炎症性皮膚状態を寛解するための方法
本発明は、炎症性皮膚状態を治療するために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるチオレドキシンの使用に関する。本発明は更に、皮膚表面に対してチオレドキシンを含んで成る有効量の組成物を適用することを含んで成る、炎症性皮膚状態を寛解する方法に関する。本発明は更に、０．０００１〜０．５％ｗ／ｖのチオレドキシンを含んで成る炎症性皮膚状態を寛解するために適当な医薬組成物に関する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、とりわけ、炎症性皮膚状態を寛解するための方法に関する。
【０００２】
炎症性皮膚状態は、ケモカイン及びサイトカイン、並びに特に炎症促進性サイトカイン、例えば、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、並びに腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）の活性に関係することが知られている。またこれらの同様のサイトカインは、皮膚免疫応答の開始において中心的な役割を果たすことが知られており、そして実際に皮膚からの表皮ランゲルハンス細胞（ＬＣ）の遊走に必須のシグナルを供する。皮膚からのＬＣの移動、及び続く皮膚排出リンパ節におけるこれらの蓄積は、免疫応答が誘発される部位（局所リンパ節）に対する抗原の輸送のための機構を供する。
【０００３】
表皮からのＬＣの遊走がＩＬ−１α、ＩＬ−１β、及びＴＮＦ−αによるシグナルの供給に依存するという我々の理解は、皮膚組織内のこれらのサイトカインの利用能及び機能活性を研究するための実験系を供する。実験は、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、又はＴＮＦ−αの利用能又は機能を阻害することが知られている因子が誘発されたＬＣ遊走の有意な阻害に関することを示している。
【０００４】
ＬＣ動員の刺激に必要とされることに加え、ＩＬ−１βは皮膚炎症の原因となることが知られており、そして直接的又は間接的に、いくつかの皮膚炎症性障害の病因に関係する。ＩＬ−１βは、生理活性である成熟したカルボキシ末端フラグメントを生産するために切断及び分泌され、そしてほとんど全ての細胞種に見られる特定の細胞表面受容体に結合し、そして一連の応答の引き金を引くことによりこれらの効果を発揮する、不活性な細胞内の前駆体タンパク質として合成される。
【０００５】
本発明は、皮膚に局所的に適用された場合、特定の分子が生理活性のＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βの生産及び／又は利用能を阻害することができるという驚くべき発見に基づく。とりわけ、ＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βが病因に関係する場合、このようなこれらの分子は炎症性皮膚状態の治療に適当である。適当な分子は、チオレドキシン（ＴＲＸ）、Ｃｙｓ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ活性部位を伴う１２ｋＤａのタンパク質、及び更に「レドックス（redox)−不活性」ＴＲＸ分子を含む（ここで活性部位におけるシステインはシステイン以外のアミノ酸により置換されてよい）。一方これらの分子は、ＩＬ−１α又はＩＬ−１βの生産又は活性を阻害することによりこれらの治療効果を発揮するようであることが示されている―また、これらは抗炎症性サイトカイン、例えば、インターロイキン−１０（ＩＬ−１０）の生産を刺激することにより、関連する又は追加的な有利な効果を発揮することが可能である。
【０００６】
本発明に従い、炎症性皮膚状態を寛解することが可能なポリペプチドであって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであり、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること（但し１つのＣｙｓがＳｅｒで置換される場合、他方のＣｙｓはＳｅｒで置換されない）；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とするポリペプチドを供する。
【０００７】
好ましくは、上記修飾は、Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2の両方をＳｅｒ以外のアミノ酸で独立に置換することから成る。活性部位の修飾は、活性部位レドックス（酸化還元）不活性を与え、そして驚くべきことに、これらのレドックス不活性分子は炎症性皮膚状態を寛解することが可能であることが発見されている。
【０００８】
本発明は更に、修飾されていないチオレドキシンがＣｙｓ1及びＣｙｓ2に追加して１又は複数のシステインを含む場合、上記修飾が、１又は複数の更なるシステインを置換及び／又は欠失することを含んで成る、修飾されたチオレドキシンを供する。
【０００９】
Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2は共に独立に置換されてよい。例えば、本発明のポリペプチドの１つの態様は、Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａ、他にはＡｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒを含んで成ることができる。本発明の好ましい態様において、Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2は共に、Ａｌａにより置換され、Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａを与える。より好ましくは置換されていないＴＲＸがヒトＴＲＸであるポリペプチドであり、そして更により好ましくは配列番号３、配列番号９、及び配列番号１０から成る群から選択されるポリペプチドである。
【００１０】
本発明の更なる態様は、本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡ配列である。ＤＮＡ配列の正確な性質は、当然にポリペプチドの特異的な性質、及びＤＮＡ配列の意図される使用に依存する。例えば、ＤＮＡ配列のコドン最適化は組換え発現系におけるＤＮＡ配列の発現に必要とされ得る（コドン最適化配列の例は配列番号６として供される）。このようなＤＮＡ配列を供するために必要とされる技術は当業者に周知である。本発明の好ましいＤＮＡ配列は配列番号４に示される。
【００１１】
本発明はまた、好ましくは本発明のポリペプチド含んで成る、炎症性皮膚状態を治療するために適当な医薬−及び医薬組成物／医薬品としての本発明のポリペプチドの使用に関する。治療目的のために、本発明のポリペプチドは、いずれかの慣習的な手段により個々の治療剤又は他の治療剤との組み合わせとして投与することができる。本発明の医薬組成物は、医薬業界の当業者に周知な方法を使用して、所望される的確な投与経路に依存して適応させることができる。本発明の組成物は、制限することなく、皮膚を介する適用、例えば、局所適用及び皮下適用に適当なものを含む。乾癬の治療のためには、局所適用は治療効果を与えるために十分である。
【００１２】
本発明は更に、本発明のポリペプチドを生産する方法に関する。このような方法は、上記ポリペプチドの組換え発現、及び特に当該ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列を含んで成るベクター（ここで当該ベクターは生物内において当該ＤＮＡ配列を発現する）で生物を形質転換すること、及び当該ポリペプチドを生産するために当該ＤＮＡ配列の発現を許容する条件において当該生物を生育すること、を含んで成る。生育により、例えば、生育が細胞数を増加させることを意味する当該生物が単細胞生物である場合、バイオマスを増加することを意味する。「生物」は本発明のポリペプチドの組換え発現に適当ないずれかの生物を含む。適当な組換え発現系は、制限することなく、哺乳類細胞培養液、酵母及び細菌を含む。特に好ましくは大腸菌（E. coli)である。このような宿主細胞における発現に適当なベクターは、当業者に容易に明らかとなり、そして例えば、Ｔ７プロモーターを宿すベクター、例えば、大腸菌（E. coli)における発現のための、例えば、ｐＥＴベクター、及び酵母ピチア・パストリス（Pichia pastoris）における発現に適当な他のベクターを含む。また、当該ポリペプチドの生産方法は、当該ポリペプチドの精製を含んでよい。精製により、生産材料から組換えポリペプチドを得ることを意味する。このような方法は、これらのポリペプチドの適正製造基準（ＧＭＰ）を通して利用することができる。
【００１３】
本発明は更に、以下の群から選択される分子を含んで成る有効量の組成物を皮膚表面に適用することを含んで成る、炎症性皮膚状態を寛解するための方法に関する：
ａ．チオレドキシン活性部位（Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2）を含んで成るタンパク質；
ｂ．チオレドキシン（ＴＲＸ）；
ｃ．修飾されたチオレドキシンであって、ここで当該修飾が、修飾されていないチオレドキシンに存在する少なくとも１つのシステインをシステイン以外のアミノ酸で置換及び／又は欠失することを含んで成る、チオレドキシン；
ｄ．本発明に従うポリペプチド；及び
ｅ．配列番号１に示されるタンパク質の三次元構造中に存在する領域に類似する三次元構造の領域を含んで成る分子であって、そしてこれが炎症性皮膚状態を寛解することが可能である、分子。
【００１４】
「炎症性皮膚状態」の語は、例えば、ヒト炎症性皮膚状態、及び動物炎症性皮膚状態を含む。好ましい態様において、当該炎症性皮膚状態は、乾癬、扁平苔癬、アトピー性湿疹、刺激性若しくはアレルギー性接触皮膚炎、接触蕁麻疹、乳児湿疹、及び尋常性ざ瘡から成る群から選択される。本発明の方法はまた、創傷治癒、及び火傷、特に日焼けの治療を補助することにおいて有用である。乾癬は、分散した乾癬プラークの出現により特徴付けられる慢性炎症性皮膚状態である。乾癬は、皮膚形態におけるいくらかの変化に関係する。炎症誘発性サイトカインが乾癬の病因において重要な役割を果たす証拠が増えている。現在の治療は、抗炎症剤−典型的には副腎皮質ステロイド、の局所投与を含む。このような治療は完全には有効ではなく、そして望ましくない副作用が付随する。他の治療ストラテジーは、ＴＮＦ−α機能の破壊であるが、これもまた有害反応の原因となることがわかっている。このため、炎症性皮膚障害の治療に有効であるが、有害な副作用をほとんど又は全く示さず、そして理想的には非観血法により、例えば、炎症に直接適用することにより送達することができる更なる分子を供することが必要である。
【００１５】
本発明の方法における使用に好ましいものは、ＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βの生産及び／又は活性を阻害することができる、及び／又はＩＬ−１０の生産及び／又は活性を刺激若しくは増強することができる分子である。
【００１６】
ＴＲＸは、細胞のレドックス制御系の重要な成分である、小さな（１０〜１４ｋＤａ）、偏在性のタンパク質である。本発明の方法における使用に適当なＴＲＸは、（１）原核生物（例えば、大腸菌（E. coli)−配列番号７）、（２）植物（例えば、シロイヌナズナ（Arabidopsis）−配列番号８）、及び（３）動物（例えば、ヒト−配列番号１）由来のＴＲＸを含む。ＴＲＸは、還元状態（この場合、活性部位（Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2）における２つのシステインはジチオールを供する）、及び酸化状態（この場合、活性部位における２つのシステイン間において形成されるジスルフィド架橋が存在する）において存在することができる。生理条件下において、両方のレドックス状態が存在でき、そして本発明において両方の形態を利用することができる。更に一定のチオレドキシンは多量体形態において存在できることが知られている。例えば、ヒトＴＲＸ（ｈＴＲＸ）は、Ｃｙｓ−７３間にジスルフィド架橋が存在する二量体を形成できることが知られている。単量体形態に追加して、本発明の方法において上記分子のこれらの多量体形態もまた利用することができる。しかしながら、好ましくは当該分子、例えば、チオレドキシンは、実質的に還元状態において存在する。実質的に還元されるとは、＞８０％、好ましくは＞９０％、より好ましくは＞９５％の存在分子が還元状態にあることを意味する。上記方法における使用のための好ましい分子は、配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである―当該タンパク質は内在性ヒトタンパク質であり、このため患者に投与されたときの副作用又は免疫応答のいずれかの原因とはならないようである。本発明の方法における使用に適当な他の分子は、活性部位における１つ又は両方のシステインがシステイン以外のアミノ酸により置換されている、チオレドキシン活性部位を含んで成るタンパク質を含む。一方又は他方のシステインが置換される例は、Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａ、及びＡｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2を含む。驚くべきことに、Ｃｙｓ1とＣｙｓ2の両方が置換されているレドックス不活性ＴＲＸ分子もまた本発明の方法に成功的に使用できることが発見された。更に、当該ＴＲＸ分子が活性部位以外において更なるスステインを含んで成る場合、これらの追加的なシステインもまた活性を全く失うことなく置換することができる。例えば、５つのシステイン（Ｃ32、Ｃ35、Ｃ62、Ｃ69、及びＣ73）を含む、ヒトチオレドキシンに関して、（１）Ｃ７３Ａ、（２）Ｃ３２Ａ、Ｃ３５Ａ、及びＣ７３Ａ；並びに（３）Ｃ３２Ａ、Ｃ３５Ａ、Ｃ６２Ａ、Ｃ６９Ａ、及びＣ７３Ａを含んで成る修飾されたヒトチオレドキシンは、生理活性を維持することが示されている。また、修飾されていないチオレドキシン中の活性部位以外に存在するシステインが置換及び／又は欠失されたとしても活性が維持されることが示されている。例えば、配列番号１１（Ｃ７３Ａ）において示されるタンパク質は活性であることが示されている。また当該活性分子は、９５℃で３０分間、又は５６℃で３０分間の加熱処理により不活性となり得ることが判明し、観察された活性の原因であるこれらの分子に関する構造特性が存在することを示している。従って、本発明は更に、炎症性皮膚状態を寛解することができる、本願に開示される活性分子、例えば、配列番号１の三次元構造中に存在する領域と三次元的に相同な領域を含んで成る分子に関する。当該方法における使用に特に好ましいものは、本発明のポリペプチドであり、配列番号３、配列番号９、配列番号１０、及び配列番号１１に示されるポリペプチド配列を含む。
【００１７】
記載された分子は、極めて低い投与割合において、炎症性皮膚状態を治療するために使用することができることが示されている。従って、本発明は更に、医薬組成物中の活性分子の濃度が、好ましくは０．０００１〜０．５％ｗ／ｖ（１μｇ／ｍｌ〜５ｍｇ／ｍｌ）、より好ましくは０．０００１〜０．１％ｗ／ｖ、より好ましくは０．０００１〜０．０１％ｗ／ｖ、そして更により好ましくは０．０００１〜０．００１％ｗ／ｖである、医薬組成物を供する。当該組成物がクリームである場合には、活性分子は０．０００１％〜０．０２％ｗ／ｖの濃度において存在することが特に好ましい。実質的に還元された単量体状態において組換えヒトチオレドキシンを含んで成る組成物が特に好ましい。
【００１８】
皮膚表面に対する上述の分子の適用割合は、好ましくは０．０５〜１０μｇ／ｃｍ2、より好ましくは０．０５〜５μｇ／ｃｍ2、及びより好ましくは０．１〜１μｇ／ｃｍ2である。実質的に還元された単量体状態においてヒトチオレドキシンが皮膚表面に適用されることが好ましい。
【００１９】
本発明は更に、上述の分子及び追加的な活性成分を含んで成る有効量の組成物を皮膚表面に適用することを含んで成る、炎症性皮膚状態の治療方法に関する。追加的な活性とは、医薬的効果も有する成分を意味し−これは上記分子に対して相加的又は相乗的であってよい。更なる活性成分の例は、ラクトフェリン（例えば、配列番号５に示される）、及び／又は副腎皮質ステロイドを含む。本発明はまた、上述の分子及び追加的な活性成分を含んで成る医薬組成物に関する。好ましい追加的な活性成分は、ラクトフェリン（例えば、配列番号５に示される）、及び／又は副腎皮質ステロイド、及び／又は炎症性皮膚状態の治療に適当な局所用医薬を含む。好ましい組成物は、当該分子が配列番号１に示されるヒトチオレドキシン及び／又は配列番号３に示される修飾されたＴＲＸであり、そして追加的な活性成分が配列番号５に示されるラクトフェリンである。本発明の組成物はまた、更なる成分、例えば、抗酸化剤、例えば、グルタチオン、ビタミンＡ、ビタミンＣ、ビタミンＥ、又は植物、例えば、アロエ（Aloe vera)由来の実際の抽出物を含んで成る。本発明の医薬組成物はまた、重篤な炎症性皮膚状態の治療のための併用療法において使用することができる。
【００２０】
本発明の組成物は皮膚への適用に適当であることが好ましい。従って、当該組成物は、典型的には、溶液、ゲル、ローション、軟膏、クリーム、懸濁液、ペースト、リニメント剤、粉末、チンキ、エアロゾル、経皮薬物送達システム、又は医薬的に許容される形態に類似して、当業界に周知な方法により処方される。活性成分の皮膚を介した浸透を増強する物質、例えば、ジメチルスルホキシド、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、界面活性剤、アゾン、アルコール、アセトン、プロピレングリコール、及びポリエチレングリコールを更に加えることができる。当該組成物は、皮膚に直接的に、あるいは多様な経皮薬物送達システム、例えば、パッチを介して適用することができる。
【００２１】
本発明は更に、医薬として炎症性皮膚状態を寛解することができるポリペプチドの使用であって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであって、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とする使用に関する。
【００２２】
本発明は更に、医薬としての配列番号１１及び１７に示されるポリペプチドの使用に関する。
【００２３】
本発明は更に、炎症性皮膚状態を寛解することができるポリペプチド等の使用であって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであって、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とする、炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるポリペプチド使用；炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるチオレドキシンの使用；及び炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンの使用、に関する。
【００２４】
本発明は、更に、炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造における配列番号１１及び１７に示されるポリペプチドの使用に関する。
【実施例】
【００２５】
マウス実験
マウス
Specific Pathogen Free Breeding Unit (Alderley Park, Cheshire, UK)から得た若年成体（６〜８週齢）のオスのＢＡＬＢ／ｃ系マウスを以下の調査において使用した。
【００２６】
チオレドキシン
組換え型の未変性ヒトＴＲＸ（ｈＴＲＸ−配列番号１）又は修飾したヒトＴＲＸ（配列番号３）を水性クリームＢＤ中１６．７μｇ／ｍｌに希釈し、そして同じ部位を化学薬品又はサイトカインに暴露する前に、３０μｌ（０．５μｇのＴＲＸ）を両耳の背側に局所的に適用した。コントロールマウスは等量のクリームのみを受けた。同じ実験において、動物は０．５、０．１、及び０．０５μｇのＴＲＸを受けた。
【００２７】
化学薬品及び暴露
皮膚感作性化学薬品４−エトキシ−２−フェニルオキサゾール−５−オン（オキサゾロン；Sigma Chemical Co. , St Louis, MO）を４：１のアセトン：オリーブ油（ＡＯＯ）に溶解させた。マウス群は２５μｌの０．５％オキサゾロン、又は媒体（ＡＯＯ）単独を両耳の背側に受けた。他のコントロールマウスは処理しなかった（未処理）。
【００２８】
サイトカイン
組換えマウスＴＮＦ−α（Ｌ９２９細胞毒性アッセイによる特異活性２×１０8Ｕ／ｍｇ；エンドトキシンレベル：０．００９ｎｇ／μｇ）をGenzyme (West Malling, Kent, UK)から得た。組換えマウスＴＮＦ−α（Ｌ９２９細胞毒性アッセイによる特異活性１〜２×１０8Ｕ／ｍｇ; エンドトキシンレベル：＜０．１ｎｇ／μｇ）をR&D Systems (Oxon, UK)から購入した。担体タンパク質として、サイトカインを０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）の無菌溶液中に供給するか、あるいは再構成させた。サイトカインを０．１％ＢＳＡを含む無菌ＰＢＳで希釈し、そして３０ゲージステンレス針を伴う１ｍｌシリンジを使用して投与した。マウスは両耳介に３０μｌの皮内注射を受けた。
【００２９】
表皮シートの調製及び分析
化学薬品又はＩＬ−１βに暴露して４時間後、あるいはＴＮＦ−αで処理して３０分後に耳を除去した。鉗子により試料を背側の耳と腹側の耳半分にわけた。背側半分をＰＢＳ中に溶解した０．０２Ｍのエチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ；Sigma)と共に３７℃で９０分間インキュベートした。鉗子により表皮を真皮から分離し、そしてＰＢＳ中で洗浄した。表皮シートをアセトン中−２０℃で２０分間固定した。固定後、シートをＰＢＳ中で洗浄し、それから０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳにおいて５μｇ／ｍｌに希釈した抗マウスＭＨＣ（Ｉ−Ａd／Ｉ−Ｅd）モノクローナル抗体と共に室温で３０分間インキュベートした。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳにおいて１：１００に希釈した、ＦＩＴＣ−結合Ｆ（ａｂ）2ヤギ抗ラットＩｇＧと共に更に３０分間インキュベートする前に当該シートを洗浄した。最後にシートをＰＢＳ中で洗浄し、そしてCitifluor (Citifluor Ltd. , London, UK)において顕微鏡スライド上にのせ、マニキュア液で封着した。蛍光顕微鏡により試料を盲検法において検査し、そして染色された細胞の頻度を目盛り付格子（×４０拡大率において０．３２×０．２１３）を有する接眼を使用して評価した。各試料のために、耳の中心部分における１０連続フィールドを検査した。
【００３０】
表皮サイトカイン生産の測定
０．５％オキサゾロンへの暴露から２時間後、耳を除去し、そして無菌条件下で外植片用培養液を調製した。直ぐに耳を７０％エタノール中で洗浄し、ＰＢＳ中でリンスし、そして鉗子により背側と腹側半分に分けた。背側半分を２４ウェル組織培養プレート中の２５０μｌのＲＰＭＩ−１６４０培地上に浮かべた（１つの背側耳半分／ウェル）。１６時間の培養後、上清を回収し、各マウスのためにプールし、そして−７０℃の貯蔵前に１５０ｇで５分間遠心分離した。製造業者の指示に従いBio-PlexTMサイトカインアレイシステム(Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)を使用して上清中のＩＬ−１０含量を測定した。
【００３１】
樹状細胞（ＤＣ）の調製及び分析
化学薬品で処理してから１８時間後、又はサイトカインＴＮＦ−α及びＩＬ−１βの投与から、それぞれ４時間及び１７時間後、流入領域耳介リンパ節を切除した。各実験群のために当該節をプールした。無菌２００メッシュステンレススチールガーゼを通して機械的な脱凝集により無菌条件下においてリンパ節細胞（ＬＮＣ）の単一細胞懸濁液を調製し、そして２５ｍＭのＨＥＰＥＳ、４００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン、４００μｇ／ｍｌのアンピシリン、及び１０％加熱不活性化ウシ胎児血清（ＲＰＭＩ−ＦＣＳ）を補充したＲＰＭＩ−１６４０成長培地(Gibco, Renfrewshire, UK)中に再懸濁した。生細胞カウントは、トリパンブルー染色の除外により行い、そしてリンパ節あたりの全細胞を記録した。細胞濃度をＲＰＭＩ−ＦＣＳ中５×１０６細胞／ｍｌに調整し、メトリザミド(Sigma Chemical Co. ; ＲＰＭＩ−ＦＣＳ中１４．５％）における不連続勾配遠心分離によりＤＣ−濃縮群を調製した。このような低い浮遊密度画分におけるＤＣの頻度は位相差顕微鏡観察を使用する直接的な形態検査により慣習的に評価した。
【００３２】
ヒト実験
ＴＲＸ及び暴露
水性クリーム中のＴＲＸ（５０μｌ中０．５μｇ）を日が当らない臀部又は尻において認識される２箇所の皮膚部位（各２ｃｍ2の面積）に局所的に適用した。反対側の臀部又は尻における更に２箇所の部位に５０μｌの水性クリームを単独で与えた。２時間後、ボランティアは、通常の無菌生理食塩水において希釈された５００Ｕの相同組換えＴＮＦ−αの皮内注射及び５０μｌの無菌生理食塩水のコントロール注射を対の部位（一方は前もってＴＲＸに暴露し、そして一方はクリーム単独に暴露した）に受けた。２時間後、それぞれ処理した部位から、局所麻酔（１％リグノカイン）下においてパンチバイオプシー（６ｍｍ）を採取した。
【００３３】
表皮シートの調製及び分析
表皮ランゲルハンス細胞（ＬＣ）をＣＤ１ａ（ヒト表皮中のＬＣを特徴付ける膜決定要因）の発現に基づき認識した。ＬＣを染色するために、バイオプシーをリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中に溶解した０．０２Ｍのエチレンジアミンテトラ酢酸(Sigma, St Louis, MO, USA)中に直ぐに置き、そして３７℃で２時間インキュベートした。鉗子を使用して真皮から表皮を分離し、ＰＢＳ中で洗浄し、そして−２０℃においてアセトン中で固定した。ＰＢＳ中で洗浄後、表皮シートを０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳ中で１０μｇ／ｍｌに希釈したＣＤ１ａに特異的なモノクローナル抗体[クローンＮＡ１／３４（マウスＩｇＧ２ａ）；DAKO Ltd, Cambridge, UK]と共に室温で３０分間インキュベートした。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中で１：１００に希釈したフルオレッセインイソチオシアネート結合ヤギＦ（ａｂ’）2抗マウス免疫グロブリン（ＤＡＫＯ）と共に更に３０分間インキュベートする前に、シートを洗浄した。最後にＰＢＳ中でシートを洗浄し、そしてCitifluor (Citifluor Ltd. , London, UK)において顕微鏡スライド上にのせ、そしてマニキュア液で封着した。それから各スライドの識別はテープを使用して隠した。
【００３４】
蛍光顕微鏡により試料を検査し、そして染色された細胞の頻度を目盛り付格子（×４０拡大率において０．３２×０．２１３）を有する接眼を使用して評価した。各試料のために、５０連続フィールドを検査した。全ての試料をカウントした後、各スライドの識別を明らかにした。結果は、細胞数／ｍｍ2の平均値±標準偏差として表す。
【００３５】
実験１
当該実験の目的は、未変性ｈＴＲＸのマウスの皮膚に対する局所適用が、その後の強力な接触アレルゲンであるオキサゾロンへの同じ部位における暴露により誘発されるＬＣ遊走のインテグリティ（integrity)に影響できるか否かを決定することである。代表的な実験の結果を図１に示す。当該結果は、ｈＴＲＸの事前暴露がアレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害を生じることを明らかとする。記載された結果は、当該接触アレルゲンの場合において、局所適用されたｈＴＲＸが、刺激に対する有効なＬＣ動員及び遊走に必要な１又は複数の生物学的過程を阻害するために十分な濃度において、マウス皮膚の生存表皮に達することができることを意味する。
【００３６】
実験２
以前の実験は、マウス及び人の両方において、表皮ＬＣの遊走が一定のサイトカイン及びケモカイン（特に重要であることが知られているもののうち２つはインターロイキン−１β（ＩＬ−１β）及び腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）である）の利用能に依存するという明確な証拠を供している。損なわれたＬＣ遊走をもたらすサイトカイン機能の摂動の前例が存在する。従って、次の実験において、我々は、ｈＴＲＸがＩＬ−１β又はＴＮＦ−αのいずれかにより誘発されるＬＣ遊走に影響し得るか否かを調査した。代表的な実験の結果を図２に表す。これらのデータは、マウスのｈＴＲＸに対する事前局所暴露が相同的ＴＮＦ−αの皮内（ｉｄ）注射により誘発されたＬＣ遊走のほぼ完全な阻害を起こすことができることを明らかにした。一方、同じように適用されたｈＴＲＸは、相同的ＩＬ−１βの皮内投与により誘発されたＬＣ遊走のインテグリティにおいて影響がなかった。これは、ｈＴＲＸの局所適用がＬＣ−１β機能の摂動に関係すること意味する。このようにｈＴＲＸは、生理活性のＩＬ−１βの利用能に必要とされる環境において、アレルゲン（オキサゾロン）（図１）、又はＴＮＦ−α（図２）のいずれかの応答におけるＬＣ動員を極めて有効に阻害した。しかしながら、ｈＴＲＸの阻害効果は、遊走の有効性が損なわれていない場合、ＩＬ−１βの外来源の追加により克服することができる。
【００３７】
実験３
並行した一連の実験において、実験２で取り組んだ同じ問題を調査したが、補充的な指標（endpoint)を使用した。この場合、使用した指標は皮膚流入領域リンパ節における樹状細胞（ＤＣ）の蓄積とした。当該測定の関連性は、表皮ＬＣが求心性リンパを介して皮膚輸送から流入領域リンパ節に遊走するために誘発されることである（適応免疫系と相互作用するため）。従って表皮からのＬＣの喪失の機能として、あるいは皮膚流入領域リンパ節におけるこれらの引き続く蓄積の機能として、ＬＣ動員の有効性を測定することができる。ＩＬ−１β又はＴＮＦ−αのいずれかの皮下投与後のリンパ節におけるＤＣ蓄積におけるｈＴＲＸの影響を検査した場合の代表的な実験を図３に示す。当該結果は図２に示す結果と一致する。即ち、ＴＮＦ−αに応答するＤＣ蓄積を阻害するが、ＩＬ−１βに応答する蓄積は阻害しないことが判明した。
【００３８】
実験４
ＴＲＸのほとんどの生物学的特性は、当該タンパク質のレドックス活性の機能であることが考慮される。タンパク質レドックス−不活性を与える別のアミノ置換基を有する利用できるタンパク質のレドックス−不活性突然変異体が存在する。これらの突然変異体の１つは配列番号３に示されるＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａである。実験の他の系列において、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５ＡのＬＣ遊走を阻害する能力を調査し、そして未変性ｈＴＲＸ（配列番号１）の活性と比較した。代表的な実験を図４に示す。これらの実験において、ＬＣ動員は化学的なアレルゲンのオキサゾロンで刺激され、そして当該応答を阻害するためのｈＴＲＸ又はＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａの能力を測定した。図４に概要される結果は、未変性ｈＴＲＸ及びレドックス−不活性突然変異体Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａは共にＬＣ遊走のインテグリティを実質的にきわめて阻害することができることを明確に示す。ＬＣ遊走におけるＴＲＸの効果（及びＩＬ−１βシグナリングのインテグリティ）は活性レドックス機能と独立していることが結論付けられる。
【００３９】
実験５
続く実験において、未変性ｈＴＲＸ（配列番号１）及びＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（配列番号３）の相対的な効力をＬＣ遊走の阻害の観点から比較した。１つの実験計画において、多様な濃度のレドックス不活性突然変異タンパク質を単一の濃度の未変性ｈＴＲＸと比較した。代表的な実験結果を図５に概要する。利用可能なデータは、ＬＣ遊走の用量依存的な阻害を明らかにする。０．５μｇのＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（又は０．５μｇの未変性ｈＴＲＸ）に対するマウスの暴露は、アレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害により特徴付けられた。より低濃度のＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（０．１μｇ又は０．０５μｇ）はアレルゲン誘発ＬＣ遊走を阻害することができたが、これらの結果はより高用量のタンパク質でみられたものよりも完全ではなかった。
【００４０】
実験６
並行的な調査において、反対の見当識を伴う同様の実験計画を利用した。即ち、未変性ｈＴＲＸで用量応答を行い、当該結果を単用量のレドックス不活性突然変異体の効果と比較した。代表的な実験を図６に示す。再度、明らかな用量応答の関係が観察された。０．５μｇのｈＴＲＸ（又は０．５μｇのＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ）でのマウスの処理は、アレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害を生じた。より低用量のｈＴＲＸ（０．１μｇ又は０．０５μｇ）は同様の効果を有したが、０．５μｇで行った場合よりも低い遊走の完全阻害を生じた。これらのデータを併せると、ｈＴＲＸ及びＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａは共にＬＣ遊走の阻害を生じ、そして匹敵する効力であることが確認される。
【００４１】
実験７
次の一連の実験において、健康な成人のボランティアによりヒトにおけるＬＣ遊走のインテグリティにおけるｈＴＲＸの影響を調査した。これらの２人のボランティアにより得られた結果を図７に示す。マウスにおいて行った以前の実験（上述の図２を参照のこと）と共通して、ｈＴＲＸに対する事前局所暴露が相同組換えＴＢＦ−αの皮下投与により実質的に刺激されたＬＣ遊走の有意な阻害を生じたことが各２人のボランティアにおいて観察された。これらのデータは、ｈＴＲＸの効果がマウスの皮膚において最初に観察されたものと比較してヒトの皮膚において変化することを確認する。
【００４２】
実験８
当該実験は、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａ修飾ヒトＴＲＸがレドックス不活性であることを示すために計画された。当該アッセイは室温で１５分間行い、そしてジチオニトロ安息香酸（ＤＴＮＢ）の還元を分光光度計で超過時間４１２ｎｍにて追跡した。当該反応混合物は、ＴＲＸを還元するためのＴＲＸレダクターゼにより消費される過剰な濃度のＮＡＤＰＨを含有する。その後、ＴＲＸが優先的にＤＴＮＢを還元し、そしてＴＲＸは、レダクターゼ及びＮＡＤＰＨによりその還元形態において再循環する。図８は、当該実験においえて得られた結果を示し、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａ修飾ヒトＴＲＸがレドックス不活性であることを確認する。
【００４３】
実験９
別の一連の実験において、ＩＬ−１０の皮膚細胞による同化作用におけるＴＲＸでの局所処理のマウスにおける影響を測定した。代表的な実験を図９に示す。コントロール動物から単離した皮膚組織（媒体（ＡＯＯ）単独に暴露し、接触アレルゲンのオキサゾロンでは感作していない）は、極めて低レベルのＩＬ−１０を生産し、そしてｈＴＲＸはＩＬ−１０における影響がなかった。しかしながら反対に、オキサゾロンでの感作に応答してｈＴＲＸはＩＬ−１０の生産を増強することができた。これは、ＴＲＸの更なる特性が、ＩＬ−１０（皮膚及び他の組織において抗炎症性効果を有することが知られているサイトカイン）の皮膚細胞による生産を増大することであることを意味する。
【図面の簡単な説明】
【００４４】
【図１】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ＴＲＸ−配列番号１）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）又は媒体単独（アセトン：オリーブ油；ＡＯＯ）に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理；−）。４時間後、主要組織適合複合体（ＭＨＣ）クラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４５】
【図２】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；チオ）を受けた。２時間後、耳介における皮下注射によりマウスは５０ｎｇのマウスＴＮＦα又はＩＬ−１βを受けた。コントロールマウスは処理しなかった（未処理；−）。４時間（ＩＬ−１β）又は３０分（ＴＮＦα）後、主要組織適合複合体（ＭＨＣ）クラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４６】
【図３】マウス群（ｎ＝１０）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；チオ）を受けた。２時間後、耳介における皮下注射によりマウスは５０ｎｇのマウスＴＮＦα又はＩＬ−１βを受けた。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。１７時間（ＩＬ−１β）又は４時間（ＴＮＦα）後、排出耳介リンパ節を切除し、各実験群のためにプールし、そしてＬＮＣの単細胞懸濁液を調製した。濃度勾配遠心分離によりＤＣを濃縮した。ＤＣの数はＤＣ濃縮画分の直接的な形態調査後に評価し、そしてリンパ節あたりの数として表す。
【００４７】
【図４】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）又は３０μｌの修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しななかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４８】
【図５】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）又は３０μｌの多様な量の修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ、０．１μｇ、又は０．０５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４９】
【図６】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）、又は３０μｌの修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）、又は３０μｌの多様な量の未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ、０．１μｇ、又は０．０５μｇ；ｈＴＲＸ）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００５０】
【図７】健康なボランティアを２箇所の部位において未変性ヒトＴＲＸ（Ｔｒｘ；５０μｌ中０．５μｇ）に局所的に暴露させ、そして更に２箇所の部位において等量の水性クリーム単独に暴露させた。２時間後、ヒト組換えＴＮＦ−α（５００Ｕ）又は等量の生理食塩水を対の部位（１つはＴｒｘで前処理し、そして他方はクリームで前処理）に皮内注射し、２時間後バイオプシーを採取した。表皮シートの間接的な免疫蛍光染色後、ＣＤｌａ+ＬＣ密度を評価した。結果は、５０フィールド／試料の検査に由来する細胞数／ｍｍ2の平均値±標準偏差として表す。
【００５１】
【図８】修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）がレドックス不活性であることを示すグラフ。
【００５２】
【図９】マウス群（ｎ＝５）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム、又は未変性ヒトチオレドキシン（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは等量の媒体（ＡＯＯ）のみを受けた。２時間後、耳を切除し、そして外植片を調製し、そして３７℃で１６時間培養した。BioplexサイトカインアレイによりＩＬ−１０含量を分析し、そして結果をマウスあたり生産されたＩＬ−１０のｐｇ／ｍｌとして表す。
【００５３】
【図１０】マウスにおける単量体ｈＴＲＸ突然変異体Ｃ７３Ａによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ７３Ａ若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５４】
【図１１】マウスにおける無システインｈＴＲＸ突然変異体（Ｃ３２ＡＣ３５ＡＣ６２ＡＣ６９ＡＣ７３Ａ）によるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ３２ＡＣ３５ＡＣ６２ＡＣ６９ＡＣ７３Ａ（Ｃｙｓ無し）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５５】
【図１２】マウスにおけるトリプル突然変異体Ｃ３２ＡＣ３５ＡＣ７３Ａによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ３２ＡＣ３５ＡＣ７３Ａ若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５６】
【図１３】マウスにおけるオリゴマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害における加熱処理（９５℃で３０分間）の影響。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇの加熱処理（９５℃で３０分間）オリゴマーｈＴＲＸ（ｈＴＲＸ−ＨＴ）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５７】
【図１４】マウスにおけるオリゴマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害における加熱処理（５６℃で３０分間）の影響。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇの加熱処理（５６℃で３０分間）オリゴマーｈＴＲＸ（ｈＴＲＸ−ＨＴ）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５８】
【図１５】誘発されたモノマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、多様な濃度のｈＴＲＸｒｍ（０．５μｇ、４μｇ、２０μｇ）、若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しななかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【配列表フリーテキスト】
【００５９】
全ての配列は、Ｎ末端メチオニンを伴い明細書中に供される。疑義を避けるために、本発明はＮ末端メチオニンが非存在である配列も含むことを理解されるべきである。
【００６０】
配列番号１ ヒトＴＲＸ（タンパク質）
配列番号２ ヒトＴＲＸ（ＤＮＡ）
配列番号３ 修飾ヒトＴＲＸ（タンパク質）
配列番号４ 修飾ヒトＴＲＸ（ＤＮＡ）
配列番号５ ヒトラクトフェリン（タンパク質）
配列番号６ 大腸菌（E. coli)における発現のために最適化したヒトＴＲＸをコードするＤＮＡ配列
配列番号７ 大腸菌（E. coli)チオレドキシン
配列番号８ シロイナズナ（Arabidopsis）チオレドキシン
配列番号９ トリプル修飾ヒトチオレドキシン（Ｃ３２Ａ，Ｃ３５Ａ，Ｃ７３Ａ）
配列番号１０ 無システインヒトチオレドキシン（Ｃ３２Ａ，Ｃ３５Ａ，Ｃ６２Ａ，Ｃ６９Ａ，Ｃ７３Ａ）
配列番号１１ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ７３Ａ）
配列番号１２ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ）
配列番号１３ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３５Ｓ）
配列番号１４ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ Ｃ３５Ｓ）
配列番号１５ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ Ｃ６９Ｓ）
配列番号１６ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３５Ｓ Ｃ６９Ｓ）
配列番号１７ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ７３Ｓ）
【００６１】
【表１】
【表２】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、とりわけ、炎症性皮膚状態を寛解するための方法に関する。
【０００２】
炎症性皮膚状態は、ケモカイン及びサイトカイン、並びに特に炎症促進性サイトカイン、例えば、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、並びに腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）の活性に関係することが知られている。またこれらの同様のサイトカインは、皮膚免疫応答の開始において中心的な役割を果たすことが知られており、そして実際に皮膚からの表皮ランゲルハンス細胞（ＬＣ）の遊走に必須のシグナルを供する。皮膚からのＬＣの移動、及び続く皮膚排出リンパ節におけるこれらの蓄積は、免疫応答が誘発される部位（局所リンパ節）に対する抗原の輸送のための機構を供する。
【０００３】
表皮からのＬＣの遊走がＩＬ−１α、ＩＬ−１β、及びＴＮＦ−αによるシグナルの供給に依存するという我々の理解は、皮膚組織内のこれらのサイトカインの利用能及び機能活性を研究するための実験系を供する。実験は、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、又はＴＮＦ−αの利用能又は機能を阻害することが知られている因子が誘発されたＬＣ遊走の有意な阻害に関することを示している。
【０００４】
ＬＣ動員の刺激に必要とされることに加え、ＩＬ−１βは皮膚炎症の原因となることが知られており、そして直接的又は間接的に、いくつかの皮膚炎症性障害の病因に関係する。ＩＬ−１βは、生理活性である成熟したカルボキシ末端フラグメントを生産するために切断及び分泌され、そしてほとんど全ての細胞種に見られる特定の細胞表面受容体に結合し、そして一連の応答の引き金を引くことによりこれらの効果を発揮する、不活性な細胞内の前駆体タンパク質として合成される。
【０００５】
本発明は、皮膚に局所的に適用された場合、特定の分子が生理活性のＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βの生産及び／又は利用能を阻害することができるという驚くべき発見に基づく。とりわけ、ＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βが病因に関係する場合、このようなこれらの分子は炎症性皮膚状態の治療に適当である。適当な分子は、チオレドキシン（ＴＲＸ）、Ｃｙｓ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ活性部位を伴う１２ｋＤａのタンパク質、及び更に「レドックス（redox)−不活性」ＴＲＸ分子を含む（ここで活性部位におけるシステインはシステイン以外のアミノ酸により置換されてよい）。一方これらの分子は、ＩＬ−１α又はＩＬ−１βの生産又は活性を阻害することによりこれらの治療効果を発揮するようであることが示されている―また、これらは抗炎症性サイトカイン、例えば、インターロイキン−１０（ＩＬ−１０）の生産を刺激することにより、関連する又は追加的な有利な効果を発揮することが可能である。
【０００６】
本発明に従い、炎症性皮膚状態を寛解することが可能なポリペプチドであって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであり、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること（但し１つのＣｙｓがＳｅｒで置換される場合、他方のＣｙｓはＳｅｒで置換されない）；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とするポリペプチドを供する。
【０００７】
好ましくは、上記修飾は、Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2の両方をＳｅｒ以外のアミノ酸で独立に置換することから成る。活性部位の修飾は、活性部位レドックス（酸化還元）不活性を与え、そして驚くべきことに、これらのレドックス不活性分子は炎症性皮膚状態を寛解することが可能であることが発見されている。
【０００８】
本発明は更に、修飾されていないチオレドキシンがＣｙｓ1及びＣｙｓ2に追加して１又は複数のシステインを含む場合、上記修飾が、１又は複数の更なるシステインを置換及び／又は欠失することを含んで成る、修飾されたチオレドキシンを供する。
【０００９】
Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2は共に独立に置換されてよい。例えば、本発明のポリペプチドの１つの態様は、Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａ、他にはＡｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒを含んで成ることができる。本発明の好ましい態様において、Ｃｙｓ1及びＣｙｓ2は共に、Ａｌａにより置換され、Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａを与える。より好ましくは置換されていないＴＲＸがヒトＴＲＸであるポリペプチドであり、そして更により好ましくは配列番号３、配列番号９、及び配列番号１０から成る群から選択されるポリペプチドである。
【００１０】
本発明の更なる態様は、本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡ配列である。ＤＮＡ配列の正確な性質は、当然にポリペプチドの特異的な性質、及びＤＮＡ配列の意図される使用に依存する。例えば、ＤＮＡ配列のコドン最適化は組換え発現系におけるＤＮＡ配列の発現に必要とされ得る（コドン最適化配列の例は配列番号６として供される）。このようなＤＮＡ配列を供するために必要とされる技術は当業者に周知である。本発明の好ましいＤＮＡ配列は配列番号４に示される。
【００１１】
本発明はまた、好ましくは本発明のポリペプチド含んで成る、炎症性皮膚状態を治療するために適当な医薬−及び医薬組成物／医薬品としての本発明のポリペプチドの使用に関する。治療目的のために、本発明のポリペプチドは、いずれかの慣習的な手段により個々の治療剤又は他の治療剤との組み合わせとして投与することができる。本発明の医薬組成物は、医薬業界の当業者に周知な方法を使用して、所望される的確な投与経路に依存して適応させることができる。本発明の組成物は、制限することなく、皮膚を介する適用、例えば、局所適用及び皮下適用に適当なものを含む。乾癬の治療のためには、局所適用は治療効果を与えるために十分である。
【００１２】
本発明は更に、本発明のポリペプチドを生産する方法に関する。このような方法は、上記ポリペプチドの組換え発現、及び特に当該ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列を含んで成るベクター（ここで当該ベクターは生物内において当該ＤＮＡ配列を発現する）で生物を形質転換すること、及び当該ポリペプチドを生産するために当該ＤＮＡ配列の発現を許容する条件において当該生物を生育すること、を含んで成る。生育により、例えば、生育が細胞数を増加させることを意味する当該生物が単細胞生物である場合、バイオマスを増加することを意味する。「生物」は本発明のポリペプチドの組換え発現に適当ないずれかの生物を含む。適当な組換え発現系は、制限することなく、哺乳類細胞培養液、酵母及び細菌を含む。特に好ましくは大腸菌（E. coli)である。このような宿主細胞における発現に適当なベクターは、当業者に容易に明らかとなり、そして例えば、Ｔ７プロモーターを宿すベクター、例えば、大腸菌（E. coli)における発現のための、例えば、ｐＥＴベクター、及び酵母ピチア・パストリス（Pichia pastoris）における発現に適当な他のベクターを含む。また、当該ポリペプチドの生産方法は、当該ポリペプチドの精製を含んでよい。精製により、生産材料から組換えポリペプチドを得ることを意味する。このような方法は、これらのポリペプチドの適正製造基準（ＧＭＰ）を通して利用することができる。
【００１３】
本発明は更に、以下の群から選択される分子を含んで成る有効量の組成物を皮膚表面に適用することを含んで成る、炎症性皮膚状態を寛解するための方法に関する：
ａ．チオレドキシン活性部位（Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2）を含んで成るタンパク質；
ｂ．チオレドキシン（ＴＲＸ）；
ｃ．修飾されたチオレドキシンであって、ここで当該修飾が、修飾されていないチオレドキシンに存在する少なくとも１つのシステインをシステイン以外のアミノ酸で置換及び／又は欠失することを含んで成る、チオレドキシン；
ｄ．本発明に従うポリペプチド；及び
ｅ．配列番号１に示されるタンパク質の三次元構造中に存在する領域に類似する三次元構造の領域を含んで成る分子であって、そしてこれが炎症性皮膚状態を寛解することが可能である、分子。
【００１４】
「炎症性皮膚状態」の語は、例えば、ヒト炎症性皮膚状態、及び動物炎症性皮膚状態を含む。好ましい態様において、当該炎症性皮膚状態は、乾癬、扁平苔癬、アトピー性湿疹、刺激性若しくはアレルギー性接触皮膚炎、接触蕁麻疹、乳児湿疹、及び尋常性ざ瘡から成る群から選択される。本発明の方法はまた、創傷治癒、及び火傷、特に日焼けの治療を補助することにおいて有用である。乾癬は、分散した乾癬プラークの出現により特徴付けられる慢性炎症性皮膚状態である。乾癬は、皮膚形態におけるいくらかの変化に関係する。炎症誘発性サイトカインが乾癬の病因において重要な役割を果たす証拠が増えている。現在の治療は、抗炎症剤−典型的には副腎皮質ステロイド、の局所投与を含む。このような治療は完全には有効ではなく、そして望ましくない副作用が付随する。他の治療ストラテジーは、ＴＮＦ−α機能の破壊であるが、これもまた有害反応の原因となることがわかっている。このため、炎症性皮膚障害の治療に有効であるが、有害な副作用をほとんど又は全く示さず、そして理想的には非観血法により、例えば、炎症に直接適用することにより送達することができる更なる分子を供することが必要である。
【００１５】
本発明の方法における使用に好ましいものは、ＩＬ−１α及び／又はＩＬ−１βの生産及び／又は活性を阻害することができる、及び／又はＩＬ−１０の生産及び／又は活性を刺激若しくは増強することができる分子である。
【００１６】
ＴＲＸは、細胞のレドックス制御系の重要な成分である、小さな（１０〜１４ｋＤａ）、偏在性のタンパク質である。本発明の方法における使用に適当なＴＲＸは、（１）原核生物（例えば、大腸菌（E. coli)−配列番号７）、（２）植物（例えば、シロイヌナズナ（Arabidopsis）−配列番号８）、及び（３）動物（例えば、ヒト−配列番号１）由来のＴＲＸを含む。ＴＲＸは、還元状態（この場合、活性部位（Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2）における２つのシステインはジチオールを供する）、及び酸化状態（この場合、活性部位における２つのシステイン間において形成されるジスルフィド架橋が存在する）において存在することができる。生理条件下において、両方のレドックス状態が存在でき、そして本発明において両方の形態を利用することができる。更に一定のチオレドキシンは多量体形態において存在できることが知られている。例えば、ヒトＴＲＸ（ｈＴＲＸ）は、Ｃｙｓ−７３間にジスルフィド架橋が存在する二量体を形成できることが知られている。単量体形態に追加して、本発明の方法において上記分子のこれらの多量体形態もまた利用することができる。しかしながら、好ましくは当該分子、例えば、チオレドキシンは、実質的に還元状態において存在する。実質的に還元されるとは、＞８０％、好ましくは＞９０％、より好ましくは＞９５％の存在分子が還元状態にあることを意味する。上記方法における使用のための好ましい分子は、配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである―当該タンパク質は内在性ヒトタンパク質であり、このため患者に投与されたときの副作用又は免疫応答のいずれかの原因とはならないようである。本発明の方法における使用に適当な他の分子は、活性部位における１つ又は両方のシステインがシステイン以外のアミノ酸により置換されている、チオレドキシン活性部位を含んで成るタンパク質を含む。一方又は他方のシステインが置換される例は、Ｃｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａ、及びＡｌａ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2を含む。驚くべきことに、Ｃｙｓ1とＣｙｓ2の両方が置換されているレドックス不活性ＴＲＸ分子もまた本発明の方法に成功的に使用できることが発見された。更に、当該ＴＲＸ分子が活性部位以外において更なるスステインを含んで成る場合、これらの追加的なシステインもまた活性を全く失うことなく置換することができる。例えば、５つのシステイン（Ｃ32、Ｃ35、Ｃ62、Ｃ69、及びＣ73）を含む、ヒトチオレドキシンに関して、（１）Ｃ７３Ａ、（２）Ｃ３２Ａ、Ｃ３５Ａ、及びＣ７３Ａ；並びに（３）Ｃ３２Ａ、Ｃ３５Ａ、Ｃ６２Ａ、Ｃ６９Ａ、及びＣ７３Ａを含んで成る修飾されたヒトチオレドキシンは、生理活性を維持することが示されている。また、修飾されていないチオレドキシン中の活性部位以外に存在するシステインが置換及び／又は欠失されたとしても活性が維持されることが示されている。例えば、配列番号１１（Ｃ７３Ａ）において示されるタンパク質は活性であることが示されている。また当該活性分子は、９５℃で３０分間、又は５６℃で３０分間の加熱処理により不活性となり得ることが判明し、観察された活性の原因であるこれらの分子に関する構造特性が存在することを示している。従って、本発明は更に、炎症性皮膚状態を寛解することができる、本願に開示される活性分子、例えば、配列番号１の三次元構造中に存在する領域と三次元的に相同な領域を含んで成る分子に関する。当該方法における使用に特に好ましいものは、本発明のポリペプチドであり、配列番号３、配列番号９、配列番号１０、及び配列番号１１に示されるポリペプチド配列を含む。
【００１７】
記載された分子は、極めて低い投与割合において、炎症性皮膚状態を治療するために使用することができることが示されている。従って、本発明は更に、医薬組成物中の活性分子の濃度が、好ましくは０．０００１〜０．５％ｗ／ｖ（１μｇ／ｍｌ〜５ｍｇ／ｍｌ）、より好ましくは０．０００１〜０．１％ｗ／ｖ、より好ましくは０．０００１〜０．０１％ｗ／ｖ、そして更により好ましくは０．０００１〜０．００１％ｗ／ｖである、医薬組成物を供する。当該組成物がクリームである場合には、活性分子は０．０００１％〜０．０２％ｗ／ｖの濃度において存在することが特に好ましい。実質的に還元された単量体状態において組換えヒトチオレドキシンを含んで成る組成物が特に好ましい。
【００１８】
皮膚表面に対する上述の分子の適用割合は、好ましくは０．０５〜１０μｇ／ｃｍ2、より好ましくは０．０５〜５μｇ／ｃｍ2、及びより好ましくは０．１〜１μｇ／ｃｍ2である。実質的に還元された単量体状態においてヒトチオレドキシンが皮膚表面に適用されることが好ましい。
【００１９】
本発明は更に、上述の分子及び追加的な活性成分を含んで成る有効量の組成物を皮膚表面に適用することを含んで成る、炎症性皮膚状態の治療方法に関する。追加的な活性とは、医薬的効果も有する成分を意味し−これは上記分子に対して相加的又は相乗的であってよい。更なる活性成分の例は、ラクトフェリン（例えば、配列番号５に示される）、及び／又は副腎皮質ステロイドを含む。本発明はまた、上述の分子及び追加的な活性成分を含んで成る医薬組成物に関する。好ましい追加的な活性成分は、ラクトフェリン（例えば、配列番号５に示される）、及び／又は副腎皮質ステロイド、及び／又は炎症性皮膚状態の治療に適当な局所用医薬を含む。好ましい組成物は、当該分子が配列番号１に示されるヒトチオレドキシン及び／又は配列番号３に示される修飾されたＴＲＸであり、そして追加的な活性成分が配列番号５に示されるラクトフェリンである。本発明の組成物はまた、更なる成分、例えば、抗酸化剤、例えば、グルタチオン、ビタミンＡ、ビタミンＣ、ビタミンＥ、又は植物、例えば、アロエ（Aloe vera)由来の実際の抽出物を含んで成る。本発明の医薬組成物はまた、重篤な炎症性皮膚状態の治療のための併用療法において使用することができる。
【００２０】
本発明の組成物は皮膚への適用に適当であることが好ましい。従って、当該組成物は、典型的には、溶液、ゲル、ローション、軟膏、クリーム、懸濁液、ペースト、リニメント剤、粉末、チンキ、エアロゾル、経皮薬物送達システム、又は医薬的に許容される形態に類似して、当業界に周知な方法により処方される。活性成分の皮膚を介した浸透を増強する物質、例えば、ジメチルスルホキシド、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、界面活性剤、アゾン、アルコール、アセトン、プロピレングリコール、及びポリエチレングリコールを更に加えることができる。当該組成物は、皮膚に直接的に、あるいは多様な経皮薬物送達システム、例えば、パッチを介して適用することができる。
【００２１】
本発明は更に、医薬として炎症性皮膚状態を寛解することができるポリペプチドの使用であって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであって、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とする使用に関する。
【００２２】
本発明は更に、医薬としての配列番号１１及び１７に示されるポリペプチドの使用に関する。
【００２３】
本発明は更に、炎症性皮膚状態を寛解することができるポリペプチド等の使用であって、当該ポリペプチドが修飾されたチオレドキシンであって、当該修飾が、
ａ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2をシステイン以外のアミノ酸で置換すること；又は
ｂ．修飾されていないチオレドキシン中に存在するモチーフＣｙｓ1−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ2中のＣｙｓ1及びＣｙｓ2のいずれかをシステイン以外のアミノ酸で置換し、そして置換されていないシステインを欠失すること、
を含んで成ることを特徴とする、炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるポリペプチド使用；炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるチオレドキシンの使用；及び炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンの使用、に関する。
【００２４】
本発明は、更に、炎症性皮膚状態を寛解させるために皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造における配列番号１１及び１７に示されるポリペプチドの使用に関する。
【実施例】
【００２５】
マウス実験
マウス
Specific Pathogen Free Breeding Unit (Alderley Park, Cheshire, UK)から得た若年成体（６〜８週齢）のオスのＢＡＬＢ／ｃ系マウスを以下の調査において使用した。
【００２６】
チオレドキシン
組換え型の未変性ヒトＴＲＸ（ｈＴＲＸ−配列番号１）又は修飾したヒトＴＲＸ（配列番号３）を水性クリームＢＤ中１６．７μｇ／ｍｌに希釈し、そして同じ部位を化学薬品又はサイトカインに暴露する前に、３０μｌ（０．５μｇのＴＲＸ）を両耳の背側に局所的に適用した。コントロールマウスは等量のクリームのみを受けた。同じ実験において、動物は０．５、０．１、及び０．０５μｇのＴＲＸを受けた。
【００２７】
化学薬品及び暴露
皮膚感作性化学薬品４−エトキシ−２−フェニルオキサゾール−５−オン（オキサゾロン；Sigma Chemical Co. , St Louis, MO）を４：１のアセトン：オリーブ油（ＡＯＯ）に溶解させた。マウス群は２５μｌの０．５％オキサゾロン、又は媒体（ＡＯＯ）単独を両耳の背側に受けた。他のコントロールマウスは処理しなかった（未処理）。
【００２８】
サイトカイン
組換えマウスＴＮＦ−α（Ｌ９２９細胞毒性アッセイによる特異活性２×１０8Ｕ／ｍｇ；エンドトキシンレベル：０．００９ｎｇ／μｇ）をGenzyme (West Malling, Kent, UK)から得た。組換えマウスＴＮＦ−α（Ｌ９２９細胞毒性アッセイによる特異活性１〜２×１０8Ｕ／ｍｇ; エンドトキシンレベル：＜０．１ｎｇ／μｇ）をR&D Systems (Oxon, UK)から購入した。担体タンパク質として、サイトカインを０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）の無菌溶液中に供給するか、あるいは再構成させた。サイトカインを０．１％ＢＳＡを含む無菌ＰＢＳで希釈し、そして３０ゲージステンレス針を伴う１ｍｌシリンジを使用して投与した。マウスは両耳介に３０μｌの皮内注射を受けた。
【００２９】
表皮シートの調製及び分析
化学薬品又はＩＬ−１βに暴露して４時間後、あるいはＴＮＦ−αで処理して３０分後に耳を除去した。鉗子により試料を背側の耳と腹側の耳半分にわけた。背側半分をＰＢＳ中に溶解した０．０２Ｍのエチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ；Sigma)と共に３７℃で９０分間インキュベートした。鉗子により表皮を真皮から分離し、そしてＰＢＳ中で洗浄した。表皮シートをアセトン中−２０℃で２０分間固定した。固定後、シートをＰＢＳ中で洗浄し、それから０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳにおいて５μｇ／ｍｌに希釈した抗マウスＭＨＣ（Ｉ−Ａd／Ｉ−Ｅd）モノクローナル抗体と共に室温で３０分間インキュベートした。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳにおいて１：１００に希釈した、ＦＩＴＣ−結合Ｆ（ａｂ）2ヤギ抗ラットＩｇＧと共に更に３０分間インキュベートする前に当該シートを洗浄した。最後にシートをＰＢＳ中で洗浄し、そしてCitifluor (Citifluor Ltd. , London, UK)において顕微鏡スライド上にのせ、マニキュア液で封着した。蛍光顕微鏡により試料を盲検法において検査し、そして染色された細胞の頻度を目盛り付格子（×４０拡大率において０．３２×０．２１３）を有する接眼を使用して評価した。各試料のために、耳の中心部分における１０連続フィールドを検査した。
【００３０】
表皮サイトカイン生産の測定
０．５％オキサゾロンへの暴露から２時間後、耳を除去し、そして無菌条件下で外植片用培養液を調製した。直ぐに耳を７０％エタノール中で洗浄し、ＰＢＳ中でリンスし、そして鉗子により背側と腹側半分に分けた。背側半分を２４ウェル組織培養プレート中の２５０μｌのＲＰＭＩ−１６４０培地上に浮かべた（１つの背側耳半分／ウェル）。１６時間の培養後、上清を回収し、各マウスのためにプールし、そして−７０℃の貯蔵前に１５０ｇで５分間遠心分離した。製造業者の指示に従いBio-PlexTMサイトカインアレイシステム(Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)を使用して上清中のＩＬ−１０含量を測定した。
【００３１】
樹状細胞（ＤＣ）の調製及び分析
化学薬品で処理してから１８時間後、又はサイトカインＴＮＦ−α及びＩＬ−１βの投与から、それぞれ４時間及び１７時間後、流入領域耳介リンパ節を切除した。各実験群のために当該節をプールした。無菌２００メッシュステンレススチールガーゼを通して機械的な脱凝集により無菌条件下においてリンパ節細胞（ＬＮＣ）の単一細胞懸濁液を調製し、そして２５ｍＭのＨＥＰＥＳ、４００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン、４００μｇ／ｍｌのアンピシリン、及び１０％加熱不活性化ウシ胎児血清（ＲＰＭＩ−ＦＣＳ）を補充したＲＰＭＩ−１６４０成長培地(Gibco, Renfrewshire, UK)中に再懸濁した。生細胞カウントは、トリパンブルー染色の除外により行い、そしてリンパ節あたりの全細胞を記録した。細胞濃度をＲＰＭＩ−ＦＣＳ中５×１０６細胞／ｍｌに調整し、メトリザミド(Sigma Chemical Co. ; ＲＰＭＩ−ＦＣＳ中１４．５％）における不連続勾配遠心分離によりＤＣ−濃縮群を調製した。このような低い浮遊密度画分におけるＤＣの頻度は位相差顕微鏡観察を使用する直接的な形態検査により慣習的に評価した。
【００３２】
ヒト実験
ＴＲＸ及び暴露
水性クリーム中のＴＲＸ（５０μｌ中０．５μｇ）を日が当らない臀部又は尻において認識される２箇所の皮膚部位（各２ｃｍ2の面積）に局所的に適用した。反対側の臀部又は尻における更に２箇所の部位に５０μｌの水性クリームを単独で与えた。２時間後、ボランティアは、通常の無菌生理食塩水において希釈された５００Ｕの相同組換えＴＮＦ−αの皮内注射及び５０μｌの無菌生理食塩水のコントロール注射を対の部位（一方は前もってＴＲＸに暴露し、そして一方はクリーム単独に暴露した）に受けた。２時間後、それぞれ処理した部位から、局所麻酔（１％リグノカイン）下においてパンチバイオプシー（６ｍｍ）を採取した。
【００３３】
表皮シートの調製及び分析
表皮ランゲルハンス細胞（ＬＣ）をＣＤ１ａ（ヒト表皮中のＬＣを特徴付ける膜決定要因）の発現に基づき認識した。ＬＣを染色するために、バイオプシーをリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中に溶解した０．０２Ｍのエチレンジアミンテトラ酢酸(Sigma, St Louis, MO, USA)中に直ぐに置き、そして３７℃で２時間インキュベートした。鉗子を使用して真皮から表皮を分離し、ＰＢＳ中で洗浄し、そして−２０℃においてアセトン中で固定した。ＰＢＳ中で洗浄後、表皮シートを０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳ中で１０μｇ／ｍｌに希釈したＣＤ１ａに特異的なモノクローナル抗体[クローンＮＡ１／３４（マウスＩｇＧ２ａ）；DAKO Ltd, Cambridge, UK]と共に室温で３０分間インキュベートした。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中で１：１００に希釈したフルオレッセインイソチオシアネート結合ヤギＦ（ａｂ’）2抗マウス免疫グロブリン（ＤＡＫＯ）と共に更に３０分間インキュベートする前に、シートを洗浄した。最後にＰＢＳ中でシートを洗浄し、そしてCitifluor (Citifluor Ltd. , London, UK)において顕微鏡スライド上にのせ、そしてマニキュア液で封着した。それから各スライドの識別はテープを使用して隠した。
【００３４】
蛍光顕微鏡により試料を検査し、そして染色された細胞の頻度を目盛り付格子（×４０拡大率において０．３２×０．２１３）を有する接眼を使用して評価した。各試料のために、５０連続フィールドを検査した。全ての試料をカウントした後、各スライドの識別を明らかにした。結果は、細胞数／ｍｍ2の平均値±標準偏差として表す。
【００３５】
実験１
当該実験の目的は、未変性ｈＴＲＸのマウスの皮膚に対する局所適用が、その後の強力な接触アレルゲンであるオキサゾロンへの同じ部位における暴露により誘発されるＬＣ遊走のインテグリティ（integrity)に影響できるか否かを決定することである。代表的な実験の結果を図１に示す。当該結果は、ｈＴＲＸの事前暴露がアレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害を生じることを明らかとする。記載された結果は、当該接触アレルゲンの場合において、局所適用されたｈＴＲＸが、刺激に対する有効なＬＣ動員及び遊走に必要な１又は複数の生物学的過程を阻害するために十分な濃度において、マウス皮膚の生存表皮に達することができることを意味する。
【００３６】
実験２
以前の実験は、マウス及び人の両方において、表皮ＬＣの遊走が一定のサイトカイン及びケモカイン（特に重要であることが知られているもののうち２つはインターロイキン−１β（ＩＬ−１β）及び腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）である）の利用能に依存するという明確な証拠を供している。損なわれたＬＣ遊走をもたらすサイトカイン機能の摂動の前例が存在する。従って、次の実験において、我々は、ｈＴＲＸがＩＬ−１β又はＴＮＦ−αのいずれかにより誘発されるＬＣ遊走に影響し得るか否かを調査した。代表的な実験の結果を図２に表す。これらのデータは、マウスのｈＴＲＸに対する事前局所暴露が相同的ＴＮＦ−αの皮内（ｉｄ）注射により誘発されたＬＣ遊走のほぼ完全な阻害を起こすことができることを明らかにした。一方、同じように適用されたｈＴＲＸは、相同的ＩＬ−１βの皮内投与により誘発されたＬＣ遊走のインテグリティにおいて影響がなかった。これは、ｈＴＲＸの局所適用がＬＣ−１β機能の摂動に関係すること意味する。このようにｈＴＲＸは、生理活性のＩＬ−１βの利用能に必要とされる環境において、アレルゲン（オキサゾロン）（図１）、又はＴＮＦ−α（図２）のいずれかの応答におけるＬＣ動員を極めて有効に阻害した。しかしながら、ｈＴＲＸの阻害効果は、遊走の有効性が損なわれていない場合、ＩＬ−１βの外来源の追加により克服することができる。
【００３７】
実験３
並行した一連の実験において、実験２で取り組んだ同じ問題を調査したが、補充的な指標（endpoint)を使用した。この場合、使用した指標は皮膚流入領域リンパ節における樹状細胞（ＤＣ）の蓄積とした。当該測定の関連性は、表皮ＬＣが求心性リンパを介して皮膚輸送から流入領域リンパ節に遊走するために誘発されることである（適応免疫系と相互作用するため）。従って表皮からのＬＣの喪失の機能として、あるいは皮膚流入領域リンパ節におけるこれらの引き続く蓄積の機能として、ＬＣ動員の有効性を測定することができる。ＩＬ−１β又はＴＮＦ−αのいずれかの皮下投与後のリンパ節におけるＤＣ蓄積におけるｈＴＲＸの影響を検査した場合の代表的な実験を図３に示す。当該結果は図２に示す結果と一致する。即ち、ＴＮＦ−αに応答するＤＣ蓄積を阻害するが、ＩＬ−１βに応答する蓄積は阻害しないことが判明した。
【００３８】
実験４
ＴＲＸのほとんどの生物学的特性は、当該タンパク質のレドックス活性の機能であることが考慮される。タンパク質レドックス−不活性を与える別のアミノ置換基を有する利用できるタンパク質のレドックス−不活性突然変異体が存在する。これらの突然変異体の１つは配列番号３に示されるＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａである。実験の他の系列において、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５ＡのＬＣ遊走を阻害する能力を調査し、そして未変性ｈＴＲＸ（配列番号１）の活性と比較した。代表的な実験を図４に示す。これらの実験において、ＬＣ動員は化学的なアレルゲンのオキサゾロンで刺激され、そして当該応答を阻害するためのｈＴＲＸ又はＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａの能力を測定した。図４に概要される結果は、未変性ｈＴＲＸ及びレドックス−不活性突然変異体Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａは共にＬＣ遊走のインテグリティを実質的にきわめて阻害することができることを明確に示す。ＬＣ遊走におけるＴＲＸの効果（及びＩＬ−１βシグナリングのインテグリティ）は活性レドックス機能と独立していることが結論付けられる。
【００３９】
実験５
続く実験において、未変性ｈＴＲＸ（配列番号１）及びＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（配列番号３）の相対的な効力をＬＣ遊走の阻害の観点から比較した。１つの実験計画において、多様な濃度のレドックス不活性突然変異タンパク質を単一の濃度の未変性ｈＴＲＸと比較した。代表的な実験結果を図５に概要する。利用可能なデータは、ＬＣ遊走の用量依存的な阻害を明らかにする。０．５μｇのＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（又は０．５μｇの未変性ｈＴＲＸ）に対するマウスの暴露は、アレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害により特徴付けられた。より低濃度のＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ（０．１μｇ又は０．０５μｇ）はアレルゲン誘発ＬＣ遊走を阻害することができたが、これらの結果はより高用量のタンパク質でみられたものよりも完全ではなかった。
【００４０】
実験６
並行的な調査において、反対の見当識を伴う同様の実験計画を利用した。即ち、未変性ｈＴＲＸで用量応答を行い、当該結果を単用量のレドックス不活性突然変異体の効果と比較した。代表的な実験を図６に示す。再度、明らかな用量応答の関係が観察された。０．５μｇのｈＴＲＸ（又は０．５μｇのＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａ）でのマウスの処理は、アレルゲン誘発ＬＣ遊走の完全な阻害を生じた。より低用量のｈＴＲＸ（０．１μｇ又は０．０５μｇ）は同様の効果を有したが、０．５μｇで行った場合よりも低い遊走の完全阻害を生じた。これらのデータを併せると、ｈＴＲＸ及びＣ３２Ａ／Ｃ３５Ａは共にＬＣ遊走の阻害を生じ、そして匹敵する効力であることが確認される。
【００４１】
実験７
次の一連の実験において、健康な成人のボランティアによりヒトにおけるＬＣ遊走のインテグリティにおけるｈＴＲＸの影響を調査した。これらの２人のボランティアにより得られた結果を図７に示す。マウスにおいて行った以前の実験（上述の図２を参照のこと）と共通して、ｈＴＲＸに対する事前局所暴露が相同組換えＴＢＦ−αの皮下投与により実質的に刺激されたＬＣ遊走の有意な阻害を生じたことが各２人のボランティアにおいて観察された。これらのデータは、ｈＴＲＸの効果がマウスの皮膚において最初に観察されたものと比較してヒトの皮膚において変化することを確認する。
【００４２】
実験８
当該実験は、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａ修飾ヒトＴＲＸがレドックス不活性であることを示すために計画された。当該アッセイは室温で１５分間行い、そしてジチオニトロ安息香酸（ＤＴＮＢ）の還元を分光光度計で超過時間４１２ｎｍにて追跡した。当該反応混合物は、ＴＲＸを還元するためのＴＲＸレダクターゼにより消費される過剰な濃度のＮＡＤＰＨを含有する。その後、ＴＲＸが優先的にＤＴＮＢを還元し、そしてＴＲＸは、レダクターゼ及びＮＡＤＰＨによりその還元形態において再循環する。図８は、当該実験においえて得られた結果を示し、Ｃ３２Ａ／Ｃ３５Ａ修飾ヒトＴＲＸがレドックス不活性であることを確認する。
【００４３】
実験９
別の一連の実験において、ＩＬ−１０の皮膚細胞による同化作用におけるＴＲＸでの局所処理のマウスにおける影響を測定した。代表的な実験を図９に示す。コントロール動物から単離した皮膚組織（媒体（ＡＯＯ）単独に暴露し、接触アレルゲンのオキサゾロンでは感作していない）は、極めて低レベルのＩＬ−１０を生産し、そしてｈＴＲＸはＩＬ−１０における影響がなかった。しかしながら反対に、オキサゾロンでの感作に応答してｈＴＲＸはＩＬ−１０の生産を増強することができた。これは、ＴＲＸの更なる特性が、ＩＬ−１０（皮膚及び他の組織において抗炎症性効果を有することが知られているサイトカイン）の皮膚細胞による生産を増大することであることを意味する。
【図面の簡単な説明】
【００４４】
【図１】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ＴＲＸ−配列番号１）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）又は媒体単独（アセトン：オリーブ油；ＡＯＯ）に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理；−）。４時間後、主要組織適合複合体（ＭＨＣ）クラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４５】
【図２】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；チオ）を受けた。２時間後、耳介における皮下注射によりマウスは５０ｎｇのマウスＴＮＦα又はＩＬ−１βを受けた。コントロールマウスは処理しなかった（未処理；−）。４時間（ＩＬ−１β）又は３０分（ＴＮＦα）後、主要組織適合複合体（ＭＨＣ）クラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４６】
【図３】マウス群（ｎ＝１０）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；チオ）を受けた。２時間後、耳介における皮下注射によりマウスは５０ｎｇのマウスＴＮＦα又はＩＬ−１βを受けた。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。１７時間（ＩＬ−１β）又は４時間（ＴＮＦα）後、排出耳介リンパ節を切除し、各実験群のためにプールし、そしてＬＮＣの単細胞懸濁液を調製した。濃度勾配遠心分離によりＤＣを濃縮した。ＤＣの数はＤＣ濃縮画分の直接的な形態調査後に評価し、そしてリンパ節あたりの数として表す。
【００４７】
【図４】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）又は３０μｌの修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しななかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４８】
【図５】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）又は３０μｌの未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）又は３０μｌの多様な量の修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ、０．１μｇ、又は０．０５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００４９】
【図６】マウス群（ｎ＝３）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム（ｃｒ）、又は３０μｌの修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）、又は３０μｌの多様な量の未変性ヒトＴＲＸ（０．５μｇ、０．１μｇ、又は０．０５μｇ；ｈＴＲＸ）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、ＭＨＣクラスII（Ｉａ）+ＬＣ頻度の分析のために表皮シートを調製した。ＬＣ数（平均値±標準偏差）は、ｎ＝６の表皮シート／処理群の分析に由来する。
【００５０】
【図７】健康なボランティアを２箇所の部位において未変性ヒトＴＲＸ（Ｔｒｘ；５０μｌ中０．５μｇ）に局所的に暴露させ、そして更に２箇所の部位において等量の水性クリーム単独に暴露させた。２時間後、ヒト組換えＴＮＦ−α（５００Ｕ）又は等量の生理食塩水を対の部位（１つはＴｒｘで前処理し、そして他方はクリームで前処理）に皮内注射し、２時間後バイオプシーを採取した。表皮シートの間接的な免疫蛍光染色後、ＣＤｌａ+ＬＣ密度を評価した。結果は、５０フィールド／試料の検査に由来する細胞数／ｍｍ2の平均値±標準偏差として表す。
【００５１】
【図８】修飾ヒトＴＲＸ（０．５μｇ；Ｃ３２ＡＣ３５Ａ−配列番号３）がレドックス不活性であることを示すグラフ。
【００５２】
【図９】マウス群（ｎ＝５）は、両耳の背側において３０μｌの水性クリーム、又は未変性ヒトチオレドキシン（０．５μｇ；ｈＴＲＸ）を受けた。２時間後、両耳の背側においてマウスを０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）に局所的に暴露した。コントロールマウスは等量の媒体（ＡＯＯ）のみを受けた。２時間後、耳を切除し、そして外植片を調製し、そして３７℃で１６時間培養した。BioplexサイトカインアレイによりＩＬ−１０含量を分析し、そして結果をマウスあたり生産されたＩＬ−１０のｐｇ／ｍｌとして表す。
【００５３】
【図１０】マウスにおける単量体ｈＴＲＸ突然変異体Ｃ７３Ａによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ７３Ａ若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５４】
【図１１】マウスにおける無システインｈＴＲＸ突然変異体（Ｃ３２ＡＣ３５ＡＣ６２ＡＣ６９ＡＣ７３Ａ）によるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ３２ＡＣ３５ＡＣ６２ＡＣ６９ＡＣ７３Ａ（Ｃｙｓ無し）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５５】
【図１２】マウスにおけるトリプル突然変異体Ｃ３２ＡＣ３５ＡＣ７３Ａによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇのＣ３２ＡＣ３５ＡＣ７３Ａ若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５６】
【図１３】マウスにおけるオリゴマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害における加熱処理（９５℃で３０分間）の影響。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇの加熱処理（９５℃で３０分間）オリゴマーｈＴＲＸ（ｈＴＲＸ−ＨＴ）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５７】
【図１４】マウスにおけるオリゴマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害における加熱処理（５６℃で３０分間）の影響。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、０．５μｇのオリゴマーｈＴＲＸ、０．５μｇの加熱処理（５６℃で３０分間）オリゴマーｈＴＲＸ（ｈＴＲＸ−ＨＴ）若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しなかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【００５８】
【図１５】誘発されたモノマーｈＴＲＸによるオキサゾロン誘発ＬＣ遊走の阻害。マウス群（ｎ＝３）を両耳の背側において、多様な濃度のｈＴＲＸｒｍ（０．５μｇ、４μｇ、２０μｇ）、若しくはクリームのみを含有する３０μｌの水性クリームＢＰに暴露し、同じ部位における適用の２時間前に、０．５％オキサゾロン（Ｏｘ）を媒体（４：１ アセトン：オリーブ油）中に懸濁した。コントロールマウスは処理しななかった（未処理）。４時間後、耳を除去し、そしてＭＨＣクラスII（Ｉａ）発現のための間接的な免疫蛍光染色用に背側の耳の半分から表皮シートを調製した。結果は、各６つの耳の１０フィールド／耳の検査後に、表皮のＩａ+ＬＣ／ｍｍ2平均数（±標準偏差）として表す。
【配列表フリーテキスト】
【００５９】
全ての配列は、Ｎ末端メチオニンを伴い明細書中に供される。疑義を避けるために、本発明はＮ末端メチオニンが非存在である配列も含むことを理解されるべきである。
【００６０】
配列番号１ ヒトＴＲＸ（タンパク質）
配列番号２ ヒトＴＲＸ（ＤＮＡ）
配列番号３ 修飾ヒトＴＲＸ（タンパク質）
配列番号４ 修飾ヒトＴＲＸ（ＤＮＡ）
配列番号５ ヒトラクトフェリン（タンパク質）
配列番号６ 大腸菌（E. coli)における発現のために最適化したヒトＴＲＸをコードするＤＮＡ配列
配列番号７ 大腸菌（E. coli)チオレドキシン
配列番号８ シロイナズナ（Arabidopsis）チオレドキシン
配列番号９ トリプル修飾ヒトチオレドキシン（Ｃ３２Ａ，Ｃ３５Ａ，Ｃ７３Ａ）
配列番号１０ 無システインヒトチオレドキシン（Ｃ３２Ａ，Ｃ３５Ａ，Ｃ６２Ａ，Ｃ６９Ａ，Ｃ７３Ａ）
配列番号１１ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ７３Ａ）
配列番号１２ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ）
配列番号１３ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３５Ｓ）
配列番号１４ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ Ｃ３５Ｓ）
配列番号１５ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３２Ｓ Ｃ６９Ｓ）
配列番号１６ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ３５Ｓ Ｃ６９Ｓ）
配列番号１７ 修飾ヒトＴＲＸ（Ｃ７３Ｓ）
【００６１】
【表１】
【表２】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
炎症性皮膚状態を寛解するための皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるチオレドキシン使用。
【請求項２】
チオレドキシンがヒトチオレドキシンである、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
チオレドキシンが配列番号１に示される配列を有する、請求項１又は２に記載の使用。
【請求項４】
チオレドキシンが実質的に還元状態である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の使用。
【請求項５】
チオレドキシンが多量体形態である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
【請求項６】
チオレドキシンがインターロイキン１α及び／又はインターロイキン１βの生産及び／又は活性を阻害することが可能である、請求項１に記載の使用。
【請求項７】
チオレドキシンがインターロイキン１０の生産及び／又は活性を刺激及び／又は増強することが可能である、請求項１に記載の使用。
【請求項８】
医薬が、溶液、ゲル、ローション、軟膏、クリーム、及びペーストから成る群から選択される、請求項１に記載の使用。
【請求項９】
炎症性皮膚状態が、乾癬、扁平苔癬、アトピー性湿疹、刺激性若しくはアレルギー性接触皮膚炎、接触蕁麻疹、乳児湿疹、及び尋常性ざ瘡から成る群から選択される、請求項１〜８のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１０】
皮膚状態が乾癬である、請求項９に記載の使用。
【請求項１１】
医薬が、更に追加的な活性成分を含んで成る、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１２】
追加的な活性成分が、副腎皮質ステロイド、及び／又はラクトフェリン、及び／又は皮膚炎疾患の治療に有効ないずれかの他の局所用医薬である、請求項１１に記載の使用。
【請求項１３】
追加的な活性成分がラクトフェリンである、請求項１２に記載の使用。
【請求項１４】
皮膚表面に対してチオレドキシンを含んで成る有効量の組成物を適用することを含んで成る炎症性皮膚状態を寛解する方法。
【請求項１５】
前記チオレドキシンが、実質的に還元状態における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
チオレドキシンが０．０５〜５μｇ／ｃｍ2の濃度において皮膚表面に適用される、請求項１４又は請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
０．０００１〜０．５％ｗ／ｖのチオレドキシンを含んで成る、炎症性皮膚状態を寛解するために適当な医薬組成物。
【請求項１８】
チオレドキシンが、実質的に還元状態における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである、請求項１７に記載の医薬組成物。
【請求項１】
炎症性皮膚状態を寛解するための皮膚表面に対する適用に適当な医薬の製造におけるチオレドキシン使用。
【請求項２】
チオレドキシンがヒトチオレドキシンである、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
チオレドキシンが配列番号１に示される配列を有する、請求項１又は２に記載の使用。
【請求項４】
チオレドキシンが実質的に還元状態である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の使用。
【請求項５】
チオレドキシンが多量体形態である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
【請求項６】
チオレドキシンがインターロイキン１α及び／又はインターロイキン１βの生産及び／又は活性を阻害することが可能である、請求項１に記載の使用。
【請求項７】
チオレドキシンがインターロイキン１０の生産及び／又は活性を刺激及び／又は増強することが可能である、請求項１に記載の使用。
【請求項８】
医薬が、溶液、ゲル、ローション、軟膏、クリーム、及びペーストから成る群から選択される、請求項１に記載の使用。
【請求項９】
炎症性皮膚状態が、乾癬、扁平苔癬、アトピー性湿疹、刺激性若しくはアレルギー性接触皮膚炎、接触蕁麻疹、乳児湿疹、及び尋常性ざ瘡から成る群から選択される、請求項１〜８のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１０】
皮膚状態が乾癬である、請求項９に記載の使用。
【請求項１１】
医薬が、更に追加的な活性成分を含んで成る、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１２】
追加的な活性成分が、副腎皮質ステロイド、及び／又はラクトフェリン、及び／又は皮膚炎疾患の治療に有効ないずれかの他の局所用医薬である、請求項１１に記載の使用。
【請求項１３】
追加的な活性成分がラクトフェリンである、請求項１２に記載の使用。
【請求項１４】
皮膚表面に対してチオレドキシンを含んで成る有効量の組成物を適用することを含んで成る炎症性皮膚状態を寛解する方法。
【請求項１５】
前記チオレドキシンが、実質的に還元状態における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
チオレドキシンが０．０５〜５μｇ／ｃｍ2の濃度において皮膚表面に適用される、請求項１４又は請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
０．０００１〜０．５％ｗ／ｖのチオレドキシンを含んで成る、炎症性皮膚状態を寛解するために適当な医薬組成物。
【請求項１８】
チオレドキシンが、実質的に還元状態における配列番号１に示されるヒトチオレドキシンである、請求項１７に記載の医薬組成物。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【公表番号】特表２００８−５０１７７２（Ｐ２００８−５０１７７２Ａ）
【公表日】平成２０年１月２４日（２００８．１．２４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−５２６５５２（Ｐ２００７−５２６５５２）
【出願日】平成１７年６月１０日（２００５．６．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００５／００２３００
【国際公開番号】ＷＯ２００５／１２１３２９
【国際公開日】平成１７年１２月２２日（２００５．１２．２２）
【出願人】（５００３７１３０７）シンジェンタ リミテッド (141)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２０年１月２４日（２００８．１．２４）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年６月１０日（２００５．６．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００５／００２３００
【国際公開番号】ＷＯ２００５／１２１３２９
【国際公開日】平成１７年１２月２２日（２００５．１２．２２）
【出願人】（５００３７１３０７）シンジェンタ リミテッド (141)
【Ｆターム（参考）】
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