噴霧乾燥した血液製剤とその製造方法
本発明は、脱水血液製剤の調製方法に関するものであり、この方法は、（ａ）水和血液製剤を供給するステップと；（ｂ）この方法で生成した脱水血液製剤だけでなく、この水和血液製剤を噴霧乾燥して脱水血液製剤を生成するステップと；を具える。本発明は、血液関連の疾患を患う患者を治療する方法に関するものであり、この方法は、（ａ）脱水血液製剤の治療量を再水和して、再水和治療組成物を生成するステップと；（ｂ）この再水和治療用組成物を投与するステップと；を具える。本発明は、上記の脱水血液製剤（図１に描写）を具える包帯又は外科的補助具に関するものである。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
［発明の背景］
本発明は、従来の凍結乾燥（フリーズドライ）の代替として噴霧乾燥を用いて乾燥した血液製剤の調製方法と、この方法により製造した生成物に関する。本発明を用いると乾燥生成物の回収率を上げることができる。最終生成物を水と混合するときに再構成率が上昇するだけでなく、天然の血漿の少なくとも３倍の濃度を示す。
【背景技術】
【０００２】
［関連技術の簡単な説明］
噴霧乾燥は、流動ガスの流れの中で溶液を噴霧して急速溶媒蒸発（すなわち、脱水）させる技術である。出来上がったものは、残留溶質から構成される微粒子のサブ秒の時間スケールでの形成物である。材料４、食品５、及び製薬６，７産業における産業プロセスとして、数十年間噴霧乾燥を用いている（以前の報告については、Ｂｅｒｇｓｏｅ８などを参照されたい）。最近では、吸入剤９、高度な担体治療用の微細構造１０−１２の製剤、及び新しい種類の微細材料１３−１５用の微粒子として、噴霧乾燥はタンパク質治療の調製を容易にしている。究極の微粒子のサイズと組成を決定する動的、相移転、物質移動、熱伝達、及び他の物理的なプロセスは、良く理解されており（最近の報告については、Ｖｅｈｒｉｎｇ１６などを参照されたい）、材料科学研究において噴霧乾燥の研究は、非常に盛んな分野である。この研究の主要部からの重要な知見は、水溶液系においては揮発プロセス中で気化熱が粒子の温度を下げるということである。従って、タンパク質活性を維持するために、タンパク質の熱変性を最小限に抑えることができる。
【０００３】
第二次世界大戦中には、全血輸血の利点は高く評価されたが、輸血反応する収集、輸送、期限切れ、及び型のミスマッチと関連する物流の困難が、普及利用を制限した１７。そのため全血の代替として乾燥血漿を開発した１８。第二次世界大戦中に、アメリカ、イギリス、及びカナダの軍隊の輸血業務は、非常に好ましい安全性プロファイルを有する乾燥血漿１を広く利用した。当初は今日の凍結乾燥プロトコルに類似する乾燥技術で、Ｓｈａｒｐ ａｎｄ Ｄｏｈｍｅ株式会社（後により大きな産業コンソーシアム）により米国陸−海軍の乾燥血漿の調製方法を商業的な量に調整した１９。この米国陸−海軍の乾燥血漿は、０．６７％（ｗ／ｖ）のクエン酸ナトリウムでは凝固せず、１９４２年以降は、０．１％（ｗ／ｖ）のクエン酸で再水和した。クエン酸で再水和すると、トロンビン発生をより好ましく維持するｐＨ７．４乃至７．６の最終生成物をもたらすことがわかった２０。
【０００４】
１９４５年以降は、米国陸−海軍の乾燥血漿を広範な民間利用に委ね、朝鮮戦争の初期段階で使用した。しかし、紫外線照射微生物汚染除去方法２１の開発が初期段階であったにもかかわらず、１９５３年に乾燥血漿の生産を停止した。公にされた理由は肝炎汚染であった。しかし、２００５年には１３００万以上のユニットを収集した血漿の民間利用は、主に新鮮凍結血漿として、非常に拡大していた２２。最新医療では、さまざまな目安として血漿を使用しており、その最も重要なものの１つが、大量の失血を伴う外傷における蘇生混合物の成分としての使用である。出血性ショック関連の凝固障害で高頻度に減少する凝固因子とフィブリノゲンなどの成分を血漿は含んでいる（例えば、Ｈａｒｄｙら２３を参照されたい）。
【０００５】
いくつかの医学的所見が、高濃度血漿生成物の有用性を示している。有害転帰の最初の観察は標準蘇生法に関連したので、高濃度の血漿などの生成物によって実現される低容量蘇生法の望ましさがますます認められてきている２４−２６。輸血に関連した心臓負担及び体液過剰に関連した急性呼吸窮迫症候群の発生率は、低容量蘇生法で回避することができる２７，２８。継続する出血が深刻化する希釈性凝血障害にも、少ない容量の投与が望ましい（例えば、Ｓｔｅｒｎの記事２９を参照されたい）。ヘモグロビンベースの酸素担体（ＨＢＯＣｓ）３０などの高度な蘇生生成物の発達は、大量の液体を注入することなく十分な組織酸素化を達成する能力を実現する。しかし、ＨＢＯＣｓの導入は、濃縮血漿などの止血系を補う低容量生成物の必要性が予想された。
【０００６】
乾燥血液製剤は当該技術分野で知られており、乾燥生成物を実現する主たる技術は凍結乾燥（フリーズドライ）である。例えば、Ｂｒｉｎｋｈｏｕｓらの米国特許第４，２８７，０８７号と第４，１４５，１８５号は、ホルムアルデヒドなどの架橋試薬で固定される乾燥血液血小板を開示する。米国特許第５，６５６，４９８号、第５，６５１，９６６号、第５，８９１，３９３号、第５，９０２，６０８号、及び第５，９９３，８０４号は、さらに乾燥血液製剤を開示する。そのような生成物は、安定、長期保存が可能であり、深刻な外傷を経験した患者に粉末形態で止血できる可能性があるので、治療目的に有用である。しかし、汚染を回避するため、厳重な無菌状態でかかる生成物を生産しなくてはならない。
【０００７】
現在の輸血実務では、解凍した単一ドナーの「新鮮凍結」生成物として血漿を頻繁に提供する。しかし、将来の軍事的利用、開発途上の国、荒野医療状況において冷凍物を提供することは困難であるので、この形状因子は、物資的に問題となり得る。従って、乾燥血漿生成物を用いた冷凍（凍結乾燥）の撤廃は、大きな利点となることだろう。更に、新鮮凍結血漿生成物の病原体を減少させるよりも乾燥血漿生成物の病原体を減少させるほうがはるかに容易である。本発明は、必要に対する答えであると考えられている。
【発明の概要】
【０００８】
一実施例において、本発明は：（ａ）水和血液製剤を提供するステップと；（ｂ）この水和血液製剤を噴霧乾燥して脱水血液製剤を生成するステップと；を具える脱水血液製剤の調製方法とともにこの方法によって製造される脱水血液製剤に関する。
【０００９】
別の実施例において、本発明は：（ａ）脱水血液製剤の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；（ｂ）この再水和治療用組成物を患者に投与するステップと；を具える血液関連の疾患を患う患者を治療する方法に関する。
【００１０】
別の実施例において、本発明は、上記の脱水血液製剤を具える包帯又は外科的な補助具に関する。
【００１１】
更に別の実施例において、本発明は：（ａ）水和固定化血小板を提供するステップと；（ｂ）水和固定化血小板を噴霧乾燥して脱水固定化血小板を生成ステップと；を具える脱水固定化血小板の調製方法とともにこの方法により製造する脱水固定化血小板に関する。
【００１２】
更に別の実施例において、本発明は：（ａ）脱水固定化血小板の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；（ｂ）再水和治療用組成物を患者に投与するステップと；を具える血液関連の疾患を患う患者を治療する方法に関する。
【００１３】
更に別の実施例において、本発明は、上記の脱水固定化血小板を具える包帯又は外科的な補助具に関する。
【００１４】
更に別の実施例において、本発明は、球面がくぼんだ形状を有する噴霧乾燥した固定化血小板に関するものであり、前記噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板用組成物を形成するとき、この組成物は、比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物より低い濁度（Ａ５００）値を有する。
【００１５】
以下の発明の詳細な説明を読むと、これらの及び他の実施例が明確になるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、本発明により生成した、噴霧乾燥した血漿ミクロスフェアの電子顕微鏡写真である。
【図２】図２は、さまざまなサンプルにおける凝固因子レベルを示すグラフである。
【図３】図３は、本発明の方法により生成した、噴霧乾燥した血漿に伴う天然凝固経路ターンオーバーを示すグラフを描写する。
【図４】図４は、本発明の方法により生成した噴霧乾燥した血漿のフィブリンの超微細構造の電子顕微鏡写真である。
【図５】図５は、いくつかの濃度における噴霧乾燥した血漿対凍結乾燥した血漿の濁度及び再水和率を描写するグラフである。
【図６】図６は、噴霧乾燥した誘導体化血小板を再水和した電子顕微鏡である。
【図７】図７は、噴霧乾燥した誘導体化血小板を再水和した別の顕微鏡写真である。
【図８】図８は、本発明の方法により製造した噴霧乾燥した再水和血小板のリストセチン凝集を示す電子顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
上記のとおり、本発明は、脱水血液製剤の調製方法と、この方法で製造した脱水血液製剤に関する。本発明の方法で脱水した有用な脱水血液製剤は、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清、血漿（ｐｌａｓｍａ）、及びこれらの組み合わせを含むがこれらに限定されるものではない。本発明の方法に適したある特定の有用な血液製剤は、ホルムアルデヒド又はパラホルムアルデヒドなどの固定剤で固定されている血小板である。更に、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液だけでなくこれらの組み合わせなどの診断用薬又は治療薬に、この血液製剤をさらに変更することができる。有用な変更生成物の一例は、Ｅｎｔｅｇｒｉｏｎ株式会社（レサーチトライアングルパーク、ノースカロライナ州）が市販するＳＴＡＳＩＸ（誘導化乾燥血小板）である。
【００１８】
当該技術で知られる凍結乾燥（フリーズドライ）などの従来の乾燥技術の代替として、本発明の方法は噴霧乾燥の技術を用いる。噴霧乾燥は、温かい乾燥媒体中に材料の供給を噴霧して流体状態の物質を乾燥微粒子形状に変換する方法である。噴霧乾燥は、制御された方法で噴霧媒体と乾燥媒体の混合による霧状供給物から水分を蒸発させることを含む。乾燥媒体は一般的には空気であるが、窒素など他のガスを用いることもある。噴霧粒子中の水分含量が望ましい含量に達するまで乾燥を進めたら、乾燥媒体からこの生成物を分離する。
【００１９】
噴霧乾燥の全プロセスは、一般に一連の四つのプロセスからなる。分散は、圧力ノズル、二流体ノズル、回転円板噴霧器、又は超音波ノズルによって達成され得る。噴霧器のタイプの選択は、所望の供給物の性質、量及び乾燥生成物の特性に依存する。分散エネルギーが高いほど、生じる液滴は小さくなる。乾燥中に液滴の挙動に影響を及ぼすことによりこれが乾燥生成物の特性に多大な影響を与えるので、噴霧が乾燥空気に接触する方法は噴霧乾燥器の設計において重要な因子となる。一実施例において、装置を通過する熱風の流れと同じ方向に材料を噴霧する。液滴が最も高湿度のときに、液滴が高温乾燥ガスと接触する。もう一つの実施例では、高温ガスの流れの逆方向に材料を噴霧する。高温ガスは上方に流れ、生成物は熱風を通過して収集トレイに次々に落ちる。残存する湿気が除去されるので、生成物は非常に熱くなる。この方法は、熱的に安定な生成物にのみ適している。更に別の実施例では、双方の噴霧方法の利点を組み合わせる。生成物は上向きに噴霧されてごく短時間高温域にとどまり、残存する湿気が除去される。次いで、重力がこの生成物を冷却域に引き込む。この生成物は短時間のみ高温域にあり熱の影響を受けにくいので、この実施例は特に有利である。
【００２０】
噴霧乾燥方法は、主に空気を乾燥媒体として用いるが、窒素など他のガスを用いてもよい。電気的に又はバーナーでこのガス流を加熱して、このプロセス後に大気中に排出する。この加熱媒体をリサイクルして再利用する場合は、一般的に窒素などの不活性ガスを空気の代わりに用いる。可燃性の溶媒、有毒な生成物、又は酸素感受性の生成物を処理するときは、窒素の使用が有利である。
【００２１】
噴霧乾燥のプロセス中に、噴霧の液滴が乾燥ガスに接触するとすぐに液滴表面で急速に確立された飽和蒸気膜から蒸発が起こる。高比表面積と既存の温度と湿度勾配、熱と物質移動が、効果的な乾燥を引き起こす。蒸発は、液滴の冷却、ひいては小さな熱負荷につながる。生成物の温度が出口乾燥空気温度まで上昇する前に、所望の液滴の脱湿が完了して乾燥器から生成物を取り出せるように、乾燥チャンバの設計と空気流量がチャンバ内の液滴の滞留時間を提供する。従って、生成物に対する熱損害の可能性はほとんどない。
【００２２】
この乾燥媒体から生成物を分離するのに二つのシステムを使用する。最初に乾燥生成物の一次分離を乾燥チャンバの底部で行い、次に乾燥した生成物の総回収を分離装置で行う。一実施例において、サイクロンを用いて材料を収集する。慣性力に基づいて、サイクロンの壁に落下方向の張力として粒子を分離して、取り出す。電気集塵器、繊維（袋）フィルタ、又はスクラバのような湿式収集器など他のシステム使用して乾燥生成物を収集する場合もある。
【００２３】
本発明で用いる噴霧乾燥は、凍結乾燥（フリーズドライ）など他の乾燥方法に比べて利点がある。噴霧乾燥を使用すると、凍結乾燥方法で生成するよりも、より安定し、塊の少ない、及びよく分散する生成物を生成する。噴霧乾燥により生成した高度に分散する粒子はまた、高速な再水和速度を可能にするが、これはより大きい利用可能な表面積の結果のようだ。これに対して、凍結乾燥生成物の凝集性質は、本発明の方法で乾燥した血液製剤よりも再水和時間が実質的に長くなる結果となる。血液製剤の多くの輸血や他の使用は、時間的な制約があるので、この再水和の高い速度は、戦場又は緊急処置状況で大きな利点となり得る。以下で更に詳しく説明するように、本発明の噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板組成物を形成すると、この組成物は、濁度（Ａ５００）値を有するが、これは比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物と比べて小さい。
【００２４】
本発明方法の噴霧乾燥した生成物を傷を治療する際の局所治療として用いることがある。一実施例において、この生成物を直接傷に用いて凝固を助け、又は包帯あるいは外科的な補助具もしくはカバーに塗布して傷を癒す助けとする。代替の実施例において、血小板減少症（休薬血小板を含む）、出血性血小板機能異常症、及び重度の出血を経験する外傷犠牲者などの血液関連疾患に苦しむ患者に本発明方法の噴霧した生成物を再水和した形状を静脈注射を介して投与する場合がある。
【実施例】
【００２５】
［一般的な設計と方法］
噴霧乾燥した血漿の濃度。溶媒洗剤で処理したヒトのプール血漿（Ｋｅｄｒｉｏｎ Ｓ．ｐ．Ａ．，Ｂａｒｇａ，イタリア）と１０種類の動物中のブタの血漿（チャペルヒルのノースカロライナ大学、フランシス・オーエン血液調査研究所より寄贈された）を、さまざまな装置のパラメータを実行して噴霧乾燥し、又は標準的な凍結乾燥サイクルで凍結乾燥して、さまざまなサイズの脱水微粒子を得ることができる。次いで、さまざまな量の低濃度のグリシンを含むｐＨ２．４の滅菌水でこの生成物を再水和して、脱水プロセス間のプロトンの損失を補填し、比較して濃度の上限を定めた。実験の詳細は以下の通りである。
【００２６】
血漿の脱水。脱水を得るには、Ｂｕｃｈｉ Ｂ−２７０レサーチ噴霧乾燥器で１時間あたりＮ２を４１５リットルの流量で、１４０℃、１３０℃、１２０℃、１１０℃、及びこれより低い温度でブタとヒトの血漿を噴霧乾燥する。各温度でいずれのタイプ（すなわち、ブタとヒト）も３回稼動を実行することが好ましい。最終生成物の水分含量と走査顕微鏡で画像化した微粒子を分析することができる。更に４ｍｍの層からブタとヒトの血漿の一部を３日間−２０℃で凍結乾燥して、「凍結乾燥コントロール」の固形物を得る。添付の図に示すように、凍結乾燥材料が固形物を形成するのに対し、噴霧乾燥材料は、微粉末であることが観察され、顕微鏡下でミクロスフェアとして現れる。
【００２７】
血漿の再水和噴霧乾燥及び凍結乾燥のコントロールロット（それぞれ３本ずつ）を、１倍、２倍、３倍、４倍のグリシンを含む適切な量の滅菌水で再水和して、高濃度の血漿をより高くする。以下の通りに、再水和して最終的にｐＨ７．４の生成物にするためにｐＨ２．４のグリシン溶液で再水和することができる：１倍−２０ｍＭグリシン、２倍−４０ｍＭグリシン、３倍−６０ｍＭグリシン、４倍−８０ｍＭグリシンなど。
【００２８】
物理的及び化学的分析。以下の分析は、出発血漿（噴霧乾燥前）、噴霧乾燥材料の各ロット、及び凍結乾燥したコントロールの血漿のそれぞれ３本のサンプルを用いて行なってもよい。ウィルコクソンの符号順位検定で比較して、符号検定を用いて指向性を評価する。
【００２９】
濁度と可溶化速度−７００ｎｍでの光吸収の光学的測定は、再水和反応の開始後の時間の関数として濁度を評価し得る。
【００３０】
落球粘度計で粘度を推定することができる。
【００３１】
ＥＬＩＳＡ分析を用いて凝固因子レベル（ＦＩＩ，ＦＶ，ＦＶＩＩ，ＦＶＩＩＩ，ＦＩＸ，ＦＸ，ＦＸＩＩ，ＦＸＩＩ，ＦＸＩＩＩ，プロテインＳ，プロテインＣ，フォンヴィレブランド因子）を測定する。
【００３２】
凝固経路ターンオーバー−プロトロンビン時間と活性部分トロンボプラスチン時間は、１倍に高濃縮溶液を希釈した後の濃縮血漿で測定する。最終的な凝血塊を走査電子顕微鏡で観察して、線維の厚さと密度を評価する。
【００３３】
濃縮液は、標準的な輸血実践のための凝固因子のレベル及び活性が、通常の個人内及び個人間の変動の範囲内にある適切なレオロジーを有するとより好ましい。以下に示すブタの研究における「最も高濃度の」注入用にこの溶液を利用することができる。
【００３４】
ブタにおける濃縮血漿生成物の安全性評価。負傷したブタで高濃度血漿製剤の最大耐量を特定することが、これらの研究の目的である。失血及び代償性出血性ショックを誘導して動物を肝損傷にさらす。次いで、好ましくない血行動態反応が認められるまで、高濃縮血漿ブタ製剤を動物に注入する。プロトロンビン合併症の組織学的な証拠のために、動物実験後に動物を屠殺し検視分析する。この分析のエンドポイントは、最大耐量と血漿濃度の程度との関係を定義することである。
【００３５】
ブタにおけるショックの誘発と高濃度血漿の注入。４０乃至５０ｋｇのブタ（Ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｏｆ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ（ＵＮＣ）の繁殖コロニーから採取された）を麻酔する。
【００３６】
血行動態及び血管作用のプロセスの分析。いくつかのセンサを配置して、血行動態及び血管作用のプロセスを観察する：外頸静脈を通して肺静脈熱希釈カテーテルを肺静脈に挿入し：マイクロマノメータを先端に付けたカテーテルを、左大腿血管を通して右心房と胸部大動脈に配置する：ａ．２２ゲージのカテーテルを左大腿動脈に挿入し、揚水ポンプに連結する。頭部と腸間膜動脈にドップラー血流プローブを配置して、血流のパターンを測定し：切開した頸動脈と開腹によりこの処置を支持することができる。
【００３７】
ショックの誘発と高濃度血漿の注入。１時間で総血液量の４０％を抜去することにより、出血性ショックを誘発することができる。血液を抜去して出血性ショック（動脈血圧＜４０ｍｍＨｇ、頭部、内臓の血流パターンの変化を意味する）を確認した後、１倍の噴霧乾燥した血漿又は高濃度の噴霧乾燥した血漿を複数回、中間及び高レベルの濃度（上記のように決定した）で動物に注入する。各注入は、動物の血液量の１／１０に相当する量が望ましく、ハーバードシリンジポンプで３分間実行するのが望ましい。血行動態パラメータや他の生理的パラメータを測定することができ、二つの連続急速投与により血行動態の安定性が悪化したときは、注入を停止することができる。次いで、検視及び組織学的分析するために動物を屠殺する。この実施例で用いた動物と注入した生成物の数を表１に示す。
【００３８】
【表１】
【００３９】
微小血管病変（Ｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｅｓ）と溶血性疾患。屠殺の後、選択した腎組織、肝組織、肺組織、脾臓組織、肺、及び他の組織を光学顕微鏡分析用に調製する。組織学的分析は、巨視的又は播種性血管内凝固又は選択した臓器不全の早期誘発の兆候を識別するのに焦点を当てる。
【００４０】
データ分析。ウィルコクソンの符号順位検定で血漿群間の比較をし、符号検定を用いて指向性を評価する。
【００４１】
［実施例１：血漿の噴霧乾燥と凝固タンパク質活性の維持］
以下の一連の実験は、血漿を噴霧乾燥して、脱水した微粒子を得ることができ、天然凝固因子レベルと凝固パラメータで血漿を当初の容量に再水和できることを示す。溶媒洗剤でプールした血漿を標準的な噴霧乾燥（Ｂｕｔｃｈｉ社のＢ−２７０を用いて１２０℃で１時間あたり４１５リットルのＮ２）して、図１に示す生成物を得た。得られた微粒子のくぼみのある球状の形状は、他のタンパク質を噴霧乾燥したときに得られる形に類似し、これは水の除去及び濃度の初期運動の結果として、タンパク質表面シェルが形成されることを示している（例えば、Ｖｅｈｒｉｎｇ１６を参照されたい）。しかし、この形状は波状表面のテクスチャを示す凍結乾燥した血漿に対して独特である。
【００４２】
ｐＨ２．４の２０ｍＭのグリシンで再水和して、乾燥プロセス中のタンパク質の損失を当初のタンパク質濃度に補うと、図２に示すように、凝固因子レベルは噴霧乾燥する前の当初の血漿と本質的に同一であることがわかった。噴霧乾燥はまた、血漿凝固の速度にわずかに影響を及ぼした（図３）。噴霧乾燥後は増大した凝固タンパク質分子ターンオーバーの統計的傾向（この分析では有意ではない）があり、これは血漿サンプル中のタンパク質の結合状態の差異に関係する影響である。噴霧乾燥した血漿のフィブリノゲン重合の後のフィブリン鎖は、正常な形態をとった（図４）。
【００４３】
本発明の方法と対照的に、凍結及び凍結乾燥血漿を段階的に分離することにより、さまざまな組成が混在する微細で巨視的な領域を含む生成物になる。その結果、超生理的濃度での再水和は時間がかかり、混濁懸濁液が生じる。いくつかの再水和した血漿の濃度がＡ５００（濁度）を表す図５に示すデータがこの点を実証する。溶媒洗剤で処理した血漿生成物を噴霧乾燥又は凍結乾燥にさらして、天然の（１倍）、２倍、３倍、又は４倍の最終濃度に再水和する。巨視的な溶解が起こる時間に基づく再水和時間は、噴霧乾燥した材料が微粒子製剤の大きな表面積が原因で劇的に速いので、図５で低いＡ５００値を示すように、著しく混濁の少ない懸濁液をもたらす。
【００４４】
上記の血漿に加えて、上記の説明に従い他の血液製剤を乾燥して、再水和することがある。実質的に、いかなる処理をした又は未処理の血液製剤も本発明の方法で用いることがある。血液製剤の実施例は、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清ならびにこれらの組み合わせを含む。天然に存在する状態でこの血液製剤を本発明の方法で用いるか、もしくは任意の方法で変更する場合がある。これらの血液製剤の変更の例は、米国特許第５，６５１，９６６号；第５，８９１，３９３号；第５，９０２，６０８号；及び第５，９９３，８０４号に記載するように、ホルムアルデヒド又はパラホルムアルデヒドなどの固定剤を有する固定を含み、造影剤、濃縮因子、パフォーマンス強化薬、抗菌剤及び抗ウィルス剤、若しくは普遍的なドナー溶液の追加を含む。有用な変更生成物の一例は、Ｅｎｔｅｇｒｉｏｎ株式会社（リサーチトライアングルパーク、ノースカロライナ州）が市販するＳＴＡＳＩＸ（誘導体化乾燥血小板）である。以下は、噴霧乾燥したＳＴＡＳＩＸ粒子を再水和する一般的なプロトコルである。
【００４５】
［実施例２：噴霧乾燥した誘導化血小板の再水和］
この実施例の目的は、全ての成分（血小板粒子、緩衝塩、充填剤（ヒト血清アルブミンなど））の濃度が、噴霧乾燥器へ入った懸濁液と同じになるように、噴霧乾燥した誘導化血小板（商標名ＳＴＡＳＩＸで販売され、ノースカロナイナ州のＥｎｔｅｇｒｉｏｎ社より入手できる）を再水和することである。三段階でこれを達成した。
【００４６】
第一に、噴霧乾燥前の懸濁液に用いられる充填媒体のための「基準Ａ２８０値」を得る。これは、血小板を遠心分離した後で噴霧乾燥前のＡ２８０ｎｍ値であり、これはヒト血清アルブミン充填剤である上澄みタンパク質濃度を大きく反映している。第二に、噴霧乾燥後の粉末の試験再水和を１０％（ｗ／ｖ）で行い、次いで２８０ｎｍ（Ａ２８０）で充填剤（ヒト血清アルブミン）の光学密度を測定する。第三に、噴霧乾燥前の上澄みのＡ２８０と１０％の上澄みのＡ２８０値と比較して（比率で）、１０％の再水和に近似値とどれ位離れているか決定する。次いでこの比率を用いて、噴霧乾燥前の懸濁液の充填剤のタンパク質濃度に一致させる必要がある、乾燥粉末の正確な重量パーセントを計算する。
【００４７】
再水和後の粒子の血小板数を二つの方法で測定する。第一はＨｉｓｋａ細胞計算器で、第二は光学濁度を測定することによる。これらの値や関連する再水和量が、すべての粒子特性評価分析の出発点を形成する。
【００４８】
［手順］
１．噴霧乾燥前の光学密度を測定して、基準Ａ２８０値を得る。
ａ）液体の噴霧乾燥前のサンプルを解凍して、デスクトップの微量遠心管を５に設定し二分間遠心して遠心分離する。上澄みを保持する。
ｂ）この上澄み１／１０をクエン酸生理食塩水へ三倍に希釈して、ナノドロップ分光計でＡ２８０値を計測する。
【００４９】
２．１０％（ｗ／ｖ）の懸濁液のタンパク質の光学密度の測定。
ａ）マイクロチューブ中の２０乃至５０ｍｇの粒子部分をいくつか（だいたい４つ）に検量する。質量を記録する。一のチューブを蒸留水で１０％（ｗ／ｖ）の懸濁液に再水和する。更に分析用に残りのチューブを保存する。
ｂ）粒子を上記のように遠心分離して、上澄みを保持する。
ｃ）各再水和サンプルの上澄み１／１０をクエン酸食塩水に三倍に希釈して、Ａ２８０値を測定する。
【００５０】
３．再水和の重量パーセントを計算して、以下の噴霧乾燥前の値と適合させる。
ａ）希釈係数（１／１０）により希釈した噴霧乾燥前の上澄みからＡ２８０値を分けて、三つの値を平均し理論的な基準Ａ２８０値又はＡ２８０，ｒｅｆを得る。
ｂ）希釈係数（１／１０）によって１０％の再水和の上澄みからＡ２８０値を分けて、三つの値を平均しＡ２８０，１０％といわれる理論的な不希釈のＡ２８０値を得る。
ｃ）再水和したサンプルが、基準Ａ２８０値と同じＡ２８０値をとるように、基準Ａ２８０値方程式１に従いＡ２８０，ｒｅｆ値に対するＡ２８０，１０％の比をとり、噴霧乾燥後の粉末の適した再水和質量（ｗ／ｖ）を得る。
【００５１】
重量パーセント（ｗ／ｖ）＊＝１０％（ｗ／ｖ）×Ａ２８０，ｒｅｆ／Ａ２８０，１０％（方程式１）
＊重量パーセントは、ｍｇ／ｍｌを単位としており、例えば、８．９％（ｗ／ｖ）は８９ｍｇ／ｍｌに相当する。
【００５２】
［ＳＴＡＳＩＸ粒子の総数の測定］
ａ）１０％の再水和懸濁液（細胞を遠心分離しない）１／１０をクエン酸生理食塩水で三倍に希釈する。
ｂ）各サンプルをＡ５００で濁度を測定する。
ｃ）Ｈｉｓｋａ血液学的分析器で直接細胞総数を測定する。
ｄ）収量低下を考慮して計算する。
再水和して噴霧乾燥した誘導化血小板（再水和したＳＴＡＳＩＸ）の電子顕微鏡写真は、図６と図７に示した。
【００５３】
［実施例３：カニクイザルにおける単回投与の距離測定の静脈内毒性試験］
単回でサルに静脈注射して投与（だいたい５回以上）したときに、噴霧乾燥した誘導化血小板（上記のようにＳｔａｓｉｘを噴霧乾燥して再水和した）の毒性の評価をするように検査を設計した。動物の回復サブグループを７日間観察した。
【００５４】
５グループのサルを用いた−グループ１−溶媒（緩衝液）コントロール；グループ２−１倍の治療的ＳＴＡＳＩＸ量；グループ３−５倍の治療的ＳＴＡＳＩＸ量；グループ４−１０倍治療的ＳＴＡＳＩＸ量；及びグループ５−ヒト血清アルブミン（５００ｍｇ／ｋｇ）。用量はそれぞれ０．０、２．１×１０９、１．０５×１０１０、２．１×１０１０であり、グループ１、２、３、４、及び５において０．０血小板／ｋｇである。ヒト患者において、１倍の用量は、推測の治療的ＳＴＡＳＩＸ量、すなわち血液１マイクロリットルあたり追加の３０，０００の血小板である。
【００５５】
この実験で用いたいずれのサルにも、症候的及びミクロ病理学的のいずれの副作用も見られなかった。２匹のオスのサルと２匹のメスのサルはすべて、わずか５分の非常に短い期間で注入したＳＴＡＳＩＸの１０倍の治療量に耐性があったので、無毒性量（ＮＯＡＥＬ）は、少なくとも１０倍の治療量である。ヒトの臨床設定においては、２０分というかなりゆっくりした時間速度でＳＴＡＳＩＸ用量を注入する。
【００５６】
注入後２日目又は８日目のいずれかに５つの投与グループを含む１４匹の対象のサルの部検を行なったが、心臓や肺のいずれにも、微小血栓の発達の証拠は認められなかった。要するに、すべての適切な動物の使用と取り扱い規制下で、主要な外部の研究室で行なった詳細な動物実験では、対象とするヒトの治療量の最大１０倍服用しても、ＳＴＡＳＩＸは巨視的及び微視的のいずれのレベルでも有害な影響を提示しなかった。
【００５７】
［実施例４：アルデヒド安定化血小板の噴霧乾燥］
この実施例では、アルデヒド安定化血小板を脱水する凍結乾燥の代替としての噴霧乾燥の有用性を検査する。その全体が参照により本明細書に組み込まれている米国特許第５，６５１，９６６号に記載されているＲｅａｄらの手順を用いてヒトのアフェレーシス血小板を安定化した。
【００５８】
上記の５％（ｗ／ｖ）ヒト血清アルブミン中の２００万血小板／マイクロリットルで最終アルデヒド安定化血小板懸濁液を噴霧乾燥（１２０℃で１時間あたり４１５リットルのＮ２）して検査したところ、図６と７に示すものと似た直径３乃至３０ミクロンの球状粒子からなる微粉末を得た。
【００５９】
１７個の独立した乾燥血小板製剤を噴霧乾燥して調製し、当初の脱水前の容量に再水和した。これら１７個が達した可算の血小板の収率（再水和後／噴霧乾燥前）は、９６．８％＋／−７．０％（標準偏差）だった。
【００６０】
図８は、再水和後に噴霧乾燥した血小板の、正常なヒト血漿（フォンヴィレブランド因子源として）への変換と、１ｍｇ／ｍｌ（パネルＢ）又はコントロールの緩衝液（パネルＡ）に対応する量のリストセチン添加を示す。リストセチン添加で大きな凝集体が認められ、これは噴霧乾燥が糖タンパク質１Ｂ−フォンヴィレブランド因子受容体の機能を維持したことを示す。
【００６１】
カニクイザル（１又は２／性別／グループ）は、２．１×１０９、１．０５×１０１０、又は２．１×１０１０血小板／ｋｇの用量で噴霧乾燥した血小板の５分間の静脈内注射を１回受けた。コントロールの動物（２／性別）は、溶媒（生理的食塩水中の５．３７５ｍＭのクエン酸ナトリウムと２ｍＭのシステイン）を受け、別のグループは、５００ｍｇ／ｋｇのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を受けた。投与量は、すべてのグループに２ｍＬ／ｋｇ／分であった。投与後１日目又は７日目に動物を観察した。投与１日後に１動物／性別／グループを安楽死させ、部検を行った。コントロールと高用量（２．１×１０１０血小板／ｋｇ）グループから性別ごとに部検前に動物を７日間保存した。検査中に評価したパラメータは、生存能力、臨床観察、体重、臨床病理（２日目と８日目に予備検査）、器官重量、巨視的観察、及び微視的病理であった。
【００６２】
噴霧乾燥した血小板のすべての用量（最大２．１×１０１０血小板／ｋｇ）の投与は、良好な耐容性を示した。血液学的変化は、用量投与の後日の血小板数の減少と二匹の高用量（２．１×１０１０血小板／ｋｇ）動物（メス）のうち一匹の平均血小板量の増加だけだった。凝集又は臨床病理のパラメータにおける変化は観察されなかった。コントロールの値と比較すると、すべての検査対象動物及びＨＳＡで治療した動物で脾臓重量の増加が見られた。中用量と高用量（１．０５×１０１０又は２．１×１０１０血小板／ｋｇ）のメスとＨＳＡで治療した２日目のメスと高用量（部検が行われるグループのみ）の８日目のメスの脾臓の胚中心のサイズの、何匹かの動物では脾臓の黄褐色の変色と表面の異常の巨視的観察と関連する、軽度から中程度の増加を顕微鏡観察は示した。メスの胚中心の肥大は、ＨＳＡに対する考えられる反応と思われた。小さい胚中心を有する溶媒で処理したコントロールでは、同様の検査結果は見られなかった。しかし、サルの脾臓では、活性な胚中心は一般的な所見であり、そしてこのサンプルのサイズが小さかったので、この所見は通常のバックグラウンドの範囲内である可能性がある。ある動物の７日後の脾臓の胚中心肥大の持続は、抗原刺激に対する胚中心反応である回復の欠如を示唆するが、この所見もまた通常のバックグラウンドの変化を反映する場合がある。
【００６３】
［実施例５−血漿の噴霧乾燥とブタにおける検査］
新鮮なブタの血液由来の分離した血漿を、新鮮な凍結した血漿（ＦＦＰ）として保管又は冷凍乾燥した血漿（ＦＤＰ）若しくは噴霧乾燥した血漿（ＳＤＰ、前述の実施例で詳述したように調製した）として保存した。インビトロ検査：当初のＦＦＰの量と同等（１倍ＳＤＰ）又は１／３（３倍ＳＤＰ）である蒸留水中でＳＤＰを再構成した。プロトンビン時間（ＰＴ）、部分的トロンボプラスチン時間（ＰＴＴ）、フィブリノゲンレベル、及び選択された凝固因子の活性の測定を分析は含んだ。インビトロ検査で、多発性外傷（大腿骨骨折、等級Ｖの肝臓損傷）と出血性ショック（アシドーシス、凝固障害、及び低体温症の「致命的三徴」を伴う６０％の動脈性出血）にブタをさらし、ＦＦＰ、ＦＤＰ、又は３倍ＳＤＰで治療した（ｎ＝４乃至５／グループ）。ベースライン（ＢＬ）、ショック後（ＰＳ）、晶質後（ＰＣ）、治療（ＭＯ）で凝固プロファイル（ＰＴ、ＰＴＴ、トロンボエラストグラフィー）を測定し、４時間モニタリング（Ｍ１−４）した。
【００６４】
噴霧乾燥後に凝固因子が保たれていることをインビトロ検査は示した。３倍ＳＤＰが長引いたＰＴ／ＰＴＴを示すとともに、ＦＦＰと１倍ＳＤＰの凝固は類似していた。多発性外傷／出血性ショックは著しい凝固障害をもたらすが、３倍ＳＤＰの注入はＦＦＰとＦＤＰと同様に凝固障害対策に有効であった。これらの結果は、血漿が噴霧乾燥されて、インビボで凝固特性を損なうことなく当初の量の１／３に再構成され得ることを示している。この常温保存が可能、少量、高張性、及び高浸透圧の血漿は、外傷関連の及び他の凝固障害の治療に論理学的に魅力的な選択である。
【００６５】
［参照］
1. Kendrick, B.G.D.B. Blood Program in World War II. U.S. Government Printing Office Library of Cong. Cat. No. 64-60006, http://amedd.mil/booksdoc/wwii/blood/default.htm (1964).
2. Ketchum, L., Hess, J.R. & Hiippala, S. Indications for early fresh frozen plasma, cryoprecipitate, and platelet transfusion in trauma. The Journal of trauma 60, S51- 58 (2006).
3. Erber, W.N. & Perry, D.J. Plasma and plasma products in the treatment of massive haemorrhage. Best Pract Res Clin Haematol 19, 97-112 (2006).
4. Smith, M.W. Spray-drying synthetic detergents. Manufacturing chemist and aerosol news 22, 186-187 (1951).
5. Heldman, D.R., Hall, C.W. & Hedrick, T.I. Air filtration for the spray drying of dairy products. Journal of dairy science 51, 466-470 (1968).
6. Raff, A.M., Robinson, M.J. & Svedres, E.V. Spray-drying of tablet granulations. I. A preliminary report. Journal of pharmaceutical sciences 50, 76-79 (1961).
7. Riegelman, S., Swintosky, J. V., Hiquchi, T. & Busse, L.W. Studies on pharmaceutical powders and the state of subdivision. IV. The application of spray- drying techniques to pharmaceutical powders. Journal of the American Pharmaceutical Association 39, 444-450 (1950).
8. Bergsoe, C. Progress in spray-drying. Manufacturing chemist and aerosol news 20, 72-75 (1949).
9. Maltesen, M.J., Bjerregaard, S., Hovgaard, L., Havelund, S. & van de Weert, M. Quality by design - Spray drying of insulin intended for inhalation. Eur J P harm Biopharm 70, 828-838 (2008).
10. Borghetti, G.S., Lula, I.S. , Sinisterra, R.D. & Bassani, V.L. Quercetin/beta- Cyclodextrin Solid Complexes Prepared in Aqueous Solution Followed by Spray- drying or by Physical Mixture. AAPS PharmSciTech (2009).
11. Mohammed, G. A., Puri, V. & Bansal, A. K. Coprocessing of nevirapine and stavudine by spray drying. Pharmaceutical development and technology 13, 299- 310 (2008).
12. Ochiuz, L. & Peris, J.E. Preparation and characterisation of alendronate-loaded chitosan microparticles obtained through the spray drying technique. Medicinal chemistry (Shariqah (United Arab Emirates)) 5, 191-196 (2009).
13. Iskandar,F.et al.Production of morphology-controllable porous hyaluronic acid particles using a spray-drying method.Acta biomaterialia (2008).
14. Sen, D. et al. Evaporation Driven Self-Assembly of a Colloidal Dispersion during Spray Drying: Volume Fraction Dependent Morphological Transition.Langmuir(2009).
15. Zhang, X. et al. Preparation of a dispersible PEGylate nanostructured lipid carriers (NLC) loaded with 10-hydroxycamptothecin by spray-drying. Chemical & pharmaceutical bulletin 56, 1645-1650 (2008).
16. Vehring, R. Pharmaceutical particle engineering via spray drying. Pharmaceutical research 25,999-1022(2008).
17. Churchhill, C. Surgery in World War II. The physiologic effects of wounds.U.S. Government Printing Office(1952).
18. Blalock, A. Report on Committee on Transfusion, National Research Council. (1940).
19. Harper, S.B. The preparation and experimental use of dried blood plasma. Proceedings of Staff Meetings of the Mayo Clinic 15, 689-694 (1940).
20. Strumia, D. Minutes, meeting of subcommittee on blood substitutes. Division of Medical Sciences, National Research Council (1942).
21. Allen, J., Enerson, D., Barron, E. and Sykes, C. Pooled plasma with little or no risk of homologous serum Jaundice. J.A.M.A. 152, 1421-1423(1954).
22. Whitaker, B.a.S., M. The 2005 Nationwide Blood Collection and Utilization Survey Report. AABB and US Dept. HHS
http://www.aabbo.org/apps/docs/05nbcursrpt.pdf(2005).
23. Hardy, J.F., De Moerloose, P. & Samama, M. Massive transfusion and coagulopathy: pathophysiology and implications for clinical management. Can J Anaesth 51, 293-310 (2004).
24. Baxter, C.R. & Shires, T. Physiological response to crystalloid resuscitation of severe burns. Annals of the New York Academy of Sciences 150, 874-894 (1968).
25. Shires, T. Initial care of the injured patient. The Journal of trauma 10, 940-948 (1970).
26. Shires, T., Coln, D., Carrico, J. & Lightfoot, S. Fluid Therapy in Hemorrhagic Shock. Arch Surg 88, 688-693 (1964).
27. Skeate, R.C. & Eastlund, T. Distinguishing between transfusion related acute lung injury and transfusion associated circulatory overload. Current opinion in hematology 14, 682-687 (2007).
28. Triulzi, D.J. Transfusion-related acute lung injury: current concepts for the clinician. Anesthesia and analgesia 108, 770-776 (2009).
29. Stern, S.A. Low-volume fluid resuscitation for presumed hemorrhagic shock: helpful or harmful? Current opinion in critical care 7, 422-430 (2001).
30. Reynolds, P.S., Barbee, R.W., Skaflen, M.D. & Ward, K.R. Low-volume resuscitation cocktail extends survival after severe hemorrhagic shock. Shock (Augusta, Ga 28, 45-52 (2007).
31. Fischer, T.H., Merricks, E., Raymer, R., Nichols, T., Hayes, P., Bode, A., Pearce, L. and Manning, J. The co-infusion of rehydrated lyopholized platelets wth HBOC-201 for hemostasis in dilutional thrombocytopenia. Blood 98, 2250 (2001).
32. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion using serial infusions of perflubron emulsion. Acad Emerg Med 4, 883-890 (1997).
33. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: enhanced resuscitation using oxygenated perflubron emulsion, with and without aortic arch epinephrine. Ann Emerg Med 29, 580-587(1997).
34. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion with hemoglobin-based oxygen carrier-201 for resuscitation from exsanguinating cardiac arrest in swine. Critical care medicine 29, 2067-2074 (2001).
35. Toung, T., Reilly, P.M., Fuh, K.C., Ferris, R. & Bulkley, G.B. Mesenteric vasoconstriction in response to hemorrhagic shock. Shock (Augusta, Ga 13, 267- 273 (2000).
36. Brummel-Ziedins, K., Vossen, C. Y., Rosendaal, F.R., Umezaki, K. & Mann, K.G. The plasma hemostatic proteome: thrombin generation in healthy individuals. J Thromb Haemost 3,1472-1481 (2005).
37. Budowsky, E., Ackerman, S., Purmal, A., Edson, C, Williams, M. Methods and compositions for inactivating viruses. United States Patent, 6,369,048 (2002).
38. Burnouf, T. et al. Nanofiltration of single plasma donations: feasibility study. Vox Sang 84, 111-119 (2003).
39. Burnouf-Radosevich, M., Appourchaux, P., Huart, JJ. & Burnouf, T. Nanofiltration, a new specific virus elimination method applied to high-purity factor IX and factor XI concentrates. Vox Sang 67, 132-138 (1994).
40. Horowitz, B.a.C, S. Removal of antibodies from blood-derived compositions while retaining coagulation factors. United States Patent 5,541,294 (1996).
41. Bakaltcheva, L, O'Sullivan, A.M., Hmel, P. & Ogbu, H. Freeze-dried whole plasma: evaluating sucrose, trehalose, sorbitol, mannitol and glycine as stabilizers. Thrombosis research 120, 105-116 (2007).
42. MacLennan, S. & Williamson, L.M. Risks of fresh frozen plasma and platelets. The Journal of trauma 60, S46-50 (2006).
43. Solheim, B. G. Universal pathogen-reduced plasma in elective open-heart surgery and liver resection. Clin Med Res 4, 209-217 (2006).
44. Noddeland, H. et al. Universal solvent/detergent-treated fresh frozen plasma (Uniplas- rationale and clinical properties. Thrombosis research 107 Suppl 1, S33- 37 (2002).
45. Medwatch, F. Imporrtant safety information regarding Plas+SD. http://www.fda.gov/medwatch/2002/plassd deardoc.pdf(2002).
46. Monroe, D.M., Hoffman, M., Allen, G.A. & Roberts, H.R. The factor VII-platelet interplay: effectiveness of recombinant factor VIIa in the treatment of bleeding in severe thrombocytopathia. Seminars in thrombosis and hemostasis 26, 373-377 (2000).
47. Monroe, D.M., Hoffman, M. & Roberts, H.R. Platelets and thrombin generation. Arterioscler Thromb Vase Biol 22, 1381-1389 (2002).
48. Deveras, R. A. & Kessler, C.M. Reversal of warfarin-induced excessive anticoagulation with recombinant human factor VIIa concentrate. Annals of internal medicine 137, 884-888 (2002).
49. Freeman, W.D. et al. Recombinant factor VIIa for rapid reversal of warfarin anticoagulation in acuteintracranial hemorrhage. Mayo Clin Proc 79, 1495-1500 (2004).
50. Sorensen, B., Johansen, P., Nielsen, G. L., Sorensen, J. C. & Ingerslev, J. Reversal of the International Normalized Ratio with recombinant activated factor VII in central nervous system bleeding during warfarin thromboprophylaxis: clinical and biochemical aspects. Blood Coagul Fibrinolysis 14, 469-477 (2003).
51. Talkad, A., Mathews, M., Honings, D., Jahnel, J. & Wang, D. Reversal of warfarin-induced anticoagulation with factor VIIa prior to rt-PA in acute stroke. Neurology 64, 1480-1481 (2005).
【技術分野】
【０００１】
［発明の背景］
本発明は、従来の凍結乾燥（フリーズドライ）の代替として噴霧乾燥を用いて乾燥した血液製剤の調製方法と、この方法により製造した生成物に関する。本発明を用いると乾燥生成物の回収率を上げることができる。最終生成物を水と混合するときに再構成率が上昇するだけでなく、天然の血漿の少なくとも３倍の濃度を示す。
【背景技術】
【０００２】
［関連技術の簡単な説明］
噴霧乾燥は、流動ガスの流れの中で溶液を噴霧して急速溶媒蒸発（すなわち、脱水）させる技術である。出来上がったものは、残留溶質から構成される微粒子のサブ秒の時間スケールでの形成物である。材料４、食品５、及び製薬６，７産業における産業プロセスとして、数十年間噴霧乾燥を用いている（以前の報告については、Ｂｅｒｇｓｏｅ８などを参照されたい）。最近では、吸入剤９、高度な担体治療用の微細構造１０−１２の製剤、及び新しい種類の微細材料１３−１５用の微粒子として、噴霧乾燥はタンパク質治療の調製を容易にしている。究極の微粒子のサイズと組成を決定する動的、相移転、物質移動、熱伝達、及び他の物理的なプロセスは、良く理解されており（最近の報告については、Ｖｅｈｒｉｎｇ１６などを参照されたい）、材料科学研究において噴霧乾燥の研究は、非常に盛んな分野である。この研究の主要部からの重要な知見は、水溶液系においては揮発プロセス中で気化熱が粒子の温度を下げるということである。従って、タンパク質活性を維持するために、タンパク質の熱変性を最小限に抑えることができる。
【０００３】
第二次世界大戦中には、全血輸血の利点は高く評価されたが、輸血反応する収集、輸送、期限切れ、及び型のミスマッチと関連する物流の困難が、普及利用を制限した１７。そのため全血の代替として乾燥血漿を開発した１８。第二次世界大戦中に、アメリカ、イギリス、及びカナダの軍隊の輸血業務は、非常に好ましい安全性プロファイルを有する乾燥血漿１を広く利用した。当初は今日の凍結乾燥プロトコルに類似する乾燥技術で、Ｓｈａｒｐ ａｎｄ Ｄｏｈｍｅ株式会社（後により大きな産業コンソーシアム）により米国陸−海軍の乾燥血漿の調製方法を商業的な量に調整した１９。この米国陸−海軍の乾燥血漿は、０．６７％（ｗ／ｖ）のクエン酸ナトリウムでは凝固せず、１９４２年以降は、０．１％（ｗ／ｖ）のクエン酸で再水和した。クエン酸で再水和すると、トロンビン発生をより好ましく維持するｐＨ７．４乃至７．６の最終生成物をもたらすことがわかった２０。
【０００４】
１９４５年以降は、米国陸−海軍の乾燥血漿を広範な民間利用に委ね、朝鮮戦争の初期段階で使用した。しかし、紫外線照射微生物汚染除去方法２１の開発が初期段階であったにもかかわらず、１９５３年に乾燥血漿の生産を停止した。公にされた理由は肝炎汚染であった。しかし、２００５年には１３００万以上のユニットを収集した血漿の民間利用は、主に新鮮凍結血漿として、非常に拡大していた２２。最新医療では、さまざまな目安として血漿を使用しており、その最も重要なものの１つが、大量の失血を伴う外傷における蘇生混合物の成分としての使用である。出血性ショック関連の凝固障害で高頻度に減少する凝固因子とフィブリノゲンなどの成分を血漿は含んでいる（例えば、Ｈａｒｄｙら２３を参照されたい）。
【０００５】
いくつかの医学的所見が、高濃度血漿生成物の有用性を示している。有害転帰の最初の観察は標準蘇生法に関連したので、高濃度の血漿などの生成物によって実現される低容量蘇生法の望ましさがますます認められてきている２４−２６。輸血に関連した心臓負担及び体液過剰に関連した急性呼吸窮迫症候群の発生率は、低容量蘇生法で回避することができる２７，２８。継続する出血が深刻化する希釈性凝血障害にも、少ない容量の投与が望ましい（例えば、Ｓｔｅｒｎの記事２９を参照されたい）。ヘモグロビンベースの酸素担体（ＨＢＯＣｓ）３０などの高度な蘇生生成物の発達は、大量の液体を注入することなく十分な組織酸素化を達成する能力を実現する。しかし、ＨＢＯＣｓの導入は、濃縮血漿などの止血系を補う低容量生成物の必要性が予想された。
【０００６】
乾燥血液製剤は当該技術分野で知られており、乾燥生成物を実現する主たる技術は凍結乾燥（フリーズドライ）である。例えば、Ｂｒｉｎｋｈｏｕｓらの米国特許第４，２８７，０８７号と第４，１４５，１８５号は、ホルムアルデヒドなどの架橋試薬で固定される乾燥血液血小板を開示する。米国特許第５，６５６，４９８号、第５，６５１，９６６号、第５，８９１，３９３号、第５，９０２，６０８号、及び第５，９９３，８０４号は、さらに乾燥血液製剤を開示する。そのような生成物は、安定、長期保存が可能であり、深刻な外傷を経験した患者に粉末形態で止血できる可能性があるので、治療目的に有用である。しかし、汚染を回避するため、厳重な無菌状態でかかる生成物を生産しなくてはならない。
【０００７】
現在の輸血実務では、解凍した単一ドナーの「新鮮凍結」生成物として血漿を頻繁に提供する。しかし、将来の軍事的利用、開発途上の国、荒野医療状況において冷凍物を提供することは困難であるので、この形状因子は、物資的に問題となり得る。従って、乾燥血漿生成物を用いた冷凍（凍結乾燥）の撤廃は、大きな利点となることだろう。更に、新鮮凍結血漿生成物の病原体を減少させるよりも乾燥血漿生成物の病原体を減少させるほうがはるかに容易である。本発明は、必要に対する答えであると考えられている。
【発明の概要】
【０００８】
一実施例において、本発明は：（ａ）水和血液製剤を提供するステップと；（ｂ）この水和血液製剤を噴霧乾燥して脱水血液製剤を生成するステップと；を具える脱水血液製剤の調製方法とともにこの方法によって製造される脱水血液製剤に関する。
【０００９】
別の実施例において、本発明は：（ａ）脱水血液製剤の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；（ｂ）この再水和治療用組成物を患者に投与するステップと；を具える血液関連の疾患を患う患者を治療する方法に関する。
【００１０】
別の実施例において、本発明は、上記の脱水血液製剤を具える包帯又は外科的な補助具に関する。
【００１１】
更に別の実施例において、本発明は：（ａ）水和固定化血小板を提供するステップと；（ｂ）水和固定化血小板を噴霧乾燥して脱水固定化血小板を生成ステップと；を具える脱水固定化血小板の調製方法とともにこの方法により製造する脱水固定化血小板に関する。
【００１２】
更に別の実施例において、本発明は：（ａ）脱水固定化血小板の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；（ｂ）再水和治療用組成物を患者に投与するステップと；を具える血液関連の疾患を患う患者を治療する方法に関する。
【００１３】
更に別の実施例において、本発明は、上記の脱水固定化血小板を具える包帯又は外科的な補助具に関する。
【００１４】
更に別の実施例において、本発明は、球面がくぼんだ形状を有する噴霧乾燥した固定化血小板に関するものであり、前記噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板用組成物を形成するとき、この組成物は、比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物より低い濁度（Ａ５００）値を有する。
【００１５】
以下の発明の詳細な説明を読むと、これらの及び他の実施例が明確になるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、本発明により生成した、噴霧乾燥した血漿ミクロスフェアの電子顕微鏡写真である。
【図２】図２は、さまざまなサンプルにおける凝固因子レベルを示すグラフである。
【図３】図３は、本発明の方法により生成した、噴霧乾燥した血漿に伴う天然凝固経路ターンオーバーを示すグラフを描写する。
【図４】図４は、本発明の方法により生成した噴霧乾燥した血漿のフィブリンの超微細構造の電子顕微鏡写真である。
【図５】図５は、いくつかの濃度における噴霧乾燥した血漿対凍結乾燥した血漿の濁度及び再水和率を描写するグラフである。
【図６】図６は、噴霧乾燥した誘導体化血小板を再水和した電子顕微鏡である。
【図７】図７は、噴霧乾燥した誘導体化血小板を再水和した別の顕微鏡写真である。
【図８】図８は、本発明の方法により製造した噴霧乾燥した再水和血小板のリストセチン凝集を示す電子顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
上記のとおり、本発明は、脱水血液製剤の調製方法と、この方法で製造した脱水血液製剤に関する。本発明の方法で脱水した有用な脱水血液製剤は、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清、血漿（ｐｌａｓｍａ）、及びこれらの組み合わせを含むがこれらに限定されるものではない。本発明の方法に適したある特定の有用な血液製剤は、ホルムアルデヒド又はパラホルムアルデヒドなどの固定剤で固定されている血小板である。更に、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液だけでなくこれらの組み合わせなどの診断用薬又は治療薬に、この血液製剤をさらに変更することができる。有用な変更生成物の一例は、Ｅｎｔｅｇｒｉｏｎ株式会社（レサーチトライアングルパーク、ノースカロライナ州）が市販するＳＴＡＳＩＸ（誘導化乾燥血小板）である。
【００１８】
当該技術で知られる凍結乾燥（フリーズドライ）などの従来の乾燥技術の代替として、本発明の方法は噴霧乾燥の技術を用いる。噴霧乾燥は、温かい乾燥媒体中に材料の供給を噴霧して流体状態の物質を乾燥微粒子形状に変換する方法である。噴霧乾燥は、制御された方法で噴霧媒体と乾燥媒体の混合による霧状供給物から水分を蒸発させることを含む。乾燥媒体は一般的には空気であるが、窒素など他のガスを用いることもある。噴霧粒子中の水分含量が望ましい含量に達するまで乾燥を進めたら、乾燥媒体からこの生成物を分離する。
【００１９】
噴霧乾燥の全プロセスは、一般に一連の四つのプロセスからなる。分散は、圧力ノズル、二流体ノズル、回転円板噴霧器、又は超音波ノズルによって達成され得る。噴霧器のタイプの選択は、所望の供給物の性質、量及び乾燥生成物の特性に依存する。分散エネルギーが高いほど、生じる液滴は小さくなる。乾燥中に液滴の挙動に影響を及ぼすことによりこれが乾燥生成物の特性に多大な影響を与えるので、噴霧が乾燥空気に接触する方法は噴霧乾燥器の設計において重要な因子となる。一実施例において、装置を通過する熱風の流れと同じ方向に材料を噴霧する。液滴が最も高湿度のときに、液滴が高温乾燥ガスと接触する。もう一つの実施例では、高温ガスの流れの逆方向に材料を噴霧する。高温ガスは上方に流れ、生成物は熱風を通過して収集トレイに次々に落ちる。残存する湿気が除去されるので、生成物は非常に熱くなる。この方法は、熱的に安定な生成物にのみ適している。更に別の実施例では、双方の噴霧方法の利点を組み合わせる。生成物は上向きに噴霧されてごく短時間高温域にとどまり、残存する湿気が除去される。次いで、重力がこの生成物を冷却域に引き込む。この生成物は短時間のみ高温域にあり熱の影響を受けにくいので、この実施例は特に有利である。
【００２０】
噴霧乾燥方法は、主に空気を乾燥媒体として用いるが、窒素など他のガスを用いてもよい。電気的に又はバーナーでこのガス流を加熱して、このプロセス後に大気中に排出する。この加熱媒体をリサイクルして再利用する場合は、一般的に窒素などの不活性ガスを空気の代わりに用いる。可燃性の溶媒、有毒な生成物、又は酸素感受性の生成物を処理するときは、窒素の使用が有利である。
【００２１】
噴霧乾燥のプロセス中に、噴霧の液滴が乾燥ガスに接触するとすぐに液滴表面で急速に確立された飽和蒸気膜から蒸発が起こる。高比表面積と既存の温度と湿度勾配、熱と物質移動が、効果的な乾燥を引き起こす。蒸発は、液滴の冷却、ひいては小さな熱負荷につながる。生成物の温度が出口乾燥空気温度まで上昇する前に、所望の液滴の脱湿が完了して乾燥器から生成物を取り出せるように、乾燥チャンバの設計と空気流量がチャンバ内の液滴の滞留時間を提供する。従って、生成物に対する熱損害の可能性はほとんどない。
【００２２】
この乾燥媒体から生成物を分離するのに二つのシステムを使用する。最初に乾燥生成物の一次分離を乾燥チャンバの底部で行い、次に乾燥した生成物の総回収を分離装置で行う。一実施例において、サイクロンを用いて材料を収集する。慣性力に基づいて、サイクロンの壁に落下方向の張力として粒子を分離して、取り出す。電気集塵器、繊維（袋）フィルタ、又はスクラバのような湿式収集器など他のシステム使用して乾燥生成物を収集する場合もある。
【００２３】
本発明で用いる噴霧乾燥は、凍結乾燥（フリーズドライ）など他の乾燥方法に比べて利点がある。噴霧乾燥を使用すると、凍結乾燥方法で生成するよりも、より安定し、塊の少ない、及びよく分散する生成物を生成する。噴霧乾燥により生成した高度に分散する粒子はまた、高速な再水和速度を可能にするが、これはより大きい利用可能な表面積の結果のようだ。これに対して、凍結乾燥生成物の凝集性質は、本発明の方法で乾燥した血液製剤よりも再水和時間が実質的に長くなる結果となる。血液製剤の多くの輸血や他の使用は、時間的な制約があるので、この再水和の高い速度は、戦場又は緊急処置状況で大きな利点となり得る。以下で更に詳しく説明するように、本発明の噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板組成物を形成すると、この組成物は、濁度（Ａ５００）値を有するが、これは比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物と比べて小さい。
【００２４】
本発明方法の噴霧乾燥した生成物を傷を治療する際の局所治療として用いることがある。一実施例において、この生成物を直接傷に用いて凝固を助け、又は包帯あるいは外科的な補助具もしくはカバーに塗布して傷を癒す助けとする。代替の実施例において、血小板減少症（休薬血小板を含む）、出血性血小板機能異常症、及び重度の出血を経験する外傷犠牲者などの血液関連疾患に苦しむ患者に本発明方法の噴霧した生成物を再水和した形状を静脈注射を介して投与する場合がある。
【実施例】
【００２５】
［一般的な設計と方法］
噴霧乾燥した血漿の濃度。溶媒洗剤で処理したヒトのプール血漿（Ｋｅｄｒｉｏｎ Ｓ．ｐ．Ａ．，Ｂａｒｇａ，イタリア）と１０種類の動物中のブタの血漿（チャペルヒルのノースカロライナ大学、フランシス・オーエン血液調査研究所より寄贈された）を、さまざまな装置のパラメータを実行して噴霧乾燥し、又は標準的な凍結乾燥サイクルで凍結乾燥して、さまざまなサイズの脱水微粒子を得ることができる。次いで、さまざまな量の低濃度のグリシンを含むｐＨ２．４の滅菌水でこの生成物を再水和して、脱水プロセス間のプロトンの損失を補填し、比較して濃度の上限を定めた。実験の詳細は以下の通りである。
【００２６】
血漿の脱水。脱水を得るには、Ｂｕｃｈｉ Ｂ−２７０レサーチ噴霧乾燥器で１時間あたりＮ２を４１５リットルの流量で、１４０℃、１３０℃、１２０℃、１１０℃、及びこれより低い温度でブタとヒトの血漿を噴霧乾燥する。各温度でいずれのタイプ（すなわち、ブタとヒト）も３回稼動を実行することが好ましい。最終生成物の水分含量と走査顕微鏡で画像化した微粒子を分析することができる。更に４ｍｍの層からブタとヒトの血漿の一部を３日間−２０℃で凍結乾燥して、「凍結乾燥コントロール」の固形物を得る。添付の図に示すように、凍結乾燥材料が固形物を形成するのに対し、噴霧乾燥材料は、微粉末であることが観察され、顕微鏡下でミクロスフェアとして現れる。
【００２７】
血漿の再水和噴霧乾燥及び凍結乾燥のコントロールロット（それぞれ３本ずつ）を、１倍、２倍、３倍、４倍のグリシンを含む適切な量の滅菌水で再水和して、高濃度の血漿をより高くする。以下の通りに、再水和して最終的にｐＨ７．４の生成物にするためにｐＨ２．４のグリシン溶液で再水和することができる：１倍−２０ｍＭグリシン、２倍−４０ｍＭグリシン、３倍−６０ｍＭグリシン、４倍−８０ｍＭグリシンなど。
【００２８】
物理的及び化学的分析。以下の分析は、出発血漿（噴霧乾燥前）、噴霧乾燥材料の各ロット、及び凍結乾燥したコントロールの血漿のそれぞれ３本のサンプルを用いて行なってもよい。ウィルコクソンの符号順位検定で比較して、符号検定を用いて指向性を評価する。
【００２９】
濁度と可溶化速度−７００ｎｍでの光吸収の光学的測定は、再水和反応の開始後の時間の関数として濁度を評価し得る。
【００３０】
落球粘度計で粘度を推定することができる。
【００３１】
ＥＬＩＳＡ分析を用いて凝固因子レベル（ＦＩＩ，ＦＶ，ＦＶＩＩ，ＦＶＩＩＩ，ＦＩＸ，ＦＸ，ＦＸＩＩ，ＦＸＩＩ，ＦＸＩＩＩ，プロテインＳ，プロテインＣ，フォンヴィレブランド因子）を測定する。
【００３２】
凝固経路ターンオーバー−プロトロンビン時間と活性部分トロンボプラスチン時間は、１倍に高濃縮溶液を希釈した後の濃縮血漿で測定する。最終的な凝血塊を走査電子顕微鏡で観察して、線維の厚さと密度を評価する。
【００３３】
濃縮液は、標準的な輸血実践のための凝固因子のレベル及び活性が、通常の個人内及び個人間の変動の範囲内にある適切なレオロジーを有するとより好ましい。以下に示すブタの研究における「最も高濃度の」注入用にこの溶液を利用することができる。
【００３４】
ブタにおける濃縮血漿生成物の安全性評価。負傷したブタで高濃度血漿製剤の最大耐量を特定することが、これらの研究の目的である。失血及び代償性出血性ショックを誘導して動物を肝損傷にさらす。次いで、好ましくない血行動態反応が認められるまで、高濃縮血漿ブタ製剤を動物に注入する。プロトロンビン合併症の組織学的な証拠のために、動物実験後に動物を屠殺し検視分析する。この分析のエンドポイントは、最大耐量と血漿濃度の程度との関係を定義することである。
【００３５】
ブタにおけるショックの誘発と高濃度血漿の注入。４０乃至５０ｋｇのブタ（Ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｏｆ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ（ＵＮＣ）の繁殖コロニーから採取された）を麻酔する。
【００３６】
血行動態及び血管作用のプロセスの分析。いくつかのセンサを配置して、血行動態及び血管作用のプロセスを観察する：外頸静脈を通して肺静脈熱希釈カテーテルを肺静脈に挿入し：マイクロマノメータを先端に付けたカテーテルを、左大腿血管を通して右心房と胸部大動脈に配置する：ａ．２２ゲージのカテーテルを左大腿動脈に挿入し、揚水ポンプに連結する。頭部と腸間膜動脈にドップラー血流プローブを配置して、血流のパターンを測定し：切開した頸動脈と開腹によりこの処置を支持することができる。
【００３７】
ショックの誘発と高濃度血漿の注入。１時間で総血液量の４０％を抜去することにより、出血性ショックを誘発することができる。血液を抜去して出血性ショック（動脈血圧＜４０ｍｍＨｇ、頭部、内臓の血流パターンの変化を意味する）を確認した後、１倍の噴霧乾燥した血漿又は高濃度の噴霧乾燥した血漿を複数回、中間及び高レベルの濃度（上記のように決定した）で動物に注入する。各注入は、動物の血液量の１／１０に相当する量が望ましく、ハーバードシリンジポンプで３分間実行するのが望ましい。血行動態パラメータや他の生理的パラメータを測定することができ、二つの連続急速投与により血行動態の安定性が悪化したときは、注入を停止することができる。次いで、検視及び組織学的分析するために動物を屠殺する。この実施例で用いた動物と注入した生成物の数を表１に示す。
【００３８】
【表１】
【００３９】
微小血管病変（Ｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｅｓ）と溶血性疾患。屠殺の後、選択した腎組織、肝組織、肺組織、脾臓組織、肺、及び他の組織を光学顕微鏡分析用に調製する。組織学的分析は、巨視的又は播種性血管内凝固又は選択した臓器不全の早期誘発の兆候を識別するのに焦点を当てる。
【００４０】
データ分析。ウィルコクソンの符号順位検定で血漿群間の比較をし、符号検定を用いて指向性を評価する。
【００４１】
［実施例１：血漿の噴霧乾燥と凝固タンパク質活性の維持］
以下の一連の実験は、血漿を噴霧乾燥して、脱水した微粒子を得ることができ、天然凝固因子レベルと凝固パラメータで血漿を当初の容量に再水和できることを示す。溶媒洗剤でプールした血漿を標準的な噴霧乾燥（Ｂｕｔｃｈｉ社のＢ−２７０を用いて１２０℃で１時間あたり４１５リットルのＮ２）して、図１に示す生成物を得た。得られた微粒子のくぼみのある球状の形状は、他のタンパク質を噴霧乾燥したときに得られる形に類似し、これは水の除去及び濃度の初期運動の結果として、タンパク質表面シェルが形成されることを示している（例えば、Ｖｅｈｒｉｎｇ１６を参照されたい）。しかし、この形状は波状表面のテクスチャを示す凍結乾燥した血漿に対して独特である。
【００４２】
ｐＨ２．４の２０ｍＭのグリシンで再水和して、乾燥プロセス中のタンパク質の損失を当初のタンパク質濃度に補うと、図２に示すように、凝固因子レベルは噴霧乾燥する前の当初の血漿と本質的に同一であることがわかった。噴霧乾燥はまた、血漿凝固の速度にわずかに影響を及ぼした（図３）。噴霧乾燥後は増大した凝固タンパク質分子ターンオーバーの統計的傾向（この分析では有意ではない）があり、これは血漿サンプル中のタンパク質の結合状態の差異に関係する影響である。噴霧乾燥した血漿のフィブリノゲン重合の後のフィブリン鎖は、正常な形態をとった（図４）。
【００４３】
本発明の方法と対照的に、凍結及び凍結乾燥血漿を段階的に分離することにより、さまざまな組成が混在する微細で巨視的な領域を含む生成物になる。その結果、超生理的濃度での再水和は時間がかかり、混濁懸濁液が生じる。いくつかの再水和した血漿の濃度がＡ５００（濁度）を表す図５に示すデータがこの点を実証する。溶媒洗剤で処理した血漿生成物を噴霧乾燥又は凍結乾燥にさらして、天然の（１倍）、２倍、３倍、又は４倍の最終濃度に再水和する。巨視的な溶解が起こる時間に基づく再水和時間は、噴霧乾燥した材料が微粒子製剤の大きな表面積が原因で劇的に速いので、図５で低いＡ５００値を示すように、著しく混濁の少ない懸濁液をもたらす。
【００４４】
上記の血漿に加えて、上記の説明に従い他の血液製剤を乾燥して、再水和することがある。実質的に、いかなる処理をした又は未処理の血液製剤も本発明の方法で用いることがある。血液製剤の実施例は、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清ならびにこれらの組み合わせを含む。天然に存在する状態でこの血液製剤を本発明の方法で用いるか、もしくは任意の方法で変更する場合がある。これらの血液製剤の変更の例は、米国特許第５，６５１，９６６号；第５，８９１，３９３号；第５，９０２，６０８号；及び第５，９９３，８０４号に記載するように、ホルムアルデヒド又はパラホルムアルデヒドなどの固定剤を有する固定を含み、造影剤、濃縮因子、パフォーマンス強化薬、抗菌剤及び抗ウィルス剤、若しくは普遍的なドナー溶液の追加を含む。有用な変更生成物の一例は、Ｅｎｔｅｇｒｉｏｎ株式会社（リサーチトライアングルパーク、ノースカロライナ州）が市販するＳＴＡＳＩＸ（誘導体化乾燥血小板）である。以下は、噴霧乾燥したＳＴＡＳＩＸ粒子を再水和する一般的なプロトコルである。
【００４５】
［実施例２：噴霧乾燥した誘導化血小板の再水和］
この実施例の目的は、全ての成分（血小板粒子、緩衝塩、充填剤（ヒト血清アルブミンなど））の濃度が、噴霧乾燥器へ入った懸濁液と同じになるように、噴霧乾燥した誘導化血小板（商標名ＳＴＡＳＩＸで販売され、ノースカロナイナ州のＥｎｔｅｇｒｉｏｎ社より入手できる）を再水和することである。三段階でこれを達成した。
【００４６】
第一に、噴霧乾燥前の懸濁液に用いられる充填媒体のための「基準Ａ２８０値」を得る。これは、血小板を遠心分離した後で噴霧乾燥前のＡ２８０ｎｍ値であり、これはヒト血清アルブミン充填剤である上澄みタンパク質濃度を大きく反映している。第二に、噴霧乾燥後の粉末の試験再水和を１０％（ｗ／ｖ）で行い、次いで２８０ｎｍ（Ａ２８０）で充填剤（ヒト血清アルブミン）の光学密度を測定する。第三に、噴霧乾燥前の上澄みのＡ２８０と１０％の上澄みのＡ２８０値と比較して（比率で）、１０％の再水和に近似値とどれ位離れているか決定する。次いでこの比率を用いて、噴霧乾燥前の懸濁液の充填剤のタンパク質濃度に一致させる必要がある、乾燥粉末の正確な重量パーセントを計算する。
【００４７】
再水和後の粒子の血小板数を二つの方法で測定する。第一はＨｉｓｋａ細胞計算器で、第二は光学濁度を測定することによる。これらの値や関連する再水和量が、すべての粒子特性評価分析の出発点を形成する。
【００４８】
［手順］
１．噴霧乾燥前の光学密度を測定して、基準Ａ２８０値を得る。
ａ）液体の噴霧乾燥前のサンプルを解凍して、デスクトップの微量遠心管を５に設定し二分間遠心して遠心分離する。上澄みを保持する。
ｂ）この上澄み１／１０をクエン酸生理食塩水へ三倍に希釈して、ナノドロップ分光計でＡ２８０値を計測する。
【００４９】
２．１０％（ｗ／ｖ）の懸濁液のタンパク質の光学密度の測定。
ａ）マイクロチューブ中の２０乃至５０ｍｇの粒子部分をいくつか（だいたい４つ）に検量する。質量を記録する。一のチューブを蒸留水で１０％（ｗ／ｖ）の懸濁液に再水和する。更に分析用に残りのチューブを保存する。
ｂ）粒子を上記のように遠心分離して、上澄みを保持する。
ｃ）各再水和サンプルの上澄み１／１０をクエン酸食塩水に三倍に希釈して、Ａ２８０値を測定する。
【００５０】
３．再水和の重量パーセントを計算して、以下の噴霧乾燥前の値と適合させる。
ａ）希釈係数（１／１０）により希釈した噴霧乾燥前の上澄みからＡ２８０値を分けて、三つの値を平均し理論的な基準Ａ２８０値又はＡ２８０，ｒｅｆを得る。
ｂ）希釈係数（１／１０）によって１０％の再水和の上澄みからＡ２８０値を分けて、三つの値を平均しＡ２８０，１０％といわれる理論的な不希釈のＡ２８０値を得る。
ｃ）再水和したサンプルが、基準Ａ２８０値と同じＡ２８０値をとるように、基準Ａ２８０値方程式１に従いＡ２８０，ｒｅｆ値に対するＡ２８０，１０％の比をとり、噴霧乾燥後の粉末の適した再水和質量（ｗ／ｖ）を得る。
【００５１】
重量パーセント（ｗ／ｖ）＊＝１０％（ｗ／ｖ）×Ａ２８０，ｒｅｆ／Ａ２８０，１０％（方程式１）
＊重量パーセントは、ｍｇ／ｍｌを単位としており、例えば、８．９％（ｗ／ｖ）は８９ｍｇ／ｍｌに相当する。
【００５２】
［ＳＴＡＳＩＸ粒子の総数の測定］
ａ）１０％の再水和懸濁液（細胞を遠心分離しない）１／１０をクエン酸生理食塩水で三倍に希釈する。
ｂ）各サンプルをＡ５００で濁度を測定する。
ｃ）Ｈｉｓｋａ血液学的分析器で直接細胞総数を測定する。
ｄ）収量低下を考慮して計算する。
再水和して噴霧乾燥した誘導化血小板（再水和したＳＴＡＳＩＸ）の電子顕微鏡写真は、図６と図７に示した。
【００５３】
［実施例３：カニクイザルにおける単回投与の距離測定の静脈内毒性試験］
単回でサルに静脈注射して投与（だいたい５回以上）したときに、噴霧乾燥した誘導化血小板（上記のようにＳｔａｓｉｘを噴霧乾燥して再水和した）の毒性の評価をするように検査を設計した。動物の回復サブグループを７日間観察した。
【００５４】
５グループのサルを用いた−グループ１−溶媒（緩衝液）コントロール；グループ２−１倍の治療的ＳＴＡＳＩＸ量；グループ３−５倍の治療的ＳＴＡＳＩＸ量；グループ４−１０倍治療的ＳＴＡＳＩＸ量；及びグループ５−ヒト血清アルブミン（５００ｍｇ／ｋｇ）。用量はそれぞれ０．０、２．１×１０９、１．０５×１０１０、２．１×１０１０であり、グループ１、２、３、４、及び５において０．０血小板／ｋｇである。ヒト患者において、１倍の用量は、推測の治療的ＳＴＡＳＩＸ量、すなわち血液１マイクロリットルあたり追加の３０，０００の血小板である。
【００５５】
この実験で用いたいずれのサルにも、症候的及びミクロ病理学的のいずれの副作用も見られなかった。２匹のオスのサルと２匹のメスのサルはすべて、わずか５分の非常に短い期間で注入したＳＴＡＳＩＸの１０倍の治療量に耐性があったので、無毒性量（ＮＯＡＥＬ）は、少なくとも１０倍の治療量である。ヒトの臨床設定においては、２０分というかなりゆっくりした時間速度でＳＴＡＳＩＸ用量を注入する。
【００５６】
注入後２日目又は８日目のいずれかに５つの投与グループを含む１４匹の対象のサルの部検を行なったが、心臓や肺のいずれにも、微小血栓の発達の証拠は認められなかった。要するに、すべての適切な動物の使用と取り扱い規制下で、主要な外部の研究室で行なった詳細な動物実験では、対象とするヒトの治療量の最大１０倍服用しても、ＳＴＡＳＩＸは巨視的及び微視的のいずれのレベルでも有害な影響を提示しなかった。
【００５７】
［実施例４：アルデヒド安定化血小板の噴霧乾燥］
この実施例では、アルデヒド安定化血小板を脱水する凍結乾燥の代替としての噴霧乾燥の有用性を検査する。その全体が参照により本明細書に組み込まれている米国特許第５，６５１，９６６号に記載されているＲｅａｄらの手順を用いてヒトのアフェレーシス血小板を安定化した。
【００５８】
上記の５％（ｗ／ｖ）ヒト血清アルブミン中の２００万血小板／マイクロリットルで最終アルデヒド安定化血小板懸濁液を噴霧乾燥（１２０℃で１時間あたり４１５リットルのＮ２）して検査したところ、図６と７に示すものと似た直径３乃至３０ミクロンの球状粒子からなる微粉末を得た。
【００５９】
１７個の独立した乾燥血小板製剤を噴霧乾燥して調製し、当初の脱水前の容量に再水和した。これら１７個が達した可算の血小板の収率（再水和後／噴霧乾燥前）は、９６．８％＋／−７．０％（標準偏差）だった。
【００６０】
図８は、再水和後に噴霧乾燥した血小板の、正常なヒト血漿（フォンヴィレブランド因子源として）への変換と、１ｍｇ／ｍｌ（パネルＢ）又はコントロールの緩衝液（パネルＡ）に対応する量のリストセチン添加を示す。リストセチン添加で大きな凝集体が認められ、これは噴霧乾燥が糖タンパク質１Ｂ−フォンヴィレブランド因子受容体の機能を維持したことを示す。
【００６１】
カニクイザル（１又は２／性別／グループ）は、２．１×１０９、１．０５×１０１０、又は２．１×１０１０血小板／ｋｇの用量で噴霧乾燥した血小板の５分間の静脈内注射を１回受けた。コントロールの動物（２／性別）は、溶媒（生理的食塩水中の５．３７５ｍＭのクエン酸ナトリウムと２ｍＭのシステイン）を受け、別のグループは、５００ｍｇ／ｋｇのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を受けた。投与量は、すべてのグループに２ｍＬ／ｋｇ／分であった。投与後１日目又は７日目に動物を観察した。投与１日後に１動物／性別／グループを安楽死させ、部検を行った。コントロールと高用量（２．１×１０１０血小板／ｋｇ）グループから性別ごとに部検前に動物を７日間保存した。検査中に評価したパラメータは、生存能力、臨床観察、体重、臨床病理（２日目と８日目に予備検査）、器官重量、巨視的観察、及び微視的病理であった。
【００６２】
噴霧乾燥した血小板のすべての用量（最大２．１×１０１０血小板／ｋｇ）の投与は、良好な耐容性を示した。血液学的変化は、用量投与の後日の血小板数の減少と二匹の高用量（２．１×１０１０血小板／ｋｇ）動物（メス）のうち一匹の平均血小板量の増加だけだった。凝集又は臨床病理のパラメータにおける変化は観察されなかった。コントロールの値と比較すると、すべての検査対象動物及びＨＳＡで治療した動物で脾臓重量の増加が見られた。中用量と高用量（１．０５×１０１０又は２．１×１０１０血小板／ｋｇ）のメスとＨＳＡで治療した２日目のメスと高用量（部検が行われるグループのみ）の８日目のメスの脾臓の胚中心のサイズの、何匹かの動物では脾臓の黄褐色の変色と表面の異常の巨視的観察と関連する、軽度から中程度の増加を顕微鏡観察は示した。メスの胚中心の肥大は、ＨＳＡに対する考えられる反応と思われた。小さい胚中心を有する溶媒で処理したコントロールでは、同様の検査結果は見られなかった。しかし、サルの脾臓では、活性な胚中心は一般的な所見であり、そしてこのサンプルのサイズが小さかったので、この所見は通常のバックグラウンドの範囲内である可能性がある。ある動物の７日後の脾臓の胚中心肥大の持続は、抗原刺激に対する胚中心反応である回復の欠如を示唆するが、この所見もまた通常のバックグラウンドの変化を反映する場合がある。
【００６３】
［実施例５−血漿の噴霧乾燥とブタにおける検査］
新鮮なブタの血液由来の分離した血漿を、新鮮な凍結した血漿（ＦＦＰ）として保管又は冷凍乾燥した血漿（ＦＤＰ）若しくは噴霧乾燥した血漿（ＳＤＰ、前述の実施例で詳述したように調製した）として保存した。インビトロ検査：当初のＦＦＰの量と同等（１倍ＳＤＰ）又は１／３（３倍ＳＤＰ）である蒸留水中でＳＤＰを再構成した。プロトンビン時間（ＰＴ）、部分的トロンボプラスチン時間（ＰＴＴ）、フィブリノゲンレベル、及び選択された凝固因子の活性の測定を分析は含んだ。インビトロ検査で、多発性外傷（大腿骨骨折、等級Ｖの肝臓損傷）と出血性ショック（アシドーシス、凝固障害、及び低体温症の「致命的三徴」を伴う６０％の動脈性出血）にブタをさらし、ＦＦＰ、ＦＤＰ、又は３倍ＳＤＰで治療した（ｎ＝４乃至５／グループ）。ベースライン（ＢＬ）、ショック後（ＰＳ）、晶質後（ＰＣ）、治療（ＭＯ）で凝固プロファイル（ＰＴ、ＰＴＴ、トロンボエラストグラフィー）を測定し、４時間モニタリング（Ｍ１−４）した。
【００６４】
噴霧乾燥後に凝固因子が保たれていることをインビトロ検査は示した。３倍ＳＤＰが長引いたＰＴ／ＰＴＴを示すとともに、ＦＦＰと１倍ＳＤＰの凝固は類似していた。多発性外傷／出血性ショックは著しい凝固障害をもたらすが、３倍ＳＤＰの注入はＦＦＰとＦＤＰと同様に凝固障害対策に有効であった。これらの結果は、血漿が噴霧乾燥されて、インビボで凝固特性を損なうことなく当初の量の１／３に再構成され得ることを示している。この常温保存が可能、少量、高張性、及び高浸透圧の血漿は、外傷関連の及び他の凝固障害の治療に論理学的に魅力的な選択である。
【００６５】
［参照］
1. Kendrick, B.G.D.B. Blood Program in World War II. U.S. Government Printing Office Library of Cong. Cat. No. 64-60006, http://amedd.mil/booksdoc/wwii/blood/default.htm (1964).
2. Ketchum, L., Hess, J.R. & Hiippala, S. Indications for early fresh frozen plasma, cryoprecipitate, and platelet transfusion in trauma. The Journal of trauma 60, S51- 58 (2006).
3. Erber, W.N. & Perry, D.J. Plasma and plasma products in the treatment of massive haemorrhage. Best Pract Res Clin Haematol 19, 97-112 (2006).
4. Smith, M.W. Spray-drying synthetic detergents. Manufacturing chemist and aerosol news 22, 186-187 (1951).
5. Heldman, D.R., Hall, C.W. & Hedrick, T.I. Air filtration for the spray drying of dairy products. Journal of dairy science 51, 466-470 (1968).
6. Raff, A.M., Robinson, M.J. & Svedres, E.V. Spray-drying of tablet granulations. I. A preliminary report. Journal of pharmaceutical sciences 50, 76-79 (1961).
7. Riegelman, S., Swintosky, J. V., Hiquchi, T. & Busse, L.W. Studies on pharmaceutical powders and the state of subdivision. IV. The application of spray- drying techniques to pharmaceutical powders. Journal of the American Pharmaceutical Association 39, 444-450 (1950).
8. Bergsoe, C. Progress in spray-drying. Manufacturing chemist and aerosol news 20, 72-75 (1949).
9. Maltesen, M.J., Bjerregaard, S., Hovgaard, L., Havelund, S. & van de Weert, M. Quality by design - Spray drying of insulin intended for inhalation. Eur J P harm Biopharm 70, 828-838 (2008).
10. Borghetti, G.S., Lula, I.S. , Sinisterra, R.D. & Bassani, V.L. Quercetin/beta- Cyclodextrin Solid Complexes Prepared in Aqueous Solution Followed by Spray- drying or by Physical Mixture. AAPS PharmSciTech (2009).
11. Mohammed, G. A., Puri, V. & Bansal, A. K. Coprocessing of nevirapine and stavudine by spray drying. Pharmaceutical development and technology 13, 299- 310 (2008).
12. Ochiuz, L. & Peris, J.E. Preparation and characterisation of alendronate-loaded chitosan microparticles obtained through the spray drying technique. Medicinal chemistry (Shariqah (United Arab Emirates)) 5, 191-196 (2009).
13. Iskandar,F.et al.Production of morphology-controllable porous hyaluronic acid particles using a spray-drying method.Acta biomaterialia (2008).
14. Sen, D. et al. Evaporation Driven Self-Assembly of a Colloidal Dispersion during Spray Drying: Volume Fraction Dependent Morphological Transition.Langmuir(2009).
15. Zhang, X. et al. Preparation of a dispersible PEGylate nanostructured lipid carriers (NLC) loaded with 10-hydroxycamptothecin by spray-drying. Chemical & pharmaceutical bulletin 56, 1645-1650 (2008).
16. Vehring, R. Pharmaceutical particle engineering via spray drying. Pharmaceutical research 25,999-1022(2008).
17. Churchhill, C. Surgery in World War II. The physiologic effects of wounds.U.S. Government Printing Office(1952).
18. Blalock, A. Report on Committee on Transfusion, National Research Council. (1940).
19. Harper, S.B. The preparation and experimental use of dried blood plasma. Proceedings of Staff Meetings of the Mayo Clinic 15, 689-694 (1940).
20. Strumia, D. Minutes, meeting of subcommittee on blood substitutes. Division of Medical Sciences, National Research Council (1942).
21. Allen, J., Enerson, D., Barron, E. and Sykes, C. Pooled plasma with little or no risk of homologous serum Jaundice. J.A.M.A. 152, 1421-1423(1954).
22. Whitaker, B.a.S., M. The 2005 Nationwide Blood Collection and Utilization Survey Report. AABB and US Dept. HHS
http://www.aabbo.org/apps/docs/05nbcursrpt.pdf(2005).
23. Hardy, J.F., De Moerloose, P. & Samama, M. Massive transfusion and coagulopathy: pathophysiology and implications for clinical management. Can J Anaesth 51, 293-310 (2004).
24. Baxter, C.R. & Shires, T. Physiological response to crystalloid resuscitation of severe burns. Annals of the New York Academy of Sciences 150, 874-894 (1968).
25. Shires, T. Initial care of the injured patient. The Journal of trauma 10, 940-948 (1970).
26. Shires, T., Coln, D., Carrico, J. & Lightfoot, S. Fluid Therapy in Hemorrhagic Shock. Arch Surg 88, 688-693 (1964).
27. Skeate, R.C. & Eastlund, T. Distinguishing between transfusion related acute lung injury and transfusion associated circulatory overload. Current opinion in hematology 14, 682-687 (2007).
28. Triulzi, D.J. Transfusion-related acute lung injury: current concepts for the clinician. Anesthesia and analgesia 108, 770-776 (2009).
29. Stern, S.A. Low-volume fluid resuscitation for presumed hemorrhagic shock: helpful or harmful? Current opinion in critical care 7, 422-430 (2001).
30. Reynolds, P.S., Barbee, R.W., Skaflen, M.D. & Ward, K.R. Low-volume resuscitation cocktail extends survival after severe hemorrhagic shock. Shock (Augusta, Ga 28, 45-52 (2007).
31. Fischer, T.H., Merricks, E., Raymer, R., Nichols, T., Hayes, P., Bode, A., Pearce, L. and Manning, J. The co-infusion of rehydrated lyopholized platelets wth HBOC-201 for hemostasis in dilutional thrombocytopenia. Blood 98, 2250 (2001).
32. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion using serial infusions of perflubron emulsion. Acad Emerg Med 4, 883-890 (1997).
33. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: enhanced resuscitation using oxygenated perflubron emulsion, with and without aortic arch epinephrine. Ann Emerg Med 29, 580-587(1997).
34. Manning, J.E. et al. Selective aortic arch perfusion with hemoglobin-based oxygen carrier-201 for resuscitation from exsanguinating cardiac arrest in swine. Critical care medicine 29, 2067-2074 (2001).
35. Toung, T., Reilly, P.M., Fuh, K.C., Ferris, R. & Bulkley, G.B. Mesenteric vasoconstriction in response to hemorrhagic shock. Shock (Augusta, Ga 13, 267- 273 (2000).
36. Brummel-Ziedins, K., Vossen, C. Y., Rosendaal, F.R., Umezaki, K. & Mann, K.G. The plasma hemostatic proteome: thrombin generation in healthy individuals. J Thromb Haemost 3,1472-1481 (2005).
37. Budowsky, E., Ackerman, S., Purmal, A., Edson, C, Williams, M. Methods and compositions for inactivating viruses. United States Patent, 6,369,048 (2002).
38. Burnouf, T. et al. Nanofiltration of single plasma donations: feasibility study. Vox Sang 84, 111-119 (2003).
39. Burnouf-Radosevich, M., Appourchaux, P., Huart, JJ. & Burnouf, T. Nanofiltration, a new specific virus elimination method applied to high-purity factor IX and factor XI concentrates. Vox Sang 67, 132-138 (1994).
40. Horowitz, B.a.C, S. Removal of antibodies from blood-derived compositions while retaining coagulation factors. United States Patent 5,541,294 (1996).
41. Bakaltcheva, L, O'Sullivan, A.M., Hmel, P. & Ogbu, H. Freeze-dried whole plasma: evaluating sucrose, trehalose, sorbitol, mannitol and glycine as stabilizers. Thrombosis research 120, 105-116 (2007).
42. MacLennan, S. & Williamson, L.M. Risks of fresh frozen plasma and platelets. The Journal of trauma 60, S46-50 (2006).
43. Solheim, B. G. Universal pathogen-reduced plasma in elective open-heart surgery and liver resection. Clin Med Res 4, 209-217 (2006).
44. Noddeland, H. et al. Universal solvent/detergent-treated fresh frozen plasma (Uniplas- rationale and clinical properties. Thrombosis research 107 Suppl 1, S33- 37 (2002).
45. Medwatch, F. Imporrtant safety information regarding Plas+SD. http://www.fda.gov/medwatch/2002/plassd deardoc.pdf(2002).
46. Monroe, D.M., Hoffman, M., Allen, G.A. & Roberts, H.R. The factor VII-platelet interplay: effectiveness of recombinant factor VIIa in the treatment of bleeding in severe thrombocytopathia. Seminars in thrombosis and hemostasis 26, 373-377 (2000).
47. Monroe, D.M., Hoffman, M. & Roberts, H.R. Platelets and thrombin generation. Arterioscler Thromb Vase Biol 22, 1381-1389 (2002).
48. Deveras, R. A. & Kessler, C.M. Reversal of warfarin-induced excessive anticoagulation with recombinant human factor VIIa concentrate. Annals of internal medicine 137, 884-888 (2002).
49. Freeman, W.D. et al. Recombinant factor VIIa for rapid reversal of warfarin anticoagulation in acuteintracranial hemorrhage. Mayo Clin Proc 79, 1495-1500 (2004).
50. Sorensen, B., Johansen, P., Nielsen, G. L., Sorensen, J. C. & Ingerslev, J. Reversal of the International Normalized Ratio with recombinant activated factor VII in central nervous system bleeding during warfarin thromboprophylaxis: clinical and biochemical aspects. Blood Coagul Fibrinolysis 14, 469-477 (2003).
51. Talkad, A., Mathews, M., Honings, D., Jahnel, J. & Wang, D. Reversal of warfarin-induced anticoagulation with factor VIIa prior to rt-PA in acute stroke. Neurology 64, 1480-1481 (2005).
【特許請求の範囲】
【請求項１】
脱水血液製剤の調製方法において：
（ａ）水和血液製剤を供給するステップと；
（ｂ）前記水和血液製剤を噴霧乾燥して、脱水血液製剤を生成するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項２】
請求項１に記載の方法において、前記水和血液製剤が、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清、血漿（ｐｌａｓｍａ）、及びこれらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項３】
請求項１に記載の方法において、前記水和血液製剤が、物理的に又は化学的に変更されていることを特徴とする方法。
【請求項４】
請求項３に記載の方法において、前記変更が、化学的固定であることを特徴とする方法。
【請求項５】
請求項３に記載の方法において、前記変更が、さらに診断試薬又は治療用薬剤を具えることを特徴とする方法。
【請求項６】
請求項５に記載の方法において、前記診断試薬又は治療用薬剤が、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液、これらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項７】
請求項１に記載の方法で製造されることを特徴とする脱水血液製剤。
【請求項８】
血液関連の疾患を患っている患者を治療する方法において：
（ａ）請求項７に記載の脱水血液製剤の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成ステップと；
（ｂ）前記再水和治療用組成物を前記患者に投与するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項９】
請求項７に記載の脱水血液製剤を具えることを特徴とする包帯又は外科的な補助具。
【請求項１０】
脱水固定化血小板の調製方法において：
（ａ）水和固定化血小板を供給するステップと；
（ｂ）前記水和固定化血小板を噴霧乾燥して、脱水固定化血小板を生成するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項１１】
請求項１０に記載の方法において、前記水和固定化血小板が、診断試薬又は治療用薬剤を含むことを特徴とする方法。
【請求項１２】
請求項１１に記載の方法において、前記診断試薬又は治療用薬剤が、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液、及びこれらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項１３】
請求項１０に記載の方法で製造されることを特徴とする脱水固定化血小板。
【請求項１４】
血液関連の疾患を患っている患者を治療する方法において：
（ａ）請求項１３に記載の脱水固定化血小板の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；
（ｂ）前記再水和治療用組成物を前記患者に投与するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項１５】
請求項１３に記載の脱水固定化血小板を具えることを特徴とする包帯又は外科的な補助具。
【請求項１６】
くぼみのある球状の形状を有する噴霧乾燥した固定化血小板において、前記噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板組成物を形成するとき、当該組成物が、比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物よりも低い濁度（Ａ５００）値を有することを特徴とする固定化血小板。
【請求項１】
脱水血液製剤の調製方法において：
（ａ）水和血液製剤を供給するステップと；
（ｂ）前記水和血液製剤を噴霧乾燥して、脱水血液製剤を生成するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項２】
請求項１に記載の方法において、前記水和血液製剤が、全血、血漿（ｂｌｏｏｄ ｐｌａｓｍａ）、血小板、赤血球、血清、血漿（ｐｌａｓｍａ）、及びこれらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項３】
請求項１に記載の方法において、前記水和血液製剤が、物理的に又は化学的に変更されていることを特徴とする方法。
【請求項４】
請求項３に記載の方法において、前記変更が、化学的固定であることを特徴とする方法。
【請求項５】
請求項３に記載の方法において、前記変更が、さらに診断試薬又は治療用薬剤を具えることを特徴とする方法。
【請求項６】
請求項５に記載の方法において、前記診断試薬又は治療用薬剤が、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液、これらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項７】
請求項１に記載の方法で製造されることを特徴とする脱水血液製剤。
【請求項８】
血液関連の疾患を患っている患者を治療する方法において：
（ａ）請求項７に記載の脱水血液製剤の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成ステップと；
（ｂ）前記再水和治療用組成物を前記患者に投与するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項９】
請求項７に記載の脱水血液製剤を具えることを特徴とする包帯又は外科的な補助具。
【請求項１０】
脱水固定化血小板の調製方法において：
（ａ）水和固定化血小板を供給するステップと；
（ｂ）前記水和固定化血小板を噴霧乾燥して、脱水固定化血小板を生成するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項１１】
請求項１０に記載の方法において、前記水和固定化血小板が、診断試薬又は治療用薬剤を含むことを特徴とする方法。
【請求項１２】
請求項１１に記載の方法において、前記診断試薬又は治療用薬剤が、造影剤、濃縮因子、機能増強薬剤、抗菌性及び抗ウイルス試薬、万能ドナー溶液、及びこれらの組み合わせからなる群より選択されることを特徴とする方法。
【請求項１３】
請求項１０に記載の方法で製造されることを特徴とする脱水固定化血小板。
【請求項１４】
血液関連の疾患を患っている患者を治療する方法において：
（ａ）請求項１３に記載の脱水固定化血小板の治療量を再水和して、再水和治療用組成物を生成するステップと；
（ｂ）前記再水和治療用組成物を前記患者に投与するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項１５】
請求項１３に記載の脱水固定化血小板を具えることを特徴とする包帯又は外科的な補助具。
【請求項１６】
くぼみのある球状の形状を有する噴霧乾燥した固定化血小板において、前記噴霧乾燥した固定化血小板を再水和して再水和固定化血小板組成物を形成するとき、当該組成物が、比較可能な固定化血小板の再水和凍結乾燥組成物よりも低い濁度（Ａ５００）値を有することを特徴とする固定化血小板。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【公表番号】特表２０１２−５２３４１４（Ｐ２０１２−５２３４１４Ａ）
【公表日】平成２４年１０月４日（２０１２．１０．４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１２−５０４７５７（Ｐ２０１２−５０４７５７）
【出願日】平成２２年４月６日（２０１０．４．６）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２０１０／０３００３１
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／１１７９７６
【国際公開日】平成２２年１０月１４日（２０１０．１０．１４）
【出願人】（５０８２０８４０９）エンテグリオン、インコーポレイテッド (3)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２４年１０月４日（２０１２．１０．４）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年４月６日（２０１０．４．６）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２０１０／０３００３１
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／１１７９７６
【国際公開日】平成２２年１０月１４日（２０１０．１０．１４）
【出願人】（５０８２０８４０９）エンテグリオン、インコーポレイテッド (3)
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]