細胞培養容器
【課題】培養細胞の自動判別に適した培養容器を提供することを目的とする。
【解決手段】本発明は、個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、凹部が４個以上近接しており、凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、培養容器に関する。
【解決手段】本発明は、個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、凹部が４個以上近接しており、凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、培養容器に関する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、受精卵などの個別管理が必要な細胞を培養するための培養容器、ならびに該培養容器を用いた培養細胞の判別方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
培養系で精子と卵子とを体外受精させて受精卵（接合子）を作製して、さらに受精卵を卵割、桑実胚、胚盤胞の段階を経て、透明帯から孵化した脱出胚盤胞の段階まで培養することが可能となり、この卵割から胚盤胞の段階にある受精卵を子宮に移植して産子を得る補助的生殖技術（ＡＲＴ）が、家畜領域のみならずヒトの不妊医療でも確立されている。
【０００３】
しかし、体外受精による妊娠成功率は必ずしも高くはなく、たとえばヒトにおいては、その妊娠成功率は、依然として２５〜３５％程度に留まっている。その原因の一つとして、培養において子宮への移植に適した良質な受精卵を得られる確率が高くないことが挙げられる。培養された受精卵は、専門家が顕微鏡で個別に観察することにより、子宮への移植に適した良質な受精卵であるか否か判別されている。従って、その判別にはコスト及び時間がかかるという問題がある。そこで、子宮への移植に適した良質な受精卵を低コストかつ短時間で判別する技術が求められている。また、良質な受精卵の判断が個人により異なるという問題もあり、良質な受精卵だという基準や選別する技術が必要とされている。
【０００４】
従来、受精卵の培養は、培養容器上のウェル内に５００μＬ程度の培養液を入れ、該培養液中で受精卵を培養する方法、培養容器上のウェル内に２０μＬ程度の微小滴を載せ、該微小滴の表面をミネラルオイルで被覆し、その中に受精卵を入れる方法（非特許文献１）等により行われていた。また、非特許文献２及び３は、培養容器上に複数の窪みを設け、それぞれの窪みごとに受精卵を導入して培養することにより受精卵を個別に管理する方法を開示している。非特許文献４は、培養容器上にメッシュ体を配置し、メッシュの編目ごとに受精卵を導入して培養することにより受精卵を個別に管理する方法を開示している。
【０００５】
さらに近年では、細胞治療・再生医療の研究開発が進み、細胞培養中の無菌環境を維持することや、細胞の品質確保、あるいは細胞を迅速且つ大量に培養し判別することについてのニーズが高まっている。しかし従来は、上記非特許文献１〜４に示すような培養容器を用い、手作業で培養細胞の状態を観察しているため、連続的な細胞状態の観察が困難であること、培養環境の変化や雑菌による汚染リスクなど細胞への影響が懸念されること、培養細胞の判別にコストと時間がかかり効率が悪いことなどが課題となっていた。したがって、培養細胞を自動的に判別する技術の開発が望まれていた。また、例えば畜産の分野においても、国により「家畜改良増殖目標」が策定され、この目標達成のため受精卵移植を活用した肉専用種の増頭の推進が図られている中、細胞の自動判別技術は非常に有用と考えられる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】菅原，尾川（編）、「生殖機能細胞の培養法」、日本、学会出版センター、１９９３年６月出版、第２５〜１５３頁
【非特許文献２】M. Taka, et al. Journal of Reproduction and Development, 51, 533-537 (2005)
【非特許文献３】Vajta G., et al. Molecular Reproduction and Development, 55, 256-264 (2000)
【非特許文献４】P. J. Booth, et al. Biology of Reproduction, 77, 765-779 (2007)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明者らは、上記従来の状況に鑑み、子宮への移植に適した良質な受精卵を低コストかつ短時間で判別すべく、受精卵の判別の自動化の可能性を検討した。そして、非特許文献１に記載される培養容器を用いて自動化を検討したところ、培養している複数の受精卵がプレート内や微小滴内で移動してしまい、それぞれ質の異なる受精卵を個別に管理することができず、受精卵の判別を自動で行うのには適してないことが明らかとなった。また、受精卵の自動判別においては、ＣＣＤカメラ等を用いて受精卵の画像を撮像することが考えられるが、従来の培養容器では受精卵を個別に撮影することが困難であることも明らかとなった。
【０００８】
そこで、非特許文献２〜４に記載される複数の窪みを設けた培養容器や、メッシュを配置した培養容器を用いて自動化を検討したところ、受精卵の密度も高く、受精卵を個別に管理することは可能であるが、窪み内やメッシュの編目内で受精卵が移動して窪みの側壁やメッシュに接触した場合には、取得した画像の輪郭抽出処理により受精卵の画像を抽出することが困難であることを見出した。
【０００９】
従って、本発明は、培養細胞の自動判別に適した培養容器を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、上記課題を解決すべく検討を行った結果、壁面が、最も低い位置から外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する凹部が密に配置された細胞収容部を有する培養容器を用いて細胞を培養することにより、培養細胞の撮影画像における細胞の輪郭抽出処理が効率よく実施でき、従って、培養細胞の自動判別に適していることを見出し、本発明を完成した。
【００１１】
すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器。
【００１２】
（２）凹部の壁面が、直線部分を含む傾斜面を有する、（１）に記載の培養容器。
（３）傾斜面の表面粗さについて、最大高さＲｙが１．０μｍ未満である、（２）に記載の培養容器。
（４）凹部の開口部の開口幅が１００μｍ〜３００μｍである、（１）〜（３）のいずれかに記載の培養容器。
【００１３】
（５）凹部の深さが５０μｍ〜２００μｍである、（１）〜（４）のいずれかに記載の培養容器。
（６）凹部の開口部が円形である、（１）〜（５）のいずれかに記載の培養容器。
（７）凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を有する、（６）に記載の培養容器。
【００１４】
（８）円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度が８９〜４５°である、（７）に記載の培養容器。
（９）近接する凹部が、１ｍｍ２あたり１個以上の密度で配置されている、（１）〜（８）のいずれかに記載の培養容器。
（１０）近接する４個以上の凹部が正方格子状又は最密充填状に配置されている、請求項（１）〜（９）のいずれかに記載の培養容器。
【００１５】
（１１）凹部が２４個以上配置されている、（１）〜（１０）のいずれかに記載の培養容器。
（１２）細胞が、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される、（１）〜（１１）のいずれかに記載の培養容器。
（１３）細胞が、ウシの受精卵である、（１２）に記載の培養容器。
【００１６】
（１４）近接する４個以上の凹部が、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられている、（１）〜（１３）のいずれかに記載の培養容器。
（１５）培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有する、（１４）に記載の培養容器。
（１６）培養細胞の自動判別に使用するための、（１）〜（１５）のいずれかに記載の培養容器。
【００１７】
（１７）倍率４倍の対物レンズを用いて細胞収容部を顕微鏡観察したときに、観察視野内に４個以上の凹部が含まれる、（１６）に記載の培養容器。
（１８）培養細胞の判別方法であって、（１）〜（１７）のいずれかに記載の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得した培養細胞の画像を検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む、前記判別方法。
【発明の効果】
【００１８】
本発明により、培養細胞の自動判別に適した培養容器が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１ａ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図１ｂ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図２ａ】本発明の実施形態である培養容器Ａを示す概略図である。
【図２ｂ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図３】近接した凹部を最密充填状に配置する場合の平面図である。
【図４】比較例で用いた培養容器Ｂを示す。
【図５】本発明の培養容器Ａで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図６】図５の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図７】比較例で用いた培養容器Ｂで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図８】図７の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図９】比較例で用いた培養容器Ｂで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図１０】図９の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図１１】本発明の実施形態である培養容器Ｃを示す平面図である。
【図１２】図１１のＩＩＩａ−ＩＩＩａ断面図である。
【図１３】図１１における細胞収容部の部分拡大図である。
【図１４】図１３のＩＩＩｂ−ＩＩＩｂ断面図である。
【図１５】図１３における凹部の部分拡大図である。
【図１６】図１５のＩＩＩｃ−ＩＩＩｃ断面図である。
【図１７】培養容器Ｃの外観写真である。
【図１８】培養容器Ｃの細胞収容部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図１９】培養容器Ｃの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図２０】図１９の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図２１】培養容器Ｄの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図２２】図２１の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図２３】本発明の実施形態である培養容器Ｅを示す平面図である。
【図２４】図２３のＩＶａ−ＩＶａ断面図である。
【図２５】図２３における細胞収容部の部分拡大図である。
【図２６】図２５のＩＶｂ−ＩＶｂ断面図である。
【図２７】図２５における凹部の部分拡大図である。
【図２８】図２７のＩＶｃ−ＩＶｃ断面図である。
【図２９】培養容器Ｅの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図３０】図２９の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図３１】本発明の培養容器Ｃで培養したマウス受精卵の顕微鏡写真である。
【図３２】図３１の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図３３】本発明の培養容器Ｃで培養したウシ受精卵の顕微鏡写真である。
【図３４】図３３の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
本発明は、個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器に関する。
【００２１】
個別管理が必要とされる細胞とは、培養中及び培養後において個々の細胞を特定する必要があるものをさし、複数の細胞を培養している培養容器において互いに混同してしまうことが望ましくない細胞をさす。個別管理が必要とされる細胞としては、例えば、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞（胚性幹細胞）及びｉＰＳ細胞（人工多能性幹細胞）が挙げられる。卵細胞は、未受精の卵細胞をさし、未成熟卵母細胞及び成熟卵母細胞が含まれる。受精卵は、受精後、卵割により２細胞期、４細胞期、８細胞期と細胞数が増えていき、桑実胚を経て、胚盤胞へと発生する。受精卵には、２細胞胚、４細胞胚及び８細胞胚などの初期胚、桑実胚、胚盤胞（初期胚盤胞、拡張胚盤胞及び脱出胚盤胞を含む）が含まれる。胚盤胞は、胎盤を形成する潜在能力がある外部細胞と胚を形成する潜在能力がある内部細胞塊からなる胚を意味する。ＥＳ細胞は胚盤胞の内部細胞塊から得られる未分化な多能性又は全能性細胞をさす。ｉＰＳ細胞は、体細胞（主に線維芽細胞）へ数種類の遺伝子（転写因子）を導入することにより、ＥＳ細胞に似た分化万能性を持たせた細胞をさす。すなわち、本発明において培養の対象となる細胞には、受精卵や胚盤胞のように複数の細胞の集合体も包含される。本発明の培養容器は、好ましくは哺乳動物及び鳥類の細胞、特に哺乳動物の細胞の培養に好適である。哺乳動物は、温血脊椎動物をさし、例えば、ヒト及びサルなどの霊長類、マウス、ラット及びウサギなどの齧歯類、イヌ及びネコなどの愛玩動物、ならびにウシ、ウマ及びブタなどの家畜が挙げられる。本発明の培養容器は、ウシの受精卵の培養に特に好適である。
【００２２】
本発明の培養容器は、底壁と側壁とを有し、底壁と側壁とから形成される空間に液体を収容可能である。底壁の形状は特に制限されず、三角形及び四角形等の多角形の形状でもよく、円（円形及び楕円形を含む）の形状でもよく、側壁は底壁の外縁を囲うように形成される。本発明の培養容器において、通常、底壁と反対側は開口している。なお、本発明の培養容器は、通常のシャーレと同様に蓋を有していてもよい。本発明の培養容器の底壁と側壁は、好ましくは慣用のシャーレと同様の形状を形成する。そして、培養容器の底壁には、凹部を有する細胞収容部が形成されている。細胞収容部の凹部は、培養容器の底壁に直接窪みとして設けられた凹部でもよいし（図１ａ）、底壁から突出した部材により形成される凹部でもよい（図１ｂ）。
【００２３】
凹部は、４個以上、好ましくは６個以上、より好ましくは８個以上が、近接して形成されている。凹部は、少なくとも４個が近接して形成されていればよく、さらに近接していない凹部が別途形成されていてもよい。また、４個以上近接して形成された凹部の群が、複数群配置されていてもよく、それらの群は互いに近接していなくてもよい。
【００２４】
凹部は、壁面及び開口部を有し、開口部の外縁の形状は特に制限されないが、好ましくは円形（円形及び楕円形を含む）である。
【００２５】
近接する凹部間のピッチは１ｍｍ以下である。ただし、上記ピッチは収容する細胞の種類に依存して異なる。
【００２６】
例えば、ウシ受精卵を収容する場合、近接する凹部間のピッチは通常１ｍｍ以下、好ましくは０．７ｍｍ以下、さらに好ましくは０．４５ｍｍ以下である。観察装置として、１／２インチのＣＣＤ素子、４、１０、２０倍の対物レンズを備えたものがよく用いられる。このような観察装置で、４倍の対物レンズを選択した場合の観察可能な視野はおよそ１．６ｍｍ×１．２ｍｍであり、この観察視野内に４個以上の凹部が含まれるように設計することが好ましい。凹部の直径がウシ受精卵の直径（０．２５ｍｍ）より大きく、０．３ｍｍだとすると、ピッチが０．９ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に２×２＝４個の受精卵を観察することができ、ピッチが０．６５ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に３×２＝６個の受精卵を観察することができ、ピッチが０．４３ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に４×３＝１２個の受精卵を観察することができる。観察視野内に４個以上の凹部が含まれるように設計することで、例えば培養細胞の自動判別を行う場合に、一度に多数個の細胞を処理でき、また視野内の一つの受精卵と他の受精卵との比較判別が容易になるため、判別操作をより効率的に行うことができる。
【００２７】
凹部間のピッチは近接する凹部の中心間の距離である（図１のａ）。凹部の中心は、凹部の開口部の外縁が形成する図形の重心位置とし、外縁が円形であればその円の中心をさす。上記凹部間のピッチは通常平均ピッチをさし、平均ピッチは、ある凹部に関しては、近接する全ての凹部とのピッチから平均値を算出したものをさす。凹部間のピッチは、凹部の開口部の外縁の寸法より大きい。凹部の開口部の外縁の寸法は、開口部の外縁が円形であればその直径をさし、そうでなければ開口部の外縁が形成する図形の最大径と最短径の平均値とする。換言すれば、近接する凹部は、１ｍｍ２あたり１個以上、好ましくは４個以上の密度で配置されている。近接する４個以上の凹部は、正方格子状又は最密充填状に配置されていることが好ましい。例えば、２５個の凹部を５×５の正方格子状に配置する場合を挙げることができる。正方格子状又は最密充填状に配置することにより、培養容器の底壁における各凹部の位置の特定が容易になり、自動化処理に適用しやすい。また、凹部は、培養容器１個あたり、合計で好ましくは２４個以上、より好ましくは５０個以上配置されている。培養容器１個あたりに多くの凹部を設けることにより、一定数の細胞を培養するのに必要な培養容器の数を低減することができ、経済的に有利である。
【００２８】
凹部の開口部の外縁が円形である場合、近接する凹部間のピッチは、Ｘ＋ｍ＋ｎ（ここで、Ｘは細胞の最大径を表し、ｍは凹部の開口部の外縁が形成する円の直径から細胞の最大径を引いた長さを表し、ｎは凹部間の仕切りの長さを表す）と規定することもできる。凹部間の仕切りとは、近接する凹部間の外縁と外縁の最短距離をさす。ここでｍは通常０．１ｍｍ以下、好ましくは０．０７ｍｍ以下、さらに好ましくは０．０５ｍｍ以下であり、ｎは通常０．６ｍｍ以下、好ましくは０．３５ｍｍ以下、さらに好ましくは０．１５ｍｍ以下である。
【００２９】
上記のようなピッチで凹部を密に配置することにより、細胞を個別に管理しつつ多くの細胞を同時に培養でき、さらに顕微鏡の一視野に多くの細胞が入るため、一度に多くの細胞の画像を取得することができる。
【００３０】
細胞収容部の凹部の開口部は、細胞を収容可能な開口幅を有する。ここで、凹部の開口部の開口幅は、凹部の開口部の外縁が形成する図形の最短径の長さをさす。従って、凹部の開口部の外縁が円形である場合、開口幅は円の直径に等しく、その直径は、培養する細胞の最大寸法より大きいものとなる。本発明の培養容器により受精卵を培養する場合、胚盤胞の段階まで培養することが望ましいため、円形の開口部の直径は、胚盤胞の段階の細胞の最大寸法より大きいものであることが望ましい。胚盤胞の段階の細胞の最大寸法は通常１００μｍ〜２８０μｍであることから、円形の開口部の直径は、通常１００μｍ以上である。また、上述のように、凹部の開口部の外縁の寸法（開口部の外縁が形成する図形の最大径と最短径の平均値）は、凹部間のピッチより小さい。開口部の外縁が円形である場合、その直径は、凹部間のピッチ、すなわち円の中心間の距離より短く、通常１ｍｍ未満である。上記開口幅及び寸法は収容する細胞の種類に依存して異なるが、通常は、凹部の開口部の開口幅を、例えば１００μｍ〜３００μｍとすることが好ましい。
【００３１】
例えば、ウシ受精卵の場合、凹部の開口部の開口幅（凹部が円形である場合は直径）は、通常０．２５ｍｍ以上、好ましくは０．２６ｍｍ以上、さらに好ましくは０．２７ｍｍ以上であり、通常１ｍｍ未満、好ましくは０．７ｍｍ未満、さらに好ましくは０．４５ｍｍ未満である。また、上記凹部の開口部の開口幅は、Ｘ＋ｍ（ここでＸは細胞の最大径を表す）と規定することもできる。ここで、ｍは、好ましくは０．０１ｍｍ以上、さらに好ましくは０．０２ｍｍ以上である。
【００３２】
細胞収容部の凹部の壁面は、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する。細胞収容部の凹部は、通常、培養容器の底壁側に底がくるように形成される。凹部の傾斜面の形状（プロファイル）は、凹部の最も低い位置から凹部の外縁へ向かって曲線状に高くなる場合、階段状に高くなる場合等、適宜採用することができるが、特に直線部分を含むこと、すなわち凹部の最も低い位置から凹部の外縁へ進むに従い、その経路の全区間もしくは一部の区間が直線状に高くなる傾斜面であることが好ましい。直線部分を含むことで、凹部内に配置した細胞の移動が抑制され、細胞を凹部の最深部に固定し易くなる。したがって、顕微鏡で観察した場合に鮮明な画像を得ることができる。
【００３３】
傾斜面の表面粗さは、大きい値であると、顕微鏡で透過観察を行った画像を輪郭抽出処理に付す際に、傾斜面上の凹凸に起因して明瞭な輪郭が得られない恐れがあるため、可能な限り小さい値であることが好ましい。具体的には、最大高さＲｙ（粗さ曲線からその平均線の方向に基準長さだけを抜き取り、この抜き取り部分における山頂線と谷底線との間隔をいう）が１．０μｍ未満、特に０．５μｍ未満であることが好ましい。なお、傾斜面の表面粗さは、培養容器の鋳型を作製する際に磨き処理を施す等して、鋳型の加工精度を高めることにより小さくすることができる。
【００３４】
細胞収容部の凹部の壁面は、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を含む。円錐状又は円錐台状の部分は、培養容器の底壁側に、円錐の頂点又は円錐台の上面及び下面のうち面積の狭い方がくるように形成される。円錐状には、円錐及び楕円錐、これらに類似の形状、例えば、円錐又は楕円錐の頂点が丸みを帯びている形状、円錐面が外側に膨らんでいる形状、円錐面が内側に凹んでいる形状などが含まれる。円錐台状には、円錐台及び楕円錐台、これらに類似の形状、例えば、円錐台又は楕円錐台の上面又は下面と円錐面との接合部が丸みを帯びている形状、円錐面が外側に膨らんでいる形状、円錐面が内側に凹んでいる形状などが含まれる。細胞収容部の凹部の壁面が、円錐台状の部分を含む場合、円錐台の上面及び下面のうち培養容器の底壁側にくる面積の狭い方の直径は、細胞の最大径より小さいことが好ましい。具体的には、面積の狭い方の直径が、細胞の最大径の２分の１以下であることが好ましい。２分の１以下であると、細胞が凹部の中心に配置されやすくなり、移動も抑制され、細胞の撮影が容易になる。また、特に、面積の狭い方の直径が、１０μｍ以下であることが好ましい。直径が１０μｍ以下であると、撮影の際に、光の屈折、散乱などの影響を受けて観察しにくくなる中央の領域が狭くなり、鮮明な画像が得られるため有効である。なお、凹部の円錐状及び円錐台状の部分において円錐面は曲面であり、平面を含まないことが好ましい。細胞収容部の凹部の壁面は、通常、培養容器の底壁側に、上記のような傾斜面、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を有する。細胞収容部の凹部の壁面は、上記のような傾斜面より開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有していてもよい。
【００３５】
細胞収容部の凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を含む場合、円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度は、通常８９〜４５°、好ましくは８８〜６５°、より好ましくは８５〜８０°である。一定の角度以上とすることにより、重力を駆動源として、細胞を配置したい場所（最深部）へ移動させやすく、一定の角度以下とすることにより、顕微鏡で透過観察する際の傾斜面での反射、散乱が起こりにくくなり、鮮明な観察像を得ることができる。
【００３６】
細胞収容部の凹部が培養容器の底壁に平行な底面とそれに垂直な側面とからなる場合は、細胞が凹部内で移動して側面に接触する場合があり、その状態で細胞の撮像を行うと、撮影された画像において輪郭抽出処理により細胞の画像を抽出することが困難であるという問題があるが、細胞収容部の凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する場合、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を含む場合は、培養される細胞は自動的に凹部の底の部分に存在することとなり、凹部が培養容器の底壁に垂直な側面を傾斜面より開口部側に有していたとしても、これに接触したままとなることはなく、撮像された細胞の画像の輪郭抽出処理を問題なく実施することができる。
【００３７】
また、細胞収容部の凹部の深さは、特に限定されるものではないが、浅過ぎると、培養容器の輸送時や細胞の分裂時などに細胞が動き、細胞が凹部の範囲外に出てしまう恐れがあるため、確実に細胞を凹部内に保持できるように適宜設定される。例えば、細胞を凹部内に保持するには、深さが細胞の最大径の１／３以上であることが好ましく、１／２以上であることがさらに好ましい。一方、深過ぎると、凹部内に培養液や細胞を導入することが難しくなるため、細胞を凹部内に保持しつつ、深過ぎない値になるよう適宜設定される。例えば、深さの上限を凹部の開口部の直径に対して３倍以下とすることができる。さらに、培養液の導入を容易にするためには、深さは凹部直径の１倍以下であることが好ましく、１／２以下であることが特に好ましい。また、凹部の直径が小さく、深さが深いほど対流が起きにくくなるため、細胞の呼吸や代謝に伴って、周辺の培養液の組成変化が起きやすくなる可能性がある。細胞は、周辺の培養液の組成の影響を受けて成長しやすさが変化するため、細胞の成長を促すように生物学的な影響を考慮して直径と深さを設定することが好ましい。一般的には、細胞の種類によっても異なるが、凹部の深さを５０μｍ〜２００μｍ程度とすることが好ましい。例えば、ウシ受精卵の場合、最大径が２５０μｍ程度であるため、深さは８０μｍ以上、さらに好ましくは１２５μｍ以上とすることが好ましい。なお、この深さは、傾斜面と、さらに存在する場合は培養容器の底壁に垂直な側面とを有する凹部において、開口部から最深部までを垂直に測った深さをいう。
【００３８】
４個以上近接して形成された凹部は、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられていてもよい。当該実施形態では、近接した凹部（細胞収容部）の群ごとに内壁で囲まれており、複数の凹部の群が培養容器の底壁に存在する場合は、各群ごとに内壁で囲まれることになる。通常、受精卵等の培養においては、培養容器に受精卵を含む培地の液滴を形成し、液滴をオイルで覆うことにより培地の乾燥が防止されている。４個以上近接して形成された凹部の群をさらに内壁で囲むことにより、その内部（中心側）に培地を収容して培地の分散を防ぐことができる。培地をミネラルオイル等のオイルで覆う場合も同様である。
【００３９】
さらに、本発明の培養容器は、培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有していてもよい。換言すれば、細胞収容部が存在する部分より外周側に、さらなる内壁と培養容器の側壁によって形成される、液体を収容可能な外堀があるような形状である。近接した凹部を囲む内壁の内部（中心側）には上記と同様に培地を収容し、外堀より内側（中心側）にミネラルオイル等のオイルを収容し、外堀に培地や水などを収容することができる。外堀の容量は、通常１ｍｌ以上である。この外堀に培地や水を収容することにより、凹部に細胞を入れる際にピペットやガラスキャピラリーを洗うのに用いることができたり、培養器内の湿度を高められる。従って、培地の乾燥を防止するためのミネラルオイルを使わなくてもすむ場合がある。
【００４０】
また、４個以上近接して形成された凹部は、その内部の培地が互いに連通しうるような溝を有していてもよい。溝が存在することにより、細胞培養中に培地が凹部間を循環することができ、オートクライン・パラクライン効果により凹部にそれぞれ収容される細胞の成長を増進させることができる。
【００４１】
本発明の培養容器の材質は、特に制限されない。具体的には、金属、ガラス、及びシリコン等の無機材料、プラスチック（例えば、ポリスチレン樹脂、ポリエステル樹脂、ポリエチレン樹脂、ポリプロピレン樹脂、ＡＢＳ樹脂、ナイロン、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリウレタン樹脂、メチルペンテン樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂、エポキシ樹脂、塩化ビニル樹脂）で代表される有機材料を挙げることができる。本発明の培養容器は、当業者に公知の方法で製造することができる。例えば、プラスチック材料からなる培養容器を製造する場合には、慣用の成形法、例えば射出成形により製造することができる。
【００４２】
本発明の培養容器は、受精卵の発育を促進するような表面処理又は表面コートがなされていてもよい。特に、受精卵の発育を促進するために、他の器官の細胞（例えば、子宮内膜細胞や卵管上皮細胞）と共培養をする場合、これらの細胞をあらかじめ培養容器に接着させる必要がある。このような場合に、培養容器の表面に細胞接着性の材料をコートすると有利である。
【００４３】
図２ａに本発明の培養容器の一実施形態を示す。図２ａは、細胞収容部の凹部の壁面が、培養容器の底壁側に円錐状（頂点が丸みを帯びている形状）の部分を有し、それより開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有する実施形態である。図２ａに示すとおり、培養容器は、側壁１と底壁２を有し、底壁２には細胞収容部３の凹部４が９個近接して形成され、凹部４の９個の群が４群形成されている。凹部４には細胞６が収容されており、凹部４は円錐状の部分を有し、その壁面（円錐面）７は、凹部の外縁１３に進むに従って高くなるように傾斜している。円錐の中心線と母線とのなす角度はαで表される。図２ａの実施形態では、９個の近接する凹部の群が、それらを囲む内壁５により、培養容器内のその他の部分と隔てられている。内壁５の内部には培地８が収容され、さらに培養容器全体にミネラルオイル９が収容されている。
【００４４】
図２ｂに本発明の培養容器の別の実施形態を示す。図２ｂは、細胞収容部の凹部の壁面が、培養容器の底壁側に円錐状（頂点が丸みを帯びている形状）の部分を有し、それより開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有する実施形態である。図２ｂに示すとおり、培養容器は、側壁１と底壁２を有し、底壁２には細胞収容部３の凹部４が９個近接して形成され、凹部４の９個の群が４群形成されている。凹部４には細胞６が収容されており、凹部４は円錐状の部分を有し、その壁面（円錐面）７は、凹部の外縁１３に進むに従って高くなるように傾斜している。図２ｂの実施形態では、９個の近接する凹部の群が、それらを囲む内壁５により、培養容器内のその他の部分と隔てられている。さらに、培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部が存在する。すなわち、培養容器の外周部に、さらなる内壁１０と培養容器の側壁とにより形成される外堀１１があるような形状である。近接した凹部を囲む内壁の内部（中心側）には培地８が収容され、外堀の内側（中心側）にミネラルオイル９が収容され、外堀１１に培地や水１２が収容される。ミネラルオイル９は省略することができる。なお、図２ａ及び図２ｂでは、近接した凹部が正方格子状に配置されている。
【００４５】
本発明の培養容器は、培養細胞を自動判別する場合に特に好適に用いられる。培養細胞の判別には、培養細胞の質の判別が含まれる。培養細胞の質の判別には、例えば受精卵を培養する場合には、子宮への移植に適した良質な受精卵であるか否かの判別が含まれる。
【００４６】
培養細胞の自動判別においては、顕微鏡により取得された培養容器内の細胞の画像をＣＣＤカメラ等の検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付し、画像中の細胞に該当する部分を抽出し、抽出された細胞の画像を画像解析装置で解析することによりその質を判別することができる。画像の輪郭抽出処理については、例えば、特開２００６−３３７１１０号公報に記載された処理を利用できる。
【００４７】
従って一実施形態において本発明は、培養細胞の判別方法に関する。本発明の判別方法は、本発明の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得された培養細胞の画像をＣＣＤカメラ等の検出装置で撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む。
【００４８】
培養は、通常、培養容器を培養細胞の発育及び維持に必要なガスを含む環境雰囲気及び一定の環境温度をもたらすインキュベータに入れることにより実施される。必要なガスには、水蒸気、遊離酸素（Ｏ２）及び二酸化炭素（ＣＯ２）が含まれる。環境温度とＣＯ２含有量を調節することにより、培地のｐＨを一定時間内に安定させることができる。安定なＣＯ２含有量と安定な温度により安定なｐＨが得られる。培養のための培地は、細胞を培養する能力を有するものであれば特に制限はないが、受精卵培養用の培養液としては、例えば、Ｍ１６が挙げられる。画像比較プログラムにより、培養中の細胞の画像を予め保存された画像と比較することにより、培養の際の温度、ガス及び培地などの培養条件を調節することもできる。
【００４９】
培養細胞の判別は、例えば、特許第３６９３９０７号公報に記載の方法を採用できる。
以下、本発明を実施例により説明するが、本発明は実施例の範囲に限定されるものではない。
【実施例】
【００５０】
製造例１ 培養容器Ａの製造
図２ａに示す培養容器を、一般的な射出成形加工により製造した。まず、図２ａの逆パターンの鋳型を加工し、該鋳型上へ加熱溶融したポリスチレン材料を流し込み、冷却、離型して傾斜付き培養容器Ａを得た。該傾斜付き培養容器Ａは、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。
【００５１】
製造例２ 培養容器Ｂの製造
直径約３５ｍｍのポリスチレン製ディッシュを用意し、その底面へ直径０．４ｍｍの貫通口を１ｍｍ間隔で加工して貫通口付きディッシュを得た。次に、貫通口付きディッシュの底面へ、ディッシュの外側からカバーガラスを接着して培養容器Ｂを得た（図４）。貫通孔の側面はカバーガラス接着には、接着剤を用いた。該培養容器Ｂは、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。
【００５２】
製造例３ 培養容器Ｃの製造
図１１〜１６に示す培養容器Ｃを、一般的な射出成形加工により製造した。まず、図１１の逆パターンの鋳型を加工し、磨き加工により平滑性を高めた。該鋳型上へ加熱溶融したポリスチレン材料を流し込み、冷却、離型して傾斜付き培養容器Ｃを得た。この培養容器Ｃの細胞収容部３には、５×５の正方格子状に配置された２５個の凹部４が形成されている。製造した培養容器Ｃの外観写真を図１７に示す。該傾斜付き培養容器Ｃは、エタノール中に１時間浸漬して洗浄した後、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。なお、図１２において、内壁５で囲まれた領域の直径ｄは７ｍｍであり、図１３及び１４で示す凹部４のピッチａは４２０μｍである。また、図１５及び１６において、凹部の直径ｒは２７０μｍ、深さＬは１５０μｍに設定した。さらに、円錐状に形成した壁面７について、円錐の中心線と母線とのなす角度αは８３°に設定した。
【００５３】
図１８に、製造した培養容器Ｃの細胞収容部３の断面形状計測結果（計測装置：キーエンス社製ダブルスキャン高精度レーザ測定器ＬＴ−９０１０Ｍ及び高精度形状測定システムＫＳ−１１００、測定間隔５μｍ）、図１９に凹部４の断面形状計測結果（計測装置及び測定条件は上記と同様）をそれぞれ示す。また、図２０には、図１９の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図２０から、最大高さＲｙは０．４７μｍと求められた。
【００５４】
製造例４ 培養容器Ｄの製造
鋳型の製造時に、磨き処理を施さない以外は上記製造例３と同様の手順で培養容器Ｄを製造した。図２１に培養容器Ｄの凹部４の断面形状計測結果を示す。また、図２２には、図２１の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図２２から、最大高さＲｙは４．９μｍと求められた。
【００５５】
製造例５ 培養容器Ｅの製造
図２３〜図２８に示す培養容器Ｅを、上記製造例３と同様の手順で製造した。なお、培養容器Ｅでは、凹部４の壁面７を、凹部の最深部から凹部の外縁１３へ向かって曲線状に高くなるような傾斜面としている。培養容器Ｅのその他の寸法は図１１〜１６に示す培養容器Ｃと同一である。
【００５６】
図２９に培養容器Ｅの凹部４の断面形状計測結果を示す。また、図３０には、図２９の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図３０から、最大高さＲｙは２．９μｍと求められた。
【００５７】
（実施例１）
製造例１で製造した培養容器Ａを用いて、ラット受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００５８】
ラット受精卵を製造例１の培養容器Ａの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００５９】
受精卵が初期の卵割をした後に、倍率２０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図５に示す。
受精卵の輪郭を抽出するため、以下のような閾値処理を施した。
【００６０】
図６は図５に対して閾値処理を行った画像である。製造例１の培養容器Ａを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図６に示すように、凹部の壁面の影響無く受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６１】
閾値処理は、例えばカメラで撮影した受精卵画像の各画素値（＝輝度値）を予め設定された第１の閾値と第２の閾値（第１の閾値＜第２の閾値）に基づいて、第１の閾値以上かつ第２の閾値以下の場合には１（白）０（黒）を設定し、第１の閾値より小さい又は２の閾値より大きい場合には０（黒）１（白）を設定するといった処理である（＝２値化処理）。
【００６２】
（実施例２）
製造例３で製造した培養容器Ｃを用いて、マウス受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００６３】
マウス受精卵を製造例３の培養容器Ｃの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００６４】
受精卵が初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図３１に示す。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図３２は図３１に対して閾値処理を行った画像である。製造例３の培養容器Ｃを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図３２に示すように、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６５】
（実施例３）
実施例２と同様に培養容器Ｃにウシ受精卵を導入した直後に、倍率４倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影し、一部を切り出した写真を図３３に示す。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図３４は図３３に対して閾値処理を行った画像である。製造例３の培養容器Ｃを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図３４に示すように、凹部の壁面の影響無くウシ受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６６】
（実施例４）
実施例２と同様に培養容器Ｄにマウス受精卵を導入し初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出したところ、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。しかしながら、細胞収容部の凹部の傾斜面が平滑化されていないため、透過率が低く、ノイズの影響があり、実施例２よりも識別が困難であった。
【００６７】
（実施例５）
実施例２と同様に培養容器Ｅにマウス受精卵を導入し初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出したところ、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。しかしながら、細胞収容部の凹部における傾斜面が培養容器Ｃのように直線状ではなく、曲率を有するため、受精卵が凹部の壁面に接触している確率が実施例２よりも高かった。以上の実施例２、４及び５の結果から、凹部の傾斜面は直線部分を含み且つＲｙ値が小さいほど、細胞を凹部の中央に集めることができ、細胞の判別に有利であることが分かった。
【００６８】
（比較例１）
比較例１として、製造例２で製造した培養容器Ｂを用いて、マウス受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００６９】
マウス受精卵を製造例２の培養容器Ｂの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００７０】
製造例２で製造した培養容器Ｂに受精卵を導入した直後に、倍率１０の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図７及び９に示す。
【００７１】
実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図８は図７に対して閾値処理をしたもの、図１０は図９に対して閾値処理をしたものである。
【００７２】
図８のように、偶然に細胞収容部の凹部の壁面から離れている受精卵については、受精卵の輪郭を抽出できたが、図１０のように、細胞収容部の凹部の壁面に接触している受精卵については、受精卵の輪郭を抽出することができなかった。
【符号の説明】
【００７３】
１：側壁、２：底壁、３：細胞収容部、４：細胞収容部の凹部、５：内壁、６：細胞、７：凹部の壁面（円錐面）、８：培地、９：ミネラルオイル、１０：内壁、１１：外堀、１２：培地又は水、１３：外縁
【技術分野】
【０００１】
本発明は、受精卵などの個別管理が必要な細胞を培養するための培養容器、ならびに該培養容器を用いた培養細胞の判別方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
培養系で精子と卵子とを体外受精させて受精卵（接合子）を作製して、さらに受精卵を卵割、桑実胚、胚盤胞の段階を経て、透明帯から孵化した脱出胚盤胞の段階まで培養することが可能となり、この卵割から胚盤胞の段階にある受精卵を子宮に移植して産子を得る補助的生殖技術（ＡＲＴ）が、家畜領域のみならずヒトの不妊医療でも確立されている。
【０００３】
しかし、体外受精による妊娠成功率は必ずしも高くはなく、たとえばヒトにおいては、その妊娠成功率は、依然として２５〜３５％程度に留まっている。その原因の一つとして、培養において子宮への移植に適した良質な受精卵を得られる確率が高くないことが挙げられる。培養された受精卵は、専門家が顕微鏡で個別に観察することにより、子宮への移植に適した良質な受精卵であるか否か判別されている。従って、その判別にはコスト及び時間がかかるという問題がある。そこで、子宮への移植に適した良質な受精卵を低コストかつ短時間で判別する技術が求められている。また、良質な受精卵の判断が個人により異なるという問題もあり、良質な受精卵だという基準や選別する技術が必要とされている。
【０００４】
従来、受精卵の培養は、培養容器上のウェル内に５００μＬ程度の培養液を入れ、該培養液中で受精卵を培養する方法、培養容器上のウェル内に２０μＬ程度の微小滴を載せ、該微小滴の表面をミネラルオイルで被覆し、その中に受精卵を入れる方法（非特許文献１）等により行われていた。また、非特許文献２及び３は、培養容器上に複数の窪みを設け、それぞれの窪みごとに受精卵を導入して培養することにより受精卵を個別に管理する方法を開示している。非特許文献４は、培養容器上にメッシュ体を配置し、メッシュの編目ごとに受精卵を導入して培養することにより受精卵を個別に管理する方法を開示している。
【０００５】
さらに近年では、細胞治療・再生医療の研究開発が進み、細胞培養中の無菌環境を維持することや、細胞の品質確保、あるいは細胞を迅速且つ大量に培養し判別することについてのニーズが高まっている。しかし従来は、上記非特許文献１〜４に示すような培養容器を用い、手作業で培養細胞の状態を観察しているため、連続的な細胞状態の観察が困難であること、培養環境の変化や雑菌による汚染リスクなど細胞への影響が懸念されること、培養細胞の判別にコストと時間がかかり効率が悪いことなどが課題となっていた。したがって、培養細胞を自動的に判別する技術の開発が望まれていた。また、例えば畜産の分野においても、国により「家畜改良増殖目標」が策定され、この目標達成のため受精卵移植を活用した肉専用種の増頭の推進が図られている中、細胞の自動判別技術は非常に有用と考えられる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】菅原，尾川（編）、「生殖機能細胞の培養法」、日本、学会出版センター、１９９３年６月出版、第２５〜１５３頁
【非特許文献２】M. Taka, et al. Journal of Reproduction and Development, 51, 533-537 (2005)
【非特許文献３】Vajta G., et al. Molecular Reproduction and Development, 55, 256-264 (2000)
【非特許文献４】P. J. Booth, et al. Biology of Reproduction, 77, 765-779 (2007)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明者らは、上記従来の状況に鑑み、子宮への移植に適した良質な受精卵を低コストかつ短時間で判別すべく、受精卵の判別の自動化の可能性を検討した。そして、非特許文献１に記載される培養容器を用いて自動化を検討したところ、培養している複数の受精卵がプレート内や微小滴内で移動してしまい、それぞれ質の異なる受精卵を個別に管理することができず、受精卵の判別を自動で行うのには適してないことが明らかとなった。また、受精卵の自動判別においては、ＣＣＤカメラ等を用いて受精卵の画像を撮像することが考えられるが、従来の培養容器では受精卵を個別に撮影することが困難であることも明らかとなった。
【０００８】
そこで、非特許文献２〜４に記載される複数の窪みを設けた培養容器や、メッシュを配置した培養容器を用いて自動化を検討したところ、受精卵の密度も高く、受精卵を個別に管理することは可能であるが、窪み内やメッシュの編目内で受精卵が移動して窪みの側壁やメッシュに接触した場合には、取得した画像の輪郭抽出処理により受精卵の画像を抽出することが困難であることを見出した。
【０００９】
従って、本発明は、培養細胞の自動判別に適した培養容器を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、上記課題を解決すべく検討を行った結果、壁面が、最も低い位置から外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する凹部が密に配置された細胞収容部を有する培養容器を用いて細胞を培養することにより、培養細胞の撮影画像における細胞の輪郭抽出処理が効率よく実施でき、従って、培養細胞の自動判別に適していることを見出し、本発明を完成した。
【００１１】
すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器。
【００１２】
（２）凹部の壁面が、直線部分を含む傾斜面を有する、（１）に記載の培養容器。
（３）傾斜面の表面粗さについて、最大高さＲｙが１．０μｍ未満である、（２）に記載の培養容器。
（４）凹部の開口部の開口幅が１００μｍ〜３００μｍである、（１）〜（３）のいずれかに記載の培養容器。
【００１３】
（５）凹部の深さが５０μｍ〜２００μｍである、（１）〜（４）のいずれかに記載の培養容器。
（６）凹部の開口部が円形である、（１）〜（５）のいずれかに記載の培養容器。
（７）凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を有する、（６）に記載の培養容器。
【００１４】
（８）円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度が８９〜４５°である、（７）に記載の培養容器。
（９）近接する凹部が、１ｍｍ２あたり１個以上の密度で配置されている、（１）〜（８）のいずれかに記載の培養容器。
（１０）近接する４個以上の凹部が正方格子状又は最密充填状に配置されている、請求項（１）〜（９）のいずれかに記載の培養容器。
【００１５】
（１１）凹部が２４個以上配置されている、（１）〜（１０）のいずれかに記載の培養容器。
（１２）細胞が、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される、（１）〜（１１）のいずれかに記載の培養容器。
（１３）細胞が、ウシの受精卵である、（１２）に記載の培養容器。
【００１６】
（１４）近接する４個以上の凹部が、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられている、（１）〜（１３）のいずれかに記載の培養容器。
（１５）培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有する、（１４）に記載の培養容器。
（１６）培養細胞の自動判別に使用するための、（１）〜（１５）のいずれかに記載の培養容器。
【００１７】
（１７）倍率４倍の対物レンズを用いて細胞収容部を顕微鏡観察したときに、観察視野内に４個以上の凹部が含まれる、（１６）に記載の培養容器。
（１８）培養細胞の判別方法であって、（１）〜（１７）のいずれかに記載の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得した培養細胞の画像を検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む、前記判別方法。
【発明の効果】
【００１８】
本発明により、培養細胞の自動判別に適した培養容器が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１ａ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図１ｂ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図２ａ】本発明の実施形態である培養容器Ａを示す概略図である。
【図２ｂ】本発明の実施形態を示す概略図である。
【図３】近接した凹部を最密充填状に配置する場合の平面図である。
【図４】比較例で用いた培養容器Ｂを示す。
【図５】本発明の培養容器Ａで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図６】図５の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図７】比較例で用いた培養容器Ｂで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図８】図７の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図９】比較例で用いた培養容器Ｂで培養した受精卵の顕微鏡写真である。
【図１０】図９の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図１１】本発明の実施形態である培養容器Ｃを示す平面図である。
【図１２】図１１のＩＩＩａ−ＩＩＩａ断面図である。
【図１３】図１１における細胞収容部の部分拡大図である。
【図１４】図１３のＩＩＩｂ−ＩＩＩｂ断面図である。
【図１５】図１３における凹部の部分拡大図である。
【図１６】図１５のＩＩＩｃ−ＩＩＩｃ断面図である。
【図１７】培養容器Ｃの外観写真である。
【図１８】培養容器Ｃの細胞収容部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図１９】培養容器Ｃの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図２０】図１９の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図２１】培養容器Ｄの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図２２】図２１の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図２３】本発明の実施形態である培養容器Ｅを示す平面図である。
【図２４】図２３のＩＶａ−ＩＶａ断面図である。
【図２５】図２３における細胞収容部の部分拡大図である。
【図２６】図２５のＩＶｂ−ＩＶｂ断面図である。
【図２７】図２５における凹部の部分拡大図である。
【図２８】図２７のＩＶｃ−ＩＶｃ断面図である。
【図２９】培養容器Ｅの凹部の断面形状計測結果を示すグラフである。
【図３０】図２９の右側傾斜面に対して線形フィッティングを行い、傾きを補正した図である。
【図３１】本発明の培養容器Ｃで培養したマウス受精卵の顕微鏡写真である。
【図３２】図３１の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【図３３】本発明の培養容器Ｃで培養したウシ受精卵の顕微鏡写真である。
【図３４】図３３の画像に対して閾値処理を行った結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
本発明は、個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器に関する。
【００２１】
個別管理が必要とされる細胞とは、培養中及び培養後において個々の細胞を特定する必要があるものをさし、複数の細胞を培養している培養容器において互いに混同してしまうことが望ましくない細胞をさす。個別管理が必要とされる細胞としては、例えば、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞（胚性幹細胞）及びｉＰＳ細胞（人工多能性幹細胞）が挙げられる。卵細胞は、未受精の卵細胞をさし、未成熟卵母細胞及び成熟卵母細胞が含まれる。受精卵は、受精後、卵割により２細胞期、４細胞期、８細胞期と細胞数が増えていき、桑実胚を経て、胚盤胞へと発生する。受精卵には、２細胞胚、４細胞胚及び８細胞胚などの初期胚、桑実胚、胚盤胞（初期胚盤胞、拡張胚盤胞及び脱出胚盤胞を含む）が含まれる。胚盤胞は、胎盤を形成する潜在能力がある外部細胞と胚を形成する潜在能力がある内部細胞塊からなる胚を意味する。ＥＳ細胞は胚盤胞の内部細胞塊から得られる未分化な多能性又は全能性細胞をさす。ｉＰＳ細胞は、体細胞（主に線維芽細胞）へ数種類の遺伝子（転写因子）を導入することにより、ＥＳ細胞に似た分化万能性を持たせた細胞をさす。すなわち、本発明において培養の対象となる細胞には、受精卵や胚盤胞のように複数の細胞の集合体も包含される。本発明の培養容器は、好ましくは哺乳動物及び鳥類の細胞、特に哺乳動物の細胞の培養に好適である。哺乳動物は、温血脊椎動物をさし、例えば、ヒト及びサルなどの霊長類、マウス、ラット及びウサギなどの齧歯類、イヌ及びネコなどの愛玩動物、ならびにウシ、ウマ及びブタなどの家畜が挙げられる。本発明の培養容器は、ウシの受精卵の培養に特に好適である。
【００２２】
本発明の培養容器は、底壁と側壁とを有し、底壁と側壁とから形成される空間に液体を収容可能である。底壁の形状は特に制限されず、三角形及び四角形等の多角形の形状でもよく、円（円形及び楕円形を含む）の形状でもよく、側壁は底壁の外縁を囲うように形成される。本発明の培養容器において、通常、底壁と反対側は開口している。なお、本発明の培養容器は、通常のシャーレと同様に蓋を有していてもよい。本発明の培養容器の底壁と側壁は、好ましくは慣用のシャーレと同様の形状を形成する。そして、培養容器の底壁には、凹部を有する細胞収容部が形成されている。細胞収容部の凹部は、培養容器の底壁に直接窪みとして設けられた凹部でもよいし（図１ａ）、底壁から突出した部材により形成される凹部でもよい（図１ｂ）。
【００２３】
凹部は、４個以上、好ましくは６個以上、より好ましくは８個以上が、近接して形成されている。凹部は、少なくとも４個が近接して形成されていればよく、さらに近接していない凹部が別途形成されていてもよい。また、４個以上近接して形成された凹部の群が、複数群配置されていてもよく、それらの群は互いに近接していなくてもよい。
【００２４】
凹部は、壁面及び開口部を有し、開口部の外縁の形状は特に制限されないが、好ましくは円形（円形及び楕円形を含む）である。
【００２５】
近接する凹部間のピッチは１ｍｍ以下である。ただし、上記ピッチは収容する細胞の種類に依存して異なる。
【００２６】
例えば、ウシ受精卵を収容する場合、近接する凹部間のピッチは通常１ｍｍ以下、好ましくは０．７ｍｍ以下、さらに好ましくは０．４５ｍｍ以下である。観察装置として、１／２インチのＣＣＤ素子、４、１０、２０倍の対物レンズを備えたものがよく用いられる。このような観察装置で、４倍の対物レンズを選択した場合の観察可能な視野はおよそ１．６ｍｍ×１．２ｍｍであり、この観察視野内に４個以上の凹部が含まれるように設計することが好ましい。凹部の直径がウシ受精卵の直径（０．２５ｍｍ）より大きく、０．３ｍｍだとすると、ピッチが０．９ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に２×２＝４個の受精卵を観察することができ、ピッチが０．６５ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に３×２＝６個の受精卵を観察することができ、ピッチが０．４３ｍｍ以下の場合、１．６ｍｍ×１．２ｍｍの顕微鏡視野内に４×３＝１２個の受精卵を観察することができる。観察視野内に４個以上の凹部が含まれるように設計することで、例えば培養細胞の自動判別を行う場合に、一度に多数個の細胞を処理でき、また視野内の一つの受精卵と他の受精卵との比較判別が容易になるため、判別操作をより効率的に行うことができる。
【００２７】
凹部間のピッチは近接する凹部の中心間の距離である（図１のａ）。凹部の中心は、凹部の開口部の外縁が形成する図形の重心位置とし、外縁が円形であればその円の中心をさす。上記凹部間のピッチは通常平均ピッチをさし、平均ピッチは、ある凹部に関しては、近接する全ての凹部とのピッチから平均値を算出したものをさす。凹部間のピッチは、凹部の開口部の外縁の寸法より大きい。凹部の開口部の外縁の寸法は、開口部の外縁が円形であればその直径をさし、そうでなければ開口部の外縁が形成する図形の最大径と最短径の平均値とする。換言すれば、近接する凹部は、１ｍｍ２あたり１個以上、好ましくは４個以上の密度で配置されている。近接する４個以上の凹部は、正方格子状又は最密充填状に配置されていることが好ましい。例えば、２５個の凹部を５×５の正方格子状に配置する場合を挙げることができる。正方格子状又は最密充填状に配置することにより、培養容器の底壁における各凹部の位置の特定が容易になり、自動化処理に適用しやすい。また、凹部は、培養容器１個あたり、合計で好ましくは２４個以上、より好ましくは５０個以上配置されている。培養容器１個あたりに多くの凹部を設けることにより、一定数の細胞を培養するのに必要な培養容器の数を低減することができ、経済的に有利である。
【００２８】
凹部の開口部の外縁が円形である場合、近接する凹部間のピッチは、Ｘ＋ｍ＋ｎ（ここで、Ｘは細胞の最大径を表し、ｍは凹部の開口部の外縁が形成する円の直径から細胞の最大径を引いた長さを表し、ｎは凹部間の仕切りの長さを表す）と規定することもできる。凹部間の仕切りとは、近接する凹部間の外縁と外縁の最短距離をさす。ここでｍは通常０．１ｍｍ以下、好ましくは０．０７ｍｍ以下、さらに好ましくは０．０５ｍｍ以下であり、ｎは通常０．６ｍｍ以下、好ましくは０．３５ｍｍ以下、さらに好ましくは０．１５ｍｍ以下である。
【００２９】
上記のようなピッチで凹部を密に配置することにより、細胞を個別に管理しつつ多くの細胞を同時に培養でき、さらに顕微鏡の一視野に多くの細胞が入るため、一度に多くの細胞の画像を取得することができる。
【００３０】
細胞収容部の凹部の開口部は、細胞を収容可能な開口幅を有する。ここで、凹部の開口部の開口幅は、凹部の開口部の外縁が形成する図形の最短径の長さをさす。従って、凹部の開口部の外縁が円形である場合、開口幅は円の直径に等しく、その直径は、培養する細胞の最大寸法より大きいものとなる。本発明の培養容器により受精卵を培養する場合、胚盤胞の段階まで培養することが望ましいため、円形の開口部の直径は、胚盤胞の段階の細胞の最大寸法より大きいものであることが望ましい。胚盤胞の段階の細胞の最大寸法は通常１００μｍ〜２８０μｍであることから、円形の開口部の直径は、通常１００μｍ以上である。また、上述のように、凹部の開口部の外縁の寸法（開口部の外縁が形成する図形の最大径と最短径の平均値）は、凹部間のピッチより小さい。開口部の外縁が円形である場合、その直径は、凹部間のピッチ、すなわち円の中心間の距離より短く、通常１ｍｍ未満である。上記開口幅及び寸法は収容する細胞の種類に依存して異なるが、通常は、凹部の開口部の開口幅を、例えば１００μｍ〜３００μｍとすることが好ましい。
【００３１】
例えば、ウシ受精卵の場合、凹部の開口部の開口幅（凹部が円形である場合は直径）は、通常０．２５ｍｍ以上、好ましくは０．２６ｍｍ以上、さらに好ましくは０．２７ｍｍ以上であり、通常１ｍｍ未満、好ましくは０．７ｍｍ未満、さらに好ましくは０．４５ｍｍ未満である。また、上記凹部の開口部の開口幅は、Ｘ＋ｍ（ここでＸは細胞の最大径を表す）と規定することもできる。ここで、ｍは、好ましくは０．０１ｍｍ以上、さらに好ましくは０．０２ｍｍ以上である。
【００３２】
細胞収容部の凹部の壁面は、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する。細胞収容部の凹部は、通常、培養容器の底壁側に底がくるように形成される。凹部の傾斜面の形状（プロファイル）は、凹部の最も低い位置から凹部の外縁へ向かって曲線状に高くなる場合、階段状に高くなる場合等、適宜採用することができるが、特に直線部分を含むこと、すなわち凹部の最も低い位置から凹部の外縁へ進むに従い、その経路の全区間もしくは一部の区間が直線状に高くなる傾斜面であることが好ましい。直線部分を含むことで、凹部内に配置した細胞の移動が抑制され、細胞を凹部の最深部に固定し易くなる。したがって、顕微鏡で観察した場合に鮮明な画像を得ることができる。
【００３３】
傾斜面の表面粗さは、大きい値であると、顕微鏡で透過観察を行った画像を輪郭抽出処理に付す際に、傾斜面上の凹凸に起因して明瞭な輪郭が得られない恐れがあるため、可能な限り小さい値であることが好ましい。具体的には、最大高さＲｙ（粗さ曲線からその平均線の方向に基準長さだけを抜き取り、この抜き取り部分における山頂線と谷底線との間隔をいう）が１．０μｍ未満、特に０．５μｍ未満であることが好ましい。なお、傾斜面の表面粗さは、培養容器の鋳型を作製する際に磨き処理を施す等して、鋳型の加工精度を高めることにより小さくすることができる。
【００３４】
細胞収容部の凹部の壁面は、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を含む。円錐状又は円錐台状の部分は、培養容器の底壁側に、円錐の頂点又は円錐台の上面及び下面のうち面積の狭い方がくるように形成される。円錐状には、円錐及び楕円錐、これらに類似の形状、例えば、円錐又は楕円錐の頂点が丸みを帯びている形状、円錐面が外側に膨らんでいる形状、円錐面が内側に凹んでいる形状などが含まれる。円錐台状には、円錐台及び楕円錐台、これらに類似の形状、例えば、円錐台又は楕円錐台の上面又は下面と円錐面との接合部が丸みを帯びている形状、円錐面が外側に膨らんでいる形状、円錐面が内側に凹んでいる形状などが含まれる。細胞収容部の凹部の壁面が、円錐台状の部分を含む場合、円錐台の上面及び下面のうち培養容器の底壁側にくる面積の狭い方の直径は、細胞の最大径より小さいことが好ましい。具体的には、面積の狭い方の直径が、細胞の最大径の２分の１以下であることが好ましい。２分の１以下であると、細胞が凹部の中心に配置されやすくなり、移動も抑制され、細胞の撮影が容易になる。また、特に、面積の狭い方の直径が、１０μｍ以下であることが好ましい。直径が１０μｍ以下であると、撮影の際に、光の屈折、散乱などの影響を受けて観察しにくくなる中央の領域が狭くなり、鮮明な画像が得られるため有効である。なお、凹部の円錐状及び円錐台状の部分において円錐面は曲面であり、平面を含まないことが好ましい。細胞収容部の凹部の壁面は、通常、培養容器の底壁側に、上記のような傾斜面、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を有する。細胞収容部の凹部の壁面は、上記のような傾斜面より開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有していてもよい。
【００３５】
細胞収容部の凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を含む場合、円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度は、通常８９〜４５°、好ましくは８８〜６５°、より好ましくは８５〜８０°である。一定の角度以上とすることにより、重力を駆動源として、細胞を配置したい場所（最深部）へ移動させやすく、一定の角度以下とすることにより、顕微鏡で透過観察する際の傾斜面での反射、散乱が起こりにくくなり、鮮明な観察像を得ることができる。
【００３６】
細胞収容部の凹部が培養容器の底壁に平行な底面とそれに垂直な側面とからなる場合は、細胞が凹部内で移動して側面に接触する場合があり、その状態で細胞の撮像を行うと、撮影された画像において輪郭抽出処理により細胞の画像を抽出することが困難であるという問題があるが、細胞収容部の凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有する場合、好ましくは円錐状又は円錐台状の部分を含む場合は、培養される細胞は自動的に凹部の底の部分に存在することとなり、凹部が培養容器の底壁に垂直な側面を傾斜面より開口部側に有していたとしても、これに接触したままとなることはなく、撮像された細胞の画像の輪郭抽出処理を問題なく実施することができる。
【００３７】
また、細胞収容部の凹部の深さは、特に限定されるものではないが、浅過ぎると、培養容器の輸送時や細胞の分裂時などに細胞が動き、細胞が凹部の範囲外に出てしまう恐れがあるため、確実に細胞を凹部内に保持できるように適宜設定される。例えば、細胞を凹部内に保持するには、深さが細胞の最大径の１／３以上であることが好ましく、１／２以上であることがさらに好ましい。一方、深過ぎると、凹部内に培養液や細胞を導入することが難しくなるため、細胞を凹部内に保持しつつ、深過ぎない値になるよう適宜設定される。例えば、深さの上限を凹部の開口部の直径に対して３倍以下とすることができる。さらに、培養液の導入を容易にするためには、深さは凹部直径の１倍以下であることが好ましく、１／２以下であることが特に好ましい。また、凹部の直径が小さく、深さが深いほど対流が起きにくくなるため、細胞の呼吸や代謝に伴って、周辺の培養液の組成変化が起きやすくなる可能性がある。細胞は、周辺の培養液の組成の影響を受けて成長しやすさが変化するため、細胞の成長を促すように生物学的な影響を考慮して直径と深さを設定することが好ましい。一般的には、細胞の種類によっても異なるが、凹部の深さを５０μｍ〜２００μｍ程度とすることが好ましい。例えば、ウシ受精卵の場合、最大径が２５０μｍ程度であるため、深さは８０μｍ以上、さらに好ましくは１２５μｍ以上とすることが好ましい。なお、この深さは、傾斜面と、さらに存在する場合は培養容器の底壁に垂直な側面とを有する凹部において、開口部から最深部までを垂直に測った深さをいう。
【００３８】
４個以上近接して形成された凹部は、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられていてもよい。当該実施形態では、近接した凹部（細胞収容部）の群ごとに内壁で囲まれており、複数の凹部の群が培養容器の底壁に存在する場合は、各群ごとに内壁で囲まれることになる。通常、受精卵等の培養においては、培養容器に受精卵を含む培地の液滴を形成し、液滴をオイルで覆うことにより培地の乾燥が防止されている。４個以上近接して形成された凹部の群をさらに内壁で囲むことにより、その内部（中心側）に培地を収容して培地の分散を防ぐことができる。培地をミネラルオイル等のオイルで覆う場合も同様である。
【００３９】
さらに、本発明の培養容器は、培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有していてもよい。換言すれば、細胞収容部が存在する部分より外周側に、さらなる内壁と培養容器の側壁によって形成される、液体を収容可能な外堀があるような形状である。近接した凹部を囲む内壁の内部（中心側）には上記と同様に培地を収容し、外堀より内側（中心側）にミネラルオイル等のオイルを収容し、外堀に培地や水などを収容することができる。外堀の容量は、通常１ｍｌ以上である。この外堀に培地や水を収容することにより、凹部に細胞を入れる際にピペットやガラスキャピラリーを洗うのに用いることができたり、培養器内の湿度を高められる。従って、培地の乾燥を防止するためのミネラルオイルを使わなくてもすむ場合がある。
【００４０】
また、４個以上近接して形成された凹部は、その内部の培地が互いに連通しうるような溝を有していてもよい。溝が存在することにより、細胞培養中に培地が凹部間を循環することができ、オートクライン・パラクライン効果により凹部にそれぞれ収容される細胞の成長を増進させることができる。
【００４１】
本発明の培養容器の材質は、特に制限されない。具体的には、金属、ガラス、及びシリコン等の無機材料、プラスチック（例えば、ポリスチレン樹脂、ポリエステル樹脂、ポリエチレン樹脂、ポリプロピレン樹脂、ＡＢＳ樹脂、ナイロン、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリウレタン樹脂、メチルペンテン樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂、エポキシ樹脂、塩化ビニル樹脂）で代表される有機材料を挙げることができる。本発明の培養容器は、当業者に公知の方法で製造することができる。例えば、プラスチック材料からなる培養容器を製造する場合には、慣用の成形法、例えば射出成形により製造することができる。
【００４２】
本発明の培養容器は、受精卵の発育を促進するような表面処理又は表面コートがなされていてもよい。特に、受精卵の発育を促進するために、他の器官の細胞（例えば、子宮内膜細胞や卵管上皮細胞）と共培養をする場合、これらの細胞をあらかじめ培養容器に接着させる必要がある。このような場合に、培養容器の表面に細胞接着性の材料をコートすると有利である。
【００４３】
図２ａに本発明の培養容器の一実施形態を示す。図２ａは、細胞収容部の凹部の壁面が、培養容器の底壁側に円錐状（頂点が丸みを帯びている形状）の部分を有し、それより開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有する実施形態である。図２ａに示すとおり、培養容器は、側壁１と底壁２を有し、底壁２には細胞収容部３の凹部４が９個近接して形成され、凹部４の９個の群が４群形成されている。凹部４には細胞６が収容されており、凹部４は円錐状の部分を有し、その壁面（円錐面）７は、凹部の外縁１３に進むに従って高くなるように傾斜している。円錐の中心線と母線とのなす角度はαで表される。図２ａの実施形態では、９個の近接する凹部の群が、それらを囲む内壁５により、培養容器内のその他の部分と隔てられている。内壁５の内部には培地８が収容され、さらに培養容器全体にミネラルオイル９が収容されている。
【００４４】
図２ｂに本発明の培養容器の別の実施形態を示す。図２ｂは、細胞収容部の凹部の壁面が、培養容器の底壁側に円錐状（頂点が丸みを帯びている形状）の部分を有し、それより開口部側に、培養容器の底壁に垂直な壁面を有する実施形態である。図２ｂに示すとおり、培養容器は、側壁１と底壁２を有し、底壁２には細胞収容部３の凹部４が９個近接して形成され、凹部４の９個の群が４群形成されている。凹部４には細胞６が収容されており、凹部４は円錐状の部分を有し、その壁面（円錐面）７は、凹部の外縁１３に進むに従って高くなるように傾斜している。図２ｂの実施形態では、９個の近接する凹部の群が、それらを囲む内壁５により、培養容器内のその他の部分と隔てられている。さらに、培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部が存在する。すなわち、培養容器の外周部に、さらなる内壁１０と培養容器の側壁とにより形成される外堀１１があるような形状である。近接した凹部を囲む内壁の内部（中心側）には培地８が収容され、外堀の内側（中心側）にミネラルオイル９が収容され、外堀１１に培地や水１２が収容される。ミネラルオイル９は省略することができる。なお、図２ａ及び図２ｂでは、近接した凹部が正方格子状に配置されている。
【００４５】
本発明の培養容器は、培養細胞を自動判別する場合に特に好適に用いられる。培養細胞の判別には、培養細胞の質の判別が含まれる。培養細胞の質の判別には、例えば受精卵を培養する場合には、子宮への移植に適した良質な受精卵であるか否かの判別が含まれる。
【００４６】
培養細胞の自動判別においては、顕微鏡により取得された培養容器内の細胞の画像をＣＣＤカメラ等の検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付し、画像中の細胞に該当する部分を抽出し、抽出された細胞の画像を画像解析装置で解析することによりその質を判別することができる。画像の輪郭抽出処理については、例えば、特開２００６−３３７１１０号公報に記載された処理を利用できる。
【００４７】
従って一実施形態において本発明は、培養細胞の判別方法に関する。本発明の判別方法は、本発明の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得された培養細胞の画像をＣＣＤカメラ等の検出装置で撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む。
【００４８】
培養は、通常、培養容器を培養細胞の発育及び維持に必要なガスを含む環境雰囲気及び一定の環境温度をもたらすインキュベータに入れることにより実施される。必要なガスには、水蒸気、遊離酸素（Ｏ２）及び二酸化炭素（ＣＯ２）が含まれる。環境温度とＣＯ２含有量を調節することにより、培地のｐＨを一定時間内に安定させることができる。安定なＣＯ２含有量と安定な温度により安定なｐＨが得られる。培養のための培地は、細胞を培養する能力を有するものであれば特に制限はないが、受精卵培養用の培養液としては、例えば、Ｍ１６が挙げられる。画像比較プログラムにより、培養中の細胞の画像を予め保存された画像と比較することにより、培養の際の温度、ガス及び培地などの培養条件を調節することもできる。
【００４９】
培養細胞の判別は、例えば、特許第３６９３９０７号公報に記載の方法を採用できる。
以下、本発明を実施例により説明するが、本発明は実施例の範囲に限定されるものではない。
【実施例】
【００５０】
製造例１ 培養容器Ａの製造
図２ａに示す培養容器を、一般的な射出成形加工により製造した。まず、図２ａの逆パターンの鋳型を加工し、該鋳型上へ加熱溶融したポリスチレン材料を流し込み、冷却、離型して傾斜付き培養容器Ａを得た。該傾斜付き培養容器Ａは、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。
【００５１】
製造例２ 培養容器Ｂの製造
直径約３５ｍｍのポリスチレン製ディッシュを用意し、その底面へ直径０．４ｍｍの貫通口を１ｍｍ間隔で加工して貫通口付きディッシュを得た。次に、貫通口付きディッシュの底面へ、ディッシュの外側からカバーガラスを接着して培養容器Ｂを得た（図４）。貫通孔の側面はカバーガラス接着には、接着剤を用いた。該培養容器Ｂは、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。
【００５２】
製造例３ 培養容器Ｃの製造
図１１〜１６に示す培養容器Ｃを、一般的な射出成形加工により製造した。まず、図１１の逆パターンの鋳型を加工し、磨き加工により平滑性を高めた。該鋳型上へ加熱溶融したポリスチレン材料を流し込み、冷却、離型して傾斜付き培養容器Ｃを得た。この培養容器Ｃの細胞収容部３には、５×５の正方格子状に配置された２５個の凹部４が形成されている。製造した培養容器Ｃの外観写真を図１７に示す。該傾斜付き培養容器Ｃは、エタノール中に１時間浸漬して洗浄した後、バイオクリーンベンチ内のＵＶライト下に４０分程度置いて滅菌してから培養に用いた。なお、図１２において、内壁５で囲まれた領域の直径ｄは７ｍｍであり、図１３及び１４で示す凹部４のピッチａは４２０μｍである。また、図１５及び１６において、凹部の直径ｒは２７０μｍ、深さＬは１５０μｍに設定した。さらに、円錐状に形成した壁面７について、円錐の中心線と母線とのなす角度αは８３°に設定した。
【００５３】
図１８に、製造した培養容器Ｃの細胞収容部３の断面形状計測結果（計測装置：キーエンス社製ダブルスキャン高精度レーザ測定器ＬＴ−９０１０Ｍ及び高精度形状測定システムＫＳ−１１００、測定間隔５μｍ）、図１９に凹部４の断面形状計測結果（計測装置及び測定条件は上記と同様）をそれぞれ示す。また、図２０には、図１９の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図２０から、最大高さＲｙは０．４７μｍと求められた。
【００５４】
製造例４ 培養容器Ｄの製造
鋳型の製造時に、磨き処理を施さない以外は上記製造例３と同様の手順で培養容器Ｄを製造した。図２１に培養容器Ｄの凹部４の断面形状計測結果を示す。また、図２２には、図２１の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図２２から、最大高さＲｙは４．９μｍと求められた。
【００５５】
製造例５ 培養容器Ｅの製造
図２３〜図２８に示す培養容器Ｅを、上記製造例３と同様の手順で製造した。なお、培養容器Ｅでは、凹部４の壁面７を、凹部の最深部から凹部の外縁１３へ向かって曲線状に高くなるような傾斜面としている。培養容器Ｅのその他の寸法は図１１〜１６に示す培養容器Ｃと同一である。
【００５６】
図２９に培養容器Ｅの凹部４の断面形状計測結果を示す。また、図３０には、図２９の右側傾斜面に対して、線形フィッティングを行い、さらに傾きを補正した図を示す。図３０から、最大高さＲｙは２．９μｍと求められた。
【００５７】
（実施例１）
製造例１で製造した培養容器Ａを用いて、ラット受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００５８】
ラット受精卵を製造例１の培養容器Ａの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００５９】
受精卵が初期の卵割をした後に、倍率２０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図５に示す。
受精卵の輪郭を抽出するため、以下のような閾値処理を施した。
【００６０】
図６は図５に対して閾値処理を行った画像である。製造例１の培養容器Ａを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図６に示すように、凹部の壁面の影響無く受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６１】
閾値処理は、例えばカメラで撮影した受精卵画像の各画素値（＝輝度値）を予め設定された第１の閾値と第２の閾値（第１の閾値＜第２の閾値）に基づいて、第１の閾値以上かつ第２の閾値以下の場合には１（白）０（黒）を設定し、第１の閾値より小さい又は２の閾値より大きい場合には０（黒）１（白）を設定するといった処理である（＝２値化処理）。
【００６２】
（実施例２）
製造例３で製造した培養容器Ｃを用いて、マウス受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００６３】
マウス受精卵を製造例３の培養容器Ｃの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００６４】
受精卵が初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図３１に示す。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図３２は図３１に対して閾値処理を行った画像である。製造例３の培養容器Ｃを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図３２に示すように、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６５】
（実施例３）
実施例２と同様に培養容器Ｃにウシ受精卵を導入した直後に、倍率４倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影し、一部を切り出した写真を図３３に示す。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図３４は図３３に対して閾値処理を行った画像である。製造例３の培養容器Ｃを用いた場合、閾値処理を施すことによって、図３４に示すように、凹部の壁面の影響無くウシ受精卵の輪郭を識別することが可能であった。
【００６６】
（実施例４）
実施例２と同様に培養容器Ｄにマウス受精卵を導入し初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出したところ、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。しかしながら、細胞収容部の凹部の傾斜面が平滑化されていないため、透過率が低く、ノイズの影響があり、実施例２よりも識別が困難であった。
【００６７】
（実施例５）
実施例２と同様に培養容器Ｅにマウス受精卵を導入し初期の卵割をした後に、倍率１０倍の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した。実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出したところ、凹部の壁面の影響無くマウス受精卵の輪郭を識別することが可能であった。しかしながら、細胞収容部の凹部における傾斜面が培養容器Ｃのように直線状ではなく、曲率を有するため、受精卵が凹部の壁面に接触している確率が実施例２よりも高かった。以上の実施例２、４及び５の結果から、凹部の傾斜面は直線部分を含み且つＲｙ値が小さいほど、細胞を凹部の中央に集めることができ、細胞の判別に有利であることが分かった。
【００６８】
（比較例１）
比較例１として、製造例２で製造した培養容器Ｂを用いて、マウス受精卵を培養し、観察した画像を用いて、受精卵の輪郭抽出処理を行った。
【００６９】
マウス受精卵を製造例２の培養容器Ｂの細胞収容部の凹部にガラスキャピラリーを用いて導入した。さらに、培地の蒸発を防ぐために、培地を覆うようにミネラルオイルを入れた。培養は、ＣＯ２インキュベータ（５％ＣＯ２、５％Ｏ２及び９０％空気、３７℃、湿度飽和）にて行った。
【００７０】
製造例２で製造した培養容器Ｂに受精卵を導入した直後に、倍率１０の観察装置（高倍率のレンズと撮像用カメラを備えている）で撮影した写真を図７及び９に示す。
【００７１】
実施例１と同様の閾値処理により、受精卵の輪郭を抽出した。図８は図７に対して閾値処理をしたもの、図１０は図９に対して閾値処理をしたものである。
【００７２】
図８のように、偶然に細胞収容部の凹部の壁面から離れている受精卵については、受精卵の輪郭を抽出できたが、図１０のように、細胞収容部の凹部の壁面に接触している受精卵については、受精卵の輪郭を抽出することができなかった。
【符号の説明】
【００７３】
１：側壁、２：底壁、３：細胞収容部、４：細胞収容部の凹部、５：内壁、６：細胞、７：凹部の壁面（円錐面）、８：培地、９：ミネラルオイル、１０：内壁、１１：外堀、１２：培地又は水、１３：外縁
【特許請求の範囲】
【請求項１】
個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器。
【請求項２】
凹部の壁面が、直線部分を含む傾斜面を有する、請求項１に記載の培養容器。
【請求項３】
傾斜面の表面粗さについて、最大高さＲｙが１．０μｍ未満である、請求項２に記載の培養容器。
【請求項４】
凹部の開口部の開口幅が１００μｍ〜３００μｍである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項５】
凹部の深さが５０μｍ〜２００μｍである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項６】
凹部の開口部が円形である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項７】
凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を有する、請求項６に記載の培養容器。
【請求項８】
円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度が８９〜４５°である、請求項７に記載の培養容器。
【請求項９】
近接する凹部が、１ｍｍ２あたり１個以上の密度で配置されている、請求項１〜８のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１０】
近接する４個以上の凹部が正方格子状又は最密充填状に配置されている、請求項１〜９のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１１】
凹部が２４個以上配置されている、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１２】
細胞が、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１３】
細胞が、ウシの受精卵である、請求項１２に記載の培養容器。
【請求項１４】
近接する４個以上の凹部が、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられている、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１５】
培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有する、請求項１４に記載の培養容器。
【請求項１６】
培養細胞の自動判別に使用するための、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１７】
倍率４倍の対物レンズを用いて細胞収容部を顕微鏡観察したときに、観察視野内に４個以上の凹部が含まれる、請求項１６に記載の培養容器。
【請求項１８】
培養細胞の判別方法であって、請求項１〜１７のいずれか１項に記載の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得した培養細胞の画像を検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む、前記判別方法。
【請求項１】
個別管理が必要とされる細胞を培養するための、底壁と側壁とを有する培養容器であって、
底壁に、凹部を有する細胞収容部が配置されており、
凹部が４個以上近接しており、
凹部の壁面が、凹部の最も低い位置から凹部の外縁に進むに従って高くなるような傾斜面を有し、
近接する凹部間のピッチが１ｍｍ以下である、
前記培養容器。
【請求項２】
凹部の壁面が、直線部分を含む傾斜面を有する、請求項１に記載の培養容器。
【請求項３】
傾斜面の表面粗さについて、最大高さＲｙが１．０μｍ未満である、請求項２に記載の培養容器。
【請求項４】
凹部の開口部の開口幅が１００μｍ〜３００μｍである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項５】
凹部の深さが５０μｍ〜２００μｍである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項６】
凹部の開口部が円形である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項７】
凹部の壁面が円錐状又は円錐台状の部分を有する、請求項６に記載の培養容器。
【請求項８】
円錐又は円錐台の中心線と母線とのなす角度が８９〜４５°である、請求項７に記載の培養容器。
【請求項９】
近接する凹部が、１ｍｍ２あたり１個以上の密度で配置されている、請求項１〜８のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１０】
近接する４個以上の凹部が正方格子状又は最密充填状に配置されている、請求項１〜９のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１１】
凹部が２４個以上配置されている、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１２】
細胞が、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１３】
細胞が、ウシの受精卵である、請求項１２に記載の培養容器。
【請求項１４】
近接する４個以上の凹部が、それらを囲む内壁により、培養容器内のその他の部分と隔てられている、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１５】
培養容器の外周部であって細胞収容部を有しない部分に液体収容部を有する、請求項１４に記載の培養容器。
【請求項１６】
培養細胞の自動判別に使用するための、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の培養容器。
【請求項１７】
倍率４倍の対物レンズを用いて細胞収容部を顕微鏡観察したときに、観察視野内に４個以上の凹部が含まれる、請求項１６に記載の培養容器。
【請求項１８】
培養細胞の判別方法であって、請求項１〜１７のいずれか１項に記載の培養容器の細胞収容部の凹部に、受精卵、卵細胞、ＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞からなる群から選択される細胞をそれぞれ導入して培養し、顕微鏡により取得した培養細胞の画像を検出装置によって撮像し、得られた像を輪郭抽出処理に付すことを含む、前記判別方法。
【図１ａ】
【図１ｂ】
【図２ａ】
【図２ｂ】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【図１ｂ】
【図２ａ】
【図２ｂ】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【公開番号】特開２０１０−２００７４８（Ｐ２０１０−２００７４８Ａ）
【公開日】平成２２年９月１６日（２０１０．９．１６）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−２２４６３（Ｐ２０１０−２２４６３）
【出願日】平成２２年２月３日（２０１０．２．３）
【出願人】（０００００２８９７）大日本印刷株式会社 (14,506)
【出願人】（３０１０２９４０３）独立行政法人家畜改良センター (12)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２２年９月１６日（２０１０．９．１６）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年２月３日（２０１０．２．３）
【出願人】（０００００２８９７）大日本印刷株式会社 (14,506)
【出願人】（３０１０２９４０３）独立行政法人家畜改良センター (12)
【Ｆターム（参考）】
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