加水分解性ポリマーＦＭＯＣ−リンカー
本発明は、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニル−メトキシカルボニル）をベースとしたポリマーコンジュゲートに関する。これらのコンジュゲートは、タンパク質およびペプチド薬物のインビボでの循環を延長するのに有用である。一つの実施形態において、本発明は、インビボでの循環などのインビボでの特性を改善するために、加水分解性リンカーがタンパク質またはペプチド薬物とコンジュゲートされている、少なくとも１つの半合成バイオポリマーと結合した加水分解性リンカーを提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願への相互参照）
本願は、２００７年６月２６日に出願された米国仮特許出願第６０／９３７，１６９号、および２００８年４月７日に出願された米国仮特許出願第６１／１２３，２６３号への優先権の利益を主張し、これらの米国仮特許出願の双方の全体は、本明細書中に参考として援用される。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、少なくとも１つの半合成ポリマーと結合している加水分解性リンカーの作製に関する。これらの加水分解性リンカーは、タンパク質およびペプチド系の薬物のインビボでの循環を延長するのに有用である。
【背景技術】
【０００３】
（発明の背景）
ほとんどのタンパク質またはペプチド薬物は寿命が短く、しばしば、インビボで短い循環半減期を有する。タンパク質またはペプチド薬物が経口で吸収されないことを考慮すると、循環系において治療活性のある薬物を長く保持することは、臨床的重要性の点で明らかに望ましい特徴である。
【０００４】
タンパク質またはペプチド薬物の臨床的特性を改善するための好ましい方策は、その薬物を、ポリマー、例えばポリアルキレンオキシド（非特許文献１）、またはポリシアル酸（非特許文献２）、デキストランもしくはヒドロキシルアルキルスターチなどの多糖で修飾することである。（本明細書で引用したすべての文献を参照により本明細書に組み込む。）
しばらくの間、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）を用いた修飾が知られていた。しかし、ＰＥＧを用いたタンパク質の修飾はしばしば、タンパク質の活性の低下をもたらす。
【０００５】
コロミン酸（ＣＡ）として知られているポリシアル酸（ＰＳＡ）は、天然由来の環状多糖である。これは、α（２→８）ケトシド結合でのＮ−アセチルノイラミン酸のホモポリマーであり、その非還元末端に隣接ジオール基を含む。ＰＳＡは負の電荷を有しており、人体の天然成分である。これは、所定の物理的特性でバクテリアから簡単に大量生産することができる（特許文献１）。ポリシアル酸と化学的にも免疫学的にも同じなので、人体内で、バクテリアのポリシアル酸は、タンパク質と結合していても非免疫原性である。他のポリマー（例えば、ＰＥＧ）とは異なり、ポリシアル酸は生分解性である。
【０００６】
しかし、ＰＳＡなどの酸性単糖とコンジュゲートしたポリペプチドを含む治療用化合物はこれまで市販されていない。
【０００７】
１〜４個のシアル酸単位しかもたない短いＰＳＡポリマー鎖も合成されている（非特許文献３；非特許文献４）。
【０００８】
ＰＥＧ部分を含むいくつかの加水分解性または分解性リンカーが提案されている。
【０００９】
特許文献２は、弱い、加水分解的に不安定な結合を有するＰＥＧおよび関連ポリマー誘導体を記載している。
【００１０】
特許文献３は、ビス−Ｎ−２−ヒドロキシエチルグリシン基（ビシン）をベースとした放出可能なＰＥＧ−リンカーを記載している。
【００１１】
特許文献４および特許文献５は、加水分解性フルオレンをベースとしたＰＥＧ構造体を記載している。
【００１２】
これらのリンカーをタンパク質系薬物とコンジュゲートした後は、タンパク質−ポリマー複合体をプロドラッグとみなすことができ、制御放出機序により、タンパク質の活性をコンジュゲートから放出することができる。この考え方を用いて、薬物動態特性が改善された薬物を得ることができる（非特許文献５）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】米国特許第５，８４６，９５１号明細書
【特許文献２】米国特許第６，５１５，１００号明細書
【特許文献３】米国特許第７，１２２，１８９号明細書
【特許文献４】国際公開第０４／０８９２８０号パンフレット
【特許文献５】国際公開第０６／１３８５７２号パンフレット
【非特許文献】
【００１４】
【非特許文献１】Ｒｏｂｅｒｔｓら、Ａｄｖａｎ Ｄｒｕｇ Ｒｅｖ．第５４巻、４５９〜４７６頁（２００２年）
【非特許文献２】Ｆｅｒｎａｎｄｅｓら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第１３４１巻、２６〜３４頁（１９９７年）
【非特許文献３】Ｋａｎｇら、Ｃｈｅｍ Ｃｏｍｍｕｎ．、２２７〜２２８頁（２０００年）
【非特許文献４】Ｒｅｓｓら、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、第１巻、３１〜４６頁（２００４年）
【非特許文献５】Ｚｈａｏら、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．第１７巻、３４１〜３５１頁（２００６年）
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明は、インビボでの循環などのインビボでの特性を改善するために、加水分解性リンカーがタンパク質またはペプチド薬物とコンジュゲートされている、少なくとも１つの半合成バイオポリマーと結合した加水分解性リンカーを提供する。
【００１６】
本発明は、一般式１の化合物を提供する。
【００１７】
【化１】
ただし、
Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合している。
【００１８】
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基である。
【００１９】
Ｙ基と結合していることに加えて、式Ｉの化合物は任意選択で、利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基と結合していてもよい。
【００２０】
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３である。
【００２１】
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から選択される。
【００２２】
Ｒ４はポリマーである。
【図面の簡単な説明】
【００２３】
【図１】ｐＨ８．３におけるインビトロでのＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートの加水分解を示す図である。ＦＶＩＩａ活性の放出はＳｔａｃｌｏｔアッセイ（Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定した。
【図２】ｐＨ８．３におけるインビトロでのＦＶＩＩａ−トリマーＰＳＡコンジュゲートの加水分解を示す図である。ＦＶＩＩａ活性の放出はＳｔａｃｌｏｔアッセイ（Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定した。
【図３】凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）で測定した血漿中でのＦＶ１１ａ活性を示す図である。ＦＶＩＩａ凝固活性について、用量調節した曲線下面積（ＡＵＣ）は、非修飾ｒＦＶｉｌａでは０．０１４であり、ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート（０〜無限大）では０．０１５に増大した。終末相半減期は２．３時間から４．４時間へ延長され、平均滞留時間（ＭＲＴ）は１．４時間から２．４時間へ延長された。
【図４】ポリクローナル抗ヒトＦＶＩＩ抗体を用いたＥＬＩＳＡによるＦＶＩＩａ抗原の測定結果を示す図である。抗原について、用量調節したＡＵＣ（０〜無限大）は０．０１０（非修飾ｒＦＶＩＩａ）から０．０１４（ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート）へ増大し、終末相半減期は１．４時間から２．３時間へ延長され、ＭＲＴ１．５時間から２．２時間へ延長された。
【図５】凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）で測定した血漿中でのＦＶＩＩａ活性を示す図である。ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートの薬物動態は、未変性（ｎａｔｉｖｅ）ｒＦＶＩＩａ（−△−）と比較して改善されている（−○−）。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
本発明は、少なくとも１つの半合成バイオポリマーと結合した加水分解性リンカーであって、インビボでの循環などのインビボでの特性を改善するために、タンパク質またはペプチド薬物とさらにコンジュゲートさせることができる加水分解性リンカーを提供する。タンパク質またはペプチド薬物の活性を、制御放出機序により、コンジュゲートから放出することができる。
【００２５】
以下の段落は、一般的定義、および本発明による化合物を作り上げる様々な化学的部分の定義を提供するものであり、別に明確に示された定義により、より広い定義が提供されていない限り、本明細書および特許請求の範囲を通して一様に当てはまるものとする。
【００２６】
「Ｃ１〜Ｃ８−アルキル」は、１〜８個の炭素原子を有する一価アルキル基を指す。この用語の例は、メチル、エチル、プロピル、ブチル、ヘキシルなどの基である。直鎖状および分岐状アルキルが含まれる。
【００２７】
「脱離基」は、コンジュゲートを形成するタンパク質またはペプチド薬物上の求核部（ｎｕｃｌｅｏｐｈｉｌｅ）と反応することができる基を指す。この用語の例には、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル、Ｎ−ヒドロキシベンゾトリアゾリル、ハロゲン、Ｎ−ヒドロキシフタリミジル、ｐ−ニトロフェノキシ、イミダゾリル、チアゾリジニルチオン、Ｏ−アシル尿素などの基であり、また当業者には他の適切な脱離基も明らかであろう。したがって、本発明のためには、タンパク質またはペプチド薬物は、アミンなどの置換のための１つまたは複数の基を含む。タンパク質またはペプチド薬物は、血漿タンパク質、すなわちＦＶＩＩＩ、ＶＷＦ、ＦＶＩＩａおよびＦＩＸなどの血液凝固因子である。
【００２８】
「半合成バイオポリマー」は、天然由来のポリマーをベースとした人造有機ポリマーを指す。半合成バイオポリマーを反応基で官能化して、これらの官能化された半合成バイオポリマーを他の化合物にコンジュゲートさせることもできる。この「半合成バイオポリマー」という用語の例は、炭水化物などの直鎖状または分岐状ポリマー、具体的には例えば多糖類である。多糖類の例は、ＰＳＡ（ポリシアル酸）およびＨＡＳ（ヒドロキシアルキルスターチ）である。
【００２９】
「加水分解性」リンカーは、その中でタンパク質が、未変性の形態で放出されるリンカー系を指す。タンパク質は放出され、リンカーは完全に切断される。加水分解性のリンカーの同義語は「分解性」または「放出性」のリンカーである。
【００３０】
本発明は、一般式１の化合物を提供する。
【００３１】
【化２】
ただし、Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合している。
【００３２】
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基である。
【００３３】
Ｙ基と結合していることに加えて、式Ｉの化合物は、利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基と任意選択で結合することができる。
【００３４】
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３である。
【００３５】
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から選択される。
【００３６】
Ｒ４はポリマーである。その例は、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）などの親水性ポリマーである。
【００３７】
一実施形態では、ＺがＮ−スクシンイミジルエステルであり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つがＹ基と結合しており、Ｙが、
【００３８】
【化３】
（式中、ＰＯＬＹＭＥＲは、好ましくは１，０００Ｄａ〜３００，０００Ｄａの分子量を有する半合成バイオポリマーである）
である式１の化合物に関する。
【００３９】
一実施形態では、分子量は５，０００〜２５，０００、好ましくは５，０００〜１０，０００である。
【００４０】
他の実施形態では、前記半合成バイオポリマーは炭水化物である。好ましくは少なくとも３単位の単糖を含む多糖が好ましい。
【００４１】
一実施形態では、前記多糖は２〜２００単位、好ましくは１０〜１００単位の単糖を含む。
【００４２】
一実施形態では、半合成バイオポリマーはＰＳＡ誘導体である。
【００４３】
他の実施形態では、半合成バイオポリマーは、チオエーテル結合を介してスクシンイミジル部分と結合している。
【００４４】
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである。
【００４５】
一実施形態では、Ｒ１はその出現ごとに独立に、メチル、エチル、プロピル、ブチルおよびヘキシルからなる群から選択される。
【００４６】
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、ただし、Ｒは水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである。
【００４７】
一実施形態では、Ｒ２は−Ｃ（Ｏ）ＮＨ−である。
【００４８】
他の実施形態では、Ｒ２は−ＮＨＣ（Ｏ）−である。
【００４９】
一実施形態では、式１の化合物は、１、２、３または４の位置の少なくとも１つでＹ基と結合している。
【００５０】
他の実施形態では、式１の化合物は、１、２、３または４の位置の少なくとも１つでＹ基と結合しており、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基とさらに結合している。
【００５１】
他の実施形態では、式１の化合物は、２または３の位置の少なくとも１つで少なくとも１つのＹ基と結合しており、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基とさらに結合している。
【００５２】
他の実施形態では、式１の化合物は、２および７の位置でＹ基と結合している。
【００５３】
他の実施形態では、式Ｉの化合物は、２および７の位置でＹ基およびＸ基とそれぞれ結合している。
【００５４】
他の実施形態では、式１の化合物は、
【００５５】
【化４】
【００５６】
【化５】
【００５７】
【化６】
【００５８】
【化７】
である。
【００５９】
他の実施形態では、本発明は式１の化合物の調製に関する。
【００６０】
Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）は、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニル−メトキシカルボニル）部分をベースとしたタンパク質の誘導体化のための加水分解性ＰＥＧ−リンカーの合成を記載している。ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（９−ヒドロキシメチル−２−（アミノ−３−マレイミド−プロピオネート）−７−スルホフルオレンＮ−ヒドロキシスクシンイミジルカーボネート）の合成が記載されている。以下の合成スキームは、ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ誘導体から出発した、式１の化合物を調製するための例としての合成ステップを示す。
【００６１】
【化８】
ただし、
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、ただし、Ｒは、独立に、水素またはＣ１〜Ｃ８−アルキルである。
【００６２】
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーであり、
ｎは０、１、２、３または４から選択される整数であり、
ｍは、１、２、３または４から選択される整数である。
【００６３】
ＨＳ−ＰＯＬＹＭＥＲは、
【００６４】
【化９】
などのチオール誘導体化された半合成バイオポリマーである。
【００６５】
式２の化合物は、アミンなどの置換のための１つまたは複数の基を含むタンパク質またはペプチド薬物と容易に反応させることができる。好ましいタンパク質またはペプチド薬物は、ＦＶＩＩＩ、ＶＷＦ、ＦＶＩＩａ、ＦＩＸなどの血液凝固因子である。
【００６６】
上記手順によって修飾されたタンパク質およびペプチド薬物は、著しく高いインビボでの循環性を有する。リンカーの加水分解性は、その未変性の形態でのタンパク質の放出によって、加水分解後に活性を再度得ることができるようにする。図１および図２に例を示す。タンパク質コンジュゲートの生物活性の回復を図３および図４に示す。
【００６７】
本発明を、以下の実施例によって説明するが、これらに限定されるものではない。
【実施例】
【００６８】
（実施例１）
末端ＳＨ基を含むＰＳＡの調製
ポリシアル酸（Ｓｉｇｍａ）をＮａＩＯ４で酸化し（Ｆｅｒｎａｎｄｅｓら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第１３４１巻、２６〜３４頁（１９９７年））、末端アルデヒド基を生成させた。次いで、ＷＯ０５／０１６９７３に記載されているようにして、ＮＨ４Ｃｌで還元的アミノ化ステップを実施し、シッフ塩基をＮａＣＮＢＨ３で還元して末端アミノ基を含むＰＳＡ−ＮＨ２を得た。続いて、メーカーの使用説明書に従って、２−イミノチオラン（Ｐｉｅｒｃｅ ２６１０１）と反応させて、末端ＳＨ基を含む改変されたＰＳＡを調製した。生成したＳＨ基のモル濃度はＥｌｌｍａｎｓ試薬を用いて判定した。さらに、同じ手順を、ＴｉｍＴｅｃ、ＬＬＣ、Ｎｅｗａｒｋ、ＵＳＡから得たＮ−アセチルノイラミン酸トリマーにＳＨ基を導入するために用いた。
【００６９】
（実施例２）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＶＩＩａのＰＳＡとのコンジュゲート
５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）中のｒＦＶＩＩａ（０．７ｍｇ／ｍｌ）の１５ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．５ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。次いで、実施例１に従って末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを調製した。ＰＳＡ誘導体をその混合物（濃度：１０ｍｇ ＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質）に加え、さらに２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。ＱＨｙｐｅｒＤ Ｆ ５０μｍ樹脂（ＢｉｏＳｅｐｒａ）およびＰｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ−１０カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ１０；ｈ＝１０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーにより、遊離試薬を、ｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩａを含む溶液をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、２０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．５）で洗浄した。次いでポリシアル化されたｒＦＶＩＩａを、溶出緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．１）で溶出させた。溶出液は０．０６ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍ；Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻：６０４〜１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲートと結合したＰＳＡの証拠が示された。コンジュゲート中のｒＦＶＩＩａの活性を放出させるために、４５０μｌの溶出液を５０μｌの１Ｍ ＴＲＩＳ緩衝液（ｐＨ８．３）に加え、ＦＶＩＩａ活性の放出を測定した（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）。結果を図２に示す。
【００７０】
（実施例３）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたトリマーＰＳＡのｒＦＶＩＩａとのコンジュゲート
５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）中のｒＦＶＩＩａ（０．７ｍｇ／ｍｌ）の１５ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．０７ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。次いで、実施例１に記載のようにしてトリマーＰＳＡ（ＴｉｍＴｅｃ、ＬＬＣ、Ｎｅｗａｒｋ、ＵＳＡ）を誘導体化して遊離ＳＨ基を導入した。トリマーＰＳＡ−ＳＨ誘導体を混合物（濃度：０．４３ｍｇトリマーＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質）に加え、さらに２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。ＱＨｙｐｅｒＤ Ｆ ５０μｍ樹脂（ＢｉｏＳｅｐｒａ）およびＰｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ−１０カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ１０；ｈ＝１０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーにより、遊離試薬をｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩａを含む溶液をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、２０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．５）で洗浄した。次いでポリシアル化されたｒＦＶＩＩａを溶出緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．１）で溶出させた。溶出液は０．０６ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻、６０４〜１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲート中での結合したＰＳＡの証拠が示された。コンジュゲート中のｒＦＶＩＩａの活性を放出させるために、４５０μｌの溶出液を５０μｌの１Ｍ ＴＲＩＳ緩衝液（ｐＨ８．３）に加え、ＦＶＩＩａ活性の放出を測定した（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）。結果を図１に示す。
【００７１】
（実施例４）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたヒト血清アルブミンのＰＳＡとのコンジュゲート
ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．２）中で二官能性リンカーＭａｌ−ＦＭＳＯＳＵリンカー（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）で１時間インキュベートする。次いで、過剰のリンカーを、同じ緩衝剤系を用いてＳｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５（ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）によるゲルろ過によって分離する。タンパク質を含む画分を収集し、ＰＳＡ−ＳＨ（実施例１に従って調製）を加える。混合物を室温で２時間インキュベートする。次いでコンジュゲートを、ＤＥＡＥ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＦＦ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた陰イオン交換クロマトグラフィーによって精製する。タンパク質−ＰＳＡコンジュゲートを、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液ｐＨ４．５で溶出させる。コンジュゲートを含む画分を集め、１０Ｋ膜を用いた限外ろ過により濃縮する。次いでその溶液を、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．２）に対してダイアフィルトレーションにかける（ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｅｄ）。
【００７２】
（実施例５）
正常ラットにおけるｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡ−コンジュゲートの薬物動態
ｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートを、０．０５ｍｇ／ｍｇの濃度のタンパク質のＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵを用いて、実施例２に従って調製した。８匹の正常ラット（４匹のオス、４匹のメス）に麻酔をかけ、緩衝液（１．３ｇ／Ｌグリシルグリシン、３ｇ／Ｌ塩化ナトリウム、３０ｇ／Ｌマンニトール、１．５ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２×２Ｈ２Ｏ、０．１ｇ／Ｌ Ｔｗｅｅｎ８０、ｐＨ５．５）中のｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡ−コンジュゲートを、１０ｍｌ／ｋｇ（１２００μｇタンパク質／ｋｇ）の体積用量で尾静脈に静脈注射を施した。１２００μｇタンパク質／ｋｇの用量の非修飾ｒＦＶＩＩａを、８匹の正常ラット（４匹のオス、４匹のメス）での対照として用いた。上記コンジュゲート（ｓｕｂｓｔａｎｃｅ）を注射した後、５分、１時間、２時間、４時間、７時間、１０時間および２４時間後に、尾動脈から血液試料を採取し、クエン酸血漿を調製し、さらなる分析用に冷凍した。
【００７３】
血漿でのＦＶＩＩａ活性を凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定し、ＦＶＩＩ抗原をＥＬＩＳＡ（ポリクローナル抗ヒトＦＶＩＩ抗体）で判定した。結果を統計的に評価した。ＦＶＩＩａ凝固活性について、用量調節した曲線下面積（ＡＵＣ）は、非修飾ｒＦＶＩＩａでは０．０１４であり、ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート（０〜無限大）では０．０１５に増大した。終末相半減期は２．３時間から４．４時間へ延長され、平均滞留時間（ＭＲＴ）は１．４時間から２．４時間へ延長された。抗原について、用量調節したＡＵＣ（０〜無限大）は０．０１０（非修飾ｒＦＶＩＩａ）から０．０１４（ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート）へ増大し、終末相半減期は１．４時間から２．３時間へ延長され、ＭＲＴは１．５時間から２．２時間へ延長された。すべての計算を、統計プログラムを用いて実施した（プログラムＲ：Ａ ｌａｎｇｕａｇｅ ａｎｄ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ｆｏｒ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ． Ｒ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ、Ｖｉｅｎｎａ、Ａｕｓｔｒｉａ、ＩＳＢＮ ３−９０００５１−０７−０、ＵＲＬ ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇ）。薬物動態を図３および図４に示す。
【００７４】
（実施例６）
正常ラットにおけるｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡ−コンジュゲートの薬物動態
ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートを、０．０５ｍｇ／ｍｇの濃度のタンパク質のＭＡＬＦＭＳ−ＯＳＵを用いて、実施例３に従って調製した。６匹の正常ラット（３匹のオス、３匹のメス）に麻酔をかけ、緩衝液（１．３ｇ／Ｌグリシルグリシン、３ｇ／Ｌ塩化ナトリウム、３０ｇ／Ｌマンニトール、１．５ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２×２Ｈ２Ｏ、０．１ｇ／Ｌ Ｔｗｅｅｎ８０、ｐＨ５．５）中のｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡ−コンジュゲートを、１０ｍｌ／ｋｇ（１２００μｇタンパク質／ｋｇ）の体積用量で尾静脈に静脈注射を施した。１２００μｇタンパク質／ｋｇの用量の非修飾ｒＦＶＩＩａを、６匹の正常ラット（３匹のオス、３匹のメス）での対照として用いた。上記コンジュゲートを注射した後、５分、１時間、２時間、４時間、７時間、１０時間および２４時間後に、尾動脈から血液試料を採取し、クエン酸血漿を調製し、さらなる分析用に冷凍した。
【００７５】
血漿でのＦＶＩＩａ活性を凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定し、排出曲線を作成した。ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートの改善された薬物動態を図５に示す。
【００７６】
（実施例７）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＩＸのＰＳＡとのコンジュゲート
２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）中の組換えＦＩＸ（８ｍｇ／ｍｌ）の０．６ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．０７ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを実施例１に従って調製した。ＰＳＡ誘導体を混合物（濃度：３２ｍｇＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質−１００倍モル過剰）に加え、さらに室温で２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。事前充填型ブチルセファロースカラム（ＨｉＴｒａｐブチルＦＦ ５ｍｌ、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた疎水性相互作用クロマトグラフィーにより遊離試薬をｒＦＩＸ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。５Ｍ ＮａＣｌ（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）を含む緩衝液を、ＰＳＡ−ｒＦＩＸを含む溶液に加えて３Ｍ ＮａＣｌの最終濃度を得た。この混合物をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、３Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）で洗浄し、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２を含む５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）でｒＦＩＸ−ＰＳＡコンジュゲートを溶出させた。コンジュゲートを溶出させた後、ｐＨをｐＨ６．９に調節した。ＢＣＡアッセイで測定すると、溶出液は０．２４ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍ、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻、６０４〜６１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲート中での結合したＰＳＡの証拠が示された。最終ステップにおいて、溶出液を、３０ｋＤ膜（再生セルロース／Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を用いた限外ろ過／膜分離法（ＵＦ／ＤＦ）により、２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ７．４に対して１０倍に濃縮した。
【００７７】
（実施例８）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＶＩＩＩのＰＳＡとのコンジュゲート
ｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートを調製するために、２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）中のＡｄｖａｔｅの製造プロセスにより得られた組換えＦＶＩＩＩ（４．５ｍｇ／ｍｌ）の６ｍｌの溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．３１５ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを実施例１に従って調製した。ＰＳＡ誘導体を混合物（濃度：２７．８ｍｇＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質−４５０倍モル過剰）に加え、さらに室温で２時間インキュベートした。０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。事前充填型ブチルセファロースカラム（ＨｉＴｒａｐブチルＦＦ ５ｍｌ、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた疎水性相互作用クロマトグラフィーにより遊離試薬をｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。５Ｍ ＮａＣｌ（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）を含む緩衝液を、ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩＩを含む溶液に加えて３Ｍ ＮａＣｌの最終濃度を得た。この混合物をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、３Ｍ ＮａＣｌ、０．１％Ｔｗｅｅｎ８０、５ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）で洗浄し、ｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートを、クエン酸緩衝液（ｐＨ７．４）（１３．６ｍＭ Ｎａ３クエン酸、２０ｍＭ ＣａＣｌ２、２０ｍＭヒスチジン、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０）で溶出させた。コンジュゲートを溶出させた後、ｐＨをｐＨ６．９に調節した。溶出液は２．５ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでいた（ＢＣＡアッセイ）。
【技術分野】
【０００１】
（関連出願への相互参照）
本願は、２００７年６月２６日に出願された米国仮特許出願第６０／９３７，１６９号、および２００８年４月７日に出願された米国仮特許出願第６１／１２３，２６３号への優先権の利益を主張し、これらの米国仮特許出願の双方の全体は、本明細書中に参考として援用される。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、少なくとも１つの半合成ポリマーと結合している加水分解性リンカーの作製に関する。これらの加水分解性リンカーは、タンパク質およびペプチド系の薬物のインビボでの循環を延長するのに有用である。
【背景技術】
【０００３】
（発明の背景）
ほとんどのタンパク質またはペプチド薬物は寿命が短く、しばしば、インビボで短い循環半減期を有する。タンパク質またはペプチド薬物が経口で吸収されないことを考慮すると、循環系において治療活性のある薬物を長く保持することは、臨床的重要性の点で明らかに望ましい特徴である。
【０００４】
タンパク質またはペプチド薬物の臨床的特性を改善するための好ましい方策は、その薬物を、ポリマー、例えばポリアルキレンオキシド（非特許文献１）、またはポリシアル酸（非特許文献２）、デキストランもしくはヒドロキシルアルキルスターチなどの多糖で修飾することである。（本明細書で引用したすべての文献を参照により本明細書に組み込む。）
しばらくの間、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）を用いた修飾が知られていた。しかし、ＰＥＧを用いたタンパク質の修飾はしばしば、タンパク質の活性の低下をもたらす。
【０００５】
コロミン酸（ＣＡ）として知られているポリシアル酸（ＰＳＡ）は、天然由来の環状多糖である。これは、α（２→８）ケトシド結合でのＮ−アセチルノイラミン酸のホモポリマーであり、その非還元末端に隣接ジオール基を含む。ＰＳＡは負の電荷を有しており、人体の天然成分である。これは、所定の物理的特性でバクテリアから簡単に大量生産することができる（特許文献１）。ポリシアル酸と化学的にも免疫学的にも同じなので、人体内で、バクテリアのポリシアル酸は、タンパク質と結合していても非免疫原性である。他のポリマー（例えば、ＰＥＧ）とは異なり、ポリシアル酸は生分解性である。
【０００６】
しかし、ＰＳＡなどの酸性単糖とコンジュゲートしたポリペプチドを含む治療用化合物はこれまで市販されていない。
【０００７】
１〜４個のシアル酸単位しかもたない短いＰＳＡポリマー鎖も合成されている（非特許文献３；非特許文献４）。
【０００８】
ＰＥＧ部分を含むいくつかの加水分解性または分解性リンカーが提案されている。
【０００９】
特許文献２は、弱い、加水分解的に不安定な結合を有するＰＥＧおよび関連ポリマー誘導体を記載している。
【００１０】
特許文献３は、ビス−Ｎ−２−ヒドロキシエチルグリシン基（ビシン）をベースとした放出可能なＰＥＧ−リンカーを記載している。
【００１１】
特許文献４および特許文献５は、加水分解性フルオレンをベースとしたＰＥＧ構造体を記載している。
【００１２】
これらのリンカーをタンパク質系薬物とコンジュゲートした後は、タンパク質−ポリマー複合体をプロドラッグとみなすことができ、制御放出機序により、タンパク質の活性をコンジュゲートから放出することができる。この考え方を用いて、薬物動態特性が改善された薬物を得ることができる（非特許文献５）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】米国特許第５，８４６，９５１号明細書
【特許文献２】米国特許第６，５１５，１００号明細書
【特許文献３】米国特許第７，１２２，１８９号明細書
【特許文献４】国際公開第０４／０８９２８０号パンフレット
【特許文献５】国際公開第０６／１３８５７２号パンフレット
【非特許文献】
【００１４】
【非特許文献１】Ｒｏｂｅｒｔｓら、Ａｄｖａｎ Ｄｒｕｇ Ｒｅｖ．第５４巻、４５９〜４７６頁（２００２年）
【非特許文献２】Ｆｅｒｎａｎｄｅｓら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第１３４１巻、２６〜３４頁（１９９７年）
【非特許文献３】Ｋａｎｇら、Ｃｈｅｍ Ｃｏｍｍｕｎ．、２２７〜２２８頁（２０００年）
【非特許文献４】Ｒｅｓｓら、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、第１巻、３１〜４６頁（２００４年）
【非特許文献５】Ｚｈａｏら、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．第１７巻、３４１〜３５１頁（２００６年）
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明は、インビボでの循環などのインビボでの特性を改善するために、加水分解性リンカーがタンパク質またはペプチド薬物とコンジュゲートされている、少なくとも１つの半合成バイオポリマーと結合した加水分解性リンカーを提供する。
【００１６】
本発明は、一般式１の化合物を提供する。
【００１７】
【化１】
ただし、
Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合している。
【００１８】
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基である。
【００１９】
Ｙ基と結合していることに加えて、式Ｉの化合物は任意選択で、利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基と結合していてもよい。
【００２０】
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３である。
【００２１】
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から選択される。
【００２２】
Ｒ４はポリマーである。
【図面の簡単な説明】
【００２３】
【図１】ｐＨ８．３におけるインビトロでのＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートの加水分解を示す図である。ＦＶＩＩａ活性の放出はＳｔａｃｌｏｔアッセイ（Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定した。
【図２】ｐＨ８．３におけるインビトロでのＦＶＩＩａ−トリマーＰＳＡコンジュゲートの加水分解を示す図である。ＦＶＩＩａ活性の放出はＳｔａｃｌｏｔアッセイ（Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定した。
【図３】凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）で測定した血漿中でのＦＶ１１ａ活性を示す図である。ＦＶＩＩａ凝固活性について、用量調節した曲線下面積（ＡＵＣ）は、非修飾ｒＦＶｉｌａでは０．０１４であり、ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート（０〜無限大）では０．０１５に増大した。終末相半減期は２．３時間から４．４時間へ延長され、平均滞留時間（ＭＲＴ）は１．４時間から２．４時間へ延長された。
【図４】ポリクローナル抗ヒトＦＶＩＩ抗体を用いたＥＬＩＳＡによるＦＶＩＩａ抗原の測定結果を示す図である。抗原について、用量調節したＡＵＣ（０〜無限大）は０．０１０（非修飾ｒＦＶＩＩａ）から０．０１４（ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート）へ増大し、終末相半減期は１．４時間から２．３時間へ延長され、ＭＲＴ１．５時間から２．２時間へ延長された。
【図５】凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）で測定した血漿中でのＦＶＩＩａ活性を示す図である。ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートの薬物動態は、未変性（ｎａｔｉｖｅ）ｒＦＶＩＩａ（−△−）と比較して改善されている（−○−）。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
本発明は、少なくとも１つの半合成バイオポリマーと結合した加水分解性リンカーであって、インビボでの循環などのインビボでの特性を改善するために、タンパク質またはペプチド薬物とさらにコンジュゲートさせることができる加水分解性リンカーを提供する。タンパク質またはペプチド薬物の活性を、制御放出機序により、コンジュゲートから放出することができる。
【００２５】
以下の段落は、一般的定義、および本発明による化合物を作り上げる様々な化学的部分の定義を提供するものであり、別に明確に示された定義により、より広い定義が提供されていない限り、本明細書および特許請求の範囲を通して一様に当てはまるものとする。
【００２６】
「Ｃ１〜Ｃ８−アルキル」は、１〜８個の炭素原子を有する一価アルキル基を指す。この用語の例は、メチル、エチル、プロピル、ブチル、ヘキシルなどの基である。直鎖状および分岐状アルキルが含まれる。
【００２７】
「脱離基」は、コンジュゲートを形成するタンパク質またはペプチド薬物上の求核部（ｎｕｃｌｅｏｐｈｉｌｅ）と反応することができる基を指す。この用語の例には、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル、Ｎ−ヒドロキシベンゾトリアゾリル、ハロゲン、Ｎ−ヒドロキシフタリミジル、ｐ−ニトロフェノキシ、イミダゾリル、チアゾリジニルチオン、Ｏ−アシル尿素などの基であり、また当業者には他の適切な脱離基も明らかであろう。したがって、本発明のためには、タンパク質またはペプチド薬物は、アミンなどの置換のための１つまたは複数の基を含む。タンパク質またはペプチド薬物は、血漿タンパク質、すなわちＦＶＩＩＩ、ＶＷＦ、ＦＶＩＩａおよびＦＩＸなどの血液凝固因子である。
【００２８】
「半合成バイオポリマー」は、天然由来のポリマーをベースとした人造有機ポリマーを指す。半合成バイオポリマーを反応基で官能化して、これらの官能化された半合成バイオポリマーを他の化合物にコンジュゲートさせることもできる。この「半合成バイオポリマー」という用語の例は、炭水化物などの直鎖状または分岐状ポリマー、具体的には例えば多糖類である。多糖類の例は、ＰＳＡ（ポリシアル酸）およびＨＡＳ（ヒドロキシアルキルスターチ）である。
【００２９】
「加水分解性」リンカーは、その中でタンパク質が、未変性の形態で放出されるリンカー系を指す。タンパク質は放出され、リンカーは完全に切断される。加水分解性のリンカーの同義語は「分解性」または「放出性」のリンカーである。
【００３０】
本発明は、一般式１の化合物を提供する。
【００３１】
【化２】
ただし、Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合している。
【００３２】
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基である。
【００３３】
Ｙ基と結合していることに加えて、式Ｉの化合物は、利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基と任意選択で結合することができる。
【００３４】
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３である。
【００３５】
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から選択される。
【００３６】
Ｒ４はポリマーである。その例は、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）などの親水性ポリマーである。
【００３７】
一実施形態では、ＺがＮ−スクシンイミジルエステルであり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つがＹ基と結合しており、Ｙが、
【００３８】
【化３】
（式中、ＰＯＬＹＭＥＲは、好ましくは１，０００Ｄａ〜３００，０００Ｄａの分子量を有する半合成バイオポリマーである）
である式１の化合物に関する。
【００３９】
一実施形態では、分子量は５，０００〜２５，０００、好ましくは５，０００〜１０，０００である。
【００４０】
他の実施形態では、前記半合成バイオポリマーは炭水化物である。好ましくは少なくとも３単位の単糖を含む多糖が好ましい。
【００４１】
一実施形態では、前記多糖は２〜２００単位、好ましくは１０〜１００単位の単糖を含む。
【００４２】
一実施形態では、半合成バイオポリマーはＰＳＡ誘導体である。
【００４３】
他の実施形態では、半合成バイオポリマーは、チオエーテル結合を介してスクシンイミジル部分と結合している。
【００４４】
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである。
【００４５】
一実施形態では、Ｒ１はその出現ごとに独立に、メチル、エチル、プロピル、ブチルおよびヘキシルからなる群から選択される。
【００４６】
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、ただし、Ｒは水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである。
【００４７】
一実施形態では、Ｒ２は−Ｃ（Ｏ）ＮＨ−である。
【００４８】
他の実施形態では、Ｒ２は−ＮＨＣ（Ｏ）−である。
【００４９】
一実施形態では、式１の化合物は、１、２、３または４の位置の少なくとも１つでＹ基と結合している。
【００５０】
他の実施形態では、式１の化合物は、１、２、３または４の位置の少なくとも１つでＹ基と結合しており、５、６、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基とさらに結合している。
【００５１】
他の実施形態では、式１の化合物は、２または３の位置の少なくとも１つで少なくとも１つのＹ基と結合しており、７または８の位置の少なくとも１つでＸ基とさらに結合している。
【００５２】
他の実施形態では、式１の化合物は、２および７の位置でＹ基と結合している。
【００５３】
他の実施形態では、式Ｉの化合物は、２および７の位置でＹ基およびＸ基とそれぞれ結合している。
【００５４】
他の実施形態では、式１の化合物は、
【００５５】
【化４】
【００５６】
【化５】
【００５７】
【化６】
【００５８】
【化７】
である。
【００５９】
他の実施形態では、本発明は式１の化合物の調製に関する。
【００６０】
Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）は、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニル−メトキシカルボニル）部分をベースとしたタンパク質の誘導体化のための加水分解性ＰＥＧ−リンカーの合成を記載している。ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（９−ヒドロキシメチル−２−（アミノ−３−マレイミド−プロピオネート）−７−スルホフルオレンＮ−ヒドロキシスクシンイミジルカーボネート）の合成が記載されている。以下の合成スキームは、ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ誘導体から出発した、式１の化合物を調製するための例としての合成ステップを示す。
【００６１】
【化８】
ただし、
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、ただし、Ｒは、独立に、水素またはＣ１〜Ｃ８−アルキルである。
【００６２】
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーであり、
ｎは０、１、２、３または４から選択される整数であり、
ｍは、１、２、３または４から選択される整数である。
【００６３】
ＨＳ−ＰＯＬＹＭＥＲは、
【００６４】
【化９】
などのチオール誘導体化された半合成バイオポリマーである。
【００６５】
式２の化合物は、アミンなどの置換のための１つまたは複数の基を含むタンパク質またはペプチド薬物と容易に反応させることができる。好ましいタンパク質またはペプチド薬物は、ＦＶＩＩＩ、ＶＷＦ、ＦＶＩＩａ、ＦＩＸなどの血液凝固因子である。
【００６６】
上記手順によって修飾されたタンパク質およびペプチド薬物は、著しく高いインビボでの循環性を有する。リンカーの加水分解性は、その未変性の形態でのタンパク質の放出によって、加水分解後に活性を再度得ることができるようにする。図１および図２に例を示す。タンパク質コンジュゲートの生物活性の回復を図３および図４に示す。
【００６７】
本発明を、以下の実施例によって説明するが、これらに限定されるものではない。
【実施例】
【００６８】
（実施例１）
末端ＳＨ基を含むＰＳＡの調製
ポリシアル酸（Ｓｉｇｍａ）をＮａＩＯ４で酸化し（Ｆｅｒｎａｎｄｅｓら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第１３４１巻、２６〜３４頁（１９９７年））、末端アルデヒド基を生成させた。次いで、ＷＯ０５／０１６９７３に記載されているようにして、ＮＨ４Ｃｌで還元的アミノ化ステップを実施し、シッフ塩基をＮａＣＮＢＨ３で還元して末端アミノ基を含むＰＳＡ−ＮＨ２を得た。続いて、メーカーの使用説明書に従って、２−イミノチオラン（Ｐｉｅｒｃｅ ２６１０１）と反応させて、末端ＳＨ基を含む改変されたＰＳＡを調製した。生成したＳＨ基のモル濃度はＥｌｌｍａｎｓ試薬を用いて判定した。さらに、同じ手順を、ＴｉｍＴｅｃ、ＬＬＣ、Ｎｅｗａｒｋ、ＵＳＡから得たＮ−アセチルノイラミン酸トリマーにＳＨ基を導入するために用いた。
【００６９】
（実施例２）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＶＩＩａのＰＳＡとのコンジュゲート
５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）中のｒＦＶＩＩａ（０．７ｍｇ／ｍｌ）の１５ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．５ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。次いで、実施例１に従って末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを調製した。ＰＳＡ誘導体をその混合物（濃度：１０ｍｇ ＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質）に加え、さらに２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。ＱＨｙｐｅｒＤ Ｆ ５０μｍ樹脂（ＢｉｏＳｅｐｒａ）およびＰｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ−１０カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ１０；ｈ＝１０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーにより、遊離試薬を、ｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩａを含む溶液をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、２０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．５）で洗浄した。次いでポリシアル化されたｒＦＶＩＩａを、溶出緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．１）で溶出させた。溶出液は０．０６ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍ；Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻：６０４〜１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲートと結合したＰＳＡの証拠が示された。コンジュゲート中のｒＦＶＩＩａの活性を放出させるために、４５０μｌの溶出液を５０μｌの１Ｍ ＴＲＩＳ緩衝液（ｐＨ８．３）に加え、ＦＶＩＩａ活性の放出を測定した（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）。結果を図２に示す。
【００７０】
（実施例３）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたトリマーＰＳＡのｒＦＶＩＩａとのコンジュゲート
５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）中のｒＦＶＩＩａ（０．７ｍｇ／ｍｌ）の１５ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．０７ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。次いで、実施例１に記載のようにしてトリマーＰＳＡ（ＴｉｍＴｅｃ、ＬＬＣ、Ｎｅｗａｒｋ、ＵＳＡ）を誘導体化して遊離ＳＨ基を導入した。トリマーＰＳＡ−ＳＨ誘導体を混合物（濃度：０．４３ｍｇトリマーＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質）に加え、さらに２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。ＱＨｙｐｅｒＤ Ｆ ５０μｍ樹脂（ＢｉｏＳｅｐｒａ）およびＰｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ−１０カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＸＫ１０；ｈ＝１０ｃｍ）を用いてイオン交換クロマトグラフィーにより、遊離試薬をｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩａを含む溶液をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、２０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．５）で洗浄した。次いでポリシアル化されたｒＦＶＩＩａを溶出緩衝液（２０ｍＭクエン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ６．１）で溶出させた。溶出液は０．０６ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍら、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻、６０４〜１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲート中での結合したＰＳＡの証拠が示された。コンジュゲート中のｒＦＶＩＩａの活性を放出させるために、４５０μｌの溶出液を５０μｌの１Ｍ ＴＲＩＳ緩衝液（ｐＨ８．３）に加え、ＦＶＩＩａ活性の放出を測定した（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）。結果を図１に示す。
【００７１】
（実施例４）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたヒト血清アルブミンのＰＳＡとのコンジュゲート
ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．２）中で二官能性リンカーＭａｌ−ＦＭＳＯＳＵリンカー（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）で１時間インキュベートする。次いで、過剰のリンカーを、同じ緩衝剤系を用いてＳｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５（ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）によるゲルろ過によって分離する。タンパク質を含む画分を収集し、ＰＳＡ−ＳＨ（実施例１に従って調製）を加える。混合物を室温で２時間インキュベートする。次いでコンジュゲートを、ＤＥＡＥ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＦＦ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた陰イオン交換クロマトグラフィーによって精製する。タンパク質−ＰＳＡコンジュゲートを、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液ｐＨ４．５で溶出させる。コンジュゲートを含む画分を集め、１０Ｋ膜を用いた限外ろ過により濃縮する。次いでその溶液を、２５ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．２）に対してダイアフィルトレーションにかける（ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｅｄ）。
【００７２】
（実施例５）
正常ラットにおけるｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡ−コンジュゲートの薬物動態
ｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡコンジュゲートを、０．０５ｍｇ／ｍｇの濃度のタンパク質のＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵを用いて、実施例２に従って調製した。８匹の正常ラット（４匹のオス、４匹のメス）に麻酔をかけ、緩衝液（１．３ｇ／Ｌグリシルグリシン、３ｇ／Ｌ塩化ナトリウム、３０ｇ／Ｌマンニトール、１．５ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２×２Ｈ２Ｏ、０．１ｇ／Ｌ Ｔｗｅｅｎ８０、ｐＨ５．５）中のｒＦＶＩＩａ−ＰＳＡ−コンジュゲートを、１０ｍｌ／ｋｇ（１２００μｇタンパク質／ｋｇ）の体積用量で尾静脈に静脈注射を施した。１２００μｇタンパク質／ｋｇの用量の非修飾ｒＦＶＩＩａを、８匹の正常ラット（４匹のオス、４匹のメス）での対照として用いた。上記コンジュゲート（ｓｕｂｓｔａｎｃｅ）を注射した後、５分、１時間、２時間、４時間、７時間、１０時間および２４時間後に、尾動脈から血液試料を採取し、クエン酸血漿を調製し、さらなる分析用に冷凍した。
【００７３】
血漿でのＦＶＩＩａ活性を凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定し、ＦＶＩＩ抗原をＥＬＩＳＡ（ポリクローナル抗ヒトＦＶＩＩ抗体）で判定した。結果を統計的に評価した。ＦＶＩＩａ凝固活性について、用量調節した曲線下面積（ＡＵＣ）は、非修飾ｒＦＶＩＩａでは０．０１４であり、ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート（０〜無限大）では０．０１５に増大した。終末相半減期は２．３時間から４．４時間へ延長され、平均滞留時間（ＭＲＴ）は１．４時間から２．４時間へ延長された。抗原について、用量調節したＡＵＣ（０〜無限大）は０．０１０（非修飾ｒＦＶＩＩａ）から０．０１４（ｒＦＶＩＩａ−コンジュゲート）へ増大し、終末相半減期は１．４時間から２．３時間へ延長され、ＭＲＴは１．５時間から２．２時間へ延長された。すべての計算を、統計プログラムを用いて実施した（プログラムＲ：Ａ ｌａｎｇｕａｇｅ ａｎｄ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ｆｏｒ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ． Ｒ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ、Ｖｉｅｎｎａ、Ａｕｓｔｒｉａ、ＩＳＢＮ ３−９０００５１−０７−０、ＵＲＬ ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇ）。薬物動態を図３および図４に示す。
【００７４】
（実施例６）
正常ラットにおけるｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡ−コンジュゲートの薬物動態
ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートを、０．０５ｍｇ／ｍｇの濃度のタンパク質のＭＡＬＦＭＳ−ＯＳＵを用いて、実施例３に従って調製した。６匹の正常ラット（３匹のオス、３匹のメス）に麻酔をかけ、緩衝液（１．３ｇ／Ｌグリシルグリシン、３ｇ／Ｌ塩化ナトリウム、３０ｇ／Ｌマンニトール、１．５ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２×２Ｈ２Ｏ、０．１ｇ／Ｌ Ｔｗｅｅｎ８０、ｐＨ５．５）中のｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡ−コンジュゲートを、１０ｍｌ／ｋｇ（１２００μｇタンパク質／ｋｇ）の体積用量で尾静脈に静脈注射を施した。１２００μｇタンパク質／ｋｇの用量の非修飾ｒＦＶＩＩａを、６匹の正常ラット（３匹のオス、３匹のメス）での対照として用いた。上記コンジュゲートを注射した後、５分、１時間、２時間、４時間、７時間、１０時間および２４時間後に、尾動脈から血液試料を採取し、クエン酸血漿を調製し、さらなる分析用に冷凍した。
【００７５】
血漿でのＦＶＩＩａ活性を凝固アッセイ（Ｓｔａｃｌｏｔ、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ Ｓｔａｇｏ、Ａｓｎｉｅｒｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により測定し、排出曲線を作成した。ｒＦＶＩＩａ−トリマー−ＰＳＡコンジュゲートの改善された薬物動態を図５に示す。
【００７６】
（実施例７）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＩＸのＰＳＡとのコンジュゲート
２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）中の組換えＦＩＸ（８ｍｇ／ｍｌ）の０．６ｍｌ溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．０７ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを実施例１に従って調製した。ＰＳＡ誘導体を混合物（濃度：３２ｍｇＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質−１００倍モル過剰）に加え、さらに室温で２時間インキュベートした。次いで、０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。事前充填型ブチルセファロースカラム（ＨｉＴｒａｐブチルＦＦ ５ｍｌ、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた疎水性相互作用クロマトグラフィーにより遊離試薬をｒＦＩＸ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。５Ｍ ＮａＣｌ（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）を含む緩衝液を、ＰＳＡ−ｒＦＩＸを含む溶液に加えて３Ｍ ＮａＣｌの最終濃度を得た。この混合物をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、３Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）で洗浄し、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２を含む５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）でｒＦＩＸ−ＰＳＡコンジュゲートを溶出させた。コンジュゲートを溶出させた後、ｐＨをｐＨ６．９に調節した。ＢＣＡアッセイで測定すると、溶出液は０．２４ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでおり、レゾルシノールアッセイ（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍ、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ、第２４巻、６０４〜６１１頁（１９５７年））によって、コンジュゲート中での結合したＰＳＡの証拠が示された。最終ステップにおいて、溶出液を、３０ｋＤ膜（再生セルロース／Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を用いた限外ろ過／膜分離法（ＵＦ／ＤＦ）により、２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ７．４に対して１０倍に濃縮した。
【００７７】
（実施例８）
ＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵリンカーを用いたｒＦＶＩＩＩのＰＳＡとのコンジュゲート
ｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートを調製するために、２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．４）中のＡｄｖａｔｅの製造プロセスにより得られた組換えＦＶＩＩＩ（４．５ｍｇ／ｍｌ）の６ｍｌの溶液に、二官能性リンカーＭＡＬ−ＦＭＳ−ＯＳＵ（Ｔｓｕｂｅｒｙら、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．、第２７９巻、３８１１８〜３８１２４頁（２００４年）によって概要が示されているようにして調製した）を加え（濃度：０．３１５ｍｇ／ｍｇタンパク質）、室温で３０分間インキュベートした。末端ＳＨ基を含む誘導体化ＰＳＡを実施例１に従って調製した。ＰＳＡ誘導体を混合物（濃度：２７．８ｍｇＰＳＡ−ＳＨ／ｍｇタンパク質−４５０倍モル過剰）に加え、さらに室温で２時間インキュベートした。０．１Ｍグリシン（最終濃度１０ｍＭ）および５ｍＭシステイン（終末濃度０．５ｍＭ）の水溶液を加えて反応を停止させた。事前充填型ブチルセファロースカラム（ＨｉＴｒａｐブチルＦＦ ５ｍｌ、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いた疎水性相互作用クロマトグラフィーにより遊離試薬をｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートから分離した。５Ｍ ＮａＣｌ（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０、６．７ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）を含む緩衝液を、ＰＳＡ−ｒＦＶＩＩＩを含む溶液に加えて３Ｍ ＮａＣｌの最終濃度を得た。この混合物をそのカラムにかけ、続いてこれを１０ＣＶ平衡緩衝液（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液、３Ｍ ＮａＣｌ、０．１％Ｔｗｅｅｎ８０、５ｍＭ ＣａＣｌ２、ｐＨ６．９）で洗浄し、ｒＦＶＩＩＩ−ＰＳＡコンジュゲートを、クエン酸緩衝液（ｐＨ７．４）（１３．６ｍＭ Ｎａ３クエン酸、２０ｍＭ ＣａＣｌ２、２０ｍＭヒスチジン、０．０１％Ｔｗｅｅｎ８０）で溶出させた。コンジュゲートを溶出させた後、ｐＨをｐＨ６．９に調節した。溶出液は２．５ｍｇ／ｍｌのタンパク質を含んでいた（ＢＣＡアッセイ）。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
式Ｉの化合物
【化１０】
（式中、
Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合しており、
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基であり、
利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つは任意選択でＸ基と結合しており、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーである）。
【請求項２】
ＺがＮ−スクシンイミジルエステルであり、
Ｙが、
【化１１】
であり、
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである、
請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
Ｒ２が−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−またはＮＲＣ（Ｏ）−であり、ここで、Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである、請求項２に記載の化合物。
【請求項４】
前記ＰＯＬＹＭＥＲがチオエーテル結合を介して結合している、請求項３に記載の化合物。
【請求項５】
前記半合成バイオポリマーが炭水化物である、請求項１から４のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項６】
前記半合成バイオポリマーが多糖である、請求項５に記載の化合物。
【請求項７】
前記多糖がポリシアル酸（ＰＳＡ）である、請求項６に記載の化合物。
【請求項８】
前記多糖が少なくとも３単位の単糖を含む、請求項６に記載の化合物。
【請求項９】
以下のＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、Ｖ、ＶＩ、ＶＩＩ、ＶＩＩＩ、ＩＸ、ＸおよびＸＩ
【化１２】
【化１３】
【化１４】
【化１５】
からなる群から選択される、請求項１に記載の化合物。
【請求項１０】
請求項１に記載の化合物の調製方法であって、中間化合物をカップリング反応にかけるステップを含み、ここで
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーであり、
ｎは、０、１、２、３または４から選択される整数であり、
ｍは、１、２、３または４から選択される整数である、
方法。
【請求項１１】
ＨＳ−ＰＯＬＹＭＥＲが
【化１６】
である、請求項８に記載の方法。
【請求項１２】
Ｒ２が、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−または−ＮＲＣ（Ｏ）−のいずれかであり、ここで、Ｒは、独立に、水素またはＣ１〜Ｃ８−アルキルである、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
前記化合物が、置換のための１つまたは複数の基を含むタンパク質またはペプチド薬物とコンジュゲートしている、請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
請求項１から７のいずれか一項に記載の化合物およびタンパク質またはペプチド薬物を含むコンジュゲート。
【請求項１】
式Ｉの化合物
【化１０】
（式中、
Ｚは脱離基であり、１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つはＹ基と結合しており、
Ｙは、Ｎ−スクシンイミジル部分と結合した半合成バイオポリマーを含む基であり、
利用可能な１、２、３、４、５、６、７または８の位置の少なくとも１つは任意選択でＸ基と結合しており、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーである）。
【請求項２】
ＺがＮ−スクシンイミジルエステルであり、
Ｙが、
【化１１】
であり、
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである、
請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
Ｒ２が−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−またはＮＲＣ（Ｏ）−であり、ここで、Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルである、請求項２に記載の化合物。
【請求項４】
前記ＰＯＬＹＭＥＲがチオエーテル結合を介して結合している、請求項３に記載の化合物。
【請求項５】
前記半合成バイオポリマーが炭水化物である、請求項１から４のいずれか一項に記載の化合物。
【請求項６】
前記半合成バイオポリマーが多糖である、請求項５に記載の化合物。
【請求項７】
前記多糖がポリシアル酸（ＰＳＡ）である、請求項６に記載の化合物。
【請求項８】
前記多糖が少なくとも３単位の単糖を含む、請求項６に記載の化合物。
【請求項９】
以下のＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、Ｖ、ＶＩ、ＶＩＩ、ＶＩＩＩ、ＩＸ、ＸおよびＸＩ
【化１２】
【化１３】
【化１４】
【化１５】
からなる群から選択される、請求項１に記載の化合物。
【請求項１０】
請求項１に記載の化合物の調製方法であって、中間化合物をカップリング反応にかけるステップを含み、ここで
ＰＯＬＹＭＥＲは半合成バイオポリマーであり、
Ｒ１はその出現ごとに独立に（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｒ２は、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲ−、−ＮＲＣ（Ｏ）−および−ＮＲＣ（Ｏ）−（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−ＮＲからなる群から独立に選択され、
Ｒは、独立に、水素または（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルであり、
Ｘは−ＳＯ３−Ｒ３であり、
Ｒ３は、水素、（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキルおよび（Ｃ１〜Ｃ８）−アルキル−Ｒ４からなる群から独立に選択され、
Ｒ４はポリマーであり、
ｎは、０、１、２、３または４から選択される整数であり、
ｍは、１、２、３または４から選択される整数である、
方法。
【請求項１１】
ＨＳ−ＰＯＬＹＭＥＲが
【化１６】
である、請求項８に記載の方法。
【請求項１２】
Ｒ２が、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−または−ＮＲＣ（Ｏ）−のいずれかであり、ここで、Ｒは、独立に、水素またはＣ１〜Ｃ８−アルキルである、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
前記化合物が、置換のための１つまたは複数の基を含むタンパク質またはペプチド薬物とコンジュゲートしている、請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
請求項１から７のいずれか一項に記載の化合物およびタンパク質またはペプチド薬物を含むコンジュゲート。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【公表番号】特表２０１０−５３１３７１（Ｐ２０１０−５３１３７１Ａ）
【公表日】平成２２年９月２４日（２０１０．９．２４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−５１３７４９（Ｐ２０１０−５１３７４９）
【出願日】平成２０年６月２５日（２００８．６．２５）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２００８／００５１５５
【国際公開番号】ＷＯ２００９／０００５２２
【国際公開日】平成２０年１２月３１日（２００８．１２．３１）
【出願人】（５９１０１３２２９）バクスター・インターナショナル・インコーポレイテッド (448)
【氏名又は名称原語表記】ＢＡＸＴＥＲ ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ ＩＮＣＯＲＰ０ＲＡＴＥＤ
【出願人】（５０１４５３１８９）バクスター・ヘルスケヤー・ソシエテ・アノニム (289)
【氏名又は名称原語表記】ＢＡＸＴＥＲ ＨＥＡＬＴＨＣＡＲＥ Ｓ．Ａ．
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２２年９月２４日（２０１０．９．２４）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年６月２５日（２００８．６．２５）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２００８／００５１５５
【国際公開番号】ＷＯ２００９／０００５２２
【国際公開日】平成２０年１２月３１日（２００８．１２．３１）
【出願人】（５９１０１３２２９）バクスター・インターナショナル・インコーポレイテッド (448)
【氏名又は名称原語表記】ＢＡＸＴＥＲ ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ ＩＮＣＯＲＰ０ＲＡＴＥＤ
【出願人】（５０１４５３１８９）バクスター・ヘルスケヤー・ソシエテ・アノニム (289)
【氏名又は名称原語表記】ＢＡＸＴＥＲ ＨＥＡＬＴＨＣＡＲＥ Ｓ．Ａ．
【Ｆターム（参考）】
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