ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤
【課題】本発明はＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞を特異的に増加させるＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を提供することを目的とする。
【解決手段】フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【解決手段】フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
我々の体を貫く一本の「管」である消化管は単に中空の管ではなく、食物の消化、栄養分の吸収、残渣の排出といった本来の生理機能を適切に実施するとともに、体外からの有害化学物質や病原微生物から生体を防御するために、消化管腔内を監視し処理するシステムが存在するとされる。その具体的な分子機構はまだ解明されていないが、管腔内の状態を反映する情報伝達物質と、その情報を受け取る受容体とが存在していると思われる。
【０００３】
Ｇ蛋白質共役型受容体４３（ＧＰＲ４３）は、リガンドが不明なＧ蛋白質共役型受容体の中から、Ｇ蛋白質共役型受容体４１（ＧＰＲ４１）とともに短鎖脂肪酸に応答し、細胞内カルシウム上昇やｃＡＭＰ減少を惹起する受容体として、２００３年に同定されている（非特許文献１〜３）。最近、国際薬理学連合によりＧＰＲ４３は遊離脂肪酸受容体２（ＦＦＡ２）、ＧＰＲ４１はＦＦＡ３と命名された。
【０００４】
ＧＰＲ４３は、単球、好中球といった免疫細胞に発現するとともに、ラット及びヒトの腸管粘膜におけるＬ型腸内分泌細胞にも発現していることが報告されている（非特許文献４及び５）。したがって、ＧＰＲ４３は消化管において何らかの制御機能を果たしていると推測される。また、ごく最近の研究によると、ＧＰＲ４３欠失マウスでは大腸炎や関節炎、喘息などの炎症応答が消失しなかったり、逆に炎症が悪化したりすることが認められるので、ＧＰＲ４３はある種の炎症応答の沈静化に必要であると考えられる（非特許文献６）。
【０００５】
一方、短鎖脂肪酸は、大腸において生理的状態でも高濃度で存在している。食事により摂取された難消化性糖質の大部分は大腸において腸内細菌の発酵を受け、酢酸やプロピオン酸、酪酸といった短鎖脂肪酸に変換される。古くから短鎖脂肪酸は、反芻動物では栄養学的観点からよく研究されているが、１９６０年代になるまでヒトの生理機能に及ぼす短鎖脂肪酸の影響についてはあまり注目されていなかった。最近では栄養分として大腸粘膜から吸収されるのみならず、大腸に対して様々な生理作用を発揮し、さらに脂質代謝、グルコース・インスリン代謝などにも関与している可能性があり注目を集めてきている。しかしながら、その詳細な分子機構は未だ不明なところが多い。
【０００６】
フラクトオリゴ糖（ＦＯＳ）は、腸内細菌の発酵を受け短鎖脂肪酸に変換される難消化性糖質の一つである。フラクトオリゴ糖は、腸内のビフィズス菌増殖促進作用、整腸作用、ミネラル吸収促進作用等の優れた生理機能を有することから、機能性素材として広く使用されている。しかしながら、フラクトオリゴ糖とＧＰＲ４３陽性細胞との関連性についての報告はなかった。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｂｒｏｗｎ ＡＪら，Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７８：１１３１２−１１３１９，２００３．
【非特許文献２】Ｌｅ Ｐｏｕｌ Ｅら，Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７８：２５４８１−２５４８９，２００３．
【非特許文献３】Ｎｉｌｓｓｏｎ ＮＥら，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ ３０３：１０４７−１０５２、２００３．
【非特許文献４】Ｋａｒａｋｉ Ｓら，Ｃｅｌｌ Ｔｉｓｓｕｅ Ｒｅｓ ３２４：３５３−３６０、２００６．
【非特許文献５】Ｋａｒａｋｉ Ｓら，Ｊ Ｍｏｌ Ｈｉｓｔｏｌ ３９：１３５−１４２，２００８．
【非特許文献６】Ｋｅｎｄｌｅ Ｍ． Ｍａｓｌｏｗｓｋｉら，Ｎａｔｕｒｅ ｖｏｌ．４６１，１２８２−１２８６，２００９．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
上述したように、ＧＰＲ４３は正常な腸内環境を保つための消化管腔内の監視・処理システムにおいて、何らかの監視役、すなわちセンサーとして機能していると思われる。したがって、そのセンサーの数が多くなればなるほど、生体にとっては有益な働きはより大きくなることが期待される。しかしながら、ＧＰＲ４３の発現量又はＧＰＲ４３発現細胞（ＧＰＲ４３陽性細胞）を特異的に増加させる手段はこれまでなかった。そこで、本発明はＧＰＲ４３陽性細胞を特異的に増加させる、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは上記課題を解決するため鋭意研究した結果、ラットにフラクトオリゴ糖を投与したところ、顕著なＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進作用が認められ、さらにＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞の増加促進作用もあることを見出し、本発明の完成に至った。
【００１０】
すなわち、本発明は、フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を提供する。また、本発明においてＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞がＬ型腸内分泌細胞であることが好ましい。
【００１１】
本発明は、また、上記ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を含む飲食品を提供する。
【発明の効果】
【００１２】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤によれば、ＧＰＲ４３を発現する腸内分泌細胞の数を増加することができる。これにより、ＧＰＲ４３に伴う有益な働き、例えば、抗アレルギー作用や抗炎症作用などをもたらすことが可能となる。また、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤は、その有効成分であるフラクトオリゴ糖が食品としても利用されるため、安全である。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】図１は特殊混餌粉末飼料の投与期間中におけるラットの体重変化を示す図である。
【図２】図２は対照群と５％ＦＯＳ群とのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞数の差異を示すグラフである。
【図３】図３は対照群と５％ＦＯＳ群とのＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数の差異を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、フラクトオリゴ糖（ＦＯＳ）を有効成分として含有する。本明細書における「ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞」とは、Ｇ蛋白質共役型受容体４３（ＧＰＲ４３）を発現する腸内分泌細胞を指す。ＧＰＲ４３陽性細胞は、例えば免疫組織化学的手法によって検出することができ、抗ＧＰＲ４３抗体に対する免疫活性のある細胞をＧＰＲ４３陽性細胞と判定することができる。また、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法などによってＧＰＲ４３のｍＲＮＡの発現量を測定することによってもＧＰＲ４３陽性細胞であるかどうかを判定することができる。また、本明細書における「ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞」とは、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）を発現する腸内分泌細胞を指す。ＧＬＰ−１陽性細胞の検出も同様に、免疫組織化学的手法やｍＲＮＡの発現量の測定によって行うことができる。なおここで、「細胞増加」とは、ＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現する腸内分泌細胞の増殖による増加と、ＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現しなかった又は発現量が検出限界以下の腸内分泌細胞が検出可能な量のＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現するようになることによる増加との両方を含む。
【００１５】
腸内分泌細胞のうち、特にＬ型腸内分泌細胞はＧＰＲ４３を発現することが知られている。本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって増えた細胞のうち、殆どがＬ型腸内分泌細胞であると推測される。Ｌ型腸内分泌細胞は、ＧＰＲ４３を発現するほか、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）やペプチドＹＹ（ＰＹＹ）などの消化管ホルモンを分泌する細胞としても知られている。したがって、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって、腸管内に分泌されるＧＬＰ−１やＰＹＹの量に影響する可能性があると推測される。実際に本発明者らは、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞の増加とともに、ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞も増加したことを初めて証明した。
【００１６】
ＧＬＰ−１は、（１）グルコース濃度依存性インスリン分泌促進、（２）グルカゴン分泌抑制、（３）膵β細胞増殖、（４）胃排泄抑制、（５）中枢性食欲抑制、（６）インスリン抵抗性改善などの作用があるとされている。ＰＹＹは、摂食の制御や上部消化管の運動抑制の制御に関与することが知られている。したがって、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、ＧＰＲ４３の増加に伴う有益の作用のほか、ＧＬＰ−１やＰＹＹの増加に伴う有益な作用も奏する可能性があると推測される。
【００１７】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤の有効成分であるフラクトオリゴ糖は、β−１，２結合によりショ糖のフラクトース残基に１〜３分子のフラクトースが結合したものであり、３糖類の１−ケストース、４糖類のニストース、５糖類の１−フルクトシルニストース等が含まれる。フラクトオリゴ糖は腸内のビフィズス菌増殖促進作用、整腸作用、ミネラル吸収促進作用等の優れた生理機能を有することから、機能性素材として広く使用されている。本発明に使用されるフラクトオリゴ糖は特に限定されないが、メイオリゴＰ（明治製菓株式会社製）などが好ましく用いられる。
【００１８】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、好ましく１〜９９重量％のフラクトオリゴ糖を含み、より好ましくは１０〜９９重量％のフラクトオリゴ糖を含む。本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は経口投与の形態であれば特に限定されないが、錠剤、カプセル剤、散剤、懸濁剤、水剤などの剤形であってもよい。
【００１９】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、有効成分であるフラクトオリゴ糖の他、薬学的に許容される担体又は添加物を含んでもよい。このような担体及び添加物の例として、水、薬学的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースなどが挙げられる。使用される添加物は、剤形に応じて上記の中から適宜又は組み合わせて選択される。
【００２０】
本発明はまた、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を含む飲食品を提供する。ここで、飲食品とは全ての飲食物を含む。本発明の目的にかなうものであれば、通常の飲食品に本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を添加して、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加用機能性飲食品として使用することができる。フラクトオリゴ糖の腸への送達及び腸内細菌によるフラクトオリゴ糖の資化（発酵）に影響を与えないものであれば、あらゆる飲食品に本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を添加することができる。飲食品への添加量は特に限定されないが、各飲飲食品の特性、嗜好性、経済性等を考慮して、その添加量としては０．５〜９９重量％程度であればよく、目的に応じて適当な製造工程の段階で適宜配合すればよい。フラクトオリゴ糖は飲食品としても利用される実績があるため、安全性に問題がないと考えられる。
【実施例】
【００２１】
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【００２２】
実施例１ ラットにおけるＦＯＳ添加食餌によるＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加の評価試験
［材料及び方法］
【００２３】
１．被験物質
本試験にはフラクトオリゴ糖としてメイオリゴＰ粉末（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製）を使用した。
２．供試動物
日本エスエルシー株式会社生産の雄性Ｓｌｃ：Ｗｉｓｔａｒラット（ＳＰＦ）９週齢を１０匹購入した。動物は購入から実験開始まで馴化した。
３．飼育施設
動物は温度２４±２℃、湿度５０±１０％、空調方式：オールフレッシュエアー、午前７時から午後７時までの１２時間照明に設定されたバリア施設内の動物室で飼育した。
４．飼育方法
試験期間中はアルミ製平板ケージ（Ｗ２５×Ｄ４０×Ｈ１８ｃｍ）で個別飼育した。動物には３日間の予備飼育期間中は固形飼料（ラボＭＲストック日本農産工業株式会社）を、群分け後は、試験期間を通じ特殊混餌粉末飼料（オリエンタル酵母工業株式会社にて作製）を１６ｇ／日摂取させた。飲水は、水道水を給水瓶で、試験期間を通じ自由摂取させた。
【００２４】
５．試験実施方法
５−１．特殊混餌粉末飼料の調製方法
放射線滅菌した、表１に示した配合の２種類の特殊混餌粉末飼料をオリエンタル酵母工業株式会社にて作製した。
【表１】
５−２．測定及び群分け方法
９週齢のラットの体重を測定し、これを指標とし、層別連続無作為化法により対照群と５％ＦＯＳ群とに群分けを行った。それぞれの群のラットに、表１に示す混餌粉末飼料を２８日間にわたり、１日あたり１６ｇ給与し、食べ残した場合には残量を測定した。投与期間中、２回／週の割合で体重測定を行った。
【００２５】
６．屠殺・標本採取方法
６−１．屠殺・腸管摘出
ラットをジエチルエーテルにより吸入麻酔し、断頭・放血屠殺した。回腸以下を摘出して氷冷リン酸緩衝液（ＰＢＳ）＋ニカルジピン（１０−６Ｍ）に浸漬した。
６−２．標本組織の区分
本試験に供する腸管組織は、回腸終末部（回盲部より口側へ約２ｃｍまで）と、近位結腸と、遠位結腸とに区分した。
【００２６】
７．組織化学法
７−１．Ｚａｍｂｏｎｉ（ザンボニ）固定液の調製
４％パラホルムアルデヒド、０．２％ピクリン酸、及び０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）を含むＺａｍｂｏｎｉ固定液を用時調製した。
【００２７】
７−２．凍結切片の作製
腸管組織各部位を組織包埋カセット（プロカセット、サクラファインテックジャパン株式会社、日本）に入れ、Ｚａｍｂｏｎｉ固定液２０時間、４℃で浸漬固定した。固定した組織をＰＢＳで１０分×３回洗浄し、さらにＰＢＳを毎日交換しながら３日間４℃で保存した。次に、１０％→２０％→３０％ショ糖ＰＢＳに２時間ずつ浸潤させてクリオプロテクションを行った。標本をＯＣＴコンパウンド（サクラファインテックジャパン株式会社）に包埋、液体窒素で凍結、凍結ブロックは切片作製まで−８０℃で保存した。凍結した組織をクリオスタット（ＣＭ１１００、Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ、ドイツ）で１０μｍ厚に薄切し、ＰＬＬ（Ｐｏｌｙ−Ｌ−Ｌｙｓｉｎｅ）被覆したスライドグラスに切片を貼り付け、風乾、染色に供するまで−８０℃で保存した。なお、組織染色・計測を行う実験者とは別の実験者をコントローラーとして標本ラベルをコード化し、盲検的に以下の試験を行った。
７−３．蛍光免疫染色
【００２８】
切片をＰＢＳで洗浄（１０分×３回）、１０％ロバ正常血清、１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含むＰＢＳを滴下し、湿箱中、室温、１時間静置し、非特異反応のブロッキングを行った。次に、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ＰＢＳで希釈したウサギ抗ＧＰＲ４３抗体又はウサギ抗ＧＬＰ−１抗体を１次抗体として、抗ＧＰＲ４３抗体は４℃で一晩、抗ＧＬＰ−１抗体は室温で、湿箱中に静置し、反応させた。ＰＢＳで１０分×３回洗浄した後、２次抗体（０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ＰＢＳで希釈し、１μｇ／ｍＬのＤＡＰＩを含有）に室温、１時間反応させた。二重染色には、一次反応はヤギ抗ＧＬＰ−１抗体をウサギ抗ＧＰＲ４３抗体液と混合して反応させ、二次反応には標識の異なる２次抗体を使用した。２次抗体反応の終了した標本をＰＢＳで１０分×３回洗浄した後、蛍光標識標本用封入剤（ＤａｋｏＣｙｔｏｍａｔｉｏｎ、デンマーク）で封入、マニキュアでカバーガラスの周囲をシールした。蛍光顕微鏡（ＩＸ７０、オリンパス株式会社、日本）で蛍光観察し、冷却ＣＣＤカメラ（ＡｘｉｏＶｉｓｉｏｎ、ドイツ）で画像を撮影した。画像解析ソフトウェアＩｍａｇｅ Ｊ（ＮＩＨ）により、画像の粘膜面積当たりの免疫活性陽性腸内分泌細胞数を計測した。なお、使用した抗体は表２に示した。
【００２９】
【表２】
【００３０】
７−４．計測・検定
免疫染色によりＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞及びＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞の細胞密度について、それぞれ２切片以上の標本から各切片５視野以上を計測し、動物１個体１部位、１０視野以上の計測結果を平均して１標本のデータ（ｎ＝１）とした。各食餌群ｎ＝５の平均を算出し、ｔ‐検定によって対照群と５％ＦＯＳ群との間の有意差検定（有意水準５％未満）を行った。
【００３１】
［結果］
１．飼育データ
１−１．一般状態観察
被験物質食餌飼育期間中、全ての動物の一般状態に異常はなく、被験物質摂取による下痢及び軟便等も観察されなかった。
１−２．体重
体重推移を図１に示した。対照群と５％ＦＯＳ群間の体重増加に有意な差はみられなかった。
１−３．残餌量
特餌開始１４日まではいずれの試験群も混餌飼料を残す動物はほとんどいなかった。しかし、５％ＦＯＳ群では、２３日以降３匹に食べ残しがみられたが、食べ残した量は少量（４ｇ以内）であった。
【００３２】
２．蛍光免疫組織化学
２−１．ＧＰＲ−４３陽性・腸内分泌細胞数
ウサギ抗ＧＰＲ４３（ＲＹ１５０５）を用いた蛍光免疫染色により、ＧＰＲ４３免疫活性を有する腸内分泌細胞が観察された。５％ＦＯＳ群の単位面積（１ｍｍ２）当たりのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞数は、対照群に対して、回腸終末部で１．４２倍、近位結腸で３．３３倍、遠位結腸で１．４２倍に増加しており、近位結腸においては統計学的に有意に増加していた（Ｐ＜０．０５）。なお、腸内分泌細胞のほか粘膜における上皮細胞もＧＰＲ４３を発現するとされるが、今回の実験では粘膜厚（上皮細胞数に相当する）に変化が認められなかったため、増加したのは腸内分泌細胞のみであったと示唆された。
【００３３】
２−２．ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数
抗ＧＬＰ−１抗体を用いた蛍光免疫染色により、ＧＬＰ−１免疫活性を有する腸内分泌細胞が観察された。回腸終末部及び遠位結腸にはウサギ抗ＧＬＰ−１抗体（Ｙ３２０）、近位結腸にはヤギ抗ＧＬＰ−１抗体（ｓｃ７７８２）をそれぞれ用いた。５％ＦＯＳ群の単位面積（１ｍｍ２）当たりのＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数は、対照群に対して、回腸終末部で１．２８倍、近位結腸で２．０８倍、遠位結腸で１．２５倍に増加しており、近位結腸においては統計学的に有意に増加していた（Ｐ＜０．００１）。
【００３４】
３．結果総括
本実施例において、５％ＦＯＳ群は、対照群に比して体重増加に差は無く、下痢等も発生しなかったことから、５％ＦＯＳ食餌による不快な症状は惹起されなかったものと考えられる。また、粘膜の肥厚等の形態的変化も観察されなかったが、単位面積当たりのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞及びＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数は、近位結腸においてそれぞれ約３倍及び約２倍に有意に増加し、遠位結腸、回腸終末部においても増加傾向を示した。また、二重染色試験により、ＧＰＲ４３及びＧＬＰ−１が殆ど同じ細胞に共存することが示されたことから、増加したＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞は殆どＬ型腸内分泌細胞であると示唆された。
【００３５】
フラクトオリゴ糖によるＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進効果のメカニズムは不明であるが、フラクトオリゴ糖がビフィズス菌等をはじめとする有益な腸内細菌によって大腸内で短鎖脂肪酸に変換されるため、恐らく短鎖脂肪酸の作用・刺激により、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞が増加するものと推定される。一方で、腸内分泌細胞以外のＧＰＲ４３発現細胞（例えば、上皮細胞）の増加が認められていないため、フラクトオリゴ糖による作用はＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞特異的であると推測される。
【００３６】
実施例２ 錠剤の製造
以下に示す配合比率で定法に従い３００ｍｇの錠剤を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ２５０ｍｇ
トウモロコシデンプン １５ｍｇ
結晶セルロース ２５ｍｇ
カルボキシメチルセルロース １０ｍｇ
【００３７】
実施例３ 散剤の製造
以下に示す配合比率で定法に従い散剤を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ２００ｍｇ
乳糖 ７９１ｍｇ
ヒドロキシプロピルセルロース ４ｍｇ
無水ケイ酸 ５ｍｇ
【００３８】
実施例４ 錠菓の製造
以下に示す配合比率で定法に従い錠菓を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ８５ｍｇ
アビセル ４ｍｇ
クエン酸 ３ｍｇ
シュガーエステル ３ｍｇ
ビフィズス菌 ５ｍｇ
【技術分野】
【０００１】
本発明はＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
我々の体を貫く一本の「管」である消化管は単に中空の管ではなく、食物の消化、栄養分の吸収、残渣の排出といった本来の生理機能を適切に実施するとともに、体外からの有害化学物質や病原微生物から生体を防御するために、消化管腔内を監視し処理するシステムが存在するとされる。その具体的な分子機構はまだ解明されていないが、管腔内の状態を反映する情報伝達物質と、その情報を受け取る受容体とが存在していると思われる。
【０００３】
Ｇ蛋白質共役型受容体４３（ＧＰＲ４３）は、リガンドが不明なＧ蛋白質共役型受容体の中から、Ｇ蛋白質共役型受容体４１（ＧＰＲ４１）とともに短鎖脂肪酸に応答し、細胞内カルシウム上昇やｃＡＭＰ減少を惹起する受容体として、２００３年に同定されている（非特許文献１〜３）。最近、国際薬理学連合によりＧＰＲ４３は遊離脂肪酸受容体２（ＦＦＡ２）、ＧＰＲ４１はＦＦＡ３と命名された。
【０００４】
ＧＰＲ４３は、単球、好中球といった免疫細胞に発現するとともに、ラット及びヒトの腸管粘膜におけるＬ型腸内分泌細胞にも発現していることが報告されている（非特許文献４及び５）。したがって、ＧＰＲ４３は消化管において何らかの制御機能を果たしていると推測される。また、ごく最近の研究によると、ＧＰＲ４３欠失マウスでは大腸炎や関節炎、喘息などの炎症応答が消失しなかったり、逆に炎症が悪化したりすることが認められるので、ＧＰＲ４３はある種の炎症応答の沈静化に必要であると考えられる（非特許文献６）。
【０００５】
一方、短鎖脂肪酸は、大腸において生理的状態でも高濃度で存在している。食事により摂取された難消化性糖質の大部分は大腸において腸内細菌の発酵を受け、酢酸やプロピオン酸、酪酸といった短鎖脂肪酸に変換される。古くから短鎖脂肪酸は、反芻動物では栄養学的観点からよく研究されているが、１９６０年代になるまでヒトの生理機能に及ぼす短鎖脂肪酸の影響についてはあまり注目されていなかった。最近では栄養分として大腸粘膜から吸収されるのみならず、大腸に対して様々な生理作用を発揮し、さらに脂質代謝、グルコース・インスリン代謝などにも関与している可能性があり注目を集めてきている。しかしながら、その詳細な分子機構は未だ不明なところが多い。
【０００６】
フラクトオリゴ糖（ＦＯＳ）は、腸内細菌の発酵を受け短鎖脂肪酸に変換される難消化性糖質の一つである。フラクトオリゴ糖は、腸内のビフィズス菌増殖促進作用、整腸作用、ミネラル吸収促進作用等の優れた生理機能を有することから、機能性素材として広く使用されている。しかしながら、フラクトオリゴ糖とＧＰＲ４３陽性細胞との関連性についての報告はなかった。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｂｒｏｗｎ ＡＪら，Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７８：１１３１２−１１３１９，２００３．
【非特許文献２】Ｌｅ Ｐｏｕｌ Ｅら，Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７８：２５４８１−２５４８９，２００３．
【非特許文献３】Ｎｉｌｓｓｏｎ ＮＥら，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ ３０３：１０４７−１０５２、２００３．
【非特許文献４】Ｋａｒａｋｉ Ｓら，Ｃｅｌｌ Ｔｉｓｓｕｅ Ｒｅｓ ３２４：３５３−３６０、２００６．
【非特許文献５】Ｋａｒａｋｉ Ｓら，Ｊ Ｍｏｌ Ｈｉｓｔｏｌ ３９：１３５−１４２，２００８．
【非特許文献６】Ｋｅｎｄｌｅ Ｍ． Ｍａｓｌｏｗｓｋｉら，Ｎａｔｕｒｅ ｖｏｌ．４６１，１２８２−１２８６，２００９．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
上述したように、ＧＰＲ４３は正常な腸内環境を保つための消化管腔内の監視・処理システムにおいて、何らかの監視役、すなわちセンサーとして機能していると思われる。したがって、そのセンサーの数が多くなればなるほど、生体にとっては有益な働きはより大きくなることが期待される。しかしながら、ＧＰＲ４３の発現量又はＧＰＲ４３発現細胞（ＧＰＲ４３陽性細胞）を特異的に増加させる手段はこれまでなかった。そこで、本発明はＧＰＲ４３陽性細胞を特異的に増加させる、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは上記課題を解決するため鋭意研究した結果、ラットにフラクトオリゴ糖を投与したところ、顕著なＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進作用が認められ、さらにＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞の増加促進作用もあることを見出し、本発明の完成に至った。
【００１０】
すなわち、本発明は、フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を提供する。また、本発明においてＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞がＬ型腸内分泌細胞であることが好ましい。
【００１１】
本発明は、また、上記ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を含む飲食品を提供する。
【発明の効果】
【００１２】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤によれば、ＧＰＲ４３を発現する腸内分泌細胞の数を増加することができる。これにより、ＧＰＲ４３に伴う有益な働き、例えば、抗アレルギー作用や抗炎症作用などをもたらすことが可能となる。また、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤は、その有効成分であるフラクトオリゴ糖が食品としても利用されるため、安全である。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】図１は特殊混餌粉末飼料の投与期間中におけるラットの体重変化を示す図である。
【図２】図２は対照群と５％ＦＯＳ群とのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞数の差異を示すグラフである。
【図３】図３は対照群と５％ＦＯＳ群とのＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数の差異を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、フラクトオリゴ糖（ＦＯＳ）を有効成分として含有する。本明細書における「ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞」とは、Ｇ蛋白質共役型受容体４３（ＧＰＲ４３）を発現する腸内分泌細胞を指す。ＧＰＲ４３陽性細胞は、例えば免疫組織化学的手法によって検出することができ、抗ＧＰＲ４３抗体に対する免疫活性のある細胞をＧＰＲ４３陽性細胞と判定することができる。また、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法などによってＧＰＲ４３のｍＲＮＡの発現量を測定することによってもＧＰＲ４３陽性細胞であるかどうかを判定することができる。また、本明細書における「ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞」とは、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）を発現する腸内分泌細胞を指す。ＧＬＰ−１陽性細胞の検出も同様に、免疫組織化学的手法やｍＲＮＡの発現量の測定によって行うことができる。なおここで、「細胞増加」とは、ＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現する腸内分泌細胞の増殖による増加と、ＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現しなかった又は発現量が検出限界以下の腸内分泌細胞が検出可能な量のＧＰＲ４３又はＧＬＰ−１を発現するようになることによる増加との両方を含む。
【００１５】
腸内分泌細胞のうち、特にＬ型腸内分泌細胞はＧＰＲ４３を発現することが知られている。本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって増えた細胞のうち、殆どがＬ型腸内分泌細胞であると推測される。Ｌ型腸内分泌細胞は、ＧＰＲ４３を発現するほか、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）やペプチドＹＹ（ＰＹＹ）などの消化管ホルモンを分泌する細胞としても知られている。したがって、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって、腸管内に分泌されるＧＬＰ−１やＰＹＹの量に影響する可能性があると推測される。実際に本発明者らは、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤によって、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞の増加とともに、ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞も増加したことを初めて証明した。
【００１６】
ＧＬＰ−１は、（１）グルコース濃度依存性インスリン分泌促進、（２）グルカゴン分泌抑制、（３）膵β細胞増殖、（４）胃排泄抑制、（５）中枢性食欲抑制、（６）インスリン抵抗性改善などの作用があるとされている。ＰＹＹは、摂食の制御や上部消化管の運動抑制の制御に関与することが知られている。したがって、本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、ＧＰＲ４３の増加に伴う有益の作用のほか、ＧＬＰ−１やＰＹＹの増加に伴う有益な作用も奏する可能性があると推測される。
【００１７】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤の有効成分であるフラクトオリゴ糖は、β−１，２結合によりショ糖のフラクトース残基に１〜３分子のフラクトースが結合したものであり、３糖類の１−ケストース、４糖類のニストース、５糖類の１−フルクトシルニストース等が含まれる。フラクトオリゴ糖は腸内のビフィズス菌増殖促進作用、整腸作用、ミネラル吸収促進作用等の優れた生理機能を有することから、機能性素材として広く使用されている。本発明に使用されるフラクトオリゴ糖は特に限定されないが、メイオリゴＰ（明治製菓株式会社製）などが好ましく用いられる。
【００１８】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、好ましく１〜９９重量％のフラクトオリゴ糖を含み、より好ましくは１０〜９９重量％のフラクトオリゴ糖を含む。本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は経口投与の形態であれば特に限定されないが、錠剤、カプセル剤、散剤、懸濁剤、水剤などの剤形であってもよい。
【００１９】
本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤は、有効成分であるフラクトオリゴ糖の他、薬学的に許容される担体又は添加物を含んでもよい。このような担体及び添加物の例として、水、薬学的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースなどが挙げられる。使用される添加物は、剤形に応じて上記の中から適宜又は組み合わせて選択される。
【００２０】
本発明はまた、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を含む飲食品を提供する。ここで、飲食品とは全ての飲食物を含む。本発明の目的にかなうものであれば、通常の飲食品に本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を添加して、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加用機能性飲食品として使用することができる。フラクトオリゴ糖の腸への送達及び腸内細菌によるフラクトオリゴ糖の資化（発酵）に影響を与えないものであれば、あらゆる飲食品に本発明のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加剤を添加することができる。飲食品への添加量は特に限定されないが、各飲飲食品の特性、嗜好性、経済性等を考慮して、その添加量としては０．５〜９９重量％程度であればよく、目的に応じて適当な製造工程の段階で適宜配合すればよい。フラクトオリゴ糖は飲食品としても利用される実績があるため、安全性に問題がないと考えられる。
【実施例】
【００２１】
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【００２２】
実施例１ ラットにおけるＦＯＳ添加食餌によるＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加の評価試験
［材料及び方法］
【００２３】
１．被験物質
本試験にはフラクトオリゴ糖としてメイオリゴＰ粉末（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製）を使用した。
２．供試動物
日本エスエルシー株式会社生産の雄性Ｓｌｃ：Ｗｉｓｔａｒラット（ＳＰＦ）９週齢を１０匹購入した。動物は購入から実験開始まで馴化した。
３．飼育施設
動物は温度２４±２℃、湿度５０±１０％、空調方式：オールフレッシュエアー、午前７時から午後７時までの１２時間照明に設定されたバリア施設内の動物室で飼育した。
４．飼育方法
試験期間中はアルミ製平板ケージ（Ｗ２５×Ｄ４０×Ｈ１８ｃｍ）で個別飼育した。動物には３日間の予備飼育期間中は固形飼料（ラボＭＲストック日本農産工業株式会社）を、群分け後は、試験期間を通じ特殊混餌粉末飼料（オリエンタル酵母工業株式会社にて作製）を１６ｇ／日摂取させた。飲水は、水道水を給水瓶で、試験期間を通じ自由摂取させた。
【００２４】
５．試験実施方法
５−１．特殊混餌粉末飼料の調製方法
放射線滅菌した、表１に示した配合の２種類の特殊混餌粉末飼料をオリエンタル酵母工業株式会社にて作製した。
【表１】
５−２．測定及び群分け方法
９週齢のラットの体重を測定し、これを指標とし、層別連続無作為化法により対照群と５％ＦＯＳ群とに群分けを行った。それぞれの群のラットに、表１に示す混餌粉末飼料を２８日間にわたり、１日あたり１６ｇ給与し、食べ残した場合には残量を測定した。投与期間中、２回／週の割合で体重測定を行った。
【００２５】
６．屠殺・標本採取方法
６−１．屠殺・腸管摘出
ラットをジエチルエーテルにより吸入麻酔し、断頭・放血屠殺した。回腸以下を摘出して氷冷リン酸緩衝液（ＰＢＳ）＋ニカルジピン（１０−６Ｍ）に浸漬した。
６−２．標本組織の区分
本試験に供する腸管組織は、回腸終末部（回盲部より口側へ約２ｃｍまで）と、近位結腸と、遠位結腸とに区分した。
【００２６】
７．組織化学法
７−１．Ｚａｍｂｏｎｉ（ザンボニ）固定液の調製
４％パラホルムアルデヒド、０．２％ピクリン酸、及び０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）を含むＺａｍｂｏｎｉ固定液を用時調製した。
【００２７】
７−２．凍結切片の作製
腸管組織各部位を組織包埋カセット（プロカセット、サクラファインテックジャパン株式会社、日本）に入れ、Ｚａｍｂｏｎｉ固定液２０時間、４℃で浸漬固定した。固定した組織をＰＢＳで１０分×３回洗浄し、さらにＰＢＳを毎日交換しながら３日間４℃で保存した。次に、１０％→２０％→３０％ショ糖ＰＢＳに２時間ずつ浸潤させてクリオプロテクションを行った。標本をＯＣＴコンパウンド（サクラファインテックジャパン株式会社）に包埋、液体窒素で凍結、凍結ブロックは切片作製まで−８０℃で保存した。凍結した組織をクリオスタット（ＣＭ１１００、Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ、ドイツ）で１０μｍ厚に薄切し、ＰＬＬ（Ｐｏｌｙ−Ｌ−Ｌｙｓｉｎｅ）被覆したスライドグラスに切片を貼り付け、風乾、染色に供するまで−８０℃で保存した。なお、組織染色・計測を行う実験者とは別の実験者をコントローラーとして標本ラベルをコード化し、盲検的に以下の試験を行った。
７−３．蛍光免疫染色
【００２８】
切片をＰＢＳで洗浄（１０分×３回）、１０％ロバ正常血清、１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含むＰＢＳを滴下し、湿箱中、室温、１時間静置し、非特異反応のブロッキングを行った。次に、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ＰＢＳで希釈したウサギ抗ＧＰＲ４３抗体又はウサギ抗ＧＬＰ−１抗体を１次抗体として、抗ＧＰＲ４３抗体は４℃で一晩、抗ＧＬＰ−１抗体は室温で、湿箱中に静置し、反応させた。ＰＢＳで１０分×３回洗浄した後、２次抗体（０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ＰＢＳで希釈し、１μｇ／ｍＬのＤＡＰＩを含有）に室温、１時間反応させた。二重染色には、一次反応はヤギ抗ＧＬＰ−１抗体をウサギ抗ＧＰＲ４３抗体液と混合して反応させ、二次反応には標識の異なる２次抗体を使用した。２次抗体反応の終了した標本をＰＢＳで１０分×３回洗浄した後、蛍光標識標本用封入剤（ＤａｋｏＣｙｔｏｍａｔｉｏｎ、デンマーク）で封入、マニキュアでカバーガラスの周囲をシールした。蛍光顕微鏡（ＩＸ７０、オリンパス株式会社、日本）で蛍光観察し、冷却ＣＣＤカメラ（ＡｘｉｏＶｉｓｉｏｎ、ドイツ）で画像を撮影した。画像解析ソフトウェアＩｍａｇｅ Ｊ（ＮＩＨ）により、画像の粘膜面積当たりの免疫活性陽性腸内分泌細胞数を計測した。なお、使用した抗体は表２に示した。
【００２９】
【表２】
【００３０】
７−４．計測・検定
免疫染色によりＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞及びＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞の細胞密度について、それぞれ２切片以上の標本から各切片５視野以上を計測し、動物１個体１部位、１０視野以上の計測結果を平均して１標本のデータ（ｎ＝１）とした。各食餌群ｎ＝５の平均を算出し、ｔ‐検定によって対照群と５％ＦＯＳ群との間の有意差検定（有意水準５％未満）を行った。
【００３１】
［結果］
１．飼育データ
１−１．一般状態観察
被験物質食餌飼育期間中、全ての動物の一般状態に異常はなく、被験物質摂取による下痢及び軟便等も観察されなかった。
１−２．体重
体重推移を図１に示した。対照群と５％ＦＯＳ群間の体重増加に有意な差はみられなかった。
１−３．残餌量
特餌開始１４日まではいずれの試験群も混餌飼料を残す動物はほとんどいなかった。しかし、５％ＦＯＳ群では、２３日以降３匹に食べ残しがみられたが、食べ残した量は少量（４ｇ以内）であった。
【００３２】
２．蛍光免疫組織化学
２−１．ＧＰＲ−４３陽性・腸内分泌細胞数
ウサギ抗ＧＰＲ４３（ＲＹ１５０５）を用いた蛍光免疫染色により、ＧＰＲ４３免疫活性を有する腸内分泌細胞が観察された。５％ＦＯＳ群の単位面積（１ｍｍ２）当たりのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞数は、対照群に対して、回腸終末部で１．４２倍、近位結腸で３．３３倍、遠位結腸で１．４２倍に増加しており、近位結腸においては統計学的に有意に増加していた（Ｐ＜０．０５）。なお、腸内分泌細胞のほか粘膜における上皮細胞もＧＰＲ４３を発現するとされるが、今回の実験では粘膜厚（上皮細胞数に相当する）に変化が認められなかったため、増加したのは腸内分泌細胞のみであったと示唆された。
【００３３】
２−２．ＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数
抗ＧＬＰ−１抗体を用いた蛍光免疫染色により、ＧＬＰ−１免疫活性を有する腸内分泌細胞が観察された。回腸終末部及び遠位結腸にはウサギ抗ＧＬＰ−１抗体（Ｙ３２０）、近位結腸にはヤギ抗ＧＬＰ−１抗体（ｓｃ７７８２）をそれぞれ用いた。５％ＦＯＳ群の単位面積（１ｍｍ２）当たりのＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数は、対照群に対して、回腸終末部で１．２８倍、近位結腸で２．０８倍、遠位結腸で１．２５倍に増加しており、近位結腸においては統計学的に有意に増加していた（Ｐ＜０．００１）。
【００３４】
３．結果総括
本実施例において、５％ＦＯＳ群は、対照群に比して体重増加に差は無く、下痢等も発生しなかったことから、５％ＦＯＳ食餌による不快な症状は惹起されなかったものと考えられる。また、粘膜の肥厚等の形態的変化も観察されなかったが、単位面積当たりのＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞及びＧＬＰ−１陽性・腸内分泌細胞数は、近位結腸においてそれぞれ約３倍及び約２倍に有意に増加し、遠位結腸、回腸終末部においても増加傾向を示した。また、二重染色試験により、ＧＰＲ４３及びＧＬＰ−１が殆ど同じ細胞に共存することが示されたことから、増加したＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞は殆どＬ型腸内分泌細胞であると示唆された。
【００３５】
フラクトオリゴ糖によるＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進効果のメカニズムは不明であるが、フラクトオリゴ糖がビフィズス菌等をはじめとする有益な腸内細菌によって大腸内で短鎖脂肪酸に変換されるため、恐らく短鎖脂肪酸の作用・刺激により、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞が増加するものと推定される。一方で、腸内分泌細胞以外のＧＰＲ４３発現細胞（例えば、上皮細胞）の増加が認められていないため、フラクトオリゴ糖による作用はＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞特異的であると推測される。
【００３６】
実施例２ 錠剤の製造
以下に示す配合比率で定法に従い３００ｍｇの錠剤を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ２５０ｍｇ
トウモロコシデンプン １５ｍｇ
結晶セルロース ２５ｍｇ
カルボキシメチルセルロース １０ｍｇ
【００３７】
実施例３ 散剤の製造
以下に示す配合比率で定法に従い散剤を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ２００ｍｇ
乳糖 ７９１ｍｇ
ヒドロキシプロピルセルロース ４ｍｇ
無水ケイ酸 ５ｍｇ
【００３８】
実施例４ 錠菓の製造
以下に示す配合比率で定法に従い錠菓を製造した。
メイオリゴＰ粉末
（フラクトオリゴ糖含量９５．４％、明治製菓株式会社製） ８５ｍｇ
アビセル ４ｍｇ
クエン酸 ３ｍｇ
シュガーエステル ３ｍｇ
ビフィズス菌 ５ｍｇ
【特許請求の範囲】
【請求項１】
フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【請求項２】
前記ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞がＬ型腸内分泌細胞である、請求項１記載のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【請求項３】
請求項１又は２に記載のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を含む、飲食品。
【請求項１】
フラクトオリゴ糖を有効成分として含有する、ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【請求項２】
前記ＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞がＬ型腸内分泌細胞である、請求項１記載のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤。
【請求項３】
請求項１又は２に記載のＧＰＲ４３陽性・腸内分泌細胞増加促進剤を含む、飲食品。
【図１】
【図２】
【図３】
【図２】
【図３】
【公開番号】特開２０１１−２０７８３４（Ｐ２０１１−２０７８３４Ａ）
【公開日】平成２３年１０月２０日（２０１１．１０．２０）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−７８６５３（Ｐ２０１０−７８６５３）
【出願日】平成２２年３月３０日（２０１０．３．３０）
【出願人】（５０７２１９６８６）静岡県公立大学法人 (63)
【出願人】（０００００６１３８）株式会社明治 (265)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２３年１０月２０日（２０１１．１０．２０）
【国際特許分類】
【出願日】平成２２年３月３０日（２０１０．３．３０）
【出願人】（５０７２１９６８６）静岡県公立大学法人 (63)
【出願人】（０００００６１３８）株式会社明治 (265)
【Ｆターム（参考）】
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