ウイルス及び細胞結合部位を持つ分子を用いたウイルス媒介性ＤＮＡ導入を増強する方法
【課題】細胞へのウイルス媒介性遺伝子導入の増強方法を提供する。
【解決手段】フィブロネクチンまたはフィブロネクチンフラグメントの存在下で、細胞を感染させることを含むレトロウイルスによる造血細胞およびその他の細胞の形質転換効率を増加させる方法、および遺伝子トランスファーの強化、造血細胞集団、および細胞内へのレトロウイスル仲介ＤＮＡトランスファーを強化する構築物、を利用する体細胞遺伝子療法の改良された方法ならびにそれらの使用。フィブロネクチンおよびフィブロネクチンフラグメントは、細胞、特に、前駆細胞および初期造血幹細胞を含む造血細胞、へのレトロウイスル仲介遺伝子トランスファーを強化する。
【解決手段】フィブロネクチンまたはフィブロネクチンフラグメントの存在下で、細胞を感染させることを含むレトロウイルスによる造血細胞およびその他の細胞の形質転換効率を増加させる方法、および遺伝子トランスファーの強化、造血細胞集団、および細胞内へのレトロウイスル仲介ＤＮＡトランスファーを強化する構築物、を利用する体細胞遺伝子療法の改良された方法ならびにそれらの使用。フィブロネクチンおよびフィブロネクチンフラグメントは、細胞、特に、前駆細胞および初期造血幹細胞を含む造血細胞、へのレトロウイスル仲介遺伝子トランスファーを強化する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
発明の分野
本発明は、一般的にはウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させること、より具体的には、ウイルスに結合する領域と、細胞に結合する領域を含むポリペプチド類のような分子を用いて、細胞へのウイルス媒介性遺伝子導入を増強させる方法に関連する。
【背景技術】
【０００２】
発明の背景
遺伝子導入技術の進歩と同様に、多くのヒト疾患の分子的基礎の理解の進歩により、重度の遺伝病に対する体細胞遺伝子治療のプロトコールを開発するための最近の試みがもたらされた。最近、ヒト遺伝子治療に対する、見込みのある疾患候補は、酵素、もしくは他のタンパク質が不完全または見られないものであって、酵素もしくはタンパク質のレベルが厳密に調節される必要がないもの、特に本質的には調節されており、そしてその欠陥が骨髄で発見されたものを含む。
【０００３】
例えば、遺伝子治療の候補の一つの疾患は、重症複合免疫不全症（ＳＣＩＤ）を引き起こすアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）欠損症である。ＡＤＡ欠損患者は、骨髄細胞で検出できる酵素はわずか、もしくは存在しない。しかしながら、ＡＤＡ欠損は適合した骨髄移植によって治療された。ＡＤＡ正常細胞は、ＡＤＡ欠損細胞に比べて、選択的優位であり、正常に患者の骨髄に再配置（ｒｅｐｏｐｕｌａｔｅ）される。
【０００４】
骨髄細胞は、骨髄組織が簡単にｉｎ ｖｉｔｒｏで扱うことができ、再配置する細胞を含むことから、体細胞遺伝子治療のよい標的である。別の方法としては、ヒト臍帯血も多数の原始前駆細胞を含んでいることが以前に明らかにされている。長期にわたり再配置する細胞である造血幹細胞への遺伝子導入の成功は、これらの細胞の子孫において明示された様々な疾患に対して修正の治癒を導く可能性がある。
【０００５】
再配置する幹細胞への遺伝子導入、及び長期遺伝子発現は、若干の研究者によってネズミモデルで成し遂げられた。しかしながら、イヌ及び霊長類の様なより大きい動物での ｉｎ ｖｉｖｏ 実験は限られた成功しかなく、これはほとんど原始造血幹細胞の感染の低効率による。現在の遺伝子導入技術の限界は、成人骨髄（ＡＢＭ）に存在する幹細胞の数の少なさ、これらの細胞を精製する適当な方法がないこと、及び細胞周期でのこれらの原始細胞の画分が低いことを含む、いくつかの因子によって、ヒトプロトコールに利用する際、さらに複雑になる。
【０００６】
骨髄細胞を伴うネズミの実験、及び大動物の実験双方において、最も有効なプロトコールが、レトロウイルス産生細胞株と標的細胞の共培養を利用していることが注目された。また、ヒトでのＦＤＡ−立証済み遺伝子導入試験のほとんどは、遺伝子形質導入のために、組換えレトロウイルスに依存している。組換えレトロウイルスベクターは、導入に効果的であり、細胞ＤＮＡへ外来ＤＮＡを正確に、及び安定に組み込むことから、遺伝子治療に好ましい。これらのベクターは、遺伝子導入のための外来ＤＮＡを含み、ウイルスの病原性を除去するために、さらに修飾される。これらの修飾のために、ウイルスの産生は一般的にレトロウイルスパッケージング細胞を用いることによって行われる。しかしながら、臨床遺伝子治療のために、無細胞の形質導入が、生物学的に安全で、品質管理についての関心のためにさらに好ましい。不幸なことに、幹細胞などの造血細胞への効率のよい遺伝子導入は、一般的にウイルス産生細胞との共培養なしには不可能であった。
【０００７】
最近、遺伝子導入効率は、感染中に標的細胞を間質細胞へ暴露することで増加されうることが示された。間質細胞は、造血微環境（ＨＭ）の主要な構成物である。ＨＭは、マクロファージ、間質細胞、内皮細胞、含脂肪細胞、及び様々な特定の接着分子によって構成されている複合細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の組織化されたネットワークによって成り立っている。ラミニン、コラーゲン、トロンボスポンジン、プロテオグリカン類、グリコサミノグリカン類、及びフィブロネクチンなどのＥＣＭ分子は、造血細胞及び成長因子双方のための固定部分を提供する。このレトロウイルス感染における間質の促進効果の基礎をなす機構は明らかではないが、造血細胞の増殖及び分化の生理学的調節が、これらの細胞がＨＭの細胞と直接接触されたときに起こるということが以前から知られていた。
【０００８】
長期にわたり再配置する造血幹細胞及び他の細胞への効率的な遺伝子導入は問題を残しており、現在の造血性の疾患及び他の疾患の治癒を目指す療法への遺伝子導入プロトコールの広範囲での適用を阻害する。求められていることは、過去の方法の危険および限界を排除したほ乳類細胞への遺伝的物質の効果的な導入の方法を求めることであり続けている。本発明は、この必要性に取り組んだものである。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
発明の概要
簡単に、本発明の一つの好ましい様態は、レトロウイルスベクターによる造血細胞の形質導入の効率を増加させる方法を提供する。この方法は、レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるのに効果的な、十分に純粋なフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片の存在下で、複製欠損組換えレトロウイルスベクターを、生存している造血細胞に感染することを含む。フィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片は、天然に生じる物質から由来しうるか、また合成的に由来することができ（例えば、遺伝的に組換え、もしくは化学的合成技術によって設計される）、もしくは、天然に生じるもの及び合成物質の組み合わせにより由来しうる。加えて、本発明で用いたフィブロネクチンポリペプチド、もしくはペプチド類は、本発明に従って、形質導入を高めることができるのに必要な接着特性を持っている、機能的ポリペプチドをそれでもなお提供する、自然に生ずるフィブロネクチンのアミノ酸配列の変異を含む可能性があることが理解されるであろう。
【００１０】
他の本発明の好ましい様態は、レトロウイルスによる細胞形質導入の効率が増加するのに効果的な量の、固定化されたフィブロネクチン、固定化されたフィブロネクチン断片、もしくは固定化されたそれらの混合物存在下で、生存している造血細胞へ外来ＤＮＡを運ぶ複製欠損組換えレトロウイルスを感染することを含む、形質導入された造血細胞を産生する方法を提供する。
【００１１】
本発明の他の好ましい様態は、細胞移植の改善された方法を提供する。この方法は、ドナー動物からの生存している造血細胞を得る工程、形質導入された生存している造血細胞産生のために、固定化された形で、形質導入の効率を増加させるのに効果的なフィブロネクチンおよび／またはその断片の存在下で、造血細胞を組換えレトロウイルスベクターにて感染させる工程、及び細胞移植片として、この形質導入された生存している造血細胞をレシピエント動物に導入する工程を含む。一つの好ましい方法において、感染細胞は自己提供体に導入することができる。
【００１２】
本発明の他の好ましい様態は、細胞移植法に適した、形質導入された臍帯血細胞を得る方法を提供する。この方法は、レトロウイルスベクターによる造血細胞の形質導入効率を増加するために効果的な量の固定化されたフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片の存在下で、臍帯血由来の造血細胞に、複製欠損組換えレトロウイルスベクターを感染させることを含む。本発明はまた、これらの方法で得ることのできる臍帯血由来の生存している形質導入された細胞集団を含み、そして細胞移植片として動物体内へ形質導入された細胞集団を導入することを含む、細胞移植方法を含む。
【００１３】
本発明の上記言及の様態のさらに固有の局面に従って、使用されたフィブロネクチンまたはフィブロネクチン断片は、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のレトロウイルス結合活性を提供する第一のアミノ酸配列、及び、フィブロネクチンのＣＳ−１部位の細胞結合活性を提供する第二のアミノ酸配列を含みうる。これらの二つのフィブロネクチンの結合部位を一緒に用いることは、レトロウイルスによる標的細胞の形質導入効率を非常に顕著に高めることが証明された。
【００１４】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスベクターによる予め決定した標的細胞の形質導入の効率を高めるための構築物を産生する方法を提供する。この方法は、前記標的細胞と結合するリガンドと、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のレトロウイルス結合活性を提供するアミノ酸配列を含むポリペプチドとを、共有的に結合する工程を含む。本発明はまた、レトロウイルスによる、予め決定した標的細胞の形質導入の効率を増加させるために、そしてこの形質導入された細胞を用いて細胞移植処置法のために、これらの構築物を利用することを含む方法を含む。
【００１５】
本発明の他の好ましい様態は、多量のウイルスを局在化するために、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のウイルス結合活性を含む、固定化された効果的な量のフィブロネクチンまたはフィブロネクチン断片の存在下で、ウイルスを含む培養液をインキュベートすることを含む、多量のウイルスを局在化するための方法を提供する。
【００１６】
さらに、本発明の他の好ましい様態は、一般的に、以下の節でさらに示すように、十分に純粋なおよび／または固定されたフィブロネクチン、またはそのフラグメントを含む、形質導入された生存している造血細胞、及び細胞培養を提供すると同時に、細胞へのレトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入を行うためのキットを提供する。
【００１７】
さらなる本発明の好ましい様態は、レトロウイルスと細胞を共局在化させ、細胞の形質導入効率を増加させるために、細胞と結合するリガンドと、レトロウイルスと結合するリガンドとを含む、特定の量の固定化物質である、効果的な固定された量のポリペプチドのような物質の存在下で、レトロウイルスを細胞に感染させることを含む、レトロウイルスによる生存している細胞の形質導入された群を得るための方法を提供する。さらに驚いたことに、それらの工程は、さらに都合よいことに、今まで、形質導入効率を増加させることを望むために、遺伝子導入プロトコールにおいて使用されていたものである、ヘキサジメトリンブロミド（１，５−ジメチル−１，５−ジアゾウンデカメチレンポリメトブロミドとしても同定されている）の非存在下で、もしくは少なくとも実質的に存在しない状態で行われる。しかしながら、驚くべきことに、ヘキサジメトリンブロミドの存在は、本発明の共局在化媒介性遺伝子導入工程における形質導入効率を増大させるのではなく、むしろ減少させることが発見された。従って、さらに好ましい本発明の様態は、ヘキサジメトリンブロミド、もしくは共局在化のための物質の非存在下で行われた同じ様なプロトコール、例えば類似の共培養プロトコールにおける、形質導入効率を増加させる他の物質の非存在下で行われる。結果として生ずる改善した細胞集団、及び細胞移植方法はまた、本発明の一部分を形成する。
【００１８】
本発明の他の好ましい様態は、細胞に結合するアミノ酸配列と、レトロウイルスに結合する、Ｖ型コラーゲン、または繊維芽細胞増殖因子由来のアミノ酸配列を含むポリペプチドの存在下での、レトロウイルスと細胞の感染の過程を含む、レトロウイルスによる生存している細胞の形質導入群を得るための方法を提供する。
【００１９】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスと細胞を共局在化し、細胞の形質導入効率を増加させるために、Ｔ細胞に結合するリガンドとレトロウイルスに結合するリガンドとを含む物質の存在下で、レトロウイルスを細胞に感染させることを含む、レトロウイルスによるＴ細胞の形質導入の方法を提供する。好ましい形において、本方法で用いた物質は、Ｔ細胞に結合する第一のアミノ酸配列と、レトロウイルスに結合する第二のアミノ酸配列を含むポリペプチドである。
【００２０】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスを局在化させる方法を提供する。レトロウイルスに結合するＶ型コラーゲンまたは繊維芽細胞増殖因子由来のアミノ酸配列を持つ、効果的な量の分離されたポリペプチドに、レトロウイルスを接触させることを含む。
【００２１】
ほ乳類細胞の効果的なレトロウイルス感染の方法を提供することは本発明の目的である。
共培養の必要性を取りのぞいた、レトロウイルスベクターによる遺伝子導入の方法を提供することは、本発明のさらなる目的である。
【００２２】
自己および／または同種の細胞移植のための、改善した方法および細胞培養を提供することは、本発明のさらなる目的である。
本発明のこれらのそして他の目的、利点、及び特徴は、すぐに以下の記載によって、当業者に対しては容易に明らかになるであろう。
【課題を解決するための手段】
【００２３】
好ましい様態の記述
本発明の原理の理解を促進する目的のために、参考文献は現在、それらの特定の態様をなし、固有言語は同様に記載するために使用しうる。それにも関わらず、本発明の範囲を制限しないことがそれによって、このような変化、さらには改良、そして本発明が関係する技術分野での当業者が想到したであろう様に企画され、本明細書に示されたように、このような本発明の原理の応用を意図していると理解されるであろう。
【００２４】
以上に指摘したように、本発明は、レトロウイルスなどのウイルスによる、生存している細胞の形質導入の頻度を増加させる方法を提供する。本発明はまた、組換えレトロウイルスベクターを用いて、生存している細胞への効果的な遺伝子導入の方法、形質導入された細胞を得る方法、そして自己及び他の細胞移植を行うための方法と物質も提供する。
【００２５】
本発明の一つの特徴は、フィブロネクチン（ＦＮ）及びＦＮの細胞結合部位ＣＳ−１を含むフィブロネクチン断片が、フィブロネクチン受容体を持ち、それによって、フィブロネクチンもしくはその断片への結合能力を示す、たとえば投入された前駆細胞及び原始造血幹細胞、もしくは長期培養始原細胞（ＬＴＣ−ＩＣ）といった造血細胞などの細胞へのレトロウイルス媒介性遺伝子導入を顕著に増強するという発見である。都合よいことに、この上昇した効率は、ウイルス産生細胞との共培養を必要としない。本発明の他の特徴は、ヘパリン−ＩＩ結合部位の中に位置するフィブロネクチンのウイルス結合部位の発見を利用する。本発明の別の特徴は、ヘパリン−ＩＩ結合部位に局在するフィブロネクチンのウィルス結合部位の発見を利用する。このウイルス結合部位は、例えば、ウイルスを標的細胞に送達するための広い範囲の構造を含む多くの応用において、ウイルス粒子を局在化させるために使うことができる。
【００２６】
本発明のある好ましい観点に従った組換えウイルスベクターは、外来ＤＮＡを含み、そして非病原性、すなわち複製欠損である。これらのベクターは、外来ＤＮＡを動物細胞、特にほ乳類細胞のような宿主細胞の細胞ＤＮＡの中に効果的に導入し、正確にそして安定に組み込む。例えば、本発明において、関心の遺伝子のコード配列からの塩基の列を含むヌクレオチド配列を、遺伝子を駆動するための適当なプロモーター、一般的には外来のプロモーターの調節下で、組換えレトロウイルスベクターの中へ組み込むことができる。これに関連して、外来ＤＮＡは、天然、もしくは人工的どちらかで産生したＤＮＡを含むことができ、異質組織源から得られた部分から由来することができる。この異質組織源の部分は、天然に生じたもの、もしくは化学的に合成された分子である可能性があり、そしてこれらの部分は、ライゲーションもしくはこの分野で既知の他の方法で連結する。
【００２７】
ウイルスに組み込まれた外来ＤＮＡは、細胞への導入のための関心のいずれかのＤＮＡであり得る。例えば、外来ＤＮＡは、知られている異常と関係するＡＤＡなどのタンパク質、もしくはアンチセンスＲＮＡ、リボザイム、もしくは疑似プライマー（例えば、１９９０年１１月１５日発行のＷＯ ９０／１３６４１ を参照）、細胞内抗体（例えば、１９９４年２月３日発行の ＷＯ ９４／０２６１０ を参照）、成長因子、もしくは類似のものをコードすることができる。
【００２８】
示したように、導入されたヌクレオチド配列は、プロモーター調節下にあり、従って一般的にプロモーターの下流にあるであろう。別の言い方をすれば、プロモーター配列は、一般的にコード配列の上流（すなわち５’末端）にあるであろう。このような傾向において、プロモーターと共同する他の調節因子（例えばエンハンサー配列）や、外来コード配列の転写を行うための転写開始コドンが存在しうるか否かについてはよく知られている。「調節下」の語は、導入された遺伝子の転写を達成するために必要であるような、他の成分の存在を企図する。同様に組換えＤＮＡは好ましくは導入されたコード配列より下流に終止配列を含みうる。
【００２９】
選択マーカー、もしくは他の選別できる好要因を提供する外来ＤＮＡを含むレトロウイルスベクターを使用することができる。例えば、ベクターはネオマイシンなどの抗生物質を含む、様々な選択薬剤に対する抵抗性を提供する一つもしくはそれ以上の外来性遺伝子を含むことができる。本発明で用いることのできた典型的なベクターは、例えば、すべてすでに Ｍｏｒｉｔｚ ｅｔ ａｌ． （１９９３） Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． １７８：５２９ によって報告されている、 Ｎ２／Ｚｉｐ ＴＫＮＥＯベクター（ＴＫＮＥＯ）（ＮＩＨ／３Ｔ３細胞上の力価：１×１０５ Ｇ４１８ｒ ｃｆｕ／ｍｌ）、ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡベクター、及びＺｉｐＰＧＫ−ｍＡＤＡベクターである。ＴＫＮＥＯベクターでは、ネオホスホタランスフェラーゼ配列がヘルペス・シンプレックスのチミジンキナーゼプロモーターを介して、センス方向に発現している（５’長末端繰り返しＬＴＲに関係する）。このベクターは形質導入された細胞の同定を促進するネオマイシン耐性を提供する選択マーカー遺伝子を含む。ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡベクターにおいて、ヒトＡＤＡ（”ｈＡＤＡ”）ｃＤＮＡは、ヒトホスフォグリセレートキナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターを介して、５’ＬＴＲと関連するセンス方向に発現している。これは、ただ一つの発現しうる遺伝子配列を含み、優性選択マーカーを欠く。ＺｉｐＰＧＫ−ｍＡＤＡ（ＰＧＫ−ｍＡＤＡ）ベクターは、ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡがネズミＡＤＡ（”ｍＡＤＡ”）ＤＮＡに置き換えられたこと以外は、ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡと同じものである。これら、及び他のウイルスベクター、及びこれらの産生手法はよく知られており、これらの本発明における実行、及び使用は、本明細書中の開示を与えられた当業者の間ではよくあることである。
【００３０】
本発明中で使用したウイルスベクターは、ヒトフィブロネクチンのアミノ酸配列を含む、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列に結合する能力を示す。以下で議論するように、本発明はいずれかの説に限られるわけではないが、それぞれの機能部位に対する、ウイルスと細胞の結合を介して、ウイルスと標的細胞とが共局在化することは、ウイルスによる細胞の形質導入の増大を促進すると信じられている。この考えでは、ヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列に対するウィルスの結合能力、そして従って、本発明で効果的に役に立つためのウイルスの能力は、以下の実施例８、及び９で記載したような決まった操作を用いてすぐに確かめられる。一般的にいえば、これらのアッセイは、固定化ポリペプチドマトリックスからの洗浄に耐えるために、ウイルス粒子が、ヘパリン−ＩＩ結合部位を含む固定化ペプチドに結合する範囲を決定する。簡単に言えば、例えば、フィブロネクチンヘパリン−ＩＩ結合部位を含む、固定化ポリペプチドを含むウェルの中で、ウイルス含有上清をインキュベートできる。次いでこのウェルをさらに生理食塩水緩衝液で洗い、その後、ウイルスに対する標的細胞を、ウェルに残っている感染活性のレベルを決定するために、ウェルの中でインキュベートする。初期ウイルス上清と比べた感染活性、もしくは力価の減少が測定され、同じ対照実行（例えばＢＳＡ−コートウェルの使用）と比較した。対照ウェルに比べてヘパリン−ＩＩ部分を含むウェルでの顕著に高い力価は、本発明の観点における使用に、対象ウイルスが適していることを明らかにしている。このスクリーニング手法を促進するために、ウイルスベクターは、以上で議論したように、選択マーカー遺伝子を含んでもよい。
【００３１】
本発明で使用するためのフィブロネクチン断片は、天然、もしくは合成起源のものでよく、例えば以前に、 Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ． （１９８１） Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２５６：７２７７ ； Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ （１９８６） Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０２：４４９ ； 及び Ｂｅｒｎａｒｄｉ ｅｔ ａｌ． （１９８７） Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０５：４８９ によって記載されたような天然に生ずる物質からの十分な純度で調整されうる。この考えにおいて、本明細書の、十分に純粋なフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片についての言及は、それらがフィブロネクチンが天然で生じる他のタンパク質から、本質的に遊離していることを意味するつもりである。本発明で使用するための、十分に純粋なフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片は、例えば、一般的にはＴａｇｕｃｈｉら、そして日本、京都の宝酒造株式会社に与えられた１９９３年３月３０日の米国特許 Ｎｏ． ５，１９８，４２３で記載されたように、組換えにより産生することができる。特に、以下の実施例でＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ２７１、ＣＨ２９６及びＣ−ＣＳ−１として同定された組換え断片、及びそれらを入手する方法は、この ’４２３特許で詳細に記載されている。以下の実施例で用いたＣ２７４断片は、米国特許 Ｎｏ． ５，１０２，９８３で記載されているようにして入手した。これらの断片、もしくは断片からの日常的に引き出すことのできるものは、これも米国特許 Ｎｏ． ５，１９８，４２３ に記載されているようにＦＥＲＭ Ｐ−１０７２１（Ｈ−２９６）、ＦＥＲＭ ＢＰ−２７９９（メチオニンを介してＨ−２７１に結合するＣ−２７７）、ＦＥＲＭ ＢＰ−２８００（メチオニンを介してＨ−２９６に結合するＣ−２７７）、及びＦＥＲＭ ＢＰ−２２６４（Ｈ−２７１）として工業技術院（日本）の機関である発酵研究所（Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）に寄託されている、Ｅ． ｃｏｌｉの培養によって入手できる。加えて、本明細書中の使用可能なフィブロネクチン断片に関する、もしくはこのような断片のための開始の物質に関する役に立つ情報は、上記記載の組換え断片についてさらに報告されているＫｉｍｉｚｕｋａら（Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， １１０， ２８４−２９１ （１９９１））、ヒトフィブロネクチン遺伝子の構造について報告しているもの（ＥＭＢＯ Ｊ．， ４， １７５５−１７５９ （１９８５））、ヒトフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位について報告しているもの（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ２５， ４９３６−４９４１ （１９８６））において見いだしうる。ＣＳ−１細胞接着部位とヘパリン−ＩＩ結合部位双方を含むフィブロネクチン断片、例えば、約３０もしくは３５ｋＤ断片（３０／３５ＦＮ）、そして以下の実施例で報告する様々な組換え断片を含むものは、このようなさらなる作業の中で造血細胞への遺伝子導入の効率を顕著に高めることが発見されており、そして本発明での使用に好ましい。従って、大きくいえば、本発明で用いたフィブロネクチン関連ポリペプチド、もしくはポリペプチド類は、ウイルスに結合するフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列と同様に、フィブロネクチンのＣＳ−１細胞接着の細胞結合活性を与えるアミノ酸配列を提供すると理解されるだろう。当業者は、細胞及びウイルス結合活性の必要性は、これらの機能的フィブロネクチン部位の天然アミノ酸配列、及び天然アミノ酸配列と違うが、十分に細胞結合及びウイルス結合活性を示す点では似ているアミノ酸配列両方により提供されうるということを理解するであろう。これらの類似アミノ酸配列は、これらの対応する天然配列との実質的な配列相同性を示し、望ましい細胞結合特性もしくは、ウイルス結合特性を持つアミノ酸配列を提供する一方で、アミノ酸が削除されたもの、置換されたものおよび／または修飾されたものを含むことができる。
【００３２】
この考えでは、適切な生物技術分野は、対象の機能的部位内でアミノ酸の削除、置換、付加、もしくはその他の修飾を日常的に起こしうるような状態に進歩した。次いで結果としてのアミノ酸配列は、望ましい細胞結合活性、もしくはウイルス結合活性を求めて、日常的にスクリーニングされうる。例えば、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位の変異体、もしくは修飾型のウイルス結合活性は、一般的に上記で議論し、さらに具体的には、ウイルスインキュベート、洗浄、対照と比較した感染維持力を決定するためのウイルス力価アッセイを用いた、以下の実施例８及び９のようにしてスクリーニングすることができる。本明細書中で提供した技術を得れば、これらの結合アッセイは代表的で、しかし当業者に対しては日常的な実験であり得る。
【００３３】
フィブロネクチンのＣＳ−１細胞接着部位に対する修飾、もしくは変異型に対する細胞の結合、もしくは他の細胞結合ポリペプチド類の細胞結合は、同じく慣例の手法を用いてアッセイされうる。例えば、このような手法は、 Ｎａｔｕｒｅ， ３５２：４３８−４４１ （１９９１）に記載のものを含む。簡単にいえば、細胞結合ポリペプチドをプラスチックディッシュにコートし、分析すべき細胞集団を培養液中で３０分〜２時間重層する。このインキュベート期間後、タンパク質への非接着の細胞を回収し、計数し、生存数をアッセイする。ポリペプチドへ接着した細胞も、トリプシン、もしくは細胞解離緩衝液（例えば Ｇｉｂｃｏ）を用いて回収し、計数し生存数を調べる。いくつかの場合、例えば、造血コロニー形成細胞のために、この細胞のコロニー形成特性を確かめるために、細胞をさらに１２〜１４日間培養する。次いで付着細胞の割合を測定し、プラスチックディッシュにコートしたウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）などの標準対照と比較する。アッセイしたポリペプチドに対する標的細胞の実質的な結合は、ポリペプチド／細胞の組み合わせが本発明に適合するという指摘を提供し、このポリペプチドは、ウイルスベクターによる標的細胞の感染を高めるための、本発明の構築物を作製するために、フィブロネクチン由来のレトロウイルス結合断片に結合しうる。
【００３４】
本発明の、さらに固有の観点により、レトロウイルスベクターによる形質導入を高めるために使用した、ウイルス結合ポリペプチドは、（ｉ）ヒトフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のＡｌａ１６９０−Ｔｈｒ１９６０に対応する第一のアミノ酸配列を含み、これは式により示す（配列番号１）
【００３５】
【化１】
【００３６】
もしくは、レトロウイルスの結合能力を示すための、それに対して十分に類似のアミノ酸配列；
及び（ｉｉ）式により示される、ヒトフィブロネクチンのＩＩＩＣＳ結合部位（ＣＳ−１細胞結合部位）の一つの部分に対応する、第二のアミノ酸配列（配列番号２）、
Ａｓｐ Ｇｌｕ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ｖａｌ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｈｉｓ Ｐｒｏ Ａｓｎ Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｙ Ｐｒｏ Ｇｌｕ Ｉｌｅ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｖａｌ Ｐｒｏ Ｓｅｒ Ｔｈｒ ；
もしくは、原始前駆細胞および／または長期にわたり再配置する（幹）細胞などの造血細胞結合能を示すための、それに対して十分に類似のアミノ酸配列を含みうる。
【００３７】
以前に言及したように、結果としてのアミノ酸配列が、ウイルス結合能（ヘパリン−ＩＩ結合部位の場合）、及び標的細胞結合能（ＣＳ−１部位の場合）を示すために、これらの天然配列のある修飾および／または変異は、本発明の実施内で可能であることが理解されるであろう。
【００３８】
例えば、ヘパリンと結合し、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位との本質的に配列同一性を示す配列を持つ既知のポリペプチド類は、例えば、Ｖ型コラーゲン及び繊維芽細胞増殖因子を含む。以下の特異的な実施例１６で記載のように、ＶＬＡ−４および／またはＶＬＡ−５のための結合部位などのような細胞結合配列と連結する、これらの配列を含むポリペプチド類は、細胞結合配列に結合する細胞への、レトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入を高めるために使用できる。
【００３９】
本発明の一つの観点は、ｉｎ ｖｉｔｒｏの細胞治療、及び続いて宿主への標的細胞の移植を伴う、すなわち形質導入された標的細胞による宿主への「移植」として知られる、宿主への標的細胞の形質導入の体細胞の遺伝子治療の方法を提供する。造血、または他の細胞、例えば骨髄もしくは末梢血から単離された幹細胞、胚性幹細胞、もしくはそれ以外のＣＤ３４＋、および／もしくはＣ−ｋｉｔ＋として特性化された細胞は、ヒトもしくはその他の哺乳動物源より標準プロトコールを用いて集められる。例えば、造血細胞は、ヒトドナーの骨髄または末梢血、もしくはヒト胎児臍帯血から集めることができる。いったん回収した後、造血細胞は所望により幹細胞および／または始原前駆細胞内で、それらを濃縮するために、標準手技によって処理する。次いで造血細胞は、例えば組織培養プレート上で適当にインキュベートされうる。所望により、この期間中、接着陰性低密度単核細胞は、レトロウイルス感染の前に前刺激されうる。当該技術分野で既知の、そして本明細書で用いられている前刺激は、レトロウイルスに暴露する前に、成長刺激因子に細胞を暴露する過程と関連する。このような前刺激は、レトロウイルスによる造血細胞の形質導入を改善することが証明された。
【００４０】
前刺激に続いて、細胞を採集し、レトロウイルスによる細胞形質導入の効率を高める、本明細書に記載される、フィブロネクチンまたはその断片とともにインキュベートする。好ましくは、細胞は精製されたおよび／または不溶性、例えば、固定化フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片とともにインキュベートする。次いで細胞は、ウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるのに効果的な量のフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で、組換えウイルス、例えば細胞中の酵素もしくは他のタンパク質の欠損、もしくは異常を修正するための遺伝子を含んだレトロウイルスに感染させることができる。次いで結果としての形質導入造血細胞は、慣習的に、例えば、静脈注射で動物細胞移植レシピエントへ導入し、自己ドナーが望ましいが、異種遺伝子移植も含まれ、後者は特に、以下で議論するように、移植に対して臍帯血細胞が使用される。
【００４１】
本発明の方法は、例えば、癌、白血病、タンパク質欠損もしくは異常に関連する疾患を含む、骨髄疾患を含む様々な疾患に対する遺伝子標識プロトコル、もしくは遺伝子治療プロトコール、及び、化学療法などの他の治療プロトコールへの抵抗性を改善するために、造血細胞を修飾する治療の中で使用されうる。本発明が使用される可能性のある代表的な疾患は、従って、ＡＤＡ欠損、例えばＡＤＡ−欠損ＳＣＩＤ、小児急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、神経芽細胞腫、及び成人ＡＭＬ、及び急性リンパ球性白血病（ＡＬＬ）を含む。
【００４２】
本発明の一つの特に好ましい様態において、細胞移植のために用いられた細胞は、ヒトの臍帯血から入手する。従って、ヒト臍帯血は収集され、例えば接着陰性低密度単核細胞集団を入手することにより、生存している始原造血前駆細胞および／または幹細胞に濃縮される。その後この集団は、そこで所望により、前刺激され、そしてレトロウイルスベクターと、ベクターによる細胞の形質導入の効率を高めるための、固定化および／または精製フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で、インキュベートする。この考えにおいて、臍帯血由来の始原造血細胞および／または幹細胞は、たとえフィブロネクチンが臍帯血中のＥＣＭの構成成分ではなく、たとえ臍帯血由来の始原前駆細胞及び幹細胞が、骨髄からのものと違う特徴を有する場合でも、フィブロネクチン、もしくはフィブロネクチン断片の存在下で、かなり高められる。特に、臍帯血幹細胞は、ＣＤ３４＋、ＨＬＡ−ＤＲ＋として特徴づけられており、一方、骨髄からの幹細胞は、ＣＤ３４＋、ＨＬＡ−ＤＲ−として特徴づけられた。臍帯血由来の始原前駆細胞が、フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で高められた様式で、効率的に形質導入されることの発見により、造血細胞の、簡単で高い幹細胞濃縮源の使用を可能になった。さらに、始原前駆細胞、及び幹細胞を濃縮した臍帯血由来の異種遺伝子移植による、多くの患者の移植の成功についての証拠により、臍帯血を造血細胞のとても好ましい源とすることができる（Ｋｏｈｌｉ−Ｋｕｍｍｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒｉｔ． Ｈｅａｅｍａｔｏｌ． ８５：４１９−４２２ （１９９３） ； Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌ １７：３１３−３２９ （１９９１） ； Ｇｌｕｃｋｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｈｅａｅｍａｔｏｌ． ４５：５５７ （１９８０） ； Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ：Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ ｐｐ． ６０−６８ （１９８９） ； Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ ７９：１８７４−１８８１ （１９９２） ； Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ ８２−８６ａ （要約）を参照）。
【００４３】
もし望めば、回収した、形質導入した造血もしくは他の細胞を、形質導入の効率及び遺伝子発現について試験することができる。例えば、本発明によって提供される、レトロウイルス媒介性遺伝子導入での顕著な改善は、以下の特定の実施例によって示されており、フィブロネクチンもしくは効果的なフィブロネクチン断片の存在下で、レトロウイルスによる高感染及び遺伝子導入効率を示す、いくつかの試験を記載している。特に、ＰＧＫ−ｈＡＤＡレトロウイルスに感染されたネズミ造血細胞は、高いレベルの形質導入ＡＤＡ ｃＤＮＡを発現した。同様に、ヒト前駆細胞コロニーに感染させた個々のＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルスは、ネズミＡＤＡのレベルが、内在性ヒトＡＤＡタンパク質より１０倍も上昇して発現した。従って、導入効率の説得力のある解析をするために、前駆細胞コロニーは、もし形質導入されたｍＡＤＡの発現が、内在性ヒトＡＤＡレベルと同等か、それ以上ある場合にのみ、形質導入されたとみなされた。ＴＫＮＥＯベクター由来のネオの高レベルの発現は、ネオホスフォトランスフェラーゼ（ネオ遺伝子産物）活性に対するアッセイとしてＧ４１８薬剤耐性によって検出した。
【００４４】
上で示したように、本発明の方法は、レトロウイルス産生細胞の存在下での共培養を必要とすることなく、都合よく行われる。従って、本発明の一つの観点によると、レトロウイルス媒介性遺伝子導入は、標的造血細胞、もしくは他の細胞以外の細胞が実質上非存在下において実行しうる。例えば、レトロウイルスベクタープラスミドを含む産生細胞を培養することができ、上清が回収される。次いでレトロウイルス含有上清は、好ましくは固定型の、すなわち、感染が行われる基質上、さもなければ、感染用の培養液と接触する場合のフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片存在下で、造血細胞の感染に用いることができる。この考えにおいては、高力価、ヘルパーなしのレトロウイルスを産生する産生細胞も、本発明での使用に適合することが企図される。これらは、例えば、本分野で既知の、多くの他のパッケージング細胞株と同様に、Ｐｓｉ−２、Ｃ２、ＰＡ１２、ＰＡ３１７、ＧＰ＋ｅｎｖＡＭ１２などのパッケージング細胞を含む。
【００４５】
本発明の他の特徴によると、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位内のアミノ酸に対する、強いウイルスの結合は、広い範囲の細胞型にわたるウィルス療法に対する送達システムを構築するために使用しうる。この目的のために、フィブロネクチン由来のレトロウイルス結合部位を含むポリペプチドは、標的細胞に特異的な、この構造を与える、いずれかのリガンドとも共有的に結合しうる。このアプローチは、それぞれの標的細胞に対する特異的レトロウイルス細胞株の構築の、前もった必要性を回避しうる（Ｋａｓａｈａｒａ， Ｎ．， Ａ． Ｍ． Ｄｏｚｙ， ａｎｄ Ｙ．Ｗ． Ｋａｎ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ， Ｖｏｌ． ２６６， ｐｐ． １３７３−１３７６ （１９９４） ；そしてＶａｌｓｅｓｉａ−Ｗｉｔｔｍａｎｎ， Ｓ．， Ａ． Ｄｒｙｎｄａ， Ｇ． Ｄｅｌｅａｇｅ， Ｍ． Ａｕｍａｉｌｌｅｙ， Ｊ． Ｍ． Ｈｅａｒｄ， Ｏ． Ｄａｎｏｓ， Ｇ． Ｖｅｒｄｉｅｒ， ａｎｄ Ｆ． Ｌ． Ｃｏｓｓｅｔ， Ｊ． Ｖｉｒｏｌ．， Ｖｏｌ． ６８， ｐｐ ４６０９−４６１９ （１９９４））。標的構造の特異性は、例えば、１）細胞接着タンパク質、２）ホルモン、もしくはサイトカイン、３）標的細胞に対するモノクローナル抗体、４）標的細胞に結合する糖鎖（Ｇ．Ａｓｈｗｅｌｌ， ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， Ｖｏｌ ５１， ｐｐ． ５３１−５５４ （１９８２））、５）標的細胞代謝物、もしくは６）標的細胞に結合する機能的ポリペプチド類を含む、リガンドを使用することにより提供されうる。遺伝子送達のための構築物の効率は、いくつかのヘパリン−ＩＩウイルス結合部位を含むこと、そして従って、標的細胞に対して送達されるウイルス粒子の量を増加させることにより改善されうる。例えば、米国特許 Ｎｏ．５，１９８，４２３に記載のような、Ｐｒｏ１２３９−Ｓｅｒ１５１５に対応しているヒトフィブロネクチンの細胞結合部位は、ＢＨＫ及びＢ１６−Ｆ１０細胞（Ｋｉｍｉｚｕｋａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｖｏｌ． １１０， ｐｐ． ２８５−２９１ （１９９１））を含む細胞に結合することが示された。加えて、ヘパリン−ＩＩ部位、それ自身は、繊維芽細胞、内皮細胞、及び腫瘍細胞に結合することが示された。これらのポリペプチド配列は、レトロウイルスによる感染のために、予め決定した細胞を標的にするために、フィブロネクチン由来の、レトロウイルス結合部位と結合しうる。
【００４６】
造血系における、典型的な応用例は、それぞれ、高度特異的な赤血球、もしくは顆粒球前駆細胞を標的にするための、フィブロネクチンのレトロウイルス結合部位と結合する、エリスロポエチンもしくはＧ−ＣＳＦの構造をも含む。他の本発明に従った共通の応用は、特異的もしくは優位的に悪性細胞と結合するリガンドと、レトロウイルス結合部位、または部位群を組み合わせることでありうる。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏ、及びｉｎ ｖｉｖｏでも、乳癌細胞の成長は、フィブロネクチンからの一つもしくはそれ以上のウイルス結合部位を含んでいる本発明の構造の中のリガンドとして、供給されるであろう、黄体形成ホルモン放出誘導体（Ｅｍｏｎｓ， Ｇ． ｅｔ ａｌ．， Ｈｕｍ． Ｒｅｐｒｏｄ． ９：１３６４−１３７９ （１９９４））、エストロジェン（Ｔｏｌｃｈｅｒ， Ａ． Ｗ．， Ｏｎｃｏｌ． ８：３９−４３ （１９９４））、もしくは抗エストロジェン（Ｈｏｗｅｌｌ， Ａ． ｅｔ ａｌ．， Ｌａｎｃｅｔ ３４５：２９−３０ （１９９５））、プロゲステロジェン、または抗プロゲステロジェン（Ｋｌｉｊｎ． Ｆ． Ｇ ｅｔ ａｌ．， Ｈｕｍ． Ｒｅｐｒｏｄ． ９ Ｓｕｐｐｌ． １：１８１−１８９ （１９９４） ； Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ， Ｋ． ｅｔ ａｌ．， Ｓｅｍｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２１：６７２−６８７ （１９９４））のような標的細胞上の受容体に結合する物質を使用することで、影響されうることが示された。さらなる例として、甲状腺（癌）細胞はＪｏｄｉｄの構築物を用いることで高度に、特異的に標的化されうる。肝（癌）細胞は、ＨＤＬ、もしくはその一部を含む構築物により標的化されうる。最後に、モノクローナル抗体とフィブロネクチンのレトロウイルス結合部位の構造は、抗体が入手できるどんな細胞及び臓器を標的化することもできる。従って広い範囲のほ乳類細胞型が、ウイルスベクターに結合し局在化するために、フィブロネクチンのレトロウイルス結合部位の能力を利用することで、標的になりうる。
【００４７】
従って、本発明の他の好ましい様態は、標的細胞のウイルス形質導入を高めるために用いることのできる構築物を準備することを含む。フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位の、ウイルス結合アミノ酸配列は、標的細胞が結合するリガンドと結合する。以上で議論したように、リガンドは、例えば、フィブロネクチンもしくは他のタンパク質（細胞接着タンパク質、例えば、ラミニン、コラーゲン、ビトロネクチン、オステオポンチン、もしくはトロンボスポンジンを含む）由来ののポリペプチド、ホルモン、代謝物、抗体（モノクローナル抗体を含む）、もしくは標的細胞に結合する、好ましくは特異的に結合する能力のあることを示しているいずれかの他のリガンドである可能性がある。結果のすべての構築物は、以下の実施例にて特異的に例示した、フィブロネクチンポリペプチド鎖として使用する場合と同様の様式にて、固定型として用いることができる。
【００４８】
このような構築物と、細胞標的アプローチは、上記に議論したようにｉｎ ｖｉｔｒｏで用いられる可能性があり、そして同様に生理学的条件下での構造の安定化、及び特異性と、レトロウイルス構造の相互作用などの、様々な因子を考慮することで、レトロウイルスのｉｎ ｖｉｖｏでの標的化にも使用される可能性がある。特異性は、例えば、標的肝細胞への門脈静脈のカテーテル挿入などの、標的細胞への構築物の送達の局在化のための、送達系の改良によって改善される可能性もある。
【００４９】
他の本発明の観点は、ウイルスと細胞の共局在化に関与する、本発明の形質導入過程が、ヘキサジメトリンブロミドの非存在下で、もしくは実質的に非存在の状況で行ったときに、より優位であるという発見に関連する。ヘキサジメトリンブロミド（商業的にはポリブレンＲの名前で入手できる）は、レトロウイルスによる形質導入の効率を改善する目的のために、レトロウイルス媒介性遺伝子導入プロトコールで広く用いられていたポリカチオン性の物質である。それにも関わらず、本明細書で記載したような遺伝子導入プロトコールを高めるような共局在化した際の、ヘキサジメトリンブロミドの存在は、形質導入効率を減少させることが発見された。従って、本発明の改善された過程は、少なくとも実質的にヘキサジメトリンブロミドの非存在下で（すなわち、約１μｇ／ｍｌ未満のヘキサジメトリンブロミドのみ含む）、及びさらに好ましくはヘキサジメトリンブロミドの非存在下の培養液中で行われる。このような過程は、レトロウイルス産生細胞及びヘキサジメトリンブロミド双方とも実質的に存在しない、実質的なレトロウイルス形質導入生存細胞集団を含む、本発明の好ましい細胞構成物を提供する。この考えにおいては、本明細書中で用いたような、実質的に形質導入された生存している細胞群は、少なくとも約２０％のこの集団の細胞が、レトロウイルスによって形質導入されたことを意味することを意図する。さらに好ましい集団は、少なくとも約５０％の形質導入細胞を持ち、最も好ましいものは、少なくとも約７５％の形質導入細胞を持ちうる。本発明のこの観点による、好ましい細胞構成物は、造血細胞を含み、さらに好ましくは、始原前駆細胞及び幹細胞を濃縮した、造血細胞集団を含みうる。従って一般的にいえば、本発明の都合のよい過程は、ポリカチオン性の薬剤、もしくは、フィブロネクチン断片、もしくは共局在化のための他の物質の存在しない、類似のレトロウイルス感染プロトコール（例えば共培養）に対応して、形質導入効率の増加を導くような、しかし共局在化のための物質の存在下での形質導入効率を減少させるようなその他の薬剤が存在しない状態で行うことができる。
【００５０】
非常に簡単な、レトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入が、本発明の方法を実施するように特にデザインされたキットを用いて実行しうることが企画される。従って、本発明の他の側面は、レトロウイルス感染を行うことができる人工基質とともに、レトロウイルスによる標的細胞の形質導入を高めるよう上記で議論した一定量の実質的に純粋なポリペプチド、もしくは構築物を含むキットを提供する。ポリペプチド、もしくは他の構築物は、別々に提供され、もしくは人工基質上にコートされうる。ヒト造血細胞のための感染プロトコールの場合、キットは、細胞前刺激のための造血細胞増殖因子をも含みうる。加えて、このキットは、形質導入のために、上記で議論したように、組換えレトロウイルスベクターを含みうる。一般的にいえば、このキットは、このキットを使用している間、構成物の破損を防ぐのにもう一つの十分な空間的な関連において、これらの様々なキット構成物を収納する、無菌包装を含みうる。例えば、複合構成物、もしくは空間的な関連におけるキット構成物を保持するための部分を有する成形プラスチック商品を用いることが共通の慣例である。
【図面の簡単な説明】
【００５１】
【図１】図１は、キモトリプシン断片を含むフィブロネクチン分子の概略図表示を提供する。
【図２】図２は、以下の実施例１でさらに記載したように、ＴＫＮＥＯベクターを用いた、フィブロネクチン断片の存在下での、投入された（ｃｏｍｉｔｔｅｄ）ヒト前駆細胞の感染効率を表す。
【図３】図３は、以下の実施例１でさらに記載したように、ＴＫＮＥＯベクターを用いた、フィブロネクチン及びその断片の存在下での、様々な投入されたヒト造血前駆細胞の感染効率を比較する。
【図４】図４は、以下の実施例７でさらに記載したように、（ｉ）共培養方法（レーン２−４）、（ｉｉ）固定化フィブロネクチン断片存在下での上清感染（レーン５−７）、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染（レーン８−１０）によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスの、ｈＡＤＡの存在を比較する。ｈＡＤＡの対照はレーン１及び１２に示され、ネズミＡＤＡに対する対照はレーン１１に示される。
【図５】図５は、以下の実施例８でさらに記載したように、フィブロネクチン断片へのウイルス結合を示す。
【図６】図６は、以下の実施例８でさらに記載したように、フィブロネクチン断片への、レトロウイルスの結合が、濃度依存的であることを示す。
【図７】図７は、以下の実施例９−１１で用いた、様々な組換えフィブロネクチン断片を図示している略図を提供する。
【図８】図８は、以下の実施例９で記載したように、いくつかの組換え断片を含む、様々なフィブロネクチン断片に結合するレトロウイルスを示す。
【図９】図９は、以下の実施例９で記載したように、フィブロネクチン断片と結合するレトロウイルスを、ヘパリンが阻止することを示す。
【図１０】図１０は、以下の実施例１０でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下での、ネズミ造血細胞のレトロウイルス感染効率を示す。
【図１１】図１１及び１２は、以下の実施例１１で記載するように、（ｉ）共培養法、（ｉｉ）様々なフィブロネクチン断片上での上清感染、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスにおける、ｈＡＤＡの存在を比較している。
【図１２】図１１及び１２は、以下の実施例１１で記載するように、（ｉ）共培養法、（ｉｉ）様々なフィブロネクチン断片上での上清感染、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスにおける、ｈＡＤＡの存在を比較している。
【図１３】図１３は、フィブロネクチンのα−鎖の構造と、実施例で用いた組換え断片とのその関連とを示している。フィブロネクチンＩ型、ＩＩ型、及びＩＩＩ型リピートが示され、ＩＩＩ型リピートは１〜１４まで番号付けした。細胞への３つの結合部位は、細胞結合部位（ＣＢＤ）に対してはＣＥＬＬ、ヘパリン結合部位（ＨＢＤ）に対してはＨＥＰＡＲＩＮ、そしてオルタナティブにスプライシングされたＩＩＩＣＳ部位のはじめの２５アミノ酸によって形成された、ＶＬＡ−４結合部位ＣＳ−１に対してはＣＳ−１として表示する。
【図１４】図１４は、以下の実施例１２でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下での、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１５】図１５は、以下の実施例１２でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下で、非接着性ＨＬ６０細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１６】図１６は、フィブロネクチンへ結合するレトロウイルスに対する、低分子量及び高分子量ヘパリンの影響を示す。
【図１７】図１７は以下の実施例１３で議論したように、組換えフィブロネクチン断片の存在下で、ＣＤ３４＋細胞集団内の様々な型の前駆細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１８】図１８は、以下の実施例１４で議論したように、組換えフィブロネクチンの存在下で、Ｃ−ｋｉｔ＋細胞集団中の、ＨＰＰ−ＣＦＣ細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１９】図１９は、以下の実施例１５で議論したように、ヘキサジメトリンブロミドの濃度を増加させるに従って、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞のレトロウイルス感染効率が減少することを示す。
【図２０】図２０は、以下の実施例１５で議論したように、ヘキサジメトリンブロミドの濃度を増加させるに従って、クローン原性骨髄細胞のレトロウイルス感染効率が減少することを示す。
【図２１】図２１は、Ｔ細胞がフィブロネクチン受容体を発現することを示す、フローサイトメトリー試験の結果を示す。
【図２２】図２２は、ヒトＴ細胞の前刺激を示すフローサイトメトリー試験の結果を示す。
【図２３】図２３は、ＡＤＡイソ酵素アッセイによる、ヒトＴ細胞への遺伝子導入の効率の解析の結果を示す。
【図２４】図２４は、さらに実施例１６で記載する、感染プロトコールで用いたポリペプチド類を示す略図を提供する。
【図２５】図２５は、図２４で同定した、ペプチド類Ｃ−ＦＧＦ、Ｃ−ＣＯＬ、及びｂＦＧＦの存在下で、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞の形質導入の効率を示す図である。
【図２６】図２６は、フローサイトメトリー解析でアッセイしたように、図２４で同定したペプチドの存在下で、ＨＥＬ細胞へのレトロウイルス遺伝子導入の効率を示す。
【図２７】図２７は、図２４で同定したポリペプチドの存在下で、ＣＤ３４＋骨髄細胞の形質導入の効率を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００５２】
本発明は好ましくは以下の形態を含む。
１． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞集団を得る方法であって：
細胞に結合するリガンドおよびレトロウイルスに結合するリガンドを含む、有効に固定化される量の物質の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よってレトロウイルスおよび細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ここにおいて前記感染は本質的にヘキサジメチリンブロミドを含まない培地で行われる：
ことを含む、前記の方法。
【００５３】
２． 細胞が造血幹細胞を含む、態様１記載の方法。
３． 態様１記載の方法によって製造される生存可能な細胞集団。
４． 造血幹細胞を含む、態様３記載の生存可能な細胞集団。
【００５４】
５． 態様１記載の方法によって製造される生存可能な細胞集団を哺乳動物に移植する：ことを含む、細胞移植方法。
６． 実質上レトロウイルスで形質転換された生存可能な細胞集団を含み、レトロウイルス産生細胞およびヘキサジメチリンブロミドの両方を本質的に含まない：細胞組成物。
【００５５】
７． 前記の生存可能な細胞が造血幹細胞を含む、態様６記載の細胞組成物。
８． 態様６記載の細胞組成物を哺乳動物に移植する；ことを含む、細胞移植方法。
９． 細胞集団が造血幹細胞を含む、態様８記載の方法。
１０． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞集団を得る方法であって：
細胞と結合するリガンドおよびレトロウイルスと結合するリガンドを含む、有効に固定化される量の物質の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よって、レトロウイルスと細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ここにおいて前記感染は、共培養中ではレトロウイルスによる細胞を形質転換する効率を上昇させるが、前記物質存在下ではレトロウイルスによる細胞の形質転換の効率を減少させる薬剤を実質上含まない培地で行われる：
ことを含む、前記の方法。
１１． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞の集団を得る方法であって：
細胞を結合するアミノ酸配列、およびレトロウイルスと結合するコラーゲンＶまたは繊維芽細胞増殖因子からのアミノ酸配列を含むポリペプチド存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させる：
ことを含む、前記の方法。
１２． 前記の感染が、レトロウイルス−プロデューサー細胞の非存在下で、レトロウイルスと細胞を接触させることを含む、態様１１記載の方法。
１３． Ｔ細胞をレトロウイルスで形質転換する方法であって、Ｔ細胞と結合するリガンド、およびレトロウイルスと結合するリガンドを含む物質存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よって、レトロウイルスと細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ことを含む、前記の方法。
１４． 物質が、Ｔ細胞と結合する第一のアミノ酸配列、およびレトロウイルスと結合する第二のアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、第二のアミノ酸配列が、配列：
【００５６】
【化２】
【００５７】
またはそれと充分に類似するアミノ酸配列を持ち、レトロウイスルと結合する能力を示すものである；
態様１３記載の方法。
１５． レトロウイスルを結合するコラーゲンＶまたは繊維芽細胞増殖因子からのアミノ酸配列を持つ、有効量の単離されたポリペプチドとレトロウイルスを接触させることを含む、レトロウイルスを配置する方法。
【実施例】
【００５８】
本発明のさらなる理解、及び評価を促進するために、以下に続く固有の実施例を提供する。これらの実施例は、説示的なものであり、その本質を限定しているものではないことが理解されよう。
【００５９】
実施例１ ＴＫＮＥＯを用いた骨髄細胞への遺伝子導入
１．１．ウイルス上清の調整
レトロウイルスプラスミドＴＫＮＥＯベクターを含むＧＰ＋ＥｎｖＡＭ１２産生細胞（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ ｅｔ ａｌ． （１９８８） Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １６７：４００ 参照）を、１０％胎児子牛血清（ＦＣＳ、Ｈｙｃｌｏｎｅ， Ｌｏｇａｎ ＵＴ）、及び１００ ｕｎｉｔｓ／ｍｌ ペニシリン、及び１００ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ストレプトマイシン（Ｐ／Ｓ、双方 Ｇｉｂｃｏ）を含むＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏｓ Ｍｅｄｉｕｍ （ＩＭＤＭ、Ｇｉｂｃｏ， Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ，ＭＤ）中で培養した。ウイルスを含む上清を、２０％ＦＣＳを含むＩＭＤＭ１０ ｍｌ を加えて一晩プレートをコンフルエンスにすることによって回収する。回収した培養液を、０．４５ミクロンフィルター（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ， Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ， ＭＩ）を通して濾過し、使用まで−８０℃にて保存した。
【００６０】
１．２．フィブロネクチン断片の用意
ＦＮを、ＦＮを４Ｍ尿素で溶出する前に、ゼラチン−アガロースカラムを１Ｍ尿素で洗浄した以外は、すでに、 Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ．， Ｍｅｔｈｏｄｓ． Ｅｎｚｙｍｏｌ． ８２：８０３−８３１ （１９８２） で記載されているように、ヒト血漿（Ｌｉｆｅｓｏｕｒｃｅ， Ｇｌｅｎｖｉｅｗ，ＩＬ）から精製した。精製したＦＮは、４℃にて，１０ｍＭ ３−（シクロヘキシルアミノ）−１−プロパン−スルホン酸（ＣＡＰＳ）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＣａＣｌ２ ｐＨ １１．０に対して透析し、−８０℃にて等分して保存した。ＦＮのキモトリプシン様細胞結合部位（ＣＢＤ）（ＣＳ−１）、及び、ヘパリン−ＩＩ結合断片は、すでに記載されているように（Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ． （１９８２）， ｓｕｐｒａ， Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ， Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０２， ｐｐ． ４４９−４５６ （１９８６）， ａｎｄ Ｂｅｒｎａｒｄｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０５， ｐｐ． ４８９−４９８ （１９８７））精製した。三つの主なヘパリン断片（３０ｋＤ、３５ｋＤ、４２ｋＤ）が、ヘパリン−アガロースカラムからの１Ｍ ＮａＣｌ中の溶出で得られた。これらのヘパリン結合断片を、さらに精製するために、１Ｍ ＮａＣｌ溶出物を４℃にて１晩、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．０に対して透析し、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．０で平衡化された陽イオン交換カラム（２ｍｌ ＤＥＡＥ セファロース ｆａｓｔ ｆｌｏｗ， （Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ， Ｕｐｐｓａｌａ， Ｓｗｅｄｅｎ） ／ｍｇ タンパク質）に通した。３０／３５ｋＤ断片を、非結合フラクションで回収し、一方４２ｋＤ断片はカラムより１００ｍＭ ＮａＣｌにて溶出した。ＦＮ ５００ｍｇ から、おおよそ２６ｍｇの３０／３５ｋＤ断片、及び４ｍｇの４２ｋＤ断片を得た。３０／３５ｋＤ断片でなく、４２ｋＤ断片は、ウエスタンブロッティング手法によって決定したように、フィブリン結合部位に対する抗体によって認識された。また、４２ｋＤ断片は、フィブリン−セルロースアフィニティーカラムへ結合する。
【００６１】
感染プロトコールで使用するために、フィブロネクチン断片を Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ （１９８６）， ｓｕｐｒａ によって記載されたように、７５ｐｍｏｌ／ｃｍ２の濃度にて、３５、もしくは１００ｍｍペトリディシュ（Ｆａｌｃｏｎ，Ｌｉｎｃｏｌｎ Ｐａｒｋ，ＮＪ）に固定化した。コントロールのプレートは、２％（ＦＮなし）ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ， Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて類似の方法でコートした。
【００６２】
１．３．レトロウイルス感染プロトコール
健康な大人提供者からの、骨髄サンプルを、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ によって立証されたプロトコールに従った、無菌保存剤なしの培養液硫酸ヘパリンを含むチューブに集めた。低密度単核細胞を、フィコール−ハイパック（密度 １．０７７ ｇ／ｍｌ， Ｐｈａｒｍａｃｉａ， Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ， ＮＪ）において、２５℃にて４５分間遠心することで用意した。プラスチック接着細胞を、低密度骨髄細胞から２％ＦＣＳ入りＩＭＤＭ中、５％ＣＯ２中で３７℃にて４〜１６時間さらに組織培養プレートをインキュベートすることで取り除いた。
【００６３】
接着陰性低密度単核細胞は、すでに、Ｌｕｓｋｅｙ ｅｒ ａｌ． （１９９２） Ｂｌｏｏｄ ８０：３９６ に記載されたように、レトロウイルス感染前にペトリディシュ上１×１０６ ｃｅｌｌｓ／ｍｌ の細胞密度で、２０％ＦＣＳ、１００ Ｕ／ｍｌ ｒｈＩＬ−６、１００ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＳＣＦ（両方 Ａｍｇｅｎ，Ｔｈｏｕｓａｎｄ Ｏａｋｓ， ＣＡ）、及びＰ／Ｓを含むＩＭＤＭ中、５％ＣＯ２、３７℃で４８時間前刺激した。前刺激した細胞を、プラスチックへ弱い接着をする細胞を取り除くために、勢いよくピペッティングすることで回収した。
【００６４】
前刺激した細胞（５×１０５ ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）を、ＢＳＡ（コントロールプレート）、もしくはフィブロネクチンもしくはその断片（プラスチックプレートへタンパク質がより接着するようにＵＶ照射した。）でコートされたプレート上で６時間インキュベートし、成長因子（上記の通り）、及び７．５ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ポリブレン（Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌ， Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ， ＷＬ）存在下、ウイルス上清にて感染させた。ウイルス上清は、２時間後置き換え、（成長因子、及び５．０ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ポリブレンを含むもの）、細胞をさらに１２〜２４時間インキュベートした。非接着細胞はそれぞれの培養液交換で再び加えた。
【００６５】
感染プロトコールに従って、非接着細胞をデカントし、接着造血細胞は製品の使用説明書に従って、細胞解離緩衝液（ＣＤＢ）（酵素なし／ＰＢＳベース、Ｇｉｂｃｏ）を用いて回収した。接着細胞を、非接着細胞フラクシャンに加え、２回洗浄し、計数した。回収した細胞は、クローン原性メチルセルロース前駆体分析を行うか、あるいは長期骨髄培養を行った。
【００６６】
１．４．長期骨髄培養
ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）分析を、すでに記載された方法に従って、若干の改良をして行った。Ｓｕｔｈｅｒｌａｎｄ ｅｔ ａｌ． Ｂｌｏｏｄ ７４：１５６３ （１９８９）。簡単には１０％ＦＣＳ、１０％ウマ血清（Ｓｉｇｍａ）及びＰ／Ｓ、１×１０−５Ｍヒドロコルチゾン（Ｕｐｊｏｈｎ， Ｋａｌａｍａｚｏｏ，ＭＩ）、及び、６ウェル組織培養プレート上に、３２０モスモル塩化ナトリウム（Ｃｏｓｔａｒ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ）を含む５ ｍｌ ＩＭＤＭ中でのコンフレントな（上記のような）前照射を受けた同種ヒト骨髄繊維芽細胞（ＢＭＦ）において、０．５−１×１０６の感染細胞を播種した。ＬＴＭＣは、３３℃で５％ＣＯ２、及び毎週培養液及び非接着細胞の５０％を取り去ることで栄養を与えてインキュベートした。５週間後、ＬＴＣ−ＩＣ培養は、ＢＭＦから、接着造血細胞を取り除くために、ＣＤＢを用いて回収した。非接着、及び接着造血細胞双方を一緒にし、ＬＴＣ−ＩＣから由来するコロニーを得るために、メチルセルロースにプレートした。
【００６７】
１．５．クローン原性メチルセルロース分析
メチルセルロース分析は、すでに Ｔｏｋｓｏｚ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｃ． Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， ＵＳＡ， Ｖｏｌ． ８９， ｐ７３５０ （１９９２） で記載されたものに、若干の改良を加えて行った。２．５×１０４感染大人骨髄細胞を、２５％ＦＣＳ、１０％ヒト血漿、１０−５Ｍベータ−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ）、及びＰ／Ｓを含む１ ｍｌの２．４％ＩＭＤＭメチルセルロース（Ｆｌｕｋａ， Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ， ＮＹ）中で、５ ｕｎｉｔｓ／ｍｌ エリスロポエチン（Ｅｐｏ， Ａｍｇｅｎ）、１００ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＳＣＦ、１０ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＩＬ−３（Ｇｅｎｚｙｍｅ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ， ＭＡ）とともにプレートした。培養は、３７℃にて、５％ＣＯ２／９５％空気でインキュベートし、コロニー（＞５０細胞数）を１３日目に反転顕微鏡で見ることで、ＣＦＵ−ＧＭ（顆粒球及びマクロファージを含む）、ＣＦＵ−混合（骨髄及び赤血球成分を含む）、ＢＦＵ−Ｅ（赤血球成分のみを含む）として計数した。
【００６８】
１．６．レトロウイルス感染分析
ＴＫＮＥＯウイルスによる感染効率は１３日目の１．５ ｍｇ／ｍｌ（乾燥粉、Ｇｉｂｃｏ）Ｇ４１８抵抗性メチルセルロ−スコロニ−の割合を決めることで解析した。擬感染は、骨髄を組換えウイルスをつくらないＧＰ＋ＥｎｖＡＭ１２パッケージング株上でインキュベートすることでそれぞれの実験で行った。１．５ ｍｇ／ｍｌ Ｇ４１８とのこれらの擬感染細胞の培養は一貫して、＜１％バックグラウンドコロニーを示す。
【００６９】
１．７．前駆細胞への遺伝子導入効率
形質導入効率は、３０／３５ ＦＮ−、もしくはＢＳＡコートディッシュにまき、骨髄細胞に感染することで比較した。これらの状態間では、選択なしの感染の後に得られたコロニー数においては、違いが観察されなかった。図２は感染後のＧ４１８ｒコロニーの割合を示す。多系統（ＣＦＵ−混合）前駆細胞と同様に、系統制限（ＢＦＵ−Ｅ、及びＣＦＵ−ＧＭ）から由来するものを含む、すべての前駆体型からの、３０／３５ ＦＮ上で高い割合のＧ４１８ｒコロニーが確認された。すべての前駆体への感染はＢＳＡに比べ、３０／３５ ＦＮで９倍増加した。
【００７０】
１．８．長期培養イニシエーション細胞への遺伝子導入
ＬＴＣ−ＩＣへの遺伝子導入はＴＫＮＥＯベクターを用いて行った。コロニー由来ＬＴＣ−ＩＣへの遺伝子導入は、３０／３５ ＦＮ上での感染後、検出されたのみである。（３０／３５ ＦＮ対ＢＳＡ １６％Ｇ４１８ｒ対０％Ｇ４１８ｒコロニー）。
【００７１】
１．９．造血細胞の感染効率への３０／３５ＦＮ効果の特異性
３０／３５ ＦＮにおいて見られた遺伝子導入効率の増加の特異性を決めるためにＴＫＮＥＯによる感染を、ＢＳＡ、３０／３５ ＦＮ、無傷の（ｉｎｔａｃｔ）フィブロネクチン、ＲＧＤＳテトラペプチド配列を含む中心細胞結合部位（ＣＢＤ）を含む１１５ｋＤ ＦＮ断片、ＣＳ−１配列は欠損しているが、ヘパリン−ＩＩ結合部位を持つことによって特徴づけられる４２ｋＤ Ｃ−末端ＦＮ断片（４２ＦＮ）上で行った（図１）。ＢＳＡ上での感染は３±１％Ｇ４１８ｒ ＢＦＵ−Ｅ、１±１％ Ｇ４１８ｒ ＣＦＵ−ＧＭ、及び０±０％ Ｇ４１８ｒ ＣＦＵ−混合を示した。ＣＢＤ上で観察されたＧ４１８ｒコロニー群は明らかな増加が見られず、一方４２ ＦＮ上ではＢＦＵ−Ｅのわずかに高い感染（６．０±−１％）が見られた（図３）。しかしながら、無傷のＦＮはすべての前駆体への遺伝子導入の増加を促進した。無傷のＦＮ上での感染後のＧ４１８ｒコロニーの割合は３０／３５ＦＮ上のものより少なかったが、それぞれＢＦＵ−Ｅ（１６±−２対２４±４％）、ＣＦＵ−ＧＭ（５±２対２０±４％）、及びＣＦＵ−混合（６±１対９±１％）（無傷ＦＮ対３０／３５ＦＮ）であった。
【００７２】
実施例２ ＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いた骨髄細胞への遺伝子導入
２．１．全体的な手順
ＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルス上清は実施例１のＴＫＮＥＯのための記載と同様に準備した。フィブロネクチンのキモトリプシン様断片は（図１）、すでに実施例１で記載のように準備し、実施例１のレトロウイルス感染プロトコールに従った。ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）分析、及びメチルセルロース分析は実施例１に従って行った。
【００７３】
２．２． レトロウイルス感染の分析
ＡＤＡイソ酵素電気泳動によるタンパク質分析によって、ＰＧＫ−ｍＡＤＡベクターの感染効率を定量した。個々の前駆（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）細胞コロニーの分析は、Ｍｏｒｉｔｚ（１９９３）およびＬｉｍら（１９８９）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６巻、８８９２頁に前記した方法に従って、行なわれた。トランスファー効率を厳密に分析するために、内在性ヒトＡＤＡと同じか、またはより高レベルのｍＡＤＡを発現するコロニーのみを形質転換されたと考えた。プールしたコロニーを分析するために、メチルセルロース培地より選択（ｐｉｃｋ ｏｕｔ）したコロニーを、１．５ｍｌのミクロチューブ（Ｒａｉｎｉｎ，Ｗｏｂｕｒｎ，ＭＡ）内に集め、暖めた培地およびリン酸緩衝塩類溶液（ＰＢＳ）で洗浄し、遠心分離し、そして−２０℃に保存した。ＡＤＡ分析のため、凍結−融解サイクルを繰り返すことによって、５μｌの溶解バッファーに細胞を溶解し、そしてイソ酵素電気泳動を、前記の方法に従って行った。
【００７４】
２．３． 前駆細胞内への遺伝子トランスファー効率
３０／３５ＦＮ−またはＢＳＡ−コート皿上にプレートした間、骨髄細胞に感染させることによって、形質転換効率を比較した。選別しなかった場合、感染後得られたコロニー数の差は、これらの条件間では認められなかった。表１に示したように、すべての前駆細胞内への感染効率は、実質上、ＢＳＡに対して３０／３５ＦＮ上で増加した。高力価（〜１ｘ１０７ビリオン（ｖｉｒｏｎｓ）／ｍｌ）ベクターで予想されるように、前駆細胞の形質転換効率は、非常に高かった。表１に示すように、３０／３５ＦＮ上での骨髄へのＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染は、２回の別々に行った実験で、前駆細胞の１００％近い形質転換が得られた。
【００７５】
【表１】
【００７６】
２．４． 長期培養−始原細胞（ｉｎｉｔｉａｔｉｎｇ ｃｅｌｌ）内への遺伝子トランスファー効率
ＰＧＫ−ｍＡＤＡで行った４回の独立した実験では、週齢５週のＬＴＭＣから誘導された前駆細胞コロニー（即ち、ＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニー）の有意な割合が、トランスファーされたマウスＡＤＡ遺伝子を発現していた。発現は、分析したコロニーの２／１２（１７％）から６／６（１００％）までの範囲であった（表２）。導入されたｍＡＤＡ遺伝子の発現は、陽性と考えられるすべてのコロニー内で、内在性ヒトＡＤＡ活性量を越えるか、または少なくとも等しかった。ＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染効率は、ＴＫＮＥＯより高かった。表２に示すように、３０／３５ＦＮ上の骨髄へのＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染では、２回の別々の実験で、前駆細胞の１００％近い形質転換が得られた。
【００７７】
【表２】
【００７８】
２．５． 造血細胞の感染効率への３０／３５ＦＮ効果の特異性
ＬＴＣ−ＩＣ内への遺伝子トランスファー効率は、３０／３５ＦＮ上で増加した。これらの二次のＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニーは比較的小サイズであるため、単一コロニーでタンパク質分析を成し遂げる能力には限界がある。ＢＳＡ上でのＰＧＫ−ｍＡＤＡでの感染後、完全な（ｉｎｔａｃｔ）フィブロネクチンならびに４２ＦＮ ０／６、０／４および０／３ ＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニーは、それぞれ、マウスＡＤＡの発現を示したが、３０／３５ＦＮ上で感染させた３／５ＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーは、ｍＡＤＡを発現した。さらに、複数のＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーを２回の追加実験で分析する前にプールしたところ、ｍＡＤＡ発現は、３０／３５ＦＮ上で感染後のみに検出され、完全なＦＮ上ではより少ない程度であり、４２ＦＮまたはＢＳＡ上では検出されなかった。
【００７９】
実施例３ ＰＧＫ−ｈＡＤＡを用いた骨髄細胞内への遺伝子トランスファー
３．１． 一般的方法
実施例１のＴＫＮＥＯで記載した方法に従って、ＰＧＫ−ｈＡＤＡウイルス上清を調製した。実施例１に前述した方法に従って、フィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）を調製し、次に実施例１のレトロウイルス感染プロトコールを行った。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイを、実施例１記載の方法に従って行った。
【００８０】
３．２． レトロウイスル感染の分析
プールしたコロニーを分析するために、メチルセルロース培地より選択したコロニーを１．５ｍｌのミクロチューブ（Ｒａｉｎｉｎ，Ｗｏｂｕｒｎ，ＭＡ）に集め、暖めた培地およびＰＢＳで洗浄し、遠心分離し、そして−２０℃で保存した。ＡＤＡ分析のために、細胞を、凍結−解凍サイクルを繰り返すことによって５ｍｌの溶解バッファーに溶解し、そして前述の方法に従って、イソ酵素を電気泳動した。
【００８１】
実施例４ ＴＫＮＥＯを用いた臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
４．１． 一般的方法
ＴＫＮＥＯウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）は、実施例１に前述した方法に従って、調製された。次いで、実施例１に記載のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、骨髄細胞の代わりに、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅで是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）およびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８２】
４．２． 前駆細胞の遺伝子トランスファー効率
ＦＮ３０／３５上での感染は、３回の別々の実験において、ＢＳＡと比較して４倍以上増加していた（表３）
【００８３】
【表３】
【００８４】
実施例５ ＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いた臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
５．１． 一般的方法
ＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）は、実施例１に前記された方法に従って、調製された。次いで、実施例１記載のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅに是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８５】
５．２． 長期培養した始原細胞内への遺伝子トランスファー効率
より力価の高いＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いると、ＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーの分析は、ＦＮ３０／３５上で上清を用いて感染させた臍帯血から確立された培地からのみ、導入したｍＡＤＡ ｃＤＮＡの高レベル発現を示した。ＢＳＡ対照プレート内で感染させたＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニー内では、ｍＡＤＡの発現はほとんど検出されなかった。
【００８６】
実施例４および５に示した結果は、ＦＮ３０／３５を用いた感染効率の改善が、臍帯血前駆細胞および幹細胞を用いた場合にも達成できることを、証明している。
実施例６ ＰＧＫ−ｈＡＤＡを用いての臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
ＰＧＫ−ｈＡＤＡウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（表１）は、実施例１のＴＫＮＥＯに記載の方法に従って、調製された。次に、実施例１のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、骨髄細胞の代わりに、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅに是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８７】
実施例７−１１ 実施例７−１１のためのレトロウイルスベクターおよび産生細胞（ｐｒｏｄｕｃｅｒ ｃｅｌｌ）系
実施例７−１１に関して、２つのレトロウイルス産生パッケージング細胞系（ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ−ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｐａｃｋａｇｉｎｇ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ）を用いた：それぞれ、エコトロピック（ｅｃｏｔｒｏｐｉｃ）ＧＰ＋Ｅ８６（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６２，１１２０−１１２４、１９８８）ならびにアンホトロピック（ａｍｐｈｏｔｒｏｐｉｃ）ＧＰ＋ｅｎｖＡＭ１２細胞系（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１６７，４００−４０６，１９８８）：ここに記載された研究に用いられたレトロウイルスベクターおよび産生細胞クローンを、表４に列挙した。
【００８８】
【表４】
【００８９】
すべての細胞系は、ＥＡＬ２ａ細胞を除き、１０％のウシ胎児血清（ＦＣＳ，Ｈｙｃｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）および１００ユニット／ｍｌのペニシリンおよび１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン（Ｐ／Ｓ、両方共Ｇｉｂｃｏ）を含むダルベッコの修飾Ｅａｇｌｅ培地（ＤＭＥ，Ｇｉｂｃｏ，ＧｒａｎｄＩｓｌａｎｄ，ＮＹ）内で培養され、ＥＡＬ２ａ細胞は、１０％ ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓを含むＤＭＥ−Ｆ１２（Ｇｉｂｃｏ）内で増殖させた。ウイルスを含む上清は、マウス細胞には１０ｍｌのα−最少必須培地（αＭＥＭ，Ｇｉｂｃｏ）、またはヒト細胞にはイスコフのダルベッコ培地（ＩＭＤＭ，Ｇｉｂｃｏ）（それぞれ１０％のＦＣＳ＋Ｐ／Ｓを含む）を１０ｃｍの集密プレートに一晩加えることによって、集められた。収集した培地を、０．４５ミクロンフィルター（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ，ＭＩ）でろ過し、使用するまで−８０℃に保存した。
【００９０】
実施例７ マウスの一次造血細胞の形質転換
７．１． 実験方法
マウスの細胞で研究するために、１５０ｍｇ／ｋｇの５−フルオロウラシルの投与後、２日の週齢６から８週のＣ３Ｈ／ＨｅＪマウスの大腿骨および頸骨から、骨髄を収集した（ＳｏｌｏＰａｃｋ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｐａｒｋ，ＩＬ）（Ｌｉｍ，Ｂ．，Ｊ．Ｆ．Ａｐｐｅｒｌｅｙ，Ｓ．Ｈ．ＯｒｋｉｎおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６、８８９２−８８９６、１９８９）。細胞は、ＩＭＤＭ／２０％ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓ中の濃度５ｘ１０６細胞／ｍｌ、並びに１００ｎｇ／ｍｌのラット組換え幹細胞因子（ｒｒＳＣＦ；Ａｍｇｅｎ．Ｔｈｏｕｓａｎｄｓ Ｏａｋｓ，ＣＡ）および１００ユニット／ｍｌのヒト組換えインターロイキン−６（ｒｈＩＬ−６；Ｐｅｐｒｏ Ｔｅｃｈ Ｉｎｃ．，Ｒｏｃｋ Ｈｉｌｌ，ＮＪ）で、４８時間、前刺激（ｐｒｅｓｔｉｍｕｌａｔｅ）した（Ｌｕｓｋｅｙ，Ｂ．Ｄ．，Ｍ．Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ，Ｋ．ＺｓｅｂｏおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｂｌｏｏｄ，Ｖｏｌ．８０，ｐｐ．３９６−４０２、１９９２）。次に、ＥＰＨＡ−５産生細胞によって作り出されたＰＧＫ−ｈＡＤＡベクターでの遺伝子トランスファー効率を、３種類の異なる感染プロトコールを用いて比較した：１）上清感染；２）ＦＮ３０／３５上での上清感染；３）ＥＰＨＡ−５産生細胞上での同時培養。そのために、１００ｍｍの細菌皿を、５ｍｌのリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ；Ｇｉｂｃｏ）中に溶解した２．５μｇ／ｃｍ２のＦＮ３０／３５（７５ｐｍｏｌ／ｃｍ２に等しい）で、室温、ＵＶ光下で、１時間、皿のフタを開けたままで、さらに１時間、皿のふたを閉めてコートした。２％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｆｒａｃｔｉｏｎ Ｖ：Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）で、室温で３０分間、ブロックした後、皿を、２．５％（ｖ／ｖ） １Ｍ Ｈｅｐｅｓを添加したハンクス液（Ｈａｎｋ’ｓ Ｂａｌａｎｃｅｄ Ｓａｌｔ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）（ＨＢＳＳ）（両方共Ｇｉｂｃｏ）で、一度洗浄した。上清感染では、皿をＢＳＡのみでコートした。５ｘ１０６の前刺激したドナー細胞を、ＥＰＨＡ−５細胞より上記の方法に従って得られた１０ｍｌのウイルス上清に、１００Ｕ／ｍｌのｒｈＩＬ−６、１００ｎｇ／ｍｌのｈｒＳＣＦおよび７．５μｇ／ｍｌのポリブレン（ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ）を添加したものと共に、インキュベートした。非粘着性細胞を集め、新たにウイルス上清を再付加した。共培養のために、４ｍｌ培地中のＥＰＨＡ−５細胞を、１０μｇ／ｍｌのマイトマイシンＣと共に、２時間、３７℃でインキュベートし、洗浄し、トリプシン処理し、そして１０ｍｌのαＭＥＭ／２０％ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓ中、３ｘ１０６の細胞濃度で、１００ｍｍの組織培養皿上に接種した。翌日、５ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、１００Ｕ／ｍｌのｒｈＩＬ−６、１００ｎｇ／ｍｌのｒｒＳＣＦおよび４μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、４８時間加えた。感染プロトコールに次いで、非粘着性細胞をデカントし、そして、粘着性造血細胞を、製造者の指示書に従って、Ｃｅｌｌ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（ＣＤＢ）（酵素非含有／ＰＢＳをベースとする、Ｇｉｂｃｏ）を用いて、培養液から収集した。粘着性細胞を非粘着性画分に加え、二度洗浄し、そして、おおよそ１ｍｌのＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ中に懸濁した。５ｘ１０６の前刺激した細胞から得られた全細胞を、致死量の全身照射（７００＋４００ｃＧｙ、１３７Ｃｓ−源）（Ｌｕｓｋｅｙ，Ｂ．Ｄ．，Ｍ．Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ，Ｋ．ＺｓｅｂｏおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｂｌｏｏｄ，Ｖｏｌ．８０，３９６−４０２、１９９２）を受けた３匹のレシピエントマウスの尾静脈内に注射した。造血幹細胞の形質転換は、導入されたヒトＡＤＡ ｃＤＮＡの発現用に再構築されたマウスを試験することによって、分析された。このＡＤＡイソ酵素分析は、原位置での酢酸セルロースのｉｎ ｖｉｖｏ酵素分析によって、ｈＡＤＡタンパク質の存在について、末梢血液細胞を試験することによって、移植されたマウス内で成し遂げられた（Ｌｉｍ，Ｂ．，Ｄ．Ａ．ＷｉｌｌｉａｍｓおよびＳ．Ｈ．Ｏｒｋｉｎ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，７，３４５９−３４６５、１９８７）。試験は、最初４ヶ月間、追加移植を行い、月に一度繰り返した。
【００９１】
７．２． 結果
遺伝子操作された造血幹細胞でのマウスの骨髄再構築が長期に及ぶことは、一般的に、４ヶ月の追加移植期間後の幹細胞の形質転換効率を定量するために、適当であるとして受け入れられる。形質転換骨髄の７ヶ月後のレシピエントのイソ酵素分析による分析は、１）ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡ発現は、同時培養またはＦＮ３０／３５上での上清感染のいずれかを用いると存在するが、ＦＮ３０／３５なしでの上清感染後移植したグループでは、存在せず、そして２）発現のレベルは、共培養とＦＮ３０／３５グループで同等である：ことを示した。図４、列２−４に示したように、ＥＰＨＡ−５細胞上での同時培養によって形質転換された骨髄を移植した３匹のマウスでは、ヒトＡＤＡが容易に検出できることを証明した。同様のレベルのヒトＡＤＡは、ＦＮ２０／３５の上清感染によって形質転換された造血細胞を移植した３匹のマウスでも検出された（図４、列５−７）。これに対して、ＢＳＡ上での上清感染によって形質転換された造血細胞を移植した３匹のマウスでは、ヒトＡＤＡは検出されなかった（図４、列８−１０）。ヒトＡＤＡの位置コントロールを図４の列１および１２に、ならびにマウスのＡＤＡを列１１に示す。列２−１０のマウスのバンドは、同量のタンパク質が負荷されたことを示す。これらのデータは、ＦＮ３０／３５上での上清感染によって長期にわたって再構築される造血幹細胞の形質転換が 同時培養と等価であり、ＦＮ３０／３５なしでの上清感染より遥かに優れていることを証明している。
【００９２】
実施例８ ＴＮ３０／３５に結合したレトロウイルスベクターによる改良された形質転換メカニズム
８．１． 実験方法
形質転換の増加が、ウイルスと造血細胞を共に配置する（ｃｏ−ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ）結果であるか否かを試験するため、我々は、組換えレトロウイルス粒子がＦＮ３０／３５との結合を示すか否かについて分析した。そのため、ＦＮ３０／３５−コートプレートを、ＴＫＮｅｏウイルスを含む上清と共に、３０分間プレインキュベートし、その後、広範囲にわたって洗浄した。上清のウイルス力価をＮＩＨ／３Ｔ３を用いて、標準的方法に従って、定量した（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６２，１１２０−１１２４、１９８８）。簡単に言えば、３Ｔ３細胞を、６穴の組織培養プレートに、濃度１０００細胞／穴でプレートし、一晩増殖させた。ウイルス上清の一連の希釈物を、７．５μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、それぞれの穴に加え、そして２ｍｌの培地を加えた後、３７℃で２．５時間インキュベートした。２４時間後、培地は、Ｇ４１８（０．７５ｍｇ／ｍｌ、乾燥粉末、Ｇｉｂｃｏ）を含む培地と置き換え、そしてプレートを１０−１２日間インキュベートした。Ｇ４１８−耐性コロニー（Ｇ４１８ｒ）を１０−１２日後に染色し、そして数を記入した。ウイルス上清の希釈倍率を掛けたコロニー／穴の数を、上清の感染粒子（ｃｆｕ）／ｍｌとして用いた。我々は、ウイルス上清とプレインキュベーションし、そして１０００ＮＩＨ／３Ｔ３／３５ｍｍ細菌皿細胞＋ポリブレンを加えることによって集中的に洗浄した後、ＦＮ３０／３５−コートしたまたはＢＳＡ−コートした３５ｍｍプレート上に残っているレトロウイルス粒子の量を、評価／”滴定”した。２４時間後、培養液に、０．７５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８（乾燥粉末）を含む培地を供給し、そしてさらに細胞を１０−１２日間インキュベートした。このインキュベーションの後、Ｇ４１８−耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーを数えることによって、粘着性ウイルスの存在を定量した。
【００９３】
ＦＮ３０／３５へのウイルスの結合が、服用量依存様式で起こるか否かを評価するために、皿をコートするＦＮ３０／３５の濃度を上昇させて、上記の実験を繰り返した。そのため、上記の方法に従って、３５ｍｍの細胞皿を、１、４、１０および２０μｇ／ｃｍ２のＦＮ３０／３５でコートした。前もって１ｘ１０４感染粒子／ｍｌと滴定されたＴＫＮｅｏウイルスストックの１：５０希釈物を、ＦＮ３０／３５−コートプレート上で３０分間インキュベートした。集中的に洗浄した後、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞をそれぞれの穴に加えた。選別を上記の通り行い、そしてＧ４１８−耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーを、選別の１０日後、計数した。
【００９４】
８．２． 結果
図５は、３回の実験の内の典型的な一つの結果を示す。ＴＫＮｅｏ上清を用いて、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内のＧ４１８ｒコロニーによって測定されたレトロウイルスの力価は、ＢＳＡ−コートプレート上では、３ｌｏｇより多く（４ｘ１０３から０）減少したが、これに対して、３０／３５ＦＮでコートしたプレート上では、力価の減少は、１ｌｏｇのみであった。これらのデータは、レトロウイルスは、ＦＮ３０／３５と定量的に結合するが、しかしＢＳＡでコートした皿（対照皿）とは結合しないことを、証明している。図６は、ウイルス−含有上清を、ＦＮ３０／３５の濃度を増加させてコートしたプレート上でインキュベートした場合、Ｇ４１８−耐性コロニーの数の増加が検出されたことを示している。このように、ＦＮ３０／３５へのウイルスの結合は、服用量依存様式で起こっている。
【００９５】
実施例９ 組換えフィブロネクチンフラグメントへのウイルスの結合
９．１． 実験方法
Ｋｉｍｉｚｕｋａらは、以前、大腸菌内にクローン化したＦＮ ＤＮＡ配列の発現について報告している（Ｋｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｔｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｊｏ，Ｄ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）。クローン化したキメラペプチドは、細胞粘着性に関係することが知られているフィブロネクチン内の様々な重要配列（ＲＧＤＳ、ＣＳ−１およびヘパリン結合部位）の内の一つまたはその組み合わせを含む（図７参照のこと）。レトロウイルスがこれらの組み換えＦＮフラグメントと結合することができるか否かを分析するために、３Ｔ３細胞コロニー形成アッセイを、１ｘ１０４感染粒子／ｍｌの凍結レトロウイルスＴＫＮｅｏストックの２つの異なる希釈物（１：１０および１：１００）を用いて、組換えフラグメントＣ−２７４、Ｈ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１、ＣＨ−２９６およびＣ−ＣＳ１ならびに陽性対照としてＦＮ３０／３５でコートしたプレート上で繰り返した。ＦＮフラグメントは、１２０−１３０ｐｍｏｌ／ｃｍ２の濃度（Ｃ−２７４、Ｈ−２７１、Ｈ−２９６、Ｃ−ＣＳ１、ＦＮ３０／３５では４μｇ／ｃｍ２に等しく、ＣＨ−２７１およびＣＨ２９６では８μｇ／ｃｍ２に等しい）で用いられた。簡単に言えば、プレートをコートし、ウイスルを加え、プレートを広範囲に洗浄し、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞を２４時間加え、そして１０日間選択培地内で増殖させ、その後、コロニーを染色し、数を数えた。
【００９６】
９．２． 結果
図８は、Ｇ４１８−耐性コロニーの数（およびそのウイルス粘着性）が、フラグメントＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１およびＣＨ−２９６で増加したことを示している。さらに、図８は、ウイルス結合量が、これら組み換えフラグメントとＦＮ３０／３５の間では概略的に比較できるが、この仕事中では、ＣＨ−２７１フラグメントが最も高いレベルのウイルス結合を示したことを、示している。これらの５ＦＮフラグメントのすべてに共通なのは、高アフィニティーのヘパリン結合部位を含むタイプＩＩＩリピート１２−１４であり（Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ，Ｅ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，５７，３７５−４１３、１９８８、およびＫｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｇｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｊｏ．Ｋ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）、多分、リピート１３に位置する（Ｋｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｇｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｋｏ，Ｋ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）。このことは、ウイルス結合が、この既知の粘着部位を通して起こることを示唆している。このことは、４μｇ／ｃｍ２のＣＨ−２７１でコートした皿を、ヘパリン結合部位との細胞結合を阻害することが知られている高荷電分子である、硫酸ヘパリンの濃度を上昇（１０−１０００μｇ／ｍｌ）させて、プレインキュベーションすることによって、証明された。図９に示したように、Ｇ４１８−耐性コロニーの数は、高濃度の硫酸ヘパリンと共にＣＨ−２７１をプレインキュベーションした後には、減少している。これらのデータは、ＦＮへのウイルス結合が、ＦＮのカルボキシ末端ドメイン内のＣＳ−１部位のすぐ隣りに位置する高アフィニティーのヘパリン結合部位を通して仲介されることを、示唆している。
【００９７】
実施例１０ 組換えフィブロネクチンフラグメント上での造血細胞の形質転換
１０．１． 実験方法
前記したように、ＦＮ３０／３５上での造血細胞の形質転換の上昇が、組換えＦＮフラグメントでもまた認めることができるか否かを分析するために、我々は、高増殖潜在性−コロニー形成細胞（ｈｉｇｈ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ− ｃｏｌｏｎｙ ｆｏｒｍｉｎｇ ｃｅｌｌ）（ＨＰＰ−ＣＦＣ）アッセイを用いて、インビトロでの上清感染の形質転換効率を評価した。ＥＡＬ２ａベクターを用いることによって、我々は、ＢＳＡ上での様々な組換えＦＮフラグメント対ＦＮ３０／３５の上清感染の、造血細胞の形質転換への影響を、遺伝子トランスファーのインジケーターとしてＧ４１８−耐性コロニーの増殖を利用して、比較した。さらに、我々は、すでにＦＮフラグメントに粘着したウイルス粒子（対上清ウイルス）が造血細胞を形質転換する能力を比較した。上記の方法に従って、０．５から１ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、３５ｍｍのＦＮ−コートペトリ皿上、１−２ｍｌのＥＡＬ２ａウイルス含有上清中、増殖因子および５μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、インキュベートした。ＦＮフラグメントに結合したウイルスによる造血細胞の形質転換を評価するために、ウイルス含有上清と共にインキュベートした３５ｍｍのＦＮ−コート皿を各２ｍｌのＰＢＳで３回洗浄した。次に、０．５から１ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、増殖因子およびポリブレンを添加した２ｍｌの培地内に加えた。２２時間後、細胞を収集し、そして、Ｂｒａｄｌｅｙ，Ｔ．Ｒ．およびＤ．Ｍｅｔｃａｌｆ，Ａｕｓｔ，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．Ｓｃｉ．、４４、２８７ー２９３，１９６６に記載の方法に従って、１．５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８を加えておよび加えずに、ＨＰＰ−ＣＦＣアッセイに塗布した。培養液を、１４日間、７％ＣＯ２中、３３℃でインキュベートし、遺伝子トランスファー効率を、Ｇ４１８耐性コロニーの％として計算した。
【００９８】
１０．２． 結果
上清感染を通しての初期造血細胞（ｐｒｉｍｉｔｉｖｅ ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｃｅｌｌｓ）の形質転換（図１０）は、ヘパリン−結合部位（ｈｅｐａｒｉｎ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｓｉｔｅ）（ＨＢＳ）および少なくとも一つより多くの活性細胞粘着部位（立体棒）を含むすべてのフラグメントで、ＢＳＡ上での上清感染より有意に高い。組み換えフラグメントＣＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６およびＣ−ＣＳ１（３つのフラグメントはすべて、ヘパリン−結合部位およびＣＳ−１部位の両方を含む）の形質転換効率は、ＦＮ３０／３５の効果と同等であった。その他のすべての場合において、形質転換は、劇的に減少した。これらのデータは、以前にＦＮ３０／３５上で示された初期造血細胞の形質転換の増加を、組み換えＦＮフラグメント上でも複製できることを、証明している。さらに、フィブロネクチンに直接結合したウイルスは、造血細胞を遺伝的に形質転換する能力を持つことを、証明している。最終的に、初期造血前駆体（幹）細胞を形質転換するために、ＣＳ−１およびヘパリン結合部位の両方の存在が有用であることが、確認された。
【００９９】
実施例１１ 組換えフィブロネクチンフラグメント上でのマウスのドナー細胞の形質転換を用いる、マウスの長期にわたる骨髄の再構築
１１．１． 実験方法
造血幹細胞の再構築への効果を分析するために、初期造血前駆細胞について、ＢＳ対ＦＮ３０／３５対組み換えＦＮフラグメント上での上清感染、対同時培養を、骨髄移植を用いて比較する、上記のインビトロでの研究（実施例１０から）を繰り返した。簡単に言えば、致死照射マウスに、ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡを含むＥＰＨＡ−５ベクターで形質転換したドナー細胞を注射した。１ヶ月後およびおおよそ６ヶ月後、遺伝子トランスファー効果を、ＡＤＡイソ酵素アッセイで末梢血液から分析した。
【０１００】
１１．２． 結果
図１１は、１ヶ月後の結果を示し、ヘパリン結合部位およびＣＳ−１の両方を含むフィブロネクチンフラグメントＨ−２９６では、ＦＮ３０／３５および共培養と同様の結果が得られることを、はっきりと示している。これら部位を両方共含まないフラグメントは、移植可能な造血細胞の形質転換に、あまり有効ではない。これらのデータは、初期造血／幹細胞ならびにＣＳ−１およびヘパリン結合部位を両方共含む組換えＦＮフラグメントに結合したレトロウイルスが共に配置されることが、移植可能な造血細胞を効果的に形質転換することを証明している。
【０１０１】
図１２は、移植後４ヶ月および６ヶ月の結果を示している。この時点で、造血幹細胞を再集団化する遺伝的形質転換は、対照プレート上またはＣＢＤ（Ｃ−２７４）あるいはＩＩＩ１２−１４（Ｈ−２７１）のみを含むフラグメント上で形質転換した細胞を移植した動物内では、示すことができなかった。ＨＳＣｓの遺伝的形質転換は、Ｃ−ＣＳ１フラグメント上ではより少ない頻度で認められ、この場合、１／３の動物がヒトのタンパク質陽性であった。インビボで再集団化した幹細胞内への遺伝子トランスファーは、ＣＢＤ（ＣＨ−２７１）またはＣＳ１（Ｈ−２９６）のいずれかと組み合わされたＨＢＤを含むフラグメント上で、一律に認められた。３つの細胞結合部位をすべて含むフラグメント（ＣＨ−２９６）上での形質転換は、標的細胞、産生細胞系、の同時培養で最も効果的に比較できた。これらのデータは、ＶＬＡ−４および／またはＶＬＡ−５の結合部位と組み合わせてＩＩＩ１２−１４を含むフィブロネクチンフラグメントがマウスの造血前駆細胞および幹細胞内へのレトロウイルスが仲介する遺伝子トランスファーを増加させる能力を有するを示している。
【０１０２】
実施例１２
フィブロネクチンは、少なくとも３つの部位（図１３）：インテグリンＶＬＡ−５を通してリピート１０内にテトラペプチドＲＧＤＳを含む細胞結合ドメイン（ｃｅｌｌ ｂｉｎｄｉｎｇ ｄｏｍａｉｎ）（ＣＢＤ）；細胞表面のプロテオグリカン分子を通してタイプＩＩＩリピート１２−１４（ＩＩＩ１２−１４）内に含まれるヘパリン結合ドメイン；および、インテグリンＶＬＡ−４を通して変化するスプライス領域ＩＩＩＣＳ内のＣＳ１配列：を通して細胞粘着性を支配する。これらの研究では、これらの単一の細胞粘着部位を単独で含むか、あるいはペプチド内に組み合わせて含む、図１３に示す６つのキメラ組換えＦＮフラグメントを用いた。
【０１０３】
ＦＮ−コートした細菌皿を、アンホトロピック（ａｍｐｈｏｔｒｏｐｉｃ）パッケージング細胞系ＴＫＮｅｏからの２ｍｌの上清（ＳＮ）内の２００ｃｆｕと共に、インキュベートした。３７℃に３０分間置いた後、皿をＰＢＳで３回洗浄し、次いで、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞（繊維芽細胞）を、１０％のウシ血清（ＣＳ；Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）および２％のＰ／Ｓを添加した１ｍｌのＤＭＥＭ内に加えた。翌日、細胞は、０．７５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８を含む選択培地内に置かれた。８−１０日後、皿を、Ｓｔａｔ Ｓｔａｉｎ（Ｖｏｌｕ−Ｓｏｌ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で染色し、そしてＧ４１８ｒコロニーをカウントした。このアッセイでは、レトロウイルスは、コートしていないかまたはＢＳＡ−コートしたプレートとは結合しない。図１４に示したように、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内への遺伝子トランスファーは、ここでは”ＩＩＩ１２−１４”と名付けられたヘパリン−ＩＩ結合ドメインを含むフラグメント（Ｈ−２７１、ＣＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６）上でのみ起こった。これらのデータは、レトロウイルス粒子がフィブロネクチンのＩＩＩ１２−１４リピート内の配列に直接的に結合することを証明している。ＮＩＨ／３Ｔ３細胞の感染は、ＩＩＩ１２−１４のみの場合と比較して、ＩＩＩ１２−１４およびＣＢＤの両方を含むＦＮフラグメント（Ｈ−２７１対ＣＨ−２７１を比較する）で有意により高かった。注目すべきことに、２００のＮＥＯｃｆｕ／プレートのインプットから最大で８０のＧ４１８ｒＮＩＨ／３Ｔ３コロニー／プレートが生成した。これとは対照的に、ＣＳ１を加えても、ＮＩＨ／３Ｔ３形質転換にいかなる効果も示さなかった（Ｈ−２７１対Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１対ＣＨ−２９６）。
【０１０４】
ＦＮがレトロウイルス−仲介の遺伝子トランスファーを増加させるメカニズムがフラグメントへのレトロウイルスおよび標的細胞の同時結合によるものであることを証拠付けるため、非粘着細胞系（ＨＬ６０、既知の前骨髄細胞白血病細胞系）を用いて、実験を行った。ＨＬ６０細胞を、直接フルオロクロム−結合のＶＬＡ−４に対するモノクローナル抗体（ＦＩＴＣ：Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）およびＶＬＡ−５に対するモノクローナル抗体（ＰＥ；Ａｎｔｉｇｅｎｉｘ Ａｍｅｒｉｃａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で、またはＩｇＧ１およびＩｇＧ２ａ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）をイソ型対照として、染色した。死滅細胞を、プロピフィウムヨード（ｐｒｏｐｉｆｉｕｍ ｉｏｄｉｎｅ）染色によって、排除した。次いで、細胞をＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）上で分析した。遺伝子トランスファーを研究するために、１０４のＨＬ６０細胞を、神経増殖因子レセプター（ＮＧＦ−Ｒ）（力価１０５ｃｆｕ／ｍｌ）を含むアンホトロピックパッケージング細胞系ＤＡＧ（Ｓｔ．Ｊｕｄｅ’ｓ Ｃｈｉｌｄｒｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｈｏｓｐｉｔａｌ，Ｍｅｍｐｈｉｓ，ＴＮ．Ｕ．Ｓ．Ａ．から得られた）からのウイルス上清と共に、懸濁し、そして、濃度２μｇ／ｃｍ２ の６つのＦＮフラグメントでコートした細胞６穴プレートに加えた。４時間後、培養中のＨＬ６０培養液から２ｍｌの順化培地を加えた。４ｍｌの新たな培地（５％のＦＣＳおよび２％のＰ／Ｓを含むＲＰＭＩ， Ｇｉｂｃｏ）を、４−５日後に加えた。細胞を全体で８日間増殖させ、次いで、ＮＧＦ−Ｒ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）に対するモノクローナル抗体８２１１で、または対照としてイソ型ＩｇＧ１（Ｄａｋｏ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で染色し、次いで、ＦＩＴＣ−複合 ヤギ−抗−マウスの二次血清（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）と反応させた。細胞デブリスを排除するために、サンプルをプロピジウムヨード（ｐｒｏｐｉｄｉｕｍ ｉｏｄｉｎｅ）（ＰＩ）と共にインキュベートし、次に、ＦＡＣＳｃａｎで測定した。遺伝子トランスファーは、ＮＧＦ−Ｒ発現の分析によって、生きた細胞の通門（ｇａｔｉｎｇ）の後に、証明された。遺伝子トランスファーの研究はすべて、ポリブレンまたはプロタミンなしで、行われた。図１５に示すように、ＨＬ６０細胞は、フローサイトメトリー分析（Ａ＋Ｂ）では、ＶＬＡ−４を発現するが、ＶＬＡ−５を発現しない。発現データと一致して、ＨＬ６０細胞は、ＣＳ１を含むフラグメント（Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６、Ｃ−ＣＳ１）でコートされたプレートのみに粘着した。図１５に示すように、ＨＬ−６０細胞の遺伝子形質転換は、ＣＳ１と組み合わせてＩＩＩ１２−１４を含むフラグメント（Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６）上でのみ起こった。ＨＬ−６０細胞は、それらのＶＬＡ−４インテグリンを通してＣ−ＣＳ１フラグメントと粘着するが、レトロウイルス結合が劇的に起こるＩＩＩ１２−１４ が存在しないと、ＨＬ６０細胞の形質転換は減少する。
【０１０５】
実験のもう一つのセットでは、濃度を増加させた高分子量（ＨＭＷ） のヘパリン（Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．、ＭＷ約７０００−２５０００）は、２．５％（ｖ／ｖ）の１Ｍ Ｈｅｐｅｓ（ＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ；すべてＧｉｂｃｏ）を添加した２ｍｌのハンクス液（Ｈａｎｋｓ Ｂａｌａｎｃｅｄ Ｓａｌｔ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）に溶解させ、そして濃度４μｇ／ｃｍ２ の異なるＦＮフラグメントでコートした細菌の６穴プレートに加えた。３０分後、プレートを、ＰＢＳで３回洗浄し、次に４００ｃｆｕ／２ｍｌのアンホトロピックＴＫＮｅｏベクターを加えた。３７℃で３０分後、プレートを再びＰＢＳで洗浄し、次いで１０％のＣＳおよび２％のＰ／Ｓと共に、ＤＭＥＭ中の２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞を加えた。上記の方法に従って、選別を行い、遺伝子トランスファー効率を、８−１０日の培養の後のＧ４１８ｒ コロニーの数として計数した。同様の実験セットでは、分画した低分子量（ＬＭＷ）ヘパリン（Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．、ＭＷ約３０００）は、濃度を増加させた２ｍｌのＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ中に溶解させた。次いで、ＨＭＷ ヘパリンに関して上記した方法に従って、実験をデザインした。遺伝子トランスファー効率は、８−１０日後のＧ４１８ｒ の数として計数した。これらの遺伝子トランスファー研究のすべては、ポリブレンまたはプロタミンなしで行った。これらの実験の結果を図１６に示す。示したように、ＦＮへのウイルスの結合は、高分子量ヘパリンでは服用量依存様式で競合できる（１６Ａ）が、低分子量ヘパリンでは競合しない（１６Ｂ）。これらは、結果として、レトロウイルス粒子がＩＩＩ１２−１４内の配列に結合すること証拠となる。
【０１０６】
実施例１３ ＣＤ３４＋ 細胞集団内でのＢＦＵ−Ｅ細胞の選択的形質転換
この実施例では、混合した細胞集団内で選別された細胞を、ウイルス結合ドメインおよび細胞結合ドメインを持ち、標的細胞に特異的であるポリペプチドを用いることによって、形質転換の標的とすることができることを証明した。一般的ＴＫＮＥＯ感染および実施例１のアッセイプロトコールを繰り返したが、ＢＦＵ−Ｅ、ＣＦＵ−ＧＭおよびＣＦＵ−Ｍｉｘ細胞［臍帯血（ＣＢ）細胞よりアフィニティクロマトグラフィーによって得られた］を含むＣＤ３４＋細胞は、実質的に均一な集団を用い、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２７１の濃度は１、２、４、８、１６および２０μｇ／ｃｍ２ に変化させて用いた。結果を図１７に示す。示した通り、ＢＦＵ−Ｅ細胞は、ＶＬＡ−５結合部位に結合し、高い効率で形質転換された（Ｇ４１８耐性コロニーの２５％より多い）が、これに対してＣＦＵ−ＧＭおよびＣＦＵ−Ｍｉｘ集団は、有意なＶＬＡ−５への結合を示さず、実質的により低い効率で形質転換された（Ｇ４１８耐性コロニーの約５％より少ない）。
【０１０７】
実施例１４ ｃ−ＫＩＴ＋細胞の形質転換
本実施例では、ｃ−ＫＩＴ＋として実質的に均一な細胞集団を、本発明の方法に従って、形質転換した。このため、ｃ−ＫＩＴ＋細胞は、フローサイトメトリー選択技術を用いて、マウスの骨髄から単離された。細胞は、一般的には実施例１記載の方法に従って、ＴＫＮＥＯベクターを用いた感染プロトコールに委ねたが、ＦＮフラグメントは、図１８に示すように変化させ、感染した細胞は、ＨＰＰ−ＣＦＣでアッセイした。図１８に示すように、ＩＩＩ１２−１４およびＶＬＡ−４結合部位を含むＦＮフラグメント（ＦＮ３０／３５、Ｈ２９６およびＣＨ−２９６）は、高い形質転換効率を示した（Ｇ４１８耐性コロニーの８０％より高い）が、これらの２つのドメインを欠くＦＮフラグメントは、結果として有意な形質転換を生じない（Ｃ２７４およびＣ−ＣＳ１）か、または実質的に低い効率を示す（Ｈ２７１、ＣＨ２７１、Ｇ４１８耐性コロニーの２０％より少ない）。
【０１０８】
実施例１５ ポリブレンの濃度を変化させて用いた場合のＮＩＨ／３Ｔ３およびクローン原性（ｃｌｏｎｏｇｅｎｉｃ）ＢＭ細胞の形質転換
この実験セットでは、本発明の有用な形質転換法が、ヘキサジメチリンブロミド非存在下で行われることを証明した。ＮＩＨ／３Ｔ３（繊維芽細胞）細胞およびクロ−ン原性骨髄細胞は、一般的には、それぞれ実施例１２および１に記載した通りのＴＫＮＥＯ感染プロトコールに委ねたが、ベクター、細胞および様々な濃度のポリブレンを最初に一緒に懸濁し、次いで、ＦＮフラグメントＣＨ−２９６（８μｇ／ｍｌ）でコートした基質に適用した。アッセイは、これらの細胞型に関して前記したとおりである。結果を図１９および２０に示す。図１９に示すように、Ｇ４１８耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーの数は、ポリブレン濃度を増加させると、劇的に減少する（その範囲は、ポリブレンを使わなかった場合約１４から、１２．５μｇ／ｍｌのポリブレンを用いた場合約４に低下する）。同様に、図２０は、プロトコールがポリブレンの非存在下に委ねられた場合に４０近いコロニーが得られたことを、表しているが、これに対して１０μｇ／ｍｌのポリブレンを用いた場合の関連値は、１５より少なかった。
【０１０９】
実施例１６ Ｔ細胞の形質転換、ならびにコラーゲンＶおよびＦＧＦウイルス結合配列を持つポリペプチドの使用
この実施例では、ヒトＴ細胞内へのＤＮＡトランスファーの強化、およびコラーゲンＶおよび繊維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）からのレトロウイルス結合配列（フィブロネクチンのヘパリンＩＩ結合部位と実質的に相同である）の発明への使用について、説明している。このために、全血を、モノクローナル抗体（ＣＤ３ ｐｅｒＣＰに対するＭｏＡｂｓ；Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）、ＣＤ４９ｅ（ＰＥ；Ａｎｉｔｅｎｉｘ Ａｍｅｒｉｃａ）、ＣＤ４９ｄ（ＦＩＴＣ，ＰＥ，それぞれ：Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で、１５分間、室温で染色し、次いで、製造者らの勧告に従って、ＦＡＣＳ溶解溶液（ＢＥＣＴＩＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）と共にＦＡＣＳｃａｎ（ＢＥＣＴＩＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）での分析用に、調製した。末梢血液−誘導単核細胞（ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｂｌｏｏｄ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ ｃｅｌｌｓ）（ＰＢ−ＭＮＣｓ）は、１ｘ１０６細胞／ｍｌの濃度で、１μｇ／ｍｌのＯＫＴ−３（Ｏｒｔｈｏ）および５０Ｕ／ｍｌのＩＬ−２（Ｃｅｔｕｓ）で、前刺激した。２−３日後、細胞を収集し、洗浄し、次いで、７．５μｇ／ｍｌのポリブレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）の連続存在下、８μｇ／ｃｍ２ のＣＨ２９６で又は２％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）でコートした組織培養処理しなかったプレート上、ＰＧＫプロモーターの調節下で、マウスのアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピックレトロウイスル５５／６で、１または２日間形質転換した。一日おきに、５０％の培地を、５０Ｕ／ｍｌのＩＬ−２を含む培地に新しく置き換える。感染から４−６日後、細胞を収集し、ＣＤ３、ＣＤ５６、ＴＣＲ−αβおよびＨＬＡ−ＤＲに対するＭｏＡｂｓ（すべてＢｅｃｔｉｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を用いて、形態学的に分析した。遺伝子トランスファー効率の分析は、ＡＤＡイソ酵素アッセイ（Ｂｏｄｉｎｅ，Ｄ．Ｍ．ら、Ｂｌｏｏｄ，８２，１９７５−８０，１９９３；Ｍｏｒｉｔｚ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，５２９−３６、１９９３）でヒトの内在性のＡＤＡタンパク質と比較して、形質転換されたマウスのＡＤＡ酵素の活性を測定することによって、非選択集団上で、行われた。
【０１１０】
結果：
Ａ． Ｔ細胞
最初に、ヒトＴ細胞を、ＦＮレセプターＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５の発現について分析した。このために、末梢血液（ＰＢ）−誘導単核細胞（ＭＮＣｓ）を、ＣＤ３、ＣＤ４９ｄおよびＣＤ４９ｅに対するモノクローナル抗体（ＭｏＡｂｓ）で染色し、フローサイトメトリーで分析した。図２１に示すように、細胞を、すべての末梢血液Ｔ細胞を表すＣＤ３陽性リンパ球（Ｒ１およびＲ４）について通門した。ＰＢ Ｔ細胞の９４％は、ＣＤ４９ｄ陽性であり、９６％はＣＤ４９ｅ陽性である。Ｔ細胞の９０％は、ＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５の両方を発現している。
【０１１１】
次に、ＰＢ−誘導ＰＢ−ＭＮＣｓを、２−３日間、ＣＤ３ＭｏＡｂ ＯＫＴ−３および組換えＩＬ−２で前刺激し、次いで、１−２日間、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２９６かまたはＢＳＡでコートした非組織培養処理したプレート上、ＰＧＫプロモーター調節下で、形質転換した；対照には、マウスのアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピック産生細胞系ＡＭｍＡ５５／６（Ｂｏｄｉｎｅ，Ｄ．Ｍ．ら、Ｂｌｏｏｄ，８２，１９７５−８０，１９９３；Ｍｏｒｉｔｚ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１７８，５２９−３６，１９９３）からのレトロウイルス上清でコートしたプレートを用いた。
【０１１２】
感染４−６日後のフロー分析は、細胞培養液が＞９０％のＴ細胞を含み、その大部分は、それらのＨＬＡ−ＤＲおよびＣＤ５６発現によって示されるように強く活性化された（図２２）。
【０１１３】
ＡＤＡイソ酵素アッセイによる遺伝子トランスファー効率の分析（図２３）は、誘導されたマウスＡＤＡタンパク質の活性が、形質転換プロトコールが組み換えペプチドＣＨ−２９６を含む場合には、ヒト内因性タンパク質の活性と等しいことを証明した。ＢＳＡ上での感染では、アッセイの感受性以上のレベルの遺伝子トランスファーが得られた。
【０１１４】
これらのデータは、ヒト一次Ｔ細胞（ｐｒｉｍａｒｙ Ｔ ｃｅｌｌｓ）が、ポリブレンの様なポリカチオンの非存在下で、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２９６上の無細胞レトロウイルス−含有上清で効率よく形質転換されうることを、証明している。遺伝子配達効率は、上清＋ポリブレンのみを用いた標準的方法と比較して、非常に高い。
【０１１５】
Ｂ． 新しい組換えペプチド
コラーゲンＶ（ＣＯＬ）および塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）の両方が、フィブロネクチンのＨＢＤと配列相同性を示し、ヘパリン結合能力もまた有するため、図２４に示す７つの組み換えタンパク質を、レトロウイルス結合活性について分析した。
【０１１６】
最初に、ＣＯＬおよびＦＧＦを分析して、それらが機能的レトロウイルス結合配列を持つか否かについて決定した。最後に、細菌プレートを組換えペプチドでコートし、次いで、アンホトロピックＮＥＯレトロウイルスを含む上清を加えた。３０分後、プレートを徹底的に洗浄してすべての非結合レトロウイルス粒子を除去し、次いで、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞をそれぞれのプレートに加えた。遺伝子トランスファー効率は、８−１０日後、Ｇ４１８耐性（Ｇ４１８ｒ ）ＮＩＨ／３Ｔ３細胞コロニーの数で、評価した。
【０１１７】
図２５に示すように、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内への充分な遺伝子配達は、ＨＢＤ（フラグメントＣＨ−２７１）と又はコラーゲンＶ（Ｃ−ＣＯＬ）あるいはＦＧＦ（Ｃ−ＦＧＦ）の配列と組み合わせてＦＮの細胞結合ドメイン（ＣＢＤ）を含む組換えペプチド上で起こるＧ４１８ｒコロニーの増殖で、評価した。これらの結果は、レトロウイルス粒子がコラーゲンＶまたはｂＦＧＦ内の配列と直接的に結合することをも証明し、これらの配列を含む組換えペプチドを、造血細胞の標的に用いることができることの証拠となる。
【０１１８】
ＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５を発現するＨＥＬ細胞は、このように、組換えフラグメントＣ−２７４（ＣＢＤ）、Ｈ−２７１（ＨＢＤ）、ＣＨ−２７１（ＣＢＤ−ＨＢＤ）、ＣＯＬ、Ｃ−ＣＯＬ（ＣＢＤ＋ＣＯＬ）、Ｃ−ＦＧＦ、Ｃ−ＦＧＦ−ＣＳ１上で、および対照としてＢＳＡ上で、切除型（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ）神経増殖因子レセプターｐ７５鎖（ＮＧＦ−Ｒ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピックレトロウイルスで形質転換された。遺伝子トランスファ−効率を、８日後、ＮＧＦ−Ｒ発現のフローサイトメトリー分析によって分析した。
【０１１９】
図２６に示したように、低レベルの遺伝子トランスファーは、Ｃ−２７４でコートしたプレートまたはＢＳＡでコートしたプレート上で起こった。Ｈ−２７１（ＨＢＤ）およびＣＯＬ上での形質転換は、結果として３３−３６％のＮＧＦ−Ｒ陽性細胞を生じた。ＨＢＤ（ＣＨ−２７１）へのＣＢＤの付加は、切除型細胞の百分率を、この実験で最も高いレベルに上昇させた。興味深いことに、Ｃ−ＣＯＬフラグメント中のＣＯＬへのＣＢＤ（ＶＡＬ−５結合部位）付加も、また、フラグメントＣ−ＦＧＦ−ＣＳ１内のＣＳ−１（＝ＶＡＬ−４結合部位）の付加も、ＨＥＬ細胞の遺伝子形質転換を有意には上昇させなかった。
【０１２０】
最後に、１日ＩＬ−６およびＳＣＦで前刺激したヒトＣＤ３４＋骨髄（ＢＭ）細胞を、アンホトロピックＮＥＯレトロウイルスと共にキメラペプチド上で、１日間形質転換し、次いで、１．５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８の存在下または非存在下で前駆細胞アッセイのため、塗布した。
【０１２１】
Ｇ４１８ｒコロニーの％として培養１４日後に評価した効率良い遺伝子トランスファーは、細胞結合レセプターと組み合わせてＨ−２７１又はＦＧＦ内にレトロウイルス結合配列を含むフラグメント上で起こっていた。特記すべきことに、ＮＧＦ−ＲレトロウイルスでＨＥＬ細胞を遺伝的に修飾することによって得られる結果（図２７）に対して、Ｃ−ＦＧＦにＣＳ１部位を付加すると、クローン原性ＣＤ３４＋ＢＭ細胞内への遺伝子トランスファー効率が著しく促進されて、フラグメントＣＨ−２９６（ＣＢＤ＋ＨＢＤ＋ＣＤ１）で得られたレベルに近づく。
【０１２２】
このように、一次Ｔ細胞は、それらのＶＬＡ−４又はＶＬＡ−５インテグリンを通してフィブロネクチンと結合するＴ細胞の能力を用いるフィブロネクチンの粘着性ドメイン上のレトロウイルスベクターで効率よく形質転換できることが、証明された。また、レトロウイルス粒子は、フィブロネクチンのヘパリンＩＩ結合ドメインと相同性を示すコラーゲンＶまたはｂＦＧＦ内の配列に粘着すること、ならびに造血細胞および細胞系は、標的細胞のための結合部位と組み合わせてコラーゲンＶまたはｂＦＧＦのレトロウイルス結合配列を含む組み換えペプチド上で、効率よく遺伝的に修飾されうること、もまた示した。
【０１２３】
本発明は、前の記述を詳細に説明し記載するが、本発明は、その特徴を説明するものとして考えられるべきであって、特徴を制限するものとして考えるべきではなく、望ましい実施態様のみを記載すること、および本発明の思想の中に入る変化および修飾のすべてが保護されることを所望することを、理解するであろう。
【０１２４】
ここに引用されたすべての文献は、そのそれぞれが独立的に参照として採用される様に、ここにその全体を参照として採用される。さらに、同時係属の米国特許出願０８／２１８，３５５、１９９４年３月２５日出願、および同時係属の国際特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９５／０３８１７、１９９５年３月２７日に出願され合衆国指定、はその全体を参照としてここに採用する。
【技術分野】
【０００１】
発明の分野
本発明は、一般的にはウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させること、より具体的には、ウイルスに結合する領域と、細胞に結合する領域を含むポリペプチド類のような分子を用いて、細胞へのウイルス媒介性遺伝子導入を増強させる方法に関連する。
【背景技術】
【０００２】
発明の背景
遺伝子導入技術の進歩と同様に、多くのヒト疾患の分子的基礎の理解の進歩により、重度の遺伝病に対する体細胞遺伝子治療のプロトコールを開発するための最近の試みがもたらされた。最近、ヒト遺伝子治療に対する、見込みのある疾患候補は、酵素、もしくは他のタンパク質が不完全または見られないものであって、酵素もしくはタンパク質のレベルが厳密に調節される必要がないもの、特に本質的には調節されており、そしてその欠陥が骨髄で発見されたものを含む。
【０００３】
例えば、遺伝子治療の候補の一つの疾患は、重症複合免疫不全症（ＳＣＩＤ）を引き起こすアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）欠損症である。ＡＤＡ欠損患者は、骨髄細胞で検出できる酵素はわずか、もしくは存在しない。しかしながら、ＡＤＡ欠損は適合した骨髄移植によって治療された。ＡＤＡ正常細胞は、ＡＤＡ欠損細胞に比べて、選択的優位であり、正常に患者の骨髄に再配置（ｒｅｐｏｐｕｌａｔｅ）される。
【０００４】
骨髄細胞は、骨髄組織が簡単にｉｎ ｖｉｔｒｏで扱うことができ、再配置する細胞を含むことから、体細胞遺伝子治療のよい標的である。別の方法としては、ヒト臍帯血も多数の原始前駆細胞を含んでいることが以前に明らかにされている。長期にわたり再配置する細胞である造血幹細胞への遺伝子導入の成功は、これらの細胞の子孫において明示された様々な疾患に対して修正の治癒を導く可能性がある。
【０００５】
再配置する幹細胞への遺伝子導入、及び長期遺伝子発現は、若干の研究者によってネズミモデルで成し遂げられた。しかしながら、イヌ及び霊長類の様なより大きい動物での ｉｎ ｖｉｖｏ 実験は限られた成功しかなく、これはほとんど原始造血幹細胞の感染の低効率による。現在の遺伝子導入技術の限界は、成人骨髄（ＡＢＭ）に存在する幹細胞の数の少なさ、これらの細胞を精製する適当な方法がないこと、及び細胞周期でのこれらの原始細胞の画分が低いことを含む、いくつかの因子によって、ヒトプロトコールに利用する際、さらに複雑になる。
【０００６】
骨髄細胞を伴うネズミの実験、及び大動物の実験双方において、最も有効なプロトコールが、レトロウイルス産生細胞株と標的細胞の共培養を利用していることが注目された。また、ヒトでのＦＤＡ−立証済み遺伝子導入試験のほとんどは、遺伝子形質導入のために、組換えレトロウイルスに依存している。組換えレトロウイルスベクターは、導入に効果的であり、細胞ＤＮＡへ外来ＤＮＡを正確に、及び安定に組み込むことから、遺伝子治療に好ましい。これらのベクターは、遺伝子導入のための外来ＤＮＡを含み、ウイルスの病原性を除去するために、さらに修飾される。これらの修飾のために、ウイルスの産生は一般的にレトロウイルスパッケージング細胞を用いることによって行われる。しかしながら、臨床遺伝子治療のために、無細胞の形質導入が、生物学的に安全で、品質管理についての関心のためにさらに好ましい。不幸なことに、幹細胞などの造血細胞への効率のよい遺伝子導入は、一般的にウイルス産生細胞との共培養なしには不可能であった。
【０００７】
最近、遺伝子導入効率は、感染中に標的細胞を間質細胞へ暴露することで増加されうることが示された。間質細胞は、造血微環境（ＨＭ）の主要な構成物である。ＨＭは、マクロファージ、間質細胞、内皮細胞、含脂肪細胞、及び様々な特定の接着分子によって構成されている複合細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の組織化されたネットワークによって成り立っている。ラミニン、コラーゲン、トロンボスポンジン、プロテオグリカン類、グリコサミノグリカン類、及びフィブロネクチンなどのＥＣＭ分子は、造血細胞及び成長因子双方のための固定部分を提供する。このレトロウイルス感染における間質の促進効果の基礎をなす機構は明らかではないが、造血細胞の増殖及び分化の生理学的調節が、これらの細胞がＨＭの細胞と直接接触されたときに起こるということが以前から知られていた。
【０００８】
長期にわたり再配置する造血幹細胞及び他の細胞への効率的な遺伝子導入は問題を残しており、現在の造血性の疾患及び他の疾患の治癒を目指す療法への遺伝子導入プロトコールの広範囲での適用を阻害する。求められていることは、過去の方法の危険および限界を排除したほ乳類細胞への遺伝的物質の効果的な導入の方法を求めることであり続けている。本発明は、この必要性に取り組んだものである。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
発明の概要
簡単に、本発明の一つの好ましい様態は、レトロウイルスベクターによる造血細胞の形質導入の効率を増加させる方法を提供する。この方法は、レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるのに効果的な、十分に純粋なフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片の存在下で、複製欠損組換えレトロウイルスベクターを、生存している造血細胞に感染することを含む。フィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片は、天然に生じる物質から由来しうるか、また合成的に由来することができ（例えば、遺伝的に組換え、もしくは化学的合成技術によって設計される）、もしくは、天然に生じるもの及び合成物質の組み合わせにより由来しうる。加えて、本発明で用いたフィブロネクチンポリペプチド、もしくはペプチド類は、本発明に従って、形質導入を高めることができるのに必要な接着特性を持っている、機能的ポリペプチドをそれでもなお提供する、自然に生ずるフィブロネクチンのアミノ酸配列の変異を含む可能性があることが理解されるであろう。
【００１０】
他の本発明の好ましい様態は、レトロウイルスによる細胞形質導入の効率が増加するのに効果的な量の、固定化されたフィブロネクチン、固定化されたフィブロネクチン断片、もしくは固定化されたそれらの混合物存在下で、生存している造血細胞へ外来ＤＮＡを運ぶ複製欠損組換えレトロウイルスを感染することを含む、形質導入された造血細胞を産生する方法を提供する。
【００１１】
本発明の他の好ましい様態は、細胞移植の改善された方法を提供する。この方法は、ドナー動物からの生存している造血細胞を得る工程、形質導入された生存している造血細胞産生のために、固定化された形で、形質導入の効率を増加させるのに効果的なフィブロネクチンおよび／またはその断片の存在下で、造血細胞を組換えレトロウイルスベクターにて感染させる工程、及び細胞移植片として、この形質導入された生存している造血細胞をレシピエント動物に導入する工程を含む。一つの好ましい方法において、感染細胞は自己提供体に導入することができる。
【００１２】
本発明の他の好ましい様態は、細胞移植法に適した、形質導入された臍帯血細胞を得る方法を提供する。この方法は、レトロウイルスベクターによる造血細胞の形質導入効率を増加するために効果的な量の固定化されたフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片の存在下で、臍帯血由来の造血細胞に、複製欠損組換えレトロウイルスベクターを感染させることを含む。本発明はまた、これらの方法で得ることのできる臍帯血由来の生存している形質導入された細胞集団を含み、そして細胞移植片として動物体内へ形質導入された細胞集団を導入することを含む、細胞移植方法を含む。
【００１３】
本発明の上記言及の様態のさらに固有の局面に従って、使用されたフィブロネクチンまたはフィブロネクチン断片は、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のレトロウイルス結合活性を提供する第一のアミノ酸配列、及び、フィブロネクチンのＣＳ−１部位の細胞結合活性を提供する第二のアミノ酸配列を含みうる。これらの二つのフィブロネクチンの結合部位を一緒に用いることは、レトロウイルスによる標的細胞の形質導入効率を非常に顕著に高めることが証明された。
【００１４】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスベクターによる予め決定した標的細胞の形質導入の効率を高めるための構築物を産生する方法を提供する。この方法は、前記標的細胞と結合するリガンドと、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のレトロウイルス結合活性を提供するアミノ酸配列を含むポリペプチドとを、共有的に結合する工程を含む。本発明はまた、レトロウイルスによる、予め決定した標的細胞の形質導入の効率を増加させるために、そしてこの形質導入された細胞を用いて細胞移植処置法のために、これらの構築物を利用することを含む方法を含む。
【００１５】
本発明の他の好ましい様態は、多量のウイルスを局在化するために、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のウイルス結合活性を含む、固定化された効果的な量のフィブロネクチンまたはフィブロネクチン断片の存在下で、ウイルスを含む培養液をインキュベートすることを含む、多量のウイルスを局在化するための方法を提供する。
【００１６】
さらに、本発明の他の好ましい様態は、一般的に、以下の節でさらに示すように、十分に純粋なおよび／または固定されたフィブロネクチン、またはそのフラグメントを含む、形質導入された生存している造血細胞、及び細胞培養を提供すると同時に、細胞へのレトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入を行うためのキットを提供する。
【００１７】
さらなる本発明の好ましい様態は、レトロウイルスと細胞を共局在化させ、細胞の形質導入効率を増加させるために、細胞と結合するリガンドと、レトロウイルスと結合するリガンドとを含む、特定の量の固定化物質である、効果的な固定された量のポリペプチドのような物質の存在下で、レトロウイルスを細胞に感染させることを含む、レトロウイルスによる生存している細胞の形質導入された群を得るための方法を提供する。さらに驚いたことに、それらの工程は、さらに都合よいことに、今まで、形質導入効率を増加させることを望むために、遺伝子導入プロトコールにおいて使用されていたものである、ヘキサジメトリンブロミド（１，５−ジメチル−１，５−ジアゾウンデカメチレンポリメトブロミドとしても同定されている）の非存在下で、もしくは少なくとも実質的に存在しない状態で行われる。しかしながら、驚くべきことに、ヘキサジメトリンブロミドの存在は、本発明の共局在化媒介性遺伝子導入工程における形質導入効率を増大させるのではなく、むしろ減少させることが発見された。従って、さらに好ましい本発明の様態は、ヘキサジメトリンブロミド、もしくは共局在化のための物質の非存在下で行われた同じ様なプロトコール、例えば類似の共培養プロトコールにおける、形質導入効率を増加させる他の物質の非存在下で行われる。結果として生ずる改善した細胞集団、及び細胞移植方法はまた、本発明の一部分を形成する。
【００１８】
本発明の他の好ましい様態は、細胞に結合するアミノ酸配列と、レトロウイルスに結合する、Ｖ型コラーゲン、または繊維芽細胞増殖因子由来のアミノ酸配列を含むポリペプチドの存在下での、レトロウイルスと細胞の感染の過程を含む、レトロウイルスによる生存している細胞の形質導入群を得るための方法を提供する。
【００１９】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスと細胞を共局在化し、細胞の形質導入効率を増加させるために、Ｔ細胞に結合するリガンドとレトロウイルスに結合するリガンドとを含む物質の存在下で、レトロウイルスを細胞に感染させることを含む、レトロウイルスによるＴ細胞の形質導入の方法を提供する。好ましい形において、本方法で用いた物質は、Ｔ細胞に結合する第一のアミノ酸配列と、レトロウイルスに結合する第二のアミノ酸配列を含むポリペプチドである。
【００２０】
本発明の他の好ましい様態は、レトロウイルスを局在化させる方法を提供する。レトロウイルスに結合するＶ型コラーゲンまたは繊維芽細胞増殖因子由来のアミノ酸配列を持つ、効果的な量の分離されたポリペプチドに、レトロウイルスを接触させることを含む。
【００２１】
ほ乳類細胞の効果的なレトロウイルス感染の方法を提供することは本発明の目的である。
共培養の必要性を取りのぞいた、レトロウイルスベクターによる遺伝子導入の方法を提供することは、本発明のさらなる目的である。
【００２２】
自己および／または同種の細胞移植のための、改善した方法および細胞培養を提供することは、本発明のさらなる目的である。
本発明のこれらのそして他の目的、利点、及び特徴は、すぐに以下の記載によって、当業者に対しては容易に明らかになるであろう。
【課題を解決するための手段】
【００２３】
好ましい様態の記述
本発明の原理の理解を促進する目的のために、参考文献は現在、それらの特定の態様をなし、固有言語は同様に記載するために使用しうる。それにも関わらず、本発明の範囲を制限しないことがそれによって、このような変化、さらには改良、そして本発明が関係する技術分野での当業者が想到したであろう様に企画され、本明細書に示されたように、このような本発明の原理の応用を意図していると理解されるであろう。
【００２４】
以上に指摘したように、本発明は、レトロウイルスなどのウイルスによる、生存している細胞の形質導入の頻度を増加させる方法を提供する。本発明はまた、組換えレトロウイルスベクターを用いて、生存している細胞への効果的な遺伝子導入の方法、形質導入された細胞を得る方法、そして自己及び他の細胞移植を行うための方法と物質も提供する。
【００２５】
本発明の一つの特徴は、フィブロネクチン（ＦＮ）及びＦＮの細胞結合部位ＣＳ−１を含むフィブロネクチン断片が、フィブロネクチン受容体を持ち、それによって、フィブロネクチンもしくはその断片への結合能力を示す、たとえば投入された前駆細胞及び原始造血幹細胞、もしくは長期培養始原細胞（ＬＴＣ−ＩＣ）といった造血細胞などの細胞へのレトロウイルス媒介性遺伝子導入を顕著に増強するという発見である。都合よいことに、この上昇した効率は、ウイルス産生細胞との共培養を必要としない。本発明の他の特徴は、ヘパリン−ＩＩ結合部位の中に位置するフィブロネクチンのウイルス結合部位の発見を利用する。本発明の別の特徴は、ヘパリン−ＩＩ結合部位に局在するフィブロネクチンのウィルス結合部位の発見を利用する。このウイルス結合部位は、例えば、ウイルスを標的細胞に送達するための広い範囲の構造を含む多くの応用において、ウイルス粒子を局在化させるために使うことができる。
【００２６】
本発明のある好ましい観点に従った組換えウイルスベクターは、外来ＤＮＡを含み、そして非病原性、すなわち複製欠損である。これらのベクターは、外来ＤＮＡを動物細胞、特にほ乳類細胞のような宿主細胞の細胞ＤＮＡの中に効果的に導入し、正確にそして安定に組み込む。例えば、本発明において、関心の遺伝子のコード配列からの塩基の列を含むヌクレオチド配列を、遺伝子を駆動するための適当なプロモーター、一般的には外来のプロモーターの調節下で、組換えレトロウイルスベクターの中へ組み込むことができる。これに関連して、外来ＤＮＡは、天然、もしくは人工的どちらかで産生したＤＮＡを含むことができ、異質組織源から得られた部分から由来することができる。この異質組織源の部分は、天然に生じたもの、もしくは化学的に合成された分子である可能性があり、そしてこれらの部分は、ライゲーションもしくはこの分野で既知の他の方法で連結する。
【００２７】
ウイルスに組み込まれた外来ＤＮＡは、細胞への導入のための関心のいずれかのＤＮＡであり得る。例えば、外来ＤＮＡは、知られている異常と関係するＡＤＡなどのタンパク質、もしくはアンチセンスＲＮＡ、リボザイム、もしくは疑似プライマー（例えば、１９９０年１１月１５日発行のＷＯ ９０／１３６４１ を参照）、細胞内抗体（例えば、１９９４年２月３日発行の ＷＯ ９４／０２６１０ を参照）、成長因子、もしくは類似のものをコードすることができる。
【００２８】
示したように、導入されたヌクレオチド配列は、プロモーター調節下にあり、従って一般的にプロモーターの下流にあるであろう。別の言い方をすれば、プロモーター配列は、一般的にコード配列の上流（すなわち５’末端）にあるであろう。このような傾向において、プロモーターと共同する他の調節因子（例えばエンハンサー配列）や、外来コード配列の転写を行うための転写開始コドンが存在しうるか否かについてはよく知られている。「調節下」の語は、導入された遺伝子の転写を達成するために必要であるような、他の成分の存在を企図する。同様に組換えＤＮＡは好ましくは導入されたコード配列より下流に終止配列を含みうる。
【００２９】
選択マーカー、もしくは他の選別できる好要因を提供する外来ＤＮＡを含むレトロウイルスベクターを使用することができる。例えば、ベクターはネオマイシンなどの抗生物質を含む、様々な選択薬剤に対する抵抗性を提供する一つもしくはそれ以上の外来性遺伝子を含むことができる。本発明で用いることのできた典型的なベクターは、例えば、すべてすでに Ｍｏｒｉｔｚ ｅｔ ａｌ． （１９９３） Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． １７８：５２９ によって報告されている、 Ｎ２／Ｚｉｐ ＴＫＮＥＯベクター（ＴＫＮＥＯ）（ＮＩＨ／３Ｔ３細胞上の力価：１×１０５ Ｇ４１８ｒ ｃｆｕ／ｍｌ）、ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡベクター、及びＺｉｐＰＧＫ−ｍＡＤＡベクターである。ＴＫＮＥＯベクターでは、ネオホスホタランスフェラーゼ配列がヘルペス・シンプレックスのチミジンキナーゼプロモーターを介して、センス方向に発現している（５’長末端繰り返しＬＴＲに関係する）。このベクターは形質導入された細胞の同定を促進するネオマイシン耐性を提供する選択マーカー遺伝子を含む。ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡベクターにおいて、ヒトＡＤＡ（”ｈＡＤＡ”）ｃＤＮＡは、ヒトホスフォグリセレートキナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターを介して、５’ＬＴＲと関連するセンス方向に発現している。これは、ただ一つの発現しうる遺伝子配列を含み、優性選択マーカーを欠く。ＺｉｐＰＧＫ−ｍＡＤＡ（ＰＧＫ−ｍＡＤＡ）ベクターは、ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡがネズミＡＤＡ（”ｍＡＤＡ”）ＤＮＡに置き換えられたこと以外は、ＺｉｐＰＧＫ−ｈＡＤＡと同じものである。これら、及び他のウイルスベクター、及びこれらの産生手法はよく知られており、これらの本発明における実行、及び使用は、本明細書中の開示を与えられた当業者の間ではよくあることである。
【００３０】
本発明中で使用したウイルスベクターは、ヒトフィブロネクチンのアミノ酸配列を含む、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列に結合する能力を示す。以下で議論するように、本発明はいずれかの説に限られるわけではないが、それぞれの機能部位に対する、ウイルスと細胞の結合を介して、ウイルスと標的細胞とが共局在化することは、ウイルスによる細胞の形質導入の増大を促進すると信じられている。この考えでは、ヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列に対するウィルスの結合能力、そして従って、本発明で効果的に役に立つためのウイルスの能力は、以下の実施例８、及び９で記載したような決まった操作を用いてすぐに確かめられる。一般的にいえば、これらのアッセイは、固定化ポリペプチドマトリックスからの洗浄に耐えるために、ウイルス粒子が、ヘパリン−ＩＩ結合部位を含む固定化ペプチドに結合する範囲を決定する。簡単に言えば、例えば、フィブロネクチンヘパリン−ＩＩ結合部位を含む、固定化ポリペプチドを含むウェルの中で、ウイルス含有上清をインキュベートできる。次いでこのウェルをさらに生理食塩水緩衝液で洗い、その後、ウイルスに対する標的細胞を、ウェルに残っている感染活性のレベルを決定するために、ウェルの中でインキュベートする。初期ウイルス上清と比べた感染活性、もしくは力価の減少が測定され、同じ対照実行（例えばＢＳＡ−コートウェルの使用）と比較した。対照ウェルに比べてヘパリン−ＩＩ部分を含むウェルでの顕著に高い力価は、本発明の観点における使用に、対象ウイルスが適していることを明らかにしている。このスクリーニング手法を促進するために、ウイルスベクターは、以上で議論したように、選択マーカー遺伝子を含んでもよい。
【００３１】
本発明で使用するためのフィブロネクチン断片は、天然、もしくは合成起源のものでよく、例えば以前に、 Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ． （１９８１） Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２５６：７２７７ ； Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ （１９８６） Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０２：４４９ ； 及び Ｂｅｒｎａｒｄｉ ｅｔ ａｌ． （１９８７） Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０５：４８９ によって記載されたような天然に生ずる物質からの十分な純度で調整されうる。この考えにおいて、本明細書の、十分に純粋なフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片についての言及は、それらがフィブロネクチンが天然で生じる他のタンパク質から、本質的に遊離していることを意味するつもりである。本発明で使用するための、十分に純粋なフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片は、例えば、一般的にはＴａｇｕｃｈｉら、そして日本、京都の宝酒造株式会社に与えられた１９９３年３月３０日の米国特許 Ｎｏ． ５，１９８，４２３で記載されたように、組換えにより産生することができる。特に、以下の実施例でＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ２７１、ＣＨ２９６及びＣ−ＣＳ−１として同定された組換え断片、及びそれらを入手する方法は、この ’４２３特許で詳細に記載されている。以下の実施例で用いたＣ２７４断片は、米国特許 Ｎｏ． ５，１０２，９８３で記載されているようにして入手した。これらの断片、もしくは断片からの日常的に引き出すことのできるものは、これも米国特許 Ｎｏ． ５，１９８，４２３ に記載されているようにＦＥＲＭ Ｐ−１０７２１（Ｈ−２９６）、ＦＥＲＭ ＢＰ−２７９９（メチオニンを介してＨ−２７１に結合するＣ−２７７）、ＦＥＲＭ ＢＰ−２８００（メチオニンを介してＨ−２９６に結合するＣ−２７７）、及びＦＥＲＭ ＢＰ−２２６４（Ｈ−２７１）として工業技術院（日本）の機関である発酵研究所（Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）に寄託されている、Ｅ． ｃｏｌｉの培養によって入手できる。加えて、本明細書中の使用可能なフィブロネクチン断片に関する、もしくはこのような断片のための開始の物質に関する役に立つ情報は、上記記載の組換え断片についてさらに報告されているＫｉｍｉｚｕｋａら（Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， １１０， ２８４−２９１ （１９９１））、ヒトフィブロネクチン遺伝子の構造について報告しているもの（ＥＭＢＯ Ｊ．， ４， １７５５−１７５９ （１９８５））、ヒトフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位について報告しているもの（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ２５， ４９３６−４９４１ （１９８６））において見いだしうる。ＣＳ−１細胞接着部位とヘパリン−ＩＩ結合部位双方を含むフィブロネクチン断片、例えば、約３０もしくは３５ｋＤ断片（３０／３５ＦＮ）、そして以下の実施例で報告する様々な組換え断片を含むものは、このようなさらなる作業の中で造血細胞への遺伝子導入の効率を顕著に高めることが発見されており、そして本発明での使用に好ましい。従って、大きくいえば、本発明で用いたフィブロネクチン関連ポリペプチド、もしくはポリペプチド類は、ウイルスに結合するフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のアミノ酸配列と同様に、フィブロネクチンのＣＳ−１細胞接着の細胞結合活性を与えるアミノ酸配列を提供すると理解されるだろう。当業者は、細胞及びウイルス結合活性の必要性は、これらの機能的フィブロネクチン部位の天然アミノ酸配列、及び天然アミノ酸配列と違うが、十分に細胞結合及びウイルス結合活性を示す点では似ているアミノ酸配列両方により提供されうるということを理解するであろう。これらの類似アミノ酸配列は、これらの対応する天然配列との実質的な配列相同性を示し、望ましい細胞結合特性もしくは、ウイルス結合特性を持つアミノ酸配列を提供する一方で、アミノ酸が削除されたもの、置換されたものおよび／または修飾されたものを含むことができる。
【００３２】
この考えでは、適切な生物技術分野は、対象の機能的部位内でアミノ酸の削除、置換、付加、もしくはその他の修飾を日常的に起こしうるような状態に進歩した。次いで結果としてのアミノ酸配列は、望ましい細胞結合活性、もしくはウイルス結合活性を求めて、日常的にスクリーニングされうる。例えば、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位の変異体、もしくは修飾型のウイルス結合活性は、一般的に上記で議論し、さらに具体的には、ウイルスインキュベート、洗浄、対照と比較した感染維持力を決定するためのウイルス力価アッセイを用いた、以下の実施例８及び９のようにしてスクリーニングすることができる。本明細書中で提供した技術を得れば、これらの結合アッセイは代表的で、しかし当業者に対しては日常的な実験であり得る。
【００３３】
フィブロネクチンのＣＳ−１細胞接着部位に対する修飾、もしくは変異型に対する細胞の結合、もしくは他の細胞結合ポリペプチド類の細胞結合は、同じく慣例の手法を用いてアッセイされうる。例えば、このような手法は、 Ｎａｔｕｒｅ， ３５２：４３８−４４１ （１９９１）に記載のものを含む。簡単にいえば、細胞結合ポリペプチドをプラスチックディッシュにコートし、分析すべき細胞集団を培養液中で３０分〜２時間重層する。このインキュベート期間後、タンパク質への非接着の細胞を回収し、計数し、生存数をアッセイする。ポリペプチドへ接着した細胞も、トリプシン、もしくは細胞解離緩衝液（例えば Ｇｉｂｃｏ）を用いて回収し、計数し生存数を調べる。いくつかの場合、例えば、造血コロニー形成細胞のために、この細胞のコロニー形成特性を確かめるために、細胞をさらに１２〜１４日間培養する。次いで付着細胞の割合を測定し、プラスチックディッシュにコートしたウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）などの標準対照と比較する。アッセイしたポリペプチドに対する標的細胞の実質的な結合は、ポリペプチド／細胞の組み合わせが本発明に適合するという指摘を提供し、このポリペプチドは、ウイルスベクターによる標的細胞の感染を高めるための、本発明の構築物を作製するために、フィブロネクチン由来のレトロウイルス結合断片に結合しうる。
【００３４】
本発明の、さらに固有の観点により、レトロウイルスベクターによる形質導入を高めるために使用した、ウイルス結合ポリペプチドは、（ｉ）ヒトフィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位のＡｌａ１６９０−Ｔｈｒ１９６０に対応する第一のアミノ酸配列を含み、これは式により示す（配列番号１）
【００３５】
【化１】
【００３６】
もしくは、レトロウイルスの結合能力を示すための、それに対して十分に類似のアミノ酸配列；
及び（ｉｉ）式により示される、ヒトフィブロネクチンのＩＩＩＣＳ結合部位（ＣＳ−１細胞結合部位）の一つの部分に対応する、第二のアミノ酸配列（配列番号２）、
Ａｓｐ Ｇｌｕ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ｖａｌ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｈｉｓ Ｐｒｏ Ａｓｎ Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｙ Ｐｒｏ Ｇｌｕ Ｉｌｅ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｖａｌ Ｐｒｏ Ｓｅｒ Ｔｈｒ ；
もしくは、原始前駆細胞および／または長期にわたり再配置する（幹）細胞などの造血細胞結合能を示すための、それに対して十分に類似のアミノ酸配列を含みうる。
【００３７】
以前に言及したように、結果としてのアミノ酸配列が、ウイルス結合能（ヘパリン−ＩＩ結合部位の場合）、及び標的細胞結合能（ＣＳ−１部位の場合）を示すために、これらの天然配列のある修飾および／または変異は、本発明の実施内で可能であることが理解されるであろう。
【００３８】
例えば、ヘパリンと結合し、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位との本質的に配列同一性を示す配列を持つ既知のポリペプチド類は、例えば、Ｖ型コラーゲン及び繊維芽細胞増殖因子を含む。以下の特異的な実施例１６で記載のように、ＶＬＡ−４および／またはＶＬＡ−５のための結合部位などのような細胞結合配列と連結する、これらの配列を含むポリペプチド類は、細胞結合配列に結合する細胞への、レトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入を高めるために使用できる。
【００３９】
本発明の一つの観点は、ｉｎ ｖｉｔｒｏの細胞治療、及び続いて宿主への標的細胞の移植を伴う、すなわち形質導入された標的細胞による宿主への「移植」として知られる、宿主への標的細胞の形質導入の体細胞の遺伝子治療の方法を提供する。造血、または他の細胞、例えば骨髄もしくは末梢血から単離された幹細胞、胚性幹細胞、もしくはそれ以外のＣＤ３４＋、および／もしくはＣ−ｋｉｔ＋として特性化された細胞は、ヒトもしくはその他の哺乳動物源より標準プロトコールを用いて集められる。例えば、造血細胞は、ヒトドナーの骨髄または末梢血、もしくはヒト胎児臍帯血から集めることができる。いったん回収した後、造血細胞は所望により幹細胞および／または始原前駆細胞内で、それらを濃縮するために、標準手技によって処理する。次いで造血細胞は、例えば組織培養プレート上で適当にインキュベートされうる。所望により、この期間中、接着陰性低密度単核細胞は、レトロウイルス感染の前に前刺激されうる。当該技術分野で既知の、そして本明細書で用いられている前刺激は、レトロウイルスに暴露する前に、成長刺激因子に細胞を暴露する過程と関連する。このような前刺激は、レトロウイルスによる造血細胞の形質導入を改善することが証明された。
【００４０】
前刺激に続いて、細胞を採集し、レトロウイルスによる細胞形質導入の効率を高める、本明細書に記載される、フィブロネクチンまたはその断片とともにインキュベートする。好ましくは、細胞は精製されたおよび／または不溶性、例えば、固定化フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片とともにインキュベートする。次いで細胞は、ウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるのに効果的な量のフィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で、組換えウイルス、例えば細胞中の酵素もしくは他のタンパク質の欠損、もしくは異常を修正するための遺伝子を含んだレトロウイルスに感染させることができる。次いで結果としての形質導入造血細胞は、慣習的に、例えば、静脈注射で動物細胞移植レシピエントへ導入し、自己ドナーが望ましいが、異種遺伝子移植も含まれ、後者は特に、以下で議論するように、移植に対して臍帯血細胞が使用される。
【００４１】
本発明の方法は、例えば、癌、白血病、タンパク質欠損もしくは異常に関連する疾患を含む、骨髄疾患を含む様々な疾患に対する遺伝子標識プロトコル、もしくは遺伝子治療プロトコール、及び、化学療法などの他の治療プロトコールへの抵抗性を改善するために、造血細胞を修飾する治療の中で使用されうる。本発明が使用される可能性のある代表的な疾患は、従って、ＡＤＡ欠損、例えばＡＤＡ−欠損ＳＣＩＤ、小児急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、神経芽細胞腫、及び成人ＡＭＬ、及び急性リンパ球性白血病（ＡＬＬ）を含む。
【００４２】
本発明の一つの特に好ましい様態において、細胞移植のために用いられた細胞は、ヒトの臍帯血から入手する。従って、ヒト臍帯血は収集され、例えば接着陰性低密度単核細胞集団を入手することにより、生存している始原造血前駆細胞および／または幹細胞に濃縮される。その後この集団は、そこで所望により、前刺激され、そしてレトロウイルスベクターと、ベクターによる細胞の形質導入の効率を高めるための、固定化および／または精製フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で、インキュベートする。この考えにおいて、臍帯血由来の始原造血細胞および／または幹細胞は、たとえフィブロネクチンが臍帯血中のＥＣＭの構成成分ではなく、たとえ臍帯血由来の始原前駆細胞及び幹細胞が、骨髄からのものと違う特徴を有する場合でも、フィブロネクチン、もしくはフィブロネクチン断片の存在下で、かなり高められる。特に、臍帯血幹細胞は、ＣＤ３４＋、ＨＬＡ−ＤＲ＋として特徴づけられており、一方、骨髄からの幹細胞は、ＣＤ３４＋、ＨＬＡ−ＤＲ−として特徴づけられた。臍帯血由来の始原前駆細胞が、フィブロネクチンもしくはフィブロネクチン断片の存在下で高められた様式で、効率的に形質導入されることの発見により、造血細胞の、簡単で高い幹細胞濃縮源の使用を可能になった。さらに、始原前駆細胞、及び幹細胞を濃縮した臍帯血由来の異種遺伝子移植による、多くの患者の移植の成功についての証拠により、臍帯血を造血細胞のとても好ましい源とすることができる（Ｋｏｈｌｉ−Ｋｕｍｍｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒｉｔ． Ｈｅａｅｍａｔｏｌ． ８５：４１９−４２２ （１９９３） ； Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌ １７：３１３−３２９ （１９９１） ； Ｇｌｕｃｋｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｈｅａｅｍａｔｏｌ． ４５：５５７ （１９８０） ； Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ：Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ ｐｐ． ６０−６８ （１９８９） ； Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ ７９：１８７４−１８８１ （１９９２） ； Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ ８２−８６ａ （要約）を参照）。
【００４３】
もし望めば、回収した、形質導入した造血もしくは他の細胞を、形質導入の効率及び遺伝子発現について試験することができる。例えば、本発明によって提供される、レトロウイルス媒介性遺伝子導入での顕著な改善は、以下の特定の実施例によって示されており、フィブロネクチンもしくは効果的なフィブロネクチン断片の存在下で、レトロウイルスによる高感染及び遺伝子導入効率を示す、いくつかの試験を記載している。特に、ＰＧＫ−ｈＡＤＡレトロウイルスに感染されたネズミ造血細胞は、高いレベルの形質導入ＡＤＡ ｃＤＮＡを発現した。同様に、ヒト前駆細胞コロニーに感染させた個々のＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルスは、ネズミＡＤＡのレベルが、内在性ヒトＡＤＡタンパク質より１０倍も上昇して発現した。従って、導入効率の説得力のある解析をするために、前駆細胞コロニーは、もし形質導入されたｍＡＤＡの発現が、内在性ヒトＡＤＡレベルと同等か、それ以上ある場合にのみ、形質導入されたとみなされた。ＴＫＮＥＯベクター由来のネオの高レベルの発現は、ネオホスフォトランスフェラーゼ（ネオ遺伝子産物）活性に対するアッセイとしてＧ４１８薬剤耐性によって検出した。
【００４４】
上で示したように、本発明の方法は、レトロウイルス産生細胞の存在下での共培養を必要とすることなく、都合よく行われる。従って、本発明の一つの観点によると、レトロウイルス媒介性遺伝子導入は、標的造血細胞、もしくは他の細胞以外の細胞が実質上非存在下において実行しうる。例えば、レトロウイルスベクタープラスミドを含む産生細胞を培養することができ、上清が回収される。次いでレトロウイルス含有上清は、好ましくは固定型の、すなわち、感染が行われる基質上、さもなければ、感染用の培養液と接触する場合のフィブロネクチンおよび／またはフィブロネクチン断片存在下で、造血細胞の感染に用いることができる。この考えにおいては、高力価、ヘルパーなしのレトロウイルスを産生する産生細胞も、本発明での使用に適合することが企図される。これらは、例えば、本分野で既知の、多くの他のパッケージング細胞株と同様に、Ｐｓｉ−２、Ｃ２、ＰＡ１２、ＰＡ３１７、ＧＰ＋ｅｎｖＡＭ１２などのパッケージング細胞を含む。
【００４５】
本発明の他の特徴によると、フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位内のアミノ酸に対する、強いウイルスの結合は、広い範囲の細胞型にわたるウィルス療法に対する送達システムを構築するために使用しうる。この目的のために、フィブロネクチン由来のレトロウイルス結合部位を含むポリペプチドは、標的細胞に特異的な、この構造を与える、いずれかのリガンドとも共有的に結合しうる。このアプローチは、それぞれの標的細胞に対する特異的レトロウイルス細胞株の構築の、前もった必要性を回避しうる（Ｋａｓａｈａｒａ， Ｎ．， Ａ． Ｍ． Ｄｏｚｙ， ａｎｄ Ｙ．Ｗ． Ｋａｎ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ， Ｖｏｌ． ２６６， ｐｐ． １３７３−１３７６ （１９９４） ；そしてＶａｌｓｅｓｉａ−Ｗｉｔｔｍａｎｎ， Ｓ．， Ａ． Ｄｒｙｎｄａ， Ｇ． Ｄｅｌｅａｇｅ， Ｍ． Ａｕｍａｉｌｌｅｙ， Ｊ． Ｍ． Ｈｅａｒｄ， Ｏ． Ｄａｎｏｓ， Ｇ． Ｖｅｒｄｉｅｒ， ａｎｄ Ｆ． Ｌ． Ｃｏｓｓｅｔ， Ｊ． Ｖｉｒｏｌ．， Ｖｏｌ． ６８， ｐｐ ４６０９−４６１９ （１９９４））。標的構造の特異性は、例えば、１）細胞接着タンパク質、２）ホルモン、もしくはサイトカイン、３）標的細胞に対するモノクローナル抗体、４）標的細胞に結合する糖鎖（Ｇ．Ａｓｈｗｅｌｌ， ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， Ｖｏｌ ５１， ｐｐ． ５３１−５５４ （１９８２））、５）標的細胞代謝物、もしくは６）標的細胞に結合する機能的ポリペプチド類を含む、リガンドを使用することにより提供されうる。遺伝子送達のための構築物の効率は、いくつかのヘパリン−ＩＩウイルス結合部位を含むこと、そして従って、標的細胞に対して送達されるウイルス粒子の量を増加させることにより改善されうる。例えば、米国特許 Ｎｏ．５，１９８，４２３に記載のような、Ｐｒｏ１２３９−Ｓｅｒ１５１５に対応しているヒトフィブロネクチンの細胞結合部位は、ＢＨＫ及びＢ１６−Ｆ１０細胞（Ｋｉｍｉｚｕｋａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｖｏｌ． １１０， ｐｐ． ２８５−２９１ （１９９１））を含む細胞に結合することが示された。加えて、ヘパリン−ＩＩ部位、それ自身は、繊維芽細胞、内皮細胞、及び腫瘍細胞に結合することが示された。これらのポリペプチド配列は、レトロウイルスによる感染のために、予め決定した細胞を標的にするために、フィブロネクチン由来の、レトロウイルス結合部位と結合しうる。
【００４６】
造血系における、典型的な応用例は、それぞれ、高度特異的な赤血球、もしくは顆粒球前駆細胞を標的にするための、フィブロネクチンのレトロウイルス結合部位と結合する、エリスロポエチンもしくはＧ−ＣＳＦの構造をも含む。他の本発明に従った共通の応用は、特異的もしくは優位的に悪性細胞と結合するリガンドと、レトロウイルス結合部位、または部位群を組み合わせることでありうる。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏ、及びｉｎ ｖｉｖｏでも、乳癌細胞の成長は、フィブロネクチンからの一つもしくはそれ以上のウイルス結合部位を含んでいる本発明の構造の中のリガンドとして、供給されるであろう、黄体形成ホルモン放出誘導体（Ｅｍｏｎｓ， Ｇ． ｅｔ ａｌ．， Ｈｕｍ． Ｒｅｐｒｏｄ． ９：１３６４−１３７９ （１９９４））、エストロジェン（Ｔｏｌｃｈｅｒ， Ａ． Ｗ．， Ｏｎｃｏｌ． ８：３９−４３ （１９９４））、もしくは抗エストロジェン（Ｈｏｗｅｌｌ， Ａ． ｅｔ ａｌ．， Ｌａｎｃｅｔ ３４５：２９−３０ （１９９５））、プロゲステロジェン、または抗プロゲステロジェン（Ｋｌｉｊｎ． Ｆ． Ｇ ｅｔ ａｌ．， Ｈｕｍ． Ｒｅｐｒｏｄ． ９ Ｓｕｐｐｌ． １：１８１−１８９ （１９９４） ； Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ， Ｋ． ｅｔ ａｌ．， Ｓｅｍｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２１：６７２−６８７ （１９９４））のような標的細胞上の受容体に結合する物質を使用することで、影響されうることが示された。さらなる例として、甲状腺（癌）細胞はＪｏｄｉｄの構築物を用いることで高度に、特異的に標的化されうる。肝（癌）細胞は、ＨＤＬ、もしくはその一部を含む構築物により標的化されうる。最後に、モノクローナル抗体とフィブロネクチンのレトロウイルス結合部位の構造は、抗体が入手できるどんな細胞及び臓器を標的化することもできる。従って広い範囲のほ乳類細胞型が、ウイルスベクターに結合し局在化するために、フィブロネクチンのレトロウイルス結合部位の能力を利用することで、標的になりうる。
【００４７】
従って、本発明の他の好ましい様態は、標的細胞のウイルス形質導入を高めるために用いることのできる構築物を準備することを含む。フィブロネクチンのヘパリン−ＩＩ結合部位の、ウイルス結合アミノ酸配列は、標的細胞が結合するリガンドと結合する。以上で議論したように、リガンドは、例えば、フィブロネクチンもしくは他のタンパク質（細胞接着タンパク質、例えば、ラミニン、コラーゲン、ビトロネクチン、オステオポンチン、もしくはトロンボスポンジンを含む）由来ののポリペプチド、ホルモン、代謝物、抗体（モノクローナル抗体を含む）、もしくは標的細胞に結合する、好ましくは特異的に結合する能力のあることを示しているいずれかの他のリガンドである可能性がある。結果のすべての構築物は、以下の実施例にて特異的に例示した、フィブロネクチンポリペプチド鎖として使用する場合と同様の様式にて、固定型として用いることができる。
【００４８】
このような構築物と、細胞標的アプローチは、上記に議論したようにｉｎ ｖｉｔｒｏで用いられる可能性があり、そして同様に生理学的条件下での構造の安定化、及び特異性と、レトロウイルス構造の相互作用などの、様々な因子を考慮することで、レトロウイルスのｉｎ ｖｉｖｏでの標的化にも使用される可能性がある。特異性は、例えば、標的肝細胞への門脈静脈のカテーテル挿入などの、標的細胞への構築物の送達の局在化のための、送達系の改良によって改善される可能性もある。
【００４９】
他の本発明の観点は、ウイルスと細胞の共局在化に関与する、本発明の形質導入過程が、ヘキサジメトリンブロミドの非存在下で、もしくは実質的に非存在の状況で行ったときに、より優位であるという発見に関連する。ヘキサジメトリンブロミド（商業的にはポリブレンＲの名前で入手できる）は、レトロウイルスによる形質導入の効率を改善する目的のために、レトロウイルス媒介性遺伝子導入プロトコールで広く用いられていたポリカチオン性の物質である。それにも関わらず、本明細書で記載したような遺伝子導入プロトコールを高めるような共局在化した際の、ヘキサジメトリンブロミドの存在は、形質導入効率を減少させることが発見された。従って、本発明の改善された過程は、少なくとも実質的にヘキサジメトリンブロミドの非存在下で（すなわち、約１μｇ／ｍｌ未満のヘキサジメトリンブロミドのみ含む）、及びさらに好ましくはヘキサジメトリンブロミドの非存在下の培養液中で行われる。このような過程は、レトロウイルス産生細胞及びヘキサジメトリンブロミド双方とも実質的に存在しない、実質的なレトロウイルス形質導入生存細胞集団を含む、本発明の好ましい細胞構成物を提供する。この考えにおいては、本明細書中で用いたような、実質的に形質導入された生存している細胞群は、少なくとも約２０％のこの集団の細胞が、レトロウイルスによって形質導入されたことを意味することを意図する。さらに好ましい集団は、少なくとも約５０％の形質導入細胞を持ち、最も好ましいものは、少なくとも約７５％の形質導入細胞を持ちうる。本発明のこの観点による、好ましい細胞構成物は、造血細胞を含み、さらに好ましくは、始原前駆細胞及び幹細胞を濃縮した、造血細胞集団を含みうる。従って一般的にいえば、本発明の都合のよい過程は、ポリカチオン性の薬剤、もしくは、フィブロネクチン断片、もしくは共局在化のための他の物質の存在しない、類似のレトロウイルス感染プロトコール（例えば共培養）に対応して、形質導入効率の増加を導くような、しかし共局在化のための物質の存在下での形質導入効率を減少させるようなその他の薬剤が存在しない状態で行うことができる。
【００５０】
非常に簡単な、レトロウイルス媒介性ＤＮＡ導入が、本発明の方法を実施するように特にデザインされたキットを用いて実行しうることが企画される。従って、本発明の他の側面は、レトロウイルス感染を行うことができる人工基質とともに、レトロウイルスによる標的細胞の形質導入を高めるよう上記で議論した一定量の実質的に純粋なポリペプチド、もしくは構築物を含むキットを提供する。ポリペプチド、もしくは他の構築物は、別々に提供され、もしくは人工基質上にコートされうる。ヒト造血細胞のための感染プロトコールの場合、キットは、細胞前刺激のための造血細胞増殖因子をも含みうる。加えて、このキットは、形質導入のために、上記で議論したように、組換えレトロウイルスベクターを含みうる。一般的にいえば、このキットは、このキットを使用している間、構成物の破損を防ぐのにもう一つの十分な空間的な関連において、これらの様々なキット構成物を収納する、無菌包装を含みうる。例えば、複合構成物、もしくは空間的な関連におけるキット構成物を保持するための部分を有する成形プラスチック商品を用いることが共通の慣例である。
【図面の簡単な説明】
【００５１】
【図１】図１は、キモトリプシン断片を含むフィブロネクチン分子の概略図表示を提供する。
【図２】図２は、以下の実施例１でさらに記載したように、ＴＫＮＥＯベクターを用いた、フィブロネクチン断片の存在下での、投入された（ｃｏｍｉｔｔｅｄ）ヒト前駆細胞の感染効率を表す。
【図３】図３は、以下の実施例１でさらに記載したように、ＴＫＮＥＯベクターを用いた、フィブロネクチン及びその断片の存在下での、様々な投入されたヒト造血前駆細胞の感染効率を比較する。
【図４】図４は、以下の実施例７でさらに記載したように、（ｉ）共培養方法（レーン２−４）、（ｉｉ）固定化フィブロネクチン断片存在下での上清感染（レーン５−７）、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染（レーン８−１０）によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスの、ｈＡＤＡの存在を比較する。ｈＡＤＡの対照はレーン１及び１２に示され、ネズミＡＤＡに対する対照はレーン１１に示される。
【図５】図５は、以下の実施例８でさらに記載したように、フィブロネクチン断片へのウイルス結合を示す。
【図６】図６は、以下の実施例８でさらに記載したように、フィブロネクチン断片への、レトロウイルスの結合が、濃度依存的であることを示す。
【図７】図７は、以下の実施例９−１１で用いた、様々な組換えフィブロネクチン断片を図示している略図を提供する。
【図８】図８は、以下の実施例９で記載したように、いくつかの組換え断片を含む、様々なフィブロネクチン断片に結合するレトロウイルスを示す。
【図９】図９は、以下の実施例９で記載したように、フィブロネクチン断片と結合するレトロウイルスを、ヘパリンが阻止することを示す。
【図１０】図１０は、以下の実施例１０でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下での、ネズミ造血細胞のレトロウイルス感染効率を示す。
【図１１】図１１及び１２は、以下の実施例１１で記載するように、（ｉ）共培養法、（ｉｉ）様々なフィブロネクチン断片上での上清感染、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスにおける、ｈＡＤＡの存在を比較している。
【図１２】図１１及び１２は、以下の実施例１１で記載するように、（ｉ）共培養法、（ｉｉ）様々なフィブロネクチン断片上での上清感染、及び（ｉｉｉ）ＢＳＡ上での上清感染によって形質導入された骨髄細胞を移植されたマウスにおける、ｈＡＤＡの存在を比較している。
【図１３】図１３は、フィブロネクチンのα−鎖の構造と、実施例で用いた組換え断片とのその関連とを示している。フィブロネクチンＩ型、ＩＩ型、及びＩＩＩ型リピートが示され、ＩＩＩ型リピートは１〜１４まで番号付けした。細胞への３つの結合部位は、細胞結合部位（ＣＢＤ）に対してはＣＥＬＬ、ヘパリン結合部位（ＨＢＤ）に対してはＨＥＰＡＲＩＮ、そしてオルタナティブにスプライシングされたＩＩＩＣＳ部位のはじめの２５アミノ酸によって形成された、ＶＬＡ−４結合部位ＣＳ−１に対してはＣＳ−１として表示する。
【図１４】図１４は、以下の実施例１２でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下での、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１５】図１５は、以下の実施例１２でさらに報告したように、様々なフィブロネクチン断片の存在下で、非接着性ＨＬ６０細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１６】図１６は、フィブロネクチンへ結合するレトロウイルスに対する、低分子量及び高分子量ヘパリンの影響を示す。
【図１７】図１７は以下の実施例１３で議論したように、組換えフィブロネクチン断片の存在下で、ＣＤ３４＋細胞集団内の様々な型の前駆細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１８】図１８は、以下の実施例１４で議論したように、組換えフィブロネクチンの存在下で、Ｃ−ｋｉｔ＋細胞集団中の、ＨＰＰ−ＣＦＣ細胞のレトロウイルス感染の効率を示す。
【図１９】図１９は、以下の実施例１５で議論したように、ヘキサジメトリンブロミドの濃度を増加させるに従って、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞のレトロウイルス感染効率が減少することを示す。
【図２０】図２０は、以下の実施例１５で議論したように、ヘキサジメトリンブロミドの濃度を増加させるに従って、クローン原性骨髄細胞のレトロウイルス感染効率が減少することを示す。
【図２１】図２１は、Ｔ細胞がフィブロネクチン受容体を発現することを示す、フローサイトメトリー試験の結果を示す。
【図２２】図２２は、ヒトＴ細胞の前刺激を示すフローサイトメトリー試験の結果を示す。
【図２３】図２３は、ＡＤＡイソ酵素アッセイによる、ヒトＴ細胞への遺伝子導入の効率の解析の結果を示す。
【図２４】図２４は、さらに実施例１６で記載する、感染プロトコールで用いたポリペプチド類を示す略図を提供する。
【図２５】図２５は、図２４で同定した、ペプチド類Ｃ−ＦＧＦ、Ｃ−ＣＯＬ、及びｂＦＧＦの存在下で、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞の形質導入の効率を示す図である。
【図２６】図２６は、フローサイトメトリー解析でアッセイしたように、図２４で同定したペプチドの存在下で、ＨＥＬ細胞へのレトロウイルス遺伝子導入の効率を示す。
【図２７】図２７は、図２４で同定したポリペプチドの存在下で、ＣＤ３４＋骨髄細胞の形質導入の効率を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００５２】
本発明は好ましくは以下の形態を含む。
１． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞集団を得る方法であって：
細胞に結合するリガンドおよびレトロウイルスに結合するリガンドを含む、有効に固定化される量の物質の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よってレトロウイルスおよび細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ここにおいて前記感染は本質的にヘキサジメチリンブロミドを含まない培地で行われる：
ことを含む、前記の方法。
【００５３】
２． 細胞が造血幹細胞を含む、態様１記載の方法。
３． 態様１記載の方法によって製造される生存可能な細胞集団。
４． 造血幹細胞を含む、態様３記載の生存可能な細胞集団。
【００５４】
５． 態様１記載の方法によって製造される生存可能な細胞集団を哺乳動物に移植する：ことを含む、細胞移植方法。
６． 実質上レトロウイルスで形質転換された生存可能な細胞集団を含み、レトロウイルス産生細胞およびヘキサジメチリンブロミドの両方を本質的に含まない：細胞組成物。
【００５５】
７． 前記の生存可能な細胞が造血幹細胞を含む、態様６記載の細胞組成物。
８． 態様６記載の細胞組成物を哺乳動物に移植する；ことを含む、細胞移植方法。
９． 細胞集団が造血幹細胞を含む、態様８記載の方法。
１０． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞集団を得る方法であって：
細胞と結合するリガンドおよびレトロウイルスと結合するリガンドを含む、有効に固定化される量の物質の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よって、レトロウイルスと細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ここにおいて前記感染は、共培養中ではレトロウイルスによる細胞を形質転換する効率を上昇させるが、前記物質存在下ではレトロウイルスによる細胞の形質転換の効率を減少させる薬剤を実質上含まない培地で行われる：
ことを含む、前記の方法。
１１． レトロウイルスによって形質転換された生存可能な細胞の集団を得る方法であって：
細胞を結合するアミノ酸配列、およびレトロウイルスと結合するコラーゲンＶまたは繊維芽細胞増殖因子からのアミノ酸配列を含むポリペプチド存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させる：
ことを含む、前記の方法。
１２． 前記の感染が、レトロウイルス−プロデューサー細胞の非存在下で、レトロウイルスと細胞を接触させることを含む、態様１１記載の方法。
１３． Ｔ細胞をレトロウイルスで形質転換する方法であって、Ｔ細胞と結合するリガンド、およびレトロウイルスと結合するリガンドを含む物質存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させ、よって、レトロウイルスと細胞を共に配置し、そして細胞の形質転換効率を上昇させる、ことを含む、前記の方法。
１４． 物質が、Ｔ細胞と結合する第一のアミノ酸配列、およびレトロウイルスと結合する第二のアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、第二のアミノ酸配列が、配列：
【００５６】
【化２】
【００５７】
またはそれと充分に類似するアミノ酸配列を持ち、レトロウイスルと結合する能力を示すものである；
態様１３記載の方法。
１５． レトロウイスルを結合するコラーゲンＶまたは繊維芽細胞増殖因子からのアミノ酸配列を持つ、有効量の単離されたポリペプチドとレトロウイルスを接触させることを含む、レトロウイルスを配置する方法。
【実施例】
【００５８】
本発明のさらなる理解、及び評価を促進するために、以下に続く固有の実施例を提供する。これらの実施例は、説示的なものであり、その本質を限定しているものではないことが理解されよう。
【００５９】
実施例１ ＴＫＮＥＯを用いた骨髄細胞への遺伝子導入
１．１．ウイルス上清の調整
レトロウイルスプラスミドＴＫＮＥＯベクターを含むＧＰ＋ＥｎｖＡＭ１２産生細胞（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ ｅｔ ａｌ． （１９８８） Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １６７：４００ 参照）を、１０％胎児子牛血清（ＦＣＳ、Ｈｙｃｌｏｎｅ， Ｌｏｇａｎ ＵＴ）、及び１００ ｕｎｉｔｓ／ｍｌ ペニシリン、及び１００ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ストレプトマイシン（Ｐ／Ｓ、双方 Ｇｉｂｃｏ）を含むＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏｓ Ｍｅｄｉｕｍ （ＩＭＤＭ、Ｇｉｂｃｏ， Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ，ＭＤ）中で培養した。ウイルスを含む上清を、２０％ＦＣＳを含むＩＭＤＭ１０ ｍｌ を加えて一晩プレートをコンフルエンスにすることによって回収する。回収した培養液を、０．４５ミクロンフィルター（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ， Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ， ＭＩ）を通して濾過し、使用まで−８０℃にて保存した。
【００６０】
１．２．フィブロネクチン断片の用意
ＦＮを、ＦＮを４Ｍ尿素で溶出する前に、ゼラチン−アガロースカラムを１Ｍ尿素で洗浄した以外は、すでに、 Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ．， Ｍｅｔｈｏｄｓ． Ｅｎｚｙｍｏｌ． ８２：８０３−８３１ （１９８２） で記載されているように、ヒト血漿（Ｌｉｆｅｓｏｕｒｃｅ， Ｇｌｅｎｖｉｅｗ，ＩＬ）から精製した。精製したＦＮは、４℃にて，１０ｍＭ ３−（シクロヘキシルアミノ）−１−プロパン−スルホン酸（ＣＡＰＳ）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＣａＣｌ２ ｐＨ １１．０に対して透析し、−８０℃にて等分して保存した。ＦＮのキモトリプシン様細胞結合部位（ＣＢＤ）（ＣＳ−１）、及び、ヘパリン−ＩＩ結合断片は、すでに記載されているように（Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ ｅｔ ａｌ． （１９８２）， ｓｕｐｒａ， Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ， Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０２， ｐｐ． ４４９−４５６ （１９８６）， ａｎｄ Ｂｅｒｎａｒｄｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １０５， ｐｐ． ４８９−４９８ （１９８７））精製した。三つの主なヘパリン断片（３０ｋＤ、３５ｋＤ、４２ｋＤ）が、ヘパリン−アガロースカラムからの１Ｍ ＮａＣｌ中の溶出で得られた。これらのヘパリン結合断片を、さらに精製するために、１Ｍ ＮａＣｌ溶出物を４℃にて１晩、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．０に対して透析し、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．０で平衡化された陽イオン交換カラム（２ｍｌ ＤＥＡＥ セファロース ｆａｓｔ ｆｌｏｗ， （Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ， Ｕｐｐｓａｌａ， Ｓｗｅｄｅｎ） ／ｍｇ タンパク質）に通した。３０／３５ｋＤ断片を、非結合フラクションで回収し、一方４２ｋＤ断片はカラムより１００ｍＭ ＮａＣｌにて溶出した。ＦＮ ５００ｍｇ から、おおよそ２６ｍｇの３０／３５ｋＤ断片、及び４ｍｇの４２ｋＤ断片を得た。３０／３５ｋＤ断片でなく、４２ｋＤ断片は、ウエスタンブロッティング手法によって決定したように、フィブリン結合部位に対する抗体によって認識された。また、４２ｋＤ断片は、フィブリン−セルロースアフィニティーカラムへ結合する。
【００６１】
感染プロトコールで使用するために、フィブロネクチン断片を Ｐａｔｅｌ ａｎｄ Ｌｏｄｉｓｈ （１９８６）， ｓｕｐｒａ によって記載されたように、７５ｐｍｏｌ／ｃｍ２の濃度にて、３５、もしくは１００ｍｍペトリディシュ（Ｆａｌｃｏｎ，Ｌｉｎｃｏｌｎ Ｐａｒｋ，ＮＪ）に固定化した。コントロールのプレートは、２％（ＦＮなし）ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ， Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて類似の方法でコートした。
【００６２】
１．３．レトロウイルス感染プロトコール
健康な大人提供者からの、骨髄サンプルを、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ によって立証されたプロトコールに従った、無菌保存剤なしの培養液硫酸ヘパリンを含むチューブに集めた。低密度単核細胞を、フィコール−ハイパック（密度 １．０７７ ｇ／ｍｌ， Ｐｈａｒｍａｃｉａ， Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ， ＮＪ）において、２５℃にて４５分間遠心することで用意した。プラスチック接着細胞を、低密度骨髄細胞から２％ＦＣＳ入りＩＭＤＭ中、５％ＣＯ２中で３７℃にて４〜１６時間さらに組織培養プレートをインキュベートすることで取り除いた。
【００６３】
接着陰性低密度単核細胞は、すでに、Ｌｕｓｋｅｙ ｅｒ ａｌ． （１９９２） Ｂｌｏｏｄ ８０：３９６ に記載されたように、レトロウイルス感染前にペトリディシュ上１×１０６ ｃｅｌｌｓ／ｍｌ の細胞密度で、２０％ＦＣＳ、１００ Ｕ／ｍｌ ｒｈＩＬ−６、１００ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＳＣＦ（両方 Ａｍｇｅｎ，Ｔｈｏｕｓａｎｄ Ｏａｋｓ， ＣＡ）、及びＰ／Ｓを含むＩＭＤＭ中、５％ＣＯ２、３７℃で４８時間前刺激した。前刺激した細胞を、プラスチックへ弱い接着をする細胞を取り除くために、勢いよくピペッティングすることで回収した。
【００６４】
前刺激した細胞（５×１０５ ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）を、ＢＳＡ（コントロールプレート）、もしくはフィブロネクチンもしくはその断片（プラスチックプレートへタンパク質がより接着するようにＵＶ照射した。）でコートされたプレート上で６時間インキュベートし、成長因子（上記の通り）、及び７．５ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ポリブレン（Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌ， Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ， ＷＬ）存在下、ウイルス上清にて感染させた。ウイルス上清は、２時間後置き換え、（成長因子、及び５．０ ｍｉｃｒｏｇｒａｍ／ｍｌ ポリブレンを含むもの）、細胞をさらに１２〜２４時間インキュベートした。非接着細胞はそれぞれの培養液交換で再び加えた。
【００６５】
感染プロトコールに従って、非接着細胞をデカントし、接着造血細胞は製品の使用説明書に従って、細胞解離緩衝液（ＣＤＢ）（酵素なし／ＰＢＳベース、Ｇｉｂｃｏ）を用いて回収した。接着細胞を、非接着細胞フラクシャンに加え、２回洗浄し、計数した。回収した細胞は、クローン原性メチルセルロース前駆体分析を行うか、あるいは長期骨髄培養を行った。
【００６６】
１．４．長期骨髄培養
ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）分析を、すでに記載された方法に従って、若干の改良をして行った。Ｓｕｔｈｅｒｌａｎｄ ｅｔ ａｌ． Ｂｌｏｏｄ ７４：１５６３ （１９８９）。簡単には１０％ＦＣＳ、１０％ウマ血清（Ｓｉｇｍａ）及びＰ／Ｓ、１×１０−５Ｍヒドロコルチゾン（Ｕｐｊｏｈｎ， Ｋａｌａｍａｚｏｏ，ＭＩ）、及び、６ウェル組織培養プレート上に、３２０モスモル塩化ナトリウム（Ｃｏｓｔａｒ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ）を含む５ ｍｌ ＩＭＤＭ中でのコンフレントな（上記のような）前照射を受けた同種ヒト骨髄繊維芽細胞（ＢＭＦ）において、０．５−１×１０６の感染細胞を播種した。ＬＴＭＣは、３３℃で５％ＣＯ２、及び毎週培養液及び非接着細胞の５０％を取り去ることで栄養を与えてインキュベートした。５週間後、ＬＴＣ−ＩＣ培養は、ＢＭＦから、接着造血細胞を取り除くために、ＣＤＢを用いて回収した。非接着、及び接着造血細胞双方を一緒にし、ＬＴＣ−ＩＣから由来するコロニーを得るために、メチルセルロースにプレートした。
【００６７】
１．５．クローン原性メチルセルロース分析
メチルセルロース分析は、すでに Ｔｏｋｓｏｚ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｃ． Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， ＵＳＡ， Ｖｏｌ． ８９， ｐ７３５０ （１９９２） で記載されたものに、若干の改良を加えて行った。２．５×１０４感染大人骨髄細胞を、２５％ＦＣＳ、１０％ヒト血漿、１０−５Ｍベータ−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ）、及びＰ／Ｓを含む１ ｍｌの２．４％ＩＭＤＭメチルセルロース（Ｆｌｕｋａ， Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ， ＮＹ）中で、５ ｕｎｉｔｓ／ｍｌ エリスロポエチン（Ｅｐｏ， Ａｍｇｅｎ）、１００ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＳＣＦ、１０ ｎｇ／ｍｌ ｒｈＩＬ−３（Ｇｅｎｚｙｍｅ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ， ＭＡ）とともにプレートした。培養は、３７℃にて、５％ＣＯ２／９５％空気でインキュベートし、コロニー（＞５０細胞数）を１３日目に反転顕微鏡で見ることで、ＣＦＵ−ＧＭ（顆粒球及びマクロファージを含む）、ＣＦＵ−混合（骨髄及び赤血球成分を含む）、ＢＦＵ−Ｅ（赤血球成分のみを含む）として計数した。
【００６８】
１．６．レトロウイルス感染分析
ＴＫＮＥＯウイルスによる感染効率は１３日目の１．５ ｍｇ／ｍｌ（乾燥粉、Ｇｉｂｃｏ）Ｇ４１８抵抗性メチルセルロ−スコロニ−の割合を決めることで解析した。擬感染は、骨髄を組換えウイルスをつくらないＧＰ＋ＥｎｖＡＭ１２パッケージング株上でインキュベートすることでそれぞれの実験で行った。１．５ ｍｇ／ｍｌ Ｇ４１８とのこれらの擬感染細胞の培養は一貫して、＜１％バックグラウンドコロニーを示す。
【００６９】
１．７．前駆細胞への遺伝子導入効率
形質導入効率は、３０／３５ ＦＮ−、もしくはＢＳＡコートディッシュにまき、骨髄細胞に感染することで比較した。これらの状態間では、選択なしの感染の後に得られたコロニー数においては、違いが観察されなかった。図２は感染後のＧ４１８ｒコロニーの割合を示す。多系統（ＣＦＵ−混合）前駆細胞と同様に、系統制限（ＢＦＵ−Ｅ、及びＣＦＵ−ＧＭ）から由来するものを含む、すべての前駆体型からの、３０／３５ ＦＮ上で高い割合のＧ４１８ｒコロニーが確認された。すべての前駆体への感染はＢＳＡに比べ、３０／３５ ＦＮで９倍増加した。
【００７０】
１．８．長期培養イニシエーション細胞への遺伝子導入
ＬＴＣ−ＩＣへの遺伝子導入はＴＫＮＥＯベクターを用いて行った。コロニー由来ＬＴＣ−ＩＣへの遺伝子導入は、３０／３５ ＦＮ上での感染後、検出されたのみである。（３０／３５ ＦＮ対ＢＳＡ １６％Ｇ４１８ｒ対０％Ｇ４１８ｒコロニー）。
【００７１】
１．９．造血細胞の感染効率への３０／３５ＦＮ効果の特異性
３０／３５ ＦＮにおいて見られた遺伝子導入効率の増加の特異性を決めるためにＴＫＮＥＯによる感染を、ＢＳＡ、３０／３５ ＦＮ、無傷の（ｉｎｔａｃｔ）フィブロネクチン、ＲＧＤＳテトラペプチド配列を含む中心細胞結合部位（ＣＢＤ）を含む１１５ｋＤ ＦＮ断片、ＣＳ−１配列は欠損しているが、ヘパリン−ＩＩ結合部位を持つことによって特徴づけられる４２ｋＤ Ｃ−末端ＦＮ断片（４２ＦＮ）上で行った（図１）。ＢＳＡ上での感染は３±１％Ｇ４１８ｒ ＢＦＵ−Ｅ、１±１％ Ｇ４１８ｒ ＣＦＵ−ＧＭ、及び０±０％ Ｇ４１８ｒ ＣＦＵ−混合を示した。ＣＢＤ上で観察されたＧ４１８ｒコロニー群は明らかな増加が見られず、一方４２ ＦＮ上ではＢＦＵ−Ｅのわずかに高い感染（６．０±−１％）が見られた（図３）。しかしながら、無傷のＦＮはすべての前駆体への遺伝子導入の増加を促進した。無傷のＦＮ上での感染後のＧ４１８ｒコロニーの割合は３０／３５ＦＮ上のものより少なかったが、それぞれＢＦＵ−Ｅ（１６±−２対２４±４％）、ＣＦＵ−ＧＭ（５±２対２０±４％）、及びＣＦＵ−混合（６±１対９±１％）（無傷ＦＮ対３０／３５ＦＮ）であった。
【００７２】
実施例２ ＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いた骨髄細胞への遺伝子導入
２．１．全体的な手順
ＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルス上清は実施例１のＴＫＮＥＯのための記載と同様に準備した。フィブロネクチンのキモトリプシン様断片は（図１）、すでに実施例１で記載のように準備し、実施例１のレトロウイルス感染プロトコールに従った。ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）分析、及びメチルセルロース分析は実施例１に従って行った。
【００７３】
２．２． レトロウイルス感染の分析
ＡＤＡイソ酵素電気泳動によるタンパク質分析によって、ＰＧＫ−ｍＡＤＡベクターの感染効率を定量した。個々の前駆（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）細胞コロニーの分析は、Ｍｏｒｉｔｚ（１９９３）およびＬｉｍら（１９８９）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６巻、８８９２頁に前記した方法に従って、行なわれた。トランスファー効率を厳密に分析するために、内在性ヒトＡＤＡと同じか、またはより高レベルのｍＡＤＡを発現するコロニーのみを形質転換されたと考えた。プールしたコロニーを分析するために、メチルセルロース培地より選択（ｐｉｃｋ ｏｕｔ）したコロニーを、１．５ｍｌのミクロチューブ（Ｒａｉｎｉｎ，Ｗｏｂｕｒｎ，ＭＡ）内に集め、暖めた培地およびリン酸緩衝塩類溶液（ＰＢＳ）で洗浄し、遠心分離し、そして−２０℃に保存した。ＡＤＡ分析のため、凍結−融解サイクルを繰り返すことによって、５μｌの溶解バッファーに細胞を溶解し、そしてイソ酵素電気泳動を、前記の方法に従って行った。
【００７４】
２．３． 前駆細胞内への遺伝子トランスファー効率
３０／３５ＦＮ−またはＢＳＡ−コート皿上にプレートした間、骨髄細胞に感染させることによって、形質転換効率を比較した。選別しなかった場合、感染後得られたコロニー数の差は、これらの条件間では認められなかった。表１に示したように、すべての前駆細胞内への感染効率は、実質上、ＢＳＡに対して３０／３５ＦＮ上で増加した。高力価（〜１ｘ１０７ビリオン（ｖｉｒｏｎｓ）／ｍｌ）ベクターで予想されるように、前駆細胞の形質転換効率は、非常に高かった。表１に示すように、３０／３５ＦＮ上での骨髄へのＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染は、２回の別々に行った実験で、前駆細胞の１００％近い形質転換が得られた。
【００７５】
【表１】
【００７６】
２．４． 長期培養−始原細胞（ｉｎｉｔｉａｔｉｎｇ ｃｅｌｌ）内への遺伝子トランスファー効率
ＰＧＫ−ｍＡＤＡで行った４回の独立した実験では、週齢５週のＬＴＭＣから誘導された前駆細胞コロニー（即ち、ＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニー）の有意な割合が、トランスファーされたマウスＡＤＡ遺伝子を発現していた。発現は、分析したコロニーの２／１２（１７％）から６／６（１００％）までの範囲であった（表２）。導入されたｍＡＤＡ遺伝子の発現は、陽性と考えられるすべてのコロニー内で、内在性ヒトＡＤＡ活性量を越えるか、または少なくとも等しかった。ＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染効率は、ＴＫＮＥＯより高かった。表２に示すように、３０／３５ＦＮ上の骨髄へのＰＧＫ−ｍＡＤＡの感染では、２回の別々の実験で、前駆細胞の１００％近い形質転換が得られた。
【００７７】
【表２】
【００７８】
２．５． 造血細胞の感染効率への３０／３５ＦＮ効果の特異性
ＬＴＣ−ＩＣ内への遺伝子トランスファー効率は、３０／３５ＦＮ上で増加した。これらの二次のＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニーは比較的小サイズであるため、単一コロニーでタンパク質分析を成し遂げる能力には限界がある。ＢＳＡ上でのＰＧＫ−ｍＡＤＡでの感染後、完全な（ｉｎｔａｃｔ）フィブロネクチンならびに４２ＦＮ ０／６、０／４および０／３ ＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニーは、それぞれ、マウスＡＤＡの発現を示したが、３０／３５ＦＮ上で感染させた３／５ＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーは、ｍＡＤＡを発現した。さらに、複数のＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーを２回の追加実験で分析する前にプールしたところ、ｍＡＤＡ発現は、３０／３５ＦＮ上で感染後のみに検出され、完全なＦＮ上ではより少ない程度であり、４２ＦＮまたはＢＳＡ上では検出されなかった。
【００７９】
実施例３ ＰＧＫ−ｈＡＤＡを用いた骨髄細胞内への遺伝子トランスファー
３．１． 一般的方法
実施例１のＴＫＮＥＯで記載した方法に従って、ＰＧＫ−ｈＡＤＡウイルス上清を調製した。実施例１に前述した方法に従って、フィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）を調製し、次に実施例１のレトロウイルス感染プロトコールを行った。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイを、実施例１記載の方法に従って行った。
【００８０】
３．２． レトロウイスル感染の分析
プールしたコロニーを分析するために、メチルセルロース培地より選択したコロニーを１．５ｍｌのミクロチューブ（Ｒａｉｎｉｎ，Ｗｏｂｕｒｎ，ＭＡ）に集め、暖めた培地およびＰＢＳで洗浄し、遠心分離し、そして−２０℃で保存した。ＡＤＡ分析のために、細胞を、凍結−解凍サイクルを繰り返すことによって５ｍｌの溶解バッファーに溶解し、そして前述の方法に従って、イソ酵素を電気泳動した。
【００８１】
実施例４ ＴＫＮＥＯを用いた臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
４．１． 一般的方法
ＴＫＮＥＯウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）は、実施例１に前述した方法に従って、調製された。次いで、実施例１に記載のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、骨髄細胞の代わりに、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅで是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣ（ヒト幹細胞）およびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８２】
４．２． 前駆細胞の遺伝子トランスファー効率
ＦＮ３０／３５上での感染は、３回の別々の実験において、ＢＳＡと比較して４倍以上増加していた（表３）
【００８３】
【表３】
【００８４】
実施例５ ＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いた臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
５．１． 一般的方法
ＰＧＫ−ｍＡＤＡウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（図１）は、実施例１に前記された方法に従って、調製された。次いで、実施例１記載のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅに是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８５】
５．２． 長期培養した始原細胞内への遺伝子トランスファー効率
より力価の高いＰＧＫ−ｍＡＤＡを用いると、ＬＴＣ−ＩＣ−誘導コロニーの分析は、ＦＮ３０／３５上で上清を用いて感染させた臍帯血から確立された培地からのみ、導入したｍＡＤＡ ｃＤＮＡの高レベル発現を示した。ＢＳＡ対照プレート内で感染させたＬＴＣ−ＩＣ誘導コロニー内では、ｍＡＤＡの発現はほとんど検出されなかった。
【００８６】
実施例４および５に示した結果は、ＦＮ３０／３５を用いた感染効率の改善が、臍帯血前駆細胞および幹細胞を用いた場合にも達成できることを、証明している。
実施例６ ＰＧＫ−ｈＡＤＡを用いての臍帯血細胞内への遺伝子トランスファー
ＰＧＫ−ｈＡＤＡウイルス上清およびフィブロネクチンのキモトリプシンフラグメント（表１）は、実施例１のＴＫＮＥＯに記載の方法に従って、調製された。次に、実施例１のレトロウイルス感染プロトコールを行ったが、骨髄細胞の代わりに、正常な満期産新生児からの臍帯血を、ｔｈｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ Ｉｎｄｉａｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅに是認されたプロトコールに従って、ヘパリン含有チューブに集めて用いた。ＬＴＣ−ＩＣおよびメチルセルロースアッセイは、実施例１に記載の方法に従って、行われた。
【００８７】
実施例７−１１ 実施例７−１１のためのレトロウイルスベクターおよび産生細胞（ｐｒｏｄｕｃｅｒ ｃｅｌｌ）系
実施例７−１１に関して、２つのレトロウイルス産生パッケージング細胞系（ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ−ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｐａｃｋａｇｉｎｇ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ）を用いた：それぞれ、エコトロピック（ｅｃｏｔｒｏｐｉｃ）ＧＰ＋Ｅ８６（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６２，１１２０−１１２４、１９８８）ならびにアンホトロピック（ａｍｐｈｏｔｒｏｐｉｃ）ＧＰ＋ｅｎｖＡＭ１２細胞系（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１６７，４００−４０６，１９８８）：ここに記載された研究に用いられたレトロウイルスベクターおよび産生細胞クローンを、表４に列挙した。
【００８８】
【表４】
【００８９】
すべての細胞系は、ＥＡＬ２ａ細胞を除き、１０％のウシ胎児血清（ＦＣＳ，Ｈｙｃｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）および１００ユニット／ｍｌのペニシリンおよび１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン（Ｐ／Ｓ、両方共Ｇｉｂｃｏ）を含むダルベッコの修飾Ｅａｇｌｅ培地（ＤＭＥ，Ｇｉｂｃｏ，ＧｒａｎｄＩｓｌａｎｄ，ＮＹ）内で培養され、ＥＡＬ２ａ細胞は、１０％ ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓを含むＤＭＥ−Ｆ１２（Ｇｉｂｃｏ）内で増殖させた。ウイルスを含む上清は、マウス細胞には１０ｍｌのα−最少必須培地（αＭＥＭ，Ｇｉｂｃｏ）、またはヒト細胞にはイスコフのダルベッコ培地（ＩＭＤＭ，Ｇｉｂｃｏ）（それぞれ１０％のＦＣＳ＋Ｐ／Ｓを含む）を１０ｃｍの集密プレートに一晩加えることによって、集められた。収集した培地を、０．４５ミクロンフィルター（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ，ＭＩ）でろ過し、使用するまで−８０℃に保存した。
【００９０】
実施例７ マウスの一次造血細胞の形質転換
７．１． 実験方法
マウスの細胞で研究するために、１５０ｍｇ／ｋｇの５−フルオロウラシルの投与後、２日の週齢６から８週のＣ３Ｈ／ＨｅＪマウスの大腿骨および頸骨から、骨髄を収集した（ＳｏｌｏＰａｃｋ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｐａｒｋ，ＩＬ）（Ｌｉｍ，Ｂ．，Ｊ．Ｆ．Ａｐｐｅｒｌｅｙ，Ｓ．Ｈ．ＯｒｋｉｎおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６、８８９２−８８９６、１９８９）。細胞は、ＩＭＤＭ／２０％ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓ中の濃度５ｘ１０６細胞／ｍｌ、並びに１００ｎｇ／ｍｌのラット組換え幹細胞因子（ｒｒＳＣＦ；Ａｍｇｅｎ．Ｔｈｏｕｓａｎｄｓ Ｏａｋｓ，ＣＡ）および１００ユニット／ｍｌのヒト組換えインターロイキン−６（ｒｈＩＬ−６；Ｐｅｐｒｏ Ｔｅｃｈ Ｉｎｃ．，Ｒｏｃｋ Ｈｉｌｌ，ＮＪ）で、４８時間、前刺激（ｐｒｅｓｔｉｍｕｌａｔｅ）した（Ｌｕｓｋｅｙ，Ｂ．Ｄ．，Ｍ．Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ，Ｋ．ＺｓｅｂｏおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｂｌｏｏｄ，Ｖｏｌ．８０，ｐｐ．３９６−４０２、１９９２）。次に、ＥＰＨＡ−５産生細胞によって作り出されたＰＧＫ−ｈＡＤＡベクターでの遺伝子トランスファー効率を、３種類の異なる感染プロトコールを用いて比較した：１）上清感染；２）ＦＮ３０／３５上での上清感染；３）ＥＰＨＡ−５産生細胞上での同時培養。そのために、１００ｍｍの細菌皿を、５ｍｌのリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ；Ｇｉｂｃｏ）中に溶解した２．５μｇ／ｃｍ２のＦＮ３０／３５（７５ｐｍｏｌ／ｃｍ２に等しい）で、室温、ＵＶ光下で、１時間、皿のフタを開けたままで、さらに１時間、皿のふたを閉めてコートした。２％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｆｒａｃｔｉｏｎ Ｖ：Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）で、室温で３０分間、ブロックした後、皿を、２．５％（ｖ／ｖ） １Ｍ Ｈｅｐｅｓを添加したハンクス液（Ｈａｎｋ’ｓ Ｂａｌａｎｃｅｄ Ｓａｌｔ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）（ＨＢＳＳ）（両方共Ｇｉｂｃｏ）で、一度洗浄した。上清感染では、皿をＢＳＡのみでコートした。５ｘ１０６の前刺激したドナー細胞を、ＥＰＨＡ−５細胞より上記の方法に従って得られた１０ｍｌのウイルス上清に、１００Ｕ／ｍｌのｒｈＩＬ−６、１００ｎｇ／ｍｌのｈｒＳＣＦおよび７．５μｇ／ｍｌのポリブレン（ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ）を添加したものと共に、インキュベートした。非粘着性細胞を集め、新たにウイルス上清を再付加した。共培養のために、４ｍｌ培地中のＥＰＨＡ−５細胞を、１０μｇ／ｍｌのマイトマイシンＣと共に、２時間、３７℃でインキュベートし、洗浄し、トリプシン処理し、そして１０ｍｌのαＭＥＭ／２０％ＦＣＳ＋Ｐ／Ｓ中、３ｘ１０６の細胞濃度で、１００ｍｍの組織培養皿上に接種した。翌日、５ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、１００Ｕ／ｍｌのｒｈＩＬ−６、１００ｎｇ／ｍｌのｒｒＳＣＦおよび４μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、４８時間加えた。感染プロトコールに次いで、非粘着性細胞をデカントし、そして、粘着性造血細胞を、製造者の指示書に従って、Ｃｅｌｌ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（ＣＤＢ）（酵素非含有／ＰＢＳをベースとする、Ｇｉｂｃｏ）を用いて、培養液から収集した。粘着性細胞を非粘着性画分に加え、二度洗浄し、そして、おおよそ１ｍｌのＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ中に懸濁した。５ｘ１０６の前刺激した細胞から得られた全細胞を、致死量の全身照射（７００＋４００ｃＧｙ、１３７Ｃｓ−源）（Ｌｕｓｋｅｙ，Ｂ．Ｄ．，Ｍ．Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ，Ｋ．ＺｓｅｂｏおよびＤ．Ａ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｂｌｏｏｄ，Ｖｏｌ．８０，３９６−４０２、１９９２）を受けた３匹のレシピエントマウスの尾静脈内に注射した。造血幹細胞の形質転換は、導入されたヒトＡＤＡ ｃＤＮＡの発現用に再構築されたマウスを試験することによって、分析された。このＡＤＡイソ酵素分析は、原位置での酢酸セルロースのｉｎ ｖｉｖｏ酵素分析によって、ｈＡＤＡタンパク質の存在について、末梢血液細胞を試験することによって、移植されたマウス内で成し遂げられた（Ｌｉｍ，Ｂ．，Ｄ．Ａ．ＷｉｌｌｉａｍｓおよびＳ．Ｈ．Ｏｒｋｉｎ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，７，３４５９−３４６５、１９８７）。試験は、最初４ヶ月間、追加移植を行い、月に一度繰り返した。
【００９１】
７．２． 結果
遺伝子操作された造血幹細胞でのマウスの骨髄再構築が長期に及ぶことは、一般的に、４ヶ月の追加移植期間後の幹細胞の形質転換効率を定量するために、適当であるとして受け入れられる。形質転換骨髄の７ヶ月後のレシピエントのイソ酵素分析による分析は、１）ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡ発現は、同時培養またはＦＮ３０／３５上での上清感染のいずれかを用いると存在するが、ＦＮ３０／３５なしでの上清感染後移植したグループでは、存在せず、そして２）発現のレベルは、共培養とＦＮ３０／３５グループで同等である：ことを示した。図４、列２−４に示したように、ＥＰＨＡ−５細胞上での同時培養によって形質転換された骨髄を移植した３匹のマウスでは、ヒトＡＤＡが容易に検出できることを証明した。同様のレベルのヒトＡＤＡは、ＦＮ２０／３５の上清感染によって形質転換された造血細胞を移植した３匹のマウスでも検出された（図４、列５−７）。これに対して、ＢＳＡ上での上清感染によって形質転換された造血細胞を移植した３匹のマウスでは、ヒトＡＤＡは検出されなかった（図４、列８−１０）。ヒトＡＤＡの位置コントロールを図４の列１および１２に、ならびにマウスのＡＤＡを列１１に示す。列２−１０のマウスのバンドは、同量のタンパク質が負荷されたことを示す。これらのデータは、ＦＮ３０／３５上での上清感染によって長期にわたって再構築される造血幹細胞の形質転換が 同時培養と等価であり、ＦＮ３０／３５なしでの上清感染より遥かに優れていることを証明している。
【００９２】
実施例８ ＴＮ３０／３５に結合したレトロウイルスベクターによる改良された形質転換メカニズム
８．１． 実験方法
形質転換の増加が、ウイルスと造血細胞を共に配置する（ｃｏ−ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ）結果であるか否かを試験するため、我々は、組換えレトロウイルス粒子がＦＮ３０／３５との結合を示すか否かについて分析した。そのため、ＦＮ３０／３５−コートプレートを、ＴＫＮｅｏウイルスを含む上清と共に、３０分間プレインキュベートし、その後、広範囲にわたって洗浄した。上清のウイルス力価をＮＩＨ／３Ｔ３を用いて、標準的方法に従って、定量した（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ，Ｄ．，Ｓ．ＧｏｆｆおよびＡ．Ｂａｎｋ，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６２，１１２０−１１２４、１９８８）。簡単に言えば、３Ｔ３細胞を、６穴の組織培養プレートに、濃度１０００細胞／穴でプレートし、一晩増殖させた。ウイルス上清の一連の希釈物を、７．５μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、それぞれの穴に加え、そして２ｍｌの培地を加えた後、３７℃で２．５時間インキュベートした。２４時間後、培地は、Ｇ４１８（０．７５ｍｇ／ｍｌ、乾燥粉末、Ｇｉｂｃｏ）を含む培地と置き換え、そしてプレートを１０−１２日間インキュベートした。Ｇ４１８−耐性コロニー（Ｇ４１８ｒ）を１０−１２日後に染色し、そして数を記入した。ウイルス上清の希釈倍率を掛けたコロニー／穴の数を、上清の感染粒子（ｃｆｕ）／ｍｌとして用いた。我々は、ウイルス上清とプレインキュベーションし、そして１０００ＮＩＨ／３Ｔ３／３５ｍｍ細菌皿細胞＋ポリブレンを加えることによって集中的に洗浄した後、ＦＮ３０／３５−コートしたまたはＢＳＡ−コートした３５ｍｍプレート上に残っているレトロウイルス粒子の量を、評価／”滴定”した。２４時間後、培養液に、０．７５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８（乾燥粉末）を含む培地を供給し、そしてさらに細胞を１０−１２日間インキュベートした。このインキュベーションの後、Ｇ４１８−耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーを数えることによって、粘着性ウイルスの存在を定量した。
【００９３】
ＦＮ３０／３５へのウイルスの結合が、服用量依存様式で起こるか否かを評価するために、皿をコートするＦＮ３０／３５の濃度を上昇させて、上記の実験を繰り返した。そのため、上記の方法に従って、３５ｍｍの細胞皿を、１、４、１０および２０μｇ／ｃｍ２のＦＮ３０／３５でコートした。前もって１ｘ１０４感染粒子／ｍｌと滴定されたＴＫＮｅｏウイルスストックの１：５０希釈物を、ＦＮ３０／３５−コートプレート上で３０分間インキュベートした。集中的に洗浄した後、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞をそれぞれの穴に加えた。選別を上記の通り行い、そしてＧ４１８−耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーを、選別の１０日後、計数した。
【００９４】
８．２． 結果
図５は、３回の実験の内の典型的な一つの結果を示す。ＴＫＮｅｏ上清を用いて、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内のＧ４１８ｒコロニーによって測定されたレトロウイルスの力価は、ＢＳＡ−コートプレート上では、３ｌｏｇより多く（４ｘ１０３から０）減少したが、これに対して、３０／３５ＦＮでコートしたプレート上では、力価の減少は、１ｌｏｇのみであった。これらのデータは、レトロウイルスは、ＦＮ３０／３５と定量的に結合するが、しかしＢＳＡでコートした皿（対照皿）とは結合しないことを、証明している。図６は、ウイルス−含有上清を、ＦＮ３０／３５の濃度を増加させてコートしたプレート上でインキュベートした場合、Ｇ４１８−耐性コロニーの数の増加が検出されたことを示している。このように、ＦＮ３０／３５へのウイルスの結合は、服用量依存様式で起こっている。
【００９５】
実施例９ 組換えフィブロネクチンフラグメントへのウイルスの結合
９．１． 実験方法
Ｋｉｍｉｚｕｋａらは、以前、大腸菌内にクローン化したＦＮ ＤＮＡ配列の発現について報告している（Ｋｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｔｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｊｏ，Ｄ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）。クローン化したキメラペプチドは、細胞粘着性に関係することが知られているフィブロネクチン内の様々な重要配列（ＲＧＤＳ、ＣＳ−１およびヘパリン結合部位）の内の一つまたはその組み合わせを含む（図７参照のこと）。レトロウイルスがこれらの組み換えＦＮフラグメントと結合することができるか否かを分析するために、３Ｔ３細胞コロニー形成アッセイを、１ｘ１０４感染粒子／ｍｌの凍結レトロウイルスＴＫＮｅｏストックの２つの異なる希釈物（１：１０および１：１００）を用いて、組換えフラグメントＣ−２７４、Ｈ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１、ＣＨ−２９６およびＣ−ＣＳ１ならびに陽性対照としてＦＮ３０／３５でコートしたプレート上で繰り返した。ＦＮフラグメントは、１２０−１３０ｐｍｏｌ／ｃｍ２の濃度（Ｃ−２７４、Ｈ−２７１、Ｈ−２９６、Ｃ−ＣＳ１、ＦＮ３０／３５では４μｇ／ｃｍ２に等しく、ＣＨ−２７１およびＣＨ２９６では８μｇ／ｃｍ２に等しい）で用いられた。簡単に言えば、プレートをコートし、ウイスルを加え、プレートを広範囲に洗浄し、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞を２４時間加え、そして１０日間選択培地内で増殖させ、その後、コロニーを染色し、数を数えた。
【００９６】
９．２． 結果
図８は、Ｇ４１８−耐性コロニーの数（およびそのウイルス粘着性）が、フラグメントＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１およびＣＨ−２９６で増加したことを示している。さらに、図８は、ウイルス結合量が、これら組み換えフラグメントとＦＮ３０／３５の間では概略的に比較できるが、この仕事中では、ＣＨ−２７１フラグメントが最も高いレベルのウイルス結合を示したことを、示している。これらの５ＦＮフラグメントのすべてに共通なのは、高アフィニティーのヘパリン結合部位を含むタイプＩＩＩリピート１２−１４であり（Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ，Ｅ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，５７，３７５−４１３、１９８８、およびＫｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｇｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｊｏ．Ｋ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）、多分、リピート１３に位置する（Ｋｉｍｉｚｕｋａ，Ｆ．，Ｙ．Ｔａｇｕｃｈｉ，Ｙ．Ｏｈｄａｔｅ，Ｙ．Ｋａｗａｓｅ，Ｔ．Ｓｈｉｍｏｋｏ，Ｋ．Ｈａｓｈｉｎｏ，Ｉ．Ｋａｔｏ，Ｋ．ＳｅｋｉｇｕｃｈｉおよびＫ．Ｔｉｔａｎｉ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，２８４−２９１、１９９１）。このことは、ウイルス結合が、この既知の粘着部位を通して起こることを示唆している。このことは、４μｇ／ｃｍ２のＣＨ−２７１でコートした皿を、ヘパリン結合部位との細胞結合を阻害することが知られている高荷電分子である、硫酸ヘパリンの濃度を上昇（１０−１０００μｇ／ｍｌ）させて、プレインキュベーションすることによって、証明された。図９に示したように、Ｇ４１８−耐性コロニーの数は、高濃度の硫酸ヘパリンと共にＣＨ−２７１をプレインキュベーションした後には、減少している。これらのデータは、ＦＮへのウイルス結合が、ＦＮのカルボキシ末端ドメイン内のＣＳ−１部位のすぐ隣りに位置する高アフィニティーのヘパリン結合部位を通して仲介されることを、示唆している。
【００９７】
実施例１０ 組換えフィブロネクチンフラグメント上での造血細胞の形質転換
１０．１． 実験方法
前記したように、ＦＮ３０／３５上での造血細胞の形質転換の上昇が、組換えＦＮフラグメントでもまた認めることができるか否かを分析するために、我々は、高増殖潜在性−コロニー形成細胞（ｈｉｇｈ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ− ｃｏｌｏｎｙ ｆｏｒｍｉｎｇ ｃｅｌｌ）（ＨＰＰ−ＣＦＣ）アッセイを用いて、インビトロでの上清感染の形質転換効率を評価した。ＥＡＬ２ａベクターを用いることによって、我々は、ＢＳＡ上での様々な組換えＦＮフラグメント対ＦＮ３０／３５の上清感染の、造血細胞の形質転換への影響を、遺伝子トランスファーのインジケーターとしてＧ４１８−耐性コロニーの増殖を利用して、比較した。さらに、我々は、すでにＦＮフラグメントに粘着したウイルス粒子（対上清ウイルス）が造血細胞を形質転換する能力を比較した。上記の方法に従って、０．５から１ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、３５ｍｍのＦＮ−コートペトリ皿上、１−２ｍｌのＥＡＬ２ａウイルス含有上清中、増殖因子および５μｇ／ｍｌのポリブレンと共に、インキュベートした。ＦＮフラグメントに結合したウイルスによる造血細胞の形質転換を評価するために、ウイルス含有上清と共にインキュベートした３５ｍｍのＦＮ−コート皿を各２ｍｌのＰＢＳで３回洗浄した。次に、０．５から１ｘ１０６の前刺激した骨髄細胞を、増殖因子およびポリブレンを添加した２ｍｌの培地内に加えた。２２時間後、細胞を収集し、そして、Ｂｒａｄｌｅｙ，Ｔ．Ｒ．およびＤ．Ｍｅｔｃａｌｆ，Ａｕｓｔ，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．Ｓｃｉ．、４４、２８７ー２９３，１９６６に記載の方法に従って、１．５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８を加えておよび加えずに、ＨＰＰ−ＣＦＣアッセイに塗布した。培養液を、１４日間、７％ＣＯ２中、３３℃でインキュベートし、遺伝子トランスファー効率を、Ｇ４１８耐性コロニーの％として計算した。
【００９８】
１０．２． 結果
上清感染を通しての初期造血細胞（ｐｒｉｍｉｔｉｖｅ ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｃｅｌｌｓ）の形質転換（図１０）は、ヘパリン−結合部位（ｈｅｐａｒｉｎ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｓｉｔｅ）（ＨＢＳ）および少なくとも一つより多くの活性細胞粘着部位（立体棒）を含むすべてのフラグメントで、ＢＳＡ上での上清感染より有意に高い。組み換えフラグメントＣＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６およびＣ−ＣＳ１（３つのフラグメントはすべて、ヘパリン−結合部位およびＣＳ−１部位の両方を含む）の形質転換効率は、ＦＮ３０／３５の効果と同等であった。その他のすべての場合において、形質転換は、劇的に減少した。これらのデータは、以前にＦＮ３０／３５上で示された初期造血細胞の形質転換の増加を、組み換えＦＮフラグメント上でも複製できることを、証明している。さらに、フィブロネクチンに直接結合したウイルスは、造血細胞を遺伝的に形質転換する能力を持つことを、証明している。最終的に、初期造血前駆体（幹）細胞を形質転換するために、ＣＳ−１およびヘパリン結合部位の両方の存在が有用であることが、確認された。
【００９９】
実施例１１ 組換えフィブロネクチンフラグメント上でのマウスのドナー細胞の形質転換を用いる、マウスの長期にわたる骨髄の再構築
１１．１． 実験方法
造血幹細胞の再構築への効果を分析するために、初期造血前駆細胞について、ＢＳ対ＦＮ３０／３５対組み換えＦＮフラグメント上での上清感染、対同時培養を、骨髄移植を用いて比較する、上記のインビトロでの研究（実施例１０から）を繰り返した。簡単に言えば、致死照射マウスに、ヒトＡＤＡ ｃＤＮＡを含むＥＰＨＡ−５ベクターで形質転換したドナー細胞を注射した。１ヶ月後およびおおよそ６ヶ月後、遺伝子トランスファー効果を、ＡＤＡイソ酵素アッセイで末梢血液から分析した。
【０１００】
１１．２． 結果
図１１は、１ヶ月後の結果を示し、ヘパリン結合部位およびＣＳ−１の両方を含むフィブロネクチンフラグメントＨ−２９６では、ＦＮ３０／３５および共培養と同様の結果が得られることを、はっきりと示している。これら部位を両方共含まないフラグメントは、移植可能な造血細胞の形質転換に、あまり有効ではない。これらのデータは、初期造血／幹細胞ならびにＣＳ−１およびヘパリン結合部位を両方共含む組換えＦＮフラグメントに結合したレトロウイルスが共に配置されることが、移植可能な造血細胞を効果的に形質転換することを証明している。
【０１０１】
図１２は、移植後４ヶ月および６ヶ月の結果を示している。この時点で、造血幹細胞を再集団化する遺伝的形質転換は、対照プレート上またはＣＢＤ（Ｃ−２７４）あるいはＩＩＩ１２−１４（Ｈ−２７１）のみを含むフラグメント上で形質転換した細胞を移植した動物内では、示すことができなかった。ＨＳＣｓの遺伝的形質転換は、Ｃ−ＣＳ１フラグメント上ではより少ない頻度で認められ、この場合、１／３の動物がヒトのタンパク質陽性であった。インビボで再集団化した幹細胞内への遺伝子トランスファーは、ＣＢＤ（ＣＨ−２７１）またはＣＳ１（Ｈ−２９６）のいずれかと組み合わされたＨＢＤを含むフラグメント上で、一律に認められた。３つの細胞結合部位をすべて含むフラグメント（ＣＨ−２９６）上での形質転換は、標的細胞、産生細胞系、の同時培養で最も効果的に比較できた。これらのデータは、ＶＬＡ−４および／またはＶＬＡ−５の結合部位と組み合わせてＩＩＩ１２−１４を含むフィブロネクチンフラグメントがマウスの造血前駆細胞および幹細胞内へのレトロウイルスが仲介する遺伝子トランスファーを増加させる能力を有するを示している。
【０１０２】
実施例１２
フィブロネクチンは、少なくとも３つの部位（図１３）：インテグリンＶＬＡ−５を通してリピート１０内にテトラペプチドＲＧＤＳを含む細胞結合ドメイン（ｃｅｌｌ ｂｉｎｄｉｎｇ ｄｏｍａｉｎ）（ＣＢＤ）；細胞表面のプロテオグリカン分子を通してタイプＩＩＩリピート１２−１４（ＩＩＩ１２−１４）内に含まれるヘパリン結合ドメイン；および、インテグリンＶＬＡ−４を通して変化するスプライス領域ＩＩＩＣＳ内のＣＳ１配列：を通して細胞粘着性を支配する。これらの研究では、これらの単一の細胞粘着部位を単独で含むか、あるいはペプチド内に組み合わせて含む、図１３に示す６つのキメラ組換えＦＮフラグメントを用いた。
【０１０３】
ＦＮ−コートした細菌皿を、アンホトロピック（ａｍｐｈｏｔｒｏｐｉｃ）パッケージング細胞系ＴＫＮｅｏからの２ｍｌの上清（ＳＮ）内の２００ｃｆｕと共に、インキュベートした。３７℃に３０分間置いた後、皿をＰＢＳで３回洗浄し、次いで、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞（繊維芽細胞）を、１０％のウシ血清（ＣＳ；Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）および２％のＰ／Ｓを添加した１ｍｌのＤＭＥＭ内に加えた。翌日、細胞は、０．７５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８を含む選択培地内に置かれた。８−１０日後、皿を、Ｓｔａｔ Ｓｔａｉｎ（Ｖｏｌｕ−Ｓｏｌ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で染色し、そしてＧ４１８ｒコロニーをカウントした。このアッセイでは、レトロウイルスは、コートしていないかまたはＢＳＡ−コートしたプレートとは結合しない。図１４に示したように、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内への遺伝子トランスファーは、ここでは”ＩＩＩ１２−１４”と名付けられたヘパリン−ＩＩ結合ドメインを含むフラグメント（Ｈ−２７１、ＣＨ−２７１、Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６）上でのみ起こった。これらのデータは、レトロウイルス粒子がフィブロネクチンのＩＩＩ１２−１４リピート内の配列に直接的に結合することを証明している。ＮＩＨ／３Ｔ３細胞の感染は、ＩＩＩ１２−１４のみの場合と比較して、ＩＩＩ１２−１４およびＣＢＤの両方を含むＦＮフラグメント（Ｈ−２７１対ＣＨ−２７１を比較する）で有意により高かった。注目すべきことに、２００のＮＥＯｃｆｕ／プレートのインプットから最大で８０のＧ４１８ｒＮＩＨ／３Ｔ３コロニー／プレートが生成した。これとは対照的に、ＣＳ１を加えても、ＮＩＨ／３Ｔ３形質転換にいかなる効果も示さなかった（Ｈ−２７１対Ｈ−２９６、ＣＨ−２７１対ＣＨ−２９６）。
【０１０４】
ＦＮがレトロウイルス−仲介の遺伝子トランスファーを増加させるメカニズムがフラグメントへのレトロウイルスおよび標的細胞の同時結合によるものであることを証拠付けるため、非粘着細胞系（ＨＬ６０、既知の前骨髄細胞白血病細胞系）を用いて、実験を行った。ＨＬ６０細胞を、直接フルオロクロム−結合のＶＬＡ−４に対するモノクローナル抗体（ＦＩＴＣ：Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）およびＶＬＡ−５に対するモノクローナル抗体（ＰＥ；Ａｎｔｉｇｅｎｉｘ Ａｍｅｒｉｃａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で、またはＩｇＧ１およびＩｇＧ２ａ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）をイソ型対照として、染色した。死滅細胞を、プロピフィウムヨード（ｐｒｏｐｉｆｉｕｍ ｉｏｄｉｎｅ）染色によって、排除した。次いで、細胞をＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）上で分析した。遺伝子トランスファーを研究するために、１０４のＨＬ６０細胞を、神経増殖因子レセプター（ＮＧＦ−Ｒ）（力価１０５ｃｆｕ／ｍｌ）を含むアンホトロピックパッケージング細胞系ＤＡＧ（Ｓｔ．Ｊｕｄｅ’ｓ Ｃｈｉｌｄｒｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｈｏｓｐｉｔａｌ，Ｍｅｍｐｈｉｓ，ＴＮ．Ｕ．Ｓ．Ａ．から得られた）からのウイルス上清と共に、懸濁し、そして、濃度２μｇ／ｃｍ２ の６つのＦＮフラグメントでコートした細胞６穴プレートに加えた。４時間後、培養中のＨＬ６０培養液から２ｍｌの順化培地を加えた。４ｍｌの新たな培地（５％のＦＣＳおよび２％のＰ／Ｓを含むＲＰＭＩ， Ｇｉｂｃｏ）を、４−５日後に加えた。細胞を全体で８日間増殖させ、次いで、ＮＧＦ−Ｒ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）に対するモノクローナル抗体８２１１で、または対照としてイソ型ＩｇＧ１（Ｄａｋｏ，Ｕ．Ｓ．Ａ．）で染色し、次いで、ＦＩＴＣ−複合 ヤギ−抗−マウスの二次血清（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）と反応させた。細胞デブリスを排除するために、サンプルをプロピジウムヨード（ｐｒｏｐｉｄｉｕｍ ｉｏｄｉｎｅ）（ＰＩ）と共にインキュベートし、次に、ＦＡＣＳｃａｎで測定した。遺伝子トランスファーは、ＮＧＦ−Ｒ発現の分析によって、生きた細胞の通門（ｇａｔｉｎｇ）の後に、証明された。遺伝子トランスファーの研究はすべて、ポリブレンまたはプロタミンなしで、行われた。図１５に示すように、ＨＬ６０細胞は、フローサイトメトリー分析（Ａ＋Ｂ）では、ＶＬＡ−４を発現するが、ＶＬＡ−５を発現しない。発現データと一致して、ＨＬ６０細胞は、ＣＳ１を含むフラグメント（Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６、Ｃ−ＣＳ１）でコートされたプレートのみに粘着した。図１５に示すように、ＨＬ−６０細胞の遺伝子形質転換は、ＣＳ１と組み合わせてＩＩＩ１２−１４を含むフラグメント（Ｈ−２９６、ＣＨ−２９６）上でのみ起こった。ＨＬ−６０細胞は、それらのＶＬＡ−４インテグリンを通してＣ−ＣＳ１フラグメントと粘着するが、レトロウイルス結合が劇的に起こるＩＩＩ１２−１４ が存在しないと、ＨＬ６０細胞の形質転換は減少する。
【０１０５】
実験のもう一つのセットでは、濃度を増加させた高分子量（ＨＭＷ） のヘパリン（Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．、ＭＷ約７０００−２５０００）は、２．５％（ｖ／ｖ）の１Ｍ Ｈｅｐｅｓ（ＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ；すべてＧｉｂｃｏ）を添加した２ｍｌのハンクス液（Ｈａｎｋｓ Ｂａｌａｎｃｅｄ Ｓａｌｔ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）に溶解させ、そして濃度４μｇ／ｃｍ２ の異なるＦＮフラグメントでコートした細菌の６穴プレートに加えた。３０分後、プレートを、ＰＢＳで３回洗浄し、次に４００ｃｆｕ／２ｍｌのアンホトロピックＴＫＮｅｏベクターを加えた。３７℃で３０分後、プレートを再びＰＢＳで洗浄し、次いで１０％のＣＳおよび２％のＰ／Ｓと共に、ＤＭＥＭ中の２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞を加えた。上記の方法に従って、選別を行い、遺伝子トランスファー効率を、８−１０日の培養の後のＧ４１８ｒ コロニーの数として計数した。同様の実験セットでは、分画した低分子量（ＬＭＷ）ヘパリン（Ｓｉｇｍａ，Ｕ．Ｓ．Ａ．、ＭＷ約３０００）は、濃度を増加させた２ｍｌのＨＢＳＳ／Ｈｅｐｅｓ中に溶解させた。次いで、ＨＭＷ ヘパリンに関して上記した方法に従って、実験をデザインした。遺伝子トランスファー効率は、８−１０日後のＧ４１８ｒ の数として計数した。これらの遺伝子トランスファー研究のすべては、ポリブレンまたはプロタミンなしで行った。これらの実験の結果を図１６に示す。示したように、ＦＮへのウイルスの結合は、高分子量ヘパリンでは服用量依存様式で競合できる（１６Ａ）が、低分子量ヘパリンでは競合しない（１６Ｂ）。これらは、結果として、レトロウイルス粒子がＩＩＩ１２−１４内の配列に結合すること証拠となる。
【０１０６】
実施例１３ ＣＤ３４＋ 細胞集団内でのＢＦＵ−Ｅ細胞の選択的形質転換
この実施例では、混合した細胞集団内で選別された細胞を、ウイルス結合ドメインおよび細胞結合ドメインを持ち、標的細胞に特異的であるポリペプチドを用いることによって、形質転換の標的とすることができることを証明した。一般的ＴＫＮＥＯ感染および実施例１のアッセイプロトコールを繰り返したが、ＢＦＵ−Ｅ、ＣＦＵ−ＧＭおよびＣＦＵ−Ｍｉｘ細胞［臍帯血（ＣＢ）細胞よりアフィニティクロマトグラフィーによって得られた］を含むＣＤ３４＋細胞は、実質的に均一な集団を用い、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２７１の濃度は１、２、４、８、１６および２０μｇ／ｃｍ２ に変化させて用いた。結果を図１７に示す。示した通り、ＢＦＵ−Ｅ細胞は、ＶＬＡ−５結合部位に結合し、高い効率で形質転換された（Ｇ４１８耐性コロニーの２５％より多い）が、これに対してＣＦＵ−ＧＭおよびＣＦＵ−Ｍｉｘ集団は、有意なＶＬＡ−５への結合を示さず、実質的により低い効率で形質転換された（Ｇ４１８耐性コロニーの約５％より少ない）。
【０１０７】
実施例１４ ｃ−ＫＩＴ＋細胞の形質転換
本実施例では、ｃ−ＫＩＴ＋として実質的に均一な細胞集団を、本発明の方法に従って、形質転換した。このため、ｃ−ＫＩＴ＋細胞は、フローサイトメトリー選択技術を用いて、マウスの骨髄から単離された。細胞は、一般的には実施例１記載の方法に従って、ＴＫＮＥＯベクターを用いた感染プロトコールに委ねたが、ＦＮフラグメントは、図１８に示すように変化させ、感染した細胞は、ＨＰＰ−ＣＦＣでアッセイした。図１８に示すように、ＩＩＩ１２−１４およびＶＬＡ−４結合部位を含むＦＮフラグメント（ＦＮ３０／３５、Ｈ２９６およびＣＨ−２９６）は、高い形質転換効率を示した（Ｇ４１８耐性コロニーの８０％より高い）が、これらの２つのドメインを欠くＦＮフラグメントは、結果として有意な形質転換を生じない（Ｃ２７４およびＣ−ＣＳ１）か、または実質的に低い効率を示す（Ｈ２７１、ＣＨ２７１、Ｇ４１８耐性コロニーの２０％より少ない）。
【０１０８】
実施例１５ ポリブレンの濃度を変化させて用いた場合のＮＩＨ／３Ｔ３およびクローン原性（ｃｌｏｎｏｇｅｎｉｃ）ＢＭ細胞の形質転換
この実験セットでは、本発明の有用な形質転換法が、ヘキサジメチリンブロミド非存在下で行われることを証明した。ＮＩＨ／３Ｔ３（繊維芽細胞）細胞およびクロ−ン原性骨髄細胞は、一般的には、それぞれ実施例１２および１に記載した通りのＴＫＮＥＯ感染プロトコールに委ねたが、ベクター、細胞および様々な濃度のポリブレンを最初に一緒に懸濁し、次いで、ＦＮフラグメントＣＨ−２９６（８μｇ／ｍｌ）でコートした基質に適用した。アッセイは、これらの細胞型に関して前記したとおりである。結果を図１９および２０に示す。図１９に示すように、Ｇ４１８耐性ＮＩＨ／３Ｔ３コロニーの数は、ポリブレン濃度を増加させると、劇的に減少する（その範囲は、ポリブレンを使わなかった場合約１４から、１２．５μｇ／ｍｌのポリブレンを用いた場合約４に低下する）。同様に、図２０は、プロトコールがポリブレンの非存在下に委ねられた場合に４０近いコロニーが得られたことを、表しているが、これに対して１０μｇ／ｍｌのポリブレンを用いた場合の関連値は、１５より少なかった。
【０１０９】
実施例１６ Ｔ細胞の形質転換、ならびにコラーゲンＶおよびＦＧＦウイルス結合配列を持つポリペプチドの使用
この実施例では、ヒトＴ細胞内へのＤＮＡトランスファーの強化、およびコラーゲンＶおよび繊維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）からのレトロウイルス結合配列（フィブロネクチンのヘパリンＩＩ結合部位と実質的に相同である）の発明への使用について、説明している。このために、全血を、モノクローナル抗体（ＣＤ３ ｐｅｒＣＰに対するＭｏＡｂｓ；Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）、ＣＤ４９ｅ（ＰＥ；Ａｎｉｔｅｎｉｘ Ａｍｅｒｉｃａ）、ＣＤ４９ｄ（ＦＩＴＣ，ＰＥ，それぞれ：Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で、１５分間、室温で染色し、次いで、製造者らの勧告に従って、ＦＡＣＳ溶解溶液（ＢＥＣＴＩＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）と共にＦＡＣＳｃａｎ（ＢＥＣＴＩＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）での分析用に、調製した。末梢血液−誘導単核細胞（ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｂｌｏｏｄ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ ｃｅｌｌｓ）（ＰＢ−ＭＮＣｓ）は、１ｘ１０６細胞／ｍｌの濃度で、１μｇ／ｍｌのＯＫＴ−３（Ｏｒｔｈｏ）および５０Ｕ／ｍｌのＩＬ−２（Ｃｅｔｕｓ）で、前刺激した。２−３日後、細胞を収集し、洗浄し、次いで、７．５μｇ／ｍｌのポリブレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）の連続存在下、８μｇ／ｃｍ２ のＣＨ２９６で又は２％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）でコートした組織培養処理しなかったプレート上、ＰＧＫプロモーターの調節下で、マウスのアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピックレトロウイスル５５／６で、１または２日間形質転換した。一日おきに、５０％の培地を、５０Ｕ／ｍｌのＩＬ−２を含む培地に新しく置き換える。感染から４−６日後、細胞を収集し、ＣＤ３、ＣＤ５６、ＴＣＲ−αβおよびＨＬＡ−ＤＲに対するＭｏＡｂｓ（すべてＢｅｃｔｉｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を用いて、形態学的に分析した。遺伝子トランスファー効率の分析は、ＡＤＡイソ酵素アッセイ（Ｂｏｄｉｎｅ，Ｄ．Ｍ．ら、Ｂｌｏｏｄ，８２，１９７５−８０，１９９３；Ｍｏｒｉｔｚ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，５２９−３６、１９９３）でヒトの内在性のＡＤＡタンパク質と比較して、形質転換されたマウスのＡＤＡ酵素の活性を測定することによって、非選択集団上で、行われた。
【０１１０】
結果：
Ａ． Ｔ細胞
最初に、ヒトＴ細胞を、ＦＮレセプターＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５の発現について分析した。このために、末梢血液（ＰＢ）−誘導単核細胞（ＭＮＣｓ）を、ＣＤ３、ＣＤ４９ｄおよびＣＤ４９ｅに対するモノクローナル抗体（ＭｏＡｂｓ）で染色し、フローサイトメトリーで分析した。図２１に示すように、細胞を、すべての末梢血液Ｔ細胞を表すＣＤ３陽性リンパ球（Ｒ１およびＲ４）について通門した。ＰＢ Ｔ細胞の９４％は、ＣＤ４９ｄ陽性であり、９６％はＣＤ４９ｅ陽性である。Ｔ細胞の９０％は、ＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５の両方を発現している。
【０１１１】
次に、ＰＢ−誘導ＰＢ−ＭＮＣｓを、２−３日間、ＣＤ３ＭｏＡｂ ＯＫＴ−３および組換えＩＬ−２で前刺激し、次いで、１−２日間、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２９６かまたはＢＳＡでコートした非組織培養処理したプレート上、ＰＧＫプロモーター調節下で、形質転換した；対照には、マウスのアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピック産生細胞系ＡＭｍＡ５５／６（Ｂｏｄｉｎｅ，Ｄ．Ｍ．ら、Ｂｌｏｏｄ，８２，１９７５−８０，１９９３；Ｍｏｒｉｔｚ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１７８，５２９−３６，１９９３）からのレトロウイルス上清でコートしたプレートを用いた。
【０１１２】
感染４−６日後のフロー分析は、細胞培養液が＞９０％のＴ細胞を含み、その大部分は、それらのＨＬＡ−ＤＲおよびＣＤ５６発現によって示されるように強く活性化された（図２２）。
【０１１３】
ＡＤＡイソ酵素アッセイによる遺伝子トランスファー効率の分析（図２３）は、誘導されたマウスＡＤＡタンパク質の活性が、形質転換プロトコールが組み換えペプチドＣＨ−２９６を含む場合には、ヒト内因性タンパク質の活性と等しいことを証明した。ＢＳＡ上での感染では、アッセイの感受性以上のレベルの遺伝子トランスファーが得られた。
【０１１４】
これらのデータは、ヒト一次Ｔ細胞（ｐｒｉｍａｒｙ Ｔ ｃｅｌｌｓ）が、ポリブレンの様なポリカチオンの非存在下で、組換えＦＮフラグメントＣＨ−２９６上の無細胞レトロウイルス−含有上清で効率よく形質転換されうることを、証明している。遺伝子配達効率は、上清＋ポリブレンのみを用いた標準的方法と比較して、非常に高い。
【０１１５】
Ｂ． 新しい組換えペプチド
コラーゲンＶ（ＣＯＬ）および塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）の両方が、フィブロネクチンのＨＢＤと配列相同性を示し、ヘパリン結合能力もまた有するため、図２４に示す７つの組み換えタンパク質を、レトロウイルス結合活性について分析した。
【０１１６】
最初に、ＣＯＬおよびＦＧＦを分析して、それらが機能的レトロウイルス結合配列を持つか否かについて決定した。最後に、細菌プレートを組換えペプチドでコートし、次いで、アンホトロピックＮＥＯレトロウイルスを含む上清を加えた。３０分後、プレートを徹底的に洗浄してすべての非結合レトロウイルス粒子を除去し、次いで、２０００ＮＩＨ／３Ｔ３細胞をそれぞれのプレートに加えた。遺伝子トランスファー効率は、８−１０日後、Ｇ４１８耐性（Ｇ４１８ｒ ）ＮＩＨ／３Ｔ３細胞コロニーの数で、評価した。
【０１１７】
図２５に示すように、ＮＩＨ／３Ｔ３細胞内への充分な遺伝子配達は、ＨＢＤ（フラグメントＣＨ−２７１）と又はコラーゲンＶ（Ｃ−ＣＯＬ）あるいはＦＧＦ（Ｃ−ＦＧＦ）の配列と組み合わせてＦＮの細胞結合ドメイン（ＣＢＤ）を含む組換えペプチド上で起こるＧ４１８ｒコロニーの増殖で、評価した。これらの結果は、レトロウイルス粒子がコラーゲンＶまたはｂＦＧＦ内の配列と直接的に結合することをも証明し、これらの配列を含む組換えペプチドを、造血細胞の標的に用いることができることの証拠となる。
【０１１８】
ＶＬＡ−４およびＶＬＡ−５を発現するＨＥＬ細胞は、このように、組換えフラグメントＣ−２７４（ＣＢＤ）、Ｈ−２７１（ＨＢＤ）、ＣＨ−２７１（ＣＢＤ−ＨＢＤ）、ＣＯＬ、Ｃ−ＣＯＬ（ＣＢＤ＋ＣＯＬ）、Ｃ−ＦＧＦ、Ｃ−ＦＧＦ−ＣＳ１上で、および対照としてＢＳＡ上で、切除型（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ）神経増殖因子レセプターｐ７５鎖（ＮＧＦ−Ｒ）ｃＤＮＡを含むアンホトロピックレトロウイルスで形質転換された。遺伝子トランスファ−効率を、８日後、ＮＧＦ−Ｒ発現のフローサイトメトリー分析によって分析した。
【０１１９】
図２６に示したように、低レベルの遺伝子トランスファーは、Ｃ−２７４でコートしたプレートまたはＢＳＡでコートしたプレート上で起こった。Ｈ−２７１（ＨＢＤ）およびＣＯＬ上での形質転換は、結果として３３−３６％のＮＧＦ−Ｒ陽性細胞を生じた。ＨＢＤ（ＣＨ−２７１）へのＣＢＤの付加は、切除型細胞の百分率を、この実験で最も高いレベルに上昇させた。興味深いことに、Ｃ−ＣＯＬフラグメント中のＣＯＬへのＣＢＤ（ＶＡＬ−５結合部位）付加も、また、フラグメントＣ−ＦＧＦ−ＣＳ１内のＣＳ−１（＝ＶＡＬ−４結合部位）の付加も、ＨＥＬ細胞の遺伝子形質転換を有意には上昇させなかった。
【０１２０】
最後に、１日ＩＬ−６およびＳＣＦで前刺激したヒトＣＤ３４＋骨髄（ＢＭ）細胞を、アンホトロピックＮＥＯレトロウイルスと共にキメラペプチド上で、１日間形質転換し、次いで、１．５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８の存在下または非存在下で前駆細胞アッセイのため、塗布した。
【０１２１】
Ｇ４１８ｒコロニーの％として培養１４日後に評価した効率良い遺伝子トランスファーは、細胞結合レセプターと組み合わせてＨ−２７１又はＦＧＦ内にレトロウイルス結合配列を含むフラグメント上で起こっていた。特記すべきことに、ＮＧＦ−ＲレトロウイルスでＨＥＬ細胞を遺伝的に修飾することによって得られる結果（図２７）に対して、Ｃ−ＦＧＦにＣＳ１部位を付加すると、クローン原性ＣＤ３４＋ＢＭ細胞内への遺伝子トランスファー効率が著しく促進されて、フラグメントＣＨ−２９６（ＣＢＤ＋ＨＢＤ＋ＣＤ１）で得られたレベルに近づく。
【０１２２】
このように、一次Ｔ細胞は、それらのＶＬＡ−４又はＶＬＡ−５インテグリンを通してフィブロネクチンと結合するＴ細胞の能力を用いるフィブロネクチンの粘着性ドメイン上のレトロウイルスベクターで効率よく形質転換できることが、証明された。また、レトロウイルス粒子は、フィブロネクチンのヘパリンＩＩ結合ドメインと相同性を示すコラーゲンＶまたはｂＦＧＦ内の配列に粘着すること、ならびに造血細胞および細胞系は、標的細胞のための結合部位と組み合わせてコラーゲンＶまたはｂＦＧＦのレトロウイルス結合配列を含む組み換えペプチド上で、効率よく遺伝的に修飾されうること、もまた示した。
【０１２３】
本発明は、前の記述を詳細に説明し記載するが、本発明は、その特徴を説明するものとして考えられるべきであって、特徴を制限するものとして考えるべきではなく、望ましい実施態様のみを記載すること、および本発明の思想の中に入る変化および修飾のすべてが保護されることを所望することを、理解するであろう。
【０１２４】
ここに引用されたすべての文献は、そのそれぞれが独立的に参照として採用される様に、ここにその全体を参照として採用される。さらに、同時係属の米国特許出願０８／２１８，３５５、１９９４年３月２５日出願、および同時係属の国際特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９５／０３８１７、１９９５年３月２７日に出願され合衆国指定、はその全体を参照としてここに採用する。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ポリカチオン性剤を含まず、そして組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６を含む、生存可能な哺乳類の細胞集団であって、
当該細胞集団は、レトロウイルスによって形質導入された生存可能な細胞集団を得る方法であって、
レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるために、有効な固定化された量の組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させる、
ここにおいて、前記感染は、共培養中レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるが、前記組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６の存在下でレトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を減少させる、ポリカチオン性剤を含まない培地で行われる、
ことを含む方法によって製造される、
前記前記哺乳類の細胞集団。
【請求項２】
造血幹細胞を含む、請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項３】
請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団を哺乳動物に移植することを含む、細胞移植方法のために使用される、請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項４】
レトロウイルスで形質導入されたｉｎ ｖｉｔｒｏの生存可能な哺乳類の細胞集団を含む哺乳類の細胞組成物であって、レトロウイルス産生細胞および共培養中レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるポリカチオン性剤を含まず、そして、組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６をさらに含む、前記哺乳類の細胞組成物。
【請求項５】
前記の生存可能な細胞が造血幹細胞を含む、請求項４記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項６】
請求項４記載の組成物から得られた生存可能な哺乳類の細胞集団を哺乳動物に移植することを含む、細胞移植方法のために使用される、請求項４記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項７】
細胞が造血幹細胞を含む、請求項６記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項８】
前記哺乳類の細胞集団が、造血幹細胞を含むヒト造血細胞集団である、請求項２記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項９】
生存可能な哺乳類の細胞集団が、哺乳類の同じ種に由来する、請求項６記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項１０】
哺乳類がヒトであり、そして生存可能な哺乳類の細胞集団がヒトの細胞集団である、請求項９記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項１１】
細胞がヒト造血細胞である、請求項４に記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項１】
ポリカチオン性剤を含まず、そして組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６を含む、生存可能な哺乳類の細胞集団であって、
当該細胞集団は、レトロウイルスによって形質導入された生存可能な細胞集団を得る方法であって、
レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるために、有効な固定化された量の組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６の存在下で、細胞をレトロウイルスに感染させる、
ここにおいて、前記感染は、共培養中レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるが、前記組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６の存在下でレトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を減少させる、ポリカチオン性剤を含まない培地で行われる、
ことを含む方法によって製造される、
前記前記哺乳類の細胞集団。
【請求項２】
造血幹細胞を含む、請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項３】
請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団を哺乳動物に移植することを含む、細胞移植方法のために使用される、請求項１記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項４】
レトロウイルスで形質導入されたｉｎ ｖｉｔｒｏの生存可能な哺乳類の細胞集団を含む哺乳類の細胞組成物であって、レトロウイルス産生細胞および共培養中レトロウイルスによる細胞の形質導入の効率を増加させるポリカチオン性剤を含まず、そして、組換えフィブロネクチンフラグメントＣＨ−２９６をさらに含む、前記哺乳類の細胞組成物。
【請求項５】
前記の生存可能な細胞が造血幹細胞を含む、請求項４記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項６】
請求項４記載の組成物から得られた生存可能な哺乳類の細胞集団を哺乳動物に移植することを含む、細胞移植方法のために使用される、請求項４記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項７】
細胞が造血幹細胞を含む、請求項６記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項８】
前記哺乳類の細胞集団が、造血幹細胞を含むヒト造血細胞集団である、請求項２記載の生存可能な哺乳類の細胞集団。
【請求項９】
生存可能な哺乳類の細胞集団が、哺乳類の同じ種に由来する、請求項６記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項１０】
哺乳類がヒトであり、そして生存可能な哺乳類の細胞集団がヒトの細胞集団である、請求項９記載の哺乳類の細胞組成物。
【請求項１１】
細胞がヒト造血細胞である、請求項４に記載の哺乳類の細胞組成物。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【公開番号】特開２００９−２６１４０７（Ｐ２００９−２６１４０７Ａ）
【公開日】平成２１年１１月１２日（２００９．１１．１２）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００９−１５５８５５（Ｐ２００９−１５５８５５）
【出願日】平成２１年６月３０日（２００９．６．３０）
【分割の表示】特願平９−５１３７５８の分割
【原出願日】平成８年９月３０日（１９９６．９．３０）
【出願人】（３０１０４６７８７）インディアナ・ユニバーシティ・リサーチ・アンド・テクノロジー・コーポレーション (24)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２１年１１月１２日（２００９．１１．１２）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年６月３０日（２００９．６．３０）
【分割の表示】特願平９−５１３７５８の分割
【原出願日】平成８年９月３０日（１９９６．９．３０）
【出願人】（３０１０４６７８７）インディアナ・ユニバーシティ・リサーチ・アンド・テクノロジー・コーポレーション (24)
【Ｆターム（参考）】
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