核酸分析デバイス，核酸分析装置、及び核酸分析方法
【課題】微小な核酸プローブを高密度に１つずつ並べるためには、事前に嵩高い微粒子に核酸プローブを一分子だけ捕捉させ、その微粒子を任意に配列した構造体に選択的に固定する方法が大変有効である。しかし、固定反応の観点からは微粒子径と接着用パッドは大きい方が望ましいが、励起の観点からは微粒子は小さい方が望ましい。そのため、微粒子径と接着用パッド径はその間に限定されてしまい、固定反応と励起それぞれに関して最適な条件を両立できていない。
【解決手段】そこで、嵩高い微粒子として外部刺激応答性微粒子を用いる。はじめに一分子の核酸試料断片を保持した外部刺激応答性微粒子を基板上に一つずつ高密度に且つ規則正しくに整列させて固定し、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させる。
【解決手段】そこで、嵩高い微粒子として外部刺激応答性微粒子を用いる。はじめに一分子の核酸試料断片を保持した外部刺激応答性微粒子を基板上に一つずつ高密度に且つ規則正しくに整列させて固定し、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させる。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、核酸分析デバイスおよびそれを用いた核酸分析装置および核酸分析方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＤＮＡやタンパク質等の標的物質を検出する手段として、標的物質に蛍光標識を施し、レーザ等所定の励起光を照射して発生する蛍光を検出する方法が広く用いられている。例えば、これらの応用として、P.N.A.S. 2003, Vol. 100, pp. 3960-3964.（非特許文献１）にあるように、基板にＤＮＡなどを固定してその塩基配列を決定する方法が提案されている。この方法は一般にSequencing by synthesisと呼ばれ、基板表面にランダムに分析すべき試料ＤＮＡ断片を一分子ずつ捕捉し、１塩基ずつ伸長させて、その結果を蛍光計測より検出することにより塩基配列を決定するものである。本方式では、単一ＤＮＡ分子毎に塩基配列が決定できるため、従来技術の問題であったクローニングやＰＣＲ等での試料ＤＮＡの精製、増幅が不要にでき、ゲノム解析や遺伝子診断の迅速化が期待できる。また、本方式を用いた塩基配列決定においては蛍光分子励起方法としてエバネッセント光励起が有効である。
【０００３】
以下、エバネッセント光について記す。入射側媒質の屈折率ｎ１，出射側媒質の屈折率ｎ２である界面に対し、入射角θで波長λの電磁波（光）を入射する際、θｃ＝sin-1（ｎ２／ｎ１）で与えられるθｃを臨界角と呼ぶ（ただし、sin-1はsinの逆関数）。入射角がθ≧θｃであるときに電磁波は全反射し、このとき界面の出射側近傍には界面からの距離に従い指数関数的に減衰する電磁場が生じる。この電磁場はエバネッセント場（光）と呼ばれる。エバネッセント場相対強度（Ｅ）は界面からの距離（ｚ）の関数で、界面上（ｚ＝０）の時に１で最大となり、波長，入射角，屈折率で決まる値ｄを用いて、Ｅ＝exp（−ｚ／ｄ）と表される。この値ｄを染み出し距離と呼ぶ。ｄは、屈折率ｎ１，出射側媒質の屈折率ｎ２，入射角θ，波長λを用いて、ｄ＝λ／４π（ｎ１2・sin2θ−ｎ２2）-1/2で与えられることが知られている。
【０００４】
エバネッセント場は界面からの距離に応じて指数関数的に減衰するため、界面付近に存在する蛍光色素のみを励起することができ、ＳＮ比の向上に有効である。一方、励起照射系にレーザで発生させたエバネッセント場を利用した場合、その照野はレーザのスポット径に限定される。そのため、プローブの並列数を増加するには、照野内に核酸試料断片を高密度で一分子ずつ固定する技術が必要である。このとき、できるだけ高密度、且つ規則正しく、平滑な基板上に核酸試料を整列させて固定することが望まれる。これは一回に並列解析できるサンプル数を増やすことと、データ処理時間を短縮するためである。核酸試料を担持させた微粒子を平滑支持基板上にばらまいて固定させる方法は容易であるが、蛍光測定で配列を読み取る段になると、ＣＣＤカメラで検出したランダムに存在する微粒子画像から数値データを取得する際、膨大なデータ処理時間がかかってしまうためである。
【０００５】
これらの課題を解決するため、特許文献１では予め嵩高い微粒子に核酸プローブを一分子だけ捕捉させ、その微粒子を任意に配列した構造体に選択的に固定する方法を提示している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２０１０−１７２２７１号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】P.N.A.S. 2003, Vol. 100, pp. 3960-3964.
【非特許文献２】P.N.A.S. 2006, vol. 103, pp. 19635-19640.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
特許文献１に記載の方法は一分子の配列固定方法として非常に有効であるが、エバネッセント光励起と併用する場合、微粒子の直径分、微粒子上部と基板表面に距離が発生し励起光が減衰する。上記で述べたように、嵩高い微粒子を用いることで核酸プローブの一分子固定は容易になる反面、エバネッセント場を利用した励起の場合、微粒子径が大きくなることで微粒子表面に捕捉された核酸プローブは界面から離れるため、それに応じて励起光が減衰する。
【０００９】
こうした減衰は分子プローブが小さい場合にはほとんど問題にはならないが、例えば、分子プローブが何百塩基から何千塩基にも及ぶ核酸である場合、界面から一定距離離れた核酸の先端部分では取り込まれた蛍光分子が励起できないほど減衰し分析不能になる。
【００１０】
さらに流路内で微粒子固定や溶液交換が行われる場合、微粒子径が大きくなるほど液流の抵抗が増大するため、一度固定された微粒子も剥がれやすくなる。以上のような影響を小さくするためには微粒子径は５０ｎｍ以下であることが望ましい。
【００１１】
一方、微粒子径を小さくすることによる弊害もある。微粒子を一つずつ固定する反応に際しては微粒子径に対する接着パッド径は同等程度か同等以下が望ましく、衝突頻度の観点から各々は大きいほど固定され易い。
【００１２】
したがって、小さい微粒子（ここでは５０ｎｍ以下とする）では接着用パッドへの反応効率は低い。さらに接着用パッド径に関しても製造し易さと安定性の面で、大きいほどよく、少なくとも３０ｎｍ以上であることが望ましい。
【００１３】
すなわち、固定反応の観点からは微粒子径と接着用パッドは大きい方が望ましいが、励起の観点からは微粒子は小さい方が望ましい。そのため、微粒子径と接着用パッドは３０〜５０ｎｍ程度に限定されてしまい、固定反応と励起それぞれに関して最適な条件を両立できていない。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
そこで、嵩高い微粒子として外部刺激応答性微粒子を用いる。はじめに一分子の核酸試料断片を保持した外部刺激応答性微粒子を基板上に一つずつ高密度に且つ規則正しくに整列させて固定し、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させる。
【発明の効果】
【００１５】
本発明により、プローブ分子を嵩高い外部刺激応答性微粒子を介して容易に所定位置に一分子ずつ固定でき、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させることで、界面とプローブ間の距離を縮小させ励起光であるエバネッセント光の減衰を抑え、さらに該微粒子と接着パッドとの接着面積が増大することにより核酸プローブ分子を強固に固定できる。さらに、比較的大きい径の微粒子を使用できるため、その大きさに応じた比較的大きい径で製造しやすい接着用パッドを使用できる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】実施例１および実施例２における分子プローブが捕捉された微粒子を配列し、外部刺激により変形したデバイスについての説明図。
【図２】実施例２における微粒子の形状とエバネッセント場の距離の変化についての説明図。
【図３】実施例３におけるデバイスの製造法に関する説明図。
【図４】実施例３におけるデバイスの製造法に関する説明図。
【図５】実施例４における核酸分析装置の構成に関する説明図。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本実施例では、検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に規則的に固定した核酸分析用デバイスであって、基板上の微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、微粒子と検出用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子が外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析デバイスを開示する。
【００１８】
さらに、本実施例では、分子プローブを一分子有する微粒子だけを選別し、その微粒子を基板上の接着用パッドに規則的に固定し、前記微粒子を外部刺激により変形させて作製した核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド、及び核酸試料を供給する手段と、該核酸分析デバイスにエバネッセント光を照射する手段と、核酸分析デバイス上においてヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段と、を備えた核酸試料の塩基配列情報を取得する核酸分析装置を開示する。
【００１９】
さらに、本実施例では基板上の前記微粒子の固定位置に接着用のパッドを備え、微粒子と接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、接着用パッドの直径が微粒子の直径と同等あるいはそれ以下の大きさであり、基板表面に非特異的吸着防止用の有機物ポリマーを材料とする薄膜層を有する、核酸分析デバイスを開示する。
【００２０】
さらに、本実施例では、微粒子１個に対して、一分子の分子プローブが固定されていることを開示する。
【００２１】
さらに、本実施例では微粒子が外部刺激応答性重合体から選ばれる材料からなることを特徴とするデバイスであって、外部刺激が、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射，化学処理から選ばれるものであることを開示する。
【００２２】
さらに、本実施例では接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、またはアルミから選ばれる材料からなることを開示する。
【００２３】
さらに、本実施例では前記核酸分析デバイスに光を照射する手段として、エバネッセント場を利用することを開示する。
【００２４】
以下、上記及びその他の本発明の新規な特徴と効果について、図を参照して説明する。ここでは、本発明を完全に理解してもらうため、特定の実施形態について詳細な説明を行うが、本発明はここに記した内容に限定されるものではない。
【００２５】
本実施例で例示する刺激応答性微粒子は、形状が外部刺激では変形しづらいコア部、例えば、磁性微粒子と、刺激応答性ポリマーとが、多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されている。この刺激応答性ポリマーは、磁性微粒子表面に固定された多価アルコールまたは多価アルコール誘導体にグラフト重合されるか、またはそのポリマー末端または側鎖の官能基と、多価アルコールまたは多価アルコール誘導体の有する官能基との結合によって、固定されている。その刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子の平均粒径は、１〜１０００ｎｍであることが好ましく、より好ましくは、３０〜２００ｎｍである。
【００２６】
今回使用した刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーである。熱応答性ポリマーは特定の分子構造を持ち、水中で下限臨界溶液温度（LOWER Critical Solution temperature，ＬＣＳＴ）を有し、ある温度を境にそれより高い温度ではその分子内、或いは分子間の疎水結合が強まりポリマー鎖が凝集し、逆に、低い温度ではポリマー鎖が水分子を結合し水和する相転移挙動を示す。その相転移現象は可逆的であり、スイッチング基剤と呼ばれる。また、上限臨界溶液温度（Upper Critical Solution temperature，ＵＣＳＴ）を有するものは、ある温度を境にそれより低い温度で凝集し、高い温度ではポリマー鎖が水分子を結合し水和する相転移挙動を示す。
【００２７】
熱応答性ポリマーの中で、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドは最もよく研究されており、側鎖に親水性部分と疎水性部分両方を持つＬＣＳＴが３２℃のポリマーである。すなわち、３２℃以上の温度では側鎖の疎水性部分であるイソプロピル基によって分子内，分子間において疎水結合が強まりポリマー鎖が凝集し、３２℃より低い温度ではもう一方の親水性部分のアミド結合と水分子とが結合するため水に溶解する。こうした相転移現象はアクリレートの添加などで阻害することもできる。
【００２８】
熱応答性ポリマーは、下限臨界溶液温度を有するポリマー及び上限臨界溶液温度を有するポリマーに区別される。
【００２９】
下限臨界溶液温度を有するポリマーは、Ｎ置換（メタ）アクリルアミド誘導体からなるポリマー，ポリオキシエチレンアルキルアミン誘導体，ポリオキシエチレンソルビタンラウレート等のポリオキシエチレンソルビタンエステル誘導体，（ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル）（メタ）アクリレート類、および（ポリオキシエチレンアルキルエーテル）（メタ）アクリレート類等のポリオキシエチレン（メタ）アクリル酸エステル誘導体等である。また、これらの重合体及びこれらの少なくとも２種の単量体からなるコポリマーも利用できる。これらのなかでも、Ｎ−ｎ−プロピルアクリルアミド，Ｎ−イソプロピルアクリルアミド，Ｎ−エチルアクリルアミド，Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド，Ｎ−アクリロイルピロリジン，Ｎ−アクリロイルピペリジン，Ｎ−アクリロイルモルホリン，Ｎ−ｎ−プロピルメタクリルアミド，Ｎ−イソプロピルメタクリルアミド，Ｎ−エチルメタクリルアミド，Ｎ，Ｎ−ジメチルメタクリルアミド，Ｎ−メタクリロイルピロリジン，Ｎ−メタクリロイルピペリジン，Ｎ−メタクリロイルモルホリンからなる群から選ばれる少なくとも１種の単量体からなるポリマーが好ましく利用できる。
【００３０】
また、上限臨界溶液温度を有するポリマーは、アクリルアミド，アセチルアクリルアミド，ビオチノールアクリレート，Ｎ−ビオチニル−Ｎ′−メタクロイルトリメチレンアミド，アクロイルグリシンアミド，アクロイルザルコシンアミド，メタクリルザルコシンアミド，アクロイルニペコタミド及びアクロイルメチルウラシル等からなる群から選ばれる少なくとも１種の単量体からなるポリマーである。また、これらの少なくとも２種の単量体からなるコポリマーも利用できる。これらのなかでも、アクリルアミド，アセチルアクリルアミド，ビオチノールアクリレート，Ｎ−ビオチニル−Ｎ′−メタクロイルトリメチレンアミド，アクロイルグリシンアミド，アクロイルザルコシンアミド，メタクリルザルコシンアミド，アクロイルニペコタミド及びアクロイルメチルウラシルからなる群から選ばれる少なくとも１種が好ましく利用できる。
【００３１】
以上の材料により製造されたゲル状微粒子は加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射，化学処理による脱水処理により水分を失い体積が減少する。体積の減少の評価は走査型電子顕微鏡（以下、ＳＥＭ）や原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）などにより観察と計測ができる。
【００３２】
接着用パッドあるいはプローブ分子を相互に特異的吸着作用する部位として、ビオチン，アビジン，グルタチオン，レクチン及び抗体等を刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子に固定することで、それらに親和性を有する分子と特異的に結合できる。ビオチンの場合は、アビジンとの特異的な結合を介してビオチン化された目的タンパク質と、またビオチン化された抗体を用いてそれらの抗原である種々のタンパク質と更に結合することが可能である。
【００３３】
本発明では、市販されているアビジン，ビオチン化タンパクが利用でき、ビオチン化は、当技術分野で周知の方法に従えばよい。また、ポリマーの重合時にカルボン酸，アミノ基またはエポキシ基等の官能基を持つモノマーを他のモノマーと共重合させ、当技術分野で周知の方法に従い、この官能基を介して、リガンドをポリマー上に固定する方法が利用できる。これにより、刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子と、リガンドとからなる吸着材が得られる。
【００３４】
核酸を捕捉するプローブ分子には、ＤＮＡやＲＮＡの核酸分子の一本鎖を用いることができる。核酸分子の末端を官能基と同様に予め修飾しておき、微粒子と反応させておく。また、核酸を捕捉するプローブ分子として核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を用いることもできる。発現タンパク質にアビジンタグを導入する試薬が市販されており、このような試薬を用いて核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を合成することにより、例えば、市販のビオチンで表面が修飾された微粒子表面に容易に核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を固定できる。核酸を捕捉するプローブ分子として核酸分子の一本鎖を用いた場合には、特定の相補配列を有する核酸試料分子を捕捉することができる。捕捉後に、核酸合成酵素やヌクレオチドを供給することにより、基板上で核酸伸張反応を起こすこともできる。また、核酸結合タンパク質を用いた場合にも特定の配列を持っている核酸を捕捉することができる。そして、プローブ分子として核酸合成酵素を用いた場合には、非特定の核酸試料分子を捕捉できる。この場合も、ヌクレオチドを供給することにより基板上で核酸伸長反応を起こすことができる。
【００３５】
一つの微粒子に固定するプローブ分子は、一分子であることが好ましい。プローブ分子が短い核酸試料断片である場合、微粒子を結合させた後に、一つのプローブ分子が結合した微粒子だけを選択的に取得することができる。例えば、微粒子の数をプローブ分子の数よりも１０倍多くして反応させると、約９０％の微粒子にはプローブ分子が捕捉されず、約９％の微粒子にはプローブ分子が一分子補足されていた。この結果は、ポアソン分布を仮定した場合の予測結果とよく一致している。したがって、プローブ分子を捕捉した微粒子のみを捕捉すれば、捕集した微粒子のうち９０％以上はプローブ分子を一分子のみ捕捉した微粒子となる。この状態で、分子量による分離や磁気微粒子による捕集、電荷の差を用いた電気泳動分離などを利用してプローブ分子が一分子結合した微粒子をさらに高い純度で取得することができる。
【００３６】
接着用パッドを平滑支持基板上に形成する方法としては、半導体で既に実用化されている薄膜プロセスを活用することができる。例えば、マスクを通した蒸着・スパッタリング、あるいは蒸着・スパッタリングにより薄膜を形成した後、ドライあるいはウエットエッチングにより製造することができる。規則正しく配置することは、薄膜プロセスを用いることで容易に実現できる。パッド間の間隔は任意に設定できるが、検出手段として光計測を行う場合、光検出の回折限界を考えると５００ｎｍ以上が好ましい。
【００３７】
本実施例の核酸分析デバイスから核酸試料に関する情報を検出するやり方にはいくつかの方式が考えられるが、感度や簡便性の観点から蛍光検出法を用いる方式が好ましい。まず、核酸分析デバイスに対して核酸試料を供給し、プローブ分子に核酸試料を捕捉させる。次に、蛍光色素を有するヌクレオチドを供給し、プローブ分子がＤＮＡプローブである場合には、核酸合成酵素を供給する。デバイス上で核酸伸長反応を起こし、伸長反応中に核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光測定を行う。この場合、ヌクレオチドの一種類を供給，未反応ヌクレオチドの洗浄，蛍光観察，違う種類のヌクレオチドの供給、以降を繰り返し行う、いわゆる逐次伸長反応方式は容易に実現できる。蛍光観察後に蛍光色素を消光するか、蛍光色素がリン酸部位に付いたヌクレオチドを用いることにより、連続的な反応を起こし、核酸試料の塩基配列情報を得ることができる。一方、４種類のヌクレオチドが各々異なる蛍光色素を有するものを供給し、洗浄することなく、連続的な核酸伸長反応を起こし、連続的に蛍光観察を行うことで、いわゆるリアルタイム反応方式を実現することもできる。この場合、蛍光色素がリン酸部位に付いたヌクレオチドを用いると、伸長反応後リン酸部位が切断されるため、消光することなく連続的に蛍光測定して核酸試料の塩基配列情報を得ることができる。
【００３８】
（実施例）
〔デバイスの構成〕
本実施例のデバイスの構成を、図１を用いて説明する。平滑支持基板１０１の上に接着用パッド１０２が規則正しく、例えば図１に示すように格子状に形成されている。接着用パッド１０２と微粒子１０３は、線状分子１０５を介して化学結合により結ばれている。線状分子１０５の末端の官能基１０６と、接着用パッド１０２とは化学的相互作用により結合していることが好ましい。その際、官能基１０６は、平滑支持基板１０１との相互作用が弱く、接着用パッド１０２との相互作用が強いことが好ましい。このような観点から、平滑支持基板としては、石英ガラス，サファイア，シリコン基板などを用いることができる。また、接着用パッド１０２には、金，チタン，ニッケル，アルミから選ばれる材料で構成することができる。官能基１０６には、平滑支持基板１０１と接着用パッド１０２との組合せを考えて選択せねばならないが、例えば、スルホヒドリル基，アミノ基，カルボキシル基，リン酸基，アルデヒド基等を用いることができる。線状分子１０５は、微粒子１０３と接着用パッド１０２を結ぶ役割を果たし、長さに大きな限定はないが、炭素数にして３から２０程度の直鎖状分子が好ましい。線状分子１０５の末端の官能基１０７は、微粒子１０３との接着性をもたらす。平滑支持基板には非特異的吸着防止用の薄膜（非特異的吸着防止膜）１０８が形成されている。薄膜１０８は微粒子１０３の非特異的吸着を防止する有機ポリマーを材料としていることが好ましい。例えば、有機ポリマーとしてポリエチレングリコール（ＰＥＧ），ポリアクリルアミド，３−グリシドキシプロピルメトキシシラン（ＧＯＰＳ）などを用いることができる。微粒子１０３としては、形状が外部刺激では変形しづらいコア部、例えば、磁性微粒子と、刺激応答性ポリマーとが結合したものを用いることができる。微粒子１０３の平均粒径は、１〜１０００ｎｍであることが好ましく、より好ましくは、３０〜２００ｎｍである。
【００３９】
このように基板を作製した上で、外部刺激を与えることで、微粒子１０３を変形させて微粒子径を縮小させることで、分子プローブ１０４と平滑支持基板１０１との距離を縮めることができる。
【００４０】
〔本実施例の効果〕
本実施例のデバイスにおける外部刺激による微粒子の変形の効果について、図２を用いて説明する。平滑支持基板２０１として厚み０.７２５mmの石英ガラス基板を用い、その上に接着用パッド２０２としてＴｉパッド（直径５０ｎｍ、厚み１０ｎｍ）を実施例３に記載の方法で作製した。Ｔｉパッド上にはアミノプロピルリン酸を反応させた後、スクシンイミドービオチンを反応させることにより、Ｔｉパッド上にビオチンを導入した。その後、微粒子２０３として表面にアビジンがコートされている刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子であるマグナビート社製Ｔｈｅｒｍａ−Ｍａｘ（登録商標） ＬＡ ａｖｉｄｉｎを基板表面に反応させた。次に、基板に１００ｎＭのＡｔｔｏ５３２−ｂｉｏｔｉｎを１５分間室温で反応させることで固定化された微粒子上に蛍光色素（Ａｔｔｏ５３２）を固定させた。固定反応後、基板上を水で満たした状態で、基板裏面側よりＹＡＧレーザ（５３２ｎｍ）を全反射条件で入射し、発生する蛍光を基板上面側から対物レンズを通して集光しＣＣＤカメラで観察した。次に、基板を取り出し、外部刺激として１０分間１０-7Ｐａで減圧乾燥した、その後、再度同じ装置・条件で蛍光を測定した。その結果、Ａｔｔｏ５３２の蛍光強度は減圧乾燥処理前後で大きく変動し、減圧乾燥処理後は処理前の凡そ１.７倍ほど強くなっていることが確認された。その後、基板表面を走査型電子顕微鏡（以下、ＳＥＭ）で２.０ｋＶ、５０ｋ倍の条件で観察した結果、潰れた微粒子が観察された。厚みは凡そ３〜５ｎｍ程度と見積もられた。以上の結果から、微粒子が水を十分含んだ状態では、基板と色素の距離が微粒子の大きさだけ離れているのに対して、乾燥後は微粒子が潰れることで基板と色素の距離が近くなり、その分、色素を励起するエバネッセント光が強くなったために蛍光強度が強くなったものと理解される。
【００４１】
以上のように、外部刺激によって形状が変化する（径が小さくなる）微粒子上に評価対象の蛍光色素を持つ分子を固定すると、外部刺激で微粒子径を小さくすることで、蛍光強度を強く観察できることが示された。
【００４２】
〔デバイスの製造方法〕
核酸分析デバイスの製造方法の一例を、図３と図４を用いて説明する。平滑支持基板３０１上に接着用パッド３０５を構成する材料、例えば、金，チタン，ニッケル，アルミ、をスパッタリングで製膜する。これを金属の薄膜３０２とする。平滑支持基板３０１としてガラス基板，サファイア基板を用い、接着用パッド３０５の材料として金，アルミ，ニッケルを用いる場合には、基板材料と接着用パッド３０５材料との間に接着を補強するためにチタンやクロムの薄膜を入れることが好ましい。また、接着用パッド３０５はできる限り薄いほうが好ましい。これは、平滑支持基板３０１に厚みがあると側面部の面積が増え、接着用パッド３０５直径が微粒子の直径以下の場合でも、複数の微粒子が固定される可能性が高まるためである。そのため、金属の薄膜３０２は成膜の時点でできる限り薄く作製するほうが好ましい。
【００４３】
この金属の薄膜３０２の上にレジストでパターンを形成する。次にレジストパターン以外の金属の薄膜３０２をエッチングにより除去する。さらに電子線用ポジ型レジスト３０３を剥離すると接着用パッド３０５が完成する。次に、平滑支持基板３０１には吸着せず、接着用パッド３０５には吸着する線状分子３０４を反応させる。接着用パッド３０５が金，チタン，アルミ，ニッケルの場合には、線状分子３０４末端の官能基としては、各々、スルホヒドニル基，リン酸基，チアゾール基を用いることが好ましい。線状分子３０４の官能基には、例えばビオチンを用いることができる。線状分子３０４を平滑支持基板３０１と反応させた後、接着用パッド３０５を形成した以外の平滑支持基板３０１表面に薄膜を作製する。
【００４４】
薄膜１０８は微粒子１０３の非特異的吸着を防止する有機ポリマーを材料とする。非特異的吸着を防止する有機ポリマーの種類は微粒子１０３の表面状態に合わせて適宜選択する。微粒子１０３の表面状態が負の電荷を有している場合は、反発するように負に帯電している有機ポリマーを選択する。微粒子１０３の表面が親水性ならば、有機ポリマーは疎水性のものを選択し、微粒子１０３の表面が疎水性ならば、有機ポリマーは親水性のものを選択する。例えば、親水性のアビジンが修飾された微粒子１０３に対して非特異的吸着防止膜３０６としてポリエチレングリコール（ＰＥＧ），ポリアクリルアミド，３−グリシドキシプロピルメトキシシラン（ＧＯＰＳ）などを用いることができる。
【００４５】
核酸分析デバイスの製造法の一例を図４で説明する。この方法を用いることで、接着用パッド４０６と平滑支持基板４０１に選択性を持たない線状分子４０３でも接着用パッド４０６上のみに線状分子４０３を残すことができる。線状分子４０３は製膜した金属の薄膜４０２のエッチングの前に反応させることもできる。その場合、線状分子４０３を反応させてから電子線用ポジ型レジスト４０４でパターンを形成する。電子線用ポジ型レジスト４０４で保護された部分以外はエッチングにより、線状分子４０３ごと除去される。次いで表面に非特異的吸着防止膜４０５を製膜する。電子線用ポジ型レジスト４０４剥離をすることで接着用パッド４０６上のみに線状分子４０３を残すことができる。
【００４６】
微粒子表面には、予めアビジンを修飾しておくことが好ましい。金または白金微粒子を用いる場合には、アミノチオールを反応させた後、ビオチン−スクシンイミド（Ｐｉｅｒｃｅ社製ＮＨＳ−Ｂｉｏｔｉｎ）を反応させ、最後にストレプトアビジンを反応させることにより、アビジン修飾することが容易にできる。金または白金以外の金属微粒子を用いる場合には、酸素雰囲気中で加熱処理することにより表面を酸化処理した後、アミノシランを反応させ、次にビオチン−スクシンイミド（Ｐｉｅｒｃｅ社製ＮＨＳ−Ｂｉｏｔｉｎ）を反応させ、最後にストレプトアビジンを反応させる。これにより、金属微粒子表面をアビジン修飾することが容易にできる。核酸捕捉プローブを固定した微粒子を平滑支持基板４０１と反応させることにより、本実施例の核酸分析デバイスを製造することができる。
【００４７】
〔核酸分析装置の構成〕
本実施例では、核酸分析デバイスを用いた核酸分析装置の好ましい構成の一例について図５を参照しながら説明する。本実施例の核酸分析装置は、核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、核酸分析デバイスに光を照射する手段と、核酸分析デバイス上においてヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段と、を備える。より具体的には、カバープレート５０１と検出窓５０２と溶液交換用口である注入口５０３と排出口５０４から構成される反応チャンバに前記のデバイスを設置する。なお、カバープレート５０１と検出窓の材質として、ＰＤＭＳ（Polydimethylsiloxane）を使用する。また、検出窓の厚さは０.１７mmとする。ＹＡＧレーザ光源（波長５３２ｎｍ，出力２０ｍＷ）５０７およびＹＡＧレーザ光源（波長３５５ｎｍ，出力２０ｍＷ）５０８から発振するレーザ光５０９および５１０を、レーザ光５０９のみをλ／４板５１１によって円偏光し、ダイクロイックミラー（４１０ｎｍ以下を反射）５１２によって、前記２つのレーザ光を同軸になるよう調整した後、レンズ５１３によって集光し、その後、プリズム５１４を介してデバイス５０５へ臨界角以上で照射する。蛍光体はレーザ光で励起され、その蛍光の一部は検出窓を介して出射される。また、検出窓より出射される蛍光は、対物レンズ（×６０，ＮＡ１.３５，作動距離０.１５mm）５１５により平行光束とされ、光学フィルタ５１６により背景光及び励起光が遮断され、結像レンズにより２次元ＣＣＤカメラ５１８上に結像される。
【００４８】
逐次反応方式の場合には、蛍光色素付きヌクレオチドとして、P.N.A.S. 2006, vol. 103, pp 19635-19640（非特許文献２）に開示されているような、リボースの３′ＯＨの位置に３′−Ｏ−アリル基を保護基として入れ、また、ピリミジンの５位の位置にあるいはプリンの７位の位置にアリル基を介して蛍光色素と結びつけたものが使用できる。アリル基は光照射あるいはパラジウムと接触することで切断されるため、色素の消光と伸長反応の制御を同時に達成することができる。逐次反応でも、未反応のヌクレオチドを洗浄で除去する必要はない。さらに、洗浄工程が必要ないことからリアルタイムで伸長反応を計測することも可能である。この場合には、前記ヌクレオチドにおいて、リボースの３′ＯＨの位置に３′−Ｏ−アリル基を保護基として入れる必要は無く、光照射で切断可能な官能基を介して色素と結びついているヌクレオチドを用いれば良い。
【００４９】
蛍光色素へのエネルギー移動媒体として半導体微粒子を用いた場合にも、上述の核酸分析装置の例は適用可能である。例えば、半導体微粒子としてＱｄｏｔ（Ｒ）５６５ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（インビトロジェン社製）を用いると、ＹＡＧレーザ光源（波長５３２ｎｍ，出力２０ｍＷ）で十分に励起できる。この励起エネルギーは５３２ｎｍの光では励起されないアレクサ６３３（インビトロジェン社製）へ移動することにより蛍光を発するようになる。つまり、未反応のヌクレオチドに付随する色素は励起されることはなく、ＤＮＡプローブに捕捉され半導体微粒子に近接しエネルギー移動が起きてはじめて発光するので、捕捉されたヌクレオチドを蛍光測定で識別することが可能である。分子プローブ固定用の微粒子の材質が有機ポリマーである場合は、外部光源の光を照射しても励起しない。そのため、励起エネルギーの移動による蛍光色素の発光は起こらず、未反応のヌクレオチドも発光し、ノイズとなる可能性がある。しかし、核酸合成酵素に半導体微粒子などのエネルギー移動をもたらす微粒子を結合することで、取り込まれたヌクレオチドだけを発光させることができる。あるいは、核酸合成酵素に金，銀，白金，アルミニウム等を結合させれば、取り込まれたヌクレオチドの蛍光を増強させることができる。あるいは、微粒子を固定する金属パッドの材料に金，銀，白金，アルミニウム等を用いれば、金属パッド周囲の蛍光が増強されるため、ＳＮ比を向上できる。
【００５０】
上記のように、本実施例の核酸分析デバイスを用いて核酸分析装置を組上げることにより、洗浄工程を入れることなく、解析時間の短縮化，デバイス及び分析装置の簡便化が図れ、逐次反応方式のみならず、リアルタイムで塩基の伸長反応を計測することが可能となり、従来技術に対して大幅な時間短縮になる。
【産業上の利用可能性】
【００５１】
核酸分析デバイスを用いた核酸分析において、「ｄｅｐｈａｓｉｎｇ」が起こることがないため読み取塩基長を長くでき、かつ、多種類の被解析ＤＮＡ断片を一度に解析可能であるため、非常に高いスループットとすることができる。
【符号の説明】
【００５２】
１０１，２０１，３０１，４０１ 平滑支持基板
１０２，２０２，３０５，４０６ 接着用パッド
１０３，２０３ 微粒子
１０４，２０４ 分子プローブ
１０５，３０４，４０３ 線状分子
１０６，１０７ 官能基
１０８，３０６，４０５ 非特異的吸着防止膜
３０２，４０２ 金属の薄膜
３０３，４０４ 電子線用ポジ型レジスト
５０１ カバープレート
５０２ 検出窓
５０３ 注入口
５０４ 排出口
５０５ デバイス
５０６ 流路
５０７，５０８ ＹＡＧレーザ光源
５０９，５１０ レーザ光
５１１ λ／４板
５１２ ダイクロイックミラー
５１３ レンズ
５１４ プリズム
５１５ 対物レンズ
５１６ 光学フィルタ
５１７ 結像レンズ
５１８ ２次元ＣＣＤカメラ
【技術分野】
【０００１】
本発明は、核酸分析デバイスおよびそれを用いた核酸分析装置および核酸分析方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＤＮＡやタンパク質等の標的物質を検出する手段として、標的物質に蛍光標識を施し、レーザ等所定の励起光を照射して発生する蛍光を検出する方法が広く用いられている。例えば、これらの応用として、P.N.A.S. 2003, Vol. 100, pp. 3960-3964.（非特許文献１）にあるように、基板にＤＮＡなどを固定してその塩基配列を決定する方法が提案されている。この方法は一般にSequencing by synthesisと呼ばれ、基板表面にランダムに分析すべき試料ＤＮＡ断片を一分子ずつ捕捉し、１塩基ずつ伸長させて、その結果を蛍光計測より検出することにより塩基配列を決定するものである。本方式では、単一ＤＮＡ分子毎に塩基配列が決定できるため、従来技術の問題であったクローニングやＰＣＲ等での試料ＤＮＡの精製、増幅が不要にでき、ゲノム解析や遺伝子診断の迅速化が期待できる。また、本方式を用いた塩基配列決定においては蛍光分子励起方法としてエバネッセント光励起が有効である。
【０００３】
以下、エバネッセント光について記す。入射側媒質の屈折率ｎ１，出射側媒質の屈折率ｎ２である界面に対し、入射角θで波長λの電磁波（光）を入射する際、θｃ＝sin-1（ｎ２／ｎ１）で与えられるθｃを臨界角と呼ぶ（ただし、sin-1はsinの逆関数）。入射角がθ≧θｃであるときに電磁波は全反射し、このとき界面の出射側近傍には界面からの距離に従い指数関数的に減衰する電磁場が生じる。この電磁場はエバネッセント場（光）と呼ばれる。エバネッセント場相対強度（Ｅ）は界面からの距離（ｚ）の関数で、界面上（ｚ＝０）の時に１で最大となり、波長，入射角，屈折率で決まる値ｄを用いて、Ｅ＝exp（−ｚ／ｄ）と表される。この値ｄを染み出し距離と呼ぶ。ｄは、屈折率ｎ１，出射側媒質の屈折率ｎ２，入射角θ，波長λを用いて、ｄ＝λ／４π（ｎ１2・sin2θ−ｎ２2）-1/2で与えられることが知られている。
【０００４】
エバネッセント場は界面からの距離に応じて指数関数的に減衰するため、界面付近に存在する蛍光色素のみを励起することができ、ＳＮ比の向上に有効である。一方、励起照射系にレーザで発生させたエバネッセント場を利用した場合、その照野はレーザのスポット径に限定される。そのため、プローブの並列数を増加するには、照野内に核酸試料断片を高密度で一分子ずつ固定する技術が必要である。このとき、できるだけ高密度、且つ規則正しく、平滑な基板上に核酸試料を整列させて固定することが望まれる。これは一回に並列解析できるサンプル数を増やすことと、データ処理時間を短縮するためである。核酸試料を担持させた微粒子を平滑支持基板上にばらまいて固定させる方法は容易であるが、蛍光測定で配列を読み取る段になると、ＣＣＤカメラで検出したランダムに存在する微粒子画像から数値データを取得する際、膨大なデータ処理時間がかかってしまうためである。
【０００５】
これらの課題を解決するため、特許文献１では予め嵩高い微粒子に核酸プローブを一分子だけ捕捉させ、その微粒子を任意に配列した構造体に選択的に固定する方法を提示している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２０１０−１７２２７１号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】P.N.A.S. 2003, Vol. 100, pp. 3960-3964.
【非特許文献２】P.N.A.S. 2006, vol. 103, pp. 19635-19640.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
特許文献１に記載の方法は一分子の配列固定方法として非常に有効であるが、エバネッセント光励起と併用する場合、微粒子の直径分、微粒子上部と基板表面に距離が発生し励起光が減衰する。上記で述べたように、嵩高い微粒子を用いることで核酸プローブの一分子固定は容易になる反面、エバネッセント場を利用した励起の場合、微粒子径が大きくなることで微粒子表面に捕捉された核酸プローブは界面から離れるため、それに応じて励起光が減衰する。
【０００９】
こうした減衰は分子プローブが小さい場合にはほとんど問題にはならないが、例えば、分子プローブが何百塩基から何千塩基にも及ぶ核酸である場合、界面から一定距離離れた核酸の先端部分では取り込まれた蛍光分子が励起できないほど減衰し分析不能になる。
【００１０】
さらに流路内で微粒子固定や溶液交換が行われる場合、微粒子径が大きくなるほど液流の抵抗が増大するため、一度固定された微粒子も剥がれやすくなる。以上のような影響を小さくするためには微粒子径は５０ｎｍ以下であることが望ましい。
【００１１】
一方、微粒子径を小さくすることによる弊害もある。微粒子を一つずつ固定する反応に際しては微粒子径に対する接着パッド径は同等程度か同等以下が望ましく、衝突頻度の観点から各々は大きいほど固定され易い。
【００１２】
したがって、小さい微粒子（ここでは５０ｎｍ以下とする）では接着用パッドへの反応効率は低い。さらに接着用パッド径に関しても製造し易さと安定性の面で、大きいほどよく、少なくとも３０ｎｍ以上であることが望ましい。
【００１３】
すなわち、固定反応の観点からは微粒子径と接着用パッドは大きい方が望ましいが、励起の観点からは微粒子は小さい方が望ましい。そのため、微粒子径と接着用パッドは３０〜５０ｎｍ程度に限定されてしまい、固定反応と励起それぞれに関して最適な条件を両立できていない。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
そこで、嵩高い微粒子として外部刺激応答性微粒子を用いる。はじめに一分子の核酸試料断片を保持した外部刺激応答性微粒子を基板上に一つずつ高密度に且つ規則正しくに整列させて固定し、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させる。
【発明の効果】
【００１５】
本発明により、プローブ分子を嵩高い外部刺激応答性微粒子を介して容易に所定位置に一分子ずつ固定でき、次いで外部刺激を与え該微粒子の体積を減少させることで、界面とプローブ間の距離を縮小させ励起光であるエバネッセント光の減衰を抑え、さらに該微粒子と接着パッドとの接着面積が増大することにより核酸プローブ分子を強固に固定できる。さらに、比較的大きい径の微粒子を使用できるため、その大きさに応じた比較的大きい径で製造しやすい接着用パッドを使用できる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】実施例１および実施例２における分子プローブが捕捉された微粒子を配列し、外部刺激により変形したデバイスについての説明図。
【図２】実施例２における微粒子の形状とエバネッセント場の距離の変化についての説明図。
【図３】実施例３におけるデバイスの製造法に関する説明図。
【図４】実施例３におけるデバイスの製造法に関する説明図。
【図５】実施例４における核酸分析装置の構成に関する説明図。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本実施例では、検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に規則的に固定した核酸分析用デバイスであって、基板上の微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、微粒子と検出用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子が外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析デバイスを開示する。
【００１８】
さらに、本実施例では、分子プローブを一分子有する微粒子だけを選別し、その微粒子を基板上の接着用パッドに規則的に固定し、前記微粒子を外部刺激により変形させて作製した核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド、及び核酸試料を供給する手段と、該核酸分析デバイスにエバネッセント光を照射する手段と、核酸分析デバイス上においてヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段と、を備えた核酸試料の塩基配列情報を取得する核酸分析装置を開示する。
【００１９】
さらに、本実施例では基板上の前記微粒子の固定位置に接着用のパッドを備え、微粒子と接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、接着用パッドの直径が微粒子の直径と同等あるいはそれ以下の大きさであり、基板表面に非特異的吸着防止用の有機物ポリマーを材料とする薄膜層を有する、核酸分析デバイスを開示する。
【００２０】
さらに、本実施例では、微粒子１個に対して、一分子の分子プローブが固定されていることを開示する。
【００２１】
さらに、本実施例では微粒子が外部刺激応答性重合体から選ばれる材料からなることを特徴とするデバイスであって、外部刺激が、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射，化学処理から選ばれるものであることを開示する。
【００２２】
さらに、本実施例では接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、またはアルミから選ばれる材料からなることを開示する。
【００２３】
さらに、本実施例では前記核酸分析デバイスに光を照射する手段として、エバネッセント場を利用することを開示する。
【００２４】
以下、上記及びその他の本発明の新規な特徴と効果について、図を参照して説明する。ここでは、本発明を完全に理解してもらうため、特定の実施形態について詳細な説明を行うが、本発明はここに記した内容に限定されるものではない。
【００２５】
本実施例で例示する刺激応答性微粒子は、形状が外部刺激では変形しづらいコア部、例えば、磁性微粒子と、刺激応答性ポリマーとが、多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されている。この刺激応答性ポリマーは、磁性微粒子表面に固定された多価アルコールまたは多価アルコール誘導体にグラフト重合されるか、またはそのポリマー末端または側鎖の官能基と、多価アルコールまたは多価アルコール誘導体の有する官能基との結合によって、固定されている。その刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子の平均粒径は、１〜１０００ｎｍであることが好ましく、より好ましくは、３０〜２００ｎｍである。
【００２６】
今回使用した刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーである。熱応答性ポリマーは特定の分子構造を持ち、水中で下限臨界溶液温度（LOWER Critical Solution temperature，ＬＣＳＴ）を有し、ある温度を境にそれより高い温度ではその分子内、或いは分子間の疎水結合が強まりポリマー鎖が凝集し、逆に、低い温度ではポリマー鎖が水分子を結合し水和する相転移挙動を示す。その相転移現象は可逆的であり、スイッチング基剤と呼ばれる。また、上限臨界溶液温度（Upper Critical Solution temperature，ＵＣＳＴ）を有するものは、ある温度を境にそれより低い温度で凝集し、高い温度ではポリマー鎖が水分子を結合し水和する相転移挙動を示す。
【００２７】
熱応答性ポリマーの中で、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドは最もよく研究されており、側鎖に親水性部分と疎水性部分両方を持つＬＣＳＴが３２℃のポリマーである。すなわち、３２℃以上の温度では側鎖の疎水性部分であるイソプロピル基によって分子内，分子間において疎水結合が強まりポリマー鎖が凝集し、３２℃より低い温度ではもう一方の親水性部分のアミド結合と水分子とが結合するため水に溶解する。こうした相転移現象はアクリレートの添加などで阻害することもできる。
【００２８】
熱応答性ポリマーは、下限臨界溶液温度を有するポリマー及び上限臨界溶液温度を有するポリマーに区別される。
【００２９】
下限臨界溶液温度を有するポリマーは、Ｎ置換（メタ）アクリルアミド誘導体からなるポリマー，ポリオキシエチレンアルキルアミン誘導体，ポリオキシエチレンソルビタンラウレート等のポリオキシエチレンソルビタンエステル誘導体，（ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル）（メタ）アクリレート類、および（ポリオキシエチレンアルキルエーテル）（メタ）アクリレート類等のポリオキシエチレン（メタ）アクリル酸エステル誘導体等である。また、これらの重合体及びこれらの少なくとも２種の単量体からなるコポリマーも利用できる。これらのなかでも、Ｎ−ｎ−プロピルアクリルアミド，Ｎ−イソプロピルアクリルアミド，Ｎ−エチルアクリルアミド，Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド，Ｎ−アクリロイルピロリジン，Ｎ−アクリロイルピペリジン，Ｎ−アクリロイルモルホリン，Ｎ−ｎ−プロピルメタクリルアミド，Ｎ−イソプロピルメタクリルアミド，Ｎ−エチルメタクリルアミド，Ｎ，Ｎ−ジメチルメタクリルアミド，Ｎ−メタクリロイルピロリジン，Ｎ−メタクリロイルピペリジン，Ｎ−メタクリロイルモルホリンからなる群から選ばれる少なくとも１種の単量体からなるポリマーが好ましく利用できる。
【００３０】
また、上限臨界溶液温度を有するポリマーは、アクリルアミド，アセチルアクリルアミド，ビオチノールアクリレート，Ｎ−ビオチニル−Ｎ′−メタクロイルトリメチレンアミド，アクロイルグリシンアミド，アクロイルザルコシンアミド，メタクリルザルコシンアミド，アクロイルニペコタミド及びアクロイルメチルウラシル等からなる群から選ばれる少なくとも１種の単量体からなるポリマーである。また、これらの少なくとも２種の単量体からなるコポリマーも利用できる。これらのなかでも、アクリルアミド，アセチルアクリルアミド，ビオチノールアクリレート，Ｎ−ビオチニル−Ｎ′−メタクロイルトリメチレンアミド，アクロイルグリシンアミド，アクロイルザルコシンアミド，メタクリルザルコシンアミド，アクロイルニペコタミド及びアクロイルメチルウラシルからなる群から選ばれる少なくとも１種が好ましく利用できる。
【００３１】
以上の材料により製造されたゲル状微粒子は加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射，化学処理による脱水処理により水分を失い体積が減少する。体積の減少の評価は走査型電子顕微鏡（以下、ＳＥＭ）や原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）などにより観察と計測ができる。
【００３２】
接着用パッドあるいはプローブ分子を相互に特異的吸着作用する部位として、ビオチン，アビジン，グルタチオン，レクチン及び抗体等を刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子に固定することで、それらに親和性を有する分子と特異的に結合できる。ビオチンの場合は、アビジンとの特異的な結合を介してビオチン化された目的タンパク質と、またビオチン化された抗体を用いてそれらの抗原である種々のタンパク質と更に結合することが可能である。
【００３３】
本発明では、市販されているアビジン，ビオチン化タンパクが利用でき、ビオチン化は、当技術分野で周知の方法に従えばよい。また、ポリマーの重合時にカルボン酸，アミノ基またはエポキシ基等の官能基を持つモノマーを他のモノマーと共重合させ、当技術分野で周知の方法に従い、この官能基を介して、リガンドをポリマー上に固定する方法が利用できる。これにより、刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子と、リガンドとからなる吸着材が得られる。
【００３４】
核酸を捕捉するプローブ分子には、ＤＮＡやＲＮＡの核酸分子の一本鎖を用いることができる。核酸分子の末端を官能基と同様に予め修飾しておき、微粒子と反応させておく。また、核酸を捕捉するプローブ分子として核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を用いることもできる。発現タンパク質にアビジンタグを導入する試薬が市販されており、このような試薬を用いて核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を合成することにより、例えば、市販のビオチンで表面が修飾された微粒子表面に容易に核酸結合タンパク質や核酸合成酵素を固定できる。核酸を捕捉するプローブ分子として核酸分子の一本鎖を用いた場合には、特定の相補配列を有する核酸試料分子を捕捉することができる。捕捉後に、核酸合成酵素やヌクレオチドを供給することにより、基板上で核酸伸張反応を起こすこともできる。また、核酸結合タンパク質を用いた場合にも特定の配列を持っている核酸を捕捉することができる。そして、プローブ分子として核酸合成酵素を用いた場合には、非特定の核酸試料分子を捕捉できる。この場合も、ヌクレオチドを供給することにより基板上で核酸伸長反応を起こすことができる。
【００３５】
一つの微粒子に固定するプローブ分子は、一分子であることが好ましい。プローブ分子が短い核酸試料断片である場合、微粒子を結合させた後に、一つのプローブ分子が結合した微粒子だけを選択的に取得することができる。例えば、微粒子の数をプローブ分子の数よりも１０倍多くして反応させると、約９０％の微粒子にはプローブ分子が捕捉されず、約９％の微粒子にはプローブ分子が一分子補足されていた。この結果は、ポアソン分布を仮定した場合の予測結果とよく一致している。したがって、プローブ分子を捕捉した微粒子のみを捕捉すれば、捕集した微粒子のうち９０％以上はプローブ分子を一分子のみ捕捉した微粒子となる。この状態で、分子量による分離や磁気微粒子による捕集、電荷の差を用いた電気泳動分離などを利用してプローブ分子が一分子結合した微粒子をさらに高い純度で取得することができる。
【００３６】
接着用パッドを平滑支持基板上に形成する方法としては、半導体で既に実用化されている薄膜プロセスを活用することができる。例えば、マスクを通した蒸着・スパッタリング、あるいは蒸着・スパッタリングにより薄膜を形成した後、ドライあるいはウエットエッチングにより製造することができる。規則正しく配置することは、薄膜プロセスを用いることで容易に実現できる。パッド間の間隔は任意に設定できるが、検出手段として光計測を行う場合、光検出の回折限界を考えると５００ｎｍ以上が好ましい。
【００３７】
本実施例の核酸分析デバイスから核酸試料に関する情報を検出するやり方にはいくつかの方式が考えられるが、感度や簡便性の観点から蛍光検出法を用いる方式が好ましい。まず、核酸分析デバイスに対して核酸試料を供給し、プローブ分子に核酸試料を捕捉させる。次に、蛍光色素を有するヌクレオチドを供給し、プローブ分子がＤＮＡプローブである場合には、核酸合成酵素を供給する。デバイス上で核酸伸長反応を起こし、伸長反応中に核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光測定を行う。この場合、ヌクレオチドの一種類を供給，未反応ヌクレオチドの洗浄，蛍光観察，違う種類のヌクレオチドの供給、以降を繰り返し行う、いわゆる逐次伸長反応方式は容易に実現できる。蛍光観察後に蛍光色素を消光するか、蛍光色素がリン酸部位に付いたヌクレオチドを用いることにより、連続的な反応を起こし、核酸試料の塩基配列情報を得ることができる。一方、４種類のヌクレオチドが各々異なる蛍光色素を有するものを供給し、洗浄することなく、連続的な核酸伸長反応を起こし、連続的に蛍光観察を行うことで、いわゆるリアルタイム反応方式を実現することもできる。この場合、蛍光色素がリン酸部位に付いたヌクレオチドを用いると、伸長反応後リン酸部位が切断されるため、消光することなく連続的に蛍光測定して核酸試料の塩基配列情報を得ることができる。
【００３８】
（実施例）
〔デバイスの構成〕
本実施例のデバイスの構成を、図１を用いて説明する。平滑支持基板１０１の上に接着用パッド１０２が規則正しく、例えば図１に示すように格子状に形成されている。接着用パッド１０２と微粒子１０３は、線状分子１０５を介して化学結合により結ばれている。線状分子１０５の末端の官能基１０６と、接着用パッド１０２とは化学的相互作用により結合していることが好ましい。その際、官能基１０６は、平滑支持基板１０１との相互作用が弱く、接着用パッド１０２との相互作用が強いことが好ましい。このような観点から、平滑支持基板としては、石英ガラス，サファイア，シリコン基板などを用いることができる。また、接着用パッド１０２には、金，チタン，ニッケル，アルミから選ばれる材料で構成することができる。官能基１０６には、平滑支持基板１０１と接着用パッド１０２との組合せを考えて選択せねばならないが、例えば、スルホヒドリル基，アミノ基，カルボキシル基，リン酸基，アルデヒド基等を用いることができる。線状分子１０５は、微粒子１０３と接着用パッド１０２を結ぶ役割を果たし、長さに大きな限定はないが、炭素数にして３から２０程度の直鎖状分子が好ましい。線状分子１０５の末端の官能基１０７は、微粒子１０３との接着性をもたらす。平滑支持基板には非特異的吸着防止用の薄膜（非特異的吸着防止膜）１０８が形成されている。薄膜１０８は微粒子１０３の非特異的吸着を防止する有機ポリマーを材料としていることが好ましい。例えば、有機ポリマーとしてポリエチレングリコール（ＰＥＧ），ポリアクリルアミド，３−グリシドキシプロピルメトキシシラン（ＧＯＰＳ）などを用いることができる。微粒子１０３としては、形状が外部刺激では変形しづらいコア部、例えば、磁性微粒子と、刺激応答性ポリマーとが結合したものを用いることができる。微粒子１０３の平均粒径は、１〜１０００ｎｍであることが好ましく、より好ましくは、３０〜２００ｎｍである。
【００３９】
このように基板を作製した上で、外部刺激を与えることで、微粒子１０３を変形させて微粒子径を縮小させることで、分子プローブ１０４と平滑支持基板１０１との距離を縮めることができる。
【００４０】
〔本実施例の効果〕
本実施例のデバイスにおける外部刺激による微粒子の変形の効果について、図２を用いて説明する。平滑支持基板２０１として厚み０.７２５mmの石英ガラス基板を用い、その上に接着用パッド２０２としてＴｉパッド（直径５０ｎｍ、厚み１０ｎｍ）を実施例３に記載の方法で作製した。Ｔｉパッド上にはアミノプロピルリン酸を反応させた後、スクシンイミドービオチンを反応させることにより、Ｔｉパッド上にビオチンを導入した。その後、微粒子２０３として表面にアビジンがコートされている刺激応答性ポリマー固定化磁性微粒子であるマグナビート社製Ｔｈｅｒｍａ−Ｍａｘ（登録商標） ＬＡ ａｖｉｄｉｎを基板表面に反応させた。次に、基板に１００ｎＭのＡｔｔｏ５３２−ｂｉｏｔｉｎを１５分間室温で反応させることで固定化された微粒子上に蛍光色素（Ａｔｔｏ５３２）を固定させた。固定反応後、基板上を水で満たした状態で、基板裏面側よりＹＡＧレーザ（５３２ｎｍ）を全反射条件で入射し、発生する蛍光を基板上面側から対物レンズを通して集光しＣＣＤカメラで観察した。次に、基板を取り出し、外部刺激として１０分間１０-7Ｐａで減圧乾燥した、その後、再度同じ装置・条件で蛍光を測定した。その結果、Ａｔｔｏ５３２の蛍光強度は減圧乾燥処理前後で大きく変動し、減圧乾燥処理後は処理前の凡そ１.７倍ほど強くなっていることが確認された。その後、基板表面を走査型電子顕微鏡（以下、ＳＥＭ）で２.０ｋＶ、５０ｋ倍の条件で観察した結果、潰れた微粒子が観察された。厚みは凡そ３〜５ｎｍ程度と見積もられた。以上の結果から、微粒子が水を十分含んだ状態では、基板と色素の距離が微粒子の大きさだけ離れているのに対して、乾燥後は微粒子が潰れることで基板と色素の距離が近くなり、その分、色素を励起するエバネッセント光が強くなったために蛍光強度が強くなったものと理解される。
【００４１】
以上のように、外部刺激によって形状が変化する（径が小さくなる）微粒子上に評価対象の蛍光色素を持つ分子を固定すると、外部刺激で微粒子径を小さくすることで、蛍光強度を強く観察できることが示された。
【００４２】
〔デバイスの製造方法〕
核酸分析デバイスの製造方法の一例を、図３と図４を用いて説明する。平滑支持基板３０１上に接着用パッド３０５を構成する材料、例えば、金，チタン，ニッケル，アルミ、をスパッタリングで製膜する。これを金属の薄膜３０２とする。平滑支持基板３０１としてガラス基板，サファイア基板を用い、接着用パッド３０５の材料として金，アルミ，ニッケルを用いる場合には、基板材料と接着用パッド３０５材料との間に接着を補強するためにチタンやクロムの薄膜を入れることが好ましい。また、接着用パッド３０５はできる限り薄いほうが好ましい。これは、平滑支持基板３０１に厚みがあると側面部の面積が増え、接着用パッド３０５直径が微粒子の直径以下の場合でも、複数の微粒子が固定される可能性が高まるためである。そのため、金属の薄膜３０２は成膜の時点でできる限り薄く作製するほうが好ましい。
【００４３】
この金属の薄膜３０２の上にレジストでパターンを形成する。次にレジストパターン以外の金属の薄膜３０２をエッチングにより除去する。さらに電子線用ポジ型レジスト３０３を剥離すると接着用パッド３０５が完成する。次に、平滑支持基板３０１には吸着せず、接着用パッド３０５には吸着する線状分子３０４を反応させる。接着用パッド３０５が金，チタン，アルミ，ニッケルの場合には、線状分子３０４末端の官能基としては、各々、スルホヒドニル基，リン酸基，チアゾール基を用いることが好ましい。線状分子３０４の官能基には、例えばビオチンを用いることができる。線状分子３０４を平滑支持基板３０１と反応させた後、接着用パッド３０５を形成した以外の平滑支持基板３０１表面に薄膜を作製する。
【００４４】
薄膜１０８は微粒子１０３の非特異的吸着を防止する有機ポリマーを材料とする。非特異的吸着を防止する有機ポリマーの種類は微粒子１０３の表面状態に合わせて適宜選択する。微粒子１０３の表面状態が負の電荷を有している場合は、反発するように負に帯電している有機ポリマーを選択する。微粒子１０３の表面が親水性ならば、有機ポリマーは疎水性のものを選択し、微粒子１０３の表面が疎水性ならば、有機ポリマーは親水性のものを選択する。例えば、親水性のアビジンが修飾された微粒子１０３に対して非特異的吸着防止膜３０６としてポリエチレングリコール（ＰＥＧ），ポリアクリルアミド，３−グリシドキシプロピルメトキシシラン（ＧＯＰＳ）などを用いることができる。
【００４５】
核酸分析デバイスの製造法の一例を図４で説明する。この方法を用いることで、接着用パッド４０６と平滑支持基板４０１に選択性を持たない線状分子４０３でも接着用パッド４０６上のみに線状分子４０３を残すことができる。線状分子４０３は製膜した金属の薄膜４０２のエッチングの前に反応させることもできる。その場合、線状分子４０３を反応させてから電子線用ポジ型レジスト４０４でパターンを形成する。電子線用ポジ型レジスト４０４で保護された部分以外はエッチングにより、線状分子４０３ごと除去される。次いで表面に非特異的吸着防止膜４０５を製膜する。電子線用ポジ型レジスト４０４剥離をすることで接着用パッド４０６上のみに線状分子４０３を残すことができる。
【００４６】
微粒子表面には、予めアビジンを修飾しておくことが好ましい。金または白金微粒子を用いる場合には、アミノチオールを反応させた後、ビオチン−スクシンイミド（Ｐｉｅｒｃｅ社製ＮＨＳ−Ｂｉｏｔｉｎ）を反応させ、最後にストレプトアビジンを反応させることにより、アビジン修飾することが容易にできる。金または白金以外の金属微粒子を用いる場合には、酸素雰囲気中で加熱処理することにより表面を酸化処理した後、アミノシランを反応させ、次にビオチン−スクシンイミド（Ｐｉｅｒｃｅ社製ＮＨＳ−Ｂｉｏｔｉｎ）を反応させ、最後にストレプトアビジンを反応させる。これにより、金属微粒子表面をアビジン修飾することが容易にできる。核酸捕捉プローブを固定した微粒子を平滑支持基板４０１と反応させることにより、本実施例の核酸分析デバイスを製造することができる。
【００４７】
〔核酸分析装置の構成〕
本実施例では、核酸分析デバイスを用いた核酸分析装置の好ましい構成の一例について図５を参照しながら説明する。本実施例の核酸分析装置は、核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、核酸分析デバイスに光を照射する手段と、核酸分析デバイス上においてヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段と、を備える。より具体的には、カバープレート５０１と検出窓５０２と溶液交換用口である注入口５０３と排出口５０４から構成される反応チャンバに前記のデバイスを設置する。なお、カバープレート５０１と検出窓の材質として、ＰＤＭＳ（Polydimethylsiloxane）を使用する。また、検出窓の厚さは０.１７mmとする。ＹＡＧレーザ光源（波長５３２ｎｍ，出力２０ｍＷ）５０７およびＹＡＧレーザ光源（波長３５５ｎｍ，出力２０ｍＷ）５０８から発振するレーザ光５０９および５１０を、レーザ光５０９のみをλ／４板５１１によって円偏光し、ダイクロイックミラー（４１０ｎｍ以下を反射）５１２によって、前記２つのレーザ光を同軸になるよう調整した後、レンズ５１３によって集光し、その後、プリズム５１４を介してデバイス５０５へ臨界角以上で照射する。蛍光体はレーザ光で励起され、その蛍光の一部は検出窓を介して出射される。また、検出窓より出射される蛍光は、対物レンズ（×６０，ＮＡ１.３５，作動距離０.１５mm）５１５により平行光束とされ、光学フィルタ５１６により背景光及び励起光が遮断され、結像レンズにより２次元ＣＣＤカメラ５１８上に結像される。
【００４８】
逐次反応方式の場合には、蛍光色素付きヌクレオチドとして、P.N.A.S. 2006, vol. 103, pp 19635-19640（非特許文献２）に開示されているような、リボースの３′ＯＨの位置に３′−Ｏ−アリル基を保護基として入れ、また、ピリミジンの５位の位置にあるいはプリンの７位の位置にアリル基を介して蛍光色素と結びつけたものが使用できる。アリル基は光照射あるいはパラジウムと接触することで切断されるため、色素の消光と伸長反応の制御を同時に達成することができる。逐次反応でも、未反応のヌクレオチドを洗浄で除去する必要はない。さらに、洗浄工程が必要ないことからリアルタイムで伸長反応を計測することも可能である。この場合には、前記ヌクレオチドにおいて、リボースの３′ＯＨの位置に３′−Ｏ−アリル基を保護基として入れる必要は無く、光照射で切断可能な官能基を介して色素と結びついているヌクレオチドを用いれば良い。
【００４９】
蛍光色素へのエネルギー移動媒体として半導体微粒子を用いた場合にも、上述の核酸分析装置の例は適用可能である。例えば、半導体微粒子としてＱｄｏｔ（Ｒ）５６５ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（インビトロジェン社製）を用いると、ＹＡＧレーザ光源（波長５３２ｎｍ，出力２０ｍＷ）で十分に励起できる。この励起エネルギーは５３２ｎｍの光では励起されないアレクサ６３３（インビトロジェン社製）へ移動することにより蛍光を発するようになる。つまり、未反応のヌクレオチドに付随する色素は励起されることはなく、ＤＮＡプローブに捕捉され半導体微粒子に近接しエネルギー移動が起きてはじめて発光するので、捕捉されたヌクレオチドを蛍光測定で識別することが可能である。分子プローブ固定用の微粒子の材質が有機ポリマーである場合は、外部光源の光を照射しても励起しない。そのため、励起エネルギーの移動による蛍光色素の発光は起こらず、未反応のヌクレオチドも発光し、ノイズとなる可能性がある。しかし、核酸合成酵素に半導体微粒子などのエネルギー移動をもたらす微粒子を結合することで、取り込まれたヌクレオチドだけを発光させることができる。あるいは、核酸合成酵素に金，銀，白金，アルミニウム等を結合させれば、取り込まれたヌクレオチドの蛍光を増強させることができる。あるいは、微粒子を固定する金属パッドの材料に金，銀，白金，アルミニウム等を用いれば、金属パッド周囲の蛍光が増強されるため、ＳＮ比を向上できる。
【００５０】
上記のように、本実施例の核酸分析デバイスを用いて核酸分析装置を組上げることにより、洗浄工程を入れることなく、解析時間の短縮化，デバイス及び分析装置の簡便化が図れ、逐次反応方式のみならず、リアルタイムで塩基の伸長反応を計測することが可能となり、従来技術に対して大幅な時間短縮になる。
【産業上の利用可能性】
【００５１】
核酸分析デバイスを用いた核酸分析において、「ｄｅｐｈａｓｉｎｇ」が起こることがないため読み取塩基長を長くでき、かつ、多種類の被解析ＤＮＡ断片を一度に解析可能であるため、非常に高いスループットとすることができる。
【符号の説明】
【００５２】
１０１，２０１，３０１，４０１ 平滑支持基板
１０２，２０２，３０５，４０６ 接着用パッド
１０３，２０３ 微粒子
１０４，２０４ 分子プローブ
１０５，３０４，４０３ 線状分子
１０６，１０７ 官能基
１０８，３０６，４０５ 非特異的吸着防止膜
３０２，４０２ 金属の薄膜
３０３，４０４ 電子線用ポジ型レジスト
５０１ カバープレート
５０２ 検出窓
５０３ 注入口
５０４ 排出口
５０５ デバイス
５０６ 流路
５０７，５０８ ＹＡＧレーザ光源
５０９，５１０ レーザ光
５１１ λ／４板
５１２ ダイクロイックミラー
５１３ レンズ
５１４ プリズム
５１５ 対物レンズ
５１６ 光学フィルタ
５１７ 結像レンズ
５１８ ２次元ＣＣＤカメラ
【特許請求の範囲】
【請求項１】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスであって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子は外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、外部刺激応答性重合体から選ばれる材料であることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項３】
請求項２に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、磁性微粒子と刺激応答性ポリマーとが多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されて成ることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項４】
請求項３に記載の核酸分析デバイスであって、
前記刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーであることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項５】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析デバイス。
【請求項６】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記プローブ分子は、核酸、または核酸合成酵素であることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項７】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子１つには、前記プローブ分子１つが固定されていることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項８】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、又はアルミから選ばれる材料からなることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項９】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定して成る核酸分析デバイスと、前記核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、前記核酸分析デバイスに光を照射する手段と、前記核酸分析デバイス上において前記ヌクレオチド，前記核酸合成酵素、及び前記核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段を備え、
前記微粒子は、外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１０】
請求項９に記載の核酸分析装置において、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合していることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１１】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子は、外部刺激応答性重合体から選ばれる材料であることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１２】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子は、磁性微粒子と刺激応答性ポリマーとが多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されて成ることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１３】
請求項１２に記載の核酸分析装置であって、
前記刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーであることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１４】
請求項９に記載の核酸分析デバイスであって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析装置。
【請求項１５】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記プローブ分子は、核酸、または核酸合成酵素であることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１６】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子１つには、前記プローブ分子１つが固定されていることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１７】
請求項１０に記載の核酸分析装置であって、
接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、又はアルミから選ばれる材料からなることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１８】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスであって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子は外部刺激により変形していることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項１９】
請求項１８に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、基板側へ圧縮された形状を有することを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２０】
請求項１８に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、変形後は変形前よりも前記微粒子の上部から基板表面までの距離が短いことを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２１】
請求項１８〜２０のいずれかの核酸分析デバイスと、前記核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、前記核酸分析デバイスに光を照射する手段と、前記核酸分析デバイス上において前記ヌクレオチド，前記核酸合成酵素、及び前記核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段とを備えたことを特徴とする核酸分析装置。
【請求項２２】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスを用いた核酸分析方法であって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に備えられた接着用パッドと前記微粒子とを化学結合を介して結合させる工程、前記微粒子は外部刺激により変形させる工程を有することを特徴とする核酸分析方法。
【請求項２３】
請求項２２に記載の核酸分析方法であって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析方法。
【請求項１】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスであって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子は外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、外部刺激応答性重合体から選ばれる材料であることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項３】
請求項２に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、磁性微粒子と刺激応答性ポリマーとが多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されて成ることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項４】
請求項３に記載の核酸分析デバイスであって、
前記刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーであることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項５】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析デバイス。
【請求項６】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記プローブ分子は、核酸、または核酸合成酵素であることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項７】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子１つには、前記プローブ分子１つが固定されていることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項８】
請求項１に記載の核酸分析デバイスであって、
前記接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、又はアルミから選ばれる材料からなることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項９】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定して成る核酸分析デバイスと、前記核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、前記核酸分析デバイスに光を照射する手段と、前記核酸分析デバイス上において前記ヌクレオチド，前記核酸合成酵素、及び前記核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段を備え、
前記微粒子は、外部刺激により変形することを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１０】
請求項９に記載の核酸分析装置において、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合していることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１１】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子は、外部刺激応答性重合体から選ばれる材料であることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１２】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子は、磁性微粒子と刺激応答性ポリマーとが多価アルコールまたは多価アルコール誘導体を介して固定されて成ることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１３】
請求項１２に記載の核酸分析装置であって、
前記刺激応答性ポリマーは、熱応答性ポリマーであることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１４】
請求項９に記載の核酸分析デバイスであって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析装置。
【請求項１５】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記プローブ分子は、核酸、または核酸合成酵素であることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１６】
請求項９に記載の核酸分析装置であって、
前記微粒子１つには、前記プローブ分子１つが固定されていることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１７】
請求項１０に記載の核酸分析装置であって、
接着用パッドが、金，チタン，ニッケル、又はアルミから選ばれる材料からなることを特徴とする核酸分析装置。
【請求項１８】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスであって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に接着用パッドを備え、前記微粒子と前記接着用パッドとが化学結合を介して結合しており、前記微粒子は外部刺激により変形していることを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項１９】
請求項１８に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、基板側へ圧縮された形状を有することを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２０】
請求項１８に記載の核酸分析デバイスであって、
前記微粒子は、変形後は変形前よりも前記微粒子の上部から基板表面までの距離が短いことを特徴とする核酸分析デバイス。
【請求項２１】
請求項１８〜２０のいずれかの核酸分析デバイスと、前記核酸分析デバイスに対して、蛍光色素を有するヌクレオチド，核酸合成酵素、及び核酸試料を供給する手段と、前記核酸分析デバイスに光を照射する手段と、前記核酸分析デバイス上において前記ヌクレオチド，前記核酸合成酵素、及び前記核酸試料が共存することにより起きる核酸伸長反応により核酸鎖中に取り込まれた蛍光色素の蛍光を測定する発光検出手段とを備えたことを特徴とする核酸分析装置。
【請求項２２】
検出対象の核酸を捕捉できるプローブ分子を有する微粒子を基板上に固定した核酸分析デバイスを用いた核酸分析方法であって、
前記基板上の前記微粒子の固定位置に備えられた接着用パッドと前記微粒子とを化学結合を介して結合させる工程、前記微粒子は外部刺激により変形させる工程を有することを特徴とする核酸分析方法。
【請求項２３】
請求項２２に記載の核酸分析方法であって、
上記外部刺激は、加熱，凍結，減圧，遠心，マイクロ波照射、および化学処理から選ばれるものである核酸分析方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【公開番号】特開２０１２−５８１１４（Ｐ２０１２−５８１１４Ａ）
【公開日】平成２４年３月２２日（２０１２．３．２２）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−２０２６３０（Ｐ２０１０−２０２６３０）
【出願日】平成２２年９月１０日（２０１０．９．１０）
【出願人】（５０１３８７８３９）株式会社日立ハイテクノロジーズ (4,325)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２４年３月２２日（２０１２．３．２２）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年９月１０日（２０１０．９．１０）
【出願人】（５０１３８７８３９）株式会社日立ハイテクノロジーズ (4,325)
【Ｆターム（参考）】
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