ガゴメ由来免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法
【課題】 ガゴメ由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供する。
【解決手段】 ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法であって、ガゴメを粉砕する粉砕工程と、粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程とを有する免疫賦活剤の製造方法。
【解決手段】 ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法であって、ガゴメを粉砕する粉砕工程と、粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程とを有する免疫賦活剤の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出されて得られる粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）は、主として北海道沿岸の函館周辺から渡島半島東岸、松前小島、東北北部の大間岬等のごく限られた地域で生息し、水深７〜２５ｍの岩礁上で生育する、藻体の長さが２ｍ、幅が３０ｃｍ以上にもなる多年生藻類である。葉状部に大小の凹凸状のしわが一面に形成されており、粘りの原因である粘性多糖類が藻体から多量に分泌されるという特徴を有している。この粘性多糖類は、フコイダンやラミナラン、アルギン酸等から構成されており、この粘性多糖類が健康に役立つことが昨今明らかにされ、健康食品の原材料や薬剤の有効成分として注目されている。
【０００３】
例えば、ＷＯ９７−０２６８９６号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いたアポトーシス誘発剤が開示されている（特許文献１）。また、特開２００５−２３１９９８号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いた透析アミロイドーシス治療剤が開示されている（特許文献２）。
【０００４】
一方、海藻から抽出した多糖類を有効成分とした免疫賦活剤が提案されている。例えば、特開平６−２５６２０８号公報には、紅藻類から抽出した酸性多糖にβ−アガラーゼを作用させて低粘性化したものを有効成分とする免疫賦活剤が開示されており（特許文献３）、特開２００７−２３０９８０号公報には、メカブから多糖類抽出液を調製し、その多糖類抽出液を遠心分離して沈殿画分を抽出した免疫賦活剤が開示されている（特許文献４）。
【０００５】
【特許文献１】ＷＯ９７−０２６８９６号公報
【特許文献２】特開２００５−２３１９９８号公報
【特許文献３】特開平６−２５６２０８号公報
【特許文献４】特開２００７−２３０９８０号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
特許文献１および特許文献２に開示された発明は、いずれも免疫賦活に関するものではない。また、特許文献３に開示された発明は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の免疫賦活剤に関するものではなく、粘性多糖類の粘性を酵素処理によって低下させた免疫賦活剤に関するものである。さらに、特許文献４に開示された発明もまたガゴメ由来の免疫賦活剤ではなく、多糖類抽出液を調製・遠心分離して得られた沈殿画分を用いた免疫賦活剤に関するものである。
【０００７】
一方、本願発明者等は、ガゴメから粘性多糖類を抽出して、様々なサイトカインや抗体の産生量を定量すること、およびＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性を測定することによる免疫賦活効果を鋭意検討したところ、抽出条件、濃度、粘度、および反射光の光強度等により免疫賦活効果が異なることを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、ガゴメ由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することを目的としている。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明に係る免疫賦活剤の第一の態様は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１０】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、２０℃における水の粘度の値を１とした場合の前記水性溶媒溶液の相対粘度の値が、２．５より大きく２５．８より小さい値であってもよい。
【００１１】
本発明に係る免疫賦活剤の第二の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１２】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が３０℃未満の水性溶媒で抽出されてもよく、前記粘性多糖類のｐＨが５以上８未満の条件下で抽出されてもよい。
【００１３】
本発明に係る免疫賦活剤の第三の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして測定したアルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合において、水性溶媒溶液の光強度の値が６００以上の値である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１４】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が、塩類を除去する処理がされたものであってもよい。
【００１５】
一方、本発明に係る粘性多糖類の抽出方法は、ガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法であって、ガゴメを粉砕する粉砕工程と、粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程とを有するものである。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とし、効果的な免疫賦活作用を有する免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
以下、本発明に係るガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について、実施形態を用いて説明する。まず、本発明に係るガゴメ由来免疫賦活剤について説明する。
【００１８】
本発明に係る免疫賦活剤は、ガゴメから抽出された粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分としている。本発明における「粘性多糖類」とは、水溶性溶媒を用いてガゴメから抽出される粘質物、および当該抽出された粘質物を処理したものをいい、多糖の一種であるアルギン酸やラミナラン、および硫酸多糖の一種であるフコイダン等の多糖を主な構成としている。また、ここにいう「処理」とは、一般には加工を施して性質を変えることをいうが、免疫賦活作用を損なわない態様をいい、例えば、熱処理や冷却処理、凍結処理、酸・アルカリ処理、架橋処理、固液分離処理、撹拌処理、乾燥処理、脱塩処理等であって免疫賦活作用を損なわない態様をいう。
【００１９】
なお、本発明において「免疫賦活」は、「免疫刺激」、「免疫増強」、「免疫増進」、「免疫活性」、「免疫活性化」、「免疫向上」、あるいは「免疫亢進」と交換可能に用いられ、「免疫増進剤」は、「免疫刺激剤」、「免疫増強剤」、「免疫増進剤」、「免疫活性剤」、あるいは「免疫亢進剤」と交換可能に用いられる。したがって「免疫賦活作用」は、例えば、「免疫刺激作用」としても表すことができる。
【００２０】
本実施形態においては、乾燥したガゴメをフードカッターにて破砕し、破砕したガゴメの２５倍重量の蒸留水にこれを混合して調製した混合液を２０℃条件下で２４時間振盪して抽出して得た上澄みを粘性多糖類としている。
【００２１】
ここで、本実施形態においては、乾燥したガゴメから粘性多糖類が抽出されているが、本発明における「ガゴメ」はこれに限定されず、収穫直後や一時保存したような生のものでもよく、一旦凍結保存されたもの等であってもよい。また、破砕のサイズは特に限定されないが、例えば、細切りサイズ（約１０ｍｍ〜２０ｍｍの大きさ）や粉砕サイズ（約５ｍｍ〜１０ｍｍの大きさ）、微粉砕サイズ（１ｍｍ〜５ｍｍの大きさ）、粉末サイズ（１ｍｍ以下の大きさ）とすることができる。本実施形態においては、１ｍｍ〜３ｍｍの微粉砕とすることを好適としている。
【００２２】
また、本実施形態においては、破砕したガゴメの２５倍重量の蒸留水を用いて粘性多糖類が抽出されているが、粘性多糖類の抽出に用いられる溶媒の種類やその量は、水性溶媒であって粘性多糖類の抽出が可能な量であれば特に限定されず、適宜選択することができる。本発明における水性溶媒としては、例えば、水または水性溶剤を挙げることができ、水が好ましい。水としては、蒸留水の他、精製水、金属イオン等を除去したイオン交換水、純水、これらを滅菌処理した水等を挙げることができる。また、水性溶剤としてはアルコール類や酸、塩基等を挙げることができる。
【００２３】
次に、本発明においては、抽出された粘性多糖類のうち、水性溶媒溶液とした場合の所定の濃度、相対粘度、粘度、抽出温度、抽出ｐＨ、あるいは反射光の光強度を有するものを、免疫賦活剤の有効成分として選択する。
【００２４】
本発明においては、水性溶媒溶液とした場合の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分としている。ここで、本発明における「濃度」とは、粘性多糖類の水性溶媒溶液の濃度である。すなわち、本発明における濃度とは、糖濃度のみならず、粘性多糖類に含まれる多糖と、硫酸基、還元末端、および灰分等から選択される任意の混合体の濃度が含まれる。なお、本実施形態における濃度とは、粘性多糖類の水溶液の糖濃度であり、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％であるものを、好適な粘性多糖類としている。
【００２５】
糖濃度は必要に応じて、糖重量と水溶液の重量または容積とを基に、ｗ／ｗ％、ｗ／ｖ％で表すことができる。また糖濃度は、可溶性固形分の割合を、糖液の屈折率を基にして表したものであるＢｒｉｘ（ｗ／ｗ％）によって表すことができる。また、糖濃度の測定方法は、フェノール硫酸法、アンスロン硫酸法等により、発色した化合物の吸光度を測定することにより求めることができ、単糖類と多糖類とはいずれも任意の糖に換算して定量することができる｛基礎生化学実験法 第５巻 ｐ１１８(２０００)｝。なお、本実施形態においては、フェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝により、フコイダンを標準糖として糖濃度を測定している。
【００２６】
本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の濃度に相関性のある水性溶媒溶液の相対粘度の値によっても選択することができる。すなわち、本発明においては、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満であって、かつ２０℃における水の粘度の値を１とした場合の水性溶媒溶液の相対粘度の値が、２．５より大きく２５．８より小さい値のものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％であって、かつ相対粘度の値が５．８〜２０．３であるものを、より好適な粘性多糖類としている。
【００２７】
本発明において、粘性多糖類の水性溶媒溶液の相対粘度は、２０℃における水の粘度の値を１としているが、相対粘度の測定方法は特に限定されず、所望の粘度計や相対粘度計を用いることにより適宜測定することができる。なお、本実施形態においては、２０℃の条件下、内径が０．７５ｍｍおよび１．５ｍｍのオストワルド相対粘度計を用いて相対粘度を測定している。
【００２８】
また、２０℃における水の粘度は１センチポアズ（ｃＰ）であることから、本発明におおける粘性多糖類は、水性溶媒溶液とした場合の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度であるものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の粘度が５．８ｃＰ〜２０．３ｃＰであるものを、好適な粘性多糖類としている。
【００２９】
さらに、本発明においては、３０℃未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類、および／またはｐＨが５以上８未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類を選択することができる。３０℃未満の条件下、および／またはｐＨが５以上８未満の条件下で抽出されることにより、粘性度の高い粘性多糖類が得られることが発明者等によって明らかにされている。本実施形態においては、４℃〜２０℃の条件下、および／またはｐＨが５．８〜７．６の条件下で抽出された粘性多糖類が、好適な粘性多糖類として用いられ、２０℃の条件下、および／またはｐＨが６．３〜７．４の条件下で抽出された粘性多糖類が、より好適な粘性多糖類として用いられている。
【００３０】
次に、本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の反射光の光強度によって選択することができる。本発明における粘性多糖類は、粘稠性の高い複数の多糖類等が相互に絡み合って高次構造を有する複合体を形成し、この高次構造複合体が一定のサイズや密度となる場合に免疫賦活効果を発揮すると発明者等は考えている。反射光の光強度の値は一定の範囲では水性溶媒溶液の濃度に比例するが、濃度が高すぎると当該光強度の値は小さくなることが発明者等によって明らかにされている。これは、当該一定の濃度において形成される一定のサイズや密度の高次構造複合体が免疫賦活効果を有していることを示している。発明者等によれば、存在する高次構造複合体のサイズや密度が光の反射に大きく影響しており、一定の糖濃度を超える場合は高次構造複合体のサイズが大きくなりすぎてしまうことから、光の反射がうまくなされないと考えられている。
【００３１】
なお、本実施形態においては、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして水溶液の光強度の値を測定し、アルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合に、水溶液の光強度の値が約６００〜９００の値である粘性多糖類を好適な粘性多糖類とし、当該水溶液の光強度の値が約７１０〜９００の値である粘性多糖類をより好適な粘性多糖類としている。
【００３２】
さらに、本発明における粘性多糖類は、塩類を除去する処理がされたものを選択することができる。本発明における「塩類」には、いわゆる塩化ナトリウムのみならず、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩等の無機塩や、無機質（ミネラル）、微量元素が含まれる。また、本発明において、「除去する処理」には、すべてを取り除く行為のみならず、少なくともその一部を取り除く行為が含まれる。
【００３３】
本発明において、塩類を除去する処理は特に限定されないが、例えば、透析膜、限外濾過膜、脱塩用カラム等を用いた透析や電気透析、吸引濾過や限外濾過、あるいはイオン交換樹脂を用いて行う等、当業者に公知の任意の物理的または化学的方法・手段を挙げることができる。本実施形態においては、セルロースチューブ透析膜を用いた透析により、塩類を除去する処理がなされている。透析により塩類が除かれると、電荷バランスが変化して分子構造が広がり、その結果、巨大構造が形成され、粘度が上昇すると発明者等によって考えられている。
【００３４】
次に、本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について説明する。本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、
(i)ガゴメを粉砕する粉砕工程
(ii)粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程
(iii)粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程
以上(i)〜(iii)の工程を有している。
【００３５】
本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、以上(i)〜(iii)の工程を有していれば、他の任意の工程を有してもよく、例えば、加熱工程や冷却工程、凍結工程、酸・アルカリ添加工程、架橋工程、固液分離工程、撹拌工程、乾燥工程、脱塩工程等、当業者に公知の任意の工程を有してもよい。本実施形態においては、フードカッターが用いられているが、本発明における「粉砕」は、これに限られず、当業者に公知の任意の手段を挙げることができる。
【００３６】
ここで、本発明における「振盪」とは、一般にはふるい動かすことをいうが、これに限られず、「撹拌」の意味を含む趣旨である。すなわち本発明においては、所望の振盪機器を用いることができるほか、マグネティックスターラーやメカニカルスターラー等の撹拌機器を用いることもできる。なお、本実施形態においては、恒温振盪培養器を用いて振盪を行っている。
【００３７】
以下、本発明に係る免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法の実施例について説明する。なお、本発明の範囲は、これらの実施例によって示される特徴に限定されない。
【実施例１】
【００３８】
《抽出条件の検討》
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から高粘度の粘性多糖類を抽出するために、抽出温度、時間、およびｐＨの検討を行いつつ、粘性多糖類の濃度と粘度との関係について検討を行った。
【００３９】
（１）温度および時間の検討
まず、乾燥したガゴメをフードカッターで微粉砕して１ｍｍ〜３ｍｍに小片化し、２５倍重量の蒸留水に懸濁した。この懸濁液を４〜１００℃の温度条件下、１時間〜２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪することによって粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。抽出温度は４，１０，２０，３０，４０，６０，８０，１００℃の８段階で行った。粘度測定は、オストワルド粘度計（管内径０．７５ｍｍまたは１．５ｍｍ；柴田化学）を用いて２０℃の浴槽中で各々６回測定し、水に対する相対粘度の平均値を算出した。その結果を図１（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１（ｂ）に示す。
【００４０】
図１（ａ）および（ｂ）に示すように、２０℃の温度条件下で１２時間〜２４時間抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。
【００４１】
（２）ｐＨの検討
次に、フードカッターを用いて１〜３ｍｍのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、２５倍重量の蒸留水に懸濁後、０．１ＮのＨＣｌ水溶液または０．１ＮのＮａＯＨ水溶液を加えることによりｐＨを３．８〜９．４に調製した。このｐＨ調製懸濁液を２０℃の温度条件下、２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。粘度の測定および算出は、（１）と同様に行った。また、当該上澄み中の糖濃度はフェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝を用いて測定した。その結果を図２（ａ）に示し、ｐＨと相対粘度との関係を図２（ｂ）に示す。
【００４２】
図２（ａ）および（ｂ）に示すように、ｐＨを７．１の条件下にて抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。
【００４３】
（３）糖濃度と粘度との関係
前記（１）および（２）と同様の方法で、温度３０℃未満でｐＨ５．８の条件下で抽出された粘性多糖類の抽出液を用いて、含有する粘性多糖類の糖濃度（％）を測定し、相対粘度との関係を調べた。その結果を図３に示す。
【００４４】
図３に示すように、抽出液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％である場合に、相対粘度は５．８〜２０．３の値となった。そして、糖濃度が高くなるにつれて相対粘度も高くなる傾向が明らかとなった。
【実施例２】
【００４５】
《粘性多糖抽出液の成分解析》
フードカッターを用いて１〜３ｍｍのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、２５倍重量の蒸留水に懸濁後、２０℃の温度条件下、２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、吸引濾過により濾液とガゴメ残渣とに固液分離した。この濾液をさらに１５００ｒｐｍで２０分間遠心して沈殿物を除去して上清を得た。得られた上清２５ｍＬをセルロースチューブ透析膜（平面幅３２ｍｍ，直径２０ｍｍ，壁厚０．０３０５ｍｍ，透過分子量約１４０００以下；三光純薬）に供し、１．２５Ｌの蒸留水を外液として、スターラーで撹拌しながら透析処理を行った。透析処理は、透析開始から各々３時間後、６時間後、１２時間後に外液を交換し、２４時間経過するまで行った。透析処理後の溶液を凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性多糖類抽出液（ＧＥ）とした。一方、透析処理後の溶液を６０℃で１時間加熱処理をした後、凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性低下液（ＧＨ）とした。
【００４６】
上記透析処理後の溶液（抽出液）の粘度と、上記透析処理後の溶液を凍結乾燥したもの（凍結乾燥品）に含まれる全糖量、構成する各多糖量、硫酸基、還元末端、および灰分との定量を行った。粘度および全糖量は実施例１と同様に行った。また、各多糖量の定量は、Ｎｉｓｈｉｄｅらの手法（Nishide, E.; Yoshihara, M.; Kato, T.; Hakone, T.; Kamata, Y.; Anzai, H.; Uchida, N. Fractionation of laminaran and fucoidan by DEAE-sephadex column chromatography. Bull. Coll. Agr. & Vet. Med., Nihon Univ. 1994, 51, 103-107）に従って各々分離した後、フェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝により行った。さらに、硫酸基の定量は、ロジゾン酸法（Terho, T. T.; Hartiala, K. Method for determination of the sulfate content of glycosaminoglycans. Anal Biochem. 1971, 41, 471-476.）により行い、還元末端の定量は、ソムギー・ネルソン法（Somogyi, M. Note on sugar determination. J Biol Chem. 1952, 195, 19-23.）により行い、灰分の定量は、直接灰化法（５５０℃灰化法）により行った。その結果を図４に示す。
【００４７】
図４に示すように、ＧＥ中には多糖としてフコイダン、ラミナラン、アルギン酸を含んでいることが示された。また、ＧＨの相対粘度はＧＥに比べて非常に低い値が示され、６０℃で１時間の加熱処理を行うことにより、抽出液の粘性が低下することが明らかとなった。
【実施例３】
【００４８】
《マウスを用いた免疫賦活作用の検討》
マウスを用いてガゴメから抽出した粘性多糖類の免疫賦活作用について検討を行った。
まず、マウスは６週齢オスのＣ５７ＢＬ／６Ｃｒ（三協ラボサービス）を使用し、群分けを行った。試験構成群は、コントロール群，ＧＥ１０，ＧＥ３０，ＧＥ１００，ＧＨ１０，ＧＨ３０，ＧＨ１００の計７群を設定し、各群につき５匹のマウスを用いた。実施例２で得られたＧＥを滅菌蒸留水にて各々１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製し、これら水溶液を被検物質としてＧＥ１０，ＧＥ３０，ＧＥ１００の３群に投与した。一方、実施例２で得られたＧＨを滅菌蒸留水にて各々１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製し、これら水溶液を被検物質としてＧＨ１０、ＧＨ３０、ＧＨ１００の３群に投与した。コントロール群には滅菌蒸留水を投与した。
【００４９】
試験方法は、群分けを行った日を０日とし、翌日から１日１回ゾンデを用いて被検物質または滅菌蒸留水を、各々１０ｍＬ／ｋｇを１４日間連日経口投与した。投与期間中は毎日体重を測定した。また、投与最終日の１４日目には糞便を採取し、投与最終日の翌日の１５日目にはマウスの解剖を行った。解剖は、まずマウスを炭酸ガスで屠殺し、後大静脈から全採血を行った後、脾臓を摘出した。なお、動物実験は、「国立大学法人北海道大学動物実験に関する規程」に準じて実施した。
【００５０】
前記で得られたデータおよびサンプルを用いて、免疫賦活作用について調べた。なお、データ解析は、得られた数値に基づいて、各群における平均値および標準偏差を算出した。各群間の統計解析はＥｘｃｅｌ（登録商標；Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ）を用いてＴ検定を行い、コントロール群との平均値を比較することにより被検物質の効果を評価した。有意水準は危険率５％および１％とし、各々「＊」および「＊＊」で示す。
【００５１】
（１）体重
試験期間中における各群の体重推移を図５（ａ）〜（ｇ）に示し、投与最終日の１４日目には各群の体重の平均値を算出し、データ解析を行った。その結果を図６（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図６（ｂ）に示す。図５（ａ）〜（ｇ）に示すように、全ての群において各個体の体重差は認められなかった。また、図６（ａ）および（ｂ）に示すように、コントロール群と比較して、ＧＥまたはＧＨの投与群の全てにおいて、有意差は認められなかった。
【００５２】
（２）脾臓重量
摘出した脾臓重量を測定し、データ解析を行った。その結果を図７（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図７（ｂ）に示す。
【００５３】
その結果、コントロール群と比較して、ＧＥ３０において、脾臓重量値が有意に高い値を示し（ｐ＜０．０１）、脾臓が巨大化していることが明らかとなった。
【００５４】
（３）脾臓細胞によるサイトカインおよび抗体産生量
摘出した脾臓の脾臓細胞より産生されたサイトカインおよび免疫グロブリンの量をＥＬＩＳＡ法で定量した。測定方法は、摘出した脾臓から細胞懸濁液（２．８×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製し、培養プレートに分注した後、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）を最終濃度１μｇ／ｍＬとなるよう添加し、培養温度３７℃、ＣＯ２濃度５％の条件下で、サイトカインについては３日間、免疫グロブリンについては５日間、各々培養することにより、脾臓細胞より産生された培養上清を得た。そして、サンドイッチ酵素免疫測定（サンドイッチＥＬＩＳＡ）法により、培養上清中のサイトカイン（ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６）濃度および免疫グロブリン（ＩｇＡ，ＩｇＭ）濃度を測定した。その結果を図８（ａ）〜（ｇ）に示す。
【００５５】
その結果、コントロール群と比較して、ＧＥ３０では、ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６，ＩｇＡ，ＩｇＭのすべての値が有意に高い値を示し（ｐ＜０．０５）、サイトカインおよび抗体の産生を促進することが明らかとなった。
【００５６】
（４）ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性
摘出した脾臓からよりナチュラル・キラー（ＮＫ）細胞を単離し、ＹＡＣ−１を標的細胞とした腫瘍細胞傷害活性をＮＫ活性として測定した。すなわち、摘出した脾臓からＮＫ細胞を単離した後、６．２５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬの濃度に調製し、これをエフェクター細胞（Ｅ）とした。一方、ＹＡＣ−１細胞（大日本住友製薬）を２．５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ、５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ、１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬの濃度に調製し、これを標的細胞（Ｔ）とした。ＥとＴとの細胞数の比を１００：１，５０：１，２５：１で混合し播種した９６ウェルプレートを３７℃（５％ＣＯ２）で２２時間培養した。この９６ウェルプレートをＷＳＴ−１試薬（タカラバイオ）で２時間染色した後、マイクロプレートリーダー（コロナ）を用いて４５０ｎｍの吸光値を測定した。なお、ＹＡＣ−１細胞に対する傷害活性は次式により求めた。
（次式）
％（細胞傷害活性）＝［１−{（Ｅ・Ｔ共培養の吸光値−Ｅ培養の吸光値）／（Ｔ培養の吸光値）}］×１００
得られた数値に基づいて各々データ解析し、その結果を各々図９（ａ）〜（ｃ）に示し、これを各々グラフ化したものを図１０（ａ）〜（ｃ）に示す。
【００５７】
その結果、Ｅ：Ｔの比１００：１に場合には、コントロール群と比較して、ＧＥ３０おいてＮＫ細胞活性の有意な亢進が認められた（ｐ＜０．０５）。
【実施例４】
【００５８】
《粘度測定》
前記実施例３で投与した被検物質（投与液）の粘度を各々測定した。粘度測定は、実施例１で用いた方法にて６回測定を行った。各群における個々の相対粘度を図１１（ａ）〜（ｆ）に示し、６回の測定データの平均値を図１２に示す。
【００５９】
その結果、ＧＥ、ＧＨのいずれにおいても、濃度が増加するに伴って相対粘度の値が大きくなることが明らかとなった。
【実施例５】
【００６０】
《光強度測定》
（１）投与液の測定
前記実施例３で投与した被検物質（投与液）の構造の特徴を調べるために、蛍光光度計を用いた反射光の光強度の測定を行った。実施例３で投与した被検物質を測定サンプルとし、精製アルギン酸（Ｓｉｇｍａ）を１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製しもの、およびカルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ；関東化学）を１０ｍｇ／ｍＬに調製したものを対照サンプルとした。ＣＭＣは滅菌蒸留水に溶解し、精製アルギン酸は１２％炭酸ナトリウム水溶液に溶解して用いた。０．６ｍＬの各サンプルを蛍光光度計に供し、蛍光波長と励起波長とを共に３５０ｎｍとして、反応光の光強度を測定した。測定後、アルギン酸０．１％水溶液の光強度を１００として各光強度を算出した。その結果を図１３（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１３（ｂ）に示す。
【００６１】
図１３（ａ）および（ｂ）に示すように、ＧＥ３０において著しく高い光強度が検出された。前記実施例３において、ＧＥ３０に有意な免疫賦活作用が認められたことから、３ｍｇ／ｍＬのＧＥには免疫賦活に亢進的に作用する特異的な構造を有していることが示唆された。また、ＧＨ３０はＧＥ３０に比べて光強度が３６．３％低下していた。これは、前記実施例４において、ＧＨ３０はＧＥ３０に比べて粘度の低下が認められており、熱処理により糖分子の高次構造が崩壊していることが示唆された。なお、１０ｍｇ／ｍＬのアルギン酸における光強度が高い値を示しているのは、分子構造の中心に金属イオン塩が存在することで、架橋結合によって大きなクラスターが形成されるためであると考えられる。
【００６２】
（２）ＧＥの濃度検討
ＧＥを滅菌蒸留水にて１，２，３，５，１０ｍｇ／ｍＬに調製したサンプルを、各々ＧＥ１０，ＧＥ２０，ＧＥ３０，ＧＥ５０，ＧＥ１００とし、前記（１）と同様に反射光の光強度の測定を行った。サンプル調製および測定を各々４回行った。その結果を図１４（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１４（ｂ）に示す。
【００６３】
その結果、ＧＥ３０，ＧＥ５０，ＧＥ１００における光強度は６００以上の値を示し、ＧＥ３０，ＧＥ５０では、光強度は７００以上の高い値を示すことが明らかとなった。
【００６４】
以上のような本実施例によれば、ガゴメ由来の粘性多糖類は、特定の粘度または特定の測定による反射率を有することにより、脾臓細胞におけるサイトカイン産生、抗体産生、およびＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性を促進し、図１５に示すような免疫応答に作用していることが示唆される。
【００６５】
また、本実施形態においては、水を溶媒として免疫賦活亢進作用に有効なガゴメ由来の粘性多糖類を抽出しており、この粘性多糖類の水性溶液の適度な粘稠性と免疫賦活作用とを利用して、とろみを有する機能性食品の開発が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００６６】
【図１】実施例１（１）において、抽出温度および抽出時間の検討結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の相対粘度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図２】実施例１（２）において、抽出ｐＨの検討結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の相対粘度を示す図表および抽出液中の糖濃度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）のｐＨと相対粘度との関係をグラフ化した図である。
【図３】実施例１（３）において、糖濃度と粘度との関係示す図である。
【図４】実施例２において、粘性多糖抽出液の成分解析の結果を示す図である。
【図５】実施例３（１）において、各群の体重推移を示した図である。（ａ）〜（ｇ）は、各々コントロール群，ＧＥ１０群，ＧＥ３０群，ＧＥ１００群，ＧＨ１０群，ＧＨ３０群，ＧＨ１００群の体重推移を示す。
【図６】実施例３（１）において、投与最終日の各群における体重の平均値を示す図である。（ａ）は測定した個々の体重を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図７】実施例３（３）において、摘出した脾臓重量を示す図である。（ａ）は測定した個々の脾臓重量を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図８】実施例３（４）において、脾臓細胞のサイトカインおよび抗体産生量を測定した結果を示す図である。（ａ）〜（ｇ）は、各々ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６，ＩｇＡ，ＩｇＭの産生量を示す。
【図９】実施例３（５）において、ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性の測定結果を示す図表である。（ａ）〜（ｃ）は、各々ＥとＴの細胞数の比を２５対１，５０対１，１００対１とした時の測定結果を示す。
【図１０】実施例３（５）において、ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性の測定結果をグラフ化した図である。（ａ）〜（ｃ）は、各々ＥとＴの細胞数の比を２５対１，５０対１，１００対１とした時の測定結果を示す。
【図１１】実施例４において、粘度測定した個々の数値を示す図である。
【図１２】実施例４において、粘度測定した個々の数値から算出した平均値を示す図である。
【図１３】実施例５（１）において、光強度を測定した結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の光強度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図１４】実施例５（２）において、光強度を測定した結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の光強度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図１５】ガゴメ由来の粘性多糖類が作用すると考えられる免疫応答について示した図である。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出されて得られる粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）は、主として北海道沿岸の函館周辺から渡島半島東岸、松前小島、東北北部の大間岬等のごく限られた地域で生息し、水深７〜２５ｍの岩礁上で生育する、藻体の長さが２ｍ、幅が３０ｃｍ以上にもなる多年生藻類である。葉状部に大小の凹凸状のしわが一面に形成されており、粘りの原因である粘性多糖類が藻体から多量に分泌されるという特徴を有している。この粘性多糖類は、フコイダンやラミナラン、アルギン酸等から構成されており、この粘性多糖類が健康に役立つことが昨今明らかにされ、健康食品の原材料や薬剤の有効成分として注目されている。
【０００３】
例えば、ＷＯ９７−０２６８９６号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いたアポトーシス誘発剤が開示されている（特許文献１）。また、特開２００５−２３１９９８号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いた透析アミロイドーシス治療剤が開示されている（特許文献２）。
【０００４】
一方、海藻から抽出した多糖類を有効成分とした免疫賦活剤が提案されている。例えば、特開平６−２５６２０８号公報には、紅藻類から抽出した酸性多糖にβ−アガラーゼを作用させて低粘性化したものを有効成分とする免疫賦活剤が開示されており（特許文献３）、特開２００７−２３０９８０号公報には、メカブから多糖類抽出液を調製し、その多糖類抽出液を遠心分離して沈殿画分を抽出した免疫賦活剤が開示されている（特許文献４）。
【０００５】
【特許文献１】ＷＯ９７−０２６８９６号公報
【特許文献２】特開２００５−２３１９９８号公報
【特許文献３】特開平６−２５６２０８号公報
【特許文献４】特開２００７−２３０９８０号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
特許文献１および特許文献２に開示された発明は、いずれも免疫賦活に関するものではない。また、特許文献３に開示された発明は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の免疫賦活剤に関するものではなく、粘性多糖類の粘性を酵素処理によって低下させた免疫賦活剤に関するものである。さらに、特許文献４に開示された発明もまたガゴメ由来の免疫賦活剤ではなく、多糖類抽出液を調製・遠心分離して得られた沈殿画分を用いた免疫賦活剤に関するものである。
【０００７】
一方、本願発明者等は、ガゴメから粘性多糖類を抽出して、様々なサイトカインや抗体の産生量を定量すること、およびＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性を測定することによる免疫賦活効果を鋭意検討したところ、抽出条件、濃度、粘度、および反射光の光強度等により免疫賦活効果が異なることを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、ガゴメ由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することを目的としている。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明に係る免疫賦活剤の第一の態様は、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１０】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、２０℃における水の粘度の値を１とした場合の前記水性溶媒溶液の相対粘度の値が、２．５より大きく２５．８より小さい値であってもよい。
【００１１】
本発明に係る免疫賦活剤の第二の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１２】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が３０℃未満の水性溶媒で抽出されてもよく、前記粘性多糖類のｐＨが５以上８未満の条件下で抽出されてもよい。
【００１３】
本発明に係る免疫賦活剤の第三の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして測定したアルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合において、水性溶媒溶液の光強度の値が６００以上の値である粘性多糖類を有効成分として含むものである。
【００１４】
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が、塩類を除去する処理がされたものであってもよい。
【００１５】
一方、本発明に係る粘性多糖類の抽出方法は、ガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法であって、ガゴメを粉砕する粉砕工程と、粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程とを有するものである。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とし、効果的な免疫賦活作用を有する免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
以下、本発明に係るガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について、実施形態を用いて説明する。まず、本発明に係るガゴメ由来免疫賦活剤について説明する。
【００１８】
本発明に係る免疫賦活剤は、ガゴメから抽出された粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分としている。本発明における「粘性多糖類」とは、水溶性溶媒を用いてガゴメから抽出される粘質物、および当該抽出された粘質物を処理したものをいい、多糖の一種であるアルギン酸やラミナラン、および硫酸多糖の一種であるフコイダン等の多糖を主な構成としている。また、ここにいう「処理」とは、一般には加工を施して性質を変えることをいうが、免疫賦活作用を損なわない態様をいい、例えば、熱処理や冷却処理、凍結処理、酸・アルカリ処理、架橋処理、固液分離処理、撹拌処理、乾燥処理、脱塩処理等であって免疫賦活作用を損なわない態様をいう。
【００１９】
なお、本発明において「免疫賦活」は、「免疫刺激」、「免疫増強」、「免疫増進」、「免疫活性」、「免疫活性化」、「免疫向上」、あるいは「免疫亢進」と交換可能に用いられ、「免疫増進剤」は、「免疫刺激剤」、「免疫増強剤」、「免疫増進剤」、「免疫活性剤」、あるいは「免疫亢進剤」と交換可能に用いられる。したがって「免疫賦活作用」は、例えば、「免疫刺激作用」としても表すことができる。
【００２０】
本実施形態においては、乾燥したガゴメをフードカッターにて破砕し、破砕したガゴメの２５倍重量の蒸留水にこれを混合して調製した混合液を２０℃条件下で２４時間振盪して抽出して得た上澄みを粘性多糖類としている。
【００２１】
ここで、本実施形態においては、乾燥したガゴメから粘性多糖類が抽出されているが、本発明における「ガゴメ」はこれに限定されず、収穫直後や一時保存したような生のものでもよく、一旦凍結保存されたもの等であってもよい。また、破砕のサイズは特に限定されないが、例えば、細切りサイズ（約１０ｍｍ〜２０ｍｍの大きさ）や粉砕サイズ（約５ｍｍ〜１０ｍｍの大きさ）、微粉砕サイズ（１ｍｍ〜５ｍｍの大きさ）、粉末サイズ（１ｍｍ以下の大きさ）とすることができる。本実施形態においては、１ｍｍ〜３ｍｍの微粉砕とすることを好適としている。
【００２２】
また、本実施形態においては、破砕したガゴメの２５倍重量の蒸留水を用いて粘性多糖類が抽出されているが、粘性多糖類の抽出に用いられる溶媒の種類やその量は、水性溶媒であって粘性多糖類の抽出が可能な量であれば特に限定されず、適宜選択することができる。本発明における水性溶媒としては、例えば、水または水性溶剤を挙げることができ、水が好ましい。水としては、蒸留水の他、精製水、金属イオン等を除去したイオン交換水、純水、これらを滅菌処理した水等を挙げることができる。また、水性溶剤としてはアルコール類や酸、塩基等を挙げることができる。
【００２３】
次に、本発明においては、抽出された粘性多糖類のうち、水性溶媒溶液とした場合の所定の濃度、相対粘度、粘度、抽出温度、抽出ｐＨ、あるいは反射光の光強度を有するものを、免疫賦活剤の有効成分として選択する。
【００２４】
本発明においては、水性溶媒溶液とした場合の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分としている。ここで、本発明における「濃度」とは、粘性多糖類の水性溶媒溶液の濃度である。すなわち、本発明における濃度とは、糖濃度のみならず、粘性多糖類に含まれる多糖と、硫酸基、還元末端、および灰分等から選択される任意の混合体の濃度が含まれる。なお、本実施形態における濃度とは、粘性多糖類の水溶液の糖濃度であり、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％であるものを、好適な粘性多糖類としている。
【００２５】
糖濃度は必要に応じて、糖重量と水溶液の重量または容積とを基に、ｗ／ｗ％、ｗ／ｖ％で表すことができる。また糖濃度は、可溶性固形分の割合を、糖液の屈折率を基にして表したものであるＢｒｉｘ（ｗ／ｗ％）によって表すことができる。また、糖濃度の測定方法は、フェノール硫酸法、アンスロン硫酸法等により、発色した化合物の吸光度を測定することにより求めることができ、単糖類と多糖類とはいずれも任意の糖に換算して定量することができる｛基礎生化学実験法 第５巻 ｐ１１８(２０００)｝。なお、本実施形態においては、フェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝により、フコイダンを標準糖として糖濃度を測定している。
【００２６】
本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の濃度に相関性のある水性溶媒溶液の相対粘度の値によっても選択することができる。すなわち、本発明においては、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満であって、かつ２０℃における水の粘度の値を１とした場合の水性溶媒溶液の相対粘度の値が、２．５より大きく２５．８より小さい値のものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％であって、かつ相対粘度の値が５．８〜２０．３であるものを、より好適な粘性多糖類としている。
【００２７】
本発明において、粘性多糖類の水性溶媒溶液の相対粘度は、２０℃における水の粘度の値を１としているが、相対粘度の測定方法は特に限定されず、所望の粘度計や相対粘度計を用いることにより適宜測定することができる。なお、本実施形態においては、２０℃の条件下、内径が０．７５ｍｍおよび１．５ｍｍのオストワルド相対粘度計を用いて相対粘度を測定している。
【００２８】
また、２０℃における水の粘度は１センチポアズ（ｃＰ）であることから、本発明におおける粘性多糖類は、水性溶媒溶液とした場合の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度であるものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の粘度が５．８ｃＰ〜２０．３ｃＰであるものを、好適な粘性多糖類としている。
【００２９】
さらに、本発明においては、３０℃未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類、および／またはｐＨが５以上８未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類を選択することができる。３０℃未満の条件下、および／またはｐＨが５以上８未満の条件下で抽出されることにより、粘性度の高い粘性多糖類が得られることが発明者等によって明らかにされている。本実施形態においては、４℃〜２０℃の条件下、および／またはｐＨが５．８〜７．６の条件下で抽出された粘性多糖類が、好適な粘性多糖類として用いられ、２０℃の条件下、および／またはｐＨが６．３〜７．４の条件下で抽出された粘性多糖類が、より好適な粘性多糖類として用いられている。
【００３０】
次に、本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の反射光の光強度によって選択することができる。本発明における粘性多糖類は、粘稠性の高い複数の多糖類等が相互に絡み合って高次構造を有する複合体を形成し、この高次構造複合体が一定のサイズや密度となる場合に免疫賦活効果を発揮すると発明者等は考えている。反射光の光強度の値は一定の範囲では水性溶媒溶液の濃度に比例するが、濃度が高すぎると当該光強度の値は小さくなることが発明者等によって明らかにされている。これは、当該一定の濃度において形成される一定のサイズや密度の高次構造複合体が免疫賦活効果を有していることを示している。発明者等によれば、存在する高次構造複合体のサイズや密度が光の反射に大きく影響しており、一定の糖濃度を超える場合は高次構造複合体のサイズが大きくなりすぎてしまうことから、光の反射がうまくなされないと考えられている。
【００３１】
なお、本実施形態においては、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして水溶液の光強度の値を測定し、アルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合に、水溶液の光強度の値が約６００〜９００の値である粘性多糖類を好適な粘性多糖類とし、当該水溶液の光強度の値が約７１０〜９００の値である粘性多糖類をより好適な粘性多糖類としている。
【００３２】
さらに、本発明における粘性多糖類は、塩類を除去する処理がされたものを選択することができる。本発明における「塩類」には、いわゆる塩化ナトリウムのみならず、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩等の無機塩や、無機質（ミネラル）、微量元素が含まれる。また、本発明において、「除去する処理」には、すべてを取り除く行為のみならず、少なくともその一部を取り除く行為が含まれる。
【００３３】
本発明において、塩類を除去する処理は特に限定されないが、例えば、透析膜、限外濾過膜、脱塩用カラム等を用いた透析や電気透析、吸引濾過や限外濾過、あるいはイオン交換樹脂を用いて行う等、当業者に公知の任意の物理的または化学的方法・手段を挙げることができる。本実施形態においては、セルロースチューブ透析膜を用いた透析により、塩類を除去する処理がなされている。透析により塩類が除かれると、電荷バランスが変化して分子構造が広がり、その結果、巨大構造が形成され、粘度が上昇すると発明者等によって考えられている。
【００３４】
次に、本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について説明する。本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、
(i)ガゴメを粉砕する粉砕工程
(ii)粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程
(iii)粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程
以上(i)〜(iii)の工程を有している。
【００３５】
本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、以上(i)〜(iii)の工程を有していれば、他の任意の工程を有してもよく、例えば、加熱工程や冷却工程、凍結工程、酸・アルカリ添加工程、架橋工程、固液分離工程、撹拌工程、乾燥工程、脱塩工程等、当業者に公知の任意の工程を有してもよい。本実施形態においては、フードカッターが用いられているが、本発明における「粉砕」は、これに限られず、当業者に公知の任意の手段を挙げることができる。
【００３６】
ここで、本発明における「振盪」とは、一般にはふるい動かすことをいうが、これに限られず、「撹拌」の意味を含む趣旨である。すなわち本発明においては、所望の振盪機器を用いることができるほか、マグネティックスターラーやメカニカルスターラー等の撹拌機器を用いることもできる。なお、本実施形態においては、恒温振盪培養器を用いて振盪を行っている。
【００３７】
以下、本発明に係る免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法の実施例について説明する。なお、本発明の範囲は、これらの実施例によって示される特徴に限定されない。
【実施例１】
【００３８】
《抽出条件の検討》
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から高粘度の粘性多糖類を抽出するために、抽出温度、時間、およびｐＨの検討を行いつつ、粘性多糖類の濃度と粘度との関係について検討を行った。
【００３９】
（１）温度および時間の検討
まず、乾燥したガゴメをフードカッターで微粉砕して１ｍｍ〜３ｍｍに小片化し、２５倍重量の蒸留水に懸濁した。この懸濁液を４〜１００℃の温度条件下、１時間〜２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪することによって粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。抽出温度は４，１０，２０，３０，４０，６０，８０，１００℃の８段階で行った。粘度測定は、オストワルド粘度計（管内径０．７５ｍｍまたは１．５ｍｍ；柴田化学）を用いて２０℃の浴槽中で各々６回測定し、水に対する相対粘度の平均値を算出した。その結果を図１（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１（ｂ）に示す。
【００４０】
図１（ａ）および（ｂ）に示すように、２０℃の温度条件下で１２時間〜２４時間抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。
【００４１】
（２）ｐＨの検討
次に、フードカッターを用いて１〜３ｍｍのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、２５倍重量の蒸留水に懸濁後、０．１ＮのＨＣｌ水溶液または０．１ＮのＮａＯＨ水溶液を加えることによりｐＨを３．８〜９．４に調製した。このｐＨ調製懸濁液を２０℃の温度条件下、２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。粘度の測定および算出は、（１）と同様に行った。また、当該上澄み中の糖濃度はフェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝を用いて測定した。その結果を図２（ａ）に示し、ｐＨと相対粘度との関係を図２（ｂ）に示す。
【００４２】
図２（ａ）および（ｂ）に示すように、ｐＨを７．１の条件下にて抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。
【００４３】
（３）糖濃度と粘度との関係
前記（１）および（２）と同様の方法で、温度３０℃未満でｐＨ５．８の条件下で抽出された粘性多糖類の抽出液を用いて、含有する粘性多糖類の糖濃度（％）を測定し、相対粘度との関係を調べた。その結果を図３に示す。
【００４４】
図３に示すように、抽出液の糖濃度が０．０７％〜０．２９％である場合に、相対粘度は５．８〜２０．３の値となった。そして、糖濃度が高くなるにつれて相対粘度も高くなる傾向が明らかとなった。
【実施例２】
【００４５】
《粘性多糖抽出液の成分解析》
フードカッターを用いて１〜３ｍｍのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、２５倍重量の蒸留水に懸濁後、２０℃の温度条件下、２４時間１００ｒｐｍ／分で、恒温振盪培養器（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、吸引濾過により濾液とガゴメ残渣とに固液分離した。この濾液をさらに１５００ｒｐｍで２０分間遠心して沈殿物を除去して上清を得た。得られた上清２５ｍＬをセルロースチューブ透析膜（平面幅３２ｍｍ，直径２０ｍｍ，壁厚０．０３０５ｍｍ，透過分子量約１４０００以下；三光純薬）に供し、１．２５Ｌの蒸留水を外液として、スターラーで撹拌しながら透析処理を行った。透析処理は、透析開始から各々３時間後、６時間後、１２時間後に外液を交換し、２４時間経過するまで行った。透析処理後の溶液を凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性多糖類抽出液（ＧＥ）とした。一方、透析処理後の溶液を６０℃で１時間加熱処理をした後、凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性低下液（ＧＨ）とした。
【００４６】
上記透析処理後の溶液（抽出液）の粘度と、上記透析処理後の溶液を凍結乾燥したもの（凍結乾燥品）に含まれる全糖量、構成する各多糖量、硫酸基、還元末端、および灰分との定量を行った。粘度および全糖量は実施例１と同様に行った。また、各多糖量の定量は、Ｎｉｓｈｉｄｅらの手法（Nishide, E.; Yoshihara, M.; Kato, T.; Hakone, T.; Kamata, Y.; Anzai, H.; Uchida, N. Fractionation of laminaran and fucoidan by DEAE-sephadex column chromatography. Bull. Coll. Agr. & Vet. Med., Nihon Univ. 1994, 51, 103-107）に従って各々分離した後、フェノール硫酸法｛Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)｝により行った。さらに、硫酸基の定量は、ロジゾン酸法（Terho, T. T.; Hartiala, K. Method for determination of the sulfate content of glycosaminoglycans. Anal Biochem. 1971, 41, 471-476.）により行い、還元末端の定量は、ソムギー・ネルソン法（Somogyi, M. Note on sugar determination. J Biol Chem. 1952, 195, 19-23.）により行い、灰分の定量は、直接灰化法（５５０℃灰化法）により行った。その結果を図４に示す。
【００４７】
図４に示すように、ＧＥ中には多糖としてフコイダン、ラミナラン、アルギン酸を含んでいることが示された。また、ＧＨの相対粘度はＧＥに比べて非常に低い値が示され、６０℃で１時間の加熱処理を行うことにより、抽出液の粘性が低下することが明らかとなった。
【実施例３】
【００４８】
《マウスを用いた免疫賦活作用の検討》
マウスを用いてガゴメから抽出した粘性多糖類の免疫賦活作用について検討を行った。
まず、マウスは６週齢オスのＣ５７ＢＬ／６Ｃｒ（三協ラボサービス）を使用し、群分けを行った。試験構成群は、コントロール群，ＧＥ１０，ＧＥ３０，ＧＥ１００，ＧＨ１０，ＧＨ３０，ＧＨ１００の計７群を設定し、各群につき５匹のマウスを用いた。実施例２で得られたＧＥを滅菌蒸留水にて各々１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製し、これら水溶液を被検物質としてＧＥ１０，ＧＥ３０，ＧＥ１００の３群に投与した。一方、実施例２で得られたＧＨを滅菌蒸留水にて各々１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製し、これら水溶液を被検物質としてＧＨ１０、ＧＨ３０、ＧＨ１００の３群に投与した。コントロール群には滅菌蒸留水を投与した。
【００４９】
試験方法は、群分けを行った日を０日とし、翌日から１日１回ゾンデを用いて被検物質または滅菌蒸留水を、各々１０ｍＬ／ｋｇを１４日間連日経口投与した。投与期間中は毎日体重を測定した。また、投与最終日の１４日目には糞便を採取し、投与最終日の翌日の１５日目にはマウスの解剖を行った。解剖は、まずマウスを炭酸ガスで屠殺し、後大静脈から全採血を行った後、脾臓を摘出した。なお、動物実験は、「国立大学法人北海道大学動物実験に関する規程」に準じて実施した。
【００５０】
前記で得られたデータおよびサンプルを用いて、免疫賦活作用について調べた。なお、データ解析は、得られた数値に基づいて、各群における平均値および標準偏差を算出した。各群間の統計解析はＥｘｃｅｌ（登録商標；Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ）を用いてＴ検定を行い、コントロール群との平均値を比較することにより被検物質の効果を評価した。有意水準は危険率５％および１％とし、各々「＊」および「＊＊」で示す。
【００５１】
（１）体重
試験期間中における各群の体重推移を図５（ａ）〜（ｇ）に示し、投与最終日の１４日目には各群の体重の平均値を算出し、データ解析を行った。その結果を図６（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図６（ｂ）に示す。図５（ａ）〜（ｇ）に示すように、全ての群において各個体の体重差は認められなかった。また、図６（ａ）および（ｂ）に示すように、コントロール群と比較して、ＧＥまたはＧＨの投与群の全てにおいて、有意差は認められなかった。
【００５２】
（２）脾臓重量
摘出した脾臓重量を測定し、データ解析を行った。その結果を図７（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図７（ｂ）に示す。
【００５３】
その結果、コントロール群と比較して、ＧＥ３０において、脾臓重量値が有意に高い値を示し（ｐ＜０．０１）、脾臓が巨大化していることが明らかとなった。
【００５４】
（３）脾臓細胞によるサイトカインおよび抗体産生量
摘出した脾臓の脾臓細胞より産生されたサイトカインおよび免疫グロブリンの量をＥＬＩＳＡ法で定量した。測定方法は、摘出した脾臓から細胞懸濁液（２．８×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製し、培養プレートに分注した後、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）を最終濃度１μｇ／ｍＬとなるよう添加し、培養温度３７℃、ＣＯ２濃度５％の条件下で、サイトカインについては３日間、免疫グロブリンについては５日間、各々培養することにより、脾臓細胞より産生された培養上清を得た。そして、サンドイッチ酵素免疫測定（サンドイッチＥＬＩＳＡ）法により、培養上清中のサイトカイン（ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６）濃度および免疫グロブリン（ＩｇＡ，ＩｇＭ）濃度を測定した。その結果を図８（ａ）〜（ｇ）に示す。
【００５５】
その結果、コントロール群と比較して、ＧＥ３０では、ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６，ＩｇＡ，ＩｇＭのすべての値が有意に高い値を示し（ｐ＜０．０５）、サイトカインおよび抗体の産生を促進することが明らかとなった。
【００５６】
（４）ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性
摘出した脾臓からよりナチュラル・キラー（ＮＫ）細胞を単離し、ＹＡＣ−１を標的細胞とした腫瘍細胞傷害活性をＮＫ活性として測定した。すなわち、摘出した脾臓からＮＫ細胞を単離した後、６．２５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬの濃度に調製し、これをエフェクター細胞（Ｅ）とした。一方、ＹＡＣ−１細胞（大日本住友製薬）を２．５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ、５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ、１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬの濃度に調製し、これを標的細胞（Ｔ）とした。ＥとＴとの細胞数の比を１００：１，５０：１，２５：１で混合し播種した９６ウェルプレートを３７℃（５％ＣＯ２）で２２時間培養した。この９６ウェルプレートをＷＳＴ−１試薬（タカラバイオ）で２時間染色した後、マイクロプレートリーダー（コロナ）を用いて４５０ｎｍの吸光値を測定した。なお、ＹＡＣ−１細胞に対する傷害活性は次式により求めた。
（次式）
％（細胞傷害活性）＝［１−{（Ｅ・Ｔ共培養の吸光値−Ｅ培養の吸光値）／（Ｔ培養の吸光値）}］×１００
得られた数値に基づいて各々データ解析し、その結果を各々図９（ａ）〜（ｃ）に示し、これを各々グラフ化したものを図１０（ａ）〜（ｃ）に示す。
【００５７】
その結果、Ｅ：Ｔの比１００：１に場合には、コントロール群と比較して、ＧＥ３０おいてＮＫ細胞活性の有意な亢進が認められた（ｐ＜０．０５）。
【実施例４】
【００５８】
《粘度測定》
前記実施例３で投与した被検物質（投与液）の粘度を各々測定した。粘度測定は、実施例１で用いた方法にて６回測定を行った。各群における個々の相対粘度を図１１（ａ）〜（ｆ）に示し、６回の測定データの平均値を図１２に示す。
【００５９】
その結果、ＧＥ、ＧＨのいずれにおいても、濃度が増加するに伴って相対粘度の値が大きくなることが明らかとなった。
【実施例５】
【００６０】
《光強度測定》
（１）投与液の測定
前記実施例３で投与した被検物質（投与液）の構造の特徴を調べるために、蛍光光度計を用いた反射光の光強度の測定を行った。実施例３で投与した被検物質を測定サンプルとし、精製アルギン酸（Ｓｉｇｍａ）を１，３，１０ｍｇ／ｍＬに調製しもの、およびカルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ；関東化学）を１０ｍｇ／ｍＬに調製したものを対照サンプルとした。ＣＭＣは滅菌蒸留水に溶解し、精製アルギン酸は１２％炭酸ナトリウム水溶液に溶解して用いた。０．６ｍＬの各サンプルを蛍光光度計に供し、蛍光波長と励起波長とを共に３５０ｎｍとして、反応光の光強度を測定した。測定後、アルギン酸０．１％水溶液の光強度を１００として各光強度を算出した。その結果を図１３（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１３（ｂ）に示す。
【００６１】
図１３（ａ）および（ｂ）に示すように、ＧＥ３０において著しく高い光強度が検出された。前記実施例３において、ＧＥ３０に有意な免疫賦活作用が認められたことから、３ｍｇ／ｍＬのＧＥには免疫賦活に亢進的に作用する特異的な構造を有していることが示唆された。また、ＧＨ３０はＧＥ３０に比べて光強度が３６．３％低下していた。これは、前記実施例４において、ＧＨ３０はＧＥ３０に比べて粘度の低下が認められており、熱処理により糖分子の高次構造が崩壊していることが示唆された。なお、１０ｍｇ／ｍＬのアルギン酸における光強度が高い値を示しているのは、分子構造の中心に金属イオン塩が存在することで、架橋結合によって大きなクラスターが形成されるためであると考えられる。
【００６２】
（２）ＧＥの濃度検討
ＧＥを滅菌蒸留水にて１，２，３，５，１０ｍｇ／ｍＬに調製したサンプルを、各々ＧＥ１０，ＧＥ２０，ＧＥ３０，ＧＥ５０，ＧＥ１００とし、前記（１）と同様に反射光の光強度の測定を行った。サンプル調製および測定を各々４回行った。その結果を図１４（ａ）に示し、これをグラフ化したものを図１４（ｂ）に示す。
【００６３】
その結果、ＧＥ３０，ＧＥ５０，ＧＥ１００における光強度は６００以上の値を示し、ＧＥ３０，ＧＥ５０では、光強度は７００以上の高い値を示すことが明らかとなった。
【００６４】
以上のような本実施例によれば、ガゴメ由来の粘性多糖類は、特定の粘度または特定の測定による反射率を有することにより、脾臓細胞におけるサイトカイン産生、抗体産生、およびＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性を促進し、図１５に示すような免疫応答に作用していることが示唆される。
【００６５】
また、本実施形態においては、水を溶媒として免疫賦活亢進作用に有効なガゴメ由来の粘性多糖類を抽出しており、この粘性多糖類の水性溶液の適度な粘稠性と免疫賦活作用とを利用して、とろみを有する機能性食品の開発が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００６６】
【図１】実施例１（１）において、抽出温度および抽出時間の検討結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の相対粘度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図２】実施例１（２）において、抽出ｐＨの検討結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の相対粘度を示す図表および抽出液中の糖濃度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）のｐＨと相対粘度との関係をグラフ化した図である。
【図３】実施例１（３）において、糖濃度と粘度との関係示す図である。
【図４】実施例２において、粘性多糖抽出液の成分解析の結果を示す図である。
【図５】実施例３（１）において、各群の体重推移を示した図である。（ａ）〜（ｇ）は、各々コントロール群，ＧＥ１０群，ＧＥ３０群，ＧＥ１００群，ＧＨ１０群，ＧＨ３０群，ＧＨ１００群の体重推移を示す。
【図６】実施例３（１）において、投与最終日の各群における体重の平均値を示す図である。（ａ）は測定した個々の体重を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図７】実施例３（３）において、摘出した脾臓重量を示す図である。（ａ）は測定した個々の脾臓重量を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図８】実施例３（４）において、脾臓細胞のサイトカインおよび抗体産生量を測定した結果を示す図である。（ａ）〜（ｇ）は、各々ＩＦＮ−γ，ＩＬ−１２，ＩＬ−１８，ＩＬ−６，ＩｇＡ，ＩｇＭの産生量を示す。
【図９】実施例３（５）において、ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性の測定結果を示す図表である。（ａ）〜（ｃ）は、各々ＥとＴの細胞数の比を２５対１，５０対１，１００対１とした時の測定結果を示す。
【図１０】実施例３（５）において、ＹＡＣ−１腫瘍細胞傷害活性の測定結果をグラフ化した図である。（ａ）〜（ｃ）は、各々ＥとＴの細胞数の比を２５対１，５０対１，１００対１とした時の測定結果を示す。
【図１１】実施例４において、粘度測定した個々の数値を示す図である。
【図１２】実施例４において、粘度測定した個々の数値から算出した平均値を示す図である。
【図１３】実施例５（１）において、光強度を測定した結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の光強度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図１４】実施例５（２）において、光強度を測定した結果を示す図である。（ａ）は測定した個々の光強度を示す図表であり、（ｂ）は（ａ）をグラフ化した図である。
【図１５】ガゴメ由来の粘性多糖類が作用すると考えられる免疫応答について示した図である。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項２】
請求項１において、２０℃における水の粘度の値を１とした場合の前記水性溶媒溶液の相対粘度の値が２．５より大きく２５．８より小さい値である免疫賦活剤。
【請求項３】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項４】
請求項１から請求項３のいずれかにおいて、前記粘性多糖類が３０℃未満の水性溶媒で抽出された免疫賦活剤。
【請求項５】
請求項１から請求項３のいずれかにおいて、前記粘性多糖類のｐＨが５以上８未満の条件下で抽出された免疫賦活剤。
【請求項６】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして測定したアルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合において、水性溶媒溶液の光強度の値が６００以上の値である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項７】
請求項１から請求項６のいずれかにおいて、前記粘性多糖類が、塩類を除去する処理がされたものである免疫賦活剤。
【請求項８】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の粘性多糖類の抽出方法であって、
ガゴメを粉砕する粉砕工程と、
粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、
粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程と
を有するガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法。
【請求項１】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が０．０５％より高く０．３％未満である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項２】
請求項１において、２０℃における水の粘度の値を１とした場合の前記水性溶媒溶液の相対粘度の値が２．５より大きく２５．８より小さい値である免疫賦活剤。
【請求項３】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の粘度が２．５センチポアズより大きく２５．８センチポアズより小さい粘度である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項４】
請求項１から請求項３のいずれかにおいて、前記粘性多糖類が３０℃未満の水性溶媒で抽出された免疫賦活剤。
【請求項５】
請求項１から請求項３のいずれかにおいて、前記粘性多糖類のｐＨが５以上８未満の条件下で抽出された免疫賦活剤。
【請求項６】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）から抽出された粘性多糖類であって、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを３５０ｎｍとして測定したアルギン酸水溶液０．１％の光強度の値を１００とした場合において、水性溶媒溶液の光強度の値が６００以上の値である粘性多糖類を有効成分として含む免疫賦活剤。
【請求項７】
請求項１から請求項６のいずれかにおいて、前記粘性多糖類が、塩類を除去する処理がされたものである免疫賦活剤。
【請求項８】
ガゴメ（Kjellmaniella crassifolia Miyabe）由来の粘性多糖類の抽出方法であって、
ガゴメを粉砕する粉砕工程と、
粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、
粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程と
を有するガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【公開番号】特開２００９−２２７６１８（Ｐ２００９−２２７６１８Ａ）
【公開日】平成２１年１０月８日（２００９．１０．８）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−７６１０１（Ｐ２００８−７６１０１）
【出願日】平成２０年３月２４日（２００８．３．２４）
【新規性喪失の例外の表示】特許法第３０条第１項適用申請有り 平成１９年９月２５日 ２００７（平成１９）年度日本水産学会秋季大会 国立大学法人北海道大学大学院水産科学研究院発行の「２００７年（平成１９年）度日本水産学会秋季大会（日本農学大会水産部会）講演要旨集」に発表
【出願人】（５０４１７３４７１）国立大学法人 北海道大学 (971)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２１年１０月８日（２００９．１０．８）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年３月２４日（２００８．３．２４）
【新規性喪失の例外の表示】特許法第３０条第１項適用申請有り 平成１９年９月２５日 ２００７（平成１９）年度日本水産学会秋季大会 国立大学法人北海道大学大学院水産科学研究院発行の「２００７年（平成１９年）度日本水産学会秋季大会（日本農学大会水産部会）講演要旨集」に発表
【出願人】（５０４１７３４７１）国立大学法人 北海道大学 (971)
【Ｆターム（参考）】
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