歯科用製剤におけるオステオポンチンの使用
【課題】歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を抑制する。
【解決手段】歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を抑制するためのオステオポンチンの使用、およびオステオポンチンを含有する歯科用製剤。
【解決手段】歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を抑制するためのオステオポンチンの使用、およびオステオポンチンを含有する歯科用製剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、歯科用製剤に関する。特に、本発明は、歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を顕著に低減するためのオステオポンチン（ＯＰＮ）の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
歯のケアに関しては、歯垢の形成、歯垢中の細菌の増殖、虫歯、歯石、歯周病、および歯の脱灰などの、美容上および治療上多くの問題がある。
【０００３】
歯垢は、口腔内の硬組織（歯）上に堆積する複雑なバイオフィルムである。５００種を超える細菌腫が歯垢を構成するが、コロニーの形成は、最初のコロニー形成菌がエナメル質の唾液薄膜に付着し続いて第２のコロニー形成菌が付着するという、細菌の付着を介する組織化されたパターンに従う。一連の連鎖球菌種が、この初期のコロニー形成菌に属することは広く知られている。従って、これらの菌の付着を制御することが重要である。種々の付着因子および分子間相互作用が、付着相互作用の根底にあり、歯垢の発達に寄与し、最終的には虫歯および歯周病などの疾患の原因となる。
【０００４】
歯のエナメル質は、ヒドロキシアパタイトを含む。口内では、自然な平衡が存在している。この平衡の一方では、ヒドロキシアパタイトが歯のエナメル質から溶出され、他方では、唾液中に自然に存在する物質から、ヒドロキシアパタイトが歯の中または歯の表面で形成される。この平衡が、ヒドロキシアパタイトが溶解されるような状態にあると、脱灰と称される、齲蝕原性状態が生じる。
【０００５】
エナメル質にフッ化物イオンを組み入れるとそのエナメル質が脱灰から保護されることはかなり以前から知られている。したがって、フッ化物を練り歯磨きに組み入れることが多い。しかし、特に、例えば小児でよくあるように、患者が練り歯磨き、他の歯磨剤、または口腔衛生製品を飲み込んでいる場合、フッ化物はフッ素中毒を起こす可能性がある。これは、飲料水中の比較的高濃度のフッ化物の分野でも問題となる。
【０００６】
本特許出願の目的は、既存の乳タンパク質であるオステオポンチンの使用を提案することである。ここでは、オステオポンチンを、歯の表面上の細菌の増殖を制御または阻止するために歯科用製剤に加え、それによって歯垢の形成および虫歯を予防または抑制する。
【０００７】
乳タンパク質の画分の使用が記載された２〜３の特許がある。すなわち、エナメル質への損傷の治療のための、カゼインの加水分解物、カゼインホスホペプチド（ＣＰＰ）、およびミルクのレンネットからのグリコマクロペプチド（ＧＭＰ）の使用が、これらがエナメル質にアモルファスリン酸カルシウムを供給する働きをするという仮説とともに記載されている。
【０００８】
国際公開第０３／０５９３０４号は、フッ化物イオン源とＣＰＰ画分とを含有する口腔ケア用の組成物を提案している。この製剤は、口腔用製剤に加えたリン酸カルシウムをアモルファス型に安定化し、同時に、その製剤中のフッ化物濃度を安定化する。
【０００９】
国際公開第００／０７４５４号は、ミルクをベースとする特有の食品製剤に加えるとラットで虫歯予防（抗齲蝕原性の）効果を有するＧＭＰについて記載している。
【００１０】
ＣＰＰペプチドおよびＧＭＰペプチドと対照的に、ＯＰＮは、それがエナメル質への口腔の微生物の付着に生理的に活性な影響を及ぼし、したがって虫歯の発達に悪影響を及ぼす可能性によって、口腔内に新たな次元を導入する。ＣＰＰおよびＧＭＰのように、ＯＰＮも、歯の修復に利用可能な唾液中のアモルファスリン酸カルシウム濃度に影響を及ぼす。
【００１１】
このように、ＯＰＮは歯科治療に関していくつかの機能を有している。
【００１２】
例えば練り歯磨きや洗口剤（マウス・ウォッシュ）にＯＰＮを使用する大きな利点は、ＯＰＮがウシのミルク中の天然のタンパク質成分であり、したがって臨床試験の必要性がわずかであることである。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】国際公開第０３／０５９３０４号パンフレット
【特許文献２】国際公開第００／０７４５４号パンフレット
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１４】
驚くべきことに、歯科用製剤中に使用されたオステオポンチンが、エナメル質表面上の細菌の付着および増殖を抑制することが明らかになった。
【００１５】
本発明は、オステオポンチンを含有する口腔用の組成物に関し、この組成物には、練り歯磨き、洗口剤、およびチューインガム、ならびに関連のある組成物が含まれる。
【００１６】
精巧に研磨したヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクからなる歯の類似物を使ったｉｎ ｖｉｔｒｏでの研究では、ＯＰＮの希釈溶液に浸した歯の類似物のＨＡ表面上に、水で洗い流すことができないＯＰＮの被膜が生じる。このような処理をしたディスクをヒトの唾液に接触させると、驚くべきことに、ＯＰＮの被膜が歯の類似物の表面上の細菌の付着および増殖を顕著に抑制し、歯垢の形成を顕著に抑制する結果となることを見出した。この試みは、種々の年齢および口腔内細菌叢の患者グループからの唾液サンプルを使って行った。これらの結果は、練り歯磨きおよび洗口剤などの口腔用製剤へのＯＰＮの使用可能性を示唆し、チューインガム中の成分としてのＯＰＮの使用可能性をも示唆する。
【００１７】
したがって、本発明は、歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を抑制するためのオステオポンチンの使用、およびオステオポンチンを含有する歯科用製剤に関する。
【００１８】
本明細書で使用したように、用語「オステオポンチン」または「ＯＰＮ」は、ミルクから得られたオステオポンチンを意味し、ＯＰＮに由来してミルク中のタンパク質分解により天然に生じるフラグメントまたはペプチド、ならびに、国際公開第０１／４９７４１で提案されている方法から得られるような遺伝子組み換え技術、リン酸化反応、またはグリコシル化反応による変異体を包含する。ミルクは、ウシ、ラクダ、ヤギ、ヒツジ、ヒトコブラクダ、およびラマ等のような乳を産生するいずれの動物からのミルクであってもよい。しかし、ウシのミルクからのＯＰＮが、入手可能性の理由から好ましい。その量はすべて天然のウシのミルクのＯＰＮに基づいているが、ＯＰＮの活性画分または別の供給源からのＯＰＮに基づく対応する量に容易に修正することができる。ＯＰＮまたはその誘導体は、遺伝子工学的に調製することもできる。
【００１９】
歯科用製剤は、例えば、歯磨き粉、歯磨きゲル、歯科用洗口剤、口腔スプレー、またはチューインガムなどの、歯磨剤または関連する口腔衛生関連製品のいずれであってもよい。オステオポンチン（ＯＰＮ）は、酸性の、高度にリン酸化された、シアル酸が豊富なカルシウム結合タンパク質である。ＯＰＮは、１モルにつき、２８モルのリン酸塩および約５０モルのカルシウムに結合する。ＯＰＮの等電点は約３．０である。このタンパク質は体内の多くの組織に存在し、シグナル伝達タンパク質および制御タンパク質としての役割を果たす。このタンパク質は、生体内鉱質形成プロセスにおける活性タンパク質である。ＯＰＮは、骨細胞、平滑筋細胞、および上皮細胞を含む多くの細胞型で発現される。
【００２０】
ＯＰＮは、ウシのミルク中に存在する。典型的な濃度は、１Ｌにつき２０ｍｇである。
【００２１】
ＯＰＮは、国際公開第０１／４９７７４１（Ａ２）号の特許または国際公開第０１／２８４１３号に記載されているように、例えば、ｐＨ４．５の酸性の乳漿から、陰イオンクロマトグラフィーで比較的簡単に単離することができる。９０〜９５％までの純度のものを容易に得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】図１は、エリプソメトリーにより異なる温度で測定した、ヒドロキシアパタイトディスク上へのＯＰＮの吸着を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
オステオポンチンの量は、通常、歯科用製剤１ｋｇ当たりオステオポンチン約５０ｍｇ〜約１５００ｍｇの間である。しかし、これより少ない量でも効果がある。これより多い量を使用することもできるが、効果は実質的には増加しないであろう。実用的な量は、１ｋｇ当たりＯＰＮ１００〜１０００ｍｇであり、２００〜５００ｍｇが好ましく、最も好適には約３５０ｍｇである。これより多量としてもより良い結果が得られないと推定され、したがって推奨しない。ＯＰＮは比較的高価な含有物だからである。
【００２４】
本発明の好ましい組成物は、既に言及したように、練り歯磨き、歯磨きゲル、および歯磨き粉の形態である。このような練り歯磨きおよび歯磨きゲルの成分として、以下のうち１種またはそれ以上が挙げられる。歯科用研磨剤（約１０％から約５０％まで）、界面活性剤（約０．５％から約１０％まで）、増粘剤（約０．０４％から約０．５％まで）、湿潤剤（約０．１％から約３％まで）、風味料（約０．０４％から約２％まで）、甘味料（約０．１％から約３％まで）、着色料（約０．０１％から約０．５％まで）、および、水（約２％から約４５％まで）。抗齲蝕性剤は、約０．００１％から約１％までのＯＰＮを含有する。抗歯石剤は、約０．１％から約１３％までのＯＰＮを含有する。
【００２５】
歯磨き粉は、言うまでもなく、実質的に液体成分を含まない。
【００２６】
その他の本発明の好ましい組成物は、口腔スプレーを含む、歯科用洗口剤である。このような洗口剤および口腔スプレーの成分として、通常、以下のうち１種またはそれ以上が挙げられる。水（約４５％から約９５％まで）、エタノール（約０％から約２５％まで）、湿潤剤（約０％から約５０％まで）、界面活性剤（約０．０１％から約７％まで）、風味料（約０．００４％から約２％まで）、甘味料（約０．１％から約３％まで）、および、着色料（約０．００１％から約０．５％まで）。抗齲蝕性剤は、約０．００１％から約１％までのＯＰＮを含有する。抗歯石剤は、約０．１％から約１３％までのＯＰＮを含有する。
【００２７】
第３の応用分野は、概括的な言葉で言うと、多様な配合のチューインガム製剤である。
【００２８】
本発明を、さらに以下の実施例および実験により説明する。
【実施例】
【００２９】
〔背景〕本研究の目的は、ＯＰＮがヒドロキシアパタイト表面に安定な状態で結合することと、このＯＰＮの被膜が水または緩衝液で洗い流すことによっては除去できないこととの２つを立証することである。
【００３０】
ＯＰＮは、歯の類似物の表面上の細菌の付着に影響を与える。
【００３１】
ＯＰＮがｉｎ ｖｉｔｒｏで歯垢の増加を妨げる能力は、本研究では、歯のエナメル質のモデルの役割を果たすヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクで研究した。このディスクを、ＯＰＮ溶液に浸し、浸した後のディスクを唾液と共にインキュベートした。この其質上の増殖は、Ｍａｌｍｏ大学（スウェーデン）の歯科学部で、異なる歯垢形成細菌の菌株の細菌数により調べた。
【００３２】
ＯＰＮを被覆したＨＡ表面の対照として、被覆せずＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）処理をしたＨＡディスクを使用した。
【００３３】
本研究は、以下に記載するように、その特性が詳細に明らかにされた６名のドナーからの唾液サンプルで行った。
【００３４】
〔材料および方法〕（化学物質）
オステオポンチン（ＯＰＮ）は、アルラ・フーズａｍｂａが、クロマトグラフィーによる純度で約９５％に調製した。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）は、シグマ−アルドリッチから購入した。ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）は、シグマ（St. Louis, MO, USA, L-6026）から入手した。その他の化学物質はいずれも分析用であり、使用した水はミリＱ品質（Milli-Q quality）であった。其質の前処理および吸着実験は、０．０１Ｍのリン酸塩および０．０５Ｍの塩化ナトリウムを含有するリン酸緩衝液中、ｐＨ７で行った。緩衝剤のみならず、ガラス製品およびピペットチップ等はいずれもオートクレーブで殺菌した。実験に使用するタンパク質溶液は、ろ過により殺菌した（カットオフ値０．２２μｍ）。
【００３５】
（唾液サンプル）
実験のための刺激により生じた唾液を、パラフィン片を噛んだ後に採集した。刺激唾液サンプルのドナーの概括を表１に示す。採集に先立つ２時間は食物および飲料の摂取を禁止した。
【００３６】
（其質）
直径１０ｍｍのヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクをスウェーデンセラミック研究所（Goteborg）から購入した。走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）観察に用いるディスクは、両面を研磨して、超音波で洗浄できるようにした。実験を始める前に、其質（ディスク）をマイルドな洗剤溶液で処理し、十分に水で洗浄した。最終的に、ディスクはエタノールと水とで洗浄した。其質は、７０％エタノール中で使用するまで貯蔵し、使用時には水で洗浄し窒素気流下で乾燥した。乾燥後、エリプソメトリー（偏光解析法）測定に用いる其質は、高周波グロー放電プラズマ装置（Harrick PDC 3XG, Harrick Scientific社、ニューヨーク州Ossining）を使用して低圧残留空気（１０〜３０Ｐa）中でプラズマ洗浄した。
【００３７】
（細菌被膜の形成）
其質表面は、タンパク質溶液中、３７℃で１時間プレインキュベートした。その後、其質を緩衝液で洗浄し、３７℃で４０時間インキュベートした。本実験では、プレインキュベートおよびインキュベートの間中、攪拌下に置いた。インキュベート後、ＨＡディスクを緩衝液で洗浄した。
【００３８】
（エリプソメトリー）
ＯＰＮとＨＡ其質上の唾液タンパク質との相互作用は、エリプソメトリー（偏光解析法）により追跡した。エリプソメトリーとは、表面での反射後の偏光の変化を測定する光学的方法である（３）。使用した装置は、ルドルフ薄膜エリプソメーター（タイプ４３６）（ルドルフリサーチ社、ニュージャージー州Fairfield）であり、４０１５Åまでフィルターをかけたキセノンランプが装備されていて、ＬａｎｄｇｒｅｎとＪｏｎｓｓｏｎとによる記載（１９９３年）の設定で操作した。
偏光角度（ΔおよびΨ）を決めるために、未処理の其質に対して強度が最小の配置を確立した。吸着後のΔおよびΨの変化から、吸着したタンパク質被膜の膜厚と屈折率を、ＭｃＣｒａｃｋｉｎらの方法（４）に従って、表面被膜が均質であると仮定して計算した。吸着質量Γ（ｍｇ／ｍ２）は、Ｃｕｙｐｅｒｓらの方法（５）に従って計算した。これらの著者らにより示されたように、吸着質量は、低い表面被覆率では膜厚および屈折率より正確に測定できる。このため、吸着質量をここで提示した。分子量とモル屈折率の比の値と、使用した部分比容の値は、それぞれ４．１ｇ／ｍｌおよび０．７５ｍｌ／ｇであった。これらの値は、タンパク質のために一般に使われており、これまでに唾液成分の吸着に関する多くの研究で適用されている（（６、７）を参照されたい）。
【００３９】
上記其質の部で説明したように調製した表面を、緩衝液が入ったエリプソメーターキュベット中に置いた。このキュベットは特に記載しない限り３７℃に自動調節されており、溶液はマグネチックスターラーで攪拌した。偏光角度が安定すると、唾液を添加して最終的に１０％（ｖ／ｖ）の濃度とした。吸着を１時間測定し、その後続けて、連続的に緩衝液を流す（１２ｍｌ／ｍｉｎ）ことによりキュベットを洗浄した。脱離はその後さらに２５分間行った。これが菌膜形成の標準的な手順である。菌膜の凝集性の指標を得るために、本実験では特にＳＤＳを最後に添加した。標準的な実験では、１７ｍＭの濃度（水中のｃｍｃ濃度（臨界ミセル濃度）の２倍であって、緩衝液中のｃｍｃ濃度の約９倍）を添加し、その後、ＳＤＳ添加の５分後に緩衝液での最後の洗浄を行った。
【００４０】
〔細菌学的分析法〕（培地）
微生物の分離のために採用した基本的な寒天培地は、血液寒天培地（８）、ミティス・サリバリウス寒天培地（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）（ＭＳＡ：Mitis Salivarius ager）、ミティス・サリバリウス・バシトラシン（ＭＳＢ：Mitis Salivarius-bacitracin）寒天培地（９）、Ｎｉｃｋｅｒｓｏｎによるカンジダ選択寒天培地（Ｍｅｒｃｋ社）、マッコンキー培地（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）である。
【００４１】
（唾液サンプルの培養手順）
唾液サンプルを従来型のＶＭＧII（生存率保持）培地に移し、採集後２４時間以内にボルテックスで攪拌し、希釈し、血液寒天培地、ＭＳＡ培地、およびＭＳＢ培地に接種した。血液寒天培地は嫌気性のチャンバー（窒素中に水素１０％、二酸化炭素１０％）中で４日間インキュベートし、ＭＳＡ培地は二酸化炭素５％の空気雰囲気下で２日間インキュベートした。寒天プレート上のコロニー形成単位（ＣＦＵ）の総数は、立体顕微鏡を用いて数えた。
【００４２】
（ディスクからの微生物の除去）
ディスクに付着した微生物を、マイクロチップを使用し、Ｓｏｎｉｃｓ Ｖｉｂｒａｃｅｌｌ中、１秒のパルス１０回で超音波処理することにより除去した。超音波処理による細胞の除去の有効性は、微生物の増殖が観察できないことにより確認した。
【００４３】
（脱離サンプル培養手順）
脱離サンプルをボルテックスで攪拌し、希釈し、以下の培地、すなわち、血液寒天培地、ＭＳＡ、カンジダ選択寒天培地、マッコンキー培地、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０に接種した。血液寒天培地は嫌気性のチャンバー（窒素中に水素１０％、二酸化炭素１０％）中で５日間インキュベートし、ＭＳＡ培地は二酸化炭素５％の空気雰囲気下で２日間インキュベートした、カンジダ選択寒天培地、マッコンキー培地、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０は好気的に２日間インキュベートした。培地上のＣＦＵの総数は、立体顕微鏡を用いて計数した。ＭＳＡ上のＣＦＵの総数は、異なるコロニータイプの形態、大きさ、数に特に注意を払って分析した。各形態タイプの代表的なコロニーからの細胞をグラム染色し、後で同定するために血液寒天培地に接種した。将来のキャラクタリゼーションのために、ＭＳＡ上で培養している分離株を、脱脂乳（蒸留水中１０％（ｗ／ｖ）の脱脂乳、Ｏｘｏｉｄ Ｌａｂ社のＬ３１、Ｈａｍｐｓｈｉｒｅ、英国）中−７９℃で保存した。
【００４４】
（連鎖球菌の分離株の同定）
グラム陽性でカタラーゼ陰性の連鎖した球菌は、連鎖球菌と考えられ、これらの分離株は以前に記載された特徴（１０）に基づいた種および亜種レベルに同定される。
【００４５】
〔結果と考察〕（タンパク質相互作用の研究）
ＯＰＮとＨＡとの間、およびＯＰＮと唾液との間の相互作用を調べるために、エリプソメトリー研究をした。
図１に、吸着温度の影響を示す。この図から、ＨＡ表面上のＯＰＮの吸着は、ほぼ瞬間的に起こることがわかる。より高い温度（３７℃）ではより多量のＯＰＮが吸着されるが、洗浄すると、３７℃で安定な表面付着物が１ｍｇ／ｍ２まで多少脱離する結果となった。歯磨き中のＳＤＳの化学効果をシミュレートするため、ＳＤＳをキュベットに５分間添加し、その後緩衝液で洗浄した。本洗浄ステップの後、吸着量とこの２つの温度との間には顕著な相違はない。
【００４６】
得られた結果は、ＯＰＮがＨＡディスクの表面被覆を生じさせ、その被覆は水による洗浄後およびＳＤＳ処理後に膜厚が低減するとはいえ安定であることを示す。
【００４７】
〔細菌被膜の形成〕
表１および表２に示した、マイルドな超音波処理により脱離した細菌数は、それぞれ０．１ｍｇ／ｍｌおよび１ｍｇ／ｍｌの濃度のＯＰＮ溶液で処理したＨＡディスクの細菌の付着への顕著な影響を、全ての唾液ドナーについて、血液寒天培地およびＭＳＡ培地双方のプレート上の細菌総数で示している。ＢＳＡまたは唾液で処理したＨＡディスクは表面に細菌をより多く呈した。微生物の総数はＯＰＣ被覆ディスクが対照ディスク（唾液またはＢＳＡ被覆）の１０〜１０００分の１であった。刺激唾液サンプルは、唾液中の細菌叢の共通の特徴であると考えられている高度に多様な細菌の構成を呈した。対照ディスクより有意に少ない連鎖球菌がＯＰＮ被覆ディスクにコロニー形成したという発見は興味深いものであった。
【００４８】
〔表１〕
両側面を研磨し、異なる前処理後に刺激唾液中でインキュベートした全ディスクの細菌分析。嫌気的にインキュベートした血液寒天プレート上の総数（ＣＦＵ）。
【００４９】
【表１】
【００５０】
〔表２〕
両側面を研磨し、異なる前処理後に刺激唾液中でインキュベートした全ディスクの細菌分析。通性嫌気的にインキュベートしたミティス・サリバリウス寒天培地（ＭＳＡ）上の総数。
【００５１】
【表２】
【００５２】
〔まとめ〕
これらの結果は、ＨＡディスクのＯＰＮ前処理が刺激唾液中でのインキュベーション後の細菌量に明らかな効果を及ぼすことを示す。抗付着効果は、調査した０．１〜１ｍｇ／ｍｌの範囲で、歯の類似物を浸すためのＯＰＮ溶液の濃度にほとんど依存しないようである。
【００５３】
単一層の被覆のためには、ＯＰＮの量は少なくてよい。
【００５４】
対照ディスクと比較して、有意に少ない連鎖球菌しかＯＰＮ被覆ディスクに付着しなかったことは興味深い。
【００５５】
（参考文献）
【表３】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、歯科用製剤に関する。特に、本発明は、歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を顕著に低減するためのオステオポンチン（ＯＰＮ）の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
歯のケアに関しては、歯垢の形成、歯垢中の細菌の増殖、虫歯、歯石、歯周病、および歯の脱灰などの、美容上および治療上多くの問題がある。
【０００３】
歯垢は、口腔内の硬組織（歯）上に堆積する複雑なバイオフィルムである。５００種を超える細菌腫が歯垢を構成するが、コロニーの形成は、最初のコロニー形成菌がエナメル質の唾液薄膜に付着し続いて第２のコロニー形成菌が付着するという、細菌の付着を介する組織化されたパターンに従う。一連の連鎖球菌種が、この初期のコロニー形成菌に属することは広く知られている。従って、これらの菌の付着を制御することが重要である。種々の付着因子および分子間相互作用が、付着相互作用の根底にあり、歯垢の発達に寄与し、最終的には虫歯および歯周病などの疾患の原因となる。
【０００４】
歯のエナメル質は、ヒドロキシアパタイトを含む。口内では、自然な平衡が存在している。この平衡の一方では、ヒドロキシアパタイトが歯のエナメル質から溶出され、他方では、唾液中に自然に存在する物質から、ヒドロキシアパタイトが歯の中または歯の表面で形成される。この平衡が、ヒドロキシアパタイトが溶解されるような状態にあると、脱灰と称される、齲蝕原性状態が生じる。
【０００５】
エナメル質にフッ化物イオンを組み入れるとそのエナメル質が脱灰から保護されることはかなり以前から知られている。したがって、フッ化物を練り歯磨きに組み入れることが多い。しかし、特に、例えば小児でよくあるように、患者が練り歯磨き、他の歯磨剤、または口腔衛生製品を飲み込んでいる場合、フッ化物はフッ素中毒を起こす可能性がある。これは、飲料水中の比較的高濃度のフッ化物の分野でも問題となる。
【０００６】
本特許出願の目的は、既存の乳タンパク質であるオステオポンチンの使用を提案することである。ここでは、オステオポンチンを、歯の表面上の細菌の増殖を制御または阻止するために歯科用製剤に加え、それによって歯垢の形成および虫歯を予防または抑制する。
【０００７】
乳タンパク質の画分の使用が記載された２〜３の特許がある。すなわち、エナメル質への損傷の治療のための、カゼインの加水分解物、カゼインホスホペプチド（ＣＰＰ）、およびミルクのレンネットからのグリコマクロペプチド（ＧＭＰ）の使用が、これらがエナメル質にアモルファスリン酸カルシウムを供給する働きをするという仮説とともに記載されている。
【０００８】
国際公開第０３／０５９３０４号は、フッ化物イオン源とＣＰＰ画分とを含有する口腔ケア用の組成物を提案している。この製剤は、口腔用製剤に加えたリン酸カルシウムをアモルファス型に安定化し、同時に、その製剤中のフッ化物濃度を安定化する。
【０００９】
国際公開第００／０７４５４号は、ミルクをベースとする特有の食品製剤に加えるとラットで虫歯予防（抗齲蝕原性の）効果を有するＧＭＰについて記載している。
【００１０】
ＣＰＰペプチドおよびＧＭＰペプチドと対照的に、ＯＰＮは、それがエナメル質への口腔の微生物の付着に生理的に活性な影響を及ぼし、したがって虫歯の発達に悪影響を及ぼす可能性によって、口腔内に新たな次元を導入する。ＣＰＰおよびＧＭＰのように、ＯＰＮも、歯の修復に利用可能な唾液中のアモルファスリン酸カルシウム濃度に影響を及ぼす。
【００１１】
このように、ＯＰＮは歯科治療に関していくつかの機能を有している。
【００１２】
例えば練り歯磨きや洗口剤（マウス・ウォッシュ）にＯＰＮを使用する大きな利点は、ＯＰＮがウシのミルク中の天然のタンパク質成分であり、したがって臨床試験の必要性がわずかであることである。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】国際公開第０３／０５９３０４号パンフレット
【特許文献２】国際公開第００／０７４５４号パンフレット
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１４】
驚くべきことに、歯科用製剤中に使用されたオステオポンチンが、エナメル質表面上の細菌の付着および増殖を抑制することが明らかになった。
【００１５】
本発明は、オステオポンチンを含有する口腔用の組成物に関し、この組成物には、練り歯磨き、洗口剤、およびチューインガム、ならびに関連のある組成物が含まれる。
【００１６】
精巧に研磨したヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクからなる歯の類似物を使ったｉｎ ｖｉｔｒｏでの研究では、ＯＰＮの希釈溶液に浸した歯の類似物のＨＡ表面上に、水で洗い流すことができないＯＰＮの被膜が生じる。このような処理をしたディスクをヒトの唾液に接触させると、驚くべきことに、ＯＰＮの被膜が歯の類似物の表面上の細菌の付着および増殖を顕著に抑制し、歯垢の形成を顕著に抑制する結果となることを見出した。この試みは、種々の年齢および口腔内細菌叢の患者グループからの唾液サンプルを使って行った。これらの結果は、練り歯磨きおよび洗口剤などの口腔用製剤へのＯＰＮの使用可能性を示唆し、チューインガム中の成分としてのＯＰＮの使用可能性をも示唆する。
【００１７】
したがって、本発明は、歯のエナメル質上の歯垢の細菌の増殖を抑制するためのオステオポンチンの使用、およびオステオポンチンを含有する歯科用製剤に関する。
【００１８】
本明細書で使用したように、用語「オステオポンチン」または「ＯＰＮ」は、ミルクから得られたオステオポンチンを意味し、ＯＰＮに由来してミルク中のタンパク質分解により天然に生じるフラグメントまたはペプチド、ならびに、国際公開第０１／４９７４１で提案されている方法から得られるような遺伝子組み換え技術、リン酸化反応、またはグリコシル化反応による変異体を包含する。ミルクは、ウシ、ラクダ、ヤギ、ヒツジ、ヒトコブラクダ、およびラマ等のような乳を産生するいずれの動物からのミルクであってもよい。しかし、ウシのミルクからのＯＰＮが、入手可能性の理由から好ましい。その量はすべて天然のウシのミルクのＯＰＮに基づいているが、ＯＰＮの活性画分または別の供給源からのＯＰＮに基づく対応する量に容易に修正することができる。ＯＰＮまたはその誘導体は、遺伝子工学的に調製することもできる。
【００１９】
歯科用製剤は、例えば、歯磨き粉、歯磨きゲル、歯科用洗口剤、口腔スプレー、またはチューインガムなどの、歯磨剤または関連する口腔衛生関連製品のいずれであってもよい。オステオポンチン（ＯＰＮ）は、酸性の、高度にリン酸化された、シアル酸が豊富なカルシウム結合タンパク質である。ＯＰＮは、１モルにつき、２８モルのリン酸塩および約５０モルのカルシウムに結合する。ＯＰＮの等電点は約３．０である。このタンパク質は体内の多くの組織に存在し、シグナル伝達タンパク質および制御タンパク質としての役割を果たす。このタンパク質は、生体内鉱質形成プロセスにおける活性タンパク質である。ＯＰＮは、骨細胞、平滑筋細胞、および上皮細胞を含む多くの細胞型で発現される。
【００２０】
ＯＰＮは、ウシのミルク中に存在する。典型的な濃度は、１Ｌにつき２０ｍｇである。
【００２１】
ＯＰＮは、国際公開第０１／４９７７４１（Ａ２）号の特許または国際公開第０１／２８４１３号に記載されているように、例えば、ｐＨ４．５の酸性の乳漿から、陰イオンクロマトグラフィーで比較的簡単に単離することができる。９０〜９５％までの純度のものを容易に得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】図１は、エリプソメトリーにより異なる温度で測定した、ヒドロキシアパタイトディスク上へのＯＰＮの吸着を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
オステオポンチンの量は、通常、歯科用製剤１ｋｇ当たりオステオポンチン約５０ｍｇ〜約１５００ｍｇの間である。しかし、これより少ない量でも効果がある。これより多い量を使用することもできるが、効果は実質的には増加しないであろう。実用的な量は、１ｋｇ当たりＯＰＮ１００〜１０００ｍｇであり、２００〜５００ｍｇが好ましく、最も好適には約３５０ｍｇである。これより多量としてもより良い結果が得られないと推定され、したがって推奨しない。ＯＰＮは比較的高価な含有物だからである。
【００２４】
本発明の好ましい組成物は、既に言及したように、練り歯磨き、歯磨きゲル、および歯磨き粉の形態である。このような練り歯磨きおよび歯磨きゲルの成分として、以下のうち１種またはそれ以上が挙げられる。歯科用研磨剤（約１０％から約５０％まで）、界面活性剤（約０．５％から約１０％まで）、増粘剤（約０．０４％から約０．５％まで）、湿潤剤（約０．１％から約３％まで）、風味料（約０．０４％から約２％まで）、甘味料（約０．１％から約３％まで）、着色料（約０．０１％から約０．５％まで）、および、水（約２％から約４５％まで）。抗齲蝕性剤は、約０．００１％から約１％までのＯＰＮを含有する。抗歯石剤は、約０．１％から約１３％までのＯＰＮを含有する。
【００２５】
歯磨き粉は、言うまでもなく、実質的に液体成分を含まない。
【００２６】
その他の本発明の好ましい組成物は、口腔スプレーを含む、歯科用洗口剤である。このような洗口剤および口腔スプレーの成分として、通常、以下のうち１種またはそれ以上が挙げられる。水（約４５％から約９５％まで）、エタノール（約０％から約２５％まで）、湿潤剤（約０％から約５０％まで）、界面活性剤（約０．０１％から約７％まで）、風味料（約０．００４％から約２％まで）、甘味料（約０．１％から約３％まで）、および、着色料（約０．００１％から約０．５％まで）。抗齲蝕性剤は、約０．００１％から約１％までのＯＰＮを含有する。抗歯石剤は、約０．１％から約１３％までのＯＰＮを含有する。
【００２７】
第３の応用分野は、概括的な言葉で言うと、多様な配合のチューインガム製剤である。
【００２８】
本発明を、さらに以下の実施例および実験により説明する。
【実施例】
【００２９】
〔背景〕本研究の目的は、ＯＰＮがヒドロキシアパタイト表面に安定な状態で結合することと、このＯＰＮの被膜が水または緩衝液で洗い流すことによっては除去できないこととの２つを立証することである。
【００３０】
ＯＰＮは、歯の類似物の表面上の細菌の付着に影響を与える。
【００３１】
ＯＰＮがｉｎ ｖｉｔｒｏで歯垢の増加を妨げる能力は、本研究では、歯のエナメル質のモデルの役割を果たすヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクで研究した。このディスクを、ＯＰＮ溶液に浸し、浸した後のディスクを唾液と共にインキュベートした。この其質上の増殖は、Ｍａｌｍｏ大学（スウェーデン）の歯科学部で、異なる歯垢形成細菌の菌株の細菌数により調べた。
【００３２】
ＯＰＮを被覆したＨＡ表面の対照として、被覆せずＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）処理をしたＨＡディスクを使用した。
【００３３】
本研究は、以下に記載するように、その特性が詳細に明らかにされた６名のドナーからの唾液サンプルで行った。
【００３４】
〔材料および方法〕（化学物質）
オステオポンチン（ＯＰＮ）は、アルラ・フーズａｍｂａが、クロマトグラフィーによる純度で約９５％に調製した。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）は、シグマ−アルドリッチから購入した。ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）は、シグマ（St. Louis, MO, USA, L-6026）から入手した。その他の化学物質はいずれも分析用であり、使用した水はミリＱ品質（Milli-Q quality）であった。其質の前処理および吸着実験は、０．０１Ｍのリン酸塩および０．０５Ｍの塩化ナトリウムを含有するリン酸緩衝液中、ｐＨ７で行った。緩衝剤のみならず、ガラス製品およびピペットチップ等はいずれもオートクレーブで殺菌した。実験に使用するタンパク質溶液は、ろ過により殺菌した（カットオフ値０．２２μｍ）。
【００３５】
（唾液サンプル）
実験のための刺激により生じた唾液を、パラフィン片を噛んだ後に採集した。刺激唾液サンプルのドナーの概括を表１に示す。採集に先立つ２時間は食物および飲料の摂取を禁止した。
【００３６】
（其質）
直径１０ｍｍのヒドロキシアパタイト（ＨＡ）ディスクをスウェーデンセラミック研究所（Goteborg）から購入した。走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）観察に用いるディスクは、両面を研磨して、超音波で洗浄できるようにした。実験を始める前に、其質（ディスク）をマイルドな洗剤溶液で処理し、十分に水で洗浄した。最終的に、ディスクはエタノールと水とで洗浄した。其質は、７０％エタノール中で使用するまで貯蔵し、使用時には水で洗浄し窒素気流下で乾燥した。乾燥後、エリプソメトリー（偏光解析法）測定に用いる其質は、高周波グロー放電プラズマ装置（Harrick PDC 3XG, Harrick Scientific社、ニューヨーク州Ossining）を使用して低圧残留空気（１０〜３０Ｐa）中でプラズマ洗浄した。
【００３７】
（細菌被膜の形成）
其質表面は、タンパク質溶液中、３７℃で１時間プレインキュベートした。その後、其質を緩衝液で洗浄し、３７℃で４０時間インキュベートした。本実験では、プレインキュベートおよびインキュベートの間中、攪拌下に置いた。インキュベート後、ＨＡディスクを緩衝液で洗浄した。
【００３８】
（エリプソメトリー）
ＯＰＮとＨＡ其質上の唾液タンパク質との相互作用は、エリプソメトリー（偏光解析法）により追跡した。エリプソメトリーとは、表面での反射後の偏光の変化を測定する光学的方法である（３）。使用した装置は、ルドルフ薄膜エリプソメーター（タイプ４３６）（ルドルフリサーチ社、ニュージャージー州Fairfield）であり、４０１５Åまでフィルターをかけたキセノンランプが装備されていて、ＬａｎｄｇｒｅｎとＪｏｎｓｓｏｎとによる記載（１９９３年）の設定で操作した。
偏光角度（ΔおよびΨ）を決めるために、未処理の其質に対して強度が最小の配置を確立した。吸着後のΔおよびΨの変化から、吸着したタンパク質被膜の膜厚と屈折率を、ＭｃＣｒａｃｋｉｎらの方法（４）に従って、表面被膜が均質であると仮定して計算した。吸着質量Γ（ｍｇ／ｍ２）は、Ｃｕｙｐｅｒｓらの方法（５）に従って計算した。これらの著者らにより示されたように、吸着質量は、低い表面被覆率では膜厚および屈折率より正確に測定できる。このため、吸着質量をここで提示した。分子量とモル屈折率の比の値と、使用した部分比容の値は、それぞれ４．１ｇ／ｍｌおよび０．７５ｍｌ／ｇであった。これらの値は、タンパク質のために一般に使われており、これまでに唾液成分の吸着に関する多くの研究で適用されている（（６、７）を参照されたい）。
【００３９】
上記其質の部で説明したように調製した表面を、緩衝液が入ったエリプソメーターキュベット中に置いた。このキュベットは特に記載しない限り３７℃に自動調節されており、溶液はマグネチックスターラーで攪拌した。偏光角度が安定すると、唾液を添加して最終的に１０％（ｖ／ｖ）の濃度とした。吸着を１時間測定し、その後続けて、連続的に緩衝液を流す（１２ｍｌ／ｍｉｎ）ことによりキュベットを洗浄した。脱離はその後さらに２５分間行った。これが菌膜形成の標準的な手順である。菌膜の凝集性の指標を得るために、本実験では特にＳＤＳを最後に添加した。標準的な実験では、１７ｍＭの濃度（水中のｃｍｃ濃度（臨界ミセル濃度）の２倍であって、緩衝液中のｃｍｃ濃度の約９倍）を添加し、その後、ＳＤＳ添加の５分後に緩衝液での最後の洗浄を行った。
【００４０】
〔細菌学的分析法〕（培地）
微生物の分離のために採用した基本的な寒天培地は、血液寒天培地（８）、ミティス・サリバリウス寒天培地（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）（ＭＳＡ：Mitis Salivarius ager）、ミティス・サリバリウス・バシトラシン（ＭＳＢ：Mitis Salivarius-bacitracin）寒天培地（９）、Ｎｉｃｋｅｒｓｏｎによるカンジダ選択寒天培地（Ｍｅｒｃｋ社）、マッコンキー培地（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂ社）である。
【００４１】
（唾液サンプルの培養手順）
唾液サンプルを従来型のＶＭＧII（生存率保持）培地に移し、採集後２４時間以内にボルテックスで攪拌し、希釈し、血液寒天培地、ＭＳＡ培地、およびＭＳＢ培地に接種した。血液寒天培地は嫌気性のチャンバー（窒素中に水素１０％、二酸化炭素１０％）中で４日間インキュベートし、ＭＳＡ培地は二酸化炭素５％の空気雰囲気下で２日間インキュベートした。寒天プレート上のコロニー形成単位（ＣＦＵ）の総数は、立体顕微鏡を用いて数えた。
【００４２】
（ディスクからの微生物の除去）
ディスクに付着した微生物を、マイクロチップを使用し、Ｓｏｎｉｃｓ Ｖｉｂｒａｃｅｌｌ中、１秒のパルス１０回で超音波処理することにより除去した。超音波処理による細胞の除去の有効性は、微生物の増殖が観察できないことにより確認した。
【００４３】
（脱離サンプル培養手順）
脱離サンプルをボルテックスで攪拌し、希釈し、以下の培地、すなわち、血液寒天培地、ＭＳＡ、カンジダ選択寒天培地、マッコンキー培地、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０に接種した。血液寒天培地は嫌気性のチャンバー（窒素中に水素１０％、二酸化炭素１０％）中で５日間インキュベートし、ＭＳＡ培地は二酸化炭素５％の空気雰囲気下で２日間インキュベートした、カンジダ選択寒天培地、マッコンキー培地、およびブドウ球菌培地Ｎｏ．１１０は好気的に２日間インキュベートした。培地上のＣＦＵの総数は、立体顕微鏡を用いて計数した。ＭＳＡ上のＣＦＵの総数は、異なるコロニータイプの形態、大きさ、数に特に注意を払って分析した。各形態タイプの代表的なコロニーからの細胞をグラム染色し、後で同定するために血液寒天培地に接種した。将来のキャラクタリゼーションのために、ＭＳＡ上で培養している分離株を、脱脂乳（蒸留水中１０％（ｗ／ｖ）の脱脂乳、Ｏｘｏｉｄ Ｌａｂ社のＬ３１、Ｈａｍｐｓｈｉｒｅ、英国）中−７９℃で保存した。
【００４４】
（連鎖球菌の分離株の同定）
グラム陽性でカタラーゼ陰性の連鎖した球菌は、連鎖球菌と考えられ、これらの分離株は以前に記載された特徴（１０）に基づいた種および亜種レベルに同定される。
【００４５】
〔結果と考察〕（タンパク質相互作用の研究）
ＯＰＮとＨＡとの間、およびＯＰＮと唾液との間の相互作用を調べるために、エリプソメトリー研究をした。
図１に、吸着温度の影響を示す。この図から、ＨＡ表面上のＯＰＮの吸着は、ほぼ瞬間的に起こることがわかる。より高い温度（３７℃）ではより多量のＯＰＮが吸着されるが、洗浄すると、３７℃で安定な表面付着物が１ｍｇ／ｍ２まで多少脱離する結果となった。歯磨き中のＳＤＳの化学効果をシミュレートするため、ＳＤＳをキュベットに５分間添加し、その後緩衝液で洗浄した。本洗浄ステップの後、吸着量とこの２つの温度との間には顕著な相違はない。
【００４６】
得られた結果は、ＯＰＮがＨＡディスクの表面被覆を生じさせ、その被覆は水による洗浄後およびＳＤＳ処理後に膜厚が低減するとはいえ安定であることを示す。
【００４７】
〔細菌被膜の形成〕
表１および表２に示した、マイルドな超音波処理により脱離した細菌数は、それぞれ０．１ｍｇ／ｍｌおよび１ｍｇ／ｍｌの濃度のＯＰＮ溶液で処理したＨＡディスクの細菌の付着への顕著な影響を、全ての唾液ドナーについて、血液寒天培地およびＭＳＡ培地双方のプレート上の細菌総数で示している。ＢＳＡまたは唾液で処理したＨＡディスクは表面に細菌をより多く呈した。微生物の総数はＯＰＣ被覆ディスクが対照ディスク（唾液またはＢＳＡ被覆）の１０〜１０００分の１であった。刺激唾液サンプルは、唾液中の細菌叢の共通の特徴であると考えられている高度に多様な細菌の構成を呈した。対照ディスクより有意に少ない連鎖球菌がＯＰＮ被覆ディスクにコロニー形成したという発見は興味深いものであった。
【００４８】
〔表１〕
両側面を研磨し、異なる前処理後に刺激唾液中でインキュベートした全ディスクの細菌分析。嫌気的にインキュベートした血液寒天プレート上の総数（ＣＦＵ）。
【００４９】
【表１】
【００５０】
〔表２〕
両側面を研磨し、異なる前処理後に刺激唾液中でインキュベートした全ディスクの細菌分析。通性嫌気的にインキュベートしたミティス・サリバリウス寒天培地（ＭＳＡ）上の総数。
【００５１】
【表２】
【００５２】
〔まとめ〕
これらの結果は、ＨＡディスクのＯＰＮ前処理が刺激唾液中でのインキュベーション後の細菌量に明らかな効果を及ぼすことを示す。抗付着効果は、調査した０．１〜１ｍｇ／ｍｌの範囲で、歯の類似物を浸すためのＯＰＮ溶液の濃度にほとんど依存しないようである。
【００５３】
単一層の被覆のためには、ＯＰＮの量は少なくてよい。
【００５４】
対照ディスクと比較して、有意に少ない連鎖球菌しかＯＰＮ被覆ディスクに付着しなかったことは興味深い。
【００５５】
（参考文献）
【表３】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
歯のエナメル質上での歯垢細菌の増殖を抑制または予防するための、オステオポンチンの使用。
【請求項２】
虫歯を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項３】
歯石を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項４】
歯周病を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項５】
歯の脱灰を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項６】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約５ｍｇから約１５００ｍｇ含有する、歯科用製剤。
【請求項７】
練り歯磨き、歯磨き粉、歯磨きゲル、歯科用洗口剤、口腔スプレー、またはチューインガムの形態の、請求項６に記載の歯科用製剤。
【請求項８】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約１００ｍｇから約１０００ｍｇ含む、請求項７に記載の歯科用製剤。
【請求項９】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約２００ｍｇから約５００ｍｇ含む、請求項８に記載の歯科用製剤。
【請求項１０】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約３５０ｍｇ含む、請求項９に記載の歯科用製剤。
【請求項１１】
虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防のための歯科用製剤を製造するための、オステオポンチンの使用。
【請求項１２】
有効な量のオステオポンチンを口中に投与することによる、歯のエナメル質上の歯垢細菌の増殖の予防または阻止方法。
【請求項１３】
有効な量のオステオポンチンを虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防の必要がある患者に経口投与することによる、虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防方法。
【請求項１】
歯のエナメル質上での歯垢細菌の増殖を抑制または予防するための、オステオポンチンの使用。
【請求項２】
虫歯を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項３】
歯石を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項４】
歯周病を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項５】
歯の脱灰を抑制または予防するための、請求項１に記載のオステオポンチンの使用。
【請求項６】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約５ｍｇから約１５００ｍｇ含有する、歯科用製剤。
【請求項７】
練り歯磨き、歯磨き粉、歯磨きゲル、歯科用洗口剤、口腔スプレー、またはチューインガムの形態の、請求項６に記載の歯科用製剤。
【請求項８】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約１００ｍｇから約１０００ｍｇ含む、請求項７に記載の歯科用製剤。
【請求項９】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約２００ｍｇから約５００ｍｇ含む、請求項８に記載の歯科用製剤。
【請求項１０】
製剤１ｋｇにつきオステオポンチンを約３５０ｍｇ含む、請求項９に記載の歯科用製剤。
【請求項１１】
虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防のための歯科用製剤を製造するための、オステオポンチンの使用。
【請求項１２】
有効な量のオステオポンチンを口中に投与することによる、歯のエナメル質上の歯垢細菌の増殖の予防または阻止方法。
【請求項１３】
有効な量のオステオポンチンを虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防の必要がある患者に経口投与することによる、虫歯、歯石、または歯周病の治療または予防方法。
【図１】
【公開番号】特開２０１２−２１１１９５（Ｐ２０１２−２１１１９５Ａ）
【公開日】平成２４年１１月１日（２０１２．１１．１）
【国際特許分類】
【外国語出願】
【出願番号】特願２０１２−１７１８４０（Ｐ２０１２−１７１８４０）
【出願日】平成２４年８月２日（２０１２．８．２）
【分割の表示】特願２００６−５４１８００（Ｐ２００６−５４１８００）の分割
【原出願日】平成１６年１２月１日（２００４．１２．１）
【出願人】（５０１２９５９６９）アルラ・フーズ・エイ・エム・ビィ・エイ (11)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２４年１１月１日（２０１２．１１．１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１２−１７１８４０（Ｐ２０１２−１７１８４０）
【出願日】平成２４年８月２日（２０１２．８．２）
【分割の表示】特願２００６−５４１８００（Ｐ２００６−５４１８００）の分割
【原出願日】平成１６年１２月１日（２００４．１２．１）
【出願人】（５０１２９５９６９）アルラ・フーズ・エイ・エム・ビィ・エイ (11)
【Ｆターム（参考）】
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