ＩＬ−５介在障害を治療および診断するための改良方法
【課題】ヒトインターロイキン５（ＩＬ−５）に関する中和モノクローナル抗体などの、好酸球分化および増殖（すなわち、好酸球の蓄積）を減少させ、そして好酸球炎症を減少させる、治療をするため改良方法を提供する。
【解決手段】ＩＬ−５介在疾患および好酸球産生過多介在疾患の治療および診断に、さらに詳細には、ヒトＩＬ−５のヒトＩＬ−５レセプターのα−鎖への結合を遮断しない、モノクローナル抗体およびＦａｂ、キメラ、ヒトおよびヒト化抗体などの他の変性抗体を得る。
【解決手段】ＩＬ−５介在疾患および好酸球産生過多介在疾患の治療および診断に、さらに詳細には、ヒトＩＬ−５のヒトＩＬ−５レセプターのα−鎖への結合を遮断しない、モノクローナル抗体およびＦａｂ、キメラ、ヒトおよびヒト化抗体などの他の変性抗体を得る。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本願は、１９９４年１２月２３日出願の米国特許出願番号０８／３６３１３１の一部継続出願である、１９９５年６月６日出願の米国特許出願番号０８／４７０１１０および０８／４６７４２０の一部継続出願である、１９９５年１２月２２日出願のＰＣＴ／ＵＳ９５／１７０８２の一部継続出願である。
【０００２】
本発明は、一般に、ＩＬ−５介在の、好酸球の産生過多の症状の治療および診断に、さらに詳細には、ｍＡｂおよびＦａｂ、キメラ、ヒトおよびヒト化抗体などの他の抗体に関する。
【背景技術】
【０００３】
好酸球は、肺組織における過敏性反応に伴うアレルギー障害を含む、多種の炎症病態の病因に関与している（Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄら、Ｉｎ：Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌｓ， Ｈ．Ｓｍｉｔｈ およびＲ．Ｃｏｏｋ， Ｅｄｓ．， １５１−１９２頁、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｌｏｎｄｏｎ（１９９３））。顕著な例として、非特異的気管支過反応に至る、気道の可逆性障害により特徴付けられる疾患である、喘息が挙げられる。次に、この疾患は、慢性炎症反応の気管支粘膜のレベルでの発生ならびにマクロファージ、リンパ球および好酸球によって特徴的な浸潤が発生することに依存する。該疾患に典型的な粘膜損傷の始まりにおいて好酸球が中心的役割を果たすことは明らかである（Ｃｏｒｒｉｇａｎら、Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｔｏｄａｙ、１３：５０１−５０７（１９９２））。慢性喘息患者の循環組織、気管支分泌組織および肺実質組織において、多数の活性化好酸球が報告されており、種々の肺機能試験により測定されるように、疾患の重度は血中好酸球数と相関関係にある（Ｇｒｉｆｆｅｎら、Ｊ． Ａｌｌｅｒ． Ｃｌｉｎ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、 ６７：５４８−５５７（１９９１））。脱顆粒の工程においてもしばしば、多数の好酸球が、遅発性気管支反応を患っている患者の気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）流体にて回収されており、通常、ステロイド療法の結果として好酸球数の減少が臨床的徴候の改良と関連している（Ｂｏｕｓｑｕｅｔら、Ｎ． Ｅｎｇ． Ｊ． Ｍｅｄ．、３２３：１０３３−１０３９（１９９０））。
【０００４】
インターロイキン５（ＩＬ−５）は、活性化ＣＤ４＋Ｔリンパ球により優勢的に産生されるホモダイマー糖タンパク質である。ヒトにおいて、ＩＬ−５は好酸球の成長および分化を調整することに大きく関与している。高レベルのＩＬ−５が、喘息患者の気管支肺胞洗浄液にて検出される（Ｍｏｔｏｊｕｍａら、Ａｌｌｅｒｇｙ、４８：９８（１９９３））。ＩＬ−５についてトランスジェニックなマウスは、抗原刺激のない末梢血液および組織中にて著しい好酸球増加症を示し（Ｄｅｎｔら、Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．、１７２：１４２５（１９９０））、抗−ネズミＩＬ−５モノクローナル抗体がマウスの血液および組織における好酸球増加症の減少（Ｈｉｔｏｓｈｉら、Ｉｎｔ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． ３：１３５（１９９１））ならびに実験動物における寄生虫感染およびアレルゲン攻撃に伴う好中球増加症の減少（Ｃｏｆｆｍａｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４５：３０８−３１０（１９８９）、Ｓｈｅｒら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．、８３：６１−６５（１９９０）、Ｃｈａｎｄら、Ｅｕｒ． Ｊ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．、２１１：１２１−１２３（１９９２））において効果を有することが明らかにされた。
【０００５】
コルチコステロイドは好酸球の数および喘息の他の炎症性成分を抑制することにおいて極めて効果的であるが、重度の喘息患者および最近では軽いないしは中程度の喘息患者における副作用と関連がある。他の主たる抗炎症薬療法−クロモグリケート（ｃｒｏｍｏｇｌｙｃａｔｅ）（クロモリンナトリウム（ｃｒｏｍｏｌｙｎ ｓｏｄｉｕｍ）およびネドクロミル（ｎｅｄｏｃｒｏｍｉｌ））だけではコルチコステロイドよりもかなり効能が小さく、その正確な作用機序は依然として不明である。
【非特許文献１】Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄら、Ｉｎ：Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌｓ，Ｈ．ＳｍｉｔｈおよびＲ．Ｃｏｏｋ，Ｅｄｓ．，１５１−１９２頁、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ（１９９３）
【非特許文献２】Ｃｏｒｒｉｇａｎら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ、１３：５０１−５０７（１９９２）
【非特許文献３】Ｇｒｉｆｆｅｎら、Ｊ．Ａｌｌｅｒ．Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、６７：５４８−５５７（１９９１）
【非特許文献４】Ｂｏｕｓｑｕｅｔら、Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．、３２３：１０３３−１０３９（１９９０）
【非特許文献５】Ｍｏｔｏｊｕｍａら、Ａｌｌｅｒｇｙ、４８：９８（１９９３）
【非特許文献６】Ｄｅｎｔら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、１７２：１４２５（１９９０）
【非特許文献７】Ｈｉｔｏｓｈｉら、Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．３：１３５（１９９１）
【非特許文献８】Ｃｏｆｆｍａｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４５：３０８−３１０（１９８９）
【非特許文献９】Ｓｈｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、８３：６１−６５（１９９０）
【非特許文献１０】Ｃｈａｎｄら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．、２１１：１２１−１２３（１９９２）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
最近の開発は、新規な吸入性ステロイド、長期作用性気管支拡張剤および新規な生化学または薬理学標的に作用する薬剤（例えば、カリウムチャネル活性化剤、ロイコトリエンアンタゴニスト、５−リポオキシゲナーゼ（５−ＬＯ）阻害剤など）に焦点が当てられている。理想的な薬物は、ステロイドの効能とクロモリンナトリウムに伴う安全性を併せて有し、さらには選択性が増加し、加えて迅速に作用を開始するものである。中和ＩＬ−５抗体は、ヒトの好酸球関連徴候を緩和するにおいて有用であるかもしれない。
【０００７】
したがって、当該分野においては、ヒトインターロイキン５に関する中和モノクローナル抗体などの、好酸球分化および増殖（すなわち、好酸球の蓄積）を減少させ、そして好酸球炎症を減少させる、高親和性ＩＬ−５アンタゴニストに対する要求がある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
第１の態様において、本発明は、好酸球の産生過多に伴う症状を治療するための改良方法であって、その改良がヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターα鎖に結合することを遮断しない、ヒトＩＬ−５に関する中和モノクローナル抗体を投与する工程からなる改良方法を提供する。そのようなモノクローナル抗体の一例がラットモノクローナル抗体４Ａ６である。
【０００９】
さらにもう一つ別の態様において、本発明は、ヒトにおけるヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体の有無を評価する方法であって、患者の生体液試料を得、ヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターα鎖に結合することを遮断しないヒトＩＬ−５に関するモノクローナル抗体を、ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／モノクローナル抗体複合体を形成しうるような条件下でかかる試料と接触させ、そのヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／モノクローナル抗体複合体の有無を検出することからなる方法を提供する。この方法を用いてヒトにおける好酸球の産生過多に伴う症状を診断することができ、さらにそのような障害の進行および処理を探知することができる。
【００１０】
さらなる態様において、本発明は、ＩＬ−５、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖／ｍＡｂ複合体がヒトＩＬ−５レセプターβ鎖に結合することを拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物とＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を可能とする条件下で接触させ、そのＩＬ−５、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖／ｍＡｂ複合体がそのＩＬ−５レセプターβ鎖に結合することを拮抗する候補化合物を同定することからなる方法を提供する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
詳細な記載およびその好ましい具体例において、本発明の他の態様および利点を記載する。
【００１２】
本発明は、ネズミモノクローナル抗体２Ｂ６またはラット抗体４Ａ６にて示されるようなヒトＩＬ−５結合特異性、中和活性およびヒトＩＬ−５に対する高親和性により特徴付けられる、種々の抗体、変性抗体およびそのフラグメントを提供する。本発明の抗体を、通常のハイブリドーマ技法、ファージディスプレイコンビナトリアルライブラリー、免疫グロブリン鎖シャフリングおよびヒト化技法により調製し、新規な中和抗体を生成した。これらの産物は、ＩＬ−５介在障害、例えば喘息の治療およびその障害の治療用医薬組成物において有用である。これらの産物はまた、ヒトの内因性ＩＬ−５レベルまたは活性化細胞よりエクスビボにて放出されたＩＬ−５を測定すること（例えば、酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ））でＩＬ−５介在症状を診断するにおいても有用である。
【００１３】
好ましくは、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−５に結合するが、ヒトＩＬ−５とＩＬ−５レセプターα鎖の間の相互作用を遮断しない。すなわち、好ましい抗体はヒトＩＬ−５についてのＩＬ−５レセプターα鎖と非競合的である。本発明の好ましい抗体はまた、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖の複合体と結合する。天然に存する可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖はインビトロにて観察されている（例えば、Ｔａｖｅｒｎｉｅｒら、Ｃｅｌｌ、６６：１１７５−１１８４（１９９１）を参照のこと）が、本願の前には、可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖がインビボにて産生されるかどうか、知られていなかった。出願人らはインビボにて可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖を同定した。かくして、複合したＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖に結合する抗体は、それが「フリーな」または複合していないＩＬ−５ならびに複合したＩＬ−５に結合するために、より効果的な治療剤であろう。加えて、可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖はヒトＩＬ−５の天然のアンタゴニストであろう。かくして、可溶性レセプターと競合しない抗体がさらに望ましく、ＩＬ−５の効果的なアンタゴニストであり、よって、好酸球の産生過多などのＩＬ−５介在症状を治療するための（ＩＬ−５への結合についてＩＬ−５レセプターα鎖と競合するｍＡｂとの関係にて）改良された治療剤である。
【００１４】
１．定義
「変性抗体」とは、選択された宿主細胞にて発現させることにより得ることのできる、変性免疫グロブリンのコーディング領域によりコードされるタンパク質をいう。かかる変性抗体は、改変抗体（例えば、キメラまたはヒト化抗体）または免疫グロブリン定常領域のすべてもしくは一部、例えば、Ｆｖ、ＦａｂもしくはＦ（ａｂ）２などを欠いている抗体フラグメントである。
【００１５】
「変性免疫グロブリンのコーディング領域」とは、本発明の変性抗体をコードする核酸配列をいう。変性抗体がＣＤＲグラフト化またはヒト化抗体である場合、非ヒト免疫グロブリンの相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードする配列をヒト可変フレームワーク配列を有する第１免疫グロブリンパートナーに挿入する。所望により、第１免疫グロブリンパートナーは第２免疫グロブリンパートナーに作動的に連結されていてもよい。
【００１６】
「第１免疫グロブリンパートナー」とは、自然の（または天然に存する）ＣＤＲコード化領域がドナー抗体のＣＤＲ−コード化領域と置換されている、ヒトフレームワークまたはヒト免疫グロブリン可変領域をコードする核酸配列をいう。ヒト可変領域は免疫グロブリンの重鎖、軽鎖（または両鎖）、アナログまたはその機能的フラグメントとすることができる。抗体（免疫グロブリン）の可変領域中に位置する、そのようなＣＤＲ領域は、当該分野における公知方法により決定することができる。例えば、Ｋａｂａｔら（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，第４版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（１９８７））はＣＤＲを位置付けるための規則を開示する。加えて、ＣＤＲ領域／構造を同定するのに有用なコンピュータープログラムも知られている。
【００１７】
「中和抗体」とは、結合が起こると、ヒトＩＬ−５のその特異的レセプターへの結合を阻害することにより、またはＩＬ−５のそのレセプターを介するシグナル化を阻害することによりＩＬ−５活性を阻害する抗体をいう。Ｂ１３細胞バイオアッセイ（ＩＬ−５中和抗体アッセイ、実施例２Ｃを参照のこと）にて測定した場合にＩＬ−５活性の阻害において９０％有効、好ましくは９５％有効、最も好ましくは１００％有効であるならば、ｍＡｂは中和抗体である。
【００１８】
「高親和性抗体」なる語は、光学バイオセンサー分析（実施例２Ｄを参照のこと）により測定した場合にヒトＩＬ−５について３．５ｘ１０−１１以下のＫｄ値により特徴付けられる結合親和性を有する抗体をいう。
【００１９】
「ヒトＩＬ−５に対する結合特異性」とは、ネズミではなく、ヒトのＩＬ−５に対する高親和性を意味する。
【００２０】
「第２免疫グロブリンパートナー」とは、第１免疫グロブリンパートナーがフレームにてまたは任意の慣用的リンカー配列の手段（すなわち、機能的連結手段）により融合するタンパク質またはペプチドをコードする別のヌクレオチド配列をいう。好ましくは、それは免疫グロブリン遺伝子である。第２免疫グロブリンパートナーは、目的とする同一（すなわち、相同的−第１および第２変性抗体が同一起源から由来する）または付加的（すなわち、異種的）抗体についての定常領域全体をコードする核酸配列を含んでいてもよい。そのパートナーは免疫グロブリンの重鎖または軽鎖（もしくは単一ポリペプチドの一部としての両鎖）であってもよい。第２免疫グロブリンパートナーは特定の免疫グロブリン種またはイソタイプに限定されない。加えて、第２免疫グロブリンパートナーは、ＦａｂまたはＦ（ａｂ）２に見られるような、免疫グロブリン定常領域の一部（すなわち、適当なヒト定常部またはフレームワーク領域の別個の部分）を有していてもよい。このような第２免疫グロブリンパートナーはまた、例えば、ファージディスプレイライブラリーの一部として、宿主細胞の外面に暴露された内在性膜タンパク質をコードする配列、あるいは分析または診断検出のためのタンパク質、例えばホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ等をコードする配列を有してもよい。
【００２１】
Ｆｖ、Ｆｃ、Ｆｄ、ＦａｂまたはＦ（ａｂ）２なる語は、その標準的な意味で用いられる（例えば、Ｈａｒｌｏｗら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ （１９８８）を参照のこと）。
【００２２】
本明細書にて用いる場合、「改変抗体」は一の型の変性抗体、すなわち、選択されたアクセプター抗体の軽鎖および／または重鎖可変ドメインが選択されたエピトープに対して特異性を有する１またはそれ以上のドナー抗体から由来の類似する部分により置換されている完全長の合成抗体（例えば、抗体フラグメントに対立するキメラまたはヒト化抗体）として記載する。例えば、そのような分子は修飾されていない軽鎖（またはキメラ軽鎖）と関連するヒト化重鎖あるいはその逆により特徴付けられる抗体を包含する。改変抗体はまた、ドナー抗体結合特異性を保持するためにアクセプター抗体の軽鎖および／または重鎖可変ドメインのフレームワーク領域をコードする核酸配列が変形されていることにより特徴付けることもできる。これらの抗体はアクセプター抗体から由来の１またはそれ以上のＣＤＲ（好ましくはすべてのＣＤＲ）が本明細書に記載のドナー抗体から由来のＣＤＲで置換されていてもよい。
【００２３】
「キメラ抗体」とは、アクセプター抗体から由来の軽鎖および重鎖定常部と共にドナー抗体から由来の天然に存在する可変領域（軽鎖および重鎖）を有する一の型の改変抗体をいう。
【００２４】
「ヒト化抗体」とは、ヒト以外のドナーの免疫グロブリンから由来のＣＤＲを有する一の型の改変抗体であって、その分子の残りの免疫グロブリン誘導部が一の（またはそれ以上の）ヒト免疫グロブリン（複数でも可）から由来する改変抗体をいう。加えて、フレームワーク支持残基を結合親和性を保持するように改変してもよい（例えば、Ｑｕｅｅｎら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ、８６：１００２９−１００３２（１９８９）；Ｈｏｄｇｓｏｎら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、９：４２１（１９９１）を参照のこと）。
【００２５】
「ドナー抗体」なる語は、変性免疫グロブリンのコーディング領域を提供し、ドナー抗体の特徴である抗原特異性および中和活性を有する変性抗体を発現するように、可変領域、ＣＤＲまたは他の機能性領域あるいはそのアナログを第１免疫グロブリンパートナーに付与する抗体（モノクローナルまたは組換え体）をいう。本発明にて用いるのに適当な一のドナー抗体は、２Ｂ６と称されるヒト以外のドナー（すなわち、ネズミ）中和モノクローナル抗体である。その２Ｂ６抗体は、高親和性の、ヒト−ＩＬ−５特異的な（すなわち、ネズミＩＬ−５を認識しない）、適当なネズミＩｇＧ定常領域に、各々、配列番号２および１６の可変軽鎖ＤＮＡおよびアミノ酸配列を、および各々、配列番号１および１５の可変重鎖ＤＮＡおよびアミノ酸配列を有するイソタイプＩｇＧ１の中和抗体と定義される。
【００２６】
「アクセプター抗体」なる語は、その重鎖および／または軽鎖フレームワーク領域ならびにその重鎖および／または軽鎖定常領域をコードする核酸配列のすべて（またはいずれかの部分であるが、好ましくはすべて）を第１免疫グロブリンパートナーに付与する、ドナー抗体に対して異種の抗体（モノクローナルまたは組換え体）をいう。ヒト抗体がアクセプター抗体であることが好ましい。
【００２７】
「ＣＤＲ」は、免疫グロブリンの重鎖および軽鎖超可変領域である、抗体の相補性決定領域のアミノ酸配列と定義される。例えば、Ｋａｂａｔら、Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第４版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（１９８７）を参照のこと。免疫グロブリンの可変部には、３つの重鎖および３つの軽鎖ＣＤＲ（またはＣＤＲ領域）がある。かくして、本明細書にて用いる「ＣＤＲ」は３つのすべての重鎖ＣＤＲまたは３つのすべての軽鎖ＣＤＲ（あるいは適当ならば、すべての重鎖とすべての軽鎖の両方のＣＤＲ）をいう。
【００２８】
ＣＤＲは抗体が抗原またはエピトープに結合するための多数の接触残基を提供する。本発明の目的とするＣＤＲはドナー抗体の可変重鎖および軽鎖配列より誘導され、天然に存在するＣＤＲのアナログを包含し、そのアナログもまた、それらを誘導するドナー抗体と同じ抗原結合特異性および／または中和能を共有あるいは保持している。
【００２９】
「抗原結合特異性または中和能を共有する」とは、例えば、ｍＡｂ ２Ｂ６はあるレベルの抗原親和性により特徴付けることができるが、適当な構造環境下にある２Ｂ６の核酸配列によりコードされるＣＤＲはより低いまたは高い親和性を有してもよいことを意味する。にもかかわらず、そのような環境下にある２Ｂ６のＣＤＲは２Ｂ６と同じエピトープを認識すると考えられる。２Ｂ６の代表的な重鎖ＣＤＲは、配列番号７；配列番号８；配列番号９を包含し、２Ｂ６の代表的な軽鎖ＣＤＲは、配列番号１０；配列番号１１；配列番号１２を包含する。
【００３０】
「機能的フラグメント」は、そのフラグメントを誘導する抗体と同じ抗原結合特異性および／または中和能を保持している部分的重鎖または軽鎖可変配列（免疫グロブリン可変領域のアミノまたはカルボキシ末端が僅かに欠失している配列）である。
【００３１】
「アナログ」は、少なくとも１個のアミノ酸により修飾されているアミノ酸配列であって、その修飾はアミノ酸が生物学的特性、例えば、非修飾配列の抗原特異性および高親和性を保持できるように、化学的に、あるいは２ないし３個（すなわち、１０個以下）のアミノ酸を置換または再配列することができるものである。例えば、特定のエンドヌクレアーゼ制限部位がＣＤＲコード領域内またはその周囲で形成される場合、置換を介して（サイレント）変異を行うことができる。
【００３２】
アナログはまた対立遺伝子変異として生じてもよい。「対立遺伝子変異または修飾」は、本発明のアミノ酸またはペプチド配列をコードする核酸配列の変化である。かかる変異または修飾は遺伝コードの縮重によるものであっても、または所望の特性を得るために故意に改変されたものであってもよい。これらの変異または修飾が、コードされたいずれかのアミノ酸配列において変化をもたらしてもよくまたはもたらさなくてもよい。
【００３３】
「エフェクター物質」なる語は、変性抗体および／または天然または合成の軽鎖または重鎖のドナー抗体あるいはドナー抗体の他のフラグメントが常套手段により結合していてもよい非タンパク質キャリア分子をいう。かかる非タンパク質キャリアは診断分野にて用いられる通常のキャリア、例えば、ポリスチレンまたは他のプラスチックビーズ、例えばＢＩＡｃｏｒｅ［Ｐｈａｒｍａｃｉａ］系において用いられるようなポリサッカリド、または医薬分野にて有用で、ヒトおよび動物への投与が安全な他の非タンパク質物質を包含することができる。他のエフェクター物質として、重金属原子を封鎖するためのマクロサイクルまたは放射性アイソトープが挙げられる。かかるエフェクター物質、例えばポリエチレングリコールは、変性抗体の半減期を増加させるのに有用であるかもしれない。
【００３４】
「好酸球の産生過多に伴う症状」とは、アレルギーおよび／またはアトピー応答、または限定されるものではないが、アレルギー鼻炎および喘息などの好酸球増加症に付随する応答をいう。
【００３５】
ＩＩ．高親和性ＩＬ−５モノクローナル抗体
本発明の抗体、変性抗体およびフラグメントの構築において用いる場合、ヒト以外の種（例えば、ウシ、ヒツジ、サル、ニワトリ、齧歯動物（例えば、ネズミおよびラット）など）を用い、天然のＩＬ−５またはそのペプチドエピトープを付与して所望の免疫グロブリンを得ることができる。従来のハイブリドーマ技法を用いてヒト以外の種のｍＡｂをＩＬ−５に分泌するハイブリドーマ細胞系を得る。そのようなハイブリドーマを、実施例のセクションにおいて記載されるように、９６−ウェルプレートに被覆したＩＬ−５、あるいは別法としてストレプタビジン被覆プレートに結合したビオチニル化ＩＬ−５を一緒に用いて結合についてスクリーニングする。
【００３６】
一の具体的な本発明の高親和性中和ｍＡｂは、以下の実施例１においてさらに詳細に記載される、キメラまたはヒト化抗体の開発のために用いることのできるｍＡｂ ２Ｂ６、ネズミ抗体である。２Ｂ６ ｍＡｂは、ＩＬ−５について３．５ｘ１０−１１Ｍよりも小さなＫｄ（約２．２ｘ１０−１１Ｍ）を有する、ヒトＩＬ−５との抗原結合特異性により特徴付けられる。２Ｂ６から由来のＦａｂフラグメントのＩＬ−５についてのＫｄ（実施例３Ｈを参照のこと）を光学バイオセンサーにより測定した場合、約９ｘ１０−１１Ｍであると評価された。ｍＡｂ ２Ｂ６がヒトＩＬ−５とヒトＩＬ−５レセプターのα鎖の間の結合相互作用を遮断することは明らかである。
【００３７】
もう一つ別の望ましいドナー抗体はネズミｍＡｂ ２Ｅ３である。このｍＡｂはイソタイプＩｇＧ２ａであること、３．５ｘ１０−１１Ｍ（約２．０ｘ１０−１１Ｍ）以下のｈＩＬ−５に対する解離定数を有することにより特徴付けられる。
【００３８】
さらに、もう一つ別の所望のドナーはラットｍＡｂ ４Ａ６である。このｍＡｂはｈＩＬ−５に対して３．５ｘ１０−１１Ｍ（約１．８ｘ１０−１１Ｍ）以下の解離定数を有することにより特徴付けられる。加えて、ｍＡｂ ４Ａ６がヒトＩＬ−５とＩＬ−５レセプターのβ−鎖の間の結合相互作用を遮断するのは明らかである。ｍＡｂ ４Ａ６はヒトＩＬ−５がＩＬ−５レセプターのα鎖に結合することを遮断しない。かくして、ｍＡｂ ４Ａ６はヒトＩＬ−５およびＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖の複合体を結合する。
【００３９】
本発明は、２Ｂ６ ｍＡｂ、２Ｅ３ ｍＡｂまたはその超可変（すなわち、ＣＤＲ）配列の使用に限定されるものではない。ヒトＩＬ−５および対応する抗−ＩＬ−５ ＣＤＲに対して３．５ｘ１０−１１Ｍ以下の解離定数により特徴付けられる他の適当な高親和性ＩＬ−５抗体をその代わりに用いてもよい。以下の記載においては常に、ドナー抗体は２Ｂ６または２Ｅ３と同定されるが、この称呼は単に記載を明瞭かつ簡潔にするにすぎない。
【００４０】
ＩＩＩ．抗体フラグメント
本発明はまたヒトＩＬ−５と対抗して方向づけられるｍＡｂより由来のＦａｂフラグメントまたはＦ（ａｂ’）２フラグメントの使用を包含する。これらのフラグメントはＩＬ−５および好酸球介在症状に対するインビボにおける保護剤として、あるいはＩＬ−５診断剤として有用である。Ｆａｂフラグメントは軽鎖全体および重鎖のアミノ末端部を含有し；Ｆ（ａｂ’）２フラグメントはジスルフィド結合により結合した２つのＦａｂフラグメントにより形成されるフラグメントである。ｍＡｂ ２Ｂ６、２Ｅ３および他の同様の高親和性のＩＬ−５結合抗体は、ＦａｂフラグメントおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントの供給源を提供し、常套手段、例えば、ｍＡｂを適当なタンパク質分解酵素、パパインおよび／またはペプシンで切断することにより、または組換え技法により得ることができる。これらのＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、それ自体が治療剤、保護剤または診断剤として、および本明細書に記載の組換え体またはヒト化抗体の形成において有用な可変領域およびＣＤＲ配列を含む配列のドナーとして有用である。
【００４１】
ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、コンビナトリアルファージライブラリー（例えば、Ｗｉｎｔｅｒら、Ａｎｎ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１２：４３３−４５５（１９９４）を参照のこと）を介するか、または免疫グロブリンチェインシャフリング（例えば、Ｍａｒｋｓら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０：７７９−７８３（１９９２）を参照のこと）（共に出典明示により本明細書の一部とする）を介して構築することができ、ここで選択された抗体（例えば、２Ｂ６）からのＦｄまたはＶＨ免疫グロブリンを軽鎖免疫グロブリンのレパートリー、ＶＬ（またはＶＫ）と結合させ、新規なＦａｂを形成することができる。反対に、選択された抗体からの軽鎖免疫グロブリンを重鎖免疫グロブリンのレパートリー、ＶＨ（またはＦｄ）と結合させて新規なＦａｂを形成することもできる。実施例においてさらに詳細に記載されるように、ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｂを軽鎖免疫グロブリンのレパートリーと結合させると中和ＩＬ−５Ｆａｂが得られた。すなわち、チェインシャフリング法により独特な配列（ヌクレオチドおよびアミノ酸）を有する中和Ｆａｂを回収することができる。
【００４２】
ＩＶ．．目的とする抗−ＩＬ−５アミノ酸およびヌクレオチド配列
ｍＡｂ ２Ｂ６または前記の他の抗体は、ドナー抗体の抗原結合特異性により特徴付けられる種々の変性抗体を設計して得るのに有用な、可変重鎖および／または軽鎖ペプチド配列、フレームワーク配列、ＣＤＲ配列、その機能的フラグメントおよびアナログ、ならびにそれらをコードする核酸配列などの配列を付与する。
【００４３】
一例として、本発明は、ＩＬ−５ネズミ抗体２Ｂ６からの可変軽鎖および可変重鎖配列およびそれに由来する配列を提供する。２Ｂ６の重鎖可変領域を図１に示す。ＣＤＲコード化領域はボックス部で示されており、配列番号７；配列番号８および配列番号９にて提供される。２Ｂ６の軽鎖クローン可変領域を図２に示す。ＣＤＲコード化領域は配列番号１０；配列番号１１および配列番号１２で提供される。
【００４４】
ヒト化重鎖可変領域を図８（配列番号１８および１９）で示す。シグナル配列もまた、配列番号１７で示す。他の適当なシグナル配列は当業者に公知であり、本明細書に列挙されているシグナル配列と置き換えてもよい。この構築体のＣＤＲアミノ酸配列は元のネズミのおよびキメラ重鎖ＣＤＲと同じであり、配列番号７；配列番号８および配列番号９で提供される。具体的な（合成）ヒト化軽鎖可変配列を図９（配列番号２０および２１）に示す。
【００４５】
可変軽鎖および重鎖ペプチド配列をコードする、本発明の核酸配列またはそのフラグメントはまた、ＣＤＲをコードする核酸配列またはフレームワーク領域内にて特異的変化を変異誘発発生導入するのに、および得られた修飾または融合核酸配列を発現用プラスミドに組み込むのに有用である。例えば、フレームワークおよびＣＤＲコード化領域のヌクレオチド配列におけるサイレント置換を用い、変異誘発発生ＣＤＲ（および／またはフレームワーク）領域の挿入を容易にする制限酵素部位を構成した。これらのＣＤＲコード化領域は本発明のヒト化抗体の構築に用いた。
【００４６】
遺伝暗号の縮重性を考慮すれば、本発明の可変重鎖および軽鎖アミノ酸配列およびＣＤＲ配列、ならびにドナー抗体の抗原特異性を共有するその機能的フラグメントおよびアナログをコードする種々のコーディング配列を構築することができる。可変鎖ペプチド配列またはＣＤＲをコードする、本発明の単離された核酸配列またはそのフラグメントを用いて変性抗体、例えば、キメラまたはヒト化抗体、または別の免疫グロブリンパートナーと機能的に結合させた本発明の他の改変抗体を産生することができる。
【００４７】
本明細書に記載の変性抗体の一部をコードする単離された核酸配列に加えて、元のＣＤＲコード化配列に相補的な配列またはそのＣＤＲコード化領域の周りの修飾されたヒトフレームワーク領域に相補的な配列などの、別のそのような核酸配列も本発明に含まれる。有用なＤＮＡ配列は、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下（Ｔ． Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ （１９８２）、３８７−３８９頁を参照のこと）でＤＮＡ配列とハイブリダイズする配列を包含する。そのようなストリンジェントなハイブリダイゼーション条件の一例は、４ｘＳＳＣ、６５℃でハイブリダイゼーションし、つづいて０．１ｘＳＳＣ中で１時間洗浄するものである。また、代表的なストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、５０％ホルムアミド中、４ｘＳＳＣ、４２℃での条件である。好ましくは、これらのハイブリダイゼーションするＤＮＡ配列は、その長さが少なくとも１８個のヌクレオチドであり、すなわち略ＣＤＲの大きさである。
【００４８】
Ｖ．変性免疫グロブリン分子および変性抗体
変性免疫グロブリン分子は、キメラ抗体およびヒト化抗体などの改変抗体を含む変性抗体をコードすることができる。所望の変性免疫グロブリンのコーディング領域は、第１免疫グロブリンパートナー（ヒトフレームワークまたはヒト免疫グロブリン可変領域）に挿入されるＩＬ−５抗体、好ましくは本発明により得られるような高親和性抗体の抗原特異性を有するペプチドをコードするＣＤＲコード化領域を含有する。
【００４９】
好ましくは、第１免疫グロブリンパートナーは、第２免疫グロブリンパートナーに作動可能に連結している。第２免疫グロブリンパートナーは前記に定義されているとおりであり、目的とする第２抗体領域、例えばＦｃ領域をコードする配列を有していてもよい。第２免疫グロブリンパートナーはまた、軽鎖または重鎖の定常領域がフレームにてまたはリンカー配列により融合する別の免疫グロブリンをコードする配列を含んでいてもよい。ＩＬ−５の機能的フラグメントまたはアナログに拮抗するように指向された改変抗体を、同一抗体との結合の強化を惹起するように設計してもよい。
【００５０】
第２免疫グロブリンパートナーをまた、非タンパク質キャリアー分子を含む、第２免疫グロブリンパートナーが常套手段により作動可能に連結することのできる、前記したエフェクター物質と結合させてもよい。
【００５１】
第２免疫グロブリンパートナー、例えば、抗体配列と、エフェクター物質との融合または連結は、いずれか適当な手段、例えば、通常の共有結合またはイオン結合、タンパク質融合、またはヘテロ−二機能的架橋剤、例えば、カルボジイミド、グルタルアルデヒドなどによるものである。かかる技法は当該分野にて知られており、汎用的な化学および生化学テキストに記載されている。
【００５２】
加えて、第２免疫グロブリンパートナーとエフェクター物質との間に所望の間隔を付与するにすぎない通常のリンカー配列をまた、変性免疫グロブリンのコーディング領域に構築することもできる。そのようなリンカーの設計は当業者に周知である。
【００５３】
加えて、本発明の分子についてのシグナル配列を修飾し、発現を向上させることもできる。一例として、ネズミ重鎖配列から由来のシグナル配列およびＣＤＲを有する２Ｂ６ヒト化抗体は、最初のシグナルペプチドがもう一つ別のシグナル配列（配列番号１７）で置換されている。
【００５４】
一の典型的な変性抗体は、ｍＡｂ ２Ｂ６の抗原特異性を有する可変重鎖および／または軽鎖のペプチドまたはタンパク質配列、例えばＶＨおよびＶＬ鎖を有する。
【００５５】
本発明のさらに別の望ましい変性抗体は、ネズミ抗体分子２Ｂ６の重鎖および／または軽鎖の可変領域のＣＤＲの少なくとも１つ、好ましくは全てを、ヒト起源から由来の残りの配列、あるいはその機能的フラグメントまたはアナログと共に含有するアミノ酸配列により特徴付けられる。例えば、ヒト化ＶＨおよびＶＬ領域（図８および９）を参照のこと。
【００５６】
別のさらなる具体例において、本発明の改変抗体を別の物質と結合させてもよい。例えば、組換えＤＮＡ技法の操作を用いて、完全な抗体分子のＦｃフラグメントまたはＣＨ２ ＣＨ３ドメインが酵素または他の検出可能な分子（すなわち、ポリペプチドのエフェクターまたはレポーター分子）により置換されている、本発明の改変抗体を産生することができる。
【００５７】
第２免疫グロブリンパートナーもまた、ネズミ２Ｂ６の抗原特異性を有するＣＤＲ含有配列に異種的な非免疫グロブリンペプチド、タンパク質またはそのフラグメントに作動可能に連結させることができる。得られたタンパク質は、抗−ＩＬ−５抗原特異性と、発現して非免疫グロブリンの特性の両方を示すかもしれない。その融合パートナーの特性は、例えば、別の結合またはレセプタードメインなどの機能的特性であってもよく、あるいは融合パートナーその物が治療タンパク質である場合の治療特性または付加的な抗原特性であってもよい。
【００５８】
本発明の別の望ましいタンパク質は、完全な長さの重鎖および軽鎖またはその別個のフラグメント、例えばＦａｂまたはＦ（ａｂ’）２フラグメント、重鎖ダイマー、またはＦＶまたは単鎖抗体（ＳＣＡ）などのその最小組換えフラグメント、あるいは選択されたドナーｍＡｂ、例えばｍＡｂ ２Ｂ６または２Ｅ３と同様の特異性を有する他の分子を有する完全な抗体分子を含んでいてもよい。かかるタンパク質は変性抗体の形態にて用いてもよく、あるいはその非融合形態にて用いてもよい。
【００５９】
第２免疫グロブリンパートナーがドナー抗体と異なる抗体、例えばイソタイプまたは種の免疫グロブリンのフレームワークまたは定常領域より誘導される場合はいつでも、改変抗体が結果として生じる。改変抗体は、一の起源、例えば、アクセプター抗原からの免疫グロブリン（Ｉｇ）定常領域と可変フレームワーク領域、およびドナー抗体、例えば、本明細書に記載の抗−ＩＬ−５抗体からの１またはそれ以上の（好ましくはすべての）ＣＤＲを有し得る。加えて、アクセプターｍＡｂの軽鎖および／または重鎖の可変ドメインフレームワーク領域の核酸またはアミノ酸レベルでの、またはドナーＣＤＲ領域の改変、例えば、欠失、置換または付加を、ドナー抗体の抗原結合特異性を保持するために行ってもよい。
【００６０】
そのような改変抗体を、（前記したように修飾されていてもよい）ＩＬ−５ｍＡｂの一方（または両方）の可変重鎖および／または軽鎖あるいは１またはそれ以上の以下に示す重鎖または軽鎖ＣＤＲ（図７を参照のこと）を用いるように設計する。本発明の改変抗体は中和作用を示し、すなわち、該抗体は、望ましくは、ＩＬ−５タンパク質のレセプターへの結合を遮断し、ＩＬ−５依存性細胞の増殖を遮断または妨げる。
【００６１】
かかる改変抗体は、選択されたヒト免疫グロブリンまたはサブタイプのフレームワーク領域を含有するヒト化抗体、またはＩＬ−５抗体の機能的フラグメントに融合したヒト重鎖および軽鎖の定常領域を含有するキメラ抗体を有していてもよい。適当なヒト（または他の動物）アクセプター抗体は、ドナー抗体のヌクレオチドまたはアミノ酸配列との相同性により、慣用的データベース、例えば、ＫＡＢＡＴ（登録商標）データベース、Ｌｏｓ Ａｌａｍｏｓ データベースおよびＳｗｉｓｓ Ｐｒｏｔｅｉｎ データベースより選択されるものであってもよい。（アミノ酸を基礎として）ドナー抗体のフレームワーク領域との相同性により特徴付けられるヒト抗体は、ドナーＣＤＲを挿入するための重鎖の定常領域および／または重鎖の可変フレームワーク領域を供給するのに適しているかもしれない。軽鎖の定常または可変フレームワーク領域を供与することのできる適当なアクセプター抗体は同様の方法により選択することができる。アクセプター抗体の重鎖および軽鎖は同一のアクセプター抗体より得ることを要しないことに留意すべきである。
【００６２】
異種フレームワークおよび定常領域は、ＩｇＧ（サブタイプ１ないし４）、ＩｇＭ、ＩｇＡおよびＩｇＥなどのヒト免疫グロブリン種およびイソタイプより選択されることが望ましい。しかしながら、アクセプター抗体はヒト免疫グロブリンのタンパク質配列だけを有している必要はない。例えば、ヒト免疫グロブリン鎖の一部をコードするＤＮＡ配列が非免疫グロブリンアミノ酸配列、例えばポリペプチドのエフェクターまたはレポーター分子をコードするＤＮＡ配列に融合するように遺伝子を構築してもよい。
【００６３】
特に望ましいヒト化抗体は、一例として、選択されたヒト抗体配列のフレームワーク領域上に挿入された２Ｂ６のＣＤＲを有する。ヒト化中和抗体では、ＩＬ−５抗体の重鎖および／または軽鎖の可変領域からの１、２または好ましくは３個のＣＤＲを、選択されたヒト抗体配列のフレームワーク領域に挿入し、ヒト抗体の本来のＣＤＲと置き換える。
【００６４】
好ましくは、ヒト化抗体中の、ヒト重鎖および軽鎖の可変ドメインを１またはそれ以上のＣＤＲ置換により改変する。６個すべてのＣＤＲをまたは６個より少ないＣＤＲを種々組み合わせて用いることが可能である。６個すべてのＣＤＲを置換することが好ましい。軽鎖としてヒトアクセプター抗体から由来の非修飾軽鎖を用い、ヒト重鎖においてのみＣＤＲを置換することも可能である。さらに別法として、通常の抗体データベースに依存して、別のヒト抗体から適合可能な軽鎖を選択することができる。改変抗体の残りは、いずれか適当なヒト免疫グロブリンより誘導することができる。
【００６５】
かくして、改変されたヒト化抗体は、天然のヒト抗体またはそのフラグメントの構造を有し、効果的な治療用途、例えば、ヒトにおけるＩＬ−５介在炎症疾患の治療、あるいは診断用途に必要な特性を組み合わせて有することが好ましい。
【００６６】
もう一つ別の例として、改変抗体は、２Ｅ３の軽鎖の可変領域の３つのＣＤＲ（配列番号１０、１１および１３）および２Ｂ６の重鎖の可変領域の３つのＣＤＲ（配列番号７，８および９）を有していてもよい。得られたヒト化抗体はｍＡｂ ２Ｂ６の同じ抗原結合特異性および高親和性により特徴付けられるはずである。
【００６７】
当業者であれば、必然的にドナー抗体の特異性および高アフィニティーに影響を及ぼすことなく、可変ドメインのアミノ酸を変化させることにより、改変抗体（すなわち、アナログ）をさらに修飾してもよいことが理解されるであろう。重鎖および軽鎖のアミノ酸が可変ドメインフレームワークまたはＣＤＲのいずれかでもしくはその両方にて他のアミノ酸で置換されていてもよいと考えられる。
【００６８】
加えて、定常領域を改変し、本発明の分子の選択性を強化または減少させてもよい。例えば、二量体化、Ｆｃレセプターとの結合、または補体と結合して活性化することができる（例えば、Ａｎｇａｌら、Ｍｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、３０：１０５−１０８（１９９３）、Ｘｕら、Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．、２６９：３４６９−３４７４（１９９４）、Ｗｉｎｔｅｒら、ＥＰ３０７４３４−Ｂを参照のこと）。
【００６９】
キメラ抗体である変性抗体は、フレームワーク領域を含む、完全なヒト以外のドナー抗体の重鎖および軽鎖の可変領域を、ヒト免疫グロブリンの両鎖の定常領域と一緒に提供することで、前記したヒト化抗体と区別される。本発明のヒト化抗体に関連して付加的な非ヒト配列を保持するキメラ抗体はヒトにて有意な免疫応答を惹起させると考えられる。
【００７０】
そのような抗体は、以下に示すようなＩＬ−５介在疾患の予防および治療にて有用である。
【００７１】
ＶＩ．変性および改変抗体の産生
好ましくは、ｍＡｂ ２Ｂ６または他の適当なドナーｍＡｂ（例えば、２Ｅ３、２Ｆ２，４Ａ６など）の可変軽鎖および／または重鎖配列およびＣＤＲおよびそのコード化核酸配列を、以下の方法により、本発明の変性抗体、好ましくはヒト化抗体の構築に利用する。同一または類似する技法を用いて、本発明の他の具体例を実施してもよい。
【００７２】
選択されたドナーｍＡｂ、例えば、ネズミ抗体２Ｂ６を産生するハイブリドーマを慣用的にクローンし、その重鎖および軽鎖の可変領域のＤＮＡを当業者に公知の方法、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８９））に記載の方法により得る。少なくともＣＤＲをコードする領域およびドナーｍＡｂ結合特異性を保持するために必要とされるアクセプターｍＡｂの軽鎖および／または重鎖の可変ドメインフレームワーク領域の部分、ならびにヒト免疫グロブリンより由来の抗体鎖の残りの免疫グロブリン誘導部を含有する２Ｂ６の重鎖および軽鎖の可変領域は、ポリヌクレオチドのプライマーおよび逆転写酵素を用いて得られる。そのＣＤＲをコードする領域は既知のデータベースを用いて他の抗体と比較することにより同定される。
【００７３】
ついで、マウス／ヒトのキメラ抗体を調製し、結合能についてアッセイする。かかるキメラ抗体は完全なヒト以外のドナー抗体ＶＨおよびＶＬ領域を、両鎖のヒトＩｇ定常領域と共に含有する。
【００７４】
ヒト抗体からの重鎖の可変領域の同種フレームワーク領域をコンピューターデーターベース、例えば、ＫＡＢＡＴ（登録商標）を用いて同定し、２Ｂ６と相同性を有するヒト抗体をアクセプター抗体として選択した。２Ｂ６ ＣＤＲをコードする領域をヒト抗体フレームワーク内に含有する合成した重鎖の可変領域の配列を、フレームワーク領域にて任意のヌクレオチド置換で制限部位が組み込まれるように設計した。ついで、この設計された配列を長鎖合成オリゴマーを用いて合成した。別法として、その設計された配列をオリゴヌクレオチドを重ね、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅し、誤りを正すことにより合成することもできる。
【００７５】
適当な軽鎖の可変フレームワーク領域を同様にして設計した。
【００７６】
ヒト化抗体はキメラ抗体から誘導してもよく、あるいは好ましくは、重鎖および軽鎖からのドナーｍＡｂのＣＤＲをコードする領域を、適宜、選択された重鎖および軽鎖フレームワーク内に挿入することにより製造することもできる。別法として、本発明のヒト化抗体を標準的な突然変異誘発法を用いて調製してもよい。かくして、得られたヒト化抗体はヒトフレームワーク領域およびドナーｍＡｂ ＣＤＲをコードする領域を含有する。つづいてフレームワークの残基を製造してもよい。得られたヒト化抗体を組換え宿主細胞、例えば、ＣＯＳ、ＣＨＯまたは骨髄腫細胞にて発現させることができる。この技法を用いて、他のヒト化抗体を他の適当なＩＬ−５特異的、中和、高親和性、非ヒト抗体について調製してもよい。
【００７７】
変性抗体についてのこれらのコーディング配列を宿主細胞における複製ならびに発現および／または宿主細胞からの分泌を調節する能力を有する通常の調節対照配列と機能的に組み合わせて配置することにより、通常の発現ベクターまたは組換えプラスミドを産生する。調節配列は、プロモーター配列、例えば、ＣＭＶプロモーターおよびシグナル配列を包含し、他の既知の抗体より誘導することができる。同様に、相補的抗体の軽鎖または重鎖をコードするＤＮＡ配列を有する第２発現ベクターを産生することができる。この第２発現ベクターは、できる限り各ポリペプチド鎖が機能的に発現されるように、コーディング配列および選択可能なマーカーが関係する範囲を除いて第１発現ベクターと同一であることが好ましい。また、変性抗体の重鎖および軽鎖のコーディング配列がシグナルベクター上に存していてもよい。
【００７８】
選択された宿主細胞は、一般的技法により、第１および第２の両方のベクターで共トランスフェクション（または、単一のベクターで単一トランスフェクション）され、組換えまたは合成の軽鎖および重鎖の両方を有してなる本発明のトランスフェクションされた宿主細胞を形成する。ついで、このトランスフェクションされた細胞を一般的技法により培養し、本発明の改変抗体を産生する。組換え重鎖および／または軽鎖の両方の結合体を含むヒト化抗体を、適当なアッセイ、例えば、ＥＬＩＳＡまたはＲＩＡにより培養体よりスクリーンする。同様の一般的技法を用いて本発明の他の変性抗体および分子を構築してもよい。
【００７９】
当業者は、本発明の方法および組成物の構築に用いられるクローニングおよびサブクローニング工程のための適当なベクターを選択する。例えば、通常のｐＵＣシリーズのクローニングベクターを用いてもよい。使用されるベクターの一つがｐＵＣ１９であり、例えば、Ａｍｅｒｓｈａｍ（Ｂｕｃｋｉｎｇｈａｍｓｈｉｒｅ、Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｍ）またはＰｈａｒｍａｃｉａ（Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）より入手可能である。加えて、容易に複製することのできるいずれのベクターも多くのクローニング部位および選択可能な遺伝子（例えば、抗生物質耐性）を有しており、操作が簡単であり、クローニングに用いることができる。かくして、クローニングベクターの選択は本発明を限定するファクターではない。
【００８０】
同様に、本発明に係る改変抗体の発現に用いられるベクターは、当業者であれば一般的ないずれのベクターからも選択することができる。ベクターはまた、選択された宿主細胞における異種ＤＮＡ配列の複製および発現を指向する選択された調節配列（例えば、ＣＭＶプロモーター）を有する。これらのベクターは、改変抗体または変性免疫グロブリンのコーディング領域をコードする前記したＤＮＡ配列を有する。加えて、ベクターは取り扱いを容易にするために所望の制限部位を挿入することで修飾された選択免疫グロブリン配列が組み込まれていてもよい。
【００８１】
発現ベクターはまた、異種ＤＮＡ配列の発現を増幅するのに適した遺伝子、例えば、哺乳動物のジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）により特徴付けることもできる。他の好ましいベクター配列は、ウシ成長ホルモン（ＢＧＨ）からのようなポリＡシグナル配列およびベータグロビンプロモーター配列（ベータグロプロ）を包含する。本明細書中において有用な発現ベクターは、当業者に周知の方法により合成してもよい。
【００８２】
かかるベクターの成分、例えば、レプリコン、選択遺伝子、エンハンサー、プロモーター、シグナル配列などは市販または天然源より入手してもよく、あるいは選択宿主における組換えＤＮＡの産物の発現および／または分泌を方向づけるのに用いる公知操作により合成してもよい。哺乳動物、細菌、昆虫、酵母および真菌の発現の分野において多くの種類が知られている他の適当な発現ベクターもまたこの目的のために選択することができる。
【００８３】
本発明はまた、改変抗体またはその変性免疫グロブリン分子のコーディング配列を含有する組換えプラスミドでトランスフェクションされた細胞系も包含する。これらのクローニングベクターのクローニングおよび他の操作に関して有用な宿主細胞もまた一般的なものである。しかし、最も望ましくは、イー・コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）の種々の株からの細胞をクローニングベクターの複製および本発明の変性抗体の構築における他の工程に用いる。
【００８４】
本発明の改変抗体または変性抗体を発現させるのに適当な宿主細胞または細胞系は、ＣＨＯ、ＣＯＳ、繊維芽細胞（例えば、３Ｔ３）および骨髄細胞などの哺乳動物細胞であることが好ましく、より好ましくはＣＨＯまたは骨髄細胞である。分子をヒト糖鎖形成パターンで修飾されるようにする、ヒト細胞を用いてもよい。また他の真核生物細胞系を用いてもよい。適当な哺乳動物の宿主細胞ならびに形質転換、培養、増幅、スクリーニング、および産物の産生および精製の方法の選択は当該分野にて知られている。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、前掲を参照のこと。
【００８５】
細菌細胞が本発明の組換えＦａｂを発現するのに適した宿主細胞として有用であることが明らかにされた（例えば、Ｐｌｕｋｔｈｕｎ，Ａ．、Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｒｅｖ．、１３０：１５１−１８８（１９９２）を参照のこと）。しかしながら、細菌細胞にて発現されたタンパク質は、折りたたまれていないか、不当に折りたたまれた形態にあるか、または糖鎖形成されていない形態にあるという傾向のため、細菌細胞にて産生されるいずれの組換えＦａｂも抗原結合能を保持するためにスクリーニングされなければならないであろう。細菌細胞により発現される分子が適宜折りたたまれた形態にて産生されたならば、その細菌細胞は望ましい宿主であろう。例えば、発現のために用いられるイー・コリの種々の菌株が生物工学の分野にて宿主細胞としてよく知られている。バチルス・サチリス（Ｂ． ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、他のバチルス属などの種々の菌株もまたこの方法にて利用することができる。
【００８６】
所望により、当該分野の当業者に知られている酵母細胞の菌株を、ならびに昆虫細胞、例えば、ＤｒｏｓｏｐｈｉｌａおよびＬｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ、およびウイルス発現系の菌株を宿主細胞として利用してもよい。例えば、Ｍｉｌｌｅｒら、Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、８：２７７−２９８、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ（１９８６）およびその中の引用文献を参照のこと。
【００８７】
本発明のベクターを構築することのできる一般的方法、本発明の宿主細胞を産生するのに必要なトランスフェクション法、および本発明の変性抗体をかかる宿主細胞から産生するのに必要な培養方法はすべて慣用的技法である。同様に、一度産生した、本発明の変性抗体を、硫酸アンモニウム沈降、アフィニティーカラム、カラムクロマトグラフィー、ゲル電気泳動などを含む、当該分野における標準技法に従って、細胞培養物より精製することができる。かかる方法は当該分野の範囲内であり、本発明を限定するものではない。
ヒト化抗体のさらに別の発現法として、米国特許第４８７３３１６号に記載されるように、トランスジェニック動物における発現を利用することができる。この特許はトランスジェニック的に哺乳動物に組み込まれた場合に雌がミルク中に所望の組換えタンパク質を産生させるような動物のカゼインプロモーターを用いる発現系に関するものである。
改変抗体を所望の方法により発現させて、ついでその抗体を適当なアッセイを用いてインビトロ活性について試験する。近年一般的なＥＬＩＳＡアッセイフォーマットを利用して改変抗体とＩＬ−５の結合を定性的かつ定量的に評価する。加えて、さらにその後にヒト臨床実験を行う前に他のインビトロアッセイを用いて中和効能を明確にし、通常のクリアランス機構にもかかわらず、体内における改変抗体の永続性を評価することができる。
２Ｂ６より調製されるヒト化抗体について記載されている操作に従って、当業者であれば他のドナーＩＬ−５抗体、可変領域配列および本明細書に記載のＣＤＲペプチドからヒト化抗体を構築することもできる。改変抗体は、改変抗体の受容体により潜在的に「自己」と認識される可変領域フレームワークで産生することもできる。可変領域のフレームワークを少し修飾し、受容体に対して免疫原性が顕著に増加することなく、抗原結合を大きく増加させることができる。そのような改変抗体は、ＩＬ−５介在症状に対してヒトを効果的に治療するかもしれない。かかる抗体はまたそのような症状の診断に有用であるかもしれない。
【００８８】
ＶＩＩ．治療／予防／診断的使用
本発明はまた、好酸球関連徴候、すなわち、好酸球産生過多に伴う症状、例えば喘息を患っているヒトの治療法であって、１またはそれ以上の本明細書に記載の改変抗体または変性抗体、またはそのフラグメントを含む、有効量の抗体を投与することからなる方法に関する。
【００８９】
本発明の分子を用いて誘発される治療応答は、分子がヒトＩＬ−５に結合し、つづいて好酸球刺激を遮断することにより誘起される。好ましくは、本発明の分子は、ヒトＩＬ−５との結合についてＩＬ−５レセプターアルファ−鎖と競合しない。すなわち、本発明の好ましい分子は、ヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターのα鎖に結合することを遮断しない。かくして、治療に用いるのに適する製剤および処方において、本発明の分子は、アレルギーおよび／またはアトピー応答、または好酸球増加症に付随する応答、例えば、限定されるものではないが、アレルギー性鼻炎、喘息、慢性好酸球性肺炎、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症、小児脂肪便症、好酸球性胃腸炎、チャーグ−ストラウス症候群（結節性動脈周囲炎＋アトピー）、好酸球性筋痛症候群、過好酸球性症候群、偶発性血管性浮腫を含む浮腫性反応、ぜん虫感染（好酸球が予防機能を有するかもしれない）、オンコセルカ皮膚炎およびアトピー性皮膚炎を経験している人々には極めて望ましいものである。
【００９０】
本発明の変性抗体、抗体およびそのフラグメントはまた、他の抗体、特に本発明の改変抗体が対向して関与する症状の原因である他のマーカー（エピトープ）と反応的なヒトｍＡｂと一緒に用いてもよい。
【００９１】
本発明の治療薬は、約２日から約３週間の、または必要に応じて、アレルギー症状の治療に望ましいと考えられる。例えば、より長期の治療は季節性鼻炎などを治療する場合に望ましい場合もある。これはＩＬ−５介在障害の従来の治療で現在使用されている注入プロトコルよりもかなり優れている。投与量および治療期間は本発明の分子のヒト循環にある相対的な期間と関連しており、治療すべき症状および患者の健康に応じて当業者であれば調節することができる。
【００９２】
本発明の治療薬の投与方法は、該治療薬を宿主にデリバリーする適当な経路とすることができる。本発明の変性抗体、抗体、改変抗体およびそのフラグメント、ならびに医薬組成物は、非経口投与、すなわち、皮下、筋肉内、静脈内または経鼻内投与に特に有用である。
【００９３】
本発明の治療薬は、医薬上許容される担体中に、有効成分として本発明の改変（例えば、ヒト化）抗体を有効量含有してなる医薬組成物として調製できる。本発明の予防薬において、注射の準備の整った形態の、好ましくは生理学的ｐＨに緩衝処理した、改変抗体を含有する水性懸濁液または水溶液が好ましい。非経口投与用組成物は、一般に、医薬上許容される担体、好ましくは水性担体に溶かした本発明の改変抗体の溶液またはそのカクテルを含む。種々の水性担体、例えば、０．４％セイライン、０．３％グリシンなどを用いてもよい。これらの溶液は滅菌されており、一般に粒状物を含まない。これらの溶液は、慣用的な周知滅菌技法（例えば、濾過）により滅菌処理できる。組成物は要すれば医薬上許容される補助物質を含有していてもよく、ｐＨ調節剤および緩衝剤などの生理学的条件に近づけることができる。かかる医薬処方中の本発明の抗体の濃度は、広範囲に、すなわち、約０．５重量％未満から、一般には約１重量％でまたは少なくとも１重量％から、１５または２０重量％程度まで変化させることができ、選択される特定の投与法に従って、流状体積、粘度等に基づいて主に選択されるであろう。
【００９４】
このように、筋肉内注射用の本発明の医薬組成物は、１ｍｌの滅菌緩衝水と、約１ｎｇないし約１００ｍｇ、例えば、約５０ｎｇないし約３０ｍｇ、さらに好ましくは約５ｍｇないし約２５ｍｇの本発明の改変抗体を含有するように調製される。同様に、静脈内注入用の本発明の医薬組成物は、約２５０ｍｌのＲｉｎｇｅｒ滅菌溶液と、約１ｍｇないし約３０ｍｇ、好ましくは５ｍｇないし約２５ｍｇの本発明の改変抗体を含有するように調製される。非経口投与可能な組成物の製法は周知であるかまたは当業者に明らかであり、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ、第１５版、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ、Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａにおいてより詳細に記載されている。
【００９５】
本発明の治療薬は、医薬製剤において、単位投与形にて投与されることが好ましい。適当な治療上有効な量は当業者であれば容易に決定することができる。ヒトまたは他の動物における炎症障害を効果的に治療するために、一回の用量が体重７０ｋｇ当たり約０．１ｍｇないし約２０ｍｇの本発明のタンパク質または抗体を、非経口的に、好ましくは静脈内または筋肉内投与すべきである。必要ならば、かかる投与を、炎症応答の間、顧問医によって適宜選択された適当な間隔で繰り返し行ってもよい。
【００９６】
本発明の抗体、変性抗体および改変抗体はまた、診断方法、例えばＩＬ−５介在障害を測定するために、またはかかる障害の治療の進行状況を追跡するために用いることができる。診断薬として、これらの抗体は、血清、血漿または他の適当な組織中のＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体のレベル、または培養基中のヒト細胞による放出を測定するための、ＥＬＩＳＡおよび他の慣用的アッセイフォーマットに使用するために慣用的に標識化することができる。変性抗体を使用するアッセイの特性は慣用的なものであり、本発明の開示を限定するものではない。
【００９７】
かくして、本発明の一の具体例は、患者におけるアレルギーおよび好酸球産生過多に付随する他の症状の診断を補助する方法であって、その患者から得られた試料（血漿または組織）中のヒトＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体の量を測定し、その測定量を正常な個体群におけるヒトＩＬ−５の平均量と比較して、それで患者の試料中に有意に多量のＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体が存在することが、アレルギーおよび好酸球の産生過多に付随する他の症状の徴候を示す方法に関する。
【００９８】
本発明の化合物をスクリーニングする具体例として、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を膜フラクションにてまたは細胞結合形にて単離し、複数の候補分子と接触させ、その中からレセプターと結合し、相互作用するレセプターを選択する。候補化合物は競合性スクリーニングアッセイに付すことができる。そのアッセイにおいては、既知リガンド、すなわち、好ましくは検出可能な分析用試薬、最も好ましくは放射活性で標識した、ヒトＩＬ−５またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体を試験すべき薬物と共に導入し、標識化リガンドの結合を阻害または亢進する化合物の能力を測定する。別法として、目的とする放射活性標識した候補化合物を用いることで、または候補化合物の相互作用または結合に由来する第２メッセンジャー効果により、結合または相互作用を直接測定することができる。化合物をそのアフィニティーの増加および目的とするレセプターに対する選択性についてスクリーニングする。無償で、すなわち、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖に対する効果を誘発することなく結合する分子は、おそらく、優れたアンタゴニストであろう。潜在的なアンタゴニストは、ＩＬ−５レセプターβ−鎖に特異的であり、それによりその活性を阻害または無効にする、小型有機分子、ペプチド、ポリペプチドおよび抗体を包含する。
【００９９】
本明細書に記載の抗体、変性抗体またはそのフラグメントは、貯蔵のために凍結乾燥し、使用前に適当な担体で復元することができる。この技法は一般的な免疫グロブリンで効果的であることがわかっており、当該分野にて公知の凍結乾燥法および復元操作を利用することができる。
【０１００】
以下の実施例は、典型的な改変抗体の構築ならびに適当なベクターおよび宿主細胞におけるその発現を含む、本発明の種々の態様を示すが、本発明の範囲を限定すると解釈すべきではない。アミノ酸はすべて慣用的な三文字または一文字コードで同定されている。必要な制限酵素、プラスミドおよび他の試薬および材料はすべて、特に限定しない限り、市販源より入手した。一般的クローニングライゲーションおよび他の組換えＤＮＡ法はすべて、Ｔ． Ｍａｎｉａｔｉｓら（前掲）またはその第２版（１９８９）、Ｓａｍｂｒｏｏｋら編、同一出版社（「Ｓａｍｂｒｏｏｋら」）にあるようにしておこなった。
【実施例】
【０１０１】
実施例１−ｈＩＬ−５に対するｍＡｂの産生
ヒトＩＬ−５をＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ２（Ｓ２）細胞にて発現させて均質に精製した。ネズミＩＬ−５をＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ ２１（Ｓｆ２１）細胞を用いてバキュロウイルスにて発現させて均質に精製した。モノクローナル抗体、ＴＲＦＫ−５（中和ラット抗−マウスＩＬ−５抗体）をＧｅｎｚｙｍｅ Ｃｏｒｐ．（ＭＡ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ）より入手した。
【０１０２】
Ａ．免疫化操作：
組換えヒトＩＬ−５（ＩＬ−５）を一群７匹のＣＡＦ１雌マウス（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ、Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）の免疫原として用いた。動物に、１対１の割合のＴｉｔｅｒ ＭＡＸＴＭ（ＣｙｔｏＲｘ Ｃｏｒｐ．、Ｎｏｒｃｒｏｓｓ、ＧＡ）で乳化させたリン酸緩衝セイライン（ＰＢＳ）中のＩＬ−５を４ヶ月にわたって３回皮下注射した。初回抗原投与量は５０μｇ（マイクログラム）であり、追加抗原刺激量は２５および１０μｇ（マイクログラム）であった。追加抗原刺激接種を行った後、血清試料を採集し、レセプター結合阻害アッセイおよびＢ１３増殖アッセイ（またはＩＬ−５中和アッセイ（実施例２Ｃ））により、ＩＬ−５への結合について、および中和活性について検定した。マウスはすべて、ＩＬ−５に結合する血清試料を産生した。脾臓ドナーとして選択された動物に、殺す３日前に１０μｇ（マイクログラム）の組換えヒトＩＬ−５を静脈内に追加抗原投与した。
【０１０３】
Ｂ．ハイブリドーマ開発：
最初にＫｏｈｌｅｒら（Ｎａｔｕｒｅ、２５６：４９５（１９７５））により報告された融合操作を、細胞単層を用いる技法（Ｋｅｎｎｅｔら編、”Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ：Ａ ｎｅｗ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ ｉｎ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ”、３６８−３７７頁、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ）を行うために修飾して用いた。２匹のドナーマウスからの脾臓細胞をプールし、１０００万個のＳＰ２／０／Ａｇ１４骨髄腫細胞に対して５０００万個の割合の脾臓細胞を用いて融合を行った。融合陽性ウェルの上清をＥＬＩＳＡを用いてＩＬ−５との結合についてアッセイした。ＩＬ−５に対する抗体を産生する細胞を含むウェルを広げ、上清をＩＬ−５レセプター結合阻害アッセイおよびＢ１３（中和）増幅アッセイ（以下に記載）にてスクリーンした。
【０１０４】
ＩＬ−５との反応性を有するｍＡｂを分泌する１６種のハイブリドーマを単離した。そのハイブリドーマ上清をヨウ素処理したＩＬ−５と混合し、ＩＬ−５レセプター（ＩＬ−５Ｒ）のα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ細胞より調製した膜抽出物に加え、レセプター結合の阻害についてアッセイした。１１種のハイブリドーマ上清は、ヨウ素処理したＩＬ−５のＩＬ−５レセプターα鎖への結合を６０％以上阻害した。３種のｍＡｂ、すなわち、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２もまた、ネズミＩＬ−５ではなくヒトＩＬ−５に対する応答にてネズミＢ１３の増殖を７０％以上阻害した。５種のハイブリドーマ（そのうちの４種（１Ｃ６、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２）は結合および／または増殖を遮断し、１種（２４Ｇ９）は非中和抗体である）を軟寒天中で繰り返しサブクローンし、安定したクローン細胞系を生成した。クローン系からの上清をＥＬＩＳＡにより交差−反応性についてスクリーンしたが、ヒトＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−４、ＩＬ−８、Ｍ−ＣＳＦまたはＴＧＦαと結合しなかった。ｍＡｂを精製し、結合親和性を１０から１００ｐＭで変化させる光学生物センサー（ＢＩＡｃｏｒｅ）分析より評価した。クローン系から由来の上清をネズミイソ型試薬（ＰｈａｒＭｉｎｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）を用いてイソ型に付した。ｍＡｂの中和活性に関する親和性およびＩＣ５０を表Ｉ（実施例２）に要約して示す。
【０１０５】
マウスについて前記したように比較免疫化プロトコルおよび融合のためのラット骨髄腫を用い、ラットハイブリドーマを同様の方法により免疫化ラットより誘導させた。ＩＬ−５に結合するｍＡｂを産生する２種のラットハイブリドーマ、４Ａ６および５Ｄ３を同定した。ｍＡｂ ２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２と同様、ｍＡｂ ４Ａ６および５Ｄ３も、以下に記載のＢ１３アッセイにおいて中和抗体であることが判明した。
【０１０６】
Ｃ．ハイブリドーマ寄託
モノクローナル抗体２Ｂ６を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｂ６．２０６．７５（１）を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８３で受け入れられた。
【０１０７】
モノクローナル抗体２Ｅ３を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｅ３．３９．４０．２をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８２で受け入れられた。
【０１０８】
モノクローナル抗体２Ｆ２を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｆ２．３７．８０．１２をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８１で受け入れられた。
【０１０９】
モノクローナル抗体２４Ｇ９を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２４Ｇ９．８．２０．５をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８０で受け入れられた。
【０１１０】
モノクローナル抗体４Ａ６を産生するハイブリドーマ細胞系４Ａ６（１）Ｇ１Ｆ７をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１９４３で受け入れられた。
【０１１１】
モノクローナル抗体５Ｄ３を産生するハイブリドーマ細胞系５Ｄ３（１）Ｆ５Ｄ６をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１９４２で受け入れられた。
【０１１２】
実施例２−アッセイ
Ａ．ＥＬＩＳＡ
ＭａｘｉＳｏｒｂＴＭイムノプレート（Ｎｕｂｃ、Ｎａｐｅｒｖｉｌｌｅ、ＩＬ）の各ウェルを０．０５Ｍ炭酸塩緩衝液（ｐＨ９．６）中のＩＬ−５（０．２μｇ）で被覆した。４℃で一夜インキュベートした後、プレートをＰＢＳ（０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０含有）ですすぎ、ＰＢＳ（０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０含有）中の１％ＢＳＡを用いて室温で２時間遮断した。非希釈ハイブリッド上清をＩＬ−５被覆のウェルに加え、室温で２時間インキュベートした。該プレートを注ぎ、ペルオキシダーゼ標識化ヤギ抗−マウスＩｇＧ＆ＩｇＭ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を１％ＢＳＡおよび０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０を含有するＰＢＳに１／７５００の希釈度で加えた。２時間後にプレートを洗浄し、０．１％尿素ペルオキシドおよび１ｍｇ／ｍｌのオルトフェニレンジアミンを含有する、０．２ｍｌの０．１Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ４．７５）を添加した。１５分経過後、プレートをＶＭａｘＴＭマイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ、Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ、ＣＡ）上、４５０ｎｍで読み取った。
【０１１３】
Ｂ．レセプター結合阻害アッセイ
ヒトＩＬ−５レセプター（ＩＬ−５Ｒ）のα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａＳ２細胞の膜抽出物を用いてレセプターに結合するＩＬ−５についての抗体の作用を測定した。１０９個の細胞を１０００ｘｇ、４℃で１０分間遠心してペレット状にした。その細胞ペレットをドライアイス／エタノール浴中で１５分間凍結させた。該ペレットを解凍し、ＰＢＳ（１０ｍｌ）に４℃で再び懸濁させ、１０００ｘｇで１０分間遠心してペレット状にした。その細胞ペレットをＰＢＳ中に２回洗浄し、低張緩衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、１ｍＭ ジチオスレイトール、１ｍＭ フェニルメチルスルホニルフルオリド、１μＭ ロイペプシン、１μＭ ペプスタチンＡ）（１３．５ｍｌ）に再び懸濁させ、５分間氷上でインキュベーションした。その細胞懸濁液を１５ｍｌのＤｏｕｎｃｅホモジナイザー中で均一にし、２．５Ｍシュークロース溶液を用いてシュークロースの最終濃度を０．２５Ｍとした。１０００ｘｇで１５分間遠心分離に付すことで細胞残骸を除去した。細胞膜を１０００００ｘｇ、４℃で９０分間遠心してペレット状にし、５０ｍｌの１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、２５０ｍＭシュークロースに再び懸濁させ、−７０℃で貯蔵した。
【０１１４】
レセプターを含むＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ膜を用いるアッセイは、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．２）および０．１％ＢＳＡ（結合緩衝液）を含有するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ組織培地Ｍ３（Ｌｉｎｄｑｕｉｓｔら、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ Ｉｎｆ． Ｓｅｒｖ．、５８：１６３（１９８２））を用い、ＭｕｌｔｉｓｃｒｅｅｎＧＶＴＭプレート（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐ．、Ｂｅｄｆｏｒｄ、ＭＡ）にて行った。ウェルを結合緩衝液（０．１ｍｌ）で予め遮断した。５０μｌの試験サンプルを三重試験にてウェルに加え、つづいてヨウ素化（１２５Ｉ）ＩＬ−５（２５μｌ）を加えた。室温で２０分間インキュベーションした後、ヒトＩＬ−５Ｒのα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａＳ２細胞の膜抽出物（２５μｌ）を該ウェルに加えた。さらに１時間インキュベーションした後、膜を真空濾過により集め、結合緩衝液で３回洗浄した。フィルターを乾燥させて計数した。
【０１１５】
Ｃ．ＩＬ−５中和アッセイ
ネズミＩＬ−５／ＩＬ−３依存性細胞系、ＬｙＨ７．Ｂ１３（Ｂ１３）をＲ．Ｐａｌａｃｉｏｓ（Ｂａｓｅｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）の好意により入手した。Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、ピリビン酸ナトリウム、ペニシリン−ストレプトマイシン（すべて、ＧｉｂｃｏＢＲＬ）、加えて２−メルカプトエタノール（５ｘ１０−５Ｍ、Ｓｉｇｍａ）、１０％ウシ胎児血清（Ｇｌｏｂｅｐｈａｒｍ、Ｓｕｒｒｅｙ、ＵＫ）および１−１０単位のネズミＩＬ−５を補足した、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｒｅｎｆｒｅｗｓｈｉｒｅ、ＵＫ）で週に２回、細胞を継代培養した。アッセイ用の細胞を適宜希釈した試験試料の存在下、９６−ウェルの丸底プレートで三重（５０００個の細胞／ウェル）にて４８時間培養し、０．５μＣｉ−３Ｈ−チミジン（Ａｍｅｒｓｈａｍ、Ｂｕｃｋｓ、ＵＫ）で最終４時間パルス処理した。その細胞を１２０５ベータプレート（ＬＫＢ Ｗａｌｌａｃ、Ｂｅｄｓ、ＵＫ）にてシンチレーションカウントするのに処理した。
【０１１６】
Ｄ．光学バイオセンサー
固定されたｈＩＬ−５および抗体の動力学的および平衡結合特性はＢＩＡｃｏｒｅ光学バイオセンサー（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）を用いて測定した。動力学的データは以前に開示されている関係（Ｋａｒｌｓｓｏｎら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈ．、１４５：２２９−２４０（１９９１））を用いて評価した。
【０１１７】
３種の中和抗体、すなわち、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２は、１２５Ｉ−ＩＬ−５の膜レセプターへの結合の阻害およびＢ細胞増殖の中和にて極めて類似する能力を有し、さらにＩＬ−５に対して極めて類似する親和性を有した（表１を参照のこと）。これら３種のｍＡｂ、２ＩｇＧ１および１ＩｇＧ２ａからのＶＨおよびＶＬのヌクレオチド配列を各々測定した。得られた配列は極めて類似しており、２、３の残基が異なるだけである。
【表１】
【０１１８】
実施例３−コンビナトリアルライブラリーからのＩＬ−５Ｆａｂの単離および特徴化
Ａ．ＰＣＲおよびコンビナトリアルライブラリー構築
３匹のマウスの脾臓より精製したＲＮＡを、以前にＨｕｓｅら（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６：１２７５（１９８９））およびＫａｎｇ、Ｓ．Ａ．（Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、２：１１１（１９９１））に記載されているように、次のキットで供給されるプライマー（ｄＴ）１５または３’Ｆｄ（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ＆ＩｇＧ３）およびカッパ軽鎖プライマーのいずれかを用いてｃＤＮＡキット（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）で逆転写した。免疫グロブリンｃＤＮＡをプライマーおよび記載（Ｈｕｓｅら、前掲）の熱循環条件を用いてＰＣＲにより増幅させた。すべての反応に対して、ＡｍｐｌｉＷａｘＴＭ ＰＣＲ Ｇｅｍ１００（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｃｅｔｕｓ、Ｎｏｒｗａｌｋ、ＣＴ）ビーズを用い、製造主プロトコルに従ってＨｏｔ Ｓｔａｒｔ技法を利用した。ＰＣＲ産物をゲル精製し、消化し、ｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３ベクター（Ａｍｅｓら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５２：４５７２（１９９４））にライゲーションした。ＦｄｃＤＮＡとライゲーションさせた後のライブラリータイターは５．１ｘ１０７ＣＦＵであり、カッパｃＤＮＡとライゲーションさせた後では１．５ｘ１０６ＣＦＵであった。ファージミドライブラリーで形質転換したＸＬ１−Ｂｌｕｅ細胞（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）をヘルパーファージＶＣＳＭ１３（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）で感染させ、ファージをＢａｒｂａｓおよびＬｅｒｎｅｒ（Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、２：１１９（１９９１））に記載されているように調製した。
【０１１９】
Ｂ．バイオパンニング
４個のマイクロタイターウェル（Ｉｍｍｕｌｏｎ ＩＩ Ｒｅｍｏｖａｗｅｌｌ Ｓｔｒｉｐｓ、Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ、ＶＡ）を、０．１Ｍ重炭酸塩（ｐＨ８．６）中のＩＬ−５（１μｇ／ウェル）で４℃で一夜被覆した。そのウェルを水で洗浄し、３％ＢＳＡを含有するＰＢＳで３７℃で１時間遮断した。遮断溶液を除去し、ライブラリーをマイクロタイターウェルに加え（５０μｌ／ウェル）、３７℃で２時間インキュベーションした。ｐＨをグリシンで２．２に調整し、１ｍｇ／ｍｌのＢＳＡを含有する、０．１Ｍ ＨＣｌで付着ファージを溶出する前に、ウェルをＴＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（登録商標）（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．５、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）で１０回洗浄し、Ｈ２Ｏで１回洗浄した。
【０１２０】
Ｃ．コロニーリフト
第３および第４ラウンドのバイオパンニングより単離したクローンのコロニーリフトを記載（ＢａｒｂａｓおよびＬｅｒｎｅｒ、前掲）に従い処理した。フィルターを、Ｂｏｌｔｏｎ−Ｈｕｎｔｅｒ試薬（ＮＥＮ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）を用い、製造主推奨の操作に従ってヨウ素化した、０．５−１．０μＣｉの１２５Ｉ−ＩＬ−５と共に、１％ＢＳＡ含有ＰＢＳ中、室温で１時間インキュベーションし、０．２５％Ｔｗｅｅｎ含有のＰＢＳで洗浄し、Ｋｏｄａｋ ＸＡＲフィルムに暴露した。ＩＬ−５反応性Ｆａｂを発現するコロニーをオートラジオグラフィーで検出した。
【０１２１】
Ｄ．可溶性Ｆａｂの調製
ファージミドＤＮＡをＮｈｅＩおよびＳｐｅＩで消化し、遺伝子ＩＩＩを除去し、自己ライゲーションに付した。ＸＬ１−Ｂｌｕｅ細胞を形質転換させて、単離されたクローンを１％グルコースおよび５０μｇ／ｍｌカルベニシリン（ｃａｒｂｅｎｉｃｉｌｌｉｎ）含有のスーパーブロス（ＳＢ）培地（３０ｇトリプトン、２０ｇ酵母抽出物、１０ｇの３−［Ｎ−モルホリノ］プロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）、ｐＨを７に調整）（５．０ｍｌ）中に３７℃で一夜増殖させた。この培養物１ｍｌからの細胞を、３５００ｒｐｍで１０分間、Ｂｅｃｋｍａｎ ＧＳ−６Ｒ遠心機にてペレット状とし、５０μｇ／ｍｌカルベニシリン含有のＳＢ（５ｍｌ）に植え付けるのに用いた。培養物を３７℃で１時間振盪し、イソプロピル−ｂ−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ；１ｍＭ）を加え、培養物を一夜２８℃に移した。細胞ペレットを４℃で２０分間３０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ８．０）に懸濁させた２０％シュークロースに溶かし、つづいてＭｉｃｒｏｆｕｇｅで１０分間遠心分離に付すことにより可溶性Ｆａｂをペリプラズム抽出物より調製した。既知量のネズミＦａｂを含有する試料と比較することによりウェスタンブロットによりＦａｂ濃度を評価した。異なる細菌ペリプラズム抽出物は、ウェスタンブロット分析により評価した場合、１ないし２０μｇ／ｍｌの範囲の、同様の濃度のＦａｂを含有した。
【０１２２】
Ｅ．Ｆａｂの精製
タンパク質の精製を助成するのにキレート化ペプチドを重鎖のカルボキシ末端で改変した。ＮｈｅＩおよびＳｐｅＩで消化してＭ１３遺伝子ＩＩＩコーディング領域を除去した後、６個のヒスチジン残基をコードする、一対の重複オリゴヌクレオチド：
［配列番号４３］５’−ＣＴＡＧＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＴＡＡ−３’；
［配列番号４４］３’−ＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＡＴＴＧＡＴＣ−５’
をＦａｂ発現ベクターにサブクローニングした。Ｆａｂ発現の誘発は前記のように行った。２８℃で一夜誘発させた後、２０％シュークロース、３０ｍＭ ＴＲＩＳ（ｐＨ８．０）中、４℃で３０分間インキュベーションさせることで、細胞ペレットのペリプラズム溶菌液を調製した。尿素およびＢｒｉｊ−３５デタージェントを浄化した上清に、各々、２Ｍおよび１％の最終濃度まで添加した。室温で１時間攪拌した後、その処理かつ浄化した上清を、緩衝液Ａ（１００ｍＭ Ｎａ−Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．３Ｍ ＮａＣｌ、２Ｍ尿素、ｐＨ８．０）で平衡にした５ｍｌニッケル−ＮＴＡ金属封鎖カラム（１．５ｘ３ｃｍ）に直接０．５ｍｌ／分で充填した。カラム容量の４倍（２０ｍｌ）で洗浄した後、前記したのと同じ緩衝液をｐＨ８からｐＨ４の逆ｐＨ勾配でカラム容量の６倍（３０ｍｌ）を用いて結合物質を溶出した。精製されたＦａｂがｐＨ５．５でシャープな対称ピークにてカラムより溶出された。それは＞９０％純度であり、ＤＮＡがなかった。
【０１２３】
Ｆ．Ｆａｂ ＥＬＩＳＡ：
イムロン（Ｉｍｍｕｌｏｎ）ＩＩプレート（Ｄｙｎａｔｅｃｈ）を０．１Ｍ重炭酸塩緩衝液（ｐＨ８．６）に懸濁させたタンパク質で一夜４℃で被覆した。希釈および洗浄を０．０５％ＴｗｅｅｎＴＭ２０含有のＰＢＳにて行った。プレートを洗浄し、１％ＢＳＡ含有のＰＢＳで１時間室温で遮断した。可溶性Ｆａｂまたは精製されたＦａｂを含有する種々の希釈度の細菌性上清をプレートに加えた。１時間インキュベーションした後、プレートを洗浄し、ビオチニル化ヤギ抗−マウスκ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ， Ｉｎｃ．、Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）を１時間にわたって加えた（１：２０００希釈度；５０μｌ／ウェル）。プレートを洗浄し、ストレプタビジン標識ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを１時間で加えた（１：２０００希釈度；５０μｌ／ウェル）。プレ−トを洗浄し、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質を加え（１００μｌ／ウェル；Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）、４０５ｎｍでの光学密度をＵＶｍａｘＴＭ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）マイクロプレートリーダー上で読み取った。
【０１２４】
Ｇ．Ｆａｂのコンビナトリアルライブラリーからの単離および特徴化
ＩＬ−５で被覆したマイクロタイターウェルに対する複数回のラウンドのバイオパンニングに付すことで、ライブラリーからＦａｂをＩＬ−５に運ぶファージを選択した。４ラウンドの選択操作の後、ＩＬ−５反応性Ｆａｂを１２５Ｉ−ＩＬ−５を用いるコロニーリフトアッセイにより同定した。第３ラウンドから３４個の、第４ラウンドから４個の標識されたＩＬ−５と結合したコロニーが同定された。ＩＬ−５との結合を、Ｆａｂ−遺伝子ＩＩＩ融合タンパク質を発現する培養上清を用い、直接結合性ＥＬＩＳＡにより確認した。ＤＮＡをこれらコロニーより単離し、Ｍ１３遺伝子ＩＩＩのコーディング領域を除去した後、可溶性Ｆａｂ発現を誘発した。ペリプラズムフラクションを調製し、ＩＬ−５との結合についてＥＬＩＳＡでアッセイした。Ｆａｂは他のタンパク質、ｒＣ５ａと明確に結合することなく、ＩＬ−５に特異的に結合した。
【０１２５】
希釈されていないペリプラズム抽出物（１ないし２μｇ／ｍｌのＦａｂを含有する）をＩＬ−５Ｒ結合阻害アッセイ（実施例２）にて検定した。いずれのＦａｂもヨウ素化ＩＬ−５のＩＬ−５Ｒαへの結合を３５％以上まで阻害しなかった。
【０１２６】
Ｈ．中和ｍＡｂのＦａｂへの変換
ｍＡｂ（２Ｂ６）のＦｄおよびκｃＤＮＡを前記の条件を用いてＰＣＲにより単離した。ゲル精製されたフラグメントを遺伝子ＩＩＩｃＤＮＡのヘキサ−Ｈｉｓ配列３’を含むように修飾されたｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３ベクターにサブクローンし、プラスミドｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３Ｈを得た。２Ｂ６重鎖および軽鎖を含有する機能的なＩＬ−５結合Ｆａｂクローンをコロニーリフトアッセイにより同定した。遺伝子ＩＩＩをＮｈｅＩ／ＳｐｅＩＩ消化および自己ライゲーションを介して除去し、重鎖をフレームにてヘキサ−Ｈｉｓに融合させ、前記のように精製した。用量依存法において、このＦａｂはペアレントｍＡｂ、ネズミ２Ｂ６の値と同様の、約７．５μｇ／ｍｌのＩＣ５０でレセプター結合を阻害した。
【０１２７】
Ｉ．チェーン−シャッフルされたライブラリーの構築およびスクリーニング
中和ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｄをコードするｃＤＮＡをＸｈｏＩ／ＳｐｅＩフラグメントとして軽鎖ｃＤＮＡの代わりにＳｓｔＩ／ＸｂａＩフラグメントを含有するｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３Ｈにサブクローンした。このファージミドをＳｓｔＩおよびＸｂａＩで消化し、ＩＬ−５免疫化マウス（前記）より由来のＳｓｔＩ／ＸｂａＩ消化された軽鎖ＰＣＲ産物とライゲーションした。ライゲーション後のライブラリータイターは４ｘ１０５ＣＦＵであった。バイオパンニングおよびコロニーリフロアッセイをコンビナトリアルライブラリーについて前記したように行った。
【０１２８】
中和ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｄをコードするｃＤＮＡを同じ軽鎖レパートリーと対合させることによりライブラリーを構築し、ＩＬ−５免疫化マウスより回収し、コンビナトリアルライブラリーを形成するのに用いた。このチェーンシャッフルされたライブラリーを免疫化ＩＬ−５に対する４ラウンドのバイオパンニングに付し、得られたコロニーをコロニーリフトアッセイを用いてＩＬ−５反応性についてアッセイした。ヨウ素化されたＩＬ−５と結合した、陽性コロニーをＥＬＩＳＡおよびＩＬ−５Ｒα結合アッセイによりさらに検定した。チェーンシャッフルされたライブラリーより回収された２つのＦａｂ、２＆１５は、ＩＬ−５のＩＬ−５Ｒαとの結合を遮断し、Ｂ１３アッセイにおけるＩＬ−５依存性増殖を阻害した。これら２Ｖｋの配列は、２Ｂ６ ＶＨについての原軽鎖パートナーである、２Ｂ６ Ｖｋの配列に類似している。Ｆａｂ２＆１５の軽鎖配列は、各々、配列番号４５および４６である。Ｆａｂ２の場合、ＣＤＲ１−３は、各々、配列番号１０、１１および４７である。Ｆａｂ１５の場合、ＣＤＲ１−３は、各々、配列番号１０、１１および４８である。
【０１２９】
実施例４および５にておいて以下に列挙されるすべての抗体のアミノ酸配列には、ＣＤＲおよびフレームワークの長さを変えることのできる、ＫＡＢＡＴ番号付けシステムを利用する。すなわち、キーとなるアミノ酸はその前にある実際の数と無関係に常に同じ番号が付されている。例えば、すべての軽鎖のＣＤＲ１の前にあるシステインは常にＫＡＢＡＴ位置２３であり、ＣＤＲ１の後にあるトリプトファン残基は、たとえ、ＣＤＲ１が１７個までのアミノ酸を含んでいるとしても、常にＫＡＢＡＴ位置３５である。
【０１３０】
実施例４−ヒト化抗体
１種のヒト化抗体をそのヒト抗体フレームワーク内にネズミＣＤＲを含むように設計した。次の操作を行うことで、ＩＬ−５特異的マウス抗体２Ｂ６のこのヒト化バージョンを調製した。
【０１３１】
Ａ．遺伝子クローニング
Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ（Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）より入手したキットを用いて２Ｂ６、２Ｆ２および２Ｅ３の各々のハイブリドーマ細胞系（実施例１を参照のこと）より、ｍＲＮＡを単離し、ｃＤＮＡキット（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）で得られたプライマー（ｄＴ）１５を用いて逆転写してｃＤＮＡを調製した。マウス免疫グロブリンに特異的なＰＣＲプライマーを用い、重鎖可変領域のアミノ酸番号９（ＫＡＢＡＴ 番号表示システム）からヒンジ領域に、および軽鎖可変領域のアミノ酸番号９（ＫＡＢＡＴ 番号表示システム）から定常領域の末端にまで広がっているドメインをコードするＤＮＡを増幅した。各々の抗体鎖のいくつかのクローンを独立ＰＣＲ反応により得た。
【０１３２】
使用したマウスガンマ１ヒンジ領域プライマーは、［配列番号２２］：
５’ ＧＴＡＣＡＴＡＴＧＣＡＡＧＧＣＴＴＡＣＡＡＣＣＡＣＡＡＴＣ ３’である。
【０１３３】
使用したマウスガンマ２ａヒンジ領域プライマーは、［配列番号２３］：
５’ ＧＧＡＣＡＧＧＧＣＴＴＡＣＴＡＧＴＧＧＧＣＣＣＴＣＴＧＧＧＣＴＣ ３’である。
【０１３４】
使用したマウス重鎖可変領域プライマーは、［配列番号２４］：
５’ ＡＧＧＴ（ＣまたはＧ）（ＣまたはＡ）Ａ（ＧまたはＡ）ＣＴ（ＧまたはＴ）ＴＣＴＣＧＡＧＴＣ（ＴまたはＡ）ＧＧ ３’である。
【０１３５】
使用したマウスカッパ鎖定常領域プライマーは、［配列番号２５］：
５’ ＣＴＡＡＣＡＣＴＣＡＴＴＣＣＴＧＴＴＧＡＡＧＣＴＣＴＴＧＡＣＡＡＴＧＧＧ ３’である。
【０１３６】
使用したマウス軽鎖可変領域プライマーは、［配列番号２６］：
５’ ＣＣＡＧＡＴＧＴＧＡＧＣＴＣＧＴＧＡＴＧＡＣＣＣＡＧＡＣＴＣＣＡ ３’である。
【０１３７】
ＰＣＲフラグメントをプラスミドｐＧＥＭ７ｆ＋（Ｐｒｏｍｅｇａ）にクローンし、ついでＥ． ｃｏｌｉ ＤＨ５ａ（Ｂｅｔｈｅｓｄａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｓ）に形質転換した。
【０１３８】
Ｂ．ＤＮＡ配列決定
上記パートＡの重鎖および軽鎖ネズミｃＤＮＡクローンを配列決定した。これらクローンの可変領域の配列決定の結果を配列番号１−６（図１−６）に示す。クローンは、各々、マウス重鎖可変領域または軽鎖可変領域の間に保存されていることが知られているアミノ酸を含有した。そのＣＤＲアミノ酸配列を以下に列挙する。
【０１３９】
２Ｂ６重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および９である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号１によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１２である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号２によりコードされる。
【０１４０】
２Ｆ２重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および９である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号３によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１３である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号４によりコードされる。
【０１４１】
２Ｅ３重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および１４である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号５によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１３である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号６によりコードされる。
Ｃ．ヒトフレームワークの選択
【０１４２】
２Ｂ６のクローニングの後、アミノ酸をＮ−末端残基に帰属させるために、可変領域の重鎖および軽鎖のアミノ酸配列（図１および２）（各々、配列番号１５および１６）をＫＡＢＡＴおよびＳＷＩＳＳ−ＰＲＯＴ（Ｎｕｃ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、２０：２０１９−２０２２（１９９２））タンパク質配列データベースにある既知ネズミ免疫グロブリン配列と比較した。ついで、ヒトフレームワークをネズミ配列と最も密接に対合するであろう重鎖および軽鎖の両方について同定するために、２Ｂ６重鎖および軽鎖可変領域推定アミノ酸配列をヒト免疫グロブリンタンパク質配列データベースと比較した。加えて、重鎖および軽鎖をＦａｂドメインの構造モデルより得られる位置データベースを用いて評価し、ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないアミノ酸によるコンフリクトの可能性を評価した。コンフリクトは対応するマウスアミノ酸をその位置で置換することによりヒト化可変領域フレームワークを合成する間に決定された。
【０１４３】
ヒトメラノーマ免疫グロブリン（ＣＯＲ）より得られた抗体の重鎖フレームワーク領域を用いた（Ｅ． Ｍ． ＰｒｅｓｓおよびＮ． Ｍ． Ｈｏｇｇ、Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｊ．、１１７：６４１−６６０（１９７０））。ヒト重鎖フレームワークアミノ酸配列は２Ｂ６フレームワークと略６６％の相同性を有することが判明した。
【０１４４】
適当な軽鎖可変領域フレームワークでは、Ｂｅｎｃｅ−Ｊｏｎｅｓタンパク質（ＬＥＮ）（Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．、３５６：５０７−５５７（１９７５））の軽鎖可変フレームワーク配列を用いた。ヒト軽鎖フレームワーク領域は、アミノ酸レベルでネズミ２Ｂ６軽鎖フレームワーク領域と略８２％相同的であった。
【０１４５】
選択されたヒトフレームワークを逆翻訳し、ＤＮＡ配列を得た。
【０１４６】
Ｄ．ヒト化ｍＡｂ遺伝子の構築
２Ｂ６重鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１−２］およびヒト抗体のフレームワーク配列を得る場合、合成重鎖可変領域を調製した［配列番号１８］。これは、つなぎ合わされると、アミノ酸番号２１−１０６（ＫＡＢＡＴ番号付け）をコードする４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号２７および２８］［配列番号２９および３０］を用いて調製した。オリゴヌクレオチドを、ＣＯＲフレームワーク（前掲）を基礎とするもう一つ別のヒト化重鎖より由来の配列を含むｐＵＣ１８プラスミドを基礎とするｐＵＣ１８のＨｐａＩ−ＫｐｎＩ制限部位にライゲーションした。このプラスミドはシグナル配列［配列番号１７］および残りの可変領域の配列を提供するものである。マッピングされた配列中の誤りは、変異原性プライマーとのＰＣＲによるか、または現存する制限部位への合成リンカーの付加により訂正した。
【０１４７】
シグナル配列およびヒト化重鎖可変領域をＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントとしてｐＵＣを基礎とするプラスミドから切除し、ＩｇＧ１ヒト定常領域を含む発現ベクターｐＣＤにライゲーションした。合成重鎖可変領域のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を図８［配列番号１８および１９］に示す。ヒトフレームワーク残基は配列番号１９のアミノ酸１−３０、３６−４９、６６−９７および１０９−１１９である。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６ ＣＤＲと同じである。得られた発現ベクター、ｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０を図１０に示す。
【０１４８】
２Ｂ６軽鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１０、１１および１２］およびヒト抗体のフレームワーク配列を得る場合、合成軽鎖可変領域［配列番号２０］を調製した。各々、ＳａｃＩ−ＫｐｎＩおよびＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ末端を有するヒト化ＶＬのアミノ酸番号２７−５８（ＫＡＢＡＴ番号付け）［配列番号３１および３２］およびアミノ酸番号８０−１０９［配列番号３３および３４］をコードする４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号２７および２８］［配列番号２９および３０］を、ＬＥＮフレームワークと高度の相同性を共有するもう一つ別のヒト軽鎖フレームワーク（Ｂ１７）（Ｍａｒｓｈら、Ｎｕｃ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、１３：６５３１−６５４４（１９８５））より由来の配列を含むｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに挿入した。このプラスミドは残りの可変領域配列を提供する。マッピングされた配列中のいずれの誤りおよびＬＥＮとＢ１７フレームワークの間の違いも、変異原性プライマーを用いてＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正された。
【０１４９】
ヒト化軽鎖可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとしてｐＵＣ−プラスミドより単離し、κヒト定常領域と一緒にシグナル配列［配列番号１７］を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションした。合成軽鎖可変領域のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を図９［配列番号２０および２１］に示す。ヒトフレームワーク残基は配列番号２１のアミノ酸１−２３、４１−５５、６３−９４および１０４−１１３である。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６ ＣＤＲと同じである。しかし、これらＣＤＲのコーディング配列はネズミ２Ｂ６コーディング配列と異なっており、制限酵素部位を形成することができる。得られた発現ベクターの一つ、ｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０を図１１に示す。これらの合成可変軽鎖および／または重鎖配列をヒト化抗体の構築に利用する。
【０１５０】
Ｅ．ヒト化ＭＡｂの発現
ＩｇＧ１イソ型から由来のヒト化重鎖は、配列番号１９に示されるような合成重鎖可変領域を利用している。２Ｂ６重鎖ＣＤＲを含有するこの合成ＶＨを前記したように設計して合成した。
【０１５１】
ヒト化軽鎖である、ヒトκ鎖は、配列番号２１に示されるような合成軽鎖可変領域を利用している。２Ｂ６軽鎖ＣＤＲを含有するこの合成ＶＬを前記したように設計して合成した。ヒト化可変領域をコードするＤＮＡフラグメントを、シグナル配列を利用し、ＣＭＶプロモーターおよび後記する実施例５にて産生されるキメラのヒト重鎖またはヒト軽鎖定常領域を含む、ｐＵＣ１９を基礎とする哺乳動物細胞発現プラスミドに、慣用的方法（Ｍａｎｉａｔｉｓら、前掲）により挿入し、プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＬＣ１．０（重鎖）［配列番号４９、図１０もまた参照のこと］およびｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０（軽鎖）［配列番号５０、図１１も参照のこと］を得た。該プラスミドをＣＯＳ細胞に同時トランスフェクションし、上清を、各々、３および５日後に、実施例５に記載されるようにＥＬＩＳＡによりヒト抗体の存在についてアッセイした。
【０１５２】
上記実施例は具体例として改変抗体の調製を記載する。他の改変抗体を開発するために、常套手段により開発された他の抗−ＩＬ−５抗体（例えば、２Ｆ２、２Ｅ３、４Ａ６、５Ｄ３、２４Ｇ９など）を用いて同様の操作を行った。
【０１５３】
Ｆ．精製
キメラおよびヒト化２Ｂ６を発現するＣＨＯの精製は、通常のタンパク質Ａ（またはＧ）アフィニティークロマトグラフィーに付し、つづいてイオン交換およびモレキュラーシーブクロマトグラフィーに付すことにより行うことができる。幸運にも同様の方法を他のｍＡｂ（例えば、呼吸シンシチウムウイルス、インターロイキン−４およびマラリアサーカムスポロゾイト抗原に対するｍＡｂ）を＞９５％の純度で精製するのに用いた。
【０１５４】
Ｇ．付加的なヒト化ｍＡｂおよび発現プラスミド
プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０［配列番号４９］を得る場合、フレームワーク位置７３のトレオニンの代わりにアスパラギンを用いる発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．１を調製した。これは、ＥｃｏＲＶおよびＸｈｏＩ末端［配列番号５１および配列番号５２］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０にライゲーションすることにより行った。同様に、発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．２はフレームワーク３７のバリンの代わりにイソロイシンを用いる。これはＨｐａＩおよびＸｂａＩ末端［配列番号５３および配列番号５４］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０にライゲーションすることにより行った。発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＤＨＣ１．３もまた、ＨｐａＩおよびＸｂａＩ末端［配列番号５３および配列番号５４］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．１にライゲーションすることにより調製された。
【０１５５】
４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号３１、３２、３３および３４］のＤＮＡ配列を含有する前記されているｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドを得る場合、フレームワーク番号１５がロイシンからアラニンに変わっているヒト化軽鎖可変領域を調製した。このプラスミドをＮｈｅＩおよびＳａｃＩ制限エンドヌクレアーゼで消化し、合成リンカー［配列番号５５および５６］を挿入した。ついで、ＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントを単離し、同様に消化された発現ベクターｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０にライゲーションし、ｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．１を形成した。
【０１５６】
合成可変領域を免疫グロブリンより得られた重鎖フレームワーク領域（ＮＥＷ）（Ｓａｕｌら、Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２５３：５８５−５９７（１９７８））および２Ｂ６重鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１−２］を用いて調製した。ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないフレームワークアミノ酸を同定し、前記した方法を用いて置換を行った。アニールし、伸長させた場合、シグナル配列［配列番号１７］および重鎖可変領域を示すアミノ酸をコードする、４種の重複している合成オリゴヌクレオチド［配列番号５７，５８，５９および６０］を得た。ついで、この合成遺伝子をＰＣＲプライマー［配列番号６３および６４］を用いて増幅させ、ＢｓｔＸＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ制限フラグメントとして、ｐＵＣ１８を基礎とするＣＯＲフレームワークをベースとする別のヒト化重鎖より由来の配列を含むプラスミドにライゲーションした。合成オリゴヌクレオチドリンカー［配列番号７５および７６］をＳａｃＩＩおよびＫｐｎＩ制限部位に挿入することにより、フェニルアラニンのチロシンへのフレームワーク置換をアミノ酸位置９１（Ｋａｂａｔ番号表示システム）（図１２の位置９４に対応する）で行った。得られた重鎖可変領域（図１２および配列番号６１、６２）をＮＥＷＭヒト化重鎖という。
【０１５７】
マッピングされた配列中のいずれの誤りも、変異原性プライマーを用いるＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正した。シグナル配列およびヒト化重鎖可変領域をＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントとしてｐＵＣを基礎とするプラスミドより切除し、ヒトＩｇＧ１定常領域を含有する発現ベクターｐＣＤにライゲーションし、プラスミドｐＣＤＩＬ５５ＮＥＷＭを調製した。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６重鎖ＣＤＲと同一である。
【０１５８】
合成可変領域は、免疫グロブリン（ＲＥＩ）（Ｐａｌｍら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ３５６：１６７−１９１（１９７５））より得られた軽鎖フレームワーク領域および２Ｂ６軽鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１０、１１および１２］を用いて作成した。ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないフレームワークアミノ酸を同定し、置換を前に記載されている方法を用いて行った。アニールし、拡張すると、ＲＥＩヒト化軽鎖と称される軽鎖可変領域［図１３および配列番号６９、７０］を発現するアミノ酸をコードする、４個の重複合成オリゴヌクレオチド［配列番号６５、６６、６７および６８］を得た。ついで、この合成遺伝子をＰＣＲプライマーを用いて増幅し、ＥｃｏＲＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ制限フラグメントとしてｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）にライゲーションした。
【０１５９】
マッピングされた配列中の誤りは、変異原性プライマーを用いてＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正された。ヒト化軽鎖可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとしてｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）を基礎とするプラスミドより切除し、ヒトκ定常領域と共にシグナル配列［配列番号１７］を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションし、プラスミドｐＣＮＩＬ５ＲＥＩを形成した。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６軽鎖ＣＤＲと同じである。しかしながら、これらＣＤＲについてのコーディング配列はネズミ２Ｂ６のコーディング配列と異なり、制限酵素部位の形成を可能とする。これらの合成可変軽鎖および／または重鎖配列をヒト化抗体の構築に用いる。
【０１６０】
前記したｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）を基礎とするプラスミドを得る場合、フレームワーク位置１５番がバリンからアラニンに変えられている、ヒト化軽鎖可変領域を調製することができる。このプラスミドをＮｈｅＩおよびＳａｃＩ制限エンドヌクレアーゼで消化し、合成リンカー［配列番号７３および７４］を挿入してもよい。ついで、ＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントを単離し、同様に消化された発現ベクターｐＣＮＩＬ５ＨＺＲＥＩに挿入し、プラスミドｐＣＮＩＬ５ＲＥＩＶ１５Ａを形成してもよい。
【０１６１】
実施例５−キメラ抗体の構築
ネズミｍＡｂ２Ｂ６重鎖可変領域のアミノ酸番号９−１０４（ＫＡＢＡＴ番号表示）をコードするＤＮＡを、２Ｂ６ハイブリドーマ細胞系より得られたｃＤＮＡ（実施例４を参照のこと）のｐＧＥＭ７Ｚｆ＋を基礎とするＰＣＲクローン由来のＡｖａＩＩ−ＳｔｙＩ制限フラグメントとして単離した。このフラグメントを４つの小型合成オリゴマーリンカー［配列番号３５および３６］［配列番号３７および３８］と一緒にＢｓｔＸ１−ＨｉｎｄＩＩＩで消化したｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに組み合わせることにより、フランキング重鎖可変領域の配列およびシグナル配列［配列番号１７］を得た。、密接に関連したネズミ重鎖より推定したＮ−末端アミノ酸のコンセンサスを最初の８個のＶＨ残基に帰属させ、配列番号３５および３６内でコードした。２Ｂ６重鎖の最初の１５個のＮ−末端アミノ酸を配列決定することにより、重鎖の推定アミノ酸配列を確認した。
【０１６２】
シグナルおよびＶＨ領域に関する配列を含有するＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントを単離し、既にヒトＩｇＧ１定常領域をコードするプラスミドｐＣＤにライゲーションした。
【０１６３】
ネズミｍＡｂ２Ｂ６軽鎖可変領域のアミノ酸番号１２−９９（ＫＡＢＡＴ番号表示）をコードするＤＮＡを、２Ｂ６ハイブリドーマ細胞系より得られたｃＤＮＡ（実施例４を参照のこと）のｐＧＥＭ７Ｚｆ＋を基礎とするＰＣＲクローン由来のＤｄｅＩ−ＡｖａｌＩ制限フラグメントとして単離した。このフラグメントを４つの小型合成オリゴマーリンカー［配列番号３９および４０］［配列番号４１および４２］と一緒にＥｃｏＲＶ−ＨｉｎｄＩＩＩで消化したｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに組み合わせることにより、フランキング軽鎖可変領域の配列を得た。、密接に関連したネズミ軽鎖より推定されるＮ−末端アミノ酸のコンセンサスを最初の８個のＶＬ残基に帰属させ、配列番号３９および４０の範囲内でコードした。２Ｂ６軽鎖の最初の１５個のＮ−末端アミノ酸を配列決定することにより、軽鎖の推定アミノ酸配列を確認した。ついで、この可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとして単離し、既にヒトκ領域およびシグナル配列を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションした。
【０１６４】
ｐＣＤおよびｐＣＮを基礎とするプラスミドをＣＯＳ細胞に同時形質導入することによりキメラ抗体の発現を行った。３日および５日後に培養上清を集め、次のようにＥＬＩＳＡにより免疫グロブリン発現についてアッセイを行った：最終工程を除く各工程でＰＢＳ洗浄を行った。マイクロタイタープレートを１００ｎｇ／５０μｌ／ウェルのヒト抗体のＦｃ領域に特異的なヤギ抗体を用いて一夜被覆した。培養上清を加え、１時間インキュベーションした。ついで、ヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体を共有するホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを加え、１時間インキュベーションした。ついで、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を添加した。１時間インキュベーションした後、４０５ｎｍでの吸光度をマイクロタイタープレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ、ＣＡ）で読み取った。キメラ抗体の発現が検出された。類似するＥＬＩＳＡにおいて、キメラ抗体を含有するＣＯＳ細胞上清は、ヒトＩＬ−５タンパク質で被覆したマイクロタイターウェルに特異的に結合した。この結果、ＩＬ−５に対する抗体をコードする遺伝子が合成され、かつ発現されたことが確認された。
【０１６５】
上記実施例は代表的な改変抗体の製法を記載するものである。常套手段により発現される他の抗ＩＬ−５ドナー抗体（例えば、２Ｆ２、２Ｅ３、４Ａ６、５Ｄ３、２４Ｇ９など）を用い、同様の操作を他の改変抗体の発現について行うこともできる。
【０１６６】
実施例６−ヒトＩＬ−５／ｈＩＬ−５レセプターα鎖／ＭＡｂ複合体
Ａ．ＥＬＩＳＡ
以下の抗体：２４Ｇ９（非中和）、４Ａ６（中和）および２Ｂ６（中和）を、２ｎｇ／ｍｌ−３２ｎｇ／ｍｌの間の濃度で評価した。
【０１６７】
平坦な底のＥＬＩＳＡプレートウェル（Ｗａｌｌａｃ）を１００μｌのタンパク質−Ａ（５μｇ／ｍｌ）で４℃で一夜被覆した。吸引後、ウェルを１％ＢＳＡ含有の２００μｌ遮断緩衝液で遮断し、３７℃で６０分間インキュベーションした。プレートを４回洗浄し、１００μｌの可溶性ＩＬ−５ＲαＦｃ（Ｊｏｈｎｓｏｎら、（１９９５） Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２７０：９４５９−９４７１）（２．２５μｇ／ｍｌ）を各ウェルに加え、３７℃で３０分間インキュベーションした。プレートを１回洗浄し、増加する濃度の組換えヒトＩＬ−５を各ウェルに加えた。３７℃で３０分間インキュベーションした後、ウェルを１回洗浄し、１００μｌの抗体（２μｇ／ｍｌ）を加え、３７℃で６０分間インキュベーションした。プレートを４回洗浄し、１００μｌのビオチン標識したヤギ抗マウスＩｇまたはヤギ抗ラットＩｇ（Ｓｉｇｍａ）を各ウェルに加えた。プレートを３７℃で６０分間インキュベーションし、４回洗浄した。ユーロピウム標識したストレプタビジン（ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ）（Ｗａｌｌａｃ）をユーロピウム緩衝液（Ｗａｌｌａｃ）中で１：１０００に希釈し、１００μｌ容量を各ウェルに加えた。プレートを３７℃で３０分間インキュベーションし、６回洗浄した。エンハンサー溶液（Ｗａｌｌａｃ）を各ウェルに加え、１２３４デルフィア（Ｄｅｌｐｈｉａ）・リサーチ・フルオロメーターを用いてプレートを読み取った。
【０１６８】
ｍＡｂ ２４Ｇ９および４Ａ６のＩＬ−５／ＩＬ−５レセプター複合体への結合が用量依存的に増加した。そのような増加はｍＡｂ ２Ｂ６を用いて観察されなかった。ｍＡｂ ２Ｂ６はＩＬ−５のＩＬ−５Ｒα鎖への結合を阻害する。対照的に、２４Ｇ９または４Ａ６のいずれもＩＬ−５のＩＬ−５Ｒα鎖への結合を阻害しなかった。表ＩＩを参照のこと。
【表２】
【０１６９】
Ｂ．光学バイオセンサー
（１）ｍＡｂをＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した（実施例２Ｄを参照のこと）。５μｌ／分の流速でｈＩＬ−５（２５μｌ）を４Ａ６表面上に通した。ついで、ＩＬ−５レセプターα鎖（２５μｌ中１５、３０、６０、１２０ｎＭ）を注入した。４Ａ６／ＩＬ−５複合体への結合におけるＩＬ−５レセプターα鎖（Ｒａ）の動態は、Ｋｏｎ＝６．３ｘ１０５（／Ｍ／ｓ）；Ｋｏｆｆ＝２．３ｘ１０−３（／ｓ）として計算することができる。ＩＬ−５−ＩＬ−５Ｐαの相互作用についての動態はＫｏｎ＝７．５ｘ１０５（／Ｍ／ｓ）；Ｋｏｆｆ＝２．８ｘ１０−３（／ｓ）である。かくして、ｍＡｂ ４Ａ６はＩＬ−５とＩＬ−５レセプターα鎖の間の相互作用に対して有意な作用を付与しない。
【０１７０】
（２）ｈＩＬ−５をＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した。ｍＡｂ ４Ａ６（２５μｌ、３２μｇ／ｍｌ）をその表面に注入し、つづいてＩＬ−５レセプターα鎖（２０μｌ、９０ｎＭ）を注入した。対照として、同じ量のＩＬ−５レセプターα鎖をＩＬ−５表面に直接注入した。ｍＡｂ ４Ａ６のｈＩＬ−５への前結合はＩＬ−５レセプターα鎖のｈＩＬ−５への結合を遮断しなかった。
【０１７１】
（３）ＰｒｏｔｅｉｎＡをＢＩＡｃｏｒｅチップ上に固定した。ＩＬ−５Ｒａ−Ｆｃ（３０μｌ、２０μｇ／ｍｌ）をＰｒｏｔｅｉｎＡ表面に注入した。ついで、ＩＬ−５（２５μｌ、８０ｎＭ）をＩＬ−５Ｒａ−Ｆｃで捕獲し、つづいてｍＡｂ ２４Ｇ９（２５μｌ、３２μｇ／ｍｌ）と結合させた。ｍＡｂ ２４Ｇ９はｈＩＬ−５／ＩＬ−５Ｒα複合体に結合した。
【０１７２】
（４）ｍＡｂ ２４Ｇ９をＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した。ＩＬ−５を２４Ｇ９表面に捕獲し、つづいて異なるｍＡｂを注入した。ｍＡｂ ２Ｂ６、ＴＲＦＫ５およびＣＭＸ５−２をＩＬ−５／２４Ｇ９複合体に結合させたが、ｍＡｂ ４Ａ６のＩＬ−５への結合は遮断された。このことは４Ａ６および２４Ｇ９が結合エピトープを共有していることを示す。
【０１７３】
Ｃ．沈降速度
１４時間経過後（２０℃）、沈降速度によりｈＩＬ−５、ｍＡｂ ４Ａ６および可溶性ＩＬ−５レセプターα鎖の３成分混合物を分析した。可溶性ＩＬ−５レセプターα鎖／ｈＩＬ−５／ｍＡｂ複合体と同じ大きさに相当する複合体が観察された。
【図面の簡単な説明】
【０１７４】
【図１】〔配列番号１および１５〕は、ネズミ抗体２Ｂ６およびネズミ／ヒト２Ｂ６キメラ抗体についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図２】〔配列番号２および１６〕は、ネズミ抗体２Ｂ６およびネズミ／ヒト２Ｂ６キメラ抗体についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図３】〔配列番号３〕は、ネズミ抗体２Ｆ２についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図４】〔配列番号４〕は、ネズミ抗体２Ｆ２についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図５】〔配列番号５〕は、ネズミ抗体２Ｅ３についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図６】〔配列番号６〕は、ネズミ抗体２Ｅ３についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図７】〔配列番号７−１４〕は、ネズミ抗体２Ｂ６、２Ｆ２および２Ｅ３からの重鎖および軽鎖ＣＤＲを示す。
【図８】〔配列番号１８および１９〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図９】〔配列番号２０および２１〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図１０】哺乳動物細胞にてヒト化重鎖遺伝子を発現させるのに用いられるプラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０の模式図である。該プラスミドは、ｐＵＣ１９バックグラウンド中に、ベータラクタマーゼ遺伝子（ＢＥＴＡ ＬＡＣ）、ＳＶ−４０の複製起点（ＳＶ４０）、サイトメガロウイルスプロモーター配列（ＣＭＶ）、シグナル配列、ヒト化重鎖、ウシ成長ホルモン（ＢＧＨ）のポリＡシグナル、ベータグロビンプロモーター（ベータグロプロ）、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）およびもう一つ別のＢＧＨ配列ポリＡシグナルを含有する。
【図１１】哺乳動物細胞にてヒト化軽鎖遺伝子を発現させるのに用いられるプラスミドｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０の模式図である。
【図１２】〔配列番号６１および６２〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についてのＮｅｗ Ｍ重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図１３】〔配列番号６９および７０〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についてのＲＥＩ軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【０１７５】
【表３−１】
【表３−２】
【表３−３】
【表３−４】
【表３−５】
【表３−６】
【表３−７】
【表３−８】
【表３−９】
【表３−１０】
【表３−１１】
【表３−１２】
【表３−１３】
【表３−１４】
【表３−１５】
【表３−１６】
【表３−１７】
【表３−１８】
【表３−１９】
【表３−２０】
【表３−２１】
【表３−２２】
【表３−２３】
【表３−２４】
【表３−２５】
【表３−２６】
【表３−２７】
【表３−２８】
【表３−２９】
【表３−３０】
【表３−３１】
【表３−３２】
【表３−３３】
【表３−３４】
【表３−３５】
【表３−３６】
【表３−３７】
【表３−３８】
【表３−３９】
【表３−４０】
【表３−４１】
【表３−４２】
【表３−４３】
【表３−４４】
【表３−４５】
【表３−４６】
【表３−４７】
【表３−４８】
【表３−４９】
【表３−５０】
【表３−５１】
【表３−５２】
【表３−５３】
【表３−５４】
【表３−５５】
【表３−５６】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本願は、１９９４年１２月２３日出願の米国特許出願番号０８／３６３１３１の一部継続出願である、１９９５年６月６日出願の米国特許出願番号０８／４７０１１０および０８／４６７４２０の一部継続出願である、１９９５年１２月２２日出願のＰＣＴ／ＵＳ９５／１７０８２の一部継続出願である。
【０００２】
本発明は、一般に、ＩＬ−５介在の、好酸球の産生過多の症状の治療および診断に、さらに詳細には、ｍＡｂおよびＦａｂ、キメラ、ヒトおよびヒト化抗体などの他の抗体に関する。
【背景技術】
【０００３】
好酸球は、肺組織における過敏性反応に伴うアレルギー障害を含む、多種の炎症病態の病因に関与している（Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄら、Ｉｎ：Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌｓ， Ｈ．Ｓｍｉｔｈ およびＲ．Ｃｏｏｋ， Ｅｄｓ．， １５１−１９２頁、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｌｏｎｄｏｎ（１９９３））。顕著な例として、非特異的気管支過反応に至る、気道の可逆性障害により特徴付けられる疾患である、喘息が挙げられる。次に、この疾患は、慢性炎症反応の気管支粘膜のレベルでの発生ならびにマクロファージ、リンパ球および好酸球によって特徴的な浸潤が発生することに依存する。該疾患に典型的な粘膜損傷の始まりにおいて好酸球が中心的役割を果たすことは明らかである（Ｃｏｒｒｉｇａｎら、Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｔｏｄａｙ、１３：５０１−５０７（１９９２））。慢性喘息患者の循環組織、気管支分泌組織および肺実質組織において、多数の活性化好酸球が報告されており、種々の肺機能試験により測定されるように、疾患の重度は血中好酸球数と相関関係にある（Ｇｒｉｆｆｅｎら、Ｊ． Ａｌｌｅｒ． Ｃｌｉｎ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、 ６７：５４８−５５７（１９９１））。脱顆粒の工程においてもしばしば、多数の好酸球が、遅発性気管支反応を患っている患者の気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）流体にて回収されており、通常、ステロイド療法の結果として好酸球数の減少が臨床的徴候の改良と関連している（Ｂｏｕｓｑｕｅｔら、Ｎ． Ｅｎｇ． Ｊ． Ｍｅｄ．、３２３：１０３３−１０３９（１９９０））。
【０００４】
インターロイキン５（ＩＬ−５）は、活性化ＣＤ４＋Ｔリンパ球により優勢的に産生されるホモダイマー糖タンパク質である。ヒトにおいて、ＩＬ−５は好酸球の成長および分化を調整することに大きく関与している。高レベルのＩＬ−５が、喘息患者の気管支肺胞洗浄液にて検出される（Ｍｏｔｏｊｕｍａら、Ａｌｌｅｒｇｙ、４８：９８（１９９３））。ＩＬ−５についてトランスジェニックなマウスは、抗原刺激のない末梢血液および組織中にて著しい好酸球増加症を示し（Ｄｅｎｔら、Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．、１７２：１４２５（１９９０））、抗−ネズミＩＬ−５モノクローナル抗体がマウスの血液および組織における好酸球増加症の減少（Ｈｉｔｏｓｈｉら、Ｉｎｔ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． ３：１３５（１９９１））ならびに実験動物における寄生虫感染およびアレルゲン攻撃に伴う好中球増加症の減少（Ｃｏｆｆｍａｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４５：３０８−３１０（１９８９）、Ｓｈｅｒら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．、８３：６１−６５（１９９０）、Ｃｈａｎｄら、Ｅｕｒ． Ｊ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．、２１１：１２１−１２３（１９９２））において効果を有することが明らかにされた。
【０００５】
コルチコステロイドは好酸球の数および喘息の他の炎症性成分を抑制することにおいて極めて効果的であるが、重度の喘息患者および最近では軽いないしは中程度の喘息患者における副作用と関連がある。他の主たる抗炎症薬療法−クロモグリケート（ｃｒｏｍｏｇｌｙｃａｔｅ）（クロモリンナトリウム（ｃｒｏｍｏｌｙｎ ｓｏｄｉｕｍ）およびネドクロミル（ｎｅｄｏｃｒｏｍｉｌ））だけではコルチコステロイドよりもかなり効能が小さく、その正確な作用機序は依然として不明である。
【非特許文献１】Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄら、Ｉｎ：Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌｓ，Ｈ．ＳｍｉｔｈおよびＲ．Ｃｏｏｋ，Ｅｄｓ．，１５１−１９２頁、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ（１９９３）
【非特許文献２】Ｃｏｒｒｉｇａｎら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ、１３：５０１−５０７（１９９２）
【非特許文献３】Ｇｒｉｆｆｅｎら、Ｊ．Ａｌｌｅｒ．Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、６７：５４８−５５７（１９９１）
【非特許文献４】Ｂｏｕｓｑｕｅｔら、Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．、３２３：１０３３−１０３９（１９９０）
【非特許文献５】Ｍｏｔｏｊｕｍａら、Ａｌｌｅｒｇｙ、４８：９８（１９９３）
【非特許文献６】Ｄｅｎｔら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、１７２：１４２５（１９９０）
【非特許文献７】Ｈｉｔｏｓｈｉら、Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．３：１３５（１９９１）
【非特許文献８】Ｃｏｆｆｍａｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４５：３０８−３１０（１９８９）
【非特許文献９】Ｓｈｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、８３：６１−６５（１９９０）
【非特許文献１０】Ｃｈａｎｄら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．、２１１：１２１−１２３（１９９２）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
最近の開発は、新規な吸入性ステロイド、長期作用性気管支拡張剤および新規な生化学または薬理学標的に作用する薬剤（例えば、カリウムチャネル活性化剤、ロイコトリエンアンタゴニスト、５−リポオキシゲナーゼ（５−ＬＯ）阻害剤など）に焦点が当てられている。理想的な薬物は、ステロイドの効能とクロモリンナトリウムに伴う安全性を併せて有し、さらには選択性が増加し、加えて迅速に作用を開始するものである。中和ＩＬ−５抗体は、ヒトの好酸球関連徴候を緩和するにおいて有用であるかもしれない。
【０００７】
したがって、当該分野においては、ヒトインターロイキン５に関する中和モノクローナル抗体などの、好酸球分化および増殖（すなわち、好酸球の蓄積）を減少させ、そして好酸球炎症を減少させる、高親和性ＩＬ−５アンタゴニストに対する要求がある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
第１の態様において、本発明は、好酸球の産生過多に伴う症状を治療するための改良方法であって、その改良がヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターα鎖に結合することを遮断しない、ヒトＩＬ−５に関する中和モノクローナル抗体を投与する工程からなる改良方法を提供する。そのようなモノクローナル抗体の一例がラットモノクローナル抗体４Ａ６である。
【０００９】
さらにもう一つ別の態様において、本発明は、ヒトにおけるヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体の有無を評価する方法であって、患者の生体液試料を得、ヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターα鎖に結合することを遮断しないヒトＩＬ−５に関するモノクローナル抗体を、ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／モノクローナル抗体複合体を形成しうるような条件下でかかる試料と接触させ、そのヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／モノクローナル抗体複合体の有無を検出することからなる方法を提供する。この方法を用いてヒトにおける好酸球の産生過多に伴う症状を診断することができ、さらにそのような障害の進行および処理を探知することができる。
【００１０】
さらなる態様において、本発明は、ＩＬ−５、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖／ｍＡｂ複合体がヒトＩＬ−５レセプターβ鎖に結合することを拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物とＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を可能とする条件下で接触させ、そのＩＬ−５、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖／ｍＡｂ複合体がそのＩＬ−５レセプターβ鎖に結合することを拮抗する候補化合物を同定することからなる方法を提供する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
詳細な記載およびその好ましい具体例において、本発明の他の態様および利点を記載する。
【００１２】
本発明は、ネズミモノクローナル抗体２Ｂ６またはラット抗体４Ａ６にて示されるようなヒトＩＬ−５結合特異性、中和活性およびヒトＩＬ−５に対する高親和性により特徴付けられる、種々の抗体、変性抗体およびそのフラグメントを提供する。本発明の抗体を、通常のハイブリドーマ技法、ファージディスプレイコンビナトリアルライブラリー、免疫グロブリン鎖シャフリングおよびヒト化技法により調製し、新規な中和抗体を生成した。これらの産物は、ＩＬ−５介在障害、例えば喘息の治療およびその障害の治療用医薬組成物において有用である。これらの産物はまた、ヒトの内因性ＩＬ−５レベルまたは活性化細胞よりエクスビボにて放出されたＩＬ−５を測定すること（例えば、酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ））でＩＬ−５介在症状を診断するにおいても有用である。
【００１３】
好ましくは、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−５に結合するが、ヒトＩＬ−５とＩＬ−５レセプターα鎖の間の相互作用を遮断しない。すなわち、好ましい抗体はヒトＩＬ−５についてのＩＬ−５レセプターα鎖と非競合的である。本発明の好ましい抗体はまた、ＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖の複合体と結合する。天然に存する可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖はインビトロにて観察されている（例えば、Ｔａｖｅｒｎｉｅｒら、Ｃｅｌｌ、６６：１１７５−１１８４（１９９１）を参照のこと）が、本願の前には、可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖がインビボにて産生されるかどうか、知られていなかった。出願人らはインビボにて可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖を同定した。かくして、複合したＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖に結合する抗体は、それが「フリーな」または複合していないＩＬ−５ならびに複合したＩＬ−５に結合するために、より効果的な治療剤であろう。加えて、可溶形態のＩＬ−５レセプターα鎖はヒトＩＬ−５の天然のアンタゴニストであろう。かくして、可溶性レセプターと競合しない抗体がさらに望ましく、ＩＬ−５の効果的なアンタゴニストであり、よって、好酸球の産生過多などのＩＬ−５介在症状を治療するための（ＩＬ−５への結合についてＩＬ−５レセプターα鎖と競合するｍＡｂとの関係にて）改良された治療剤である。
【００１４】
１．定義
「変性抗体」とは、選択された宿主細胞にて発現させることにより得ることのできる、変性免疫グロブリンのコーディング領域によりコードされるタンパク質をいう。かかる変性抗体は、改変抗体（例えば、キメラまたはヒト化抗体）または免疫グロブリン定常領域のすべてもしくは一部、例えば、Ｆｖ、ＦａｂもしくはＦ（ａｂ）２などを欠いている抗体フラグメントである。
【００１５】
「変性免疫グロブリンのコーディング領域」とは、本発明の変性抗体をコードする核酸配列をいう。変性抗体がＣＤＲグラフト化またはヒト化抗体である場合、非ヒト免疫グロブリンの相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードする配列をヒト可変フレームワーク配列を有する第１免疫グロブリンパートナーに挿入する。所望により、第１免疫グロブリンパートナーは第２免疫グロブリンパートナーに作動的に連結されていてもよい。
【００１６】
「第１免疫グロブリンパートナー」とは、自然の（または天然に存する）ＣＤＲコード化領域がドナー抗体のＣＤＲ−コード化領域と置換されている、ヒトフレームワークまたはヒト免疫グロブリン可変領域をコードする核酸配列をいう。ヒト可変領域は免疫グロブリンの重鎖、軽鎖（または両鎖）、アナログまたはその機能的フラグメントとすることができる。抗体（免疫グロブリン）の可変領域中に位置する、そのようなＣＤＲ領域は、当該分野における公知方法により決定することができる。例えば、Ｋａｂａｔら（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，第４版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（１９８７））はＣＤＲを位置付けるための規則を開示する。加えて、ＣＤＲ領域／構造を同定するのに有用なコンピュータープログラムも知られている。
【００１７】
「中和抗体」とは、結合が起こると、ヒトＩＬ−５のその特異的レセプターへの結合を阻害することにより、またはＩＬ−５のそのレセプターを介するシグナル化を阻害することによりＩＬ−５活性を阻害する抗体をいう。Ｂ１３細胞バイオアッセイ（ＩＬ−５中和抗体アッセイ、実施例２Ｃを参照のこと）にて測定した場合にＩＬ−５活性の阻害において９０％有効、好ましくは９５％有効、最も好ましくは１００％有効であるならば、ｍＡｂは中和抗体である。
【００１８】
「高親和性抗体」なる語は、光学バイオセンサー分析（実施例２Ｄを参照のこと）により測定した場合にヒトＩＬ−５について３．５ｘ１０−１１以下のＫｄ値により特徴付けられる結合親和性を有する抗体をいう。
【００１９】
「ヒトＩＬ−５に対する結合特異性」とは、ネズミではなく、ヒトのＩＬ−５に対する高親和性を意味する。
【００２０】
「第２免疫グロブリンパートナー」とは、第１免疫グロブリンパートナーがフレームにてまたは任意の慣用的リンカー配列の手段（すなわち、機能的連結手段）により融合するタンパク質またはペプチドをコードする別のヌクレオチド配列をいう。好ましくは、それは免疫グロブリン遺伝子である。第２免疫グロブリンパートナーは、目的とする同一（すなわち、相同的−第１および第２変性抗体が同一起源から由来する）または付加的（すなわち、異種的）抗体についての定常領域全体をコードする核酸配列を含んでいてもよい。そのパートナーは免疫グロブリンの重鎖または軽鎖（もしくは単一ポリペプチドの一部としての両鎖）であってもよい。第２免疫グロブリンパートナーは特定の免疫グロブリン種またはイソタイプに限定されない。加えて、第２免疫グロブリンパートナーは、ＦａｂまたはＦ（ａｂ）２に見られるような、免疫グロブリン定常領域の一部（すなわち、適当なヒト定常部またはフレームワーク領域の別個の部分）を有していてもよい。このような第２免疫グロブリンパートナーはまた、例えば、ファージディスプレイライブラリーの一部として、宿主細胞の外面に暴露された内在性膜タンパク質をコードする配列、あるいは分析または診断検出のためのタンパク質、例えばホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ等をコードする配列を有してもよい。
【００２１】
Ｆｖ、Ｆｃ、Ｆｄ、ＦａｂまたはＦ（ａｂ）２なる語は、その標準的な意味で用いられる（例えば、Ｈａｒｌｏｗら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ （１９８８）を参照のこと）。
【００２２】
本明細書にて用いる場合、「改変抗体」は一の型の変性抗体、すなわち、選択されたアクセプター抗体の軽鎖および／または重鎖可変ドメインが選択されたエピトープに対して特異性を有する１またはそれ以上のドナー抗体から由来の類似する部分により置換されている完全長の合成抗体（例えば、抗体フラグメントに対立するキメラまたはヒト化抗体）として記載する。例えば、そのような分子は修飾されていない軽鎖（またはキメラ軽鎖）と関連するヒト化重鎖あるいはその逆により特徴付けられる抗体を包含する。改変抗体はまた、ドナー抗体結合特異性を保持するためにアクセプター抗体の軽鎖および／または重鎖可変ドメインのフレームワーク領域をコードする核酸配列が変形されていることにより特徴付けることもできる。これらの抗体はアクセプター抗体から由来の１またはそれ以上のＣＤＲ（好ましくはすべてのＣＤＲ）が本明細書に記載のドナー抗体から由来のＣＤＲで置換されていてもよい。
【００２３】
「キメラ抗体」とは、アクセプター抗体から由来の軽鎖および重鎖定常部と共にドナー抗体から由来の天然に存在する可変領域（軽鎖および重鎖）を有する一の型の改変抗体をいう。
【００２４】
「ヒト化抗体」とは、ヒト以外のドナーの免疫グロブリンから由来のＣＤＲを有する一の型の改変抗体であって、その分子の残りの免疫グロブリン誘導部が一の（またはそれ以上の）ヒト免疫グロブリン（複数でも可）から由来する改変抗体をいう。加えて、フレームワーク支持残基を結合親和性を保持するように改変してもよい（例えば、Ｑｕｅｅｎら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ、８６：１００２９−１００３２（１９８９）；Ｈｏｄｇｓｏｎら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、９：４２１（１９９１）を参照のこと）。
【００２５】
「ドナー抗体」なる語は、変性免疫グロブリンのコーディング領域を提供し、ドナー抗体の特徴である抗原特異性および中和活性を有する変性抗体を発現するように、可変領域、ＣＤＲまたは他の機能性領域あるいはそのアナログを第１免疫グロブリンパートナーに付与する抗体（モノクローナルまたは組換え体）をいう。本発明にて用いるのに適当な一のドナー抗体は、２Ｂ６と称されるヒト以外のドナー（すなわち、ネズミ）中和モノクローナル抗体である。その２Ｂ６抗体は、高親和性の、ヒト−ＩＬ−５特異的な（すなわち、ネズミＩＬ−５を認識しない）、適当なネズミＩｇＧ定常領域に、各々、配列番号２および１６の可変軽鎖ＤＮＡおよびアミノ酸配列を、および各々、配列番号１および１５の可変重鎖ＤＮＡおよびアミノ酸配列を有するイソタイプＩｇＧ１の中和抗体と定義される。
【００２６】
「アクセプター抗体」なる語は、その重鎖および／または軽鎖フレームワーク領域ならびにその重鎖および／または軽鎖定常領域をコードする核酸配列のすべて（またはいずれかの部分であるが、好ましくはすべて）を第１免疫グロブリンパートナーに付与する、ドナー抗体に対して異種の抗体（モノクローナルまたは組換え体）をいう。ヒト抗体がアクセプター抗体であることが好ましい。
【００２７】
「ＣＤＲ」は、免疫グロブリンの重鎖および軽鎖超可変領域である、抗体の相補性決定領域のアミノ酸配列と定義される。例えば、Ｋａｂａｔら、Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第４版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（１９８７）を参照のこと。免疫グロブリンの可変部には、３つの重鎖および３つの軽鎖ＣＤＲ（またはＣＤＲ領域）がある。かくして、本明細書にて用いる「ＣＤＲ」は３つのすべての重鎖ＣＤＲまたは３つのすべての軽鎖ＣＤＲ（あるいは適当ならば、すべての重鎖とすべての軽鎖の両方のＣＤＲ）をいう。
【００２８】
ＣＤＲは抗体が抗原またはエピトープに結合するための多数の接触残基を提供する。本発明の目的とするＣＤＲはドナー抗体の可変重鎖および軽鎖配列より誘導され、天然に存在するＣＤＲのアナログを包含し、そのアナログもまた、それらを誘導するドナー抗体と同じ抗原結合特異性および／または中和能を共有あるいは保持している。
【００２９】
「抗原結合特異性または中和能を共有する」とは、例えば、ｍＡｂ ２Ｂ６はあるレベルの抗原親和性により特徴付けることができるが、適当な構造環境下にある２Ｂ６の核酸配列によりコードされるＣＤＲはより低いまたは高い親和性を有してもよいことを意味する。にもかかわらず、そのような環境下にある２Ｂ６のＣＤＲは２Ｂ６と同じエピトープを認識すると考えられる。２Ｂ６の代表的な重鎖ＣＤＲは、配列番号７；配列番号８；配列番号９を包含し、２Ｂ６の代表的な軽鎖ＣＤＲは、配列番号１０；配列番号１１；配列番号１２を包含する。
【００３０】
「機能的フラグメント」は、そのフラグメントを誘導する抗体と同じ抗原結合特異性および／または中和能を保持している部分的重鎖または軽鎖可変配列（免疫グロブリン可変領域のアミノまたはカルボキシ末端が僅かに欠失している配列）である。
【００３１】
「アナログ」は、少なくとも１個のアミノ酸により修飾されているアミノ酸配列であって、その修飾はアミノ酸が生物学的特性、例えば、非修飾配列の抗原特異性および高親和性を保持できるように、化学的に、あるいは２ないし３個（すなわち、１０個以下）のアミノ酸を置換または再配列することができるものである。例えば、特定のエンドヌクレアーゼ制限部位がＣＤＲコード領域内またはその周囲で形成される場合、置換を介して（サイレント）変異を行うことができる。
【００３２】
アナログはまた対立遺伝子変異として生じてもよい。「対立遺伝子変異または修飾」は、本発明のアミノ酸またはペプチド配列をコードする核酸配列の変化である。かかる変異または修飾は遺伝コードの縮重によるものであっても、または所望の特性を得るために故意に改変されたものであってもよい。これらの変異または修飾が、コードされたいずれかのアミノ酸配列において変化をもたらしてもよくまたはもたらさなくてもよい。
【００３３】
「エフェクター物質」なる語は、変性抗体および／または天然または合成の軽鎖または重鎖のドナー抗体あるいはドナー抗体の他のフラグメントが常套手段により結合していてもよい非タンパク質キャリア分子をいう。かかる非タンパク質キャリアは診断分野にて用いられる通常のキャリア、例えば、ポリスチレンまたは他のプラスチックビーズ、例えばＢＩＡｃｏｒｅ［Ｐｈａｒｍａｃｉａ］系において用いられるようなポリサッカリド、または医薬分野にて有用で、ヒトおよび動物への投与が安全な他の非タンパク質物質を包含することができる。他のエフェクター物質として、重金属原子を封鎖するためのマクロサイクルまたは放射性アイソトープが挙げられる。かかるエフェクター物質、例えばポリエチレングリコールは、変性抗体の半減期を増加させるのに有用であるかもしれない。
【００３４】
「好酸球の産生過多に伴う症状」とは、アレルギーおよび／またはアトピー応答、または限定されるものではないが、アレルギー鼻炎および喘息などの好酸球増加症に付随する応答をいう。
【００３５】
ＩＩ．高親和性ＩＬ−５モノクローナル抗体
本発明の抗体、変性抗体およびフラグメントの構築において用いる場合、ヒト以外の種（例えば、ウシ、ヒツジ、サル、ニワトリ、齧歯動物（例えば、ネズミおよびラット）など）を用い、天然のＩＬ−５またはそのペプチドエピトープを付与して所望の免疫グロブリンを得ることができる。従来のハイブリドーマ技法を用いてヒト以外の種のｍＡｂをＩＬ−５に分泌するハイブリドーマ細胞系を得る。そのようなハイブリドーマを、実施例のセクションにおいて記載されるように、９６−ウェルプレートに被覆したＩＬ−５、あるいは別法としてストレプタビジン被覆プレートに結合したビオチニル化ＩＬ−５を一緒に用いて結合についてスクリーニングする。
【００３６】
一の具体的な本発明の高親和性中和ｍＡｂは、以下の実施例１においてさらに詳細に記載される、キメラまたはヒト化抗体の開発のために用いることのできるｍＡｂ ２Ｂ６、ネズミ抗体である。２Ｂ６ ｍＡｂは、ＩＬ−５について３．５ｘ１０−１１Ｍよりも小さなＫｄ（約２．２ｘ１０−１１Ｍ）を有する、ヒトＩＬ−５との抗原結合特異性により特徴付けられる。２Ｂ６から由来のＦａｂフラグメントのＩＬ−５についてのＫｄ（実施例３Ｈを参照のこと）を光学バイオセンサーにより測定した場合、約９ｘ１０−１１Ｍであると評価された。ｍＡｂ ２Ｂ６がヒトＩＬ−５とヒトＩＬ−５レセプターのα鎖の間の結合相互作用を遮断することは明らかである。
【００３７】
もう一つ別の望ましいドナー抗体はネズミｍＡｂ ２Ｅ３である。このｍＡｂはイソタイプＩｇＧ２ａであること、３．５ｘ１０−１１Ｍ（約２．０ｘ１０−１１Ｍ）以下のｈＩＬ−５に対する解離定数を有することにより特徴付けられる。
【００３８】
さらに、もう一つ別の所望のドナーはラットｍＡｂ ４Ａ６である。このｍＡｂはｈＩＬ−５に対して３．５ｘ１０−１１Ｍ（約１．８ｘ１０−１１Ｍ）以下の解離定数を有することにより特徴付けられる。加えて、ｍＡｂ ４Ａ６がヒトＩＬ−５とＩＬ−５レセプターのβ−鎖の間の結合相互作用を遮断するのは明らかである。ｍＡｂ ４Ａ６はヒトＩＬ−５がＩＬ−５レセプターのα鎖に結合することを遮断しない。かくして、ｍＡｂ ４Ａ６はヒトＩＬ−５およびＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖の複合体を結合する。
【００３９】
本発明は、２Ｂ６ ｍＡｂ、２Ｅ３ ｍＡｂまたはその超可変（すなわち、ＣＤＲ）配列の使用に限定されるものではない。ヒトＩＬ−５および対応する抗−ＩＬ−５ ＣＤＲに対して３．５ｘ１０−１１Ｍ以下の解離定数により特徴付けられる他の適当な高親和性ＩＬ−５抗体をその代わりに用いてもよい。以下の記載においては常に、ドナー抗体は２Ｂ６または２Ｅ３と同定されるが、この称呼は単に記載を明瞭かつ簡潔にするにすぎない。
【００４０】
ＩＩＩ．抗体フラグメント
本発明はまたヒトＩＬ−５と対抗して方向づけられるｍＡｂより由来のＦａｂフラグメントまたはＦ（ａｂ’）２フラグメントの使用を包含する。これらのフラグメントはＩＬ−５および好酸球介在症状に対するインビボにおける保護剤として、あるいはＩＬ−５診断剤として有用である。Ｆａｂフラグメントは軽鎖全体および重鎖のアミノ末端部を含有し；Ｆ（ａｂ’）２フラグメントはジスルフィド結合により結合した２つのＦａｂフラグメントにより形成されるフラグメントである。ｍＡｂ ２Ｂ６、２Ｅ３および他の同様の高親和性のＩＬ−５結合抗体は、ＦａｂフラグメントおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントの供給源を提供し、常套手段、例えば、ｍＡｂを適当なタンパク質分解酵素、パパインおよび／またはペプシンで切断することにより、または組換え技法により得ることができる。これらのＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、それ自体が治療剤、保護剤または診断剤として、および本明細書に記載の組換え体またはヒト化抗体の形成において有用な可変領域およびＣＤＲ配列を含む配列のドナーとして有用である。
【００４１】
ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、コンビナトリアルファージライブラリー（例えば、Ｗｉｎｔｅｒら、Ａｎｎ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１２：４３３−４５５（１９９４）を参照のこと）を介するか、または免疫グロブリンチェインシャフリング（例えば、Ｍａｒｋｓら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０：７７９−７８３（１９９２）を参照のこと）（共に出典明示により本明細書の一部とする）を介して構築することができ、ここで選択された抗体（例えば、２Ｂ６）からのＦｄまたはＶＨ免疫グロブリンを軽鎖免疫グロブリンのレパートリー、ＶＬ（またはＶＫ）と結合させ、新規なＦａｂを形成することができる。反対に、選択された抗体からの軽鎖免疫グロブリンを重鎖免疫グロブリンのレパートリー、ＶＨ（またはＦｄ）と結合させて新規なＦａｂを形成することもできる。実施例においてさらに詳細に記載されるように、ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｂを軽鎖免疫グロブリンのレパートリーと結合させると中和ＩＬ−５Ｆａｂが得られた。すなわち、チェインシャフリング法により独特な配列（ヌクレオチドおよびアミノ酸）を有する中和Ｆａｂを回収することができる。
【００４２】
ＩＶ．．目的とする抗−ＩＬ−５アミノ酸およびヌクレオチド配列
ｍＡｂ ２Ｂ６または前記の他の抗体は、ドナー抗体の抗原結合特異性により特徴付けられる種々の変性抗体を設計して得るのに有用な、可変重鎖および／または軽鎖ペプチド配列、フレームワーク配列、ＣＤＲ配列、その機能的フラグメントおよびアナログ、ならびにそれらをコードする核酸配列などの配列を付与する。
【００４３】
一例として、本発明は、ＩＬ−５ネズミ抗体２Ｂ６からの可変軽鎖および可変重鎖配列およびそれに由来する配列を提供する。２Ｂ６の重鎖可変領域を図１に示す。ＣＤＲコード化領域はボックス部で示されており、配列番号７；配列番号８および配列番号９にて提供される。２Ｂ６の軽鎖クローン可変領域を図２に示す。ＣＤＲコード化領域は配列番号１０；配列番号１１および配列番号１２で提供される。
【００４４】
ヒト化重鎖可変領域を図８（配列番号１８および１９）で示す。シグナル配列もまた、配列番号１７で示す。他の適当なシグナル配列は当業者に公知であり、本明細書に列挙されているシグナル配列と置き換えてもよい。この構築体のＣＤＲアミノ酸配列は元のネズミのおよびキメラ重鎖ＣＤＲと同じであり、配列番号７；配列番号８および配列番号９で提供される。具体的な（合成）ヒト化軽鎖可変配列を図９（配列番号２０および２１）に示す。
【００４５】
可変軽鎖および重鎖ペプチド配列をコードする、本発明の核酸配列またはそのフラグメントはまた、ＣＤＲをコードする核酸配列またはフレームワーク領域内にて特異的変化を変異誘発発生導入するのに、および得られた修飾または融合核酸配列を発現用プラスミドに組み込むのに有用である。例えば、フレームワークおよびＣＤＲコード化領域のヌクレオチド配列におけるサイレント置換を用い、変異誘発発生ＣＤＲ（および／またはフレームワーク）領域の挿入を容易にする制限酵素部位を構成した。これらのＣＤＲコード化領域は本発明のヒト化抗体の構築に用いた。
【００４６】
遺伝暗号の縮重性を考慮すれば、本発明の可変重鎖および軽鎖アミノ酸配列およびＣＤＲ配列、ならびにドナー抗体の抗原特異性を共有するその機能的フラグメントおよびアナログをコードする種々のコーディング配列を構築することができる。可変鎖ペプチド配列またはＣＤＲをコードする、本発明の単離された核酸配列またはそのフラグメントを用いて変性抗体、例えば、キメラまたはヒト化抗体、または別の免疫グロブリンパートナーと機能的に結合させた本発明の他の改変抗体を産生することができる。
【００４７】
本明細書に記載の変性抗体の一部をコードする単離された核酸配列に加えて、元のＣＤＲコード化配列に相補的な配列またはそのＣＤＲコード化領域の周りの修飾されたヒトフレームワーク領域に相補的な配列などの、別のそのような核酸配列も本発明に含まれる。有用なＤＮＡ配列は、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下（Ｔ． Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ （１９８２）、３８７−３８９頁を参照のこと）でＤＮＡ配列とハイブリダイズする配列を包含する。そのようなストリンジェントなハイブリダイゼーション条件の一例は、４ｘＳＳＣ、６５℃でハイブリダイゼーションし、つづいて０．１ｘＳＳＣ中で１時間洗浄するものである。また、代表的なストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、５０％ホルムアミド中、４ｘＳＳＣ、４２℃での条件である。好ましくは、これらのハイブリダイゼーションするＤＮＡ配列は、その長さが少なくとも１８個のヌクレオチドであり、すなわち略ＣＤＲの大きさである。
【００４８】
Ｖ．変性免疫グロブリン分子および変性抗体
変性免疫グロブリン分子は、キメラ抗体およびヒト化抗体などの改変抗体を含む変性抗体をコードすることができる。所望の変性免疫グロブリンのコーディング領域は、第１免疫グロブリンパートナー（ヒトフレームワークまたはヒト免疫グロブリン可変領域）に挿入されるＩＬ−５抗体、好ましくは本発明により得られるような高親和性抗体の抗原特異性を有するペプチドをコードするＣＤＲコード化領域を含有する。
【００４９】
好ましくは、第１免疫グロブリンパートナーは、第２免疫グロブリンパートナーに作動可能に連結している。第２免疫グロブリンパートナーは前記に定義されているとおりであり、目的とする第２抗体領域、例えばＦｃ領域をコードする配列を有していてもよい。第２免疫グロブリンパートナーはまた、軽鎖または重鎖の定常領域がフレームにてまたはリンカー配列により融合する別の免疫グロブリンをコードする配列を含んでいてもよい。ＩＬ−５の機能的フラグメントまたはアナログに拮抗するように指向された改変抗体を、同一抗体との結合の強化を惹起するように設計してもよい。
【００５０】
第２免疫グロブリンパートナーをまた、非タンパク質キャリアー分子を含む、第２免疫グロブリンパートナーが常套手段により作動可能に連結することのできる、前記したエフェクター物質と結合させてもよい。
【００５１】
第２免疫グロブリンパートナー、例えば、抗体配列と、エフェクター物質との融合または連結は、いずれか適当な手段、例えば、通常の共有結合またはイオン結合、タンパク質融合、またはヘテロ−二機能的架橋剤、例えば、カルボジイミド、グルタルアルデヒドなどによるものである。かかる技法は当該分野にて知られており、汎用的な化学および生化学テキストに記載されている。
【００５２】
加えて、第２免疫グロブリンパートナーとエフェクター物質との間に所望の間隔を付与するにすぎない通常のリンカー配列をまた、変性免疫グロブリンのコーディング領域に構築することもできる。そのようなリンカーの設計は当業者に周知である。
【００５３】
加えて、本発明の分子についてのシグナル配列を修飾し、発現を向上させることもできる。一例として、ネズミ重鎖配列から由来のシグナル配列およびＣＤＲを有する２Ｂ６ヒト化抗体は、最初のシグナルペプチドがもう一つ別のシグナル配列（配列番号１７）で置換されている。
【００５４】
一の典型的な変性抗体は、ｍＡｂ ２Ｂ６の抗原特異性を有する可変重鎖および／または軽鎖のペプチドまたはタンパク質配列、例えばＶＨおよびＶＬ鎖を有する。
【００５５】
本発明のさらに別の望ましい変性抗体は、ネズミ抗体分子２Ｂ６の重鎖および／または軽鎖の可変領域のＣＤＲの少なくとも１つ、好ましくは全てを、ヒト起源から由来の残りの配列、あるいはその機能的フラグメントまたはアナログと共に含有するアミノ酸配列により特徴付けられる。例えば、ヒト化ＶＨおよびＶＬ領域（図８および９）を参照のこと。
【００５６】
別のさらなる具体例において、本発明の改変抗体を別の物質と結合させてもよい。例えば、組換えＤＮＡ技法の操作を用いて、完全な抗体分子のＦｃフラグメントまたはＣＨ２ ＣＨ３ドメインが酵素または他の検出可能な分子（すなわち、ポリペプチドのエフェクターまたはレポーター分子）により置換されている、本発明の改変抗体を産生することができる。
【００５７】
第２免疫グロブリンパートナーもまた、ネズミ２Ｂ６の抗原特異性を有するＣＤＲ含有配列に異種的な非免疫グロブリンペプチド、タンパク質またはそのフラグメントに作動可能に連結させることができる。得られたタンパク質は、抗−ＩＬ−５抗原特異性と、発現して非免疫グロブリンの特性の両方を示すかもしれない。その融合パートナーの特性は、例えば、別の結合またはレセプタードメインなどの機能的特性であってもよく、あるいは融合パートナーその物が治療タンパク質である場合の治療特性または付加的な抗原特性であってもよい。
【００５８】
本発明の別の望ましいタンパク質は、完全な長さの重鎖および軽鎖またはその別個のフラグメント、例えばＦａｂまたはＦ（ａｂ’）２フラグメント、重鎖ダイマー、またはＦＶまたは単鎖抗体（ＳＣＡ）などのその最小組換えフラグメント、あるいは選択されたドナーｍＡｂ、例えばｍＡｂ ２Ｂ６または２Ｅ３と同様の特異性を有する他の分子を有する完全な抗体分子を含んでいてもよい。かかるタンパク質は変性抗体の形態にて用いてもよく、あるいはその非融合形態にて用いてもよい。
【００５９】
第２免疫グロブリンパートナーがドナー抗体と異なる抗体、例えばイソタイプまたは種の免疫グロブリンのフレームワークまたは定常領域より誘導される場合はいつでも、改変抗体が結果として生じる。改変抗体は、一の起源、例えば、アクセプター抗原からの免疫グロブリン（Ｉｇ）定常領域と可変フレームワーク領域、およびドナー抗体、例えば、本明細書に記載の抗−ＩＬ−５抗体からの１またはそれ以上の（好ましくはすべての）ＣＤＲを有し得る。加えて、アクセプターｍＡｂの軽鎖および／または重鎖の可変ドメインフレームワーク領域の核酸またはアミノ酸レベルでの、またはドナーＣＤＲ領域の改変、例えば、欠失、置換または付加を、ドナー抗体の抗原結合特異性を保持するために行ってもよい。
【００６０】
そのような改変抗体を、（前記したように修飾されていてもよい）ＩＬ−５ｍＡｂの一方（または両方）の可変重鎖および／または軽鎖あるいは１またはそれ以上の以下に示す重鎖または軽鎖ＣＤＲ（図７を参照のこと）を用いるように設計する。本発明の改変抗体は中和作用を示し、すなわち、該抗体は、望ましくは、ＩＬ−５タンパク質のレセプターへの結合を遮断し、ＩＬ−５依存性細胞の増殖を遮断または妨げる。
【００６１】
かかる改変抗体は、選択されたヒト免疫グロブリンまたはサブタイプのフレームワーク領域を含有するヒト化抗体、またはＩＬ−５抗体の機能的フラグメントに融合したヒト重鎖および軽鎖の定常領域を含有するキメラ抗体を有していてもよい。適当なヒト（または他の動物）アクセプター抗体は、ドナー抗体のヌクレオチドまたはアミノ酸配列との相同性により、慣用的データベース、例えば、ＫＡＢＡＴ（登録商標）データベース、Ｌｏｓ Ａｌａｍｏｓ データベースおよびＳｗｉｓｓ Ｐｒｏｔｅｉｎ データベースより選択されるものであってもよい。（アミノ酸を基礎として）ドナー抗体のフレームワーク領域との相同性により特徴付けられるヒト抗体は、ドナーＣＤＲを挿入するための重鎖の定常領域および／または重鎖の可変フレームワーク領域を供給するのに適しているかもしれない。軽鎖の定常または可変フレームワーク領域を供与することのできる適当なアクセプター抗体は同様の方法により選択することができる。アクセプター抗体の重鎖および軽鎖は同一のアクセプター抗体より得ることを要しないことに留意すべきである。
【００６２】
異種フレームワークおよび定常領域は、ＩｇＧ（サブタイプ１ないし４）、ＩｇＭ、ＩｇＡおよびＩｇＥなどのヒト免疫グロブリン種およびイソタイプより選択されることが望ましい。しかしながら、アクセプター抗体はヒト免疫グロブリンのタンパク質配列だけを有している必要はない。例えば、ヒト免疫グロブリン鎖の一部をコードするＤＮＡ配列が非免疫グロブリンアミノ酸配列、例えばポリペプチドのエフェクターまたはレポーター分子をコードするＤＮＡ配列に融合するように遺伝子を構築してもよい。
【００６３】
特に望ましいヒト化抗体は、一例として、選択されたヒト抗体配列のフレームワーク領域上に挿入された２Ｂ６のＣＤＲを有する。ヒト化中和抗体では、ＩＬ−５抗体の重鎖および／または軽鎖の可変領域からの１、２または好ましくは３個のＣＤＲを、選択されたヒト抗体配列のフレームワーク領域に挿入し、ヒト抗体の本来のＣＤＲと置き換える。
【００６４】
好ましくは、ヒト化抗体中の、ヒト重鎖および軽鎖の可変ドメインを１またはそれ以上のＣＤＲ置換により改変する。６個すべてのＣＤＲをまたは６個より少ないＣＤＲを種々組み合わせて用いることが可能である。６個すべてのＣＤＲを置換することが好ましい。軽鎖としてヒトアクセプター抗体から由来の非修飾軽鎖を用い、ヒト重鎖においてのみＣＤＲを置換することも可能である。さらに別法として、通常の抗体データベースに依存して、別のヒト抗体から適合可能な軽鎖を選択することができる。改変抗体の残りは、いずれか適当なヒト免疫グロブリンより誘導することができる。
【００６５】
かくして、改変されたヒト化抗体は、天然のヒト抗体またはそのフラグメントの構造を有し、効果的な治療用途、例えば、ヒトにおけるＩＬ−５介在炎症疾患の治療、あるいは診断用途に必要な特性を組み合わせて有することが好ましい。
【００６６】
もう一つ別の例として、改変抗体は、２Ｅ３の軽鎖の可変領域の３つのＣＤＲ（配列番号１０、１１および１３）および２Ｂ６の重鎖の可変領域の３つのＣＤＲ（配列番号７，８および９）を有していてもよい。得られたヒト化抗体はｍＡｂ ２Ｂ６の同じ抗原結合特異性および高親和性により特徴付けられるはずである。
【００６７】
当業者であれば、必然的にドナー抗体の特異性および高アフィニティーに影響を及ぼすことなく、可変ドメインのアミノ酸を変化させることにより、改変抗体（すなわち、アナログ）をさらに修飾してもよいことが理解されるであろう。重鎖および軽鎖のアミノ酸が可変ドメインフレームワークまたはＣＤＲのいずれかでもしくはその両方にて他のアミノ酸で置換されていてもよいと考えられる。
【００６８】
加えて、定常領域を改変し、本発明の分子の選択性を強化または減少させてもよい。例えば、二量体化、Ｆｃレセプターとの結合、または補体と結合して活性化することができる（例えば、Ａｎｇａｌら、Ｍｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、３０：１０５−１０８（１９９３）、Ｘｕら、Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．、２６９：３４６９−３４７４（１９９４）、Ｗｉｎｔｅｒら、ＥＰ３０７４３４−Ｂを参照のこと）。
【００６９】
キメラ抗体である変性抗体は、フレームワーク領域を含む、完全なヒト以外のドナー抗体の重鎖および軽鎖の可変領域を、ヒト免疫グロブリンの両鎖の定常領域と一緒に提供することで、前記したヒト化抗体と区別される。本発明のヒト化抗体に関連して付加的な非ヒト配列を保持するキメラ抗体はヒトにて有意な免疫応答を惹起させると考えられる。
【００７０】
そのような抗体は、以下に示すようなＩＬ−５介在疾患の予防および治療にて有用である。
【００７１】
ＶＩ．変性および改変抗体の産生
好ましくは、ｍＡｂ ２Ｂ６または他の適当なドナーｍＡｂ（例えば、２Ｅ３、２Ｆ２，４Ａ６など）の可変軽鎖および／または重鎖配列およびＣＤＲおよびそのコード化核酸配列を、以下の方法により、本発明の変性抗体、好ましくはヒト化抗体の構築に利用する。同一または類似する技法を用いて、本発明の他の具体例を実施してもよい。
【００７２】
選択されたドナーｍＡｂ、例えば、ネズミ抗体２Ｂ６を産生するハイブリドーマを慣用的にクローンし、その重鎖および軽鎖の可変領域のＤＮＡを当業者に公知の方法、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８９））に記載の方法により得る。少なくともＣＤＲをコードする領域およびドナーｍＡｂ結合特異性を保持するために必要とされるアクセプターｍＡｂの軽鎖および／または重鎖の可変ドメインフレームワーク領域の部分、ならびにヒト免疫グロブリンより由来の抗体鎖の残りの免疫グロブリン誘導部を含有する２Ｂ６の重鎖および軽鎖の可変領域は、ポリヌクレオチドのプライマーおよび逆転写酵素を用いて得られる。そのＣＤＲをコードする領域は既知のデータベースを用いて他の抗体と比較することにより同定される。
【００７３】
ついで、マウス／ヒトのキメラ抗体を調製し、結合能についてアッセイする。かかるキメラ抗体は完全なヒト以外のドナー抗体ＶＨおよびＶＬ領域を、両鎖のヒトＩｇ定常領域と共に含有する。
【００７４】
ヒト抗体からの重鎖の可変領域の同種フレームワーク領域をコンピューターデーターベース、例えば、ＫＡＢＡＴ（登録商標）を用いて同定し、２Ｂ６と相同性を有するヒト抗体をアクセプター抗体として選択した。２Ｂ６ ＣＤＲをコードする領域をヒト抗体フレームワーク内に含有する合成した重鎖の可変領域の配列を、フレームワーク領域にて任意のヌクレオチド置換で制限部位が組み込まれるように設計した。ついで、この設計された配列を長鎖合成オリゴマーを用いて合成した。別法として、その設計された配列をオリゴヌクレオチドを重ね、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅し、誤りを正すことにより合成することもできる。
【００７５】
適当な軽鎖の可変フレームワーク領域を同様にして設計した。
【００７６】
ヒト化抗体はキメラ抗体から誘導してもよく、あるいは好ましくは、重鎖および軽鎖からのドナーｍＡｂのＣＤＲをコードする領域を、適宜、選択された重鎖および軽鎖フレームワーク内に挿入することにより製造することもできる。別法として、本発明のヒト化抗体を標準的な突然変異誘発法を用いて調製してもよい。かくして、得られたヒト化抗体はヒトフレームワーク領域およびドナーｍＡｂ ＣＤＲをコードする領域を含有する。つづいてフレームワークの残基を製造してもよい。得られたヒト化抗体を組換え宿主細胞、例えば、ＣＯＳ、ＣＨＯまたは骨髄腫細胞にて発現させることができる。この技法を用いて、他のヒト化抗体を他の適当なＩＬ−５特異的、中和、高親和性、非ヒト抗体について調製してもよい。
【００７７】
変性抗体についてのこれらのコーディング配列を宿主細胞における複製ならびに発現および／または宿主細胞からの分泌を調節する能力を有する通常の調節対照配列と機能的に組み合わせて配置することにより、通常の発現ベクターまたは組換えプラスミドを産生する。調節配列は、プロモーター配列、例えば、ＣＭＶプロモーターおよびシグナル配列を包含し、他の既知の抗体より誘導することができる。同様に、相補的抗体の軽鎖または重鎖をコードするＤＮＡ配列を有する第２発現ベクターを産生することができる。この第２発現ベクターは、できる限り各ポリペプチド鎖が機能的に発現されるように、コーディング配列および選択可能なマーカーが関係する範囲を除いて第１発現ベクターと同一であることが好ましい。また、変性抗体の重鎖および軽鎖のコーディング配列がシグナルベクター上に存していてもよい。
【００７８】
選択された宿主細胞は、一般的技法により、第１および第２の両方のベクターで共トランスフェクション（または、単一のベクターで単一トランスフェクション）され、組換えまたは合成の軽鎖および重鎖の両方を有してなる本発明のトランスフェクションされた宿主細胞を形成する。ついで、このトランスフェクションされた細胞を一般的技法により培養し、本発明の改変抗体を産生する。組換え重鎖および／または軽鎖の両方の結合体を含むヒト化抗体を、適当なアッセイ、例えば、ＥＬＩＳＡまたはＲＩＡにより培養体よりスクリーンする。同様の一般的技法を用いて本発明の他の変性抗体および分子を構築してもよい。
【００７９】
当業者は、本発明の方法および組成物の構築に用いられるクローニングおよびサブクローニング工程のための適当なベクターを選択する。例えば、通常のｐＵＣシリーズのクローニングベクターを用いてもよい。使用されるベクターの一つがｐＵＣ１９であり、例えば、Ａｍｅｒｓｈａｍ（Ｂｕｃｋｉｎｇｈａｍｓｈｉｒｅ、Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｍ）またはＰｈａｒｍａｃｉａ（Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）より入手可能である。加えて、容易に複製することのできるいずれのベクターも多くのクローニング部位および選択可能な遺伝子（例えば、抗生物質耐性）を有しており、操作が簡単であり、クローニングに用いることができる。かくして、クローニングベクターの選択は本発明を限定するファクターではない。
【００８０】
同様に、本発明に係る改変抗体の発現に用いられるベクターは、当業者であれば一般的ないずれのベクターからも選択することができる。ベクターはまた、選択された宿主細胞における異種ＤＮＡ配列の複製および発現を指向する選択された調節配列（例えば、ＣＭＶプロモーター）を有する。これらのベクターは、改変抗体または変性免疫グロブリンのコーディング領域をコードする前記したＤＮＡ配列を有する。加えて、ベクターは取り扱いを容易にするために所望の制限部位を挿入することで修飾された選択免疫グロブリン配列が組み込まれていてもよい。
【００８１】
発現ベクターはまた、異種ＤＮＡ配列の発現を増幅するのに適した遺伝子、例えば、哺乳動物のジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）により特徴付けることもできる。他の好ましいベクター配列は、ウシ成長ホルモン（ＢＧＨ）からのようなポリＡシグナル配列およびベータグロビンプロモーター配列（ベータグロプロ）を包含する。本明細書中において有用な発現ベクターは、当業者に周知の方法により合成してもよい。
【００８２】
かかるベクターの成分、例えば、レプリコン、選択遺伝子、エンハンサー、プロモーター、シグナル配列などは市販または天然源より入手してもよく、あるいは選択宿主における組換えＤＮＡの産物の発現および／または分泌を方向づけるのに用いる公知操作により合成してもよい。哺乳動物、細菌、昆虫、酵母および真菌の発現の分野において多くの種類が知られている他の適当な発現ベクターもまたこの目的のために選択することができる。
【００８３】
本発明はまた、改変抗体またはその変性免疫グロブリン分子のコーディング配列を含有する組換えプラスミドでトランスフェクションされた細胞系も包含する。これらのクローニングベクターのクローニングおよび他の操作に関して有用な宿主細胞もまた一般的なものである。しかし、最も望ましくは、イー・コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）の種々の株からの細胞をクローニングベクターの複製および本発明の変性抗体の構築における他の工程に用いる。
【００８４】
本発明の改変抗体または変性抗体を発現させるのに適当な宿主細胞または細胞系は、ＣＨＯ、ＣＯＳ、繊維芽細胞（例えば、３Ｔ３）および骨髄細胞などの哺乳動物細胞であることが好ましく、より好ましくはＣＨＯまたは骨髄細胞である。分子をヒト糖鎖形成パターンで修飾されるようにする、ヒト細胞を用いてもよい。また他の真核生物細胞系を用いてもよい。適当な哺乳動物の宿主細胞ならびに形質転換、培養、増幅、スクリーニング、および産物の産生および精製の方法の選択は当該分野にて知られている。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、前掲を参照のこと。
【００８５】
細菌細胞が本発明の組換えＦａｂを発現するのに適した宿主細胞として有用であることが明らかにされた（例えば、Ｐｌｕｋｔｈｕｎ，Ａ．、Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｒｅｖ．、１３０：１５１−１８８（１９９２）を参照のこと）。しかしながら、細菌細胞にて発現されたタンパク質は、折りたたまれていないか、不当に折りたたまれた形態にあるか、または糖鎖形成されていない形態にあるという傾向のため、細菌細胞にて産生されるいずれの組換えＦａｂも抗原結合能を保持するためにスクリーニングされなければならないであろう。細菌細胞により発現される分子が適宜折りたたまれた形態にて産生されたならば、その細菌細胞は望ましい宿主であろう。例えば、発現のために用いられるイー・コリの種々の菌株が生物工学の分野にて宿主細胞としてよく知られている。バチルス・サチリス（Ｂ． ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、他のバチルス属などの種々の菌株もまたこの方法にて利用することができる。
【００８６】
所望により、当該分野の当業者に知られている酵母細胞の菌株を、ならびに昆虫細胞、例えば、ＤｒｏｓｏｐｈｉｌａおよびＬｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ、およびウイルス発現系の菌株を宿主細胞として利用してもよい。例えば、Ｍｉｌｌｅｒら、Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、８：２７７−２９８、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ（１９８６）およびその中の引用文献を参照のこと。
【００８７】
本発明のベクターを構築することのできる一般的方法、本発明の宿主細胞を産生するのに必要なトランスフェクション法、および本発明の変性抗体をかかる宿主細胞から産生するのに必要な培養方法はすべて慣用的技法である。同様に、一度産生した、本発明の変性抗体を、硫酸アンモニウム沈降、アフィニティーカラム、カラムクロマトグラフィー、ゲル電気泳動などを含む、当該分野における標準技法に従って、細胞培養物より精製することができる。かかる方法は当該分野の範囲内であり、本発明を限定するものではない。
ヒト化抗体のさらに別の発現法として、米国特許第４８７３３１６号に記載されるように、トランスジェニック動物における発現を利用することができる。この特許はトランスジェニック的に哺乳動物に組み込まれた場合に雌がミルク中に所望の組換えタンパク質を産生させるような動物のカゼインプロモーターを用いる発現系に関するものである。
改変抗体を所望の方法により発現させて、ついでその抗体を適当なアッセイを用いてインビトロ活性について試験する。近年一般的なＥＬＩＳＡアッセイフォーマットを利用して改変抗体とＩＬ−５の結合を定性的かつ定量的に評価する。加えて、さらにその後にヒト臨床実験を行う前に他のインビトロアッセイを用いて中和効能を明確にし、通常のクリアランス機構にもかかわらず、体内における改変抗体の永続性を評価することができる。
２Ｂ６より調製されるヒト化抗体について記載されている操作に従って、当業者であれば他のドナーＩＬ−５抗体、可変領域配列および本明細書に記載のＣＤＲペプチドからヒト化抗体を構築することもできる。改変抗体は、改変抗体の受容体により潜在的に「自己」と認識される可変領域フレームワークで産生することもできる。可変領域のフレームワークを少し修飾し、受容体に対して免疫原性が顕著に増加することなく、抗原結合を大きく増加させることができる。そのような改変抗体は、ＩＬ−５介在症状に対してヒトを効果的に治療するかもしれない。かかる抗体はまたそのような症状の診断に有用であるかもしれない。
【００８８】
ＶＩＩ．治療／予防／診断的使用
本発明はまた、好酸球関連徴候、すなわち、好酸球産生過多に伴う症状、例えば喘息を患っているヒトの治療法であって、１またはそれ以上の本明細書に記載の改変抗体または変性抗体、またはそのフラグメントを含む、有効量の抗体を投与することからなる方法に関する。
【００８９】
本発明の分子を用いて誘発される治療応答は、分子がヒトＩＬ−５に結合し、つづいて好酸球刺激を遮断することにより誘起される。好ましくは、本発明の分子は、ヒトＩＬ−５との結合についてＩＬ−５レセプターアルファ−鎖と競合しない。すなわち、本発明の好ましい分子は、ヒトＩＬ−５がヒトＩＬ−５レセプターのα鎖に結合することを遮断しない。かくして、治療に用いるのに適する製剤および処方において、本発明の分子は、アレルギーおよび／またはアトピー応答、または好酸球増加症に付随する応答、例えば、限定されるものではないが、アレルギー性鼻炎、喘息、慢性好酸球性肺炎、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症、小児脂肪便症、好酸球性胃腸炎、チャーグ−ストラウス症候群（結節性動脈周囲炎＋アトピー）、好酸球性筋痛症候群、過好酸球性症候群、偶発性血管性浮腫を含む浮腫性反応、ぜん虫感染（好酸球が予防機能を有するかもしれない）、オンコセルカ皮膚炎およびアトピー性皮膚炎を経験している人々には極めて望ましいものである。
【００９０】
本発明の変性抗体、抗体およびそのフラグメントはまた、他の抗体、特に本発明の改変抗体が対向して関与する症状の原因である他のマーカー（エピトープ）と反応的なヒトｍＡｂと一緒に用いてもよい。
【００９１】
本発明の治療薬は、約２日から約３週間の、または必要に応じて、アレルギー症状の治療に望ましいと考えられる。例えば、より長期の治療は季節性鼻炎などを治療する場合に望ましい場合もある。これはＩＬ−５介在障害の従来の治療で現在使用されている注入プロトコルよりもかなり優れている。投与量および治療期間は本発明の分子のヒト循環にある相対的な期間と関連しており、治療すべき症状および患者の健康に応じて当業者であれば調節することができる。
【００９２】
本発明の治療薬の投与方法は、該治療薬を宿主にデリバリーする適当な経路とすることができる。本発明の変性抗体、抗体、改変抗体およびそのフラグメント、ならびに医薬組成物は、非経口投与、すなわち、皮下、筋肉内、静脈内または経鼻内投与に特に有用である。
【００９３】
本発明の治療薬は、医薬上許容される担体中に、有効成分として本発明の改変（例えば、ヒト化）抗体を有効量含有してなる医薬組成物として調製できる。本発明の予防薬において、注射の準備の整った形態の、好ましくは生理学的ｐＨに緩衝処理した、改変抗体を含有する水性懸濁液または水溶液が好ましい。非経口投与用組成物は、一般に、医薬上許容される担体、好ましくは水性担体に溶かした本発明の改変抗体の溶液またはそのカクテルを含む。種々の水性担体、例えば、０．４％セイライン、０．３％グリシンなどを用いてもよい。これらの溶液は滅菌されており、一般に粒状物を含まない。これらの溶液は、慣用的な周知滅菌技法（例えば、濾過）により滅菌処理できる。組成物は要すれば医薬上許容される補助物質を含有していてもよく、ｐＨ調節剤および緩衝剤などの生理学的条件に近づけることができる。かかる医薬処方中の本発明の抗体の濃度は、広範囲に、すなわち、約０．５重量％未満から、一般には約１重量％でまたは少なくとも１重量％から、１５または２０重量％程度まで変化させることができ、選択される特定の投与法に従って、流状体積、粘度等に基づいて主に選択されるであろう。
【００９４】
このように、筋肉内注射用の本発明の医薬組成物は、１ｍｌの滅菌緩衝水と、約１ｎｇないし約１００ｍｇ、例えば、約５０ｎｇないし約３０ｍｇ、さらに好ましくは約５ｍｇないし約２５ｍｇの本発明の改変抗体を含有するように調製される。同様に、静脈内注入用の本発明の医薬組成物は、約２５０ｍｌのＲｉｎｇｅｒ滅菌溶液と、約１ｍｇないし約３０ｍｇ、好ましくは５ｍｇないし約２５ｍｇの本発明の改変抗体を含有するように調製される。非経口投与可能な組成物の製法は周知であるかまたは当業者に明らかであり、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ、第１５版、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ、Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａにおいてより詳細に記載されている。
【００９５】
本発明の治療薬は、医薬製剤において、単位投与形にて投与されることが好ましい。適当な治療上有効な量は当業者であれば容易に決定することができる。ヒトまたは他の動物における炎症障害を効果的に治療するために、一回の用量が体重７０ｋｇ当たり約０．１ｍｇないし約２０ｍｇの本発明のタンパク質または抗体を、非経口的に、好ましくは静脈内または筋肉内投与すべきである。必要ならば、かかる投与を、炎症応答の間、顧問医によって適宜選択された適当な間隔で繰り返し行ってもよい。
【００９６】
本発明の抗体、変性抗体および改変抗体はまた、診断方法、例えばＩＬ−５介在障害を測定するために、またはかかる障害の治療の進行状況を追跡するために用いることができる。診断薬として、これらの抗体は、血清、血漿または他の適当な組織中のＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体のレベル、または培養基中のヒト細胞による放出を測定するための、ＥＬＩＳＡおよび他の慣用的アッセイフォーマットに使用するために慣用的に標識化することができる。変性抗体を使用するアッセイの特性は慣用的なものであり、本発明の開示を限定するものではない。
【００９７】
かくして、本発明の一の具体例は、患者におけるアレルギーおよび好酸球産生過多に付随する他の症状の診断を補助する方法であって、その患者から得られた試料（血漿または組織）中のヒトＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体の量を測定し、その測定量を正常な個体群におけるヒトＩＬ−５の平均量と比較して、それで患者の試料中に有意に多量のＩＬ−５および／またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体が存在することが、アレルギーおよび好酸球の産生過多に付随する他の症状の徴候を示す方法に関する。
【００９８】
本発明の化合物をスクリーニングする具体例として、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を膜フラクションにてまたは細胞結合形にて単離し、複数の候補分子と接触させ、その中からレセプターと結合し、相互作用するレセプターを選択する。候補化合物は競合性スクリーニングアッセイに付すことができる。そのアッセイにおいては、既知リガンド、すなわち、好ましくは検出可能な分析用試薬、最も好ましくは放射活性で標識した、ヒトＩＬ−５またはＩＬ−５／ＩＬ−５レセプターα鎖複合体を試験すべき薬物と共に導入し、標識化リガンドの結合を阻害または亢進する化合物の能力を測定する。別法として、目的とする放射活性標識した候補化合物を用いることで、または候補化合物の相互作用または結合に由来する第２メッセンジャー効果により、結合または相互作用を直接測定することができる。化合物をそのアフィニティーの増加および目的とするレセプターに対する選択性についてスクリーニングする。無償で、すなわち、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖に対する効果を誘発することなく結合する分子は、おそらく、優れたアンタゴニストであろう。潜在的なアンタゴニストは、ＩＬ−５レセプターβ−鎖に特異的であり、それによりその活性を阻害または無効にする、小型有機分子、ペプチド、ポリペプチドおよび抗体を包含する。
【００９９】
本明細書に記載の抗体、変性抗体またはそのフラグメントは、貯蔵のために凍結乾燥し、使用前に適当な担体で復元することができる。この技法は一般的な免疫グロブリンで効果的であることがわかっており、当該分野にて公知の凍結乾燥法および復元操作を利用することができる。
【０１００】
以下の実施例は、典型的な改変抗体の構築ならびに適当なベクターおよび宿主細胞におけるその発現を含む、本発明の種々の態様を示すが、本発明の範囲を限定すると解釈すべきではない。アミノ酸はすべて慣用的な三文字または一文字コードで同定されている。必要な制限酵素、プラスミドおよび他の試薬および材料はすべて、特に限定しない限り、市販源より入手した。一般的クローニングライゲーションおよび他の組換えＤＮＡ法はすべて、Ｔ． Ｍａｎｉａｔｉｓら（前掲）またはその第２版（１９８９）、Ｓａｍｂｒｏｏｋら編、同一出版社（「Ｓａｍｂｒｏｏｋら」）にあるようにしておこなった。
【実施例】
【０１０１】
実施例１−ｈＩＬ−５に対するｍＡｂの産生
ヒトＩＬ−５をＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ２（Ｓ２）細胞にて発現させて均質に精製した。ネズミＩＬ−５をＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ ２１（Ｓｆ２１）細胞を用いてバキュロウイルスにて発現させて均質に精製した。モノクローナル抗体、ＴＲＦＫ−５（中和ラット抗−マウスＩＬ−５抗体）をＧｅｎｚｙｍｅ Ｃｏｒｐ．（ＭＡ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ）より入手した。
【０１０２】
Ａ．免疫化操作：
組換えヒトＩＬ−５（ＩＬ−５）を一群７匹のＣＡＦ１雌マウス（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ、Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）の免疫原として用いた。動物に、１対１の割合のＴｉｔｅｒ ＭＡＸＴＭ（ＣｙｔｏＲｘ Ｃｏｒｐ．、Ｎｏｒｃｒｏｓｓ、ＧＡ）で乳化させたリン酸緩衝セイライン（ＰＢＳ）中のＩＬ−５を４ヶ月にわたって３回皮下注射した。初回抗原投与量は５０μｇ（マイクログラム）であり、追加抗原刺激量は２５および１０μｇ（マイクログラム）であった。追加抗原刺激接種を行った後、血清試料を採集し、レセプター結合阻害アッセイおよびＢ１３増殖アッセイ（またはＩＬ−５中和アッセイ（実施例２Ｃ））により、ＩＬ−５への結合について、および中和活性について検定した。マウスはすべて、ＩＬ−５に結合する血清試料を産生した。脾臓ドナーとして選択された動物に、殺す３日前に１０μｇ（マイクログラム）の組換えヒトＩＬ−５を静脈内に追加抗原投与した。
【０１０３】
Ｂ．ハイブリドーマ開発：
最初にＫｏｈｌｅｒら（Ｎａｔｕｒｅ、２５６：４９５（１９７５））により報告された融合操作を、細胞単層を用いる技法（Ｋｅｎｎｅｔら編、”Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ：Ａ ｎｅｗ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ ｉｎ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ”、３６８−３７７頁、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ）を行うために修飾して用いた。２匹のドナーマウスからの脾臓細胞をプールし、１０００万個のＳＰ２／０／Ａｇ１４骨髄腫細胞に対して５０００万個の割合の脾臓細胞を用いて融合を行った。融合陽性ウェルの上清をＥＬＩＳＡを用いてＩＬ−５との結合についてアッセイした。ＩＬ−５に対する抗体を産生する細胞を含むウェルを広げ、上清をＩＬ−５レセプター結合阻害アッセイおよびＢ１３（中和）増幅アッセイ（以下に記載）にてスクリーンした。
【０１０４】
ＩＬ−５との反応性を有するｍＡｂを分泌する１６種のハイブリドーマを単離した。そのハイブリドーマ上清をヨウ素処理したＩＬ−５と混合し、ＩＬ−５レセプター（ＩＬ−５Ｒ）のα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ細胞より調製した膜抽出物に加え、レセプター結合の阻害についてアッセイした。１１種のハイブリドーマ上清は、ヨウ素処理したＩＬ−５のＩＬ−５レセプターα鎖への結合を６０％以上阻害した。３種のｍＡｂ、すなわち、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２もまた、ネズミＩＬ−５ではなくヒトＩＬ−５に対する応答にてネズミＢ１３の増殖を７０％以上阻害した。５種のハイブリドーマ（そのうちの４種（１Ｃ６、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２）は結合および／または増殖を遮断し、１種（２４Ｇ９）は非中和抗体である）を軟寒天中で繰り返しサブクローンし、安定したクローン細胞系を生成した。クローン系からの上清をＥＬＩＳＡにより交差−反応性についてスクリーンしたが、ヒトＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−４、ＩＬ−８、Ｍ−ＣＳＦまたはＴＧＦαと結合しなかった。ｍＡｂを精製し、結合親和性を１０から１００ｐＭで変化させる光学生物センサー（ＢＩＡｃｏｒｅ）分析より評価した。クローン系から由来の上清をネズミイソ型試薬（ＰｈａｒＭｉｎｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）を用いてイソ型に付した。ｍＡｂの中和活性に関する親和性およびＩＣ５０を表Ｉ（実施例２）に要約して示す。
【０１０５】
マウスについて前記したように比較免疫化プロトコルおよび融合のためのラット骨髄腫を用い、ラットハイブリドーマを同様の方法により免疫化ラットより誘導させた。ＩＬ−５に結合するｍＡｂを産生する２種のラットハイブリドーマ、４Ａ６および５Ｄ３を同定した。ｍＡｂ ２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２と同様、ｍＡｂ ４Ａ６および５Ｄ３も、以下に記載のＢ１３アッセイにおいて中和抗体であることが判明した。
【０１０６】
Ｃ．ハイブリドーマ寄託
モノクローナル抗体２Ｂ６を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｂ６．２０６．７５（１）を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８３で受け入れられた。
【０１０７】
モノクローナル抗体２Ｅ３を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｅ３．３９．４０．２をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８２で受け入れられた。
【０１０８】
モノクローナル抗体２Ｆ２を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２Ｆ２．３７．８０．１２をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８１で受け入れられた。
【０１０９】
モノクローナル抗体２４Ｇ９を産生するハイブリドーマ細胞系ＳＫ１１９−２４Ｇ９．８．２０．５をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１７８０で受け入れられた。
【０１１０】
モノクローナル抗体４Ａ６を産生するハイブリドーマ細胞系４Ａ６（１）Ｇ１Ｆ７をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１９４３で受け入れられた。
【０１１１】
モノクローナル抗体５Ｄ３を産生するハイブリドーマ細胞系５Ｄ３（１）Ｆ５Ｄ６をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡに寄託し、それは特許手続き上の微生物寄託の基準となるブタペスト条約（１９７７年）に従って、特許寄託菌として受入れ番号ＨＢ１１９４２で受け入れられた。
【０１１２】
実施例２−アッセイ
Ａ．ＥＬＩＳＡ
ＭａｘｉＳｏｒｂＴＭイムノプレート（Ｎｕｂｃ、Ｎａｐｅｒｖｉｌｌｅ、ＩＬ）の各ウェルを０．０５Ｍ炭酸塩緩衝液（ｐＨ９．６）中のＩＬ−５（０．２μｇ）で被覆した。４℃で一夜インキュベートした後、プレートをＰＢＳ（０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０含有）ですすぎ、ＰＢＳ（０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０含有）中の１％ＢＳＡを用いて室温で２時間遮断した。非希釈ハイブリッド上清をＩＬ−５被覆のウェルに加え、室温で２時間インキュベートした。該プレートを注ぎ、ペルオキシダーゼ標識化ヤギ抗−マウスＩｇＧ＆ＩｇＭ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を１％ＢＳＡおよび０．０２５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０を含有するＰＢＳに１／７５００の希釈度で加えた。２時間後にプレートを洗浄し、０．１％尿素ペルオキシドおよび１ｍｇ／ｍｌのオルトフェニレンジアミンを含有する、０．２ｍｌの０．１Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ４．７５）を添加した。１５分経過後、プレートをＶＭａｘＴＭマイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ、Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ、ＣＡ）上、４５０ｎｍで読み取った。
【０１１３】
Ｂ．レセプター結合阻害アッセイ
ヒトＩＬ−５レセプター（ＩＬ−５Ｒ）のα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａＳ２細胞の膜抽出物を用いてレセプターに結合するＩＬ−５についての抗体の作用を測定した。１０９個の細胞を１０００ｘｇ、４℃で１０分間遠心してペレット状にした。その細胞ペレットをドライアイス／エタノール浴中で１５分間凍結させた。該ペレットを解凍し、ＰＢＳ（１０ｍｌ）に４℃で再び懸濁させ、１０００ｘｇで１０分間遠心してペレット状にした。その細胞ペレットをＰＢＳ中に２回洗浄し、低張緩衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、１ｍＭ ジチオスレイトール、１ｍＭ フェニルメチルスルホニルフルオリド、１μＭ ロイペプシン、１μＭ ペプスタチンＡ）（１３．５ｍｌ）に再び懸濁させ、５分間氷上でインキュベーションした。その細胞懸濁液を１５ｍｌのＤｏｕｎｃｅホモジナイザー中で均一にし、２．５Ｍシュークロース溶液を用いてシュークロースの最終濃度を０．２５Ｍとした。１０００ｘｇで１５分間遠心分離に付すことで細胞残骸を除去した。細胞膜を１０００００ｘｇ、４℃で９０分間遠心してペレット状にし、５０ｍｌの１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、２５０ｍＭシュークロースに再び懸濁させ、−７０℃で貯蔵した。
【０１１４】
レセプターを含むＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ膜を用いるアッセイは、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．２）および０．１％ＢＳＡ（結合緩衝液）を含有するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ組織培地Ｍ３（Ｌｉｎｄｑｕｉｓｔら、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ Ｉｎｆ． Ｓｅｒｖ．、５８：１６３（１９８２））を用い、ＭｕｌｔｉｓｃｒｅｅｎＧＶＴＭプレート（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐ．、Ｂｅｄｆｏｒｄ、ＭＡ）にて行った。ウェルを結合緩衝液（０．１ｍｌ）で予め遮断した。５０μｌの試験サンプルを三重試験にてウェルに加え、つづいてヨウ素化（１２５Ｉ）ＩＬ−５（２５μｌ）を加えた。室温で２０分間インキュベーションした後、ヒトＩＬ−５Ｒのα鎖を発現するＤｒｏｓｏｐｈｉｌａＳ２細胞の膜抽出物（２５μｌ）を該ウェルに加えた。さらに１時間インキュベーションした後、膜を真空濾過により集め、結合緩衝液で３回洗浄した。フィルターを乾燥させて計数した。
【０１１５】
Ｃ．ＩＬ−５中和アッセイ
ネズミＩＬ−５／ＩＬ−３依存性細胞系、ＬｙＨ７．Ｂ１３（Ｂ１３）をＲ．Ｐａｌａｃｉｏｓ（Ｂａｓｅｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）の好意により入手した。Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、ピリビン酸ナトリウム、ペニシリン−ストレプトマイシン（すべて、ＧｉｂｃｏＢＲＬ）、加えて２−メルカプトエタノール（５ｘ１０−５Ｍ、Ｓｉｇｍａ）、１０％ウシ胎児血清（Ｇｌｏｂｅｐｈａｒｍ、Ｓｕｒｒｅｙ、ＵＫ）および１−１０単位のネズミＩＬ−５を補足した、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｒｅｎｆｒｅｗｓｈｉｒｅ、ＵＫ）で週に２回、細胞を継代培養した。アッセイ用の細胞を適宜希釈した試験試料の存在下、９６−ウェルの丸底プレートで三重（５０００個の細胞／ウェル）にて４８時間培養し、０．５μＣｉ−３Ｈ−チミジン（Ａｍｅｒｓｈａｍ、Ｂｕｃｋｓ、ＵＫ）で最終４時間パルス処理した。その細胞を１２０５ベータプレート（ＬＫＢ Ｗａｌｌａｃ、Ｂｅｄｓ、ＵＫ）にてシンチレーションカウントするのに処理した。
【０１１６】
Ｄ．光学バイオセンサー
固定されたｈＩＬ−５および抗体の動力学的および平衡結合特性はＢＩＡｃｏｒｅ光学バイオセンサー（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）を用いて測定した。動力学的データは以前に開示されている関係（Ｋａｒｌｓｓｏｎら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈ．、１４５：２２９−２４０（１９９１））を用いて評価した。
【０１１７】
３種の中和抗体、すなわち、２Ｂ６、２Ｅ３および２Ｆ２は、１２５Ｉ−ＩＬ−５の膜レセプターへの結合の阻害およびＢ細胞増殖の中和にて極めて類似する能力を有し、さらにＩＬ−５に対して極めて類似する親和性を有した（表１を参照のこと）。これら３種のｍＡｂ、２ＩｇＧ１および１ＩｇＧ２ａからのＶＨおよびＶＬのヌクレオチド配列を各々測定した。得られた配列は極めて類似しており、２、３の残基が異なるだけである。
【表１】
【０１１８】
実施例３−コンビナトリアルライブラリーからのＩＬ−５Ｆａｂの単離および特徴化
Ａ．ＰＣＲおよびコンビナトリアルライブラリー構築
３匹のマウスの脾臓より精製したＲＮＡを、以前にＨｕｓｅら（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６：１２７５（１９８９））およびＫａｎｇ、Ｓ．Ａ．（Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、２：１１１（１９９１））に記載されているように、次のキットで供給されるプライマー（ｄＴ）１５または３’Ｆｄ（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ＆ＩｇＧ３）およびカッパ軽鎖プライマーのいずれかを用いてｃＤＮＡキット（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）で逆転写した。免疫グロブリンｃＤＮＡをプライマーおよび記載（Ｈｕｓｅら、前掲）の熱循環条件を用いてＰＣＲにより増幅させた。すべての反応に対して、ＡｍｐｌｉＷａｘＴＭ ＰＣＲ Ｇｅｍ１００（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｃｅｔｕｓ、Ｎｏｒｗａｌｋ、ＣＴ）ビーズを用い、製造主プロトコルに従ってＨｏｔ Ｓｔａｒｔ技法を利用した。ＰＣＲ産物をゲル精製し、消化し、ｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３ベクター（Ａｍｅｓら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５２：４５７２（１９９４））にライゲーションした。ＦｄｃＤＮＡとライゲーションさせた後のライブラリータイターは５．１ｘ１０７ＣＦＵであり、カッパｃＤＮＡとライゲーションさせた後では１．５ｘ１０６ＣＦＵであった。ファージミドライブラリーで形質転換したＸＬ１−Ｂｌｕｅ細胞（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）をヘルパーファージＶＣＳＭ１３（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）で感染させ、ファージをＢａｒｂａｓおよびＬｅｒｎｅｒ（Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、２：１１９（１９９１））に記載されているように調製した。
【０１１９】
Ｂ．バイオパンニング
４個のマイクロタイターウェル（Ｉｍｍｕｌｏｎ ＩＩ Ｒｅｍｏｖａｗｅｌｌ Ｓｔｒｉｐｓ、Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ、ＶＡ）を、０．１Ｍ重炭酸塩（ｐＨ８．６）中のＩＬ−５（１μｇ／ウェル）で４℃で一夜被覆した。そのウェルを水で洗浄し、３％ＢＳＡを含有するＰＢＳで３７℃で１時間遮断した。遮断溶液を除去し、ライブラリーをマイクロタイターウェルに加え（５０μｌ／ウェル）、３７℃で２時間インキュベーションした。ｐＨをグリシンで２．２に調整し、１ｍｇ／ｍｌのＢＳＡを含有する、０．１Ｍ ＨＣｌで付着ファージを溶出する前に、ウェルをＴＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（登録商標）（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．５、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）で１０回洗浄し、Ｈ２Ｏで１回洗浄した。
【０１２０】
Ｃ．コロニーリフト
第３および第４ラウンドのバイオパンニングより単離したクローンのコロニーリフトを記載（ＢａｒｂａｓおよびＬｅｒｎｅｒ、前掲）に従い処理した。フィルターを、Ｂｏｌｔｏｎ−Ｈｕｎｔｅｒ試薬（ＮＥＮ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）を用い、製造主推奨の操作に従ってヨウ素化した、０．５−１．０μＣｉの１２５Ｉ−ＩＬ−５と共に、１％ＢＳＡ含有ＰＢＳ中、室温で１時間インキュベーションし、０．２５％Ｔｗｅｅｎ含有のＰＢＳで洗浄し、Ｋｏｄａｋ ＸＡＲフィルムに暴露した。ＩＬ−５反応性Ｆａｂを発現するコロニーをオートラジオグラフィーで検出した。
【０１２１】
Ｄ．可溶性Ｆａｂの調製
ファージミドＤＮＡをＮｈｅＩおよびＳｐｅＩで消化し、遺伝子ＩＩＩを除去し、自己ライゲーションに付した。ＸＬ１−Ｂｌｕｅ細胞を形質転換させて、単離されたクローンを１％グルコースおよび５０μｇ／ｍｌカルベニシリン（ｃａｒｂｅｎｉｃｉｌｌｉｎ）含有のスーパーブロス（ＳＢ）培地（３０ｇトリプトン、２０ｇ酵母抽出物、１０ｇの３−［Ｎ−モルホリノ］プロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）、ｐＨを７に調整）（５．０ｍｌ）中に３７℃で一夜増殖させた。この培養物１ｍｌからの細胞を、３５００ｒｐｍで１０分間、Ｂｅｃｋｍａｎ ＧＳ−６Ｒ遠心機にてペレット状とし、５０μｇ／ｍｌカルベニシリン含有のＳＢ（５ｍｌ）に植え付けるのに用いた。培養物を３７℃で１時間振盪し、イソプロピル−ｂ−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ；１ｍＭ）を加え、培養物を一夜２８℃に移した。細胞ペレットを４℃で２０分間３０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ８．０）に懸濁させた２０％シュークロースに溶かし、つづいてＭｉｃｒｏｆｕｇｅで１０分間遠心分離に付すことにより可溶性Ｆａｂをペリプラズム抽出物より調製した。既知量のネズミＦａｂを含有する試料と比較することによりウェスタンブロットによりＦａｂ濃度を評価した。異なる細菌ペリプラズム抽出物は、ウェスタンブロット分析により評価した場合、１ないし２０μｇ／ｍｌの範囲の、同様の濃度のＦａｂを含有した。
【０１２２】
Ｅ．Ｆａｂの精製
タンパク質の精製を助成するのにキレート化ペプチドを重鎖のカルボキシ末端で改変した。ＮｈｅＩおよびＳｐｅＩで消化してＭ１３遺伝子ＩＩＩコーディング領域を除去した後、６個のヒスチジン残基をコードする、一対の重複オリゴヌクレオチド：
［配列番号４３］５’−ＣＴＡＧＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＴＡＡ−３’；
［配列番号４４］３’−ＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＡＴＴＧＡＴＣ−５’
をＦａｂ発現ベクターにサブクローニングした。Ｆａｂ発現の誘発は前記のように行った。２８℃で一夜誘発させた後、２０％シュークロース、３０ｍＭ ＴＲＩＳ（ｐＨ８．０）中、４℃で３０分間インキュベーションさせることで、細胞ペレットのペリプラズム溶菌液を調製した。尿素およびＢｒｉｊ−３５デタージェントを浄化した上清に、各々、２Ｍおよび１％の最終濃度まで添加した。室温で１時間攪拌した後、その処理かつ浄化した上清を、緩衝液Ａ（１００ｍＭ Ｎａ−Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．３Ｍ ＮａＣｌ、２Ｍ尿素、ｐＨ８．０）で平衡にした５ｍｌニッケル−ＮＴＡ金属封鎖カラム（１．５ｘ３ｃｍ）に直接０．５ｍｌ／分で充填した。カラム容量の４倍（２０ｍｌ）で洗浄した後、前記したのと同じ緩衝液をｐＨ８からｐＨ４の逆ｐＨ勾配でカラム容量の６倍（３０ｍｌ）を用いて結合物質を溶出した。精製されたＦａｂがｐＨ５．５でシャープな対称ピークにてカラムより溶出された。それは＞９０％純度であり、ＤＮＡがなかった。
【０１２３】
Ｆ．Ｆａｂ ＥＬＩＳＡ：
イムロン（Ｉｍｍｕｌｏｎ）ＩＩプレート（Ｄｙｎａｔｅｃｈ）を０．１Ｍ重炭酸塩緩衝液（ｐＨ８．６）に懸濁させたタンパク質で一夜４℃で被覆した。希釈および洗浄を０．０５％ＴｗｅｅｎＴＭ２０含有のＰＢＳにて行った。プレートを洗浄し、１％ＢＳＡ含有のＰＢＳで１時間室温で遮断した。可溶性Ｆａｂまたは精製されたＦａｂを含有する種々の希釈度の細菌性上清をプレートに加えた。１時間インキュベーションした後、プレートを洗浄し、ビオチニル化ヤギ抗−マウスκ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ， Ｉｎｃ．、Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）を１時間にわたって加えた（１：２０００希釈度；５０μｌ／ウェル）。プレートを洗浄し、ストレプタビジン標識ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを１時間で加えた（１：２０００希釈度；５０μｌ／ウェル）。プレ−トを洗浄し、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質を加え（１００μｌ／ウェル；Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）、４０５ｎｍでの光学密度をＵＶｍａｘＴＭ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）マイクロプレートリーダー上で読み取った。
【０１２４】
Ｇ．Ｆａｂのコンビナトリアルライブラリーからの単離および特徴化
ＩＬ−５で被覆したマイクロタイターウェルに対する複数回のラウンドのバイオパンニングに付すことで、ライブラリーからＦａｂをＩＬ−５に運ぶファージを選択した。４ラウンドの選択操作の後、ＩＬ−５反応性Ｆａｂを１２５Ｉ−ＩＬ−５を用いるコロニーリフトアッセイにより同定した。第３ラウンドから３４個の、第４ラウンドから４個の標識されたＩＬ−５と結合したコロニーが同定された。ＩＬ−５との結合を、Ｆａｂ−遺伝子ＩＩＩ融合タンパク質を発現する培養上清を用い、直接結合性ＥＬＩＳＡにより確認した。ＤＮＡをこれらコロニーより単離し、Ｍ１３遺伝子ＩＩＩのコーディング領域を除去した後、可溶性Ｆａｂ発現を誘発した。ペリプラズムフラクションを調製し、ＩＬ−５との結合についてＥＬＩＳＡでアッセイした。Ｆａｂは他のタンパク質、ｒＣ５ａと明確に結合することなく、ＩＬ−５に特異的に結合した。
【０１２５】
希釈されていないペリプラズム抽出物（１ないし２μｇ／ｍｌのＦａｂを含有する）をＩＬ−５Ｒ結合阻害アッセイ（実施例２）にて検定した。いずれのＦａｂもヨウ素化ＩＬ−５のＩＬ−５Ｒαへの結合を３５％以上まで阻害しなかった。
【０１２６】
Ｈ．中和ｍＡｂのＦａｂへの変換
ｍＡｂ（２Ｂ６）のＦｄおよびκｃＤＮＡを前記の条件を用いてＰＣＲにより単離した。ゲル精製されたフラグメントを遺伝子ＩＩＩｃＤＮＡのヘキサ−Ｈｉｓ配列３’を含むように修飾されたｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３ベクターにサブクローンし、プラスミドｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３Ｈを得た。２Ｂ６重鎖および軽鎖を含有する機能的なＩＬ−５結合Ｆａｂクローンをコロニーリフトアッセイにより同定した。遺伝子ＩＩＩをＮｈｅＩ／ＳｐｅＩＩ消化および自己ライゲーションを介して除去し、重鎖をフレームにてヘキサ−Ｈｉｓに融合させ、前記のように精製した。用量依存法において、このＦａｂはペアレントｍＡｂ、ネズミ２Ｂ６の値と同様の、約７．５μｇ／ｍｌのＩＣ５０でレセプター結合を阻害した。
【０１２７】
Ｉ．チェーン−シャッフルされたライブラリーの構築およびスクリーニング
中和ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｄをコードするｃＤＮＡをＸｈｏＩ／ＳｐｅＩフラグメントとして軽鎖ｃＤＮＡの代わりにＳｓｔＩ／ＸｂａＩフラグメントを含有するｐＭＫＦａｂＧｅｎｅ３Ｈにサブクローンした。このファージミドをＳｓｔＩおよびＸｂａＩで消化し、ＩＬ−５免疫化マウス（前記）より由来のＳｓｔＩ／ＸｂａＩ消化された軽鎖ＰＣＲ産物とライゲーションした。ライゲーション後のライブラリータイターは４ｘ１０５ＣＦＵであった。バイオパンニングおよびコロニーリフロアッセイをコンビナトリアルライブラリーについて前記したように行った。
【０１２８】
中和ｍＡｂ ２Ｂ６のＦｄをコードするｃＤＮＡを同じ軽鎖レパートリーと対合させることによりライブラリーを構築し、ＩＬ−５免疫化マウスより回収し、コンビナトリアルライブラリーを形成するのに用いた。このチェーンシャッフルされたライブラリーを免疫化ＩＬ−５に対する４ラウンドのバイオパンニングに付し、得られたコロニーをコロニーリフトアッセイを用いてＩＬ−５反応性についてアッセイした。ヨウ素化されたＩＬ−５と結合した、陽性コロニーをＥＬＩＳＡおよびＩＬ−５Ｒα結合アッセイによりさらに検定した。チェーンシャッフルされたライブラリーより回収された２つのＦａｂ、２＆１５は、ＩＬ−５のＩＬ−５Ｒαとの結合を遮断し、Ｂ１３アッセイにおけるＩＬ−５依存性増殖を阻害した。これら２Ｖｋの配列は、２Ｂ６ ＶＨについての原軽鎖パートナーである、２Ｂ６ Ｖｋの配列に類似している。Ｆａｂ２＆１５の軽鎖配列は、各々、配列番号４５および４６である。Ｆａｂ２の場合、ＣＤＲ１−３は、各々、配列番号１０、１１および４７である。Ｆａｂ１５の場合、ＣＤＲ１−３は、各々、配列番号１０、１１および４８である。
【０１２９】
実施例４および５にておいて以下に列挙されるすべての抗体のアミノ酸配列には、ＣＤＲおよびフレームワークの長さを変えることのできる、ＫＡＢＡＴ番号付けシステムを利用する。すなわち、キーとなるアミノ酸はその前にある実際の数と無関係に常に同じ番号が付されている。例えば、すべての軽鎖のＣＤＲ１の前にあるシステインは常にＫＡＢＡＴ位置２３であり、ＣＤＲ１の後にあるトリプトファン残基は、たとえ、ＣＤＲ１が１７個までのアミノ酸を含んでいるとしても、常にＫＡＢＡＴ位置３５である。
【０１３０】
実施例４−ヒト化抗体
１種のヒト化抗体をそのヒト抗体フレームワーク内にネズミＣＤＲを含むように設計した。次の操作を行うことで、ＩＬ−５特異的マウス抗体２Ｂ６のこのヒト化バージョンを調製した。
【０１３１】
Ａ．遺伝子クローニング
Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ（Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）より入手したキットを用いて２Ｂ６、２Ｆ２および２Ｅ３の各々のハイブリドーマ細胞系（実施例１を参照のこと）より、ｍＲＮＡを単離し、ｃＤＮＡキット（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）で得られたプライマー（ｄＴ）１５を用いて逆転写してｃＤＮＡを調製した。マウス免疫グロブリンに特異的なＰＣＲプライマーを用い、重鎖可変領域のアミノ酸番号９（ＫＡＢＡＴ 番号表示システム）からヒンジ領域に、および軽鎖可変領域のアミノ酸番号９（ＫＡＢＡＴ 番号表示システム）から定常領域の末端にまで広がっているドメインをコードするＤＮＡを増幅した。各々の抗体鎖のいくつかのクローンを独立ＰＣＲ反応により得た。
【０１３２】
使用したマウスガンマ１ヒンジ領域プライマーは、［配列番号２２］：
５’ ＧＴＡＣＡＴＡＴＧＣＡＡＧＧＣＴＴＡＣＡＡＣＣＡＣＡＡＴＣ ３’である。
【０１３３】
使用したマウスガンマ２ａヒンジ領域プライマーは、［配列番号２３］：
５’ ＧＧＡＣＡＧＧＧＣＴＴＡＣＴＡＧＴＧＧＧＣＣＣＴＣＴＧＧＧＣＴＣ ３’である。
【０１３４】
使用したマウス重鎖可変領域プライマーは、［配列番号２４］：
５’ ＡＧＧＴ（ＣまたはＧ）（ＣまたはＡ）Ａ（ＧまたはＡ）ＣＴ（ＧまたはＴ）ＴＣＴＣＧＡＧＴＣ（ＴまたはＡ）ＧＧ ３’である。
【０１３５】
使用したマウスカッパ鎖定常領域プライマーは、［配列番号２５］：
５’ ＣＴＡＡＣＡＣＴＣＡＴＴＣＣＴＧＴＴＧＡＡＧＣＴＣＴＴＧＡＣＡＡＴＧＧＧ ３’である。
【０１３６】
使用したマウス軽鎖可変領域プライマーは、［配列番号２６］：
５’ ＣＣＡＧＡＴＧＴＧＡＧＣＴＣＧＴＧＡＴＧＡＣＣＣＡＧＡＣＴＣＣＡ ３’である。
【０１３７】
ＰＣＲフラグメントをプラスミドｐＧＥＭ７ｆ＋（Ｐｒｏｍｅｇａ）にクローンし、ついでＥ． ｃｏｌｉ ＤＨ５ａ（Ｂｅｔｈｅｓｄａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｓ）に形質転換した。
【０１３８】
Ｂ．ＤＮＡ配列決定
上記パートＡの重鎖および軽鎖ネズミｃＤＮＡクローンを配列決定した。これらクローンの可変領域の配列決定の結果を配列番号１−６（図１−６）に示す。クローンは、各々、マウス重鎖可変領域または軽鎖可変領域の間に保存されていることが知られているアミノ酸を含有した。そのＣＤＲアミノ酸配列を以下に列挙する。
【０１３９】
２Ｂ６重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および９である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号１によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１２である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号２によりコードされる。
【０１４０】
２Ｆ２重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および９である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号３によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１３である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号４によりコードされる。
【０１４１】
２Ｅ３重鎖のＣＤＲ領域は配列番号７、８および１４である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号５によりコードされる。その軽鎖のＣＤＲ領域は配列番号１０、１１および１３である。図７を参照のこと。これらの配列は配列番号６によりコードされる。
Ｃ．ヒトフレームワークの選択
【０１４２】
２Ｂ６のクローニングの後、アミノ酸をＮ−末端残基に帰属させるために、可変領域の重鎖および軽鎖のアミノ酸配列（図１および２）（各々、配列番号１５および１６）をＫＡＢＡＴおよびＳＷＩＳＳ−ＰＲＯＴ（Ｎｕｃ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、２０：２０１９−２０２２（１９９２））タンパク質配列データベースにある既知ネズミ免疫グロブリン配列と比較した。ついで、ヒトフレームワークをネズミ配列と最も密接に対合するであろう重鎖および軽鎖の両方について同定するために、２Ｂ６重鎖および軽鎖可変領域推定アミノ酸配列をヒト免疫グロブリンタンパク質配列データベースと比較した。加えて、重鎖および軽鎖をＦａｂドメインの構造モデルより得られる位置データベースを用いて評価し、ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないアミノ酸によるコンフリクトの可能性を評価した。コンフリクトは対応するマウスアミノ酸をその位置で置換することによりヒト化可変領域フレームワークを合成する間に決定された。
【０１４３】
ヒトメラノーマ免疫グロブリン（ＣＯＲ）より得られた抗体の重鎖フレームワーク領域を用いた（Ｅ． Ｍ． ＰｒｅｓｓおよびＮ． Ｍ． Ｈｏｇｇ、Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｊ．、１１７：６４１−６６０（１９７０））。ヒト重鎖フレームワークアミノ酸配列は２Ｂ６フレームワークと略６６％の相同性を有することが判明した。
【０１４４】
適当な軽鎖可変領域フレームワークでは、Ｂｅｎｃｅ−Ｊｏｎｅｓタンパク質（ＬＥＮ）（Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．、３５６：５０７−５５７（１９７５））の軽鎖可変フレームワーク配列を用いた。ヒト軽鎖フレームワーク領域は、アミノ酸レベルでネズミ２Ｂ６軽鎖フレームワーク領域と略８２％相同的であった。
【０１４５】
選択されたヒトフレームワークを逆翻訳し、ＤＮＡ配列を得た。
【０１４６】
Ｄ．ヒト化ｍＡｂ遺伝子の構築
２Ｂ６重鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１−２］およびヒト抗体のフレームワーク配列を得る場合、合成重鎖可変領域を調製した［配列番号１８］。これは、つなぎ合わされると、アミノ酸番号２１−１０６（ＫＡＢＡＴ番号付け）をコードする４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号２７および２８］［配列番号２９および３０］を用いて調製した。オリゴヌクレオチドを、ＣＯＲフレームワーク（前掲）を基礎とするもう一つ別のヒト化重鎖より由来の配列を含むｐＵＣ１８プラスミドを基礎とするｐＵＣ１８のＨｐａＩ−ＫｐｎＩ制限部位にライゲーションした。このプラスミドはシグナル配列［配列番号１７］および残りの可変領域の配列を提供するものである。マッピングされた配列中の誤りは、変異原性プライマーとのＰＣＲによるか、または現存する制限部位への合成リンカーの付加により訂正した。
【０１４７】
シグナル配列およびヒト化重鎖可変領域をＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントとしてｐＵＣを基礎とするプラスミドから切除し、ＩｇＧ１ヒト定常領域を含む発現ベクターｐＣＤにライゲーションした。合成重鎖可変領域のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を図８［配列番号１８および１９］に示す。ヒトフレームワーク残基は配列番号１９のアミノ酸１−３０、３６−４９、６６−９７および１０９−１１９である。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６ ＣＤＲと同じである。得られた発現ベクター、ｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０を図１０に示す。
【０１４８】
２Ｂ６軽鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１０、１１および１２］およびヒト抗体のフレームワーク配列を得る場合、合成軽鎖可変領域［配列番号２０］を調製した。各々、ＳａｃＩ−ＫｐｎＩおよびＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ末端を有するヒト化ＶＬのアミノ酸番号２７−５８（ＫＡＢＡＴ番号付け）［配列番号３１および３２］およびアミノ酸番号８０−１０９［配列番号３３および３４］をコードする４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号２７および２８］［配列番号２９および３０］を、ＬＥＮフレームワークと高度の相同性を共有するもう一つ別のヒト軽鎖フレームワーク（Ｂ１７）（Ｍａｒｓｈら、Ｎｕｃ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、１３：６５３１−６５４４（１９８５））より由来の配列を含むｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに挿入した。このプラスミドは残りの可変領域配列を提供する。マッピングされた配列中のいずれの誤りおよびＬＥＮとＢ１７フレームワークの間の違いも、変異原性プライマーを用いてＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正された。
【０１４９】
ヒト化軽鎖可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとしてｐＵＣ−プラスミドより単離し、κヒト定常領域と一緒にシグナル配列［配列番号１７］を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションした。合成軽鎖可変領域のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を図９［配列番号２０および２１］に示す。ヒトフレームワーク残基は配列番号２１のアミノ酸１−２３、４１−５５、６３−９４および１０４−１１３である。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６ ＣＤＲと同じである。しかし、これらＣＤＲのコーディング配列はネズミ２Ｂ６コーディング配列と異なっており、制限酵素部位を形成することができる。得られた発現ベクターの一つ、ｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０を図１１に示す。これらの合成可変軽鎖および／または重鎖配列をヒト化抗体の構築に利用する。
【０１５０】
Ｅ．ヒト化ＭＡｂの発現
ＩｇＧ１イソ型から由来のヒト化重鎖は、配列番号１９に示されるような合成重鎖可変領域を利用している。２Ｂ６重鎖ＣＤＲを含有するこの合成ＶＨを前記したように設計して合成した。
【０１５１】
ヒト化軽鎖である、ヒトκ鎖は、配列番号２１に示されるような合成軽鎖可変領域を利用している。２Ｂ６軽鎖ＣＤＲを含有するこの合成ＶＬを前記したように設計して合成した。ヒト化可変領域をコードするＤＮＡフラグメントを、シグナル配列を利用し、ＣＭＶプロモーターおよび後記する実施例５にて産生されるキメラのヒト重鎖またはヒト軽鎖定常領域を含む、ｐＵＣ１９を基礎とする哺乳動物細胞発現プラスミドに、慣用的方法（Ｍａｎｉａｔｉｓら、前掲）により挿入し、プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＬＣ１．０（重鎖）［配列番号４９、図１０もまた参照のこと］およびｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０（軽鎖）［配列番号５０、図１１も参照のこと］を得た。該プラスミドをＣＯＳ細胞に同時トランスフェクションし、上清を、各々、３および５日後に、実施例５に記載されるようにＥＬＩＳＡによりヒト抗体の存在についてアッセイした。
【０１５２】
上記実施例は具体例として改変抗体の調製を記載する。他の改変抗体を開発するために、常套手段により開発された他の抗−ＩＬ−５抗体（例えば、２Ｆ２、２Ｅ３、４Ａ６、５Ｄ３、２４Ｇ９など）を用いて同様の操作を行った。
【０１５３】
Ｆ．精製
キメラおよびヒト化２Ｂ６を発現するＣＨＯの精製は、通常のタンパク質Ａ（またはＧ）アフィニティークロマトグラフィーに付し、つづいてイオン交換およびモレキュラーシーブクロマトグラフィーに付すことにより行うことができる。幸運にも同様の方法を他のｍＡｂ（例えば、呼吸シンシチウムウイルス、インターロイキン−４およびマラリアサーカムスポロゾイト抗原に対するｍＡｂ）を＞９５％の純度で精製するのに用いた。
【０１５４】
Ｇ．付加的なヒト化ｍＡｂおよび発現プラスミド
プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０［配列番号４９］を得る場合、フレームワーク位置７３のトレオニンの代わりにアスパラギンを用いる発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．１を調製した。これは、ＥｃｏＲＶおよびＸｈｏＩ末端［配列番号５１および配列番号５２］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０にライゲーションすることにより行った。同様に、発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．２はフレームワーク３７のバリンの代わりにイソロイシンを用いる。これはＨｐａＩおよびＸｂａＩ末端［配列番号５３および配列番号５４］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０にライゲーションすることにより行った。発現プラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＤＨＣ１．３もまた、ＨｐａＩおよびＸｂａＩ末端［配列番号５３および配列番号５４］を有する合成リンカーを同様に消化されたｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．１にライゲーションすることにより調製された。
【０１５５】
４種の合成オリゴヌクレオチド［配列番号３１、３２、３３および３４］のＤＮＡ配列を含有する前記されているｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドを得る場合、フレームワーク番号１５がロイシンからアラニンに変わっているヒト化軽鎖可変領域を調製した。このプラスミドをＮｈｅＩおよびＳａｃＩ制限エンドヌクレアーゼで消化し、合成リンカー［配列番号５５および５６］を挿入した。ついで、ＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントを単離し、同様に消化された発現ベクターｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０にライゲーションし、ｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．１を形成した。
【０１５６】
合成可変領域を免疫グロブリンより得られた重鎖フレームワーク領域（ＮＥＷ）（Ｓａｕｌら、Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２５３：５８５−５９７（１９７８））および２Ｂ６重鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１−２］を用いて調製した。ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないフレームワークアミノ酸を同定し、前記した方法を用いて置換を行った。アニールし、伸長させた場合、シグナル配列［配列番号１７］および重鎖可変領域を示すアミノ酸をコードする、４種の重複している合成オリゴヌクレオチド［配列番号５７，５８，５９および６０］を得た。ついで、この合成遺伝子をＰＣＲプライマー［配列番号６３および６４］を用いて増幅させ、ＢｓｔＸＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ制限フラグメントとして、ｐＵＣ１８を基礎とするＣＯＲフレームワークをベースとする別のヒト化重鎖より由来の配列を含むプラスミドにライゲーションした。合成オリゴヌクレオチドリンカー［配列番号７５および７６］をＳａｃＩＩおよびＫｐｎＩ制限部位に挿入することにより、フェニルアラニンのチロシンへのフレームワーク置換をアミノ酸位置９１（Ｋａｂａｔ番号表示システム）（図１２の位置９４に対応する）で行った。得られた重鎖可変領域（図１２および配列番号６１、６２）をＮＥＷＭヒト化重鎖という。
【０１５７】
マッピングされた配列中のいずれの誤りも、変異原性プライマーを用いるＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正した。シグナル配列およびヒト化重鎖可変領域をＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントとしてｐＵＣを基礎とするプラスミドより切除し、ヒトＩｇＧ１定常領域を含有する発現ベクターｐＣＤにライゲーションし、プラスミドｐＣＤＩＬ５５ＮＥＷＭを調製した。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６重鎖ＣＤＲと同一である。
【０１５８】
合成可変領域は、免疫グロブリン（ＲＥＩ）（Ｐａｌｍら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ３５６：１６７−１９１（１９７５））より得られた軽鎖フレームワーク領域および２Ｂ６軽鎖ＣＤＲ［図７および配列番号１０、１１および１２］を用いて作成した。ＣＤＲ提示に影響を及ぼすかもしれないフレームワークアミノ酸を同定し、置換を前に記載されている方法を用いて行った。アニールし、拡張すると、ＲＥＩヒト化軽鎖と称される軽鎖可変領域［図１３および配列番号６９、７０］を発現するアミノ酸をコードする、４個の重複合成オリゴヌクレオチド［配列番号６５、６６、６７および６８］を得た。ついで、この合成遺伝子をＰＣＲプライマーを用いて増幅し、ＥｃｏＲＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ制限フラグメントとしてｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）にライゲーションした。
【０１５９】
マッピングされた配列中の誤りは、変異原性プライマーを用いてＰＣＲに付すか、または合成リンカーを現存する制限部位に付加することにより訂正された。ヒト化軽鎖可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとしてｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）を基礎とするプラスミドより切除し、ヒトκ定常領域と共にシグナル配列［配列番号１７］を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションし、プラスミドｐＣＮＩＬ５ＲＥＩを形成した。ＣＤＲのアミノ酸配列はネズミ２Ｂ６軽鎖ＣＤＲと同じである。しかしながら、これらＣＤＲについてのコーディング配列はネズミ２Ｂ６のコーディング配列と異なり、制限酵素部位の形成を可能とする。これらの合成可変軽鎖および／または重鎖配列をヒト化抗体の構築に用いる。
【０１６０】
前記したｐＧＥＭ−７Ｚｆ（＋）を基礎とするプラスミドを得る場合、フレームワーク位置１５番がバリンからアラニンに変えられている、ヒト化軽鎖可変領域を調製することができる。このプラスミドをＮｈｅＩおよびＳａｃＩ制限エンドヌクレアーゼで消化し、合成リンカー［配列番号７３および７４］を挿入してもよい。ついで、ＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントを単離し、同様に消化された発現ベクターｐＣＮＩＬ５ＨＺＲＥＩに挿入し、プラスミドｐＣＮＩＬ５ＲＥＩＶ１５Ａを形成してもよい。
【０１６１】
実施例５−キメラ抗体の構築
ネズミｍＡｂ２Ｂ６重鎖可変領域のアミノ酸番号９−１０４（ＫＡＢＡＴ番号表示）をコードするＤＮＡを、２Ｂ６ハイブリドーマ細胞系より得られたｃＤＮＡ（実施例４を参照のこと）のｐＧＥＭ７Ｚｆ＋を基礎とするＰＣＲクローン由来のＡｖａＩＩ−ＳｔｙＩ制限フラグメントとして単離した。このフラグメントを４つの小型合成オリゴマーリンカー［配列番号３５および３６］［配列番号３７および３８］と一緒にＢｓｔＸ１−ＨｉｎｄＩＩＩで消化したｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに組み合わせることにより、フランキング重鎖可変領域の配列およびシグナル配列［配列番号１７］を得た。、密接に関連したネズミ重鎖より推定したＮ−末端アミノ酸のコンセンサスを最初の８個のＶＨ残基に帰属させ、配列番号３５および３６内でコードした。２Ｂ６重鎖の最初の１５個のＮ−末端アミノ酸を配列決定することにより、重鎖の推定アミノ酸配列を確認した。
【０１６２】
シグナルおよびＶＨ領域に関する配列を含有するＥｃｏＲＩ−ＡｐａＩフラグメントを単離し、既にヒトＩｇＧ１定常領域をコードするプラスミドｐＣＤにライゲーションした。
【０１６３】
ネズミｍＡｂ２Ｂ６軽鎖可変領域のアミノ酸番号１２−９９（ＫＡＢＡＴ番号表示）をコードするＤＮＡを、２Ｂ６ハイブリドーマ細胞系より得られたｃＤＮＡ（実施例４を参照のこと）のｐＧＥＭ７Ｚｆ＋を基礎とするＰＣＲクローン由来のＤｄｅＩ−ＡｖａｌＩ制限フラグメントとして単離した。このフラグメントを４つの小型合成オリゴマーリンカー［配列番号３９および４０］［配列番号４１および４２］と一緒にＥｃｏＲＶ−ＨｉｎｄＩＩＩで消化したｐＵＣ１８を基礎とするプラスミドに組み合わせることにより、フランキング軽鎖可変領域の配列を得た。、密接に関連したネズミ軽鎖より推定されるＮ−末端アミノ酸のコンセンサスを最初の８個のＶＬ残基に帰属させ、配列番号３９および４０の範囲内でコードした。２Ｂ６軽鎖の最初の１５個のＮ−末端アミノ酸を配列決定することにより、軽鎖の推定アミノ酸配列を確認した。ついで、この可変領域をＥｃｏＲＶ−ＮａｒＩフラグメントとして単離し、既にヒトκ領域およびシグナル配列を含有する発現ベクターｐＣＮにライゲーションした。
【０１６４】
ｐＣＤおよびｐＣＮを基礎とするプラスミドをＣＯＳ細胞に同時形質導入することによりキメラ抗体の発現を行った。３日および５日後に培養上清を集め、次のようにＥＬＩＳＡにより免疫グロブリン発現についてアッセイを行った：最終工程を除く各工程でＰＢＳ洗浄を行った。マイクロタイタープレートを１００ｎｇ／５０μｌ／ウェルのヒト抗体のＦｃ領域に特異的なヤギ抗体を用いて一夜被覆した。培養上清を加え、１時間インキュベーションした。ついで、ヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体を共有するホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを加え、１時間インキュベーションした。ついで、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を添加した。１時間インキュベーションした後、４０５ｎｍでの吸光度をマイクロタイタープレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ、ＣＡ）で読み取った。キメラ抗体の発現が検出された。類似するＥＬＩＳＡにおいて、キメラ抗体を含有するＣＯＳ細胞上清は、ヒトＩＬ−５タンパク質で被覆したマイクロタイターウェルに特異的に結合した。この結果、ＩＬ−５に対する抗体をコードする遺伝子が合成され、かつ発現されたことが確認された。
【０１６５】
上記実施例は代表的な改変抗体の製法を記載するものである。常套手段により発現される他の抗ＩＬ−５ドナー抗体（例えば、２Ｆ２、２Ｅ３、４Ａ６、５Ｄ３、２４Ｇ９など）を用い、同様の操作を他の改変抗体の発現について行うこともできる。
【０１６６】
実施例６−ヒトＩＬ−５／ｈＩＬ−５レセプターα鎖／ＭＡｂ複合体
Ａ．ＥＬＩＳＡ
以下の抗体：２４Ｇ９（非中和）、４Ａ６（中和）および２Ｂ６（中和）を、２ｎｇ／ｍｌ−３２ｎｇ／ｍｌの間の濃度で評価した。
【０１６７】
平坦な底のＥＬＩＳＡプレートウェル（Ｗａｌｌａｃ）を１００μｌのタンパク質−Ａ（５μｇ／ｍｌ）で４℃で一夜被覆した。吸引後、ウェルを１％ＢＳＡ含有の２００μｌ遮断緩衝液で遮断し、３７℃で６０分間インキュベーションした。プレートを４回洗浄し、１００μｌの可溶性ＩＬ−５ＲαＦｃ（Ｊｏｈｎｓｏｎら、（１９９５） Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２７０：９４５９−９４７１）（２．２５μｇ／ｍｌ）を各ウェルに加え、３７℃で３０分間インキュベーションした。プレートを１回洗浄し、増加する濃度の組換えヒトＩＬ−５を各ウェルに加えた。３７℃で３０分間インキュベーションした後、ウェルを１回洗浄し、１００μｌの抗体（２μｇ／ｍｌ）を加え、３７℃で６０分間インキュベーションした。プレートを４回洗浄し、１００μｌのビオチン標識したヤギ抗マウスＩｇまたはヤギ抗ラットＩｇ（Ｓｉｇｍａ）を各ウェルに加えた。プレートを３７℃で６０分間インキュベーションし、４回洗浄した。ユーロピウム標識したストレプタビジン（ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ）（Ｗａｌｌａｃ）をユーロピウム緩衝液（Ｗａｌｌａｃ）中で１：１０００に希釈し、１００μｌ容量を各ウェルに加えた。プレートを３７℃で３０分間インキュベーションし、６回洗浄した。エンハンサー溶液（Ｗａｌｌａｃ）を各ウェルに加え、１２３４デルフィア（Ｄｅｌｐｈｉａ）・リサーチ・フルオロメーターを用いてプレートを読み取った。
【０１６８】
ｍＡｂ ２４Ｇ９および４Ａ６のＩＬ−５／ＩＬ−５レセプター複合体への結合が用量依存的に増加した。そのような増加はｍＡｂ ２Ｂ６を用いて観察されなかった。ｍＡｂ ２Ｂ６はＩＬ−５のＩＬ−５Ｒα鎖への結合を阻害する。対照的に、２４Ｇ９または４Ａ６のいずれもＩＬ−５のＩＬ−５Ｒα鎖への結合を阻害しなかった。表ＩＩを参照のこと。
【表２】
【０１６９】
Ｂ．光学バイオセンサー
（１）ｍＡｂをＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した（実施例２Ｄを参照のこと）。５μｌ／分の流速でｈＩＬ−５（２５μｌ）を４Ａ６表面上に通した。ついで、ＩＬ−５レセプターα鎖（２５μｌ中１５、３０、６０、１２０ｎＭ）を注入した。４Ａ６／ＩＬ−５複合体への結合におけるＩＬ−５レセプターα鎖（Ｒａ）の動態は、Ｋｏｎ＝６．３ｘ１０５（／Ｍ／ｓ）；Ｋｏｆｆ＝２．３ｘ１０−３（／ｓ）として計算することができる。ＩＬ−５−ＩＬ−５Ｐαの相互作用についての動態はＫｏｎ＝７．５ｘ１０５（／Ｍ／ｓ）；Ｋｏｆｆ＝２．８ｘ１０−３（／ｓ）である。かくして、ｍＡｂ ４Ａ６はＩＬ−５とＩＬ−５レセプターα鎖の間の相互作用に対して有意な作用を付与しない。
【０１７０】
（２）ｈＩＬ−５をＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した。ｍＡｂ ４Ａ６（２５μｌ、３２μｇ／ｍｌ）をその表面に注入し、つづいてＩＬ−５レセプターα鎖（２０μｌ、９０ｎＭ）を注入した。対照として、同じ量のＩＬ−５レセプターα鎖をＩＬ−５表面に直接注入した。ｍＡｂ ４Ａ６のｈＩＬ−５への前結合はＩＬ−５レセプターα鎖のｈＩＬ−５への結合を遮断しなかった。
【０１７１】
（３）ＰｒｏｔｅｉｎＡをＢＩＡｃｏｒｅチップ上に固定した。ＩＬ−５Ｒａ−Ｆｃ（３０μｌ、２０μｇ／ｍｌ）をＰｒｏｔｅｉｎＡ表面に注入した。ついで、ＩＬ−５（２５μｌ、８０ｎＭ）をＩＬ−５Ｒａ−Ｆｃで捕獲し、つづいてｍＡｂ ２４Ｇ９（２５μｌ、３２μｇ／ｍｌ）と結合させた。ｍＡｂ ２４Ｇ９はｈＩＬ−５／ＩＬ−５Ｒα複合体に結合した。
【０１７２】
（４）ｍＡｂ ２４Ｇ９をＢＩＡｃｏｒｅチップに固定した。ＩＬ−５を２４Ｇ９表面に捕獲し、つづいて異なるｍＡｂを注入した。ｍＡｂ ２Ｂ６、ＴＲＦＫ５およびＣＭＸ５−２をＩＬ−５／２４Ｇ９複合体に結合させたが、ｍＡｂ ４Ａ６のＩＬ−５への結合は遮断された。このことは４Ａ６および２４Ｇ９が結合エピトープを共有していることを示す。
【０１７３】
Ｃ．沈降速度
１４時間経過後（２０℃）、沈降速度によりｈＩＬ−５、ｍＡｂ ４Ａ６および可溶性ＩＬ−５レセプターα鎖の３成分混合物を分析した。可溶性ＩＬ−５レセプターα鎖／ｈＩＬ−５／ｍＡｂ複合体と同じ大きさに相当する複合体が観察された。
【図面の簡単な説明】
【０１７４】
【図１】〔配列番号１および１５〕は、ネズミ抗体２Ｂ６およびネズミ／ヒト２Ｂ６キメラ抗体についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図２】〔配列番号２および１６〕は、ネズミ抗体２Ｂ６およびネズミ／ヒト２Ｂ６キメラ抗体についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図３】〔配列番号３〕は、ネズミ抗体２Ｆ２についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図４】〔配列番号４〕は、ネズミ抗体２Ｆ２についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図５】〔配列番号５〕は、ネズミ抗体２Ｅ３についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図６】〔配列番号６〕は、ネズミ抗体２Ｅ３についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図７】〔配列番号７−１４〕は、ネズミ抗体２Ｂ６、２Ｆ２および２Ｅ３からの重鎖および軽鎖ＣＤＲを示す。
【図８】〔配列番号１８および１９〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についての重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図９】〔配列番号２０および２１〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についての軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図１０】哺乳動物細胞にてヒト化重鎖遺伝子を発現させるのに用いられるプラスミドｐＣＤＩＬ５ＨＺＨＣ１．０の模式図である。該プラスミドは、ｐＵＣ１９バックグラウンド中に、ベータラクタマーゼ遺伝子（ＢＥＴＡ ＬＡＣ）、ＳＶ−４０の複製起点（ＳＶ４０）、サイトメガロウイルスプロモーター配列（ＣＭＶ）、シグナル配列、ヒト化重鎖、ウシ成長ホルモン（ＢＧＨ）のポリＡシグナル、ベータグロビンプロモーター（ベータグロプロ）、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）およびもう一つ別のＢＧＨ配列ポリＡシグナルを含有する。
【図１１】哺乳動物細胞にてヒト化軽鎖遺伝子を発現させるのに用いられるプラスミドｐＣＮＩＬ５ＨＺＬＣ１．０の模式図である。
【図１２】〔配列番号６１および６２〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についてのＮｅｗ Ｍ重鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【図１３】〔配列番号６９および７０〕は、ヒト化抗体２Ｂ６についてのＲＥＩ軽鎖可変領域を示す。ボックス領域はＣＤＲを示す。
【０１７５】
【表３−１】
【表３−２】
【表３−３】
【表３−４】
【表３−５】
【表３−６】
【表３−７】
【表３−８】
【表３−９】
【表３−１０】
【表３−１１】
【表３−１２】
【表３−１３】
【表３−１４】
【表３−１５】
【表３−１６】
【表３−１７】
【表３−１８】
【表３−１９】
【表３−２０】
【表３−２１】
【表３−２２】
【表３−２３】
【表３−２４】
【表３−２５】
【表３−２６】
【表３−２７】
【表３−２８】
【表３−２９】
【表３−３０】
【表３−３１】
【表３−３２】
【表３−３３】
【表３−３４】
【表３−３５】
【表３−３６】
【表３−３７】
【表３−３８】
【表３−３９】
【表３−４０】
【表３−４１】
【表３−４２】
【表３−４３】
【表３−４４】
【表３−４５】
【表３−４６】
【表３−４７】
【表３−４８】
【表３−４９】
【表３−５０】
【表３−５１】
【表３−５２】
【表３−５３】
【表３−５４】
【表３−５５】
【表３−５６】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体のヒトＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物と該レセプターとの結合を可能とする条件下で接触させ、ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体の結合を拮抗する候補化合物を同定することからなる方法。
【請求項２】
以下の複合体（ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／ヒトＩＬ−５のヒトＩＬ−５レセプターα鎖への結合を遮断しないヒトＩＬ−５についてのモノクローナル抗体）のヒトＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって；
ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物とＩＬ−５レセプターβ鎖との結合を可能とする条件下で接触させ、該レセプター／ＩＬ−５／抗体複合体のＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する候補化合物を同定することからなる方法。
【請求項１】
ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体のヒトＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって、ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物と該レセプターとの結合を可能とする条件下で接触させ、ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５複合体の結合を拮抗する候補化合物を同定することからなる方法。
【請求項２】
以下の複合体（ヒトＩＬ−５可溶性レセプターα鎖／ヒトＩＬ−５／ヒトＩＬ−５のヒトＩＬ−５レセプターα鎖への結合を遮断しないヒトＩＬ−５についてのモノクローナル抗体）のヒトＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する化合物をスクリーニングし、そのような化合物を同定する方法であって；
ヒトＩＬ−５レセプターβ鎖を複数の候補化合物とＩＬ−５レセプターβ鎖との結合を可能とする条件下で接触させ、該レセプター／ＩＬ−５／抗体複合体のＩＬ−５レセプターβ鎖への結合を拮抗する候補化合物を同定することからなる方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【公開番号】特開２００８−１８９６６６（Ｐ２００８−１８９６６６Ａ）
【公開日】平成２０年８月２１日（２００８．８．２１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−１０４７２（Ｐ２００８−１０４７２）
【出願日】平成２０年１月２１日（２００８．１．２１）
【分割の表示】特願平１０−５０３４０１の分割
【原出願日】平成９年６月２０日（１９９７．６．２０）
【出願人】（５９１００２９５７）スミスクライン・ビーチャム・コーポレイション (341)
【氏名又は名称原語表記】ＳＭＩＴＨＫＬＩＮＥ ＢＥＥＣＨＡＭ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年８月２１日（２００８．８．２１）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年１月２１日（２００８．１．２１）
【分割の表示】特願平１０−５０３４０１の分割
【原出願日】平成９年６月２０日（１９９７．６．２０）
【出願人】（５９１００２９５７）スミスクライン・ビーチャム・コーポレイション (341)
【氏名又は名称原語表記】ＳＭＩＴＨＫＬＩＮＥ ＢＥＥＣＨＡＭ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ
【Ｆターム（参考）】
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