ＳＴＡＰＨＹＬＯＣＯＣＣＵＳＡＵＲＥＵＳタンパク質および核酸
【課題】アミノ酸配列および対応するヌクレオチド配列を含む、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ由来のタンパク質を提供する。
【解決手段】特定のアミノ酸配列を有する、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ由来のタンパク質および前記タンパク質と５０％以上の配列同一性を有するタンパク質、および前記タンパク質をコードする核酸分子。これらのタンパク質は、ホモログ、オルトログ、対立遺伝子改変体および機能的変異体を含む。またこれらのタンパク質はワクチン、免疫原性組成物、診断研究、酵素研究および抗生物質に対する標的として有用である。
【解決手段】特定のアミノ酸配列を有する、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ由来のタンパク質および前記タンパク質と５０％以上の配列同一性を有するタンパク質、および前記タンパク質をコードする核酸分子。これらのタンパク質は、ホモログ、オルトログ、対立遺伝子改変体および機能的変異体を含む。またこれらのタンパク質はワクチン、免疫原性組成物、診断研究、酵素研究および抗生物質に対する標的として有用である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本明細書中で引用される全ての文書は、その全体が参考として援用される。
【０００２】
（技術分野）
本発明は、細菌Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ由来の核酸およびタンパ
ク質に関する。
【背景技術】
【０００３】
（背景技術）
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓは、グラム陽性の球形細菌で、顕微鏡検
査では、対になって、短鎖、または群クラスターであると思われる。いくつかの菌株は、
ヒトにおいて食中毒（ブドウ球菌腸性毒）を引き起こす非常に熱安定のタンパク質である
エンテロトキシンを生成し得る。特に、臨床的関心は、広範な抗生物質に耐性である菌株
（「ＭＲＳＡ」）である。
【０００４】
Ｓ．ａｕｒｅｕｓに対する有効なワクチンは現在のところないが、多糖結合体化ワクチ
ンが、現在、臨床試験されている（ＮａｂｉからのＳｔａｐｈＶＡＸＴＭ）。
【０００５】
ワクチンの開発において使用され得るタンパク質を提供することが、本発明の目的であ
る。さらなる目的は、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ感染の診断に使用され得るタンパク質および核酸
を提供すること、Ｓ．ａｕｒｅｕｓの検出のために使用され得るタンパク質および核酸を
提供すること、Ｓ．ａｕｒｅｕｓのタンパク質の発現に有用な核酸を提供すること、およ
び抗生物質探索に有用な標的であるタンパク質を提供することである。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００６】
（発明の開示）
本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列を含むタンパク質を提
供する。これらのアミノ酸配列は、ちょうど配列番号２〜配列番号５６４２である。
【０００７】
本発明はまた、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列に対して配列同一
性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質を提供する。特定の配列に依存して、配列同一
性の程度は、好ましくは、５０％よりも高い（例えば、６０％、７０％、８０％、９０％
、９５％、９９％以上）。これらのタンパク質は、ホモログ、オルトログ、対立遺伝子改
変体および機能的変異体を含む。代表的に、２つのタンパク質間の５０％以上の同一性は
、機能的等価物を表すと見なされる。タンパク質間の同一性は、好ましくは、ＭＰＳＲＣ
Ｈプログラム（Ｏｘｆｏｒｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ）において実行されるような、Ｓｍｉ
ｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎ相同性検索アルゴリズムによって決定され、これは、ｇａｐ ｏ
ｐｅｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１２およびｇａｐ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１
のパラメーターを用いるアフィンギャップを使用する。
【０００８】
本発明はさらに、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列のフラグメント
を含むタンパク質を提供する。このフラグメントは、配列由来の少なくともｎ個の連続し
たアミノ酸を含むべきであり、特定の配列に依存して、ｎは、７以上である（例えば、８
、１０、１２、１４、１６、１８、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、
１００以上）。好ましくは、このフラグメントは、配列由来の１つ以上のエピトープを含
む。他の好ましいフラグメントは、（ａ）実施例中に開示されるタンパク質のＮ末端シグ
ナルペプチド、（ｂ）Ｎ末端シグナルペプチドを有さない、実施例中に開示されるタンパ
ク質、および（ｃ）Ｎ末端アミノ酸残基を有さない、実施例中に開示されるタンパク質、
である。
【０００９】
もちろん、本発明のタンパク質は、様々な方法（例えば、組換え体発現、Ｓ．ａｕｒｅ
ｕｓからの精製、化学合成など）によって、および様々な形態（例えば、ネイティブ、融
合など）で調製され得る。それらは、好ましくは、実質的に純粋な形態（すなわち、実質
的に、他のｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタンパク質または宿主細胞タンパク質がない）
で調製される。本発明のタンパク質は、好ましくは、ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタン
パク質である。
【００１０】
好ましいタンパク質は、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９の表ＩＶ中に列挙される「ＧＢ
Ｓｎｎｎ」抗原に対して相同性を示す、すなわち、免疫化および／または診断に有用な抗
原であると推察されるタンパク質である。これらには、配列番号：１０７８（ＧＢＳ１９
９）、１８７６（ＧＢＳ１７７）、１９４６（ＧＢＳ３１１）、２５０８（ＧＢＳ３１２
）、３７２４（ＧＢＳ２５）、４６００（ＧＢＳ９０）、４８２６（ＧＢＳ４９２）、お
よび５３６０（ＧＢＳ１１４）が含まれる。
【００１１】
さらなる局面に従って、本発明は、これらのタンパク質に結合する抗体を提供する。こ
れらは、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体であり得、そして、任意の適切な
手段によって生成され得る。抗体は、検出可能なラベルを含み得る。
【００１２】
さらなる局面に従って、本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓヌクレオチ
ド配列を含む核酸を提供する。これらの配列は、配列番号１〜配列番号５６４１の間の奇
数である。
【００１３】
さらに、本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓヌクレオチド配列に対して
配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む核酸を提供する。配列間の同一性は、好まし
くは、上記のようなＳｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎ相同性アルゴリズムによって決定され
る。
【００１４】
さらに、本発明は、好ましくは、「高ストリンジェンシー」条件（例えば、０．１×Ｓ
ＳＣ、０．５％ＳＤＳ溶液中で６５℃）下で、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓ核
酸にハイブリダイズし得る核酸を提供する。
【００１５】
これらの配列のフラグメントを含む核酸もまた、提供される。これらは、Ｓ．ａｕｒｅ
ｕｓ配列由来の、少なくともｎ個の連続するヌクレオチドを含むべきであり、特定の配列
に依存して、ｎは、１０以上である（例えば、１２、１４、１５、１８、２０、２５、３
０、３５、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００以上）。
【００１６】
本発明の核酸は、ハイブリダイゼーション反応（例えば、ノーザンブロットもしくはサ
ザンブロット、または、核酸マイクロアレイもしくは「遺伝子チップ」において）、およ
び増幅反応（ＰＣＲ、ＳＤＡ、ＳＳＳＲ、ＬＣＲ、ＮＡＳＢＡ、ＴＭＡ）などで使用され
得る。
【００１７】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明のタンパク質およびタンパク質フラグメント
をコードする核酸を提供する。
【００１８】
本発明が、上記の配列に対して相補的な配列を含む核酸を（例えば、アンチセンスまた
はプロービングの目的のために）提供することもまた、理解されるべきである。
【００１９】
もちろん、本発明に従う核酸は、多くの方法（例えば、化学合成によって、ゲノムもし
くはｃＤＮＡライブラリーから、生物自身からなど）で調製され得、そして、様々な形態
（例えば、１本鎖、２本鎖、ベクター、プライマーなど）を取り得る。核酸は、好ましく
は、実質的には単離された形態である。
【００２０】
本発明に従う核酸は、例えば、放射性標識または蛍光標識で、標識され得る。これは、
この核酸が、例えば、ＰＣＲ、ＬＣＲ、ＴＭＡ、ＮＡＳＢＡ中でプライマーまたはプロー
ブとして使用される場合、特に有用である。
【００２１】
さらに、用語「核酸」は、ＤＮＡおよびＲＮＡ、ならびにそのアナログ（例えば、改変
された骨格を含むアナログ）を含み、そして、ペプチド核酸（ＰＮＡ）などもまた含む。
【００２２】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明のヌクレオチド配列を含むベクター（例えば
、クローニングベクターまたは発現ベクター）およびこのようなベクターで形質転換され
た宿主細胞を含む。
【００２３】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明に従うタンパク質、抗体および／または核酸
を含む組成物を提供する。これらの組成物は、例えば、免疫原性組成物としてか、診断試
薬としてか、またはワクチンとして適切であり得る。
【００２４】
本発明はまた、医薬（例えば免疫原性組成物またはワクチン）として、または診断試薬
としての使用のための、本発明に従う核酸、タンパク質または抗体を提供する。本発明は
また、以下：（ｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓに起因する感染を処置するかまたは防
止するための医薬；（ｉｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓの存在またはｓｔａｐｈｙｌ
ｏｃｏｃｃｕｓに対して産生された抗体の検出のための診断試薬；ならびに／あるいはは
（ｉｉｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓに対して抗体を産生し得る試薬の製造における
、本発明に従う核酸、タンパク質または抗体の使用を提供する。このｓｔａｐｈｙｌｏｃ
ｏｃｃｕｓは、任意の種、群、または菌株であり得るが、好ましくはＳ．ａｕｒｅｕｓで
ある。
【００２５】
本発明はまた、患者を処置する方法を提供し、この方法は、患者に、治療有効量の本発
明の核酸、タンパク質および／または抗体を投与する工程を包含する。
【００２６】
本発明はまた、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ（例えば、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）核酸配列
内に含まれる標的配列を増幅するためのプライマー（例えば、ＰＣＲプライマー）を含む
キットを提供し、このキットは、第１のプライマーおよび第２のプライマーを含み、ここ
で、第１のプライマーは実質的にこの標的配列に対して相補的であり、そして、第２のプ
ライマーは、この標的配列の相補鎖に対して、実質的に相補的であり、ここで、実質的な
相補性を有するこれらのプライマーの部分は、増幅される標的配列の終端を規定する。第
１のプライマーおよび／または第２のプライマーは、検出可能な標識（例えば、蛍光標識
）を含み得る。
【００２７】
本発明はまた、１本鎖核酸または２本鎖核酸（またはそれらの混合物）中に含まれるＳ
ｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ（例えば、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）鋳型核酸配列の増幅を可能に
する、第１の１本鎖オリゴヌクレオチドおよび第２の１本鎖オリゴヌクレオチドを含むキ
ットを提供し、ここで：（ａ）第１のオリゴヌクレオチドは、この鋳型核酸配列に対して
実質的に相補的なプライマー配列を含み；（ｂ）第２のオリゴヌクレオチドは、この鋳型
核酸配列の相補鎖に対して実質的に相補的なプライマー配列を含み；（ｃ）第１のオリゴ
ヌクレオチドおよび／または第２のオリゴヌクレオチドは、この鋳型核酸に対して相補的
でない配列を含み；そして（ｄ）このプライマー配列は、増幅される鋳型配列の終端を規
定する。特徴（ｃ）の非相補的配列は、好ましくは、プライマー配列の上流（すなわち、
５’側）である。これらの（ｃ）配列の１つまたは両方は、制限部位（例えば、ＥＰ−Ｂ
−０５０９６１２）またはプロモーター配列（ＥＰ−Ｂ−０５０５０１２）を含み得る。
第１のオリゴヌクレオチドおよび／または第２のオリゴヌクレオチドは、検出可能な標識
（例えば、蛍光標識）を含み得る。
【００２８】
鋳型配列は、ゲノム配列の任意の部分であり得る。例えば、この配列は、ｒＲＮＡ遺伝
子またはタンパク質コード遺伝子であり得る。この鋳型配列は、好ましくは、Ｓ．ａｕｒ
ｅｕｓに特異的である。
【００２９】
本発明はまた、式ＮＨ２−Ａ−［−Ｘ−Ｌ−］ｎ−Ｂ−ＣＯＯＨにより表せられるハイ
ブリッドタンパク質を提供し、ここで、Ｘは、上記のような本発明のアミノ酸配列であり
、Ｌは、任意のリンカーアミノ酸配列であり、Ａは、任意のＮ−末端アミノ酸配列であり
、Ｂは、任意のＣ末端アミノ酸配列であり、そして、ｎは、１よりも大きい整数である。
ｎの値は、２とｘとの間であり、そして、ｘの値は、代表的には、３、４、５、６、７、
８、９または１０である。好ましくは、ｎは、２、３または４であり；より好ましくは２
または３であり；最も好ましくは、ｎ＝２である。各ｎの例について、−Ｘ−は、同一で
も、異なってもよい。［−Ｘ−Ｌ−］の各ｎの例について、リンカーアミノ酸配列−Ｌ−
は、存在してもしなくてもよい。例えば、ｎ＝２の場合、このハイブリッドは、ＮＨ２−
Ｘ１−Ｌ１−Ｘ２−Ｌ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｘ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｌ
１−Ｘ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｘ２−Ｌ２−ＣＯＯＨなどであり得る。リンカーア
ミノ酸配列である−Ｌ−は、代表的には、短い（例えば、２０以下のアミノ酸、すなわち
、１９、１８、１７、１６、１５、１４、１３、１２、１１、１０、９、８、７、６、５
、４、３、２、１）。例としては、クローニングを容易にする短いペプチド配列、ポリ−
グリシンリンカー（すなわち、Ｇｌｙｎ（ここで、ｎ＝２、３、４、５、６，７，８，９
、１０以上））、およびヒスチジンタグ（Ｈｉｓｎ（ここで、ｎ＝３、４、５、６、７、
８、９、１０以上））が挙げられる。他の適切なリンカーアミノ酸配列は、当業者に明白
である。−Ａ−および−Ｂ−は、代表的に短い（例えば、４０以下のアミノ酸、すなわち
３９、３８、３７、３６、３５、３４、３３、３２、３１、３０、２９、２８、２７、２
６、２５、２４、２３、２２、２１、２０、１９、１８、１７、１６、１５、１４、１３
、１２、１１、１０、９、８、７、６、５、４、３、２、１）任意の配列である。例とし
ては、タンパク質輸送を指向するリーダー配列、またはクローニングもしくは精製を容易
にする短いペプチド配列（例えば、ヒスチジンタグ、すなわちＨｉｓｎ（ここで、ｎ＝３
、４、５、６、７、８、９、１０以上））が挙げられる。他の適切なＮ−末端およびＣ−
末端アミノ酸配列は、当業者に明白である。
【００３０】
さらなる局面に従って、本発明は様々なプロセスを提供する。
【００３１】
本発明のタンパク質を生成するためのプロセスが提供され、このプロセスは、タンパク
質発現を誘導する条件下で、本発明の宿主細胞を培養する工程を包含する。
【００３２】
本発明のタンパク質または核酸を生成するプロセスが提供され、ここで、このタンパク
質または核酸は、化学的手段を使用して、部分的または全体的に合成される。
【００３３】
本発明のポリヌクレオチドを検出するためのプロセスが提供され、このプロセスは以下
の工程：（ａ）本発明に従う核プローブと生物学的サンプルを、二重鎖を形成するような
ハイブリダイズの条件下で接触させる工程；および（ｂ）二重鎖を検出する工程を包含す
る。
【００３４】
生物学的サンプル中のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓを検出するためのプロセスもまた
提供され、このプロセスは、本発明に従う核と生物学的サンプルを、ハイブリダイズの条
件下で接触させる工程を包含する。このプロセスは、核酸増幅（例えば、ＰＣＲ、ＳＤＡ
、ＳＳＳＲ、ＮＡＳＢＡ、ＬＣＲ、ＴＭＡなど）またはハイブリダイゼーション（例えば
、マイクロアレイ、ブロット、溶液中のプローブを使用するハイブリダイゼーションなど
）を含み得る。臨床的サンプル（特に、ＭＲＳＡ）中のＳ．ａｕｒｅｕｓのＰＣＲ検出は
、以前に報告されている）［例えば、Ｍｕｒａｋａｍｉら、（１９９１）Ｊ．Ｃｌｉｎ．
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２９：２２４０〜２２４４；Ｂｉｇｎａｒｄｉら、（１９９６）Ｊ
．Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．３７：５３〜６３；Ｋｉｔａｇａｗａら
、（１９９６）Ａｎｎ．Ｓｕｒｇｅｒｙ ２２４：６６５〜６７１；Ｖａｎｎｕｆｆｅｌ
ら（１９９８）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．３６：２３６６〜２３６８；Ｊａｙ
ａｒａｔｎｅ ＆ Ｒｕｔｈｅｒｆｏｒｄ（１９９９）Ｄｉａｇｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ
．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．３５；１３〜１８を参照のこと］。
【００３５】
本発明のタンパク質を検出するためのプロセスが提供され、このプロセスは、以下の工
程：（ａ）本発明の抗体と生物学的サンプルを、抗体−抗原複合体の形成に適切な条件下
で接触させる工程；および（ｂ）この複合体を検出する工程、を包含する。
【００３６】
本発明はまた、試験化合物が本発明のタンパク質に結合するか否かを決定するためのプ
ロセスを提供する。試験化合物が本発明のタンパク質に結合し、この結合が、Ｓ．ａｕｒ
ｅｕｓ細菌の生活環を阻害する場合、この試験化合物は、抗生物質としてか、または抗生
物質の設計のためのリード化合物として使用され得る。このプロセスは、代表的には、試
験化合物と本発明のタンパク質を接触させる工程、およびこの試験化合物が、このタンパ
ク質に結合するかどうかを決定する工程を包含する。これらのプロセス中で使用される本
発明の好ましいタンパク質は、酵素（例えば、ｔＲＮＡシンテターゼ）、膜輸送体および
リボソームタンパク質である。適切な試験化合物としては、タンパク質、ポリペプチド、
炭水化物、脂質、核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡおよびそれらの改変形態）、ならびに低
分子有機化合物（例えば、２００Ｄａと２０００Ｄａとの間のＭＷ）が挙げられる。試験
化合物は、個々に提供されるが、代表的には、ライブラリーの一部（例えば、組合せライ
ブラリー）である。結合相互作用の検出方法は、ＮＭＲ、フィルタ結合アッセイ、ゲルリ
ターデイションアッセイ、置換アッセイ、表面プラズモン共鳴、逆ツーハイブリッドなど
が挙げられる。本発明のタンパク質に結合する化合物は、Ｓ．ａｕｒｅｕｓと化合物を接
触させ、次いで、増殖阻害をモニタすることによって、抗生物質活性について試験され得
る。本発明はまた、これらの方法を使用して同定された化合物を提供する。
【００３７】
本発明は、本発明のタンパク質および１つ以上の以下の抗原を含む：
−Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ由来のタンパク質抗原（例えば、ＶａｃＡ
、ＣａｇＡ、ＮＡＰ、ＨｏｐＸ、ＨｏｐＹ［例えば、ＷＯ９８／０４７０２］および／ま
たはウレアーゼ）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来のタンパク質抗原（例えば、ＷＯ９９／
２４５７８、ＷＯ９９／３６５４４、ＷＯ９９／５７２８０、ＷＯ００／２２４３０、Ｔ
ｅｔｔｅｌｉｎら（２０００）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７：１８０９〜１８１５、Ｐｉｚｚ
ａら（２０００）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７：１８１６〜１８２０およびＷＯ９６／２９４
１２中に開示されるもの）（タンパク質「２８７」および誘導体が特に好ましい）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来の外膜小胞（ＯＭＶ）調製物（例えば、
ＷＯ０１／５２８８５；Ｂｊｕｎｅら（１９９１）、Ｌａｎｃｅｔ ３３８（８７７５）
：１０９３〜１０９６；Ｆｕｋａｓａｗａら（１９９９）Ｖａｃｃｉｎｅ １７：２９５
１〜２９５８；Ｒｏｓｅｎｑｖｉｓｔら（１９９８）Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．Ｓｔａｎｄ．９
２：３２３〜３３３など中に開示されるようなもの）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ａ、Ｃ、Ｗ１３５および／またはＹ由来の糖類
抗原（例えば、血清型Ｃ由来のＣｏｓｔａｎｔｉｎｏら（１９９２）Ｖａｃｃｉｎｅ １
０：６９１〜６９８中に開示されるオリゴ糖）［Ｃｏｓｔａｎｔｉｎｏら（１９９９）Ｖ
ａｃｃｉｎｅ １７：１２５１〜１２６３をまた参照のこと］
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の糖類抗原［例えば、Ｗａ
ｔｓｏｎ（２０００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ Ｊ １９：３３１〜３３
２；Ｒｕｂｉｎ（２０００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｃｌｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍ ４７：２６
９〜２８５，ｖ；Ｊｅｄｒｚｅｊａｓ（２００１）Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｍｏｌ Ｂｉｏ
ｌ Ｒｅｖ ６５：１８７〜２０７］
−Ａ型肝炎ウイルス（例えば、不活性ウイルス）由来の抗原［例えば、Ｂｅｌｌ（２０
００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ Ｊ １９：１１８７〜１１８８；Ｉｗａ
ｒｓｏｎ（１９９５）ＡＰＭＩＳ １０３：３２１〜３２６］
−Ｂ型肝炎ウイスル由来の抗原（例えば、表面抗原および／またはコア抗原）［例えば
、Ｇｅｒｌｉｃｈら（１９９０）Ｖａｃｃｉｎｅ ８ Ｓｕｐｐｌ：Ｓ６３〜６８ ＆
７９〜８０］
−Ｃ型肝炎ウイルス由来の抗原［例えば、Ｈｓｕら（１９９９）Ｃｌｉｎ Ｌｉｖｅｒ
Ｄｉｓ ３：９０１〜９１５］
−Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ由来の抗原（例えば、Ｂ．ｐｅｒｔｕｓ
ｓｉｓ由来の百日咳ホロトキシン（ＰＴ）および糸状血球凝集素（ＦＨＡ）で、必要に応
じて、ペルタクチンならびに／または凝集原２および凝集原３とも組合せる）［例えば、
Ｇｕｓｔａｆｓｓｏｎら（１９９６）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３３４：３４９〜３５
５；Ｒａｐｐｕｏｌｉら（１９９１）ＴＩＢＴＥＣＨ９：２３２〜２３８］
−ジフテリア抗原（例えば、ジフテリアトキソイド）［例えば、Ｖａｃｃｉｎｅｓ（１
９９８）、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒ編．ＩＳＢＮ ０−７２１６−１９４
６−０の３章］、例えば、ＣＲＭ１９７変異体［例えば、Ｄｅｌ Ｇｕｉｄｉｃｅら（１
９９８）Ｍｏｌｅｕｌａｒ Ａｓｐｅｃｔｓ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １９：１〜７０
］
−破傷風抗原（例えば、破傷風トキソイド）［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔ
ｉｍｅｒの４章］
−Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ Ｂ由来の糖類抗原
−Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ由来の抗原［例えば、ＷＯ９９／２４５７８、ＷＯ９９
／３６５４４、ＷＯ９９／５７２８０］
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の抗原［例えば、ＷＯ０２／０２６
０６；Ｋａｌｍａｎら（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ２１：３８５〜３
８９；Ｒｅａｄら（２０００）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ ２８：１３９７〜
４０６；Ｓｈｉｒａｉら（２０００）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１８１（Ｓｕｐｐｌ３
）：Ｓ５２４〜Ｓ５２７；ＷＯ９９／２７１０５；ＷＯ００／２７９９４；ＷＯ００／３
７４９４］
−Ｓ．ａｇａｌａｃｔｉａｅ由来の抗原［例えば、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９］
−Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ由来の抗原［例えば、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９］
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ［例えば、ＷＯ９９／２８４７５］
−Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ由来の抗原［例えばＲｏｓｓら
（２００１）Ｖａｃｃｉｎｅ １９：４１３５〜４１４２］
−ＩＰＶまたはＯＰＶのようなポリオ抗原［例えば、Ｓｕｔｔｅｒら（２０００）Ｐｅ
ｄｉａｔｒ Ｃｌｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍ ４７：２８７〜３０８；Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ
＆ Ｓｐａｎｎ（１９９９）Ａｍ Ｆａｍ Ｐｈｙｓｉｃｉａｎ ５９：１１３〜１１
８、１２５〜１２６］
−凍結乾燥化不活性ウイルス［例えばＭＭＷＲ Ｍｏｒｂ Ｍｏｒｔａｌ Ｗｋｌｙ
Ｒｅｐ １９９８ Ｊａｎ １６；４７（１）：１２、１９；ＲａｂＡｖｅｒｔＴＭ］の
ような狂犬病抗原［例えば、Ｄｒｅｅｓｅｎ（１９９７）Ｖａｃｃｉｎｅ １５ Ｓｕｐ
ｐｌ：Ｓ２〜６］
−麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、および／または風疹抗原［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ
＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒの９章、１０章および１１章］；
−血球凝集素および／またはノイラミニダーゼ表面タンパク質のような、インフルエン
ザ抗原［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒの１９章］
−Ｍｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓ由来の抗原［例えば、ＭｃＭｉｃｈａ
ｅｌ（２０００）Ｖａｃｃｉｎｅ １９ Ｓｕｐｐｌ １：Ｓ１０１〜１０７］。
【００３８】
糖類抗原または糖質抗原が含まれる場合、この抗原は、免疫原性を増強するために、好
ましくは、キャリアタンパク質に結合体化される［例えば、Ｒａｍｓａｙら（２００１）
Ｌａｎｃｅｔ ３５７（９２５１）：１９５〜１９６；Ｌｉｎｄｂｅｒｇ（１９９９）Ｖ
ａｃｃｉｎｅ １７ Ｓｕｐｐｌ ２：Ｓ２８〜３６；Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｖａｃｃｉ
ｎｅｓ（Ｃｒｕｓｅ編）ＩＳＢＮ ３８０５５４９３２６、特に、１０巻：４８〜１１４
など］。好ましいキャリアタンパク質は、細菌毒素または細菌トキソイド（例えば、ジフ
テリアトキソイドまたは破傷風トキソイド）である。ＣＲＭ１９７ジフテリアトキソイド
が、特に好ましい。他の適切なキャリアタンパク質としては、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄ
ｉｓの外膜タンパク質［例えば、ＥＰ−０３７２５０１］、合成ペプチド［例えば、ＥＰ
−０３７８８８１、ＥＰ−０４２７３４７］、熱ショックタンパク質［例えば、ＷＯ９３
／１７７１２］、百日咳タンパク質［例えば、ＷＯ９８／５８６６８；ＥＰ−０４７１１
７７］、Ｈ．ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ由来のプロテインＤ［例えば、ＷＯ００／５６３６０
］、Ｃ．ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ由来の毒素Ａまたは毒素Ｂ［例えば、ＷＯ００／６１７６１
］などが挙げられる。任意の適切な結合体化反応は、必要な場合、任意の適切なリンカー
とともに使用され得る。
【００３９】
毒性タンパク質抗原は、必要な場合、解毒され得る（例えば、化学手段および／または
遺伝的手段による百日咳の解毒）。
【００４０】
ジフテリア抗原が組成物中に含まれる場合、破傷風抗原および百日咳抗原を含むことが
また好ましい。同様に、破傷風抗原が含まれる場合、ジフテリア抗原および百日咳抗原が
含まれることがまた、好ましい。同様に、百日咳抗原が含まれる場合、ジフテリア抗原お
よび破傷風抗原が含まれることがまた、好ましい。
【００４１】
抗原は、好ましくは、アルミニウム塩に吸着される。
【００４２】
組成物中の抗原は、代表的には、各々少なくとも１μｇ／ｍｌの濃度で存在する。一般
に、任意の所与の抗原の濃度は、この抗原に対する免疫応答を誘発するのに十分である。
【００４３】
本発明はまた、本発明の２以上（例えば、３、４、５）のタンパク質を含む組成物を提
供する。
【００４４】
本発明を実施するために（例えば、ワクチン接種または診断の目的で、開示される配列
を利用するために）使用され得る標準的技術および標準的手順の要旨が以下に続く。この
要旨は、本発明の限定ではなく、むしろ、使用され得るが、必要とされない実施例を与え
る。
【００４５】
（総論）
本発明の実施は、他に示されなければ、分子生物学、微生物学、組換えＤＮＡ、および
免疫学の従来技術を使用し、これらは当該分野の技術の範囲内である。このような技術は
以下の文献で十分説明されている（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃ
ｌｏｎｉｎｇ；Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版（１９８９）；ＤＮＡ
Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ｖｏｌｕｍｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ（Ｄ．Ｎ Ｇｌｏｖｅｒ編 １９
８５）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編
１９８４）；Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｄ．Ｈａｍ
ｅｓおよびＳ．Ｊ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編 １９８４）；Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎ
ｄ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｄ．ＨａｍｅｓおよびＳ．Ｊ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編 １
９８４）；Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編 １
９８６）；Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅｓ（ＩＲＬ Ｐ
ｒｅｓｓ、１９８６）；Ｂ．Ｐｅｒｂａｌ、Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８４）；ｔｈｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ
Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ｓｅｒｉｅｓ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｉｎｃ．）、特
に１５４巻および１５５巻；Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｍ
ａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌｓ（Ｊ．Ｈ．ＭｉｌｌｅｒおよびＭ．Ｐ．Ｃａｌｏｓ編１９
８７、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）；Ｍａｙｅｒお
よびＷａｌｋｅｒ、編（１９８７）、Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐ
ｒｅｓｓ、Ｌｏｎｄｏｎ）；Ｓｃｏｐｅｓ、（１９８７）Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉ
ｃａｔｉｏｎ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ、第２版（Ｓｐｒｉｎ
ｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ、Ｎ．Ｙ．）、およびＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅ
ｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｖｏｌｕｍｅｓ Ｉ−ＩＶ（Ｄ．Ｍ．Ｗｅｉｒおよび
Ｃ．Ｃ．Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ編 １９８６）。
【００４６】
ヌクレオチドおよびアミノ酸についての標準的な略号が、本明細書において使用される
。
【００４７】
（定義）
Ｘを含む組成物は、組成物中のＸ＋Ｙの合計のうちの少なくとも８５重量％がＸである
とき、Ｙを「実質的に含まない」。好ましくは、Ｘは、組成物中のＸ＋Ｙの合計のうちの
少なくとも９０重量％を、さらに好ましくは少なくとも約９５重量％を、または９９重量
％さえも含む。
【００４８】
用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」は、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」および「
からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ）」を意味する。例えば、Ｘを「含む」組成物は、もっ
ぱらＸからなり得るか、またはＸ＋ＹのようなＸに何かを付加したものも含み得る。
【００４９】
用語「異種」とは、天然では一緒には見られない２つの生物学的成分をいう。この成分
は、宿主細胞、遺伝子または調節領域（例えば、プロモーター）であり得る。異種成分は
天然では一緒には見られないが、例えば、遺伝子に対して異種のプロモーターがその遺伝
子に作動可能に連結されるときは、それらは一緒に機能し得る。別の例は、ｓｔａｐｈｙ
ｌｏｃｏｃｃｕｓ配列がマウス宿主細胞に対して異種である場合である。さらなる例は、
天然においてみられない配置で単一タンパク質に組み立てられた、同じタンパク質または
異なるタンパク質由来の２つのエピトープである。
【００５０】
「複製起点」とは、発現ベクターのような、ポリヌクレオチドの複製を開始および調節
するポリヌクレオチド配列である。複製起点は、細胞内でのポリヌクレオチド複製の自律
性ユニットとして振る舞い、それ自体の制御下で複製し得る。複製起点は、ベクターが特
定の宿主細胞において複製するために必要とされ得る。特定の複製起点を有せば、発現ベ
クターは、細胞内の適切なタンパク質の存在下で高いコピー数で再生され得る。起点の例
は、酵母において有効な自律性複製配列；およびＣＯＳ−７細胞で有効であるウイルスＴ
抗原である。
【００５１】
「変異体」配列は、天然の配列または開示された配列とは異なるが配列同一性を有する
ＤＮＡ配列、ＲＮＡ配列またはアミノ酸配列として定義される。特定の配列に依存して、
天然の配列または開示された配列と変異体配列との間の配列同一性の程度は、好ましくは
５０％より大きい（例えば、上記のＳｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎアルゴリズムを使用し
て算出して６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％またはそれより大きい）。
本明細書中で使用される場合、本明細書で核酸配列が提供される核酸分子（または領域）
の「対立遺伝子改変体」は、別のもしくは第２の単離体のゲノム中の本質的に同じ遺伝子
座で生じ、かつ、例えば、変異または組換えにより生ずる天然のバリエーションに起因し
て、類似するが、しかし同一でない核酸配列を有する核酸分子（または領域）である。コ
ード領域の対立遺伝子改変体は、代表的には、比較される遺伝子によってコードされるタ
ンパク質の活性と類似した活性を有するタンパク質をコードする。対立遺伝子改変体はま
た、遺伝子の５’または３’非翻訳領域（例えば、調節制御領域）での変化を含み得る（
例えば、米国特許第５，７５３，２３５号を参照のこと）。
【００５２】
（発現系）
ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓヌクレオチド配列は、種々の異なる発現系；例えば、哺
乳動物細胞、バキュロウイルス、植物、細菌、および酵母について使用される発現系にお
いて発現され得る。
【００５３】
（ｉ．哺乳動物系）
哺乳動物発現系は当該分野において公知である。哺乳動物プロモーターは、哺乳動物Ｒ
ＮＡポリメラーゼを結合し得、コード配列（例えば、構造遺伝子）のｍＲＮＡへの下流（
３’）転写を開始し得る任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、転写開始領域（これ
はコード配列の５’末端の近位に通常位置する）およびＴＡＴＡボックス（転写開始部位
の２５〜３０塩基対（ｂｐ）上流に通常位置する）を有する。ＴＡＴＡボックスは、その
正しい部位においてＲＮＡポリメラーゼＩＩにＲＮＡ合成を開始させるよう指示すると考
えられている。哺乳動物プロモーターはまた、ＴＡＴＡボックスの１００〜２００ｂｐ上
流以内に通常位置する上流プロモーターエレメントを含む。上流プロモーターエレメント
は、転写が開始される速度を決定し、そしていずれの方向にも作用し得る（Ｓａｍｂｒｏ
ｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ Ｃｌｏｎｅｄ Ｇｅｎｅｓ ｉｎ
Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌｓ．」、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａ
ｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版）。
【００５４】
哺乳動物ウイルス遺伝子は、しばしば高度に発現され、そして広い宿主域を有する；従
って、哺乳動物ウイルス遺伝子をコードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供
する。例は、ＳＶ４０初期プロモーター、マウス乳癌ウイルスＬＴＲプロモーター、アデ
ノウイルス主要後期プロモーター（Ａｄ ＭＬＰ）、および単純疱疹ウイルスプロモータ
ーを含む。さらに、マウスのメタロチオネイン遺伝子のような非ウイルス性遺伝子に由来
する配列もまた、有用なプロモーター配列を提供する。発現は、構成性であるかまたは調
節される（誘導可能）かのいずれかであり得、プロモーターに依存して、ホルモン応答性
細胞においてグルココルチコイドで誘導され得る。
【００５５】
上記のプロモーターエレメントと組み合わされたエンハンサーエレメント（エンハンサ
ー）の存在は、通常発現レベルを増大させる。エンハンサーは、同種プロモーターまたは
異種プロモーターに連結されたとき、転写を１０００倍まで刺激し得る調節ＤＮＡ配列で
あり、合成は、通常のＲＮＡ開始部位で始まる。エンハンサーはまた、それらが、通常方
向もしくは反転（ｆｌｉｐｐｅｄ）方向のいずれかで転写開始部位より上流もしくは下流
に、またはプロモーターから１０００ヌクレオチドを超える距離で位置するとき、活性で
ある（Ｍａｎｉａｔｉｓら（１９８７） Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３６：１２３７；Ａｌｂｅ
ｒｔｓら（１９８９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｅｌｌ、
第２版）。ウイルス由来のエンハンサーエレメントは、それらは通常、より広い宿主域を
有するため、特に有用であり得る。例としては、ＳＶ４０初期遺伝子エンハンサー（Ｄｉ
ｊｋｅｍａら（１９８５）ＥＭＢＯ Ｊ．４：７６１）およびラウス肉腫ウイルスの長末
端反復（ＬＴＲ）に由来するエンハンサー／プロモーター（Ｇｏｒｍａｎら（１９８２ｂ
）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．７９：６７７７）およびヒトサイトメガロウ
イルスに由来するエンハンサー／プロモーター（Ｂｏｓｈａｒｔら（１９８５）Ｃｅｌｌ
４１：５２１）が挙げられる。さらに、いくつかのエンハンサーは調節可能であり、そ
してホルモンまたは金属イオンのような誘導因子の存在下のみで活性になる（Ｓａｓｓｏ
ｎｅ−ＣｏｒｓｉおよびＢｏｒｅｌｌｉ（１９８６）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．２：２
１５；Ｍａｎｉａｔｉｓら（１９８７）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３６：１２３７）。
【００５６】
ＤＮＡ分子は、哺乳動物細胞において細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、Ｄ
ＮＡ分子と直接連結され得、この場合、組換えタンパク質のＮ末端における最初のアミノ
酸は常に、ＡＴＧ開始コドンによりコードされるメチオニンである。所望される場合、Ｎ
末端は、臭化シアンとのインビトロでのインキュベーションによりタンパク質から切断さ
れ得る。
【００５７】
あるいは、外来タンパク質もまた、哺乳動物細胞において外来タンパク質の分泌を提供
するリーダー配列フラグメントを含む融合タンパク質をコードするキメラＤＮＡ分子を作
製することにより、細胞から増殖培地中へ分泌され得る。好ましくは、リーダーフラグメ
ントと外来遺伝子との間にコードされる、インビボまたはインビトロのいずれかにおいて
切断され得るプロセシング部位が存在する。リーダー配列フラグメントは通常、細胞から
のタンパク質の分泌を指示する、疎水性アミノ酸を含むシグナルペプチドをコードする。
アデノウイルス３部構成リーダーは、哺乳動物細胞における外来タンパク質の分泌を提供
するリーダー配列の例である。
【００５８】
通常、哺乳動物細胞によって認識される転写終結配列およびポリアデニル化配列は、翻
訳終止コドンの３’側に存在する調節領域であり、従って、プロモーターエレメントと共
に、コード配列に隣接する。成熟ｍＲＮＡの３’末端は、部位特異的転写後切断およびポ
リアデニル化により形成される（Ｂｉｒｎｓｔｉｅｌら、（１９８５）Ｃｅｌｌ ４１：
３４９；ＰｒｏｕｄｆｏｏｔおよびＷｈｉｔｅｌａｗ（１９８８）「Ｔｅｒｍｉｎａｔｉ
ｏｎ ａｎｄ ３’ｅｎｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｏｆ ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ ＲＮ
Ａ．」Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｐｌｉｃｉｎｇ（Ｂ．Ｄ．Ｈａｍｅｓお
よびＤ．Ｍ．Ｇｌｏｖｅｒ編）；Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ（１９８９）Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．１４：１０５）。これらの配列は、ｍＲＮＡの転写を導き、そのｍＲ
ＮＡは、そのＤＮＡにコードされるポリペプチドに翻訳され得る。転写ターミネーター／
ポリアデニル化シグナルの例としては、ＳＶ４０由来のものが挙げられる（Ｓａｍｂｒｏ
ｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｌｏｎｅｄ ｇｅｎｅｓ ｉｎ
ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｍａｍｍａｌｉａｎ ｃｅｌｌｓ．」Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎ
ｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）。
【００５９】
通常、プロモーター、ポリアデニル化シグナル、および転写終結配列を含む上記の構成
要素は、発現構築物内に共に導入される。エンハンサー、機能的なスプライス供与部位お
よびスプライス受容部位を有するイントロン、ならびにリーダー配列もまた、所望される
場合、発現構築物内に含まれ得る。発現構築物はしばしば、哺乳動物細胞または細菌のよ
うな宿主内で安定的に維持され得る染色体外エレメント（例えば、プラスミド）のような
、レプリコン内で維持される。哺乳動物の複製系としては、複製にトランス作用性の因子
を必要とする、動物ウイルス由来の複製系が挙げられる。例えば、ＳＶ４０（Ｇｌｕｚｍ
ａｍ（１９８１）Ｃｅｌｌ ２３：１７５）、あるいはポリオーマウイルスのようなパポ
バウイルスの複製系を含むプラスミドは、適切なウイルスのＴ抗原の存在下で極めて高い
コピー数で複製する。哺乳動物レプリコンの別の例としては、ウシパピローマウイルスお
よびエプスタイン−バーウイルス由来のレプリコンが挙げられる。さらに、このレプリコ
ンは、二つの複製系を有し得、従って、例えば、発現用に哺乳動物細胞内で、ならびにク
ローニングおよび増幅用に原核生物の宿主内で、そのレプリコンが維持されることが可能
である。このような哺乳動物−細菌シャトルベクターの例としては、ｐＭＴ２（Ｋａｕｆ
ｍａｎら（１９８９）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．９：９４６）およびｐＨＥＢＯ（Ｓ
ｈｉｍｉｚｕら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．６：１０７４）が挙げられる
。
【００６０】
使用される形質転換の手順は、形質転換される宿主に依存する。異種のポリヌクレオチ
ドの哺乳動物細胞への導入方法は、当該分野で公知であり、その方法としては、デキスト
ラン媒介トランスフェクション、リン酸カルシウム沈殿、ポリブレン媒介トランスフェク
ション、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、リポソーム内へのポリヌクレオ
チドの封入、およびＤＮＡの核内への直接微量注入が挙げられる。
【００６１】
発現用宿主として利用可能な哺乳動物細胞株は、当該分野で公知であり、そのような細
胞株としては、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ＨｅＬａ細胞、新生仔ハム
スター腎臓（ＢＨＫ）細胞、サル腎臓細胞（ＣＯＳ）、ヒト肝細胞癌細胞（例えば、Ｈｅ
ｐ Ｇ２）および多くの他の細胞株を含むが、これらに限定されない、Ａｍｅｒｉｃａｎ
Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）から入手可能な多くの
不死化細胞株が挙げられる。
【００６２】
（ｉｉ バキュロウイルス系）
タンパク質をコードしているポリヌクレオチドはまた、適切な昆虫発現ベクター内に挿
入され得、そしてそのベクター内で、制御エレメントに作動可能に連結される。ベクター
の構築には、当該分野で公知の技術を使用する。一般に、その発現系の構成要素として、
以下のものが挙げられる：バキュロウイルスゲノムのフラグメント、および発現させる異
種遺伝子の挿入用の簡便な制限部位の両方を含む転移ベクター（通常は細菌プラスミド）
；転移ベクター内のバキュロウイルスに特異的なフラグメントに相同性のある配列を有す
る野生型バキュロウイルス（これは、バキュロウイルスゲノム内への異種遺伝子の相同組
換えを可能にする）；ならびに適切な昆虫宿主細胞および増殖培地。
【００６３】
転移ベクターにタンパク質をコードするＤＮＡ配列を挿入した後、そのベクターおよび
野生型ウイルスゲノムを、昆虫宿主細胞にトランスフェクトし、そこでこのベクターとウ
イルスゲノムとを組換えさせる。パッケージングされた組換えウイルスは発現され、そし
て組換えプラークが同定されそして精製される。バキュロウイルス／昆虫細胞発現系の材
料および方法は、特に、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ ＣＡからキット形
態（「ＭａｘＢａｃ」キット）で市販される。これらの技術は、一般に当業者に公知であ
り、そしてＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、Ｔｅｘａｓ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ Ｓｔａｔｉｏｎ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ Ｎｏ．１５５５（１９８７
）（以下、「ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ」）に十分に記載されている。
【００６４】
タンパク質をコードするＤＮＡ配列をバキュロウイルスゲノムに挿入するのに先立って
、プロモーター、リーダー（所望される場合は）、目的のコード配列、および転写終結配
列を含む上記の構成要素を、通常、中間置換（ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ ｔｒａｎｓｐ
ｌａｃｅｍｅｎｔ）構築物（転移ベクター）に構築する。この構築物は、単一の遺伝子お
よび作動可能に連結された調節エレメント；作動可能に連結された調節エレメントのセッ
トを各々が所有する複数の遺伝子；あるいは調節エレメントの同じセットにより調節され
る複数の遺伝子を含み得る。中間置換構築物は、しばしば、細菌のような宿主内で安定的
に維持し得る染色体外エレメント（例えば、プラスミド）のような、レプリコン内で維持
される。レプリコンは、複製系を有しており、従って、それはクローニングおよび増幅用
の適切な宿主内で維持され得る。
【００６５】
現在、外来遺伝子のＡｃＮＰＶへの導入のために最も一般に使用される転移ベクターは
、ｐＡｃ３７３である。当業者に公知の多くの他のベクターもまた設計されている。これ
らのものとして、例えば、ｐＶＬ９８５（これは、ポリへドリンの開始コドンをＡＴＧか
らＡＴＴに変化させ、そしてそのＡＴＴから３２塩基対下流に、ＢａｍＨＩクローニング
部位を導入する；ＬｕｃｋｏｗおよびＳｕｍｍｅｒｓ、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ（１９８９）１
７：３１を参照のこと）が挙げられる。
【００６６】
そのプラスミドはまた通常、ポリへドリンポリアデニル化シグナル（Ｍｉｌｌｅｒら（
１９８８）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．、４２：１７７）、および原核生物の
アンピシリン耐性（ａｍｐ）遺伝子、ならびに大腸菌においての選択および増殖のための
複製起点を含む。
【００６７】
バキュロウイルス転移ベクターは通常、バキュロウイルスプロモーターを含む。バキュ
ロウイルスプロモーターは、バキュロウイルスＲＮＡポリメラーゼに結合し得、そしてコ
ード配列（例えば、構造遺伝子）のｍＲＮＡへの下流（５’から３’）方向の転写を開始
し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、コード配列の５’末端に近接
して存在する転写開始領域を有している。この転写開始領域は通常、ＲＮＡポリメラーゼ
結合部位および転写開始部位を含む。バキュロウイルス転移ベクターは、またエンハンサ
ーと呼ばれる第二のドメインを有し得、これは存在する場合は、通常、構造遺伝子に対し
て遠位にある。発現は調節されるか、または構成的であるかのいずれかであり得る。
【００６８】
ウイルスの感染周期の後期で大量に転写される構造遺伝子は、特に有用なプロモーター
配列を提供する。例としては、ウイルス多角体タンパク質をコードする遺伝子（Ｆｒｉｅ
ｓｅｎら、（１９８６）「Ｔｈｅ Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕ
ｓ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ」、Ｔｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ
ｏｆ Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓｅｓ（Ｗａｌｔｅｒ Ｄｏｅｒｆｌｅｒ編）；欧州特許
公開番号１２７８３９および１５５４７６；ならびにｐ１０タンパク質をコードする遺伝
子（Ｖｌａｋら、（１９８８）、Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．６９：７６５）由来の配列が
挙げられる。
【００６９】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、分泌昆虫タンパク質または分泌バキュロウ
イルスタンパク質の遺伝子（例えば、バキュロウイルスポリへドリン遺伝子（Ｃａｒｂｏ
ｎｅｌｌら（１９８８）Ｇｅｎｅ、７３：４０９））から誘導され得る。あるいは、哺乳
動物細胞の翻訳後修飾（例えば、シグナルペプチド切断、タンパク質分解性切断、および
リン酸化）のシグナルは、昆虫細胞に認識されると思われ、そして分泌および核蓄積に必
要なシグナルもまた、無脊椎動物細胞と脊椎動物細胞との間で保存されると思われるため
に、ヒトα−インターフェロン（Ｍａｅｄａら、（１９８５）、Ｎａｔｕｒｅ ３１５：
５９２）；ヒトガストリン放出ペプチド（Ｌｅｂａｃｑ−Ｖｅｒｈｅｙｄｅｎら、（１９
８８）、Ｍｏｌｅｃ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．８：３１２９）；ヒトＩＬ−２（Ｓｍｉｔｈ
ら、（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８２：８４０４）
；マウスＩＬ−３（Ｍｉｙａｊｉｍａら（１９８７）Ｇｅｎｅ ５８：２７３）；および
ヒトグルコセレブロシダーゼ（Ｍａｒｔｉｎら、（１９８８）ＤＮＡ、７：９９）をコー
ドする遺伝子由来のリーダーのような、非昆虫起源のリーダーも、昆虫での分泌を与える
ために使用され得る。
【００７０】
組換えポリペプチドまたは組換えポリタンパク質は、細胞内に発現され得、または適切
な調節配列と共に発現される場合、分泌され得る。非融合外来タンパク質の優れた細胞内
発現には通常、ＡＴＧ開始シグナルに先行する適切な翻訳開始シグナルを含む短いリーダ
ー配列を理想的には有する異種遺伝子が必要である。所望であれば、Ｎ末端のメチオニン
は、臭化シアンとのインビトロインキュベーションにより、成熟タンパク質から切断され
得る。
【００７１】
あるいは、天然では分泌されない組換えポリタンパク質あるいは組換えタンパク質は、
昆虫において外来タンパク質の分泌を与えるリーダー配列フラグメントを含む、融合タン
パク質をコードするキメラＤＮＡ分子を作製することにより、昆虫細胞から分泌され得る
。このリーダー配列フラグメントは通常、タンパク質の小胞体内へのトランスロケーショ
ンを指示する疎水性アミノ酸を含むシグナルペプチドをコードしている。
【００７２】
タンパク質の発現産物前駆体をコードするＤＮＡ配列および／または遺伝子の挿入後、
昆虫細胞宿主に、転移ベクターの異種ＤＮＡおよび野生型バキュロウイルスのゲノムＤＮ
Ａを同時形質転換（通常は、同時トランスフェクションによって）する。構築物のプロモ
ーターおよび転写終結配列は、通常バキュロウイルスゲノムの２〜５ｋｂの区域を含む。
バキュロウイルスウイルスの望ましい部位に異種ＤＮＡを導入する方法は、当該分野で公
知である（ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、上記；Ｊｕら（１９８７）；Ｓｍｉｔｈら
、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．（１９８３）３：２１５６；ならびにＬｕｃｋｏｗおよ
びＳｕｍｍｅｒｓ（１９８９）を参照のこと）。例えば、その挿入は、相同二重交差組換
え（ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｄｏｕｂｌｅ ｃｒｏｓｓｏｖｅｒ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔ
ｉｏｎ）により、ポリへドリン遺伝子のような遺伝子内へであり得る；挿入はまた、所望
のバキュロウイルス遺伝子内に設計された制限酵素部位内へであり得る。Ｍｉｌｌｅｒら
、（１９８９）、Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ ４；９１。発現ベクター内のポリへドリン遺伝子
の代わりにクローン化した場合、このＤＮＡ配列は、ポリへドリン特異的配列が５’およ
び３’の両側に隣接しており、そしてポリへドリンプロモーターの下流に位置される。
【００７３】
新規に形成されたバキュロウイルス発現ベクターは続いて、感染性の組換えバキュロウ
イルス内にパッケージされる。相同組換えは、低い頻度で起こる（約１％と約５％との間
）；それゆえ、同時トランスフェクション後に産生されたウイルスの大半は、依然野生型
ウイルスである。従って、組換えウイルスを同定する方法が必要となる。その発現系の利
点は、組換えウイルスを区別し得る視覚的スクリーニングである。天然のウイルスにより
産生されるポリへドリンタンパク質は、ウイルス感染後の後の時期に、その感染された細
胞の核内で非常に高いレベルで産生される。蓄積されたポリへドリンタンパク質は、閉塞
体を形成し、またそれは包理された粒子を含む。これらの閉塞体は、最大１５μｍの大き
さで、高度に屈折し、明るく輝く外見を与え、容易に光学顕微鏡下で可視化される。組換
えウイルスに感染した細胞は、閉塞体を欠く。組換えウイルスと野生型ウイルスとを区別
するために、トランスフェクションの上清を、当業者に公知の技術により昆虫細胞の単層
にプラーク形成させる。すなわち、プラークを、光学顕微鏡下で閉塞体の存在（野性型ウ
イルスを示す）または非存在（組換えウイルスを示す）によりスクリーニングする。「Ｃ
ｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ」２巻（Ａｕｓｕ
ｂｅｌら編）１６．８（増補１０、１９９０）；ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、上記
；Ｍｉｌｌｅｒら（１９８９）。
【００７４】
組換えバキュロウイルス発現ベクターは、いくつかの昆虫細胞への感染用に開発された
。例えば、組換えバキュロウイルスは、特に以下に示すもののために開発された：Ａｅｄ
ｅｓ ａｅｇｙｐｔｉ、Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ、Ｂｏｍｂｙｘ
ｍｏｒｉ、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒ、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ
ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ、およびＴｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ ｎｉ（ＷＯ８９／０４６６
９９；Ｃａｒｂｏｎｅｌｌら、（１９８５）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．５６：１５３；Ｗｒｉｇｈ
ｔ（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：７１８；Ｓｍｉｔｈら、（１９８３）Ｍｏｌ．Ｃ
ｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３：２１５６；およびＦｒａｓｅｒら、（１９８９）Ｉｎ Ｖｉｔｒ
ｏ Ｃｅｌｌ．Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．２５：２２５を一般に参照のこと）。
【００７５】
細胞および細胞培養培地は、バキュロウイルス／発現系における異種ポリペプチドの直
接発現および融合発現の両方のために市販される；細胞培養技術は、一般に当業者に公知
である。例えば、上記ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈを参照のこと。
【００７６】
改変した昆虫細胞をさらに、適切な栄養培地で増殖させる。この培地は、その改変した
昆虫宿主内で存在するプラスミドの安定的維持を可能にする。発現産物の遺伝子が、誘導
性の制御下にある場合、宿主は高密度まで増殖され得、そして発現は誘導され得る。ある
いは、発現が構成的である場合、その産物は培地中に連続的に発現され、そして目的産物
を取り出し、そして枯渇した栄養を補給しながら、栄養培地を連続的に循環させる必要が
ある。その産物は、クロマトグラフィー（例えば、ＨＰＬＣ、アフィニティークロマトグ
ラフィー、イオン交換クロマトグラフィーなど）；電気泳動；密度勾配遠心；溶媒抽出な
どのような技術により精製され得る。適切な場合、その産物をさらに精製し、必要ならば
、培地中にまた分泌された、または昆虫細胞の溶解から生じたあらゆる昆虫タンパク質を
実質的に除去し、宿主細片（例えば、タンパク質、脂質および多糖類）を少なくとも実質
的に含まない産物を供給する。
【００７７】
タンパク質の発現を得るために、形質転換体に由来する組換え宿主細胞は、組換えタン
パク質をコードする配列の発現を可能にする条件下でインキュベートされる。これらの条
件は、選択された宿主細胞に依存して変動する。しかし、その条件は、当該分野で公知の
条件に基づいて、当業者に容易に確かめられる。
【００７８】
（ｉｉｉ 植物系）
当該分野で公知の多くの植物細胞培養および全植物遺伝子発現系が存在する。例示的な
植物細胞遺伝子発現系としては、米国特許第５，６９３，５０６号；米国特許第５，６５
９，１２２号；および米国特許第５，６０８，１４３号のような特許に記載されるものが
挙げられる。植物細胞培養における遺伝子発現のさらなる例は、Ｚｅｎｋ、Ｐｈｙｔｏｃ
ｈｅｍｉｓｔｒｙ ３０：３８６１−３８６３（１９９１）に記載された。植物タンパク
質のシグナルペプチドの記載は、上記の参考文献に加え、以下に示すものの中においても
見出され得る；Ｖａｕｌｃｏｍｂｅら、Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２０９：３３−４
０（１９８７）；Ｃｈａｎｄｌｅｒら、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇ
ｙ ３：４０７−４１８（１９８４）；Ｒｏｇｅｒｓ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６０
：３７３１−３７３８（１９８５）；Ｒｏｔｈｓｔｅｉｎら、Ｇｅｎｅ ５５：３５３−
３５６（１９８７）；Ｗｈｉｔｔｉｅｒら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒ
ｃｈ １５：２５１５−２５３５（１９８７）；Ｗｉｒｓｅｌら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ３：３−１４（１９８９）；Ｙｕら、Ｇｅｎｅ １２２：２
４７−２５３（１９９２）。植物ホルモンジベレリン酸およびジベレリン酸により誘導さ
れる分泌酵素による植物遺伝子発現の調節の記載は、Ｒ．Ｌ．ＪｏｎｅｓおよびＪ．Ｍａ
ｃＭｉｌｌｉｎ、Ｇｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎｓ：Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓ
ｉｏｌｏｇｙ、Ｍａｌｃｏｌｍ Ｂ．Ｗｉｌｋｉｎｓ編 １９８４ Ｐｉｔｍａｎ Ｐｕ
ｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｌｉｍｉｔｅｄ、Ｌｏｎｄｏｎ、２１−５２頁の中に見出され得る。
他の代謝調節性遺伝子が記載される参考文献：Ｓｈｅｅｎ、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ、２：
１０２７−１０３８（１９９０）；Ｍａａｓら、ＥＭＢＯ Ｊ．９：３４４７−３４５２
（１９９０）；ＢｅｎｋｅｌおよびＨｉｃｋｅｙ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．８４：１３３７−１３３９（１９８７）。
【００７９】
代表的に、当該分野で公知の技術を使用して、所望のポリヌクレオチド配列は、植物内
で作動するように設計された遺伝子調節エレメントを含む発現カセットの中に挿入される
。その発現カセットは、植物宿主内での発現に適切な発現カセットの上流および下流にコ
ンパニオン配列を有する望ましい発現ベクターの中に挿入される。そのコンパニオン配列
は、プラスミドまたはウイルス起源のものであり、そしてそのベクターが、細菌のような
本来のクローニング宿主から、所望の植物宿主へＤＮＡを移動させるために必要とされる
特徴をベクターに提供する。基本的な細菌／植物ベクター構築物は、好ましくは、広い宿
主域の原核生物の複製起点；原核生物の選択マーカー；および、アグロバクテリウムの形
質転換については、アグロバクテリウム媒介移入のためのＴ ＤＮＡ配列を植物染色体に
提供する。異種遺伝子が容易に検出できない場合は、好ましくは、その構築物はまた、植
物細胞が形質転換されたかどうかを決定するために適した選択マーカー遺伝子を有する。
適切なマーカーの一般的な総説は、例えば、イネ科のメンバーについては、Ｗｉｌｍｉｎ
ｋおよびＤｏｎｓ、１９９３、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｔｒ、１１（２）
：１６５−１８５に見られる。
【００８０】
植物ゲノムへの異種配列の組み込みを可能にするために適した配列もまた、推奨される
。これらは、相同組換え用のためのトランスポゾン配列など、および植物ゲノム内へ異種
発現カセットのランダム挿入を可能にするＴｉ配列を含み得る。適切な原核生物選択マー
カーとしては、アンピシリンまたはテトラサイクリンのような抗生物質に対する耐性が挙
げられる。さらなる機能をコードしている他のＤＮＡ配列はまた、当該分野で公知である
ように、そのベクターの中に存在し得る。
【００８１】
本発明の核酸分子はまた、目的のタンパク質の発現用の発現カセットに含まれ得る。２
つ以上も可能であるが、通常はただ一つの発現カセットが存在する。組換え発現カセット
は、異種タンパク質のコード配列に加え、以下のエレメントを含む；プロモーター領域、
植物の５’非翻訳配列、構造遺伝子がそれを備えているかどうかに依存して、開始コドン
、ならびに転写および翻訳終結配列。そのカセットの５’末端および３’末端の独特な制
限酵素部位は、既存のベクター内への容易な挿入を可能にする。
【００８２】
異種のコード配列は、本発明に関係する任意のタンパク質についての配列であり得る。
目的のタンパク質をコードする配列は、適切な場合、そのタンパク質のプロセシングおよ
びトランスロケーションを可能にするシグナルペプチドをコードし、そして通常、本発明
の所望のタンパク質の膜への結合を生じ得るあらゆる配列を欠いている。たいてい、転写
開始領域は、発芽中に発現およびトランスロケーションされる遺伝子についてのものであ
るから、トランスロケーションを与えるシグナルペプチドを使用することにより、また、
目的のタンパク質のトランスロケーションを提供し得る。このようにして、目的のタンパ
ク質は、それらが発現される細胞からトランスロケーションされ、そして効率的に回収さ
れ得る。代表的には、種子における分泌は、アリューロン層あるいは胚盤上皮層を通過し
て、種子の胚乳内へと至る。タンパク質がそれが産生された細胞から分泌されることは必
要とされないが、このことは組換えタンパク質の単離および精製を容易にする。
【００８３】
所望の遺伝子産物の最終的な発現が、真核生物におけるものであるので、クローン化し
た遺伝子の任意の部分が、イントロンのような、宿主のスプライセオソーム（ｓｐｌｉｃ
ｏｓｏｍｅ）機構よりプロセシングされて除去される配列を含むかどうかを決定すること
が望ましい。そのような場合、「イントロン」領域の部位特異的変異誘発は、偽イントロ
ンコードとして遺伝的メッセージの一部を欠失することを防ぐために実施され得る。Ｒｅ
ｅｄおよびＭａｎｉａｔｉｓ、Ｃｅｌｌ ４１：９５−１０５（１９８５）。
【００８４】
ベクターは、組換えＤＮＡを機械的に転移するためにマイクロピペットを用いて植物細
胞内に直接的に微量注入され得る（Ｃｒｏｓｓｗａｙ、Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ、２
０２：１７９−１８５、１９８５）。遺伝物質はまた、ポリエチレングリコールを用いて
植物細胞内に転移され得る（Ｋｒｅｎｓら、Ｎａｔｕｒｅ、２９６、７２−７４、１９８
２）。核酸セグメントの導入の別の方法は、小さいビーズまたは微粒子のいずれかのマト
リックスの内部に、あるいは表面に核酸を有する小さな微粒子による高速バリスティック
（ｂａｌｌｉｓｔｉｃ）穿通法である（Ｋｌｅｉｎら、Ｎａｔｕｒｅ、３２７、７０−７
３、１９８７ならびにＫｎｕｄｓｅｎおよびＭｕｌｌｅｒ、１９９１、Ｐｌａｎｔａ、１
８５：３３０−３３６は、大麦胚乳の粒子の照射（ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）によりトラ
ンスジェニック大麦を作製することを示している）。さらに別の導入方法は、他の物体（
ミニ細胞、細胞、リソソームまたは他の易融な脂肪表面体のいずれか）とのプロトプラス
トの融合である（Ｆｒａｌｅｙら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、７
９、１８５９−１８６３、１９８２）。
【００８５】
ベクターはまた、エレクトロポレーションにより植物細胞内に導入され得る（Ｆｒｏｍ
ｍら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：５８２４、１９８５）。
この技術において、植物プロトプラストは、遺伝子構築物を含むプラスミドの存在下でエ
レクトロポレートされる。高電界強度での電気衝撃により、生体膜を可逆的に透過性にし
、プラスミドの導入を可能にする。エレクトロポレートされた植物プロトプラストは細胞
壁を再形成し、分裂し、植物カルスを形成する。
【００８６】
プロトプラストが単離され得、そして培養されて完全な再生植物を与え得る全ての植物
は、本発明により形質転換され得、その結果、移入した遺伝子を含む完全な植物が回収さ
れる。実際に、全ての植物が、サトウキビ、テンサイ、ワタ、果樹および他の樹木、マメ
科植物および野菜という全ての主要な種を含むがそれらに限定されない培養細胞または組
織から再生され得ることが公知である。いくつかの適切な植物としては、例えば、以下の
属由来の種が挙げられる：Ｆｒａｇａｒｉａ、Ｌｏｔｕｓ、Ｍｅｄｉｃａｇｏ、Ｏｎｏｂ
ｒｙｃｈｉｓ、Ｔｒｉｆｏｌｉｕｍ、Ｔｒｉｇｏｎｅｌｌａ、Ｖｉｇｎａ、Ｃｉｔｒｕｓ
、Ｌｉｎｕｍ、Ｇｅｒａｎｉｕｍ、Ｍａｎｉｈｏｔ、Ｄａｕｃｕｓ、Ａｒａｂｉｄｏｐｓ
ｉｓ、Ｂｒａｓｓｉｃａ、Ｒａｐｈａｎｕｓ、Ｓｉｎａｐｉｓ、Ａｔｒｏｐａ、Ｃａｐｓ
ｉｃｕｍ、Ｄａｔｕｒａ、Ｈｙｏｓｃｙａｍｕｓ、Ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｏｎ、Ｎｉｃｏｔ
ｉａｎａ、Ｓｏｌａｎｕｍ、Ｐｅｔｕｎｉａ、Ｄｉｇｉｔａｌｉｓ、Ｍａｊｏｒａｎａ、
Ｃｉｃｈｏｒｉｕｍ、Ｈｅｌｉａｎｔｈｕｓ、Ｌａｃｔｕｃａ、Ｂｒｏｍｕｓ、Ａｓｐａ
ｒａｇｕｓ、Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ、Ｈｅｒｅｒｏｃａｌｌｉｓ、Ｎｅｍｅｓｉａ、Ｐ
ｅｌａｒｇｏｎｉｕｍ、Ｐａｎｉｃｕｍ、Ｐｅｎｎｉｓｅｔｕｍ、Ｒａｎｕｎｃｕｌｕｓ
、Ｓｅｎｅｃｉｏ、Ｓａｌｐｉｇｌｏｓｓｉｓ、Ｃｕｃｕｍｉｓ、Ｂｒｏｗａａｌｉａ、
Ｇｌｙｃｉｎｅ、Ｌｏｌｉｕｍ、Ｚｅａ、Ｔｒｉｔｉｃｕｍ、Ｓｏｒｇｈｕｍ、およびＤ
ａｔｕｒａ。
【００８７】
再生のための手法は、植物の種によって変化するが、しかし一般に異種遺伝子のコピー
を含む形質転換されたプロトプラストの懸濁液が最初に提供される。カルス組織は形成さ
れ、そしてシュートがカルスから誘導され得、続いて発根させ得る。あるいは、胚形成が
プロトプラスト懸濁液から誘導され得る。これらの胚は、天然の胚として発芽し、植物を
形成する。培養培地は、一般に種々のアミノ酸、ならびにオーキシンおよびサイトカイニ
ンのようなホルモンを含有する。グルタミン酸およびプロリンを培地に添加することもま
た、特にコーンおよびアルファルファのような種にとって有用である。シュートおよび根
は通常、同時に発達する。効率的な再生は培地、遺伝子型、および培養歴に依存する。こ
れらの３つの変動要因が制御される場合は、再生は十分に再現性がありそして繰り返し可
能である。
【００８８】
いくつかの植物細胞培養系において、本発明の所望のタンパク質は排出され得、あるい
はこのタンパク質は植物全体から抽出され得る。本発明の所望のタンパク質が培地内に分
泌される場合、これは回収され得る。あるいは、胚および胚のない半分の種子または他の
植物組織は、機械的に破壊されて細胞間および組織間のあらゆる分泌タンパク質を放出し
得る。その混合物は緩衝液に懸濁されて、可溶タンパク質が回収され得る。次いで、従来
のタンパク質単離および精製方法は組換えタンパク質を精製するために使用される。時間
、温度、ｐＨ、酸素、および容量というパラメーターは、異種タンパク質の発現および回
収を最適化するために慣用的な方法により調整される。
【００８９】
（ｉｖ．細菌系）
細菌の発現技術は、当該分野で公知である。細菌のプロモーターは、細菌のＲＮＡポリ
メラーゼに結合し得、そしてコード配列（例えば、構造遺伝子）の下流方向（３’方向）
へのｍＲＮＡへの転写を開始し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、
コード配列の５’末端に近接して配置される、転写開始領域を有する。この転写開始領域
は、通常、ＲＮＡポリメラーゼ結合部位および転写開始部位を含む。細菌のプロモーター
はまた、オペレーターと呼ばれる第二のドメインを有し、これは、ＲＮＡ合成が開始する
、隣接するＲＮＡポリメラーゼ結合部位と重複し得る。オペレーターは、遺伝子リプレッ
サータンパク質がこのオペレーターに結合し、それによって、特定の遺伝子の転写を阻害
し得るような、負の調節された（誘導性の）転写を可能にする。構成的発現は、オペレー
ターのような負の調節エレメントの非存在下で起こり得る。さらに、正の調節は、遺伝子
アクチベータータンパク質結合配列により達成され得、この配列は、通常、存在する場合
には、ＲＮＡポリメラーゼ結合配列の（５’）側に近接している。遺伝子アクチベーター
タンパク質の例としては、カタボライト活性化タンパク質（ＣＡＰ）があり、これは、Ｅ
ｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ（Ｅ．ｃｏｌｉ）におけるｌａｃオペロンの転写の開始
を補助する（Ｒａｉｂａｕｄら（１９８４）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．１８：１７
３）。従って、調節される発現は、正または負のいずれかであり、それによって、転写を
増強するかまたは低下し得る。
【００９０】
代謝経路の酵素をコードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供する。例とし
ては、ガラクトース、ラクトース（ｌａｃ）（Ｃｈａｎｇら．（１９９７）Ｎａｔｕｒｅ
１９８：１０５６）およびマルトースのような糖代謝の酵素由来のプロモーター配列が
挙げられる。さらなる例としては、トリプトファン（ｔｒｐ）（Ｇｏｅｄｄｅｌら（１９
８０）Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．８：４０５７；Ｙｅｌｖｅｒｔｏｎら（１９８１）
Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．９：７３１；米国特許第４，７３８，９２１号；欧州特
許公開番号００３６ ７７６および０１２１ ７７５）のような生合成酵素由来のプロモ
ーター配列が挙げられる。β−ラクタマーゼ（ｂｌａ）プロモーター系（Ｗｅｉｓｓｍａ
ｎｎ（１９８１）「Ｔｈｅ ｃｌｏｎｉｎｇ ｏｆ ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ａｎｄ ｏ
ｔｈｅｒ ｍｉｓｔａｋｅｓ．」Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ３（Ｉ．Ｇｒｅｓｓｅｒ編））
、バクテリオファージλＰＬ（Ｓｈｉｍａｔａｋｅら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２９２
：１２８）およびＴ５（米国特許第４，６８９，４０６号）プロモーター系もまた、有用
なプロモーター配列を提供する。
【００９１】
さらに、天然に存在しない合成プロモーターもまた、細菌プロモーターとして機能する
。例えば、ある細菌プロモーターまたはバクテリオファージプロモーターの転写活性化配
列を、別の細菌プロモーターまたはバクテリオファージプロモーターのオペロン配列と結
合し得、合成ハイブリッドプロモーターを作製する（米国特許第４，５５１，４３３号）
。例えば、ｔａｃプロモーターは、ｔｒｐプロモーター配列、およびｌａｃリプレッサー
により調節されるｌａｃオペロン配列の両方から構成される、ハイブリッドｔｒｐ−ｌａ
ｃプロモーターである（Ａｍａｎｎら（１９８３）Ｇｅｎｅ ２５：１６７；ｄｅ Ｂｏ
ｅｒら（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８０：２１）。さらに、細
菌プロモーターには、細菌のＲＮＡポリメラーゼに結合しそして転写を開始させる能力を
有する、非細菌起源の天然に存在するプロモーターが含まれ得る。非細菌起源の天然に存
在するプロモーターはまた、適合性のあるＲＮＡポリメラーゼと連結され、原核生物にお
いていくつかの遺伝子の高レベルの発現をもたらし得る。バクテリオファージＴ７ ＲＮ
Ａポリメラーゼ／プロモーター系は、連結したプロモーター系の例である（Ｓｔｕｄｉｅ
ｒら（１９８６）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１８９：１１３；Ｔａｂｏｒら（１９８５）Ｐ
ｒｏｃ Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８２：１０７４）。さらに、ハイブリッドプロモ
ーターはまた、バクテリオファージプロモーターおよびＥ．ｃｏｌｉオペレーター領域か
ら構成され得る（欧州特許公開番号０２６７ ８５１）。
【００９２】
機能性プロモーター配列に加え、有効なリボソーム結合部位もまた、原核生物における
外来遺伝子の発現に有用である。Ｅ．ｃｏｌｉにおいて、リボソーム結合部位は、シャイ
ン−ダルガルノ（ＳＤ）配列と呼ばれ、そしてこれは、開始コドン（ＡＴＧ）および開始
コドンの３〜１１ヌクレオチド上流に位置する長さ３〜９ヌクレオチドの配列を含む（Ｓ
ｈｉｎｅら（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ ２５４：３４）。ＳＤ配列は、ＳＤ配列とＥ．ｃ
ｏｌｉの１６Ｓ ｒＲＮＡの３’末端との間の塩基対形成により、リボソームへのｍＲＮ
Ａの結合を促進すると考えられている（Ｓｔｅｉｔｚら（１９７９）「Ｇｅｎｅｔｉｃ
ｓｉｇｎａｌｓ ａｎｄ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｉｎ ｍｅｓｓ
ｅｎｇｅｒ ＲＮＡ．」Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｄｅｖ
ｅｌｏｐｍｅｎｔ：Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ（Ｒ．Ｆ．Ｇｏｌｄｂｅｒｇｅｒ編
））。弱いリボソーム結合部位を有する真核生物遺伝子および原核生物遺伝子の発現のた
め（Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｌｏｎｅｄ ｇ
ｅｎｅｓ ｉｎ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ．」Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎ
ｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）。
【００９３】
ＤＮＡ分子は、細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、そのＤＮＡ分子と直接的
に連結され得、この場合、Ｎ末端の最初のアミノ酸は、常に、メチオニンであり、これは
、ＡＴＧ開始コドンによりコードされる。所望される場合、Ｎ末端のメチオニンは、臭化
シアンとのインビトロインキュベーションによって、あるいは細菌性メチオニンＮ末端ペ
プチダーゼとのインビボインキュベーションまたはインビトロインキュベーションのいず
れかによって、タンパク質から切断され得る（欧州特許公開番号２１９ ２３７）。
【００９４】
融合タンパク質は、直接的発現に対する代替物を提供する。通常、内在性の細菌タンパ
ク質あるいは他の安定なタンパク質のＮ末端部分をコードするＤＮＡ配列を、異種コード
配列の５’末端に融合する。発現の際に、この構築物は、その２つのアミノ酸配列の融合
物を提供する。例えば、バクテリオファージλ細胞遺伝子は、外来遺伝子の５’末端に連
結され得、そして細菌において発現され得る。この生じた融合タンパク質は、好ましくは
、このバクテリオファージタンパク質をこの外来遺伝子から切断するためのプロセシング
酵素（第Ｘａ因子）用の部位を保持する（Ｎａｇａｉら（１９８４）Ｎａｔｕｒｅ ３０
９：８１０）。融合タンパク質はまた、ｌａｃＺ（Ｊｉａら（１９８７）Ｇｅｎｅ ６０
：１９７）、ｔｒｐＥ（Ａｌｌｅｎら（１９８７）Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．５：９３
；Ｍａｋｏｆｆら（１９８９）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３５：１１）、およ
びＣｈｅｙ（欧州特許公開番号３２４ ６４７）遺伝子由来の配列を用いて作製され得る
。この２つのアミノ酸配列の接合部でのＤＮＡ配列は、切断可能部位をコードしてもよい
し、コードしなくてもよい。別の例は、ユビキチン融合タンパク質である。このような融
合タンパク質は、外来タンパク質からユビキチンを切断するためのプロセシング酵素（例
えば、ユビキチン特異的プロセシングプロテアーゼ）部位を好ましくは保持する、ユビキ
チン領域と共に作製され得る。この方法を通して、ネイティブの外来タンパク質は単離さ
れ得る（Ｍｉｌｌｅｒら（１９８９）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ７：６９８）。
【００９５】
あるいは、外来タンパク質はまた、細菌において外来タンパク質の分泌を提供するシグ
ナルペプチド配列フラグメントから構成された融合タンパク質をコードする、キメラＤＮ
Ａ分子を作製することによって、細胞から分泌され得る（米国特許第４，３３６，３３６
号）。このシグナル配列フラグメントは、通常、細胞からのタンパク質の分泌を指向する
、疎水性アミノ酸から構成されるシグナルペプチドをコードする。このタンパク質は、増
殖培地（グラム陽性細菌）またはペリプラズム空間（細胞の内膜と外膜との間に位置する
）（グラム陰性細菌）のいずれかに分泌される。好ましくは、インビボまたはインビトロ
のいずれかで切断され得る、このシグナルペプチドフラグメントと外来遺伝子との間にコ
ードされる、プロセシング部位が存在する。
【００９６】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、Ｅ．ｃｏｌｉ外膜タンパク質遺伝子（ｏｍ
ｐＡ）（Ｍａｓｕｉら（１９８３）、Ｅｘｐｅｒｉｍｅｔａｌ Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏ
ｎ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ；Ｇｈｒａｙｅｂら、（１９８４）ＥＭＢＯ
Ｊ．３：２４３７）およびＥ．ｃｏｌｉアルカリホスファターゼシグナル配列（ｐｈｏ
Ａ）（Ｏｋａら（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８２：７２１２）
のような、分泌性細菌タンパク質の遺伝子に由来し得る。さらなる例として、種々のＢａ
ｃｉｌｌｕｓ株由来のα−アミラーゼ遺伝子のシグナル配列が、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ由
来の異種タンパク質を分泌するために使用され得る（Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ
．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：５５８２；欧州特許公開番号２４４ ０
４２）。
【００９７】
通常、細菌によって認識される転写終結配列は、翻訳終止コドンの３’側に位置する調
節領域であり、そして従って、プロモーターとともに、コード配列に隣接する。これらの
配列は、ｍＲＮＡの転写を指向し、このｍＲＮＡが、そのＤＮＡによってコードされるポ
リペプチドへと翻訳され得る。転写終結配列は、頻繁には、ステムループ構造を形成し得
る、約５０ヌクレオチドのＤＮＡ配列を含み、この構造が、転写の終結を補助する。例と
しては、強力なプロモーターを有する遺伝子（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉのｔｒｐ遺伝子およ
び他の生合成遺伝子）由来の転写終結配列が挙げられる。
【００９８】
通常、上記の構成要素（プロモーター、シグナル配列（もし所望ならば）、目的のコー
ド配列、および転写終結配列を含む）が、発現構築物へと組み立てられる。発現構築物は
、しばしば、宿主（例えば、細菌）において安定に維持し得る染色体外エレメント（例え
ばプラスミド）のような、レプリコンに維持される。このレプリコンは、複製系を有し、
従って、これが、このレプリコンを、発現またはクローニングおよび増幅のいずれかのた
めに、原核生物宿主において保持されることを可能にする。さらに、レプリコンは、高コ
ピー数プラスミドまたは低コピー数プラスミドのいずれかであり得る。高コピー数プラス
ミドは、一般に、約５〜約２００、そして通常、約１０〜約１５０の範囲のコピー数を有
する。高コピー数プラスミドを含む宿主は、好ましくは、少なくとも約１０個、そしてよ
り好ましくは、少なくとも約２０個のプラスミドを含む。宿主に対するベクターおよび外
来タンパク質の効果に依存して、高コピー数ベクターまたは低コピー数ベクターのいずれ
かが選択され得る。
【００９９】
あるいは、発現構築物は、組み込みベクターを用いて、細菌ゲノム内に組み込まれ得る
。組み込みベクターは、通常、ベクターが組み込むのを可能にする、細菌染色体と相同な
少なくとも１つの配列を含む。組み込みは、このベクターにおける相同なＤＮＡと細菌染
色体との間の組換えから生じるようである。例えば、種々のＢａｃｉｌｌｕｓ株由来のＤ
ＮＡで構築した組み込みベクターは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ染色体に組み込まれる（欧州特許
公開番号００１２７ ３２８）。組み込みベクターはまた、バクテリオファージまたはト
ランスポゾン配列から構成され得る。
【０１００】
通常、染色体外発現構築物および組み込み発現構築物は、選択マーカーを含み、形質転
換された細菌株の選択を可能にし得る。選択マーカーは、この細菌宿主において発現され
得、そしてこれらには、薬物（例えば、アンピシリン、クロラムフェニコール、エリスロ
マイシン、カナマイシン（ネオマイシン）およびテトラサイクリン）に対する耐性を細菌
に付与する遺伝子が含まれ得る（Ｄａｖｉｅｓら（１９７８）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃ
ｒｏｂｉｏｌ．３２：４６９）。選択マーカーはまた、ヒスチジン、トリプトファンおよ
びロイシンの生合成経路における生合成遺伝子のような、生合成遺伝子を含み得る。
【０１０１】
あるいは、上記の成分のいくつかは、形質転換ベクターに組み立てられ得る。形質転換
ベクターは、通常、上記のように、レプリコンにおいて維持されるかまたは組み込みベク
ターへと展開されるかのいずれかの、選択マーカー（ｍａｒｋｅｔ）から構成される。
【０１０２】
発現ベクターおよび形質転換ベクター（染色体外レプリコンまたは組み込みベクターの
いずれも）は、多くの細菌への形質転換のために開発されてきた。例えば、発現ベクター
は、とりわけ、以下の細菌のために開発されてきた：Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉ
ｓ（Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：
５５８２；欧州特許公開番号００３６ ２５９および欧州特許公開番号００６３ ９５３
；（ＰＣＴ公開番号）ＷＯ ８４／０４５４１）、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ（
Ｓｈｉｍａｔａｋｅら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２９２：１２８；Ａｍａｎｎら（１９
８５）Ｇｅｎｅ ４０：１８３；Ｓｔｕｄｉｅｒら（１９８６）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．
１８９：１１３；欧州特許公開番号００３６ ７７６、欧州特許公開番号０１３６ ８２
９および欧州特許公開番号０１３６ ９０７）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｃｒｅｍ
ｏｒｉｓ（Ｐｏｗｅｌｌら（１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ
．５４：６５５）；Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌｉｖｉｄａｎｓ（Ｐｏｗｅｌｌら（
１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５４：６５５）、Ｓｔｒｅ
ｐｔｏｍｙｃｅｓ ｌｉｖｉｄａｎｓ（米国特許４，７４５，０５６号）。
【０１０３】
外因性ＤＮＡを細菌宿主へ導入する方法は、当該分野において周知であり、そして通常
、ＣａＣｌ２または他の薬剤（例えば、２価の陽イオンおよびＤＭＳＯ）のいずれかで処
理された細菌の形質転換を含む。ＤＮＡはまた、エレクトロポレーションによって、細菌
細胞へ導入され得る。形質転換の手順は、通常、形質転換される細菌の種によって変化す
る。例えば、以下を参照のこと：［Ｍａｓｓｏｎら（１９８９）ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂ
ｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．６０：２７３；Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃ
ａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：５５８２；欧州特許公開番号００３６ ２５９および欧州
特許公開番号００６３ ９５３；ＷＯ８４／０４５４１、Ｂａｃｉｌｌｕｓ］、［Ｍｉｌ
ｌｅｒら（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８５：８５６；Ｗａｎｇ
ら（１９９０）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７２：９４９、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ
］、［Ｃｏｈｅｎら（１９７３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．６９：２１１
０；Ｄｏｗｅｒら（１９８８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１６：６１２７；
Ｋｕｓｈｎｅｒ（１９７８）「Ａｎ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｔｒａ
ｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ｗｉｔｈ Ｃｏ１
Ｅ１−ｄｅｒｉｖｅｄ ｐｌａｓｍｉｄｓ」Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ：
Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｙｍｐｏｓｉ
ｕｍ ｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（Ｈ．Ｗ．ＢｏｙｅｒおよびＳ．
Ｎｉｃｏｓｉａ編）；Ｍａｎｄｅｌら（１９７０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．５３：１５９
；Ｔａｋｅｔｏ（１９８８）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ ９４９：３１
８、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ］、［Ｃｈａｓｓｙら（１９８７）ＦＥＭＳ Ｍ
ｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．４４：１７３、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ］、［Ｆｉｅ
ｄｌｅｒら（１９８８）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ １７０：３８、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎ
ａｓ］、［Ａｕｇｕｓｔｉｎら（１９９０）ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．
６６：２０３、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ］、［Ｂａｒａｎｙら（１９８０）Ｊ．Ｂ
ａｃｔｅｒｉｏｌ．１４４：６９８；Ｈａｒｌａｎｄｅｒ（１９８７）「Ｔｒａｎｓｆｏ
ｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｂｙ ｅｌｅｃｔ
ｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ」Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（Ｊ．Ｆｅｒｒ
ｅｔｔｉおよびＲ．Ｃｕｒｔｉｓｓ ＩＩＩ編）；Ｐｅｒｒｙら（１９８１）Ｉｎｆｅｃ
ｔ．Ｉｍｍｕｎ．３２：１２９５；Ｐｏｗｅｌｌら（１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏ
ｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５４：６５５；Ｓｏｍｋｕｔｉら（１９８７）Ｐｒｏｃ．４ｔ
ｈ Ｅｖｒ．Ｃｏｎｇ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １：４１２、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏ
ｃｃｕｓ］。
【０１０４】
（ｖ．酵母発現）
酵母発現系もまた、当業者に公知である。酵母プロモーターは、酵母ＲＮＡポリメラー
ゼに結合し得、そしてコード配列（例えば、構造遺伝子）からｍＲＮＡへの下流の（３’
側の）転写を開始し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、コード配列
の５’末端の近位に位置する、転写開始領域を有する。この転写開始領域は、通常、ＲＮ
Ａポリメラーゼ結合部位（「ＴＡＴＡボックス」）および転写開始部位を含む。酵母プロ
モーターはまた、上流アクチベーター配列（ＵＡＳ）と呼ばれる第２のドメインを有し得
、これは、存在する場合、通常、構造遺伝子に対して遠位にある。このＵＡＳは、調節さ
れた（誘導性）発現を可能にする。構成的発現は、ＵＡＳの非存在下で生じる。調節され
た発現は、正または負のいずれかであり得、それによって、転写を増強または減少させ得
る。
【０１０５】
酵母は、活性な代謝経路を有する発酵性生物であり、従って、代謝経路における酵素を
コードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供する。例としては、以下が挙げら
れる：アルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）（欧州特許公開番号０２８４ ０４４）、
エノラーゼ、グルコキナーゼ、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ、グリセルアルデヒ
ド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰまたはＧＡＰＤＨ）、ヘキソキナーゼ、ホスホ
フルクトキナーゼ、３−ホスホグリセリン酸ムターゼ、およびピルビン酸キナーゼ（Ｐｙ
Ｋ）（欧州特許公開番号０３２９ ２０３）。酸性ホスファターゼをコードする酵母ＰＨ
Ｏ５遺伝子もまた、有用なプロモーター配列を提供する（Ｍｙａｎｏｈａｒａら（１９８
３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：１）。
【０１０６】
さらに、天然には存在しない合成プロモーターもまた、酵母のプロモーターとして機能
する。例えば、ある１つの酵母プロモーターのＵＡＳ配列を、別の酵母プロモーターの転
写活性化領域と連結し得、合成ハイブリッドプロモーターを生成し得る。このようなハイ
ブリッドプロモーターの例としては、ＧＡＰ転写活性化領域に連結されたＡＤＨ調節配列
（米国特許第４，８７６，１９７号および同第４，８８０，７３４号）が挙げられる。ハ
イブリッドプロモーターの他の例としては、ＧＡＰまたはＰｙＫのような解糖系酵素遺伝
子の転写活性化領域に結合された、ＡＤＨ２遺伝子、ＧＡＬ４遺伝子、ＧＡＬ１０遺伝子
またはＰＨＯ５遺伝子のいずれかの調節配列からなるプロモーターが挙げられる（欧州特
許公開番号０１６４ ５５６）。さらに、酵母プロモーターには、酵母ＲＮＡポリメラー
ゼと結合しそして転写を開始する能力を有する、非酵母起源の天然に存在するプロモータ
ーが含まれ得る。このようなプロモーターの例としては、とりわけ、以下が挙げられる：
（Ｃｏｈｅｎら、（１９８０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：
１０７８；Ｈｅｎｉｋｏｆｆら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２８３：８３５；Ｈｏｌｌｅ
ｎｂｅｒｇら（１９８１）Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐｉｃｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．９６：１１９；Ｈｏｌｌｅｎｂｅｒｇら（１９７９）「Ｔｈｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏ
ｎ ｏｆ Ｂａｃｔｅｒｉａｌ Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ Ｇｅｎ
ｅｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｙｅａｓｔ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ
」、Ｐｌａｓｍｉｄｓ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ、Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ａｎｄ
Ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ Ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ（Ｋ．Ｎ．ＴｉｍｍｉｓおよびＡ．Ｐｕｈ
ｌｅｒ編）；Ｍｅｒｃｅｒａｕ−Ｐｕｉｇａｌｏｎら（１９８０）Ｇｅｎｅ １１：１６
３；Ｐａｎｔｈｉｅｒら（１９８０）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．２：１０９；）。
【０１０７】
ＤＮＡ分子は、酵母において、細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、ＤＮＡ分
子と直接連結され得、その場合、この組換えタンパク質のＮ末端にある最初のアミノ酸は
、常に、メチオニンであり、これが、ＡＴＧ開始コドンによってコードされている。所望
の場合、Ｎ末端のメチオニンは、臭化シアンとのインビトロインキュベーションによって
、このタンパク質から切断され得る。
【０１０８】
融合タンパク質は、酵母発現系について、ならびに哺乳動物、植物、バキュロウイルス
および細菌の発現系においての、代替物を提供する。通常、内因性酵母タンパク質または
他の安定なタンパク質のＮ末端部分をコードするＤＮＡ配列を、異種コード配列の５’末
端に融合する。発現に際して、この構築物は、この２つのアミノ酸配列の融合物を提供す
る。例えば、酵母またはヒトのスーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）遺伝子を、外来
遺伝子の５’末端に連結し、そして酵母において発現させ得る。この２つのアミノ酸配列
の連結部にあるＤＮＡ配列は、切断可能部位をコードしてもよいし、コードしなくてもよ
い。例えば、欧州特許公開番号０１９６ ０５６を参照のこと。別の例はユビキチン融合
タンパク質である。このような融合タンパク質は、外来タンパク質からユビキチンを切断
するプロセシング酵素（例えば、ユビキチン特異的プロセシングプロテアーゼ）部位を好
ましくは保持する、ユビキチン領域と共に作製される。従って、この方法を通じて、ネイ
ティブな外来タンパク質は、単離され得る（例えば、ＷＯ８８／０２４０６６）。
【０１０９】
あるいは、外来タンパク質はまた、酵母における外来タンパク質の分泌を提供するリー
ダー配列フラグメントから構成された融合タンパク質をコードする、キメラＤＮＡ分子を
作製することによって、細胞から増殖培地へ分泌され得る。好ましくは、インビボまたは
インビトロのいずれかで切断され得る、リーダーフラグメントと外来遺伝子との間にコー
ドされるプロセシング部位が存在する。リーダー配列フラグメントは、通常、細胞からの
タンパク質の分泌を指向する、疎水性アミノ酸から構成されるシグナルペプチドをコード
する。
【０１１０】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、分泌性酵母タンパク質の遺伝子（例えば、
酵母インベルターゼ遺伝子（欧州特許公開番号００１２ ８７３；日本国公開公報６２、
０９６、０８６）およびＡ因子遺伝子（米国特許４，５８８，６８４））由来であり得る
。あるいは、インターフェロンリーダーのような、酵母における分泌もまた提供する、非
酵母起源のリーダーが存在する（欧州特許公開番号００６０ ０５７）。
【０１１１】
好ましいクラスの分泌リーダーは、酵母α因子遺伝子のフラグメントを使用するリーダ
ーであり、これは「プレ」シグナル配列、および「プロ」領域の両方を含む。使用され得
るこの型のα因子フラグメントは、完全長のプレ−プロα因子リーダー（約８３アミノ酸
残基）および短縮されたα因子リーダー（通常約２５〜約５０アミノ酸残基）を含む（米
国特許４，５４６，０８３号および同第４，８７０，００８号；欧州特許公開番号０３２
４ ２７４）。分泌を提供するα因子リーダーフラグメントを使用するさらなるリーダー
としては、第１の酵母のプレ配列および第２の酵母α因子由来のプロ領域を用いて作製さ
れる、ハイブリッドα因子リーダーが挙げられる（例えば、（ＰＣＴ公開番号）ＷＯ８９
／０２４６３を参照のこと）。
【０１１２】
通常、酵母に認識される転写終結配列は、翻訳終止コドンの３’側に位置する調節領域
であり、そして従って、プロモーターと共にコード配列に隣接する。これらの配列は、ｍ
ＲＮＡの転写を指向し、このｍＲＮＡが、そのＤＮＡにコードされるポリペプチドへと翻
訳され得る。転写終結配列および他の酵母に認識される終結配列の例は、例えば、解糖酵
素をコードする配列である。
【０１１３】
通常、上記の成分（プロモーター、リーダー（所望の場合）、目的のコード配列および
転写終結配列を含む）を、発現構築物に組み立てる。発現構築物は、しばしば、宿主（例
えば、酵母または細菌）において安定に維持され得る染色体外エレメント（例えば、プラ
スミド）のような、レプリコンにおいて維持される。このレプリコンは、２つの複製系を
有し得、従って、これが、例えば、発現のために酵母中で維持され、そしてクローニング
および増幅のために原核生物宿主中で維持されることを可能にする。このような酵母−細
菌シャトルベクターの例としては、以下が挙げられる：ＹＥｐ２４（Ｂｏｔｓｔｅｉｎら
（１９７９）Ｇｅｎｅ ８：１７〜２４）、ｐＣｌ／１（Ｂｒａｋｅら（１９８４）Ｐｒ
ｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：４６４２〜４６４６）、およびＹＲ
ｐ１７（Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら（１９８２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５８：１５７）
。さらに、レプリコンは、高コピー数プラスミドまたは低コピー数プラスミドのいずれか
であり得る。高コピー数プラスミドは、一般に、約５〜約２００、そして通常、約１０〜
約１５０の範囲のコピー数を有する。高コピー数プラスミドを含む宿主は、好ましくは、
少なくとも約１０個、そしてより好ましくは、少なくとも約２０個を有する。宿主に対す
るベクターおよび外来タンパク質の効果に依存して、高コピー数ベクターまたは低コピー
数ベクターのいずれかが選択され得る。例えば、Ｂｒａｋｅら、前出を参照のこと。
【０１１４】
あるいは、発現構築物は、組み込みベクターを用いて、酵母のゲノムへ組み込まれ得る
。組み込みベクターは、通常、ベクターが組み込むのを可能にする、酵母の染色体と相同
な少なくとも１つの配列を含み、そして好ましくは、この発現構築物に隣接する２つの相
同配列を含む。組み込みは、ベクターにおける相同なＤＮＡと酵母の染色体との間の組換
えから生じるようである（Ｏｒｒ−Ｗｅａｖｅｒら（１９８３）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ
Ｅｎｚｙｍｏｌ．１０１：２２８〜２４５）。組み込みベクターは、そのベクター中に含
有するための適切な相同配列を選択することによって、酵母における特定の遺伝子座に指
向され得る。Ｏｒｒ−Ｗｅａｖｅｒら、前出を参照のこと。１つ以上の発現構築物が組み
込まれ得、これが、おそらく、産生される組換えタンパク質のレベルに影響を与える（Ｒ
ｉｎｅら（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：６７５０
）。ベクターに含まれる染色体配列は、ベクターにおける単一セグメントとして存在し得
るか（これは、ベクター全体の組み込みを生じる）、または染色体における隣接セグメン
トに相同でかつベクターにおける発現構築物に隣接する２つのセグメントとして存在し得
る（これは、発現構築物のみの安定した組み込みを生じ得る）。
【０１１５】
通常、染色体外発現構築物および組み込み発現構築物は、その形質転換された酵母株の
選択を可能にする、選択マーカーを含み得る。選択マーカーとしては、酵母宿主において
発現され得る生合成遺伝子（例えば、ＡＤＥ２、ＨＩＳ４、ＬＥＵ２、ＴＲＰ１およびＡ
ＬＧ７）ならびにＧ４１８耐性遺伝子が挙げられ得、それぞれ、酵母細胞にツニカマイシ
ンおよびＧ４１８に対する耐性を付与する。さらに、適切な選択マーカーはまた、金属の
ような毒性化合物の存在下において増殖する能力を、酵母に提供し得る。例えば、ＣＵＰ
１の存在は、酵母が、銅イオンの存在下において増殖することを可能にする（Ｂｕｔｔら
（１９８７）Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．５１：３５１）。
【０１１６】
あるいは、上記成分のうちのいくつかは、形質転換ベクターへと組み立てられ得る。形
質転換ベクターは、通常、上記のように、レプリコンにおいて維持されるかまたは組み込
みベクターに展開される、選択マーカーから構成される。
【０１１７】
発現ベクターおよび形質転換ベクターは、染色体外レプリコンまたは組み込みベクター
のいずれかであり、多くの酵母への形質転換のために開発されてきた。例えば、発現ベク
ターは、とりわけ、以下の酵母のために開発されてきた：Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａ
ｎｓ（Ｋｕｒｔｚら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．６：１４２）、Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｍａｌｔｏｓａ（Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏ
ｌ．２５：１４１）、Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ（Ｇｌｅｅｓｏｎら（
１９８６）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３２：３４５９；Ｒｏｇｇｅｎｋａｍｐ
ら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２０２：３０２）、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙ
ｃｅｓ ｆｒａｇｉｌｉｓ（Ｄａｓら（１９８４）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５８：１
１６５）、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ（Ｄｅ Ｌｏｕｖｅｎｃｏｕｒｔ
ら（１９８３）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５４：７３７；Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇら
（１９９０）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：１３５）、Ｐｉｃｈｉａ ｇｕｉｌｌ
ｅｒｉｍｏｎｄｉｉ（Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．
２５：１４１）、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ（Ｃｒｅｇｇら（１９８５）Ｍｏｌ．
Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：３３７６；米国特許第４，８３７，１４８号および同第４，９
２９，５５５号）、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ（Ｈｉｎｎｅｎ
ら（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：１９２９；Ｉｔ
ｏら（１９８３）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５３：１６３）、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ（ＢｅａｃｈおよびＮｕｒｓｅ（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ
３００：７０６）、およびＹａｒｒｏｗｉａ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ（Ｄａｖｉｄｏｗ
ら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：３８０４７１；Ｇａｉｌｌａｒｄｉｎら（
１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：４９）。
【０１１８】
外因性ＤＮＡを酵母宿主へ導入する方法は、当該分野において周知であり、そして通常
、スフェロプラストの形質転換またはアルカリ陽イオンで処理したインタクトな酵母細胞
の形質転換が含まれる。形質転換の手順は、通常、形質転換される酵母の種によって変化
する。例えば、以下を参照のこと：（Ｋｕｒｔｚら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉ
ｏｌ．６：１４２；Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２
５：１４１；Ｃａｎｄｉｄａ）；（Ｇｌｅｅｓｏｎら（１９８６）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒ
ｏｂｉｏｌ．１３２：３４５９；Ｒｏｇｇｅｎｋａｍｐら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．
Ｇｅｎｅｔ．２０２：３０２；Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）；（Ｄａｓら（１９８４）Ｊ．Ｂａ
ｃｔｅｒｉｏｌ．１５８：１１６５；Ｄｅ Ｌｏｕｖｅｎｃｏｕｒｔら（１９８３）Ｊ．
Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５４：１１６５；Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇら（１９９０）Ｂｉ
ｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：１３５；Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｃｒｅｇｇ
ら（１９８５）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：３３７６；Ｋｕｎｚｅら（１９８５）
Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２５：１４１；米国特許第４，８３７，１４８号
および同第４、９２９、５５５号；Ｐｉｃｈｉａ）；（Ｈｉｎｎｅｎら（１９７８）Ｐｒ
ｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：１９２９；Ｉｔｏら（１９８３）Ｊ
．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５３：１６３ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｂｅａｃｈ
およびＮｕｒｓｅ（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ３００：７０６；Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｄａｖｉｄｏｗら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：３
９；Ｇａｉｌｌａｒｄｉｎら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：４９；Ｙａｒｒ
ｏｗｉａ）。
【０１１９】
（抗体）
本明細書中で使用される場合、用語「抗体」とは、少なくとも１つの抗体結合部位から
構成されるポリペプチドまたはポリペプチド群をいう。「抗体結合部位」は、内部表面形
状および抗原のエピトープの特徴に相補的な電荷分布を有する、３次元結合空間であり、
これが、抗体と抗原の結合を可能にする。「抗体」は、例えば、脊椎動物抗体、ハイブリ
ッド抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、改変された抗体、単価抗体、Ｆａｂタンパク質、お
よび単一ドメイン抗体を含む。
【０１２０】
本発明のタンパク質に対する抗体は、親和性クロマトグラフィー、免疫アッセイ、およ
びｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓのタンパク質の識別／同定に有用である。
【０１２１】
本発明のタンパク質に対する抗体（ポリクローナルおよびモノクローナルの両方）は、
従来の方法によって調製され得る。一般に、このタンパク質は、最初に、適切な動物、好
ましくはマウス、ラット、ウサギ、またはヤギを免疫するために使用される。ウサギおよ
びヤギは、得られ得る血清の容量、および標識された抗ウサギ抗体および抗ヤギ抗体の入
手可能性に起因して、ポリクローナル血清の調製のために好ましい。免疫は、一般的に、
タンパク質を生理的食塩水（好ましくはフロイント完全アジュバントのようなアジュバン
ト）に混合または乳化し、そしてこの混合物または乳化物を非経口的に（一般的に皮下、
または筋肉内に）注射することによって、行われる。５０〜２００μｇ／注射の用量が、
代表的に十分である。免疫は、一般的に、２〜６週後に生理的食塩水（好ましくはフロイ
ント不完全アジュバントを用いて）中のタンパク質の１回以上の注射でブーストされる。
あるいは、当該分野において公知の方法を使用するインビトロ免疫によって抗体を産生し
得、これは、本発明の目的にとっては、インビボ免疫に等しいと考えられる。ポリクロー
ナル抗血清は、免疫された動物からガラスまたはプラスチック製の容器へ採血し、その血
液を２５℃で１時間インキュベートし、その後４℃で２〜１８時間インキュベートするこ
とによって得られる。この血清は、遠心分離（例えば１、０００ｇ、１０分間）によって
回収される。ウサギから、採血１回につき約２０〜５０ｍｌが得られ得る。
【０１２２】
モノクローナル抗体は、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ（Ｎａｔｕｒｅ（１９７
５）２５６：４９５〜９６）の標準的方法、またはその改変版を使用して調製される。代
表的には、マウスまたはラットが、上記のように免疫される。しかし、血清を抽出するた
めに動物から採血するよりも、脾臓（および必要に応じていくつかの大きなリンパ節）が
取り出され、そして単一の細胞へ解離される。所望の場合、脾臓細胞は、（非特異的付着
細胞の除去後）タンパク質抗原でコーティングされたプレートまたはウェルへ細胞懸濁液
を適用することによって、スクリーニングされ得る。この抗原に特異的な膜結合免疫グロ
ブリンを発現するＢ細胞は、このプレートに結合し、そして残りの懸濁液によって、洗い
落とされない。得られるＢ細胞、または全ての解離された脾臓細胞は、次に骨髄腫細胞と
融合するように誘導されてハイブリドーマを形成し、そして選択培地（例えばヒポキサン
チン、アミノプテリン、チミジン培地、「ＨＡＴ」）において培養される。得られるハイ
ブリドーマは、限界希釈によってプレーティングされ、そして免疫する抗原に対して特異
的に結合する（かつ関連しない抗原に結合しない）抗体の産生についてアッセイされる。
選択されたＭＡｂ分泌ハイブリドーマは、次にインビトロ（例えば、組織培養瓶または中
空線維リアクター中で）、またはインビボ（マウスにおける腹水として）のいずれかで培
養される。
【０１２３】
所望の場合、抗体は（ポリクローナルまたはモノクローナルいずれであっても）、従来
技術を使用して標識され得る。適切な標識としては、以下が挙げられる：発蛍光団、発色
団、放射性原子（特に３２Ｐおよび１２５Ｉ）、電子密度試薬、酵素、および特異的結合
パートナーを有するリガンド。酵素は、代表的に、その活性によって検出される。例えば
、西洋ワサビペルオキシダーゼは、通常、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン
（ＴＭＢ）を青い色素へ変換するその能力（分光光度計を用いて定量可能）によって、検
出される。「特異的結合パートナー」とは、高い特異性でリガンド分子に結合し得るタン
パク質をいい、例えば、抗原およびそれに特異的なモノクローナル抗体の場合である。他
の特異的結合パートナーは、ビオチンおよびアビジンまたはストレプトアビジン、ＩｇＧ
およびプロテインＡ、ならびに当該分野において公知の多くのレセプター−リガンド結合
体を含む。同じ標識がいくつかの異なる様式で働き得るので、上記が、種々の標識を別個
のクラスへ分類することを意味しないことは、理解されるべきである。例えば、１２５Ｉ
は、放射性標識として、または電子密度試薬として働き得る。ＨＲＰは、酵素として、ま
たはＭＡｂについての抗原として働き得る。さらに、所望の効果のために、種々の標識を
組合せ得る。例えば、ＭＡｂおよびアビジンはまた、本発明の実施において、標識を必要
とする：従って、ＭＡｂをビオチンで標識して、そして１２５Ｉで標識したアビジン、ま
たはＨＲＰで標識した抗ビオチンＭＡｂで、その存在を検出し得る。他の並べ替えおよび
可能性は、当業者に容易に明らかであり、そして本発明の範囲内で等価であると考えられ
る。
【０１２４】
（薬学的組成物）
薬学的組成物は、本発明のポリペプチド、抗体または核酸のいずれかを含み得る。この
薬学的組成物は、治療上有効な量の、本願発明のポリペプチド、抗体、またはポリヌクレ
オチドのいずれかを含む。
【０１２５】
本明細書において使用される場合、用語「治療上有効な量」とは、所望の疾患または状
態を処置、改善、または予防するための治療薬剤の量、または、検出可能な治療効果また
は予防効果を示すための治療薬剤の量をいう。この効果は、例えば、キメラマーカーまた
は抗原レベルによって検出され得る。治療効果はまた、体温低下のような、身体の症状に
おける減少を含む。被験体に対する正確な有効量は、被験体の大きさおよび健康、状態の
性質および程度、ならびに投与のために選択される治療剤または治療剤の組合せに依存す
る。従って、あらかじめ正確な有効量を特定することは有用ではない。しかし、所定状況
のための有効量は、慣用的な実験によって決定され得、そして臨床医の判断内である。
【０１２６】
本発明の目的のために、有効な用量は、ＤＮＡ構築物が投与される個体において、約０
．０１ｍｇ／ｋｇ〜５０ｍｇ／ｋｇまたは０．０５ｍｇ／ｋｇ〜約１０ｍｇ／ｋｇのＤＮ
Ａ構築物である。
【０１２７】
薬学的組成物はまた、薬学的に受容可能なキャリアを含み得る。用語「薬学的に受容可
能なキャリア」とは、抗体またはポリペプチド、遺伝子、および他の治療薬剤のような、
治療薬剤の投与のためのキャリアをいう。この用語は、この組成物を受け取る個体に有害
な抗体の産生をそれ自体は誘導しない、任意の薬学的キャリアをいい、そして、過度の毒
性を伴わずに投与され得る。適切なキャリアは、タンパク質、多糖、ポリ乳酸、ポリグリ
コール酸、重合アミノ酸、アミノ酸コポリマー、および不活性ウイルス粒子のような、大
きく、ゆっくり代謝される高分子であり得る。このようなキャリアは、当業者に周知であ
る。
【０１２８】
薬学的に受容可能な塩が、その中で使用され得る。例えば、塩酸塩、臭化水素塩、リン
酸塩、硫酸塩などのような鉱酸塩；および酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香
酸塩などのような有機酸の塩である。薬学的に受容可能な賦形剤の徹底的な議論は、Ｒｅ
ｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐ
ｕｂ．Ｃｏ．、Ｎ．Ｊ．１９９１）にて入手可能である。
【０１２９】
治療組成物における薬学的に受容可能なキャリアは、水、生理的食塩水、グリセロール
およびエタノールのような液体を含み得る。さらに、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝物質
などのような補助物質が、このようなビヒクルに存在し得る。代表的には、治療組成物は
、液体溶液または懸濁液のいずれかとして、注射可能物質として調製される；注射前に液
体ビヒクルに溶解または懸濁するのに適切な固体形態もまた、調製され得る。リポソーム
は、薬学的に受容可能なキャリアの定義中に含まれる。
【０１３０】
（送達方法）
一旦処方されると、本発明の組成物は、その被験体へ直接投与され得る。処置される被
験体は、動物であり得；特に、ヒト被験体が処置され得る。
【０１３１】
その組成物の直接送達は、一般的に、皮下、腹腔、静脈内、または筋肉内のいずれかで
の注入によって達成されるか、あるいは、組織の間隙空間へ送達される。この組成物はま
た、病巣へ投与され得る。他の投与様式には、経口投与、および肺投与、坐剤、および経
皮（ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ）適用または経皮（ｔｒａｎｓｃｕｔａｎｅｏｕｓ）適用（
例えば、ＷＯ９８／２０７３４を参照のこと）、針、および遺伝子銃またはハイポスプレ
ー（ｈｙｐｏｓｐｒａｙ）が含まれる。投薬処置は、単回用量スケジュール、または多数
回用量スケジュールであり得る。
【０１３２】
（ワクチン）
本発明に従うワクチンは、予防的（すなわち、感染を予防するため）または治療的（す
なわち、感染後の疾患を処置するため）のいずれかであり得る。
【０１３３】
このようなワクチンは、免疫抗原、免疫原、ポリペプチド、タンパク質または核酸を、
通常「薬学的に受容可能なキャリア」と組合せて含み、このキャリアは、その組成物を受
ける個体に有害である抗体の産生をそれ自体は誘発しない任意のキャリアを含む。適切な
キャリアは、代表的に、大きく、ゆっくり代謝される高分子（例えば、タンパク質、多糖
、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、重合アミノ酸、アミノ酸コポリマー、脂質凝集物（例え
ば、油小滴またはリポソーム）、および不活性ウイルス粒子である。このようなキャリア
は、当業者に周知である。さらに、これらのキャリアは免疫刺激薬剤（「アジュバント」
）として機能し得る。さらに、この抗原または免疫原は、細菌毒素（例えば、ジフテリア
、破傷風、コレラ、Ｈ．ｐｙｌｏｒｉなどの病原体由来の毒素）と結合体化され得る。
【０１３４】
この組成物の効力を増強するために好ましいアジュバントは、（１）アルミニウム塩（
「ミョウバン」）（例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウ
ムなど）、（２）水中油エマルジョン処方物（他の特定の免疫刺激薬剤（例えば、ムラミ
ルペプチド（以下を参照のこと）または細菌細胞壁成分）を含むか含まない）、例えば、
以下：（ａ）５％スクアレン、０．５％ Ｔｗｅｅｎ ８０、および０．５％ Ｓｐａｎ
８５（必要に応じて、種々の量のＭＴＰ−ＰＥ（以下を参照のこと）を含有するが、必
要ではない）を含み、モデル１１０Ｙマイクロフルイダイザー（Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉ
ｃｓ、Ｎｅｗｔｏｎ、ＭＡ）のようなマイクロフルイダイザーを用いてμ未満の粒子へと
処方された、ＭＦ５９ＴＭ（ＷＯ９０／１４８３７；Ｖａｃｃｉｎｅ ｄｅｓｉｇｎ：ｔ
ｈｅ ｓｕｂｕｎｉｔ ａｎｄ ａｄｊｕｖａｎｔ ａｐｐｒｏａｃｈ、Ｐｏｗｅｌｌお
よびＮｅｗｍａｎ編、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ １９９５の第１０章）；（ｂ）μ未満
のエマルジョンへと微小流体化されたか、またはボルテックスして、より大きな粒子径エ
マルジョンを生成したかのいずれかである、１０％スクアレン、０．４％ Ｔｗｅｅｎ８
０、５％プルロニックブロックポリマーＬ１２１、およびｔｈｒ−ＭＤＰ（以下を参照の
こと）を含有する、ＳＡＦ、ならびに（ｃ）２％スクアレン、０．２％ Ｔｗｅｅｎ８０
、およびモノホスホリピドＡ（ＭＰＬ）、トレハロースジミコレート（ＴＤＭ）、および
細胞壁骨格（ＣＷＳ）、好ましくはＭＰＬおよびＣＷＳ（ＤｅｔｏｘＴＭ）からなる群由
来の１つ以上の細菌細胞壁成分を含む、ＲｉｂｉＴＭアジュバント系（ＲＡＳ）、（Ｒｉ
ｂｉ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍ、Ｈａｍｉｌｔｏｎ、ＭＴ）；（３）サポニンアジュバント
（例えば、ＳｔｉｍｕｌｏｎＴＭ）（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｗｏ
ｒｃｅｓｔｅｒ、ＭＡ）を使用し得るか、またはそれから粒子（例えば、ＩＳＣＯＭ（免
疫刺激性複合体）を生成し得る；（４）完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）および不
完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）；（５）サイトカイン（例えば、インターロイキ
ン（例えば、ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−１
２など）、インターフェロン（例えば、γインターフェロン）、マクロファージコロニー
刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）など；ならびに（６）その組成物の効
力を強化するための免疫刺激剤として作用する他の物質を含むが、それらに限定されない
。ミョウバンおよびＭＦ５９ＴＭが好ましい。
【０１３５】
上記で言及したように、ムラミルペプチドは、Ｎ−アセチル−ムラミル−Ｌ−スレオニ
ル−Ｄ−イソグルタミン（ｔｈｒ−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチル−ノルムラミル−Ｌ−アラニ
ル−Ｄ−イソグルタミン（ノル−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−
イソグルタミニル−Ｌ−アラニン−２−（１’−２’−ジパルミトイル−ｓｎ−グリセロ
−３−ヒドロキシホスホリルオキシ）−エチルアミン（ＭＴＰ−ＰＥ）などを含むが、そ
れらに限定されない。
【０１３６】
免疫原性組成物（例えば、免疫抗原／免疫原／ポリペプチド／タンパク質／核酸、薬学
的に受容可能なキャリア、およびアジュバント）は、代表的に、希釈剤（例えば、水、生
理食塩水、グリセロール、エタノールなど）を含有する。さらに、補助物質（例えば、湿
潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝物質など）が、このようなビヒクルにおいて存在し得る。
【０１３７】
代表的に、免疫原性組成物は、液体溶液または懸濁物のいずれかとして、注射剤として
調製され；注射前に液体ビヒクルにおける溶液または懸濁物として適切な固体形態もまた
調製され得る。この調製物はまた、薬学的に受容可能なキャリアの下で、上記に記載のよ
うに、アジュバント効果の強化のために乳化され得るかまたはリポソーム中にカプセル化
され得る。
【０１３８】
ワクチンとして使用される免疫原性組成物は、免疫原性有効量の抗原性ポリペプチドま
たは免疫原性ポリペプチド、および任意の他の上記の成分を必要に応じて含む。「免疫原
性有効量」とは、個体へのその量の投与が、単回用量であれ、一連の（用量の）一部とし
てであれ、処置または予防に有効であることを意味する。この量は、処置される個体の健
康および身体状態、処置される個体の分類学上の群（例えば、非ヒト霊長類、霊長類など
）、個体の免疫系が抗体を合成する能力、所望される防御の程度、そのワクチンの処方、
医療的状況の処置する医師の評価、および他の関連する因子に依存して変動する。その量
は、比較的広い範囲にあり、この量が慣用的な試行を通して決定され得ることが予想され
る。
【０１３９】
免疫原性組成物は、従来のように、非経口的（例えば、皮下、筋肉内または経皮（ｔｒ
ａｎｓｕｄｅｒｍａｌｌｙ）／経皮（ｔｒａｎｓｕｃｕｔａｎｅｏｕｓｌｙ）のいずれか
での注射による）に投与される（例えば、ＷＯ９８／２０７３４）。他の投与様式に適切
なさらなる処方物は、経口処方物および肺処方物、坐剤、ならびに経皮適用を含む。投薬
処置は、単回用量スケジュールまたは多数回用量スケジュールであり得る。ワクチンは、
他の免疫調節剤と組み合わせて投与され得る。
【０１４０】
タンパク質ベースのワクチンの代替として、ＤＮＡワクチンが使用され得る（例えば、
ＲｏｂｉｎｓｏｎおよびＴｏｒｒｅｓ（１９９７）Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎ
ｏｌ ９：２７１−２８３；Ｄｏｎｎｅｌｌｙら（１９９７）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｉｍｍ
ｕｎｏｌ １５：６１７−６４８；本明細書以下）。
【０１４１】
（遺伝子送達ビヒクル）
本発明の治療剤のコード配列を含む、哺乳動物における発現のためにその哺乳動物へ送
達される構築物の送達のための遺伝子治療ビヒクルは、局所または全身的のいずれかで投
与され得る。これらの構築物は、ウイルスベクターアプローチまたは非ウイルスベクター
アプローチを、インビボまたはエキソビボの様式で利用し得る。このようなコード配列の
発現は、内因性哺乳動物プロモーターまたは異種性プロモーターを用いて誘導され得る。
このコード配列のインビボでの発現は、構成性または調節性のいずれかであり得る。
【０１４２】
本発明は、意図された核酸配列を発現し得る遺伝子送達ビヒクルを含む。この遺伝子送
達ビヒクルは、好ましくは、ウイルスベクター、そしてより好ましくはレトロウイルスベ
クター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、ヘルペスウ
イルスベクターまたはαウイルスベクターである。このウイルスベクターはまた、アスト
ロウイルスベクター、コロナウイルスベクター、オルトミクソウイルスベクター、パポバ
ウイルスベクター、パラミクソウイルスベクター、パルボウイルスベクター、ピコルナウ
イルスベクター、ポックスウイルスベクター、またはトガウイルスベクターであり得る。
一般的には、Ｊｏｌｌｙ（１９９４）Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １：５
１−６４；Ｋｉｍｕｒａ（１９９４）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ５：８４
５−８５２；Ｃｏｎｎｅｌｌｙ（１９９５）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ６
：１８５−１９３；およびＫａｐｌｉｔｔ（１９９４）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ
６：１４８−１５３を参照のこと。
【０１４３】
レトロウイルスベクターは、当該分野で周知であり、そして、本発明者らは、任意のレ
トロウイルス遺伝子治療ベクターが本発明において使用可能であることを意図しており、
このレトロウイルスベクターには、Ｂ型、Ｃ型およびＤ型のレトロウイルス、異種栄養性
レトロウイルス（例えば、ＮＺＢ−Ｘ１、ＮＺＢ−Ｘ２およびＮＺＢ９−１（Ｏ’Ｎｅｉ
ｌｌ（１９８５）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．５３：１６０を参照のこと）多栄養性レトロウイルス
（例えば、ＭＣＦおよびＭＣＦ−ＭＬＶ（Ｋｅｌｌｙ（１９８３）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．４５
：２９１を参照のこと）、スプマウイルスおよびレンチウイルスが含まれる。ＲＮＡ Ｔ
ｕｍｏｒ Ｖｉｒｕｓｅｓ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｏｂｏｒ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｙ、１９８５を参照のこと。
【０１４４】
レトロウイルス遺伝子治療ベクターの部分は、異なるレトロウイルスに由来し得る。例
えば、レトロウイルスＬＴＲは、マウス肉腫ウイルスに由来し得、ｔＲＮＡ結合部位はラ
ウス肉腫ウイルスに由来し得、パッケージングシグナルはマウス白血病ウイルスに由来し
得、そして第二の鎖合成の起源はトリ白血症ウイルスに由来し得る。
【０１４５】
これらの組換えレトロウイルスベクターを使用して、適切なパッケージング細胞株へそ
れらを導入することによって形質導入コンピテントレトロウイルスベクター粒子を生成し
得る（米国特許第５，５９１，６２４号を参照のこと）。レトロウイルスベクターは、レ
トロウイルス粒子へのキメラインテグラーゼ酵素の組込みによる、宿主細胞ＤＮＡへの部
位特異的組込みのために構築され得る（ＷＯ９６／３７６２６号を参照のこと）。この組
換えウイルスベクターは複製欠損組換えウイルスであることが好ましい。
【０１４６】
上記に記載のレトロウイルスベクターを伴う使用について適切なパッケージング細胞株
は、当該分野で周知であり、容易に調製され（ＷＯ９５／３０７６３号およびＷＯ９２／
０５２６６号を参照のこと）、そしてこれを使用して、組換えベクター粒子の生産のため
のプロデューサー細胞株（これは、ベクター細胞株または「ＶＣＬ」とも称される）を作
製し得る。好ましくは、このパッケージング細胞株は、ヒトの親細胞（例えば、ＨＴ１０
８０細胞）またはミンク親細胞株から作製され、これは、ヒト血清における不活化を排除
する。
【０１４７】
レトロウイルス遺伝子治療ベクターの構築のために好ましいレトロウイルスは、トリ白
血病ウイルス、ウシ白血病ウイルス、マウス白血病ウイルス、ミンク細胞フォーカス形成
ウイルス、マウス肉腫ウイルス、細網内皮症ウイルスおよびラウス肉腫ウイルスを含む。
特に好ましいマウス白血病ウイルスは、４０７０Ａおよび１５０４Ａ（Ｈａｒｔｌｅｙお
よびＲｏｗｅ（１９７６）Ｊ Ｖｉｒｏｌ １９：１９−２５）、エーベルソン（ＡＴＣ
Ｃ番号ＶＲ−９９９）、フレンド（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−２４５）、グラフィー、グロス（
ＡＴＣＣ番号ＶＲ−５９０）、カーステン（Ｋｉｒｓｔｅｎ）、ハーベイ（Ｈａｒｖｅｙ
）肉腫ウイルス、ならびにラッシャー（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−９９８）およびモロニーマウ
ス白血病ウイルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１９０）を含む。このようなレトロウイルスは、
寄託機関または収集機関（例えば、アメリカンタイプカルチャーコレクション（「ＡＴＣ
Ｃ」）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）から入手し得るか、または一般に利用
可能な技術を用いて公知の供給源から単離され得る。
【０１４８】
本発明において使用可能な例示的な公知のレトロウイルス遺伝子治療ベクターとしては
、特許出願ＧＢ２２００６５１、ＥＰ０４１５７３１、ＥＰ０３４５２４２、ＥＰ０３３
４３０１、ＷＯ８９／０２４６８；ＷＯ８９／０５３４９、ＷＯ８９／０９２７１、ＷＯ
９０／０２８０６、ＷＯ９０／０７９３６、ＷＯ９４／０３６２２、ＷＯ９３／２５６９
８、ＷＯ９３／２５２３４、ＷＯ９３／１１２３０、ＷＯ９３／１０２１８、ＷＯ９１／
０２８０５、ＷＯ９１／０２８２５、ＷＯ９５／０７９９４、米国特許第５，２１９，７
４０号、同第４，４０５，７１２号、同第４，８６１，７１９号、同第４，９８０，２８
９号、同第４，７７７，１２７号、同第５，５９１，６２４号に記載されるものが挙げら
れる。Ｖｉｌｅ（１９９３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：３８６０−３８６４；Ｖｉｌ
ｅ（１９９３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：９６２−９６７；Ｒａｍ（１９９３）Ｃａ
ｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３（１９９３）８３−８８；Ｔａｋａｍｉｙａ（１９９２）Ｊ Ｎ
ｅｕｒｏｓｃｉ Ｒｅｓ ３３：４９３−５０３；Ｂａｂａ（１９９３）Ｊ Ｎｅｕｒｏ
ｓｕｒｇ ７９：７２９−７３５；Ｍａｎｎ（１９８３）Ｃｅｌｌ ３３：１５３；Ｃａ
ｎｅ（１９８４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８１；６３４９；およびＭｉ
ｌｌｅｒ（１９９０）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １もまた参照のこと。
【０１４９】
ヒトアデノウイルス遺伝子治療ベクターもまた当該分野で公知であり、そして本発明に
おいて使用可能である。例えば、Ｂｅｒｋｎｅｒ（１９８８）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅ
ｓ ６：６１６およびＲｏｓｅｎｆｅｌｄ（１９９１）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５２：４３１
；ならびにＷＯ９３／０７２８３、ＷＯ９３／０６２２３、およびＷＯ９３／０７２８２
を参照のこと。本発明において使用可能な例示的な公知のアデノウイルス遺伝子治療ベク
ターとしては、上記に参照される文書およびＷＯ９４／１２６４９、ＷＯ９３／０３７６
９、ＷＯ９３／１９１９１、ＷＯ９４／２８９３８、ＷＯ９５／１１９８４、ＷＯ９５／
００６５５、ＷＯ９５／２７０７１、ＷＯ９５／２９９９３、ＷＯ９５／３４６７１、Ｗ
Ｏ９６／０５３２０、ＷＯ９４／０８０２６、ＷＯ９４／１１５０６、ＷＯ９３／０６２
２３、ＷＯ９４／２４２９９、ＷＯ９５／１４１０２、ＷＯ９５／２４２９７、ＷＯ９５
／０２６９７、ＷＯ９４／２８１５２、ＷＯ９４／２４２９９、ＷＯ９５／０９２４１，
ＷＯ９５／２５８０７、ＷＯ９５／０５８３５、ＷＯ９４／１８９２２およびＷＯ９５／
０９６５４において記載されるものが挙げられる。あるいは、Ｃｕｒｉｅｌ（１９９２）
Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．３：１４７−１５４に記載されるような殺傷したアデノウ
イルスに連結したＤＮＡの投与が使用され得る。本発明の遺伝子送達ビヒクルはまた、ア
デノウイルス随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクターを含む。本発明における使用のためのこの
ようなベクターの主要なそして好ましい例は、Ｓｒｉｖａｓｔａｖａ ＷＯ９３／０９２
３９に開示されるＡＡＶ−２ベースのベクターである。最も好ましいＡＡＶベクターは、
２つのＡＡＶ逆方向末端反復を含む。ここで、ネイティブＤ配列は、ヌクレオチドの置換
によって改変され、その結果、少なくとも５つのネイティブなヌクレオチドおよび１８ま
でのネイティブヌクレオチド、好ましくは少なくとも１０のネイティブヌクレオチドから
１８までのネイティブヌクレオチド、最も好ましくは１０のネイティブヌクレオチドが保
持され、そしてＤ配列の残りのヌクレオチドが欠失またはネイティブでないヌクレオチド
で置換されている。ＡＡＶ逆方向末端反復のネイティブなＤ配列は、各ＡＡＶ逆方向末端
反復において（すなわち、各末端に１つの配列が存在する）２０の連続するヌクレオチド
の配列であって、これは、ＨＰ形成に関与しない。ネイティブでない置換ヌクレオチドは
、同じ位置でのネイティブなＤ配列に見出されるヌクレオチド以外の任意のヌクレオチド
であり得る。他の使用可能な例示的なＡＡＶベクターは、ｐＷＰ−１９、ｐＷＮ−１であ
り、これらは両方ともはＮａｈｒｅｉｎｉ（１９９３）Ｇｅｎｅ １２４：２５７−２６
２に開示される。このようなＡＡＶベクターの別の例は、ｐｓｕｂ２０１（Ｓａｍｕｌｓ
ｋｉ（１９８７）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６１：３０９６を参照のこと）である。別の例示的な
ＡＡＶベクターは、Ｄｏｕｂｌｅ−Ｄ ＩＴＲベクターである。Ｄｏｕｂｌｅ−Ｄ ＩＴ
Ｒベクターの構築は、米国特許第５，４７８，７４５号に開示される。なお他のベクター
は、Ｃａｒｔｅｒの米国特許第４，７９７，３６８号およびＭｕｚｙｃｚｋａの米国特許
第５，１３９，９４１号、Ｃｈａｒｔｅｊｅｅの米国特許第５，４７４，９３５号ならび
にＫｏｔｉｎのＷＯ９４／２８８１５７に開示されるものである。本発明において使用可
能なＡＡＶベクターのなおさらなる例は、ＳＳＶ９ＡＦＡＢＴＫｎｅｏであり、これは、
ＡＦＰエンハンサーおよびアルブミンプロモーターを含み、そして肝臓において優勢に発
現を指向する。その構造および構築は、Ｓｕ（１９９６）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅ
ｒａｐｙ ７：４６３−４７０に開示されている。さらなるＡＡＶ遺伝子治療ベクターは
、米国特許第５，３５４，６７８号、同第５，１７３，４１４号、同第５，１３９，９４
１号、および同第５，２５２，４７９号に記載されている。
【０１５０】
本発明の遺伝子治療ベクターはまた、ヘルペスウイルスベクターを含む。主要なそして
好ましい例は、チミジンキナーゼポリペプチドをコードする配列を含む単純ヘルペスウイ
ルスベクター（例えば、米国特許第５，２８８，６４１号、およびＥＰ０１７６１７０（
Ｒｏｉｚｍａｎ）に開示されるもの）である。さらなる例示的な単純ヘルペスウイルスベ
クターとしては、ＷＯ９５／０４１３９（Ｗｉｓｔａｒ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）に開示さ
れているＨＦＥＭ／ＩＣＰ６−ＬａｃＺ、Ｇｅｌｌｅｒ（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２
４１：１６６７−１６６９ならびにＷＯ９０／０９４４１およびＷＯ９２／０７９４５に
記載されているｐＨＳＶｌａｃ、Ｆｉｎｋ（１９９２）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ
ａｐｙ ３：１１−１９に記載されるＨＳＶ Ｕｓ３：：ｐｇＣ−ｌａｃＺ、ならびにＥ
Ｐ０４５３２４２（Ｂｒｅａｋｅｆｉｅｌｄ）に記載されているＨＳＶ ７１３４、２Ｒ
Ｈ １０５およびＧＡＬ４、ならびにＡＴＣＣに受託番号ＶＲ−９７７およびＶＲ−２６
０として寄託されたものが挙げられる。
【０１５１】
本発明において使用され得るαウイルス遺伝子治療ベクターもまた意図される。好まし
いαウイルスベクターは、シンドビスウイルスベクターである。トガウイルス、セムリキ
森林ウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−６７；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４７）、Ｍｉｄｄｌｅｂｅ
ｒｇウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−３７０）、ロスリバーウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−３７
３；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４６）、ベネズエラウマ脳炎ウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ９２３
；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２５０；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４９；ＡＴＣＣ ＶＲ−５３２）お
よび米国特許第５，０９１，３０９号、同第５，２１７，８７９号、およびＷＯ９２／１
０５７８に記載されているもの。より詳細には、米国特許出願第０８／４０５，６２７号
（１９９５年３月１５日出願）、ＷＯ９４／２１７９２号、ＷＯ９２／１０５７８号、Ｗ
Ｏ９５／０７９９４号、米国特許第５，０９１，３０９号、ならびに米国特許第５，２１
７，８７９号に記載されているαウイルスベクターが使用可能である。このようなαウイ
ルスは、ＡＴＣＣ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）のような寄託機関または収
集機関から入手し得るか、あるいは一般的に利用可能な技術を用いて公知の供給源から単
離され得る。好ましくは、細胞傷害性を減少させたαウイルスベクターを使用する（米国
特許出願番号０８／６７９６４０号を参照のこと）。
【０１５２】
ＤＮＡベクター系（例えば、真核生物層状発現系）もまた、本発明の核酸の発現に有用
である。真核生物層状発現系の詳細な説明についてはＷＯ９５／０７９９４を参照のこと
。好ましくは、本発明の真核生物層状発現系はαウイルスベクターに由来し、そして最も
好ましくはシンドビスウイルスベクターに由来する。
【０１５３】
本発明における使用に適切な他のウイルスベクターとしては、以下に由来するものが挙
げられる：ポリオウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−５８およびＥｖａｎｓ、Ｎａｔｕ
ｒｅ ３３９（１９８９）３８５およびＳａｂｉｎ（１９７３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｓｔａｎ
ｄａｒｄｉｚａｔｉｏｎ １：１１５に記載されているもの）；リノウイルス（例えば、
ＡＴＣＣ ＶＲ−１１１０およびＡｒｎｏｌｄ（１９９０）Ｊ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅ
ｍ Ｌ４０１に記載されているもの）；ポックスウイルス（例えば、カナリアポックスル
ウイルスまたはワクシニアウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−１１１およびＡＴＣＣ
ＶＲ−２０１０ならびにＦｉｓｈｅｒ−Ｈｏｃｈ（１９８９）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃ
ａｄ Ｓｃｉ ８６：３１７；Ｆｌｅｘｎｅｒ（１９８９）Ａｎｎ ＮＹ Ａｃａｄ Ｓ
ｃｉ ５６９：８６、Ｆｌｅｘｎｅｒ（１９９０）Ｖａｃｃｉｎｅ ８：１７；米国特許
第４，６０３，１１２号および同第４，７６９，３３０号ならびにＷＯ８９／０１９７３
号に記載されているもの）；ＳＶ４０ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３０５および
Ｍｕｌｌｉｇａｎ（１９７９）Ｎａｔｕｒｅ ２７７：１０８およびＭａｄｚａｋ（１９
９２）Ｊ Ｇｅｎ Ｖｉｒｏｌ ７３：１５３３に記載されているもの）；インフルエン
ザウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７９７および米国特許第５，１６６，０５７号お
よびＥｎａｍｉ（１９９０）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８７：３８０２−
３８０５；ＥｎａｍｉおよびＰａｌｅｓｅ（１９９１）Ｊ Ｖｉｒｏｌ ６５：２７１１
−２７１３およびＬｕｙｔｊｅｓ（１９８９）Ｃｅｌｌ ５９：１１０（ＭｃＭｉｃｈａ
ｅｌ（１９８３）ＮＥＪ Ｍｅｄ ３０９：１３ならびにＹａｐ（１９７８）Ｎａｔｕｒ
ｅ ２７３：２３８およびＮａｔｕｒｅ（１９７９）２７７：１０８もまた参照のこと）
に記載されているような逆遺伝子技術を使用して作製した組換えインフルエンザウイルス
）；ＥＰ−０３８６８８２およびＢｕｃｈｓｃｈａｃｈｅｒ（１９９２）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ
．６６：２７３１に記載されているようなヒト免疫不全ウイルス；麻疹ウイルス（例えば
、ＡＴＣＣ ＶＲ−６７およびＶＲ−１２４７ならびにＥＰ−０４４０２１９に記載され
ているもの）；アウラ（Ａｕｒａ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３６８）；ベバ
ル（Ｂｅｂａｒｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６００およびＡＴＣＣ ＶＲ−
１２４０）；カバス（Ｃａｂａｓｓｏｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９２２）
；チクングニヤウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６４およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４
１）；フォートモーガン（Ｆｏｒｔ Ｍｏｒｇａｎ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ
−９２４）；ゲタウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３６９およびＡＴＣＣ ＶＲ−１
２４３）；キジラガハ（Ｋｙｚｙｌａｇａｃｈ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９
２７）；マヤロウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６６）；ムカン（Ｍｕｃａｍｂｏ）
ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−５８０およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４４）；ヌヅム
（Ｎｄｕｍｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７１）；ピクスナ（Ｐｉｘｕｎａ
）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７２およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４５）；トナ
テ（Ｔｏｎａｔｅ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９２５）；トリニティ（Ｔｒｉ
ｎｉｔｙ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−４６９）；ユナ（Ｕｎａ）ウイルス（例
えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７４）；ワタロア（Ｗｈａｔａｒｏａ）ウイルス（例えば、Ａ
ＴＣＣ ＶＲ−９２６）；Ｙ−６２−３３ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７５）
；オニョンウイルス、東部脳炎ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６５およびＡＴＣＣ
ＶＲ−１２４２）；西部脳炎ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７０、ＡＴＣＣ Ｖ
Ｒ−１２５１、ＡＴＣＣ ＶＲ−６２２およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２５２）；ならびにコ
ロナウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７４０）およびＨａｍｒｅ（１９６６）Ｐｒｏ
ｃ Ｓｏｃ Ｅｘｐ Ｂｉｏｌ Ｍｅｄ １２１：１９０に記載されているもの。
【０１５４】
本発明の組成物の細胞への送達は、上に言及したウイルスベクターに限定されない。他
の送達方法および媒体が使用され得る（例えば、核酸発現ベクター、殺傷したアデノウイ
ルスに連結したポリカチオン性縮合ＤＮＡかまたは連結してないポリカチオン性縮合ＤＮ
Ａ単独（例えば、米国特許出願番号０８／３６６，７８７（１９９４年１２月３０日出願
）およびＣｕｒｉｅｌ（１９９２）Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ ３：１４７−１５４を
参照のこと）、リガンド連結ＤＮＡ（例えば、Ｗｕ（１９８９）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ
２６４：１６９８５−１６９８７を参照のこと）、真核生物細胞送達ビヒクル細胞（例
えば、米国特許出願番号０８／２４０，０３０（１９９４年５月９日出願）および米国特
許出願番号０８／４０４，７９６を参照のこと）、光重合化ヒドロゲル物質の沈着、手動
の遺伝子移入粒子銃（米国特許第５，１４９，６５５号に記載されているような）、米国
特許第５，２０６，１５２号およびＷＯ９２／１１０３３に記載されているような電離放
射線、核電荷中和または細胞膜との融合）。さらなるアプローチは、Ｐｈｉｌｉｐ（１９
９４）Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ １４：２４１１−２４１８およびＷｏｆｆｅｎｄｉ
ｎ（１９９４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ９１：１５８１−１５８５に記
載される。
【０１５５】
粒子媒介遺伝子移入が使用され得る（例えば、米国特許出願番号６０／０２３，８６７
号を参照のこと）。手短には、配列を、高レベル発現のための従来の制御配列を含む従来
のベクターに挿入し得、次いで細胞標的化リガンド（例えば、アシアロオロソムコイド（
ＷｕおよびＷｕ（１９８７）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９−４４３２に記
載されているような）、Ｈｕｃｋｅｄ（１９９０）Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ
４０：２５３−２６３に記載されているようなインスリン、Ｐｌａｎｋ（１９９２）Ｂ
ｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ ３：５３３−５３９に記載されているようなガラク
トース、ラクトースまたはトランスフェリン）に連結された合成遺伝子移入分子（例えば
、ポリリジン、プロタミンおよびアルブミンのような重合ＤＮＡ結合カチオン）とともに
インキュベートされ得る。
【０１５６】
裸のＤＮＡもまた使用され得る。例示的な裸のＤＮＡ導入方法は、ＷＯ９０／１１０９
２および米国特許第５，５８０，８５９号に記載されている。取り込み効率は、生分解性
のラテックスビーズを用いて改良され得る。ＤＮＡコートラテックスビーズは、ビーズに
よるエンドサイトーシス開始の後に効率よく細胞へと輸送される。この方法は、ビーズを
処理して疎水性を高め、それによってエンドソームの破壊および細胞質へのＤＮＡの放出
を容易にすることによってさらに改良され得る。
【０１５７】
遺伝子送達ビヒクルとして作用し得るリポソームは、米国特許第５，４２２，１２０号
、ＷＯ９５／１３７９６、ＷＯ９４／２３６９７、ＷＯ９１／１４４４５、およびＥＰ−
５２４，９６８に記載される。米国特許出願６０／０２３，８６７に記載されるように、
非ウイルス性送達において、ポリペプチドをコードする核酸配列は、高レベル発現のため
の従来の制御配列を含む従来のベクターへと挿入され得、次いで細胞標的化リガンド（例
えば、アシアロオロソムコイド、インスリン、ガラクトース、ラクトースまたはトランス
フェリン）に連結された、重合性ＤＮＡ結合カチオン（例えば、ポリリジン、プロタミン
、およびアルブミン）のような合成遺伝子移入分子とともにインキュベートされ得る。他
の送達系は、種々の組織特異的または普遍的作用性のプロモーターの制御下に遺伝子を含
むＤＮＡをカプセル化するためのリポソームの使用を含む。さらに、使用に適切な非ウイ
ルス送達は、機械的送達系（例えば、Ｗｏｆｆｅｎｄｉｎら（１９９４）Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１（２４）：１１５８１−１１５８５に記載される
アプローチを含む。さらに、コード配列およびそのようなものの発現産物は、光重合化ヒ
ドロゲル物質の沈着を介して送達され得る。コード配列の送達について使用され得る、遺
伝子送達のための他の従来の方法としては、例えば、手動の遺伝子移入粒子銃（米国特許
第５，１４９，６５５号に記載されているような）；移入された遺伝子を活性化するため
の電離放射線の使用（米国特許第５，２０６，１５２号およびＷＯ９２／１１０３３に記
載されるような）が挙げられる。
【０１５８】
例示的なリポソームおよびポリカチオン性遺伝子送達ビヒクルは、米国特許第５，４２
２，１２０号および同第４，７６２，９１５号；ＷＯ９５／１３７９６；ＷＯ９４／２３
６９７；およびＷＯ９１／１４４４５；ＥＰ−０５２４９６８；およびＳｔｒｙｅｒ、Ｂ
ｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２３６−２４０頁（１９７５）、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ、Ｓ
ａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ；Ｓｚｏｋａ（１９８０）Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ
Ａｃｔａ ６００：１；Ｂａｙｅｒ（１９７９） Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａ
ｃｔａ ５５０：４６４；Ｒｉｖｎａｙ（１９８７）Ｍｅｔｈ Ｅｎｚｙｍｏｌ １４９
：１１９；Ｗａｎｇ（１９８７）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８４：７８５
１；Ｐｌａｎｔ（１９８９）Ａｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ １７６：４２０に記載されてい
るものである。
【０１５９】
ポリヌクレオチド組成物は、治療有効量の遺伝子治療ビヒクル（この用語は上記に定義
されるとおりである）を含み得る。本発明の目的のために、有効用量は、投与される個体
において、約０．０１ｍｇ／ｋｇ〜５０ｍｇ／ｋｇまたは０．０５ｍｇ／ｋｇ〜約１０ｍ
ｇ／ｋｇのＤＮＡ構築物である。
【０１６０】
（送達方法）
一旦処方されると、本発明のポリヌクレオチド組成物は、（１）被験体に直接）；（２
）エキソビボで被験体由来の細胞に送達されて；または（３）組換えタンパク質の発現の
ためにインビトロで、投与され得る。処置される被験体は、哺乳動物または鳥類であり得
る。ヒト被験体もまた処置され得る。
【０１６１】
この組成物の直接送達は、皮下、腹腔内、静脈内、または筋肉内の注射によって、ある
いは組織の間隙空間への送達によって一般的に達成される。この組成物はまた、病巣へ投
与され得る。他の投与様式としては、経口投与および肺投与、坐剤、および経皮（ｔｒａ
ｎｓｄｅｒｍａｌ）もしくは経皮（ｔｒａｎｓｃｕｔａｎｅｏｕｓ）適用（例えばＷＯ９
８／２０７３４を参照のこと）、針、ならびに遺伝子銃またはハイポスプレーが挙げられ
る。投薬治療は、単回用量スケジュールまたは多数回用量スケジュールであり得る。
【０１６２】
エキソビボ送達および被験体への形質転換細胞の再移植のための方法は、当該分野で公
知であり、そして例えばＷＯ９３／１４７７８に記載されている。エキソビボ適用に有用
である細胞の例としては、例えば、幹細胞、特に、造血細胞、リンパ細胞、マクロファー
ジ、樹状細胞または腫瘍細胞が挙げられる。
【０１６３】
一般的に、エキソビボ適用およびインビトロ適用の両方のための核酸の送達は、以下の
手順：例えば、デキストラン媒介トランスフェクション、リン酸カルシウム沈降、ポリブ
レン媒介トランスフェクション、原形質体融合、エレクトロポレーション、ポリヌクレオ
チドのリポソーム内へのカプセル化、およびＤＮＡの核への直接の微量注入（これらはす
べて当該分野で周知である）で達成され得る。
【０１６４】
（ポリヌクレオチドおよびポリペプチドの薬学的組成物）
上記に記載の薬学的に受容可能なキャリアおよび塩に加えて、以下のさらなる薬剤がポ
リヌクレオチド組成物および／またはポリペプチド組成物とともに使用され得る。
【０１６５】
（Ａ．ポリペプチド）
１つの例は、限定することなく以下を包含するポリペプチドである：アシアロオロソム
コイド（ＡＳＯＲ）；トランスフェリン；アシアロ糖タンパク質；抗体；抗体フラグメン
ト；フェリチン；インターロイキン；インターフェロン；顆粒球マクロファージコロニー
刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、マクロファージコ
ロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、幹細胞因子およびエリスロポエチン。ウイルス抗原（例
えば、エンベロープタンパク質）もまた、使用され得る。また、他の侵襲性生物由来のタ
ンパク質（例えば、ＲＩＩとして知られる熱帯熱マラリア原虫（ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ
ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）のサーカムスポロゾイト（ｃｉｒｃｕｍｓｐｏｒｏｚｏｉｔｅ）
タンパク質由来の１７アミノ酸ペプチド）。
【０１６６】
（Ｂ．ホルモン、ビタミンなど）
包含され得る他の群は、例えば、ホルモン、ステロイド、アンドロゲン、エストロゲン
、甲状腺ホルモン、またはビタミン、葉酸である。
【０１６７】
（Ｃ．ポリアルキレン、ポリサッカリドなど）
また、ポリアルキレングリコールが、所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドとともに
含まれ得る。好ましい実施態様において、ポリアルキレングリコールは、ポリエチレング
リコールである。さらに、モノサッカリド、ジサッカリド、またはポリサッカリドが含有
され得る。この局面の好ましい実施態様において、このポリサッカリドは、デキストラン
またはＤＥＡＥ−デキストランである。また、キトサンおよびポリ（乳酸−コ−グリコリ
ド）
（Ｄ．脂質およびリポソーム）
所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドはまた、被験体またはそれに由来する細胞への
送達の前に、脂質中にカプセル化され得るか、またはリポソーム中にパッケージングされ
得る。
【０１６８】
脂質カプセル化は、一般的に核酸に安定に結合し得るかまたは核酸を捕捉および維持し
得る、リポソームを用いて達成される。脂質調製物に対する縮合ポリヌクレオチドの比は
、変動し得るが、一般的に約１：１（ｍｇＤＮＡ：マイクロモル脂質）であるか、または
より多くの脂質である。核酸の送達のためのキャリアとしてリポソーム使用の概説につい
ては、ＨｕｇおよびＳｌｅｉｇｈｔ（１９９１）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃ
ｔａ．１０９７：１−１７；Ｓｔｒａｕｂｉｎｇｅｒ（１９８３）Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍ
ｏｌ．１０１：５１２−５２７を参照のこと。
【０１６９】
本発明における使用のためのリポソーム調製物は、カチオン性（正に荷電した）調製物
、アニオン性（負に荷電した）調製物および中性調製物を包含する。カチオン性リポソー
ムは、機能的な形態で、プラスミドＤＮＡ（Ｆｅｌｇｎｅｒ（１９８７）Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４：７４１３−７４１６）；ｍＲＮＡ（Ｍａｌｏｎ
ｅ（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：６０７７−６０
８１；および精製した転写因子（Ｄｅｂｓ（１９９０）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５
：１０１８９−１０１９２）の細胞内送達を媒介することが示されている。
【０１７０】
カチオン性リポソームは容易に入手可能である。例えば、Ｎ［１−２、３−ジオレイル
オキシ）プロピル］−Ｎ、Ｎ、Ｎ−トリエチルアンモニウム（ＤＯＴＭＡ）リポソームは
、ＧＩＢＣＯ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹからの商標リポフェクチン（Ｌ
ｉｐｏｆｅｃｔｉｎ）の下で入手可能である（Ｆｅｌｇｎｅｒ、前出もまた参照のこと）
。他の市販されているリポソームとしては、トランスフェクテース（ｔｒａｎｓｆｅｃｔ
ａｃｅ）（ＤＤＡＢ／ＤＯＰＥ）およびＤＯＴＡＰ／ＤＯＰＥ（Ｂｏｅｒｈｉｎｇｅｒ）
が挙げられる。他のカチオン性リポソームは、当該分野で周知の技法を使用して、容易に
利用可能な物質から調製され得る。例えば、ＤＯＴＡＰ（１、２−ビス（オレオイルオキ
シ）−３−（トリメチルアンモニオ）プロパン）リポソームの合成の記載について、Ｓｚ
ｏｋａ（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：４１９４−
４１９８；ＷＯ９０／１１０９２を参照のこと。
【０１７１】
同様に、アニオン性リポソームおよび中性リポソームは、例えば、Ａｖａｎｔｉ Ｐｏ
ｌａｒ Ｌｉｐｉｄｓ（Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）から容易に入手可能であるか、ま
たは容易に入手可能な物質を使用してたやすく調製され得る。このような物質としては、
とりわけ、ホスファチジルコリン、コレステロール、ホスファチジルエタノールアミン、
ジオレオイルホスファチジルコリン（ＤＯＰＣ）、ジオレオイルホスファチジルグリセロ
ール（ＤＯＰＧ）、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）が挙げら
れる。これらの物質はまた、適切な比率のＤＯＴＭＡ出発物質およびＤＯＴＡＰ出発物質
と混合され得る。これらの物質を使用してリポソームを作製する方法は、当該分野で周知
である。
【０１７２】
このリポソームとしては、多重膜リポソーム（ＭＬＶ）、小さな単膜リポソーム（ＳＵ
Ｖ）、または大きな単膜リポソーム（ＬＵＶ）が挙げられ得る。種々のリポソーム−核酸
複合体は当該分野で公知の方法を使用して調製され得る。例えば、Ｓｔｒａｕｂｉｎｇｅ
ｒ（１９８３）Ｍｅｔｈ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０１：５１２−５２７；Ｓｚｏｋａ（１９
７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：４１９４−４１９８；Ｐ
ａｐａｈａｄｊｏｐｏｕｌｏｓ（１９７５）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ
３９４：４８３；Ｗｉｌｓｏｎ（１９７９）Ｃｅｌｌ １７：７７）；Ｄｅａｍｅｒお
よびＢａｎｇｈａｍ（１９７６）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ ４４３：
６２９；Ｏｓｔｒｏ（１９７７）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕ
ｎ．７６：８３６；Ｆｒａｌｅｙ（１９７９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．
ＵＳＡ ７６：３３４８）；ＥｎｏｃｈおよびＳｔｒｉｔｔｍａｔｔｅｒ（１９７９）Ｐ
ｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７６：１４５；Ｆｒａｌｅｙ（１９８０
）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８０）２５５：１０４３１；ＳｚｏｋａおよびＰａｐ
ａｈａｄｊｏｐｏｕｌｏｓ（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
７５：１４５；ならびにＳｃｈａｅｆｅｒ−Ｒｉｄｄｅｒ（１９８２）Ｓｃｉｅｎｃｅ
２１５：１６６を参照のこと。
【０１７３】
（Ｅ．リポタンパク質）
さらに、リポタンパク質が、送達されるポリヌクレオチド／ポリペプチドと共に含まれ
得る。利用されるリポタンパク質の例としては、カイロミクロン、ＨＤＬ、ＩＤＬ、ＬＤ
Ｌ、およびＶＬＤＬが挙げられる。これらのタンパク質の変異体、フラグメント、または
融合物もまた、使用され得る。また、天然に存在するリポタンパク質の改変体（例えば、
アセチル化されたＬＤＬ）が使用され得る。これらのリポタンパク質は、リポタンパク質
レセプターを発現する細胞へのポリヌクレオチドの送達を標的化し得る。好ましくは、リ
ポタンパク質が、送達されるポリヌクレオチドと共に含まれる場合、他の標的化リガンド
はその組成物中には含まれない。
【０１７４】
天然に存在するリポタンパク質は、脂質部分およびタンパク質部分を含む。このタンパ
ク質部分は、アポタンパク質として知られる。現在では、アポタンパク質Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ
、およびＥが単離および同定されている。少なくともこれらの２つはいくつかのタンパク
質を含み、ローマ数字、ＡＩ、ＡＩＩ、ＡＩＶ；ＣＩ、ＣＩＩ、ＣＩＩＩによって命名さ
れている。
【０１７５】
１つのリポタンパク質は、１つより多くのアポタンパク質を含み得る。例えば、天然に
存在するカイロミクロンはＡ、Ｂ、Ｃ、およびＥから構成され、時間が経てばこれらのリ
ポタンパク質はＡを欠失し、そしてＣおよびＥアポタンパク質を獲得する。ＶＬＤＬは、
Ａ、Ｂ、Ｃ、およびＥアポタンパク質を含み、ＬＤＬはアポタンパク質Ｂを含み；そして
ＨＤＬはアポタンパク質Ａ、Ｃ、およびＥを含む。
【０１７６】
これらのアポタンパク質のアミノ酸は公知であり、そして例えば、Ｂｒｅｓｌｏｗ（１
９８５）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ ５４：６９９；Ｌａｗ（１９８６）Ａｄｖ
．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．１５１：１６２；Ｃｈｅｎ（１９８６）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃ
ｈｅｍ ２６１：１２９１８；Ｋａｎｅ（１９８０）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓ
ｃｉ ＵＳＡ ７７：２４６５；およびＵｔｅｒｍａｎｎ（１９８４）Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ
ｔ ６５：２３２に記載されている。
【０１７７】
リポタンパク質は、トリグリセリド、コレステロール（遊離およびエステル）、および
リン脂質を含む、種々の脂質を含む。この脂質の組成は、天然に存在するリポタンパク質
において変化する。例えば、カイロミクロンは主としてトリグリセリドを含む。天然に存
在するリポタンパク質の脂質含有物のより詳細な記載は、例えば、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍ
ｏｌ．１２８（１９８６）に見いだされ得る。この脂質の組成は、レセプター結合活性に
ついてアポタンパク質の立体構造を補助するように選択される。脂質組成はまた、ポリヌ
クレオチド結合分子との疎水性相互作用および会合を容易にするように選択され得る。
【０１７８】
天然に存在するリポタンパク質は、例えば、超遠心分離によって血清から単離され得る
。そのような方法は、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．（前出）；Ｐｉｔａｓ（１９８０）Ｊ
．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５５：５４５４−５４６０およびＭａｈｅｙ（１９７９）Ｊ Ｃｌ
ｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ ６４：７４３−７５０に記載される。リポタンパク質はまた、イン
ビトロ方法によってかまたは所望の宿主細胞中のアポタンパク質遺伝子の発現による組換
え方法によって産生され得る。例えば、Ａｔｋｉｎｓｏｎ（１９８６）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ
Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｃｈｅｍ １５：４０３およびＲａｄｄｉｎｇ（１９５８）Ｂｉｏｃ
ｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ ３０：４４３を参照のこと。リポタンパク質はまた
、Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｓｔｏｕｇｈｔｏｎ
、ＭＡ、ＵＳＡのような商業的な供給者から購入され得る。リポタンパク質のさらなる記
載は、ＷＯ９８／０６４３７にて見い出され得る。
【０１７９】
（Ｆ．ポリカチオン性薬剤）
ポリカチオン性薬剤は、送達される所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドを含む組成
物中に、リポタンパク質を伴ってかまたはリポタンパク質を伴わずに含まれ得る。
【０１８０】
ポリカチオン性薬剤は、代表的には、生理的に適切なｐＨにおいて正味の正電荷を示し
、そして所望の位置への送達を容易にするために核酸の電荷を中和し得る。これらの薬剤
は、インビトロ適用、エキソビボ適用、およびインビボ適用のいずれも有する。ポリカチ
オン性薬剤は、生きている被験体に、筋肉内、皮下などのいずれかで核酸を送達するため
に使用され得る。
【０１８１】
以下は、ポリカチオン性薬剤として有用なポリペプチドの例である：ポリリジン、ポリ
アルギニン、ポリオルニチン、およびプロタミン。他の例としては、ヒストン、プロタミ
ン、ヒト血清アルブミン、ＤＮＡ結合タンパク質、非ヒストン染色体タンパク質、ＤＮＡ
ウイルス由来のコートタンパク質（例えば、Ｘ１７４）が挙げられる。転写因子もまた、
ＤＮＡに結合するドメインを含み、従って核酸縮合薬剤として有用であり得る。手短に言
えば、転写因子（例えば、Ｃ／ＣＥＢＰ、ｃ−ｊｕｎ、ｃ−ｆｏｓ、ＡＰ−１、ＡＰ−２
、ＡＰ−３、ＣＰＦ、Ｐｒｏｔ−１、Ｓｐ−１、Ｏｃｔ−１、Ｏｃｔ−２、ＣＲＥＰ、お
よびＴＦＩＩＤ）は、ＤＮＡ配列に結合する塩基性ドメインを含む。
【０１８２】
有機ポリカチオン性薬剤としては、スペルミン、スペルミジン、およびプトレシン（ｐ
ｕｒｔｒｅｓｃｉｎｅ）が挙げられる。
【０１８３】
ポリカチオン性薬剤の大きさおよびその物理的特性は、上記の表から推定されて、他の
ポリペプチドポリカチオン性薬剤が構築され得るか、または合成ポリカチオン性薬剤が作
製され得る。
【０１８４】
有用な合成ポリカチオン性薬剤としては、例えば、ＤＥＡＥ−デキストラン、ポリブレ
ンが挙げられる。ＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎＴＭ、およびｌｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥＴＭは
、ポリヌクレオチド／ポリペプチドと組み合わせた場合にポリカチオン性複合体を形成す
るモノマーである。
【０１８５】
（免疫診断アッセイ）
本発明のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ抗原は、抗体レベルを検出するためのイムノア
ッセイにおいて使用され得る（または、逆に抗Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ抗体は抗原
レベルを検出するために使用され得る）。十分に規定された組換え抗原に基づくイムノア
ッセイは、侵襲性の診断方法と置き換えるために開発され得る。生物学的サンプル（例え
ば、血液サンプルまたは血清サンプルを含む）内のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタンパ
ク質に対する抗体が検出され得る。このイムノアッセイの設計は、多くのバリエーション
の対象であり、そして種々のこれらは当該分野で公知である。イムノアッセイのプロトコ
ルは、例えば、競合アッセイ、または直接反応アッセイ、またはサンドイッチ型アッセイ
に基づき得る。プロトコルはまた、例えば、固体支持体を使用し得、または免疫沈降によ
ってなされ得る。ほとんどのアッセイは、標識された抗体またはポリペプチドの使用を含
み、その標識は、例えば、蛍光分子、化学発光分子、放射性分子、または色素分子であり
得る。プローブからのシグナルを増幅するアッセイは公知である；これらの例は、ビオチ
ンおよびアビジンを利用するアッセイ、ならびに酵素標識および酵素媒介イムノアッセイ
（例えば、ＥＬＩＳＡアッセイ）である。
【０１８６】
免疫診断に適切であり、かつ適切な標識試薬を備えるキットは、適切な容器中に、アッ
セイの実行に必要とされる残りの試薬および物質（例えば、適切な緩衝液、塩溶液など）
ならびにアッセイの説明書の適切なセットと共に本発明の組成物を含む適切な物質を詰め
ることによって構築される。
【０１８７】
（核酸ハイブリダイゼーション）
「ハイブリダイゼーション」とは、水素結合による２つの核酸配列の互いに対する会合
をいう。代表的には、１つの配列は、固体支持体に固定され、そして他方は溶液中で遊離
している。次いで、２つの配列は水素結合に好ましい条件下で互いに接触して配置される
。この結合に影響を与える因子としては以下が挙げられる：溶媒のタイプおよび容量；反
応温度；ハイブリダイゼーションの時間；撹拌；液体相の配列の固体支持体への非特異的
な付着をブロックする薬剤（Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ試薬またはＢＬＯＴＴＯ）；配列の濃
度；配列の会合の速度を増大させる化合物（硫酸デキストランまたはポリエチレングリコ
ール）の使用；およびハイブリダイゼーション後の洗浄条件のストリンジェンシー。Ｓａ
ｍｂｒｏｏｋら（前出）第２巻、第９章、９．４７〜９．５７頁を参照のこと。
【０１８８】
「ストリンジェンシー」とは、異なる配列よりも非常に類似する配列の会合に好ましい
ハイブリダイゼーション反応における条件をいう。例えば、研究中のハイブリッドの計算
されたＴｍより約１２０〜２００℃低い温度および塩濃度の組み合わせが選択されるべき
である。温度および塩条件はしばしば、フィルタに固定したゲノムＤＮＡのサンプルが目
的の配列にハイブリダイズし、次いで異なるストリンジェンシーの条件下で洗浄される、
予備的な実験において経験的に決定され得る。Ｓａｍｂｒｏｏｋら、９．５０頁を参照の
こと。
【０１８９】
例えば、サザンブロットを行う場合、考慮する変数は、（１）ブロットされるＤＮＡの
複雑さ、および（２）プローブと検出される配列との間の相同性である。研究されるフラ
グメントの全量は、プラスミドまたはファージ消化物については０．１〜１μｇ、高度に
複雑な真核生物ゲノム中の単一コピー遺伝子については１０−９〜１０−８ｇまで、１０
倍変化し得る。より低い複雑さのポリヌクレオチドについては、実質的により短いブロッ
ティング、ハイブリダイゼーション、および曝露時間、より少量の出発ポリヌクレオチド
、およびより低い特異的活性のプローブが使用され得る。例えば、単一コピーの酵母遺伝
子は、１μｇの酵母ＤＮＡで開始し、２時間ブロットし、そして４〜８時間、１０８ｃｐ
ｍ／μｇのプローブとハイブリダイズして、わずか１時間の曝露時間を用いて検出され得
る。単一コピーの哺乳動物遺伝子について、保存性のアプローチは、１０μｇのＤＮＡで
開始し、一晩ブロットし、そして１０８ｃｐｍ／μｇより多いプローブを用いて１０％硫
酸デキストランの存在下で一晩ハイブリダイズし、約２４時間露光時間を生じる。
【０１９０】
いくつかの因子が、プローブと目的のフラグメントとの間のＤＮＡ−ＤＮＡハイブリッ
ドの融解温度（Ｔｍ）、ならびに、結果として、ハイブリダイゼーションおよび洗浄につ
いての適切な条件に影響を与え得る。多くの場合において、そのプローブはフラグメント
に対して１００％相同なわけではない。他の共通して直面する変化には、ハイブリダイズ
する配列の長さおよび全Ｇ＋Ｃ含量、ならびにハイブリダイゼーション緩衝液のイオン強
度およびホルムアミド含量が含まれる。これらのすべての因子の効果は、一つの式によっ
て近似され得る：
Ｔｍ＝８１＋１６．６（ｌｏｇ１０Ｃｉ）＋０．４［％（Ｇ＋Ｃ）］−０．６（％ホ
ルムアミド）−６００／ｎ−１．５（％ミスマッチ）。
ここでＣｉは塩濃度（一価イオン）であり、そしてｎは、塩基対内のハイブリッドの長さ
である（ＭｅｉｎｋｏｔｈおよびＷａｈｌ（１９８４）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３
８：２６７〜２８４からわずかに改変した）。
【０１９１】
ハイブリダイゼーション実験の設計において、核酸ハイブリダイゼーションに影響を与
えるいくつかの因子が簡便に変更され得る。ハイブリダイゼーションおよび洗浄の温度な
らびに洗浄時の塩濃度を調整するのが最も簡単である。ハイブリダイゼーション温度（す
なわち、ストリンジェンシー）が上昇するにつれて、非相同的な鎖の間で起こるハイブリ
ダイゼーションは起こりにくくなるようであり、結果として、バックグラウンドが減少す
る。放射標識したプローブが固定化されたフラグメントと完全に相同ではない場合（遺伝
子ファミリーおよび種間のハイブリダイゼーション実験における場合で頻繁であるように
）、ハイブリダイゼーション温度は低下されなければならず、そしてバックグラウンドが
増大する。洗浄の温度は、類似の様式で、ハイブリダイゼーションバンドの強度、および
バックグラウンドの程度に影響を与える。洗浄のストリンジェンシーはまた、塩濃度の減
少とともに増大する。
【０１９２】
一般的に、５０％ホルムアミドの存在下で都合よいハイブリダイゼーション温度は、標
的フラグメントに９５％〜１００％相同であるプローブについて４２℃、９０％〜９５％
相同性については３７℃、８５％〜９０％相同性については３２℃である。より低い相同
性については、上記の式を用いて、適切にホルムアミド含量が低くされ、そして温度が調
整されるべきである。プローブと標的フラグメントとの間の相同性が未知である場合、最
も単純なアプローチは、ともにストリンジェントではないハイブリダイゼーション条件お
よび洗浄条件で開始することである。オートラジオグラフィー後に非特異的バンドまたは
高いバックグラウンドが観察される場合、フィルタは高ストリンジェンシーで洗浄され得
、そして再び露光され得る。露光のために必要な時間がこのアプローチを非実用的にする
場合、いくつかのハイブリダイゼーションおよび／または洗浄ストリンジェンシーが並行
して試験されるべきである。
【０１９３】
（核酸プローブアッセイ）
本発明に従う核酸プローブを利用する、ＰＣＲ、分枝ＤＮＡプローブアッセイ、または
ブロッティング技術のような方法は、ｃＤＮＡまたはｍＲＮＡの存在を決定し得る。プロ
ーブは、検出されるに十分に安定な、二重鎖または二本鎖複合体を形成し得る場合に、本
発明の配列に「ハイブリダイズする」といわれる。
【０１９４】
核酸プローブは、本発明のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓヌクレオチド配列（センス鎖
およびアンチセンス鎖の両方を含む）にハイブリダイズする。多くの異なるヌクレオチド
配列がアミノ酸配列をコードするが、ネイティブなＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列は
、細胞に存在する実際の配列であるので、好ましい。ｍＲＮＡは、コード配列を表し、従
ってプローブはコード配列に相補的であるはずであり、一本鎖ｃＤＮＡはｍＲＮＡに相補
的であり、従ってｃＤＮＡプローブは非コード配列に相補的であるべきである。
【０１９５】
プローブ配列はＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列（またはその相補物）に同一である
必要はない。核酸プローブが標的ヌクレオチドと、検出され得る二重鎖を形成し得る場合
、配列および長さにおけるいくつかの変動は、アッセイ感度の増加をもたらし得る。また
、核酸プローブは、形成された二重鎖を安定化するためにさらなるヌクレオチドを含み得
る。さらなるＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列もまた、形成された二重鎖を検出するた
めの標識として役立ち得る。例えば、非相補的ヌクレオチド配列が、そのプローブの５’
末端に付着され得、ここでそのプローブ配列の残りはＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列
に相補的である。あるいは、非相補的塩基またはより長い配列は、プローブ中に分散され
得、ただし、プローブ配列は、それとハイブリダイズし、そしてそれによって検出され得
る二重鎖を形成するために十分にＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列との相補性を有する
。
【０１９６】
プローブの正確な長さおよび配列は、ハイブリダイゼーション条件（例えば、温度、塩
条件など）に依存する。例えば、診断的適用については、分析物の配列の複雑さに依存し
て、核酸プローブは、代表的には、少なくとも１０〜２０ヌクレオチド、好ましくは１５
〜２５、そしてより好ましくは少なくとも３０ヌクレオチドを含むが、これよりも短くも
あり得る。短いプライマーは、一般的には、鋳型との十分に安定なハイブリッド複合体を
形成するためにより低い温度を必要とする。
【０１９７】
プローブは、合成的手順（例えば、Ｍａｔｔｅｕｃｃｉらのトリエステル法（Ｊ．Ａｍ
．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．（１９８１）１０３：３１８５））によってか、またはＵｒｄｅａ
ら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８３）８０：７４６１）によ
ってか、または市販の自動オリゴヌクレオチド合成機を使用して、生成され得る。
【０１９８】
プローブの化学的性質は、優先度に従って選択され得る。特定の適用については、ＤＮ
ＡまたはＲＮＡが適切である。他の適用については、改変（例えば、ホスホロチオエート
またはメチルホスホネートのようなバックボーンの改変）が組み込まれ得、インビボの半
減期を増大させ、ＲＮＡ親和性を変化させ、ヌクレアーゼ耐性などを増大させるために使
用され得（例えば、ＡｇｒａｗａｌおよびＩｙｅｒ（１９９５）Ｃｕｒｒ Ｏｐｉｎ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ６：１２−１９；Ａｇｒａｗａｌ（１９９６）ＴＩＢＴＥＣＨ １
４：３７６−３８７を参照のこと）；ペプチド核酸のようなアナログもまた使用され得る
（例えば、Ｃｏｒｅｙ（１９９７）ＴＩＢＴＥＣＨ １５：２２４−２２９；Ｂｕｃｈａ
ｒｄｔら（１９９３）ＴＩＢＴＥＣＨ １１：３８４−３８６を参照のこと）。
【０１９９】
あるいは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）は、少量の標的核酸を検出する別の周知の
手段である。そのアッセイは、Ｍｕｌｌｉｓら、（Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８
７）１５５：３３５−３５０）；米国特許第４，６８３，１９５号および同第４，６８３
，２０２号に記載されている。２つの「プライマー」ヌクレオチドは、標的核酸とハイブ
リダイズし、そして反応を開始するために使用される。このプライマーは、増殖標的（ま
たはその相補物）の配列にハイブリダイズしない、二重鎖の安定性を補助するための、ま
たは、例えば、都合よい制限部位を組み込むための配列を含み得る。代表的には、このよ
うな配列は、所望のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列に隣接する。
【０２００】
熱安定性ポリメラーゼは、もともとの標的核酸を鋳型として使用して、プライマーから
標的核酸のコピーを作製する。標的核酸の閾値量がポリメラーゼによって産生された後、
それらはより従来的な方法（例えば、サザンブロット）によって検出され得る。サザンブ
ロット法を使用する場合、標識されたプローブは、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列（
またはその相補物）にハイブリダイズする。
【０２０１】
また、ｍＲＮＡまたはｃＤＮＡは、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（前出）に記載される、従来的
なブロッティング技術によって検出され得る。ｍＲＮＡ、またはｍＲＮＡからポリメラー
ゼ酵素を使用して生成されたｃＤＮＡは、ゲル電気泳動を使用して精製および分離され得
る。次いで、ゲル上の核酸は、ニトロセルロースのような固体支持体にブロットされる。
この固体支持体は、標識されたプローブに曝露され、次いで洗浄して、すべてのハイブリ
ダイズしていないプローブを除去する。次に、標識プローブを含む二重鎖を検出する。代
表的には、そのプローブは、放射活性部分で標識される。
【０２０２】
（本発明を実施するための様式）
２８２１の核酸コード配列を、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ（ＮＣＴＣ ８３２５株）で、それら
の推定翻訳産物とともに同定した。核酸配列を、奇数番号（配列番号１、３、５、７、・
・・、５６３９、５６４１）とともに、配列表で与える。各核酸配列、その推定翻訳産物
（配列番号２、４、６、８、・・・５６４０、５６４２）に続く。推定機能を、配列表の
＜２２３＞領域に与える。
【０２０３】
種々の試験を使用して、実施例中で同定したタンパク質のインビボ免疫原性を評価し得
る。例えば、そのタンパク質を、組換え的に発現させ、そして、このタンパク質を使用し
て、イムノブロットによって患者の血清をスクリーニングする。タンパク質と患者血清と
の間の陽性反応は、この患者が、以前にこのタンパク質に対して免疫応答を起こした（す
なわち、このタンパク質が免疫原である）ということを示す。この方法をまた使用して、
免疫優性のタンパク質を同定し得る。
【０２０４】
組換えタンパク質をまた簡便に使用して、（例えば、マウスにおいて）抗体を調製し得
る。これらを、タンパク質が細胞表面に位置するということを直接確認するために使用し
得る。標識化抗体（例えば、ＦＡＣＳのための蛍光標識化）を、インタクトな細菌ととも
にインキュベートし得、そして、細菌表面上の標識の存在で、タンパク質の位置を確認す
る。
【０２０５】
本発明は、実施例のみを介して記載され、そして、改変がなされ得るが、本発明の範囲
および意図内であるということが、理解される。
【技術分野】
【０００１】
本明細書中で引用される全ての文書は、その全体が参考として援用される。
【０００２】
（技術分野）
本発明は、細菌Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ由来の核酸およびタンパ
ク質に関する。
【背景技術】
【０００３】
（背景技術）
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓは、グラム陽性の球形細菌で、顕微鏡検
査では、対になって、短鎖、または群クラスターであると思われる。いくつかの菌株は、
ヒトにおいて食中毒（ブドウ球菌腸性毒）を引き起こす非常に熱安定のタンパク質である
エンテロトキシンを生成し得る。特に、臨床的関心は、広範な抗生物質に耐性である菌株
（「ＭＲＳＡ」）である。
【０００４】
Ｓ．ａｕｒｅｕｓに対する有効なワクチンは現在のところないが、多糖結合体化ワクチ
ンが、現在、臨床試験されている（ＮａｂｉからのＳｔａｐｈＶＡＸＴＭ）。
【０００５】
ワクチンの開発において使用され得るタンパク質を提供することが、本発明の目的であ
る。さらなる目的は、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ感染の診断に使用され得るタンパク質および核酸
を提供すること、Ｓ．ａｕｒｅｕｓの検出のために使用され得るタンパク質および核酸を
提供すること、Ｓ．ａｕｒｅｕｓのタンパク質の発現に有用な核酸を提供すること、およ
び抗生物質探索に有用な標的であるタンパク質を提供することである。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００６】
（発明の開示）
本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列を含むタンパク質を提
供する。これらのアミノ酸配列は、ちょうど配列番号２〜配列番号５６４２である。
【０００７】
本発明はまた、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列に対して配列同一
性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質を提供する。特定の配列に依存して、配列同一
性の程度は、好ましくは、５０％よりも高い（例えば、６０％、７０％、８０％、９０％
、９５％、９９％以上）。これらのタンパク質は、ホモログ、オルトログ、対立遺伝子改
変体および機能的変異体を含む。代表的に、２つのタンパク質間の５０％以上の同一性は
、機能的等価物を表すと見なされる。タンパク質間の同一性は、好ましくは、ＭＰＳＲＣ
Ｈプログラム（Ｏｘｆｏｒｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ）において実行されるような、Ｓｍｉ
ｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎ相同性検索アルゴリズムによって決定され、これは、ｇａｐ ｏ
ｐｅｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１２およびｇａｐ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１
のパラメーターを用いるアフィンギャップを使用する。
【０００８】
本発明はさらに、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓアミノ酸配列のフラグメント
を含むタンパク質を提供する。このフラグメントは、配列由来の少なくともｎ個の連続し
たアミノ酸を含むべきであり、特定の配列に依存して、ｎは、７以上である（例えば、８
、１０、１２、１４、１６、１８、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、
１００以上）。好ましくは、このフラグメントは、配列由来の１つ以上のエピトープを含
む。他の好ましいフラグメントは、（ａ）実施例中に開示されるタンパク質のＮ末端シグ
ナルペプチド、（ｂ）Ｎ末端シグナルペプチドを有さない、実施例中に開示されるタンパ
ク質、および（ｃ）Ｎ末端アミノ酸残基を有さない、実施例中に開示されるタンパク質、
である。
【０００９】
もちろん、本発明のタンパク質は、様々な方法（例えば、組換え体発現、Ｓ．ａｕｒｅ
ｕｓからの精製、化学合成など）によって、および様々な形態（例えば、ネイティブ、融
合など）で調製され得る。それらは、好ましくは、実質的に純粋な形態（すなわち、実質
的に、他のｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタンパク質または宿主細胞タンパク質がない）
で調製される。本発明のタンパク質は、好ましくは、ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタン
パク質である。
【００１０】
好ましいタンパク質は、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９の表ＩＶ中に列挙される「ＧＢ
Ｓｎｎｎ」抗原に対して相同性を示す、すなわち、免疫化および／または診断に有用な抗
原であると推察されるタンパク質である。これらには、配列番号：１０７８（ＧＢＳ１９
９）、１８７６（ＧＢＳ１７７）、１９４６（ＧＢＳ３１１）、２５０８（ＧＢＳ３１２
）、３７２４（ＧＢＳ２５）、４６００（ＧＢＳ９０）、４８２６（ＧＢＳ４９２）、お
よび５３６０（ＧＢＳ１１４）が含まれる。
【００１１】
さらなる局面に従って、本発明は、これらのタンパク質に結合する抗体を提供する。こ
れらは、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体であり得、そして、任意の適切な
手段によって生成され得る。抗体は、検出可能なラベルを含み得る。
【００１２】
さらなる局面に従って、本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓヌクレオチ
ド配列を含む核酸を提供する。これらの配列は、配列番号１〜配列番号５６４１の間の奇
数である。
【００１３】
さらに、本発明は、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓヌクレオチド配列に対して
配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む核酸を提供する。配列間の同一性は、好まし
くは、上記のようなＳｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎ相同性アルゴリズムによって決定され
る。
【００１４】
さらに、本発明は、好ましくは、「高ストリンジェンシー」条件（例えば、０．１×Ｓ
ＳＣ、０．５％ＳＤＳ溶液中で６５℃）下で、実施例中に開示されるＳ．ａｕｒｅｕｓ核
酸にハイブリダイズし得る核酸を提供する。
【００１５】
これらの配列のフラグメントを含む核酸もまた、提供される。これらは、Ｓ．ａｕｒｅ
ｕｓ配列由来の、少なくともｎ個の連続するヌクレオチドを含むべきであり、特定の配列
に依存して、ｎは、１０以上である（例えば、１２、１４、１５、１８、２０、２５、３
０、３５、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００以上）。
【００１６】
本発明の核酸は、ハイブリダイゼーション反応（例えば、ノーザンブロットもしくはサ
ザンブロット、または、核酸マイクロアレイもしくは「遺伝子チップ」において）、およ
び増幅反応（ＰＣＲ、ＳＤＡ、ＳＳＳＲ、ＬＣＲ、ＮＡＳＢＡ、ＴＭＡ）などで使用され
得る。
【００１７】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明のタンパク質およびタンパク質フラグメント
をコードする核酸を提供する。
【００１８】
本発明が、上記の配列に対して相補的な配列を含む核酸を（例えば、アンチセンスまた
はプロービングの目的のために）提供することもまた、理解されるべきである。
【００１９】
もちろん、本発明に従う核酸は、多くの方法（例えば、化学合成によって、ゲノムもし
くはｃＤＮＡライブラリーから、生物自身からなど）で調製され得、そして、様々な形態
（例えば、１本鎖、２本鎖、ベクター、プライマーなど）を取り得る。核酸は、好ましく
は、実質的には単離された形態である。
【００２０】
本発明に従う核酸は、例えば、放射性標識または蛍光標識で、標識され得る。これは、
この核酸が、例えば、ＰＣＲ、ＬＣＲ、ＴＭＡ、ＮＡＳＢＡ中でプライマーまたはプロー
ブとして使用される場合、特に有用である。
【００２１】
さらに、用語「核酸」は、ＤＮＡおよびＲＮＡ、ならびにそのアナログ（例えば、改変
された骨格を含むアナログ）を含み、そして、ペプチド核酸（ＰＮＡ）などもまた含む。
【００２２】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明のヌクレオチド配列を含むベクター（例えば
、クローニングベクターまたは発現ベクター）およびこのようなベクターで形質転換され
た宿主細胞を含む。
【００２３】
さらなる局面に従って、本発明は、本発明に従うタンパク質、抗体および／または核酸
を含む組成物を提供する。これらの組成物は、例えば、免疫原性組成物としてか、診断試
薬としてか、またはワクチンとして適切であり得る。
【００２４】
本発明はまた、医薬（例えば免疫原性組成物またはワクチン）として、または診断試薬
としての使用のための、本発明に従う核酸、タンパク質または抗体を提供する。本発明は
また、以下：（ｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓに起因する感染を処置するかまたは防
止するための医薬；（ｉｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓの存在またはｓｔａｐｈｙｌ
ｏｃｏｃｃｕｓに対して産生された抗体の検出のための診断試薬；ならびに／あるいはは
（ｉｉｉ）ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓに対して抗体を産生し得る試薬の製造における
、本発明に従う核酸、タンパク質または抗体の使用を提供する。このｓｔａｐｈｙｌｏｃ
ｏｃｃｕｓは、任意の種、群、または菌株であり得るが、好ましくはＳ．ａｕｒｅｕｓで
ある。
【００２５】
本発明はまた、患者を処置する方法を提供し、この方法は、患者に、治療有効量の本発
明の核酸、タンパク質および／または抗体を投与する工程を包含する。
【００２６】
本発明はまた、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ（例えば、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）核酸配列
内に含まれる標的配列を増幅するためのプライマー（例えば、ＰＣＲプライマー）を含む
キットを提供し、このキットは、第１のプライマーおよび第２のプライマーを含み、ここ
で、第１のプライマーは実質的にこの標的配列に対して相補的であり、そして、第２のプ
ライマーは、この標的配列の相補鎖に対して、実質的に相補的であり、ここで、実質的な
相補性を有するこれらのプライマーの部分は、増幅される標的配列の終端を規定する。第
１のプライマーおよび／または第２のプライマーは、検出可能な標識（例えば、蛍光標識
）を含み得る。
【００２７】
本発明はまた、１本鎖核酸または２本鎖核酸（またはそれらの混合物）中に含まれるＳ
ｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ（例えば、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）鋳型核酸配列の増幅を可能に
する、第１の１本鎖オリゴヌクレオチドおよび第２の１本鎖オリゴヌクレオチドを含むキ
ットを提供し、ここで：（ａ）第１のオリゴヌクレオチドは、この鋳型核酸配列に対して
実質的に相補的なプライマー配列を含み；（ｂ）第２のオリゴヌクレオチドは、この鋳型
核酸配列の相補鎖に対して実質的に相補的なプライマー配列を含み；（ｃ）第１のオリゴ
ヌクレオチドおよび／または第２のオリゴヌクレオチドは、この鋳型核酸に対して相補的
でない配列を含み；そして（ｄ）このプライマー配列は、増幅される鋳型配列の終端を規
定する。特徴（ｃ）の非相補的配列は、好ましくは、プライマー配列の上流（すなわち、
５’側）である。これらの（ｃ）配列の１つまたは両方は、制限部位（例えば、ＥＰ−Ｂ
−０５０９６１２）またはプロモーター配列（ＥＰ−Ｂ−０５０５０１２）を含み得る。
第１のオリゴヌクレオチドおよび／または第２のオリゴヌクレオチドは、検出可能な標識
（例えば、蛍光標識）を含み得る。
【００２８】
鋳型配列は、ゲノム配列の任意の部分であり得る。例えば、この配列は、ｒＲＮＡ遺伝
子またはタンパク質コード遺伝子であり得る。この鋳型配列は、好ましくは、Ｓ．ａｕｒ
ｅｕｓに特異的である。
【００２９】
本発明はまた、式ＮＨ２−Ａ−［−Ｘ−Ｌ−］ｎ−Ｂ−ＣＯＯＨにより表せられるハイ
ブリッドタンパク質を提供し、ここで、Ｘは、上記のような本発明のアミノ酸配列であり
、Ｌは、任意のリンカーアミノ酸配列であり、Ａは、任意のＮ−末端アミノ酸配列であり
、Ｂは、任意のＣ末端アミノ酸配列であり、そして、ｎは、１よりも大きい整数である。
ｎの値は、２とｘとの間であり、そして、ｘの値は、代表的には、３、４、５、６、７、
８、９または１０である。好ましくは、ｎは、２、３または４であり；より好ましくは２
または３であり；最も好ましくは、ｎ＝２である。各ｎの例について、−Ｘ−は、同一で
も、異なってもよい。［−Ｘ−Ｌ−］の各ｎの例について、リンカーアミノ酸配列−Ｌ−
は、存在してもしなくてもよい。例えば、ｎ＝２の場合、このハイブリッドは、ＮＨ２−
Ｘ１−Ｌ１−Ｘ２−Ｌ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｘ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｌ
１−Ｘ２−ＣＯＯＨ、ＮＨ２−Ｘ１−Ｘ２−Ｌ２−ＣＯＯＨなどであり得る。リンカーア
ミノ酸配列である−Ｌ−は、代表的には、短い（例えば、２０以下のアミノ酸、すなわち
、１９、１８、１７、１６、１５、１４、１３、１２、１１、１０、９、８、７、６、５
、４、３、２、１）。例としては、クローニングを容易にする短いペプチド配列、ポリ−
グリシンリンカー（すなわち、Ｇｌｙｎ（ここで、ｎ＝２、３、４、５、６，７，８，９
、１０以上））、およびヒスチジンタグ（Ｈｉｓｎ（ここで、ｎ＝３、４、５、６、７、
８、９、１０以上））が挙げられる。他の適切なリンカーアミノ酸配列は、当業者に明白
である。−Ａ−および−Ｂ−は、代表的に短い（例えば、４０以下のアミノ酸、すなわち
３９、３８、３７、３６、３５、３４、３３、３２、３１、３０、２９、２８、２７、２
６、２５、２４、２３、２２、２１、２０、１９、１８、１７、１６、１５、１４、１３
、１２、１１、１０、９、８、７、６、５、４、３、２、１）任意の配列である。例とし
ては、タンパク質輸送を指向するリーダー配列、またはクローニングもしくは精製を容易
にする短いペプチド配列（例えば、ヒスチジンタグ、すなわちＨｉｓｎ（ここで、ｎ＝３
、４、５、６、７、８、９、１０以上））が挙げられる。他の適切なＮ−末端およびＣ−
末端アミノ酸配列は、当業者に明白である。
【００３０】
さらなる局面に従って、本発明は様々なプロセスを提供する。
【００３１】
本発明のタンパク質を生成するためのプロセスが提供され、このプロセスは、タンパク
質発現を誘導する条件下で、本発明の宿主細胞を培養する工程を包含する。
【００３２】
本発明のタンパク質または核酸を生成するプロセスが提供され、ここで、このタンパク
質または核酸は、化学的手段を使用して、部分的または全体的に合成される。
【００３３】
本発明のポリヌクレオチドを検出するためのプロセスが提供され、このプロセスは以下
の工程：（ａ）本発明に従う核プローブと生物学的サンプルを、二重鎖を形成するような
ハイブリダイズの条件下で接触させる工程；および（ｂ）二重鎖を検出する工程を包含す
る。
【００３４】
生物学的サンプル中のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓを検出するためのプロセスもまた
提供され、このプロセスは、本発明に従う核と生物学的サンプルを、ハイブリダイズの条
件下で接触させる工程を包含する。このプロセスは、核酸増幅（例えば、ＰＣＲ、ＳＤＡ
、ＳＳＳＲ、ＮＡＳＢＡ、ＬＣＲ、ＴＭＡなど）またはハイブリダイゼーション（例えば
、マイクロアレイ、ブロット、溶液中のプローブを使用するハイブリダイゼーションなど
）を含み得る。臨床的サンプル（特に、ＭＲＳＡ）中のＳ．ａｕｒｅｕｓのＰＣＲ検出は
、以前に報告されている）［例えば、Ｍｕｒａｋａｍｉら、（１９９１）Ｊ．Ｃｌｉｎ．
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２９：２２４０〜２２４４；Ｂｉｇｎａｒｄｉら、（１９９６）Ｊ
．Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．３７：５３〜６３；Ｋｉｔａｇａｗａら
、（１９９６）Ａｎｎ．Ｓｕｒｇｅｒｙ ２２４：６６５〜６７１；Ｖａｎｎｕｆｆｅｌ
ら（１９９８）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．３６：２３６６〜２３６８；Ｊａｙ
ａｒａｔｎｅ ＆ Ｒｕｔｈｅｒｆｏｒｄ（１９９９）Ｄｉａｇｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ
．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．３５；１３〜１８を参照のこと］。
【００３５】
本発明のタンパク質を検出するためのプロセスが提供され、このプロセスは、以下の工
程：（ａ）本発明の抗体と生物学的サンプルを、抗体−抗原複合体の形成に適切な条件下
で接触させる工程；および（ｂ）この複合体を検出する工程、を包含する。
【００３６】
本発明はまた、試験化合物が本発明のタンパク質に結合するか否かを決定するためのプ
ロセスを提供する。試験化合物が本発明のタンパク質に結合し、この結合が、Ｓ．ａｕｒ
ｅｕｓ細菌の生活環を阻害する場合、この試験化合物は、抗生物質としてか、または抗生
物質の設計のためのリード化合物として使用され得る。このプロセスは、代表的には、試
験化合物と本発明のタンパク質を接触させる工程、およびこの試験化合物が、このタンパ
ク質に結合するかどうかを決定する工程を包含する。これらのプロセス中で使用される本
発明の好ましいタンパク質は、酵素（例えば、ｔＲＮＡシンテターゼ）、膜輸送体および
リボソームタンパク質である。適切な試験化合物としては、タンパク質、ポリペプチド、
炭水化物、脂質、核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡおよびそれらの改変形態）、ならびに低
分子有機化合物（例えば、２００Ｄａと２０００Ｄａとの間のＭＷ）が挙げられる。試験
化合物は、個々に提供されるが、代表的には、ライブラリーの一部（例えば、組合せライ
ブラリー）である。結合相互作用の検出方法は、ＮＭＲ、フィルタ結合アッセイ、ゲルリ
ターデイションアッセイ、置換アッセイ、表面プラズモン共鳴、逆ツーハイブリッドなど
が挙げられる。本発明のタンパク質に結合する化合物は、Ｓ．ａｕｒｅｕｓと化合物を接
触させ、次いで、増殖阻害をモニタすることによって、抗生物質活性について試験され得
る。本発明はまた、これらの方法を使用して同定された化合物を提供する。
【００３７】
本発明は、本発明のタンパク質および１つ以上の以下の抗原を含む：
−Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ由来のタンパク質抗原（例えば、ＶａｃＡ
、ＣａｇＡ、ＮＡＰ、ＨｏｐＸ、ＨｏｐＹ［例えば、ＷＯ９８／０４７０２］および／ま
たはウレアーゼ）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来のタンパク質抗原（例えば、ＷＯ９９／
２４５７８、ＷＯ９９／３６５４４、ＷＯ９９／５７２８０、ＷＯ００／２２４３０、Ｔ
ｅｔｔｅｌｉｎら（２０００）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７：１８０９〜１８１５、Ｐｉｚｚ
ａら（２０００）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７：１８１６〜１８２０およびＷＯ９６／２９４
１２中に開示されるもの）（タンパク質「２８７」および誘導体が特に好ましい）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来の外膜小胞（ＯＭＶ）調製物（例えば、
ＷＯ０１／５２８８５；Ｂｊｕｎｅら（１９９１）、Ｌａｎｃｅｔ ３３８（８７７５）
：１０９３〜１０９６；Ｆｕｋａｓａｗａら（１９９９）Ｖａｃｃｉｎｅ １７：２９５
１〜２９５８；Ｒｏｓｅｎｑｖｉｓｔら（１９９８）Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．Ｓｔａｎｄ．９
２：３２３〜３３３など中に開示されるようなもの）
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ａ、Ｃ、Ｗ１３５および／またはＹ由来の糖類
抗原（例えば、血清型Ｃ由来のＣｏｓｔａｎｔｉｎｏら（１９９２）Ｖａｃｃｉｎｅ １
０：６９１〜６９８中に開示されるオリゴ糖）［Ｃｏｓｔａｎｔｉｎｏら（１９９９）Ｖ
ａｃｃｉｎｅ １７：１２５１〜１２６３をまた参照のこと］
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の糖類抗原［例えば、Ｗａ
ｔｓｏｎ（２０００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ Ｊ １９：３３１〜３３
２；Ｒｕｂｉｎ（２０００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｃｌｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍ ４７：２６
９〜２８５，ｖ；Ｊｅｄｒｚｅｊａｓ（２００１）Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｍｏｌ Ｂｉｏ
ｌ Ｒｅｖ ６５：１８７〜２０７］
−Ａ型肝炎ウイルス（例えば、不活性ウイルス）由来の抗原［例えば、Ｂｅｌｌ（２０
００）Ｐｅｄｉａｔｒ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ Ｊ １９：１１８７〜１１８８；Ｉｗａ
ｒｓｏｎ（１９９５）ＡＰＭＩＳ １０３：３２１〜３２６］
−Ｂ型肝炎ウイスル由来の抗原（例えば、表面抗原および／またはコア抗原）［例えば
、Ｇｅｒｌｉｃｈら（１９９０）Ｖａｃｃｉｎｅ ８ Ｓｕｐｐｌ：Ｓ６３〜６８ ＆
７９〜８０］
−Ｃ型肝炎ウイルス由来の抗原［例えば、Ｈｓｕら（１９９９）Ｃｌｉｎ Ｌｉｖｅｒ
Ｄｉｓ ３：９０１〜９１５］
−Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ由来の抗原（例えば、Ｂ．ｐｅｒｔｕｓ
ｓｉｓ由来の百日咳ホロトキシン（ＰＴ）および糸状血球凝集素（ＦＨＡ）で、必要に応
じて、ペルタクチンならびに／または凝集原２および凝集原３とも組合せる）［例えば、
Ｇｕｓｔａｆｓｓｏｎら（１９９６）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３３４：３４９〜３５
５；Ｒａｐｐｕｏｌｉら（１９９１）ＴＩＢＴＥＣＨ９：２３２〜２３８］
−ジフテリア抗原（例えば、ジフテリアトキソイド）［例えば、Ｖａｃｃｉｎｅｓ（１
９９８）、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒ編．ＩＳＢＮ ０−７２１６−１９４
６−０の３章］、例えば、ＣＲＭ１９７変異体［例えば、Ｄｅｌ Ｇｕｉｄｉｃｅら（１
９９８）Ｍｏｌｅｕｌａｒ Ａｓｐｅｃｔｓ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １９：１〜７０
］
−破傷風抗原（例えば、破傷風トキソイド）［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔ
ｉｍｅｒの４章］
−Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ Ｂ由来の糖類抗原
−Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ由来の抗原［例えば、ＷＯ９９／２４５７８、ＷＯ９９
／３６５４４、ＷＯ９９／５７２８０］
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の抗原［例えば、ＷＯ０２／０２６
０６；Ｋａｌｍａｎら（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ２１：３８５〜３
８９；Ｒｅａｄら（２０００）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ ２８：１３９７〜
４０６；Ｓｈｉｒａｉら（２０００）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１８１（Ｓｕｐｐｌ３
）：Ｓ５２４〜Ｓ５２７；ＷＯ９９／２７１０５；ＷＯ００／２７９９４；ＷＯ００／３
７４９４］
−Ｓ．ａｇａｌａｃｔｉａｅ由来の抗原［例えば、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９］
−Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ由来の抗原［例えば、ＰＣＴ／ＧＢ０１／０４７８９］
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ［例えば、ＷＯ９９／２８４７５］
−Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ由来の抗原［例えばＲｏｓｓら
（２００１）Ｖａｃｃｉｎｅ １９：４１３５〜４１４２］
−ＩＰＶまたはＯＰＶのようなポリオ抗原［例えば、Ｓｕｔｔｅｒら（２０００）Ｐｅ
ｄｉａｔｒ Ｃｌｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍ ４７：２８７〜３０８；Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ
＆ Ｓｐａｎｎ（１９９９）Ａｍ Ｆａｍ Ｐｈｙｓｉｃｉａｎ ５９：１１３〜１１
８、１２５〜１２６］
−凍結乾燥化不活性ウイルス［例えばＭＭＷＲ Ｍｏｒｂ Ｍｏｒｔａｌ Ｗｋｌｙ
Ｒｅｐ １９９８ Ｊａｎ １６；４７（１）：１２、１９；ＲａｂＡｖｅｒｔＴＭ］の
ような狂犬病抗原［例えば、Ｄｒｅｅｓｅｎ（１９９７）Ｖａｃｃｉｎｅ １５ Ｓｕｐ
ｐｌ：Ｓ２〜６］
−麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、および／または風疹抗原［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ
＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒの９章、１０章および１１章］；
−血球凝集素および／またはノイラミニダーゼ表面タンパク質のような、インフルエン
ザ抗原［例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎ ＆ Ｍｏｒｔｉｍｅｒの１９章］
−Ｍｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓ由来の抗原［例えば、ＭｃＭｉｃｈａ
ｅｌ（２０００）Ｖａｃｃｉｎｅ １９ Ｓｕｐｐｌ １：Ｓ１０１〜１０７］。
【００３８】
糖類抗原または糖質抗原が含まれる場合、この抗原は、免疫原性を増強するために、好
ましくは、キャリアタンパク質に結合体化される［例えば、Ｒａｍｓａｙら（２００１）
Ｌａｎｃｅｔ ３５７（９２５１）：１９５〜１９６；Ｌｉｎｄｂｅｒｇ（１９９９）Ｖ
ａｃｃｉｎｅ １７ Ｓｕｐｐｌ ２：Ｓ２８〜３６；Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｖａｃｃｉ
ｎｅｓ（Ｃｒｕｓｅ編）ＩＳＢＮ ３８０５５４９３２６、特に、１０巻：４８〜１１４
など］。好ましいキャリアタンパク質は、細菌毒素または細菌トキソイド（例えば、ジフ
テリアトキソイドまたは破傷風トキソイド）である。ＣＲＭ１９７ジフテリアトキソイド
が、特に好ましい。他の適切なキャリアタンパク質としては、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄ
ｉｓの外膜タンパク質［例えば、ＥＰ−０３７２５０１］、合成ペプチド［例えば、ＥＰ
−０３７８８８１、ＥＰ−０４２７３４７］、熱ショックタンパク質［例えば、ＷＯ９３
／１７７１２］、百日咳タンパク質［例えば、ＷＯ９８／５８６６８；ＥＰ−０４７１１
７７］、Ｈ．ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ由来のプロテインＤ［例えば、ＷＯ００／５６３６０
］、Ｃ．ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ由来の毒素Ａまたは毒素Ｂ［例えば、ＷＯ００／６１７６１
］などが挙げられる。任意の適切な結合体化反応は、必要な場合、任意の適切なリンカー
とともに使用され得る。
【００３９】
毒性タンパク質抗原は、必要な場合、解毒され得る（例えば、化学手段および／または
遺伝的手段による百日咳の解毒）。
【００４０】
ジフテリア抗原が組成物中に含まれる場合、破傷風抗原および百日咳抗原を含むことが
また好ましい。同様に、破傷風抗原が含まれる場合、ジフテリア抗原および百日咳抗原が
含まれることがまた、好ましい。同様に、百日咳抗原が含まれる場合、ジフテリア抗原お
よび破傷風抗原が含まれることがまた、好ましい。
【００４１】
抗原は、好ましくは、アルミニウム塩に吸着される。
【００４２】
組成物中の抗原は、代表的には、各々少なくとも１μｇ／ｍｌの濃度で存在する。一般
に、任意の所与の抗原の濃度は、この抗原に対する免疫応答を誘発するのに十分である。
【００４３】
本発明はまた、本発明の２以上（例えば、３、４、５）のタンパク質を含む組成物を提
供する。
【００４４】
本発明を実施するために（例えば、ワクチン接種または診断の目的で、開示される配列
を利用するために）使用され得る標準的技術および標準的手順の要旨が以下に続く。この
要旨は、本発明の限定ではなく、むしろ、使用され得るが、必要とされない実施例を与え
る。
【００４５】
（総論）
本発明の実施は、他に示されなければ、分子生物学、微生物学、組換えＤＮＡ、および
免疫学の従来技術を使用し、これらは当該分野の技術の範囲内である。このような技術は
以下の文献で十分説明されている（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃ
ｌｏｎｉｎｇ；Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版（１９８９）；ＤＮＡ
Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ｖｏｌｕｍｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ（Ｄ．Ｎ Ｇｌｏｖｅｒ編 １９
８５）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編
１９８４）；Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｄ．Ｈａｍ
ｅｓおよびＳ．Ｊ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編 １９８４）；Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎ
ｄ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｄ．ＨａｍｅｓおよびＳ．Ｊ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編 １
９８４）；Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編 １
９８６）；Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅｓ（ＩＲＬ Ｐ
ｒｅｓｓ、１９８６）；Ｂ．Ｐｅｒｂａｌ、Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８４）；ｔｈｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ
Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ｓｅｒｉｅｓ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｉｎｃ．）、特
に１５４巻および１５５巻；Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｍ
ａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌｓ（Ｊ．Ｈ．ＭｉｌｌｅｒおよびＭ．Ｐ．Ｃａｌｏｓ編１９
８７、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）；Ｍａｙｅｒお
よびＷａｌｋｅｒ、編（１９８７）、Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐ
ｒｅｓｓ、Ｌｏｎｄｏｎ）；Ｓｃｏｐｅｓ、（１９８７）Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉ
ｃａｔｉｏｎ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ、第２版（Ｓｐｒｉｎ
ｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ、Ｎ．Ｙ．）、およびＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅ
ｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｖｏｌｕｍｅｓ Ｉ−ＩＶ（Ｄ．Ｍ．Ｗｅｉｒおよび
Ｃ．Ｃ．Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ編 １９８６）。
【００４６】
ヌクレオチドおよびアミノ酸についての標準的な略号が、本明細書において使用される
。
【００４７】
（定義）
Ｘを含む組成物は、組成物中のＸ＋Ｙの合計のうちの少なくとも８５重量％がＸである
とき、Ｙを「実質的に含まない」。好ましくは、Ｘは、組成物中のＸ＋Ｙの合計のうちの
少なくとも９０重量％を、さらに好ましくは少なくとも約９５重量％を、または９９重量
％さえも含む。
【００４８】
用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」は、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」および「
からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ）」を意味する。例えば、Ｘを「含む」組成物は、もっ
ぱらＸからなり得るか、またはＸ＋ＹのようなＸに何かを付加したものも含み得る。
【００４９】
用語「異種」とは、天然では一緒には見られない２つの生物学的成分をいう。この成分
は、宿主細胞、遺伝子または調節領域（例えば、プロモーター）であり得る。異種成分は
天然では一緒には見られないが、例えば、遺伝子に対して異種のプロモーターがその遺伝
子に作動可能に連結されるときは、それらは一緒に機能し得る。別の例は、ｓｔａｐｈｙ
ｌｏｃｏｃｃｕｓ配列がマウス宿主細胞に対して異種である場合である。さらなる例は、
天然においてみられない配置で単一タンパク質に組み立てられた、同じタンパク質または
異なるタンパク質由来の２つのエピトープである。
【００５０】
「複製起点」とは、発現ベクターのような、ポリヌクレオチドの複製を開始および調節
するポリヌクレオチド配列である。複製起点は、細胞内でのポリヌクレオチド複製の自律
性ユニットとして振る舞い、それ自体の制御下で複製し得る。複製起点は、ベクターが特
定の宿主細胞において複製するために必要とされ得る。特定の複製起点を有せば、発現ベ
クターは、細胞内の適切なタンパク質の存在下で高いコピー数で再生され得る。起点の例
は、酵母において有効な自律性複製配列；およびＣＯＳ−７細胞で有効であるウイルスＴ
抗原である。
【００５１】
「変異体」配列は、天然の配列または開示された配列とは異なるが配列同一性を有する
ＤＮＡ配列、ＲＮＡ配列またはアミノ酸配列として定義される。特定の配列に依存して、
天然の配列または開示された配列と変異体配列との間の配列同一性の程度は、好ましくは
５０％より大きい（例えば、上記のＳｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎアルゴリズムを使用し
て算出して６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％またはそれより大きい）。
本明細書中で使用される場合、本明細書で核酸配列が提供される核酸分子（または領域）
の「対立遺伝子改変体」は、別のもしくは第２の単離体のゲノム中の本質的に同じ遺伝子
座で生じ、かつ、例えば、変異または組換えにより生ずる天然のバリエーションに起因し
て、類似するが、しかし同一でない核酸配列を有する核酸分子（または領域）である。コ
ード領域の対立遺伝子改変体は、代表的には、比較される遺伝子によってコードされるタ
ンパク質の活性と類似した活性を有するタンパク質をコードする。対立遺伝子改変体はま
た、遺伝子の５’または３’非翻訳領域（例えば、調節制御領域）での変化を含み得る（
例えば、米国特許第５，７５３，２３５号を参照のこと）。
【００５２】
（発現系）
ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓヌクレオチド配列は、種々の異なる発現系；例えば、哺
乳動物細胞、バキュロウイルス、植物、細菌、および酵母について使用される発現系にお
いて発現され得る。
【００５３】
（ｉ．哺乳動物系）
哺乳動物発現系は当該分野において公知である。哺乳動物プロモーターは、哺乳動物Ｒ
ＮＡポリメラーゼを結合し得、コード配列（例えば、構造遺伝子）のｍＲＮＡへの下流（
３’）転写を開始し得る任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、転写開始領域（これ
はコード配列の５’末端の近位に通常位置する）およびＴＡＴＡボックス（転写開始部位
の２５〜３０塩基対（ｂｐ）上流に通常位置する）を有する。ＴＡＴＡボックスは、その
正しい部位においてＲＮＡポリメラーゼＩＩにＲＮＡ合成を開始させるよう指示すると考
えられている。哺乳動物プロモーターはまた、ＴＡＴＡボックスの１００〜２００ｂｐ上
流以内に通常位置する上流プロモーターエレメントを含む。上流プロモーターエレメント
は、転写が開始される速度を決定し、そしていずれの方向にも作用し得る（Ｓａｍｂｒｏ
ｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ Ｃｌｏｎｅｄ Ｇｅｎｅｓ ｉｎ
Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌｓ．」、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａ
ｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版）。
【００５４】
哺乳動物ウイルス遺伝子は、しばしば高度に発現され、そして広い宿主域を有する；従
って、哺乳動物ウイルス遺伝子をコードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供
する。例は、ＳＶ４０初期プロモーター、マウス乳癌ウイルスＬＴＲプロモーター、アデ
ノウイルス主要後期プロモーター（Ａｄ ＭＬＰ）、および単純疱疹ウイルスプロモータ
ーを含む。さらに、マウスのメタロチオネイン遺伝子のような非ウイルス性遺伝子に由来
する配列もまた、有用なプロモーター配列を提供する。発現は、構成性であるかまたは調
節される（誘導可能）かのいずれかであり得、プロモーターに依存して、ホルモン応答性
細胞においてグルココルチコイドで誘導され得る。
【００５５】
上記のプロモーターエレメントと組み合わされたエンハンサーエレメント（エンハンサ
ー）の存在は、通常発現レベルを増大させる。エンハンサーは、同種プロモーターまたは
異種プロモーターに連結されたとき、転写を１０００倍まで刺激し得る調節ＤＮＡ配列で
あり、合成は、通常のＲＮＡ開始部位で始まる。エンハンサーはまた、それらが、通常方
向もしくは反転（ｆｌｉｐｐｅｄ）方向のいずれかで転写開始部位より上流もしくは下流
に、またはプロモーターから１０００ヌクレオチドを超える距離で位置するとき、活性で
ある（Ｍａｎｉａｔｉｓら（１９８７） Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３６：１２３７；Ａｌｂｅ
ｒｔｓら（１９８９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｅｌｌ、
第２版）。ウイルス由来のエンハンサーエレメントは、それらは通常、より広い宿主域を
有するため、特に有用であり得る。例としては、ＳＶ４０初期遺伝子エンハンサー（Ｄｉ
ｊｋｅｍａら（１９８５）ＥＭＢＯ Ｊ．４：７６１）およびラウス肉腫ウイルスの長末
端反復（ＬＴＲ）に由来するエンハンサー／プロモーター（Ｇｏｒｍａｎら（１９８２ｂ
）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．７９：６７７７）およびヒトサイトメガロウ
イルスに由来するエンハンサー／プロモーター（Ｂｏｓｈａｒｔら（１９８５）Ｃｅｌｌ
４１：５２１）が挙げられる。さらに、いくつかのエンハンサーは調節可能であり、そ
してホルモンまたは金属イオンのような誘導因子の存在下のみで活性になる（Ｓａｓｓｏ
ｎｅ−ＣｏｒｓｉおよびＢｏｒｅｌｌｉ（１９８６）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．２：２
１５；Ｍａｎｉａｔｉｓら（１９８７）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３６：１２３７）。
【００５６】
ＤＮＡ分子は、哺乳動物細胞において細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、Ｄ
ＮＡ分子と直接連結され得、この場合、組換えタンパク質のＮ末端における最初のアミノ
酸は常に、ＡＴＧ開始コドンによりコードされるメチオニンである。所望される場合、Ｎ
末端は、臭化シアンとのインビトロでのインキュベーションによりタンパク質から切断さ
れ得る。
【００５７】
あるいは、外来タンパク質もまた、哺乳動物細胞において外来タンパク質の分泌を提供
するリーダー配列フラグメントを含む融合タンパク質をコードするキメラＤＮＡ分子を作
製することにより、細胞から増殖培地中へ分泌され得る。好ましくは、リーダーフラグメ
ントと外来遺伝子との間にコードされる、インビボまたはインビトロのいずれかにおいて
切断され得るプロセシング部位が存在する。リーダー配列フラグメントは通常、細胞から
のタンパク質の分泌を指示する、疎水性アミノ酸を含むシグナルペプチドをコードする。
アデノウイルス３部構成リーダーは、哺乳動物細胞における外来タンパク質の分泌を提供
するリーダー配列の例である。
【００５８】
通常、哺乳動物細胞によって認識される転写終結配列およびポリアデニル化配列は、翻
訳終止コドンの３’側に存在する調節領域であり、従って、プロモーターエレメントと共
に、コード配列に隣接する。成熟ｍＲＮＡの３’末端は、部位特異的転写後切断およびポ
リアデニル化により形成される（Ｂｉｒｎｓｔｉｅｌら、（１９８５）Ｃｅｌｌ ４１：
３４９；ＰｒｏｕｄｆｏｏｔおよびＷｈｉｔｅｌａｗ（１９８８）「Ｔｅｒｍｉｎａｔｉ
ｏｎ ａｎｄ ３’ｅｎｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｏｆ ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ ＲＮ
Ａ．」Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｐｌｉｃｉｎｇ（Ｂ．Ｄ．Ｈａｍｅｓお
よびＤ．Ｍ．Ｇｌｏｖｅｒ編）；Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ（１９８９）Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．１４：１０５）。これらの配列は、ｍＲＮＡの転写を導き、そのｍＲ
ＮＡは、そのＤＮＡにコードされるポリペプチドに翻訳され得る。転写ターミネーター／
ポリアデニル化シグナルの例としては、ＳＶ４０由来のものが挙げられる（Ｓａｍｂｒｏ
ｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｌｏｎｅｄ ｇｅｎｅｓ ｉｎ
ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｍａｍｍａｌｉａｎ ｃｅｌｌｓ．」Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎ
ｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）。
【００５９】
通常、プロモーター、ポリアデニル化シグナル、および転写終結配列を含む上記の構成
要素は、発現構築物内に共に導入される。エンハンサー、機能的なスプライス供与部位お
よびスプライス受容部位を有するイントロン、ならびにリーダー配列もまた、所望される
場合、発現構築物内に含まれ得る。発現構築物はしばしば、哺乳動物細胞または細菌のよ
うな宿主内で安定的に維持され得る染色体外エレメント（例えば、プラスミド）のような
、レプリコン内で維持される。哺乳動物の複製系としては、複製にトランス作用性の因子
を必要とする、動物ウイルス由来の複製系が挙げられる。例えば、ＳＶ４０（Ｇｌｕｚｍ
ａｍ（１９８１）Ｃｅｌｌ ２３：１７５）、あるいはポリオーマウイルスのようなパポ
バウイルスの複製系を含むプラスミドは、適切なウイルスのＴ抗原の存在下で極めて高い
コピー数で複製する。哺乳動物レプリコンの別の例としては、ウシパピローマウイルスお
よびエプスタイン−バーウイルス由来のレプリコンが挙げられる。さらに、このレプリコ
ンは、二つの複製系を有し得、従って、例えば、発現用に哺乳動物細胞内で、ならびにク
ローニングおよび増幅用に原核生物の宿主内で、そのレプリコンが維持されることが可能
である。このような哺乳動物−細菌シャトルベクターの例としては、ｐＭＴ２（Ｋａｕｆ
ｍａｎら（１９８９）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．９：９４６）およびｐＨＥＢＯ（Ｓ
ｈｉｍｉｚｕら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．６：１０７４）が挙げられる
。
【００６０】
使用される形質転換の手順は、形質転換される宿主に依存する。異種のポリヌクレオチ
ドの哺乳動物細胞への導入方法は、当該分野で公知であり、その方法としては、デキスト
ラン媒介トランスフェクション、リン酸カルシウム沈殿、ポリブレン媒介トランスフェク
ション、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、リポソーム内へのポリヌクレオ
チドの封入、およびＤＮＡの核内への直接微量注入が挙げられる。
【００６１】
発現用宿主として利用可能な哺乳動物細胞株は、当該分野で公知であり、そのような細
胞株としては、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ＨｅＬａ細胞、新生仔ハム
スター腎臓（ＢＨＫ）細胞、サル腎臓細胞（ＣＯＳ）、ヒト肝細胞癌細胞（例えば、Ｈｅ
ｐ Ｇ２）および多くの他の細胞株を含むが、これらに限定されない、Ａｍｅｒｉｃａｎ
Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）から入手可能な多くの
不死化細胞株が挙げられる。
【００６２】
（ｉｉ バキュロウイルス系）
タンパク質をコードしているポリヌクレオチドはまた、適切な昆虫発現ベクター内に挿
入され得、そしてそのベクター内で、制御エレメントに作動可能に連結される。ベクター
の構築には、当該分野で公知の技術を使用する。一般に、その発現系の構成要素として、
以下のものが挙げられる：バキュロウイルスゲノムのフラグメント、および発現させる異
種遺伝子の挿入用の簡便な制限部位の両方を含む転移ベクター（通常は細菌プラスミド）
；転移ベクター内のバキュロウイルスに特異的なフラグメントに相同性のある配列を有す
る野生型バキュロウイルス（これは、バキュロウイルスゲノム内への異種遺伝子の相同組
換えを可能にする）；ならびに適切な昆虫宿主細胞および増殖培地。
【００６３】
転移ベクターにタンパク質をコードするＤＮＡ配列を挿入した後、そのベクターおよび
野生型ウイルスゲノムを、昆虫宿主細胞にトランスフェクトし、そこでこのベクターとウ
イルスゲノムとを組換えさせる。パッケージングされた組換えウイルスは発現され、そし
て組換えプラークが同定されそして精製される。バキュロウイルス／昆虫細胞発現系の材
料および方法は、特に、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ ＣＡからキット形
態（「ＭａｘＢａｃ」キット）で市販される。これらの技術は、一般に当業者に公知であ
り、そしてＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、Ｔｅｘａｓ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ Ｓｔａｔｉｏｎ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ Ｎｏ．１５５５（１９８７
）（以下、「ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ」）に十分に記載されている。
【００６４】
タンパク質をコードするＤＮＡ配列をバキュロウイルスゲノムに挿入するのに先立って
、プロモーター、リーダー（所望される場合は）、目的のコード配列、および転写終結配
列を含む上記の構成要素を、通常、中間置換（ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ ｔｒａｎｓｐ
ｌａｃｅｍｅｎｔ）構築物（転移ベクター）に構築する。この構築物は、単一の遺伝子お
よび作動可能に連結された調節エレメント；作動可能に連結された調節エレメントのセッ
トを各々が所有する複数の遺伝子；あるいは調節エレメントの同じセットにより調節され
る複数の遺伝子を含み得る。中間置換構築物は、しばしば、細菌のような宿主内で安定的
に維持し得る染色体外エレメント（例えば、プラスミド）のような、レプリコン内で維持
される。レプリコンは、複製系を有しており、従って、それはクローニングおよび増幅用
の適切な宿主内で維持され得る。
【００６５】
現在、外来遺伝子のＡｃＮＰＶへの導入のために最も一般に使用される転移ベクターは
、ｐＡｃ３７３である。当業者に公知の多くの他のベクターもまた設計されている。これ
らのものとして、例えば、ｐＶＬ９８５（これは、ポリへドリンの開始コドンをＡＴＧか
らＡＴＴに変化させ、そしてそのＡＴＴから３２塩基対下流に、ＢａｍＨＩクローニング
部位を導入する；ＬｕｃｋｏｗおよびＳｕｍｍｅｒｓ、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ（１９８９）１
７：３１を参照のこと）が挙げられる。
【００６６】
そのプラスミドはまた通常、ポリへドリンポリアデニル化シグナル（Ｍｉｌｌｅｒら（
１９８８）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．、４２：１７７）、および原核生物の
アンピシリン耐性（ａｍｐ）遺伝子、ならびに大腸菌においての選択および増殖のための
複製起点を含む。
【００６７】
バキュロウイルス転移ベクターは通常、バキュロウイルスプロモーターを含む。バキュ
ロウイルスプロモーターは、バキュロウイルスＲＮＡポリメラーゼに結合し得、そしてコ
ード配列（例えば、構造遺伝子）のｍＲＮＡへの下流（５’から３’）方向の転写を開始
し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、コード配列の５’末端に近接
して存在する転写開始領域を有している。この転写開始領域は通常、ＲＮＡポリメラーゼ
結合部位および転写開始部位を含む。バキュロウイルス転移ベクターは、またエンハンサ
ーと呼ばれる第二のドメインを有し得、これは存在する場合は、通常、構造遺伝子に対し
て遠位にある。発現は調節されるか、または構成的であるかのいずれかであり得る。
【００６８】
ウイルスの感染周期の後期で大量に転写される構造遺伝子は、特に有用なプロモーター
配列を提供する。例としては、ウイルス多角体タンパク質をコードする遺伝子（Ｆｒｉｅ
ｓｅｎら、（１９８６）「Ｔｈｅ Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕ
ｓ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ」、Ｔｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ
ｏｆ Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓｅｓ（Ｗａｌｔｅｒ Ｄｏｅｒｆｌｅｒ編）；欧州特許
公開番号１２７８３９および１５５４７６；ならびにｐ１０タンパク質をコードする遺伝
子（Ｖｌａｋら、（１９８８）、Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．６９：７６５）由来の配列が
挙げられる。
【００６９】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、分泌昆虫タンパク質または分泌バキュロウ
イルスタンパク質の遺伝子（例えば、バキュロウイルスポリへドリン遺伝子（Ｃａｒｂｏ
ｎｅｌｌら（１９８８）Ｇｅｎｅ、７３：４０９））から誘導され得る。あるいは、哺乳
動物細胞の翻訳後修飾（例えば、シグナルペプチド切断、タンパク質分解性切断、および
リン酸化）のシグナルは、昆虫細胞に認識されると思われ、そして分泌および核蓄積に必
要なシグナルもまた、無脊椎動物細胞と脊椎動物細胞との間で保存されると思われるため
に、ヒトα−インターフェロン（Ｍａｅｄａら、（１９８５）、Ｎａｔｕｒｅ ３１５：
５９２）；ヒトガストリン放出ペプチド（Ｌｅｂａｃｑ−Ｖｅｒｈｅｙｄｅｎら、（１９
８８）、Ｍｏｌｅｃ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．８：３１２９）；ヒトＩＬ−２（Ｓｍｉｔｈ
ら、（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８２：８４０４）
；マウスＩＬ−３（Ｍｉｙａｊｉｍａら（１９８７）Ｇｅｎｅ ５８：２７３）；および
ヒトグルコセレブロシダーゼ（Ｍａｒｔｉｎら、（１９８８）ＤＮＡ、７：９９）をコー
ドする遺伝子由来のリーダーのような、非昆虫起源のリーダーも、昆虫での分泌を与える
ために使用され得る。
【００７０】
組換えポリペプチドまたは組換えポリタンパク質は、細胞内に発現され得、または適切
な調節配列と共に発現される場合、分泌され得る。非融合外来タンパク質の優れた細胞内
発現には通常、ＡＴＧ開始シグナルに先行する適切な翻訳開始シグナルを含む短いリーダ
ー配列を理想的には有する異種遺伝子が必要である。所望であれば、Ｎ末端のメチオニン
は、臭化シアンとのインビトロインキュベーションにより、成熟タンパク質から切断され
得る。
【００７１】
あるいは、天然では分泌されない組換えポリタンパク質あるいは組換えタンパク質は、
昆虫において外来タンパク質の分泌を与えるリーダー配列フラグメントを含む、融合タン
パク質をコードするキメラＤＮＡ分子を作製することにより、昆虫細胞から分泌され得る
。このリーダー配列フラグメントは通常、タンパク質の小胞体内へのトランスロケーショ
ンを指示する疎水性アミノ酸を含むシグナルペプチドをコードしている。
【００７２】
タンパク質の発現産物前駆体をコードするＤＮＡ配列および／または遺伝子の挿入後、
昆虫細胞宿主に、転移ベクターの異種ＤＮＡおよび野生型バキュロウイルスのゲノムＤＮ
Ａを同時形質転換（通常は、同時トランスフェクションによって）する。構築物のプロモ
ーターおよび転写終結配列は、通常バキュロウイルスゲノムの２〜５ｋｂの区域を含む。
バキュロウイルスウイルスの望ましい部位に異種ＤＮＡを導入する方法は、当該分野で公
知である（ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、上記；Ｊｕら（１９８７）；Ｓｍｉｔｈら
、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．（１９８３）３：２１５６；ならびにＬｕｃｋｏｗおよ
びＳｕｍｍｅｒｓ（１９８９）を参照のこと）。例えば、その挿入は、相同二重交差組換
え（ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｄｏｕｂｌｅ ｃｒｏｓｓｏｖｅｒ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔ
ｉｏｎ）により、ポリへドリン遺伝子のような遺伝子内へであり得る；挿入はまた、所望
のバキュロウイルス遺伝子内に設計された制限酵素部位内へであり得る。Ｍｉｌｌｅｒら
、（１９８９）、Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ ４；９１。発現ベクター内のポリへドリン遺伝子
の代わりにクローン化した場合、このＤＮＡ配列は、ポリへドリン特異的配列が５’およ
び３’の両側に隣接しており、そしてポリへドリンプロモーターの下流に位置される。
【００７３】
新規に形成されたバキュロウイルス発現ベクターは続いて、感染性の組換えバキュロウ
イルス内にパッケージされる。相同組換えは、低い頻度で起こる（約１％と約５％との間
）；それゆえ、同時トランスフェクション後に産生されたウイルスの大半は、依然野生型
ウイルスである。従って、組換えウイルスを同定する方法が必要となる。その発現系の利
点は、組換えウイルスを区別し得る視覚的スクリーニングである。天然のウイルスにより
産生されるポリへドリンタンパク質は、ウイルス感染後の後の時期に、その感染された細
胞の核内で非常に高いレベルで産生される。蓄積されたポリへドリンタンパク質は、閉塞
体を形成し、またそれは包理された粒子を含む。これらの閉塞体は、最大１５μｍの大き
さで、高度に屈折し、明るく輝く外見を与え、容易に光学顕微鏡下で可視化される。組換
えウイルスに感染した細胞は、閉塞体を欠く。組換えウイルスと野生型ウイルスとを区別
するために、トランスフェクションの上清を、当業者に公知の技術により昆虫細胞の単層
にプラーク形成させる。すなわち、プラークを、光学顕微鏡下で閉塞体の存在（野性型ウ
イルスを示す）または非存在（組換えウイルスを示す）によりスクリーニングする。「Ｃ
ｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ」２巻（Ａｕｓｕ
ｂｅｌら編）１６．８（増補１０、１９９０）；ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈ、上記
；Ｍｉｌｌｅｒら（１９８９）。
【００７４】
組換えバキュロウイルス発現ベクターは、いくつかの昆虫細胞への感染用に開発された
。例えば、組換えバキュロウイルスは、特に以下に示すもののために開発された：Ａｅｄ
ｅｓ ａｅｇｙｐｔｉ、Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ、Ｂｏｍｂｙｘ
ｍｏｒｉ、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒ、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ
ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ、およびＴｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ ｎｉ（ＷＯ８９／０４６６
９９；Ｃａｒｂｏｎｅｌｌら、（１９８５）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．５６：１５３；Ｗｒｉｇｈ
ｔ（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：７１８；Ｓｍｉｔｈら、（１９８３）Ｍｏｌ．Ｃ
ｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３：２１５６；およびＦｒａｓｅｒら、（１９８９）Ｉｎ Ｖｉｔｒ
ｏ Ｃｅｌｌ．Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．２５：２２５を一般に参照のこと）。
【００７５】
細胞および細胞培養培地は、バキュロウイルス／発現系における異種ポリペプチドの直
接発現および融合発現の両方のために市販される；細胞培養技術は、一般に当業者に公知
である。例えば、上記ＳｕｍｍｅｒｓおよびＳｍｉｔｈを参照のこと。
【００７６】
改変した昆虫細胞をさらに、適切な栄養培地で増殖させる。この培地は、その改変した
昆虫宿主内で存在するプラスミドの安定的維持を可能にする。発現産物の遺伝子が、誘導
性の制御下にある場合、宿主は高密度まで増殖され得、そして発現は誘導され得る。ある
いは、発現が構成的である場合、その産物は培地中に連続的に発現され、そして目的産物
を取り出し、そして枯渇した栄養を補給しながら、栄養培地を連続的に循環させる必要が
ある。その産物は、クロマトグラフィー（例えば、ＨＰＬＣ、アフィニティークロマトグ
ラフィー、イオン交換クロマトグラフィーなど）；電気泳動；密度勾配遠心；溶媒抽出な
どのような技術により精製され得る。適切な場合、その産物をさらに精製し、必要ならば
、培地中にまた分泌された、または昆虫細胞の溶解から生じたあらゆる昆虫タンパク質を
実質的に除去し、宿主細片（例えば、タンパク質、脂質および多糖類）を少なくとも実質
的に含まない産物を供給する。
【００７７】
タンパク質の発現を得るために、形質転換体に由来する組換え宿主細胞は、組換えタン
パク質をコードする配列の発現を可能にする条件下でインキュベートされる。これらの条
件は、選択された宿主細胞に依存して変動する。しかし、その条件は、当該分野で公知の
条件に基づいて、当業者に容易に確かめられる。
【００７８】
（ｉｉｉ 植物系）
当該分野で公知の多くの植物細胞培養および全植物遺伝子発現系が存在する。例示的な
植物細胞遺伝子発現系としては、米国特許第５，６９３，５０６号；米国特許第５，６５
９，１２２号；および米国特許第５，６０８，１４３号のような特許に記載されるものが
挙げられる。植物細胞培養における遺伝子発現のさらなる例は、Ｚｅｎｋ、Ｐｈｙｔｏｃ
ｈｅｍｉｓｔｒｙ ３０：３８６１−３８６３（１９９１）に記載された。植物タンパク
質のシグナルペプチドの記載は、上記の参考文献に加え、以下に示すものの中においても
見出され得る；Ｖａｕｌｃｏｍｂｅら、Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２０９：３３−４
０（１９８７）；Ｃｈａｎｄｌｅｒら、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇ
ｙ ３：４０７−４１８（１９８４）；Ｒｏｇｅｒｓ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６０
：３７３１−３７３８（１９８５）；Ｒｏｔｈｓｔｅｉｎら、Ｇｅｎｅ ５５：３５３−
３５６（１９８７）；Ｗｈｉｔｔｉｅｒら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒ
ｃｈ １５：２５１５−２５３５（１９８７）；Ｗｉｒｓｅｌら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ３：３−１４（１９８９）；Ｙｕら、Ｇｅｎｅ １２２：２
４７−２５３（１９９２）。植物ホルモンジベレリン酸およびジベレリン酸により誘導さ
れる分泌酵素による植物遺伝子発現の調節の記載は、Ｒ．Ｌ．ＪｏｎｅｓおよびＪ．Ｍａ
ｃＭｉｌｌｉｎ、Ｇｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎｓ：Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓ
ｉｏｌｏｇｙ、Ｍａｌｃｏｌｍ Ｂ．Ｗｉｌｋｉｎｓ編 １９８４ Ｐｉｔｍａｎ Ｐｕ
ｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｌｉｍｉｔｅｄ、Ｌｏｎｄｏｎ、２１−５２頁の中に見出され得る。
他の代謝調節性遺伝子が記載される参考文献：Ｓｈｅｅｎ、Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ、２：
１０２７−１０３８（１９９０）；Ｍａａｓら、ＥＭＢＯ Ｊ．９：３４４７−３４５２
（１９９０）；ＢｅｎｋｅｌおよびＨｉｃｋｅｙ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．８４：１３３７−１３３９（１９８７）。
【００７９】
代表的に、当該分野で公知の技術を使用して、所望のポリヌクレオチド配列は、植物内
で作動するように設計された遺伝子調節エレメントを含む発現カセットの中に挿入される
。その発現カセットは、植物宿主内での発現に適切な発現カセットの上流および下流にコ
ンパニオン配列を有する望ましい発現ベクターの中に挿入される。そのコンパニオン配列
は、プラスミドまたはウイルス起源のものであり、そしてそのベクターが、細菌のような
本来のクローニング宿主から、所望の植物宿主へＤＮＡを移動させるために必要とされる
特徴をベクターに提供する。基本的な細菌／植物ベクター構築物は、好ましくは、広い宿
主域の原核生物の複製起点；原核生物の選択マーカー；および、アグロバクテリウムの形
質転換については、アグロバクテリウム媒介移入のためのＴ ＤＮＡ配列を植物染色体に
提供する。異種遺伝子が容易に検出できない場合は、好ましくは、その構築物はまた、植
物細胞が形質転換されたかどうかを決定するために適した選択マーカー遺伝子を有する。
適切なマーカーの一般的な総説は、例えば、イネ科のメンバーについては、Ｗｉｌｍｉｎ
ｋおよびＤｏｎｓ、１９９３、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｔｒ、１１（２）
：１６５−１８５に見られる。
【００８０】
植物ゲノムへの異種配列の組み込みを可能にするために適した配列もまた、推奨される
。これらは、相同組換え用のためのトランスポゾン配列など、および植物ゲノム内へ異種
発現カセットのランダム挿入を可能にするＴｉ配列を含み得る。適切な原核生物選択マー
カーとしては、アンピシリンまたはテトラサイクリンのような抗生物質に対する耐性が挙
げられる。さらなる機能をコードしている他のＤＮＡ配列はまた、当該分野で公知である
ように、そのベクターの中に存在し得る。
【００８１】
本発明の核酸分子はまた、目的のタンパク質の発現用の発現カセットに含まれ得る。２
つ以上も可能であるが、通常はただ一つの発現カセットが存在する。組換え発現カセット
は、異種タンパク質のコード配列に加え、以下のエレメントを含む；プロモーター領域、
植物の５’非翻訳配列、構造遺伝子がそれを備えているかどうかに依存して、開始コドン
、ならびに転写および翻訳終結配列。そのカセットの５’末端および３’末端の独特な制
限酵素部位は、既存のベクター内への容易な挿入を可能にする。
【００８２】
異種のコード配列は、本発明に関係する任意のタンパク質についての配列であり得る。
目的のタンパク質をコードする配列は、適切な場合、そのタンパク質のプロセシングおよ
びトランスロケーションを可能にするシグナルペプチドをコードし、そして通常、本発明
の所望のタンパク質の膜への結合を生じ得るあらゆる配列を欠いている。たいてい、転写
開始領域は、発芽中に発現およびトランスロケーションされる遺伝子についてのものであ
るから、トランスロケーションを与えるシグナルペプチドを使用することにより、また、
目的のタンパク質のトランスロケーションを提供し得る。このようにして、目的のタンパ
ク質は、それらが発現される細胞からトランスロケーションされ、そして効率的に回収さ
れ得る。代表的には、種子における分泌は、アリューロン層あるいは胚盤上皮層を通過し
て、種子の胚乳内へと至る。タンパク質がそれが産生された細胞から分泌されることは必
要とされないが、このことは組換えタンパク質の単離および精製を容易にする。
【００８３】
所望の遺伝子産物の最終的な発現が、真核生物におけるものであるので、クローン化し
た遺伝子の任意の部分が、イントロンのような、宿主のスプライセオソーム（ｓｐｌｉｃ
ｏｓｏｍｅ）機構よりプロセシングされて除去される配列を含むかどうかを決定すること
が望ましい。そのような場合、「イントロン」領域の部位特異的変異誘発は、偽イントロ
ンコードとして遺伝的メッセージの一部を欠失することを防ぐために実施され得る。Ｒｅ
ｅｄおよびＭａｎｉａｔｉｓ、Ｃｅｌｌ ４１：９５−１０５（１９８５）。
【００８４】
ベクターは、組換えＤＮＡを機械的に転移するためにマイクロピペットを用いて植物細
胞内に直接的に微量注入され得る（Ｃｒｏｓｓｗａｙ、Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ、２
０２：１７９−１８５、１９８５）。遺伝物質はまた、ポリエチレングリコールを用いて
植物細胞内に転移され得る（Ｋｒｅｎｓら、Ｎａｔｕｒｅ、２９６、７２−７４、１９８
２）。核酸セグメントの導入の別の方法は、小さいビーズまたは微粒子のいずれかのマト
リックスの内部に、あるいは表面に核酸を有する小さな微粒子による高速バリスティック
（ｂａｌｌｉｓｔｉｃ）穿通法である（Ｋｌｅｉｎら、Ｎａｔｕｒｅ、３２７、７０−７
３、１９８７ならびにＫｎｕｄｓｅｎおよびＭｕｌｌｅｒ、１９９１、Ｐｌａｎｔａ、１
８５：３３０−３３６は、大麦胚乳の粒子の照射（ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）によりトラ
ンスジェニック大麦を作製することを示している）。さらに別の導入方法は、他の物体（
ミニ細胞、細胞、リソソームまたは他の易融な脂肪表面体のいずれか）とのプロトプラス
トの融合である（Ｆｒａｌｅｙら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、７
９、１８５９−１８６３、１９８２）。
【００８５】
ベクターはまた、エレクトロポレーションにより植物細胞内に導入され得る（Ｆｒｏｍ
ｍら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：５８２４、１９８５）。
この技術において、植物プロトプラストは、遺伝子構築物を含むプラスミドの存在下でエ
レクトロポレートされる。高電界強度での電気衝撃により、生体膜を可逆的に透過性にし
、プラスミドの導入を可能にする。エレクトロポレートされた植物プロトプラストは細胞
壁を再形成し、分裂し、植物カルスを形成する。
【００８６】
プロトプラストが単離され得、そして培養されて完全な再生植物を与え得る全ての植物
は、本発明により形質転換され得、その結果、移入した遺伝子を含む完全な植物が回収さ
れる。実際に、全ての植物が、サトウキビ、テンサイ、ワタ、果樹および他の樹木、マメ
科植物および野菜という全ての主要な種を含むがそれらに限定されない培養細胞または組
織から再生され得ることが公知である。いくつかの適切な植物としては、例えば、以下の
属由来の種が挙げられる：Ｆｒａｇａｒｉａ、Ｌｏｔｕｓ、Ｍｅｄｉｃａｇｏ、Ｏｎｏｂ
ｒｙｃｈｉｓ、Ｔｒｉｆｏｌｉｕｍ、Ｔｒｉｇｏｎｅｌｌａ、Ｖｉｇｎａ、Ｃｉｔｒｕｓ
、Ｌｉｎｕｍ、Ｇｅｒａｎｉｕｍ、Ｍａｎｉｈｏｔ、Ｄａｕｃｕｓ、Ａｒａｂｉｄｏｐｓ
ｉｓ、Ｂｒａｓｓｉｃａ、Ｒａｐｈａｎｕｓ、Ｓｉｎａｐｉｓ、Ａｔｒｏｐａ、Ｃａｐｓ
ｉｃｕｍ、Ｄａｔｕｒａ、Ｈｙｏｓｃｙａｍｕｓ、Ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｏｎ、Ｎｉｃｏｔ
ｉａｎａ、Ｓｏｌａｎｕｍ、Ｐｅｔｕｎｉａ、Ｄｉｇｉｔａｌｉｓ、Ｍａｊｏｒａｎａ、
Ｃｉｃｈｏｒｉｕｍ、Ｈｅｌｉａｎｔｈｕｓ、Ｌａｃｔｕｃａ、Ｂｒｏｍｕｓ、Ａｓｐａ
ｒａｇｕｓ、Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ、Ｈｅｒｅｒｏｃａｌｌｉｓ、Ｎｅｍｅｓｉａ、Ｐ
ｅｌａｒｇｏｎｉｕｍ、Ｐａｎｉｃｕｍ、Ｐｅｎｎｉｓｅｔｕｍ、Ｒａｎｕｎｃｕｌｕｓ
、Ｓｅｎｅｃｉｏ、Ｓａｌｐｉｇｌｏｓｓｉｓ、Ｃｕｃｕｍｉｓ、Ｂｒｏｗａａｌｉａ、
Ｇｌｙｃｉｎｅ、Ｌｏｌｉｕｍ、Ｚｅａ、Ｔｒｉｔｉｃｕｍ、Ｓｏｒｇｈｕｍ、およびＤ
ａｔｕｒａ。
【００８７】
再生のための手法は、植物の種によって変化するが、しかし一般に異種遺伝子のコピー
を含む形質転換されたプロトプラストの懸濁液が最初に提供される。カルス組織は形成さ
れ、そしてシュートがカルスから誘導され得、続いて発根させ得る。あるいは、胚形成が
プロトプラスト懸濁液から誘導され得る。これらの胚は、天然の胚として発芽し、植物を
形成する。培養培地は、一般に種々のアミノ酸、ならびにオーキシンおよびサイトカイニ
ンのようなホルモンを含有する。グルタミン酸およびプロリンを培地に添加することもま
た、特にコーンおよびアルファルファのような種にとって有用である。シュートおよび根
は通常、同時に発達する。効率的な再生は培地、遺伝子型、および培養歴に依存する。こ
れらの３つの変動要因が制御される場合は、再生は十分に再現性がありそして繰り返し可
能である。
【００８８】
いくつかの植物細胞培養系において、本発明の所望のタンパク質は排出され得、あるい
はこのタンパク質は植物全体から抽出され得る。本発明の所望のタンパク質が培地内に分
泌される場合、これは回収され得る。あるいは、胚および胚のない半分の種子または他の
植物組織は、機械的に破壊されて細胞間および組織間のあらゆる分泌タンパク質を放出し
得る。その混合物は緩衝液に懸濁されて、可溶タンパク質が回収され得る。次いで、従来
のタンパク質単離および精製方法は組換えタンパク質を精製するために使用される。時間
、温度、ｐＨ、酸素、および容量というパラメーターは、異種タンパク質の発現および回
収を最適化するために慣用的な方法により調整される。
【００８９】
（ｉｖ．細菌系）
細菌の発現技術は、当該分野で公知である。細菌のプロモーターは、細菌のＲＮＡポリ
メラーゼに結合し得、そしてコード配列（例えば、構造遺伝子）の下流方向（３’方向）
へのｍＲＮＡへの転写を開始し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、
コード配列の５’末端に近接して配置される、転写開始領域を有する。この転写開始領域
は、通常、ＲＮＡポリメラーゼ結合部位および転写開始部位を含む。細菌のプロモーター
はまた、オペレーターと呼ばれる第二のドメインを有し、これは、ＲＮＡ合成が開始する
、隣接するＲＮＡポリメラーゼ結合部位と重複し得る。オペレーターは、遺伝子リプレッ
サータンパク質がこのオペレーターに結合し、それによって、特定の遺伝子の転写を阻害
し得るような、負の調節された（誘導性の）転写を可能にする。構成的発現は、オペレー
ターのような負の調節エレメントの非存在下で起こり得る。さらに、正の調節は、遺伝子
アクチベータータンパク質結合配列により達成され得、この配列は、通常、存在する場合
には、ＲＮＡポリメラーゼ結合配列の（５’）側に近接している。遺伝子アクチベーター
タンパク質の例としては、カタボライト活性化タンパク質（ＣＡＰ）があり、これは、Ｅ
ｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ（Ｅ．ｃｏｌｉ）におけるｌａｃオペロンの転写の開始
を補助する（Ｒａｉｂａｕｄら（１９８４）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．１８：１７
３）。従って、調節される発現は、正または負のいずれかであり、それによって、転写を
増強するかまたは低下し得る。
【００９０】
代謝経路の酵素をコードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供する。例とし
ては、ガラクトース、ラクトース（ｌａｃ）（Ｃｈａｎｇら．（１９９７）Ｎａｔｕｒｅ
１９８：１０５６）およびマルトースのような糖代謝の酵素由来のプロモーター配列が
挙げられる。さらなる例としては、トリプトファン（ｔｒｐ）（Ｇｏｅｄｄｅｌら（１９
８０）Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．８：４０５７；Ｙｅｌｖｅｒｔｏｎら（１９８１）
Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．９：７３１；米国特許第４，７３８，９２１号；欧州特
許公開番号００３６ ７７６および０１２１ ７７５）のような生合成酵素由来のプロモ
ーター配列が挙げられる。β−ラクタマーゼ（ｂｌａ）プロモーター系（Ｗｅｉｓｓｍａ
ｎｎ（１９８１）「Ｔｈｅ ｃｌｏｎｉｎｇ ｏｆ ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ａｎｄ ｏ
ｔｈｅｒ ｍｉｓｔａｋｅｓ．」Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ３（Ｉ．Ｇｒｅｓｓｅｒ編））
、バクテリオファージλＰＬ（Ｓｈｉｍａｔａｋｅら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２９２
：１２８）およびＴ５（米国特許第４，６８９，４０６号）プロモーター系もまた、有用
なプロモーター配列を提供する。
【００９１】
さらに、天然に存在しない合成プロモーターもまた、細菌プロモーターとして機能する
。例えば、ある細菌プロモーターまたはバクテリオファージプロモーターの転写活性化配
列を、別の細菌プロモーターまたはバクテリオファージプロモーターのオペロン配列と結
合し得、合成ハイブリッドプロモーターを作製する（米国特許第４，５５１，４３３号）
。例えば、ｔａｃプロモーターは、ｔｒｐプロモーター配列、およびｌａｃリプレッサー
により調節されるｌａｃオペロン配列の両方から構成される、ハイブリッドｔｒｐ−ｌａ
ｃプロモーターである（Ａｍａｎｎら（１９８３）Ｇｅｎｅ ２５：１６７；ｄｅ Ｂｏ
ｅｒら（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８０：２１）。さらに、細
菌プロモーターには、細菌のＲＮＡポリメラーゼに結合しそして転写を開始させる能力を
有する、非細菌起源の天然に存在するプロモーターが含まれ得る。非細菌起源の天然に存
在するプロモーターはまた、適合性のあるＲＮＡポリメラーゼと連結され、原核生物にお
いていくつかの遺伝子の高レベルの発現をもたらし得る。バクテリオファージＴ７ ＲＮ
Ａポリメラーゼ／プロモーター系は、連結したプロモーター系の例である（Ｓｔｕｄｉｅ
ｒら（１９８６）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１８９：１１３；Ｔａｂｏｒら（１９８５）Ｐ
ｒｏｃ Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８２：１０７４）。さらに、ハイブリッドプロモ
ーターはまた、バクテリオファージプロモーターおよびＥ．ｃｏｌｉオペレーター領域か
ら構成され得る（欧州特許公開番号０２６７ ８５１）。
【００９２】
機能性プロモーター配列に加え、有効なリボソーム結合部位もまた、原核生物における
外来遺伝子の発現に有用である。Ｅ．ｃｏｌｉにおいて、リボソーム結合部位は、シャイ
ン−ダルガルノ（ＳＤ）配列と呼ばれ、そしてこれは、開始コドン（ＡＴＧ）および開始
コドンの３〜１１ヌクレオチド上流に位置する長さ３〜９ヌクレオチドの配列を含む（Ｓ
ｈｉｎｅら（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ ２５４：３４）。ＳＤ配列は、ＳＤ配列とＥ．ｃ
ｏｌｉの１６Ｓ ｒＲＮＡの３’末端との間の塩基対形成により、リボソームへのｍＲＮ
Ａの結合を促進すると考えられている（Ｓｔｅｉｔｚら（１９７９）「Ｇｅｎｅｔｉｃ
ｓｉｇｎａｌｓ ａｎｄ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｉｎ ｍｅｓｓ
ｅｎｇｅｒ ＲＮＡ．」Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｄｅｖ
ｅｌｏｐｍｅｎｔ：Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ（Ｒ．Ｆ．Ｇｏｌｄｂｅｒｇｅｒ編
））。弱いリボソーム結合部位を有する真核生物遺伝子および原核生物遺伝子の発現のた
め（Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｌｏｎｅｄ ｇ
ｅｎｅｓ ｉｎ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ．」Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎ
ｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）。
【００９３】
ＤＮＡ分子は、細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、そのＤＮＡ分子と直接的
に連結され得、この場合、Ｎ末端の最初のアミノ酸は、常に、メチオニンであり、これは
、ＡＴＧ開始コドンによりコードされる。所望される場合、Ｎ末端のメチオニンは、臭化
シアンとのインビトロインキュベーションによって、あるいは細菌性メチオニンＮ末端ペ
プチダーゼとのインビボインキュベーションまたはインビトロインキュベーションのいず
れかによって、タンパク質から切断され得る（欧州特許公開番号２１９ ２３７）。
【００９４】
融合タンパク質は、直接的発現に対する代替物を提供する。通常、内在性の細菌タンパ
ク質あるいは他の安定なタンパク質のＮ末端部分をコードするＤＮＡ配列を、異種コード
配列の５’末端に融合する。発現の際に、この構築物は、その２つのアミノ酸配列の融合
物を提供する。例えば、バクテリオファージλ細胞遺伝子は、外来遺伝子の５’末端に連
結され得、そして細菌において発現され得る。この生じた融合タンパク質は、好ましくは
、このバクテリオファージタンパク質をこの外来遺伝子から切断するためのプロセシング
酵素（第Ｘａ因子）用の部位を保持する（Ｎａｇａｉら（１９８４）Ｎａｔｕｒｅ ３０
９：８１０）。融合タンパク質はまた、ｌａｃＺ（Ｊｉａら（１９８７）Ｇｅｎｅ ６０
：１９７）、ｔｒｐＥ（Ａｌｌｅｎら（１９８７）Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．５：９３
；Ｍａｋｏｆｆら（１９８９）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３５：１１）、およ
びＣｈｅｙ（欧州特許公開番号３２４ ６４７）遺伝子由来の配列を用いて作製され得る
。この２つのアミノ酸配列の接合部でのＤＮＡ配列は、切断可能部位をコードしてもよい
し、コードしなくてもよい。別の例は、ユビキチン融合タンパク質である。このような融
合タンパク質は、外来タンパク質からユビキチンを切断するためのプロセシング酵素（例
えば、ユビキチン特異的プロセシングプロテアーゼ）部位を好ましくは保持する、ユビキ
チン領域と共に作製され得る。この方法を通して、ネイティブの外来タンパク質は単離さ
れ得る（Ｍｉｌｌｅｒら（１９８９）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ７：６９８）。
【００９５】
あるいは、外来タンパク質はまた、細菌において外来タンパク質の分泌を提供するシグ
ナルペプチド配列フラグメントから構成された融合タンパク質をコードする、キメラＤＮ
Ａ分子を作製することによって、細胞から分泌され得る（米国特許第４，３３６，３３６
号）。このシグナル配列フラグメントは、通常、細胞からのタンパク質の分泌を指向する
、疎水性アミノ酸から構成されるシグナルペプチドをコードする。このタンパク質は、増
殖培地（グラム陽性細菌）またはペリプラズム空間（細胞の内膜と外膜との間に位置する
）（グラム陰性細菌）のいずれかに分泌される。好ましくは、インビボまたはインビトロ
のいずれかで切断され得る、このシグナルペプチドフラグメントと外来遺伝子との間にコ
ードされる、プロセシング部位が存在する。
【００９６】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、Ｅ．ｃｏｌｉ外膜タンパク質遺伝子（ｏｍ
ｐＡ）（Ｍａｓｕｉら（１９８３）、Ｅｘｐｅｒｉｍｅｔａｌ Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏ
ｎ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ；Ｇｈｒａｙｅｂら、（１９８４）ＥＭＢＯ
Ｊ．３：２４３７）およびＥ．ｃｏｌｉアルカリホスファターゼシグナル配列（ｐｈｏ
Ａ）（Ｏｋａら（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８２：７２１２）
のような、分泌性細菌タンパク質の遺伝子に由来し得る。さらなる例として、種々のＢａ
ｃｉｌｌｕｓ株由来のα−アミラーゼ遺伝子のシグナル配列が、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ由
来の異種タンパク質を分泌するために使用され得る（Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ
．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：５５８２；欧州特許公開番号２４４ ０
４２）。
【００９７】
通常、細菌によって認識される転写終結配列は、翻訳終止コドンの３’側に位置する調
節領域であり、そして従って、プロモーターとともに、コード配列に隣接する。これらの
配列は、ｍＲＮＡの転写を指向し、このｍＲＮＡが、そのＤＮＡによってコードされるポ
リペプチドへと翻訳され得る。転写終結配列は、頻繁には、ステムループ構造を形成し得
る、約５０ヌクレオチドのＤＮＡ配列を含み、この構造が、転写の終結を補助する。例と
しては、強力なプロモーターを有する遺伝子（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉのｔｒｐ遺伝子およ
び他の生合成遺伝子）由来の転写終結配列が挙げられる。
【００９８】
通常、上記の構成要素（プロモーター、シグナル配列（もし所望ならば）、目的のコー
ド配列、および転写終結配列を含む）が、発現構築物へと組み立てられる。発現構築物は
、しばしば、宿主（例えば、細菌）において安定に維持し得る染色体外エレメント（例え
ばプラスミド）のような、レプリコンに維持される。このレプリコンは、複製系を有し、
従って、これが、このレプリコンを、発現またはクローニングおよび増幅のいずれかのた
めに、原核生物宿主において保持されることを可能にする。さらに、レプリコンは、高コ
ピー数プラスミドまたは低コピー数プラスミドのいずれかであり得る。高コピー数プラス
ミドは、一般に、約５〜約２００、そして通常、約１０〜約１５０の範囲のコピー数を有
する。高コピー数プラスミドを含む宿主は、好ましくは、少なくとも約１０個、そしてよ
り好ましくは、少なくとも約２０個のプラスミドを含む。宿主に対するベクターおよび外
来タンパク質の効果に依存して、高コピー数ベクターまたは低コピー数ベクターのいずれ
かが選択され得る。
【００９９】
あるいは、発現構築物は、組み込みベクターを用いて、細菌ゲノム内に組み込まれ得る
。組み込みベクターは、通常、ベクターが組み込むのを可能にする、細菌染色体と相同な
少なくとも１つの配列を含む。組み込みは、このベクターにおける相同なＤＮＡと細菌染
色体との間の組換えから生じるようである。例えば、種々のＢａｃｉｌｌｕｓ株由来のＤ
ＮＡで構築した組み込みベクターは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ染色体に組み込まれる（欧州特許
公開番号００１２７ ３２８）。組み込みベクターはまた、バクテリオファージまたはト
ランスポゾン配列から構成され得る。
【０１００】
通常、染色体外発現構築物および組み込み発現構築物は、選択マーカーを含み、形質転
換された細菌株の選択を可能にし得る。選択マーカーは、この細菌宿主において発現され
得、そしてこれらには、薬物（例えば、アンピシリン、クロラムフェニコール、エリスロ
マイシン、カナマイシン（ネオマイシン）およびテトラサイクリン）に対する耐性を細菌
に付与する遺伝子が含まれ得る（Ｄａｖｉｅｓら（１９７８）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃ
ｒｏｂｉｏｌ．３２：４６９）。選択マーカーはまた、ヒスチジン、トリプトファンおよ
びロイシンの生合成経路における生合成遺伝子のような、生合成遺伝子を含み得る。
【０１０１】
あるいは、上記の成分のいくつかは、形質転換ベクターに組み立てられ得る。形質転換
ベクターは、通常、上記のように、レプリコンにおいて維持されるかまたは組み込みベク
ターへと展開されるかのいずれかの、選択マーカー（ｍａｒｋｅｔ）から構成される。
【０１０２】
発現ベクターおよび形質転換ベクター（染色体外レプリコンまたは組み込みベクターの
いずれも）は、多くの細菌への形質転換のために開発されてきた。例えば、発現ベクター
は、とりわけ、以下の細菌のために開発されてきた：Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉ
ｓ（Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：
５５８２；欧州特許公開番号００３６ ２５９および欧州特許公開番号００６３ ９５３
；（ＰＣＴ公開番号）ＷＯ ８４／０４５４１）、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ（
Ｓｈｉｍａｔａｋｅら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２９２：１２８；Ａｍａｎｎら（１９
８５）Ｇｅｎｅ ４０：１８３；Ｓｔｕｄｉｅｒら（１９８６）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．
１８９：１１３；欧州特許公開番号００３６ ７７６、欧州特許公開番号０１３６ ８２
９および欧州特許公開番号０１３６ ９０７）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｃｒｅｍ
ｏｒｉｓ（Ｐｏｗｅｌｌら（１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ
．５４：６５５）；Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌｉｖｉｄａｎｓ（Ｐｏｗｅｌｌら（
１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５４：６５５）、Ｓｔｒｅ
ｐｔｏｍｙｃｅｓ ｌｉｖｉｄａｎｓ（米国特許４，７４５，０５６号）。
【０１０３】
外因性ＤＮＡを細菌宿主へ導入する方法は、当該分野において周知であり、そして通常
、ＣａＣｌ２または他の薬剤（例えば、２価の陽イオンおよびＤＭＳＯ）のいずれかで処
理された細菌の形質転換を含む。ＤＮＡはまた、エレクトロポレーションによって、細菌
細胞へ導入され得る。形質転換の手順は、通常、形質転換される細菌の種によって変化す
る。例えば、以下を参照のこと：［Ｍａｓｓｏｎら（１９８９）ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂ
ｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．６０：２７３；Ｐａｌｖａら（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃ
ａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：５５８２；欧州特許公開番号００３６ ２５９および欧州
特許公開番号００６３ ９５３；ＷＯ８４／０４５４１、Ｂａｃｉｌｌｕｓ］、［Ｍｉｌ
ｌｅｒら（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８５：８５６；Ｗａｎｇ
ら（１９９０）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７２：９４９、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ
］、［Ｃｏｈｅｎら（１９７３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．６９：２１１
０；Ｄｏｗｅｒら（１９８８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１６：６１２７；
Ｋｕｓｈｎｅｒ（１９７８）「Ａｎ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｔｒａ
ｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ｗｉｔｈ Ｃｏ１
Ｅ１−ｄｅｒｉｖｅｄ ｐｌａｓｍｉｄｓ」Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ：
Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｙｍｐｏｓｉ
ｕｍ ｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（Ｈ．Ｗ．ＢｏｙｅｒおよびＳ．
Ｎｉｃｏｓｉａ編）；Ｍａｎｄｅｌら（１９７０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．５３：１５９
；Ｔａｋｅｔｏ（１９８８）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ ９４９：３１
８、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ］、［Ｃｈａｓｓｙら（１９８７）ＦＥＭＳ Ｍ
ｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．４４：１７３、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ］、［Ｆｉｅ
ｄｌｅｒら（１９８８）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ １７０：３８、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎ
ａｓ］、［Ａｕｇｕｓｔｉｎら（１９９０）ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．
６６：２０３、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ］、［Ｂａｒａｎｙら（１９８０）Ｊ．Ｂ
ａｃｔｅｒｉｏｌ．１４４：６９８；Ｈａｒｌａｎｄｅｒ（１９８７）「Ｔｒａｎｓｆｏ
ｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｂｙ ｅｌｅｃｔ
ｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ」Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（Ｊ．Ｆｅｒｒ
ｅｔｔｉおよびＲ．Ｃｕｒｔｉｓｓ ＩＩＩ編）；Ｐｅｒｒｙら（１９８１）Ｉｎｆｅｃ
ｔ．Ｉｍｍｕｎ．３２：１２９５；Ｐｏｗｅｌｌら（１９８８）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏ
ｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５４：６５５；Ｓｏｍｋｕｔｉら（１９８７）Ｐｒｏｃ．４ｔ
ｈ Ｅｖｒ．Ｃｏｎｇ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １：４１２、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏ
ｃｃｕｓ］。
【０１０４】
（ｖ．酵母発現）
酵母発現系もまた、当業者に公知である。酵母プロモーターは、酵母ＲＮＡポリメラー
ゼに結合し得、そしてコード配列（例えば、構造遺伝子）からｍＲＮＡへの下流の（３’
側の）転写を開始し得る、任意のＤＮＡ配列である。プロモーターは、通常、コード配列
の５’末端の近位に位置する、転写開始領域を有する。この転写開始領域は、通常、ＲＮ
Ａポリメラーゼ結合部位（「ＴＡＴＡボックス」）および転写開始部位を含む。酵母プロ
モーターはまた、上流アクチベーター配列（ＵＡＳ）と呼ばれる第２のドメインを有し得
、これは、存在する場合、通常、構造遺伝子に対して遠位にある。このＵＡＳは、調節さ
れた（誘導性）発現を可能にする。構成的発現は、ＵＡＳの非存在下で生じる。調節され
た発現は、正または負のいずれかであり得、それによって、転写を増強または減少させ得
る。
【０１０５】
酵母は、活性な代謝経路を有する発酵性生物であり、従って、代謝経路における酵素を
コードする配列は、特に有用なプロモーター配列を提供する。例としては、以下が挙げら
れる：アルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）（欧州特許公開番号０２８４ ０４４）、
エノラーゼ、グルコキナーゼ、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ、グリセルアルデヒ
ド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰまたはＧＡＰＤＨ）、ヘキソキナーゼ、ホスホ
フルクトキナーゼ、３−ホスホグリセリン酸ムターゼ、およびピルビン酸キナーゼ（Ｐｙ
Ｋ）（欧州特許公開番号０３２９ ２０３）。酸性ホスファターゼをコードする酵母ＰＨ
Ｏ５遺伝子もまた、有用なプロモーター配列を提供する（Ｍｙａｎｏｈａｒａら（１９８
３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：１）。
【０１０６】
さらに、天然には存在しない合成プロモーターもまた、酵母のプロモーターとして機能
する。例えば、ある１つの酵母プロモーターのＵＡＳ配列を、別の酵母プロモーターの転
写活性化領域と連結し得、合成ハイブリッドプロモーターを生成し得る。このようなハイ
ブリッドプロモーターの例としては、ＧＡＰ転写活性化領域に連結されたＡＤＨ調節配列
（米国特許第４，８７６，１９７号および同第４，８８０，７３４号）が挙げられる。ハ
イブリッドプロモーターの他の例としては、ＧＡＰまたはＰｙＫのような解糖系酵素遺伝
子の転写活性化領域に結合された、ＡＤＨ２遺伝子、ＧＡＬ４遺伝子、ＧＡＬ１０遺伝子
またはＰＨＯ５遺伝子のいずれかの調節配列からなるプロモーターが挙げられる（欧州特
許公開番号０１６４ ５５６）。さらに、酵母プロモーターには、酵母ＲＮＡポリメラー
ゼと結合しそして転写を開始する能力を有する、非酵母起源の天然に存在するプロモータ
ーが含まれ得る。このようなプロモーターの例としては、とりわけ、以下が挙げられる：
（Ｃｏｈｅｎら、（１９８０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：
１０７８；Ｈｅｎｉｋｏｆｆら（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ２８３：８３５；Ｈｏｌｌｅ
ｎｂｅｒｇら（１９８１）Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐｉｃｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．９６：１１９；Ｈｏｌｌｅｎｂｅｒｇら（１９７９）「Ｔｈｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏ
ｎ ｏｆ Ｂａｃｔｅｒｉａｌ Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ Ｇｅｎ
ｅｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｙｅａｓｔ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ
」、Ｐｌａｓｍｉｄｓ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ、Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ａｎｄ
Ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ Ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ（Ｋ．Ｎ．ＴｉｍｍｉｓおよびＡ．Ｐｕｈ
ｌｅｒ編）；Ｍｅｒｃｅｒａｕ−Ｐｕｉｇａｌｏｎら（１９８０）Ｇｅｎｅ １１：１６
３；Ｐａｎｔｈｉｅｒら（１９８０）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．２：１０９；）。
【０１０７】
ＤＮＡ分子は、酵母において、細胞内で発現され得る。プロモーター配列は、ＤＮＡ分
子と直接連結され得、その場合、この組換えタンパク質のＮ末端にある最初のアミノ酸は
、常に、メチオニンであり、これが、ＡＴＧ開始コドンによってコードされている。所望
の場合、Ｎ末端のメチオニンは、臭化シアンとのインビトロインキュベーションによって
、このタンパク質から切断され得る。
【０１０８】
融合タンパク質は、酵母発現系について、ならびに哺乳動物、植物、バキュロウイルス
および細菌の発現系においての、代替物を提供する。通常、内因性酵母タンパク質または
他の安定なタンパク質のＮ末端部分をコードするＤＮＡ配列を、異種コード配列の５’末
端に融合する。発現に際して、この構築物は、この２つのアミノ酸配列の融合物を提供す
る。例えば、酵母またはヒトのスーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）遺伝子を、外来
遺伝子の５’末端に連結し、そして酵母において発現させ得る。この２つのアミノ酸配列
の連結部にあるＤＮＡ配列は、切断可能部位をコードしてもよいし、コードしなくてもよ
い。例えば、欧州特許公開番号０１９６ ０５６を参照のこと。別の例はユビキチン融合
タンパク質である。このような融合タンパク質は、外来タンパク質からユビキチンを切断
するプロセシング酵素（例えば、ユビキチン特異的プロセシングプロテアーゼ）部位を好
ましくは保持する、ユビキチン領域と共に作製される。従って、この方法を通じて、ネイ
ティブな外来タンパク質は、単離され得る（例えば、ＷＯ８８／０２４０６６）。
【０１０９】
あるいは、外来タンパク質はまた、酵母における外来タンパク質の分泌を提供するリー
ダー配列フラグメントから構成された融合タンパク質をコードする、キメラＤＮＡ分子を
作製することによって、細胞から増殖培地へ分泌され得る。好ましくは、インビボまたは
インビトロのいずれかで切断され得る、リーダーフラグメントと外来遺伝子との間にコー
ドされるプロセシング部位が存在する。リーダー配列フラグメントは、通常、細胞からの
タンパク質の分泌を指向する、疎水性アミノ酸から構成されるシグナルペプチドをコード
する。
【０１１０】
適切なシグナル配列をコードするＤＮＡは、分泌性酵母タンパク質の遺伝子（例えば、
酵母インベルターゼ遺伝子（欧州特許公開番号００１２ ８７３；日本国公開公報６２、
０９６、０８６）およびＡ因子遺伝子（米国特許４，５８８，６８４））由来であり得る
。あるいは、インターフェロンリーダーのような、酵母における分泌もまた提供する、非
酵母起源のリーダーが存在する（欧州特許公開番号００６０ ０５７）。
【０１１１】
好ましいクラスの分泌リーダーは、酵母α因子遺伝子のフラグメントを使用するリーダ
ーであり、これは「プレ」シグナル配列、および「プロ」領域の両方を含む。使用され得
るこの型のα因子フラグメントは、完全長のプレ−プロα因子リーダー（約８３アミノ酸
残基）および短縮されたα因子リーダー（通常約２５〜約５０アミノ酸残基）を含む（米
国特許４，５４６，０８３号および同第４，８７０，００８号；欧州特許公開番号０３２
４ ２７４）。分泌を提供するα因子リーダーフラグメントを使用するさらなるリーダー
としては、第１の酵母のプレ配列および第２の酵母α因子由来のプロ領域を用いて作製さ
れる、ハイブリッドα因子リーダーが挙げられる（例えば、（ＰＣＴ公開番号）ＷＯ８９
／０２４６３を参照のこと）。
【０１１２】
通常、酵母に認識される転写終結配列は、翻訳終止コドンの３’側に位置する調節領域
であり、そして従って、プロモーターと共にコード配列に隣接する。これらの配列は、ｍ
ＲＮＡの転写を指向し、このｍＲＮＡが、そのＤＮＡにコードされるポリペプチドへと翻
訳され得る。転写終結配列および他の酵母に認識される終結配列の例は、例えば、解糖酵
素をコードする配列である。
【０１１３】
通常、上記の成分（プロモーター、リーダー（所望の場合）、目的のコード配列および
転写終結配列を含む）を、発現構築物に組み立てる。発現構築物は、しばしば、宿主（例
えば、酵母または細菌）において安定に維持され得る染色体外エレメント（例えば、プラ
スミド）のような、レプリコンにおいて維持される。このレプリコンは、２つの複製系を
有し得、従って、これが、例えば、発現のために酵母中で維持され、そしてクローニング
および増幅のために原核生物宿主中で維持されることを可能にする。このような酵母−細
菌シャトルベクターの例としては、以下が挙げられる：ＹＥｐ２４（Ｂｏｔｓｔｅｉｎら
（１９７９）Ｇｅｎｅ ８：１７〜２４）、ｐＣｌ／１（Ｂｒａｋｅら（１９８４）Ｐｒ
ｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：４６４２〜４６４６）、およびＹＲ
ｐ１７（Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら（１９８２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５８：１５７）
。さらに、レプリコンは、高コピー数プラスミドまたは低コピー数プラスミドのいずれか
であり得る。高コピー数プラスミドは、一般に、約５〜約２００、そして通常、約１０〜
約１５０の範囲のコピー数を有する。高コピー数プラスミドを含む宿主は、好ましくは、
少なくとも約１０個、そしてより好ましくは、少なくとも約２０個を有する。宿主に対す
るベクターおよび外来タンパク質の効果に依存して、高コピー数ベクターまたは低コピー
数ベクターのいずれかが選択され得る。例えば、Ｂｒａｋｅら、前出を参照のこと。
【０１１４】
あるいは、発現構築物は、組み込みベクターを用いて、酵母のゲノムへ組み込まれ得る
。組み込みベクターは、通常、ベクターが組み込むのを可能にする、酵母の染色体と相同
な少なくとも１つの配列を含み、そして好ましくは、この発現構築物に隣接する２つの相
同配列を含む。組み込みは、ベクターにおける相同なＤＮＡと酵母の染色体との間の組換
えから生じるようである（Ｏｒｒ−Ｗｅａｖｅｒら（１９８３）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ
Ｅｎｚｙｍｏｌ．１０１：２２８〜２４５）。組み込みベクターは、そのベクター中に含
有するための適切な相同配列を選択することによって、酵母における特定の遺伝子座に指
向され得る。Ｏｒｒ−Ｗｅａｖｅｒら、前出を参照のこと。１つ以上の発現構築物が組み
込まれ得、これが、おそらく、産生される組換えタンパク質のレベルに影響を与える（Ｒ
ｉｎｅら（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：６７５０
）。ベクターに含まれる染色体配列は、ベクターにおける単一セグメントとして存在し得
るか（これは、ベクター全体の組み込みを生じる）、または染色体における隣接セグメン
トに相同でかつベクターにおける発現構築物に隣接する２つのセグメントとして存在し得
る（これは、発現構築物のみの安定した組み込みを生じ得る）。
【０１１５】
通常、染色体外発現構築物および組み込み発現構築物は、その形質転換された酵母株の
選択を可能にする、選択マーカーを含み得る。選択マーカーとしては、酵母宿主において
発現され得る生合成遺伝子（例えば、ＡＤＥ２、ＨＩＳ４、ＬＥＵ２、ＴＲＰ１およびＡ
ＬＧ７）ならびにＧ４１８耐性遺伝子が挙げられ得、それぞれ、酵母細胞にツニカマイシ
ンおよびＧ４１８に対する耐性を付与する。さらに、適切な選択マーカーはまた、金属の
ような毒性化合物の存在下において増殖する能力を、酵母に提供し得る。例えば、ＣＵＰ
１の存在は、酵母が、銅イオンの存在下において増殖することを可能にする（Ｂｕｔｔら
（１９８７）Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．５１：３５１）。
【０１１６】
あるいは、上記成分のうちのいくつかは、形質転換ベクターへと組み立てられ得る。形
質転換ベクターは、通常、上記のように、レプリコンにおいて維持されるかまたは組み込
みベクターに展開される、選択マーカーから構成される。
【０１１７】
発現ベクターおよび形質転換ベクターは、染色体外レプリコンまたは組み込みベクター
のいずれかであり、多くの酵母への形質転換のために開発されてきた。例えば、発現ベク
ターは、とりわけ、以下の酵母のために開発されてきた：Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａ
ｎｓ（Ｋｕｒｔｚら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．６：１４２）、Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｍａｌｔｏｓａ（Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏ
ｌ．２５：１４１）、Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ（Ｇｌｅｅｓｏｎら（
１９８６）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３２：３４５９；Ｒｏｇｇｅｎｋａｍｐ
ら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２０２：３０２）、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙ
ｃｅｓ ｆｒａｇｉｌｉｓ（Ｄａｓら（１９８４）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５８：１
１６５）、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ（Ｄｅ Ｌｏｕｖｅｎｃｏｕｒｔ
ら（１９８３）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５４：７３７；Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇら
（１９９０）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：１３５）、Ｐｉｃｈｉａ ｇｕｉｌｌ
ｅｒｉｍｏｎｄｉｉ（Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．
２５：１４１）、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ（Ｃｒｅｇｇら（１９８５）Ｍｏｌ．
Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：３３７６；米国特許第４，８３７，１４８号および同第４，９
２９，５５５号）、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ（Ｈｉｎｎｅｎ
ら（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：１９２９；Ｉｔ
ｏら（１９８３）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５３：１６３）、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ（ＢｅａｃｈおよびＮｕｒｓｅ（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ
３００：７０６）、およびＹａｒｒｏｗｉａ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ（Ｄａｖｉｄｏｗ
ら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：３８０４７１；Ｇａｉｌｌａｒｄｉｎら（
１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：４９）。
【０１１８】
外因性ＤＮＡを酵母宿主へ導入する方法は、当該分野において周知であり、そして通常
、スフェロプラストの形質転換またはアルカリ陽イオンで処理したインタクトな酵母細胞
の形質転換が含まれる。形質転換の手順は、通常、形質転換される酵母の種によって変化
する。例えば、以下を参照のこと：（Ｋｕｒｔｚら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉ
ｏｌ．６：１４２；Ｋｕｎｚｅら（１９８５）Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２
５：１４１；Ｃａｎｄｉｄａ）；（Ｇｌｅｅｓｏｎら（１９８６）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒ
ｏｂｉｏｌ．１３２：３４５９；Ｒｏｇｇｅｎｋａｍｐら（１９８６）Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．
Ｇｅｎｅｔ．２０２：３０２；Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）；（Ｄａｓら（１９８４）Ｊ．Ｂａ
ｃｔｅｒｉｏｌ．１５８：１１６５；Ｄｅ Ｌｏｕｖｅｎｃｏｕｒｔら（１９８３）Ｊ．
Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５４：１１６５；Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇら（１９９０）Ｂｉ
ｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：１３５；Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｃｒｅｇｇ
ら（１９８５）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：３３７６；Ｋｕｎｚｅら（１９８５）
Ｊ．Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２５：１４１；米国特許第４，８３７，１４８号
および同第４、９２９、５５５号；Ｐｉｃｈｉａ）；（Ｈｉｎｎｅｎら（１９７８）Ｐｒ
ｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：１９２９；Ｉｔｏら（１９８３）Ｊ
．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５３：１６３ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｂｅａｃｈ
およびＮｕｒｓｅ（１９８１）Ｎａｔｕｒｅ ３００：７０６；Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ）；（Ｄａｖｉｄｏｗら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：３
９；Ｇａｉｌｌａｒｄｉｎら（１９８５）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅｔ．１０：４９；Ｙａｒｒ
ｏｗｉａ）。
【０１１９】
（抗体）
本明細書中で使用される場合、用語「抗体」とは、少なくとも１つの抗体結合部位から
構成されるポリペプチドまたはポリペプチド群をいう。「抗体結合部位」は、内部表面形
状および抗原のエピトープの特徴に相補的な電荷分布を有する、３次元結合空間であり、
これが、抗体と抗原の結合を可能にする。「抗体」は、例えば、脊椎動物抗体、ハイブリ
ッド抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、改変された抗体、単価抗体、Ｆａｂタンパク質、お
よび単一ドメイン抗体を含む。
【０１２０】
本発明のタンパク質に対する抗体は、親和性クロマトグラフィー、免疫アッセイ、およ
びｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓのタンパク質の識別／同定に有用である。
【０１２１】
本発明のタンパク質に対する抗体（ポリクローナルおよびモノクローナルの両方）は、
従来の方法によって調製され得る。一般に、このタンパク質は、最初に、適切な動物、好
ましくはマウス、ラット、ウサギ、またはヤギを免疫するために使用される。ウサギおよ
びヤギは、得られ得る血清の容量、および標識された抗ウサギ抗体および抗ヤギ抗体の入
手可能性に起因して、ポリクローナル血清の調製のために好ましい。免疫は、一般的に、
タンパク質を生理的食塩水（好ましくはフロイント完全アジュバントのようなアジュバン
ト）に混合または乳化し、そしてこの混合物または乳化物を非経口的に（一般的に皮下、
または筋肉内に）注射することによって、行われる。５０〜２００μｇ／注射の用量が、
代表的に十分である。免疫は、一般的に、２〜６週後に生理的食塩水（好ましくはフロイ
ント不完全アジュバントを用いて）中のタンパク質の１回以上の注射でブーストされる。
あるいは、当該分野において公知の方法を使用するインビトロ免疫によって抗体を産生し
得、これは、本発明の目的にとっては、インビボ免疫に等しいと考えられる。ポリクロー
ナル抗血清は、免疫された動物からガラスまたはプラスチック製の容器へ採血し、その血
液を２５℃で１時間インキュベートし、その後４℃で２〜１８時間インキュベートするこ
とによって得られる。この血清は、遠心分離（例えば１、０００ｇ、１０分間）によって
回収される。ウサギから、採血１回につき約２０〜５０ｍｌが得られ得る。
【０１２２】
モノクローナル抗体は、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ（Ｎａｔｕｒｅ（１９７
５）２５６：４９５〜９６）の標準的方法、またはその改変版を使用して調製される。代
表的には、マウスまたはラットが、上記のように免疫される。しかし、血清を抽出するた
めに動物から採血するよりも、脾臓（および必要に応じていくつかの大きなリンパ節）が
取り出され、そして単一の細胞へ解離される。所望の場合、脾臓細胞は、（非特異的付着
細胞の除去後）タンパク質抗原でコーティングされたプレートまたはウェルへ細胞懸濁液
を適用することによって、スクリーニングされ得る。この抗原に特異的な膜結合免疫グロ
ブリンを発現するＢ細胞は、このプレートに結合し、そして残りの懸濁液によって、洗い
落とされない。得られるＢ細胞、または全ての解離された脾臓細胞は、次に骨髄腫細胞と
融合するように誘導されてハイブリドーマを形成し、そして選択培地（例えばヒポキサン
チン、アミノプテリン、チミジン培地、「ＨＡＴ」）において培養される。得られるハイ
ブリドーマは、限界希釈によってプレーティングされ、そして免疫する抗原に対して特異
的に結合する（かつ関連しない抗原に結合しない）抗体の産生についてアッセイされる。
選択されたＭＡｂ分泌ハイブリドーマは、次にインビトロ（例えば、組織培養瓶または中
空線維リアクター中で）、またはインビボ（マウスにおける腹水として）のいずれかで培
養される。
【０１２３】
所望の場合、抗体は（ポリクローナルまたはモノクローナルいずれであっても）、従来
技術を使用して標識され得る。適切な標識としては、以下が挙げられる：発蛍光団、発色
団、放射性原子（特に３２Ｐおよび１２５Ｉ）、電子密度試薬、酵素、および特異的結合
パートナーを有するリガンド。酵素は、代表的に、その活性によって検出される。例えば
、西洋ワサビペルオキシダーゼは、通常、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン
（ＴＭＢ）を青い色素へ変換するその能力（分光光度計を用いて定量可能）によって、検
出される。「特異的結合パートナー」とは、高い特異性でリガンド分子に結合し得るタン
パク質をいい、例えば、抗原およびそれに特異的なモノクローナル抗体の場合である。他
の特異的結合パートナーは、ビオチンおよびアビジンまたはストレプトアビジン、ＩｇＧ
およびプロテインＡ、ならびに当該分野において公知の多くのレセプター−リガンド結合
体を含む。同じ標識がいくつかの異なる様式で働き得るので、上記が、種々の標識を別個
のクラスへ分類することを意味しないことは、理解されるべきである。例えば、１２５Ｉ
は、放射性標識として、または電子密度試薬として働き得る。ＨＲＰは、酵素として、ま
たはＭＡｂについての抗原として働き得る。さらに、所望の効果のために、種々の標識を
組合せ得る。例えば、ＭＡｂおよびアビジンはまた、本発明の実施において、標識を必要
とする：従って、ＭＡｂをビオチンで標識して、そして１２５Ｉで標識したアビジン、ま
たはＨＲＰで標識した抗ビオチンＭＡｂで、その存在を検出し得る。他の並べ替えおよび
可能性は、当業者に容易に明らかであり、そして本発明の範囲内で等価であると考えられ
る。
【０１２４】
（薬学的組成物）
薬学的組成物は、本発明のポリペプチド、抗体または核酸のいずれかを含み得る。この
薬学的組成物は、治療上有効な量の、本願発明のポリペプチド、抗体、またはポリヌクレ
オチドのいずれかを含む。
【０１２５】
本明細書において使用される場合、用語「治療上有効な量」とは、所望の疾患または状
態を処置、改善、または予防するための治療薬剤の量、または、検出可能な治療効果また
は予防効果を示すための治療薬剤の量をいう。この効果は、例えば、キメラマーカーまた
は抗原レベルによって検出され得る。治療効果はまた、体温低下のような、身体の症状に
おける減少を含む。被験体に対する正確な有効量は、被験体の大きさおよび健康、状態の
性質および程度、ならびに投与のために選択される治療剤または治療剤の組合せに依存す
る。従って、あらかじめ正確な有効量を特定することは有用ではない。しかし、所定状況
のための有効量は、慣用的な実験によって決定され得、そして臨床医の判断内である。
【０１２６】
本発明の目的のために、有効な用量は、ＤＮＡ構築物が投与される個体において、約０
．０１ｍｇ／ｋｇ〜５０ｍｇ／ｋｇまたは０．０５ｍｇ／ｋｇ〜約１０ｍｇ／ｋｇのＤＮ
Ａ構築物である。
【０１２７】
薬学的組成物はまた、薬学的に受容可能なキャリアを含み得る。用語「薬学的に受容可
能なキャリア」とは、抗体またはポリペプチド、遺伝子、および他の治療薬剤のような、
治療薬剤の投与のためのキャリアをいう。この用語は、この組成物を受け取る個体に有害
な抗体の産生をそれ自体は誘導しない、任意の薬学的キャリアをいい、そして、過度の毒
性を伴わずに投与され得る。適切なキャリアは、タンパク質、多糖、ポリ乳酸、ポリグリ
コール酸、重合アミノ酸、アミノ酸コポリマー、および不活性ウイルス粒子のような、大
きく、ゆっくり代謝される高分子であり得る。このようなキャリアは、当業者に周知であ
る。
【０１２８】
薬学的に受容可能な塩が、その中で使用され得る。例えば、塩酸塩、臭化水素塩、リン
酸塩、硫酸塩などのような鉱酸塩；および酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香
酸塩などのような有機酸の塩である。薬学的に受容可能な賦形剤の徹底的な議論は、Ｒｅ
ｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐ
ｕｂ．Ｃｏ．、Ｎ．Ｊ．１９９１）にて入手可能である。
【０１２９】
治療組成物における薬学的に受容可能なキャリアは、水、生理的食塩水、グリセロール
およびエタノールのような液体を含み得る。さらに、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝物質
などのような補助物質が、このようなビヒクルに存在し得る。代表的には、治療組成物は
、液体溶液または懸濁液のいずれかとして、注射可能物質として調製される；注射前に液
体ビヒクルに溶解または懸濁するのに適切な固体形態もまた、調製され得る。リポソーム
は、薬学的に受容可能なキャリアの定義中に含まれる。
【０１３０】
（送達方法）
一旦処方されると、本発明の組成物は、その被験体へ直接投与され得る。処置される被
験体は、動物であり得；特に、ヒト被験体が処置され得る。
【０１３１】
その組成物の直接送達は、一般的に、皮下、腹腔、静脈内、または筋肉内のいずれかで
の注入によって達成されるか、あるいは、組織の間隙空間へ送達される。この組成物はま
た、病巣へ投与され得る。他の投与様式には、経口投与、および肺投与、坐剤、および経
皮（ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ）適用または経皮（ｔｒａｎｓｃｕｔａｎｅｏｕｓ）適用（
例えば、ＷＯ９８／２０７３４を参照のこと）、針、および遺伝子銃またはハイポスプレ
ー（ｈｙｐｏｓｐｒａｙ）が含まれる。投薬処置は、単回用量スケジュール、または多数
回用量スケジュールであり得る。
【０１３２】
（ワクチン）
本発明に従うワクチンは、予防的（すなわち、感染を予防するため）または治療的（す
なわち、感染後の疾患を処置するため）のいずれかであり得る。
【０１３３】
このようなワクチンは、免疫抗原、免疫原、ポリペプチド、タンパク質または核酸を、
通常「薬学的に受容可能なキャリア」と組合せて含み、このキャリアは、その組成物を受
ける個体に有害である抗体の産生をそれ自体は誘発しない任意のキャリアを含む。適切な
キャリアは、代表的に、大きく、ゆっくり代謝される高分子（例えば、タンパク質、多糖
、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、重合アミノ酸、アミノ酸コポリマー、脂質凝集物（例え
ば、油小滴またはリポソーム）、および不活性ウイルス粒子である。このようなキャリア
は、当業者に周知である。さらに、これらのキャリアは免疫刺激薬剤（「アジュバント」
）として機能し得る。さらに、この抗原または免疫原は、細菌毒素（例えば、ジフテリア
、破傷風、コレラ、Ｈ．ｐｙｌｏｒｉなどの病原体由来の毒素）と結合体化され得る。
【０１３４】
この組成物の効力を増強するために好ましいアジュバントは、（１）アルミニウム塩（
「ミョウバン」）（例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウ
ムなど）、（２）水中油エマルジョン処方物（他の特定の免疫刺激薬剤（例えば、ムラミ
ルペプチド（以下を参照のこと）または細菌細胞壁成分）を含むか含まない）、例えば、
以下：（ａ）５％スクアレン、０．５％ Ｔｗｅｅｎ ８０、および０．５％ Ｓｐａｎ
８５（必要に応じて、種々の量のＭＴＰ−ＰＥ（以下を参照のこと）を含有するが、必
要ではない）を含み、モデル１１０Ｙマイクロフルイダイザー（Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉ
ｃｓ、Ｎｅｗｔｏｎ、ＭＡ）のようなマイクロフルイダイザーを用いてμ未満の粒子へと
処方された、ＭＦ５９ＴＭ（ＷＯ９０／１４８３７；Ｖａｃｃｉｎｅ ｄｅｓｉｇｎ：ｔ
ｈｅ ｓｕｂｕｎｉｔ ａｎｄ ａｄｊｕｖａｎｔ ａｐｐｒｏａｃｈ、Ｐｏｗｅｌｌお
よびＮｅｗｍａｎ編、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ １９９５の第１０章）；（ｂ）μ未満
のエマルジョンへと微小流体化されたか、またはボルテックスして、より大きな粒子径エ
マルジョンを生成したかのいずれかである、１０％スクアレン、０．４％ Ｔｗｅｅｎ８
０、５％プルロニックブロックポリマーＬ１２１、およびｔｈｒ−ＭＤＰ（以下を参照の
こと）を含有する、ＳＡＦ、ならびに（ｃ）２％スクアレン、０．２％ Ｔｗｅｅｎ８０
、およびモノホスホリピドＡ（ＭＰＬ）、トレハロースジミコレート（ＴＤＭ）、および
細胞壁骨格（ＣＷＳ）、好ましくはＭＰＬおよびＣＷＳ（ＤｅｔｏｘＴＭ）からなる群由
来の１つ以上の細菌細胞壁成分を含む、ＲｉｂｉＴＭアジュバント系（ＲＡＳ）、（Ｒｉ
ｂｉ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍ、Ｈａｍｉｌｔｏｎ、ＭＴ）；（３）サポニンアジュバント
（例えば、ＳｔｉｍｕｌｏｎＴＭ）（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｗｏ
ｒｃｅｓｔｅｒ、ＭＡ）を使用し得るか、またはそれから粒子（例えば、ＩＳＣＯＭ（免
疫刺激性複合体）を生成し得る；（４）完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）および不
完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）；（５）サイトカイン（例えば、インターロイキ
ン（例えば、ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−１
２など）、インターフェロン（例えば、γインターフェロン）、マクロファージコロニー
刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）など；ならびに（６）その組成物の効
力を強化するための免疫刺激剤として作用する他の物質を含むが、それらに限定されない
。ミョウバンおよびＭＦ５９ＴＭが好ましい。
【０１３５】
上記で言及したように、ムラミルペプチドは、Ｎ−アセチル−ムラミル−Ｌ−スレオニ
ル−Ｄ−イソグルタミン（ｔｈｒ−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチル−ノルムラミル−Ｌ−アラニ
ル−Ｄ−イソグルタミン（ノル−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−
イソグルタミニル−Ｌ−アラニン−２−（１’−２’−ジパルミトイル−ｓｎ−グリセロ
−３−ヒドロキシホスホリルオキシ）−エチルアミン（ＭＴＰ−ＰＥ）などを含むが、そ
れらに限定されない。
【０１３６】
免疫原性組成物（例えば、免疫抗原／免疫原／ポリペプチド／タンパク質／核酸、薬学
的に受容可能なキャリア、およびアジュバント）は、代表的に、希釈剤（例えば、水、生
理食塩水、グリセロール、エタノールなど）を含有する。さらに、補助物質（例えば、湿
潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝物質など）が、このようなビヒクルにおいて存在し得る。
【０１３７】
代表的に、免疫原性組成物は、液体溶液または懸濁物のいずれかとして、注射剤として
調製され；注射前に液体ビヒクルにおける溶液または懸濁物として適切な固体形態もまた
調製され得る。この調製物はまた、薬学的に受容可能なキャリアの下で、上記に記載のよ
うに、アジュバント効果の強化のために乳化され得るかまたはリポソーム中にカプセル化
され得る。
【０１３８】
ワクチンとして使用される免疫原性組成物は、免疫原性有効量の抗原性ポリペプチドま
たは免疫原性ポリペプチド、および任意の他の上記の成分を必要に応じて含む。「免疫原
性有効量」とは、個体へのその量の投与が、単回用量であれ、一連の（用量の）一部とし
てであれ、処置または予防に有効であることを意味する。この量は、処置される個体の健
康および身体状態、処置される個体の分類学上の群（例えば、非ヒト霊長類、霊長類など
）、個体の免疫系が抗体を合成する能力、所望される防御の程度、そのワクチンの処方、
医療的状況の処置する医師の評価、および他の関連する因子に依存して変動する。その量
は、比較的広い範囲にあり、この量が慣用的な試行を通して決定され得ることが予想され
る。
【０１３９】
免疫原性組成物は、従来のように、非経口的（例えば、皮下、筋肉内または経皮（ｔｒ
ａｎｓｕｄｅｒｍａｌｌｙ）／経皮（ｔｒａｎｓｕｃｕｔａｎｅｏｕｓｌｙ）のいずれか
での注射による）に投与される（例えば、ＷＯ９８／２０７３４）。他の投与様式に適切
なさらなる処方物は、経口処方物および肺処方物、坐剤、ならびに経皮適用を含む。投薬
処置は、単回用量スケジュールまたは多数回用量スケジュールであり得る。ワクチンは、
他の免疫調節剤と組み合わせて投与され得る。
【０１４０】
タンパク質ベースのワクチンの代替として、ＤＮＡワクチンが使用され得る（例えば、
ＲｏｂｉｎｓｏｎおよびＴｏｒｒｅｓ（１９９７）Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎ
ｏｌ ９：２７１−２８３；Ｄｏｎｎｅｌｌｙら（１９９７）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｉｍｍ
ｕｎｏｌ １５：６１７−６４８；本明細書以下）。
【０１４１】
（遺伝子送達ビヒクル）
本発明の治療剤のコード配列を含む、哺乳動物における発現のためにその哺乳動物へ送
達される構築物の送達のための遺伝子治療ビヒクルは、局所または全身的のいずれかで投
与され得る。これらの構築物は、ウイルスベクターアプローチまたは非ウイルスベクター
アプローチを、インビボまたはエキソビボの様式で利用し得る。このようなコード配列の
発現は、内因性哺乳動物プロモーターまたは異種性プロモーターを用いて誘導され得る。
このコード配列のインビボでの発現は、構成性または調節性のいずれかであり得る。
【０１４２】
本発明は、意図された核酸配列を発現し得る遺伝子送達ビヒクルを含む。この遺伝子送
達ビヒクルは、好ましくは、ウイルスベクター、そしてより好ましくはレトロウイルスベ
クター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、ヘルペスウ
イルスベクターまたはαウイルスベクターである。このウイルスベクターはまた、アスト
ロウイルスベクター、コロナウイルスベクター、オルトミクソウイルスベクター、パポバ
ウイルスベクター、パラミクソウイルスベクター、パルボウイルスベクター、ピコルナウ
イルスベクター、ポックスウイルスベクター、またはトガウイルスベクターであり得る。
一般的には、Ｊｏｌｌｙ（１９９４）Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １：５
１−６４；Ｋｉｍｕｒａ（１９９４）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ５：８４
５−８５２；Ｃｏｎｎｅｌｌｙ（１９９５）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ６
：１８５−１９３；およびＫａｐｌｉｔｔ（１９９４）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ
６：１４８−１５３を参照のこと。
【０１４３】
レトロウイルスベクターは、当該分野で周知であり、そして、本発明者らは、任意のレ
トロウイルス遺伝子治療ベクターが本発明において使用可能であることを意図しており、
このレトロウイルスベクターには、Ｂ型、Ｃ型およびＤ型のレトロウイルス、異種栄養性
レトロウイルス（例えば、ＮＺＢ−Ｘ１、ＮＺＢ−Ｘ２およびＮＺＢ９−１（Ｏ’Ｎｅｉ
ｌｌ（１９８５）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．５３：１６０を参照のこと）多栄養性レトロウイルス
（例えば、ＭＣＦおよびＭＣＦ−ＭＬＶ（Ｋｅｌｌｙ（１９８３）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．４５
：２９１を参照のこと）、スプマウイルスおよびレンチウイルスが含まれる。ＲＮＡ Ｔ
ｕｍｏｒ Ｖｉｒｕｓｅｓ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｏｂｏｒ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｙ、１９８５を参照のこと。
【０１４４】
レトロウイルス遺伝子治療ベクターの部分は、異なるレトロウイルスに由来し得る。例
えば、レトロウイルスＬＴＲは、マウス肉腫ウイルスに由来し得、ｔＲＮＡ結合部位はラ
ウス肉腫ウイルスに由来し得、パッケージングシグナルはマウス白血病ウイルスに由来し
得、そして第二の鎖合成の起源はトリ白血症ウイルスに由来し得る。
【０１４５】
これらの組換えレトロウイルスベクターを使用して、適切なパッケージング細胞株へそ
れらを導入することによって形質導入コンピテントレトロウイルスベクター粒子を生成し
得る（米国特許第５，５９１，６２４号を参照のこと）。レトロウイルスベクターは、レ
トロウイルス粒子へのキメラインテグラーゼ酵素の組込みによる、宿主細胞ＤＮＡへの部
位特異的組込みのために構築され得る（ＷＯ９６／３７６２６号を参照のこと）。この組
換えウイルスベクターは複製欠損組換えウイルスであることが好ましい。
【０１４６】
上記に記載のレトロウイルスベクターを伴う使用について適切なパッケージング細胞株
は、当該分野で周知であり、容易に調製され（ＷＯ９５／３０７６３号およびＷＯ９２／
０５２６６号を参照のこと）、そしてこれを使用して、組換えベクター粒子の生産のため
のプロデューサー細胞株（これは、ベクター細胞株または「ＶＣＬ」とも称される）を作
製し得る。好ましくは、このパッケージング細胞株は、ヒトの親細胞（例えば、ＨＴ１０
８０細胞）またはミンク親細胞株から作製され、これは、ヒト血清における不活化を排除
する。
【０１４７】
レトロウイルス遺伝子治療ベクターの構築のために好ましいレトロウイルスは、トリ白
血病ウイルス、ウシ白血病ウイルス、マウス白血病ウイルス、ミンク細胞フォーカス形成
ウイルス、マウス肉腫ウイルス、細網内皮症ウイルスおよびラウス肉腫ウイルスを含む。
特に好ましいマウス白血病ウイルスは、４０７０Ａおよび１５０４Ａ（Ｈａｒｔｌｅｙお
よびＲｏｗｅ（１９７６）Ｊ Ｖｉｒｏｌ １９：１９−２５）、エーベルソン（ＡＴＣ
Ｃ番号ＶＲ−９９９）、フレンド（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−２４５）、グラフィー、グロス（
ＡＴＣＣ番号ＶＲ−５９０）、カーステン（Ｋｉｒｓｔｅｎ）、ハーベイ（Ｈａｒｖｅｙ
）肉腫ウイルス、ならびにラッシャー（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−９９８）およびモロニーマウ
ス白血病ウイルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１９０）を含む。このようなレトロウイルスは、
寄託機関または収集機関（例えば、アメリカンタイプカルチャーコレクション（「ＡＴＣ
Ｃ」）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）から入手し得るか、または一般に利用
可能な技術を用いて公知の供給源から単離され得る。
【０１４８】
本発明において使用可能な例示的な公知のレトロウイルス遺伝子治療ベクターとしては
、特許出願ＧＢ２２００６５１、ＥＰ０４１５７３１、ＥＰ０３４５２４２、ＥＰ０３３
４３０１、ＷＯ８９／０２４６８；ＷＯ８９／０５３４９、ＷＯ８９／０９２７１、ＷＯ
９０／０２８０６、ＷＯ９０／０７９３６、ＷＯ９４／０３６２２、ＷＯ９３／２５６９
８、ＷＯ９３／２５２３４、ＷＯ９３／１１２３０、ＷＯ９３／１０２１８、ＷＯ９１／
０２８０５、ＷＯ９１／０２８２５、ＷＯ９５／０７９９４、米国特許第５，２１９，７
４０号、同第４，４０５，７１２号、同第４，８６１，７１９号、同第４，９８０，２８
９号、同第４，７７７，１２７号、同第５，５９１，６２４号に記載されるものが挙げら
れる。Ｖｉｌｅ（１９９３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：３８６０−３８６４；Ｖｉｌ
ｅ（１９９３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：９６２−９６７；Ｒａｍ（１９９３）Ｃａ
ｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３（１９９３）８３−８８；Ｔａｋａｍｉｙａ（１９９２）Ｊ Ｎ
ｅｕｒｏｓｃｉ Ｒｅｓ ３３：４９３−５０３；Ｂａｂａ（１９９３）Ｊ Ｎｅｕｒｏ
ｓｕｒｇ ７９：７２９−７３５；Ｍａｎｎ（１９８３）Ｃｅｌｌ ３３：１５３；Ｃａ
ｎｅ（１９８４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８１；６３４９；およびＭｉ
ｌｌｅｒ（１９９０）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １もまた参照のこと。
【０１４９】
ヒトアデノウイルス遺伝子治療ベクターもまた当該分野で公知であり、そして本発明に
おいて使用可能である。例えば、Ｂｅｒｋｎｅｒ（１９８８）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅ
ｓ ６：６１６およびＲｏｓｅｎｆｅｌｄ（１９９１）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５２：４３１
；ならびにＷＯ９３／０７２８３、ＷＯ９３／０６２２３、およびＷＯ９３／０７２８２
を参照のこと。本発明において使用可能な例示的な公知のアデノウイルス遺伝子治療ベク
ターとしては、上記に参照される文書およびＷＯ９４／１２６４９、ＷＯ９３／０３７６
９、ＷＯ９３／１９１９１、ＷＯ９４／２８９３８、ＷＯ９５／１１９８４、ＷＯ９５／
００６５５、ＷＯ９５／２７０７１、ＷＯ９５／２９９９３、ＷＯ９５／３４６７１、Ｗ
Ｏ９６／０５３２０、ＷＯ９４／０８０２６、ＷＯ９４／１１５０６、ＷＯ９３／０６２
２３、ＷＯ９４／２４２９９、ＷＯ９５／１４１０２、ＷＯ９５／２４２９７、ＷＯ９５
／０２６９７、ＷＯ９４／２８１５２、ＷＯ９４／２４２９９、ＷＯ９５／０９２４１，
ＷＯ９５／２５８０７、ＷＯ９５／０５８３５、ＷＯ９４／１８９２２およびＷＯ９５／
０９６５４において記載されるものが挙げられる。あるいは、Ｃｕｒｉｅｌ（１９９２）
Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．３：１４７−１５４に記載されるような殺傷したアデノウ
イルスに連結したＤＮＡの投与が使用され得る。本発明の遺伝子送達ビヒクルはまた、ア
デノウイルス随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクターを含む。本発明における使用のためのこの
ようなベクターの主要なそして好ましい例は、Ｓｒｉｖａｓｔａｖａ ＷＯ９３／０９２
３９に開示されるＡＡＶ−２ベースのベクターである。最も好ましいＡＡＶベクターは、
２つのＡＡＶ逆方向末端反復を含む。ここで、ネイティブＤ配列は、ヌクレオチドの置換
によって改変され、その結果、少なくとも５つのネイティブなヌクレオチドおよび１８ま
でのネイティブヌクレオチド、好ましくは少なくとも１０のネイティブヌクレオチドから
１８までのネイティブヌクレオチド、最も好ましくは１０のネイティブヌクレオチドが保
持され、そしてＤ配列の残りのヌクレオチドが欠失またはネイティブでないヌクレオチド
で置換されている。ＡＡＶ逆方向末端反復のネイティブなＤ配列は、各ＡＡＶ逆方向末端
反復において（すなわち、各末端に１つの配列が存在する）２０の連続するヌクレオチド
の配列であって、これは、ＨＰ形成に関与しない。ネイティブでない置換ヌクレオチドは
、同じ位置でのネイティブなＤ配列に見出されるヌクレオチド以外の任意のヌクレオチド
であり得る。他の使用可能な例示的なＡＡＶベクターは、ｐＷＰ−１９、ｐＷＮ−１であ
り、これらは両方ともはＮａｈｒｅｉｎｉ（１９９３）Ｇｅｎｅ １２４：２５７−２６
２に開示される。このようなＡＡＶベクターの別の例は、ｐｓｕｂ２０１（Ｓａｍｕｌｓ
ｋｉ（１９８７）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６１：３０９６を参照のこと）である。別の例示的な
ＡＡＶベクターは、Ｄｏｕｂｌｅ−Ｄ ＩＴＲベクターである。Ｄｏｕｂｌｅ−Ｄ ＩＴ
Ｒベクターの構築は、米国特許第５，４７８，７４５号に開示される。なお他のベクター
は、Ｃａｒｔｅｒの米国特許第４，７９７，３６８号およびＭｕｚｙｃｚｋａの米国特許
第５，１３９，９４１号、Ｃｈａｒｔｅｊｅｅの米国特許第５，４７４，９３５号ならび
にＫｏｔｉｎのＷＯ９４／２８８１５７に開示されるものである。本発明において使用可
能なＡＡＶベクターのなおさらなる例は、ＳＳＶ９ＡＦＡＢＴＫｎｅｏであり、これは、
ＡＦＰエンハンサーおよびアルブミンプロモーターを含み、そして肝臓において優勢に発
現を指向する。その構造および構築は、Ｓｕ（１９９６）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅ
ｒａｐｙ ７：４６３−４７０に開示されている。さらなるＡＡＶ遺伝子治療ベクターは
、米国特許第５，３５４，６７８号、同第５，１７３，４１４号、同第５，１３９，９４
１号、および同第５，２５２，４７９号に記載されている。
【０１５０】
本発明の遺伝子治療ベクターはまた、ヘルペスウイルスベクターを含む。主要なそして
好ましい例は、チミジンキナーゼポリペプチドをコードする配列を含む単純ヘルペスウイ
ルスベクター（例えば、米国特許第５，２８８，６４１号、およびＥＰ０１７６１７０（
Ｒｏｉｚｍａｎ）に開示されるもの）である。さらなる例示的な単純ヘルペスウイルスベ
クターとしては、ＷＯ９５／０４１３９（Ｗｉｓｔａｒ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）に開示さ
れているＨＦＥＭ／ＩＣＰ６−ＬａｃＺ、Ｇｅｌｌｅｒ（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２
４１：１６６７−１６６９ならびにＷＯ９０／０９４４１およびＷＯ９２／０７９４５に
記載されているｐＨＳＶｌａｃ、Ｆｉｎｋ（１９９２）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ
ａｐｙ ３：１１−１９に記載されるＨＳＶ Ｕｓ３：：ｐｇＣ−ｌａｃＺ、ならびにＥ
Ｐ０４５３２４２（Ｂｒｅａｋｅｆｉｅｌｄ）に記載されているＨＳＶ ７１３４、２Ｒ
Ｈ １０５およびＧＡＬ４、ならびにＡＴＣＣに受託番号ＶＲ−９７７およびＶＲ−２６
０として寄託されたものが挙げられる。
【０１５１】
本発明において使用され得るαウイルス遺伝子治療ベクターもまた意図される。好まし
いαウイルスベクターは、シンドビスウイルスベクターである。トガウイルス、セムリキ
森林ウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−６７；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４７）、Ｍｉｄｄｌｅｂｅ
ｒｇウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−３７０）、ロスリバーウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ−３７
３；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４６）、ベネズエラウマ脳炎ウイルス（ＡＴＣＣ ＶＲ９２３
；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２５０；ＡＴＣＣ ＶＲ−１２４９；ＡＴＣＣ ＶＲ−５３２）お
よび米国特許第５，０９１，３０９号、同第５，２１７，８７９号、およびＷＯ９２／１
０５７８に記載されているもの。より詳細には、米国特許出願第０８／４０５，６２７号
（１９９５年３月１５日出願）、ＷＯ９４／２１７９２号、ＷＯ９２／１０５７８号、Ｗ
Ｏ９５／０７９９４号、米国特許第５，０９１，３０９号、ならびに米国特許第５，２１
７，８７９号に記載されているαウイルスベクターが使用可能である。このようなαウイ
ルスは、ＡＴＣＣ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）のような寄託機関または収
集機関から入手し得るか、あるいは一般的に利用可能な技術を用いて公知の供給源から単
離され得る。好ましくは、細胞傷害性を減少させたαウイルスベクターを使用する（米国
特許出願番号０８／６７９６４０号を参照のこと）。
【０１５２】
ＤＮＡベクター系（例えば、真核生物層状発現系）もまた、本発明の核酸の発現に有用
である。真核生物層状発現系の詳細な説明についてはＷＯ９５／０７９９４を参照のこと
。好ましくは、本発明の真核生物層状発現系はαウイルスベクターに由来し、そして最も
好ましくはシンドビスウイルスベクターに由来する。
【０１５３】
本発明における使用に適切な他のウイルスベクターとしては、以下に由来するものが挙
げられる：ポリオウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−５８およびＥｖａｎｓ、Ｎａｔｕ
ｒｅ ３３９（１９８９）３８５およびＳａｂｉｎ（１９７３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｓｔａｎ
ｄａｒｄｉｚａｔｉｏｎ １：１１５に記載されているもの）；リノウイルス（例えば、
ＡＴＣＣ ＶＲ−１１１０およびＡｒｎｏｌｄ（１９９０）Ｊ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅ
ｍ Ｌ４０１に記載されているもの）；ポックスウイルス（例えば、カナリアポックスル
ウイルスまたはワクシニアウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−１１１およびＡＴＣＣ
ＶＲ−２０１０ならびにＦｉｓｈｅｒ−Ｈｏｃｈ（１９８９）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃ
ａｄ Ｓｃｉ ８６：３１７；Ｆｌｅｘｎｅｒ（１９８９）Ａｎｎ ＮＹ Ａｃａｄ Ｓ
ｃｉ ５６９：８６、Ｆｌｅｘｎｅｒ（１９９０）Ｖａｃｃｉｎｅ ８：１７；米国特許
第４，６０３，１１２号および同第４，７６９，３３０号ならびにＷＯ８９／０１９７３
号に記載されているもの）；ＳＶ４０ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３０５および
Ｍｕｌｌｉｇａｎ（１９７９）Ｎａｔｕｒｅ ２７７：１０８およびＭａｄｚａｋ（１９
９２）Ｊ Ｇｅｎ Ｖｉｒｏｌ ７３：１５３３に記載されているもの）；インフルエン
ザウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７９７および米国特許第５，１６６，０５７号お
よびＥｎａｍｉ（１９９０）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８７：３８０２−
３８０５；ＥｎａｍｉおよびＰａｌｅｓｅ（１９９１）Ｊ Ｖｉｒｏｌ ６５：２７１１
−２７１３およびＬｕｙｔｊｅｓ（１９８９）Ｃｅｌｌ ５９：１１０（ＭｃＭｉｃｈａ
ｅｌ（１９８３）ＮＥＪ Ｍｅｄ ３０９：１３ならびにＹａｐ（１９７８）Ｎａｔｕｒ
ｅ ２７３：２３８およびＮａｔｕｒｅ（１９７９）２７７：１０８もまた参照のこと）
に記載されているような逆遺伝子技術を使用して作製した組換えインフルエンザウイルス
）；ＥＰ−０３８６８８２およびＢｕｃｈｓｃｈａｃｈｅｒ（１９９２）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ
．６６：２７３１に記載されているようなヒト免疫不全ウイルス；麻疹ウイルス（例えば
、ＡＴＣＣ ＶＲ−６７およびＶＲ−１２４７ならびにＥＰ−０４４０２１９に記載され
ているもの）；アウラ（Ａｕｒａ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３６８）；ベバ
ル（Ｂｅｂａｒｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６００およびＡＴＣＣ ＶＲ−
１２４０）；カバス（Ｃａｂａｓｓｏｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９２２）
；チクングニヤウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６４およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４
１）；フォートモーガン（Ｆｏｒｔ Ｍｏｒｇａｎ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ
−９２４）；ゲタウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３６９およびＡＴＣＣ ＶＲ−１
２４３）；キジラガハ（Ｋｙｚｙｌａｇａｃｈ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９
２７）；マヤロウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６６）；ムカン（Ｍｕｃａｍｂｏ）
ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−５８０およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４４）；ヌヅム
（Ｎｄｕｍｕ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７１）；ピクスナ（Ｐｉｘｕｎａ
）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７２およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２４５）；トナ
テ（Ｔｏｎａｔｅ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−９２５）；トリニティ（Ｔｒｉ
ｎｉｔｙ）ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−４６９）；ユナ（Ｕｎａ）ウイルス（例
えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７４）；ワタロア（Ｗｈａｔａｒｏａ）ウイルス（例えば、Ａ
ＴＣＣ ＶＲ−９２６）；Ｙ−６２−３３ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−３７５）
；オニョンウイルス、東部脳炎ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−６５およびＡＴＣＣ
ＶＲ−１２４２）；西部脳炎ウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７０、ＡＴＣＣ Ｖ
Ｒ−１２５１、ＡＴＣＣ ＶＲ−６２２およびＡＴＣＣ ＶＲ−１２５２）；ならびにコ
ロナウイルス（例えば、ＡＴＣＣ ＶＲ−７４０）およびＨａｍｒｅ（１９６６）Ｐｒｏ
ｃ Ｓｏｃ Ｅｘｐ Ｂｉｏｌ Ｍｅｄ １２１：１９０に記載されているもの。
【０１５４】
本発明の組成物の細胞への送達は、上に言及したウイルスベクターに限定されない。他
の送達方法および媒体が使用され得る（例えば、核酸発現ベクター、殺傷したアデノウイ
ルスに連結したポリカチオン性縮合ＤＮＡかまたは連結してないポリカチオン性縮合ＤＮ
Ａ単独（例えば、米国特許出願番号０８／３６６，７８７（１９９４年１２月３０日出願
）およびＣｕｒｉｅｌ（１９９２）Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ ３：１４７−１５４を
参照のこと）、リガンド連結ＤＮＡ（例えば、Ｗｕ（１９８９）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ
２６４：１６９８５−１６９８７を参照のこと）、真核生物細胞送達ビヒクル細胞（例
えば、米国特許出願番号０８／２４０，０３０（１９９４年５月９日出願）および米国特
許出願番号０８／４０４，７９６を参照のこと）、光重合化ヒドロゲル物質の沈着、手動
の遺伝子移入粒子銃（米国特許第５，１４９，６５５号に記載されているような）、米国
特許第５，２０６，１５２号およびＷＯ９２／１１０３３に記載されているような電離放
射線、核電荷中和または細胞膜との融合）。さらなるアプローチは、Ｐｈｉｌｉｐ（１９
９４）Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ １４：２４１１−２４１８およびＷｏｆｆｅｎｄｉ
ｎ（１９９４）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ９１：１５８１−１５８５に記
載される。
【０１５５】
粒子媒介遺伝子移入が使用され得る（例えば、米国特許出願番号６０／０２３，８６７
号を参照のこと）。手短には、配列を、高レベル発現のための従来の制御配列を含む従来
のベクターに挿入し得、次いで細胞標的化リガンド（例えば、アシアロオロソムコイド（
ＷｕおよびＷｕ（１９８７）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９−４４３２に記
載されているような）、Ｈｕｃｋｅｄ（１９９０）Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ
４０：２５３−２６３に記載されているようなインスリン、Ｐｌａｎｋ（１９９２）Ｂ
ｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ ３：５３３−５３９に記載されているようなガラク
トース、ラクトースまたはトランスフェリン）に連結された合成遺伝子移入分子（例えば
、ポリリジン、プロタミンおよびアルブミンのような重合ＤＮＡ結合カチオン）とともに
インキュベートされ得る。
【０１５６】
裸のＤＮＡもまた使用され得る。例示的な裸のＤＮＡ導入方法は、ＷＯ９０／１１０９
２および米国特許第５，５８０，８５９号に記載されている。取り込み効率は、生分解性
のラテックスビーズを用いて改良され得る。ＤＮＡコートラテックスビーズは、ビーズに
よるエンドサイトーシス開始の後に効率よく細胞へと輸送される。この方法は、ビーズを
処理して疎水性を高め、それによってエンドソームの破壊および細胞質へのＤＮＡの放出
を容易にすることによってさらに改良され得る。
【０１５７】
遺伝子送達ビヒクルとして作用し得るリポソームは、米国特許第５，４２２，１２０号
、ＷＯ９５／１３７９６、ＷＯ９４／２３６９７、ＷＯ９１／１４４４５、およびＥＰ−
５２４，９６８に記載される。米国特許出願６０／０２３，８６７に記載されるように、
非ウイルス性送達において、ポリペプチドをコードする核酸配列は、高レベル発現のため
の従来の制御配列を含む従来のベクターへと挿入され得、次いで細胞標的化リガンド（例
えば、アシアロオロソムコイド、インスリン、ガラクトース、ラクトースまたはトランス
フェリン）に連結された、重合性ＤＮＡ結合カチオン（例えば、ポリリジン、プロタミン
、およびアルブミン）のような合成遺伝子移入分子とともにインキュベートされ得る。他
の送達系は、種々の組織特異的または普遍的作用性のプロモーターの制御下に遺伝子を含
むＤＮＡをカプセル化するためのリポソームの使用を含む。さらに、使用に適切な非ウイ
ルス送達は、機械的送達系（例えば、Ｗｏｆｆｅｎｄｉｎら（１９９４）Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１（２４）：１１５８１−１１５８５に記載される
アプローチを含む。さらに、コード配列およびそのようなものの発現産物は、光重合化ヒ
ドロゲル物質の沈着を介して送達され得る。コード配列の送達について使用され得る、遺
伝子送達のための他の従来の方法としては、例えば、手動の遺伝子移入粒子銃（米国特許
第５，１４９，６５５号に記載されているような）；移入された遺伝子を活性化するため
の電離放射線の使用（米国特許第５，２０６，１５２号およびＷＯ９２／１１０３３に記
載されるような）が挙げられる。
【０１５８】
例示的なリポソームおよびポリカチオン性遺伝子送達ビヒクルは、米国特許第５，４２
２，１２０号および同第４，７６２，９１５号；ＷＯ９５／１３７９６；ＷＯ９４／２３
６９７；およびＷＯ９１／１４４４５；ＥＰ−０５２４９６８；およびＳｔｒｙｅｒ、Ｂ
ｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２３６−２４０頁（１９７５）、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ、Ｓ
ａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ；Ｓｚｏｋａ（１９８０）Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ
Ａｃｔａ ６００：１；Ｂａｙｅｒ（１９７９） Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａ
ｃｔａ ５５０：４６４；Ｒｉｖｎａｙ（１９８７）Ｍｅｔｈ Ｅｎｚｙｍｏｌ １４９
：１１９；Ｗａｎｇ（１９８７）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８４：７８５
１；Ｐｌａｎｔ（１９８９）Ａｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ １７６：４２０に記載されてい
るものである。
【０１５９】
ポリヌクレオチド組成物は、治療有効量の遺伝子治療ビヒクル（この用語は上記に定義
されるとおりである）を含み得る。本発明の目的のために、有効用量は、投与される個体
において、約０．０１ｍｇ／ｋｇ〜５０ｍｇ／ｋｇまたは０．０５ｍｇ／ｋｇ〜約１０ｍ
ｇ／ｋｇのＤＮＡ構築物である。
【０１６０】
（送達方法）
一旦処方されると、本発明のポリヌクレオチド組成物は、（１）被験体に直接）；（２
）エキソビボで被験体由来の細胞に送達されて；または（３）組換えタンパク質の発現の
ためにインビトロで、投与され得る。処置される被験体は、哺乳動物または鳥類であり得
る。ヒト被験体もまた処置され得る。
【０１６１】
この組成物の直接送達は、皮下、腹腔内、静脈内、または筋肉内の注射によって、ある
いは組織の間隙空間への送達によって一般的に達成される。この組成物はまた、病巣へ投
与され得る。他の投与様式としては、経口投与および肺投与、坐剤、および経皮（ｔｒａ
ｎｓｄｅｒｍａｌ）もしくは経皮（ｔｒａｎｓｃｕｔａｎｅｏｕｓ）適用（例えばＷＯ９
８／２０７３４を参照のこと）、針、ならびに遺伝子銃またはハイポスプレーが挙げられ
る。投薬治療は、単回用量スケジュールまたは多数回用量スケジュールであり得る。
【０１６２】
エキソビボ送達および被験体への形質転換細胞の再移植のための方法は、当該分野で公
知であり、そして例えばＷＯ９３／１４７７８に記載されている。エキソビボ適用に有用
である細胞の例としては、例えば、幹細胞、特に、造血細胞、リンパ細胞、マクロファー
ジ、樹状細胞または腫瘍細胞が挙げられる。
【０１６３】
一般的に、エキソビボ適用およびインビトロ適用の両方のための核酸の送達は、以下の
手順：例えば、デキストラン媒介トランスフェクション、リン酸カルシウム沈降、ポリブ
レン媒介トランスフェクション、原形質体融合、エレクトロポレーション、ポリヌクレオ
チドのリポソーム内へのカプセル化、およびＤＮＡの核への直接の微量注入（これらはす
べて当該分野で周知である）で達成され得る。
【０１６４】
（ポリヌクレオチドおよびポリペプチドの薬学的組成物）
上記に記載の薬学的に受容可能なキャリアおよび塩に加えて、以下のさらなる薬剤がポ
リヌクレオチド組成物および／またはポリペプチド組成物とともに使用され得る。
【０１６５】
（Ａ．ポリペプチド）
１つの例は、限定することなく以下を包含するポリペプチドである：アシアロオロソム
コイド（ＡＳＯＲ）；トランスフェリン；アシアロ糖タンパク質；抗体；抗体フラグメン
ト；フェリチン；インターロイキン；インターフェロン；顆粒球マクロファージコロニー
刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、マクロファージコ
ロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、幹細胞因子およびエリスロポエチン。ウイルス抗原（例
えば、エンベロープタンパク質）もまた、使用され得る。また、他の侵襲性生物由来のタ
ンパク質（例えば、ＲＩＩとして知られる熱帯熱マラリア原虫（ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ
ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）のサーカムスポロゾイト（ｃｉｒｃｕｍｓｐｏｒｏｚｏｉｔｅ）
タンパク質由来の１７アミノ酸ペプチド）。
【０１６６】
（Ｂ．ホルモン、ビタミンなど）
包含され得る他の群は、例えば、ホルモン、ステロイド、アンドロゲン、エストロゲン
、甲状腺ホルモン、またはビタミン、葉酸である。
【０１６７】
（Ｃ．ポリアルキレン、ポリサッカリドなど）
また、ポリアルキレングリコールが、所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドとともに
含まれ得る。好ましい実施態様において、ポリアルキレングリコールは、ポリエチレング
リコールである。さらに、モノサッカリド、ジサッカリド、またはポリサッカリドが含有
され得る。この局面の好ましい実施態様において、このポリサッカリドは、デキストラン
またはＤＥＡＥ−デキストランである。また、キトサンおよびポリ（乳酸−コ−グリコリ
ド）
（Ｄ．脂質およびリポソーム）
所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドはまた、被験体またはそれに由来する細胞への
送達の前に、脂質中にカプセル化され得るか、またはリポソーム中にパッケージングされ
得る。
【０１６８】
脂質カプセル化は、一般的に核酸に安定に結合し得るかまたは核酸を捕捉および維持し
得る、リポソームを用いて達成される。脂質調製物に対する縮合ポリヌクレオチドの比は
、変動し得るが、一般的に約１：１（ｍｇＤＮＡ：マイクロモル脂質）であるか、または
より多くの脂質である。核酸の送達のためのキャリアとしてリポソーム使用の概説につい
ては、ＨｕｇおよびＳｌｅｉｇｈｔ（１９９１）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃ
ｔａ．１０９７：１−１７；Ｓｔｒａｕｂｉｎｇｅｒ（１９８３）Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍ
ｏｌ．１０１：５１２−５２７を参照のこと。
【０１６９】
本発明における使用のためのリポソーム調製物は、カチオン性（正に荷電した）調製物
、アニオン性（負に荷電した）調製物および中性調製物を包含する。カチオン性リポソー
ムは、機能的な形態で、プラスミドＤＮＡ（Ｆｅｌｇｎｅｒ（１９８７）Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４：７４１３−７４１６）；ｍＲＮＡ（Ｍａｌｏｎ
ｅ（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：６０７７−６０
８１；および精製した転写因子（Ｄｅｂｓ（１９９０）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５
：１０１８９−１０１９２）の細胞内送達を媒介することが示されている。
【０１７０】
カチオン性リポソームは容易に入手可能である。例えば、Ｎ［１−２、３−ジオレイル
オキシ）プロピル］−Ｎ、Ｎ、Ｎ−トリエチルアンモニウム（ＤＯＴＭＡ）リポソームは
、ＧＩＢＣＯ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹからの商標リポフェクチン（Ｌ
ｉｐｏｆｅｃｔｉｎ）の下で入手可能である（Ｆｅｌｇｎｅｒ、前出もまた参照のこと）
。他の市販されているリポソームとしては、トランスフェクテース（ｔｒａｎｓｆｅｃｔ
ａｃｅ）（ＤＤＡＢ／ＤＯＰＥ）およびＤＯＴＡＰ／ＤＯＰＥ（Ｂｏｅｒｈｉｎｇｅｒ）
が挙げられる。他のカチオン性リポソームは、当該分野で周知の技法を使用して、容易に
利用可能な物質から調製され得る。例えば、ＤＯＴＡＰ（１、２−ビス（オレオイルオキ
シ）−３−（トリメチルアンモニオ）プロパン）リポソームの合成の記載について、Ｓｚ
ｏｋａ（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：４１９４−
４１９８；ＷＯ９０／１１０９２を参照のこと。
【０１７１】
同様に、アニオン性リポソームおよび中性リポソームは、例えば、Ａｖａｎｔｉ Ｐｏ
ｌａｒ Ｌｉｐｉｄｓ（Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）から容易に入手可能であるか、ま
たは容易に入手可能な物質を使用してたやすく調製され得る。このような物質としては、
とりわけ、ホスファチジルコリン、コレステロール、ホスファチジルエタノールアミン、
ジオレオイルホスファチジルコリン（ＤＯＰＣ）、ジオレオイルホスファチジルグリセロ
ール（ＤＯＰＧ）、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）が挙げら
れる。これらの物質はまた、適切な比率のＤＯＴＭＡ出発物質およびＤＯＴＡＰ出発物質
と混合され得る。これらの物質を使用してリポソームを作製する方法は、当該分野で周知
である。
【０１７２】
このリポソームとしては、多重膜リポソーム（ＭＬＶ）、小さな単膜リポソーム（ＳＵ
Ｖ）、または大きな単膜リポソーム（ＬＵＶ）が挙げられ得る。種々のリポソーム−核酸
複合体は当該分野で公知の方法を使用して調製され得る。例えば、Ｓｔｒａｕｂｉｎｇｅ
ｒ（１９８３）Ｍｅｔｈ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０１：５１２−５２７；Ｓｚｏｋａ（１９
７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７５：４１９４−４１９８；Ｐ
ａｐａｈａｄｊｏｐｏｕｌｏｓ（１９７５）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ
３９４：４８３；Ｗｉｌｓｏｎ（１９７９）Ｃｅｌｌ １７：７７）；Ｄｅａｍｅｒお
よびＢａｎｇｈａｍ（１９７６）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ ４４３：
６２９；Ｏｓｔｒｏ（１９７７）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕ
ｎ．７６：８３６；Ｆｒａｌｅｙ（１９７９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．
ＵＳＡ ７６：３３４８）；ＥｎｏｃｈおよびＳｔｒｉｔｔｍａｔｔｅｒ（１９７９）Ｐ
ｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７６：１４５；Ｆｒａｌｅｙ（１９８０
）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８０）２５５：１０４３１；ＳｚｏｋａおよびＰａｐ
ａｈａｄｊｏｐｏｕｌｏｓ（１９７８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
７５：１４５；ならびにＳｃｈａｅｆｅｒ−Ｒｉｄｄｅｒ（１９８２）Ｓｃｉｅｎｃｅ
２１５：１６６を参照のこと。
【０１７３】
（Ｅ．リポタンパク質）
さらに、リポタンパク質が、送達されるポリヌクレオチド／ポリペプチドと共に含まれ
得る。利用されるリポタンパク質の例としては、カイロミクロン、ＨＤＬ、ＩＤＬ、ＬＤ
Ｌ、およびＶＬＤＬが挙げられる。これらのタンパク質の変異体、フラグメント、または
融合物もまた、使用され得る。また、天然に存在するリポタンパク質の改変体（例えば、
アセチル化されたＬＤＬ）が使用され得る。これらのリポタンパク質は、リポタンパク質
レセプターを発現する細胞へのポリヌクレオチドの送達を標的化し得る。好ましくは、リ
ポタンパク質が、送達されるポリヌクレオチドと共に含まれる場合、他の標的化リガンド
はその組成物中には含まれない。
【０１７４】
天然に存在するリポタンパク質は、脂質部分およびタンパク質部分を含む。このタンパ
ク質部分は、アポタンパク質として知られる。現在では、アポタンパク質Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ
、およびＥが単離および同定されている。少なくともこれらの２つはいくつかのタンパク
質を含み、ローマ数字、ＡＩ、ＡＩＩ、ＡＩＶ；ＣＩ、ＣＩＩ、ＣＩＩＩによって命名さ
れている。
【０１７５】
１つのリポタンパク質は、１つより多くのアポタンパク質を含み得る。例えば、天然に
存在するカイロミクロンはＡ、Ｂ、Ｃ、およびＥから構成され、時間が経てばこれらのリ
ポタンパク質はＡを欠失し、そしてＣおよびＥアポタンパク質を獲得する。ＶＬＤＬは、
Ａ、Ｂ、Ｃ、およびＥアポタンパク質を含み、ＬＤＬはアポタンパク質Ｂを含み；そして
ＨＤＬはアポタンパク質Ａ、Ｃ、およびＥを含む。
【０１７６】
これらのアポタンパク質のアミノ酸は公知であり、そして例えば、Ｂｒｅｓｌｏｗ（１
９８５）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ ５４：６９９；Ｌａｗ（１９８６）Ａｄｖ
．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．１５１：１６２；Ｃｈｅｎ（１９８６）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃ
ｈｅｍ ２６１：１２９１８；Ｋａｎｅ（１９８０）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓ
ｃｉ ＵＳＡ ７７：２４６５；およびＵｔｅｒｍａｎｎ（１９８４）Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ
ｔ ６５：２３２に記載されている。
【０１７７】
リポタンパク質は、トリグリセリド、コレステロール（遊離およびエステル）、および
リン脂質を含む、種々の脂質を含む。この脂質の組成は、天然に存在するリポタンパク質
において変化する。例えば、カイロミクロンは主としてトリグリセリドを含む。天然に存
在するリポタンパク質の脂質含有物のより詳細な記載は、例えば、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍ
ｏｌ．１２８（１９８６）に見いだされ得る。この脂質の組成は、レセプター結合活性に
ついてアポタンパク質の立体構造を補助するように選択される。脂質組成はまた、ポリヌ
クレオチド結合分子との疎水性相互作用および会合を容易にするように選択され得る。
【０１７８】
天然に存在するリポタンパク質は、例えば、超遠心分離によって血清から単離され得る
。そのような方法は、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．（前出）；Ｐｉｔａｓ（１９８０）Ｊ
．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５５：５４５４−５４６０およびＭａｈｅｙ（１９７９）Ｊ Ｃｌ
ｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ ６４：７４３−７５０に記載される。リポタンパク質はまた、イン
ビトロ方法によってかまたは所望の宿主細胞中のアポタンパク質遺伝子の発現による組換
え方法によって産生され得る。例えば、Ａｔｋｉｎｓｏｎ（１９８６）Ａｎｎｕ Ｒｅｖ
Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｃｈｅｍ １５：４０３およびＲａｄｄｉｎｇ（１９５８）Ｂｉｏｃ
ｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ ３０：４４３を参照のこと。リポタンパク質はまた
、Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｓｔｏｕｇｈｔｏｎ
、ＭＡ、ＵＳＡのような商業的な供給者から購入され得る。リポタンパク質のさらなる記
載は、ＷＯ９８／０６４３７にて見い出され得る。
【０１７９】
（Ｆ．ポリカチオン性薬剤）
ポリカチオン性薬剤は、送達される所望のポリヌクレオチド／ポリペプチドを含む組成
物中に、リポタンパク質を伴ってかまたはリポタンパク質を伴わずに含まれ得る。
【０１８０】
ポリカチオン性薬剤は、代表的には、生理的に適切なｐＨにおいて正味の正電荷を示し
、そして所望の位置への送達を容易にするために核酸の電荷を中和し得る。これらの薬剤
は、インビトロ適用、エキソビボ適用、およびインビボ適用のいずれも有する。ポリカチ
オン性薬剤は、生きている被験体に、筋肉内、皮下などのいずれかで核酸を送達するため
に使用され得る。
【０１８１】
以下は、ポリカチオン性薬剤として有用なポリペプチドの例である：ポリリジン、ポリ
アルギニン、ポリオルニチン、およびプロタミン。他の例としては、ヒストン、プロタミ
ン、ヒト血清アルブミン、ＤＮＡ結合タンパク質、非ヒストン染色体タンパク質、ＤＮＡ
ウイルス由来のコートタンパク質（例えば、Ｘ１７４）が挙げられる。転写因子もまた、
ＤＮＡに結合するドメインを含み、従って核酸縮合薬剤として有用であり得る。手短に言
えば、転写因子（例えば、Ｃ／ＣＥＢＰ、ｃ−ｊｕｎ、ｃ−ｆｏｓ、ＡＰ−１、ＡＰ−２
、ＡＰ−３、ＣＰＦ、Ｐｒｏｔ−１、Ｓｐ−１、Ｏｃｔ−１、Ｏｃｔ−２、ＣＲＥＰ、お
よびＴＦＩＩＤ）は、ＤＮＡ配列に結合する塩基性ドメインを含む。
【０１８２】
有機ポリカチオン性薬剤としては、スペルミン、スペルミジン、およびプトレシン（ｐ
ｕｒｔｒｅｓｃｉｎｅ）が挙げられる。
【０１８３】
ポリカチオン性薬剤の大きさおよびその物理的特性は、上記の表から推定されて、他の
ポリペプチドポリカチオン性薬剤が構築され得るか、または合成ポリカチオン性薬剤が作
製され得る。
【０１８４】
有用な合成ポリカチオン性薬剤としては、例えば、ＤＥＡＥ−デキストラン、ポリブレ
ンが挙げられる。ＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎＴＭ、およびｌｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥＴＭは
、ポリヌクレオチド／ポリペプチドと組み合わせた場合にポリカチオン性複合体を形成す
るモノマーである。
【０１８５】
（免疫診断アッセイ）
本発明のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ抗原は、抗体レベルを検出するためのイムノア
ッセイにおいて使用され得る（または、逆に抗Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ抗体は抗原
レベルを検出するために使用され得る）。十分に規定された組換え抗原に基づくイムノア
ッセイは、侵襲性の診断方法と置き換えるために開発され得る。生物学的サンプル（例え
ば、血液サンプルまたは血清サンプルを含む）内のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓタンパ
ク質に対する抗体が検出され得る。このイムノアッセイの設計は、多くのバリエーション
の対象であり、そして種々のこれらは当該分野で公知である。イムノアッセイのプロトコ
ルは、例えば、競合アッセイ、または直接反応アッセイ、またはサンドイッチ型アッセイ
に基づき得る。プロトコルはまた、例えば、固体支持体を使用し得、または免疫沈降によ
ってなされ得る。ほとんどのアッセイは、標識された抗体またはポリペプチドの使用を含
み、その標識は、例えば、蛍光分子、化学発光分子、放射性分子、または色素分子であり
得る。プローブからのシグナルを増幅するアッセイは公知である；これらの例は、ビオチ
ンおよびアビジンを利用するアッセイ、ならびに酵素標識および酵素媒介イムノアッセイ
（例えば、ＥＬＩＳＡアッセイ）である。
【０１８６】
免疫診断に適切であり、かつ適切な標識試薬を備えるキットは、適切な容器中に、アッ
セイの実行に必要とされる残りの試薬および物質（例えば、適切な緩衝液、塩溶液など）
ならびにアッセイの説明書の適切なセットと共に本発明の組成物を含む適切な物質を詰め
ることによって構築される。
【０１８７】
（核酸ハイブリダイゼーション）
「ハイブリダイゼーション」とは、水素結合による２つの核酸配列の互いに対する会合
をいう。代表的には、１つの配列は、固体支持体に固定され、そして他方は溶液中で遊離
している。次いで、２つの配列は水素結合に好ましい条件下で互いに接触して配置される
。この結合に影響を与える因子としては以下が挙げられる：溶媒のタイプおよび容量；反
応温度；ハイブリダイゼーションの時間；撹拌；液体相の配列の固体支持体への非特異的
な付着をブロックする薬剤（Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ試薬またはＢＬＯＴＴＯ）；配列の濃
度；配列の会合の速度を増大させる化合物（硫酸デキストランまたはポリエチレングリコ
ール）の使用；およびハイブリダイゼーション後の洗浄条件のストリンジェンシー。Ｓａ
ｍｂｒｏｏｋら（前出）第２巻、第９章、９．４７〜９．５７頁を参照のこと。
【０１８８】
「ストリンジェンシー」とは、異なる配列よりも非常に類似する配列の会合に好ましい
ハイブリダイゼーション反応における条件をいう。例えば、研究中のハイブリッドの計算
されたＴｍより約１２０〜２００℃低い温度および塩濃度の組み合わせが選択されるべき
である。温度および塩条件はしばしば、フィルタに固定したゲノムＤＮＡのサンプルが目
的の配列にハイブリダイズし、次いで異なるストリンジェンシーの条件下で洗浄される、
予備的な実験において経験的に決定され得る。Ｓａｍｂｒｏｏｋら、９．５０頁を参照の
こと。
【０１８９】
例えば、サザンブロットを行う場合、考慮する変数は、（１）ブロットされるＤＮＡの
複雑さ、および（２）プローブと検出される配列との間の相同性である。研究されるフラ
グメントの全量は、プラスミドまたはファージ消化物については０．１〜１μｇ、高度に
複雑な真核生物ゲノム中の単一コピー遺伝子については１０−９〜１０−８ｇまで、１０
倍変化し得る。より低い複雑さのポリヌクレオチドについては、実質的により短いブロッ
ティング、ハイブリダイゼーション、および曝露時間、より少量の出発ポリヌクレオチド
、およびより低い特異的活性のプローブが使用され得る。例えば、単一コピーの酵母遺伝
子は、１μｇの酵母ＤＮＡで開始し、２時間ブロットし、そして４〜８時間、１０８ｃｐ
ｍ／μｇのプローブとハイブリダイズして、わずか１時間の曝露時間を用いて検出され得
る。単一コピーの哺乳動物遺伝子について、保存性のアプローチは、１０μｇのＤＮＡで
開始し、一晩ブロットし、そして１０８ｃｐｍ／μｇより多いプローブを用いて１０％硫
酸デキストランの存在下で一晩ハイブリダイズし、約２４時間露光時間を生じる。
【０１９０】
いくつかの因子が、プローブと目的のフラグメントとの間のＤＮＡ−ＤＮＡハイブリッ
ドの融解温度（Ｔｍ）、ならびに、結果として、ハイブリダイゼーションおよび洗浄につ
いての適切な条件に影響を与え得る。多くの場合において、そのプローブはフラグメント
に対して１００％相同なわけではない。他の共通して直面する変化には、ハイブリダイズ
する配列の長さおよび全Ｇ＋Ｃ含量、ならびにハイブリダイゼーション緩衝液のイオン強
度およびホルムアミド含量が含まれる。これらのすべての因子の効果は、一つの式によっ
て近似され得る：
Ｔｍ＝８１＋１６．６（ｌｏｇ１０Ｃｉ）＋０．４［％（Ｇ＋Ｃ）］−０．６（％ホ
ルムアミド）−６００／ｎ−１．５（％ミスマッチ）。
ここでＣｉは塩濃度（一価イオン）であり、そしてｎは、塩基対内のハイブリッドの長さ
である（ＭｅｉｎｋｏｔｈおよびＷａｈｌ（１９８４）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３
８：２６７〜２８４からわずかに改変した）。
【０１９１】
ハイブリダイゼーション実験の設計において、核酸ハイブリダイゼーションに影響を与
えるいくつかの因子が簡便に変更され得る。ハイブリダイゼーションおよび洗浄の温度な
らびに洗浄時の塩濃度を調整するのが最も簡単である。ハイブリダイゼーション温度（す
なわち、ストリンジェンシー）が上昇するにつれて、非相同的な鎖の間で起こるハイブリ
ダイゼーションは起こりにくくなるようであり、結果として、バックグラウンドが減少す
る。放射標識したプローブが固定化されたフラグメントと完全に相同ではない場合（遺伝
子ファミリーおよび種間のハイブリダイゼーション実験における場合で頻繁であるように
）、ハイブリダイゼーション温度は低下されなければならず、そしてバックグラウンドが
増大する。洗浄の温度は、類似の様式で、ハイブリダイゼーションバンドの強度、および
バックグラウンドの程度に影響を与える。洗浄のストリンジェンシーはまた、塩濃度の減
少とともに増大する。
【０１９２】
一般的に、５０％ホルムアミドの存在下で都合よいハイブリダイゼーション温度は、標
的フラグメントに９５％〜１００％相同であるプローブについて４２℃、９０％〜９５％
相同性については３７℃、８５％〜９０％相同性については３２℃である。より低い相同
性については、上記の式を用いて、適切にホルムアミド含量が低くされ、そして温度が調
整されるべきである。プローブと標的フラグメントとの間の相同性が未知である場合、最
も単純なアプローチは、ともにストリンジェントではないハイブリダイゼーション条件お
よび洗浄条件で開始することである。オートラジオグラフィー後に非特異的バンドまたは
高いバックグラウンドが観察される場合、フィルタは高ストリンジェンシーで洗浄され得
、そして再び露光され得る。露光のために必要な時間がこのアプローチを非実用的にする
場合、いくつかのハイブリダイゼーションおよび／または洗浄ストリンジェンシーが並行
して試験されるべきである。
【０１９３】
（核酸プローブアッセイ）
本発明に従う核酸プローブを利用する、ＰＣＲ、分枝ＤＮＡプローブアッセイ、または
ブロッティング技術のような方法は、ｃＤＮＡまたはｍＲＮＡの存在を決定し得る。プロ
ーブは、検出されるに十分に安定な、二重鎖または二本鎖複合体を形成し得る場合に、本
発明の配列に「ハイブリダイズする」といわれる。
【０１９４】
核酸プローブは、本発明のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓヌクレオチド配列（センス鎖
およびアンチセンス鎖の両方を含む）にハイブリダイズする。多くの異なるヌクレオチド
配列がアミノ酸配列をコードするが、ネイティブなＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列は
、細胞に存在する実際の配列であるので、好ましい。ｍＲＮＡは、コード配列を表し、従
ってプローブはコード配列に相補的であるはずであり、一本鎖ｃＤＮＡはｍＲＮＡに相補
的であり、従ってｃＤＮＡプローブは非コード配列に相補的であるべきである。
【０１９５】
プローブ配列はＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列（またはその相補物）に同一である
必要はない。核酸プローブが標的ヌクレオチドと、検出され得る二重鎖を形成し得る場合
、配列および長さにおけるいくつかの変動は、アッセイ感度の増加をもたらし得る。また
、核酸プローブは、形成された二重鎖を安定化するためにさらなるヌクレオチドを含み得
る。さらなるＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列もまた、形成された二重鎖を検出するた
めの標識として役立ち得る。例えば、非相補的ヌクレオチド配列が、そのプローブの５’
末端に付着され得、ここでそのプローブ配列の残りはＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列
に相補的である。あるいは、非相補的塩基またはより長い配列は、プローブ中に分散され
得、ただし、プローブ配列は、それとハイブリダイズし、そしてそれによって検出され得
る二重鎖を形成するために十分にＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列との相補性を有する
。
【０１９６】
プローブの正確な長さおよび配列は、ハイブリダイゼーション条件（例えば、温度、塩
条件など）に依存する。例えば、診断的適用については、分析物の配列の複雑さに依存し
て、核酸プローブは、代表的には、少なくとも１０〜２０ヌクレオチド、好ましくは１５
〜２５、そしてより好ましくは少なくとも３０ヌクレオチドを含むが、これよりも短くも
あり得る。短いプライマーは、一般的には、鋳型との十分に安定なハイブリッド複合体を
形成するためにより低い温度を必要とする。
【０１９７】
プローブは、合成的手順（例えば、Ｍａｔｔｅｕｃｃｉらのトリエステル法（Ｊ．Ａｍ
．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．（１９８１）１０３：３１８５））によってか、またはＵｒｄｅａ
ら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８３）８０：７４６１）によ
ってか、または市販の自動オリゴヌクレオチド合成機を使用して、生成され得る。
【０１９８】
プローブの化学的性質は、優先度に従って選択され得る。特定の適用については、ＤＮ
ＡまたはＲＮＡが適切である。他の適用については、改変（例えば、ホスホロチオエート
またはメチルホスホネートのようなバックボーンの改変）が組み込まれ得、インビボの半
減期を増大させ、ＲＮＡ親和性を変化させ、ヌクレアーゼ耐性などを増大させるために使
用され得（例えば、ＡｇｒａｗａｌおよびＩｙｅｒ（１９９５）Ｃｕｒｒ Ｏｐｉｎ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ６：１２−１９；Ａｇｒａｗａｌ（１９９６）ＴＩＢＴＥＣＨ １
４：３７６−３８７を参照のこと）；ペプチド核酸のようなアナログもまた使用され得る
（例えば、Ｃｏｒｅｙ（１９９７）ＴＩＢＴＥＣＨ １５：２２４−２２９；Ｂｕｃｈａ
ｒｄｔら（１９９３）ＴＩＢＴＥＣＨ １１：３８４−３８６を参照のこと）。
【０１９９】
あるいは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）は、少量の標的核酸を検出する別の周知の
手段である。そのアッセイは、Ｍｕｌｌｉｓら、（Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８
７）１５５：３３５−３５０）；米国特許第４，６８３，１９５号および同第４，６８３
，２０２号に記載されている。２つの「プライマー」ヌクレオチドは、標的核酸とハイブ
リダイズし、そして反応を開始するために使用される。このプライマーは、増殖標的（ま
たはその相補物）の配列にハイブリダイズしない、二重鎖の安定性を補助するための、ま
たは、例えば、都合よい制限部位を組み込むための配列を含み得る。代表的には、このよ
うな配列は、所望のＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列に隣接する。
【０２００】
熱安定性ポリメラーゼは、もともとの標的核酸を鋳型として使用して、プライマーから
標的核酸のコピーを作製する。標的核酸の閾値量がポリメラーゼによって産生された後、
それらはより従来的な方法（例えば、サザンブロット）によって検出され得る。サザンブ
ロット法を使用する場合、標識されたプローブは、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ配列（
またはその相補物）にハイブリダイズする。
【０２０１】
また、ｍＲＮＡまたはｃＤＮＡは、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（前出）に記載される、従来的
なブロッティング技術によって検出され得る。ｍＲＮＡ、またはｍＲＮＡからポリメラー
ゼ酵素を使用して生成されたｃＤＮＡは、ゲル電気泳動を使用して精製および分離され得
る。次いで、ゲル上の核酸は、ニトロセルロースのような固体支持体にブロットされる。
この固体支持体は、標識されたプローブに曝露され、次いで洗浄して、すべてのハイブリ
ダイズしていないプローブを除去する。次に、標識プローブを含む二重鎖を検出する。代
表的には、そのプローブは、放射活性部分で標識される。
【０２０２】
（本発明を実施するための様式）
２８２１の核酸コード配列を、Ｓ．ａｕｒｅｕｓ（ＮＣＴＣ ８３２５株）で、それら
の推定翻訳産物とともに同定した。核酸配列を、奇数番号（配列番号１、３、５、７、・
・・、５６３９、５６４１）とともに、配列表で与える。各核酸配列、その推定翻訳産物
（配列番号２、４、６、８、・・・５６４０、５６４２）に続く。推定機能を、配列表の
＜２２３＞領域に与える。
【０２０３】
種々の試験を使用して、実施例中で同定したタンパク質のインビボ免疫原性を評価し得
る。例えば、そのタンパク質を、組換え的に発現させ、そして、このタンパク質を使用し
て、イムノブロットによって患者の血清をスクリーニングする。タンパク質と患者血清と
の間の陽性反応は、この患者が、以前にこのタンパク質に対して免疫応答を起こした（す
なわち、このタンパク質が免疫原である）ということを示す。この方法をまた使用して、
免疫優性のタンパク質を同定し得る。
【０２０４】
組換えタンパク質をまた簡便に使用して、（例えば、マウスにおいて）抗体を調製し得
る。これらを、タンパク質が細胞表面に位置するということを直接確認するために使用し
得る。標識化抗体（例えば、ＦＡＣＳのための蛍光標識化）を、インタクトな細菌ととも
にインキュベートし得、そして、細菌表面上の標識の存在で、タンパク質の位置を確認す
る。
【０２０５】
本発明は、実施例のみを介して記載され、そして、改変がなされ得るが、本発明の範囲
および意図内であるということが、理解される。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の配列番号からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、タンパク質：
【化１】
。
【請求項２】
請求項１に記載のタンパク質と、５０％以上の配列同一性を有する、タンパク質。
【請求項３】
以下の配列番号からなる群から選択されるアミノ酸配列のフラグメントを含む、タンパ
ク質：
【化２】
。
【請求項４】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質に結合する抗体。
【請求項５】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質をコードする核酸分子。
【請求項６】
請求項５に記載の核酸分子であって、該核酸分子が、以下の配列番号からなる群から選
択されるヌクレオチド配列を含む、核酸分子：
【化３】
。
【請求項７】
以下の配列番号からなる群から選択されるヌクレオチド配列のフラグメントを含む、核
酸分子：
【化４】
。
【請求項８】
請求項５〜請求項７のいずれか１項に記載の核酸分子に相補的なヌクレオチド配列を含
む、核酸分子。
【請求項９】
請求項５〜請求項８のいずれか１項に記載の核酸分子に対して、５０％以上の配列相同
一性を有するヌクレオチド配列を含む、核酸分子。
【請求項１０】
高ストリンジェンシー条件下で、請求項５〜請求項９のいずれか１項に記載の核酸分子
とハイブリダイズし得る、核酸分子。
【請求項１１】
請求項１〜請求項１０のいずれかに記載のタンパク質、核酸分子、または抗体を含む、
組成物。
【請求項１２】
ワクチン組成物または診断組成物である、請求項１１に記載の組成物。
【請求項１３】
医薬品としての使用のための、請求項１１または請求項１２に記載の組成物。
【請求項１４】
ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ細菌、特にＳ．ａｕｒｅｕｓに起因する感染の処置また
は予防のための医薬の製造における、請求項１３に記載の組成物の使用。
【請求項１５】
疾患が敗血症である、請求項１４に記載の使用。
【請求項１６】
患者に治療有効量の請求項１３に記載の組成物を投与する工程を包含する、該患者を処
置する方法。
【請求項１７】
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ核酸配列内に含まれる標的核酸を増幅するためのプライ
マーを含有するキットであって、該キットは、第１のプライマーおよび第２のプライマー
を含み、ここで、該第１のプライマーは、該標的配列に対して実質的に相補的であり、そ
して、該第２のプライマーは、該標的配列の相補鎖に対して実質的に相補的であり、ここ
で、実質的な相補性を有する該プライマーの一部が、増幅される標的配列の末端を規定し
、そしてここで、該第１のプライマーおよび／または該第２のプライマーが、請求項５〜
請求項１０のいずれか１項に記載の核酸である、キット。
【請求項１８】
１本鎖または２本鎖の核酸（またはそれらの混合物）中に含まれるＳｔａｐｈｙｌｏｃ
ｏｃｃｕｓ鋳型核酸配列の増幅を可能にする第１の１本鎖オリゴヌクレオチドおよび第２
の１本鎖オリゴヌクレオチドを含有するキットであって、ここで：（ａ）該第１のオリゴ
ヌクレオチドは、該鋳型核酸配列に対して実質的に相補的であるプライマー配列を含み；
（ｂ）該第２のオリゴヌクレオチドは、該鋳型核酸配列の相補鎖に対して実質的に相補的
であるプライマー配列を含み；（ｃ）該第１のオリゴヌクレオチドおよび／または該第２
のオリゴヌクレオチドは、該鋳型核酸に対して相補的でない配列を含み；（ｄ）該プライ
マー配列が、増幅される該鋳型配列の末端を規定し；そして（ｅ）該第１のオリゴヌクレ
オチドおよび／または該第２のオリゴヌクレオチドは、請求項５〜請求項１０のいずれか
１項に記載の核鎖である、キット。
【請求項１９】
式ＮＨ２−Ａ−［−Ｘ−Ｌ−］ｎ−Ｂ−ＣＯＯＨにより表せられるハイブリッドタンパ
ク質であって、ここで、Ｘは、請求項１、請求項２または請求項３に記載のタンパク質の
アミノ酸配列であり、Ｌは、任意のリンカーアミノ酸配列であり、Ａは、任意のＮ末端ア
ミノ酸配列であり、Ｂは、任意のＣ末端アミノ酸配列であり、そして、ｎは、１よりも大
きい整数である、ハイブリッドタンパク質。
【請求項２０】
試験化合物と、請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質とを接触させる
工程、および該試験化合物が、該タンパク質に結合するか否かを決定する工程を包含する
、アッセイ。
【請求項２１】
請求項１３に記載の組成物であって、１つ以上の以下の抗原：
−Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ由来のタンパク質抗原；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来のタンパク質抗原；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ由来の該膜小胞（ＯＭＶ）調製物；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ａ、Ｃ、Ｗ１３５および／またはＹ由来の糖類
抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の糖類抗原；
−Ａ型肝炎ウイルス由来の抗原；
−Ｂ型肝炎ウイスル由来の抗原；
−Ｃ型肝炎ウイルス由来の抗原；
−Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ由来の抗原；
−ジフテリア抗原；
−破傷風抗原；
−Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｉｎｆｌｕｅｎｎｚａｅ Ｂ由来の糖類抗原；
−Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ由来の抗原；
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ａｇａｌａｃｔｉａｅ由来の抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ由来の抗原；
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ由来の抗原；
−Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ由来の抗原；
−ポリオ抗原；
−狂犬病抗原；
−麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、および／または風疹抗原；
−インフルエンザ抗原；ならびに／あるいは
−Ｍｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓ由来の抗原
をさらに含む、組成物。
【請求項２２】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質を２つ以上含む、組成物。
【請求項１】
以下の配列番号からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、タンパク質：
【化１】
。
【請求項２】
請求項１に記載のタンパク質と、５０％以上の配列同一性を有する、タンパク質。
【請求項３】
以下の配列番号からなる群から選択されるアミノ酸配列のフラグメントを含む、タンパ
ク質：
【化２】
。
【請求項４】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質に結合する抗体。
【請求項５】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質をコードする核酸分子。
【請求項６】
請求項５に記載の核酸分子であって、該核酸分子が、以下の配列番号からなる群から選
択されるヌクレオチド配列を含む、核酸分子：
【化３】
。
【請求項７】
以下の配列番号からなる群から選択されるヌクレオチド配列のフラグメントを含む、核
酸分子：
【化４】
。
【請求項８】
請求項５〜請求項７のいずれか１項に記載の核酸分子に相補的なヌクレオチド配列を含
む、核酸分子。
【請求項９】
請求項５〜請求項８のいずれか１項に記載の核酸分子に対して、５０％以上の配列相同
一性を有するヌクレオチド配列を含む、核酸分子。
【請求項１０】
高ストリンジェンシー条件下で、請求項５〜請求項９のいずれか１項に記載の核酸分子
とハイブリダイズし得る、核酸分子。
【請求項１１】
請求項１〜請求項１０のいずれかに記載のタンパク質、核酸分子、または抗体を含む、
組成物。
【請求項１２】
ワクチン組成物または診断組成物である、請求項１１に記載の組成物。
【請求項１３】
医薬品としての使用のための、請求項１１または請求項１２に記載の組成物。
【請求項１４】
ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ細菌、特にＳ．ａｕｒｅｕｓに起因する感染の処置また
は予防のための医薬の製造における、請求項１３に記載の組成物の使用。
【請求項１５】
疾患が敗血症である、請求項１４に記載の使用。
【請求項１６】
患者に治療有効量の請求項１３に記載の組成物を投与する工程を包含する、該患者を処
置する方法。
【請求項１７】
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ核酸配列内に含まれる標的核酸を増幅するためのプライ
マーを含有するキットであって、該キットは、第１のプライマーおよび第２のプライマー
を含み、ここで、該第１のプライマーは、該標的配列に対して実質的に相補的であり、そ
して、該第２のプライマーは、該標的配列の相補鎖に対して実質的に相補的であり、ここ
で、実質的な相補性を有する該プライマーの一部が、増幅される標的配列の末端を規定し
、そしてここで、該第１のプライマーおよび／または該第２のプライマーが、請求項５〜
請求項１０のいずれか１項に記載の核酸である、キット。
【請求項１８】
１本鎖または２本鎖の核酸（またはそれらの混合物）中に含まれるＳｔａｐｈｙｌｏｃ
ｏｃｃｕｓ鋳型核酸配列の増幅を可能にする第１の１本鎖オリゴヌクレオチドおよび第２
の１本鎖オリゴヌクレオチドを含有するキットであって、ここで：（ａ）該第１のオリゴ
ヌクレオチドは、該鋳型核酸配列に対して実質的に相補的であるプライマー配列を含み；
（ｂ）該第２のオリゴヌクレオチドは、該鋳型核酸配列の相補鎖に対して実質的に相補的
であるプライマー配列を含み；（ｃ）該第１のオリゴヌクレオチドおよび／または該第２
のオリゴヌクレオチドは、該鋳型核酸に対して相補的でない配列を含み；（ｄ）該プライ
マー配列が、増幅される該鋳型配列の末端を規定し；そして（ｅ）該第１のオリゴヌクレ
オチドおよび／または該第２のオリゴヌクレオチドは、請求項５〜請求項１０のいずれか
１項に記載の核鎖である、キット。
【請求項１９】
式ＮＨ２−Ａ−［−Ｘ−Ｌ−］ｎ−Ｂ−ＣＯＯＨにより表せられるハイブリッドタンパ
ク質であって、ここで、Ｘは、請求項１、請求項２または請求項３に記載のタンパク質の
アミノ酸配列であり、Ｌは、任意のリンカーアミノ酸配列であり、Ａは、任意のＮ末端ア
ミノ酸配列であり、Ｂは、任意のＣ末端アミノ酸配列であり、そして、ｎは、１よりも大
きい整数である、ハイブリッドタンパク質。
【請求項２０】
試験化合物と、請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質とを接触させる
工程、および該試験化合物が、該タンパク質に結合するか否かを決定する工程を包含する
、アッセイ。
【請求項２１】
請求項１３に記載の組成物であって、１つ以上の以下の抗原：
−Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ由来のタンパク質抗原；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ由来のタンパク質抗原；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ由来の該膜小胞（ＯＭＶ）調製物；
−Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ａ、Ｃ、Ｗ１３５および／またはＹ由来の糖類
抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の糖類抗原；
−Ａ型肝炎ウイルス由来の抗原；
−Ｂ型肝炎ウイスル由来の抗原；
−Ｃ型肝炎ウイルス由来の抗原；
−Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ由来の抗原；
−ジフテリア抗原；
−破傷風抗原；
−Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｉｎｆｌｕｅｎｎｚａｅ Ｂ由来の糖類抗原；
−Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ由来の抗原；
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ａｇａｌａｃｔｉａｅ由来の抗原；
−Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ由来の抗原；
−Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ由来の抗原；
−Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ由来の抗原；
−ポリオ抗原；
−狂犬病抗原；
−麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、および／または風疹抗原；
−インフルエンザ抗原；ならびに／あるいは
−Ｍｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓ由来の抗原
をさらに含む、組成物。
【請求項２２】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載のタンパク質を２つ以上含む、組成物。
【公開番号】特開２００９−１６５４６８（Ｐ２００９−１６５４６８Ａ）
【公開日】平成２１年７月３０日（２００９．７．３０）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−３１６４２２（Ｐ２００８−３１６４２２）
【出願日】平成２０年１２月１２日（２００８．１２．１２）
【分割の表示】特願２００２−５９２３４２（Ｐ２００２−５９２３４２）の分割
【原出願日】平成１４年３月２７日（２００２．３．２７）
【出願人】（５９２２４３７９３）カイロン ソチエタ ア レスポンサビリタ リミタータ (107)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２１年７月３０日（２００９．７．３０）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年１２月１２日（２００８．１２．１２）
【分割の表示】特願２００２−５９２３４２（Ｐ２００２−５９２３４２）の分割
【原出願日】平成１４年３月２７日（２００２．３．２７）
【出願人】（５９２２４３７９３）カイロン ソチエタ ア レスポンサビリタ リミタータ (107)
【Ｆターム（参考）】
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