生体材料からのＤＮＡの単離方法
【課題】生体材料、特に不純物及び阻害物質を含み得る大便試料からの核酸の安定化、精製、又は／及び単離のための方法を行うために適した試薬キットを提供する。
【解決手段】不純物を結合させるための吸着マトリックス（不溶性炭水化物系吸着マトリックス）及び抽出バッファーを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去する生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、抽出バッファーが（ａ）２〜８の範囲のｐＨ（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度、又は／及び（ｃ）フェノール中和物質を含むことを特徴とする方法。
【解決手段】不純物を結合させるための吸着マトリックス（不溶性炭水化物系吸着マトリックス）及び抽出バッファーを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去する生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、抽出バッファーが（ａ）２〜８の範囲のｐＨ（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度、又は／及び（ｃ）フェノール中和物質を含むことを特徴とする方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体材料、特に不純物及び阻害剤又は妨害物質(interfering substances)を含み得る大便 (stool)試料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法に関する。更に、本発明の方法を行うために適した試薬キットを記載する。
【０００２】
様々な研究分野からの数多くの例は、保管中に核酸を損傷させ、かつ例えば増幅による核酸の酵素処理を妨げる物質によって汚染された生体試料からの核酸の分析の重要性を立証する。従って、更なる分析のために生体材料に含まれる核酸を使用するためには、前記物質が極めて低濃度で存在し、又は試料から完全に除去されていることが重要である。
【０００３】
糞便試料からの核酸試料の分析は、特に重要である。重要な医学的適用は、消化管の腫瘍の初期診断におけるパラメーターとして役立ち得る大便からの核のヒトＤＮＡの腫瘍に特異的な改変(modifications)の検出である。更に、核酸に基づく検出法(nucleic acid-based assay)による大便試料からの細菌性及びウイルス性伝染病の病原菌の検出は、ますます重要になっている。
【０００４】
大便試料からの核酸の精製のためのプロテアーゼ処理、フェノール／クロロホルム抽出、カオトロピック塩の存在下での核酸のシリカへの結合、ゲル濾過、アニオン交換クロマトグラフィー及び陽イオン界面活性剤の使用のような様々な精製手段の適用は周知である。しかし、前記方法を使用して大便試料から単離された核酸は、一般的に不安定であり、例えばＰＣＲのようなその後の酵素反応においてしばしば問題を引き起こす。この理由は、核酸と共に単離され、前記核酸を損傷させ、更に酵素反応を妨げる物質である。大便に含まれる既知の阻害剤類は、ヘモグロビン及びその代謝産物、胆汁酸及び胆汁酸誘導体、更に多糖類である。
【０００５】
ＰＣＴ／ＥＰ／９６／０３５９５には、生体材料、特に糞便からの核酸の精製、安定化又は／及び単離のための方法であって、不純物を結合させるための吸着マトリックスを、生体材料からの核酸含有試料へ添加する方法が記載されている。使用する吸着マトリックスは、好ましくは澱粉炭水化物系、例えば澱粉、セルロース、グリコゲン又は／及び他の生物発生的(biogenic)若しくは生物発生的でない(nonbiogenic)炭水化物又はそれらの混合物であり、穀類、エンドウ豆、トウモロコシ、ジャガイモ、若しくはそれらの成分、又は混合物からなる粉末を含むことが好ましい。精製された炭水化物又は／及び粉末の混合物、特にセルロースとジャガイモ粉末との混合物は、大便試料からの核酸の精製に特に適していることが分かった。
【０００６】
しかし、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５に記載の方法を用いた場合、核酸を損傷する物質及びＰＣＲ阻害剤が完全に除去されないこともある。阻害された(inhibitory)大便試料の割合が変わり易い場合、核酸の酵素処理及びその後の標準的なプロトコルを用いる精製は不可能である。
【０００７】
従って、本発明の目的は、核酸の単離方法であって、少なくとも従来技術の欠点のいくつかを取り除き、特に“阻害された試料”からの核酸の再生的な(reproducibly)精製を可能にする方法を提供することである。
【０００８】
驚くべきことに、下記の１つ以上の手段を用いると、阻害された試料からの核酸の精製をも改善できることが見出された：
（ａ）酸性〜中性ｐＨを有する抽出バッファーを使用すること、
（ｂ）高い塩濃度の抽出バッファーを使用すること、及び
（ｃ）フェノール中和物質(phenol neutralizing substance)を含む抽出バッファーを使用すること。
【０００９】
従って、本発明は、生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、抽出バッファー及び不純物を結合させるための吸着マトリックスを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去し、不純物がそれに結合し、抽出バッファーが
（ａ）２〜８の範囲のｐＨ
（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度、又は／及び
（ｃ）フェノール中和物質
を含む方法に関する。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、先行技術の抽出バッファー（図１ａ）及び本発明の抽出バッファー（図１ｂ）を用いた阻害された大便試料におけるＤＮＡの増幅性を示す。
【００１１】
第一の態様において、バッファーは、２〜８、好ましくは３〜７、特に好ましくは４〜６．５の範囲のｐＨを有する。酢酸塩バッファー、例えば酢酸ナトリウムの使用がここでは有利である。しかし、他のバッファー、例えばリン酸塩バッファー又はクエン酸塩バッファーの使用も可能である。
【００１２】
第二の態様によれば、抽出バッファーの塩濃度は、少なくとも１００ｍＭ、好ましくは少なくとも２００ｍＭで、それぞれの場合に使用される塩の最大溶解度までである。使用される好ましい塩は、アルカリ金属ハロゲン化物、例えばＮａＣｌ若しくはＫＣｌ又はそれらの混合物である。
【００１３】
第三の態様において、バッファーは、少なくとも１つのフェノール中和物質を含む。フェノールを中和できる物質の好ましい例としては、様々な重合度のポリビニルピロリドン(PVP)、例えば、ＰＶＰ−１０、還元剤、例えばβ-メルカプトエタノール若しくはジチオトレイトールのようなチオール試薬、又はホウ酸塩が挙げられる。少なくとも０．５％（ｗ／ｗ）で溶解度の限界までの濃度のポリビニルピロリドンを用いることが特に好ましい。
【００１４】
更に、本発明の方法に適した抽出バッファーは、例えばＥＤＴＡのようなキレート化合物、又は／及び界面活性剤、例えばＳＤＳのようなイオン性界面活性剤を好ましくは含む。キレート化合物は、１〜２００ｍＭの濃度で含まれることが好ましい。界面活性剤濃度は、好ましくは０．１〜５％（ｗ／ｗ）である。
【００１５】
抽出バッファーと混合した吸着マトリックスは、核酸の損傷を引き起こし、又は／及び酵素反応が行われることを妨げる不純物を除去又は中和することができ、その例としては、ヘモグロビンの分解生成物、例えばビリルビン(bilirubin)及びその分解生成物、胆汁酸若しくはそれらの塩又はそれらの分解生成物、又は／並びに特に植物由来の多糖類及びポリフェノールが挙げられる。不溶性吸着マトリックスを用いることが好ましい。
【００１６】
適当な吸着マトリックスに関しては、出願ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５が参照される。炭水化物系吸着マトリックス、例えば穀類、トウモロコシ、エンドウ豆、大豆、及び特にジャガイモからなる粉末若しくはそれらの成分又はそれらの混合物を用いることが特に好ましい。粉末と他の炭水化物、例えばセルロースのような精製された炭水化物との混合物が特に好ましい。
【００１７】
吸着マトリックスを試料へ添加する量は、試料組成に本質的に依存する。試料に基づき、例えば、重量で０．０５：１〜１００：１、特に０．１：１〜１０：１の割合で吸着マトリックスを使用することができる。
【００１８】
核酸を分解する、又は酵素反応を阻害する不純物を含む生体材料から、核酸含有試料を採取する。試料の好ましい供給源は糞便である。しかし、前記試料は、他の供給源、例えば、全ての種類の組織、骨髄、血液、血清、血漿、尿、精液、ＣＳＦ、痰のようなヒト及び動物の体液、スワブ(swabs)、植物、植物の一部及び抽出物、例えば樹液、真菌(fungi)、細菌のような微生物、化石化(fossilized)又はミイラ化した(mummified)試料、土壌試料、泥(sludge)、排水並びに食物からも採取することができる。
【００１９】
吸着マトリックスの添加前に抽出バッファーへ入れ、それぞれの場合に所望の期間プレインキュベートする(preincubated)ことが好ましい。一方、試料、抽出バッファー及び吸着マトリックスを一緒に同時に添加することもできる。抽出バッファーは、室温で抽出バッファー中で少なくとも重量で０．１：１、好ましくは０．５：１〜５０：１の割合で好ましくは使用され、インキュベーションは、均質化処理、例えばボルテックスミキサーによる攪拌(vortexing)を好ましくは含む。
【００２０】
本発明の態様において、インキュベーションは、試料材料からの核酸の放出に有利な条件下で行うことができる。そのようなインキュベーション条件は、分解することが“難しい”材料、例えば細菌若しくは寄生動物のような細胞、又は例えばウイルスからの核酸を検出すべきである場合に特に用いられる。この場合、インキュベーション中の核酸の放出は、化学的、熱的、又は／及び酵素的処理によって向上することができ、その結果、全ＤＮＡに関しても、具体的には検出されるべきＤＮＡに関しても、試料材料から核酸が高収率が得られる。ここでは、温度を例えば５０℃以上に、特に７０℃以上に上げることが好ましい。
【００２１】
一方、分解され易い材料、例えばヒト細胞のような感受性細胞からの核酸が測定されるべきである場合、試料における他の核酸の望ましくない放出をこの方法で回避するため、又は制限するために、温度を下げて、例えば１０℃以下、特に４℃以下でインキュベーションを行うこともできる。
【００２２】
吸着マトリックスの添加後に、試料を更にインキュベートする。このインキュベーションも、所望により、室温で、温度を下げて、又は核酸の放出に有利な条件で行うことができる。
【００２３】
インキュベーション後、例えば遠心分離によって試料から吸着マトリックスを除去することができる。その代わりに、例えば液体生体試料の場合は、吸着マトリックスを試料へ直接添加することもできる。更に、遠心分離、減圧適用、又は／及び重力手段によって、試料を吸着マトリックス上へ導くことができ、その後、吸着マトリックスと共にカラムへ入れることが好ましい。
【００２４】
抽出バッファー及び吸着マトリックスによる処理は、試料に含まれる核酸の溶解度を著しく上昇させ、かつ次の核酸の単離の再生性(reproducibility)をより良好にする。これは、単離の後に核酸の酵素処理、例えば増幅又は／及び制限切断(restriction cleavage)を行う場合に特に当てはまる。例えばＰＣＲ（ポリメラーゼ・チェーン反応）、ＬＣＲ（リガーゼ・チェーン反応）、ＮＡＳＢＡ（核酸に基づく特異的増幅）又は３ＳＲ（自動継続配列複製(self-sustained sequence replication)）による増幅を行うことが特に好ましい。
【００２５】
ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５において既に述べられているように、本発明の特に好ましい態様は、大便試料からの核酸、特にＤＮＡの分析、検出又は単離である。本発明の方法は、糞便試料から、不純物のない増幅可能な(amplifiable)核酸を得ることを可能し、突然変異、特に腫瘍に特異的なＤＮＡ突然変異の検出のために使用することができる。
【００２６】
本発明は更に、生体材料からの核酸の安定化及び精製のための試薬キットであって、
（ａ）核酸含有試料を入れるために適した上記のような抽出バッファー、及び
（ｂ）生体材料の不純物を結合させるための吸着マトリックス
を含むキットに関する。
【００２７】
吸着マトリックスは、数個に分けて容器に入れた状態で、例えば遠心分離され得るミニカラム(miniculumn)のようなカラムに入れた状態であることもできる。バッファーは、濃縮又は凍結乾燥してすぐに使用できる状態(ready-in-use form)であることができる。
【００２８】
試薬キットは、例えば無機(mineral)又は／及び有機支持体材料、適当な溶液、補助剤、又は／及び付属物(accessories)を含む、核酸試料を精製するための更なる手段を含むことが好ましい。支持体材料の無機成分は、例えば多孔質若しくは非多孔質金属酸化物又は金属混合酸化物(metal mixed oxides)、例えば酸化アルミニウム、二酸化チタン、又は二酸化ジルコニウム、シリカゲル、ガラス系材料、例えば変性若しくは非変性ガラス粒子若しくはガラス粉末、石英、ゼオライト又は上記物質の１つ以上の混合物であることができる。一方、支持体は、例えば、官能基によって任意に変性されたラテックス粒子、例えばポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニリデン、フッ化物、特に超高分子量ポリエチレン又はＨＤポリエチレン、又は上記物質の１つ以上の混合物から選ばれる有機成分を含むこともできる。
【００２９】
支持体は、例えば、０．１μｍ〜１００μｍの平均粒子サイズを有する粒子の形であることもできる。多孔質支持体を用いる場合、２μｍ〜１００μｍの平均孔径が好ましい。支持体は、例えば、粒子の非結合床 (loose beds)、例えばガラス、石英又はセラミックからなる濾過層、膜、例えばシリカゲルを含む膜、例えば石英若しくはガラスウールのような繊維又は組織の状態、そして更に合成ポリマーのラテックス又はフリット材料の状態であることができる。
【００３０】
また、本発明の試薬キットは、酵素及び他の核酸処理のための手段、例えば核酸の増幅に適した少なくとも１つのプライマー及び酵素、例えば核酸ポリメラーゼ、又は／並びに少なくとも１つの制限エンドヌクレアーゼのような補助物質を含むこともできる。
【００３１】
核酸の増幅のためのプライマーは、分析されるべき遺伝子、即ち、例えば癌遺伝子、腫瘍抑圧遺伝子(tumor suppressor genes)、又は／及びミクロサテライト部(microsatellite sections)に適切に(expediently)由来する。核酸の増幅に適した酵素及び制限エンドヌクレアーゼは周知であり、市販されている。
【００３２】
また、以下の図面及び実施例は、本発明を説明するためのものである。図において：
図１は、先行技術の抽出バッファー（図１ａ）及び本発明の抽出バッファー（図１ｂ）を用いた阻害された大便試料におけるＤＮＡの増幅性(amplificability)を示す。
【実施例】
【００３３】
実施例１
大便試料からのＤＮＡの分析
セルロース及びジャガイモ粉末からなる吸着マトリックスを用いてＤＮＡを精製した後、ＰＣＲによって増幅した。
【００３４】
ヒト大便試料を集め、凍結させて−８０℃で保管した。大便２００ｍｇを２ｍｌのマイクロ遠心分離器(microcentrifuge vessel)へ入れ、氷上で保管した。次いで、大便試料を６００μｌの抽出バッファーへ入れ、混合物をボルテックスミキサーで１分間攪拌することによって均質化した。
【００３５】
ジャガイモ粉末及びセルロース系吸着マトリックス（２００ｍｇ）を３００μｌの抽出バッファーへ入れ、ボルテックスミキサーで攪拌することによって再度懸濁させた。その後、マトリックス懸濁液を大便ホモジェネート(homogenate)へ加え、ボルテックスミキサーで１分間攪拌した。
【００３６】
大便粒子、吸着マトリックス及び他の不純物を沈殿させるために試料を５分間遠心分離した。上清を新しいマイクロ遠心分離器へ移し、更に５分間遠心分離した。
【００３７】
６００μｌの上清中に含まれるＤＮＡを、下記の試薬及び遠心分離カラムを用いて更に精製した。プロテイナーゼＫ処理の後、カオトロピック塩の存在下で、核酸を遠心分離カラムのシリカゲル膜に結合させ、更に洗浄処理をした後溶出させた。
【００３８】
テンプレート（ＧＦＰ（緑色蛍光蛋白質(green fluorescence protein)）及びその増幅に必要なその他の成分（プライマー、ポリメラーゼ、ヌクレオチド、バッファー）をＤＮＡ溶出液へ添加した。ＰＣＲ混合物中のＤＮＡ溶出液の最終濃度は、１０％（ｖ／ｖ）であった。
【００３９】
計１９人の阻害された大便試料からのＤＮＡ単離物の増幅性を、ＰＣＲ（図１ａ及びｂ中の１〜１９列）によって試験した。ＰＣＲ後、ゲル電気泳動によって混合物を分画し、増幅生成物（予測長(expected length)７７１ｂｐ）を臭化エチジウム染色によって視覚化した。
【００４０】
ＤＮＡ長マーカー（Ｍ；１ｋＢマーカー(1 kB Marker)、ギブコ ＢＲＬ(Gibco BRL)、ベセスダ(Bethesda) メリーランド(Meryland)）を参照としてゲルへ加えた。ＤＮＡ溶出液の代わりにＧＦＰ−ＰＣＲ混合物へ加えた対照は、トリスバッファー（Ｔ）、高阻害(highly inhibitory)大便ＤＮＡ（Ｉ）又は阻害されていない大便ＤＮＡ（Ｎ）であった。更に、対照反応ＧＦＰを、何も添加せずに（−）増幅した。
【００４１】
阻害された大便試料の場合、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５に用いられた大便溶解バッファー（５００ｍＭ トリス−ＨＣｌ ｐＨ９．０、５０ｍＭ ＥＤＴＡ、１０ｍＭ ＮａＣｌ）を用いると増幅生成物が得られないことがしばしばあった。それ故、図１ａは、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５から知られているプロトコルを用いると、試験された１９個の試料の２つのみ（４番及び１５番の試料）で増幅が起こったことを示す。
【００４２】
驚くべきことに、標準のバッファーを以下の表１に示すバッファーＥ１〜Ｅ８と取り替えることにより、ＤＮＡの増幅性を劇的に向上できることが見出された。
【００４３】
【表１】
【００４４】
図１ｂは、本発明の抽出バッファーを用いた場合、１９個の試料全てから、増幅可能なＤＮＡを単離できたことを示す。
【００４５】
実施例２
上昇させた温度での大便抽出
特別な細胞（例えば細菌、寄生動物）又はウイルスからの核酸の検出において、ＤＮＡの効率的な放出を確実に行うためには、温度を上昇させて大便試料の抽出を行うことが適当である。
【００４６】
それぞれの場合に、１０5個の腫瘍菌を１ｇの大便へ加え、実施例１の方法によって処理した。大便試料を、４℃、１８〜２５℃の室温（ＲＴ）、５０℃、７０℃、８０℃又は９０℃で５分間、本発明のバッファー中で抽出した。全ＤＮＡ収量から溶解率(efficiency of lysis)を測定し、添加した腫瘍菌の溶解率を特異的腫瘍菌配列（ｖｉｒ遺伝子(vir gene)）の増幅から測定した。結果を以下の表２に示す。
【００４７】
【表２】
【００４８】
それぞれの場合において、結果は、記載の温度での２つの別個の大便抽出物に基づいている。全ＤＮＡ収量は、２６０ｎｍのＯＤ測定によって測定した。増幅生成物をアガロースゲル上で分画した。＋は、増幅率を示す（＋〜＋＋＋：率の増加）。
【００４９】
表２は、インキュベーション温度が少なくとも５０℃、特に少なくとも７０℃に上昇すると、全ＤＮＡ収量及び細菌の溶解のいずれもが、並びにそれによる増幅収量が顕著に増加したことを示す。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体材料、特に不純物及び阻害剤又は妨害物質(interfering substances)を含み得る大便 (stool)試料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法に関する。更に、本発明の方法を行うために適した試薬キットを記載する。
【０００２】
様々な研究分野からの数多くの例は、保管中に核酸を損傷させ、かつ例えば増幅による核酸の酵素処理を妨げる物質によって汚染された生体試料からの核酸の分析の重要性を立証する。従って、更なる分析のために生体材料に含まれる核酸を使用するためには、前記物質が極めて低濃度で存在し、又は試料から完全に除去されていることが重要である。
【０００３】
糞便試料からの核酸試料の分析は、特に重要である。重要な医学的適用は、消化管の腫瘍の初期診断におけるパラメーターとして役立ち得る大便からの核のヒトＤＮＡの腫瘍に特異的な改変(modifications)の検出である。更に、核酸に基づく検出法(nucleic acid-based assay)による大便試料からの細菌性及びウイルス性伝染病の病原菌の検出は、ますます重要になっている。
【０００４】
大便試料からの核酸の精製のためのプロテアーゼ処理、フェノール／クロロホルム抽出、カオトロピック塩の存在下での核酸のシリカへの結合、ゲル濾過、アニオン交換クロマトグラフィー及び陽イオン界面活性剤の使用のような様々な精製手段の適用は周知である。しかし、前記方法を使用して大便試料から単離された核酸は、一般的に不安定であり、例えばＰＣＲのようなその後の酵素反応においてしばしば問題を引き起こす。この理由は、核酸と共に単離され、前記核酸を損傷させ、更に酵素反応を妨げる物質である。大便に含まれる既知の阻害剤類は、ヘモグロビン及びその代謝産物、胆汁酸及び胆汁酸誘導体、更に多糖類である。
【０００５】
ＰＣＴ／ＥＰ／９６／０３５９５には、生体材料、特に糞便からの核酸の精製、安定化又は／及び単離のための方法であって、不純物を結合させるための吸着マトリックスを、生体材料からの核酸含有試料へ添加する方法が記載されている。使用する吸着マトリックスは、好ましくは澱粉炭水化物系、例えば澱粉、セルロース、グリコゲン又は／及び他の生物発生的(biogenic)若しくは生物発生的でない(nonbiogenic)炭水化物又はそれらの混合物であり、穀類、エンドウ豆、トウモロコシ、ジャガイモ、若しくはそれらの成分、又は混合物からなる粉末を含むことが好ましい。精製された炭水化物又は／及び粉末の混合物、特にセルロースとジャガイモ粉末との混合物は、大便試料からの核酸の精製に特に適していることが分かった。
【０００６】
しかし、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５に記載の方法を用いた場合、核酸を損傷する物質及びＰＣＲ阻害剤が完全に除去されないこともある。阻害された(inhibitory)大便試料の割合が変わり易い場合、核酸の酵素処理及びその後の標準的なプロトコルを用いる精製は不可能である。
【０００７】
従って、本発明の目的は、核酸の単離方法であって、少なくとも従来技術の欠点のいくつかを取り除き、特に“阻害された試料”からの核酸の再生的な(reproducibly)精製を可能にする方法を提供することである。
【０００８】
驚くべきことに、下記の１つ以上の手段を用いると、阻害された試料からの核酸の精製をも改善できることが見出された：
（ａ）酸性〜中性ｐＨを有する抽出バッファーを使用すること、
（ｂ）高い塩濃度の抽出バッファーを使用すること、及び
（ｃ）フェノール中和物質(phenol neutralizing substance)を含む抽出バッファーを使用すること。
【０００９】
従って、本発明は、生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、抽出バッファー及び不純物を結合させるための吸着マトリックスを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去し、不純物がそれに結合し、抽出バッファーが
（ａ）２〜８の範囲のｐＨ
（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度、又は／及び
（ｃ）フェノール中和物質
を含む方法に関する。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、先行技術の抽出バッファー（図１ａ）及び本発明の抽出バッファー（図１ｂ）を用いた阻害された大便試料におけるＤＮＡの増幅性を示す。
【００１１】
第一の態様において、バッファーは、２〜８、好ましくは３〜７、特に好ましくは４〜６．５の範囲のｐＨを有する。酢酸塩バッファー、例えば酢酸ナトリウムの使用がここでは有利である。しかし、他のバッファー、例えばリン酸塩バッファー又はクエン酸塩バッファーの使用も可能である。
【００１２】
第二の態様によれば、抽出バッファーの塩濃度は、少なくとも１００ｍＭ、好ましくは少なくとも２００ｍＭで、それぞれの場合に使用される塩の最大溶解度までである。使用される好ましい塩は、アルカリ金属ハロゲン化物、例えばＮａＣｌ若しくはＫＣｌ又はそれらの混合物である。
【００１３】
第三の態様において、バッファーは、少なくとも１つのフェノール中和物質を含む。フェノールを中和できる物質の好ましい例としては、様々な重合度のポリビニルピロリドン(PVP)、例えば、ＰＶＰ−１０、還元剤、例えばβ-メルカプトエタノール若しくはジチオトレイトールのようなチオール試薬、又はホウ酸塩が挙げられる。少なくとも０．５％（ｗ／ｗ）で溶解度の限界までの濃度のポリビニルピロリドンを用いることが特に好ましい。
【００１４】
更に、本発明の方法に適した抽出バッファーは、例えばＥＤＴＡのようなキレート化合物、又は／及び界面活性剤、例えばＳＤＳのようなイオン性界面活性剤を好ましくは含む。キレート化合物は、１〜２００ｍＭの濃度で含まれることが好ましい。界面活性剤濃度は、好ましくは０．１〜５％（ｗ／ｗ）である。
【００１５】
抽出バッファーと混合した吸着マトリックスは、核酸の損傷を引き起こし、又は／及び酵素反応が行われることを妨げる不純物を除去又は中和することができ、その例としては、ヘモグロビンの分解生成物、例えばビリルビン(bilirubin)及びその分解生成物、胆汁酸若しくはそれらの塩又はそれらの分解生成物、又は／並びに特に植物由来の多糖類及びポリフェノールが挙げられる。不溶性吸着マトリックスを用いることが好ましい。
【００１６】
適当な吸着マトリックスに関しては、出願ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５が参照される。炭水化物系吸着マトリックス、例えば穀類、トウモロコシ、エンドウ豆、大豆、及び特にジャガイモからなる粉末若しくはそれらの成分又はそれらの混合物を用いることが特に好ましい。粉末と他の炭水化物、例えばセルロースのような精製された炭水化物との混合物が特に好ましい。
【００１７】
吸着マトリックスを試料へ添加する量は、試料組成に本質的に依存する。試料に基づき、例えば、重量で０．０５：１〜１００：１、特に０．１：１〜１０：１の割合で吸着マトリックスを使用することができる。
【００１８】
核酸を分解する、又は酵素反応を阻害する不純物を含む生体材料から、核酸含有試料を採取する。試料の好ましい供給源は糞便である。しかし、前記試料は、他の供給源、例えば、全ての種類の組織、骨髄、血液、血清、血漿、尿、精液、ＣＳＦ、痰のようなヒト及び動物の体液、スワブ(swabs)、植物、植物の一部及び抽出物、例えば樹液、真菌(fungi)、細菌のような微生物、化石化(fossilized)又はミイラ化した(mummified)試料、土壌試料、泥(sludge)、排水並びに食物からも採取することができる。
【００１９】
吸着マトリックスの添加前に抽出バッファーへ入れ、それぞれの場合に所望の期間プレインキュベートする(preincubated)ことが好ましい。一方、試料、抽出バッファー及び吸着マトリックスを一緒に同時に添加することもできる。抽出バッファーは、室温で抽出バッファー中で少なくとも重量で０．１：１、好ましくは０．５：１〜５０：１の割合で好ましくは使用され、インキュベーションは、均質化処理、例えばボルテックスミキサーによる攪拌(vortexing)を好ましくは含む。
【００２０】
本発明の態様において、インキュベーションは、試料材料からの核酸の放出に有利な条件下で行うことができる。そのようなインキュベーション条件は、分解することが“難しい”材料、例えば細菌若しくは寄生動物のような細胞、又は例えばウイルスからの核酸を検出すべきである場合に特に用いられる。この場合、インキュベーション中の核酸の放出は、化学的、熱的、又は／及び酵素的処理によって向上することができ、その結果、全ＤＮＡに関しても、具体的には検出されるべきＤＮＡに関しても、試料材料から核酸が高収率が得られる。ここでは、温度を例えば５０℃以上に、特に７０℃以上に上げることが好ましい。
【００２１】
一方、分解され易い材料、例えばヒト細胞のような感受性細胞からの核酸が測定されるべきである場合、試料における他の核酸の望ましくない放出をこの方法で回避するため、又は制限するために、温度を下げて、例えば１０℃以下、特に４℃以下でインキュベーションを行うこともできる。
【００２２】
吸着マトリックスの添加後に、試料を更にインキュベートする。このインキュベーションも、所望により、室温で、温度を下げて、又は核酸の放出に有利な条件で行うことができる。
【００２３】
インキュベーション後、例えば遠心分離によって試料から吸着マトリックスを除去することができる。その代わりに、例えば液体生体試料の場合は、吸着マトリックスを試料へ直接添加することもできる。更に、遠心分離、減圧適用、又は／及び重力手段によって、試料を吸着マトリックス上へ導くことができ、その後、吸着マトリックスと共にカラムへ入れることが好ましい。
【００２４】
抽出バッファー及び吸着マトリックスによる処理は、試料に含まれる核酸の溶解度を著しく上昇させ、かつ次の核酸の単離の再生性(reproducibility)をより良好にする。これは、単離の後に核酸の酵素処理、例えば増幅又は／及び制限切断(restriction cleavage)を行う場合に特に当てはまる。例えばＰＣＲ（ポリメラーゼ・チェーン反応）、ＬＣＲ（リガーゼ・チェーン反応）、ＮＡＳＢＡ（核酸に基づく特異的増幅）又は３ＳＲ（自動継続配列複製(self-sustained sequence replication)）による増幅を行うことが特に好ましい。
【００２５】
ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５において既に述べられているように、本発明の特に好ましい態様は、大便試料からの核酸、特にＤＮＡの分析、検出又は単離である。本発明の方法は、糞便試料から、不純物のない増幅可能な(amplifiable)核酸を得ることを可能し、突然変異、特に腫瘍に特異的なＤＮＡ突然変異の検出のために使用することができる。
【００２６】
本発明は更に、生体材料からの核酸の安定化及び精製のための試薬キットであって、
（ａ）核酸含有試料を入れるために適した上記のような抽出バッファー、及び
（ｂ）生体材料の不純物を結合させるための吸着マトリックス
を含むキットに関する。
【００２７】
吸着マトリックスは、数個に分けて容器に入れた状態で、例えば遠心分離され得るミニカラム(miniculumn)のようなカラムに入れた状態であることもできる。バッファーは、濃縮又は凍結乾燥してすぐに使用できる状態(ready-in-use form)であることができる。
【００２８】
試薬キットは、例えば無機(mineral)又は／及び有機支持体材料、適当な溶液、補助剤、又は／及び付属物(accessories)を含む、核酸試料を精製するための更なる手段を含むことが好ましい。支持体材料の無機成分は、例えば多孔質若しくは非多孔質金属酸化物又は金属混合酸化物(metal mixed oxides)、例えば酸化アルミニウム、二酸化チタン、又は二酸化ジルコニウム、シリカゲル、ガラス系材料、例えば変性若しくは非変性ガラス粒子若しくはガラス粉末、石英、ゼオライト又は上記物質の１つ以上の混合物であることができる。一方、支持体は、例えば、官能基によって任意に変性されたラテックス粒子、例えばポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニリデン、フッ化物、特に超高分子量ポリエチレン又はＨＤポリエチレン、又は上記物質の１つ以上の混合物から選ばれる有機成分を含むこともできる。
【００２９】
支持体は、例えば、０．１μｍ〜１００μｍの平均粒子サイズを有する粒子の形であることもできる。多孔質支持体を用いる場合、２μｍ〜１００μｍの平均孔径が好ましい。支持体は、例えば、粒子の非結合床 (loose beds)、例えばガラス、石英又はセラミックからなる濾過層、膜、例えばシリカゲルを含む膜、例えば石英若しくはガラスウールのような繊維又は組織の状態、そして更に合成ポリマーのラテックス又はフリット材料の状態であることができる。
【００３０】
また、本発明の試薬キットは、酵素及び他の核酸処理のための手段、例えば核酸の増幅に適した少なくとも１つのプライマー及び酵素、例えば核酸ポリメラーゼ、又は／並びに少なくとも１つの制限エンドヌクレアーゼのような補助物質を含むこともできる。
【００３１】
核酸の増幅のためのプライマーは、分析されるべき遺伝子、即ち、例えば癌遺伝子、腫瘍抑圧遺伝子(tumor suppressor genes)、又は／及びミクロサテライト部(microsatellite sections)に適切に(expediently)由来する。核酸の増幅に適した酵素及び制限エンドヌクレアーゼは周知であり、市販されている。
【００３２】
また、以下の図面及び実施例は、本発明を説明するためのものである。図において：
図１は、先行技術の抽出バッファー（図１ａ）及び本発明の抽出バッファー（図１ｂ）を用いた阻害された大便試料におけるＤＮＡの増幅性(amplificability)を示す。
【実施例】
【００３３】
実施例１
大便試料からのＤＮＡの分析
セルロース及びジャガイモ粉末からなる吸着マトリックスを用いてＤＮＡを精製した後、ＰＣＲによって増幅した。
【００３４】
ヒト大便試料を集め、凍結させて−８０℃で保管した。大便２００ｍｇを２ｍｌのマイクロ遠心分離器(microcentrifuge vessel)へ入れ、氷上で保管した。次いで、大便試料を６００μｌの抽出バッファーへ入れ、混合物をボルテックスミキサーで１分間攪拌することによって均質化した。
【００３５】
ジャガイモ粉末及びセルロース系吸着マトリックス（２００ｍｇ）を３００μｌの抽出バッファーへ入れ、ボルテックスミキサーで攪拌することによって再度懸濁させた。その後、マトリックス懸濁液を大便ホモジェネート(homogenate)へ加え、ボルテックスミキサーで１分間攪拌した。
【００３６】
大便粒子、吸着マトリックス及び他の不純物を沈殿させるために試料を５分間遠心分離した。上清を新しいマイクロ遠心分離器へ移し、更に５分間遠心分離した。
【００３７】
６００μｌの上清中に含まれるＤＮＡを、下記の試薬及び遠心分離カラムを用いて更に精製した。プロテイナーゼＫ処理の後、カオトロピック塩の存在下で、核酸を遠心分離カラムのシリカゲル膜に結合させ、更に洗浄処理をした後溶出させた。
【００３８】
テンプレート（ＧＦＰ（緑色蛍光蛋白質(green fluorescence protein)）及びその増幅に必要なその他の成分（プライマー、ポリメラーゼ、ヌクレオチド、バッファー）をＤＮＡ溶出液へ添加した。ＰＣＲ混合物中のＤＮＡ溶出液の最終濃度は、１０％（ｖ／ｖ）であった。
【００３９】
計１９人の阻害された大便試料からのＤＮＡ単離物の増幅性を、ＰＣＲ（図１ａ及びｂ中の１〜１９列）によって試験した。ＰＣＲ後、ゲル電気泳動によって混合物を分画し、増幅生成物（予測長(expected length)７７１ｂｐ）を臭化エチジウム染色によって視覚化した。
【００４０】
ＤＮＡ長マーカー（Ｍ；１ｋＢマーカー(1 kB Marker)、ギブコ ＢＲＬ(Gibco BRL)、ベセスダ(Bethesda) メリーランド(Meryland)）を参照としてゲルへ加えた。ＤＮＡ溶出液の代わりにＧＦＰ−ＰＣＲ混合物へ加えた対照は、トリスバッファー（Ｔ）、高阻害(highly inhibitory)大便ＤＮＡ（Ｉ）又は阻害されていない大便ＤＮＡ（Ｎ）であった。更に、対照反応ＧＦＰを、何も添加せずに（−）増幅した。
【００４１】
阻害された大便試料の場合、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５に用いられた大便溶解バッファー（５００ｍＭ トリス−ＨＣｌ ｐＨ９．０、５０ｍＭ ＥＤＴＡ、１０ｍＭ ＮａＣｌ）を用いると増幅生成物が得られないことがしばしばあった。それ故、図１ａは、ＰＣＴ／ＥＰ９６／０３５９５から知られているプロトコルを用いると、試験された１９個の試料の２つのみ（４番及び１５番の試料）で増幅が起こったことを示す。
【００４２】
驚くべきことに、標準のバッファーを以下の表１に示すバッファーＥ１〜Ｅ８と取り替えることにより、ＤＮＡの増幅性を劇的に向上できることが見出された。
【００４３】
【表１】
【００４４】
図１ｂは、本発明の抽出バッファーを用いた場合、１９個の試料全てから、増幅可能なＤＮＡを単離できたことを示す。
【００４５】
実施例２
上昇させた温度での大便抽出
特別な細胞（例えば細菌、寄生動物）又はウイルスからの核酸の検出において、ＤＮＡの効率的な放出を確実に行うためには、温度を上昇させて大便試料の抽出を行うことが適当である。
【００４６】
それぞれの場合に、１０5個の腫瘍菌を１ｇの大便へ加え、実施例１の方法によって処理した。大便試料を、４℃、１８〜２５℃の室温（ＲＴ）、５０℃、７０℃、８０℃又は９０℃で５分間、本発明のバッファー中で抽出した。全ＤＮＡ収量から溶解率(efficiency of lysis)を測定し、添加した腫瘍菌の溶解率を特異的腫瘍菌配列（ｖｉｒ遺伝子(vir gene)）の増幅から測定した。結果を以下の表２に示す。
【００４７】
【表２】
【００４８】
それぞれの場合において、結果は、記載の温度での２つの別個の大便抽出物に基づいている。全ＤＮＡ収量は、２６０ｎｍのＯＤ測定によって測定した。増幅生成物をアガロースゲル上で分画した。＋は、増幅率を示す（＋〜＋＋＋：率の増加）。
【００４９】
表２は、インキュベーション温度が少なくとも５０℃、特に少なくとも７０℃に上昇すると、全ＤＮＡ収量及び細菌の溶解のいずれもが、並びにそれによる増幅収量が顕著に増加したことを示す。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
不純物を結合させるための吸着マトリックス及び抽出バッファーを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去する生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、
抽出バッファーが
（ａ）２〜８の範囲のｐＨ
（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度
又は／及び
（ｃ）フェノール中和物質
を含むことを特徴とする方法。
【請求項２】
ｐＨが４〜６．５の抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
少なくとも１００ｍＭの濃度のＫＣｌ又は／及びＮａＣｌを含む抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
フェノール中和物質として少なくとも０．５％のポリビニルピロリドンを含む抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
不溶性炭水化物系吸着マトリックスを使用することを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
他の炭水化物と適当に混合したジャガイモ粉末又はそれらの成分を使用することを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
核酸含有試料を糞便から採取することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
吸着マトリックスと接触させる前に試料を抽出バッファー中でインキュベートすることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
【請求項９】
インキュベーション温度が１０℃以下であることを特徴とする請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
核酸の放出に有利な条件下でインキュベーションを行うことを特徴とする請求項８に記載の方法。
【請求項１１】
インキュベーション温度が５０℃以上であることを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
遠心分離により、減圧適用により、又は／及び重力手段により試料を吸着マトリックス上に導くことを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の方法。
【請求項１３】
大便試料からの核酸の分析、検出又は単離のための請求項１〜１２のいずれかに記載の方法の使用。
【請求項１４】
（ａ）核酸含有試料を入れるために適した請求項１〜４に記載の抽出バッファー、及び
（ｂ）生体試料の不純物を結合させるために適した吸着マトリックス
を含む生体試料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための試薬キット。
【請求項１】
不純物を結合させるための吸着マトリックス及び抽出バッファーを核酸含有試料へ添加し、次いで核酸を吸着マトリックスから除去する生体材料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための方法であって、
抽出バッファーが
（ａ）２〜８の範囲のｐＨ
（ｂ）少なくとも１００ｍＭの塩濃度
又は／及び
（ｃ）フェノール中和物質
を含むことを特徴とする方法。
【請求項２】
ｐＨが４〜６．５の抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
少なくとも１００ｍＭの濃度のＫＣｌ又は／及びＮａＣｌを含む抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
フェノール中和物質として少なくとも０．５％のポリビニルピロリドンを含む抽出バッファーを使用することを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
不溶性炭水化物系吸着マトリックスを使用することを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
他の炭水化物と適当に混合したジャガイモ粉末又はそれらの成分を使用することを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
核酸含有試料を糞便から採取することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
吸着マトリックスと接触させる前に試料を抽出バッファー中でインキュベートすることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
【請求項９】
インキュベーション温度が１０℃以下であることを特徴とする請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
核酸の放出に有利な条件下でインキュベーションを行うことを特徴とする請求項８に記載の方法。
【請求項１１】
インキュベーション温度が５０℃以上であることを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
遠心分離により、減圧適用により、又は／及び重力手段により試料を吸着マトリックス上に導くことを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の方法。
【請求項１３】
大便試料からの核酸の分析、検出又は単離のための請求項１〜１２のいずれかに記載の方法の使用。
【請求項１４】
（ａ）核酸含有試料を入れるために適した請求項１〜４に記載の抽出バッファー、及び
（ｂ）生体試料の不純物を結合させるために適した吸着マトリックス
を含む生体試料からの核酸の精製、安定化、又は／及び単離のための試薬キット。
【図１】
【公開番号】特開２０１０−２７９３７４（Ｐ２０１０−２７９３７４Ａ）
【公開日】平成２２年１２月１６日（２０１０．１２．１６）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−１６５０８２（Ｐ２０１０−１６５０８２）
【出願日】平成２２年７月２２日（２０１０．７．２２）
【分割の表示】特願２０００−５９３７３４（Ｐ２０００−５９３７３４）の分割
【原出願日】平成１２年１月５日（２０００．１．５）
【出願人】（５９４１８２７１９）マックス−プランク−ゲゼルシャフト ツール フェルデルンク デル ヴィッセンシャフテン エー．ファウ． (3)
【出願人】（５９９０７２６１１）キアゲン ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング (83)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２２年１２月１６日（２０１０．１２．１６）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年７月２２日（２０１０．７．２２）
【分割の表示】特願２０００−５９３７３４（Ｐ２０００−５９３７３４）の分割
【原出願日】平成１２年１月５日（２０００．１．５）
【出願人】（５９４１８２７１９）マックス−プランク−ゲゼルシャフト ツール フェルデルンク デル ヴィッセンシャフテン エー．ファウ． (3)
【出願人】（５９９０７２６１１）キアゲン ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング (83)
【Ｆターム（参考）】
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