黄麹菌変異株の育種方法
【課題】付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株、例えば、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌、並びに遺伝子の欠失変異株（ｐｙｒＧ変異株）などを得る。
【解決手段】アスペルギルス・ソーヤ及び同・オリゼ等の黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することにより所望の微生物学的特長を有する黄麹菌の変異株を得る。
【解決手段】アスペルギルス・ソーヤ及び同・オリゼ等の黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することにより所望の微生物学的特長を有する黄麹菌の変異株を得る。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
黄麹菌は、日本の伝統食品である醤油、味噌、日本酒、みりんなどの醸造に利用される微生物である。黄麹菌は、これらの食品製造において、主に原料を分解する役割を担っている。醤油を例にとると、原料である大豆と小麦に黄麹菌を生育させ、麹を製造する。この段階で麹菌は大豆や小麦のタンパク質、糖質などを分解する酵素を生産する。ここでの分解率が高いと次工程の乳酸発酵、酵母発酵が適正に行われ、製品の品質向上に大きく寄与する。また、タンパク質を高分解することにより、製品の歩留まりが向上し、生産性を向上することができる。これらのことから、黄麹菌の改良は、酵素生産性を向上させることを主な目的として、これまでも精力的に行われている。
【０００３】
黄麹菌の育種方法としては突然変異方法、遺伝子組換え方法がある。遺伝子組換え方法は、効率的に目的株を育種することができる方法であるが、遺伝子組換え技術を食品に応用していくことが日本市場においてはまだ受け入れられていないため、現実の食品製造に使用するのは問題がある。そのため、今でも従来からの突然変異方法が黄麹菌の育種の主流である。突然変異の方法としては紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの薬剤による変異などが行われてきたが、どちらの方法も付随変異が多いという欠点がある。つまり、ひとつの菌株に同時に変異が多数生じてしまうため、目的以外の形質も変化してしまうという問題点がある。付随変異により、菌の生育が遅くなる、他の酵素生産性が低下するなどの問題が頻繁に生じ、実用上有望な変異株を取ることが非常に困難である。
【０００４】
また、これらの変異方法は長年実施されてきているが、場合によってはこれらの変異方法では得ることができない変異株があることが知られている。例えば、醤油麹菌においてはプロテアーゼとグルタミナーゼを同時に高生産する株を得ることは非常に困難であることが報告されており、これを解決するために細胞融合法が用いられている（特許文献１参照）。また、紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの薬剤による従来の変異方法によると、得られる変異株は塩基置換や塩基挿入、あるいは、わずかな数の塩基の欠失に伴うものがほとんどで、大規模に塩基が欠失した変異株を得ることは困難であった。さらに、アスペルギルス・オリゼＲＩＢ４０株（独立行政法人 酒類総合研究所、菌株保管）は既にゲノム解析が行われた麹菌であり、遺伝子組換え技術の宿主として非常に重要な株であるが、これを親株としてｐｙｒＧ変異株が紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの従来の突然変異方法では得られないことが知られている。ｐｙｒＧ変異株は形質転換を行う際の宿主であるため、この変異株が得られないことは遺伝子組換え技術進展に大きな問題を与える。
【０００５】
このように黄麹菌は醸造食品産業上、また遺伝子工学産業上において重要な微生物であるが、育種に関して上記のような問題があるため、効果的な育種方法を開発することは大きな課題である。また、黄麹菌は黒麹菌などの他の麹菌と異なり、細胞内に複数の核を持っているため、変異を困難にしている。これらのことを背景に、黄麹菌の育種において、効率的で効果的な変異方法の確立が求められている。
【特許文献１】特公平３−７３２７１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の課題は、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株を得る、黄麹菌変異株の育種方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するため、鋭意研究を重ねた結果、重イオンビームを照射する方法を用いて黄麹菌を変異し、その中から従来の変異方法では得ることができなかった変異株を得ることができることを見出し、この知見に基づいて本発明を完成した。
【０００８】
すなわち、本発明は以下に示す黄麹菌変異株の育種方法である。
（１）黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
（２）黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤ又はアスペルギルス・オリゼである上記（１）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（３）重イオンビームが、4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+からなる群のいずれかを線源とする上記（１）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（４）変異の生じた黄麹菌が、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌である、上記（１）〜（３）のいずれかである黄麹菌変異株の育種方法。
（５）変異を生じた黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３０）である上記（４）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（６）黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から遺伝子の欠失変異株を得ることを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
（７）黄麹菌変異株が、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ-（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１）である黄麹菌変異株の育種方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株（例えば、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌）、並びに遺伝子の欠失変異株（アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０を親株としたｐｙｒＧ突然変異株）を得ることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明に係る黄麹菌は、アスペルギルス・ソーヤ及びアスペルギルス・オリゼに属する任意の菌株が挙げられる。このような菌株としては、従来の醤油、味噌又は清酒の醸造に使用する麹菌が挙げられ、例えば、アスペルギルス・ソーヤ ２６２（ＦＥＲＭ Ｐ−２１８８）、アスペルギルス・ソーヤ ２１６５（ＦＥＲＭ Ｐ−７２８０）及びアスペルギルス・オリゼ（ＩＡＭ２６３８）、アスペルギルス・ソーヤ ＡＴＣＣ４２２５１などが挙げられる。
【００１１】
次に、重イオンビームを照射するには、上記菌株の分生子、凍結乾燥させた分生子、発芽分生子、発芽後５℃程度まで冷却した分生子などの胞子懸濁液を、通常の寒天平板培養培地、例えば、マルツ培地（マルツエキス９％、酵母エキス０．５％、寒天２％ ｐＨ６）等に０．２〜２０×１０6個塗布し4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+などをイオン源とした重イオンビームを照射する。
重イオンビームの線量は２５〜２，５００Ｇｙが好ましく、５０〜８００Ｇｙがより好ましく、１００〜５００Ｇｙが最も好ましい。
この重イオンビームの照射は、例えば、独立行政法人日本原子力研究開発機構 高崎量子応用研究所のＴＩＡＲＡを用いることができる。
【００１２】
照射後は、同培地で２５〜３５℃で２〜６日間培養し、分生子を着生させ、この分生子を回収し、変異の生じた黄麹菌を選択する。
【００１３】
変異の生じた黄麹菌を選択する場合の例としては、プロテアーゼ生産能の高い変異株を選択する方法が挙げられる。この方法は、カゼインプレートに、照射した麹菌株を接種し、麹菌の生育適温にて適当時間培養し、培養後、コロニーの周りにできるクリアゾーンの大きい株を選択し、その株について醸造特性を調べ、プロテアーゼ生産能の高い変異株をスクリーニングする方法で行われる。
【００１４】
本発明によれば、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株、例えば、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌、並びに遺伝子の欠失変異株、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０を親株としたｐｙｒＧ突然変異株を得ることができる。
【実施例１】
【００１５】
（非常に高いプロテアーゼ活性を示しながらも、グルタミナーゼ活性が親株並みの高いレベルを維持している黄麹菌の育種方法）
（重イオンビーム照射に麹菌の育種法）
親株としてアスペルギルス・ソーヤＡＴＣＣ４２２５１を使用した。
アスペルギルス・ソーヤＡＴＣＣ４２２５１の分生子をマルツ培地（マルツエキス９％、酵母エキス０．５％、寒天２％ ｐＨ６）に約２×１０6個塗布し、12Ｃ5+をイオン源として２５０Ｇｙの強度で照射を行った。
重イオンビームの照射は、独立行政法人日本原子力研究開発機構 高崎量子応用研究所のＴＬＡＲＡを用いて行った。
照射後、３０℃で４日間培養し、分生子を着生させた。この分生子を回収し、カゼインプレートによる高プロテアーゼ変異株のスクリーニングを行った。
【００１６】
（カゼイン培地によるスクリーニング）
回収した分生子を約４００個／ｍｌになるように滅菌水で希釈した。
この希釈液を５０μｌずつカゼイン培地（ミルクカゼイン０．４％、カザミノ酸０．０５％、リン酸１カリウム０．３６％、リン酸２ナトリウム１．４３％、硫酸マグネシウム０．５％、硫酸第二鉄０．００２％、寒天２％ ｐＨ６．５）（％はｗ／ｗ％を意味する）に塗布し、３０℃で４日間培養した。培養後、コロニーの周りにできるクリアゾーンの大きい株を選択し、その株について醸造特性を調べた。
【００１７】
醤油麹の製造法は定法に従って行った。すなわち、蒸煮した脱脂大豆と焙炒割砕小麦を５０：５０の割合で混合し、ここに種麹を１／１０００量（ｗ／ｗ）加え、３日麹で製麹した。
【００１８】
得られた麹の分析は以下のようにして行った。
（プロテアーゼ活性の測定法）
麹に１０倍量の蒸留水を加え、よく混合し、２時間室温で放置した。これをＮＯ．２の濾紙（アドバンテック社製）で濾過し、得られた抽出液を酵素サンプルとして、「しょうゆ試験法」（財団法人 日本醤油研究所 昭和６０年）に記載の方法に従って測定した。
プロテアーゼ活性は、麹１ｇ当り１分間に１μモルのチロシンを生成する活性を１Ｕ（ユニット又は単位）として示した
【００１９】
（グルタミナーゼ活性の測定法）
麹に５０倍量の蒸留水を加え、ポリトロンで１分間破砕したものを酵素サンプルとした。この酵素サンプル７ｍｌに０．１Ｍ Ｌ−グルタミン溶液（１Ｍトリス、０．１Ｍ塩酸ヒドロキシルアミン ｐＨ８）５ｍｌを加え、よく混合した後、３０℃で１時間反応させた。反応は、停止液（５０ｇ塩化第二鉄／１０００ｍｌ８．４Ｎ塩酸）２ｍｌを入れることで停止した。この液をＮＯ．５Ｃの濾紙（アドバンテック社製）で濾過した。この濾液の吸光度を４２０ｎｍで測定した。活性はテストの吸光度から酵素ブランク、水ブランクの吸光度を引いた後、係数として６．０３をかけてＵ／ｇ麹とした。
グルタミナーゼ活性は、麹１ｇ当り１分間に１μモルのグルタミン酸量を生成する活性を１Ｕ（ユニット又は単位）として示した。
【００２０】
得られえた変異株アスペルギルス・ソーヤ Ｉ６７−１の麹分析値を表１に示す。
【００２１】
【表１】
【００２２】
表１の結果から、変異株は、一番手入れ品温が親株と同等であり、生育も良好で、付随変異が生じていないことが確認された。また、これまでは突然変異により高プロテアーゼ変異株を得るとグルタミナーゼは親株よりも低下してしまうことが知られていたが、ここに示すとおり、Ｉ６７−１は非常に高いプロテアーゼ活性を示しながらも、グルタミナーゼも親株並みの高いレベルを維持していることがわかる。なお、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１は、平成１９年１０月２日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−○○○を得ている。
【実施例２】
【００２３】
（アスペルギルス・ソーヤ オリゼ ＲＩＢ４０由来のｐｙｒＧ変異株の育種方法）
ｐｙｒＧ変異株の獲得は定法に従って行った。
すなわち、Ｃｚａｐｅｋ−Ｄｏｘ Ｂｒｏｔｈ（Ｄｉｆｃｏ製）に１０ｍＭウリジン、３ｍｇ／ｍｌ ５−フルオロオロチン酸を加えたｐｙｒＧ変異株選択培地に重イオンビーム変異処理した分生子を塗布し、生育してきたコロニーをｐｙｒＧ変異株候補株としてピックアップした。
【００２４】
得られたｐｙｒＧ変異株候補株３３株を親株にして、それぞれｐｙｒＧ遺伝子を形質転換し、相補試験を行った。その結果、１株形質転換体を得ることができ、これをＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ−株とした。なお、この菌株は、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１を得ている。
【実施例３】
【００２５】
（アスペルギルス・ソーヤ ＡＴＣＣ４２２５１由来の欠失変異株の育種方法）
一般にアスペルギルス・ソーヤは野生型では緑色の分生子を着生するが、稀に白い分生子を形成する突然変異株を得ることができる。この突然変異株の一部はｗＡ遺伝子に変異が入ることで得られることが知られているので、この遺伝子の変異を調べることで重イオンビームによる変異のパターンを解析した。実施例２と同様にして重イオンビームによる変異株を得た。比較のため、常法により紫外線変異で、白い分生子を形成する変異株を得た。そして変異株のｗＡ遺伝子配列を解析した。
【００２６】
重イオンビーム変異で得た白色変異株は１１４株中３８株が欠失変異株であったのに対し、紫外線変異で得た白色変異株は３８株中１株も欠失変異株が得られなかった。なお、重イオンビームで得られたｗＡ遺伝子の欠失に伴う白色変異株Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ ｗＡ−ＩＢは、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４２８を得ている。また紫外線変異で得たｗＡ遺伝子の塩基置換による白色変異株Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ ｗＡ−ＵＶは、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、それぞれ受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４２９を得ている。
【技術分野】
【０００１】
本発明は黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
黄麹菌は、日本の伝統食品である醤油、味噌、日本酒、みりんなどの醸造に利用される微生物である。黄麹菌は、これらの食品製造において、主に原料を分解する役割を担っている。醤油を例にとると、原料である大豆と小麦に黄麹菌を生育させ、麹を製造する。この段階で麹菌は大豆や小麦のタンパク質、糖質などを分解する酵素を生産する。ここでの分解率が高いと次工程の乳酸発酵、酵母発酵が適正に行われ、製品の品質向上に大きく寄与する。また、タンパク質を高分解することにより、製品の歩留まりが向上し、生産性を向上することができる。これらのことから、黄麹菌の改良は、酵素生産性を向上させることを主な目的として、これまでも精力的に行われている。
【０００３】
黄麹菌の育種方法としては突然変異方法、遺伝子組換え方法がある。遺伝子組換え方法は、効率的に目的株を育種することができる方法であるが、遺伝子組換え技術を食品に応用していくことが日本市場においてはまだ受け入れられていないため、現実の食品製造に使用するのは問題がある。そのため、今でも従来からの突然変異方法が黄麹菌の育種の主流である。突然変異の方法としては紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの薬剤による変異などが行われてきたが、どちらの方法も付随変異が多いという欠点がある。つまり、ひとつの菌株に同時に変異が多数生じてしまうため、目的以外の形質も変化してしまうという問題点がある。付随変異により、菌の生育が遅くなる、他の酵素生産性が低下するなどの問題が頻繁に生じ、実用上有望な変異株を取ることが非常に困難である。
【０００４】
また、これらの変異方法は長年実施されてきているが、場合によってはこれらの変異方法では得ることができない変異株があることが知られている。例えば、醤油麹菌においてはプロテアーゼとグルタミナーゼを同時に高生産する株を得ることは非常に困難であることが報告されており、これを解決するために細胞融合法が用いられている（特許文献１参照）。また、紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの薬剤による従来の変異方法によると、得られる変異株は塩基置換や塩基挿入、あるいは、わずかな数の塩基の欠失に伴うものがほとんどで、大規模に塩基が欠失した変異株を得ることは困難であった。さらに、アスペルギルス・オリゼＲＩＢ４０株（独立行政法人 酒類総合研究所、菌株保管）は既にゲノム解析が行われた麹菌であり、遺伝子組換え技術の宿主として非常に重要な株であるが、これを親株としてｐｙｒＧ変異株が紫外線照射、ニトロソグアニジンなどの従来の突然変異方法では得られないことが知られている。ｐｙｒＧ変異株は形質転換を行う際の宿主であるため、この変異株が得られないことは遺伝子組換え技術進展に大きな問題を与える。
【０００５】
このように黄麹菌は醸造食品産業上、また遺伝子工学産業上において重要な微生物であるが、育種に関して上記のような問題があるため、効果的な育種方法を開発することは大きな課題である。また、黄麹菌は黒麹菌などの他の麹菌と異なり、細胞内に複数の核を持っているため、変異を困難にしている。これらのことを背景に、黄麹菌の育種において、効率的で効果的な変異方法の確立が求められている。
【特許文献１】特公平３−７３２７１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の課題は、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株を得る、黄麹菌変異株の育種方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するため、鋭意研究を重ねた結果、重イオンビームを照射する方法を用いて黄麹菌を変異し、その中から従来の変異方法では得ることができなかった変異株を得ることができることを見出し、この知見に基づいて本発明を完成した。
【０００８】
すなわち、本発明は以下に示す黄麹菌変異株の育種方法である。
（１）黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
（２）黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤ又はアスペルギルス・オリゼである上記（１）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（３）重イオンビームが、4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+からなる群のいずれかを線源とする上記（１）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（４）変異の生じた黄麹菌が、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌である、上記（１）〜（３）のいずれかである黄麹菌変異株の育種方法。
（５）変異を生じた黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３０）である上記（４）に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
（６）黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から遺伝子の欠失変異株を得ることを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
（７）黄麹菌変異株が、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ-（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１）である黄麹菌変異株の育種方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株（例えば、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌）、並びに遺伝子の欠失変異株（アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０を親株としたｐｙｒＧ突然変異株）を得ることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明に係る黄麹菌は、アスペルギルス・ソーヤ及びアスペルギルス・オリゼに属する任意の菌株が挙げられる。このような菌株としては、従来の醤油、味噌又は清酒の醸造に使用する麹菌が挙げられ、例えば、アスペルギルス・ソーヤ ２６２（ＦＥＲＭ Ｐ−２１８８）、アスペルギルス・ソーヤ ２１６５（ＦＥＲＭ Ｐ−７２８０）及びアスペルギルス・オリゼ（ＩＡＭ２６３８）、アスペルギルス・ソーヤ ＡＴＣＣ４２２５１などが挙げられる。
【００１１】
次に、重イオンビームを照射するには、上記菌株の分生子、凍結乾燥させた分生子、発芽分生子、発芽後５℃程度まで冷却した分生子などの胞子懸濁液を、通常の寒天平板培養培地、例えば、マルツ培地（マルツエキス９％、酵母エキス０．５％、寒天２％ ｐＨ６）等に０．２〜２０×１０6個塗布し4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+などをイオン源とした重イオンビームを照射する。
重イオンビームの線量は２５〜２，５００Ｇｙが好ましく、５０〜８００Ｇｙがより好ましく、１００〜５００Ｇｙが最も好ましい。
この重イオンビームの照射は、例えば、独立行政法人日本原子力研究開発機構 高崎量子応用研究所のＴＩＡＲＡを用いることができる。
【００１２】
照射後は、同培地で２５〜３５℃で２〜６日間培養し、分生子を着生させ、この分生子を回収し、変異の生じた黄麹菌を選択する。
【００１３】
変異の生じた黄麹菌を選択する場合の例としては、プロテアーゼ生産能の高い変異株を選択する方法が挙げられる。この方法は、カゼインプレートに、照射した麹菌株を接種し、麹菌の生育適温にて適当時間培養し、培養後、コロニーの周りにできるクリアゾーンの大きい株を選択し、その株について醸造特性を調べ、プロテアーゼ生産能の高い変異株をスクリーニングする方法で行われる。
【００１４】
本発明によれば、付随変異が少なく、従来の変異方法では獲得できなかった黄麹菌の変異株、例えば、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌、並びに遺伝子の欠失変異株、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０を親株としたｐｙｒＧ突然変異株を得ることができる。
【実施例１】
【００１５】
（非常に高いプロテアーゼ活性を示しながらも、グルタミナーゼ活性が親株並みの高いレベルを維持している黄麹菌の育種方法）
（重イオンビーム照射に麹菌の育種法）
親株としてアスペルギルス・ソーヤＡＴＣＣ４２２５１を使用した。
アスペルギルス・ソーヤＡＴＣＣ４２２５１の分生子をマルツ培地（マルツエキス９％、酵母エキス０．５％、寒天２％ ｐＨ６）に約２×１０6個塗布し、12Ｃ5+をイオン源として２５０Ｇｙの強度で照射を行った。
重イオンビームの照射は、独立行政法人日本原子力研究開発機構 高崎量子応用研究所のＴＬＡＲＡを用いて行った。
照射後、３０℃で４日間培養し、分生子を着生させた。この分生子を回収し、カゼインプレートによる高プロテアーゼ変異株のスクリーニングを行った。
【００１６】
（カゼイン培地によるスクリーニング）
回収した分生子を約４００個／ｍｌになるように滅菌水で希釈した。
この希釈液を５０μｌずつカゼイン培地（ミルクカゼイン０．４％、カザミノ酸０．０５％、リン酸１カリウム０．３６％、リン酸２ナトリウム１．４３％、硫酸マグネシウム０．５％、硫酸第二鉄０．００２％、寒天２％ ｐＨ６．５）（％はｗ／ｗ％を意味する）に塗布し、３０℃で４日間培養した。培養後、コロニーの周りにできるクリアゾーンの大きい株を選択し、その株について醸造特性を調べた。
【００１７】
醤油麹の製造法は定法に従って行った。すなわち、蒸煮した脱脂大豆と焙炒割砕小麦を５０：５０の割合で混合し、ここに種麹を１／１０００量（ｗ／ｗ）加え、３日麹で製麹した。
【００１８】
得られた麹の分析は以下のようにして行った。
（プロテアーゼ活性の測定法）
麹に１０倍量の蒸留水を加え、よく混合し、２時間室温で放置した。これをＮＯ．２の濾紙（アドバンテック社製）で濾過し、得られた抽出液を酵素サンプルとして、「しょうゆ試験法」（財団法人 日本醤油研究所 昭和６０年）に記載の方法に従って測定した。
プロテアーゼ活性は、麹１ｇ当り１分間に１μモルのチロシンを生成する活性を１Ｕ（ユニット又は単位）として示した
【００１９】
（グルタミナーゼ活性の測定法）
麹に５０倍量の蒸留水を加え、ポリトロンで１分間破砕したものを酵素サンプルとした。この酵素サンプル７ｍｌに０．１Ｍ Ｌ−グルタミン溶液（１Ｍトリス、０．１Ｍ塩酸ヒドロキシルアミン ｐＨ８）５ｍｌを加え、よく混合した後、３０℃で１時間反応させた。反応は、停止液（５０ｇ塩化第二鉄／１０００ｍｌ８．４Ｎ塩酸）２ｍｌを入れることで停止した。この液をＮＯ．５Ｃの濾紙（アドバンテック社製）で濾過した。この濾液の吸光度を４２０ｎｍで測定した。活性はテストの吸光度から酵素ブランク、水ブランクの吸光度を引いた後、係数として６．０３をかけてＵ／ｇ麹とした。
グルタミナーゼ活性は、麹１ｇ当り１分間に１μモルのグルタミン酸量を生成する活性を１Ｕ（ユニット又は単位）として示した。
【００２０】
得られえた変異株アスペルギルス・ソーヤ Ｉ６７−１の麹分析値を表１に示す。
【００２１】
【表１】
【００２２】
表１の結果から、変異株は、一番手入れ品温が親株と同等であり、生育も良好で、付随変異が生じていないことが確認された。また、これまでは突然変異により高プロテアーゼ変異株を得るとグルタミナーゼは親株よりも低下してしまうことが知られていたが、ここに示すとおり、Ｉ６７−１は非常に高いプロテアーゼ活性を示しながらも、グルタミナーゼも親株並みの高いレベルを維持していることがわかる。なお、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１は、平成１９年１０月２日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−○○○を得ている。
【実施例２】
【００２３】
（アスペルギルス・ソーヤ オリゼ ＲＩＢ４０由来のｐｙｒＧ変異株の育種方法）
ｐｙｒＧ変異株の獲得は定法に従って行った。
すなわち、Ｃｚａｐｅｋ−Ｄｏｘ Ｂｒｏｔｈ（Ｄｉｆｃｏ製）に１０ｍＭウリジン、３ｍｇ／ｍｌ ５−フルオロオロチン酸を加えたｐｙｒＧ変異株選択培地に重イオンビーム変異処理した分生子を塗布し、生育してきたコロニーをｐｙｒＧ変異株候補株としてピックアップした。
【００２４】
得られたｐｙｒＧ変異株候補株３３株を親株にして、それぞれｐｙｒＧ遺伝子を形質転換し、相補試験を行った。その結果、１株形質転換体を得ることができ、これをＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ−株とした。なお、この菌株は、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１を得ている。
【実施例３】
【００２５】
（アスペルギルス・ソーヤ ＡＴＣＣ４２２５１由来の欠失変異株の育種方法）
一般にアスペルギルス・ソーヤは野生型では緑色の分生子を着生するが、稀に白い分生子を形成する突然変異株を得ることができる。この突然変異株の一部はｗＡ遺伝子に変異が入ることで得られることが知られているので、この遺伝子の変異を調べることで重イオンビームによる変異のパターンを解析した。実施例２と同様にして重イオンビームによる変異株を得た。比較のため、常法により紫外線変異で、白い分生子を形成する変異株を得た。そして変異株のｗＡ遺伝子配列を解析した。
【００２６】
重イオンビーム変異で得た白色変異株は１１４株中３８株が欠失変異株であったのに対し、紫外線変異で得た白色変異株は３８株中１株も欠失変異株が得られなかった。なお、重イオンビームで得られたｗＡ遺伝子の欠失に伴う白色変異株Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ ｗＡ−ＩＢは、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４２８を得ている。また紫外線変異で得たｗＡ遺伝子の塩基置換による白色変異株Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ ｗＡ−ＵＶは、平成１９年１０月３日付けにて、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターへ寄託し、それぞれ受領番号：ＮＩＴＥ ＡＰ−４２９を得ている。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項２】
黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤ又はアスペルギルス・オリゼである請求項１に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項３】
重イオンビームが、4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+からなる群のいずれかを線源とする請求項１に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項４】
変異の生じた黄麹菌が、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌である、請求項１〜３のいずれかである黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項５】
変異を生じた黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３０）である請求項４に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項６】
黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から遺伝子の欠失変異株を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項７】
黄麹菌変異株が、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ-（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１）である黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項１】
黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から変異の生じた黄麹菌を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項２】
黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤ又はアスペルギルス・オリゼである請求項１に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項３】
重イオンビームが、4Ｈｅ2+、20Ｎｅ8+及び12Ｃ5+からなる群のいずれかを線源とする請求項１に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項４】
変異の生じた黄麹菌が、１，１００Ｕ／ｇ麹以上のプロテアーゼ生産能を有し、２．０Ｕ／ｇ麹以上のグルタミナーゼ生産能を有する麹菌である、請求項１〜３のいずれかである黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項５】
変異を生じた黄麹菌が、アスペルギルス・ソーヤＩ６７−１（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３０）である請求項４に記載の黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項６】
黄麹菌に重イオンビームを照射し、その照射体及びその培養物から遺伝子の欠失変異株を選択することを特徴とする黄麹菌変異株の育種方法。
【請求項７】
黄麹菌変異株が、アスペルギルス・オリゼ ＲＩＢ４０ ｐｙｒＧ-（ＮＩＴＥ ＡＰ−４３１）である黄麹菌変異株の育種方法。
【公開番号】特開２００９−９５２８０（Ｐ２００９−９５２８０Ａ）
【公開日】平成２１年５月７日（２００９．５．７）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−２６９９５６（Ｐ２００７−２６９９５６）
【出願日】平成１９年１０月１７日（２００７．１０．１７）
【出願人】（０００００４４７７）キッコーマン株式会社 (212)
【出願人】（５０５３７４７８３）独立行政法人 日本原子力研究開発機構 (727)
【上記１名の代理人】
【識別番号】１００１２５５４２
【弁理士】
【氏名又は名称】鈴木 英之
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２１年５月７日（２００９．５．７）
【国際特許分類】
【出願日】平成１９年１０月１７日（２００７．１０．１７）
【出願人】（０００００４４７７）キッコーマン株式会社 (212)
【出願人】（５０５３７４７８３）独立行政法人 日本原子力研究開発機構 (727)
【上記１名の代理人】
【識別番号】１００１２５５４２
【弁理士】
【氏名又は名称】鈴木 英之
【Ｆターム（参考）】
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