ＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＦＬ）のミメティックまたはＲＥＴシグナル経路活性化因子を用いた、神経系細胞の生存を容易にするための方法
ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物の有効量を、治療を必要とする対象に投与することによって、神経学的疾患および他の疾患を治療するための化合物および治療方法を開示する。本化合物は、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）のミメティック、ＧＦＲα／ＲＥＴシグナル伝達経路アゴニストおよび／または直接ＲＥＴアゴニスト（活性化因子）である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願との相互参照
本願は、２００９年１２月１１日に出願した米国仮出願第６１／２８５，８５８号の優先権を主張するものであり、その開示内容は、本記載をもって本願に全て組み込まれたものとする。
【背景技術】
【０００２】
多くの神経系疾患および全ての神経変性疾患が、ニューロンの死またはその神経突起（neuritis）の喪失によって生じるものである。今のところ、神経保護性または神経回復性の薬剤は存在しない。神経の生存を支持する数種のタンパク質が神経系疾患および神経変性疾患に対して効果的であることは、動物モデルおよび臨床試験によって示されており、一例は、パーキンソン氏病および慢性疼痛に対するＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＬＦ）である。しかしながら、タンパク質は、薬物動態学的性質の劣る大分子であり、血液脳関門を通過することができない。
【０００３】
ニューロンは非分裂性の細胞であり、生き残るためには、近隣の細胞、細胞外マトリクス（ＥＣＭ）および環境からの恒常的な生存シグナルを必要とする。「生き続けよ」というシグナルは、通常、神経生存を促進する神経栄養因子によって伝達される。パーキンソン氏病（ＰＤ）やアルツハイマー病などのある種の病理学的状態においては、ニューロンは進行的に変性する。ニューロンはシナプス結合を損失し、軸索変性を経て、やがて死に至る。
【０００４】
現在利用可能な神経変性疾患の治療法は症候性であり、神経変性を逆行させたり、有意に減速させたりすることが可能な他の治療方法は存在しない。神経栄養因子に基づく治療法は、神経生存の促進のみならず、軸索の再生を誘導し、シナプスの形成を支持し、そしてニューロンの機能的性質を促進することから、大きな期待が寄せられている。
【０００５】
グリア細胞誘導性神経栄養因子（ＧＤＮＦ）はトランスフォーミング成長因子βスーパーファミリーの遠縁のメンバーであり、ＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＦＬ）の基本メンバーである。このファミリーは、次の４メンバー： ＧＤＮＦ、ニュールツリン（ＮＲＴＮ）、アルテミン（ＡＲＴＮ）およびパーセフィン（ＰＳＰＮ）（図１）からなり、いずれも強力な神経栄養因子である（Airaksinen and Saarma, 2002）。１９９３年の発見以来、ＧＤＮＦは、ドーパミン作動性ニューロンに対する生存支持作用、軸索出芽の誘導、ＰＤにおいて変性するこれらニューロンの機能的ドーパミン代謝の調節という能力ゆえに、大きな注目を集めている（Lin et al., 1993）。更にＧＤＮＦは、ＰＤの動物モデルにおいて、ドーパミンニューロンを保護するだけでなく、修復する数少ない成長因子の１つである（Bespalov and Saarma, 2007、Lindholm et al., 2007）。
【０００６】
ＧＤＮＦは、数多くのパーキンソン氏病動物モデルにおいて、その保護効果および神経回復効果が既に確認されており、２つの臨床試験（Gill et al., 2003、Slevin et al., 2005）において非常に有望な結果が得られているものの、近年の研究では、ＧＤＮＦの明確な臨床的有用性を示すことができなかった（Lang et al., 2006)。この矛盾は、試験の構成、患者の疾病状態、およびE. coli発現ＧＤＮＦの性質などにおける違いによって説明することができるかもしれない。今日まで、上記３つの試験において異なる結果が得られた理由について明確な理解は得られていない。
【０００７】
ＧＤＮＦは運動ニューロンも支持する（Henderson et al., 1994）ことから、ＧＤＮＦは、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）の治療にも重要となるかもしれない。ＲＥＴシグナル伝達が脳内のドーパミン量を増加させる（Mijatovic et al., 2007）ことから、うつ病の治療への応用も考えられる。ＧＤＮＦまたはそのミメティックは、男性用避妊薬としても使用できるであろう（Meng et al., 2000）。
【０００８】
ＮＲＴＮは、ＮＲＴＮ遺伝子を保有するアデノウイルスの被殻内注射による近年の第ＩＩ相臨床試験において、パーキンソン氏病患者に有意な改善が見られたことから、非常に期待される分子である（Ceregene Inc.のプレスリリース）。ＡＲＴＮは、慢性疼痛の動物モデルに対する有効性（Gardell et al., 2003）および感覚ニューロンに対する回復性（Wang et al., 2008）が明らかとなったことから、現在、Biogen Idec／NsGeneの実施する神経症に対する第Ｉ相臨床試験においてテストされている。ＰＳＰＮは、卒中およびアルツハイマー病の治療用として検討されている（Golden et al., 2003、Tomac et al., 2002）。
【０００９】
ＧＦＬ受容体複合体は適切な薬剤標的であると考えられているが、ＧＦＬポリペプチドはおそらく薬理学的に不適切な薬剤である。タンパク質に基づく療法の困難性の１つは、生物学的利用能である。ＧＤＮＦは１３４個のアミノ酸からなる塩基性タンパク質であり、血液脳関門を通過することはできない。従って、ＧＤＮＦを送達するためには脳外科手術が必要である。更に、ＧＤＮＦ、ＮＲＴＮおよびＡＲＴＮは、細胞外マトリクス（ＥＣＭ）の成分であるヘパラン硫酸と相互作用する（Lin et al., 1993）。この相互作用は、投与または産生した領域からのＧＦＬの拡散を劇的に低下させる。組み換えＧＤＮＦは、炎症および抗ＧＤＮＦ抗体の産生を誘導する場合があり（Lang et al., 2006）、また、組み換えＧＤＮＦは高価である。E. coli産生組み換えＧＤＮＦは、先ず不活性タンパク質として産生された後、in vitroで復元されるため、その性質はバッチごとに異なる。最後に、ＧＤＮＦは特異性に欠け、ＧＤＮＦはＧＦＲα１を介した（更に、弱いがＧＦＲα２およびＧＦＲα３を介した）ＲＥＴの活性化のみならず、全く異なる以下の受容体も活性化することができる： 神経系細胞接着分子ＮＣＡＭ、およびＧＤＮＦ結合性ヘパラン硫酸側鎖を有するシンデカン糖タンパク質（Bespalov et al.、未出版）（Sariola and Saarma, 2003）。このような多面的なＧＤＮＦの作用は、複数の副作用につながりうる。
【００１０】
哺乳動物細胞は活性化ＧＤＮＦを厳密な品質管理下で分泌することから、遺伝子療法的および細胞療法的な手段は、E. coli産生組み換えＧＤＮＦと関連した免疫応答および炎症性応答の問題を克服するための一助となりうる。ウイルスベクターや、ＧＤＮＦ分泌性の遺伝的に修飾された細胞をポリマーカプセルに封入したものを含む移植可能な装置（Sautter et al., 1998）は、パーキンソン氏病の治療に用いることができる。残念なことに、未制御で連続的に産生されるＧＤＮＦによる恒常的なＲＥＴの活性化は悪性腫瘍につながる可能性があるため、このような方法は、発癌のリスクを高めると考えられる。例えば、ＧＤＮＦ過剰発現トランスジェニックマウスは精巣癌を発症する（Meng et al., 2001）。遺伝子療法や細胞療法とは異なり、小分子は決まった時間間隔で送達され、生体内で迅速に分解されることから、永続的なＲＥＴの活性化を引き起こすことはない。ＧＤＮＦのミメティックは部分的なアゴニストであるという事実によって、発癌のリスクは更に減少する。
【発明の概要】
【００１１】
本発明は、治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物の有効量を対象に投与することを包含する方法に関する。
【００１２】
対象に化合物、組成物または物質を投与することに関連して記載した本発明の全ての態様は、化合物、組成物または物質の、対象を治療するための使用、あるいは治療を必要とする対象の示す病態に対する薬物治療（または治療に有用な薬剤）の製造のための使用にも関わることを理解されたい。
【００１３】
また、上記の目的に有用な、本明細書に記載した全ての化合物（またはその塩やエステル、あるいはそのプロドラッグ）は、それ自体が本発明の１つの態様である。同様に、これら化合物の少なくとも１種、および薬学的に許容される希釈剤、賦形剤または担体を包含する組成物も、本発明の１つの態様である。同様に、少なくとも１種の化合物の単位剤形も本発明の１つの態様である。更に、化合物または組成物を含有する注射器などの医療器具も、本発明の１つの態様である。
【００１４】
本発明において標的とする疾患には、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態が含まれる。
【００１５】
ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体を阻害および／または活性化する化合物、その塩またはエステルも開示する。
【００１６】
人体を対象とした方法の特許化が禁止されている出願国については、以下の限定を課すものとする：（１）ヒト対象の選択は、人体から先に採取した生物学的サンプルの試験に基づいた選択、および／または病歴、問診または人体に対して実施するものではない他の行為によって得られた情報に基づいた選択に限定されると解釈するものとし、（２）ヒト対象に対する組成物の投与は、ヒト対象が何らかの技術（例えば、経口投与、吸入、局所投与、注射、挿入など）を用いて自己投与するため、または処方した機関以外の者によって対象に投与されるための、制御された物質の処方に限定されると解釈するものとする。本願はそれぞれの出願国において、特許性のある発明主題を定義する法律または規則と合致する最も広く妥当な解釈を意図したものである。人体を対象とする方法の権利化が認められる出願国については、対象の選択および組成物の投与は、人体に対して行う方法と上記行為の両方を含むものとする。
【００１７】
「発明の概要」という見出しは、発明の制限または限定を意図したものではない。本発明は、出願時の発明の詳細な説明や図面に記載した全ての態様も含んでいる。ここに添付した原請求の範囲も、本発明と考えられる態様を定義し、この参照をもってこの概要に組み込まれたものとする。
【００１８】
更に上記に加え、本発明は、更なる態様として、上記で具体的に述べたバリエーションよりも僅かでも範囲の狭い全ての態様も含んでいる。例えば、簡潔さのために属や数値範囲に参照しながら発明の態様を説明した場合であっても、属に含まれる各種類や、数値範囲の中の各数値や副範囲も本発明の態様として意図していることを理解されたい。同様に、本発明の種々の態様や特性を組み合わせて、本発明の範囲に含まれることを意図した更なる態様を創設することもできる。本願の出願人が本願請求の範囲の全範囲を発明したものであるが、請求の範囲は、他者の先行技術までもその範囲に含めることを意図してはいない。従って、本願の請求項の範囲に含まれる制定法上の先行技術に対する出願人の注意が特許庁、他の法人または他の個人によって喚起された場合には、出願人は、該請求項に係る発明を再定義し、制定法上の先行技術または制定法上の先行技術から自明なバリエーションを該請求項の範囲から除外するために、適用される特許法の元で行使可能な補正する権利を保有する。このような補正後の請求項によって定義された本発明のバリエーションも本発明の態様として意図したものである。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】ＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＦＬ）およびその受容体。ＧＦＬは、シグナル伝達受容体ＲＥＴに直接結合することはできず、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカー型ＧＦＲαを必要とする。ＧＤＮＦ、ニュールツリン（ＮＲＴＮ）、アルテミン（ＡＲＴＮ）およびパーセフィン（ＰＳＰＮ）は、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体と相互作用し、更にＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体を介してシグナル伝達も行う。ＴＭ：膜貫通ドメイン。全てのタンパク質を３次元リボンモデルで示した。
【図２】有標細胞（proprietary cell）に基づくルシフェラーゼレポーターシステムを用いた、ＧＦＬシグナル伝達ミメティックの確認。スクリーニングしたいくつかの化合物の構造は次の通りである。化合物２４３Ｇ７は後述する式（VIII）で表される構造を有し、化合物２９９Ｂ５は後述する式（Ｘ）で表される構造を有し、化合物２９０Ａ１１は下記式で表される構造を有し、
【化１】
化合物３１９Ｈ６は下記式で表される構造を有し、
【化２】
そして化合物３７５Ｆ４は下記式で表される構造を有する。
【化３】
【図３】ＲＥＴ−ＥＬＩＳＡアッセイによるＧＦＬミメティックの検出。ＧＦＬミメティックは、ＧＦＲα１およびＧＦＲα３を介してＲＥＴを活性化する。化合物２１９９０２は下記式で表される構造を有し、
【化４】
そして化合物７４６０９は下記式で表される構造を有する。
【化５】
【図４】リン酸化アッセイにより明らかとなった、選択したＧＦＬミメティックによるＧＦＲαを介したＲＥＴの強力な活性化。ＷＢ：ウエスタンブロッティング。ＩＰ：免疫沈降法。ｐＹ：抗リン酸化チロシン抗体。アスタリスクは、ＲＥＴの活性化を誘導するＧＬＦミメティック化合物を示す。レーンの番号と化合物は以下の通りである。１）ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、２）下記式で表される構造を有する不活性化合物クロロキン：
【化６】
３）下記式で表される構造を有する不活性化合物１３００５：
【化７】
４）下記式で表される構造を有する活性化合物２１９９０２：
【化８】
５）下記式で表される構造を有する活性化合物１４３５１１：
【化９】
６） 下記式で表される構造を有する不活性化合物３４９０５１：
【化１０】
７）下記式で表される構造を有する不活性化合物１０８：
【化１１】
８）下記式で表される構造を有する活性化合物２９２６５１：
【化１２】
９）ＧＤＮＦ、および１０）分子量マーカー（ＭＷ）。
【図５】ＧＦＲα１／ＲＥＴ発現細胞（上部パネル）、およびＧＦＲα３／ＲＥＴ発現レポーター細胞系またはＲＥＴ発現レポーター細胞系（下部パネル）に投与した化合物の容量反応。ＧＦＲα／ＲＥＴが活性化するシグナル伝達カスケードはＭＡＰＫの活性化をもたらし、ルシフェラーゼレポータータンパク質の誘導につながる。化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７は、ＧＦＲα１／ＲＥＴ発現レポーター細胞系およびＧＦＲα３／ＲＥＴ発現レポーター細胞系において、用量依存的にルシフェラーゼ発現を誘導した。ＲＥＴ単独を発現する細胞においては有意な効果は見られなかった。化合物ＢＴ１８はＧＦＲα１／ＲＥＴ細胞系で活性を示した。ＧＦＲα３／ＲＥＴ発現細胞系（ａ３）：実線、ＲＥＴ発現細胞系（Ｎｏａ）：破線。ＢＴ１０は下記式で表される構造を有し、
【化１３】
ＢＴ１３（本明細書において「Ｎ１３」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１４】
ＢＴ１６（本明細書において「Ｎ１６」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１５】
ＢＴ１７（本明細書において「Ｎ１７」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１６】
ＢＴ１８は下記式で表される構造を有し、
【化１７】
そしてＢＴ１９は下記式で表される構造を有する。
【化１８】
【図６Ａ】新規な（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの誘導したＲＥＴのリン酸化。ＢＴ１０、ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７とＢＴ１９の構造は、図５の説明に記載した通りであり、ＢＴ１２は下記式で表される構造を有する。
【化１９】
種々のＢＴ化合物（構造は上述した通り）によるＧＦＲα１／ＲＥＴの活性化。ＭＧ８７ ＲＥＴ繊維芽細胞をＧＦＲα１構築物でトランスフェクトし、１００μＭ濃度のＢＴ試験化合物で処理した。上部パネルは、ＲＥＴ抗体で免疫沈降させた膜（ＩＰ：ＲＥＴ）を溶解してリン酸化チロシン抗体でプロービングしたもの（ＷＢ： ｐＹ）を表す。化合物ＢＴ１３およびＢＴ１６はＧＦＲα１を介してＲＥＴを強力に活性化した。化合物ＢＴ１７およびＢＴ１８はＧＦＲα１／ＲＥＴに対する弱いアゴニストのようだ。下部パネルは、同じ膜を抗ＲＥＴ抗体でプロービングした結果を示す（ＷＢ：ＲＥＴ）。ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を負の対照として用いた。ＧＤＮＦ（１００ｎｇ／ｍｌ）を正の対照として用いた。
【図６Ｂ】ＢＴ化合物による、ＧＦＲα３／ＲＥＴの活性化。ＭＧ８７ ＲＥＴ繊維芽細胞をＧＦＲα３構築物またはＧＦＰ構築物でトランスフェクトし、１００μＭ濃度のＢＴ化合物（構造は上述した通り）で処理した。上部パネルは、ＲＥＴ抗体で免疫沈降させた膜（ＩＰ：抗ＲＥＴ）を溶解してリン酸化チロシン抗体でプロービングしたもの（ＷＢ：ｐＹ）を表す。化合物ＢＴ１３はＧＦＲα３を介してＲＥＴを強力に活性化した。化合物ＢＴ１６、ＢＴ１７およびＢＴ１８はＧＦＲα３／ＲＥＴに対する弱いアゴニストのようだ。下部パネルは、同じ膜を抗ＲＥＴ抗体でプロービングした結果を示す（ＷＢ：抗ＲＥＴ）。ＧＦＲα３トランスフェクト細胞において、３０μｌのＤＭＳＯを負の対照として用いた。ＧＦＲα３トランスフェクト細胞において、ＡＲＴＮ（１００ｎｇ／ｍｌ）を正の対照として用いた。
【図７】ベヒクル、ＧＤＮＦ（１０μｇ）または記載した濃度（０．２〜５μｇ）のＧＤＮＦミメティックの線条体注入による、アンフェタミン誘導回転運動に対する効果。ラットに対して、線条体内の６−ＯＨＤＡ（２８μｇ）による障害の誘導から３週間後に、ベヒクル、ＧＤＮＦまたは上述した構造のＢＴ ＧＤＮＦミメティック化合物を線条体に投与した。アンフェタミン誘導行動を障害から６週間後に測定した。
【図８】記載したＢＴ化合物の存在下における、マウス繊維芽細胞の細胞成長。ＢＴ１０、ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７、ＢＴ１８およびＢＴ１９の構造は、上述した通りである。結果は、ＤＭＳＯ対照（生存率は１００±５％と仮定）に対する生細胞数のパーセントで表した。全ての化合物が、５０μＭの濃度で中庸な細胞成長阻害を示した（但し、ＢＴ１０は、２μＭを超える濃度で有意な毒性を示した）。
【図９】アンフェタミン誘導回転運動に対する、ベヒクル、ＧＤＮＦ（１０μｇ）またはＧＤＮＦミメティック（投与量は記載の通り）の線条体注入の影響。化合物の構造は上述した通りである。
【００２０】
発明の詳細な説明
本明細書においては、神経学的疾患と非神経学的な疾患の両方を含む、対象の有する疾患を治療するための化合物および方法を開示する。本発明の方法は、ＧＦＲα受容体分子に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物（「ＧＤＮＦミメティック化合物」）または下流のＲＥＴシグナル伝達に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物（「ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物」）の有効量を対象に投与することを包含する。本発明のいくつかのバリエーションにおいては、少なくとも１種の薬学的に許容される希釈剤、アジュバントまたは担体を更に含有する組成物として、上記化合物を投与する。
【００２１】
本明細書の開示においては、以下の治療学的な目標のいずれかが達成された場合に、治療は成功したものとみなす。病気の症状の改善、緩和または消失；病気またはその症状の進行の遅延または停止；変質または障害の改善、部分的治癒または完治；対象の部分的または完全な回復；および／または本発明よりも高い治療費、困難な投与または許容度の低い副作用を伴う他の標準治療法を低減または排除しながらも達成される、同等の生活の質。
【００２２】
疾患は、例えば、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、またはＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態である。
【００２３】
対象は、動物またはヒトである。動物は哺乳動物である。
【００２４】
更に本明細書においては、神経系細胞の生存を容易にするか、神経機能を亢進するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および／または活性調節特異性を示す化合物で神経系細胞を処理することを包含する方法を開示する。更に、下流のＲＥＴシグナル伝達を誘導する化合物も開示する。
【００２５】
化合物は小分子である。いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（Ｉ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００２６】
【化２０】
【００２７】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アルケニレンアリール基および水酸基からなる群より選ばれる１種である。）いくつかの態様においては、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、アルキレンアミノ基および水素原子からなる群より選ばれる１種であり、アルキレンアミノ部分のアミノ基は、更に１個または２個のアルキル基またはアルキレンアリール基（例えば、ベンジル基）で置換されていても良い。種々の態様においては、Ｒ３は塩化アルキル基またはアミノアルキル基である。特定の態様においては、Ｒ１は水素原子であり、Ｒ２はアルキレンアミノ基である。
【００２８】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（II）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００２９】
【化２１】
【００３０】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３１】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（III）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３２】
【化２２】
【００３３】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３４】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（IV）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３５】
【化２３】
【００３６】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３７】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（Ｖ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３８】
【化２４】
【００３９】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００４０】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VI）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４１】
【化２５】
【００４２】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４３】
【化２６】
【００４４】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VIII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４５】
【化２７】
【００４６】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（IX）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４７】
【化２８】
【００４８】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（Ｘ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４９】
【化２９】
【００５０】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XI）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５１】
【化３０】
【００５２】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５３】
【化３１】
【００５４】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XIII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５５】
【化３２】
【００５６】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XIV）〜（XIX）のいずれかで表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５７】
【化３３】
【００５８】
【化３４】
【００５９】
【化３５】
【００６０】
【化３６】
【００６１】
【化３７】
【００６２】
【化３８】
【００６３】
種々の場合において、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XX）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００６４】
【化３９】
【００６５】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）Ｒ１の具体例としては、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００６６】
本明細書で使用する「アルキル」という用語は、炭素原子を含む直鎖状または分岐状の炭化水素基であり、典型的にはメチル基、エチル基、および直鎖状または分岐状のプロピル基とブチル基である。特に断りがない限り、炭化水素基は最大２０個の炭素原子を有してもよい。「アルキル」という用語には、「架橋アルキル」、即ち、Ｃ6〜Ｃ16の二環式または多環式の炭化水素基も含まれ、具体例としては、ノルボルニル基、アダマンチル基、ビシクロ［２．２．２］オクチル基、ビシクロ［２．２．１］ヘプチル基、ビシクロ［３．２．１］オクチル基やデカヒドロナフチル基が挙げられる。アルキル基は、所望により、水酸基（ＯＨ）、ハロゲン、アミノ基、スルホニル基などで置換されていてもよい。「アルコキシ」基とは、酸素置換基を有するアルキル基、例えば、Ｏ−アルキル基である。
【００６７】
「アルケニル」という用語は、少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を有する炭素原子を含有する、直鎖状または分岐状の炭化水素基を意味する。特に断りがない限り、炭化水素基は最大２０個の炭素原子を有してもよい。アルケニル基は、所望により、水酸基（ＯＨ）、ハロゲン原子、アミノ基、スルホニル基などで置換されていてもよい。
【００６８】
本明細書で使用する「アルキレン」という用語は、定義された置換基を更に有するアルキル基を意味する。例えば、「アルキレンアリール」という用語は、アリール基で置換されたアルキル基を意味し、「アルキレンアミノ」という用語は、アミノ基で置換されたアルキル基を意味する。アルキレンアミノ部分のアミノ基は、例えば、アルキル基、アルキレンアリール基、アリール基またはこれらの組み合わせによって更に置換されていてもよい。「アルケニレン」という用語は、定義された置換基を更に有するアルケニル基を意味する。
【００６９】
本明細書で使用する「アリール」という用語は、単環式または多環式の芳香族基、好ましくは単環式または二環式の芳香族基、例えば、フェニル基やナフチル基を意味する。特に断りがない限り、アリール基は未置換でもよいし、１個または２個以上、特に１〜４個の置換基、例えば、各々独立に、ハロゲン原子、アルキル基、アルケニル基、ＯＣＦ3、ＮＯ2、ＣＮ、ＮＣ、ＯＨ、アルコキシ基、アミノ基、ＣＯ2Ｈ、ＣＯ2アルキル基、アリール基、およびヘテロアリール基からなる群より選ばれるもので置換されていてもよい。代表的なアリール基としては、フェニル基、ナフチル基、テトラヒドロナフチル基、クロロフェニル基、メチルフェニル基、メトキシフェニル基、トリフルオロメチルフェニル基、ニトロフェニル基、２，４−メトキシクロロフェニル基などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。「アリールオキシ」基とは、酸素置換基を有するアリール基、例えば、Ｏ−アリール基である。
【００７０】
本明細書で使用する「アシル」という用語は、カルボニル基、例えば、Ｃ（Ｏ）を意味する。アシル基は、例えば、水素原子、アルキル基、アルケニル基、アリール基、アルケニルアリール基、アルコキシ基、またはアミノ基で更に置換されていてもよい。アシル基の具体例としては、アルコキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアルキル）、アリールオキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアリール）、アルキレンアリールオキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアルキレンアリール）、カルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ2）、アルキルカルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ（アルキル））やジアルキルカルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ（アルキル）2）などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００７１】
本明細書で使用する「アミノ」という用語は、窒素含有置換基であって、アルキル基、アルケニル基、アリール基、アルキレンアリール基およびアシル基からなる群より選ばれる置換基を０個、１個または２個有するものを意味する。置換基が０個のアミノ基は−ＮＨ2である。
【００７２】
本明細書で使用する「ハロゲン」または「ハロゲン原子」（"halo" or "halogen"）という用語は、フッ素原子、臭素原子、ヨウ素原子または塩素原子を意味する。
【００７３】
本明細書で使用する「薬学的に許容される塩」という用語は、合理的な医療的判断の範囲内において、過度の毒性、炎症、アレルギー反応などを起こすことなく、ヒトおよび下等動物の組織と接触させて用いるのに適しており、且つ妥当なリスク便益比と合致する塩類を意味する。薬学的に許容される塩は、当業界では広く知られている。例えば、S. M. Berge et al.は、J. Pharmaceutical Sciences、66: 1-19 (1977)において、薬学的に許容される塩について詳細に記載している。塩類は、本発明の化合物の最終的な単離・精製の際にin situで製造するか、あるいは遊離した塩基性官能基を適切な有機酸または無機酸と反応させることで別途製造することができる。薬学的に許容される無毒性の酸付加塩の例としては、塩酸、臭化水素酸、リン酸、硫酸または過塩素酸などの無機酸、または酢酸、マレイン酸、酒石酸、クエン酸、コハク酸、ラクトビオン酸またはマロン酸などの有機酸を用いる方法あるいはイオン交換などの当業界で使用される他の方法で製造したアミノ基の塩などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。他の薬学的に許容される塩としては、アジピン酸塩、アルギン酸塩、アスコルビン酸塩、アスパラギン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、安息香酸塩、重硫酸塩、ホウ酸塩、酪酸塩、樟脳酸塩、カンファースルホン酸塩、クエン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ジグルコン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタン硫酸塩、蟻酸塩、フマル酸塩、グルコヘプトン酸塩、グリセロリン酸塩、グルコン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、カプロン酸塩、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシエタン硫酸塩、ラクトビオン酸塩、乳酸塩、ラウリン酸塩、ラウリル硫酸塩、リンゴ酸塩、マレイン酸、マロン酸塩、メタンスルホン酸塩、２−ナフタレンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、硝酸塩、オレイン酸塩、オキサロ酸塩、パルミチン酸塩、パモ酸塩、ペクチニン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、リン酸塩、ピクリン酸塩、ピバリン酸塩、プロピオン酸塩、ステアリン酸塩、コハク酸塩、硫酸塩、酒石酸塩、チオシアン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩、ウンデカン酸塩、吉草酸塩などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。代表的なアルカリ金属塩またはアルカリ土金属塩としては、ナトリウム塩、リチウム塩、カリウム塩、カルシウム塩およびマグネシウム塩が挙げられる。更に、適切な場合には、薬学的に許容される塩には、ハロゲン化物、水酸化物、カルボン酸塩、硫酸塩、リン酸塩、硝酸塩、炭素数が１〜６のアルキル基、スルホン酸塩およびアリールスルホン酸塩などの対イオンを用いて形成した、無毒性のアンモニウム塩、四級アンモニウム塩およびアミンカチオンが含まれる。
【００７４】
製剤
本明細書に開示した化合物は、その摂取、分布および／または吸収を補助するために、他の分子、分子構造または化合物の混合物、例えば、リポソーム、担体、希釈剤、受容体標的化分子、経口用製剤、経腸用製剤、局所用製剤または他の製剤と、更に混合、封入、結合またはその他の方法で関連付けてもかまわない。このような摂取、分布および／または吸収を補助する製剤の調製方法を教示する代表的な米国特許としては、次の特許が挙げられるが、これらに限定されるものではない： 米国特許第５，１０８，９２１号、米国特許第５，３５４，８４４号、米国特許第５，４１６，０１６号、米国特許第５，４５９，１２７号、米国特許第５，５２１，２９１号、米国特許第５，５４３，１５８号、米国特許第５，５４７，９３２号、米国特許第５，５８３，０２０号、米国特許第５，５９１，７２１号、米国特許第４，４２６，３３０号、米国特許第４，５３４，８９９号、米国特許第５，０１３，５５６号、米国特許第５，１０８，９２１号、米国特許第５，２１３，８０４号、米国特許第５，２２７，１７０号、米国特許第５，２６４，２２１号、米国特許第５，３５６，６３３号、米国特許第５，３９５，６１９号、米国特許第５，４１６，０１６号、米国特許第５，４１７，９７８号、米国特許第５，４６２，８５４号、米国特許第５，４６９，８５４号、米国特許第５，５１２，２９５号、米国特許第５，５２７，５２８号、米国特許第５，５３４，２５９号、米国特許第５，５４３，１５２号、米国特許第５，５５６，９４８号、米国特許第５，５８０，５７５号および米国特許第５，５９５，７５６号。ここで参照したことをもってこれら米国特許は本願に組み込まれたものとする。
【００７５】
更に本明細書においては、個々に記載した化合物を含む医薬組成物および医薬製剤を開示する。医薬組成物は、局所治療または全身治療のいずれを目的とするか、そして治療を施す面積に応じて、数々の方法で投与することができる。投与には、局所投与（点眼、および経膣送達や経腸送達を含む粘膜への投与も含まれる）、経肺投与（例えば、噴霧吸入器による投与、気管内投与、鼻腔内投与、表皮投与および経皮投与を含む、粉体またはエアゾールの吸入または吹送)、経口投与、または非経口投与が含まれる。非経口投与には、静脈内、動脈内、皮下、腹腔内または筋肉内の注射または点滴、あるいは頭蓋内、例えば、髄腔内または脳室内への投与が含まれる。局所投与用の医薬組成物および医薬製剤には、経皮吸収用貼付剤、軟膏、乳剤、クリーム剤、ゲル剤、滴剤、座薬、スプレー剤、液剤および粉剤が含まれる。公知の薬学的な担体、水性基剤、粉末基剤、油性基剤、増粘剤などの使用は必須でもよいし、好ましくてもよい。
【００７６】
医薬製剤（利便性のために単位剤型で提供されてもよい）は、製薬工業界においてよく知られた公知技術に基づいて製造することができる。このような技術には、活性成分を薬学的な担体または賦形剤と接触させる工程が含まれる。一般的に製剤は、活性成分を液状担体、細かく粉砕した固体担体、またはその両方と均一且つ密接に関連付け、そして、必要であれば、製品の形状を整えることによって製造する。
【００７７】
組成物は、あり得る様々な剤型のいずれにでも処方することが可能であり、剤型としては、錠剤、カプセル剤、ゲルカプセル剤、液状シロップ剤、ソフトゲル剤、座薬および注腸剤などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。組成物は、水系溶媒、非水系溶媒または混合溶媒を用いた懸濁液として処方することもできる。水系懸濁液は懸濁液の粘性を高める物質、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトールおよび／またはデキストランを更に含んでいてもよい。懸濁液は安定化剤を更に含んでいてもよい。
【００７８】
医薬組成物としては、溶液製剤、乳化製剤、泡状製剤およびリポソーム含有製剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明の医薬組成物および医薬製剤は、１種または複数種の浸透促進剤、担体、賦形剤、希釈剤あるいは他の活性成分または不活性成分を包含してもよい。
【００７９】
乳化製剤は、典型的には、ある液体が通常直径０．１μｍを超える大きさの液滴として他の液体に分散した不均質系である。乳化製剤は、分散相と、水相か油相のいずれかに溶液として存在するか、それ自体からなる別の相として存在する活性薬剤の他に、付加成分を含有してもよい。マイクロエマルジョンも、本明細書で開示する態様に含まれる。乳化製剤およびその用途は当業界で広く知られており、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されている。上記米国特許は、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８０】
製剤には、リポソーム製剤も含まれる。本明細書において「リポソーム」という用語は、球状の二重膜（単数または複数）を形成する両親媒性脂質からなるベヒクルを意味する。リポソームは、親油性材料によって形成された膜と、送達すべき組成物を含有する水性の内部とを有する、単層膜状または多層膜状のベヒクルである。「リポソーム」の定義には、更に「立体安定型」リポソームも含まれ、本明細書においてこの「立体安定型」リポソームは、１種または複数種の特殊化脂質を包含するリポソームを意味し、特殊化脂質とは、リポソームに取り込まれると、特殊化脂質を含まないリポソームと比べて、循環存続期間が延長される脂質である。立体安定型リポソームの例としては、リポソームのベヒクル形成性脂質部位の一部が１種または複数種の糖脂質を包含するものや、１種または複数種の親水性ポリマー（例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）部分など）によって誘導体化されたものが挙げられる。リポソームおよびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８１】
本明細書に開示した医薬製剤および医薬組成物は、界面活性剤を含んでもよい。薬用製品、製剤および乳化剤における界面活性剤の使用は、当業界で広く知られている。界面活性剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８２】
１つの態様においては、本明細書で開示する化合物の効率的な送達を実行するための１種または複数種の浸透促進剤を包含する製剤を開示する。浸透促進剤は、非親油性薬剤の細胞膜を介した拡散を補助するだけでなく、親油性薬剤の透過性も促進する。浸透促進剤は５つの大まかな分類、即ち、界面活性剤、脂肪酸、胆汁酸塩、キレート剤、および非キレート化非界面活性剤のいずれかに属するものとして分類することができる。浸透促進剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８３】
当業者は、製剤はその意図した用途、即ち、投与経路に基づいて、慣例的に設計されていることを認識するであろう。
【００８４】
局所投与用の好ましい製剤としては、本発明の化合物と、脂質、リポソーム、脂肪酸、脂肪酸エステル、ステロイド、キレート剤および界面活性剤などの局所送達用薬剤との混合物が挙げられる。好ましい脂質およびリポソームとしては、中性物質（例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）、ジミリストイルホスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）、ジステアロイルホスファチジルコリン）、陰性物質（例えば、ジミリストイルホスファチジルグリセロール（ＤＭＰＧ））、およびカチオン性物質（例えば、ジオレオイルテトラメチルアミノプロピル（ＤＯＴＡＰ）およびジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＴＭＡ））が挙げられる。
【００８５】
経口投与用の組成物および製剤には、粉剤または顆粒剤、ミクロ粒子、ナノ粒子、水系媒体または非水系媒体を用いた溶液または懸濁液、カプセル剤、ゲルカプセル剤、分包剤、錠剤またはミニ錠剤が含まれる。増粘剤、香料、希釈剤、乳化剤、分散補助剤またはバインダーの使用が望ましい場合もあろう。好ましい経口製剤は、少なくとも１種の浸透促進剤、界面活性剤およびキレート剤と共に化合物を投与するものである。好ましい界面活性剤としては、脂肪酸および／またはそのエステルまたは塩、胆汁酸および／またはその塩が挙げられる。好ましい胆汁酸／胆汁酸塩、脂肪酸およびそれらの用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。複数種の浸透促進剤の組み合わせ、例えば、脂肪酸／脂肪酸塩と胆汁酸／胆汁酸塩との組み合わせも好ましい。特に好ましい組み合わせは、ラウリン酸のナトリウム塩、カプリン酸およびＵＤＣＡの組み合わせである。更なる浸透促進剤としては、ポリオキシエチレン−９−ラウリルエーテル、ポリオキシエチレン−２０−セチルエーテルが挙げられる。本発明の化合物は、噴霧乾燥した粒子を含む顆粒状の薬剤、あるいはミクロ粒子またはナノ粒子となるように形成した複合体を経口的に送達することができる。複合化剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。経口製剤およびその製造方法は、米国特許出願第０９／１０８，６７３号、米国特許出願第０９／３１５，２９８号および米国特許出願第１０／０７１，８２２号のそれぞれに更に詳細に記載されており、本参照をもってそれらの内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８６】
非経口投与用、髄腔内投与用または脳室内投与用の組成物および製剤は、滅菌水性溶液を含んでいてもよく、このような溶液は更に緩衝剤、希釈剤および他の適切な添加剤を含んでいてもよい。他の適切な添加剤としては、浸透促進剤、担体化合物および他の薬学的に許容される担体または賦形剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００８７】
必要であれば、血液脳関門（ＢＢＢ）の浸透を促進するために、脳に薬剤を送達するための様々な新規な手法を用いて活性化合物を投与することができる。ＢＢＢを透過しての輸送を増加するために当業界で知られている種々の手法を本発明の化合物に適合させることにより、ＢＢＢを透過しての本発明のモジュレーターの輸送を促進することができる（このような手法に関する説明としては、例えば、Pardridge. Trends in Biotechnol. 12:239-245 (1994)、Van Bree et al. Pharm. World Sci. 15:2-9 (1993)およびPardridge et al. Pharmacol. Toxicol. 71:3-10 (1992)を参照）。１つの手法においては、膜透過輸送能を強化したプロドラッグを形成するように、化合物を化学的に修飾する。適切な化学修飾としては、アミド結合またはエステル結合を介した化合物と脂肪酸の共有結合（例えば、米国特許第４，９３３，３２４号および国際公開公報ＷＯ ８９／０７９３８、米国特許第５，２８４，８７６号、Toth et al. J. Drug Target. 2:217-239 (1994)、およびShashoua et al. J. Med. Chem. 27:659-664 (1984)を参照）、および化合物の糖化（例えば、米国特許第５，２６０，３０８号を参照）が挙げられる。更に、Ｎ−アシルアミノ酸誘導体をモジュレーターにおいて用いて「脂質」プロドラッグを形成することもできる（例えば、米国特許第５，１１２，８６３号を参照）。
【００８８】
ＢＢＢを透過しての輸送を促進するための別の手法としては、ペプチド性ミメティック化合物またはペプチドミメティック化合物を第２ペプチドまたは第２タンパク質に結合してキメラタンパク質を形成する方法が挙げられる。この方法において第２ペプチドまたは第２タンパク質は、吸収剤仲介型または受容体仲介型のトランスサイトーシスによりＢＢＢを通過する。よって、本明細書に開示する化合物をこのような第２ペプチドまたは第２タンパク質とカップリングすることによって、得られたキメラタンパク質は、ＢＢＢを透過して輸送される。第２ペプチドまたは第２タンパク質は、脳毛細血管内皮細胞受容体リガンドのリガンドでもよい。例えば、好ましいリガンドは、脳毛細血管内皮細胞上のトランスフェリン受容体に特異的に結合するモノクローナル抗体である（例えば、米国特許第５，１８２，１０７号と米国特許第５，１５４，９２４号、および国際公開公報ＷＯ９３／１０８１９と国際公開公報ＷＯ９５／０２４２１を参照）。ＢＢＢを透過しての輸送を仲介することのできる他の適切なペプチドまたはタンパク質としては、ヒストン（例えば、米国特許第４，９０２，５０５号を参照）、およびビオチン、葉酸塩、ナイアシン、パントテン酸、リボフラビン、チアミン、ピリドキサールおよびアスコルビン酸などのリガンド（例えば、米国特許第５，４１６，０１６号と米国特許第５，１０８，９２１号を参照）が挙げられる。更に。グルコーストランスポーター ＧＬＵＴ−１は、糖ペプチド（［Ｍｅｔ５］エンケファリンのＬ−セリニル−β−Ｄ−グルコシド類似体）をＢＢＢ透過して輸送するという報告がある（Polt et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:7114-1778 (1994)）。このような糖ペプチドに化合物をカップリングすることによって、ＧＬＵＴ−１グルコーストランスポーターをモジュレーターの標的とすることができる。例えば、修飾基Ａｉｃ（未修飾のアミノ基を有するコール酸誘導体である３−（Ｏ−アミノエチル−イソ）−コリル基）によって未修飾のアミンが修飾された化合物を、標準的な方法でＡｉｃのアミノ基を介して糖ペプチドにカップリングすることができる。キメラタンパク質は、組み換えＤＮＡ法（例えば、融合タンパク質をコードするキメラ遺伝子の形成）、またはモジュレーターを第２ペプチドまたは第２タンパク質に化学架橋することによってキメラタンパク質を形成する方法により作製することができる。数々の化学架橋剤が当業界で知られている（例えば、イリノイ州、ロックフォードのPierce社より市販されている）。架橋剤としては、モジュレーターの第２ペプチドまたは第２タンパク質へのカップリングを高収率で行うことができ、且つその後にリンカーの開裂により生物活性モジュレーターを放出できるものを選択することができる。例えば、ビオチン−アビジンに基づくリンカーシステムを使用することができる。
【００８９】
ＢＢＢを透過しての輸送を促進するための更なる手法においては、ＢＢＢを透過しての輸送を仲介する送達ベクターに化合物を封入する。例えば、化合物を、正の電荷を帯びた単層膜状リポソームなどのリポソーム（例えば、国際公開公報ＷＯ ８８／０７８５１および国際公開公報ＷＯ ８８／０７８５２を参照）またはポリマー製マイクロスフィア（例えば、米国特許第５，４１３，７９７号、米国特許第５，２７１，９６１号および米国特許第５，０１９，４００号を参照）に封入することができる。更に送達ベクターは、ＢＢＢを透過して輸送される対象となるように修飾することもできる。例えば、ＢＢＢを透過して能動的に輸送される分子を用いて、またはトランスフェリン受容体に特異的に結合するモノクローナル抗体などの脳内皮細胞受容体のリガンド（例えば、国際公開公報ＷＯ ９１／０４０１４および国際公開公報ＷＯ ９４／０２１７８を参照）を用いて、送達ベクター（例えば、リポソーム）に対して共有結合を介した修飾を行うことができる。
【００９０】
ＢＢＢを透過してのモジュレーターの輸送を促進するための別の手法においては、ＢＢＢの透過性を増加する機能を有する他の薬剤（透過処理剤）と共に化合物を投与する。このようなＢＢＢ「透過処理剤」の具体例としては、ブラジキニンとブラジキニンアゴニスト（例えば、米国特許第５，１１２，５９６号を参照）および米国特許第５，２６８，１６４号に開示されたペプチド性化合物が挙げられる。
【００９１】
投薬法
製剤および投与法（投薬法）の選択は、例えば、容量反応、毒性および薬物動態学的研究に基づいて行われる。投薬は、治療すべき病体の重症度および応答性に依存し、治療期間は数日から数ヶ月であり、治療効果が見られるまで、あるいは病態または病状の減少が達成されるまで継続される。慢性的な病態または症状であって、病態または症状の減少は見込まれるが、完治は不可能な場合、投薬を無期限的に継続することもある。最適な投薬スケジュールは、患者の体内における薬剤蓄積量の測定値から計算することができる。当業者は容易に最適投与量、投与方法および繰り返し頻度を決定することができる。最適投与量は、個別のオリゴヌクレオチドの相対的有効性によって変化し、通常、in vitroおよびin vivoの動物モデルにおいて効果が見られるＥＣ50に基づいて推定することができる。通常の投与量は、体重１ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇであり、１日、１週間、１月または１年に１回または複数回投与するか、あるいは２〜２０年に１回投与することができる。当業者は、測定した滞留時間および体液や組織における薬剤濃度から投薬の繰り返し頻度を推定することができる。患者は、成功した治療に続き、病態の再発を防止するための維持療法を受けることが望ましいこともあり、この場合、維持量、即ち、体重１ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇの範囲内のオリゴヌクレオチドを、１日１回または複数回から２０年に１回までの範囲内で投与する。
【００９２】
アッセイ法
ＧＦＲα受容体分子または下流ＲＥＴシグナル伝達に対する結合用および／または修飾用の化合物（例えば、ＧＤＮＦミメティック）のアッセイを行うための方法も開示する。アッセイによって、化合物のハイスループット解析を提供することができる。例えば、ＧＦＲα１を発現する細胞を目的化合物と接触させ、そして細胞成長の増加を指標として目的化合物がＧＤＮＦミメティックであるか否かを判定する。この際、具体的には、ミメティックアッセイの細胞成長を、化合物を使用しない対照実験のバックグラウンド値と比較する。場合によっては、細胞はＧＦＲα１と共にルシフェラーゼを発現する細胞であり、細胞成長の指標はルシフェラーゼである。細胞成長は、細胞−化合物混合物の発光を計測することによって測定することができる。
【００９３】
更に、細胞が、他の目的受容体、例えば、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３またはＧＦＲα４を天然にまたは組み換えによって発現するアッセイも考えられる。本発明のいくつかのバリエーションにおいては、ＧＦＲα１、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３およびＧＦＲα４からなる群より選ばれる１種の受容体に対して特異的な化合物を選択する。他の場合には、２種、３種または全４種の受容体を調節する化合物を選択する。
【００９４】
本発明のアッセイは、正の対照、例えば、目的受容体に対する天然のリガンドを用いて実施することもできる。こうすることによって、ＧＦＲα１、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３および／またはＧＦＲα４のリガンド仲介性の活性化を阻害する受容体結合化合物を選択することができる。好ましいリガンドと受容体の組み合わせを図１に示した。この図には、特定のリガンド／受容体相互作用に対して模倣、調節または干渉する化合物の代表的な適応症も示した。
【００９５】
本明細書に開示した別の方法は、化合物をＧＤＮＦミメティックとして評価するための二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡアッセイを包含し、この方法は、いくつかの態様において、ミメティックの活性に対する定量的な測定を提供することができる。ＲＥＴおよびＧＦＲα１（または他の目的受容体の１種）を発現する細胞を目的の化合物と接触させ、次に抗ＲＥＴ抗体と接触させた後に、抗ｐＹ抗体（マウス抗ｐＹ抗体など）と接触させて二重抗体サンドイッチを形成する。二重抗体サンドイッチの形成は、化合物がＧＤＮＦミメティックであることの指標となる。場合によっては、サンドイッチの検出は間接的な検出でもよく、例えば、抗ｐＹ抗体がマウス抗体の場合、サンドイッチを２次抗マウスＨＲＰ結合抗体および化学発光試薬（ＥＣＬ試薬など）と接触させ、得られる発光を測定する。
【実施例】
【００９６】
以下の実施例は、本願で開示した発明の実例を提供するために本願に含めたものである。本明細書の開示および当業者の一般的な技術水準を考慮すると、当業者は以下の実施例が単なる例示を意図したものであり、本願で開示した発明の精神および範囲から逸脱することなく、数々の変化、修飾および改変が採用可能であることを理解するであろう。
【００９７】
方法
細胞系。ＲＥＴ癌原遺伝子で安定にトランスフェクトしたＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞（Leppanen et al., 2004）。Ｎ１８ラット／マウス神経膠腫／神経芽腫細胞はＡＴＣＣより入手した。
【００９８】
動物。上頸神経節はＰ０−Ｐ２ウイスターラットから単離した。実験動物の使用は、ヘルシンキ大学動物実験委員会の承認および自治体理事会（County Administrative Board）の主席獣医官の許可（ＨＹ ５５−０６）の下に行った。
【００９９】
タンパク質。ＧＤＮＦとＡＲＴＮは、PeproTech Ltdより入手した。ＮＧＦはPromegaから購入した。全てのＧＦＬの濃度を、ＢＳＡを標準としたmicroBCAキット（Pierce製）で確認した。
【０１００】
プラスミド。ｐＣＤＮＡ３（Invitrogen製）にサブクローニングした、フラッグをタグとして付した全長ラットＧＦＲα１ ｃＤＮＡ（Leppanen et al., 2004）。ｐＣＤＮＡ６（Invitrogen製）にサブクローニングした、全長ヒトＧＦＲα１ ｃＤＮＡ（Sidorova et al.、未出版）。全長ヒトＧＦＲα３ ｃＤＮＡ（Wang et al., 2006）。ｐＣＲ３．１(Invitrogen製）内の全長ヒトＲＥＴ（長鎖イソフォーム）（Runeberg-Roos et al., 2007）。ＭＡＰＫ活性化検出システム（Baloh et al., 2000）およびPathDetect Elk-1 (Stratagene製）は、２種のプラスミドを含んでいる。第１のプラスミドは、Ｅｌｋ−１の活性化ドメインおよび酵母ＧＡＬ４タンパク質のＤＮＡ結合ドメイン（Ｇａｌ４−Ｅｌｋ１）からなる、ＭＡＰＫ経路特異的な融合トランス活性化因子を恒常的に発現する。もう一方のプラスミドであるＧａｌ４−Ｌｕｃは、酵母ＧＡＬ４結合配列を含有する合成プロモーターの制御下にあるルシフェラーゼ遺伝子を保有する。
【０１０１】
安定な細胞系の作製。ＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞を３５ｍｍのディッシュに植え付け、細胞のトランスフェクションを４μｇのＧ４−Ｌｕｃ、Ｇａｌ４−Ｅｌｋ（Baloh et al., 2000）およびＧＦＲα１発現プラスミド（“αＬＵＣ”細胞）またはネオマイシン耐性遺伝子を含む空のベクター（“ＮＯα”細胞）によって行った。トランスフェクションは、ＤＮＡ送達用のリポフェクタミン２０００（Invitrogen製）を、製造者の説明書に従って、４：１：１で使用して行った。次の日に細胞をトリプシン処理に付し、低密度で１０ｃｍの組織培養用ディッシュに植えつけた。安定な形質転換細胞を、５００〜７５０μｇ／ｍｌのジェネティシン（Invitrogen製）の存在下で選択した。確立された細胞系は、１０％ ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン（Invivogen製）、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ ジェネティシンおよび１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２で維持した。Pathdetect Elk-1 システムおよびヒトＧＦＲα１発現プラスミド保有細胞（“Ｓｔｒａｔ−Ｌｕｃ”細胞）または空ベクター保有細胞（対照細胞系“ＮＯＳｔｒａｔｉｓ”）を選択し、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン（Invivogen製）、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８、２μｇ／ｍｌ ブラスチシジンＳおよび１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２で維持した。
【０１０２】
レポーター遺伝子のルシフェラーゼ活性によるアッセイを用いた、ＧＤＮＦミメティックの検出
アッセイ開始の１日前に、９６穴プレートに細胞密度がウェル当たり２０，０００細胞となるように、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８および１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２に細胞を植え付けた。次の日には、１０％ ＦＢＳと１００μｇ／ｍｌ ノルモシンを含むＤＭＥＭを用いて、終濃度が１００ｎｇ／ｍｌとなるように各神経栄養因子をウェルに添加した。細胞に２４時間ルシフェラーゼを産生させ、その後、２０μｌの１×培養細胞溶解試薬（Cell culture lysis reagent）（Promega製）を用いて溶解し、更に１回の凍結融解を行うことで、細胞溶解を完全なものとした。次に、黒色の９６穴イソプレート（PerkinElmer製）のウェル内で、５μｌの細胞溶解物を（氷上で）２０μｌのルシフェラーゼアッセイ基質（Promega製）と混合した。発光は、MicroBeta 2 カウンター（PerkinElmer製）で２回計測した。２回目の計測結果を使用した。播種細胞密度を最適化するために、２，０００〜５０，０００細胞／ウェルをアッセイの前日に播種し、溶液中のＧＤＮＦによって刺激された細胞の応答を推定するために、播種前に終濃度が１０〜１００ｎｇ／ｍｌとなるまでＧＤＮＦを細胞懸濁液に添加し、その後、細胞を細胞密度が２０，０００細胞／ウェルとなるように９６穴プレートに播種し、２４時間静置してルシフェラーゼを産生させた。容量反応曲線用には、ＧＦＬを終濃度が５〜２００ｎｇ／ｍｌとなるように添加した。ルシフェラーゼ産生に必要な最適時間を決定するために、細胞をＧＤＮＦと共に培養液中に４〜４８時間放置した。短期のＭＡＰＫ活性化を研究するために、αＬＵＣ細胞を１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦで０．５〜６０分間処理し、増殖培地で１回洗浄し、新鮮な増殖培地中に２４時間静置してルシフェラーゼを産生させた。データはＭ±ｍで表し、Ｍは４回の平均値であり、ｍは標準偏差である。検出結果は図２に示した。研究した化合物には以下のものが含まれる。
【０１０３】
下記式で表される構造を有する化合物２９９Ｂ５。
【化４０】
【０１０４】
下記式で表される構造を有する化合物２９０Ａ１１。
【化４１】
【０１０５】
下記式で表される構造を有する化合物３１９Ｈ６。
【化４２】
【０１０６】
そして、下記式で表される構造を有する化合物３７５Ｆ４。
【化４３】
【０１０７】
ＲＥＴ−ＥＬＩＳＡアッセイを用いた、ＧＤＮＦミメティックの検出
ＧＤＮＦまたはそのミメティックを用いた刺激を行った後、細胞を溶解し、固相免疫沈降法と続くリン酸化チロシン検出のための抗ＲＥＴ抗体を予め吸着させた９６穴プレートに溶解物を移動した。 リン酸化ＲＥＴ検出用の９６穴プレート（OptiPlate 96 F HB、黒色、Wallac製）の作製： １μｇ／ｍｌのヤギ抗ＲＥＴ抗体（Santa Cruz製）をＰＢＳで希釈した。７５μｌ／ウェルの希釈した抗体を添加し、プレートを封止し、＋４℃で１晩インキュベートした。その後、２００μｌ／ウェルのＰＢＳで３回洗浄し、ブロッキング溶液（５％ＢＳＡのＴＢＳ溶液）を用いて室温で２時間のブロッキングを行い、溶解バッファー（１０ｍｌのＴＢＳ（バッファー）当たり、１％ Triton X-100、１％ ＮＰ−４０、０．２５％ デオキシコール酸、１０％ グリセロール、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、１ｍＭ ＥＤＴＡおよび完全プロテアーゼ阻害試薬（Complete protease inhibitor）（Roche製）１錠を含む）で１回洗浄した。 抗原の結合およびシグナルの検出： 刺激した細胞（目的リガンド５〜１５分間）を氷上に置き、１ｍＭのバナジウム酸ナトリウムを添加した氷冷ＰＢＳで１回洗浄した。ＰＢＳを除去した後、細胞を１００〜２００μｌの氷上の溶解バッファー中、＋４℃において少なくとも２０分間の振盪下で溶解させた。１００μｌ／ウェルの溶解物を抗ＲＥＴ被覆９６穴プレートに加え、プレートを封止し、＋４℃の水平シェイカー上で１．５〜２時間インキュベートした。次に２００μｌ／ウェルの洗浄バッファー（１％ Triton X-100と２％ グリセロールを含むＴＢＳ）で３回洗浄した。結合バッファー（１％ Triton X-100、２％ グリセロールと２％ ＢＳＡを含むＴＢＳ）で１：１０００に希釈した抗ｐＹ抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate製）を添加し（１００μｌ／ウェル）、そして室温で１〜１．５時間インキュベートした。その後、２００μｌ／ウェルの洗浄バッファーで３回洗浄した。結合バッファーで１：３０００に希釈した二次抗マウスＨＲＰ結合抗体（Dako製）を１００μｌ／ウェル添加した。室温で３０〜４０分間インキュベートし、２００μｌ／ウェルの洗浄バッファーで３〜４回洗浄した。最後に、事前に混合し、室温に暖めておいたＥＣＬ試薬１００μｌ／ウェルを添加した。暗黒（ルミノメーター内）で１〜２分間インキュベートした後、MicroBetaルミノメーターで計測した。検出結果は図３に示す。
【０１０８】
化合物２１９９０２は、下記式で表される構造を有する。
【化４４】
【０１０９】
そして、化合物７４６０９は下記式で表される構造を有する。
【化４５】
【０１１０】
免疫沈降法およびウエスタンブロッティングによる、ＲＥＴリン酸化アッセイを用いたＧＤＮＦミメティックの検出
αＬＵＣ細胞およびＮＯα細胞をそれぞれ３５ｍｍの組織培養用ディッシュに植えつけ、無血清ＤＭＥＭで４時間にわたり飢餓状態とし、５００ｎｇ／ｍｌのＰＳＰＮまたは１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦ（正の対照）で１５分間刺激した。その後、細胞を、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4を含有する氷冷ＰＢＳで１回洗浄し、１ｍｌ／ウェルのＲＩＰＡ修飾バッファー（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１％ ＮＰ−４０、１％ ＴＸ−１００、１０％ グリセロール、ＥＤＴＡ無添加プロテアーゼ阻害剤カクテル（Roche製）、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、２．５ｍｇ／ｍｌ デオキシコール酸ナトリウムおよび１ｍＭ ＰＭＳＦを含有する５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４）中、氷上で溶解した。ＲＥＴを抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（Santa-Cruz Biotechnology, Inc.製）で免疫沈降させた。沈殿したタンパク質を７．５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開し、ニトロセルロースメンブランに転写した。１０％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用い、メンブランを室温で１５分間のブロッキングに付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔで１：１０００に希釈した抗リン酸化チロシン抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate Biotechnology製）を用い、室温で２時間プロービングした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで５分間の洗浄に３回付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用いて希釈したＨＲＰ結合二次抗マウス抗体（DAKO製）の１：３０００溶液を用い、室温で４５分間インキュベートした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで１０分間の洗浄に５回付した。ＬＡＳ３０００画像化プログラムを用い、染色されたバンドをＥＣＬ試薬（Pierce製）で可視化した（図４、上部パネル）。タンパク質が等量ずつロードされていることを確認するために、ストリッピングした後、抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（１：５００、Santa-Cruz Biotechnology、Inc.製）でプロービングした。Ｃ−２０の検出には、ＨＲＰと結合した二次抗ヤギ抗体（１：１５００、DAKO製）を使用した。検出結果は図４の下部パネルに示す。
【０１１１】
レポーター遺伝子ルシフェラーゼ活性によるアッセイを用いた、新規（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティックおよびＡＲＴＮミメティックの容量反応
アッセイ開始の１日前に、９６穴プレート（または３８４穴プレート）にウェル当たりの細胞密度が２０，０００細胞（あるいは３８４穴プレートの場合は５，０００細胞）となるように、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８および１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２に細胞を植え付けた。次の日に、終濃度が１〜５０μＭとなるように化合物を添加した。化合物の構造は、上述した図５の説明に示した。細胞に２４時間ルシフェラーゼを産生させ、その後、２０μｌの１×培養細胞溶解試薬（Cell culture lysis reagent）（Promega製）を用いて溶解し、更に１回の凍結融解を行うことで、細胞溶解を完全なものとした。次に、黒色のイソプレート（PerkinElmer製）のウェル内で、５μｌの細胞溶解物を（氷上で）２０μｌのルシフェラーゼアッセイ基質（Promega製）と混合した。発光を、MicroBeta 2 カウンター（PerkinElmer製）で２回計測した。データは誘導倍率（fold induction）として示し、対応濃度のＤＭＳＯを参照とした。データは図５を参照。
【０１１２】
免疫沈降法およびウエスタンブロッティングによる、ＲＥＴリン酸化アッセイにおける新規（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの活性
実験の前日に、ＭＧ８７ＲＥＴ細胞を３５ｍｍの組織培養用ディッシュに植えつけた。細胞をＧＦＲα１、ＧＦＲα３またはＧＦＰをコードするベクターでトランスフェクトした。実験の当日には、無血清ＤＭＥＭで４時間にわたり飢餓状態とし、濃度が１００μＭの研究対象化合物（構造は、上述した図６の説明に示した）または１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦまたはＡＲＴＮ（正の対照）で細胞を１５分間刺激した。その後、細胞を、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4を含有する氷冷ＰＢＳで１回洗浄し、１ｍｌ／ウェルのＲＩＰＡ修飾バッファー（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１％ ＮＰ−４０、１％ ＴＸ−１００、１０％ グリセロール、ＥＤＴＡ無添加プロテアーゼ阻害剤カクテル（Roche製）、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、２．５ｍｇ／ｍｌ デオキシコール酸ナトリウムおよび１ｍＭ ＰＭＳＦを含有する５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４）中、氷上で溶解した。ＲＥＴを抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（Santa-Cruz Biotechnology, Inc.製）で免疫沈降させた。沈殿したタンパク質を７．５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開し、ニトロセルロースメンブランに転写した。１０％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用い、メンブランを室温で１５分間のブロッキングに付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔで１：１０００に希釈した抗リン酸化チロシン抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate Biotechnology製）を用い、室温で２時間プロービングした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで５分の洗浄に３回付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用いて希釈したＨＲＰ結合二次抗マウス抗体（DAKO製）の１：３０００溶液を用い、室温で４５分間インキュベートした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで１０分の洗浄に５回付した。ＬＡＳ３０００画像化プログラムを用い、染色されたバンドをＥＣＬ試薬（Pierce製）で可視化した。タンパク質が等量ずつロードされていることを確認するために、ストリッピングした後、抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（１：５００、Santa-Cruz Biotechnology、Inc.製）でプロービングした。Ｃ−２０の検出には、ＨＲＰと結合した二次抗ヤギ抗体（１：１５００、DAKO製）を使用した。検出結果を図６に示す。
【０１１３】
パーキンソン氏病の動物モデル
全てのラットに対し、活性化合物（即ち、ＧＦＬミメティックまたはＲＥＴシグナル伝達活性化因子）の腹腔注射（ｉ．ｐ．）および／または２回の定位マイクロインフュージョンを施した。具体的には、１回目には、ベヒクル（４μｌ）、活性化合物（１〜１００ｍｇ／ｋｇ）またはＧＤＮＦ（１０μｇ）のいずれかを注入し、６時間後にはそれぞれの動物に６−ＯＨＤＡ（８μｇ）を左の背側線条体（left dorsal striatum）の同じ部位に投与した。前頂と硬膜に対する左線条体における座標は、PaxinosとWatsonのアトラス（Paxinos and Watson, 1997, The rat brain in stereotaxic coordinates (ラット脳の定位座標), Academic press, San Diego）によるとＡ／Ｐ ＋１．０、Ｌ／Ｍ ＋２．７、Ｄ／Ｖ −４だった。この研究は、以下のグループからなるものである： 線条体 ＰＢＳ＋６−ＯＨＤＡ、線条体 ＧＤＮＦ＋６−ＯＨＤＡ、線条体 ＧＦＬミメティック＋６−ＯＨＤＡ、および線条体 ＰＢＳ＋６−ＯＨＤＡ＋ｉ．ｐ．ＧＦＬミメティック。
【０１１４】
回転行動： 障害から２週間後と４週間後に行動試験を実施した。Ｄ−アンフェタミン（フィンランド国、ヘルシンキ、University Pharmacy製）の投与（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）の３０分前には、ラットを試験チャンバーに慣らしておいた。完全な（３６０°の）同側性回転および対側性回転の数を２時間にわたり記録した。障害側に対する累計同側性回転数は、右回転の数から左回転の数を引くことで算出した。
【０１１５】
免疫組織化学： 障害から４週間後には、過剰量のペントバルビタールナトリウム（９０ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）（フィンランド国、Orion Pharma製）でラットを麻酔し、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、続いて４％ パラホルムアルデヒドを含む０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）による心臓内還流を行った。脳を取り出し、４時間の固定後処理を行い、２０％ ショ糖含有リン酸ナトリウムバッファー中、４℃で保存した。４０μｍ厚の連続した環状断凍結切片をスライド式ミクロトームで切り出した。６セットの切片を凍結保護溶液（０．５Ｍ ＰＢ、３０％ グリセロールと３０％ エチレングリコール）に回収し、免疫組織化学的処理を行うまで−２０℃で保存した。浮動性切片をＴＨ−免疫組織化学のために処理した。ＰＢＳで３回すすいだ後、３％ Ｈ2Ｏ2／１０％ メタノール／ＰＢＳ中で内因性ペルオキシダーゼ活性の抑制処理を５分間行った。ＰＢＳで３回すすいだ後、切片を正常ウマ血清（ＮＨＳ）／０．３％ Triton X-100 を含むＰＢＳとプレインキュベートすることで、非特異的な染色をブロックした。その後、切片を、１：２０００に希釈したビオチン化マウス−抗ＴＨ抗体（カリフォルニア州、テメクラ、Chemicon製）と共に室温で一晩インキュベートした。続いて、切片を、１：２００に希釈したビオチン化ウマ抗マウス抗体（BA2001、Vector製）とのインキュベーション、およびElite ABC Vectastainキット（Vector Laboratories製）を用いたアビジン−ビオチンペルオキシダーゼ複合体とのインキュベーションに付した。ＤＡＢを発色団として使用し、反応を可視化した。
【０１１６】
形態解析／ＳＮ細胞数： 光学フラクショネーター（Optical fractionator）法を解像原理と公平な計測規則（West et al.,1991, Anat. Rec. 231, 482-497、Mouton et al. 2002, Brain Res. 956, 30-35）と組み合わせて使用する、公平なステレオロジーによる細胞計数法で、黒質緻密部（ＳＮｐｃ）のＴＨ陽性細胞数を計測した。ＳＮｐｃの全体を、Olympus BX51顕微鏡に装着したStereo Investigator（ドイツ国、MicroBrightField製）のプラットフォーム上で解析した。容量解析のために、それぞれの動物について、内側終止核（medial terminal nucleus）（ＭＴＮ）が存在する（Ａ／Ｐ軸は−５．３）ＳＮｐｃの中央部から３つの切片を選択した。光学フラクショネーターによる推定は、個別の脳サンプルに関する計数誤差がｘ％未満となるように最適化した。それぞれの参照空間は低倍率（４×）で輪郭をとり、細胞は高倍率（６０×、油浸）の対物レンズを用いて計数した。
【０１１７】
オスのウイスターラットでは、線条体および／または腹腔内への１回の活性化合物の注射が黒質線条体路におけるドーパミン作動性神経の６−ヒドロキシドーパミン（６−ＯＨＤＡ、８μｇ）誘導変性を防止した。麻酔下でラットに２回の定位マイクロインジェクションを施した。具体的には、１回目には、ベヒクル（ＰＢＳ、４μｌ、対照群）または活性化合物を投与し、６時間後にはそれぞれの動物に６−ＯＨＤＡ（８μｇ）を左背側線条体（left dorsal striatum）の同じ部位に投与した。前頂と硬膜に対する左線条体における座標は、PaxinosとWatsonのアトラス（Paxinos and Watson, 1997, The rat brain in stereotaxic coordinates（ラット脳の定位座標）, Academic press, San Diego）によるとＡ／Ｐ ＋１．０、Ｌ／Ｍ ＋２．７、Ｄ／Ｖ −４だった。
【０１１８】
全てのラットについて行動試験を２回行った。障害から２週間後と４週間後には、同側性（障害のある側への）回転行動を誘導するためにＤ−アンフェタミンを投与し（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）、行動を２時間にわたり記録した。障害から２週間後には、対照群においてアンフェタミン（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）は顕著な同側性回転行動を誘導すると考えられる。一方、処置群（６−ＯＨＤＡ処理の前に活性化合物で処置）においては、同側性回転数の増加は最小かまたは見られないと考えられる。障害から４週間後には、活性化合物はアンフェタミン誘導性の同側性回転を著しく逆転させることができ、免疫組織化学的分析も神経栄養因子によるＤＡ細胞の顕著な防御効果を示すと考えられる。
【０１１９】
ＴＨ免疫組織化学。 障害から４週間後には、２回目の行動試験に続いて、過剰量のペントバルビタールナトリウム（９０ｍｇ／ｋｇ）でラットを麻酔し、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、続いて４％ パラホルムアルデヒドを含む０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）による心臓内還流を行った。浮動性切片はＴＨ−免疫組織化学のために処理される。光学フラクショネーター法を解像原理と公平な計測規則（West et al.,1991, Anat. Rec. 231, 482-497、Mouton et al. 2002, Brain Res. 956, 30-35）と組み合わせて使用する、公平なステレオロジーによる細胞計数法で、黒質緻密部（ＳＮｐｃ）のＴＨ陽性細胞数を計測した。ＳＮｐｃの全体を、Olympus BX51顕微鏡に装着したStereo Investigator（ドイツ国、MicroBrightField製）のプラットフォーム上で解析した。対照群と処置群における、黒質緻密部のＴＨ陽性細胞数の減少はそれぞれ約３０％と約４％になると考えられる。
【０１２０】
別のパーキンソン氏病研究
本研究の目的は、線条体（ｉ．ｓ．）投与した小分子ＧＤＮＦミメティック（化合物１３、１６、３１９Ｈ６および２９２６５１、それぞれの構造は上述した図面の説明に示した）の、パーキンソン氏病のラットモデル６−ＯＨＤＡにおける効果を調査することである。本研究で使用した亜急性障害モデルにおいては、線条体のドーパミン作動性末端の近傍に６−ＯＨＤＡを注入することによって、数週間かけてゆっくりと進行する黒質（ＳＮｃ）の障害を作製した（Kirik-D 1998、Exp. Neurol. 152:259-277）。このモデルにおいては、黒質線状体突起の一部は無傷のまま残されており、その部分が成長促進性および神経保護性の試薬に応答して生じる再生および機能的回復のための基質として働くことができる。
【０１２１】
神経毒である６−ＯＨＤＡに暴露してから３週間後に、ＧＤＮＦミメティック化合物、ＧＤＮＦまたはベヒクルを線条体に投与した。ＳＮｃ内のドーパミン作動性ニューロンに対する選択的な損傷と、ドーパミンおよびその代謝産物の線条体における濃度とを、６−ＯＨＤＡの注入から１２週間後に、それぞれチロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）免疫組織化学およびＨＰＬＣで評価した。更にラットの行動障害を、前肢非対称試験（シリンダー試験）、アンフェタミン誘導回転運動非対称試験、および常同的自発回転行動の欠陥を評価するためのＹ字迷路試験で評価した。
【０１２２】
動物： 全ての動物実験は、国立衛生研究所（ＮＩＨ）の実験動物の飼育および使用に関するガイドラインに基づき、南フィンランド国家州局（State Provincial Office of Southern Finland）の認可のもとに行われた。ドイツ国、Charles Riverより購入した、体重が２２０〜２７５ｇの合計１０８匹の雄ウイスターラットを実験に使用した。動物は、標準温度（２２±１℃）および光制御環境（午前７時〜午後８時まで点灯）の下、飼料および水が自由に摂取可能な条件で飼育した。動物は以下の群に分けた。
【０１２３】
グループ１： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にベヒクル（０ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ２： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり５μｇ、即ち、０．４ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ３： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり１μｇ、即ち、０．１ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ４： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり０．２μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ５： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１６（ラット当たり０．５μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ６： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ２９２６５１（ラット当たり５μｇ、即ち、０．４ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ７： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ２９２６５１（ラット当たり１μｇ、即ち、０．１ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ８： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１８（ラット当たり１μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ９： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＧＤＮＦ（R & D Systems, Ltd.製、ラット当たり１０μｇまたは約４０μｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
【０１２４】
部分的な逆行変性をＳＮｃに発生させるために、６−ＯＨＤＡ障害をSauerとOertelの変法に従って実施した（Sauer and Oertel, 1994）。雄のウイスターラットに５％のイソフルラン（７０％ Ｎ2Ｏおよび３０％ Ｏ2中、流速３００ｍｌ／分）で麻酔をかけ、定位枠に入れた。手術の際には麻酔の濃度を１〜１．５％に減少させた。恒温ブランケットシステムを用い、直腸温度を３７．０±１．０℃に維持した。頭蓋骨に対する少量の骨切除開頭術によって右脳半球を露出させた。細い鉗子で硬膜を注意深く除去し、６−ＯＨＤＡ（４μｇ／μｌ）を右線条体に定位注入した。合計７μｌの６−ＯＨＤＡを流速０．５μｌ／分で点滴し、以下の座標で示される４箇所の間で均等に分配させた：ＡＰ ＋１．０、ＭＬ ＋２．８、ＤＶ −６．０、−５．５、−５．０および−４．４ｍｍ。カニューレは抜き取る前に更に５分間その位置に保持した。頭蓋骨の穴は続いて修復材で塞ぎ、皮膚を縫合し消毒した。ラットを静置して麻酔から醒めるのを待ち、起こりうる術後の合併症について注意深く監視した。動物は自由に飼料と水が摂取できる飼育用ケージに戻した。
【０１２５】
２１日目に、ラットに５％のイソフルラン（７０％ Ｎ2Ｏおよび３０％ Ｏ2中、流速３００ｍｌ／分）で再び麻酔をかけ、定位枠に入れた。手術の際には麻酔の濃度を１〜１．５％に減少させた。恒温ブランケットシステムを用い、直腸温度を３７．０±１．０℃に維持した。頭蓋骨に対する少量の骨切除開頭術によって右脳半球を露出させた。ＧＤＮＦまたはベヒクルを右線条体に定位注入した。各投与溶液を流速１μｌ／分で点滴し、以下の座標で示される４箇所の間で均等に分配させた：ＡＰ ＋１．０、ＭＬ ＋２．８、ＤＶ −６．０、−５．５、−５．０および−４．４ｍｍ。カニューレは抜き取る前に更に５分間その位置に保持した。頭蓋骨の穴は続いて修復材で塞ぎ、皮膚を縫合し消毒した。ラットを静置して麻酔から醒めるのを待ち、起こりうる術後の合併症について注意深く監視した。動物は自由に飼料と水が摂取できる飼育用ケージに戻した。
【０１２６】
行動試験： 自発的立ち上がり行動における前肢の使用および選択性 − シリンダー試験：飼育用ケージの壁に対する自発的立ち上がり行動における前肢の使用を定量するために、シリンダー試験（Innovative Models of CNS disease: from molecule to therapy（中枢神経系疾患の革新的モデル：分子から治療まで）. Clifton, NJ, Humana, 1999 の Schallert and Tillersonの方法の変法）を使用した。６−ＯＨＤＡ注入の１４日、３５日、５６日および７７日後に試験を実施した。飼育用ケージの中を自由に動き回るラットを観察した。立ち上がりながら各前足とケージの壁とを接触させる行動について、処置に対して盲目の観察者によってスコアをつけた。各動物について２０回の接触をスコアし、欠陥のある前肢接触および欠陥のない前肢接触のそれぞれの数を、総接触回数に対するパーセントとして計算した。
【０１２７】
自発的回転行動の選択性および活動性検査のためのＹ字迷路試験
Ｙ字迷路は黒色に塗装したプラスチック製である。Ｙ字迷路のアーム部はそれぞれ長さ３５ｃｍ、高さ２５ｃｍおよび幅１０ｃｍであり、等角に位置している。６−ＯＨＤＡ注入から１４日、３５日、５６日および７７日後に、１つのアームの端にラットを置き、８分間の期間中は迷路内を自由に動き回らせた。アーム部への進入の経緯を手作業で記録した。片側６−ＯＨＤＡ障害を有するラットは、ドーパミン活性がより高い側（非障害部、左側)を避ける傾向にあり、よって右回りに対して偏りを示す。右回りを選択するパーセンテージは、総回転数に対する右回りのパーセンテージ（（右回り／左回り＋右回り）×１００％）としてデータセットから求めた。右回り選択性スコアに加え、アーム部進入の総回数も計測した。
【０１２８】
アンフェタミン誘導性非対称回転運動
動物のアンフェタミン誘導回転行動について、６−ＯＨＤＡ注入から４２日および８４日後に試験した。運動の非対称性は、アンフェタミン（５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）注射から４５分後に、自動ロトメーターボウル（ドイツ国、TSE Systems製）で観察した。各試験の同側性回転非対称性の総スコアは、障害側に対する同側性回転の数から対側性回転の数を減じることで計算した。
【０１２９】
総括的健康状態および人道的見地に基づくエンドポイント
研究所職員によって動物を毎日観察した。動物の総括的健康状態が著しく悪化した場合には、過剰量のＣＯ2によってラットを殺生し、断頭した。許容可能なエンドポイントの定義には、以下のものが含まれる： ２４時間の観察期間中に見られる、自発的活動の欠失および飲食不能；大量出血；突発的炎症；解剖学的構造の欠失；２０ｍｍを超える腫脹または腫瘍；および３０秒以内の体勢回復不能。
【０１３０】
６−ＯＨＤＡ暴露から８５日後には、脳から血液を除去するために、ヘパリン化（２．５ＩＵ／ｍｌ）生理食塩水で動物に経心的な還流を行った。その後、脳を除去し、氷上で解剖した。
【０１３１】
同側性線条体および対側性線条体の全体を解剖し、重量を測定した後に直ちにドライアイス上で急速凍結し、ドーパミンおよびその代謝産物のＨＰＬＣ解析のために−８０℃で保存した。同側性線条体サンプルは全てＨＰＬＣ解析に付した。対側性線条体サンプルのＨＰＬＣ解析は行わなかった。
【０１３２】
ＳＮｃを含む後頭脳ブロックを、４％ パラホルムアルデヒドの０．１Ｍ リン酸バッファー（ＰＢ）溶液に２４時間浸漬することで固定した。３０％ショ糖の０．１Ｍ ＰＢ溶液による２〜３日間の低温保護および液体窒素によるブロックの凍結後、厚さ２０μｍの凍結切片をクリオスタットで作製した。各ラットから得た４個の切片を１つのSuperfrostTM スライドガラスに置き（切片の間隔は１００μｍ）、ＴＨ免疫組織化学に用いた（それぞれ４個の切片を乗せた４つの余分なスライドガラスも回収し、予備のサンプルとして−８０℃で保存した）。切片を始めに再水和し、次に０．５％のTween-20を含むＰＢＳで透過処理を行った。次に切片を、５％ヤギ血清を含むＰＢＳＴ（０．０５％のTween 20を含むＰＢＳ）でブロックし、続いて、１：１５００に希釈したウサギ抗ＴＨポリクローナル抗体（Novus Biologicals製、カタログ番号ＮＢ３００−１０９）と共に室温で一晩インキュベートした。その後、切片を洗浄し、Alexa FluorR 594結合ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体（Molecular Probes製、カタログ番号Ａ１１０１２）と共に室温で２時間インキュベートした。最後に、切片をすすぎ、脱水し、カバーガラスを掛け、Olympus製のＡＸ−７０蛍光顕微鏡で観察した。ＳＮｃを介してＴＨ免疫蛍光ニューロンの数を計数した（各動物につき４個の切片）。
【０１３３】
同側性線条体をＨＰＬＣに付した。線条体組織サンプル中のドーパミン（ＤＡ）、３，４−ジヒドロキシフェニル酢酸（ＤＯＰＡＣ）およびホモバニール酸（ＨＶＡ）の濃度を、電気化学検出を伴う高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）法で求めた。
【０１３４】
氷上で融解した後の組織サンプルを、MSE Soniprep 150 超音波破砕機（英国、クロウリー、MSE Scientific Instruments製）を用いて０．１Ｍの過塩素酸中でホモジェナイズした（１：１０、ｗ／ｖ）。組織ホモジェネートを４℃、１５，０００ｇで１５分間遠心分離した。上清をポリプロピレン膜（GHP Acrodisc 13、０．４５μｍ）（米国、ミシガン州、アナーバー、Pall Corporation製）で濾過し、０．１Ｍの過塩素酸で希釈した（１：１）。サンプルはプラスチック製のバイアルに移し、直ちに分析した。
【０１３５】
ＥＳＡ ＨＰＬＣシステム（米国、マサチューセッツ州、チェルムスフォード、ESA Inc.製）は、５８２溶剤送達システム、ＤＧ−１２１０真空脱ガス装置、５４２オートサンプラー、８８０サーモスタット付チャンバー、および２チャンネルの５０１４Ｂ微小透析用セルとウインドウズデータ収集モジュール用のCoulArrayR（バージョン１．００）を備えた８チャンネルのCoulArrayR 5600電気化学アレイ検出器からなる。印加した電位は以下の通りである： −１７５ｍＶ（チャンネル１）、＋２２５ｍＶ（チャンネル２）、＋３５０ｍＶ（チャンネル３）および＋４５０ｍＶ（チャンネル４）。ＤＡおよびＤＯＰＡＣはチャンネル２で検出し、ＨＶＡはチャンネル３で検出した。注入容量は１０μｌとした。
【０１３６】
分析物は、Zorbax SB-Aqプレカラム（２．１×１２．５ｍｍ、５μｍ）を有する、Zorbax SB-Aq逆相カラム（２．１×１００ｍｍ、３．５μｍ）（米国、デラウエア州、ウィルミントン、リトルフォールズ、Agilent Technologies Inc.製）によって、均一溶媒で分離した。カラムは３５℃に維持した。移動相は、４．７５ｍＭ クエン酸一水和物、７ｍＭ １−オクタンスルホン酸および５０μＭ ＥＤＴＡ二ナトリウム−アセトニトリル混合物（９８：２、ｖ／ｖ）を含有する１００ｍＭ 第一リン酸ナトリウム溶液である。移動相のｐＨは、ｏ−リン酸で２．２に調整した。流速は０．３ｍｌ／分である。ＤＡ、ＤＯＰＡＣおよびＨＶＡのレベルは、ｎｍｏｌ／ｇ湿組織で表した。
【０１３７】
全ての値を平均±標準偏差（ＳＤ）または標準誤差（ＳＥＭ）で表し、差は、Ｐ＜０．０５のレベルで統計的に有意とみなした。統計解析は、StatsDirect統計用ソフトウエアを用いて実施した。平均値間の差は、一方向分散分析（ＡＮＯＶＡ）とそれに続くDunnett検定（対照（＝ベヒクル処置ラット）群との比較）で解析した。ノンパラメトリックなデータは、Kruskal-Wallis分散分析で解析した。
【０１３８】
結果： １２週にわたり動物を追跡調査したところ、６−ＯＨＤＡ処置ラットの線条体に注射したＧＤＮＦミメティック化合物が副作用を誘導することはなかった。行動アッセイにおいても、線条体内に注射した化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１による毒性効果は見られなかった。
【０１３９】
６−ＯＨＤＡ注射から６週間後および化合物ＢＴ１３（または１３）、ＢＴ１６（または１６）、ＢＴ１８（または１８）およびＢＴ２９２６５１（または２９２６５１）の線条体注入から３週間後に実施したアンフェタミン誘導回転運動アッセイにおいては、ＢＴ１３が１種の濃度（０．２μｇ）、化合物ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１も１種の濃度（１μｇ）において、アンフェタミン誘導同側性回転運動を減少させた。図７を参照。
【０１４０】
６−ＯＨＤＡ神経毒の線条体注入から３週間後に注入したＧＤＮＦミメティック化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１は、障害を負ったラットのアンフェタミン誘導同側性回転運動を有意に減少させた。よって化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１は、in vivoにおいて、パーキンソン氏病のラットモデルの病的な運動行動を有意に減少させる。
【０１４１】
ドーパミン作動性ニューロンの生存
ラットのドーパミン作動性ニューロンを、Schinelli et al., 1988の記載に従って培養した。簡単に説明すると、妊娠１５日目の雌のラット（ウイスターラット、Janvierより購入）を頚椎脱臼で殺生し、胎仔を子宮より取り出した。胎生中脳を取り出し、１％のペニシリン−ストレプトマイシン（ＰＳ、Invitrogen製）と１％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ、Sigma製）を含む、氷冷のリーボビッツ培地（Ｌ１５、Invitrogen製）に入れた。ドーパミン作動性ニューロンに富んだ発達過程の脳の領域であることから、中脳屈の前側部分のみを細胞の調製に使用した。
【０１４２】
中脳は、カルシウムとマグネシウムを含まないＰＢＳで希釈した、１０％のトリプシンＥＤＴＡ １０×（Invitrogen製）を用いた３７℃で２０分のトリプシン処理によって分離した。反応は、DNAase I（グレードII）（０．１ｍｇ／ｍｌ、Roche Diagnostic製）と１０％ ウシ胎仔血清（ＦＣＳ、Invitrogen製）を含むダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ、Invitrogen製）の添加で停止した。次に１０ｍｌのピペットに３回通すことで、細胞を機械的に分離させた。ＢＳＡ（３．５％）のＬ１５培地溶液層の上で細胞を１８０×ｇ、室温で１０分の遠心分離に付した。上澄みを廃棄し、細胞ペレットをＢ２７（２％、Invitrogen製）、Ｌ−グルタミン（０．２ｍＭ、Invitrogen製）と１％のＰＳ溶液を添加したNeurobasal（Invitrogen製）からなる特定の培地に再懸濁した。トリパンブルー色素排除試験を用い、Neubauerサイトメーターで生細胞を計数した。
【０１４３】
細胞を、９６穴プレート（ウェルはポリ−Ｌ−リシン（１０μｇ／ｍｌ、Sigma製）でコートしておいた）に６９，０００細胞／ウェルの密度で播種し、加湿空気（９５％）／ＣＯ2（５％）雰囲気下、３７℃で培養した。培地の半分を２日ごとに新鮮な培地と交換した。この条件下で５日間培養した後には、星状細胞が培養液中に存在し、成長因子を放出してニューロンの分化を可能にした。神経細胞集団の３〜５％はドーパミン作動性ニューロンだった。
【０１４４】
６日目には培地を除去し、新鮮な培地を加えた。加えた培地は、１６μＭ ＭＰＰ+の有無、更に試験物質の有無により異なっていた。４８時間の薬物処理後（培養８日目）に、細胞を４％のＰＦＡで固定した。ドーパミン作動性ニューロンを抗チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）モノクローナル抗体（Sigma製）で標識した。この抗体は、ドーパミン作動性ニューロンの神経突起および細胞体を標識する。上記抗体をAlexa Fluor 488 ヤギ抗マウスＩｇＧ（Molecular probe製）で視覚化し、細胞核を蛍光マーカー（ヘキスト溶液、SIGMA製）で標識した。各条件につき、倍率を１０×にしたInCell AnalyzerTM（商標） 1000（Amersham Biosciences製）を用い、１つのウェルにつき２×１０枚の写真を撮影した。全ての画像を同一条件下で撮影した。
【０１４５】
ＭＰＰ+薬物処理の有りと無しの両条件における、神経突起の長さおよび抗チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）抗体で標識されたニューロンの数に関する解析を、InCell AnalyzerTM 1000 3.2.ワークステーションソフトウエアで実施した。ドーパミン作動性ニューロンおよび完全長神経突起を、１０枚の写真から計数した（培養条件の異なる１２種の解析）。
【０１４６】
化合物３１９Ｈ６による細胞保護が、下記表のデータによって示された。これら結果は、化合物の神経保護性効果が天然の脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）に類似することを明確に示している。
【０１４７】
【表１】
【０１４８】
ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの細胞生存率に対する効果の評価
エコーアコースティック分注器（Echo acoustic dispenser）（Labcyte Inc.製）を用いて、２．５〜１２５ｎｌ容量の試験化合物を３８４穴培養プレートに移送した。規定の濃度でＤＭＳＯに溶解した化合物の存在下に、２０，０００細胞／ｍｌ（５００細胞／ウェル）のトリプシン化ＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞を播種した。水平振盪機で簡単に混合した後、プレートを遠心分離に付し、恒温機に移した。化合物に細胞を加えてから２日（４８時間）後に、細胞の生存率をCelTiterGlo試薬（Promega製）で評価した。結果を図８に示す。
【０１４９】
アンフェタミン誘導回転運動
ラットに線条体内６−ＯＨＤＡによって障害を誘導した３週間後に、線条体にベヒクル、ＧＤＮＦ、またはＧＤＮＦミメティックを投与した。アンフェタミン誘導行動を障害誘導から４２日および８４日後に計測した。運動の非対称性は、アンフェタミン（５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）注射から４５分後に自動ロトメーターボウル（ドイツ国、TSE Systems製）で観察した。各試験の同側性回転非対称性の総スコアは、障害側に対する同側性回転の数から対側性回転の数を減じることで計算した。データを下記図９に示す。
【０１５０】
他の適切な疾患モデル
パーキンソン氏病について上述した実験と同様に、以下の適切な疾患モデルを用いた実験を設計し、実施することができる： ＡＬＳ（例えば、ＳＯＤ１Ｇ９３Ａラットモデル）、脳虚血（例えば、中大脳動脈結紮齧歯動物モデル）、アルツハイマー病（例えば、Αβ過剰発現トランスジェニックマウスモデル）、慢性疼痛（例えば、脊柱神経結紮ラットモデル）など。
【０１５１】
参考文献
本明細書に引用した文献は、それらの全内容が参照によって本願に組み込まれたものとする。更に、特定のアッセイまたは試薬に関する教示のために文献が引用された場合には、その特定の教示も参照によって本願に組み込まれたものとする。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０１５２】
【特許文献１】Longo, et al.、Methods of facilitating neural cell survival using non-peptide and peptide BDNF neurotrophin mimetics、米国特許出願公開第２００７００６０５２６号、２００７年３月１５日。
【非特許文献】
【０１５３】
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【技術分野】
【０００１】
関連出願との相互参照
本願は、２００９年１２月１１日に出願した米国仮出願第６１／２８５，８５８号の優先権を主張するものであり、その開示内容は、本記載をもって本願に全て組み込まれたものとする。
【背景技術】
【０００２】
多くの神経系疾患および全ての神経変性疾患が、ニューロンの死またはその神経突起（neuritis）の喪失によって生じるものである。今のところ、神経保護性または神経回復性の薬剤は存在しない。神経の生存を支持する数種のタンパク質が神経系疾患および神経変性疾患に対して効果的であることは、動物モデルおよび臨床試験によって示されており、一例は、パーキンソン氏病および慢性疼痛に対するＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＬＦ）である。しかしながら、タンパク質は、薬物動態学的性質の劣る大分子であり、血液脳関門を通過することができない。
【０００３】
ニューロンは非分裂性の細胞であり、生き残るためには、近隣の細胞、細胞外マトリクス（ＥＣＭ）および環境からの恒常的な生存シグナルを必要とする。「生き続けよ」というシグナルは、通常、神経生存を促進する神経栄養因子によって伝達される。パーキンソン氏病（ＰＤ）やアルツハイマー病などのある種の病理学的状態においては、ニューロンは進行的に変性する。ニューロンはシナプス結合を損失し、軸索変性を経て、やがて死に至る。
【０００４】
現在利用可能な神経変性疾患の治療法は症候性であり、神経変性を逆行させたり、有意に減速させたりすることが可能な他の治療方法は存在しない。神経栄養因子に基づく治療法は、神経生存の促進のみならず、軸索の再生を誘導し、シナプスの形成を支持し、そしてニューロンの機能的性質を促進することから、大きな期待が寄せられている。
【０００５】
グリア細胞誘導性神経栄養因子（ＧＤＮＦ）はトランスフォーミング成長因子βスーパーファミリーの遠縁のメンバーであり、ＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＦＬ）の基本メンバーである。このファミリーは、次の４メンバー： ＧＤＮＦ、ニュールツリン（ＮＲＴＮ）、アルテミン（ＡＲＴＮ）およびパーセフィン（ＰＳＰＮ）（図１）からなり、いずれも強力な神経栄養因子である（Airaksinen and Saarma, 2002）。１９９３年の発見以来、ＧＤＮＦは、ドーパミン作動性ニューロンに対する生存支持作用、軸索出芽の誘導、ＰＤにおいて変性するこれらニューロンの機能的ドーパミン代謝の調節という能力ゆえに、大きな注目を集めている（Lin et al., 1993）。更にＧＤＮＦは、ＰＤの動物モデルにおいて、ドーパミンニューロンを保護するだけでなく、修復する数少ない成長因子の１つである（Bespalov and Saarma, 2007、Lindholm et al., 2007）。
【０００６】
ＧＤＮＦは、数多くのパーキンソン氏病動物モデルにおいて、その保護効果および神経回復効果が既に確認されており、２つの臨床試験（Gill et al., 2003、Slevin et al., 2005）において非常に有望な結果が得られているものの、近年の研究では、ＧＤＮＦの明確な臨床的有用性を示すことができなかった（Lang et al., 2006)。この矛盾は、試験の構成、患者の疾病状態、およびE. coli発現ＧＤＮＦの性質などにおける違いによって説明することができるかもしれない。今日まで、上記３つの試験において異なる結果が得られた理由について明確な理解は得られていない。
【０００７】
ＧＤＮＦは運動ニューロンも支持する（Henderson et al., 1994）ことから、ＧＤＮＦは、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）の治療にも重要となるかもしれない。ＲＥＴシグナル伝達が脳内のドーパミン量を増加させる（Mijatovic et al., 2007）ことから、うつ病の治療への応用も考えられる。ＧＤＮＦまたはそのミメティックは、男性用避妊薬としても使用できるであろう（Meng et al., 2000）。
【０００８】
ＮＲＴＮは、ＮＲＴＮ遺伝子を保有するアデノウイルスの被殻内注射による近年の第ＩＩ相臨床試験において、パーキンソン氏病患者に有意な改善が見られたことから、非常に期待される分子である（Ceregene Inc.のプレスリリース）。ＡＲＴＮは、慢性疼痛の動物モデルに対する有効性（Gardell et al., 2003）および感覚ニューロンに対する回復性（Wang et al., 2008）が明らかとなったことから、現在、Biogen Idec／NsGeneの実施する神経症に対する第Ｉ相臨床試験においてテストされている。ＰＳＰＮは、卒中およびアルツハイマー病の治療用として検討されている（Golden et al., 2003、Tomac et al., 2002）。
【０００９】
ＧＦＬ受容体複合体は適切な薬剤標的であると考えられているが、ＧＦＬポリペプチドはおそらく薬理学的に不適切な薬剤である。タンパク質に基づく療法の困難性の１つは、生物学的利用能である。ＧＤＮＦは１３４個のアミノ酸からなる塩基性タンパク質であり、血液脳関門を通過することはできない。従って、ＧＤＮＦを送達するためには脳外科手術が必要である。更に、ＧＤＮＦ、ＮＲＴＮおよびＡＲＴＮは、細胞外マトリクス（ＥＣＭ）の成分であるヘパラン硫酸と相互作用する（Lin et al., 1993）。この相互作用は、投与または産生した領域からのＧＦＬの拡散を劇的に低下させる。組み換えＧＤＮＦは、炎症および抗ＧＤＮＦ抗体の産生を誘導する場合があり（Lang et al., 2006）、また、組み換えＧＤＮＦは高価である。E. coli産生組み換えＧＤＮＦは、先ず不活性タンパク質として産生された後、in vitroで復元されるため、その性質はバッチごとに異なる。最後に、ＧＤＮＦは特異性に欠け、ＧＤＮＦはＧＦＲα１を介した（更に、弱いがＧＦＲα２およびＧＦＲα３を介した）ＲＥＴの活性化のみならず、全く異なる以下の受容体も活性化することができる： 神経系細胞接着分子ＮＣＡＭ、およびＧＤＮＦ結合性ヘパラン硫酸側鎖を有するシンデカン糖タンパク質（Bespalov et al.、未出版）（Sariola and Saarma, 2003）。このような多面的なＧＤＮＦの作用は、複数の副作用につながりうる。
【００１０】
哺乳動物細胞は活性化ＧＤＮＦを厳密な品質管理下で分泌することから、遺伝子療法的および細胞療法的な手段は、E. coli産生組み換えＧＤＮＦと関連した免疫応答および炎症性応答の問題を克服するための一助となりうる。ウイルスベクターや、ＧＤＮＦ分泌性の遺伝的に修飾された細胞をポリマーカプセルに封入したものを含む移植可能な装置（Sautter et al., 1998）は、パーキンソン氏病の治療に用いることができる。残念なことに、未制御で連続的に産生されるＧＤＮＦによる恒常的なＲＥＴの活性化は悪性腫瘍につながる可能性があるため、このような方法は、発癌のリスクを高めると考えられる。例えば、ＧＤＮＦ過剰発現トランスジェニックマウスは精巣癌を発症する（Meng et al., 2001）。遺伝子療法や細胞療法とは異なり、小分子は決まった時間間隔で送達され、生体内で迅速に分解されることから、永続的なＲＥＴの活性化を引き起こすことはない。ＧＤＮＦのミメティックは部分的なアゴニストであるという事実によって、発癌のリスクは更に減少する。
【発明の概要】
【００１１】
本発明は、治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物の有効量を対象に投与することを包含する方法に関する。
【００１２】
対象に化合物、組成物または物質を投与することに関連して記載した本発明の全ての態様は、化合物、組成物または物質の、対象を治療するための使用、あるいは治療を必要とする対象の示す病態に対する薬物治療（または治療に有用な薬剤）の製造のための使用にも関わることを理解されたい。
【００１３】
また、上記の目的に有用な、本明細書に記載した全ての化合物（またはその塩やエステル、あるいはそのプロドラッグ）は、それ自体が本発明の１つの態様である。同様に、これら化合物の少なくとも１種、および薬学的に許容される希釈剤、賦形剤または担体を包含する組成物も、本発明の１つの態様である。同様に、少なくとも１種の化合物の単位剤形も本発明の１つの態様である。更に、化合物または組成物を含有する注射器などの医療器具も、本発明の１つの態様である。
【００１４】
本発明において標的とする疾患には、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態が含まれる。
【００１５】
ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体を阻害および／または活性化する化合物、その塩またはエステルも開示する。
【００１６】
人体を対象とした方法の特許化が禁止されている出願国については、以下の限定を課すものとする：（１）ヒト対象の選択は、人体から先に採取した生物学的サンプルの試験に基づいた選択、および／または病歴、問診または人体に対して実施するものではない他の行為によって得られた情報に基づいた選択に限定されると解釈するものとし、（２）ヒト対象に対する組成物の投与は、ヒト対象が何らかの技術（例えば、経口投与、吸入、局所投与、注射、挿入など）を用いて自己投与するため、または処方した機関以外の者によって対象に投与されるための、制御された物質の処方に限定されると解釈するものとする。本願はそれぞれの出願国において、特許性のある発明主題を定義する法律または規則と合致する最も広く妥当な解釈を意図したものである。人体を対象とする方法の権利化が認められる出願国については、対象の選択および組成物の投与は、人体に対して行う方法と上記行為の両方を含むものとする。
【００１７】
「発明の概要」という見出しは、発明の制限または限定を意図したものではない。本発明は、出願時の発明の詳細な説明や図面に記載した全ての態様も含んでいる。ここに添付した原請求の範囲も、本発明と考えられる態様を定義し、この参照をもってこの概要に組み込まれたものとする。
【００１８】
更に上記に加え、本発明は、更なる態様として、上記で具体的に述べたバリエーションよりも僅かでも範囲の狭い全ての態様も含んでいる。例えば、簡潔さのために属や数値範囲に参照しながら発明の態様を説明した場合であっても、属に含まれる各種類や、数値範囲の中の各数値や副範囲も本発明の態様として意図していることを理解されたい。同様に、本発明の種々の態様や特性を組み合わせて、本発明の範囲に含まれることを意図した更なる態様を創設することもできる。本願の出願人が本願請求の範囲の全範囲を発明したものであるが、請求の範囲は、他者の先行技術までもその範囲に含めることを意図してはいない。従って、本願の請求項の範囲に含まれる制定法上の先行技術に対する出願人の注意が特許庁、他の法人または他の個人によって喚起された場合には、出願人は、該請求項に係る発明を再定義し、制定法上の先行技術または制定法上の先行技術から自明なバリエーションを該請求項の範囲から除外するために、適用される特許法の元で行使可能な補正する権利を保有する。このような補正後の請求項によって定義された本発明のバリエーションも本発明の態様として意図したものである。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】ＧＤＮＦファミリーリガンド（ＧＦＬ）およびその受容体。ＧＦＬは、シグナル伝達受容体ＲＥＴに直接結合することはできず、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカー型ＧＦＲαを必要とする。ＧＤＮＦ、ニュールツリン（ＮＲＴＮ）、アルテミン（ＡＲＴＮ）およびパーセフィン（ＰＳＰＮ）は、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体と相互作用し、更にＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体を介してシグナル伝達も行う。ＴＭ：膜貫通ドメイン。全てのタンパク質を３次元リボンモデルで示した。
【図２】有標細胞（proprietary cell）に基づくルシフェラーゼレポーターシステムを用いた、ＧＦＬシグナル伝達ミメティックの確認。スクリーニングしたいくつかの化合物の構造は次の通りである。化合物２４３Ｇ７は後述する式（VIII）で表される構造を有し、化合物２９９Ｂ５は後述する式（Ｘ）で表される構造を有し、化合物２９０Ａ１１は下記式で表される構造を有し、
【化１】
化合物３１９Ｈ６は下記式で表される構造を有し、
【化２】
そして化合物３７５Ｆ４は下記式で表される構造を有する。
【化３】
【図３】ＲＥＴ−ＥＬＩＳＡアッセイによるＧＦＬミメティックの検出。ＧＦＬミメティックは、ＧＦＲα１およびＧＦＲα３を介してＲＥＴを活性化する。化合物２１９９０２は下記式で表される構造を有し、
【化４】
そして化合物７４６０９は下記式で表される構造を有する。
【化５】
【図４】リン酸化アッセイにより明らかとなった、選択したＧＦＬミメティックによるＧＦＲαを介したＲＥＴの強力な活性化。ＷＢ：ウエスタンブロッティング。ＩＰ：免疫沈降法。ｐＹ：抗リン酸化チロシン抗体。アスタリスクは、ＲＥＴの活性化を誘導するＧＬＦミメティック化合物を示す。レーンの番号と化合物は以下の通りである。１）ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、２）下記式で表される構造を有する不活性化合物クロロキン：
【化６】
３）下記式で表される構造を有する不活性化合物１３００５：
【化７】
４）下記式で表される構造を有する活性化合物２１９９０２：
【化８】
５）下記式で表される構造を有する活性化合物１４３５１１：
【化９】
６） 下記式で表される構造を有する不活性化合物３４９０５１：
【化１０】
７）下記式で表される構造を有する不活性化合物１０８：
【化１１】
８）下記式で表される構造を有する活性化合物２９２６５１：
【化１２】
９）ＧＤＮＦ、および１０）分子量マーカー（ＭＷ）。
【図５】ＧＦＲα１／ＲＥＴ発現細胞（上部パネル）、およびＧＦＲα３／ＲＥＴ発現レポーター細胞系またはＲＥＴ発現レポーター細胞系（下部パネル）に投与した化合物の容量反応。ＧＦＲα／ＲＥＴが活性化するシグナル伝達カスケードはＭＡＰＫの活性化をもたらし、ルシフェラーゼレポータータンパク質の誘導につながる。化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７は、ＧＦＲα１／ＲＥＴ発現レポーター細胞系およびＧＦＲα３／ＲＥＴ発現レポーター細胞系において、用量依存的にルシフェラーゼ発現を誘導した。ＲＥＴ単独を発現する細胞においては有意な効果は見られなかった。化合物ＢＴ１８はＧＦＲα１／ＲＥＴ細胞系で活性を示した。ＧＦＲα３／ＲＥＴ発現細胞系（ａ３）：実線、ＲＥＴ発現細胞系（Ｎｏａ）：破線。ＢＴ１０は下記式で表される構造を有し、
【化１３】
ＢＴ１３（本明細書において「Ｎ１３」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１４】
ＢＴ１６（本明細書において「Ｎ１６」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１５】
ＢＴ１７（本明細書において「Ｎ１７」と称することもある）は下記式で表される構造を有し、
【化１６】
ＢＴ１８は下記式で表される構造を有し、
【化１７】
そしてＢＴ１９は下記式で表される構造を有する。
【化１８】
【図６Ａ】新規な（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの誘導したＲＥＴのリン酸化。ＢＴ１０、ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７とＢＴ１９の構造は、図５の説明に記載した通りであり、ＢＴ１２は下記式で表される構造を有する。
【化１９】
種々のＢＴ化合物（構造は上述した通り）によるＧＦＲα１／ＲＥＴの活性化。ＭＧ８７ ＲＥＴ繊維芽細胞をＧＦＲα１構築物でトランスフェクトし、１００μＭ濃度のＢＴ試験化合物で処理した。上部パネルは、ＲＥＴ抗体で免疫沈降させた膜（ＩＰ：ＲＥＴ）を溶解してリン酸化チロシン抗体でプロービングしたもの（ＷＢ： ｐＹ）を表す。化合物ＢＴ１３およびＢＴ１６はＧＦＲα１を介してＲＥＴを強力に活性化した。化合物ＢＴ１７およびＢＴ１８はＧＦＲα１／ＲＥＴに対する弱いアゴニストのようだ。下部パネルは、同じ膜を抗ＲＥＴ抗体でプロービングした結果を示す（ＷＢ：ＲＥＴ）。ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を負の対照として用いた。ＧＤＮＦ（１００ｎｇ／ｍｌ）を正の対照として用いた。
【図６Ｂ】ＢＴ化合物による、ＧＦＲα３／ＲＥＴの活性化。ＭＧ８７ ＲＥＴ繊維芽細胞をＧＦＲα３構築物またはＧＦＰ構築物でトランスフェクトし、１００μＭ濃度のＢＴ化合物（構造は上述した通り）で処理した。上部パネルは、ＲＥＴ抗体で免疫沈降させた膜（ＩＰ：抗ＲＥＴ）を溶解してリン酸化チロシン抗体でプロービングしたもの（ＷＢ：ｐＹ）を表す。化合物ＢＴ１３はＧＦＲα３を介してＲＥＴを強力に活性化した。化合物ＢＴ１６、ＢＴ１７およびＢＴ１８はＧＦＲα３／ＲＥＴに対する弱いアゴニストのようだ。下部パネルは、同じ膜を抗ＲＥＴ抗体でプロービングした結果を示す（ＷＢ：抗ＲＥＴ）。ＧＦＲα３トランスフェクト細胞において、３０μｌのＤＭＳＯを負の対照として用いた。ＧＦＲα３トランスフェクト細胞において、ＡＲＴＮ（１００ｎｇ／ｍｌ）を正の対照として用いた。
【図７】ベヒクル、ＧＤＮＦ（１０μｇ）または記載した濃度（０．２〜５μｇ）のＧＤＮＦミメティックの線条体注入による、アンフェタミン誘導回転運動に対する効果。ラットに対して、線条体内の６−ＯＨＤＡ（２８μｇ）による障害の誘導から３週間後に、ベヒクル、ＧＤＮＦまたは上述した構造のＢＴ ＧＤＮＦミメティック化合物を線条体に投与した。アンフェタミン誘導行動を障害から６週間後に測定した。
【図８】記載したＢＴ化合物の存在下における、マウス繊維芽細胞の細胞成長。ＢＴ１０、ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１７、ＢＴ１８およびＢＴ１９の構造は、上述した通りである。結果は、ＤＭＳＯ対照（生存率は１００±５％と仮定）に対する生細胞数のパーセントで表した。全ての化合物が、５０μＭの濃度で中庸な細胞成長阻害を示した（但し、ＢＴ１０は、２μＭを超える濃度で有意な毒性を示した）。
【図９】アンフェタミン誘導回転運動に対する、ベヒクル、ＧＤＮＦ（１０μｇ）またはＧＤＮＦミメティック（投与量は記載の通り）の線条体注入の影響。化合物の構造は上述した通りである。
【００２０】
発明の詳細な説明
本明細書においては、神経学的疾患と非神経学的な疾患の両方を含む、対象の有する疾患を治療するための化合物および方法を開示する。本発明の方法は、ＧＦＲα受容体分子に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物（「ＧＤＮＦミメティック化合物」）または下流のＲＥＴシグナル伝達に対して結合特異性および／または調節特異性を示す化合物（「ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物」）の有効量を対象に投与することを包含する。本発明のいくつかのバリエーションにおいては、少なくとも１種の薬学的に許容される希釈剤、アジュバントまたは担体を更に含有する組成物として、上記化合物を投与する。
【００２１】
本明細書の開示においては、以下の治療学的な目標のいずれかが達成された場合に、治療は成功したものとみなす。病気の症状の改善、緩和または消失；病気またはその症状の進行の遅延または停止；変質または障害の改善、部分的治癒または完治；対象の部分的または完全な回復；および／または本発明よりも高い治療費、困難な投与または許容度の低い副作用を伴う他の標準治療法を低減または排除しながらも達成される、同等の生活の質。
【００２２】
疾患は、例えば、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、またはＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態である。
【００２３】
対象は、動物またはヒトである。動物は哺乳動物である。
【００２４】
更に本明細書においては、神経系細胞の生存を容易にするか、神経機能を亢進するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および／または活性調節特異性を示す化合物で神経系細胞を処理することを包含する方法を開示する。更に、下流のＲＥＴシグナル伝達を誘導する化合物も開示する。
【００２５】
化合物は小分子である。いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（Ｉ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００２６】
【化２０】
【００２７】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アルケニレンアリール基および水酸基からなる群より選ばれる１種である。）いくつかの態様においては、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、アルキレンアミノ基および水素原子からなる群より選ばれる１種であり、アルキレンアミノ部分のアミノ基は、更に１個または２個のアルキル基またはアルキレンアリール基（例えば、ベンジル基）で置換されていても良い。種々の態様においては、Ｒ３は塩化アルキル基またはアミノアルキル基である。特定の態様においては、Ｒ１は水素原子であり、Ｒ２はアルキレンアミノ基である。
【００２８】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（II）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００２９】
【化２１】
【００３０】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３１】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（III）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３２】
【化２２】
【００３３】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３４】
いくつかの態様においては、ＧＤＮＦミメティック化合物は、下記式（IV）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３５】
【化２３】
【００３６】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００３７】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（Ｖ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００３８】
【化２４】
【００３９】
（式中、Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そしてＲ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
【００４０】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VI）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４１】
【化２５】
【００４２】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４３】
【化２６】
【００４４】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（VIII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４５】
【化２７】
【００４６】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（IX）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４７】
【化２８】
【００４８】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（Ｘ）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００４９】
【化２９】
【００５０】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XI）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５１】
【化３０】
【００５２】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５３】
【化３１】
【００５４】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XIII）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５５】
【化３２】
【００５６】
いくつかの態様においては、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XIV）〜（XIX）のいずれかで表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００５７】
【化３３】
【００５８】
【化３４】
【００５９】
【化３５】
【００６０】
【化３６】
【００６１】
【化３７】
【００６２】
【化３８】
【００６３】
種々の場合において、ＲＥＴシグナル伝達活性化化合物は、下記式（XX）で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩である。
【００６４】
【化３９】
【００６５】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）Ｒ１の具体例としては、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００６６】
本明細書で使用する「アルキル」という用語は、炭素原子を含む直鎖状または分岐状の炭化水素基であり、典型的にはメチル基、エチル基、および直鎖状または分岐状のプロピル基とブチル基である。特に断りがない限り、炭化水素基は最大２０個の炭素原子を有してもよい。「アルキル」という用語には、「架橋アルキル」、即ち、Ｃ6〜Ｃ16の二環式または多環式の炭化水素基も含まれ、具体例としては、ノルボルニル基、アダマンチル基、ビシクロ［２．２．２］オクチル基、ビシクロ［２．２．１］ヘプチル基、ビシクロ［３．２．１］オクチル基やデカヒドロナフチル基が挙げられる。アルキル基は、所望により、水酸基（ＯＨ）、ハロゲン、アミノ基、スルホニル基などで置換されていてもよい。「アルコキシ」基とは、酸素置換基を有するアルキル基、例えば、Ｏ−アルキル基である。
【００６７】
「アルケニル」という用語は、少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を有する炭素原子を含有する、直鎖状または分岐状の炭化水素基を意味する。特に断りがない限り、炭化水素基は最大２０個の炭素原子を有してもよい。アルケニル基は、所望により、水酸基（ＯＨ）、ハロゲン原子、アミノ基、スルホニル基などで置換されていてもよい。
【００６８】
本明細書で使用する「アルキレン」という用語は、定義された置換基を更に有するアルキル基を意味する。例えば、「アルキレンアリール」という用語は、アリール基で置換されたアルキル基を意味し、「アルキレンアミノ」という用語は、アミノ基で置換されたアルキル基を意味する。アルキレンアミノ部分のアミノ基は、例えば、アルキル基、アルキレンアリール基、アリール基またはこれらの組み合わせによって更に置換されていてもよい。「アルケニレン」という用語は、定義された置換基を更に有するアルケニル基を意味する。
【００６９】
本明細書で使用する「アリール」という用語は、単環式または多環式の芳香族基、好ましくは単環式または二環式の芳香族基、例えば、フェニル基やナフチル基を意味する。特に断りがない限り、アリール基は未置換でもよいし、１個または２個以上、特に１〜４個の置換基、例えば、各々独立に、ハロゲン原子、アルキル基、アルケニル基、ＯＣＦ3、ＮＯ2、ＣＮ、ＮＣ、ＯＨ、アルコキシ基、アミノ基、ＣＯ2Ｈ、ＣＯ2アルキル基、アリール基、およびヘテロアリール基からなる群より選ばれるもので置換されていてもよい。代表的なアリール基としては、フェニル基、ナフチル基、テトラヒドロナフチル基、クロロフェニル基、メチルフェニル基、メトキシフェニル基、トリフルオロメチルフェニル基、ニトロフェニル基、２，４−メトキシクロロフェニル基などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。「アリールオキシ」基とは、酸素置換基を有するアリール基、例えば、Ｏ−アリール基である。
【００７０】
本明細書で使用する「アシル」という用語は、カルボニル基、例えば、Ｃ（Ｏ）を意味する。アシル基は、例えば、水素原子、アルキル基、アルケニル基、アリール基、アルケニルアリール基、アルコキシ基、またはアミノ基で更に置換されていてもよい。アシル基の具体例としては、アルコキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアルキル）、アリールオキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアリール）、アルキレンアリールオキシカルボニル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−Ｏアルキレンアリール）、カルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ2）、アルキルカルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ（アルキル））やジアルキルカルバモイル基（例えば、Ｃ（Ｏ）−ＮＨ（アルキル）2）などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００７１】
本明細書で使用する「アミノ」という用語は、窒素含有置換基であって、アルキル基、アルケニル基、アリール基、アルキレンアリール基およびアシル基からなる群より選ばれる置換基を０個、１個または２個有するものを意味する。置換基が０個のアミノ基は−ＮＨ2である。
【００７２】
本明細書で使用する「ハロゲン」または「ハロゲン原子」（"halo" or "halogen"）という用語は、フッ素原子、臭素原子、ヨウ素原子または塩素原子を意味する。
【００７３】
本明細書で使用する「薬学的に許容される塩」という用語は、合理的な医療的判断の範囲内において、過度の毒性、炎症、アレルギー反応などを起こすことなく、ヒトおよび下等動物の組織と接触させて用いるのに適しており、且つ妥当なリスク便益比と合致する塩類を意味する。薬学的に許容される塩は、当業界では広く知られている。例えば、S. M. Berge et al.は、J. Pharmaceutical Sciences、66: 1-19 (1977)において、薬学的に許容される塩について詳細に記載している。塩類は、本発明の化合物の最終的な単離・精製の際にin situで製造するか、あるいは遊離した塩基性官能基を適切な有機酸または無機酸と反応させることで別途製造することができる。薬学的に許容される無毒性の酸付加塩の例としては、塩酸、臭化水素酸、リン酸、硫酸または過塩素酸などの無機酸、または酢酸、マレイン酸、酒石酸、クエン酸、コハク酸、ラクトビオン酸またはマロン酸などの有機酸を用いる方法あるいはイオン交換などの当業界で使用される他の方法で製造したアミノ基の塩などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。他の薬学的に許容される塩としては、アジピン酸塩、アルギン酸塩、アスコルビン酸塩、アスパラギン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、安息香酸塩、重硫酸塩、ホウ酸塩、酪酸塩、樟脳酸塩、カンファースルホン酸塩、クエン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ジグルコン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタン硫酸塩、蟻酸塩、フマル酸塩、グルコヘプトン酸塩、グリセロリン酸塩、グルコン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、カプロン酸塩、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシエタン硫酸塩、ラクトビオン酸塩、乳酸塩、ラウリン酸塩、ラウリル硫酸塩、リンゴ酸塩、マレイン酸、マロン酸塩、メタンスルホン酸塩、２−ナフタレンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、硝酸塩、オレイン酸塩、オキサロ酸塩、パルミチン酸塩、パモ酸塩、ペクチニン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、リン酸塩、ピクリン酸塩、ピバリン酸塩、プロピオン酸塩、ステアリン酸塩、コハク酸塩、硫酸塩、酒石酸塩、チオシアン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩、ウンデカン酸塩、吉草酸塩などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。代表的なアルカリ金属塩またはアルカリ土金属塩としては、ナトリウム塩、リチウム塩、カリウム塩、カルシウム塩およびマグネシウム塩が挙げられる。更に、適切な場合には、薬学的に許容される塩には、ハロゲン化物、水酸化物、カルボン酸塩、硫酸塩、リン酸塩、硝酸塩、炭素数が１〜６のアルキル基、スルホン酸塩およびアリールスルホン酸塩などの対イオンを用いて形成した、無毒性のアンモニウム塩、四級アンモニウム塩およびアミンカチオンが含まれる。
【００７４】
製剤
本明細書に開示した化合物は、その摂取、分布および／または吸収を補助するために、他の分子、分子構造または化合物の混合物、例えば、リポソーム、担体、希釈剤、受容体標的化分子、経口用製剤、経腸用製剤、局所用製剤または他の製剤と、更に混合、封入、結合またはその他の方法で関連付けてもかまわない。このような摂取、分布および／または吸収を補助する製剤の調製方法を教示する代表的な米国特許としては、次の特許が挙げられるが、これらに限定されるものではない： 米国特許第５，１０８，９２１号、米国特許第５，３５４，８４４号、米国特許第５，４１６，０１６号、米国特許第５，４５９，１２７号、米国特許第５，５２１，２９１号、米国特許第５，５４３，１５８号、米国特許第５，５４７，９３２号、米国特許第５，５８３，０２０号、米国特許第５，５９１，７２１号、米国特許第４，４２６，３３０号、米国特許第４，５３４，８９９号、米国特許第５，０１３，５５６号、米国特許第５，１０８，９２１号、米国特許第５，２１３，８０４号、米国特許第５，２２７，１７０号、米国特許第５，２６４，２２１号、米国特許第５，３５６，６３３号、米国特許第５，３９５，６１９号、米国特許第５，４１６，０１６号、米国特許第５，４１７，９７８号、米国特許第５，４６２，８５４号、米国特許第５，４６９，８５４号、米国特許第５，５１２，２９５号、米国特許第５，５２７，５２８号、米国特許第５，５３４，２５９号、米国特許第５，５４３，１５２号、米国特許第５，５５６，９４８号、米国特許第５，５８０，５７５号および米国特許第５，５９５，７５６号。ここで参照したことをもってこれら米国特許は本願に組み込まれたものとする。
【００７５】
更に本明細書においては、個々に記載した化合物を含む医薬組成物および医薬製剤を開示する。医薬組成物は、局所治療または全身治療のいずれを目的とするか、そして治療を施す面積に応じて、数々の方法で投与することができる。投与には、局所投与（点眼、および経膣送達や経腸送達を含む粘膜への投与も含まれる）、経肺投与（例えば、噴霧吸入器による投与、気管内投与、鼻腔内投与、表皮投与および経皮投与を含む、粉体またはエアゾールの吸入または吹送)、経口投与、または非経口投与が含まれる。非経口投与には、静脈内、動脈内、皮下、腹腔内または筋肉内の注射または点滴、あるいは頭蓋内、例えば、髄腔内または脳室内への投与が含まれる。局所投与用の医薬組成物および医薬製剤には、経皮吸収用貼付剤、軟膏、乳剤、クリーム剤、ゲル剤、滴剤、座薬、スプレー剤、液剤および粉剤が含まれる。公知の薬学的な担体、水性基剤、粉末基剤、油性基剤、増粘剤などの使用は必須でもよいし、好ましくてもよい。
【００７６】
医薬製剤（利便性のために単位剤型で提供されてもよい）は、製薬工業界においてよく知られた公知技術に基づいて製造することができる。このような技術には、活性成分を薬学的な担体または賦形剤と接触させる工程が含まれる。一般的に製剤は、活性成分を液状担体、細かく粉砕した固体担体、またはその両方と均一且つ密接に関連付け、そして、必要であれば、製品の形状を整えることによって製造する。
【００７７】
組成物は、あり得る様々な剤型のいずれにでも処方することが可能であり、剤型としては、錠剤、カプセル剤、ゲルカプセル剤、液状シロップ剤、ソフトゲル剤、座薬および注腸剤などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。組成物は、水系溶媒、非水系溶媒または混合溶媒を用いた懸濁液として処方することもできる。水系懸濁液は懸濁液の粘性を高める物質、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトールおよび／またはデキストランを更に含んでいてもよい。懸濁液は安定化剤を更に含んでいてもよい。
【００７８】
医薬組成物としては、溶液製剤、乳化製剤、泡状製剤およびリポソーム含有製剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明の医薬組成物および医薬製剤は、１種または複数種の浸透促進剤、担体、賦形剤、希釈剤あるいは他の活性成分または不活性成分を包含してもよい。
【００７９】
乳化製剤は、典型的には、ある液体が通常直径０．１μｍを超える大きさの液滴として他の液体に分散した不均質系である。乳化製剤は、分散相と、水相か油相のいずれかに溶液として存在するか、それ自体からなる別の相として存在する活性薬剤の他に、付加成分を含有してもよい。マイクロエマルジョンも、本明細書で開示する態様に含まれる。乳化製剤およびその用途は当業界で広く知られており、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されている。上記米国特許は、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８０】
製剤には、リポソーム製剤も含まれる。本明細書において「リポソーム」という用語は、球状の二重膜（単数または複数）を形成する両親媒性脂質からなるベヒクルを意味する。リポソームは、親油性材料によって形成された膜と、送達すべき組成物を含有する水性の内部とを有する、単層膜状または多層膜状のベヒクルである。「リポソーム」の定義には、更に「立体安定型」リポソームも含まれ、本明細書においてこの「立体安定型」リポソームは、１種または複数種の特殊化脂質を包含するリポソームを意味し、特殊化脂質とは、リポソームに取り込まれると、特殊化脂質を含まないリポソームと比べて、循環存続期間が延長される脂質である。立体安定型リポソームの例としては、リポソームのベヒクル形成性脂質部位の一部が１種または複数種の糖脂質を包含するものや、１種または複数種の親水性ポリマー（例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）部分など）によって誘導体化されたものが挙げられる。リポソームおよびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８１】
本明細書に開示した医薬製剤および医薬組成物は、界面活性剤を含んでもよい。薬用製品、製剤および乳化剤における界面活性剤の使用は、当業界で広く知られている。界面活性剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８２】
１つの態様においては、本明細書で開示する化合物の効率的な送達を実行するための１種または複数種の浸透促進剤を包含する製剤を開示する。浸透促進剤は、非親油性薬剤の細胞膜を介した拡散を補助するだけでなく、親油性薬剤の透過性も促進する。浸透促進剤は５つの大まかな分類、即ち、界面活性剤、脂肪酸、胆汁酸塩、キレート剤、および非キレート化非界面活性剤のいずれかに属するものとして分類することができる。浸透促進剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８３】
当業者は、製剤はその意図した用途、即ち、投与経路に基づいて、慣例的に設計されていることを認識するであろう。
【００８４】
局所投与用の好ましい製剤としては、本発明の化合物と、脂質、リポソーム、脂肪酸、脂肪酸エステル、ステロイド、キレート剤および界面活性剤などの局所送達用薬剤との混合物が挙げられる。好ましい脂質およびリポソームとしては、中性物質（例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）、ジミリストイルホスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）、ジステアロイルホスファチジルコリン）、陰性物質（例えば、ジミリストイルホスファチジルグリセロール（ＤＭＰＧ））、およびカチオン性物質（例えば、ジオレオイルテトラメチルアミノプロピル（ＤＯＴＡＰ）およびジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＴＭＡ））が挙げられる。
【００８５】
経口投与用の組成物および製剤には、粉剤または顆粒剤、ミクロ粒子、ナノ粒子、水系媒体または非水系媒体を用いた溶液または懸濁液、カプセル剤、ゲルカプセル剤、分包剤、錠剤またはミニ錠剤が含まれる。増粘剤、香料、希釈剤、乳化剤、分散補助剤またはバインダーの使用が望ましい場合もあろう。好ましい経口製剤は、少なくとも１種の浸透促進剤、界面活性剤およびキレート剤と共に化合物を投与するものである。好ましい界面活性剤としては、脂肪酸および／またはそのエステルまたは塩、胆汁酸および／またはその塩が挙げられる。好ましい胆汁酸／胆汁酸塩、脂肪酸およびそれらの用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。複数種の浸透促進剤の組み合わせ、例えば、脂肪酸／脂肪酸塩と胆汁酸／胆汁酸塩との組み合わせも好ましい。特に好ましい組み合わせは、ラウリン酸のナトリウム塩、カプリン酸およびＵＤＣＡの組み合わせである。更なる浸透促進剤としては、ポリオキシエチレン−９−ラウリルエーテル、ポリオキシエチレン−２０−セチルエーテルが挙げられる。本発明の化合物は、噴霧乾燥した粒子を含む顆粒状の薬剤、あるいはミクロ粒子またはナノ粒子となるように形成した複合体を経口的に送達することができる。複合化剤およびその用途は、米国特許第６，２８７，８６０号に更に詳細に記載されており、本参照をもってその内容の全てが本願に組み込まれたものとする。経口製剤およびその製造方法は、米国特許出願第０９／１０８，６７３号、米国特許出願第０９／３１５，２９８号および米国特許出願第１０／０７１，８２２号のそれぞれに更に詳細に記載されており、本参照をもってそれらの内容の全てが本願に組み込まれたものとする。
【００８６】
非経口投与用、髄腔内投与用または脳室内投与用の組成物および製剤は、滅菌水性溶液を含んでいてもよく、このような溶液は更に緩衝剤、希釈剤および他の適切な添加剤を含んでいてもよい。他の適切な添加剤としては、浸透促進剤、担体化合物および他の薬学的に許容される担体または賦形剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００８７】
必要であれば、血液脳関門（ＢＢＢ）の浸透を促進するために、脳に薬剤を送達するための様々な新規な手法を用いて活性化合物を投与することができる。ＢＢＢを透過しての輸送を増加するために当業界で知られている種々の手法を本発明の化合物に適合させることにより、ＢＢＢを透過しての本発明のモジュレーターの輸送を促進することができる（このような手法に関する説明としては、例えば、Pardridge. Trends in Biotechnol. 12:239-245 (1994)、Van Bree et al. Pharm. World Sci. 15:2-9 (1993)およびPardridge et al. Pharmacol. Toxicol. 71:3-10 (1992)を参照）。１つの手法においては、膜透過輸送能を強化したプロドラッグを形成するように、化合物を化学的に修飾する。適切な化学修飾としては、アミド結合またはエステル結合を介した化合物と脂肪酸の共有結合（例えば、米国特許第４，９３３，３２４号および国際公開公報ＷＯ ８９／０７９３８、米国特許第５，２８４，８７６号、Toth et al. J. Drug Target. 2:217-239 (1994)、およびShashoua et al. J. Med. Chem. 27:659-664 (1984)を参照）、および化合物の糖化（例えば、米国特許第５，２６０，３０８号を参照）が挙げられる。更に、Ｎ−アシルアミノ酸誘導体をモジュレーターにおいて用いて「脂質」プロドラッグを形成することもできる（例えば、米国特許第５，１１２，８６３号を参照）。
【００８８】
ＢＢＢを透過しての輸送を促進するための別の手法としては、ペプチド性ミメティック化合物またはペプチドミメティック化合物を第２ペプチドまたは第２タンパク質に結合してキメラタンパク質を形成する方法が挙げられる。この方法において第２ペプチドまたは第２タンパク質は、吸収剤仲介型または受容体仲介型のトランスサイトーシスによりＢＢＢを通過する。よって、本明細書に開示する化合物をこのような第２ペプチドまたは第２タンパク質とカップリングすることによって、得られたキメラタンパク質は、ＢＢＢを透過して輸送される。第２ペプチドまたは第２タンパク質は、脳毛細血管内皮細胞受容体リガンドのリガンドでもよい。例えば、好ましいリガンドは、脳毛細血管内皮細胞上のトランスフェリン受容体に特異的に結合するモノクローナル抗体である（例えば、米国特許第５，１８２，１０７号と米国特許第５，１５４，９２４号、および国際公開公報ＷＯ９３／１０８１９と国際公開公報ＷＯ９５／０２４２１を参照）。ＢＢＢを透過しての輸送を仲介することのできる他の適切なペプチドまたはタンパク質としては、ヒストン（例えば、米国特許第４，９０２，５０５号を参照）、およびビオチン、葉酸塩、ナイアシン、パントテン酸、リボフラビン、チアミン、ピリドキサールおよびアスコルビン酸などのリガンド（例えば、米国特許第５，４１６，０１６号と米国特許第５，１０８，９２１号を参照）が挙げられる。更に。グルコーストランスポーター ＧＬＵＴ−１は、糖ペプチド（［Ｍｅｔ５］エンケファリンのＬ−セリニル−β−Ｄ−グルコシド類似体）をＢＢＢ透過して輸送するという報告がある（Polt et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:7114-1778 (1994)）。このような糖ペプチドに化合物をカップリングすることによって、ＧＬＵＴ−１グルコーストランスポーターをモジュレーターの標的とすることができる。例えば、修飾基Ａｉｃ（未修飾のアミノ基を有するコール酸誘導体である３−（Ｏ−アミノエチル−イソ）−コリル基）によって未修飾のアミンが修飾された化合物を、標準的な方法でＡｉｃのアミノ基を介して糖ペプチドにカップリングすることができる。キメラタンパク質は、組み換えＤＮＡ法（例えば、融合タンパク質をコードするキメラ遺伝子の形成）、またはモジュレーターを第２ペプチドまたは第２タンパク質に化学架橋することによってキメラタンパク質を形成する方法により作製することができる。数々の化学架橋剤が当業界で知られている（例えば、イリノイ州、ロックフォードのPierce社より市販されている）。架橋剤としては、モジュレーターの第２ペプチドまたは第２タンパク質へのカップリングを高収率で行うことができ、且つその後にリンカーの開裂により生物活性モジュレーターを放出できるものを選択することができる。例えば、ビオチン−アビジンに基づくリンカーシステムを使用することができる。
【００８９】
ＢＢＢを透過しての輸送を促進するための更なる手法においては、ＢＢＢを透過しての輸送を仲介する送達ベクターに化合物を封入する。例えば、化合物を、正の電荷を帯びた単層膜状リポソームなどのリポソーム（例えば、国際公開公報ＷＯ ８８／０７８５１および国際公開公報ＷＯ ８８／０７８５２を参照）またはポリマー製マイクロスフィア（例えば、米国特許第５，４１３，７９７号、米国特許第５，２７１，９６１号および米国特許第５，０１９，４００号を参照）に封入することができる。更に送達ベクターは、ＢＢＢを透過して輸送される対象となるように修飾することもできる。例えば、ＢＢＢを透過して能動的に輸送される分子を用いて、またはトランスフェリン受容体に特異的に結合するモノクローナル抗体などの脳内皮細胞受容体のリガンド（例えば、国際公開公報ＷＯ ９１／０４０１４および国際公開公報ＷＯ ９４／０２１７８を参照）を用いて、送達ベクター（例えば、リポソーム）に対して共有結合を介した修飾を行うことができる。
【００９０】
ＢＢＢを透過してのモジュレーターの輸送を促進するための別の手法においては、ＢＢＢの透過性を増加する機能を有する他の薬剤（透過処理剤）と共に化合物を投与する。このようなＢＢＢ「透過処理剤」の具体例としては、ブラジキニンとブラジキニンアゴニスト（例えば、米国特許第５，１１２，５９６号を参照）および米国特許第５，２６８，１６４号に開示されたペプチド性化合物が挙げられる。
【００９１】
投薬法
製剤および投与法（投薬法）の選択は、例えば、容量反応、毒性および薬物動態学的研究に基づいて行われる。投薬は、治療すべき病体の重症度および応答性に依存し、治療期間は数日から数ヶ月であり、治療効果が見られるまで、あるいは病態または病状の減少が達成されるまで継続される。慢性的な病態または症状であって、病態または症状の減少は見込まれるが、完治は不可能な場合、投薬を無期限的に継続することもある。最適な投薬スケジュールは、患者の体内における薬剤蓄積量の測定値から計算することができる。当業者は容易に最適投与量、投与方法および繰り返し頻度を決定することができる。最適投与量は、個別のオリゴヌクレオチドの相対的有効性によって変化し、通常、in vitroおよびin vivoの動物モデルにおいて効果が見られるＥＣ50に基づいて推定することができる。通常の投与量は、体重１ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇであり、１日、１週間、１月または１年に１回または複数回投与するか、あるいは２〜２０年に１回投与することができる。当業者は、測定した滞留時間および体液や組織における薬剤濃度から投薬の繰り返し頻度を推定することができる。患者は、成功した治療に続き、病態の再発を防止するための維持療法を受けることが望ましいこともあり、この場合、維持量、即ち、体重１ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇの範囲内のオリゴヌクレオチドを、１日１回または複数回から２０年に１回までの範囲内で投与する。
【００９２】
アッセイ法
ＧＦＲα受容体分子または下流ＲＥＴシグナル伝達に対する結合用および／または修飾用の化合物（例えば、ＧＤＮＦミメティック）のアッセイを行うための方法も開示する。アッセイによって、化合物のハイスループット解析を提供することができる。例えば、ＧＦＲα１を発現する細胞を目的化合物と接触させ、そして細胞成長の増加を指標として目的化合物がＧＤＮＦミメティックであるか否かを判定する。この際、具体的には、ミメティックアッセイの細胞成長を、化合物を使用しない対照実験のバックグラウンド値と比較する。場合によっては、細胞はＧＦＲα１と共にルシフェラーゼを発現する細胞であり、細胞成長の指標はルシフェラーゼである。細胞成長は、細胞−化合物混合物の発光を計測することによって測定することができる。
【００９３】
更に、細胞が、他の目的受容体、例えば、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３またはＧＦＲα４を天然にまたは組み換えによって発現するアッセイも考えられる。本発明のいくつかのバリエーションにおいては、ＧＦＲα１、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３およびＧＦＲα４からなる群より選ばれる１種の受容体に対して特異的な化合物を選択する。他の場合には、２種、３種または全４種の受容体を調節する化合物を選択する。
【００９４】
本発明のアッセイは、正の対照、例えば、目的受容体に対する天然のリガンドを用いて実施することもできる。こうすることによって、ＧＦＲα１、ＧＦＲα２、ＧＦＲα３および／またはＧＦＲα４のリガンド仲介性の活性化を阻害する受容体結合化合物を選択することができる。好ましいリガンドと受容体の組み合わせを図１に示した。この図には、特定のリガンド／受容体相互作用に対して模倣、調節または干渉する化合物の代表的な適応症も示した。
【００９５】
本明細書に開示した別の方法は、化合物をＧＤＮＦミメティックとして評価するための二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡアッセイを包含し、この方法は、いくつかの態様において、ミメティックの活性に対する定量的な測定を提供することができる。ＲＥＴおよびＧＦＲα１（または他の目的受容体の１種）を発現する細胞を目的の化合物と接触させ、次に抗ＲＥＴ抗体と接触させた後に、抗ｐＹ抗体（マウス抗ｐＹ抗体など）と接触させて二重抗体サンドイッチを形成する。二重抗体サンドイッチの形成は、化合物がＧＤＮＦミメティックであることの指標となる。場合によっては、サンドイッチの検出は間接的な検出でもよく、例えば、抗ｐＹ抗体がマウス抗体の場合、サンドイッチを２次抗マウスＨＲＰ結合抗体および化学発光試薬（ＥＣＬ試薬など）と接触させ、得られる発光を測定する。
【実施例】
【００９６】
以下の実施例は、本願で開示した発明の実例を提供するために本願に含めたものである。本明細書の開示および当業者の一般的な技術水準を考慮すると、当業者は以下の実施例が単なる例示を意図したものであり、本願で開示した発明の精神および範囲から逸脱することなく、数々の変化、修飾および改変が採用可能であることを理解するであろう。
【００９７】
方法
細胞系。ＲＥＴ癌原遺伝子で安定にトランスフェクトしたＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞（Leppanen et al., 2004）。Ｎ１８ラット／マウス神経膠腫／神経芽腫細胞はＡＴＣＣより入手した。
【００９８】
動物。上頸神経節はＰ０−Ｐ２ウイスターラットから単離した。実験動物の使用は、ヘルシンキ大学動物実験委員会の承認および自治体理事会（County Administrative Board）の主席獣医官の許可（ＨＹ ５５−０６）の下に行った。
【００９９】
タンパク質。ＧＤＮＦとＡＲＴＮは、PeproTech Ltdより入手した。ＮＧＦはPromegaから購入した。全てのＧＦＬの濃度を、ＢＳＡを標準としたmicroBCAキット（Pierce製）で確認した。
【０１００】
プラスミド。ｐＣＤＮＡ３（Invitrogen製）にサブクローニングした、フラッグをタグとして付した全長ラットＧＦＲα１ ｃＤＮＡ（Leppanen et al., 2004）。ｐＣＤＮＡ６（Invitrogen製）にサブクローニングした、全長ヒトＧＦＲα１ ｃＤＮＡ（Sidorova et al.、未出版）。全長ヒトＧＦＲα３ ｃＤＮＡ（Wang et al., 2006）。ｐＣＲ３．１(Invitrogen製）内の全長ヒトＲＥＴ（長鎖イソフォーム）（Runeberg-Roos et al., 2007）。ＭＡＰＫ活性化検出システム（Baloh et al., 2000）およびPathDetect Elk-1 (Stratagene製）は、２種のプラスミドを含んでいる。第１のプラスミドは、Ｅｌｋ−１の活性化ドメインおよび酵母ＧＡＬ４タンパク質のＤＮＡ結合ドメイン（Ｇａｌ４−Ｅｌｋ１）からなる、ＭＡＰＫ経路特異的な融合トランス活性化因子を恒常的に発現する。もう一方のプラスミドであるＧａｌ４−Ｌｕｃは、酵母ＧＡＬ４結合配列を含有する合成プロモーターの制御下にあるルシフェラーゼ遺伝子を保有する。
【０１０１】
安定な細胞系の作製。ＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞を３５ｍｍのディッシュに植え付け、細胞のトランスフェクションを４μｇのＧ４−Ｌｕｃ、Ｇａｌ４−Ｅｌｋ（Baloh et al., 2000）およびＧＦＲα１発現プラスミド（“αＬＵＣ”細胞）またはネオマイシン耐性遺伝子を含む空のベクター（“ＮＯα”細胞）によって行った。トランスフェクションは、ＤＮＡ送達用のリポフェクタミン２０００（Invitrogen製）を、製造者の説明書に従って、４：１：１で使用して行った。次の日に細胞をトリプシン処理に付し、低密度で１０ｃｍの組織培養用ディッシュに植えつけた。安定な形質転換細胞を、５００〜７５０μｇ／ｍｌのジェネティシン（Invitrogen製）の存在下で選択した。確立された細胞系は、１０％ ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン（Invivogen製）、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ ジェネティシンおよび１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２で維持した。Pathdetect Elk-1 システムおよびヒトＧＦＲα１発現プラスミド保有細胞（“Ｓｔｒａｔ−Ｌｕｃ”細胞）または空ベクター保有細胞（対照細胞系“ＮＯＳｔｒａｔｉｓ”）を選択し、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン（Invivogen製）、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８、２μｇ／ｍｌ ブラスチシジンＳおよび１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２で維持した。
【０１０２】
レポーター遺伝子のルシフェラーゼ活性によるアッセイを用いた、ＧＤＮＦミメティックの検出
アッセイ開始の１日前に、９６穴プレートに細胞密度がウェル当たり２０，０００細胞となるように、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８および１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２に細胞を植え付けた。次の日には、１０％ ＦＢＳと１００μｇ／ｍｌ ノルモシンを含むＤＭＥＭを用いて、終濃度が１００ｎｇ／ｍｌとなるように各神経栄養因子をウェルに添加した。細胞に２４時間ルシフェラーゼを産生させ、その後、２０μｌの１×培養細胞溶解試薬（Cell culture lysis reagent）（Promega製）を用いて溶解し、更に１回の凍結融解を行うことで、細胞溶解を完全なものとした。次に、黒色の９６穴イソプレート（PerkinElmer製）のウェル内で、５μｌの細胞溶解物を（氷上で）２０μｌのルシフェラーゼアッセイ基質（Promega製）と混合した。発光は、MicroBeta 2 カウンター（PerkinElmer製）で２回計測した。２回目の計測結果を使用した。播種細胞密度を最適化するために、２，０００〜５０，０００細胞／ウェルをアッセイの前日に播種し、溶液中のＧＤＮＦによって刺激された細胞の応答を推定するために、播種前に終濃度が１０〜１００ｎｇ／ｍｌとなるまでＧＤＮＦを細胞懸濁液に添加し、その後、細胞を細胞密度が２０，０００細胞／ウェルとなるように９６穴プレートに播種し、２４時間静置してルシフェラーゼを産生させた。容量反応曲線用には、ＧＦＬを終濃度が５〜２００ｎｇ／ｍｌとなるように添加した。ルシフェラーゼ産生に必要な最適時間を決定するために、細胞をＧＤＮＦと共に培養液中に４〜４８時間放置した。短期のＭＡＰＫ活性化を研究するために、αＬＵＣ細胞を１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦで０．５〜６０分間処理し、増殖培地で１回洗浄し、新鮮な増殖培地中に２４時間静置してルシフェラーゼを産生させた。データはＭ±ｍで表し、Ｍは４回の平均値であり、ｍは標準偏差である。検出結果は図２に示した。研究した化合物には以下のものが含まれる。
【０１０３】
下記式で表される構造を有する化合物２９９Ｂ５。
【化４０】
【０１０４】
下記式で表される構造を有する化合物２９０Ａ１１。
【化４１】
【０１０５】
下記式で表される構造を有する化合物３１９Ｈ６。
【化４２】
【０１０６】
そして、下記式で表される構造を有する化合物３７５Ｆ４。
【化４３】
【０１０７】
ＲＥＴ−ＥＬＩＳＡアッセイを用いた、ＧＤＮＦミメティックの検出
ＧＤＮＦまたはそのミメティックを用いた刺激を行った後、細胞を溶解し、固相免疫沈降法と続くリン酸化チロシン検出のための抗ＲＥＴ抗体を予め吸着させた９６穴プレートに溶解物を移動した。 リン酸化ＲＥＴ検出用の９６穴プレート（OptiPlate 96 F HB、黒色、Wallac製）の作製： １μｇ／ｍｌのヤギ抗ＲＥＴ抗体（Santa Cruz製）をＰＢＳで希釈した。７５μｌ／ウェルの希釈した抗体を添加し、プレートを封止し、＋４℃で１晩インキュベートした。その後、２００μｌ／ウェルのＰＢＳで３回洗浄し、ブロッキング溶液（５％ＢＳＡのＴＢＳ溶液）を用いて室温で２時間のブロッキングを行い、溶解バッファー（１０ｍｌのＴＢＳ（バッファー）当たり、１％ Triton X-100、１％ ＮＰ−４０、０．２５％ デオキシコール酸、１０％ グリセロール、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、１ｍＭ ＥＤＴＡおよび完全プロテアーゼ阻害試薬（Complete protease inhibitor）（Roche製）１錠を含む）で１回洗浄した。 抗原の結合およびシグナルの検出： 刺激した細胞（目的リガンド５〜１５分間）を氷上に置き、１ｍＭのバナジウム酸ナトリウムを添加した氷冷ＰＢＳで１回洗浄した。ＰＢＳを除去した後、細胞を１００〜２００μｌの氷上の溶解バッファー中、＋４℃において少なくとも２０分間の振盪下で溶解させた。１００μｌ／ウェルの溶解物を抗ＲＥＴ被覆９６穴プレートに加え、プレートを封止し、＋４℃の水平シェイカー上で１．５〜２時間インキュベートした。次に２００μｌ／ウェルの洗浄バッファー（１％ Triton X-100と２％ グリセロールを含むＴＢＳ）で３回洗浄した。結合バッファー（１％ Triton X-100、２％ グリセロールと２％ ＢＳＡを含むＴＢＳ）で１：１０００に希釈した抗ｐＹ抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate製）を添加し（１００μｌ／ウェル）、そして室温で１〜１．５時間インキュベートした。その後、２００μｌ／ウェルの洗浄バッファーで３回洗浄した。結合バッファーで１：３０００に希釈した二次抗マウスＨＲＰ結合抗体（Dako製）を１００μｌ／ウェル添加した。室温で３０〜４０分間インキュベートし、２００μｌ／ウェルの洗浄バッファーで３〜４回洗浄した。最後に、事前に混合し、室温に暖めておいたＥＣＬ試薬１００μｌ／ウェルを添加した。暗黒（ルミノメーター内）で１〜２分間インキュベートした後、MicroBetaルミノメーターで計測した。検出結果は図３に示す。
【０１０８】
化合物２１９９０２は、下記式で表される構造を有する。
【化４４】
【０１０９】
そして、化合物７４６０９は下記式で表される構造を有する。
【化４５】
【０１１０】
免疫沈降法およびウエスタンブロッティングによる、ＲＥＴリン酸化アッセイを用いたＧＤＮＦミメティックの検出
αＬＵＣ細胞およびＮＯα細胞をそれぞれ３５ｍｍの組織培養用ディッシュに植えつけ、無血清ＤＭＥＭで４時間にわたり飢餓状態とし、５００ｎｇ／ｍｌのＰＳＰＮまたは１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦ（正の対照）で１５分間刺激した。その後、細胞を、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4を含有する氷冷ＰＢＳで１回洗浄し、１ｍｌ／ウェルのＲＩＰＡ修飾バッファー（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１％ ＮＰ−４０、１％ ＴＸ−１００、１０％ グリセロール、ＥＤＴＡ無添加プロテアーゼ阻害剤カクテル（Roche製）、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、２．５ｍｇ／ｍｌ デオキシコール酸ナトリウムおよび１ｍＭ ＰＭＳＦを含有する５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４）中、氷上で溶解した。ＲＥＴを抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（Santa-Cruz Biotechnology, Inc.製）で免疫沈降させた。沈殿したタンパク質を７．５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開し、ニトロセルロースメンブランに転写した。１０％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用い、メンブランを室温で１５分間のブロッキングに付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔで１：１０００に希釈した抗リン酸化チロシン抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate Biotechnology製）を用い、室温で２時間プロービングした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで５分間の洗浄に３回付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用いて希釈したＨＲＰ結合二次抗マウス抗体（DAKO製）の１：３０００溶液を用い、室温で４５分間インキュベートした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで１０分間の洗浄に５回付した。ＬＡＳ３０００画像化プログラムを用い、染色されたバンドをＥＣＬ試薬（Pierce製）で可視化した（図４、上部パネル）。タンパク質が等量ずつロードされていることを確認するために、ストリッピングした後、抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（１：５００、Santa-Cruz Biotechnology、Inc.製）でプロービングした。Ｃ−２０の検出には、ＨＲＰと結合した二次抗ヤギ抗体（１：１５００、DAKO製）を使用した。検出結果は図４の下部パネルに示す。
【０１１１】
レポーター遺伝子ルシフェラーゼ活性によるアッセイを用いた、新規（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティックおよびＡＲＴＮミメティックの容量反応
アッセイ開始の１日前に、９６穴プレート（または３８４穴プレート）にウェル当たりの細胞密度が２０，０００細胞（あるいは３８４穴プレートの場合は５，０００細胞）となるように、１０％ ＦＢＳ、１００μｇ／ｍｌ ノルモシン、２μｇ／ｍｌ ピューロマイシン、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８および１５ｍＭ ＨＥＰＥＳを含むＤＭＥＭ、ｐＨ７．２に細胞を植え付けた。次の日に、終濃度が１〜５０μＭとなるように化合物を添加した。化合物の構造は、上述した図５の説明に示した。細胞に２４時間ルシフェラーゼを産生させ、その後、２０μｌの１×培養細胞溶解試薬（Cell culture lysis reagent）（Promega製）を用いて溶解し、更に１回の凍結融解を行うことで、細胞溶解を完全なものとした。次に、黒色のイソプレート（PerkinElmer製）のウェル内で、５μｌの細胞溶解物を（氷上で）２０μｌのルシフェラーゼアッセイ基質（Promega製）と混合した。発光を、MicroBeta 2 カウンター（PerkinElmer製）で２回計測した。データは誘導倍率（fold induction）として示し、対応濃度のＤＭＳＯを参照とした。データは図５を参照。
【０１１２】
免疫沈降法およびウエスタンブロッティングによる、ＲＥＴリン酸化アッセイにおける新規（ＢＴ）ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの活性
実験の前日に、ＭＧ８７ＲＥＴ細胞を３５ｍｍの組織培養用ディッシュに植えつけた。細胞をＧＦＲα１、ＧＦＲα３またはＧＦＰをコードするベクターでトランスフェクトした。実験の当日には、無血清ＤＭＥＭで４時間にわたり飢餓状態とし、濃度が１００μＭの研究対象化合物（構造は、上述した図６の説明に示した）または１００ｎｇ／ｍｌのＧＤＮＦまたはＡＲＴＮ（正の対照）で細胞を１５分間刺激した。その後、細胞を、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4を含有する氷冷ＰＢＳで１回洗浄し、１ｍｌ／ウェルのＲＩＰＡ修飾バッファー（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１％ ＮＰ−４０、１％ ＴＸ−１００、１０％ グリセロール、ＥＤＴＡ無添加プロテアーゼ阻害剤カクテル（Roche製）、１ｍＭ Ｎａ3ＶＯ4、２．５ｍｇ／ｍｌ デオキシコール酸ナトリウムおよび１ｍＭ ＰＭＳＦを含有する５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４）中、氷上で溶解した。ＲＥＴを抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（Santa-Cruz Biotechnology, Inc.製）で免疫沈降させた。沈殿したタンパク質を７．５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開し、ニトロセルロースメンブランに転写した。１０％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用い、メンブランを室温で１５分間のブロッキングに付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔで１：１０００に希釈した抗リン酸化チロシン抗体（クローン４Ｇ１０、Upstate Biotechnology製）を用い、室温で２時間プロービングした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで５分の洗浄に３回付し、３％ 無脂肪乾燥乳を含むＴＢＳ−Ｔを用いて希釈したＨＲＰ結合二次抗マウス抗体（DAKO製）の１：３０００溶液を用い、室温で４５分間インキュベートした。メンブランをＴＢＳ−Ｔで１０分の洗浄に５回付した。ＬＡＳ３０００画像化プログラムを用い、染色されたバンドをＥＣＬ試薬（Pierce製）で可視化した。タンパク質が等量ずつロードされていることを確認するために、ストリッピングした後、抗ＲＥＴ Ｃ−２０抗体（１：５００、Santa-Cruz Biotechnology、Inc.製）でプロービングした。Ｃ−２０の検出には、ＨＲＰと結合した二次抗ヤギ抗体（１：１５００、DAKO製）を使用した。検出結果を図６に示す。
【０１１３】
パーキンソン氏病の動物モデル
全てのラットに対し、活性化合物（即ち、ＧＦＬミメティックまたはＲＥＴシグナル伝達活性化因子）の腹腔注射（ｉ．ｐ．）および／または２回の定位マイクロインフュージョンを施した。具体的には、１回目には、ベヒクル（４μｌ）、活性化合物（１〜１００ｍｇ／ｋｇ）またはＧＤＮＦ（１０μｇ）のいずれかを注入し、６時間後にはそれぞれの動物に６−ＯＨＤＡ（８μｇ）を左の背側線条体（left dorsal striatum）の同じ部位に投与した。前頂と硬膜に対する左線条体における座標は、PaxinosとWatsonのアトラス（Paxinos and Watson, 1997, The rat brain in stereotaxic coordinates (ラット脳の定位座標), Academic press, San Diego）によるとＡ／Ｐ ＋１．０、Ｌ／Ｍ ＋２．７、Ｄ／Ｖ −４だった。この研究は、以下のグループからなるものである： 線条体 ＰＢＳ＋６−ＯＨＤＡ、線条体 ＧＤＮＦ＋６−ＯＨＤＡ、線条体 ＧＦＬミメティック＋６−ＯＨＤＡ、および線条体 ＰＢＳ＋６−ＯＨＤＡ＋ｉ．ｐ．ＧＦＬミメティック。
【０１１４】
回転行動： 障害から２週間後と４週間後に行動試験を実施した。Ｄ−アンフェタミン（フィンランド国、ヘルシンキ、University Pharmacy製）の投与（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）の３０分前には、ラットを試験チャンバーに慣らしておいた。完全な（３６０°の）同側性回転および対側性回転の数を２時間にわたり記録した。障害側に対する累計同側性回転数は、右回転の数から左回転の数を引くことで算出した。
【０１１５】
免疫組織化学： 障害から４週間後には、過剰量のペントバルビタールナトリウム（９０ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）（フィンランド国、Orion Pharma製）でラットを麻酔し、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、続いて４％ パラホルムアルデヒドを含む０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）による心臓内還流を行った。脳を取り出し、４時間の固定後処理を行い、２０％ ショ糖含有リン酸ナトリウムバッファー中、４℃で保存した。４０μｍ厚の連続した環状断凍結切片をスライド式ミクロトームで切り出した。６セットの切片を凍結保護溶液（０．５Ｍ ＰＢ、３０％ グリセロールと３０％ エチレングリコール）に回収し、免疫組織化学的処理を行うまで−２０℃で保存した。浮動性切片をＴＨ−免疫組織化学のために処理した。ＰＢＳで３回すすいだ後、３％ Ｈ2Ｏ2／１０％ メタノール／ＰＢＳ中で内因性ペルオキシダーゼ活性の抑制処理を５分間行った。ＰＢＳで３回すすいだ後、切片を正常ウマ血清（ＮＨＳ）／０．３％ Triton X-100 を含むＰＢＳとプレインキュベートすることで、非特異的な染色をブロックした。その後、切片を、１：２０００に希釈したビオチン化マウス−抗ＴＨ抗体（カリフォルニア州、テメクラ、Chemicon製）と共に室温で一晩インキュベートした。続いて、切片を、１：２００に希釈したビオチン化ウマ抗マウス抗体（BA2001、Vector製）とのインキュベーション、およびElite ABC Vectastainキット（Vector Laboratories製）を用いたアビジン−ビオチンペルオキシダーゼ複合体とのインキュベーションに付した。ＤＡＢを発色団として使用し、反応を可視化した。
【０１１６】
形態解析／ＳＮ細胞数： 光学フラクショネーター（Optical fractionator）法を解像原理と公平な計測規則（West et al.,1991, Anat. Rec. 231, 482-497、Mouton et al. 2002, Brain Res. 956, 30-35）と組み合わせて使用する、公平なステレオロジーによる細胞計数法で、黒質緻密部（ＳＮｐｃ）のＴＨ陽性細胞数を計測した。ＳＮｐｃの全体を、Olympus BX51顕微鏡に装着したStereo Investigator（ドイツ国、MicroBrightField製）のプラットフォーム上で解析した。容量解析のために、それぞれの動物について、内側終止核（medial terminal nucleus）（ＭＴＮ）が存在する（Ａ／Ｐ軸は−５．３）ＳＮｐｃの中央部から３つの切片を選択した。光学フラクショネーターによる推定は、個別の脳サンプルに関する計数誤差がｘ％未満となるように最適化した。それぞれの参照空間は低倍率（４×）で輪郭をとり、細胞は高倍率（６０×、油浸）の対物レンズを用いて計数した。
【０１１７】
オスのウイスターラットでは、線条体および／または腹腔内への１回の活性化合物の注射が黒質線条体路におけるドーパミン作動性神経の６−ヒドロキシドーパミン（６−ＯＨＤＡ、８μｇ）誘導変性を防止した。麻酔下でラットに２回の定位マイクロインジェクションを施した。具体的には、１回目には、ベヒクル（ＰＢＳ、４μｌ、対照群）または活性化合物を投与し、６時間後にはそれぞれの動物に６−ＯＨＤＡ（８μｇ）を左背側線条体（left dorsal striatum）の同じ部位に投与した。前頂と硬膜に対する左線条体における座標は、PaxinosとWatsonのアトラス（Paxinos and Watson, 1997, The rat brain in stereotaxic coordinates（ラット脳の定位座標）, Academic press, San Diego）によるとＡ／Ｐ ＋１．０、Ｌ／Ｍ ＋２．７、Ｄ／Ｖ −４だった。
【０１１８】
全てのラットについて行動試験を２回行った。障害から２週間後と４週間後には、同側性（障害のある側への）回転行動を誘導するためにＤ−アンフェタミンを投与し（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）、行動を２時間にわたり記録した。障害から２週間後には、対照群においてアンフェタミン（２．５ｍｇ／ｋｇを腹腔注射）は顕著な同側性回転行動を誘導すると考えられる。一方、処置群（６−ＯＨＤＡ処理の前に活性化合物で処置）においては、同側性回転数の増加は最小かまたは見られないと考えられる。障害から４週間後には、活性化合物はアンフェタミン誘導性の同側性回転を著しく逆転させることができ、免疫組織化学的分析も神経栄養因子によるＤＡ細胞の顕著な防御効果を示すと考えられる。
【０１１９】
ＴＨ免疫組織化学。 障害から４週間後には、２回目の行動試験に続いて、過剰量のペントバルビタールナトリウム（９０ｍｇ／ｋｇ）でラットを麻酔し、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、続いて４％ パラホルムアルデヒドを含む０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）による心臓内還流を行った。浮動性切片はＴＨ−免疫組織化学のために処理される。光学フラクショネーター法を解像原理と公平な計測規則（West et al.,1991, Anat. Rec. 231, 482-497、Mouton et al. 2002, Brain Res. 956, 30-35）と組み合わせて使用する、公平なステレオロジーによる細胞計数法で、黒質緻密部（ＳＮｐｃ）のＴＨ陽性細胞数を計測した。ＳＮｐｃの全体を、Olympus BX51顕微鏡に装着したStereo Investigator（ドイツ国、MicroBrightField製）のプラットフォーム上で解析した。対照群と処置群における、黒質緻密部のＴＨ陽性細胞数の減少はそれぞれ約３０％と約４％になると考えられる。
【０１２０】
別のパーキンソン氏病研究
本研究の目的は、線条体（ｉ．ｓ．）投与した小分子ＧＤＮＦミメティック（化合物１３、１６、３１９Ｈ６および２９２６５１、それぞれの構造は上述した図面の説明に示した）の、パーキンソン氏病のラットモデル６−ＯＨＤＡにおける効果を調査することである。本研究で使用した亜急性障害モデルにおいては、線条体のドーパミン作動性末端の近傍に６−ＯＨＤＡを注入することによって、数週間かけてゆっくりと進行する黒質（ＳＮｃ）の障害を作製した（Kirik-D 1998、Exp. Neurol. 152:259-277）。このモデルにおいては、黒質線状体突起の一部は無傷のまま残されており、その部分が成長促進性および神経保護性の試薬に応答して生じる再生および機能的回復のための基質として働くことができる。
【０１２１】
神経毒である６−ＯＨＤＡに暴露してから３週間後に、ＧＤＮＦミメティック化合物、ＧＤＮＦまたはベヒクルを線条体に投与した。ＳＮｃ内のドーパミン作動性ニューロンに対する選択的な損傷と、ドーパミンおよびその代謝産物の線条体における濃度とを、６−ＯＨＤＡの注入から１２週間後に、それぞれチロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）免疫組織化学およびＨＰＬＣで評価した。更にラットの行動障害を、前肢非対称試験（シリンダー試験）、アンフェタミン誘導回転運動非対称試験、および常同的自発回転行動の欠陥を評価するためのＹ字迷路試験で評価した。
【０１２２】
動物： 全ての動物実験は、国立衛生研究所（ＮＩＨ）の実験動物の飼育および使用に関するガイドラインに基づき、南フィンランド国家州局（State Provincial Office of Southern Finland）の認可のもとに行われた。ドイツ国、Charles Riverより購入した、体重が２２０〜２７５ｇの合計１０８匹の雄ウイスターラットを実験に使用した。動物は、標準温度（２２±１℃）および光制御環境（午前７時〜午後８時まで点灯）の下、飼料および水が自由に摂取可能な条件で飼育した。動物は以下の群に分けた。
【０１２３】
グループ１： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にベヒクル（０ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ２： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり５μｇ、即ち、０．４ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ３： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり１μｇ、即ち、０．１ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ４： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１３（ラット当たり０．２μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ５： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１６（ラット当たり０．５μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ６： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ２９２６５１（ラット当たり５μｇ、即ち、０．４ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ７： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ２９２６５１（ラット当たり１μｇ、即ち、０．１ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ８： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＢＴ１８（ラット当たり１μｇ、即ち、０．２ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
グループ９： ６−ＯＨＤＡの注入から３週間後にＧＤＮＦ（R & D Systems, Ltd.製、ラット当たり１０μｇまたは約４０μｇ／ｋｇ、ｉ．ｓ．）で処理した１２匹のラット
【０１２４】
部分的な逆行変性をＳＮｃに発生させるために、６−ＯＨＤＡ障害をSauerとOertelの変法に従って実施した（Sauer and Oertel, 1994）。雄のウイスターラットに５％のイソフルラン（７０％ Ｎ2Ｏおよび３０％ Ｏ2中、流速３００ｍｌ／分）で麻酔をかけ、定位枠に入れた。手術の際には麻酔の濃度を１〜１．５％に減少させた。恒温ブランケットシステムを用い、直腸温度を３７．０±１．０℃に維持した。頭蓋骨に対する少量の骨切除開頭術によって右脳半球を露出させた。細い鉗子で硬膜を注意深く除去し、６−ＯＨＤＡ（４μｇ／μｌ）を右線条体に定位注入した。合計７μｌの６−ＯＨＤＡを流速０．５μｌ／分で点滴し、以下の座標で示される４箇所の間で均等に分配させた：ＡＰ ＋１．０、ＭＬ ＋２．８、ＤＶ −６．０、−５．５、−５．０および−４．４ｍｍ。カニューレは抜き取る前に更に５分間その位置に保持した。頭蓋骨の穴は続いて修復材で塞ぎ、皮膚を縫合し消毒した。ラットを静置して麻酔から醒めるのを待ち、起こりうる術後の合併症について注意深く監視した。動物は自由に飼料と水が摂取できる飼育用ケージに戻した。
【０１２５】
２１日目に、ラットに５％のイソフルラン（７０％ Ｎ2Ｏおよび３０％ Ｏ2中、流速３００ｍｌ／分）で再び麻酔をかけ、定位枠に入れた。手術の際には麻酔の濃度を１〜１．５％に減少させた。恒温ブランケットシステムを用い、直腸温度を３７．０±１．０℃に維持した。頭蓋骨に対する少量の骨切除開頭術によって右脳半球を露出させた。ＧＤＮＦまたはベヒクルを右線条体に定位注入した。各投与溶液を流速１μｌ／分で点滴し、以下の座標で示される４箇所の間で均等に分配させた：ＡＰ ＋１．０、ＭＬ ＋２．８、ＤＶ −６．０、−５．５、−５．０および−４．４ｍｍ。カニューレは抜き取る前に更に５分間その位置に保持した。頭蓋骨の穴は続いて修復材で塞ぎ、皮膚を縫合し消毒した。ラットを静置して麻酔から醒めるのを待ち、起こりうる術後の合併症について注意深く監視した。動物は自由に飼料と水が摂取できる飼育用ケージに戻した。
【０１２６】
行動試験： 自発的立ち上がり行動における前肢の使用および選択性 − シリンダー試験：飼育用ケージの壁に対する自発的立ち上がり行動における前肢の使用を定量するために、シリンダー試験（Innovative Models of CNS disease: from molecule to therapy（中枢神経系疾患の革新的モデル：分子から治療まで）. Clifton, NJ, Humana, 1999 の Schallert and Tillersonの方法の変法）を使用した。６−ＯＨＤＡ注入の１４日、３５日、５６日および７７日後に試験を実施した。飼育用ケージの中を自由に動き回るラットを観察した。立ち上がりながら各前足とケージの壁とを接触させる行動について、処置に対して盲目の観察者によってスコアをつけた。各動物について２０回の接触をスコアし、欠陥のある前肢接触および欠陥のない前肢接触のそれぞれの数を、総接触回数に対するパーセントとして計算した。
【０１２７】
自発的回転行動の選択性および活動性検査のためのＹ字迷路試験
Ｙ字迷路は黒色に塗装したプラスチック製である。Ｙ字迷路のアーム部はそれぞれ長さ３５ｃｍ、高さ２５ｃｍおよび幅１０ｃｍであり、等角に位置している。６−ＯＨＤＡ注入から１４日、３５日、５６日および７７日後に、１つのアームの端にラットを置き、８分間の期間中は迷路内を自由に動き回らせた。アーム部への進入の経緯を手作業で記録した。片側６−ＯＨＤＡ障害を有するラットは、ドーパミン活性がより高い側（非障害部、左側)を避ける傾向にあり、よって右回りに対して偏りを示す。右回りを選択するパーセンテージは、総回転数に対する右回りのパーセンテージ（（右回り／左回り＋右回り）×１００％）としてデータセットから求めた。右回り選択性スコアに加え、アーム部進入の総回数も計測した。
【０１２８】
アンフェタミン誘導性非対称回転運動
動物のアンフェタミン誘導回転行動について、６−ＯＨＤＡ注入から４２日および８４日後に試験した。運動の非対称性は、アンフェタミン（５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）注射から４５分後に、自動ロトメーターボウル（ドイツ国、TSE Systems製）で観察した。各試験の同側性回転非対称性の総スコアは、障害側に対する同側性回転の数から対側性回転の数を減じることで計算した。
【０１２９】
総括的健康状態および人道的見地に基づくエンドポイント
研究所職員によって動物を毎日観察した。動物の総括的健康状態が著しく悪化した場合には、過剰量のＣＯ2によってラットを殺生し、断頭した。許容可能なエンドポイントの定義には、以下のものが含まれる： ２４時間の観察期間中に見られる、自発的活動の欠失および飲食不能；大量出血；突発的炎症；解剖学的構造の欠失；２０ｍｍを超える腫脹または腫瘍；および３０秒以内の体勢回復不能。
【０１３０】
６−ＯＨＤＡ暴露から８５日後には、脳から血液を除去するために、ヘパリン化（２．５ＩＵ／ｍｌ）生理食塩水で動物に経心的な還流を行った。その後、脳を除去し、氷上で解剖した。
【０１３１】
同側性線条体および対側性線条体の全体を解剖し、重量を測定した後に直ちにドライアイス上で急速凍結し、ドーパミンおよびその代謝産物のＨＰＬＣ解析のために−８０℃で保存した。同側性線条体サンプルは全てＨＰＬＣ解析に付した。対側性線条体サンプルのＨＰＬＣ解析は行わなかった。
【０１３２】
ＳＮｃを含む後頭脳ブロックを、４％ パラホルムアルデヒドの０．１Ｍ リン酸バッファー（ＰＢ）溶液に２４時間浸漬することで固定した。３０％ショ糖の０．１Ｍ ＰＢ溶液による２〜３日間の低温保護および液体窒素によるブロックの凍結後、厚さ２０μｍの凍結切片をクリオスタットで作製した。各ラットから得た４個の切片を１つのSuperfrostTM スライドガラスに置き（切片の間隔は１００μｍ）、ＴＨ免疫組織化学に用いた（それぞれ４個の切片を乗せた４つの余分なスライドガラスも回収し、予備のサンプルとして−８０℃で保存した）。切片を始めに再水和し、次に０．５％のTween-20を含むＰＢＳで透過処理を行った。次に切片を、５％ヤギ血清を含むＰＢＳＴ（０．０５％のTween 20を含むＰＢＳ）でブロックし、続いて、１：１５００に希釈したウサギ抗ＴＨポリクローナル抗体（Novus Biologicals製、カタログ番号ＮＢ３００−１０９）と共に室温で一晩インキュベートした。その後、切片を洗浄し、Alexa FluorR 594結合ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体（Molecular Probes製、カタログ番号Ａ１１０１２）と共に室温で２時間インキュベートした。最後に、切片をすすぎ、脱水し、カバーガラスを掛け、Olympus製のＡＸ−７０蛍光顕微鏡で観察した。ＳＮｃを介してＴＨ免疫蛍光ニューロンの数を計数した（各動物につき４個の切片）。
【０１３３】
同側性線条体をＨＰＬＣに付した。線条体組織サンプル中のドーパミン（ＤＡ）、３，４−ジヒドロキシフェニル酢酸（ＤＯＰＡＣ）およびホモバニール酸（ＨＶＡ）の濃度を、電気化学検出を伴う高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）法で求めた。
【０１３４】
氷上で融解した後の組織サンプルを、MSE Soniprep 150 超音波破砕機（英国、クロウリー、MSE Scientific Instruments製）を用いて０．１Ｍの過塩素酸中でホモジェナイズした（１：１０、ｗ／ｖ）。組織ホモジェネートを４℃、１５，０００ｇで１５分間遠心分離した。上清をポリプロピレン膜（GHP Acrodisc 13、０．４５μｍ）（米国、ミシガン州、アナーバー、Pall Corporation製）で濾過し、０．１Ｍの過塩素酸で希釈した（１：１）。サンプルはプラスチック製のバイアルに移し、直ちに分析した。
【０１３５】
ＥＳＡ ＨＰＬＣシステム（米国、マサチューセッツ州、チェルムスフォード、ESA Inc.製）は、５８２溶剤送達システム、ＤＧ−１２１０真空脱ガス装置、５４２オートサンプラー、８８０サーモスタット付チャンバー、および２チャンネルの５０１４Ｂ微小透析用セルとウインドウズデータ収集モジュール用のCoulArrayR（バージョン１．００）を備えた８チャンネルのCoulArrayR 5600電気化学アレイ検出器からなる。印加した電位は以下の通りである： −１７５ｍＶ（チャンネル１）、＋２２５ｍＶ（チャンネル２）、＋３５０ｍＶ（チャンネル３）および＋４５０ｍＶ（チャンネル４）。ＤＡおよびＤＯＰＡＣはチャンネル２で検出し、ＨＶＡはチャンネル３で検出した。注入容量は１０μｌとした。
【０１３６】
分析物は、Zorbax SB-Aqプレカラム（２．１×１２．５ｍｍ、５μｍ）を有する、Zorbax SB-Aq逆相カラム（２．１×１００ｍｍ、３．５μｍ）（米国、デラウエア州、ウィルミントン、リトルフォールズ、Agilent Technologies Inc.製）によって、均一溶媒で分離した。カラムは３５℃に維持した。移動相は、４．７５ｍＭ クエン酸一水和物、７ｍＭ １−オクタンスルホン酸および５０μＭ ＥＤＴＡ二ナトリウム−アセトニトリル混合物（９８：２、ｖ／ｖ）を含有する１００ｍＭ 第一リン酸ナトリウム溶液である。移動相のｐＨは、ｏ−リン酸で２．２に調整した。流速は０．３ｍｌ／分である。ＤＡ、ＤＯＰＡＣおよびＨＶＡのレベルは、ｎｍｏｌ／ｇ湿組織で表した。
【０１３７】
全ての値を平均±標準偏差（ＳＤ）または標準誤差（ＳＥＭ）で表し、差は、Ｐ＜０．０５のレベルで統計的に有意とみなした。統計解析は、StatsDirect統計用ソフトウエアを用いて実施した。平均値間の差は、一方向分散分析（ＡＮＯＶＡ）とそれに続くDunnett検定（対照（＝ベヒクル処置ラット）群との比較）で解析した。ノンパラメトリックなデータは、Kruskal-Wallis分散分析で解析した。
【０１３８】
結果： １２週にわたり動物を追跡調査したところ、６−ＯＨＤＡ処置ラットの線条体に注射したＧＤＮＦミメティック化合物が副作用を誘導することはなかった。行動アッセイにおいても、線条体内に注射した化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１による毒性効果は見られなかった。
【０１３９】
６−ＯＨＤＡ注射から６週間後および化合物ＢＴ１３（または１３）、ＢＴ１６（または１６）、ＢＴ１８（または１８）およびＢＴ２９２６５１（または２９２６５１）の線条体注入から３週間後に実施したアンフェタミン誘導回転運動アッセイにおいては、ＢＴ１３が１種の濃度（０．２μｇ）、化合物ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１も１種の濃度（１μｇ）において、アンフェタミン誘導同側性回転運動を減少させた。図７を参照。
【０１４０】
６−ＯＨＤＡ神経毒の線条体注入から３週間後に注入したＧＤＮＦミメティック化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１は、障害を負ったラットのアンフェタミン誘導同側性回転運動を有意に減少させた。よって化合物ＢＴ１３、ＢＴ１６、ＢＴ１８およびＢＴ２９２６５１は、in vivoにおいて、パーキンソン氏病のラットモデルの病的な運動行動を有意に減少させる。
【０１４１】
ドーパミン作動性ニューロンの生存
ラットのドーパミン作動性ニューロンを、Schinelli et al., 1988の記載に従って培養した。簡単に説明すると、妊娠１５日目の雌のラット（ウイスターラット、Janvierより購入）を頚椎脱臼で殺生し、胎仔を子宮より取り出した。胎生中脳を取り出し、１％のペニシリン−ストレプトマイシン（ＰＳ、Invitrogen製）と１％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ、Sigma製）を含む、氷冷のリーボビッツ培地（Ｌ１５、Invitrogen製）に入れた。ドーパミン作動性ニューロンに富んだ発達過程の脳の領域であることから、中脳屈の前側部分のみを細胞の調製に使用した。
【０１４２】
中脳は、カルシウムとマグネシウムを含まないＰＢＳで希釈した、１０％のトリプシンＥＤＴＡ １０×（Invitrogen製）を用いた３７℃で２０分のトリプシン処理によって分離した。反応は、DNAase I（グレードII）（０．１ｍｇ／ｍｌ、Roche Diagnostic製）と１０％ ウシ胎仔血清（ＦＣＳ、Invitrogen製）を含むダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ、Invitrogen製）の添加で停止した。次に１０ｍｌのピペットに３回通すことで、細胞を機械的に分離させた。ＢＳＡ（３．５％）のＬ１５培地溶液層の上で細胞を１８０×ｇ、室温で１０分の遠心分離に付した。上澄みを廃棄し、細胞ペレットをＢ２７（２％、Invitrogen製）、Ｌ−グルタミン（０．２ｍＭ、Invitrogen製）と１％のＰＳ溶液を添加したNeurobasal（Invitrogen製）からなる特定の培地に再懸濁した。トリパンブルー色素排除試験を用い、Neubauerサイトメーターで生細胞を計数した。
【０１４３】
細胞を、９６穴プレート（ウェルはポリ−Ｌ−リシン（１０μｇ／ｍｌ、Sigma製）でコートしておいた）に６９，０００細胞／ウェルの密度で播種し、加湿空気（９５％）／ＣＯ2（５％）雰囲気下、３７℃で培養した。培地の半分を２日ごとに新鮮な培地と交換した。この条件下で５日間培養した後には、星状細胞が培養液中に存在し、成長因子を放出してニューロンの分化を可能にした。神経細胞集団の３〜５％はドーパミン作動性ニューロンだった。
【０１４４】
６日目には培地を除去し、新鮮な培地を加えた。加えた培地は、１６μＭ ＭＰＰ+の有無、更に試験物質の有無により異なっていた。４８時間の薬物処理後（培養８日目）に、細胞を４％のＰＦＡで固定した。ドーパミン作動性ニューロンを抗チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）モノクローナル抗体（Sigma製）で標識した。この抗体は、ドーパミン作動性ニューロンの神経突起および細胞体を標識する。上記抗体をAlexa Fluor 488 ヤギ抗マウスＩｇＧ（Molecular probe製）で視覚化し、細胞核を蛍光マーカー（ヘキスト溶液、SIGMA製）で標識した。各条件につき、倍率を１０×にしたInCell AnalyzerTM（商標） 1000（Amersham Biosciences製）を用い、１つのウェルにつき２×１０枚の写真を撮影した。全ての画像を同一条件下で撮影した。
【０１４５】
ＭＰＰ+薬物処理の有りと無しの両条件における、神経突起の長さおよび抗チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）抗体で標識されたニューロンの数に関する解析を、InCell AnalyzerTM 1000 3.2.ワークステーションソフトウエアで実施した。ドーパミン作動性ニューロンおよび完全長神経突起を、１０枚の写真から計数した（培養条件の異なる１２種の解析）。
【０１４６】
化合物３１９Ｈ６による細胞保護が、下記表のデータによって示された。これら結果は、化合物の神経保護性効果が天然の脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）に類似することを明確に示している。
【０１４７】
【表１】
【０１４８】
ＧＤＮＦミメティック／ＡＲＴＮミメティックの細胞生存率に対する効果の評価
エコーアコースティック分注器（Echo acoustic dispenser）（Labcyte Inc.製）を用いて、２．５〜１２５ｎｌ容量の試験化合物を３８４穴培養プレートに移送した。規定の濃度でＤＭＳＯに溶解した化合物の存在下に、２０，０００細胞／ｍｌ（５００細胞／ウェル）のトリプシン化ＭＧ８７ＲＥＴマウス繊維芽細胞を播種した。水平振盪機で簡単に混合した後、プレートを遠心分離に付し、恒温機に移した。化合物に細胞を加えてから２日（４８時間）後に、細胞の生存率をCelTiterGlo試薬（Promega製）で評価した。結果を図８に示す。
【０１４９】
アンフェタミン誘導回転運動
ラットに線条体内６−ＯＨＤＡによって障害を誘導した３週間後に、線条体にベヒクル、ＧＤＮＦ、またはＧＤＮＦミメティックを投与した。アンフェタミン誘導行動を障害誘導から４２日および８４日後に計測した。運動の非対称性は、アンフェタミン（５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）注射から４５分後に自動ロトメーターボウル（ドイツ国、TSE Systems製）で観察した。各試験の同側性回転非対称性の総スコアは、障害側に対する同側性回転の数から対側性回転の数を減じることで計算した。データを下記図９に示す。
【０１５０】
他の適切な疾患モデル
パーキンソン氏病について上述した実験と同様に、以下の適切な疾患モデルを用いた実験を設計し、実施することができる： ＡＬＳ（例えば、ＳＯＤ１Ｇ９３Ａラットモデル）、脳虚血（例えば、中大脳動脈結紮齧歯動物モデル）、アルツハイマー病（例えば、Αβ過剰発現トランスジェニックマウスモデル）、慢性疼痛（例えば、脊柱神経結紮ラットモデル）など。
【０１５１】
参考文献
本明細書に引用した文献は、それらの全内容が参照によって本願に組み込まれたものとする。更に、特定のアッセイまたは試薬に関する教示のために文献が引用された場合には、その特定の教示も参照によって本願に組み込まれたものとする。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０１５２】
【特許文献１】Longo, et al.、Methods of facilitating neural cell survival using non-peptide and peptide BDNF neurotrophin mimetics、米国特許出願公開第２００７００６０５２６号、２００７年３月１５日。
【非特許文献】
【０１５３】
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（Ｉ）：
【化４６】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、水酸基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項２】
上記式（Ｉ）中のＲ１およびＲ２が、各々独立に、アルキレンアミノ基および水素原子からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
下記式（II）：
【化４７】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項４】
下記式（III）：
【化４８】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項５】
下記式（IV）：
【化４９】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項６】
下記式（Ｖ）：
【化５０】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項７】
下記式（XX）：
【化５１】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項８】
上記式（XX）中のＲ１が、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基、テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項７に記載の化合物。
【請求項９】
下記式（VI）〜（XIX）：
【化５２】
【化５３】
【化５４】
【化５５】
【化５６】
【化５７】
【化５８】
【化５９】
【化６０】
【化６１】
【化６２】
【化６３】
【化６４】
【化６５】
のいずれかで表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項１０】
請求項１〜９の化合物の少なくとも１種、および薬学的に許容される希釈剤、アジュバントまたは担体を包含する組成物。
【請求項１１】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれかの化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項１３】
ニューロン、神経系細胞、神経前駆細胞、神経始原細胞または神経組織の成長を調節するための方法であって、該細胞または組織を請求項１〜１１のいずれかの化合物または組成物と接触させることを包含する方法。
【請求項１４】
Ex vivoで接触させることを特徴とする、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
該化合物が、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体活性化因子、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体阻害因子、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティック、およびＲＥＴ活性化因子からなる群より選ばれる少なくとも１種としての活性を有することを特徴とする、請求項１〜９のいずれかに記載の化合物。
【請求項１６】
対象の有する疾患の治療用である、請求項１〜１２および１５のいずれかに記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１７】
疾患の治療を、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体の調節によって行うことを特徴とする、請求項１６に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１８】
該疾患が、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態からなる群より選ばれるものであることを特徴とする、請求項１６または１７に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１９】
対象が哺乳動物であることを特徴とする、請求項１６〜１８のいずれかに記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項２０】
対象がヒトであることを特徴とする、請求項１９に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項２１】
治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す化合物の有効量を対象に投与することを包含する方法。
【請求項２２】
ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す化合物の使用であって、治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための使用。
【請求項２３】
治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するために、ＧＦＲα１受容体分子に対する結合および調節の少なくとも１種に用いる化合物。
【請求項２４】
該疾患が、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態からなる群より選ばれるものであることを特徴とする、請求項２１〜２３のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２５】
対象が哺乳動物であることを特徴とする、請求項２１〜２４のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２６】
対象がヒトであることを特徴とする、請求項２５に記載の方法、使用または化合物。
【請求項２７】
該化合物が、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティックであることを特徴とする、請求項２１〜２６のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２８】
グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティックとしての活性を有する、精製した化合物。
【請求項２９】
請求項２８の精製した化合物を包含し、薬学的に許容される希釈剤または担体を更に包含する組成物。
【請求項３０】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項２８に記載の精製した化合物または請求項２９に記載の組成物。
【請求項３１】
請求項２８〜３０のいずれかの精製した化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項３２】
該化合物が小分子であることを特徴とする、請求項２１〜３０のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３３】
該化合物が、下記式（Ｉ）：
【化６６】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アルケニレンアリール基および水酸基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３４】
該化合物が、下記式（II）：
【化６７】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３５】
該化合物が、下記式（III）：
【化６８】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３６】
該化合物が、下記式（IV）：
【化６９】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３７】
該化合物が、少なくとも１種のＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す親化合物の誘導体を包含し、該誘導体も、少なくとも１種のＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示すことを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３８】
該誘導体は、有効性、選択性、親水性、親油性、両親媒性、可溶性、生物学的利用能，および肝分解に対する耐性からなる群より選ばれる少なくとも１種の性質が親化合物よりも強化されていることを特徴とする、請求項３７に記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３９】
対象におけるＲＥＴの下流活性化によって疾患を治療するための方法であって、ＲＥＴを活性化する化合物を対象に投与することを包含する方法。
【請求項４０】
治療を必要とする対象におけるＲＥＴの下流活性化によって疾患を治療するための、ＲＥＴを活性化する化合物の使用。
【請求項４１】
該化合物が小分子であることを特徴とする、請求項３９または４０に記載の方法または使用。
【請求項４２】
ＲＥＴを活性化する、精製した化合物。
【請求項４３】
請求項４２の化合物、および薬学的に許容される希釈剤または担体を包含する組成物。
【請求項４４】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項４２または４３の化合物または組成物。
【請求項４５】
請求項４２〜４４のいずれかの化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項４６】
該化合物が、下記式（Ｖ）：
【化７０】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４７】
該化合物が、下記式（VI）：
【化７１】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４８】
該化合物が、下記式（VII）：
【化７２】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４９】
該化合物が、下記式（VIII）：
【化７３】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５０】
該化合物が、下記式（IX）：
【化７４】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５１】
該化合物が、下記式（XX）：
【化７５】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５２】
上記式（XX）中のＲ１が、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基、テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項５１に記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５３】
ＧＤＮＦのミメティックを同定するための方法であって、目的化合物をＧＦＲα１を発現する細胞と接触させ、そして細胞成長を計測することを包含し、バックグラウンドの細胞成長に対する細胞成長の増加を、化合物がＧＤＮＦのミメティックであることの指標とする方法。
【請求項５４】
細胞成長の増加を検出するために、目的化合物の存在下における細胞成長を、目的化合物の非存在下における細胞成長と比較することを特徴とする、請求項５３に記載の方法。
【請求項５５】
該細胞は、組み換えによってＧＦＲα１を発現する細胞であることを特徴とする、請求項５３または５４に記載の方法
【請求項５６】
該細胞は、更にレポータータンパク質を発現し、レポータータンパク質またはレポータータンパク質活性の測定によって細胞成長を検出することを特徴とする、請求項５３〜５５のいずれかに記載の方法
【請求項５７】
レポータータンパク質がルシフェラーゼであることを特徴とする、請求項５６に記載の方法。
【請求項５８】
細胞成長の測定が、ルシフェラーゼ活性の計測を包含することを特徴とする、請求項５７に記載の方法。
【請求項５９】
ＧＤＮＦのミメティックを同定するための方法であって、化合物をＲＥＴおよびＧＦＲα１を発現する細胞と接触させ、そしてＲＥＴのリン酸化を検出することを包含し、バックグラウンドに対して増加したＲＥＴのリン酸化を、化合物がＧＤＮＦのミメティックであることの指標とする方法。
【請求項６０】
該細胞を溶解し、そして細胞溶解物をＲＥＴに結合する抗体と接触させることを特徴とする、請求項５９に記載の方法。
【請求項６１】
ＲＥＴをリン酸化チロシンに結合する抗体（抗ｐＹ抗体）と接触させ、そしてＲＥＴに結合した抗体の量を計測することによってＲＥＴのリン酸化を測定する工程を更に包含する、請求項５９または６０に記載の方法。
【請求項１】
下記式（Ｉ）：
【化４６】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、水酸基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項２】
上記式（Ｉ）中のＲ１およびＲ２が、各々独立に、アルキレンアミノ基および水素原子からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
下記式（II）：
【化４７】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項４】
下記式（III）：
【化４８】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項５】
下記式（IV）：
【化４９】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項６】
下記式（Ｖ）：
【化５０】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項７】
下記式（XX）：
【化５１】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項８】
上記式（XX）中のＲ１が、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基、テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項７に記載の化合物。
【請求項９】
下記式（VI）〜（XIX）：
【化５２】
【化５３】
【化５４】
【化５５】
【化５６】
【化５７】
【化５８】
【化５９】
【化６０】
【化６１】
【化６２】
【化６３】
【化６４】
【化６５】
のいずれかで表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩。
【請求項１０】
請求項１〜９の化合物の少なくとも１種、および薬学的に許容される希釈剤、アジュバントまたは担体を包含する組成物。
【請求項１１】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれかの化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項１３】
ニューロン、神経系細胞、神経前駆細胞、神経始原細胞または神経組織の成長を調節するための方法であって、該細胞または組織を請求項１〜１１のいずれかの化合物または組成物と接触させることを包含する方法。
【請求項１４】
Ex vivoで接触させることを特徴とする、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
該化合物が、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体活性化因子、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体阻害因子、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティック、およびＲＥＴ活性化因子からなる群より選ばれる少なくとも１種としての活性を有することを特徴とする、請求項１〜９のいずれかに記載の化合物。
【請求項１６】
対象の有する疾患の治療用である、請求項１〜１２および１５のいずれかに記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１７】
疾患の治療を、ＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体の調節によって行うことを特徴とする、請求項１６に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１８】
該疾患が、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態からなる群より選ばれるものであることを特徴とする、請求項１６または１７に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項１９】
対象が哺乳動物であることを特徴とする、請求項１６〜１８のいずれかに記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項２０】
対象がヒトであることを特徴とする、請求項１９に記載の化合物、組成物または医療器具。
【請求項２１】
治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための方法であって、ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す化合物の有効量を対象に投与することを包含する方法。
【請求項２２】
ＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す化合物の使用であって、治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するための使用。
【請求項２３】
治療を必要とする対象におけるＧＦＲα／ＲＥＴ受容体複合体との接触、あるいは該複合体の活性化または阻害によって疾患を治療するために、ＧＦＲα１受容体分子に対する結合および調節の少なくとも１種に用いる化合物。
【請求項２４】
該疾患が、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、レット症候群、てんかん、パーキンソン氏病、脊髄損傷、卒中、低酸素症、虚血、脳の損傷、糖尿病性神経障害、末梢神経障害、神経移植の合併症、運動ニューロン疾患、多発性硬化症、ＨＩＶ認知症、末梢神経の損傷、聴力損失、うつ病、肥満症、メタボリック症候群、疼痛、癌、およびＧＦＲα／ＲＥＴ発現細胞の変性または機能不全を伴う他の病態からなる群より選ばれるものであることを特徴とする、請求項２１〜２３のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２５】
対象が哺乳動物であることを特徴とする、請求項２１〜２４のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２６】
対象がヒトであることを特徴とする、請求項２５に記載の方法、使用または化合物。
【請求項２７】
該化合物が、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティックであることを特徴とする、請求項２１〜２６のいずれかに記載の方法、使用または化合物。
【請求項２８】
グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーリガンド（ＧＦＬ）の少なくとも１種のミメティックとしての活性を有する、精製した化合物。
【請求項２９】
請求項２８の精製した化合物を包含し、薬学的に許容される希釈剤または担体を更に包含する組成物。
【請求項３０】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項２８に記載の精製した化合物または請求項２９に記載の組成物。
【請求項３１】
請求項２８〜３０のいずれかの精製した化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項３２】
該化合物が小分子であることを特徴とする、請求項２１〜３０のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３３】
該化合物が、下記式（Ｉ）：
【化６６】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ４は、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アルケニレンアリール基および水酸基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３４】
該化合物が、下記式（II）：
【化６７】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３５】
該化合物が、下記式（III）：
【化６８】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３６】
該化合物が、下記式（IV）：
【化６９】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５およびＲ６は、各々独立に、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３７】
該化合物が、少なくとも１種のＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示す親化合物の誘導体を包含し、該誘導体も、少なくとも１種のＧＦＲα１受容体分子に対して結合特異性および調節特異性の少なくとも１種を示すことを特徴とする、請求項２１〜３２のいずれかに記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３８】
該誘導体は、有効性、選択性、親水性、親油性、両親媒性、可溶性、生物学的利用能，および肝分解に対する耐性からなる群より選ばれる少なくとも１種の性質が親化合物よりも強化されていることを特徴とする、請求項３７に記載の方法、使用、化合物または組成物。
【請求項３９】
対象におけるＲＥＴの下流活性化によって疾患を治療するための方法であって、ＲＥＴを活性化する化合物を対象に投与することを包含する方法。
【請求項４０】
治療を必要とする対象におけるＲＥＴの下流活性化によって疾患を治療するための、ＲＥＴを活性化する化合物の使用。
【請求項４１】
該化合物が小分子であることを特徴とする、請求項３９または４０に記載の方法または使用。
【請求項４２】
ＲＥＴを活性化する、精製した化合物。
【請求項４３】
請求項４２の化合物、および薬学的に許容される希釈剤または担体を包含する組成物。
【請求項４４】
単位剤形になっているか、または投薬用の滅菌容器に収容されていることを特徴とする、請求項４２または４３の化合物または組成物。
【請求項４５】
請求項４２〜４４のいずれかの化合物または組成物を含有する医療器具、好ましくは注射器。
【請求項４６】
該化合物が、下記式（Ｖ）：
【化７０】
（式中、
Ｒ１およびＲ２は、各々独立に、水素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基、ジアルキルカルバモイル基およびアルキレンアミノ基からなる群より選ばれる１種であり、そして
Ｒ３は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アルキル基、アリール基、アルキレンアリール基、アシル基、アルコキシ基、アルコキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基、アルキレンアリールオキシカルボニル基、カルバモイル基、アルキルカルバモイル基およびジアルキルカルバモイル基からなる群より選ばれる１種である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４７】
該化合物が、下記式（VI）：
【化７１】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４８】
該化合物が、下記式（VII）：
【化７２】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項４９】
該化合物が、下記式（VIII）：
【化７３】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５０】
該化合物が、下記式（IX）：
【化７４】
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５１】
該化合物が、下記式（XX）：
【化７５】
（式中、Ｒ１は環式または非環式のアミノ基である。）
で表される構造を有する化合物またはその薬学的に許容される塩であることを特徴とする、請求項３９〜４５のいずれかに記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５２】
上記式（XX）中のＲ１が、ジアルキルアミノ基、ピペリジニル基、置換ピペリジニル基、ピペラジニル基、置換ピペラジニル基、テトラヒドロイソキノリニル基および置換テトラヒドロイソキノリニル基からなる群より選ばれる１種であることを特徴とする、請求項５１に記載の方法、使用、化合物、組成物または器具。
【請求項５３】
ＧＤＮＦのミメティックを同定するための方法であって、目的化合物をＧＦＲα１を発現する細胞と接触させ、そして細胞成長を計測することを包含し、バックグラウンドの細胞成長に対する細胞成長の増加を、化合物がＧＤＮＦのミメティックであることの指標とする方法。
【請求項５４】
細胞成長の増加を検出するために、目的化合物の存在下における細胞成長を、目的化合物の非存在下における細胞成長と比較することを特徴とする、請求項５３に記載の方法。
【請求項５５】
該細胞は、組み換えによってＧＦＲα１を発現する細胞であることを特徴とする、請求項５３または５４に記載の方法
【請求項５６】
該細胞は、更にレポータータンパク質を発現し、レポータータンパク質またはレポータータンパク質活性の測定によって細胞成長を検出することを特徴とする、請求項５３〜５５のいずれかに記載の方法
【請求項５７】
レポータータンパク質がルシフェラーゼであることを特徴とする、請求項５６に記載の方法。
【請求項５８】
細胞成長の測定が、ルシフェラーゼ活性の計測を包含することを特徴とする、請求項５７に記載の方法。
【請求項５９】
ＧＤＮＦのミメティックを同定するための方法であって、化合物をＲＥＴおよびＧＦＲα１を発現する細胞と接触させ、そしてＲＥＴのリン酸化を検出することを包含し、バックグラウンドに対して増加したＲＥＴのリン酸化を、化合物がＧＤＮＦのミメティックであることの指標とする方法。
【請求項６０】
該細胞を溶解し、そして細胞溶解物をＲＥＴに結合する抗体と接触させることを特徴とする、請求項５９に記載の方法。
【請求項６１】
ＲＥＴをリン酸化チロシンに結合する抗体（抗ｐＹ抗体）と接触させ、そしてＲＥＴに結合した抗体の量を計測することによってＲＥＴのリン酸化を測定する工程を更に包含する、請求項５９または６０に記載の方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６Ａ】
【図６Ｂ】
【図７】
【図８】
【図９】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６Ａ】
【図６Ｂ】
【図７】
【図８】
【図９】
【公表番号】特表２０１３−５１３５８８（Ｐ２０１３−５１３５８８Ａ）
【公表日】平成２５年４月２２日（２０１３．４．２２）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１２−５４２５８０（Ｐ２０１２−５４２５８０）
【出願日】平成２２年１２月１３日（２０１０．１２．１３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２０１０／０６９５３５
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０７０１７７
【国際公開日】平成２３年６月１６日（２０１１．６．１６）
【公序良俗違反の表示】
（特許庁注：以下のものは登録商標）
１．ウィンドウズ
【出願人】（５１２１５２５２５）
【氏名又は名称原語表記】ＧｅｎｅＣｏｄｅ ＡＳ
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２５年４月２２日（２０１３．４．２２）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年１２月１３日（２０１０．１２．１３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２０１０／０６９５３５
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０７０１７７
【国際公開日】平成２３年６月１６日（２０１１．６．１６）
【公序良俗違反の表示】
（特許庁注：以下のものは登録商標）
１．ウィンドウズ
【出願人】（５１２１５２５２５）
【氏名又は名称原語表記】ＧｅｎｅＣｏｄｅ ＡＳ
【Ｆターム（参考）】
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