白血球の血管外遊出またはガン細胞の成長及び／もしくは転移を抑制するポリペプチドまたはその融合蛋白質
本発明は、膜貫通蛋白質の一種であるＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）の細胞外部位のうち、高度保存領域（ＨＣＲ）Ｉ−ＩＩＩに由来するポリペプチドまたはその融合蛋白質に関する。前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質は白血球の血管外遊出の抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移の抑制活性を有する。また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、これを含むベクター、及び前記ベクターで形質転換された形質転換体を提供する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物を提供する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物を提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質であって、ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）の細胞外領域のうち、高度保存領域（ＨＣＲ）Ｉ−ＩＩＩに由来するポリペプチドまたはその融合蛋白質に関する。また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、これを含むベクター、及び前記ベクターで形質転換された形質転換体に関する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物に関する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
炎症反応は、感染、外傷などによって損傷した組織の構造及び機能を復元するための生体の防御反応として知られている。炎症部位への白血球細胞の移動は、感染の迅速な治癒及び多様な外傷から発生する組織損傷の修復に重要である。しかし、誤った炎症反応や持続的な炎症反応は、人体組織の損傷及び疾患を引き起こす。例えば、炎症疾患は、脳脊髓膜炎、腸炎、皮膚炎、ブドウ膜炎、脳炎、成人性呼吸困難症候群のような細菌やウィルスによる感染や、外傷、自家免疫疾患、または臓器移植拒絶反応のような非感染要因によって発生する。炎症疾患は、症状や病理学的特徴によって、急性炎症疾患と慢性炎症疾患とに分類される。アレルギーや細菌／ウィルス感染のような急性炎症は、血流、血管サイズ及び血管透過性の変化、並びに白血球の浸潤などの局所的症状として現れる。これに対して、リューマチ性関節炎、粥状動脈硬化症、慢性腎臓炎、肝硬化症などの慢性炎症の主要な病理学的特徴は、炎症誘発因子の持続的存在による、炎症部位への大食細胞、リンパ球、形質細胞などの持続的な浸潤であり、その結果、炎症反応は長期にわたって続く。
【０００３】
炎症反応の誘導には、炎症部位への白血球の浸潤が必須である。多くの細胞接着分子が白血球の浸潤に関与する。すなわち、白血球の浸潤は、白血球が、炎症部位から分泌されるケモカインによって、炎症部位の血管に動員された後、移動速度を落としつつ、血管内皮細胞表面で回転するローリング段階、白血球が回転を止めて内皮細胞壁にしっかりと付着する接着段階、及び白血球が毛細血管と基底膜とを通過する遊出段階を含む。前記最後の段階、すなわち遊出段階は、「漏出」または「経内皮血管外遊出」とも呼ばれる。
【０００４】
発ガン物質によって誘導されたガン細胞は、正常細胞より急速に増殖し、腫瘍塊を形成し、周辺の組織に浸潤して正常な身体機能を阻害する。ガン細胞は、血管新生を誘導することによって栄養分と酸素の供給を得るが、ガン細胞の転移もまた血管新生によって引き起こされる。ガン細胞は、特定部位で無限成長を行うだけではなく、原発部位を離脱して新しい部位へと移動し、そこで成長する。この過程を転移という。転移は、いくつかの主要段階：ガン細胞から移動能の高い間葉細胞への転換、前記間葉細胞の腫瘍原発部位からの離脱、周囲の結合組織及び毛細血管への浸潤と拡散、血管を介した移動、血管外への遊出、結合組織を介した移動並びに第２の部位での増殖、を含む。
【０００５】
腫瘍細胞表面における細胞接着分子の発現と活性化は、腫瘍転移において非常に重要な役割を果たす(Zetter, B. R. (1993). Adhesion molecules in tumor metastasis. Semin Cancer Biol. 4: 219)。腫瘍転移は、腫瘍細胞表面における細胞接着分子の発現パターン及び活性の調節を介して誘導される。腫瘍細胞の転移を理解するためには、細胞接着分子及びそれらの発現と機能とを調節する物質について理解することが必須である(Bailly, M., Yan, L., Whitesides, G. M., Condeelis, J. S., and Segall, J. E. (1998). Regulation of protusion shape and adhesion to the sustratum during chemoacic responses of mammalian carcinoma cells. Exp Cell Res. 241: 285; Frisch, S. M., Vuori, K., Ruoslahti, E., and Chan-Hui., P. (1996). Control of adhesion-dependent cell survival by focal adhesion kinase. J Cell Biol 134: 793; and Hannigan, G. E., Leung-Hagesteijn, C., Fitz-Gibbon, L., Coppolino, M. G., Radeva, G., Filmus, J., Bell, J. C., and Dedhar, S. (1996). Regulation of cell adhesion and anchorage-dependent growth by a new β1-integrin-linked protein kinase. Nature 379: 91)。
【０００６】
本発明者らは、ＣＤ９９分子が活性化されると、β１インテグリンの機能が変化し、ガン細胞の細胞外基質（ＥＣＭ）への付着が抑制されることを開示した。これは、ＣＤ９９がガン細胞の転移に関与しうることを示唆する(Suh JS., 2001. Control of invasiveness of human breast carcinoma cell line MCF-7 by CD99 molecule. Kangwon National University)。また、本発明者らは、ＣＤ９９に由来するポリペプチド、すなわちＣＤ９９の９４番〜９７番のペプチドを含むポリペプチドが、ＣＤ９９を効果的に活性化させ、それによって、白血球の血管外遊出またはガン細胞の成長及び／もしくは転移を抑制することができることを開示した（国際特許公開第２００７／０３７６０１号）。
【０００７】
一方、ＣＤ９９は、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）と共にＣＤ９９同族体を構成する(Fouchet C, Gane P, Huet M, Fellous M, Rouger P, Banting G, Cartron JP, Lopez C. 2000. A study of the coregulation and tissue specificity of XG and MIC2 gene expression in eukaryotic cells. Blood 95:1819; Suh YH, Shin YK, Kook MC, Oh KI, Park WS, Kim SH, Lee IS, Park HJ, Huh TL, Park SH. 2003. Cloning, genomic organization, alternative transcripts and expression analysis of CD99L2, a novel paralog of human CD99, and identification of evolutionary conserved motifs. Gene 307:63; Park SH, Shin YK, Suh YH, Park WS, Ban YL, Choi HS, Park HJ, Jung KC. 2005. Rapid divergency of rodent CD99 orthologs: implications for the evolution of the pseudoautosomal region. Gene 353(2):177)。前記ＣＤ９９同族体は、１型膜貫通蛋白質の１つであり、糖化された細胞外領域、細胞膜貫通領域及び細胞内領域から構成されている。ＣＤ９９及びＣＤ９９Ｌ２の保存領域であるＨＣＲＩ−ＩＩＩは、細胞外領域に位置し、ＣＤ９９蛋白質間の相互結合、及びＣＤ９９のβ１インテグリンの非活性化に重要な役割を果たす(Suh JS., 2009. CD99 activation attenuates the adhesion of MCF-7 cells to laminin, fibronectin, and collagen IV by reducing β1 integrin activity. Kangwon National University)。ＨＣＲＩＩは、ＰＢＤＸ（またはＸＧ）にも存在する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者らは、ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）の高度保存領域（ＨＣＲ）に由来する特定のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質が、白血球の血管外遊出を抑制することによって炎症反応を抑制でき、また血管新生及びガン細胞の経内皮血管外遊出を抑制することによってガン細胞の成長及び／または転移を抑制することができることを発見した。
【０００９】
従って、本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質であって、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）のＨＣＲに由来するポリペプチドまたはその融合蛋白質を提供する。
【００１０】
また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド及びそれを含むベクターを提供する。
【００１１】
また本発明は、前記ベクターで宿主細胞を形質転換させることにより得られる形質転換体を提供する。
【００１２】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物を提供する。
【００１３】
また本発明は、 有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物を提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
本発明の一態様によって、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドであって、配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と；配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと；配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチドが提供される。
【００１５】
本発明の別の一態様によって、前記ポリペプチドとポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域との融合蛋白質、または前記ポリペプチドとＦｃ領域との融合蛋白質が提供される。
【００１６】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドが提供される。
【００１７】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターが提供される。
【００１８】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ベクターで宿主細胞を形質転換させることにより得られる形質転換体が提供される。
【００１９】
本発明のさらにまた別の一態様によって、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物が提供される。
【００２０】
本発明のさらにまた別の一態様によって、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物が提供される。
【発明の効果】
【００２１】
本発明によるポリペプチドまたはその融合蛋白質は、白血球の血管外遊出を抑制することができるため、炎症抑制用薬学組成物に有用に適用される。また、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質は、血管新生及びガン細胞の血管外遊出を抑制することができるため、ガン細胞の成長及び転移を抑制することができる。従って、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質は、ガンの予防用または治療用の薬学組成物に有用に適用される。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】ＣＤ９９蛋白質のＨＣＲを示す図面である。
【図２】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図３】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図４】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図５】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図６】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図７】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図８】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図９】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図１０】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図１１】急性接触性皮膚炎が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを注入した後の、耳重量の比較値を示すグラフである。
【図１２】ＩｇＥ依存性即時型過敏反応が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを注入した後、耳厚の変化を測定して得られた結果である。
【図１３】コラーゲン誘導関節炎（ＣＩＡ）が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを投与した後、平均関節炎スコアを測定して得られた結果である。
【図１４】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１５】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１６】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１７】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１８】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１９】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図２０】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２１】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２２】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２３】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図２４】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図２５】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本明細書において、「炎症」または「炎症性疾患」は、急性及び／または慢性の炎症性疾患を含み、例えば、リューマチ性関節炎、癒着性関節包炎、滑膜炎、股関節炎、骨関節炎、骨粗しょう症、関節周囲炎、多発性硬化症、骨髄炎、全身紅班性狼瘡、リューマチ性多発筋肉痛（ＰＭＲ）、シェーグレン症候群、進行性全身硬化症（強皮症）、強直性脊椎炎、多発筋炎、皮膚筋炎、天疱瘡、類天疱瘡、１型糖尿病、重症筋無力症、橋本甲状腺炎、バセドウ病、グッドパスチャー症候群、混合結合組織病、硬化性胆管炎、炎症性腸疾患（クローン病及び潰瘍性大腸炎を含む）、炎症性皮膚病、炎症性呼吸気疾患［通常型間質性肺炎（ＵＩＰ）、リンパ性間質性肺炎、巨細胞間質性肺炎、細胞性間質性肺炎、剥離性間質性肺炎、石綿症、珪肺症、ベリリウム中毒症、滑石症、塵肺症、成人性呼吸困難症候群及び外因性アレルギー性肺胞炎を含む］、即時型過敏反応（喘息及び花粉症を含む）、サルコイドーシス、ウェゲナー肉芽腫症、多様な血管炎、慢性活動性肝炎、遅延型過敏反応（漆皮膚炎を含む）、皮膚アレルギー、乾癬性関節炎、ライター症候群、即時型過敏反応、リューマチ熱、急性または慢性の糸球体腎炎、急性憎悪、腎盂腎炎、蜂窩織炎、膀胱炎、急性胆嚢炎、炎症性大動脈瘤、粥状動脈硬化症、スティル病、パーキンソン病、アルツハイマー病などを含む。また、本発明の蛋白質または融合蛋白質は、炎症疾患を伴う疾患、例えば、再潅流損傷、自己免疫疾患、臓器移植または組織同種移植の拒絶反応などの患者にも投与可能である。従って、本明細書における「炎症」または「炎症疾患」は、前記の炎症疾患を伴う疾患を含むものであると理解せねばならない。本発明の蛋白質または融合蛋白質は、望ましくは、リューマチ性関節炎、骨粗しょう症、呼吸器炎症、自己免疫疾患及び／または臓器移植の拒絶反応であり、さらに望ましくは、リューマチ性関節炎、自己免疫疾患及び／または臓器移植の拒絶反応に適用可能であり、特に望ましくは、急性接触性皮膚炎、アレルギー性炎症またはリューマチ性関節炎に使用される。
【００２４】
ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９（配列番号１）、ＣＤ９９Ｌ２（配列番号２）、ＰＢＤＸ（またはＸＧ）（配列番号３）の高度保存領域（ＨＣＲｓ）に由来する多様な長さのリガンドが、ＣＤ９９分子との結合を介して、β１インテグリンを非活性化できることが、本発明によって新たに発見された。また、ＣＤ９９及びその同族体のＨＣＲに由来する特定の配列を含むポリペプチドが、内皮細胞及びガン細胞のβ１インテグリンの非活性化を介して、血管新生及びガン細胞の経内皮移動を抑制することによって、抗ガン活性を示すことが、本発明によって新たに発見された。
【００２５】
特に、前記ポリペプチドの配列を分析した結果、Ｌｅｕ−Ｘａａ−Ａｓｐの配列が、β１インテグリン非活性化に必要な最小単位であることもまた、新たに明らかになった。前記Ｘａａは、任意のアミノ酸であってよいが、望ましくは、Ｓｅｒ、Ｇｌｙ、ＡｌａまたはＧｌｕであって、これらはそれぞれ配列番号１１〜１４のペプチドに当たる。従って、前記Ｌｅｕ−Ｘａａ−Ａｓｐの配列を含むＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２またはＰＢＤＸ（またはＸＧ）に由来する蛋白質が、β１インテグリンの非活性化を介して、白血球の経内皮移動を遮断することによって抗炎症活性を示し、また内皮細胞の血管新生及びガン細胞の移動を抑制することによって抗ガン活性を示すことが、本発明によって明らかになった。望ましくは、本発明の蛋白質またはその融合蛋白質は、乳ガン、胃ガン、大腸ガン、結腸ガン、直腸ガン、膵臓ガンのような固形ガンまたはリンパ腫に適用可能である。
【００２６】
本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドであって、配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と；配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと；配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチドを提供する。望ましくは、本発明のポリペプチドは配列番号４〜１４のポリペプチドからなる群から選択される。
【００２７】
本発明はまた、前記ポリペプチドとポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域との融合蛋白質、または前記ポリペプチドとＦｃ領域との融合蛋白質を含む。前記ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域は、タグペプチドであって、ヒスチジン結合樹脂との結合によって本発明のポリペプチドを分離及び精製するために使用できる。本発明の融合蛋白質において、前記ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域は、配列番号１５のアミノ酸配列を有してもよい。前記Ｆｃ領域は、ポリペプチドの血中安定性を増大させるために使用できる。本発明の融合蛋白質において、前記Ｆｃ領域は、配列番号１６のアミノ酸配列を有してもよい。
【００２８】
本発明はまた、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む。前記ポリヌクレオチドは、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２またはＰＢＤＸ（またはＸＧ）をコードする核酸配列から公知の方法によって作製可能である。前記ポリヌクレオチドは、配列番号２０〜３３のヌクレオチド配列を有してもよい。
【００２９】
本発明はまた、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。公知の多様なベクター、例えば、ｐＰＩＣＺα Ａ，Ｂ，Ｃ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国）などをクローニング・ベクターとして使用してもよい。望ましくは、ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域をコードするＤＮＡ（例えば、配列番号３４）を含むベクター、例えば、ｐＥＴ２８ａ（＋）ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎｅ社、米国）などをクローニング・ベクターとして使用してもよい。また、Ｆｃ領域をコードするＤＮＡ（例えば、配列番号３５のヌクレオチド配列から構成されたｃＤＮＡ）を通常のベクター、例えば、ｐＥＴ２８ａ（＋）ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎｅ社、米国）に挿入して得られたベクターを、クローニング・ベクターとして使用してもよい。本発明のベクターは、前記ポリペプチドをコードする遺伝子を適切な制限酵素部位を有するクローニング・ベクターに公知の方法で挿入することにより構築できる。本発明のベクターは、遺伝子治療を目的とする遺伝子治療用組成物に直接使用してもよく、形質転換体の作製のために使用してもよい。
【００３０】
本発明はまた、前記ベクターを用いて宿主細胞を形質転換させることにより得られた形質転換体を含む。前記宿主細胞は、前記のポリペプチドが効果的に発現可能であるならば、特に限定されるものではない。望ましくは、前記宿主細胞は、エスケリチア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｇｅｎｕｓ）（例えば、エスケリチアコリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ））、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ ｇｅｎｕｓ）（例えば、Ｘ−３３ Ｐｉｃｈｉａ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国）などから選択されてもよい。
【００３１】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物を提供する。
【００３２】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物を提供する。
【００３３】
本発明の薬学組成物は、ラクトース、トウモロコシ澱粉などの賦形剤；ステアリン酸マグネシウムなどの潤滑剤；入手可能な乳化剤；懸濁剤；緩衝剤；等張化剤などを含んでもよい。本発明の薬学組成物は、経口または非経口の投与が可能である。望ましくは、本発明の薬学組成物は、非経口投与形態で製剤化される。筋肉内、腹腔内、皮下及び静脈内の投与のために、一般的に有効成分の滅菌溶液が調製される。その場合、前記滅菌溶液は、所望のｐＨ値を達成するための緩衝液を含んでもよい。静脈内投与用製剤に関しては、製剤に等張性が付与されるように、等張化剤を使用してもよい。また、本発明の薬学組成物は、ｐＨ７．４の生理食塩水のような薬学的に許容される担体を含む水性溶液の形態で製剤化することができる。前記水性溶液は、局所的ボーラス注射によって、患者の筋肉内血流に導入できる。
【００３４】
本発明の薬学組成物は、多様な炎症疾患、（乳ガン、胃ガン、大腸ガン、結腸ガン、直腸ガン、膵臓ガンのような）固形ガンまたはリンパ腫を患う患者に、１日に約１〜２，０００ｍｇ／ｋｇの用量で投与可能である。一般的に、適切な投与量は、患者の年齢、体重及び症状によって変わる。
【００３５】
以下、本発明について実施例により、さらに詳細に説明する。しかし、これらの実施例は、説明のためだけに提供されるものであり、本発明はこれらに限定されない。
【実施例】
【００３６】
実施例１．ポリペプチドの合成
配列番号４及び５のポリペプチドをそれぞれコードする配列番号２０及び２１のｃＤＮＡ断片を、ｐＥＴ２８ａ（＋）−Ｆｃベクター（ヒト免疫グロブリンのＦｃ領域をコードする配列番号３５のｃＤＮＡをｐＥＴ２８ａ（＋）ベクターに挿入して作製したベクター）に挿入し、ｐＥＴ２８ａ−ＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−ＦｃベクターとｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ（またはＸＧ）ＥＸＴ−Ｆｃベクターとを作製した。すなわち、配列番号２０及び２１のｃＤＮＡ断片をＰＣＲにより単離し、ＥｃｏＲＩで消化した後、結合酵素を利用してｐＥＴ２８ａ（＋）−ＦｃベクターのＥｃｏＲＩ部位に挿入し、ｐＥＴ２８ａ−ＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−ＦｃベクターとｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ（またはＸＧ）ＥＸＴ−Ｆｃベクターとを作製した。
【００３７】
得られた発現ベクターでＢＬ２１（ＤＥ３）細胞を形質転換させて得られたコロニーを、ＬＢ培地で約４〜６時間培養した。培養物の吸光度（Ａ６００）が０．４〜０．６になった時点で、イソプロピルβ−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）（１．４ｍＭ）を用いて７〜９時間蛋白質の発現を誘導した。細胞を遠心分離して沈殿させ、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で洗浄した後、さらに沈殿させて培地から不純物を除去した。分画物をＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルで分析して蛋白質発現を確認した。
【００３８】
発現した蛋白質の精製のために、８Ｍ尿素緩衝液（８Ｍ尿素、０．０１Ｍ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ、０．１Ｍ ＮａＨ２ＰＯ４）を使用した。精製段階によって、尿素緩衝液のｐＨを８．０、６．３、４．５などに調節した。蛋白質分解酵素阻害剤（１ｍＭ ＰＭＳＦ、１０μｇ／ｍｌロイペプチン、１μｇ／ｍｌペプスタチン、１μｇ／ｍｌアプロチニン）を含むｐＨ８．０の尿素緩衝液で細胞を溶解させた後、４℃、１３，０００ｒｐｍで２０分間で遠心分離した。上澄み液を、ヒスチジン結合樹脂であるＮｉ−ＮＴＡ Ｈｉｓ Ｂｉｎｄ Ｒｅｓｉｎ（Ｎｏｖａｇｅｎ社、米国）と、１ｍｌのエッペンドルフチューブ内で混合した後、４℃で１６時間インキュベーションして発現した蛋白質のヒスチジン残基と樹脂との結合を誘導した。反応溶液を遠心分離し、上澄み液を捨て、ペレットをｐＨ６．３尿素緩衝液で洗浄した。蛋白質をＰＢＳで透析した後、分注単位ごとに冷蔵保管した。
【００３９】
配列番号６〜１４のペプチドは、自動ペプチド合成器（ＰｅｐｔｒＥｘ−Ｒ４８、Ｐｅｐｔｒｏｎ社、大田、大韓民国）を用いて、ＦＭＯＣ固相法によって合成した。合成されたペプチドは、Ｃ１８分析用ＲＰカラム（資生堂カプセルパック）を使用した逆相高速液体クロマトグラフィ（Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ ＬＣ−２０ＡＢ、島津製作所）で精製及び分析し、質量分析器（ＨＰ １１００ Ｓｅｒｉｅｓ ＬＣ／ＭＳＤ、Ｈｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ社、Ｒｏｓｅｖｉｌｌｅ、米国）を利用して単離した。
【００４０】
【表１】
ＦＬ：全長、
ＥＸＴ：細胞外領域、
ＨＣＲ：高度保存領域
【００４１】
実施例２．ポリペプチドを含む組成物の調製
配列番号４〜１４のポリペプチドを、３μｇ／１００μｌの濃度になるように、ＰＢＳに溶解させた。得られた蛋白質溶液を、下記試験例で使用した。
【００４２】
試験例１．ヒト単核球（Ｕ９３７）で発現するβ１インテグリンの非活性化試験
ヒト単核球（Ｕ９３７）で発現するβ１インテグリンの非活性化に対する配列番号６〜１４のペプチド断片の効果を試験した。
【００４３】
Ｕ９３７細胞（５×１０４）を各ウェルに添加した後、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４のそれぞれのペプチドを含む蛋白質溶液（５〜３０μｇ／ｍｌ）で処理した。１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、０．１μＭフッ化フェニルメチルスルホニル（ＰＭＳＰ）、１μｇ／ｍｌペプスタチンＡ、１０μｇ／ｍｌロイペプチン、１μｇ／ｍｌアプロチニン及び１ｍＭ Ｎａ３ＶＯ４が添加された１％ＮＰ４０溶解緩衝液（１％ノニデット Ｐ４０、０．１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５Ｍトリス（ｐＨ８．０）、５ｍＭ ＥＤＴＡ）で溶解させた。
【００４４】
細胞溶解物を１０％ポリアクリルアミド・ゲル上で電気泳動した。活性化形態のβ１インテグリンを認識するために、β−メルカプトエタノールのない非還元状態で電気泳動を実施した。分離された蛋白質をニトロセルロース膜に転写した後、ブロッキング溶液（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０と３％ウシ血清アルブミンとが含まれたトリス緩衝生理食塩水（ＴＢＳ））を用いて室温で約１時間処理した。活性化形態のβ１インテグリンに特異的な抗β１インテグリンモノクローナル抗体（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ Ｃｏ．；ｃａｔ．Ｎｏ．ＭＡＢ２２５９Ｚ）が添加されたＴＢＳ緩衝液中で２時間インキュベーションした。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ緩衝液で洗浄した後、蛋白質を西洋ワサビペルオキシダーゼ結合抗マウスＩｇＧ（ＤｉＮｏｎＡ Ｃｏ．；ｃａｔ．Ｎｏ．８００１９Ｆ）を用いて室温で１時間処理した。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ緩衝液で５回洗浄した後、抗体検出キット（ｉＮｔＲＯＮ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ）を使用して可視化した。同量の細胞溶解物を対照として本実験を確認するために、抗βアクチンモノクローナル抗体（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｌｔｄ．；ｃａｔ Ｎｏ．Ａ５４４４１）を使用してアクチンを検出した。その結果は、図２〜図４の通りである。
【００４５】
図２〜図４から分かるように、ＣＤ９９の細胞内ドメインに由来するＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。図２〜図４によれば、本発明のポリペプチドで処理した群では、用量依存的にβ１インテグリンが非活性化された。しかし、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含まないポリペプチドで処理した場合には、このような減少は観察されなかった（データ示さず）。
【００４６】
試験例２．ヒト単核球（Ｕ９３７）とＨＵＶＥＣとの接着に対する抑制活性試験
ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）との接着に対する配列番号６〜１４のペプチド断片の効果を試験した。９６ウェル細胞培養板の各ウェルに、ＨＵＶＥＣ（５×１０４）を添加した。５％ＣＯ２中、３７℃で２４時間インキュベーションした後、ＨＵＶＥＣをＩＬ−１βで４時間処理して活性化させた後、無血清培地で洗浄した。Ｕ９３７細胞（１×１０５）を、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４の各ペプチドを含む蛋白質溶液（５〜３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理した。得られたＵ９３７細胞を無血清培地で３回洗浄した後、ＨＵＶＥＣを含むそれぞれのウェルに添加した。３７℃で１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し、トリプシン−ＥＤＴＡを利用して細胞外基質から分離した。ＨＵＶＥＣとは異なる、小さな円形状のＵ９３７細胞の数を、倒立顕微鏡下、血球計算機を使用して測定した。その結果は、図５〜図７の通りである。図５〜図７では、ＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。
【００４７】
図５〜図７から分かるように、本発明のポリペプチドを用いて処理した群では、ＨＵＶＥＣに接着した単核球の数が、対照群に比べて、約３０〜６０％減少している。また、融合蛋白質であるｐＥＴ２８ａ−ｈＣＤ９９Ｌ２−Ｆｃ及びｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（データ示さず）。しかし、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含まないポリペプチドで処理した群では、かような減少は観察されなかった。従って、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含むポリペプチドは、単核球の経内皮血管外遊出を抑制できることが期待される。
【００４８】
試験例３．単核球の試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管外遊出に対する抑制活性試験
ＨＵＶＥＣをボイデンチャンバーの上室で培養した。上澄み液を除去し、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理したかまたは処理していないヒト単核球（Ｕ９３７）を、５×１０５細胞／チャンバーとなるように接種した。このとき、ＮＩＨ／３Ｔ３マウス線維母細胞を、０．００５％ビタミンＣ及び０．１％ウシ血清アルブミンを含むＤＭＥＭ無血清培地で１６時間培養して得られた培養物を遠心分離して得られた上澄み液を含む培養液を、前記チャンバーの下室に入れ、単核球の浸潤を誘導した。前記チャンバーを６時間培養し、浸潤して下室に移動した細胞数を測定した。前記試験を５回反復した。結果を図８〜図１０に示す。対照ペプチドは、ＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦからなるペプチドである。
【００４９】
図８〜図１０から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した群での単核球の血管外への遊出は、対照群に比べて、有意に減少（約２５〜４０％減少）した。白血球が血管を通って炎症部位に移動するためには、経内皮血管外遊出が必須であることを考慮すると、本発明によるポリペプチドは、効果的に炎症反応を抑制できることが期待される。
【００５０】
試験例４．急性接触性皮膚炎に対する抑制活性試験
本発明によるポリペプチドの抵炎症活性を試験した。２５０μＭ ＰＭＡ（ホルボール１２−ミリステート１３−アセテート）を、Ｂａｌｂ／ｃマウス（約６週齢）の一方の耳に塗布して接触性皮膚炎を誘導した。同時に、配列番号１１〜１４のペプチド断片（１００μｇ）をＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した蛋白質溶液（１００μｌ）を、皮膚炎を誘導したマウスの尾静脈を介して注入した。対照ペプチド（すなわち、ＱＫＫＫＬＣＦ）（１００μｇ）をＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した溶液（１００μｌ）を、同じ方法で注入した。６時間後、耳重量を測定することによって、皮膚炎誘発及び疾患の程度を評価した。耳重量測定は、パンチング器を使用して耳の３カ所で同じサイズの耳サンプルを採取した後、得られたサンプルを称量して行った。
【００５１】
図１１は、本発明のポリペプチドで処理した試験群マウスの耳重量を、該ペプチドで処理していない対照群マウスと比較して得られたグラフである。図１１によれば、本発明によるポリペプチドで処理した群では、耳重量が対照群に比べて約１５〜３０％減少している。従って、配列番号１１〜１４のペプチドを含んだ本発明のポリペプチドは、炎症反応を効果的に抑制できることが期待される。
【００５２】
試験例５．ＩｇＥ依存性即時型過敏反応に対する抑制活性試験
本発明によるポリペプチドの抗アレルギー活性を試験した。Ｂａｌｂ／ｃマウス（約６週齢）を、尾静脈を介してＩｇＥ抗体（５μｇ）を注射することにより感作した。２４時間後、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）を、ＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した蛋白質溶液（１００μｌ）を、感作したマウスの尾静脈を介して注入した。抗原として、０．１５％ＤＮＦＢ溶液［２，４−ニトロフルオロベンゼンのアセトン：オリーブ油（４：１）溶液］をマウスの耳に塗布し、ＩｇＥ依存性即時型過敏反応を誘導した。陰性対照群マウスには、０．１５％ＤＮＦＢ溶液の処理なしに、ＰＢＳ（１００μｌ）の注入のみを行った。陽性対照群マウスには、ＰＢＳ（１００μｌ）を注入し、０．１５％ＤＮＦＢ溶液による処理を行った。耳厚の変化を、デジタルノギスを用いて、１時間毎に１２時間測定した。３日目から毎日、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）を試験群マウスに腹腔注射し、対照群マウスにはＰＢＳのみを腹腔注射した。耳厚の変化を１５日間測定した。
【００５３】
図１２は、試験群マウス及び陽性対照群マウス（０．１５％ＤＮＦＢ溶液処理によって耳厚増大）の耳厚の変化を、陰性対照群と比較して得たグラフである。図１２から分かるように、本発明によるポリペプチドを注入した群では、耳厚増大が、陽性対照群に比べて顕著に低減した。従って、配列番号１３のペプチドを含んだ本発明のポリペプチドは、ＩｇＥ依存性即時型過敏反応を効果的に抑制できることが期待される。
【００５４】
試験例６．コラーゲン誘導関節炎（ＣＩＡ）に対する抑制活性試験
リューマチ性関節炎に対する本発明によるペプチドの抑制活性を試験した。ＣＦＡ（完全フロイントアジュバント）とウシＩＩ型コラーゲン（２ｍｇ／ｍｌ）との１：１（ｖ／ｖ）混合物（５０μｌ）を、Ｃ５７ＢＬ／６マウス（オス、４週齢）の尾根部皮下に注入した。２週後、ウシＩＩ型コラーゲン（２ｍｇ／ｍｌ）と完全フロイントアジュバントとの１：１（ｖ／ｖ）混合物をマウスの足の裏に追加接種した。ＣＩＡが誘導され、平均関節炎スコアが９〜１２点に達した時点で、マウスを無作為に試験群と対照群とに分けた。試験群には、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）のＰＢＳ（１００μｌ）溶液を経口投与し、対照群には、ＰＢＳ（１００μｌ）のみを経口投与した。この後、平均関節炎スコアを肉眼で２１日間測定し、統計分析した。平均関節炎スコアは、次の基準に基づいて付与した：０＝正常、１＝足の指１本以下の浮腫、２＝足の指２本以上の浮腫、３＝足の裏及び足の指１本以下の浮腫、４＝足の裏及び足の指２本以上の浮腫、または足首、足の裏及び足の指１本以下の浮腫、５＝足の指の硬直。
【００５５】
図１３は、（ＰＢＳのみで処理した）対照群及び（本発明によるペプチドで処理した）試験群の平均関節炎スコアを測定して得られた結果である。図１３から分かるように、本発明によるペプチドを経口投与群では、関節炎が有意に抑制された。
【００５６】
試験例７．細胞外基質へのＨＵＶＥＣの付着に対する抑制活性試験
ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する配列番号４〜１４のポリペプチドの効果を試験した。
【００５７】
細胞外基質成分の一つであるフィブロネクチンで９６ウェル細胞培養板の各ウェルをコーティングし、紫外線下で乾燥させた。ＨＵＶＥＣ（５×１０４）を各ウェルに入れ、実施例２で調製した配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液を３０μｇ／ｍｌの濃度で用いて各ウェルの処理を行った。１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、トリプシン−ＥＤＴＡを利用して分離した後、トリパンブルー溶液で染色した。フィブロネクチンに接着した細胞の数を血球計算機を使用して測定した。その結果を図１４〜図１６に示す。図１４〜図１６では、ＣＤ９９の細胞内領域に由来するＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。
【００５８】
図１４〜図１６から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した試験群では、フィブロネクチンに接着したＨＵＶＥＣの数が、対照群に比べて、約３０〜６０％減少した。また、融合蛋白質であるＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−Ｆｃ及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（図１６）。このとき、対照ペプチドはヒトＩｇＧＦｃ、すなわち、配列番号１６の蛋白質であった。
【００５９】
試験例８．試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管新生に対する抑制活性試験
血管新生に対する本発明のポリペプチドの効果を試験した。
【００６０】
一般的に、血管の基底膜成分と血管内皮細胞との相互作用は、新生血管の形成及び維持に重要な役割を果たす。基底膜成分であるマトリゲルを用いて２４ウェル細胞培養板を処理すると、重合反応によりプラグが形成される。マトリゲルでコーティングした２４ウェル細胞培養板に、ＨＵＶＥＣを８×１０４細胞／ウェルの密度で接種した。実施例２で調製した配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）及びｂＦＧＦ（塩基性線維芽細胞成長因子、１５０ｎｇ／ｍｌ）を前記ウェルに添加した。２４時間インキュベーションした後、新生血管の形成を倒立顕微鏡を使用して観察した（×５０倍）。その結果を図１７〜図１９に示す。対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。
【００６１】
図１７〜図１９から分かるように、ＨＵＶＥＣを、本発明のポリペプチドを含有する蛋白質溶液で処理すると、血管形成（すなわち、血管新生）が顕著に抑制された。また、融合蛋白質であるＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−Ｆｃ及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（図１９）。
【００６２】
試験例９．ガン細胞の浸潤に対する抑制活性試験
トランスウェルの各ウェルを、インテグリンのリガンドであるフィブロネクチンでコーティングした。ＭＣＦ−７ヒト乳ガン細胞（５×１０５細胞）をトランスウェルの上室に入れ、２４時間インキュベーションした。細胞が約８０％成長した時点で、各ウェルを、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で処理した。５％ＣＯ２中、３７℃で１時間インキュベーションした後、各ウェルを０．１％ＢＳＡで処理した。浸潤誘導培地（ＮＩＨ３Ｔ３細胞を０．００５％ビタミンＣ及び１％ＢＳＡが添加された無血清ＤＭＥＭ中で２４時間培養して得られた培養上澄み液）をトランスウェル下室にロードした。トランスウェルの下室に移動した細胞数を２４時間おきに３回測定した後、その結果を統計分析した。対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。その結果を図２０〜図２２に示す。
【００６３】
図２０〜図２２から分かるように、本発明による配列番号４〜１４のペプチドで処理した群では、ヒト乳ガン細胞の浸潤率が、対照ペプチドで処理した群に比べて、約６０％抑制された。ガン細胞が血管外に遊出し、基底膜や周囲結合組織を浸潤した後、新しい部位に転移することを考慮すると、本発明のポリペプチドがガン細胞の転移を効果的に抑制できることが分かる。
【００６４】
試験例１０．ガン細胞の試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管外遊出に対する抑制活性試験
ＨＵＶＥＣをボイデンチャンバーの上室で培養した。上澄み液を除去し、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理したかまたは処理していないＭＣＦ−７ヒト乳ガン細胞を、５×１０５細胞／チャンバーとなるように接種した。このとき、浸潤誘導培地を下室に入れ、乳ガン細胞の浸潤を誘導した。前記チャンバーを６時間培養し、下室に移動した細胞数を測定した。前記試験を３回以上反復した。結果を図２３〜図２５に示す。図２３〜図２５で、対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。
【００６５】
図２３〜図２５から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した群では、ヒト乳ガン細胞の血管外遊出が、対照群の約６０〜８０％に低下した。ガン細胞が血管を介して臓器に転移するためには血管外への遊出が必須であることを考慮するとき、本発明のポリペプチドがガン細胞の転移を効果的に抑制できることが分かる。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質であって、ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）の細胞外領域のうち、高度保存領域（ＨＣＲ）Ｉ−ＩＩＩに由来するポリペプチドまたはその融合蛋白質に関する。また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、これを含むベクター、及び前記ベクターで形質転換された形質転換体に関する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物に関する。また本発明は、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
炎症反応は、感染、外傷などによって損傷した組織の構造及び機能を復元するための生体の防御反応として知られている。炎症部位への白血球細胞の移動は、感染の迅速な治癒及び多様な外傷から発生する組織損傷の修復に重要である。しかし、誤った炎症反応や持続的な炎症反応は、人体組織の損傷及び疾患を引き起こす。例えば、炎症疾患は、脳脊髓膜炎、腸炎、皮膚炎、ブドウ膜炎、脳炎、成人性呼吸困難症候群のような細菌やウィルスによる感染や、外傷、自家免疫疾患、または臓器移植拒絶反応のような非感染要因によって発生する。炎症疾患は、症状や病理学的特徴によって、急性炎症疾患と慢性炎症疾患とに分類される。アレルギーや細菌／ウィルス感染のような急性炎症は、血流、血管サイズ及び血管透過性の変化、並びに白血球の浸潤などの局所的症状として現れる。これに対して、リューマチ性関節炎、粥状動脈硬化症、慢性腎臓炎、肝硬化症などの慢性炎症の主要な病理学的特徴は、炎症誘発因子の持続的存在による、炎症部位への大食細胞、リンパ球、形質細胞などの持続的な浸潤であり、その結果、炎症反応は長期にわたって続く。
【０００３】
炎症反応の誘導には、炎症部位への白血球の浸潤が必須である。多くの細胞接着分子が白血球の浸潤に関与する。すなわち、白血球の浸潤は、白血球が、炎症部位から分泌されるケモカインによって、炎症部位の血管に動員された後、移動速度を落としつつ、血管内皮細胞表面で回転するローリング段階、白血球が回転を止めて内皮細胞壁にしっかりと付着する接着段階、及び白血球が毛細血管と基底膜とを通過する遊出段階を含む。前記最後の段階、すなわち遊出段階は、「漏出」または「経内皮血管外遊出」とも呼ばれる。
【０００４】
発ガン物質によって誘導されたガン細胞は、正常細胞より急速に増殖し、腫瘍塊を形成し、周辺の組織に浸潤して正常な身体機能を阻害する。ガン細胞は、血管新生を誘導することによって栄養分と酸素の供給を得るが、ガン細胞の転移もまた血管新生によって引き起こされる。ガン細胞は、特定部位で無限成長を行うだけではなく、原発部位を離脱して新しい部位へと移動し、そこで成長する。この過程を転移という。転移は、いくつかの主要段階：ガン細胞から移動能の高い間葉細胞への転換、前記間葉細胞の腫瘍原発部位からの離脱、周囲の結合組織及び毛細血管への浸潤と拡散、血管を介した移動、血管外への遊出、結合組織を介した移動並びに第２の部位での増殖、を含む。
【０００５】
腫瘍細胞表面における細胞接着分子の発現と活性化は、腫瘍転移において非常に重要な役割を果たす(Zetter, B. R. (1993). Adhesion molecules in tumor metastasis. Semin Cancer Biol. 4: 219)。腫瘍転移は、腫瘍細胞表面における細胞接着分子の発現パターン及び活性の調節を介して誘導される。腫瘍細胞の転移を理解するためには、細胞接着分子及びそれらの発現と機能とを調節する物質について理解することが必須である(Bailly, M., Yan, L., Whitesides, G. M., Condeelis, J. S., and Segall, J. E. (1998). Regulation of protusion shape and adhesion to the sustratum during chemoacic responses of mammalian carcinoma cells. Exp Cell Res. 241: 285; Frisch, S. M., Vuori, K., Ruoslahti, E., and Chan-Hui., P. (1996). Control of adhesion-dependent cell survival by focal adhesion kinase. J Cell Biol 134: 793; and Hannigan, G. E., Leung-Hagesteijn, C., Fitz-Gibbon, L., Coppolino, M. G., Radeva, G., Filmus, J., Bell, J. C., and Dedhar, S. (1996). Regulation of cell adhesion and anchorage-dependent growth by a new β1-integrin-linked protein kinase. Nature 379: 91)。
【０００６】
本発明者らは、ＣＤ９９分子が活性化されると、β１インテグリンの機能が変化し、ガン細胞の細胞外基質（ＥＣＭ）への付着が抑制されることを開示した。これは、ＣＤ９９がガン細胞の転移に関与しうることを示唆する(Suh JS., 2001. Control of invasiveness of human breast carcinoma cell line MCF-7 by CD99 molecule. Kangwon National University)。また、本発明者らは、ＣＤ９９に由来するポリペプチド、すなわちＣＤ９９の９４番〜９７番のペプチドを含むポリペプチドが、ＣＤ９９を効果的に活性化させ、それによって、白血球の血管外遊出またはガン細胞の成長及び／もしくは転移を抑制することができることを開示した（国際特許公開第２００７／０３７６０１号）。
【０００７】
一方、ＣＤ９９は、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）と共にＣＤ９９同族体を構成する(Fouchet C, Gane P, Huet M, Fellous M, Rouger P, Banting G, Cartron JP, Lopez C. 2000. A study of the coregulation and tissue specificity of XG and MIC2 gene expression in eukaryotic cells. Blood 95:1819; Suh YH, Shin YK, Kook MC, Oh KI, Park WS, Kim SH, Lee IS, Park HJ, Huh TL, Park SH. 2003. Cloning, genomic organization, alternative transcripts and expression analysis of CD99L2, a novel paralog of human CD99, and identification of evolutionary conserved motifs. Gene 307:63; Park SH, Shin YK, Suh YH, Park WS, Ban YL, Choi HS, Park HJ, Jung KC. 2005. Rapid divergency of rodent CD99 orthologs: implications for the evolution of the pseudoautosomal region. Gene 353(2):177)。前記ＣＤ９９同族体は、１型膜貫通蛋白質の１つであり、糖化された細胞外領域、細胞膜貫通領域及び細胞内領域から構成されている。ＣＤ９９及びＣＤ９９Ｌ２の保存領域であるＨＣＲＩ−ＩＩＩは、細胞外領域に位置し、ＣＤ９９蛋白質間の相互結合、及びＣＤ９９のβ１インテグリンの非活性化に重要な役割を果たす(Suh JS., 2009. CD99 activation attenuates the adhesion of MCF-7 cells to laminin, fibronectin, and collagen IV by reducing β1 integrin activity. Kangwon National University)。ＨＣＲＩＩは、ＰＢＤＸ（またはＸＧ）にも存在する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者らは、ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）の高度保存領域（ＨＣＲ）に由来する特定のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質が、白血球の血管外遊出を抑制することによって炎症反応を抑制でき、また血管新生及びガン細胞の経内皮血管外遊出を抑制することによってガン細胞の成長及び／または転移を抑制することができることを発見した。
【０００９】
従って、本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドまたはその融合蛋白質であって、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）のＨＣＲに由来するポリペプチドまたはその融合蛋白質を提供する。
【００１０】
また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド及びそれを含むベクターを提供する。
【００１１】
また本発明は、前記ベクターで宿主細胞を形質転換させることにより得られる形質転換体を提供する。
【００１２】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物を提供する。
【００１３】
また本発明は、 有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物を提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
本発明の一態様によって、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドであって、配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と；配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと；配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチドが提供される。
【００１５】
本発明の別の一態様によって、前記ポリペプチドとポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域との融合蛋白質、または前記ポリペプチドとＦｃ領域との融合蛋白質が提供される。
【００１６】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドが提供される。
【００１７】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターが提供される。
【００１８】
本発明のさらにまた別の一態様によって、前記ベクターで宿主細胞を形質転換させることにより得られる形質転換体が提供される。
【００１９】
本発明のさらにまた別の一態様によって、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物が提供される。
【００２０】
本発明のさらにまた別の一態様によって、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物が提供される。
【発明の効果】
【００２１】
本発明によるポリペプチドまたはその融合蛋白質は、白血球の血管外遊出を抑制することができるため、炎症抑制用薬学組成物に有用に適用される。また、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質は、血管新生及びガン細胞の血管外遊出を抑制することができるため、ガン細胞の成長及び転移を抑制することができる。従って、前記ポリペプチドまたはその融合蛋白質は、ガンの予防用または治療用の薬学組成物に有用に適用される。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】ＣＤ９９蛋白質のＨＣＲを示す図面である。
【図２】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図３】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図４】β１インテグリン非活性化に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図５】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図６】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図７】ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞との接着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図８】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図９】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図１０】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト単核球（Ｕ９３７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図１１】急性接触性皮膚炎が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを注入した後の、耳重量の比較値を示すグラフである。
【図１２】ＩｇＥ依存性即時型過敏反応が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを注入した後、耳厚の変化を測定して得られた結果である。
【図１３】コラーゲン誘導関節炎（ＣＩＡ）が誘発されたマウスに本発明のポリペプチドを投与した後、平均関節炎スコアを測定して得られた結果である。
【図１４】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１５】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１６】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１７】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１８】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図１９】ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の血管新生に対する本発明のポリペプチドの影響を評価して得られた結果である。
【図２０】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２１】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２２】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）を浸潤分析した結果である。
【図２３】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図２４】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【図２５】本発明のポリペプチドを用いて処理した後の、ヒト乳ガン細胞（ＭＣＦ−７）の経内皮血管外遊出分析結果である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本明細書において、「炎症」または「炎症性疾患」は、急性及び／または慢性の炎症性疾患を含み、例えば、リューマチ性関節炎、癒着性関節包炎、滑膜炎、股関節炎、骨関節炎、骨粗しょう症、関節周囲炎、多発性硬化症、骨髄炎、全身紅班性狼瘡、リューマチ性多発筋肉痛（ＰＭＲ）、シェーグレン症候群、進行性全身硬化症（強皮症）、強直性脊椎炎、多発筋炎、皮膚筋炎、天疱瘡、類天疱瘡、１型糖尿病、重症筋無力症、橋本甲状腺炎、バセドウ病、グッドパスチャー症候群、混合結合組織病、硬化性胆管炎、炎症性腸疾患（クローン病及び潰瘍性大腸炎を含む）、炎症性皮膚病、炎症性呼吸気疾患［通常型間質性肺炎（ＵＩＰ）、リンパ性間質性肺炎、巨細胞間質性肺炎、細胞性間質性肺炎、剥離性間質性肺炎、石綿症、珪肺症、ベリリウム中毒症、滑石症、塵肺症、成人性呼吸困難症候群及び外因性アレルギー性肺胞炎を含む］、即時型過敏反応（喘息及び花粉症を含む）、サルコイドーシス、ウェゲナー肉芽腫症、多様な血管炎、慢性活動性肝炎、遅延型過敏反応（漆皮膚炎を含む）、皮膚アレルギー、乾癬性関節炎、ライター症候群、即時型過敏反応、リューマチ熱、急性または慢性の糸球体腎炎、急性憎悪、腎盂腎炎、蜂窩織炎、膀胱炎、急性胆嚢炎、炎症性大動脈瘤、粥状動脈硬化症、スティル病、パーキンソン病、アルツハイマー病などを含む。また、本発明の蛋白質または融合蛋白質は、炎症疾患を伴う疾患、例えば、再潅流損傷、自己免疫疾患、臓器移植または組織同種移植の拒絶反応などの患者にも投与可能である。従って、本明細書における「炎症」または「炎症疾患」は、前記の炎症疾患を伴う疾患を含むものであると理解せねばならない。本発明の蛋白質または融合蛋白質は、望ましくは、リューマチ性関節炎、骨粗しょう症、呼吸器炎症、自己免疫疾患及び／または臓器移植の拒絶反応であり、さらに望ましくは、リューマチ性関節炎、自己免疫疾患及び／または臓器移植の拒絶反応に適用可能であり、特に望ましくは、急性接触性皮膚炎、アレルギー性炎症またはリューマチ性関節炎に使用される。
【００２４】
ＣＤ９９及びその同族体、すなわち、ＣＤ９９（配列番号１）、ＣＤ９９Ｌ２（配列番号２）、ＰＢＤＸ（またはＸＧ）（配列番号３）の高度保存領域（ＨＣＲｓ）に由来する多様な長さのリガンドが、ＣＤ９９分子との結合を介して、β１インテグリンを非活性化できることが、本発明によって新たに発見された。また、ＣＤ９９及びその同族体のＨＣＲに由来する特定の配列を含むポリペプチドが、内皮細胞及びガン細胞のβ１インテグリンの非活性化を介して、血管新生及びガン細胞の経内皮移動を抑制することによって、抗ガン活性を示すことが、本発明によって新たに発見された。
【００２５】
特に、前記ポリペプチドの配列を分析した結果、Ｌｅｕ−Ｘａａ−Ａｓｐの配列が、β１インテグリン非活性化に必要な最小単位であることもまた、新たに明らかになった。前記Ｘａａは、任意のアミノ酸であってよいが、望ましくは、Ｓｅｒ、Ｇｌｙ、ＡｌａまたはＧｌｕであって、これらはそれぞれ配列番号１１〜１４のペプチドに当たる。従って、前記Ｌｅｕ−Ｘａａ−Ａｓｐの配列を含むＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２またはＰＢＤＸ（またはＸＧ）に由来する蛋白質が、β１インテグリンの非活性化を介して、白血球の経内皮移動を遮断することによって抗炎症活性を示し、また内皮細胞の血管新生及びガン細胞の移動を抑制することによって抗ガン活性を示すことが、本発明によって明らかになった。望ましくは、本発明の蛋白質またはその融合蛋白質は、乳ガン、胃ガン、大腸ガン、結腸ガン、直腸ガン、膵臓ガンのような固形ガンまたはリンパ腫に適用可能である。
【００２６】
本発明は、白血球の血管外遊出に対する抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移に対する抑制活性を有するポリペプチドであって、配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と；配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと；配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチドを提供する。望ましくは、本発明のポリペプチドは配列番号４〜１４のポリペプチドからなる群から選択される。
【００２７】
本発明はまた、前記ポリペプチドとポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域との融合蛋白質、または前記ポリペプチドとＦｃ領域との融合蛋白質を含む。前記ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域は、タグペプチドであって、ヒスチジン結合樹脂との結合によって本発明のポリペプチドを分離及び精製するために使用できる。本発明の融合蛋白質において、前記ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域は、配列番号１５のアミノ酸配列を有してもよい。前記Ｆｃ領域は、ポリペプチドの血中安定性を増大させるために使用できる。本発明の融合蛋白質において、前記Ｆｃ領域は、配列番号１６のアミノ酸配列を有してもよい。
【００２８】
本発明はまた、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む。前記ポリヌクレオチドは、ＣＤ９９、ＣＤ９９Ｌ２またはＰＢＤＸ（またはＸＧ）をコードする核酸配列から公知の方法によって作製可能である。前記ポリヌクレオチドは、配列番号２０〜３３のヌクレオチド配列を有してもよい。
【００２９】
本発明はまた、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。公知の多様なベクター、例えば、ｐＰＩＣＺα Ａ，Ｂ，Ｃ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国）などをクローニング・ベクターとして使用してもよい。望ましくは、ポリヒスチジン（ｐｏｌｙ−Ｈｉｓ）領域をコードするＤＮＡ（例えば、配列番号３４）を含むベクター、例えば、ｐＥＴ２８ａ（＋）ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎｅ社、米国）などをクローニング・ベクターとして使用してもよい。また、Ｆｃ領域をコードするＤＮＡ（例えば、配列番号３５のヌクレオチド配列から構成されたｃＤＮＡ）を通常のベクター、例えば、ｐＥＴ２８ａ（＋）ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎｅ社、米国）に挿入して得られたベクターを、クローニング・ベクターとして使用してもよい。本発明のベクターは、前記ポリペプチドをコードする遺伝子を適切な制限酵素部位を有するクローニング・ベクターに公知の方法で挿入することにより構築できる。本発明のベクターは、遺伝子治療を目的とする遺伝子治療用組成物に直接使用してもよく、形質転換体の作製のために使用してもよい。
【００３０】
本発明はまた、前記ベクターを用いて宿主細胞を形質転換させることにより得られた形質転換体を含む。前記宿主細胞は、前記のポリペプチドが効果的に発現可能であるならば、特に限定されるものではない。望ましくは、前記宿主細胞は、エスケリチア属（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｇｅｎｕｓ）（例えば、エスケリチアコリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ））、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａ ｇｅｎｕｓ）（例えば、Ｘ−３３ Ｐｉｃｈｉａ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国）などから選択されてもよい。
【００３１】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物を提供する。
【００３２】
また本発明は、有効成分としての前記ポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物を提供する。
【００３３】
本発明の薬学組成物は、ラクトース、トウモロコシ澱粉などの賦形剤；ステアリン酸マグネシウムなどの潤滑剤；入手可能な乳化剤；懸濁剤；緩衝剤；等張化剤などを含んでもよい。本発明の薬学組成物は、経口または非経口の投与が可能である。望ましくは、本発明の薬学組成物は、非経口投与形態で製剤化される。筋肉内、腹腔内、皮下及び静脈内の投与のために、一般的に有効成分の滅菌溶液が調製される。その場合、前記滅菌溶液は、所望のｐＨ値を達成するための緩衝液を含んでもよい。静脈内投与用製剤に関しては、製剤に等張性が付与されるように、等張化剤を使用してもよい。また、本発明の薬学組成物は、ｐＨ７．４の生理食塩水のような薬学的に許容される担体を含む水性溶液の形態で製剤化することができる。前記水性溶液は、局所的ボーラス注射によって、患者の筋肉内血流に導入できる。
【００３４】
本発明の薬学組成物は、多様な炎症疾患、（乳ガン、胃ガン、大腸ガン、結腸ガン、直腸ガン、膵臓ガンのような）固形ガンまたはリンパ腫を患う患者に、１日に約１〜２，０００ｍｇ／ｋｇの用量で投与可能である。一般的に、適切な投与量は、患者の年齢、体重及び症状によって変わる。
【００３５】
以下、本発明について実施例により、さらに詳細に説明する。しかし、これらの実施例は、説明のためだけに提供されるものであり、本発明はこれらに限定されない。
【実施例】
【００３６】
実施例１．ポリペプチドの合成
配列番号４及び５のポリペプチドをそれぞれコードする配列番号２０及び２１のｃＤＮＡ断片を、ｐＥＴ２８ａ（＋）−Ｆｃベクター（ヒト免疫グロブリンのＦｃ領域をコードする配列番号３５のｃＤＮＡをｐＥＴ２８ａ（＋）ベクターに挿入して作製したベクター）に挿入し、ｐＥＴ２８ａ−ＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−ＦｃベクターとｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ（またはＸＧ）ＥＸＴ−Ｆｃベクターとを作製した。すなわち、配列番号２０及び２１のｃＤＮＡ断片をＰＣＲにより単離し、ＥｃｏＲＩで消化した後、結合酵素を利用してｐＥＴ２８ａ（＋）−ＦｃベクターのＥｃｏＲＩ部位に挿入し、ｐＥＴ２８ａ−ＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−ＦｃベクターとｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ（またはＸＧ）ＥＸＴ−Ｆｃベクターとを作製した。
【００３７】
得られた発現ベクターでＢＬ２１（ＤＥ３）細胞を形質転換させて得られたコロニーを、ＬＢ培地で約４〜６時間培養した。培養物の吸光度（Ａ６００）が０．４〜０．６になった時点で、イソプロピルβ−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）（１．４ｍＭ）を用いて７〜９時間蛋白質の発現を誘導した。細胞を遠心分離して沈殿させ、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で洗浄した後、さらに沈殿させて培地から不純物を除去した。分画物をＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルで分析して蛋白質発現を確認した。
【００３８】
発現した蛋白質の精製のために、８Ｍ尿素緩衝液（８Ｍ尿素、０．０１Ｍ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ、０．１Ｍ ＮａＨ２ＰＯ４）を使用した。精製段階によって、尿素緩衝液のｐＨを８．０、６．３、４．５などに調節した。蛋白質分解酵素阻害剤（１ｍＭ ＰＭＳＦ、１０μｇ／ｍｌロイペプチン、１μｇ／ｍｌペプスタチン、１μｇ／ｍｌアプロチニン）を含むｐＨ８．０の尿素緩衝液で細胞を溶解させた後、４℃、１３，０００ｒｐｍで２０分間で遠心分離した。上澄み液を、ヒスチジン結合樹脂であるＮｉ−ＮＴＡ Ｈｉｓ Ｂｉｎｄ Ｒｅｓｉｎ（Ｎｏｖａｇｅｎ社、米国）と、１ｍｌのエッペンドルフチューブ内で混合した後、４℃で１６時間インキュベーションして発現した蛋白質のヒスチジン残基と樹脂との結合を誘導した。反応溶液を遠心分離し、上澄み液を捨て、ペレットをｐＨ６．３尿素緩衝液で洗浄した。蛋白質をＰＢＳで透析した後、分注単位ごとに冷蔵保管した。
【００３９】
配列番号６〜１４のペプチドは、自動ペプチド合成器（ＰｅｐｔｒＥｘ−Ｒ４８、Ｐｅｐｔｒｏｎ社、大田、大韓民国）を用いて、ＦＭＯＣ固相法によって合成した。合成されたペプチドは、Ｃ１８分析用ＲＰカラム（資生堂カプセルパック）を使用した逆相高速液体クロマトグラフィ（Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ ＬＣ−２０ＡＢ、島津製作所）で精製及び分析し、質量分析器（ＨＰ １１００ Ｓｅｒｉｅｓ ＬＣ／ＭＳＤ、Ｈｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ社、Ｒｏｓｅｖｉｌｌｅ、米国）を利用して単離した。
【００４０】
【表１】
ＦＬ：全長、
ＥＸＴ：細胞外領域、
ＨＣＲ：高度保存領域
【００４１】
実施例２．ポリペプチドを含む組成物の調製
配列番号４〜１４のポリペプチドを、３μｇ／１００μｌの濃度になるように、ＰＢＳに溶解させた。得られた蛋白質溶液を、下記試験例で使用した。
【００４２】
試験例１．ヒト単核球（Ｕ９３７）で発現するβ１インテグリンの非活性化試験
ヒト単核球（Ｕ９３７）で発現するβ１インテグリンの非活性化に対する配列番号６〜１４のペプチド断片の効果を試験した。
【００４３】
Ｕ９３７細胞（５×１０４）を各ウェルに添加した後、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４のそれぞれのペプチドを含む蛋白質溶液（５〜３０μｇ／ｍｌ）で処理した。１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、０．１μＭフッ化フェニルメチルスルホニル（ＰＭＳＰ）、１μｇ／ｍｌペプスタチンＡ、１０μｇ／ｍｌロイペプチン、１μｇ／ｍｌアプロチニン及び１ｍＭ Ｎａ３ＶＯ４が添加された１％ＮＰ４０溶解緩衝液（１％ノニデット Ｐ４０、０．１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５Ｍトリス（ｐＨ８．０）、５ｍＭ ＥＤＴＡ）で溶解させた。
【００４４】
細胞溶解物を１０％ポリアクリルアミド・ゲル上で電気泳動した。活性化形態のβ１インテグリンを認識するために、β−メルカプトエタノールのない非還元状態で電気泳動を実施した。分離された蛋白質をニトロセルロース膜に転写した後、ブロッキング溶液（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０と３％ウシ血清アルブミンとが含まれたトリス緩衝生理食塩水（ＴＢＳ））を用いて室温で約１時間処理した。活性化形態のβ１インテグリンに特異的な抗β１インテグリンモノクローナル抗体（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ Ｃｏ．；ｃａｔ．Ｎｏ．ＭＡＢ２２５９Ｚ）が添加されたＴＢＳ緩衝液中で２時間インキュベーションした。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ緩衝液で洗浄した後、蛋白質を西洋ワサビペルオキシダーゼ結合抗マウスＩｇＧ（ＤｉＮｏｎＡ Ｃｏ．；ｃａｔ．Ｎｏ．８００１９Ｆ）を用いて室温で１時間処理した。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ緩衝液で５回洗浄した後、抗体検出キット（ｉＮｔＲＯＮ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ）を使用して可視化した。同量の細胞溶解物を対照として本実験を確認するために、抗βアクチンモノクローナル抗体（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｌｔｄ．；ｃａｔ Ｎｏ．Ａ５４４４１）を使用してアクチンを検出した。その結果は、図２〜図４の通りである。
【００４５】
図２〜図４から分かるように、ＣＤ９９の細胞内ドメインに由来するＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。図２〜図４によれば、本発明のポリペプチドで処理した群では、用量依存的にβ１インテグリンが非活性化された。しかし、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含まないポリペプチドで処理した場合には、このような減少は観察されなかった（データ示さず）。
【００４６】
試験例２．ヒト単核球（Ｕ９３７）とＨＵＶＥＣとの接着に対する抑制活性試験
ヒト単核球（Ｕ９３７）とヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）との接着に対する配列番号６〜１４のペプチド断片の効果を試験した。９６ウェル細胞培養板の各ウェルに、ＨＵＶＥＣ（５×１０４）を添加した。５％ＣＯ２中、３７℃で２４時間インキュベーションした後、ＨＵＶＥＣをＩＬ−１βで４時間処理して活性化させた後、無血清培地で洗浄した。Ｕ９３７細胞（１×１０５）を、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４の各ペプチドを含む蛋白質溶液（５〜３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理した。得られたＵ９３７細胞を無血清培地で３回洗浄した後、ＨＵＶＥＣを含むそれぞれのウェルに添加した。３７℃で１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し、トリプシン−ＥＤＴＡを利用して細胞外基質から分離した。ＨＵＶＥＣとは異なる、小さな円形状のＵ９３７細胞の数を、倒立顕微鏡下、血球計算機を使用して測定した。その結果は、図５〜図７の通りである。図５〜図７では、ＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。
【００４７】
図５〜図７から分かるように、本発明のポリペプチドを用いて処理した群では、ＨＵＶＥＣに接着した単核球の数が、対照群に比べて、約３０〜６０％減少している。また、融合蛋白質であるｐＥＴ２８ａ−ｈＣＤ９９Ｌ２−Ｆｃ及びｐＥＴ２８ａ−ＰＢＤＸ−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（データ示さず）。しかし、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含まないポリペプチドで処理した群では、かような減少は観察されなかった。従って、配列番号１１〜１４のアミノ酸を含むポリペプチドは、単核球の経内皮血管外遊出を抑制できることが期待される。
【００４８】
試験例３．単核球の試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管外遊出に対する抑制活性試験
ＨＵＶＥＣをボイデンチャンバーの上室で培養した。上澄み液を除去し、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号６〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理したかまたは処理していないヒト単核球（Ｕ９３７）を、５×１０５細胞／チャンバーとなるように接種した。このとき、ＮＩＨ／３Ｔ３マウス線維母細胞を、０．００５％ビタミンＣ及び０．１％ウシ血清アルブミンを含むＤＭＥＭ無血清培地で１６時間培養して得られた培養物を遠心分離して得られた上澄み液を含む培養液を、前記チャンバーの下室に入れ、単核球の浸潤を誘導した。前記チャンバーを６時間培養し、浸潤して下室に移動した細胞数を測定した。前記試験を５回反復した。結果を図８〜図１０に示す。対照ペプチドは、ＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦからなるペプチドである。
【００４９】
図８〜図１０から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した群での単核球の血管外への遊出は、対照群に比べて、有意に減少（約２５〜４０％減少）した。白血球が血管を通って炎症部位に移動するためには、経内皮血管外遊出が必須であることを考慮すると、本発明によるポリペプチドは、効果的に炎症反応を抑制できることが期待される。
【００５０】
試験例４．急性接触性皮膚炎に対する抑制活性試験
本発明によるポリペプチドの抵炎症活性を試験した。２５０μＭ ＰＭＡ（ホルボール１２−ミリステート１３−アセテート）を、Ｂａｌｂ／ｃマウス（約６週齢）の一方の耳に塗布して接触性皮膚炎を誘導した。同時に、配列番号１１〜１４のペプチド断片（１００μｇ）をＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した蛋白質溶液（１００μｌ）を、皮膚炎を誘導したマウスの尾静脈を介して注入した。対照ペプチド（すなわち、ＱＫＫＫＬＣＦ）（１００μｇ）をＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した溶液（１００μｌ）を、同じ方法で注入した。６時間後、耳重量を測定することによって、皮膚炎誘発及び疾患の程度を評価した。耳重量測定は、パンチング器を使用して耳の３カ所で同じサイズの耳サンプルを採取した後、得られたサンプルを称量して行った。
【００５１】
図１１は、本発明のポリペプチドで処理した試験群マウスの耳重量を、該ペプチドで処理していない対照群マウスと比較して得られたグラフである。図１１によれば、本発明によるポリペプチドで処理した群では、耳重量が対照群に比べて約１５〜３０％減少している。従って、配列番号１１〜１４のペプチドを含んだ本発明のポリペプチドは、炎症反応を効果的に抑制できることが期待される。
【００５２】
試験例５．ＩｇＥ依存性即時型過敏反応に対する抑制活性試験
本発明によるポリペプチドの抗アレルギー活性を試験した。Ｂａｌｂ／ｃマウス（約６週齢）を、尾静脈を介してＩｇＥ抗体（５μｇ）を注射することにより感作した。２４時間後、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）を、ＰＢＳ（１００μｌ）に溶解させて調製した蛋白質溶液（１００μｌ）を、感作したマウスの尾静脈を介して注入した。抗原として、０．１５％ＤＮＦＢ溶液［２，４−ニトロフルオロベンゼンのアセトン：オリーブ油（４：１）溶液］をマウスの耳に塗布し、ＩｇＥ依存性即時型過敏反応を誘導した。陰性対照群マウスには、０．１５％ＤＮＦＢ溶液の処理なしに、ＰＢＳ（１００μｌ）の注入のみを行った。陽性対照群マウスには、ＰＢＳ（１００μｌ）を注入し、０．１５％ＤＮＦＢ溶液による処理を行った。耳厚の変化を、デジタルノギスを用いて、１時間毎に１２時間測定した。３日目から毎日、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）を試験群マウスに腹腔注射し、対照群マウスにはＰＢＳのみを腹腔注射した。耳厚の変化を１５日間測定した。
【００５３】
図１２は、試験群マウス及び陽性対照群マウス（０．１５％ＤＮＦＢ溶液処理によって耳厚増大）の耳厚の変化を、陰性対照群と比較して得たグラフである。図１２から分かるように、本発明によるポリペプチドを注入した群では、耳厚増大が、陽性対照群に比べて顕著に低減した。従って、配列番号１３のペプチドを含んだ本発明のポリペプチドは、ＩｇＥ依存性即時型過敏反応を効果的に抑制できることが期待される。
【００５４】
試験例６．コラーゲン誘導関節炎（ＣＩＡ）に対する抑制活性試験
リューマチ性関節炎に対する本発明によるペプチドの抑制活性を試験した。ＣＦＡ（完全フロイントアジュバント）とウシＩＩ型コラーゲン（２ｍｇ／ｍｌ）との１：１（ｖ／ｖ）混合物（５０μｌ）を、Ｃ５７ＢＬ／６マウス（オス、４週齢）の尾根部皮下に注入した。２週後、ウシＩＩ型コラーゲン（２ｍｇ／ｍｌ）と完全フロイントアジュバントとの１：１（ｖ／ｖ）混合物をマウスの足の裏に追加接種した。ＣＩＡが誘導され、平均関節炎スコアが９〜１２点に達した時点で、マウスを無作為に試験群と対照群とに分けた。試験群には、配列番号１３のペプチド断片（１００μｇ）のＰＢＳ（１００μｌ）溶液を経口投与し、対照群には、ＰＢＳ（１００μｌ）のみを経口投与した。この後、平均関節炎スコアを肉眼で２１日間測定し、統計分析した。平均関節炎スコアは、次の基準に基づいて付与した：０＝正常、１＝足の指１本以下の浮腫、２＝足の指２本以上の浮腫、３＝足の裏及び足の指１本以下の浮腫、４＝足の裏及び足の指２本以上の浮腫、または足首、足の裏及び足の指１本以下の浮腫、５＝足の指の硬直。
【００５５】
図１３は、（ＰＢＳのみで処理した）対照群及び（本発明によるペプチドで処理した）試験群の平均関節炎スコアを測定して得られた結果である。図１３から分かるように、本発明によるペプチドを経口投与群では、関節炎が有意に抑制された。
【００５６】
試験例７．細胞外基質へのＨＵＶＥＣの付着に対する抑制活性試験
ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）のフィブロネクチンへの付着に対する配列番号４〜１４のポリペプチドの効果を試験した。
【００５７】
細胞外基質成分の一つであるフィブロネクチンで９６ウェル細胞培養板の各ウェルをコーティングし、紫外線下で乾燥させた。ＨＵＶＥＣ（５×１０４）を各ウェルに入れ、実施例２で調製した配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液を３０μｇ／ｍｌの濃度で用いて各ウェルの処理を行った。１時間インキュベーションした後、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、トリプシン−ＥＤＴＡを利用して分離した後、トリパンブルー溶液で染色した。フィブロネクチンに接着した細胞の数を血球計算機を使用して測定した。その結果を図１４〜図１６に示す。図１４〜図１６では、ＣＤ９９の細胞内領域に由来するＱＫＫＫＬＣＦまたはＬＣＦを対照ペプチドとして使用した。
【００５８】
図１４〜図１６から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した試験群では、フィブロネクチンに接着したＨＵＶＥＣの数が、対照群に比べて、約３０〜６０％減少した。また、融合蛋白質であるＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−Ｆｃ及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（図１６）。このとき、対照ペプチドはヒトＩｇＧＦｃ、すなわち、配列番号１６の蛋白質であった。
【００５９】
試験例８．試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管新生に対する抑制活性試験
血管新生に対する本発明のポリペプチドの効果を試験した。
【００６０】
一般的に、血管の基底膜成分と血管内皮細胞との相互作用は、新生血管の形成及び維持に重要な役割を果たす。基底膜成分であるマトリゲルを用いて２４ウェル細胞培養板を処理すると、重合反応によりプラグが形成される。マトリゲルでコーティングした２４ウェル細胞培養板に、ＨＵＶＥＣを８×１０４細胞／ウェルの密度で接種した。実施例２で調製した配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）及びｂＦＧＦ（塩基性線維芽細胞成長因子、１５０ｎｇ／ｍｌ）を前記ウェルに添加した。２４時間インキュベーションした後、新生血管の形成を倒立顕微鏡を使用して観察した（×５０倍）。その結果を図１７〜図１９に示す。対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。
【００６１】
図１７〜図１９から分かるように、ＨＵＶＥＣを、本発明のポリペプチドを含有する蛋白質溶液で処理すると、血管形成（すなわち、血管新生）が顕著に抑制された。また、融合蛋白質であるＣＤ９９Ｌ２ＥＸＴ−Ｆｃ及びＰＢＤＸ（またはＸＧ）−Ｆｃで処理した場合にも、同様の結果が得られた（図１９）。
【００６２】
試験例９．ガン細胞の浸潤に対する抑制活性試験
トランスウェルの各ウェルを、インテグリンのリガンドであるフィブロネクチンでコーティングした。ＭＣＦ−７ヒト乳ガン細胞（５×１０５細胞）をトランスウェルの上室に入れ、２４時間インキュベーションした。細胞が約８０％成長した時点で、各ウェルを、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で処理した。５％ＣＯ２中、３７℃で１時間インキュベーションした後、各ウェルを０．１％ＢＳＡで処理した。浸潤誘導培地（ＮＩＨ３Ｔ３細胞を０．００５％ビタミンＣ及び１％ＢＳＡが添加された無血清ＤＭＥＭ中で２４時間培養して得られた培養上澄み液）をトランスウェル下室にロードした。トランスウェルの下室に移動した細胞数を２４時間おきに３回測定した後、その結果を統計分析した。対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。その結果を図２０〜図２２に示す。
【００６３】
図２０〜図２２から分かるように、本発明による配列番号４〜１４のペプチドで処理した群では、ヒト乳ガン細胞の浸潤率が、対照ペプチドで処理した群に比べて、約６０％抑制された。ガン細胞が血管外に遊出し、基底膜や周囲結合組織を浸潤した後、新しい部位に転移することを考慮すると、本発明のポリペプチドがガン細胞の転移を効果的に抑制できることが分かる。
【００６４】
試験例１０．ガン細胞の試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）血管外遊出に対する抑制活性試験
ＨＵＶＥＣをボイデンチャンバーの上室で培養した。上澄み液を除去し、実施例２で調製したＰＢＳ中に配列番号４〜１４のそれぞれのペプチドを含有する蛋白質溶液（３０μｇ／ｍｌ）で１時間処理したかまたは処理していないＭＣＦ−７ヒト乳ガン細胞を、５×１０５細胞／チャンバーとなるように接種した。このとき、浸潤誘導培地を下室に入れ、乳ガン細胞の浸潤を誘導した。前記チャンバーを６時間培養し、下室に移動した細胞数を測定した。前記試験を３回以上反復した。結果を図２３〜図２５に示す。図２３〜図２５で、対照ペプチド及び蛋白質は、試験例１及び７で使用したものと同じペプチド及びＦｃである。
【００６５】
図２３〜図２５から分かるように、本発明のポリペプチドで処理した群では、ヒト乳ガン細胞の血管外遊出が、対照群の約６０〜８０％に低下した。ガン細胞が血管を介して臓器に転移するためには血管外への遊出が必須であることを考慮するとき、本発明のポリペプチドがガン細胞の転移を効果的に抑制できることが分かる。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
白血球の血管外遊出の抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移の抑制活性を有するポリペプチドであって、
配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と、
配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと、
配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチド。
【請求項２】
前記ポリペプチドが、配列番号４〜１４のポリペプチドからなる群から選択されることを特徴とする請求項１に記載のリペプチド。
【請求項３】
ポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域が、請求項１または請求項２に記載のポリペプチドと融合されていることを特徴とする融合蛋白質。
【請求項４】
前記ポリヒスチジン領域が配列番号１５のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項３に記載の融合蛋白質。
【請求項５】
Ｆｃ領域が、請求項１または請求項２に記載のポリペプチドと融合されていることを特徴とする融合蛋白質。
【請求項６】
前記Ｆｃ領域が、配列番号１６のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項５に記載の融合蛋白質。
【請求項７】
請求項１または請求項２に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【請求項８】
配列番号２０〜３３のポリヌクレオチドからなる群から選択されたことを特徴とする請求項７に記載のポリヌクレオチド。
【請求項９】
請求項１または請求項２に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクター。
【請求項１０】
ポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域またはＦｃ領域をコードするｃＤＮＡが挿入されていることを特徴とする請求項９に記載のベクター。
【請求項１１】
請求項９に記載のベクターで宿主細胞を形質転換させて得られる形質転換体。
【請求項１２】
前記宿主細胞が、エスケリチア属またはピキア属の細胞であることを特徴とする請求項１１に記載の形質転換体。
【請求項１３】
有効成分としての請求項１〜請求項６のうちいずれか１項に記載のポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物。
【請求項１４】
前記炎症性疾患が、急性接触性皮膚炎、アレルギー性炎症またはリューマチ性関節炎であることを特徴とする請求項１３に記載の薬学組成物。
【請求項１５】
有効成分としての請求項１〜請求項６のうちいずれか１項に記載のポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物。
【請求項１６】
前記ガン細胞が、乳ガン細胞、胃ガン細胞、大腸ガン細胞、結腸ガン細胞、直腸ガン細胞、膵臓ガン細胞またはリンパ腫細胞であることを特徴とする請求項１５に記載の薬学組成物。
【請求項１】
白血球の血管外遊出の抑制活性またはガン細胞の成長及び／もしくは転移の抑制活性を有するポリペプチドであって、
配列番号１の２８〜３０番または５５〜５７番のペプチドを含む、配列番号１のポリペプチドに由来する３〜９６個のアミノ酸からなるポリペプチド（ただし、配列番号１の９４〜９７番のペプチドを含むポリペプチドは除外する）と、
配列番号２の３２〜３４番、７３〜７５番、１２１〜１２３番または１５０〜１５２番のペプチドを含む、配列番号２のポリペプチドに由来する３〜２００個のアミノ酸からなるポリペプチドと、
配列番号３の２７〜２９番のペプチドを含む、配列番号３のポリペプチドに由来する３〜１３０個のアミノ酸からなるポリペプチドと、からなる群から選択されたポリペプチド。
【請求項２】
前記ポリペプチドが、配列番号４〜１４のポリペプチドからなる群から選択されることを特徴とする請求項１に記載のリペプチド。
【請求項３】
ポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域が、請求項１または請求項２に記載のポリペプチドと融合されていることを特徴とする融合蛋白質。
【請求項４】
前記ポリヒスチジン領域が配列番号１５のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項３に記載の融合蛋白質。
【請求項５】
Ｆｃ領域が、請求項１または請求項２に記載のポリペプチドと融合されていることを特徴とする融合蛋白質。
【請求項６】
前記Ｆｃ領域が、配列番号１６のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項５に記載の融合蛋白質。
【請求項７】
請求項１または請求項２に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【請求項８】
配列番号２０〜３３のポリヌクレオチドからなる群から選択されたことを特徴とする請求項７に記載のポリヌクレオチド。
【請求項９】
請求項１または請求項２に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクター。
【請求項１０】
ポリヒスチジン（poly−Ｈｉｓ）領域またはＦｃ領域をコードするｃＤＮＡが挿入されていることを特徴とする請求項９に記載のベクター。
【請求項１１】
請求項９に記載のベクターで宿主細胞を形質転換させて得られる形質転換体。
【請求項１２】
前記宿主細胞が、エスケリチア属またはピキア属の細胞であることを特徴とする請求項１１に記載の形質転換体。
【請求項１３】
有効成分としての請求項１〜請求項６のうちいずれか１項に記載のポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含む炎症疾患の予防用または治療用の薬学組成物。
【請求項１４】
前記炎症性疾患が、急性接触性皮膚炎、アレルギー性炎症またはリューマチ性関節炎であることを特徴とする請求項１３に記載の薬学組成物。
【請求項１５】
有効成分としての請求項１〜請求項６のうちいずれか１項に記載のポリペプチドまたは融合蛋白質、及び薬学的に許容可能な担体を含むガン細胞の成長抑制用及び／または転移抑制用の薬学組成物。
【請求項１６】
前記ガン細胞が、乳ガン細胞、胃ガン細胞、大腸ガン細胞、結腸ガン細胞、直腸ガン細胞、膵臓ガン細胞またはリンパ腫細胞であることを特徴とする請求項１５に記載の薬学組成物。
【図１】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１７】
【図１８】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１７】
【図１８】
【公表番号】特表２０１３−５０７９５４（Ｐ２０１３−５０７９５４Ａ）
【公表日】平成２５年３月７日（２０１３．３．７）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１２−５３５１０５（Ｐ２０１２−５３５１０５）
【出願日】平成２２年８月２４日（２０１０．８．２４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＫＲ２０１０／００５６１９
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０４９２８９
【国際公開日】平成２３年４月２８日（２０１１．４．２８）
【出願人】（５１２１０４５０２）スパデリクサー インコーポレイテッド (1)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２５年３月７日（２０１３．３．７）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年８月２４日（２０１０．８．２４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＫＲ２０１０／００５６１９
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０４９２８９
【国際公開日】平成２３年４月２８日（２０１１．４．２８）
【出願人】（５１２１０４５０２）スパデリクサー インコーポレイテッド (1)
【Ｆターム（参考）】
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