微生物増殖促進組成物および微生物の培養方法
【課題】酵母などの真菌類；腸内細菌、大腸菌、乳酸菌などの細菌類などの微生物の増殖促進に好適に用いられる新規な微生物増殖促進組成物を提供する。
【解決手段】グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有している。
【解決手段】グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有している。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は微生物増殖促進組成物および微生物の培養方法に関し、詳細には、グルコースおよびアピオースを含む微生物増殖促進組成物に関するものである。本発明の微生物増殖促進組成物は、特に、酵母などの真菌類；腸内細菌、大腸菌、セレウス菌、乳酸菌などの細菌類などの微生物の増殖促進・生育促進に好適に用いられる。
【背景技術】
【０００２】
アピオースは、代表的には、以下に示すヘミアセタール型［式（Ｉ）］または非ヘミアセタール型［式（ＩＩ）］の構造
【０００３】
【化１】
を有する五炭糖であり、フラボノイド配糖体（Ｌｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ｏ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１−２）−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ）の構成糖として、グルコースと結合した２糖類の形で存在している。
【０００４】
アピオースは、例えば、トウガラシ、ピーマン、パプリカ、シシトウなどのトウガラシ属や、パセリなどのパセリ属などの植物に含まれている。しかしながら、植物中に含まれるアピオースの量は非常に微量であり、アピオースの精製品は極めて高価である。
【０００５】
本発明者は、稀少糖であるアピオースについて長年研究を行なっており、例えば、特許文献１では、アピオースなどのフラボノイド配糖体による害虫防除作用を、特許文献２では、アピオースを工業的規模で効率良く製造する方法を、それぞれ提案している。しかしながら、上記以外のアピオースの生理活性は知られていない。
【特許文献１】特開２００３−１０４８１８号公報
【特許文献２】特開２００５−１９４２４１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、新規な微生物増殖促進組成物および微生物の培養方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決することのできた本発明の微生物増殖促進組成物は、グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有するところに要旨を有している。
【０００８】
上記微生物は、細菌または真菌であることが好ましい。
【０００９】
また、上記課題を解決することのできた本発明の微生物増殖促進組成物は、上記の微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養するところに要旨を有している。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の微生物増殖促進組成物を用いれば、微生物、特に、酵母などの真菌類：腸内細菌、大腸菌、乳酸菌などの細菌類などの微生物の増殖・生育を促進させることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明者は、前述した特許文献１を報告した後も、引き続き、アピオースの新たな生理活性を探索してきた。その結果、（ア）アピオースは、微生物の増殖・生育に対して優れた促進作用を有しており、炭素源として用いられるグルコースと併用することにより上記作用が有効に発揮されること、（イ）アピオースによる微生物増殖促進作用は、実験に用いた他の単糖類では見られず、アピオースに特異的に見られることを見出し、本発明を完成した。
【００１２】
本発明の微生物増殖促進組成物は、グルコースなどのグルコース供給源以外にアピオースを必須成分として含有しており、グルコース供給源とアピオースの混合比率は、グルコース供給源をグルコースに換算したときのグルコース換算量（以下、単にグルコースと呼ぶ。）１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有するところに特徴がある。このような微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養すれば、後記する実施例で実証するように、アピオースを含有しないグルコース含有培地（対照群）で培養した場合に比べ、微生物の増殖・生育が促進される。
【００１３】
本明細書において、「微生物の増殖促進作用（または増殖・生育促進作用）」は、定常期における微生物量および世代時間の増殖速度に基づき、総合的に判断している。これらは、培養液の濁度を分光光度計で測定し、波長６６０ｎｍの吸光度（ＯＤ６６０ｎｍ）に基づいて算出される。具体的には、グルコースおよびアピオースを両方添加した実験群と、アピオースを添加せずグルコースのみを添加した対照群とについて、ＯＤ６６０ｎｍをそれぞれ測定し、当該吸光度に基づいて微生物量および世代時間の増殖速度をそれぞれ算出したとき、アピオース無添加の対照群に比べてアピオース添加群の方が、微生物量および増殖速度の少なくとも一方が、おおむね、１０％以上（好ましくは２０％以上）増加したものを、「微生物の増殖促進作用がある」と判断している。ただし、この数値は一応の目安であり、具体的な評価基準は、微生物の種類などによっても適宜適切に定められる。
【００１４】
なお、後記する実施例では、各実験群ごとに、必ず、アピオース無添加の対照群を設けている。アピオースは抱水するために含有量を精度良く測定することが極めて困難であること、アピオースを少量ずつ製造した場合ロット間のバラツキが大きいこと、などの理由により、実験ごとのデータのバラツキが大きいからである。
【００１５】
以下、本発明の微生物増殖促進組成物について詳述する。
【００１６】
本発明において、グルコース１００質量部に対するアピオースの含有比率は、おおむね、１質量部以上であり、これにより、種々の微生物に対して増殖・生育促進作用が有効に発揮される（後記する実施例を参照）。微生物の増殖・生育促進作用は、後記する実施例に示すように、概して、アピオースの含有比率が高いほど増加する傾向にあるため、アピオースの含有比率は高いほど良い。具体的には、微生物の種類や使用する培地などによっても相違するが、グルコース１００質量部に対するアピオースの好ましい含有比率は、おおむね、２質量部以上であり、より好ましい含有比率は５質量部以上である。なお、その上限は、微生物の増殖・生育促進作用との関係からは特に限定されないが、アピオースの価格などを考慮して総合的に勘案すると、グルコース１００質量部に対するアピオースの含有比率は、おおむね、１５０質量部以下であることが好ましく、１００質量部であることがより好ましく、５０質量部以下であることがより好ましい。
【００１７】
ここで、グルコース供給源とは、グルコースを少なくとも含有する糖類を意味する。具体的には、グルコースのほか、オリゴ糖類（少糖類）や多糖類などを意味し、例えば、マルトース、セロビオース、ラクトース、スクロースなどのオリゴ糖類；デンプン、グリコーゲン、セルロースなどの多糖類などが挙げられる。
【００１８】
本発明に用いられるアピオースは、市販品を用いても良い。あるいは、前述した特許文献２に記載の方法によってアピオースを調製しても良い。この方法によれば、アピオースを工業的規模で効率よく得ることができる。詳細な調製方法は、特許文献２を参照すれば良い。そのほかに、下記（ア）および（イ）の文献には、アピインからアピオースを分離するに当たり、酵素を用いる方法や加熱下に酸加水分解する方法が記載されており、これらの方法を用いてもよい。
（ア）宮道悦男著、「最新植物成分研究法 改訂版」、廣川書店、１９７１年発行、第２５７頁〜第２７３頁
（イ）名取信策ら編、「天然有機化合物実験法」、講談社、１９７８年発行、第３６２頁〜第３７６頁
【００１９】
本発明の微生物増殖促進組成物を用いて微生物を培養するに当たっては、微生物の種類ごとに、当該微生物に適した栄養培地中に上記の微生物増殖促進組成物を添加するだけで良く、これにより、所望の効果が得られる（後記する実施例を参照）。具体的には、例えば、ＬＢ培地、ＭＲＳ培地、８０４培地、３６２培地などの細菌用培地；ＹＭ培地などの酵母用培地に本発明の組成物を添加し、添加後の培地（以下では、特に、「調整培地」という。）中のグルコース濃度が、増殖を促進させたい微生物に適した濃度になるように、組成物の添加量を調整すれば良い。従って、調整培地中に含まれる他の成分、例えば、炭素源、窒素源、ビタミン、無機類などは、微生物の種類に適した栄養培地の組成をそのまま適用することができる。上記の栄養培地は、市販品を用いてもよい。
【００２０】
また、上記の調整培地を用いて培養する方法も特に限定されず、微生物に最も適した培養条件で培養すれば良い。
【００２１】
後記する実施例に示すように、アピオースによる微生物の増殖・生育促進活性は、特定の微生物に特異的に見られるものではなく、程度の差こそあれ、細菌類、真菌類などの微生物全般に見られるものである。アピオースによって微生物の増殖が促進されるメカニズムは詳細には不明であるが、後記する実施例の実験結果に基づけば、アピオースは炭素源として微生物に消費されるというよりも、むしろ、グルコースを炭素源として消費して増殖する過程である解糖系（ＥＭＰ回路）とは無関係に、微生物の増殖を促進しているのではないかと推察される。
【００２２】
本発明の微生物増殖促進組成物を適用することのできる微生物の種類は特に限定されず、例えば、酵母、かび、きのこなどの真菌類；腸内細菌、大腸菌、セレウス菌、乳酸菌などの細菌類などが挙げられる。酵母類としては、例えば、Saccharomyces cerevisiae（出芽酵母）、Schizosaccharomyces pombe（分裂酵母）、Kluyveromyces lactis、Cryptococcus neoformans、Pichia fermentans（産膜酵母）などが挙げられる。細菌類としては、例えば、腸内細菌（例えば、Serratia marcescens、Enterococcus fecalis）、大腸菌Escherichia coli、セレウス菌Bacillus cereus、乳酸菌［例えば、Leuconostoc mesenteroides（ヘテロ型乳酸菌）］などが挙げられる。
【実施例】
【００２３】
以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明は下記実施例によって制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも可能であり、それらは何れも本発明の技術的範囲に含まれる。以下では、特に断らない限り、「％」は質量％を意味する。
【００２４】
後記する実験では、以下のようにして調製したアピオースを用い、表１に示す種々の微生物を用いて生育試験を行った（実験１〜６、実験８〜１７）。また、参考のため、アピオースの還元糖（アピトール）を以下のようにして調製し、同様の実験を行なった（実験７）。
【００２５】
【表１】
【００２６】
表１に併記した培地（各微生物の最適培地）の組成は、下記（ａ）〜（ｄ）のとおりである。
【００２７】
。
（ａ）ＹＭ培地
Ｇｌｕｃｏｓｅ：１０ｇ、Ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、Ｍａｌｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ５．６に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００２８】
（ｂ）８０４培地
Ｐｏｌｙ ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：５ｇ、Ｇｌｕｃｏｓｅ：５ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：１ｇ、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ６．８に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００２９】
（ｃ）ＭＲＳ培地
Ｐｅｐｔｏｎｅ：１０ｇ、Ｍｅａｔ ｅｘｔｒａｃｔ：１０ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：５ｇ、Ｇｌｕｃｏｓｅ：２０ｇ、Ｔｗｅｅｎ８０：１ｇ、Ｋ２ＨＰＯ４：２ｇ、Ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ：５ｇ、Ｄｉａｍｍｏｎｉｕｍ ｈｙｄｒｏｇｅｎｃｉｔｒａｔｅ：２ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．２ｇ、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．０５、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ６．３に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００３０】
（ｄ）Ｂ−１培地
Ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｍｅａｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、ＮａＣｌ：３ｇ、またはこれに寒天末２０ｇを加えたものを３Ｎ ＨＣｌ水溶液でｐＨ７．０に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００３１】
（１）アピオースの調製
本実施例では、ピーマン中のフラボノイド配糖体から下記手順でアピオースを調製した。
【００３２】
まず、ピーマン（Capsicum annuum var.angulosum、品種：新さきがけ２号・早生）の種子を培土が入ったプラスチックトレーに均等に播種し、３週間栽培した後、生育した苗を培土が入ったポリビニールポットに移植してハウス内で栽培した。背丈が２０ｃｍ以上に生育した時点で圃場に移植して栽培した後、葉を回収した。
【００３３】
このようにして得られたピーマンの生葉５．２ｋｇを９０％メタノール／水の混液中に３日間浸漬し、得られた抽出液をろ過し、減圧濃縮した。この濃縮液１．５ｍＬ中にヘキサンを加え、数回分液を繰り返した後、水層を減圧濃縮し、固形物をろ過することによって暗緑色不定形固体を得た。この固体をメタノール１００ｍＬで数回洗浄し、フラボノイド二配糖体であるＬｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ｏ−Ｄ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１→２）−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅおよびＡｐｉｇｅｎｉｎ ７−Ｏ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１→２）−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅの混合物（４５．２ｇ）を得た。
【００３４】
上記のようにして得られたフラボノイド二配糖体（３ｇ）をメタノール５００ｍｌに転溶し、１０％ＨＣｌを２００ｍｌ加えた後、３５℃で加水分解を行った。１２時間後、加水分解が完了した時点で、ろ過可能な容量まで減圧濃縮を行った後、この濃縮液をＮａＯＨで中和した。中和の際に生じたＮａＣｌの結晶を濾過して除去し、フラボノイド一配糖体であるＬｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ο−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅおよびＡｐｉｇｅｎｉｎ ７−Ο−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅの混合物を得た。
【００３５】
次に、得られた母液を減圧濃縮した後、ＮａＣｌが溶けないように注意しながら適量の脱イオン水を加え、桐山式漏斗を用いてろ過し、中和の際に生じたＮａＣｌとアピオースを分離した。この操作を十数回行った後、ＯＤＳカラムに通して水画分を回収し、減圧濃縮を行うことによってアピオース（０．１２ｇ）を得た。
【００３６】
（２）アピオースの還元糖（アピトール）の調製
まず、上記のようにして得られたアピオース１ｍｇをナス型フラスコに入れ、脱イオン水１ｍｌを加えて充分溶解し、水素化ホウ素ナトリウム（ＮａＢＨ４）１００ｍｇを加えた。次いで、フラスコを共栓し、スターラーで撹拌しながら３０℃の湯煎で加熱し、３時間反応させた。その後、氷水でナス型フラスコ全体を充分冷却し、陽イオン交換樹脂ＤＷ−５０を徐々に加えて適度に振ってＮａを吸着させることにより水素化ホウ素ナトリウムを分解した。Ｈ２の気泡が発生しなくなるまで陽イオン交換樹脂ＤＷ−５０を加え、桐山式漏斗でろ別した。このようにして得られたろ液は、エバポレーターで白い粉末のホウ酸が析出するまで完全に乾固した。乾固は充分に行ない、アピオースとホウ酸が錯体を形成してしないように留意した。このようにして乾固したサンプルにメタノールを５〜１０ｍＬ加えてホウ酸を溶かした後、乾固した。この操作を十数回行うことにより、ホウ酸をメタノールとの反応物であるホウ酸トリメチルとして除去することができる。このようにしてアピオースの還元糖（アピトール）を得た（１ｇ）。
【００３７】
（３）微生物の生育試験
まず、表１に記載の菌について、表１に併記した最適培地中に加え、小型振とう培養装置（ＩＷＡＳＡＫＩ ＧＬＡＳＳ ＣＯ．，ＬＴＤ．製「ＳＨＫＵ−４」）を用いて３０℃で２４〜４８時間前培養を行なった。
【００３８】
一方、上記菌の生育には、表２に示す２種類の液体培地を用いた。上記の液体培地中、Ｍ９培地の組成は以下のとおりである。これらの液体培地は、前述した方法で得られたアピオースの１０％水溶液を用い、グルコースの濃度が０．５％で、アピオースの濃度が０．１％（グルコース：アピオース＝５：１）、またはグルコースの濃度が０．５％で、アピオースの濃度が０．５％（グルコース：アピオース＝１：１）となるように、滅菌水を用いて調製したものである。比較のため、アピオースの代わりに同量の滅菌水を加えた培地も用意した。
【００３９】
詳細には、表２の液体培地（合計６０００μＬ）中に前述した前培養液３０μＬを加え、小型振盪培養装置［バイオフォトレコーダー（登録商標）ＴＶＳ０６２ＣＡ、東洋製作所製］を用いて３０℃で振とう培養を行ない、６６０ｎｍでの吸光度（ＯＤ６６０ｎｍ）を３０分ごとに測定した。なお、アピオースの還元糖を用いて微生物の生育試験を行うときは、アピオースの代わりにアピトールを添加し、上記と同様にして生育試験を行い、６６０ｎｍでの吸光度を３０分ごとに測定した。
【００４０】
なお、微生物の生育試験は、アピオースの効果をより正確に計測するため、微生物の生育に必要最小限の物質のみを備えた培養液を含む下記組成のＭ９最少培地を用いて行なった。これにより、肉汁やイーストエキスなどに含まれる未知の不特定物質による不測の影響を排除することができる。
【００４１】
【表２】
【００４２】
（Ｍ９最少培地）
１０×Ｍ９ ｓａｌｔｓ：１００ｍＬ、１Ｍ ＭｇＳＯ４：２ｍＬ、０．１Ｍ ＣａＣｌ２：１ｍＬ、２５％ ｃａｒｂｏｎ ｓｏｕｒｃｅ、金属塩溶液：１ｍＬ、ビタミン混合液：１ｍＬを加え、水を加えて合計１Ｌとした（ｐＨ≒７）。このようにして得られた培地は、大腸菌の生育に用いる場合はそのまま使用することにし、一方、酵母や乳酸菌などの生育に使用する場合には、各微生物の培養に適した培地のｐＨとなるように、３Ｎ ＨＣｌ水溶液などを用いてｐＨを調整した。
【００４３】
ここで、「１０×Ｍ９ ｓａｌｔｓ」は、Ｎａ２ＨＰＯ４・７Ｈ２Ｏ：１２８ｇ、ＫＨ２ＰＯ４：３０ｇ、ＮａＣｌ：５ｇ、ＮＨ４Ｃｌ：１０ｇ／Ｌである。金属塩溶液の組成は、ＮａＣｌ：１ｇ、ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ：２ｇ、ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．０５ｇ、Ｎａ２ＭｏＯ４・２Ｈ２Ｏ：０．１ｇ、Ｎａ２ＷＯ４・２Ｈ２Ｏ：０．０５ｇ、Ｃｏｎｃ．ＨＣｌ：１０ｍＬ／Ｌである。ビタミン混合液の組成は、パントテン酸カルシウム４００ｍｇ、イノシトール２００ｍｇ、ニコチン酸４００ｍｇ、ｐ−アミノ安息香酸２００ｍｇ、ピリドキシン塩酸塩４００ｍｇ、チアミン塩酸塩４００ｍｇ、ビオチン２ｍｇ、ビタミンＢ１２０．５ｍｇ／Ｌである。
【００４４】
実験１：Pichia fermentansの生育試験
ここでは、酵母の一種であるPichia fermentansを用い、アピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１および表３に示す。
【００４５】
【表３】
【００４６】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００４７】
まず、誘導期に関し、０．１％アピオース添加群で約１９時間、アピオース無添加の対照群では約２０時間であり、アピオース添加群の方が増殖開始は早かった。また、世代時間に関し、０．１％アピオース添加群では約１４０．５分であり、アピオース無添加の対照群（約１７７．９分）に比べ、世代時間は短くなった。
【００４８】
また、菌数に関し、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒２．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒２．５まで増殖した。
【００４９】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースは、Pichia fermentansの増殖促進活性を有することが確認された。
【００５０】
実験２：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（１）
ここでは、ヘテロ型乳酸菌Leuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図２および表４に示す。
【００５１】
【表４】
【００５２】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００５３】
まず、誘導期に関し、０．１％アピオース添加群とアピオース無添加の対照群では差が見られなかった。一方、世代時間に関しては、０．１％アピオース添加群は、アピオース無添加の対照群に比べ、世代時間は約４０分短くなった。
【００５４】
菌数に関し、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．１程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒１．６まで増殖した。
【００５５】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースは、Leuconostoc mesenteroidesの増殖促進活性を有することが確認された。
【００５６】
実験３：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（２）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの濃度を０．０１〜０．１％の範囲で変化させたときの増殖促進作用を調べた。その結果を図３および表５に示す。
【００５７】
【表５】
【００５８】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００５９】
まず、誘導期に関し、アピオース添加群とアピオース無添加の対照群では、アピオースの濃度にかかわらず、差は見られなかった。一方、世代時間に関しては、アピオースの濃度が高くなるほど、世代時間は短くなる傾向が見られた。
【００６０】
菌数に関し、アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒２．８〜３付近まで増殖し、アピオースの濃度が高くなるにつれて吸光度も高くなる傾向が認められた。対数増殖期では、アピオースの濃度が高いほど増殖速度が速くなることが分かる。
【００６１】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースによるLeuconostoc mesenteroidesの増殖促進作用は、０．００１％以上の濃度でも認められることが確認された。
【００６２】
実験４：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（３）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの濃度を実験３に比べて更に低くし、０．００１〜０．０１％の範囲で変化させたときの増殖促進作用を調べた。その結果を図４に示す。
【００６３】
上記の図より、誘導期、対数増殖期、および定常期に移行する時間は、アピオース添加群もアピオース無添加の対照群も、殆ど変わらないが、対数増殖期の増殖速度を比較すると、０．０１％アピオース添加群が最も速く、次いで、０．００５％アピオース添加群であった。一方、０．００１％添加群は、対照群に比べ、誘導期と対数増殖期の間の加速期での増殖速度は若干速いものの、２４．５時間経過後付近から増殖速度は全く同じになったため、０．００１％添加群では、Leuconostoc mesenteroidesの増殖促進活性はないと判断した。
【００６４】
以上より、Leuconostoc mesenteroidesに対するアピオースによる増殖促進活性の限界濃度は、約０．００５％であると判定した。このように、アピオースは、極く微量でも上記活性を発揮することが確認された。
【００６５】
実験５：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（４）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオース以外の種々の単糖類（グルコース、リボース、アラビノース）を０．０１％添加したときの増殖促進作用を調べた。その結果を図５に示す。
【００６６】
上記の図に示すように、本実験に用いた４種類の単糖類のうち、対数増殖期の増殖速度は、他の単糖類に比べてアピオースが最も速い。詳細には、アピオースは、対数増殖期の初期段階（約７０分前後まで）はグルコースと殆ど差は見られなかったが、経過時間が長くなるにつれ、増殖速度の差が顕著に見られるようになった。また、アピオースと同じ５炭糖であるリボースは、アピオースに比べて著しく増殖速度が遅かった。従って、アピオースは、単糖類のなかでも微生物の増殖促進活性に極めて優れていることが確認された。
【００６７】
実験６：E.coli MG1655の生育試験
実験４において、Leuconostoc mesenteroidesの代わりにE.coli MG1655を用い、アピオース以外の単糖類（グルコース、リボース、アラビノース）を０．０１％添加したときの増殖促進作用を調べた。その結果を図６に示す。
【００６８】
上記の図に示すように、本実験に用いた４種類の単糖類のうち、アピオースは、他の単糖類に比べ、対数増殖期の増殖速度は最も速いことから、アピオースは、単糖類のなかでも微生物の増殖促進活性に極めて優れていることが確認された。
【００６９】
実験７：アピオースの還元糖を用いた微生物の生育試験
前述した実験５において、アピオースによる増殖促進活性が認められたLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの代わりにアピオースの還元糖（アピトール）を用いて生育試験を行なった。ここでは、ホウ酸の影響を考慮し、アピトールの代わりにホウ酸のみを含むサンプルを用意し、上記と同様に実験行った。これらの結果を図７に示す。
【００７０】
Leuconostoc mesenteroidesの結果は図７に示すとおりであり、アピトール添加群は、グルコースのみを含む対照群やホウ酸のみを含む対照群と殆ど差は見られず、アピオースを還元すると、増殖促進活性は消失することが判明した。
【００７１】
このように、アピオースとアピオースの還元糖であるアピトールとは、微生物に対する作用が全く異なっているが、これは、両者の構造の違いに起因していると考えられる。すなわち、アピオース中のアルデヒド基（−ＣＨＯ）は、微生物に対して資化と無関係の過程で増殖促進活性を有していると考えられるのに対し、アルデヒド基が還元されたメチノール（−ＣＨ２ＯＨ）は上記活性を有していないと考えられる。
【００７２】
実験８：Schizosaccharomyces pombeの生育試験
ここでは、酵母菌の一種であるSchizosaccharomyces pombe を用い、以下の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図８に示す。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
【００７３】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒３程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒３．５まで増殖したことから、アピオースは、Schizosaccharomyces pombeの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７４】
実験９：Saccharomyces cerevisiaeの生育試験
ここでは、酵母菌の一種であるSaccharomyces cerevisiaeを用い、前述した実施例８と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図９に示す。
【００７５】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒３．７程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒４まで増殖したことから、アピオースは、Saccharomyces cerevisiaeの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７６】
実験１０：Enterococcus faecalisの生育試験
ここでは、腸内細菌の一種であるEnterococcus faecalisを用い、前述した実施例８と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１０に示す。
【００７７】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒１．８まで増殖したことから、アピオースは、Enterococcus faecalisの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７８】
実験１１：Cryptococcus neoformansの生育試験（その１）
ここでは、酵母菌の一種であるCryptococcus neoformansを用い、以下の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１１に示す。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％＋アピオースを０．１％添加
（グルコース：アピオース＝１：０．２５）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１．２５）
（３）Ｎｏ．３：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％のみ添加した培地（対照群）
【００７９】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．７程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群（Ｎｏ．１）では、ＯＤ６６０≒２．６まで、０．５％アピオース添加群（Ｎｏ．２）では、ＯＤ６６０≒２．８まで増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、菌数も増加する傾向にあることが分かった。従って、アピオースは、Cryptococcus neoformansの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８０】
実験１２：Cryptococcus neoformansの生育試験（その２）
ここでは、上記のCryptococcus neoformansを用い、以下の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。アピオース単独の培地を用いて実験を行なったのは、アピオースが資化されるか（すなわち、炭素源／エネルギー源となるか）どうかを確認するためである。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にアピオースを０．５％のみ添加した培地（参考群）
【００８１】
その結果を図１２に示す。上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群に比べて、アピオースのみを添加した参考群では菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．６程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００８２】
実験１３：Serratia marcescensの生育試験（１）
ここでは、生育が容易であり、世代時間が比較的短い腸内細菌の一種であるSerratia marcescensを用い、以下の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．１％添加
（グルコース：アピオース＝１：０．２）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１）
（３）Ｎｏ．３：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
【００８３】
その結果を図１３に示す。上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒２．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群（Ｎｏ．１）および０．５％アピオース添加群（Ｎｏ．２）では、ＯＤ６６０≒３．２〜３．３付近まで増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、おおむね、菌数も増加する傾向が見られた。従って、アピオースは、Serratia marcescensの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８４】
実験１４：Serratia marcescensの生育試験（その２）
ここでは、上記のSerratia marcescenを用い、前述した実験１２と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１４に示す。
【００８５】
上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群に比べて、アピオースのみを添加した参考群では菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．３程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００８６】
実験１５：Kluyveromyces lactisの生育試験（１）
ここでは、乳製品から分離した酵母菌の一種であるKluyveromyces lactisを用い、前述した実験１１と同じ組成の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図１５に示す。
【００８７】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒０．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群ではＯＤ６６０≒０．７まで増加し、０．５％アピオース添加群ではＯＤ６６０≒２付近まで著しく増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、菌数も増加する傾向が見られた。従って、アピオースは、Kluyveromyces lactisの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８８】
実験１６：Kluyveromyces lactisの生育試験（その２）
ここでは、上記のKluyveromyces lactisを用い、前述した実験１２と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１６に示す。
【００８９】
上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群も、アピオースのみを添加した参考群も、いずれも菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．３程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００９０】
実験１７：Bacillus Cereusの生育試験
ここでは、セレウス菌Bacillus cereusを用い、前述した実験１３と同じ組成の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図１７に示す。
【００９１】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒０．６程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、ＯＤ６６０≒２．５まで増殖し、０．１％アピオース添加群では、ＯＤ６６０≒３．２まで更に増殖し、アピオース添加群では、いずれの濃度においても菌数が増加した。従って、アピオースは、Bacillus cereusの増殖促進活性を有することが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００９２】
【図１】図１は、実験１におけるPichia fermentansの生育試験の結果を示すグラフである。
【図２】図２は、実験２におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図３】図３は、実験３におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図４】図４は、実験４におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（３）の結果を示すグラフである。
【図５】図５は、実験５におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（４）の結果を示すグラフである。
【図６】図６は、実験６におけるE.coli MG1655の生育試験の結果を示すグラフである。
【図７】図７は、実験７において、アピオースの還元糖（アピトール）を用いたLeuconostoc mesenteroidesの生育試験の結果を示すグラフである。
【図８】図８は、実験８におけるSchizosaccharomyces pombeの生育試験の結果を示すグラフである。
【図９】図９は、実験９におけるSaccharomyces cerevisiaeの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１０】図１０は、実験１０におけるEnterococcus faecalisの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１１】図１１は、実験１１におけるCryptococcus neoformansの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１２】図１２は、実験１２におけるCryptococcus neoformansの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１３】図１３は、実験１３におけるSerratia marcescensの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図１４】図１４は、実験１４におけるSerratia marcescensの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１５】図１５は、実験１５におけるKluyveromyces lactisの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図１６】図１６は、実験１６におけるKluyveromyces lactisの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１７】図１７は、実験１７におけるBacillus cereusの生育試験の結果を示すグラフである。
【技術分野】
【０００１】
本発明は微生物増殖促進組成物および微生物の培養方法に関し、詳細には、グルコースおよびアピオースを含む微生物増殖促進組成物に関するものである。本発明の微生物増殖促進組成物は、特に、酵母などの真菌類；腸内細菌、大腸菌、セレウス菌、乳酸菌などの細菌類などの微生物の増殖促進・生育促進に好適に用いられる。
【背景技術】
【０００２】
アピオースは、代表的には、以下に示すヘミアセタール型［式（Ｉ）］または非ヘミアセタール型［式（ＩＩ）］の構造
【０００３】
【化１】
を有する五炭糖であり、フラボノイド配糖体（Ｌｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ｏ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１−２）−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ）の構成糖として、グルコースと結合した２糖類の形で存在している。
【０００４】
アピオースは、例えば、トウガラシ、ピーマン、パプリカ、シシトウなどのトウガラシ属や、パセリなどのパセリ属などの植物に含まれている。しかしながら、植物中に含まれるアピオースの量は非常に微量であり、アピオースの精製品は極めて高価である。
【０００５】
本発明者は、稀少糖であるアピオースについて長年研究を行なっており、例えば、特許文献１では、アピオースなどのフラボノイド配糖体による害虫防除作用を、特許文献２では、アピオースを工業的規模で効率良く製造する方法を、それぞれ提案している。しかしながら、上記以外のアピオースの生理活性は知られていない。
【特許文献１】特開２００３−１０４８１８号公報
【特許文献２】特開２００５−１９４２４１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、新規な微生物増殖促進組成物および微生物の培養方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決することのできた本発明の微生物増殖促進組成物は、グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有するところに要旨を有している。
【０００８】
上記微生物は、細菌または真菌であることが好ましい。
【０００９】
また、上記課題を解決することのできた本発明の微生物増殖促進組成物は、上記の微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養するところに要旨を有している。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の微生物増殖促進組成物を用いれば、微生物、特に、酵母などの真菌類：腸内細菌、大腸菌、乳酸菌などの細菌類などの微生物の増殖・生育を促進させることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明者は、前述した特許文献１を報告した後も、引き続き、アピオースの新たな生理活性を探索してきた。その結果、（ア）アピオースは、微生物の増殖・生育に対して優れた促進作用を有しており、炭素源として用いられるグルコースと併用することにより上記作用が有効に発揮されること、（イ）アピオースによる微生物増殖促進作用は、実験に用いた他の単糖類では見られず、アピオースに特異的に見られることを見出し、本発明を完成した。
【００１２】
本発明の微生物増殖促進組成物は、グルコースなどのグルコース供給源以外にアピオースを必須成分として含有しており、グルコース供給源とアピオースの混合比率は、グルコース供給源をグルコースに換算したときのグルコース換算量（以下、単にグルコースと呼ぶ。）１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有するところに特徴がある。このような微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養すれば、後記する実施例で実証するように、アピオースを含有しないグルコース含有培地（対照群）で培養した場合に比べ、微生物の増殖・生育が促進される。
【００１３】
本明細書において、「微生物の増殖促進作用（または増殖・生育促進作用）」は、定常期における微生物量および世代時間の増殖速度に基づき、総合的に判断している。これらは、培養液の濁度を分光光度計で測定し、波長６６０ｎｍの吸光度（ＯＤ６６０ｎｍ）に基づいて算出される。具体的には、グルコースおよびアピオースを両方添加した実験群と、アピオースを添加せずグルコースのみを添加した対照群とについて、ＯＤ６６０ｎｍをそれぞれ測定し、当該吸光度に基づいて微生物量および世代時間の増殖速度をそれぞれ算出したとき、アピオース無添加の対照群に比べてアピオース添加群の方が、微生物量および増殖速度の少なくとも一方が、おおむね、１０％以上（好ましくは２０％以上）増加したものを、「微生物の増殖促進作用がある」と判断している。ただし、この数値は一応の目安であり、具体的な評価基準は、微生物の種類などによっても適宜適切に定められる。
【００１４】
なお、後記する実施例では、各実験群ごとに、必ず、アピオース無添加の対照群を設けている。アピオースは抱水するために含有量を精度良く測定することが極めて困難であること、アピオースを少量ずつ製造した場合ロット間のバラツキが大きいこと、などの理由により、実験ごとのデータのバラツキが大きいからである。
【００１５】
以下、本発明の微生物増殖促進組成物について詳述する。
【００１６】
本発明において、グルコース１００質量部に対するアピオースの含有比率は、おおむね、１質量部以上であり、これにより、種々の微生物に対して増殖・生育促進作用が有効に発揮される（後記する実施例を参照）。微生物の増殖・生育促進作用は、後記する実施例に示すように、概して、アピオースの含有比率が高いほど増加する傾向にあるため、アピオースの含有比率は高いほど良い。具体的には、微生物の種類や使用する培地などによっても相違するが、グルコース１００質量部に対するアピオースの好ましい含有比率は、おおむね、２質量部以上であり、より好ましい含有比率は５質量部以上である。なお、その上限は、微生物の増殖・生育促進作用との関係からは特に限定されないが、アピオースの価格などを考慮して総合的に勘案すると、グルコース１００質量部に対するアピオースの含有比率は、おおむね、１５０質量部以下であることが好ましく、１００質量部であることがより好ましく、５０質量部以下であることがより好ましい。
【００１７】
ここで、グルコース供給源とは、グルコースを少なくとも含有する糖類を意味する。具体的には、グルコースのほか、オリゴ糖類（少糖類）や多糖類などを意味し、例えば、マルトース、セロビオース、ラクトース、スクロースなどのオリゴ糖類；デンプン、グリコーゲン、セルロースなどの多糖類などが挙げられる。
【００１８】
本発明に用いられるアピオースは、市販品を用いても良い。あるいは、前述した特許文献２に記載の方法によってアピオースを調製しても良い。この方法によれば、アピオースを工業的規模で効率よく得ることができる。詳細な調製方法は、特許文献２を参照すれば良い。そのほかに、下記（ア）および（イ）の文献には、アピインからアピオースを分離するに当たり、酵素を用いる方法や加熱下に酸加水分解する方法が記載されており、これらの方法を用いてもよい。
（ア）宮道悦男著、「最新植物成分研究法 改訂版」、廣川書店、１９７１年発行、第２５７頁〜第２７３頁
（イ）名取信策ら編、「天然有機化合物実験法」、講談社、１９７８年発行、第３６２頁〜第３７６頁
【００１９】
本発明の微生物増殖促進組成物を用いて微生物を培養するに当たっては、微生物の種類ごとに、当該微生物に適した栄養培地中に上記の微生物増殖促進組成物を添加するだけで良く、これにより、所望の効果が得られる（後記する実施例を参照）。具体的には、例えば、ＬＢ培地、ＭＲＳ培地、８０４培地、３６２培地などの細菌用培地；ＹＭ培地などの酵母用培地に本発明の組成物を添加し、添加後の培地（以下では、特に、「調整培地」という。）中のグルコース濃度が、増殖を促進させたい微生物に適した濃度になるように、組成物の添加量を調整すれば良い。従って、調整培地中に含まれる他の成分、例えば、炭素源、窒素源、ビタミン、無機類などは、微生物の種類に適した栄養培地の組成をそのまま適用することができる。上記の栄養培地は、市販品を用いてもよい。
【００２０】
また、上記の調整培地を用いて培養する方法も特に限定されず、微生物に最も適した培養条件で培養すれば良い。
【００２１】
後記する実施例に示すように、アピオースによる微生物の増殖・生育促進活性は、特定の微生物に特異的に見られるものではなく、程度の差こそあれ、細菌類、真菌類などの微生物全般に見られるものである。アピオースによって微生物の増殖が促進されるメカニズムは詳細には不明であるが、後記する実施例の実験結果に基づけば、アピオースは炭素源として微生物に消費されるというよりも、むしろ、グルコースを炭素源として消費して増殖する過程である解糖系（ＥＭＰ回路）とは無関係に、微生物の増殖を促進しているのではないかと推察される。
【００２２】
本発明の微生物増殖促進組成物を適用することのできる微生物の種類は特に限定されず、例えば、酵母、かび、きのこなどの真菌類；腸内細菌、大腸菌、セレウス菌、乳酸菌などの細菌類などが挙げられる。酵母類としては、例えば、Saccharomyces cerevisiae（出芽酵母）、Schizosaccharomyces pombe（分裂酵母）、Kluyveromyces lactis、Cryptococcus neoformans、Pichia fermentans（産膜酵母）などが挙げられる。細菌類としては、例えば、腸内細菌（例えば、Serratia marcescens、Enterococcus fecalis）、大腸菌Escherichia coli、セレウス菌Bacillus cereus、乳酸菌［例えば、Leuconostoc mesenteroides（ヘテロ型乳酸菌）］などが挙げられる。
【実施例】
【００２３】
以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明は下記実施例によって制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも可能であり、それらは何れも本発明の技術的範囲に含まれる。以下では、特に断らない限り、「％」は質量％を意味する。
【００２４】
後記する実験では、以下のようにして調製したアピオースを用い、表１に示す種々の微生物を用いて生育試験を行った（実験１〜６、実験８〜１７）。また、参考のため、アピオースの還元糖（アピトール）を以下のようにして調製し、同様の実験を行なった（実験７）。
【００２５】
【表１】
【００２６】
表１に併記した培地（各微生物の最適培地）の組成は、下記（ａ）〜（ｄ）のとおりである。
【００２７】
。
（ａ）ＹＭ培地
Ｇｌｕｃｏｓｅ：１０ｇ、Ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、Ｍａｌｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ５．６に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００２８】
（ｂ）８０４培地
Ｐｏｌｙ ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：５ｇ、Ｇｌｕｃｏｓｅ：５ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：１ｇ、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ６．８に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００２９】
（ｃ）ＭＲＳ培地
Ｐｅｐｔｏｎｅ：１０ｇ、Ｍｅａｔ ｅｘｔｒａｃｔ：１０ｇ、Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ：５ｇ、Ｇｌｕｃｏｓｅ：２０ｇ、Ｔｗｅｅｎ８０：１ｇ、Ｋ２ＨＰＯ４：２ｇ、Ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ：５ｇ、Ｄｉａｍｍｏｎｉｕｍ ｈｙｄｒｏｇｅｎｃｉｔｒａｔｅ：２ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．２ｇ、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．０５、またはこれに寒天末１５ｇを加えたものをｐＨ６．３に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００３０】
（ｄ）Ｂ−１培地
Ｐｅｐｔｏｎｅ：５ｇ、Ｍｅａｔ ｅｘｔｒａｃｔ：３ｇ、ＮａＣｌ：３ｇ、またはこれに寒天末２０ｇを加えたものを３Ｎ ＨＣｌ水溶液でｐＨ７．０に調整し、水を加えて合計１Ｌとした。
【００３１】
（１）アピオースの調製
本実施例では、ピーマン中のフラボノイド配糖体から下記手順でアピオースを調製した。
【００３２】
まず、ピーマン（Capsicum annuum var.angulosum、品種：新さきがけ２号・早生）の種子を培土が入ったプラスチックトレーに均等に播種し、３週間栽培した後、生育した苗を培土が入ったポリビニールポットに移植してハウス内で栽培した。背丈が２０ｃｍ以上に生育した時点で圃場に移植して栽培した後、葉を回収した。
【００３３】
このようにして得られたピーマンの生葉５．２ｋｇを９０％メタノール／水の混液中に３日間浸漬し、得られた抽出液をろ過し、減圧濃縮した。この濃縮液１．５ｍＬ中にヘキサンを加え、数回分液を繰り返した後、水層を減圧濃縮し、固形物をろ過することによって暗緑色不定形固体を得た。この固体をメタノール１００ｍＬで数回洗浄し、フラボノイド二配糖体であるＬｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ｏ−Ｄ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１→２）−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅおよびＡｐｉｇｅｎｉｎ ７−Ｏ−ａｐｉｏｓｙｌ−（１→２）−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅの混合物（４５．２ｇ）を得た。
【００３４】
上記のようにして得られたフラボノイド二配糖体（３ｇ）をメタノール５００ｍｌに転溶し、１０％ＨＣｌを２００ｍｌ加えた後、３５℃で加水分解を行った。１２時間後、加水分解が完了した時点で、ろ過可能な容量まで減圧濃縮を行った後、この濃縮液をＮａＯＨで中和した。中和の際に生じたＮａＣｌの結晶を濾過して除去し、フラボノイド一配糖体であるＬｕｔｅｏｌｉｎ ７−Ο−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅおよびＡｐｉｇｅｎｉｎ ７−Ο−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅの混合物を得た。
【００３５】
次に、得られた母液を減圧濃縮した後、ＮａＣｌが溶けないように注意しながら適量の脱イオン水を加え、桐山式漏斗を用いてろ過し、中和の際に生じたＮａＣｌとアピオースを分離した。この操作を十数回行った後、ＯＤＳカラムに通して水画分を回収し、減圧濃縮を行うことによってアピオース（０．１２ｇ）を得た。
【００３６】
（２）アピオースの還元糖（アピトール）の調製
まず、上記のようにして得られたアピオース１ｍｇをナス型フラスコに入れ、脱イオン水１ｍｌを加えて充分溶解し、水素化ホウ素ナトリウム（ＮａＢＨ４）１００ｍｇを加えた。次いで、フラスコを共栓し、スターラーで撹拌しながら３０℃の湯煎で加熱し、３時間反応させた。その後、氷水でナス型フラスコ全体を充分冷却し、陽イオン交換樹脂ＤＷ−５０を徐々に加えて適度に振ってＮａを吸着させることにより水素化ホウ素ナトリウムを分解した。Ｈ２の気泡が発生しなくなるまで陽イオン交換樹脂ＤＷ−５０を加え、桐山式漏斗でろ別した。このようにして得られたろ液は、エバポレーターで白い粉末のホウ酸が析出するまで完全に乾固した。乾固は充分に行ない、アピオースとホウ酸が錯体を形成してしないように留意した。このようにして乾固したサンプルにメタノールを５〜１０ｍＬ加えてホウ酸を溶かした後、乾固した。この操作を十数回行うことにより、ホウ酸をメタノールとの反応物であるホウ酸トリメチルとして除去することができる。このようにしてアピオースの還元糖（アピトール）を得た（１ｇ）。
【００３７】
（３）微生物の生育試験
まず、表１に記載の菌について、表１に併記した最適培地中に加え、小型振とう培養装置（ＩＷＡＳＡＫＩ ＧＬＡＳＳ ＣＯ．，ＬＴＤ．製「ＳＨＫＵ−４」）を用いて３０℃で２４〜４８時間前培養を行なった。
【００３８】
一方、上記菌の生育には、表２に示す２種類の液体培地を用いた。上記の液体培地中、Ｍ９培地の組成は以下のとおりである。これらの液体培地は、前述した方法で得られたアピオースの１０％水溶液を用い、グルコースの濃度が０．５％で、アピオースの濃度が０．１％（グルコース：アピオース＝５：１）、またはグルコースの濃度が０．５％で、アピオースの濃度が０．５％（グルコース：アピオース＝１：１）となるように、滅菌水を用いて調製したものである。比較のため、アピオースの代わりに同量の滅菌水を加えた培地も用意した。
【００３９】
詳細には、表２の液体培地（合計６０００μＬ）中に前述した前培養液３０μＬを加え、小型振盪培養装置［バイオフォトレコーダー（登録商標）ＴＶＳ０６２ＣＡ、東洋製作所製］を用いて３０℃で振とう培養を行ない、６６０ｎｍでの吸光度（ＯＤ６６０ｎｍ）を３０分ごとに測定した。なお、アピオースの還元糖を用いて微生物の生育試験を行うときは、アピオースの代わりにアピトールを添加し、上記と同様にして生育試験を行い、６６０ｎｍでの吸光度を３０分ごとに測定した。
【００４０】
なお、微生物の生育試験は、アピオースの効果をより正確に計測するため、微生物の生育に必要最小限の物質のみを備えた培養液を含む下記組成のＭ９最少培地を用いて行なった。これにより、肉汁やイーストエキスなどに含まれる未知の不特定物質による不測の影響を排除することができる。
【００４１】
【表２】
【００４２】
（Ｍ９最少培地）
１０×Ｍ９ ｓａｌｔｓ：１００ｍＬ、１Ｍ ＭｇＳＯ４：２ｍＬ、０．１Ｍ ＣａＣｌ２：１ｍＬ、２５％ ｃａｒｂｏｎ ｓｏｕｒｃｅ、金属塩溶液：１ｍＬ、ビタミン混合液：１ｍＬを加え、水を加えて合計１Ｌとした（ｐＨ≒７）。このようにして得られた培地は、大腸菌の生育に用いる場合はそのまま使用することにし、一方、酵母や乳酸菌などの生育に使用する場合には、各微生物の培養に適した培地のｐＨとなるように、３Ｎ ＨＣｌ水溶液などを用いてｐＨを調整した。
【００４３】
ここで、「１０×Ｍ９ ｓａｌｔｓ」は、Ｎａ２ＨＰＯ４・７Ｈ２Ｏ：１２８ｇ、ＫＨ２ＰＯ４：３０ｇ、ＮａＣｌ：５ｇ、ＮＨ４Ｃｌ：１０ｇ／Ｌである。金属塩溶液の組成は、ＮａＣｌ：１ｇ、ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ：２ｇ、ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．５ｇ、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ：０．０５ｇ、Ｎａ２ＭｏＯ４・２Ｈ２Ｏ：０．１ｇ、Ｎａ２ＷＯ４・２Ｈ２Ｏ：０．０５ｇ、Ｃｏｎｃ．ＨＣｌ：１０ｍＬ／Ｌである。ビタミン混合液の組成は、パントテン酸カルシウム４００ｍｇ、イノシトール２００ｍｇ、ニコチン酸４００ｍｇ、ｐ−アミノ安息香酸２００ｍｇ、ピリドキシン塩酸塩４００ｍｇ、チアミン塩酸塩４００ｍｇ、ビオチン２ｍｇ、ビタミンＢ１２０．５ｍｇ／Ｌである。
【００４４】
実験１：Pichia fermentansの生育試験
ここでは、酵母の一種であるPichia fermentansを用い、アピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１および表３に示す。
【００４５】
【表３】
【００４６】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００４７】
まず、誘導期に関し、０．１％アピオース添加群で約１９時間、アピオース無添加の対照群では約２０時間であり、アピオース添加群の方が増殖開始は早かった。また、世代時間に関し、０．１％アピオース添加群では約１４０．５分であり、アピオース無添加の対照群（約１７７．９分）に比べ、世代時間は短くなった。
【００４８】
また、菌数に関し、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒２．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒２．５まで増殖した。
【００４９】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースは、Pichia fermentansの増殖促進活性を有することが確認された。
【００５０】
実験２：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（１）
ここでは、ヘテロ型乳酸菌Leuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図２および表４に示す。
【００５１】
【表４】
【００５２】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００５３】
まず、誘導期に関し、０．１％アピオース添加群とアピオース無添加の対照群では差が見られなかった。一方、世代時間に関しては、０．１％アピオース添加群は、アピオース無添加の対照群に比べ、世代時間は約４０分短くなった。
【００５４】
菌数に関し、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．１程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒１．６まで増殖した。
【００５５】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースは、Leuconostoc mesenteroidesの増殖促進活性を有することが確認された。
【００５６】
実験３：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（２）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの濃度を０．０１〜０．１％の範囲で変化させたときの増殖促進作用を調べた。その結果を図３および表５に示す。
【００５７】
【表５】
【００５８】
上記の図および表より、以下のように考察することができる。
【００５９】
まず、誘導期に関し、アピオース添加群とアピオース無添加の対照群では、アピオースの濃度にかかわらず、差は見られなかった。一方、世代時間に関しては、アピオースの濃度が高くなるほど、世代時間は短くなる傾向が見られた。
【００６０】
菌数に関し、アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒２．８〜３付近まで増殖し、アピオースの濃度が高くなるにつれて吸光度も高くなる傾向が認められた。対数増殖期では、アピオースの濃度が高いほど増殖速度が速くなることが分かる。
【００６１】
上記の実験結果を総合的に勘案すると、アピオースによるLeuconostoc mesenteroidesの増殖促進作用は、０．００１％以上の濃度でも認められることが確認された。
【００６２】
実験４：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（３）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの濃度を実験３に比べて更に低くし、０．００１〜０．０１％の範囲で変化させたときの増殖促進作用を調べた。その結果を図４に示す。
【００６３】
上記の図より、誘導期、対数増殖期、および定常期に移行する時間は、アピオース添加群もアピオース無添加の対照群も、殆ど変わらないが、対数増殖期の増殖速度を比較すると、０．０１％アピオース添加群が最も速く、次いで、０．００５％アピオース添加群であった。一方、０．００１％添加群は、対照群に比べ、誘導期と対数増殖期の間の加速期での増殖速度は若干速いものの、２４．５時間経過後付近から増殖速度は全く同じになったため、０．００１％添加群では、Leuconostoc mesenteroidesの増殖促進活性はないと判断した。
【００６４】
以上より、Leuconostoc mesenteroidesに対するアピオースによる増殖促進活性の限界濃度は、約０．００５％であると判定した。このように、アピオースは、極く微量でも上記活性を発揮することが確認された。
【００６５】
実験５：Leuconostoc mesenteroidesの生育試験（４）
ここでは、上記のLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオース以外の種々の単糖類（グルコース、リボース、アラビノース）を０．０１％添加したときの増殖促進作用を調べた。その結果を図５に示す。
【００６６】
上記の図に示すように、本実験に用いた４種類の単糖類のうち、対数増殖期の増殖速度は、他の単糖類に比べてアピオースが最も速い。詳細には、アピオースは、対数増殖期の初期段階（約７０分前後まで）はグルコースと殆ど差は見られなかったが、経過時間が長くなるにつれ、増殖速度の差が顕著に見られるようになった。また、アピオースと同じ５炭糖であるリボースは、アピオースに比べて著しく増殖速度が遅かった。従って、アピオースは、単糖類のなかでも微生物の増殖促進活性に極めて優れていることが確認された。
【００６７】
実験６：E.coli MG1655の生育試験
実験４において、Leuconostoc mesenteroidesの代わりにE.coli MG1655を用い、アピオース以外の単糖類（グルコース、リボース、アラビノース）を０．０１％添加したときの増殖促進作用を調べた。その結果を図６に示す。
【００６８】
上記の図に示すように、本実験に用いた４種類の単糖類のうち、アピオースは、他の単糖類に比べ、対数増殖期の増殖速度は最も速いことから、アピオースは、単糖類のなかでも微生物の増殖促進活性に極めて優れていることが確認された。
【００６９】
実験７：アピオースの還元糖を用いた微生物の生育試験
前述した実験５において、アピオースによる増殖促進活性が認められたLeuconostoc mesenteroidesを用い、アピオースの代わりにアピオースの還元糖（アピトール）を用いて生育試験を行なった。ここでは、ホウ酸の影響を考慮し、アピトールの代わりにホウ酸のみを含むサンプルを用意し、上記と同様に実験行った。これらの結果を図７に示す。
【００７０】
Leuconostoc mesenteroidesの結果は図７に示すとおりであり、アピトール添加群は、グルコースのみを含む対照群やホウ酸のみを含む対照群と殆ど差は見られず、アピオースを還元すると、増殖促進活性は消失することが判明した。
【００７１】
このように、アピオースとアピオースの還元糖であるアピトールとは、微生物に対する作用が全く異なっているが、これは、両者の構造の違いに起因していると考えられる。すなわち、アピオース中のアルデヒド基（−ＣＨＯ）は、微生物に対して資化と無関係の過程で増殖促進活性を有していると考えられるのに対し、アルデヒド基が還元されたメチノール（−ＣＨ２ＯＨ）は上記活性を有していないと考えられる。
【００７２】
実験８：Schizosaccharomyces pombeの生育試験
ここでは、酵母菌の一種であるSchizosaccharomyces pombe を用い、以下の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図８に示す。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
【００７３】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒３程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒３．５まで増殖したことから、アピオースは、Schizosaccharomyces pombeの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７４】
実験９：Saccharomyces cerevisiaeの生育試験
ここでは、酵母菌の一種であるSaccharomyces cerevisiaeを用い、前述した実施例８と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図９に示す。
【００７５】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒３．７程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒４まで増殖したことから、アピオースは、Saccharomyces cerevisiaeの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７６】
実験１０：Enterococcus faecalisの生育試験
ここでは、腸内細菌の一種であるEnterococcus faecalisを用い、前述した実施例８と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１０に示す。
【００７７】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、おおむね、ＯＤ６６０≒１．８まで増殖したことから、アピオースは、Enterococcus faecalisの増殖促進活性を有することが確認された。
【００７８】
実験１１：Cryptococcus neoformansの生育試験（その１）
ここでは、酵母菌の一種であるCryptococcus neoformansを用い、以下の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１１に示す。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％＋アピオースを０．１％添加
（グルコース：アピオース＝１：０．２５）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１．２５）
（３）Ｎｏ．３：Ｍ９最少培地にグルコースを０．４％のみ添加した培地（対照群）
【００７９】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒１．７程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群（Ｎｏ．１）では、ＯＤ６６０≒２．６まで、０．５％アピオース添加群（Ｎｏ．２）では、ＯＤ６６０≒２．８まで増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、菌数も増加する傾向にあることが分かった。従って、アピオースは、Cryptococcus neoformansの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８０】
実験１２：Cryptococcus neoformansの生育試験（その２）
ここでは、上記のCryptococcus neoformansを用い、以下の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。アピオース単独の培地を用いて実験を行なったのは、アピオースが資化されるか（すなわち、炭素源／エネルギー源となるか）どうかを確認するためである。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にアピオースを０．５％のみ添加した培地（参考群）
【００８１】
その結果を図１２に示す。上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群に比べて、アピオースのみを添加した参考群では菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．６程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００８２】
実験１３：Serratia marcescensの生育試験（１）
ここでは、生育が容易であり、世代時間が比較的短い腸内細菌の一種であるSerratia marcescensを用い、以下の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。
（１）Ｎｏ．１：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．１％添加
（グルコース：アピオース＝１：０．２）
（２）Ｎｏ．２：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％＋アピオースを０．５％添加
（グルコース：アピオース＝１：１）
（３）Ｎｏ．３：Ｍ９最少培地にグルコースを０．５％のみ添加した培地（対照群）
【００８３】
その結果を図１３に示す。上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒２．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群（Ｎｏ．１）および０．５％アピオース添加群（Ｎｏ．２）では、ＯＤ６６０≒３．２〜３．３付近まで増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、おおむね、菌数も増加する傾向が見られた。従って、アピオースは、Serratia marcescensの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８４】
実験１４：Serratia marcescensの生育試験（その２）
ここでは、上記のSerratia marcescenを用い、前述した実験１２と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１４に示す。
【００８５】
上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群に比べて、アピオースのみを添加した参考群では菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．３程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００８６】
実験１５：Kluyveromyces lactisの生育試験（１）
ここでは、乳製品から分離した酵母菌の一種であるKluyveromyces lactisを用い、前述した実験１１と同じ組成の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図１５に示す。
【００８７】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒０．２程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．１％アピオース添加群ではＯＤ６６０≒０．７まで増加し、０．５％アピオース添加群ではＯＤ６６０≒２付近まで著しく増殖し、アピオースの濃度が増加するにつれ、菌数も増加する傾向が見られた。従って、アピオースは、Kluyveromyces lactisの増殖促進活性を有することが確認された。
【００８８】
実験１６：Kluyveromyces lactisの生育試験（その２）
ここでは、上記のKluyveromyces lactisを用い、前述した実験１２と同じ組成の二種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進作用を調べた。その結果を図１６に示す。
【００８９】
上記の図に示すように、グルコースのみを添加した対照群も、アピオースのみを添加した参考群も、いずれも菌数の増加がほとんど見られず、ＯＤ６６０≒０．３程度しか菌数が増殖しなかった。この結果より、アピオースは炭素源として用いられるのではないことが分かった。アピオースは、グルコースと併用することによって微生物の増殖促進活性が発揮されることから、アピオースは触媒のような働きをするのではないかと推察される。
【００９０】
実験１７：Bacillus Cereusの生育試験
ここでは、セレウス菌Bacillus cereusを用い、前述した実験１３と同じ組成の三種類の培地を用いてアピオースによる増殖促進活性を調べた。その結果を図１７に示す。
【００９１】
上記の図に示すように、アピオース無添加の対照群では、ＯＤ６６０≒０．６程度しか菌数が増殖していないのに対し、０．５％アピオース添加群では、ＯＤ６６０≒２．５まで増殖し、０．１％アピオース添加群では、ＯＤ６６０≒３．２まで更に増殖し、アピオース添加群では、いずれの濃度においても菌数が増加した。従って、アピオースは、Bacillus cereusの増殖促進活性を有することが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００９２】
【図１】図１は、実験１におけるPichia fermentansの生育試験の結果を示すグラフである。
【図２】図２は、実験２におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図３】図３は、実験３におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図４】図４は、実験４におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（３）の結果を示すグラフである。
【図５】図５は、実験５におけるLeuconostoc mesenteroidesの生育試験（４）の結果を示すグラフである。
【図６】図６は、実験６におけるE.coli MG1655の生育試験の結果を示すグラフである。
【図７】図７は、実験７において、アピオースの還元糖（アピトール）を用いたLeuconostoc mesenteroidesの生育試験の結果を示すグラフである。
【図８】図８は、実験８におけるSchizosaccharomyces pombeの生育試験の結果を示すグラフである。
【図９】図９は、実験９におけるSaccharomyces cerevisiaeの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１０】図１０は、実験１０におけるEnterococcus faecalisの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１１】図１１は、実験１１におけるCryptococcus neoformansの生育試験の結果を示すグラフである。
【図１２】図１２は、実験１２におけるCryptococcus neoformansの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１３】図１３は、実験１３におけるSerratia marcescensの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図１４】図１４は、実験１４におけるSerratia marcescensの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１５】図１５は、実験１５におけるKluyveromyces lactisの生育試験（１）の結果を示すグラフである。
【図１６】図１６は、実験１６におけるKluyveromyces lactisの生育試験（２）の結果を示すグラフである。
【図１７】図１７は、実験１７におけるBacillus cereusの生育試験の結果を示すグラフである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有することを特徴とする微生物増殖促進組成物。
【請求項２】
前記微生物は細菌または真菌である請求項１に記載の微生物増殖促進組成物。
【請求項３】
請求項１または２に記載の微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養することを特徴とする微生物の培養方法。
【請求項１】
グルコース供給源およびアピオースを含有する微生物増殖促進組成物であり、グルコース１００質量部に対し、アピオースを１質量部以上含有することを特徴とする微生物増殖促進組成物。
【請求項２】
前記微生物は細菌または真菌である請求項１に記載の微生物増殖促進組成物。
【請求項３】
請求項１または２に記載の微生物増殖促進組成物を含む培地を用いて微生物を培養することを特徴とする微生物の培養方法。
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【公開番号】特開２００８−２４５６０２（Ｐ２００８−２４５６０２Ａ）
【公開日】平成２０年１０月１６日（２００８．１０．１６）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−９３０００（Ｐ２００７−９３０００）
【出願日】平成１９年３月３０日（２００７．３．３０）
【新規性喪失の例外の表示】特許法第３０条第１項適用申請有り 平成１９年２月１３日〜１４日 国立大学法人 高知大学主催の「高知大学農学部生物資源学科卒業論文発表会」に文書をもって発表
【出願人】（５０４１７４１８０）国立大学法人高知大学 (174)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年１０月１６日（２００８．１０．１６）
【国際特許分類】
【出願日】平成１９年３月３０日（２００７．３．３０）
【新規性喪失の例外の表示】特許法第３０条第１項適用申請有り 平成１９年２月１３日〜１４日 国立大学法人 高知大学主催の「高知大学農学部生物資源学科卒業論文発表会」に文書をもって発表
【出願人】（５０４１７４１８０）国立大学法人高知大学 (174)
【Ｆターム（参考）】
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