細胞死抑制活性強化タンパク質ＦＮＫを用いた骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の凍結保存と移植の効率の増強
【課題】 骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存するための凍結保存剤および骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに活性を維持し、移植時の移植効率を高めるための骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の提供。
【解決手段】 Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤、または骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【解決手段】 Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤、または骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法および凍結保存剤に関し、さらに骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植時に移植細胞を劣化させずに活性を維持する方法および維持剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
現在、骨髄、臍帯血、末梢血由来の造血幹細胞が白血病の治療のために移植に使用されている。これらの造血幹細胞は、CD34陽性細胞（細胞の表面のマーカー）として研究が行われており、CD34陽性細胞を大量にフラスコ内で増やす試みも行われている。移植後に造血幹細胞が、移植された人体中で赤血球や白血球といった血液系の細胞を作り出して行く。
【０００３】
骨髄幹細胞等は採取後直ぐに移植に供されることは少なく、液体窒素で凍結保存を行なうことが多い。しかし、凍結保存とそれに続く融解（解凍）を行なうことによって、細胞の活性が低下してしまう。そこで、凍結・融解を行なっても、骨髄幹細胞の活性が低下しない方法が求められていた。
【０００４】
従来、ジメチルスルホキシド（DMSO）、ハイドロキシエチルスターチ(HES)、エチレングリコール、グリセロールや凍結保存剤として市販されているCP-1(極東製薬工業株式会社、東京）、セルバンカー（十慈フィールド株式会社、東京）等を添加することによって、凍結保存を行なっていた。この方法は動物細胞の凍結保存方法としては一般的な方法であったが（非特許文献１等参照）、それだけでは充分な効果は得られなかった。
【０００５】
【非特許文献１】宗村庚修編、「細胞培養マニュアル」、講談社サイエンティフィク、1997年８月１日、p.32-33
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存するための凍結保存剤および骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに活性を維持し、移植時の移植効率を高めるための骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法について鋭意検討を行った。アポトーシス抑制タンパク質であるBcl-xLを改変してその活性を強化したタンパク質であるFNKタンパク質に細胞膜通過ドメイン（PTD）を連結させたタンパク質PTD-FNKの骨髄幹細胞の凍結保存に対する効果を検討した。フローサイトメーターを用いてCD34陽性細胞を指標に骨髄幹細胞の活性を検査した。PTD-FNK添加群では凍結・融解による細胞傷害が著しく現れる低い細胞密度（細胞濃度）で凍結保存を行なっても骨髄細胞の80％、骨髄幹細胞でも80％の活性（生存）が保たれることを見出した。このような細胞活性（生存）保存効果は、凍結保存を繰り返し行なっても得られた。
【０００８】
本発明者はさらに上記タンパク質を骨髄移植を行う際の骨髄幹細胞を含む骨髄単核球細胞に添加したところ、骨髄単核球細胞の細胞死を防ぎ、骨髄移植時の単核球細胞の劣化を防止することをも見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち、本発明の態様は以下の通りである。
[１] Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
[２] Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される[１]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
[３] FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、[１]または[２]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【００１０】
[４] 細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される[３]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【００１１】
[５] [１]〜[４]のいずれかの骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を用いて骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を生存率を低下させずに凍結保存する方法。
[６] Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
[７] Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される[６]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
[８] FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、[６]または[７]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【００１２】
[９] 細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される[８]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
[１０] 人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を、[６]〜[７]のいずれかの骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法。
【発明の効果】
【００１３】
骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を凍結する際にFNKタンパク質に細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質を添加することにより、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞死を抑制することができ、凍結・融解後の生存率が高まる。従って、上記タンパク質は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の凍結保存剤として利用することができる。また、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する際にFNKタンパク質に細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質を添加することにより、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞死を抑制することができ、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率を高めることができる。従って、上記タンパク質は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞活性維持剤あるいは移植効率増強剤として利用することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
細胞死抑制活性強化タンパク質であるFNKは、がん原遺伝子であるbcl-2遺伝子（Science 226(4678):1097-1099, 1984; Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81(22):7166-7170, 1984; Proc.Natl.Acad.Sci.USA 83(14):5214-5218, 1986; Cell47(1):19-28, 1986）のホモログからなるbcl-2ファミリーに属するbcl-xL遺伝子(Cell 74(4):597-608, 1993)を改変することにより得られる。
【００１５】
FNKは、Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つのアミノ酸が置換されたアミノ酸配列を有する。好ましくは３つが置換されている。FNKをコードする遺伝子は、bcl-xL遺伝子のコード領域において、第22番目のTyrをコードするトリプレットコドン(tac)をPheをコードするコドン（tttまたはttc）に置換する塩基の置換、第26番目のGlnをコードするコドン(cag)をAsnをコードするコドン(aatまたはaac)に置換する塩基の置換および第165番目のArgをコードするコドン(cgg)をLysをコードするコドン(aaaまたはaag)に置換する塩基の置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つの置換を有するように塩基配列を変異させることにより得られる。FNKタンパク質をコードするDNA配列およびアミノ酸配列の一例として、ラット由来のものをそれぞれ配列番号１および２に、ヒト由来のものをそれぞれ配列番号３および４に示す。
【００１６】
本発明で用いるFNKはいかなる動物種由来のBcl-xLタンパク質を改変したものでもよく、例えばヒト、マウス、ラット、ブタ、イヌ由来のBcl-xLタンパク質が挙げられる。図７にヒト、マウス、ラット、ブタ、イヌ由来のBcl-xLタンパク質のアラインメントを示す。また、ヒト、マウス、ラット、ブタおよびイヌ由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号５〜９に示す。図７において、いずれの動物種由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列においても、第22番目のアミノ酸はTyrであり、第26番目のアミノ酸はGlnであり、165番目のアミノ酸はArgである。図７に示されている動物種以外の動物種由来のBcl-xLタンパク質においても、これら３箇所のアミノ酸は保存されていると考えられ、本発明のFNKタンパク質は由来動物種を問わず、Bcl-xLタンパク質のアミノ酸配列において、第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つのアミノ酸が置換されたアミノ酸配列を有するタンパク質を包含する。また、本発明のFNKタンパク質は、各種動物由来のFNKタンパク質が有するアミノ酸配列において、第22番目、第26番目および165番目のアミノ酸以外のアミノ酸の１個または数個のアミノ酸が置換したアミノ酸配列を有するタンパク質であって、FNKタンパク質活性を有するタンパク質、またはFNKタンパク質が有するアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が欠失または付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質であって、FNKタンパク質活性を有するタンパク質も包含する。一般に、遺伝子には個体特異的な遺伝的多型が知られている。ヒトのBcl-xLタンパク質においても、FNKタンパク質活性に影響を与えない部位にアミノ酸置換（遺伝的多型）がある場合があり、例えば、配列番号５に表すヒトBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列において、第70番目のGlyがAlaに置換されているものが知られている。本発明のFNKタンパク質は、このような個体特異的なアミノ酸置換であって、FNKタンパク質活性に大きな影響を与えないアミノ酸置換を有するアミノ酸配列からなるタンパク質をも包含する。
【００１７】
本発明のFNKタンパク質は、本明細書に記載のBcl-xLタンパク質もしくはFNKタンパク質のアミノ酸配列またはbcl-xL遺伝子もしくはFNKタンパク質をコードするDNAの塩基配列情報を基に、得ることができる。例えば、特開2001-120281号公報には、ラット由来のFNKタンパク質について記載されており、該公報の記載に従って本発明のFNKタンパク質を得ることができる。
【００１８】
本発明の凍結保存剤に用いるFNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ドメイン(PTD)が連結している。
【００１９】
細胞膜通過ドメインはアルギニン、リシンを含む塩基性アミノ酸を種に含む細胞膜通過ペプチドからなり、アミノ酸の光学異性体（D体、L体）に依存しない。細胞膜通過ペプチドとしては種々のものが知られており、本発明においてはいかなる細胞膜通過ペプチドを用いることができる。
【００２０】
細胞膜通過ペプチドとして、６個から１２個、好ましくは７個から11個、さらに好ましくは９個または10個のアルギニンのみまたはリシンのみからなるペプチド、５個から15個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、ならびに前記アルギニンのみまたはリシンのみからなるペプチドまたはアルギニンおよびリシンからなるペプチドにおいて、数個、好ましくは１個から８個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド等が挙げられる。例としてアルギニン９個からなるペプチド（R9、配列番号１０および１１）、アルギニン７個およびリシン２個からなるペプチド（K2R7、配列番号１２および１３）、アルギニン７個およびグリシン６個からなるペプチド（R7G6、配列番号１４および１５）等が挙げられる。これらの細胞膜通過ペプチドを連結するとき、FNKタンパク質のアミノ酸配列の第１番目のメチオニンは残しておいてもよいし、除去してもよい。
【００２１】
また、細胞膜通過ペプチドとして、HIV-1・TATの細胞膜通過ドメイン（protein transduction domain）YGRKKRRQRRR（配列番号１６および１７）やショウジョウバエのホメオボックスタンパク質アンテナペディアの細胞膜通過ドメインRQIKIWFQNRRMKWKK（配列番号１８）が挙げられる。その他、VP22のC末端(267-300)ペプチドDAATATRGRSAASRPRERPRAPARSASRPRRPVE（配列番号１９）、HIV-1/Rev(34-50)ペプチドTRQARRNRRRRWRERQR（配列番号２０）、FHV/coat(35-49)ペプチドRRRRNRTRRNRRRVR（配列番号２１）、K-FGFのN末端(7-22)の疎水性領域AAVALLPAVLLALLAP(配列番号２２)等が挙げられる。
【００２２】
また、FNKタンパク質と細胞膜通過ペプチドの間にスペーサー配列を有していてもよい。スペーサー配列はアミノ酸数個からなりその配列には限定はないが、例えば、１個から５個、好ましくは１個から３個、さらに好ましくは１個のグリシンが挙げられる。
【００２３】
これらの細胞膜通過ペプチドは、それぞれの細胞膜通過ペプチドをコードするDNAをFNKをコードするDNAと連結して融合DNAを作製し、この融合DNAを遺伝子工学の手法により大腸菌等の宿主細胞で発現させることによって、Ｎ末端側に細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質を作製することができる。あるいはまた、２価の架橋剤（例えば、EDCやβ-アラニン等を介して、FNKタンパク質と細胞膜通過ペプチドを結合させる方法によって細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質を作製することができる。
【００２４】
細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質として、ヒトFNKタンパク質にK2R7ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２３に、アミノ酸配列を配列番号２４に示す）、ヒトFNKタンパク質にR7G6ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２５に、アミノ酸配列を配列番号２６に示す）、ヒトFNKタンパク質にR9ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２７に、アミノ酸配列を配列番号２８に示す）、ヒトFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞膜通過ドメインを連結させたもの（DNA配列を配列番号２９に、アミノ酸配列を配列番号３０に示す）およびラットFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞通過ドメインを連結させたもの（DNA配列を配列番号３１に、アミノ酸配列を配列番号３２に示す）等が挙げられる。
【００２５】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤は、上記のFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を含み、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させることなく凍結保存することができる。ここで、骨髄細胞とは、骨髄から採取された細胞をいい、臍帯血細胞とは臍帯から採取された細胞をいい、末梢血幹細胞とは末梢血から分離された幹細胞（造血幹細胞）をいう。本発明の凍結保存剤は、骨髄または臍帯血から得られた細胞全体を対象とすることもできるし、骨髄または臍帯血細胞から単離された幹細胞（造血幹細胞）や単核球を対象とすることもできる。また、骨髄または臍帯血細胞から造血幹細胞等の表面に発現する抗原であるCD34抗原を発現しているCD34陽性細胞またはCD34陽性CD38陰性細胞をフローサイトメーター等を用いて単離し（CD34陽性細胞）、本発明の凍結保存剤を用いて凍結保存することもできる。また、末梢血幹細胞も末梢血から単核球またはCD34抗原を発現している細胞を単離することにより得られる。本発明において、細胞を劣化させないとは、細胞死を起こすことなく細胞の生存率を高く保ち、さらに細胞本来が有する機能を維持させることをいう。本発明の凍結保存剤は、RPMI1640、DMEM等の細胞培養用培地、生理食塩水、リンガー液、リン酸緩衝液等の緩衝液にFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を0.01〜100nM、好ましくは0.05nM〜50nM、さらに好ましくは0.1nM〜10nM、特に好ましくは0.3nM〜10nM含んでいる。また、適宜動物血清、ヒトアルブミン等の動物由来アルブミン、スクロース等の糖や、ジメチルスルホキシド（DMSO）、ハイドロキシエチルスターチ（HES)、エチレングリコール、グリセロール等を含んでいてもよい。採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を105〜108細胞/mlの密度で懸濁させ、クライオチューブ等の細胞凍結用チューブや細胞凍結用バッグに入れ、凍結すればよい。なお、一般的に細胞を凍結する場合は、細胞密度が高い方が凍結・融解後の細胞生存率が高くなる。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤は、105細胞/mlの低密度で凍結した場合でも、本発明保存剤がない場合に比べ、凍結・融解後の細胞生存率を高く保つことが可能である。凍結は-20℃以下、好ましくは-40℃以下、さらに好ましくは-80℃以下あるいは液体窒素中で行う。凍結期間は限定されず、上記低温に保たれている限り、数ヶ月から数年間の長期保存を行っても、凍結骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞は劣化することはない。本発明は凍結保存剤のpHは、中性付近が好ましく、pH４〜８、好ましくはpH５〜7.5、さらに好ましくはpH６〜７である。
【００２６】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞に添加し、凍結後融解した場合の、生存率は20％以上、好ましくは30％以上、さらに好ましくは35％以上、特に好ましくは40％以上である。
【００２７】
本発明は、採取した細胞を上記骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞保存剤に入れ凍結することを含む、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法をも包含する。
【００２８】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、上記のFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を含み、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する際に骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させることなく骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率を高めることができる。また、造血幹細胞の移植において、幹細胞の生体外での増殖は希求されているが、本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、幹細胞の生体外での増殖にも用いることができる。すなわち、幹細胞の活性を維持することにより、幹細胞の増殖も促進される。この際、幹細胞を培養する際に、適宜幹細胞の増殖因子等を添加すればよい。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、RPMI1640、DMEM等の細胞培養用培地、生理食塩水、リンガー液、リン酸緩衝液等の緩衝液にFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を0.01〜100nM、好ましくは0.05nM〜50nM、さらに好ましくは0.1nM〜10nM、特に好ましくは0.3nM〜10nM含んでいる。また、適宜動物血清等を含んでいてもよい。本発明は骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤のpHは、中性付近が好ましく、pH４〜８、好ましくはpH５〜7.5、さらに好ましくはpH６〜７である。採取した骨髄細胞、臍帯血細胞もしくは末梢血幹細胞または凍結保存後融解した骨髄細胞、臍帯血細胞もしくは末梢血幹細胞懸濁液中に本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤を添加すればよい。骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する前に本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で数日間培養してもよいし、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植直前に添加してもよい。また、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で培養し、移植前に、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を単離し、維持剤と分離した後に移植してもよい。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を培養することにより、移植細胞の生存率（移植効率）が上昇する。すなわち、本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞移植効率増強剤として用いることもできる。さらに、本発明は、人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法をも包含する。
【００２９】
本発明の凍結保存剤、活性維持剤を用いて凍結保存したまたは活性維持した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞は白血病の治療や、腎癌、脳腫瘍等の腫瘍の治療に用いることができる。
【実施例】
【００３０】
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例１ PTD-FNKによる凍結耐性
１．骨髄単核球細胞の調製、PTD-FNK処理
ラットFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質（DNA配列を配列番号３２にアミノ酸配列を配列番号３３に示す）を大腸菌で発現させ精製し、実施例１および２で用いた。この発現及び精製に関しては、既に報告されている方法を用いて行った（Asoh, S. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99, 17107-17112. (2002)）。
【００３１】
インフォームド・コンセントを得たヒトから採取された正常骨髄(1〜2 ml)から常法に従いリンフォプレップ(Lymphoprep, 1.077±0.001 g/ml, AXIS-SHIELD PoC AS社, オスロー、ノルウェー)を用いて行った。骨髄はPBS (Phosphate-buffered saline)溶液を加えて骨髄溶液とした。50-mlファルコンチューブ (Falcon社)に15 mlのリンフォプレップを加え、その上に静かに30 mlの骨髄溶液を重層し、界面がきちんとできていることを確認した。20℃, 400xgの遠心条件で35分遠心し、ブレーキをかけずに止めた。界面に中間層として認められる単核球層をスポイトで取り出して新しいファルコンチューブに入れる。等量以上のPBS/EDTA溶液を加えて混合後、20℃, 250xgの遠心条件で10分遠心し、ブレーキをかけずに止めた。骨髄単核球細胞を沈殿物として回収し、10% FBS（牛胎児血清）を含むRPMI1640 (Life Technologies,インビトロジェン社)培地で懸濁した。トリパンブルー色素を用いて、血球計数板上で生細胞数を計測した。RPMI1640培地で細胞を2 x 106 と2 x 105 個/mlの細胞濃度にし、PTD-FNKを所定の濃度に加えた。PTD-FNK 0 nMでは等量の溶媒（vehicle）を加えた。37℃で保温した後、2-ml クリオチューブ (Nunc社、デンマーク)に250μlずつ入れた。これに、250μlのCP-1細胞凍害保護液を加え500μlとした（最終的細胞濃度は1 x 106 と1 x 105 個/ml)。CP-1細胞凍害保護液は極東製薬工業（株）（東京）から発売されているCP-1(50 ml用；hydroxyethyl starch 10 g + demethyl sulfoxide 5 mlに生理食塩水を加えて34 mlとして販売)に、添付されていて説明書に従って、ヒト血清アルブミン(Calbiochem製、メルクジャパン、東京）を注射用蒸留水（大塚製薬）で25%に溶かした溶液を加えて全量50 mlとして調製した。
【００３２】
２．凍結保存と生細胞数の計測
細胞が入ったクリオチューブはフリージングコンテナー NalgenCryo 1℃ freezing container (Nalgene社、米国)内に設置し、フリージングコンテナーを-80℃の冷凍庫内に置いて冷却し、-80℃の冷凍庫内で一週間保存した(1st cycle)。保存したクリオチューブを取り出し、37℃のウォーターバスに浸けることで細胞を急速に解凍した。解凍後、穏やかに懸濁した。1 x 106個/mlで凍結保存した細胞については、250μlを5 ml のRPMI1640培地がはいった15-mlファルコンチューブに入れた。残りの250μlが入っているクリオチューブは、再びフリージングコンテナー内に設置し、フリージングコンテナーを-80℃の冷凍庫内に置いて冷却し、-80℃の冷凍庫内で一週間保存した（2nd cycle）。1 x 10５ 個/mlで凍結保存した細胞については、500μlを5 ml のRPMI1640培地がはいった15-mlファルコンチューブに入れた。
【００３３】
15-mlファルコンチューブに入れた細胞は遠心（上記条件）によって沈殿物として回収し、250μlのRPMI1640培地に懸濁した。5μlを等量のトリパンブルー溶液と混合し、血球計数板で生細胞数を計測した（図１. 生存率）。2nd cycle の凍結保存（-80℃、1週間）した細胞についても同様にして急速解凍し、トリパンブルーを使って、血球計数板で生細胞数を計測した。図１は、1 x 106 と1 x 105 個/mlの条件で１回（1st cycle）凍結・融解後の細胞の生存率を示す(3回の実験結果)。凍結前の細胞数（1 x 106 と1 x 105 個/ml）をそれぞれ100％として,PTD-FNKの各濃度での平均の生存率（棒グラフ）に標準偏差（縦線）をつけて示した。統計的解析（one-way ANOVA）の結果、1 x 106個/mlの条件でPTD-FNK 0 nM (vehicle)との有意差が認められ、＊はP<0.05, **はP<0.01を示す。1 x 105 個/mlの条件でもPTD-FNK 0 nM (vehicle)との有意差が認められ、#はP<0.005、##はP<0.001を示す。
【００３４】
図１に示すように、いずれの細胞濃度でもPTD-FNKは明白に凍結・融解による細胞死を抑制し、それはPTD-FNK濃度依存的であり、その効果は0.3 nMでプラトーに達した。細胞濃度が高い条件に比べ、低い条件のほうで、PTD-FNKの細胞死抑制活性は顕著に認められた。
【００３５】
実施例１の結果は、PTD-FNKは骨髄単核球細胞の凍結・融解による細胞死を抑制したことを示す。
【００３６】
３．CD34幹細胞のフローサイトメトリーによる検討
1 x 106 個/mlで凍結保存細胞については、骨髄単核球細胞の中で造血幹細胞や血管新生に関わっている血管内皮幹細胞を含んでいるCD34陽性細胞について検討した。トリパンブルーを使って、血球計数板で生細胞数を計測した残りの細胞（245μl）を蛍光色素FITCが結合した抗ヒト34抗体（FITC-conjugate anti-human CD34 mouse monoclonal antibody; BD Biosciences Pharmingen社、米国）とヨウ化プロピヂウム(PI; 5μM)で処理した。処理の条件はBD Biosciences Pharmingen社から提供された説明書（添付）に従って行った。フローサイトメーター(EPICS ELITE ESP; Beckma Coulter K.K.社、東京)を使って、10,000個の細胞についてPI染色性（陽性;死細胞、陰性;生細胞）とFITC染色性（陽性;CD34 positive, 陰性;CD34 negative）を調べ、生存している（PI陰性）細胞の中で、CD34陽性幹細胞の割合を計測した(図２)。使用した抗ヒト34抗体のCD34染色特異性については、同じアイソタイプの抗体FITC-conjugated IgG (BD Biosciences Pharmingen社、米国)で上記細胞を処理しても、FITC陽性となった細胞が検出されないことで確認した。
【００３７】
図２に1 x 106 個/mlの条件で凍結・融解を1回(1st cycle)および2回(2nd cycle)行った後の骨髄単核球細胞中の生存しているCD34陽性幹細胞の割合を示した。また表１に生存CD34陽性細胞の割合を示す。PI陰性（生存している細胞）を縦軸、その細胞のFITC蛍光強度を横軸にとった。図２中に示した横棒の範囲内のFITC蛍光強度を持った生細胞をCD34陽性細胞とし、その全生細胞数に対する割合（％）を横棒の上に示した。通常、ヒト骨髄単核球細胞中にはCD34陽性細胞が1.5%から8.2% (medianは5.4%)含まれている。
【００３８】
図２に示すように、1st cycleでも2nd cycleでも、処理したPTD-FNK濃度依存的に生存しているCD34陽性細胞の割合が上昇した。骨髄単核球細胞の生存率（図１)を考慮すると、PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べた時、CD34陽性細胞数は3倍多く生き残っている。
【００３９】
また、PTD-FNK 0 nMでは1回(1st cycle)に比べ2回(2nd cycle)目で、CD34陽性細胞の割合が55%に減少していた。一方、PTD-FNK処理した細胞では、2回の凍結・融解後でも1回の時とほぼ同じ割合を示した。PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べると、CD34陽性細胞の割合は3.6倍高かった。
【００４０】
【表１】
【００４１】
さらに、２回凍結・融解した後の骨髄単核球細胞の生存率は2.6% (標準偏差1.1;PTD-FNK 0 nM), 6.0% (標準偏差1.5;PTD-FNK 0.1 nM), 6.5% (標準偏差1.4;PTD-FNK 0.3 nM), 8.6% (標準偏差1.8;PTD-FNK 1 nM)であった（３回の実験結果）。この生存率と上記２の結果を一緒に考慮すると、PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べた時、２回の凍結・融解後に生き残ったCD34陽性細胞数はPTD-FNK処理で12倍上昇した。
【００４２】
以上のように、本実施例は、PTD-FNKは骨髄CD34陽性幹細胞の凍結再解凍による細胞死を著しく抑制したことを示す。
【００４３】
実施例２ ラット下肢虚血モデルを用いた、骨髄単核球細胞の移植効率に対するPTD-FNKの効果の検討
EGFP-トランスジェニック SDラット（”green rat CZ-004” 6から9週齢、雄、大阪大学遺伝情報実験センター 岡部 勝 教授より使用許可を得て購入）の大腿骨と脛骨から骨髄を取り出し、常法に従い、Lymphoprep (Axis-Shield PoC AS, Oslo, Norway)を用いた密度勾配遠心法で骨髄単核球細胞を調製した。調製されたgreen rat由来骨髄単核球細胞はEGFP(enhanced green fluorescent protein)を発現し、EGM-2培地で８日間培養してもEGFPの蛍光が消滅しないことを確認した（図３パネルA、B）。
【００４４】
常法に従い、正常SDラットの右側大腿動脈を抜去して下肢虚血モデルを作製した。green rat由来骨髄単核球細胞をPTD-FNK（0、10 nM）を含むEGM-2培地で1時間処理し、1 x107個の細胞を下肢虚血モデルラットの前脛骨筋に注入（移植）した。8日後に注入部の筋肉を取り出し、注入部を中心に上下に300μmごとに8μm厚の凍結切片を5枚作製した。ヨウ化プロピジウム (PI)で染色し、細胞の並び方から直径50μm以上の血管のEGFPの蛍光を共焦点レーザー顕微鏡で調べた（図6パネルA、B、C）。このような細胞の並び方をしている構造が血管であることを隣接凍結切片を用いて、1枚をPI染色で、もう1枚を血管壁のフォンウィルブランド因子に対する抗体(DAKOPATTS, Denmark；希釈倍率 1:500)で染色し、確認した（図４パネルA、B）。切片あたりEGFPの蛍光を発している血管の数を計数し、その平均値（各４匹,5切片/匹）を図5に示した。図中のscale barは100μmである。
【００４５】
各図は以下を示す。
図３A 調製直後のgreen rat由来骨髄単核球細胞のEGFPの蛍光
図３B EGM-2培地で8日間培養したgreen rat由来骨髄単核球細胞のEGFPの蛍光
図４A PI染色した隣接切片。中央にPI染色された細胞の並び方から血管とおもわれる。
図４B 上記Aの隣接切片を、抗フォンウィルブランド因子(vWF)抗体で染色した。中央部が抗体で染色され、上記AのPI染色で血管と思われた構造が血管であることが確認された。
図５ PTD-FNKで処理、未処理のgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入された虚血部位の前脛骨筋のEGFP陽性の切片あたりの血管数。＊P＜0.03, t 検定。
図６A、B、C 図5で計測した切片の代表的染色像。同じ切片の(A) PI染色、(B) EGFPの蛍光、（C） 2枚の像を重ね合わせた像（merge）。
【００４６】
本実施例に示すように、PTD-FNK処理で、移植骨髄単核球細胞が生き残って定着している血管数が約2倍多かった。PTD-FNK処理で、移植骨髄単核球細胞の虚血による細胞死を抑制し、その結果移植効率を高めたと考えられる。
【図面の簡単な説明】
【００４７】
【図１】凍結・融解後の骨髄単核球細胞の生存率を示す図である。
【図２】凍結・融解後の骨髄単核球細胞中のCD34陽性幹細胞の割合を示す図である。
【図３】green rat由来骨髄単核球細胞の蛍光を示す図である。
【図４】PI染色で細胞の並び方から判断した血管様構造が確かに血管であることを確認した図である。
【図５】PTD-FNKで処理したgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入した虚血部位の前脛骨筋において、移植骨髄単核球細胞が定着した血管の数を示す図である。
【図６】PTD-FNKで処理したgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入した虚血部位の前脛骨筋において、移植骨髄単核球細胞が定着した血管を示す図である。
【図７】ヒト、ラット、マウス、ブタおよびイヌ由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。
【配列表フリーテキスト】
【００４８】
配列番号１０から３２、合成
【技術分野】
【０００１】
本発明は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法および凍結保存剤に関し、さらに骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植時に移植細胞を劣化させずに活性を維持する方法および維持剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
現在、骨髄、臍帯血、末梢血由来の造血幹細胞が白血病の治療のために移植に使用されている。これらの造血幹細胞は、CD34陽性細胞（細胞の表面のマーカー）として研究が行われており、CD34陽性細胞を大量にフラスコ内で増やす試みも行われている。移植後に造血幹細胞が、移植された人体中で赤血球や白血球といった血液系の細胞を作り出して行く。
【０００３】
骨髄幹細胞等は採取後直ぐに移植に供されることは少なく、液体窒素で凍結保存を行なうことが多い。しかし、凍結保存とそれに続く融解（解凍）を行なうことによって、細胞の活性が低下してしまう。そこで、凍結・融解を行なっても、骨髄幹細胞の活性が低下しない方法が求められていた。
【０００４】
従来、ジメチルスルホキシド（DMSO）、ハイドロキシエチルスターチ(HES)、エチレングリコール、グリセロールや凍結保存剤として市販されているCP-1(極東製薬工業株式会社、東京）、セルバンカー（十慈フィールド株式会社、東京）等を添加することによって、凍結保存を行なっていた。この方法は動物細胞の凍結保存方法としては一般的な方法であったが（非特許文献１等参照）、それだけでは充分な効果は得られなかった。
【０００５】
【非特許文献１】宗村庚修編、「細胞培養マニュアル」、講談社サイエンティフィク、1997年８月１日、p.32-33
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存するための凍結保存剤および骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに活性を維持し、移植時の移植効率を高めるための骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法について鋭意検討を行った。アポトーシス抑制タンパク質であるBcl-xLを改変してその活性を強化したタンパク質であるFNKタンパク質に細胞膜通過ドメイン（PTD）を連結させたタンパク質PTD-FNKの骨髄幹細胞の凍結保存に対する効果を検討した。フローサイトメーターを用いてCD34陽性細胞を指標に骨髄幹細胞の活性を検査した。PTD-FNK添加群では凍結・融解による細胞傷害が著しく現れる低い細胞密度（細胞濃度）で凍結保存を行なっても骨髄細胞の80％、骨髄幹細胞でも80％の活性（生存）が保たれることを見出した。このような細胞活性（生存）保存効果は、凍結保存を繰り返し行なっても得られた。
【０００８】
本発明者はさらに上記タンパク質を骨髄移植を行う際の骨髄幹細胞を含む骨髄単核球細胞に添加したところ、骨髄単核球細胞の細胞死を防ぎ、骨髄移植時の単核球細胞の劣化を防止することをも見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち、本発明の態様は以下の通りである。
[１] Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
[２] Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される[１]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
[３] FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、[１]または[２]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【００１０】
[４] 細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される[３]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【００１１】
[５] [１]〜[４]のいずれかの骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を用いて骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を生存率を低下させずに凍結保存する方法。
[６] Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
[７] Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される[６]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
[８] FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、[６]または[７]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【００１２】
[９] 細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される[８]の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
[１０] 人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を、[６]〜[７]のいずれかの骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法。
【発明の効果】
【００１３】
骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を凍結する際にFNKタンパク質に細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質を添加することにより、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞死を抑制することができ、凍結・融解後の生存率が高まる。従って、上記タンパク質は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の凍結保存剤として利用することができる。また、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する際にFNKタンパク質に細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質を添加することにより、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞死を抑制することができ、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率を高めることができる。従って、上記タンパク質は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の細胞活性維持剤あるいは移植効率増強剤として利用することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
細胞死抑制活性強化タンパク質であるFNKは、がん原遺伝子であるbcl-2遺伝子（Science 226(4678):1097-1099, 1984; Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81(22):7166-7170, 1984; Proc.Natl.Acad.Sci.USA 83(14):5214-5218, 1986; Cell47(1):19-28, 1986）のホモログからなるbcl-2ファミリーに属するbcl-xL遺伝子(Cell 74(4):597-608, 1993)を改変することにより得られる。
【００１５】
FNKは、Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つのアミノ酸が置換されたアミノ酸配列を有する。好ましくは３つが置換されている。FNKをコードする遺伝子は、bcl-xL遺伝子のコード領域において、第22番目のTyrをコードするトリプレットコドン(tac)をPheをコードするコドン（tttまたはttc）に置換する塩基の置換、第26番目のGlnをコードするコドン(cag)をAsnをコードするコドン(aatまたはaac)に置換する塩基の置換および第165番目のArgをコードするコドン(cgg)をLysをコードするコドン(aaaまたはaag)に置換する塩基の置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つの置換を有するように塩基配列を変異させることにより得られる。FNKタンパク質をコードするDNA配列およびアミノ酸配列の一例として、ラット由来のものをそれぞれ配列番号１および２に、ヒト由来のものをそれぞれ配列番号３および４に示す。
【００１６】
本発明で用いるFNKはいかなる動物種由来のBcl-xLタンパク質を改変したものでもよく、例えばヒト、マウス、ラット、ブタ、イヌ由来のBcl-xLタンパク質が挙げられる。図７にヒト、マウス、ラット、ブタ、イヌ由来のBcl-xLタンパク質のアラインメントを示す。また、ヒト、マウス、ラット、ブタおよびイヌ由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号５〜９に示す。図７において、いずれの動物種由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列においても、第22番目のアミノ酸はTyrであり、第26番目のアミノ酸はGlnであり、165番目のアミノ酸はArgである。図７に示されている動物種以外の動物種由来のBcl-xLタンパク質においても、これら３箇所のアミノ酸は保存されていると考えられ、本発明のFNKタンパク質は由来動物種を問わず、Bcl-xLタンパク質のアミノ酸配列において、第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちのいずれか１つ、いずれか２つまたは３つのアミノ酸が置換されたアミノ酸配列を有するタンパク質を包含する。また、本発明のFNKタンパク質は、各種動物由来のFNKタンパク質が有するアミノ酸配列において、第22番目、第26番目および165番目のアミノ酸以外のアミノ酸の１個または数個のアミノ酸が置換したアミノ酸配列を有するタンパク質であって、FNKタンパク質活性を有するタンパク質、またはFNKタンパク質が有するアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が欠失または付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質であって、FNKタンパク質活性を有するタンパク質も包含する。一般に、遺伝子には個体特異的な遺伝的多型が知られている。ヒトのBcl-xLタンパク質においても、FNKタンパク質活性に影響を与えない部位にアミノ酸置換（遺伝的多型）がある場合があり、例えば、配列番号５に表すヒトBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列において、第70番目のGlyがAlaに置換されているものが知られている。本発明のFNKタンパク質は、このような個体特異的なアミノ酸置換であって、FNKタンパク質活性に大きな影響を与えないアミノ酸置換を有するアミノ酸配列からなるタンパク質をも包含する。
【００１７】
本発明のFNKタンパク質は、本明細書に記載のBcl-xLタンパク質もしくはFNKタンパク質のアミノ酸配列またはbcl-xL遺伝子もしくはFNKタンパク質をコードするDNAの塩基配列情報を基に、得ることができる。例えば、特開2001-120281号公報には、ラット由来のFNKタンパク質について記載されており、該公報の記載に従って本発明のFNKタンパク質を得ることができる。
【００１８】
本発明の凍結保存剤に用いるFNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ドメイン(PTD)が連結している。
【００１９】
細胞膜通過ドメインはアルギニン、リシンを含む塩基性アミノ酸を種に含む細胞膜通過ペプチドからなり、アミノ酸の光学異性体（D体、L体）に依存しない。細胞膜通過ペプチドとしては種々のものが知られており、本発明においてはいかなる細胞膜通過ペプチドを用いることができる。
【００２０】
細胞膜通過ペプチドとして、６個から１２個、好ましくは７個から11個、さらに好ましくは９個または10個のアルギニンのみまたはリシンのみからなるペプチド、５個から15個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、ならびに前記アルギニンのみまたはリシンのみからなるペプチドまたはアルギニンおよびリシンからなるペプチドにおいて、数個、好ましくは１個から８個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド等が挙げられる。例としてアルギニン９個からなるペプチド（R9、配列番号１０および１１）、アルギニン７個およびリシン２個からなるペプチド（K2R7、配列番号１２および１３）、アルギニン７個およびグリシン６個からなるペプチド（R7G6、配列番号１４および１５）等が挙げられる。これらの細胞膜通過ペプチドを連結するとき、FNKタンパク質のアミノ酸配列の第１番目のメチオニンは残しておいてもよいし、除去してもよい。
【００２１】
また、細胞膜通過ペプチドとして、HIV-1・TATの細胞膜通過ドメイン（protein transduction domain）YGRKKRRQRRR（配列番号１６および１７）やショウジョウバエのホメオボックスタンパク質アンテナペディアの細胞膜通過ドメインRQIKIWFQNRRMKWKK（配列番号１８）が挙げられる。その他、VP22のC末端(267-300)ペプチドDAATATRGRSAASRPRERPRAPARSASRPRRPVE（配列番号１９）、HIV-1/Rev(34-50)ペプチドTRQARRNRRRRWRERQR（配列番号２０）、FHV/coat(35-49)ペプチドRRRRNRTRRNRRRVR（配列番号２１）、K-FGFのN末端(7-22)の疎水性領域AAVALLPAVLLALLAP(配列番号２２)等が挙げられる。
【００２２】
また、FNKタンパク質と細胞膜通過ペプチドの間にスペーサー配列を有していてもよい。スペーサー配列はアミノ酸数個からなりその配列には限定はないが、例えば、１個から５個、好ましくは１個から３個、さらに好ましくは１個のグリシンが挙げられる。
【００２３】
これらの細胞膜通過ペプチドは、それぞれの細胞膜通過ペプチドをコードするDNAをFNKをコードするDNAと連結して融合DNAを作製し、この融合DNAを遺伝子工学の手法により大腸菌等の宿主細胞で発現させることによって、Ｎ末端側に細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質を作製することができる。あるいはまた、２価の架橋剤（例えば、EDCやβ-アラニン等を介して、FNKタンパク質と細胞膜通過ペプチドを結合させる方法によって細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質を作製することができる。
【００２４】
細胞膜通過ペプチドを連結したFNKタンパク質として、ヒトFNKタンパク質にK2R7ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２３に、アミノ酸配列を配列番号２４に示す）、ヒトFNKタンパク質にR7G6ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２５に、アミノ酸配列を配列番号２６に示す）、ヒトFNKタンパク質にR9ペプチドを連結させたもの（DNA配列を配列番号２７に、アミノ酸配列を配列番号２８に示す）、ヒトFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞膜通過ドメインを連結させたもの（DNA配列を配列番号２９に、アミノ酸配列を配列番号３０に示す）およびラットFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞通過ドメインを連結させたもの（DNA配列を配列番号３１に、アミノ酸配列を配列番号３２に示す）等が挙げられる。
【００２５】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤は、上記のFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を含み、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させることなく凍結保存することができる。ここで、骨髄細胞とは、骨髄から採取された細胞をいい、臍帯血細胞とは臍帯から採取された細胞をいい、末梢血幹細胞とは末梢血から分離された幹細胞（造血幹細胞）をいう。本発明の凍結保存剤は、骨髄または臍帯血から得られた細胞全体を対象とすることもできるし、骨髄または臍帯血細胞から単離された幹細胞（造血幹細胞）や単核球を対象とすることもできる。また、骨髄または臍帯血細胞から造血幹細胞等の表面に発現する抗原であるCD34抗原を発現しているCD34陽性細胞またはCD34陽性CD38陰性細胞をフローサイトメーター等を用いて単離し（CD34陽性細胞）、本発明の凍結保存剤を用いて凍結保存することもできる。また、末梢血幹細胞も末梢血から単核球またはCD34抗原を発現している細胞を単離することにより得られる。本発明において、細胞を劣化させないとは、細胞死を起こすことなく細胞の生存率を高く保ち、さらに細胞本来が有する機能を維持させることをいう。本発明の凍結保存剤は、RPMI1640、DMEM等の細胞培養用培地、生理食塩水、リンガー液、リン酸緩衝液等の緩衝液にFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を0.01〜100nM、好ましくは0.05nM〜50nM、さらに好ましくは0.1nM〜10nM、特に好ましくは0.3nM〜10nM含んでいる。また、適宜動物血清、ヒトアルブミン等の動物由来アルブミン、スクロース等の糖や、ジメチルスルホキシド（DMSO）、ハイドロキシエチルスターチ（HES)、エチレングリコール、グリセロール等を含んでいてもよい。採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を105〜108細胞/mlの密度で懸濁させ、クライオチューブ等の細胞凍結用チューブや細胞凍結用バッグに入れ、凍結すればよい。なお、一般的に細胞を凍結する場合は、細胞密度が高い方が凍結・融解後の細胞生存率が高くなる。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤は、105細胞/mlの低密度で凍結した場合でも、本発明保存剤がない場合に比べ、凍結・融解後の細胞生存率を高く保つことが可能である。凍結は-20℃以下、好ましくは-40℃以下、さらに好ましくは-80℃以下あるいは液体窒素中で行う。凍結期間は限定されず、上記低温に保たれている限り、数ヶ月から数年間の長期保存を行っても、凍結骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞は劣化することはない。本発明は凍結保存剤のpHは、中性付近が好ましく、pH４〜８、好ましくはpH５〜7.5、さらに好ましくはpH６〜７である。
【００２６】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞に添加し、凍結後融解した場合の、生存率は20％以上、好ましくは30％以上、さらに好ましくは35％以上、特に好ましくは40％以上である。
【００２７】
本発明は、採取した細胞を上記骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞保存剤に入れ凍結することを含む、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させずに凍結保存する方法をも包含する。
【００２８】
本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、上記のFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を含み、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する際に骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を劣化させることなく骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率を高めることができる。また、造血幹細胞の移植において、幹細胞の生体外での増殖は希求されているが、本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、幹細胞の生体外での増殖にも用いることができる。すなわち、幹細胞の活性を維持することにより、幹細胞の増殖も促進される。この際、幹細胞を培養する際に、適宜幹細胞の増殖因子等を添加すればよい。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、RPMI1640、DMEM等の細胞培養用培地、生理食塩水、リンガー液、リン酸緩衝液等の緩衝液にFNKタンパク質にPTDを連結させたタンパク質を0.01〜100nM、好ましくは0.05nM〜50nM、さらに好ましくは0.1nM〜10nM、特に好ましくは0.3nM〜10nM含んでいる。また、適宜動物血清等を含んでいてもよい。本発明は骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤のpHは、中性付近が好ましく、pH４〜８、好ましくはpH５〜7.5、さらに好ましくはpH６〜７である。採取した骨髄細胞、臍帯血細胞もしくは末梢血幹細胞または凍結保存後融解した骨髄細胞、臍帯血細胞もしくは末梢血幹細胞懸濁液中に本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤を添加すればよい。骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を移植する前に本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で数日間培養してもよいし、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植直前に添加してもよい。また、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で培養し、移植前に、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を単離し、維持剤と分離した後に移植してもよい。本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤の存在下で骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を培養することにより、移植細胞の生存率（移植効率）が上昇する。すなわち、本発明の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤は、骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞移植効率増強剤として用いることもできる。さらに、本発明は、人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法をも包含する。
【００２９】
本発明の凍結保存剤、活性維持剤を用いて凍結保存したまたは活性維持した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞は白血病の治療や、腎癌、脳腫瘍等の腫瘍の治療に用いることができる。
【実施例】
【００３０】
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例１ PTD-FNKによる凍結耐性
１．骨髄単核球細胞の調製、PTD-FNK処理
ラットFNKタンパク質に１個のGlyをスペーサーとしてTatの細胞膜通過ドメインを連結させたタンパク質（DNA配列を配列番号３２にアミノ酸配列を配列番号３３に示す）を大腸菌で発現させ精製し、実施例１および２で用いた。この発現及び精製に関しては、既に報告されている方法を用いて行った（Asoh, S. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99, 17107-17112. (2002)）。
【００３１】
インフォームド・コンセントを得たヒトから採取された正常骨髄(1〜2 ml)から常法に従いリンフォプレップ(Lymphoprep, 1.077±0.001 g/ml, AXIS-SHIELD PoC AS社, オスロー、ノルウェー)を用いて行った。骨髄はPBS (Phosphate-buffered saline)溶液を加えて骨髄溶液とした。50-mlファルコンチューブ (Falcon社)に15 mlのリンフォプレップを加え、その上に静かに30 mlの骨髄溶液を重層し、界面がきちんとできていることを確認した。20℃, 400xgの遠心条件で35分遠心し、ブレーキをかけずに止めた。界面に中間層として認められる単核球層をスポイトで取り出して新しいファルコンチューブに入れる。等量以上のPBS/EDTA溶液を加えて混合後、20℃, 250xgの遠心条件で10分遠心し、ブレーキをかけずに止めた。骨髄単核球細胞を沈殿物として回収し、10% FBS（牛胎児血清）を含むRPMI1640 (Life Technologies,インビトロジェン社)培地で懸濁した。トリパンブルー色素を用いて、血球計数板上で生細胞数を計測した。RPMI1640培地で細胞を2 x 106 と2 x 105 個/mlの細胞濃度にし、PTD-FNKを所定の濃度に加えた。PTD-FNK 0 nMでは等量の溶媒（vehicle）を加えた。37℃で保温した後、2-ml クリオチューブ (Nunc社、デンマーク)に250μlずつ入れた。これに、250μlのCP-1細胞凍害保護液を加え500μlとした（最終的細胞濃度は1 x 106 と1 x 105 個/ml)。CP-1細胞凍害保護液は極東製薬工業（株）（東京）から発売されているCP-1(50 ml用；hydroxyethyl starch 10 g + demethyl sulfoxide 5 mlに生理食塩水を加えて34 mlとして販売)に、添付されていて説明書に従って、ヒト血清アルブミン(Calbiochem製、メルクジャパン、東京）を注射用蒸留水（大塚製薬）で25%に溶かした溶液を加えて全量50 mlとして調製した。
【００３２】
２．凍結保存と生細胞数の計測
細胞が入ったクリオチューブはフリージングコンテナー NalgenCryo 1℃ freezing container (Nalgene社、米国)内に設置し、フリージングコンテナーを-80℃の冷凍庫内に置いて冷却し、-80℃の冷凍庫内で一週間保存した(1st cycle)。保存したクリオチューブを取り出し、37℃のウォーターバスに浸けることで細胞を急速に解凍した。解凍後、穏やかに懸濁した。1 x 106個/mlで凍結保存した細胞については、250μlを5 ml のRPMI1640培地がはいった15-mlファルコンチューブに入れた。残りの250μlが入っているクリオチューブは、再びフリージングコンテナー内に設置し、フリージングコンテナーを-80℃の冷凍庫内に置いて冷却し、-80℃の冷凍庫内で一週間保存した（2nd cycle）。1 x 10５ 個/mlで凍結保存した細胞については、500μlを5 ml のRPMI1640培地がはいった15-mlファルコンチューブに入れた。
【００３３】
15-mlファルコンチューブに入れた細胞は遠心（上記条件）によって沈殿物として回収し、250μlのRPMI1640培地に懸濁した。5μlを等量のトリパンブルー溶液と混合し、血球計数板で生細胞数を計測した（図１. 生存率）。2nd cycle の凍結保存（-80℃、1週間）した細胞についても同様にして急速解凍し、トリパンブルーを使って、血球計数板で生細胞数を計測した。図１は、1 x 106 と1 x 105 個/mlの条件で１回（1st cycle）凍結・融解後の細胞の生存率を示す(3回の実験結果)。凍結前の細胞数（1 x 106 と1 x 105 個/ml）をそれぞれ100％として,PTD-FNKの各濃度での平均の生存率（棒グラフ）に標準偏差（縦線）をつけて示した。統計的解析（one-way ANOVA）の結果、1 x 106個/mlの条件でPTD-FNK 0 nM (vehicle)との有意差が認められ、＊はP<0.05, **はP<0.01を示す。1 x 105 個/mlの条件でもPTD-FNK 0 nM (vehicle)との有意差が認められ、#はP<0.005、##はP<0.001を示す。
【００３４】
図１に示すように、いずれの細胞濃度でもPTD-FNKは明白に凍結・融解による細胞死を抑制し、それはPTD-FNK濃度依存的であり、その効果は0.3 nMでプラトーに達した。細胞濃度が高い条件に比べ、低い条件のほうで、PTD-FNKの細胞死抑制活性は顕著に認められた。
【００３５】
実施例１の結果は、PTD-FNKは骨髄単核球細胞の凍結・融解による細胞死を抑制したことを示す。
【００３６】
３．CD34幹細胞のフローサイトメトリーによる検討
1 x 106 個/mlで凍結保存細胞については、骨髄単核球細胞の中で造血幹細胞や血管新生に関わっている血管内皮幹細胞を含んでいるCD34陽性細胞について検討した。トリパンブルーを使って、血球計数板で生細胞数を計測した残りの細胞（245μl）を蛍光色素FITCが結合した抗ヒト34抗体（FITC-conjugate anti-human CD34 mouse monoclonal antibody; BD Biosciences Pharmingen社、米国）とヨウ化プロピヂウム(PI; 5μM)で処理した。処理の条件はBD Biosciences Pharmingen社から提供された説明書（添付）に従って行った。フローサイトメーター(EPICS ELITE ESP; Beckma Coulter K.K.社、東京)を使って、10,000個の細胞についてPI染色性（陽性;死細胞、陰性;生細胞）とFITC染色性（陽性;CD34 positive, 陰性;CD34 negative）を調べ、生存している（PI陰性）細胞の中で、CD34陽性幹細胞の割合を計測した(図２)。使用した抗ヒト34抗体のCD34染色特異性については、同じアイソタイプの抗体FITC-conjugated IgG (BD Biosciences Pharmingen社、米国)で上記細胞を処理しても、FITC陽性となった細胞が検出されないことで確認した。
【００３７】
図２に1 x 106 個/mlの条件で凍結・融解を1回(1st cycle)および2回(2nd cycle)行った後の骨髄単核球細胞中の生存しているCD34陽性幹細胞の割合を示した。また表１に生存CD34陽性細胞の割合を示す。PI陰性（生存している細胞）を縦軸、その細胞のFITC蛍光強度を横軸にとった。図２中に示した横棒の範囲内のFITC蛍光強度を持った生細胞をCD34陽性細胞とし、その全生細胞数に対する割合（％）を横棒の上に示した。通常、ヒト骨髄単核球細胞中にはCD34陽性細胞が1.5%から8.2% (medianは5.4%)含まれている。
【００３８】
図２に示すように、1st cycleでも2nd cycleでも、処理したPTD-FNK濃度依存的に生存しているCD34陽性細胞の割合が上昇した。骨髄単核球細胞の生存率（図１)を考慮すると、PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べた時、CD34陽性細胞数は3倍多く生き残っている。
【００３９】
また、PTD-FNK 0 nMでは1回(1st cycle)に比べ2回(2nd cycle)目で、CD34陽性細胞の割合が55%に減少していた。一方、PTD-FNK処理した細胞では、2回の凍結・融解後でも1回の時とほぼ同じ割合を示した。PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べると、CD34陽性細胞の割合は3.6倍高かった。
【００４０】
【表１】
【００４１】
さらに、２回凍結・融解した後の骨髄単核球細胞の生存率は2.6% (標準偏差1.1;PTD-FNK 0 nM), 6.0% (標準偏差1.5;PTD-FNK 0.1 nM), 6.5% (標準偏差1.4;PTD-FNK 0.3 nM), 8.6% (標準偏差1.8;PTD-FNK 1 nM)であった（３回の実験結果）。この生存率と上記２の結果を一緒に考慮すると、PTD-FNK 0 nMと1 nMを比べた時、２回の凍結・融解後に生き残ったCD34陽性細胞数はPTD-FNK処理で12倍上昇した。
【００４２】
以上のように、本実施例は、PTD-FNKは骨髄CD34陽性幹細胞の凍結再解凍による細胞死を著しく抑制したことを示す。
【００４３】
実施例２ ラット下肢虚血モデルを用いた、骨髄単核球細胞の移植効率に対するPTD-FNKの効果の検討
EGFP-トランスジェニック SDラット（”green rat CZ-004” 6から9週齢、雄、大阪大学遺伝情報実験センター 岡部 勝 教授より使用許可を得て購入）の大腿骨と脛骨から骨髄を取り出し、常法に従い、Lymphoprep (Axis-Shield PoC AS, Oslo, Norway)を用いた密度勾配遠心法で骨髄単核球細胞を調製した。調製されたgreen rat由来骨髄単核球細胞はEGFP(enhanced green fluorescent protein)を発現し、EGM-2培地で８日間培養してもEGFPの蛍光が消滅しないことを確認した（図３パネルA、B）。
【００４４】
常法に従い、正常SDラットの右側大腿動脈を抜去して下肢虚血モデルを作製した。green rat由来骨髄単核球細胞をPTD-FNK（0、10 nM）を含むEGM-2培地で1時間処理し、1 x107個の細胞を下肢虚血モデルラットの前脛骨筋に注入（移植）した。8日後に注入部の筋肉を取り出し、注入部を中心に上下に300μmごとに8μm厚の凍結切片を5枚作製した。ヨウ化プロピジウム (PI)で染色し、細胞の並び方から直径50μm以上の血管のEGFPの蛍光を共焦点レーザー顕微鏡で調べた（図6パネルA、B、C）。このような細胞の並び方をしている構造が血管であることを隣接凍結切片を用いて、1枚をPI染色で、もう1枚を血管壁のフォンウィルブランド因子に対する抗体(DAKOPATTS, Denmark；希釈倍率 1:500)で染色し、確認した（図４パネルA、B）。切片あたりEGFPの蛍光を発している血管の数を計数し、その平均値（各４匹,5切片/匹）を図5に示した。図中のscale barは100μmである。
【００４５】
各図は以下を示す。
図３A 調製直後のgreen rat由来骨髄単核球細胞のEGFPの蛍光
図３B EGM-2培地で8日間培養したgreen rat由来骨髄単核球細胞のEGFPの蛍光
図４A PI染色した隣接切片。中央にPI染色された細胞の並び方から血管とおもわれる。
図４B 上記Aの隣接切片を、抗フォンウィルブランド因子(vWF)抗体で染色した。中央部が抗体で染色され、上記AのPI染色で血管と思われた構造が血管であることが確認された。
図５ PTD-FNKで処理、未処理のgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入された虚血部位の前脛骨筋のEGFP陽性の切片あたりの血管数。＊P＜0.03, t 検定。
図６A、B、C 図5で計測した切片の代表的染色像。同じ切片の(A) PI染色、(B) EGFPの蛍光、（C） 2枚の像を重ね合わせた像（merge）。
【００４６】
本実施例に示すように、PTD-FNK処理で、移植骨髄単核球細胞が生き残って定着している血管数が約2倍多かった。PTD-FNK処理で、移植骨髄単核球細胞の虚血による細胞死を抑制し、その結果移植効率を高めたと考えられる。
【図面の簡単な説明】
【００４７】
【図１】凍結・融解後の骨髄単核球細胞の生存率を示す図である。
【図２】凍結・融解後の骨髄単核球細胞中のCD34陽性幹細胞の割合を示す図である。
【図３】green rat由来骨髄単核球細胞の蛍光を示す図である。
【図４】PI染色で細胞の並び方から判断した血管様構造が確かに血管であることを確認した図である。
【図５】PTD-FNKで処理したgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入した虚血部位の前脛骨筋において、移植骨髄単核球細胞が定着した血管の数を示す図である。
【図６】PTD-FNKで処理したgreen rat由来骨髄単核球細胞を注入した虚血部位の前脛骨筋において、移植骨髄単核球細胞が定着した血管を示す図である。
【図７】ヒト、ラット、マウス、ブタおよびイヌ由来のBcl-xLタンパク質のアミノ酸配列のアラインメントを示す図である。
【配列表フリーテキスト】
【００４８】
配列番号１０から３２、合成
【特許請求の範囲】
【請求項１】
Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項２】
Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される請求項１記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項３】
FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、請求項１または２に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項４】
細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される請求項３記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を用いて骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の生存率を低下させずに凍結保存する方法。
【請求項６】
Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項７】
Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される請求項６記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項８】
FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、請求項６または７に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項９】
細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される請求項８記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【請求項１０】
人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を、請求項６〜７のいずれか１項に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法。
【請求項１】
Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項２】
Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される請求項１記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項３】
FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、請求項１または２に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
【請求項４】
細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される請求項３記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞凍結保存剤を用いて骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の生存率を低下させずに凍結保存する方法。
【請求項６】
Bcl-xLタンパク質の第22番目のTyrのPheへの置換、第26番目のGlnのAsnへの置換および165番目のArgのLysへの置換のうちの少なくとも１つの置換を有するFNKタンパク質を有効成分として含む骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項７】
Bcl-xLタンパク質がヒト由来（配列番号５）、マウス由来（配列番号６）、ラット由来（配列番号７）、ブタ由来（配列番号８）およびイヌ由来（配列番号９）Bcl-xLタンパク質から選択される請求項６記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項８】
FNKタンパク質のN末端側に細胞膜通過ペプチドが連結している、請求項６または７に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
【請求項９】
細胞膜通過ペプチドが、以下のペプチド(i)〜(xiii)のいずれかから選択される請求項８記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤。
(i) ６〜１２個のアルギニンからなるペプチド、
(ii) ６〜１２個のリシンからなるペプチド、
(iii) ６〜１５個のアルギニンおよびリシンからなるペプチド、
(iv) (i)から(iii)のいずれかのペプチドにおいて、数個のアミノ酸がグリシンに置換されたペプチド、
(v) 配列番号１１で表される(i)のペプチド、
(vi) 配列番号１３で表される(iii)のペプチド、
(vii) 配列番号１５で表される(iv)のペプチド、
(viii) 配列番号１７で表されるペプチド、
(viiii) 配列番号１８で表されるペプチド、
(x) 配列番号１９で表されるペプチド、
(xi) 配列番号２０で表されるペプチド、
(xii) 配列番号２１で表されるペプチド、ならびに
(xiii) 配列番号２２で表されるペプチド
【請求項１０】
人体から採取した骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞を、請求項６〜７のいずれか１項に記載の骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞活性維持剤と共に培養することを含む、移植骨髄細胞、臍帯血細胞または末梢血幹細胞の移植効率増強方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【公開番号】特開２００６−２４６８５３（Ｐ２００６−２４６８５３Ａ）
【公開日】平成１８年９月２１日（２００６．９．２１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−７１８１９（Ｐ２００５−７１８１９）
【出願日】平成１７年３月１４日（２００５．３．１４）
【出願人】（８０３００００３４）学校法人日本医科大学 (37)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１８年９月２１日（２００６．９．２１）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年３月１４日（２００５．３．１４）
【出願人】（８０３００００３４）学校法人日本医科大学 (37)
【Ｆターム（参考）】
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