ウィルス感染を治療するためのアセチルサリチル酸塩を使用する方法
【課題】本発明は、特に耐性が高く、とりわけ喘息発作を引き起こすリスクを確実に防ぐことが可能な、ウィルス感染を治療するためのアセチルサリチル酸を含む製剤を提供することを目的とする。
【解決手段】本発明は、人間又は動物、とりわけ哺乳類と鳥類におけるウィルス感染の予防又は治療に用いられる医薬組成物を生成するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含む物理学的有効量のＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の使用方法を提供する。
【解決手段】本発明は、人間又は動物、とりわけ哺乳類と鳥類におけるウィルス感染の予防又は治療に用いられる医薬組成物を生成するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含む物理学的有効量のＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の使用方法を提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬組成物を製造するための塩基性アミノ酸を含むO−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の新規な使用方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
インフルエンザは、今もなお大流行の可能性を持つ人類の大疫病の1つである。誘導病原体となるA型インフルエンザウィルスに対する薬は少ししか存在しないが、ウィルスに対して即効性がある。問題は、耐性が比較的早く生じる点である。さらに、Ｈ５型のＡ型インフルエンザウィルスに感染することで誘発され、家禽で流行的に生じる鳥インフルエンザは、人間にも感染するというリスクを有する。よって、感染した家禽に接触する人は特に高いリスクにさらされる。また特筆すべきは、Ｈ５Ｎ１型ウィルスがオセルタミビルを含むいくつかの承認された薬に対して、次第に影響を受けなくなっているという報告があった。よって、ウィルス感染の予防及び治療のための、可能であれば耐性を誘発しない新規且つ有効な抗インフルエンザ薬が緊急に必要とされている。
【０００３】
アセチルサリチル酸は宿主細胞において転写因子ＮＦ−ｋＢを阻害し、ＮＦ−ｋＢシグナル経路の抑制過程で必須ウィルス成分は細胞核内に留まり、もはやウィルス粒子に組み込まれることが不可能となることがＷＯ2004/060360Ａ１から知られている。ウィルス感染の予防又は治療のためにアセチルサリチル酸を気体投与することも上記文献から知られている。
【０００４】
例えば、ＤＥ102 02 019Ａ１から塩基性アミノ酸を含むアセチルサリチル酸塩が知られており、これによって得られる製剤は内服のみの使用に限定される。さらに、リウマチ性疾患、関節炎、神経痛、筋肉痛、偏頭痛、虚血性心疾患、脳卒中、狭心症、心筋症、バイパス手術、経皮経管冠動脈形成、ステント移植、ＨＩＶ患者の免疫システムへの刺激、腫瘍の予防、認知症による認知力低下の遅延、胆石形成の抑制及び／又は糖尿病の治療のために上記塩を用いることが上記文献から知られている。従来周知となっている塩はすでにAspisol（登録商標）の名前で、喘息、花粉症、鼻粘膜の腫れ、慢性気道感染症を治療するための薬として使用されており、内服の他に注射により投与される。これら全ての疾患は、インフルエンザウィルスによるウィルス感染と直接的な相関関係があるわけではない。
【０００５】
気道又は肺にエアロゾルとして吸入投与される、抗ウィルス剤としての純粋なアセチルサリチル酸の使用は、動物モデルにおいて概ね非常に有効であることが判明した。しかし、純粋なアセチルサリチル酸の吸入は、人間への使用では気道に強い刺激を生じることもある。さらに、単独で使用される場合、過敏な患者におけるアセチルサリチル酸の吸入は喘息発作を引き起こすことがある点が記載されている。従って、抗インフルエンザ薬としてアセチルサリチル酸を気体で使用することは、喘息患者又は喘息のリスクのある人にはどのような場合であっても禁忌とされる。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
よって本発明は、特に耐性が高く、とりわけ喘息発作を引き起こすリスクを確実に防ぐことが可能な、ウィルス感染を治療するためのアセチルサリチル酸を含む製剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記目的を達成するために、人間又は動物、とりわけ哺乳類と鳥類におけるウィルス感染の予防又は治療に用いられる医薬組成物を生成するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含む物理学的有効量のＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の使用方法を本発明は提供する。本発明の目的の対象とされるウィルス感染は、とりわけ自然発生的な野生型ウィルスによる感染であり、遺伝子組み換えウィルスによる感染は対象とされない。
【０００８】
鳥類の中で予防又は治療に関連するものは、とりわけ雌鶏、ガチョウ、アヒル、七面鳥、うずら又は鳩などの家禽であるが、鳴禽もまた関連する。
【０００９】
投与される製剤は酸ではないため、このような塩を特に気体投与で用いることにより、例えば気道粘膜等における組織の刺激が回避される。これにより、特に喘息を患う患者又は喘息のリスクのある人において喘息発作が確実に防がれ、副作用のリスクを有さず、さらに製剤はすでに喘息の薬として使用されているため、治療薬としても予防薬としても幅広く適用される上で実質的に何の障害もない。さらに、ウィルス複製の抑制効果はアセチルサリチル酸の誘導体化によって実質的に影響を受けず、それどころか、驚くべきことに部分的にわずかに増加することが本発明で判明した。
【００１０】
塩基性アミノ酸が“リジン、アルギニン、オルニチン、ジアミノ酪酸又はこれら酸の混合物”の中から選択されるのであれば、モノアセチルサリチル酸であることが好ましい。アミノ酸は、アルファ原子において水素又は随意のラジカルが側鎖として結合されたαアミノカルボン酸であってもよい。塩基性アミノ酸の側鎖は、１つ又はいくつかの塩基性基、詳細にはアミノ基から構成される。塩基性アミノ酸はＤ−リジン、Ｌ−リジン又はＤ−リジンとＬ−リジンの混合物であることが好ましい。
【００１１】
さらに製剤は、具体的にはグリシン等の非塩基性側鎖を有する天然又は非天然のアミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる。組成物におけるリジンとグリシンの重量比は１００：１から１：１の範囲とされ、具体的には１００：１から１０：１の範囲内とされる。製剤はリジンとグリシンのアミノ酸の塩の混合物であることが好ましい。特に好ましいのは、Aspisol（登録商標）という商標名で流通している組成物の例えば水溶液状の塩又は混合塩である。
【００１２】
本発明のために、生体に服用又は投与された後に本発明に応じて使用される活性物質に自然的に代謝されるプロドラッグを含む医薬組成物が使用されてもよい。
【００１３】
本発明によると、使用される組成物は多数のウィルス感染の予防又は治療に用いることが可能である。とりわけ適するのは、インフルエンザウィルス等のマイナス鎖ＲＮＡウィルス、特にＨ５型又はＨ７型のウィルスを有するＡ型インフルエンザウィルスによる感染の予防又は治療のための組成物である。
【００１４】
しかし、本発明に従って使用される物質が、ＮＦ−ｋＢ依存的に規制され、ウィルスによって誘発されるサイトカインの過剰発現（サイトカイン・ストーム）を抑制することも発見された。従って、本発明による物質によって、サイトカインの過剰発現ととりわけ相関的な病原ポテンシャルを持つ多くのウィルスの病原性を一般に低下することが可能となる。よって、本発明に応じて使用される組成物は、コロナウィルス（ＳＡＲＳ），呼吸器合胞体ウィルス（ＲＳＶ），マールブルグウィルスやエボラウィルス等のフィロウィルス、ラッサウィルス、アルゼンチン出血熱ウィルス、ボリビア出血熱ウィルス、ベネズエラ出血熱ウィルス等のアレナウィルス、ハンタウィルス、デング熱ウィルスや黄熱病ウィルス等のフラビウィルス、クリミア・コンゴ出血熱ウィルス、リフトバレー熱ウィルス、パラインフルエンザウィルス（１、２及び３型）、ライノウィルス、ヒトメタ肺炎ウィルス（ｈＭＰＶ）及びエプスタイン・バーウィルスによるウィルス感染の治療及び予防にも適する。
【００１５】
本発明に応じて用いられる医薬組成物の生薬製剤は、この技術における通常の方法で生成することができ、原理的には、例えば経口、注射又は吸入用の気体等による随意の投与法が適用可能である。適する固体又は液体の生薬製剤の形態としては、例えば顆粒、粉末、糖衣錠、錠剤、（マイクロ）カプセル、坐薬、シロップ、ジュース、懸濁液、乳剤、点滴剤もしくは注射剤（i.v.、i.p.、i.m.又は s.c.）もしくは微細分散液（エアロゾル）、経皮システム、活性物質を持続的に放出する製剤等があり、その生成にはキャリア物質、爆発剤、結合剤、コーティング剤、膨張剤、滑り剤もしくは潤滑剤、調味料、甘味料及び溶液メディエーター等の通常の手段が用いられる。補助物質としては、炭酸マグネシウム、二酸化チタン、ラクトース、マンニトール及びその他のサッカリド、滑石、乳タンパク質、ゼラチン、でんぷん、セルロース及びその誘導体、タラ肝油、ひまわり油、ピーナッツ油又はゴマ油等の動物性及び植物性油、ポリエチレン・グリコール、精製水や例えばグリセリン等の単一又は多原子価アルコール、及び上記溶剤の混合物が挙げられる。本発明による医薬組成物は、本発明において用いられる少なくとも１種類の塩を、医薬的に適切で生理的に良好な耐溶性を有するキャリアに規定量混合され、場合によってはその後に適切な活性、追加又は補助物質と混合され、望ましい投与形態に製剤して生成される。経口投与のための製剤の例は、例えばＤＥ102 02 019 A1及びそれに引用された文献に記載されている。
【００１６】
しかしながら、生薬製剤としては、気体による経鼻投与のための液体の水性組成物（溶液）又は、例えばＣＦＣ（クロロフルオロカーボン）等の室温で液化する噴射剤、１，１，１，２−テトラフルオロエタン又は１，１，１，２，３，３，３−ヘプタフルオロプロパン等のハイドロフルオロアルカン、プロパン、ブタン、イソブタン、又は医療用エアロゾル処方物の分野で通常用いられるその他の噴射剤等の懸濁液に適用可能であれば、粉末状のものが好ましい。上記の噴射剤に加えて、又はその代替として、空気、酸素窒素、二酸化炭素、亜酸化窒素もまた利用可能である。組成物は、例えば生理学的に耐溶性のある表面活性物質等の医療用エアロゾル処方物の通常の追加及び補助物質、及び／又は従来の分散剤から構成されてもよい。
【００１７】
水溶液は０．０１ｍＭないし３．０Ｍ、好適には０．５ないし３．０Ｍ又は０．０１ないし１００ｍＭ、とりわけ０．１ないし１０ｍＭの塩又は混合塩の水溶液であることが好ましい。
【００１８】
溶液であれ、固体状又は懸濁液状の塩であれ、エアロゾルの粒径は、ＭＭＡＤ値（空気動力学的中央粒子径）が１０μｍよりも、好ましくは５μｍよりも小さいことが望ましい。空気動力学的粒度分布のＦＰＤ（微粒子量）又はＦＰＦ（微粒子の割合）の測定には、米国薬局方（ＵＳＰ）第６０１章又は欧州薬局方（Ph. Eur.）インハランダ承認基準（Inhalanda Monograph）に記載されている、例えば５段階多段階液体インピンジャー（ＭＳＬＩ）又は８段階アンダーセン・カスケード・インパクター（ＡＣＩ）などのインパクターが適している。空気動力学的粒度分布に基づき、エアロゾル製剤のＭＭＡＤ値は対数確立プロットを用いて計算することができる。好ましいＭＭＡD値では、エアロゾル粒子は呼吸性で、通常の投与期間において肺全体に十分な濃度が得られるように肺の深い場所まで達する。小さな粒子が再度吸引されるのを防ぐために、ＭＭＡD値の最低限度は０．１μｍ、好ましくは０．５μｍ、最適には１μｍと定められる。
【００１９】
本発明で用いられる塩は、例えばピンディスク、ボール又は空気分離ミルを用いて望ましいＭＭＡD値を得るために小片により細かくされるか、従来の方法で微粉化される。
【００２０】
本発明におけるエアロゾルの投与は、医療分野では常用されている吸入器や噴霧器などのエアロゾル発生器が備わった全ての吸引装置を用いて行うことができる。例としては、粉末エアロゾル吸入器又はＤＰＩ（粉末吸入器）、ノズル、超音波、振動膜噴霧器が挙げられる。さらに、電気流体力学の原理や液剤から凝縮されたエアロゾルを用いたエアロゾル発生器が使用されてもよい。適した吸入装置の例は、ＥＰ1741460Ａ、ＥＰ1700614Ａ、ＥＰ1258264Ａ及びＥＰ1163921Ａに記載されている。
【００２１】
用いたエアロゾル発生器のスループット率に関連した組成物の塩分濃度は、少なくとも１０ｍｇ、好ましくは少なくとも５０ｍｇ、最適には少なくとも１００ｍｇの塩がエアロゾルに変換され、５分以内、好ましくは２分以内、最適には１分以内に患者に投与されるように選択される。
【００２２】
さらに、最適な肺沈着を得るには吸気流又は吸気量を確認及び調整することが有効である。吸気流が速すぎると、エアロゾル粒子は咽頭後方にすぐにぶつかるか、声門で分散してしまう。また呼吸が速すぎると、エアロゾルは気管の上部までしか達さず、肺の深部までは届かない。そのため、用いられる吸引システムは患者による深く且つゆっくりとした吸引を保証するものでなければならない。子供への使用では、吸入量は少なくとも２００ｍｌ、好ましくは少なくとも５００ｍｌでなければならない。大人への使用では、吸入量は少なくとも３００ｍｌ、好ましくは少なくとも５００ｍｌとされる。適切には、上記のエアロゾル量の吸引は短くとも１秒、好ましくは短くとも３秒、最適には短くとも５秒の間に行われる。患者の吸気容量に応じて、吸気流は少なくとも１０００ｍｌ／秒、特に少なくとも５００ｍｌ／秒、とりわけ少なくとも３００ｍｌ／秒になるように、また呼吸量は少なくとも２０％、特に少なくとも３０％、とりわけ少なくとも５０％、最大で９５％になるように好適に調整される。後者は、患者によるゆっくりとした深い吸引を保証する。
【００２３】
本発明のために、センサーを用いて上記パラメーターを測定し、電気、音響及び／又は光による信号で吸入が正常に行われているか否かの情報を提供する吸入システムが使用されてもよい。上記のように作動する吸入装置に関しては、前記した文献を参照されたい。簡易的な吸入システムの場合、上記の測定結果が記された患者の情報シートが医薬組成物に加味されてもよい。
【００２４】
このように、本発明は天然又は非天然の塩基アミノ酸、噴射剤、及び選択的に補助及び／又はキャリア物質を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなるエアロゾル製剤にもまた関連する。塩は、完全な製剤に対して０．００１〜５０ｗｔ−％、０．００１〜１０ｗｔ−％、特に０．１〜１０ｗｔ−％、又は１０〜５０ｗｔ−％、特に３０〜５０ｗｔ−％の量で含まれる。塩が粒子状であるならば、１０μｍ以下、特に５μｍ以下のＭＭＡD値で含有される。
【００２５】
特に上記のような高濃度のものが用いられる場合、このような溶液から生成されるエアロゾルが上記のような小さな粒径で生成できるというのは驚くべきことである。
【００２６】
さらに本発明は、人間及び動物におけるウィルス感染を予防又は治療するための本発明によるエアロゾル製剤の使用方法にも関し、ウィルスに感染するリスクがある又は既に感染した人間又は動物は、生理学的に有効な量のエアロゾル製剤が鼻又は口から吸入されるように気体投与される。
【００２７】
最後に、本発明は供給タンクとそれに接続されたエアロゾル発生器を備えた吸入装置に関し、供給タンクには本発明によるエアロゾル製剤が備えられる。エアロゾル発生器の出力側には、通常マウスピースが接続される。さらに、制御装置による制御下で吸入流及び／又は吸入量を制御する手段となるエア・ポンプが備えられてもよい。吸入流及び呼吸量の制御及び／又は規制を行うための制御及び／又は規制手段が備えられてもよく、制御及び／又は規制手段は上述した数値に好適に調整される。
【００２８】
本発明による医薬組成物の上記説明は、本発明によるエアロゾル製剤とその使用及び吸入装置にも同様に適用される。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】実施例１において、Ａはアセチルサリチル酸又はアマンタジン又はオセルタミビルで処置された細胞のウィルス力価を非処置細胞の上清のウィルス力価と比較した図であり、Ｂはリジン・グリシン・アセチルサリチル酸又はオセルタミビルで処理された細胞のウィルス力価を非処置細胞の上清のウィルス力価と比較した図である。
【図２】実施例２において、ウィルス力価と時間の関係を示す図である。
【図３】実施例２において、Ａは２０時間の時間値でのウィルス力価を示した図であり、Ｂはウィルス力価の成長速度図を示した図である。
【図４】実施例３において、ＡはＦＰＶのウィルス力価を示した図であり、ＢはＭＢ１のウィルス力価を示した図である。
【図５】実施例４において、ＭＡＰＫの活性型に対して作用するリン酸特異抗体によって検出することが可能なＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫのウィルス誘発性活性化がウェスタンブロット法に基づいて示された図である
【図６】実施例４において、ＬＧ−アセチルサリチル酸の場合におけるカスパーゼ基質ポリＡＤＰリボースポリメラーゼ（ＰＡＲP）の切断によるカスパーゼ活性がウェスタンブロット法に基づいて示された図である。
【図７】実施例４において、ＬＧ−アセチルサリチル酸によってウィルスタンパクＭ１、ＮＰ、ＮＳ１及びＰＢ１の蓄積が阻害されていないことをウェスタンブロット法で示した図である。
【図８】実施例４における免疫蛍光分析の結果を示した図である。
【図９】実施例５におけるＬＧ−アセチルサリチル酸が投与されたマウス肺におけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率を示した図である。
【図１０】Ａ、Ｂはそれぞれ実施例６における実験前日及び実験当日のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１１】Ｃ、Ｄはそれぞれ実施例６における実験１日目及び実験２日目のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１２】Ｅ、Ｆはそれぞれ実施例６における実験３日目及び実験４日目のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１３】実施例６におけるＬＧ−アセチルサリチル酸群とＰＢＳ処置群の体重変化を示した図である。
【図１４】実施例６において、ＡはＬＧ−アセチルサリチル酸による処置／未処置の肝臓の重量を示した図であり、Ｂは同様の脾臓の重量を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００３０】
本発明は、実施例を参照として以下により詳細に説明される。
【実施例】
【００３１】
実施例１：耐性現象の調査
細胞因子に対して抗ウィルス的に作用する抑制剤としてのアセチルサリチル酸の耐性が特に課題となる問題であるため、その耐性変異株の生成傾向がウィルスに直接作用するアマンタジンやオセルタミビルなどの薬剤と比較された。Ａ５４９肺上皮細胞に高病原性鳥インフルエンザＡウィルス分離株A/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｈ７）（ＦＰＶ、家禽ペストウィルス）をＭＯＩ（感染の多重度）＝０．０１で感染させ、アセチルサリチル酸（５ｍＭ）、アマンタジン（５μＭ）及びオセルタミビル（２μＭ）の存在下及び非存在下で２４時間培養された。別のバッチでは、Ａ５４９肺上皮細胞にA/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｈ７）をＭＯＩ＝０．００１で感染させ、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸（５ｍＭ）及びオセルタミビル（２μＭ）の存在下及び非存在下で２４時間培養された。その後、両方のバッチからそれぞれのサンプルの細胞上清が採取され、ＭＤＣＫ細胞のプラ−ク・アッセイからウィルス力価が測定された。そして上清は正常化（normalize）され、二回処置された又は非処置の細胞を同数のウィルスでそれぞれ感染させるのに用いられ、同様の状況下で継代された。この工程が、５代〜８代継代まで繰り返された。
【００３２】
図１Ａでは、アセチルサリチル酸又はアマンタジン又はオセルタミビルで処置された細胞のウィルス力価が非処置細胞の上清のウィルス力価と比較されている。アマンタジンで処置された細胞のウィルス力価が、耐性変異株が形成されたことにより、３代継代で再び大幅に増加しているのが判る。驚くべきことに、このような現象はオセルタミビルにおける実験条件下でも同範囲で見受けられた。しかし、それとは明らかに対照的に、アセチルサリチル酸では５代継代においても１代継代と変わらない抗ウィルス活性が見られることが判った。図１Ｂでは、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸又はオセルタミビルで処理された細胞のウィルス力価が非処置細胞の上清のウィルス力価と比較されている。図１Ａに表わされた結果はリジン・グリシン・アセチルサリチル酸においても同様に得られ、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸による処置後は８代継代後でさえもウィルスの耐性形成は見られなかった。ここで得られた結果は、アセチルサリチル酸だけでなくリジン・グリシン・アセチルサリチル酸が細胞培養において耐性変異株を形成する傾向が全くないことを実証するのに十分に足りるものである。
【００３３】
実施例２：抗病原性Ａ型インフルエンザウィルスに対する抗ウィルス活性のためのリジン・グリシン・アセチルサリチル酸形成の調査
調査の対象となる組成物はリジン・グリシン・アセチルサリチル酸（以下、ＬＧ−アセチルサリチル酸とも呼ぶ）であり、Bayer AGから入手可能な製品Aspisol（登録商標）の分子構成に相当する。
【００３４】
この製剤はインフルエンザウィルスに対する抗ウィルス活性を調べるための実験の対象とされた。Ａ５４９肺上皮細胞はA/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｎ７）（ＭＯＩ＝０．０１）によって感染され、アセチルサリチル酸（５ｍＭ）又はＬＧ−アセチルサリチル酸（５ｍＭ）の存在下又は非存在下で８時間、２４時間そして３６時間培養された。各サンプルの細胞上清が採取され、ＭＤＣＫ細胞のプラ−ク・アッセイからウィルス力価が測定された。図２はウィルス力価と時間の関係を示す図である。その結果は、ＬＧ−アセチルサリチル酸はアセチルサリチル酸と同様に効率的に抗病原性鳥Ｈ７Ｎ７分離株のウィルス増幅を抑制することを示した。
【００３５】
図３で示されるように、亜型Ｈ５Ｎ1の高病原性分離株によって感染した場合にも上記と同様のことが該当した。Ａ５４９肺上皮細胞はヒト由来Ｈ５Ｎ1分離株A/Thailand/KAN-1/2004（ＭＯＩ＝０．００１）に感染され、上述の濃度のアセチルサリチル酸又はＬＧ−ア
セチルサリチル酸の存在下又は非存在下で培養された。そして細胞上清は、ＭＤＣK細胞のプラ−ク・アッセイによりウィルス力価を測定するために調査された。図３Ａは２０時間の時間値を示し、図３Ｂはウィルス力価の成長速度図を示す。その両方において、Ｈ５Ｎ１株のウィルス力価は数少数乗（several decimal powers）も効果的に阻害されているのが判る。
【００３６】
ＬＧ−アセチルサリチル酸製剤は体外で高い抗ウィルスポテンシャルを有するため、吸入投与用の抗インフルエンザ活性物質としても適すると考えられる。
【００３７】
実施例３：細胞培養系における高病原性鳥インフルエンザウィルスに対するＬＧ−アセチルサリチル酸の影響
ＭＤＣＫＩＩ細胞は、１０％の熱的に不活性化されたウシ胎仔血清（FCS、PAA Laboratories/A4305-0346）、ペニシリン（Grunenthal/616G03）及びストレプトマイシン（Sanavita/03056440111）が加えられたＭＥＭ培地で培養された。感染させるために、細胞は２４ウェルプレート（８×１０4細胞／ｗｅｌｌ；Greiner, Germany, No. 662160, Lot 05210151）に蒔かれ、３７℃で一晩培養された。感染させる前に、細胞はＰＢＳで洗浄され、対応する細胞（ＦＰＶ,ＳＮ１,ＭＢ１）はＰＢＳ／ＢＡ（ＢＡが０．６％添加されたＰＢＳ（MP Biomedicals））、ＭｇＣｌ2１ｍＭ、ＣａＣｌ2０．９ｍＭ、ペニシリン（Grunenthal/616G03）及びストレプトマイシンに溶かされ、０．００１のＭＯＩで細胞ローン（lawn）においてピペット（pippeted）された。３７℃で３０分間培養された後、細胞接種は除去され、細胞にはＭＥＭ培地又はＬＧ−アセチルサリチル酸５ｍＭを含んだＭＥＭ培地が１ｍｌ加えられた。感染から８、２４、３２及び４８時間後、それぞれの上清が採取された。“プラ−ク・アッセイ”を用いて感染性のウィルス粒子の有無が検証された。
【００３８】
“プラ−ク・アッセイ”のために、ＭＤＣＫＩＩ細胞は翌日には細胞ローンがコンフルエントな状態になるように９６ウェルプレートに蒔かれた。細胞はＰＢＳで洗浄され、上清の希釈物によって感染され、ＰＢＳ／ＢＡにおいて３７℃で６０分間安置された。培養後、細胞はアビセル培養混合物（アビセルＲＣ−５８１（ＦＭＣ／Ｂ６２４Ｃ））によってコートされた。このため、２．５％アビセル溶液は同量の２ｘＭＥＭ培地と混合された。培養して２０時間後、アビセル培養混合物は除去され、細胞はＰＢＳにおいて４％Roti（登録商標）-Histofix（Roth/32789170）溶液によって固定された状態で４℃で３０分間培養された後、ＰＢＳで洗浄された。染色に必要とされる以下の作業工程は、室温で行われた。ＰＢＳで０．３％トリトン−Ｘ−１０Ｏ（Serva/30043）と共に培養されることで、細胞は透過性になった。ウィルス感染された細胞は免疫組織学法を用いて染色された。このために、細胞はＡ型インフルエンザウィルスの核タンパク質に特異的なモノクローナル抗体（Serotec/250107）と１時間培養された。感染した細胞は、ぺルオキシダーゼ抗マウス抗体とTrueBlue（登録商標）ペルオキシダーゼ基質（KPL/070490）が添加されて行われたまた別の培養（３０分）で検知された。抗体希釈は１０％ＦＣＳと０．１％Tween−２０（Serva/16211）が添加されたＰＢＳにおいて行われた。一次抗体及び二次抗体と培養された後、細胞はＰＢＳ／０．１％Tween−２０による５分間の洗浄を３回繰り返された。反応を止めるために、プレートは水道水で洗浄され乾燥された。乾燥されたプレートは、CorelDRAW９．０ソフトウェアを用いてスキャンされ、測定された。上清のウィルス力価を特定するために、９６ウェルプレートの各ウェルに蓄積した感染細胞（巣）が数えられた。数えられた巣の数はそれぞれの希釈係数で乗算された。計算値から、各サンプルの平均値が求められた。ウィルス力価は平均値のｌｏｇ１０として記録された。
【００３９】
この結果は図４に開示される。Ｈ７Ｎ１ウィルス（ＦＰＶ）及びＨ５Ｎ１ウィルス（ＭＢ１）の複製は、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置されたことにより、細胞培養系において部分的には９９％以上も抑制されることが見受けられた。
【００４０】
実施例４：ＬＧ−アセチルサリチル酸の抗ウィルス活動の基礎となる作用の分子メカニズムの調査
さらに、ＬＧ−アセチルサリチル酸の作用の分子像が、アセチルサリチル酸の純物質の分子像と同様かどうかが検証された。ＬＧ−アセチルサリチル酸はＮＦ−ｋＢ阻害剤として作用し、そのため他のウィルス誘導性シグナル経路に何ら副作用を及ぼさないはずである。インフルエンザウィルスの感染後にも活性化されるシグナル伝達物質の重要な群は、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ）と呼ばれるもので、キナーゼＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫもこれに属する。アセチルサリチル酸の純物質に関しては、これらキナーゼのウィルス誘発性活性化はアセチルサリチル酸によって阻害されないことがすでに判っている。図５で示されるように、ＬＧ−アセチルサリチル酸に関しても同様のことが言える。ウェスタンブロット法において、これらキナーゼの活性型に対して作用するリン酸特異抗体によって検出することが可能なＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫ（図５、トラック５）のウィルス誘発性活性化は、５ｍＭ（トラック７）又は７ｍＭ（トラック９）のアセチルサリチル酸を添加しても阻害されなかった。アセチルサリチル酸は、プロアポトーシス因子の発現を阻害することで抗ウィルス的に作用し、最終的には細胞内におけるカスパーゼ活性を低下させる。図６は、ＬＧ−アセチルサリチル酸の場合におけるカスパーゼ基質ポリＡＤＰリボースポリメラーゼ（ＰＡＲＰ）の切断によるカスパーゼ活性がウェスタンブロット法に基づいて示されている。３０時間の時点ではっきりと見受けられる切断されたＰＡＲＰ（トラック６）のバンドは、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処理されたサンプル（トラック７）においては効果的に減少している。
【００４１】
ウィルス複製におけるＮＦ−ｋＢ依存の工程とは、ウィルス性リボヌクレタンパク質複合体（ＲＮＰ）が細胞質へカスパーゼ依存性輸送され、細胞膜において新たなウィルス粒子内で形成される工程である。アセチルサリチル酸は、増殖サイクルの初期段階におけるウィルスタンパクの蓄積に作用することなく上記工程を特異的に阻害する。ＬＧ−アセチルサリチル酸においても同様の作用機序が働く。図７で、ＬＧ−アセチルサリチル酸によってウィルスタンパクＭ１、ＮＰ、ＮＳ１及びＰＢ１の蓄積が阻害されていないことをウェスタンブロット法で示されている。しかし、図８に示される免疫蛍光分析からも明らかなように、アセチルサリチル酸の純物質についての上記説明と同様に、ウィルス性ＲＮＰ複合体が効率的に保持されることが判明した。
【００４２】
上記から、ＬＧ−アセチルサリチル酸はアセチルサリチル酸と同様の抗ウィルスポテンシャルを有し、ウィルス増殖を阻害する上で同様の分子構造で働くという結論が導かれた。
【００４３】
実施例５：ＬＧ−アセチルサリチル酸による処置後におけるＩＰ１０及びインターフェロンガンマ ｍ−ＲＮＡ発現の減少
サイトカイン・ストームと呼ばれる過剰なサイトカイン産生は、Ｈ５Ｎ１インフルエンザウィルスによる感染において重要な病原性因子であることが知られている。これらサイトカインのほとんどがＮＦ−ｋＢ依存で制御されているため、ＬＧ−ＡＳＡはウィルス誘発性サイトカインの発現を阻害し、これらウィルスの病原性に間接的に影響を及ぼすのかを検証した。独自の準備作業から、マウス肺がＨ５Ｎ1（ＭＢ１）に感染された後にＩＰ１０及びＩＦＮガンマが制御されることが明らかになっていた。このケモカイン又はサイトカインの発現は転写因子ＮＦ−ｋＢによって誘発されている。以前の実験結果から、アスピリンはＮＦ−ｋＢ阻害剤として作用することも知られている。
【００４４】
この実験の目的は、Ｈ５Ｎ１に感染したマウス肺においてＬＧ−アセチルサリチル酸がＮＦ−ｋＢ阻害剤として働くか否かを検証することである。このために、ＭＢ１の感染前と感染中にＬＧ−アセチルサリチル酸を処置した場合、２つのケモカイン又はサイトカインの発現率に対して影響を及ぼすか否かが調べられた。実験のためにＢａｌｂ／ｃマウス５匹それぞれに、感染（１×１０３ｐｆｕ／５０μｌ）の１時間前にＬＧ−アセチルサリチル酸５０ｍＭがｉ．ｖ．（１００μｌ）及びｉ．ｐ．（２００μｌ）で処置された。その後は感染の１７、２４及び４２時間後に処置が行われた。４８時間後に肺は取り出され、ＲＮＡが隔離された。対照動物と比較して、ＬＧ−アセチルサリチル酸が投与されたマウス肺におけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率が、定量的ＲＴ−ＰＣＲを用いて検証された。そのデータ結果は図９に開示される。
【００４５】
比較する上で結果がより明白になるよう、投与されていないマウスにおけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率は１００％に設定された。ＬＧ−アセチルサリチル酸が静脈注射及び腹腔内治療経路で４回投与された後、ケモカイン又はサイトカインの両方においてｍ−ＲＮＡの発現の減少が検知された。静脈注射治療経路ではＩＰ１０は６２％減少、ＩＦＮガンマは６８％減少し、ＩＰ１０は２６％減、ＩＦＡガンマは５０％減であった腹腔内治療経路よりも高い効果が見られた。
【００４６】
ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置された感染マウス肺におけるＮＦ−ｋＢ依存遺伝子のＨ５Ｎ１のウィルス誘発性発現は大きく減少したことを上記結果は示している。サイトカインは大きな部分ではＮＦ−ｋＢ依存で制御され、Ｈ５Ｎ１ウィルス感染後に見られるサイトカインの過剰産生（サイトカイン・ストーム）はこれらウィルスの病原性に大きく関わるため、この結果は重要な意味を持つ。このように、ＬＧ−ＡＳＡはウィルス複製に直接的に影響を及ぼすだけでなく、サイトカインの過剰産生を抑制することにより病気の経過に間接的にも積極的にも影響を及ぼす。
【００４７】
実施例６：適合性の調査
下記の実験では、エアロゾルで処置された後のマウスにおけるＬＧ−アセチルサリチル酸の適合性が検査された。処置の影響を可能な限り正確に観察できるように、実験はマウス監視システム（Mouse Monitoring System）を用いて行われた。このシステムによると、体温測定をリアルタイムで行うことができる。５分毎に体温値が測定され、記入された（図１０〜１２、Ａ〜Ｆ）。さらに、動物の体重は毎日測定された。処置の完了時にはマウスは殺処分され、肝臓及び脾臓の臓器重量が計測された。肝毒性の第一兆候として、肝臓が肥大する。また、脾臓が肥大するのは炎症が起こっている兆候である。
【００４８】
適合性研究のため、処置の３日前に全部で１２匹の雌Ｂａｌｂ／ｃマウスにマウス監視送信機が埋め込まれた。成功した介入は３日間監視された。その後、マウス６匹はそれぞれパリ・ネブライザーによって１日に３回、５０ｍＭのＬＧ−アセチルサリチル酸溶液を２ｍｌ投与された。対照となるマウス６匹には、２ｍｌのＰＢＳが投与された。処置に約１０分を要するように、溶液は１．５barの圧力で噴霧された。処置は５日間に渡り毎日９：００、１２：００及び１５：００に行われた。
【００４９】
ＬＧ−アセチルサリチル酸の体重変化に及ぼす影響について検証された。全てのマウスの体重は、処置が行われる初日の１回目の処置（９：００）の前に開始され、毎日計測された。処置初日の体重は１００％に設定され、翌日からの計測された体重はそれを参照にされた。２つの処置群の比較結果は図１３に開示される。ＬＧ−アセチルサリチル酸群とＰＢＳ処置群の間で、体重変化に顕著な違いはないことが見受けられる。
【００５０】
さらに、ＬＧ−アセチルサリチル酸の体温に及ぼす影響についても検証された。既に記載されたように、マウス監視システムはマウスの体温をリアルタイムで測定することが可能である。マウスは代謝が高いため、健康に少しでも変化があれば直ちに体温変化に表れる。図１０〜１２には、処置の前日（図１０Ａ）から処置最終日（４日目）（図１２Ｆ）までの体温の変化が示される。対照動物と比較して、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置されたマウスの体温における差は見受けられない。
【００５１】
最後に、ＬＧ−アセチルサリチル酸の肝臓及び脾臓の重量に及ぼす影響について検証された。最終処置が行われてから１５分後に全ての動物が殺処分され、解剖された。大静脈から放血が完全に行われた後、内蔵器官が調べられた。まず初めに、横隔膜から虚脱しない状態で肺が調べられた。肝臓と脾臓の重量が計測された。この結果は図１４に開示される。処置中、マウスの体重に変化はほとんど見られなかったため、臓器重量の正常化は省略されてもよい。脾臓（図１４Ａ）及び肝臓（図１４Ｂ）については、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置された動物と対照動物の間で顕著な差は見られなかった。このように、マウスに吸入による処置を行っても、しばしば臓器の腫れを伴うとされる肝毒性の兆候は見受けられなかった。さらに、多くの場合脾臓の肥大を伴うとされる全身性炎症反応も見受けられなかった。
【００５２】
上記調査からは、概要として５０ｍＭ濃度のＬＧ−アセチルサリチル酸２ｍｌを５日間かけて吸入投与することはマウスには適合することが判った。
【００５３】
実施例７：患者を対象とした実験
治療のための試みとして、気管支に感染症のある患者４人は、最高で２ＭのＬＧ−ＡＳＡ（５０：５０）からなり、５μｍ以下の粒径で気化された溶液が投与された。ＬＧ−ＡＳＡの総量は最大で３５０ｍｇであった。吸入量は５００ｍｌ／秒以下に、大抵の場合は３００ｍｌ／秒以下になるように調整された。呼吸量は患者の吸気容量の少なくとも３０％、大抵の場合は少なくとも５０％に調整された。
【００５４】
患者の内３人においては、すでに投与初日には症状の顕著な改善が見られた。その他全ての患者においては、症状の改善は投与から３日後に見られた。主観的に感知されたこれら溶液中高濃度の適合性は優良であった。味に刺激があると報告した患者はいなかった。また、必要以上の咳の衝動も検知されなかった。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬組成物を製造するための塩基性アミノ酸を含むO−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の新規な使用方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
インフルエンザは、今もなお大流行の可能性を持つ人類の大疫病の1つである。誘導病原体となるA型インフルエンザウィルスに対する薬は少ししか存在しないが、ウィルスに対して即効性がある。問題は、耐性が比較的早く生じる点である。さらに、Ｈ５型のＡ型インフルエンザウィルスに感染することで誘発され、家禽で流行的に生じる鳥インフルエンザは、人間にも感染するというリスクを有する。よって、感染した家禽に接触する人は特に高いリスクにさらされる。また特筆すべきは、Ｈ５Ｎ１型ウィルスがオセルタミビルを含むいくつかの承認された薬に対して、次第に影響を受けなくなっているという報告があった。よって、ウィルス感染の予防及び治療のための、可能であれば耐性を誘発しない新規且つ有効な抗インフルエンザ薬が緊急に必要とされている。
【０００３】
アセチルサリチル酸は宿主細胞において転写因子ＮＦ−ｋＢを阻害し、ＮＦ−ｋＢシグナル経路の抑制過程で必須ウィルス成分は細胞核内に留まり、もはやウィルス粒子に組み込まれることが不可能となることがＷＯ2004/060360Ａ１から知られている。ウィルス感染の予防又は治療のためにアセチルサリチル酸を気体投与することも上記文献から知られている。
【０００４】
例えば、ＤＥ102 02 019Ａ１から塩基性アミノ酸を含むアセチルサリチル酸塩が知られており、これによって得られる製剤は内服のみの使用に限定される。さらに、リウマチ性疾患、関節炎、神経痛、筋肉痛、偏頭痛、虚血性心疾患、脳卒中、狭心症、心筋症、バイパス手術、経皮経管冠動脈形成、ステント移植、ＨＩＶ患者の免疫システムへの刺激、腫瘍の予防、認知症による認知力低下の遅延、胆石形成の抑制及び／又は糖尿病の治療のために上記塩を用いることが上記文献から知られている。従来周知となっている塩はすでにAspisol（登録商標）の名前で、喘息、花粉症、鼻粘膜の腫れ、慢性気道感染症を治療するための薬として使用されており、内服の他に注射により投与される。これら全ての疾患は、インフルエンザウィルスによるウィルス感染と直接的な相関関係があるわけではない。
【０００５】
気道又は肺にエアロゾルとして吸入投与される、抗ウィルス剤としての純粋なアセチルサリチル酸の使用は、動物モデルにおいて概ね非常に有効であることが判明した。しかし、純粋なアセチルサリチル酸の吸入は、人間への使用では気道に強い刺激を生じることもある。さらに、単独で使用される場合、過敏な患者におけるアセチルサリチル酸の吸入は喘息発作を引き起こすことがある点が記載されている。従って、抗インフルエンザ薬としてアセチルサリチル酸を気体で使用することは、喘息患者又は喘息のリスクのある人にはどのような場合であっても禁忌とされる。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
よって本発明は、特に耐性が高く、とりわけ喘息発作を引き起こすリスクを確実に防ぐことが可能な、ウィルス感染を治療するためのアセチルサリチル酸を含む製剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記目的を達成するために、人間又は動物、とりわけ哺乳類と鳥類におけるウィルス感染の予防又は治療に用いられる医薬組成物を生成するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含む物理学的有効量のＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物の使用方法を本発明は提供する。本発明の目的の対象とされるウィルス感染は、とりわけ自然発生的な野生型ウィルスによる感染であり、遺伝子組み換えウィルスによる感染は対象とされない。
【０００８】
鳥類の中で予防又は治療に関連するものは、とりわけ雌鶏、ガチョウ、アヒル、七面鳥、うずら又は鳩などの家禽であるが、鳴禽もまた関連する。
【０００９】
投与される製剤は酸ではないため、このような塩を特に気体投与で用いることにより、例えば気道粘膜等における組織の刺激が回避される。これにより、特に喘息を患う患者又は喘息のリスクのある人において喘息発作が確実に防がれ、副作用のリスクを有さず、さらに製剤はすでに喘息の薬として使用されているため、治療薬としても予防薬としても幅広く適用される上で実質的に何の障害もない。さらに、ウィルス複製の抑制効果はアセチルサリチル酸の誘導体化によって実質的に影響を受けず、それどころか、驚くべきことに部分的にわずかに増加することが本発明で判明した。
【００１０】
塩基性アミノ酸が“リジン、アルギニン、オルニチン、ジアミノ酪酸又はこれら酸の混合物”の中から選択されるのであれば、モノアセチルサリチル酸であることが好ましい。アミノ酸は、アルファ原子において水素又は随意のラジカルが側鎖として結合されたαアミノカルボン酸であってもよい。塩基性アミノ酸の側鎖は、１つ又はいくつかの塩基性基、詳細にはアミノ基から構成される。塩基性アミノ酸はＤ−リジン、Ｌ−リジン又はＤ−リジンとＬ−リジンの混合物であることが好ましい。
【００１１】
さらに製剤は、具体的にはグリシン等の非塩基性側鎖を有する天然又は非天然のアミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる。組成物におけるリジンとグリシンの重量比は１００：１から１：１の範囲とされ、具体的には１００：１から１０：１の範囲内とされる。製剤はリジンとグリシンのアミノ酸の塩の混合物であることが好ましい。特に好ましいのは、Aspisol（登録商標）という商標名で流通している組成物の例えば水溶液状の塩又は混合塩である。
【００１２】
本発明のために、生体に服用又は投与された後に本発明に応じて使用される活性物質に自然的に代謝されるプロドラッグを含む医薬組成物が使用されてもよい。
【００１３】
本発明によると、使用される組成物は多数のウィルス感染の予防又は治療に用いることが可能である。とりわけ適するのは、インフルエンザウィルス等のマイナス鎖ＲＮＡウィルス、特にＨ５型又はＨ７型のウィルスを有するＡ型インフルエンザウィルスによる感染の予防又は治療のための組成物である。
【００１４】
しかし、本発明に従って使用される物質が、ＮＦ−ｋＢ依存的に規制され、ウィルスによって誘発されるサイトカインの過剰発現（サイトカイン・ストーム）を抑制することも発見された。従って、本発明による物質によって、サイトカインの過剰発現ととりわけ相関的な病原ポテンシャルを持つ多くのウィルスの病原性を一般に低下することが可能となる。よって、本発明に応じて使用される組成物は、コロナウィルス（ＳＡＲＳ），呼吸器合胞体ウィルス（ＲＳＶ），マールブルグウィルスやエボラウィルス等のフィロウィルス、ラッサウィルス、アルゼンチン出血熱ウィルス、ボリビア出血熱ウィルス、ベネズエラ出血熱ウィルス等のアレナウィルス、ハンタウィルス、デング熱ウィルスや黄熱病ウィルス等のフラビウィルス、クリミア・コンゴ出血熱ウィルス、リフトバレー熱ウィルス、パラインフルエンザウィルス（１、２及び３型）、ライノウィルス、ヒトメタ肺炎ウィルス（ｈＭＰＶ）及びエプスタイン・バーウィルスによるウィルス感染の治療及び予防にも適する。
【００１５】
本発明に応じて用いられる医薬組成物の生薬製剤は、この技術における通常の方法で生成することができ、原理的には、例えば経口、注射又は吸入用の気体等による随意の投与法が適用可能である。適する固体又は液体の生薬製剤の形態としては、例えば顆粒、粉末、糖衣錠、錠剤、（マイクロ）カプセル、坐薬、シロップ、ジュース、懸濁液、乳剤、点滴剤もしくは注射剤（i.v.、i.p.、i.m.又は s.c.）もしくは微細分散液（エアロゾル）、経皮システム、活性物質を持続的に放出する製剤等があり、その生成にはキャリア物質、爆発剤、結合剤、コーティング剤、膨張剤、滑り剤もしくは潤滑剤、調味料、甘味料及び溶液メディエーター等の通常の手段が用いられる。補助物質としては、炭酸マグネシウム、二酸化チタン、ラクトース、マンニトール及びその他のサッカリド、滑石、乳タンパク質、ゼラチン、でんぷん、セルロース及びその誘導体、タラ肝油、ひまわり油、ピーナッツ油又はゴマ油等の動物性及び植物性油、ポリエチレン・グリコール、精製水や例えばグリセリン等の単一又は多原子価アルコール、及び上記溶剤の混合物が挙げられる。本発明による医薬組成物は、本発明において用いられる少なくとも１種類の塩を、医薬的に適切で生理的に良好な耐溶性を有するキャリアに規定量混合され、場合によってはその後に適切な活性、追加又は補助物質と混合され、望ましい投与形態に製剤して生成される。経口投与のための製剤の例は、例えばＤＥ102 02 019 A1及びそれに引用された文献に記載されている。
【００１６】
しかしながら、生薬製剤としては、気体による経鼻投与のための液体の水性組成物（溶液）又は、例えばＣＦＣ（クロロフルオロカーボン）等の室温で液化する噴射剤、１，１，１，２−テトラフルオロエタン又は１，１，１，２，３，３，３−ヘプタフルオロプロパン等のハイドロフルオロアルカン、プロパン、ブタン、イソブタン、又は医療用エアロゾル処方物の分野で通常用いられるその他の噴射剤等の懸濁液に適用可能であれば、粉末状のものが好ましい。上記の噴射剤に加えて、又はその代替として、空気、酸素窒素、二酸化炭素、亜酸化窒素もまた利用可能である。組成物は、例えば生理学的に耐溶性のある表面活性物質等の医療用エアロゾル処方物の通常の追加及び補助物質、及び／又は従来の分散剤から構成されてもよい。
【００１７】
水溶液は０．０１ｍＭないし３．０Ｍ、好適には０．５ないし３．０Ｍ又は０．０１ないし１００ｍＭ、とりわけ０．１ないし１０ｍＭの塩又は混合塩の水溶液であることが好ましい。
【００１８】
溶液であれ、固体状又は懸濁液状の塩であれ、エアロゾルの粒径は、ＭＭＡＤ値（空気動力学的中央粒子径）が１０μｍよりも、好ましくは５μｍよりも小さいことが望ましい。空気動力学的粒度分布のＦＰＤ（微粒子量）又はＦＰＦ（微粒子の割合）の測定には、米国薬局方（ＵＳＰ）第６０１章又は欧州薬局方（Ph. Eur.）インハランダ承認基準（Inhalanda Monograph）に記載されている、例えば５段階多段階液体インピンジャー（ＭＳＬＩ）又は８段階アンダーセン・カスケード・インパクター（ＡＣＩ）などのインパクターが適している。空気動力学的粒度分布に基づき、エアロゾル製剤のＭＭＡＤ値は対数確立プロットを用いて計算することができる。好ましいＭＭＡD値では、エアロゾル粒子は呼吸性で、通常の投与期間において肺全体に十分な濃度が得られるように肺の深い場所まで達する。小さな粒子が再度吸引されるのを防ぐために、ＭＭＡD値の最低限度は０．１μｍ、好ましくは０．５μｍ、最適には１μｍと定められる。
【００１９】
本発明で用いられる塩は、例えばピンディスク、ボール又は空気分離ミルを用いて望ましいＭＭＡD値を得るために小片により細かくされるか、従来の方法で微粉化される。
【００２０】
本発明におけるエアロゾルの投与は、医療分野では常用されている吸入器や噴霧器などのエアロゾル発生器が備わった全ての吸引装置を用いて行うことができる。例としては、粉末エアロゾル吸入器又はＤＰＩ（粉末吸入器）、ノズル、超音波、振動膜噴霧器が挙げられる。さらに、電気流体力学の原理や液剤から凝縮されたエアロゾルを用いたエアロゾル発生器が使用されてもよい。適した吸入装置の例は、ＥＰ1741460Ａ、ＥＰ1700614Ａ、ＥＰ1258264Ａ及びＥＰ1163921Ａに記載されている。
【００２１】
用いたエアロゾル発生器のスループット率に関連した組成物の塩分濃度は、少なくとも１０ｍｇ、好ましくは少なくとも５０ｍｇ、最適には少なくとも１００ｍｇの塩がエアロゾルに変換され、５分以内、好ましくは２分以内、最適には１分以内に患者に投与されるように選択される。
【００２２】
さらに、最適な肺沈着を得るには吸気流又は吸気量を確認及び調整することが有効である。吸気流が速すぎると、エアロゾル粒子は咽頭後方にすぐにぶつかるか、声門で分散してしまう。また呼吸が速すぎると、エアロゾルは気管の上部までしか達さず、肺の深部までは届かない。そのため、用いられる吸引システムは患者による深く且つゆっくりとした吸引を保証するものでなければならない。子供への使用では、吸入量は少なくとも２００ｍｌ、好ましくは少なくとも５００ｍｌでなければならない。大人への使用では、吸入量は少なくとも３００ｍｌ、好ましくは少なくとも５００ｍｌとされる。適切には、上記のエアロゾル量の吸引は短くとも１秒、好ましくは短くとも３秒、最適には短くとも５秒の間に行われる。患者の吸気容量に応じて、吸気流は少なくとも１０００ｍｌ／秒、特に少なくとも５００ｍｌ／秒、とりわけ少なくとも３００ｍｌ／秒になるように、また呼吸量は少なくとも２０％、特に少なくとも３０％、とりわけ少なくとも５０％、最大で９５％になるように好適に調整される。後者は、患者によるゆっくりとした深い吸引を保証する。
【００２３】
本発明のために、センサーを用いて上記パラメーターを測定し、電気、音響及び／又は光による信号で吸入が正常に行われているか否かの情報を提供する吸入システムが使用されてもよい。上記のように作動する吸入装置に関しては、前記した文献を参照されたい。簡易的な吸入システムの場合、上記の測定結果が記された患者の情報シートが医薬組成物に加味されてもよい。
【００２４】
このように、本発明は天然又は非天然の塩基アミノ酸、噴射剤、及び選択的に補助及び／又はキャリア物質を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなるエアロゾル製剤にもまた関連する。塩は、完全な製剤に対して０．００１〜５０ｗｔ−％、０．００１〜１０ｗｔ−％、特に０．１〜１０ｗｔ−％、又は１０〜５０ｗｔ−％、特に３０〜５０ｗｔ−％の量で含まれる。塩が粒子状であるならば、１０μｍ以下、特に５μｍ以下のＭＭＡD値で含有される。
【００２５】
特に上記のような高濃度のものが用いられる場合、このような溶液から生成されるエアロゾルが上記のような小さな粒径で生成できるというのは驚くべきことである。
【００２６】
さらに本発明は、人間及び動物におけるウィルス感染を予防又は治療するための本発明によるエアロゾル製剤の使用方法にも関し、ウィルスに感染するリスクがある又は既に感染した人間又は動物は、生理学的に有効な量のエアロゾル製剤が鼻又は口から吸入されるように気体投与される。
【００２７】
最後に、本発明は供給タンクとそれに接続されたエアロゾル発生器を備えた吸入装置に関し、供給タンクには本発明によるエアロゾル製剤が備えられる。エアロゾル発生器の出力側には、通常マウスピースが接続される。さらに、制御装置による制御下で吸入流及び／又は吸入量を制御する手段となるエア・ポンプが備えられてもよい。吸入流及び呼吸量の制御及び／又は規制を行うための制御及び／又は規制手段が備えられてもよく、制御及び／又は規制手段は上述した数値に好適に調整される。
【００２８】
本発明による医薬組成物の上記説明は、本発明によるエアロゾル製剤とその使用及び吸入装置にも同様に適用される。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】実施例１において、Ａはアセチルサリチル酸又はアマンタジン又はオセルタミビルで処置された細胞のウィルス力価を非処置細胞の上清のウィルス力価と比較した図であり、Ｂはリジン・グリシン・アセチルサリチル酸又はオセルタミビルで処理された細胞のウィルス力価を非処置細胞の上清のウィルス力価と比較した図である。
【図２】実施例２において、ウィルス力価と時間の関係を示す図である。
【図３】実施例２において、Ａは２０時間の時間値でのウィルス力価を示した図であり、Ｂはウィルス力価の成長速度図を示した図である。
【図４】実施例３において、ＡはＦＰＶのウィルス力価を示した図であり、ＢはＭＢ１のウィルス力価を示した図である。
【図５】実施例４において、ＭＡＰＫの活性型に対して作用するリン酸特異抗体によって検出することが可能なＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫのウィルス誘発性活性化がウェスタンブロット法に基づいて示された図である
【図６】実施例４において、ＬＧ−アセチルサリチル酸の場合におけるカスパーゼ基質ポリＡＤＰリボースポリメラーゼ（ＰＡＲP）の切断によるカスパーゼ活性がウェスタンブロット法に基づいて示された図である。
【図７】実施例４において、ＬＧ−アセチルサリチル酸によってウィルスタンパクＭ１、ＮＰ、ＮＳ１及びＰＢ１の蓄積が阻害されていないことをウェスタンブロット法で示した図である。
【図８】実施例４における免疫蛍光分析の結果を示した図である。
【図９】実施例５におけるＬＧ−アセチルサリチル酸が投与されたマウス肺におけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率を示した図である。
【図１０】Ａ、Ｂはそれぞれ実施例６における実験前日及び実験当日のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１１】Ｃ、Ｄはそれぞれ実施例６における実験１日目及び実験２日目のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１２】Ｅ、Ｆはそれぞれ実施例６における実験３日目及び実験４日目のマウスの体温測定の結果を示した図である。
【図１３】実施例６におけるＬＧ−アセチルサリチル酸群とＰＢＳ処置群の体重変化を示した図である。
【図１４】実施例６において、ＡはＬＧ−アセチルサリチル酸による処置／未処置の肝臓の重量を示した図であり、Ｂは同様の脾臓の重量を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００３０】
本発明は、実施例を参照として以下により詳細に説明される。
【実施例】
【００３１】
実施例１：耐性現象の調査
細胞因子に対して抗ウィルス的に作用する抑制剤としてのアセチルサリチル酸の耐性が特に課題となる問題であるため、その耐性変異株の生成傾向がウィルスに直接作用するアマンタジンやオセルタミビルなどの薬剤と比較された。Ａ５４９肺上皮細胞に高病原性鳥インフルエンザＡウィルス分離株A/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｈ７）（ＦＰＶ、家禽ペストウィルス）をＭＯＩ（感染の多重度）＝０．０１で感染させ、アセチルサリチル酸（５ｍＭ）、アマンタジン（５μＭ）及びオセルタミビル（２μＭ）の存在下及び非存在下で２４時間培養された。別のバッチでは、Ａ５４９肺上皮細胞にA/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｈ７）をＭＯＩ＝０．００１で感染させ、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸（５ｍＭ）及びオセルタミビル（２μＭ）の存在下及び非存在下で２４時間培養された。その後、両方のバッチからそれぞれのサンプルの細胞上清が採取され、ＭＤＣＫ細胞のプラ−ク・アッセイからウィルス力価が測定された。そして上清は正常化（normalize）され、二回処置された又は非処置の細胞を同数のウィルスでそれぞれ感染させるのに用いられ、同様の状況下で継代された。この工程が、５代〜８代継代まで繰り返された。
【００３２】
図１Ａでは、アセチルサリチル酸又はアマンタジン又はオセルタミビルで処置された細胞のウィルス力価が非処置細胞の上清のウィルス力価と比較されている。アマンタジンで処置された細胞のウィルス力価が、耐性変異株が形成されたことにより、３代継代で再び大幅に増加しているのが判る。驚くべきことに、このような現象はオセルタミビルにおける実験条件下でも同範囲で見受けられた。しかし、それとは明らかに対照的に、アセチルサリチル酸では５代継代においても１代継代と変わらない抗ウィルス活性が見られることが判った。図１Ｂでは、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸又はオセルタミビルで処理された細胞のウィルス力価が非処置細胞の上清のウィルス力価と比較されている。図１Ａに表わされた結果はリジン・グリシン・アセチルサリチル酸においても同様に得られ、リジン・グリシン・アセチルサリチル酸による処置後は８代継代後でさえもウィルスの耐性形成は見られなかった。ここで得られた結果は、アセチルサリチル酸だけでなくリジン・グリシン・アセチルサリチル酸が細胞培養において耐性変異株を形成する傾向が全くないことを実証するのに十分に足りるものである。
【００３３】
実施例２：抗病原性Ａ型インフルエンザウィルスに対する抗ウィルス活性のためのリジン・グリシン・アセチルサリチル酸形成の調査
調査の対象となる組成物はリジン・グリシン・アセチルサリチル酸（以下、ＬＧ−アセチルサリチル酸とも呼ぶ）であり、Bayer AGから入手可能な製品Aspisol（登録商標）の分子構成に相当する。
【００３４】
この製剤はインフルエンザウィルスに対する抗ウィルス活性を調べるための実験の対象とされた。Ａ５４９肺上皮細胞はA/FPV/Bratislava/79（Ｈ７Ｎ７）（ＭＯＩ＝０．０１）によって感染され、アセチルサリチル酸（５ｍＭ）又はＬＧ−アセチルサリチル酸（５ｍＭ）の存在下又は非存在下で８時間、２４時間そして３６時間培養された。各サンプルの細胞上清が採取され、ＭＤＣＫ細胞のプラ−ク・アッセイからウィルス力価が測定された。図２はウィルス力価と時間の関係を示す図である。その結果は、ＬＧ−アセチルサリチル酸はアセチルサリチル酸と同様に効率的に抗病原性鳥Ｈ７Ｎ７分離株のウィルス増幅を抑制することを示した。
【００３５】
図３で示されるように、亜型Ｈ５Ｎ1の高病原性分離株によって感染した場合にも上記と同様のことが該当した。Ａ５４９肺上皮細胞はヒト由来Ｈ５Ｎ1分離株A/Thailand/KAN-1/2004（ＭＯＩ＝０．００１）に感染され、上述の濃度のアセチルサリチル酸又はＬＧ−ア
セチルサリチル酸の存在下又は非存在下で培養された。そして細胞上清は、ＭＤＣK細胞のプラ−ク・アッセイによりウィルス力価を測定するために調査された。図３Ａは２０時間の時間値を示し、図３Ｂはウィルス力価の成長速度図を示す。その両方において、Ｈ５Ｎ１株のウィルス力価は数少数乗（several decimal powers）も効果的に阻害されているのが判る。
【００３６】
ＬＧ−アセチルサリチル酸製剤は体外で高い抗ウィルスポテンシャルを有するため、吸入投与用の抗インフルエンザ活性物質としても適すると考えられる。
【００３７】
実施例３：細胞培養系における高病原性鳥インフルエンザウィルスに対するＬＧ−アセチルサリチル酸の影響
ＭＤＣＫＩＩ細胞は、１０％の熱的に不活性化されたウシ胎仔血清（FCS、PAA Laboratories/A4305-0346）、ペニシリン（Grunenthal/616G03）及びストレプトマイシン（Sanavita/03056440111）が加えられたＭＥＭ培地で培養された。感染させるために、細胞は２４ウェルプレート（８×１０4細胞／ｗｅｌｌ；Greiner, Germany, No. 662160, Lot 05210151）に蒔かれ、３７℃で一晩培養された。感染させる前に、細胞はＰＢＳで洗浄され、対応する細胞（ＦＰＶ,ＳＮ１,ＭＢ１）はＰＢＳ／ＢＡ（ＢＡが０．６％添加されたＰＢＳ（MP Biomedicals））、ＭｇＣｌ2１ｍＭ、ＣａＣｌ2０．９ｍＭ、ペニシリン（Grunenthal/616G03）及びストレプトマイシンに溶かされ、０．００１のＭＯＩで細胞ローン（lawn）においてピペット（pippeted）された。３７℃で３０分間培養された後、細胞接種は除去され、細胞にはＭＥＭ培地又はＬＧ−アセチルサリチル酸５ｍＭを含んだＭＥＭ培地が１ｍｌ加えられた。感染から８、２４、３２及び４８時間後、それぞれの上清が採取された。“プラ−ク・アッセイ”を用いて感染性のウィルス粒子の有無が検証された。
【００３８】
“プラ−ク・アッセイ”のために、ＭＤＣＫＩＩ細胞は翌日には細胞ローンがコンフルエントな状態になるように９６ウェルプレートに蒔かれた。細胞はＰＢＳで洗浄され、上清の希釈物によって感染され、ＰＢＳ／ＢＡにおいて３７℃で６０分間安置された。培養後、細胞はアビセル培養混合物（アビセルＲＣ−５８１（ＦＭＣ／Ｂ６２４Ｃ））によってコートされた。このため、２．５％アビセル溶液は同量の２ｘＭＥＭ培地と混合された。培養して２０時間後、アビセル培養混合物は除去され、細胞はＰＢＳにおいて４％Roti（登録商標）-Histofix（Roth/32789170）溶液によって固定された状態で４℃で３０分間培養された後、ＰＢＳで洗浄された。染色に必要とされる以下の作業工程は、室温で行われた。ＰＢＳで０．３％トリトン−Ｘ−１０Ｏ（Serva/30043）と共に培養されることで、細胞は透過性になった。ウィルス感染された細胞は免疫組織学法を用いて染色された。このために、細胞はＡ型インフルエンザウィルスの核タンパク質に特異的なモノクローナル抗体（Serotec/250107）と１時間培養された。感染した細胞は、ぺルオキシダーゼ抗マウス抗体とTrueBlue（登録商標）ペルオキシダーゼ基質（KPL/070490）が添加されて行われたまた別の培養（３０分）で検知された。抗体希釈は１０％ＦＣＳと０．１％Tween−２０（Serva/16211）が添加されたＰＢＳにおいて行われた。一次抗体及び二次抗体と培養された後、細胞はＰＢＳ／０．１％Tween−２０による５分間の洗浄を３回繰り返された。反応を止めるために、プレートは水道水で洗浄され乾燥された。乾燥されたプレートは、CorelDRAW９．０ソフトウェアを用いてスキャンされ、測定された。上清のウィルス力価を特定するために、９６ウェルプレートの各ウェルに蓄積した感染細胞（巣）が数えられた。数えられた巣の数はそれぞれの希釈係数で乗算された。計算値から、各サンプルの平均値が求められた。ウィルス力価は平均値のｌｏｇ１０として記録された。
【００３９】
この結果は図４に開示される。Ｈ７Ｎ１ウィルス（ＦＰＶ）及びＨ５Ｎ１ウィルス（ＭＢ１）の複製は、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置されたことにより、細胞培養系において部分的には９９％以上も抑制されることが見受けられた。
【００４０】
実施例４：ＬＧ−アセチルサリチル酸の抗ウィルス活動の基礎となる作用の分子メカニズムの調査
さらに、ＬＧ−アセチルサリチル酸の作用の分子像が、アセチルサリチル酸の純物質の分子像と同様かどうかが検証された。ＬＧ−アセチルサリチル酸はＮＦ−ｋＢ阻害剤として作用し、そのため他のウィルス誘導性シグナル経路に何ら副作用を及ぼさないはずである。インフルエンザウィルスの感染後にも活性化されるシグナル伝達物質の重要な群は、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ）と呼ばれるもので、キナーゼＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫもこれに属する。アセチルサリチル酸の純物質に関しては、これらキナーゼのウィルス誘発性活性化はアセチルサリチル酸によって阻害されないことがすでに判っている。図５で示されるように、ＬＧ−アセチルサリチル酸に関しても同様のことが言える。ウェスタンブロット法において、これらキナーゼの活性型に対して作用するリン酸特異抗体によって検出することが可能なＪＮＫ、ｐ３８及びＥＲＫ（図５、トラック５）のウィルス誘発性活性化は、５ｍＭ（トラック７）又は７ｍＭ（トラック９）のアセチルサリチル酸を添加しても阻害されなかった。アセチルサリチル酸は、プロアポトーシス因子の発現を阻害することで抗ウィルス的に作用し、最終的には細胞内におけるカスパーゼ活性を低下させる。図６は、ＬＧ−アセチルサリチル酸の場合におけるカスパーゼ基質ポリＡＤＰリボースポリメラーゼ（ＰＡＲＰ）の切断によるカスパーゼ活性がウェスタンブロット法に基づいて示されている。３０時間の時点ではっきりと見受けられる切断されたＰＡＲＰ（トラック６）のバンドは、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処理されたサンプル（トラック７）においては効果的に減少している。
【００４１】
ウィルス複製におけるＮＦ−ｋＢ依存の工程とは、ウィルス性リボヌクレタンパク質複合体（ＲＮＰ）が細胞質へカスパーゼ依存性輸送され、細胞膜において新たなウィルス粒子内で形成される工程である。アセチルサリチル酸は、増殖サイクルの初期段階におけるウィルスタンパクの蓄積に作用することなく上記工程を特異的に阻害する。ＬＧ−アセチルサリチル酸においても同様の作用機序が働く。図７で、ＬＧ−アセチルサリチル酸によってウィルスタンパクＭ１、ＮＰ、ＮＳ１及びＰＢ１の蓄積が阻害されていないことをウェスタンブロット法で示されている。しかし、図８に示される免疫蛍光分析からも明らかなように、アセチルサリチル酸の純物質についての上記説明と同様に、ウィルス性ＲＮＰ複合体が効率的に保持されることが判明した。
【００４２】
上記から、ＬＧ−アセチルサリチル酸はアセチルサリチル酸と同様の抗ウィルスポテンシャルを有し、ウィルス増殖を阻害する上で同様の分子構造で働くという結論が導かれた。
【００４３】
実施例５：ＬＧ−アセチルサリチル酸による処置後におけるＩＰ１０及びインターフェロンガンマ ｍ−ＲＮＡ発現の減少
サイトカイン・ストームと呼ばれる過剰なサイトカイン産生は、Ｈ５Ｎ１インフルエンザウィルスによる感染において重要な病原性因子であることが知られている。これらサイトカインのほとんどがＮＦ−ｋＢ依存で制御されているため、ＬＧ−ＡＳＡはウィルス誘発性サイトカインの発現を阻害し、これらウィルスの病原性に間接的に影響を及ぼすのかを検証した。独自の準備作業から、マウス肺がＨ５Ｎ1（ＭＢ１）に感染された後にＩＰ１０及びＩＦＮガンマが制御されることが明らかになっていた。このケモカイン又はサイトカインの発現は転写因子ＮＦ−ｋＢによって誘発されている。以前の実験結果から、アスピリンはＮＦ−ｋＢ阻害剤として作用することも知られている。
【００４４】
この実験の目的は、Ｈ５Ｎ１に感染したマウス肺においてＬＧ−アセチルサリチル酸がＮＦ−ｋＢ阻害剤として働くか否かを検証することである。このために、ＭＢ１の感染前と感染中にＬＧ−アセチルサリチル酸を処置した場合、２つのケモカイン又はサイトカインの発現率に対して影響を及ぼすか否かが調べられた。実験のためにＢａｌｂ／ｃマウス５匹それぞれに、感染（１×１０３ｐｆｕ／５０μｌ）の１時間前にＬＧ−アセチルサリチル酸５０ｍＭがｉ．ｖ．（１００μｌ）及びｉ．ｐ．（２００μｌ）で処置された。その後は感染の１７、２４及び４２時間後に処置が行われた。４８時間後に肺は取り出され、ＲＮＡが隔離された。対照動物と比較して、ＬＧ−アセチルサリチル酸が投与されたマウス肺におけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率が、定量的ＲＴ−ＰＣＲを用いて検証された。そのデータ結果は図９に開示される。
【００４５】
比較する上で結果がより明白になるよう、投与されていないマウスにおけるＩＰ１０及びＩＦＮガンマの発現率は１００％に設定された。ＬＧ−アセチルサリチル酸が静脈注射及び腹腔内治療経路で４回投与された後、ケモカイン又はサイトカインの両方においてｍ−ＲＮＡの発現の減少が検知された。静脈注射治療経路ではＩＰ１０は６２％減少、ＩＦＮガンマは６８％減少し、ＩＰ１０は２６％減、ＩＦＡガンマは５０％減であった腹腔内治療経路よりも高い効果が見られた。
【００４６】
ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置された感染マウス肺におけるＮＦ−ｋＢ依存遺伝子のＨ５Ｎ１のウィルス誘発性発現は大きく減少したことを上記結果は示している。サイトカインは大きな部分ではＮＦ−ｋＢ依存で制御され、Ｈ５Ｎ１ウィルス感染後に見られるサイトカインの過剰産生（サイトカイン・ストーム）はこれらウィルスの病原性に大きく関わるため、この結果は重要な意味を持つ。このように、ＬＧ−ＡＳＡはウィルス複製に直接的に影響を及ぼすだけでなく、サイトカインの過剰産生を抑制することにより病気の経過に間接的にも積極的にも影響を及ぼす。
【００４７】
実施例６：適合性の調査
下記の実験では、エアロゾルで処置された後のマウスにおけるＬＧ−アセチルサリチル酸の適合性が検査された。処置の影響を可能な限り正確に観察できるように、実験はマウス監視システム（Mouse Monitoring System）を用いて行われた。このシステムによると、体温測定をリアルタイムで行うことができる。５分毎に体温値が測定され、記入された（図１０〜１２、Ａ〜Ｆ）。さらに、動物の体重は毎日測定された。処置の完了時にはマウスは殺処分され、肝臓及び脾臓の臓器重量が計測された。肝毒性の第一兆候として、肝臓が肥大する。また、脾臓が肥大するのは炎症が起こっている兆候である。
【００４８】
適合性研究のため、処置の３日前に全部で１２匹の雌Ｂａｌｂ／ｃマウスにマウス監視送信機が埋め込まれた。成功した介入は３日間監視された。その後、マウス６匹はそれぞれパリ・ネブライザーによって１日に３回、５０ｍＭのＬＧ−アセチルサリチル酸溶液を２ｍｌ投与された。対照となるマウス６匹には、２ｍｌのＰＢＳが投与された。処置に約１０分を要するように、溶液は１．５barの圧力で噴霧された。処置は５日間に渡り毎日９：００、１２：００及び１５：００に行われた。
【００４９】
ＬＧ−アセチルサリチル酸の体重変化に及ぼす影響について検証された。全てのマウスの体重は、処置が行われる初日の１回目の処置（９：００）の前に開始され、毎日計測された。処置初日の体重は１００％に設定され、翌日からの計測された体重はそれを参照にされた。２つの処置群の比較結果は図１３に開示される。ＬＧ−アセチルサリチル酸群とＰＢＳ処置群の間で、体重変化に顕著な違いはないことが見受けられる。
【００５０】
さらに、ＬＧ−アセチルサリチル酸の体温に及ぼす影響についても検証された。既に記載されたように、マウス監視システムはマウスの体温をリアルタイムで測定することが可能である。マウスは代謝が高いため、健康に少しでも変化があれば直ちに体温変化に表れる。図１０〜１２には、処置の前日（図１０Ａ）から処置最終日（４日目）（図１２Ｆ）までの体温の変化が示される。対照動物と比較して、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置されたマウスの体温における差は見受けられない。
【００５１】
最後に、ＬＧ−アセチルサリチル酸の肝臓及び脾臓の重量に及ぼす影響について検証された。最終処置が行われてから１５分後に全ての動物が殺処分され、解剖された。大静脈から放血が完全に行われた後、内蔵器官が調べられた。まず初めに、横隔膜から虚脱しない状態で肺が調べられた。肝臓と脾臓の重量が計測された。この結果は図１４に開示される。処置中、マウスの体重に変化はほとんど見られなかったため、臓器重量の正常化は省略されてもよい。脾臓（図１４Ａ）及び肝臓（図１４Ｂ）については、ＬＧ−アセチルサリチル酸で処置された動物と対照動物の間で顕著な差は見られなかった。このように、マウスに吸入による処置を行っても、しばしば臓器の腫れを伴うとされる肝毒性の兆候は見受けられなかった。さらに、多くの場合脾臓の肥大を伴うとされる全身性炎症反応も見受けられなかった。
【００５２】
上記調査からは、概要として５０ｍＭ濃度のＬＧ−アセチルサリチル酸２ｍｌを５日間かけて吸入投与することはマウスには適合することが判った。
【００５３】
実施例７：患者を対象とした実験
治療のための試みとして、気管支に感染症のある患者４人は、最高で２ＭのＬＧ−ＡＳＡ（５０：５０）からなり、５μｍ以下の粒径で気化された溶液が投与された。ＬＧ−ＡＳＡの総量は最大で３５０ｍｇであった。吸入量は５００ｍｌ／秒以下に、大抵の場合は３００ｍｌ／秒以下になるように調整された。呼吸量は患者の吸気容量の少なくとも３０％、大抵の場合は少なくとも５０％に調整された。
【００５４】
患者の内３人においては、すでに投与初日には症状の顕著な改善が見られた。その他全ての患者においては、症状の改善は投与から３日後に見られた。主観的に感知されたこれら溶液中高濃度の適合性は優良であった。味に刺激があると報告した患者はいなかった。また、必要以上の咳の衝動も検知されなかった。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
人間又は動物におけるウィルス感染を予防又は治療するための医薬組成物を製造するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物を使用する方法。
【請求項２】
上記塩基性アミノ酸は“リジン、アルギニン、オルニチン、ジアミノ酪酸及びこれらアミノ酸の混合物”からなる群から選択され、好適にはモノアセチルサリチル酸であり、選択的には非塩基性側鎖を有する天然又は非天然の塩基性アミノ酸、特にグリシンを含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなることを特徴とする請求項１に記載の使用方法。
【請求項３】
上記塩基性アミノ酸は、Ｄ−リジン、Ｌ−リジン又はＤ−リジンとＬ−リジンの混合物であることを特徴とする請求項２に記載の使用方法。
【請求項４】
マイナス鎖ＲＮＡウィルス、好適にはＡ型インフルエンザウィルス、特にＨ５又はＨ７型のウィルスによる感染の予防又は治療のための、請求項１から３のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項５】
例えば経鼻投与などの気体による投与のための、液体の水性組成物としての生薬製剤である上記１から４のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項６】
上記水性組成物は、０．１ないし５Ｍ、特に０．１ないし３Ｍ、好適には１ないし３Ｍの塩の水性組成物であることを特徴とする請求項５に記載の使用方法。
【請求項７】
上記水性組成物は、０．０１ないし１００ｍＭ、特に０．１ないし１０ｍＭの塩の水性組成物であることを特徴とする請求項５に記載の使用方法。
【請求項８】
上記組成物は、吸入器又は噴霧器を備えた医薬的に適合するタンクに備えられることを特徴とする請求項１から７のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項９】
上記タンクは、患者の吸気容量に応じて、吸入量を１０００ｍｌ／秒以下、好ましくは５００ｍｌ／秒以下に、呼吸量を少なくとも１０％、特に少なくとも３０％、好ましくは少なくとも５０％から最大９５％に調整できるように備えられることを特徴とする請求項８に記載の使用方法。
【請求項１０】
天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩、噴射剤及び選択的に補助及び／又はキャリア物質からなるエアロゾル製剤。
【請求項１１】
上記塩は、全体の製剤に対して０．００１ないし５０ｗｔ−％、０．００１ないし１０ｗｔ−％、特に０．１ないし１０ｗｔ−％又は特に１０ないし５０ｗｔ−％の量で含まれることを特徴とする請求項１０に記載のエアロゾル製剤。
【請求項１２】
上記塩は、１０μｍ以下、特に５μｍ以下のＭＭＡD値を有する粒子又は溶液として構成されることを特徴とする請求項１０又は１１に記載のエアロゾル製剤。
【請求項１３】
人間又は動物におけるウィルス感染を予防又は治療するためのエアロゾルを使用する方法であり、
ウィルスに感染する恐れのある又はウィルスに感染した人間又は動物は、鼻又は口からの吸引による気体投与で薬理的に効果的な量のエアロゾル製剤を投与されることを特徴とする請求項１０から１２のいずれか１項に記載のエアロゾル製剤を使用する方法。
【請求項１４】
少なくとも１０ｍｇ、好ましくは少なくとも５０ｍｇ、最適には少なくとも１００ｍｇ、最大では２００ｍｇ以上の上記エアロゾル製剤が、５分以内、好ましくは２分以内、最適には１分以内に気体投与されることを特徴とする請求項１３に記載の使用方法。
【請求項１５】
吸入流は１０００ｍｌ／秒以下、特に５００ｍｌ／秒以下、とりわけ３００ｍｌ／秒以下に、呼吸量は患者の吸気容量に対して少なくとも２０％、特に少なくとも３０％、好ましくは少なくとも５０％から最大９５％になるように調整されることを特徴とする請求項１３又は１４に記載の使用方法。
【請求項１６】
供給タンクと、該供給タンクに接続されたエアロゾル発生器を備えた吸入装置であって、供給タンクは請求項１０から１２のいずれか１項に記載のエアロゾル製剤を備えることを特徴とする吸入装置。
【請求項１７】
吸入流及び呼吸量を制御及び／又は規制するための制御及び／又は規制手段を備えた請求項１６に記載の吸入装置であって、上記制御及び／又は規制手段は好ましくは請求項１３に記載の数値に調整されることを特徴とする吸入装置。
【請求項１】
人間又は動物におけるウィルス感染を予防又は治療するための医薬組成物を製造するための、天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなる組成物を使用する方法。
【請求項２】
上記塩基性アミノ酸は“リジン、アルギニン、オルニチン、ジアミノ酪酸及びこれらアミノ酸の混合物”からなる群から選択され、好適にはモノアセチルサリチル酸であり、選択的には非塩基性側鎖を有する天然又は非天然の塩基性アミノ酸、特にグリシンを含むＯ−アセチルサリチル酸の塩からなることを特徴とする請求項１に記載の使用方法。
【請求項３】
上記塩基性アミノ酸は、Ｄ−リジン、Ｌ−リジン又はＤ−リジンとＬ−リジンの混合物であることを特徴とする請求項２に記載の使用方法。
【請求項４】
マイナス鎖ＲＮＡウィルス、好適にはＡ型インフルエンザウィルス、特にＨ５又はＨ７型のウィルスによる感染の予防又は治療のための、請求項１から３のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項５】
例えば経鼻投与などの気体による投与のための、液体の水性組成物としての生薬製剤である上記１から４のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項６】
上記水性組成物は、０．１ないし５Ｍ、特に０．１ないし３Ｍ、好適には１ないし３Ｍの塩の水性組成物であることを特徴とする請求項５に記載の使用方法。
【請求項７】
上記水性組成物は、０．０１ないし１００ｍＭ、特に０．１ないし１０ｍＭの塩の水性組成物であることを特徴とする請求項５に記載の使用方法。
【請求項８】
上記組成物は、吸入器又は噴霧器を備えた医薬的に適合するタンクに備えられることを特徴とする請求項１から７のいずれか１項に記載の使用方法。
【請求項９】
上記タンクは、患者の吸気容量に応じて、吸入量を１０００ｍｌ／秒以下、好ましくは５００ｍｌ／秒以下に、呼吸量を少なくとも１０％、特に少なくとも３０％、好ましくは少なくとも５０％から最大９５％に調整できるように備えられることを特徴とする請求項８に記載の使用方法。
【請求項１０】
天然又は非天然の塩基性アミノ酸を含むＯ−アセチルサリチル酸の塩、噴射剤及び選択的に補助及び／又はキャリア物質からなるエアロゾル製剤。
【請求項１１】
上記塩は、全体の製剤に対して０．００１ないし５０ｗｔ−％、０．００１ないし１０ｗｔ−％、特に０．１ないし１０ｗｔ−％又は特に１０ないし５０ｗｔ−％の量で含まれることを特徴とする請求項１０に記載のエアロゾル製剤。
【請求項１２】
上記塩は、１０μｍ以下、特に５μｍ以下のＭＭＡD値を有する粒子又は溶液として構成されることを特徴とする請求項１０又は１１に記載のエアロゾル製剤。
【請求項１３】
人間又は動物におけるウィルス感染を予防又は治療するためのエアロゾルを使用する方法であり、
ウィルスに感染する恐れのある又はウィルスに感染した人間又は動物は、鼻又は口からの吸引による気体投与で薬理的に効果的な量のエアロゾル製剤を投与されることを特徴とする請求項１０から１２のいずれか１項に記載のエアロゾル製剤を使用する方法。
【請求項１４】
少なくとも１０ｍｇ、好ましくは少なくとも５０ｍｇ、最適には少なくとも１００ｍｇ、最大では２００ｍｇ以上の上記エアロゾル製剤が、５分以内、好ましくは２分以内、最適には１分以内に気体投与されることを特徴とする請求項１３に記載の使用方法。
【請求項１５】
吸入流は１０００ｍｌ／秒以下、特に５００ｍｌ／秒以下、とりわけ３００ｍｌ／秒以下に、呼吸量は患者の吸気容量に対して少なくとも２０％、特に少なくとも３０％、好ましくは少なくとも５０％から最大９５％になるように調整されることを特徴とする請求項１３又は１４に記載の使用方法。
【請求項１６】
供給タンクと、該供給タンクに接続されたエアロゾル発生器を備えた吸入装置であって、供給タンクは請求項１０から１２のいずれか１項に記載のエアロゾル製剤を備えることを特徴とする吸入装置。
【請求項１７】
吸入流及び呼吸量を制御及び／又は規制するための制御及び／又は規制手段を備えた請求項１６に記載の吸入装置であって、上記制御及び／又は規制手段は好ましくは請求項１３に記載の数値に調整されることを特徴とする吸入装置。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【公表番号】特表２０１１−５０９９２８（Ｐ２０１１−５０９９２８Ａ）
【公表日】平成２３年３月３１日（２０１１．３．３１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−５４１６９１（Ｐ２０１０−５４１６９１）
【出願日】平成２１年１月１４日（２００９．１．１４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＤＥ２００９／００００３３
【国際公開番号】ＷＯ２００９／０８９８２２
【国際公開日】平成２１年７月２３日（２００９．７．２３）
【出願人】（５０８１１４０８５）アクティファエロ ゲーエムベーハー (2)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２３年３月３１日（２０１１．３．３１）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年１月１４日（２００９．１．１４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＤＥ２００９／００００３３
【国際公開番号】ＷＯ２００９／０８９８２２
【国際公開日】平成２１年７月２３日（２００９．７．２３）
【出願人】（５０８１１４０８５）アクティファエロ ゲーエムベーハー (2)
【Ｆターム（参考）】
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