バクテリオファージを含む、細菌性感染症治療用の薬剤
【課題】 魚類のエドワジエラ症および／またはレンサ球菌症を治療および予防する薬剤を提供する。
【解決手段】 本発明に係る薬剤に、エドワジエラ・タルダに特異的に感染するバクテリオファージ、またはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージを含ませる。各バクテリオファージは、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として集殖法、または２重寒天法にて得たものである。
【解決手段】 本発明に係る薬剤に、エドワジエラ・タルダに特異的に感染するバクテリオファージ、またはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージを含ませる。各バクテリオファージは、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として集殖法、または２重寒天法にて得たものである。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はバクテリオファージを含む、細菌性感染症治療用の薬剤に関し、特に、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症を治療するための、バクテリオファージを含む薬剤に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
養殖技術の急速な発展に伴い、今や様々な魚種を養殖できるようになっている。このような養殖産業における大きな課題の一つに、養殖魚の感染症がある。一般的な養殖場では、ある大きさの養殖領域内で数多くの魚を養殖するため、１尾の養殖魚が感染症になると、瞬く間に養殖領域の全ての魚に感染し、重症の場合には全養殖魚が死滅してしまう場合がある。これは、養殖業者にとって死活問題と成り得る。
【０００３】
このような感染症として知られているものとして、例えば、養殖ヒラメでは、エドワジエラ症（Edwardsiellosis）およびレンサ球菌症（Streptococcus iniae infection）がある。
【０００４】
エドワジエラ症は、Edwardsiella tardaが被感染体（ここではヒラメ）に感染することによって引き起こされる感染症である。Edwardsiella tardaは、グラム陰性桿菌であり、ヒラメ以外にも、マダイ、テラピアなど多くの魚種に対して感染能をもっている。また、ウナギのパラコロ病の原因菌でもある。エドワジエラ症になると、内臓に膿瘍形成や腹水といった症状を示す。
【０００５】
レンサ球菌症は、Streptococcus iniaeが被感染体に感染することによって引き起こされる感染症である。Streptococcus iniaeは、１９８０年代はじめより、ニジマス、ギンザケ、アユ等に全身感染を起こすことが知られていたが、最近では特にヒラメにおいてエドワジエラ症と並ぶ再重要疾病となっている。ヒラメの場合、レンサ球菌症を発症すると、鰓蓋出血、眼球突出、腹水の貯留等を示し、重度の全身感染を引き起こして死に至る。
【０００６】
このようなエドワジエラ症およびレンサ球菌症は、養殖場に限らず、海や河川の遊魚への影響も確認されており、社会問題化している。
【０００７】
このようなエドワジエラ症およびレンサ球菌症の予防・治療策として、レンサ球菌症の場合では、化学薬剤を使用する方法がある。化学薬剤としては、例えばオキシテトラサイクリンを用いることができる。
【０００８】
エドワジエラ症およびレンサ球菌症を予防する方法として、ワクチンの開発なども行われている。
【０００９】
一方、近年、細菌感染症を、バクテリオファージを用いて治療する方法が研究されている。例えば、非特許文献１には、マウスの大腸菌感染を、バクテリオファージを用いて治療する方法が記載されている。
【００１０】
バクテリオファージは、細菌内で増殖して短時間（約３０分）で細菌を殺す能力があり、しかも特定の細菌種または特定の株にのみ感染するという特徴を有するので、感染症の治療に用いることができる。また、バクテリオファージは、自然界における細菌の存在量を調整する役割を担っており、環境への有害性は皆無である。
【００１１】
バクテリオファージを用いて細菌感染症を治療する方法は、魚類についても研究が行われつつあり、本願発明者らによって、養殖アユやニジマスにおいて被害の大きい「細菌性冷水病」に対するバクテリオファージを用いた治療薬剤の研究（特許文献１）がなされている。また、同じく本願発明者らは、養殖アユの「細菌性出血性腹水病」あるいは養殖ブリの「Lactococcus garvieae 感染症」について、その原因菌に特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを用いて感染症をコントロールできることを報告している（非特許文献２、３、４）。
【特許文献１】特開２００４−２６９４４５号公報（２００４年９月３０日公開）
【非特許文献１】「ジャーナルオブジェネラルマイクロバイオロジー」（"Journal of General Microbiology"）,（イギリス），1982年，第128巻，p.307-318
【非特許文献２】「アプライドアンドエンバイロンメンタルマイクロバイオロジー」（"APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY"）,（アメリカ合衆国），第66巻，2000年4月，p.1416-1422
【非特許文献３】「ディジーズオブアクアティックオーガニズムズ」（"DISEASES OF AQUATIC ORGANISMS"）,（ドイツ），2003年1月，第53巻，p.33-39
【非特許文献４】「ディジーズオブアクアティックオーガニズムズ」（"DISEASES OF AQUATIC ORGANISMS"）,（ドイツ），1999年6月，第37巻，p.33-41
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
しかしながら、エドワジエラ症およびレンサ球菌症の予防・治療策については、まだ数多くの問題が残っている。
【００１３】
まず、エドワジエラ症に関しては、これを予防・治療するために使用できる有効な薬剤（水産用医薬品）がないということである。すなわち、エドワジエラ症の予防・治療策に有効な方法は未だに解明されていない。
【００１４】
また、上述したように、レンサ球菌症の予防・治療策の一つに化学薬剤を投与する方法があるが、その治療効果はかなり不安定であり、安定してレンサ球菌症を抑制することができない。
【００１５】
また、化学薬剤の投与に関しては、薬剤耐性細菌が出現する可能性が非常に高いという問題がある。さらに、化学薬剤を投与する場合、化学薬剤が海や河川に流出することで環境汚染につながり、他の生息生物やヒトへの有害な影響といった問題が発生する。
【００１６】
また、ワクチンについては、現在エドワジエラ症に有効な市販ワクチンはなく、今春（平成１７年）市販されたレンサ球菌症に対するワクチンは、養殖現場での使用に際して、そのコストと投与方法（注射）に難点がある。
【００１７】
本発明は上記課題に鑑みてなされたものであり、その目的は、良好な効果を示すエドワジエラ症の予防および治療のための薬剤、および良好な効果を示すレンサ球菌症の予防および治療のための薬剤を提供することにあり、加えて、環境にも無害な当該薬剤を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）に特異的に感染するバクテリオファージ、およびレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエ（Streptococcus iniae）に特異的に感染するバクテリオファージを見出し、本発明を完成させるに至った。
【００１９】
まず、エドワジエラ症の予防および治療に関しては、本発明に係る、エドワジエラ症の予防および治療のための薬剤は、上記の課題を解決するために、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴としている。
【００２０】
また、レンサ球菌症の予防および治療に関しては、本発明に係る、レンサ球菌症の予防および治療のための薬剤は、上記の課題を解決するために、ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴としている。
【００２１】
上記バクテリオファージとは、細菌に感染するウイルスであり、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージは、例えば、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、集殖法または２重寒天法にて採取できる。
【００２２】
ここで、上記「指示細菌として採取する」とは、特定の細菌種または細菌株（指示細菌）を含む環境で、この指示細菌を溶菌するバクテリオファージを培養することによってこのバクテリオファージを増殖させて、バクテリオファージを得る方法である。具体的には、集殖法では、材料すなわち目的のバクテリオファージを含む試料を、指示細菌をいれた液体培地で培養することにより、材料中のバクテリオファージの数を増やす。また、２重寒天法では、材料と指示細菌とを軟寒天中で混合し、栄養寒天平板上に重層させることで、材料中のバクテリオファージにプラーク（溶菌斑）を形成させる。
【００２３】
また、上記バクテリオファージとしては、特にミオウィルス科、シホウィルス科、またはポドウィルス科に分類されるものが挙げられる。
【００２４】
このような薬剤を、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を発症した魚類に対して投与すれば、上記バクテリオファージが、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、またはレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するので、安定した治療効果を発揮する。
【００２５】
このように、本発明の薬剤はバクテリオファージを用いて、原因細菌を溶菌しているので、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を防ぐ生物農薬であるということもできる。
【００２６】
なお、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、およびレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌する上記各バクテリオファージを共に用いることによって、エドワジエラ症およびレンサ球菌症を同時に治療することができることは言うまでもない。
【００２７】
また、本発明に係る薬剤に含まれるバクテリオファージは、自然環境に生息するものであるので、環境汚染や人を含めた他生物への悪影響もない。さらに、化学薬剤の投与に対しては薬剤耐性細菌が出現するのに対し、バクテリオファージ耐性のエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエが現れる可能性も低い。
【００２８】
また、本発明の薬剤は、上記バクテリオファージとして感染特性の異なる複数種類の株を含んでいることが望ましい。
【００２９】
本発明の薬剤に含まれるバクテリオファージは、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染し、溶菌させるものであるが、それぞれのバクテリオファージ株は、すべてのエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに感染できるわけではなく、エドワジエラ・タルダの株またはストレプトコッカス・イニアエの株によって感染可能なものと感染できないものがある。なお、本明細書における「感染特性が異なる」とは、この感染できるエドワジエラ・タルダの株またはストレプトコッカス・イニアエの株が異なることを示している。従って、薬剤に、複数の株のバクテリオファージを含ませることで、感染・溶菌が可能なエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエの株が増え、エドワジエラ症またはレンサ球菌症の治療の可能性が高まる。
【００３０】
本発明の薬剤を投与する対象動物としては、ヒラメ科の魚類が挙げられる。ヒラメ科の魚類は、エドワジエラ症およびレンサ球菌症の発症が多く確認され、被害が広がっている。ヒラメ科の魚類に本発明の薬剤を投与することで、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症の被害を抑えることができる。
【００３１】
また、本発明の薬剤が、薬剤投与対象動物に注射または経口投与されるように構成されていることによって、本発明の薬剤は、腹腔や筋肉または消化管から循環系に侵入し、腎臓等に蓄積されたエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを溶菌して、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を発症した個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００３２】
注射や経口投与以外にも、本発明の薬剤を、薬剤投与対象動物の体表面から接触投与（浸漬法）できるように構成することも可能である。
【００３３】
なお、本明細書における「体表面」とは、皮膚をはじめとする、外部環境と接触できる状態にある部分を示し、魚類で言えば、そのエラも「体表面」に含まれる。魚類を薬剤投与対象動物とする場合には、魚類を本発明に係る薬剤が分散した分散液に浸漬することによって、薬剤を投与することができる。これにより、本発明の薬剤に含まれるバクテリオファージが、体表やエラに付着したエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを溶菌する、あるいはバクテリオファージは体表から体内に速やかに侵入することができるので、体内で増殖中の細菌を溶菌することにより、エドワジエラ症またはレンサ球菌症に罹った個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００３４】
また、上記バクテリオファージは動物の循環器系を循環したものであることが望ましい。
【００３５】
バクテリオファージを生体に投与する場合、バクテリオファージが、体内にある種々の生体防御因子（補体など）の作用により比較的短時間で消滅してしまい、生体に長時間作用することができない。そこで、バクテリオファージを動物の循環器系を循環させることによって、これらの防御因子の作用を受けにくい、または受けない株を選択することができ、長時間体内に存在し得るバクテリオファージ株を取得することができる。これにより、バクテリオファージが投与対象個体の体内に長く留まり、治療効果が長く持続する薬剤とすることもできる。
【発明の効果】
【００３６】
本発明のエドワジエラ症治療用の薬剤は、以上のように、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むものである。
【００３７】
また、本発明のレンサ球菌症治療用の薬剤は、以上のように、ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むものである。
【００３８】
それゆえ、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、またはレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに感染した、または感染する可能性のある薬剤投与対象動物（例えばヒラメ科の魚類）に対して、本発明の薬剤を投与することで、当該薬剤に含まれるバクテリオファージが、体内に侵入したエドワジエラ・タルダ、または体内に侵入したストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するので、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を回復させる治療効果を発揮することができる。
【００３９】
また、本発明に係る薬剤に含まれるバクテリオファージは、自然環境に生息するものであるので、環境汚染や、人を含めた他生物への影響等の心配がない。さらに、化学薬剤の投与の場合では、薬剤耐性細菌が出現するのに対し、バクテリオファージ耐性のエドワジエラ・タルダおよびストレプトコッカス・イニアエが現れる可能性は低い。
【００４０】
従って、エドワジエラ症やレンサ球菌症により深刻な被害がでているヒラメ養殖場などにおいて、環境への負担がなく、治療効果の高いエドワジエラ症またはレンサ球菌症治療用の薬剤として使用できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４１】
本発明の一実施形態について説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００４２】
バクテリオファージ（以下ファージと称する）は、細菌内で増殖して短時間（約３０分）で細菌を殺す能力があり、しかも特定の細菌種あるいは特定の株にのみ感染するという特徴を有する。また、ファージは自然界における細菌の存在量を調整する役割を担っており、環境への有害性は皆無であることが分かっている。そこで、本願発明者らは、「エドワジエラ症」の原因細菌であるエドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージ、および「レンサ球菌症」の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエを特異的に溶菌するファージを採取し、治療に利用できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【００４３】
エドワジエラ・タルダは、グラム陰性桿菌であり、ヒラメ以外にも、マダイ、テラピアなど多くの魚種に対して感染能をもっている。また、ウナギのパラコロ病の原因菌でもある。エドワジエラ・タルダに感染してエドワジエラ症を発症すると、内臓に膿瘍形成や腹水といった症状を示す。
【００４４】
ストレプトコッカス・イニアエは、１９８０年代はじめより、ニジマス、サケ、ブリ等に髄膜脳炎を起こすことが知られており、魚の表面に存在し、時に菌血症から髄膜脳炎を起こす。ストレプトコッカス・イニアエに感染してレンサ球菌症を発症すると、体色黒化、エラの出血等を示し、重症例では、腹部膨満、腎臓と脾臓が腫大し、死に至らしめる疾病で、ヒラメの疾病の中で最重要の疾病の１つとなっている。
【００４５】
以下、本発明の一実施の形態について、図表を用いて説明する。
【００４６】
なお、以下の説明では、「エドワジエラ症」の原因細菌であるエドワジエラ・タルダに対する本発明の薬剤について説明するが、特に、言及しない限りにおいては、「エドワジエラ症」の代わりに「レンサ球菌症」を適用でき、かつ以下の説明において「エドワジエラ・タルダ」の代わりに「ストレプトコッカス・イニアエ」を適用することができる。
【００４７】
本実施形態における薬剤は、エドワジエラ症を治療するために、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌するファージを利用する薬剤である。このファージは、エドワジエラ・タルダを指示細菌として、自然環境から、例えば集殖法や２重寒天法を用いて採取することができる。集殖法では、材料すなわち目的のファージを含む試料を、指示細菌をいれた液体培地で培養することにより、材料中のファージの数を増やす。また、２重寒天法では、材料と指示細菌とを軟寒天中で混合し、栄養寒天平板上に重層させることで、材料中のファージにプラーク（溶菌斑）を形成させる。集殖法および２重寒天法の詳細については、海洋学講座１１「海洋微生物」多賀信夫編、東京大学出版会（１９７４）に詳細に記載されている。
【００４８】
なお、ファージを採取するためのエドワジエラ・タルダは、例えばエドワジエラ症を発症した魚個体の患部や、エドワジエラ症罹病魚が生息している水から、塗沫法により取得でき、トリプトソイ寒天培地またはサルモネラ・シゲラ寒天培地（選択培地）で２５−３０℃にて分離・培養することができる。
【００４９】
以上のようにして得たエドワジエラ・タルダを特異的に感染・溶菌するファージは、生育環境とほぼ同等な条件の培養液にて保存することが可能であり、５℃程度の低温で保存した場合は、６ヶ月以上の保存が可能である。
【００５０】
上記ファージは、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるので、魚類に対して投与することで、後述の実施例に示すように、エドワジエラ症を回復させる治療効果を安定して発揮することができる。さらに、本実施形態におけるエドワジエラ症治療用の薬剤に、古くから海産魚の疾病として知られているラクトコックス・ガルビアエ（Lactococcus garvieae）感染症などの他の感染症を治療するファージを混合することにより、エドワジエラ症の治療を行うと共に、別の細菌の繁殖を防ぐ薬剤を提供することも可能である。
【００５１】
また、上述したように、本発明に係る、エドワジエラ症治療用の薬剤と、レンサ球菌症治療用の薬剤とを併せて用いることにより、エドワジエラ・タルダの繁殖を防ぐことによってエドワジエラ症の治療を行うと共に、レンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエの繁殖を防ぐことによってレンサ球菌症を治療することができる。
【００５２】
バクテリオファージは、もともと自然環境に生息し、細菌の存在量を調整する役割を担っているものである。そのため、環境汚染や、人を含めた他生物への悪影響も皆無であると言える。
【００５３】
さらに、細菌を化学薬剤により死滅させる場合と異なり、ファージを細菌に感染させたとしても、ファージ耐性細菌の出現の可能性は低いと言われている（APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY,Apr. 2000, p.1416-1422、DISEASE OF AQUATIC ORGANISMS vol.53:33-39, 2003参照）。非特許文献３に示されるファージを用いた細菌感染症（細菌性腹水病）の治療においても、観察期間の間、ファージ耐性菌の出現は観察されていない。従って、本実施形態の薬剤に含まれるファージに対する耐性を有するエドワジエラ・タルダが現れる可能性は低く、長期間の使用においても安定したエドワジエラ症への治療・予防効果が得られると期待できる。
【００５４】
細菌に感染するウイルスであるファージは、保持する遺伝子がＲＮＡであるかＤＮＡであるか、あるいは１本鎖であるか２本鎖により分類されており、さらに、粒子の形態的特徴から科に分類される。エドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージとしては、２本鎖ＤＮＡを有し、図１のように、頭部、尾部を有しているもの、すなわち、ミオウィルス科（Myoviridae）、シホウィルス科(Siphoviridae)、ポドウィルス科(Podoviridae)に分類されるものが挙げられる。なお、図１（ａ）および（ｂ）のミオウィルス科は収縮可能な尾部を持ち、図１（ｃ）のシホウィルス科は柔軟性のある長い尾部を持ち、図１（ｄ）のポドウィルス科は短い尾部を持つことなどにより特徴付けられている。
【００５５】
上記ファージはさらに細かく株に分類される。本発明の薬剤に含まれるファージは、一種類の株から構成されているものでも構わないが、多種類の株を含んでいることが好ましい。これは、種々の株のファージを含むことにより、種々の感染特性のファージを含むこととなり、多くのエドワジエラ・タルダ株に感染し、溶菌できるためである。多くの種類の株に作用する薬剤であれば、あらゆるエドワジエラ症に対して治療効果を発揮できる。
【００５６】
また、本発明の薬剤を投与する対象動物としては、具体的には、ヒラメ（ヒラメ科の魚類）が挙げられる。ヒラメは、養殖場などにおけるエドワジエラ症による被害が大きいので、その対策が望まれている。また、本実施の形態の薬剤は後述するように、人工的にエドワジエラ症を発症させたヒラメに投与することで、その症状が回復した。
【００５７】
しかしなから、本発明の薬剤の適用対象はこれに限らず、エドワジエラ・タルダに感受性を有する全ての魚（淡水魚も含む）に適用可能であり、野生魚、養殖魚、種苗、魚の大きさ、魚の成長段階等を問わず、どのような魚類にも適用可能である。具体的には、マダイ、クロダイ、ブリ、ウナギ、テラピア等にも適用可能である。
【００５８】
本発明の薬剤は、個体毎に直接注射する以外に、魚個体に経口投与されることによって投与されてもよい。経口投与は、例えば、魚の口内にファージを注入してもよいが、餌に本発明の薬剤を混入、またはスプレーなどで染み込ませて個体に自由に摂取させれば、多数の個体に対して薬剤を投与することができるため、好ましい。この後、ファージは、消化管から体内に侵入し、腎臓等に存在するエドワジエラ・タルダを溶菌して、エドワジエラ症を発症した個体の発症を抑えたり、治療したりできる。
【００５９】
また、本実施形態の薬剤を適当な分散媒体に分散して、分散液を水槽などに入れて、分散液中に魚類を浸漬することによって、体表やエラに付着したエドワジエラ・タルダまた体内で増殖中の菌を溶菌して、エドワジエラ症を発症した個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００６０】
本実施形態の薬剤は、どのような濃度でエドワジエラ・タルダを特異的に感染して溶菌するファージを含んでいてもよいが、使用時のファージの濃度は１０５ＰＦＵ／ｍｌ（ｇ）以上１０９ＰＦＵ／ｍｌ（ｇ）以下で薬剤に含ませ、それを餌に混入する、あるいはそれに魚を浸漬することが望ましい。なお、ＰＦＵとは、プラーク形成単位であり、プラーク形成の元となるファージの濃度を示している。
【００６１】
本発明の薬剤の投与方法は、上記した経口投与法、浸漬法に限定されるものではなく、注射によって投与対象動物に投与されてもよい。注射による投与の場合、ワクチン投与の際に用いられるワクチン接種用連続注射器を用いて行うことができる。
【００６２】
本実施形態の薬剤に含まれるファージは、動物の循環器系を循環したものであることが望ましい。上記動物にはヒラメを用いることができ、例えばファージをヒラメの腹腔内に注入した後血液からファージを採取（動物透過）し、再び培養することで、動物の循環器系を循環したファージを得ることができる。この動物透過は複数回繰り返すことが好ましい。
【００６３】
ファージを生体に投与する場合、当該ファージが体内にある生体防御因子（補体など）の作用により比較的短時間で消滅してしまうと、長時間生体に作用できない。ところが、動物の循環器系を循環させれば、生体防御因子（補体など）の作用を受けない突然変異株が選択され、長時間体内に存在し得るファージ株を取得できる（「プロシーディングスオブザナショナルアカデミーオブサイエンスイズオブザユナイテッドステーツオブアメリカ」（"Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America"）,（アメリカ合衆国），1996年4月，第93巻，p.3188-3192を参照のこと）。これにより、バクテリオファージが投与対象個体の体内に長く留まり、治療および予防効果が長く持続する薬剤とすることもできる。
【実施例】
【００６４】
本発明について、実施例に基づいてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。当業者は本発明の範囲を逸脱することなく、種々の変更、修正、および改変を行うことができる。
【００６５】
〔実施例１〕 エドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージの取得方法
まず、ファージを得るためのエドワジエラ・タルダの取得方法について説明する。
【００６６】
広島、愛媛、長崎、および三重県下で採取した、エドワジエラ症を発症したヒラメ、マダイ、クロダイから、エドワジエラ・タルダ２７株を分離した。この２７株それぞれについて、分離された魚種、その魚の採取された場所、採取年を表１に示している。
【００６７】
【表１】
【００６８】
上記のようにして得られたエドワジエラ・タルダを指示細菌として、自然環境から、２重寒天法を用いてエドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌するファージを採取した。
【００６９】
次に、得られたファージ（以下、ＰＥｔＦファージと呼ぶ）の形態および核酸型を調べた。これらの株は全て核酸として２本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を有し、ウイルス粒子の形態的特徴を基にした分類における、ミオウィルス科（Myoviridae）、ポドウィルス科(Podoviridae)のいずれかに属していた（図１参照）。
【００７０】
また、得られたＰＥｔＦファージは、その感染性から、ＨＷ−８、ＫＦ−１、ＩＷ−１、ＪＦ−１、ＧＷ−１の５株に分類された。それぞれの株の属する科と、頭部サイズ、尾部サイズを表２に示す。
【００７１】
【表２】
【００７２】
なお、得られたＰＥｔＦファージはいずれも、エドワジエラ・タルダ以外の細菌には感染しないことがわかった。
【００７３】
次に、このようにして得られた５株のファージの感染性を、上述した２７株のエドワジエラ・タルダについて調べた。
【００７４】
上述した２重寒天法により、ＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１の５株のファージが、それぞれのエドワジエラ・タルダに感染するか否かを調べた。その結果が表１に示されている。
【００７５】
これによれば、どのエドワジエラ・タルダもＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１のうちの少なくとも一つに感受性を示した。
【００７６】
また、ＰＥ２１０株に対して、ファージの試験管内増殖抑制効果を調べたところ、いずれのファージも約１０５ＰＦＵ／ｍｌ以上で増殖抑制効果を示した。
【００７７】
〔実施例２〕 エドワジエラ症を発症したヒラメに対するファージ治療（経口法）
以下に、エドワジエラ症を発症したヒラメに対するファージ治療の実施例を説明する。まず、ヒラメにエドワジエラ・タルダを感染させた。
【００７８】
感染方法は、ヒラメ病魚由来エドワジエラ・タルダＰＥ２１０を用い、その培養菌（３．０×１０１０ＣＦＵ／ｍｌ）を平均体重６２ｇのヒラメの肛門から直腸内に０．１ｍｌ注入した。ヒラメ１尾当たりの菌量は３．０×１０９ＣＦＵであった。
【００７９】
次に、上記の方法によりエドワジエラ・タルダを感染させたヒラメに、それぞれ約１０９ＰＦＵ／ｍｌに調整したＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１の５株のＰＥｔＦファージを等量ずつ混合したＰＥｔＦファージ混合液を、市販の配合飼料（日清飼料、おとひめ２号を粉末にしたもの）と混合し、このファージ飼料を強制的に経口摂取させた（経口投与）。ファージ投与量は、ヒラメ１尾当たり平均４．２×１０８ＰＦＵとなった（ファージ力価は２重寒天法で測定）。
【００８０】
経口投与後、水温２５℃で、２０日間流水飼育した。ファージ投与区、対照区（ファージ投与なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【００８１】
図２に、２０日間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図２中には、ＰＥｔＦファージを経口摂取させたファージ区４０尾、およびＰＥｔＦファージを摂取させなかった対照区４０尾の２０日間の飼育期間中の生存率を縦軸に、ファージ投与からの日数を横軸に示す。図２から、２０日後における、ファージ区の生存率は５１．３％（すなわち、死亡率は４８．７％）、対照区の生存率は２９．２％（すなわち、死亡率は７１．８％）という結果が得られた。
【００８２】
以上から、ＰＥｔＦファージを経口摂取させたことによって、対照区に比べてエドワジエラ・タルダに感染したヒラメの生存率（生残率）の低下を有意に抑制させることができたことが示された。
【００８３】
また、各区の生残ヒラメの腎臓からトリプトソイ寒天培地を用いて画線塗抹法によりエドワジエラ・タルダＰＥ２１０の再分離を行った結果、上記対照区からの分離率が８１．８％であったのに対して、上記ファージ区からの分離率は４５．０％であった。これにより、対照区と比較して、ファージ区のヒラメではその腎臓中のエドワジエラ・タルダＰＥ２１０が減少していることが示された。
【００８４】
以上のことから、ＰＥｔＦファージを経口投与が、エドワジエラ症の治療に有効であることが示された。
【００８５】
〔実施例３〕 経口法により投与されたヒラメの各組織内のファージ濃度
本実施例では、経口法により投与されたヒラメの各組織内におけるファージ濃度を経時的に測定した。
【００８６】
ＰＥｔＦ ＩＷ−１ファージ液（約１０１１ＰＦＵ／ｍｌ）を、市販の配合飼料（日清飼料、おとひめ２号を粉末にしたもの）と混合し、このファージ飼料を平均体重６２ｇのヒラメに強制的に経口摂取させた（経口投与）。ファージ投与量は、ヒラメ１尾当たり平均１０１０ＰＦＵとなった（ファージ力価は２重寒天法で測定）。
【００８７】
このようにしてファージを投与したヒラメの肝臓、脾臓、腎臓、脳におけるファージ量を２重寒天法により経時的に定量した。定量結果を表３に示す。
【００８８】
【表３】
【００８９】
表３に示すように、肝臓、脾臓、腎臓、脳には、ファージ投与後１時間以内にファージが確認できた。また、ファージ投与後６時間後には、各組織におけるファージ濃度が１０５〜１０６ＰＦＵ／組織（ｇ）まで上昇していた。そして、ファージ感染後２４時間後には、胃と腸管を除く各組織中からファージが消失していることが示された。
【００９０】
このことから、経口的に投与されたファージは速やかに各組織に侵入し、数時間は安定して存在し得ることが確かめられた。また、２４時間後には各組織から消失したことは、ファージが体内で長時間の残存することによる生体への悪影響を考慮する必要がないことを意味する。
【００９１】
〔実施例４〕 ストレプトコッカス・イニアエを特異的に溶菌するファージの取得方法
まず、ファージを得るためのストレプトコッカス・イニアエの取得方法について説明する。
【００９２】
愛媛および香川県下で採取した、レンサ球菌症を発症したヒラメから、ストレプトコッカス・イニアエ合計２２株を分離した。なお、比較対照として、ブリおよびニジマス由来のストレプトコッカス・イニアエ株をそれぞれ１株ずつ供試した。この２４株それぞれについて、分離された魚種、その魚の採取された場所、採取年を表４に示している。
【００９３】
【表４】
【００９４】
上記のストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、自然環境から、２重寒天法を用いてストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するファージを採取した。
【００９５】
次に、得られたファージ（以下、ＰＳｉＦファージと呼ぶ）の形態および核酸型を調べた。これらの株は全て核酸として２本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を有し、ウイルス粒子の形態的特徴を基にした分類における、ミオウィルス科（Myoviridae）、シホウィルス科(Siphoviridae)のいずれかに属していた（図１参照）。
【００９６】
また、得られたＰＳｉＦファージは、その感染性から、ＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の４株に分類された。それぞれの株の属する科と、頭部サイズ、尾部サイズを表５に示す。
【００９７】
【表５】
【００９８】
なお、得られたＰＳｉＦファージはいずれも、ストレプトコッカス・イニアエ以外の細菌には感染しないことがわかった。
【００９９】
次に、このようにして得られた４株のファージの感染性を、上述した２４株のストレプトコッカス・イニアエについて調べた。
【０１００】
上述した２重寒天法により、ＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の４株のファージが、それぞれのストレプトコッカス・イニアエに感染するか否かを調べた。その結果が表４に示されている。
【０１０１】
これによれば、ヒラメ由来のどのストレプトコッカス・イニアエもＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０のいずれのファージにも感受性を示した。なお、比較に用いたブリおよびニジマス由来の株も少なくともＰＳｉＪ１００６とＰＳｉＪ１１０４に感受性を示した。
【０１０２】
〔実施例５〕 ヒラメのレンサ球菌症に対するファージ治療（注射法）
以下に、ヒラメのレンサ球菌症に対するファージ治療の実施例を説明する。まず、ヒラメにストレプトコッカス・イニアエを感染させた。
【０１０３】
感染方法は、ヒラメ病魚由来ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を用い、その培養菌液（２．６×１０６ＣＦＵ／ｍｌ）を平均体重４２ｇのヒラメの腹腔内に０．１ｍｌ注射した。ヒラメ１尾当たりの接種菌量は２．６×１０５ＣＦＵであった。
【０１０４】
このようにしてストレプトコッカス・イニアエを注射感染させたヒラメに、菌接種後１時間して、それぞれ約１０９ＰＦＵ／ｍｌに調整したＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の各ＰＳｉＦファージを等量ずつ混合したＰＳｉＦファージ混合液（５．５×１０９ＰＦＵ／ｍｌ）を、注射器を用いて腹腔内に０．１ｍｌ注入した（ヒラメ１尾当たりのファージ接種量は５．５×１０８ＰＦＵとなる）。
【０１０５】
ファージ注射後、水温２５℃で、２週間流水飼育した。ファージ接種区、対照区（ファージ接種なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【０１０６】
図３に、２週間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図３中には、ＰＳｉＦファージを接種したファージ区（２０尾×２）、およびＰＳｉＦファージを接種しなかった対照区（２０尾×２）の２週間の飼育期間中の生存率を縦軸に、ファージ接種からの日数を横軸に示す。図３から、２週間後における、ファージ区の生存率は８０．０％（すなわち、死亡率は２０．０％）、対照区の生存率は０．０％（すなわち、死亡率は１００．０％）という結果が得られた。
【０１０７】
さらに、同様の実施例では、ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後１２時間後、および２４時間後に、上記したＰＳｉＦファージ混合液を、注射器を用いて腹腔内にそれぞれ０．１ｍｌ注入し、ヒラメ１尾当たり各々６．７×１０８ＰＦＵのＰＳｉＦファージを接種させた。
【０１０８】
ファージ接種後、水温２５℃で、２週間流水飼育した。ファージ接種区、対照区（ファージ接種なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【０１０９】
図４に、２週間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図４中には、ＰＳｉＦファージを接種したファージ区（２０尾×２）、およびＰＳｉＦファージを接種しなかった対照区（２０尾×２）の２週間の飼育期間中の生存率（生残率）を縦軸に、ファージ接種からの日数を横軸に示す。図４から、２週間後における、菌接種１２時間後にファージを接種した区の生存率は４５．０％（すなわち、死亡率は５５．０％）、菌接種２４時間後にファージを接種した区の生存率は３３．０％（すなわち、死亡率は６７．０％）、ファージを接種しなかった対照区の生存率は５．０％（すなわち、死亡率は９５．０％）という結果が得られた。
【０１１０】
以上から、ＰＳｉＦファージを注射したことによって、対照区に比べてストレプトコッカス・イニアエ感染によるヒラメの生存率の低下を有意に抑制させることができたことが示された。
【０１１１】
なお本発明は、以上説示した各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能である。
【産業上の利用可能性】
【０１１２】
以上のように、本発明では、エドワジエラ・タルダに特異的に感染するバクテリオファージを用いた、エドワジエラ症の予防および治療のための薬剤、およびストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージを用いた、レンサ球菌症の予防および治療のための薬剤を提供することができるため、本発明は、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症により深刻な被害がでている養殖場などにおいて、環境への負担がなく、治療効果の高い、各感染症の治療用薬剤として広く適用することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【０１１３】
【図１】バクテリオファージの代表的形態を示す模式図である。
【図２】本発明の一実施例である、エドワジエラ・タルダ（エドワジエラ症の原因菌）を感染させたヒラメに対する、ＰＥｔＦファージの治療効果（経口投与）を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。
【図３】本発明の一実施例である、ストレプトコッカス・イニアエ（レンサ球菌症の原因菌）を感染させたヒラメに対する、腹腔内注射法によるＰＳｉＦファージの治療効果を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後１時間後に、ＰＳｉＦファージを接種した。
【図４】本発明の一実施例である、図３と同じくストレプトコッカス・イニアエを感染させたヒラメに対するＰＳｉＦファージの治療効果（腹腔内注射法）を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後、１２時間後または２４時間後に、ＰＳｉＦファージを接種した。
【技術分野】
【０００１】
本発明はバクテリオファージを含む、細菌性感染症治療用の薬剤に関し、特に、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症を治療するための、バクテリオファージを含む薬剤に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
養殖技術の急速な発展に伴い、今や様々な魚種を養殖できるようになっている。このような養殖産業における大きな課題の一つに、養殖魚の感染症がある。一般的な養殖場では、ある大きさの養殖領域内で数多くの魚を養殖するため、１尾の養殖魚が感染症になると、瞬く間に養殖領域の全ての魚に感染し、重症の場合には全養殖魚が死滅してしまう場合がある。これは、養殖業者にとって死活問題と成り得る。
【０００３】
このような感染症として知られているものとして、例えば、養殖ヒラメでは、エドワジエラ症（Edwardsiellosis）およびレンサ球菌症（Streptococcus iniae infection）がある。
【０００４】
エドワジエラ症は、Edwardsiella tardaが被感染体（ここではヒラメ）に感染することによって引き起こされる感染症である。Edwardsiella tardaは、グラム陰性桿菌であり、ヒラメ以外にも、マダイ、テラピアなど多くの魚種に対して感染能をもっている。また、ウナギのパラコロ病の原因菌でもある。エドワジエラ症になると、内臓に膿瘍形成や腹水といった症状を示す。
【０００５】
レンサ球菌症は、Streptococcus iniaeが被感染体に感染することによって引き起こされる感染症である。Streptococcus iniaeは、１９８０年代はじめより、ニジマス、ギンザケ、アユ等に全身感染を起こすことが知られていたが、最近では特にヒラメにおいてエドワジエラ症と並ぶ再重要疾病となっている。ヒラメの場合、レンサ球菌症を発症すると、鰓蓋出血、眼球突出、腹水の貯留等を示し、重度の全身感染を引き起こして死に至る。
【０００６】
このようなエドワジエラ症およびレンサ球菌症は、養殖場に限らず、海や河川の遊魚への影響も確認されており、社会問題化している。
【０００７】
このようなエドワジエラ症およびレンサ球菌症の予防・治療策として、レンサ球菌症の場合では、化学薬剤を使用する方法がある。化学薬剤としては、例えばオキシテトラサイクリンを用いることができる。
【０００８】
エドワジエラ症およびレンサ球菌症を予防する方法として、ワクチンの開発なども行われている。
【０００９】
一方、近年、細菌感染症を、バクテリオファージを用いて治療する方法が研究されている。例えば、非特許文献１には、マウスの大腸菌感染を、バクテリオファージを用いて治療する方法が記載されている。
【００１０】
バクテリオファージは、細菌内で増殖して短時間（約３０分）で細菌を殺す能力があり、しかも特定の細菌種または特定の株にのみ感染するという特徴を有するので、感染症の治療に用いることができる。また、バクテリオファージは、自然界における細菌の存在量を調整する役割を担っており、環境への有害性は皆無である。
【００１１】
バクテリオファージを用いて細菌感染症を治療する方法は、魚類についても研究が行われつつあり、本願発明者らによって、養殖アユやニジマスにおいて被害の大きい「細菌性冷水病」に対するバクテリオファージを用いた治療薬剤の研究（特許文献１）がなされている。また、同じく本願発明者らは、養殖アユの「細菌性出血性腹水病」あるいは養殖ブリの「Lactococcus garvieae 感染症」について、その原因菌に特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを用いて感染症をコントロールできることを報告している（非特許文献２、３、４）。
【特許文献１】特開２００４−２６９４４５号公報（２００４年９月３０日公開）
【非特許文献１】「ジャーナルオブジェネラルマイクロバイオロジー」（"Journal of General Microbiology"）,（イギリス），1982年，第128巻，p.307-318
【非特許文献２】「アプライドアンドエンバイロンメンタルマイクロバイオロジー」（"APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY"）,（アメリカ合衆国），第66巻，2000年4月，p.1416-1422
【非特許文献３】「ディジーズオブアクアティックオーガニズムズ」（"DISEASES OF AQUATIC ORGANISMS"）,（ドイツ），2003年1月，第53巻，p.33-39
【非特許文献４】「ディジーズオブアクアティックオーガニズムズ」（"DISEASES OF AQUATIC ORGANISMS"）,（ドイツ），1999年6月，第37巻，p.33-41
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
しかしながら、エドワジエラ症およびレンサ球菌症の予防・治療策については、まだ数多くの問題が残っている。
【００１３】
まず、エドワジエラ症に関しては、これを予防・治療するために使用できる有効な薬剤（水産用医薬品）がないということである。すなわち、エドワジエラ症の予防・治療策に有効な方法は未だに解明されていない。
【００１４】
また、上述したように、レンサ球菌症の予防・治療策の一つに化学薬剤を投与する方法があるが、その治療効果はかなり不安定であり、安定してレンサ球菌症を抑制することができない。
【００１５】
また、化学薬剤の投与に関しては、薬剤耐性細菌が出現する可能性が非常に高いという問題がある。さらに、化学薬剤を投与する場合、化学薬剤が海や河川に流出することで環境汚染につながり、他の生息生物やヒトへの有害な影響といった問題が発生する。
【００１６】
また、ワクチンについては、現在エドワジエラ症に有効な市販ワクチンはなく、今春（平成１７年）市販されたレンサ球菌症に対するワクチンは、養殖現場での使用に際して、そのコストと投与方法（注射）に難点がある。
【００１７】
本発明は上記課題に鑑みてなされたものであり、その目的は、良好な効果を示すエドワジエラ症の予防および治療のための薬剤、および良好な効果を示すレンサ球菌症の予防および治療のための薬剤を提供することにあり、加えて、環境にも無害な当該薬剤を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）に特異的に感染するバクテリオファージ、およびレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエ（Streptococcus iniae）に特異的に感染するバクテリオファージを見出し、本発明を完成させるに至った。
【００１９】
まず、エドワジエラ症の予防および治療に関しては、本発明に係る、エドワジエラ症の予防および治療のための薬剤は、上記の課題を解決するために、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴としている。
【００２０】
また、レンサ球菌症の予防および治療に関しては、本発明に係る、レンサ球菌症の予防および治療のための薬剤は、上記の課題を解決するために、ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴としている。
【００２１】
上記バクテリオファージとは、細菌に感染するウイルスであり、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージは、例えば、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、集殖法または２重寒天法にて採取できる。
【００２２】
ここで、上記「指示細菌として採取する」とは、特定の細菌種または細菌株（指示細菌）を含む環境で、この指示細菌を溶菌するバクテリオファージを培養することによってこのバクテリオファージを増殖させて、バクテリオファージを得る方法である。具体的には、集殖法では、材料すなわち目的のバクテリオファージを含む試料を、指示細菌をいれた液体培地で培養することにより、材料中のバクテリオファージの数を増やす。また、２重寒天法では、材料と指示細菌とを軟寒天中で混合し、栄養寒天平板上に重層させることで、材料中のバクテリオファージにプラーク（溶菌斑）を形成させる。
【００２３】
また、上記バクテリオファージとしては、特にミオウィルス科、シホウィルス科、またはポドウィルス科に分類されるものが挙げられる。
【００２４】
このような薬剤を、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を発症した魚類に対して投与すれば、上記バクテリオファージが、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、またはレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するので、安定した治療効果を発揮する。
【００２５】
このように、本発明の薬剤はバクテリオファージを用いて、原因細菌を溶菌しているので、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を防ぐ生物農薬であるということもできる。
【００２６】
なお、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、およびレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌する上記各バクテリオファージを共に用いることによって、エドワジエラ症およびレンサ球菌症を同時に治療することができることは言うまでもない。
【００２７】
また、本発明に係る薬剤に含まれるバクテリオファージは、自然環境に生息するものであるので、環境汚染や人を含めた他生物への悪影響もない。さらに、化学薬剤の投与に対しては薬剤耐性細菌が出現するのに対し、バクテリオファージ耐性のエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエが現れる可能性も低い。
【００２８】
また、本発明の薬剤は、上記バクテリオファージとして感染特性の異なる複数種類の株を含んでいることが望ましい。
【００２９】
本発明の薬剤に含まれるバクテリオファージは、エドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染し、溶菌させるものであるが、それぞれのバクテリオファージ株は、すべてのエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエに感染できるわけではなく、エドワジエラ・タルダの株またはストレプトコッカス・イニアエの株によって感染可能なものと感染できないものがある。なお、本明細書における「感染特性が異なる」とは、この感染できるエドワジエラ・タルダの株またはストレプトコッカス・イニアエの株が異なることを示している。従って、薬剤に、複数の株のバクテリオファージを含ませることで、感染・溶菌が可能なエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエの株が増え、エドワジエラ症またはレンサ球菌症の治療の可能性が高まる。
【００３０】
本発明の薬剤を投与する対象動物としては、ヒラメ科の魚類が挙げられる。ヒラメ科の魚類は、エドワジエラ症およびレンサ球菌症の発症が多く確認され、被害が広がっている。ヒラメ科の魚類に本発明の薬剤を投与することで、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症の被害を抑えることができる。
【００３１】
また、本発明の薬剤が、薬剤投与対象動物に注射または経口投与されるように構成されていることによって、本発明の薬剤は、腹腔や筋肉または消化管から循環系に侵入し、腎臓等に蓄積されたエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを溶菌して、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を発症した個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００３２】
注射や経口投与以外にも、本発明の薬剤を、薬剤投与対象動物の体表面から接触投与（浸漬法）できるように構成することも可能である。
【００３３】
なお、本明細書における「体表面」とは、皮膚をはじめとする、外部環境と接触できる状態にある部分を示し、魚類で言えば、そのエラも「体表面」に含まれる。魚類を薬剤投与対象動物とする場合には、魚類を本発明に係る薬剤が分散した分散液に浸漬することによって、薬剤を投与することができる。これにより、本発明の薬剤に含まれるバクテリオファージが、体表やエラに付着したエドワジエラ・タルダまたはストレプトコッカス・イニアエを溶菌する、あるいはバクテリオファージは体表から体内に速やかに侵入することができるので、体内で増殖中の細菌を溶菌することにより、エドワジエラ症またはレンサ球菌症に罹った個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００３４】
また、上記バクテリオファージは動物の循環器系を循環したものであることが望ましい。
【００３５】
バクテリオファージを生体に投与する場合、バクテリオファージが、体内にある種々の生体防御因子（補体など）の作用により比較的短時間で消滅してしまい、生体に長時間作用することができない。そこで、バクテリオファージを動物の循環器系を循環させることによって、これらの防御因子の作用を受けにくい、または受けない株を選択することができ、長時間体内に存在し得るバクテリオファージ株を取得することができる。これにより、バクテリオファージが投与対象個体の体内に長く留まり、治療効果が長く持続する薬剤とすることもできる。
【発明の効果】
【００３６】
本発明のエドワジエラ症治療用の薬剤は、以上のように、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むものである。
【００３７】
また、本発明のレンサ球菌症治療用の薬剤は、以上のように、ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むものである。
【００３８】
それゆえ、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダ、またはレンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエに感染した、または感染する可能性のある薬剤投与対象動物（例えばヒラメ科の魚類）に対して、本発明の薬剤を投与することで、当該薬剤に含まれるバクテリオファージが、体内に侵入したエドワジエラ・タルダ、または体内に侵入したストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するので、エドワジエラ症またはレンサ球菌症を回復させる治療効果を発揮することができる。
【００３９】
また、本発明に係る薬剤に含まれるバクテリオファージは、自然環境に生息するものであるので、環境汚染や、人を含めた他生物への影響等の心配がない。さらに、化学薬剤の投与の場合では、薬剤耐性細菌が出現するのに対し、バクテリオファージ耐性のエドワジエラ・タルダおよびストレプトコッカス・イニアエが現れる可能性は低い。
【００４０】
従って、エドワジエラ症やレンサ球菌症により深刻な被害がでているヒラメ養殖場などにおいて、環境への負担がなく、治療効果の高いエドワジエラ症またはレンサ球菌症治療用の薬剤として使用できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４１】
本発明の一実施形態について説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００４２】
バクテリオファージ（以下ファージと称する）は、細菌内で増殖して短時間（約３０分）で細菌を殺す能力があり、しかも特定の細菌種あるいは特定の株にのみ感染するという特徴を有する。また、ファージは自然界における細菌の存在量を調整する役割を担っており、環境への有害性は皆無であることが分かっている。そこで、本願発明者らは、「エドワジエラ症」の原因細菌であるエドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージ、および「レンサ球菌症」の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエを特異的に溶菌するファージを採取し、治療に利用できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【００４３】
エドワジエラ・タルダは、グラム陰性桿菌であり、ヒラメ以外にも、マダイ、テラピアなど多くの魚種に対して感染能をもっている。また、ウナギのパラコロ病の原因菌でもある。エドワジエラ・タルダに感染してエドワジエラ症を発症すると、内臓に膿瘍形成や腹水といった症状を示す。
【００４４】
ストレプトコッカス・イニアエは、１９８０年代はじめより、ニジマス、サケ、ブリ等に髄膜脳炎を起こすことが知られており、魚の表面に存在し、時に菌血症から髄膜脳炎を起こす。ストレプトコッカス・イニアエに感染してレンサ球菌症を発症すると、体色黒化、エラの出血等を示し、重症例では、腹部膨満、腎臓と脾臓が腫大し、死に至らしめる疾病で、ヒラメの疾病の中で最重要の疾病の１つとなっている。
【００４５】
以下、本発明の一実施の形態について、図表を用いて説明する。
【００４６】
なお、以下の説明では、「エドワジエラ症」の原因細菌であるエドワジエラ・タルダに対する本発明の薬剤について説明するが、特に、言及しない限りにおいては、「エドワジエラ症」の代わりに「レンサ球菌症」を適用でき、かつ以下の説明において「エドワジエラ・タルダ」の代わりに「ストレプトコッカス・イニアエ」を適用することができる。
【００４７】
本実施形態における薬剤は、エドワジエラ症を治療するために、エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌するファージを利用する薬剤である。このファージは、エドワジエラ・タルダを指示細菌として、自然環境から、例えば集殖法や２重寒天法を用いて採取することができる。集殖法では、材料すなわち目的のファージを含む試料を、指示細菌をいれた液体培地で培養することにより、材料中のファージの数を増やす。また、２重寒天法では、材料と指示細菌とを軟寒天中で混合し、栄養寒天平板上に重層させることで、材料中のファージにプラーク（溶菌斑）を形成させる。集殖法および２重寒天法の詳細については、海洋学講座１１「海洋微生物」多賀信夫編、東京大学出版会（１９７４）に詳細に記載されている。
【００４８】
なお、ファージを採取するためのエドワジエラ・タルダは、例えばエドワジエラ症を発症した魚個体の患部や、エドワジエラ症罹病魚が生息している水から、塗沫法により取得でき、トリプトソイ寒天培地またはサルモネラ・シゲラ寒天培地（選択培地）で２５−３０℃にて分離・培養することができる。
【００４９】
以上のようにして得たエドワジエラ・タルダを特異的に感染・溶菌するファージは、生育環境とほぼ同等な条件の培養液にて保存することが可能であり、５℃程度の低温で保存した場合は、６ヶ月以上の保存が可能である。
【００５０】
上記ファージは、エドワジエラ症の原因細菌であるエドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるので、魚類に対して投与することで、後述の実施例に示すように、エドワジエラ症を回復させる治療効果を安定して発揮することができる。さらに、本実施形態におけるエドワジエラ症治療用の薬剤に、古くから海産魚の疾病として知られているラクトコックス・ガルビアエ（Lactococcus garvieae）感染症などの他の感染症を治療するファージを混合することにより、エドワジエラ症の治療を行うと共に、別の細菌の繁殖を防ぐ薬剤を提供することも可能である。
【００５１】
また、上述したように、本発明に係る、エドワジエラ症治療用の薬剤と、レンサ球菌症治療用の薬剤とを併せて用いることにより、エドワジエラ・タルダの繁殖を防ぐことによってエドワジエラ症の治療を行うと共に、レンサ球菌症の原因細菌であるストレプトコッカス・イニアエの繁殖を防ぐことによってレンサ球菌症を治療することができる。
【００５２】
バクテリオファージは、もともと自然環境に生息し、細菌の存在量を調整する役割を担っているものである。そのため、環境汚染や、人を含めた他生物への悪影響も皆無であると言える。
【００５３】
さらに、細菌を化学薬剤により死滅させる場合と異なり、ファージを細菌に感染させたとしても、ファージ耐性細菌の出現の可能性は低いと言われている（APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY,Apr. 2000, p.1416-1422、DISEASE OF AQUATIC ORGANISMS vol.53:33-39, 2003参照）。非特許文献３に示されるファージを用いた細菌感染症（細菌性腹水病）の治療においても、観察期間の間、ファージ耐性菌の出現は観察されていない。従って、本実施形態の薬剤に含まれるファージに対する耐性を有するエドワジエラ・タルダが現れる可能性は低く、長期間の使用においても安定したエドワジエラ症への治療・予防効果が得られると期待できる。
【００５４】
細菌に感染するウイルスであるファージは、保持する遺伝子がＲＮＡであるかＤＮＡであるか、あるいは１本鎖であるか２本鎖により分類されており、さらに、粒子の形態的特徴から科に分類される。エドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージとしては、２本鎖ＤＮＡを有し、図１のように、頭部、尾部を有しているもの、すなわち、ミオウィルス科（Myoviridae）、シホウィルス科(Siphoviridae)、ポドウィルス科(Podoviridae)に分類されるものが挙げられる。なお、図１（ａ）および（ｂ）のミオウィルス科は収縮可能な尾部を持ち、図１（ｃ）のシホウィルス科は柔軟性のある長い尾部を持ち、図１（ｄ）のポドウィルス科は短い尾部を持つことなどにより特徴付けられている。
【００５５】
上記ファージはさらに細かく株に分類される。本発明の薬剤に含まれるファージは、一種類の株から構成されているものでも構わないが、多種類の株を含んでいることが好ましい。これは、種々の株のファージを含むことにより、種々の感染特性のファージを含むこととなり、多くのエドワジエラ・タルダ株に感染し、溶菌できるためである。多くの種類の株に作用する薬剤であれば、あらゆるエドワジエラ症に対して治療効果を発揮できる。
【００５６】
また、本発明の薬剤を投与する対象動物としては、具体的には、ヒラメ（ヒラメ科の魚類）が挙げられる。ヒラメは、養殖場などにおけるエドワジエラ症による被害が大きいので、その対策が望まれている。また、本実施の形態の薬剤は後述するように、人工的にエドワジエラ症を発症させたヒラメに投与することで、その症状が回復した。
【００５７】
しかしなから、本発明の薬剤の適用対象はこれに限らず、エドワジエラ・タルダに感受性を有する全ての魚（淡水魚も含む）に適用可能であり、野生魚、養殖魚、種苗、魚の大きさ、魚の成長段階等を問わず、どのような魚類にも適用可能である。具体的には、マダイ、クロダイ、ブリ、ウナギ、テラピア等にも適用可能である。
【００５８】
本発明の薬剤は、個体毎に直接注射する以外に、魚個体に経口投与されることによって投与されてもよい。経口投与は、例えば、魚の口内にファージを注入してもよいが、餌に本発明の薬剤を混入、またはスプレーなどで染み込ませて個体に自由に摂取させれば、多数の個体に対して薬剤を投与することができるため、好ましい。この後、ファージは、消化管から体内に侵入し、腎臓等に存在するエドワジエラ・タルダを溶菌して、エドワジエラ症を発症した個体の発症を抑えたり、治療したりできる。
【００５９】
また、本実施形態の薬剤を適当な分散媒体に分散して、分散液を水槽などに入れて、分散液中に魚類を浸漬することによって、体表やエラに付着したエドワジエラ・タルダまた体内で増殖中の菌を溶菌して、エドワジエラ症を発症した個体を治療したり、発症を抑えたりできる。
【００６０】
本実施形態の薬剤は、どのような濃度でエドワジエラ・タルダを特異的に感染して溶菌するファージを含んでいてもよいが、使用時のファージの濃度は１０５ＰＦＵ／ｍｌ（ｇ）以上１０９ＰＦＵ／ｍｌ（ｇ）以下で薬剤に含ませ、それを餌に混入する、あるいはそれに魚を浸漬することが望ましい。なお、ＰＦＵとは、プラーク形成単位であり、プラーク形成の元となるファージの濃度を示している。
【００６１】
本発明の薬剤の投与方法は、上記した経口投与法、浸漬法に限定されるものではなく、注射によって投与対象動物に投与されてもよい。注射による投与の場合、ワクチン投与の際に用いられるワクチン接種用連続注射器を用いて行うことができる。
【００６２】
本実施形態の薬剤に含まれるファージは、動物の循環器系を循環したものであることが望ましい。上記動物にはヒラメを用いることができ、例えばファージをヒラメの腹腔内に注入した後血液からファージを採取（動物透過）し、再び培養することで、動物の循環器系を循環したファージを得ることができる。この動物透過は複数回繰り返すことが好ましい。
【００６３】
ファージを生体に投与する場合、当該ファージが体内にある生体防御因子（補体など）の作用により比較的短時間で消滅してしまうと、長時間生体に作用できない。ところが、動物の循環器系を循環させれば、生体防御因子（補体など）の作用を受けない突然変異株が選択され、長時間体内に存在し得るファージ株を取得できる（「プロシーディングスオブザナショナルアカデミーオブサイエンスイズオブザユナイテッドステーツオブアメリカ」（"Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America"）,（アメリカ合衆国），1996年4月，第93巻，p.3188-3192を参照のこと）。これにより、バクテリオファージが投与対象個体の体内に長く留まり、治療および予防効果が長く持続する薬剤とすることもできる。
【実施例】
【００６４】
本発明について、実施例に基づいてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。当業者は本発明の範囲を逸脱することなく、種々の変更、修正、および改変を行うことができる。
【００６５】
〔実施例１〕 エドワジエラ・タルダを特異的に溶菌するファージの取得方法
まず、ファージを得るためのエドワジエラ・タルダの取得方法について説明する。
【００６６】
広島、愛媛、長崎、および三重県下で採取した、エドワジエラ症を発症したヒラメ、マダイ、クロダイから、エドワジエラ・タルダ２７株を分離した。この２７株それぞれについて、分離された魚種、その魚の採取された場所、採取年を表１に示している。
【００６７】
【表１】
【００６８】
上記のようにして得られたエドワジエラ・タルダを指示細菌として、自然環境から、２重寒天法を用いてエドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌するファージを採取した。
【００６９】
次に、得られたファージ（以下、ＰＥｔＦファージと呼ぶ）の形態および核酸型を調べた。これらの株は全て核酸として２本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を有し、ウイルス粒子の形態的特徴を基にした分類における、ミオウィルス科（Myoviridae）、ポドウィルス科(Podoviridae)のいずれかに属していた（図１参照）。
【００７０】
また、得られたＰＥｔＦファージは、その感染性から、ＨＷ−８、ＫＦ−１、ＩＷ−１、ＪＦ−１、ＧＷ−１の５株に分類された。それぞれの株の属する科と、頭部サイズ、尾部サイズを表２に示す。
【００７１】
【表２】
【００７２】
なお、得られたＰＥｔＦファージはいずれも、エドワジエラ・タルダ以外の細菌には感染しないことがわかった。
【００７３】
次に、このようにして得られた５株のファージの感染性を、上述した２７株のエドワジエラ・タルダについて調べた。
【００７４】
上述した２重寒天法により、ＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１の５株のファージが、それぞれのエドワジエラ・タルダに感染するか否かを調べた。その結果が表１に示されている。
【００７５】
これによれば、どのエドワジエラ・タルダもＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１のうちの少なくとも一つに感受性を示した。
【００７６】
また、ＰＥ２１０株に対して、ファージの試験管内増殖抑制効果を調べたところ、いずれのファージも約１０５ＰＦＵ／ｍｌ以上で増殖抑制効果を示した。
【００７７】
〔実施例２〕 エドワジエラ症を発症したヒラメに対するファージ治療（経口法）
以下に、エドワジエラ症を発症したヒラメに対するファージ治療の実施例を説明する。まず、ヒラメにエドワジエラ・タルダを感染させた。
【００７８】
感染方法は、ヒラメ病魚由来エドワジエラ・タルダＰＥ２１０を用い、その培養菌（３．０×１０１０ＣＦＵ／ｍｌ）を平均体重６２ｇのヒラメの肛門から直腸内に０．１ｍｌ注入した。ヒラメ１尾当たりの菌量は３．０×１０９ＣＦＵであった。
【００７９】
次に、上記の方法によりエドワジエラ・タルダを感染させたヒラメに、それぞれ約１０９ＰＦＵ／ｍｌに調整したＰＥｔＦ ＨＷ−８、ＰＥｔＦ ＫＦ−１、ＰＥｔＦ ＩＷ−１、ＰＥｔＦ ＪＦ−１、ＰＥｔＦ ＧＷ−１の５株のＰＥｔＦファージを等量ずつ混合したＰＥｔＦファージ混合液を、市販の配合飼料（日清飼料、おとひめ２号を粉末にしたもの）と混合し、このファージ飼料を強制的に経口摂取させた（経口投与）。ファージ投与量は、ヒラメ１尾当たり平均４．２×１０８ＰＦＵとなった（ファージ力価は２重寒天法で測定）。
【００８０】
経口投与後、水温２５℃で、２０日間流水飼育した。ファージ投与区、対照区（ファージ投与なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【００８１】
図２に、２０日間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図２中には、ＰＥｔＦファージを経口摂取させたファージ区４０尾、およびＰＥｔＦファージを摂取させなかった対照区４０尾の２０日間の飼育期間中の生存率を縦軸に、ファージ投与からの日数を横軸に示す。図２から、２０日後における、ファージ区の生存率は５１．３％（すなわち、死亡率は４８．７％）、対照区の生存率は２９．２％（すなわち、死亡率は７１．８％）という結果が得られた。
【００８２】
以上から、ＰＥｔＦファージを経口摂取させたことによって、対照区に比べてエドワジエラ・タルダに感染したヒラメの生存率（生残率）の低下を有意に抑制させることができたことが示された。
【００８３】
また、各区の生残ヒラメの腎臓からトリプトソイ寒天培地を用いて画線塗抹法によりエドワジエラ・タルダＰＥ２１０の再分離を行った結果、上記対照区からの分離率が８１．８％であったのに対して、上記ファージ区からの分離率は４５．０％であった。これにより、対照区と比較して、ファージ区のヒラメではその腎臓中のエドワジエラ・タルダＰＥ２１０が減少していることが示された。
【００８４】
以上のことから、ＰＥｔＦファージを経口投与が、エドワジエラ症の治療に有効であることが示された。
【００８５】
〔実施例３〕 経口法により投与されたヒラメの各組織内のファージ濃度
本実施例では、経口法により投与されたヒラメの各組織内におけるファージ濃度を経時的に測定した。
【００８６】
ＰＥｔＦ ＩＷ−１ファージ液（約１０１１ＰＦＵ／ｍｌ）を、市販の配合飼料（日清飼料、おとひめ２号を粉末にしたもの）と混合し、このファージ飼料を平均体重６２ｇのヒラメに強制的に経口摂取させた（経口投与）。ファージ投与量は、ヒラメ１尾当たり平均１０１０ＰＦＵとなった（ファージ力価は２重寒天法で測定）。
【００８７】
このようにしてファージを投与したヒラメの肝臓、脾臓、腎臓、脳におけるファージ量を２重寒天法により経時的に定量した。定量結果を表３に示す。
【００８８】
【表３】
【００８９】
表３に示すように、肝臓、脾臓、腎臓、脳には、ファージ投与後１時間以内にファージが確認できた。また、ファージ投与後６時間後には、各組織におけるファージ濃度が１０５〜１０６ＰＦＵ／組織（ｇ）まで上昇していた。そして、ファージ感染後２４時間後には、胃と腸管を除く各組織中からファージが消失していることが示された。
【００９０】
このことから、経口的に投与されたファージは速やかに各組織に侵入し、数時間は安定して存在し得ることが確かめられた。また、２４時間後には各組織から消失したことは、ファージが体内で長時間の残存することによる生体への悪影響を考慮する必要がないことを意味する。
【００９１】
〔実施例４〕 ストレプトコッカス・イニアエを特異的に溶菌するファージの取得方法
まず、ファージを得るためのストレプトコッカス・イニアエの取得方法について説明する。
【００９２】
愛媛および香川県下で採取した、レンサ球菌症を発症したヒラメから、ストレプトコッカス・イニアエ合計２２株を分離した。なお、比較対照として、ブリおよびニジマス由来のストレプトコッカス・イニアエ株をそれぞれ１株ずつ供試した。この２４株それぞれについて、分離された魚種、その魚の採取された場所、採取年を表４に示している。
【００９３】
【表４】
【００９４】
上記のストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、自然環境から、２重寒天法を用いてストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌するファージを採取した。
【００９５】
次に、得られたファージ（以下、ＰＳｉＦファージと呼ぶ）の形態および核酸型を調べた。これらの株は全て核酸として２本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を有し、ウイルス粒子の形態的特徴を基にした分類における、ミオウィルス科（Myoviridae）、シホウィルス科(Siphoviridae)のいずれかに属していた（図１参照）。
【００９６】
また、得られたＰＳｉＦファージは、その感染性から、ＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の４株に分類された。それぞれの株の属する科と、頭部サイズ、尾部サイズを表５に示す。
【００９７】
【表５】
【００９８】
なお、得られたＰＳｉＦファージはいずれも、ストレプトコッカス・イニアエ以外の細菌には感染しないことがわかった。
【００９９】
次に、このようにして得られた４株のファージの感染性を、上述した２４株のストレプトコッカス・イニアエについて調べた。
【０１００】
上述した２重寒天法により、ＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の４株のファージが、それぞれのストレプトコッカス・イニアエに感染するか否かを調べた。その結果が表４に示されている。
【０１０１】
これによれば、ヒラメ由来のどのストレプトコッカス・イニアエもＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０のいずれのファージにも感受性を示した。なお、比較に用いたブリおよびニジマス由来の株も少なくともＰＳｉＪ１００６とＰＳｉＪ１１０４に感受性を示した。
【０１０２】
〔実施例５〕 ヒラメのレンサ球菌症に対するファージ治療（注射法）
以下に、ヒラメのレンサ球菌症に対するファージ治療の実施例を説明する。まず、ヒラメにストレプトコッカス・イニアエを感染させた。
【０１０３】
感染方法は、ヒラメ病魚由来ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を用い、その培養菌液（２．６×１０６ＣＦＵ／ｍｌ）を平均体重４２ｇのヒラメの腹腔内に０．１ｍｌ注射した。ヒラメ１尾当たりの接種菌量は２．６×１０５ＣＦＵであった。
【０１０４】
このようにしてストレプトコッカス・イニアエを注射感染させたヒラメに、菌接種後１時間して、それぞれ約１０９ＰＦＵ／ｍｌに調整したＰＳｉＪ１００６、ＰＳｉＪ１１０４、ＰＳｉＪ１２０８、ＰＳｉＪ１２２０の各ＰＳｉＦファージを等量ずつ混合したＰＳｉＦファージ混合液（５．５×１０９ＰＦＵ／ｍｌ）を、注射器を用いて腹腔内に０．１ｍｌ注入した（ヒラメ１尾当たりのファージ接種量は５．５×１０８ＰＦＵとなる）。
【０１０５】
ファージ注射後、水温２５℃で、２週間流水飼育した。ファージ接種区、対照区（ファージ接種なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【０１０６】
図３に、２週間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図３中には、ＰＳｉＦファージを接種したファージ区（２０尾×２）、およびＰＳｉＦファージを接種しなかった対照区（２０尾×２）の２週間の飼育期間中の生存率を縦軸に、ファージ接種からの日数を横軸に示す。図３から、２週間後における、ファージ区の生存率は８０．０％（すなわち、死亡率は２０．０％）、対照区の生存率は０．０％（すなわち、死亡率は１００．０％）という結果が得られた。
【０１０７】
さらに、同様の実施例では、ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後１２時間後、および２４時間後に、上記したＰＳｉＦファージ混合液を、注射器を用いて腹腔内にそれぞれ０．１ｍｌ注入し、ヒラメ１尾当たり各々６．７×１０８ＰＦＵのＰＳｉＦファージを接種させた。
【０１０８】
ファージ接種後、水温２５℃で、２週間流水飼育した。ファージ接種区、対照区（ファージ接種なし）ともに４０尾（２０尾×２水槽）のヒラメを供試した。
【０１０９】
図４に、２週間の飼育期間中の累積死亡率を示す。図４中には、ＰＳｉＦファージを接種したファージ区（２０尾×２）、およびＰＳｉＦファージを接種しなかった対照区（２０尾×２）の２週間の飼育期間中の生存率（生残率）を縦軸に、ファージ接種からの日数を横軸に示す。図４から、２週間後における、菌接種１２時間後にファージを接種した区の生存率は４５．０％（すなわち、死亡率は５５．０％）、菌接種２４時間後にファージを接種した区の生存率は３３．０％（すなわち、死亡率は６７．０％）、ファージを接種しなかった対照区の生存率は５．０％（すなわち、死亡率は９５．０％）という結果が得られた。
【０１１０】
以上から、ＰＳｉＦファージを注射したことによって、対照区に比べてストレプトコッカス・イニアエ感染によるヒラメの生存率の低下を有意に抑制させることができたことが示された。
【０１１１】
なお本発明は、以上説示した各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能である。
【産業上の利用可能性】
【０１１２】
以上のように、本発明では、エドワジエラ・タルダに特異的に感染するバクテリオファージを用いた、エドワジエラ症の予防および治療のための薬剤、およびストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染するバクテリオファージを用いた、レンサ球菌症の予防および治療のための薬剤を提供することができるため、本発明は、エドワジエラ症および／またはレンサ球菌症により深刻な被害がでている養殖場などにおいて、環境への負担がなく、治療効果の高い、各感染症の治療用薬剤として広く適用することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【０１１３】
【図１】バクテリオファージの代表的形態を示す模式図である。
【図２】本発明の一実施例である、エドワジエラ・タルダ（エドワジエラ症の原因菌）を感染させたヒラメに対する、ＰＥｔＦファージの治療効果（経口投与）を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。
【図３】本発明の一実施例である、ストレプトコッカス・イニアエ（レンサ球菌症の原因菌）を感染させたヒラメに対する、腹腔内注射法によるＰＳｉＦファージの治療効果を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後１時間後に、ＰＳｉＦファージを接種した。
【図４】本発明の一実施例である、図３と同じくストレプトコッカス・イニアエを感染させたヒラメに対するＰＳｉＦファージの治療効果（腹腔内注射法）を、累積死亡率に基づいて示したグラフである。ストレプトコッカス・イニアエＰＳｉ４０２を接種した後、１２時間後または２４時間後に、ＰＳｉＦファージを接種した。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴とするエドワジエラ症治療用の薬剤。
【請求項２】
ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴とするレンサ球菌症治療用の薬剤。
【請求項３】
上記バクテリオファージは、上記エドワジエラ・タルダを指示細菌として、集殖法または２重寒天法により得られたものであることを特徴とする請求項１に記載の薬剤。
【請求項４】
上記バクテリオファージは、上記ストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、集殖法または２重寒天法により得られたものであることを特徴とする請求項２に記載の薬剤。
【請求項５】
上記バクテリオファージがミオウィルス科、シホウィルス科、またはポドウィルス科に分類されるものであることを特徴とする請求項１から４の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項６】
上記バクテリオファージが感染特性の異なる複数種類の株を含んでいることを特徴とする請求項１から５の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項７】
薬剤投与対象動物に注射投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１から６の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項８】
薬剤投与対象動物に経口投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１から７の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項９】
薬剤投与対象動物の体表面から接触投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１ないし８のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項１０】
薬剤投与対象動物が、ヒラメ科の魚類であることを特徴とする請求項１から９の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項１１】
上記バクテリオファージは、動物の循環器系を循環したものであることを特徴とする請求項１ないし１０のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項１】
エドワジエラ・タルダに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴とするエドワジエラ症治療用の薬剤。
【請求項２】
ストレプトコッカス・イニアエに特異的に感染して溶菌させるバクテリオファージを含むことを特徴とするレンサ球菌症治療用の薬剤。
【請求項３】
上記バクテリオファージは、上記エドワジエラ・タルダを指示細菌として、集殖法または２重寒天法により得られたものであることを特徴とする請求項１に記載の薬剤。
【請求項４】
上記バクテリオファージは、上記ストレプトコッカス・イニアエを指示細菌として、集殖法または２重寒天法により得られたものであることを特徴とする請求項２に記載の薬剤。
【請求項５】
上記バクテリオファージがミオウィルス科、シホウィルス科、またはポドウィルス科に分類されるものであることを特徴とする請求項１から４の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項６】
上記バクテリオファージが感染特性の異なる複数種類の株を含んでいることを特徴とする請求項１から５の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項７】
薬剤投与対象動物に注射投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１から６の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項８】
薬剤投与対象動物に経口投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１から７の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項９】
薬剤投与対象動物の体表面から接触投与できるように構成されていることを特徴とする請求項１ないし８のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項１０】
薬剤投与対象動物が、ヒラメ科の魚類であることを特徴とする請求項１から９の何れか１項に記載の薬剤。
【請求項１１】
上記バクテリオファージは、動物の循環器系を循環したものであることを特徴とする請求項１ないし１０のいずれか１項に記載の薬剤。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図２】
【図３】
【図４】
【公開番号】特開２００７−８４４９２（Ｐ２００７−８４４９２Ａ）
【公開日】平成１９年４月５日（２００７．４．５）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−２７６５０１（Ｐ２００５−２７６５０１）
【出願日】平成１７年９月２２日（２００５．９．２２）
【出願人】（５０４１３６５６８）国立大学法人広島大学 (924)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１９年４月５日（２００７．４．５）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年９月２２日（２００５．９．２２）
【出願人】（５０４１３６５６８）国立大学法人広島大学 (924)
【Ｆターム（参考）】
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