微生物検出方法及び溶菌試薬
【課題】 極微量の微生物であっても十分に検出できる微生物検出方法及び溶菌試薬を提供すること。
【解決手段】 本発明は、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程と、を備え、溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする微生物検出方法である。
【解決手段】 本発明は、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程と、を備え、溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする微生物検出方法である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物検出方法及び溶菌試薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
生肉や乳製品を取り扱う食品産業等においては、食中毒予防の観点から迅速かつ高感度で微生物を検出する方法が求められている。近年では微生物の検出方法として、生物に存在するＡＴＰ（アデノシン三リン酸）を指標とし、ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとの反応で発生する生物化学発光を測定することによって微生物を検出するという方法が用いられている。
【０００３】
この方法を用いて細胞内ＡＴＰを測定するためには、細胞中に含まれるＡＴＰを抽出する必要がある。細胞中のＡＴＰを抽出する方法としては、トリクロロ酢酸水溶液に微生物を加えて抽出する方法（ＴＣＡ法）、界面活性剤水溶液に細胞を加えて抽出する方法（界面活性剤法）、９０℃位に熱したトリス緩衝液に細胞を加えて抽出する方法（トリス緩衝液法）、エタノールを用いる方法（エタノール法）、リゾチームなどの溶菌酵素を用いる方法（酵素法）等が知られている。しかしながら、上記ＴＣＡ法及びトリス緩衝液法では中和処理を行ったり、試料を高温にしたりする必要がある。すなわち、ｐＨや温度を調製する必要があり、安定した量のＡＴＰを迅速に抽出することが困難である。一方、界面活性剤法及びエタノール法では、界面活性剤やエタノールによって生物化学発光させるための酵素が阻害される場合があり、生物化学発光の感度が低下する傾向にある。他方、酵素法は細胞内ＡＴＰの抽出に時間がかかるという問題点を有している。
【０００４】
このように、上記いずれのＡＴＰ抽出方法にも一長一短があり、場合に応じて使い分けているのが現状である。この中でも酵素を阻害する場合があるが、微生物から有効にＡＴＰを抽出できる陽イオン界面活性剤を溶菌試薬として用いる界面活性剤法がよく用いられている。例えば、下記特許文献１では、細胞を含む試料の細胞内ＡＴＰを生物化学発光法によって測定する方法において、当該試料を、陽イオン性界面活性剤を含むＡＴＰ抽出試薬と、陽イオン性界面活性剤による酵素反応阻害を抑制するための蛋白質又は配糖体を含む酵素反応阻害抑制試薬と、に接触させる細胞内ＡＴＰの測定方法が開示されている。この方法によれば、陽イオン性界面活性剤による発光阻害が抑制されるという効果が得られる。
【特許文献１】特許第３１７５０１８号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ところで、細胞内ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとの反応で発生する生物化学発光を測定し、微生物を検出する方法においては、微生物が極微量のとき、細胞内ＡＴＰを増幅させる方法が効果的であり、この増幅は、増幅試薬を用いて行われ、増幅試薬としては、一般に増幅酵素と増幅基質が用いられる。
【０００６】
しかしながら、前述した特許文献１記載の検出方法は、例えばポリリン酸化合物などの陰イオン性化合物で構成される増幅基質が存在すると、陽イオン界面活性剤と当該陰イオン性化合物が不溶性の塩を形成してしまい、その結果、溶菌効果が著しく低下する傾向にあり、微生物を十分に検出することができない。また、溶菌反応を開始した後に、陰イオン性化合物および細菌由来のＡＴＰを基質として含む酵素反応を行う場合においても、溶菌反応を維持することが困難となる傾向にある。この場合、発光量が経時的に低下するため、測定する時刻によって発光量が大きく異なることがあり、微生物を再現性よく検出することができない。
【０００７】
なお、界面活性剤として、陽イオン界面活性剤に代えて陰イオン界面活性剤を用いた場合は、酵素自体が変性される傾向にあり、溶菌反応自体が進まず、微生物を殆ど検出することができない。一方、界面活性剤として、非イオン界面活性剤を用いた場合は、溶菌反応が遅く、発光量が微量の場合は検出できないという問題がある。
【０００８】
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、極微量の微生物であっても十分に検出できる微生物検出方法及び溶菌試薬を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記課題を解決するため、本発明の微生物検出方法は、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて前記微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程と、を備え、溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする。
【００１０】
本発明の微生物検出方法では、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させると、細胞内ＡＴＰが抽出される。このとき、溶菌試薬に含まれる界面活性剤として、非イオン界面活性剤を用いることにより、界面活性剤が溶菌酵素を阻害することが十分に抑制される。また、上記溶菌試薬が、キレート剤を含有すると、溶菌反応が促進される。
【００１１】
さらに、上記溶菌試薬は上記非イオン界面活性剤及びキレート剤に加え、溶菌酵素を含有すると、細胞が十分に溶菌され細胞内ＡＴＰが十分に抽出される。そして、抽出された細胞内ＡＴＰは、増幅されるため、微生物が微量であってもルシフェリン及びルシフェラーゼとの発光反応により十分な発光量を短時間で得ることができる。また、本発明の微生物検出方法では、上述したように、溶菌反応において溶菌酵素の阻害が十分に抑制される。加えて、上述したように界面活性剤として非イオン性界面活性剤が用いられることで、増幅試薬に用いられるポリリン酸等の陰イオン性化合物が存在しても不溶性の塩の形成が十分に防止される。従って、発光量の時間的な低下が十分に抑えられ、微生物の検出結果の再現性を高めることができる。
【００１２】
なお、キレート剤が溶菌反応を促進させることができる理由については、明らかとなってはいないが、キレート剤は、界面活性剤が細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する工程を促進する、いわゆる触媒の働きをするためであると推測される。
【００１３】
上記微生物検出方法において、上記溶菌酵素が細胞壁を加水分解する酵素であることが好ましい。この場合、生物化学発光において、発光量の低下がより十分に抑制される。
【００１４】
上記微生物検出方法において、上記溶菌試薬が更に糖類を含むことが好ましい。この場合は、溶菌酵素の活性低下がより十分に抑制され、発光量をより増加させることができる。
【００１５】
上記微生物検出方法において、非イオン界面活性剤の濃度が溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、溶菌酵素の濃度が溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭであることが好ましい。ここで、１unitとは、Micrococcuslysodeikticus 乾燥菌体のリン酸バッファー懸濁液を基質としてリゾチームを作用させたとき、吸光度（６４０ｎｍ）を１分間あたり０．００１減少させる酵素量をいう。
【００１６】
溶菌試薬に含まれる非イオン性界面活性剤、溶菌酵素、及びキレート剤の濃度が上記範囲であると、上記範囲外である場合に比べて、細胞内ＡＴＰの抽出がより促進され、より十分な発光量を短時間で得ることができ、発光量の時間的な低下をより十分に抑制できる。
【００１７】
本発明の溶菌試薬は、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする。この溶菌試薬によれば、微生物と接触させると、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを短時間で十分に抽出することができる。なお、上記溶菌試薬は、溶菌の対象となる微生物に制限されずに用いることが可能である。
【発明の効果】
【００１８】
本発明の微生物検出方法によれば、生物化学発光において、極微量の微生物であっても十分に検出できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１９】
以下、本発明の好適な実施形態について更に詳細に説明する。
【００２０】
本実施形態に係る微生物検出方法は、生物の細胞から溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含む溶菌試薬を用いて細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとを反応させる発光工程とを備える。
【００２１】
［抽出工程］
抽出工程は、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する工程である。
【００２２】
微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する場合は、界面活性剤法を用いる。すなわち、抽出工程では、溶菌酵素、非イオン界面活性剤、及びキレート剤を含む溶菌試薬が用いられる。このような溶菌試薬を用いることにより、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを短時間で十分に抽出することができる。
【００２３】
上記溶菌酵素としては、特に限定されないが、例えば、リゾチーム、キチナーゼ、キトサナーゼ、アクロモペプチダーゼ、β−１，３−グルカナーゼ、ヘキソサミニダーゼ等が挙げられる。これらの中でもリゾチーム等の細胞壁を加水分解する溶菌酵素が好ましい。これらの溶菌酵素は細胞壁を加水分解することができる。この場合、生物化学発光において、発光量の低下がより十分に抑制される。なお、リゾチームは、比較的安価で入手が容易であるため、より有用である。
【００２４】
上記溶菌試薬には、非イオン界面活性剤が含まれる。この非イオン界面活性剤により、界面活性剤が溶菌試薬中に含まれる溶菌酵素を阻害することを抑制することができる。さらに、本実施形態のように後述する抽出した細胞内ＡＴＰの増幅が行われる場合は、界面活性剤と増幅試薬とで不溶性の塩が形成されることを防止することができる。
【００２５】
上記溶菌試薬には、キレート剤が含まれる。キレート剤は溶菌反応を促進させる役割を果たす。
【００２６】
上記キレート剤としては、特に限定されないが、例えば、EDTA、EGTA、CyDTA、DTPA 、NTA、TTHA、IDA、NTPO、BAPTA等が挙げられる。
【００２７】
これらの中でも、EDTA、EGTA、CyDTA、DTPA 、TTHAが好ましい。キレート剤が上記化合物であると、溶菌反応がより促進される効果がある。
【００２８】
上記溶菌試薬は、更に糖類を含むことが好ましい。この場合の溶菌試薬は、溶菌速度を速め、溶菌酵素の活性低下をより抑制することができる。従って、発光量の経時的低下をより十分に抑制することができ、微生物の検出結果の再現性をより高めることができる。
【００２９】
上記糖類としては、特に限定されないが、例えば、スクロース、グルコース、フルクトース、マルトース、ガラクトース、ラクトース、トレハロース、マンノース等が挙げられる。
【００３０】
これらの中でも、スクロース、トレハロースが好ましい。糖類が上記化合物であると、酵素活性の低下がより抑制されるという利点がある。
【００３１】
なお、上記溶菌試薬は、上述した溶菌酵素活性を阻害するものでなければ、エチレングリコール、グリセロール、２−メルカプトエタノール、ジチオトレイトール等の試薬を更に含んでいてもよい。さらに、上記溶菌試薬は、溶菌の対象となる微生物に特に制限されずに用いることが可能である。
【００３２】
また、本実施形態に係る微生物検出方法において、対象となる微生物としては、特に限定されないが、例えば、大腸菌、大腸菌群、サルモネラ、黄色ブドウ球菌等が挙げられる。
【００３３】
次に上述した溶菌試薬に含まれる溶菌酵素、非イオン界面活性剤、キレート剤の好適な濃度範囲について説明する。
【００３４】
溶菌酵素の濃度は、溶菌試薬全量に対して１．０×１０４units／ml〜１．０×１０７units／mlであることが好ましく、１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであることが更に好ましい。溶菌酵素の濃度が１．０×１０５units／ml未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の働きが不十分となり、細胞内ＡＴＰの抽出に時間がかかる傾向にあり、溶菌酵素の濃度が１．０×１０６units／mlを超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の働きに差は生じないため、無駄に溶菌酵素が使用されることとなる。
【００３５】
界面活性剤は、一般に酵素を阻害する傾向にあるが、その阻害度合は界面活性剤濃度が高いほど大きくなる。また、抽出能力は界面活性剤濃度が高いほど大きくなり、低いと阻害が小さくなる代わりに、抽出能力が不十分になる。したがって、本実施形態において用いる非イオン界面活性剤の濃度は重要である。すなわち、非イオン界面活性剤の濃度は、溶菌試薬全量に対して０．０１質量％〜５．０質量％であることが好ましく、０．１質量％〜１．０質量％であることが更に好ましい。非イオン界面活性剤の濃度が０．１質量％未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌の速度が遅くなる傾向にあり、非イオン界面活性剤の濃度が１．０質量％を超えると、非イオン界面活性剤が酵素（溶菌酵素等）の酵素反応を阻害する傾向にある。
【００３６】
キレート剤の濃度は、溶菌試薬全量に対して１ｍＭ以上であることが好ましく、５ｍＭ〜１０mＭであることが更に好ましい。キレート剤の濃度が５ｍＭ未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌反応が遅くなる傾向にあり、キレート剤の濃度が１０ｍＭを超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、酵素反応（特に発光反応）が阻害されてしまう傾向にある。
【００３７】
また、上記溶菌試薬が糖類を含む場合において、当該糖類の濃度は、溶菌試薬全量に対して０．１質量％以上であることが好ましく、０．５質量％〜１０質量％であることが更に好ましい。糖類の濃度が０．５質量％未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌速度を早める効果が得られ難くなり、糖類の濃度が１０質量％を超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の活性を阻害する度合いが大きくなる傾向にある。
【００３８】
上記溶菌試薬において、非イオン界面活性剤の濃度が溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、溶菌酵素の濃度が溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭであることが好ましい。
【００３９】
溶菌試薬に含まれる非イオン性界面活性剤、溶菌酵素、及びキレート剤の濃度がいずれも上記範囲であると、いずれかが上記範囲外である場合に比べて、細胞内ＡＴＰの抽出がより促進され、より十分な発光量を短時間で得ることができ、発光量の時間的な低下をより十分に抑制できる。
【００４０】
［増幅工程］
増幅工程は、抽出工程で抽出された細胞内ＡＴＰを増幅させる工程である。
【００４１】
増幅試薬には、増幅基質と増幅酵素が含まれるが、増幅基質として、ポリリン酸を用い、増幅酵素として、アデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼを用いた場合、ＡＴＰの増幅メカニズムは、次のとおりである。すなわち、ＡＴＰの存在下に、ＡＭＰ（アデノシン一リン酸）をアデニレートキナーゼと反応させて２分子のＡＤＰ（アデノシン二リン酸）とし、ポリリン酸化合物の存在下で、当該２分子のＡＤＰをポリリン酸キナーゼと反応させて２分子のＡＴＰとポリリン酸化合物とする。こうして、１分子のＡＴＰを２分子のＡＴＰとすることができ、更にこの反応を繰り返すことにより、ＡＴＰを更に増幅させることができる。
【００４２】
ＡＴＰを増幅させるための増幅試薬は、増幅基質および増幅酵素で構成されるが、増幅試薬は、増幅基質としてのポリリン酸と、増幅酵素としてのアデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼで構成される。また、上記ポリリン酸キナーゼの代わりにピルビン酸キナーゼを用いることもできる。この中でも増幅基質としてポリリン酸、増幅酵素としてアデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼを用いるものが好ましい。この場合、ポリリン酸がリン酸供与基質として作用することとなるので、特に鎖長の長いポリリン酸を用いることで反応効率を向上させることができるという利点がある。
【００４３】
［発光工程］
発光工程は、増幅させたＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとを接触させて生物化学発光を生じさせる工程である。この発光工程は、ＡＴＰとルシフェリン及びルシフェラーゼとを混合させることにより、行うことができる。
【００４４】
そして、この発光を光検出装置等で検出することにより、微生物を検出することが可能となる。上記光検出装置としては、公知のものを用いることができ、例えばＣＣＤ、フォトダイオードや光電子増倍管を用いることができる。
【００４５】
なお、本発明の微生物検出方法は、抽出工程、増幅工程、及び発光工程を備えていれば、他の工程をさらに含んでいてもよい。
【００４６】
上記他の工程としては、微生物から細胞内ＡＴＰを抽出する前に細菌のフロックを分解させる分解工程、微生物によらない不要なＡＴＰを除去液を用いて除去する除去工程、この除去液を不活性化させる不活性化工程等のうち少なくとも１つの工程が挙げられる。
【実施例】
【００４７】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００４８】
（溶菌試薬Ａの調製）
以下の方法により、溶菌試薬Ａを調製した。
【００４９】
リゾチーム（Ｌｙｓｏｚｙｍｅ）が８ｍｇ／ｍｌ（鶏卵白由来、溶菌酵素）、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（登録商標）が０．１重量％（非イオン界面活性剤）、スクロースが０．８重量％（糖類）、ＥＤＴＡが５０ｍＭ（キレート剤）となるように、１０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ８．０）を混合し、溶菌試薬Ａとした。
【００５０】
（溶菌試薬Ｂ）
以下の製品を溶菌試薬Ｂとした。
【００５１】
ＡＴＰ抽出試薬（ルシフェール２５０＋、キッコーマン（株）社製）
【００５２】
（増幅基質及び発光増幅酵素の調製）
以下の方法により、増幅基質及び発光増幅酵素を調製した。
【００５３】
ＡＭＰが４×１０−５Ｍ、ポリリン酸が１ｍＭとなるように、５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４）を混合し、増幅基質とした。また、ＰＰＫ−ＡＤＫ（増幅酵素）を濃度が４０μｇ／ｍｌとなるようにルシフェール２５０＋（発光試薬、キッコーマン社製）を混合し、発光増幅酵素とした。
【００５４】
［実施例１］
およそ１００ｃｅｌｌｓ／ｍｌの大腸菌（E.coli JM109）を含むＰＢＳ溶液２５μｌに対し、溶菌試薬Ａを２５μｌ加えた後、増幅基質を５０μｌ、発光増幅酵素を１００μｌ加えることによって得られる発光量の経時変化を、Perkin-Elmer社製 Wallac 1420ARVOMXマルチラベルマイクロプレートカウンターを用いて測定した。得られた結果を図１に示す。
【００５５】
［比較例１］
溶菌試薬Ａの代わりに溶菌試薬Ｂを用いたこと以外は、実施例１に準じて発光量を測定した。
【００５６】
溶菌試薬Ｂを用いた場合、増幅基質と混和すると直ちに反応溶液が白濁し、発光増幅酵素を用いても発光増幅を行うことが不可能であった。すなわち、溶菌試薬Ｂは増幅発光反応に適用することができないことが分かった。また、図１より、実施例１によれば、溶菌試薬Ａおよび増幅発光反応を組み合わせることによって、極微量（数個／測定）の微生物の存在を検出できることが示された。
【００５７】
以上より、本発明によれば、極微量の微生物であっても十分に検出できる微生物検出方法及び溶菌試薬を提供できることが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００５８】
【図１】図１は実施例１における発光量の時間変化を示すグラフである。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物検出方法及び溶菌試薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
生肉や乳製品を取り扱う食品産業等においては、食中毒予防の観点から迅速かつ高感度で微生物を検出する方法が求められている。近年では微生物の検出方法として、生物に存在するＡＴＰ（アデノシン三リン酸）を指標とし、ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとの反応で発生する生物化学発光を測定することによって微生物を検出するという方法が用いられている。
【０００３】
この方法を用いて細胞内ＡＴＰを測定するためには、細胞中に含まれるＡＴＰを抽出する必要がある。細胞中のＡＴＰを抽出する方法としては、トリクロロ酢酸水溶液に微生物を加えて抽出する方法（ＴＣＡ法）、界面活性剤水溶液に細胞を加えて抽出する方法（界面活性剤法）、９０℃位に熱したトリス緩衝液に細胞を加えて抽出する方法（トリス緩衝液法）、エタノールを用いる方法（エタノール法）、リゾチームなどの溶菌酵素を用いる方法（酵素法）等が知られている。しかしながら、上記ＴＣＡ法及びトリス緩衝液法では中和処理を行ったり、試料を高温にしたりする必要がある。すなわち、ｐＨや温度を調製する必要があり、安定した量のＡＴＰを迅速に抽出することが困難である。一方、界面活性剤法及びエタノール法では、界面活性剤やエタノールによって生物化学発光させるための酵素が阻害される場合があり、生物化学発光の感度が低下する傾向にある。他方、酵素法は細胞内ＡＴＰの抽出に時間がかかるという問題点を有している。
【０００４】
このように、上記いずれのＡＴＰ抽出方法にも一長一短があり、場合に応じて使い分けているのが現状である。この中でも酵素を阻害する場合があるが、微生物から有効にＡＴＰを抽出できる陽イオン界面活性剤を溶菌試薬として用いる界面活性剤法がよく用いられている。例えば、下記特許文献１では、細胞を含む試料の細胞内ＡＴＰを生物化学発光法によって測定する方法において、当該試料を、陽イオン性界面活性剤を含むＡＴＰ抽出試薬と、陽イオン性界面活性剤による酵素反応阻害を抑制するための蛋白質又は配糖体を含む酵素反応阻害抑制試薬と、に接触させる細胞内ＡＴＰの測定方法が開示されている。この方法によれば、陽イオン性界面活性剤による発光阻害が抑制されるという効果が得られる。
【特許文献１】特許第３１７５０１８号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ところで、細胞内ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとの反応で発生する生物化学発光を測定し、微生物を検出する方法においては、微生物が極微量のとき、細胞内ＡＴＰを増幅させる方法が効果的であり、この増幅は、増幅試薬を用いて行われ、増幅試薬としては、一般に増幅酵素と増幅基質が用いられる。
【０００６】
しかしながら、前述した特許文献１記載の検出方法は、例えばポリリン酸化合物などの陰イオン性化合物で構成される増幅基質が存在すると、陽イオン界面活性剤と当該陰イオン性化合物が不溶性の塩を形成してしまい、その結果、溶菌効果が著しく低下する傾向にあり、微生物を十分に検出することができない。また、溶菌反応を開始した後に、陰イオン性化合物および細菌由来のＡＴＰを基質として含む酵素反応を行う場合においても、溶菌反応を維持することが困難となる傾向にある。この場合、発光量が経時的に低下するため、測定する時刻によって発光量が大きく異なることがあり、微生物を再現性よく検出することができない。
【０００７】
なお、界面活性剤として、陽イオン界面活性剤に代えて陰イオン界面活性剤を用いた場合は、酵素自体が変性される傾向にあり、溶菌反応自体が進まず、微生物を殆ど検出することができない。一方、界面活性剤として、非イオン界面活性剤を用いた場合は、溶菌反応が遅く、発光量が微量の場合は検出できないという問題がある。
【０００８】
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、極微量の微生物であっても十分に検出できる微生物検出方法及び溶菌試薬を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記課題を解決するため、本発明の微生物検出方法は、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて前記微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程と、を備え、溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする。
【００１０】
本発明の微生物検出方法では、微生物の細胞を溶菌試薬と接触させると、細胞内ＡＴＰが抽出される。このとき、溶菌試薬に含まれる界面活性剤として、非イオン界面活性剤を用いることにより、界面活性剤が溶菌酵素を阻害することが十分に抑制される。また、上記溶菌試薬が、キレート剤を含有すると、溶菌反応が促進される。
【００１１】
さらに、上記溶菌試薬は上記非イオン界面活性剤及びキレート剤に加え、溶菌酵素を含有すると、細胞が十分に溶菌され細胞内ＡＴＰが十分に抽出される。そして、抽出された細胞内ＡＴＰは、増幅されるため、微生物が微量であってもルシフェリン及びルシフェラーゼとの発光反応により十分な発光量を短時間で得ることができる。また、本発明の微生物検出方法では、上述したように、溶菌反応において溶菌酵素の阻害が十分に抑制される。加えて、上述したように界面活性剤として非イオン性界面活性剤が用いられることで、増幅試薬に用いられるポリリン酸等の陰イオン性化合物が存在しても不溶性の塩の形成が十分に防止される。従って、発光量の時間的な低下が十分に抑えられ、微生物の検出結果の再現性を高めることができる。
【００１２】
なお、キレート剤が溶菌反応を促進させることができる理由については、明らかとなってはいないが、キレート剤は、界面活性剤が細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する工程を促進する、いわゆる触媒の働きをするためであると推測される。
【００１３】
上記微生物検出方法において、上記溶菌酵素が細胞壁を加水分解する酵素であることが好ましい。この場合、生物化学発光において、発光量の低下がより十分に抑制される。
【００１４】
上記微生物検出方法において、上記溶菌試薬が更に糖類を含むことが好ましい。この場合は、溶菌酵素の活性低下がより十分に抑制され、発光量をより増加させることができる。
【００１５】
上記微生物検出方法において、非イオン界面活性剤の濃度が溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、溶菌酵素の濃度が溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭであることが好ましい。ここで、１unitとは、Micrococcuslysodeikticus 乾燥菌体のリン酸バッファー懸濁液を基質としてリゾチームを作用させたとき、吸光度（６４０ｎｍ）を１分間あたり０．００１減少させる酵素量をいう。
【００１６】
溶菌試薬に含まれる非イオン性界面活性剤、溶菌酵素、及びキレート剤の濃度が上記範囲であると、上記範囲外である場合に比べて、細胞内ＡＴＰの抽出がより促進され、より十分な発光量を短時間で得ることができ、発光量の時間的な低下をより十分に抑制できる。
【００１７】
本発明の溶菌試薬は、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする。この溶菌試薬によれば、微生物と接触させると、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを短時間で十分に抽出することができる。なお、上記溶菌試薬は、溶菌の対象となる微生物に制限されずに用いることが可能である。
【発明の効果】
【００１８】
本発明の微生物検出方法によれば、生物化学発光において、極微量の微生物であっても十分に検出できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１９】
以下、本発明の好適な実施形態について更に詳細に説明する。
【００２０】
本実施形態に係る微生物検出方法は、生物の細胞から溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含む溶菌試薬を用いて細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、抽出した細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、増幅させた細胞内ＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとを反応させる発光工程とを備える。
【００２１】
［抽出工程］
抽出工程は、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する工程である。
【００２２】
微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する場合は、界面活性剤法を用いる。すなわち、抽出工程では、溶菌酵素、非イオン界面活性剤、及びキレート剤を含む溶菌試薬が用いられる。このような溶菌試薬を用いることにより、微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを短時間で十分に抽出することができる。
【００２３】
上記溶菌酵素としては、特に限定されないが、例えば、リゾチーム、キチナーゼ、キトサナーゼ、アクロモペプチダーゼ、β−１，３−グルカナーゼ、ヘキソサミニダーゼ等が挙げられる。これらの中でもリゾチーム等の細胞壁を加水分解する溶菌酵素が好ましい。これらの溶菌酵素は細胞壁を加水分解することができる。この場合、生物化学発光において、発光量の低下がより十分に抑制される。なお、リゾチームは、比較的安価で入手が容易であるため、より有用である。
【００２４】
上記溶菌試薬には、非イオン界面活性剤が含まれる。この非イオン界面活性剤により、界面活性剤が溶菌試薬中に含まれる溶菌酵素を阻害することを抑制することができる。さらに、本実施形態のように後述する抽出した細胞内ＡＴＰの増幅が行われる場合は、界面活性剤と増幅試薬とで不溶性の塩が形成されることを防止することができる。
【００２５】
上記溶菌試薬には、キレート剤が含まれる。キレート剤は溶菌反応を促進させる役割を果たす。
【００２６】
上記キレート剤としては、特に限定されないが、例えば、EDTA、EGTA、CyDTA、DTPA 、NTA、TTHA、IDA、NTPO、BAPTA等が挙げられる。
【００２７】
これらの中でも、EDTA、EGTA、CyDTA、DTPA 、TTHAが好ましい。キレート剤が上記化合物であると、溶菌反応がより促進される効果がある。
【００２８】
上記溶菌試薬は、更に糖類を含むことが好ましい。この場合の溶菌試薬は、溶菌速度を速め、溶菌酵素の活性低下をより抑制することができる。従って、発光量の経時的低下をより十分に抑制することができ、微生物の検出結果の再現性をより高めることができる。
【００２９】
上記糖類としては、特に限定されないが、例えば、スクロース、グルコース、フルクトース、マルトース、ガラクトース、ラクトース、トレハロース、マンノース等が挙げられる。
【００３０】
これらの中でも、スクロース、トレハロースが好ましい。糖類が上記化合物であると、酵素活性の低下がより抑制されるという利点がある。
【００３１】
なお、上記溶菌試薬は、上述した溶菌酵素活性を阻害するものでなければ、エチレングリコール、グリセロール、２−メルカプトエタノール、ジチオトレイトール等の試薬を更に含んでいてもよい。さらに、上記溶菌試薬は、溶菌の対象となる微生物に特に制限されずに用いることが可能である。
【００３２】
また、本実施形態に係る微生物検出方法において、対象となる微生物としては、特に限定されないが、例えば、大腸菌、大腸菌群、サルモネラ、黄色ブドウ球菌等が挙げられる。
【００３３】
次に上述した溶菌試薬に含まれる溶菌酵素、非イオン界面活性剤、キレート剤の好適な濃度範囲について説明する。
【００３４】
溶菌酵素の濃度は、溶菌試薬全量に対して１．０×１０４units／ml〜１．０×１０７units／mlであることが好ましく、１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであることが更に好ましい。溶菌酵素の濃度が１．０×１０５units／ml未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の働きが不十分となり、細胞内ＡＴＰの抽出に時間がかかる傾向にあり、溶菌酵素の濃度が１．０×１０６units／mlを超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の働きに差は生じないため、無駄に溶菌酵素が使用されることとなる。
【００３５】
界面活性剤は、一般に酵素を阻害する傾向にあるが、その阻害度合は界面活性剤濃度が高いほど大きくなる。また、抽出能力は界面活性剤濃度が高いほど大きくなり、低いと阻害が小さくなる代わりに、抽出能力が不十分になる。したがって、本実施形態において用いる非イオン界面活性剤の濃度は重要である。すなわち、非イオン界面活性剤の濃度は、溶菌試薬全量に対して０．０１質量％〜５．０質量％であることが好ましく、０．１質量％〜１．０質量％であることが更に好ましい。非イオン界面活性剤の濃度が０．１質量％未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌の速度が遅くなる傾向にあり、非イオン界面活性剤の濃度が１．０質量％を超えると、非イオン界面活性剤が酵素（溶菌酵素等）の酵素反応を阻害する傾向にある。
【００３６】
キレート剤の濃度は、溶菌試薬全量に対して１ｍＭ以上であることが好ましく、５ｍＭ〜１０mＭであることが更に好ましい。キレート剤の濃度が５ｍＭ未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌反応が遅くなる傾向にあり、キレート剤の濃度が１０ｍＭを超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、酵素反応（特に発光反応）が阻害されてしまう傾向にある。
【００３７】
また、上記溶菌試薬が糖類を含む場合において、当該糖類の濃度は、溶菌試薬全量に対して０．１質量％以上であることが好ましく、０．５質量％〜１０質量％であることが更に好ましい。糖類の濃度が０．５質量％未満であると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌速度を早める効果が得られ難くなり、糖類の濃度が１０質量％を超えると、濃度が上記範囲にある場合と比べて、溶菌酵素の活性を阻害する度合いが大きくなる傾向にある。
【００３８】
上記溶菌試薬において、非イオン界面活性剤の濃度が溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、溶菌酵素の濃度が溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭであることが好ましい。
【００３９】
溶菌試薬に含まれる非イオン性界面活性剤、溶菌酵素、及びキレート剤の濃度がいずれも上記範囲であると、いずれかが上記範囲外である場合に比べて、細胞内ＡＴＰの抽出がより促進され、より十分な発光量を短時間で得ることができ、発光量の時間的な低下をより十分に抑制できる。
【００４０】
［増幅工程］
増幅工程は、抽出工程で抽出された細胞内ＡＴＰを増幅させる工程である。
【００４１】
増幅試薬には、増幅基質と増幅酵素が含まれるが、増幅基質として、ポリリン酸を用い、増幅酵素として、アデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼを用いた場合、ＡＴＰの増幅メカニズムは、次のとおりである。すなわち、ＡＴＰの存在下に、ＡＭＰ（アデノシン一リン酸）をアデニレートキナーゼと反応させて２分子のＡＤＰ（アデノシン二リン酸）とし、ポリリン酸化合物の存在下で、当該２分子のＡＤＰをポリリン酸キナーゼと反応させて２分子のＡＴＰとポリリン酸化合物とする。こうして、１分子のＡＴＰを２分子のＡＴＰとすることができ、更にこの反応を繰り返すことにより、ＡＴＰを更に増幅させることができる。
【００４２】
ＡＴＰを増幅させるための増幅試薬は、増幅基質および増幅酵素で構成されるが、増幅試薬は、増幅基質としてのポリリン酸と、増幅酵素としてのアデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼで構成される。また、上記ポリリン酸キナーゼの代わりにピルビン酸キナーゼを用いることもできる。この中でも増幅基質としてポリリン酸、増幅酵素としてアデニレートキナーゼ及びポリリン酸キナーゼを用いるものが好ましい。この場合、ポリリン酸がリン酸供与基質として作用することとなるので、特に鎖長の長いポリリン酸を用いることで反応効率を向上させることができるという利点がある。
【００４３】
［発光工程］
発光工程は、増幅させたＡＴＰと、ルシフェリン及びルシフェラーゼとを接触させて生物化学発光を生じさせる工程である。この発光工程は、ＡＴＰとルシフェリン及びルシフェラーゼとを混合させることにより、行うことができる。
【００４４】
そして、この発光を光検出装置等で検出することにより、微生物を検出することが可能となる。上記光検出装置としては、公知のものを用いることができ、例えばＣＣＤ、フォトダイオードや光電子増倍管を用いることができる。
【００４５】
なお、本発明の微生物検出方法は、抽出工程、増幅工程、及び発光工程を備えていれば、他の工程をさらに含んでいてもよい。
【００４６】
上記他の工程としては、微生物から細胞内ＡＴＰを抽出する前に細菌のフロックを分解させる分解工程、微生物によらない不要なＡＴＰを除去液を用いて除去する除去工程、この除去液を不活性化させる不活性化工程等のうち少なくとも１つの工程が挙げられる。
【実施例】
【００４７】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００４８】
（溶菌試薬Ａの調製）
以下の方法により、溶菌試薬Ａを調製した。
【００４９】
リゾチーム（Ｌｙｓｏｚｙｍｅ）が８ｍｇ／ｍｌ（鶏卵白由来、溶菌酵素）、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（登録商標）が０．１重量％（非イオン界面活性剤）、スクロースが０．８重量％（糖類）、ＥＤＴＡが５０ｍＭ（キレート剤）となるように、１０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ８．０）を混合し、溶菌試薬Ａとした。
【００５０】
（溶菌試薬Ｂ）
以下の製品を溶菌試薬Ｂとした。
【００５１】
ＡＴＰ抽出試薬（ルシフェール２５０＋、キッコーマン（株）社製）
【００５２】
（増幅基質及び発光増幅酵素の調製）
以下の方法により、増幅基質及び発光増幅酵素を調製した。
【００５３】
ＡＭＰが４×１０−５Ｍ、ポリリン酸が１ｍＭとなるように、５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４）を混合し、増幅基質とした。また、ＰＰＫ−ＡＤＫ（増幅酵素）を濃度が４０μｇ／ｍｌとなるようにルシフェール２５０＋（発光試薬、キッコーマン社製）を混合し、発光増幅酵素とした。
【００５４】
［実施例１］
およそ１００ｃｅｌｌｓ／ｍｌの大腸菌（E.coli JM109）を含むＰＢＳ溶液２５μｌに対し、溶菌試薬Ａを２５μｌ加えた後、増幅基質を５０μｌ、発光増幅酵素を１００μｌ加えることによって得られる発光量の経時変化を、Perkin-Elmer社製 Wallac 1420ARVOMXマルチラベルマイクロプレートカウンターを用いて測定した。得られた結果を図１に示す。
【００５５】
［比較例１］
溶菌試薬Ａの代わりに溶菌試薬Ｂを用いたこと以外は、実施例１に準じて発光量を測定した。
【００５６】
溶菌試薬Ｂを用いた場合、増幅基質と混和すると直ちに反応溶液が白濁し、発光増幅酵素を用いても発光増幅を行うことが不可能であった。すなわち、溶菌試薬Ｂは増幅発光反応に適用することができないことが分かった。また、図１より、実施例１によれば、溶菌試薬Ａおよび増幅発光反応を組み合わせることによって、極微量（数個／測定）の微生物の存在を検出できることが示された。
【００５７】
以上より、本発明によれば、極微量の微生物であっても十分に検出できる微生物検出方法及び溶菌試薬を提供できることが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００５８】
【図１】図１は実施例１における発光量の時間変化を示すグラフである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて前記微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、
抽出した前記細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、
増幅させた前記細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程とを備え、
前記溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする微生物検出方法。
【請求項２】
前記溶菌酵素が細胞壁を加水分解する酵素である、請求項１記載の微生物検出方法。
【請求項３】
前記溶菌試薬が更に糖類を含む、請求項１又は２に記載の微生物検出方法。
【請求項４】
前記非イオン界面活性剤の濃度が前記溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、前記溶菌酵素の濃度が前記溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が前記溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭである、請求項１〜３のうちのいずれか一項に記載の微生物検出方法。
【請求項５】
溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする溶菌試薬。
【請求項１】
微生物の細胞を溶菌試薬と接触させて前記微生物の細胞から細胞内ＡＴＰを抽出する抽出工程と、
抽出した前記細胞内ＡＴＰを増幅させる増幅工程と、
増幅させた前記細胞内ＡＴＰ、ルシフェリン及びルシフェラーゼを接触させて発光させる発光工程とを備え、
前記溶菌試薬が、溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする微生物検出方法。
【請求項２】
前記溶菌酵素が細胞壁を加水分解する酵素である、請求項１記載の微生物検出方法。
【請求項３】
前記溶菌試薬が更に糖類を含む、請求項１又は２に記載の微生物検出方法。
【請求項４】
前記非イオン界面活性剤の濃度が前記溶菌試薬全量に対して０．１質量％〜１．０質量％であり、前記溶菌酵素の濃度が前記溶菌試薬全量に対して１．０×１０５units／ml〜１．０×１０６units／mlであり、キレート剤の濃度が前記溶菌試薬全量に対して５ｍＭ〜１０ｍＭである、請求項１〜３のうちのいずれか一項に記載の微生物検出方法。
【請求項５】
溶菌酵素、非イオン性界面活性剤、及びキレート剤を含むことを特徴とする溶菌試薬。
【図１】
【公開番号】特開２００６−２４６７９２（Ｐ２００６−２４６７９２Ａ）
【公開日】平成１８年９月２１日（２００６．９．２１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−６７９９８（Ｐ２００５−６７９９８）
【出願日】平成１７年３月１０日（２００５．３．１０）
【出願人】（５０２２０５１４５）株式会社物産ナノテク研究所 (101)
【出願人】（５０４１３６５６８）国立大学法人広島大学 (924)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１８年９月２１日（２００６．９．２１）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年３月１０日（２００５．３．１０）
【出願人】（５０２２０５１４５）株式会社物産ナノテク研究所 (101)
【出願人】（５０４１３６５６８）国立大学法人広島大学 (924)
【Ｆターム（参考）】
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