細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法
【課題】
抗体産生細胞と腫瘍細胞のような異種細胞同士をできる限り無駄無く細胞融合させ、かつ融合した細胞をできる限り無駄なく回収し高い融合確率を得るための細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を提供する。
【解決の手段】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を用いる。
抗体産生細胞と腫瘍細胞のような異種細胞同士をできる限り無駄無く細胞融合させ、かつ融合した細胞をできる限り無駄なく回収し高い融合確率を得るための細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を提供する。
【解決の手段】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を用いる。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞融合を効率的に行うための細胞融合装置、およびそれを用いた細胞融合方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来より、異なる細胞同士を融合させ１つの交雑細胞とする細胞融合技術として、主にポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いる化学的細胞融合法が用いられているが、この方法では（ｉ）ＰＥＧは細胞に対して強い毒性を持っている、（ｉｉ）融合するにあたりＰＥＧの重合度、添加量などの最適な諸条件を見出すのに手間がかかる、（ｉｉｉ）融合に際して高度な技術が要求され、特定の技術に習熟した人にしか使えない、（ｉｖ）２細胞の接触は偶発的であり、２細胞一対での細胞融合の制御が困難なため細胞融合確率が極めて低い、等の解決すべき課題があった。
【０００３】
これに対して、電気的細胞融合法は、高度な技術が不要で、簡単に効率よく融合させることができ、細胞に与える毒性がなく、高活性をもったままの状態で細胞を融合させることができるという利点がある。電気的細胞融合法は、１９８１年西ドイツのＺｉｍｍｅｒｍａｎｎが確立したものであり、その原理は次の通りである。すなわち、平行電極間に交流電圧を印加し、そこに細胞を導入すると、細胞は電流密度の高い方へ引き寄せられ数珠状にならぶ。なお、細胞が数珠状にならんだ状態を一般にパールチェーンと呼ぶ。この状態で数μｓｅｃ〜数十μｓｅｃ単位のパルス電圧を電極間に印加することにより細胞膜の電気伝導度が瞬間的に低下し、脂質二重層により構成される細胞膜の可逆的乱れとその再構成が行われ、その結果、細胞融合が起こるものである。
【０００４】
上記の電気的融合法には、主に微小電極法と平行電極法が用いられているが、このうち微小電極法は、２細胞一対の融合を顕微鏡を見ながらマイクロマニュピレーターで細胞を拾い集めてはパルス電圧を印加する方法であり、極めて確実ではあるが、手間のかかる方法であり、その操作は熟練を要す上、大量の細胞を扱う上では実用的とはいえなかった。また平行電極法は、誘電泳動により複数の細胞を数珠状に配列形成させた後、パルス電圧を印加することによって融合させる方法であり、その取り扱いは簡単であるが、数珠状になった複数の細胞が融合するため化学的細胞融合法と同様に２細胞の接触は偶発的であり、２細胞一対での細胞融合の確実な制御が難しいという課題があった。
【０００５】
また、一般的な細胞融合は、目的とする抗体を産生してくれるが増殖能の無い抗体産生細胞と、抗体は産生しないが極めて増殖能のある癌細胞を細胞融合させ、目的とする抗体を産生しかつ極めて増殖能のある融合細胞により抗体を工業的に生産する目的で行われる。ここで、通常抗体産生細胞の直径は数〜５μｍ前後の大きさであり、癌細胞の直径は１０μｍ前後の大きさのものが多く、この直径の異なる２種の細胞を細胞融合させる際に、２種の異なった細胞同士が接触する確率を上げ、すなわち融合確率を上げるために、直径の小さい抗体産生細胞の数を、直径の大きい癌細胞の数よりも多く導入し細胞融合させている。実際逆に、直径の小さい抗体産生細胞の数を、直径の大きい癌細胞の数よりも少なく導入し細胞融合させた場合は、融合細胞はほとんど認められない。すなわち、上記従来の化学的細胞融合法及び電気的細胞融合法は、一般に、抗体産生細胞の数よりも癌細胞の数を２倍〜１０倍程度導入し細胞融合していた。しかしながら、このような細胞の導入を行うと、本来、抗体産生能力を有する抗体産生細胞の約半分〜９０％程度が無駄になってしまうという課題があった。なお、一般に抗体産生細胞は脾臓より取り出されることから脾臓細胞といわれることもある。また、一般に癌細胞はミエローマ細胞といわれることもある。
【０００６】
上記平行電極法の課題を解決するために、細胞融合用チャンバーの細胞融合領域に対向するように配置された導電部材よりなる一対の電極と、前記一対の電極間に配置され、且つ前記一対の電極方向に貫通した微細孔を有する絶縁体とよりなる細胞融合用チャンバーの例が報告されている（例えば、特許文献１参照）。
【０００７】
図１は上記例の細胞融合用チャンバーの断面図を示した概念図である。図１において、例えば樹脂材からなる細胞融合用チャンバーの細胞融合領域（１）の両側には、導電部材からなる電極（２）が配置され、これら電極は導電線（３）を介して外部に設けられた電源（４）と接続されている。外部に設けられた電源は電界の強さが約４００Ｖ／ｃｍ〜７００Ｖ／ｃｍ、周波数１ＭＨｚ程度の高周波交流電圧を出力する交流電源（５）と、約７ｋＶ／ｃｍ、パルス幅５０μｓｅｃ程度のパルス電圧を出力する直流パルス電源（６）と、電極と交流電源又は直流パルス電源の電気的接続を切替える為のスイッチ（７）とから構成されている。
【０００８】
ここで、交流電源から出力する交流電圧の波形は、特に断りがない限りは一般に正弦波の波形を用いる。細胞融合用チャンバーは、電気的に絶縁な材料、例えばシリコーン樹脂からなる絶縁体（８）により２つの空間に区分けされている。ここで、絶縁体には最小口径が１μｍ〜数十μｍの微細孔（９）が設けられている。また、細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）はそれぞれ細胞融合用チャンバーの細胞融合領域内の細胞懸濁液内におかれている。
【０００９】
上記例の動作を図２〜図４を用いて説明する。最初に、電源（４）の切替えスイッチ（７）を電界の強さが約４００Ｖ／ｃｍ〜７００Ｖ／ｃｍ、周波数１ＭＨｚの高周波電圧を出力する交流電源（５）に接続させる。この状態において電気力線（１２）は、図２に示すように微細孔（９）に集中する。細胞Ａ（１０）および細胞Ｂ（１１）は、ここに集中する電気力線（１２）のため誘電泳動力を受け、図３に示すように微細孔（９）の中心付近に固定される。ここで細胞Ａ（１０）と細胞Ｂ（１１）は出会い接触する。次に、電源（４）の切替えスイッチ（７）を直流パルス電源（６）に切替える。図３に示した状態におかれた細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）は、パルス電圧により細胞Ａ（１０）および細胞Ｂ（１１）の接触点で細胞膜の可逆的破壊が起こり、図４に示すように融合が生ずる。このようにすることで、微細孔において細胞Ａと細胞Ｂを２細胞一対で細胞融合させることができる。
【００１０】
しかしながら、前記特許文献１に記載された細胞融合チャンバーを用いて細胞融合を行う方法は、前記微細孔において２細胞一対を同時に固定することが難しいという課題があった。例えば、細胞Ａを微細孔に入れた後、さらに細胞Ｂを微細孔に入れるために細胞融合用チャンバー内に細胞Ｂを含有する細胞懸濁液を導入すると、導入する際の送液により、あらかじめ微細孔に固定しておいた細胞Ａが微細孔から脱離してしまう。また、細胞Ａと細胞Ｂを同時に微細孔に固定するには細胞懸濁液の送液に熟練を要し非常に困難であった。さらに、前記特許文献１に記載された方法により、複数の細胞を同時に細胞融合させるためには、例えば、絶縁体上にアレイ状に形成した複数の微細孔に、概ね同時に２細胞を一対ずつ固定する必要がある。ここでアレイ状とは、複数の微細孔の縦と横の間隔が概ね等間隔に配置されていることを意味する。しかしながら、交流電源を接続して細胞を微細孔に固定する際に、複数の細胞が集中して固定される微細孔や、細胞が全く固定されない微細孔があり、複数のアレイ状に形成された微細孔で目的とする２細胞一対の細胞融合を行うことが非常に難しいという課題があった。
【００１１】
一方、アレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ細胞を固定する方法の例が報告されている（例えば、特許文献２参照）。特許文献２記載の方法は、微細孔（特許文献２では、マイクロウエルと記載されている）の内径と深さがそれぞれ細胞（特許文献２では、被検体リンパ球と記載されている）の直径の１〜２倍の大きさの複数の微細孔に、複数の細胞を含む液を微細孔を覆うように加え、微細孔内に細胞が沈むのを待つ過程と、微細孔外の細胞を洗い流す洗浄の過程を繰り返し行うことで１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定している。
【００１２】
しかしながら、前記特許文献２に記載された方法により１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定する方法は、重力により細胞が沈むのを待つ時間が５分程度と長いこと、微細孔内に細胞が沈むのを待つ過程と微細孔外の細胞を洗い流す洗浄過程を繰り返す必要があり操作が煩雑な上さらに時間を要すること、微細孔に入らなかった細胞を洗い流す過程で細胞が失われる可能性があるため、細胞すべてを有効に使用することが難しいという課題があった。一般に、細胞融合を行う場合は、細胞の活性を維持するためにその処理時間はできる限り短いことが好ましく、また、細胞１つ１つが持つ特異性を見出すためには、できる限り細胞の喪失がないことが好ましい。
【００１３】
上記従来の技術における問題点や課題を解決するために、本発明者らは、後述する比較例に示した様に細胞融合用チャンバーの細胞融合領域に対向するように配置された導電部材よりなる一対の電極と、前記一対の電極間に配置され、且つ前記一対の電極方向に貫通した複数の微細孔を有する絶縁体よりなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合装置を用い、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、交流電圧を印加することで前記微細孔内に第１の細胞を固定した後、第２の細胞を導入して、前記第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、パルス電圧を印加することで細胞融合する方法を検討した。本検討において、融合させる細胞の大きさに対して微細孔の大きさを最適化し、細胞を微細孔に固定する際に印加する交流電圧の波形の形状を最適化することで、アレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を極めて容易に固定できることを見出し、２細胞１対を融合させ、１／１００００の融合確率を得た。これは、通常の電気的細胞融合法における融合確率０．２／１００００の５倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた（例えば、特許文献３参照）。
また、前述の細胞融合装置を用い、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、交流電圧を印加することで前記微細孔内に第１の細胞を固定した後、第２の細胞を導入して、前記第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合する方法を検討した。本検討において、融合させる細胞の大きさに対して微細孔の大きさを最適化し、細胞を微細孔に固定する際に印加する交流電圧の波形の形状を最適化することで、アレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を極めて容易に固定できることを見出し、２細胞１対を融合させ、０．５／１００００の融合確率を得た。これは、通常の化学的細胞融合法における融合確率０．１２／１００００の約４倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた（例えば、特許文献４参照）。
【００１４】
しかしながら、前述のいずれの細胞融合方法でも、融合した細胞を回収する際に、微細孔への細胞付着による細胞の取残しが一定の割合あり、結果として融合確率が低くなってしまうという課題があった。細胞の取残しを減らす手段の一つとして、細胞融合用チャンバーの細胞融合領域を洗い流す洗浄の過程を繰り返し行うことにより融合細胞の取り残しは若干減少するものの、細胞へのダメージが大きく、細胞の活性が低下したり、細胞が死滅する割合が高くなる。
従って、融合した細胞へのダメージが小さく、短時間（例えば、数秒程度）で細胞を微細孔から取り出し、また微細孔への細胞付着による細胞の取残しを飛躍的に下げることが課題となっていた。
【００１５】
【特許文献１】特公平７−４２１８号公報（図１）
【特許文献２】特許第３７２３８８２号公報（図１）
【特許文献３】特開２００７−２９５９１２公報
【特許文献４】特開２００７−２９５９２２公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明の目的は、かかる従来の実状に鑑みて提案されたものであり、抗体産生細胞と腫瘍細胞のような異種細胞同士をできる限り無駄無く細胞融合させ、かつ融合した細胞をできる限り無駄なく回収し高い融合確率を得るための細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明は上記課題を解決するものとして、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置を用いることにより、またこの細胞融合装置を用いた細胞融合方法により、上記の従来技術の課題を解決することができることを見出し、遂に本発明を完成するに至った。以下、本発明を詳細に説明する。
【００１８】
すなわち本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置である。
【００１９】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞融合用電源が直流パルス電圧を印加する直流パルス電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記直流パルス電源及び前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有する上記の細胞融合装置である。
【００２０】
また本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた化学的に細胞を融合する細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源および細胞取り出し用電源を有する、上記の細胞融合装置である。
【００２１】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有する、上記の細胞融合装置である。
【００２２】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満である上記の細胞融合装置である。
【００２３】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を微細孔に固定する波形を有する交流電圧が前記電極間に印加される上記の細胞融合装置である。
【００２４】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形を有する交流電圧を前記電極間に印加する上記の細胞融合装置である。
【００２５】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形である上記の細胞融合装置である。
【００２６】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、矩形波、台形波またはこれらを組み合わせた波形である上記の細胞融合装置である。
【００２７】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である上記の細胞融合装置である。
【００２８】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔が、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定できる形状である上記の細胞融合装置である。
【００２９】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満である、あるいは、前記微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが前記微細孔に固定する細胞の直径以下である上記の細胞融合装置である。
【００３０】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状である上記の細胞融合装置である。
【００３１】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、四辺形である上記の細胞融合装置である。
【００３２】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される複数の微細孔が、絶縁体の水平面においてアレイ状に形成されている上記の細胞融合装置である。
【００３３】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置において、前記絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、前記絶縁体の水平面において、隣り合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されている上記の細胞融合装置である。
【００３４】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置において、前記微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である上記の細胞融合装置である。
【００３５】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体の材質が親水性である上記の細胞融合装置である。
【００３６】
また本発明の細胞融合装置は、前記スペーサーが、細胞融合領域を形成する貫通孔を有する上記の細胞融合装置である。
【００３７】
また本発明の細胞融合装置は、前記スペーサーが、細胞を導入する導入流路および細胞を排出する排出流路を有する上記の細胞融合装置である。
【００３８】
また本発明の細胞融合方法は、前述した細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、前記切替機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え前記直流パルス電源を印加して細胞融合を行い、前記切替機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出す細胞融合方法である。
【００３９】
また本発明の細胞融合方法は、前述した細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出す細胞融合方法である。
【００４０】
また本発明の細胞融合方法は、上記記載の細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行う、上記の細胞融合方法である。
【００４１】
また本発明の細胞融合方法は、細胞を、ポリエチレングリコールを加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行う、上記の細胞融合方法である。
【００４２】
図５に本発明の細胞融合装置の概念図を示す。本発明に用いる細胞融合装置は大きく分けて、細胞融合容器（１３）と電源（４）から構成される。
【００４３】
細胞融合容器は、図５に示すように上部電極（１４）と下部電極（１５）の間に、スペーサー（１６）を配置し、微細孔（９）を形成した絶縁体（８）を下部電極の細胞融合領域側に配置した構造を有する。なお、図５は後述する図６の断面図に示すように、上部電極（１４）、スペーサー（１６）、絶縁体（８）および下部電極（１５）が密着する構造となっている。上部電極と下部電極の材質は導電部材であって化学的に安定な部材であればとくに制限はなく、白金、金、銅などの金属やステンレスなどの合金及び、ＩＴＯ（Ｉｎｄｉｕｍ Ｔｉｎ Ｏｘｉｄｅ：酸化インジウムスズ）等の透明導電性材料を成膜したガラス基板などでもよいが、細胞融合を観察するには、ＩＴＯなどの透明導電性材料を成膜したガラス基板を電極として用いることが好ましい。
【００４４】
上部電極と下部電極の面積には特に制限はないが、取り扱いやすいサイズとして、例えば、縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１ｍｍ程度のサイズが好ましい。
【００４５】
スペーサーは、上部電極と下部電極が直接接触しないように設けられ、かつ細胞融合容器に細胞懸濁液を入れておくスペースを確保するための細胞融合領域を形成する貫通孔を有しているものであり、その材質は絶縁材料であればよく、例えばガラス、セラミック、樹脂等がある。またスペーサーには、細胞融合容器に細胞を導入、排出するため、細胞を導入する導入流路とそれに連通する導入口（１７）と、細胞を排出する排出流路とそれに連通する排出口（１８）が設けられていてもよい。スペーサーのサイズは上部電極と下部電極が接触しなければ特に制限はないが、前記電極に合わせたサイズが好ましい。例えば、電極サイズが縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ程度であれば、スペーサーのサイズは例えば縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ程度が好ましい。細胞融合領域（１）を形成するスペーサーの内側の空間と厚みも特に制限はないが、細胞懸濁液を例えば数μＬ〜数ｍＬ程度入れる容量があればよく、例えば、スペーサーのサイズが縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ程度の場合、スペーサーの内側の空間は、縦２０ｍｍ×横２０ｍｍ程度であればよく、スペーサーの厚みは０．５〜２．０ｍｍ程度であればよい。
【００４６】
絶縁体（８）には微細孔（９）が形成されている。絶縁体（８）の材質は、例えばガラス、セラミック、樹脂等の絶縁材料であれば特に制限はないが、貫通した微細孔を形成させる必要があることから、樹脂等の比較的加工が容易な材料が好ましい。
【００４７】
また、絶縁体の材質は、細胞を絶縁体に形成した微細孔に引き寄せて固定することから、細胞と親和性のある材質が好ましく、一般的に、細胞の表面が親水性であることから、絶縁体の表面が親水性であることが好ましい。
【００４８】
ここで親水性とは、細胞融合を行う際に用いる細胞の懸濁液もしくは純水の親和性が高いことを意味し、一般的には、絶縁体の表面に前記懸濁液もしくは純水を滴下したときに形成される液滴と前記絶縁体の表面との接触角で示され、接触角が小さいほど絶縁体の表面と細胞懸濁液もしくは純水との親和性が高く、すなわち、細胞との親和性が高くなる。また、細胞の懸濁液とは、マンニトールやグルコース、スクロース等の糖類の水溶液及びその水溶液に塩化カルシウムや塩化マグネシウムなどの電解質やＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）等のタンパク質を含有した水溶液に融合させる細胞を含有させた懸濁液、または、マンニトールやグルコース、スクロース等の糖類の水溶液及びその水溶液に塩化カルシウムや塩化マグネシウムなどの電解質やＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）等のタンパク質と、ポリエチレングリコールのような細胞膜の流動性を高める化学物質を含有した水溶液に融合させる細胞を含有させた懸濁液を意味する。
【００４９】
親水性の比較的高い絶縁膜としては、ガラスや酸化チタン等があり、これらの材料を絶縁体として用いればよい。あるいは、樹脂等の親水性の低い材料を前記絶縁体に用いる場合は、親水化処理することにより絶縁体の表面を親水性に改質すればよい。ここで、絶縁体の表面を親水化処理する方法としては、プラズマ処理、化学修飾、タンパク質の物理吸着などによる修飾、或いはこれらの方法を任意に組み合わせた方法などが挙げられ、本発明において用いることができる。
【００５０】
ここで、絶縁体の表面のプラズマ処理とは、電子・イオン・ラジカルなどの活性種が存在する電気的に中性な電離気体（プラズマ）を絶縁体の表面に照射することにより、絶縁体の表面における有機汚染物の除去や化学結合状態を変化させ、絶縁体の表面を改質する処理である。プラズマ処理には、非重合性ガス（Ａｒ、Ｏ２など）を用いるプラズマ表面処理と有機モノマーを用いて絶縁体の表面を高分子薄膜でコーティング処理するプラズマ重合がある。プラズマ表面処理は、Ａｒなどの非反応性ガスによる表面架橋層の形成、Ｏ２などの反応性ガスによる官能基の導入などがあり、酸素プラズマ処理により−ＣＯＯＨや−ＣＯを導入し、絶縁体の表面の親水性を向上させることで細胞との親和性を高めることが可能である。
【００５１】
また、絶縁体の表面の化学修飾とは、水酸基やカルボキシル基、アミノ基、スルホン基などの親水基を有する誘導体やシランカップリング剤などを絶縁体の表面へ結合させることで親水化する方法である。シランカップリング剤は有機物とケイ素から構成される化合物であり、分子中に親水性を示す反応基（水酸基、カルボキシル基、アミノ基、スルホン基など）と、疎水性を示す（ビニル基、メチル基、エチル基、プロピル基など）の２種以上の異なった反応基を有している。そのため、シランカップリング剤の希薄溶液に疎水性の絶縁体を浸漬すれば、疎水性を示す反応基が疎水性の絶縁体の表面に化学的に結合し、親水性を示す反応基が絶縁体の表面を覆うため、絶縁体の表面を均一に親水化することが可能である。
【００５２】
さらに、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）などのタンパク質含有溶液に絶縁体を数分〜数時間を浸漬することで、タンパク質を物理吸着させ、絶縁体の表面を親水化することができる。
【００５３】
また親水性の評価方法としては、以下に記載する一般的な手法を用いた。すなわち、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定することによって絶縁体の表面の親水性を評価した。ここで、一般的に親水性の厳密な定義はないが、本発明における親水性とは、前記接触角が４５°以下、好ましくは３０°以下であると定義する。
【００５４】
樹脂に貫通した微細孔を形成する手段としては、形成する微細孔の位置にレーザーを照射する方法や、微細孔の位置に貫通孔を形成するためのピンを有する金型を用いて成形する方法などの既知の方法を用いればよい。また、絶縁体にＵＶ硬化性樹脂などを用いる場合は、微細孔に相当するパターンを描画した露光用フォトマスクを用いて一般的なフォトリソグラフィー（露光）とエッチング（現像）により貫通した微細孔を形成することができる。絶縁体に複数の微細孔を形成する場合は、絶縁体にＵＶ硬化性樹脂を用いて、一般的なフォトリソグラフィーとエッチングによる方法で微細孔を形成することが好ましい。なお図６は、図５の細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図を示した概略図である。上部電極（１４）、スペーサー（１６）、絶縁体（８）、下部電極（１５）を図６のように貼り合わせる手段としては、それぞれを接着剤で貼り合わせたり、加圧した状態で過熱して融着させたりする方法や、スペーサーを表面粘着性のあるＰＤＭＳ（ｐｏｌｙ−ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｉｌｏｘａｎｅ）やシリコンシートのような樹脂を用いて作製することで圧着することにより張り合わせる方法など、既知の方法を用いればよい。このようにすることで図６に示した細胞融合領域（１）を形成することができる。
【００５５】
細胞容器の上部電極と下部電極には導電線（３）を介して電源（４）が接続されている。電源（４）は細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。また前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上、より好ましくは５０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満、より好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが好ましい。
【００５６】
また本発明の細胞融合装置は、前述した絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、絶縁体の水平面において、隣り合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されていること、例えば絶縁体の面においてアレイ状に形成されていることが好ましい。ここでアレイ状とは、微細孔の縦と横の間隔が概ね等間隔に配置されていることを意味する。微細孔をアレイ状に配置することで、電極間に印加した電圧によって生じる電界がすべての微細孔に概ね均等に生じる。
【００５７】
また、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するためには、アレイ状に形成した微細孔の間隔が狭すぎても広すぎても不適当となることがある。微細孔の間隔が狭すぎる場合は、１つの微細孔につき複数の細胞が固定される確率が高くなり結果として細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなることがある。また、微細孔の間隔が広すぎる場合には、微細孔と微細孔の間に細胞が残されてしまい、細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなることがある。従ってより具体的には、微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れ固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であることが好ましく、さらには微細孔の間隔が固定する細胞の直径の１倍以上２倍以下程度であることがより好ましい。
【００５８】
以下では、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するための交流電圧の波形と微細孔の形状に関して説明する。ここで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するとは、１つの微細孔につき１つの細胞が固定されている割合が、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定されている、１つの微細孔につき細胞が固定されていない割合よりも大きい、あるいは１つの微細孔につき２以上の細胞が固定されておりかつ１つの微細孔につき細胞が固定されていない割合よりも大きいことのいずれかを意味する。
【００５９】
本発明の細胞融合装置は、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するため、前記交流電源により前記電極間に印加する交流電圧の波形が、電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形である細胞融合装置であって、好ましくは、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する波形であり、例えば、前記交流電圧の波形が、矩形波、台形波、またはこれらを組み合わせた波形である波形であり、さらに好ましくは、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である波形の交流電圧を印加する電源からなる細胞融合装置である。
【００６０】
また、本発明の細胞融合装置は、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状であることを特徴とする細胞融合装置であって、さらには、前記微細孔の平面形状が、四辺形である細胞融合装置である。また、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、あるいは、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が前記微細孔に固定する細胞の直径の１以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが前記微細孔に固定する細胞の直径の以下である細胞融合装置であり、その際、前記微細孔の隣り合う間隔が、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である細胞融合装置である。
【００６１】
以下では、交流電圧の波形について、図を用いてさらに説明する。
【００６２】
本発明の細胞融合装置に用いる交流電圧の波形は、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返すことが可能であれば特に制限はなく、図７にこの態様の交流電圧の波形の一例を示す。図７の交流電圧の波形の半周期であるＴ／２ごとに前記細胞の充電と放電が繰り返される。なお図７の場合、半周期ごとに電圧の極性の正と負が反転するため、半周期ごとに前記細胞が充電されたときに電荷の極性が正と負に反転する。
【００６３】
なお、本発明の細胞融合装置に用いる交流電圧の波形は、直流成分を有しないことが好ましい。これは、直流成分により発生した静電気力により細胞が特定の方向に偏った力を受けて移動するため誘電泳動力により細胞を微細孔に固定することが困難になることがあり、また細胞を含有する懸濁液に含まれるイオンが電極表面で電気反応を生じることで発熱が起こり、それにより細胞が熱運動を起こすため、誘電泳動力により細胞の動きを制御することができなくなり細胞を微細孔に引き寄せることが困難となることがあるためである。
【００６４】
また、より具体的には、本発明の細胞融合方法に用いる前記交流電圧の波形は、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する波形である。図７におけるＳ［ｓ］が電圧が一定時間変化しない時間である。本発明では、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間Ｓ［ｓ］が細胞の静電容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗Ｒ［Ω］の積からなる時定数τ［ｓ］以上であることが好ましいことから、Ｓ＞τ（＝Ｃ×Ｒ）の関係であることが好ましい。
【００６５】
なお、本発明における交流電圧の波形は図７に示す波形のみに限定されるものではなく、本発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能であることは言うまでもない。例えば、交流電圧の波形が、矩形波（図８）、台形波（図９）、またはこれらを組み合わせた波形（図１０）であってもよい。また、印加する電圧値や周波数は、細胞融合容器の電極間距離や、融合対象となる細胞の種類や大きさ、細胞を含有する細胞懸濁液の種類によって適切な値を設定すればよい。例えば、細胞融合容器の面積が２ｃｍ×２ｃｍ程度、電極間距離が１ｍｍ程度、融合対象の細胞が直径１０μｍ程度の細胞、懸濁腋の成分が３００ｍＭのマンニトール水溶液の場合、直径１０μｍ程度の細胞の静電容量は一般に１ｐＦ程度、面積２ｃｍ×２ｃｍ程度、電極間距離１ｍｍ程度の細胞融合容器に３００ｍＭのマンニトール水溶液を入れたときの抵抗値が５ｋΩ程度であることから、細胞の静電容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗Ｒ［Ω］の積からなる時定数τ［ｓ］は５ｎｓとなる。従って電極間に印加する交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が少なくとも５ｎｓだけ変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する交流電圧波形であることが好ましい。例えば、図８に示した矩形波交流電圧波形を用いた場合、Ｓの時間が５ｎｓより長くなる、すなわち、周波数が１００ＭＨｚ（＝１／（２×５ｎｓ））未満であることが好ましく、さらには電気的な取り扱いのしやすさや市販の信号発生器で容易に扱うことができることを考慮すると、周波数は１〜３ＭＨｚ程度の矩形波交流電圧波形が好ましい。またこの場合の矩形波交流電圧波形の電圧は、微細孔に細胞を引き寄せるのに十分な誘電泳動力を発生させるため、１０〜２０Ｖｐｐ程度であることが好ましい。なお、この例の条件の場合、微細孔に細胞が引き寄せられる時間は１〜５秒程度であり、瞬時に細胞を微細孔に固定することができる。
【００６６】
次に、上記態様の交流電圧の波形と上記態様の微細孔を用いた場合に、１つの微細孔につき概ね１つの細胞が固定される理由を図１１〜図２１を用いて説明する。
【００６７】
図１１〜図１３には本発明の細胞融合方法に用いる細胞融合装置において、微細孔に細胞が入る過程の概念図を示す。絶縁体（８）の厚みは細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）の直径と概ね等しく、微細孔の内径は細胞Ａ及び細胞Ｂの直径の１〜２倍の範囲であり、図１２に示すように微細孔Ａ（１９）に細胞Ａが入った後、図１３に示すように微細孔Ｂ（２０）に細胞Ｂが入る場合を想定している。図１４〜図１６には、それぞれ図１１〜図１３を電気的な等価回路で表現した図を示した。細胞を含有する細胞懸濁液は抵抗（抵抗値：５ｋΩ）、細胞はコンデンサー（容量：１ｐＦ）で表現することができる。
【００６８】
図１７に示す、周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波形の交流電圧を図７の上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に印加すると、図１１の微細孔において、微細孔Ａ（１９）の部分に示すように電気力線の集中が生じることで細胞に対して誘電泳動力が発生し、図１２に示すように細胞Ａ（１０）が微細孔Ａ（１９）に引き寄せられ、微細孔Ａに細胞Ａが固定され細胞Ａが微細孔Ａを塞ぐ。なお細胞は誘電泳動力以外にも重力及び電極からの静電気力によっても微細孔に誘導される。細胞Ａで塞がれた微細孔Ａの部分は、図１５に示すようにコンデンサーＡ（２１）と電気的に等価となる。図１７に示す電圧波形を印加した場合、図１５のコンデンサーＡにおける電圧波形を図１８、電流波形を図１９に示す。図１８のようにコンデンサーＡは細胞Ａの容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含む細胞懸濁液の抵抗値Ｒ［Ω］の積で求められる時定数τ［ｓ］（＝Ｃ×Ｒ）の時間を要して充電される。
【００６９】
なお、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以下が好ましいことから、τ＜１／２ｆを満たす周波数の矩形波交流電圧を用いる事が好ましい。コンデンサーＡが充電されると電流は流れなくなるため、図１９に示すように、コンデンサーＡに流れる電流は、時定数τの時間だけパルス状に電流が流れるものの、その後は電流が流れなくなり絶縁体と電気的に等価になる。このため細胞Ａの入った微細孔Ａでは、電気力線の集中が生じなくなり、微細孔Ａが新たに細胞を引き寄せる確率は低くなる。一方、微細孔Ｂには電気力線の集中が生じているため、細胞Ｂが誘電泳動力により引き寄せられ微細孔Ｂに細胞Ｂが固定され細胞Ｂが微細孔Ｂを塞ぐ。これを繰り返すことにより、空の微細孔につぎつぎと細胞が入っていくことで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することができる。
【００７０】
なお、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以下である場合、図１５におけるコンデンサーＡが十分充電されないため、コンデンサーＡに電流が流れ続け、細胞Ａが入った微細孔Ａにおいて引き続き電流が流れ電気力線の集中が生じる。よって、細胞Ｂは細胞Ａの入った微細孔Ａに引き寄せられる可能性があるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定される確率が高くなる。
【００７１】
次に、図２０に示す周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波形の交流電圧を印加すると、微細孔において電気力線の集中が生じることで細胞に対して誘電泳動力が発生し、細胞が誘電泳動力により微細孔に引き寄せられ、細胞Ａが微細孔Ａを塞ぐ。細胞Ａが塞いだ微細孔Ａの部分は、図１５に示すようにコンデンサーＡと等価となる。図２０に示す電圧波形を印加した場合、コンデンサーＡにおける電圧波形と電流波形を図２１に示す。図２１に示すように印加する交流電圧の波形が正弦波の場合は、正弦波の位相が９０度すすむだけで、正弦波の波形は変化しないため、細胞Ａが入った微細孔Ａにおいて引き続き電流が流れ、電気力線の集中が生じる。このため、細胞Ｂは細胞Ａの入った微細孔Ａに引き寄せられる可能性があるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定される確率が高くなる。従って、正弦波や三角波のように常に電圧が連続的に変化する交流電圧の波形では、複数の細胞が集中して固定される微細孔と、細胞が全く固定されない微細孔があり、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが難しくなることがある。なお、印加する電圧が直流の場合は、細胞を含有する細胞懸濁液に含まれるイオンが電極表面で電気反応を生じることで発熱が起こり、それにより細胞が熱運動を起こすため、誘電泳動力により細胞の動きを制御することができなくなり細胞を微細孔に引き寄せることが困難となることがある。
【００７２】
以下では、微細孔の形状について、図を用いてさらに説明する。
【００７３】
前述したように、微細孔の内径が細胞の直径より大きいと、細胞は微細孔を十分塞ぐことができず、電気力線の集中が発生し細胞が誘電泳動力により引き寄せられるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が入る確率が高くなる。２以上の細胞を微細孔に固定した状態で細胞融合を行う場合は、微細孔の直径が微細孔に固定する細胞の直径よりも大きくてもよい。しかしながら、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定した状態で細胞融合を行う場合は、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径は、微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、もしくは微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが微細孔に固定する細胞の直径の以下であることが好ましい。
【００７４】
図２２に示すように、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径未満の場合は、第１の細胞（２２）が微細孔の中に入らず、微細孔が形成される絶縁体の表面上に固定されるため、第２の細胞（２３）は微細孔の深さにかかわらず前記第１の細胞と接触するので微細孔の深さに特に制限はない。一方、図２４に示すように、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲である場合は、前記第１の細胞が微細孔の中に入るため、微細孔の深さが前記第１の細胞の直径より大きいと、前記第２の細胞が前記第１の細胞と接触できない場合があるため、図２３に示すように微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲である場合は微細孔の深さは微細孔に固定する細胞の直径以下であることが好ましい。
【００７５】
また、本発明の細胞融合装置は、前記微細孔（９）の平面形状が、１以上の角を有する形状である細胞融合装置であって、さらには、前記微細孔の平面形状が、四辺形である細胞融合装置である。ここで、角とは微細孔の形状を構成する２辺が鋭角あるいは鈍角で交わる部分であり、角の先端が若干丸みを帯びた形状も含む。図２６に、微細孔の平面形状が１以上の角を有する代表的な形状を示した。また、四辺形とは、前記微細孔の形状が前記角を４つ有しており、前記４つの角は、角の先端が若干丸みを帯びた形状なども含む。また、４本の辺は直線であってもよいし、４本全ての辺あるいは４本のうち任意の辺が微細孔の中心あるいは外側に向かって若干湾曲していてもよい。図２７に、本発明における四辺形の微細孔の形状の代表的な例を示した。
【００７６】
上述したように、微細孔の平面形状の一部に角が存在していれば、前記角の部分において電気力線の集中が生じ誘電泳動力が強くなり、より強い誘電泳動力で細胞が引き寄せられる結果、細胞が微細孔に固定される確率が向上する。角は微細孔に少なくとも１箇所存在すればよいが、複数存在していた方がより好ましい。しかしながら、角の形状は鈍角よりも鋭角の方が電気力線の集中が生じやすく誘電泳動力が強いため、五角形以上の多角形よりも四角形以下の多角形の方がより好ましい。また、四角形であれば特に制限はなく、例えば図２７に示すように台形や菱形、平行四辺形などの態様があるが、四辺形の微細孔の形状が４つの角を結ぶ辺の長さが４本とも概ね等しく、微細孔の中心において９０度の角度で点対称であれば、四辺形の微細孔の４つの辺に生じる誘電泳動力が４つとも等しく、４つの角に生じる誘電泳動力も４つとも等しくなり、微細孔の方向によらず微細孔の誘電泳動力の分布が点対称となるため、微細孔に対する細胞の位置によらず、偏りの少ない誘電泳動力を作用させることが可能となるため、微細孔の形状は図２７の（ａ）〜（ｄ）のような正方形あるいは正方形に近い形状であることがより好ましい。図２５には、微細孔の形状が正方形の場合の本発明における細胞融合装置の一例を示した。
【００７７】
さらに、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するためには、微細孔の間隔が狭すぎても広すぎても不適当となることがある。微細孔の間隔が狭すぎる場合は、１つの微細孔につき複数の細胞が固定される確率が高くなり結果として細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなる。また、微細孔の間隔が広すぎる場合には、微細孔と微細孔の間に細胞が残されてしまい、細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなる。従って具体的には、微細孔の間隔は、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下程度の範囲であることが好ましく、さらには微細孔の間隔が固定する細胞の直径の１倍以上２倍以下程度であることがより好ましい。
【００７８】
以上の理由から、本発明の細胞融合装置は、前記交流電源により前記電極間に印加する交流電圧の波形が、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形である。またより具体意的には、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形であり、例えば矩形波、台形波、またはこれらを組み合わせた波形であって、さらに好ましくは、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である細胞融合装置である。また、絶縁体を貫通する微細孔の平面形状に内接する最大円の直径は、微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、もしくは、微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ微細孔の深さが細胞の直径と以下であり、さらに複数の微細孔の隣り合う間隔が、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である。このようにすることで、絶縁体上にアレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが可能となる。また、前記絶縁体の表面を親水化処理することにより絶縁体の表面と細胞との親和性が増すことで、細胞が微細孔に寄りやすくなること、さらに絶縁体上の微細孔の平面形状が角を有することで、前記角部において電気力線の集中が生じることで誘電泳動力が大きくなりことで微細孔への細胞固定率を飛躍的向上させることが可能となり、より高い融合効率を得ることができる。
【００７９】
なお、本発明の細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法では、１つの微細孔に第１の細胞を固定した後、固定した第１の細胞のさらに上から第２の細胞を固定する。第２の細胞には誘電泳動力、重力、及び第１の細胞の静電気力が作用し第１の細胞と接触する。しかしながら、前述した理由により、微細孔を第１の細胞が塞いでしまうため電流が流れにくくなることで電気力線の発生が抑制され、第２の細胞に作用する誘電泳動力が弱くなる。従って、第２の細胞を、微細孔に固定した第１の細胞に１つずつ接触させる確率が低下する。しかしながら、第２の細胞の数を第１の細胞の数よりも多くし、細胞融合領域に過剰に導入することで、第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げることが可能である。
【００８０】
次に、図を用いて本発明の細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法に関してさらに詳細に説明する。
【００８１】
本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置である。
【００８２】
また、前記第１の交流電圧の波形は、上記記載の波形を有する交流電圧であることがより好ましい。第１の交流電圧の周波数は、細胞が微細孔に引き寄せられる周波数であれば特に制限はないが、さらには交流周波数が３０ｋＨｚ以上、より好ましくは５０ｋＨｚ以上であることが好ましい。また前記第２の交流電圧の波形は、特に制限はない。第２の交流電圧の周波数は、細胞が微細孔から引き離される周波数であれば特に制限はないが、さらには交流周波数が２０ｋＨｚ未満、より好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが好ましい。ここで、本発明の細胞融合方法の概略図を図２８〜３０に示す。
【００８３】
図２８〜３０には、いずれも第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さい例を示している。本発明の細胞融合方法においては、第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さいことが好ましいが、本質的には第１の細胞の直径が第２の細胞の直径と等しいか大きくてもよい。また、本発明の細胞融合方法は、第１の細胞と第２の細胞が微細孔表面の近傍で細胞融合することが好ましいが、本質的には微細孔の中で第１の細胞と第２の細胞を融合してもよく、図２８〜３０に示したいずれの態様以外であっても、発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能である。
【００８４】
図２８は、微細孔（９）の直径と深さが、第１の細胞（２２）の直径と概ね等しく第１の細胞がちょうど微細孔の中に入る程度の場合であり、図２９は、微細孔（９）の直径と深さが、第１の細胞（２２）の直径よりも大きい場合であり、図３０は、微細孔（９）の直径と深さが第１の細胞（２２）の直径よりも小さい場合である。いずれの場合も、第１の細胞の数よりも第２の細胞の数を多く細胞融合領域内に導入している。
【００８５】
本発明においては、第１の細胞の数よりも第２の細胞の数が多ければ特に制限はないが、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が１に近すぎると、あまり顕著な融合確率の向上が見られない。また、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が１０を超えても、融合確率の大幅な向上が見られず、第２の細胞の濃度が高くなりすぎて細胞の送液が難しくなる。従って、細胞の送液が容易であり、融合確率が効果的に向上する範囲として、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が２〜８程度であることが好ましい。
【００８６】
以下に本発明の細胞融合の態様が好ましい理由を説明する。本発明の最良の形態は、図２８に示す細胞融合の態様である。まず、第１の細胞（２２）として、直径の小さい細胞を細胞懸濁液（２４）とともに細胞融合領域（１）に導入し、第１の交流電源により前述した波形を有する交流電圧（５）を印加して１つの微細孔（９）につき第１の細胞１つを固定する。この場合、第１の細胞は主に正の誘電泳動力、重力、電極からの静電気力によって微細孔に誘導される。ここで正の誘電泳動力とは、細胞が微細孔の方向に向かって引き寄せられる様に働く力であって、第１の交流電源により印加される第１の交流電圧の周波数が５０ｋＨｚ以上の場合に、確実に細胞に正の誘電泳動力が働くことを本発明者らは見出した。
【００８７】
また微細孔の直径と深さは第１の細胞の直径と概ね等しく、第１の細胞がちょうど微細孔の中に入る。このようにすることで、微細孔の底面の電極面と第１の細胞に静電気力が発生し、第１の細胞は微細孔に確実に固定される。第１の細胞の数に特に制限はないが、第１の細胞を有効に使用することを考慮すると、微細孔の数と同等であることが好ましい。
【００８８】
次に、第２の細胞（２３）として、直径の大きい細胞を細胞懸濁液（２４）とともに細胞融合領域（１）に導入する。このとき、第１の細胞（２２）は電極との静電気力で固定されている上、周囲を微細孔（９）で囲まれているため、第２の細胞を送液することにより第１の細胞が微細孔から離脱することはほとんどない。導入された第２の細胞は、第１の交流電源により前述した波形を有する交流電圧（５）を印加することにより、微細孔に固定された第１の細胞の上から接触し固定される。この場合、第２の細胞には、微細孔での正の誘電泳動力も作用するが、主に重力、第１の細胞からの静電気力によって微細孔に固定された第１の細胞に誘導される。第２の細胞の数に特に制限はないが、第２の細胞を有効に使用することを考慮すると、微細孔の数と同等であることが好ましいが、微細孔の数よりも過剰に導入することで、第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げることが可能である。
【００８９】
次に、前記切替え機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え、細胞融合を行うための直流パルス電圧（６）を印加することで、微細孔において接触した第１の細胞と第２の細胞を２細胞一対で融合させ、融合細胞（２５）を得ることができる。その後、前記切替え機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧（５）を印加する。この場合、微細孔の中にある融合細胞には負の誘電泳動力が働く。ここで負の誘電泳動力とは、細胞が微細孔から引き離される方向に働く力であって、第２の交流電源により印加される第２の交流電圧の周波数が１０ｋＨｚ未満の場合に、確実に細胞に負の誘電泳動力が働くことを本発明者らは見出した。このようにすることで、前記細胞融合により融合した融合細胞を負の誘電泳動力を利用して強制的に微細孔の中から取り出すことが初めて可能となり、融合領域から融合細胞を取り出す際に、融合細胞を微細孔に残すことなく効率的に取り出すことが可能となる。従って上記のような細胞融合方法を用いることで、より効率的な２細胞１対の細胞融合と融合細胞の取り出しが可能となる。
【００９０】
ここで、ある周波数で正の誘電泳動力と負の誘電泳動力が切り換わる理由を説明する。本発明の微細孔における誘電泳動力は、細胞半径、交流電圧、細胞の誘電率、細胞懸濁液の誘電率により、一般に以下の式１で示される。
誘電泳動力∝（細胞半径）３×（細胞の誘電率−細胞懸濁液の誘電率）×（微細孔で集中した交流電圧の大きさ）２
・・・（式１）
ここで、一般に細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率は交流電圧の周波数に依存して変化する。よって、交流電圧の周波数を変化させたときの細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率の大小により誘電泳動力の符号が決まる。すなわち、交流電圧の周波数を変化させたとき、細胞の誘電率が細胞懸濁液の誘電率よりも大きくなれば正の誘電泳動力が働き、細胞の誘電率が細胞懸濁液の誘電率よりも小さくなれば負の誘電泳動力が働く。従って、理論的には、計算により細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率が等しくなる周波数を求めれば、その周波数がちょうど正の誘電泳動力と負の誘電泳動力が変化する境界の周波数（以下、境界周波数と称する。）となる。しかしながら、一般に細胞の誘電率や細胞懸濁液の誘電率を周波数ごとに測定することは難しいため、細胞の動く方向の変化で、境界周波数を実験的に決定することが多い。この境界周波数は、当然、取り扱う細胞の種類や細胞懸濁液の種類によって異なる。
【００９１】
従って、本発明では、第１の交流電圧の周波数は細胞が微細孔に引き寄せられる周波数であれば特に制限はなく、第２の交流電圧の周波数は細胞が微細孔から引き離される周波数であれば特に制限はない。例えば、本発明で用いたマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ及びその融合細胞は、交流周波数が３０ｋＨｚ以上で正の誘電泳動力が確実に働き、交流電圧の周波数が１０ｋＨｚ未満で負の誘電泳動力が確実に働く。
【００９２】
また本発明の細胞融合方法を電気的細胞融合法に適用した場合は、第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さいことがさらに好ましい。この理由を以下に説明する。
【００９３】
電気的細胞融合法の場合は、微細孔では電気力線の集中が生じるため、微細孔付近の電界強度は、図３１に示すように微細孔内の電極面の電界強度が最も高く、絶縁体の表面からもう一方の電極に向けて次第に電界強度が弱くなる。図３１は、一方の電極に任意の膜厚の絶縁体に任意の直径と深さを有する微細孔を１個配置し、電極間に任意の電圧を印加した場合の電界強度を有限要素法を用いて計算した。縦軸が電界強度を最大の電界強度で正規化した値であり、横軸は電極間の位置である。横軸の原点に絶縁体を配置した電極が存在している。絶縁体面は図中の点線で示した位置に相当し、横軸の原点から点線までの範囲が絶縁体厚に相当する。今回行った計算では、絶縁体の材質や厚み、微細孔の大きさや深さにあまり大きく依存せず、図３１に示すように微細孔内の電極面の電界強度は、絶縁体面の電界強度より約２０％程度高い結果となった。
【００９４】
一般に電気的細胞融合法は、前述したように、細胞融合させるためのパルス電圧を印加することで細胞膜の電気伝導度が瞬間的に低下し、脂質二重層から構成される細胞膜の可逆的乱れとその再構成が行われることで細胞融合させる。一般に細胞の直径が小さいほど細胞膜の可逆的乱れを生じさせるパルス電圧は高くなる。従って、直径の小さい細胞を第１の細胞として微細孔に入れ、直径の大きい細胞を第２の細胞として微細孔に固定された第１の細胞の上から固定すれば、印加するパルス電圧は同じでも、図３１に示すように、微細孔内の電界強度が微細孔表面の電界強度より高いために、微細孔内に固定された直径の小さい第１の細胞にはより高い電圧が印加され、微細孔表面に固定された直径の大きい第２の細胞には第１の細胞に印加される電圧よりも２０％程度低い電圧が印加される。このようにすることで、直径の異なる細胞を細胞融合させる場合の細胞膜の可逆的乱れを生じさせる電圧の違いをある程度キャンセルすることが可能となり、同一の融合電圧で直径の異なる細胞の細胞膜に同時に可逆的乱れを生じさせることが可能となり、さらに融合確率を高めることが可能となる。
【００９５】
また、前述したように微細孔に固定した第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げるため、第２の細胞の数を第１の細胞の数より多くし、細胞融合領域に過剰に導入した場合でも、図３１に示すように、電界強度は微細孔近傍で最も高く、微細孔から離れるに従って弱くなっていくため、パルス電圧を適切に調整することで、微細孔近傍で接触した第１の細胞と第２の細胞のみの細胞膜が可逆的乱れを生じ細胞融合する。従って、図２８〜図３０に示すように、微細孔近傍で接触した第１の細胞と第２の細胞のみを選択的に細胞融合させることが可能となる。
【００９６】
また、本発明の細胞融合装置は、細胞融合を行うための直流パルス電圧（６）を印加する代わりに、細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れ、化学的に細胞を融合する、化学的細胞融合方法を用いて細胞融合しても良い。
【００９７】
以下では、本発明の化学的に細胞を融合する細胞融合装置および細胞融合方法についてさらに詳細に説明する。
【００９８】
本発明の化学的細胞融合方法は、本発明の細胞融合装置を用いた化学的細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする化学的細胞融合法である。
【００９９】
ここで、化学的に細胞を融合する、すなわち化学的細胞融合法とは、ポリエチレングリコールのような細胞膜の流動性を高める化学物質を加えた懸濁液に細胞を入れて融合させることを意味し、一般に、細胞膜の流動性が高まった状態で細胞が接触すると膜融合が容易に起こることを利用した細胞融合の一つである。
【０１００】
また、本発明の細胞融合方法は、細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れ、本発明の細胞融合装置の細胞融合容器内にある微細孔にて２細胞を接触させ融合する細胞融合方法である。細胞膜の流動性が高まった状態で細胞が接触すると膜融合が容易に起こるので、前述したように微細孔において２細胞一対が接触すれば、２細胞一対での細胞融合が生じる。ここで、細胞膜の流動性を高める物質は、接触した細胞同士に膜融合を起こさせる物質であれば特に制限はないが、例えばポリエチレングリコールやリゾチウムなどがあり、特に、ポリエチレングリコールであることが好ましい。またさらに、平均分子量１０００〜６０００程度のポリエチレングリコールが好ましい。
【０１０１】
また、本発明の細胞融合方法は、第１の細胞より第２の細胞を多く導入してもよい。第１の細胞よりも第２の細胞を多く導入することは、第１の細胞が抗体産生細胞のように、抗体を産生するが増殖能の無い細胞であって数が限られており、第２の細胞が癌細胞のように極めて増殖能の高い細胞であって、人為的に無限に培養できる細胞である場合、数に限りある貴重な抗体産生細胞を無駄なく利用することができることから、特に本発明の細胞融合方法は有用である。
【発明の効果】
【０１０２】
本発明によれば、以下の効果を奏することができる。
（１）本発明の細胞融合装置においては、微細孔を形成した絶縁体を細胞融合領域側のどちらか一方の電極面上に配置することで、微細孔に細胞を確実に固定し、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行うことが可能となる。
（２）本発明の細胞融合装置においては、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、微細孔に固定する細胞の直径の１以上２倍未満の範囲であり、かつ微細孔の深さが、前記微細孔に固定する細胞の直径以下であり、このようにすることで、微細孔に確実に細胞を固定することができる。
（３）本発明の細胞融合装置においては、微細孔が絶縁体上に複数個、アレイ状に形成されており、このようにすることで、複数の微細孔に固定した２細胞一対の細胞を同時に細胞融合させることが可能となり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行うことが可能となる。
（４）本発明の細胞融合装置においては、微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であり、このようにすることで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定する確率を高めることができ、微細孔において２細胞を一対で接触させる確率を上げることが可能になる。
（５）本発明の細胞融合装置においては、第１の交流電源により電極間に印加する第１の交流電圧の波形と周波数を制御することで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが可能となる。
（６）本発明の細胞融合装置においては、第２の交流電源により電極間に印加する第２の交流電圧の周波数を制御することで、融合細胞を微細孔から確実に取り出すことが可能となる。
（７）本発明の細胞融合方法においては、上記記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、第１の交流電圧を印加することで微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、細胞融合領域内に第２の細胞を導入して、第１の交流電圧を印加することで第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、直流パルス電圧を印加して第１の細胞と第２の細胞を微細孔表面の近傍で細胞融合させ、第２の交流電圧を印加することで融合細胞を微細孔から取り出す細胞融合方法であり、前記第１の交流電圧は、前述した波形と周波数を有する第１の交流電圧であることが好ましく、前記第２の交流電圧は、前述した周波数を有する第２の交流電圧であることが好ましく、このようにすることで、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことが可能となる。
（８）本発明の細胞融合方法においては、上記記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、第１の交流電圧を印加することで微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、細胞融合領域内に第２の細胞を導入して、第１の交流電圧を印加することで第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合させ、第２の交流電圧を印加することで融合細胞を微細孔から取り出す細胞融合方法であり、前記第１の交流電圧は、前述した波形と周波数を有する第１の交流電圧であることが好ましく、前記第２の交流電圧は、前述した周波数を有する第２の交流電圧であることが好ましく、このようにすることで、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことが可能となる。
（９）本発明の細胞融合方法においては、第１の細胞の直径が、第２の細胞の直径よりも小さいものを用いるものであり、このようにすることで、直径の異なる細胞を細胞融合させる場合の細胞膜の可逆的乱れを生じさせる電圧の違いをある程度キャンセルすることが可能となる。
【実施例】
【０１０３】
以下、本発明を実施例により詳細に説明する。なお本発明は、これらの実施例のみに限定されるものではなく、発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能であることは言うまでもない。
【０１０４】
（実施例１）
図５に実施例１に用いた細胞融合装置の概念図を示した。細胞融合装置は大きく分けて、細胞融合容器（１３）と電源（４）から構成される。細胞融合容器は、図５に示すように上部電極（１４）と下部電極（１５）の間に、スペーサー（１６）を配置し、複数の微細孔をアレイ状に形成した絶縁体（８）をスペーサーと下部電極で挟んだ構造を有する。なお、本実施例では、後述するように一般的なフォトリソグラフィーにより、下部電極（１５）と複数の微細孔をアレイ状に形成した絶縁体（８）を一体形成した微細孔付き絶縁体一体型下部電極を用いた。
【０１０５】
上部電極と下部電極は、縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１ｍｍのパイレックス（登録商標）基板に、ＩＴＯを成膜（膜厚１５０ｎｍ）したものを用いた。スペーサーは、縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１．５ｍｍのシリコンシートの中央を縦２０ｍｍ×横２０ｍｍにくりぬいた形状にして用いた。また、図５に示すように、細胞が含有した細胞懸濁液を導入、排出するための導入口（１７）と排出口（１８）を設けた。複数の微細孔を有する絶縁体（８）は、図３２に示すフォトリソグラフィーとエッチングによる方法により下部電極に一体形成することで作製した。
【０１０６】
はじめに、ＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１０７】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１０８】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した細胞融合装置を用いて、後述する実験を行った。細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭの濃度のマンニトール水溶液に懸濁させ、マウス抗体産生細胞は０．７×１０６個／ｍＬ、マウスミエローマ細胞は０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。ここで、ＢＳＡは電圧印加による細胞へのダメージを軽減する役割を担う。また、両細胞懸濁液には、細胞融合での細胞膜の再生を促進するために、０．１ｍＭ濃度の塩化カルシウム、０．１ｍＭ濃度の塩化マグネシウムを添加した。
【０１０９】
上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。ここで細胞固定率とは、顕微鏡の視野に縦１５個×横１５個の２２５個の微細孔が見えるようにし、細胞を導入して固定したときの、１〜２個の細胞が入った微細孔数を２２５個の微細孔数で割った値で定義した。なお、以下の実施例２〜５及び比較例１〜２での細胞固定率も同じ定義である。
【０１１０】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であり、マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１１１】
次に、第１の交流電源を直流パルス電源（ネッパジーン株式会社製、ＬＦ１０１）に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後、細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地（Ｈ：ヒポキサンチン（ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ）、Ａ：アミノプテリン（ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎｅ）、Ｔ：チミジン（ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ）を成分とする培地）に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約５０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１．２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例１で示した負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない電気的細胞融合における融合確率１／１００００の１．２５倍の融合確率であり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことを確認することができた。
【０１１２】
（実施例２）
図２５に実施例２に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた一辺が７μｍの正方形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１１３】
次に、微細孔付き絶縁体の親水性を評価するため、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約４７°であった。そこで、微細孔付き絶縁体を親水化するために、微細孔付き絶縁体一体型下部電極をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭ濃度のマンニトール水溶液に約１時間浸し、絶縁体表面にＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた後、同様に、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約２７°であり、親水性が向上したことを確認した。
【０１１４】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１１５】
次に、実施例１で用いたマウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約８５％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりもさらに向上したことがわかった。
【０１１６】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約８０％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりもさらに向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約６８％（＝８５％×８０％）であると推定される。
【０１１７】
次に、第１の交流電源を直流パルス電源に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと、第２の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後、細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約１７０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約４．２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例１で示した負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない電気的細胞融合における融合確率１／１００００の約４．２５倍の融合確率であり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことを確認することができた。
【０１１８】
（比較例１）
図５に比較例に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１あるいは実施例２と同様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。
【０１１９】
また、電極間に電圧を印加する電源は、交流電源として信号発生器（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）、直流パルス電源として細胞融合用電源（ネッパジーン製、ＬＦ１０１）を導電線（３）を介して接続し、交流電源と直流パルス電源は切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。
【０１２０】
引き続き、実施例１と同じマウス抗体産生細胞（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、約２分間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウス抗体産生細胞を固定することができ、細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。
【０１２１】
続いて、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、実施例１で用いたマウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１２２】
次に、電源を直流パルス電源に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約４０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１／１００００の融合確率を得られた。
（実施例３）
実施例３では、実施例１と同じ細胞融合装置を用いた。図５に実施例１に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１２３】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１２４】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した細胞融合装置を用いて、後述する実験を行った。細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１２５】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。
【０１２６】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であり、マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１２７】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約２５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約０．６２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約１．３倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１２８】
（実施例４）
実施例３に用いた微細孔付き絶縁体の親水性を評価するために、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約４７°であった。そこで、微細孔付き絶縁体を親水化するために、微細孔付き絶縁体一体型下部電極をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭ濃度のマンニトール水溶液に約１時間浸し、絶縁体表面にＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた後、同様に、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約２７°であり、親水性が向上したことを確認した。
【０１２９】
このように親水化処理した微細孔付き絶縁体一体型下部電極を用いて、実施例３と同様に組み立てた細胞融合装置を用いて下記に示したように細胞融合を実施した。
【０１３０】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１３１】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約７０％であった。この結果から、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりも向上したことがわかった。
【０１３２】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約６５％であった。この結果から、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりも向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約４６％（＝７０％×６５％）であると推定される。
【０１３３】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約３７．５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約０．９４／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約１．９倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１３４】
（実施例５）
図２５に実施例５に用いた細胞融合装置を示した。微細孔の形状が、一辺が７μｍの正方形の微細孔パターンとなっている以外は、実施例４に用いた細胞融合装置と同じである。
【０１３５】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１３６】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約７５％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１さらには実施例２よりもさらに向上したことがわかった。
【０１３７】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約７０％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１さらには実施例２よりもさらに向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約５３％（＝７５％×７０％）であると推定される。
【０１３８】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約４５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１．１３／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約２．３倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１３９】
（比較例２）
図５に比較例２に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を２．５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、４５分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（８０℃、１５分）を行った。レジストにはキシレン系のネガタイプレジストを用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ７μｍの微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい２．５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１１５℃、３０分）を行いレジストを固めた。このようにして作製した上部電極（１４）、スペーサー（１６）、微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。シリコンシートの表面は粘着性があり、圧着することで各部品は密着し、細胞を含有した細胞懸濁液を漏れなく細胞融合容器の中に入れることができた。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源は、交流電源として信号発生器（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）を導電線（３）を介して接続した。
【０１４０】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１４１】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口よりシリンジを用いて注入し、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ、１〜２個のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウス抗体産生細胞が入る確率は３５％であった。
【０１４２】
続いて、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口よりシリンジを用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ、１つのマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウスミエローマ細胞が入る確率は５５％であった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確立は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１４３】
次に、この状態のまま１分間静置したあと細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、２０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して０．５／１００００の融合確率を得られた。
【０１４４】
（実施例６）
図５に実施例６に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ８．５μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１４５】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１４６】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した装置を用いて、後述する実験を行った。
実施例１で用いたマウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を１０秒間電極間に印加したところ、アレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１個のマウスミエローマ細胞が入る確率は約９１％であった。ここで細胞固定率とは、懸濁液を導入して顕微鏡の視野内に存在した１７４個のマウスミエローマ細胞のうち微細孔に固定された細胞数を、視野内細胞数の１７４個で割った値で定義した。電圧および矩形波交流電圧印加時間は上記のままで周波数だけを小さくする実験を行った。その結果、図３３のように５０ｋＨｚでは固定率は約８１％を示し、３０ｋＨｚで約５０％が固定された。しかし１０ｋＨｚではほとんど固定されなかった。この結果から、細胞固定用交流電源の交流周波数は３０ｋＨｚ以上、好ましくは５０ｋＨｚ以上が望ましいことを確認した。
また、同様に手法を用いて細胞脱離率の測定を行った。細胞脱離率とは、懸濁液を導入して第１の交流電源を用いて固定されたマウスミエローマ細胞のうち第２の交流電源に切替えた際微細孔から取り出されたマウスミエローマ細胞の細胞数を、固定された細胞数で割った値で定義した。第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数１０ｋＨｚの矩形波交流電圧を１０秒間電極間に印加したところ、アレイ状に形成した複数の微細孔に固定されていたマウスミエローマ細胞を取り出すことができた。このときの、マウスミエローマ細胞の脱離率は約１００％であった。電圧および矩形波交流電圧印加時間は上記のままで周波数だけを大きくする実験を行った。その結果、図３４のように１０ｋＨｚでは脱離率は約１００％を示し、２０ｋＨｚでは約５０％が脱離した。しかし１００ｋＨｚではほとんど脱離しなかった。この結果から、細胞取り出し用交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満、好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが望ましいことを確認した。
【図面の簡単な説明】
【０１４７】
【図１】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの断面図を示した概念図である。
【図２】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第１の図である。
【図３】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第２の図である。
【図４】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第３の図である。
【図５】本発明の細胞融合方法に用いる細胞融合装置の一例を示す概念図である。
【図６】図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図、及び図２５に示した細胞融合容器のＢ−Ｂ’断面図である。
【図７】本発明に用いる交流電圧の波形の一例である。
【図８】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、矩形波を示した図である。
【図９】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、台形波を示した図である。
【図１０】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、矩形波と台形波を組み合わせた波形を示した図である。
【図１１】本発明の細胞操作方法を説明する第１の図である。
【図１２】本発明の細胞操作方法を説明する第２の図である。
【図１３】本発明の細胞操作方法を説明する第３の図である。
【図１４】図１１を電気的な等価回路で表した図である。
【図１５】図１２を電気的な等価回路で表した図である。
【図１６】図１３を電気的な等価回路で表した図である。
【図１７】周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を示す図である。
【図１８】図１７に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１５のコンデンサーＡにおける電圧波形を示す図である。
【図１９】図１７に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１５のコンデンサーＡにおける電流波形を示す図である。
【図２０】周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波交流電圧の波形を示す図である。
【図２１】図２０に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１７のコンデンサーＡにおける電圧波形または電流波形を示す図である。
【図２２】本発明における、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径未満の場合の２細胞の接触を説明する概念図である。
【図２３】本発明における、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ、微細孔の深さが第１の細胞の直径より小さい場合の２細胞の接触を説明する概念図である。
【図２４】微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ、微細孔の深さが第１の細胞の直径より大きい場合、２細胞が接触できない事を説明する概念図である。
【図２５】本発明の第２の実施例に用いた細胞融合装置の概念図である。
【図２６】本発明における微細孔形状例の第１の図である。
【図２７】本発明における微細孔形状例の第２の図である。
【図２８】本発明の細胞融合方法の第１の例を示す図である。
【図２９】本発明の細胞融合方法の第２の例を示す図である。
【図３０】本発明の細胞融合方法の第３の例を示す図である。
【図３１】微細孔近傍の電界強度を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は電極面からの距離（任意単位）であり、Ｙ軸（縦軸）は電界強度（任意単位）である。
【図３２】一般的なフォトリソグラフィーとエッチング方法の概略図である。
【図３３】本発明の微細孔への細胞固定率と周波数の関係を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は交流電圧の周波数（単位はｋＨｚ）であり、Ｙ軸（縦軸）は細胞固定率（単位は％）である。
【図３４】本発明の微細孔への細胞脱離率と周波数の関係を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は交流電圧の周波数（単位はｋＨｚ）であり、Ｙ軸（縦軸）は細胞脱離率（単位は％）である。
【符号の説明】
【０１４８】
１：細胞融合領域
２：電極
３：導電線
４：電源
５：第１の交流電源
６：直流パルス電源
７：スイッチ
８：絶縁体
９：微細孔
１０：細胞Ａ
１１：細胞Ｂ
１２：電気力線
１３：細胞融合容器
１４：上部電極
１５：下部電極
１６：スペーサー
１７：導入口
１８：排出口
１９：微細孔Ａ
２０：微細孔Ｂ
２１：コンデンサーＡ
２２：第１の細胞
２３：第２の細胞
２４：細胞懸濁液
２５：融合細胞
２６：ＩＴＯ
２７：パイレックス（登録商標）ガラス
２８：レジスト
２９：露光用フォトマスク
３０：露光
３１：現像液
３２：微細孔付き絶縁体一体型下部電極
３３：抵抗
３４：第２の交流電源
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞融合を効率的に行うための細胞融合装置、およびそれを用いた細胞融合方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来より、異なる細胞同士を融合させ１つの交雑細胞とする細胞融合技術として、主にポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いる化学的細胞融合法が用いられているが、この方法では（ｉ）ＰＥＧは細胞に対して強い毒性を持っている、（ｉｉ）融合するにあたりＰＥＧの重合度、添加量などの最適な諸条件を見出すのに手間がかかる、（ｉｉｉ）融合に際して高度な技術が要求され、特定の技術に習熟した人にしか使えない、（ｉｖ）２細胞の接触は偶発的であり、２細胞一対での細胞融合の制御が困難なため細胞融合確率が極めて低い、等の解決すべき課題があった。
【０００３】
これに対して、電気的細胞融合法は、高度な技術が不要で、簡単に効率よく融合させることができ、細胞に与える毒性がなく、高活性をもったままの状態で細胞を融合させることができるという利点がある。電気的細胞融合法は、１９８１年西ドイツのＺｉｍｍｅｒｍａｎｎが確立したものであり、その原理は次の通りである。すなわち、平行電極間に交流電圧を印加し、そこに細胞を導入すると、細胞は電流密度の高い方へ引き寄せられ数珠状にならぶ。なお、細胞が数珠状にならんだ状態を一般にパールチェーンと呼ぶ。この状態で数μｓｅｃ〜数十μｓｅｃ単位のパルス電圧を電極間に印加することにより細胞膜の電気伝導度が瞬間的に低下し、脂質二重層により構成される細胞膜の可逆的乱れとその再構成が行われ、その結果、細胞融合が起こるものである。
【０００４】
上記の電気的融合法には、主に微小電極法と平行電極法が用いられているが、このうち微小電極法は、２細胞一対の融合を顕微鏡を見ながらマイクロマニュピレーターで細胞を拾い集めてはパルス電圧を印加する方法であり、極めて確実ではあるが、手間のかかる方法であり、その操作は熟練を要す上、大量の細胞を扱う上では実用的とはいえなかった。また平行電極法は、誘電泳動により複数の細胞を数珠状に配列形成させた後、パルス電圧を印加することによって融合させる方法であり、その取り扱いは簡単であるが、数珠状になった複数の細胞が融合するため化学的細胞融合法と同様に２細胞の接触は偶発的であり、２細胞一対での細胞融合の確実な制御が難しいという課題があった。
【０００５】
また、一般的な細胞融合は、目的とする抗体を産生してくれるが増殖能の無い抗体産生細胞と、抗体は産生しないが極めて増殖能のある癌細胞を細胞融合させ、目的とする抗体を産生しかつ極めて増殖能のある融合細胞により抗体を工業的に生産する目的で行われる。ここで、通常抗体産生細胞の直径は数〜５μｍ前後の大きさであり、癌細胞の直径は１０μｍ前後の大きさのものが多く、この直径の異なる２種の細胞を細胞融合させる際に、２種の異なった細胞同士が接触する確率を上げ、すなわち融合確率を上げるために、直径の小さい抗体産生細胞の数を、直径の大きい癌細胞の数よりも多く導入し細胞融合させている。実際逆に、直径の小さい抗体産生細胞の数を、直径の大きい癌細胞の数よりも少なく導入し細胞融合させた場合は、融合細胞はほとんど認められない。すなわち、上記従来の化学的細胞融合法及び電気的細胞融合法は、一般に、抗体産生細胞の数よりも癌細胞の数を２倍〜１０倍程度導入し細胞融合していた。しかしながら、このような細胞の導入を行うと、本来、抗体産生能力を有する抗体産生細胞の約半分〜９０％程度が無駄になってしまうという課題があった。なお、一般に抗体産生細胞は脾臓より取り出されることから脾臓細胞といわれることもある。また、一般に癌細胞はミエローマ細胞といわれることもある。
【０００６】
上記平行電極法の課題を解決するために、細胞融合用チャンバーの細胞融合領域に対向するように配置された導電部材よりなる一対の電極と、前記一対の電極間に配置され、且つ前記一対の電極方向に貫通した微細孔を有する絶縁体とよりなる細胞融合用チャンバーの例が報告されている（例えば、特許文献１参照）。
【０００７】
図１は上記例の細胞融合用チャンバーの断面図を示した概念図である。図１において、例えば樹脂材からなる細胞融合用チャンバーの細胞融合領域（１）の両側には、導電部材からなる電極（２）が配置され、これら電極は導電線（３）を介して外部に設けられた電源（４）と接続されている。外部に設けられた電源は電界の強さが約４００Ｖ／ｃｍ〜７００Ｖ／ｃｍ、周波数１ＭＨｚ程度の高周波交流電圧を出力する交流電源（５）と、約７ｋＶ／ｃｍ、パルス幅５０μｓｅｃ程度のパルス電圧を出力する直流パルス電源（６）と、電極と交流電源又は直流パルス電源の電気的接続を切替える為のスイッチ（７）とから構成されている。
【０００８】
ここで、交流電源から出力する交流電圧の波形は、特に断りがない限りは一般に正弦波の波形を用いる。細胞融合用チャンバーは、電気的に絶縁な材料、例えばシリコーン樹脂からなる絶縁体（８）により２つの空間に区分けされている。ここで、絶縁体には最小口径が１μｍ〜数十μｍの微細孔（９）が設けられている。また、細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）はそれぞれ細胞融合用チャンバーの細胞融合領域内の細胞懸濁液内におかれている。
【０００９】
上記例の動作を図２〜図４を用いて説明する。最初に、電源（４）の切替えスイッチ（７）を電界の強さが約４００Ｖ／ｃｍ〜７００Ｖ／ｃｍ、周波数１ＭＨｚの高周波電圧を出力する交流電源（５）に接続させる。この状態において電気力線（１２）は、図２に示すように微細孔（９）に集中する。細胞Ａ（１０）および細胞Ｂ（１１）は、ここに集中する電気力線（１２）のため誘電泳動力を受け、図３に示すように微細孔（９）の中心付近に固定される。ここで細胞Ａ（１０）と細胞Ｂ（１１）は出会い接触する。次に、電源（４）の切替えスイッチ（７）を直流パルス電源（６）に切替える。図３に示した状態におかれた細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）は、パルス電圧により細胞Ａ（１０）および細胞Ｂ（１１）の接触点で細胞膜の可逆的破壊が起こり、図４に示すように融合が生ずる。このようにすることで、微細孔において細胞Ａと細胞Ｂを２細胞一対で細胞融合させることができる。
【００１０】
しかしながら、前記特許文献１に記載された細胞融合チャンバーを用いて細胞融合を行う方法は、前記微細孔において２細胞一対を同時に固定することが難しいという課題があった。例えば、細胞Ａを微細孔に入れた後、さらに細胞Ｂを微細孔に入れるために細胞融合用チャンバー内に細胞Ｂを含有する細胞懸濁液を導入すると、導入する際の送液により、あらかじめ微細孔に固定しておいた細胞Ａが微細孔から脱離してしまう。また、細胞Ａと細胞Ｂを同時に微細孔に固定するには細胞懸濁液の送液に熟練を要し非常に困難であった。さらに、前記特許文献１に記載された方法により、複数の細胞を同時に細胞融合させるためには、例えば、絶縁体上にアレイ状に形成した複数の微細孔に、概ね同時に２細胞を一対ずつ固定する必要がある。ここでアレイ状とは、複数の微細孔の縦と横の間隔が概ね等間隔に配置されていることを意味する。しかしながら、交流電源を接続して細胞を微細孔に固定する際に、複数の細胞が集中して固定される微細孔や、細胞が全く固定されない微細孔があり、複数のアレイ状に形成された微細孔で目的とする２細胞一対の細胞融合を行うことが非常に難しいという課題があった。
【００１１】
一方、アレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ細胞を固定する方法の例が報告されている（例えば、特許文献２参照）。特許文献２記載の方法は、微細孔（特許文献２では、マイクロウエルと記載されている）の内径と深さがそれぞれ細胞（特許文献２では、被検体リンパ球と記載されている）の直径の１〜２倍の大きさの複数の微細孔に、複数の細胞を含む液を微細孔を覆うように加え、微細孔内に細胞が沈むのを待つ過程と、微細孔外の細胞を洗い流す洗浄の過程を繰り返し行うことで１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定している。
【００１２】
しかしながら、前記特許文献２に記載された方法により１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定する方法は、重力により細胞が沈むのを待つ時間が５分程度と長いこと、微細孔内に細胞が沈むのを待つ過程と微細孔外の細胞を洗い流す洗浄過程を繰り返す必要があり操作が煩雑な上さらに時間を要すること、微細孔に入らなかった細胞を洗い流す過程で細胞が失われる可能性があるため、細胞すべてを有効に使用することが難しいという課題があった。一般に、細胞融合を行う場合は、細胞の活性を維持するためにその処理時間はできる限り短いことが好ましく、また、細胞１つ１つが持つ特異性を見出すためには、できる限り細胞の喪失がないことが好ましい。
【００１３】
上記従来の技術における問題点や課題を解決するために、本発明者らは、後述する比較例に示した様に細胞融合用チャンバーの細胞融合領域に対向するように配置された導電部材よりなる一対の電極と、前記一対の電極間に配置され、且つ前記一対の電極方向に貫通した複数の微細孔を有する絶縁体よりなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合装置を用い、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、交流電圧を印加することで前記微細孔内に第１の細胞を固定した後、第２の細胞を導入して、前記第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、パルス電圧を印加することで細胞融合する方法を検討した。本検討において、融合させる細胞の大きさに対して微細孔の大きさを最適化し、細胞を微細孔に固定する際に印加する交流電圧の波形の形状を最適化することで、アレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を極めて容易に固定できることを見出し、２細胞１対を融合させ、１／１００００の融合確率を得た。これは、通常の電気的細胞融合法における融合確率０．２／１００００の５倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた（例えば、特許文献３参照）。
また、前述の細胞融合装置を用い、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、交流電圧を印加することで前記微細孔内に第１の細胞を固定した後、第２の細胞を導入して、前記第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合する方法を検討した。本検討において、融合させる細胞の大きさに対して微細孔の大きさを最適化し、細胞を微細孔に固定する際に印加する交流電圧の波形の形状を最適化することで、アレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を極めて容易に固定できることを見出し、２細胞１対を融合させ、０．５／１００００の融合確率を得た。これは、通常の化学的細胞融合法における融合確率０．１２／１００００の約４倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた（例えば、特許文献４参照）。
【００１４】
しかしながら、前述のいずれの細胞融合方法でも、融合した細胞を回収する際に、微細孔への細胞付着による細胞の取残しが一定の割合あり、結果として融合確率が低くなってしまうという課題があった。細胞の取残しを減らす手段の一つとして、細胞融合用チャンバーの細胞融合領域を洗い流す洗浄の過程を繰り返し行うことにより融合細胞の取り残しは若干減少するものの、細胞へのダメージが大きく、細胞の活性が低下したり、細胞が死滅する割合が高くなる。
従って、融合した細胞へのダメージが小さく、短時間（例えば、数秒程度）で細胞を微細孔から取り出し、また微細孔への細胞付着による細胞の取残しを飛躍的に下げることが課題となっていた。
【００１５】
【特許文献１】特公平７−４２１８号公報（図１）
【特許文献２】特許第３７２３８８２号公報（図１）
【特許文献３】特開２００７−２９５９１２公報
【特許文献４】特開２００７−２９５９２２公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明の目的は、かかる従来の実状に鑑みて提案されたものであり、抗体産生細胞と腫瘍細胞のような異種細胞同士をできる限り無駄無く細胞融合させ、かつ融合した細胞をできる限り無駄なく回収し高い融合確率を得るための細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明は上記課題を解決するものとして、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置を用いることにより、またこの細胞融合装置を用いた細胞融合方法により、上記の従来技術の課題を解決することができることを見出し、遂に本発明を完成するに至った。以下、本発明を詳細に説明する。
【００１８】
すなわち本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置である。
【００１９】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞融合用電源が直流パルス電圧を印加する直流パルス電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記直流パルス電源及び前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有する上記の細胞融合装置である。
【００２０】
また本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた化学的に細胞を融合する細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源および細胞取り出し用電源を有する、上記の細胞融合装置である。
【００２１】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有する、上記の細胞融合装置である。
【００２２】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満である上記の細胞融合装置である。
【００２３】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を微細孔に固定する波形を有する交流電圧が前記電極間に印加される上記の細胞融合装置である。
【００２４】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形を有する交流電圧を前記電極間に印加する上記の細胞融合装置である。
【００２５】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形である上記の細胞融合装置である。
【００２６】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、矩形波、台形波またはこれらを組み合わせた波形である上記の細胞融合装置である。
【００２７】
また本発明の細胞融合装置は、前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である上記の細胞融合装置である。
【００２８】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔が、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定できる形状である上記の細胞融合装置である。
【００２９】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満である、あるいは、前記微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが前記微細孔に固定する細胞の直径以下である上記の細胞融合装置である。
【００３０】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状である上記の細胞融合装置である。
【００３１】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置が備えた前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、四辺形である上記の細胞融合装置である。
【００３２】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体に形成される複数の微細孔が、絶縁体の水平面においてアレイ状に形成されている上記の細胞融合装置である。
【００３３】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置において、前記絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、前記絶縁体の水平面において、隣り合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されている上記の細胞融合装置である。
【００３４】
また本発明の細胞融合装置は、前述した細胞融合装置において、前記微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である上記の細胞融合装置である。
【００３５】
また本発明の細胞融合装置は、前記絶縁体の材質が親水性である上記の細胞融合装置である。
【００３６】
また本発明の細胞融合装置は、前記スペーサーが、細胞融合領域を形成する貫通孔を有する上記の細胞融合装置である。
【００３７】
また本発明の細胞融合装置は、前記スペーサーが、細胞を導入する導入流路および細胞を排出する排出流路を有する上記の細胞融合装置である。
【００３８】
また本発明の細胞融合方法は、前述した細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、前記切替機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え前記直流パルス電源を印加して細胞融合を行い、前記切替機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出す細胞融合方法である。
【００３９】
また本発明の細胞融合方法は、前述した細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出す細胞融合方法である。
【００４０】
また本発明の細胞融合方法は、上記記載の細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行う、上記の細胞融合方法である。
【００４１】
また本発明の細胞融合方法は、細胞を、ポリエチレングリコールを加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行う、上記の細胞融合方法である。
【００４２】
図５に本発明の細胞融合装置の概念図を示す。本発明に用いる細胞融合装置は大きく分けて、細胞融合容器（１３）と電源（４）から構成される。
【００４３】
細胞融合容器は、図５に示すように上部電極（１４）と下部電極（１５）の間に、スペーサー（１６）を配置し、微細孔（９）を形成した絶縁体（８）を下部電極の細胞融合領域側に配置した構造を有する。なお、図５は後述する図６の断面図に示すように、上部電極（１４）、スペーサー（１６）、絶縁体（８）および下部電極（１５）が密着する構造となっている。上部電極と下部電極の材質は導電部材であって化学的に安定な部材であればとくに制限はなく、白金、金、銅などの金属やステンレスなどの合金及び、ＩＴＯ（Ｉｎｄｉｕｍ Ｔｉｎ Ｏｘｉｄｅ：酸化インジウムスズ）等の透明導電性材料を成膜したガラス基板などでもよいが、細胞融合を観察するには、ＩＴＯなどの透明導電性材料を成膜したガラス基板を電極として用いることが好ましい。
【００４４】
上部電極と下部電極の面積には特に制限はないが、取り扱いやすいサイズとして、例えば、縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１ｍｍ程度のサイズが好ましい。
【００４５】
スペーサーは、上部電極と下部電極が直接接触しないように設けられ、かつ細胞融合容器に細胞懸濁液を入れておくスペースを確保するための細胞融合領域を形成する貫通孔を有しているものであり、その材質は絶縁材料であればよく、例えばガラス、セラミック、樹脂等がある。またスペーサーには、細胞融合容器に細胞を導入、排出するため、細胞を導入する導入流路とそれに連通する導入口（１７）と、細胞を排出する排出流路とそれに連通する排出口（１８）が設けられていてもよい。スペーサーのサイズは上部電極と下部電極が接触しなければ特に制限はないが、前記電極に合わせたサイズが好ましい。例えば、電極サイズが縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ程度であれば、スペーサーのサイズは例えば縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ程度が好ましい。細胞融合領域（１）を形成するスペーサーの内側の空間と厚みも特に制限はないが、細胞懸濁液を例えば数μＬ〜数ｍＬ程度入れる容量があればよく、例えば、スペーサーのサイズが縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ程度の場合、スペーサーの内側の空間は、縦２０ｍｍ×横２０ｍｍ程度であればよく、スペーサーの厚みは０．５〜２．０ｍｍ程度であればよい。
【００４６】
絶縁体（８）には微細孔（９）が形成されている。絶縁体（８）の材質は、例えばガラス、セラミック、樹脂等の絶縁材料であれば特に制限はないが、貫通した微細孔を形成させる必要があることから、樹脂等の比較的加工が容易な材料が好ましい。
【００４７】
また、絶縁体の材質は、細胞を絶縁体に形成した微細孔に引き寄せて固定することから、細胞と親和性のある材質が好ましく、一般的に、細胞の表面が親水性であることから、絶縁体の表面が親水性であることが好ましい。
【００４８】
ここで親水性とは、細胞融合を行う際に用いる細胞の懸濁液もしくは純水の親和性が高いことを意味し、一般的には、絶縁体の表面に前記懸濁液もしくは純水を滴下したときに形成される液滴と前記絶縁体の表面との接触角で示され、接触角が小さいほど絶縁体の表面と細胞懸濁液もしくは純水との親和性が高く、すなわち、細胞との親和性が高くなる。また、細胞の懸濁液とは、マンニトールやグルコース、スクロース等の糖類の水溶液及びその水溶液に塩化カルシウムや塩化マグネシウムなどの電解質やＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）等のタンパク質を含有した水溶液に融合させる細胞を含有させた懸濁液、または、マンニトールやグルコース、スクロース等の糖類の水溶液及びその水溶液に塩化カルシウムや塩化マグネシウムなどの電解質やＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）等のタンパク質と、ポリエチレングリコールのような細胞膜の流動性を高める化学物質を含有した水溶液に融合させる細胞を含有させた懸濁液を意味する。
【００４９】
親水性の比較的高い絶縁膜としては、ガラスや酸化チタン等があり、これらの材料を絶縁体として用いればよい。あるいは、樹脂等の親水性の低い材料を前記絶縁体に用いる場合は、親水化処理することにより絶縁体の表面を親水性に改質すればよい。ここで、絶縁体の表面を親水化処理する方法としては、プラズマ処理、化学修飾、タンパク質の物理吸着などによる修飾、或いはこれらの方法を任意に組み合わせた方法などが挙げられ、本発明において用いることができる。
【００５０】
ここで、絶縁体の表面のプラズマ処理とは、電子・イオン・ラジカルなどの活性種が存在する電気的に中性な電離気体（プラズマ）を絶縁体の表面に照射することにより、絶縁体の表面における有機汚染物の除去や化学結合状態を変化させ、絶縁体の表面を改質する処理である。プラズマ処理には、非重合性ガス（Ａｒ、Ｏ２など）を用いるプラズマ表面処理と有機モノマーを用いて絶縁体の表面を高分子薄膜でコーティング処理するプラズマ重合がある。プラズマ表面処理は、Ａｒなどの非反応性ガスによる表面架橋層の形成、Ｏ２などの反応性ガスによる官能基の導入などがあり、酸素プラズマ処理により−ＣＯＯＨや−ＣＯを導入し、絶縁体の表面の親水性を向上させることで細胞との親和性を高めることが可能である。
【００５１】
また、絶縁体の表面の化学修飾とは、水酸基やカルボキシル基、アミノ基、スルホン基などの親水基を有する誘導体やシランカップリング剤などを絶縁体の表面へ結合させることで親水化する方法である。シランカップリング剤は有機物とケイ素から構成される化合物であり、分子中に親水性を示す反応基（水酸基、カルボキシル基、アミノ基、スルホン基など）と、疎水性を示す（ビニル基、メチル基、エチル基、プロピル基など）の２種以上の異なった反応基を有している。そのため、シランカップリング剤の希薄溶液に疎水性の絶縁体を浸漬すれば、疎水性を示す反応基が疎水性の絶縁体の表面に化学的に結合し、親水性を示す反応基が絶縁体の表面を覆うため、絶縁体の表面を均一に親水化することが可能である。
【００５２】
さらに、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）などのタンパク質含有溶液に絶縁体を数分〜数時間を浸漬することで、タンパク質を物理吸着させ、絶縁体の表面を親水化することができる。
【００５３】
また親水性の評価方法としては、以下に記載する一般的な手法を用いた。すなわち、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定することによって絶縁体の表面の親水性を評価した。ここで、一般的に親水性の厳密な定義はないが、本発明における親水性とは、前記接触角が４５°以下、好ましくは３０°以下であると定義する。
【００５４】
樹脂に貫通した微細孔を形成する手段としては、形成する微細孔の位置にレーザーを照射する方法や、微細孔の位置に貫通孔を形成するためのピンを有する金型を用いて成形する方法などの既知の方法を用いればよい。また、絶縁体にＵＶ硬化性樹脂などを用いる場合は、微細孔に相当するパターンを描画した露光用フォトマスクを用いて一般的なフォトリソグラフィー（露光）とエッチング（現像）により貫通した微細孔を形成することができる。絶縁体に複数の微細孔を形成する場合は、絶縁体にＵＶ硬化性樹脂を用いて、一般的なフォトリソグラフィーとエッチングによる方法で微細孔を形成することが好ましい。なお図６は、図５の細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図を示した概略図である。上部電極（１４）、スペーサー（１６）、絶縁体（８）、下部電極（１５）を図６のように貼り合わせる手段としては、それぞれを接着剤で貼り合わせたり、加圧した状態で過熱して融着させたりする方法や、スペーサーを表面粘着性のあるＰＤＭＳ（ｐｏｌｙ−ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｉｌｏｘａｎｅ）やシリコンシートのような樹脂を用いて作製することで圧着することにより張り合わせる方法など、既知の方法を用いればよい。このようにすることで図６に示した細胞融合領域（１）を形成することができる。
【００５５】
細胞容器の上部電極と下部電極には導電線（３）を介して電源（４）が接続されている。電源（４）は細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。また前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上、より好ましくは５０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満、より好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが好ましい。
【００５６】
また本発明の細胞融合装置は、前述した絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、絶縁体の水平面において、隣り合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されていること、例えば絶縁体の面においてアレイ状に形成されていることが好ましい。ここでアレイ状とは、微細孔の縦と横の間隔が概ね等間隔に配置されていることを意味する。微細孔をアレイ状に配置することで、電極間に印加した電圧によって生じる電界がすべての微細孔に概ね均等に生じる。
【００５７】
また、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するためには、アレイ状に形成した微細孔の間隔が狭すぎても広すぎても不適当となることがある。微細孔の間隔が狭すぎる場合は、１つの微細孔につき複数の細胞が固定される確率が高くなり結果として細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなることがある。また、微細孔の間隔が広すぎる場合には、微細孔と微細孔の間に細胞が残されてしまい、細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなることがある。従ってより具体的には、微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れ固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であることが好ましく、さらには微細孔の間隔が固定する細胞の直径の１倍以上２倍以下程度であることがより好ましい。
【００５８】
以下では、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するための交流電圧の波形と微細孔の形状に関して説明する。ここで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するとは、１つの微細孔につき１つの細胞が固定されている割合が、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定されている、１つの微細孔につき細胞が固定されていない割合よりも大きい、あるいは１つの微細孔につき２以上の細胞が固定されておりかつ１つの微細孔につき細胞が固定されていない割合よりも大きいことのいずれかを意味する。
【００５９】
本発明の細胞融合装置は、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するため、前記交流電源により前記電極間に印加する交流電圧の波形が、電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形である細胞融合装置であって、好ましくは、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する波形であり、例えば、前記交流電圧の波形が、矩形波、台形波、またはこれらを組み合わせた波形である波形であり、さらに好ましくは、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である波形の交流電圧を印加する電源からなる細胞融合装置である。
【００６０】
また、本発明の細胞融合装置は、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状であることを特徴とする細胞融合装置であって、さらには、前記微細孔の平面形状が、四辺形である細胞融合装置である。また、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、あるいは、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が前記微細孔に固定する細胞の直径の１以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが前記微細孔に固定する細胞の直径の以下である細胞融合装置であり、その際、前記微細孔の隣り合う間隔が、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である細胞融合装置である。
【００６１】
以下では、交流電圧の波形について、図を用いてさらに説明する。
【００６２】
本発明の細胞融合装置に用いる交流電圧の波形は、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返すことが可能であれば特に制限はなく、図７にこの態様の交流電圧の波形の一例を示す。図７の交流電圧の波形の半周期であるＴ／２ごとに前記細胞の充電と放電が繰り返される。なお図７の場合、半周期ごとに電圧の極性の正と負が反転するため、半周期ごとに前記細胞が充電されたときに電荷の極性が正と負に反転する。
【００６３】
なお、本発明の細胞融合装置に用いる交流電圧の波形は、直流成分を有しないことが好ましい。これは、直流成分により発生した静電気力により細胞が特定の方向に偏った力を受けて移動するため誘電泳動力により細胞を微細孔に固定することが困難になることがあり、また細胞を含有する懸濁液に含まれるイオンが電極表面で電気反応を生じることで発熱が起こり、それにより細胞が熱運動を起こすため、誘電泳動力により細胞の動きを制御することができなくなり細胞を微細孔に引き寄せることが困難となることがあるためである。
【００６４】
また、より具体的には、本発明の細胞融合方法に用いる前記交流電圧の波形は、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する波形である。図７におけるＳ［ｓ］が電圧が一定時間変化しない時間である。本発明では、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間Ｓ［ｓ］が細胞の静電容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗Ｒ［Ω］の積からなる時定数τ［ｓ］以上であることが好ましいことから、Ｓ＞τ（＝Ｃ×Ｒ）の関係であることが好ましい。
【００６５】
なお、本発明における交流電圧の波形は図７に示す波形のみに限定されるものではなく、本発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能であることは言うまでもない。例えば、交流電圧の波形が、矩形波（図８）、台形波（図９）、またはこれらを組み合わせた波形（図１０）であってもよい。また、印加する電圧値や周波数は、細胞融合容器の電極間距離や、融合対象となる細胞の種類や大きさ、細胞を含有する細胞懸濁液の種類によって適切な値を設定すればよい。例えば、細胞融合容器の面積が２ｃｍ×２ｃｍ程度、電極間距離が１ｍｍ程度、融合対象の細胞が直径１０μｍ程度の細胞、懸濁腋の成分が３００ｍＭのマンニトール水溶液の場合、直径１０μｍ程度の細胞の静電容量は一般に１ｐＦ程度、面積２ｃｍ×２ｃｍ程度、電極間距離１ｍｍ程度の細胞融合容器に３００ｍＭのマンニトール水溶液を入れたときの抵抗値が５ｋΩ程度であることから、細胞の静電容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗Ｒ［Ω］の積からなる時定数τ［ｓ］は５ｎｓとなる。従って電極間に印加する交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が少なくとも５ｎｓだけ変化しない時間を半周期内に少なくとも１以上有する交流電圧波形であることが好ましい。例えば、図８に示した矩形波交流電圧波形を用いた場合、Ｓの時間が５ｎｓより長くなる、すなわち、周波数が１００ＭＨｚ（＝１／（２×５ｎｓ））未満であることが好ましく、さらには電気的な取り扱いのしやすさや市販の信号発生器で容易に扱うことができることを考慮すると、周波数は１〜３ＭＨｚ程度の矩形波交流電圧波形が好ましい。またこの場合の矩形波交流電圧波形の電圧は、微細孔に細胞を引き寄せるのに十分な誘電泳動力を発生させるため、１０〜２０Ｖｐｐ程度であることが好ましい。なお、この例の条件の場合、微細孔に細胞が引き寄せられる時間は１〜５秒程度であり、瞬時に細胞を微細孔に固定することができる。
【００６６】
次に、上記態様の交流電圧の波形と上記態様の微細孔を用いた場合に、１つの微細孔につき概ね１つの細胞が固定される理由を図１１〜図２１を用いて説明する。
【００６７】
図１１〜図１３には本発明の細胞融合方法に用いる細胞融合装置において、微細孔に細胞が入る過程の概念図を示す。絶縁体（８）の厚みは細胞Ａ（１０）及び細胞Ｂ（１１）の直径と概ね等しく、微細孔の内径は細胞Ａ及び細胞Ｂの直径の１〜２倍の範囲であり、図１２に示すように微細孔Ａ（１９）に細胞Ａが入った後、図１３に示すように微細孔Ｂ（２０）に細胞Ｂが入る場合を想定している。図１４〜図１６には、それぞれ図１１〜図１３を電気的な等価回路で表現した図を示した。細胞を含有する細胞懸濁液は抵抗（抵抗値：５ｋΩ）、細胞はコンデンサー（容量：１ｐＦ）で表現することができる。
【００６８】
図１７に示す、周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波形の交流電圧を図７の上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に印加すると、図１１の微細孔において、微細孔Ａ（１９）の部分に示すように電気力線の集中が生じることで細胞に対して誘電泳動力が発生し、図１２に示すように細胞Ａ（１０）が微細孔Ａ（１９）に引き寄せられ、微細孔Ａに細胞Ａが固定され細胞Ａが微細孔Ａを塞ぐ。なお細胞は誘電泳動力以外にも重力及び電極からの静電気力によっても微細孔に誘導される。細胞Ａで塞がれた微細孔Ａの部分は、図１５に示すようにコンデンサーＡ（２１）と電気的に等価となる。図１７に示す電圧波形を印加した場合、図１５のコンデンサーＡにおける電圧波形を図１８、電流波形を図１９に示す。図１８のようにコンデンサーＡは細胞Ａの容量Ｃ［Ｆ］と細胞を含む細胞懸濁液の抵抗値Ｒ［Ω］の積で求められる時定数τ［ｓ］（＝Ｃ×Ｒ）の時間を要して充電される。
【００６９】
なお、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以下が好ましいことから、τ＜１／２ｆを満たす周波数の矩形波交流電圧を用いる事が好ましい。コンデンサーＡが充電されると電流は流れなくなるため、図１９に示すように、コンデンサーＡに流れる電流は、時定数τの時間だけパルス状に電流が流れるものの、その後は電流が流れなくなり絶縁体と電気的に等価になる。このため細胞Ａの入った微細孔Ａでは、電気力線の集中が生じなくなり、微細孔Ａが新たに細胞を引き寄せる確率は低くなる。一方、微細孔Ｂには電気力線の集中が生じているため、細胞Ｂが誘電泳動力により引き寄せられ微細孔Ｂに細胞Ｂが固定され細胞Ｂが微細孔Ｂを塞ぐ。これを繰り返すことにより、空の微細孔につぎつぎと細胞が入っていくことで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することができる。
【００７０】
なお、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以下である場合、図１５におけるコンデンサーＡが十分充電されないため、コンデンサーＡに電流が流れ続け、細胞Ａが入った微細孔Ａにおいて引き続き電流が流れ電気力線の集中が生じる。よって、細胞Ｂは細胞Ａの入った微細孔Ａに引き寄せられる可能性があるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定される確率が高くなる。
【００７１】
次に、図２０に示す周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波形の交流電圧を印加すると、微細孔において電気力線の集中が生じることで細胞に対して誘電泳動力が発生し、細胞が誘電泳動力により微細孔に引き寄せられ、細胞Ａが微細孔Ａを塞ぐ。細胞Ａが塞いだ微細孔Ａの部分は、図１５に示すようにコンデンサーＡと等価となる。図２０に示す電圧波形を印加した場合、コンデンサーＡにおける電圧波形と電流波形を図２１に示す。図２１に示すように印加する交流電圧の波形が正弦波の場合は、正弦波の位相が９０度すすむだけで、正弦波の波形は変化しないため、細胞Ａが入った微細孔Ａにおいて引き続き電流が流れ、電気力線の集中が生じる。このため、細胞Ｂは細胞Ａの入った微細孔Ａに引き寄せられる可能性があるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が固定される確率が高くなる。従って、正弦波や三角波のように常に電圧が連続的に変化する交流電圧の波形では、複数の細胞が集中して固定される微細孔と、細胞が全く固定されない微細孔があり、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが難しくなることがある。なお、印加する電圧が直流の場合は、細胞を含有する細胞懸濁液に含まれるイオンが電極表面で電気反応を生じることで発熱が起こり、それにより細胞が熱運動を起こすため、誘電泳動力により細胞の動きを制御することができなくなり細胞を微細孔に引き寄せることが困難となることがある。
【００７２】
以下では、微細孔の形状について、図を用いてさらに説明する。
【００７３】
前述したように、微細孔の内径が細胞の直径より大きいと、細胞は微細孔を十分塞ぐことができず、電気力線の集中が発生し細胞が誘電泳動力により引き寄せられるため、１つの微細孔につき２以上の細胞が入る確率が高くなる。２以上の細胞を微細孔に固定した状態で細胞融合を行う場合は、微細孔の直径が微細孔に固定する細胞の直径よりも大きくてもよい。しかしながら、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定した状態で細胞融合を行う場合は、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径は、微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、もしくは微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ前記微細孔の深さが微細孔に固定する細胞の直径の以下であることが好ましい。
【００７４】
図２２に示すように、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径未満の場合は、第１の細胞（２２）が微細孔の中に入らず、微細孔が形成される絶縁体の表面上に固定されるため、第２の細胞（２３）は微細孔の深さにかかわらず前記第１の細胞と接触するので微細孔の深さに特に制限はない。一方、図２４に示すように、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲である場合は、前記第１の細胞が微細孔の中に入るため、微細孔の深さが前記第１の細胞の直径より大きいと、前記第２の細胞が前記第１の細胞と接触できない場合があるため、図２３に示すように微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲である場合は微細孔の深さは微細孔に固定する細胞の直径以下であることが好ましい。
【００７５】
また、本発明の細胞融合装置は、前記微細孔（９）の平面形状が、１以上の角を有する形状である細胞融合装置であって、さらには、前記微細孔の平面形状が、四辺形である細胞融合装置である。ここで、角とは微細孔の形状を構成する２辺が鋭角あるいは鈍角で交わる部分であり、角の先端が若干丸みを帯びた形状も含む。図２６に、微細孔の平面形状が１以上の角を有する代表的な形状を示した。また、四辺形とは、前記微細孔の形状が前記角を４つ有しており、前記４つの角は、角の先端が若干丸みを帯びた形状なども含む。また、４本の辺は直線であってもよいし、４本全ての辺あるいは４本のうち任意の辺が微細孔の中心あるいは外側に向かって若干湾曲していてもよい。図２７に、本発明における四辺形の微細孔の形状の代表的な例を示した。
【００７６】
上述したように、微細孔の平面形状の一部に角が存在していれば、前記角の部分において電気力線の集中が生じ誘電泳動力が強くなり、より強い誘電泳動力で細胞が引き寄せられる結果、細胞が微細孔に固定される確率が向上する。角は微細孔に少なくとも１箇所存在すればよいが、複数存在していた方がより好ましい。しかしながら、角の形状は鈍角よりも鋭角の方が電気力線の集中が生じやすく誘電泳動力が強いため、五角形以上の多角形よりも四角形以下の多角形の方がより好ましい。また、四角形であれば特に制限はなく、例えば図２７に示すように台形や菱形、平行四辺形などの態様があるが、四辺形の微細孔の形状が４つの角を結ぶ辺の長さが４本とも概ね等しく、微細孔の中心において９０度の角度で点対称であれば、四辺形の微細孔の４つの辺に生じる誘電泳動力が４つとも等しく、４つの角に生じる誘電泳動力も４つとも等しくなり、微細孔の方向によらず微細孔の誘電泳動力の分布が点対称となるため、微細孔に対する細胞の位置によらず、偏りの少ない誘電泳動力を作用させることが可能となるため、微細孔の形状は図２７の（ａ）〜（ｄ）のような正方形あるいは正方形に近い形状であることがより好ましい。図２５には、微細孔の形状が正方形の場合の本発明における細胞融合装置の一例を示した。
【００７７】
さらに、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定するためには、微細孔の間隔が狭すぎても広すぎても不適当となることがある。微細孔の間隔が狭すぎる場合は、１つの微細孔につき複数の細胞が固定される確率が高くなり結果として細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなる。また、微細孔の間隔が広すぎる場合には、微細孔と微細孔の間に細胞が残されてしまい、細胞の入らない微細孔が生じる確率が高くなる。従って具体的には、微細孔の間隔は、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下程度の範囲であることが好ましく、さらには微細孔の間隔が固定する細胞の直径の１倍以上２倍以下程度であることがより好ましい。
【００７８】
以上の理由から、本発明の細胞融合装置は、前記交流電源により前記電極間に印加する交流電圧の波形が、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形である。またより具体意的には、前記交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形であり、例えば矩形波、台形波、またはこれらを組み合わせた波形であって、さらに好ましくは、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上である細胞融合装置である。また、絶縁体を貫通する微細孔の平面形状に内接する最大円の直径は、微細孔に固定する細胞の直径未満であるか、もしくは、微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲でありかつ微細孔の深さが細胞の直径と以下であり、さらに複数の微細孔の隣り合う間隔が、固定する細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲である。このようにすることで、絶縁体上にアレイ状に形成した複数の微細孔において、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが可能となる。また、前記絶縁体の表面を親水化処理することにより絶縁体の表面と細胞との親和性が増すことで、細胞が微細孔に寄りやすくなること、さらに絶縁体上の微細孔の平面形状が角を有することで、前記角部において電気力線の集中が生じることで誘電泳動力が大きくなりことで微細孔への細胞固定率を飛躍的向上させることが可能となり、より高い融合効率を得ることができる。
【００７９】
なお、本発明の細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法では、１つの微細孔に第１の細胞を固定した後、固定した第１の細胞のさらに上から第２の細胞を固定する。第２の細胞には誘電泳動力、重力、及び第１の細胞の静電気力が作用し第１の細胞と接触する。しかしながら、前述した理由により、微細孔を第１の細胞が塞いでしまうため電流が流れにくくなることで電気力線の発生が抑制され、第２の細胞に作用する誘電泳動力が弱くなる。従って、第２の細胞を、微細孔に固定した第１の細胞に１つずつ接触させる確率が低下する。しかしながら、第２の細胞の数を第１の細胞の数よりも多くし、細胞融合領域に過剰に導入することで、第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げることが可能である。
【００８０】
次に、図を用いて本発明の細胞融合装置およびそれを用いた細胞融合方法に関してさらに詳細に説明する。
【００８１】
本発明の細胞融合装置は、細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源を有する細胞融合装置である。
【００８２】
また、前記第１の交流電圧の波形は、上記記載の波形を有する交流電圧であることがより好ましい。第１の交流電圧の周波数は、細胞が微細孔に引き寄せられる周波数であれば特に制限はないが、さらには交流周波数が３０ｋＨｚ以上、より好ましくは５０ｋＨｚ以上であることが好ましい。また前記第２の交流電圧の波形は、特に制限はない。第２の交流電圧の周波数は、細胞が微細孔から引き離される周波数であれば特に制限はないが、さらには交流周波数が２０ｋＨｚ未満、より好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが好ましい。ここで、本発明の細胞融合方法の概略図を図２８〜３０に示す。
【００８３】
図２８〜３０には、いずれも第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さい例を示している。本発明の細胞融合方法においては、第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さいことが好ましいが、本質的には第１の細胞の直径が第２の細胞の直径と等しいか大きくてもよい。また、本発明の細胞融合方法は、第１の細胞と第２の細胞が微細孔表面の近傍で細胞融合することが好ましいが、本質的には微細孔の中で第１の細胞と第２の細胞を融合してもよく、図２８〜３０に示したいずれの態様以外であっても、発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能である。
【００８４】
図２８は、微細孔（９）の直径と深さが、第１の細胞（２２）の直径と概ね等しく第１の細胞がちょうど微細孔の中に入る程度の場合であり、図２９は、微細孔（９）の直径と深さが、第１の細胞（２２）の直径よりも大きい場合であり、図３０は、微細孔（９）の直径と深さが第１の細胞（２２）の直径よりも小さい場合である。いずれの場合も、第１の細胞の数よりも第２の細胞の数を多く細胞融合領域内に導入している。
【００８５】
本発明においては、第１の細胞の数よりも第２の細胞の数が多ければ特に制限はないが、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が１に近すぎると、あまり顕著な融合確率の向上が見られない。また、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が１０を超えても、融合確率の大幅な向上が見られず、第２の細胞の濃度が高くなりすぎて細胞の送液が難しくなる。従って、細胞の送液が容易であり、融合確率が効果的に向上する範囲として、第１の細胞の数に対する第２の細胞の数の比が２〜８程度であることが好ましい。
【００８６】
以下に本発明の細胞融合の態様が好ましい理由を説明する。本発明の最良の形態は、図２８に示す細胞融合の態様である。まず、第１の細胞（２２）として、直径の小さい細胞を細胞懸濁液（２４）とともに細胞融合領域（１）に導入し、第１の交流電源により前述した波形を有する交流電圧（５）を印加して１つの微細孔（９）につき第１の細胞１つを固定する。この場合、第１の細胞は主に正の誘電泳動力、重力、電極からの静電気力によって微細孔に誘導される。ここで正の誘電泳動力とは、細胞が微細孔の方向に向かって引き寄せられる様に働く力であって、第１の交流電源により印加される第１の交流電圧の周波数が５０ｋＨｚ以上の場合に、確実に細胞に正の誘電泳動力が働くことを本発明者らは見出した。
【００８７】
また微細孔の直径と深さは第１の細胞の直径と概ね等しく、第１の細胞がちょうど微細孔の中に入る。このようにすることで、微細孔の底面の電極面と第１の細胞に静電気力が発生し、第１の細胞は微細孔に確実に固定される。第１の細胞の数に特に制限はないが、第１の細胞を有効に使用することを考慮すると、微細孔の数と同等であることが好ましい。
【００８８】
次に、第２の細胞（２３）として、直径の大きい細胞を細胞懸濁液（２４）とともに細胞融合領域（１）に導入する。このとき、第１の細胞（２２）は電極との静電気力で固定されている上、周囲を微細孔（９）で囲まれているため、第２の細胞を送液することにより第１の細胞が微細孔から離脱することはほとんどない。導入された第２の細胞は、第１の交流電源により前述した波形を有する交流電圧（５）を印加することにより、微細孔に固定された第１の細胞の上から接触し固定される。この場合、第２の細胞には、微細孔での正の誘電泳動力も作用するが、主に重力、第１の細胞からの静電気力によって微細孔に固定された第１の細胞に誘導される。第２の細胞の数に特に制限はないが、第２の細胞を有効に使用することを考慮すると、微細孔の数と同等であることが好ましいが、微細孔の数よりも過剰に導入することで、第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げることが可能である。
【００８９】
次に、前記切替え機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え、細胞融合を行うための直流パルス電圧（６）を印加することで、微細孔において接触した第１の細胞と第２の細胞を２細胞一対で融合させ、融合細胞（２５）を得ることができる。その後、前記切替え機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧（５）を印加する。この場合、微細孔の中にある融合細胞には負の誘電泳動力が働く。ここで負の誘電泳動力とは、細胞が微細孔から引き離される方向に働く力であって、第２の交流電源により印加される第２の交流電圧の周波数が１０ｋＨｚ未満の場合に、確実に細胞に負の誘電泳動力が働くことを本発明者らは見出した。このようにすることで、前記細胞融合により融合した融合細胞を負の誘電泳動力を利用して強制的に微細孔の中から取り出すことが初めて可能となり、融合領域から融合細胞を取り出す際に、融合細胞を微細孔に残すことなく効率的に取り出すことが可能となる。従って上記のような細胞融合方法を用いることで、より効率的な２細胞１対の細胞融合と融合細胞の取り出しが可能となる。
【００９０】
ここで、ある周波数で正の誘電泳動力と負の誘電泳動力が切り換わる理由を説明する。本発明の微細孔における誘電泳動力は、細胞半径、交流電圧、細胞の誘電率、細胞懸濁液の誘電率により、一般に以下の式１で示される。
誘電泳動力∝（細胞半径）３×（細胞の誘電率−細胞懸濁液の誘電率）×（微細孔で集中した交流電圧の大きさ）２
・・・（式１）
ここで、一般に細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率は交流電圧の周波数に依存して変化する。よって、交流電圧の周波数を変化させたときの細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率の大小により誘電泳動力の符号が決まる。すなわち、交流電圧の周波数を変化させたとき、細胞の誘電率が細胞懸濁液の誘電率よりも大きくなれば正の誘電泳動力が働き、細胞の誘電率が細胞懸濁液の誘電率よりも小さくなれば負の誘電泳動力が働く。従って、理論的には、計算により細胞の誘電率と細胞懸濁液の誘電率が等しくなる周波数を求めれば、その周波数がちょうど正の誘電泳動力と負の誘電泳動力が変化する境界の周波数（以下、境界周波数と称する。）となる。しかしながら、一般に細胞の誘電率や細胞懸濁液の誘電率を周波数ごとに測定することは難しいため、細胞の動く方向の変化で、境界周波数を実験的に決定することが多い。この境界周波数は、当然、取り扱う細胞の種類や細胞懸濁液の種類によって異なる。
【００９１】
従って、本発明では、第１の交流電圧の周波数は細胞が微細孔に引き寄せられる周波数であれば特に制限はなく、第２の交流電圧の周波数は細胞が微細孔から引き離される周波数であれば特に制限はない。例えば、本発明で用いたマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ及びその融合細胞は、交流周波数が３０ｋＨｚ以上で正の誘電泳動力が確実に働き、交流電圧の周波数が１０ｋＨｚ未満で負の誘電泳動力が確実に働く。
【００９２】
また本発明の細胞融合方法を電気的細胞融合法に適用した場合は、第１の細胞の直径が第２の細胞の直径よりも小さいことがさらに好ましい。この理由を以下に説明する。
【００９３】
電気的細胞融合法の場合は、微細孔では電気力線の集中が生じるため、微細孔付近の電界強度は、図３１に示すように微細孔内の電極面の電界強度が最も高く、絶縁体の表面からもう一方の電極に向けて次第に電界強度が弱くなる。図３１は、一方の電極に任意の膜厚の絶縁体に任意の直径と深さを有する微細孔を１個配置し、電極間に任意の電圧を印加した場合の電界強度を有限要素法を用いて計算した。縦軸が電界強度を最大の電界強度で正規化した値であり、横軸は電極間の位置である。横軸の原点に絶縁体を配置した電極が存在している。絶縁体面は図中の点線で示した位置に相当し、横軸の原点から点線までの範囲が絶縁体厚に相当する。今回行った計算では、絶縁体の材質や厚み、微細孔の大きさや深さにあまり大きく依存せず、図３１に示すように微細孔内の電極面の電界強度は、絶縁体面の電界強度より約２０％程度高い結果となった。
【００９４】
一般に電気的細胞融合法は、前述したように、細胞融合させるためのパルス電圧を印加することで細胞膜の電気伝導度が瞬間的に低下し、脂質二重層から構成される細胞膜の可逆的乱れとその再構成が行われることで細胞融合させる。一般に細胞の直径が小さいほど細胞膜の可逆的乱れを生じさせるパルス電圧は高くなる。従って、直径の小さい細胞を第１の細胞として微細孔に入れ、直径の大きい細胞を第２の細胞として微細孔に固定された第１の細胞の上から固定すれば、印加するパルス電圧は同じでも、図３１に示すように、微細孔内の電界強度が微細孔表面の電界強度より高いために、微細孔内に固定された直径の小さい第１の細胞にはより高い電圧が印加され、微細孔表面に固定された直径の大きい第２の細胞には第１の細胞に印加される電圧よりも２０％程度低い電圧が印加される。このようにすることで、直径の異なる細胞を細胞融合させる場合の細胞膜の可逆的乱れを生じさせる電圧の違いをある程度キャンセルすることが可能となり、同一の融合電圧で直径の異なる細胞の細胞膜に同時に可逆的乱れを生じさせることが可能となり、さらに融合確率を高めることが可能となる。
【００９５】
また、前述したように微細孔に固定した第１の細胞と第２の細胞の接触確率を上げるため、第２の細胞の数を第１の細胞の数より多くし、細胞融合領域に過剰に導入した場合でも、図３１に示すように、電界強度は微細孔近傍で最も高く、微細孔から離れるに従って弱くなっていくため、パルス電圧を適切に調整することで、微細孔近傍で接触した第１の細胞と第２の細胞のみの細胞膜が可逆的乱れを生じ細胞融合する。従って、図２８〜図３０に示すように、微細孔近傍で接触した第１の細胞と第２の細胞のみを選択的に細胞融合させることが可能となる。
【００９６】
また、本発明の細胞融合装置は、細胞融合を行うための直流パルス電圧（６）を印加する代わりに、細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れ、化学的に細胞を融合する、化学的細胞融合方法を用いて細胞融合しても良い。
【００９７】
以下では、本発明の化学的に細胞を融合する細胞融合装置および細胞融合方法についてさらに詳細に説明する。
【００９８】
本発明の化学的細胞融合方法は、本発明の細胞融合装置を用いた化学的細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする化学的細胞融合法である。
【００９９】
ここで、化学的に細胞を融合する、すなわち化学的細胞融合法とは、ポリエチレングリコールのような細胞膜の流動性を高める化学物質を加えた懸濁液に細胞を入れて融合させることを意味し、一般に、細胞膜の流動性が高まった状態で細胞が接触すると膜融合が容易に起こることを利用した細胞融合の一つである。
【０１００】
また、本発明の細胞融合方法は、細胞を細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れ、本発明の細胞融合装置の細胞融合容器内にある微細孔にて２細胞を接触させ融合する細胞融合方法である。細胞膜の流動性が高まった状態で細胞が接触すると膜融合が容易に起こるので、前述したように微細孔において２細胞一対が接触すれば、２細胞一対での細胞融合が生じる。ここで、細胞膜の流動性を高める物質は、接触した細胞同士に膜融合を起こさせる物質であれば特に制限はないが、例えばポリエチレングリコールやリゾチウムなどがあり、特に、ポリエチレングリコールであることが好ましい。またさらに、平均分子量１０００〜６０００程度のポリエチレングリコールが好ましい。
【０１０１】
また、本発明の細胞融合方法は、第１の細胞より第２の細胞を多く導入してもよい。第１の細胞よりも第２の細胞を多く導入することは、第１の細胞が抗体産生細胞のように、抗体を産生するが増殖能の無い細胞であって数が限られており、第２の細胞が癌細胞のように極めて増殖能の高い細胞であって、人為的に無限に培養できる細胞である場合、数に限りある貴重な抗体産生細胞を無駄なく利用することができることから、特に本発明の細胞融合方法は有用である。
【発明の効果】
【０１０２】
本発明によれば、以下の効果を奏することができる。
（１）本発明の細胞融合装置においては、微細孔を形成した絶縁体を細胞融合領域側のどちらか一方の電極面上に配置することで、微細孔に細胞を確実に固定し、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行うことが可能となる。
（２）本発明の細胞融合装置においては、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、微細孔に固定する細胞の直径の１以上２倍未満の範囲であり、かつ微細孔の深さが、前記微細孔に固定する細胞の直径以下であり、このようにすることで、微細孔に確実に細胞を固定することができる。
（３）本発明の細胞融合装置においては、微細孔が絶縁体上に複数個、アレイ状に形成されており、このようにすることで、複数の微細孔に固定した２細胞一対の細胞を同時に細胞融合させることが可能となり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行うことが可能となる。
（４）本発明の細胞融合装置においては、微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であり、このようにすることで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定する確率を高めることができ、微細孔において２細胞を一対で接触させる確率を上げることが可能になる。
（５）本発明の細胞融合装置においては、第１の交流電源により電極間に印加する第１の交流電圧の波形と周波数を制御することで、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定することが可能となる。
（６）本発明の細胞融合装置においては、第２の交流電源により電極間に印加する第２の交流電圧の周波数を制御することで、融合細胞を微細孔から確実に取り出すことが可能となる。
（７）本発明の細胞融合方法においては、上記記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、第１の交流電圧を印加することで微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、細胞融合領域内に第２の細胞を導入して、第１の交流電圧を印加することで第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、直流パルス電圧を印加して第１の細胞と第２の細胞を微細孔表面の近傍で細胞融合させ、第２の交流電圧を印加することで融合細胞を微細孔から取り出す細胞融合方法であり、前記第１の交流電圧は、前述した波形と周波数を有する第１の交流電圧であることが好ましく、前記第２の交流電圧は、前述した周波数を有する第２の交流電圧であることが好ましく、このようにすることで、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことが可能となる。
（８）本発明の細胞融合方法においては、上記記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、第１の交流電圧を印加することで微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、細胞融合領域内に第２の細胞を導入して、第１の交流電圧を印加することで第１の細胞に第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合させ、第２の交流電圧を印加することで融合細胞を微細孔から取り出す細胞融合方法であり、前記第１の交流電圧は、前述した波形と周波数を有する第１の交流電圧であることが好ましく、前記第２の交流電圧は、前述した周波数を有する第２の交流電圧であることが好ましく、このようにすることで、微細孔近傍にある２細胞一対を選択的に細胞融合させることができ、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことが可能となる。
（９）本発明の細胞融合方法においては、第１の細胞の直径が、第２の細胞の直径よりも小さいものを用いるものであり、このようにすることで、直径の異なる細胞を細胞融合させる場合の細胞膜の可逆的乱れを生じさせる電圧の違いをある程度キャンセルすることが可能となる。
【実施例】
【０１０３】
以下、本発明を実施例により詳細に説明する。なお本発明は、これらの実施例のみに限定されるものではなく、発明の要旨を逸脱しない範囲で、任意に変更が可能であることは言うまでもない。
【０１０４】
（実施例１）
図５に実施例１に用いた細胞融合装置の概念図を示した。細胞融合装置は大きく分けて、細胞融合容器（１３）と電源（４）から構成される。細胞融合容器は、図５に示すように上部電極（１４）と下部電極（１５）の間に、スペーサー（１６）を配置し、複数の微細孔をアレイ状に形成した絶縁体（８）をスペーサーと下部電極で挟んだ構造を有する。なお、本実施例では、後述するように一般的なフォトリソグラフィーにより、下部電極（１５）と複数の微細孔をアレイ状に形成した絶縁体（８）を一体形成した微細孔付き絶縁体一体型下部電極を用いた。
【０１０５】
上部電極と下部電極は、縦７０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１ｍｍのパイレックス（登録商標）基板に、ＩＴＯを成膜（膜厚１５０ｎｍ）したものを用いた。スペーサーは、縦４０ｍｍ×横４０ｍｍ×厚さ１．５ｍｍのシリコンシートの中央を縦２０ｍｍ×横２０ｍｍにくりぬいた形状にして用いた。また、図５に示すように、細胞が含有した細胞懸濁液を導入、排出するための導入口（１７）と排出口（１８）を設けた。複数の微細孔を有する絶縁体（８）は、図３２に示すフォトリソグラフィーとエッチングによる方法により下部電極に一体形成することで作製した。
【０１０６】
はじめに、ＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１０７】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１０８】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した細胞融合装置を用いて、後述する実験を行った。細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭの濃度のマンニトール水溶液に懸濁させ、マウス抗体産生細胞は０．７×１０６個／ｍＬ、マウスミエローマ細胞は０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。ここで、ＢＳＡは電圧印加による細胞へのダメージを軽減する役割を担う。また、両細胞懸濁液には、細胞融合での細胞膜の再生を促進するために、０．１ｍＭ濃度の塩化カルシウム、０．１ｍＭ濃度の塩化マグネシウムを添加した。
【０１０９】
上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。ここで細胞固定率とは、顕微鏡の視野に縦１５個×横１５個の２２５個の微細孔が見えるようにし、細胞を導入して固定したときの、１〜２個の細胞が入った微細孔数を２２５個の微細孔数で割った値で定義した。なお、以下の実施例２〜５及び比較例１〜２での細胞固定率も同じ定義である。
【０１１０】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であり、マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１１１】
次に、第１の交流電源を直流パルス電源（ネッパジーン株式会社製、ＬＦ１０１）に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後、細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地（Ｈ：ヒポキサンチン（ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ）、Ａ：アミノプテリン（ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎｅ）、Ｔ：チミジン（ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ）を成分とする培地）に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約５０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１．２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例１で示した負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない電気的細胞融合における融合確率１／１００００の１．２５倍の融合確率であり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことを確認することができた。
【０１１２】
（実施例２）
図２５に実施例２に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた一辺が７μｍの正方形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１１３】
次に、微細孔付き絶縁体の親水性を評価するため、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約４７°であった。そこで、微細孔付き絶縁体を親水化するために、微細孔付き絶縁体一体型下部電極をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭ濃度のマンニトール水溶液に約１時間浸し、絶縁体表面にＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた後、同様に、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約２７°であり、親水性が向上したことを確認した。
【０１１４】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞融合用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞融合用電源は、上部電極と下部電極の電極間に直流パルス電圧を印加するための直流パルス電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１１５】
次に、実施例１で用いたマウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約８５％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりもさらに向上したことがわかった。
【０１１６】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約８０％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりもさらに向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約６８％（＝８５％×８０％）であると推定される。
【０１１７】
次に、第１の交流電源を直流パルス電源に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと、第２の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後、細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約１７０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約４．２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例１で示した負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない電気的細胞融合における融合確率１／１００００の約４．２５倍の融合確率であり、２細胞一対での細胞融合を効率的に行い、融合細胞を効率的に取り出すことを確認することができた。
【０１１８】
（比較例１）
図５に比較例に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１あるいは実施例２と同様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。
【０１１９】
また、電極間に電圧を印加する電源は、交流電源として信号発生器（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）、直流パルス電源として細胞融合用電源（ネッパジーン製、ＬＦ１０１）を導電線（３）を介して接続し、交流電源と直流パルス電源は切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。
【０１２０】
引き続き、実施例１と同じマウス抗体産生細胞（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、約２分間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウス抗体産生細胞を固定することができ、細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。
【０１２１】
続いて、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、実施例１で用いたマウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１２２】
次に、電源を直流パルス電源に切替えて、電極間に電圧８０Ｖ、パルス幅３０μｓの直流パルス電圧を印加し細胞融合を行い、そのまま１５分静置したあと細胞融合容器内の細胞懸濁液をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地を５％ＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約４０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１／１００００の融合確率を得られた。
（実施例３）
実施例３では、実施例１と同じ細胞融合装置を用いた。図５に実施例１に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ１０μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１２３】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１２４】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した細胞融合装置を用いて、後述する実験を行った。細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１２５】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約３５％であった。
【０１２６】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約５５％であり、マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１２７】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約２５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約０．６２５／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約１．３倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１２８】
（実施例４）
実施例３に用いた微細孔付き絶縁体の親水性を評価するために、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約４７°であった。そこで、微細孔付き絶縁体を親水化するために、微細孔付き絶縁体一体型下部電極をＢＳＡ（１ｍｇ／ｍＬ）含有の３００ｍＭ濃度のマンニトール水溶液に約１時間浸し、絶縁体表面にＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた後、同様に、絶縁体表面に純水を滴下し、そのときに絶縁体の表面に形成される液滴と絶縁体の表面との接触角を測定したところ、接触角は約２７°であり、親水性が向上したことを確認した。
【０１２９】
このように親水化処理した微細孔付き絶縁体一体型下部電極を用いて、実施例３と同様に組み立てた細胞融合装置を用いて下記に示したように細胞融合を実施した。
【０１３０】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１３１】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約７０％であった。この結果から、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりも向上したことがわかった。
【０１３２】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約６５％であった。この結果から、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１よりも向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約４６％（＝７０％×６５％）であると推定される。
【０１３３】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約３７．５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約０．９４／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約１．９倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１３４】
（実施例５）
図２５に実施例５に用いた細胞融合装置を示した。微細孔の形状が、一辺が７μｍの正方形の微細孔パターンとなっている以外は、実施例４に用いた細胞融合装置と同じである。
【０１３５】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１３６】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウス抗体産生細胞が入る確率は約７５％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１さらには実施例２よりもさらに向上したことがわかった。
【０１３７】
続いて、第１の交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１〜２個程度のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個程度のマウスミエローマ細胞が入る確率は約７０％であった。この結果から、微細孔の平面形状が角を有することで、角部において電気力線の集中が生じ、誘電泳動力が高められるとともに、微細孔付絶縁膜を親水化したことにより、微細孔への細胞固定確率が実施例１さらには実施例２よりもさらに向上したことがわかった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確率は、約５３％（＝７５％×７０％）であると推定される。
【０１３８】
次に、この状態のまま１分間静置したあと、第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数８ｋＨｚの交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔から微細孔の外へ概ね１００％の融合細胞を取り出すことができた。その後細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。なお、ＨＡＴ培地は、融合細胞のみを選択的に増殖させる培地である。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、約４５個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して約１．１３／１００００の融合確率を得られた。これは、比較例２で示したポリエチレングリコールを用いた負の誘電泳動力で融合細胞を取り出さない細胞融合における融合確率０．５／１００００の約２．３倍の融合確率であり、効率的な２細胞一対での融合を確認することができた。
【０１３９】
（比較例２）
図５に比較例２に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を２．５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、４５分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（８０℃、１５分）を行った。レジストにはキシレン系のネガタイプレジストを用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ７μｍの微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい２．５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１１５℃、３０分）を行いレジストを固めた。このようにして作製した上部電極（１４）、スペーサー（１６）、微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。シリコンシートの表面は粘着性があり、圧着することで各部品は密着し、細胞を含有した細胞懸濁液を漏れなく細胞融合容器の中に入れることができた。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源は、交流電源として信号発生器（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）を導電線（３）を介して接続した。
【０１４０】
細胞は、マウス抗体産生細胞（φ５μｍ）とマウスミエローマ細胞（φ１０μｍ）を用いた。両方の細胞を培地から取り出し、遠心分離で細胞と培地を分離し、取り出した細胞をそれぞれ分子量４０００のポリエチレングリコール５０％水溶液に懸濁させ、０．７×１０６個／ｍＬの密度になるように細胞懸濁液を調整した。
【０１４１】
まずはじめに、上記マウス抗体産生細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウス抗体産生細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口よりシリンジを用いて注入し、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ、１〜２個のマウス抗体産生細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウス抗体産生細胞が入る確率は３５％であった。
【０１４２】
続いて、交流電源により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を電極間に印加したまま、上記マウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口よりシリンジを用いて注入したところ、２〜３秒程度の極めて短い時間でアレイ状に形成した複数の微細孔に１つずつ、１つのマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１〜２個のマウスミエローマ細胞が入る確率は５５％であった。マウスミエローマ細胞を導入する際に、先に入れたマウス抗体産生細胞が微細孔から脱離する様子はほとんど観察されなかったことから、微細孔においてマウス抗体産生細胞とマウスミエローマ細胞が２細胞一対で接触している確立は、約２０％（＝３５％×５５％）であると推定される。
【０１４３】
次に、この状態のまま１分間静置したあと細胞融合容器内の細胞懸濁液を取り出し培地で希釈後、遠心分離で細胞と細胞懸濁液を分離し、取り出した細胞をＨＡＴ培地に入れ、融合細胞の培養を行った。細胞懸濁液を入れたＨＡＴ培地をＣＯ２インキュベータに入れて細胞培養を行い６日後に融合細胞をカウントした結果、２０個の融合細胞を確認することができ、全マウス抗体産生細胞４０万個に対して０．５／１００００の融合確率を得られた。
【０１４４】
（実施例６）
図５に実施例６に用いた細胞融合装置の概念図を示した。実施例１と同じ様に、図３２に示すようにＩＴＯ（２６）を成膜したパイレックス（登録商標）ガラス（２７）のＩＴＯ成膜面にレジスト（２８）を５μｍの膜厚になるようスピンコーターを用いて塗布し、１分自然乾燥後、ホットプレートを用いてプリベーク（６５℃、１分 → ９５℃、３分）を行った。レジストにはエポキシ系のネガタイプレジストであるＳＵ−８を用いた。次に、縦３０ｍｍ×横３０ｍｍのエリアに、微細孔と微細孔の縦と横の間隔が３０μｍで、縦１０００個×横１０００個のアレイ状に並べた直径φ８．５μｍの円形の微細孔パターンを描いた露光用フォトマスク（２９）を用いて、ＵＶ露光機にてレジストを露光（３０）し、現像液（３１）で現像した。露光時間と現像時間は、微細孔の深さがレジストの膜厚と等しい５μｍになるように調整し、微細孔の底面にＩＴＯが露出するようにした。現像後、ホットプレートを用いてポストベーク（１５０℃、１５分）を行い、レジストを固め、微細孔付き絶縁体一体型下部電極を製作した。
【０１４５】
このようにして作製した微細孔付き絶縁体一体型下部電極（３２）と上部電極（１４）、スペーサー（１６）を図６のように積層し圧着した。図６は、図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図である。スペーサーをくりぬいた面積が縦２０ｍｍ×横２０ｍｍであることから、この空間に存在する微細孔の数は約４０万個である。また、電極間に電圧を印加する電源（４）は、細胞固定用電源、細胞取り出し用電源から構成されており、切替えスイッチ等の切替え機構により適宜切替えて使用することができる。ここで前記細胞固定用電源は、上部電極（１４）と下部電極（１５）の電極間に第１の交流電圧を印加するための第１の交流電源であり、前記細胞取り出し用電源は、上部電極と下部電極の電極間に第２の交流電圧を印加するための第２の交流電源である。
【０１４６】
上記微細孔付き絶縁膜一体型下部電極で構成した装置を用いて、後述する実験を行った。
実施例１で用いたマウスミエローマ細胞の細胞懸濁液６００μＬ（マウスミエローマ細胞数：約４０万個）をスペーサーの導入口より１ｍＬ容量の分注器を用いて注入し、第１の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数３ＭＨｚの矩形波交流電圧を１０秒間電極間に印加したところ、アレイ状に形成した複数の微細孔の１つずつに１個のマウスミエローマ細胞を固定することができ、複数の細胞をアレイ状に配置させることができた。このときの、１つの微細孔につき１個のマウスミエローマ細胞が入る確率は約９１％であった。ここで細胞固定率とは、懸濁液を導入して顕微鏡の視野内に存在した１７４個のマウスミエローマ細胞のうち微細孔に固定された細胞数を、視野内細胞数の１７４個で割った値で定義した。電圧および矩形波交流電圧印加時間は上記のままで周波数だけを小さくする実験を行った。その結果、図３３のように５０ｋＨｚでは固定率は約８１％を示し、３０ｋＨｚで約５０％が固定された。しかし１０ｋＨｚではほとんど固定されなかった。この結果から、細胞固定用交流電源の交流周波数は３０ｋＨｚ以上、好ましくは５０ｋＨｚ以上が望ましいことを確認した。
また、同様に手法を用いて細胞脱離率の測定を行った。細胞脱離率とは、懸濁液を導入して第１の交流電源を用いて固定されたマウスミエローマ細胞のうち第２の交流電源に切替えた際微細孔から取り出されたマウスミエローマ細胞の細胞数を、固定された細胞数で割った値で定義した。第２の交流電源（エヌエフ回路設計ブロック製、ＷＦ１９６６）により電圧１０Ｖｐｐ、周波数１０ｋＨｚの矩形波交流電圧を１０秒間電極間に印加したところ、アレイ状に形成した複数の微細孔に固定されていたマウスミエローマ細胞を取り出すことができた。このときの、マウスミエローマ細胞の脱離率は約１００％であった。電圧および矩形波交流電圧印加時間は上記のままで周波数だけを大きくする実験を行った。その結果、図３４のように１０ｋＨｚでは脱離率は約１００％を示し、２０ｋＨｚでは約５０％が脱離した。しかし１００ｋＨｚではほとんど脱離しなかった。この結果から、細胞取り出し用交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満、好ましくは１０ｋＨｚ未満であることが望ましいことを確認した。
【図面の簡単な説明】
【０１４７】
【図１】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの断面図を示した概念図である。
【図２】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第１の図である。
【図３】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第２の図である。
【図４】特許文献１記載の細胞融合用チャンバーの動作を説明する第３の図である。
【図５】本発明の細胞融合方法に用いる細胞融合装置の一例を示す概念図である。
【図６】図５に示した細胞融合容器のＡ−Ａ’断面図、及び図２５に示した細胞融合容器のＢ−Ｂ’断面図である。
【図７】本発明に用いる交流電圧の波形の一例である。
【図８】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、矩形波を示した図である。
【図９】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、台形波を示した図である。
【図１０】本発明に用いる交流電圧の波形の一例として、矩形波と台形波を組み合わせた波形を示した図である。
【図１１】本発明の細胞操作方法を説明する第１の図である。
【図１２】本発明の細胞操作方法を説明する第２の図である。
【図１３】本発明の細胞操作方法を説明する第３の図である。
【図１４】図１１を電気的な等価回路で表した図である。
【図１５】図１２を電気的な等価回路で表した図である。
【図１６】図１３を電気的な等価回路で表した図である。
【図１７】周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を示す図である。
【図１８】図１７に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１５のコンデンサーＡにおける電圧波形を示す図である。
【図１９】図１７に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の矩形波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１５のコンデンサーＡにおける電流波形を示す図である。
【図２０】周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波交流電圧の波形を示す図である。
【図２１】図２０に示した周波数ｆ［Ｈｚ］の正弦波交流電圧の波形を電極間に印加した場合の、図１７のコンデンサーＡにおける電圧波形または電流波形を示す図である。
【図２２】本発明における、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径未満の場合の２細胞の接触を説明する概念図である。
【図２３】本発明における、微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ、微細孔の深さが第１の細胞の直径より小さい場合の２細胞の接触を説明する概念図である。
【図２４】微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が微細孔に固定する第１の細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ、微細孔の深さが第１の細胞の直径より大きい場合、２細胞が接触できない事を説明する概念図である。
【図２５】本発明の第２の実施例に用いた細胞融合装置の概念図である。
【図２６】本発明における微細孔形状例の第１の図である。
【図２７】本発明における微細孔形状例の第２の図である。
【図２８】本発明の細胞融合方法の第１の例を示す図である。
【図２９】本発明の細胞融合方法の第２の例を示す図である。
【図３０】本発明の細胞融合方法の第３の例を示す図である。
【図３１】微細孔近傍の電界強度を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は電極面からの距離（任意単位）であり、Ｙ軸（縦軸）は電界強度（任意単位）である。
【図３２】一般的なフォトリソグラフィーとエッチング方法の概略図である。
【図３３】本発明の微細孔への細胞固定率と周波数の関係を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は交流電圧の周波数（単位はｋＨｚ）であり、Ｙ軸（縦軸）は細胞固定率（単位は％）である。
【図３４】本発明の微細孔への細胞脱離率と周波数の関係を示した図であり、図中、Ｘ軸（横軸）は交流電圧の周波数（単位はｋＨｚ）であり、Ｙ軸（縦軸）は細胞脱離率（単位は％）である。
【符号の説明】
【０１４８】
１：細胞融合領域
２：電極
３：導電線
４：電源
５：第１の交流電源
６：直流パルス電源
７：スイッチ
８：絶縁体
９：微細孔
１０：細胞Ａ
１１：細胞Ｂ
１２：電気力線
１３：細胞融合容器
１４：上部電極
１５：下部電極
１６：スペーサー
１７：導入口
１８：排出口
１９：微細孔Ａ
２０：微細孔Ｂ
２１：コンデンサーＡ
２２：第１の細胞
２３：第２の細胞
２４：細胞懸濁液
２５：融合細胞
２６：ＩＴＯ
２７：パイレックス（登録商標）ガラス
２８：レジスト
２９：露光用フォトマスク
３０：露光
３１：現像液
３２：微細孔付き絶縁体一体型下部電極
３３：抵抗
３４：第２の交流電源
【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置。
【請求項２】
前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞融合用電源が直流パルス電圧を印加する直流パルス電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記直流パルス電源及び前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有することを特徴とする請求項１記載の細胞融合装置。
【請求項３】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた化学的に細胞を融合する細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源および細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置。
【請求項４】
前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有することを特徴とする請求項３記載の細胞融合装置。
【請求項５】
前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満であることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項６】
前記第１の交流電源により、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を微細孔に固定する波形を有する交流電圧が前記電極間に印加されることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項７】
前記第１の交流電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形を有する交流電圧を前記電極間に印加することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項８】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形であることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項９】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、矩形波、台形波またはこれらを組み合わせた波形であることを特徴とする請求項１〜８のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１０】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上であることを特徴とする請求項１〜９のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１１】
前記絶縁体に形成される微細孔が、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定できる形状であることを特徴とする請求項１〜１０のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１２】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満であることを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１３】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ前記微細孔の深さが、前記微細孔に固定する細胞の直径以下であることを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１４】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状であることを特徴とする請求項１〜１３のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１５】
前記微細孔の平面形状が、四辺形であることを特徴とする請求項１〜１４のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１６】
前記絶縁体に形成される複数の微細孔が、絶縁体の水平面においてアレイ状に形成されていることを特徴とする請求項１〜１５のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１７】
前記絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、前記絶縁体の水平面において、隣合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されていることを特徴とする請求項１〜１６のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１８】
前記微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であることを特徴とする請求項１〜１７のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１９】
前記絶縁体の材質が親水性であることを特徴とする請求項１〜１８のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２０】
前記スペーサーが、細胞融合領域を形成する貫通孔を有することを特徴とする請求項１〜１９のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２１】
前記スペーサーが、細胞を導入する導入流路および細胞を排出する排出流路を有することを特徴とする請求項１〜２０のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２２】
請求項１、請求項２、請求項５〜２１のいずれかに記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、前記切替え機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え前記直流パルス電源を印加して細胞融合を行い、前記切替え機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする細胞融合方法。
【請求項２３】
請求項３〜２１のいずれかに記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする細胞融合方法。
【請求項２４】
細胞を、細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行うことを特徴とする請求項２３に記載の細胞融合方法。
【請求項２５】
細胞を、ポリエチレングリコールを加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行うことを特徴とする請求項２３または請求項２４に記載の細胞融合方法。
【請求項１】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源、細胞融合用電源および細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置。
【請求項２】
前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞融合用電源が直流パルス電圧を印加する直流パルス電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記直流パルス電源及び前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有することを特徴とする請求項１記載の細胞融合装置。
【請求項３】
細胞融合領域内に対向して配置される導電部材からなる一対の電極と、前記一対の電極間に平板状のスペーサーを介して配置され、かつ前記対向して配置された電極の方向に貫通した１または複数の微細孔を有した平板状の絶縁体からなり、前記絶縁体が前記電極のいずれか一方の電極の細胞融合領域側の電極面上に配置されている細胞融合容器と、前記一対の電極に電圧を印加する電源と、を備えた化学的に細胞を融合する細胞融合装置であって、前記電源が細胞固定用電源および細胞取り出し用電源を有することを特徴とする細胞融合装置。
【請求項４】
前記電源のうち、前記細胞固定用電源が第１の交流電圧を印加する第１の交流電源からなり、前記細胞取り出し用電源が第２の交流電圧を印加する第２の交流電源からなり、前記第１の交流電源と前記第２の交流電源とを切替える切替え機構を有することを特徴とする請求項３記載の細胞融合装置。
【請求項５】
前記第１の交流電源の交流周波数が３０ｋＨｚ以上であり、かつ前記第２の交流電源の交流周波数が２０ｋＨｚ未満であることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項６】
前記第１の交流電源により、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を微細孔に固定する波形を有する交流電圧が前記電極間に印加されることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項７】
前記第１の交流電源により、前記細胞の充電と放電を周期的に繰り返す波形を有する交流電圧を前記電極間に印加することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項８】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間を半周期内に１以上有する波形であることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項９】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、矩形波、台形波またはこれらを組み合わせた波形であることを特徴とする請求項１〜８のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１０】
前記第１の交流電源により出力される前記第１の交流電圧の波形が、０以外の値を有する電圧が一定時間変化しない時間が細胞の静電容量と細胞を含有する細胞懸濁液の抵抗の積からなる時定数以上であることを特徴とする請求項１〜９のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１１】
前記絶縁体に形成される微細孔が、１つの微細孔につき概ね１つの細胞を固定できる形状であることを特徴とする請求項１〜１０のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１２】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径未満であることを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１３】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状に内接する最大円の直径が、前記微細孔に固定する細胞の直径の１倍以上２倍未満の範囲であり、かつ前記微細孔の深さが、前記微細孔に固定する細胞の直径以下であることを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１４】
前記絶縁体に形成される微細孔において、前記微細孔の平面形状が、１以上の角を有する形状であることを特徴とする請求項１〜１３のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１５】
前記微細孔の平面形状が、四辺形であることを特徴とする請求項１〜１４のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１６】
前記絶縁体に形成される複数の微細孔が、絶縁体の水平面においてアレイ状に形成されていることを特徴とする請求項１〜１５のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１７】
前記絶縁体に形成される微細孔の中心位置が、前記絶縁体の水平面において、隣合ういずれの微細孔の中心位置からも微細孔の中心位置が同じ位置に形成されていることを特徴とする請求項１〜１６のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１８】
前記微細孔の隣り合う間隔が、微細孔に入れる細胞の直径の０．５倍以上６倍以下の範囲であることを特徴とする請求項１〜１７のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項１９】
前記絶縁体の材質が親水性であることを特徴とする請求項１〜１８のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２０】
前記スペーサーが、細胞融合領域を形成する貫通孔を有することを特徴とする請求項１〜１９のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２１】
前記スペーサーが、細胞を導入する導入流路および細胞を排出する排出流路を有することを特徴とする請求項１〜２０のいずれかに記載の細胞融合装置。
【請求項２２】
請求項１、請求項２、請求項５〜２１のいずれかに記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、前記切替え機構により前記第１の交流電源を前記直流パルス電源に切替え前記直流パルス電源を印加して細胞融合を行い、前記切替え機構により前記直流パルス電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする細胞融合方法。
【請求項２３】
請求項３〜２１のいずれかに記載の細胞融合装置を用いた細胞融合方法であって、前記細胞融合領域内に第１の細胞を導入し、前記第１の交流電圧を印加することで前記微細孔内に前記第１の細胞を固定した後、前記微細孔領域内に第２の細胞を導入して、前記第１の交流電源を印加することで前記第１の細胞に前記第２の細胞を微細孔の位置において接触させ、化学的に細胞融合を行い、前記切替え機構により第１の交流電源を前記第２の交流電源に切替え、前記第２の交流電圧を印加することで、前記細胞融合により融合した融合細胞を前記微細孔から取り出すことを特徴とする細胞融合方法。
【請求項２４】
細胞を、細胞膜の流動性を高める物質を加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行うことを特徴とする請求項２３に記載の細胞融合方法。
【請求項２５】
細胞を、ポリエチレングリコールを加えた細胞懸濁液に入れて化学的に細胞融合を行うことを特徴とする請求項２３または請求項２４に記載の細胞融合方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【公開番号】特開２００８−２５９４９３（Ｐ２００８−２５９４９３Ａ）
【公開日】平成２０年１０月３０日（２００８．１０．３０）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−３０９４３（Ｐ２００８−３０９４３）
【出願日】平成２０年２月１２日（２００８．２．１２）
【出願人】（０００００３３００）東ソー株式会社 (1,901)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年１０月３０日（２００８．１０．３０）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年２月１２日（２００８．２．１２）
【出願人】（０００００３３００）東ソー株式会社 (1,901)
【Ｆターム（参考）】
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