キレート剤
本明細書中に記載の式の化合物であって、式中、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択され、Ｒ２およびＲ３は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、親水性部分、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。本発明の化合物は、標的分子への化学選択的結合を可能にする二官能性キレート剤として有用であるかもしれない。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、キレート剤に関する。本発明は、特に標的分子への選択的結合のための一連の二官能性キレート剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
放射性核種の非共有結合では、放射性マーカーと標的分子を結びつけるために二官能性キレート剤（ＢＦＣＡ）が使用される。これらのＢＦＣＡの中では、１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン−１，４，７，１０−四酢酸（ＤＯＴＡ）はよく研究されている大環状錯体リガンドであり、これは、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）１とは対照的に、二価および三価金属両方の極めて安定性の高い錯体を形成することが示されている。２、３このリガンドを金属キレーターとして含有する放射性医薬品は、治療および画像診断における幅広い利用が見出されている４、５（非特許文献１および非特許文献２）。
【０００３】
ＤＯＴＡ−ペプチドは一般に、溶液中で６、または保護されていないＤＯＴＡを使用して１もしくはより便利にはＤＯＴＡの４つのカルボン酸基の多重活性化による副反応を克服するために保護されたＤＯＴＡ誘導体を使用して、樹脂結合ペプチドの遊離アミンにＤＯＴＡ残基を結合する固体担体上で合成される。従って、多数のＤＯＴＡ誘導体が開発されており、モノ結合体（ｍｏｎｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）の選択的形成が可能である。例えば、３基保護の市販のＤＯＴＡ−トリス（ｔｅｒｔ−ブチル）エステル７および対応するベンジル保護アナログＤＯＴＡ−トリス（ベンジル）エステル８、イソチオシアネート官能基化ｐ−ＮＣＳ−Ｂｚ−ＤＯＴＡ９だけでなく、保護されていないさらなるカルボン酸基を含むＤＯＴＡＧＡ（ｔＢｕ）４１０が広く用いられているＢＦＣＡである。他のアプローチでは、ＤＯＴＡ部分を側鎖に含む誘導体化アミノ酸が用いられた１１、またはＤＯＴＡ部分は樹脂結合ペプチドのＮ末端上で段階的に合成された１２。これら全ての方法の主な制限は、ＤＯＴＡ残基の求電子性の結合である。この手順は、選択的反応用のその他のＮ−またはＳ−求核基を許容しない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｈｅｐｐｅｌｅｒ，Ａ．；Ｆｒｏｉｄｅｖａｕｘ，Ｓ．；Ｅｂｅｒｌｅ，Ａ．Ｎ．；Ｍａｅｃｋｅ，Ｈ．Ｒ．Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｆｏｒ ｔｕｍｏｒ ｌｏｃａｌｉｓａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅｒａｐｙ ｗｉｔｈ ｒａｄｉｏｐｅｐｔｉｄｅｓ．Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２０００，７，９７１−９９４．
【非特許文献２】Ｍｉｌｅｎｉｃ，Ｄ．Ｅ．；Ｂｒａｄｙ，Ｅ．Ｄ．；Ｂｒｅｃｈｂｉｅｌ，Ｍ．Ｗ．Ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｔａｒｇｅｔｅｄ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｃａｎｃｅｒ ｔｈｅｒａｐｙ．Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ２００４，３，４８８−４９８．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
多官能性化合物の部位選択的官能基化を可能にする化学選択的アプローチが依然として求められている。しかし、そのような方法は、ＤＯＴＡ−結合放射性医薬品の合成にとって強力なツールとなるであろうし、新たな合成戦略や、錯構造、例えば我々が最近開発した、４−［１８Ｆ］フルオロベンズアルデヒドを使用して１８Ｆの標識に成功した多量体のアミノオキシ官能基化ＲＧＤ誘導体１３の合成が可能となる。１４最近の発表では、Ｈｏｖｉｎｅｎが、ナルトレキソンおよび２−デオキシ−Ｄ−リボースと接合したＤＯＴＡのトリスｔｅｒｔ−ブチルエステルの誘導体化によるアミノオキシ官能基化キレートの合成を報告している。１５しかし、報告された手順は高価な出発材料を必要とし、ペプチドのような多官能性化合物への適用性は未だ明らかでない。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、式：
【０００７】
【化１】
の化合物を提供し、
式中、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択され、Ｒ２およびＲ３は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、親水性部分、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【０００８】
Ｒ５がアルキルであるならば、好ましくは、このアルキルは、長さが１、２、３、４、５、または６個の炭素原子である。好ましくは、Ｒ５は、アリールまたはヘテロアリール基である。より好ましくは、Ｒ５は、１つまたは２つの環を有する５員〜９員のアリールまたはヘテロアリール基である。より好ましくは、Ｒ５は、６員のアリールまたはヘテロアリール基である。さらにより好ましくは、Ｒ５はフェニル基である。最も好ましくは、フェニル基は、パラ位がカルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【０００９】
好ましくは、Ｒ５は、カルボニル基または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【００１０】
本発明の一実施形態において、Ｒ５は、カルボニル基で置換されている。好ましくは、このカルボニル基はケト基である。好ましくは、このケト基はメチルケトンである。ケト基の利点は、ケト基が高い反応性を持つ基ではないため、化合物に長期間の安定性を与えることである。これにより、これを長期間保存できるようになる。著しく長い期間にわたって化合物を保管しようとする際に、反応性の高い基は問題となる。さらに、ケト基は、ペプチドのような多官能性化合物への化学選択的結合を可能にする。別の利点は、ケト基は合成プロセスにおいてさらなる保護を必要としないことである。
【００１１】
本発明の別の実施形態において、付加環化反応に参加するのに適した官能基は、アルキン基またはアジド基である。好ましくは、このアルキン基はエチニル基である。
【００１２】
一実施形態において、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、水素およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択される。好ましくは、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は同一である、または別のカルボキシル保護基である。好ましくは、Ｒ４は、水素またはメチルである。より好ましくは、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、ｔ−ブチルであり、Ｒ４は、Ｈまたはメチルである。
【００１３】
カルボニル保護基が存在するならば、それらは好ましくはベンジル、フルオレニルメチル、およびｔ−ブチルから選択される。
【００１４】
一実施形態において、Ｒ１またはＲ４のどちらかは親水性部分である。好ましくは、Ｒ１およびＲ４は両方とも親水性部分である。Ｒ４および／またはＲ１が親水性部分の場合、化合物は好ましくは、ガリウム６８と錯体形成するために使用される。好ましくは、親水性部分は糖である。親水性部分、特に糖を化合物に結合させる利点は、それらが化合物の薬物動態特性を向上させることである。
【００１５】
本発明の別の態様において、式：
【００１６】
【化２】
の化合物が提供され、
式中、基Ｇ１からＧ４の２つ〜４つは、ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５であり、任意の残りの基Ｇ１からＧ４はＣＨ２ＣＯ２Ｒ１であり、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は上記で定めた通りであり、Ｒ１は上記で定めた通りである。これによって化合物が複数の標的分子に結合できるようになり、それぞれのＲ５基の位置に１つが結合する。
【００１７】
本発明は、上述のような化合物および誘導体化された標的分子を有する結合体も提供し、Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合は、標的分子は、相補的なアミノオキシ部分またはカルボニル部分を含むように誘導体化されており、化合物と標的分子はオキシム結合で結合されており、Ｒ５が付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている場合は、標的分子は、付加環化反応用の相補基を含むように誘導体化されており、化合物と標的分子は、付加環化反応のヘテロ環生成物によって結合される。Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合、Ｒ５は好ましくはカルボニル基で置換されている。
【００１８】
この結合体の一実施形態において、化合物および標的分子は、１，２，３−トリアゾール基によって結合されている。
【００１９】
本発明は、上述の化合物または上述の結合体と錯体を形成する放射性核種を有するキレートも提供する。好ましくは、放射性核種は、アクチニウム２２５、ビスマス２１２、ビスマス２１３、鉛２０３、銅６４、銅６７、ガリウム６６、ガリウム６７、ガリウム６８、ルテチウム１７７、インジウム１１１、インジウム１１３、イットリウム８６およびイットリウム９０、ジスプロシウム１６２、ジスプロシウム１６５、ジスプロシウム１６７、ホルミウム１６６、プラセオジミウム１４２、プラセオジミウム１４３、プロメチウム１４９、およびテルビウム１４９から選択される。
【００２０】
本発明は、本発明に従う化合物の合成の方法も提供し、この合成は、２置換のアリール、ヘテロアリール、アルキル、または組み合わせＲ５、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応であって、ここでＲ４およびＲ５は上記と同じ意味を有し、Ｌ１は脱離基であり、Ｘは、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基である、またはそのような官能基の保護形態である、アルキル化；ならびに、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用するシクレンの他の窒素原子のアルキル化であって、ここでＲは、上記で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３であり、Ｌ２は脱離基である、アルキル化、を有する。好ましくは、合成は、２置換のアリールまたはヘテロアリール、Ｒ５、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応を有する。
【００２１】
シクレンを出発材料として使用する利点は、他の化合物、例えば非常に高価なＤＯＴＡトリスｔｅｒｔ−ブチルエステルと比較して、シクレンが比較的安価であることである。
【００２２】
合成の方法は、さらなるＲ５を含む基をシクレンと反応させるステップを伴い、シクレンの窒素原子の２〜４つはＬ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘと反応し、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は上記と同じ意味を持ち、シクレンの任意の残りの窒素原子は、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを用いてアルキル化され、Ｒは、上記で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３である。
【００２３】
本発明は、本発明の化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させることによって、本発明の結合体を合成する方法も提供する。この合成は、結合体と放射性核種との錯体形成でキレートを形成する前に行われてよい。あるいは、化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させる前に、本発明の化合物と放射性核種との錯体形成によってキレートを合成することが可能である。結合体と放射性核種の錯体形成の前に化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させることの利点は、放射性核種の操作に必要な注意を要さずに、最初にキレート剤がさらに操作（例、標的投与用に精製され処方される）されてよいことである。さらに、結合体は、使用のために異なる場所へ輸送される前に、中心となる場所において大量生産され得る。もう１つの利点は、化合物と放射性核種の錯体形成に使用される条件が非常に厳しいものであってよく、そうでなければ化合物に影響を与えかねないこれらの厳しい条件の前に最終的な結合体が形成されることである。
【００２４】
この方法の一実施形態において、遷移金属触媒の存在下で、化合物と標的分子が付加環化反応によって結合する。好ましくは、金属触媒は銅またはロジウムに基づいている。
【００２５】
本発明は、治療または診断において使用するためのキレートも提供する。
【００２６】
さらに、本発明は、過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療用の薬剤の調製におけるキレートの使用を提供する。
【００２７】
さらに、本発明は、過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療に使用するためのキレートを提供する。
【００２８】
好ましくは、上記の使用における状態は癌である。好ましくは、癌はホルモン応答性である。
【００２９】
本発明は、対象における過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断または治療の方法も提供し、この方法は、それぞれ診断上または治療上効果的な量の本発明に従うキレートの対象への投与を有する。
【００３０】
本発明は、本発明に従う結合体の合成における、本発明に従う化合物の使用を提供する。
【００３１】
さらに、本発明は、本発明に従うキレートの合成における、本発明に従う結合体の使用を提供する。
【００３２】
本発明は、結合体またはキレートも提供し、標的分子はペプチドである。
【００３３】
本発明は、１つ以上のジスルフィド架橋を有する標的分子への二官能性キレート剤の金属触媒による接合に続いて、二官能性キレート剤から金属触媒を脱キレート化する方法を提供し、この方法は、硫化ナトリウムを使用した金属イオンの除去および、続いて行われる、ジスルフィド架橋を再構築するための、ＮＨ３およびアセトニトリルと水を有する溶媒での処理から成る。好ましくは、二官能性キレート剤は、本発明の化合物である。
【００３４】
一実施例において、接合反応は、付加環化反応を伴う。
【００３５】
好ましくは、金属触媒は銅またはロジウムに基づいている。
【００３６】
最後に、本発明は、上述のように、複数のＲ５基を持つ化合物と、Ｒ５基を介して化合物に結合する２つ以上の標的分子とを有する結合体を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００３７】
ここで、一例にすぎないが、添付の図面を参照してより詳しく本発明を説明する。
【図１】４−アセチルフェニル−ＤＯＴＡ誘導体１および２、ならびにエチニルＤＯＴＡ誘導体３の構造を示す。
【図２】オキシムライゲーションによって得られた粗製ＤＯＴＡ結合体１９のＨＰＬＣトレースを示す。
【図３】１，３−双極付加環化と、続く脱保護（ステップ２、スキーム５）後に得られた粗製ＤＯＴＡ結合体２４のＨＰＬＣトレースを示す。
【図４】ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウス（ｎ＝５、競合試験ではｎ＝３）の３０分および６０分ｐ．ｉ．の［６８Ｇａ］１９の生体内分布を示す。データは、ｇ組織当たりの％注射用量（％ｉＤ／ｇ）で与えられ、平均値±ＳＤである。
【図５】ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウス（ｎ＝５）の３０分および６０分ｐ．ｉ．の［６８Ｇａ］１９に見られた腫瘍対非腫瘍比を示す。データは、平均値±ＳＤである。
【図６】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→８０％、３０分間。
【図７】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、３０分間。
【図８】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→１００％、３０分間。
【図９】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→８０％、３０分間。
【図１０】ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオテート誘導体１９のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、３０分間。
【図１１】ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオテート誘導体２４のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、６０分間。
【図１２】１，３−双極付加環化によって得られた粗製ＤＯＴＡ結合体２６のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、６０分間。
【図１３ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１３ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１４ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１４ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１５ａ】メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１５ｂ】メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１６ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１６ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１７ａ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１７ｂ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１８ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１８ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１９ａ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１９ｂ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２０ａ】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２０ｂ】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２１ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２１ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２２ａ】メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２２ｂ】メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２３ａ】メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２３ｂ】メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ａ】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ｂ−１】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ｂ−２】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２５】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（１６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２６ａ】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２６ｂ】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２７ａ】Ｎ−（３−アジドプロピル）スクシンアミド（２１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２７ｂ】Ｎ−（３−アジドプロピル）スクシンアミド（２１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【発明を実施するための形態】
【００３８】
高度に官能基化された生体分子への化学選択的結合を可能にする新規な二官能性ポリ（アミノカルボキシレート）キレート剤の便利な合成が説明される。周知のキレーター１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン−１，４，７，１０−四酢酸（ＤＯＴＡ）に基づいて、１当量のパラ位官能基化アルキル２−ブロモフェニルアセテートと３当量の市販のアルキル２−ブロモアセテートで１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（シクレン）をアルキル化することによって、さらなる官能基を有する新規な二官能性キレート剤を合成した。得られた化合物は、さらなるカルボニルおよびアルキン官能基をそれぞれ有し、保護されていない適切な官能基化生体分子の迅速な部位特異的標識を可能にする。これは、化学選択的オキシムライゲーションおよび１，３−双極付加環化（クリック化学）による、我々の新たなＤＯＴＡ誘導体のソマトスタチンアナログＴｙｒ３−オクトレオテートへの結合によって示された。マウスにおける初期生体内分布試験では、放射性金属化ペプチドを用いるｉｎ ｖｉｖｏ画像解析に対する、説明されたＤＯＴＡ接合の適合性が示された。
【００３９】
故に、我々の目標は、幅広い種類の官能基の存在下で化学選択的結合を可能にする新規なＤＯＴＡ誘導体を開発することであった。その結果、我々の方法を便利に、また広く用いられているが非常に高価なＤＯＴＡ−トリス（ｔｅｒｔ−ブチル）エステルの一般的な代替法とするために、安価な市販材料からわずかな合成ステップで容易に入手できる構造に焦点を当てた。さらに、対応する多官能性化合物が入手しやすいことは、我々の検討において重要な側面であった。オキシムライゲーション１６、１７だけでなくＨｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化１８、１９はよく研究されており、化学選択的カップリング用の強力な反応であって、我々の目的に要求される全てのものを満たしている。オキシムライゲーションは、オキシム結合の形成のもとのアミノオキシ成分とアルデヒドまたはメチルケトン２０間の高度に選択的な反応を意味し、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏの両方で適度に安定であることが知られている。この反応は、Ｎ末端のシステインを除くあらゆる遊離アミノ酸側鎖を許容することが示され、例えば、ｔｅｍｐｌａｔｅ ａｓｓｅｍｂｌｅｄ ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ２１、２２、放射性標識ペプチド結合体２３、２４、環状ペプチド２５、およびタンパク質アナログ２６、２７の合成における幅広い利用が見られた。トリアゾールの形成のためのアジドとアルキンの化学選択的Ｈｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化が、非常に有用な“クリック”反応として最近再認識され２８〜３０、医薬品化学における各種の開発における用途が見出されている。３１〜３６ＤＯＴＡ結合体合成のための様々な手法をユーザーに提供するために、我々は、上述の両反応タイプ用の適切なＤＯＴＡ誘導体に焦点を当てた。
【００４０】
故にこの報告では、我々は、化合物２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（１）および２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル（２）それぞれの、アミノオキシ官能基化化合物とのオキシムライゲーションのためのカルボニル成分としての合成と、アジド官能基化化合物との“クリック”反応のための２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−トリメチルシリルエチニル）酢酸メチルエステル（３）の合成を提示する（図１）。加えて、これらの誘導体を、それらのメチルケトン−およびアルキン−官能基を介して生体分子に結合させるために、化合物２および３は、１つの異なって官能基化されたカルボキシル基によるさらなる選択的修飾を可能にするであろう。両クラスの誘導体は、腫瘍診断および内部放射線療法の目的のために十分に確立された標的分子であるソマトスタチンアナログである、適切なＮ−末端が修飾された保護されていないＴｙｒ３−オクトレオテートと高度に選択的に反応することを証明した。３７〜４０それぞれの生体分子の受容体親和性に影響を与えない新しい放射性リガンドの合成に対する、前述の異なる化学選択的接合アプローチの適用性を示すために、Ｔｙｒ３−オクトレオテートアナログの１つを６８Ｇａで標識し、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおいて初期生体内分布試験で評価した。
【００４１】
実験手順
一般的事項。トリチルクロリドポリスチロール（ＴＣＰ）樹脂（０．９４ｍｍｏｌ／ｇ）をＰｅｐＣｈｅｍ（Ｔｕｅｂｉｎｇｅｎ、ドイツ）より購入した。カップリング試薬およびアミノ酸誘導体をＮｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ、Ｎｅｏｓｙｓｔｅｍ、およびＩＲＩＳ Ｂｉｏｔｅｃｈ ＧｍｂＨ、Ｍｅｒｃｋ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｐｅｒｓｅｐｔｉｖｅ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨ、およびＮｅｏｓｙｓｔｅｍより購入した。無水溶媒をＦｌｕｋａより購入した。その他全ての試薬および溶媒を、Ｍｅｒｃｋ、Ａｌｄｒｉｃｈ、およびＦｌｕｋａより購入し、そのまま使用した。無水溶媒を移すのに、標準的なシリンジ法を用いた。アルミバックプレート（Ｍｅｒｃｋシリカゲル６０Ｆ２５４）で薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）を行った。２５４ｎｍでのＵＶ吸収によって、またはモリブデン酸セリウムアンモニウム（ＣＡＭ）で呈色させて化合物を可視化した。シリカゲル６０（Ｍｅｒｃｋ、２３０〜４００メッシュ）（分離される材料１ｇに対しておよそ５０ｇ）で、指示された溶出剤を使用してフラッシュクロマトグラフィーを実施した。クロマトグラフィー用の溶媒を使用前に蒸留した。クロマトグラフィー用の溶出溶媒系は、体積／体積比として報告する。Ｏｍｎｉｃｒｏｍ ＹＭＣカラム（４．６ｍｍ×２５０ｍｍ、５μｍＣ１８、１ｍＬ／分）を使用して、非ペプチド化合物は２５４ｎｍで、ペプチド化合物は２２０ｎｍで検出しＲＰ−ＨＰＬＣ解析を行った。溶出剤は、水（０．１％ＴＦＡ）からアセトニトリル（０．１％ＴＦＡ）（３０分間）の直線的勾配とした。分析ＲＰ−ＨＰＬＣの保持時間（Ｒｔ）は分で示し、勾配はアセトニトリルの割合で記載する。ＮＭＲ：Ｂｒｕｋｅｒ ＡＣ−２５０、ＡＶ−３６０、ＡＶ−５００、およびＤＭＸ５００。１Ｈおよび１３ＣのＮＭＲスペクトルを周辺温度で記録した。スペクトルを、それらのそれぞれの溶媒シグナル（ＣＤＣｌ３：１Ｈ ７．２６ｐｐｍ、１３Ｃ ７７．０ｐｐｍ、ＭｅＯＨ−ｄ４：１Ｈ ３．３１ｐｐｍ、１３Ｃ ４９．０５ｐｐｍ）にキャリブレーションした。化学シフト（δ）は、１００万分の１（ｐｐｍ）で報告し、カップリング定数（Ｊ値）はヘルツ（Ｈｚ）で与える。多重度を説明するために以下の略号を使用した：ｓ、シングル、ｄ、ダブレット、ｔ、トリプレット、ｑ、カルテット、ｄｄ、ダブレットのダブレット、ｄｔ、トリプレットのダブレット、ｍ、マルチプレット、ｂ、ブロード。ＭＳ：Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＭＡＴ８２００（ＥＩ）、Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＬＣＱ（ＥＳＩ）。Ｂｒｕｋｅｒ Ｕｌｔｒａｆｌｅｘ ＴＯＦ／ＴＯＦでペプチド配列解析を行った。
【００４２】
メチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）。アルゴン雰囲気下、メチル２−ブロモアセテート（３．５５ｍＬ、３７．５ｍｍｏｌ、１．０当量）、Ｐｄ（ＯＡｃ）２（２５２ｍｇ、１．１３ｍｍｏｌ、３ｍｏｌ％）、Ｐ（ｏ−トリル）３（１．０２ｇ、３．３５ｍｍｏｌ、９ｍｏｌ％）およびＫ２ＣＯ３（２６．０ｇ、０．１９ｍｍｏｌ、５．０当量）を含むＴＨＦ（１２０ｍＬ）の懸濁液に、４−アセチルフェニルボロン酸（７．３８ｇ、４５．０ｍｍｏｌ、１．２当量）を含むＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１２０ｍＬ／１．７ｍＬ）の溶液を１時間にわたり滴下しながら加えた。室温で１８時間攪拌後、混合物を濾過し、溶媒を減圧下で除去した。残渣をＥｔＯＡｃ（２５０ｍＬ）に取り、次いで飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（１５０ｍＬ）、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（１５０ｍＬ）および食塩水で洗浄した。ＭｇＳＯ４で乾燥させた後、有機層を短いシリカゲルカラムで濾過して濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８）で、５（４．７３ｇ、６６％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１３（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ４４−４４°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９１（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．３６（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．６８（ｓ，２Ｈ），２．５７（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．５，１７１．１，１３９．２，１３６．０，１２９．４（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），５２．１，４０．９，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１２Ｏ３の理論値 １９２．０７８６４；実測値 １９２．０７８６３。
【００４３】
メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）。５（３．００ｇ、１５．６ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＣＣｌ４（３００ｍＬ）の溶液に、Ｎ−ブロモスクシンイミド（３．３６ｇ、１８．９ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＢｒ２（２滴）を加えた。混合物を還流するまで加熱し、５００Ｗのハロゲンランプで１０分間照射し、還流しながらさらに５０分間攪拌した。室温まで冷却した後反応溶液を濾過し、溶媒を濃縮し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：４）で精製して、７（３．７５ｇ、８９％）を黄白色の油として得た。Ｒｆ＝０．１８（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９４（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．６３（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），５．３８（ｓ，１Ｈ），３．７９（ｓ，３Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．１，１６８．２，１４０．４，１３７．５，１２８．９，１２８．６，５３．５，４５．３，２６．６；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１１８１ＢｒＯ３の理論値 ２７１．９８７１２；実測値 ２７１．９８７１６，ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１１７９ＢｒＯ３の理論値 ２６９．９８９１７；実測値 ２６９．９８８６３。
【００４４】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（７６２ｍｇ、４．４３ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＫ２ＣＯ３（１．２７ｇ、９．２２ｍｍｏｌ、２．５当量）を含むＤＭＦ（１００ｍＬ）の懸濁液に、７（１．００ｇ、３．６９ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（６０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過して減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：７→７：１、１％ＮＥｔ３）で９（８２９ｍｇ、６２％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ３２−３５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ８．０４（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．４５（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），５．０２（ｓ，１Ｈ），３．７７（ｓ，３Ｈ），３．３７−３．３０（ｍ，２Ｈ），３．２４−３．１０（ｍ，４Ｈ），３．０９−３．０１（ｍ，４Ｈ），３．００−２．９４（ｍ，４Ｈ），２．６３（ｍ，５Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １９９．８，１７４．１，１３９．６，１３８．４，１３１．２（２ Ｃ），１２９．８（２ Ｃ），６６．５，５３．２，４８．０（２ Ｃ），４６．３（２ Ｃ），４３．８（２ Ｃ），４３．８（２ Ｃ），２６．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ１９Ｈ３０Ｎ４Ｏ３の理論値 ３６２．２；実測値 ３６３．２ ［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００４５】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチル−フェニル）アセテート（１１）。室温の９（７２３ｍｇ、１．９９ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（１．２４ｇ、８．９８ｍｍｏｌ、４．５当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（０．９７ｍＬ、６．５８ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過して減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：１０→７：１、１％ＮＥｔ３）で、１１（８３ｍｇ、８３％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→８０％） Ｒｔ＝１７．４；Ｒｆ＝０．８３（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７３−７５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９５（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．１６（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），４．７５（ｓ，１Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．５９（ｄ，Ｊ＝１７．４ Ｈｚ，１Ｈ），３．４２（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．３９（ｄ，Ｊ＝１７．４ Ｈｚ，１Ｈ），３．２４−３．０５（ｍ，３Ｈ），３．０２−２．６８（ｍ，６Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），２．５７−２．４２（ｍ，４Ｈ），２．３５−２．２５（ｍ，２Ｈ），２．２５−２．１５（ｍ，２Ｈ），２．１４−２．０５（ｍ，２Ｈ），１．４８（ｓ，９Ｈ），１．４５（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．４，１７４．５，１７３．６，１７３．１，１７２．９，１３６．９，１３６．７，１３０．２（２Ｃ），１２８．３（２Ｃ），８２．５，８２．２，８２．１，７７．２，６４．８，５５．９，５５．７，５５．５，５２．７，５２．４，５２．３，４８．５，４８．０，４７．９，４７．８，４４．６，２７．９（３Ｃ），２７．８（３Ｃ），２７．７（３Ｃ），２６．６；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ３の理論値 ４０４．２７８７５；実測値 ４０４．２７９５１。
【００４６】
（Ｒ／Ｓ）−２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチルフェニル）酢酸・１／２ＡｃＯＨ（２）。室温の１１（２６．０ｍｇ、３１．７μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（５ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（１．７５ｍｇ、７２．９μｍｏｌ、２．３当量）を含む水（１５０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。減圧下で濃縮後、粗生成物を分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→６０％、３０分間）で精製し、酢酸を凍結乾燥して除き、２（９．０ｍｇ、３８％、回収された１１に関して６６％）を無色の固体として得た。９４％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝２５．７；ｍｐ ６８−７２°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ８．０６（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．６３（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），５．１２（ｓ，１Ｈ），４．０４−３．３４（ｍ，８Ｈ），３．３４−３．１８（ｍ，４Ｈ），３．１５−２．６６（ｍ，１０Ｈ），２．６３（ｓ，３Ｈ），１．９９（ｓ，１／２×３Ｈ（ＡｃＯＨ）），１．５３（ｓ，９Ｈ），１．５２（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １９９．７，１７５．２，１７２．７，１７０．４（ｂｒ，３Ｃ），１３８．８（２Ｃ），１３２．７（２Ｃ），１２９．８（２Ｃ），８４．１（ｂｒ，３Ｃ），６９．９，５６．５，５２．９−５１．０（ｂｒ，８Ｃ），２０．５（９Ｃ），２６．８，２０．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ３６Ｈ５８Ｎ４Ｏ９の理論値 ６９０．４；実測値 ６９１．４ ［Ｍ＋Ｈ］＋，７１３．４ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，７２９．３ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００４７】
メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）。（４−ヨードフェニル）酢酸（１２）（１５．０ｇ、５７．０ｍｍｏｌ）を含む無水メタノール（５０ｍＬ）の溶液に、ＳＯＣｌ２（２０．７ｍＬ、２８５ｍｍｏｌ、５当量）を０℃で滴下しながら加えた。室温で１時間攪拌後、減圧下で溶媒を除去し、残渣をＥｔ２Ｏ（４００ｍＬ）に溶解した。次いで、有機層を飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（４００ｍＬ）、飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（４００ｍＬ）、および食塩水（４００ｍＬ）で洗浄し、ＭｇＳＯ４で乾燥させた。減圧下で濃縮し１３（１４．７ｇ、９３％）を得た。Ｒｆ＝０．５７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．６５（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．０３（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．５６（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １７１．３，１３７．６，１３３．５，１３１．２，９２．５，５２．０，４０．５。
【００４８】
１−アジド−３−アミノプロパン（２０）。文献の手順（５６）を若干変更した：１−ブロモ−３−アミノプロパン臭化水素酸塩（５．４７ｇ、２５．０ｍｍｏｌ、１．０当量）およびアジ化ナトリウム（３．２５ｇ、５０．０ｍｍｏｌ、２．０当量）を含む２０ｍＬの水溶液を、８０℃で２４時間加熱した。反応混合物を氷浴で冷却後、ジエチルエーテル（３０ｍＬ）を加えた。温度を１０℃未満に保ちながら、ＫＯＨペレットの添加によってｐＨを１４に調節した。有機層の分離後、ジエチルエーテルで水分をさらに抽出した。集めた有機層をＭｇＳＯ４で乾燥させ、真空中で注意深く濃縮した。残った油は、２１．０ｍｍｏｌ（８４％）の２０と、およそ等モル量のジエチルエーテルを含み（プロトンＮＭＲの積分に基づく）、それ以上精製せずに使用した。分光分析データは、文献２０と同一であった。
【００４９】
３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸（２１）。２０（５０１ｍｇ、５．００ｍｍｏｌ、１．１当量）およびＮＥｔ３（６９３μＬ、５．００ｍｍｏｌ、１．１当量）を含む１０ｍＬのアセトンの溶液に、無水コハク酸（４６０ｍｇ、４．５５ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む５ｍＬのアセトンの溶液を、室温で１５分間にわたって加えた。反応混合物を室温でさらに１５時間攪拌した。真空中で濃縮後、残渣を希釈ＨＣｌ水溶液（２０ｍＬ）と酢酸エチル（２０ｍＬ）の間に区分化して分離し、水層を酢酸エチルでさらに抽出した（２×１０ｍＬ）。集めた有機層の濃縮後、２１（６５３ｍｇ、３．２７ｍｍｏｌ、７１％）を白色固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ３．３４（ｔ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ），３．２４（ｔ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ），２．５９（ｄｔ，Ｊ＝６．５ Ｈｚ，１．１ Ｈｚ，２Ｈ），２．４４（ｄｔ，Ｊ＝６．７ Ｈｚ，１．３ Ｈｚ，２Ｈ），１．７４（ｑ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７６．２，１７４．７，５０．０，３７．７，３１．５，３０．２，２９．７；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ１１Ｈ１２Ｏ３の理論値 ２００．１；実測値 ２０１．１（Ｍ＋Ｈ＋）。
【００５０】
ペプチド合成
標準的なＦｍｏｃストラテジー（５７〜６０）に従い、ＴＣＰ−樹脂を用いてペプチド合成を行った。
【００５１】
ＴＣＰ樹脂へのＮ−Ｆｍｏｃ−アミノ酸の結合。一般的手順Ｉ。
【００５２】
無水ＤＣＭ（１０ｍＬ）で２０分間膨潤させた後、ＴＣＰ樹脂（２．００ｇ、理論上０．９６ｍｍｏｌ／ｇ、１．９２ｍｍｏｌ）を、Ｆｍｏｃ保護アミノ酸（１．２当量、２．３ｍｍｏｌ）を含む無水ＤＣＭ（１９ｍＬ）溶液およびＤＩＰＥＡ（９８０μＬ、３当量、５．８ｍｍｏｌ）で、室温にて２時間処理した。ＭｅＯＨ（２ｍＬ）およびＤＩＰＥＡ（０．４ｍＬ）を加えてフリー部位にキャップをし、反応混合物を１５分間振盪した。樹脂をＮＭＰ（３×１０ｍＬ）、ＤＣＭ（５×１０ｍＬ）、およびＭｅＯＨ（３×１０ｍＬ）で洗浄し、真空下で乾燥させ、樹脂結合Ｎ−Ｆｍｏｃアミノ酸を得た。
【００５３】
Ｆｍｏｃの脱保護。一般的手順ＩＩ。
【００５４】
Ｆｍｏｃ保護樹脂を、２０％ピペリジンを含むＮＭＰの溶液１０ｍＬで処理し（３×１０分間）、ＮＭＰで洗浄した（５×１０ｍＬ）。
【００５５】
ＴＢＴＵ／ＨＯＢｔとのカップリング。一般的手順ＩＩＩ。
【００５６】
Ｆｍｏｃアミノ酸（２．５当量）、ＴＢＴＵ（２．５当量）、ＨＯＢｔ（２．５当量）、およびＤＩＰＥＡ（７当量）をＮＭＰに溶解して０．２ｍｍｏｌ／Ｌ溶液を得、これを樹脂に加えた。反応混合物を室温にて９０分間振盪し、ＮＭＰで洗浄した（５×１０ｍＬ）。
【００５７】
トリフルオロ酢酸での切断と脱保護。一般的手順ＩＶ。
【００５８】
樹脂をＤＣＭで洗浄し（３×１０ｍＬ）、ＴＦＡ、Ｈ２Ｏ、およびトリイソプロピルシラン（９０：５：５、ｖ／ｖ／ｖ、２０ｍＬ）の混合物で３回×１０分間処理した。濾過による樹脂の除去後、濾液を集め、さらに９０分間攪拌した。溶媒を減圧下で濃縮し、Ｅｔ２Ｏでペプチドを沈殿させた。
【００５９】
直鎖ペプチドのジスルフィド環化。一般的手順Ｖ。
【００６０】
直鎖ペプチドを高希釈（ｃ＝１ｍＭ）で水に溶解し、濃縮ＮａＨＣＯ３水溶液を加えてｐＨを７〜８に調節した。次に、３０％のＨ２Ｏ２水溶液（３当量）を、激しく攪拌しながら滴下して加えた。３０分後に反応を停止させ、凍結乾燥によって溶媒を除去した。
【００６１】
シクロ［２，７］−ＡｏｘＡｃ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（１８）およびシクロ［２，７］−３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（２３）の合成。直鎖ペプチド配列、Ｈ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨを、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の方法で固相上に合成した。手順ＩＶに従って、サンプルを樹脂から切断し、ペプチド配列をＭＡＬＤＩ−ＴＯＦペプチド配列解析で確認した。ＭＳ（ＭＡＬＤＩ） Ｃ４９Ｈ６６Ｎ１０Ｏ１２Ｓ２の理論値 １０５０．４３；実測値 １０５１．４０ ［Ｍ＋Ｈ］＋．さらなる手順では、樹脂を２つの部分に分けた：
１）シクロ［２，７］−ＡｏｘＡｃ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（１８）：（Ｂｏｃ−アミノオキシ）酢酸を、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法で上記の樹脂結合ペプチドの一部にカップリングさせ、直鎖ペプチドを、手順ＩＶに従って樹脂から切断した。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。ステップＩＶおよびＶで使用する全ての溶媒の品質に十分注意しなくてはならない（ＨＰＬＣ品質）。小バッチの粗生成物を精製し、半分取（ｓｅｍｉｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ）ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）による精製後にアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオテート１８を無色の固体として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１７．３；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ５１Ｈ６７Ｎ１１Ｏ１４Ｓ２の理論値 １１２１．４３；実測値 １１２２．５ ［Ｍ＋Ｈ］＋，５６２．１ ［（２Ｍ＋２Ｈ）／２］２＋。
２）シクロ［２，７］−３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（２３）。２１を、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法で上記の樹脂結合ペプチドの一部にカップリングさせ、直鎖ペプチドを手順ＩＶに従って樹脂から切断した。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→６０％、３０分間）による精製後に、ペプチドを無色の固体として得た。９６％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→５０％） Ｒｔ＝２５．０；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ５６Ｈ７４Ｎ１４Ｏ１４Ｓ２の理論値 １２３０．５０；実測値 １２３１．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１２５３．６ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，１２６９．３ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００６２】
３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ（２５）の合成：直鎖ペプチドを、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法にて固相上で合成し、手順ＩＶに従って樹脂から切断した。半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）による精製後に、ペプチドを無色の固体として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％，３０分） Ｒｔ＝１６．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ３８Ｈ５０Ｎ１０Ｏ１０の理論値 ８０６．３７；実測値 ８０７．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，８２９．５ ［Ｍ＋Ｎａ］＋。
【００６３】
ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ誘導体２６の合成。室温の３（３．１ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（０．２ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（０．３ｍｇ、１４μｍｏｌ、３．４当量）を含む水（３０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。次に、水（０．２ｍＬ）、ペプチド２２（３．８ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）、０．１Ｍ ＣｕＳＯ４水溶液（４９μＬ、４．９μｍｏｌ、１．２当量）および銅粉末（１０ｍｇ）を加え、混合物を１８時間攪拌した。この後、銅粉末を濾別し、Ｎａ２Ｓ（Ｎａ２Ｓ・９Ｈ２Ｏ、１２ｍｇ、４９μｍｏｌ、１２．０当量）を加えて溶解した銅塩を沈殿させた。混合物を濾過し、溶媒を減圧下で除去した。ｔｅｒｔ−ブチルエステルを、ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ混合物（９５：５：５、ｖ／ｖ／ｖ、１ｍＬ）で２時間処理することで切断した。その後、溶液を減圧下で濃縮し、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に２３（３．２２ｍｇ、５１％）を無色の粉末として得た。９５％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１２．６；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ６２Ｈ８２Ｎ１４Ｏ１８の理論値 １３１０．５９；実測値 ６５６．９ ［（Ｍ＋２Ｈ）／２］＋，６６７．９ ［（Ｍ＋Ｈ＋Ｎａ）／２］＋，１３１１．８ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１３３３．６ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，１３４９．５ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００６４】
ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）。アルゴン雰囲気下のｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（６．８０ｍＬ、４６．４ｍｍｏｌ、１．０当量）、Ｐｄ（ＯＡｃ）２（３３６ｍｇ、１．５０ｍｍｏｌ、３ｍｏｌ％）、Ｐ（ｏ−トリル）３（１．３６ｇ、４．４６ｍｍｏｌ、１０ｍｏｌ％）、およびＫ２ＣＯ３（３４．６ｇ、０．２５ｍｍｏｌ、５．４当量）を含むＴＨＦ（１６０ｍＬ）の懸濁液に、４−アセチルフェニルボロン酸（４）（９．８４ｇ、６０．０ｍｍｏｌ、１．３当量）を含むＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１６０ｍＬ／２．２ｍＬ）の溶液を１時間にわたり滴下しながら加えた。室温で１８時間攪拌後、混合物を濾過し、減圧下で溶媒を除去した。残渣をＥｔＯＡｃ（２５０ｍＬ）に取り、次に飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（１５０ｍＬ）、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（１５０ｍＬ）および食塩水で洗浄した。ＭｇＳＯ４で乾燥させた後、有機層を、シリカゲルを通して濾過し濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８）で、６（６．７８ｇ、６３％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ５０−５２°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９２（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．３７（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），３．５８（ｓ，２Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），１．４３（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．７，１７０．０，１４０．１，１３５．８，１２９．４（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），８１．２，４２．６，２８．０，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１８Ｏ３の理論値 ２３４．１２５５９；実測値 ２３４．１２５３２。
【００６５】
ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）。６（２．８４ｇ、１２．１ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＣＣｌ４（２５０ｍＬ）の溶液に、Ｎ−ブロモスクシンイミド（２．５８ｇ、１４．５ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＢｒ２（２滴）を加えた。混合物を還流するまで加熱し、５００Ｗのハロゲンランプで１０分間照射し、還流しながらさらに５０分間攪拌した。室温まで冷却した後、反応溶液を濾過し、溶媒を濃縮し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：１０）で精製して、８（３．３４ｇ、８８％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ５４−５６°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９３（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．６２（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），５．２７（ｓ，１Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），１．４５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．２，１６６．６，１４１．１，１３７．３，１２８．８（２Ｃ），１２８．６（２Ｃ），８３．５，４７．１，２７．６，２６．６；ＭＳ（ＥＩ） ｍ／ｚ（％） ３１４（＜１） ［Ｍ（８１Ｂｒ）］＋，３１２（＜１） ［Ｍ（７９Ｂｒ）］＋，２４１（１０） ［Ｍ（８１Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］＋，２３９（８） ［Ｍ（７９Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］＋；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１０Ｈ８８１ＢｒＯ２ ［Ｍ（８１Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］の理論値 ２４０．９６８７２；実測値 ２４０．９６８３３，ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１０Ｈ８７９ＢｒＯ２ ［Ｍ（７９Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］の理論値 ２３８．９７０７６；実測値 ２３８．９７０７４。
【００６６】
（Ｒ／Ｓ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（３３１ｍｇ、１．９２ｍｍｏｌ、１．２当量）とＫ２ＣＯ３（５５２ｍｇ、３．９９ｍｍｏｌ、２．５当量）を含むＤＭＦの懸濁液に、８（５００ｍｇ、１．６０ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：７→７：１、１％ＮＥｔ３）で、１０（４８８ｍｇ、７５％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ３３−３６°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９１（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．４３（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），４．６２（ｓ，１Ｈ），２．９０−２．６７（ｍ，１１Ｈ），２．６４−２．４４（ｍ，１０Ｈ），１．４７（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．４，１７０．７，１４２．３，１３６．４，１２９．３，１２８．３，８１．９，６７．８，４９．３，４７．７，４５．９，４５．８，２８．１，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ３の理論値 ４０４．２７８７５；実測値 ４０４．２７９５１。
【００６７】
（Ｒ／Ｓ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）。室温の１０（７００ｍｇ、１．７３ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（１．０８ｍｇ、７．７９ｍｍｏｌ、４．５当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（０．８４ｍＬ、５．７１ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（２０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ ９：１、１％ＴＥＡ）で、１１（９３０ｍｇ、７２％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→１００％） Ｒｔ＝２２．０；Ｒｆ＝０．８３（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７０−７１°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９４（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．１１（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），４．６６（ｓ，１Ｈ），３．６０（ｄ，Ｊ＝１７．３ Ｈｚ，１Ｈ），３．４５（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），３．３８（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．２２−３．０５（ｍ，３Ｈ），２．９８−２．７０（ｍ，６Ｈ），２．６１（ｓ，３Ｈ），２．６１−２．４８（ｍ，２Ｈ），２．４６−２．３８（ｍ，１Ｈ），２．３６−２．２４（ｍ，２Ｈ），２．２２−２．０４（ｍ，５Ｈ），１．４９（ｓ，９Ｈ），１．４８（ｓ，９Ｈ），１．４６（ｓ，９Ｈ），１．３９（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．６，１７３．４，１７３．１，１７３．０，１７２．９，１３７．２，１３６．６，１３０．３（２Ｃ），１２８．１（２Ｃ），８２．９，８２．２，８２．１，８２．０，６５．４，５６．０，５５．８，５５．５，５２．７，５２．４，５２．１，４８．５，４８．１，４８．０，４７．９，４４．５，２７．９（３Ｃ），２７．８（６Ｃ），２７．７（３Ｃ），２６．６；ＭＳ（ＥＩ） ｍ／ｚ（％） ７４６．０（９） ［Ｍ］＋，６４５．１（４７） ［Ｍ−ＣＯ２ｔＢｕ］＋；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ３５Ｈ５７Ｎ４Ｏ７ ［Ｍ−ＣＯ２ｔＢｕ］の理論値 ６４５．４２２７３；実測値 ６４５．４２２５７。
【００６８】
メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）。０℃のメチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）（１２．８ｇ、４５ｍｍｏｌ、１．０当量）、トリメチルシリル−アセチレン（９．３０ｍＬ、６７．５ｍｍｏｌ、１．５当量）およびＴＥＡ（１４．９ｍＬ、１０８ｍｍｏｌ、２．４当量）を含む無水ＣＨ３ＣＮ（１２０ｍＬ）の溶液に、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４（３．６ｇ、３．１５ｍｍｏｌ、０．０７当量）およびＣｕＩ（６．００ｇ、３１．５ｍｍｏｌ、０．７当量）を加えた。０℃で３０分間、および室温で３時間攪拌後、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）を溶出剤として使用してシリカの短いカラムに通して混合物を濾過した。減圧下で溶媒を除去し、残渣をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８０→１：２０）で精製して、１４（１０．３ｇ、９３％）を黄白色の結晶として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：１０）；ｍｐ ５５−５８°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．４２（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．２１（ｄ，Ｊ＝８．５ Ｈｚ，２Ｈ），３．６８（ｓ，３Ｈ），３．６１（ｓ，２Ｈ），０．２５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １７１．４，１３４．３，１３２．０（２Ｃ），１２９．１（２Ｃ），１２２．０，１０４．７，９４．２，５２．０，４１．０，−０．０（３Ｃ）；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１８Ｏ２Ｓｉの理論値 ２４６．１０７６１；実測値 ２４６．１０７４４。
【００６９】
メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）。−７８℃の１４（２．０７ｇ、８．４０ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＴＨＦ（２０ｍＬ）の溶液に、ＬＤＡ（ＴＨＦ／ｎ−ヘプタン／エチルベンゼン中の２Ｍ溶液、５．０４ｍＬ、１０．１ｍｍｏｌ、１．２当量）を加えて、溶液を１時間攪拌した。この後、Ｎ−ブロモスクシンイミド（１．７９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ、１．２当量）を含む無水ＴＨＦ（２０ｍＬ）の懸濁液を加え、１８時間にわたって混合物を室温まで温めた。減圧下で溶媒を除去し、残渣をＣＣｌ４（３０ｍＬ）に懸濁し、濾過し、蒸発させた。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８０→１：２０、１％ＮＥｔ３）による精製で、１５（１．２８ｇ、４７％、回収された１４に関して９２％）を得た。Ｒｆ＝０．４２（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：１０）；ｍｐ ８２−８４°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．４７（ｄ，Ｊ＝８．７ Ｈｚ，２Ｈ），７．４４（ｄ，Ｊ＝８．７ Ｈｚ，２Ｈ），５．３２（ｓ，１Ｈ），３．７７（ｓ，３Ｈ），０．２５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １６８．３，１３５．７，１３２．２（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），１２４．２，１０４．１，９５．８，５３．３，４５．８，４５．８，−０．１（３Ｃ）；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１７８１ＢｒＯ２Ｓｉの理論値 ３２６．０１６０８；実測値 ３２６．０１６２２。
【００７０】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１６）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（シクレン）（５４８ｍｇ、３．１８ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＫ２ＣＯ３（４３９ｍｇ、３．１８ｍｍｏｌ、１．２当量）を含むＤＭＦ（６０ｍＬ）の懸濁液に、１５（８６２ｍｇ、２．６５ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：９→９：１、１％ＮＥｔ３）で、１６（５９０ｍｇ、５３％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７０−７５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ７．４９（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．３０（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），４．９０（ｓ，１Ｈ），３．７８（ｓ，３Ｈ），３．２１−３．０１（ｍ，６Ｈ），３．０１−２．８２（ｍ，８Ｈ），２．７１−２．６２（ｍ，２Ｈ），０．２３（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７４．２，１３５．６，１３３．２（２Ｃ），１３０．８（２Ｃ），１２４．９，１０５．４，９５．９，６７．２，５３．０，４８．４（２Ｃ），４７．０（２Ｃ），４４．９（２Ｃ），４４．４（２Ｃ），−０．０（３Ｃ）；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ２Ｓｉの理論値 ４１６．３；実測値 ４１７．４ ［（Ｍ＋Ｈ）］＋，４３９．４ ［（Ｍ＋Ｎａ）］＋。
【００７１】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）。室温の１６（５３０ｍｇ、１．２７ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（６３４ｍｇ、４．５７ｍｍｏｌ、３．６当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（６１５μＬ、４．１９ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（２０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過して減圧下で濃縮し、残渣をＴＨＦ（２０ｍＬ）に溶解した。その後、フッ化テトラブチルアンモニウム（４８１ｍｇ、１．５２ｍｍｏｌ、１．２当量）を加え、１５分間の攪拌後、溶媒を除去し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：１０、１％ＮＥｔ３）で精製して、３（５０８ｍｇ、８５％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→１００％） Ｒｔ＝２０．０；Ｒｆ＝０．２８（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，１：９，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ６３−６８°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ７．４８（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．２０（ｄ，Ｊ＝８．０ Ｈｚ，２Ｈ），４．８３（ｓ，１Ｈ），３．７５（ｄ，Ｊ＝１７．２ Ｈｚ，１Ｈ），３．７４（ｓ，３Ｈ），３．５５（ｓ，１Ｈ），３．５４（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．５１（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），３．２６−３．２１（ｍ，１Ｈ），３．１８−３．０５（ｍ，４Ｈ），２．９９−２．９２（ｍ，３Ｈ），２．８９（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），２．８７（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），２．７４−２．６３（ｍ，２Ｈ），２．３３（ｄ，Ｊ＝１１．５ Ｈｚ，１Ｈ），２．２８−２．１２（ｍ，４Ｈ），２．１２−２．０５（ｍ，２Ｈ），１．５４（ｓ，９Ｈ），１．５２（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７６．３，１７５．４，１７５．１，１７４．７，１３４．１，１３２．８，１３１．７，１２３．８，８３．８，８３．５，８３．１，７９．７，６６．４，５９．６１，５９．５９，５９．５７，５７．１，５６．８，５６．７，５４．２，５３．９，５３．７，５３．２，４５．９，２８．５，２８．４，２８．３，２４．８；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ３７Ｈ５８Ｎ４Ｏ８の理論値 ６８６．４２５４６；実測値 ６８６．４２５３２。
【００７２】
化学選択的オキシムライゲーション。ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート誘導体１９の合成。１（３．３ｍｇ、４．５μｍｏｌ、１．０当量）を、１０ＮのＨＣｌ水溶液を含むジオキサン（５０／５０、ｖ／ｖ、２ｍＬ）中で１８時間脱保護した後、溶媒を減圧下で除去した。残渣をＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、０．２ｍＬ、ＨＰＬＣグレード）にｐＨ４（ＴＦＡ、ＨＰＬＣグレード）で溶解し、１８（６．１ｍｇ、４．５μｍｏｌ、１．０当量）を加えた。１８時間攪拌後、溶媒を濃縮して、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に１９（６．１ｍｇ、７３％）を無色の粉末として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１８．１；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ７５Ｈ９９Ｎ１５Ｏ２２Ｓ２の理論値 １６２５．７；実測値 １６２６．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１６６４．６ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００７３】
化学選択的１，３−双極付加環化。（“クリック”化学）。ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート誘導体２４の合成。室温の３（３．１ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（０．２ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（０．３３ｍｇ、１４μｍｏｌ、３．４当量）を含むＨ２Ｏ（３０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。次いで、Ｈ２Ｏ（０．２ｍＬ）、ペプチド２５（５．５ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）、０．１Ｍ ＣｕＳＯ４水溶液（４９μＬ、４．９μｍｏｌ、１．２当量）および銅粉末（１０ｍｇ）を加えて、混合物を１８時間攪拌した。この後、銅粉末を濾別し、減圧下で溶媒を除去し、ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏの混合物（９５：５：５、ｖ／ｖ、１ｍＬ）で２時間処理することによってｔｅｒｔ−ブチルエステルを切断した。溶媒を再度除去し、残渣をＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、１ｍＬ）に取り、Ｎａ２Ｓ（Ｎａ２Ｓ・９Ｈ２Ｏ、１２ｍｇ、４９μｍｏｌ、１２．０当量）を加えて銅塩を沈殿させた。混合物を濾過し、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に直鎖状の２４（３．０ｍｇ、３７％）を無色の粉末として得た。ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ／ＤＭＳＯ（１：１：０．１、４ｍＬ）中で４８時間攪拌することによって、直鎖状ペプチドを定量的収率で再環化した。ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：２、ｖ／ｖ、１０ｍＬ、ｐＨ１〜３（ＴＦＡ））から蒸発および凍結乾燥させた後、２４（３．０ｍｇ、２５から３７％）を白色粉末として分離した。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１６．１；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ８０Ｈ１０６Ｎ１８Ｏ２２Ｓ２の理論値 １７３４．７；実測値 ８６８．８ ［（Ｍ＋２Ｈ）／２］＋，１７３５．５ ［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００７４】
１９の６８Ｇａ−標識。６８ＧａＣｌ３を、インハウスの“ＯＢＮＩＮＳＫ” ６８Ｇｅ／６８Ｇａジェネレーター（１．４８ＧＢｑ、Ｃｈｅｍｏｔｒａｄｅ Ｃｈｅｍｉｅｈａｎｄｅｌｓｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ＧｍｂＨ、ライプチヒ、ドイツ）から、０．１ＮのＨＣｌで溶出した。６８Ｇａ標識については、最初にジェネレーター溶出液を最終量がおよそ２００μＬになるように真空中で濃縮した。通常は行わないものの、この実験的研究に使用された古いジェネレーターによってもたらされた比較的少ない６８Ｇａ放射活性を完全に活用できるようにするためにはこの濃縮ステップが必要であった。次に、６８Ｇａ活性を２３０μＬの０．１Ｎ ＮａＯＡｃ（ｐＨ＝４．５）で希釈し、８０μＬの１Ｎ ＮａＯＨを加えることによってｐＨ３．５に緩衝した。２．２μＬの０．７ｍＭペプチド１９ストック溶液（１．５ｎｍｏｌ（３μｇ）のペプチドに相当する）を加えた後、反応混合物を１５分間９５℃に加熱した。室温まで冷却後、反応混合物を２ｍＬの水で希釈した。未反応の６８Ｇａ活性を除去するために、標識ペプチド［６８Ｇａ］１９をＳｅｐ−Ｐａｋ Ｃ−１８カートリッジ上に固定化し、１０ｍＬの水で洗浄し、２ｍＬのエタノールで溶出した。マウス注射用のエタノールを含まない溶液を得るために、溶媒を真空中で蒸発させ、最終的な放射能濃度が３８μＣｉ／１００μＬとなるように生成物を２ｍＬのＰＢＳに再溶解した。Ｓｙｋａｍ勾配ＨＰＬＣシステム（Ｓｙｋａｍ ＧｍｂＨ、フルスランフェルドブルック、ドイツ）およびＵＶＩＳ２００フォトメーター（Ｌｉｎｅａｒ（商標）Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ、リーノ−、米国）を使用して、Ｎｕｃｌｅｏｓｉｌ １００Ｃ１８（５μｍ、１２５×４．０ｍｍ）カラムで品質管理用の分析ＨＰＬＣを行った。放射活性測定については、ＵＶフォトメーターのアウトレットをＮａ（Ｔｌ）ウェルタイプシンチレーションカウンターＡｃｅ Ｍａｔｅ（商標）９２５−Ｓｃｉｎｔ（ＥＧ＆Ｇ Ｏｒｔｅｃ、ミュンヘン、ドイツ）に接続した。使用した溶出剤は、Ｈ２Ｏ（０．１％ＴＦＡ、溶媒Ａ）およびＣＨ３ＣＮ（０．１％ＴＦＡ、溶媒Ｂ）で、勾配は：０〜２分間が０％Ｂ、２〜９分間が０〜４０％Ｂ、９〜１５分間が４０％Ｂとした。１ｍＬ／分の一定流量でペプチドを溶出した。ＵＶ検出波長は２２０ｎｍであった。Ｒｔ（［６８Ｇａ］１９）＝１５．３分；Ｋ’ ＝ ８．１３。
【００７５】
動物実験。その高いｓｓｔ２−ソマトスタチン受容体発現のため、ラット膵臓腫瘍細胞株ＡＲ４２Ｊを腫瘍モデルとして使用した。５５腫瘍増殖を確立するため、１ｍＭ ＥＤＴＡを含むＰＢＳを用いて細胞を培養フラスコの表面から剥がし、遠心分離して、無血清培地（ＲＰＭＩ−１６４０、Ｂｉｏｃｈｒｏｍ、ベルリン、ドイツ）に再懸濁した。細胞懸濁液の濃度は３．７×１０６個／血清１００μＬであった。ヌードマウス（雌、６〜８週）の脇腹に、１００μＬの細胞懸濁液を皮下注射した。腫瘍移植の１０日後に、全てのマウスは触知可能な充実性腫瘤を示し（腫瘍重量は０．７〜１．４ｇ）、これらを実験に使用した。
【００７６】
生体内分布試験では、３８μＣｉの［６８Ｇａ］１９（０．１５μｇのペプチドに相当する）を含む１００μＬのＰＢＳを、マウスの尾静脈に静脈内注射した。放射性リガンドの非特異的な組織内蓄積を、過剰量のｃｏｌｄ ｃｏｍｐｅｔｉｔｏｒ（２０μｇ Ｔｙｒ３−オクトレオチド／マウス）の同時注入よって判定した。放射性リガンド注射後の異なる時点（３０分および６０分ｐ．ｉ．）において、マウス（時間点につきｎ＝５；６０分ｐ．ｉ．におけるブロッキング試験用にｎ＝３）を屠殺し、解剖した。目的とする臓器を取り出し、重量を測定し、γカウンター（Ｗａｌｌａｃｈ、トゥルク、フィンランド）でカウントした。データは、ｇ組織当たりの％注射用量（％ｉＤ／ｇ）で表す。
【００７７】
結果
オキシムライゲーションを介したアミノオキシ官能基化ペプチドへの化学選択的結合のためのカルボニル−置換ＤＯＴＡ誘導体の開発。我々の合成戦略を計画する上で、アミノオキシ基は、ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル保護アミノオキシ官能基化アミノ酸成分として容易にペプチドに組み込まれうることから、我々は、カルボニル官能基をＤＯＴＡ部分に結合させることを決定した。カルボニル官能基として、アルデヒドよりも、その有意に高い安定性からメチルケトンが好ましかった。この手順は、アルデヒドを使用する場合には不可欠であろうさらなる保護および脱保護のステップを回避し、最終化合物をより長期間にわたって容易に保存できるようにする。さらに、我々のアイディアは、我々の新しいＤＯＴＡ誘導体の潜在的な応用範囲を拡大するものであった。これまでは、モノ結合体の選択的形成を可能にする誘導体に主に焦点が当てられていたが、選択的に変換され得る２つの異なる官能基を提供する新規なＤＯＴＡ誘導体の開発は、例えば、ホモ−およびヘテロオリゴマーの選択的合成４１または薬物動態の向上４２をもたらすことが示されている、糖のようなさらなる基の結合などの新たな機会をもたらすものとなるだろう。従って我々は、２つの異なる保護基戦略を策定した：ｉ）塩基に不安定な１つの保護基での直交保護（ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ）であり、１つのカルボン酸基の選択的脱保護と誘導体化を可能にするもの、およびｉｉ）モノ結合体のみが望ましい場合に１ステップの脱保護を提供する、酸に不安定な基での完全な保護である。
【００７８】
我々の合成は、４−アセチルフェニルボロン酸（４）から始まり、これを鈴木クロスカップリング反応においてメチル２−ブロモアセテートおよびｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートとそれぞれ反応させて、対応する２−（４−アセチルフェニル）置換アセテート５および６を良好な収率で形成させた（スキーム１）。４３
【００７９】
【化３】
スキーム１．カルボニル置換ＤＯＴＡ誘導体１および２の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＢｒＣＨ２ＣＯ２Ｒ、Ｐｄ（ＯＡｃ）２／Ｐ（ｏ−Ｔｏｌ）３、Ｋ２ＣＯ３、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、５：６６％、６：６３％、（ｂ）ＮＢＳ、Ｂｒ２、ｈｖ、ＣＣｌ４、１時間、７：８９％、８：８８％、（ｃ）１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン、Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、１０時間、９：６２％、１０：７５％、（ｄ）ＢｒＣＨ２ＣＯ２ｔ−Ｂｕ Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、４時間、１１：８３％、１：７２％、（ｅ）ＬｉＯＨ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、３８％（回収された１１に関して６６％）。
【００８０】
触媒量の臭素の存在下、Ｎ−ブロモスクシンイミドを使用したラジカル条件下でのα臭素化と、光照射による開始によって、α−ブロモエステル７および８を高収率（それぞれ８９％および８８％）で得た。後者の化合物を、Ｋ２ＣＯ３の存在下、シクレンを含むＤＭＦの溶液にゆっくりと加えて、対応するモノアルキル化シクレン付加化合物９および１０を６２％および７５％の収率で得た。続くｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートでのペルアルキル化で、テトラエステル１１および１（それぞれ８３％および７２％の収率）が得られた。驚いたことに、ＬｉＯＨを用いたメチルエステル１１の鹸化の間に、ｔｅｒｔ−ブチルエステルの部分的な脱保護が観察された。しかし、この副反応が主反応よりもゆっくりと進行することから、生成物のさらなる切断を防ぐために、約５０％の変換で反応を止めた場合、良好な収率で所望の遊離酸２を得ることができる。このようにして、ＨＰＬＣによる精製後に２を３８％の収率（回収された１１に基づいて６６％）で得た。ＬｉＩを使用した試行的鹸化では、複数の生成物からなる分離不能な混合物がもたらされ、炭酸塩を使用した場合、鹸化は起こらなかった。
【００８１】
Ｈｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化を介したアジド官能基化ペプチドへの化学選択的結合のためのアルキン置換ＤＯＴＡ誘導体の開発。Ｈｕｉｓｇｅｎ付加環化１８，１９を介したペプチドへの結合を可能にする適切なＤＯＴＡ誘導体のデザインでは、例えば、アジド酸の導入４４〜４６によって、または固相上でのジアゾ転移４７によって、アジド官能基化ペプチドが利用できることから、我々は、アルキン官能基をＤＯＴＡ誘導体に結合させることに決めた。カルボニル置換誘導体の合成における有意義な経験を経て、アルキンの組み込みのための中核的残基として、我々は２−ブロモ−２−フェニル酢酸を再度選択し、上述のものと類似の合成経路が可能となった。
【００８２】
市販の４−ヨードフェニル酢酸（１２）を、メチルエステル１３（９３％収率）としてまず保護し、その後、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４／ＣｕＩを触媒として用いて、トリメチルシリル−アセチレンでの薗頭カップリングを行い、４−アルキニルフェニルアセテート１４を９３％の収率で得た（スキーム２）。
【００８３】
【化４】
スキーム２．アルキン官能基化ＤＯＴＡ誘導体の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＳＯＣｌ２、ＭｅＯＨ、１時間、９３％、（ｂ）ＨＣ≡Ｃ−ＴＭＳ、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４／ＣｕＩ、ＮＥｔ３、ＣＨ３ＣＮ、３時間、９３％、（ｃ）１）ＬＤＡ、ＴＨＦ、１時間、２）ＮＢＳ、ＴＨＦ、１８時間、４７％（回収された１４に関して９２％）、（ｄ）１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン、Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、１０時間、５３％、（ｅ）１）ＢｒＣＨ２ＣＯ２ｔ−Ｂｕ Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、４時間、２）ＴＢＡＦ、ＴＨＦ、１５分間、８５％。
【００８４】
残念なことに、７および８について上述したようなラジカル条件下での１４のα臭素化は、ＮＢＳおよびＢｒ２／ｈｖを開始剤としたもの両方で失敗した。これは、三重結合の存在によって生じた副反応に起因する可能性が高い。従って我々は、求電子的に臭化物を導入することによってこの問題を回避した。この目的のために、我々は、Ｅｖａｎｓら４８が説明しているものと類似の手法でエステル１４をホウ素エノラートに変換し、ＬＤＡおよびＢｕ２ＢＯＴｆで処理して、その後ＮＢＳを求電子的臭素化試薬として加えた。しかし、α−ブロモエステル１５の収率はむしろ不良であった（３９％）。反応をさらに最適化する試みにおいて、我々は、ＬＤＡでの脱プロトン化によって得られる１４のリチウムエノラートがＮＢＳと直接反応すれば、変換が非常にクリーンに進行することを見出した。このようにして１５を４７％の収率で得ることができ、未反応の１４が４９％の収率で一緒に回収された。この結果は、反応中の１当量の１４のリチウムエノラートで形成された生成物の迅速な脱プロトン化につながる、α−ブロモエステル１５の１４に対する著しく高い酸性度によって説明される。たとえエノラートを著しく過剰なＮＢＳに加えても、収率をそれ以上上げることはできなかった。しかし、回収された出発材料１４に基づくと、収率はほぼ定量的であった。上述のものと類似の方法で、α−ブロモエステル１５でのシクレンのモノアルキル化を行い、１６を５３％の収率で得た。続くｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートでのペルアルキル化およびＴＢＡＦを用いたＴＭＳ保護基の切断によって、テトラエステル３を得た（２ステップで８５％の収率）。２の合成で述べたように、我々は、３中のメチルエステルの選択的な鹸化も試みた。しかし、我々にとっても大きな驚きであったが、１当量のＬｉＯＨの存在下では、３中のｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断はさらに迅速に進行し、我々は、切断されたｔｅｒｔ−ブチルエステルおよびメチルエステルの１つを有する対応する化合物を主生成物として見出した。１つのｔｅｒｔ−ブチル基を持たない位置異性体の中の所望の生成物は、わずかな量でしか検出できなかった。
【００８５】
ＤＯＴＡケトン誘導体１を使用した、オキシムライゲーションを介したＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート結合体１９の化学選択的合成。これらの新規な官能基化キレーターを手にして、我々は、Ｎ−末端アミノオキシへだけでなく、Ｔｙｒ３−オクトレオタートに基づくアルキン官能基化ソマトスタチンアナログへの化学選択的結合を詳細に調べた。
【００８６】
我々の初期の実験では、オキシムライゲーションにｔｅｒｔ−ブチル保護ＤＯＴＡケトン１を直接使用したが、反応は非常にクリーンに進行したものの、得られた結合体のオキシム結合は、ｔｅｒｔ−ブチル基の完全な脱保護に必要な強力な酸性条件下では安定ではなかった。従って我々は、ライゲーションの前にｉｎ ｓｉｔｕで１を脱保護しなくてはならなかった。比較的穏やかな方法（ギ酸４９または５０％ＴＦＡ／Ｈ２Ｏ）を使用すると脱保護は失敗し、Ｆｍｏｃペプチド化学で使用される標準的な脱保護用混合物であるＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５／２．５／２．５、ｖ／ｖ／ｖ）混合物５０を用いると、１中のケトンの還元がもたらされた。１０ＮのＨＣｌ水溶液を含むジオキサン（５０／５０、ｖ／ｖ）で処理した場合、定量的切断が実現された（スキーム３）。次に、得られた脱保護されたキレーター１７を、ｐＨ４（ＴＦＡ）においてＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ混合物中で等モル量のアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３オクトレオタート１８と反応させて、純度８５％（ＨＰＬＣ解析による）で所望の結合体１９を得た（スキーム３）（図２）。遊離アミノオキシ官能基が生じるあらゆる反応は、カルボニル官能基化された不純物との副反応を防ぐために高い溶媒純度（ＨＰＬＣグレード）が必要とされることを強調する必要がある。分取ＨＰＬＣで最終生成物をさらに精製して、収率７３％、純度９７％で１９を得た。
【００８７】
【化５】
スキーム３．ＤＯＴＡ誘導体１およびアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート１８の化学選択的オキシムライゲーション。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）１０Ｎ ＨＣｌ／ジオキサン（１：１、ｖ／ｖ）、１８時間、（ｂ）ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、ＨＰＬＣグレード）ｐＨ４（ＴＦＡ、ＨＰＬＣグレード）、１８時間、７３％（２ステップ）。
【００８８】
ＤＯＴＡアルキン誘導体３を使用したＨｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化を介したＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート結合体２４の化学選択的合成。Ｔｙｒ３−オクトレオタートのアジド官能基化に関して、我々は、固相上での３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸２１での単純なＮ末端伸長法を選択した。複数の生物活性ペプチドにおいては、ＢＦＣＡと標的分子との間にスペーサーを使用するのが非常に重要であること、および、我々のグループにおけるこれまでの経験を踏まえ、２１をリンカーとして選択した。１−ブロモ−３−アミノプロパンから出発する２１の２ステップの合成は安価で、収率が高く、スケールアップが容易で、クロマトグラフィーを必要としない（スキーム４）。
【００８９】
【化６】
スキーム４．３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸２１の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＮａＮ３、Ｈ２Ｏ、８０℃、２４時間、８４％、（ｂ）無水コハク酸、ＮＥｔ３、アセトン、１５時間、７１％。
【００９０】
付加環化の前に、メチルエステル３をｉｎ ｓｉｔｕで鹸化し（上述のように、このステップはｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断と一緒に進行する）、得られる遊離酸２２の混合物を、Ｃｕ／ＣｕＳＯ４を触媒系として使用して、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ混合物中でアジド官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート２３と反応させた（スキーム５）。次に、粗生成物混合物をＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５／２．５／２．５、ｖ／ｖ／ｖ）混合物５０を使用して直接脱保護し、良好な純度（ＨＰＬＣ解析によると６９％、図３）で粗生成物２４を得た（スキーム５）。しかし、ＥＳＩ法による質量分析では、２４が非常に安定した銅錯体として得られたことが示され、これは、酸性溶出剤を使用したＨＰＬＣ精製中でも安定であることが証明された。しかしながら、銅塩は硫化ナトリウムでの沈殿によって容易に除去することができた。このステップの結果として、分子内ジスルフィド架橋の開裂が生じ、ペプチドをＨＰＬＣ精製後に再環化しなくてはならなかった。定量的収率で環化が行われ、所望の結合体２４を３７％の収率で２３から、９７％の純度で得た。
【００９１】
【化７】
スキーム５．ＤＯＴＡ誘導体３およびアジド官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート２３の化学選択的１，３−双極付加環化。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＬｉＯＨ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、（ｂ）１）Ｃｕ／ＣｕＳＯ４、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、２）ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５：５：５、ｖ／ｖ）、２時間、３）Ｎａ２Ｓ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、４）ＤＭＳＯ、ＮＨ３、ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ、４８時間、３７％（５ステップ）。
【００９２】
我々の手順を確認するために、システインを含まないアジド官能基化サンプルペプチド３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ（２５、サポート情報を参照）で反応を繰り返した。類似の方法で、付加環化によって銅錯体生成物の形成がもたらされたが、この場合は、副反応なしで金属イオンを除去することができた。ｔｅｒｔ−ブチルエステルの脱保護によって、ＨＰＬＣ解析によると７６％の純度の粗生成物が得られた。ＨＰＬＣ精製後、対応する結合体２６を５１％の収率で得た。
【００９３】
放射性標識。通常は、さらなる処理を行わずに、ペプチド標識に６８Ｇｅ／６８Ｇａジェネレーター溶出液が直接使用される。しかしこの研究では溶出液を蒸発乾固させ、６８Ｇａ放射能を少量の反応バッファー（０．１Ｎ ＮａＯＡｃ、ｐＨ３．５）に再溶解し、これを放射性金属化反応に使用した。ジェネレーターはほぼ消耗していたが、この手順によって、効率的な放射性金属導入に必要なペプチド前駆体の量の低減が可能となり、故に、比較的高い比放射能の［６８Ｇａ］１９がもたらされた（マウスへの注射の時点において５７０Ｃｉ／ｍｍｏｌ）。［６８Ｇａ］１９は、５５．７％の放射化学的収率で得られた。［６８Ｇａ］１９の放射化学的純度は９１．４％であった。
【００９４】
生体内分布試験。ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスの３０分および６０分ｐ．ｉ．における［６８Ｇａ］１９の生体内分布データを図４に示す。両時間点において、放射性リガンドの血中濃度は比較的高かった（３０分および６０分ｐ．ｉ．において、それぞれ２．３７±０．３５および１．７１±０．１７％ｉＤ／ｇ）。観察期間中に腎臓内蓄積は急速に低下し（２０．０±２．４から１１．９±１．９％ｉＤ／ｇ）、これは［６８Ｇａ］１９の腎クリアランスを示していたが、その他の排泄器官、すなわち肝臓および腸管におけるトレーサー蓄積は、長時間にわたってゆっくりとしか低下せず、これはおそらく排出と関係のない非特異的蓄積に起因するものである。ｓｓｔ発現組織では、腫瘍と他のｓｓｔ陽性臓器との強い相違が観察された。膵臓、副腎、および胃におけるトレーサー蓄積が３０〜６０分ｐ．ｉ．の間に有意に低下した一方、腫瘍内蓄積はこの期間ほぼ一定のままであった（３０および６０分ｐ．ｉ．においてそれぞれ７．７３±１．５２および７．４６±１．３０）。このことと、他の臓器内の非特異的なトレーサー蓄積の全体的な低下が、３０〜６０分ｐ．ｉ．の間の腫瘍／臓器比の上昇につながった（図５）。過剰量の未標識競合物質（２０μｇ Ｔｙｒ３−オクトレオチド／マウス）の同時注入による競合試験（６０分ｐ．ｉ．）において、腫瘍内蓄積が主に受容体を介していることが示された。これらの条件下で、腫瘍内蓄積は２．６８±０．３６％ｉＤ／ｇに低下した。
【００９５】
考察
ＤＯＴＡ（１，４，７，１０−テトラキス（カルボキシメチル）−１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）およびその誘導体は、様々な二価および三価の金属イオンと非常に安定した錯体を形成できることから、医療分野における画像技術用のキレーターの重要なクラスとして浮上した。キレーターが接合した標的生体分子の便利な合成のために、直交保護されたカルボキシ基を有する、種々の適当なプロキレーター説明されている。しかし、これまでのところ、標的分子内のアミンまたはカルボキシル官能基を介するもの以外の結合を可能にするプロキレーターの合成に関する報告は１つしかない。１５オキシムライゲーションまたはクリック化学を介する化学選択的結合を可能にするＢＦＣＡの開発における我々のアプローチは、新規なキレーター１、２、および３の合成をもたらした。この合成における最初の重要なステップは、シクレンのモノアルキル化である。文献では、２当量７または５当量８のシクレンが使用され、定量的収率がアルキル化剤の量に基づいて計算される、複数の類似のモノアルキル化の例が存在する。金属を保護基として使用する試みも存在する。５１一連のもののうちシクレンが最も高価な試薬であることから、我々の合成においては、おおよそ等モル量のアルキル化剤を使用し、化合物１６、９、および１０について、それぞれシクレンに基づいて５３、６２、および７５％の間で満足のいく収率を得た。粗生成物をさらに直接アルキル化することができたが、得られた化合物のアルキル化酢酸エステル残基の性質のみが異なっているもっと後の段階における分離よりも、高度にアルキル化された生成物および未反応のシクレンから粗生成物を分離するほうが容易であったため、フラッシュクロマトグラフーを使用してこの段階でこの中間体の精製を行った。通常は、拡散バンドのためにシリカでのシクレン誘導体の分離は時として非常に困難であること、分取ＲＰ−ＨＰＬＣによる精製が優れた代替手段であることにも留意するべきである。α−ブロモエステル７、８、および１５の合成は複雑ではなく、生成物が良好な収率で得られた。
【００９６】
驚くべきことに、３および１１中のメチルエステルの最終的な鹸化は、複数の条件下においてｔｅｒｔ−ブチルエステルの加水分解ももたらした。３については、２を単一生成物として得るために、約５０％の変換で反応を停止することが可能であった。残念ながら、アルキン誘導体１１の場合は、ｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断はさらに速く進行した。従って、我々は、遊離酸２２の混合物との化学選択的１，２，３トリアゾール形成を行い、次いでＴＦＡでの処理によって残りのｔｅｒｔ−ブチル基を切断した。クリック反応２８、２９、３１〜３６について、我々は、過剰量の銅金属と一緒に１．２当量の硫酸銅を使用し、これによって、触媒活性のＣｕＩ種のｉｎ ｓｉｔｕ生成がもたらされた。わずか１ｍｏｌ％のＣｕＩＩ塩が用いられている報告５２があるものの、１当量のＣｕＩＩが、ＤＯＴＡ誘導体２２によって直ちに錯体化される事実を考えると、我々は過剰量のＣｕＩＩ塩を使用しなくてはならなかった。しかし、文献では多くの異なる手順が存在し５２、我々の目的にとって触媒量の最適化は不可欠ではなかった。
【００９７】
モデルペプチド２５を使用すると、１，２，３−トリアゾール誘導体へのクリーンな変換が観察された。金属を含まない化合物を入手するために硫化ナトリウムでの沈殿が不可欠であること、および、その後に２４中の開裂したジスルフィド架橋の再環化が必要であることに直面したため、Ｔｙｒ３−オクトレオタートの場合にみられるようなジスルフィド架橋を含む標的分子には、この手法でのキレーターの化学選択的導入は推奨できなかった。しかし、システインを含まない標的部分にとっては、我々のアルキン誘導体化キレーターは、モデルペプチド２５との反応によって示されたように、高度に化学選択的なＢＦＣＡの結合に対するもう１つの優れた代替法を提供する。ごく最近、Ｌｉｎと共同研究者らは、ＣｕＩ−触媒による１，２，３−トリアゾール形成による部位特異的タンパク質修飾を示した。５３この手法を適用し、アルキン官能基化ＤＯＴＡ誘導体２２を使用すると、タンパク質の部位特異的ＤＯＴＡ標識が可能となるであろう。
【００９８】
我々の新しいメチルケトン官能基化キレーター１７の、保護されていないＮ末端アミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタートとのオキシムライゲーションは、円滑に、副生成物もなく進行し、これにより、メチルケトンとヒドロキシルアミンの化学選択的縮合のもう１つの例が追加された。しかし、ベンズアルドキシムのみをもたらす、１８をベンズアルデヒドとアセトフェノンに同時に曝露する競合実験で我々が証明したように、アミノオキシ基とのケトンの反応速度はアルデヒドと比較すると非常に遅い。４時間の反応時間の後、等モル量のメチルケトン１７を使用すると、変換は約６０％であり、一晩放置すると終了まで進んだ。従って、我々は、アミノオキシ官能基化生体分子のライゲーションに適した、実験台上で安定な新規なＤＯＴＡ誘導体の化学選択的結合を示すことに成功した。最近提示されたアミノオキシ官能基化ＤＯＴＡ誘導体１５と比較すると、ＳＰＰＳ用の適切なアミノオキシ官能基化成分が市販されていることから（例、Ｂｏｃ−Ａｍｓ（Ｆｍｏｃ）−ＯＨおよびＦｍｏｃ−Ｄｐｒ（Ｂｏｃ−Ａｏａ）−ＯＨ）、我々の逆アプローチによって、ペプチド配列中のあらゆる位置における我々のキレーターの導入が可能になる。
【００９９】
［６８Ｇａ］１９が、３０分および６０分ｐ．ｉ．において特異的かつ高い腫瘍内蓄積を示したことが、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおける最初のｉｎ ｖｉｖｏ評価で示され、これはｓｓｔ受容体親和性が、用いられるライゲーション化学によってほとんど影響を受けないままであることを示唆する。［６８Ｇａ］１９について見出された腫瘍内蓄積および腫瘍対臓器比が、同じ腫瘍モデルにおける“参照”リガンド［６８Ｇａ］ＤＯＴＡＴＯＣ（ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオチド）および［６８Ｇａ］ＤＯＴＡＴＡＴＥ（ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート）５４について報告されたものほど高くなかったが、この研究で提示されたＤＯＴＡカップリング手法に基づく放射性金属化オクトレオタートアナログを、恐らくは最適化の後に、ｉｎ ｖｉｖｏのｓｓｔイメージングにも用いてよい。この文脈では、［６８Ｇａ］１９は、それらの受容体結合能に挑戦することなく、新規な受容体結合放射性ペプチドの合成に対する、オキシムライゲーションを介したＤＯＴＡ接合化学の一般的適用性の原理の証明に役立ち得る。
【０１００】
結論
本書で説明した新規なアルキンおよびケト官能基化ＤＯＴＡ誘導体によって、多官能性化合物との容易で化学選択的な接合が可能となる。さらに、遊離カルボキシルおよびカルボニル部分を有する二官能性誘導体が報告され、これは、ヘテロダイマーのような高級化合物のさらなる誘導および合成にとって有用なツールであってよい。我々の新たな修飾キレーターに関して、我々は、ＢＦＣＡの最終的な適用を考慮して、複雑な保護基化学を回避する経済的で単純な手順を開発した。これにより、標識化合物がわずかな合成ステップで簡単に入手できるようになる。アルキンだけでなくメチルケトン官能基化ＤＯＴＡ誘導体も、対応する接合反応において適切なＮ末端修飾Ｔｙｒ３−オクトレオタートと高度に選択的に反応することが証明された。さらに、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおける［６８Ｇａ］１９の薬物動態は、診断的および治療的ｉｎ ｖｉｖｏ応用のための新たな放射性金属化ペプチドリガンドの合成に対する、化学選択的ＢＦＣ接合アプローチの適合性を示す。
【０１０１】
参考文献
【０１０２】
【数１】
【０１０３】
【数２】
【０１０４】
【数３】
【０１０５】
【数４】
【０１０６】
【数５】
【０１０７】
【数６】
【０１０８】
【数７】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、キレート剤に関する。本発明は、特に標的分子への選択的結合のための一連の二官能性キレート剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
放射性核種の非共有結合では、放射性マーカーと標的分子を結びつけるために二官能性キレート剤（ＢＦＣＡ）が使用される。これらのＢＦＣＡの中では、１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン−１，４，７，１０−四酢酸（ＤＯＴＡ）はよく研究されている大環状錯体リガンドであり、これは、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）１とは対照的に、二価および三価金属両方の極めて安定性の高い錯体を形成することが示されている。２、３このリガンドを金属キレーターとして含有する放射性医薬品は、治療および画像診断における幅広い利用が見出されている４、５（非特許文献１および非特許文献２）。
【０００３】
ＤＯＴＡ−ペプチドは一般に、溶液中で６、または保護されていないＤＯＴＡを使用して１もしくはより便利にはＤＯＴＡの４つのカルボン酸基の多重活性化による副反応を克服するために保護されたＤＯＴＡ誘導体を使用して、樹脂結合ペプチドの遊離アミンにＤＯＴＡ残基を結合する固体担体上で合成される。従って、多数のＤＯＴＡ誘導体が開発されており、モノ結合体（ｍｏｎｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）の選択的形成が可能である。例えば、３基保護の市販のＤＯＴＡ−トリス（ｔｅｒｔ−ブチル）エステル７および対応するベンジル保護アナログＤＯＴＡ−トリス（ベンジル）エステル８、イソチオシアネート官能基化ｐ−ＮＣＳ−Ｂｚ−ＤＯＴＡ９だけでなく、保護されていないさらなるカルボン酸基を含むＤＯＴＡＧＡ（ｔＢｕ）４１０が広く用いられているＢＦＣＡである。他のアプローチでは、ＤＯＴＡ部分を側鎖に含む誘導体化アミノ酸が用いられた１１、またはＤＯＴＡ部分は樹脂結合ペプチドのＮ末端上で段階的に合成された１２。これら全ての方法の主な制限は、ＤＯＴＡ残基の求電子性の結合である。この手順は、選択的反応用のその他のＮ−またはＳ−求核基を許容しない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｈｅｐｐｅｌｅｒ，Ａ．；Ｆｒｏｉｄｅｖａｕｘ，Ｓ．；Ｅｂｅｒｌｅ，Ａ．Ｎ．；Ｍａｅｃｋｅ，Ｈ．Ｒ．Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｆｏｒ ｔｕｍｏｒ ｌｏｃａｌｉｓａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅｒａｐｙ ｗｉｔｈ ｒａｄｉｏｐｅｐｔｉｄｅｓ．Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２０００，７，９７１−９９４．
【非特許文献２】Ｍｉｌｅｎｉｃ，Ｄ．Ｅ．；Ｂｒａｄｙ，Ｅ．Ｄ．；Ｂｒｅｃｈｂｉｅｌ，Ｍ．Ｗ．Ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｔａｒｇｅｔｅｄ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｃａｎｃｅｒ ｔｈｅｒａｐｙ．Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ２００４，３，４８８−４９８．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
多官能性化合物の部位選択的官能基化を可能にする化学選択的アプローチが依然として求められている。しかし、そのような方法は、ＤＯＴＡ−結合放射性医薬品の合成にとって強力なツールとなるであろうし、新たな合成戦略や、錯構造、例えば我々が最近開発した、４−［１８Ｆ］フルオロベンズアルデヒドを使用して１８Ｆの標識に成功した多量体のアミノオキシ官能基化ＲＧＤ誘導体１３の合成が可能となる。１４最近の発表では、Ｈｏｖｉｎｅｎが、ナルトレキソンおよび２−デオキシ−Ｄ−リボースと接合したＤＯＴＡのトリスｔｅｒｔ−ブチルエステルの誘導体化によるアミノオキシ官能基化キレートの合成を報告している。１５しかし、報告された手順は高価な出発材料を必要とし、ペプチドのような多官能性化合物への適用性は未だ明らかでない。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、式：
【０００７】
【化１】
の化合物を提供し、
式中、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択され、Ｒ２およびＲ３は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、親水性部分、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【０００８】
Ｒ５がアルキルであるならば、好ましくは、このアルキルは、長さが１、２、３、４、５、または６個の炭素原子である。好ましくは、Ｒ５は、アリールまたはヘテロアリール基である。より好ましくは、Ｒ５は、１つまたは２つの環を有する５員〜９員のアリールまたはヘテロアリール基である。より好ましくは、Ｒ５は、６員のアリールまたはヘテロアリール基である。さらにより好ましくは、Ｒ５はフェニル基である。最も好ましくは、フェニル基は、パラ位がカルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【０００９】
好ましくは、Ｒ５は、カルボニル基または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている。
【００１０】
本発明の一実施形態において、Ｒ５は、カルボニル基で置換されている。好ましくは、このカルボニル基はケト基である。好ましくは、このケト基はメチルケトンである。ケト基の利点は、ケト基が高い反応性を持つ基ではないため、化合物に長期間の安定性を与えることである。これにより、これを長期間保存できるようになる。著しく長い期間にわたって化合物を保管しようとする際に、反応性の高い基は問題となる。さらに、ケト基は、ペプチドのような多官能性化合物への化学選択的結合を可能にする。別の利点は、ケト基は合成プロセスにおいてさらなる保護を必要としないことである。
【００１１】
本発明の別の実施形態において、付加環化反応に参加するのに適した官能基は、アルキン基またはアジド基である。好ましくは、このアルキン基はエチニル基である。
【００１２】
一実施形態において、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、水素およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択される。好ましくは、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は同一である、または別のカルボキシル保護基である。好ましくは、Ｒ４は、水素またはメチルである。より好ましくは、Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、ｔ−ブチルであり、Ｒ４は、Ｈまたはメチルである。
【００１３】
カルボニル保護基が存在するならば、それらは好ましくはベンジル、フルオレニルメチル、およびｔ−ブチルから選択される。
【００１４】
一実施形態において、Ｒ１またはＲ４のどちらかは親水性部分である。好ましくは、Ｒ１およびＲ４は両方とも親水性部分である。Ｒ４および／またはＲ１が親水性部分の場合、化合物は好ましくは、ガリウム６８と錯体形成するために使用される。好ましくは、親水性部分は糖である。親水性部分、特に糖を化合物に結合させる利点は、それらが化合物の薬物動態特性を向上させることである。
【００１５】
本発明の別の態様において、式：
【００１６】
【化２】
の化合物が提供され、
式中、基Ｇ１からＧ４の２つ〜４つは、ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５であり、任意の残りの基Ｇ１からＧ４はＣＨ２ＣＯ２Ｒ１であり、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は上記で定めた通りであり、Ｒ１は上記で定めた通りである。これによって化合物が複数の標的分子に結合できるようになり、それぞれのＲ５基の位置に１つが結合する。
【００１７】
本発明は、上述のような化合物および誘導体化された標的分子を有する結合体も提供し、Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合は、標的分子は、相補的なアミノオキシ部分またはカルボニル部分を含むように誘導体化されており、化合物と標的分子はオキシム結合で結合されており、Ｒ５が付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている場合は、標的分子は、付加環化反応用の相補基を含むように誘導体化されており、化合物と標的分子は、付加環化反応のヘテロ環生成物によって結合される。Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合、Ｒ５は好ましくはカルボニル基で置換されている。
【００１８】
この結合体の一実施形態において、化合物および標的分子は、１，２，３−トリアゾール基によって結合されている。
【００１９】
本発明は、上述の化合物または上述の結合体と錯体を形成する放射性核種を有するキレートも提供する。好ましくは、放射性核種は、アクチニウム２２５、ビスマス２１２、ビスマス２１３、鉛２０３、銅６４、銅６７、ガリウム６６、ガリウム６７、ガリウム６８、ルテチウム１７７、インジウム１１１、インジウム１１３、イットリウム８６およびイットリウム９０、ジスプロシウム１６２、ジスプロシウム１６５、ジスプロシウム１６７、ホルミウム１６６、プラセオジミウム１４２、プラセオジミウム１４３、プロメチウム１４９、およびテルビウム１４９から選択される。
【００２０】
本発明は、本発明に従う化合物の合成の方法も提供し、この合成は、２置換のアリール、ヘテロアリール、アルキル、または組み合わせＲ５、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応であって、ここでＲ４およびＲ５は上記と同じ意味を有し、Ｌ１は脱離基であり、Ｘは、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基である、またはそのような官能基の保護形態である、アルキル化；ならびに、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用するシクレンの他の窒素原子のアルキル化であって、ここでＲは、上記で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３であり、Ｌ２は脱離基である、アルキル化、を有する。好ましくは、合成は、２置換のアリールまたはヘテロアリール、Ｒ５、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応を有する。
【００２１】
シクレンを出発材料として使用する利点は、他の化合物、例えば非常に高価なＤＯＴＡトリスｔｅｒｔ−ブチルエステルと比較して、シクレンが比較的安価であることである。
【００２２】
合成の方法は、さらなるＲ５を含む基をシクレンと反応させるステップを伴い、シクレンの窒素原子の２〜４つはＬ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘと反応し、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は上記と同じ意味を持ち、シクレンの任意の残りの窒素原子は、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを用いてアルキル化され、Ｒは、上記で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３である。
【００２３】
本発明は、本発明の化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させることによって、本発明の結合体を合成する方法も提供する。この合成は、結合体と放射性核種との錯体形成でキレートを形成する前に行われてよい。あるいは、化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させる前に、本発明の化合物と放射性核種との錯体形成によってキレートを合成することが可能である。結合体と放射性核種の錯体形成の前に化合物と誘導体化標的分子を一緒に反応させることの利点は、放射性核種の操作に必要な注意を要さずに、最初にキレート剤がさらに操作（例、標的投与用に精製され処方される）されてよいことである。さらに、結合体は、使用のために異なる場所へ輸送される前に、中心となる場所において大量生産され得る。もう１つの利点は、化合物と放射性核種の錯体形成に使用される条件が非常に厳しいものであってよく、そうでなければ化合物に影響を与えかねないこれらの厳しい条件の前に最終的な結合体が形成されることである。
【００２４】
この方法の一実施形態において、遷移金属触媒の存在下で、化合物と標的分子が付加環化反応によって結合する。好ましくは、金属触媒は銅またはロジウムに基づいている。
【００２５】
本発明は、治療または診断において使用するためのキレートも提供する。
【００２６】
さらに、本発明は、過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療用の薬剤の調製におけるキレートの使用を提供する。
【００２７】
さらに、本発明は、過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療に使用するためのキレートを提供する。
【００２８】
好ましくは、上記の使用における状態は癌である。好ましくは、癌はホルモン応答性である。
【００２９】
本発明は、対象における過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断または治療の方法も提供し、この方法は、それぞれ診断上または治療上効果的な量の本発明に従うキレートの対象への投与を有する。
【００３０】
本発明は、本発明に従う結合体の合成における、本発明に従う化合物の使用を提供する。
【００３１】
さらに、本発明は、本発明に従うキレートの合成における、本発明に従う結合体の使用を提供する。
【００３２】
本発明は、結合体またはキレートも提供し、標的分子はペプチドである。
【００３３】
本発明は、１つ以上のジスルフィド架橋を有する標的分子への二官能性キレート剤の金属触媒による接合に続いて、二官能性キレート剤から金属触媒を脱キレート化する方法を提供し、この方法は、硫化ナトリウムを使用した金属イオンの除去および、続いて行われる、ジスルフィド架橋を再構築するための、ＮＨ３およびアセトニトリルと水を有する溶媒での処理から成る。好ましくは、二官能性キレート剤は、本発明の化合物である。
【００３４】
一実施例において、接合反応は、付加環化反応を伴う。
【００３５】
好ましくは、金属触媒は銅またはロジウムに基づいている。
【００３６】
最後に、本発明は、上述のように、複数のＲ５基を持つ化合物と、Ｒ５基を介して化合物に結合する２つ以上の標的分子とを有する結合体を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００３７】
ここで、一例にすぎないが、添付の図面を参照してより詳しく本発明を説明する。
【図１】４−アセチルフェニル−ＤＯＴＡ誘導体１および２、ならびにエチニルＤＯＴＡ誘導体３の構造を示す。
【図２】オキシムライゲーションによって得られた粗製ＤＯＴＡ結合体１９のＨＰＬＣトレースを示す。
【図３】１，３−双極付加環化と、続く脱保護（ステップ２、スキーム５）後に得られた粗製ＤＯＴＡ結合体２４のＨＰＬＣトレースを示す。
【図４】ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウス（ｎ＝５、競合試験ではｎ＝３）の３０分および６０分ｐ．ｉ．の［６８Ｇａ］１９の生体内分布を示す。データは、ｇ組織当たりの％注射用量（％ｉＤ／ｇ）で与えられ、平均値±ＳＤである。
【図５】ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウス（ｎ＝５）の３０分および６０分ｐ．ｉ．の［６８Ｇａ］１９に見られた腫瘍対非腫瘍比を示す。データは、平均値±ＳＤである。
【図６】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→８０％、３０分間。
【図７】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、３０分間。
【図８】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→１００％、３０分間。
【図９】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→８０％、３０分間。
【図１０】ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオテート誘導体１９のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、３０分間。
【図１１】ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオテート誘導体２４のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、６０分間。
【図１２】１，３−双極付加環化によって得られた粗製ＤＯＴＡ結合体２６のＨＰＬＣトレースを示す。勾配：１０→６０％、６０分間。
【図１３ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１３ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１４ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１４ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１５ａ】メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１５ｂ】メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１６ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１６ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１７ａ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１７ｂ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１８ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１８ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１９ａ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図１９ｂ】メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２０ａ】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２０ｂ】２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（２）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２１ａ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２１ｂ】ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２２ａ】メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２２ｂ】メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２３ａ】メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２３ｂ】メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ａ】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ｂ−１】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２４ｂ−２】メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２５】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（１６）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２６ａ】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２６ｂ】（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２７ａ】Ｎ−（３−アジドプロピル）スクシンアミド（２１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【図２７ｂ】Ｎ−（３−アジドプロピル）スクシンアミド（２１）のＮＭＲスペクトルを示す。
【発明を実施するための形態】
【００３８】
高度に官能基化された生体分子への化学選択的結合を可能にする新規な二官能性ポリ（アミノカルボキシレート）キレート剤の便利な合成が説明される。周知のキレーター１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン−１，４，７，１０−四酢酸（ＤＯＴＡ）に基づいて、１当量のパラ位官能基化アルキル２−ブロモフェニルアセテートと３当量の市販のアルキル２−ブロモアセテートで１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（シクレン）をアルキル化することによって、さらなる官能基を有する新規な二官能性キレート剤を合成した。得られた化合物は、さらなるカルボニルおよびアルキン官能基をそれぞれ有し、保護されていない適切な官能基化生体分子の迅速な部位特異的標識を可能にする。これは、化学選択的オキシムライゲーションおよび１，３−双極付加環化（クリック化学）による、我々の新たなＤＯＴＡ誘導体のソマトスタチンアナログＴｙｒ３−オクトレオテートへの結合によって示された。マウスにおける初期生体内分布試験では、放射性金属化ペプチドを用いるｉｎ ｖｉｖｏ画像解析に対する、説明されたＤＯＴＡ接合の適合性が示された。
【００３９】
故に、我々の目標は、幅広い種類の官能基の存在下で化学選択的結合を可能にする新規なＤＯＴＡ誘導体を開発することであった。その結果、我々の方法を便利に、また広く用いられているが非常に高価なＤＯＴＡ−トリス（ｔｅｒｔ−ブチル）エステルの一般的な代替法とするために、安価な市販材料からわずかな合成ステップで容易に入手できる構造に焦点を当てた。さらに、対応する多官能性化合物が入手しやすいことは、我々の検討において重要な側面であった。オキシムライゲーション１６、１７だけでなくＨｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化１８、１９はよく研究されており、化学選択的カップリング用の強力な反応であって、我々の目的に要求される全てのものを満たしている。オキシムライゲーションは、オキシム結合の形成のもとのアミノオキシ成分とアルデヒドまたはメチルケトン２０間の高度に選択的な反応を意味し、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏの両方で適度に安定であることが知られている。この反応は、Ｎ末端のシステインを除くあらゆる遊離アミノ酸側鎖を許容することが示され、例えば、ｔｅｍｐｌａｔｅ ａｓｓｅｍｂｌｅｄ ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ２１、２２、放射性標識ペプチド結合体２３、２４、環状ペプチド２５、およびタンパク質アナログ２６、２７の合成における幅広い利用が見られた。トリアゾールの形成のためのアジドとアルキンの化学選択的Ｈｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化が、非常に有用な“クリック”反応として最近再認識され２８〜３０、医薬品化学における各種の開発における用途が見出されている。３１〜３６ＤＯＴＡ結合体合成のための様々な手法をユーザーに提供するために、我々は、上述の両反応タイプ用の適切なＤＯＴＡ誘導体に焦点を当てた。
【００４０】
故にこの報告では、我々は、化合物２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸（１）および２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−アセチルフェニル）酢酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル（２）それぞれの、アミノオキシ官能基化化合物とのオキシムライゲーションのためのカルボニル成分としての合成と、アジド官能基化化合物との“クリック”反応のための２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−（４−トリメチルシリルエチニル）酢酸メチルエステル（３）の合成を提示する（図１）。加えて、これらの誘導体を、それらのメチルケトン−およびアルキン−官能基を介して生体分子に結合させるために、化合物２および３は、１つの異なって官能基化されたカルボキシル基によるさらなる選択的修飾を可能にするであろう。両クラスの誘導体は、腫瘍診断および内部放射線療法の目的のために十分に確立された標的分子であるソマトスタチンアナログである、適切なＮ−末端が修飾された保護されていないＴｙｒ３−オクトレオテートと高度に選択的に反応することを証明した。３７〜４０それぞれの生体分子の受容体親和性に影響を与えない新しい放射性リガンドの合成に対する、前述の異なる化学選択的接合アプローチの適用性を示すために、Ｔｙｒ３−オクトレオテートアナログの１つを６８Ｇａで標識し、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおいて初期生体内分布試験で評価した。
【００４１】
実験手順
一般的事項。トリチルクロリドポリスチロール（ＴＣＰ）樹脂（０．９４ｍｍｏｌ／ｇ）をＰｅｐＣｈｅｍ（Ｔｕｅｂｉｎｇｅｎ、ドイツ）より購入した。カップリング試薬およびアミノ酸誘導体をＮｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ、Ｎｅｏｓｙｓｔｅｍ、およびＩＲＩＳ Ｂｉｏｔｅｃｈ ＧｍｂＨ、Ｍｅｒｃｋ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｐｅｒｓｅｐｔｉｖｅ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨ、およびＮｅｏｓｙｓｔｅｍより購入した。無水溶媒をＦｌｕｋａより購入した。その他全ての試薬および溶媒を、Ｍｅｒｃｋ、Ａｌｄｒｉｃｈ、およびＦｌｕｋａより購入し、そのまま使用した。無水溶媒を移すのに、標準的なシリンジ法を用いた。アルミバックプレート（Ｍｅｒｃｋシリカゲル６０Ｆ２５４）で薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）を行った。２５４ｎｍでのＵＶ吸収によって、またはモリブデン酸セリウムアンモニウム（ＣＡＭ）で呈色させて化合物を可視化した。シリカゲル６０（Ｍｅｒｃｋ、２３０〜４００メッシュ）（分離される材料１ｇに対しておよそ５０ｇ）で、指示された溶出剤を使用してフラッシュクロマトグラフィーを実施した。クロマトグラフィー用の溶媒を使用前に蒸留した。クロマトグラフィー用の溶出溶媒系は、体積／体積比として報告する。Ｏｍｎｉｃｒｏｍ ＹＭＣカラム（４．６ｍｍ×２５０ｍｍ、５μｍＣ１８、１ｍＬ／分）を使用して、非ペプチド化合物は２５４ｎｍで、ペプチド化合物は２２０ｎｍで検出しＲＰ−ＨＰＬＣ解析を行った。溶出剤は、水（０．１％ＴＦＡ）からアセトニトリル（０．１％ＴＦＡ）（３０分間）の直線的勾配とした。分析ＲＰ−ＨＰＬＣの保持時間（Ｒｔ）は分で示し、勾配はアセトニトリルの割合で記載する。ＮＭＲ：Ｂｒｕｋｅｒ ＡＣ−２５０、ＡＶ−３６０、ＡＶ−５００、およびＤＭＸ５００。１Ｈおよび１３ＣのＮＭＲスペクトルを周辺温度で記録した。スペクトルを、それらのそれぞれの溶媒シグナル（ＣＤＣｌ３：１Ｈ ７．２６ｐｐｍ、１３Ｃ ７７．０ｐｐｍ、ＭｅＯＨ−ｄ４：１Ｈ ３．３１ｐｐｍ、１３Ｃ ４９．０５ｐｐｍ）にキャリブレーションした。化学シフト（δ）は、１００万分の１（ｐｐｍ）で報告し、カップリング定数（Ｊ値）はヘルツ（Ｈｚ）で与える。多重度を説明するために以下の略号を使用した：ｓ、シングル、ｄ、ダブレット、ｔ、トリプレット、ｑ、カルテット、ｄｄ、ダブレットのダブレット、ｄｔ、トリプレットのダブレット、ｍ、マルチプレット、ｂ、ブロード。ＭＳ：Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＭＡＴ８２００（ＥＩ）、Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＬＣＱ（ＥＳＩ）。Ｂｒｕｋｅｒ Ｕｌｔｒａｆｌｅｘ ＴＯＦ／ＴＯＦでペプチド配列解析を行った。
【００４２】
メチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（５）。アルゴン雰囲気下、メチル２−ブロモアセテート（３．５５ｍＬ、３７．５ｍｍｏｌ、１．０当量）、Ｐｄ（ＯＡｃ）２（２５２ｍｇ、１．１３ｍｍｏｌ、３ｍｏｌ％）、Ｐ（ｏ−トリル）３（１．０２ｇ、３．３５ｍｍｏｌ、９ｍｏｌ％）およびＫ２ＣＯ３（２６．０ｇ、０．１９ｍｍｏｌ、５．０当量）を含むＴＨＦ（１２０ｍＬ）の懸濁液に、４−アセチルフェニルボロン酸（７．３８ｇ、４５．０ｍｍｏｌ、１．２当量）を含むＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１２０ｍＬ／１．７ｍＬ）の溶液を１時間にわたり滴下しながら加えた。室温で１８時間攪拌後、混合物を濾過し、溶媒を減圧下で除去した。残渣をＥｔＯＡｃ（２５０ｍＬ）に取り、次いで飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（１５０ｍＬ）、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（１５０ｍＬ）および食塩水で洗浄した。ＭｇＳＯ４で乾燥させた後、有機層を短いシリカゲルカラムで濾過して濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８）で、５（４．７３ｇ、６６％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１３（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ４４−４４°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９１（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．３６（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．６８（ｓ，２Ｈ），２．５７（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．５，１７１．１，１３９．２，１３６．０，１２９．４（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），５２．１，４０．９，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１２Ｏ３の理論値 １９２．０７８６４；実測値 １９２．０７８６３。
【００４３】
メチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（７）。５（３．００ｇ、１５．６ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＣＣｌ４（３００ｍＬ）の溶液に、Ｎ−ブロモスクシンイミド（３．３６ｇ、１８．９ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＢｒ２（２滴）を加えた。混合物を還流するまで加熱し、５００Ｗのハロゲンランプで１０分間照射し、還流しながらさらに５０分間攪拌した。室温まで冷却した後反応溶液を濾過し、溶媒を濃縮し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：４）で精製して、７（３．７５ｇ、８９％）を黄白色の油として得た。Ｒｆ＝０．１８（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９４（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．６３（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），５．３８（ｓ，１Ｈ），３．７９（ｓ，３Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．１，１６８．２，１４０．４，１３７．５，１２８．９，１２８．６，５３．５，４５．３，２６．６；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１１８１ＢｒＯ３の理論値 ２７１．９８７１２；実測値 ２７１．９８７１６，ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１１Ｈ１１７９ＢｒＯ３の理論値 ２６９．９８９１７；実測値 ２６９．９８８６３。
【００４４】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（９）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（７６２ｍｇ、４．４３ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＫ２ＣＯ３（１．２７ｇ、９．２２ｍｍｏｌ、２．５当量）を含むＤＭＦ（１００ｍＬ）の懸濁液に、７（１．００ｇ、３．６９ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（６０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過して減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：７→７：１、１％ＮＥｔ３）で９（８２９ｍｇ、６２％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ３２−３５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ８．０４（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．４５（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），５．０２（ｓ，１Ｈ），３．７７（ｓ，３Ｈ），３．３７−３．３０（ｍ，２Ｈ），３．２４−３．１０（ｍ，４Ｈ），３．０９−３．０１（ｍ，４Ｈ），３．００−２．９４（ｍ，４Ｈ），２．６３（ｍ，５Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １９９．８，１７４．１，１３９．６，１３８．４，１３１．２（２ Ｃ），１２９．８（２ Ｃ），６６．５，５３．２，４８．０（２ Ｃ），４６．３（２ Ｃ），４３．８（２ Ｃ），４３．８（２ Ｃ），２６．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ１９Ｈ３０Ｎ４Ｏ３の理論値 ３６２．２；実測値 ３６３．２ ［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００４５】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチル−フェニル）アセテート（１１）。室温の９（７２３ｍｇ、１．９９ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（１．２４ｇ、８．９８ｍｍｏｌ、４．５当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（０．９７ｍＬ、６．５８ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過して減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：１０→７：１、１％ＮＥｔ３）で、１１（８３ｍｇ、８３％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→８０％） Ｒｔ＝１７．４；Ｒｆ＝０．８３（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７３−７５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９５（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．１６（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），４．７５（ｓ，１Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．５９（ｄ，Ｊ＝１７．４ Ｈｚ，１Ｈ），３．４２（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．３９（ｄ，Ｊ＝１７．４ Ｈｚ，１Ｈ），３．２４−３．０５（ｍ，３Ｈ），３．０２−２．６８（ｍ，６Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），２．５７−２．４２（ｍ，４Ｈ），２．３５−２．２５（ｍ，２Ｈ），２．２５−２．１５（ｍ，２Ｈ），２．１４−２．０５（ｍ，２Ｈ），１．４８（ｓ，９Ｈ），１．４５（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．４，１７４．５，１７３．６，１７３．１，１７２．９，１３６．９，１３６．７，１３０．２（２Ｃ），１２８．３（２Ｃ），８２．５，８２．２，８２．１，７７．２，６４．８，５５．９，５５．７，５５．５，５２．７，５２．４，５２．３，４８．５，４８．０，４７．９，４７．８，４４．６，２７．９（３Ｃ），２７．８（３Ｃ），２７．７（３Ｃ），２６．６；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ３の理論値 ４０４．２７８７５；実測値 ４０４．２７９５１。
【００４６】
（Ｒ／Ｓ）−２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチルフェニル）酢酸・１／２ＡｃＯＨ（２）。室温の１１（２６．０ｍｇ、３１．７μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（５ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（１．７５ｍｇ、７２．９μｍｏｌ、２．３当量）を含む水（１５０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。減圧下で濃縮後、粗生成物を分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→６０％、３０分間）で精製し、酢酸を凍結乾燥して除き、２（９．０ｍｇ、３８％、回収された１１に関して６６％）を無色の固体として得た。９４％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝２５．７；ｍｐ ６８−７２°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ８．０６（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．６３（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），５．１２（ｓ，１Ｈ），４．０４−３．３４（ｍ，８Ｈ），３．３４−３．１８（ｍ，４Ｈ），３．１５−２．６６（ｍ，１０Ｈ），２．６３（ｓ，３Ｈ），１．９９（ｓ，１／２×３Ｈ（ＡｃＯＨ）），１．５３（ｓ，９Ｈ），１．５２（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １９９．７，１７５．２，１７２．７，１７０．４（ｂｒ，３Ｃ），１３８．８（２Ｃ），１３２．７（２Ｃ），１２９．８（２Ｃ），８４．１（ｂｒ，３Ｃ），６９．９，５６．５，５２．９−５１．０（ｂｒ，８Ｃ），２０．５（９Ｃ），２６．８，２０．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ３６Ｈ５８Ｎ４Ｏ９の理論値 ６９０．４；実測値 ６９１．４ ［Ｍ＋Ｈ］＋，７１３．４ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，７２９．３ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００４７】
メチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）。（４−ヨードフェニル）酢酸（１２）（１５．０ｇ、５７．０ｍｍｏｌ）を含む無水メタノール（５０ｍＬ）の溶液に、ＳＯＣｌ２（２０．７ｍＬ、２８５ｍｍｏｌ、５当量）を０℃で滴下しながら加えた。室温で１時間攪拌後、減圧下で溶媒を除去し、残渣をＥｔ２Ｏ（４００ｍＬ）に溶解した。次いで、有機層を飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（４００ｍＬ）、飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（４００ｍＬ）、および食塩水（４００ｍＬ）で洗浄し、ＭｇＳＯ４で乾燥させた。減圧下で濃縮し１３（１４．７ｇ、９３％）を得た。Ｒｆ＝０．５７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．６５（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．０３（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），３．６９（ｓ，３Ｈ），３．５６（ｓ，３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １７１．３，１３７．６，１３３．５，１３１．２，９２．５，５２．０，４０．５。
【００４８】
１−アジド−３−アミノプロパン（２０）。文献の手順（５６）を若干変更した：１−ブロモ−３−アミノプロパン臭化水素酸塩（５．４７ｇ、２５．０ｍｍｏｌ、１．０当量）およびアジ化ナトリウム（３．２５ｇ、５０．０ｍｍｏｌ、２．０当量）を含む２０ｍＬの水溶液を、８０℃で２４時間加熱した。反応混合物を氷浴で冷却後、ジエチルエーテル（３０ｍＬ）を加えた。温度を１０℃未満に保ちながら、ＫＯＨペレットの添加によってｐＨを１４に調節した。有機層の分離後、ジエチルエーテルで水分をさらに抽出した。集めた有機層をＭｇＳＯ４で乾燥させ、真空中で注意深く濃縮した。残った油は、２１．０ｍｍｏｌ（８４％）の２０と、およそ等モル量のジエチルエーテルを含み（プロトンＮＭＲの積分に基づく）、それ以上精製せずに使用した。分光分析データは、文献２０と同一であった。
【００４９】
３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸（２１）。２０（５０１ｍｇ、５．００ｍｍｏｌ、１．１当量）およびＮＥｔ３（６９３μＬ、５．００ｍｍｏｌ、１．１当量）を含む１０ｍＬのアセトンの溶液に、無水コハク酸（４６０ｍｇ、４．５５ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む５ｍＬのアセトンの溶液を、室温で１５分間にわたって加えた。反応混合物を室温でさらに１５時間攪拌した。真空中で濃縮後、残渣を希釈ＨＣｌ水溶液（２０ｍＬ）と酢酸エチル（２０ｍＬ）の間に区分化して分離し、水層を酢酸エチルでさらに抽出した（２×１０ｍＬ）。集めた有機層の濃縮後、２１（６５３ｍｇ、３．２７ｍｍｏｌ、７１％）を白色固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ３．３４（ｔ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ），３．２４（ｔ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ），２．５９（ｄｔ，Ｊ＝６．５ Ｈｚ，１．１ Ｈｚ，２Ｈ），２．４４（ｄｔ，Ｊ＝６．７ Ｈｚ，１．３ Ｈｚ，２Ｈ），１．７４（ｑ，Ｊ＝６．８ Ｈｚ，２Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７６．２，１７４．７，５０．０，３７．７，３１．５，３０．２，２９．７；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ１１Ｈ１２Ｏ３の理論値 ２００．１；実測値 ２０１．１（Ｍ＋Ｈ＋）。
【００５０】
ペプチド合成
標準的なＦｍｏｃストラテジー（５７〜６０）に従い、ＴＣＰ−樹脂を用いてペプチド合成を行った。
【００５１】
ＴＣＰ樹脂へのＮ−Ｆｍｏｃ−アミノ酸の結合。一般的手順Ｉ。
【００５２】
無水ＤＣＭ（１０ｍＬ）で２０分間膨潤させた後、ＴＣＰ樹脂（２．００ｇ、理論上０．９６ｍｍｏｌ／ｇ、１．９２ｍｍｏｌ）を、Ｆｍｏｃ保護アミノ酸（１．２当量、２．３ｍｍｏｌ）を含む無水ＤＣＭ（１９ｍＬ）溶液およびＤＩＰＥＡ（９８０μＬ、３当量、５．８ｍｍｏｌ）で、室温にて２時間処理した。ＭｅＯＨ（２ｍＬ）およびＤＩＰＥＡ（０．４ｍＬ）を加えてフリー部位にキャップをし、反応混合物を１５分間振盪した。樹脂をＮＭＰ（３×１０ｍＬ）、ＤＣＭ（５×１０ｍＬ）、およびＭｅＯＨ（３×１０ｍＬ）で洗浄し、真空下で乾燥させ、樹脂結合Ｎ−Ｆｍｏｃアミノ酸を得た。
【００５３】
Ｆｍｏｃの脱保護。一般的手順ＩＩ。
【００５４】
Ｆｍｏｃ保護樹脂を、２０％ピペリジンを含むＮＭＰの溶液１０ｍＬで処理し（３×１０分間）、ＮＭＰで洗浄した（５×１０ｍＬ）。
【００５５】
ＴＢＴＵ／ＨＯＢｔとのカップリング。一般的手順ＩＩＩ。
【００５６】
Ｆｍｏｃアミノ酸（２．５当量）、ＴＢＴＵ（２．５当量）、ＨＯＢｔ（２．５当量）、およびＤＩＰＥＡ（７当量）をＮＭＰに溶解して０．２ｍｍｏｌ／Ｌ溶液を得、これを樹脂に加えた。反応混合物を室温にて９０分間振盪し、ＮＭＰで洗浄した（５×１０ｍＬ）。
【００５７】
トリフルオロ酢酸での切断と脱保護。一般的手順ＩＶ。
【００５８】
樹脂をＤＣＭで洗浄し（３×１０ｍＬ）、ＴＦＡ、Ｈ２Ｏ、およびトリイソプロピルシラン（９０：５：５、ｖ／ｖ／ｖ、２０ｍＬ）の混合物で３回×１０分間処理した。濾過による樹脂の除去後、濾液を集め、さらに９０分間攪拌した。溶媒を減圧下で濃縮し、Ｅｔ２Ｏでペプチドを沈殿させた。
【００５９】
直鎖ペプチドのジスルフィド環化。一般的手順Ｖ。
【００６０】
直鎖ペプチドを高希釈（ｃ＝１ｍＭ）で水に溶解し、濃縮ＮａＨＣＯ３水溶液を加えてｐＨを７〜８に調節した。次に、３０％のＨ２Ｏ２水溶液（３当量）を、激しく攪拌しながら滴下して加えた。３０分後に反応を停止させ、凍結乾燥によって溶媒を除去した。
【００６１】
シクロ［２，７］−ＡｏｘＡｃ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（１８）およびシクロ［２，７］−３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（２３）の合成。直鎖ペプチド配列、Ｈ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨを、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の方法で固相上に合成した。手順ＩＶに従って、サンプルを樹脂から切断し、ペプチド配列をＭＡＬＤＩ−ＴＯＦペプチド配列解析で確認した。ＭＳ（ＭＡＬＤＩ） Ｃ４９Ｈ６６Ｎ１０Ｏ１２Ｓ２の理論値 １０５０．４３；実測値 １０５１．４０ ［Ｍ＋Ｈ］＋．さらなる手順では、樹脂を２つの部分に分けた：
１）シクロ［２，７］−ＡｏｘＡｃ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（１８）：（Ｂｏｃ−アミノオキシ）酢酸を、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法で上記の樹脂結合ペプチドの一部にカップリングさせ、直鎖ペプチドを、手順ＩＶに従って樹脂から切断した。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。ステップＩＶおよびＶで使用する全ての溶媒の品質に十分注意しなくてはならない（ＨＰＬＣ品質）。小バッチの粗生成物を精製し、半分取（ｓｅｍｉｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ）ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）による精製後にアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオテート１８を無色の固体として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１７．３；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ５１Ｈ６７Ｎ１１Ｏ１４Ｓ２の理論値 １１２１．４３；実測値 １１２２．５ ［Ｍ＋Ｈ］＋，５６２．１ ［（２Ｍ＋２Ｈ）／２］２＋。
２）シクロ［２，７］−３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｔｙｒ−Ｄ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ−Ｔｈｒ−Ｃｙｓ−Ｔｈｒ−ＯＨ（２３）。２１を、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法で上記の樹脂結合ペプチドの一部にカップリングさせ、直鎖ペプチドを手順ＩＶに従って樹脂から切断した。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。ジスルフィド環化を一般的手順Ｖに従って行った。半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→６０％、３０分間）による精製後に、ペプチドを無色の固体として得た。９６％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→５０％） Ｒｔ＝２５．０；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ５６Ｈ７４Ｎ１４Ｏ１４Ｓ２の理論値 １２３０．５０；実測値 １２３１．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１２５３．６ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，１２６９．３ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００６２】
３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ（２５）の合成：直鎖ペプチドを、一般的手順Ｉ〜ＩＩＩと同様の手法にて固相上で合成し、手順ＩＶに従って樹脂から切断した。半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）による精製後に、ペプチドを無色の固体として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％，３０分） Ｒｔ＝１６．８；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ３８Ｈ５０Ｎ１０Ｏ１０の理論値 ８０６．３７；実測値 ８０７．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，８２９．５ ［Ｍ＋Ｎａ］＋。
【００６３】
ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ誘導体２６の合成。室温の３（３．１ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（０．２ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（０．３ｍｇ、１４μｍｏｌ、３．４当量）を含む水（３０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。次に、水（０．２ｍＬ）、ペプチド２２（３．８ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）、０．１Ｍ ＣｕＳＯ４水溶液（４９μＬ、４．９μｍｏｌ、１．２当量）および銅粉末（１０ｍｇ）を加え、混合物を１８時間攪拌した。この後、銅粉末を濾別し、Ｎａ２Ｓ（Ｎａ２Ｓ・９Ｈ２Ｏ、１２ｍｇ、４９μｍｏｌ、１２．０当量）を加えて溶解した銅塩を沈殿させた。混合物を濾過し、溶媒を減圧下で除去した。ｔｅｒｔ−ブチルエステルを、ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ混合物（９５：５：５、ｖ／ｖ／ｖ、１ｍＬ）で２時間処理することで切断した。その後、溶液を減圧下で濃縮し、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に２３（３．２２ｍｇ、５１％）を無色の粉末として得た。９５％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１２．６；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ６２Ｈ８２Ｎ１４Ｏ１８の理論値 １３１０．５９；実測値 ６５６．９ ［（Ｍ＋２Ｈ）／２］＋，６６７．９ ［（Ｍ＋Ｈ＋Ｎａ）／２］＋，１３１１．８ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１３３３．６ ［Ｍ＋Ｎａ］＋，１３４９．５ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００６４】
ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）アセテート（６）。アルゴン雰囲気下のｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（６．８０ｍＬ、４６．４ｍｍｏｌ、１．０当量）、Ｐｄ（ＯＡｃ）２（３３６ｍｇ、１．５０ｍｍｏｌ、３ｍｏｌ％）、Ｐ（ｏ−トリル）３（１．３６ｇ、４．４６ｍｍｏｌ、１０ｍｏｌ％）、およびＫ２ＣＯ３（３４．６ｇ、０．２５ｍｍｏｌ、５．４当量）を含むＴＨＦ（１６０ｍＬ）の懸濁液に、４−アセチルフェニルボロン酸（４）（９．８４ｇ、６０．０ｍｍｏｌ、１．３当量）を含むＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１６０ｍＬ／２．２ｍＬ）の溶液を１時間にわたり滴下しながら加えた。室温で１８時間攪拌後、混合物を濾過し、減圧下で溶媒を除去した。残渣をＥｔＯＡｃ（２５０ｍＬ）に取り、次に飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液（１５０ｍＬ）、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（１５０ｍＬ）および食塩水で洗浄した。ＭｇＳＯ４で乾燥させた後、有機層を、シリカゲルを通して濾過し濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８）で、６（６．７８ｇ、６３％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ５０−５２°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９２（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．３７（ｄ，Ｊ＝８．１ Ｈｚ，２Ｈ），３．５８（ｓ，２Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），１．４３（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．７，１７０．０，１４０．１，１３５．８，１２９．４（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），８１．２，４２．６，２８．０，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１８Ｏ３の理論値 ２３４．１２５５９；実測値 ２３４．１２５３２。
【００６５】
ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセチルフェニル）−２−ブロモアセテート（８）。６（２．８４ｇ、１２．１ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＣＣｌ４（２５０ｍＬ）の溶液に、Ｎ−ブロモスクシンイミド（２．５８ｇ、１４．５ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＢｒ２（２滴）を加えた。混合物を還流するまで加熱し、５００Ｗのハロゲンランプで１０分間照射し、還流しながらさらに５０分間攪拌した。室温まで冷却した後、反応溶液を濾過し、溶媒を濃縮し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：１０）で精製して、８（３．３４ｇ、８８％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：４）；ｍｐ ５４−５６°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９３（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．６２（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），５．２７（ｓ，１Ｈ），２．５９（ｓ，３Ｈ），１．４５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．２，１６６．６，１４１．１，１３７．３，１２８．８（２Ｃ），１２８．６（２Ｃ），８３．５，４７．１，２７．６，２６．６；ＭＳ（ＥＩ） ｍ／ｚ（％） ３１４（＜１） ［Ｍ（８１Ｂｒ）］＋，３１２（＜１） ［Ｍ（７９Ｂｒ）］＋，２４１（１０） ［Ｍ（８１Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］＋，２３９（８） ［Ｍ（７９Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］＋；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１０Ｈ８８１ＢｒＯ２ ［Ｍ（８１Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］の理論値 ２４０．９６８７２；実測値 ２４０．９６８３３，ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１０Ｈ８７９ＢｒＯ２ ［Ｍ（７９Ｂｒ）−ＯｔＢｕ］の理論値 ２３８．９７０７６；実測値 ２３８．９７０７４。
【００６６】
（Ｒ／Ｓ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（１０）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（３３１ｍｇ、１．９２ｍｍｏｌ、１．２当量）とＫ２ＣＯ３（５５２ｍｇ、３．９９ｍｍｏｌ、２．５当量）を含むＤＭＦの懸濁液に、８（５００ｍｇ、１．６０ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：７→７：１、１％ＮＥｔ３）で、１０（４８８ｍｇ、７５％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ３３−３６°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９１（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．４３（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），４．６２（ｓ，１Ｈ），２．９０−２．６７（ｍ，１１Ｈ），２．６４−２．４４（ｍ，１０Ｈ），１．４７（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．４，１７０．７，１４２．３，１３６．４，１２９．３，１２８．３，８１．９，６７．８，４９．３，４７．７，４５．９，４５．８，２８．１，２６．５；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ３の理論値 ４０４．２７８７５；実測値 ４０４．２７９５１。
【００６７】
（Ｒ／Ｓ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−アセチルフェニル）アセテート（１）。室温の１０（７００ｍｇ、１．７３ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（１．０８ｍｇ、７．７９ｍｍｏｌ、４．５当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（０．８４ｍＬ、５．７１ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（２０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ ９：１、１％ＴＥＡ）で、１１（９３０ｍｇ、７２％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→１００％） Ｒｔ＝２２．０；Ｒｆ＝０．８３（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７０−７１°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．９４（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），７．１１（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），４．６６（ｓ，１Ｈ），３．６０（ｄ，Ｊ＝１７．３ Ｈｚ，１Ｈ），３．４５（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），３．３８（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．２２−３．０５（ｍ，３Ｈ），２．９８−２．７０（ｍ，６Ｈ），２．６１（ｓ，３Ｈ），２．６１−２．４８（ｍ，２Ｈ），２．４６−２．３８（ｍ，１Ｈ），２．３６−２．２４（ｍ，２Ｈ），２．２２−２．０４（ｍ，５Ｈ），１．４９（ｓ，９Ｈ），１．４８（ｓ，９Ｈ），１．４６（ｓ，９Ｈ），１．３９（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １９７．６，１７３．４，１７３．１，１７３．０，１７２．９，１３７．２，１３６．６，１３０．３（２Ｃ），１２８．１（２Ｃ），８２．９，８２．２，８２．１，８２．０，６５．４，５６．０，５５．８，５５．５，５２．７，５２．４，５２．１，４８．５，４８．１，４８．０，４７．９，４４．５，２７．９（３Ｃ），２７．８（６Ｃ），２７．７（３Ｃ），２６．６；ＭＳ（ＥＩ） ｍ／ｚ（％） ７４６．０（９） ［Ｍ］＋，６４５．１（４７） ［Ｍ−ＣＯ２ｔＢｕ］＋；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ３５Ｈ５７Ｎ４Ｏ７ ［Ｍ−ＣＯ２ｔＢｕ］の理論値 ６４５．４２２７３；実測値 ６４５．４２２５７。
【００６８】
メチル２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１４）。０℃のメチル（４−ヨードフェニル）アセテート（１３）（１２．８ｇ、４５ｍｍｏｌ、１．０当量）、トリメチルシリル−アセチレン（９．３０ｍＬ、６７．５ｍｍｏｌ、１．５当量）およびＴＥＡ（１４．９ｍＬ、１０８ｍｍｏｌ、２．４当量）を含む無水ＣＨ３ＣＮ（１２０ｍＬ）の溶液に、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４（３．６ｇ、３．１５ｍｍｏｌ、０．０７当量）およびＣｕＩ（６．００ｇ、３１．５ｍｍｏｌ、０．７当量）を加えた。０℃で３０分間、および室温で３時間攪拌後、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）を溶出剤として使用してシリカの短いカラムに通して混合物を濾過した。減圧下で溶媒を除去し、残渣をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８０→１：２０）で精製して、１４（１０．３ｇ、９３％）を黄白色の結晶として得た。Ｒｆ＝０．２７（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：１０）；ｍｐ ５５−５８°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．４２（ｄ，Ｊ＝８．４ Ｈｚ，２Ｈ），７．２１（ｄ，Ｊ＝８．５ Ｈｚ，２Ｈ），３．６８（ｓ，３Ｈ），３．６１（ｓ，２Ｈ），０．２５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １７１．４，１３４．３，１３２．０（２Ｃ），１２９．１（２Ｃ），１２２．０，１０４．７，９４．２，５２．０，４１．０，−０．０（３Ｃ）；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１８Ｏ２Ｓｉの理論値 ２４６．１０７６１；実測値 ２４６．１０７４４。
【００６９】
メチル２−ブロモ−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１５）。−７８℃の１４（２．０７ｇ、８．４０ｍｍｏｌ、１．０当量）を含む無水ＴＨＦ（２０ｍＬ）の溶液に、ＬＤＡ（ＴＨＦ／ｎ−ヘプタン／エチルベンゼン中の２Ｍ溶液、５．０４ｍＬ、１０．１ｍｍｏｌ、１．２当量）を加えて、溶液を１時間攪拌した。この後、Ｎ−ブロモスクシンイミド（１．７９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ、１．２当量）を含む無水ＴＨＦ（２０ｍＬ）の懸濁液を加え、１８時間にわたって混合物を室温まで温めた。減圧下で溶媒を除去し、残渣をＣＣｌ４（３０ｍＬ）に懸濁し、濾過し、蒸発させた。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：８０→１：２０、１％ＮＥｔ３）による精製で、１５（１．２８ｇ、４７％、回収された１４に関して９２％）を得た。Ｒｆ＝０．４２（ＥｔＯＡｃ／ヘキサン，１：１０）；ｍｐ ８２−８４°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（３６０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ ７．４７（ｄ，Ｊ＝８．７ Ｈｚ，２Ｈ），７．４４（ｄ，Ｊ＝８．７ Ｈｚ，２Ｈ），５．３２（ｓ，１Ｈ），３．７７（ｓ，３Ｈ），０．２５（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（９０ ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３） δ １６８．３，１３５．７，１３２．２（２Ｃ），１２８．５（２Ｃ），１２４．２，１０４．１，９５．８，５３．３，４５．８，４５．８，−０．１（３Ｃ）；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ１４Ｈ１７８１ＢｒＯ２Ｓｉの理論値 ３２６．０１６０８；実測値 ３２６．０１６２２。
【００７０】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）］−２−（４−（２−（トリメチルシリル）エチニル）フェニル）アセテート（１６）。室温の１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン（シクレン）（５４８ｍｇ、３．１８ｍｍｏｌ、１．２当量）およびＫ２ＣＯ３（４３９ｍｇ、３．１８ｍｍｏｌ、１．２当量）を含むＤＭＦ（６０ｍＬ）の懸濁液に、１５（８６２ｍｇ、２．６５ｍｍｏｌ、１．０当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の溶液を１０時間にわたって滴下しながら加えた。混合物を濾過し減圧下で濃縮した。シリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（勾配ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：９→９：１、１％ＮＥｔ３）で、１６（５９０ｍｇ、５３％）を黄白色の固体として得た。Ｒｆ＝０．１０（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，３：１，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ７０−７５°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ７．４９（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．３０（ｄ，Ｊ＝８．３ Ｈｚ，２Ｈ），４．９０（ｓ，１Ｈ），３．７８（ｓ，３Ｈ），３．２１−３．０１（ｍ，６Ｈ），３．０１−２．８２（ｍ，８Ｈ），２．７１−２．６２（ｍ，２Ｈ），０．２３（ｓ，９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７４．２，１３５．６，１３３．２（２Ｃ），１３０．８（２Ｃ），１２４．９，１０５．４，９５．９，６７．２，５３．０，４８．４（２Ｃ），４７．０（２Ｃ），４４．９（２Ｃ），４４．４（２Ｃ），−０．０（３Ｃ）；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ２２Ｈ３６Ｎ４Ｏ２Ｓｉの理論値 ４１６．３；実測値 ４１７．４ ［（Ｍ＋Ｈ）］＋，４３９．４ ［（Ｍ＋Ｎａ）］＋。
【００７１】
（Ｒ／Ｓ）−メチル２−［１−（１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）−４，７，１０−トリス（ｔｅｒｔ−ブチルアセテート）］−２−（４−エチニル）フェニル）アセテート（３）。室温の１６（５３０ｍｇ、１．２７ｍｍｏｌ、１．０当量）およびＫ２ＣＯ３（６３４ｍｇ、４．５７ｍｍｏｌ、３．６当量）を含むＤＭＦ（５０ｍＬ）の懸濁液に、ｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテート（６１５μＬ、４．１９ｍｍｏｌ、３．３当量）を含むＤＭＦ（２０ｍＬ）の溶液を３０分間にわたって加えた。４時間の攪拌後、混合物を濾過して減圧下で濃縮し、残渣をＴＨＦ（２０ｍＬ）に溶解した。その後、フッ化テトラブチルアンモニウム（４８１ｍｇ、１．５２ｍｍｏｌ、１．２当量）を加え、１５分間の攪拌後、溶媒を除去し、粗生成物をシリカゲルでのフラッシュクロマトグラフィー（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３ １：１０、１％ＮＥｔ３）で精製して、３（５０８ｍｇ、８５％）を黄白色の固体として得た。９９％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→１００％） Ｒｔ＝２０．０；Ｒｆ＝０．２８（ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３，１：９，１％ ＮＥｔ３）；ｍｐ ６３−６８°Ｃ；１Ｈ ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ ７．４８（ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，２Ｈ），７．２０（ｄ，Ｊ＝８．０ Ｈｚ，２Ｈ），４．８３（ｓ，１Ｈ），３．７５（ｄ，Ｊ＝１７．２ Ｈｚ，１Ｈ），３．７４（ｓ，３Ｈ），３．５５（ｓ，１Ｈ），３．５４（ｄ，Ｊ＝１７．５ Ｈｚ，１Ｈ），３．５１（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），３．２６−３．２１（ｍ，１Ｈ），３．１８−３．０５（ｍ，４Ｈ），２．９９−２．９２（ｍ，３Ｈ），２．８９（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），２．８７（ｄ，Ｊ＝１７．６ Ｈｚ，１Ｈ），２．７４−２．６３（ｍ，２Ｈ），２．３３（ｄ，Ｊ＝１１．５ Ｈｚ，１Ｈ），２．２８−２．１２（ｍ，４Ｈ），２．１２−２．０５（ｍ，２Ｈ），１．５４（ｓ，９Ｈ），１．５２（ｓ，１８Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１２５ ＭＨｚ，ＭｅＯＨ−ｄ４） δ １７６．３，１７５．４，１７５．１，１７４．７，１３４．１，１３２．８，１３１．７，１２３．８，８３．８，８３．５，８３．１，７９．７，６６．４，５９．６１，５９．５９，５９．５７，５７．１，５６．８，５６．７，５４．２，５３．９，５３．７，５３．２，４５．９，２８．５，２８．４，２８．３，２４．８；ＨＲＭＳ（ＥＩ） Ｃ３７Ｈ５８Ｎ４Ｏ８の理論値 ６８６．４２５４６；実測値 ６８６．４２５３２。
【００７２】
化学選択的オキシムライゲーション。ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート誘導体１９の合成。１（３．３ｍｇ、４．５μｍｏｌ、１．０当量）を、１０ＮのＨＣｌ水溶液を含むジオキサン（５０／５０、ｖ／ｖ、２ｍＬ）中で１８時間脱保護した後、溶媒を減圧下で除去した。残渣をＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、０．２ｍＬ、ＨＰＬＣグレード）にｐＨ４（ＴＦＡ、ＨＰＬＣグレード）で溶解し、１８（６．１ｍｇ、４．５μｍｏｌ、１．０当量）を加えた。１８時間攪拌後、溶媒を濃縮して、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に１９（６．１ｍｇ、７３％）を無色の粉末として得た。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１８．１；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ７５Ｈ９９Ｎ１５Ｏ２２Ｓ２の理論値 １６２５．７；実測値 １６２６．６ ［Ｍ＋Ｈ］＋，１６６４．６ ［Ｍ＋Ｋ］＋。
【００７３】
化学選択的１，３−双極付加環化。（“クリック”化学）。ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート誘導体２４の合成。室温の３（３．１ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）を含むＴＨＦ（０．２ｍＬ）の溶液に、ＬｉＯＨ（０．３３ｍｇ、１４μｍｏｌ、３．４当量）を含むＨ２Ｏ（３０μＬ）の溶液を加え、混合物を１８時間攪拌した。次いで、Ｈ２Ｏ（０．２ｍＬ）、ペプチド２５（５．５ｍｇ、４．１μｍｏｌ、１．０当量）、０．１Ｍ ＣｕＳＯ４水溶液（４９μＬ、４．９μｍｏｌ、１．２当量）および銅粉末（１０ｍｇ）を加えて、混合物を１８時間攪拌した。この後、銅粉末を濾別し、減圧下で溶媒を除去し、ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏの混合物（９５：５：５、ｖ／ｖ、１ｍＬ）で２時間処理することによってｔｅｒｔ−ブチルエステルを切断した。溶媒を再度除去し、残渣をＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、１ｍＬ）に取り、Ｎａ２Ｓ（Ｎａ２Ｓ・９Ｈ２Ｏ、１２ｍｇ、４９μｍｏｌ、１２．０当量）を加えて銅塩を沈殿させた。混合物を濾過し、半分取ＲＰ−ＨＰＬＣ（２０→５０％、３０分間）で粗生成物を直接精製して、凍結乾燥後に直鎖状の２４（３．０ｍｇ、３７％）を無色の粉末として得た。ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ／ＤＭＳＯ（１：１：０．１、４ｍＬ）中で４８時間攪拌することによって、直鎖状ペプチドを定量的収率で再環化した。ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：２、ｖ／ｖ、１０ｍＬ、ｐＨ１〜３（ＴＦＡ））から蒸発および凍結乾燥させた後、２４（３．０ｍｇ、２５から３７％）を白色粉末として分離した。９７％純度；ＲＰ−ＨＰＬＣ（１０→６０％） Ｒｔ＝１６．１；ＭＳ（ＥＳＩ） Ｃ８０Ｈ１０６Ｎ１８Ｏ２２Ｓ２の理論値 １７３４．７；実測値 ８６８．８ ［（Ｍ＋２Ｈ）／２］＋，１７３５．５ ［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００７４】
１９の６８Ｇａ−標識。６８ＧａＣｌ３を、インハウスの“ＯＢＮＩＮＳＫ” ６８Ｇｅ／６８Ｇａジェネレーター（１．４８ＧＢｑ、Ｃｈｅｍｏｔｒａｄｅ Ｃｈｅｍｉｅｈａｎｄｅｌｓｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ＧｍｂＨ、ライプチヒ、ドイツ）から、０．１ＮのＨＣｌで溶出した。６８Ｇａ標識については、最初にジェネレーター溶出液を最終量がおよそ２００μＬになるように真空中で濃縮した。通常は行わないものの、この実験的研究に使用された古いジェネレーターによってもたらされた比較的少ない６８Ｇａ放射活性を完全に活用できるようにするためにはこの濃縮ステップが必要であった。次に、６８Ｇａ活性を２３０μＬの０．１Ｎ ＮａＯＡｃ（ｐＨ＝４．５）で希釈し、８０μＬの１Ｎ ＮａＯＨを加えることによってｐＨ３．５に緩衝した。２．２μＬの０．７ｍＭペプチド１９ストック溶液（１．５ｎｍｏｌ（３μｇ）のペプチドに相当する）を加えた後、反応混合物を１５分間９５℃に加熱した。室温まで冷却後、反応混合物を２ｍＬの水で希釈した。未反応の６８Ｇａ活性を除去するために、標識ペプチド［６８Ｇａ］１９をＳｅｐ−Ｐａｋ Ｃ−１８カートリッジ上に固定化し、１０ｍＬの水で洗浄し、２ｍＬのエタノールで溶出した。マウス注射用のエタノールを含まない溶液を得るために、溶媒を真空中で蒸発させ、最終的な放射能濃度が３８μＣｉ／１００μＬとなるように生成物を２ｍＬのＰＢＳに再溶解した。Ｓｙｋａｍ勾配ＨＰＬＣシステム（Ｓｙｋａｍ ＧｍｂＨ、フルスランフェルドブルック、ドイツ）およびＵＶＩＳ２００フォトメーター（Ｌｉｎｅａｒ（商標）Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ、リーノ−、米国）を使用して、Ｎｕｃｌｅｏｓｉｌ １００Ｃ１８（５μｍ、１２５×４．０ｍｍ）カラムで品質管理用の分析ＨＰＬＣを行った。放射活性測定については、ＵＶフォトメーターのアウトレットをＮａ（Ｔｌ）ウェルタイプシンチレーションカウンターＡｃｅ Ｍａｔｅ（商標）９２５−Ｓｃｉｎｔ（ＥＧ＆Ｇ Ｏｒｔｅｃ、ミュンヘン、ドイツ）に接続した。使用した溶出剤は、Ｈ２Ｏ（０．１％ＴＦＡ、溶媒Ａ）およびＣＨ３ＣＮ（０．１％ＴＦＡ、溶媒Ｂ）で、勾配は：０〜２分間が０％Ｂ、２〜９分間が０〜４０％Ｂ、９〜１５分間が４０％Ｂとした。１ｍＬ／分の一定流量でペプチドを溶出した。ＵＶ検出波長は２２０ｎｍであった。Ｒｔ（［６８Ｇａ］１９）＝１５．３分；Ｋ’ ＝ ８．１３。
【００７５】
動物実験。その高いｓｓｔ２−ソマトスタチン受容体発現のため、ラット膵臓腫瘍細胞株ＡＲ４２Ｊを腫瘍モデルとして使用した。５５腫瘍増殖を確立するため、１ｍＭ ＥＤＴＡを含むＰＢＳを用いて細胞を培養フラスコの表面から剥がし、遠心分離して、無血清培地（ＲＰＭＩ−１６４０、Ｂｉｏｃｈｒｏｍ、ベルリン、ドイツ）に再懸濁した。細胞懸濁液の濃度は３．７×１０６個／血清１００μＬであった。ヌードマウス（雌、６〜８週）の脇腹に、１００μＬの細胞懸濁液を皮下注射した。腫瘍移植の１０日後に、全てのマウスは触知可能な充実性腫瘤を示し（腫瘍重量は０．７〜１．４ｇ）、これらを実験に使用した。
【００７６】
生体内分布試験では、３８μＣｉの［６８Ｇａ］１９（０．１５μｇのペプチドに相当する）を含む１００μＬのＰＢＳを、マウスの尾静脈に静脈内注射した。放射性リガンドの非特異的な組織内蓄積を、過剰量のｃｏｌｄ ｃｏｍｐｅｔｉｔｏｒ（２０μｇ Ｔｙｒ３−オクトレオチド／マウス）の同時注入よって判定した。放射性リガンド注射後の異なる時点（３０分および６０分ｐ．ｉ．）において、マウス（時間点につきｎ＝５；６０分ｐ．ｉ．におけるブロッキング試験用にｎ＝３）を屠殺し、解剖した。目的とする臓器を取り出し、重量を測定し、γカウンター（Ｗａｌｌａｃｈ、トゥルク、フィンランド）でカウントした。データは、ｇ組織当たりの％注射用量（％ｉＤ／ｇ）で表す。
【００７７】
結果
オキシムライゲーションを介したアミノオキシ官能基化ペプチドへの化学選択的結合のためのカルボニル−置換ＤＯＴＡ誘導体の開発。我々の合成戦略を計画する上で、アミノオキシ基は、ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル保護アミノオキシ官能基化アミノ酸成分として容易にペプチドに組み込まれうることから、我々は、カルボニル官能基をＤＯＴＡ部分に結合させることを決定した。カルボニル官能基として、アルデヒドよりも、その有意に高い安定性からメチルケトンが好ましかった。この手順は、アルデヒドを使用する場合には不可欠であろうさらなる保護および脱保護のステップを回避し、最終化合物をより長期間にわたって容易に保存できるようにする。さらに、我々のアイディアは、我々の新しいＤＯＴＡ誘導体の潜在的な応用範囲を拡大するものであった。これまでは、モノ結合体の選択的形成を可能にする誘導体に主に焦点が当てられていたが、選択的に変換され得る２つの異なる官能基を提供する新規なＤＯＴＡ誘導体の開発は、例えば、ホモ−およびヘテロオリゴマーの選択的合成４１または薬物動態の向上４２をもたらすことが示されている、糖のようなさらなる基の結合などの新たな機会をもたらすものとなるだろう。従って我々は、２つの異なる保護基戦略を策定した：ｉ）塩基に不安定な１つの保護基での直交保護（ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ）であり、１つのカルボン酸基の選択的脱保護と誘導体化を可能にするもの、およびｉｉ）モノ結合体のみが望ましい場合に１ステップの脱保護を提供する、酸に不安定な基での完全な保護である。
【００７８】
我々の合成は、４−アセチルフェニルボロン酸（４）から始まり、これを鈴木クロスカップリング反応においてメチル２−ブロモアセテートおよびｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートとそれぞれ反応させて、対応する２−（４−アセチルフェニル）置換アセテート５および６を良好な収率で形成させた（スキーム１）。４３
【００７９】
【化３】
スキーム１．カルボニル置換ＤＯＴＡ誘導体１および２の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＢｒＣＨ２ＣＯ２Ｒ、Ｐｄ（ＯＡｃ）２／Ｐ（ｏ−Ｔｏｌ）３、Ｋ２ＣＯ３、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、５：６６％、６：６３％、（ｂ）ＮＢＳ、Ｂｒ２、ｈｖ、ＣＣｌ４、１時間、７：８９％、８：８８％、（ｃ）１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン、Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、１０時間、９：６２％、１０：７５％、（ｄ）ＢｒＣＨ２ＣＯ２ｔ−Ｂｕ Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、４時間、１１：８３％、１：７２％、（ｅ）ＬｉＯＨ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、３８％（回収された１１に関して６６％）。
【００８０】
触媒量の臭素の存在下、Ｎ−ブロモスクシンイミドを使用したラジカル条件下でのα臭素化と、光照射による開始によって、α−ブロモエステル７および８を高収率（それぞれ８９％および８８％）で得た。後者の化合物を、Ｋ２ＣＯ３の存在下、シクレンを含むＤＭＦの溶液にゆっくりと加えて、対応するモノアルキル化シクレン付加化合物９および１０を６２％および７５％の収率で得た。続くｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートでのペルアルキル化で、テトラエステル１１および１（それぞれ８３％および７２％の収率）が得られた。驚いたことに、ＬｉＯＨを用いたメチルエステル１１の鹸化の間に、ｔｅｒｔ−ブチルエステルの部分的な脱保護が観察された。しかし、この副反応が主反応よりもゆっくりと進行することから、生成物のさらなる切断を防ぐために、約５０％の変換で反応を止めた場合、良好な収率で所望の遊離酸２を得ることができる。このようにして、ＨＰＬＣによる精製後に２を３８％の収率（回収された１１に基づいて６６％）で得た。ＬｉＩを使用した試行的鹸化では、複数の生成物からなる分離不能な混合物がもたらされ、炭酸塩を使用した場合、鹸化は起こらなかった。
【００８１】
Ｈｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化を介したアジド官能基化ペプチドへの化学選択的結合のためのアルキン置換ＤＯＴＡ誘導体の開発。Ｈｕｉｓｇｅｎ付加環化１８，１９を介したペプチドへの結合を可能にする適切なＤＯＴＡ誘導体のデザインでは、例えば、アジド酸の導入４４〜４６によって、または固相上でのジアゾ転移４７によって、アジド官能基化ペプチドが利用できることから、我々は、アルキン官能基をＤＯＴＡ誘導体に結合させることに決めた。カルボニル置換誘導体の合成における有意義な経験を経て、アルキンの組み込みのための中核的残基として、我々は２−ブロモ−２−フェニル酢酸を再度選択し、上述のものと類似の合成経路が可能となった。
【００８２】
市販の４−ヨードフェニル酢酸（１２）を、メチルエステル１３（９３％収率）としてまず保護し、その後、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４／ＣｕＩを触媒として用いて、トリメチルシリル−アセチレンでの薗頭カップリングを行い、４−アルキニルフェニルアセテート１４を９３％の収率で得た（スキーム２）。
【００８３】
【化４】
スキーム２．アルキン官能基化ＤＯＴＡ誘導体の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＳＯＣｌ２、ＭｅＯＨ、１時間、９３％、（ｂ）ＨＣ≡Ｃ−ＴＭＳ、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４／ＣｕＩ、ＮＥｔ３、ＣＨ３ＣＮ、３時間、９３％、（ｃ）１）ＬＤＡ、ＴＨＦ、１時間、２）ＮＢＳ、ＴＨＦ、１８時間、４７％（回収された１４に関して９２％）、（ｄ）１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン、Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、１０時間、５３％、（ｅ）１）ＢｒＣＨ２ＣＯ２ｔ−Ｂｕ Ｋ２ＣＯ３、ＤＭＦ、４時間、２）ＴＢＡＦ、ＴＨＦ、１５分間、８５％。
【００８４】
残念なことに、７および８について上述したようなラジカル条件下での１４のα臭素化は、ＮＢＳおよびＢｒ２／ｈｖを開始剤としたもの両方で失敗した。これは、三重結合の存在によって生じた副反応に起因する可能性が高い。従って我々は、求電子的に臭化物を導入することによってこの問題を回避した。この目的のために、我々は、Ｅｖａｎｓら４８が説明しているものと類似の手法でエステル１４をホウ素エノラートに変換し、ＬＤＡおよびＢｕ２ＢＯＴｆで処理して、その後ＮＢＳを求電子的臭素化試薬として加えた。しかし、α−ブロモエステル１５の収率はむしろ不良であった（３９％）。反応をさらに最適化する試みにおいて、我々は、ＬＤＡでの脱プロトン化によって得られる１４のリチウムエノラートがＮＢＳと直接反応すれば、変換が非常にクリーンに進行することを見出した。このようにして１５を４７％の収率で得ることができ、未反応の１４が４９％の収率で一緒に回収された。この結果は、反応中の１当量の１４のリチウムエノラートで形成された生成物の迅速な脱プロトン化につながる、α−ブロモエステル１５の１４に対する著しく高い酸性度によって説明される。たとえエノラートを著しく過剰なＮＢＳに加えても、収率をそれ以上上げることはできなかった。しかし、回収された出発材料１４に基づくと、収率はほぼ定量的であった。上述のものと類似の方法で、α−ブロモエステル１５でのシクレンのモノアルキル化を行い、１６を５３％の収率で得た。続くｔｅｒｔ−ブチル２−ブロモアセテートでのペルアルキル化およびＴＢＡＦを用いたＴＭＳ保護基の切断によって、テトラエステル３を得た（２ステップで８５％の収率）。２の合成で述べたように、我々は、３中のメチルエステルの選択的な鹸化も試みた。しかし、我々にとっても大きな驚きであったが、１当量のＬｉＯＨの存在下では、３中のｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断はさらに迅速に進行し、我々は、切断されたｔｅｒｔ−ブチルエステルおよびメチルエステルの１つを有する対応する化合物を主生成物として見出した。１つのｔｅｒｔ−ブチル基を持たない位置異性体の中の所望の生成物は、わずかな量でしか検出できなかった。
【００８５】
ＤＯＴＡケトン誘導体１を使用した、オキシムライゲーションを介したＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート結合体１９の化学選択的合成。これらの新規な官能基化キレーターを手にして、我々は、Ｎ−末端アミノオキシへだけでなく、Ｔｙｒ３−オクトレオタートに基づくアルキン官能基化ソマトスタチンアナログへの化学選択的結合を詳細に調べた。
【００８６】
我々の初期の実験では、オキシムライゲーションにｔｅｒｔ−ブチル保護ＤＯＴＡケトン１を直接使用したが、反応は非常にクリーンに進行したものの、得られた結合体のオキシム結合は、ｔｅｒｔ−ブチル基の完全な脱保護に必要な強力な酸性条件下では安定ではなかった。従って我々は、ライゲーションの前にｉｎ ｓｉｔｕで１を脱保護しなくてはならなかった。比較的穏やかな方法（ギ酸４９または５０％ＴＦＡ／Ｈ２Ｏ）を使用すると脱保護は失敗し、Ｆｍｏｃペプチド化学で使用される標準的な脱保護用混合物であるＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５／２．５／２．５、ｖ／ｖ／ｖ）混合物５０を用いると、１中のケトンの還元がもたらされた。１０ＮのＨＣｌ水溶液を含むジオキサン（５０／５０、ｖ／ｖ）で処理した場合、定量的切断が実現された（スキーム３）。次に、得られた脱保護されたキレーター１７を、ｐＨ４（ＴＦＡ）においてＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ混合物中で等モル量のアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３オクトレオタート１８と反応させて、純度８５％（ＨＰＬＣ解析による）で所望の結合体１９を得た（スキーム３）（図２）。遊離アミノオキシ官能基が生じるあらゆる反応は、カルボニル官能基化された不純物との副反応を防ぐために高い溶媒純度（ＨＰＬＣグレード）が必要とされることを強調する必要がある。分取ＨＰＬＣで最終生成物をさらに精製して、収率７３％、純度９７％で１９を得た。
【００８７】
【化５】
スキーム３．ＤＯＴＡ誘導体１およびアミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート１８の化学選択的オキシムライゲーション。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）１０Ｎ ＨＣｌ／ジオキサン（１：１、ｖ／ｖ）、１８時間、（ｂ）ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ（１：１、ｖ／ｖ、ＨＰＬＣグレード）ｐＨ４（ＴＦＡ、ＨＰＬＣグレード）、１８時間、７３％（２ステップ）。
【００８８】
ＤＯＴＡアルキン誘導体３を使用したＨｕｉｓｇｅｎ １，３−双極付加環化を介したＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート結合体２４の化学選択的合成。Ｔｙｒ３−オクトレオタートのアジド官能基化に関して、我々は、固相上での３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸２１での単純なＮ末端伸長法を選択した。複数の生物活性ペプチドにおいては、ＢＦＣＡと標的分子との間にスペーサーを使用するのが非常に重要であること、および、我々のグループにおけるこれまでの経験を踏まえ、２１をリンカーとして選択した。１−ブロモ−３−アミノプロパンから出発する２１の２ステップの合成は安価で、収率が高く、スケールアップが容易で、クロマトグラフィーを必要としない（スキーム４）。
【００８９】
【化６】
スキーム４．３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパン酸２１の合成。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＮａＮ３、Ｈ２Ｏ、８０℃、２４時間、８４％、（ｂ）無水コハク酸、ＮＥｔ３、アセトン、１５時間、７１％。
【００９０】
付加環化の前に、メチルエステル３をｉｎ ｓｉｔｕで鹸化し（上述のように、このステップはｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断と一緒に進行する）、得られる遊離酸２２の混合物を、Ｃｕ／ＣｕＳＯ４を触媒系として使用して、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ混合物中でアジド官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート２３と反応させた（スキーム５）。次に、粗生成物混合物をＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５／２．５／２．５、ｖ／ｖ／ｖ）混合物５０を使用して直接脱保護し、良好な純度（ＨＰＬＣ解析によると６９％、図３）で粗生成物２４を得た（スキーム５）。しかし、ＥＳＩ法による質量分析では、２４が非常に安定した銅錯体として得られたことが示され、これは、酸性溶出剤を使用したＨＰＬＣ精製中でも安定であることが証明された。しかしながら、銅塩は硫化ナトリウムでの沈殿によって容易に除去することができた。このステップの結果として、分子内ジスルフィド架橋の開裂が生じ、ペプチドをＨＰＬＣ精製後に再環化しなくてはならなかった。定量的収率で環化が行われ、所望の結合体２４を３７％の収率で２３から、９７％の純度で得た。
【００９１】
【化７】
スキーム５．ＤＯＴＡ誘導体３およびアジド官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタート２３の化学選択的１，３−双極付加環化。ａ
ａ試薬と条件：（ａ）ＬｉＯＨ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、（ｂ）１）Ｃｕ／ＣｕＳＯ４、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、１８時間、２）ＴＦＡ／ＴＩＰＳ／Ｈ２Ｏ（９５：５：５、ｖ／ｖ）、２時間、３）Ｎａ２Ｓ、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、４）ＤＭＳＯ、ＮＨ３、ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ、４８時間、３７％（５ステップ）。
【００９２】
我々の手順を確認するために、システインを含まないアジド官能基化サンプルペプチド３−（３−アジドプロピルカルバモイル）プロパノイル−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｙｓ（２５、サポート情報を参照）で反応を繰り返した。類似の方法で、付加環化によって銅錯体生成物の形成がもたらされたが、この場合は、副反応なしで金属イオンを除去することができた。ｔｅｒｔ−ブチルエステルの脱保護によって、ＨＰＬＣ解析によると７６％の純度の粗生成物が得られた。ＨＰＬＣ精製後、対応する結合体２６を５１％の収率で得た。
【００９３】
放射性標識。通常は、さらなる処理を行わずに、ペプチド標識に６８Ｇｅ／６８Ｇａジェネレーター溶出液が直接使用される。しかしこの研究では溶出液を蒸発乾固させ、６８Ｇａ放射能を少量の反応バッファー（０．１Ｎ ＮａＯＡｃ、ｐＨ３．５）に再溶解し、これを放射性金属化反応に使用した。ジェネレーターはほぼ消耗していたが、この手順によって、効率的な放射性金属導入に必要なペプチド前駆体の量の低減が可能となり、故に、比較的高い比放射能の［６８Ｇａ］１９がもたらされた（マウスへの注射の時点において５７０Ｃｉ／ｍｍｏｌ）。［６８Ｇａ］１９は、５５．７％の放射化学的収率で得られた。［６８Ｇａ］１９の放射化学的純度は９１．４％であった。
【００９４】
生体内分布試験。ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスの３０分および６０分ｐ．ｉ．における［６８Ｇａ］１９の生体内分布データを図４に示す。両時間点において、放射性リガンドの血中濃度は比較的高かった（３０分および６０分ｐ．ｉ．において、それぞれ２．３７±０．３５および１．７１±０．１７％ｉＤ／ｇ）。観察期間中に腎臓内蓄積は急速に低下し（２０．０±２．４から１１．９±１．９％ｉＤ／ｇ）、これは［６８Ｇａ］１９の腎クリアランスを示していたが、その他の排泄器官、すなわち肝臓および腸管におけるトレーサー蓄積は、長時間にわたってゆっくりとしか低下せず、これはおそらく排出と関係のない非特異的蓄積に起因するものである。ｓｓｔ発現組織では、腫瘍と他のｓｓｔ陽性臓器との強い相違が観察された。膵臓、副腎、および胃におけるトレーサー蓄積が３０〜６０分ｐ．ｉ．の間に有意に低下した一方、腫瘍内蓄積はこの期間ほぼ一定のままであった（３０および６０分ｐ．ｉ．においてそれぞれ７．７３±１．５２および７．４６±１．３０）。このことと、他の臓器内の非特異的なトレーサー蓄積の全体的な低下が、３０〜６０分ｐ．ｉ．の間の腫瘍／臓器比の上昇につながった（図５）。過剰量の未標識競合物質（２０μｇ Ｔｙｒ３−オクトレオチド／マウス）の同時注入による競合試験（６０分ｐ．ｉ．）において、腫瘍内蓄積が主に受容体を介していることが示された。これらの条件下で、腫瘍内蓄積は２．６８±０．３６％ｉＤ／ｇに低下した。
【００９５】
考察
ＤＯＴＡ（１，４，７，１０−テトラキス（カルボキシメチル）−１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン）およびその誘導体は、様々な二価および三価の金属イオンと非常に安定した錯体を形成できることから、医療分野における画像技術用のキレーターの重要なクラスとして浮上した。キレーターが接合した標的生体分子の便利な合成のために、直交保護されたカルボキシ基を有する、種々の適当なプロキレーター説明されている。しかし、これまでのところ、標的分子内のアミンまたはカルボキシル官能基を介するもの以外の結合を可能にするプロキレーターの合成に関する報告は１つしかない。１５オキシムライゲーションまたはクリック化学を介する化学選択的結合を可能にするＢＦＣＡの開発における我々のアプローチは、新規なキレーター１、２、および３の合成をもたらした。この合成における最初の重要なステップは、シクレンのモノアルキル化である。文献では、２当量７または５当量８のシクレンが使用され、定量的収率がアルキル化剤の量に基づいて計算される、複数の類似のモノアルキル化の例が存在する。金属を保護基として使用する試みも存在する。５１一連のもののうちシクレンが最も高価な試薬であることから、我々の合成においては、おおよそ等モル量のアルキル化剤を使用し、化合物１６、９、および１０について、それぞれシクレンに基づいて５３、６２、および７５％の間で満足のいく収率を得た。粗生成物をさらに直接アルキル化することができたが、得られた化合物のアルキル化酢酸エステル残基の性質のみが異なっているもっと後の段階における分離よりも、高度にアルキル化された生成物および未反応のシクレンから粗生成物を分離するほうが容易であったため、フラッシュクロマトグラフーを使用してこの段階でこの中間体の精製を行った。通常は、拡散バンドのためにシリカでのシクレン誘導体の分離は時として非常に困難であること、分取ＲＰ−ＨＰＬＣによる精製が優れた代替手段であることにも留意するべきである。α−ブロモエステル７、８、および１５の合成は複雑ではなく、生成物が良好な収率で得られた。
【００９６】
驚くべきことに、３および１１中のメチルエステルの最終的な鹸化は、複数の条件下においてｔｅｒｔ−ブチルエステルの加水分解ももたらした。３については、２を単一生成物として得るために、約５０％の変換で反応を停止することが可能であった。残念ながら、アルキン誘導体１１の場合は、ｔｅｒｔ−ブチルエステルの切断はさらに速く進行した。従って、我々は、遊離酸２２の混合物との化学選択的１，２，３トリアゾール形成を行い、次いでＴＦＡでの処理によって残りのｔｅｒｔ−ブチル基を切断した。クリック反応２８、２９、３１〜３６について、我々は、過剰量の銅金属と一緒に１．２当量の硫酸銅を使用し、これによって、触媒活性のＣｕＩ種のｉｎ ｓｉｔｕ生成がもたらされた。わずか１ｍｏｌ％のＣｕＩＩ塩が用いられている報告５２があるものの、１当量のＣｕＩＩが、ＤＯＴＡ誘導体２２によって直ちに錯体化される事実を考えると、我々は過剰量のＣｕＩＩ塩を使用しなくてはならなかった。しかし、文献では多くの異なる手順が存在し５２、我々の目的にとって触媒量の最適化は不可欠ではなかった。
【００９７】
モデルペプチド２５を使用すると、１，２，３−トリアゾール誘導体へのクリーンな変換が観察された。金属を含まない化合物を入手するために硫化ナトリウムでの沈殿が不可欠であること、および、その後に２４中の開裂したジスルフィド架橋の再環化が必要であることに直面したため、Ｔｙｒ３−オクトレオタートの場合にみられるようなジスルフィド架橋を含む標的分子には、この手法でのキレーターの化学選択的導入は推奨できなかった。しかし、システインを含まない標的部分にとっては、我々のアルキン誘導体化キレーターは、モデルペプチド２５との反応によって示されたように、高度に化学選択的なＢＦＣＡの結合に対するもう１つの優れた代替法を提供する。ごく最近、Ｌｉｎと共同研究者らは、ＣｕＩ−触媒による１，２，３−トリアゾール形成による部位特異的タンパク質修飾を示した。５３この手法を適用し、アルキン官能基化ＤＯＴＡ誘導体２２を使用すると、タンパク質の部位特異的ＤＯＴＡ標識が可能となるであろう。
【００９８】
我々の新しいメチルケトン官能基化キレーター１７の、保護されていないＮ末端アミノオキシ官能基化Ｔｙｒ３−オクトレオタートとのオキシムライゲーションは、円滑に、副生成物もなく進行し、これにより、メチルケトンとヒドロキシルアミンの化学選択的縮合のもう１つの例が追加された。しかし、ベンズアルドキシムのみをもたらす、１８をベンズアルデヒドとアセトフェノンに同時に曝露する競合実験で我々が証明したように、アミノオキシ基とのケトンの反応速度はアルデヒドと比較すると非常に遅い。４時間の反応時間の後、等モル量のメチルケトン１７を使用すると、変換は約６０％であり、一晩放置すると終了まで進んだ。従って、我々は、アミノオキシ官能基化生体分子のライゲーションに適した、実験台上で安定な新規なＤＯＴＡ誘導体の化学選択的結合を示すことに成功した。最近提示されたアミノオキシ官能基化ＤＯＴＡ誘導体１５と比較すると、ＳＰＰＳ用の適切なアミノオキシ官能基化成分が市販されていることから（例、Ｂｏｃ−Ａｍｓ（Ｆｍｏｃ）−ＯＨおよびＦｍｏｃ−Ｄｐｒ（Ｂｏｃ−Ａｏａ）−ＯＨ）、我々の逆アプローチによって、ペプチド配列中のあらゆる位置における我々のキレーターの導入が可能になる。
【００９９】
［６８Ｇａ］１９が、３０分および６０分ｐ．ｉ．において特異的かつ高い腫瘍内蓄積を示したことが、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおける最初のｉｎ ｖｉｖｏ評価で示され、これはｓｓｔ受容体親和性が、用いられるライゲーション化学によってほとんど影響を受けないままであることを示唆する。［６８Ｇａ］１９について見出された腫瘍内蓄積および腫瘍対臓器比が、同じ腫瘍モデルにおける“参照”リガンド［６８Ｇａ］ＤＯＴＡＴＯＣ（ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオチド）および［６８Ｇａ］ＤＯＴＡＴＡＴＥ（ＤＯＴＡ−Ｔｙｒ３−オクトレオタート）５４について報告されたものほど高くなかったが、この研究で提示されたＤＯＴＡカップリング手法に基づく放射性金属化オクトレオタートアナログを、恐らくは最適化の後に、ｉｎ ｖｉｖｏのｓｓｔイメージングにも用いてよい。この文脈では、［６８Ｇａ］１９は、それらの受容体結合能に挑戦することなく、新規な受容体結合放射性ペプチドの合成に対する、オキシムライゲーションを介したＤＯＴＡ接合化学の一般的適用性の原理の証明に役立ち得る。
【０１００】
結論
本書で説明した新規なアルキンおよびケト官能基化ＤＯＴＡ誘導体によって、多官能性化合物との容易で化学選択的な接合が可能となる。さらに、遊離カルボキシルおよびカルボニル部分を有する二官能性誘導体が報告され、これは、ヘテロダイマーのような高級化合物のさらなる誘導および合成にとって有用なツールであってよい。我々の新たな修飾キレーターに関して、我々は、ＢＦＣＡの最終的な適用を考慮して、複雑な保護基化学を回避する経済的で単純な手順を開発した。これにより、標識化合物がわずかな合成ステップで簡単に入手できるようになる。アルキンだけでなくメチルケトン官能基化ＤＯＴＡ誘導体も、対応する接合反応において適切なＮ末端修飾Ｔｙｒ３−オクトレオタートと高度に選択的に反応することが証明された。さらに、ＡＲ４２Ｊ腫瘍を有するヌードマウスにおける［６８Ｇａ］１９の薬物動態は、診断的および治療的ｉｎ ｖｉｖｏ応用のための新たな放射性金属化ペプチドリガンドの合成に対する、化学選択的ＢＦＣ接合アプローチの適合性を示す。
【０１０１】
参考文献
【０１０２】
【数１】
【０１０３】
【数２】
【０１０４】
【数３】
【０１０５】
【数４】
【０１０６】
【数５】
【０１０７】
【数６】
【０１０８】
【数７】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
式
【化８】
の化合物であって、
式中、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択され、Ｒ２およびＲ３は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、親水性部分、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている、化合物。
【請求項２】
前記カルボニル基はケト基である、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
前記ケト基はメチルケトンである、請求項２に記載の化合物。
【請求項４】
付加環化反応に参加するのに適した前記官能基は、アルキン基またはアジド基である、請求項１に記載の化合物。
【請求項５】
前記アルキン基はエチニル基である、請求項４に記載の化合物。
【請求項６】
Ｒ５は、１つまたは２つの環を有する５員〜９員のアリールまたはヘテロアリール基である、請求項１〜請求項５のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項７】
Ｒ５は、６員のアリールまたはヘテロアリール基である、請求項６に記載の化合物。
【請求項８】
Ｒ５はフェニル基である、請求項７に記載の化合物。
【請求項９】
前記フェニル基は、パラ位が前記カルボニル基または付加環化反応に参加するのに適した前記官能基で置換されている、請求項８に記載の化合物。
【請求項１０】
Ｒ５は、長さがＣ１からＣ６のアルキルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１１】
Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、同じ、または別のカルボキシル保護基である、請求項１〜請求項１０のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１２】
Ｒ４は、水素またはメチルである、請求項１〜請求項１１のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１３】
前記カルボニル保護基が存在する場合、それらは、ベンジル、フルオレニルメチル、およびｔ−ブチルから選択される、請求項１〜請求項１２のいずれか一項にに記載の化合物。
【請求項１４】
Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３はｔ−ブチルであり、Ｒ４は水素またはメチルである、請求項１〜請求項１３のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１５】
前記親水性部分は糖である、請求項１に記載の化合物。
【請求項１６】
式
【化９】
の化合物であって、
式中、前記基Ｇ１からＧ４の２つ〜４つは、ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５であり、任意の残りの基Ｇ１からＧ４はＣＨ２ＣＯ２Ｒ１であり、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されており、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択される、化合物。
【請求項１７】
請求項１〜請求項１６のいずれか一項に記載の化合物と誘導体化標的分子とを有する結合体であって、Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合は、前記標的分子は、相補的なアミノオキシ部分またはカルボニル部分を含むように誘導体化されており、前記化合物と標的分子はオキシム結合で結合されており、Ｒ５が付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている場合は、前記標的分子は、前記付加環化反応用の相補基を含むように誘導体化されており、前記化合物と前記標的分子は、前記付加環化反応のヘテロ環生成物によって結合されている、結合体。
【請求項１８】
前記化合物と標的分子は、１，２，３−トリアゾール基によって結合されている、請求項１７に記載の結合体。
【請求項１９】
請求項１〜請求項１６のいずれかに記載の化合物または請求項１７もしくは請求項１８に記載の結合体と錯体を形成する放射性核種を有するキレート。
【請求項２０】
前記放射性核種は、アクチニウム２２５、ビスマス２１２、ビスマス２１３、鉛２０３、銅６４、銅６７、ガリウム６６、ガリウム６７、ガリウム６８、ルテチウム１７７、インジウム１１１、インジウム１１３、イットリウム８６およびイットリウム９０、ジスプロシウム１６２、ジスプロシウム１６５、ジスプロシウム１６７、ホルミウム１６６、プラセオジミウム１４２、プラセオジミウム１４３、プロメチウム１４９、およびテルビウム１４９から選択される、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２１】
請求項１に記載の化合物の合成の方法であって、前記合成は、２置換のアリール、ヘテロアリール、アルキル、または組み合わせＬ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応であって、ここでＲ４およびＲ５は請求項１に記載のものと同じ意味を持ち、Ｌ１は脱離基であり、Ｘは、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基である、またはそのような官能基の保護された形態である、反応；ならびに、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用する前記シクレンのその他の窒素原子のアルキル化であって、ここでＲは、請求項１で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３であり、Ｌ２は脱離基である、アルキル化、を有する方法。
【請求項２２】
シクレンの前記窒素原子の２つ〜４つは、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘと反応し、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は請求項１に記載のものと同じ意味を持ち、前記シクレンの残りの窒素原子は、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用してアルキル化され、Ｒは、請求項１で定めたようなＲ２またはＲ３である、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
前記結合体の放射性核種との任意の錯体形成の前に、前記化合物および前記誘導体化標的分子は一緒に反応する、請求項１７に記載の結合体の合成方法。
【請求項２４】
前記化合物と標的分子は、遷移金属触媒の存在下で付加環化反応によって結合する、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
前記金属触媒は銅またはロジウムに基づいている、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
治療または診断において使用するための、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２７】
過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療用の薬剤の調製における、請求項１９に記載のキレートの使用。
【請求項２８】
過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療に使用するための、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２９】
前記状態は癌である、請求項２７に記載の使用または請求項２８に記載のキレート。
【請求項３０】
前記癌はホルモン応答性である、請求項２９に記載の使用またはキレート。
【請求項３１】
対象における過剰増殖性および／または腫瘍性の状態の診断または治療の方法であって、前記方法は、それぞれ診断上または治療上効果的な量の請求項１９または請求項２０に記載のキレートの前記対象への投与から成る、方法。
【請求項３２】
請求項１７または請求項１８に記載の結合体の合成における、請求項１〜請求項１６のいずれかに記載の化合物の使用。
【請求項３３】
請求項１９または２０に記載のキレートの合成における、請求項１７または請求項１８に記載の結合体の使用。
【請求項３４】
前記標的分子はペプチドである、請求項１７または請求項１８に記載の結合体または請求項１９または請求項２０に記載のキレート。
【請求項３５】
１つ以上のジスルフィド架橋を有する標的分子への二官能性キレート剤の金属触媒による接合の後に、二官能性キレート剤から金属触媒を脱キレートする方法であって、前記方法は、硫化ナトリウムを使用した金属イオンの除去と、それに続く、前記ジスルフィド架橋を再構築するための、ＮＨ３ならびにアセトニトリルおよび水を有する溶媒での処理とから成る、方法。
【請求項３６】
前記接合反応は、付加環化反応を伴う、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記二官能性キレート剤は、請求項１に記載の化合物である、請求項３５または請求項３６に記載の方法。
【請求項３８】
前記金属触媒は銅またはロジウムに基づいている、請求項３５〜請求項３７のいずれかに記載の方法。
【請求項３９】
請求項１６に記載の化合物と、前記Ｒ５基を介して前記化合物に結合する２つ以上の標的分子とを有する結合体。
【請求項１】
式
【化８】
の化合物であって、
式中、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択され、Ｒ２およびＲ３は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から独立して選択され、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、親水性部分、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている、化合物。
【請求項２】
前記カルボニル基はケト基である、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
前記ケト基はメチルケトンである、請求項２に記載の化合物。
【請求項４】
付加環化反応に参加するのに適した前記官能基は、アルキン基またはアジド基である、請求項１に記載の化合物。
【請求項５】
前記アルキン基はエチニル基である、請求項４に記載の化合物。
【請求項６】
Ｒ５は、１つまたは２つの環を有する５員〜９員のアリールまたはヘテロアリール基である、請求項１〜請求項５のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項７】
Ｒ５は、６員のアリールまたはヘテロアリール基である、請求項６に記載の化合物。
【請求項８】
Ｒ５はフェニル基である、請求項７に記載の化合物。
【請求項９】
前記フェニル基は、パラ位が前記カルボニル基または付加環化反応に参加するのに適した前記官能基で置換されている、請求項８に記載の化合物。
【請求項１０】
Ｒ５は、長さがＣ１からＣ６のアルキルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１１】
Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３は、同じ、または別のカルボキシル保護基である、請求項１〜請求項１０のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１２】
Ｒ４は、水素またはメチルである、請求項１〜請求項１１のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１３】
前記カルボニル保護基が存在する場合、それらは、ベンジル、フルオレニルメチル、およびｔ−ブチルから選択される、請求項１〜請求項１２のいずれか一項にに記載の化合物。
【請求項１４】
Ｒ１、Ｒ２、およびＲ３はｔ−ブチルであり、Ｒ４は水素またはメチルである、請求項１〜請求項１３のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項１５】
前記親水性部分は糖である、請求項１に記載の化合物。
【請求項１６】
式
【化９】
の化合物であって、
式中、前記基Ｇ１からＧ４の２つ〜４つは、ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５であり、任意の残りの基Ｇ１からＧ４はＣＨ２ＣＯ２Ｒ１であり、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は、アリール、ヘテロアリール、アルキル、またはこれらの基の組み合わせであり、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されており、Ｒ１は、水素、メチル、エチル、カルボキシル保護基、および親水性部分から選択される、化合物。
【請求項１７】
請求項１〜請求項１６のいずれか一項に記載の化合物と誘導体化標的分子とを有する結合体であって、Ｒ５がカルボニル基またはアミノオキシ基で置換されている場合は、前記標的分子は、相補的なアミノオキシ部分またはカルボニル部分を含むように誘導体化されており、前記化合物と標的分子はオキシム結合で結合されており、Ｒ５が付加環化反応に参加するのに適した官能基で置換されている場合は、前記標的分子は、前記付加環化反応用の相補基を含むように誘導体化されており、前記化合物と前記標的分子は、前記付加環化反応のヘテロ環生成物によって結合されている、結合体。
【請求項１８】
前記化合物と標的分子は、１，２，３−トリアゾール基によって結合されている、請求項１７に記載の結合体。
【請求項１９】
請求項１〜請求項１６のいずれかに記載の化合物または請求項１７もしくは請求項１８に記載の結合体と錯体を形成する放射性核種を有するキレート。
【請求項２０】
前記放射性核種は、アクチニウム２２５、ビスマス２１２、ビスマス２１３、鉛２０３、銅６４、銅６７、ガリウム６６、ガリウム６７、ガリウム６８、ルテチウム１７７、インジウム１１１、インジウム１１３、イットリウム８６およびイットリウム９０、ジスプロシウム１６２、ジスプロシウム１６５、ジスプロシウム１６７、ホルミウム１６６、プラセオジミウム１４２、プラセオジミウム１４３、プロメチウム１４９、およびテルビウム１４９から選択される、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２１】
請求項１に記載の化合物の合成の方法であって、前記合成は、２置換のアリール、ヘテロアリール、アルキル、または組み合わせＬ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘとシクレンとの反応であって、ここでＲ４およびＲ５は請求項１に記載のものと同じ意味を持ち、Ｌ１は脱離基であり、Ｘは、カルボニル基、アミノオキシ基、または付加環化反応に参加するのに適した官能基である、またはそのような官能基の保護された形態である、反応；ならびに、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用する前記シクレンのその他の窒素原子のアルキル化であって、ここでＲは、請求項１で定めたようなＲ１、Ｒ２、またはＲ３であり、Ｌ２は脱離基である、アルキル化、を有する方法。
【請求項２２】
シクレンの前記窒素原子の２つ〜４つは、Ｌ１−ＣＨ（ＣＯ２Ｒ４）−Ｒ５−Ｘと反応し、Ｒ４は、水素、メチル、エチル、およびカルボキシル保護基から選択され、Ｒ５は請求項１に記載のものと同じ意味を持ち、前記シクレンの残りの窒素原子は、Ｌ２ＣＨ２ＣＯ２Ｒを使用してアルキル化され、Ｒは、請求項１で定めたようなＲ２またはＲ３である、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
前記結合体の放射性核種との任意の錯体形成の前に、前記化合物および前記誘導体化標的分子は一緒に反応する、請求項１７に記載の結合体の合成方法。
【請求項２４】
前記化合物と標的分子は、遷移金属触媒の存在下で付加環化反応によって結合する、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
前記金属触媒は銅またはロジウムに基づいている、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
治療または診断において使用するための、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２７】
過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療用の薬剤の調製における、請求項１９に記載のキレートの使用。
【請求項２８】
過剰増殖性および／または腫瘍の状態の診断および／または治療に使用するための、請求項１９に記載のキレート。
【請求項２９】
前記状態は癌である、請求項２７に記載の使用または請求項２８に記載のキレート。
【請求項３０】
前記癌はホルモン応答性である、請求項２９に記載の使用またはキレート。
【請求項３１】
対象における過剰増殖性および／または腫瘍性の状態の診断または治療の方法であって、前記方法は、それぞれ診断上または治療上効果的な量の請求項１９または請求項２０に記載のキレートの前記対象への投与から成る、方法。
【請求項３２】
請求項１７または請求項１８に記載の結合体の合成における、請求項１〜請求項１６のいずれかに記載の化合物の使用。
【請求項３３】
請求項１９または２０に記載のキレートの合成における、請求項１７または請求項１８に記載の結合体の使用。
【請求項３４】
前記標的分子はペプチドである、請求項１７または請求項１８に記載の結合体または請求項１９または請求項２０に記載のキレート。
【請求項３５】
１つ以上のジスルフィド架橋を有する標的分子への二官能性キレート剤の金属触媒による接合の後に、二官能性キレート剤から金属触媒を脱キレートする方法であって、前記方法は、硫化ナトリウムを使用した金属イオンの除去と、それに続く、前記ジスルフィド架橋を再構築するための、ＮＨ３ならびにアセトニトリルおよび水を有する溶媒での処理とから成る、方法。
【請求項３６】
前記接合反応は、付加環化反応を伴う、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記二官能性キレート剤は、請求項１に記載の化合物である、請求項３５または請求項３６に記載の方法。
【請求項３８】
前記金属触媒は銅またはロジウムに基づいている、請求項３５〜請求項３７のいずれかに記載の方法。
【請求項３９】
請求項１６に記載の化合物と、前記Ｒ５基を介して前記化合物に結合する２つ以上の標的分子とを有する結合体。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３ａ】
【図１３ｂ】
【図１４ａ】
【図１４ｂ】
【図１５ａ】
【図１５ｂ】
【図１６ａ】
【図１６ｂ】
【図１７ａ】
【図１７ｂ】
【図１８ａ】
【図１８ｂ】
【図１９ａ】
【図１９ｂ】
【図２０ａ】
【図２０ｂ】
【図２１ａ】
【図２１ｂ】
【図２２ａ】
【図２２ｂ】
【図２３ａ】
【図２３ｂ】
【図２４ａ】
【図２４ｂ】
【図２５ａ】
【図２６ａ】
【図２６ｂ】
【図２７ａ】
【図２７ｂ】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３ａ】
【図１３ｂ】
【図１４ａ】
【図１４ｂ】
【図１５ａ】
【図１５ｂ】
【図１６ａ】
【図１６ｂ】
【図１７ａ】
【図１７ｂ】
【図１８ａ】
【図１８ｂ】
【図１９ａ】
【図１９ｂ】
【図２０ａ】
【図２０ｂ】
【図２１ａ】
【図２１ｂ】
【図２２ａ】
【図２２ｂ】
【図２３ａ】
【図２３ｂ】
【図２４ａ】
【図２４ｂ】
【図２５ａ】
【図２６ａ】
【図２６ｂ】
【図２７ａ】
【図２７ｂ】
【公表番号】特表２０１０−５１１６８７（Ｐ２０１０−５１１６８７Ａ）
【公表日】平成２２年４月１５日（２０１０．４．１５）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００９−５３９８０９（Ｐ２００９−５３９８０９）
【出願日】平成１９年１２月１０日（２００７．１２．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００７／００４７３３
【国際公開番号】ＷＯ２００８／０６８５１６
【国際公開日】平成２０年６月１２日（２００８．６．１２）
【出願人】（５０８２５８７９２）
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２２年４月１５日（２０１０．４．１５）
【国際特許分類】
【出願日】平成１９年１２月１０日（２００７．１２．１０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＧＢ２００７／００４７３３
【国際公開番号】ＷＯ２００８／０６８５１６
【国際公開日】平成２０年６月１２日（２００８．６．１２）
【出願人】（５０８２５８７９２）
【Ｆターム（参考）】
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