自己自制ラクトコッカス(Loctococcus)株
【課題】環境的に制限された増殖および生存性を伴った組換ラクトコッカス株を提供する。
【解決手段】環境的に制限された増殖と生存可能性を所持した組換えラクトコッカス(Loctococcus)。特定の培地成分が存在する培地中でのみ生き残ることのできるラクトコッカス(Loctococcus)。好ましい実施態様は、該培地成分が存在している宿主生物中でのみ生存できるが、該培地成分のない宿主生物の外では生存できないラクトコッカス(Loctococcus)。該ラクトコッカス(Loctococcus)は、予防用及び/又は治療用分子で形質転換され、炎症性腸疾患の疾病治療に使用される。
【解決手段】環境的に制限された増殖と生存可能性を所持した組換えラクトコッカス(Loctococcus)。特定の培地成分が存在する培地中でのみ生き残ることのできるラクトコッカス(Loctococcus)。好ましい実施態様は、該培地成分が存在している宿主生物中でのみ生存できるが、該培地成分のない宿主生物の外では生存できないラクトコッカス(Loctococcus)。該ラクトコッカス(Loctococcus)は、予防用及び/又は治療用分子で形質転換され、炎症性腸疾患の疾病治療に使用される。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、環境的に制限された増殖と生存可能性を所持した組換えラクトコッカス(Loctococcus)株に関するものである。特に、明確な培地成分が存在する培地中でのみ生き残ることのできるラクトコッカス(Loctococcus)に関するものである。好ましい実施態様は、該培地成分が存在している宿主生物中でのみ生存できるが、しかし、該培地成分のない宿主生物の外では生存できないラクトコッカス(Loctococcus)である。さらに、該ラクトコッカス(Loctococcus)は、予防用及び/又は治療用分子で形質転換され、そして、したがって炎症性腸疾患のような疾病治療に使用されうる。
【0002】
発見の背景
乳酸菌は、長い間幅広くさまざまな産業的発酵製法で使われてきた。それらは、一般に安全とみなされる地位にあり、商業的に重要なたんぱく質生産のための潜在的に有効な生物となっている。実際、インターロイキン2のようないくつかの異種たんぱく質が、ラクトコッカス(Loctococcus spp)で首尾よく生産されている(Steidler et al., 1995)。しかしながら、そのような遺伝的に改良されたマイクロの生物が、環境中で生き残りそして広がることは望まれていない。遺伝的に改良された微生物の意図しない放出を避けるために、物理的封じ込めのための安全取り扱いおよび技術的必要条件のための特別なガイドラインが用いられている。これは、産業的発酵では有効であるかもしれないけれども、物理的封じ込めは、一般には十分とは考えられていない、そして、追加の生物学的封じ込め方法が環境中での遺伝的に改良された微生物の生存可能性を減らすためにとられている。生物学的封じ込めは、物理的封じ込めが困難又はさらに適応できないところの場合はきわめて重要である。これは、遺伝的に改良された微生物が生ワクチン又は治療用化合物の配送のための乗り物として使われるような応用の場合ではとりわけである。そのような応用が、たとえば、WO 97/14806で記述されている、これは、主題に組換え非侵襲性又は非病原性微生物のよるサイトカインのような生物学的活性ペプチドの配送を公開している。WO 96/11277は、治療用たんぱく質をコードする組換え微生物の投与による人を含めた動物への治療用化合物の配送を記述している。Steidler et al. (2000)は、インターロイキン10を分泌する組換えLoctococcus lactisの投与による大腸炎の治療を記述している。そのような配送は、病気に犯された人又は動物の疾病の治療にはきわめて有効であるかもしれない、しかし、病気に犯されていない対象に入ったときに組換え微生物が、有害で病原性の微生物として働くかもしれない、そしてそのような意図しない微生物の広がりを避ける効果的な生物学的封じ込めが必要とされる。
【0003】
宿主細胞に対する生物学的封じ込めシステムは、外部環境では存在しない又は低濃度で存在するような特別な増殖因子又は栄養素に対する宿主の厳密な要求性に基づいた受動的、又は、宿主が特異な環境条件下でのみ発現するプロモーターの制御下にある遺伝子でコードされる細胞致死機能により外部環境で殺される宿主のいわゆる自殺的遺伝的要素に基づいた能動的なものであってもよい。
【0004】
受動的生物学的封じ込めシステムは、大腸菌や酵母のような微生物ではよく知られている。そのような大腸菌が、たとえば、US100495で公開されている。WO 95/1061は、乳酸微生物のサプレッサー変異株および乳酸微生物での生物学的封じ込め手段としてそれらの使用を公開している、しかし、その場合、封じ込めは宿主株のレベルというよりもむしろプラスミドレベルで、そして宿主でのプラスミドを安定化するが、しかし遺伝的に改良された宿主自身に対する封じ込めを提供してはいない。
【0005】
能動的な自殺システムは、幾人かの著者によって記述されている。そのようなシステムは、2つの要素:致死遺伝子及び致死遺伝子の発現を非許容条件下でスイッチを入れる制御配列からなる。WO 95/10614は、致死遺伝子として細胞膜で働く不完全そして/又は変異型黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)のヌクレアーゼの使用を公開している。WO 96/40947は、細胞が許容条件下にあるとき発現しそして細胞が非許容条件下にあるときには発現しないか又は一時的な発現であるような必須遺伝子、そして/又は、その遺伝子の発現が細胞に致死でその致死遺伝子は細胞が非許容条件下にあるときに発現し、しかし、細胞が許容条件下にあるときには発現しないような致死遺伝子のどちらかの発現に基づいた環境的に制限された生存可能性を有する組換え細菌システムを公開している。WO 99/58652は、relE細胞毒素に基づいた生物学的封じ込めシステムを公開している。しかしながら、ほとんどのシステムは、大腸菌(Tedkin et al., 1995; Knudsen et al., 1995; Schweder et al., 1995)又はシュードモナス(Kaplan et al., 1999; Molino et al., 1998)に対して詳しく述べられている。いくつかの封じ込めシステムは理論的には乳酸菌に適用できるけれども、疾病の予防そして/又は治療のための予防用そして/又は治療用分子配送のために自己自制の形質転換ラクトコッカスの使用を可能にするラクトコッカスに対する特異的生物学的封じ込めシステムは記述されていない。
【0006】
発明の記述
ラクトコッカスに対する適切な生物学的封じ込めシステムを提供することが本発明の目的である。
【0007】
本発明の最初の概念は、欠陥チミジル酸合成酵素遺伝子を含むラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の単離株である。好ましくは、該欠損チミジル酸合成酵素遺伝子は、遺伝子破壊によって不活化される。さらにより好ましくは、該ラクトコッカスが、ラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)である。特別な実施態様は、ラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株であり、好ましくはラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)であり、より好ましくはラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)MG1363誘導株(ここではチミジル酸合成酵素遺伝子は、破壊されインターロイキン10発現ユニットに置き換えられている)である。該インターロイキン10発現ユニットは、これに限定されないが好ましくはヒトインターロイキン10発現ユニット又はヒトインターロイキン10をコードしている遺伝子である。
【0008】
本発明のもうひとつの概念は、形質転換プラスミドが完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換のための宿主としての上記の株の使用である。本発明の更なる別の概念は、完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まないプラスミドを含む上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株である。本発明の別の概念は、インターロイキン10のような予防用そして/又は治療用分子をコードする遺伝子又は発現ユニットを含むラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株に関する。結論的として、本発明は、また疾病を治療するために予防用そして/又は治療用分子およびそのようなものを配送するためのラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株の使用に関する。炎症性腸疾患のような疾病の治療のための該分子や方法を配送する方法は、この参照として本明細書に盛り込まれるSteidler等(Science 2000, 289:1352)およびSteidler等のWO 97/14806およびWO 00/23471で詳細に説明されている。
本発明の別の概念は、上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株を含む医療用調製物である。
【0009】
ラクトコッカス・ラクティス・亜種ラクティス(Lactcocuus lactis.subsp lactis.)のチミジル酸合成酵素遺伝子(thyA)は、Ross 等(1990a)によってクローン化された;その配列は、配列番号3および配列番号5に含まれる。EP0406003は、選択マーカーとして抗生物質耐性を欠くがチミジル酸合成酵素遺伝子を保持するベクターを開示している。;同じベクターがRoss等(1990b)によって記述されている。しかしながら、このベクターは、記述されていないが適切なthyA変異を欠いているせいでラクトコッカス・ラクティス株では使用できない。本発明は、ラクトコッカスでの相同組換えを使用した遺伝子破壊によりそのような変異株を構築する方法を開示する。好ましい実施態様は、thyA遺伝子が機能的なヒトインターロイキン10発現カセットで破壊される。しかしながら、thyA遺伝子の不活化又は不活性なチミジル酸合成酵素を生じる限りはどの構築も遺伝子破壊のために使用できることは明白である。限定されない例として、相同組換えは、遺伝子欠失、チミジル酸合成酵素の不活化型にいたる一つまたはそれ以上のアミノ酸置換、又はたんぱく質の不完全型を生じるようなフレームシフト変異を生じてもよい。
【0010】
そのようなラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)thyA変異株は、純粋に物理的封じ込め以上の厳しい封じ込めを必要とする状況では形質転換のための宿主として非常に有効である。実際thyA変異株は、チミジンそして/又はチミンのない又は限定濃度しかない環境では生存できない。そのような株が完全なthyA遺伝子を含まないそして変異を相補できないプラスミドで形質転換されたとき、形質転換株は、チミジン/チミンの乏しい環境では自殺的となる。そのような株は、発酵槽での物理的封じ込めに対する追加的防御として使用できる。さらに、本発明は、そのような株が動物体内での配送体として使用される場合では特に有効であることを開示している。実際、そのような形質転換株が、たとえば経口的に人を含め動物に与えられたとき、十分な高濃度のチミジン/チミンが存在する腸で生存し、そして該動物にとって有益であるかもしれないヒトインターロイキン10のような同種又は異種たんぱく質を生産する。本発明は、さらに形質転換株が驚くべきことにコントロール株と同じスピードで腸を通過し、そして生存率の損失が実際コントロール株のそれと違いがないということを示した。しかしながら、該株が環境中にいったん分泌されると、たとえば糞便中においても、もはや生存することはできない。
【0011】
形質転換プラスミドは、thyA変異を相補できない限り任意のプラスミドでもあり得る。好ましくは、ひとつ又はそれ以上の興味ある遺伝子そしてひとつ又はそれ以上耐性マーカーを所持する自己複製型プラスミドか又は組み込み型プラスミドであってもよい。後者の場合、組み込み型プラスミドそれ自身がthyA部位で組み込みを起こすことによって、それによってthyA遺伝子は不活化するが、変異を作るために使われてもよい。おそらく、活性型thyA遺伝子は、thyAターゲット部位への挿入を標的とするターゲット配列で両脇をはさまれた興味ある遺伝子又は遺伝子群からなるカセットによるダブル相同組換えによって置き換えられる。ターゲット部位で配列組み込みを得るためには、これら配列は、十分に長くそして十分に相同であることが極めて重要である。好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の少なくとも100の連続ヌクレオチドそして逆側で配列番号2の少なくとも100の連続ヌクレオチドからなり;より好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の少なくとも500の連続ヌクレオチドそして逆側で配列番号2の少なくとも500の連続ヌクレオチドからなり;最も好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1そして逆側で配列番号2からなり、又は、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも100ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも100ヌクレオチドからなり、好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも500ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも500ヌクレオチドからなり、最も好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも1000ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも1000ヌクレオチドからなる。パーセンテージ同一は、Altschul等(1997)記載のブラスト(BLAST)で測定される。配列番号1に相同である配列の好ましい例は、配列番号7で与えられる。本発明の目的のために、配列番号1と配列番号7は交換可能である。ラクトコッカスの形質転換方法は、当業者に周知でありプロトプラスト形質転換およびエレクトロポレーションを含むがこれに限定されない。本発明記載の形質転換ラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株は、予防用そして/又は治療用分子の配送に有効でありそして医薬用組成物で使用できる。そのような分子の配送は、非限定例として、WO 97/14806そしてWO 98/31786で開示されている。予防用そして/又は治療用分子には、限定されないが、インシュリン、成長ホルモン、プロラクチン、カルシトニン、グループ1サイトカイン、グループ2サイトカインそしてグループ3サイトカインのようなポリペプチドそして病原細菌からの多糖抗原のような多糖を含む。好ましい実施態様には、ヒトインターロイキン10を配送するための上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株の使用がある。この株は、上記で示めされるクローン病を治療するための薬剤製造で使用されうる。
【0012】
実施例
ラクトコッカス・ラクティス(ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))MG1363(Gasson, 1983)から、Ross等(1990a)記載の配列隣接領域をクローン化した。
【0013】
これらの配列の知見は、thyAの5′末端(配列番号1)の1000bp範囲と3′末端(配列番号2)の1000bp範囲、すなわち“thyAターゲット”でのダブル相同組換えを用いるので、以下で述べるように全てのラクトコッカス株を遺伝子工学するためには決定的に重要である。この配列は、今日まで公の供給源から入手できない。われわれ、これらの隣接DNA断片をクローン化しそれら配列を同定した。全遺伝子座の配列は、配列番号3に示される;この配列の変異版が配列番号5に示される。5′と3′配列の両方とも、ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)IL1403の配列(Bolotin、印刷中)を登録しているジーンバンク(genebank)のAE006385の配列又はラクトコッカス・ラクティス・亜種ラクティス(L. lactis subsp. lactis)CHCC373配列の登録AF336368の配列とは異なっている。文献から、公開のhyA隣接配列(Ross et al., 1990a)(5′末端の86bpと3′末端の31bp)を使用した相同組換えが配列の短さから実質的に不可能であることは明らかである。実際、Biswas等は、相同配列の長さと組み込み頻度間の対数的減少関係を記述している。本発明で決定されたthyA座のラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy11、Thy12、、Thy15そしてThy16の配列が、それぞれ配列番号19、20、21、22で与えられる。
【0014】
thyAの置換は、以下の述べるようにthyAターゲットバージョンを保持するプラスミドで適切な置換することによってなされた。キャリアープラスミドはpORI19(Law et al., 1995)複製欠損プラスミドの誘導体であり、これは、thyAターゲットの5′1000bpまたは3′1000bpのどちらかで最初の相同組換えする時に、エリスロマイシン耐性を所定の株に移すだけである。thyAターゲットの3′1000bpまたは5′1000bpでの2回目の相同組換えで望みの株は生じる。
【0015】
thyA遺伝子は、(a)ヒトインターロイキン10(hIL−10)の成熟部分、又は(b)2位のプロリンがアラニンに置換されたhIL−10の成熟部分、又は(c)最初の2アミノ酸が欠失したhIL−10の成熟部分:以外の同一アミノ酸配列のたんぱく質に融合するラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))のUsp45分泌リーダー(van Asseldonk et al., 1990)を有するたんぱく質をコードする合成遺伝子で置換される;(a)、(b)及び(c)はhIL−10類似体と呼ばれ、その融合産物は、Usp45−hIL−10と呼ばれる。
thyA遺伝子は、ラクトコッカル(lactococcal)P1プロモーター(Waterfield et al., 1995)、大腸菌バクテリアファージT7発現シグナル:推定RNA安定化配列および改変遺伝子10リボゾーム結合部(Wells and Schofield, 1996)を含む発現ユニットで置換される。
【0016】
5′末端での挿入はthyAのATGがP1−T7Usp45−hIL10発現ユニットに融合されるような方法でなされる。
【0017】
5'agataggaaaatttcatgacttacgcagatcaagttttt. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. . .P1-T7-usp45-hIL10
5'agataggaaaatttcatggattaagtcatcttacctctt. . .thyA-,P1-T7-usp45-hIL10
【0018】
あるいは、5′末端での挿入はthyAのATGが含まないような方法でなされる。
【0019】
5'agataggaaaatttcacttacgcagatcaagttttt. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. . .P1-T7-usp45-hIL10
5'agataggaaaatttcgattaagtcatcttacctctt. . .thyA-,P1-T7-usp45-hIL10
【0020】
あるいは、5′末端での挿入はthyAプロモーター(Ross, 1990a)が含まないような方法でなされる。
【0021】
5'tctgagaggttattttgggaaatactattgaaccatatcgaggtgtgtggtataatgaagggaattaaaaaagataggaaaatttcatg. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. .P1-T7-usp45-hIL10
5'tctgagaggttattttgggaaatactagattaagtcatcttacctctt. . .thyA-, P1-T7-usp45-hIL10
【0022】
3′末端のACTAGT SpeI制限部位が、usp45−hIL10配列のTAA停止コドンの間近に接して設計された。これが、thyA停止コドンのすぐ次に設計されているTCTAGA XbaI制限部位で連結された。
【0023】
aaaatccgtaactaactagt3'...usp45-hIL10
gatttagcaatttaaattaaattaatctataagtt3'. . .thyA-野生型
tctagaattaatctataagttactga3'. . .設計thyAターゲット
aaaatccgtaactaactagaattaatctataagttactga3'. . . thyA-,usp45-hIL10
【0024】
これら構造は、図2に示されている。pOThy11、pOThy12、pOThy115及びpOThy16の配列が、配列番号23、24、25、26によってそれぞれ与えられている。
結果として生じた株は、thyA欠損で、いまだラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))で記述されていない変異株である。増殖のためにはチミン又はチミジン添加に厳密に依存している。
【0025】
欠失の地図、及び本発明の単離株/変異株のすべてのPCR分析が、図3及び図4に示されている。野生型株及び独立した単離株/変異株のチミジル酸合成酵素及びインターロイキン10遺伝子の存在は、図5および6に示されたようにサザンブロット分析によって分析された。挿入hIL10遺伝子周囲の領域がPCRで単離されDNA配列が確認された。構造は予想配列と一致する。
【0026】
変異株のヒトインターロイキン10生産が、ウェスタンブロット分析でチェックされ、そして陰性コントロールとしてpTREX1で形質転換された親株と陽性コントロールとしてIL10生産プラスミドpT1HIL10apxaで形質転換された親株とで比較された(図7)。培養上清の濃度がELISAを用いて定量された。図7Bで示されるように、変異の両単離株は、非組込み型プラスミドpT1HIL10apxaの形質転換株よりかなり少ないが、比較しうる意義ある量のhIL10を生産する。図8(パネルA及びB)は、さらにすべての変異株が意義ある量のIL10を生産していることを示している。
【0027】
図9は、pOThy11、pOThy12、又はpOThy16のいずれかを保持するラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株LL108によるhIL10の生産を示している。hIL10の定量(ELISAによる)は、指定株の培養上清中の存在を示す。組換えhIL10のN末端たんぱく質配列はエドマン分解によって決定されそして成熟組換えhIL10について予測される構造との一致を示した。たんぱく質は十分な生物活性を示した。LL108は、pOThy11、pOThy12、pOThy15、又はpOThy16のようなpORI19誘導プラスミドの複製に必要なrepA遺伝子をゲノムに組み込んでいるラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株である。この株は、グローニンゲン(Groningen)大学のD r. Jan Kok、によって丁寧に示されている。プラスミドpOThy11、pOThy12、pOThy15、そしてpOThy16は、thyA座の上流及び下流にthyA座から誘導されたゲノムDNAのおよそ1kBと隣接してさまざまなプロモーター構成(図2参照)で合成ヒトIL10遺伝子を有する。これらのプラスミドは、記述のゲノム組み込み構築のために使われた。
【0028】
チミジン無し及びチミジン補給培地での増殖へのチミジル酸欠損効果が試験された;結果が図10と11にまとめられている。培地中のチミジンの不存在は、強く変異株の増殖を制限しそしてさらに培養4時間後でのコロニー形成単位の減少を引き起こした。培地へのチミジンの添加は、野生型株と比較して同一の増殖曲線およびコロニー形成単位を生じた、これはこの変異株がチミジン補給培地では増殖又は生存性に影響しないということを示している。図11はThy12の生存性が、チミジンの不存在でひどく損なわれるということを明白に示している。図12は、最終的にラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12が、MG1363と同じスピードでマウスの腸を通過することを示している。生存性の損失はThy12とMG1363間で違いは見られない。Thy12は、増殖において完全にチミジン依存性であることをあらわし、Thy12細菌が外部のthyA遺伝子を手に入れていないことを示している。
【0029】
【表1】
【図面の簡単な説明】
【0030】
【図1】MG1363 thyA 座の地図
【図2】hIL−10の遺伝子成分およびpOThy プラスミド上に存在するさまざまな発現モジュールの表示概略図。黒部分は、本来のラクトコッカス・ラクティス(L. lactis) MG1363遺伝子情報を、白部分は組換え遺伝子情報を表している。
【図3】Thy11のPCR同定(Thy11 1.1およびThy11 7.1は独立して得られた、同一クローンであることを表している)。標準的なPCR反応は、DNA鋳型源として指定株の飽和培養液のアリコートを使ってなされた。パネルAは、指定のPCR反応産物のアガロースゲルを示す。パネルBは、プライマーが、thyA(1)、上流(2)又は(3)下流PCRで付着する位置を示す。使われたオリゴヌクレオチドプライマー:(1):ATgACTTACgCAgATCAAgTTTTT及びTTAAATTgCTAAATCAAATTTCAATTg、(2):TCTgATTgAgTACCTTgACC及びgCAATCATAATTggTTTTATTg、(3):CTTACATgACTATgAAAATCCg及びcTTTTTTATTATTAgggAAAgCA。
【図4】Thy11、Thy12、Thy15及びThy16のPCR同定。標準PCR反応は、DNA鋳型源として指定株の3日間培養コロニーを使ってなされた。パネルAは、プライマーが、上流(1)、下流(2)又はthyA(3)PCRの付着する位置を示す。使われたオリゴヌクレオチド:(1):ATgACTTACgCAgATCAAgTTTTT及びTTAAATTgCTAAATCAAATTTCAATTg、(2):TCTgATTgAgTACCTTgACC及びgCAATCATAATTggTTTTATTg、(3):CTTACATgACTATgAAAATCCg及びcTTTTTTATTATTAgggAAAgCA。パネルBは、指定のPCR反応産物のアガロースゲルを示す。
【図5】指定株のサザンブロット分析。染色体DNAは、抽出されそして指定の制限酵素で消化される。アガロースゲル電気泳動に続いて、DNAは膜に移されそしてthyA座の周りの染色体構造がDIG標識thyA又はhIL−10 DNA断片の使用によって明らかにされた(パネルA)。パネルBは、MG1363およびThy11両方でのthyA座の推測構造の概略図を示す。
【図6】パネルAは、MG1363、Thy11、Thy12、Thy15及びThy16におけるthyA座でのラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)染色体推測構造の一部概略図を示す。パネルBは、指定株のサザンブロット分析。染色体DNAは、抽出されそしてNdeIおよびSpeI制限酵素で消化される。アガロースゲル電気泳動に続いて、DNAは膜に移されそしてthyA座の周りの染色体構造がDIG標識thyA又はhIL−10 DNA断片の使用によって明らかにされた。
【図7】hIL−10の生産。パネルAは、抗IL−10抗体で明らかにされた指定株の培養上清および細胞関連たんぱく質のウェスタンブロットを示す。パネルBは、培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。
【図8】hIL−10の生産。パネルAは、指定株の培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。パネルBは、抗IL−10抗体で明らかにされた指定株の培養上清たんぱく質のウェスタンブロットを示す。
【図9】pOThy11、pOThy12、又はpOThy16いずれかを保持しているラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株LL108によるhIL−10の生産。指定株の培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。組換えIL−10のN−末端たんぱく質配列はエドマン分解法で決定されそして成熟組換えhIL−10に対して予測される構造と一致を示した。このたんぱく質は、完全な生物学的活性を示した。
【図10】100μg/ml(T100)50μg/ml(T50)25μg/ml(T25)又は無し(T0)の追加のチミジンを含みそしてあるいは5μg/ml(E)エリスロマイシンを補給されたGM17での指定株の増殖率。飽和終夜培養(T50で調製された)は、指定培地で100倍希釈された。パネルAは、吸光度集積動態を示す。パネルBは、培地mlあたりのコロニー形成単位(cfu)数の動態を示す。
【図11】チミジン無し培地(TFM)でのMG1363およびThy12の増殖率。TFMは、GM17でラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12菌を増殖し、続く遠心により菌を除去し、そして0.22μm孔径フィルター上でろ過し、pHを7.0に調整し、そして加圧滅菌することによって調製された。MG1363およびThy12菌は、それぞれGM17又は50μg/mlのチミジン+GM17での終夜培養から集められ、そしてM9緩衝液(水に6g/l Na2HPO4、3g/l KH2PO4、1g/l NH4Cl、0.5g/l NaCl)で洗浄された両懸濁液は、TFM又は50μg/mlのチミジン(T50)を補給されたTFMのどちらかで希釈された。CFU計測は、さまざまな時間ポイント:t=0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10そして20時間で測定された。これは、Thy12の生存可能性がチミジン無しでひどく損なわれるということを示している。
【図12】腸通過および生存可能性:ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)MG1363は、クロラムフェニコール(Cm)耐性マーカーを所持しているプラスミドpLET2Nで形質転換された。ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12は、エリスロマイシン(Em)耐性マーカーを所持しているプラスミドpT1NXで形質転換された。両株の109の菌が、BM9(25mM NaHCO3+25mM Na2CO3に6g/l Na2HPO4、3g/l KH2PO4、1g/l NH4Cl、0.5g/l NaCl)で再懸濁され、混合されそして3匹のマウスにt=0時に接種された。糞便が、−1から0、0から1、1から2、2から3、3から4、4から5、5から6、6から7、7から8、8から9、9から10、そして10から終夜といった時間間隔で集められた。すべてのサンプルは、等張緩衝液に再懸濁しそして適当な希釈液が、Cm、Em、又は50μg/mlのチミジン+Emのいずれかを含むGM17(0.5%グルコースで補給されたM17培地、デフィコ(Difico)、セントルイス(St. Louis))プレート上に蒔かれた。さまざまなプレートのコロニー形成単位がグラフで表されている。
【技術分野】
【0001】
本発明は、環境的に制限された増殖と生存可能性を所持した組換えラクトコッカス(Loctococcus)株に関するものである。特に、明確な培地成分が存在する培地中でのみ生き残ることのできるラクトコッカス(Loctococcus)に関するものである。好ましい実施態様は、該培地成分が存在している宿主生物中でのみ生存できるが、しかし、該培地成分のない宿主生物の外では生存できないラクトコッカス(Loctococcus)である。さらに、該ラクトコッカス(Loctococcus)は、予防用及び/又は治療用分子で形質転換され、そして、したがって炎症性腸疾患のような疾病治療に使用されうる。
【0002】
発見の背景
乳酸菌は、長い間幅広くさまざまな産業的発酵製法で使われてきた。それらは、一般に安全とみなされる地位にあり、商業的に重要なたんぱく質生産のための潜在的に有効な生物となっている。実際、インターロイキン2のようないくつかの異種たんぱく質が、ラクトコッカス(Loctococcus spp)で首尾よく生産されている(Steidler et al., 1995)。しかしながら、そのような遺伝的に改良されたマイクロの生物が、環境中で生き残りそして広がることは望まれていない。遺伝的に改良された微生物の意図しない放出を避けるために、物理的封じ込めのための安全取り扱いおよび技術的必要条件のための特別なガイドラインが用いられている。これは、産業的発酵では有効であるかもしれないけれども、物理的封じ込めは、一般には十分とは考えられていない、そして、追加の生物学的封じ込め方法が環境中での遺伝的に改良された微生物の生存可能性を減らすためにとられている。生物学的封じ込めは、物理的封じ込めが困難又はさらに適応できないところの場合はきわめて重要である。これは、遺伝的に改良された微生物が生ワクチン又は治療用化合物の配送のための乗り物として使われるような応用の場合ではとりわけである。そのような応用が、たとえば、WO 97/14806で記述されている、これは、主題に組換え非侵襲性又は非病原性微生物のよるサイトカインのような生物学的活性ペプチドの配送を公開している。WO 96/11277は、治療用たんぱく質をコードする組換え微生物の投与による人を含めた動物への治療用化合物の配送を記述している。Steidler et al. (2000)は、インターロイキン10を分泌する組換えLoctococcus lactisの投与による大腸炎の治療を記述している。そのような配送は、病気に犯された人又は動物の疾病の治療にはきわめて有効であるかもしれない、しかし、病気に犯されていない対象に入ったときに組換え微生物が、有害で病原性の微生物として働くかもしれない、そしてそのような意図しない微生物の広がりを避ける効果的な生物学的封じ込めが必要とされる。
【0003】
宿主細胞に対する生物学的封じ込めシステムは、外部環境では存在しない又は低濃度で存在するような特別な増殖因子又は栄養素に対する宿主の厳密な要求性に基づいた受動的、又は、宿主が特異な環境条件下でのみ発現するプロモーターの制御下にある遺伝子でコードされる細胞致死機能により外部環境で殺される宿主のいわゆる自殺的遺伝的要素に基づいた能動的なものであってもよい。
【0004】
受動的生物学的封じ込めシステムは、大腸菌や酵母のような微生物ではよく知られている。そのような大腸菌が、たとえば、US100495で公開されている。WO 95/1061は、乳酸微生物のサプレッサー変異株および乳酸微生物での生物学的封じ込め手段としてそれらの使用を公開している、しかし、その場合、封じ込めは宿主株のレベルというよりもむしろプラスミドレベルで、そして宿主でのプラスミドを安定化するが、しかし遺伝的に改良された宿主自身に対する封じ込めを提供してはいない。
【0005】
能動的な自殺システムは、幾人かの著者によって記述されている。そのようなシステムは、2つの要素:致死遺伝子及び致死遺伝子の発現を非許容条件下でスイッチを入れる制御配列からなる。WO 95/10614は、致死遺伝子として細胞膜で働く不完全そして/又は変異型黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)のヌクレアーゼの使用を公開している。WO 96/40947は、細胞が許容条件下にあるとき発現しそして細胞が非許容条件下にあるときには発現しないか又は一時的な発現であるような必須遺伝子、そして/又は、その遺伝子の発現が細胞に致死でその致死遺伝子は細胞が非許容条件下にあるときに発現し、しかし、細胞が許容条件下にあるときには発現しないような致死遺伝子のどちらかの発現に基づいた環境的に制限された生存可能性を有する組換え細菌システムを公開している。WO 99/58652は、relE細胞毒素に基づいた生物学的封じ込めシステムを公開している。しかしながら、ほとんどのシステムは、大腸菌(Tedkin et al., 1995; Knudsen et al., 1995; Schweder et al., 1995)又はシュードモナス(Kaplan et al., 1999; Molino et al., 1998)に対して詳しく述べられている。いくつかの封じ込めシステムは理論的には乳酸菌に適用できるけれども、疾病の予防そして/又は治療のための予防用そして/又は治療用分子配送のために自己自制の形質転換ラクトコッカスの使用を可能にするラクトコッカスに対する特異的生物学的封じ込めシステムは記述されていない。
【0006】
発明の記述
ラクトコッカスに対する適切な生物学的封じ込めシステムを提供することが本発明の目的である。
【0007】
本発明の最初の概念は、欠陥チミジル酸合成酵素遺伝子を含むラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の単離株である。好ましくは、該欠損チミジル酸合成酵素遺伝子は、遺伝子破壊によって不活化される。さらにより好ましくは、該ラクトコッカスが、ラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)である。特別な実施態様は、ラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株であり、好ましくはラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)であり、より好ましくはラクトコッカス・ラクティス(Lactcocuus lactis.)MG1363誘導株(ここではチミジル酸合成酵素遺伝子は、破壊されインターロイキン10発現ユニットに置き換えられている)である。該インターロイキン10発現ユニットは、これに限定されないが好ましくはヒトインターロイキン10発現ユニット又はヒトインターロイキン10をコードしている遺伝子である。
【0008】
本発明のもうひとつの概念は、形質転換プラスミドが完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換のための宿主としての上記の株の使用である。本発明の更なる別の概念は、完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まないプラスミドを含む上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株である。本発明の別の概念は、インターロイキン10のような予防用そして/又は治療用分子をコードする遺伝子又は発現ユニットを含むラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株に関する。結論的として、本発明は、また疾病を治療するために予防用そして/又は治療用分子およびそのようなものを配送するためのラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株の使用に関する。炎症性腸疾患のような疾病の治療のための該分子や方法を配送する方法は、この参照として本明細書に盛り込まれるSteidler等(Science 2000, 289:1352)およびSteidler等のWO 97/14806およびWO 00/23471で詳細に説明されている。
本発明の別の概念は、上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)の形質転換株を含む医療用調製物である。
【0009】
ラクトコッカス・ラクティス・亜種ラクティス(Lactcocuus lactis.subsp lactis.)のチミジル酸合成酵素遺伝子(thyA)は、Ross 等(1990a)によってクローン化された;その配列は、配列番号3および配列番号5に含まれる。EP0406003は、選択マーカーとして抗生物質耐性を欠くがチミジル酸合成酵素遺伝子を保持するベクターを開示している。;同じベクターがRoss等(1990b)によって記述されている。しかしながら、このベクターは、記述されていないが適切なthyA変異を欠いているせいでラクトコッカス・ラクティス株では使用できない。本発明は、ラクトコッカスでの相同組換えを使用した遺伝子破壊によりそのような変異株を構築する方法を開示する。好ましい実施態様は、thyA遺伝子が機能的なヒトインターロイキン10発現カセットで破壊される。しかしながら、thyA遺伝子の不活化又は不活性なチミジル酸合成酵素を生じる限りはどの構築も遺伝子破壊のために使用できることは明白である。限定されない例として、相同組換えは、遺伝子欠失、チミジル酸合成酵素の不活化型にいたる一つまたはそれ以上のアミノ酸置換、又はたんぱく質の不完全型を生じるようなフレームシフト変異を生じてもよい。
【0010】
そのようなラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)thyA変異株は、純粋に物理的封じ込め以上の厳しい封じ込めを必要とする状況では形質転換のための宿主として非常に有効である。実際thyA変異株は、チミジンそして/又はチミンのない又は限定濃度しかない環境では生存できない。そのような株が完全なthyA遺伝子を含まないそして変異を相補できないプラスミドで形質転換されたとき、形質転換株は、チミジン/チミンの乏しい環境では自殺的となる。そのような株は、発酵槽での物理的封じ込めに対する追加的防御として使用できる。さらに、本発明は、そのような株が動物体内での配送体として使用される場合では特に有効であることを開示している。実際、そのような形質転換株が、たとえば経口的に人を含め動物に与えられたとき、十分な高濃度のチミジン/チミンが存在する腸で生存し、そして該動物にとって有益であるかもしれないヒトインターロイキン10のような同種又は異種たんぱく質を生産する。本発明は、さらに形質転換株が驚くべきことにコントロール株と同じスピードで腸を通過し、そして生存率の損失が実際コントロール株のそれと違いがないということを示した。しかしながら、該株が環境中にいったん分泌されると、たとえば糞便中においても、もはや生存することはできない。
【0011】
形質転換プラスミドは、thyA変異を相補できない限り任意のプラスミドでもあり得る。好ましくは、ひとつ又はそれ以上の興味ある遺伝子そしてひとつ又はそれ以上耐性マーカーを所持する自己複製型プラスミドか又は組み込み型プラスミドであってもよい。後者の場合、組み込み型プラスミドそれ自身がthyA部位で組み込みを起こすことによって、それによってthyA遺伝子は不活化するが、変異を作るために使われてもよい。おそらく、活性型thyA遺伝子は、thyAターゲット部位への挿入を標的とするターゲット配列で両脇をはさまれた興味ある遺伝子又は遺伝子群からなるカセットによるダブル相同組換えによって置き換えられる。ターゲット部位で配列組み込みを得るためには、これら配列は、十分に長くそして十分に相同であることが極めて重要である。好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の少なくとも100の連続ヌクレオチドそして逆側で配列番号2の少なくとも100の連続ヌクレオチドからなり;より好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の少なくとも500の連続ヌクレオチドそして逆側で配列番号2の少なくとも500の連続ヌクレオチドからなり;最も好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1そして逆側で配列番号2からなり、又は、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも100ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも100ヌクレオチドからなり、好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも500ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも500ヌクレオチドからなり、最も好ましくは、該ターゲット配列が、興味ある遺伝子の片側で配列番号1の領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも1000ヌクレオチドそして逆側で配列番号2領域と少なくとも80%、好ましくは90%同一である少なくとも1000ヌクレオチドからなる。パーセンテージ同一は、Altschul等(1997)記載のブラスト(BLAST)で測定される。配列番号1に相同である配列の好ましい例は、配列番号7で与えられる。本発明の目的のために、配列番号1と配列番号7は交換可能である。ラクトコッカスの形質転換方法は、当業者に周知でありプロトプラスト形質転換およびエレクトロポレーションを含むがこれに限定されない。本発明記載の形質転換ラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株は、予防用そして/又は治療用分子の配送に有効でありそして医薬用組成物で使用できる。そのような分子の配送は、非限定例として、WO 97/14806そしてWO 98/31786で開示されている。予防用そして/又は治療用分子には、限定されないが、インシュリン、成長ホルモン、プロラクチン、カルシトニン、グループ1サイトカイン、グループ2サイトカインそしてグループ3サイトカインのようなポリペプチドそして病原細菌からの多糖抗原のような多糖を含む。好ましい実施態様には、ヒトインターロイキン10を配送するための上記のラクトコッカス種(Lactcocuus sp.)株の使用がある。この株は、上記で示めされるクローン病を治療するための薬剤製造で使用されうる。
【0012】
実施例
ラクトコッカス・ラクティス(ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))MG1363(Gasson, 1983)から、Ross等(1990a)記載の配列隣接領域をクローン化した。
【0013】
これらの配列の知見は、thyAの5′末端(配列番号1)の1000bp範囲と3′末端(配列番号2)の1000bp範囲、すなわち“thyAターゲット”でのダブル相同組換えを用いるので、以下で述べるように全てのラクトコッカス株を遺伝子工学するためには決定的に重要である。この配列は、今日まで公の供給源から入手できない。われわれ、これらの隣接DNA断片をクローン化しそれら配列を同定した。全遺伝子座の配列は、配列番号3に示される;この配列の変異版が配列番号5に示される。5′と3′配列の両方とも、ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)IL1403の配列(Bolotin、印刷中)を登録しているジーンバンク(genebank)のAE006385の配列又はラクトコッカス・ラクティス・亜種ラクティス(L. lactis subsp. lactis)CHCC373配列の登録AF336368の配列とは異なっている。文献から、公開のhyA隣接配列(Ross et al., 1990a)(5′末端の86bpと3′末端の31bp)を使用した相同組換えが配列の短さから実質的に不可能であることは明らかである。実際、Biswas等は、相同配列の長さと組み込み頻度間の対数的減少関係を記述している。本発明で決定されたthyA座のラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy11、Thy12、、Thy15そしてThy16の配列が、それぞれ配列番号19、20、21、22で与えられる。
【0014】
thyAの置換は、以下の述べるようにthyAターゲットバージョンを保持するプラスミドで適切な置換することによってなされた。キャリアープラスミドはpORI19(Law et al., 1995)複製欠損プラスミドの誘導体であり、これは、thyAターゲットの5′1000bpまたは3′1000bpのどちらかで最初の相同組換えする時に、エリスロマイシン耐性を所定の株に移すだけである。thyAターゲットの3′1000bpまたは5′1000bpでの2回目の相同組換えで望みの株は生じる。
【0015】
thyA遺伝子は、(a)ヒトインターロイキン10(hIL−10)の成熟部分、又は(b)2位のプロリンがアラニンに置換されたhIL−10の成熟部分、又は(c)最初の2アミノ酸が欠失したhIL−10の成熟部分:以外の同一アミノ酸配列のたんぱく質に融合するラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))のUsp45分泌リーダー(van Asseldonk et al., 1990)を有するたんぱく質をコードする合成遺伝子で置換される;(a)、(b)及び(c)はhIL−10類似体と呼ばれ、その融合産物は、Usp45−hIL−10と呼ばれる。
thyA遺伝子は、ラクトコッカル(lactococcal)P1プロモーター(Waterfield et al., 1995)、大腸菌バクテリアファージT7発現シグナル:推定RNA安定化配列および改変遺伝子10リボゾーム結合部(Wells and Schofield, 1996)を含む発現ユニットで置換される。
【0016】
5′末端での挿入はthyAのATGがP1−T7Usp45−hIL10発現ユニットに融合されるような方法でなされる。
【0017】
5'agataggaaaatttcatgacttacgcagatcaagttttt. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. . .P1-T7-usp45-hIL10
5'agataggaaaatttcatggattaagtcatcttacctctt. . .thyA-,P1-T7-usp45-hIL10
【0018】
あるいは、5′末端での挿入はthyAのATGが含まないような方法でなされる。
【0019】
5'agataggaaaatttcacttacgcagatcaagttttt. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. . .P1-T7-usp45-hIL10
5'agataggaaaatttcgattaagtcatcttacctctt. . .thyA-,P1-T7-usp45-hIL10
【0020】
あるいは、5′末端での挿入はthyAプロモーター(Ross, 1990a)が含まないような方法でなされる。
【0021】
5'tctgagaggttattttgggaaatactattgaaccatatcgaggtgtgtggtataatgaagggaattaaaaaagataggaaaatttcatg. . .thyA野生型
gattaagtcatcttacctctt. .P1-T7-usp45-hIL10
5'tctgagaggttattttgggaaatactagattaagtcatcttacctctt. . .thyA-, P1-T7-usp45-hIL10
【0022】
3′末端のACTAGT SpeI制限部位が、usp45−hIL10配列のTAA停止コドンの間近に接して設計された。これが、thyA停止コドンのすぐ次に設計されているTCTAGA XbaI制限部位で連結された。
【0023】
aaaatccgtaactaactagt3'...usp45-hIL10
gatttagcaatttaaattaaattaatctataagtt3'. . .thyA-野生型
tctagaattaatctataagttactga3'. . .設計thyAターゲット
aaaatccgtaactaactagaattaatctataagttactga3'. . . thyA-,usp45-hIL10
【0024】
これら構造は、図2に示されている。pOThy11、pOThy12、pOThy115及びpOThy16の配列が、配列番号23、24、25、26によってそれぞれ与えられている。
結果として生じた株は、thyA欠損で、いまだラクトコッカス・ラクティス(L. lactis))で記述されていない変異株である。増殖のためにはチミン又はチミジン添加に厳密に依存している。
【0025】
欠失の地図、及び本発明の単離株/変異株のすべてのPCR分析が、図3及び図4に示されている。野生型株及び独立した単離株/変異株のチミジル酸合成酵素及びインターロイキン10遺伝子の存在は、図5および6に示されたようにサザンブロット分析によって分析された。挿入hIL10遺伝子周囲の領域がPCRで単離されDNA配列が確認された。構造は予想配列と一致する。
【0026】
変異株のヒトインターロイキン10生産が、ウェスタンブロット分析でチェックされ、そして陰性コントロールとしてpTREX1で形質転換された親株と陽性コントロールとしてIL10生産プラスミドpT1HIL10apxaで形質転換された親株とで比較された(図7)。培養上清の濃度がELISAを用いて定量された。図7Bで示されるように、変異の両単離株は、非組込み型プラスミドpT1HIL10apxaの形質転換株よりかなり少ないが、比較しうる意義ある量のhIL10を生産する。図8(パネルA及びB)は、さらにすべての変異株が意義ある量のIL10を生産していることを示している。
【0027】
図9は、pOThy11、pOThy12、又はpOThy16のいずれかを保持するラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株LL108によるhIL10の生産を示している。hIL10の定量(ELISAによる)は、指定株の培養上清中の存在を示す。組換えhIL10のN末端たんぱく質配列はエドマン分解によって決定されそして成熟組換えhIL10について予測される構造との一致を示した。たんぱく質は十分な生物活性を示した。LL108は、pOThy11、pOThy12、pOThy15、又はpOThy16のようなpORI19誘導プラスミドの複製に必要なrepA遺伝子をゲノムに組み込んでいるラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株である。この株は、グローニンゲン(Groningen)大学のD r. Jan Kok、によって丁寧に示されている。プラスミドpOThy11、pOThy12、pOThy15、そしてpOThy16は、thyA座の上流及び下流にthyA座から誘導されたゲノムDNAのおよそ1kBと隣接してさまざまなプロモーター構成(図2参照)で合成ヒトIL10遺伝子を有する。これらのプラスミドは、記述のゲノム組み込み構築のために使われた。
【0028】
チミジン無し及びチミジン補給培地での増殖へのチミジル酸欠損効果が試験された;結果が図10と11にまとめられている。培地中のチミジンの不存在は、強く変異株の増殖を制限しそしてさらに培養4時間後でのコロニー形成単位の減少を引き起こした。培地へのチミジンの添加は、野生型株と比較して同一の増殖曲線およびコロニー形成単位を生じた、これはこの変異株がチミジン補給培地では増殖又は生存性に影響しないということを示している。図11はThy12の生存性が、チミジンの不存在でひどく損なわれるということを明白に示している。図12は、最終的にラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12が、MG1363と同じスピードでマウスの腸を通過することを示している。生存性の損失はThy12とMG1363間で違いは見られない。Thy12は、増殖において完全にチミジン依存性であることをあらわし、Thy12細菌が外部のthyA遺伝子を手に入れていないことを示している。
【0029】
【表1】
【図面の簡単な説明】
【0030】
【図1】MG1363 thyA 座の地図
【図2】hIL−10の遺伝子成分およびpOThy プラスミド上に存在するさまざまな発現モジュールの表示概略図。黒部分は、本来のラクトコッカス・ラクティス(L. lactis) MG1363遺伝子情報を、白部分は組換え遺伝子情報を表している。
【図3】Thy11のPCR同定(Thy11 1.1およびThy11 7.1は独立して得られた、同一クローンであることを表している)。標準的なPCR反応は、DNA鋳型源として指定株の飽和培養液のアリコートを使ってなされた。パネルAは、指定のPCR反応産物のアガロースゲルを示す。パネルBは、プライマーが、thyA(1)、上流(2)又は(3)下流PCRで付着する位置を示す。使われたオリゴヌクレオチドプライマー:(1):ATgACTTACgCAgATCAAgTTTTT及びTTAAATTgCTAAATCAAATTTCAATTg、(2):TCTgATTgAgTACCTTgACC及びgCAATCATAATTggTTTTATTg、(3):CTTACATgACTATgAAAATCCg及びcTTTTTTATTATTAgggAAAgCA。
【図4】Thy11、Thy12、Thy15及びThy16のPCR同定。標準PCR反応は、DNA鋳型源として指定株の3日間培養コロニーを使ってなされた。パネルAは、プライマーが、上流(1)、下流(2)又はthyA(3)PCRの付着する位置を示す。使われたオリゴヌクレオチド:(1):ATgACTTACgCAgATCAAgTTTTT及びTTAAATTgCTAAATCAAATTTCAATTg、(2):TCTgATTgAgTACCTTgACC及びgCAATCATAATTggTTTTATTg、(3):CTTACATgACTATgAAAATCCg及びcTTTTTTATTATTAgggAAAgCA。パネルBは、指定のPCR反応産物のアガロースゲルを示す。
【図5】指定株のサザンブロット分析。染色体DNAは、抽出されそして指定の制限酵素で消化される。アガロースゲル電気泳動に続いて、DNAは膜に移されそしてthyA座の周りの染色体構造がDIG標識thyA又はhIL−10 DNA断片の使用によって明らかにされた(パネルA)。パネルBは、MG1363およびThy11両方でのthyA座の推測構造の概略図を示す。
【図6】パネルAは、MG1363、Thy11、Thy12、Thy15及びThy16におけるthyA座でのラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)染色体推測構造の一部概略図を示す。パネルBは、指定株のサザンブロット分析。染色体DNAは、抽出されそしてNdeIおよびSpeI制限酵素で消化される。アガロースゲル電気泳動に続いて、DNAは膜に移されそしてthyA座の周りの染色体構造がDIG標識thyA又はhIL−10 DNA断片の使用によって明らかにされた。
【図7】hIL−10の生産。パネルAは、抗IL−10抗体で明らかにされた指定株の培養上清および細胞関連たんぱく質のウェスタンブロットを示す。パネルBは、培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。
【図8】hIL−10の生産。パネルAは、指定株の培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。パネルBは、抗IL−10抗体で明らかにされた指定株の培養上清たんぱく質のウェスタンブロットを示す。
【図9】pOThy11、pOThy12、又はpOThy16いずれかを保持しているラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)株LL108によるhIL−10の生産。指定株の培養上清中に存在するhIL−10の(ELISAによる)定量を示す。組換えIL−10のN−末端たんぱく質配列はエドマン分解法で決定されそして成熟組換えhIL−10に対して予測される構造と一致を示した。このたんぱく質は、完全な生物学的活性を示した。
【図10】100μg/ml(T100)50μg/ml(T50)25μg/ml(T25)又は無し(T0)の追加のチミジンを含みそしてあるいは5μg/ml(E)エリスロマイシンを補給されたGM17での指定株の増殖率。飽和終夜培養(T50で調製された)は、指定培地で100倍希釈された。パネルAは、吸光度集積動態を示す。パネルBは、培地mlあたりのコロニー形成単位(cfu)数の動態を示す。
【図11】チミジン無し培地(TFM)でのMG1363およびThy12の増殖率。TFMは、GM17でラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12菌を増殖し、続く遠心により菌を除去し、そして0.22μm孔径フィルター上でろ過し、pHを7.0に調整し、そして加圧滅菌することによって調製された。MG1363およびThy12菌は、それぞれGM17又は50μg/mlのチミジン+GM17での終夜培養から集められ、そしてM9緩衝液(水に6g/l Na2HPO4、3g/l KH2PO4、1g/l NH4Cl、0.5g/l NaCl)で洗浄された両懸濁液は、TFM又は50μg/mlのチミジン(T50)を補給されたTFMのどちらかで希釈された。CFU計測は、さまざまな時間ポイント:t=0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10そして20時間で測定された。これは、Thy12の生存可能性がチミジン無しでひどく損なわれるということを示している。
【図12】腸通過および生存可能性:ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)MG1363は、クロラムフェニコール(Cm)耐性マーカーを所持しているプラスミドpLET2Nで形質転換された。ラクトコッカス・ラクティス(L. lactis)Thy12は、エリスロマイシン(Em)耐性マーカーを所持しているプラスミドpT1NXで形質転換された。両株の109の菌が、BM9(25mM NaHCO3+25mM Na2CO3に6g/l Na2HPO4、3g/l KH2PO4、1g/l NH4Cl、0.5g/l NaCl)で再懸濁され、混合されそして3匹のマウスにt=0時に接種された。糞便が、−1から0、0から1、1から2、2から3、3から4、4から5、5から6、6から7、7から8、8から9、9から10、そして10から終夜といった時間間隔で集められた。すべてのサンプルは、等張緩衝液に再懸濁しそして適当な希釈液が、Cm、Em、又は50μg/mlのチミジン+Emのいずれかを含むGM17(0.5%グルコースで補給されたM17培地、デフィコ(Difico)、セントルイス(St. Louis))プレート上に蒔かれた。さまざまなプレートのコロニー形成単位がグラフで表されている。
【特許請求の範囲】
【請求項1】
欠陥チミジル酸合成酵素遺伝子を含むラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項2】
該遺伝子が、遺伝子破壊によって不活化されている請求項1又は2記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項3】
該ラクトコッカス種(Lactococcus sp.)がラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis.)である請求項1又は2記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項4】
完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換プラスミドによる形質転換のための宿主株としての請求項1−3のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)株の使用。
【請求項5】
完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換プラスミドを含む請求項1−3のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項6】
予防用及び/又は治療用分子をコードする遺伝子を含む請求項1−4のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項7】
該予防用及び/又は治療用分子がインターロイキン10である、請求項6記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項8】
予防用及び/又は治療的用分子の配送のための請求項5−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株の使用。
【請求項9】
請求項5−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株を含む医薬組成物。
【請求項10】
炎症性腸疾患治療用医薬の調製のための請求項6−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株の使用。
【請求項1】
欠陥チミジル酸合成酵素遺伝子を含むラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項2】
該遺伝子が、遺伝子破壊によって不活化されている請求項1又は2記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項3】
該ラクトコッカス種(Lactococcus sp.)がラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis.)である請求項1又は2記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の単離株。
【請求項4】
完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換プラスミドによる形質転換のための宿主株としての請求項1−3のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)株の使用。
【請求項5】
完全なチミジル酸合成酵素遺伝子を含まない形質転換プラスミドを含む請求項1−3のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項6】
予防用及び/又は治療用分子をコードする遺伝子を含む請求項1−4のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項7】
該予防用及び/又は治療用分子がインターロイキン10である、請求項6記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株。
【請求項8】
予防用及び/又は治療的用分子の配送のための請求項5−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株の使用。
【請求項9】
請求項5−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株を含む医薬組成物。
【請求項10】
炎症性腸疾患治療用医薬の調製のための請求項6−7のいずれか1項記載のラクトコッカス種(Lactococcus sp.)の形質転換株の使用。
【図1】
【図2】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図12】
【図3】
【図4】
【図5】
【図11】
【図2】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図12】
【図3】
【図4】
【図5】
【図11】
【公開番号】特開2009−60913(P2009−60913A)
【公開日】平成21年3月26日(2009.3.26)
【国際特許分類】
【外国語出願】
【出願番号】特願2008−260591(P2008−260591)
【出願日】平成20年10月7日(2008.10.7)
【分割の表示】特願2002−587611(P2002−587611)の分割
【原出願日】平成14年5月3日(2002.5.3)
【出願人】(507055501)アクトジェニックス・エヌブイ (11)
【氏名又は名称原語表記】Actogenix NV
【Fターム(参考)】
【公開日】平成21年3月26日(2009.3.26)
【国際特許分類】
【出願番号】特願2008−260591(P2008−260591)
【出願日】平成20年10月7日(2008.10.7)
【分割の表示】特願2002−587611(P2002−587611)の分割
【原出願日】平成14年5月3日(2002.5.3)
【出願人】(507055501)アクトジェニックス・エヌブイ (11)
【氏名又は名称原語表記】Actogenix NV
【Fターム(参考)】
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