有用タンパク質の製造方法
【課題】
カイコ絹糸中に含まれる組換えタンパク質の簡便な回収法を開発し、もって産業用途への実用化にむけた課題解決を図る。
【解決手段】
遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を、絹糸を中性塩の溶液、銅アルカリ溶液、または尿素溶液で溶解した後、塩濃度の低い水溶液で透析または希釈し、絹糸タンパク質を沈殿させることにより、複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく組換えタンパク質を回収する。
カイコ絹糸中に含まれる組換えタンパク質の簡便な回収法を開発し、もって産業用途への実用化にむけた課題解決を図る。
【解決手段】
遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を、絹糸を中性塩の溶液、銅アルカリ溶液、または尿素溶液で溶解した後、塩濃度の低い水溶液で透析または希釈し、絹糸タンパク質を沈殿させることにより、複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく組換えタンパク質を回収する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トランスジェニックカイコの絹糸などに大量に存在する有用タンパク質を、簡便に純度高く抽出、精製して、有用タンパク質を製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年昆虫染色体への外来遺伝子の組み換えが試みられ、核多核体病ウイルスの一種であるAutographa californica Nuclear Polyhedrosis Virus (AcNPV)（オートグラファカリフォルニアヌクレアポリヘドロシスウイルス）のDNAを用いてカイコフィブロイン重鎖遺伝子にクラゲ緑色蛍光タンパク質遺伝子を付加した融合遺伝子を、相同組み換えにより、カイコ染色体上に導入し、発現させる方法が開発され（非特許文献１参照）、その技術を用いたヒト・コラーゲン遺伝子を導入したカイコおよびその製造方法が開示されている（特許文献１参照）。
【０００３】
また最近、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac（ピギーバック）を用いることにより、外来遺伝子を昆虫の細胞へと導入できることが明らかとなり（特許文献２参照）、クラゲ緑色蛍光タンパク質遺伝子をカイコ染色体へと導入し、そのタンパク質をＡ３プロモーターにより発現させる方法が開発され、絹糸腺組織や繭中にそのタンパク質が確認された。また、交配により子孫へと遺伝子が安定に伝わることも確認された（非特許文献２参照）。さらにこの方法を改良することにより、サイトカインなどのタンパク質をカイコの絹糸腺または絹糸中に大量に産生させる技術も確立された（特許文献３参照）。
【０００４】
本技術を用いた低コストタンパク質生産を実現するには、絹糸中に大量に産生された組換えタンパク質を純度よく大量に回収することが求められるが、これまでのところ絹糸からの効率的な組換えタンパク質の回収法は知られていない。
【０００５】
一方、絹糸を加工する技術として、酸または中性塩の溶液に溶解した後、透析、希釈により絹糸を構成するタンパク質を沈殿させたり、または乾燥することにより絹糸を構成するタンパク質を粉末やフィルムとして得る方法が開示されている（特許文献４，５，６参照）が、これらは絹糸タンパク質（主にフィブロイン）を回収するためのものであり、絹糸中に存在する組換えタンパク質の回収については記載されていない。
【特許文献１】特開2001−161214号公報
【特許文献２】米国特許第6218185号明細書
【特許文献３】特願2002-60374号公報
【特許文献４】特開平6-70702号公報
【特許文献５】特開平11-104228号公報
【特許文献６】特開2001-54359号公報
【非特許文献１】ジーンズアンドデベロップメント（Genes and Development）1999年、第13巻、p.511−516
【非特許文献２】ネイチャーバイオテクノロジー（Nature Biotechnology）2000年、第18巻、p.81−84
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
有用タンパク質をコードする遺伝子を染色体中へと導入されたトランスジェニックカイコの絹糸に産生された有用タンパク質を簡便に純度高く抽出、精製する方法は知られていない。産業用途への応用を想定した場合、低コストで純度よく絹糸から組換えタンパク質を回収する技術は重要である。そこで、カイコ絹糸中に含まれる組換えタンパク質の簡便な回収法を開発し、もって産業用途への実用化にむけた課題解決を図る。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは鋭意検討の結果、遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を、絹糸を溶解剤の水溶液で溶解した後、透析または希釈により溶解剤の濃度を下げることで、絹糸タンパク質を沈殿させることにより、複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく抽出、精製できることを見出し、本発明に至った。
【０００８】
即ち、本発明は、外来タンパク質とフィブロインを含む絹糸を溶解剤の水溶液に溶解し、水溶液の溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする高純度有用タンパク質の製造方法に関するものであり、具体的には以下の通りである。
【０００９】
（１）絹糸中に遺伝子組換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に溶解し、フィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする有用タンパク質の製造方法。
【００１０】
（２）溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させることを特徴とする（１）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１１】
（３）有用タンパク質が、それをコードする遺伝子を染色体へと導入されたカイコの絹糸中に発現したものであることを特徴とする（１）または（２）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１２】
（４）溶解剤が中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることを特徴とする（１）から（３）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１３】
（５）中性塩が塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウムのいずれかであることを特徴とする（４）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１４】
（６）溶解剤が、１０重量％以上の濃度の塩化カルシウム水溶液であることを特徴とする （５）に記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１５】
（７）溶解剤の濃度を低下させるために水もしくは水とアルコールとの混合液を添加することを特徴とする（２）から（６）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１６】
（８）上清から溶媒を除去し有用タンパク質を濃縮して回収することを特徴とする請求項（１）から（６）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１７】
（９）減圧条件下で溶媒のみを揮発させ、溶媒を除去することを特徴とする（８）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１８】
（１０）有用タンパク質が、等張な水溶液に可溶性であることを特徴とする（１）から（９）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１９】
（１１）有用タンパク質がサイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質のいずれかであることを特徴とする（１）から（１０）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００２０】
（１２）有用タンパク質がネコインターフェロンまたはイヌパルボウイルスＶＰ２抗原であることを特徴とする（１１）記載の有用タンパク質の製造方法。
【発明の効果】
【００２１】
本発明により、遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく抽出、精製できることが可能となり、もって特に高純度が求められる医薬品用途など、トランスジェニックカイコにより産生された有用タンパク質を産業用途へと応用することが可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明における遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質とは、産業上利用価値の高いタンパク質であり、基本的に本来カイコの絹糸中に大量に存在しないタンパク質を遺伝子組み換え法で発現させたタンパク質である。好ましくは、生理食塩水などの等張な水溶液に可溶性のタンパク質であり、水に対する溶解度において絹フィブロインタンパク質と差が大きいものが望ましい。好ましくは、サイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質などの生物の体液中に溶解して存在するタンパク質である。例えば、ネコインターフェロンーω、イヌパルボウイルスＶＰ２抗原などがある。
【００２３】
有用タンパク質をコードする遺伝子の取得方法としては、任意の取得方法を用いることが可能である。例えば、ネコインターフェロン-ω遺伝子は、E.Coli(pFeIFN1)（微工研条寄第1633号）から抽出したプラスミドから切り出すことで得ることができる。または、切り出したネコインターフェロン-ω遺伝子を、カイコのクローニングベクター（T.Horiuchiら、Agric.Biol.Chem.,51,1573-1580,1987)に連結して作製した組換えプラスミドとカイコ多核体病ウイルスＤＮＡとを、カイコ樹立細胞にコ・トランスフェクションして作製したrBNV100から得ることも可能である。
【００２４】
本発明におけるカイコ染色体への遺伝子導入方法については、遺伝子が安定に染色体に組み込まれ、発現し、交配により子孫にも安定に遺伝子が伝わるような遺伝子導入方法であればよく、カイコ卵にマイクロインジェクションする方法、遺伝子銃を用いる方法などを用いることができるが、好ましくは、トランスポザーゼ遺伝子を含むヘルパープラスミド（Nature Biotechnology 18, 81-84, 2000）と同時に目的遺伝子を含むカイコ染色体への外来遺伝子導入用ベクターをカイコ卵にマイクロインジェクションする方法が採用される。
【００２５】
目的遺伝子は、マイクロインジェクションされたカイコ卵から孵化し成長した組換えカイコにおいて生殖細胞へ導入される。こうして得られた組換えカイコの子孫は、その染色体上に目的遺伝子を安定に保持することが可能である。本発明で得られる遺伝子組換えカイコは、通常のカイコと同様な方法で、継代維持可能である。
【００２６】
用いるカイコ染色体への外来遺伝子導入ベクターについては、ウイルスベクター、トランスポゾン由来ＤＮＡ配列を含んだベクター、または染色体には組み込まれないプラスミドベクターなどが利用できる。好ましくはトランスポゾン由来ＤＮＡ配列を含んだベクターが用いられる。
【００２７】
トランスポゾン由来のＤＮＡとしては、ショウジョウバエ由来のトランスポゾンであるmariner（マリナー）（Third International workshop on transgenesis of invertebrate organisms,p37-38,1999）, Minos（ミノス）（Insect Mol.Biol.9,277-281,2000）や鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac（ピギーバック）（Nature Biotechnology 18,81-84,2000）などを用いることが可能であるが、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac由来のＤＮＡ配列を持ったトランスポゾンが好適に使用される。piggyBac由来のＤＮＡ配列の構造としては、ＴＴＡＡ配列を含む１対の末端逆位配列が必須であり、そのＤＮＡ配列の間にサイトカイン遺伝子など外来遺伝子が挿入された構造を有するものである。トランスポゾン由来のDNA配列を利用して外来遺伝子をカイコ染色体へ導入するためには、さらにtransposase（トランスポゼース）を利用することが好ましい。例えば、piggyBac由来のtransposase（トランスポゼース）を発現することが可能なDNAを同時に導入することで、カイコ細胞内において転写・翻訳されたtransposaseがその２対の末端逆位配列を認識してその間の遺伝子断片を切り出し、カイコ染色体へと転移させることにより、カイコ染色体へ遺伝子が導入される頻度を著しく向上させることができる。
【００２８】
本発明において用いる有用タンパク質をコードする遺伝子をカイコ染色体に導入する目的で使用される遺伝子導入ベクターは、タンパク質の発現を的確に制御するように設計されるならば特に限定されないが、通常は、導入する有用タンパク質をコードする遺伝子遺伝子に対して絹糸腺特異的な発現を制御するプロモーターを上流に、任意のポリＡ配列を下流に連結した構造を持ち、これら遺伝子配列の外側に、１対のトランスポゾン由来のＤＮＡ配列を有する。さらにはプロモーターとの間に任意の遺伝子由来のシグナル配列などを連結してもよく、ポリＡとの間にも任意の遺伝子配列を連結してもよい。また人工的に設計、合成された遺伝子配列を連結することもできる。また、必要に応じてバクテリア宿主内で複製するための配列、抗生物質耐性遺伝子、蛍光タンパク遺伝子、LacZ遺伝子などを連結することもできる。例えば、適切なプロモーター下流に結合された緑色蛍光タンパク質ＧＦＰの遺伝子を、１対のトランスポゾン由来ＤＮＡ配列の間の適切な部位に導入することができる。このことによって、遺伝子組換えカイコのスクリーニングを容易にすることが可能である。また、本ベクターは、ｐＵＣ９、１９など、大腸菌由来プラスミドの一部または全てを含むこともできる。
【００２９】
さらに、ここで用いるプロモーターは特に限定されず、どのような生物由来のプロモーターであってもカイコ細胞内で有効に働くプロモーターであればよいが、カイコ絹糸腺で特異的にタンパク質の発現を誘導するように工夫されたプロモーターが好ましい。例えば、フィブロインＨ鎖プロモーター、フィブロインＬ鎖プロモーター、ｐ２５プロモーター、セリシンプロモーターなどのカイコ絹糸腺タンパク質のプロモーターが挙げられる。さらに好ましくは、フィブロインＨ鎖プロモーターである。
【００３０】
本発明において使用されるDNAを取得する方法に特に制限はない。既知の遺伝子情報に基づき、ＰＣＲ(polymerase chain reaction)法を用いて必要な遺伝子領域を増幅取得する方法、既知の遺伝子情報に基づきゲノムライブラリーやcDNAライブラリーより相同性を指標としてスクリーニングする方法などが挙げられる。本発明においては、これらの遺伝子は遺伝的多型性や変異剤などを用いた人為的変異処理による変異型も含む。遺伝的多型性とは遺伝子上の自然突然変異により遺伝子の塩基配列が一部変化しているものをいう。
【００３１】
本発明で用いられる遺伝子組換えカイコとは、外来タンパク質遺伝子がカイコ染色体に導入されたカイコのことであり、そのカイコ染色体ＤＮＡを常法に従って制限酵素処理したのち、常法に従って標識した外来タンパク質遺伝子をプローブとしてサザンブロッティングを行う時、ポジティブなシグナルを与えるカイコのことである。抗原タンパク質遺伝子が導入される染色体上の遺伝子座位は、カイコの発生、分化、成長を阻害しない部位であれば特に制限はない。
【００３２】
このようにして確認された遺伝子組換えカイコの飼育を行う。飼育方法は各ステージ（卵、稚蚕、壮蚕、蛹、蛾）において温度、湿度、明暗、給餌方法、ウイルス駆除の時期など適宜調整を行い飼育する。そして絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する繭を回収する。
【００３３】
使用する繭は生繭、乾燥繭でも良いが、好ましくは生繭を精錬して主に絹糸表面のセリシン層を除去したものを用いるのがよい。セリシン除去方法はどういう手順でも構わないが、好ましくは絹糸を０．５〜１．０％の石鹸水中で、７０〜９０℃、５〜１０分処理した後、蒸留水中で７０〜９０℃、５〜１０分の洗浄を１〜５回行い、乾燥する方法が好ましく採用できる。
【００３４】
このようにして得られた絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤で溶解する。このとき、溶解剤は、中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることが好ましい。
【００３５】
溶解剤として中性塩を含有する溶液を使用する場合、中性塩を水または水とアルコールの混合液に溶解したものが好ましい。中性塩としては、塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウム等が好ましく用いられるが、上記特開平6-70702号公報、特開平11-104228号公報、特開2001-54359号公報にも記載されている塩化カルシウムの水溶液を用いるのがコスト的に好ましい。アルコールには、メタノール、エタノールなどを用いることができる。また、溶解剤の中性塩の濃度は１０重量％以上であることが好ましく、さらに好ましくは、溶解時間を考えると30〜飽和重量％の範囲が適当である。この範囲であれば、絹糸の溶解に支障がない。絹糸を溶解する際には、溶液を６０〜８０℃程度に加熱することが好ましい。これ以下では溶解時間が非常に長くなってしまい、逆にこれ以上加熱するとアルコールの蒸発量が多大となる。
【００３６】
溶解剤として銅アルカリを含有する溶液を使用する場合、２価の銅イオンを含んだアルカリ性の溶液であればよく、銅アルカリとしては、硫酸銅、水酸化第２銅などが好ましく使用できる。これらの銅アルカリをアルカリ性溶液などに溶解したものが使用できるが、好ましくはシュバイツアー試薬（硫酸銅（ＩＩ）五水和物１ｇ、濃アンモニア水１０ｍＬ、２Ｍ水酸化ナトリウム水溶液４ｍＬ）、または銅エチレンジアミン試薬（６０ｇ／Ｌ水酸化第二銅、８６ｇ／Ｌエチレンジアミン水溶液）が用いられる。
【００３７】
溶解剤として尿素を含有する溶液を使用する場合、溶媒に水を用いて尿素の濃度は６M(mol/L)以上であることが好ましく、さらに好ましくは、溶解時間を考えると９M(mol/L)〜飽和重量M(mol/L)の範囲が適当である。この範囲であれば、絹糸の溶解に支障がない。絹糸を溶解する際には、溶液を６０〜８０℃程度に加熱することが好ましい。
【００３８】
これらの溶解剤に絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解させる場合、通常は、絹糸を細かく砕いたり、切断したり、すりつぶしてから溶解する。砕いたり切断したりする方法は絹糸に含有される有用タンパク質がこわれない方法であればどのような方法でもかまわない。より細かく砕いてから溶解する方が短時間で溶解することが可能であり、好ましい。
【００３９】
また、絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解させる場合、溶解剤の温度を６０〜８０℃程度に加熱し、撹拌するのが好ましい。溶解する際の容器は、溶解剤に侵されることがなく、絹糸や有用タンパク質に悪影響を与えることがない材質の容器であればどのようなものでもよく、ガラス製の容器などが採用できる。
【００４０】
このようにして、絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に完全に溶解する。溶解剤に溶解しない不純物などがある場合は、ここで濾過などの方法で除去しておくのが好ましい。
【００４１】
次に、絹糸の主要構成成分であるフィブロインを沈殿させる。フィブロインを沈殿させるには、溶解剤へのフィブロインの溶解度を低下させることで沈殿させることが出来る。沈殿させるには、希釈（絹糸が溶解している溶解剤の濃度を低下させる）、透析（絹糸が溶解しているよう介在の温度を低下させる）などの方法が採用できる。希釈が好ましく採用でき、この場合、希釈液を加えて十分に攪拌する。希釈液には、水、または水とアルコールの混合液を用いることが好ましい。混合比としては、好ましい比率を検討することにより求められるが、好ましくはメタノール０〜５０重量％の溶液を用いることができる。また、希釈倍率は、検討により適宜変化させることもできる。好ましくは最低３０倍〜５０倍程度とするのが良い。希釈倍率を上げれば沈殿を生じる時間は短縮されるが材料費および設備費が高くなるという問題が生じる。従って、実用的には３０〜５０倍程度が適当である。こうすることで、フィブロインが沈殿する。
【００４２】
フィブロインを沈殿させた後、上清から有用タンパク質を回収する。
【００４３】
上清からの有用タンパク質の回収方法は、特に制約はなくタンパク質溶液を濃縮する方法であれば、いかなる方法を用いてもよい。例えば、限外濾過法、エバポレーション、カラム担体を用いた吸脱着などがあげられる。ただし、目的の有用タンパク質によっては、その求められる活性、性質などを保持するような濃縮法を検討し、採用することが必要である。好ましくは、減圧条件下で溶媒のみを蒸発させ、溶媒を除去することで、有用タンパク質を濃縮させることを特徴としたエバポレーターで濃縮することが望ましい。
【実施例】
【００４４】
以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例の記載に限定されるものではない。
【００４５】
参考例１ カイコ genomic DNA（ゲノミックディエヌエー）の調製
5齢3日目のカイコを解剖し、後部絹糸腺組織を取り出した。1×SSCで洗浄した後、DNA 抽出バッファー(50mM Tris-HCl pH8.0,１mM EDTA pH8.0, 100mM NaCl)200μlを加えた。Proteinase K（プロテイナーゼケー）(final 200μg/ml)を加えて組織をグラインダーで充分すりつぶし、更にDNA抽出バッファーを350μl、10%SDS 60μlを加え混合後、50℃、２時間保温した。Tris-HCl飽和フェノール pH8.0、500μlを加え10分混合後、10,000rpm ５分 ４℃にて遠心分離し上清を回収した。上清に等量のフェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコール(25:24:1)を加え混合後、遠心分離した。再度フェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコールを加え、遠心分離後上清を回収した。等量のクロロフォルム／イソアミルアルコール(24:1)を加え混合後、遠心分離した上清に再度クロロフォルム／イソアミルアルコールを加え、遠心分離後上清を回収した。得られた上清に1/10量の3M 酢酸ナトリウム(pH5.2)を加え混合し、更に2.5倍量の冷エタノールを加え-80℃にて30分静置後、15,000rpm 10分 ４℃にて遠心分離しgenomic DNAを沈殿させた。70%エタノールでDNAの沈殿を洗浄した後、風乾させた。RNase入り滅菌水で100μg/mlとなるように溶解、希釈しgenomic DNA溶液を調製した。
【００４６】
参考例２ 遺伝子の調製
用いた遺伝子は既知の配列を利用して、その両端配列のプライマーを作製し、適当なDNAソースを鋳型としてPCRを行うことにより取得した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
【００４７】
フィブロインH鎖プロモーター・フィブロインH鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域（GeneBank登録番号AF226688の塩基番号62118〜63513番目：以下HP領域）は、Bombyx mori genomic DNA（ボンビックスモリゲノミックディエヌエー）を鋳型に、プライマー1（配列番号1）とプライマー2（配列番号2）の２種類のプライマーを用いたPCRにより取得した。
【００４８】
ネコインターフェロンーω遺伝子（GeneBank登録番号S62636の塩基番号9〜593番目：以下IC領域）はネコインターフェロンーω遺伝子をコードするバキュロウイルスrBNV100を鋳型にプライマー3（配列番号3）とプライマー4（配列番号4）の２種類のプライマーを用いてＰＣＲにより取得した。rBNV100は、例えばE.coli(pFeIFN1)（微工研条寄第1633号）から抽出したプラスミドからネコインターフェロンーωの遺伝子を切り出して、カイコのクローニングベクター（T.Horiuchiら、Agric.Biol.Chem.,51,1573-1580,1987)に連結して作製した組換えプラスミドとカイコ多核体病ウイルスＤＮＡとを、カイコ樹立細胞にコ・トランスフェクションして作製することができる。
【００４９】
フィブロインＨ鎖Ｃ末端領域遺伝子・フィブロインＨ鎖ポリＡシグナル領域（GeneBank登録番号AF226688の塩基番号79099〜79995番目：以下HA領域）は、Bombyx mori genomic DNAを鋳型に、プライマー5（配列番号5）とプライマー6（配列番号6）の２種類のプライマーを用いたPCRにより取得した。
【００５０】
PCRはKODplus（ケーオーディプラス）（東洋紡（株）製）を用いて添付のプロトコールに従って行った。すなわち、それぞれの鋳型を10ng加え、各プライマーを50pmol、添付の10×PCRバッファーを10μl、１mM MgCl２、0.2mM dNTPs、２単位KODplusとなるように各試薬を加え、全量100μlとする。DNAの変性条件を94℃,15秒、プライマーのアニーリング条件を55℃,30秒、伸長条件を68℃,60秒〜300秒の条件でPerkin-Elmer社（パーキンーエルマー社）のDNAサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。
【００５１】
これらの反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、それぞれHP領域では約1.4kbp.、IC領域では約580bp.、HA領域では約0.9bpのＤＮＡ断片を常法に従って抽出、調製した。これらのＤＮＡ断片をポリヌクレオチドキナーゼ（宝酒造（株）製）によりリン酸化した後、HinｃIIで切断後脱リン酸化処理したpUC19ベクターに宝酒造（株）のDNA Ligation Kit Ver.2（ディエヌエーライゲーションキットバージョン２）を用いて16℃、終夜反応を行い、連結した。これらを用いて常法に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質転換体にＰＣＲ断片が挿入されていることを、得られたコロニーを前述と同じ条件でＰＣＲすることによって確認し、ＰＣＲ断片の挿入されたプラスミドを常法によって調整した。これらのプラスミドをシークエンスすることにより、得られた断片がそれぞれの遺伝子の塩基配列であることを確認した。
【００５２】
参考例３ 遺伝子導入用プラスミドの作製
遺伝子導入用プラスミドには、トランスポゾンpiggyBacの一対の逆向き反復配列の間に、配列番号７に記するネコインターフェロン−ω遺伝子の発現カセットを挿入した遺伝子構造を含むプラスミドpigFeIFN−ωを用いた。
【００５３】
すなわち、米国特許第6218185号に開示されるプラスミドp3E1.2よりtransposaseをコードする領域を取り除き、そのBgl II部位およびHpa I部位を平滑化しネコインターフェロン−ω遺伝子の発現カセットを挿入し、pigFeIFN−ωを得た。
【００５４】
本実施例における遺伝子発現カセットの構成は、フィブロインH鎖プロモーター・フィブロインH鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域・ネコインターフェロンーω・フィブロインＨ鎖Ｃ末端領域・フィブロインH鎖ポリＡシグナル領域（配列番号７）である。
【００５５】
フィブロインＨ鎖遺伝子の第一イントロンは遺伝子の発現量増大に重要であり、フィブロインＨ鎖タンパク質のＣ末端領域は発現した遺伝子産物の絹糸中への分泌に重要な機能を持つ（特願2002-268726号公報）。
【００５６】
以下に具体的な方法を示す。
【００５７】
HP・IC・HAコンストラクトの作製は以下の手法により行った。参考例２で調製したネコインターフェロンーω(IC領域)を持つプラスミドをSal IとHind IIIにより切断し、ここにフィブロインＨ鎖プロモーター・フィブロインＨ鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域を持つプラスミドからSal IとHind IIIにより切り出した約1.4kbp.断片(HP領域)を挿入した。さらにこれをBamH Iにより切断し、ここにフィブロインＨ鎖Ｃ末端領域・フィブロインＨ鎖ポリＡシグナル領域を持つプラスミドからBamH Iにより切り出した約0.9kbp.断片(HA領域)を挿入した。このHP・IC・HAを持つプラスミドをAsc Iで切断し、切り出した約2.9kbp断片を宝酒造（株）T4 DNA Polymerase（ティーフォーディエヌエーポリメラーゼ）により平滑化したものと、p3E1.2をBgl II、Hpa Iで切断し、750bpの遺伝子断片を除去後、平滑化、脱リン酸化処理したものとを連結し、HP・IC・HA遺伝子カセットを含む遺伝子導入用コンストラクトpigFeIFN−ωを作製した。作製したpigFeIFN−ω遺伝子導入用コンストラクトをQIAGEN Plasmid Maxi Kit（キアゲンプラスミドマキシキット）を用い、添付のプロトコールに従って精製した。
【００５８】
参考例４ ピギーバックトランスポゼースタンパク質の調製
（１）遺伝子のクローニングおよび発現ベクターの作製
ピギーバックトランスポゼース遺伝子のクローニングには、米国特許6218185号公報で開示されているピギーバックトランスポゼース遺伝子の塩基配列を参考にオリゴヌクレオチドプライマーを合成した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
【００５９】
ピギーバックトランスポゼースタンパク質遺伝子のクローニングには、プライマー８（配列番号８）とプライマー９（配列番号９）の２種類のプライマーを用い、米国特許6218185号公報により開示されるプラスミドp３Ｅ１．２をテンプレートとして用いたPCRにより取得した。
【００６０】
PCRは0.2ｍｌのミクロ遠心チューブを用い、鋳型DNAを10ng、各プライマーを50pmol、添付の10×PCRバッファーを10μl、１mM MgCl２、0.2mM dNTPs、２単位KODplusとなるように各試薬を加え、全量を100μｌとした。DNAの変性条件を94℃、30秒、プライマーのアニーリング条件を60℃、30秒、ＤＮＡプライマーの伸長反応条件を72℃、3分の各条件でBioRad社のサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。この反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、約1.8kbpのＤＮＡ断片を常法に従って抽出、調整した。
【００６１】
このＤＮＡ断片をポリヌクレオチドキナーゼ（宝酒造（株）製）によりリン酸化した後、HincIIで切断後脱リン酸化処理したpUC19ベクターに宝酒造（株）のDNAライゲーションキットVer.2を用いて16℃、終夜反応を行い、連結した。これを用いて常法に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質転換体にPCR断片が挿入されていることを、得られたコロニーを前述と同じ条件でPCRすることによって確認し、PCR断片の挿入されたプラスミドを常法によって調整した。このプラスミドをシークエンスすることにより、得られた断片が遺伝子の塩基配列であることを確認した。
【００６２】
このプラスミドを、NcoI、およびBamHIで消化し、得られた1.8kbpのNcoI/BamHI断片を、予めNcoI、およびBamHIで消化しておいたpTV118N（宝酒造（株）製）のNcoI/BamHI間隙に常法に従ったライゲーション反応により挿入し、得られたプラスミドをｐＴＶ−ｐｉｇｇｙと命名した。このプラスミドを導入した大腸菌を培養することで、ピギーバックトランスポゼースタンパク質のＮ末端アミノ酸配列に10個のヒスジチン残基が付加された分子量約70ｋＤａの組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を生産することができる。
【００６３】
（２）組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質の産生
ｐＴＶ−ｐｉｇｇｙでE.coli BL21株をアンピシリン耐性に形質転換し、得られた形質転換体をそれぞれＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株と命名した。
【００６４】
次にＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株で、組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を産生させた。まず、ＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株を50μｇ/mlのアンピシリンナトリウムを含んだ滅菌LB培地（Sambrook, J. et al., 2001、Molecular Cloning 3rd. edition, Cold Spring Harbor Lab. Press)（LB-amp培地）5mlに１白金耳植菌し、37℃で24時間振とうして前培養を行った。
【００６５】
この前培養液をLB-amp培地50mlに全量植菌し、37℃、振幅30cmで、180rpmの条件下で3時間培養した後に1mM IPTG(isopropyl-1-thio-β-D-galactoside)添加し、更に4時間培養した。対照実験として、BL21をpTV118Nで形質転換した形質転換体を対照として用い同様の培養を行った。こうして得られた菌体を集め、5mlのトリス(TBS)緩衝液（宝酒造製）に再懸濁後、超音波破砕および遠心分離により細胞破砕液を調製した。この細胞破砕液をSDS-PAGEで分画し、Penta-His Antibody抗体（QIAGEN社製）でウエスタンブロッティングを行った結果、ＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株由来の細胞破砕液から、分子量約70ｋＤａの組み換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を検出した。
【００６６】
（３）組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質の精製
この組み換えタンパク質は、N末端アミノ酸配列に10個のヒスチジン残基があることから、ニッケルイオンとの相互作用を利用した精製を行った。
【００６７】
まず、10mlのキレーティング セファロース ファースト フロー（Chilating Sepharose Fast Flow）担体（アマシャム バイオサイエンス社製）を充填したカラムシステムを構築した。このカラムに50mlの50mM 硫酸ニッケル水溶液、50mlのTBS緩衝液の順で流した後、（２）と同様の方法で得られたBL21−piggy株の500ml培溶液由来の50ml細胞破砕液を流した。その後、100mlの5mM イミダゾールを含むTBS緩衝液、100ｍｌの50mM イミダゾールを含むTBS緩衝液をこの順序で流した。更に50mlの600mM イミダゾールを含むＴＢＳ緩衝液を流した。カラムに流した各々の緩衝液を（２）と同様の方法でウエスタンブロッティングを行ったところ、600mM イミダゾールを含むTBS緩衝液に約70kDaタンパク質を検出した。また、カラムに流した各々の緩衝液をSDS-PAGEし、クマシーブリリアントブルーで染色したところ、600mM イミダゾールを含むＴＢＳ緩衝液から、約70ｋＤａの単一バンドを検出し、この精製タンパク質は組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質であることを確認した。透析によりイミダゾールを除去した後、ウシ血清アルブミンを標準タンパク質として、Pierce社 BCA試薬を用いてタンパク質濃度を定量した。
【００６８】
参考例５ 遺伝子組換えカイコの作製
参考例３に記載の遺伝子導入用プラスミドと参考例５ピギーバックトランスポゼースタンパク質を、DNA濃度を約200μg/ml、ピギーバックトランスポゼースタンパク質濃度を約2.7μg/ml(モル比1:10)含んだ0.5mMリン酸バッファー（pH7.0）、５mM ＫＣｌ溶液を調整し、3〜20nlを産卵後４時間以内のカイコ卵500個に対してマイクロインジェクションした。
【００６９】
そのカイコ卵より孵化した幼虫を飼育し、得られた成虫（G0）を群内で掛け合わせ得られた次世代（G1）を４齢時にその体液を注射用針（21Ｇ）で採取し、ＰＣＲにより遺伝子の導入をスクリーニングした。ＰＣＲは配列番号3および配列番号4のプライマーを用いて宝酒造（株）製のPremix Taqにより行った。すなわち、Premix Taqを最終濃度２倍希釈、プライマーそれぞれ0.5μMとなるように調製した液を20μLずつ分注し、体液を0.5〜２μL加え、DNAの変性条件を94℃、30秒、プライマーのアニーリング条件を55℃、30秒、ＤＮＡプライマーの伸長反応条件を72℃、1分の各条件でBioRad社のサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。これらの反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、約580bpのＤＮＡ断片が確認されたものを、遺伝子導入陽性と判断した。その結果、染色体中にネコインターフェロンω遺伝子の発現カセットが導入された遺伝子組換えカイコが得られた。
【００７０】
参考例６ ウエスタン解析による絹糸腺組織中の組換えタンパク質の発現解析
非形質転換カイコ、HP・IC・HA形質転換カイコの後部絹糸腺組織、および繭を回収し、ネコインターフェロンωの発現をウエスタン解析により調べた。カイコ後部絹糸腺は100mMリン酸ナトリウムバッファー(pH7.0)中でホモジナイズし、遠心分離後上清を回収しサンプルとし、カイコ繭は10mgあたり４mlの60%LiSCNを加え攪拌後、終夜室温に静置し繭を溶解したものを８M尿素・２%SDS・５%2-メルカプトエタノールで10培希釈したものをサンプルとした。SDS-PAGE（エスディエスーページ）後、ECL PlusTM Western blotting Kit（イーシーエルパルスティエムウエスタンブロッティングキット） （アマシャムファルマシア社製）を用い、添付のプロトコールに従ってネコインターフェロンの検出を行った。すなわち、ブロッティングしたメンブレンをブロッキング溶液（５%スキムミルク・0.1%Tween20・PBS）中で4℃終夜ブロッキングした。メンブレンをTPBS(0.1%Tween20・PBS)で２回洗浄し、TPBSで1000倍希釈した抗ネコインターフェロン抗体で室温1時間処理した。メンブレンをTPBSで２回洗浄し、更にTPBSで５分間３回洗浄した。その後TPBSで10000倍希釈した後、HRPラベル抗ラビットIgG抗体で室温１時間処理した。メンブレンをTPBSで２回洗浄し、更にTPBSで５分間３回洗浄した後、ECL PlusTM Western blotting Detection System（イーシーエルパルスティエムウエスタンブロッティングデテクションシステム）（アマシャムファルマシア社製）の検出試薬（溶液Ａ＋溶液Ｂ）を加えた。発光をHyperfilmTMECLTM （ハイパーフィルムティエムイーシールティエム）に露光、現像した。その結果非形質転換カイコからはシグナルが検出されなかったのに対し、HP・IC・HAコンストラクトおよびHUP・IC・HAコンストラクト導入形質転換カイコの絹糸腺組織および繭からはシグナルが検出された。
【００７１】
その結果をモレキュラーイメージャー(BioRad社製)を用いてシグナル強度を測定し、濃度既知のネコインターフェロンのシグナル強度と比較しタンパク質含量を測定したところ、HP・IC・HA形質転換カイコでは繭重量の約0.8〜2.0%のネコインターフェロンが産生されており、これはカイコ一頭当たりの重量に換算すると0.4〜１mgであった。
【００７２】
実施例１
得られたネコインターフェロンを含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００７３】
メタノール４ｇ、蒸留水６ｇの混合溶液中に塩化カルシウムを１０ｇ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、７５℃で加熱することにより溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００７４】
得られた上清をエバポレーションにより１００倍に濃縮し、SDS-PAGE電気泳動により解析した。同時にネコ抗原タンパク質標準品と、前途記載の生じた沈殿も解析した。結果を図１に示す。e-PAGEL E-T520L（ATTO社製）を用いてゲル１枚あたり２０ｍＡ、１００分間電気泳動した。泳動後、２Ｄ−銀染色試薬「第一」（第一化学薬品（株））を用いてゲルを銀染色した。
【００７５】
その結果、得られた濃縮画分に、分子量25KDaのネコインターフェロンが高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【００７６】
実施例２
得られたネコインターフェロンを含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００７７】
銅エチレンジアミン試薬（６０ｇ／Ｌ水酸化第二銅、８６ｇ／Ｌエチレンジアミン水溶液）を１０ｍＬ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００７８】
実施例１と同様に解析した結果、得られた濃縮画分に、分子量25KDaのネコインターフェロンが高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【００７９】
参考例７
イヌパルボウイルスＶＰ２抗原遺伝子（GeneBank登録番号38245の塩基番号2787〜4538番目：以下VP領域）をイヌパルボウイルスＶＰ２抗原遺伝子をコードするプラスミドpAc6C2B23（ＡＴＣＣ寄託番号６７６８２号）を鋳型にプライマー10（配列番号10）とプライマー11（配列番号11）の２種類のプライマーを用いてＰＣＲにより取得した。参考例２，３，４,５と同様の方法でイヌパルボウイルスＶＰ２抗原を絹糸中に発現するトランスジェニックカイコを作製した（導入遺伝子構造を配列番号１２に示す）。参考例６と同様に抗ＶＰ２抗原抗体（コスモバイオ）を用いてウェスタンブロッティングを行い、絹糸中のイヌパルボウイルスＶＰ２抗原の含有量を調べたところ、1.2〜2.2％であった。
【００８０】
実施例３
得られたイヌパルボウイルスＶＰ２抗原を含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００８１】
メタノール４ｇ、蒸留水６ｇの混合溶液中に塩化カルシウムを１０ｇ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、７５℃で加熱することにより溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００８２】
得られた上清をエバポレーションにより１００倍に濃縮し、SDS-PAGE電気泳動により解析した。同時にイヌパルボウイルスＶＰ２抗原タンパク質標準品と、前途記載の生じた沈殿も解析した。結果を図１に示す。e-PAGEL E-T520L（ATTO社製）を用いてゲル１枚あたり２０ｍＡ、１００分間電気泳動した。泳動後、２Ｄ−銀染色試薬「第一」（第一化学薬品（株））を用いてゲルを銀染色した。
【００８３】
その結果、得られた濃縮画分に、分子量70kDaのイヌパルボウイルスＶＰ２抗原が高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００８４】
本発明によれば、有用タンパク質を発現しているカイコの絹糸から、簡便に高純度の有用タンパク質を抽出、精製することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００８５】
【図１】実施例１で得られた回収された組換えタンパク質の電気泳動結果を示す図である。
【符号の説明】
【００８６】
１．分子量マーカー（アプロタンパク質マーカーLow range）
２．ネコ抗原タンパク質標準品
３．絹糸溶解画分
４．上清濃縮画分
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トランスジェニックカイコの絹糸などに大量に存在する有用タンパク質を、簡便に純度高く抽出、精製して、有用タンパク質を製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年昆虫染色体への外来遺伝子の組み換えが試みられ、核多核体病ウイルスの一種であるAutographa californica Nuclear Polyhedrosis Virus (AcNPV)（オートグラファカリフォルニアヌクレアポリヘドロシスウイルス）のDNAを用いてカイコフィブロイン重鎖遺伝子にクラゲ緑色蛍光タンパク質遺伝子を付加した融合遺伝子を、相同組み換えにより、カイコ染色体上に導入し、発現させる方法が開発され（非特許文献１参照）、その技術を用いたヒト・コラーゲン遺伝子を導入したカイコおよびその製造方法が開示されている（特許文献１参照）。
【０００３】
また最近、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac（ピギーバック）を用いることにより、外来遺伝子を昆虫の細胞へと導入できることが明らかとなり（特許文献２参照）、クラゲ緑色蛍光タンパク質遺伝子をカイコ染色体へと導入し、そのタンパク質をＡ３プロモーターにより発現させる方法が開発され、絹糸腺組織や繭中にそのタンパク質が確認された。また、交配により子孫へと遺伝子が安定に伝わることも確認された（非特許文献２参照）。さらにこの方法を改良することにより、サイトカインなどのタンパク質をカイコの絹糸腺または絹糸中に大量に産生させる技術も確立された（特許文献３参照）。
【０００４】
本技術を用いた低コストタンパク質生産を実現するには、絹糸中に大量に産生された組換えタンパク質を純度よく大量に回収することが求められるが、これまでのところ絹糸からの効率的な組換えタンパク質の回収法は知られていない。
【０００５】
一方、絹糸を加工する技術として、酸または中性塩の溶液に溶解した後、透析、希釈により絹糸を構成するタンパク質を沈殿させたり、または乾燥することにより絹糸を構成するタンパク質を粉末やフィルムとして得る方法が開示されている（特許文献４，５，６参照）が、これらは絹糸タンパク質（主にフィブロイン）を回収するためのものであり、絹糸中に存在する組換えタンパク質の回収については記載されていない。
【特許文献１】特開2001−161214号公報
【特許文献２】米国特許第6218185号明細書
【特許文献３】特願2002-60374号公報
【特許文献４】特開平6-70702号公報
【特許文献５】特開平11-104228号公報
【特許文献６】特開2001-54359号公報
【非特許文献１】ジーンズアンドデベロップメント（Genes and Development）1999年、第13巻、p.511−516
【非特許文献２】ネイチャーバイオテクノロジー（Nature Biotechnology）2000年、第18巻、p.81−84
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
有用タンパク質をコードする遺伝子を染色体中へと導入されたトランスジェニックカイコの絹糸に産生された有用タンパク質を簡便に純度高く抽出、精製する方法は知られていない。産業用途への応用を想定した場合、低コストで純度よく絹糸から組換えタンパク質を回収する技術は重要である。そこで、カイコ絹糸中に含まれる組換えタンパク質の簡便な回収法を開発し、もって産業用途への実用化にむけた課題解決を図る。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは鋭意検討の結果、遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を、絹糸を溶解剤の水溶液で溶解した後、透析または希釈により溶解剤の濃度を下げることで、絹糸タンパク質を沈殿させることにより、複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく抽出、精製できることを見出し、本発明に至った。
【０００８】
即ち、本発明は、外来タンパク質とフィブロインを含む絹糸を溶解剤の水溶液に溶解し、水溶液の溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする高純度有用タンパク質の製造方法に関するものであり、具体的には以下の通りである。
【０００９】
（１）絹糸中に遺伝子組換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に溶解し、フィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする有用タンパク質の製造方法。
【００１０】
（２）溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させることを特徴とする（１）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１１】
（３）有用タンパク質が、それをコードする遺伝子を染色体へと導入されたカイコの絹糸中に発現したものであることを特徴とする（１）または（２）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１２】
（４）溶解剤が中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることを特徴とする（１）から（３）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１３】
（５）中性塩が塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウムのいずれかであることを特徴とする（４）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１４】
（６）溶解剤が、１０重量％以上の濃度の塩化カルシウム水溶液であることを特徴とする （５）に記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１５】
（７）溶解剤の濃度を低下させるために水もしくは水とアルコールとの混合液を添加することを特徴とする（２）から（６）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１６】
（８）上清から溶媒を除去し有用タンパク質を濃縮して回収することを特徴とする請求項（１）から（６）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１７】
（９）減圧条件下で溶媒のみを揮発させ、溶媒を除去することを特徴とする（８）記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１８】
（１０）有用タンパク質が、等張な水溶液に可溶性であることを特徴とする（１）から（９）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００１９】
（１１）有用タンパク質がサイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質のいずれかであることを特徴とする（１）から（１０）のいずれか記載の有用タンパク質の製造方法。
【００２０】
（１２）有用タンパク質がネコインターフェロンまたはイヌパルボウイルスＶＰ２抗原であることを特徴とする（１１）記載の有用タンパク質の製造方法。
【発明の効果】
【００２１】
本発明により、遺伝子組換えカイコ（トランスジェニックカイコ）により絹糸中に産生された組換えタンパク質を複雑なタンパク質精製工程を経ることなく純度よく抽出、精製できることが可能となり、もって特に高純度が求められる医薬品用途など、トランスジェニックカイコにより産生された有用タンパク質を産業用途へと応用することが可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明における遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質とは、産業上利用価値の高いタンパク質であり、基本的に本来カイコの絹糸中に大量に存在しないタンパク質を遺伝子組み換え法で発現させたタンパク質である。好ましくは、生理食塩水などの等張な水溶液に可溶性のタンパク質であり、水に対する溶解度において絹フィブロインタンパク質と差が大きいものが望ましい。好ましくは、サイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質などの生物の体液中に溶解して存在するタンパク質である。例えば、ネコインターフェロンーω、イヌパルボウイルスＶＰ２抗原などがある。
【００２３】
有用タンパク質をコードする遺伝子の取得方法としては、任意の取得方法を用いることが可能である。例えば、ネコインターフェロン-ω遺伝子は、E.Coli(pFeIFN1)（微工研条寄第1633号）から抽出したプラスミドから切り出すことで得ることができる。または、切り出したネコインターフェロン-ω遺伝子を、カイコのクローニングベクター（T.Horiuchiら、Agric.Biol.Chem.,51,1573-1580,1987)に連結して作製した組換えプラスミドとカイコ多核体病ウイルスＤＮＡとを、カイコ樹立細胞にコ・トランスフェクションして作製したrBNV100から得ることも可能である。
【００２４】
本発明におけるカイコ染色体への遺伝子導入方法については、遺伝子が安定に染色体に組み込まれ、発現し、交配により子孫にも安定に遺伝子が伝わるような遺伝子導入方法であればよく、カイコ卵にマイクロインジェクションする方法、遺伝子銃を用いる方法などを用いることができるが、好ましくは、トランスポザーゼ遺伝子を含むヘルパープラスミド（Nature Biotechnology 18, 81-84, 2000）と同時に目的遺伝子を含むカイコ染色体への外来遺伝子導入用ベクターをカイコ卵にマイクロインジェクションする方法が採用される。
【００２５】
目的遺伝子は、マイクロインジェクションされたカイコ卵から孵化し成長した組換えカイコにおいて生殖細胞へ導入される。こうして得られた組換えカイコの子孫は、その染色体上に目的遺伝子を安定に保持することが可能である。本発明で得られる遺伝子組換えカイコは、通常のカイコと同様な方法で、継代維持可能である。
【００２６】
用いるカイコ染色体への外来遺伝子導入ベクターについては、ウイルスベクター、トランスポゾン由来ＤＮＡ配列を含んだベクター、または染色体には組み込まれないプラスミドベクターなどが利用できる。好ましくはトランスポゾン由来ＤＮＡ配列を含んだベクターが用いられる。
【００２７】
トランスポゾン由来のＤＮＡとしては、ショウジョウバエ由来のトランスポゾンであるmariner（マリナー）（Third International workshop on transgenesis of invertebrate organisms,p37-38,1999）, Minos（ミノス）（Insect Mol.Biol.9,277-281,2000）や鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac（ピギーバック）（Nature Biotechnology 18,81-84,2000）などを用いることが可能であるが、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac由来のＤＮＡ配列を持ったトランスポゾンが好適に使用される。piggyBac由来のＤＮＡ配列の構造としては、ＴＴＡＡ配列を含む１対の末端逆位配列が必須であり、そのＤＮＡ配列の間にサイトカイン遺伝子など外来遺伝子が挿入された構造を有するものである。トランスポゾン由来のDNA配列を利用して外来遺伝子をカイコ染色体へ導入するためには、さらにtransposase（トランスポゼース）を利用することが好ましい。例えば、piggyBac由来のtransposase（トランスポゼース）を発現することが可能なDNAを同時に導入することで、カイコ細胞内において転写・翻訳されたtransposaseがその２対の末端逆位配列を認識してその間の遺伝子断片を切り出し、カイコ染色体へと転移させることにより、カイコ染色体へ遺伝子が導入される頻度を著しく向上させることができる。
【００２８】
本発明において用いる有用タンパク質をコードする遺伝子をカイコ染色体に導入する目的で使用される遺伝子導入ベクターは、タンパク質の発現を的確に制御するように設計されるならば特に限定されないが、通常は、導入する有用タンパク質をコードする遺伝子遺伝子に対して絹糸腺特異的な発現を制御するプロモーターを上流に、任意のポリＡ配列を下流に連結した構造を持ち、これら遺伝子配列の外側に、１対のトランスポゾン由来のＤＮＡ配列を有する。さらにはプロモーターとの間に任意の遺伝子由来のシグナル配列などを連結してもよく、ポリＡとの間にも任意の遺伝子配列を連結してもよい。また人工的に設計、合成された遺伝子配列を連結することもできる。また、必要に応じてバクテリア宿主内で複製するための配列、抗生物質耐性遺伝子、蛍光タンパク遺伝子、LacZ遺伝子などを連結することもできる。例えば、適切なプロモーター下流に結合された緑色蛍光タンパク質ＧＦＰの遺伝子を、１対のトランスポゾン由来ＤＮＡ配列の間の適切な部位に導入することができる。このことによって、遺伝子組換えカイコのスクリーニングを容易にすることが可能である。また、本ベクターは、ｐＵＣ９、１９など、大腸菌由来プラスミドの一部または全てを含むこともできる。
【００２９】
さらに、ここで用いるプロモーターは特に限定されず、どのような生物由来のプロモーターであってもカイコ細胞内で有効に働くプロモーターであればよいが、カイコ絹糸腺で特異的にタンパク質の発現を誘導するように工夫されたプロモーターが好ましい。例えば、フィブロインＨ鎖プロモーター、フィブロインＬ鎖プロモーター、ｐ２５プロモーター、セリシンプロモーターなどのカイコ絹糸腺タンパク質のプロモーターが挙げられる。さらに好ましくは、フィブロインＨ鎖プロモーターである。
【００３０】
本発明において使用されるDNAを取得する方法に特に制限はない。既知の遺伝子情報に基づき、ＰＣＲ(polymerase chain reaction)法を用いて必要な遺伝子領域を増幅取得する方法、既知の遺伝子情報に基づきゲノムライブラリーやcDNAライブラリーより相同性を指標としてスクリーニングする方法などが挙げられる。本発明においては、これらの遺伝子は遺伝的多型性や変異剤などを用いた人為的変異処理による変異型も含む。遺伝的多型性とは遺伝子上の自然突然変異により遺伝子の塩基配列が一部変化しているものをいう。
【００３１】
本発明で用いられる遺伝子組換えカイコとは、外来タンパク質遺伝子がカイコ染色体に導入されたカイコのことであり、そのカイコ染色体ＤＮＡを常法に従って制限酵素処理したのち、常法に従って標識した外来タンパク質遺伝子をプローブとしてサザンブロッティングを行う時、ポジティブなシグナルを与えるカイコのことである。抗原タンパク質遺伝子が導入される染色体上の遺伝子座位は、カイコの発生、分化、成長を阻害しない部位であれば特に制限はない。
【００３２】
このようにして確認された遺伝子組換えカイコの飼育を行う。飼育方法は各ステージ（卵、稚蚕、壮蚕、蛹、蛾）において温度、湿度、明暗、給餌方法、ウイルス駆除の時期など適宜調整を行い飼育する。そして絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する繭を回収する。
【００３３】
使用する繭は生繭、乾燥繭でも良いが、好ましくは生繭を精錬して主に絹糸表面のセリシン層を除去したものを用いるのがよい。セリシン除去方法はどういう手順でも構わないが、好ましくは絹糸を０．５〜１．０％の石鹸水中で、７０〜９０℃、５〜１０分処理した後、蒸留水中で７０〜９０℃、５〜１０分の洗浄を１〜５回行い、乾燥する方法が好ましく採用できる。
【００３４】
このようにして得られた絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤で溶解する。このとき、溶解剤は、中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることが好ましい。
【００３５】
溶解剤として中性塩を含有する溶液を使用する場合、中性塩を水または水とアルコールの混合液に溶解したものが好ましい。中性塩としては、塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウム等が好ましく用いられるが、上記特開平6-70702号公報、特開平11-104228号公報、特開2001-54359号公報にも記載されている塩化カルシウムの水溶液を用いるのがコスト的に好ましい。アルコールには、メタノール、エタノールなどを用いることができる。また、溶解剤の中性塩の濃度は１０重量％以上であることが好ましく、さらに好ましくは、溶解時間を考えると30〜飽和重量％の範囲が適当である。この範囲であれば、絹糸の溶解に支障がない。絹糸を溶解する際には、溶液を６０〜８０℃程度に加熱することが好ましい。これ以下では溶解時間が非常に長くなってしまい、逆にこれ以上加熱するとアルコールの蒸発量が多大となる。
【００３６】
溶解剤として銅アルカリを含有する溶液を使用する場合、２価の銅イオンを含んだアルカリ性の溶液であればよく、銅アルカリとしては、硫酸銅、水酸化第２銅などが好ましく使用できる。これらの銅アルカリをアルカリ性溶液などに溶解したものが使用できるが、好ましくはシュバイツアー試薬（硫酸銅（ＩＩ）五水和物１ｇ、濃アンモニア水１０ｍＬ、２Ｍ水酸化ナトリウム水溶液４ｍＬ）、または銅エチレンジアミン試薬（６０ｇ／Ｌ水酸化第二銅、８６ｇ／Ｌエチレンジアミン水溶液）が用いられる。
【００３７】
溶解剤として尿素を含有する溶液を使用する場合、溶媒に水を用いて尿素の濃度は６M(mol/L)以上であることが好ましく、さらに好ましくは、溶解時間を考えると９M(mol/L)〜飽和重量M(mol/L)の範囲が適当である。この範囲であれば、絹糸の溶解に支障がない。絹糸を溶解する際には、溶液を６０〜８０℃程度に加熱することが好ましい。
【００３８】
これらの溶解剤に絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解させる場合、通常は、絹糸を細かく砕いたり、切断したり、すりつぶしてから溶解する。砕いたり切断したりする方法は絹糸に含有される有用タンパク質がこわれない方法であればどのような方法でもかまわない。より細かく砕いてから溶解する方が短時間で溶解することが可能であり、好ましい。
【００３９】
また、絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解させる場合、溶解剤の温度を６０〜８０℃程度に加熱し、撹拌するのが好ましい。溶解する際の容器は、溶解剤に侵されることがなく、絹糸や有用タンパク質に悪影響を与えることがない材質の容器であればどのようなものでもよく、ガラス製の容器などが採用できる。
【００４０】
このようにして、絹糸中に遺伝子組み換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に完全に溶解する。溶解剤に溶解しない不純物などがある場合は、ここで濾過などの方法で除去しておくのが好ましい。
【００４１】
次に、絹糸の主要構成成分であるフィブロインを沈殿させる。フィブロインを沈殿させるには、溶解剤へのフィブロインの溶解度を低下させることで沈殿させることが出来る。沈殿させるには、希釈（絹糸が溶解している溶解剤の濃度を低下させる）、透析（絹糸が溶解しているよう介在の温度を低下させる）などの方法が採用できる。希釈が好ましく採用でき、この場合、希釈液を加えて十分に攪拌する。希釈液には、水、または水とアルコールの混合液を用いることが好ましい。混合比としては、好ましい比率を検討することにより求められるが、好ましくはメタノール０〜５０重量％の溶液を用いることができる。また、希釈倍率は、検討により適宜変化させることもできる。好ましくは最低３０倍〜５０倍程度とするのが良い。希釈倍率を上げれば沈殿を生じる時間は短縮されるが材料費および設備費が高くなるという問題が生じる。従って、実用的には３０〜５０倍程度が適当である。こうすることで、フィブロインが沈殿する。
【００４２】
フィブロインを沈殿させた後、上清から有用タンパク質を回収する。
【００４３】
上清からの有用タンパク質の回収方法は、特に制約はなくタンパク質溶液を濃縮する方法であれば、いかなる方法を用いてもよい。例えば、限外濾過法、エバポレーション、カラム担体を用いた吸脱着などがあげられる。ただし、目的の有用タンパク質によっては、その求められる活性、性質などを保持するような濃縮法を検討し、採用することが必要である。好ましくは、減圧条件下で溶媒のみを蒸発させ、溶媒を除去することで、有用タンパク質を濃縮させることを特徴としたエバポレーターで濃縮することが望ましい。
【実施例】
【００４４】
以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例の記載に限定されるものではない。
【００４５】
参考例１ カイコ genomic DNA（ゲノミックディエヌエー）の調製
5齢3日目のカイコを解剖し、後部絹糸腺組織を取り出した。1×SSCで洗浄した後、DNA 抽出バッファー(50mM Tris-HCl pH8.0,１mM EDTA pH8.0, 100mM NaCl)200μlを加えた。Proteinase K（プロテイナーゼケー）(final 200μg/ml)を加えて組織をグラインダーで充分すりつぶし、更にDNA抽出バッファーを350μl、10%SDS 60μlを加え混合後、50℃、２時間保温した。Tris-HCl飽和フェノール pH8.0、500μlを加え10分混合後、10,000rpm ５分 ４℃にて遠心分離し上清を回収した。上清に等量のフェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコール(25:24:1)を加え混合後、遠心分離した。再度フェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコールを加え、遠心分離後上清を回収した。等量のクロロフォルム／イソアミルアルコール(24:1)を加え混合後、遠心分離した上清に再度クロロフォルム／イソアミルアルコールを加え、遠心分離後上清を回収した。得られた上清に1/10量の3M 酢酸ナトリウム(pH5.2)を加え混合し、更に2.5倍量の冷エタノールを加え-80℃にて30分静置後、15,000rpm 10分 ４℃にて遠心分離しgenomic DNAを沈殿させた。70%エタノールでDNAの沈殿を洗浄した後、風乾させた。RNase入り滅菌水で100μg/mlとなるように溶解、希釈しgenomic DNA溶液を調製した。
【００４６】
参考例２ 遺伝子の調製
用いた遺伝子は既知の配列を利用して、その両端配列のプライマーを作製し、適当なDNAソースを鋳型としてPCRを行うことにより取得した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
【００４７】
フィブロインH鎖プロモーター・フィブロインH鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域（GeneBank登録番号AF226688の塩基番号62118〜63513番目：以下HP領域）は、Bombyx mori genomic DNA（ボンビックスモリゲノミックディエヌエー）を鋳型に、プライマー1（配列番号1）とプライマー2（配列番号2）の２種類のプライマーを用いたPCRにより取得した。
【００４８】
ネコインターフェロンーω遺伝子（GeneBank登録番号S62636の塩基番号9〜593番目：以下IC領域）はネコインターフェロンーω遺伝子をコードするバキュロウイルスrBNV100を鋳型にプライマー3（配列番号3）とプライマー4（配列番号4）の２種類のプライマーを用いてＰＣＲにより取得した。rBNV100は、例えばE.coli(pFeIFN1)（微工研条寄第1633号）から抽出したプラスミドからネコインターフェロンーωの遺伝子を切り出して、カイコのクローニングベクター（T.Horiuchiら、Agric.Biol.Chem.,51,1573-1580,1987)に連結して作製した組換えプラスミドとカイコ多核体病ウイルスＤＮＡとを、カイコ樹立細胞にコ・トランスフェクションして作製することができる。
【００４９】
フィブロインＨ鎖Ｃ末端領域遺伝子・フィブロインＨ鎖ポリＡシグナル領域（GeneBank登録番号AF226688の塩基番号79099〜79995番目：以下HA領域）は、Bombyx mori genomic DNAを鋳型に、プライマー5（配列番号5）とプライマー6（配列番号6）の２種類のプライマーを用いたPCRにより取得した。
【００５０】
PCRはKODplus（ケーオーディプラス）（東洋紡（株）製）を用いて添付のプロトコールに従って行った。すなわち、それぞれの鋳型を10ng加え、各プライマーを50pmol、添付の10×PCRバッファーを10μl、１mM MgCl２、0.2mM dNTPs、２単位KODplusとなるように各試薬を加え、全量100μlとする。DNAの変性条件を94℃,15秒、プライマーのアニーリング条件を55℃,30秒、伸長条件を68℃,60秒〜300秒の条件でPerkin-Elmer社（パーキンーエルマー社）のDNAサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。
【００５１】
これらの反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、それぞれHP領域では約1.4kbp.、IC領域では約580bp.、HA領域では約0.9bpのＤＮＡ断片を常法に従って抽出、調製した。これらのＤＮＡ断片をポリヌクレオチドキナーゼ（宝酒造（株）製）によりリン酸化した後、HinｃIIで切断後脱リン酸化処理したpUC19ベクターに宝酒造（株）のDNA Ligation Kit Ver.2（ディエヌエーライゲーションキットバージョン２）を用いて16℃、終夜反応を行い、連結した。これらを用いて常法に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質転換体にＰＣＲ断片が挿入されていることを、得られたコロニーを前述と同じ条件でＰＣＲすることによって確認し、ＰＣＲ断片の挿入されたプラスミドを常法によって調整した。これらのプラスミドをシークエンスすることにより、得られた断片がそれぞれの遺伝子の塩基配列であることを確認した。
【００５２】
参考例３ 遺伝子導入用プラスミドの作製
遺伝子導入用プラスミドには、トランスポゾンpiggyBacの一対の逆向き反復配列の間に、配列番号７に記するネコインターフェロン−ω遺伝子の発現カセットを挿入した遺伝子構造を含むプラスミドpigFeIFN−ωを用いた。
【００５３】
すなわち、米国特許第6218185号に開示されるプラスミドp3E1.2よりtransposaseをコードする領域を取り除き、そのBgl II部位およびHpa I部位を平滑化しネコインターフェロン−ω遺伝子の発現カセットを挿入し、pigFeIFN−ωを得た。
【００５４】
本実施例における遺伝子発現カセットの構成は、フィブロインH鎖プロモーター・フィブロインH鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域・ネコインターフェロンーω・フィブロインＨ鎖Ｃ末端領域・フィブロインH鎖ポリＡシグナル領域（配列番号７）である。
【００５５】
フィブロインＨ鎖遺伝子の第一イントロンは遺伝子の発現量増大に重要であり、フィブロインＨ鎖タンパク質のＣ末端領域は発現した遺伝子産物の絹糸中への分泌に重要な機能を持つ（特願2002-268726号公報）。
【００５６】
以下に具体的な方法を示す。
【００５７】
HP・IC・HAコンストラクトの作製は以下の手法により行った。参考例２で調製したネコインターフェロンーω(IC領域)を持つプラスミドをSal IとHind IIIにより切断し、ここにフィブロインＨ鎖プロモーター・フィブロインＨ鎖遺伝子第一エキソン・第一イントロン・第二エキソン領域を持つプラスミドからSal IとHind IIIにより切り出した約1.4kbp.断片(HP領域)を挿入した。さらにこれをBamH Iにより切断し、ここにフィブロインＨ鎖Ｃ末端領域・フィブロインＨ鎖ポリＡシグナル領域を持つプラスミドからBamH Iにより切り出した約0.9kbp.断片(HA領域)を挿入した。このHP・IC・HAを持つプラスミドをAsc Iで切断し、切り出した約2.9kbp断片を宝酒造（株）T4 DNA Polymerase（ティーフォーディエヌエーポリメラーゼ）により平滑化したものと、p3E1.2をBgl II、Hpa Iで切断し、750bpの遺伝子断片を除去後、平滑化、脱リン酸化処理したものとを連結し、HP・IC・HA遺伝子カセットを含む遺伝子導入用コンストラクトpigFeIFN−ωを作製した。作製したpigFeIFN−ω遺伝子導入用コンストラクトをQIAGEN Plasmid Maxi Kit（キアゲンプラスミドマキシキット）を用い、添付のプロトコールに従って精製した。
【００５８】
参考例４ ピギーバックトランスポゼースタンパク質の調製
（１）遺伝子のクローニングおよび発現ベクターの作製
ピギーバックトランスポゼース遺伝子のクローニングには、米国特許6218185号公報で開示されているピギーバックトランスポゼース遺伝子の塩基配列を参考にオリゴヌクレオチドプライマーを合成した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
【００５９】
ピギーバックトランスポゼースタンパク質遺伝子のクローニングには、プライマー８（配列番号８）とプライマー９（配列番号９）の２種類のプライマーを用い、米国特許6218185号公報により開示されるプラスミドp３Ｅ１．２をテンプレートとして用いたPCRにより取得した。
【００６０】
PCRは0.2ｍｌのミクロ遠心チューブを用い、鋳型DNAを10ng、各プライマーを50pmol、添付の10×PCRバッファーを10μl、１mM MgCl２、0.2mM dNTPs、２単位KODplusとなるように各試薬を加え、全量を100μｌとした。DNAの変性条件を94℃、30秒、プライマーのアニーリング条件を60℃、30秒、ＤＮＡプライマーの伸長反応条件を72℃、3分の各条件でBioRad社のサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。この反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、約1.8kbpのＤＮＡ断片を常法に従って抽出、調整した。
【００６１】
このＤＮＡ断片をポリヌクレオチドキナーゼ（宝酒造（株）製）によりリン酸化した後、HincIIで切断後脱リン酸化処理したpUC19ベクターに宝酒造（株）のDNAライゲーションキットVer.2を用いて16℃、終夜反応を行い、連結した。これを用いて常法に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質転換体にPCR断片が挿入されていることを、得られたコロニーを前述と同じ条件でPCRすることによって確認し、PCR断片の挿入されたプラスミドを常法によって調整した。このプラスミドをシークエンスすることにより、得られた断片が遺伝子の塩基配列であることを確認した。
【００６２】
このプラスミドを、NcoI、およびBamHIで消化し、得られた1.8kbpのNcoI/BamHI断片を、予めNcoI、およびBamHIで消化しておいたpTV118N（宝酒造（株）製）のNcoI/BamHI間隙に常法に従ったライゲーション反応により挿入し、得られたプラスミドをｐＴＶ−ｐｉｇｇｙと命名した。このプラスミドを導入した大腸菌を培養することで、ピギーバックトランスポゼースタンパク質のＮ末端アミノ酸配列に10個のヒスジチン残基が付加された分子量約70ｋＤａの組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を生産することができる。
【００６３】
（２）組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質の産生
ｐＴＶ−ｐｉｇｇｙでE.coli BL21株をアンピシリン耐性に形質転換し、得られた形質転換体をそれぞれＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株と命名した。
【００６４】
次にＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株で、組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を産生させた。まず、ＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株を50μｇ/mlのアンピシリンナトリウムを含んだ滅菌LB培地（Sambrook, J. et al., 2001、Molecular Cloning 3rd. edition, Cold Spring Harbor Lab. Press)（LB-amp培地）5mlに１白金耳植菌し、37℃で24時間振とうして前培養を行った。
【００６５】
この前培養液をLB-amp培地50mlに全量植菌し、37℃、振幅30cmで、180rpmの条件下で3時間培養した後に1mM IPTG(isopropyl-1-thio-β-D-galactoside)添加し、更に4時間培養した。対照実験として、BL21をpTV118Nで形質転換した形質転換体を対照として用い同様の培養を行った。こうして得られた菌体を集め、5mlのトリス(TBS)緩衝液（宝酒造製）に再懸濁後、超音波破砕および遠心分離により細胞破砕液を調製した。この細胞破砕液をSDS-PAGEで分画し、Penta-His Antibody抗体（QIAGEN社製）でウエスタンブロッティングを行った結果、ＢＬ２１−ｐｉｇｇｙ株由来の細胞破砕液から、分子量約70ｋＤａの組み換えピギーバックトランスポゼースタンパク質を検出した。
【００６６】
（３）組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質の精製
この組み換えタンパク質は、N末端アミノ酸配列に10個のヒスチジン残基があることから、ニッケルイオンとの相互作用を利用した精製を行った。
【００６７】
まず、10mlのキレーティング セファロース ファースト フロー（Chilating Sepharose Fast Flow）担体（アマシャム バイオサイエンス社製）を充填したカラムシステムを構築した。このカラムに50mlの50mM 硫酸ニッケル水溶液、50mlのTBS緩衝液の順で流した後、（２）と同様の方法で得られたBL21−piggy株の500ml培溶液由来の50ml細胞破砕液を流した。その後、100mlの5mM イミダゾールを含むTBS緩衝液、100ｍｌの50mM イミダゾールを含むTBS緩衝液をこの順序で流した。更に50mlの600mM イミダゾールを含むＴＢＳ緩衝液を流した。カラムに流した各々の緩衝液を（２）と同様の方法でウエスタンブロッティングを行ったところ、600mM イミダゾールを含むTBS緩衝液に約70kDaタンパク質を検出した。また、カラムに流した各々の緩衝液をSDS-PAGEし、クマシーブリリアントブルーで染色したところ、600mM イミダゾールを含むＴＢＳ緩衝液から、約70ｋＤａの単一バンドを検出し、この精製タンパク質は組換えピギーバックトランスポゼースタンパク質であることを確認した。透析によりイミダゾールを除去した後、ウシ血清アルブミンを標準タンパク質として、Pierce社 BCA試薬を用いてタンパク質濃度を定量した。
【００６８】
参考例５ 遺伝子組換えカイコの作製
参考例３に記載の遺伝子導入用プラスミドと参考例５ピギーバックトランスポゼースタンパク質を、DNA濃度を約200μg/ml、ピギーバックトランスポゼースタンパク質濃度を約2.7μg/ml(モル比1:10)含んだ0.5mMリン酸バッファー（pH7.0）、５mM ＫＣｌ溶液を調整し、3〜20nlを産卵後４時間以内のカイコ卵500個に対してマイクロインジェクションした。
【００６９】
そのカイコ卵より孵化した幼虫を飼育し、得られた成虫（G0）を群内で掛け合わせ得られた次世代（G1）を４齢時にその体液を注射用針（21Ｇ）で採取し、ＰＣＲにより遺伝子の導入をスクリーニングした。ＰＣＲは配列番号3および配列番号4のプライマーを用いて宝酒造（株）製のPremix Taqにより行った。すなわち、Premix Taqを最終濃度２倍希釈、プライマーそれぞれ0.5μMとなるように調製した液を20μLずつ分注し、体液を0.5〜２μL加え、DNAの変性条件を94℃、30秒、プライマーのアニーリング条件を55℃、30秒、ＤＮＡプライマーの伸長反応条件を72℃、1分の各条件でBioRad社のサーマルサイクラーを用い、30サイクル反応させた。これらの反応液を1％アガロースゲルにて電気泳動し、約580bpのＤＮＡ断片が確認されたものを、遺伝子導入陽性と判断した。その結果、染色体中にネコインターフェロンω遺伝子の発現カセットが導入された遺伝子組換えカイコが得られた。
【００７０】
参考例６ ウエスタン解析による絹糸腺組織中の組換えタンパク質の発現解析
非形質転換カイコ、HP・IC・HA形質転換カイコの後部絹糸腺組織、および繭を回収し、ネコインターフェロンωの発現をウエスタン解析により調べた。カイコ後部絹糸腺は100mMリン酸ナトリウムバッファー(pH7.0)中でホモジナイズし、遠心分離後上清を回収しサンプルとし、カイコ繭は10mgあたり４mlの60%LiSCNを加え攪拌後、終夜室温に静置し繭を溶解したものを８M尿素・２%SDS・５%2-メルカプトエタノールで10培希釈したものをサンプルとした。SDS-PAGE（エスディエスーページ）後、ECL PlusTM Western blotting Kit（イーシーエルパルスティエムウエスタンブロッティングキット） （アマシャムファルマシア社製）を用い、添付のプロトコールに従ってネコインターフェロンの検出を行った。すなわち、ブロッティングしたメンブレンをブロッキング溶液（５%スキムミルク・0.1%Tween20・PBS）中で4℃終夜ブロッキングした。メンブレンをTPBS(0.1%Tween20・PBS)で２回洗浄し、TPBSで1000倍希釈した抗ネコインターフェロン抗体で室温1時間処理した。メンブレンをTPBSで２回洗浄し、更にTPBSで５分間３回洗浄した。その後TPBSで10000倍希釈した後、HRPラベル抗ラビットIgG抗体で室温１時間処理した。メンブレンをTPBSで２回洗浄し、更にTPBSで５分間３回洗浄した後、ECL PlusTM Western blotting Detection System（イーシーエルパルスティエムウエスタンブロッティングデテクションシステム）（アマシャムファルマシア社製）の検出試薬（溶液Ａ＋溶液Ｂ）を加えた。発光をHyperfilmTMECLTM （ハイパーフィルムティエムイーシールティエム）に露光、現像した。その結果非形質転換カイコからはシグナルが検出されなかったのに対し、HP・IC・HAコンストラクトおよびHUP・IC・HAコンストラクト導入形質転換カイコの絹糸腺組織および繭からはシグナルが検出された。
【００７１】
その結果をモレキュラーイメージャー(BioRad社製)を用いてシグナル強度を測定し、濃度既知のネコインターフェロンのシグナル強度と比較しタンパク質含量を測定したところ、HP・IC・HA形質転換カイコでは繭重量の約0.8〜2.0%のネコインターフェロンが産生されており、これはカイコ一頭当たりの重量に換算すると0.4〜１mgであった。
【００７２】
実施例１
得られたネコインターフェロンを含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００７３】
メタノール４ｇ、蒸留水６ｇの混合溶液中に塩化カルシウムを１０ｇ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、７５℃で加熱することにより溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００７４】
得られた上清をエバポレーションにより１００倍に濃縮し、SDS-PAGE電気泳動により解析した。同時にネコ抗原タンパク質標準品と、前途記載の生じた沈殿も解析した。結果を図１に示す。e-PAGEL E-T520L（ATTO社製）を用いてゲル１枚あたり２０ｍＡ、１００分間電気泳動した。泳動後、２Ｄ−銀染色試薬「第一」（第一化学薬品（株））を用いてゲルを銀染色した。
【００７５】
その結果、得られた濃縮画分に、分子量25KDaのネコインターフェロンが高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【００７６】
実施例２
得られたネコインターフェロンを含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００７７】
銅エチレンジアミン試薬（６０ｇ／Ｌ水酸化第二銅、８６ｇ／Ｌエチレンジアミン水溶液）を１０ｍＬ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００７８】
実施例１と同様に解析した結果、得られた濃縮画分に、分子量25KDaのネコインターフェロンが高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【００７９】
参考例７
イヌパルボウイルスＶＰ２抗原遺伝子（GeneBank登録番号38245の塩基番号2787〜4538番目：以下VP領域）をイヌパルボウイルスＶＰ２抗原遺伝子をコードするプラスミドpAc6C2B23（ＡＴＣＣ寄託番号６７６８２号）を鋳型にプライマー10（配列番号10）とプライマー11（配列番号11）の２種類のプライマーを用いてＰＣＲにより取得した。参考例２，３，４,５と同様の方法でイヌパルボウイルスＶＰ２抗原を絹糸中に発現するトランスジェニックカイコを作製した（導入遺伝子構造を配列番号１２に示す）。参考例６と同様に抗ＶＰ２抗原抗体（コスモバイオ）を用いてウェスタンブロッティングを行い、絹糸中のイヌパルボウイルスＶＰ２抗原の含有量を調べたところ、1.2〜2.2％であった。
【００８０】
実施例３
得られたイヌパルボウイルスＶＰ２抗原を含むカイコ絹糸を０．５％の石鹸（玉の肌石鹸（株））水溶液で８０℃、１０分精錬した。その後、水中で８０℃、１０分の洗浄を２回行い、乾燥させた。
【００８１】
メタノール４ｇ、蒸留水６ｇの混合溶液中に塩化カルシウムを１０ｇ加え、十分に溶解させた後、細かく切った乾燥した絹糸を１ｇ加え、７５℃で加熱することにより溶解させた。溶解後、メタノール１１６ｇと蒸留水４６４ｇの混合液を攪拌しながら加え、３０倍に希釈した。この状態で一晩静置し、生じた沈殿と上清を分離した。
【００８２】
得られた上清をエバポレーションにより１００倍に濃縮し、SDS-PAGE電気泳動により解析した。同時にイヌパルボウイルスＶＰ２抗原タンパク質標準品と、前途記載の生じた沈殿も解析した。結果を図１に示す。e-PAGEL E-T520L（ATTO社製）を用いてゲル１枚あたり２０ｍＡ、１００分間電気泳動した。泳動後、２Ｄ−銀染色試薬「第一」（第一化学薬品（株））を用いてゲルを銀染色した。
【００８３】
その結果、得られた濃縮画分に、分子量70kDaのイヌパルボウイルスＶＰ２抗原が高純度に抽出、精製されていることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００８４】
本発明によれば、有用タンパク質を発現しているカイコの絹糸から、簡便に高純度の有用タンパク質を抽出、精製することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００８５】
【図１】実施例１で得られた回収された組換えタンパク質の電気泳動結果を示す図である。
【符号の説明】
【００８６】
１．分子量マーカー（アプロタンパク質マーカーLow range）
２．ネコ抗原タンパク質標準品
３．絹糸溶解画分
４．上清濃縮画分
【特許請求の範囲】
【請求項１】
絹糸中に遺伝子組換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に溶解し、フィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする有用タンパク質の製造方法。
【請求項２】
溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させることを特徴とする請求項１記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項３】
有用タンパク質が、それをコードする遺伝子を染色体へと導入されたカイコの絹糸中に発現したものであることを特徴とする請求項１または２記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項４】
溶解剤が中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることを特徴とする請求項１から３のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項５】
中性塩が塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウムのいずれかであることを特徴とする請求項４記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項６】
溶解剤が、１０重量％以上の濃度の塩化カルシウム水溶液であることを特徴とする請求項５に記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項７】
溶解剤の濃度を低下させるために水もしくは水とアルコールとの混合液を添加することを特徴とする請求項２から６のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項８】
上清から溶媒を除去し有用タンパク質を濃縮して回収することを特徴とする請求項１から６のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項９】
減圧条件下で溶媒のみを揮発させ、溶媒を除去することを特徴とする請求項８記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１０】
有用タンパク質が、等張な水溶液に可溶性であることを特徴とする請求項１から９のいずれか1項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１１】
有用タンパク質がサイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質のいずれかであることを特徴とする請求項１から１０のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１２】
有用タンパク質がネコインターフェロンまたはイヌパルボウイルスＶＰ２抗原であることを特徴とする請求項１１記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１】
絹糸中に遺伝子組換え法で発現させた有用タンパク質を含有する絹糸を溶解剤に溶解し、フィブロインを沈殿させた後に、上清から有用タンパク質を回収することを特徴とする有用タンパク質の製造方法。
【請求項２】
溶解剤の濃度を下げることによりフィブロインを沈殿させることを特徴とする請求項１記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項３】
有用タンパク質が、それをコードする遺伝子を染色体へと導入されたカイコの絹糸中に発現したものであることを特徴とする請求項１または２記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項４】
溶解剤が中性塩、銅アルカリおよび尿素から選ばれる少なくとも１種を含有する溶液であることを特徴とする請求項１から３のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項５】
中性塩が塩化カルシウム、チオシアン酸リチウム、臭化リチウムのいずれかであることを特徴とする請求項４記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項６】
溶解剤が、１０重量％以上の濃度の塩化カルシウム水溶液であることを特徴とする請求項５に記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項７】
溶解剤の濃度を低下させるために水もしくは水とアルコールとの混合液を添加することを特徴とする請求項２から６のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項８】
上清から溶媒を除去し有用タンパク質を濃縮して回収することを特徴とする請求項１から６のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項９】
減圧条件下で溶媒のみを揮発させ、溶媒を除去することを特徴とする請求項８記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１０】
有用タンパク質が、等張な水溶液に可溶性であることを特徴とする請求項１から９のいずれか1項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１１】
有用タンパク質がサイトカイン、インターフェロン、抗原タンパク質のいずれかであることを特徴とする請求項１から１０のいずれか１項記載の有用タンパク質の製造方法。
【請求項１２】
有用タンパク質がネコインターフェロンまたはイヌパルボウイルスＶＰ２抗原であることを特徴とする請求項１１記載の有用タンパク質の製造方法。
【図１】
【公開番号】特開２００７−１７６８３１（Ｐ２００７−１７６８３１Ａ）
【公開日】平成１９年７月１２日（２００７．７．１２）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−３７５１６１（Ｐ２００５−３７５１６１）
【出願日】平成１７年１２月２７日（２００５．１２．２７）
【出願人】（０００００３１５９）東レ株式会社 (7,677)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１９年７月１２日（２００７．７．１２）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年１２月２７日（２００５．１２．２７）
【出願人】（０００００３１５９）東レ株式会社 (7,677)
【Ｆターム（参考）】
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