ヒト化Ｋ３３Ｎモノクローナル抗体の作製、発現及び解析
本発明は、ヒトα９インテグリンを免疫特異的に認識するヒト化抗体を提供する。これらの抗体のいくつかは、α９インテグリンの生物学的機能を阻害し、それにより、例えば、癌細胞の増殖及び転移等の癌、並びに、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、糖尿病、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽種、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患等の炎症性疾患を含む、α９インテグリンと関連する様々な障害又は疾患に対する治療効果を示す。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体、並びに癌、炎症性疾患、自己免疫疾患、α９インテグリンにより誘導される疾患状態等を含む、α９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する様々な疾患又は障害に対する治療及び診断における該抗体の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
細胞は、インテグリンと呼ばれる一群の細胞表面受容体を介して細胞外マトリクス（以下、ＥＣＭと略す）に接着している。インテグリンは、α鎖とβ鎖の１：１のヘテロ二量体を形成することによりその機能を果たす。これまでに、少なくとも１８種類のα鎖、８種類のβ鎖、及び２４種類のαβヘテロ二量体が同定され、確認されている。各々のインテグリンは特異的なリガンドを認識することが知られている。インテグリンは、そのリガンド特異性又は機能によってサブファミリーに分類され、コラーゲン受容体、ラミニン受容体、フィブロネクチンやビトロネクチン等に存在するＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）配列を認識するＲＧＤ受容体、白血球にのみ存在する白血球特異的受容体に分けられる（Ｈｙｎｅｓ，Ｒ．Ｏ．，２００２，Ｉｎｔｅｇｒｉｎｓ：Ｂｉｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ，Ａｌｌｏｓｔｅｒｉｃ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｍａｃｈｉｎｅｓ．Ｃｅｌｌ １１０：６７３−８７；宮坂 昌之，２０００，新版 接着分子ハンドブック，秀潤社）。α４インテグリンとα９インテグリンは、これらのタイプのいずれにも属さないサブファミリーのメンバーであり、α４インテグリンサブファミリーと呼ばれる（Ｅｌｉｓｅ Ｌ．Ｐａｌｍｅｒ，Ｃｕｒｚｉｏ Ｒｆｉｅｇｇ，Ｒｏｎａｌｄ Ｆｅｒｒａｎｄｏ，Ｒｏｂｅｒｔ Ｐｙｔｅｌａ，Ｓｈｅｐｐａｒｄ Ｄ．，１９９３，Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｇｒｉｎ α９ Ｓｕｂｕｎｉｔ，ａ Ｎｏｖｅｌ Ｐａｒｔｎｅｒ ｏｆ β１ Ｔｈａｔ Ｉｓ Ｗｉｄｅｌｙ Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ Ｅｐｉｔｈｅｌｉａ ａｎｄ Ｍｕｓｃｌｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ，１２３：１２８９−９７）。一方、しばらくの間ＥＣＭは、細胞間を固定する物質として機能するにすぎないと考えられていた。しかし、現在は、インテグリン介在性のＥＣＭ−細胞相互作用が、細胞の増殖、接着、移動等の調節に明らかに関与し、癌の進行、炎症の悪化等を含む疾患の発症と関連することが明らかになっている。
【０００３】
例えば、ＥＣＭの１つであるオステオポンチン（以後、ＯＰＮと略す）は、分子量約４１ｋＤａの、分泌型の酸性リン酸化糖タンパク質であり、母乳、尿、尿細管、破骨細胞、骨芽細胞、マクロファージ、活性化Ｔ細胞、腫瘍組織等に広くその発現が認められる分子である。ＯＰＮは、その分子の中心に接着配列ＧＲＧＤＳ（配列番号１）を有し、ヒトＯＰＮはＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列又はマウスＯＰＮはＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号３）配列、及びそれらに近接するトロンビン切断部位を有する。ＯＰＮは、ＧＲＧＤＳ（配列番号１）配列を介してＲＧＤインテグリンと結合し、また、ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列もしくはＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号３）配列を介してα４（α４β１）インテグリン及びα９（α９β１）インテグリンと結合する。
【０００４】
ＷＯ０２／０８１５２２号は、ＯＰＮノックアウトマウス又はＯＰＮに対する中和抗体を用いてＯＰＮの機能を阻害することにより、関節リウマチ又は肝炎を治療する効果があることを開示している。また、該文献は、ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列が、α９インテグリン及びα４インテグリンを認識するため炎症性疾患の発症に不可欠であること、及び、ＯＰＮの受容体が免疫担当細胞等で発現して、炎症性疾患と関連していることを開示している。
【０００５】
結合プロファイルの違いとして、α４β１がトロンビンで切断されていないＯＰＮ（未切断型ＯＰＮ）とトロンビンで切断されたＯＰＮのＮ末端断片（切断型ＯＰＮ）の両方に結合するのに対し、α９β１は切断型ＯＰＮにのみ結合することが見出されている（Ｙ．Ｙｏｋｏｓａｋｉ，ｅｔ ａｌ．，（１９９９） Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ），２７４：３６３２８−３６３３４；Ｐ．Ｍ．Ｇｒｅｅｎ，ｅｔ ａｌ．，（２００１） ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ，５０３：７５−７９；Ｓ．Ｔ．Ｂａｒｒｙ，ｅｔ ａｌ．，（２０００） Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｃｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２５８：３４２−３５１）。
【０００６】
α４インテグリンとα９インテグリンは、ＯＰＮ以外にも多くのリガンドを共有している。知られているリガンドとしては、フィブロネクチンのＥＤＡドメイン、プロペプチド−フォン・ヴィレブランド因子（ｐｐ−ｖＷＦ）、組織トランスグルタミナーゼ（ｔＴＧ）、血液凝固第ＸＩＩＩ因子、血管細胞接着分子−１（ＶＣＡＭ−１）等を挙げることができる。また、フィブロネクチンのＣＳ−１ドメイン、ＭａｄＣＡＭ−１（α４β７）等は、α４インテグリンに特異的に認識されるリガンドとして知られている。テネイシン−Ｃ、プラスミン等は、α９インテグリンによって特異的に認識されるリガンドとして知られている。
【０００７】
インテグリンサブユニットα９、α４及びβ１のアミノ酸配列は公知である。例えば、ヒトα９はＮＭ＿００２２０７として、マウスα９はＮＭ＿１３３７２１として、ヒトα４はＮＭ＿０００８８５として、マウスα４はＮＭ＿０１０５７６として、ヒトβ１はＸ０７９７９として、及びマウスβ１はＮＭ＿０１０５７８としてＧｅｎＢａｎｋに登録されている。これらのインテグリンは、種間でアミノ酸配列における高い類似性を有することも知られている。
【発明の概要】
【０００８】
現在、癌、炎症性疾患及び自己免疫疾患を治療するための多くの種類の薬物が知られているが、癌、炎症性疾患及び自己免疫疾患に対する薬理効果がより改善された予防剤及び／又は治療剤等の開発が望まれている。本発明は、一部、α９インテグリンに対する特異的阻害抗体に癌抑制効果や抗炎症効果があるという本発明者らによる発見に基づくものである。
【０００９】
これまで本発明者らは、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識し、ハイブリドーマクローンＫ３３Ｎ（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０）によって産生されるマウスモノクローナル抗体を単離した。本明細書においては、ハイブリドーマクローンの名称は、このクローンによって産生されるモノクローナル抗体の名称と共通で使用する。該マウス抗ヒトα９インテグリン抗体はＩｇＧ１アイソタイプであった。また、該モノクローナル抗体は、ヒト及び／又はマウスのα９インテグリンと、オステオポンチン等のα９インテグリンのリガンドとの結合を阻害する。よって、該抗α９インテグリン抗体はα９インテグリンの機能を阻害し、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、並びに、例えば、関節リウマチ、変形性関節炎、肝炎、気管支喘息、線維症、糖尿病、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽種、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の炎症性疾患に対する治療効果を示す。
【００１０】
さらに、本発明の抗α９インテグリン抗体は、対象におけるα９インテグリン発現の存在とレベルを検出し、それによりα９インテグリンと関係する障害又は疾患を診断するためのインビボでの診断薬として用いることができる。
【００１１】
しかし、該モノクローナル抗体はマウス由来であることから、ヒトにおいてはその免疫原性による副作用の可能性があり、このことがヒトにおいて診断用又は治療用として直接適用することを妨げてきた。この免疫原性を低下させるために、本発明者らは、由来するマウス抗α９インテグリン抗体が示す活性と同等の生物学的活性を有するヒト化抗体を調製した。
【００１２】
したがって、本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片であって、一部が非ヒト起源に由来し、一部がヒト起源に由来する抗原結合領域を含む抗体又はその抗原結合断片を提供するものである。具体的な実施形態においては、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、Ｋ３３Ｎモノクローナル抗体等の非ヒト源（ドナー）に由来する相補性決定領域（ＣＤＲ）と、ヒト源（アクセプター）に由来するフレームワーク領域（ＦＲ）とを含む。一実施形態では、該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、ヒトα９インテグリンとヒトα９インテグリンのリガンドとの結合を阻害する。
【００１３】
具体的な実施形態においては、上述の免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）ヒトＨ鎖の可変領域（Ｖ領域）に由来する少なくとも１つのＨ鎖ＦＲ（ＦＲＨ）と、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体Ｋ３３ＮのＣＤＲＨの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＨ鎖相補性決定領域（ＣＤＲＨ）とを含む重鎖（Ｈ鎖）；又は（ｉｉ）ヒトＬ鎖のＶ領域に由来する少なくとも１つのＬ鎖ＦＲ（ＦＲＬ）と、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体Ｋ３３ＮのＣＤＲＬの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＬ鎖相補性決定領域（ＣＤＲＬ）とを含む軽鎖（Ｌ鎖）；又は上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。例えば、本発明のヒト化抗体のＣＤＲＨの少なくとも１つ及び／又はＣＤＲＬの少なくとも１つが由来する該非ヒト抗体は、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０のハイブリドーマによって産生されるモノクローナル抗体である。
【００１４】
好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）ヒトＦＲＨに由来する少なくとも１つのＦＲＨと、配列番号４、５及び６のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む少なくとも１つのＣＤＲＨ；又は（ｉｉ）ヒトＦＲＬに由来する少なくとも１つのＦＲＬと、配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む少なくとも１つのＣＤＲＬ；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれが、配列番号４、５及び６のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を含んでいてもよい。あるいは、本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれが、配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を含む。好ましい実施形態では、上述の本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれ、配列番号４、５、６、１１、１２及び１３のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、ＣＤＲＨ３、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を含む。あるいは、本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２（配列番号１８）によってコードされるヒトＨ鎖の可変領域に由来するＦＲＨ、又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１（配列番号２３）によってコードされるヒトκ−Ｌ鎖の可変領域に由来するＦＲＬを含む。好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体のＦＲＨは、配列番号１９、２０、２１及び２２のアミノ酸配列（それぞれ順に、ＤＡ９８０１０２の対応する部分によってコードされるＦＲＨ１、ＦＲＨ２、ＦＲＨ３及びＦＲＨ４）からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含む。別の好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体のＦＲＬは、配列番号２４、２５、２６及び２７のアミノ酸配列（それぞれ順に、Ｘ７２４４１の対応する部分によってコードされるＦＲＬ１、ＦＲＬ２、ＦＲＬ３及びＦＲＬ４）からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）配列番号２９のアミノ酸配列を含むＨ鎖可変領域（ＶＨ領域）；又は（ｉｉ）配列番号３１のアミノ酸配列を含むＬ鎖可変領域（ＶＬ領域）；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。最も好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）配列番号３７のアミノ酸配列を含むγ１Ｈ鎖；又は（ｉｉ）配列番号３９のアミノ酸配列を含むκＬ鎖；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。
【００１５】
本発明はさらに、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子を提供する。具体的には、本発明は、配列番号４、５及び６からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含むヒト化Ｈ鎖、又は配列番号１１、１２及び１３からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含むヒト化Ｌ鎖、又は該ヒト化Ｈ鎖と該ヒト化Ｌ鎖の両方をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子を提供する。好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、ＶＨ領域をコードする配列番号２８のヌクレオチド配列、又は配列番号２９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、ＶＬ領域をコードする配列番号３０のヌクレオチド配列、又は配列番号３１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。さらに別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、配列番号２８と３０の両方のヌクレオチド配列を含む。好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、γ１Ｈ鎖をコードする配列番号３６のヌクレオチド配列、又は配列番号３７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、κＬ鎖をコードする配列番号３８のヌクレオチド配列、又は配列番号３９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。さらに別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、配列番号３６と３８の両方のヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、更に、例えば、それぞれ、配列番号１０及び１７のアミノ酸配列のようなドナー起源のシグナルペプチド又は異種起源のシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。
【００１６】
本発明はさらに、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片のＨ鎖又はＬ鎖又はその両方をコードするヌクレオチド配列を含むベクター（例えば、発現ベクター）を提供する。このようなベクターでは、本発明のヌクレオチド配列は、１以上の調節エレメントに機能的に連結され得る。本発明のヌクレオチド配列は、ＣＤＲが由来する非ヒトドナー抗体起源のシグナルペプチド、又は異種起源のシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列を含み得る。
【００１７】
さらに、本発明は、本発明の核酸分子（本発明の核酸分子を含むベクターを含む）を含む宿主細胞を提供する。一実施形態では、本発明は、本発明のヒト化Ｈ鎖をコードする第１の核酸分子と、本発明のヒト化Ｌ鎖をコードする第２の核酸分子とを含む単離された宿主細胞を提供するものであり、該第１及び第２の核酸分子は、本発明の生物学的に機能的なヒト化抗体又はその抗原結合断片が発現されるように、それぞれが調節エレメントに機能的に連結されている。
【００１８】
したがって、本発明はさらに、ヒト化抗体が発現されるような条件下で本発明の宿主細胞を培養することと、及び産生されたヒト化抗体を回収することとを含む、本発明のヒト化抗体の調製方法を提供する。
【００１９】
本発明はさらに、本発明のヒト化抗体の少なくとも１つを含む組成物を提供する。さらに、本発明は、本発明のヒト化抗体の少なくとも１つと薬学的に許容される担体とを含む、α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防又は治療するための薬学的組成物を提供する。前記のいずれの組成物も、当該障害又は疾患を相加的に又は相乗的に改善することができる別の活性物質をさらに含むことができる。このような活性物質としては、これに限定されるものではないが、抗炎症化合物、化学療法剤等や、抗体又はその抗原結合断片（例えば、ヒトα４インテグリンに免疫特異的に結合することができる抗体）が挙げられる。
【００２０】
別の態様では、本発明は、α９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する疾患又は障害を予防又は治療する方法であって、予防に有効な量又は治療に有効な量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つをそれを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。このような使用のために、本発明のヒト化抗体はヒト化抗体の生物学的効果を増強する治療的成分と結合していてもよい。このような治療的成分の例としては、（例えば、二重特異性抗体を形成するための）抗α４抗体等の別の抗体、細胞増殖抑制性もしくは細胞破壊性の細胞毒素、放射性元素、及び／又は抗炎症剤、抗生物質等を含む他の治療剤が挙げられる。
【００２１】
さらに別の態様では、本発明は、対象におけるα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する疾患又は障害を診断する方法であって、診断に有効な量の本発明のヒト化抗体を検査対象に投与することを含む方法を提供する。このような診断への使用のために、本発明のヒト化抗体を放射性元素等の検出可能なマーカーで標識してもよい。
【００２２】
３．１．定義
本明細書で使用する場合、「抗体」という用語は、例えば、α９インテグリン等の所望の抗原に免疫特異的に結合可能な抗体分子を指し、完全な抗体分子、又は抗原結合断片を含む抗体分子の断片を包含する。
【００２３】
本明細書で使用される「免疫特異的に認識する」という用語は、標的ポリペプチド又はタンパク質、特にヒトα９インテグリンに特異的に結合する、抗体又はその抗原結合断片の能力を指す。このような抗体は、他のポリペプチド又はタンパク質に非特異的に結合しない。しかしながら、標的ポリペプチド又はタンパク質（例えば、ヒトα９インテグリン）に免疫特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、他の抗原と交差反応してもよい。例えば、ヒトα９インテグリンを免疫特異的に認識する本発明のヒト化抗体又は抗原結合断片は、例えば、他の種のα９インテグリンと交差反応してもよい。好ましくは、ヒトα９インテグリンと免疫特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、他の抗原と交差反応しない。
【００２４】
本明細書で使用される「抗原結合断片」という用語は、標的ポリペプチド又はタンパク質、特に、ヒトα９インテグリン及び／又は非ヒトα９インテグリンと免疫特異的に結合する能力を保持する抗体の任意の断片を指し、単鎖抗体、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）２断片、ジスルフィド結合Ｆｖ、並びに標的ポリペプチド又はタンパク質と特異的に結合する軽鎖（ＶＬ）の可変領域及び／又は重鎖（ＶＨ）の可変領域又は相補性決定領域（ＣＤＲ）を含有する断片を含む。したがって、ヒト化抗体のこのような抗原結合断片には、部分的又は全長のヒト定常領域が含まれていても、含まれていなくてもよい。上記の抗体断片を得るための様々な方法が当該技術分野で周知である。
【００２５】
本明細書で使用される「ヒト源に由来する」又は「非ヒト源に由来する」という用語は、抗体の一部であってそのアミノ酸配列がヒト抗体又は非ヒト抗体の対応する部分に由来する部分を指す。
【００２６】
本明細書で使用される「アクセプター配列」という用語は、通常、非ヒト抗体であるドナー抗体由来のＣＤＲのアクセプターとして働く、ヒト抗体ＶＨ領域又はＶＬ領域に由来するフレームワーク領域のヌクレオチド配列又はアミノ酸配列を指す。
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】抗ヒトα９インテグリン抗体（本発明の２つのクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ及びＭ３５Ａ）、５つの他のクローン（１Ｋ１１、２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６、及び２８Ｓ１）、並びにＹ９Ａ２）の細胞接着阻害活性を、ヒトα９インテグリン発現細胞（ヒトメラノーマ細胞Ｇ３６１）とＯＰＮ α９インテグリン結合部位ペプチド（ＳＶＶＹＧＬＲ）とを用いて測定した実験の結果を示す図である。ヒトオステオポンチンに対するモノクローナル抗体（５Ａ１）を陰性対照として使用した。
【図２】抗ヒトα９インテグリン抗体（本発明の２つのクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ及びＭ３５Ａ）、５つの他のクローン（１Ｋ１１、２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６、及び２８Ｓ１）、並びにＹ９Ａ２）の細胞接着阻害活性を、ヒトα９インテグリン発現細胞（ヒトメラノーマ細胞Ｇ３６１）とテネイシン−Ｃ断片のα９インテグリン結合部位ペプチドとを用いて測定した実験の結果を示す図である。ヒトオステオポンチンに対するモノクローナル抗体（５Ａ１）を陰性対照として使用した。
【図３】マウスＫ３３Ｎ ＶＨ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号７）を推定アミノ酸配列（配列番号８）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１０）はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔｓ，第５版，ＮＩＨ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ 第９１−３２４２号，Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。
【図４】マウスＫ３３Ｎ ＶＬ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号１４）を推定アミノ酸配列（配列番号１５）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１７）はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。
【図５】ＳｐｅＩ部位とＨｉｎｄＩＩＩ部位（下線）が両側にあるようにデザインされたＫ３３Ｎ ＶＨ（ＣｈＫ３３Ｎ ＶＨ）遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３２）を推定アミノ酸配列（配列番号８）と共に示す。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１０）はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。イントロン配列をイタリック体で示す。
【図６】ＮｈｅＩ部位とＥｃｏＲＩ部位（下線）が両側にあるようにデザインされたＫ３３Ｎ ＶＬ（ＣｈＫ３３Ｎ ＶＬ）遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３３）を推定アミノ酸配列（配列番号１５）と共に示す。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１７）はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図７】ｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３Ｎ（総称して発現ベクターという）の模式的構造を示す図である。プラスミドは、一番上のＳａｌＩ部位から時計回りに、抗体重鎖遺伝子の転写を開始するためのヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）主要前初期プロモーター及びエンハンサー（ＣＭＶプロモーター）から始まる重鎖転写ユニットを含有している。ＣＭＶプロモーターに続いて、ＶＨエキソンと、ＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３のエキソンが介在イントロンと共に含まれるヒトγ１重鎖定常領域を含有するゲノム配列とがあり、ＣＨ３に続いてｍＲＮＡのプロセッシングのためのγ１遺伝子のポリアデニル化部位がある。重鎖遺伝子配列の後、軽鎖転写ユニットがＣＭＶプロモーターから始まり、続いてＶＬエキソンと、ヒトκ鎖定常領域エキソン（ＣＬ）をその前にあるイントロンの一部と共に含有するゲノム配列、及びκ遺伝子のポリＡシグナルがある。次に、軽鎖遺伝子に続いて、ＳＶ４０初期プロモーター（ＳＶ４０プロモーター）と、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子（ｇｐｔ）と、ＳＶ４０ポリアデニル化部位（ＳＶ４０ポリ（Ａ）部位）を含有する部分とがある。最後に、プラスミドは、細菌の複製起点（ｐＵＣ ｏｒｉ）とβ−ラクタマーゼ遺伝子（β−ラクタマーゼ）とを含むプラスミドｐＵＣ１９の一部を含有する。
【図８】Ｋ３３Ｎ ＶＨ（配列番号９）、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＨ（配列番号２９）並びにＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来する、ヒトアクセプター配列のＦＲＨ１（配列番号１９）、ＦＲＨ２（配列番号２０）、ＦＲＨ３（配列番号２１）及びＦＲＨ４（配列番号２２）のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。配列の上にある数字は、Ｋａｂａｔら（１９９１）による位置を示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）によって定義されたＣＤＲ配列は下線で示す。二重下線が付された残基はＣＤＲと接触すると予想され、ヒト化型においてはこれらの位置のマウス残基は保持された。ヒトＶＨ配列のこの位置では非典型的であるＤＡ９８０１０２の８２番目のＭｅｔ（下線）を典型的な残基Ｌｅｕと置き換えて、潜在的免疫原性を減らした。ＤＡ９８０１０２中のＣＤＲ残基はこの図では省略されている。
【図９】Ｋ３３Ｎ ＶＬ（配列番号１６）、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＬ（配列番号３１）並びにＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来する、ヒトアクセプター配列のＦＲＬ１（配列番号２４）、ＦＲＬ２（配列番号２５）、ＦＲＬ３（配列番号２６）及びＦＲＬ４（配列番号２７）のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。配列の上にある数字は、Ｋａｂａｔら（１９９１）による位置を示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）によって定義されたＣＤＲ配列は下線で示す。二重下線が付された残基はＣＤＲと接触すると予想され、ヒト化型においてはこれらの位置のマウス残基は保持された。Ｘ７２４４１中のＣＤＲ残基はこの図では省略されている。
【図１０】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。
【図１１】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。
【図１２】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。矢印は、各々のオリゴヌクレオチドの位置と方向（５’から３’）を表す。ＶＨ領域（配列番号２９）のアミノ酸残基は一文字表記で示す。
【図１３】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。矢印は、各々のオリゴヌクレオチドの位置と方向（５’から３’）を表す。ＶＬ領域（配列番号３１）のアミノ酸残基は一文字表記で示す。
【図１４】ＳｐｅＩ部位とＨｉｎｄＩＩＩ部位（下線）が両側にある、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３４）を、シグナルペプチド（配列番号５８；イタリック体で示す）及びＶＨ領域（配列番号２９）の推定アミノ酸配列と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列は下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図１５】ＮｈｅＩ部位とＥｃｏＲＩ部位（下線）が両側にある、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３５）を、シグナルペプチド（配列番号５９；イタリック体で示す）及びＶＬ領域（配列番号３１）の推定アミノ酸配列と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列は下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図１６】キメラＫ３３Ｎ抗体とヒト化Ｋ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンに対する親和性の比較を示す。１μｇ／ｍＬ及び０．５μｇ／ｍＬのキメラＫ３３Ｎ及びヒト化Ｋ３３ＮのＣＨＯ／α９細胞への結合を細胞ＥＬＩＳＡで調べた。実験は３重で実施した。吸光度の平均値を標準誤差と共に示す図である。
【図１７】ＨｕＫ３３Ｎ重鎖及び軽鎖ｃＤＮＡのＰＣＲ増幅及び配列決定に使用したオリゴヌクレオチドの配列（配列番号４４〜５０）を示す。
【図１８】ｐＨｕＫ３３Ｎ中のＨｕＫ３３Ｎ γ１重鎖のコード領域のヌクレオチド配列（配列番号３６）を推定アミノ酸配列（配列番号３７）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。終止コドンは「・」で示す。
【図１９】ｐＨｕＫ３３Ｎ中のＨｕＫ３３Ｎ κ軽鎖のコード領域のヌクレオチド配列（配列番号３８）を推定アミノ酸配列（配列番号３９）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。終止コドンは「・」で示す。
【図２０】精製抗体のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析の結果を示す図である。６μｇのキメラＩｇＧ１／κ抗体及びヒト化ＩｇＧ１／κ抗体（それぞれ、ＣｈＫ３３Ｎ及びＨｕＫ３３Ｎという）を、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，第２版，１９８９，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ）に従って、還元条件下、ＳＤＳ存在下の１０％ポリアクリルアミドゲル上で泳動させた。広域タンパク質マーカー（ＭＷ；Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ，Ｉｐｓｗｉｃｈ，ＭＡ）をサイズマーカーとして使用した。右側に示す数字は、マーカーのサイズをキロダルトン（ｋＤａ）単位で示す。
【図２１】ヒトα９インテグリンに対するマウスＫ３３Ｎ抗体の結合をＦＡＣＳ解析した結果を示す図である。１．６７μｇ／ｍＬから連続的に３倍希釈した様々な濃度のマウスＫ３３Ｎ抗体について、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合を試験した。図中、試験した各々の抗体濃度（Ｘ軸）における、幾何平均チャンネル蛍光値（ＭＣＦ；Ｙ軸）がプロットされている。ＥＣ５０値を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて算出した。
【図２２】ヒトα９インテグリンに対するキメラＫ３３Ｎ抗体とヒト化Ｋ３３Ｎ抗体の結合をＦＡＣＳ解析した結果を示す図である。５μｇ／ｍｌから連続３倍希釈した様々な濃度の各抗体について、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合を試験した。図中、試験した各々の抗体濃度（Ｘ軸）における、幾何平均チャンネル蛍光値（ＭＣＦ；Ｙ軸）がプロットされている。ＥＣ５０値を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて算出した。
【図２３】ヒトα９インテグリンに対するマウスＫ３３Ｎ抗体、キメラＫ３３Ｎ抗体及びヒト化Ｋ３３Ｎ抗体、並びにマウス抗ヒトα９インテグリン抗体Ｙ９Ａ２の細胞接着阻害率の用量依存性を示す図である。各抗体を５、１、０．２、０．０４、０．００８及び０．００１６μｇ／ｍＬの濃度で、ヒトα９インテグリン発現細胞株Ｇ−３６１の細胞接着について試験した。実験は４重で実施した。平均阻害率の値を図に示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
５．１．ヒトα９インテグリンに対する抗体の調製
ヒトα９インテグリン又はその任意のエピトープを免疫特異的に認識する抗体は、当該技術分野で公知の任意の好適な方法により作製することができる。
【００２９】
本発明において抗原として使用されるα９インテグリンは、（１）α９インテグリンを発現するヒト由来の全ての細胞、もしくはこれらの細胞が存在する全ての組織から得られるタンパク質、（２）α９インテグリンをコードする遺伝子ＤＮＡ、好ましくはｃＤＮＡが、細菌、酵母、細胞株（動物細胞を含む）等に導入され、発現された、組換えタンパク質、又は（３）合成タンパク質であってもよい。
【００３０】
α９インテグリンには、ヒトα９インテグリン（配列番号５５、ここで、１〜２９番目の残基はシグナルペプチドである）のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を含むポリペプチドが含まれる。
【００３１】
本明細書中、「実質的に同一のアミノ酸配列を含むポリペプチド」という用語は、天然のヒトα９インテグリンと実質的に同等の生物学的特性を有する限り、複数のアミノ酸、好ましくは１〜１０個のアミノ酸、より好ましくは１〜数個（例えば、１〜５個）のアミノ酸が置換され、欠失し及び／又は改変されたアミノ酸配列を含む変異体ポリペプチド；並びに複数のアミノ酸、好ましくは１〜１０個のアミノ酸、より好ましくは１〜数個（例えば、１〜５個）のアミノ酸が天然のヒトα９インテグリンのアミノ酸配列に付加されたアミノ酸配列を含む変異体ポリペプチドを意味する。さらに、変異体ポリペプチドは、これらのアミノ酸置換、欠失、改変及び付加の複数を有するものであってもよい。
【００３２】
本発明における抗原としてのヒトα９インテグリンは、当該技術分野で周知の方法により産生することができ、例えば、遺伝子組換え技術の他、化学合成法、細胞培養法等、又はそれらの変法により産生することができる。
【００３３】
変異体ポリペプチドを産生する方法の例としては、合成オリゴヌクレオチド部位特異的突然変異生成（ギャップ二重鎖法）、亜硝酸又は亜硫酸処理によってランダムに点突然変異を導入することを含む点突然変異生成法、Ｂａｌ３１酵素又は他の酵素を用いて欠失突然変異を調製することを含む方法、カセット突然変異生成、リンカースキャニング法、ミス組込み法、ミスマッチプライマー法、ＤＮＡ断片合成法等が挙げられる。
【００３４】
本発明において抗原として使用されるヒトα９インテグリンは、該α９インテグリンの「一部」も含む。本明細書において、「一部」とは、α９インテグリンのリガンド、例えば、ＯＰＮ、ＶＣＡＭ−１、テネイシン−Ｃ等との結合に必要な領域を含む部分；特には、成熟ヒトα９インテグリン（配列番号５５の３０番目から１０３５番目までのアミノ酸残基）の、１４番目から９８０番目までのアミノ酸残基を含む部分、及び１１番目から９８１番目までのアミノ酸残基を含む部分を指す。該α９インテグリンの「一部」は、以下に記載する当該技術分野で公知の方法に従って、遺伝子組換えもしくは化学合成、又はそれらの変法によって産生することができ、あるいは、細胞培養法より単離されたヒトα９インテグリンをタンパク質分解的酵素等で適当に消化することによって産生することができる。
【００３５】
抗原として、細胞膜上にα９インテグリンを過剰発現する細胞それ自体、又はその膜画分を使用することもできる。ヒトα９インテグリンを過剰発現する細胞は、当該技術分野で周知の組換えＤＮＡ技術によって調製することができる。
【００３６】
上記のように調製された適当な抗原を用いて、ヒトα９インテグリン又は任意のそのエピトープに特異的な抗体を、当該技術分野で周知の様々な方法によって調製することができる。ヒトα９インテグリンに対するポリクローナル抗体は、当該技術分野で周知の様々な手順によって産生することができる。例えば、目的の抗原を、これに限定するものではないが、ウサギ、マウス、ラット等を含む様々な宿主動物に投与し、抗原に特異的なポリクローナル抗体を含有する抗血清の産生を誘導することができる。宿主の種に応じて、様々なアジュバントを用いて免疫学的応答を増大させてもよい。アジュバントとしては、フロイント（完全及び不完全）アジュバント、水酸化アルミニウム等の鉱物ゲル、リゾレシチン等の表面活性物質、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、オイルエマルジョン、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、並びに潜在的に有用なヒト用のアジュバント（例えば、ＢＣＧ（カルメット・ゲラン桿菌）及びコリネバクテリウム・パルブム）が挙げられるが、これらに限定されるものではない。このようなアジュバントも当該技術分野において周知である。
【００３７】
モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ、組換え体及びファージディスプレイ技術、又はそれらの組合せを用いる方法を含む、当該技術分野で公知の多種多様な技術を用いて調製することができる。例えば、モノクローナル抗体は、当該技術分野で公知であり、また、例えば、Ｈａｒｌｏｗら，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，第２版．１９８８）；Ｈａｍｍｅｒｌｉｎｇ，ｅｔ ａｌ．，：Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｔ−Ｃｅｌｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ，５６３−６８１ページ（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８１）（両文献は参照により本明細書に組み込まれる）等に教示されている技術を含む、ハイブリドーマ技術を用いて産生することができる。本明細書で使用される「モノクローナル抗体」という用語は、ハイブリドーマ技術によって産生される抗体に限定されるものではない。「モノクローナル抗体」という用語は、任意の真核生物、原核生物、又はファージクローンを含む、単一のクローンに由来する抗体を指すものであり、それが産生される方法を指すものではない。
【００３８】
ハイブリドーマ技術を用いた特異的抗体の産生及びスクリーニングする方法は、当該技術分野においてルーチンで行われておりかつ周知である。非限定的な例としては、マウスを目的の抗原又はそのような抗原を発現する細胞で免疫化することができる。免疫応答が検出されれば、例えば、抗原に特異的な抗体がマウス血清中に検出されれば、マウス脾臓を摘出し、脾細胞を単離する。その後、脾細胞を周知の技術により任意の好適なミエローマ細胞（例えば、Ｐ３Ｕ１、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−Ｕ１、Ｐ３ＮＳ１−Ａｇ４、ＳＰ２／０−Ａｇ１４、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−６５３等）に融合させる。ハイブリドーマを選択し、限界希釈によりクローニングする。その後、ハイブリドーマクローンを、当該技術分野で公知の方法により、抗原に結合することができる抗体を分泌する細胞についてアッセイする。通常高レベルの抗体を含有する腹水は、陽性のハイブリドーマクローンをマウスの腹腔内に接種することにより作製することができる。
【００３９】
特異的エピトープを認識する抗体断片は、公知の技術により作製することができる。例えば、Ｆａｂ及びＦ（ａｂ’）２断片は、免疫グロブリン分子をパパイン（Ｆａｂ断片を産生するため）又はペプシン（Ｆ（ａｂ’）２断片を産生するため）等の酵素を用いてタンパク質分解切断させることにより産生することができる。Ｆ（ａｂ’）２断片は、完全な軽鎖と、重鎖の可変領域、ＣＨ１領域及びヒンジ領域とを含有する。
【００４０】
本発明の抗体又はその抗原結合断片は、抗体の合成について当該技術分野で知られている任意の方法により、具体的には、化学合成又は好ましくは、組換え発現技術により産生することもできる。
【００４１】
抗体をコードするヌクレオチド配列は、当業者が利用可能な任意の情報から（すなわち、ＧｅｎＢａｎｋ、文献から、又は日常的なクローニング及び配列解析により）取得することができる。特定の抗体又はそのエピトープ結合断片をコードする核酸を含有するクローンが入手できず、抗体分子又はそのエピトープ結合断片の配列が知られている場合、免疫グロブリンをコードする核酸は、化学合成、あるいは、抗体配列の５’末端にハイブリダイズ可能な合成プライマーを用いたＰＣＲ増幅によって、又は、抗体をコードするｃＤＮＡライブラリー由来のｃＤＮＡクローン等を同定するための特定の遺伝子配列に特異的なオリゴヌクレオチドプローブを用いたクローニングによって、好適な供給源（例えば、抗体ｃＤＮＡライブラリー、又は、例えば、抗体を発現する選択されたハイブリドーマ細胞等の抗体を発現する任意の組織もしくは細胞から作製されたｃＤＮＡ、又はそのような組織若しくは細胞から単離された核酸、好ましくはポリＡ＋ ＲＮＡ）から取得し得る。その後、ＰＣＲで生成した増幅核酸を、当該技術分野で周知の任意の方法を用いて、複製可能なクローニングベクターにクローニングすることができる。
【００４２】
５．２．組換え抗体の調製
抗体のヌクレオチド配列決定後、抗体のヌクレオチド配列を、ヌクレオチド配列の操作に関する当該技術分野で周知の方法、例えば、組換えＤＮＡ技術、部位特異的突然変異誘発法、ＰＣＲ等（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら．，前記；及びＡｕｓｕｂｅｌら．，編，１９９８，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，ＮＹに記載されている技術を参照。両文献とも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。）を用いて操作して、例えば、抗体のエピトープ結合ドメイン領域又は抗体の生物学的活性を増強しもしくは低下させ得る抗体の任意の部分にアミノ酸の置換、欠失、及び／又は挿入を導入することにより、様々なアミノ酸配列を有する抗体を作製することができる。
【００４３】
抗体の組換え発現には、抗体をコードするヌクレオチド配列を含有する発現ベクターの構築が必要である。抗体分子又は抗体の重鎖もしくは軽鎖、あるいはそれらの一部をコードするヌクレオチド配列が得られた後、前記節に記載されたように当該技術分野で周知の技術を用いた組換えＤＮＡ技術により抗体分子を産生するためのベクターを産生することができる。当業者に周知の方法を用いて、抗体コード配列と適当な転写及び翻訳制御シグナルとを含有する発現ベクターを構築することができる。これらの方法としては、例えば、インビトロ組換えＤＮＡ技術、合成技術、及びインビボ遺伝子組換えが挙げられる。抗体の重鎖可変領域、軽鎖可変領域、重鎖と軽鎖の両方の可変領域、重鎖及び／又は軽鎖可変領域のエピトープ結合断片、あるいは１以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードするヌクレオチド配列を、このような発現用ベクターにクローニングすることができる。このような配列を、基となる抗体に由来するシグナルペプチド又は異種シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと融合させることができる。その後、このように調製された発現ベクターは、抗体を発現させるための適当な宿主細胞に導入することができる。したがって、本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片をコードするポリヌクレオチドを含有する宿主細胞を含む。
【００４４】
宿主細胞に、重鎖由来のポリペプチドをコードする第１のベクターと軽鎖由来のポリペプチドをコードする第２のベクターの本発明の２つの発現ベクターをコトランスフェクトしてもよい。この２つのベクターは、重鎖ポリペプチドと軽鎖ポリペプチドが同等に発現することを可能にする同一の選択マーカーを有していてもよいし、又は両方のプラスミドの維持を確実にするための異なる選択マーカーを含有していてもよい。あるいは、重鎖と軽鎖の両方のポリペプチドをコードし、それらを発現することができる単一のベクターを使用してもよい。重鎖及び軽鎖のコード配列は、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡのいずれを含んでいてもよい。
【００４５】
別の実施形態では、抗体は、当該技術分野で公知の様々なファージディスプレイ法を用いて作製することもできる。ファージディスプレイ法では、機能的抗体ドメインが、それらをコードするポリヌクレオチド配列を担持するファージ粒子の表面上に提示される。具体的な実施形態では、このようなファージを、レパートリー又はコンビナトリアル抗体ライブラリー（例えば、ヒト又はマウス）により発現される抗原結合ドメイン（例えば、Ｆａｂ及びＦｖ又はジスルフィド結合安定化Ｆｖ）を提示させるために利用することができる。目的の抗原に結合する抗原結合ドメインを発現するファージは、例えば、標識された抗原又は固体表面もしくはビーズに結合もしくは捕捉された抗原を用いて、抗原で選択又は同定することができる。これらの方法で使用されるファージは、典型的には、ｆｄ及びＭ１３を含む繊維状ファージである。抗原結合ドメインは、ファージ遺伝子ＩＩＩ又は遺伝子ＶＩＩＩタンパク質のいずれかに融合された組み換えタンパク質として発現される。本発明の免疫グロブリン、又はその断片を作製するために使用することができるファージディスプレイ法の例としては、Ｂｒｉｎｋｍａｎら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１８２：４１−５０，１９９５；Ａｍｅｓら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１８４：１７７−１８６，１９９５；Ｋｅｔｔｌｅｂｏｒｏｕｇｈら，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２４：９５２−９５８，１９９４；Ｐｅｒｓｉｃら，Ｇｅｎｅ，１８７：９−１８，１９９７；Ｂｕｒｔｏｎら，Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，５７：１９１−２８０，１９９４；ＰＣＴ出願ＰＣＴ／ＧＢ９１／０１１３４号；ＰＣＴ公開公報ＷＯ９０／０２８０９号；ＷＯ９１／１０７３７号；ＷＯ９２／０１０４７号；ＷＯ９２／１８６１９号；ＷＯ９３／１１２３６号；ＷＯ９５／１５９８２号；ＷＯ９５／２０４０１号；並びに米国特許第５，６９８，４２６号；第５，２２３，４０９号；第５，４０３，４８４号；第５，５８０，７１７号；第５，４２７，９０８号；第５，７５０，７５３号；第５，８２１，０４７号；第５，５７１，６９８号；第５，４２７，９０８号；第５，５１６，６３７号；第５，７８０，２２５号；第５，６５８，７２７号；第５，７３３，７４３号及び第５，９６９，１０８号に開示されているものが挙げられ、これらは各々、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【００４６】
上述の参考文献に記載されているように、ファージ選択の後、ファージ由来の抗体コード領域を単離し、例えば、以下で詳細に記載するように、ヒト抗体を含む完全抗体、又は任意の他の所望の断片を作製するために使用し、哺乳動物細胞、昆虫細胞、植物細胞、酵母、及び細菌を含む任意の所望の宿主で発現させることができる。例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’及びＦ（ａｂ’）２断片を産生する組換え技術を、例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９２／２２３２４号；Ｍｕｌｌｉｎａｘら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１２（６）：８６４−８６９，１９９２；及びＳａｗａｉら，ＡＪＲＩ，３４：２６−３４，１９９５；及びＢｅｔｔｅｒら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４０：１０４１−１０４３，１９８８に開示された方法（各々、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）等の当該技術分野で公知の方法を用いて採用することもできる。単鎖Ｆｖ及び抗体を産生することができる技術の例としては、米国特許第４，９４６，７７８号及び第５，２５８，４９８号；Ｈｕｓｔｏｎら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２０３：４６−８８，１９９１；Ｓｈｕら，ＰＮＡＳ，９０：７９９５−７９９９，１９９３；並びにＳｋｅｒｒａら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４０：１０３８−１０４０，１９８８に記載されているものが挙げられる。
【００４７】
本発明の抗体分子は、上述の任意の方法で産生後、免疫グロブリン分子の精製に関する当該技術分野で公知の任意の方法によって、例えば、クロマトグラフィー（例えば、イオン交換、アフィニティ、具体的には、プロテインＡもしくはプロテインＧ精製後の特異的抗原に対するアフィニティ、及びサイズ分離カラムクロマトグラフィー）、遠心分離、示差溶解度、又はタンパク質の精製のための任意の他の標準的な技術によって精製することができる。また、本発明の抗体又はその断片は、精製を容易にするため、本明細書に記載の又は当該技術分野で公知の異種ポリペプチド配列と融合させてもよい。
【００４８】
ヒトでの抗体のインビボ使用及びインビトロ検出アッセイを含む、いくつかの用途のために、キメラ、ヒト化又はヒト抗体を使用することが好ましい場合がある。キメラ抗体及びヒト化抗体は、下記の第５．３節で詳細に説明されている。
【００４９】
他の化合物又は異種ポリペプチドと融合しているか又はコンジュゲートしている抗体は、インビトロでのイムノアッセイ、精製方法（例えば、アフィニティクロマトグラフィー）、及びインビボでの治療的又は診断的用途で利用することができる。例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９３／２１２３２号；欧州特許第４３９，０９５号；Ｎａｒａｍｕｒａら，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．，３９：９１−９９，１９９４；米国特許第５，４７４，９８１号；Ｇｉｌｌｉｅｓら，ＰＮＡＳ，８９：１４２８−１４３２，１９９２；及びＦｅｌｌら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４６：２４４６−２４５２，１９９１を参照（これらは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）。例えば、抗体は、既知の方法又は市販のキット（例えば、ビオチン標識、ＦＩＴＣ標識、ＡＰＣ標識）を用いて様々な方法で標識することができる。他の例として、抗体は、インビボでの抗体の生物学的効果を増強する治療成分とコンジュゲートしていてもよい。このような治療成分の例としては、他の抗体、細胞増殖抑制性もしくは細胞破壊性の細胞毒素、放射性元素、及び／又は抗炎症剤、抗生物質等を含む他の治療剤が挙げられる。本発明において、ヒト化抗ヒトα９インテグリンは、抗α４抗体等の別の抗体とコンジュゲートして（例えば、二重特異性抗体を形成して）いてもよい。他の例として、本発明のヒト化抗体は、インビボでの診断的用途のため、例えば、放射性元素等の検出可能なマーカーで標識されていてもよい。
【００５０】
５．３．キメラ抗体及びヒト化抗体
キメラ抗体は、マウスモノクローナル抗体に由来する可変領域とヒト免疫グロブリンに由来する定常領域とを有する抗体等の、抗体の異なる部分が異なる動物種に由来する分子である。キメラ抗体を産生する方法は当該技術分野で公知である。例えば、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２９：１２０２，１９８５；Ｏら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，４：２１４ １９８６；Ｇｉｌｌｉｅｓら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１２５：１９１−２０２，１９８９；米国特許第５，８０７，７１５号；第４，８１６，５６７号；及び第４，８１６，３９７号を参照（これらは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）。
【００５１】
ヒト化抗体は、所望の抗原に結合する分子であり、非ヒト種に由来する１以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）とヒト免疫グロブリン分子に由来する１以上のフレームワーク領域とを含有する可変領域を含む。非ヒト抗体をヒト化する典型的な方法は、様々な参考文献、例えば、Ｑｕｅｅｎら，１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ８６：１００２９−１００３３、並びに米国特許第５，５８５，０８９号及び第５，６９３，７６２号；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３，１９８８；Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ３６：６９−８３，２００５に記載されており、これらは全て、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。例えば、Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａら（２００５，前記；以後、「Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａ」という）による参考文献は、もともとＱｕｅｅｎら（１９８９，前記）によって開発された抗体ヒト化方法に基づくマウスモノクローナル抗体のヒト化についての実用的かつ有益なプロトコルを提供している。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａに開示されている一般的プロトコルを以下で簡単に説明する。
【００５２】
５．３．１．ヒト化抗体を調製するための一般的プロトコル
マウスＶ遺伝子のクローニング及びシークエンシング
標的マウスモノクローナル抗体のＶＨ領域及びＶＬ領域をコードするｃＤＮＡをクローニングするために様々な方法を利用することができる。例えば、ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ増幅キット（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，ＣＡ）又はＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）を用いた、５’ＲＡＣＥ（ｃＤＮＡ末端の迅速な増幅）法が一般に使用されている。５’ＲＡＣＥの遺伝子特異的プライマーは、Ｈ鎖とＬ鎖の各々の可変領域のすぐ下流に結合することができるように、標的モノクローナル抗体のＨ鎖とＬ鎖のアイソタイプに基づいて調製することができる。したがって、５’ＲＡＣＥプライマーは、γ１、γ２ａ、γ２ｂ又はγ３等の、マウスにおける各々のサブタイプに特異的となるように設計してもよい。あるいは、サブタイプ間のコンセンサス領域又は相同性の高い領域に基づいて全てのサブタイプに共通するプライマーを設計してもよい。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａでは、以下の５’ＲＡＣＥプライマーが例として開示されている：
（ｉ）５’−ＧＣＣＡＧＴＧＧＡＴＡＧＡＣＴＧＡＴＧＧ−（配列番号５６）（マウスγ１、γ２ａ、γ２ｂ及びγ３Ｈ鎖のクローニング用）
（ｉｉ）５’−ＧＡＴＧＧＡＴＡＣＡＧＴＴＧＧＴＧＣＡＧＣ−（配列番号５７）（マウスκ軽鎖のクローニング用）。
【００５３】
ＰＣＲ増幅したＶ遺伝子断片は、例えば、Ｚｅｒｏ Ｂｌｕｎｔ ＴＯＰＯ ＰＣＲクローニングキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と、決定されたＤＮＡ配列とを用いて、プラスミドベクターに直接クローニングすることができる。例えば、得られたＤＮＡ配列がコードするアミノ酸配列を、例えば、Ｍｏｄｅｌ ２４１タンパク質シークエンサー（Ｈｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ，ＣＡ）等を用いたＮ末端アミノ酸シークエンシングによって決定された標的モノクローナル抗体のアミノ酸配列と比較することによって、得られたＤＮＡ配列を確認すべきである。典型的には、例えば、エドマン分解等により、標的抗体のＮ末端の少なくとも１５〜２０アミノ酸残基を決定すれば、クローニングされたＤＮＡ配列の真偽を十分確認することができる。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａは、マウスにおいて最も一般的な２つのＮ末端アミノ酸の１つであるグルタミンがＮ末端アミノ酸である場合、それがピログルタミンに変換されて、Ｎ末端のシークエンシングを阻止することがあることに注意が必要であるとしている。この場合、配列を得るためにＮ末端のブロックを解除する必要がある。
【００５４】
Ｖ領域の三次元モデリング
ＶＨ領域及びＶＬ領域の配列に基づいて、ＣＤＲの立体構造を維持するために潜在的に重要な標的抗体のフレームワーク残基を、例えば、Ｒ．Ｌｅｖｙら，１９８９，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８：７１６８−７１７５；及びＢ．Ｚｉｌｂｅｒら，１９９０，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２９：１００３２−１００４１に記載されている方法によってまず同定する。典型的には、ＶＨ領域及びＶＬ領域の各々は、１４個の構造的に意味のある部分に分けられ、これらの部分は、免疫グロブリンスーパーファミリーのドメイン構造を含むβ鎖及びループ様構造である。標的抗体由来の各々の部位のアミノ酸配列と、ＰＤＢデータベース中の構造が既知の抗体の対応する部分の配列とを比較する（Ｈ．Ｍ．Ｂｅｒｍａｎら，２０００，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２３５−３４２を参照）。複数の配列を比較することにより、各々の標的部位との配列の相同性が最も高い対応する部分を選択し、Ｖ領域の三次元モデルを構築する。構造を最適化するために、このモデルを、（例えば、ＥＮＣＡＤを用いて、又はＰｒｅｓｓら，１９９０，“Ｎｕｍｅｒｉｃａｌ Ｒｅｃｉｐｅｓ”，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅの記載に従って；Ｗｅｉｎｅｒら，１９８１，Ｊ．Ｃｏｍｐ．Ｃｈｅｍ．２：２８７−３０３に記載されたＡＭＢＥＲ；英国がん研究所が運営するＢｉｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｏｄｅｌｌｉｎｇ、又は“ＢＭＭ”ウェブサイトで入手可能な３Ｄ−ＪＩＧ−ＳＡＷ；又はジェノバにあるスイスバイオインフォマティクス研究所が運営するＥｘＰＡＳｙ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ Ｓｅｒｖｅｒウェブサイトで入手可能なＳＷＩＳＳ−ＭＯＤＥＬによって）、複数回、共役勾配法によりエネルギー最小化を行った。
【００５５】
ヒトフレームワークの選択
Ｖ領域の構造のモデリングと並行して、マウスＶＨ領域及びＶＬ領域のｃＤＮＡクローニングから推定されるアミノ酸配列を、それぞれ、例えば、Ｋａｂａｔデータベース（Ｊｏｈｎｓｏｎら，２０００，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２１４−２１８を参照）、ＧｅｎＢａｎｋ等におけるヒトＶ領域配列と比較する。配列全体でマウス配列と少なくとも約６５％、少なくとも約７０％、少なくとも約７５％、少なくとも約８０％、少なくとも約８５％、少なくとも約９０％、又は少なくとも９５％の相同性のあるヒトフレームワーク領域は、例えば、Ｓｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎアルゴリズム（“Ａｌｇｏｒｉｔｈｍｓ ｏｎ Ｓｔｒｉｎｇｓ，Ｔｒｅｅｓ，ａｎｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ”，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅにおける、Ｇｕｓｆｉｅｌｄ，１９９７）、又はＢＬＡＳＴ（Ｋａｒｌｉｎら，１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ８７：２２６４−２２６８）等を用いて、検索することができる。これらのヒト配列は、ｃＤＮＡに基づく配列及びタンパク質由来の配列のいずれに基づくものであってもよいが、多くの場合、生殖系列の使用がｃＤＮＡに基づく配列、タンパク質由来の配列における体細胞超突然変異と関連する潜在的免疫原性を消失させるのに有用であることから、生殖細胞系列の使用が好ましい。あるいは、Ｑｕｅｅｎら（１９８９，前記）に記載されているように、コンセンサスフレームワーク配列を用いて、ｃＤＮＡに基づく配列又はタンパク質由来の配列から得られたフレームワーク中のそのような超突然変異残基を同定し、除去することもできる。生殖細胞系列のＶＨ部分をアクセプターフレームワークとして使用する場合、第１４番染色体上のＶＨ部分のみが機能的なＶＨ領域を生じさせるので、第１５番及び第１６番染色体ではなく、第１４番染色体上にコードされるＶＨ部分を使用する。
【００５６】
ヒト化Ｖ領域の設計
Ｑｕｅｅｎら（１９８９，前記）によれば、ＣＤＲの約４〜６Åの範囲内にあるフレームワークアミノ酸は、正確なＣＤＲ構造を支持する潜在的に重要なフレームワーク残基であると考えられることから、これらのフレームワークアミノ酸を同定することが必要である。このプロセスは、例えば、米国国立科学財団（ＮＳＦ）が支援するＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ Ｆｒｅｅｗａｒｅウェブサイトで入手可能なＲＡＳＭＯＬ等の原子座標から原子間距離を計算するコンピュータプログラムを用いるか、又は手作業でコンピュータモデルを検査することによって行うことができる。重要なフレームワーク位置のアミノ酸が、マウスドナー配列とヒトアクセプター配列の間で異なる場合、通常ヒト残基をマウスドナー配列で置き換える。しかしながら、このような残基のＣＤＲ構造を支持する上での寄与がわずかである場合、典型的には対応するヒト残基が用いられる。また、選択されたヒトアクセプターが、Ｖ領域配列の約１０〜２０％未満で「非典型的な」アミノ酸を含有する場合、それらは親和性成熟の間の体細胞超突然変異の結果であり得ることから、ヒトにおける潜在的免疫原性を回避するためにドナー残基と置き換えるべきである。
【００５７】
さらに、ヒト化Ｖ領域を設計するために、潜在的なＮ結合型グリコシル化シグナルの残基等の他の因子を注意深く考慮する必要がある（詳細についてはＴｓｕｒｕｓｈｉｔａを参照）。
【００５８】
ヒト化抗体は、治療目的で必要とされ又は消失させられるべきエフェクター機能に応じて、ヒトκもしくはλ軽鎖由来のヒト定常領域もしくはその部分、及び／又はヒト抗体のγ１、γ２、γ３、γ４、μ、α１、α２、δ、もしくはε重鎖、あるいはそれらの変異体を含有していてもよい。例えば、突然変異を有する定常領域のＦｃ部分を、抗体のＦｃ受容体への結合を低下させるため、及び／又は補体を固定する能力を低下させるために、本発明のキメラ抗体又はヒト化抗体の可変領域と融合させてもよい（例えば、Ｗｉｎｔｅｒら、ドイツ特許第２，２０９，７５７号；Ｍｏｒｒｉｓｏｎら、ＷＯ８９／０７１４２号、Ｍｏｒｇａｎら、ＷＯ９４／２９３５１号を参照）。このような抗体分子の操作は、第５．２節に記載の組換えＤＮＡ技術により実施することができる。
【００５９】
好ましくは得られたキメラ抗体又はヒト化抗体は、非ヒトドナー抗体と同じ特異性及び非ヒトドナー抗体の親和性と同等か、又は少なくとも約１／３、少なくとも約１／２、もしくは少なくとも約２／３の親和性を有する。別の態様では、得られたキメラ抗体又はヒト化抗体は、少なくとも約１×１０７Ｍ−１、好ましくは少なくとも約１×１０８Ｍ−１、最も好ましくは少なくとも約１×１０９Ｍ−１の親和定数を有する。
【００６０】
上述の一般的プロトコルに加えて、抗体は、当該技術分野で公知の種々の技術を用いてヒト化することができ、例えば、ＣＤＲグラフティング（欧州特許第２３９，４００号；ＰＣＴ公開公報ＷＯ９１／０９９６７号；米国特許第５，２２５，５３９号；第５，５３０，１０１号及び第５，５８５，０８９号）、ベニアリング（ｖｅｎｅｅｒｉｎｇ）又はリサーフェイシング（ｒｅｓｕｒｆａｃｉｎｇ）（欧州特許第５９２，１０６号；欧州特許第５１９，５９６号；Ｐａｄｌａｎ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２８（４／５）：４８９−４９８，１９９１；Ｓｔｕｄｎｉｃｋａら，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，７（６）：８０５−８１４，１９９４；Ｒｏｇｕｓｋａら，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：９６９−９７３，１９９４）、並びに鎖シャッフリング（米国特許第５，５６５，３３２号）が挙げられ、これらは全てその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【００６１】
５．３．２．ヒト化抗体を医薬品として調製するために更に考慮すべき事項
ヒト化抗体を医薬品として提供するために、効率的で安定的な産生系を調製する必要がある。例えば、Ｈ鎖及びＬ鎖配列を挿入することによってヒト化抗体用の適切な発現ベクターを調製し、この発現ベクターがトランスフェクトされた生産性の高い細胞株をマスター細胞バンク（ＭＣＢ）用の種細胞として得ることができる。マスター細胞バンク（ＭＣＢ）は、ワーキング細胞バンク（ＷＣＢ）の安定的かつ半永久的な供給源として利用される。その後、ＷＣＢ由来のワーキング細胞を培養し、その培養培地を回収することにより、ヒト化抗体を調製することができる。
【００６２】
適当な調節遺伝子を含む様々な発現ベクターを、そのような産生細胞株の調製に用いることができる。哺乳動物タンパク質を発現するために一般に用いられる細胞を宿主細胞としてヒト化抗体の発現に用いることができる。このような宿主細胞としては、これに限定されるものではないが、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ＳＰ２／０−Ａｇ１４．１９細胞、ＮＳＯ細胞等が挙げられる。発現ベクターと宿主細胞の最良の組合せを選択することにより、ヒト化抗体の生産性を最大化することができる。さらに、宿主細胞によるヒト化抗体の発現を最適化するように好適な培地を選択するため、培養培地の組成を様々な無血清培地及び添加物から検討するべきである。
【００６３】
効率と最終的な収率に基づいて、宿主細胞によって産生されたヒト化抗体を、アフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー等を含む、当該技術分野で周知の様々な方法を用いて培養上清から精製することができる。
【００６４】
５．４．医薬組成物及び治療用途
本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する、上述のヒト化抗体又はその抗原結合断片を含む医薬組成物を提供する。本発明のヒト化抗体を有効成分として含有する医薬組成物は、これに限定されるものではないが、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患等の炎症性疾患を含む、α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防及び／又は治療するための薬剤として用いることができる。
【００６５】
本発明のヒト化抗体を含有する医薬組成物は、臓器移植後の慢性的拒絶、及び、例えば、全身性自己免疫疾患、エリテマトーデス、ブドウ膜炎、ベーチェット病、多発性筋炎、増殖性糸球体腎炎、サルコイドーシス、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の自己免疫疾患を治療するためにも用いることができる。
【００６６】
上述の障害又は疾患を予防又は治療するための、本発明のヒト化抗体を含む予防用及び／又は治療用薬剤は毒性が低く、好適な溶媒中で混合することにより液体調製物として直接、又は適当な剤形の医薬組成物として、ヒトに経口投与又は非経口投与することができる。
【００６７】
上述の投与に用いられる医薬組成物は、前述の抗体又はその塩と薬学的に許容される担体、希釈剤又は賦形剤とを含有する。このような組成物は、経口投与又は非経口投与に好適な剤形で提供される。
【００６８】
投与量は、投与されるべき対象の年齢及び大きさ、標的疾患、状態、投与経路等によって様々に変わり得る。抗体を、例えば、成人患者の関節リウマチ等の予防及び／又は治療に用いる場合、本発明の抗体を、一回当たり通常約０．０１〜約２０ｍｇ／体重ｋｇ、好ましくは約０．１〜約１０ｍｇ／体重ｋｇ、より好ましくは約０．１〜約５ｍｇ／体重ｋｇの用量で、１日におよそ１〜５回、好ましくは１日におよそ１〜３回静脈内投与することが有効である。他の非経口投与及び経口投与では、抗体を前記用量に対応する用量で投与することができる。状態が特に重篤である場合は、その状態によって用量を増加させてもよい。
【００６９】
例えば、リポソーム、マイクロ粒子、マイクロカプセルへの封入、突然変異体ウイルスを発現することができる組換え細胞、受容体を介するエンドサイトーシス等の様々な送達系が知られており、本発明の医薬組成物を投与するために用いることができる（例えば、Ｗｕ ａｎｄ Ｗｕ，１９８７，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９ ４４３２を参照）。投与経路としては、これに限定されるものではないが、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、及び経口経路が挙げられる。化合物は、任意の利用しやすい経路、例えば、注入又はボーラス注射、あるいは上皮又は皮膚粘膜内層（例えば、口腔粘膜、直腸及び腸粘膜等）からの吸収によって投与してもよく、また、他の生物学的に活性のある薬剤と共に投与してもよい。投与は全身性又は局所性のいずれでもよい。例えば、吸入器又はネブライザーとエアロゾル化剤を用いて、経肺投与を採用してもよい。
【００７０】
特定の実施形態では、本発明の医薬組成物を、治療を必要とする部位に局所的に投与することが望ましい場合がある。このような投与は、例えば、これに限定されるものではないが、手術時の局所注入、手術後の創傷包帯と組み合わせ等による局所塗布、注射、カテーテル、坐剤、鼻スプレー、又はインプラントによって行うことができる。前記インプラントは、多孔性、非多孔性、又はゼラチン様の物質からなり、シラスティック膜等の膜、又は繊維を含む。一実施形態では、感染した組織部位（又は、かつて感染組織部位であった部位）への直接注射により投与してもよい。
【００７１】
別の実施形態では、医薬組成物は、小胞、特にリポソーム内で送達することができる（Ｌａｎｇｅｒ，１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７−１５３３；Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ｏｆ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ，Ｌｏｐｅｚ Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｆｉｄｌｅｒ（編），Ｌｉｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，３５３−３６５頁（１９８９）のＴｒｅａｔらの稿；同書，３１７−３２７頁のＬｏｐｅｚ−Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎの稿を参照；一般には同書を参照）。
【００７２】
更に別の実施形態では、医薬組成物は、放出制御系で送達することができる。一実施形態では、ポンプを用いてもよい（Ｌａｎｇｅｒ，前記；Ｓｅｆｔｏｎ，１９８７，ＣＲＣ Ｃｒｉｔ．Ｒｅｆ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｅｎｇ．１４：２０１；Ｂｕｃｈｗａｌｄら，１９８０，Ｓｕｒｇｅｒｙ ８８：５０７；及びＳａｕｄｅｋら，１９８９，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２１：５７４を参照）。別の実施形態では、ポリマー材料を用いることができる（Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ，Ｌａｎｇｅｒ ａｎｄ Ｗｉｓｅ（編），ＣＲＣ Ｐｒｅｓ．，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ，Ｆｌｏｒｉｄａ（１９７４）；Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｂｉｏａｖａｉｌａｂｉｌｉｔｙ，Ｄｒｕｇ Ｐｒｏｄｕｃｔ Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，Ｓｍｏｌｅｎ ａｎｄ Ｂａｌｌ（編），Ｗｉｌｅｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８４）；Ｒａｎｇｅｒ ａｎｄ Ｐｅｐｐａｓ，Ｊ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｓｃｉ．Ｒｅｖ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．２３：６１（１９８３）を参照；また、Ｌｅｖｙら，１９８５，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２８：１９０；Ｄｕｒｉｎｇら．，１９８９，Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．２５：３５１；Ｈｏｗａｒｄら．，１９８９，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．７１：１０５も参照）。さらに別の実施形態では、放出制御系を組成物の標的の近くに置くことができ、それにより全身投与量の一部しか必要としないようにすることができる（例えば、Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ，前記，第２巻，１１５−１３８頁（１９８４）のＧｏｏｄｓｏｎの稿を参照）。他の放出制御系は、Ｌａｎｇｅｒ（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７−１５３３（１９９０））による総説に記載されている。
【００７３】
経口投与用の組成物の例としては、固体又は液体剤形、特に、錠剤（糖衣錠及びフィルムコート錠を含む）、丸薬、顆粒、粉末調製物、カプセル（ソフトカプセルを含む）、シロップ、エマルジョン、懸濁液等が挙げられる。このような組成物は、公知の方法により製造され、薬学的調製の分野で従来から用いられているビヒクル、希釈剤又は賦形剤を含有する。錠剤用のビヒクル又は賦形剤の例としては、ラクトース、デンプン、スクロース、ステアリン酸マグネシウム等が挙げられる。
【００７４】
注射用調製物は、静脈内、皮下、皮内及び筋肉内注射、点滴等のための剤形を含んでいてもよい。これらの注射用調製物は、公知の方法により調製することができる。注射用調製物は、例えば、上述の抗体又はその塩を、従来から注射用に用いられている滅菌水性媒体又は油性媒体中で溶解、懸濁又は乳化させることによって調製してもよい。注射用の水性媒体としては、例えば、生理的食塩水、グルコース及び他の助剤を含有する等張溶液等が挙げられ、これらは、例えば、アルコール（例えば、エタノール）、多価アルコール（例えば、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン性界面活性剤［例えば、ポリソルベート８０、ＨＣＯ−５０（水素化ヒマシ油のポリオキシエチレン（５０モル）付加物）］等の適切な可溶化剤と組み合わせて用いることができる。油性媒体としては、例えば、ゴマ油、大豆油等を利用することができ、これらは、例えば、安息香酸ベンジル、ベンジルアルコール等の可溶化剤と組み合わせて用いることができる。このように調製された注射液は、好ましくは適当なアンプルに充填される。直腸投与に用いられる坐剤は、前述の抗体又はその塩を従来の坐剤用基剤と混合することにより調製することができる。
【００７５】
有効な手段としては、上述の経口又は非経口で使用するための医薬組成物は、有効成分の投与量に合わせるのに適した単位用量からなる剤形で調製する。このような単位投与量からなる剤形としては、例えば、錠剤、丸薬、カプセル、注射液（アンプル）、坐剤等が挙げられる。含有する前述の抗体の量は、通常、単位投与量からなる剤形当たり約５〜５００ｍｇであり；特に、注射液の形態では、前述の抗体を約５〜１００ｍｇ含有することが好ましく、また、他の剤形の場合、約１０〜２５０ｍｇ含有することが好ましい。
【００７６】
上述の各々の組成物は、製剤が上述の抗体との何らかの有害な相互作用を生じさせない限り、他の有効成分をさらに含有していてもよい。
【００７７】
本発明はまた、α９インテグリン結合性機能分子（例えば、ＯＰＮ、ＶＣＡＭ−１、テネイシン−Ｃ、フィブロネクチン、ｐｐ−ｖＷＦ、ｔＴＧ等）を有効成分として含有する細胞及び／又は組織再構築の阻害剤及び／又は促進剤；並びにα９インテグリン発現細胞及び／又は組織（例えば、腫瘍細胞、好中球、平滑筋等）をα９インテグリン結合性機能分子と接触させることを含む、細胞及び／又は組織再構築の阻害方法及び／又は促進方法に関する。このような治療剤中の有効成分の投与量、投与方法、薬学的調製方法等は、本発明のヒト化抗体を含む医薬品に関する前述の記載を参照して適切に決定することができる。
【００７８】
上述のように、本発明は更にα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する障害又は疾患を予防又は治療する方法であって、有効量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つをそれを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。
【００７９】
５．５．診断的使用
本発明のヒト化抗体を含む医薬組成物は、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、癌転移、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫等の炎症性疾患のための診断薬として、又は臓器移植後の慢性的拒絶、及び、例えば、全身性自己免疫疾患、エリテマトーデス、ブドウ膜炎、ベーチェット病、多発性筋炎、増殖性糸球体腎炎、サルコイドーシス、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の自己免疫疾患、並びにその他の疾患ための診断薬として用いることができる。本発明のヒト化抗体は、α９インテグリンを特異的に認識することができることから、被験液中のα９インテグリンの定量に用いることができ、特に、サンドイッチイムノアッセイ、競合アッセイ、イムノメトリー、ネフロメトリー等、免疫染色、又は同様の方法による定量に用いることができる。これらの免疫学的方法を本発明のアッセイ方法に適用する場合には、特別な条件、手順等の説明は必要なく、当該技術分野における通常の技術的検討を従来の条件及び手順に加えてアッセイ系を構築することで十分である。これらの一般的技術手段の詳細は、総説、教科書等を参照することができる。
【００８０】
上述のように、α９インテグリンは、本発明の抗体を用いることにより高感度に定量することができる。本発明のヒト化抗体は、α９インテグリンの定量をインビボで行うことによりα９インテグリンと関連する様々な疾患を診断する上で特に有用である。例えば、α９インテグリンの発現レベルの増加又は減少が検出される場合、対象はα９インテグリンと関連する疾患、例えば、癌もしくは炎症性疾患を患っている可能性が極めて高く、又は将来においてこれらの疾患を患う可能性が極めて高いと診断することができる。したがって、本発明はまた、対象におけるα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する障害又は疾患を診断する方法であって、有効量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つ又は両方を、それを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。このようなインビボ診断に必要な投与量は、治療用途に必要な投与量よりも少なくてもよく、日常的な手順によって当業者が決定することができる。
【００８１】
本発明のヒト化抗体は、体液等の被験液、組織等に存在するα９インテグリンを特異的に検出するために用いることもできる。ヒト化抗体は、α９インテグリンの精製用の抗体カラムを調製し、精製時の各画分に含まれるα９インテグリンを検出し、又は被験細胞中のα９インテグリンの挙動を解析するために用いることもできる。
【実施例】
【００８２】
６．実施例
以下の実施例では、ヒト及び／又はマウスのα９インテグリンを免疫特異的に認識するモノクローナル抗体の調製、これらのモノクローナル抗体の可変領域の配列決定、及びこれらの抗体の他の特徴、そのような抗体のキメラ化及びヒト化、並びに得られたキメラ抗体及びヒト化抗体の特徴を説明する。これらの実施例は、これに限定するものと解釈されるものではない。
【００８３】
６．１．ヒトα９インテグリンに対するマウス抗体の調製
ヒトα９インテグリンに対するマウスモノクローナル抗体は、サブトラクティブ免疫化法（Ｗｉｌｌｉａｍｓ Ｃ．Ｖ．ら，１９９２，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １２：８４２−８４７による）に従って調製した。簡単には、３匹のＢａｌｂ／ｃマウスに、マウス１匹当たり３×１０６個の、ヒトα９インテグリンを発現するＮＩＨ−３Ｔ３細胞（ヒトα９／ＮＩＨ−３Ｔ３細胞）を腹腔内注射した。注射の１週間後及び２週間後に、マウスに、３×１０６細胞／マウスのヒトα９／ＮＩＨ−３Ｔ３細胞を腹腔内注射し、次いで１週間後に、同じ細胞を２×１０６細胞／マウスでさらに静脈内注射した。ハイブリドーマを当該技術分野で周知の方法により調製した（例えば、Ｈａｒｌｏｗら，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，第２版．１９８８）；Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｔ−ＣｅＩｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ，５６３−６８１頁のＨａｍｍｅｒｌｉｎｇらの稿（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８１）を参照）。ヒトα９インテグリンを発現するヒトα９／ＣＨＯ−Ｋ１細胞及びヒトα９インテグリンを内在性に発現するヒトメラノーマ細胞とは免疫特異的に反応するが、ヒトα４インテグリンを発現するＣＨＯ−Ｋ１細胞とは免疫特異的に反応しないモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローンを樹立し、ヒトα９インテグリンを免疫特異的に認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ）を単離した。
【００８４】
６．２．抗ヒトα９インテグリン抗体のＣＤＲ解析
モノクローナル抗体（すなわち、Ｋ３３Ｎ）のＣＤＲのアミノ酸配列を、対応するハイブリドーマから抽出したｍＲＮＡを逆転写して、ｃＤＮＡを調製することにより決定した。このｃＤＮＡを鋳型として用いて、Ｈ鎖とＬ鎖の可変領域を、ＳｃＦｖ−クローニングプライマー（Ｌｉｇｈｔ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘ ａｎｄ Ｈｅａｖｙ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘ；Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｏｒｐ．，ＩＬ製）を用いてＰＣＲで伸長させ、増幅させた。このＰＣＲ産物をｐＣＲＩＩ ＴＯＰＯベクターにクローニングし、シークエンシングしてアミノ酸配列を決定した。このプロセスを３回繰り返した。結果を表１に示す。
【００８５】
【表１】
【００８６】
６．３．細胞接着阻害活性
（１）細胞接着は、α９インテグリンのそのリガンド、すなわち、ＯＰＮ、フィブロネクチン、テネイシン−Ｃ、ＶＣＡＭ−１等を含む様々なＥＣＭ、への結合を伴うことが知られていることから、ヒトα９インテグリンを発現する細胞（ヒトメラノーマＧ３６１細胞）のリガンドへの結合を用いることにより、単離された抗ヒトα９インテグリン抗体の細胞接着阻害活性について調べた。
【００８７】
簡単には、ＯＰＮペプチドを、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）−融合ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）ペプチドとして調製した。ＴＮ−Ｃ ｆｎ３（ＲＡＡ）は、ヒトテネイシン−Ｃ中のフィブロネクチンタイプＩＩＩ反復の３番目の領域として調製する。このペプチドのＧＲＤ配列は、大腸菌宿主細胞で発現させることによりＲＡＡ配列に置き換えられている。
【００８８】
ＯＰＮペプチド及びテネイシン−Ｃ断片（ＴＮ−Ｃ ｆｎ３（ＲＡＡ））を、９６穴プレートに５μｇ／ｍＬで添加し、３７℃で１時間インキュベートしてプレートにコーティングし、その後、このプレートをブロッキング溶液（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳ）でブロッキングした。ヒトメラノーマＧ３６１細胞を０．２５％ＢＳＡ／ＤＭＥＭに懸濁し（１×１０５細胞／ｍＬ）、各濃度の抗ヒトα９インテグリン抗体をこの細胞懸濁液に添加した。０．２５％ＢＳＡ／ＤＭＥＭ中のヒトメラノーマＧ３６１細胞（１×１０５細胞／ｍＬ）と抗体の混合物を、９６穴プレートに２００μＬ／穴で添加し、５％ＣＯ２、３７℃で１時間インキュベートした。非接着細胞をＰＢＳで洗い流し、接着細胞を固定し、０．５％クリスタルバイオレット（和光純薬工業，大阪，日本製）／２０％メタノールで染色した。染色された細胞を蒸留水で３回洗浄し、次に、２０％酢酸溶液をそれに添加して、溶解させた。５９０ｎｍの波長におけるＯＤを測定して、接着活性を定量した。陰性対照として抗ヒトＯＰＮモノクローナル抗体（５Ａ１）、陽性対照として以前に調製した抗ヒトα９インテグリン抗体（１Ｋ１１，２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６及び２８Ｓ１）を用いた。
【００８９】
抗ヒトα９インテグリン抗体による、Ｇ３６１細胞のＯＰＮペプチドへの結合に対する効果を図１に示し、テネイシン−Ｃ断片への結合に対する効果を図２に示す。図１に示すように、ＯＰＮが関与する細胞接着は、陽性対照の２１Ｃ５及び２４Ｉ１１と比べて低い濃度のＫ３３Ｎにより阻害され、かつ、Ｙ９Ａ２と同じ濃度のＫ３３Ｎにより阻害された。テネイシン−Ｃが関与する細胞接着は、低濃度のＫ３３Ｎ、かつ、Ｙ９Ａ２と同じ濃度のＫ３３Ｎによって阻害され、この阻害効果は、陽性対照の２１Ｃ５及び２４Ｉ１１よりも著しく強かった。
【００９０】
６．４．非ヒト抗体のヒト化
６．４．１．マウスＫ３３ＮのＶ遺伝子のクローニング及びシークエンシング
マウスＫ３３Ｎハイブリドーマ細胞を、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％胎仔ウシ血清（ＦＢＳ；ＨｙＣｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）を含有するＴＩＬ培地Ｉ（免疫生物研究所，群馬，日本製）中で増殖させた。ＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を用いて製造者のプロトコルに従い、約１０７個のハイブリドーマ細胞から全ＲＮＡを抽出した。オリゴｄＴでプライミングされたｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて製造者のプロトコルに従い合成した。Ｋ３３Ｎの重鎖及び軽鎖の可変領域ｃＤＮＡは、それぞれ、マウスγ１鎖及びκ鎖の定常領域にアニールする３’プライマーと、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキットに含まれるＧｅｎｅＲａｃｅｒ ５’プライマー（５’−ＣＧＡＣＴＧＧＡＧＣＡＣＧＡＧＧＡＣＡＣＴＧＡ−３’）（配列番号５１）とを用いて、Ｐｈｕｓｉｏｎ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）によるポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅させた。重鎖可変領域（ＶＨ）のＰＣＲ増幅には、５’−ＧＣＣＡＧＴＧＧＡＴＡＧＡＣＡＧＡＴＧＧ−３’（配列番号５２）を有する３’プライマーを用いた。軽鎖可変領域（ＶＬ）のＰＣＲ増幅には、５’−ＧＡＴＧＧＡＴＡＣＡＧＴＴＧＧＴＧＣＡＧＣ−３’（配列番号５３）配列を有する３’プライマーを用いた。増幅されたＶＨとＶＬのｃＤＮＡを、配列決定のためにｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にサブクローニングした。可変領域のＤＮＡシークエンシングはＴｏｃｏｒｅ（Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ，ＣＡ）で実施した。いくつかの重鎖及び軽鎖クローンをシークエンシングし、典型的なマウス重鎖及び軽鎖可変領域に相同なユニーク配列を同定した。コンセンサスｃＤＮＡ配列を、Ｋ３３ＮのＶＨ及びＶＬの推定アミノ酸配列と共に、それぞれ、図３及び４に示す。
【００９１】
６．４．２．キメラＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の構築
Ｋ３３Ｎ ＶＨをコードする遺伝子を、Ｋ３３Ｎ ＶＨのｃＤＮＡを鋳型として、５’−ＧＧＧＡＣＴＡＧＴＡＣＣＡＣＣＡＴＧＧＧＡＴＧＧＡＧＣＴＧＧＡＴＣＴＴＴＣＴＣ−３’（下線はＳｐｅＩ部位）（配列番号４０）を５’プライマーとして、５’−ＧＧＧＡＡＧＣＴＴＧＴＴＴＴＡＡＧＧＡＣＴＣＡＣＣＴＧＡＧＧＡＧＡＣＴＣＴＧＡＧＡＣＴＧＧＴＧＣＣ−３’（配列番号４１）（下線はＨｉｎｄＩＩＩ部位）を３’プライマーとして用いてＰＣＲを行うことにより、スプライスドナーシグナルと適当な側面制限酵素部位とを含むエキソンとして生成した（図５）。同様に、Ｋ３３Ｎ ＶＬをコードする遺伝子を、Ｋ３３Ｎ ＶＬのｃＤＮＡを鋳型として、５’−ＧＧＧＧＣＴＡＧＣＡＣＣＡＣＣＡＴＧＡＧＴＧＴＧＣＣＣＡＣＴＣＡＡＣＴＣＣＴＧ−３’（配列番号４２）（下線はＮｈｅＩ部位）を５’プライマーとして、５’−ＧＧＧＧＡＡＴＴＣＴＧＡＧＡＡＧＡＣＴＡＣＴＴＡＣＧＴＴＴＴＡＴＴＴＣＣＡＧＣＴＴＧＧＴＣＣＣＣＣＣ−３’（配列番号４３）（下線はＥｃｏＲＩ部位）を３’プライマーとして用いてＰＣＲを行うことにより、スプライスドナーシグナルと適当な側面制限酵素部位とを含むエキソンとして生成した（図６）。Ｋ３３ＮのＶＨエキソンとＶＬエキソンのスプライスドナーシグナルは、それぞれ、マウス生殖系列ＪＨ４配列とＪκ２配列から得た。ＰＣＲ増幅断片は、ＱＩＡｑｕｉｃｋゲル抽出キット（Ｑｉａｇｅｎ，Ｖａｌｅｎｃｉａ，ＣＡ）を用いてゲル精製し、ＳｐｅＩとＨｉｎｄＩＩＩ（ＶＨの場合）又はＮｈｅＩとＥｃｏＲＩ（ＶＬの場合）で消化し、キメラＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体を産生するために、ヒトγ１定常領域とκ定常領域とを担持する哺乳動物発現ベクターにクローニングした。得られた発現ベクター、ｐＣｈＫ３３Ｎの模式的構造を図７に示す。
【００９２】
６．４．３．ヒト化Ｋ３３Ｎ Ｖ遺伝子の作製
Ｋ３３Ｎ可変領域のヒト化を、Ｑｕｅｅｎら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：１００２９−１００３３，１９８９）に概説されているように実施した。まず、コンピュータプログラムを活用してＫ３３Ｎ可変領域の分子モデルを構築した。次に、ヒト可変領域配列に対する相同性検索に基づいて、ＤＡ９８０１０２（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号）に由来するヒトアミノ酸配列であって、Ｋ３３Ｎ ＶＨに対する高い相同性を有する配列を、ヒト化Ｋ３３Ｎ ＶＨのフレームワークを提供するアクセプターとして選択した。マウスＫ３３ＮのＶＨ領域とＤＡ９８０１０２のＶＨ領域のフレームワークにおけるアミノ酸の同一性は、７４．７％（６５／８７）である。同様に、Ｘ７２４４１（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号）のヒトアミノ酸配列を、Ｋ３３Ｎ ＶＬのヒト化のためのアクセプターとして選択した。マウスＫ３３ＮとＸ７２４４１のＶＬ領域のフレームワークにおけるアミノ酸の同一性は、７６．３％（６１／８０）である。
【００９３】
コンピュータモデルによって相補性決定領域（ＣＤＲ）との顕著な接触が示唆されたフレームワーク位置においては、Ｋ３３Ｎ可変領域由来のアミノ酸をヒトフレームワークアミノ酸の代わりに用いた。２８、４８、６６、６７及び７１番目においてこの操作を行ない、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＨを作製した（図８）。さらに、ヒトＤＡ９８０１０２アクセプターの８２番目のＭｅｔは、ヒトＶＨ配列の同じサブグループでは非典型的であることが判明したことから、最も一般的なアミノ酸残基（Ｌｅｕ）に置き換えて、潜在的免疫原性を減らした。軽鎖については、７０番目と７１番目の残基で置換を行ない、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬを作製した（図９）。Ｋ３３Ｎ、デザインしたＨｕＫ３３Ｎ、及びヒトアクセプターアミノ酸配列のアラインメントを、ＶＨについては図８に、ＶＬについては図９に示す。
【００９４】
ＨｕＫ３３ＮのＶＨとＶＬの各々をコードする遺伝子を、シグナルペプチドと、スプライスドナーシグナルと、後に哺乳動物発現ベクターにクローニングするための適当な制限酵素部位とを含むエキソンとして設計した。ＨｕＫ３３ＮのＶＨエキソンとＶＬエキソンのスプライスドナーシグナルは、それぞれ、ヒト生殖系列ＪＨ４配列とＪκ１配列から得た。マウスＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子のシグナルペプチド配列は、ＳＩＧ−Ｐｒｅｄ シグナルペプチド予測ソフトウェア（ｈｔｔｐ：／／ｂｍｂｐｃｕ３６．ｌｅｅｄｓ．ａｃ．ｕｋ／ｐｒｏｔ＿ａｎａｌｙｓｉｓ／Ｓｉｇｎａｌ．ｈｔｍｌ）によって、正確な切断に準最適であることが示された。そのため、ＳＩＧ−Ｐｒｅｄソフトウェアで効率的かつ正確に切断されると予測された、マウス抗ヒトα９インテグリンモノクローナル抗体２４Ｉ１１（ジーンテクノサイエンス社）のＶＨ遺伝子のシグナルペプチド配列を、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子で用いた。ヒト化Ｋ３３Ｎ ＶＬエキソン中のシグナルペプチド配列は、対応するマウスＫ３３Ｎ ＶＬ配列から得た。ＳＩＧ−Ｐｒｅｄソフトウェアでは、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子のシグナルペプチドは、効率的かつ正確に切断されると予測された。
【００９５】
ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子を、Ｈｅら（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６０：１０２９−１０３５，１９９８）に概説されているように、ＴｈｅｒｍａｌＡｃｅ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて、いくつかの重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーの伸長とＰＣＲ増幅によって構築した。ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子の構築に用いたオリゴヌクレオチドを、ぞれぞれ、図１０と図１１に示す。ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子におけるこれらのオリゴヌクレオチドの位置を、それぞれ、図１２と図１３に示す。ＰＣＲ増幅断片をＱＩＡｑｕｉｃｋゲル抽出キット（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲル精製し、配列決定のためにｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクターにクローニングした。ＳｐｅＩとＨｉｎｄＩＩＩ（ＶＨの場合）又はＮｈｅＩとＥｃｏＲＩ（ＶＬの場合）で消化した後、ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子を、ヒトＩｇＧ１／κ形態で産生するための哺乳動物発現ベクター内の対応する部位にサブクローニングした。得られた発現ベクター、ｐＨｕＫ３３Ｎの模式的構造を図７に示す。得られたＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子のヌクレオチド配列を、推定アミノ酸配列と共に、ぞれぞれ、図１４と図１５に示す。
【００９６】
６．４．４．キメラ及びヒト化Ｋ３３Ｎ ＩｇＧ１／κの一過性発現
キメラ及びヒト化Ｋ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体は、それぞれ、ｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３ＮのプラスミドＤＮＡを、Ｄｕｒｏｃｈｅｒら（Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３０：ｅ９，２００２）に従ってポリエチレンイミンを用いてＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクトすることにより一過性に発現させた。一過性にトランスフェクトされたＨＥＫ２９３細胞は、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥＭ中で４日間維持した。培養上清中のＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の各々の発現レベルをサンドイッチＥＬＩＳＡで測定した。ＥＬＩＳＡプレートは、ＰＢＳ中１／２，０００希釈したヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｆｃγ鎖特異的ポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ，Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ，ＡＬ）を１００μＬ／穴で用いて、４℃で一晩コーティングし、洗浄緩衝液（０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ）で洗浄し、ブロッキング緩衝液（２％スキムミルク及び０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ）を３００μＬ／穴で用いて、室温で１時間ブロッキングした。洗浄緩衝液で洗浄した後、ＥＬＩＳＡ緩衝液（１％スキムミルク及び０．０２５％Ｔｗｅｅｎ ２０を含有するＰＢＳ）で適当に希釈した試料を１００μＬ／穴でＥＬＩＳＡプレートに添加した。ヒトミエローマ血清（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）から精製したヒトＩｇＧ１／κ抗体を標準品として用いた。ＥＬＩＳＡプレートを室温で２時間インキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、１／２，０００希釈したＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ヒトκ鎖ポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を１００μＬ／穴で用いて、結合した抗体を検出した。室温で１時間インキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、１００μＬ／穴のＡＢＴＳ基質（ｂｉｏ ＷＯＲＬＤ，Ｄｕｂｌｉｎ，ＯＨ）を添加して、発色を行なった。１００μＬ／穴の２％シュウ酸を添加して、発色を停止させた。吸光度を４０５ｎｍで測定した。
【００９７】
一過性に発現されたＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合を細胞ＥＬＩＳＡで調べた。表面に組換えヒトα９インテグリンを発現するＣＨＯ−Ｋ１安定トランスフェクタント（ＣＨＯ／ｈｕα９；ジーンテクノサイエンス社提供）を、１０％ＦＢＳを含有する５０μＬのＦ１２／ＤＭＥＭ（ＨｙＣｌｏｎｅ）中２×１０５細胞／穴で９６穴組織培養プレートに播種し、７．５％ＣＯ２インキュベーター内で、３７℃で一晩増殖させた。ヒトα９インテグリンへの結合を検討するために、１０％ＦＢＳを含有するＦ１２／ＤＭＥＭ中のＣｈＫ３３Ｎ、ＨｕＫ３３Ｎ又は無関係なヒトＩｇＧ１／κミエローマ抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）５０μＬを各穴に添加した。４℃で１時間インキュベートし、細胞を氷冷ＰＢＳで２回洗浄した後、１００μＬの１／１，０００希釈したＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を各穴に添加した。４℃で１時間インキュベートした後、細胞を氷冷ＰＢＳで３回洗浄した。発色させるために、１００μＬのＡＢＴＳ基質を添加した。１００μＬの２％シュウ酸を添加して、発色を停止させた。吸光度を４０５ｎｍで測定した。結果から、０．５μｇ／ｍＬと１μｇ／ｍＬの両方において、ＣｈＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合が、ＨｕＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合とほぼ同じであることが示された（図１６）。
【００９８】
６．４．５．ＣｈＫ３３Ｎ及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の各々を産生するＮＳ０安定トランスフェクタントの作製
ＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体を安定的に産生する細胞株を得るために、それぞれ、発現ベクターｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３Ｎを、マウスミエローマ細胞株ＮＳ０（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅｓ，Ｓａｌｉｓｂｕｒｙ，Ｗｉｌｔｓｈｉｒｅ，ＵＫ）の染色体に導入した。ＮＳ０細胞を、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥ培地中で増殖させた。Ｂｅｂｂｉｎｇｔｏｎら（Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：１６９−１７５，１９９２）に記載されているように、エレクトロポレーションによりＮＳ０への安定トランスフェクションを行なった。トランスフェクションの前に、発現ベクターを、ＦｓｐＩを用いて線状化した。約１０７個の細胞を１０μｇの線状化プラスミドでトランスフェクトし、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥ培地に懸濁し、いくつかの９６穴プレートに播種した。２４時間後、選択培地（１０％ＦＢＳ、ＨＴ培地サプリメント（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、０．２５ｍｇ／ｍＬキサンチン及び１μｇ／ｍＬミコフェノール酸を含有するＤＭＥ培地）を添加した。選択を開始してから約１０日後、培養上清をアッセイして抗体産生を調べた。
【００９９】
ＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体とＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の発現を、基本的には第６．４．３節に記載した手順に従って、サンドイッチＥＬＩＳＡで測定した。高レベルのＣｈＫ３３Ｎ抗体を産生するＮＳ０安定トランスフェクタント（ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１）を、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ ＳＦＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて無血清培地中での増殖に適応させた。高レベルのＨｕＫ３３Ｎ抗体を産生するＮＳ０安定トランスフェクタントは、更に、限界希釈によって９６穴プレートでサブクローニングした。これらのサブクローンのうちの１つ（ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１）をＨｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭ中での増殖に適応させた。ＰＣＲマイコプラズマ検出セット（Ｔａｋａｒａ Ｂｉｏ ＵＳＡ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）を用いた検査により、ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１とＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１の両方について、マイコプラズマの存在が陰性であることが示された。
【０１００】
ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ６Ｄ５−１１により産生されたＨｕＫ３３Ｎの重鎖と軽鎖が正しいかどうかをｃＤＮＡシークエンシングにより確認した。全ＲＮＡを、ＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ６Ｄ５−１１細胞から抽出し、オリゴｄＴでプライミングされたｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて製造者のプロトコルに従い合成した。γ１重鎖のコード領域を、ＣＭＶ２及びＪＮＴ０９８（図１７）をプライマーとして用い、Ｐｈｕｓｉｏｎポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）を用いてＰＣＲにより増幅した。ＰＣＲ断片をゲル精製し、ＣＭＶ２、ＪＮＴ０８２、ＪＮＴ０９７及びＪＮＴ０９８をプライマーとして用いてシークエンシングした（図１７）。同様に、κ軽鎖のコード領域を、ＣＭＶ２とＪＮＴ０２６とを用いて増幅した（図１７）。ゲル精製したＤＮＡ断片を、ＣＭＶ２、ＪＮＴ０２６、ＪＮＴ０８０及びＪＮＴ０８４をプライマーとして用いてシークエンシングした（図１７）。ＨｕＫ３３Ｎの重鎖と軽鎖の各々のコード領域の得られたヌクレオチド配列は、ｐＨｕＫ３３Ｎベクター中の対応する配列と完全に一致した（それぞれ、図１８及び図１９）。
【０１０１】
６．４．６．ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の精製
ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１細胞及びＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１細胞をローラーボトル中、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭで枯渇するまで増殖させた。遠心分離及び濾過後、培養上清をプロテイン−Ａセファロースカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）にかけた。カラムをＰＢＳで洗浄後、抗体を０．１Ｍのグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ３．０）で溶出させた。１ＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）で中和後、溶出した抗体の緩衝液を透析によってＰＢＳに変えた。抗体濃度を、２８０ｎｍにおける吸光度を測定して決定した（１ｍｇ／ｍＬ＝１．４ＯＤ）。抗体発現レベルは、ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１細胞では５０μｇ／ｍＬ、ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１細胞では１２μｇ／ｍＬであった。
【０１０２】
精製したＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体を、標準的な手順に従ったＳＤＳ−ＰＡＧＥにより解析した。還元条件下での解析から、ＣｈＫ３３Ｎ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ抗体は、各々、分子量約５０ｋＤａの重鎖と分子量約２５ｋＤａの軽鎖から構成されていることが示された（図２０）。各抗体の純度は９５％を上回るようであった。
【０１０３】
６．４．７．ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の特徴付け
マウスＫ３３Ｎ抗体、キメラＫ３３Ｎ抗体、及びヒト化Ｋ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合を、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞を用いたＦＡＣＳ結合アッセイで調べた。約５×１０５個のＣＨＯ／ｈｕα９細胞／試験を、ＦＡＣＳ結合緩衝液（０．５％ＢＳＡ及び０．０５％ＮａＮ３を含有するＰＢＳ）で洗浄し、様々な量の試験抗体を含有する２００μＬのＦＡＣＳ結合緩衝液に懸濁した。氷上で３０分置いた後、細胞をＦＡＣＳ結合緩衝液で洗浄した。次に、マウスＫ３３Ｎで染色した細胞を、１／２００希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を含むＦＡＣＳ結合緩衝液１００μＬに懸濁した。キメラＫ３３Ｎ又はヒト化Ｋ３３Ｎで染色した細胞は、１／２００希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗ヒトＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を含むＦＡＣＳ結合緩衝液１００μＬに懸濁した。氷上に３０分置いた後、細胞をＦＡＣＳ結合緩衝液で洗浄し、２００μＬのＦＡＣＳ結合緩衝液に懸濁し、ＦＡＣＳｃａｎフローサイトメータ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｌａｋｅｓ，ＮＪ）を用いて解析した。マウスＫ３３Ｎ抗体のＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合のＥＣ５０値は１０４ｎｇ／ｍＬであった（図２１）。ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の間で、結合パターンは互いによく似ていた（図２２）。さらに、ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体のＥＣ５０値は互いにほぼ同じであった（ＣｈＫ３３Ｎ抗体は１４３ｎｇ／ｍＬ、ＨｕＫ３３Ｎ抗体は１５１ｎｇ／ｍＬ）。この結果は、抗原結合親和性を失わせずに、マウスＫ３３Ｎ抗体をヒト化することに成功したことを示している。
【０１０４】
６．４．８．細胞接着アッセイ
９６穴平底マイクロタイタープレート（Ｎｕｎｃ）を、５０μＬの５μｇ／ｍＬ ｈＴＮＣ（ＡＥＩＤＧＩＥＬ）−ＢＳＡ溶液で、ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で１時間コーティングした。対照穴を、５０μＬの５μｇ／ｍＬ ＢＳＡ溶液でコーティングした。コーティング反応の後、穴中の溶液を２００μＬの０．５ｗ／ｖ％ＢＳＡ（ブロッキング）溶液と交換し、室温で１時間インキュベートした。ブロッキング反応後、穴をＰＢＳで洗浄した。０．２５ｗ／ｖ％ＢＳＡを含有するＴＩＬ培地に懸濁した２．５×１０５細胞／ｍＬのＧ−３６１細胞１５０μＬと、試験抗体溶液（０．２５ｗ／ｖ％ＢＳＡ／ＴＩＬ）５０μＬとをこれらの穴に添加し、３７℃のＣＯ２インキュベーター内で１時間インキュベートした。インキュベート後、非接着細胞を除去するために、各穴をＰＢＳ溶液で３回注意深く洗浄した。５０μＬの０．５ｗ／ｖ％クリスタルバイオレット溶液を添加して、接着細胞を固定及び染色した。３０分後、穴一杯の水で３回洗浄して、余分な色素を除去し、穴中の色素を５０μＬの２０ｖ／ｖ％酢酸で可溶化させた。各穴の５９５ｎｍにおける吸光度を、吸光度計を用いて測定した。細胞接着阻害率は、以下の式；（１−（Ａ−Ｂ）／（Ｃ−Ｂ））×１００（％）により算出した。Ａ：抗体が存在し、ｈＴＮＣ−ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度、Ｂ：いずれの試験抗体も存在しない、ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度、Ｃ：正常ヒトＩｇＧ存在下のｈＴＮＣ−ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度（陰性対照）（図２３）。
【０１０５】
結果
Ｙ９Ａ２のＩＣ５０は０．０５３μｇ／ｍＬ（９５％ＣＩ：０．０３２〜０．０８９）であった。Ｋ３３Ｎ、ＣｈＫ３３Ｎ、及びＨｕＫ３３ＮのＩＣ５０は、それぞれ、０．０７５μＭ（０．０５３〜０．１０６）、０．０９０μｇ／ｍＬ（０．０６３〜０．１２８）、０．０８４μｇ／ｍＬ（０．０５５〜０．１２９）であり、試験抗体のＩＣ５０値がＹ９Ａ２のＩＣ５０値と同じレベルにあることを示した。
【０１０６】
７．寄託
マウス抗ヒトα９インテグリンモノクローナル抗体を産生する、本明細書でＫ３３Ｎと表されているハイブリドーマは、２００７年５月２９日に、微生物の寄託に関するブダペスト条約に準拠して、（郵便番号３０５−８５６６）茨城県つくば市東１−１−１中央第６にある、産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託され、アクセッション番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０が与えられた。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【０１０７】
８．産業上の適用可能性
本発明のヒト化モノクローナル抗体は、α９インテグリンの機能を阻害して、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、癌転移、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患等の炎症性疾患に対する治療効果を示す。
【０１０８】
９．配列表
本明細書の全体を通じて言及されている配列を以下にまとめる。
【表２】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体、並びに癌、炎症性疾患、自己免疫疾患、α９インテグリンにより誘導される疾患状態等を含む、α９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する様々な疾患又は障害に対する治療及び診断における該抗体の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
細胞は、インテグリンと呼ばれる一群の細胞表面受容体を介して細胞外マトリクス（以下、ＥＣＭと略す）に接着している。インテグリンは、α鎖とβ鎖の１：１のヘテロ二量体を形成することによりその機能を果たす。これまでに、少なくとも１８種類のα鎖、８種類のβ鎖、及び２４種類のαβヘテロ二量体が同定され、確認されている。各々のインテグリンは特異的なリガンドを認識することが知られている。インテグリンは、そのリガンド特異性又は機能によってサブファミリーに分類され、コラーゲン受容体、ラミニン受容体、フィブロネクチンやビトロネクチン等に存在するＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）配列を認識するＲＧＤ受容体、白血球にのみ存在する白血球特異的受容体に分けられる（Ｈｙｎｅｓ，Ｒ．Ｏ．，２００２，Ｉｎｔｅｇｒｉｎｓ：Ｂｉｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ，Ａｌｌｏｓｔｅｒｉｃ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｍａｃｈｉｎｅｓ．Ｃｅｌｌ １１０：６７３−８７；宮坂 昌之，２０００，新版 接着分子ハンドブック，秀潤社）。α４インテグリンとα９インテグリンは、これらのタイプのいずれにも属さないサブファミリーのメンバーであり、α４インテグリンサブファミリーと呼ばれる（Ｅｌｉｓｅ Ｌ．Ｐａｌｍｅｒ，Ｃｕｒｚｉｏ Ｒｆｉｅｇｇ，Ｒｏｎａｌｄ Ｆｅｒｒａｎｄｏ，Ｒｏｂｅｒｔ Ｐｙｔｅｌａ，Ｓｈｅｐｐａｒｄ Ｄ．，１９９３，Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｇｒｉｎ α９ Ｓｕｂｕｎｉｔ，ａ Ｎｏｖｅｌ Ｐａｒｔｎｅｒ ｏｆ β１ Ｔｈａｔ Ｉｓ Ｗｉｄｅｌｙ Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ Ｅｐｉｔｈｅｌｉａ ａｎｄ Ｍｕｓｃｌｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ，１２３：１２８９−９７）。一方、しばらくの間ＥＣＭは、細胞間を固定する物質として機能するにすぎないと考えられていた。しかし、現在は、インテグリン介在性のＥＣＭ−細胞相互作用が、細胞の増殖、接着、移動等の調節に明らかに関与し、癌の進行、炎症の悪化等を含む疾患の発症と関連することが明らかになっている。
【０００３】
例えば、ＥＣＭの１つであるオステオポンチン（以後、ＯＰＮと略す）は、分子量約４１ｋＤａの、分泌型の酸性リン酸化糖タンパク質であり、母乳、尿、尿細管、破骨細胞、骨芽細胞、マクロファージ、活性化Ｔ細胞、腫瘍組織等に広くその発現が認められる分子である。ＯＰＮは、その分子の中心に接着配列ＧＲＧＤＳ（配列番号１）を有し、ヒトＯＰＮはＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列又はマウスＯＰＮはＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号３）配列、及びそれらに近接するトロンビン切断部位を有する。ＯＰＮは、ＧＲＧＤＳ（配列番号１）配列を介してＲＧＤインテグリンと結合し、また、ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列もしくはＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号３）配列を介してα４（α４β１）インテグリン及びα９（α９β１）インテグリンと結合する。
【０００４】
ＷＯ０２／０８１５２２号は、ＯＰＮノックアウトマウス又はＯＰＮに対する中和抗体を用いてＯＰＮの機能を阻害することにより、関節リウマチ又は肝炎を治療する効果があることを開示している。また、該文献は、ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）配列が、α９インテグリン及びα４インテグリンを認識するため炎症性疾患の発症に不可欠であること、及び、ＯＰＮの受容体が免疫担当細胞等で発現して、炎症性疾患と関連していることを開示している。
【０００５】
結合プロファイルの違いとして、α４β１がトロンビンで切断されていないＯＰＮ（未切断型ＯＰＮ）とトロンビンで切断されたＯＰＮのＮ末端断片（切断型ＯＰＮ）の両方に結合するのに対し、α９β１は切断型ＯＰＮにのみ結合することが見出されている（Ｙ．Ｙｏｋｏｓａｋｉ，ｅｔ ａｌ．，（１９９９） Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ），２７４：３６３２８−３６３３４；Ｐ．Ｍ．Ｇｒｅｅｎ，ｅｔ ａｌ．，（２００１） ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ，５０３：７５−７９；Ｓ．Ｔ．Ｂａｒｒｙ，ｅｔ ａｌ．，（２０００） Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｃｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２５８：３４２−３５１）。
【０００６】
α４インテグリンとα９インテグリンは、ＯＰＮ以外にも多くのリガンドを共有している。知られているリガンドとしては、フィブロネクチンのＥＤＡドメイン、プロペプチド−フォン・ヴィレブランド因子（ｐｐ−ｖＷＦ）、組織トランスグルタミナーゼ（ｔＴＧ）、血液凝固第ＸＩＩＩ因子、血管細胞接着分子−１（ＶＣＡＭ−１）等を挙げることができる。また、フィブロネクチンのＣＳ−１ドメイン、ＭａｄＣＡＭ−１（α４β７）等は、α４インテグリンに特異的に認識されるリガンドとして知られている。テネイシン−Ｃ、プラスミン等は、α９インテグリンによって特異的に認識されるリガンドとして知られている。
【０００７】
インテグリンサブユニットα９、α４及びβ１のアミノ酸配列は公知である。例えば、ヒトα９はＮＭ＿００２２０７として、マウスα９はＮＭ＿１３３７２１として、ヒトα４はＮＭ＿０００８８５として、マウスα４はＮＭ＿０１０５７６として、ヒトβ１はＸ０７９７９として、及びマウスβ１はＮＭ＿０１０５７８としてＧｅｎＢａｎｋに登録されている。これらのインテグリンは、種間でアミノ酸配列における高い類似性を有することも知られている。
【発明の概要】
【０００８】
現在、癌、炎症性疾患及び自己免疫疾患を治療するための多くの種類の薬物が知られているが、癌、炎症性疾患及び自己免疫疾患に対する薬理効果がより改善された予防剤及び／又は治療剤等の開発が望まれている。本発明は、一部、α９インテグリンに対する特異的阻害抗体に癌抑制効果や抗炎症効果があるという本発明者らによる発見に基づくものである。
【０００９】
これまで本発明者らは、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識し、ハイブリドーマクローンＫ３３Ｎ（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０）によって産生されるマウスモノクローナル抗体を単離した。本明細書においては、ハイブリドーマクローンの名称は、このクローンによって産生されるモノクローナル抗体の名称と共通で使用する。該マウス抗ヒトα９インテグリン抗体はＩｇＧ１アイソタイプであった。また、該モノクローナル抗体は、ヒト及び／又はマウスのα９インテグリンと、オステオポンチン等のα９インテグリンのリガンドとの結合を阻害する。よって、該抗α９インテグリン抗体はα９インテグリンの機能を阻害し、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、並びに、例えば、関節リウマチ、変形性関節炎、肝炎、気管支喘息、線維症、糖尿病、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽種、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の炎症性疾患に対する治療効果を示す。
【００１０】
さらに、本発明の抗α９インテグリン抗体は、対象におけるα９インテグリン発現の存在とレベルを検出し、それによりα９インテグリンと関係する障害又は疾患を診断するためのインビボでの診断薬として用いることができる。
【００１１】
しかし、該モノクローナル抗体はマウス由来であることから、ヒトにおいてはその免疫原性による副作用の可能性があり、このことがヒトにおいて診断用又は治療用として直接適用することを妨げてきた。この免疫原性を低下させるために、本発明者らは、由来するマウス抗α９インテグリン抗体が示す活性と同等の生物学的活性を有するヒト化抗体を調製した。
【００１２】
したがって、本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片であって、一部が非ヒト起源に由来し、一部がヒト起源に由来する抗原結合領域を含む抗体又はその抗原結合断片を提供するものである。具体的な実施形態においては、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、Ｋ３３Ｎモノクローナル抗体等の非ヒト源（ドナー）に由来する相補性決定領域（ＣＤＲ）と、ヒト源（アクセプター）に由来するフレームワーク領域（ＦＲ）とを含む。一実施形態では、該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、ヒトα９インテグリンとヒトα９インテグリンのリガンドとの結合を阻害する。
【００１３】
具体的な実施形態においては、上述の免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）ヒトＨ鎖の可変領域（Ｖ領域）に由来する少なくとも１つのＨ鎖ＦＲ（ＦＲＨ）と、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体Ｋ３３ＮのＣＤＲＨの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＨ鎖相補性決定領域（ＣＤＲＨ）とを含む重鎖（Ｈ鎖）；又は（ｉｉ）ヒトＬ鎖のＶ領域に由来する少なくとも１つのＬ鎖ＦＲ（ＦＲＬ）と、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体Ｋ３３ＮのＣＤＲＬの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＬ鎖相補性決定領域（ＣＤＲＬ）とを含む軽鎖（Ｌ鎖）；又は上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。例えば、本発明のヒト化抗体のＣＤＲＨの少なくとも１つ及び／又はＣＤＲＬの少なくとも１つが由来する該非ヒト抗体は、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０のハイブリドーマによって産生されるモノクローナル抗体である。
【００１４】
好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）ヒトＦＲＨに由来する少なくとも１つのＦＲＨと、配列番号４、５及び６のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む少なくとも１つのＣＤＲＨ；又は（ｉｉ）ヒトＦＲＬに由来する少なくとも１つのＦＲＬと、配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む少なくとも１つのＣＤＲＬ；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれが、配列番号４、５及び６のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３を含んでいてもよい。あるいは、本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれが、配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を含む。好ましい実施形態では、上述の本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、それぞれ、配列番号４、５、６、１１、１２及び１３のアミノ酸配列を有する、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、ＣＤＲＨ３、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３を含む。あるいは、本発明の該ヒト化抗体又はその抗原結合断片は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２（配列番号１８）によってコードされるヒトＨ鎖の可変領域に由来するＦＲＨ、又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１（配列番号２３）によってコードされるヒトκ−Ｌ鎖の可変領域に由来するＦＲＬを含む。好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体のＦＲＨは、配列番号１９、２０、２１及び２２のアミノ酸配列（それぞれ順に、ＤＡ９８０１０２の対応する部分によってコードされるＦＲＨ１、ＦＲＨ２、ＦＲＨ３及びＦＲＨ４）からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含む。別の好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体のＦＲＬは、配列番号２４、２５、２６及び２７のアミノ酸配列（それぞれ順に、Ｘ７２４４１の対応する部分によってコードされるＦＲＬ１、ＦＲＬ２、ＦＲＬ３及びＦＲＬ４）からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）配列番号２９のアミノ酸配列を含むＨ鎖可変領域（ＶＨ領域）；又は（ｉｉ）配列番号３１のアミノ酸配列を含むＬ鎖可変領域（ＶＬ領域）；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。最も好ましい実施形態では、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、（ｉ）配列番号３７のアミノ酸配列を含むγ１Ｈ鎖；又は（ｉｉ）配列番号３９のアミノ酸配列を含むκＬ鎖；又は（ｉｉｉ）上記の（ｉ）と（ｉｉ）の両方を含む。
【００１５】
本発明はさらに、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子を提供する。具体的には、本発明は、配列番号４、５及び６からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含むヒト化Ｈ鎖、又は配列番号１１、１２及び１３からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸配列を含むヒト化Ｌ鎖、又は該ヒト化Ｈ鎖と該ヒト化Ｌ鎖の両方をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子を提供する。好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、ＶＨ領域をコードする配列番号２８のヌクレオチド配列、又は配列番号２９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、ＶＬ領域をコードする配列番号３０のヌクレオチド配列、又は配列番号３１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。さらに別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、配列番号２８と３０の両方のヌクレオチド配列を含む。好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、γ１Ｈ鎖をコードする配列番号３６のヌクレオチド配列、又は配列番号３７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、このような単離された核酸分子は、κＬ鎖をコードする配列番号３８のヌクレオチド配列、又は配列番号３９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む。さらに別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、配列番号３６と３８の両方のヌクレオチド配列を含む。別の好ましい具体的な実施形態では、本発明の単離された核酸分子は、更に、例えば、それぞれ、配列番号１０及び１７のアミノ酸配列のようなドナー起源のシグナルペプチド又は異種起源のシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。
【００１６】
本発明はさらに、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片のＨ鎖又はＬ鎖又はその両方をコードするヌクレオチド配列を含むベクター（例えば、発現ベクター）を提供する。このようなベクターでは、本発明のヌクレオチド配列は、１以上の調節エレメントに機能的に連結され得る。本発明のヌクレオチド配列は、ＣＤＲが由来する非ヒトドナー抗体起源のシグナルペプチド、又は異種起源のシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列を含み得る。
【００１７】
さらに、本発明は、本発明の核酸分子（本発明の核酸分子を含むベクターを含む）を含む宿主細胞を提供する。一実施形態では、本発明は、本発明のヒト化Ｈ鎖をコードする第１の核酸分子と、本発明のヒト化Ｌ鎖をコードする第２の核酸分子とを含む単離された宿主細胞を提供するものであり、該第１及び第２の核酸分子は、本発明の生物学的に機能的なヒト化抗体又はその抗原結合断片が発現されるように、それぞれが調節エレメントに機能的に連結されている。
【００１８】
したがって、本発明はさらに、ヒト化抗体が発現されるような条件下で本発明の宿主細胞を培養することと、及び産生されたヒト化抗体を回収することとを含む、本発明のヒト化抗体の調製方法を提供する。
【００１９】
本発明はさらに、本発明のヒト化抗体の少なくとも１つを含む組成物を提供する。さらに、本発明は、本発明のヒト化抗体の少なくとも１つと薬学的に許容される担体とを含む、α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防又は治療するための薬学的組成物を提供する。前記のいずれの組成物も、当該障害又は疾患を相加的に又は相乗的に改善することができる別の活性物質をさらに含むことができる。このような活性物質としては、これに限定されるものではないが、抗炎症化合物、化学療法剤等や、抗体又はその抗原結合断片（例えば、ヒトα４インテグリンに免疫特異的に結合することができる抗体）が挙げられる。
【００２０】
別の態様では、本発明は、α９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する疾患又は障害を予防又は治療する方法であって、予防に有効な量又は治療に有効な量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つをそれを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。このような使用のために、本発明のヒト化抗体はヒト化抗体の生物学的効果を増強する治療的成分と結合していてもよい。このような治療的成分の例としては、（例えば、二重特異性抗体を形成するための）抗α４抗体等の別の抗体、細胞増殖抑制性もしくは細胞破壊性の細胞毒素、放射性元素、及び／又は抗炎症剤、抗生物質等を含む他の治療剤が挙げられる。
【００２１】
さらに別の態様では、本発明は、対象におけるα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する疾患又は障害を診断する方法であって、診断に有効な量の本発明のヒト化抗体を検査対象に投与することを含む方法を提供する。このような診断への使用のために、本発明のヒト化抗体を放射性元素等の検出可能なマーカーで標識してもよい。
【００２２】
３．１．定義
本明細書で使用する場合、「抗体」という用語は、例えば、α９インテグリン等の所望の抗原に免疫特異的に結合可能な抗体分子を指し、完全な抗体分子、又は抗原結合断片を含む抗体分子の断片を包含する。
【００２３】
本明細書で使用される「免疫特異的に認識する」という用語は、標的ポリペプチド又はタンパク質、特にヒトα９インテグリンに特異的に結合する、抗体又はその抗原結合断片の能力を指す。このような抗体は、他のポリペプチド又はタンパク質に非特異的に結合しない。しかしながら、標的ポリペプチド又はタンパク質（例えば、ヒトα９インテグリン）に免疫特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、他の抗原と交差反応してもよい。例えば、ヒトα９インテグリンを免疫特異的に認識する本発明のヒト化抗体又は抗原結合断片は、例えば、他の種のα９インテグリンと交差反応してもよい。好ましくは、ヒトα９インテグリンと免疫特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、他の抗原と交差反応しない。
【００２４】
本明細書で使用される「抗原結合断片」という用語は、標的ポリペプチド又はタンパク質、特に、ヒトα９インテグリン及び／又は非ヒトα９インテグリンと免疫特異的に結合する能力を保持する抗体の任意の断片を指し、単鎖抗体、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）２断片、ジスルフィド結合Ｆｖ、並びに標的ポリペプチド又はタンパク質と特異的に結合する軽鎖（ＶＬ）の可変領域及び／又は重鎖（ＶＨ）の可変領域又は相補性決定領域（ＣＤＲ）を含有する断片を含む。したがって、ヒト化抗体のこのような抗原結合断片には、部分的又は全長のヒト定常領域が含まれていても、含まれていなくてもよい。上記の抗体断片を得るための様々な方法が当該技術分野で周知である。
【００２５】
本明細書で使用される「ヒト源に由来する」又は「非ヒト源に由来する」という用語は、抗体の一部であってそのアミノ酸配列がヒト抗体又は非ヒト抗体の対応する部分に由来する部分を指す。
【００２６】
本明細書で使用される「アクセプター配列」という用語は、通常、非ヒト抗体であるドナー抗体由来のＣＤＲのアクセプターとして働く、ヒト抗体ＶＨ領域又はＶＬ領域に由来するフレームワーク領域のヌクレオチド配列又はアミノ酸配列を指す。
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】抗ヒトα９インテグリン抗体（本発明の２つのクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ及びＭ３５Ａ）、５つの他のクローン（１Ｋ１１、２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６、及び２８Ｓ１）、並びにＹ９Ａ２）の細胞接着阻害活性を、ヒトα９インテグリン発現細胞（ヒトメラノーマ細胞Ｇ３６１）とＯＰＮ α９インテグリン結合部位ペプチド（ＳＶＶＹＧＬＲ）とを用いて測定した実験の結果を示す図である。ヒトオステオポンチンに対するモノクローナル抗体（５Ａ１）を陰性対照として使用した。
【図２】抗ヒトα９インテグリン抗体（本発明の２つのクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ及びＭ３５Ａ）、５つの他のクローン（１Ｋ１１、２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６、及び２８Ｓ１）、並びにＹ９Ａ２）の細胞接着阻害活性を、ヒトα９インテグリン発現細胞（ヒトメラノーマ細胞Ｇ３６１）とテネイシン−Ｃ断片のα９インテグリン結合部位ペプチドとを用いて測定した実験の結果を示す図である。ヒトオステオポンチンに対するモノクローナル抗体（５Ａ１）を陰性対照として使用した。
【図３】マウスＫ３３Ｎ ＶＨ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号７）を推定アミノ酸配列（配列番号８）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１０）はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔｓ，第５版，ＮＩＨ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ 第９１−３２４２号，Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。
【図４】マウスＫ３３Ｎ ＶＬ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号１４）を推定アミノ酸配列（配列番号１５）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１７）はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。
【図５】ＳｐｅＩ部位とＨｉｎｄＩＩＩ部位（下線）が両側にあるようにデザインされたＫ３３Ｎ ＶＨ（ＣｈＫ３３Ｎ ＶＨ）遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３２）を推定アミノ酸配列（配列番号８）と共に示す。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１０）はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。イントロン配列をイタリック体で示す。
【図６】ＮｈｅＩ部位とＥｃｏＲＩ部位（下線）が両側にあるようにデザインされたＫ３３Ｎ ＶＬ（ＣｈＫ３３Ｎ ＶＬ）遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３３）を推定アミノ酸配列（配列番号１５）と共に示す。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列（配列番号１７）はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列を下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図７】ｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３Ｎ（総称して発現ベクターという）の模式的構造を示す図である。プラスミドは、一番上のＳａｌＩ部位から時計回りに、抗体重鎖遺伝子の転写を開始するためのヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）主要前初期プロモーター及びエンハンサー（ＣＭＶプロモーター）から始まる重鎖転写ユニットを含有している。ＣＭＶプロモーターに続いて、ＶＨエキソンと、ＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３のエキソンが介在イントロンと共に含まれるヒトγ１重鎖定常領域を含有するゲノム配列とがあり、ＣＨ３に続いてｍＲＮＡのプロセッシングのためのγ１遺伝子のポリアデニル化部位がある。重鎖遺伝子配列の後、軽鎖転写ユニットがＣＭＶプロモーターから始まり、続いてＶＬエキソンと、ヒトκ鎖定常領域エキソン（ＣＬ）をその前にあるイントロンの一部と共に含有するゲノム配列、及びκ遺伝子のポリＡシグナルがある。次に、軽鎖遺伝子に続いて、ＳＶ４０初期プロモーター（ＳＶ４０プロモーター）と、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子（ｇｐｔ）と、ＳＶ４０ポリアデニル化部位（ＳＶ４０ポリ（Ａ）部位）を含有する部分とがある。最後に、プラスミドは、細菌の複製起点（ｐＵＣ ｏｒｉ）とβ−ラクタマーゼ遺伝子（β−ラクタマーゼ）とを含むプラスミドｐＵＣ１９の一部を含有する。
【図８】Ｋ３３Ｎ ＶＨ（配列番号９）、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＨ（配列番号２９）並びにＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来する、ヒトアクセプター配列のＦＲＨ１（配列番号１９）、ＦＲＨ２（配列番号２０）、ＦＲＨ３（配列番号２１）及びＦＲＨ４（配列番号２２）のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。配列の上にある数字は、Ｋａｂａｔら（１９９１）による位置を示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）によって定義されたＣＤＲ配列は下線で示す。二重下線が付された残基はＣＤＲと接触すると予想され、ヒト化型においてはこれらの位置のマウス残基は保持された。ヒトＶＨ配列のこの位置では非典型的であるＤＡ９８０１０２の８２番目のＭｅｔ（下線）を典型的な残基Ｌｅｕと置き換えて、潜在的免疫原性を減らした。ＤＡ９８０１０２中のＣＤＲ残基はこの図では省略されている。
【図９】Ｋ３３Ｎ ＶＬ（配列番号１６）、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＬ（配列番号３１）並びにＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来する、ヒトアクセプター配列のＦＲＬ１（配列番号２４）、ＦＲＬ２（配列番号２５）、ＦＲＬ３（配列番号２６）及びＦＲＬ４（配列番号２７）のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。配列の上にある数字は、Ｋａｂａｔら（１９９１）による位置を示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）によって定義されたＣＤＲ配列は下線で示す。二重下線が付された残基はＣＤＲと接触すると予想され、ヒト化型においてはこれらの位置のマウス残基は保持された。Ｘ７２４４１中のＣＤＲ残基はこの図では省略されている。
【図１０】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。
【図１１】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。
【図１２】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。矢印は、各々のオリゴヌクレオチドの位置と方向（５’から３’）を表す。ＶＨ領域（配列番号２９）のアミノ酸残基は一文字表記で示す。
【図１３】ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子の構築に使用されたオリゴヌクレオチドを示す図である。矢印は、各々のオリゴヌクレオチドの位置と方向（５’から３’）を表す。ＶＬ領域（配列番号３１）のアミノ酸残基は一文字表記で示す。
【図１４】ＳｐｅＩ部位とＨｉｎｄＩＩＩ部位（下線）が両側にある、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３４）を、シグナルペプチド（配列番号５８；イタリック体で示す）及びＶＨ領域（配列番号２９）の推定アミノ酸配列と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列はイタリック体で示す。成熟ＶＨのＮ末端アミノ酸残基（Ｑ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列は下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図１５】ＮｈｅＩ部位とＥｃｏＲＩ部位（下線）が両側にある、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子のヌクレオチド配列（配列番号３５）を、シグナルペプチド（配列番号５９；イタリック体で示す）及びＶＬ領域（配列番号３１）の推定アミノ酸配列と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。シグナルペプチド配列はイタリック体で示す。成熟ＶＬのＮ末端アミノ酸残基（Ｄ）は二重下線で示す。Ｋａｂａｔら（１９９１）の定義によるＣＤＲ配列は下線で示す。イントロン配列はイタリック体で示す。
【図１６】キメラＫ３３Ｎ抗体とヒト化Ｋ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンに対する親和性の比較を示す。１μｇ／ｍＬ及び０．５μｇ／ｍＬのキメラＫ３３Ｎ及びヒト化Ｋ３３ＮのＣＨＯ／α９細胞への結合を細胞ＥＬＩＳＡで調べた。実験は３重で実施した。吸光度の平均値を標準誤差と共に示す図である。
【図１７】ＨｕＫ３３Ｎ重鎖及び軽鎖ｃＤＮＡのＰＣＲ増幅及び配列決定に使用したオリゴヌクレオチドの配列（配列番号４４〜５０）を示す。
【図１８】ｐＨｕＫ３３Ｎ中のＨｕＫ３３Ｎ γ１重鎖のコード領域のヌクレオチド配列（配列番号３６）を推定アミノ酸配列（配列番号３７）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。終止コドンは「・」で示す。
【図１９】ｐＨｕＫ３３Ｎ中のＨｕＫ３３Ｎ κ軽鎖のコード領域のヌクレオチド配列（配列番号３８）を推定アミノ酸配列（配列番号３９）と共に示す図である。アミノ酸残基は一文字表記で示す。終止コドンは「・」で示す。
【図２０】精製抗体のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析の結果を示す図である。６μｇのキメラＩｇＧ１／κ抗体及びヒト化ＩｇＧ１／κ抗体（それぞれ、ＣｈＫ３３Ｎ及びＨｕＫ３３Ｎという）を、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，第２版，１９８９，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ）に従って、還元条件下、ＳＤＳ存在下の１０％ポリアクリルアミドゲル上で泳動させた。広域タンパク質マーカー（ＭＷ；Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ，Ｉｐｓｗｉｃｈ，ＭＡ）をサイズマーカーとして使用した。右側に示す数字は、マーカーのサイズをキロダルトン（ｋＤａ）単位で示す。
【図２１】ヒトα９インテグリンに対するマウスＫ３３Ｎ抗体の結合をＦＡＣＳ解析した結果を示す図である。１．６７μｇ／ｍＬから連続的に３倍希釈した様々な濃度のマウスＫ３３Ｎ抗体について、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合を試験した。図中、試験した各々の抗体濃度（Ｘ軸）における、幾何平均チャンネル蛍光値（ＭＣＦ；Ｙ軸）がプロットされている。ＥＣ５０値を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて算出した。
【図２２】ヒトα９インテグリンに対するキメラＫ３３Ｎ抗体とヒト化Ｋ３３Ｎ抗体の結合をＦＡＣＳ解析した結果を示す図である。５μｇ／ｍｌから連続３倍希釈した様々な濃度の各抗体について、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合を試験した。図中、試験した各々の抗体濃度（Ｘ軸）における、幾何平均チャンネル蛍光値（ＭＣＦ；Ｙ軸）がプロットされている。ＥＣ５０値を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて算出した。
【図２３】ヒトα９インテグリンに対するマウスＫ３３Ｎ抗体、キメラＫ３３Ｎ抗体及びヒト化Ｋ３３Ｎ抗体、並びにマウス抗ヒトα９インテグリン抗体Ｙ９Ａ２の細胞接着阻害率の用量依存性を示す図である。各抗体を５、１、０．２、０．０４、０．００８及び０．００１６μｇ／ｍＬの濃度で、ヒトα９インテグリン発現細胞株Ｇ−３６１の細胞接着について試験した。実験は４重で実施した。平均阻害率の値を図に示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
５．１．ヒトα９インテグリンに対する抗体の調製
ヒトα９インテグリン又はその任意のエピトープを免疫特異的に認識する抗体は、当該技術分野で公知の任意の好適な方法により作製することができる。
【００２９】
本発明において抗原として使用されるα９インテグリンは、（１）α９インテグリンを発現するヒト由来の全ての細胞、もしくはこれらの細胞が存在する全ての組織から得られるタンパク質、（２）α９インテグリンをコードする遺伝子ＤＮＡ、好ましくはｃＤＮＡが、細菌、酵母、細胞株（動物細胞を含む）等に導入され、発現された、組換えタンパク質、又は（３）合成タンパク質であってもよい。
【００３０】
α９インテグリンには、ヒトα９インテグリン（配列番号５５、ここで、１〜２９番目の残基はシグナルペプチドである）のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を含むポリペプチドが含まれる。
【００３１】
本明細書中、「実質的に同一のアミノ酸配列を含むポリペプチド」という用語は、天然のヒトα９インテグリンと実質的に同等の生物学的特性を有する限り、複数のアミノ酸、好ましくは１〜１０個のアミノ酸、より好ましくは１〜数個（例えば、１〜５個）のアミノ酸が置換され、欠失し及び／又は改変されたアミノ酸配列を含む変異体ポリペプチド；並びに複数のアミノ酸、好ましくは１〜１０個のアミノ酸、より好ましくは１〜数個（例えば、１〜５個）のアミノ酸が天然のヒトα９インテグリンのアミノ酸配列に付加されたアミノ酸配列を含む変異体ポリペプチドを意味する。さらに、変異体ポリペプチドは、これらのアミノ酸置換、欠失、改変及び付加の複数を有するものであってもよい。
【００３２】
本発明における抗原としてのヒトα９インテグリンは、当該技術分野で周知の方法により産生することができ、例えば、遺伝子組換え技術の他、化学合成法、細胞培養法等、又はそれらの変法により産生することができる。
【００３３】
変異体ポリペプチドを産生する方法の例としては、合成オリゴヌクレオチド部位特異的突然変異生成（ギャップ二重鎖法）、亜硝酸又は亜硫酸処理によってランダムに点突然変異を導入することを含む点突然変異生成法、Ｂａｌ３１酵素又は他の酵素を用いて欠失突然変異を調製することを含む方法、カセット突然変異生成、リンカースキャニング法、ミス組込み法、ミスマッチプライマー法、ＤＮＡ断片合成法等が挙げられる。
【００３４】
本発明において抗原として使用されるヒトα９インテグリンは、該α９インテグリンの「一部」も含む。本明細書において、「一部」とは、α９インテグリンのリガンド、例えば、ＯＰＮ、ＶＣＡＭ−１、テネイシン−Ｃ等との結合に必要な領域を含む部分；特には、成熟ヒトα９インテグリン（配列番号５５の３０番目から１０３５番目までのアミノ酸残基）の、１４番目から９８０番目までのアミノ酸残基を含む部分、及び１１番目から９８１番目までのアミノ酸残基を含む部分を指す。該α９インテグリンの「一部」は、以下に記載する当該技術分野で公知の方法に従って、遺伝子組換えもしくは化学合成、又はそれらの変法によって産生することができ、あるいは、細胞培養法より単離されたヒトα９インテグリンをタンパク質分解的酵素等で適当に消化することによって産生することができる。
【００３５】
抗原として、細胞膜上にα９インテグリンを過剰発現する細胞それ自体、又はその膜画分を使用することもできる。ヒトα９インテグリンを過剰発現する細胞は、当該技術分野で周知の組換えＤＮＡ技術によって調製することができる。
【００３６】
上記のように調製された適当な抗原を用いて、ヒトα９インテグリン又は任意のそのエピトープに特異的な抗体を、当該技術分野で周知の様々な方法によって調製することができる。ヒトα９インテグリンに対するポリクローナル抗体は、当該技術分野で周知の様々な手順によって産生することができる。例えば、目的の抗原を、これに限定するものではないが、ウサギ、マウス、ラット等を含む様々な宿主動物に投与し、抗原に特異的なポリクローナル抗体を含有する抗血清の産生を誘導することができる。宿主の種に応じて、様々なアジュバントを用いて免疫学的応答を増大させてもよい。アジュバントとしては、フロイント（完全及び不完全）アジュバント、水酸化アルミニウム等の鉱物ゲル、リゾレシチン等の表面活性物質、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、オイルエマルジョン、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、並びに潜在的に有用なヒト用のアジュバント（例えば、ＢＣＧ（カルメット・ゲラン桿菌）及びコリネバクテリウム・パルブム）が挙げられるが、これらに限定されるものではない。このようなアジュバントも当該技術分野において周知である。
【００３７】
モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ、組換え体及びファージディスプレイ技術、又はそれらの組合せを用いる方法を含む、当該技術分野で公知の多種多様な技術を用いて調製することができる。例えば、モノクローナル抗体は、当該技術分野で公知であり、また、例えば、Ｈａｒｌｏｗら，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，第２版．１９８８）；Ｈａｍｍｅｒｌｉｎｇ，ｅｔ ａｌ．，：Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｔ−Ｃｅｌｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ，５６３−６８１ページ（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８１）（両文献は参照により本明細書に組み込まれる）等に教示されている技術を含む、ハイブリドーマ技術を用いて産生することができる。本明細書で使用される「モノクローナル抗体」という用語は、ハイブリドーマ技術によって産生される抗体に限定されるものではない。「モノクローナル抗体」という用語は、任意の真核生物、原核生物、又はファージクローンを含む、単一のクローンに由来する抗体を指すものであり、それが産生される方法を指すものではない。
【００３８】
ハイブリドーマ技術を用いた特異的抗体の産生及びスクリーニングする方法は、当該技術分野においてルーチンで行われておりかつ周知である。非限定的な例としては、マウスを目的の抗原又はそのような抗原を発現する細胞で免疫化することができる。免疫応答が検出されれば、例えば、抗原に特異的な抗体がマウス血清中に検出されれば、マウス脾臓を摘出し、脾細胞を単離する。その後、脾細胞を周知の技術により任意の好適なミエローマ細胞（例えば、Ｐ３Ｕ１、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−Ｕ１、Ｐ３ＮＳ１−Ａｇ４、ＳＰ２／０−Ａｇ１４、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−６５３等）に融合させる。ハイブリドーマを選択し、限界希釈によりクローニングする。その後、ハイブリドーマクローンを、当該技術分野で公知の方法により、抗原に結合することができる抗体を分泌する細胞についてアッセイする。通常高レベルの抗体を含有する腹水は、陽性のハイブリドーマクローンをマウスの腹腔内に接種することにより作製することができる。
【００３９】
特異的エピトープを認識する抗体断片は、公知の技術により作製することができる。例えば、Ｆａｂ及びＦ（ａｂ’）２断片は、免疫グロブリン分子をパパイン（Ｆａｂ断片を産生するため）又はペプシン（Ｆ（ａｂ’）２断片を産生するため）等の酵素を用いてタンパク質分解切断させることにより産生することができる。Ｆ（ａｂ’）２断片は、完全な軽鎖と、重鎖の可変領域、ＣＨ１領域及びヒンジ領域とを含有する。
【００４０】
本発明の抗体又はその抗原結合断片は、抗体の合成について当該技術分野で知られている任意の方法により、具体的には、化学合成又は好ましくは、組換え発現技術により産生することもできる。
【００４１】
抗体をコードするヌクレオチド配列は、当業者が利用可能な任意の情報から（すなわち、ＧｅｎＢａｎｋ、文献から、又は日常的なクローニング及び配列解析により）取得することができる。特定の抗体又はそのエピトープ結合断片をコードする核酸を含有するクローンが入手できず、抗体分子又はそのエピトープ結合断片の配列が知られている場合、免疫グロブリンをコードする核酸は、化学合成、あるいは、抗体配列の５’末端にハイブリダイズ可能な合成プライマーを用いたＰＣＲ増幅によって、又は、抗体をコードするｃＤＮＡライブラリー由来のｃＤＮＡクローン等を同定するための特定の遺伝子配列に特異的なオリゴヌクレオチドプローブを用いたクローニングによって、好適な供給源（例えば、抗体ｃＤＮＡライブラリー、又は、例えば、抗体を発現する選択されたハイブリドーマ細胞等の抗体を発現する任意の組織もしくは細胞から作製されたｃＤＮＡ、又はそのような組織若しくは細胞から単離された核酸、好ましくはポリＡ＋ ＲＮＡ）から取得し得る。その後、ＰＣＲで生成した増幅核酸を、当該技術分野で周知の任意の方法を用いて、複製可能なクローニングベクターにクローニングすることができる。
【００４２】
５．２．組換え抗体の調製
抗体のヌクレオチド配列決定後、抗体のヌクレオチド配列を、ヌクレオチド配列の操作に関する当該技術分野で周知の方法、例えば、組換えＤＮＡ技術、部位特異的突然変異誘発法、ＰＣＲ等（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら．，前記；及びＡｕｓｕｂｅｌら．，編，１９９８，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，ＮＹに記載されている技術を参照。両文献とも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。）を用いて操作して、例えば、抗体のエピトープ結合ドメイン領域又は抗体の生物学的活性を増強しもしくは低下させ得る抗体の任意の部分にアミノ酸の置換、欠失、及び／又は挿入を導入することにより、様々なアミノ酸配列を有する抗体を作製することができる。
【００４３】
抗体の組換え発現には、抗体をコードするヌクレオチド配列を含有する発現ベクターの構築が必要である。抗体分子又は抗体の重鎖もしくは軽鎖、あるいはそれらの一部をコードするヌクレオチド配列が得られた後、前記節に記載されたように当該技術分野で周知の技術を用いた組換えＤＮＡ技術により抗体分子を産生するためのベクターを産生することができる。当業者に周知の方法を用いて、抗体コード配列と適当な転写及び翻訳制御シグナルとを含有する発現ベクターを構築することができる。これらの方法としては、例えば、インビトロ組換えＤＮＡ技術、合成技術、及びインビボ遺伝子組換えが挙げられる。抗体の重鎖可変領域、軽鎖可変領域、重鎖と軽鎖の両方の可変領域、重鎖及び／又は軽鎖可変領域のエピトープ結合断片、あるいは１以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードするヌクレオチド配列を、このような発現用ベクターにクローニングすることができる。このような配列を、基となる抗体に由来するシグナルペプチド又は異種シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと融合させることができる。その後、このように調製された発現ベクターは、抗体を発現させるための適当な宿主細胞に導入することができる。したがって、本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片をコードするポリヌクレオチドを含有する宿主細胞を含む。
【００４４】
宿主細胞に、重鎖由来のポリペプチドをコードする第１のベクターと軽鎖由来のポリペプチドをコードする第２のベクターの本発明の２つの発現ベクターをコトランスフェクトしてもよい。この２つのベクターは、重鎖ポリペプチドと軽鎖ポリペプチドが同等に発現することを可能にする同一の選択マーカーを有していてもよいし、又は両方のプラスミドの維持を確実にするための異なる選択マーカーを含有していてもよい。あるいは、重鎖と軽鎖の両方のポリペプチドをコードし、それらを発現することができる単一のベクターを使用してもよい。重鎖及び軽鎖のコード配列は、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡのいずれを含んでいてもよい。
【００４５】
別の実施形態では、抗体は、当該技術分野で公知の様々なファージディスプレイ法を用いて作製することもできる。ファージディスプレイ法では、機能的抗体ドメインが、それらをコードするポリヌクレオチド配列を担持するファージ粒子の表面上に提示される。具体的な実施形態では、このようなファージを、レパートリー又はコンビナトリアル抗体ライブラリー（例えば、ヒト又はマウス）により発現される抗原結合ドメイン（例えば、Ｆａｂ及びＦｖ又はジスルフィド結合安定化Ｆｖ）を提示させるために利用することができる。目的の抗原に結合する抗原結合ドメインを発現するファージは、例えば、標識された抗原又は固体表面もしくはビーズに結合もしくは捕捉された抗原を用いて、抗原で選択又は同定することができる。これらの方法で使用されるファージは、典型的には、ｆｄ及びＭ１３を含む繊維状ファージである。抗原結合ドメインは、ファージ遺伝子ＩＩＩ又は遺伝子ＶＩＩＩタンパク質のいずれかに融合された組み換えタンパク質として発現される。本発明の免疫グロブリン、又はその断片を作製するために使用することができるファージディスプレイ法の例としては、Ｂｒｉｎｋｍａｎら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１８２：４１−５０，１９９５；Ａｍｅｓら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１８４：１７７−１８６，１９９５；Ｋｅｔｔｌｅｂｏｒｏｕｇｈら，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２４：９５２−９５８，１９９４；Ｐｅｒｓｉｃら，Ｇｅｎｅ，１８７：９−１８，１９９７；Ｂｕｒｔｏｎら，Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，５７：１９１−２８０，１９９４；ＰＣＴ出願ＰＣＴ／ＧＢ９１／０１１３４号；ＰＣＴ公開公報ＷＯ９０／０２８０９号；ＷＯ９１／１０７３７号；ＷＯ９２／０１０４７号；ＷＯ９２／１８６１９号；ＷＯ９３／１１２３６号；ＷＯ９５／１５９８２号；ＷＯ９５／２０４０１号；並びに米国特許第５，６９８，４２６号；第５，２２３，４０９号；第５，４０３，４８４号；第５，５８０，７１７号；第５，４２７，９０８号；第５，７５０，７５３号；第５，８２１，０４７号；第５，５７１，６９８号；第５，４２７，９０８号；第５，５１６，６３７号；第５，７８０，２２５号；第５，６５８，７２７号；第５，７３３，７４３号及び第５，９６９，１０８号に開示されているものが挙げられ、これらは各々、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【００４６】
上述の参考文献に記載されているように、ファージ選択の後、ファージ由来の抗体コード領域を単離し、例えば、以下で詳細に記載するように、ヒト抗体を含む完全抗体、又は任意の他の所望の断片を作製するために使用し、哺乳動物細胞、昆虫細胞、植物細胞、酵母、及び細菌を含む任意の所望の宿主で発現させることができる。例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’及びＦ（ａｂ’）２断片を産生する組換え技術を、例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９２／２２３２４号；Ｍｕｌｌｉｎａｘら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１２（６）：８６４−８６９，１９９２；及びＳａｗａｉら，ＡＪＲＩ，３４：２６−３４，１９９５；及びＢｅｔｔｅｒら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４０：１０４１−１０４３，１９８８に開示された方法（各々、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）等の当該技術分野で公知の方法を用いて採用することもできる。単鎖Ｆｖ及び抗体を産生することができる技術の例としては、米国特許第４，９４６，７７８号及び第５，２５８，４９８号；Ｈｕｓｔｏｎら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２０３：４６−８８，１９９１；Ｓｈｕら，ＰＮＡＳ，９０：７９９５−７９９９，１９９３；並びにＳｋｅｒｒａら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４０：１０３８−１０４０，１９８８に記載されているものが挙げられる。
【００４７】
本発明の抗体分子は、上述の任意の方法で産生後、免疫グロブリン分子の精製に関する当該技術分野で公知の任意の方法によって、例えば、クロマトグラフィー（例えば、イオン交換、アフィニティ、具体的には、プロテインＡもしくはプロテインＧ精製後の特異的抗原に対するアフィニティ、及びサイズ分離カラムクロマトグラフィー）、遠心分離、示差溶解度、又はタンパク質の精製のための任意の他の標準的な技術によって精製することができる。また、本発明の抗体又はその断片は、精製を容易にするため、本明細書に記載の又は当該技術分野で公知の異種ポリペプチド配列と融合させてもよい。
【００４８】
ヒトでの抗体のインビボ使用及びインビトロ検出アッセイを含む、いくつかの用途のために、キメラ、ヒト化又はヒト抗体を使用することが好ましい場合がある。キメラ抗体及びヒト化抗体は、下記の第５．３節で詳細に説明されている。
【００４９】
他の化合物又は異種ポリペプチドと融合しているか又はコンジュゲートしている抗体は、インビトロでのイムノアッセイ、精製方法（例えば、アフィニティクロマトグラフィー）、及びインビボでの治療的又は診断的用途で利用することができる。例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９３／２１２３２号；欧州特許第４３９，０９５号；Ｎａｒａｍｕｒａら，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．，３９：９１−９９，１９９４；米国特許第５，４７４，９８１号；Ｇｉｌｌｉｅｓら，ＰＮＡＳ，８９：１４２８−１４３２，１９９２；及びＦｅｌｌら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４６：２４４６−２４５２，１９９１を参照（これらは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）。例えば、抗体は、既知の方法又は市販のキット（例えば、ビオチン標識、ＦＩＴＣ標識、ＡＰＣ標識）を用いて様々な方法で標識することができる。他の例として、抗体は、インビボでの抗体の生物学的効果を増強する治療成分とコンジュゲートしていてもよい。このような治療成分の例としては、他の抗体、細胞増殖抑制性もしくは細胞破壊性の細胞毒素、放射性元素、及び／又は抗炎症剤、抗生物質等を含む他の治療剤が挙げられる。本発明において、ヒト化抗ヒトα９インテグリンは、抗α４抗体等の別の抗体とコンジュゲートして（例えば、二重特異性抗体を形成して）いてもよい。他の例として、本発明のヒト化抗体は、インビボでの診断的用途のため、例えば、放射性元素等の検出可能なマーカーで標識されていてもよい。
【００５０】
５．３．キメラ抗体及びヒト化抗体
キメラ抗体は、マウスモノクローナル抗体に由来する可変領域とヒト免疫グロブリンに由来する定常領域とを有する抗体等の、抗体の異なる部分が異なる動物種に由来する分子である。キメラ抗体を産生する方法は当該技術分野で公知である。例えば、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２９：１２０２，１９８５；Ｏら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，４：２１４ １９８６；Ｇｉｌｌｉｅｓら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１２５：１９１−２０２，１９８９；米国特許第５，８０７，７１５号；第４，８１６，５６７号；及び第４，８１６，３９７号を参照（これらは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる）。
【００５１】
ヒト化抗体は、所望の抗原に結合する分子であり、非ヒト種に由来する１以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）とヒト免疫グロブリン分子に由来する１以上のフレームワーク領域とを含有する可変領域を含む。非ヒト抗体をヒト化する典型的な方法は、様々な参考文献、例えば、Ｑｕｅｅｎら，１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ８６：１００２９−１００３３、並びに米国特許第５，５８５，０８９号及び第５，６９３，７６２号；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３，１９８８；Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ３６：６９−８３，２００５に記載されており、これらは全て、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。例えば、Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａら（２００５，前記；以後、「Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａ」という）による参考文献は、もともとＱｕｅｅｎら（１９８９，前記）によって開発された抗体ヒト化方法に基づくマウスモノクローナル抗体のヒト化についての実用的かつ有益なプロトコルを提供している。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａに開示されている一般的プロトコルを以下で簡単に説明する。
【００５２】
５．３．１．ヒト化抗体を調製するための一般的プロトコル
マウスＶ遺伝子のクローニング及びシークエンシング
標的マウスモノクローナル抗体のＶＨ領域及びＶＬ領域をコードするｃＤＮＡをクローニングするために様々な方法を利用することができる。例えば、ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ増幅キット（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，ＣＡ）又はＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）を用いた、５’ＲＡＣＥ（ｃＤＮＡ末端の迅速な増幅）法が一般に使用されている。５’ＲＡＣＥの遺伝子特異的プライマーは、Ｈ鎖とＬ鎖の各々の可変領域のすぐ下流に結合することができるように、標的モノクローナル抗体のＨ鎖とＬ鎖のアイソタイプに基づいて調製することができる。したがって、５’ＲＡＣＥプライマーは、γ１、γ２ａ、γ２ｂ又はγ３等の、マウスにおける各々のサブタイプに特異的となるように設計してもよい。あるいは、サブタイプ間のコンセンサス領域又は相同性の高い領域に基づいて全てのサブタイプに共通するプライマーを設計してもよい。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａでは、以下の５’ＲＡＣＥプライマーが例として開示されている：
（ｉ）５’−ＧＣＣＡＧＴＧＧＡＴＡＧＡＣＴＧＡＴＧＧ−（配列番号５６）（マウスγ１、γ２ａ、γ２ｂ及びγ３Ｈ鎖のクローニング用）
（ｉｉ）５’−ＧＡＴＧＧＡＴＡＣＡＧＴＴＧＧＴＧＣＡＧＣ−（配列番号５７）（マウスκ軽鎖のクローニング用）。
【００５３】
ＰＣＲ増幅したＶ遺伝子断片は、例えば、Ｚｅｒｏ Ｂｌｕｎｔ ＴＯＰＯ ＰＣＲクローニングキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と、決定されたＤＮＡ配列とを用いて、プラスミドベクターに直接クローニングすることができる。例えば、得られたＤＮＡ配列がコードするアミノ酸配列を、例えば、Ｍｏｄｅｌ ２４１タンパク質シークエンサー（Ｈｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ，ＣＡ）等を用いたＮ末端アミノ酸シークエンシングによって決定された標的モノクローナル抗体のアミノ酸配列と比較することによって、得られたＤＮＡ配列を確認すべきである。典型的には、例えば、エドマン分解等により、標的抗体のＮ末端の少なくとも１５〜２０アミノ酸残基を決定すれば、クローニングされたＤＮＡ配列の真偽を十分確認することができる。Ｔｓｕｒｕｓｈｉｔａは、マウスにおいて最も一般的な２つのＮ末端アミノ酸の１つであるグルタミンがＮ末端アミノ酸である場合、それがピログルタミンに変換されて、Ｎ末端のシークエンシングを阻止することがあることに注意が必要であるとしている。この場合、配列を得るためにＮ末端のブロックを解除する必要がある。
【００５４】
Ｖ領域の三次元モデリング
ＶＨ領域及びＶＬ領域の配列に基づいて、ＣＤＲの立体構造を維持するために潜在的に重要な標的抗体のフレームワーク残基を、例えば、Ｒ．Ｌｅｖｙら，１９８９，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８：７１６８−７１７５；及びＢ．Ｚｉｌｂｅｒら，１９９０，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２９：１００３２−１００４１に記載されている方法によってまず同定する。典型的には、ＶＨ領域及びＶＬ領域の各々は、１４個の構造的に意味のある部分に分けられ、これらの部分は、免疫グロブリンスーパーファミリーのドメイン構造を含むβ鎖及びループ様構造である。標的抗体由来の各々の部位のアミノ酸配列と、ＰＤＢデータベース中の構造が既知の抗体の対応する部分の配列とを比較する（Ｈ．Ｍ．Ｂｅｒｍａｎら，２０００，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２３５−３４２を参照）。複数の配列を比較することにより、各々の標的部位との配列の相同性が最も高い対応する部分を選択し、Ｖ領域の三次元モデルを構築する。構造を最適化するために、このモデルを、（例えば、ＥＮＣＡＤを用いて、又はＰｒｅｓｓら，１９９０，“Ｎｕｍｅｒｉｃａｌ Ｒｅｃｉｐｅｓ”，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅの記載に従って；Ｗｅｉｎｅｒら，１９８１，Ｊ．Ｃｏｍｐ．Ｃｈｅｍ．２：２８７−３０３に記載されたＡＭＢＥＲ；英国がん研究所が運営するＢｉｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｏｄｅｌｌｉｎｇ、又は“ＢＭＭ”ウェブサイトで入手可能な３Ｄ−ＪＩＧ−ＳＡＷ；又はジェノバにあるスイスバイオインフォマティクス研究所が運営するＥｘＰＡＳｙ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ Ｓｅｒｖｅｒウェブサイトで入手可能なＳＷＩＳＳ−ＭＯＤＥＬによって）、複数回、共役勾配法によりエネルギー最小化を行った。
【００５５】
ヒトフレームワークの選択
Ｖ領域の構造のモデリングと並行して、マウスＶＨ領域及びＶＬ領域のｃＤＮＡクローニングから推定されるアミノ酸配列を、それぞれ、例えば、Ｋａｂａｔデータベース（Ｊｏｈｎｓｏｎら，２０００，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２１４−２１８を参照）、ＧｅｎＢａｎｋ等におけるヒトＶ領域配列と比較する。配列全体でマウス配列と少なくとも約６５％、少なくとも約７０％、少なくとも約７５％、少なくとも約８０％、少なくとも約８５％、少なくとも約９０％、又は少なくとも９５％の相同性のあるヒトフレームワーク領域は、例えば、Ｓｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎアルゴリズム（“Ａｌｇｏｒｉｔｈｍｓ ｏｎ Ｓｔｒｉｎｇｓ，Ｔｒｅｅｓ，ａｎｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ”，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅにおける、Ｇｕｓｆｉｅｌｄ，１９９７）、又はＢＬＡＳＴ（Ｋａｒｌｉｎら，１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ８７：２２６４−２２６８）等を用いて、検索することができる。これらのヒト配列は、ｃＤＮＡに基づく配列及びタンパク質由来の配列のいずれに基づくものであってもよいが、多くの場合、生殖系列の使用がｃＤＮＡに基づく配列、タンパク質由来の配列における体細胞超突然変異と関連する潜在的免疫原性を消失させるのに有用であることから、生殖細胞系列の使用が好ましい。あるいは、Ｑｕｅｅｎら（１９８９，前記）に記載されているように、コンセンサスフレームワーク配列を用いて、ｃＤＮＡに基づく配列又はタンパク質由来の配列から得られたフレームワーク中のそのような超突然変異残基を同定し、除去することもできる。生殖細胞系列のＶＨ部分をアクセプターフレームワークとして使用する場合、第１４番染色体上のＶＨ部分のみが機能的なＶＨ領域を生じさせるので、第１５番及び第１６番染色体ではなく、第１４番染色体上にコードされるＶＨ部分を使用する。
【００５６】
ヒト化Ｖ領域の設計
Ｑｕｅｅｎら（１９８９，前記）によれば、ＣＤＲの約４〜６Åの範囲内にあるフレームワークアミノ酸は、正確なＣＤＲ構造を支持する潜在的に重要なフレームワーク残基であると考えられることから、これらのフレームワークアミノ酸を同定することが必要である。このプロセスは、例えば、米国国立科学財団（ＮＳＦ）が支援するＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ Ｆｒｅｅｗａｒｅウェブサイトで入手可能なＲＡＳＭＯＬ等の原子座標から原子間距離を計算するコンピュータプログラムを用いるか、又は手作業でコンピュータモデルを検査することによって行うことができる。重要なフレームワーク位置のアミノ酸が、マウスドナー配列とヒトアクセプター配列の間で異なる場合、通常ヒト残基をマウスドナー配列で置き換える。しかしながら、このような残基のＣＤＲ構造を支持する上での寄与がわずかである場合、典型的には対応するヒト残基が用いられる。また、選択されたヒトアクセプターが、Ｖ領域配列の約１０〜２０％未満で「非典型的な」アミノ酸を含有する場合、それらは親和性成熟の間の体細胞超突然変異の結果であり得ることから、ヒトにおける潜在的免疫原性を回避するためにドナー残基と置き換えるべきである。
【００５７】
さらに、ヒト化Ｖ領域を設計するために、潜在的なＮ結合型グリコシル化シグナルの残基等の他の因子を注意深く考慮する必要がある（詳細についてはＴｓｕｒｕｓｈｉｔａを参照）。
【００５８】
ヒト化抗体は、治療目的で必要とされ又は消失させられるべきエフェクター機能に応じて、ヒトκもしくはλ軽鎖由来のヒト定常領域もしくはその部分、及び／又はヒト抗体のγ１、γ２、γ３、γ４、μ、α１、α２、δ、もしくはε重鎖、あるいはそれらの変異体を含有していてもよい。例えば、突然変異を有する定常領域のＦｃ部分を、抗体のＦｃ受容体への結合を低下させるため、及び／又は補体を固定する能力を低下させるために、本発明のキメラ抗体又はヒト化抗体の可変領域と融合させてもよい（例えば、Ｗｉｎｔｅｒら、ドイツ特許第２，２０９，７５７号；Ｍｏｒｒｉｓｏｎら、ＷＯ８９／０７１４２号、Ｍｏｒｇａｎら、ＷＯ９４／２９３５１号を参照）。このような抗体分子の操作は、第５．２節に記載の組換えＤＮＡ技術により実施することができる。
【００５９】
好ましくは得られたキメラ抗体又はヒト化抗体は、非ヒトドナー抗体と同じ特異性及び非ヒトドナー抗体の親和性と同等か、又は少なくとも約１／３、少なくとも約１／２、もしくは少なくとも約２／３の親和性を有する。別の態様では、得られたキメラ抗体又はヒト化抗体は、少なくとも約１×１０７Ｍ−１、好ましくは少なくとも約１×１０８Ｍ−１、最も好ましくは少なくとも約１×１０９Ｍ−１の親和定数を有する。
【００６０】
上述の一般的プロトコルに加えて、抗体は、当該技術分野で公知の種々の技術を用いてヒト化することができ、例えば、ＣＤＲグラフティング（欧州特許第２３９，４００号；ＰＣＴ公開公報ＷＯ９１／０９９６７号；米国特許第５，２２５，５３９号；第５，５３０，１０１号及び第５，５８５，０８９号）、ベニアリング（ｖｅｎｅｅｒｉｎｇ）又はリサーフェイシング（ｒｅｓｕｒｆａｃｉｎｇ）（欧州特許第５９２，１０６号；欧州特許第５１９，５９６号；Ｐａｄｌａｎ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２８（４／５）：４８９−４９８，１９９１；Ｓｔｕｄｎｉｃｋａら，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，７（６）：８０５−８１４，１９９４；Ｒｏｇｕｓｋａら，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：９６９−９７３，１９９４）、並びに鎖シャッフリング（米国特許第５，５６５，３３２号）が挙げられ、これらは全てその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【００６１】
５．３．２．ヒト化抗体を医薬品として調製するために更に考慮すべき事項
ヒト化抗体を医薬品として提供するために、効率的で安定的な産生系を調製する必要がある。例えば、Ｈ鎖及びＬ鎖配列を挿入することによってヒト化抗体用の適切な発現ベクターを調製し、この発現ベクターがトランスフェクトされた生産性の高い細胞株をマスター細胞バンク（ＭＣＢ）用の種細胞として得ることができる。マスター細胞バンク（ＭＣＢ）は、ワーキング細胞バンク（ＷＣＢ）の安定的かつ半永久的な供給源として利用される。その後、ＷＣＢ由来のワーキング細胞を培養し、その培養培地を回収することにより、ヒト化抗体を調製することができる。
【００６２】
適当な調節遺伝子を含む様々な発現ベクターを、そのような産生細胞株の調製に用いることができる。哺乳動物タンパク質を発現するために一般に用いられる細胞を宿主細胞としてヒト化抗体の発現に用いることができる。このような宿主細胞としては、これに限定されるものではないが、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ＳＰ２／０−Ａｇ１４．１９細胞、ＮＳＯ細胞等が挙げられる。発現ベクターと宿主細胞の最良の組合せを選択することにより、ヒト化抗体の生産性を最大化することができる。さらに、宿主細胞によるヒト化抗体の発現を最適化するように好適な培地を選択するため、培養培地の組成を様々な無血清培地及び添加物から検討するべきである。
【００６３】
効率と最終的な収率に基づいて、宿主細胞によって産生されたヒト化抗体を、アフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー等を含む、当該技術分野で周知の様々な方法を用いて培養上清から精製することができる。
【００６４】
５．４．医薬組成物及び治療用途
本発明は、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する、上述のヒト化抗体又はその抗原結合断片を含む医薬組成物を提供する。本発明のヒト化抗体を有効成分として含有する医薬組成物は、これに限定されるものではないが、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患等の炎症性疾患を含む、α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防及び／又は治療するための薬剤として用いることができる。
【００６５】
本発明のヒト化抗体を含有する医薬組成物は、臓器移植後の慢性的拒絶、及び、例えば、全身性自己免疫疾患、エリテマトーデス、ブドウ膜炎、ベーチェット病、多発性筋炎、増殖性糸球体腎炎、サルコイドーシス、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の自己免疫疾患を治療するためにも用いることができる。
【００６６】
上述の障害又は疾患を予防又は治療するための、本発明のヒト化抗体を含む予防用及び／又は治療用薬剤は毒性が低く、好適な溶媒中で混合することにより液体調製物として直接、又は適当な剤形の医薬組成物として、ヒトに経口投与又は非経口投与することができる。
【００６７】
上述の投与に用いられる医薬組成物は、前述の抗体又はその塩と薬学的に許容される担体、希釈剤又は賦形剤とを含有する。このような組成物は、経口投与又は非経口投与に好適な剤形で提供される。
【００６８】
投与量は、投与されるべき対象の年齢及び大きさ、標的疾患、状態、投与経路等によって様々に変わり得る。抗体を、例えば、成人患者の関節リウマチ等の予防及び／又は治療に用いる場合、本発明の抗体を、一回当たり通常約０．０１〜約２０ｍｇ／体重ｋｇ、好ましくは約０．１〜約１０ｍｇ／体重ｋｇ、より好ましくは約０．１〜約５ｍｇ／体重ｋｇの用量で、１日におよそ１〜５回、好ましくは１日におよそ１〜３回静脈内投与することが有効である。他の非経口投与及び経口投与では、抗体を前記用量に対応する用量で投与することができる。状態が特に重篤である場合は、その状態によって用量を増加させてもよい。
【００６９】
例えば、リポソーム、マイクロ粒子、マイクロカプセルへの封入、突然変異体ウイルスを発現することができる組換え細胞、受容体を介するエンドサイトーシス等の様々な送達系が知られており、本発明の医薬組成物を投与するために用いることができる（例えば、Ｗｕ ａｎｄ Ｗｕ，１９８７，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９ ４４３２を参照）。投与経路としては、これに限定されるものではないが、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、及び経口経路が挙げられる。化合物は、任意の利用しやすい経路、例えば、注入又はボーラス注射、あるいは上皮又は皮膚粘膜内層（例えば、口腔粘膜、直腸及び腸粘膜等）からの吸収によって投与してもよく、また、他の生物学的に活性のある薬剤と共に投与してもよい。投与は全身性又は局所性のいずれでもよい。例えば、吸入器又はネブライザーとエアロゾル化剤を用いて、経肺投与を採用してもよい。
【００７０】
特定の実施形態では、本発明の医薬組成物を、治療を必要とする部位に局所的に投与することが望ましい場合がある。このような投与は、例えば、これに限定されるものではないが、手術時の局所注入、手術後の創傷包帯と組み合わせ等による局所塗布、注射、カテーテル、坐剤、鼻スプレー、又はインプラントによって行うことができる。前記インプラントは、多孔性、非多孔性、又はゼラチン様の物質からなり、シラスティック膜等の膜、又は繊維を含む。一実施形態では、感染した組織部位（又は、かつて感染組織部位であった部位）への直接注射により投与してもよい。
【００７１】
別の実施形態では、医薬組成物は、小胞、特にリポソーム内で送達することができる（Ｌａｎｇｅｒ，１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７−１５３３；Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ｏｆ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ，Ｌｏｐｅｚ Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｆｉｄｌｅｒ（編），Ｌｉｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，３５３−３６５頁（１９８９）のＴｒｅａｔらの稿；同書，３１７−３２７頁のＬｏｐｅｚ−Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎの稿を参照；一般には同書を参照）。
【００７２】
更に別の実施形態では、医薬組成物は、放出制御系で送達することができる。一実施形態では、ポンプを用いてもよい（Ｌａｎｇｅｒ，前記；Ｓｅｆｔｏｎ，１９８７，ＣＲＣ Ｃｒｉｔ．Ｒｅｆ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｅｎｇ．１４：２０１；Ｂｕｃｈｗａｌｄら，１９８０，Ｓｕｒｇｅｒｙ ８８：５０７；及びＳａｕｄｅｋら，１９８９，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２１：５７４を参照）。別の実施形態では、ポリマー材料を用いることができる（Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ，Ｌａｎｇｅｒ ａｎｄ Ｗｉｓｅ（編），ＣＲＣ Ｐｒｅｓ．，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ，Ｆｌｏｒｉｄａ（１９７４）；Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｂｉｏａｖａｉｌａｂｉｌｉｔｙ，Ｄｒｕｇ Ｐｒｏｄｕｃｔ Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，Ｓｍｏｌｅｎ ａｎｄ Ｂａｌｌ（編），Ｗｉｌｅｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８４）；Ｒａｎｇｅｒ ａｎｄ Ｐｅｐｐａｓ，Ｊ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｓｃｉ．Ｒｅｖ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．２３：６１（１９８３）を参照；また、Ｌｅｖｙら，１９８５，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２８：１９０；Ｄｕｒｉｎｇら．，１９８９，Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．２５：３５１；Ｈｏｗａｒｄら．，１９８９，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．７１：１０５も参照）。さらに別の実施形態では、放出制御系を組成物の標的の近くに置くことができ、それにより全身投与量の一部しか必要としないようにすることができる（例えば、Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ，前記，第２巻，１１５−１３８頁（１９８４）のＧｏｏｄｓｏｎの稿を参照）。他の放出制御系は、Ｌａｎｇｅｒ（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７−１５３３（１９９０））による総説に記載されている。
【００７３】
経口投与用の組成物の例としては、固体又は液体剤形、特に、錠剤（糖衣錠及びフィルムコート錠を含む）、丸薬、顆粒、粉末調製物、カプセル（ソフトカプセルを含む）、シロップ、エマルジョン、懸濁液等が挙げられる。このような組成物は、公知の方法により製造され、薬学的調製の分野で従来から用いられているビヒクル、希釈剤又は賦形剤を含有する。錠剤用のビヒクル又は賦形剤の例としては、ラクトース、デンプン、スクロース、ステアリン酸マグネシウム等が挙げられる。
【００７４】
注射用調製物は、静脈内、皮下、皮内及び筋肉内注射、点滴等のための剤形を含んでいてもよい。これらの注射用調製物は、公知の方法により調製することができる。注射用調製物は、例えば、上述の抗体又はその塩を、従来から注射用に用いられている滅菌水性媒体又は油性媒体中で溶解、懸濁又は乳化させることによって調製してもよい。注射用の水性媒体としては、例えば、生理的食塩水、グルコース及び他の助剤を含有する等張溶液等が挙げられ、これらは、例えば、アルコール（例えば、エタノール）、多価アルコール（例えば、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン性界面活性剤［例えば、ポリソルベート８０、ＨＣＯ−５０（水素化ヒマシ油のポリオキシエチレン（５０モル）付加物）］等の適切な可溶化剤と組み合わせて用いることができる。油性媒体としては、例えば、ゴマ油、大豆油等を利用することができ、これらは、例えば、安息香酸ベンジル、ベンジルアルコール等の可溶化剤と組み合わせて用いることができる。このように調製された注射液は、好ましくは適当なアンプルに充填される。直腸投与に用いられる坐剤は、前述の抗体又はその塩を従来の坐剤用基剤と混合することにより調製することができる。
【００７５】
有効な手段としては、上述の経口又は非経口で使用するための医薬組成物は、有効成分の投与量に合わせるのに適した単位用量からなる剤形で調製する。このような単位投与量からなる剤形としては、例えば、錠剤、丸薬、カプセル、注射液（アンプル）、坐剤等が挙げられる。含有する前述の抗体の量は、通常、単位投与量からなる剤形当たり約５〜５００ｍｇであり；特に、注射液の形態では、前述の抗体を約５〜１００ｍｇ含有することが好ましく、また、他の剤形の場合、約１０〜２５０ｍｇ含有することが好ましい。
【００７６】
上述の各々の組成物は、製剤が上述の抗体との何らかの有害な相互作用を生じさせない限り、他の有効成分をさらに含有していてもよい。
【００７７】
本発明はまた、α９インテグリン結合性機能分子（例えば、ＯＰＮ、ＶＣＡＭ−１、テネイシン−Ｃ、フィブロネクチン、ｐｐ−ｖＷＦ、ｔＴＧ等）を有効成分として含有する細胞及び／又は組織再構築の阻害剤及び／又は促進剤；並びにα９インテグリン発現細胞及び／又は組織（例えば、腫瘍細胞、好中球、平滑筋等）をα９インテグリン結合性機能分子と接触させることを含む、細胞及び／又は組織再構築の阻害方法及び／又は促進方法に関する。このような治療剤中の有効成分の投与量、投与方法、薬学的調製方法等は、本発明のヒト化抗体を含む医薬品に関する前述の記載を参照して適切に決定することができる。
【００７８】
上述のように、本発明は更にα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する障害又は疾患を予防又は治療する方法であって、有効量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つをそれを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。
【００７９】
５．５．診断的使用
本発明のヒト化抗体を含む医薬組成物は、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、癌転移、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫等の炎症性疾患のための診断薬として、又は臓器移植後の慢性的拒絶、及び、例えば、全身性自己免疫疾患、エリテマトーデス、ブドウ膜炎、ベーチェット病、多発性筋炎、増殖性糸球体腎炎、サルコイドーシス、α９インテグリンによって誘導される疾患状態等の自己免疫疾患、並びにその他の疾患ための診断薬として用いることができる。本発明のヒト化抗体は、α９インテグリンを特異的に認識することができることから、被験液中のα９インテグリンの定量に用いることができ、特に、サンドイッチイムノアッセイ、競合アッセイ、イムノメトリー、ネフロメトリー等、免疫染色、又は同様の方法による定量に用いることができる。これらの免疫学的方法を本発明のアッセイ方法に適用する場合には、特別な条件、手順等の説明は必要なく、当該技術分野における通常の技術的検討を従来の条件及び手順に加えてアッセイ系を構築することで十分である。これらの一般的技術手段の詳細は、総説、教科書等を参照することができる。
【００８０】
上述のように、α９インテグリンは、本発明の抗体を用いることにより高感度に定量することができる。本発明のヒト化抗体は、α９インテグリンの定量をインビボで行うことによりα９インテグリンと関連する様々な疾患を診断する上で特に有用である。例えば、α９インテグリンの発現レベルの増加又は減少が検出される場合、対象はα９インテグリンと関連する疾患、例えば、癌もしくは炎症性疾患を患っている可能性が極めて高く、又は将来においてこれらの疾患を患う可能性が極めて高いと診断することができる。したがって、本発明はまた、対象におけるα９インテグリンと関連するか又はα９インテグリンが関与する障害又は疾患を診断する方法であって、有効量の本発明のヒト化抗体の少なくとも１つ又は両方を、それを必要とする対象に投与することを含む方法を提供する。このようなインビボ診断に必要な投与量は、治療用途に必要な投与量よりも少なくてもよく、日常的な手順によって当業者が決定することができる。
【００８１】
本発明のヒト化抗体は、体液等の被験液、組織等に存在するα９インテグリンを特異的に検出するために用いることもできる。ヒト化抗体は、α９インテグリンの精製用の抗体カラムを調製し、精製時の各画分に含まれるα９インテグリンを検出し、又は被験細胞中のα９インテグリンの挙動を解析するために用いることもできる。
【実施例】
【００８２】
６．実施例
以下の実施例では、ヒト及び／又はマウスのα９インテグリンを免疫特異的に認識するモノクローナル抗体の調製、これらのモノクローナル抗体の可変領域の配列決定、及びこれらの抗体の他の特徴、そのような抗体のキメラ化及びヒト化、並びに得られたキメラ抗体及びヒト化抗体の特徴を説明する。これらの実施例は、これに限定するものと解釈されるものではない。
【００８３】
６．１．ヒトα９インテグリンに対するマウス抗体の調製
ヒトα９インテグリンに対するマウスモノクローナル抗体は、サブトラクティブ免疫化法（Ｗｉｌｌｉａｍｓ Ｃ．Ｖ．ら，１９９２，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １２：８４２−８４７による）に従って調製した。簡単には、３匹のＢａｌｂ／ｃマウスに、マウス１匹当たり３×１０６個の、ヒトα９インテグリンを発現するＮＩＨ−３Ｔ３細胞（ヒトα９／ＮＩＨ−３Ｔ３細胞）を腹腔内注射した。注射の１週間後及び２週間後に、マウスに、３×１０６細胞／マウスのヒトα９／ＮＩＨ−３Ｔ３細胞を腹腔内注射し、次いで１週間後に、同じ細胞を２×１０６細胞／マウスでさらに静脈内注射した。ハイブリドーマを当該技術分野で周知の方法により調製した（例えば、Ｈａｒｌｏｗら，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，第２版．１９８８）；Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｔ−ＣｅＩｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ，５６３−６８１頁のＨａｍｍｅｒｌｉｎｇらの稿（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８１）を参照）。ヒトα９インテグリンを発現するヒトα９／ＣＨＯ−Ｋ１細胞及びヒトα９インテグリンを内在性に発現するヒトメラノーマ細胞とは免疫特異的に反応するが、ヒトα４インテグリンを発現するＣＨＯ−Ｋ１細胞とは免疫特異的に反応しないモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローンを樹立し、ヒトα９インテグリンを免疫特異的に認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローン（すなわち、Ｋ３３Ｎ）を単離した。
【００８４】
６．２．抗ヒトα９インテグリン抗体のＣＤＲ解析
モノクローナル抗体（すなわち、Ｋ３３Ｎ）のＣＤＲのアミノ酸配列を、対応するハイブリドーマから抽出したｍＲＮＡを逆転写して、ｃＤＮＡを調製することにより決定した。このｃＤＮＡを鋳型として用いて、Ｈ鎖とＬ鎖の可変領域を、ＳｃＦｖ−クローニングプライマー（Ｌｉｇｈｔ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘ ａｎｄ Ｈｅａｖｙ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘ；Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｏｒｐ．，ＩＬ製）を用いてＰＣＲで伸長させ、増幅させた。このＰＣＲ産物をｐＣＲＩＩ ＴＯＰＯベクターにクローニングし、シークエンシングしてアミノ酸配列を決定した。このプロセスを３回繰り返した。結果を表１に示す。
【００８５】
【表１】
【００８６】
６．３．細胞接着阻害活性
（１）細胞接着は、α９インテグリンのそのリガンド、すなわち、ＯＰＮ、フィブロネクチン、テネイシン−Ｃ、ＶＣＡＭ−１等を含む様々なＥＣＭ、への結合を伴うことが知られていることから、ヒトα９インテグリンを発現する細胞（ヒトメラノーマＧ３６１細胞）のリガンドへの結合を用いることにより、単離された抗ヒトα９インテグリン抗体の細胞接着阻害活性について調べた。
【００８７】
簡単には、ＯＰＮペプチドを、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）−融合ＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２）ペプチドとして調製した。ＴＮ−Ｃ ｆｎ３（ＲＡＡ）は、ヒトテネイシン−Ｃ中のフィブロネクチンタイプＩＩＩ反復の３番目の領域として調製する。このペプチドのＧＲＤ配列は、大腸菌宿主細胞で発現させることによりＲＡＡ配列に置き換えられている。
【００８８】
ＯＰＮペプチド及びテネイシン−Ｃ断片（ＴＮ−Ｃ ｆｎ３（ＲＡＡ））を、９６穴プレートに５μｇ／ｍＬで添加し、３７℃で１時間インキュベートしてプレートにコーティングし、その後、このプレートをブロッキング溶液（０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳ）でブロッキングした。ヒトメラノーマＧ３６１細胞を０．２５％ＢＳＡ／ＤＭＥＭに懸濁し（１×１０５細胞／ｍＬ）、各濃度の抗ヒトα９インテグリン抗体をこの細胞懸濁液に添加した。０．２５％ＢＳＡ／ＤＭＥＭ中のヒトメラノーマＧ３６１細胞（１×１０５細胞／ｍＬ）と抗体の混合物を、９６穴プレートに２００μＬ／穴で添加し、５％ＣＯ２、３７℃で１時間インキュベートした。非接着細胞をＰＢＳで洗い流し、接着細胞を固定し、０．５％クリスタルバイオレット（和光純薬工業，大阪，日本製）／２０％メタノールで染色した。染色された細胞を蒸留水で３回洗浄し、次に、２０％酢酸溶液をそれに添加して、溶解させた。５９０ｎｍの波長におけるＯＤを測定して、接着活性を定量した。陰性対照として抗ヒトＯＰＮモノクローナル抗体（５Ａ１）、陽性対照として以前に調製した抗ヒトα９インテグリン抗体（１Ｋ１１，２１Ｃ５、２４Ｉ１１、２５Ｂ６及び２８Ｓ１）を用いた。
【００８９】
抗ヒトα９インテグリン抗体による、Ｇ３６１細胞のＯＰＮペプチドへの結合に対する効果を図１に示し、テネイシン−Ｃ断片への結合に対する効果を図２に示す。図１に示すように、ＯＰＮが関与する細胞接着は、陽性対照の２１Ｃ５及び２４Ｉ１１と比べて低い濃度のＫ３３Ｎにより阻害され、かつ、Ｙ９Ａ２と同じ濃度のＫ３３Ｎにより阻害された。テネイシン−Ｃが関与する細胞接着は、低濃度のＫ３３Ｎ、かつ、Ｙ９Ａ２と同じ濃度のＫ３３Ｎによって阻害され、この阻害効果は、陽性対照の２１Ｃ５及び２４Ｉ１１よりも著しく強かった。
【００９０】
６．４．非ヒト抗体のヒト化
６．４．１．マウスＫ３３ＮのＶ遺伝子のクローニング及びシークエンシング
マウスＫ３３Ｎハイブリドーマ細胞を、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％胎仔ウシ血清（ＦＢＳ；ＨｙＣｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）を含有するＴＩＬ培地Ｉ（免疫生物研究所，群馬，日本製）中で増殖させた。ＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を用いて製造者のプロトコルに従い、約１０７個のハイブリドーマ細胞から全ＲＮＡを抽出した。オリゴｄＴでプライミングされたｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて製造者のプロトコルに従い合成した。Ｋ３３Ｎの重鎖及び軽鎖の可変領域ｃＤＮＡは、それぞれ、マウスγ１鎖及びκ鎖の定常領域にアニールする３’プライマーと、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキットに含まれるＧｅｎｅＲａｃｅｒ ５’プライマー（５’−ＣＧＡＣＴＧＧＡＧＣＡＣＧＡＧＧＡＣＡＣＴＧＡ−３’）（配列番号５１）とを用いて、Ｐｈｕｓｉｏｎ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）によるポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅させた。重鎖可変領域（ＶＨ）のＰＣＲ増幅には、５’−ＧＣＣＡＧＴＧＧＡＴＡＧＡＣＡＧＡＴＧＧ−３’（配列番号５２）を有する３’プライマーを用いた。軽鎖可変領域（ＶＬ）のＰＣＲ増幅には、５’−ＧＡＴＧＧＡＴＡＣＡＧＴＴＧＧＴＧＣＡＧＣ−３’（配列番号５３）配列を有する３’プライマーを用いた。増幅されたＶＨとＶＬのｃＤＮＡを、配列決定のためにｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にサブクローニングした。可変領域のＤＮＡシークエンシングはＴｏｃｏｒｅ（Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ，ＣＡ）で実施した。いくつかの重鎖及び軽鎖クローンをシークエンシングし、典型的なマウス重鎖及び軽鎖可変領域に相同なユニーク配列を同定した。コンセンサスｃＤＮＡ配列を、Ｋ３３ＮのＶＨ及びＶＬの推定アミノ酸配列と共に、それぞれ、図３及び４に示す。
【００９１】
６．４．２．キメラＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の構築
Ｋ３３Ｎ ＶＨをコードする遺伝子を、Ｋ３３Ｎ ＶＨのｃＤＮＡを鋳型として、５’−ＧＧＧＡＣＴＡＧＴＡＣＣＡＣＣＡＴＧＧＧＡＴＧＧＡＧＣＴＧＧＡＴＣＴＴＴＣＴＣ−３’（下線はＳｐｅＩ部位）（配列番号４０）を５’プライマーとして、５’−ＧＧＧＡＡＧＣＴＴＧＴＴＴＴＡＡＧＧＡＣＴＣＡＣＣＴＧＡＧＧＡＧＡＣＴＣＴＧＡＧＡＣＴＧＧＴＧＣＣ−３’（配列番号４１）（下線はＨｉｎｄＩＩＩ部位）を３’プライマーとして用いてＰＣＲを行うことにより、スプライスドナーシグナルと適当な側面制限酵素部位とを含むエキソンとして生成した（図５）。同様に、Ｋ３３Ｎ ＶＬをコードする遺伝子を、Ｋ３３Ｎ ＶＬのｃＤＮＡを鋳型として、５’−ＧＧＧＧＣＴＡＧＣＡＣＣＡＣＣＡＴＧＡＧＴＧＴＧＣＣＣＡＣＴＣＡＡＣＴＣＣＴＧ−３’（配列番号４２）（下線はＮｈｅＩ部位）を５’プライマーとして、５’−ＧＧＧＧＡＡＴＴＣＴＧＡＧＡＡＧＡＣＴＡＣＴＴＡＣＧＴＴＴＴＡＴＴＴＣＣＡＧＣＴＴＧＧＴＣＣＣＣＣＣ−３’（配列番号４３）（下線はＥｃｏＲＩ部位）を３’プライマーとして用いてＰＣＲを行うことにより、スプライスドナーシグナルと適当な側面制限酵素部位とを含むエキソンとして生成した（図６）。Ｋ３３ＮのＶＨエキソンとＶＬエキソンのスプライスドナーシグナルは、それぞれ、マウス生殖系列ＪＨ４配列とＪκ２配列から得た。ＰＣＲ増幅断片は、ＱＩＡｑｕｉｃｋゲル抽出キット（Ｑｉａｇｅｎ，Ｖａｌｅｎｃｉａ，ＣＡ）を用いてゲル精製し、ＳｐｅＩとＨｉｎｄＩＩＩ（ＶＨの場合）又はＮｈｅＩとＥｃｏＲＩ（ＶＬの場合）で消化し、キメラＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体を産生するために、ヒトγ１定常領域とκ定常領域とを担持する哺乳動物発現ベクターにクローニングした。得られた発現ベクター、ｐＣｈＫ３３Ｎの模式的構造を図７に示す。
【００９２】
６．４．３．ヒト化Ｋ３３Ｎ Ｖ遺伝子の作製
Ｋ３３Ｎ可変領域のヒト化を、Ｑｕｅｅｎら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：１００２９−１００３３，１９８９）に概説されているように実施した。まず、コンピュータプログラムを活用してＫ３３Ｎ可変領域の分子モデルを構築した。次に、ヒト可変領域配列に対する相同性検索に基づいて、ＤＡ９８０１０２（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号）に由来するヒトアミノ酸配列であって、Ｋ３３Ｎ ＶＨに対する高い相同性を有する配列を、ヒト化Ｋ３３Ｎ ＶＨのフレームワークを提供するアクセプターとして選択した。マウスＫ３３ＮのＶＨ領域とＤＡ９８０１０２のＶＨ領域のフレームワークにおけるアミノ酸の同一性は、７４．７％（６５／８７）である。同様に、Ｘ７２４４１（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号）のヒトアミノ酸配列を、Ｋ３３Ｎ ＶＬのヒト化のためのアクセプターとして選択した。マウスＫ３３ＮとＸ７２４４１のＶＬ領域のフレームワークにおけるアミノ酸の同一性は、７６．３％（６１／８０）である。
【００９３】
コンピュータモデルによって相補性決定領域（ＣＤＲ）との顕著な接触が示唆されたフレームワーク位置においては、Ｋ３３Ｎ可変領域由来のアミノ酸をヒトフレームワークアミノ酸の代わりに用いた。２８、４８、６６、６７及び７１番目においてこの操作を行ない、ヒト化Ｋ３３Ｎ（ＨｕＫ３３Ｎ）ＶＨを作製した（図８）。さらに、ヒトＤＡ９８０１０２アクセプターの８２番目のＭｅｔは、ヒトＶＨ配列の同じサブグループでは非典型的であることが判明したことから、最も一般的なアミノ酸残基（Ｌｅｕ）に置き換えて、潜在的免疫原性を減らした。軽鎖については、７０番目と７１番目の残基で置換を行ない、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬを作製した（図９）。Ｋ３３Ｎ、デザインしたＨｕＫ３３Ｎ、及びヒトアクセプターアミノ酸配列のアラインメントを、ＶＨについては図８に、ＶＬについては図９に示す。
【００９４】
ＨｕＫ３３ＮのＶＨとＶＬの各々をコードする遺伝子を、シグナルペプチドと、スプライスドナーシグナルと、後に哺乳動物発現ベクターにクローニングするための適当な制限酵素部位とを含むエキソンとして設計した。ＨｕＫ３３ＮのＶＨエキソンとＶＬエキソンのスプライスドナーシグナルは、それぞれ、ヒト生殖系列ＪＨ４配列とＪκ１配列から得た。マウスＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子のシグナルペプチド配列は、ＳＩＧ−Ｐｒｅｄ シグナルペプチド予測ソフトウェア（ｈｔｔｐ：／／ｂｍｂｐｃｕ３６．ｌｅｅｄｓ．ａｃ．ｕｋ／ｐｒｏｔ＿ａｎａｌｙｓｉｓ／Ｓｉｇｎａｌ．ｈｔｍｌ）によって、正確な切断に準最適であることが示された。そのため、ＳＩＧ−Ｐｒｅｄソフトウェアで効率的かつ正確に切断されると予測された、マウス抗ヒトα９インテグリンモノクローナル抗体２４Ｉ１１（ジーンテクノサイエンス社）のＶＨ遺伝子のシグナルペプチド配列を、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＨ遺伝子で用いた。ヒト化Ｋ３３Ｎ ＶＬエキソン中のシグナルペプチド配列は、対応するマウスＫ３３Ｎ ＶＬ配列から得た。ＳＩＧ−Ｐｒｅｄソフトウェアでは、ＨｕＫ３３Ｎ ＶＬ遺伝子のシグナルペプチドは、効率的かつ正確に切断されると予測された。
【００９５】
ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子を、Ｈｅら（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６０：１０２９−１０３５，１９９８）に概説されているように、ＴｈｅｒｍａｌＡｃｅ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて、いくつかの重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーの伸長とＰＣＲ増幅によって構築した。ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子の構築に用いたオリゴヌクレオチドを、ぞれぞれ、図１０と図１１に示す。ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子におけるこれらのオリゴヌクレオチドの位置を、それぞれ、図１２と図１３に示す。ＰＣＲ増幅断片をＱＩＡｑｕｉｃｋゲル抽出キット（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲル精製し、配列決定のためにｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクターにクローニングした。ＳｐｅＩとＨｉｎｄＩＩＩ（ＶＨの場合）又はＮｈｅＩとＥｃｏＲＩ（ＶＬの場合）で消化した後、ＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子を、ヒトＩｇＧ１／κ形態で産生するための哺乳動物発現ベクター内の対応する部位にサブクローニングした。得られた発現ベクター、ｐＨｕＫ３３Ｎの模式的構造を図７に示す。得られたＨｕＫ３３ＮのＶＨ遺伝子とＶＬ遺伝子のヌクレオチド配列を、推定アミノ酸配列と共に、ぞれぞれ、図１４と図１５に示す。
【００９６】
６．４．４．キメラ及びヒト化Ｋ３３Ｎ ＩｇＧ１／κの一過性発現
キメラ及びヒト化Ｋ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体は、それぞれ、ｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３ＮのプラスミドＤＮＡを、Ｄｕｒｏｃｈｅｒら（Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３０：ｅ９，２００２）に従ってポリエチレンイミンを用いてＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクトすることにより一過性に発現させた。一過性にトランスフェクトされたＨＥＫ２９３細胞は、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥＭ中で４日間維持した。培養上清中のＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の各々の発現レベルをサンドイッチＥＬＩＳＡで測定した。ＥＬＩＳＡプレートは、ＰＢＳ中１／２，０００希釈したヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｆｃγ鎖特異的ポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ，Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ，ＡＬ）を１００μＬ／穴で用いて、４℃で一晩コーティングし、洗浄緩衝液（０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ）で洗浄し、ブロッキング緩衝液（２％スキムミルク及び０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ）を３００μＬ／穴で用いて、室温で１時間ブロッキングした。洗浄緩衝液で洗浄した後、ＥＬＩＳＡ緩衝液（１％スキムミルク及び０．０２５％Ｔｗｅｅｎ ２０を含有するＰＢＳ）で適当に希釈した試料を１００μＬ／穴でＥＬＩＳＡプレートに添加した。ヒトミエローマ血清（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）から精製したヒトＩｇＧ１／κ抗体を標準品として用いた。ＥＬＩＳＡプレートを室温で２時間インキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、１／２，０００希釈したＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ヒトκ鎖ポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を１００μＬ／穴で用いて、結合した抗体を検出した。室温で１時間インキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、１００μＬ／穴のＡＢＴＳ基質（ｂｉｏ ＷＯＲＬＤ，Ｄｕｂｌｉｎ，ＯＨ）を添加して、発色を行なった。１００μＬ／穴の２％シュウ酸を添加して、発色を停止させた。吸光度を４０５ｎｍで測定した。
【００９７】
一過性に発現されたＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合を細胞ＥＬＩＳＡで調べた。表面に組換えヒトα９インテグリンを発現するＣＨＯ−Ｋ１安定トランスフェクタント（ＣＨＯ／ｈｕα９；ジーンテクノサイエンス社提供）を、１０％ＦＢＳを含有する５０μＬのＦ１２／ＤＭＥＭ（ＨｙＣｌｏｎｅ）中２×１０５細胞／穴で９６穴組織培養プレートに播種し、７．５％ＣＯ２インキュベーター内で、３７℃で一晩増殖させた。ヒトα９インテグリンへの結合を検討するために、１０％ＦＢＳを含有するＦ１２／ＤＭＥＭ中のＣｈＫ３３Ｎ、ＨｕＫ３３Ｎ又は無関係なヒトＩｇＧ１／κミエローマ抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）５０μＬを各穴に添加した。４℃で１時間インキュベートし、細胞を氷冷ＰＢＳで２回洗浄した後、１００μＬの１／１，０００希釈したＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を各穴に添加した。４℃で１時間インキュベートした後、細胞を氷冷ＰＢＳで３回洗浄した。発色させるために、１００μＬのＡＢＴＳ基質を添加した。１００μＬの２％シュウ酸を添加して、発色を停止させた。吸光度を４０５ｎｍで測定した。結果から、０．５μｇ／ｍＬと１μｇ／ｍＬの両方において、ＣｈＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合が、ＨｕＫ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合とほぼ同じであることが示された（図１６）。
【００９８】
６．４．５．ＣｈＫ３３Ｎ及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の各々を産生するＮＳ０安定トランスフェクタントの作製
ＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体を安定的に産生する細胞株を得るために、それぞれ、発現ベクターｐＣｈＫ３３Ｎ及びｐＨｕＫ３３Ｎを、マウスミエローマ細胞株ＮＳ０（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅｓ，Ｓａｌｉｓｂｕｒｙ，Ｗｉｌｔｓｈｉｒｅ，ＵＫ）の染色体に導入した。ＮＳ０細胞を、７．５％ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥ培地中で増殖させた。Ｂｅｂｂｉｎｇｔｏｎら（Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：１６９−１７５，１９９２）に記載されているように、エレクトロポレーションによりＮＳ０への安定トランスフェクションを行なった。トランスフェクションの前に、発現ベクターを、ＦｓｐＩを用いて線状化した。約１０７個の細胞を１０μｇの線状化プラスミドでトランスフェクトし、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥ培地に懸濁し、いくつかの９６穴プレートに播種した。２４時間後、選択培地（１０％ＦＢＳ、ＨＴ培地サプリメント（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、０．２５ｍｇ／ｍＬキサンチン及び１μｇ／ｍＬミコフェノール酸を含有するＤＭＥ培地）を添加した。選択を開始してから約１０日後、培養上清をアッセイして抗体産生を調べた。
【００９９】
ＣｈＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体とＨｕＫ３３Ｎ ＩｇＧ１／κ抗体の発現を、基本的には第６．４．３節に記載した手順に従って、サンドイッチＥＬＩＳＡで測定した。高レベルのＣｈＫ３３Ｎ抗体を産生するＮＳ０安定トランスフェクタント（ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１）を、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ ＳＦＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて無血清培地中での増殖に適応させた。高レベルのＨｕＫ３３Ｎ抗体を産生するＮＳ０安定トランスフェクタントは、更に、限界希釈によって９６穴プレートでサブクローニングした。これらのサブクローンのうちの１つ（ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１）をＨｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭ中での増殖に適応させた。ＰＣＲマイコプラズマ検出セット（Ｔａｋａｒａ Ｂｉｏ ＵＳＡ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）を用いた検査により、ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１とＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１の両方について、マイコプラズマの存在が陰性であることが示された。
【０１００】
ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ６Ｄ５−１１により産生されたＨｕＫ３３Ｎの重鎖と軽鎖が正しいかどうかをｃＤＮＡシークエンシングにより確認した。全ＲＮＡを、ＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ６Ｄ５−１１細胞から抽出し、オリゴｄＴでプライミングされたｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＲａｃｅｒキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて製造者のプロトコルに従い合成した。γ１重鎖のコード領域を、ＣＭＶ２及びＪＮＴ０９８（図１７）をプライマーとして用い、Ｐｈｕｓｉｏｎポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）を用いてＰＣＲにより増幅した。ＰＣＲ断片をゲル精製し、ＣＭＶ２、ＪＮＴ０８２、ＪＮＴ０９７及びＪＮＴ０９８をプライマーとして用いてシークエンシングした（図１７）。同様に、κ軽鎖のコード領域を、ＣＭＶ２とＪＮＴ０２６とを用いて増幅した（図１７）。ゲル精製したＤＮＡ断片を、ＣＭＶ２、ＪＮＴ０２６、ＪＮＴ０８０及びＪＮＴ０８４をプライマーとして用いてシークエンシングした（図１７）。ＨｕＫ３３Ｎの重鎖と軽鎖の各々のコード領域の得られたヌクレオチド配列は、ｐＨｕＫ３３Ｎベクター中の対応する配列と完全に一致した（それぞれ、図１８及び図１９）。
【０１０１】
６．４．６．ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の精製
ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１細胞及びＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１細胞をローラーボトル中、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭで枯渇するまで増殖させた。遠心分離及び濾過後、培養上清をプロテイン−Ａセファロースカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）にかけた。カラムをＰＢＳで洗浄後、抗体を０．１Ｍのグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ３．０）で溶出させた。１ＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）で中和後、溶出した抗体の緩衝液を透析によってＰＢＳに変えた。抗体濃度を、２８０ｎｍにおける吸光度を測定して決定した（１ｍｇ／ｍＬ＝１．４ＯＤ）。抗体発現レベルは、ＮＳ０−ＣｈＫ３３Ｎ ３Ｄ１１細胞では５０μｇ／ｍＬ、ＮＳ０−ＨｕＫ３３Ｎ ８Ｇ８−１１細胞では１２μｇ／ｍＬであった。
【０１０２】
精製したＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体を、標準的な手順に従ったＳＤＳ−ＰＡＧＥにより解析した。還元条件下での解析から、ＣｈＫ３３Ｎ抗体及びＨｕＫ３３Ｎ抗体は、各々、分子量約５０ｋＤａの重鎖と分子量約２５ｋＤａの軽鎖から構成されていることが示された（図２０）。各抗体の純度は９５％を上回るようであった。
【０１０３】
６．４．７．ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の特徴付け
マウスＫ３３Ｎ抗体、キメラＫ３３Ｎ抗体、及びヒト化Ｋ３３Ｎ抗体のヒトα９インテグリンへの結合を、ＣＨＯ／ｈｕα９細胞を用いたＦＡＣＳ結合アッセイで調べた。約５×１０５個のＣＨＯ／ｈｕα９細胞／試験を、ＦＡＣＳ結合緩衝液（０．５％ＢＳＡ及び０．０５％ＮａＮ３を含有するＰＢＳ）で洗浄し、様々な量の試験抗体を含有する２００μＬのＦＡＣＳ結合緩衝液に懸濁した。氷上で３０分置いた後、細胞をＦＡＣＳ結合緩衝液で洗浄した。次に、マウスＫ３３Ｎで染色した細胞を、１／２００希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を含むＦＡＣＳ結合緩衝液１００μＬに懸濁した。キメラＫ３３Ｎ又はヒト化Ｋ３３Ｎで染色した細胞は、１／２００希釈したＦＩＴＣ標識ヤギ抗ヒトＩｇＧポリクローナル抗体（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ）を含むＦＡＣＳ結合緩衝液１００μＬに懸濁した。氷上に３０分置いた後、細胞をＦＡＣＳ結合緩衝液で洗浄し、２００μＬのＦＡＣＳ結合緩衝液に懸濁し、ＦＡＣＳｃａｎフローサイトメータ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｌａｋｅｓ，ＮＪ）を用いて解析した。マウスＫ３３Ｎ抗体のＣＨＯ／ｈｕα９細胞への結合のＥＣ５０値は１０４ｎｇ／ｍＬであった（図２１）。ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体の間で、結合パターンは互いによく似ていた（図２２）。さらに、ＣｈＫ３３Ｎ抗体とＨｕＫ３３Ｎ抗体のＥＣ５０値は互いにほぼ同じであった（ＣｈＫ３３Ｎ抗体は１４３ｎｇ／ｍＬ、ＨｕＫ３３Ｎ抗体は１５１ｎｇ／ｍＬ）。この結果は、抗原結合親和性を失わせずに、マウスＫ３３Ｎ抗体をヒト化することに成功したことを示している。
【０１０４】
６．４．８．細胞接着アッセイ
９６穴平底マイクロタイタープレート（Ｎｕｎｃ）を、５０μＬの５μｇ／ｍＬ ｈＴＮＣ（ＡＥＩＤＧＩＥＬ）−ＢＳＡ溶液で、ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で１時間コーティングした。対照穴を、５０μＬの５μｇ／ｍＬ ＢＳＡ溶液でコーティングした。コーティング反応の後、穴中の溶液を２００μＬの０．５ｗ／ｖ％ＢＳＡ（ブロッキング）溶液と交換し、室温で１時間インキュベートした。ブロッキング反応後、穴をＰＢＳで洗浄した。０．２５ｗ／ｖ％ＢＳＡを含有するＴＩＬ培地に懸濁した２．５×１０５細胞／ｍＬのＧ−３６１細胞１５０μＬと、試験抗体溶液（０．２５ｗ／ｖ％ＢＳＡ／ＴＩＬ）５０μＬとをこれらの穴に添加し、３７℃のＣＯ２インキュベーター内で１時間インキュベートした。インキュベート後、非接着細胞を除去するために、各穴をＰＢＳ溶液で３回注意深く洗浄した。５０μＬの０．５ｗ／ｖ％クリスタルバイオレット溶液を添加して、接着細胞を固定及び染色した。３０分後、穴一杯の水で３回洗浄して、余分な色素を除去し、穴中の色素を５０μＬの２０ｖ／ｖ％酢酸で可溶化させた。各穴の５９５ｎｍにおける吸光度を、吸光度計を用いて測定した。細胞接着阻害率は、以下の式；（１−（Ａ−Ｂ）／（Ｃ−Ｂ））×１００（％）により算出した。Ａ：抗体が存在し、ｈＴＮＣ−ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度、Ｂ：いずれの試験抗体も存在しない、ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度、Ｃ：正常ヒトＩｇＧ存在下のｈＴＮＣ−ＢＳＡでコーティングした穴の吸光度（陰性対照）（図２３）。
【０１０５】
結果
Ｙ９Ａ２のＩＣ５０は０．０５３μｇ／ｍＬ（９５％ＣＩ：０．０３２〜０．０８９）であった。Ｋ３３Ｎ、ＣｈＫ３３Ｎ、及びＨｕＫ３３ＮのＩＣ５０は、それぞれ、０．０７５μＭ（０．０５３〜０．１０６）、０．０９０μｇ／ｍＬ（０．０６３〜０．１２８）、０．０８４μｇ／ｍＬ（０．０５５〜０．１２９）であり、試験抗体のＩＣ５０値がＹ９Ａ２のＩＣ５０値と同じレベルにあることを示した。
【０１０６】
７．寄託
マウス抗ヒトα９インテグリンモノクローナル抗体を産生する、本明細書でＫ３３Ｎと表されているハイブリドーマは、２００７年５月２９日に、微生物の寄託に関するブダペスト条約に準拠して、（郵便番号３０５−８５６６）茨城県つくば市東１−１−１中央第６にある、産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託され、アクセッション番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０が与えられた。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【０１０７】
８．産業上の適用可能性
本発明のヒト化モノクローナル抗体は、α９インテグリンの機能を阻害して、例えば、癌細胞の増殖又は転移等の癌、及び、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、肝炎、気管支喘息、線維症、真性糖尿病、癌転移、動脈硬化症、多発性硬化症、肉芽腫、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎及びクローン病）、自己免疫疾患等の炎症性疾患に対する治療効果を示す。
【０１０８】
９．配列表
本明細書の全体を通じて言及されている配列を以下にまとめる。
【表２】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片であって、
（ｉ）ヒト抗体のＶＨ領域に由来する少なくとも１つのＦＲＨと、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体のＣＤＲＨの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＣＤＲＨとを含むＨ鎖；又は
（ｉｉ）ヒト抗体のＶＬ領域に由来する少なくとも１つのＦＲＬと、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体のＣＤＲＬの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＣＤＲＬとを含むＬ鎖；又は
（ｉｉｉ）上述の（ｉ）と（ｉｉ）の両方
を含む抗体。
【請求項２】
前記非ヒト抗体が、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０のハイブリドーマにより産生されるマウスモノクローナル抗体である、請求項１に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項３】
前記ヒト化抗体の少なくとも１つのＣＤＲＨが配列番号４、５及び６のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含み、かつ、前記ヒト化抗体の少なくとも１つのＣＤＲＬが配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項１に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項４】
前記ヒト抗体のＶＨ領域が、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２（配列番号１８）のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を含み、かつ、前記ヒト抗体のＶＬ領域が、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１（配列番号２３）のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を含む、請求項２又は３に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項５】
配列番号６０のアミノ酸配列を含むＨ鎖、及び配列番号６１のアミノ酸配列を含むＬ鎖を含む、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項６】
配列番号６０のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
【請求項７】
前記ヌクレオチド配列が配列番号６２のヌクレオチド配列を有する、請求項６に記載の核酸分子。
【請求項８】
シグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項６に記載の核酸分子。
【請求項９】
前記シグナルペプチドが配列番号５８のアミノ酸配列を含む、請求項８に記載の核酸分子。
【請求項１０】
配列番号６１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
【請求項１１】
前記ヌクレオチド配列が配列番号６３のヌクレオチド配列を有する、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項１２】
シグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項１３】
前記シグナルペプチドが配列番号５９のアミノ酸配列を含む、請求項１２に記載の核酸分子。
【請求項１４】
請求項６に記載の核酸分子、又は請求項１０に記載の核酸分子、あるいはその両方を含むベクターであって、前記核酸分子が１以上の調節エレメントに機能的に連結されている、ベクター。
【請求項１５】
請求項１４に記載のベクターを含む、単離された宿主細胞。
【請求項１６】
ヒト化抗体又はその抗原結合断片を製造する方法であって、前記ヒト化抗体又はその抗原結合断片が発現されるような条件下で請求項１５に記載の宿主細胞を培養することと、発現されたヒト化抗体を回収することとを含む方法。
【請求項１７】
請求項１、２又は５のいずれか一項に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片、及び薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。
【請求項１８】
α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防又は治療する方法であって、有効量の請求項５に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片をそれを必要とする対象に投与することを含む方法。
【請求項１９】
α９インテグリンと関連する障害又は疾患をインビボで診断する方法であって、有効量の請求項１又は２に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片を検査対象に投与することを含む方法。
【請求項１】
免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片であって、
（ｉ）ヒト抗体のＶＨ領域に由来する少なくとも１つのＦＲＨと、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体のＣＤＲＨの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＣＤＲＨとを含むＨ鎖；又は
（ｉｉ）ヒト抗体のＶＬ領域に由来する少なくとも１つのＦＲＬと、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識する非ヒト抗体のＣＤＲＬの少なくとも１つに由来する少なくとも１つのＣＤＲＬとを含むＬ鎖；又は
（ｉｉｉ）上述の（ｉ）と（ｉｉ）の両方
を含む抗体。
【請求項２】
前記非ヒト抗体が、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０８３０のハイブリドーマにより産生されるマウスモノクローナル抗体である、請求項１に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項３】
前記ヒト化抗体の少なくとも１つのＣＤＲＨが配列番号４、５及び６のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含み、かつ、前記ヒト化抗体の少なくとも１つのＣＤＲＬが配列番号１１、１２及び１３のアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項１に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項４】
前記ヒト抗体のＶＨ領域が、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＤＡ９８０１０２（配列番号１８）のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を含み、かつ、前記ヒト抗体のＶＬ領域が、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｘ７２４４１（配列番号２３）のヌクレオチド配列によってコードされるアミノ酸配列に由来するアミノ酸配列を含む、請求項２又は３に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項５】
配列番号６０のアミノ酸配列を含むＨ鎖、及び配列番号６１のアミノ酸配列を含むＬ鎖を含む、免疫特異的にヒトα９インテグリンを認識するヒト化抗体又はその抗原結合断片。
【請求項６】
配列番号６０のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
【請求項７】
前記ヌクレオチド配列が配列番号６２のヌクレオチド配列を有する、請求項６に記載の核酸分子。
【請求項８】
シグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項６に記載の核酸分子。
【請求項９】
前記シグナルペプチドが配列番号５８のアミノ酸配列を含む、請求項８に記載の核酸分子。
【請求項１０】
配列番号６１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
【請求項１１】
前記ヌクレオチド配列が配列番号６３のヌクレオチド配列を有する、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項１２】
シグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項１３】
前記シグナルペプチドが配列番号５９のアミノ酸配列を含む、請求項１２に記載の核酸分子。
【請求項１４】
請求項６に記載の核酸分子、又は請求項１０に記載の核酸分子、あるいはその両方を含むベクターであって、前記核酸分子が１以上の調節エレメントに機能的に連結されている、ベクター。
【請求項１５】
請求項１４に記載のベクターを含む、単離された宿主細胞。
【請求項１６】
ヒト化抗体又はその抗原結合断片を製造する方法であって、前記ヒト化抗体又はその抗原結合断片が発現されるような条件下で請求項１５に記載の宿主細胞を培養することと、発現されたヒト化抗体を回収することとを含む方法。
【請求項１７】
請求項１、２又は５のいずれか一項に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片、及び薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。
【請求項１８】
α９インテグリンと関連する障害又は疾患を予防又は治療する方法であって、有効量の請求項５に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片をそれを必要とする対象に投与することを含む方法。
【請求項１９】
α９インテグリンと関連する障害又は疾患をインビボで診断する方法であって、有効量の請求項１又は２に記載のヒト化抗体又はその抗原結合断片を検査対象に投与することを含む方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２０】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２０】
【公表番号】特表２０１２−５２６５１８（Ｐ２０１２−５２６５１８Ａ）
【公表日】平成２４年１１月１日（２０１２．１１．１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１１−５３３４８０（Ｐ２０１１−５３３４８０）
【出願日】平成２２年３月１０日（２０１０．３．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２０１０／０５４４８３
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／１０４２０８
【国際公開日】平成２２年９月１６日（２０１０．９．１６）
【出願人】（５０１４１６２４３）株式会社ジーンテクノサイエンス (9)
【出願人】（０００１２４２６９）科研製薬株式会社 (18)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２４年１１月１日（２０１２．１１．１）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年３月１０日（２０１０．３．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２０１０／０５４４８３
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／１０４２０８
【国際公開日】平成２２年９月１６日（２０１０．９．１６）
【出願人】（５０１４１６２４３）株式会社ジーンテクノサイエンス (9)
【出願人】（０００１２４２６９）科研製薬株式会社 (18)
【Ｆターム（参考）】
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