ブロッキング剤
【課題】本発明は、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して測定する方法において、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体を抑制するためのブロッキング剤を提供することを課題とする。
【解決手段】蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤を提供する。
【解決手段】蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤を提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、標識試薬と抗体との非特異的な反応を抑制するブロッキング剤に関する。さらに詳しくは、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して検出する方法において、蛍光色素と抗体との非特異的な反応を抑制するためのブロッキング剤に関する。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
免疫反応を利用して試料中の目的抗原を検出する方法において、試料を蛍光色素と結合させて、試料中の目的抗原を蛍光標識し、抗原抗体複合体の標識蛍光色素を検出することにより、試料中の目的抗原を定性的にあるいは定量的に測定する方法が知られている。本方法において、試料中の抗原と結合しなかった蛍光色素（未反応蛍光色素）が試料中に残存すると、抗体に未反応蛍光色素が非特異的に結合し、バックグラウンドが高くなることが知られている。このような蛍光色素と抗体との非特異反応を防止し、蛍光検出時のバックグラウンドを低減するため、従来、当該未反応蛍光色素をゲル濾過カラムにより取り除き、試料の精製を行っていた。しかし、ゲルろ過カラムを用いて試料を精製すると時間がかかるうえに、工程も増えるという問題があり、測定の簡略化、スピード化が求められていた。
ここで、非特異的な反応によるバックグラウンドの低減を目的とする技術として次のような従来技術が知られている。特許文献１には、ＤＮＡマイクロアレイにおける非特異的に吸着した蛍光色素付ＤＮＡ及び未精製蛍光色素誘導体などの影響を受けずに、消光剤を用いて従来よりも検出感度と再現性を向上させる方法が開示されている。そして、消光剤としては、蛍光共鳴エネルギー転移により蛍光を消光させる物質を用いるとあり、具体的には、ＤＮＰ、テトラメチルローダミンなどが挙げられている。特許文献２には、ハイブリダイゼーション用の特定の固体支持体を調製し、非特異的バックグラウンドを低減する方法が開示されている。
しかし、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体をブロックするようなブロッキング剤についてはなんら開示も示唆もされていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開2003-84002号公報
【特許文献２】特表平11-514872号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、抗原抗体反応を利用して蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出する方法において、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体を抑制するためのブロッキング剤を提供することを課題とする。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置の提供も課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明は、上記課題を解決するために、さまざまな化合物や緩衝液について、未反応蛍光色素の免疫反応に対する非特異反応抑制効果を検討したところ、驚くべきことに、トリス塩酸を用いた場合に、前記非特異反応を抑制できることをつきとめ、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
〔１〕蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
〔２〕抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、〔１〕記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
〔３〕抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である〔２〕に記載のタンパク質検出方法。
〔４〕〔２〕又は〔３〕に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）〔１〕に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【発明の効果】
【０００６】
本発明のブロッキング剤によれば、抗原抗体反応を阻害することなく、抗体と未反応蛍光色素との非特異反応のみを抑制し、バックグラウンドを抑えることができた。
また、本発明のブロッキング剤を用いた検出方法により、従来の検出方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたところ、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合抑制効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【図２】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）のブロッキング効果の濃度依存性についてＢＬＭＨ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【図３】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）のブロッキング効果の濃度依存性についてＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴としている。
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応とは、蛍光色素と抗体との非特異反応であり、測定対象である抗原を蛍光色素で標識した場合に、余剰の未反応蛍光色素が測定用の抗体と起こす反応のことをいう。
【０００９】
抗原を標識する蛍光色素としては、本発明のブロッキング剤が未反応蛍光色素と抗体との非特異反応抑制効果を発揮できるような蛍光色素であればどのようなものでもよく、タンパク質検出方法に用いられる蛍光色素が対象とされる。例えば、Ｃｙａｎｉｎｅ類、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類、ＤｙＬｉｇｈｔ類等のタンパク質のアミノ基に結合する蛍光試薬が挙げられる。Ｃｙａｎｉｎｅ類としては、Ｃｙａｎｉｎｅ３、３．５、５、５．５、７、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類としてはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ３５０、５５５、ＤｙＬｉｇｈｔ類としてはＤｙＬｉｇｈｔ ５４９、６４９等が挙げられる。
【００１０】
本発明のブロッキング剤は、抗原を蛍光色素で標識して蛍光検出するような免疫反応であればいずれの免疫反応にも用いることができる。従って、測定対象の抗原もさまざまなものが挙げられるが、例えば、Ｇ３ＰＤＨ、ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ、Ａｒｇｉｎａｓｅ−１、Ｋｅｒａｔｉｎ２ｅ、Ｋｅｒａｔｉｎ７、Ｋｅｒａｔｉｎ１５、Ｐｒｏｆｉｌｉｎ−１、ＳＣＣＡ２、ｕＰＡ、ＢＬＭＨ、ＭＭＰ２、ＨＳＰ７０、β−Ｃａｔｅｎｉｎ、Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ１、ｍａｓｐｉｎ、ＩｇＥ、ＨＳＰ２７、ＦＡＢＰ−５、ｇａｌｅｃｔｉｎ−７、ＫＬＫ７、ｅｎｏｌａｓｅ−１、Ｃａｔｈｅｐｓｉｎ Ｄ、β−ａｃｔｉｎ等が挙げられる。
【００１１】
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応において、抗体は、固相に固定化されて用いられる。抗体が固定化される固相としては、ストリップ状の試験片、プラスチック基板、粒子、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜などが挙げられ、固相への抗体の固定化はそれ自体周知の方法によって行うことができる。また、プラスチック基板に抗体が固定化されている例としては、プラスチック基板に抗体が点状にスポットされ固定化された抗体チップや抗体アレイが挙げられる。
【００１２】
本発明のブロッキング剤の免疫反応への適用方法としては、蛍光色素で標識した抗原と抗体を反応させる前に未反応蛍光色素をブロッキング剤で処理することにより、未反応蛍光色素と抗体との非特異反応を防ぐ方法が挙げられる。
【００１３】
本発明のブロッキング剤としては、トリス塩酸を用いることができ、使用濃度としては、トリス塩酸は０．１〜３Ｍ（終濃度：０．０４〜１．２Ｍ）の範囲で用いられ、好ましくは０．１〜２Ｍ（終濃度：０．０４〜０．８Ｍ）、さらに好ましくは０．５〜２Ｍ（終濃度：０．２〜０．８Ｍ）の範囲で用いられる。
【００１４】
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素で標識した試料中の抗原について抗原抗体反応を利用して検出するタンパク質検出方法に用いることができ、当該タンパク質検出方法において、バックグラウンドを低減することができる。また、本発明の検出方法により、従来の測定方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたものを、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
また、本発明のタンパク質検出方法は、定量的な検出、定性的な検出のいずれにも用いることができる。
【００１５】
また、本発明の蛍光検出方法を使用するタンパク質検出装置としては、少なくとも以下の（１）〜（５）の手段を有する検出装置が挙げられる。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）本発明のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【実施例】
【００１６】
本発明の具体的な実施方法について以下説明するが、本発明は、これに限定されるものではない。
【００１７】
〔実施例１〕
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、２００、４００、８００ｎｇ のＧ３ＰＤＨ 精製タンパク質（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−Ｐ０００８）
（１−２）抗体チップ
抗Ｇ３ＰＤＨ抗体（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−ＭＡ００３８）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＧ３ＰＤＨ抗体チップを用いた。
１つの抗体チップには、８個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の抗体スポットが設けられ、固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各試料濃度について各１ウェルに適用し測定した。なお、抗体チップの作製は、住友ベークライト株式会社に依頼して行った（以下の実施例においても同様）。
（１−３）蛍光色素
Ｃｙａｎｉｎｅ５（製品名：Ｃｙ５ ｍｏｎｏｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｄｙe 、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製（ＰＡ２５００１）、以下単にＣｙ５と省略することがある。）
（１−４）ブロッキング剤
トリス塩酸 （ｐＨ７．４）（和光純薬）を用いた。
（２）試験方法
以下の手順により、測定を行った。
（i）１．５ｍｌ容量のプラスチックチューブ（以下チューブとする）に各濃度の試料（５０μl）と０．１Ｍ Ｎａ２ＣＯ３（１５μｌ）とを混合し、１分間、室温で放置した。
（ii）Ｃｙ５を入れたチューブ前記混合試料を加えて３７℃で１０分間反応させた。
（iii）１Ｍ トリス塩酸を（ii）で反応させた試料に４０μｌ加える。
（iv）抗体チップの各ウェルに試料を添加し３７℃で３０分間反応させた。
（v）室温下、Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒで抗体チップを５回洗浄した。
（vi）室温下、超純水で抗体チップを２回洗浄した。
（vii）以下の蛍光測定機器及び条件により、蛍光強度を測定した。
蛍光測定機器：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社製 ＧｅｎｅＰｉｘ ４０００Ｂ
測定条件：ＰＭＴ Ｇａｉｎ（光電子増倍管の感度）を６００に設定してレーザースキャンを行い、スキャン後、それぞれのスポットに対するシグナル値を出し、ｎ＝５での平均値を算出した。
（３）試験結果
測定結果を図１に示す。抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
【００１８】
〔実施例２〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
（１）材料
（１−１）試料
ＢＬＭＨ精製タンパク質（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ｑ０１） ０ｎｇ（試料なし）、１２５ｎｇ（試料あり）
（１−２）抗体チップ
抗ＢＬＭＨ抗体（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ａ０１）が最終濃度０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＢＬＭＨ抗体チップを用いた。１つの抗体チップには、１０個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の抗体スポットが固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各ブロッキング剤濃度について試料を各１ウェルに適用し測定した。
（１−３）蛍光色素
実施例１と同じものを用いた。
（１−４）ブロッキング剤
０、０．１、０．５、１、２Ｍのトリス塩酸（ｐＨ７．４、和光純薬工業）を用いた。
（２）試験方法
実施例１の試験方法に同じ。
（３）試験結果
抗ＢＬＭＨ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図２に示す。これによれば、トリス塩酸 １Ｍの場合に、サンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
【００１９】
〔実施例３〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
試料として、ＢＬＭＨ精製タンパク質の代わりにＡｎｎｅｘｉｎＩＩ精製タンパク質（ＡｍＰｒｏｘ社：Ｎｏ．８１６８−１０）、抗体として抗ＢＬＭＨ抗体の代わりに抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−４７６９６）を用いた以外は、実施例２と同様に行った。抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図３に示す。これによれば、抗体チップが変わってもトリス塩酸が１Ｍでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００２０】
本発明のブロッキング剤によれば、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して測定する方法において、抗原抗体反応を阻害することなく、非特異反応を抑制し、バックグラウンドを抑えることができる。従って、従来よりも非常に簡易な方法、短時間で正確かつ高感度の測定をすることが可能となり、抗体を多数固定化した抗体チップを用いた測定方法・測定装置にも適用が可能である。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、標識試薬と抗体との非特異的な反応を抑制するブロッキング剤に関する。さらに詳しくは、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して検出する方法において、蛍光色素と抗体との非特異的な反応を抑制するためのブロッキング剤に関する。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
免疫反応を利用して試料中の目的抗原を検出する方法において、試料を蛍光色素と結合させて、試料中の目的抗原を蛍光標識し、抗原抗体複合体の標識蛍光色素を検出することにより、試料中の目的抗原を定性的にあるいは定量的に測定する方法が知られている。本方法において、試料中の抗原と結合しなかった蛍光色素（未反応蛍光色素）が試料中に残存すると、抗体に未反応蛍光色素が非特異的に結合し、バックグラウンドが高くなることが知られている。このような蛍光色素と抗体との非特異反応を防止し、蛍光検出時のバックグラウンドを低減するため、従来、当該未反応蛍光色素をゲル濾過カラムにより取り除き、試料の精製を行っていた。しかし、ゲルろ過カラムを用いて試料を精製すると時間がかかるうえに、工程も増えるという問題があり、測定の簡略化、スピード化が求められていた。
ここで、非特異的な反応によるバックグラウンドの低減を目的とする技術として次のような従来技術が知られている。特許文献１には、ＤＮＡマイクロアレイにおける非特異的に吸着した蛍光色素付ＤＮＡ及び未精製蛍光色素誘導体などの影響を受けずに、消光剤を用いて従来よりも検出感度と再現性を向上させる方法が開示されている。そして、消光剤としては、蛍光共鳴エネルギー転移により蛍光を消光させる物質を用いるとあり、具体的には、ＤＮＰ、テトラメチルローダミンなどが挙げられている。特許文献２には、ハイブリダイゼーション用の特定の固体支持体を調製し、非特異的バックグラウンドを低減する方法が開示されている。
しかし、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体をブロックするようなブロッキング剤についてはなんら開示も示唆もされていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開2003-84002号公報
【特許文献２】特表平11-514872号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、抗原抗体反応を利用して蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出する方法において、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体を抑制するためのブロッキング剤を提供することを課題とする。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置の提供も課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明は、上記課題を解決するために、さまざまな化合物や緩衝液について、未反応蛍光色素の免疫反応に対する非特異反応抑制効果を検討したところ、驚くべきことに、トリス塩酸を用いた場合に、前記非特異反応を抑制できることをつきとめ、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
〔１〕蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
〔２〕抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、〔１〕記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
〔３〕抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である〔２〕に記載のタンパク質検出方法。
〔４〕〔２〕又は〔３〕に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）〔１〕に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【発明の効果】
【０００６】
本発明のブロッキング剤によれば、抗原抗体反応を阻害することなく、抗体と未反応蛍光色素との非特異反応のみを抑制し、バックグラウンドを抑えることができた。
また、本発明のブロッキング剤を用いた検出方法により、従来の検出方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたところ、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合抑制効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【図２】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）のブロッキング効果の濃度依存性についてＢＬＭＨ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【図３】本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）のブロッキング効果の濃度依存性についてＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体チップを用いて行った試験結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴としている。
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応とは、蛍光色素と抗体との非特異反応であり、測定対象である抗原を蛍光色素で標識した場合に、余剰の未反応蛍光色素が測定用の抗体と起こす反応のことをいう。
【０００９】
抗原を標識する蛍光色素としては、本発明のブロッキング剤が未反応蛍光色素と抗体との非特異反応抑制効果を発揮できるような蛍光色素であればどのようなものでもよく、タンパク質検出方法に用いられる蛍光色素が対象とされる。例えば、Ｃｙａｎｉｎｅ類、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類、ＤｙＬｉｇｈｔ類等のタンパク質のアミノ基に結合する蛍光試薬が挙げられる。Ｃｙａｎｉｎｅ類としては、Ｃｙａｎｉｎｅ３、３．５、５、５．５、７、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類としてはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ３５０、５５５、ＤｙＬｉｇｈｔ類としてはＤｙＬｉｇｈｔ ５４９、６４９等が挙げられる。
【００１０】
本発明のブロッキング剤は、抗原を蛍光色素で標識して蛍光検出するような免疫反応であればいずれの免疫反応にも用いることができる。従って、測定対象の抗原もさまざまなものが挙げられるが、例えば、Ｇ３ＰＤＨ、ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ、Ａｒｇｉｎａｓｅ−１、Ｋｅｒａｔｉｎ２ｅ、Ｋｅｒａｔｉｎ７、Ｋｅｒａｔｉｎ１５、Ｐｒｏｆｉｌｉｎ−１、ＳＣＣＡ２、ｕＰＡ、ＢＬＭＨ、ＭＭＰ２、ＨＳＰ７０、β−Ｃａｔｅｎｉｎ、Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ１、ｍａｓｐｉｎ、ＩｇＥ、ＨＳＰ２７、ＦＡＢＰ−５、ｇａｌｅｃｔｉｎ−７、ＫＬＫ７、ｅｎｏｌａｓｅ−１、Ｃａｔｈｅｐｓｉｎ Ｄ、β−ａｃｔｉｎ等が挙げられる。
【００１１】
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応において、抗体は、固相に固定化されて用いられる。抗体が固定化される固相としては、ストリップ状の試験片、プラスチック基板、粒子、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜などが挙げられ、固相への抗体の固定化はそれ自体周知の方法によって行うことができる。また、プラスチック基板に抗体が固定化されている例としては、プラスチック基板に抗体が点状にスポットされ固定化された抗体チップや抗体アレイが挙げられる。
【００１２】
本発明のブロッキング剤の免疫反応への適用方法としては、蛍光色素で標識した抗原と抗体を反応させる前に未反応蛍光色素をブロッキング剤で処理することにより、未反応蛍光色素と抗体との非特異反応を防ぐ方法が挙げられる。
【００１３】
本発明のブロッキング剤としては、トリス塩酸を用いることができ、使用濃度としては、トリス塩酸は０．１〜３Ｍ（終濃度：０．０４〜１．２Ｍ）の範囲で用いられ、好ましくは０．１〜２Ｍ（終濃度：０．０４〜０．８Ｍ）、さらに好ましくは０．５〜２Ｍ（終濃度：０．２〜０．８Ｍ）の範囲で用いられる。
【００１４】
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素で標識した試料中の抗原について抗原抗体反応を利用して検出するタンパク質検出方法に用いることができ、当該タンパク質検出方法において、バックグラウンドを低減することができる。また、本発明の検出方法により、従来の測定方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたものを、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
また、本発明のタンパク質検出方法は、定量的な検出、定性的な検出のいずれにも用いることができる。
【００１５】
また、本発明の蛍光検出方法を使用するタンパク質検出装置としては、少なくとも以下の（１）〜（５）の手段を有する検出装置が挙げられる。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）本発明のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【実施例】
【００１６】
本発明の具体的な実施方法について以下説明するが、本発明は、これに限定されるものではない。
【００１７】
〔実施例１〕
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、２００、４００、８００ｎｇ のＧ３ＰＤＨ 精製タンパク質（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−Ｐ０００８）
（１−２）抗体チップ
抗Ｇ３ＰＤＨ抗体（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−ＭＡ００３８）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＧ３ＰＤＨ抗体チップを用いた。
１つの抗体チップには、８個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の抗体スポットが設けられ、固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各試料濃度について各１ウェルに適用し測定した。なお、抗体チップの作製は、住友ベークライト株式会社に依頼して行った（以下の実施例においても同様）。
（１−３）蛍光色素
Ｃｙａｎｉｎｅ５（製品名：Ｃｙ５ ｍｏｎｏｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｄｙe 、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製（ＰＡ２５００１）、以下単にＣｙ５と省略することがある。）
（１−４）ブロッキング剤
トリス塩酸 （ｐＨ７．４）（和光純薬）を用いた。
（２）試験方法
以下の手順により、測定を行った。
（i）１．５ｍｌ容量のプラスチックチューブ（以下チューブとする）に各濃度の試料（５０μl）と０．１Ｍ Ｎａ２ＣＯ３（１５μｌ）とを混合し、１分間、室温で放置した。
（ii）Ｃｙ５を入れたチューブ前記混合試料を加えて３７℃で１０分間反応させた。
（iii）１Ｍ トリス塩酸を（ii）で反応させた試料に４０μｌ加える。
（iv）抗体チップの各ウェルに試料を添加し３７℃で３０分間反応させた。
（v）室温下、Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒで抗体チップを５回洗浄した。
（vi）室温下、超純水で抗体チップを２回洗浄した。
（vii）以下の蛍光測定機器及び条件により、蛍光強度を測定した。
蛍光測定機器：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社製 ＧｅｎｅＰｉｘ ４０００Ｂ
測定条件：ＰＭＴ Ｇａｉｎ（光電子増倍管の感度）を６００に設定してレーザースキャンを行い、スキャン後、それぞれのスポットに対するシグナル値を出し、ｎ＝５での平均値を算出した。
（３）試験結果
測定結果を図１に示す。抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
【００１８】
〔実施例２〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
（１）材料
（１−１）試料
ＢＬＭＨ精製タンパク質（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ｑ０１） ０ｎｇ（試料なし）、１２５ｎｇ（試料あり）
（１−２）抗体チップ
抗ＢＬＭＨ抗体（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ａ０１）が最終濃度０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＢＬＭＨ抗体チップを用いた。１つの抗体チップには、１０個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の抗体スポットが固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各ブロッキング剤濃度について試料を各１ウェルに適用し測定した。
（１−３）蛍光色素
実施例１と同じものを用いた。
（１−４）ブロッキング剤
０、０．１、０．５、１、２Ｍのトリス塩酸（ｐＨ７．４、和光純薬工業）を用いた。
（２）試験方法
実施例１の試験方法に同じ。
（３）試験結果
抗ＢＬＭＨ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図２に示す。これによれば、トリス塩酸 １Ｍの場合に、サンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
【００１９】
〔実施例３〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
試料として、ＢＬＭＨ精製タンパク質の代わりにＡｎｎｅｘｉｎＩＩ精製タンパク質（ＡｍＰｒｏｘ社：Ｎｏ．８１６８−１０）、抗体として抗ＢＬＭＨ抗体の代わりに抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−４７６９６）を用いた以外は、実施例２と同様に行った。抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図３に示す。これによれば、抗体チップが変わってもトリス塩酸が１Ｍでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００２０】
本発明のブロッキング剤によれば、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して測定する方法において、抗原抗体反応を阻害することなく、非特異反応を抑制し、バックグラウンドを抑えることができる。従って、従来よりも非常に簡易な方法、短時間で正確かつ高感度の測定をすることが可能となり、抗体を多数固定化した抗体チップを用いた測定方法・測定装置にも適用が可能である。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
【請求項２】
抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、請求項１に記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
【請求項３】
抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である請求項２に記載のタンパク質検出方法。
【請求項４】
請求項２又は３に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）請求項１に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【請求項１】
蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
【請求項２】
抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、請求項１に記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
【請求項３】
抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である請求項２に記載のタンパク質検出方法。
【請求項４】
請求項２又は３に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）請求項１に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
【図１】
【図２】
【図３】
【図２】
【図３】
【公開番号】特開２０１１−４７８７２（Ｐ２０１１−４７８７２Ａ）
【公開日】平成２３年３月１０日（２０１１．３．１０）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００９−１９８１７７（Ｐ２００９−１９８１７７）
【出願日】平成２１年８月２８日（２００９．８．２８）
【出願人】（５９３１０６９１８）株式会社ファンケル (310)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２３年３月１０日（２０１１．３．１０）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年８月２８日（２００９．８．２８）
【出願人】（５９３１０６９１８）株式会社ファンケル (310)
【Ｆターム（参考）】
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