ポリペプチド治療薬剤の経口投与のための遅延放出処方物と同薬剤の使用方法
本発明はインターロイキン-11等治療に役立つポリペプチドを含み、経口投与に適する組成物を規定する。治療上有効な遅延放出経口投薬形態の生体活性ポリペプチドを含む薬学的組成物が、開示される。この組成物は、生体活性ポリペプチド（このポリペプチドは、Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および塩基性ｐＩを有することからなる群より選択される１つ以上の特性を含む）；少なくとも１つの結合剤；少なくとも１つの可塑剤；少なくとも１つの滑剤；ならびにメタクリル酸共重合体を含む。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（発明の分野）
本発明は、経口投与に適するインターロイキン−１１を含むポリペプチドを含有する組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
（発明の背景）
組換えヒトインターロイキン−１１（ｒｈＩＬ−１１）は、１７７のアミノ酸の非グルコシル化ポリペプチドである。このポリペプチドはシステイン残基を欠き、非常に塩基性である（ｐＩ＞１０．５）。ｒｈＩＬ−１１は、ヒト成長ホルモン（ｈＧＨ）および顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）を含む、ヒト成長因子ファミリーのメンバーである。
【０００３】
ｒｈＩＬ−１１は、化学療法の補助薬剤として使用され、そして他の癌処置剤と共に、血小板レベルを増加させるために投与される。ｒｈＩＬ−１１はまた、抗炎症性の効果を有すること、およびクローン病および潰瘍性大腸炎のような状態の処置に有用であることが実証されている。ＩＬ−１１は、典型的には皮下注射により投与される。皮下注射用の処方物は無菌でなければならず、そしてこれは他の投与経路に比べて高価であり得る。この経路はまた、不便であり、そして不快である。皮下注射はさらに、注射領域における局所的な組織の損傷および感染のような合併症に関連している。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００４】
（発明の要旨）
本発明は、被験体に経口で送達し得るｒｈＩＬ−１１組成物の発見に一部基づいている。
【０００５】
１つの側面において、本発明は、生体活性ポリペプチド、腸溶性コート（例えば、メタクリル酸共重合剤）、および必要に応じて、少なくとも１つの賦形剤を含む治療上有効な遅延放出経口投薬組成物を提供する。いくつかの実施形態において、この生体活性ポリペプチドは、Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および塩基性ｐＩを有することからなる群より選択される１つ以上の特性を含む。いくつかの実施形態において、このポリペプチドはシステイン残基を有さない。
【０００６】
好ましいポリペプチドはＩＬ−１１である。本発明は、生体活性ポリペプチドＩＬ−１１に関して本明細書中で記載される。しかしながら、ＩＬ−１１に関して記載される本発明の特徴はまた、他の生体活性ポリペプチドを含む組成物および方法に適用できることが理解される。
【０００７】
１つの実施形態において、この組成物は、さらに不活性なコアを含む。この不活性なコアは、例えば、ペレット、スフィア、またはビーズであり得、糖、デンプン、微結晶性セルロース、または他の任意の薬学的に受容可能な不活性賦形剤で構成される。好ましい不活性なコアは、単糖、二糖または多糖（すなわち、３つ以上の糖分子を含む重合体）のような炭水化物である。適切な炭水化物の例はスクロースである。いくつかの実施形態において、このスクロースは、組成物中に６０〜７５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【０００８】
生体活性ポリペプチドがＩＬ−１１である場合、このＩＬ−１１層は、優先的に、安定剤（例えば、メチオニン、グリシン、ポリソルベート８０およびリン酸緩衝液）、ならびに／あるいは薬学的に受容可能な結合剤（例えば、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポビドン、またはヒドロキシプロピルセルロース）と共に提供される。この組成物はさらに、１つ以上の薬学的賦形剤を含み得る。このような薬学的賦形剤としては、例えば、結合剤、崩壊剤、充填剤、可塑剤、滑沢剤、滑剤、コーティング剤、および懸濁剤／分散剤が挙げられる。
【０００９】
好ましい結合剤は、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）である。このＨＰＭＣは、好ましくは組成物中に３〜７％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１０】
好ましい滑剤は、タルクである。いつくかの実施形態において、この滑剤は、組成物中に５〜１０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１１】
可塑剤としては、例えば、クエン酸トリエチル、ポリエチレングリコール、フタル酸ジブチル、トリアセチン、ジブチルセブケート（ｄｉｂｕｔｙｌ ｓｅｂｕｃａｔｅ）、およびプロピレングリコールが挙げられ得る。好ましい可塑剤は、クエン酸トリエチルである。例えば、このクエン酸トリエチルは、１〜２％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。
【００１２】
好ましい界面活性剤は、ポリソルベート８０である。このポリソルベート８０は、０．０１５〜０．０４５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。
【００１３】
いくつかの実施形態において、組成物は、カプセル投薬形態において、複数の腸溶性コーティングされたＩＬ−１１層ペレットを含む多粒子系として提供される。この腸溶性コーティングされたＩＬ−１１ペレットは、不活性なコア（例えば、炭水化物のスフィア）、ＩＬ−１１の層、および腸溶性コートを含む。この腸溶性コートは、例えば、ｐＨ依存性の重合体、可塑剤、および抗固着剤／滑剤を含み得る。好ましい重合体としては、例えば、メタクリル酸共重合体、セルロースアセテートフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ポリビニルアセテートフタレート、セラック、ヒドロキシプロピルメチルセルロースアセテートスクレネート、カルボキシ−メチルセルロースが挙げられる。
【００１４】
好ましくは、不活性なシールコートが、遮断物として組成物中のＩＬ−１１層と腸溶性コートとの間に存在する。この不活性なシールコートとしては、例えば、ヒドロキシメチルセルロース、ポビドン、ヒドロキシプロピルセルロース、または別の薬学的に受容可能な結合剤が挙げられ得る。
【００１５】
適切な持続性重合体としては、例えば、アミノメタクリレート共重合体（Ｅｕｄｒａｇｉｔ ＲＬ、Ｅｕｄｒａｇｉｔ ＲＳ）、エチルセルロース、またはヒドロキシプロピルメチルセルロースが挙げられる。いくつかの実施形態において、このメタクリル酸共重合体は、ｐＨ５．５より上で可溶性となるｐＨ依存性のアニオン重合体である。このメタクリル酸共重合体は分散剤として提供され得、そしてこれは、組成物中に１０％〜２０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。好ましいメタクリル酸共重合体は、ＥＵＤＲＡＧＩＴ（登録商標）Ｌ３０ Ｄ−５５である。
【００１６】
好ましい実施形態において、腸溶性コーティングされた錠剤の投薬形態としては、ＩＬ−１１、充填剤である微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ １０２）、崩壊剤であるＥｘｐｌｏｔａｂ、緩衝剤であるリン酸ナトリウム、抗酸化剤であるメチオニン、界面活性剤であるＴｗｅｅｎ ８０、滑沢剤であるステアリン酸マグネシウム、および腸溶性コートが挙げられる。
【００１７】
好ましい実施形態において、持続放出錠の投薬形態としては、ＩＬ−１１、充填剤（例えば、微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ １０２）およびスクロース）、マトリックス形成重合体（ヒドロキシプロピルメチルセルロース Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ４Ｍ Ｐｒｅｍ、Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ１００ＬＶ、ＬＨ、ＣＲ、Ｐｒｅｍｉｕｍ）、滑剤（例えば、Ｓｙｌｏｉｄ）、緩衝剤であるリン酸ナトリウム、抗酸化剤であるメチオニン、界面活性剤（例えば、Ｔｗｅｅｎ ８０）、および滑沢剤（例えば、ステアリン酸マグネシウム）が挙げられる。
【００１８】
別の実施形態において、組成物はグリシンを含む。いくつかの実施形態において、このグリシンは組成物中に１〜４％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１９】
組成物は、必要に応じて、さらに抗酸化剤を含み得る。適切な抗酸化剤の例はメチオニンである。いくつかの実施形態において、このメチオニンは、組成物中に０．１〜０．５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００２０】
ＩＬ−１１は、天然に存在するＩＬ−１１から単離された精製タンパクとして提供される。あるいは、ＩＬ−１１ポリペプチドは、このポリペプチドの組換え形態（例えば、組換えヒトＩＬ−１１（ｒｈＩＬ−１１））として提供される。
【００２１】
別の側面において、本発明は、ＩＬ−１１ポリペプチド、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートを含む治療上有効な遅延放出経口投薬多粒子組成物を提供する。好ましいシーリングコートは、ＨＰＭＣである。組成物の腸溶性コーティング層は、例えば、メタクリル酸共重合体であり得る。好ましいメタクリル酸共重合体は、ｐＨ５．５より上で可溶性であり、例えばＥＵＤＲＡＧＩＴ（登録商標）Ｌ３である。
【００２２】
持続放出組成物もまた、本発明により提供され、この組成物は、ＩＬ−１１ポリペプチド、腸溶性コート（例えば、メタクリル酸共重合体）、そして必要に応じて、少なくとも１つの賦形剤を含む。１つの実施形態において、この組成物は、さらに不活性なコアを含む。この不活性なコアは、例えば、ペレット、スフィア、またはビーズであり得、糖、デンプン、微結晶性セルロース、または他の任意の薬学的に受容可能な不活性賦形剤で構成される。好ましい不活性なコアは、単糖、二糖または多糖（すなわち、３つ以上の糖分子を含む重合体）のような炭水化物である。適切な炭水化物の例はスクロースである。いくつかの実施形態において、このスクロースは、組成物中に６０〜７５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００２３】
本発明はまた、本明細書に記載されるようなＩＬ−１１ポリペプチドを包含する組成物を、被験体において生物学的応答を誘発させるのに十分な量で、被験体に経口投与することにより被験体に送達する方法を提供する。いくつかの実施形態において、この応答は被験体の小腸において誘発される。
【００２４】
本明細書中に記載された方法が使用される被験体は、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウサギ、ラット、またはマウスであり得る。
【００２５】
別の側面において、本発明は、被験体にＩＬ−１１を含む経口組成物を投与することにより、被験体における炎症の処置または予防の方法を提供する。いくつかの実施形態において、この炎症は潰瘍性大腸炎およびクローン病に関係する。
【００２６】
他の方法で定義されない限り、本明細書中に使用される全ての専門用語および化学用語は、本発明が属する当該分野の当業者により、一般的に理解されるものと同じ意味を有する。本明細書中に記載されている方法および材料に、類似または等価な方法および材料が、本発明の実施または試験において使用され得るが、適切な方法および材料は以下に記載される。本明細書に記載される、全ての公報、特許出願、特許、および他の参照文献は、その全体が参考として援用される。矛盾する場合には、本明細書（定義を含む）が制御する。さらに、材料、方法、および例は例証に過ぎず、限定されることを意図されない。
【００２７】
本発明の他の特徴および利点は、以下に続く詳細な記載、および特許請求の範囲から明らかである。
【００２８】
（発明の詳細な説明）
本発明は、経口送達に適する、生体活性ポリペプチドの処方物を提供する。いつくかの実施形態において、この生体活性ポリペプチドは、非グルコシル化（例えば、Ｎ連結もしくはＯ連結のグルコシル化部位、または両部位を欠くこと）であり、システイン残基を欠き、そして／あるいは塩基性ｐＩを有する。グルコシル化の欠如は、天然に存在するポリペプチドがグリコシル化部位を欠くためか、またはこのタンパクがこれらの部位を欠くよう操作されたためか、のいずれかであり得る。あるいは、このポリペプチドは、例えば、グリコシラーゼで処理されて、グリコシル化残基を減少または除去され得る。同様に、システイン残基の欠如は、天然に存在するポリペプチド配列においてか、または、天然に存在するシステイン残基が欠失するか、もしくは非システイン残基に置き換わったポリペプチド改変体において生じ得る。
【００２９】
処方物における使用に好ましいポリペプチドは、インターロイキン１１（ＩＬ−１１）である。このタンパクは、多面発現性サイトカインであり、原始的なリンパ造血前駆体細胞を刺激し、そして他の造血増殖因子と相乗作用し、巨大核細胞の増殖および成熟を刺激する。ＩＬ−１１は、国際出願ＰＣＴ／ＵＳ９０／０６８０３（１９９１年５月３０日公開）、ならびに米国特許第５，２１５，８９５号（１９９３年１月１日発行）に詳細に記載されている。クローン化したヒトＩＬ−１１は、あらかじめＡＴＣＣ（１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、Ｖａ．２０１１０−２２０９）に、ＡＴＣＣ番号６８２８４として、１９９０年３月３０日に寄託された。さらに、米国特許第５，２７０，１８１号（１９９３年１２月１４日発行）、および米国特許第５，２９２，６４６号（１９９４年３月８日発行）に記載されるように、ＩＬ−１１はまた、別のタンパクとの融合タンパクとして、組換え的に生成され得る。ＩＬ−１１は、従来の遺伝子操作技術により、様々なホスト細胞において生成される。ＩＬ−１１はさらに、様々な細胞株、例えば、ヒト肺線維芽細胞株であるＭＲＣ−５（ＡＴＣＣ受託番号ＣＣＬ１７１）、およびＰａｕｌらのヒト栄養芽細胞株であるＴＰＡ３０−１（ＡＴＣＣ受託番号ＣＲＬ１５８３）から得られ得る。推察されるアミノ酸配列（アミノ酸１から１９９）と同じように、ヒトＩＬ−１１をコードするｃＤＮＡはＰｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ８７：７５１２（１９９０）に記載される。米国特許第５，２９２，６４６号（前出）は、ＩＬ−１１の成熟形態（アミノ酸２２から１９９）のＮ末端プロリンが除去されているＩＬ−１１のｄｅｓ−Ｐｒｏ形態（アミノ酸２３−１９９）を記載する。当業者によって理解されるように、ＩＬ−１１活性を保持するＩＬ−１１の任意の形態が、本発明によると有用である。
【００３０】
組換え技術に加えて、ＩＬ−１１はまた、公知の従来の化学合成によって生成され得る。本発明において有用なポリペプチドを合成手段によって構築する方法は、当業者に公知である。合成的に構築されたサイトカインポリペプチド配列は、天然のサイトカインポリペプチドと、１次構造、２次構造または３次構造、および立体配座の特徴を共有することにより、その方法で共通の生物学的活性を有すると期待される。このような合成的に構築されたサイトカインポリペプチド配列、またはそれらのフラグメント（それの機能性が２倍、または部分的に２倍である）はまた、本発明の方法においても使用され得る。このように、それらは、本発明において有用な天然の精製されたサイトカインのかわりの、生物学的に活性があるか、または免疫学的な代用品として使用され得る。
【００３１】
これらサイトカインまたはそれらの活性フラグメントのタンパク配列、ペプチド配列またはＤＮＡ配列における改変はまた、本発明の方法において使用され得るタンパクを生成し得る。このような改変サイトカインは、公知の技術を使用して当業者によって生成され得る。サイトカイン配列（例えばＩＬ−１１配列）における目的の改変としては、コード配列における１つ以上の選択されたアミノ酸残基の置換、挿入または欠失が挙げられ得る。このような置換、挿入または欠失の突然変異誘発性技術は、当業者に周知である（例えば、米国特許第４，５１８，５８４号を参照のこと）。
【００３２】
本明細書中に記載されるような治療学的に有用であり得るサイトカインポリペプチド配列の、他の特定の変異としては、例えば、１つ以上のグルコシル化部位の挿入が挙げられ得る。アスパラギン連結グリコシル化認識部位は、ペプチド配列へのアミノ酸の欠失、置換もしくは付加、またはＤＮＡ配列へのヌクレオチドの欠失、置換もしくは付加により、この配列中に挿入され得る。このような変化は、Ｏ連結炭水化物の付加により改変される分子の、任意の部位においてなされ得る。このような変更されたヌクレオチド配列またはペプチド配列の発現は、これらの部位でグリコシル化される改変体を生成する。
【００３３】
全体または一部分においてそれ自体の活性を保持または延長することが期待され、そして本方法において有用であることが期待される、選択されたサイトカイン配列のさらなるアナログおよび誘導体もまた、当業者によって容易に作られ得る。１つのこのような改変は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）をサイトカイン配列に存在するリジン残基に付着させること、またはＰＥＧ誘導体もしくはＰＥＧと反応し得る１つ以上のリジン残基もしくは他のアミノ酸残基を従来技術により配列中に挿入し、ＰＥＧ部分の付着を可能とすることであり得る。
【００３４】
これらの選択されたサイトカインのさらなるアナログはまた、それらをコードするＤＮＡ配列における対立遺伝子のバリエーション、またはそれらをコードするＤＮＡ配列において誘導されたバリエーションにより特徴づけられ得る。上に参照された刊行物において開示された全てのアナログは、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下、または非ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、開示されたサイトカイン配列とハイブリダイズし得るＤＮＡ配列によって特徴づけられたアナログを含み（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ． Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９））、同様に本発明において有用であろうと予想される。
【００３５】
あるサイトカインの配列または生物学的活性フラグメントが、別のサイトカインまたはタンパク性の治療剤に融合すること（例えば、ＩＬ−１１がＩＬ−６に融合すること）（例えば、ＰＣＴ／ＵＳ９１／０６１８６（Ｗ０９２／０４４５５）１９９２年３月１９日公開に記載された、融合についての方法を参照のこと）によって調製された融合分子もまた、本明細書中に開示される組成物および方法において有用であると考えられる。代替物として、本方法によるとサイトカインの組み合わせが共に投与され得る。
【００３６】
このように、本発明の方法の記載において、ＩＬ−１１が言及されており、ＩＬ−１１が当該分野において現在開示されている配列によって生成されたタンパク、ならびに上に記載された改変により特徴づけられ、実質的に同様の活性を保持するタンパクを含むことは当業者によって理解される。
【００３７】
好ましい多粒子ＩＬ−１１処方物を示す概要図が、図１において示される。中心の糖スフィア上に、ｒｈＩＬ−１１を含む層が配置される。このｒｈＩＬ−１１薬物層は、次にヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）シーリングコートで覆われている。このＨＰＭＣシーリングコートは、メタクリル酸共重合体（例えば、Ｅｕｄｒａｇｉｔ Ｌ２０Ｄ−５５）腸溶性コートで覆われ、そしてペレット全体は、第２のＨＰＭＣシーリングコート、または最後のＨＰＭＣシーリングコートで覆われる。
【００３８】
経口ＩＬ−１１処方物は、当該分野において公知の任意の方法を使用して調製され得る。適切な方法の例として、流動層（ｆｌｕｉｄ ｂｅｄ）をスクローススフィア上に噴霧すること、直接の圧縮、および湿性顆粒合成方法が挙げられる。本発明による組成物調製の方法は、後述の実施例において説明される。
【００３９】
経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１分子を生成するための好ましい方法が描かれた流れ図が、図２において示される。薬物層シーリングコート、腸溶性コート、および第２のシーリングコートは、流動層コーターの内部に連続的に付加される。それぞれの工程において、処方物の温度と質量は、好ましくはモニターされる。
【００４０】
この流れ図は、コートを形作るために糖スフィアが流動層コーター上に充填され、そしてｒｈＩＬ−１１、二塩基性のリン酸ナトリウム、一塩基性のリン酸ナトリウム、グリシン、ポリソルベート８０、メチオニン、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）、および精製水を含む薬物層で覆われることを図示する。腸溶性コートは、Ｅｕｄｒａｇｉｔ、タルク、水酸化ナトリウム、クエン酸トリエチル、および精製水を含んで塗布される。次いで、ＨＰＭＣのシールコートおよび精製水、続いて抗固着剤としてタルクが塗布される。その後の加工は、例えば、２〜８℃で１８０日間の保存を含み得る。
【００４１】
経口送達に適した処方物合成の手順は、当該分野において公知であり、そして例えば、Ｂｅｒｇｓｔｒａｎｄら、米国特許第６，４２８，８１０号、Ｃｈｅｎら、米国特許第６，０７７，５４１号、Ｕｌｌａｈら、米国特許第６，３３１，３１６号、Ｃｈｅｎら、米国特許第６，１７４，５４８号、およびＡｎｄｅｒｓｏｎら、米国特許第６，２０７，６８２号において記載される。
【００４２】
本発明の処方物は、任意の適切な形態（例えば、処方物はカプセル、サシェ、錠剤、または懸濁剤として提供され得る）において送達され得る。
【００４３】
処方物は、ＩＬ−１１が有効であると実証された徴候の処置に使用され得る。好ましい徴候は、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）である。この状態は、慢性小腸の炎症によって特徴づけられ、そして、下痢、出血、腹部の痛み、熱、関節痛、および体重の減少のような臨床的な症状を生じる。これらの症状は、軽微なものから重症な範囲であり得、そして初期の軽症の苦痛から徐々にかつかすかに進行するか、または急性の激しい症状が突然現われ得る。
【００４４】
ＩＢＤは、患者人口の大部分における慢性病の優勢な原因である。それは、以下の２つの異なる形態において明示され得る：潰瘍化大腸炎（ＵＣ）およびクローン病（ＣＤ）。この２つの状態は、臨床的に非常に類似して現われ得るが、ＵＣは、上部ＧＩ管とは対照的に、大腸および直腸の炎症を主に含む。逆にクローン病は、上部小腸消化管のより広域に影響を与え、そしてビタミンおよび栄養不足の慢性化によって、より吸収不良を引き起こす可能性が高い。
【００４５】
本明細書に記載される経口ＩＬ−１１処方物は、炎症性腸疾患処置の補助剤と共に投与され得る。補助剤には、例えば、コルチコステロイド、免疫抑制剤、インフリキシマブ（ｉｎｆｌｉｘｉｍａｂ）、およびメサラミンが挙げられ、それらは炎症制御を補助する物質である。メサラミンは、例えば、スルファサラジンおよび５−ＡＳＡ剤（例えば、Ａｓａｃｏｌ、Ｄｉｐｅｎｔｕｍ、またはＰｅｎｔａｓａ）が挙げられる。経口ＩＬ−１１処方物はさらに、抗生物質（例えば、アンピシリン、スルホンアミド、セファロスポリン、テトラサイクリン、またはメトロニダゾールが挙げられる）と共に投与され得る。
【００４６】
投薬レジメンは、上に記載される状態の処置方法に関し、薬物の作用を変更する様々な要因（例えば、患者の状態、体重、性別および飲食物、任意の感染の重篤度、投与時間および他の臨床的要因）を考慮して主治医によって決定される。概して、１日あたりのレジメンは、１〜３０ｍｇの範囲のポリペプチドであるべきである。
【００４７】
本発明は、さらに以下の非限定的な実施例において説明される。
【実施例】
【００４８】
（実施例１）
（ｒｈＩＬ−１１の、様々な処方物賦形剤および抗酸化剤との適合性）
表１に示した処方物、賦形剤および抗酸化剤を含むｒｈＩＬ−１１錠剤について、適合性の研究を実施した。賦形剤を、充填剤、崩壊剤、緩衝剤、滑剤および滑沢剤を含めて調査した。これらの賦形剤を含むｒｈＩＬ−１１錠剤を、直接圧縮によって調製した。凍結乾燥したｒｈＩＬ−１１を回収し、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そして他の全ての賦形剤を含む適切な大きさのバイアルに移した。このバイアルを２〜３分間回転させることにより材料を混和した。ステアリン酸マグネシウムを含む処方物（Ｆ１、Ｆ２、Ｆ４〜Ｆ８）については、ステアリン酸マグネシウムをこの時点で加え、そしてさらに０．５〜１分間混和しつづけた。
【００４９】
それぞれの錠剤は１５０ｍｇであり、そして２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１（凍結乾燥によって調製された凍結乾燥粉末として加え、バイアル中の凍結濃縮液に、５ｍｇのｒｈＩＬ−１１と等価な量ならびにリン酸ナトリウムおよびグリシンを含む）を含んだ。錠剤を、４０℃／７５％ＲＨで安定下に置き、逆転相ＨＰＬＣ法を用いて、初期、２週間および４週間での強度および％Ｍｅｔ５８酸化種を試験した。概して、全ての研究した処方物は、％Ｍｅｔ５８酸化種において増加を示した。ステアリン酸を含む処方物（Ｆ３）中のｒｈＩＬ−１１の強度は、４０℃／７５％ＲＨ安定下で４週間置いた場合に、初期の９０．４％から６４．１％まで低下した。この処方物において、％Ｍｅｔ５８酸化種はまた、この期間中に４．４％から１８．８％まで増加した。クロスポビドンを含む全ての処方物（Ｆ４、Ｆ７およびＦ８）は、クロスポビドンを含まない処方物（Ｆ１）に比べ、より高い初期Ｍｅｔ５８酸化種含有量となった。Ｍｅｔ５８酸化種含有量のさらなる１０％の増加を、クロスポビドンを含む処方物において４０℃／７５％ＲＨでの４週間の保存期間後に観察した。
【００５０】
第２の研究を、抗酸化剤の潜在的な効果を試験するために設計した。本研究で評価した抗酸化剤は、メチオニン、アスコルビン酸およびＥＤＴＡであった。この錠剤処方物を、濃縮物として添加した２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１、リン酸ナトリウム、微結晶性セルロースおよびステアリン酸マグネシウムを含めて調査した。他の成分を表２に列挙する。錠剤を、高い剪断顆粒化方法、続いて圧縮により製造した。錠剤を４０℃／７５％ＲＨで安定下に置き、初期、２週間および４週間時点での％Ｍｅｔ５８酸化種を試験した。クロスポビドンを含むが、他のどのような抗酸化剤も含まない処方物（Ｗ１）は、最も高い％Ｍｅｔ５８酸化種を生成した。処方物Ｗ２、Ｗ４およびＷ５に、抗酸化剤としてメチオニンを含ませた。これらの処方物は、４０℃／７５％ＲＨでの４週間の保存期間後に、％Ｍｅｔ５８酸化種において３〜４％のわずかな増加を示した。ＥＤＴＡは、酸化に対するさらなる保護を提供しなかったようだ（Ｗ５）。アスコルビン酸はまた、メチオニンほどは有効で無かった（Ｗ３）。メチオニンは、ｒｈＩＬ−１１錠剤処方物において最も有用な抗酸化剤であるようだ。
【００５１】
最後の錠剤処方物を、賦形剤適合性研究および抗酸化剤の研究の結果に基づき選択した。表３に、使用した処方物を示す。高い剪断顆粒化の薬物の持続放出を予防するために、本処方物を使用するｒｈＩＬ−１１錠剤を、流動層顆粒方法によって製造した。錠剤を、ＨＰＭＣの層でシールし、Ｅｕｄｒａｇｉｔ（登録商標）Ｌ３０Ｄ、タルクおよびクエン酸トリエチルを含む水溶性分散剤で腸溶性コーティングし、そしてＨＰＭＣでもう一度シールした。
【００５２】
（実施例２）
（錠剤製造中の、ｒｈＩＬ−１１カプセルの完全性）
錠剤製造プロセスの間に以下のストレスに直面した、ｒｈＩＬ−１１の完全性を調査した。異なる圧縮力を、ｒｈＩＬ−１１の完全性に対する錠剤製造ストレスの影響を評価するために使用した。これらの錠剤（１５０ｍｇ）は、２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１（凍結乾燥粉末）、ＥＸＰＬＯＴＡＢ（登録商標）、微結晶性セルロース、ＮＵ−ＴＡＢ（登録商標）、サイロイド（ｓｙｌｏｉｄ）およびステアリン酸マグネシウムを含んだ。錠剤を、２．４ＫＰ、４．０ＫＰ、７．５ＫＰ、および１２．５ＫＰの硬度で直接圧縮した。タンパクの完全性を、Ｔ−１０バイオアッセイによって、ｒｈＩＬ−１１の％回復、％マルチマー、％Ｍｅｔ５８酸化種、％関連および比活性を決定することにより、測定した。表４の結果は、硬度を変動させて圧縮したｒｈＩＬ−１１錠剤が、回復、％マルチマー、％Ｍｅｔ５８酸化種および％関連が変化しなかったことを示す。同様に、様々な処方混合物および錠剤の比活性は、特異性の範囲内であった（表５）。このことは、圧縮力が、処方物研究においてｒｈＩＬ−１１の化学的または物理的不安定性の原因とならないことを示す。
【００５３】
（実施例３）
（腸溶性コーティングしたｒｈＩＬ−１１錠剤の安定性）
流動層顆粒によって調製した、腸溶性コーティングした錠剤の安定性を、ＨＤＰＥボトルにおいて４０℃／７５％ＲＨおよび室温で試験した。安定性試験により、％回復、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連種を測定した。結果を表６に示す。腸溶性コーティングした錠剤の、ｒｈＩＬ−１１強度、％Ｍｅｔ５８酸化種および％関連種は、室温、および４０℃／７５％ＲＨで保存した場合、様々な時点で変化しなかった。
【００５４】
溶解試験を、微溶解装置（ｍｉｃｒｏ−ｄｉｓｓｏｌｕｔｉｏｎ ａｐｐａｒａｔｕｓ）において５０ｍｌのグリシン／リン酸溶解媒質（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｄｉｓｓｏｌｕｔｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ）を使用して、５０ｒｐｍまたは１００ｒｐｍのパドル速度で実施した。コーティングした錠剤を、０．１Ｎ ＨＣｌにおいて２時間、続いてグリシン／リン酸溶解媒質において次の６０分間、ｒｈＩＬ−１１放出について試験した。溶解の結果、０．１Ｎ ＨＣｌ中において２時間で、１％未満のｒｈＩＬ−１１が放出されたことが明らかであった。このことは、５％腸溶性コーティングが、胃の消化に対する保護を十分に提供することを示唆する。溶解試験を、ｐＨ７のグリシン／リン酸緩衝化崩壊媒質中で実行した場合、腸溶性コーティングは溶解し、そしてｒｈＩＬ−１１を放出した。既に理解されるように、コーティングしていない錠剤については、５０ｒｐｍでの薬物の放出は不完全であった。
【００５５】
（実施例４）
（直接圧縮処方物）
本発明は、ＩＬ−１１を約５時間にわたり放出する、持続放出錠剤処方物を開発することに着目した。直接圧縮処方物を、以下のように調製した。凍結乾燥したｒｈＩＬ−１１を回収し、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そしてステアリン酸マグネシウムを除く他の全ての賦形剤を含む適切な大きさのバイアルに移した。このバイアルを２〜３分間回転させることにより材料を混和した。ステアリン酸マグネシウムをこの時点で加え、そしてさらに０．５〜１分間混和しつづけた。２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１に等価な、最終のブレンドの量を秤量し、そしてＫｉｋｕｓｏｗｉ錠剤プレス（ｔａｂｌｅｔｉｎｇ ｐｒｅｓｓ）を使用して圧縮した。硬度は７〜１０ｋｐの間に調整した。
【００５６】
溶解を、ＵＳＰパドル法を使用して、５０ＲＰＭで、メチオニン、グリシン、およびポリソルベート８０を含む１５０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）において３７℃で行った。１ｍｌのサンプルを、あらかじめ定められた時間間隔で回収し、そして新しい媒質と交換した。分析を、Ｖｙｄａｃ Ｃ４カラム（狭い口径、２．１×１５０ｍｍ）を使用して、環境温度で行った。流動速度は０．５ｍｌ／分であった。検出を、２１４ｎｍで実行した。勾配システムを、０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ａとして、そして８０％アセトニトリル中の０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ｂとして使用した。
【００５７】
表７に、直接圧縮によって調製した錠剤の処方物を示す。これら処方物の溶解の視覚的な評価を実施し、溶解媒質中における処方物の物理的挙動を特徴づけた。処方物１の錠剤は、処方物２の錠剤および処方物３の錠剤より早い浸食を示した。処方物２の錠剤は、最も遅い浸食を示した。全ての処方物は、有意な膨張を示した。処方物１の錠剤は、溶解の５〜６時間後、ほぼ完全な浸食を示した。処方物２の錠剤の約３分の２、および処方物３の錠剤の約３分の１が、同期間に浸食した。
【００５８】
これらの結果についての１つの説明は、錠剤のＨＰＭＣ含有量に基づく。ＨＰＭＣが水和するとき、ＨＰＭＣはゲルを形成し、このゲルはマトリックスの溶解および浸食を制御する障壁として作用する。ＨＰＭＣ含有量が増加するにつれて、ゲルの構造はより強く、そして堅くなる。このことが、錠剤の表面におけるゲル層の粘性および厚みを増す。その結果として、マトリックス錠剤の溶解は減速する。これらの結果は、処方物１および２からの薬物放出が、最適であることを示す。
【００５９】
（実施例５）
（湿性顆粒化処方物）
湿性顆粒化処方物を、高い剪断または流動相法を使用して調製した。ｒｈＩＬ−１１溶液を、持続放出重合体およびステアリン酸マグネシウムを除く賦形剤に添加した。顆粒を乾燥させ、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そして重合体およびステアリン酸マグネシウムと混和した。２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１に等価な、最終のブレンドの量を秤量し、そしてＫｉｋｕｓｏｗｉ錠剤プレスを使用して圧縮した。硬度は７〜１０ｋｐの間に調整した。
【００６０】
溶解を、ＵＳＰパドル法を使用して、５０ＲＰＭで、メチオニン、グリシン、およびポリソルベート８０を含む１５０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）において３７℃で行った。１ｍｌのサンプルを、あらかじめ定められた時間間隔で回収し、そして新しい媒質と交換した。分析を、Ｖｙｄａｃ Ｃ４カラム（狭い口径、２．１×１５０ｍｍ）を使用して、環境温度で行った。流動速度は０．５ｍｌ／分であった。検出を、２１４ｎｍで実行した。勾配システムを、０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ａとして、そして８０％アセトニトリル中の０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ｂとして使用した。
【００６１】
持続放出処方物を、高い剪断技術によって得られた顆粒を使用して調製した（表８を参照のこと）。薬物溶液の一部分を、重合体およびステアリン酸マグネシウムを除く全ての賦形剤のブレンドに添加した。湿性の塊を、次に乾燥させた。このサイクルを目標とされる薬物充填が得られるまで、３度繰返した。次いで重合体をブレンドに添加し、引き続きステアリン酸マグネシをブレンドに添加した。これらの処方物から調製した錠剤の、溶解媒質中における物理的挙動は、同レベルのＨＰＭＣを含有する直接圧縮処方物によって示された物理的挙動と類似であることが見出された。高い剪断顆粒から調製した即時放出錠剤の研究は、ｒｈＩＬ−１１の完全な放出を得ることが困難であることを示した。流動層顆粒から調製した錠剤の研究は、ｒｈＩＬ−１１の製造および放出に関して調査された技術の中で、この方法がｒｈＩＬ−１１顆粒化に最適であることを示す。
【００６２】
表９は、流動層顆粒によって調製した３つの持続放出錠剤の組成を示す。流動層顆粒はｒｈＩＬ−１１混合物、Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０２、一塩基性リン酸ナトリウム、二塩基性リン酸ナトリウム、メチオニンおよびポリソルベート８０を含む。これらの研究により、スクロースが保存中の即時放出錠剤の変色の原因であることが判明したので、直接圧縮および高い剪断顆粒処方物で使用するスクロースをマンニトールに置きかえた。
【００６３】
（実施例６）
（ｒｈＩＬ−１１の溶解に対する緩衝液強度の影響）
ｒｈＩＬ−１１の溶解に対する緩衝液強度５０ｍＭおよび１００ｍＭの影響を研究した。溶解媒質において、グリシン、メチオニンおよびポリソルベート８０の濃度を一定に保った。処方物６〜８の錠剤（表９）の溶解を、両方の媒質において実施した。溶解は、１００ｍＭ媒質において有意により早く、そしてほぼ完全であった。一方、わずか１５％のｒｈＩＬ−１１が、５０ｍＭ媒質において５時間後に錠剤から放出された。
【００６４】
これらの結果を理解するために、錠剤を溶解する間に生じる変化を、両方の媒質において追跡した。錠剤は１００ｍＭ媒質において、有意な膨張および早い浸食を示した。それらは溶解の約５時間後に消失した。一方、錠剤は５０ｍＭ媒質において膨張したが、溶解の５時間後に最小限の浸食しか示さなかった。これはＨＰＭＣゲル構造の強度が、イオン強度に対して感受性が高いという事実に起因し得る。溶解媒質におけるリン酸緩衝液濃度の上昇は、そのイオン強度を高め、そしてＨＰＭＣゲル構造の強度と堅固性を減少させる。
【００６５】
（実施例７）
（重合体およびその粘性度の影響）
処方物６は、１００ｍＭリン酸媒質において速い初期分離速度を示した。処方物６は、Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ４Ｍ ＰＲＥＭを持続放出重合体として含む。溶解の初期速度を低下させるために、より高い粘性度のＨＰＭＣ（Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ１５Ｍ ＰＲＥＭ）を、処方物中に組み込んだ。処方物７および８の錠剤は、改良された溶解挙動を示した。処方物７の溶解速度と比べて、処方物８によって示された溶解のより速い速度は、処方物７の錠剤には存在しない顆粒外（ｅｘｔｒａｇｒａｎｕｌａｒ）微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０２）の錠剤分解性質に起因し得る。
【００６６】
マトリックス錠剤処方物を、ＰＥＯ単独またはＨＰＭＣとの組み合わせ使用により調製した。これらの処方物のいくつかの、浸食および溶解の可視的な評価は有望であった。これら処方物の溶解サンプルのＨＰＬＣ分析は、ＰＥＯの分子量が非常に大きいため困難であった。
【００６７】
５０ｍＭリン酸媒質において、ｒｈＩＬ−１１について最適な放出プロフィールを示す、プロトタイプ処方物を調製して、そして試験した。様々な処方物を調製して、試験した。これら処方物の浸食および溶解のモニタリングは、２０〜３０％のメトセル（ｍｅｔｈｏｃｅｌ）Ｋ１００ＬＶ、ＬＨ、ＣＲ Ｐｒｅｍｉｕｍを、持続放出重合体として使用することが、受容可能な溶解挙動を示す処方物を得ることにつながり得ることを示した。表１０は、これら処方物の組成を示す。
【００６８】
処方物９および１０からのｒｈＩＬ−１１の溶解を、試験した。ｒｈＩＬ−１１の溶解は、２時間後に有意に減少した。時には、溶解の２時間後に薬物濃度において低下が認められた。不完全な放出は、ｒｈＩＬ−１１の、処方物の賦形剤へのいくぶんかの吸着に起因し得た。この現象はまた、即時放出の錠剤および即時放出のビーズについても観察された。
【００６９】
ｒｈＩＬ−１１の放出を改良するために、処方物中の緩衝種ならびに溶解媒質を、リン酸ナトリウムからリン酸アンモニウムに変えた。処方物１１を、リン酸アンモニウムを使用して調製し、一方処方物１２から外顆粒リン酸ナトリウムを除去した。処方物１１および１２の溶解を、アンモニウムリン酸種を使用して調製した媒質において行った。溶解の結果は、溶解の５時間後に薬物放出量が増し、一方受容可能な溶解プロフィールを維持することを示した。
【００７０】
（実施例８）
（ｒｈＩＬ−１１遅延放出多粒子ペレットを製造するプロセス）
ｒｈＩＬ−１１の腸溶性コーティングしたペレットを、以下の工程を含むプロセスを用いて製造する：ｒｈＩＬ−１１薬物物質を解凍し、希釈する工程；ペレットをｒｈＩＬ−１１層状化する工程；シールコーティングする工程；腸溶性コーティングする工程；最後のシールコーティング；およびタルクを塗布する工程。多粒子ペレットの成分を、表１１に列挙する。
【００７１】
ｒｈＩＬ−１１を、希釈緩衝液（４ｍＭ 一塩基性リン酸ナトリウム、６ｍＭ 二塩基性リン酸ナトリウム、０．３Ｍグリシン、ｐＨ７．０）と共に、１０ｍｇ／ｍｌの最終濃度となるまで室温で混合する。希釈したｒｈＩＬ−１１を、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（１０％溶液）、メチオニン、ポリソルベート８０および精製水と調合し、薬物層溶液を生成する。
【００７２】
この薬物層溶液（約４０，６００ｇ）を、４７℃〜５３℃の入り口温度範囲、３０〜４５℃の排気温度、３５０〜５５０ＣＦＭの供給空気容積、３５〜８５ｇ／分の噴霧速度、および３０〜４０ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーター内で、約２０，０００ｇの糖スフィアに塗布する。
【００７３】
シールコーティング溶液（約２９００ｇ）を薬物層状化ペレットに塗布する。シールコート溶液は、精製水中、ヒドロキシプロピルメチルセルロースの７．５％（ｗ／ｗ）溶液から構成される。薬物コーティング層と同様に、４７℃〜５３℃の入り口温度範囲、３０〜５５℃の排気温度、４００〜５００ＣＦＭの供給空気容積、２５〜４５ｇ／分の噴霧速度、および３０〜４０ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。シールコーティングの機能は、ｒｈＩＬ−１１タンパク質コアと酸性腸溶性コーティング環境との間に不活性な障壁を提供することである。
【００７４】
次いで、腸溶性コーティング溶液（約３０，９００ｇ）を、シールされた薬物コーティングペレットに塗布する。３２℃〜３８℃の入り口温度範囲、２５〜４０℃の排気温度、５５０〜７００ＣＦＭの供給空気容積、４５〜８５ｇ／分の噴霧速度、および２５〜３５ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。腸溶性コーティング層の機能は、胃の酸性ｐＨに対する障壁を提供することである。
【００７５】
第二のシールコート（約３８８０ｇ）を腸溶性コーティングされたペレットに塗布する。シールコート溶液は、精製水中、ヒドロキシプロピルメチルセルロースの７．５％（ｗ／ｗ）溶液から構成される。上の記載と同様に、３２℃〜３８℃の入り口温度範囲、２５〜４０℃の排気温度、５５０〜７００ＣＦＭの供給空気容積、２５〜４５ｇ／分の噴霧速度、および２５〜３５ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。最後のシールコート層の機能は、腸溶性コート層の潜在的なペレット間の固着を排除することである。シールコート層は、酸に可溶性であり、そして溶解試験の最初の工程により取り除かれる。プロセス過程の強度試験を、最後のシールコート層の塗布後に実施し、標的がカプセルの重量を満たすかどうかを決定する。
【００７６】
最後のシールコート工程完了時に、タルクを流動層コーターに添加する。シールしたｒｈＩＬ−１１腸溶性コーティングペレットを、タルクと共に３０〜６０秒間混合し、静電気を除く。次いで、タルク処理されたペレットを、流動層コーターから放出し、２つの乾燥袋（１つをポリエチレン袋の間に、そして１つを袋の外側に）を備える、２重のポリエチレンで裏打ちされた容器に置く。次いでペレットを、カプセルに充填する。
【００７７】
（実施例９）
（ｒｈＩＬ−１１の腸溶性コーティングした多粒子ペレットの安定性）
腸溶性コーティングした多粒子ペレット（流動層顆粒化により調製）の安定性を、２〜８℃で０〜６ヶ月間の長期保存条件下で試験した。安定性試験は、強度、％回復、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連種からなった。表Ｘは、腸溶性コーティングした錠剤のｒｈＩＬ−１１の強度、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連が、２〜８℃で０〜６ヶ月間保存された場合、様々な時点において変化しなかったことを示す。
【００７８】
腸溶性コーティングした多粒子ペレット（流動層コーティングにより調製）の安定性を、２５℃／６０％ＲＨで０〜６ヶ月間の加速保存条件下で試験した。これらのデータを表１３に表す。
【００７９】
（実施例１０）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおける、慢性的下痢に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
雄性トランスジェニックＨＬＡ−Ｂ２７ラットを、Ｔａｃｏｎｉｃ Ｆａｒｍｓ（Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＮＹ）から購入し、そして管理した条件（２１℃；５０±１０％湿度；１２時間の明／暗サイクル）下で個別に飼育した。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットを、１０週齢で入手し、そして４０週齢（３５０±４０ｇ、ｎ＝１２）まで動物施設で飼育した。４０週齢で、トランスジェニックラットは慢性的下痢によって発現する腸の炎症を有した。週齢の一致する非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットを、Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入し、ヒト主要組織適合性種群クラス１対立遺伝子Ｂ２７およびβ２マイクログロブリン遺伝子の高いコピー数を有するよう遺伝的操作し、コントロールとして使用した（３７０±２０ｇ、ｎ＝６）。このＦｉｓｈｅｒ３４４ラットは見たところ健康で、そして便の軟度も正常であった。ｒｈＩＬ−１１投与前に、全てのＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいてペレット形態でない下痢気味の便および下痢を観察した。
【００８０】
ｒｈＩＬ−１１多粒子が多粒子１００ｍｇあたり約１ｍｇのｒｈＩＬ−１１を含むのに対し、スクロース多粒子をプラセボコントロールとして供給する。腸溶性コーティングしたｒｈＩＬ−１１多粒子の１回の経口投与の累積効果は、２週間の処置隔日に与えた５００μｇ／ｋｇ ｒｈＩＬ−１１に等価であり、下痢症状の観察によって追跡された。３群の動物を含めて研究した：ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットを含む試験群（ｎ＝６）；プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットを含む賦形剤コントロール群（ｎ＝６）；およびプラセボで処置した、週齢が一致するＦ３４４ラットからなる健康なコントロール群（ｎ＝６）。動物を、ｒｈＩＬ−１１経口投与する２週間毎日計量し、そしてｒｈＩＬ−１１またはプラセボのいずれによっても体重において有意な変化は無かった。
【００８１】
全てのＨＬＡ−Ｂ２７ラットは臨床的な大腸炎の症状を示した。便の特性を、毎日観察し、そして通常、ソフトまたは下痢として特徴づけた。通常に対して０、ソフトでペレット形態であるものに対して１、ソフトでペレット形態でないものに対して２、および下痢に対して３と、毎日ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの処置前および処置中にスコアづけした。
【００８２】
ｒｈＩＬ−１１の経口投与は下痢症状の有意な抑制を生じた、すなわち処置の最初の９日間で、便の特性が軟らかいがペレット形成するように変化した。プラセボ受容ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおける便特性の変化を観察しなかった。同様に、プラセボ処置は、健康なＦ３４４ラットにおける通常便の特性に対する影響を示さなかった。
【００８３】
（実施例１１）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの腸の炎症に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
上の実施例１０において記載されているように、ｒｈＩＬ−１１を試験動物に経口で投与した。動物を、腸の炎症について評価した。すべての動物を、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの最後の投与から４時間後に安楽死させ、そして空腸および結腸を即時に分離した。
【００８４】
ミエロペルオキシダーゼ（ＭＰＯ、好中球によって特異的に発現される）を、炎症性の細胞侵入のマーカーとみなす。腸の組織抽出物中のＭＰＯ活性を、炎症の指数として使用した。全厚の空腸および結腸の試料（１００〜１５０ｍｇ）を、収縮実験のために分離した組織から取り出し、そして即時に液体窒素中で凍らせた。サンプルを−８０℃で保存し、そしてＭＰＯ活性を実験全体のセットについて同時に分析した。ホモジェネートからのＭＰＯの均質化および抽出を、ヘキサドデシル−トリメチルアンモ二ウムブロミドリン酸緩衝液（ｐＨ６）において実行した。ＭＰＯ活性を、１０μｌのサンプル中で３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンＭｉｃｒｏｗｅｌｌペルオキシダーゼ基質システム（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を使用し、そしてセイヨウワサビペルオキシダーゼを相対的な標準として試験した。ＭＰＯ活性を、室温で１０分間に同量の３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン基質を転換する相対的な標準の活性（セイヨウワサビペルオキシダーゼのナノグラム）に等価であるとして表現した。データを、ナノグラムで表現し、そして組織の湿重量グラムあたりに正規化した。
【００８５】
プラセボで処置した非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットと比較すると、プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットのＭＰＯ活性は、小腸において２．３倍、および大腸において３．８倍向上した。ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットは、ＭＰＯ活性が空腸および結腸の両方において低下した。ｒｈＩＬ−１１の２週間の処置後に、ＭＰＯ活性は非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットに似たレベルまで低下した。コンテストにおいて、同様のプラセボ処置の過程は、ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸および結腸においてＭＰＯ活性の有意な低下を示さなかった。
【００８６】
（実施例１２）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの腸の炎症の組織学的な評価に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
空腸および結腸組織試料を、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの経口投与後にＨＬＡ−Ｂ２７ラットから採取した。試験片を１０％の中性緩衝ホルマリン中に浸し、加工処理し、パラフィンに包埋し、そして５μｍの厚さに切断した。スライドにマウントした切断面を、ヘマトキシおよびエオジンで染色し、そして光学顕微鏡で潰瘍化、炎症性の浸潤、経壁損傷、および線維症の発現について調査した。スライドを盲検法において検査し、そしてそれぞれのパラメータを以下のようにスコアづけた：潰瘍化および線維症について０〜２；炎症および損傷の深さについて０〜３。病理の欠如は０としてスコアづけた。合計スコアを、Ｂｏｕｇｈｔｏｎ−Ｓｍｉｔｈら（１９９８）に記載される方法により、個体パラメータのスコアの合計として計算した（最大値は１０であった）。
【００８７】
便特性の改善（上の実施例１０を参照のこと）は、結腸粘膜の治癒と関連していた。腸溶性コートしたｒｈＩＬ−１１の隔日治療は、ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて組織学的損傷の縮小を生じた。組織学的損傷スコアの十分に安定した減少が、ｒｈＩＬ−１１受容動物の結腸から分離された断面においてみられた。
【００８８】
（実施例１３）
（ｒｈＩＬ−１１の、基礎的な収縮活性に対する急性効果）
空腸の切片（トライツ靭帯からおよそ５ｃｍ末端）および結腸（回盲接合部からおよそ４ｃｍ、末端）を採取し、氷温の酸化したクレブス重炭酸溶液中に置いた。縦の筋片を、筋を縦方向に徐々に剥ぐことによって、腸の断片から切り裂いた。筋片（長さ１０〜１２ｍｍ）を、解剖顕微鏡を使いながら、筋の方向に沿って削り取り、そして両端を絹の外科用縫糸で固定した（サイズ３〜０）。この筋片を、１０ｍｌの器官溶液において垂直方向にマウントし、一端は固定し、そしてもう一端を等尺性力変換器（Ｒａｄｎｏｔｉ Ｇｌａｓｓ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｃ．、Ｍｏｎｒｏｖｉａ、ＣＡ）に接着した。器官溶液を、クレブス重炭酸溶液で満たし、３７℃に保ち、そして９５％のＯ２および５％のＣＯ２で曝気した。この器官溶液を、３０分間隔で灌流によって入れ替えた。それぞれの平滑筋片は、張力０で２０分間、続いて最適な静止張力レベルに達するまでの、０．２０ｇの連続的な負荷力の増進によって、平衡に達することが可能であった。静止張力は、負荷によって増大すると考えられた。筋片はさらなる２０分の平衡が可能であった。全ての実験を、最適な張力およびＭａｃＬａｂデータ取得システム（ＡＤ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ Ｌｔｄ．、Ｃａｓｔｌｅ Ｈｉｌｌ、 Ａｕｓｔｒａｌｉａ）を使用して記録された等尺性収縮で実施した。
【００８９】
Ｆ３４４コントロールラットの空腸の縦筋において、最適な張力で記録した基礎的な活性は、低い静止張力（３．１±０．８ｎＭ／ｍｍ２）および１８±５サイクル／分の頻度で出現した、自発性の低振幅の収縮によって特徴づけられた。プラセボ処置をしたＦ３４４、プラセボ処置をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットまたはｒｈＩＬ−１１で処理をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉において記録された基礎活性間に、有意な差は無かった。ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）を器官溶液に添加した場合は、基礎的な活性において有意な変化は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した空腸の筋肉において無かった。結果的に、カルバコール（０．１μＭ）によって誘導される収縮は、ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）が器官溶液中に存在した場合に変化しなかった。
【００９０】
プラセボ処置をしたコントロールＦ３４４ラットから分離した腸の縦筋は、自発的な収縮の発生の有無に関わらず、低い静止張力（２．４±０．３ｍＮ／ｍｍ２）を示した。静止張力および自発的な収縮は、プラセボまたはｒｈＩＬ−１１を受容したＦ３４４ラットおよびＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて類似していた。ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）の器官溶液への添加は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて、自発的な収縮またはカルバコール（１μＭ）に対する収縮応答に急性の効果を示さなかった。
【００９１】
（実施例１４）
（レセプター非依存性の腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
レセプター非依存性の腸の筋収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１処置の影響を試験した。器官溶液におけるＫＣｌの濃度の向上は、レセプター非依存性の膜復極および筋収縮を誘導した。６０〜８０ｍＭのＫＣｌ濃度は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４およびまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した、空腸または結腸の筋片において最大の収縮を誘発するのに必要であった。しかしながら、プラセボ処置をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットの筋肉によって産生した能動的張力は、プラセボ処置をしたＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの筋肉によって産生した能動的張力に比べると低かった。ｒｈＩＬ−１１でのＨＬＡ−Ｂ２７ラットの処置は、空腸および結腸の両方において、高ＫＣｌによる最大収縮を増加した。さらに、ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉と、プラセボ処置をしたＦｉｓｈｅｒ３４４ラットから分離した筋肉においての比較では、高ＫＣｌに対する応答間に有意な差は無かった。
【００９２】
（実施例１５）
（コリン作用性の腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
コリン作用性の腸の筋収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１処置の影響を試験した。カルバコールに対する、完全な投薬−応答曲線を、空腸および結腸の縦筋において得た。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸から分離した縦筋は、異常な収縮応答を示した。カルバコール濃度の高上（１ｎＭ〜１０μＭ）に対する応答において、最大能動的張力は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉において、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットから分離した筋肉と比べると、有意に低かった。収縮応答の減少には、より低いカルバコール濃度に対する、投薬−応答曲線のシフトが伴った。結果として、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸においてカルバコールに対するＥＣ５０は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットの空腸から得られたＥＣ５０値と比較すると有意に低かった。ｒｈＩＬ−１１のＨＬＡ−Ｂ２７トランスジェニックラットの処置は、空腸の筋肉によって産生するカルバコール誘導最大張力を有意に増大した。この有意な増大に加えて、最大応答振幅は、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットからの筋における最大収縮より低いままであった。ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸においてカルバコールに対するＥＣ５０は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットと比較すると有意に減少し、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットの空腸においてと比較すると類似していた。
【００９３】
プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸筋によって、カルバコールに対する応答で産生した最大能動的張力は、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの筋によって産生される最大能動的張力より低かった。ｒｈＩＬ−１１治療の後、ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸の筋においてカルバコールによって誘導される最大張力は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットと比較すると有意に増大し、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの結腸においての最大張力と比較すると類似していた。空腸とは対照的に、プラセボで処置したＦ３４４およびＨＬＡ−Ｂ２７ラットならびにｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸の筋で得られたカルバコールに対する濃度−効果曲線は、類似した位置を有し、そしてＥＣ５０値間に有意な差を示さなかった。
【００９４】
（実施例１６）
（神経が介在する腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１の効果）
空腸の縦筋において、ＥＦＳ（０．５ｍｓパルス持続時間、５Ｈｚ、５ｓ列の持続時間）が収縮反応を誘導した。張力の増大は、刺激中に最大に達し、そして一連の刺激の終了後静止レベルまで減少した。ＥＦＳに対する反応は、実験を通じて再現可能であった。アトロピン（１μＭ）およびグアネチジン（１０μＭ）の存在において、ＥＦＳは非アドレナリン作用、非コリン作用（ＮＡＮＣ）および低い振幅の反応を誘導する。弛緩は観察されなかった。グアネチジンのみではＥＦＳ誘導収縮に影響を及ぼさなかった；例えば、コントロール反応およびＮＡＮＣ成分間の違いは、ＥＦＳ誘導収縮のコリン作用（アトロピン感受性）成分を意味した。コントロールおよびＮＡＮＣの神経介在収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１治療の影響を試験した。プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸筋において得られた、ＥＦＳに対するコントロール反応は、プラセボで処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットと比較して低い振幅であったが、しかしＮＡＮＣ収縮間に有意な差は無かった。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットのｒｈＩＬ−１１経口処置は、コントロールＥＦＳ誘導収縮の振幅を正規化し、そしてＮＡＮＣ反応に有意な影響を及ぼさなかった。テトロドトキシン（１μＭ）により、コントロールおよびＮＡＮＣのＥＦＳに対する反応が完全に無くなった。このことは、これらの反応が腸の神経の活性化に由来することを示した。
【００９５】
腸筋において、ＥＦＳは収縮反応を誘導し、収縮反応はアトロピンおよびグアネチジンによって部分的に阻害され、ＮＡＮＣ収縮を表した。空腸同様、結腸筋は比較的低いレベルの静止張力を維持し、そして弛緩反応は観察しなかった。プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの筋において、ＥＦＳに対するコントロール反応は、プラセボ処置したＦ３４４ラットと比較すると減少した。空腸とは対照的に、ＮＡＮＣの振幅においてもまた有意な縮小であった。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットのｒｈＩＬ−１１処置は、コントロールＥＦＳ誘導収縮の振幅を有意に増大し、そしてＮＡＮＣ反応を有意に正規化した。回復にもかかわらず、処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットはプラセボ処置したＦ３４４ラットと比較すると低値であった。ＥＦＳによって誘導されるコントロールおよびＮＡＮＣ収縮の両方が、テトロドトキシン（１μＭ）によって無くなった。
（他の実施形態）
他の実施形態は特許請求の範囲内にある。
【００９６】
【表１】
【００９７】
【表２】
【００９８】
【表３】
【００９９】
【表４】
【０１００】
【表５】
【０１０１】
【表６】
【０１０２】
【表７】
【０１０３】
【表８】
【０１０４】
【表９】
【０１０５】
【表１０】
【０１０６】
【表１１】
【０１０７】
【表１２】
【０１０８】
【表１３】
【図面の簡単な説明】
【０１０９】
【図１】図１は、経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１処方物の、概要図である。
【図２】図２は、経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１処方物の、生成過程の概要イラストである。
【技術分野】
【０００１】
（発明の分野）
本発明は、経口投与に適するインターロイキン−１１を含むポリペプチドを含有する組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
（発明の背景）
組換えヒトインターロイキン−１１（ｒｈＩＬ−１１）は、１７７のアミノ酸の非グルコシル化ポリペプチドである。このポリペプチドはシステイン残基を欠き、非常に塩基性である（ｐＩ＞１０．５）。ｒｈＩＬ−１１は、ヒト成長ホルモン（ｈＧＨ）および顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）を含む、ヒト成長因子ファミリーのメンバーである。
【０００３】
ｒｈＩＬ−１１は、化学療法の補助薬剤として使用され、そして他の癌処置剤と共に、血小板レベルを増加させるために投与される。ｒｈＩＬ−１１はまた、抗炎症性の効果を有すること、およびクローン病および潰瘍性大腸炎のような状態の処置に有用であることが実証されている。ＩＬ−１１は、典型的には皮下注射により投与される。皮下注射用の処方物は無菌でなければならず、そしてこれは他の投与経路に比べて高価であり得る。この経路はまた、不便であり、そして不快である。皮下注射はさらに、注射領域における局所的な組織の損傷および感染のような合併症に関連している。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００４】
（発明の要旨）
本発明は、被験体に経口で送達し得るｒｈＩＬ−１１組成物の発見に一部基づいている。
【０００５】
１つの側面において、本発明は、生体活性ポリペプチド、腸溶性コート（例えば、メタクリル酸共重合剤）、および必要に応じて、少なくとも１つの賦形剤を含む治療上有効な遅延放出経口投薬組成物を提供する。いくつかの実施形態において、この生体活性ポリペプチドは、Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および塩基性ｐＩを有することからなる群より選択される１つ以上の特性を含む。いくつかの実施形態において、このポリペプチドはシステイン残基を有さない。
【０００６】
好ましいポリペプチドはＩＬ−１１である。本発明は、生体活性ポリペプチドＩＬ−１１に関して本明細書中で記載される。しかしながら、ＩＬ−１１に関して記載される本発明の特徴はまた、他の生体活性ポリペプチドを含む組成物および方法に適用できることが理解される。
【０００７】
１つの実施形態において、この組成物は、さらに不活性なコアを含む。この不活性なコアは、例えば、ペレット、スフィア、またはビーズであり得、糖、デンプン、微結晶性セルロース、または他の任意の薬学的に受容可能な不活性賦形剤で構成される。好ましい不活性なコアは、単糖、二糖または多糖（すなわち、３つ以上の糖分子を含む重合体）のような炭水化物である。適切な炭水化物の例はスクロースである。いくつかの実施形態において、このスクロースは、組成物中に６０〜７５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【０００８】
生体活性ポリペプチドがＩＬ−１１である場合、このＩＬ−１１層は、優先的に、安定剤（例えば、メチオニン、グリシン、ポリソルベート８０およびリン酸緩衝液）、ならびに／あるいは薬学的に受容可能な結合剤（例えば、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポビドン、またはヒドロキシプロピルセルロース）と共に提供される。この組成物はさらに、１つ以上の薬学的賦形剤を含み得る。このような薬学的賦形剤としては、例えば、結合剤、崩壊剤、充填剤、可塑剤、滑沢剤、滑剤、コーティング剤、および懸濁剤／分散剤が挙げられる。
【０００９】
好ましい結合剤は、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）である。このＨＰＭＣは、好ましくは組成物中に３〜７％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１０】
好ましい滑剤は、タルクである。いつくかの実施形態において、この滑剤は、組成物中に５〜１０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１１】
可塑剤としては、例えば、クエン酸トリエチル、ポリエチレングリコール、フタル酸ジブチル、トリアセチン、ジブチルセブケート（ｄｉｂｕｔｙｌ ｓｅｂｕｃａｔｅ）、およびプロピレングリコールが挙げられ得る。好ましい可塑剤は、クエン酸トリエチルである。例えば、このクエン酸トリエチルは、１〜２％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。
【００１２】
好ましい界面活性剤は、ポリソルベート８０である。このポリソルベート８０は、０．０１５〜０．０４５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。
【００１３】
いくつかの実施形態において、組成物は、カプセル投薬形態において、複数の腸溶性コーティングされたＩＬ−１１層ペレットを含む多粒子系として提供される。この腸溶性コーティングされたＩＬ−１１ペレットは、不活性なコア（例えば、炭水化物のスフィア）、ＩＬ−１１の層、および腸溶性コートを含む。この腸溶性コートは、例えば、ｐＨ依存性の重合体、可塑剤、および抗固着剤／滑剤を含み得る。好ましい重合体としては、例えば、メタクリル酸共重合体、セルロースアセテートフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ポリビニルアセテートフタレート、セラック、ヒドロキシプロピルメチルセルロースアセテートスクレネート、カルボキシ−メチルセルロースが挙げられる。
【００１４】
好ましくは、不活性なシールコートが、遮断物として組成物中のＩＬ−１１層と腸溶性コートとの間に存在する。この不活性なシールコートとしては、例えば、ヒドロキシメチルセルロース、ポビドン、ヒドロキシプロピルセルロース、または別の薬学的に受容可能な結合剤が挙げられ得る。
【００１５】
適切な持続性重合体としては、例えば、アミノメタクリレート共重合体（Ｅｕｄｒａｇｉｔ ＲＬ、Ｅｕｄｒａｇｉｔ ＲＳ）、エチルセルロース、またはヒドロキシプロピルメチルセルロースが挙げられる。いくつかの実施形態において、このメタクリル酸共重合体は、ｐＨ５．５より上で可溶性となるｐＨ依存性のアニオン重合体である。このメタクリル酸共重合体は分散剤として提供され得、そしてこれは、組成物中に１０％〜２０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在し得る。好ましいメタクリル酸共重合体は、ＥＵＤＲＡＧＩＴ（登録商標）Ｌ３０ Ｄ−５５である。
【００１６】
好ましい実施形態において、腸溶性コーティングされた錠剤の投薬形態としては、ＩＬ−１１、充填剤である微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ １０２）、崩壊剤であるＥｘｐｌｏｔａｂ、緩衝剤であるリン酸ナトリウム、抗酸化剤であるメチオニン、界面活性剤であるＴｗｅｅｎ ８０、滑沢剤であるステアリン酸マグネシウム、および腸溶性コートが挙げられる。
【００１７】
好ましい実施形態において、持続放出錠の投薬形態としては、ＩＬ−１１、充填剤（例えば、微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ １０２）およびスクロース）、マトリックス形成重合体（ヒドロキシプロピルメチルセルロース Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ４Ｍ Ｐｒｅｍ、Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ１００ＬＶ、ＬＨ、ＣＲ、Ｐｒｅｍｉｕｍ）、滑剤（例えば、Ｓｙｌｏｉｄ）、緩衝剤であるリン酸ナトリウム、抗酸化剤であるメチオニン、界面活性剤（例えば、Ｔｗｅｅｎ ８０）、および滑沢剤（例えば、ステアリン酸マグネシウム）が挙げられる。
【００１８】
別の実施形態において、組成物はグリシンを含む。いくつかの実施形態において、このグリシンは組成物中に１〜４％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００１９】
組成物は、必要に応じて、さらに抗酸化剤を含み得る。適切な抗酸化剤の例はメチオニンである。いくつかの実施形態において、このメチオニンは、組成物中に０．１〜０．５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００２０】
ＩＬ−１１は、天然に存在するＩＬ−１１から単離された精製タンパクとして提供される。あるいは、ＩＬ−１１ポリペプチドは、このポリペプチドの組換え形態（例えば、組換えヒトＩＬ−１１（ｒｈＩＬ−１１））として提供される。
【００２１】
別の側面において、本発明は、ＩＬ−１１ポリペプチド、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートを含む治療上有効な遅延放出経口投薬多粒子組成物を提供する。好ましいシーリングコートは、ＨＰＭＣである。組成物の腸溶性コーティング層は、例えば、メタクリル酸共重合体であり得る。好ましいメタクリル酸共重合体は、ｐＨ５．５より上で可溶性であり、例えばＥＵＤＲＡＧＩＴ（登録商標）Ｌ３である。
【００２２】
持続放出組成物もまた、本発明により提供され、この組成物は、ＩＬ−１１ポリペプチド、腸溶性コート（例えば、メタクリル酸共重合体）、そして必要に応じて、少なくとも１つの賦形剤を含む。１つの実施形態において、この組成物は、さらに不活性なコアを含む。この不活性なコアは、例えば、ペレット、スフィア、またはビーズであり得、糖、デンプン、微結晶性セルロース、または他の任意の薬学的に受容可能な不活性賦形剤で構成される。好ましい不活性なコアは、単糖、二糖または多糖（すなわち、３つ以上の糖分子を含む重合体）のような炭水化物である。適切な炭水化物の例はスクロースである。いくつかの実施形態において、このスクロースは、組成物中に６０〜７５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する。
【００２３】
本発明はまた、本明細書に記載されるようなＩＬ−１１ポリペプチドを包含する組成物を、被験体において生物学的応答を誘発させるのに十分な量で、被験体に経口投与することにより被験体に送達する方法を提供する。いくつかの実施形態において、この応答は被験体の小腸において誘発される。
【００２４】
本明細書中に記載された方法が使用される被験体は、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウサギ、ラット、またはマウスであり得る。
【００２５】
別の側面において、本発明は、被験体にＩＬ−１１を含む経口組成物を投与することにより、被験体における炎症の処置または予防の方法を提供する。いくつかの実施形態において、この炎症は潰瘍性大腸炎およびクローン病に関係する。
【００２６】
他の方法で定義されない限り、本明細書中に使用される全ての専門用語および化学用語は、本発明が属する当該分野の当業者により、一般的に理解されるものと同じ意味を有する。本明細書中に記載されている方法および材料に、類似または等価な方法および材料が、本発明の実施または試験において使用され得るが、適切な方法および材料は以下に記載される。本明細書に記載される、全ての公報、特許出願、特許、および他の参照文献は、その全体が参考として援用される。矛盾する場合には、本明細書（定義を含む）が制御する。さらに、材料、方法、および例は例証に過ぎず、限定されることを意図されない。
【００２７】
本発明の他の特徴および利点は、以下に続く詳細な記載、および特許請求の範囲から明らかである。
【００２８】
（発明の詳細な説明）
本発明は、経口送達に適する、生体活性ポリペプチドの処方物を提供する。いつくかの実施形態において、この生体活性ポリペプチドは、非グルコシル化（例えば、Ｎ連結もしくはＯ連結のグルコシル化部位、または両部位を欠くこと）であり、システイン残基を欠き、そして／あるいは塩基性ｐＩを有する。グルコシル化の欠如は、天然に存在するポリペプチドがグリコシル化部位を欠くためか、またはこのタンパクがこれらの部位を欠くよう操作されたためか、のいずれかであり得る。あるいは、このポリペプチドは、例えば、グリコシラーゼで処理されて、グリコシル化残基を減少または除去され得る。同様に、システイン残基の欠如は、天然に存在するポリペプチド配列においてか、または、天然に存在するシステイン残基が欠失するか、もしくは非システイン残基に置き換わったポリペプチド改変体において生じ得る。
【００２９】
処方物における使用に好ましいポリペプチドは、インターロイキン１１（ＩＬ−１１）である。このタンパクは、多面発現性サイトカインであり、原始的なリンパ造血前駆体細胞を刺激し、そして他の造血増殖因子と相乗作用し、巨大核細胞の増殖および成熟を刺激する。ＩＬ−１１は、国際出願ＰＣＴ／ＵＳ９０／０６８０３（１９９１年５月３０日公開）、ならびに米国特許第５，２１５，８９５号（１９９３年１月１日発行）に詳細に記載されている。クローン化したヒトＩＬ−１１は、あらかじめＡＴＣＣ（１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、Ｖａ．２０１１０−２２０９）に、ＡＴＣＣ番号６８２８４として、１９９０年３月３０日に寄託された。さらに、米国特許第５，２７０，１８１号（１９９３年１２月１４日発行）、および米国特許第５，２９２，６４６号（１９９４年３月８日発行）に記載されるように、ＩＬ−１１はまた、別のタンパクとの融合タンパクとして、組換え的に生成され得る。ＩＬ−１１は、従来の遺伝子操作技術により、様々なホスト細胞において生成される。ＩＬ−１１はさらに、様々な細胞株、例えば、ヒト肺線維芽細胞株であるＭＲＣ−５（ＡＴＣＣ受託番号ＣＣＬ１７１）、およびＰａｕｌらのヒト栄養芽細胞株であるＴＰＡ３０−１（ＡＴＣＣ受託番号ＣＲＬ１５８３）から得られ得る。推察されるアミノ酸配列（アミノ酸１から１９９）と同じように、ヒトＩＬ−１１をコードするｃＤＮＡはＰｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ８７：７５１２（１９９０）に記載される。米国特許第５，２９２，６４６号（前出）は、ＩＬ−１１の成熟形態（アミノ酸２２から１９９）のＮ末端プロリンが除去されているＩＬ−１１のｄｅｓ−Ｐｒｏ形態（アミノ酸２３−１９９）を記載する。当業者によって理解されるように、ＩＬ−１１活性を保持するＩＬ−１１の任意の形態が、本発明によると有用である。
【００３０】
組換え技術に加えて、ＩＬ−１１はまた、公知の従来の化学合成によって生成され得る。本発明において有用なポリペプチドを合成手段によって構築する方法は、当業者に公知である。合成的に構築されたサイトカインポリペプチド配列は、天然のサイトカインポリペプチドと、１次構造、２次構造または３次構造、および立体配座の特徴を共有することにより、その方法で共通の生物学的活性を有すると期待される。このような合成的に構築されたサイトカインポリペプチド配列、またはそれらのフラグメント（それの機能性が２倍、または部分的に２倍である）はまた、本発明の方法においても使用され得る。このように、それらは、本発明において有用な天然の精製されたサイトカインのかわりの、生物学的に活性があるか、または免疫学的な代用品として使用され得る。
【００３１】
これらサイトカインまたはそれらの活性フラグメントのタンパク配列、ペプチド配列またはＤＮＡ配列における改変はまた、本発明の方法において使用され得るタンパクを生成し得る。このような改変サイトカインは、公知の技術を使用して当業者によって生成され得る。サイトカイン配列（例えばＩＬ−１１配列）における目的の改変としては、コード配列における１つ以上の選択されたアミノ酸残基の置換、挿入または欠失が挙げられ得る。このような置換、挿入または欠失の突然変異誘発性技術は、当業者に周知である（例えば、米国特許第４，５１８，５８４号を参照のこと）。
【００３２】
本明細書中に記載されるような治療学的に有用であり得るサイトカインポリペプチド配列の、他の特定の変異としては、例えば、１つ以上のグルコシル化部位の挿入が挙げられ得る。アスパラギン連結グリコシル化認識部位は、ペプチド配列へのアミノ酸の欠失、置換もしくは付加、またはＤＮＡ配列へのヌクレオチドの欠失、置換もしくは付加により、この配列中に挿入され得る。このような変化は、Ｏ連結炭水化物の付加により改変される分子の、任意の部位においてなされ得る。このような変更されたヌクレオチド配列またはペプチド配列の発現は、これらの部位でグリコシル化される改変体を生成する。
【００３３】
全体または一部分においてそれ自体の活性を保持または延長することが期待され、そして本方法において有用であることが期待される、選択されたサイトカイン配列のさらなるアナログおよび誘導体もまた、当業者によって容易に作られ得る。１つのこのような改変は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）をサイトカイン配列に存在するリジン残基に付着させること、またはＰＥＧ誘導体もしくはＰＥＧと反応し得る１つ以上のリジン残基もしくは他のアミノ酸残基を従来技術により配列中に挿入し、ＰＥＧ部分の付着を可能とすることであり得る。
【００３４】
これらの選択されたサイトカインのさらなるアナログはまた、それらをコードするＤＮＡ配列における対立遺伝子のバリエーション、またはそれらをコードするＤＮＡ配列において誘導されたバリエーションにより特徴づけられ得る。上に参照された刊行物において開示された全てのアナログは、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下、または非ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、開示されたサイトカイン配列とハイブリダイズし得るＤＮＡ配列によって特徴づけられたアナログを含み（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ． Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９））、同様に本発明において有用であろうと予想される。
【００３５】
あるサイトカインの配列または生物学的活性フラグメントが、別のサイトカインまたはタンパク性の治療剤に融合すること（例えば、ＩＬ−１１がＩＬ−６に融合すること）（例えば、ＰＣＴ／ＵＳ９１／０６１８６（Ｗ０９２／０４４５５）１９９２年３月１９日公開に記載された、融合についての方法を参照のこと）によって調製された融合分子もまた、本明細書中に開示される組成物および方法において有用であると考えられる。代替物として、本方法によるとサイトカインの組み合わせが共に投与され得る。
【００３６】
このように、本発明の方法の記載において、ＩＬ−１１が言及されており、ＩＬ−１１が当該分野において現在開示されている配列によって生成されたタンパク、ならびに上に記載された改変により特徴づけられ、実質的に同様の活性を保持するタンパクを含むことは当業者によって理解される。
【００３７】
好ましい多粒子ＩＬ−１１処方物を示す概要図が、図１において示される。中心の糖スフィア上に、ｒｈＩＬ−１１を含む層が配置される。このｒｈＩＬ−１１薬物層は、次にヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）シーリングコートで覆われている。このＨＰＭＣシーリングコートは、メタクリル酸共重合体（例えば、Ｅｕｄｒａｇｉｔ Ｌ２０Ｄ−５５）腸溶性コートで覆われ、そしてペレット全体は、第２のＨＰＭＣシーリングコート、または最後のＨＰＭＣシーリングコートで覆われる。
【００３８】
経口ＩＬ−１１処方物は、当該分野において公知の任意の方法を使用して調製され得る。適切な方法の例として、流動層（ｆｌｕｉｄ ｂｅｄ）をスクローススフィア上に噴霧すること、直接の圧縮、および湿性顆粒合成方法が挙げられる。本発明による組成物調製の方法は、後述の実施例において説明される。
【００３９】
経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１分子を生成するための好ましい方法が描かれた流れ図が、図２において示される。薬物層シーリングコート、腸溶性コート、および第２のシーリングコートは、流動層コーターの内部に連続的に付加される。それぞれの工程において、処方物の温度と質量は、好ましくはモニターされる。
【００４０】
この流れ図は、コートを形作るために糖スフィアが流動層コーター上に充填され、そしてｒｈＩＬ−１１、二塩基性のリン酸ナトリウム、一塩基性のリン酸ナトリウム、グリシン、ポリソルベート８０、メチオニン、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）、および精製水を含む薬物層で覆われることを図示する。腸溶性コートは、Ｅｕｄｒａｇｉｔ、タルク、水酸化ナトリウム、クエン酸トリエチル、および精製水を含んで塗布される。次いで、ＨＰＭＣのシールコートおよび精製水、続いて抗固着剤としてタルクが塗布される。その後の加工は、例えば、２〜８℃で１８０日間の保存を含み得る。
【００４１】
経口送達に適した処方物合成の手順は、当該分野において公知であり、そして例えば、Ｂｅｒｇｓｔｒａｎｄら、米国特許第６，４２８，８１０号、Ｃｈｅｎら、米国特許第６，０７７，５４１号、Ｕｌｌａｈら、米国特許第６，３３１，３１６号、Ｃｈｅｎら、米国特許第６，１７４，５４８号、およびＡｎｄｅｒｓｏｎら、米国特許第６，２０７，６８２号において記載される。
【００４２】
本発明の処方物は、任意の適切な形態（例えば、処方物はカプセル、サシェ、錠剤、または懸濁剤として提供され得る）において送達され得る。
【００４３】
処方物は、ＩＬ−１１が有効であると実証された徴候の処置に使用され得る。好ましい徴候は、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）である。この状態は、慢性小腸の炎症によって特徴づけられ、そして、下痢、出血、腹部の痛み、熱、関節痛、および体重の減少のような臨床的な症状を生じる。これらの症状は、軽微なものから重症な範囲であり得、そして初期の軽症の苦痛から徐々にかつかすかに進行するか、または急性の激しい症状が突然現われ得る。
【００４４】
ＩＢＤは、患者人口の大部分における慢性病の優勢な原因である。それは、以下の２つの異なる形態において明示され得る：潰瘍化大腸炎（ＵＣ）およびクローン病（ＣＤ）。この２つの状態は、臨床的に非常に類似して現われ得るが、ＵＣは、上部ＧＩ管とは対照的に、大腸および直腸の炎症を主に含む。逆にクローン病は、上部小腸消化管のより広域に影響を与え、そしてビタミンおよび栄養不足の慢性化によって、より吸収不良を引き起こす可能性が高い。
【００４５】
本明細書に記載される経口ＩＬ−１１処方物は、炎症性腸疾患処置の補助剤と共に投与され得る。補助剤には、例えば、コルチコステロイド、免疫抑制剤、インフリキシマブ（ｉｎｆｌｉｘｉｍａｂ）、およびメサラミンが挙げられ、それらは炎症制御を補助する物質である。メサラミンは、例えば、スルファサラジンおよび５−ＡＳＡ剤（例えば、Ａｓａｃｏｌ、Ｄｉｐｅｎｔｕｍ、またはＰｅｎｔａｓａ）が挙げられる。経口ＩＬ−１１処方物はさらに、抗生物質（例えば、アンピシリン、スルホンアミド、セファロスポリン、テトラサイクリン、またはメトロニダゾールが挙げられる）と共に投与され得る。
【００４６】
投薬レジメンは、上に記載される状態の処置方法に関し、薬物の作用を変更する様々な要因（例えば、患者の状態、体重、性別および飲食物、任意の感染の重篤度、投与時間および他の臨床的要因）を考慮して主治医によって決定される。概して、１日あたりのレジメンは、１〜３０ｍｇの範囲のポリペプチドであるべきである。
【００４７】
本発明は、さらに以下の非限定的な実施例において説明される。
【実施例】
【００４８】
（実施例１）
（ｒｈＩＬ−１１の、様々な処方物賦形剤および抗酸化剤との適合性）
表１に示した処方物、賦形剤および抗酸化剤を含むｒｈＩＬ−１１錠剤について、適合性の研究を実施した。賦形剤を、充填剤、崩壊剤、緩衝剤、滑剤および滑沢剤を含めて調査した。これらの賦形剤を含むｒｈＩＬ−１１錠剤を、直接圧縮によって調製した。凍結乾燥したｒｈＩＬ−１１を回収し、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そして他の全ての賦形剤を含む適切な大きさのバイアルに移した。このバイアルを２〜３分間回転させることにより材料を混和した。ステアリン酸マグネシウムを含む処方物（Ｆ１、Ｆ２、Ｆ４〜Ｆ８）については、ステアリン酸マグネシウムをこの時点で加え、そしてさらに０．５〜１分間混和しつづけた。
【００４９】
それぞれの錠剤は１５０ｍｇであり、そして２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１（凍結乾燥によって調製された凍結乾燥粉末として加え、バイアル中の凍結濃縮液に、５ｍｇのｒｈＩＬ−１１と等価な量ならびにリン酸ナトリウムおよびグリシンを含む）を含んだ。錠剤を、４０℃／７５％ＲＨで安定下に置き、逆転相ＨＰＬＣ法を用いて、初期、２週間および４週間での強度および％Ｍｅｔ５８酸化種を試験した。概して、全ての研究した処方物は、％Ｍｅｔ５８酸化種において増加を示した。ステアリン酸を含む処方物（Ｆ３）中のｒｈＩＬ−１１の強度は、４０℃／７５％ＲＨ安定下で４週間置いた場合に、初期の９０．４％から６４．１％まで低下した。この処方物において、％Ｍｅｔ５８酸化種はまた、この期間中に４．４％から１８．８％まで増加した。クロスポビドンを含む全ての処方物（Ｆ４、Ｆ７およびＦ８）は、クロスポビドンを含まない処方物（Ｆ１）に比べ、より高い初期Ｍｅｔ５８酸化種含有量となった。Ｍｅｔ５８酸化種含有量のさらなる１０％の増加を、クロスポビドンを含む処方物において４０℃／７５％ＲＨでの４週間の保存期間後に観察した。
【００５０】
第２の研究を、抗酸化剤の潜在的な効果を試験するために設計した。本研究で評価した抗酸化剤は、メチオニン、アスコルビン酸およびＥＤＴＡであった。この錠剤処方物を、濃縮物として添加した２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１、リン酸ナトリウム、微結晶性セルロースおよびステアリン酸マグネシウムを含めて調査した。他の成分を表２に列挙する。錠剤を、高い剪断顆粒化方法、続いて圧縮により製造した。錠剤を４０℃／７５％ＲＨで安定下に置き、初期、２週間および４週間時点での％Ｍｅｔ５８酸化種を試験した。クロスポビドンを含むが、他のどのような抗酸化剤も含まない処方物（Ｗ１）は、最も高い％Ｍｅｔ５８酸化種を生成した。処方物Ｗ２、Ｗ４およびＷ５に、抗酸化剤としてメチオニンを含ませた。これらの処方物は、４０℃／７５％ＲＨでの４週間の保存期間後に、％Ｍｅｔ５８酸化種において３〜４％のわずかな増加を示した。ＥＤＴＡは、酸化に対するさらなる保護を提供しなかったようだ（Ｗ５）。アスコルビン酸はまた、メチオニンほどは有効で無かった（Ｗ３）。メチオニンは、ｒｈＩＬ−１１錠剤処方物において最も有用な抗酸化剤であるようだ。
【００５１】
最後の錠剤処方物を、賦形剤適合性研究および抗酸化剤の研究の結果に基づき選択した。表３に、使用した処方物を示す。高い剪断顆粒化の薬物の持続放出を予防するために、本処方物を使用するｒｈＩＬ−１１錠剤を、流動層顆粒方法によって製造した。錠剤を、ＨＰＭＣの層でシールし、Ｅｕｄｒａｇｉｔ（登録商標）Ｌ３０Ｄ、タルクおよびクエン酸トリエチルを含む水溶性分散剤で腸溶性コーティングし、そしてＨＰＭＣでもう一度シールした。
【００５２】
（実施例２）
（錠剤製造中の、ｒｈＩＬ−１１カプセルの完全性）
錠剤製造プロセスの間に以下のストレスに直面した、ｒｈＩＬ−１１の完全性を調査した。異なる圧縮力を、ｒｈＩＬ−１１の完全性に対する錠剤製造ストレスの影響を評価するために使用した。これらの錠剤（１５０ｍｇ）は、２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１（凍結乾燥粉末）、ＥＸＰＬＯＴＡＢ（登録商標）、微結晶性セルロース、ＮＵ−ＴＡＢ（登録商標）、サイロイド（ｓｙｌｏｉｄ）およびステアリン酸マグネシウムを含んだ。錠剤を、２．４ＫＰ、４．０ＫＰ、７．５ＫＰ、および１２．５ＫＰの硬度で直接圧縮した。タンパクの完全性を、Ｔ−１０バイオアッセイによって、ｒｈＩＬ−１１の％回復、％マルチマー、％Ｍｅｔ５８酸化種、％関連および比活性を決定することにより、測定した。表４の結果は、硬度を変動させて圧縮したｒｈＩＬ−１１錠剤が、回復、％マルチマー、％Ｍｅｔ５８酸化種および％関連が変化しなかったことを示す。同様に、様々な処方混合物および錠剤の比活性は、特異性の範囲内であった（表５）。このことは、圧縮力が、処方物研究においてｒｈＩＬ−１１の化学的または物理的不安定性の原因とならないことを示す。
【００５３】
（実施例３）
（腸溶性コーティングしたｒｈＩＬ−１１錠剤の安定性）
流動層顆粒によって調製した、腸溶性コーティングした錠剤の安定性を、ＨＤＰＥボトルにおいて４０℃／７５％ＲＨおよび室温で試験した。安定性試験により、％回復、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連種を測定した。結果を表６に示す。腸溶性コーティングした錠剤の、ｒｈＩＬ−１１強度、％Ｍｅｔ５８酸化種および％関連種は、室温、および４０℃／７５％ＲＨで保存した場合、様々な時点で変化しなかった。
【００５４】
溶解試験を、微溶解装置（ｍｉｃｒｏ−ｄｉｓｓｏｌｕｔｉｏｎ ａｐｐａｒａｔｕｓ）において５０ｍｌのグリシン／リン酸溶解媒質（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｄｉｓｓｏｌｕｔｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ）を使用して、５０ｒｐｍまたは１００ｒｐｍのパドル速度で実施した。コーティングした錠剤を、０．１Ｎ ＨＣｌにおいて２時間、続いてグリシン／リン酸溶解媒質において次の６０分間、ｒｈＩＬ−１１放出について試験した。溶解の結果、０．１Ｎ ＨＣｌ中において２時間で、１％未満のｒｈＩＬ−１１が放出されたことが明らかであった。このことは、５％腸溶性コーティングが、胃の消化に対する保護を十分に提供することを示唆する。溶解試験を、ｐＨ７のグリシン／リン酸緩衝化崩壊媒質中で実行した場合、腸溶性コーティングは溶解し、そしてｒｈＩＬ−１１を放出した。既に理解されるように、コーティングしていない錠剤については、５０ｒｐｍでの薬物の放出は不完全であった。
【００５５】
（実施例４）
（直接圧縮処方物）
本発明は、ＩＬ−１１を約５時間にわたり放出する、持続放出錠剤処方物を開発することに着目した。直接圧縮処方物を、以下のように調製した。凍結乾燥したｒｈＩＬ−１１を回収し、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そしてステアリン酸マグネシウムを除く他の全ての賦形剤を含む適切な大きさのバイアルに移した。このバイアルを２〜３分間回転させることにより材料を混和した。ステアリン酸マグネシウムをこの時点で加え、そしてさらに０．５〜１分間混和しつづけた。２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１に等価な、最終のブレンドの量を秤量し、そしてＫｉｋｕｓｏｗｉ錠剤プレス（ｔａｂｌｅｔｉｎｇ ｐｒｅｓｓ）を使用して圧縮した。硬度は７〜１０ｋｐの間に調整した。
【００５６】
溶解を、ＵＳＰパドル法を使用して、５０ＲＰＭで、メチオニン、グリシン、およびポリソルベート８０を含む１５０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）において３７℃で行った。１ｍｌのサンプルを、あらかじめ定められた時間間隔で回収し、そして新しい媒質と交換した。分析を、Ｖｙｄａｃ Ｃ４カラム（狭い口径、２．１×１５０ｍｍ）を使用して、環境温度で行った。流動速度は０．５ｍｌ／分であった。検出を、２１４ｎｍで実行した。勾配システムを、０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ａとして、そして８０％アセトニトリル中の０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ｂとして使用した。
【００５７】
表７に、直接圧縮によって調製した錠剤の処方物を示す。これら処方物の溶解の視覚的な評価を実施し、溶解媒質中における処方物の物理的挙動を特徴づけた。処方物１の錠剤は、処方物２の錠剤および処方物３の錠剤より早い浸食を示した。処方物２の錠剤は、最も遅い浸食を示した。全ての処方物は、有意な膨張を示した。処方物１の錠剤は、溶解の５〜６時間後、ほぼ完全な浸食を示した。処方物２の錠剤の約３分の２、および処方物３の錠剤の約３分の１が、同期間に浸食した。
【００５８】
これらの結果についての１つの説明は、錠剤のＨＰＭＣ含有量に基づく。ＨＰＭＣが水和するとき、ＨＰＭＣはゲルを形成し、このゲルはマトリックスの溶解および浸食を制御する障壁として作用する。ＨＰＭＣ含有量が増加するにつれて、ゲルの構造はより強く、そして堅くなる。このことが、錠剤の表面におけるゲル層の粘性および厚みを増す。その結果として、マトリックス錠剤の溶解は減速する。これらの結果は、処方物１および２からの薬物放出が、最適であることを示す。
【００５９】
（実施例５）
（湿性顆粒化処方物）
湿性顆粒化処方物を、高い剪断または流動相法を使用して調製した。ｒｈＩＬ−１１溶液を、持続放出重合体およびステアリン酸マグネシウムを除く賦形剤に添加した。顆粒を乾燥させ、＃３０メッシュスクリーンを通してふるいにかけ、そして重合体およびステアリン酸マグネシウムと混和した。２．５ｍｇのｒｈＩＬ−１１に等価な、最終のブレンドの量を秤量し、そしてＫｉｋｕｓｏｗｉ錠剤プレスを使用して圧縮した。硬度は７〜１０ｋｐの間に調整した。
【００６０】
溶解を、ＵＳＰパドル法を使用して、５０ＲＰＭで、メチオニン、グリシン、およびポリソルベート８０を含む１５０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）において３７℃で行った。１ｍｌのサンプルを、あらかじめ定められた時間間隔で回収し、そして新しい媒質と交換した。分析を、Ｖｙｄａｃ Ｃ４カラム（狭い口径、２．１×１５０ｍｍ）を使用して、環境温度で行った。流動速度は０．５ｍｌ／分であった。検出を、２１４ｎｍで実行した。勾配システムを、０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ａとして、そして８０％アセトニトリル中の０．１％ｖ／ｖＴＦＡを移動相Ｂとして使用した。
【００６１】
持続放出処方物を、高い剪断技術によって得られた顆粒を使用して調製した（表８を参照のこと）。薬物溶液の一部分を、重合体およびステアリン酸マグネシウムを除く全ての賦形剤のブレンドに添加した。湿性の塊を、次に乾燥させた。このサイクルを目標とされる薬物充填が得られるまで、３度繰返した。次いで重合体をブレンドに添加し、引き続きステアリン酸マグネシをブレンドに添加した。これらの処方物から調製した錠剤の、溶解媒質中における物理的挙動は、同レベルのＨＰＭＣを含有する直接圧縮処方物によって示された物理的挙動と類似であることが見出された。高い剪断顆粒から調製した即時放出錠剤の研究は、ｒｈＩＬ−１１の完全な放出を得ることが困難であることを示した。流動層顆粒から調製した錠剤の研究は、ｒｈＩＬ−１１の製造および放出に関して調査された技術の中で、この方法がｒｈＩＬ−１１顆粒化に最適であることを示す。
【００６２】
表９は、流動層顆粒によって調製した３つの持続放出錠剤の組成を示す。流動層顆粒はｒｈＩＬ−１１混合物、Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０２、一塩基性リン酸ナトリウム、二塩基性リン酸ナトリウム、メチオニンおよびポリソルベート８０を含む。これらの研究により、スクロースが保存中の即時放出錠剤の変色の原因であることが判明したので、直接圧縮および高い剪断顆粒処方物で使用するスクロースをマンニトールに置きかえた。
【００６３】
（実施例６）
（ｒｈＩＬ−１１の溶解に対する緩衝液強度の影響）
ｒｈＩＬ−１１の溶解に対する緩衝液強度５０ｍＭおよび１００ｍＭの影響を研究した。溶解媒質において、グリシン、メチオニンおよびポリソルベート８０の濃度を一定に保った。処方物６〜８の錠剤（表９）の溶解を、両方の媒質において実施した。溶解は、１００ｍＭ媒質において有意により早く、そしてほぼ完全であった。一方、わずか１５％のｒｈＩＬ−１１が、５０ｍＭ媒質において５時間後に錠剤から放出された。
【００６４】
これらの結果を理解するために、錠剤を溶解する間に生じる変化を、両方の媒質において追跡した。錠剤は１００ｍＭ媒質において、有意な膨張および早い浸食を示した。それらは溶解の約５時間後に消失した。一方、錠剤は５０ｍＭ媒質において膨張したが、溶解の５時間後に最小限の浸食しか示さなかった。これはＨＰＭＣゲル構造の強度が、イオン強度に対して感受性が高いという事実に起因し得る。溶解媒質におけるリン酸緩衝液濃度の上昇は、そのイオン強度を高め、そしてＨＰＭＣゲル構造の強度と堅固性を減少させる。
【００６５】
（実施例７）
（重合体およびその粘性度の影響）
処方物６は、１００ｍＭリン酸媒質において速い初期分離速度を示した。処方物６は、Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ４Ｍ ＰＲＥＭを持続放出重合体として含む。溶解の初期速度を低下させるために、より高い粘性度のＨＰＭＣ（Ｍｅｔｈｏｃｅｌ Ｋ１５Ｍ ＰＲＥＭ）を、処方物中に組み込んだ。処方物７および８の錠剤は、改良された溶解挙動を示した。処方物７の溶解速度と比べて、処方物８によって示された溶解のより速い速度は、処方物７の錠剤には存在しない顆粒外（ｅｘｔｒａｇｒａｎｕｌａｒ）微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０２）の錠剤分解性質に起因し得る。
【００６６】
マトリックス錠剤処方物を、ＰＥＯ単独またはＨＰＭＣとの組み合わせ使用により調製した。これらの処方物のいくつかの、浸食および溶解の可視的な評価は有望であった。これら処方物の溶解サンプルのＨＰＬＣ分析は、ＰＥＯの分子量が非常に大きいため困難であった。
【００６７】
５０ｍＭリン酸媒質において、ｒｈＩＬ−１１について最適な放出プロフィールを示す、プロトタイプ処方物を調製して、そして試験した。様々な処方物を調製して、試験した。これら処方物の浸食および溶解のモニタリングは、２０〜３０％のメトセル（ｍｅｔｈｏｃｅｌ）Ｋ１００ＬＶ、ＬＨ、ＣＲ Ｐｒｅｍｉｕｍを、持続放出重合体として使用することが、受容可能な溶解挙動を示す処方物を得ることにつながり得ることを示した。表１０は、これら処方物の組成を示す。
【００６８】
処方物９および１０からのｒｈＩＬ−１１の溶解を、試験した。ｒｈＩＬ−１１の溶解は、２時間後に有意に減少した。時には、溶解の２時間後に薬物濃度において低下が認められた。不完全な放出は、ｒｈＩＬ−１１の、処方物の賦形剤へのいくぶんかの吸着に起因し得た。この現象はまた、即時放出の錠剤および即時放出のビーズについても観察された。
【００６９】
ｒｈＩＬ−１１の放出を改良するために、処方物中の緩衝種ならびに溶解媒質を、リン酸ナトリウムからリン酸アンモニウムに変えた。処方物１１を、リン酸アンモニウムを使用して調製し、一方処方物１２から外顆粒リン酸ナトリウムを除去した。処方物１１および１２の溶解を、アンモニウムリン酸種を使用して調製した媒質において行った。溶解の結果は、溶解の５時間後に薬物放出量が増し、一方受容可能な溶解プロフィールを維持することを示した。
【００７０】
（実施例８）
（ｒｈＩＬ−１１遅延放出多粒子ペレットを製造するプロセス）
ｒｈＩＬ−１１の腸溶性コーティングしたペレットを、以下の工程を含むプロセスを用いて製造する：ｒｈＩＬ−１１薬物物質を解凍し、希釈する工程；ペレットをｒｈＩＬ−１１層状化する工程；シールコーティングする工程；腸溶性コーティングする工程；最後のシールコーティング；およびタルクを塗布する工程。多粒子ペレットの成分を、表１１に列挙する。
【００７１】
ｒｈＩＬ−１１を、希釈緩衝液（４ｍＭ 一塩基性リン酸ナトリウム、６ｍＭ 二塩基性リン酸ナトリウム、０．３Ｍグリシン、ｐＨ７．０）と共に、１０ｍｇ／ｍｌの最終濃度となるまで室温で混合する。希釈したｒｈＩＬ−１１を、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（１０％溶液）、メチオニン、ポリソルベート８０および精製水と調合し、薬物層溶液を生成する。
【００７２】
この薬物層溶液（約４０，６００ｇ）を、４７℃〜５３℃の入り口温度範囲、３０〜４５℃の排気温度、３５０〜５５０ＣＦＭの供給空気容積、３５〜８５ｇ／分の噴霧速度、および３０〜４０ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーター内で、約２０，０００ｇの糖スフィアに塗布する。
【００７３】
シールコーティング溶液（約２９００ｇ）を薬物層状化ペレットに塗布する。シールコート溶液は、精製水中、ヒドロキシプロピルメチルセルロースの７．５％（ｗ／ｗ）溶液から構成される。薬物コーティング層と同様に、４７℃〜５３℃の入り口温度範囲、３０〜５５℃の排気温度、４００〜５００ＣＦＭの供給空気容積、２５〜４５ｇ／分の噴霧速度、および３０〜４０ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。シールコーティングの機能は、ｒｈＩＬ−１１タンパク質コアと酸性腸溶性コーティング環境との間に不活性な障壁を提供することである。
【００７４】
次いで、腸溶性コーティング溶液（約３０，９００ｇ）を、シールされた薬物コーティングペレットに塗布する。３２℃〜３８℃の入り口温度範囲、２５〜４０℃の排気温度、５５０〜７００ＣＦＭの供給空気容積、４５〜８５ｇ／分の噴霧速度、および２５〜３５ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。腸溶性コーティング層の機能は、胃の酸性ｐＨに対する障壁を提供することである。
【００７５】
第二のシールコート（約３８８０ｇ）を腸溶性コーティングされたペレットに塗布する。シールコート溶液は、精製水中、ヒドロキシプロピルメチルセルロースの７．５％（ｗ／ｗ）溶液から構成される。上の記載と同様に、３２℃〜３８℃の入り口温度範囲、２５〜４０℃の排気温度、５５０〜７００ＣＦＭの供給空気容積、２５〜４５ｇ／分の噴霧速度、および２５〜３５ＰＳＩでの霧状空気を利用して、流動層コーターを使用する。最後のシールコート層の機能は、腸溶性コート層の潜在的なペレット間の固着を排除することである。シールコート層は、酸に可溶性であり、そして溶解試験の最初の工程により取り除かれる。プロセス過程の強度試験を、最後のシールコート層の塗布後に実施し、標的がカプセルの重量を満たすかどうかを決定する。
【００７６】
最後のシールコート工程完了時に、タルクを流動層コーターに添加する。シールしたｒｈＩＬ−１１腸溶性コーティングペレットを、タルクと共に３０〜６０秒間混合し、静電気を除く。次いで、タルク処理されたペレットを、流動層コーターから放出し、２つの乾燥袋（１つをポリエチレン袋の間に、そして１つを袋の外側に）を備える、２重のポリエチレンで裏打ちされた容器に置く。次いでペレットを、カプセルに充填する。
【００７７】
（実施例９）
（ｒｈＩＬ−１１の腸溶性コーティングした多粒子ペレットの安定性）
腸溶性コーティングした多粒子ペレット（流動層顆粒化により調製）の安定性を、２〜８℃で０〜６ヶ月間の長期保存条件下で試験した。安定性試験は、強度、％回復、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連種からなった。表Ｘは、腸溶性コーティングした錠剤のｒｈＩＬ−１１の強度、％Ｍｅｔ５８酸化種、および％関連が、２〜８℃で０〜６ヶ月間保存された場合、様々な時点において変化しなかったことを示す。
【００７８】
腸溶性コーティングした多粒子ペレット（流動層コーティングにより調製）の安定性を、２５℃／６０％ＲＨで０〜６ヶ月間の加速保存条件下で試験した。これらのデータを表１３に表す。
【００７９】
（実施例１０）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおける、慢性的下痢に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
雄性トランスジェニックＨＬＡ−Ｂ２７ラットを、Ｔａｃｏｎｉｃ Ｆａｒｍｓ（Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＮＹ）から購入し、そして管理した条件（２１℃；５０±１０％湿度；１２時間の明／暗サイクル）下で個別に飼育した。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットを、１０週齢で入手し、そして４０週齢（３５０±４０ｇ、ｎ＝１２）まで動物施設で飼育した。４０週齢で、トランスジェニックラットは慢性的下痢によって発現する腸の炎症を有した。週齢の一致する非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットを、Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入し、ヒト主要組織適合性種群クラス１対立遺伝子Ｂ２７およびβ２マイクログロブリン遺伝子の高いコピー数を有するよう遺伝的操作し、コントロールとして使用した（３７０±２０ｇ、ｎ＝６）。このＦｉｓｈｅｒ３４４ラットは見たところ健康で、そして便の軟度も正常であった。ｒｈＩＬ−１１投与前に、全てのＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいてペレット形態でない下痢気味の便および下痢を観察した。
【００８０】
ｒｈＩＬ−１１多粒子が多粒子１００ｍｇあたり約１ｍｇのｒｈＩＬ−１１を含むのに対し、スクロース多粒子をプラセボコントロールとして供給する。腸溶性コーティングしたｒｈＩＬ−１１多粒子の１回の経口投与の累積効果は、２週間の処置隔日に与えた５００μｇ／ｋｇ ｒｈＩＬ−１１に等価であり、下痢症状の観察によって追跡された。３群の動物を含めて研究した：ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットを含む試験群（ｎ＝６）；プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットを含む賦形剤コントロール群（ｎ＝６）；およびプラセボで処置した、週齢が一致するＦ３４４ラットからなる健康なコントロール群（ｎ＝６）。動物を、ｒｈＩＬ−１１経口投与する２週間毎日計量し、そしてｒｈＩＬ−１１またはプラセボのいずれによっても体重において有意な変化は無かった。
【００８１】
全てのＨＬＡ−Ｂ２７ラットは臨床的な大腸炎の症状を示した。便の特性を、毎日観察し、そして通常、ソフトまたは下痢として特徴づけた。通常に対して０、ソフトでペレット形態であるものに対して１、ソフトでペレット形態でないものに対して２、および下痢に対して３と、毎日ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの処置前および処置中にスコアづけした。
【００８２】
ｒｈＩＬ−１１の経口投与は下痢症状の有意な抑制を生じた、すなわち処置の最初の９日間で、便の特性が軟らかいがペレット形成するように変化した。プラセボ受容ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおける便特性の変化を観察しなかった。同様に、プラセボ処置は、健康なＦ３４４ラットにおける通常便の特性に対する影響を示さなかった。
【００８３】
（実施例１１）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの腸の炎症に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
上の実施例１０において記載されているように、ｒｈＩＬ−１１を試験動物に経口で投与した。動物を、腸の炎症について評価した。すべての動物を、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの最後の投与から４時間後に安楽死させ、そして空腸および結腸を即時に分離した。
【００８４】
ミエロペルオキシダーゼ（ＭＰＯ、好中球によって特異的に発現される）を、炎症性の細胞侵入のマーカーとみなす。腸の組織抽出物中のＭＰＯ活性を、炎症の指数として使用した。全厚の空腸および結腸の試料（１００〜１５０ｍｇ）を、収縮実験のために分離した組織から取り出し、そして即時に液体窒素中で凍らせた。サンプルを−８０℃で保存し、そしてＭＰＯ活性を実験全体のセットについて同時に分析した。ホモジェネートからのＭＰＯの均質化および抽出を、ヘキサドデシル−トリメチルアンモ二ウムブロミドリン酸緩衝液（ｐＨ６）において実行した。ＭＰＯ活性を、１０μｌのサンプル中で３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンＭｉｃｒｏｗｅｌｌペルオキシダーゼ基質システム（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を使用し、そしてセイヨウワサビペルオキシダーゼを相対的な標準として試験した。ＭＰＯ活性を、室温で１０分間に同量の３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン基質を転換する相対的な標準の活性（セイヨウワサビペルオキシダーゼのナノグラム）に等価であるとして表現した。データを、ナノグラムで表現し、そして組織の湿重量グラムあたりに正規化した。
【００８５】
プラセボで処置した非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットと比較すると、プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットのＭＰＯ活性は、小腸において２．３倍、および大腸において３．８倍向上した。ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットは、ＭＰＯ活性が空腸および結腸の両方において低下した。ｒｈＩＬ−１１の２週間の処置後に、ＭＰＯ活性は非トランスジェニックＦｉｓｈｅｒ３４４ラットに似たレベルまで低下した。コンテストにおいて、同様のプラセボ処置の過程は、ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸および結腸においてＭＰＯ活性の有意な低下を示さなかった。
【００８６】
（実施例１２）
（ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの腸の炎症の組織学的な評価に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
空腸および結腸組織試料を、ｒｈＩＬ−１１またはプラセボの経口投与後にＨＬＡ−Ｂ２７ラットから採取した。試験片を１０％の中性緩衝ホルマリン中に浸し、加工処理し、パラフィンに包埋し、そして５μｍの厚さに切断した。スライドにマウントした切断面を、ヘマトキシおよびエオジンで染色し、そして光学顕微鏡で潰瘍化、炎症性の浸潤、経壁損傷、および線維症の発現について調査した。スライドを盲検法において検査し、そしてそれぞれのパラメータを以下のようにスコアづけた：潰瘍化および線維症について０〜２；炎症および損傷の深さについて０〜３。病理の欠如は０としてスコアづけた。合計スコアを、Ｂｏｕｇｈｔｏｎ−Ｓｍｉｔｈら（１９９８）に記載される方法により、個体パラメータのスコアの合計として計算した（最大値は１０であった）。
【００８７】
便特性の改善（上の実施例１０を参照のこと）は、結腸粘膜の治癒と関連していた。腸溶性コートしたｒｈＩＬ−１１の隔日治療は、ＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて組織学的損傷の縮小を生じた。組織学的損傷スコアの十分に安定した減少が、ｒｈＩＬ−１１受容動物の結腸から分離された断面においてみられた。
【００８８】
（実施例１３）
（ｒｈＩＬ−１１の、基礎的な収縮活性に対する急性効果）
空腸の切片（トライツ靭帯からおよそ５ｃｍ末端）および結腸（回盲接合部からおよそ４ｃｍ、末端）を採取し、氷温の酸化したクレブス重炭酸溶液中に置いた。縦の筋片を、筋を縦方向に徐々に剥ぐことによって、腸の断片から切り裂いた。筋片（長さ１０〜１２ｍｍ）を、解剖顕微鏡を使いながら、筋の方向に沿って削り取り、そして両端を絹の外科用縫糸で固定した（サイズ３〜０）。この筋片を、１０ｍｌの器官溶液において垂直方向にマウントし、一端は固定し、そしてもう一端を等尺性力変換器（Ｒａｄｎｏｔｉ Ｇｌａｓｓ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｃ．、Ｍｏｎｒｏｖｉａ、ＣＡ）に接着した。器官溶液を、クレブス重炭酸溶液で満たし、３７℃に保ち、そして９５％のＯ２および５％のＣＯ２で曝気した。この器官溶液を、３０分間隔で灌流によって入れ替えた。それぞれの平滑筋片は、張力０で２０分間、続いて最適な静止張力レベルに達するまでの、０．２０ｇの連続的な負荷力の増進によって、平衡に達することが可能であった。静止張力は、負荷によって増大すると考えられた。筋片はさらなる２０分の平衡が可能であった。全ての実験を、最適な張力およびＭａｃＬａｂデータ取得システム（ＡＤ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ Ｌｔｄ．、Ｃａｓｔｌｅ Ｈｉｌｌ、 Ａｕｓｔｒａｌｉａ）を使用して記録された等尺性収縮で実施した。
【００８９】
Ｆ３４４コントロールラットの空腸の縦筋において、最適な張力で記録した基礎的な活性は、低い静止張力（３．１±０．８ｎＭ／ｍｍ２）および１８±５サイクル／分の頻度で出現した、自発性の低振幅の収縮によって特徴づけられた。プラセボ処置をしたＦ３４４、プラセボ処置をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットまたはｒｈＩＬ−１１で処理をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉において記録された基礎活性間に、有意な差は無かった。ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）を器官溶液に添加した場合は、基礎的な活性において有意な変化は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した空腸の筋肉において無かった。結果的に、カルバコール（０．１μＭ）によって誘導される収縮は、ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）が器官溶液中に存在した場合に変化しなかった。
【００９０】
プラセボ処置をしたコントロールＦ３４４ラットから分離した腸の縦筋は、自発的な収縮の発生の有無に関わらず、低い静止張力（２．４±０．３ｍＮ／ｍｍ２）を示した。静止張力および自発的な収縮は、プラセボまたはｒｈＩＬ−１１を受容したＦ３４４ラットおよびＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて類似していた。ｒｈＩＬ−１１（１〜１０，０００ｎｇ／ｍｌ）の器官溶液への添加は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットにおいて、自発的な収縮またはカルバコール（１μＭ）に対する収縮応答に急性の効果を示さなかった。
【００９１】
（実施例１４）
（レセプター非依存性の腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
レセプター非依存性の腸の筋収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１処置の影響を試験した。器官溶液におけるＫＣｌの濃度の向上は、レセプター非依存性の膜復極および筋収縮を誘導した。６０〜８０ｍＭのＫＣｌ濃度は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４およびまたはＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した、空腸または結腸の筋片において最大の収縮を誘発するのに必要であった。しかしながら、プラセボ処置をしたＨＬＡ−Ｂ２７ラットの筋肉によって産生した能動的張力は、プラセボ処置をしたＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの筋肉によって産生した能動的張力に比べると低かった。ｒｈＩＬ−１１でのＨＬＡ−Ｂ２７ラットの処置は、空腸および結腸の両方において、高ＫＣｌによる最大収縮を増加した。さらに、ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉と、プラセボ処置をしたＦｉｓｈｅｒ３４４ラットから分離した筋肉においての比較では、高ＫＣｌに対する応答間に有意な差は無かった。
【００９２】
（実施例１５）
（コリン作用性の腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１処置の効果）
コリン作用性の腸の筋収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１処置の影響を試験した。カルバコールに対する、完全な投薬−応答曲線を、空腸および結腸の縦筋において得た。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸から分離した縦筋は、異常な収縮応答を示した。カルバコール濃度の高上（１ｎＭ〜１０μＭ）に対する応答において、最大能動的張力は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットから分離した筋肉において、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットから分離した筋肉と比べると、有意に低かった。収縮応答の減少には、より低いカルバコール濃度に対する、投薬−応答曲線のシフトが伴った。結果として、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸においてカルバコールに対するＥＣ５０は、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットの空腸から得られたＥＣ５０値と比較すると有意に低かった。ｒｈＩＬ−１１のＨＬＡ−Ｂ２７トランスジェニックラットの処置は、空腸の筋肉によって産生するカルバコール誘導最大張力を有意に増大した。この有意な増大に加えて、最大応答振幅は、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットからの筋における最大収縮より低いままであった。ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸においてカルバコールに対するＥＣ５０は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットと比較すると有意に減少し、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットの空腸においてと比較すると類似していた。
【００９３】
プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸筋によって、カルバコールに対する応答で産生した最大能動的張力は、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの筋によって産生される最大能動的張力より低かった。ｒｈＩＬ−１１治療の後、ｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸の筋においてカルバコールによって誘導される最大張力は、プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットと比較すると有意に増大し、プラセボ処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットの結腸においての最大張力と比較すると類似していた。空腸とは対照的に、プラセボで処置したＦ３４４およびＨＬＡ−Ｂ２７ラットならびにｒｈＩＬ−１１で処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの結腸の筋で得られたカルバコールに対する濃度−効果曲線は、類似した位置を有し、そしてＥＣ５０値間に有意な差を示さなかった。
【００９４】
（実施例１６）
（神経が介在する腸の筋収縮に対するｒｈＩＬ−１１の効果）
空腸の縦筋において、ＥＦＳ（０．５ｍｓパルス持続時間、５Ｈｚ、５ｓ列の持続時間）が収縮反応を誘導した。張力の増大は、刺激中に最大に達し、そして一連の刺激の終了後静止レベルまで減少した。ＥＦＳに対する反応は、実験を通じて再現可能であった。アトロピン（１μＭ）およびグアネチジン（１０μＭ）の存在において、ＥＦＳは非アドレナリン作用、非コリン作用（ＮＡＮＣ）および低い振幅の反応を誘導する。弛緩は観察されなかった。グアネチジンのみではＥＦＳ誘導収縮に影響を及ぼさなかった；例えば、コントロール反応およびＮＡＮＣ成分間の違いは、ＥＦＳ誘導収縮のコリン作用（アトロピン感受性）成分を意味した。コントロールおよびＮＡＮＣの神経介在収縮に対する、ｒｈＩＬ−１１治療の影響を試験した。プラセボで処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの空腸筋において得られた、ＥＦＳに対するコントロール反応は、プラセボで処置したＦｉｓｈｅｒ３４４ラットと比較して低い振幅であったが、しかしＮＡＮＣ収縮間に有意な差は無かった。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットのｒｈＩＬ−１１経口処置は、コントロールＥＦＳ誘導収縮の振幅を正規化し、そしてＮＡＮＣ反応に有意な影響を及ぼさなかった。テトロドトキシン（１μＭ）により、コントロールおよびＮＡＮＣのＥＦＳに対する反応が完全に無くなった。このことは、これらの反応が腸の神経の活性化に由来することを示した。
【００９５】
腸筋において、ＥＦＳは収縮反応を誘導し、収縮反応はアトロピンおよびグアネチジンによって部分的に阻害され、ＮＡＮＣ収縮を表した。空腸同様、結腸筋は比較的低いレベルの静止張力を維持し、そして弛緩反応は観察しなかった。プラセボ処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットの筋において、ＥＦＳに対するコントロール反応は、プラセボ処置したＦ３４４ラットと比較すると減少した。空腸とは対照的に、ＮＡＮＣの振幅においてもまた有意な縮小であった。ＨＬＡ−Ｂ２７ラットのｒｈＩＬ−１１処置は、コントロールＥＦＳ誘導収縮の振幅を有意に増大し、そしてＮＡＮＣ反応を有意に正規化した。回復にもかかわらず、処置したＨＬＡ−Ｂ２７ラットはプラセボ処置したＦ３４４ラットと比較すると低値であった。ＥＦＳによって誘導されるコントロールおよびＮＡＮＣ収縮の両方が、テトロドトキシン（１μＭ）によって無くなった。
（他の実施形態）
他の実施形態は特許請求の範囲内にある。
【００９６】
【表１】
【００９７】
【表２】
【００９８】
【表３】
【００９９】
【表４】
【０１００】
【表５】
【０１０１】
【表６】
【０１０２】
【表７】
【０１０３】
【表８】
【０１０４】
【表９】
【０１０５】
【表１０】
【０１０６】
【表１１】
【０１０７】
【表１２】
【０１０８】
【表１３】
【図面の簡単な説明】
【０１０９】
【図１】図１は、経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１処方物の、概要図である。
【図２】図２は、経口送達に適する多粒子ＩＬ−１１処方物の、生成過程の概要イラストである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態の生体活性ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該組成物は、以下：
生体活性ポリペプチドであって、ここで、該ポリペプチドは、以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および
塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される１つ以上の特性を含む、ポリペプチド；
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合体
を含む、薬学的組成物。
【請求項２】
請求項１に記載の組成物であって、ここで、前記ポリペプチドは以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、
および塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される２つ以上の特性を含む、組成物。
【請求項３】
前記ポリペプチドがＮ連結グリコシル化部位を欠き、わずか１つのシステインアミノ酸を含み、かつ塩基性ｐＩを有する、請求項１に記載の組成物。
【請求項４】
前記ポリペプチドがシステインアミノ酸を有さない、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態のインターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該組成物は、以下：
ＩＬ−１１ポリペプチド；
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合体
を含む、薬学的組成物。
【請求項６】
さらに炭水化物を含む、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項７】
前記炭水化物がスクロースを含む、請求項６に記載の薬学的組成物。
【請求項８】
前記炭水化物が前記薬学的組成物中に６０％〜７５％ｗｔ／ｗｔで存在する、請求項６に記載の薬学的組成物。
【請求項９】
さらにグリシンを含む、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１０】
前記グリシンが前記薬学的組成物中に１％〜４％ｗｔ／ｗｔで存在する、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１１】
さらにメチオニンを含む、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１２】
メチオニンが前記組成物中に０．１％〜０．５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項１１に記載の薬学的組成物。
【請求項１３】
前記メタクリル酸共重合体が、ｐＨ５．５より上で可溶性となるｐＨ依存性のアニオン重合体である、請求項１に記載の薬学的組成物。
【請求項１４】
前記メタクリル酸共重合体が分散して提供されている、請求項１３に記載の薬学的組成物。
【請求項１５】
前記メタクリル酸共重合体が、前記薬学的組成物中に１０％〜２０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項１３に記載の薬学的組成物。
【請求項１６】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、ヒトＩＬ−１１ポリペプチドのアミノ酸配列を有する、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１７】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、組換え的に生成されたＩＬ−１１ポリペプチドである、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１８】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、組換え的に生成されたＩＬ−１１ポリペプチドである、請求項１６に記載の薬学的組成物。
【請求項１９】
前記少なくとも１つの結合剤が、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）である、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２０】
ＨＰＭＣが前記組成物中に３％〜７％の濃度で存在する、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２１】
前記少なくとも１つの滑剤がタルクである、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２２】
タルクが、前記組成物中に５％〜１０％の濃度で存在する、請求項２１に記載の薬学的組成物。
【請求項２３】
前記少なくとも１つの可塑剤が、クエン酸トリエチルまたはポリソルベート−８０である、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２４】
前記クエン酸トリエチルが、前記組成物中に１％〜２％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項２３に記載の薬学的組成物。
【請求項２５】
前記ポリソルベート−８０が、前記組成物中に０．０１５％〜０．０４５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項２３に記載の薬学的組成物。
【請求項２６】
前記少なくとも１つの可塑剤が、クエン酸トリエチルである、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２７】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態の生体活性ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、
ここで、該生体活性ポリペプチドは、以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および
塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される１つ以上の特性を含み、かつ、
該生体活性ポリペプチドは、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートにより実質的に包まれており、ここで、該腸溶性コーティング層は、該第１のシーリングコートと該第２のシーリングコートとの間に実質的に配置される、薬学的組成物。
【請求項２８】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態のインターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該ＩＬ−１１ポリペプチドは、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートにより実質的に包まれており、ここで、該腸溶性コーティング層は、該第１のシーリングコートと該第２のシーリングコートとの間に実質的に配置される、薬学的組成物。
【請求項２９】
前記第１のシーリングコートおよび第２のシーリングコートの少なくとも１つが、ＨＰＭＣである、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３０】
前記第１のシーリングコートおよび第２のシーリングコートとも、ＨＰＭＣを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３１】
前記腸溶性コーティング層が、メタクリル酸共重合体を含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３２】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、炭水化物上に配置されている、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３３】
前記炭水化物がスクロースである、請求項３２に記載の薬学的組成物。
【請求項３４】
さらにメチオニンを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３５】
さらにグリシンを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３６】
さらに滑剤を含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３７】
前記滑剤がタルクである、請求項３６に記載の薬学的組成物。
【請求項３８】
前記組成物が、カプセル、または錠剤として提供される、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３９】
前記組成物が錠剤として提供される、請求項３８に記載の薬学的組成物。
【請求項４０】
前記組成物がカプセルとして提供される、請求項３８に記載の薬学的組成物。
【請求項４１】
前記カプセルがゼラチンカプセルである、請求項４０に記載の薬学的組成物。
【請求項４２】
生体活性ポリペプチドを被験体に送達する方法であって、該方法は、該被験体に、該被験体における生物学的応答を誘発させるのに十分な量の請求項１に記載の薬学的組成物を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４３】
インターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを被験体に送達する方法であって、該方法は、該被験体における生物学的応答を誘発させるのに十分な量の請求項５に記載の薬学的組成物を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４４】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、前記被験体の小腸において生物学的応答を誘発させる、請求項４３に記載の方法。
【請求項４５】
前記被験体がヒトである、請求項４３に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４３に記載の方法であって、ここで、前記ＩＬ−１１ポリペプチドが以下：
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合剤
を含む組成物において投与される、方法。
【請求項４７】
前記インターロイキン−１１（ＩＬ−１１）ポリペプチドが、組換えヒトＩＬ−１１である、請求項４３に記載の方法。
【請求項４８】
被験体における炎症性腸疾患を処置する方法であって、該方法は、炎症性大腸疾患の処置の必要な被験体に治療上有効量のＩＬ−１１を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４９】
前記炎症性疾患が潰瘍性大腸炎である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５０】
前記炎症性疾患がクローン病である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５１】
前記被験体がヒトである、請求項４８に記載の方法。
【請求項５２】
請求項４８に記載の方法であって、ここで、前記ＩＬ−１１ポリペプチドが以下：
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；、
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合剤
を含む組成物において投与される、方法。
【請求項１】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態の生体活性ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該組成物は、以下：
生体活性ポリペプチドであって、ここで、該ポリペプチドは、以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および
塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される１つ以上の特性を含む、ポリペプチド；
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合体
を含む、薬学的組成物。
【請求項２】
請求項１に記載の組成物であって、ここで、前記ポリペプチドは以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、
および塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される２つ以上の特性を含む、組成物。
【請求項３】
前記ポリペプチドがＮ連結グリコシル化部位を欠き、わずか１つのシステインアミノ酸を含み、かつ塩基性ｐＩを有する、請求項１に記載の組成物。
【請求項４】
前記ポリペプチドがシステインアミノ酸を有さない、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態のインターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該組成物は、以下：
ＩＬ−１１ポリペプチド；
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合体
を含む、薬学的組成物。
【請求項６】
さらに炭水化物を含む、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項７】
前記炭水化物がスクロースを含む、請求項６に記載の薬学的組成物。
【請求項８】
前記炭水化物が前記薬学的組成物中に６０％〜７５％ｗｔ／ｗｔで存在する、請求項６に記載の薬学的組成物。
【請求項９】
さらにグリシンを含む、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１０】
前記グリシンが前記薬学的組成物中に１％〜４％ｗｔ／ｗｔで存在する、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１１】
さらにメチオニンを含む、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１２】
メチオニンが前記組成物中に０．１％〜０．５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項１１に記載の薬学的組成物。
【請求項１３】
前記メタクリル酸共重合体が、ｐＨ５．５より上で可溶性となるｐＨ依存性のアニオン重合体である、請求項１に記載の薬学的組成物。
【請求項１４】
前記メタクリル酸共重合体が分散して提供されている、請求項１３に記載の薬学的組成物。
【請求項１５】
前記メタクリル酸共重合体が、前記薬学的組成物中に１０％〜２０％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項１３に記載の薬学的組成物。
【請求項１６】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、ヒトＩＬ−１１ポリペプチドのアミノ酸配列を有する、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１７】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、組換え的に生成されたＩＬ−１１ポリペプチドである、請求項９に記載の薬学的組成物。
【請求項１８】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、組換え的に生成されたＩＬ−１１ポリペプチドである、請求項１６に記載の薬学的組成物。
【請求項１９】
前記少なくとも１つの結合剤が、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）である、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２０】
ＨＰＭＣが前記組成物中に３％〜７％の濃度で存在する、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２１】
前記少なくとも１つの滑剤がタルクである、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２２】
タルクが、前記組成物中に５％〜１０％の濃度で存在する、請求項２１に記載の薬学的組成物。
【請求項２３】
前記少なくとも１つの可塑剤が、クエン酸トリエチルまたはポリソルベート−８０である、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２４】
前記クエン酸トリエチルが、前記組成物中に１％〜２％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項２３に記載の薬学的組成物。
【請求項２５】
前記ポリソルベート−８０が、前記組成物中に０．０１５％〜０．０４５％ｗｔ／ｗｔの濃度で存在する、請求項２３に記載の薬学的組成物。
【請求項２６】
前記少なくとも１つの可塑剤が、クエン酸トリエチルである、請求項５に記載の薬学的組成物。
【請求項２７】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態の生体活性ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、
ここで、該生体活性ポリペプチドは、以下の特性：
Ｎ連結グリコシル化部位を欠くこと、
わずか１つのシステインアミノ酸を有すること、および
塩基性ｐＩを有すること
からなる群より選択される１つ以上の特性を含み、かつ、
該生体活性ポリペプチドは、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートにより実質的に包まれており、ここで、該腸溶性コーティング層は、該第１のシーリングコートと該第２のシーリングコートとの間に実質的に配置される、薬学的組成物。
【請求項２８】
治療上有効な遅延放出経口投薬形態のインターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを含む薬学的組成物であって、ここで、該ＩＬ−１１ポリペプチドは、第１のシーリングコート、腸溶性コーティング層、および第２のシーリングコートにより実質的に包まれており、ここで、該腸溶性コーティング層は、該第１のシーリングコートと該第２のシーリングコートとの間に実質的に配置される、薬学的組成物。
【請求項２９】
前記第１のシーリングコートおよび第２のシーリングコートの少なくとも１つが、ＨＰＭＣである、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３０】
前記第１のシーリングコートおよび第２のシーリングコートとも、ＨＰＭＣを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３１】
前記腸溶性コーティング層が、メタクリル酸共重合体を含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３２】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、炭水化物上に配置されている、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３３】
前記炭水化物がスクロースである、請求項３２に記載の薬学的組成物。
【請求項３４】
さらにメチオニンを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３５】
さらにグリシンを含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３６】
さらに滑剤を含む、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３７】
前記滑剤がタルクである、請求項３６に記載の薬学的組成物。
【請求項３８】
前記組成物が、カプセル、または錠剤として提供される、請求項２８に記載の薬学的組成物。
【請求項３９】
前記組成物が錠剤として提供される、請求項３８に記載の薬学的組成物。
【請求項４０】
前記組成物がカプセルとして提供される、請求項３８に記載の薬学的組成物。
【請求項４１】
前記カプセルがゼラチンカプセルである、請求項４０に記載の薬学的組成物。
【請求項４２】
生体活性ポリペプチドを被験体に送達する方法であって、該方法は、該被験体に、該被験体における生物学的応答を誘発させるのに十分な量の請求項１に記載の薬学的組成物を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４３】
インターロイキン−１１（「ＩＬ−１１」）ポリペプチドを被験体に送達する方法であって、該方法は、該被験体における生物学的応答を誘発させるのに十分な量の請求項５に記載の薬学的組成物を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４４】
前記ＩＬ−１１ポリペプチドが、前記被験体の小腸において生物学的応答を誘発させる、請求項４３に記載の方法。
【請求項４５】
前記被験体がヒトである、請求項４３に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４３に記載の方法であって、ここで、前記ＩＬ−１１ポリペプチドが以下：
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合剤
を含む組成物において投与される、方法。
【請求項４７】
前記インターロイキン−１１（ＩＬ−１１）ポリペプチドが、組換えヒトＩＬ−１１である、請求項４３に記載の方法。
【請求項４８】
被験体における炎症性腸疾患を処置する方法であって、該方法は、炎症性大腸疾患の処置の必要な被験体に治療上有効量のＩＬ−１１を経口投与する工程を包含する、方法。
【請求項４９】
前記炎症性疾患が潰瘍性大腸炎である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５０】
前記炎症性疾患がクローン病である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５１】
前記被験体がヒトである、請求項４８に記載の方法。
【請求項５２】
請求項４８に記載の方法であって、ここで、前記ＩＬ−１１ポリペプチドが以下：
少なくとも１つの結合剤；
少なくとも１つの可塑剤；、
少なくとも１つの滑剤；ならびに
メタクリル酸共重合剤
を含む組成物において投与される、方法。
【図２】
【図１】
【図１】
【公表番号】特表２００６−５０３０４５（Ｐ２００６−５０３０４５Ａ）
【公表日】平成１８年１月２６日（２００６．１．２６）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００４−５３６５９３（Ｐ２００４−５３６５９３）
【出願日】平成１５年９月１６日（２００３．９．１６）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００３／０２９２７２
【国際公開番号】ＷＯ２００４／０２４１２５
【国際公開日】平成１６年３月２５日（２００４．３．２５）
【出願人】（５０４２９９７４８）
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成１８年１月２６日（２００６．１．２６）
【国際特許分類】
【出願日】平成１５年９月１６日（２００３．９．１６）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００３／０２９２７２
【国際公開番号】ＷＯ２００４／０２４１２５
【国際公開日】平成１６年３月２５日（２００４．３．２５）
【出願人】（５０４２９９７４８）
【Ｆターム（参考）】
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