フッ素化法
【解決手段】 非フッ素化糖誘導体とフッ化物との反応を含んでなるフッ素化糖誘導体の製造に際して、上記反応を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中で実施する。
【発明の効果】 本発明の方法では、制御された量の水の存在下では、反応収率は減少するどころか実際に増加する。反応混合物は１０００ｐｐｍを超える量の水を含んでいなければならないので、反応混合物に存在する水の量を一定に保つのが格段に容易であり、反応条件を一貫して再現できる。従来技術の方法で用いられている乾燥工程の幾つかを省くことができ、試薬のコスト及び合成装置の製造コストに関してプロセス全体のコストが低減する。
【発明の効果】 本発明の方法では、制御された量の水の存在下では、反応収率は減少するどころか実際に増加する。反応混合物は１０００ｐｐｍを超える量の水を含んでいなければならないので、反応混合物に存在する水の量を一定に保つのが格段に容易であり、反応条件を一貫して再現できる。従来技術の方法で用いられている乾燥工程の幾つかを省くことができ、試薬のコスト及び合成装置の製造コストに関してプロセス全体のコストが低減する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は糖誘導体のフッ素化法に関するものであり、本発明は特にフッ素化グルコースの製造に関する。当該方法は、陽電子放射断層撮影法（ＰＥＴ）のような方法に使用される放射性フッ素化糖誘導体の製造に特に有用である。
【背景技術】
【０００２】
ＰＥＴ用の［１８Ｆ］標識トレーサー化合物の製造方法において最も重要な因子の一つは合成全体の非補正収率である。これはプロセス全体の化学収率だけでなく、合成時間によっても影響され、合成時間は［１８Ｆ］の半減期が１０９．７分と比較的短いので重要である。
【０００３】
［１８Ｆ］フッ素イオンは通例ターゲットの［１８Ｏ］水のサイクロトロン照射で生成する水溶液として得られる。［１８Ｆ］フッ化物を反応性求核試薬に変換して求核放射性標識反応での使用に適するようにするための様々な工程を実施することが広く行われている。非放射性フッ素化に関して、これらの工程は［１８Ｆ］フッ素イオンからの水の除去及び適当な対イオンの供給を含む（Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｒａｄｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ， ２００３， Ｗｅｌｃｈ ＆ Ｒｅｄｖａｎｌｙ ｅｄｓ． ｃｈ．６， ｐｐ．１９５−２２７）。次いで、無水溶媒を用いて求核放射性フッ素化反応が行われる（Ａｉｇｂｉｒｈｉｏ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｆｌｕｏｒ． Ｃｈｅｍ． ７０， １９９５，ｐｐ．２７９−８７）。フッ素イオンからの水の除去は「ｎａｋｅｄ（裸の）」フッ素イオンの製造と呼ばれる。有意の量の水が存在するとフッ素イオンの溶媒和を生じ、保護糖前駆体での求核攻撃からフッ化物を遮蔽すると考えられている。そこで、当技術分野では、フッ化物の反応性を高めるとともに水の存在に起因する水酸化副生物を避けるために水の除去が必須な工程と考えられている（Ｍｏｕｇｈａｍｉｒ ｅｔ ａｌ， Ｔｅｔｔ． Ｌｅｔｔｓ． ３９， １９９８，ｐｐ．７３０５−６）。
【０００４】
［１８Ｆ］−フルオロデオキシグルコース（［１８Ｆ］−ＦＤＧ）のような［１８Ｆ］標識化合物の合成法に関する米国第６１７２２０７号には、水溶液にアセトニトリルを添加した後共沸して蒸発乾固することによってフッ素化剤を完全に無水にしなければならないと教示されている。
【０００５】
［１８Ｆ］−ＦＤＧの最も一般的な合成法はＨａｍａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｎｕｃｌ． Ｍｅｄ． ２７： ２３５−２３８（１９８６）に記載された方法であり、１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−Ｏ−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノースと［１８Ｆ］フッ化物との反応を無水溶媒中で実施する。
【特許文献１】米国第６１７２２０７号明細書
【非特許文献１】Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｒａｄｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ， ２００３， Ｗｅｌｃｈ ＆ Ｒｅｄｖａｎｌｙ ｅｄｓ． ｃｈ．６， ｐｐ．１９５−２２７
【非特許文献２】Ａｉｇｂｉｒｈｉｏ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｆｌｕｏｒ． Ｃｈｅｍ． ７０， １９９５，ｐｐ．２７９−８７
【非特許文献３】Ｍｏｕｇｈａｍｉｒ ｅｔ ａｌ， Ｔｅｔｔ． Ｌｅｔｔｓ． ３９， １９９８，ｐｐ．７３０５−６
【非特許文献４】Ｈａｍａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｎｕｃｌ． Ｍｅｄ． ２７： ２３５−２３８（１９８６）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
［１８Ｆ］標識糖誘導体の製造に現在用いられている方法には幾つかの問題が存在する。その一つはフッ素イオン及び溶媒から残留水をすべて除去するのに時間がかかり、そのため合成全体の非補正収率に影響することである。また、残留水をすべて除去する必要があるとすると、自動合成装置での合成及び機械の複雑さが増す。例えば、合成に必要な乾燥サイクルの数が増し、合成装置で合成を行うために一段と強力なヒータが必要とされかねない。
【０００７】
さらに、放射性フッ素化反応を一貫して再現できるようにするのは困難である。これは、溶媒中に少量（例えば約１０００ｐｐｍ以下）の残留水が存在することが多々あり、合成全体の非補正収率が標識反応の際に存在する残留水分量によって大きく変動するためである。水分量を１５００ｐｐｍ±２００ｐｐｍ、１５％の偏差に維持できるという結果が得られている。７５０ｐｐｍでの水分量のバラツキの絶対値はパーセント単位で２倍の偏差をもつであろう。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
今回、本発明らは、糖誘導体のフッ素化を無水条件下で行う必要がないという驚くべき知見を得た。実際、反応混合物の水分量を慎重に制御すれば、プロセスの放射化学純度（ひいては全収率）が確かに向上する。
【０００９】
これは、従来技術において上記反応を無水条件下で行う必要性が強調されていたことに鑑みればまさに予想外といえる。
【００１０】
そこで、本発明の第一の態様では、非フッ素化糖誘導体とフッ化物との反応を含んでなるフッ素化糖誘導体の製造方法であって、上記反応を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中で実施することを特徴とする方法を提供する。
【００１１】
本発明の方法は従来技術の方法に比して格段の利点を有する。まず、このような制御された量の水の存在下では、反応収率は減少するどころか実際に増加することが判明した。
【００１２】
第二に、反応混合物は１０００ｐｐｍを超える量の水を含んでいなければならないので、反応混合物に存在する水の量を一定に保つのが格段に容易である（例えば標識用溶媒に水を意図的に混入することによる）。これは、反応条件を一貫して再現できることを意味している。
【００１３】
第三に、従来技術の方法で用いられている乾燥工程の幾つかを省くことができ、試薬のコスト及び合成装置の製造コストに関してプロセス全体のコストが低減する。プロセスが簡単なほどプロセス全体の信頼性に良い影響を与えると予想される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
本明細書において「非フッ素化糖誘導体」という用語は、ＯＨ基の１つが脱離基で置換された多糖類、オリゴ糖類、二糖類又は単糖類をいい、例えば国際公開第０３／００２１５７号に教示されているように固体担体に適宜結合していてもよい。本発明の方法は、グルコース、フルクトース、リボース、アラビノース、マンノース又はガラクトースのような単糖類のフッ素化に特に適している。
【００１５】
「保護非フッ素化糖誘導体」では、糖の残りのＯＨ基は適当な保護基で保護されている。
【００１６】
「フッ素化糖誘導体」という用語は、ＯＨ基の１つがフッ素で置換された多糖類、オリゴ糖類、二糖類又は単糖類（例えばグルコース、フルクトース、リボース、アラビノース、マンノース又はガラクトースなど）をいう。
【００１７】
「保護フッ素化糖誘導体」では、糖の残りのＯＨ基は適当な保護基で保護されている。
【００１８】
本発明で用いる保護糖誘導体に適した保護基は当技術分野で周知であり、例えば“Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”， Ｔｈｅｏｄｏｒａ Ｗ． Ｇｒｅｅｎｅ ａｎｄ Ｐｅｔｅｒ Ｇ． Ｍ． Ｗｕｔｓ， ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ Ｉｎｃに記載されている。具体的にどのような保護基を選択するかはフッ素化生成物の所期の用途によって左右されるが、例えば、水酸基はアルキル又は芳香族エステルへの変換（例えば塩化アセチルのような塩化アルカノイルとの反応による）によって保護できる。別法として、水酸基はアルキル又はベンジルエーテルにのようなエーテルにも変換できる。
【００１９】
出発原料及び反応生成物が共に保護糖誘導体であるのが好ましい。
【００２０】
好適な脱離基は当技術分野で周知であり、トルエンスルホネート及びメタンスルホネートが挙げられる。ただし、脱離基がトリフルオロメタンスルホネート（トリフレート）基であるのが特に好ましい。
【００２１】
フッ素化反応は概して求核置換反応であり、脱離基のフルオロ置換はＳＮ２機構による糖の立体化学の反転を起こすことがある。そこで、最初の非フッ素化糖誘導体が生成物とは異なる糖の誘導体となることが多々ある。
【００２２】
好ましい生成物は保護フッ素化グルコース誘導体であり、対応マンノース誘導体（例えばテトラアセチルマンノース誘導体）から調製できる。
【００２３】
この反応は１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノース（すなわちテトラアセチルマンノーストリフレート）からの２−フルオロ−１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−Ｄ−グルコース（すなわちテトラアセチルフルオログルコース又はｐＦＤＧ）の調製に特に適している。
【００２４】
好適な溶媒としては、アセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及び／又はＮ−メチルピロリジノンのような非プロトン性有機溶媒又はそのいずれかの混合物が挙げられる。ただし、アセトニトリルが反応に特に適した溶媒であることが判明した。
【００２５】
溶媒に１０００ｐｐｍ以上５００００ｐｐｍ未満の水を含有させることによって反応収率が向上するが、水分量が約１０００〜１５０００ｐｐｍのときに、さらに大きな向上が達成される。最良の結果は、水分量約２０００〜７０００ｐｐｍ、好ましくは２５００〜５０００ｐｐｍの溶媒を用いて得られた。一実施形態では、好ましい水分量は３０００ｐｐｍ〜６０００ｐｐｍである。
【００２６】
本明細書で用いる「ｐｐｍ」という用語は、溶媒の水分量を表す場合にはμｇ水／ｇを意味する。
【００２７】
溶媒中の水の正確な量は、含水溶媒を所望の水分量に達するまで乾燥させるか或いは乾燥溶媒に適量の水を添加することによって達成できる。フッ化物は水溶液中で製造してもよく、この場合、溶媒の添加と溶媒／水混液の蒸発を繰返し行うか或いはフッ化物水溶液を所望の有機溶媒で希釈することによって、所望の水分量のフッ化物溶液を得ることができる。官能化ポリスチレン樹脂（例えば、エポキシド、メチルイソシアネート又は酸無水物官能化樹脂など）のようなスカベンジャー樹脂を用いてフッ化物溶液から水を除去することによって、溶媒の水分量を低減することもできる。好適な樹脂は、例えばＮｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ社から市販されている。適当な触媒、例えば４−ジメチルアミノピリジン（４−ＤＭＡＰ）を用いることによってスカベンジャー樹脂の性能を向上させることができる。
【００２８】
この実施形態では、容器中でスカベンジャー樹脂をフッ化物溶液と混合し、スカベンジャー樹脂を濾過により分離することによって乾燥工程を実施し得る。スカベンジャー樹脂を自動化合成装置で用いる場合に特に好適な別法では、スカベンジャー樹脂を容器に収容し、これにフッ化物溶液を流してもよい。フッ化物溶液は、乾燥に十分な時間スカベンジャー樹脂に滞留できるように、例えば０．１ｍＬ／分〜１００ｍＬ／分の流速で連続流として又は回分式にスカベンジャー樹脂に流せばよい。
【００２９】
スカベンジャー樹脂のこの用途は新規であり、本発明の別の態様では、放射性フッ化物、特に［１８Ｆ］フッ化物の溶液の水分量を低減する方法であって、当該方法が上記溶液をスカベンジャー樹脂に接触させることを含んでなる方法を提供する。好適には、上記溶液は、アセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンのような非プロトン性有機溶媒中のフッ化物を含む。
【００３０】
反応は液相中で実施してもよいし、或いは非フッ素化糖誘導体を固体担体に結合して以下の式（Ｉ）の樹脂−リンカー−ベクター（ＲＬＶ）を形成してもよい。
【００３１】
固体担体−リンカー−Ｘ−保護非フッ素化糖誘導体 （Ｉ）
式中、固体担体は適当な担体であり、
保護非フッ素化糖誘導体は上記で定義した通りであり、
Ｘは保護非フッ素化糖誘導体の特定の部位での求核置換を促進する基、例えば−ＳＯ２Ｏ−であり、
リンカーは、反応性を最大に高めるため反応性部位を固体担体構造から十分に離隔させるのに役立つ適当な有機基であり、例えば０〜４個のアリール基（例えばフェニル）及び／又はＣ１〜Ｃ６アルキル又はハロアルキル（特にフルオロアルキル）鎖並びに適宜追加される１〜４個のアミド又はスルホンアミド基のような官能基である。
【００３２】
ＲＬＶ系は国際公開第０３／００２１５７号に詳細に記載されており、好適なリンカーの詳細についても記載されている。
【００３３】
式（Ｉ）のＲＬＶをフッ化物溶液と接触させると、固体担体から糖が置換され、保護フッ素化糖誘導体を与える。
【００３４】
好適な固体担体は国際公開第０３／００２１５７号にも記載されており、ポリスチレン（ポリエチレングリコールなどでブロックグラフト化したものでもよい）、ポリアクリルアミド又はポリプロピレンのようなポリマー或いはガラス又はケイ素をかかるポリマーで被覆したものが挙げられる。或いは、例えば国際公開第０３／００２１５７号に記載されるように樹脂を用いてもよい。固体担体は、ビーズやピンのような小さな離散粒子の形態でも、或いはカートリッジの内面や微細加工容器に設けられたコーティングの形態であってもよい。本発明の方法を固体担体で実施することによって、追加の分離段階を必要とせずに純粋な形の生成物を得ることができる。これはフッ素化が放射性フッ素化のときに特に有利である。プロセスにおける時間の節約は非補正放射化学収率の向上をもたらすからである。
【００３５】
反応は通常５℃〜１８０℃、特に７５℃〜１２５℃の温度で実施される。
【００３６】
本発明の方法は自動化合成の一部として実施できる。これは、反応を溶液中で行おうと非フッ素化糖を固相に結合させようと当てはまる。
【００３７】
非フッ素化糖誘導体と反応させるフッ化物はイオン性化合物であってもよいし、適当な対イオンと共に供給してもよい。ただし、対イオンが反応溶媒中でフッ化物の溶解性を維持するのに十分な溶解性をもつことが重要である。従って、好適な対イオンとしては、ルビジウム又はセシウムのような大きなソフト金属イオン或いはテトラアルキルアンモニウム及びテトラアルキルホスホニウムのような非金属イオンが挙げられる。カリウムイオンも対イオンとして用いることができ、この場合、フッ化物の反応性を高めるため、４，７，１３，１６，２１，２４−ヘキサオキサ−１，１０−ジアザビシクロ−［８，８，８］−ヘキサコサン（Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２という商標で市販）のような相間移動触媒を添加してカリウム塩を有機溶媒中に溶解させてもよい。
【００３８】
本発明の方法は放射性フッ素化誘導体、特に［１８Ｆ］標識誘導体の製造に特に適しており、フッ化物は［１８Ｆ］フッ素イオンを含んでいてもよい。
【００３９】
上記で簡単に説明した通り、［１８Ｆ］フッ素イオンは［１８Ｏ］水ターゲットの照射によって調製することができ、これを本発明の方法における最初の工程としてもよい。
【００４０】
本発明の方法は［１８Ｆ］−ｐＦＤＧのような放射性フッ素化糖誘導体の製造に特に有用であり、［１８Ｆ］−ｐＦＤＧを脱保護すれば周知のＰＥＴトレーサーである［１８Ｆ］−ＦＤＧのような化合物が得られる。脱保護はこの方法の追加工程とし得る。生成物のフッ素化糖の保護基がアセチル誘導体のようなエステルである場合、脱保護は酸又は塩基加水分解によって実施し得る。
【００４１】
その他の追加工程としては、溶液からの過剰の［１８Ｆ］フッ化物の除去及び有機溶媒の除去が挙げられる。過剰の［１８Ｆ］フッ化物は、例えばイオン交換クロマトグラフィー又は固相吸着剤のような常法で除去できる。好適なイオン交換樹脂としてはＢＩＯ−ＲＡＤ ＡＧ １−Ｘ８（商標）及びＷａｔｅｒｓ ＱＭＡ（商標）が挙げられ、好適な固相吸着剤としてはアルミナが挙げられる。
【００４２】
有機溶媒は、真空昇温下での蒸発或いは溶液に窒素又はアルゴンのような不活性ガス気流を通すことによっても除去できる。
【００４３】
これら工程の最終生成物である［１８Ｆ］トレーサー化合物は、患者への投与のために製剤化してもよく、例えば水溶液として、［１８Ｆ］標識トレーサーを無菌等張食塩水（エタノールのような適当な有機溶媒を１０％以下含んでもよい。）或いはリン酸緩衝液のような適当な緩衝溶液中に溶解することによって調製してもよい。その他アスコルビン酸のような添加剤を用いてもよく、アスコルビン酸は放射線分解を低減する。
【００４４】
上述の通り本発明の方法で調製できる特に好ましい化合物は［１８Ｆ］−ｐＦＤＧであり、そこで、本発明の第二の態様では、テトラアセチルマンノーストリフレートと［１８Ｆ］フッ化物との反応を含む［１８Ｆ］−ｐＦＤＧの製造方法であって、上記フッ化物を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中に溶解されていることを特徴とする方法を提供する。本発明のこの態様の一実施形態では、テトラアセチルマンノーストリフレート（１当量）を、Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２（０．９〜１．１モル当量、好適には０．９８〜０．９９モル当量）、炭酸カリウム（０．４〜０．６モル当量、好適には０．５０〜０．６０モル当量）の存在下、１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有するアセトニトリル中で［１８Ｆ］フッ化物と反応させる。
【００４５】
本発明の好ましい特徴は第一の態様で説明した通りである。特に、この方法は［１８Ｏ］−水ターゲットの照射によって［１８Ｆ］フッ化物を生成させる最初の工程と、酸又はアルカリ加水分解によって［１８Ｆ］−ｐＦＤＧを［１８Ｆ］−ＦＤＧへと変換する追加工程を含んでもよい。
【００４６】
以下の実施例及び図面を参照して本発明をさらに詳しく説明する。
【実施例】
【００４７】
実施例１−糖の１８Ｆ標識に対する水分量変化の影響
本例では、１８Ｆ−での３通りの糖標識法を用いて、反応混合物の水分量変化の影響を評価した。
【００４８】
ａ）樹脂−リンカーベクター（ＲＬＶ）標識
１８Ｆ−をＴｒａｃｅｒｌａｂ ＭＸ（商標）に導入し、２−［１８Ｆ］フルオロ−２−デオキシグルコースの製造で用いられる標準的乾燥工程を用いて乾燥した。Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２／炭酸カリウムを用いてフッ化物をアセトニトリル中に溶解させた。乾燥工程を終え、フッ化物をアセトニトリル中に溶解した後、アセトニトリル中の乾燥１８Ｆ−試料を水分量分析用に採取し、カールフィッシャー滴定計で測定した。乾燥プロセスで通常得られるよりも水分量を高くするため、必要に応じて、追加の水を導入した。
【００４９】
１ｍＬのＨｉ Ｔｒａｐ（登録商標）カートリッジに、０．００３ｍｍｏｌ／ｇの置換度の固相結合保護マンノース前駆体約３７０ｍｇを充填した。カートリッジの一端はループを介してシリンジドライバーに接続した。カートリッジのもう一方の端はモレキュラーシーブベントを備えたＮ２充填バイアルに接続した。ホットエアガンを用いて、カートリッジを８０℃のカートリッジ外部温度に加熱した。
【００５０】
この系に次いで乾燥アセトニトリル６×０．５ｍＬを注入して不純物及び水（例えば不完全な乾燥のため自然に樹脂に存在する）を洗い流し、アセトニトリルは廃棄した。この装置に、乾燥１８Ｆ−溶液（４５０μＬ）を収容したオートサンプラーバイアルを装着した。次いで、シリンジドライバーで乾燥フッ化物を流速１８０μＬ／分で５サイクル前後に移動させた。乾燥フッ化物が固相マンノース前駆体と反応して保護［１８Ｆ］−２−デオキシグルコース誘導体が遊離した（これを脱保護すると２−［１８Ｆ］−２−デオキシグルコースが得られる）。
【００５１】
次にオートサンプラーバイアルから５μＬ試料を薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）分析用に採取し、シリカゲル６０ Ｆ２５４プレートにスポットし、９０／１０比に調製したアセトニトリル／水溶媒で展開した。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。
【００５２】
ｂ）テトラアセチルマンノーストリフレート標識
ＨＰＬＣグレードのＨ２Ｏ６００μＬに溶解した３２ｍｇのＫ２ＣＯ３に、２．５ｍＬアセトニトリルに溶解したＫｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２を加えた溶液を調製した。その０．６ｍＬを、１８Ｏ濃縮水中の約４０ＭＢｑの１８Ｆ−と共にガラス状炭素反応器に加えた。ヒータコントローラを９５℃に設定し、反応容器を合計３５分間加熱してフッ化物を乾燥した。水とアセトニトリルを窒素気流中で蒸発させた。
【００５３】
フッ化物からの水の共沸除去を促すため、１ｍＬのアセトニトリルを２分間隔で計３回注入したが、最初の添加は乾燥プロセスで２０分であった。３５分後にヒータを切り、反応容器外からの圧縮気流で反応容器を約４５℃に冷却した。
【００５４】
次いでＣＨ３ＣＮ２．０ｍＬ中のマンノーストリフレート２５ｍｇを乾燥フッ化物に添加し、混合した。ヒータコントローラを８５℃に設定した。設定温度に達して２分後にＴＬＣ分析用試料を採取した。ヒータを切り、反応容器外部からの圧縮気流で反応容器を約４５℃に冷却した。
【００５５】
ＴＬＣ分析用試料をシリカゲルにスポットし、９０／１０比に調製したアセトニトリル／水溶媒で展開した。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。次に反応容器の蓋を取り、５０μＬ試料を採取してカールフィッシャー滴定計で水分量を分析した。
【００５６】
ｃ）自動化標識
内蔵加熱反応容器及び使い捨てポリプロピレンカセットと共に２５個の三方弁を備えたプロトタイプ自動化合成プラットフォームで標識を行った。カセット流路は中間体又は最終生成物のＳＰＥ精製も可能にする。
【００５７】
フッ化物はまずＱＭＡカートリッジでトラップし、２０ｍｇのＫｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２と４．１ｍｇのＫ２ＣＯ３と３２０μＬのＣＨ３ＣＮと８０μＬのＨ２Ｏの溶液で溶出した。これを次いで窒素気流中１０５℃／１２０℃で約６分間乾燥し、アセトニトリル中の約２０ｍｇ／ｍＬテトラアセチルマンノーストリフレート１．５ｍＬに再溶解した。
【００５８】
標識反応は標識温度１０５又は１２５℃、反応時間９０又は２７０秒で行った。標識後、２［１８Ｆ］−２−デオキシグルコースをＴＬＣで分析した。ＴＬＣプレートはシリカゲル６０ Ｆ２５４であり、９５％アセトニトリル、５％水を展開溶媒として用いた。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。
【００５９】
実施例１の３通りの実験の結果を図１に示すが、この図から、反応混合物の水分量が１０００ｐｐｍ未満のときは生成物の放射化学純度が比較的低かったのに対して、水分量が１０００〜５０００ｐｐｍのときは生成物の放射化学純度が大幅に向上したことが分かる。このプロットは溶媒中の最適水分量が約２０００〜７０００ｐｐｍであったことを示している。
【００６０】
実施例２−標識プロセスでの［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ及びｐＧｌｕｃｏｓｅの生成の相関
ＲＬＶの１８−フッ化物標識を、Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２、炭酸カリウム及び様々な量の水の存在下、アセトニトリル中で実施した。標識後、得られた混合物を逆相ＨＰＬＣに付して、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｌｕｎａ ５μｍ Ｃ１８カラム（４．６ｍｍ×１５０ｍｍ）を用いて１０分間流速１ｍＬ／分で９０％溶媒Ａ／１０％溶媒Ｂから５％溶媒Ａ／９５％溶媒Ｂへの勾配（溶媒Ａ＝０．１％トリフルオロ酢酸水溶液、溶媒Ｂ＝０．１％トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液）を流した。保持時間３分の保護グルコースのピークと６．６分の保護ＦＤＧのピーク（主に［１９Ｆ］−ＦＤＧの存在に起因し、その量は［１８Ｆ］−ＦＤＧに比例する）の積分値を求め、それらの相関関係を求めた。
【００６１】
反応混合物中に大量の水が存在すると、トリフレート基での求核置換の結果、（［１８Ｆ］−ｐＦＤＧではなく）保護グルコースが大量に生成すると一般に考えられている。したがって、生成混合物中の保護グルコース誘導体濃度に対する［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ濃度のグラフをプロットしたグラフの傾きは負となり、水分量が高いほど保護グルコースレベルは高く［１８Ｆ］−ｐＦＤＧレベルは低くなると予想されていた。
【００６２】
しかし、樹脂に結合させたテトラアセチルマンノーストリフレートの標識実験から、ＨＰＬＣの２つのピークの間に良好な正の相関関係があることが判明した（図２参照）。これは高濃度の水が存在するとこれら２種類の生成物の形成が抑制されることを示している。
【００６３】
実施例３：１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロ−β−Ｄ−マンノピラノースの自動化合成
標識化の最初に放射性反応混合物をサンプリングするのには問題があった。そのため、水分量を標識反応の最後にＲＣＰ（ＩＴＬＣで測定）と共に測定した。これから、以下に述べる通り水封鎖を計算に入れることよって標識開始時の水分量を算出した。
【００６４】
放射性標識実験
１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロ−β−Ｄ−マンノピラノースの合成は、使い捨てカセットが取り付けられるように設計された自動合成装置で実施した。このカセットは、固相抽出カートリッジ用のスペースとシリンジと共に各種試薬の収容用バイアルを備えた２５弁の使い捨てカセットからなる。
【００６５】
合成シーケンスを行って２ｍＬ水中の約５０ＭＢｑの１８−フッ化物をＷａｔｅｒｓ Ａｃｃｅｓｓ ＰｌｕｓＱＭＡカートリッジ（その炭酸塩の形態）でトラップし、次にアセトニトリル／水中のｋｒｙｐｔｏｆｉｘ及び炭酸塩の溶液（２０．３ｍｇのｋｒｙｐｔｏｆｉｘ ２２２、４．３ｍｇの炭酸カリウム、３２０ｍＬのアセトニトリル、８０ｍＬの水）でカートリッジを溶出して加熱反応器に回収した。これを乾燥窒素気流中で加熱して乾燥し、次に所定の水分量のアセトニトリル中マンノーストリフレート溶液を反応器に添加した。
【００６６】
外部ヒータ温度１２５℃でさらに８０秒間反応せしめた後、０．６ｍＬを回収して廃棄し（ラインから残留水を除去するため）、残余を生成物バイアルに移した。５０μＬ溶液を用いたカールフィッシャー滴定で生成物バイアルの水分量を決定し、インスタント薄層クロマトグラフィー（ＩＴＬＣ）でＲＣＰを測定した。ＴＬＣはシリカＴＬＣプレートで実施し、スポットを９５％アセトニトリル、５％水で溶出し、ＴＬＣを用いて１８−フッ化物及び１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロβ−Ｄ−マンノピラノース（いずれの場合も２成分のみ）の相対比を計測した。
【００６７】
水封鎖測定
３回のコールド（非放射性）実験を行って、マンノーストリフレートとの反応でどの程度の水がなくなったかを調べるために所定体積の反応液を標識反応の前後にサンプリングした。これによって、測定した水分量に水封鎖を計算に入れることができた。
【００６８】
上記放射性標識実験と同様の合成シーケンスを行ってＷａｔｅｒｓ Ａｃｃｅｓｓ ＰｌｕｓＱＭＡカートリッジ（その炭酸塩の形態）に２ｍＬの水を流し、次にアセトニトリル／水中のｋｒｙｐｔｏｆｉｘと炭酸塩の溶液（２０．３ｍｇのｋｒｙｐｔｏｆｉｘ ２２２、４．３ｍｇの炭酸カリウム、３２０ｍＬのアセトニトリル、８０ｍＬの水）でカートリッジを溶出して加熱反応器に回収した。これを乾燥窒素気流中で加熱して乾燥し、次に所定の水分量のアセトニトリル中マンノーストリフレート溶液を反応器に添加した。
【００６９】
マンノーストリフレート溶液を反応器に添加してすぐに０．６ｍＬを回収して生成物バイアル中に注入した。標識反応を外部ヒータ温度１２５℃でさらに８０秒間進行させ、残りの溶液を別の生成物バイアルに移した。５０μＬの溶液を用いたカールフィッシャー滴定器で各バイアルの水分量を測定した。
【００７０】
水封鎖実験の結果を表１に示す。表１はアセトニトリル溶媒中の水の存在量を示す。
【００７１】
【表１】
低レベル及び中間レベルの水分量では、マンノーストリフレートとの反応による水の有意な封鎖は認められなかった。しかし、高レベルの水分量では水分量が約７％低下した。
【００７２】
放射標識結果
各放射標識反応の水分量を測定し、マンノーストリフレートによる水の封鎖を計算に入れて標識前の水分量を補正した。各水分量で得られたＲＣＰを表２に示すとともに、図３に図示する。
【００７３】
【表２】
これらの結果は３０００〜６０００ｐｐｍが好ましい水分量であることを裏付ける。ＲＣＰ７３．６％での疑わしい結果を無視すれば、非常に湿分の多い反応条件であったとしても、反応は約８５％ＲＣＰに近づく。
【図面の簡単な説明】
【００７４】
【図１】［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ生成物の放射化学純度と溶媒の水分量との関係を示すプロット。
【図２】樹脂−リンカー−ベクターでの標識プロセスにおける［１８Ｆ］−ｐＦＤＧとｐＧｌｕｃｏｓｅの生成の関係を示すグラフ。
【図３】自動化合成における［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ生成物の放射化学純度と溶媒の水分量との関係を示すプロット。
【技術分野】
【０００１】
本発明は糖誘導体のフッ素化法に関するものであり、本発明は特にフッ素化グルコースの製造に関する。当該方法は、陽電子放射断層撮影法（ＰＥＴ）のような方法に使用される放射性フッ素化糖誘導体の製造に特に有用である。
【背景技術】
【０００２】
ＰＥＴ用の［１８Ｆ］標識トレーサー化合物の製造方法において最も重要な因子の一つは合成全体の非補正収率である。これはプロセス全体の化学収率だけでなく、合成時間によっても影響され、合成時間は［１８Ｆ］の半減期が１０９．７分と比較的短いので重要である。
【０００３】
［１８Ｆ］フッ素イオンは通例ターゲットの［１８Ｏ］水のサイクロトロン照射で生成する水溶液として得られる。［１８Ｆ］フッ化物を反応性求核試薬に変換して求核放射性標識反応での使用に適するようにするための様々な工程を実施することが広く行われている。非放射性フッ素化に関して、これらの工程は［１８Ｆ］フッ素イオンからの水の除去及び適当な対イオンの供給を含む（Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｒａｄｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ， ２００３， Ｗｅｌｃｈ ＆ Ｒｅｄｖａｎｌｙ ｅｄｓ． ｃｈ．６， ｐｐ．１９５−２２７）。次いで、無水溶媒を用いて求核放射性フッ素化反応が行われる（Ａｉｇｂｉｒｈｉｏ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｆｌｕｏｒ． Ｃｈｅｍ． ７０， １９９５，ｐｐ．２７９−８７）。フッ素イオンからの水の除去は「ｎａｋｅｄ（裸の）」フッ素イオンの製造と呼ばれる。有意の量の水が存在するとフッ素イオンの溶媒和を生じ、保護糖前駆体での求核攻撃からフッ化物を遮蔽すると考えられている。そこで、当技術分野では、フッ化物の反応性を高めるとともに水の存在に起因する水酸化副生物を避けるために水の除去が必須な工程と考えられている（Ｍｏｕｇｈａｍｉｒ ｅｔ ａｌ， Ｔｅｔｔ． Ｌｅｔｔｓ． ３９， １９９８，ｐｐ．７３０５−６）。
【０００４】
［１８Ｆ］−フルオロデオキシグルコース（［１８Ｆ］−ＦＤＧ）のような［１８Ｆ］標識化合物の合成法に関する米国第６１７２２０７号には、水溶液にアセトニトリルを添加した後共沸して蒸発乾固することによってフッ素化剤を完全に無水にしなければならないと教示されている。
【０００５】
［１８Ｆ］−ＦＤＧの最も一般的な合成法はＨａｍａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｎｕｃｌ． Ｍｅｄ． ２７： ２３５−２３８（１９８６）に記載された方法であり、１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−Ｏ−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノースと［１８Ｆ］フッ化物との反応を無水溶媒中で実施する。
【特許文献１】米国第６１７２２０７号明細書
【非特許文献１】Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｒａｄｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ， ２００３， Ｗｅｌｃｈ ＆ Ｒｅｄｖａｎｌｙ ｅｄｓ． ｃｈ．６， ｐｐ．１９５−２２７
【非特許文献２】Ａｉｇｂｉｒｈｉｏ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｆｌｕｏｒ． Ｃｈｅｍ． ７０， １９９５，ｐｐ．２７９−８７
【非特許文献３】Ｍｏｕｇｈａｍｉｒ ｅｔ ａｌ， Ｔｅｔｔ． Ｌｅｔｔｓ． ３９， １９９８，ｐｐ．７３０５−６
【非特許文献４】Ｈａｍａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｎｕｃｌ． Ｍｅｄ． ２７： ２３５−２３８（１９８６）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
［１８Ｆ］標識糖誘導体の製造に現在用いられている方法には幾つかの問題が存在する。その一つはフッ素イオン及び溶媒から残留水をすべて除去するのに時間がかかり、そのため合成全体の非補正収率に影響することである。また、残留水をすべて除去する必要があるとすると、自動合成装置での合成及び機械の複雑さが増す。例えば、合成に必要な乾燥サイクルの数が増し、合成装置で合成を行うために一段と強力なヒータが必要とされかねない。
【０００７】
さらに、放射性フッ素化反応を一貫して再現できるようにするのは困難である。これは、溶媒中に少量（例えば約１０００ｐｐｍ以下）の残留水が存在することが多々あり、合成全体の非補正収率が標識反応の際に存在する残留水分量によって大きく変動するためである。水分量を１５００ｐｐｍ±２００ｐｐｍ、１５％の偏差に維持できるという結果が得られている。７５０ｐｐｍでの水分量のバラツキの絶対値はパーセント単位で２倍の偏差をもつであろう。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
今回、本発明らは、糖誘導体のフッ素化を無水条件下で行う必要がないという驚くべき知見を得た。実際、反応混合物の水分量を慎重に制御すれば、プロセスの放射化学純度（ひいては全収率）が確かに向上する。
【０００９】
これは、従来技術において上記反応を無水条件下で行う必要性が強調されていたことに鑑みればまさに予想外といえる。
【００１０】
そこで、本発明の第一の態様では、非フッ素化糖誘導体とフッ化物との反応を含んでなるフッ素化糖誘導体の製造方法であって、上記反応を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中で実施することを特徴とする方法を提供する。
【００１１】
本発明の方法は従来技術の方法に比して格段の利点を有する。まず、このような制御された量の水の存在下では、反応収率は減少するどころか実際に増加することが判明した。
【００１２】
第二に、反応混合物は１０００ｐｐｍを超える量の水を含んでいなければならないので、反応混合物に存在する水の量を一定に保つのが格段に容易である（例えば標識用溶媒に水を意図的に混入することによる）。これは、反応条件を一貫して再現できることを意味している。
【００１３】
第三に、従来技術の方法で用いられている乾燥工程の幾つかを省くことができ、試薬のコスト及び合成装置の製造コストに関してプロセス全体のコストが低減する。プロセスが簡単なほどプロセス全体の信頼性に良い影響を与えると予想される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
本明細書において「非フッ素化糖誘導体」という用語は、ＯＨ基の１つが脱離基で置換された多糖類、オリゴ糖類、二糖類又は単糖類をいい、例えば国際公開第０３／００２１５７号に教示されているように固体担体に適宜結合していてもよい。本発明の方法は、グルコース、フルクトース、リボース、アラビノース、マンノース又はガラクトースのような単糖類のフッ素化に特に適している。
【００１５】
「保護非フッ素化糖誘導体」では、糖の残りのＯＨ基は適当な保護基で保護されている。
【００１６】
「フッ素化糖誘導体」という用語は、ＯＨ基の１つがフッ素で置換された多糖類、オリゴ糖類、二糖類又は単糖類（例えばグルコース、フルクトース、リボース、アラビノース、マンノース又はガラクトースなど）をいう。
【００１７】
「保護フッ素化糖誘導体」では、糖の残りのＯＨ基は適当な保護基で保護されている。
【００１８】
本発明で用いる保護糖誘導体に適した保護基は当技術分野で周知であり、例えば“Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”， Ｔｈｅｏｄｏｒａ Ｗ． Ｇｒｅｅｎｅ ａｎｄ Ｐｅｔｅｒ Ｇ． Ｍ． Ｗｕｔｓ， ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ Ｉｎｃに記載されている。具体的にどのような保護基を選択するかはフッ素化生成物の所期の用途によって左右されるが、例えば、水酸基はアルキル又は芳香族エステルへの変換（例えば塩化アセチルのような塩化アルカノイルとの反応による）によって保護できる。別法として、水酸基はアルキル又はベンジルエーテルにのようなエーテルにも変換できる。
【００１９】
出発原料及び反応生成物が共に保護糖誘導体であるのが好ましい。
【００２０】
好適な脱離基は当技術分野で周知であり、トルエンスルホネート及びメタンスルホネートが挙げられる。ただし、脱離基がトリフルオロメタンスルホネート（トリフレート）基であるのが特に好ましい。
【００２１】
フッ素化反応は概して求核置換反応であり、脱離基のフルオロ置換はＳＮ２機構による糖の立体化学の反転を起こすことがある。そこで、最初の非フッ素化糖誘導体が生成物とは異なる糖の誘導体となることが多々ある。
【００２２】
好ましい生成物は保護フッ素化グルコース誘導体であり、対応マンノース誘導体（例えばテトラアセチルマンノース誘導体）から調製できる。
【００２３】
この反応は１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノース（すなわちテトラアセチルマンノーストリフレート）からの２−フルオロ−１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−Ｄ−グルコース（すなわちテトラアセチルフルオログルコース又はｐＦＤＧ）の調製に特に適している。
【００２４】
好適な溶媒としては、アセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及び／又はＮ−メチルピロリジノンのような非プロトン性有機溶媒又はそのいずれかの混合物が挙げられる。ただし、アセトニトリルが反応に特に適した溶媒であることが判明した。
【００２５】
溶媒に１０００ｐｐｍ以上５００００ｐｐｍ未満の水を含有させることによって反応収率が向上するが、水分量が約１０００〜１５０００ｐｐｍのときに、さらに大きな向上が達成される。最良の結果は、水分量約２０００〜７０００ｐｐｍ、好ましくは２５００〜５０００ｐｐｍの溶媒を用いて得られた。一実施形態では、好ましい水分量は３０００ｐｐｍ〜６０００ｐｐｍである。
【００２６】
本明細書で用いる「ｐｐｍ」という用語は、溶媒の水分量を表す場合にはμｇ水／ｇを意味する。
【００２７】
溶媒中の水の正確な量は、含水溶媒を所望の水分量に達するまで乾燥させるか或いは乾燥溶媒に適量の水を添加することによって達成できる。フッ化物は水溶液中で製造してもよく、この場合、溶媒の添加と溶媒／水混液の蒸発を繰返し行うか或いはフッ化物水溶液を所望の有機溶媒で希釈することによって、所望の水分量のフッ化物溶液を得ることができる。官能化ポリスチレン樹脂（例えば、エポキシド、メチルイソシアネート又は酸無水物官能化樹脂など）のようなスカベンジャー樹脂を用いてフッ化物溶液から水を除去することによって、溶媒の水分量を低減することもできる。好適な樹脂は、例えばＮｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ社から市販されている。適当な触媒、例えば４−ジメチルアミノピリジン（４−ＤＭＡＰ）を用いることによってスカベンジャー樹脂の性能を向上させることができる。
【００２８】
この実施形態では、容器中でスカベンジャー樹脂をフッ化物溶液と混合し、スカベンジャー樹脂を濾過により分離することによって乾燥工程を実施し得る。スカベンジャー樹脂を自動化合成装置で用いる場合に特に好適な別法では、スカベンジャー樹脂を容器に収容し、これにフッ化物溶液を流してもよい。フッ化物溶液は、乾燥に十分な時間スカベンジャー樹脂に滞留できるように、例えば０．１ｍＬ／分〜１００ｍＬ／分の流速で連続流として又は回分式にスカベンジャー樹脂に流せばよい。
【００２９】
スカベンジャー樹脂のこの用途は新規であり、本発明の別の態様では、放射性フッ化物、特に［１８Ｆ］フッ化物の溶液の水分量を低減する方法であって、当該方法が上記溶液をスカベンジャー樹脂に接触させることを含んでなる方法を提供する。好適には、上記溶液は、アセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンのような非プロトン性有機溶媒中のフッ化物を含む。
【００３０】
反応は液相中で実施してもよいし、或いは非フッ素化糖誘導体を固体担体に結合して以下の式（Ｉ）の樹脂−リンカー−ベクター（ＲＬＶ）を形成してもよい。
【００３１】
固体担体−リンカー−Ｘ−保護非フッ素化糖誘導体 （Ｉ）
式中、固体担体は適当な担体であり、
保護非フッ素化糖誘導体は上記で定義した通りであり、
Ｘは保護非フッ素化糖誘導体の特定の部位での求核置換を促進する基、例えば−ＳＯ２Ｏ−であり、
リンカーは、反応性を最大に高めるため反応性部位を固体担体構造から十分に離隔させるのに役立つ適当な有機基であり、例えば０〜４個のアリール基（例えばフェニル）及び／又はＣ１〜Ｃ６アルキル又はハロアルキル（特にフルオロアルキル）鎖並びに適宜追加される１〜４個のアミド又はスルホンアミド基のような官能基である。
【００３２】
ＲＬＶ系は国際公開第０３／００２１５７号に詳細に記載されており、好適なリンカーの詳細についても記載されている。
【００３３】
式（Ｉ）のＲＬＶをフッ化物溶液と接触させると、固体担体から糖が置換され、保護フッ素化糖誘導体を与える。
【００３４】
好適な固体担体は国際公開第０３／００２１５７号にも記載されており、ポリスチレン（ポリエチレングリコールなどでブロックグラフト化したものでもよい）、ポリアクリルアミド又はポリプロピレンのようなポリマー或いはガラス又はケイ素をかかるポリマーで被覆したものが挙げられる。或いは、例えば国際公開第０３／００２１５７号に記載されるように樹脂を用いてもよい。固体担体は、ビーズやピンのような小さな離散粒子の形態でも、或いはカートリッジの内面や微細加工容器に設けられたコーティングの形態であってもよい。本発明の方法を固体担体で実施することによって、追加の分離段階を必要とせずに純粋な形の生成物を得ることができる。これはフッ素化が放射性フッ素化のときに特に有利である。プロセスにおける時間の節約は非補正放射化学収率の向上をもたらすからである。
【００３５】
反応は通常５℃〜１８０℃、特に７５℃〜１２５℃の温度で実施される。
【００３６】
本発明の方法は自動化合成の一部として実施できる。これは、反応を溶液中で行おうと非フッ素化糖を固相に結合させようと当てはまる。
【００３７】
非フッ素化糖誘導体と反応させるフッ化物はイオン性化合物であってもよいし、適当な対イオンと共に供給してもよい。ただし、対イオンが反応溶媒中でフッ化物の溶解性を維持するのに十分な溶解性をもつことが重要である。従って、好適な対イオンとしては、ルビジウム又はセシウムのような大きなソフト金属イオン或いはテトラアルキルアンモニウム及びテトラアルキルホスホニウムのような非金属イオンが挙げられる。カリウムイオンも対イオンとして用いることができ、この場合、フッ化物の反応性を高めるため、４，７，１３，１６，２１，２４−ヘキサオキサ−１，１０−ジアザビシクロ−［８，８，８］−ヘキサコサン（Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２という商標で市販）のような相間移動触媒を添加してカリウム塩を有機溶媒中に溶解させてもよい。
【００３８】
本発明の方法は放射性フッ素化誘導体、特に［１８Ｆ］標識誘導体の製造に特に適しており、フッ化物は［１８Ｆ］フッ素イオンを含んでいてもよい。
【００３９】
上記で簡単に説明した通り、［１８Ｆ］フッ素イオンは［１８Ｏ］水ターゲットの照射によって調製することができ、これを本発明の方法における最初の工程としてもよい。
【００４０】
本発明の方法は［１８Ｆ］−ｐＦＤＧのような放射性フッ素化糖誘導体の製造に特に有用であり、［１８Ｆ］−ｐＦＤＧを脱保護すれば周知のＰＥＴトレーサーである［１８Ｆ］−ＦＤＧのような化合物が得られる。脱保護はこの方法の追加工程とし得る。生成物のフッ素化糖の保護基がアセチル誘導体のようなエステルである場合、脱保護は酸又は塩基加水分解によって実施し得る。
【００４１】
その他の追加工程としては、溶液からの過剰の［１８Ｆ］フッ化物の除去及び有機溶媒の除去が挙げられる。過剰の［１８Ｆ］フッ化物は、例えばイオン交換クロマトグラフィー又は固相吸着剤のような常法で除去できる。好適なイオン交換樹脂としてはＢＩＯ−ＲＡＤ ＡＧ １−Ｘ８（商標）及びＷａｔｅｒｓ ＱＭＡ（商標）が挙げられ、好適な固相吸着剤としてはアルミナが挙げられる。
【００４２】
有機溶媒は、真空昇温下での蒸発或いは溶液に窒素又はアルゴンのような不活性ガス気流を通すことによっても除去できる。
【００４３】
これら工程の最終生成物である［１８Ｆ］トレーサー化合物は、患者への投与のために製剤化してもよく、例えば水溶液として、［１８Ｆ］標識トレーサーを無菌等張食塩水（エタノールのような適当な有機溶媒を１０％以下含んでもよい。）或いはリン酸緩衝液のような適当な緩衝溶液中に溶解することによって調製してもよい。その他アスコルビン酸のような添加剤を用いてもよく、アスコルビン酸は放射線分解を低減する。
【００４４】
上述の通り本発明の方法で調製できる特に好ましい化合物は［１８Ｆ］−ｐＦＤＧであり、そこで、本発明の第二の態様では、テトラアセチルマンノーストリフレートと［１８Ｆ］フッ化物との反応を含む［１８Ｆ］−ｐＦＤＧの製造方法であって、上記フッ化物を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中に溶解されていることを特徴とする方法を提供する。本発明のこの態様の一実施形態では、テトラアセチルマンノーストリフレート（１当量）を、Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２（０．９〜１．１モル当量、好適には０．９８〜０．９９モル当量）、炭酸カリウム（０．４〜０．６モル当量、好適には０．５０〜０．６０モル当量）の存在下、１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有するアセトニトリル中で［１８Ｆ］フッ化物と反応させる。
【００４５】
本発明の好ましい特徴は第一の態様で説明した通りである。特に、この方法は［１８Ｏ］−水ターゲットの照射によって［１８Ｆ］フッ化物を生成させる最初の工程と、酸又はアルカリ加水分解によって［１８Ｆ］−ｐＦＤＧを［１８Ｆ］−ＦＤＧへと変換する追加工程を含んでもよい。
【００４６】
以下の実施例及び図面を参照して本発明をさらに詳しく説明する。
【実施例】
【００４７】
実施例１−糖の１８Ｆ標識に対する水分量変化の影響
本例では、１８Ｆ−での３通りの糖標識法を用いて、反応混合物の水分量変化の影響を評価した。
【００４８】
ａ）樹脂−リンカーベクター（ＲＬＶ）標識
１８Ｆ−をＴｒａｃｅｒｌａｂ ＭＸ（商標）に導入し、２−［１８Ｆ］フルオロ−２−デオキシグルコースの製造で用いられる標準的乾燥工程を用いて乾燥した。Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２／炭酸カリウムを用いてフッ化物をアセトニトリル中に溶解させた。乾燥工程を終え、フッ化物をアセトニトリル中に溶解した後、アセトニトリル中の乾燥１８Ｆ−試料を水分量分析用に採取し、カールフィッシャー滴定計で測定した。乾燥プロセスで通常得られるよりも水分量を高くするため、必要に応じて、追加の水を導入した。
【００４９】
１ｍＬのＨｉ Ｔｒａｐ（登録商標）カートリッジに、０．００３ｍｍｏｌ／ｇの置換度の固相結合保護マンノース前駆体約３７０ｍｇを充填した。カートリッジの一端はループを介してシリンジドライバーに接続した。カートリッジのもう一方の端はモレキュラーシーブベントを備えたＮ２充填バイアルに接続した。ホットエアガンを用いて、カートリッジを８０℃のカートリッジ外部温度に加熱した。
【００５０】
この系に次いで乾燥アセトニトリル６×０．５ｍＬを注入して不純物及び水（例えば不完全な乾燥のため自然に樹脂に存在する）を洗い流し、アセトニトリルは廃棄した。この装置に、乾燥１８Ｆ−溶液（４５０μＬ）を収容したオートサンプラーバイアルを装着した。次いで、シリンジドライバーで乾燥フッ化物を流速１８０μＬ／分で５サイクル前後に移動させた。乾燥フッ化物が固相マンノース前駆体と反応して保護［１８Ｆ］−２−デオキシグルコース誘導体が遊離した（これを脱保護すると２−［１８Ｆ］−２−デオキシグルコースが得られる）。
【００５１】
次にオートサンプラーバイアルから５μＬ試料を薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）分析用に採取し、シリカゲル６０ Ｆ２５４プレートにスポットし、９０／１０比に調製したアセトニトリル／水溶媒で展開した。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。
【００５２】
ｂ）テトラアセチルマンノーストリフレート標識
ＨＰＬＣグレードのＨ２Ｏ６００μＬに溶解した３２ｍｇのＫ２ＣＯ３に、２．５ｍＬアセトニトリルに溶解したＫｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２を加えた溶液を調製した。その０．６ｍＬを、１８Ｏ濃縮水中の約４０ＭＢｑの１８Ｆ−と共にガラス状炭素反応器に加えた。ヒータコントローラを９５℃に設定し、反応容器を合計３５分間加熱してフッ化物を乾燥した。水とアセトニトリルを窒素気流中で蒸発させた。
【００５３】
フッ化物からの水の共沸除去を促すため、１ｍＬのアセトニトリルを２分間隔で計３回注入したが、最初の添加は乾燥プロセスで２０分であった。３５分後にヒータを切り、反応容器外からの圧縮気流で反応容器を約４５℃に冷却した。
【００５４】
次いでＣＨ３ＣＮ２．０ｍＬ中のマンノーストリフレート２５ｍｇを乾燥フッ化物に添加し、混合した。ヒータコントローラを８５℃に設定した。設定温度に達して２分後にＴＬＣ分析用試料を採取した。ヒータを切り、反応容器外部からの圧縮気流で反応容器を約４５℃に冷却した。
【００５５】
ＴＬＣ分析用試料をシリカゲルにスポットし、９０／１０比に調製したアセトニトリル／水溶媒で展開した。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。次に反応容器の蓋を取り、５０μＬ試料を採取してカールフィッシャー滴定計で水分量を分析した。
【００５６】
ｃ）自動化標識
内蔵加熱反応容器及び使い捨てポリプロピレンカセットと共に２５個の三方弁を備えたプロトタイプ自動化合成プラットフォームで標識を行った。カセット流路は中間体又は最終生成物のＳＰＥ精製も可能にする。
【００５７】
フッ化物はまずＱＭＡカートリッジでトラップし、２０ｍｇのＫｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２と４．１ｍｇのＫ２ＣＯ３と３２０μＬのＣＨ３ＣＮと８０μＬのＨ２Ｏの溶液で溶出した。これを次いで窒素気流中１０５℃／１２０℃で約６分間乾燥し、アセトニトリル中の約２０ｍｇ／ｍＬテトラアセチルマンノーストリフレート１．５ｍＬに再溶解した。
【００５８】
標識反応は標識温度１０５又は１２５℃、反応時間９０又は２７０秒で行った。標識後、２［１８Ｆ］−２−デオキシグルコースをＴＬＣで分析した。ＴＬＣプレートはシリカゲル６０ Ｆ２５４であり、９５％アセトニトリル、５％水を展開溶媒として用いた。放射化学純度はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔａｎｔ Ｉｍａｇｅｒで求めた。
【００５９】
実施例１の３通りの実験の結果を図１に示すが、この図から、反応混合物の水分量が１０００ｐｐｍ未満のときは生成物の放射化学純度が比較的低かったのに対して、水分量が１０００〜５０００ｐｐｍのときは生成物の放射化学純度が大幅に向上したことが分かる。このプロットは溶媒中の最適水分量が約２０００〜７０００ｐｐｍであったことを示している。
【００６０】
実施例２−標識プロセスでの［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ及びｐＧｌｕｃｏｓｅの生成の相関
ＲＬＶの１８−フッ化物標識を、Ｋｒｙｐｔｏｆｉｘ（商標）２．２．２、炭酸カリウム及び様々な量の水の存在下、アセトニトリル中で実施した。標識後、得られた混合物を逆相ＨＰＬＣに付して、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｌｕｎａ ５μｍ Ｃ１８カラム（４．６ｍｍ×１５０ｍｍ）を用いて１０分間流速１ｍＬ／分で９０％溶媒Ａ／１０％溶媒Ｂから５％溶媒Ａ／９５％溶媒Ｂへの勾配（溶媒Ａ＝０．１％トリフルオロ酢酸水溶液、溶媒Ｂ＝０．１％トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液）を流した。保持時間３分の保護グルコースのピークと６．６分の保護ＦＤＧのピーク（主に［１９Ｆ］−ＦＤＧの存在に起因し、その量は［１８Ｆ］−ＦＤＧに比例する）の積分値を求め、それらの相関関係を求めた。
【００６１】
反応混合物中に大量の水が存在すると、トリフレート基での求核置換の結果、（［１８Ｆ］−ｐＦＤＧではなく）保護グルコースが大量に生成すると一般に考えられている。したがって、生成混合物中の保護グルコース誘導体濃度に対する［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ濃度のグラフをプロットしたグラフの傾きは負となり、水分量が高いほど保護グルコースレベルは高く［１８Ｆ］−ｐＦＤＧレベルは低くなると予想されていた。
【００６２】
しかし、樹脂に結合させたテトラアセチルマンノーストリフレートの標識実験から、ＨＰＬＣの２つのピークの間に良好な正の相関関係があることが判明した（図２参照）。これは高濃度の水が存在するとこれら２種類の生成物の形成が抑制されることを示している。
【００６３】
実施例３：１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロ−β−Ｄ−マンノピラノースの自動化合成
標識化の最初に放射性反応混合物をサンプリングするのには問題があった。そのため、水分量を標識反応の最後にＲＣＰ（ＩＴＬＣで測定）と共に測定した。これから、以下に述べる通り水封鎖を計算に入れることよって標識開始時の水分量を算出した。
【００６４】
放射性標識実験
１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロ−β−Ｄ−マンノピラノースの合成は、使い捨てカセットが取り付けられるように設計された自動合成装置で実施した。このカセットは、固相抽出カートリッジ用のスペースとシリンジと共に各種試薬の収容用バイアルを備えた２５弁の使い捨てカセットからなる。
【００６５】
合成シーケンスを行って２ｍＬ水中の約５０ＭＢｑの１８−フッ化物をＷａｔｅｒｓ Ａｃｃｅｓｓ ＰｌｕｓＱＭＡカートリッジ（その炭酸塩の形態）でトラップし、次にアセトニトリル／水中のｋｒｙｐｔｏｆｉｘ及び炭酸塩の溶液（２０．３ｍｇのｋｒｙｐｔｏｆｉｘ ２２２、４．３ｍｇの炭酸カリウム、３２０ｍＬのアセトニトリル、８０ｍＬの水）でカートリッジを溶出して加熱反応器に回収した。これを乾燥窒素気流中で加熱して乾燥し、次に所定の水分量のアセトニトリル中マンノーストリフレート溶液を反応器に添加した。
【００６６】
外部ヒータ温度１２５℃でさらに８０秒間反応せしめた後、０．６ｍＬを回収して廃棄し（ラインから残留水を除去するため）、残余を生成物バイアルに移した。５０μＬ溶液を用いたカールフィッシャー滴定で生成物バイアルの水分量を決定し、インスタント薄層クロマトグラフィー（ＩＴＬＣ）でＲＣＰを測定した。ＴＬＣはシリカＴＬＣプレートで実施し、スポットを９５％アセトニトリル、５％水で溶出し、ＴＬＣを用いて１８−フッ化物及び１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−フルオロβ−Ｄ−マンノピラノース（いずれの場合も２成分のみ）の相対比を計測した。
【００６７】
水封鎖測定
３回のコールド（非放射性）実験を行って、マンノーストリフレートとの反応でどの程度の水がなくなったかを調べるために所定体積の反応液を標識反応の前後にサンプリングした。これによって、測定した水分量に水封鎖を計算に入れることができた。
【００６８】
上記放射性標識実験と同様の合成シーケンスを行ってＷａｔｅｒｓ Ａｃｃｅｓｓ ＰｌｕｓＱＭＡカートリッジ（その炭酸塩の形態）に２ｍＬの水を流し、次にアセトニトリル／水中のｋｒｙｐｔｏｆｉｘと炭酸塩の溶液（２０．３ｍｇのｋｒｙｐｔｏｆｉｘ ２２２、４．３ｍｇの炭酸カリウム、３２０ｍＬのアセトニトリル、８０ｍＬの水）でカートリッジを溶出して加熱反応器に回収した。これを乾燥窒素気流中で加熱して乾燥し、次に所定の水分量のアセトニトリル中マンノーストリフレート溶液を反応器に添加した。
【００６９】
マンノーストリフレート溶液を反応器に添加してすぐに０．６ｍＬを回収して生成物バイアル中に注入した。標識反応を外部ヒータ温度１２５℃でさらに８０秒間進行させ、残りの溶液を別の生成物バイアルに移した。５０μＬの溶液を用いたカールフィッシャー滴定器で各バイアルの水分量を測定した。
【００７０】
水封鎖実験の結果を表１に示す。表１はアセトニトリル溶媒中の水の存在量を示す。
【００７１】
【表１】
低レベル及び中間レベルの水分量では、マンノーストリフレートとの反応による水の有意な封鎖は認められなかった。しかし、高レベルの水分量では水分量が約７％低下した。
【００７２】
放射標識結果
各放射標識反応の水分量を測定し、マンノーストリフレートによる水の封鎖を計算に入れて標識前の水分量を補正した。各水分量で得られたＲＣＰを表２に示すとともに、図３に図示する。
【００７３】
【表２】
これらの結果は３０００〜６０００ｐｐｍが好ましい水分量であることを裏付ける。ＲＣＰ７３．６％での疑わしい結果を無視すれば、非常に湿分の多い反応条件であったとしても、反応は約８５％ＲＣＰに近づく。
【図面の簡単な説明】
【００７４】
【図１】［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ生成物の放射化学純度と溶媒の水分量との関係を示すプロット。
【図２】樹脂−リンカー−ベクターでの標識プロセスにおける［１８Ｆ］−ｐＦＤＧとｐＧｌｕｃｏｓｅの生成の関係を示すグラフ。
【図３】自動化合成における［１８Ｆ］−ｐＦＤＧ生成物の放射化学純度と溶媒の水分量との関係を示すプロット。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
非フッ素化糖誘導体とフッ化物との反応を含んでなるフッ素化糖誘導体の製造方法であって、上記反応を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中で実施することを特徴とする方法。
【請求項２】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体が単糖類である、請求項１記載の方法。
【請求項３】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体が保護されている、請求項１又は請求項２記載の方法。
【請求項４】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体がアセチル基で保護されている、請求項３記載の方法。
【請求項５】
保護フッ素化グルコース誘導体の製造のための請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の方法であって、前記非フッ素化糖誘導体が保護マンノース誘導体である方法。
【請求項６】
１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノース（すなわちテトラアセチルマンノーストリフレート）から２−フルオロ−１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−Ｄ−グルコース（すなわちテトラアセチルフルオログルコース又はｐＦＤＧ）を製造するための請求項５記載の方法。
【請求項７】
前記溶媒がアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンから選択される、請求項１乃至請求項６のいずれか１項記載の方法。
【請求項８】
前記溶媒がアセトニトリルである、請求項７記載の方法。
【請求項９】
前記溶媒の水分量が約１０００〜１５０００ｐｐｍである、請求項１乃至請求項８のいずれか１項記載の方法。
【請求項１０】
前記溶媒の水分量が約２０００〜７０００ｐｐｍである、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
溶媒の水分量が３０００ｐｐｍ〜６０００ｐｐｍである、請求項９記載の方法。
【請求項１２】
液相中で実施される、請求項１乃至請求項１１のいずれか１項記載の方法。
【請求項１３】
自動化された請求項１乃至請求項１２のいずれか１項記載の方法。
【請求項１４】
前記フッ化物がカリウム対イオンとのイオン性フッ化物であって、４，７，１３，１６，２１，２４−ヘキサオキサ−１，１０−ジアザビシクロ−［８，８，８］−ヘキサコサンのような相間移動触媒が前記フッ化物に添加される、請求項１乃至請求項１３のいずれか１項記載の方法。
【請求項１５】
放射性標識糖誘導体の製造のための１乃至請求項１４のいずれか１項記載の方法。
【請求項１６】
放射性標識糖誘導体が［１８Ｆ］標識糖誘導体である、請求項１５記載の方法。
【請求項１７】
［１８Ｆ］−ｐＦＤＧの製造のための請求項１乃至請求項１６のいずれか１項記載の方法であって、当該方法がテトラアセチルマンノーストリフレートと［１８Ｆ］フッ化物との反応を含む方法。
【請求項１８】
以下の（ｉ）〜（ｉｖ）の１以上の追加工程を任意の順序でさらに含む、請求項１乃至請求項１７のいずれか１項記載の方法。
（ｉ）溶液からの過剰フッ化物の除去、
（ｉｉ）脱保護フッ化物を得るための保護フッ素化糖誘導体の脱保護、
（ｉｉｉ）有機溶媒の除去、及び
（ｉｖ）水溶液中の脱保護フッ化物糖誘導体の製剤化。
【請求項１９】
放射性フッ化物、特に［１８Ｆ］フッ化物の溶液の水分量を低減する方法であって、当該方法が上記溶液をスカベンジャー樹脂に接触させることを含んでなる方法。
【請求項２０】
前記溶液がアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンから選択される非プロトン性有機溶媒中のフッ化物を含む、請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
前記溶液がアセトニトリル中のフッ化物を含む、請求項１９又は請求項２０記載の方法。
【請求項１】
非フッ素化糖誘導体とフッ化物との反応を含んでなるフッ素化糖誘導体の製造方法であって、上記反応を１０００ｐｐｍ超５００００ｐｐｍ未満の量の水を含有する溶媒中で実施することを特徴とする方法。
【請求項２】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体が単糖類である、請求項１記載の方法。
【請求項３】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体が保護されている、請求項１又は請求項２記載の方法。
【請求項４】
前記フッ素化糖誘導体及び非フッ素化糖誘導体がアセチル基で保護されている、請求項３記載の方法。
【請求項５】
保護フッ素化グルコース誘導体の製造のための請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の方法であって、前記非フッ素化糖誘導体が保護マンノース誘導体である方法。
【請求項６】
１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−２−トリフルオロメタンスルホニル−β−Ｄ−マンノピラノース（すなわちテトラアセチルマンノーストリフレート）から２−フルオロ−１，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−Ｄ−グルコース（すなわちテトラアセチルフルオログルコース又はｐＦＤＧ）を製造するための請求項５記載の方法。
【請求項７】
前記溶媒がアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンから選択される、請求項１乃至請求項６のいずれか１項記載の方法。
【請求項８】
前記溶媒がアセトニトリルである、請求項７記載の方法。
【請求項９】
前記溶媒の水分量が約１０００〜１５０００ｐｐｍである、請求項１乃至請求項８のいずれか１項記載の方法。
【請求項１０】
前記溶媒の水分量が約２０００〜７０００ｐｐｍである、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
溶媒の水分量が３０００ｐｐｍ〜６０００ｐｐｍである、請求項９記載の方法。
【請求項１２】
液相中で実施される、請求項１乃至請求項１１のいずれか１項記載の方法。
【請求項１３】
自動化された請求項１乃至請求項１２のいずれか１項記載の方法。
【請求項１４】
前記フッ化物がカリウム対イオンとのイオン性フッ化物であって、４，７，１３，１６，２１，２４−ヘキサオキサ−１，１０−ジアザビシクロ−［８，８，８］−ヘキサコサンのような相間移動触媒が前記フッ化物に添加される、請求項１乃至請求項１３のいずれか１項記載の方法。
【請求項１５】
放射性標識糖誘導体の製造のための１乃至請求項１４のいずれか１項記載の方法。
【請求項１６】
放射性標識糖誘導体が［１８Ｆ］標識糖誘導体である、請求項１５記載の方法。
【請求項１７】
［１８Ｆ］−ｐＦＤＧの製造のための請求項１乃至請求項１６のいずれか１項記載の方法であって、当該方法がテトラアセチルマンノーストリフレートと［１８Ｆ］フッ化物との反応を含む方法。
【請求項１８】
以下の（ｉ）〜（ｉｖ）の１以上の追加工程を任意の順序でさらに含む、請求項１乃至請求項１７のいずれか１項記載の方法。
（ｉ）溶液からの過剰フッ化物の除去、
（ｉｉ）脱保護フッ化物を得るための保護フッ素化糖誘導体の脱保護、
（ｉｉｉ）有機溶媒の除去、及び
（ｉｖ）水溶液中の脱保護フッ化物糖誘導体の製剤化。
【請求項１９】
放射性フッ化物、特に［１８Ｆ］フッ化物の溶液の水分量を低減する方法であって、当該方法が上記溶液をスカベンジャー樹脂に接触させることを含んでなる方法。
【請求項２０】
前記溶液がアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、１，２−ジメトキシエタン、スルホラン及びＮ−メチルピロリジノンから選択される非プロトン性有機溶媒中のフッ化物を含む、請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
前記溶液がアセトニトリル中のフッ化物を含む、請求項１９又は請求項２０記載の方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図２】
【図３】
【公表番号】特表２００８−５２０６３６（Ｐ２００８−５２０６３６Ａ）
【公表日】平成２０年６月１９日（２００８．６．１９）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−５４２１００（Ｐ２００７−５４２１００）
【出願日】平成１７年１１月１８日（２００５．１１．１８）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００５／００４４５１
【国際公開番号】ＷＯ２００６／０５４０９８
【国際公開日】平成１８年５月２６日（２００６．５．２６）
【出願人】（３０５０４０７１０）ジーイー・ヘルスケア・リミテッド (99)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２０年６月１９日（２００８．６．１９）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年１１月１８日（２００５．１１．１８）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００５／００４４５１
【国際公開番号】ＷＯ２００６／０５４０９８
【国際公開日】平成１８年５月２６日（２００６．５．２６）
【出願人】（３０５０４０７１０）ジーイー・ヘルスケア・リミテッド (99)
【Ｆターム（参考）】
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