アミノ酸産生の代謝工学
【課題】バリン産生減少によるアミノ酸産生の改善およびAHAS活性減少によるアミノ酸産生の改善の提供。
【解決手段】(1)アミノ酸Xを産生する微生物Cであって(a)デキストロースからアミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;(b)以下:(i)ランダム化学変異誘発;および(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;からなる群から選択される方法により、親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、微生物Bは、分枝鎖アミノ酸について栄養要求性などである、工程;ならびに(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースからアミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで収率Zパーセントは、収率Yパーセントよりも大きい、工程、を包含する方法により得られる、微生物C。
【解決手段】(1)アミノ酸Xを産生する微生物Cであって(a)デキストロースからアミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;(b)以下:(i)ランダム化学変異誘発;および(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;からなる群から選択される方法により、親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、微生物Bは、分枝鎖アミノ酸について栄養要求性などである、工程;ならびに(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースからアミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで収率Zパーセントは、収率Yパーセントよりも大きい、工程、を包含する方法により得られる、微生物C。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
(発明の背景)
(発明分野)
本発明は、微生物遺伝学および組み換えDNA技術の分野に関する。より具体的には、本発明は、アミノ酸の発酵産生に関する。本発明により、アミノ酸産生に有用な微生物、アミノ酸産生を向上させる方法、およびアミノ酸産生プロセスが提供される。
【0002】
(関連分野)
発酵によるアミノ酸産生は、糖密、酢酸およびエタノールなどの廉価な炭素源からの安価な産生を可能とする。Corynebacteriaがアミノ酸の工業生産に有用である(S.Kinoshitaら、Proceedings of the International Symposium on Enzyme Chemistry 2:464−468(1957))という認識に従って、発酵プロセスによるアミノ酸の商業生産が、変異株の分離を用いてより実施可能になった。アミノ酸産生の微生物プロセスで用いられる微生物を4つのクラスに分類し得る:野生型株、栄養要求性変異株、調節変異株および栄養要求性調節変異株(K.Nakayamaら、NUTRITIONAL IMPROVEMENT OF FOOD AND FEED PROTEINS、M.Friedman編、(1978)、pp.649−661)。発酵により産生されたアミノ酸の立体特異性は、合成プロセスと比較して、微生物プロセスによるアミノ酸産生を優位なプロセスとし;微生物プロセスにより産生されるアミノ酸は、通常L−型である。
【0003】
L−リシンは、工業的発酵により産生されるアミノ酸の一例である。この必須アミノ酸の商業的産生は、グラム陽性微生物であるCorynebacterium glutamicum、Brevibacterium flavumおよびBrevibacterium lactofermentum(Kleemann,Aら、Amino Acids,ULLMAN‘S ENCYCLOPEDIA OF INDUSTRIAL CHEMISTRY,vol.A2,pp.57−97、Weinham:VCH−Verlagsgesellschaft(1985))を利用して主に行なわれ;累積的に、これら3つの微生物は現在、一年間におよそ250,000トンのL−リシンを産生すると報告されている。
【0004】
発酵プロセスによるL−リシン産生の経済的重要性があるなら、生産コストを下げると同時に、産生される総量を増加させることが有用であろう。それを目標として、L−リシン合成の生化学的経路が集中的にCorynebacterium(最近、Sahmら、Ann.N.Y.Acad.Sci.782:25−39(1996)によってレビューされた)において研究されている。リシン経路への入り口は、L−アスパラギン酸で始まる(図1参照)。L−アスパラギン酸自身は、オキサロ酢酸のアミノ基転移により産生される。C.glutamicumの特殊な性質は、リシン中間体ピペリジン2,6−ジカルボキシレートを二つの異なるルートで、すなわち、スクシニル化中間体に関する反応によってか、またはジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼの単一反応によって、ジアミノピメリン酸に変換するその能力である。全体的に見ると、経路への炭素流量は、2点で調節される:第一に、L−スレオニンおよびL−リシン両方のレベルによるアスパラギン酸キナーゼのフィードバック阻害によるもの、第二は、ジヒドロジピコリン酸合成レベルの調節によるものである。従って、これら2つの酵素の活性を調節解除および増加させることにより、CorynebacteriaにおいてL−リシン産生を増加させ得る。
【0005】
L−リシン合成を導く生化学的経路に加えて、最近の証拠は、細胞から媒質へのリシン輸送に関する考察が、C.glutamicumのリシン過剰産生株の開発において考慮されるべき別の条件であるということを示す。Kramerおよびその同僚による研究は、易漏出性の膜の性質の結果として起こる細胞からの受動的輸送だけで、リシン流出が説明されるものではないことを示す;これらのデータは、以下のような性質を持つ特定のキャリアを示唆する:(1)トランスポーターは、リシンに対するかなり高いKm値(20mM)を有する;(2)トランスポーターは、OH-共輸送系(取り込み系は、H+対向輸送系である)および(3)トランスポーターは正に荷電しており、膜電位が分泌を刺激する(S.BroerおよびR.Kramer,Eur.J.Biochem.202:137−143(1991))。
【0006】
栄養要求性または抵抗性の性質について分離された様々な株を利用したいくつかの発酵プロセスが、L−リシン産生に関して当該分野において公知である:米国特許第2,979,439号は、ホモセリン(またはメチオニンおよびスレオニン)要求性の変異体を開示し;米国特許第3,700,557号は、スレオニン、メチオニン、アルギニン、ヒスチジン、ロイシン、イソロイシン、フェニルアラニン、シスチン、またはシステインについて栄養要求性を有する変異株を開示し;米国特許第3,707,441号は、リシンアナログに対して抵抗性を持つ変異体を開示し;米国特許第3,687,810号は、L−リシン産生能力およびバシトラシン、ペニシリンGまたはポリミキシンに対する抵抗性の両方を有する変異株を開示し;米国特許第3,708,395号は、ホモセリン、スレオニン、スレオニンおよびメチオニン、ロイシン、イソロイシンまたはそれらの組み合わせについて栄養要求性を有し、かつリシン、スレオニン、イソロイシンまたはそれらのアナログに対する抵抗性を有する変異体を開示し;米国特許第3,825,472号は、リシンアナログに対する抵抗性を有する変異株を開示し;米国特許第4,169,763号は、L−リシンを産生し、かつアスパラギン酸アナログおよびサルファ剤の少なくとも一つに対して抵抗性であるCorynebacteriumの変異株を開示し;米国特許第5,846,790号は、ビオチン作用抑制剤非存在化でL−グルタミン酸およびL−リシンを産生し得る変異株が開示し;そして米国特許第5,650,304号は、4−N−(D−アラニル)−2,4−ジアミノ−2,4−ジデオキシ−L−アラビノース、2,4−ジデオキシ−L−アラビノースまたはその誘導体に対して抵抗性を持つ、L−リシンの産生に関して、Corynebacterium属またはBrevibacterium属に分類される株を開示する。
【0007】
CorynebacteriaのL−リシン発酵産生の分野における、より最近の発展は、リシン産生を増大させるための分子生物学技術の使用と関連がある。以下の例は、本技術の典型的な例として提供されるものである:米国特許出願番第4,560,654号および同第5,236,831号は、S−(2−アミノエチル)−システインに対して感受性のあるホストCorynebacteriumまたはBrevibacterium微生物に対して、S−(2−アミノエチル)−システインに対する抵抗性およびリシン産生能の両方を付与するDNAフラグメントをベクターDNAに挿入した組み換えDNA分子を用いて形質転換することにより得られるL−リシン産生変異株を開示し;米国特許出願第5,766,925号は、coryneform細菌(L−リシンおよびL−スレオニンにより脱感作されるフィードバック阻害を有する)由来のアスパルトキナーゼをコードする遺伝子を、漏出型ホモセリンデヒドロゲナーゼを有するCoryneform細菌、またはホモセリンデヒドロゲナーゼ遺伝子を欠失したCoryneform細菌の染色体DNAに組み込むことにより産生される変異株を開示する。
【0008】
L−リシンに加えて、他のアミノ酸、例えば、分枝鎖アミノ酸であるL−ロイシン、L−イソロイシンおよびL−バリン産生にCorynebacteriumおよび関連生物が有用である。分枝鎖アミノ酸生合成に至る生化学的経路もまた良く研究されている。アスパラギン酸経路への炭素流量は、L−イソロイシン産生に利用されうる、L−リシンまたはL−スレオニン産生に送り込まれうる(図1B)。5つの反応により、L−スレオニンからL−イソロイシンが産生される。すなわち、これらの反応を触媒する酵素には、次のものが含まれる。(1)スレオニンデヒドラターゼ、(2)アセトヒドロキシ酸シンターゼ、(3)イソメロレダクターゼ、(4)ジヒドロキシ酸デヒドラターゼ、および(5)トランスアミナーゼB、である。スレオニンデヒドラターゼは、イソロイシン合成特有である、この経路における唯一の酵素である。他の4つの酵素は、また他の分枝鎖アミノ酸、バリンおよびロイシン産生においても利用される。スレオニンからイソロイシンへの炭素流量は、スレオニンデヒドラターゼおよびアセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)により制御される。Corynebacteriumにおけるイソロイシン経路の酵素をコードする遺伝子(ilvA,ilvB,ilvC,ilvDおよびilvE)クローニングを利用して(C.Cordesら、Gene 112:113−116(1992);B.Moeckelら、J.Bacteriology 174:8065−8072(1992)および、C.Keihauerら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1993))、新規株を作製するために組み換えDNA技術を適用し得る。
【0009】
分枝鎖アミノ酸生合成経路における酵素活性の向上によるアミノ酸、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリンの産生における発展について説明されている。さらに、ilvBNオペロンによりコードされるアセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)活性の改善による分枝鎖アミノ酸産生における改善について説明されている。(概要として、H.Sahmら、Ann.N.Y.Acad.Sci.782:25−39(1996)を参照)。
【0010】
分枝鎖アミノ酸産生の例示的なプロセスには、次のものが含まれる。米国特許第5,188,948号において、ポリケチドに対して抵抗性である微生物を利用したL−バリン産生に対する発酵プロセスが開示されている。米国特許第5,521,074号において、CorynebacteriumまたはBrevibacterium属の微生物を利用したL−バリン産生のためのプロセスが開示されている。これらの微生物は、a)バリン産生能、b)唯一の炭素源として酢酸を含む培地中における、L−バリンに対する抵抗性、およびc)唯一の炭素源としてグルコースを含む培地中における、ピルビン酸アナログに対する感受性を示す。米国特許第4,601,983号において、コリネフォルム細菌において複製可能で、L−スレオニンおよびL−イソロイシン産生に使用されるホモセリンデヒドロゲナーゼ活性を持つ蛋白質産生をコードする遺伝子配列が開示されている。米国特許第4,442,208号において、組み換えDNA技術によって得られた、α−アミノ−β−ヒドロキシ吉草酸抵抗性を持つBrevibacteriumまたはCorynebacterium株を利用した、L−イソロイシン産生に対する発酵プロセスが開示されている。米国特許第4,656,135号において、L−イソロイシン産生のためのプロセスが開示されている。このプロセスには、メチルリシン抵抗性またはα−ケトマロン酸抵抗性を持ち、液体培地中でL−イソロイシン産生し得、その液体培養液から蓄積したL−イソロイシンを回収しうるBrevibacterium属またはCorynebacterium属に属する微生物の培養が含まれる。米国特許第5,118,619号において、D−ラクテートを利用する変異体による、D,L−α−ヒドロキシブチレートからのL−イソロイシン発酵産生のための方法が開示されている。米国特許第5,763,231号において、L−ロイシン産生のためのプロセスが開示されている。このプロセスは、培養培地中でのCorynebacterium、Escherichia、BrevibacteriumまたはMicrobacterium属株をインキュベーションする工程および、得られた細胞をサッカリドおよび酢酸またはその塩と反応させて、反応溶液中でL−ロイシンを形成かつ蓄積させる工程を包含する。および、米国特許第3,970,519号において、ロイシンまたはそのアナログによるフィードバック阻害に対して抵抗性を持ち、L−ロイシンを産生するための増殖栄養としてイソロイシン、スレオニンまたはメチオニンのうち少なくとも一つを必要とする株が開示されている。
【0011】
バリン産生減少によるアミノ酸産生の改善については記述されていない。
【0012】
AHAS活性減少によるアミノ酸産生の改善については記述されていない。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【0013】
本発明によって以下が提供される:
(1)アミノ酸Xを産生する微生物Cであって、ここで該微生物Cは、以下の工程:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法により得られる、微生物C。
(2) 項目1に記載の微生物Cであって、ここでアミノ酸Xは、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、微生物C。
(3) 微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目2に記載の微生物C。
(4) 微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目3に記載の微生物C。
(5) 工程(ii)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目3に記載の微生物C。
(6) 工程(ii)の変異誘発が、ilvBNオペロンの部位特異的変異誘発である、項目3に記載の微生物C。
(7) 微生物Corynebacteriumの株であって、該株は、以下の特徴:
(a)分枝鎖アミノ酸イソロイシン、ロイシンおよびバリンの1つ以上についての栄養要求性またはブラディトローフ性;
(b)培地で培養される場合、以下:
(i)グリシン;
(ii)アラニン;
(iii)メチオニン;
(iv)フェニルアラニン;
(v)トリプトファン;
(vi)プロリン;
(vii)セリン;
(viii)トレオニン;
(ix)システイン;
(x)チロシン;
(xi)アスパラギン;
(xii)グルタミン;
(xiii)アスパラギン酸;
(xiv)グルタミン酸;
(xv)リジン;
(xvi)アルギニン;および
(xvii)ヒスチジン、
からなる群からら選択されるアミノ酸を産生すること;ならびに
(c)少なくとも30%である、デキストロースからの工程(b)のアミノ酸のパーセント収率を生じること、
を有する、株。
(8) 前記ilvBNオペロンにおける変異によりさらに特徴付けられる、項目7に記載の微生物。
(9) 前記ilvBNオペロン変異が、欠失、挿入または点変異である、項目8に記載の微生物。
(10) 前記ilvBNオペロン変異が、配列番号3または配列番号5の配列により特徴付けられる、項目9に記載の微生物。
(11) NRRL寄託番号B−30149の同定特徴を有する微生物Corynebacteriumの株。
(12) NRRL寄託番号B−30150の同定特徴を有する微生物Corynebacteriumの株。
(13) アミノ酸Xの産生を増加する方法であって、該方法は、以下:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発させて、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法。
(14) 前記アミノ酸Xが、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、項目13に記載の方法。
(15) 前記微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目14に記載の方法。
(16) 前記微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目15に記載の方法。
(17) 工程(b)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目15に記載の方法。
(18) 工程(b)の変異誘発が、ilvBNオペロンの部位特異的変異である、項目15に記載の方法。
(19) アミノ酸Xを産生するためのプロセスであって、該プロセスは、以下:
(a)微生物Cを培地で培養する工程であって、ここで該微生物Cは、以下:
(i)デキストロースから収率Yパーセントの該アミノ酸を産生する親微生物Aを選択する工程;
(ii)以下:
(1)ランダム化学変異誘発;および
(2)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発、
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(iii)工程(ii)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性である、工程;ならびに
(iv)工程(iii)から栄養要求性である少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、該微生物Cは、該アミノ酸Xをデキストロースから収率Yパーセントで産生する、工程、
を包含する方法により得られる、工程;
(b)該微生物Cから産生される該アミノ酸Xを回収する工程、
を包含する、プロセス。
(20) 前記アミノ酸Xが、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、項目19に記載のプロセス。
(21) 前記微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目20に記載のプロセス。
(22) 前記微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目21に記載のプロセス。
(23) 前記工程(ii)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目21に記載のプロセス。
(24) 前記工程(ii)の変異誘発が、ilvBnオペロンの部位特異的変異誘発である、項目21に記載のプロセス。
(本発明の要旨)
本発明の目的は、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る微生物を提供することである。変換効率は次の式により定量され得る。
すなわち、[(g 産生されたアミノ酸/g 消費されたデキストロース)×100]=パーセント収率およびデキストロースからの収率として表される。
【0014】
ある実施形態において、本発明は、変異誘発により一つ以上の分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性に改変され、所望するアミノ酸に対して、親株よりも高いパーセント収率を生じるという能力について選択された微生物を提供する。
【0015】
より具体的な、ランダム化学変異誘発に親株を供することにより得られた微生物を提供する本発明の実施形態において、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である変異誘発された変異体を単離し、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ、親株よりも非常に効率よく変換可能な変異株を選択する。別の具体的な本発明の実施形態は、ilvBNオペロンの核酸配列における改変(すなわち、変異)を導入するために、rDNA法を利用し、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフである変異誘発変異体を単離し、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ、親株よりも非常に効率よく変換可能な改変体を選択して得られる微生物を提供する。
【0016】
好適な実施形態において、本発明微生物はL−リシンを産生する。その他の好適な本発明の実施形態は、Corynebacterium微生物、またはBrevibacterium微生物を指向し、そして特に好適な微生物は、L−リシンを産生するCorynebacteriumまたはBrevibacterium微生物である。最も好適な実施形態において、微生物は、NRRL番号B−30149(LC10としても知られている)またはNRRL番号B−30150(BF100−1030としても知られている)という同定特徴を有し、これらの株は、Agricultural Research Service Culture Collection(NRRL)、1815 North University Street,Peoria,Illinois 61604 USAに1999年6月29日に寄託された。
【0017】
本発明の別の目的は、親株の変異誘発、一つ以上の分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性である細胞の選択、および所望するアミノ酸の親株よりも高いデキストロースからのパーセント収率で産生する分枝鎖アミノ酸栄養要求性の選択によりアミノ酸産生を増加させる方法を提供する。
【0018】
好適な実施形態において、本方法は、ランダム化学変異誘導または組み換えDNA(rDNA)技術を用いて一つ以上の分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンまたはバリンに対して栄養要求性またはブラディトローフであるように改変されたCorynebacteriumの培養から得られる、デキストロースからのアミノ酸L−リシンの収率の向上を指向する。
【0019】
1つの特定の実施形態において、分枝鎖アミノ酸栄養要求性は、Corynebacteriumの化学変異誘発の結果である。代替の具体的な実施形態において、分枝鎖アミノ酸栄養要求性は、rDNA技術によるilvBNオペロンの変異誘発の結果である。
【0020】
本発明の別の目的は、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る微生物によるアミノ酸産生プロセスを提供することである。
【0021】
ある実施形態において、本発明は、培地中での、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフであるように親株を誘発し、そして、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することより得られた微生物を培養する工程を包含するアミノ酸産生プロセスを提供する。
【0022】
本プロセスの好適な実施形態において、親株をランダム化学変異誘発に供し、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である変異を誘発された改変体を単離し、そして親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することにより、発酵に利用される微生物が得られる。本プロセスにおけるその他の好適な実施形態において、rDNA法によりilvBNオペロンのヌクレオチド配列を変化させ(つまり、変異の導入)、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフである変異を誘発された変異体を分離し、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することにより、発酵に利用される微生物を得る。
前記の一般的記述および次の詳細な記述は例示的であり、かつ例示のみであり、特許請求の範囲のとおりの本発明のさらなる説明を提供することを意図されることが理解されるべきである。
【図面の簡単な説明】
【0023】
【図1A】図1Aは、Corynebacteriumにおける、L−リシン産生を導く生化学的経路の略図である。
【図1B】図1Bは、Corynebacteriumにおける、L−イソロイシン産生に至る生化学的経路概略図である。
【図2A】図2Aは、CorynebacteriumのilvBNオペロンのヌクレオチド配列(配列番号1)を示す。
【図2B】図2Bは、CorynebacteriumのilvBNオペロンのヌクレオチド配列(配列番号1)を示す。
【図2C】図2Cは、Corynebacteriumの、ilvBNオペロンのアミノ酸配列(配列番号2)を示す。
【図3A】図3Aは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのヌクレオチド配列(配列番号3)を示す。
【図3B】図3Bは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのヌクレオチド配列(配列番号3)を示す。
【図3C】図3Cは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのアミノ酸配列(配列番号4)を示す。
【図4A】図4Aは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4B】図4Bは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4C】図4Cは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4D】図4Dは、pRV1B5対立遺伝子のアミノ酸配列(配列番号6)を示す。
【発明を実施するための形態】
【0024】
(好適な実施形態の詳細な説明)
(1.定義)
明細書および特許請求の範囲の明確で矛盾のない理解を提供するために、これらの語が使われるべき範囲を含めて、次の定義を提供する。
【0025】
栄養要求性株:本明細書中で使用される場合、栄養要求性株なる語は、増殖するために、獲得遺伝的欠損のために合成不可能な、特定の代謝物質の外的な源を必要とする微生物株を意味する。
【0026】
アミノ酸補充:本明細書中で使用される場合、「アミノ酸補充」なる語は、成長に必要とされ、栄養要求性成長を助けるために最小培地に添加されるアミノ酸を意味している。
【0027】
ブラディトローフ:本明細書中で使用される場合、ブラディトローフなる語は、特異的な代謝物質の外的な源がない状態において遅い成長を示す微生物株を意味している。ブラディトローフ微生物は、代謝物質を合成しうるが、獲得遺伝的欠損のために、合成速度が親株での同じ代謝物質の合成速度よりも遅い。
【0028】
分枝アミノ酸:本明細書中で使用される場合、この語は、ロイシン、イソロイシンおよびバリンなど、R基が分枝した炭素構造を持つアミノ酸を意味している。
【0029】
炭素流動:本明細書中で使用される場合、この語は、生体内の両方向性、異化作用性および/または同化作用性の生化学的合成的経路の間の炭素の移動を意味している。
【0030】
染色体組込み:本明細書中で使用される場合、この語は、外因性DNA断片の、宿主生物染色体への挿入を意味している。より具体的には、この語は、外因性DNA断片と宿主細胞染色体との適切な領域間の相同的組み換えを意味するものとして使用される。
【0031】
高収率誘導体:本明細書中で使用される場合、この語は、その誘導体が由来する親株と比較した場合、高い収率で、デキストロースから特異的なアミノ酸を産生する微生物株を意味している。
【0032】
変異:本明細書中で使用される場合、この語は、目的のヌクレオチド配列における、単一塩基対変化、挿入または欠失を意味している。
【0033】
オペロン:本明細書中で使用される場合、この語は、構造遺伝子および調節エレメントを含む、DNAにおける細菌遺伝子発現および調節の単位を意味している。オペロンに含まれる調節エレメントの例には、プロモーターおよびオペレーターが含まれるがこれに限定されない。
【0034】
親株:本明細書中で使用される場合、この語は、本発明の微生物を得るためにある形態の変異誘発に供される微生物株を意味している。
【0035】
デキストロースからの収率パーセント:本明細書中で使用される場合、この語は、次の式で定義されるデキストロースからのアミノ酸収率を意味している。すなわち、
[(g 産生されたアミノ酸/g 消費されたデキストロース)×100]=%収率、である。
【0036】
表現型:本明細書中で使用される場合、この語は、微生物の遺伝的構成に依存した、識別できる形質的特徴を意味している。
【0037】
相対的成長:本明細書中で使用される場合、この語は、規定された期間にわたって、規定された培養液中で、親株の成長と子孫株の成長を直接的に比較することによって、成長の評価を提供する測定を意味している。
【0038】
変異誘発:本明細書中で使用される場合、この語は、DNAにおいて変異が発生するプロセスを意味している。「ランダム」変異誘発を用いて、変異の正確な部位を予想することはできず、微生物ゲノムのどこでも起こり、また、放射線照射または化学処理などの因子により引き起こされる物理的損傷の結果として変異が引き起こされる。rDNA変異誘発は、クローニングされた目的のDNAを指向し、それはランダムまたは部位特異的なものでありうる。
【0039】
(2.分枝鎖アミノ酸合成に対する炭素流量の減少、および非分枝型アミノ酸産生の増加に基づいた本発明の微生物)
本発明は、概して、炭素流動を非分枝鎖アミノ酸合成に向けるために、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である微生物の作製を提供する。より具体的に、ロイシン、イソロイシンまたはバリンなどの、一つ以上の分枝鎖アミノ酸(例えば、イソロイシンおよびバリン)を必要とする特異的な栄養要求性表現型を選択するか、またはイソロイシン、ロイシンおよびバリン合成への炭素流量を減少させるilvBNオペロンにおける変異を設計することにより、この系の炭素流動を、他の代謝経路(例えば、L−リシン合成)で利用できるようにし得る。
【0040】
1つの特定の実施形態において、本発明は、アミノ酸Xを産生する微生物Cを提供する。ここで、この微生物Cは、次の方法によって得られる:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法。
【0041】
デキストロースからの収率パーセントは、好適には、式[(g 産生されたアミノ酸/L / g 消費されたデキストロース/L)×100]を用いて計算される。
【0042】
親微生物は、アミノ酸Xを産生しうる、当該分野で既知の任意の微生物からも選択されうる。特に好適な親微生物は、CorynebacteriumおよびBrevibacteriumである。
【0043】
本発明の株は、当業者にとって既知で利用可能な任意の方法および技術によっても、調製され得る。本発明細菌株の構築に適した方法の例には、次のものが含まれるが、これに限らない:N−メチル−N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジン(NTG)のような適した薬剤を用いた変異誘発;線状DNA断片の形質転換および相同的組み換えを介した遺伝子組込み技術;およびバクテリオファージを介した形質導入。これらの方法は、当該分野において周知であり、例えば、J.H.Miller,Experiments in Molecular Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory
Press,Cold Spring Harbor,New York(1972);J.H.Miller,A Short Course in Bacterial Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York(1992);M.Singer およびP.Berg,Genes &Genomes,University Science Books,Mill Valley,California(1991);J.Sambrook,E.F.Fritsch およびT.Maniatis,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,第二版、Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York(1989);P.B.Kaufmanら、Handbook of Molecular and Cellular Methods in Biology and Medicine,CRC Press,Boca Raton,Florida(1995);Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology,B.R. Glick およびJ.E.Thompson編、CRC Press,Boca Raton,Florida(1993);およびP.F.Smith−Keary,Molecular Genetics of Escherichia coli,The Guilford Press,New York,NY(1989)において説明されている。
【0044】
(A.ランダム変異誘発による分枝鎖アミノ酸栄養要求性株の構築)
本発明のある具体的で好適な実施形態により、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン生合成に共通の酵素的ステップの改変が、デキストロースからのL−リシンのパーセント収率を向上させ得ることを提供する。
【0045】
最も好適な実施形態において、本発明は、親株に対するランダム変異誘発を行い、その後特定の表現型を選択することより、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である微生物の産生を提供する。変異誘発を行うために選択した親株は、目的のアミノ酸を産生することが知られている任意の株でもあり得る。好適な生物には、Corynebacterium株およびBrevibacterium株が含まれ、最も好適な生物には、L−リシンを産生するCorynebacterium株およびBrevibacterium株が含まれる。
【0046】
親株は、当該分野で既知の任意のランダム変異誘発を用いて、変異誘発され得る。これには、放射線照射および化学的方法が含まれるがこれに限らない。特に好適なものは、ランダム化学的変異誘発であり、最も好適なものは、J.H.Miller(J.H.Miller,Experiments in Molecular Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory(1972))によって記述されているアルキル化剤法である。
【0047】
例として、次のように化学的変異誘発を行った。リシン産生Corynebacterium株の培養は、富化培地中で、30℃にて、吸光度が6.0に達するまで行った。細胞を、最小培地で洗浄し、100mg/mlのNTGを含む最小培地で再懸濁した。細胞を、突然変異原に、30℃で30分間曝露した。細胞を最小培地で洗浄し、富化培地に播種した。富化培地および最小培地上に、富化培地で生じたコロニーのレプリカをとった。富化培地上で生育したが最小培地上では生育しなかったコロニーを、栄養要求性株として分類した。栄養要求性変異体に対して、最小培地および、10mMLイソロイシンおよび10mML−バリンを含む最小培地上にレプリカをとった。イソロイシンおよびバリンによりレスキューされたコロニーを、バリン栄養要求性株として分類した。株B4Bは、化学的変異誘発により作製されたバリン栄養要求性株である。
【0048】
(B.rDNA方法論を介した変異誘発による分枝鎖アミノ酸栄養要求性株の構築)
本発明のその別の具体的な好適な実施形態は、分枝鎖アミノ酸の生合成に重要なタンパク質をコードするクローン化DNA配列のin vitroおよびin
vivo 変異誘発をもたらすために、組み換えDNA技術を利用する。次いで、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性で、親株よりも高収率でデキストロースから非分枝鎖アミノ酸を産生する変異株を作製することを目的として、親株を改変するために変異されたDNAを使用し得る。
【0049】
ある具体的な好適な実施形態において、目的のクローン化DNAが、当該分野で既知の任意の方法によっても組み換えDNA技術を介して変異され得る。当業者によって既知であろうように、クローン化DNAにおける変異は、単一のヌクレオチド変化(点変異)、多重ヌクレオチド変化、ヌクレオチド欠損または挿入を含み得る。組み換えDNA技術の一般的方法は、当業者により既知であり、例えば、核酸精製、制限酵素消化、ライゲーション、遺伝子クローニング、遺伝子配列決定、遺伝子配列のポリメラーゼ連鎖増幅反応(PCR)などの基礎技術を記載する多くの一般の実験マニュアルにおいて見出され得る。(例えば、Sambrookら、Molecular Cloning: A Laboratory Manual,第2版、Cold Spring Harbor Laboratory ,Cold Spring Harbor,New York(1989);Current Protocols in Molecular Biology.Ausbelら編、John Wiley&Sons,New York,(1994);PCR Protocols(PCRプロトコール)、 Innisら、編、Academic Press,Inc.,New York,407−415頁(1990)を参照すること。)
さらに、クローン化DNAのin vitro変異誘発を具体的に示す参考文献は、当業者により既知である。例えば、部位指向性変異誘発、オリゴヌクレオチド指向性変異誘発、リンカースキャニング変異誘発、in vitroにおけるランダム化学的変異誘発、カセット変異誘発、PCR変異誘発およびその他の方法が、Directed Mutagenesis:A Practical
Approach,M.J.McPherson編、Oxford University Press,New York,(1991)において詳しく説明されている。
【0050】
別の具体的な好適な実施形態において、目的のクローン化DNAは、ホスト細胞において、in vivoで変異を起こし得る。このタイプの「in vivo変異誘発」には、一つ以上のDNA修復経路に変異を持つE.coli株のDNAの増殖によって、目的の任意のクローン化DNAにおけるランダム変異を作り出すプロセスが含まれる。これらの「変異誘発遺伝子(mutator)」株は、野生型の親株よりも高いランダム変異頻度を持つ。これらの株の一つにおけるDNAの生育により、DNA中でランダム変異が作り出される。これを行うために設計された系は、当業者にとって既知であり、そして商業的に利用し得る。例えば、Stratagene,Inc.により、そのDNA修復遺伝子(MutH,MutLおよびMutS)が欠失され、その結果短時間で多くの異なる変異が起こるE.coliのXL1 Red Strainを利用した系が提供される。10,000までの変異が30時間に起こり得、その結果当該分野で既知の方法により変異DNAから完全な変異DNAライブラリーを用意し得る。
【0051】
変異のために選択されたクローン化DNAは、分枝鎖アミノ酸合成に重要であるとして当該分野で既知である任意の配列でもあり得る。その配列には、合成に重要な一つ以上の酵素、または輸送および排出に重要な一つ以上のタンパク質産物をコードする配列が含まれるがそれに限らない。最も好適なものは、CorynebacteriumまたはBrevibacteriumのilvBNオペロンの、クローン化配列である。分枝鎖アミノ酸合成に関係するCorynebacterium遺伝子がクローニングされている。例えば、イソロイシン経路に対して遺伝子配列が利用できる(ilvA,ilvB,ilvC,ilvDおよびilvE)。(C.Cordesら、Gene112:113−116(1992);B.Mockelら、J.Bacteriology 174:8065−8072(1992);およびC.Keilhauerら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1993))。
【0052】
L−スレオニンから、5つの反応でL−イソロイシンが産生される。これらの反応を触媒する酵素は、(1)スレオニンジヒドラターゼ(ilvA)、(2)アセトヒドロキシ酸シンターゼ(ilvB)、(3)イソメロレダクターゼ(ilvC)、(4)ジヒドロキシ酸デヒドラターゼ(ilvD)、および(5)トランスアミナーゼB(ilvE)、である。スレオニンデヒドラターゼは、イソロイシン合成に特有な、この経路における唯一の酵素である。他の4つの酵素はまた、他の分枝鎖アミノ酸、バリンおよびロイシン産生においても利用される。Corynebacterium株におけるイソロイシン生合成に関係する酵素経路は図2で表される。
【0053】
アセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)およびイソメロレダクターゼ(IR)は、イソロイシン、バリン、ロイシンおよびパントテナートに対して、代謝物の流れにおいて続いて起こる反応を触媒する。他の細菌でのように、Corynebacterium株のAHASは、二つの遺伝子ilvBおよびilvNによりコードされている。遺伝子分断により、これらの遺伝子が、C.glutamicumにおいて単一のAHAS活性をコードしていることが実証された(Keilhauer,Cら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1973))。3.9,2.3および1.1kbの3個の転写産物が、ノーザンブロット解析により、in vivoで同定された。それらは、それぞれilvBNC、ilvNC、ilvCメッセンジャーと対応する。ilvC転写産物(IRをコードする)は、C.glutamicumのilvオペロンからの最も量の多い転写産物である。さらなる解析により、このオペロンで3個のプロモーターが活性であること、ilvBNCおよびilvNCメッセンジャーの定常レベルが著しく単一AHASの全体としての活性に寄与していることが示されている。
【0054】
最も好適な本発明の実施形態において、クローン化ilvBNオペロンDNA配列内で欠損を作り出すことを目的として、制限酵素消化により、変異を作製し得る。次に、変異誘発されたilvBN配列を、相同的組み換えにより、野生型配列と置き換え、分枝鎖アミノ酸に対する栄養要求性に関してスクリーニングし得る。
【0055】
その他の本発明の実施形態は、一つ以上の分枝鎖アミノ酸イソロイシン、ロイシンおよびバリンに対する栄養要求性を示し、そしてデキストロースから、親株のパーセント収率よりも高い、目的のアミノ酸のパーセント収率を産み出す微生物Corynebacteriumに引き出される。特に好適な実施形態において、産生されるアミノ酸は、L−リシンである。
【0056】
本発明の他の非常に好適な実施形態は、実質的にNRRL受託番号B−30149またはNRRL受託番号B−30150の性質全てを持つ微生物に引き出される。
【0057】
(3.アミノ酸の産生を増加させる方法)
本発明のさらなる目的において、アミノ酸の産生を増加させる方法を提供する。本発明は、アミノ酸Xの産生を増加させる方法を広く提供する。その方法が以下:
(a)デキストロースから上記アミノ酸をパーセント収率Yで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学的変異誘発;およひ
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発
からなる群から選択される方法により、上記親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、1つ以上の分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンについて栄養要求性である、工程;ならびに
(d)工程(c)から、パーセント収率Zでデキストロースから上記アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択することであって、ここで上記パーセント収率Zは、上記パーセント収率Yよりも大きい、工程、
を包含する。
【0058】
ある特に好適な実施形態において、デキストロースから決定されたパーセント収率で目的のアミノ酸を産生する、該当分野で既知である任意の株が、親株として選択され得る。デキストロースからのパーセント収率は、次の式を用いて簡便に計算され得る[(gアミノ酸/L/(g消費されたデキストロース/L)]×100。
【0059】
この生物を選択し、アミノ酸のデキストロースからの(パーセント収率を決定した後、好適には、生物のゲノム全体に指向されたランダム変異誘発技術、または目的のクローン化DNAに対して指向されるrDNA技術、のいずれかにより、変異誘発に供される。用いた変異誘発の特定の方法に関わらず、変異された生物をスクリーニングし、分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性に基づいて選択される。次いで、どの株がデキストロースから所望されるアミノ酸を親株よりも高いパーセント収率で産生するかを決定するために、選択された栄養要求性株をスクリーニングし得る。
【0060】
本発明の種々の実施形態は、生物Corynebacterium、Brevibacterium,およびE.coli.から目的のアミノ酸産生を増加させる方法を含む。さらに、特定の実施形態に依存して、本発明は、グリシン;アラニン;メチオニン;フェニルアラニン;トリプトファン;プロリン;セリン;スレオニン;システイン;チロシン;アスパラギン;グルタミン;アスパラギン酸;グルタミン酸;リシン;アルギニン;およびヒスチジンなどの非分枝鎖アミノ酸の産生を増加する方法を提供する。
【0061】
好適な実施形態において、本発明は、分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性株を作り、炭素の流れをロイシン、イソロイシンおよびバリンの合成から転用することによって非分枝鎖アミノ酸産生を増加する方法を提供する。特に好適な実施形態は、変異誘発された親株から、バリンおよびイソロイシン合成に対して栄養要求性である株を選択することによってアミノ酸の産生を増加する方法に引き出される。
【0062】
本発明は、アミノ酸の生産を増加するための方法について、種々の好適な実施形態をさらに提供し、ここで親株は、ランダムな変異誘発技術(例えば、放射線変異誘発または化学物質変異誘発)、またはrDNA技術によるilvBNオペロンの変異誘発のいずれかにより、変異誘発され得る。1つの特定の好適な実施形態において、親株は、ランダムな化学物質変異誘発により変異誘発され得る。別の特定の好適な実施形態では、親株はクローン化されたilvBNオペロンのヌクレオチド配列に指向されたrDNA技術によって変異誘発される。
【0063】
(4.アミノ酸の産生のためののプロセス)
本発明のさらなる目的において、アミノ酸の産生のためのプロセスを提供する。本発明は、一般的にアミノ酸Xの産生のためのプロセスを提供し、これは以下を含む:
アミノ酸Xを産生するためのプロセスであって、上記プロセスは、以下:
(a)微生物Cを培地で培養する工程であって、ここで上記微生物Cは、以下の方法:
(i)デキストロースからパーセント収率Yの上記アミノ酸を産生する親微生物Aを選択すること;
(ii)以下:
(1)ランダム化学的変異誘発;および
(2)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発、
からなる群から選択される方法により、上記親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させること;
(iii)工程(ii)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、上記微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性である、こと;ならびに
(iv)工程(iii)から少なくとも1つの微生物Cを選択することであって、上記微生物Cは、上記アミノ酸Xをデキストロースからパーセント収率Zで産生し、ここで上記パーセント収率Zは、パーセント収率Yより大きい、こと;
により得られる、工程;ならびに
(b)上記微生物Cから産生される上記アミノ酸Xを回収する工程、
を包含する。
【0064】
本発明の好適な実施形態は、培養される微生物を、Corynebacteirum、BrevibacteriumおよびE.coliを含む群から選択するプロセスに引き出される。特に好適であるのは、Corynebacteirum属の生物に引き出されるプロセスである。本発明プロセスのために選択される微生物は、目的のアミノ酸、特に非分枝鎖アミノ酸を産生するものである。さらに特に好適な微生物は、グリシン;アラニン;メチオニン;フェニルアラニン;トリプトファン;プロリン;セリン;スレオニン;システイン;チロシン;アスパラギン;グルタミン;アスパラギン酸;グルタミン酸;リシン;アルギニン;およびヒスチジンを産生する微生物である。選り抜きのアミノ酸の産生レベルは、デキストロースからのパーセント収率を計算する以下の式によって簡便に決定し得る[(g アミノ酸/L/(g 消費されたデキストロース/L)]×100。
【0065】
本発明のプロセスにおいて使用される微生物は、選択される親株の変異誘発によって好適に得られる。本発明の好適な実施形態は、ゲノム全体に指向されるランダム変異誘発、または目的のクローン化されたDNAのrDNA変異誘発に、選択された親株が供されるプロセスを含む。
本発明の特に好適な実施形態において、親株は放射線処理、または化学物質処理による変異誘発を含むがそれに限定されない、ランダム変異誘発に供される。より特に好適な実施形態は、親株のランダム化学変異誘発に引き出される。
本発明の別の特に好適な実施形態は、親株のrDNA変異誘発を提供する。より特に好適な実施形態は、in vitroまたはin vivoにおけるilvBNオペロンのrDNA変異誘発に引き出される。変異誘発されたilvBNオペロンまたはそのフラグメントの変異された形態は、当業者に周知である相同的組み換え技術を介して野生型のilvBNオペロン配列と置き換えられ得る(実施例6を参照のこと)。
しかし、選択された親株またはクローン化されたDNA配列は、変異誘発され、その結果として生ずる子孫は分枝鎖アミノ酸合成(すなわち、ロイシン、イソロイシンまたはバリン)の栄養要求性に関してスクリーニングされ、そして選択される。そのような変異体の選択は当業者に周知である。特に好適な実施形態は、バリンおよびイソロイシンの生合成に対する栄養要求性株に引き出される。
最終的には、本発明のプロセスの微生物の選択は、選り抜きのアミノ酸の産生に依存する。デキストロースからのパーセント収率を決めるために、式[(g アミノ酸/L / g 消費されたデキストロース/L)]×100の式を利用し、所望する微生物が、選り抜きのアミノ酸のデキストロースからのパーセント収率が親株よりも高い点に基づいて選択される。
【0066】
本発明の他の実施形態は、本発明の微生物を培養する特定の方法により変更するプロセスに引き出される。従って、アミノ酸産生に引き出される本発明プロセスにおいて行われ得る、種々の発酵技術が周知である。
適切な炭素源の例示的な例には、グルコース、フルクトース、スクロース、デンプン加水分解産物、セルロース加水分解産物および糖蜜のような炭水化物;酢酸、プロピオン酸、ギ酸、リンゴ酸、クエン酸およびフマル酸のような有機酸;およびグリセロールのようなアルコールが含まれるが、その限りではない。
適切な窒素源の例示的な例としては、アンモニアガスおよび液体アンモニアを含むアンモニア;塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、硫酸アンモニウムおよび酢酸アンモニウムのような無機酸または有機酸のアンモニウム塩;ならびに、肉抽出物、ペプトン、コーンスティープリカー、カゼイン加水分解産物、ダイズ固形加水分解産物および酵母抽出物を含む他の窒素含有物が挙げられるがその限りではない。
【0067】
一般的に、アミノ酸は商業的に本発明からバッチ型または流加型などの発酵プロセスにおいて産生され得る。バッチ型発酵において、発酵の開始時に全ての栄養素を添加する。流加型発酵または広い意味での流加型発酵においては、一つまたは多数の栄養素を、発酵開始すぐ、または培養がある一定の状態に達した後、または、添加される栄養素が培養液から使い果たされたとき、培養液に連続的に補給される。広義の流加型発酵のバッチの改変には、繰り返し流加型、またはフィルアンドドロー(fill−and−draw)発酵があり、発酵槽の内容物の一部をある時点(例えば、発酵物が満たされたとき、栄養物の補給が続けられている間)で除去する。この方法において、発酵をより長時間に延長し得る。
【0068】
発酵の別の型、連続的発酵、またはケモスタット培養は、完全培地の連続補給を使用するが、その一方で、発酵物におけるブロスの体積をほぼ同じに保つような方法で培養液を連続的または半連続的に回収する。連続的発酵は、原則的には、無限に維持され得る。
【0069】
バッチ発酵において、培地中の必須栄養素のうちの一つが消費されつくすまで、または発酵状態が不適当になるまで(例えば、pHが、微生物増殖を抑制する値にまで低下する)生物は増殖する。流加型発酵において、通常、適切な増殖条件を維持するために、例えばpHコントロールを用いて測定を行い、そして一つ以上の必須栄養素が、消費されつくされることを防ぐために、これらの栄養素を培養液中に供給する。微生物は、栄養素補給の割合により規定された増殖速度で増殖し続けるだろう。一般的に、単一栄養素は、殆どの場合炭素源であるが、増殖を制限するものとなるであろう。同じ原理は、連続発酵にも適用され、通常、培地中の単一栄養素は限られており、全ての他の栄養素は過剰である。限られた栄養素は、培養液体中に非常に低い濃度、しばしば、測定不能である程低濃度で存在するであろう。異なる型の栄養素制限が使用され得る。炭素源制限はもっとも頻繁に使用される。他の例としては、窒素源による制限、酸素による制限、ビタミンまたはアミノ酸のような特定の栄養素による制限(微生物がそのような化合物について栄養素要求性の場合)、硫黄による制限および亜リン酸による制限がある。
【0070】
アミノ酸は当業者に周知の方法によって回収され得る。例示的な手順は、Van Walsem,H.J.& Thompson,M.C.,J.Biotechnol.59:127−132(1997)および米国特許第3,565,951号で提供される。両文献とも本明細書中で参考として援用される。
【0071】
本明細書中に引用される全ての特許および刊行物は明確に参考として援用される。
【実施例】
【0072】
(実施例1)
(化学的変異誘発およびバリン栄養要求性株の選択)
リシン産生Corynebacterium株BF100を、Miller,J.H.1972 (Miller,J.H.1972 Experiments in Molecular Genetcs.Cold Spring Harbor Laboratory)で記載されているように、アルキル化剤により、変異誘発を行った。最小培地(MM)上にコロニーのレプリカを取った。MM上で増殖しなかったが完全培地(CM)で増殖したコロニーを栄養要求性株として同定した。L−バリンおよびL−イソロイシンを補給した場合MM上で成長可能なそれらの栄養要求性株を、リシン収率解析を行うために選択した。
【0073】
MMは、1リットル中の、20gのD−グルコース、10gの硫酸アンモニウム、2.5gの尿素、1gのKH2PO4、0.4gのMgSO4,7H2O・1gのNaCl、0.01gのMnSO4・H2O、0.01gのFeSO4・7H2O、10mgのパントテン酸、50mgのビオチン、200mgのチアミン、および50mgのナイアシンアミドから構成され、pH7.2であった。L−アミノ酸をMMの補助剤として用いた場合、50mg/Lのそれぞれのアミノ酸を使用した。MMIVは、イソロイシンおよびバリンを添加したMMであった。
【0074】
親株の成長パターンおよび、3種類のアミノ酸を補給した最小寒天培地上で化学的変異誘発によって産み出された高収率誘導体は、表1で示す。補助剤は、50mg/L L−アミノ酸であった。成長は、30Cにて3日後の相対的コロニーサイズとして示す。
【0075】
(実施例2)
(rDNA技術を用いた分枝鎖栄養要求性株の産生)
(1.欠損ilvB遺伝子の調製)
Corynebacterium lactofermentum(ATCC21799)のilvBNオペロンをPCRで増幅し、pAL203を作製するためにpCR−Scriptにクローニングした。ilvB遺伝子には、2つのEcoNI制限酵素部位により挟まれた390bpの領域が含まれる。EcoNIは、プラスミドpCR−Scriptを切断しない。EcoNIを用いてプラスミドpAL203を切断し、pAL203deltaを回収するようにセルフライゲーションさせることにより、ilvB欠損対立遺伝子を設計した。
【0076】
(2.改変ilvBN対立遺伝子のCorynebacterium染色体への相同的組み換え)
二重交差による対立遺伝子交換のためのベクターを、Maloyら、1996(MaloyS.R.,Stewart V.J.,およびTaylor R.K.1996 Genetic Analysis of Pathogenic Bacteria:A
Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Press)により記述されているように構築した。ATCC37766は、E.coli.中で複製するが、Corynebacterium中では複製しないプラスミド、pK184の元となるものであった。sacB遺伝子をpJC3に挿入するために、SspI部位にサブクローニングした。pJC3は、Corynebacterium中で複製し得ない。どのカナマイシン耐性コロニーも、相同的組み換えによりクローニングされた遺伝子内の部位に相同的組み換えを行うことにより染色体へ導入されたベクターを有する。導入されたベクターにおけるsacB遺伝子の致死発現により、スクロース存在下での成長が阻害される。スクロース存在下での成長には、クローニングされた挿入断片の相同的領域に沿って生じる第二の交差が必要とされる。第一および第二の交差が、改変(欠損、部位突然変異)に隣接する場合、ilvBNの改変対立遺伝子は、宿主株の染色体上に存在する対立遺伝子と交換される。
【0077】
pAL203Δ由来のilvBNオペロンの改変対立遺伝子を、導入ベクターpJC3にサブクローニングし、CorynebacteriumのBF100株に対して電気穿孔法を行い、スクロースを欠いているがカナマイシンを含むリッチ培地(DMK)プレートに播種した。コロニーを採取し、スクロースおよびカナマイシンを含まないリッチブロス中で48時間成長させた。培養液を、カナマイシンを欠くがスクロースを含むリッチプレート上に、ストリークした。シングルコロニーをスクロースプレートから採取し、DMK,SM1,MMおよびMMIVプレート上に、レプリカを取った。スクロース上で成長し得るもので、MM上では成長し得ないがMMIV上で成長可能であるカナマイシン耐性を持たないコロニーを選択し、フラスコでの実験へと進めた。LC10は、BF100由来栄養要求性株である。
【0078】
親株の成長パターンおよび、3種類のアミノ酸を補給した一連の最小寒天プレート上での組み換えDNA法を用いて産生した高収率誘導体を、表2に示す。補助剤は、50mg/LのL−アミノ酸である。成長は、30Cにて3日後の相対的コロニーサイズとして示す。
【0079】
(実施例3)
(ランダム化学的変異誘発により作製されたバリン栄養要求性株からの、L−リシン収率の震盪フラスコ培養による分析)
SM1プレートからシングルコロニーを拾い、SM1ブロスに移すことによりB4B種菌を調製した。SM1は、水1L中に、50gスクロース、3gK2HPO4、3g尿素、0.5gMgSO4,7H20、20gポリペプトン、5gビーフ抽出物、0.9mgD−ビオチン、3mgチアミン、125mgナイアシンアミド、0.5gL−メチオニン、0.25gL−スレオニン、0.5gララニンを混合して調製し、pH7.3に調整した。プレートには20g/Lの寒天が含まれていた。SM1ブロス中で成長培養を16時間行った後、等容量の30%グリセロールを添加し、培養液を−80Cにて凍結した。
【0080】
20mlのSFMが入ったバッフル付き250mlシード震盪フラスコに、0.1mlの解凍種菌を播種した。播種培地(SFM)は、水1L中の、60g D−グルコース、3g K2HPO4、3g 尿素、0.5g MgSO4・7H2O、20g ポリペプト
ン、5g ビーフ抽出物、3mg D−ビオチン、125mg ナイアシンアミド、0.5g L―メチオニン、0.25g L−スレオニン、および0.5g L−アラニンで構成され、pH7.3に調整した。培養物は、30Cにて、16時間成長させ、240rpmで2インチの変位で通気した。種培養のうち2mlを、21mlの発酵培地(FM4)の播種に使用した。FM4培地は、16mlの主要培地と5mlのデキストロースストックを混合して調製した。デキストロースストックは、180g D−グルコースに500mlの水を添加して調製した。主要培地には、1L中に、0.083gのMnSO4、
0.4mg D−ビオチン、コーンスティープリカー(cornsteep liquor)、ラフィネートおよび50gのCaCO3が含まれていた。FM4の最終容量が4%の乾燥固体になるようにコーンスティープを添加した。FM4の最終容量が5%硫酸アンモニウムになるようにラフィネートを添加した。30Cにて、48時間、250mlのバッフル付き震盪フラスコで、培養物を成長させ、240rpmで2インチの変位で通気を行った。
【0081】
表3にて、震盪フラスコ中での、バリンおよびイソロイシン要求性に対する選択により向上させたCorynebacterium株によるL−リシン産生でのデータを示す。
【0082】
(実施例4)
(rDNA法により作製されたバリン栄養要求性株からの、L−リシン収率の震盪フラスコ測定)
表4にて、震盪フラスコ中での、ilvBNオペロンの染色体コピーから390塩基対のDNA配列のを欠失させることにより改善したCorynebacterium株によるL−リシン産生におけるデータを示す(実施例2参照)。培養物を成長させ、実施例3に記載のように分析した。
【0083】
(実施例5)
(バリン栄養要求性によるリシン収率の微小発酵測定)
2Lのバッフル付き震盪フラスコ中で、500mL SM1で、18時間、種菌を成長させた。3.1LのFM4培地を、4L 微小発酵槽で使用した。温度およびpHを、32Cおよび7.2にそれぞれ維持した。20時間の時点で、フラスコの撹拌を700rpmから950rpmに増加させた。4.5LPMで空気を供給した。デキストロースを、3g/Lになるように維持した。発酵時間は、48時間であった。
【0084】
表5にて、L−イソロイシンおよびL−バリンを合成し得ないCorynebacterium株を用いた4リットル発酵装置中での、L−リシン産生におけるデータを示す。
【0085】
(実施例6)
(クローン化ILVBNのIn Vivo変異誘発により産生されたブラディトローフによるL−リシン産生)
(1.機能的AHAS酵素を産生する、欠損型ilvBNオペロンの調製)
pVAL1を得るために、pAL203のilVBNオペロンを、シャトルベクターpM2にサブクローニングした。pM2は、E.coliおよびCorynebacteriumの両方で複製し得る。pValIを、Stratagene Co.の変異誘発株XL1REDに形質転換した。XL1REDキット説明書に従って、変異誘発プラスミドを調製し、バリン栄養要求性であるCorynebacteriumに対して電気穿孔法を行った。バリン栄養要求性株は、イソロイシンおよびバリン補給、または機能的ilnBNオペロンを用いた遺伝学的補足なしではMMプレート上で成長不可能である。
【0086】
SM1プレートからカナマイシン耐性形質転換株を選択し、MMプレート上にレプリカをとった。MMプレート上で成長したそれらのコロニーは、ilnBN欠損の機能的補完性を示した。親プラスミド(pVAL1)を持つバリン栄養要求性コロニーよりも小さいコロニーを、バリン栄養要求性活性アッセイを行うために選択した。pRV1B5は、E.coliおよびCorynebacteriumで複製し得るpVAL1に由来するプラスミドである。バリン栄養要求性株において、そのプラスミドが産生したAHAS活性は、pVAL1により産生されたAHAS特異的活性の1%未満であった。この構築物のilvBNオペロンは、漏出AHAS活性を有する。
【0087】
(2.Corynebacterium染色体DNAへの相同的組み換え)
ilvBNオペロンのRV1B5漏出対立遺伝子を、導入ベクターpJC3にサブクローニングし、実施例2で行われたような相同的組み換えにより、バリン栄養要求性株において漏出対立遺伝子を欠損対立遺伝子に交換するために使用した。BF100−1030は、RV1B5対立遺伝子を用いて構築されたバリンブラディトローフ株である。表6にて、BF100−1030が震盪フラスコ中で、親株よりも少量しかバリンを産生しないことを表すデータを示す。表7にて、BF100−1030ブラディトローフ株が表5の栄養要求性株に対して改善した成長を有することを示す。表7にて、また、ブラディトローフにより、微小発酵において親株よりも少量のバリンしか産生しないことを示す。
【0088】
(表)
次の表で示すデータは、実施例セクションで考察している。用語「成長」は、660nmで測定された光学密度をいい;用語「力価」は、1リットルあたりのアミノ酸のグラム数をいい;用語「収率」は、以下の式:[(g リシン/L/(g デキストロース消費/L]×100によって定義されること;B4B=化学的変異誘発により構築されたバリン栄養要求性株;LC10=染色体ilvB遺伝子を、pAL203ΔのilnB欠損対立遺伝子と置換することにより構築されたバリン栄養要求性株;BF100−1030=染色体ilnB遺伝子を、RV1B5漏出対立遺伝子と置換することにより構築されたバリンブラディトローフであることに注意すること。
【0089】
【表1】
【0090】
【表2】
【0091】
【表3】
【0092】
【表4】
【0093】
【表5】
【0094】
【表6】
【0095】
【表7】
【0096】
【表8】
【0097】
【表9】
【技術分野】
【0001】
(発明の背景)
(発明分野)
本発明は、微生物遺伝学および組み換えDNA技術の分野に関する。より具体的には、本発明は、アミノ酸の発酵産生に関する。本発明により、アミノ酸産生に有用な微生物、アミノ酸産生を向上させる方法、およびアミノ酸産生プロセスが提供される。
【0002】
(関連分野)
発酵によるアミノ酸産生は、糖密、酢酸およびエタノールなどの廉価な炭素源からの安価な産生を可能とする。Corynebacteriaがアミノ酸の工業生産に有用である(S.Kinoshitaら、Proceedings of the International Symposium on Enzyme Chemistry 2:464−468(1957))という認識に従って、発酵プロセスによるアミノ酸の商業生産が、変異株の分離を用いてより実施可能になった。アミノ酸産生の微生物プロセスで用いられる微生物を4つのクラスに分類し得る:野生型株、栄養要求性変異株、調節変異株および栄養要求性調節変異株(K.Nakayamaら、NUTRITIONAL IMPROVEMENT OF FOOD AND FEED PROTEINS、M.Friedman編、(1978)、pp.649−661)。発酵により産生されたアミノ酸の立体特異性は、合成プロセスと比較して、微生物プロセスによるアミノ酸産生を優位なプロセスとし;微生物プロセスにより産生されるアミノ酸は、通常L−型である。
【0003】
L−リシンは、工業的発酵により産生されるアミノ酸の一例である。この必須アミノ酸の商業的産生は、グラム陽性微生物であるCorynebacterium glutamicum、Brevibacterium flavumおよびBrevibacterium lactofermentum(Kleemann,Aら、Amino Acids,ULLMAN‘S ENCYCLOPEDIA OF INDUSTRIAL CHEMISTRY,vol.A2,pp.57−97、Weinham:VCH−Verlagsgesellschaft(1985))を利用して主に行なわれ;累積的に、これら3つの微生物は現在、一年間におよそ250,000トンのL−リシンを産生すると報告されている。
【0004】
発酵プロセスによるL−リシン産生の経済的重要性があるなら、生産コストを下げると同時に、産生される総量を増加させることが有用であろう。それを目標として、L−リシン合成の生化学的経路が集中的にCorynebacterium(最近、Sahmら、Ann.N.Y.Acad.Sci.782:25−39(1996)によってレビューされた)において研究されている。リシン経路への入り口は、L−アスパラギン酸で始まる(図1参照)。L−アスパラギン酸自身は、オキサロ酢酸のアミノ基転移により産生される。C.glutamicumの特殊な性質は、リシン中間体ピペリジン2,6−ジカルボキシレートを二つの異なるルートで、すなわち、スクシニル化中間体に関する反応によってか、またはジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼの単一反応によって、ジアミノピメリン酸に変換するその能力である。全体的に見ると、経路への炭素流量は、2点で調節される:第一に、L−スレオニンおよびL−リシン両方のレベルによるアスパラギン酸キナーゼのフィードバック阻害によるもの、第二は、ジヒドロジピコリン酸合成レベルの調節によるものである。従って、これら2つの酵素の活性を調節解除および増加させることにより、CorynebacteriaにおいてL−リシン産生を増加させ得る。
【0005】
L−リシン合成を導く生化学的経路に加えて、最近の証拠は、細胞から媒質へのリシン輸送に関する考察が、C.glutamicumのリシン過剰産生株の開発において考慮されるべき別の条件であるということを示す。Kramerおよびその同僚による研究は、易漏出性の膜の性質の結果として起こる細胞からの受動的輸送だけで、リシン流出が説明されるものではないことを示す;これらのデータは、以下のような性質を持つ特定のキャリアを示唆する:(1)トランスポーターは、リシンに対するかなり高いKm値(20mM)を有する;(2)トランスポーターは、OH-共輸送系(取り込み系は、H+対向輸送系である)および(3)トランスポーターは正に荷電しており、膜電位が分泌を刺激する(S.BroerおよびR.Kramer,Eur.J.Biochem.202:137−143(1991))。
【0006】
栄養要求性または抵抗性の性質について分離された様々な株を利用したいくつかの発酵プロセスが、L−リシン産生に関して当該分野において公知である:米国特許第2,979,439号は、ホモセリン(またはメチオニンおよびスレオニン)要求性の変異体を開示し;米国特許第3,700,557号は、スレオニン、メチオニン、アルギニン、ヒスチジン、ロイシン、イソロイシン、フェニルアラニン、シスチン、またはシステインについて栄養要求性を有する変異株を開示し;米国特許第3,707,441号は、リシンアナログに対して抵抗性を持つ変異体を開示し;米国特許第3,687,810号は、L−リシン産生能力およびバシトラシン、ペニシリンGまたはポリミキシンに対する抵抗性の両方を有する変異株を開示し;米国特許第3,708,395号は、ホモセリン、スレオニン、スレオニンおよびメチオニン、ロイシン、イソロイシンまたはそれらの組み合わせについて栄養要求性を有し、かつリシン、スレオニン、イソロイシンまたはそれらのアナログに対する抵抗性を有する変異体を開示し;米国特許第3,825,472号は、リシンアナログに対する抵抗性を有する変異株を開示し;米国特許第4,169,763号は、L−リシンを産生し、かつアスパラギン酸アナログおよびサルファ剤の少なくとも一つに対して抵抗性であるCorynebacteriumの変異株を開示し;米国特許第5,846,790号は、ビオチン作用抑制剤非存在化でL−グルタミン酸およびL−リシンを産生し得る変異株が開示し;そして米国特許第5,650,304号は、4−N−(D−アラニル)−2,4−ジアミノ−2,4−ジデオキシ−L−アラビノース、2,4−ジデオキシ−L−アラビノースまたはその誘導体に対して抵抗性を持つ、L−リシンの産生に関して、Corynebacterium属またはBrevibacterium属に分類される株を開示する。
【0007】
CorynebacteriaのL−リシン発酵産生の分野における、より最近の発展は、リシン産生を増大させるための分子生物学技術の使用と関連がある。以下の例は、本技術の典型的な例として提供されるものである:米国特許出願番第4,560,654号および同第5,236,831号は、S−(2−アミノエチル)−システインに対して感受性のあるホストCorynebacteriumまたはBrevibacterium微生物に対して、S−(2−アミノエチル)−システインに対する抵抗性およびリシン産生能の両方を付与するDNAフラグメントをベクターDNAに挿入した組み換えDNA分子を用いて形質転換することにより得られるL−リシン産生変異株を開示し;米国特許出願第5,766,925号は、coryneform細菌(L−リシンおよびL−スレオニンにより脱感作されるフィードバック阻害を有する)由来のアスパルトキナーゼをコードする遺伝子を、漏出型ホモセリンデヒドロゲナーゼを有するCoryneform細菌、またはホモセリンデヒドロゲナーゼ遺伝子を欠失したCoryneform細菌の染色体DNAに組み込むことにより産生される変異株を開示する。
【0008】
L−リシンに加えて、他のアミノ酸、例えば、分枝鎖アミノ酸であるL−ロイシン、L−イソロイシンおよびL−バリン産生にCorynebacteriumおよび関連生物が有用である。分枝鎖アミノ酸生合成に至る生化学的経路もまた良く研究されている。アスパラギン酸経路への炭素流量は、L−イソロイシン産生に利用されうる、L−リシンまたはL−スレオニン産生に送り込まれうる(図1B)。5つの反応により、L−スレオニンからL−イソロイシンが産生される。すなわち、これらの反応を触媒する酵素には、次のものが含まれる。(1)スレオニンデヒドラターゼ、(2)アセトヒドロキシ酸シンターゼ、(3)イソメロレダクターゼ、(4)ジヒドロキシ酸デヒドラターゼ、および(5)トランスアミナーゼB、である。スレオニンデヒドラターゼは、イソロイシン合成特有である、この経路における唯一の酵素である。他の4つの酵素は、また他の分枝鎖アミノ酸、バリンおよびロイシン産生においても利用される。スレオニンからイソロイシンへの炭素流量は、スレオニンデヒドラターゼおよびアセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)により制御される。Corynebacteriumにおけるイソロイシン経路の酵素をコードする遺伝子(ilvA,ilvB,ilvC,ilvDおよびilvE)クローニングを利用して(C.Cordesら、Gene 112:113−116(1992);B.Moeckelら、J.Bacteriology 174:8065−8072(1992)および、C.Keihauerら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1993))、新規株を作製するために組み換えDNA技術を適用し得る。
【0009】
分枝鎖アミノ酸生合成経路における酵素活性の向上によるアミノ酸、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリンの産生における発展について説明されている。さらに、ilvBNオペロンによりコードされるアセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)活性の改善による分枝鎖アミノ酸産生における改善について説明されている。(概要として、H.Sahmら、Ann.N.Y.Acad.Sci.782:25−39(1996)を参照)。
【0010】
分枝鎖アミノ酸産生の例示的なプロセスには、次のものが含まれる。米国特許第5,188,948号において、ポリケチドに対して抵抗性である微生物を利用したL−バリン産生に対する発酵プロセスが開示されている。米国特許第5,521,074号において、CorynebacteriumまたはBrevibacterium属の微生物を利用したL−バリン産生のためのプロセスが開示されている。これらの微生物は、a)バリン産生能、b)唯一の炭素源として酢酸を含む培地中における、L−バリンに対する抵抗性、およびc)唯一の炭素源としてグルコースを含む培地中における、ピルビン酸アナログに対する感受性を示す。米国特許第4,601,983号において、コリネフォルム細菌において複製可能で、L−スレオニンおよびL−イソロイシン産生に使用されるホモセリンデヒドロゲナーゼ活性を持つ蛋白質産生をコードする遺伝子配列が開示されている。米国特許第4,442,208号において、組み換えDNA技術によって得られた、α−アミノ−β−ヒドロキシ吉草酸抵抗性を持つBrevibacteriumまたはCorynebacterium株を利用した、L−イソロイシン産生に対する発酵プロセスが開示されている。米国特許第4,656,135号において、L−イソロイシン産生のためのプロセスが開示されている。このプロセスには、メチルリシン抵抗性またはα−ケトマロン酸抵抗性を持ち、液体培地中でL−イソロイシン産生し得、その液体培養液から蓄積したL−イソロイシンを回収しうるBrevibacterium属またはCorynebacterium属に属する微生物の培養が含まれる。米国特許第5,118,619号において、D−ラクテートを利用する変異体による、D,L−α−ヒドロキシブチレートからのL−イソロイシン発酵産生のための方法が開示されている。米国特許第5,763,231号において、L−ロイシン産生のためのプロセスが開示されている。このプロセスは、培養培地中でのCorynebacterium、Escherichia、BrevibacteriumまたはMicrobacterium属株をインキュベーションする工程および、得られた細胞をサッカリドおよび酢酸またはその塩と反応させて、反応溶液中でL−ロイシンを形成かつ蓄積させる工程を包含する。および、米国特許第3,970,519号において、ロイシンまたはそのアナログによるフィードバック阻害に対して抵抗性を持ち、L−ロイシンを産生するための増殖栄養としてイソロイシン、スレオニンまたはメチオニンのうち少なくとも一つを必要とする株が開示されている。
【0011】
バリン産生減少によるアミノ酸産生の改善については記述されていない。
【0012】
AHAS活性減少によるアミノ酸産生の改善については記述されていない。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【0013】
本発明によって以下が提供される:
(1)アミノ酸Xを産生する微生物Cであって、ここで該微生物Cは、以下の工程:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法により得られる、微生物C。
(2) 項目1に記載の微生物Cであって、ここでアミノ酸Xは、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、微生物C。
(3) 微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目2に記載の微生物C。
(4) 微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目3に記載の微生物C。
(5) 工程(ii)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目3に記載の微生物C。
(6) 工程(ii)の変異誘発が、ilvBNオペロンの部位特異的変異誘発である、項目3に記載の微生物C。
(7) 微生物Corynebacteriumの株であって、該株は、以下の特徴:
(a)分枝鎖アミノ酸イソロイシン、ロイシンおよびバリンの1つ以上についての栄養要求性またはブラディトローフ性;
(b)培地で培養される場合、以下:
(i)グリシン;
(ii)アラニン;
(iii)メチオニン;
(iv)フェニルアラニン;
(v)トリプトファン;
(vi)プロリン;
(vii)セリン;
(viii)トレオニン;
(ix)システイン;
(x)チロシン;
(xi)アスパラギン;
(xii)グルタミン;
(xiii)アスパラギン酸;
(xiv)グルタミン酸;
(xv)リジン;
(xvi)アルギニン;および
(xvii)ヒスチジン、
からなる群からら選択されるアミノ酸を産生すること;ならびに
(c)少なくとも30%である、デキストロースからの工程(b)のアミノ酸のパーセント収率を生じること、
を有する、株。
(8) 前記ilvBNオペロンにおける変異によりさらに特徴付けられる、項目7に記載の微生物。
(9) 前記ilvBNオペロン変異が、欠失、挿入または点変異である、項目8に記載の微生物。
(10) 前記ilvBNオペロン変異が、配列番号3または配列番号5の配列により特徴付けられる、項目9に記載の微生物。
(11) NRRL寄託番号B−30149の同定特徴を有する微生物Corynebacteriumの株。
(12) NRRL寄託番号B−30150の同定特徴を有する微生物Corynebacteriumの株。
(13) アミノ酸Xの産生を増加する方法であって、該方法は、以下:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発させて、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法。
(14) 前記アミノ酸Xが、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、項目13に記載の方法。
(15) 前記微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目14に記載の方法。
(16) 前記微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目15に記載の方法。
(17) 工程(b)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目15に記載の方法。
(18) 工程(b)の変異誘発が、ilvBNオペロンの部位特異的変異である、項目15に記載の方法。
(19) アミノ酸Xを産生するためのプロセスであって、該プロセスは、以下:
(a)微生物Cを培地で培養する工程であって、ここで該微生物Cは、以下:
(i)デキストロースから収率Yパーセントの該アミノ酸を産生する親微生物Aを選択する工程;
(ii)以下:
(1)ランダム化学変異誘発;および
(2)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発、
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(iii)工程(ii)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性である、工程;ならびに
(iv)工程(iii)から栄養要求性である少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、該微生物Cは、該アミノ酸Xをデキストロースから収率Yパーセントで産生する、工程、
を包含する方法により得られる、工程;
(b)該微生物Cから産生される該アミノ酸Xを回収する工程、
を包含する、プロセス。
(20) 前記アミノ酸Xが、以下:
(a)グリシン;
(b)アラニン;
(c)メチオニン;
(d)フェニルアラニン;
(e)トリプトファン;
(f)プロリン;
(g)セリン;
(h)トレオニン;
(i)システイン;
(j)チロシン;
(k)アスパラギン;
(l)グルタミン;
(m)アスパラギン酸;
(n)グルタミン酸;
(o)リジン;
(p)アルギニン;および
(q)ヒスチジン、
からなる群から選択される、項目19に記載のプロセス。
(21) 前記微生物Aが、以下:
(a)Corynebacterium;
(b)Brevibacterium;および
(c)E.coli、
からなる群から選択される、項目20に記載のプロセス。
(22) 前記微生物Bが、バリンおよびイソロイシンについて栄養要求性またはブラディトローフである、項目21に記載のプロセス。
(23) 前記工程(ii)の変異誘発が、ランダム化学変異誘発である、項目21に記載のプロセス。
(24) 前記工程(ii)の変異誘発が、ilvBnオペロンの部位特異的変異誘発である、項目21に記載のプロセス。
(本発明の要旨)
本発明の目的は、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る微生物を提供することである。変換効率は次の式により定量され得る。
すなわち、[(g 産生されたアミノ酸/g 消費されたデキストロース)×100]=パーセント収率およびデキストロースからの収率として表される。
【0014】
ある実施形態において、本発明は、変異誘発により一つ以上の分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性に改変され、所望するアミノ酸に対して、親株よりも高いパーセント収率を生じるという能力について選択された微生物を提供する。
【0015】
より具体的な、ランダム化学変異誘発に親株を供することにより得られた微生物を提供する本発明の実施形態において、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である変異誘発された変異体を単離し、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ、親株よりも非常に効率よく変換可能な変異株を選択する。別の具体的な本発明の実施形態は、ilvBNオペロンの核酸配列における改変(すなわち、変異)を導入するために、rDNA法を利用し、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフである変異誘発変異体を単離し、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ、親株よりも非常に効率よく変換可能な改変体を選択して得られる微生物を提供する。
【0016】
好適な実施形態において、本発明微生物はL−リシンを産生する。その他の好適な本発明の実施形態は、Corynebacterium微生物、またはBrevibacterium微生物を指向し、そして特に好適な微生物は、L−リシンを産生するCorynebacteriumまたはBrevibacterium微生物である。最も好適な実施形態において、微生物は、NRRL番号B−30149(LC10としても知られている)またはNRRL番号B−30150(BF100−1030としても知られている)という同定特徴を有し、これらの株は、Agricultural Research Service Culture Collection(NRRL)、1815 North University Street,Peoria,Illinois 61604 USAに1999年6月29日に寄託された。
【0017】
本発明の別の目的は、親株の変異誘発、一つ以上の分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性である細胞の選択、および所望するアミノ酸の親株よりも高いデキストロースからのパーセント収率で産生する分枝鎖アミノ酸栄養要求性の選択によりアミノ酸産生を増加させる方法を提供する。
【0018】
好適な実施形態において、本方法は、ランダム化学変異誘導または組み換えDNA(rDNA)技術を用いて一つ以上の分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンまたはバリンに対して栄養要求性またはブラディトローフであるように改変されたCorynebacteriumの培養から得られる、デキストロースからのアミノ酸L−リシンの収率の向上を指向する。
【0019】
1つの特定の実施形態において、分枝鎖アミノ酸栄養要求性は、Corynebacteriumの化学変異誘発の結果である。代替の具体的な実施形態において、分枝鎖アミノ酸栄養要求性は、rDNA技術によるilvBNオペロンの変異誘発の結果である。
【0020】
本発明の別の目的は、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る微生物によるアミノ酸産生プロセスを提供することである。
【0021】
ある実施形態において、本発明は、培地中での、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフであるように親株を誘発し、そして、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することより得られた微生物を培養する工程を包含するアミノ酸産生プロセスを提供する。
【0022】
本プロセスの好適な実施形態において、親株をランダム化学変異誘発に供し、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である変異を誘発された改変体を単離し、そして親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することにより、発酵に利用される微生物が得られる。本プロセスにおけるその他の好適な実施形態において、rDNA法によりilvBNオペロンのヌクレオチド配列を変化させ(つまり、変異の導入)、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性またはブラディトローフである変異を誘発された変異体を分離し、親株よりも非常に効率よく、グルコースを、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン以外のアミノ酸へ変換し得る改変体を選択することにより、発酵に利用される微生物を得る。
前記の一般的記述および次の詳細な記述は例示的であり、かつ例示のみであり、特許請求の範囲のとおりの本発明のさらなる説明を提供することを意図されることが理解されるべきである。
【図面の簡単な説明】
【0023】
【図1A】図1Aは、Corynebacteriumにおける、L−リシン産生を導く生化学的経路の略図である。
【図1B】図1Bは、Corynebacteriumにおける、L−イソロイシン産生に至る生化学的経路概略図である。
【図2A】図2Aは、CorynebacteriumのilvBNオペロンのヌクレオチド配列(配列番号1)を示す。
【図2B】図2Bは、CorynebacteriumのilvBNオペロンのヌクレオチド配列(配列番号1)を示す。
【図2C】図2Cは、Corynebacteriumの、ilvBNオペロンのアミノ酸配列(配列番号2)を示す。
【図3A】図3Aは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのヌクレオチド配列(配列番号3)を示す。
【図3B】図3Bは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのヌクレオチド配列(配列番号3)を示す。
【図3C】図3Cは、プラスミドpAL203ΔにおけるilvBN欠失変異体についてのアミノ酸配列(配列番号4)を示す。
【図4A】図4Aは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4B】図4Bは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4C】図4Cは、pRV1B5対立遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号5)を示す。
【図4D】図4Dは、pRV1B5対立遺伝子のアミノ酸配列(配列番号6)を示す。
【発明を実施するための形態】
【0024】
(好適な実施形態の詳細な説明)
(1.定義)
明細書および特許請求の範囲の明確で矛盾のない理解を提供するために、これらの語が使われるべき範囲を含めて、次の定義を提供する。
【0025】
栄養要求性株:本明細書中で使用される場合、栄養要求性株なる語は、増殖するために、獲得遺伝的欠損のために合成不可能な、特定の代謝物質の外的な源を必要とする微生物株を意味する。
【0026】
アミノ酸補充:本明細書中で使用される場合、「アミノ酸補充」なる語は、成長に必要とされ、栄養要求性成長を助けるために最小培地に添加されるアミノ酸を意味している。
【0027】
ブラディトローフ:本明細書中で使用される場合、ブラディトローフなる語は、特異的な代謝物質の外的な源がない状態において遅い成長を示す微生物株を意味している。ブラディトローフ微生物は、代謝物質を合成しうるが、獲得遺伝的欠損のために、合成速度が親株での同じ代謝物質の合成速度よりも遅い。
【0028】
分枝アミノ酸:本明細書中で使用される場合、この語は、ロイシン、イソロイシンおよびバリンなど、R基が分枝した炭素構造を持つアミノ酸を意味している。
【0029】
炭素流動:本明細書中で使用される場合、この語は、生体内の両方向性、異化作用性および/または同化作用性の生化学的合成的経路の間の炭素の移動を意味している。
【0030】
染色体組込み:本明細書中で使用される場合、この語は、外因性DNA断片の、宿主生物染色体への挿入を意味している。より具体的には、この語は、外因性DNA断片と宿主細胞染色体との適切な領域間の相同的組み換えを意味するものとして使用される。
【0031】
高収率誘導体:本明細書中で使用される場合、この語は、その誘導体が由来する親株と比較した場合、高い収率で、デキストロースから特異的なアミノ酸を産生する微生物株を意味している。
【0032】
変異:本明細書中で使用される場合、この語は、目的のヌクレオチド配列における、単一塩基対変化、挿入または欠失を意味している。
【0033】
オペロン:本明細書中で使用される場合、この語は、構造遺伝子および調節エレメントを含む、DNAにおける細菌遺伝子発現および調節の単位を意味している。オペロンに含まれる調節エレメントの例には、プロモーターおよびオペレーターが含まれるがこれに限定されない。
【0034】
親株:本明細書中で使用される場合、この語は、本発明の微生物を得るためにある形態の変異誘発に供される微生物株を意味している。
【0035】
デキストロースからの収率パーセント:本明細書中で使用される場合、この語は、次の式で定義されるデキストロースからのアミノ酸収率を意味している。すなわち、
[(g 産生されたアミノ酸/g 消費されたデキストロース)×100]=%収率、である。
【0036】
表現型:本明細書中で使用される場合、この語は、微生物の遺伝的構成に依存した、識別できる形質的特徴を意味している。
【0037】
相対的成長:本明細書中で使用される場合、この語は、規定された期間にわたって、規定された培養液中で、親株の成長と子孫株の成長を直接的に比較することによって、成長の評価を提供する測定を意味している。
【0038】
変異誘発:本明細書中で使用される場合、この語は、DNAにおいて変異が発生するプロセスを意味している。「ランダム」変異誘発を用いて、変異の正確な部位を予想することはできず、微生物ゲノムのどこでも起こり、また、放射線照射または化学処理などの因子により引き起こされる物理的損傷の結果として変異が引き起こされる。rDNA変異誘発は、クローニングされた目的のDNAを指向し、それはランダムまたは部位特異的なものでありうる。
【0039】
(2.分枝鎖アミノ酸合成に対する炭素流量の減少、および非分枝型アミノ酸産生の増加に基づいた本発明の微生物)
本発明は、概して、炭素流動を非分枝鎖アミノ酸合成に向けるために、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である微生物の作製を提供する。より具体的に、ロイシン、イソロイシンまたはバリンなどの、一つ以上の分枝鎖アミノ酸(例えば、イソロイシンおよびバリン)を必要とする特異的な栄養要求性表現型を選択するか、またはイソロイシン、ロイシンおよびバリン合成への炭素流量を減少させるilvBNオペロンにおける変異を設計することにより、この系の炭素流動を、他の代謝経路(例えば、L−リシン合成)で利用できるようにし得る。
【0040】
1つの特定の実施形態において、本発明は、アミノ酸Xを産生する微生物Cを提供する。ここで、この微生物Cは、次の方法によって得られる:
(a)デキストロースから該アミノ酸を収率Yパーセントで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学変異誘発;および
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発;
からなる群から選択される方法により、該親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性またはブラディトローフである、工程;ならびに
(d)工程(c)から、収率Zパーセントでデキストロースから該アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択する工程であって、ここで該収率Zパーセントは、該収率Yパーセントよりも大きい、工程、
を包含する方法。
【0041】
デキストロースからの収率パーセントは、好適には、式[(g 産生されたアミノ酸/L / g 消費されたデキストロース/L)×100]を用いて計算される。
【0042】
親微生物は、アミノ酸Xを産生しうる、当該分野で既知の任意の微生物からも選択されうる。特に好適な親微生物は、CorynebacteriumおよびBrevibacteriumである。
【0043】
本発明の株は、当業者にとって既知で利用可能な任意の方法および技術によっても、調製され得る。本発明細菌株の構築に適した方法の例には、次のものが含まれるが、これに限らない:N−メチル−N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジン(NTG)のような適した薬剤を用いた変異誘発;線状DNA断片の形質転換および相同的組み換えを介した遺伝子組込み技術;およびバクテリオファージを介した形質導入。これらの方法は、当該分野において周知であり、例えば、J.H.Miller,Experiments in Molecular Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory
Press,Cold Spring Harbor,New York(1972);J.H.Miller,A Short Course in Bacterial Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York(1992);M.Singer およびP.Berg,Genes &Genomes,University Science Books,Mill Valley,California(1991);J.Sambrook,E.F.Fritsch およびT.Maniatis,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,第二版、Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York(1989);P.B.Kaufmanら、Handbook of Molecular and Cellular Methods in Biology and Medicine,CRC Press,Boca Raton,Florida(1995);Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology,B.R. Glick およびJ.E.Thompson編、CRC Press,Boca Raton,Florida(1993);およびP.F.Smith−Keary,Molecular Genetics of Escherichia coli,The Guilford Press,New York,NY(1989)において説明されている。
【0044】
(A.ランダム変異誘発による分枝鎖アミノ酸栄養要求性株の構築)
本発明のある具体的で好適な実施形態により、L−イソロイシン、L−ロイシンおよびL−バリン生合成に共通の酵素的ステップの改変が、デキストロースからのL−リシンのパーセント収率を向上させ得ることを提供する。
【0045】
最も好適な実施形態において、本発明は、親株に対するランダム変異誘発を行い、その後特定の表現型を選択することより、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性である微生物の産生を提供する。変異誘発を行うために選択した親株は、目的のアミノ酸を産生することが知られている任意の株でもあり得る。好適な生物には、Corynebacterium株およびBrevibacterium株が含まれ、最も好適な生物には、L−リシンを産生するCorynebacterium株およびBrevibacterium株が含まれる。
【0046】
親株は、当該分野で既知の任意のランダム変異誘発を用いて、変異誘発され得る。これには、放射線照射および化学的方法が含まれるがこれに限らない。特に好適なものは、ランダム化学的変異誘発であり、最も好適なものは、J.H.Miller(J.H.Miller,Experiments in Molecular Genetics,Cold Spring Harbor Laboratory(1972))によって記述されているアルキル化剤法である。
【0047】
例として、次のように化学的変異誘発を行った。リシン産生Corynebacterium株の培養は、富化培地中で、30℃にて、吸光度が6.0に達するまで行った。細胞を、最小培地で洗浄し、100mg/mlのNTGを含む最小培地で再懸濁した。細胞を、突然変異原に、30℃で30分間曝露した。細胞を最小培地で洗浄し、富化培地に播種した。富化培地および最小培地上に、富化培地で生じたコロニーのレプリカをとった。富化培地上で生育したが最小培地上では生育しなかったコロニーを、栄養要求性株として分類した。栄養要求性変異体に対して、最小培地および、10mMLイソロイシンおよび10mML−バリンを含む最小培地上にレプリカをとった。イソロイシンおよびバリンによりレスキューされたコロニーを、バリン栄養要求性株として分類した。株B4Bは、化学的変異誘発により作製されたバリン栄養要求性株である。
【0048】
(B.rDNA方法論を介した変異誘発による分枝鎖アミノ酸栄養要求性株の構築)
本発明のその別の具体的な好適な実施形態は、分枝鎖アミノ酸の生合成に重要なタンパク質をコードするクローン化DNA配列のin vitroおよびin
vivo 変異誘発をもたらすために、組み換えDNA技術を利用する。次いで、分枝鎖アミノ酸合成に対して栄養要求性で、親株よりも高収率でデキストロースから非分枝鎖アミノ酸を産生する変異株を作製することを目的として、親株を改変するために変異されたDNAを使用し得る。
【0049】
ある具体的な好適な実施形態において、目的のクローン化DNAが、当該分野で既知の任意の方法によっても組み換えDNA技術を介して変異され得る。当業者によって既知であろうように、クローン化DNAにおける変異は、単一のヌクレオチド変化(点変異)、多重ヌクレオチド変化、ヌクレオチド欠損または挿入を含み得る。組み換えDNA技術の一般的方法は、当業者により既知であり、例えば、核酸精製、制限酵素消化、ライゲーション、遺伝子クローニング、遺伝子配列決定、遺伝子配列のポリメラーゼ連鎖増幅反応(PCR)などの基礎技術を記載する多くの一般の実験マニュアルにおいて見出され得る。(例えば、Sambrookら、Molecular Cloning: A Laboratory Manual,第2版、Cold Spring Harbor Laboratory ,Cold Spring Harbor,New York(1989);Current Protocols in Molecular Biology.Ausbelら編、John Wiley&Sons,New York,(1994);PCR Protocols(PCRプロトコール)、 Innisら、編、Academic Press,Inc.,New York,407−415頁(1990)を参照すること。)
さらに、クローン化DNAのin vitro変異誘発を具体的に示す参考文献は、当業者により既知である。例えば、部位指向性変異誘発、オリゴヌクレオチド指向性変異誘発、リンカースキャニング変異誘発、in vitroにおけるランダム化学的変異誘発、カセット変異誘発、PCR変異誘発およびその他の方法が、Directed Mutagenesis:A Practical
Approach,M.J.McPherson編、Oxford University Press,New York,(1991)において詳しく説明されている。
【0050】
別の具体的な好適な実施形態において、目的のクローン化DNAは、ホスト細胞において、in vivoで変異を起こし得る。このタイプの「in vivo変異誘発」には、一つ以上のDNA修復経路に変異を持つE.coli株のDNAの増殖によって、目的の任意のクローン化DNAにおけるランダム変異を作り出すプロセスが含まれる。これらの「変異誘発遺伝子(mutator)」株は、野生型の親株よりも高いランダム変異頻度を持つ。これらの株の一つにおけるDNAの生育により、DNA中でランダム変異が作り出される。これを行うために設計された系は、当業者にとって既知であり、そして商業的に利用し得る。例えば、Stratagene,Inc.により、そのDNA修復遺伝子(MutH,MutLおよびMutS)が欠失され、その結果短時間で多くの異なる変異が起こるE.coliのXL1 Red Strainを利用した系が提供される。10,000までの変異が30時間に起こり得、その結果当該分野で既知の方法により変異DNAから完全な変異DNAライブラリーを用意し得る。
【0051】
変異のために選択されたクローン化DNAは、分枝鎖アミノ酸合成に重要であるとして当該分野で既知である任意の配列でもあり得る。その配列には、合成に重要な一つ以上の酵素、または輸送および排出に重要な一つ以上のタンパク質産物をコードする配列が含まれるがそれに限らない。最も好適なものは、CorynebacteriumまたはBrevibacteriumのilvBNオペロンの、クローン化配列である。分枝鎖アミノ酸合成に関係するCorynebacterium遺伝子がクローニングされている。例えば、イソロイシン経路に対して遺伝子配列が利用できる(ilvA,ilvB,ilvC,ilvDおよびilvE)。(C.Cordesら、Gene112:113−116(1992);B.Mockelら、J.Bacteriology 174:8065−8072(1992);およびC.Keilhauerら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1993))。
【0052】
L−スレオニンから、5つの反応でL−イソロイシンが産生される。これらの反応を触媒する酵素は、(1)スレオニンジヒドラターゼ(ilvA)、(2)アセトヒドロキシ酸シンターゼ(ilvB)、(3)イソメロレダクターゼ(ilvC)、(4)ジヒドロキシ酸デヒドラターゼ(ilvD)、および(5)トランスアミナーゼB(ilvE)、である。スレオニンデヒドラターゼは、イソロイシン合成に特有な、この経路における唯一の酵素である。他の4つの酵素はまた、他の分枝鎖アミノ酸、バリンおよびロイシン産生においても利用される。Corynebacterium株におけるイソロイシン生合成に関係する酵素経路は図2で表される。
【0053】
アセトヒドロキシ酸シンターゼ(AHAS)およびイソメロレダクターゼ(IR)は、イソロイシン、バリン、ロイシンおよびパントテナートに対して、代謝物の流れにおいて続いて起こる反応を触媒する。他の細菌でのように、Corynebacterium株のAHASは、二つの遺伝子ilvBおよびilvNによりコードされている。遺伝子分断により、これらの遺伝子が、C.glutamicumにおいて単一のAHAS活性をコードしていることが実証された(Keilhauer,Cら、J.Bacteriology 175:5595−5603(1973))。3.9,2.3および1.1kbの3個の転写産物が、ノーザンブロット解析により、in vivoで同定された。それらは、それぞれilvBNC、ilvNC、ilvCメッセンジャーと対応する。ilvC転写産物(IRをコードする)は、C.glutamicumのilvオペロンからの最も量の多い転写産物である。さらなる解析により、このオペロンで3個のプロモーターが活性であること、ilvBNCおよびilvNCメッセンジャーの定常レベルが著しく単一AHASの全体としての活性に寄与していることが示されている。
【0054】
最も好適な本発明の実施形態において、クローン化ilvBNオペロンDNA配列内で欠損を作り出すことを目的として、制限酵素消化により、変異を作製し得る。次に、変異誘発されたilvBN配列を、相同的組み換えにより、野生型配列と置き換え、分枝鎖アミノ酸に対する栄養要求性に関してスクリーニングし得る。
【0055】
その他の本発明の実施形態は、一つ以上の分枝鎖アミノ酸イソロイシン、ロイシンおよびバリンに対する栄養要求性を示し、そしてデキストロースから、親株のパーセント収率よりも高い、目的のアミノ酸のパーセント収率を産み出す微生物Corynebacteriumに引き出される。特に好適な実施形態において、産生されるアミノ酸は、L−リシンである。
【0056】
本発明の他の非常に好適な実施形態は、実質的にNRRL受託番号B−30149またはNRRL受託番号B−30150の性質全てを持つ微生物に引き出される。
【0057】
(3.アミノ酸の産生を増加させる方法)
本発明のさらなる目的において、アミノ酸の産生を増加させる方法を提供する。本発明は、アミノ酸Xの産生を増加させる方法を広く提供する。その方法が以下:
(a)デキストロースから上記アミノ酸をパーセント収率Yで産生する親微生物Aを選択する工程;
(b)以下:
(i)ランダム化学的変異誘発;およひ
(ii)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発
からなる群から選択される方法により、上記親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させる工程;
(c)工程(b)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、該微生物Bは、1つ以上の分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンについて栄養要求性である、工程;ならびに
(d)工程(c)から、パーセント収率Zでデキストロースから上記アミノ酸Xを産生する少なくとも1つの微生物Cを選択することであって、ここで上記パーセント収率Zは、上記パーセント収率Yよりも大きい、工程、
を包含する。
【0058】
ある特に好適な実施形態において、デキストロースから決定されたパーセント収率で目的のアミノ酸を産生する、該当分野で既知である任意の株が、親株として選択され得る。デキストロースからのパーセント収率は、次の式を用いて簡便に計算され得る[(gアミノ酸/L/(g消費されたデキストロース/L)]×100。
【0059】
この生物を選択し、アミノ酸のデキストロースからの(パーセント収率を決定した後、好適には、生物のゲノム全体に指向されたランダム変異誘発技術、または目的のクローン化DNAに対して指向されるrDNA技術、のいずれかにより、変異誘発に供される。用いた変異誘発の特定の方法に関わらず、変異された生物をスクリーニングし、分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性に基づいて選択される。次いで、どの株がデキストロースから所望されるアミノ酸を親株よりも高いパーセント収率で産生するかを決定するために、選択された栄養要求性株をスクリーニングし得る。
【0060】
本発明の種々の実施形態は、生物Corynebacterium、Brevibacterium,およびE.coli.から目的のアミノ酸産生を増加させる方法を含む。さらに、特定の実施形態に依存して、本発明は、グリシン;アラニン;メチオニン;フェニルアラニン;トリプトファン;プロリン;セリン;スレオニン;システイン;チロシン;アスパラギン;グルタミン;アスパラギン酸;グルタミン酸;リシン;アルギニン;およびヒスチジンなどの非分枝鎖アミノ酸の産生を増加する方法を提供する。
【0061】
好適な実施形態において、本発明は、分枝鎖アミノ酸合成に対する栄養要求性株を作り、炭素の流れをロイシン、イソロイシンおよびバリンの合成から転用することによって非分枝鎖アミノ酸産生を増加する方法を提供する。特に好適な実施形態は、変異誘発された親株から、バリンおよびイソロイシン合成に対して栄養要求性である株を選択することによってアミノ酸の産生を増加する方法に引き出される。
【0062】
本発明は、アミノ酸の生産を増加するための方法について、種々の好適な実施形態をさらに提供し、ここで親株は、ランダムな変異誘発技術(例えば、放射線変異誘発または化学物質変異誘発)、またはrDNA技術によるilvBNオペロンの変異誘発のいずれかにより、変異誘発され得る。1つの特定の好適な実施形態において、親株は、ランダムな化学物質変異誘発により変異誘発され得る。別の特定の好適な実施形態では、親株はクローン化されたilvBNオペロンのヌクレオチド配列に指向されたrDNA技術によって変異誘発される。
【0063】
(4.アミノ酸の産生のためののプロセス)
本発明のさらなる目的において、アミノ酸の産生のためのプロセスを提供する。本発明は、一般的にアミノ酸Xの産生のためのプロセスを提供し、これは以下を含む:
アミノ酸Xを産生するためのプロセスであって、上記プロセスは、以下:
(a)微生物Cを培地で培養する工程であって、ここで上記微生物Cは、以下の方法:
(i)デキストロースからパーセント収率Yの上記アミノ酸を産生する親微生物Aを選択すること;
(ii)以下:
(1)ランダム化学的変異誘発;および
(2)ilvBNオペロンのrDNA変異誘発、
からなる群から選択される方法により、上記親微生物Aを変異誘発して、微生物Bを産生させること;
(iii)工程(ii)から少なくとも1つの変異誘発された微生物Bを選択する工程であって、上記微生物Bは、分枝鎖アミノ酸ロイシン、イソロイシンおよびバリンの1つ以上について栄養要求性である、こと;ならびに
(iv)工程(iii)から少なくとも1つの微生物Cを選択することであって、上記微生物Cは、上記アミノ酸Xをデキストロースからパーセント収率Zで産生し、ここで上記パーセント収率Zは、パーセント収率Yより大きい、こと;
により得られる、工程;ならびに
(b)上記微生物Cから産生される上記アミノ酸Xを回収する工程、
を包含する。
【0064】
本発明の好適な実施形態は、培養される微生物を、Corynebacteirum、BrevibacteriumおよびE.coliを含む群から選択するプロセスに引き出される。特に好適であるのは、Corynebacteirum属の生物に引き出されるプロセスである。本発明プロセスのために選択される微生物は、目的のアミノ酸、特に非分枝鎖アミノ酸を産生するものである。さらに特に好適な微生物は、グリシン;アラニン;メチオニン;フェニルアラニン;トリプトファン;プロリン;セリン;スレオニン;システイン;チロシン;アスパラギン;グルタミン;アスパラギン酸;グルタミン酸;リシン;アルギニン;およびヒスチジンを産生する微生物である。選り抜きのアミノ酸の産生レベルは、デキストロースからのパーセント収率を計算する以下の式によって簡便に決定し得る[(g アミノ酸/L/(g 消費されたデキストロース/L)]×100。
【0065】
本発明のプロセスにおいて使用される微生物は、選択される親株の変異誘発によって好適に得られる。本発明の好適な実施形態は、ゲノム全体に指向されるランダム変異誘発、または目的のクローン化されたDNAのrDNA変異誘発に、選択された親株が供されるプロセスを含む。
本発明の特に好適な実施形態において、親株は放射線処理、または化学物質処理による変異誘発を含むがそれに限定されない、ランダム変異誘発に供される。より特に好適な実施形態は、親株のランダム化学変異誘発に引き出される。
本発明の別の特に好適な実施形態は、親株のrDNA変異誘発を提供する。より特に好適な実施形態は、in vitroまたはin vivoにおけるilvBNオペロンのrDNA変異誘発に引き出される。変異誘発されたilvBNオペロンまたはそのフラグメントの変異された形態は、当業者に周知である相同的組み換え技術を介して野生型のilvBNオペロン配列と置き換えられ得る(実施例6を参照のこと)。
しかし、選択された親株またはクローン化されたDNA配列は、変異誘発され、その結果として生ずる子孫は分枝鎖アミノ酸合成(すなわち、ロイシン、イソロイシンまたはバリン)の栄養要求性に関してスクリーニングされ、そして選択される。そのような変異体の選択は当業者に周知である。特に好適な実施形態は、バリンおよびイソロイシンの生合成に対する栄養要求性株に引き出される。
最終的には、本発明のプロセスの微生物の選択は、選り抜きのアミノ酸の産生に依存する。デキストロースからのパーセント収率を決めるために、式[(g アミノ酸/L / g 消費されたデキストロース/L)]×100の式を利用し、所望する微生物が、選り抜きのアミノ酸のデキストロースからのパーセント収率が親株よりも高い点に基づいて選択される。
【0066】
本発明の他の実施形態は、本発明の微生物を培養する特定の方法により変更するプロセスに引き出される。従って、アミノ酸産生に引き出される本発明プロセスにおいて行われ得る、種々の発酵技術が周知である。
適切な炭素源の例示的な例には、グルコース、フルクトース、スクロース、デンプン加水分解産物、セルロース加水分解産物および糖蜜のような炭水化物;酢酸、プロピオン酸、ギ酸、リンゴ酸、クエン酸およびフマル酸のような有機酸;およびグリセロールのようなアルコールが含まれるが、その限りではない。
適切な窒素源の例示的な例としては、アンモニアガスおよび液体アンモニアを含むアンモニア;塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、硫酸アンモニウムおよび酢酸アンモニウムのような無機酸または有機酸のアンモニウム塩;ならびに、肉抽出物、ペプトン、コーンスティープリカー、カゼイン加水分解産物、ダイズ固形加水分解産物および酵母抽出物を含む他の窒素含有物が挙げられるがその限りではない。
【0067】
一般的に、アミノ酸は商業的に本発明からバッチ型または流加型などの発酵プロセスにおいて産生され得る。バッチ型発酵において、発酵の開始時に全ての栄養素を添加する。流加型発酵または広い意味での流加型発酵においては、一つまたは多数の栄養素を、発酵開始すぐ、または培養がある一定の状態に達した後、または、添加される栄養素が培養液から使い果たされたとき、培養液に連続的に補給される。広義の流加型発酵のバッチの改変には、繰り返し流加型、またはフィルアンドドロー(fill−and−draw)発酵があり、発酵槽の内容物の一部をある時点(例えば、発酵物が満たされたとき、栄養物の補給が続けられている間)で除去する。この方法において、発酵をより長時間に延長し得る。
【0068】
発酵の別の型、連続的発酵、またはケモスタット培養は、完全培地の連続補給を使用するが、その一方で、発酵物におけるブロスの体積をほぼ同じに保つような方法で培養液を連続的または半連続的に回収する。連続的発酵は、原則的には、無限に維持され得る。
【0069】
バッチ発酵において、培地中の必須栄養素のうちの一つが消費されつくすまで、または発酵状態が不適当になるまで(例えば、pHが、微生物増殖を抑制する値にまで低下する)生物は増殖する。流加型発酵において、通常、適切な増殖条件を維持するために、例えばpHコントロールを用いて測定を行い、そして一つ以上の必須栄養素が、消費されつくされることを防ぐために、これらの栄養素を培養液中に供給する。微生物は、栄養素補給の割合により規定された増殖速度で増殖し続けるだろう。一般的に、単一栄養素は、殆どの場合炭素源であるが、増殖を制限するものとなるであろう。同じ原理は、連続発酵にも適用され、通常、培地中の単一栄養素は限られており、全ての他の栄養素は過剰である。限られた栄養素は、培養液体中に非常に低い濃度、しばしば、測定不能である程低濃度で存在するであろう。異なる型の栄養素制限が使用され得る。炭素源制限はもっとも頻繁に使用される。他の例としては、窒素源による制限、酸素による制限、ビタミンまたはアミノ酸のような特定の栄養素による制限(微生物がそのような化合物について栄養素要求性の場合)、硫黄による制限および亜リン酸による制限がある。
【0070】
アミノ酸は当業者に周知の方法によって回収され得る。例示的な手順は、Van Walsem,H.J.& Thompson,M.C.,J.Biotechnol.59:127−132(1997)および米国特許第3,565,951号で提供される。両文献とも本明細書中で参考として援用される。
【0071】
本明細書中に引用される全ての特許および刊行物は明確に参考として援用される。
【実施例】
【0072】
(実施例1)
(化学的変異誘発およびバリン栄養要求性株の選択)
リシン産生Corynebacterium株BF100を、Miller,J.H.1972 (Miller,J.H.1972 Experiments in Molecular Genetcs.Cold Spring Harbor Laboratory)で記載されているように、アルキル化剤により、変異誘発を行った。最小培地(MM)上にコロニーのレプリカを取った。MM上で増殖しなかったが完全培地(CM)で増殖したコロニーを栄養要求性株として同定した。L−バリンおよびL−イソロイシンを補給した場合MM上で成長可能なそれらの栄養要求性株を、リシン収率解析を行うために選択した。
【0073】
MMは、1リットル中の、20gのD−グルコース、10gの硫酸アンモニウム、2.5gの尿素、1gのKH2PO4、0.4gのMgSO4,7H2O・1gのNaCl、0.01gのMnSO4・H2O、0.01gのFeSO4・7H2O、10mgのパントテン酸、50mgのビオチン、200mgのチアミン、および50mgのナイアシンアミドから構成され、pH7.2であった。L−アミノ酸をMMの補助剤として用いた場合、50mg/Lのそれぞれのアミノ酸を使用した。MMIVは、イソロイシンおよびバリンを添加したMMであった。
【0074】
親株の成長パターンおよび、3種類のアミノ酸を補給した最小寒天培地上で化学的変異誘発によって産み出された高収率誘導体は、表1で示す。補助剤は、50mg/L L−アミノ酸であった。成長は、30Cにて3日後の相対的コロニーサイズとして示す。
【0075】
(実施例2)
(rDNA技術を用いた分枝鎖栄養要求性株の産生)
(1.欠損ilvB遺伝子の調製)
Corynebacterium lactofermentum(ATCC21799)のilvBNオペロンをPCRで増幅し、pAL203を作製するためにpCR−Scriptにクローニングした。ilvB遺伝子には、2つのEcoNI制限酵素部位により挟まれた390bpの領域が含まれる。EcoNIは、プラスミドpCR−Scriptを切断しない。EcoNIを用いてプラスミドpAL203を切断し、pAL203deltaを回収するようにセルフライゲーションさせることにより、ilvB欠損対立遺伝子を設計した。
【0076】
(2.改変ilvBN対立遺伝子のCorynebacterium染色体への相同的組み換え)
二重交差による対立遺伝子交換のためのベクターを、Maloyら、1996(MaloyS.R.,Stewart V.J.,およびTaylor R.K.1996 Genetic Analysis of Pathogenic Bacteria:A
Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Press)により記述されているように構築した。ATCC37766は、E.coli.中で複製するが、Corynebacterium中では複製しないプラスミド、pK184の元となるものであった。sacB遺伝子をpJC3に挿入するために、SspI部位にサブクローニングした。pJC3は、Corynebacterium中で複製し得ない。どのカナマイシン耐性コロニーも、相同的組み換えによりクローニングされた遺伝子内の部位に相同的組み換えを行うことにより染色体へ導入されたベクターを有する。導入されたベクターにおけるsacB遺伝子の致死発現により、スクロース存在下での成長が阻害される。スクロース存在下での成長には、クローニングされた挿入断片の相同的領域に沿って生じる第二の交差が必要とされる。第一および第二の交差が、改変(欠損、部位突然変異)に隣接する場合、ilvBNの改変対立遺伝子は、宿主株の染色体上に存在する対立遺伝子と交換される。
【0077】
pAL203Δ由来のilvBNオペロンの改変対立遺伝子を、導入ベクターpJC3にサブクローニングし、CorynebacteriumのBF100株に対して電気穿孔法を行い、スクロースを欠いているがカナマイシンを含むリッチ培地(DMK)プレートに播種した。コロニーを採取し、スクロースおよびカナマイシンを含まないリッチブロス中で48時間成長させた。培養液を、カナマイシンを欠くがスクロースを含むリッチプレート上に、ストリークした。シングルコロニーをスクロースプレートから採取し、DMK,SM1,MMおよびMMIVプレート上に、レプリカを取った。スクロース上で成長し得るもので、MM上では成長し得ないがMMIV上で成長可能であるカナマイシン耐性を持たないコロニーを選択し、フラスコでの実験へと進めた。LC10は、BF100由来栄養要求性株である。
【0078】
親株の成長パターンおよび、3種類のアミノ酸を補給した一連の最小寒天プレート上での組み換えDNA法を用いて産生した高収率誘導体を、表2に示す。補助剤は、50mg/LのL−アミノ酸である。成長は、30Cにて3日後の相対的コロニーサイズとして示す。
【0079】
(実施例3)
(ランダム化学的変異誘発により作製されたバリン栄養要求性株からの、L−リシン収率の震盪フラスコ培養による分析)
SM1プレートからシングルコロニーを拾い、SM1ブロスに移すことによりB4B種菌を調製した。SM1は、水1L中に、50gスクロース、3gK2HPO4、3g尿素、0.5gMgSO4,7H20、20gポリペプトン、5gビーフ抽出物、0.9mgD−ビオチン、3mgチアミン、125mgナイアシンアミド、0.5gL−メチオニン、0.25gL−スレオニン、0.5gララニンを混合して調製し、pH7.3に調整した。プレートには20g/Lの寒天が含まれていた。SM1ブロス中で成長培養を16時間行った後、等容量の30%グリセロールを添加し、培養液を−80Cにて凍結した。
【0080】
20mlのSFMが入ったバッフル付き250mlシード震盪フラスコに、0.1mlの解凍種菌を播種した。播種培地(SFM)は、水1L中の、60g D−グルコース、3g K2HPO4、3g 尿素、0.5g MgSO4・7H2O、20g ポリペプト
ン、5g ビーフ抽出物、3mg D−ビオチン、125mg ナイアシンアミド、0.5g L―メチオニン、0.25g L−スレオニン、および0.5g L−アラニンで構成され、pH7.3に調整した。培養物は、30Cにて、16時間成長させ、240rpmで2インチの変位で通気した。種培養のうち2mlを、21mlの発酵培地(FM4)の播種に使用した。FM4培地は、16mlの主要培地と5mlのデキストロースストックを混合して調製した。デキストロースストックは、180g D−グルコースに500mlの水を添加して調製した。主要培地には、1L中に、0.083gのMnSO4、
0.4mg D−ビオチン、コーンスティープリカー(cornsteep liquor)、ラフィネートおよび50gのCaCO3が含まれていた。FM4の最終容量が4%の乾燥固体になるようにコーンスティープを添加した。FM4の最終容量が5%硫酸アンモニウムになるようにラフィネートを添加した。30Cにて、48時間、250mlのバッフル付き震盪フラスコで、培養物を成長させ、240rpmで2インチの変位で通気を行った。
【0081】
表3にて、震盪フラスコ中での、バリンおよびイソロイシン要求性に対する選択により向上させたCorynebacterium株によるL−リシン産生でのデータを示す。
【0082】
(実施例4)
(rDNA法により作製されたバリン栄養要求性株からの、L−リシン収率の震盪フラスコ測定)
表4にて、震盪フラスコ中での、ilvBNオペロンの染色体コピーから390塩基対のDNA配列のを欠失させることにより改善したCorynebacterium株によるL−リシン産生におけるデータを示す(実施例2参照)。培養物を成長させ、実施例3に記載のように分析した。
【0083】
(実施例5)
(バリン栄養要求性によるリシン収率の微小発酵測定)
2Lのバッフル付き震盪フラスコ中で、500mL SM1で、18時間、種菌を成長させた。3.1LのFM4培地を、4L 微小発酵槽で使用した。温度およびpHを、32Cおよび7.2にそれぞれ維持した。20時間の時点で、フラスコの撹拌を700rpmから950rpmに増加させた。4.5LPMで空気を供給した。デキストロースを、3g/Lになるように維持した。発酵時間は、48時間であった。
【0084】
表5にて、L−イソロイシンおよびL−バリンを合成し得ないCorynebacterium株を用いた4リットル発酵装置中での、L−リシン産生におけるデータを示す。
【0085】
(実施例6)
(クローン化ILVBNのIn Vivo変異誘発により産生されたブラディトローフによるL−リシン産生)
(1.機能的AHAS酵素を産生する、欠損型ilvBNオペロンの調製)
pVAL1を得るために、pAL203のilVBNオペロンを、シャトルベクターpM2にサブクローニングした。pM2は、E.coliおよびCorynebacteriumの両方で複製し得る。pValIを、Stratagene Co.の変異誘発株XL1REDに形質転換した。XL1REDキット説明書に従って、変異誘発プラスミドを調製し、バリン栄養要求性であるCorynebacteriumに対して電気穿孔法を行った。バリン栄養要求性株は、イソロイシンおよびバリン補給、または機能的ilnBNオペロンを用いた遺伝学的補足なしではMMプレート上で成長不可能である。
【0086】
SM1プレートからカナマイシン耐性形質転換株を選択し、MMプレート上にレプリカをとった。MMプレート上で成長したそれらのコロニーは、ilnBN欠損の機能的補完性を示した。親プラスミド(pVAL1)を持つバリン栄養要求性コロニーよりも小さいコロニーを、バリン栄養要求性活性アッセイを行うために選択した。pRV1B5は、E.coliおよびCorynebacteriumで複製し得るpVAL1に由来するプラスミドである。バリン栄養要求性株において、そのプラスミドが産生したAHAS活性は、pVAL1により産生されたAHAS特異的活性の1%未満であった。この構築物のilvBNオペロンは、漏出AHAS活性を有する。
【0087】
(2.Corynebacterium染色体DNAへの相同的組み換え)
ilvBNオペロンのRV1B5漏出対立遺伝子を、導入ベクターpJC3にサブクローニングし、実施例2で行われたような相同的組み換えにより、バリン栄養要求性株において漏出対立遺伝子を欠損対立遺伝子に交換するために使用した。BF100−1030は、RV1B5対立遺伝子を用いて構築されたバリンブラディトローフ株である。表6にて、BF100−1030が震盪フラスコ中で、親株よりも少量しかバリンを産生しないことを表すデータを示す。表7にて、BF100−1030ブラディトローフ株が表5の栄養要求性株に対して改善した成長を有することを示す。表7にて、また、ブラディトローフにより、微小発酵において親株よりも少量のバリンしか産生しないことを示す。
【0088】
(表)
次の表で示すデータは、実施例セクションで考察している。用語「成長」は、660nmで測定された光学密度をいい;用語「力価」は、1リットルあたりのアミノ酸のグラム数をいい;用語「収率」は、以下の式:[(g リシン/L/(g デキストロース消費/L]×100によって定義されること;B4B=化学的変異誘発により構築されたバリン栄養要求性株;LC10=染色体ilvB遺伝子を、pAL203ΔのilnB欠損対立遺伝子と置換することにより構築されたバリン栄養要求性株;BF100−1030=染色体ilnB遺伝子を、RV1B5漏出対立遺伝子と置換することにより構築されたバリンブラディトローフであることに注意すること。
【0089】
【表1】
【0090】
【表2】
【0091】
【表3】
【0092】
【表4】
【0093】
【表5】
【0094】
【表6】
【0095】
【表7】
【0096】
【表8】
【0097】
【表9】
【特許請求の範囲】
【請求項1】
明細書に記載の発明。
【請求項1】
明細書に記載の発明。
【図1A】
【図1B】
【図2A】
【図2B】
【図2C】
【図3A】
【図3B】
【図3C】
【図4A】
【図4B】
【図4C】
【図4D】
【図1B】
【図2A】
【図2B】
【図2C】
【図3A】
【図3B】
【図3C】
【図4A】
【図4B】
【図4C】
【図4D】
【公開番号】特開2010−22374(P2010−22374A)
【公開日】平成22年2月4日(2010.2.4)
【国際特許分類】
【出願番号】特願2009−242895(P2009−242895)
【出願日】平成21年10月21日(2009.10.21)
【分割の表示】特願2006−200131(P2006−200131)の分割
【原出願日】平成12年8月2日(2000.8.2)
【出願人】(501183976)アーカー−ダニエルズ−ミッドランド カンパニー (12)
【Fターム(参考)】
【公開日】平成22年2月4日(2010.2.4)
【国際特許分類】
【出願日】平成21年10月21日(2009.10.21)
【分割の表示】特願2006−200131(P2006−200131)の分割
【原出願日】平成12年8月2日(2000.8.2)
【出願人】(501183976)アーカー−ダニエルズ−ミッドランド カンパニー (12)
【Fターム(参考)】
[ Back to top ]