コハク酸デヒドロゲナーゼを過剰発現させることによるメチオニンの増産
本発明は、コハク酸デヒドロゲナーゼ合成に関与する遺伝子の発現を増強するために改変された微生物を培養することによりメチオニン生産を向上させる方法に関する。これらの微生物はメチオニン／炭素源収率が高まるように改変されたものである。また、本発明は、その発酵培地からのメチオニンの単離にも関する。
【発明の詳細な説明】
【発明の背景】
【０００１】
発明の分野
本発明は、コハク酸デヒドロゲナーゼ合成に関与する遺伝子の発現を増強するために改変された微生物を培養することによりメチオニン生産を向上させる方法に関する。この微生物はメチオニン／炭素源収率が高まるように改変されたものである。また、本発明は、その発酵培地からのメチオニンの単離にも関する。
【０００２】
背景技術
コハク酸デヒドロゲナーゼ（コハク酸オキシドレダクターゼ、ＳＱＲ）は、クレブス回路と好気的呼吸鎖の双方の機能的メンバーである。ＳＱＲは、細菌の膜におけるユビキノンの還元と並行して、細胞質でのコハク酸からフマル酸への酸化を触媒する。大腸菌およびその他の細菌では、この酵素は４つのサブユニットからなる。２つの疎水性サブユニットＳｄｈＣおよびＳｄｈＤは、親水性の触媒サブユニットＳｄｈＡおよびＳｄｈＢを内膜の表面に係留する。コハク酸からフマル酸への酸化には、５つのユニークな補因子が関与する。ＳｄｈＡでは、共有結合されているフラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）分子がヒドリド伝達機構によってコハク酸酸化を触媒するために供される。次に、サブユニット（ＳｄｈＢ）を介して電子が個々に伝達される。ＳｄｈＣ、ＳｄｈＤおよびＳｄｈＢ由来の残基によりキノン結合部位が形成され、ユビキノンからユビキノールへの還元を可能とする。この酵素は、ＳｄｈＣとＳｄｈＤの間に挟まれた、酵素機能には必須でないヘムｂ分子も含む(Yankovskaya et al. 2003, Science 299, 700; Cheng et al. 2008 Biochemistry 47, 6107)。
【０００３】
アミノ酸Ｌ−メチオニンは、大量に生産される（年間６００，０００トン）重要な飼料添加物である。生産はもっぱら化学的生合成に頼り、原油由来の前駆体を必要とする。これらの非再生可能資源の価格の高騰とともに、持続可能な工程がますます注目を受けている。従って、メチオニンの発酵生産は、このような化学的工程に代わる経済的に実行可能な代替法となってきている。
【０００４】
発酵によるメチオニン生産は、いくつかの前駆体提供経路の改変を必要とする。メチオニンの生合成には３つの主要な経路が関与している。アスパラギン酸は炭素骨格の前駆体として、システインは硫黄供与体として、そしてメチレン−ＴＨＦは末端メチル基の供与体として働く。さらに、メチオニン生合成の第一段階には、アスパラギン酸由来のホモセリンのスクシニル−ＣｏＡによる活性化が必要とされる。スクシニル−ＣｏＡはクレブス回路で生産され、従って、クレブス回路の酵素の発現を高めればメチオニン生産が高まる。しかしながら、クレブス回路の活性が高いとアミノ酸生産に不利となることが示されており、イソクエン酸デヒドロゲナーゼなどのクレブス回路の酵素の活性を引き下げればアミノ酸生産に有益となり得る（ＷＯ２００７０１７７１０ Metaboric Explorer、ＷＯ２００９１３３０６３ Evonik Industries)。
【０００５】
ＷＯ２００９０７８９７３(Glycos Biotechnology)およびＥＰ１１０６６８４(Evonik Industries)は、ｓｄｈ遺伝子の欠失がアミノ酸および工業的に注目される他の代謝産物の生産を高めることを開示している。この技術から、ｓｄｈ遺伝子の発現の低下がクレブス回路の活性、従ってＣＯ２の生産を低下させ、ひいては産物の収率に積極的な影響を与えるはずであるということが理解される。
【０００６】
再生可能な炭素源から生産されるメチオニンの収率を高める必要がある。コハク酸デヒドロゲナーゼ活性の低減が産物の収率を高めるという従来技術の教示とは反対に、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素の発現の増強がメチオニン／グルコース収率を高めるということが判明した。
【発明の概要】
【０００７】
本発明は、メチオニン生産の向上のために改変された微生物を、炭素源と硫黄源とを含んでなる適当な培養培地で培養する工程、および該培養培地からメチオニンを回収する工程を含んでなる発酵工程においてメチオニンの生産を高める方法に関し、ここで、該微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ（ｓｄｈ）酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変されたものである。
【０００８】
この遺伝子（遺伝子群）の発現は、微生物にコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより増強される。
【０００９】
本発明の別の実施形態では、メチオニンはさらに培養培地から単離される。
【００１０】
本発明はまた、コハク酸デヒドロゲナーゼを過剰発現させることによりメチオニンの生産に関して至適化されている微生物、優先的には、腸内細菌科(enterobacteriaceae)、コリネフォーム(coryneform)細菌、酵母または真菌に関する。本発明の工程において用いられる。この微生物は、メチオニン／炭素源収率の増大を可能とする。
【発明の具体的説明】
【００１１】
メチオニン生産微生物
本発明は、改変微生物を培養することによる発酵工程においてメチオニンを生産する方法に関する。本発明によれば、「培養」、「発酵」、または「発酵工程」は、単純炭素源を含有する適当な増殖培地での細菌の増殖を表して互換的に用いられる。この単純炭素源はメチオニン生産用の微生物によって代謝される。
【００１２】
本発明のもう一つの目的は、発酵工程においてメチオニンを生産するためにこのような方法において用いられる改変微生物である。本発明によれば、「微生物」とは、細菌、酵母、または真菌を表す。優先的には、細菌は腸内細菌科(Enterobacteriaceae)、コリネバクテリウム科(Corynebacteriaceae)から選択される。より優先的には、微生物はエシェリキア属(Escherichia)、クレブシェラ属(Klebsiella)、パンテナ属(Pantoea)、サルモネラ属(Salmonella)、またはコリネバクテリウム属(Corynebacterium)の種である。最も好ましい実施形態では、細菌は大腸菌(Escherichia coli)およびコリネバクテリウム・グルタミクム(Corynebacterium glutamicum)の群から選択される。
【００１３】
本発明の微生物は好ましくは、ｓｄｈ酵素をコードする内因性遺伝子を含んでなる。
【００１４】
「メチオニン生産の向上のために改変された微生物」との用語は、非改変型微生物に比べて、単純炭素源を代謝することによりメチオニン生産を向上させるために遺伝的に改変された微生物を表す。このような改変は、メチオニン生合成経路に関与する遺伝子の発現の増強、変調、または低減に相当し得る。当業者ならば特定の遺伝子の発現をいかにして変調すればよいかを知っている。通常の改変としては、遺伝子置換、プロモーターの改変および異種または内因性遺伝子の発現のためのベクターの導入をはじめとする、遺伝要素での微生物の形質転換を含む。
【００１５】
本発明による改変微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素のサブユニットの一つをコードする少なくとも一つの遺伝子の発現を増強することにより改変されている。好ましくは、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素の種々のサブユニットをコードする総ての遺伝子が過剰発現される。コハク酸デヒドロゲナーゼは一般に、少なくとも３つのサブユニットを含む酵素複合体である。各サブユニットは一遺伝子によりコードされている。例えば、コリネバクテリウム種はコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする３つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢおよびｓｄｈＣを含むが(Bussmann et al, 2009, J. Biotechnol, 143(3), 173)、大腸菌またはＳ．セレビシエ(S. cerevisiae)などの他の微生物は、４つのコハク酸デヒドロゲナーゼサブユニットに対する４つの遺伝子を持っている。これらのｓｄｈ遺伝子はオペロンを形成している。オペロンとは、いくつかの遺伝子が一つの多シストロン性メッセンジャーＲＮＡに転写される転写単位を表す（大腸菌受託番号は、ｓｄｈＡ：Ｐ０ＡＣ４１、ｓｄｈＢ：Ｐ０７０１４、ｓｄｈＣ：Ｐ６９０５４、ｓｄｈＤ：Ｐ０ＡＣ４４）。
【００１６】
「増強する」、「増強された」、「過剰発現された」、「発現の増強」、または「過剰発現」は本明細書において互換的に用いられ、同様の意味を有する。本明細書においてこれらの用語は、例えば、遺伝子コピー数の増大、より強いプロモーターの使用または活性の高い対立遺伝子の使用、およびおそらくこれらの手段の組合せによる、対応するＤＮＡによりコードされている酵素活性の細胞内活性の増強を表す。これらのプロモーターは誘導型であってよく、同種のものでも異種のものでもよい。当業者ならば、どのプロモーターが最も好都合であるかを知っており、例えば、プロモーターＰｔｒｃ、Ｐｔａｃ、Ｐｌａｃ(Dickson et al, 1975, Science 187(4171), 27; de Boer et al, 1983, Proc Natl Acad Sci U S A, 80(1), 21; Brosius et al, 1985, J Biol Chem, 260(6), 3539)またはλプロモーターｃＩ(Ptashne M, 1986, Blackwell Scientific, Cambridge, MA; Ptashne M, 2004, Cold Spring Harbor Lab Press; Little J, 2004, Richard Calenda ed. Oxford University Press)が広く用いられている。
【００１７】
遺伝子がオペロンを形成している場合には、これらの遺伝子の、一つの補足的コピーを単一のプロモーターの制御下に付加することにより、それらの発現を増強することができる。発現はまた、染色体野生型プロモーターをその野生型プロモーターより強力な人工プロモーターに置き換えることで増強させることもできる。当業者であれば、プロモーター強度をいかにして決定すればよいかを知っている。
【００１８】
遺伝子の発現を高めるには、遺伝子は染色体にコードされていてもよいし、あるいは染色体外にコードされていてもよい。遺伝子コピーは染色体内に付加されても染色体外に付加されてもよい。染色体内の場合、１または数個の付加的コピーがゲノム上に存在することになり、これは当業者に公知の組換え法により導入することができる。染色体外の場合、遺伝子は種々のタイプのプラスミドまたは細菌人工染色体により運ばれることになり、複製起点が異なり、ひいては細胞内でのコピー数も異なる。それらの遺伝子は１〜５コピー、約２０コピー、または最大５００コピーとして存在してよく、これらは堅実な複製を伴う低コピー数プラスミド（例えば、ｐＳＣ１０１、ＲＫ２）、低コピー数プラスミド（例えば、ｐＡＣＹＣ、ｐＲＳＦ１０１０）または高コピー数プラスミド（例えば、ｐＳＫ ｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ）に相当する。本発明の好ましい実施形態では、ｓｄｈ遺伝子は染色体外発現を用いて過剰発現させることができる。本発明のこの実施形態では、ｓｄｈ遺伝子は細菌人工染色体により運ばれる。
【００１９】
酵素の発現は、対応するメッセンジャーＲＮＡ(Carrier and Keasling, 1998, Biotechnol. Prog. 15, 58)またはタンパク質（例えば、ＧＳＴタグ、Amersham Biosciences）を安定化または脱安定化する要素によって増進または低減することができる。
【００２０】
本発明による微生物は、本発明に従って増強される遺伝子の１または数個の対立遺伝子を含む。好ましくは、本発明による微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の、一つの補足的コピーを保有する。本発明の好ましい実施形態では、これらの遺伝子は細菌人工染色体ｐＣＣ１ＢＡＣにクローニングされる。
【００２１】
本発明の別の実施形態では、微生物は大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣおよびｓｄｈＤの、一つの補足的コピーを含む。該補足的コピーの遺伝子はオペロンを形成してもよい。本発明の特定の実施形態では、微生物は、大腸菌のコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする遺伝子の少なくとも一つの付加的コピーを含んでなる。
【００２２】
本発明の説明において、遺伝子およびタンパク質は大腸菌における対応する遺伝子の名称を用いて特定される。しかしながら、特に断りのない限り、これらの名称の使用は本発明に従ったより一般的な意味を有し、他の生物、より詳細には微生物の、対応する遺伝子およびタンパク質の総てを包含する。
【００２３】
ＰＦＡＭ(protein families database of alignments and hidden Markov models; http://www.sanger.ac.uk Software/Pfam/)は、タンパク質配列アラインメントの大きなコレクションである。各ＰＦＡＭは、複数のアライメントの可視化、タンパク質ドメインの閲覧、生物間の分布の評価、他のデータベースへのアクセス、および既知のタンパク質構造の可視化を可能とする。
【００２４】
ＣＯＧs（clusters of orthologous groups of proteins; http://www.ncbi.nlm.nih.gov/COG/)は、３０の主要な系統発生的系統を表す６６の完全に配列決定されたゲノム由来のタンパク質配列を比較することによって得られる。各ＣＯＧは少なくとも３つの系統から定義され、前者の保存されているドメインの同定を可能とする。
【００２５】
相同な配列およびそれらの相同性パーセンテージを特定する手段は当業者によく知られ、特に、ウェブサイトhttp://www.ncbi.nlm.nih. gov/BLAST/から、そのウェブサイトに示されているデフォルトパラメーターとともに使用することができるＢＬＡＳＴプログラムを含む。得られた配列を次に、例えば、プログラムＣＬＵＳＴＡＬＷ(http://www.ebi.ac.uk/clustalw/)またはＭＵＬＴＡＬＩＮ(http://prodes.toulouse.inra.fr/multalin/cgi-bin/multalin.pl)を、そのウェブサイトに示されているデフォルトパラメーターとともに用いて活用（例えば、アライン）することができる。
【００２６】
当業者ならば、既知の遺伝子に関してＧｅｎＢａｎｋで得られる参照を用いて、他の生物、細菌株、酵母、真菌、哺乳類、植物などにおける等価な遺伝子を同定することができる。この慣例的な作業は、他の微生物に由来する遺伝子と配列アラインメントを行い、別の生物で対応する遺伝子をクローニングするための縮重プローブを設計することにより同定可能なコンセンサス配列を用いて行うのが有利である。これらの分子生物学の常法は当業者によく知られ、例えばSambrookら(1989 Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor Lab., Cold Spring Harbor, New York.)により主張されている。
【００２７】
本発明による改変微生物は、メチオニン生産を増強するための他の改変をさらに含んでなってもよい。好ましくは、本発明の微生物は、ｓｄｈ酵素をコードする遺伝子の発現の増強に加えて、メチオニン生産を増強するための付加的改変を含んでなる。メチオニン生産を向上させるための改変は当技術分野でよく知られている。これらの改変は、例えば、ＷＯ２００９／０４３８０３、ＷＯ２００７／０７７０４１、ＷＯ２００５／１１１２０２に記載されており、これらの文献は引用することにより本明細書の開示の一部とされる。メチオニン生産の向上のために、微生物は下記からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現の増強を示し得る。
【００２８】
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、原形質周辺硫酸塩結合性タンパク質をコードするｃｙｓＰ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、硫酸塩ＡＢＣ輸送体の成分をコードするｃｙｓＵ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、膜結合硫酸塩輸送タンパク質をコードするｃｙｓＷ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、硫酸透過酵素をコードするｃｙｓＡ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、Ｏ−アセチルセリンスルフヒドララーゼをコードするｃｙｓＭ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、亜硫酸レダクターゼのそれぞれαサブユニットおよびβサブユニットをコードするｃｙｓＩおよびｃｙｓＪ（好ましくは、ｃｙｓＩとｃｙｓＪは一緒に過剰発現されるのが好ましい）
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、亜硫酸レダクターゼαサブユニットをコードするｃｙｓＩ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、アデニリル硫酸レダクターゼをコードするｃｙｓＨ
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、セリンアシルトランスフェラーゼをコードするｃｙｓＥ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、テトラヒドロ葉酸依存性アミノメチルトランスフェラーゼをコードするｇｃｖＴ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、アミノエチル基の担体をコードすることによりグリシン切断に関与するｇｃｖＨ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、グリシンデヒドロゲナーゼをコードするｇｃｖＰ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、リポアミドデヒドロゲナーゼをコードするｌｐｄ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホグリセル酸デヒドロゲナーゼをコードするｓｅｒＡ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホセリンホスファターゼをコードするｓｅｒＢ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホセリンアミノトランスフェラーゼをコードするｓｅｒＣ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードするｇｌｙＡ
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、５，１０−メチレンテトラヒドロ葉酸レダクターゼをコードするｍｅｔＦ
・ＷＯ２００５／１１１２０２に記載されているような、Ｓ−アデノシルメチオニンおよび／またはメチオニン(mathyonine)に対するフィードバック感受性が低減されたホモセリンスクシニルトランスフェラーゼをコードするｍｅｔＡ対立遺伝子
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、トレオニンに対するフィードバック阻害が低減されたアスパルトキナーゼ／ホモセリンデヒドロゲナーゼをコードするｔｈｒＡまたはｔｈｒＡ対立遺伝子
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、Ｂ１２依存性ホモシステイン−Ｎ５−メチルテトラヒドロ葉酸トランスメチラーゼをコードするｍｅｔＨ
本発明の別の実施形態では、微生物は下記遺伝子の少なくとも一つの発現の阻害を示し得る。
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ピルビン酸キナーゼをコードするｐｙｋＡ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ピルビン酸キナーゼをコードするｐｙｋＦ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホルミルテトラヒドロ葉酸デホルミラーゼをコードするｐｕｒＵ
・ＪＰ２０００／１５７２６７に記載されているような、メチオニンレプレッサーをコードするｍｅｔＪ
【００２９】
本発明の別の実施形態では、フィードバック阻害が改変された酵素をコードする下記の改変遺伝子が使用可能である。
【００３０】
・ＷＯ２００５１０８５６１に記載されているような、メチオニンおよびＳ−アデノシルメチオニンに対するフィードバック感受性が低減された酵素をコードするｍｅｔＡ突然変異体
・ＷＯ２００５１０８５６１に記載されているような、トレオニンに対するフィードバック感受性が低減されたｔｈｒＡ突然変異体
【００３１】
本発明によれば、微生物は、引用することにより本明細書の一部とされる特許出願ＷＯ２００４／０７６６５９に記載されているように、メチオニン生産を増大させるために、Ｏ−スクシニル−ホモセリンからのホモシステインの生産に優先的にまたは排他的にＨ２Ｓを用いる変更されたｍｅｔＢ対立遺伝子を用いることによりさらに改変してもよい。
【００３２】
上記に開示されたメチオニン生産に関する特許および特許出願は、引用することにより本明細書の開示の一部とされる。
【００３３】
発現の減弱、発現の低減、または減弱、阻害は、本明細書では互換的に用いられ、同様の意味を有する。本明細書において、この用語は遺伝子発現の部分的または完全な抑制を表し、そしてこれは「減弱された」ことを示す。この発現の抑制はその遺伝子の発現の阻害、その遺伝子発現に必要なプロモーター領域の全部もしくは一部の欠失、その遺伝子のコード領域における欠失、またはプロモーターとより弱い天然もしくは合成プロモーターとの交換のいずれかであり得る。優先的には、遺伝子の減弱は本質的にはその遺伝子の完全な欠失であり、その遺伝子をそれらの株の同定、単離および精製を助ける選択マーカー遺伝子で置換することができる。
【００３４】
本発明の特定の実施形態では、改変微生物は、ｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｌｐｄ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡおよびｍｅｔＨからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を過剰発現する。
【００３５】
本発明の別の実施形態では、改変微生物は、ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が減弱されている。
【００３６】
本発明の別の実施形態では、改変微生物は、ｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｌｐｄ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡ（優先的にはフィードバック感受性が低減されている）およびｍｅｔＨからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を過剰発現し、ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が減弱されている。
【００３７】
本発明の好ましい実施形態では、該微生物はｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡ（優先的にはフィードバック感受性が低減されている）およびｍｅｔＨ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡを過剰発現し、遺伝子ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵを抑制する。
【００３８】
当業者ならば、メチオニン生産を至適化するためには他の遺伝子を改変する必要があり得ることが分かるであろう。これらの遺伝子は、特に、引用することにより本明細書の一部とされるＷＯ２００７／０７７０４１およびＷＯ２００７／０２０２９５で同定されている。
【００３９】
培養培地
本発明の方法において、改変微生物は炭素源と硫黄源を含んでなる適当な培養培地で培養される。「適当な培養培地」とは、微生物の培養および増殖に適当な培地である。このような培地は、培養する微生物にもよるが微生物発酵の分野の熟練者にはよく知られている。
【００４０】
本発明による「炭素源」とは、微生物の正常な増殖を支えるために当業者が使用可能な任意の炭素源を表し、六炭糖（グルコース、ガラクトースまたはラクトースなど）、五炭糖、単糖類、二糖類、オリゴ糖（スクロース、セロビオースまたはマルトース）、糖蜜、デンプンまたはその誘導体、ヘミセルロース、グリセロールおよびそれらの組合せであり得る。特に好ましい単純炭素源はグルコースである。もう一つの好ましい単純炭素源はスクロースである。
【００４１】
Ｌ−メチオニンの発酵生産に用いられる硫黄源は、硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩、メチルメルカプタン、ジメチルジスルフィドまたはその組合せのいずれであってもよい。
【００４２】
本発明の好ましい実施形態では、硫黄源は硫酸塩および／またはチオ硫酸塩である。
窒素源はアンモニウム塩またはアンモニアガスである。
【００４３】
メチオニン生産の向上
本発明では、メチオニン／炭素源収率は、コハク酸デヒドロゲナーゼをコードする遺伝子の発現を増強することによって増大される。「メチオニン／炭素源収率」との用語は、発酵中に得られたメチオニンの量を消費された炭素源の量で割ったものと定義する。これはメチオニン（ｇ）／炭素源（ｇ）またはメチオニン（ｍｏｌ）／炭素源（ｍｏｌ）のパーセントで表すことができる。明細書において「増強された」との用語は、その特定の改変のない微生物および／またはその改変のない培養培地に比べての、測定可能な増加を表す。好ましい実施形態において、増強は少なくとも１％ｇ／ｇ、好ましくは少なくとも２％ｇ／ｇ、より好ましくは４％である。
【００４４】
この増強を測定するためには、グルコースの消費量と、メチオニンの生産量とを測定しなければならない。消費された炭素源の量は、屈折率測定検出ＨＰＬＣにより、または流加溶液についてはＢｒｉｘの方法に従って、培養培地中のグルコース濃度を測定することにより算出する。バッチ培養では、消費グルコースは、実験開始時の残留グルコース量から実験終了時の残留グルコース量を差し引いたものに相当する。流加発酵では、消費グルコース量は、植菌物中のグルコースと流加段階に注入したグルコース量を足して、実験終了時の残留グルコース量を差し引いた、バッチ培養中のグルコース合計に相当する。
【００４５】
「得られるメチオニン」との用語には、Ｌ−メチオニンと容易に回収可能なメチオニン誘導体ＮＡＭが含まれる。培地において得られるメチオニンの量は、標品としてＬ−メチオニン(Fluka, Ref 64319)を用いた、ＯＰＡ／Ｆｍｏｃ誘導体化後のＨＰＬＣにより測定される。ＮＡＭの量は、標品としてＮＡＭ(Sigma, Ref 01310)を用いた屈折率測定検出ＨＰＬＣを用いて測定される。
【００４６】
メチオニンの回収
発酵後のＬ−メチオニン、その前駆体またはそれに由来する化合物（例えばＮ−アセチル−メチオニン）は回収されて、最終的に精製される。生産された化合物を回収および精製する方法は当業者によく知られている（ＷＯ２００５／００７８６２、ＷＯ２００５／０５９１５５）。
【実施例】
【００４７】
実施例１： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）およびＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
メチオニン生産株は、特許出願ＷＯ２００９０４３８０３、ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載され、これらの文献は引用することにより本明細書の開示の一部とされる。
【００４８】
１．ベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣの構築
コハク酸デヒドロゲナーゼのレベルを高めるために、メチオニン生産株ＳｄｈＣＤＡＢにおいて、コピーコントロールベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ（従前に特許出願ＷＯ２００９０４３８０３に記載されているEpicentre製のｐＣＣ１ＢＡＣベクターを使用）におけるそれらの固有のプロモーターとともにクローニングされた４つの遺伝子ｄｈＣＤＡＢ。
【００４９】
このために、大腸菌ｒｒｎＢ遺伝子のＴ１転写ターミネーターであるＴＴ０２(Orosz et al., 1991, Eur. J. Biochem. 201, 653)とともにオリゴヌクレオチドｓｄｈＣＤＡＢ−ＦおよびｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−Ｒ（ウェブサイトhttp://ecogener.org/に参照配列）を用い、ＭＧ１６５５大腸菌ゲノムからｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２領域を増幅した。得られたＰＣＲ産物をｐＳＣＢベクター(Stratagene)にクローニングし、配列決定により確認し、このベクターをｐＳＣＢ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２と名付けた。
ｓｄｈＣＤＡＢ−Ｆ
【化１】
【００５０】
この配列は以下の領域を有する。
・余分な塩基を含む領域（小文字）
・ＳｐｈＩおよびＳｆｏＩ部位を担持する領域（下線の大文字）
・ｓｄｈＣＤＡＢ領域（７５３９３１〜７５３９５８）と相同な領域（太字の大文字）
ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−Ｒ
【化２】
【００５１】
この配列は以下の領域を有する。
・余分な塩基を含む領域（小文字）
・ＳｐｈＩ部位を担持する領域（下線の大文字）
・大腸菌ｒｒｎＢ遺伝子のＴ１転写ターミネーター配列に相当するＴＴ０２配列の領域（斜体の大文字）
・ｓｄｈＣＤＡＢ領域（７５７６０３〜７５７６２９）と相同な領域（太字の大文字）
ベクターｐＣＣ１ＢＡＣに遺伝子ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２を導入するために、ベクターｐＳＣＢ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２を制限酵素ＳｐｈＩで処理し、ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２領域を、同じ制限酵素で処理したベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣにクローニングした。得られたベクターをｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣと名付けた。
【００５２】
２．ＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥＷ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株の構築
次に、プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（従前に特許出願ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載されている）およびｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＯＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣを、エレクトロポレーションによりＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ株に導入し、ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＡｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株を得た。
【００５３】
３．ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株の構築
プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（従前に特許出願ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載されている）およびｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ（従前に特許出願ＷＯ２００９０４３８０３に記載されている）を、エレクトロポレーションによりＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵに導入し、ＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｚｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株を得た。
【００５４】
実施例２ 株の評価
株１： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲ ｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ＴＴ０７−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
株２： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲ ｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
【００５５】
生産株を小エルレンマイヤーフラスコで評価した。５．５ｍＬの前培養物を混合培地（２．５ｇ／Ｌグルコースおよび９０％最小培地ＰＣ１を含む１０％ＬＢ培地（Ｓｉｇｍａ２５％））中、３７℃で１６時間増殖させた。これを用いて、培地ＰＣ１においてＯＤ６００が０．２となるよう５０ｍＬ培養物に植菌を行った。必要であれば、スペクチノマイシンおよびカナマイシンを終濃度５０ｍｇ／Ｌで、クロラムフェニコールを３０ｍｇ／Ｌで加えた。培養温度は３７℃とした。培養物のＯＤ６００が５〜７に達した際に、細胞外アミノ酸を、ＯＰＡ／Ｆｍｏｃ誘導体化後にＨＰＬＣにより定量し、他の関連の代謝産物は、屈折率測定検出を用いたＨＰＬＣ（有機酸およびグルコース）およびシリル化後のＧＣ−ＭＳを用いて分析した。各株で３反復した。
【００５６】
【表１】
【００５７】
【表２】
【００５８】
細胞外メチオニン濃度を、ＯＰＡ／ＦＭＯＣ誘導体化後、ＨＰＬＣにより定量した。残留グルコース濃度は、屈折率測定検出によるＨＰＬＣを用いて分析した。メチオニン収率は次のように表した。
【数１】
表１に示されるように、メチオニン／グルコースの収率（Ｙｍｅｔ）は、ＳｄｈＣＤＡＢの過剰発現に基づき増加する。
【００５９】
参考文献
【発明の背景】
【０００１】
発明の分野
本発明は、コハク酸デヒドロゲナーゼ合成に関与する遺伝子の発現を増強するために改変された微生物を培養することによりメチオニン生産を向上させる方法に関する。この微生物はメチオニン／炭素源収率が高まるように改変されたものである。また、本発明は、その発酵培地からのメチオニンの単離にも関する。
【０００２】
背景技術
コハク酸デヒドロゲナーゼ（コハク酸オキシドレダクターゼ、ＳＱＲ）は、クレブス回路と好気的呼吸鎖の双方の機能的メンバーである。ＳＱＲは、細菌の膜におけるユビキノンの還元と並行して、細胞質でのコハク酸からフマル酸への酸化を触媒する。大腸菌およびその他の細菌では、この酵素は４つのサブユニットからなる。２つの疎水性サブユニットＳｄｈＣおよびＳｄｈＤは、親水性の触媒サブユニットＳｄｈＡおよびＳｄｈＢを内膜の表面に係留する。コハク酸からフマル酸への酸化には、５つのユニークな補因子が関与する。ＳｄｈＡでは、共有結合されているフラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）分子がヒドリド伝達機構によってコハク酸酸化を触媒するために供される。次に、サブユニット（ＳｄｈＢ）を介して電子が個々に伝達される。ＳｄｈＣ、ＳｄｈＤおよびＳｄｈＢ由来の残基によりキノン結合部位が形成され、ユビキノンからユビキノールへの還元を可能とする。この酵素は、ＳｄｈＣとＳｄｈＤの間に挟まれた、酵素機能には必須でないヘムｂ分子も含む(Yankovskaya et al. 2003, Science 299, 700; Cheng et al. 2008 Biochemistry 47, 6107)。
【０００３】
アミノ酸Ｌ−メチオニンは、大量に生産される（年間６００，０００トン）重要な飼料添加物である。生産はもっぱら化学的生合成に頼り、原油由来の前駆体を必要とする。これらの非再生可能資源の価格の高騰とともに、持続可能な工程がますます注目を受けている。従って、メチオニンの発酵生産は、このような化学的工程に代わる経済的に実行可能な代替法となってきている。
【０００４】
発酵によるメチオニン生産は、いくつかの前駆体提供経路の改変を必要とする。メチオニンの生合成には３つの主要な経路が関与している。アスパラギン酸は炭素骨格の前駆体として、システインは硫黄供与体として、そしてメチレン−ＴＨＦは末端メチル基の供与体として働く。さらに、メチオニン生合成の第一段階には、アスパラギン酸由来のホモセリンのスクシニル−ＣｏＡによる活性化が必要とされる。スクシニル−ＣｏＡはクレブス回路で生産され、従って、クレブス回路の酵素の発現を高めればメチオニン生産が高まる。しかしながら、クレブス回路の活性が高いとアミノ酸生産に不利となることが示されており、イソクエン酸デヒドロゲナーゼなどのクレブス回路の酵素の活性を引き下げればアミノ酸生産に有益となり得る（ＷＯ２００７０１７７１０ Metaboric Explorer、ＷＯ２００９１３３０６３ Evonik Industries)。
【０００５】
ＷＯ２００９０７８９７３(Glycos Biotechnology)およびＥＰ１１０６６８４(Evonik Industries)は、ｓｄｈ遺伝子の欠失がアミノ酸および工業的に注目される他の代謝産物の生産を高めることを開示している。この技術から、ｓｄｈ遺伝子の発現の低下がクレブス回路の活性、従ってＣＯ２の生産を低下させ、ひいては産物の収率に積極的な影響を与えるはずであるということが理解される。
【０００６】
再生可能な炭素源から生産されるメチオニンの収率を高める必要がある。コハク酸デヒドロゲナーゼ活性の低減が産物の収率を高めるという従来技術の教示とは反対に、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素の発現の増強がメチオニン／グルコース収率を高めるということが判明した。
【発明の概要】
【０００７】
本発明は、メチオニン生産の向上のために改変された微生物を、炭素源と硫黄源とを含んでなる適当な培養培地で培養する工程、および該培養培地からメチオニンを回収する工程を含んでなる発酵工程においてメチオニンの生産を高める方法に関し、ここで、該微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ（ｓｄｈ）酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変されたものである。
【０００８】
この遺伝子（遺伝子群）の発現は、微生物にコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより増強される。
【０００９】
本発明の別の実施形態では、メチオニンはさらに培養培地から単離される。
【００１０】
本発明はまた、コハク酸デヒドロゲナーゼを過剰発現させることによりメチオニンの生産に関して至適化されている微生物、優先的には、腸内細菌科(enterobacteriaceae)、コリネフォーム(coryneform)細菌、酵母または真菌に関する。本発明の工程において用いられる。この微生物は、メチオニン／炭素源収率の増大を可能とする。
【発明の具体的説明】
【００１１】
メチオニン生産微生物
本発明は、改変微生物を培養することによる発酵工程においてメチオニンを生産する方法に関する。本発明によれば、「培養」、「発酵」、または「発酵工程」は、単純炭素源を含有する適当な増殖培地での細菌の増殖を表して互換的に用いられる。この単純炭素源はメチオニン生産用の微生物によって代謝される。
【００１２】
本発明のもう一つの目的は、発酵工程においてメチオニンを生産するためにこのような方法において用いられる改変微生物である。本発明によれば、「微生物」とは、細菌、酵母、または真菌を表す。優先的には、細菌は腸内細菌科(Enterobacteriaceae)、コリネバクテリウム科(Corynebacteriaceae)から選択される。より優先的には、微生物はエシェリキア属(Escherichia)、クレブシェラ属(Klebsiella)、パンテナ属(Pantoea)、サルモネラ属(Salmonella)、またはコリネバクテリウム属(Corynebacterium)の種である。最も好ましい実施形態では、細菌は大腸菌(Escherichia coli)およびコリネバクテリウム・グルタミクム(Corynebacterium glutamicum)の群から選択される。
【００１３】
本発明の微生物は好ましくは、ｓｄｈ酵素をコードする内因性遺伝子を含んでなる。
【００１４】
「メチオニン生産の向上のために改変された微生物」との用語は、非改変型微生物に比べて、単純炭素源を代謝することによりメチオニン生産を向上させるために遺伝的に改変された微生物を表す。このような改変は、メチオニン生合成経路に関与する遺伝子の発現の増強、変調、または低減に相当し得る。当業者ならば特定の遺伝子の発現をいかにして変調すればよいかを知っている。通常の改変としては、遺伝子置換、プロモーターの改変および異種または内因性遺伝子の発現のためのベクターの導入をはじめとする、遺伝要素での微生物の形質転換を含む。
【００１５】
本発明による改変微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素のサブユニットの一つをコードする少なくとも一つの遺伝子の発現を増強することにより改変されている。好ましくは、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素の種々のサブユニットをコードする総ての遺伝子が過剰発現される。コハク酸デヒドロゲナーゼは一般に、少なくとも３つのサブユニットを含む酵素複合体である。各サブユニットは一遺伝子によりコードされている。例えば、コリネバクテリウム種はコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする３つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢおよびｓｄｈＣを含むが(Bussmann et al, 2009, J. Biotechnol, 143(3), 173)、大腸菌またはＳ．セレビシエ(S. cerevisiae)などの他の微生物は、４つのコハク酸デヒドロゲナーゼサブユニットに対する４つの遺伝子を持っている。これらのｓｄｈ遺伝子はオペロンを形成している。オペロンとは、いくつかの遺伝子が一つの多シストロン性メッセンジャーＲＮＡに転写される転写単位を表す（大腸菌受託番号は、ｓｄｈＡ：Ｐ０ＡＣ４１、ｓｄｈＢ：Ｐ０７０１４、ｓｄｈＣ：Ｐ６９０５４、ｓｄｈＤ：Ｐ０ＡＣ４４）。
【００１６】
「増強する」、「増強された」、「過剰発現された」、「発現の増強」、または「過剰発現」は本明細書において互換的に用いられ、同様の意味を有する。本明細書においてこれらの用語は、例えば、遺伝子コピー数の増大、より強いプロモーターの使用または活性の高い対立遺伝子の使用、およびおそらくこれらの手段の組合せによる、対応するＤＮＡによりコードされている酵素活性の細胞内活性の増強を表す。これらのプロモーターは誘導型であってよく、同種のものでも異種のものでもよい。当業者ならば、どのプロモーターが最も好都合であるかを知っており、例えば、プロモーターＰｔｒｃ、Ｐｔａｃ、Ｐｌａｃ(Dickson et al, 1975, Science 187(4171), 27; de Boer et al, 1983, Proc Natl Acad Sci U S A, 80(1), 21; Brosius et al, 1985, J Biol Chem, 260(6), 3539)またはλプロモーターｃＩ(Ptashne M, 1986, Blackwell Scientific, Cambridge, MA; Ptashne M, 2004, Cold Spring Harbor Lab Press; Little J, 2004, Richard Calenda ed. Oxford University Press)が広く用いられている。
【００１７】
遺伝子がオペロンを形成している場合には、これらの遺伝子の、一つの補足的コピーを単一のプロモーターの制御下に付加することにより、それらの発現を増強することができる。発現はまた、染色体野生型プロモーターをその野生型プロモーターより強力な人工プロモーターに置き換えることで増強させることもできる。当業者であれば、プロモーター強度をいかにして決定すればよいかを知っている。
【００１８】
遺伝子の発現を高めるには、遺伝子は染色体にコードされていてもよいし、あるいは染色体外にコードされていてもよい。遺伝子コピーは染色体内に付加されても染色体外に付加されてもよい。染色体内の場合、１または数個の付加的コピーがゲノム上に存在することになり、これは当業者に公知の組換え法により導入することができる。染色体外の場合、遺伝子は種々のタイプのプラスミドまたは細菌人工染色体により運ばれることになり、複製起点が異なり、ひいては細胞内でのコピー数も異なる。それらの遺伝子は１〜５コピー、約２０コピー、または最大５００コピーとして存在してよく、これらは堅実な複製を伴う低コピー数プラスミド（例えば、ｐＳＣ１０１、ＲＫ２）、低コピー数プラスミド（例えば、ｐＡＣＹＣ、ｐＲＳＦ１０１０）または高コピー数プラスミド（例えば、ｐＳＫ ｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ）に相当する。本発明の好ましい実施形態では、ｓｄｈ遺伝子は染色体外発現を用いて過剰発現させることができる。本発明のこの実施形態では、ｓｄｈ遺伝子は細菌人工染色体により運ばれる。
【００１９】
酵素の発現は、対応するメッセンジャーＲＮＡ(Carrier and Keasling, 1998, Biotechnol. Prog. 15, 58)またはタンパク質（例えば、ＧＳＴタグ、Amersham Biosciences）を安定化または脱安定化する要素によって増進または低減することができる。
【００２０】
本発明による微生物は、本発明に従って増強される遺伝子の１または数個の対立遺伝子を含む。好ましくは、本発明による微生物は、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の、一つの補足的コピーを保有する。本発明の好ましい実施形態では、これらの遺伝子は細菌人工染色体ｐＣＣ１ＢＡＣにクローニングされる。
【００２１】
本発明の別の実施形態では、微生物は大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣおよびｓｄｈＤの、一つの補足的コピーを含む。該補足的コピーの遺伝子はオペロンを形成してもよい。本発明の特定の実施形態では、微生物は、大腸菌のコハク酸デヒドロゲナーゼをコードする遺伝子の少なくとも一つの付加的コピーを含んでなる。
【００２２】
本発明の説明において、遺伝子およびタンパク質は大腸菌における対応する遺伝子の名称を用いて特定される。しかしながら、特に断りのない限り、これらの名称の使用は本発明に従ったより一般的な意味を有し、他の生物、より詳細には微生物の、対応する遺伝子およびタンパク質の総てを包含する。
【００２３】
ＰＦＡＭ(protein families database of alignments and hidden Markov models; http://www.sanger.ac.uk Software/Pfam/)は、タンパク質配列アラインメントの大きなコレクションである。各ＰＦＡＭは、複数のアライメントの可視化、タンパク質ドメインの閲覧、生物間の分布の評価、他のデータベースへのアクセス、および既知のタンパク質構造の可視化を可能とする。
【００２４】
ＣＯＧs（clusters of orthologous groups of proteins; http://www.ncbi.nlm.nih.gov/COG/)は、３０の主要な系統発生的系統を表す６６の完全に配列決定されたゲノム由来のタンパク質配列を比較することによって得られる。各ＣＯＧは少なくとも３つの系統から定義され、前者の保存されているドメインの同定を可能とする。
【００２５】
相同な配列およびそれらの相同性パーセンテージを特定する手段は当業者によく知られ、特に、ウェブサイトhttp://www.ncbi.nlm.nih. gov/BLAST/から、そのウェブサイトに示されているデフォルトパラメーターとともに使用することができるＢＬＡＳＴプログラムを含む。得られた配列を次に、例えば、プログラムＣＬＵＳＴＡＬＷ(http://www.ebi.ac.uk/clustalw/)またはＭＵＬＴＡＬＩＮ(http://prodes.toulouse.inra.fr/multalin/cgi-bin/multalin.pl)を、そのウェブサイトに示されているデフォルトパラメーターとともに用いて活用（例えば、アライン）することができる。
【００２６】
当業者ならば、既知の遺伝子に関してＧｅｎＢａｎｋで得られる参照を用いて、他の生物、細菌株、酵母、真菌、哺乳類、植物などにおける等価な遺伝子を同定することができる。この慣例的な作業は、他の微生物に由来する遺伝子と配列アラインメントを行い、別の生物で対応する遺伝子をクローニングするための縮重プローブを設計することにより同定可能なコンセンサス配列を用いて行うのが有利である。これらの分子生物学の常法は当業者によく知られ、例えばSambrookら(1989 Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor Lab., Cold Spring Harbor, New York.)により主張されている。
【００２７】
本発明による改変微生物は、メチオニン生産を増強するための他の改変をさらに含んでなってもよい。好ましくは、本発明の微生物は、ｓｄｈ酵素をコードする遺伝子の発現の増強に加えて、メチオニン生産を増強するための付加的改変を含んでなる。メチオニン生産を向上させるための改変は当技術分野でよく知られている。これらの改変は、例えば、ＷＯ２００９／０４３８０３、ＷＯ２００７／０７７０４１、ＷＯ２００５／１１１２０２に記載されており、これらの文献は引用することにより本明細書の開示の一部とされる。メチオニン生産の向上のために、微生物は下記からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現の増強を示し得る。
【００２８】
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、原形質周辺硫酸塩結合性タンパク質をコードするｃｙｓＰ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、硫酸塩ＡＢＣ輸送体の成分をコードするｃｙｓＵ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、膜結合硫酸塩輸送タンパク質をコードするｃｙｓＷ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、硫酸透過酵素をコードするｃｙｓＡ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、Ｏ−アセチルセリンスルフヒドララーゼをコードするｃｙｓＭ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、亜硫酸レダクターゼのそれぞれαサブユニットおよびβサブユニットをコードするｃｙｓＩおよびｃｙｓＪ（好ましくは、ｃｙｓＩとｃｙｓＪは一緒に過剰発現されるのが好ましい）
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、亜硫酸レダクターゼαサブユニットをコードするｃｙｓＩ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、アデニリル硫酸レダクターゼをコードするｃｙｓＨ
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、セリンアシルトランスフェラーゼをコードするｃｙｓＥ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、テトラヒドロ葉酸依存性アミノメチルトランスフェラーゼをコードするｇｃｖＴ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、アミノエチル基の担体をコードすることによりグリシン切断に関与するｇｃｖＨ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、グリシンデヒドロゲナーゼをコードするｇｃｖＰ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、リポアミドデヒドロゲナーゼをコードするｌｐｄ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホグリセル酸デヒドロゲナーゼをコードするｓｅｒＡ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホセリンホスファターゼをコードするｓｅｒＢ
・特許出願ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホスホセリンアミノトランスフェラーゼをコードするｓｅｒＣ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードするｇｌｙＡ
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、５，１０−メチレンテトラヒドロ葉酸レダクターゼをコードするｍｅｔＦ
・ＷＯ２００５／１１１２０２に記載されているような、Ｓ−アデノシルメチオニンおよび／またはメチオニン(mathyonine)に対するフィードバック感受性が低減されたホモセリンスクシニルトランスフェラーゼをコードするｍｅｔＡ対立遺伝子
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、トレオニンに対するフィードバック阻害が低減されたアスパルトキナーゼ／ホモセリンデヒドロゲナーゼをコードするｔｈｒＡまたはｔｈｒＡ対立遺伝子
・ＷＯ２００７／０７７０４１に記載されているような、Ｂ１２依存性ホモシステイン−Ｎ５−メチルテトラヒドロ葉酸トランスメチラーゼをコードするｍｅｔＨ
本発明の別の実施形態では、微生物は下記遺伝子の少なくとも一つの発現の阻害を示し得る。
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ピルビン酸キナーゼをコードするｐｙｋＡ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ピルビン酸キナーゼをコードするｐｙｋＦ
・ＷＯ２００９／０４３８０３に記載されているような、ホルミルテトラヒドロ葉酸デホルミラーゼをコードするｐｕｒＵ
・ＪＰ２０００／１５７２６７に記載されているような、メチオニンレプレッサーをコードするｍｅｔＪ
【００２９】
本発明の別の実施形態では、フィードバック阻害が改変された酵素をコードする下記の改変遺伝子が使用可能である。
【００３０】
・ＷＯ２００５１０８５６１に記載されているような、メチオニンおよびＳ−アデノシルメチオニンに対するフィードバック感受性が低減された酵素をコードするｍｅｔＡ突然変異体
・ＷＯ２００５１０８５６１に記載されているような、トレオニンに対するフィードバック感受性が低減されたｔｈｒＡ突然変異体
【００３１】
本発明によれば、微生物は、引用することにより本明細書の一部とされる特許出願ＷＯ２００４／０７６６５９に記載されているように、メチオニン生産を増大させるために、Ｏ−スクシニル−ホモセリンからのホモシステインの生産に優先的にまたは排他的にＨ２Ｓを用いる変更されたｍｅｔＢ対立遺伝子を用いることによりさらに改変してもよい。
【００３２】
上記に開示されたメチオニン生産に関する特許および特許出願は、引用することにより本明細書の開示の一部とされる。
【００３３】
発現の減弱、発現の低減、または減弱、阻害は、本明細書では互換的に用いられ、同様の意味を有する。本明細書において、この用語は遺伝子発現の部分的または完全な抑制を表し、そしてこれは「減弱された」ことを示す。この発現の抑制はその遺伝子の発現の阻害、その遺伝子発現に必要なプロモーター領域の全部もしくは一部の欠失、その遺伝子のコード領域における欠失、またはプロモーターとより弱い天然もしくは合成プロモーターとの交換のいずれかであり得る。優先的には、遺伝子の減弱は本質的にはその遺伝子の完全な欠失であり、その遺伝子をそれらの株の同定、単離および精製を助ける選択マーカー遺伝子で置換することができる。
【００３４】
本発明の特定の実施形態では、改変微生物は、ｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｌｐｄ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡおよびｍｅｔＨからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を過剰発現する。
【００３５】
本発明の別の実施形態では、改変微生物は、ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が減弱されている。
【００３６】
本発明の別の実施形態では、改変微生物は、ｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｌｐｄ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡ（優先的にはフィードバック感受性が低減されている）およびｍｅｔＨからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を過剰発現し、ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵからなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が減弱されている。
【００３７】
本発明の好ましい実施形態では、該微生物はｃｙｓＰ、ｃｙｓＵ、ｃｙｓＷ、ｃｙｓＡ、ｃｙｓＭ、ｃｙｓＪ、ｃｙｓＩ、ｃｙｓＨ、ｃｙｓＥ、ｇｃｖＴ、ｇｃｖＨ、ｇｃｖＰ、ｍｅｔＦ、ｍｅｔＡ（フィードバック感受性が低減されている）、ｔｈｒＡ（優先的にはフィードバック感受性が低減されている）およびｍｅｔＨ、ｓｅｒＡ、ｓｅｒＢ、ｓｅｒＣ、ｇｌｙＡを過剰発現し、遺伝子ｐｙｋＡ、ｐｙｋＦ、ｍｅｔＪおよびｐｕｒＵを抑制する。
【００３８】
当業者ならば、メチオニン生産を至適化するためには他の遺伝子を改変する必要があり得ることが分かるであろう。これらの遺伝子は、特に、引用することにより本明細書の一部とされるＷＯ２００７／０７７０４１およびＷＯ２００７／０２０２９５で同定されている。
【００３９】
培養培地
本発明の方法において、改変微生物は炭素源と硫黄源を含んでなる適当な培養培地で培養される。「適当な培養培地」とは、微生物の培養および増殖に適当な培地である。このような培地は、培養する微生物にもよるが微生物発酵の分野の熟練者にはよく知られている。
【００４０】
本発明による「炭素源」とは、微生物の正常な増殖を支えるために当業者が使用可能な任意の炭素源を表し、六炭糖（グルコース、ガラクトースまたはラクトースなど）、五炭糖、単糖類、二糖類、オリゴ糖（スクロース、セロビオースまたはマルトース）、糖蜜、デンプンまたはその誘導体、ヘミセルロース、グリセロールおよびそれらの組合せであり得る。特に好ましい単純炭素源はグルコースである。もう一つの好ましい単純炭素源はスクロースである。
【００４１】
Ｌ−メチオニンの発酵生産に用いられる硫黄源は、硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩、メチルメルカプタン、ジメチルジスルフィドまたはその組合せのいずれであってもよい。
【００４２】
本発明の好ましい実施形態では、硫黄源は硫酸塩および／またはチオ硫酸塩である。
窒素源はアンモニウム塩またはアンモニアガスである。
【００４３】
メチオニン生産の向上
本発明では、メチオニン／炭素源収率は、コハク酸デヒドロゲナーゼをコードする遺伝子の発現を増強することによって増大される。「メチオニン／炭素源収率」との用語は、発酵中に得られたメチオニンの量を消費された炭素源の量で割ったものと定義する。これはメチオニン（ｇ）／炭素源（ｇ）またはメチオニン（ｍｏｌ）／炭素源（ｍｏｌ）のパーセントで表すことができる。明細書において「増強された」との用語は、その特定の改変のない微生物および／またはその改変のない培養培地に比べての、測定可能な増加を表す。好ましい実施形態において、増強は少なくとも１％ｇ／ｇ、好ましくは少なくとも２％ｇ／ｇ、より好ましくは４％である。
【００４４】
この増強を測定するためには、グルコースの消費量と、メチオニンの生産量とを測定しなければならない。消費された炭素源の量は、屈折率測定検出ＨＰＬＣにより、または流加溶液についてはＢｒｉｘの方法に従って、培養培地中のグルコース濃度を測定することにより算出する。バッチ培養では、消費グルコースは、実験開始時の残留グルコース量から実験終了時の残留グルコース量を差し引いたものに相当する。流加発酵では、消費グルコース量は、植菌物中のグルコースと流加段階に注入したグルコース量を足して、実験終了時の残留グルコース量を差し引いた、バッチ培養中のグルコース合計に相当する。
【００４５】
「得られるメチオニン」との用語には、Ｌ−メチオニンと容易に回収可能なメチオニン誘導体ＮＡＭが含まれる。培地において得られるメチオニンの量は、標品としてＬ−メチオニン(Fluka, Ref 64319)を用いた、ＯＰＡ／Ｆｍｏｃ誘導体化後のＨＰＬＣにより測定される。ＮＡＭの量は、標品としてＮＡＭ(Sigma, Ref 01310)を用いた屈折率測定検出ＨＰＬＣを用いて測定される。
【００４６】
メチオニンの回収
発酵後のＬ−メチオニン、その前駆体またはそれに由来する化合物（例えばＮ−アセチル−メチオニン）は回収されて、最終的に精製される。生産された化合物を回収および精製する方法は当業者によく知られている（ＷＯ２００５／００７８６２、ＷＯ２００５／０５９１５５）。
【実施例】
【００４７】
実施例１： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）およびＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
メチオニン生産株は、特許出願ＷＯ２００９０４３８０３、ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載され、これらの文献は引用することにより本明細書の開示の一部とされる。
【００４８】
１．ベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣの構築
コハク酸デヒドロゲナーゼのレベルを高めるために、メチオニン生産株ＳｄｈＣＤＡＢにおいて、コピーコントロールベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ（従前に特許出願ＷＯ２００９０４３８０３に記載されているEpicentre製のｐＣＣ１ＢＡＣベクターを使用）におけるそれらの固有のプロモーターとともにクローニングされた４つの遺伝子ｄｈＣＤＡＢ。
【００４９】
このために、大腸菌ｒｒｎＢ遺伝子のＴ１転写ターミネーターであるＴＴ０２(Orosz et al., 1991, Eur. J. Biochem. 201, 653)とともにオリゴヌクレオチドｓｄｈＣＤＡＢ−ＦおよびｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−Ｒ（ウェブサイトhttp://ecogener.org/に参照配列）を用い、ＭＧ１６５５大腸菌ゲノムからｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２領域を増幅した。得られたＰＣＲ産物をｐＳＣＢベクター(Stratagene)にクローニングし、配列決定により確認し、このベクターをｐＳＣＢ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２と名付けた。
ｓｄｈＣＤＡＢ−Ｆ
【化１】
【００５０】
この配列は以下の領域を有する。
・余分な塩基を含む領域（小文字）
・ＳｐｈＩおよびＳｆｏＩ部位を担持する領域（下線の大文字）
・ｓｄｈＣＤＡＢ領域（７５３９３１〜７５３９５８）と相同な領域（太字の大文字）
ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−Ｒ
【化２】
【００５１】
この配列は以下の領域を有する。
・余分な塩基を含む領域（小文字）
・ＳｐｈＩ部位を担持する領域（下線の大文字）
・大腸菌ｒｒｎＢ遺伝子のＴ１転写ターミネーター配列に相当するＴＴ０２配列の領域（斜体の大文字）
・ｓｄｈＣＤＡＢ領域（７５７６０３〜７５７６２９）と相同な領域（太字の大文字）
ベクターｐＣＣ１ＢＡＣに遺伝子ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２を導入するために、ベクターｐＳＣＢ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２を制限酵素ＳｐｈＩで処理し、ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２領域を、同じ制限酵素で処理したベクターｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣにクローニングした。得られたベクターをｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣと名付けた。
【００５２】
２．ＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥＷ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株の構築
次に、プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（従前に特許出願ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載されている）およびｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＯＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣを、エレクトロポレーションによりＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ株に導入し、ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＡｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株を得た。
【００５３】
３．ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株の構築
プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１（従前に特許出願ＷＯ２００７／０７７０４１およびＰＣＴ／ＦＲ２００９／０５２５２０に記載されている）およびｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ（従前に特許出願ＷＯ２００９０４３８０３に記載されている）を、エレクトロポレーションによりＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵに導入し、ＭＧ１６５５ ｍｅｔ Ａ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲＮｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ΔｍｅｔＪ ΔｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ΔｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｚｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）株を得た。
【００５４】
実施例２ 株の評価
株１： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲ ｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｄｈＣＤＡＢ−ＴＴ０２−ｓｅｒＢ−ＴＴ０７−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
株２： ＭＧ１６５５ ｍｅｔＡ＊１１ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＨ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＰＵＷＡＭ ＰｔｒｃＦ−ｃｙｓＪＩＨ Ｐｔｒｃ０９−ｇｃｖＴＨＰ Ｐｔｒｃ３６−ＡＲ ｍｓｔ１７−ｍｅｔＦ ＤｍｅｔＪ ＤｐｙｋＦ ＤｐｙｋＡ ＤｐｕｒＵ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ＊１−ｃｙｓＥ−ＰｇａｐＡ−ｍｅｔＡ＊１１）（ｐＣＣ１ＢＡＣ−ｓｅｒＢ−ｇｌｙＡ−ｓｅｒＡ−ｓｅｒＣ）
【００５５】
生産株を小エルレンマイヤーフラスコで評価した。５．５ｍＬの前培養物を混合培地（２．５ｇ／Ｌグルコースおよび９０％最小培地ＰＣ１を含む１０％ＬＢ培地（Ｓｉｇｍａ２５％））中、３７℃で１６時間増殖させた。これを用いて、培地ＰＣ１においてＯＤ６００が０．２となるよう５０ｍＬ培養物に植菌を行った。必要であれば、スペクチノマイシンおよびカナマイシンを終濃度５０ｍｇ／Ｌで、クロラムフェニコールを３０ｍｇ／Ｌで加えた。培養温度は３７℃とした。培養物のＯＤ６００が５〜７に達した際に、細胞外アミノ酸を、ＯＰＡ／Ｆｍｏｃ誘導体化後にＨＰＬＣにより定量し、他の関連の代謝産物は、屈折率測定検出を用いたＨＰＬＣ（有機酸およびグルコース）およびシリル化後のＧＣ−ＭＳを用いて分析した。各株で３反復した。
【００５６】
【表１】
【００５７】
【表２】
【００５８】
細胞外メチオニン濃度を、ＯＰＡ／ＦＭＯＣ誘導体化後、ＨＰＬＣにより定量した。残留グルコース濃度は、屈折率測定検出によるＨＰＬＣを用いて分析した。メチオニン収率は次のように表した。
【数１】
表１に示されるように、メチオニン／グルコースの収率（Ｙｍｅｔ）は、ＳｄｈＣＤＡＢの過剰発現に基づき増加する。
【００５９】
参考文献
【特許請求の範囲】
【請求項１】
メチオニン生産の向上のために改変された微生物を、炭素源と硫黄源とを含んでなる適当な培養培地で培養する工程、および
該培養培地からメチオニンを回収する工程
を含んでなる発酵工程においてメチオニンを生産する方法であって、
該微生物がコハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変されたものである、方法。
【請求項２】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素が少なくとも三つのサブユニットを含んでなり、各サブユニットが一遺伝子によりコードされ、各発現が増強される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の増強された発現が、微生物に該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ｓｄｈ遺伝子の増強された発現が、微生物に大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣ、およびｓｄｈＤの少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
培養培地中の硫黄源が、硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩、またはそれらの種々の供給源の組合せである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
炭素源がグルコースまたはスクロースである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
培養培地からメチオニンを単離する工程を含んでなる、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
微生物が細菌、酵母、および真菌からなる群から選択される、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
適当な培養培地でのメチオニン生産の向上のために改変された微生物であって、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変された微生物。
【請求項１０】
コハク酸デヒドロゲナーゼが少なくとも三つのサブユニットを含んでなり、各サブユニットが一遺伝子によりコードされ、各発現が増強された、請求項９に記載の微生物。
【請求項１１】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の増強された発現が、微生物に該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項９または１０に記載の微生物。
【請求項１２】
ｓｄｈ遺伝子の増強された発現が、微生物に大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣ、およびｓｄｈＤの少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１１に記載の微生物。
【請求項１３】
大腸菌由来ｓｄｈオペロンの付加的コピーを含んでなる、請求項１２に記載の微生物。
【請求項１４】
腸内細菌科およびコリネフォーム細菌からなる群から選択される細菌である、請求項８〜１３のいずれか一項に記載の微生物。
【請求項１５】
大腸菌およびC.glutamicumからなる群から選択される、請求項１４に記載の微生物。
【請求項１】
メチオニン生産の向上のために改変された微生物を、炭素源と硫黄源とを含んでなる適当な培養培地で培養する工程、および
該培養培地からメチオニンを回収する工程
を含んでなる発酵工程においてメチオニンを生産する方法であって、
該微生物がコハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変されたものである、方法。
【請求項２】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素が少なくとも三つのサブユニットを含んでなり、各サブユニットが一遺伝子によりコードされ、各発現が増強される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の増強された発現が、微生物に該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ｓｄｈ遺伝子の増強された発現が、微生物に大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣ、およびｓｄｈＤの少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
培養培地中の硫黄源が、硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩、またはそれらの種々の供給源の組合せである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
炭素源がグルコースまたはスクロースである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
培養培地からメチオニンを単離する工程を含んでなる、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
微生物が細菌、酵母、および真菌からなる群から選択される、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
適当な培養培地でのメチオニン生産の向上のために改変された微生物であって、コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の発現を増強することによりさらに改変された微生物。
【請求項１０】
コハク酸デヒドロゲナーゼが少なくとも三つのサブユニットを含んでなり、各サブユニットが一遺伝子によりコードされ、各発現が増強された、請求項９に記載の微生物。
【請求項１１】
コハク酸デヒドロゲナーゼ酵素をコードする遺伝子の増強された発現が、微生物に該遺伝子の少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項９または１０に記載の微生物。
【請求項１２】
ｓｄｈ遺伝子の増強された発現が、微生物に大腸菌の４つの遺伝子ｓｄｈＡ、ｓｄｈＢ、ｓｄｈＣ、およびｓｄｈＤの少なくとも一つの補足的コピーを挿入することにより獲得された、請求項１１に記載の微生物。
【請求項１３】
大腸菌由来ｓｄｈオペロンの付加的コピーを含んでなる、請求項１２に記載の微生物。
【請求項１４】
腸内細菌科およびコリネフォーム細菌からなる群から選択される細菌である、請求項８〜１３のいずれか一項に記載の微生物。
【請求項１５】
大腸菌およびC.glutamicumからなる群から選択される、請求項１４に記載の微生物。
【公表番号】特表２０１３−５１６１６７（Ｐ２０１３−５１６１６７Ａ）
【公表日】平成２５年５月１３日（２０１３．５．１３）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１２−５４６５１０（Ｐ２０１２−５４６５１０）
【出願日】平成２１年１２月３０日（２００９．１２．３０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＩＢ２００９／０５６０６３
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０８０５４２
【国際公開日】平成２３年７月７日（２０１１．７．７）
【出願人】（５０５３１１９１７）メタボリック エクスプローラー (26)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２５年５月１３日（２０１３．５．１３）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年１２月３０日（２００９．１２．３０）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＩＢ２００９／０５６０６３
【国際公開番号】ＷＯ２０１１／０８０５４２
【国際公開日】平成２３年７月７日（２０１１．７．７）
【出願人】（５０５３１１９１７）メタボリック エクスプローラー (26)
【Ｆターム（参考）】
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