二光子励起蛍光プローブとその製造方法及び細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法
【課題】細胞内Ｍｇ２＋のリアルタイムモニタリング方法を提供。
【解決手段】細胞内Ｍｇ２＋のリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブは、下記化学式１の化合物からなる。Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。
・・・（１）さらに、上記二光子励起蛍光プローブの製造方法、及び上記二光子励起蛍光プローブを用いた細胞内Ｍｇ２＋のリアルタイムモニタリング方法が提供される。
【解決手段】細胞内Ｍｇ２＋のリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブは、下記化学式１の化合物からなる。Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。
・・・（１）さらに、上記二光子励起蛍光プローブの製造方法、及び上記二光子励起蛍光プローブを用いた細胞内Ｍｇ２＋のリアルタイムモニタリング方法が提供される。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブと、その製造方法及びそれを用いた細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法に関するものである。より具体的には、染料の分子量が小さくて細胞内の染色性に優れ、二光子蛍光収率が非常に大きく、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイム映像に適した二光子励起蛍光プローブ、その製造方法及びそれを用いた細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
マグネシウムイオン（Ｍｇ２＋）は、細胞内に最も多く存在する二価金属イオンであって、数百種余りの酵素活性調節に関与するだけでなく、細胞の増殖及び死滅のような多くの細胞における過程で重要な役割を担う。このような細胞内マグネシウムイオンを検出するために、多様な膜透過性蛍光プローブが開発されており、それらのうち一部は市販されている（例えば、非特許文献１、非特許文献２、非特許文献３参照）。それらのうち大部分は、アセトキシメチル（ＡＭ）エステルとして用いられるが、これは細胞内で酵素加水分解過程を経て金属イオンプローブに変化される（例えば、非特許文献４参照）。しかし、一光子（ＯＰ）蛍光プローブを備えた共焦点顕微鏡は、組職表面（＜１００μｍ）近傍のみに使用が制限される。
【０００３】
従って、組職内部の深い所での細胞現象を観察するためには、二光子顕微鏡（ＴＰＭ）の使用が必須である。励起のために２個の近赤外線光子を吸収させるＴＰＭは、一光子顕微鏡に比べてさまざまな長所を有する。具体的には、透過深度の増加（＞５００μｍ）、組職自己蛍光（auto-fluorescent）及び自己吸収（self-absorption）の低下、及び光損傷（photodamage）及び光脱色（photobleaching）の減少などである（例えば、非特許文献５、非特許文献６参照）。
【０００４】
特に、ＴＰＭの高い透過性は、組職のイメージ化において非常に重要である。これは損傷された細胞のような表面処理結果物は、脳の薄片内部に７０μｍ以上延びるためである（例えば、非特許文献７参照）。しかし、現在ＴＰＭとして用いられる大部分の一光子蛍光プローブは、小さな二光子励起蛍光部（two-photon action cross sections：φｄ）を有するために、その用途がＴＰＭのみに限定される。組織のイメージ化に関連する他の限界点としては、標的ミス（mistargeting）の問題がある。これは細胞膜結合プローブにより引き起こされる（例えば、非特許文献８、非特許文献９、非特許文献１０参照）。前記細胞膜結合プローブは、細胞内の任意の細胞膜で囲まれた構造内に蓄積されるので、蛍光量子収率が、大抵は細胞質より細胞膜の方が高くなる。そのため、細胞膜に結合されたプローブからの信号をプローブ−Ｍｇ２＋複合体の信号から分離することが非常に難しいという不都合がある。
【０００５】
従って、１）より明るいＴＰＭイメージを得るために、改善したφｄ値を有し、２）細胞質内プローブと細胞膜結合プローブとをよりよく区分するために、異なる環境下で、より広いスペクトル移動を示す効率的な二光子励起蛍光プローブを開発する必要性がある。
【非特許文献１】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies, 10th ed, Haugland, R. P. Ed.; MolecularProbes: Eugene, OR, 2005.
【非特許文献２】H. Komatsu, N. Iwasawa, D. Citterio, Y. Suzuki, T. Kubota, K. Tokuno, Y. Kitamura, K. Oka, K. Suzuki, J. Am. Chem. Soc. 2004, 126, 16353-16360.
【非特許文献３】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I. Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344-350.
【非特許文献４】R. Y. Tsien, Nature 1981, 290, 527-528.
【非特許文献５】W. R. Zipfel,R. M. Williams, W. W. Webb, Nat. Biotechnol. 2003, 21, 1369-1377.
【非特許文献６】F. Helmchen, W. Denk, Nat. Methods, 2005, 2, 932-940.
【非特許文献７】R.M.Williams,W.R.Zipfel,W.W.Webb,Curr.Opin.Chem.Biol.2001,5,603-608.
【非特許文献８】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies,10thed,Haugland,R.P.Ed.;Molecular Probes:Eugene,OR,2005.
【非特許文献９】J.R.Long,R.S.Drago,J.Chem.Ed.1982,59,1037-1039.
【非特許文献１０】K.J.Hirose,Incl.Phenom.Macrocycl.Chem.2001,39,193-209.
【非特許文献１１】B.Metten,M.Smet,N.Boens,W.Dehaen,Synthesis 2005,11,1838.
【非特許文献１２】J.N.Demas,G.A.Crosby,J.Phys.Chem.1971,75,991.
【非特許文献１３】C.Reichardt,Chem.Rev.1994,94,2319-2358.
【非特許文献１４】H.A.Benesi,J.H.Hildebrand,J.Am.Chem.Soc.1949,71,2703.
【非特許文献１５】H.A.Benesi,J.H.Hildebrand,J.Am.Chem.Soc.1949,71,2703.
【非特許文献１６】G.Grynkiewicz,M.Poenie,R.Y.Tsien.J.Biol.Chem.1985,260,3440.
【非特許文献１７】G.Grynkiewicz,M.Poenie,R.Y.Tsien.J.Biol.Chem.1985,260,3440.
【非特許文献１８】R.Y.Tsien,T.Pozzan,T.J.Rink.J.Cell Biol.1982,94,325.
【非特許文献１９】R.Y.Tsien,T.Pozzan,Methods Enzymol.1989,172,230.
【非特許文献２０】A.Takahashi,P.Camacho,J.D.Lechleiter,B.Herman.Physiol.Rev.1999,79,1089.
【非特許文献２１】J.R.Long,R.S.Drago,J.Chem.Ed.1982,59,1037.
【非特許文献２２】K.Hirose,J.Incl.Phenom.Macrocycl.Chem.2001,39,193.
【非特許文献２３】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies,10th ed,; Haugland, R. P. Ed.; Molecular Probes: Eugene, OR, 2005.
【非特許文献２４】H. Szmacinski, J. R. Lakowicz, J. Fluoresc. 1996, 6, 83-95.
【非特許文献２５】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I. Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344.
【非特許文献２６】I. J. Reynolds, CurrentProtocols in Neuroscience; Wiley: New York; 1998.
【非特許文献２７】J. G. Fitz, A. H. Sostman, J. P. Middleton, Am. J. Physiol. (London) 1994, 266, G677-G684.
【非特許文献２８】M. R. Cho, H. S. Thatte, M. T. Silvia, D. E. Golan, FASEB J. 1999, 13, 677-683.
【非特許文献２９】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I . Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344-350.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の第１の目的は、生体内に存在する多様な金属の内、特にマグネシウムに対するイオン選択性に優れ、二光子蛍光収率が非常に大きくて細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリングに適した二光子励起蛍光プローブを提供することである。
【０００７】
本発明の第２の目的は、前記二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供することである。
【０００８】
また、本発明の第３の目的は、前記二光子励起蛍光プローブを利用した細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明は、前記第１の目的を達成するため、化学式１で表される細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブを提供する。
【００１０】
本発明は、前記第２の目的を達成するため、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二格子吸収プローブの製造方法を提供する。
【００１１】
前記製造方法は、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２及び３で表わされる化合物とを反応させる段階を含む細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供する。
【００１２】
【００１３】
本発明の一実施形態によれば、前記化学式２で表わされる化合物は、メチルブロモアセテート、Ｎａ２ＨＰＯ４、ＮａＩ及び化学式４で表わされる化合物を反応させて製造することができる。
【００１４】
本発明の更なる実施形態によれば、前記化学式４で表わされる化合物は、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ、Ｈ２Ｏ及び化学式５で表わされる化合物を反応させて製造することができる。
【００１５】
【００１６】
本発明の他の実施形態によれば、前記化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物と共にＨＢｒを反応させて製造することができる。
【００１７】
【００１８】
本発明は、前記第３の目的を達成するため、前記二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入した後、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供する。
【００１９】
本発明の一実施形態によれば、前記二光子励起蛍光によるイメージは、５００〜６２０ｎｍの範囲の波長を用いて得ることができる。
【００２０】
本発明の更なる実施形態によれば、下記数式１を用いて細胞内マグネシウムイオンの濃度を定量的に測定することもできる。
【００２１】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
数式１において、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブのマグネシウムイオンに対する解離定数であり、Ｆは、測定された二格子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
以下、添付した図面及び実施形態を参照して、本発明をより詳細に説明する。
【００２３】
本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブは、二光子蛍光収率が非常に大きいため、細胞を染色する染料の量を顕著に減らすことができる。また、染料の分子量が小さく、細胞内への染色性が非常に優れているため、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムイメージングに適するという特性を有する。
【００２４】
本発明は、具体的には、化学式１で表される細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブを提供する。
【００２５】
【００２６】
化学式１における２−アセチル−６−（ジメチルアミノ）ナフタレン部分は、二光子発色団として機能し、ｏ−アミノフェノール−Ｎ，Ｎ，Ｏ−トリ酢酸部分は、Ｍｇ２＋に対する選択的結合部位として機能する。本発明による二光子励起蛍光プローブは、Ｍｇ２＋と複合体を形成する場合に、強い二光子励起蛍光（Two-Photon Excited Fluorescence：ＴＰＥＦ）を放出する。前記複合体は、溶媒環境の極性によって非常に異なる波長範囲の光を放出するために、相異なる検出ウインドウ（detection windows）を用いることで細胞膜−結合プローブと前記複合体とを容易に区分することができる。
【００２７】
一方、化学式１で表わされる化合物において、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３であり得るが、ＲがＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である場合、本発明による二光子励起蛍光プローブの細胞透過度をさらに向上させることができる。
【００２８】
本発明はまた、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２及び化学式３で表わされる化合物とを反応させて化学式１で表わされる化合物を製造する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供する。
【００２９】
【００３０】
【００３１】
望ましくは、化学式２で表わされる化合物は、化学式４で表わされる化合物、メチルブロモアセテート、Ｎａ２ＨＰＯ４及びＮａＩを反応させて製造することができる。
【００３２】
【００３３】
望ましくは、化学式４で表わされる化合物は、化学式５で表わされる化合物、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ及びＨ２Ｏとを反応させて製造することができる。
【００３４】
【００３５】
また、化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物とＨＢｒとを反応させて製造することができる。
【００３６】
【００３７】
参考までに、下記反応式１には、化学式６で表わされる化合物から、化学式１で表わされる化合物を製造する典型的な反応を示す。
【００３８】
【００３９】
前述したように、細胞透過度の向上のために、反応式１のＲは、Ｈの代りにＣＨ２ＯＣＯＣＨ３に置換されうるが、望ましくは、このような置換過程は、ＲがＨである化学式１で表わされる化合物とブロモ酢酸エチル及びトリエチルアミンとを反応させることで実行される。
【００４０】
一方、本発明は、また前記二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入した後、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供する。
【００４１】
特に、後述するように、前記二光子励起蛍光によるイメージを５００〜６２０ｎｍの範囲の波長を用いて得る場合には、細胞膜に結合された二光子励起蛍光プローブによる発光寄与度を最小化しながら、細胞内に遊離状態で存在するＭｇ２＋イオンのみを選択的に測定することも可能である。
【００４２】
また、本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法は、従来の技術とは異なって、細胞内マグネシウムの定性的分析だけではなく、これを定量的に測定することも可能であり、望ましくは、細胞内マグネシウムイオン濃度の測定は、下記数式１によって行われる。
【００４３】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
数式１において、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブのマグネシウムイオンに対する解離定数であり、Ｆは、測定された二光子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【００４４】
以下、本発明を実施例を通じてより詳細に説明するが、下記実施例は、本発明の範囲を制限するためのものではなく、本発明の理解を助けるためのものとして記載されたものである。
【実施例】
【００４５】
［製造例１］本発明による二光子励起蛍光プローブの製造
本製造例によって本発明による二光子励起蛍光プローブである化学式７で表わされる化合物を製造した。
【００４６】
【００４７】
［製造例１．１］６−アセチル−２−ヒドロキシナフタレン（化学式８）の製造
【００４８】
酢酸（１００ｍＬ）中の６−アセチル−２−メトキシナフタレン（１０．４ｇ、５２ｍｍｏｌ）溶液に、４８％のＨＢｒ（４３．０ｇ、０．５３ｍｏｌ）を添加し、混合物を得た。前記混合物を１００℃で１２時間撹拌した。過量の酢酸を真空乾固し、残留物を酢酸エチルに溶解させた後、希釈ＮａＨＣＯ３及び塩水で洗浄した。これによって分離した有機層をＭｇＳＯ４で乾燥させ、真空中で溶媒を除去した。最終生成物は、酢酸エチル／ヘキサン（１：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。
【００４９】
収量７．２ｇ（７４％）；融点１７３℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，３６２、１，６６４ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．４１（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９９（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８７（ｄ，１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．７０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．２０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、５．７０（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、２．７１（ｓ、３Ｈ）．Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１２Ｈ１０Ｏ２：Ｃ、７７．４０；Ｈ、５．４１．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７７．５２；Ｈ、５．４６。
【００５０】
［製造例１．２］６−アセチル−Ｎ−メチル−２−ナフチルアミン（化学式９）の製造
【００５１】
前記製造例１．１で製造された化学式８で表わされる化合物（６．５ｇ、３５ｍｍｏｌ）、Ｎａ２Ｓ２Ｏ５（１３．３ｇ、７０ｍｍｏｌ）、ＮａＯＨ（７．０ｇ、０．１７ｍｏｌ）及びＨ２Ｏ（２００ｍＬ）の混合物をスチールボム反応器（steel‐bomb reactor）内に入れてＭｅＮＨ２・ＨＣｌ（１４．２ｇ、０．１７ｍｏｌ）を添加して混合した後、該混合物を１４０℃で４８時間撹拌した。得られた生成物を濾過によって収集し、水で洗浄した後、クロロホルム／酢酸エチル（５０：１）を溶離液として用いるフラッシュカラムによって精製した。引き続き、メタノールを用いた再結晶によってさらに精製した。
【００５２】
収量５．９ｇ（８５％）；融点１８１℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，３４７、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９３（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．７２（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、６．９１（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．７７（ｄ、１Ｈ，Ｊ＝２Ｈｚ）、４．１７（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、２．９７（ｓ、３Ｈ）、２．６７（ｓ、３Ｈ）．Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１３Ｈ１３ＮＯ：Ｃ、７８．３６；Ｈ、６．５８；Ｎ、７．０３．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７８．３２；Ｈ、６．５６；Ｎ、７．０８。
【００５３】
［製造例１．３］６−アセチル−２−［Ｎ−メチル−Ｎ−（カルボキシ）アミノ］ナフタレン（化学式１０）の製造
【００５４】
前記製造例１．２で製造された化学式９で表わされる化合物（４．５ｇ、２３ｍｍｏｌ）、メチルブロモアセテート（５．２ｇ、３４ｍｍｏｌ）、Ｎａ２ＨＰＯ４（４．８ｇ、３４ｍｍｏｌ）及びＮａＩ（１．４ｇ、９．２ｍｍｏｌ）の混合物をＭｅＣＮ（１５０ｍＬ）中に入れて、Ｎ２下で１８時間還流させた。得られた生成物を酢酸エチルで抽出し、塩水で洗浄した後、クロロホルム／酢酸エチル（３０：１）を溶離液として用いるフラッシュカラムによって精製し、中間体を得た。
【００５５】
収量５．２ｇ（８３％）；融点９２℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：１，７５４、１，６７１ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３２（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９２（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．０８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８８（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．２３（ｓ、２Ｈ）、３．７４（ｓ、３Ｈ）、３．２１（ｓ、３Ｈ）、２．６７（ｓ、３Ｈ）；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１６Ｈ１７ＮＯ３：Ｃ、７０．８３；Ｈ、６．３２；Ｎ、５．１６．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７０．８８；Ｈ、６．３５；Ｎ、５．１０。
【００５６】
前記中間体（２．０ｇ、７．４ｍｍｏｌ）及びＫＯＨ（０．８ｇ、１４ｍｍｏｌ）の混合物をエタノール／Ｈ２Ｏ（５０／１０ｍＬ）に入れて５時間撹拌した。得られた結果物である溶液を氷水（１００ｍＬ）で希釈し、５℃未満の濃塩酸（ａｑ）をｐＨ３までゆっくり添加した。結果物である沈澱を収集し、蒸溜水で洗浄した後、メタノールを用いた再結晶によって精製した。
【００５７】
収量１．６ｇ（８４％）；融点１５８℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：２，９０６、１，７３９、１，６７８ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ８．３９（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８６（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．９３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．２７（ｓ、２Ｈ）、３．１９（ｓ、３Ｈ）、２．６５（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ＝１９９．３、１７３．２、１４９．８、１３８．２、１３０．９、１３０．９、１３０．８、１２６．４、１２５．７、１２４．１、１１６．０、１０５．５、５３．５、３８．７、２５．４ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１５Ｈ１５ＮＯ３：Ｃ、７０．０２；Ｈ、５．８８；Ｎ、５．４４．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７０．０８；Ｈ、５．７９；Ｎ、５．４５。
【００５８】
［製造例１．４］本発明による二光子励起蛍光プローブ（化学式７）の製造
【００５９】
前記製造例１．３で製造された化学式１０で表わされる化合物（０．５０ｇ、１．９ｍｍｏｌ）及び１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌ（０．４４ｇ、２．３ｍｍｏｌ）の混合物をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（２０ｍＬ）に入れて混合した後、２０分間撹拌した。攪拌後の前記混合物に、化学式１１で表わされる化合物（０．７１ｇ、２．１ｍｍｏｌ）及び４−ジメチルアミノピリジン（０．０３３ｇ、０．２９ｍｍｏｌ）を添加してＮ２下で１２時間撹拌した。下記化学式１１で表わされる化合物は、公知の方法（例えば、非特許文献１１参照）で製造した。
【００６０】
【００６１】
攪拌後の生成物を酢酸エチルで抽出し、ＭｇＳＯ４上で乾燥させた後、真空中で溶媒を除去した。最終生成物は、クロロホルム／酢酸エチル（１：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。メタノールを用いた再結晶によってさらに精製することで白色固体を得た。
【００６２】
収量０．６４ｇ（５８％）；融点１２０℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２６４、１，７５４、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、８．１５（ｓ、１Ｈ）、７．９６（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８６（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６９（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１２（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、６．８０（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．６８（ｓ、２Ｈ）、４．１６（ｓ、４Ｈ）、４．０９（ｓ、２Ｈ）、３．７７（ｓ、３Ｈ）、３．６９（ｓ、６Ｈ）、３．２２（ｓ、３Ｈ）、２．６８（ｓ、３Ｈ）；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ３０Ｈ３３Ｎ３Ｏ９：Ｃ、６２．１７；Ｈ、５．７４；Ｎ、７．２５．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、６２．２２；Ｈ、５．７６；Ｎ、７．１６。
【００６３】
これによって得られたエステル（０．５ｇ、０．８６ｍｍｏｌ）を前記製造例１．３に記載されたような方法によって加水分解した。前記加水分解の結果物である沈澱を収集し、蒸溜水で洗浄した後、メタノール−ＣＨＣｌ３−石油エーテルからの結晶化によって精製した。
【００６４】
収量０．３２ｇ（６９％）；融点１４８℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２７１、２，９０５、１，７４７、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ、８．３８（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．８３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．２２（ｓ、１Ｈ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０３（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．９７（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９．０Ｈｚ）、４．６１（ｓ、２Ｈ）、４．２２（ｓ、２Ｈ）、４．０６（ｓ、４Ｈ）、３．２０（ｓ、３Ｈ）、２．６２（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ＝１９９．２、１７４．３、１７１．１、１６９．７、１５０．２、１４９．９、１３８．０、１３５．９、１３３．３、１３０．９、１３０．８、１３０．７、１２６．３、１２５．８、１２４．０、１２０．０、１１６．２、１１３．８、１０７．１、１０５．８、６５．３、５６．４、５４．３、３９．１、２５．２ ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ２７Ｈ２７Ｎ３Ｏ９：Ｃ、６０．３３；Ｈ、５．０６；Ｎ、７．８２．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、６０．３１；Ｈ、５．１２；Ｎ、７．７８。
【００６５】
［製造例１．５］本発明による二光子励起蛍光プローブ（化学式１２）の製造
【００６６】
前記製造例１．４で製造された化学式１１で表わされる化合物（０．１５ｇ、０．２８ｍｍｏｌ）、ブロモメチルアセテート（０．３４ｇ、２．２ｍｍｏｌ）及びＥｔ３Ｎ（０．２２ｇ、１．７ｍｍｏｌ）の混合物をＣＨＣｌ３（５ｍｌ）に入れてＮ２下で１５時間撹拌した。真空中で溶液を除去し、粗生成物を酢酸エチル／ヘキサン（３：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。引き続き、メタノールを用いた再結晶によってさらに精製することで白色固体を得た。
【００６７】
収量０．１２ｇ（５８％）；融点１０４℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２５７、１，７５４、１，７０８、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、８．１８（ｓ、１Ｈ）、７．９７（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８７（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．７０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．３４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１５（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８９（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、５．８０（ｓ、２Ｈ）、５．７５（ｓ、４Ｈ）、４．７１（ｓ、２Ｈ）、４．１８（ｓ、４Ｈ）、４．０９（ｓ、２Ｈ）、３．２３（ｓ、３Ｈ）、２．６６（ｓ、３Ｈ）、２．０９（ｓ、６Ｈ）、２．０７（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ＝１９７．９、１７０．１、１６９．７、１６９．７、１６８．０、１６７．７、１５０．１、１４９．２、１３７．３、１３５．９、１３３．０、１３２．４、１３１．６、１３０．３、１２７．０、１２６．７、１２５．３、１２１．０、１１６．７、１１４．１、１０７．８、１０７．７、７９．５、７７．４、６５．９、５９．６、５３．７、４０．４、２６．７、２０．９、２０．８ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ３６Ｈ３９Ｎ３Ｏ１５：Ｃ、５７．３７；Ｈ、５．２２；Ｎ、５．５８．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、５７．３２；Ｈ、５．３１；Ｎ、５．５２。
【００６８】
[実施例１]吸光スペクトル測定
上述したように製造された化学式１３で表わされる化合物に対する吸光スペクトルをＨｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ８４５３ダイオード整列スペクトロメーター上で測定し、蛍光スペクトルを、１ｃｍ標準石英セルを備えたＡｍｉｃｏ−Ｂｏｗｍａｎ ｓｅｒｉｅｓ２発光スペクトロメーターを用いて測定した。蛍光量子収率は、公知の方法（例えば、非特許文献１２参照）によって、Ｃｏｕｍａｒｉｎ３０７を用いて測定した。
【００６９】
図１は、化学式１３で表わされる化合物の一光子吸収及び発光スペクトルである。多様な溶媒中における化学式１３で表わされる化合物の最大発光波長（λｍａｘ(１)）及び最大蛍光波長（λｍａｘｆｌ）を表１に示す。
【００７０】
【表１】
【００７１】
図１（ａ）、（ｂ）及び表１から分かるように、溶媒極性が増加するにつれて大きな深色移動が観察されるという点は、本発明による化合物が極性プローブとして非常に有用であるということを示唆する。
【００７２】
［実施例２］Ｍｇ２＋濃度変化による吸光度変化測定
図２（ａ）及び図２（ｂ）は、化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋濃度変化に対するスペクトル反応を示すグラフである。図２（ａ）から分かるように、Ｔｒｉｓバッファ溶液（１０ｍＭ、ｐＨ７．０５）中の化学式７で表わされる化合物にＭｇ２＋を添加した時、吸収スペクトルには軽微な変化が観察された。これとは対照的に、Ｍｇ２＋濃度が増加するにつれて蛍光度は急激に増加した（図２（ｂ））。これはおそらく、金属イオン複合体による光誘起電子移動（ＰＥＴ）過程が遮断されるためである。１００ｍＭ Ｍｇ２＋の存在下で、蛍光度向上因子は、１７個観測された。
【００７３】
一方、ほぼ同一の結果が二光子過程に対しても観察された。図２（ｃ）は、多様な濃度のＭｇＣｌ２（０〜１００ｍＭ）存在下での二光子蛍光スペクトルである。さらに、図３（ａ）乃至図３（ｃ）には、Ｃａ２＋（０−１０００μＭ）存在下での化学式７で表わされる化合物に対する一光子吸収スペクトル（図３（ａ））、発光スペクトル（図３（ｂ））及び二光子蛍光スペクトル（図３（ｃ））をそれぞれ図示した。
【００７４】
［実施例３］ベネシ−ヒルデブランドプロット（Benesi‐Hildebrand Plot）
化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する複合体形態は、ベネシ−ヒルデブランドプロット分析法（非特許文献１４参照）によって決定した。蛍光変化は、化学式７で表わされる化合物（Ｌ）と金属イオン（Ｍ）との間の１：１複合体形成によってのみ誘導されるという前提下で、総プローブ濃度及び蛍光強度は、［Ｌ］０＝［Ｌ］＋［ＬＭ］及びＦ＝φＬ［Ｌ］＋φＭＬ［ＭＬ］と定義される。ここで、［Ｌ］０及び［Ｍ］０はそれぞれ総濃度であり、［Ｌ］及び［ＬＭ］はそれぞれＬ及びＭの平衡濃度であり、φＬ及びφＭＬは遊離形態（free forms）及び複合形態の化学式７で表わされる化合物に対する蛍光量子収率である。もし、［Ｍ］０が［Ｌ］０より格段に大きい値を有すれば、ベネシ−ヒルデブランド式は、下記数式２で表わすことができる。
【００７５】
【００７６】
化学式７で表わされる化合物と金属イオンとの間で、１：１の金属とプローブとの複合体が形成されるならば、数式２によるデータのベネシ−ヒルデブランドプロットは線形となる（非特許文献１５参照）。図４（ａ）及び図４（ｂ）は、それぞれ化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する結合において、１／（Ｆ−Ｆｍｉｎ）ｖｓ１／［Ｍｇ２＋］のプロットである。前記プロットが線形であることから、１：１複合体が形成されるということが分かる。
【００７７】
［実施例４］解離定数の決定
ｐＨ７．０５である２４℃、１００ｍＭ ＫＣｌ及び２０ｍＭ ＮａＣｌの溶液中のＭｇ２＋−ＥＧＴＡに対する解離定数（Ｋｄ）を、ＷｉｎＭＡＸＣ（C. Patton, Stanford University, Palo Alto, CA）プログラムを用いて計算し、計算値は略２８ｍＭであった。前記溶液中の遊離［Ｍｇ２＋］水準は、Ｋｄ＝２８ｍＭであるＭｇ２＋−ＥＧＴＡ緩衝溶液によって調節した（非特許文献１６参照）。
【００７８】
Ｍｇ２＋−化学式７で表わされる化合物複合体に対するＫｄを決定するために、２４℃でＨＣｌを用いてｐＨを７．０５に調整した、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ、１００ｍＭ ＫＣｌ、２０ｍＭ ＮａＣｌ及び１ｍＭ ＥＧＴＡからなる溶液３．０ｍＬ中に、化学式７で表わされる化合物２μＭを添加した後、蛍光スペクトルを記録した。引き続き、前記溶液１．５μｌを廃棄し、化学式７で表わされる化合物２μＭ、１０３．６ｍＭのＭｇＣｌ２、４．６ｍＭのＥＧＴＡ及び１０ｍＭのＴｒｉｓを含み、ｐＨが７．０５である溶液１．５μｌと置き換えた後、スペクトルを記録した。
【００７９】
前者の溶液は１ｍＭの遊離ＥＧＴＡを含むが、後者の溶液は１００ｍＭの遊離Ｍｇ２＋を含むため、９９．９５：０．０５（ｖ／ｖ）の混合により、０．０５ｍＭ遊離Ｍｇ２＋の溶液となった。
【００８０】
さらに、０．０５ｍＭ遊離Ｍｇ２＋となった溶液に対して、同様に１．５μｌ、３．０μｌ、６．０μｌ、６．０μｌ、６．０μｌ、６．５μｌ、１５μｌ、１５μｌ、６１μｌ、６３μｌ、１２８μｌ、３６５μｌ、４２０μｌ及び９７０μｌの順に該溶液を廃棄し、該廃棄と同量の高Ｍｇ２＋濃度溶液と置き換えることによって、０．１ｍＭ、０．２ｍＭ、０．４ｍＭ、０．６ｍＭ、０．８ｍＭ、１．０ｍＭ、１．５ｍＭ、２．０ｍＭ、４．０ｍＭ、６．０ｍＭ、１０ｍＭ、２１ｍＭ、３２ｍＭ及び５４ｍＭの遊離Ｍｇ２＋の溶液を得た。
【００８１】
１００ｍＭ ＫＣｌ及び３０ｍＭ ＭＯＰＳ中のｐＨ７．２でのＣａ２＋−ＥＧＴＡに対する解離定数（Ｋｄ）は、前述したように計算し、その値は略１４４ｎＭであった。多様な［Ｃａ２＋］を含む一連の補正溶液（calibration solutions）は、２種類の溶液（１０ｍＭ Ｋ２ＥＧＴＡを含む溶液Ａ及び１０ｍＭ ＣａＥＧＴＡを含む溶液Ｂ）を多様な比率で混合することで得た。但し、５０〜１０００ｍＭ濃度はＣａＣｌ２を添加することで得た（非特許文献１７、非特許文献１８、非特許文献１９、非特許文献２０参照）。２種類の溶液は共に１００ｍＭ ＫＣｌ及び３０ｍＭ ＭＯＰＳを含み、ｐＨ７．２となるように調整された。
【００８２】
化学式７で表わされる化合物とＭｇ２＋との間に１：１金属−リガンド複合体が形成される場合、その平衡状態は下記数式３で表される。
【００８３】
ここでＬ及びＭは、それぞれ化学式７で表わされる化合物及びＭｇ２＋である。
【００８４】
総プローブ及び金属イオン濃度は、それぞれ［Ｌ］０＝［Ｌ］＋［ＬＭ］及び［Ｍ］０＝［Ｍ］＋［ＬＭ］と定義され、［Ｌ］０及び［Ｍ］０の値が与えられる場合にＫｄは、下記数式４または数式５で表わされる。
【００８５】
【００８６】
【００８７】
ここで、Ｆは、測定された蛍光強度であり、Ｆｍｉｎは、最小蛍光強度であり、Ｆｍａｘは、最大蛍光強度である。数式５による適正曲線（図５（ａ））に最もよく符合されるＫｄ数値を商用のエクセルプログラムによって計算した（非特許文献２１、非特許文献２２参照）。
【００８８】
また、二光子過程に対するＫｄ数値を決定するために、７８０ｎｍの波長及び１２３０ｍＷの出力に設定し（焦点平面からおおよそ１０ｍＷに該当）、モードロックされたチタン−サファイアレーザー光源（Ｃｏｈｅｒｅｎｔ Ｃｈａｍｅｌｅｏｎ、９０ＭＨｚ、２００ｆｓ）によって励起されるＤＭ ＩＲＥ２ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｌｅｉｃａ）を用いてＴＰＥＦスペクトルを得た。ＴＰＥＦ適正曲線（図５（ｂ））を得て、これを数式５に近似した。
【００８９】
前述した過程によってＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する一光子過程における解離定数を測定した結果、それぞれ１．４±０．１ｍＭ及び９．０±０．３ｍＭである。これはＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する二光子過程における解離定数である１．６±０．１ｍＭ及び１１±１ｍＭと非常に類似した数値であった。この結果は、一光子過程及び二光子過程の両過程において、結合が進行する類似したメカニズムが作動するということを意味する。
【００９０】
［実施例５］金属陽イオンに対する選択性測定
図６（ａ）は、化学式７で表わされる化合物の他の金属陽イオンに対する選択性を表わす図である。化学式７で表わされる化合物は、Ｍｇ２＋、Ｃａ２＋、Ｚｎ２＋及びＭｎ２＋に対しては中〜強反応を示すが、Ｆｅ２＋、Ｃｕ２＋及びＣｏ２＋に対しては遥かに弱い反応を示す。化学式７で表わされる化合物の金属イオン選択性は、既存のＭｇＧ及びＭａｇ−Ｆｕｒａ−２（非特許文献２３参照）に対して報告されたものと類似したものである。
【００９１】
一方、遊離Ｍｇ２＋の細胞内濃度（０．１〜６．０ｍＭ）は、Ｃａ２＋の細胞内濃度（１０ｎＭ〜１μＭ）より遥かに高く、キレート化可能なＺｎ２＋は、特定領域を除いて存在しないために、前記化学式７で表わされる化合物は、Ｃａ２＋及びＺｎ２＋による干渉なしにＭｇ２＋を検出することができる。さらに、図６（ｂ）で示すように、化学式７で表わされる化合物及び化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋は、生物学的に関連性あるｐＨ範囲内でｐＨ変化に敏感ではないという特性を有する。
【００９２】
［実施例６］常用プローブとの二光子スペクトル特性比較
緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物、ＭｇＧ及びＭａｇ−ｆｕｒａ−２と、Ｍｇ２＋との複合体に対する二光子スペクトル特性を図７に比較して図示し、下記表２には各プローブに対する鉱物理学的特性を列挙した。
【００９３】
【表２】
【００９４】
１）すべてのデータは、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ緩衝溶液中から（１００ｍＭ ＫＣｌ、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＧＴＡ、ｐＨ７．０５）、５０ｍＭのＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ存在下及び不存在下で測定された。
【００９５】
２）一光子吸収及び発光スペクトルのλｍａｘ
３）二光子励起スペクトルのλｍａｘ
４）蛍光量子収率、±１０％
５）１０−５０ｃｍ４ｓ／光子（ＧＭ）中のピーク二光子断面、±１５％
６）二光子活動断面
７）不検出。二光子励起蛍光強度が余りにも微弱であり断面を正確に測定できない。
【００９６】
８）ＤＭＦ中において、φ＝０．３２±０．０２
９）非特許文献２４参照
図７及び表２の結果から、従来の通常的なプローブよりも、本発明による化合物を用いる場合に、さらに明るいＴＰＭイメージが得られることが分かる。
【００９７】
［実施例７］本発明による二光子励起蛍光プローブを用いた細胞観察
Ｈｅｐ３Ｂ細胞をペニシリン／ストレプトマイシン及び１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を添加したＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）中で培養した。前記培養は、３７℃ ＣＯ２インキュベータ中で行った。Ｈｅｐ３Ｂ細胞は、無血清培地で３回洗浄され、その後、化学式１３で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体２μＭと共に、３７℃で３０分間、無血清培地中で培養された。前記Ｈｅｐ３Ｂ細胞を無血清培地で３回洗浄し、無血清培地中で１５分間さらに培養した後、観察した。
【００９８】
化学式１３で表わされる化合物で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光顕微鏡イメージは、×１００オイル物体、穿孔数（ＮＡ）＝１．３０を有するスペクトル共焦点及び多光子顕微鏡（Ｌｅｉｃａ ＴＣＳ ＳＰ２）を用いて得た。二光子蛍光顕微鏡イメージは、モードロックされたチタン−サファイアレーザー光源（Ｃｏｈｅｒｅｎｔ Ｃｈａｍｅｌｅｏｎ、９０ＭＨｚ、２００ｆｓ）として波長７８０ｎｍでプローブを励起させることで得た。３６０〜６２０ｎｍ、３６０〜４６０ｎｍ及び５００〜６２０ｎｍの範囲の波長でイメージを得るために、信号を４００Ｈｚスキャン速度で９ビット、５１２×５１２ピクセルとして収集するために内部ＰＭＴが用いられた。
【００９９】
図８（ａ）乃至図８（ｃ）は、化学式１３で表わされる化合物で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞のＴＰＭイメージである。Ｔｒｉｓ緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋の蛍光量子収率（φ＝０．５８）及びＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．３２）は、Ｔｒｉｓ緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．０４）及び化学式１３で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．０７）より遥かに大きいために（表２）、細胞から発光されたＴＰＥＦは、大部分が細胞内の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体または細胞膜結合プローブに起因したものである。ＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物は、後者に対する立派なモデルであり、これはλｍａｘｆｌ数値が類似しているためである（図８（ｄ）参照）。このような説明に対する追加的な証拠は、２ｍＭエチレンジアミンテトラ酢酸存在下の１０μＭカルシマイシン処理以後に化学式１３で表わされる化合物−Ｈｅｐ３Ｂ細胞から放出される無視できるほどのＴＰＥＦによって示され、前記ＴＰＥＦは、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下の１０μＭカルシマイシン処理によって増加する。さらに、３６０〜６２０ｎｍの範囲の波長で収集されたイメージは、集中地点（intense spot）及び明るい部位を表わし、このとき、ＴＰＥＦ最大値は、λ＝４４０ｎｍ（符号２１で示す線）及び４９８ｎｍ（符号２２で示す線）で表われる（図８（ｄ））。
【０１００】
表２から分かるように、Ｔｒｉｓ緩衝溶液中で測定された発光スペクトルと比べると、青色バンドは顕著に青色−移動されたが、赤色バンドはほぼ同一であった。２種類のスペクトルは、それぞれ、４３９ｎｍ（図８（ｄ）の符号２３で示す線）及び４８８ｎｍ（図８（ｄ）の符号２４で示す線）、４２６ｎｍ（図８（ｄ）の符号２５で示す線）及び４９８ｎｍ（図８（ｄ）の符号２６で示す線）で最大値を有する２種類のガウス関数（Gaussian functions）で近似することができる。分離されたスペクトルのピーク位置は類似しており、これはプローブが異なる極性を有して２種類の領域に存在することができるということを意味する。さらに、集中地点は、励起状態の寿命が３．３ｎｓであり、これは２．２ｎｓに集中された寿命分布曲線の最上端より遥かに長いものである。このような結果から、本発明によるプローブは２種類の相異なる環境中に存在し、このうちさらに極性が強いものは細胞内に（短寿命を有する赤色発光）、極性が弱いものは細胞膜に結合されて（長寿命を有する青色発光）存在することが推測できる。
【０１０１】
本発明による二光子励起蛍光プローブを用いる場合、細胞膜結合プローブから起因する誤差は、細胞内の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体からのＴＰＥＦを測定することにより最小化することができる。図８（ｄ）に示すように、分離されたガウス関数中で短波長バンド（符号２３で示す線）は、λが５００ｎｍで基線にまで減少する。従って、細胞膜結合プローブから発光されたＴＰＥＦはλ＞５００ｎｍでは無視できるほどである。一方、ＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物をモデルとして用いる場合には、５００ｎｍを超える発光バンドの尾部分は誤差を誘発することもあるが、λ＞５００ｎｍでの尾部分領域は、全体発光バンドの約５％であるため、重要な考慮事項にならない。結果的に、５００〜６２０ｎｍで収集されたＴＰＥＦイメージは、均等に分布する一方、短波長である３６０〜４６０ｎｍを用いて収集されたＴＰＥＦイメージは集中地点を見せる。従って、５００〜６２０ｎｍ範囲の波長を用いる場合には、細胞膜結合プローブによる寄与度を最小化しながらＭｇ２＋イオンを測定することができる。
【０１０２】
［実施例８］細胞内遊離Ｍｇ２＋イオン濃度の測定
休止状態の細胞内遊離Ｍｇ２＋イオン濃度を下記数式１によって測定した。
【０１０３】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
ここで、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブとマグネシウムイオンとの解離定数であり、Ｆは、測定された二光子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【０１０４】
最小蛍光強度（Ｆｍｉｎ）の測定は、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを用いて細胞内Ｍｇ２＋を枯渇させることで決定し、最大蛍光強度（Ｆｍａｘ）は、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを用いて測定した（非特許文献２５、非特許文献２６参照）。
【０１０５】
図９（ａ）乃至図９（ｃ）は、それぞれ、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆの測定、図９（ａ））、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）に標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆｍｉｎの測定、図９（ｂ））、及び１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）に標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆｍａｘの測定、図９（ｃ）である。
【０１０６】
休止状態のＨｅｐ３Ｂ細胞において、測定された細胞内ガラスＭｇ２＋イオンの濃度は、０．６５±０．１０ｍＭであり、このような数値は、既存文献に報告されたものとよく一致する値である（例えば、非特許文献２７、非特許文献２８参照）。
【０１０７】
近年開発されたプローブである２，３−ジシアノヒドロキノン（ＤＣＨＱ）を用いてＴＰＭによって細胞内マグネシウムイオンを定性的に分析した結果は報告されている（非特許文献２９参照）。しかしながら、ＴＰＭによる細胞内遊離Ｍｇ２＋の定量的な測定は、本発明が最初の例である。
【０１０８】
［実施例９］マウス海馬スライスのイメージ化
本発明による二光子励起蛍光プローブが組職の深層観察に有用であるという点を立証するために、生後３日のマウスから得た海馬スライスを３７℃で３０分間５μＭの化学式１３で表わされる化合物と共に培養した。図１０（ａ）は、新生児マウスの海馬スライスの明背景イメージ（brightfield image）であり、歯状回同様に、ＣＡ１及びＣＡ３領域の拡大図である（１０倍）。図１０（ｂ）は、同一の倍率のＴＰＭイメージであり、１００〜３００μｍの深さで、同一領域にＭｇ２＋が分布することが分かる。一方、前記ＣＡ３領域の場合、Ｚｎ２＋が発光に寄与した可能性を排除することはできないが、同一の領域をさらに高い倍率で観察した図１０（ｃ）及び図１０（ｄ）を参照すれば、ＣＡ１領域の錐体ニューロン層でＭｇ２＋分布が観察され、このような領域には、Ｚｎ２＋がほとんど存在しないという点を勘案すれば、本発明による二光子励起蛍光プローブがＭｇ２＋に対して高い選択性を有するということが分かる。さらに、図１０（ｄ）を参照すれば、本発明による二光子励起蛍光プローブは、深層組職内部の核に存在するＭｇ２＋までも探知することができるという点が分かる。
【０１０９】
本発明による二光子励起蛍光プローブは、上述した装置によると、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムイメージングに非常に適する。これはＭｇ２＋に対する二光子励起蛍光（ＴＰＥＦ）において、１７倍以上の向上効果を示し、これは従来の通常的なプローブに比べて７倍以上の高い数値である。従って、細胞を染色する染料の量を顕著に減らすことができる。また、染料の分子量が小さくて細胞内への染色性に非常に優れ、深層組職内部に存在するＭｇ２＋のモニタリングにも非常に適し、細胞内Ｍｇ２＋を定性的だけでなく、定量的にも測定できるという効果がある。
【図面の簡単な説明】
【０１１０】
【図１】本発明による二光子励起蛍光プローブに対する一光子吸収スペクトル（ａ）及び発光スペクトル（ｂ）を測定した結果を示すグラフ。
【図２】本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋濃度変化に対する一光子吸収スペクトル（ａ）、発光スペクトル（ｂ）及び二光子蛍光スペクトル（ｃ）のグラフ。
【図３】本発明による二光子励起蛍光プローブのＣａ２＋濃度変化に対する一光子吸収スペクトル（ａ）、発光スペクトル（ｂ）及び二光子蛍光スペクトル（ｃ）を示すグラフ。
【図４】それぞれ本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋（ａ）及びＣａ２＋（ｂ）に対する結合において、１／（Ｆ−Ｆｍａｘ）ｖｓ１／［Ｍｇ２＋］のプロットを示すグラフ。
【図５】本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法において、数式５による適正曲線を示すグラフ（ａ）及び二光子励起蛍光適正曲線（ｂ）を示すグラフ。
【図６】本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋以外の他の金属陽イオンに対する選択性（ａ）、及びｐＨ変化による蛍光強度（ｂ）を示すグラフ。
【図７】本発明による二光子励起蛍光プローブとＭｇ２＋との複合体及び従来技術によるプローブとＭｇ２＋との複合体に対する二光子スペクトル特性を比較図示した図面。
【図８】Ｈｅｐ３Ｂ細胞を本発明による二光子励起蛍光プローブに標識した後、３６０〜６２０ｎｍ（ａ）、３６０〜４６０ｎｍ（ｂ）及び５００〜６２０ｎｍ（ｃ）の波長を用いて得た二光子顕微鏡写真。
【図９】それぞれ本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ａ）、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ｂ）及び１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ｃ）。
【図１０】新生児マウスの海馬スライスを本発明による二光子励起蛍光プローブで染色した後観察した１０倍倍率の明背景イメージ（ａ）、１０倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｂ）、４０倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｃ）及び１００倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｄ）。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブと、その製造方法及びそれを用いた細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法に関するものである。より具体的には、染料の分子量が小さくて細胞内の染色性に優れ、二光子蛍光収率が非常に大きく、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイム映像に適した二光子励起蛍光プローブ、その製造方法及びそれを用いた細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
マグネシウムイオン（Ｍｇ２＋）は、細胞内に最も多く存在する二価金属イオンであって、数百種余りの酵素活性調節に関与するだけでなく、細胞の増殖及び死滅のような多くの細胞における過程で重要な役割を担う。このような細胞内マグネシウムイオンを検出するために、多様な膜透過性蛍光プローブが開発されており、それらのうち一部は市販されている（例えば、非特許文献１、非特許文献２、非特許文献３参照）。それらのうち大部分は、アセトキシメチル（ＡＭ）エステルとして用いられるが、これは細胞内で酵素加水分解過程を経て金属イオンプローブに変化される（例えば、非特許文献４参照）。しかし、一光子（ＯＰ）蛍光プローブを備えた共焦点顕微鏡は、組職表面（＜１００μｍ）近傍のみに使用が制限される。
【０００３】
従って、組職内部の深い所での細胞現象を観察するためには、二光子顕微鏡（ＴＰＭ）の使用が必須である。励起のために２個の近赤外線光子を吸収させるＴＰＭは、一光子顕微鏡に比べてさまざまな長所を有する。具体的には、透過深度の増加（＞５００μｍ）、組職自己蛍光（auto-fluorescent）及び自己吸収（self-absorption）の低下、及び光損傷（photodamage）及び光脱色（photobleaching）の減少などである（例えば、非特許文献５、非特許文献６参照）。
【０００４】
特に、ＴＰＭの高い透過性は、組職のイメージ化において非常に重要である。これは損傷された細胞のような表面処理結果物は、脳の薄片内部に７０μｍ以上延びるためである（例えば、非特許文献７参照）。しかし、現在ＴＰＭとして用いられる大部分の一光子蛍光プローブは、小さな二光子励起蛍光部（two-photon action cross sections：φｄ）を有するために、その用途がＴＰＭのみに限定される。組織のイメージ化に関連する他の限界点としては、標的ミス（mistargeting）の問題がある。これは細胞膜結合プローブにより引き起こされる（例えば、非特許文献８、非特許文献９、非特許文献１０参照）。前記細胞膜結合プローブは、細胞内の任意の細胞膜で囲まれた構造内に蓄積されるので、蛍光量子収率が、大抵は細胞質より細胞膜の方が高くなる。そのため、細胞膜に結合されたプローブからの信号をプローブ−Ｍｇ２＋複合体の信号から分離することが非常に難しいという不都合がある。
【０００５】
従って、１）より明るいＴＰＭイメージを得るために、改善したφｄ値を有し、２）細胞質内プローブと細胞膜結合プローブとをよりよく区分するために、異なる環境下で、より広いスペクトル移動を示す効率的な二光子励起蛍光プローブを開発する必要性がある。
【非特許文献１】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies, 10th ed, Haugland, R. P. Ed.; MolecularProbes: Eugene, OR, 2005.
【非特許文献２】H. Komatsu, N. Iwasawa, D. Citterio, Y. Suzuki, T. Kubota, K. Tokuno, Y. Kitamura, K. Oka, K. Suzuki, J. Am. Chem. Soc. 2004, 126, 16353-16360.
【非特許文献３】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I. Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344-350.
【非特許文献４】R. Y. Tsien, Nature 1981, 290, 527-528.
【非特許文献５】W. R. Zipfel,R. M. Williams, W. W. Webb, Nat. Biotechnol. 2003, 21, 1369-1377.
【非特許文献６】F. Helmchen, W. Denk, Nat. Methods, 2005, 2, 932-940.
【非特許文献７】R.M.Williams,W.R.Zipfel,W.W.Webb,Curr.Opin.Chem.Biol.2001,5,603-608.
【非特許文献８】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies,10thed,Haugland,R.P.Ed.;Molecular Probes:Eugene,OR,2005.
【非特許文献９】J.R.Long,R.S.Drago,J.Chem.Ed.1982,59,1037-1039.
【非特許文献１０】K.J.Hirose,Incl.Phenom.Macrocycl.Chem.2001,39,193-209.
【非特許文献１１】B.Metten,M.Smet,N.Boens,W.Dehaen,Synthesis 2005,11,1838.
【非特許文献１２】J.N.Demas,G.A.Crosby,J.Phys.Chem.1971,75,991.
【非特許文献１３】C.Reichardt,Chem.Rev.1994,94,2319-2358.
【非特許文献１４】H.A.Benesi,J.H.Hildebrand,J.Am.Chem.Soc.1949,71,2703.
【非特許文献１５】H.A.Benesi,J.H.Hildebrand,J.Am.Chem.Soc.1949,71,2703.
【非特許文献１６】G.Grynkiewicz,M.Poenie,R.Y.Tsien.J.Biol.Chem.1985,260,3440.
【非特許文献１７】G.Grynkiewicz,M.Poenie,R.Y.Tsien.J.Biol.Chem.1985,260,3440.
【非特許文献１８】R.Y.Tsien,T.Pozzan,T.J.Rink.J.Cell Biol.1982,94,325.
【非特許文献１９】R.Y.Tsien,T.Pozzan,Methods Enzymol.1989,172,230.
【非特許文献２０】A.Takahashi,P.Camacho,J.D.Lechleiter,B.Herman.Physiol.Rev.1999,79,1089.
【非特許文献２１】J.R.Long,R.S.Drago,J.Chem.Ed.1982,59,1037.
【非特許文献２２】K.Hirose,J.Incl.Phenom.Macrocycl.Chem.2001,39,193.
【非特許文献２３】The Handbooks-A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies,10th ed,; Haugland, R. P. Ed.; Molecular Probes: Eugene, OR, 2005.
【非特許文献２４】H. Szmacinski, J. R. Lakowicz, J. Fluoresc. 1996, 6, 83-95.
【非特許文献２５】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I. Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344.
【非特許文献２６】I. J. Reynolds, CurrentProtocols in Neuroscience; Wiley: New York; 1998.
【非特許文献２７】J. G. Fitz, A. H. Sostman, J. P. Middleton, Am. J. Physiol. (London) 1994, 266, G677-G684.
【非特許文献２８】M. R. Cho, H. S. Thatte, M. T. Silvia, D. E. Golan, FASEB J. 1999, 13, 677-683.
【非特許文献２９】G. Farruggia, S. Iotti, L. Prodi, M. Montalti, N. Zaccheroni, P. B. Savage, V. Trapani, P. Sale, F. I . Wolf, J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 344-350.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の第１の目的は、生体内に存在する多様な金属の内、特にマグネシウムに対するイオン選択性に優れ、二光子蛍光収率が非常に大きくて細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリングに適した二光子励起蛍光プローブを提供することである。
【０００７】
本発明の第２の目的は、前記二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供することである。
【０００８】
また、本発明の第３の目的は、前記二光子励起蛍光プローブを利用した細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明は、前記第１の目的を達成するため、化学式１で表される細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブを提供する。
【００１０】
本発明は、前記第２の目的を達成するため、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二格子吸収プローブの製造方法を提供する。
【００１１】
前記製造方法は、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２及び３で表わされる化合物とを反応させる段階を含む細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供する。
【００１２】
【００１３】
本発明の一実施形態によれば、前記化学式２で表わされる化合物は、メチルブロモアセテート、Ｎａ２ＨＰＯ４、ＮａＩ及び化学式４で表わされる化合物を反応させて製造することができる。
【００１４】
本発明の更なる実施形態によれば、前記化学式４で表わされる化合物は、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ、Ｈ２Ｏ及び化学式５で表わされる化合物を反応させて製造することができる。
【００１５】
【００１６】
本発明の他の実施形態によれば、前記化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物と共にＨＢｒを反応させて製造することができる。
【００１７】
【００１８】
本発明は、前記第３の目的を達成するため、前記二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入した後、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供する。
【００１９】
本発明の一実施形態によれば、前記二光子励起蛍光によるイメージは、５００〜６２０ｎｍの範囲の波長を用いて得ることができる。
【００２０】
本発明の更なる実施形態によれば、下記数式１を用いて細胞内マグネシウムイオンの濃度を定量的に測定することもできる。
【００２１】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
数式１において、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブのマグネシウムイオンに対する解離定数であり、Ｆは、測定された二格子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
以下、添付した図面及び実施形態を参照して、本発明をより詳細に説明する。
【００２３】
本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブは、二光子蛍光収率が非常に大きいため、細胞を染色する染料の量を顕著に減らすことができる。また、染料の分子量が小さく、細胞内への染色性が非常に優れているため、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムイメージングに適するという特性を有する。
【００２４】
本発明は、具体的には、化学式１で表される細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブを提供する。
【００２５】
【００２６】
化学式１における２−アセチル−６−（ジメチルアミノ）ナフタレン部分は、二光子発色団として機能し、ｏ−アミノフェノール−Ｎ，Ｎ，Ｏ−トリ酢酸部分は、Ｍｇ２＋に対する選択的結合部位として機能する。本発明による二光子励起蛍光プローブは、Ｍｇ２＋と複合体を形成する場合に、強い二光子励起蛍光（Two-Photon Excited Fluorescence：ＴＰＥＦ）を放出する。前記複合体は、溶媒環境の極性によって非常に異なる波長範囲の光を放出するために、相異なる検出ウインドウ（detection windows）を用いることで細胞膜−結合プローブと前記複合体とを容易に区分することができる。
【００２７】
一方、化学式１で表わされる化合物において、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３であり得るが、ＲがＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である場合、本発明による二光子励起蛍光プローブの細胞透過度をさらに向上させることができる。
【００２８】
本発明はまた、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２及び化学式３で表わされる化合物とを反応させて化学式１で表わされる化合物を製造する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法を提供する。
【００２９】
【００３０】
【００３１】
望ましくは、化学式２で表わされる化合物は、化学式４で表わされる化合物、メチルブロモアセテート、Ｎａ２ＨＰＯ４及びＮａＩを反応させて製造することができる。
【００３２】
【００３３】
望ましくは、化学式４で表わされる化合物は、化学式５で表わされる化合物、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ及びＨ２Ｏとを反応させて製造することができる。
【００３４】
【００３５】
また、化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物とＨＢｒとを反応させて製造することができる。
【００３６】
【００３７】
参考までに、下記反応式１には、化学式６で表わされる化合物から、化学式１で表わされる化合物を製造する典型的な反応を示す。
【００３８】
【００３９】
前述したように、細胞透過度の向上のために、反応式１のＲは、Ｈの代りにＣＨ２ＯＣＯＣＨ３に置換されうるが、望ましくは、このような置換過程は、ＲがＨである化学式１で表わされる化合物とブロモ酢酸エチル及びトリエチルアミンとを反応させることで実行される。
【００４０】
一方、本発明は、また前記二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入した後、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含む細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法を提供する。
【００４１】
特に、後述するように、前記二光子励起蛍光によるイメージを５００〜６２０ｎｍの範囲の波長を用いて得る場合には、細胞膜に結合された二光子励起蛍光プローブによる発光寄与度を最小化しながら、細胞内に遊離状態で存在するＭｇ２＋イオンのみを選択的に測定することも可能である。
【００４２】
また、本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法は、従来の技術とは異なって、細胞内マグネシウムの定性的分析だけではなく、これを定量的に測定することも可能であり、望ましくは、細胞内マグネシウムイオン濃度の測定は、下記数式１によって行われる。
【００４３】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
数式１において、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブのマグネシウムイオンに対する解離定数であり、Ｆは、測定された二光子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【００４４】
以下、本発明を実施例を通じてより詳細に説明するが、下記実施例は、本発明の範囲を制限するためのものではなく、本発明の理解を助けるためのものとして記載されたものである。
【実施例】
【００４５】
［製造例１］本発明による二光子励起蛍光プローブの製造
本製造例によって本発明による二光子励起蛍光プローブである化学式７で表わされる化合物を製造した。
【００４６】
【００４７】
［製造例１．１］６−アセチル−２−ヒドロキシナフタレン（化学式８）の製造
【００４８】
酢酸（１００ｍＬ）中の６−アセチル−２−メトキシナフタレン（１０．４ｇ、５２ｍｍｏｌ）溶液に、４８％のＨＢｒ（４３．０ｇ、０．５３ｍｏｌ）を添加し、混合物を得た。前記混合物を１００℃で１２時間撹拌した。過量の酢酸を真空乾固し、残留物を酢酸エチルに溶解させた後、希釈ＮａＨＣＯ３及び塩水で洗浄した。これによって分離した有機層をＭｇＳＯ４で乾燥させ、真空中で溶媒を除去した。最終生成物は、酢酸エチル／ヘキサン（１：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。
【００４９】
収量７．２ｇ（７４％）；融点１７３℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，３６２、１，６６４ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．４１（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９９（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８７（ｄ，１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．７０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．２０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、５．７０（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、２．７１（ｓ、３Ｈ）．Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１２Ｈ１０Ｏ２：Ｃ、７７．４０；Ｈ、５．４１．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７７．５２；Ｈ、５．４６。
【００５０】
［製造例１．２］６−アセチル−Ｎ−メチル−２−ナフチルアミン（化学式９）の製造
【００５１】
前記製造例１．１で製造された化学式８で表わされる化合物（６．５ｇ、３５ｍｍｏｌ）、Ｎａ２Ｓ２Ｏ５（１３．３ｇ、７０ｍｍｏｌ）、ＮａＯＨ（７．０ｇ、０．１７ｍｏｌ）及びＨ２Ｏ（２００ｍＬ）の混合物をスチールボム反応器（steel‐bomb reactor）内に入れてＭｅＮＨ２・ＨＣｌ（１４．２ｇ、０．１７ｍｏｌ）を添加して混合した後、該混合物を１４０℃で４８時間撹拌した。得られた生成物を濾過によって収集し、水で洗浄した後、クロロホルム／酢酸エチル（５０：１）を溶離液として用いるフラッシュカラムによって精製した。引き続き、メタノールを用いた再結晶によってさらに精製した。
【００５２】
収量５．９ｇ（８５％）；融点１８１℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，３４７、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９３（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．７２（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、６．９１（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．７７（ｄ、１Ｈ，Ｊ＝２Ｈｚ）、４．１７（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、２．９７（ｓ、３Ｈ）、２．６７（ｓ、３Ｈ）．Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１３Ｈ１３ＮＯ：Ｃ、７８．３６；Ｈ、６．５８；Ｎ、７．０３．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７８．３２；Ｈ、６．５６；Ｎ、７．０８。
【００５３】
［製造例１．３］６−アセチル−２−［Ｎ−メチル−Ｎ−（カルボキシ）アミノ］ナフタレン（化学式１０）の製造
【００５４】
前記製造例１．２で製造された化学式９で表わされる化合物（４．５ｇ、２３ｍｍｏｌ）、メチルブロモアセテート（５．２ｇ、３４ｍｍｏｌ）、Ｎａ２ＨＰＯ４（４．８ｇ、３４ｍｍｏｌ）及びＮａＩ（１．４ｇ、９．２ｍｍｏｌ）の混合物をＭｅＣＮ（１５０ｍＬ）中に入れて、Ｎ２下で１８時間還流させた。得られた生成物を酢酸エチルで抽出し、塩水で洗浄した後、クロロホルム／酢酸エチル（３０：１）を溶離液として用いるフラッシュカラムによって精製し、中間体を得た。
【００５５】
収量５．２ｇ（８３％）；融点９２℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：１，７５４、１，６７１ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３２（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．９２（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．０８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８８（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．２３（ｓ、２Ｈ）、３．７４（ｓ、３Ｈ）、３．２１（ｓ、３Ｈ）、２．６７（ｓ、３Ｈ）；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１６Ｈ１７ＮＯ３：Ｃ、７０．８３；Ｈ、６．３２；Ｎ、５．１６．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７０．８８；Ｈ、６．３５；Ｎ、５．１０。
【００５６】
前記中間体（２．０ｇ、７．４ｍｍｏｌ）及びＫＯＨ（０．８ｇ、１４ｍｍｏｌ）の混合物をエタノール／Ｈ２Ｏ（５０／１０ｍＬ）に入れて５時間撹拌した。得られた結果物である溶液を氷水（１００ｍＬ）で希釈し、５℃未満の濃塩酸（ａｑ）をｐＨ３までゆっくり添加した。結果物である沈澱を収集し、蒸溜水で洗浄した後、メタノールを用いた再結晶によって精製した。
【００５７】
収量１．６ｇ（８４％）；融点１５８℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：２，９０６、１，７３９、１，６７８ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ８．３９（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８６（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．９３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．２７（ｓ、２Ｈ）、３．１９（ｓ、３Ｈ）、２．６５（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ＝１９９．３、１７３．２、１４９．８、１３８．２、１３０．９、１３０．９、１３０．８、１２６．４、１２５．７、１２４．１、１１６．０、１０５．５、５３．５、３８．７、２５．４ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ１５Ｈ１５ＮＯ３：Ｃ、７０．０２；Ｈ、５．８８；Ｎ、５．４４．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、７０．０８；Ｈ、５．７９；Ｎ、５．４５。
【００５８】
［製造例１．４］本発明による二光子励起蛍光プローブ（化学式７）の製造
【００５９】
前記製造例１．３で製造された化学式１０で表わされる化合物（０．５０ｇ、１．９ｍｍｏｌ）及び１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌ（０．４４ｇ、２．３ｍｍｏｌ）の混合物をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（２０ｍＬ）に入れて混合した後、２０分間撹拌した。攪拌後の前記混合物に、化学式１１で表わされる化合物（０．７１ｇ、２．１ｍｍｏｌ）及び４−ジメチルアミノピリジン（０．０３３ｇ、０．２９ｍｍｏｌ）を添加してＮ２下で１２時間撹拌した。下記化学式１１で表わされる化合物は、公知の方法（例えば、非特許文献１１参照）で製造した。
【００６０】
【００６１】
攪拌後の生成物を酢酸エチルで抽出し、ＭｇＳＯ４上で乾燥させた後、真空中で溶媒を除去した。最終生成物は、クロロホルム／酢酸エチル（１：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。メタノールを用いた再結晶によってさらに精製することで白色固体を得た。
【００６２】
収量０．６４ｇ（５８％）；融点１２０℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２６４、１，７５４、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、８．１５（ｓ、１Ｈ）、７．９６（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８６（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６９（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１２（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、６．８０（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、４．６８（ｓ、２Ｈ）、４．１６（ｓ、４Ｈ）、４．０９（ｓ、２Ｈ）、３．７７（ｓ、３Ｈ）、３．６９（ｓ、６Ｈ）、３．２２（ｓ、３Ｈ）、２．６８（ｓ、３Ｈ）；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ３０Ｈ３３Ｎ３Ｏ９：Ｃ、６２．１７；Ｈ、５．７４；Ｎ、７．２５．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、６２．２２；Ｈ、５．７６；Ｎ、７．１６。
【００６３】
これによって得られたエステル（０．５ｇ、０．８６ｍｍｏｌ）を前記製造例１．３に記載されたような方法によって加水分解した。前記加水分解の結果物である沈澱を収集し、蒸溜水で洗浄した後、メタノール−ＣＨＣｌ３−石油エーテルからの結晶化によって精製した。
【００６４】
収量０．３２ｇ（６９％）；融点１４８℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２７１、２，９０５、１，７４７、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ、８．３８（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．８３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．６３（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．２２（ｓ、１Ｈ）、７．１８（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０３（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．９７（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９．０Ｈｚ）、４．６１（ｓ、２Ｈ）、４．２２（ｓ、２Ｈ）、４．０６（ｓ、４Ｈ）、３．２０（ｓ、３Ｈ）、２．６２（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：ｄ＝１９９．２、１７４．３、１７１．１、１６９．７、１５０．２、１４９．９、１３８．０、１３５．９、１３３．３、１３０．９、１３０．８、１３０．７、１２６．３、１２５．８、１２４．０、１２０．０、１１６．２、１１３．８、１０７．１、１０５．８、６５．３、５６．４、５４．３、３９．１、２５．２ ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ２７Ｈ２７Ｎ３Ｏ９：Ｃ、６０．３３；Ｈ、５．０６；Ｎ、７．８２．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、６０．３１；Ｈ、５．１２；Ｎ、７．７８。
【００６５】
［製造例１．５］本発明による二光子励起蛍光プローブ（化学式１２）の製造
【００６６】
前記製造例１．４で製造された化学式１１で表わされる化合物（０．１５ｇ、０．２８ｍｍｏｌ）、ブロモメチルアセテート（０．３４ｇ、２．２ｍｍｏｌ）及びＥｔ３Ｎ（０．２２ｇ、１．７ｍｍｏｌ）の混合物をＣＨＣｌ３（５ｍｌ）に入れてＮ２下で１５時間撹拌した。真空中で溶液を除去し、粗生成物を酢酸エチル／ヘキサン（３：１）を溶離液として用いるカラムクロマトグラフィーによって精製した。引き続き、メタノールを用いた再結晶によってさらに精製することで白色固体を得た。
【００６７】
収量０．１２ｇ（５８％）；融点１０４℃；ＩＲ（ＫＢｒ）：３，２５７、１，７５４、１，７０８、１，６６３ｃｍ−１；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ８．３５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、８．１８（ｓ、１Ｈ）、７．９７（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．８７（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．７０（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、７．３４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．１５（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、７．０５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８９（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９、Ｊ＝２Ｈｚ）、６．８４（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９Ｈｚ）、５．８０（ｓ、２Ｈ）、５．７５（ｓ、４Ｈ）、４．７１（ｓ、２Ｈ）、４．１８（ｓ、４Ｈ）、４．０９（ｓ、２Ｈ）、３．２３（ｓ、３Ｈ）、２．６６（ｓ、３Ｈ）、２．０９（ｓ、６Ｈ）、２．０７（ｓ、３Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：ｄ＝１９７．９、１７０．１、１６９．７、１６９．７、１６８．０、１６７．７、１５０．１、１４９．２、１３７．３、１３５．９、１３３．０、１３２．４、１３１．６、１３０．３、１２７．０、１２６．７、１２５．３、１２１．０、１１６．７、１１４．１、１０７．８、１０７．７、７９．５、７７．４、６５．９、５９．６、５３．７、４０．４、２６．７、２０．９、２０．８ｐｐｍ；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ．ｆｏｒ Ｃ３６Ｈ３９Ｎ３Ｏ１５：Ｃ、５７．３７；Ｈ、５．２２；Ｎ、５．５８．Ｆｏｕｎｄ：Ｃ、５７．３２；Ｈ、５．３１；Ｎ、５．５２。
【００６８】
[実施例１]吸光スペクトル測定
上述したように製造された化学式１３で表わされる化合物に対する吸光スペクトルをＨｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ８４５３ダイオード整列スペクトロメーター上で測定し、蛍光スペクトルを、１ｃｍ標準石英セルを備えたＡｍｉｃｏ−Ｂｏｗｍａｎ ｓｅｒｉｅｓ２発光スペクトロメーターを用いて測定した。蛍光量子収率は、公知の方法（例えば、非特許文献１２参照）によって、Ｃｏｕｍａｒｉｎ３０７を用いて測定した。
【００６９】
図１は、化学式１３で表わされる化合物の一光子吸収及び発光スペクトルである。多様な溶媒中における化学式１３で表わされる化合物の最大発光波長（λｍａｘ(１)）及び最大蛍光波長（λｍａｘｆｌ）を表１に示す。
【００７０】
【表１】
【００７１】
図１（ａ）、（ｂ）及び表１から分かるように、溶媒極性が増加するにつれて大きな深色移動が観察されるという点は、本発明による化合物が極性プローブとして非常に有用であるということを示唆する。
【００７２】
［実施例２］Ｍｇ２＋濃度変化による吸光度変化測定
図２（ａ）及び図２（ｂ）は、化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋濃度変化に対するスペクトル反応を示すグラフである。図２（ａ）から分かるように、Ｔｒｉｓバッファ溶液（１０ｍＭ、ｐＨ７．０５）中の化学式７で表わされる化合物にＭｇ２＋を添加した時、吸収スペクトルには軽微な変化が観察された。これとは対照的に、Ｍｇ２＋濃度が増加するにつれて蛍光度は急激に増加した（図２（ｂ））。これはおそらく、金属イオン複合体による光誘起電子移動（ＰＥＴ）過程が遮断されるためである。１００ｍＭ Ｍｇ２＋の存在下で、蛍光度向上因子は、１７個観測された。
【００７３】
一方、ほぼ同一の結果が二光子過程に対しても観察された。図２（ｃ）は、多様な濃度のＭｇＣｌ２（０〜１００ｍＭ）存在下での二光子蛍光スペクトルである。さらに、図３（ａ）乃至図３（ｃ）には、Ｃａ２＋（０−１０００μＭ）存在下での化学式７で表わされる化合物に対する一光子吸収スペクトル（図３（ａ））、発光スペクトル（図３（ｂ））及び二光子蛍光スペクトル（図３（ｃ））をそれぞれ図示した。
【００７４】
［実施例３］ベネシ−ヒルデブランドプロット（Benesi‐Hildebrand Plot）
化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する複合体形態は、ベネシ−ヒルデブランドプロット分析法（非特許文献１４参照）によって決定した。蛍光変化は、化学式７で表わされる化合物（Ｌ）と金属イオン（Ｍ）との間の１：１複合体形成によってのみ誘導されるという前提下で、総プローブ濃度及び蛍光強度は、［Ｌ］０＝［Ｌ］＋［ＬＭ］及びＦ＝φＬ［Ｌ］＋φＭＬ［ＭＬ］と定義される。ここで、［Ｌ］０及び［Ｍ］０はそれぞれ総濃度であり、［Ｌ］及び［ＬＭ］はそれぞれＬ及びＭの平衡濃度であり、φＬ及びφＭＬは遊離形態（free forms）及び複合形態の化学式７で表わされる化合物に対する蛍光量子収率である。もし、［Ｍ］０が［Ｌ］０より格段に大きい値を有すれば、ベネシ−ヒルデブランド式は、下記数式２で表わすことができる。
【００７５】
【００７６】
化学式７で表わされる化合物と金属イオンとの間で、１：１の金属とプローブとの複合体が形成されるならば、数式２によるデータのベネシ−ヒルデブランドプロットは線形となる（非特許文献１５参照）。図４（ａ）及び図４（ｂ）は、それぞれ化学式７で表わされる化合物のＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する結合において、１／（Ｆ−Ｆｍｉｎ）ｖｓ１／［Ｍｇ２＋］のプロットである。前記プロットが線形であることから、１：１複合体が形成されるということが分かる。
【００７７】
［実施例４］解離定数の決定
ｐＨ７．０５である２４℃、１００ｍＭ ＫＣｌ及び２０ｍＭ ＮａＣｌの溶液中のＭｇ２＋−ＥＧＴＡに対する解離定数（Ｋｄ）を、ＷｉｎＭＡＸＣ（C. Patton, Stanford University, Palo Alto, CA）プログラムを用いて計算し、計算値は略２８ｍＭであった。前記溶液中の遊離［Ｍｇ２＋］水準は、Ｋｄ＝２８ｍＭであるＭｇ２＋−ＥＧＴＡ緩衝溶液によって調節した（非特許文献１６参照）。
【００７８】
Ｍｇ２＋−化学式７で表わされる化合物複合体に対するＫｄを決定するために、２４℃でＨＣｌを用いてｐＨを７．０５に調整した、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ、１００ｍＭ ＫＣｌ、２０ｍＭ ＮａＣｌ及び１ｍＭ ＥＧＴＡからなる溶液３．０ｍＬ中に、化学式７で表わされる化合物２μＭを添加した後、蛍光スペクトルを記録した。引き続き、前記溶液１．５μｌを廃棄し、化学式７で表わされる化合物２μＭ、１０３．６ｍＭのＭｇＣｌ２、４．６ｍＭのＥＧＴＡ及び１０ｍＭのＴｒｉｓを含み、ｐＨが７．０５である溶液１．５μｌと置き換えた後、スペクトルを記録した。
【００７９】
前者の溶液は１ｍＭの遊離ＥＧＴＡを含むが、後者の溶液は１００ｍＭの遊離Ｍｇ２＋を含むため、９９．９５：０．０５（ｖ／ｖ）の混合により、０．０５ｍＭ遊離Ｍｇ２＋の溶液となった。
【００８０】
さらに、０．０５ｍＭ遊離Ｍｇ２＋となった溶液に対して、同様に１．５μｌ、３．０μｌ、６．０μｌ、６．０μｌ、６．０μｌ、６．５μｌ、１５μｌ、１５μｌ、６１μｌ、６３μｌ、１２８μｌ、３６５μｌ、４２０μｌ及び９７０μｌの順に該溶液を廃棄し、該廃棄と同量の高Ｍｇ２＋濃度溶液と置き換えることによって、０．１ｍＭ、０．２ｍＭ、０．４ｍＭ、０．６ｍＭ、０．８ｍＭ、１．０ｍＭ、１．５ｍＭ、２．０ｍＭ、４．０ｍＭ、６．０ｍＭ、１０ｍＭ、２１ｍＭ、３２ｍＭ及び５４ｍＭの遊離Ｍｇ２＋の溶液を得た。
【００８１】
１００ｍＭ ＫＣｌ及び３０ｍＭ ＭＯＰＳ中のｐＨ７．２でのＣａ２＋−ＥＧＴＡに対する解離定数（Ｋｄ）は、前述したように計算し、その値は略１４４ｎＭであった。多様な［Ｃａ２＋］を含む一連の補正溶液（calibration solutions）は、２種類の溶液（１０ｍＭ Ｋ２ＥＧＴＡを含む溶液Ａ及び１０ｍＭ ＣａＥＧＴＡを含む溶液Ｂ）を多様な比率で混合することで得た。但し、５０〜１０００ｍＭ濃度はＣａＣｌ２を添加することで得た（非特許文献１７、非特許文献１８、非特許文献１９、非特許文献２０参照）。２種類の溶液は共に１００ｍＭ ＫＣｌ及び３０ｍＭ ＭＯＰＳを含み、ｐＨ７．２となるように調整された。
【００８２】
化学式７で表わされる化合物とＭｇ２＋との間に１：１金属−リガンド複合体が形成される場合、その平衡状態は下記数式３で表される。
【００８３】
ここでＬ及びＭは、それぞれ化学式７で表わされる化合物及びＭｇ２＋である。
【００８４】
総プローブ及び金属イオン濃度は、それぞれ［Ｌ］０＝［Ｌ］＋［ＬＭ］及び［Ｍ］０＝［Ｍ］＋［ＬＭ］と定義され、［Ｌ］０及び［Ｍ］０の値が与えられる場合にＫｄは、下記数式４または数式５で表わされる。
【００８５】
【００８６】
【００８７】
ここで、Ｆは、測定された蛍光強度であり、Ｆｍｉｎは、最小蛍光強度であり、Ｆｍａｘは、最大蛍光強度である。数式５による適正曲線（図５（ａ））に最もよく符合されるＫｄ数値を商用のエクセルプログラムによって計算した（非特許文献２１、非特許文献２２参照）。
【００８８】
また、二光子過程に対するＫｄ数値を決定するために、７８０ｎｍの波長及び１２３０ｍＷの出力に設定し（焦点平面からおおよそ１０ｍＷに該当）、モードロックされたチタン−サファイアレーザー光源（Ｃｏｈｅｒｅｎｔ Ｃｈａｍｅｌｅｏｎ、９０ＭＨｚ、２００ｆｓ）によって励起されるＤＭ ＩＲＥ２ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｌｅｉｃａ）を用いてＴＰＥＦスペクトルを得た。ＴＰＥＦ適正曲線（図５（ｂ））を得て、これを数式５に近似した。
【００８９】
前述した過程によってＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する一光子過程における解離定数を測定した結果、それぞれ１．４±０．１ｍＭ及び９．０±０．３ｍＭである。これはＭｇ２＋及びＣａ２＋に対する二光子過程における解離定数である１．６±０．１ｍＭ及び１１±１ｍＭと非常に類似した数値であった。この結果は、一光子過程及び二光子過程の両過程において、結合が進行する類似したメカニズムが作動するということを意味する。
【００９０】
［実施例５］金属陽イオンに対する選択性測定
図６（ａ）は、化学式７で表わされる化合物の他の金属陽イオンに対する選択性を表わす図である。化学式７で表わされる化合物は、Ｍｇ２＋、Ｃａ２＋、Ｚｎ２＋及びＭｎ２＋に対しては中〜強反応を示すが、Ｆｅ２＋、Ｃｕ２＋及びＣｏ２＋に対しては遥かに弱い反応を示す。化学式７で表わされる化合物の金属イオン選択性は、既存のＭｇＧ及びＭａｇ−Ｆｕｒａ−２（非特許文献２３参照）に対して報告されたものと類似したものである。
【００９１】
一方、遊離Ｍｇ２＋の細胞内濃度（０．１〜６．０ｍＭ）は、Ｃａ２＋の細胞内濃度（１０ｎＭ〜１μＭ）より遥かに高く、キレート化可能なＺｎ２＋は、特定領域を除いて存在しないために、前記化学式７で表わされる化合物は、Ｃａ２＋及びＺｎ２＋による干渉なしにＭｇ２＋を検出することができる。さらに、図６（ｂ）で示すように、化学式７で表わされる化合物及び化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋は、生物学的に関連性あるｐＨ範囲内でｐＨ変化に敏感ではないという特性を有する。
【００９２】
［実施例６］常用プローブとの二光子スペクトル特性比較
緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物、ＭｇＧ及びＭａｇ−ｆｕｒａ−２と、Ｍｇ２＋との複合体に対する二光子スペクトル特性を図７に比較して図示し、下記表２には各プローブに対する鉱物理学的特性を列挙した。
【００９３】
【表２】
【００９４】
１）すべてのデータは、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ緩衝溶液中から（１００ｍＭ ＫＣｌ、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＧＴＡ、ｐＨ７．０５）、５０ｍＭのＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ存在下及び不存在下で測定された。
【００９５】
２）一光子吸収及び発光スペクトルのλｍａｘ
３）二光子励起スペクトルのλｍａｘ
４）蛍光量子収率、±１０％
５）１０−５０ｃｍ４ｓ／光子（ＧＭ）中のピーク二光子断面、±１５％
６）二光子活動断面
７）不検出。二光子励起蛍光強度が余りにも微弱であり断面を正確に測定できない。
【００９６】
８）ＤＭＦ中において、φ＝０．３２±０．０２
９）非特許文献２４参照
図７及び表２の結果から、従来の通常的なプローブよりも、本発明による化合物を用いる場合に、さらに明るいＴＰＭイメージが得られることが分かる。
【００９７】
［実施例７］本発明による二光子励起蛍光プローブを用いた細胞観察
Ｈｅｐ３Ｂ細胞をペニシリン／ストレプトマイシン及び１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を添加したＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）中で培養した。前記培養は、３７℃ ＣＯ２インキュベータ中で行った。Ｈｅｐ３Ｂ細胞は、無血清培地で３回洗浄され、その後、化学式１３で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体２μＭと共に、３７℃で３０分間、無血清培地中で培養された。前記Ｈｅｐ３Ｂ細胞を無血清培地で３回洗浄し、無血清培地中で１５分間さらに培養した後、観察した。
【００９８】
化学式１３で表わされる化合物で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光顕微鏡イメージは、×１００オイル物体、穿孔数（ＮＡ）＝１．３０を有するスペクトル共焦点及び多光子顕微鏡（Ｌｅｉｃａ ＴＣＳ ＳＰ２）を用いて得た。二光子蛍光顕微鏡イメージは、モードロックされたチタン−サファイアレーザー光源（Ｃｏｈｅｒｅｎｔ Ｃｈａｍｅｌｅｏｎ、９０ＭＨｚ、２００ｆｓ）として波長７８０ｎｍでプローブを励起させることで得た。３６０〜６２０ｎｍ、３６０〜４６０ｎｍ及び５００〜６２０ｎｍの範囲の波長でイメージを得るために、信号を４００Ｈｚスキャン速度で９ビット、５１２×５１２ピクセルとして収集するために内部ＰＭＴが用いられた。
【００９９】
図８（ａ）乃至図８（ｃ）は、化学式１３で表わされる化合物で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞のＴＰＭイメージである。Ｔｒｉｓ緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋の蛍光量子収率（φ＝０．５８）及びＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．３２）は、Ｔｒｉｓ緩衝溶液中の化学式７で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．０４）及び化学式１３で表わされる化合物の蛍光量子収率（φ＝０．０７）より遥かに大きいために（表２）、細胞から発光されたＴＰＥＦは、大部分が細胞内の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体または細胞膜結合プローブに起因したものである。ＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物は、後者に対する立派なモデルであり、これはλｍａｘｆｌ数値が類似しているためである（図８（ｄ）参照）。このような説明に対する追加的な証拠は、２ｍＭエチレンジアミンテトラ酢酸存在下の１０μＭカルシマイシン処理以後に化学式１３で表わされる化合物−Ｈｅｐ３Ｂ細胞から放出される無視できるほどのＴＰＥＦによって示され、前記ＴＰＥＦは、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下の１０μＭカルシマイシン処理によって増加する。さらに、３６０〜６２０ｎｍの範囲の波長で収集されたイメージは、集中地点（intense spot）及び明るい部位を表わし、このとき、ＴＰＥＦ最大値は、λ＝４４０ｎｍ（符号２１で示す線）及び４９８ｎｍ（符号２２で示す線）で表われる（図８（ｄ））。
【０１００】
表２から分かるように、Ｔｒｉｓ緩衝溶液中で測定された発光スペクトルと比べると、青色バンドは顕著に青色−移動されたが、赤色バンドはほぼ同一であった。２種類のスペクトルは、それぞれ、４３９ｎｍ（図８（ｄ）の符号２３で示す線）及び４８８ｎｍ（図８（ｄ）の符号２４で示す線）、４２６ｎｍ（図８（ｄ）の符号２５で示す線）及び４９８ｎｍ（図８（ｄ）の符号２６で示す線）で最大値を有する２種類のガウス関数（Gaussian functions）で近似することができる。分離されたスペクトルのピーク位置は類似しており、これはプローブが異なる極性を有して２種類の領域に存在することができるということを意味する。さらに、集中地点は、励起状態の寿命が３．３ｎｓであり、これは２．２ｎｓに集中された寿命分布曲線の最上端より遥かに長いものである。このような結果から、本発明によるプローブは２種類の相異なる環境中に存在し、このうちさらに極性が強いものは細胞内に（短寿命を有する赤色発光）、極性が弱いものは細胞膜に結合されて（長寿命を有する青色発光）存在することが推測できる。
【０１０１】
本発明による二光子励起蛍光プローブを用いる場合、細胞膜結合プローブから起因する誤差は、細胞内の化学式７で表わされる化合物−Ｍｇ２＋複合体からのＴＰＥＦを測定することにより最小化することができる。図８（ｄ）に示すように、分離されたガウス関数中で短波長バンド（符号２３で示す線）は、λが５００ｎｍで基線にまで減少する。従って、細胞膜結合プローブから発光されたＴＰＥＦはλ＞５００ｎｍでは無視できるほどである。一方、ＤＭＦ中の化学式１３で表わされる化合物をモデルとして用いる場合には、５００ｎｍを超える発光バンドの尾部分は誤差を誘発することもあるが、λ＞５００ｎｍでの尾部分領域は、全体発光バンドの約５％であるため、重要な考慮事項にならない。結果的に、５００〜６２０ｎｍで収集されたＴＰＥＦイメージは、均等に分布する一方、短波長である３６０〜４６０ｎｍを用いて収集されたＴＰＥＦイメージは集中地点を見せる。従って、５００〜６２０ｎｍ範囲の波長を用いる場合には、細胞膜結合プローブによる寄与度を最小化しながらＭｇ２＋イオンを測定することができる。
【０１０２】
［実施例８］細胞内遊離Ｍｇ２＋イオン濃度の測定
休止状態の細胞内遊離Ｍｇ２＋イオン濃度を下記数式１によって測定した。
【０１０３】
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
ここで、Ｋｄは、本発明による二光子励起蛍光プローブとマグネシウムイオンとの解離定数であり、Ｆは、測定された二光子蛍光強度であり、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘは、それぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。
【０１０４】
最小蛍光強度（Ｆｍｉｎ）の測定は、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを用いて細胞内Ｍｇ２＋を枯渇させることで決定し、最大蛍光強度（Ｆｍａｘ）は、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを用いて測定した（非特許文献２５、非特許文献２６参照）。
【０１０５】
図９（ａ）乃至図９（ｃ）は、それぞれ、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）で標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆの測定、図９（ａ））、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）に標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆｍｉｎの測定、図９（ｂ））、及び１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、化学式１３で表わされる化合物（２μＭ）に標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（Ｆｍａｘの測定、図９（ｃ）である。
【０１０６】
休止状態のＨｅｐ３Ｂ細胞において、測定された細胞内ガラスＭｇ２＋イオンの濃度は、０．６５±０．１０ｍＭであり、このような数値は、既存文献に報告されたものとよく一致する値である（例えば、非特許文献２７、非特許文献２８参照）。
【０１０７】
近年開発されたプローブである２，３−ジシアノヒドロキノン（ＤＣＨＱ）を用いてＴＰＭによって細胞内マグネシウムイオンを定性的に分析した結果は報告されている（非特許文献２９参照）。しかしながら、ＴＰＭによる細胞内遊離Ｍｇ２＋の定量的な測定は、本発明が最初の例である。
【０１０８】
［実施例９］マウス海馬スライスのイメージ化
本発明による二光子励起蛍光プローブが組職の深層観察に有用であるという点を立証するために、生後３日のマウスから得た海馬スライスを３７℃で３０分間５μＭの化学式１３で表わされる化合物と共に培養した。図１０（ａ）は、新生児マウスの海馬スライスの明背景イメージ（brightfield image）であり、歯状回同様に、ＣＡ１及びＣＡ３領域の拡大図である（１０倍）。図１０（ｂ）は、同一の倍率のＴＰＭイメージであり、１００〜３００μｍの深さで、同一領域にＭｇ２＋が分布することが分かる。一方、前記ＣＡ３領域の場合、Ｚｎ２＋が発光に寄与した可能性を排除することはできないが、同一の領域をさらに高い倍率で観察した図１０（ｃ）及び図１０（ｄ）を参照すれば、ＣＡ１領域の錐体ニューロン層でＭｇ２＋分布が観察され、このような領域には、Ｚｎ２＋がほとんど存在しないという点を勘案すれば、本発明による二光子励起蛍光プローブがＭｇ２＋に対して高い選択性を有するということが分かる。さらに、図１０（ｄ）を参照すれば、本発明による二光子励起蛍光プローブは、深層組職内部の核に存在するＭｇ２＋までも探知することができるという点が分かる。
【０１０９】
本発明による二光子励起蛍光プローブは、上述した装置によると、細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムイメージングに非常に適する。これはＭｇ２＋に対する二光子励起蛍光（ＴＰＥＦ）において、１７倍以上の向上効果を示し、これは従来の通常的なプローブに比べて７倍以上の高い数値である。従って、細胞を染色する染料の量を顕著に減らすことができる。また、染料の分子量が小さくて細胞内への染色性に非常に優れ、深層組職内部に存在するＭｇ２＋のモニタリングにも非常に適し、細胞内Ｍｇ２＋を定性的だけでなく、定量的にも測定できるという効果がある。
【図面の簡単な説明】
【０１１０】
【図１】本発明による二光子励起蛍光プローブに対する一光子吸収スペクトル（ａ）及び発光スペクトル（ｂ）を測定した結果を示すグラフ。
【図２】本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋濃度変化に対する一光子吸収スペクトル（ａ）、発光スペクトル（ｂ）及び二光子蛍光スペクトル（ｃ）のグラフ。
【図３】本発明による二光子励起蛍光プローブのＣａ２＋濃度変化に対する一光子吸収スペクトル（ａ）、発光スペクトル（ｂ）及び二光子蛍光スペクトル（ｃ）を示すグラフ。
【図４】それぞれ本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋（ａ）及びＣａ２＋（ｂ）に対する結合において、１／（Ｆ−Ｆｍａｘ）ｖｓ１／［Ｍｇ２＋］のプロットを示すグラフ。
【図５】本発明による細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法において、数式５による適正曲線を示すグラフ（ａ）及び二光子励起蛍光適正曲線（ｂ）を示すグラフ。
【図６】本発明による二光子励起蛍光プローブのＭｇ２＋以外の他の金属陽イオンに対する選択性（ａ）、及びｐＨ変化による蛍光強度（ｂ）を示すグラフ。
【図７】本発明による二光子励起蛍光プローブとＭｇ２＋との複合体及び従来技術によるプローブとＭｇ２＋との複合体に対する二光子スペクトル特性を比較図示した図面。
【図８】Ｈｅｐ３Ｂ細胞を本発明による二光子励起蛍光プローブに標識した後、３６０〜６２０ｎｍ（ａ）、３６０〜４６０ｎｍ（ｂ）及び５００〜６２０ｎｍ（ｃ）の波長を用いて得た二光子顕微鏡写真。
【図９】それぞれ本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ａ）、２ｍＭのＥＤＴＡ存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ｂ）及び１００ｍＭ ＭｇＣｌ２存在下で１０μＭカルシマイシンを処理した後、本発明による二光子励起蛍光プローブに標識されたＨｅｐ３Ｂ細胞の二光子蛍光イメージ（ｃ）。
【図１０】新生児マウスの海馬スライスを本発明による二光子励起蛍光プローブで染色した後観察した１０倍倍率の明背景イメージ（ａ）、１０倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｂ）、４０倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｃ）及び１００倍倍率の二光子顕微鏡観察写真（ｄ）。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
化学式１で表される化合物からなることを特徴とする、細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブ。
・・・（１）
（式中、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。）
【請求項２】
化学式１で表される化合物からなる細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法であって、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２で表わされる化合物と、化学式３で表わされる化合物とを反応させる段階を含むことを特徴とする二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（１）
（式中、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。）
・・・（２）
・・・（３）
【請求項３】
前記化学式２で表わされる化合物は、メチルブロモアセテートと、Ｎａ２ＨＰＯ４、ＮａＩと、化学式４で表わされる化合物とを反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項２記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（４）
【請求項４】
前記化学式４で表わされる化合物は、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ、Ｈ２Ｏ及び化学式５で表わされる化合物を反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項３記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（５）
【請求項５】
前記化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物と共にＨＢｒを反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項４記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（６）
【請求項６】
請求項１記載の二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入し、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含むことを特徴とする細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
【請求項７】
前記二光子励起蛍光プローブは、波長が５００〜６２０ｎｍの範囲で励起されることを特徴とする請求項６記載の細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
【請求項８】
数式１を用いて前記細胞内マグネシウムイオンの濃度を定量的に測定することを特徴とする請求項６に記載の細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
（式中、Ｋｄは前記二光子励起蛍光プローブとマグネシウムイオンとの解離定数、Ｆは測定された二光子蛍光強度、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘはそれぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。）
【請求項１】
化学式１で表される化合物からなることを特徴とする、細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブ。
・・・（１）
（式中、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。）
【請求項２】
化学式１で表される化合物からなる細胞内マグネシウムイオンのリアルタイムモニタリング用二光子励起蛍光プローブの製造方法であって、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド・ＨＣｌと、４−ジメチルアミノピリジンと、化学式２で表わされる化合物と、化学式３で表わされる化合物とを反応させる段階を含むことを特徴とする二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（１）
（式中、Ｒは、ＨまたはＣＨ２ＯＣＯＣＨ３である。）
・・・（２）
・・・（３）
【請求項３】
前記化学式２で表わされる化合物は、メチルブロモアセテートと、Ｎａ２ＨＰＯ４、ＮａＩと、化学式４で表わされる化合物とを反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項２記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（４）
【請求項４】
前記化学式４で表わされる化合物は、ＣＨ３ＮＨ２・ＨＣｌ、Ｎａ２Ｓ２Ｏ３、ＮａＯＨ、Ｈ２Ｏ及び化学式５で表わされる化合物を反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項３記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（５）
【請求項５】
前記化学式５で表わされる化合物は、化学式６で表わされる化合物と共にＨＢｒを反応させて製造されるものであることを特徴とする請求項４記載の二光子励起蛍光プローブの製造方法。
・・・（６）
【請求項６】
請求項１記載の二光子励起蛍光プローブを観察対象となる細胞内に注入し、該二光子励起蛍光プローブから放出される二光子励起蛍光をイメージ化する段階を含むことを特徴とする細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
【請求項７】
前記二光子励起蛍光プローブは、波長が５００〜６２０ｎｍの範囲で励起されることを特徴とする請求項６記載の細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
【請求項８】
数式１を用いて前記細胞内マグネシウムイオンの濃度を定量的に測定することを特徴とする請求項６に記載の細胞内マグネシウムのリアルタイムモニタリング方法。
［Ｍｇ２＋］＝Ｋｄ［（Ｆ−Ｆｍｉｎ）／（Ｆｍａｘ−Ｆ）］ ・・・（数式１）
（式中、Ｋｄは前記二光子励起蛍光プローブとマグネシウムイオンとの解離定数、Ｆは測定された二光子蛍光強度、Ｆｍｉｎ及びＦｍａｘはそれぞれ最小蛍光強度及び最大蛍光強度である。）
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【公開番号】特開２００８−２９２４５３（Ｐ２００８−２９２４５３Ａ）
【公開日】平成２０年１２月４日（２００８．１２．４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−２５６４３（Ｐ２００８−２５６４３）
【出願日】平成２０年２月５日（２００８．２．５）
【出願人】（５０５１７６５５６）コリア ユニバーシティ インダストリアル アンド アカデミック コラボレイション ファウンデーション (29)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年１２月４日（２００８．１２．４）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年２月５日（２００８．２．５）
【出願人】（５０５１７６５５６）コリア ユニバーシティ インダストリアル アンド アカデミック コラボレイション ファウンデーション (29)
【Ｆターム（参考）】
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