血液の病態を回復させるための装置及び方法
本発明は、血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンを含む装置に関する。本発明は、また、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質を体外除去する方法に関する。本発明は、更に固体基材に、全長ヘパリンを共有末端結合させる方法に関する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンを含む装置に関する。本発明はまた、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質を体外除去する方法に関する。本発明は、更に、固体基材に、全長ヘパリンを共有末端結合させる方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
敗血症は、最も一般的には、グラム陰性菌の全身性感染によって誘発され、そして今日、抗生物質耐性細菌株によって起こった感染が主たる問題をなす場合、予防と治療のための代わりの方法が必要である。初期の生体外及び生体内での研究は、固定化されたヘパリンを含む組成物が、微生物感染に対して予防的な特性を有することを明らかにしている。また、体外回路の生体不適合によって引き起こされる炎症反応は、重大な臨床上の問題であり、最終的に敗血症を引き起こす可能性がある。
【０００３】
ヘパラン硫酸は、殆ど全ての哺乳類細胞の表面に存在するプロテオグリカンである。微生物の多くは、哺乳類細胞の表面のヘパラン硫酸を受容体として利用する。更に、炎症細胞及びサイトカインは、結合及び活性化のために細胞表面上のヘパラン硫酸を利用する。ヘパリンは、哺乳類組織の肥満細胞の好塩基顆粒内プロテオグリカンから分離される１５〜２５ｋＤａの分子量を有する別のプロテオグリカンである。ヘパリンとヘパラン硫酸の間の構造的類似性により、固体表面に固定化されたヘパリンは、炎症細胞及びサイトカインと同様に、細菌、ウイルス及び寄生虫も結合する。
【０００４】
炎症誘発状態の進行は、敗血症、ウイルス血症、急性又は慢性腎疾患、心臓血管疾患、血液量減少性ショック、アナフィラキシー反応及び自己免疫疾患を含む多くの哺乳類の疾患における罹病率及び死亡率の劇的な増加に関連する。組織損傷及び臓器機能障害は、外来微生物によってだけでなく、そのような感染に反応して放出される炎症誘発性メディエーターによって、又は従来の体外回路による表面活性化（補体活性化など）によっても、引き起こされる可能性がある。サイトカイン（腫瘍壊死因子、インターロイキン−１、インターロイキン−６など）及び非サイトカイン（一酸化窒素、血小板活性化因子、補体及びエイコサノイド）は、代償的な組織の損傷を加え、複数の臓器系の機能障害及び生物細胞の死の一因となる可能性がある。細菌、寄生虫、真菌又はウイルス由来の成分は、多くの細胞タイプによって炎症誘発性サイトカインの活性化を惹起する可能性がある。マクロファージ、リンパ球及び顆粒球を含む炎症細胞が活性化される。感染に反応して内在性の抗炎症メディエーターが放出され、重篤な全身性の炎症反応をコントロールするために作用する。最初に、病原性微生物を除去することが、炎症反応を減退させるために極めて重要である。第２に、炎症性メディエーターのネガティブ・フィードバックとポジティブ・フィードバックの間の脆弱なバランスは、細胞損傷を調節しそして臨床転帰に影響を及ぼす重要な要因であり、従って、循環する炎症誘発性刺激物及び／又は炎症誘発性サイトカインを減少させることは、敗血症性合併症をコントロールする重要な事象である。
【０００５】
特許文献１は、微生物とアガロースに固定化されたヘパリンとの相互作用に基づいて、フラビウイルス及び他の出血性ウイルスの分離、診断及び治療の方法を開示している。特許文献１で使用されるヘパリンアガロースは、アガロース上に固定化された切断されたヘパリン分子を含む。
【０００６】
非特許文献１では、炎症誘発性サイトカインが、ヘパリンコーティングの体外回路を用いて吸着される。体外回路は、静電気的に多数点で結合したヘパリンによるBaxter Duraflo IIヘパリン表面を備えている。
【０００７】
血液の体外処理のための改善された方法及び装置についての要望が存在する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】米国特許第６，１９７，５６８号
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Artificial Organs, 26(12)：1020-1025 (2002)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明の目的は、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質の体外除去のための改善された装置及び方法を提供することである。
【００１１】
本発明の別の目的は、例えば、血液透析又は酸素投与用の従来の体外循環システムに使用し、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質を除去するための装置を提供することである。
【００１２】
本発明の更なる目的は、全長ヘパリンを、ヘパリン分子の必要な生物学的活性を変化させないで装置に固定化させる方法を提供することである。更に、その表面は、使用される反応条件下で、特にヘパリンの浸出に関して安定でなければならない。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
その第１の側面において、本発明は、血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンを含む装置を提供する。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
表面のヘパリン化のために現在使用されている最も有効な技術は、Carmeda Bioactive Surface（CBAS（登録商標））である。CBAS（登録商標）表面の調製では、表面に末端結合するヘパリン断片に反応基を付与するために、ヘパリン分子は切断される。多糖類の末端結合は、ヘパリンの結合相手が、ヘパリン分子に接近し結合することを可能にするために必要である。CBAS（登録商標）法によって結合されるヘパリン分子の平均分子量は、６〜９ｋＤａである。
【００１５】
本発明による装置ではヘパリン固定化技術が使用され、この場合平均分子量が２１ｋＤａ以上の全長ヘパリン分子が表面に末端結合される。本発明の方法を使用すると、現在のCBAS（登録商標）の技術状態と比較して、表面に付着するヘパリンの量を、ほぼ倍増させることができる。本発明の方法によって結合した長い鎖は、また、ヘパリン結合相手が結合に利用できる、大量の接近可能なヘパリンオリゴマーをもたらすスペーサ機能をも備える。
【００１６】
本発明者らは、本発明による全長ヘパリンでコーティングされた表面は、一般に従来技術で使用されるようなヘパリン断片でコーティングされた従来の表面よりも効率的に、ＴＮＦ−αを結合することを見出した。従来技術では、殆どのヘパリンコーティング表面は、固体基材にヘパリン断片を結合させるために役立つ反応基を得るために、ヘパリン分子の断片化を含む方法によって製造されている。全長ヘパリンを固体表面に連結させるこれまでの試みは、結合したヘパリン表面濃度が低く、実際の適用に役に立たないヘパリン表面をもたらした。他の全長ヘパリンを固体表面に結合させるこれまでの試みでは、ヘパリンの結合能力を大きく低下させる、固体基材へのヘパリン分子の多点結合が生じている。
【００１７】
従って、本発明の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、１０ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、１５ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の更に別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、２１ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の更に別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、３０ｋＤａを超える平均分子量を有する。好ましくは、固定化されたヘパリン分子は、１５〜２５ｋＤａの範囲の平均分子量を有する。平均分子量は、また、２５〜３５ｋＤａの範囲のように、より大きくてもよい。
【００１８】
本発明による装置の固定化されたヘパリン分子の平均分子量は、従って、現行の技術で使用されるヘパリン分子の平均分子量よりも著しく大きい。本発明に従って使用される全長ヘパリン分子は、固体基材の表面積単位当たり結合できるヘパリン結合分子の量の観点、及び固定化された全長ヘパリン分子によって提示される結合モチーフの選択支の増加によって、表面によって結合し得る分子の範囲の観点、の両者から、ヘパリン結合分子に対する改善された結合能力を提供する。
【００１９】
本発明は、末端結合した全長ヘパリンを持つ表面の製造法に関するものであり、その方法は、高い全長ヘパリン表面濃度を有する全長ヘパリンでコーティングされた表面をもたらす。本発明のさまざまな側面で用いられる全長ヘパリン分子は、従来技術のヘパリン表面と比較すると、単位表面積当たりのヘパリン結合実体の結合能力に、大幅な増加をもたらす。ヘパリンは、好ましくは共有結合で前記固体基材に結合する。ヘパリン分子の共有結合は、ヘパリンコーティング表面との接触で血液中にヘパリンが浸出することを防止する。ヘパリンの浸出は、例えば、ヘパリンの表面への静電的結合を使用している従来技術において、問題になっている。
【００２０】
より具体的な実施態様では、前記ヘパリンが、共有末端結合によって前記固体基材に結合する。固体基材へのヘパリンの共有結合は、非共有結合に比べて、固定化される分子の表面密度及び配向性のようなパラメータを良くコントロール出来る。本発明者らは、これらのパラメータが、固定化されたヘパリン分子に対してヘパリン結合有害物質の最適結合を提供するために重要であることを見出した。１つの実施態様では、固体基材上のヘパリンの表面濃度は、１〜２０μｇ／ｃｍ2の範囲である。別の実施態様において、固体基材上のヘパリンの表面濃度は、５〜１５μｇ／ｃｍ2の範囲である。共有末端結合は、ヘパリンが、ヘパリン分子の末端残基を介して固体基材に共有結合的に結合することを意味する。
【００２１】
本発明の実施態様では、表面への全長ヘパリン分子の共有結合は、ヘパリン分子のアルデヒド基と表面に存在する第一級アミノ基の反応によって達成される。全ての炭水化物の固有の特性は、還元末端にヘミアセタールを有することである。このアセタールはアルデヒドの形態と平衡状態にあり、第一級アミンとシッフ塩基を形成することができる。これらのシッフ塩基は、次に還元されて安定な第二級アミンになることができる。本発明の装置の１つの実施態様では、前記ヘパリンは、安定な第二級アミノ基を介して前記固体基材に共有結合で結合される。
【００２２】
１つの実施態様では、装置は、ヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記の入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。
【００２３】
装置の固体基材は、好ましくは大きな表面積を有する材料を含んでもよい。装置の固体基材は、微粒子又は中空糸を含むことができるが、他の種類の固体基材が使用されてもよい。前記固体基材の全表面積は、０．１〜２０ｍ2の範囲、好ましくは０．５〜３ｍ2の範囲であればよい。本発明の或る実施態様では、前記固体基材の材料は、ガラス、セルロース、セルロースアセテート、キチン、キトサン、架橋デキストラン、架橋アガロース、架橋アルギン酸、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスルホン、ポリアクリロニトリル、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）及びポリウレタンから成るグループから選択される。
【００２４】
固体基材は、粒子又はビーズを含んでもよい。本発明の固体基材が粒子又はビーズである装置の１つの実施態様では、前記粒子又はビーズは、好ましくはポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の微粒子に一般に使用される他の材料も使用することができる。本発明の別の実施態様では、固体基材は、架橋多糖類を含む。
【００２５】
本発明の固体基材が中空糸を含む装置の実施態様では、前記中空糸は、好ましくはポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の中空糸に一般に使用される他の材料も使用することができる。中空糸は、好ましくはポリスルホンを含むことができる。
【００２６】
装置の固体基材は、もちろん大きな表面積を与える他の形状又は形態で存在してもよい。
【００２７】
固体基材のサイズ及び空孔率は、それぞれの適用又は処理に対して、許容される装置圧力損失で好適な血液流速が実現できるように選択されるべきである。高血液流量で低圧損を要求するある種の適用のために、より大きい径の粒子、孔、中空糸又は他の固体基材が要求される。高血液流量及び低圧損を必要としない他の適用では、より小さい径の粒子、孔、中空糸又は他の固体基材が使用されてもよい。従って、本発明の固体基材が粒子の形態で存在する実施態様では、粒径は、１０μｍ〜５ｍｍの範囲であればよい。粒径は、また、１０μｍ〜１，０００μｍの範囲であってもよい。一般に、２０〜２００μｍの範囲の粒径が有用であるが、高流速の適用では大きな粒子が必要である可能性がある。固体基材は、１本又はそれ以上の中空糸を含んでもよい。本発明の固体基材が中空糸の形態で存在する実施態様では、前記の中空糸の内径は、１μｍ〜１，０００μｍの範囲であればよい。一般に、内径は２０〜２００μｍの範囲が有用であるが、特定の用途においては、より大きい又は小さい径の糸が使用されてもよい。
【００２８】
本発明の装置は、好ましくは、意図される適用で必要とされる血流速度のために好適に寸法調整されるべきである。非限定的な例として、腎臓透析のための体外回路における血流速度は、一般に２００〜５００ｍＬ／分の範囲であるのに対して、酸素を与えるための体外回路における血流速度は、一般に２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲である。急性敗血症の治療のための体外回路におけるような或る適用においては、血流速度はより低く、例えば、１〜１００ｍＬ／分の範囲である。
【００２９】
従って、１つの実施態様において、本発明の装置は、２００〜５００ｍＬ／分の血流に好適である。別の実施態様において、本発明の装置は、２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流に好適である。更に別の実施態様において、本発明の装置は、１〜１００ｍＬ／分の血流に好適である。
【００３０】
体外循環用の血液接触医療機器内の局所血流パターンは、停滞域でずり活性化（shear activation）による血塊形成及び血小板凝集に影響することが知られている。従って、本発明の装置は、これらの問題が生じない方式に設計されるべきである。
【００３１】
１つの実施態様において、本発明の装置は、静脈から静脈、又は動脈から静脈への体外バイパス回路状に配列される。そのような回路には、更にポンプ、チューブ及びカニューレが含まれてもよい。装置は、好ましくは、さまざまな医療処置に要求される血流に、好適であればよい。
【００３２】
別の実施態様において、本発明の装置は、装置を通して血液を輸送するポンプを含む。特定の実施態様では、装置は、他の機器に独立して操作できる独立型ユニットとして存在してもよい。
【００３３】
本発明の第１の側面の実施態様では、装置は、体外回路と共に使用するために配置されるカラムである。カラムはヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含み、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。ヘパリン化固体基材は、約１０μｇ／ｃｍ2の表面濃度で、共有末端結合した全長ヘパリンによってコーティングされる。
【００３４】
本発明による装置は、例えば、敗血症性ショック、敗血症、播種性血管内凝固、自己免疫疾患、移植拒絶反応のような適応症の治療又は予防に有用である可能性がある。他の臨床応用は、微小生物（例えば、マラリア、Ｃ型肝炎及びＨＩＶ）及びヘパリン結合性毒（例えば、ヘビ毒）の除去を含む。人工肺及び透析装置を含む従来の体外循環用の回路と組み合わせた本発明の装置の使用は、そのような回路の長期使用に関連する罹病率及び死亡率を低下させるだろう。
【００３５】
本発明の有害物質は、例えば、炎症誘発性細胞又は炎症誘発性タンパク質のような炎症誘発性メディエーターであってもよい。しかし、本発明の装置は、炎症誘発性細胞及び炎症誘発性タンパク質の除去に限定されない。ヘパリンに結合親和性を有するいかなる内因性又は外因性分子も、本発明の装置を用いて除去することができる。同様に、ヘパリンに結合親和性を有する分子を含む微生物は、本発明の装置を用いて除去することができる。本発明による装置を用いて、血液から除去することができる微生物及び分子には、例えば、細菌、ウイルス及び寄生虫から成るグループから選択される微生物、及び付随的にそのような微生物によってコードされる又はそれに関連するタンパク質又は他の分子が含まれる。
【００３６】
１つの実施態様では、前記有害物質は、ウイルスである。より具体的な実施態様では、前記ウイルスは、単純ヘルペスウイルス１型、単純ヘルペスウイルス２型、インフルエンザＡウイルス、サイトメガロウイルス及びヒト免疫不全ウイルスから成るグループから選択される。別のより具体的な実施態様では、前記ウイルスは、単純ヘルペスウイルス１型又は単純ヘルペスウイルス２型から成るグループから選択される。
【００３７】
別の実施態様において、前記有害物質は、細菌である。より具体的な実施態様では、前記細菌は、ストレプトコッカス・ニューモニエ（Streptococcus pneumoniae）のような連鎖球菌、スタフィロコッカス・アウレウス（Staphylococcus aureus）のようなブドウ球菌、エシェリキア・コリ（Escherichia coli）のような大腸菌、シュードモナス・エルギノーサ（Pseudomonas aureginosa）のような緑膿菌、ニューモコッカス・タイプ２（Pneumococcus type 2）のような肺炎球菌から成るグループから選択される。好ましい実施態様では、前記有害物質は、スタフィロコッカス・アウレウスである。
【００３８】
更に別の実施態様では、前記有害物質は、寄生虫である。より具体的な実施態様では、前記原虫は、熱帯熱マラリア原虫（Plasmodium falciparum）及びクルーズトリパノソーマ（Tryoanosoma cruzi）から成るグループから選択される。
【００３９】
更なる実施態様では、炎症誘発性メディエーターは、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ及び炎症性顆粒球から成るグループから選択される炎症誘発性細胞であってもよい。
【００４０】
その上更なる実施態様では、炎症誘発性メディエーターは、炎症誘発性サイトカインのような炎症誘発性タンパク質であってもよい。炎症誘発性タンパク質の例として、J. Biol. Chem., 2007, Mar 30;282(13):10018-27 に開示されているようなヘパリン結合モチーフを含むタンパク質、及び腫瘍壊死因子、インターロイキン−１、インターロイキン−６、プロテインＣ、インターロイキン−８、高速移動群ボックス１タンパク質又はマクロファージ遊走阻止因子から成るグループから選択されるタンパク質が挙げられる。より具体的な実施態様では、前記炎症誘発性サイトカインは、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）、腫瘍壊死因子ベータ（ＴＮＦ−β）、インターロイキン−１（ＩＬ−１）及びインターロイキン−６（ＩＬ−６）から成るグループから選択される。
【００４１】
その第２の側面では、本発明は、哺乳類の血液から有害物質を体外除去するための、以下の工程：
ａ）哺乳類の血液のサンプルを備える；
ｂ）該サンプルを、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）該有害物質が少なくとも部分的に固体基材に保持されるように、サンプルを固体基材から分離する；そして
ｄ）減少した量の上記有害物質を含有する上記サンプルを回収する；
を含む方法を提供する。
【００４２】
本発明の第２の側面の実施態様において、この方法の工程ｂ）及びｃ）は、本発明の第１の側面によって画成された装置を用いて実施される。本発明の第２の側面に記載の方法の更なる実施態様は、本発明の第１の側面に記載された装置について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質、哺乳類の血液、固体基材及びヘパリン固定化に関して特定した実施態様に対応する。
【００４３】
その第３の側面では、本発明は、有害物質によって引き起こされ又は悪化した状態に苦しむ哺乳類の対象を治療するための、以下の工程：
ａ）対象（subject）から血液を採取する；
ｂ）採取した血液を、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）減少した量の上記有害物質を含有する血液を、対象の血流に再導入する；
を含む方法を提供する。
【００４４】
本発明の第３の側面の実施態様において、この方法の工程ｂ）は、本発明の第１の側面によって画成された装置を用いて実施される。本発明の第３の側面に記載の方法の更なる実施態様は、本発明の第１の側面に記載された装置について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質、哺乳類の血液、固体基材及びヘパリン固定化に関して特定した実施態様に対応する。
【００４５】
１つの実施態様において、本発明の方法は、哺乳類の血液から炎症誘発性サイトカインを除去するために使用することができる。
【００４６】
その第４の側面では、本発明は、従来の体外血液処理装置と本明細書に記載の有害物質の除去のための装置を含む、血液又は血液成分の体外循環のための装置を提供する。
【００４７】
患者の敗血症又は腎不全のような病態の治療には、しばしば透析装置を含む体外回路での患者血液の処理を必要とする。体外血液処理で使用される処理法は、それ自体炎症誘発性サイトカインの活性化を誘導し、治療中の患者の血流におけるこれらの物質の増加をもたらす可能性がある。サイトカインの活性化は、例えば、体外循環血液処理システムのチューブ、接続部及び部品を通って輸送される間に、血液に加わる機械的ストレスによって引き起こされる可能性がある。これが重要な問題となる別の例は、例えば、外傷後の急性呼吸不全の間、血液に酸素を与えるために使用される人工肺である。特に、狭い直径の孔又は通路を通す血液輸送は、血液中に存在する血液細胞に対してずり応力を起こす可能性がある。また、血液を接触させる様々な成分の表面材料は、血液中の炎症誘発性サイトカインの活性化に影響を及ぼす可能性がある。本発明による装置は、従来の血液処理装置で発生する炎症誘発性サイトカインの活性化に関連する問題を減少させる。
【００４８】
本発明の第４の側面による方法の実施態様は、本発明の第１の側面に記載された方法について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質及び哺乳類の血液に関して特定した実施態様に対応する。
【００４９】
装置の実施態様では、前記の従来の体外血液処理装置は、血液に酸素を与えるための装置である。
【００５０】
装置の別の実施態様では、前記の従来の体外血液処理装置は、血液透析用の装置である。
【００５１】
他のタイプの従来の体外血液処理装置も、また、本発明の装置に使用することが考えられる。
【００５２】
本発明の装置では、有害物質の除去のための装置は、好ましくは従来の体外血液処理装置の下流に配置すべきである。
【００５３】
本発明の装置の好ましい実施態様では、前記の有害物質除去のための装置は、固体基材に固定化されたヘパリンを含む。
【００５４】
有害物質除去のための装置の固体基材は、好ましくは大きな表面積を有する材料を含んでもよい。装置の固体基材は、微粒子又は中空糸を含むことができるが、他の種類の固体基材が使用されてもよい。前記固体基材の全表面積は、０．１〜２０ｍ2の範囲であればよく、好ましくは０．５〜３ｍ2の範囲であればよい。
【００５５】
固体基材は、粒子又はビーズを含んでもよい。固体基材が粒子又はビーズである装置の実施態様では、前記の粒子又はビーズは、好ましくは、ポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の微粒子に一般に使用される他の材料も使用することができる。別の実施態様では、固体基材は、架橋多糖類を含む。
【００５６】
固体基材が中空糸を含む装置の実施態様では、前記中空糸は、好ましくは、ポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の中空糸に一般に使用される他の材料も使用することができる。
【００５７】
装置の固体基材は、また、もちろん大きな表面積を与える他の形状又は形態で存在してもよい。
【００５８】
本発明による装置の固体基材が粒子の形態で存在する実施態様において、粒径は、１０μｍ〜５ｍｍの範囲であればよい。粒径はまた、１０μｍ〜１，０００μｍの範囲であってもよい。一般的に、２０〜２００μｍの範囲の粒径が有用であるが、高流速の適用では大きな粒子が必要である可能性がある。固体基材は、１本又はそれ以上の中空糸を含んでもよい。本発明の固体基材が中空糸の形態で存在する実施態様では、前記の中空糸の内径は、１μｍ〜１，０００μｍの範囲であればよい。一般に、内径は２０〜２００μｍの範囲が有用であるが、特定の用途においては、より大きい又は小さい径の糸が使用されてもよい。
【００５９】
有害物質を除去するための装置は、好ましくはヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記の入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。
【００６０】
本発明の装置は、好ましくは、意図される適用で必要とされる血流速度に適した寸法に調整すべきである。従って、１つの実施態様において、本発明の装置は、２００〜５００ｍＬ／分の血流に好適である。別の実施態様において、本発明の装置は、２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流に好適である。更に別の実施態様において、本発明の装置は、１〜１００ｍＬ／分の血流に好適である。有害物質の除去のための装置は、好ましくは、停滞域でずり（shear）活性化を介する血塊形成及び血小板凝集を起こさない方式に設計されるべきである。
【００６１】
前記ヘパリンの表面濃度は、好ましくは１〜２０μｇ／ｃｍ2の範囲であり、５〜１５μｇ／ｃｍ2の範囲が好ましい。前記装置の固定化ヘパリンは、好ましくは共有結合で固体基材に結合され得る。前記装置の固定化ヘパリンは、安定な第二級アミノ基を介して共有結合で固体基材に結合され得る。より好ましくは、前記装置の固定化ヘパリンは共有末端結合した全長ヘパリンである。従って、本発明の第４の側面による装置の実施態様では、有害物質を除去するための装置は、本発明の第１の側面に関して先に開示したような装置であってもよい。
【００６２】
その第５の側面では、本発明は、血液又は血液成分の体外処理のために上記で定義した装置の使用を提供する。
【００６３】
１つの実施態様では、上記で定義された装置は、血液透析を必要としている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは２００〜５００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６４】
別の実施態様において、上記で定義された装置は、酸素投与を必要としている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６５】
更に別の実施態様では、上記で定義された装置は、急性敗血症に罹っている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは１〜１００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６６】
本発明の装置の更なる用法は、血液の体外処理の当業者には明らかである。
本発明の更なる態様では、全長ヘパリンを固体基材に共有末端結合させる方法が提供され、前記方法は以下の工程：
ａ）第一級アミノ官能基を有する固体基材を備える；
ｂ）該固体基材を、水性媒体中で全長ヘパリン及び還元剤と混合する；
ｃ）ヘパリンを、アミノ官能基に還元的に結合させる；そして
ｄ）表面に共有結合した全長ヘパリンを有する固体基材を回収する；
を含む。
【００６７】
１つの実施態様において、混合物中の全長ヘパリンの初期濃度は、２０〜５０ｇ／Ｌの範囲である。本発明の方法で使用される還元剤は、有機合成の当業者によって認識されているような、任意の好適な還元剤であればよい。１つの実施態様において、還元剤は、ＮａＢＨ3ＣＮである。本発明の方法の工程ｃ）の還元的結合は、好ましくは、３〜５の範囲のｐＨ値で行われ得る。本発明の方法の工程ｃ）の還元的結合は、好ましくは、高温で行われ得る。１つの実施態様において、前記の還元的結合は、６０℃、２４時間で行われる。その方法は、場合により、還元的結合の工程ｃ）の間に、２回目のＮａＢＨ3ＣＮを添加する追加の工程を含んでもよい。
【００６８】
本明細書で用いられるように、「血液」及び「血液成分」の用語は、哺乳類の全血、血漿及び／又は、例えば、赤血球又は血小板のような血球を指す。血液又は血液成分は、希釈又はさもなければ修飾される可能性があることが意図されている。
【００６９】
本明細書で用いられるように、用語「全長ヘパリン」は、固体表面に結合する反応性末端基を得るための切断がなされていないヘパリン又はその誘導体を意味する。生体内に存在するような全長ヘパリンの分子量は、一般的に約３〜４０ｋＤａの範囲に分布している。市販ヘパリン製剤に含まれるヘパリンの分子量は、一般に１５〜２５ｋＤａの範囲に分布している。全長ヘパリンの平均分子量は、約２１ｋＤａである。
【００７０】
本明細書で用いられるように、用語「有害物質」は、疾患又は障害の症候を示す、炎症誘発性サイトカインのような有害物質と同様、哺乳類における病気又は疾患の原因となる、ウイルス、細菌又は寄生虫のような微生物を含んでもよい。有害な微生物の例としては、スタフィロコッカス属菌、ＨＩＶ、Ｃ型肝炎、デング熱ウイルス及びマラリア起因菌のプラスモジウム属菌が挙げられる。有害物質は、例えば、単純ヘルペスウイルス１型、単純ヘルペスウイルス２型、インフルエンザＡウイルス、サイトメガロウイルス及びヒト免疫不全ウイルスなどのウイルスであってもよい。有害物質は、例えば、ストレプトコッカス・ニューモニエのような連鎖球菌、スタフィロコッカス・アウレウスのようなブドウ球菌、エシェリキア・コリのような大腸菌、シュードモナス・エルギノーサのような緑膿菌、ニューモコッカス・タイプ２のような肺炎球菌から成るグループから選択される細菌であってもよい。有害物質は、例えば、熱帯熱マラリア原虫又はクルーズトリパノソーマのような原虫であってもよい。有害物質は、例えば、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ又は炎症性顆粒球のような炎症誘発性細胞であってもよい。有害物質は、また、例えば、炎症誘発性サイトカインのような炎症誘発性タンパク質、例えば、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）、腫瘍壊死因子ベータ（ＴＮＦ−β）、インターロイキン−１（ＩＬ−１）及びインターロイキン−６（ＩＬ−６）であってもよい。上記の有害物質の例は、本発明の範囲を制限すると見なされるべきではない。当業者によって容易に認識されるように、全ての種類のヘパリン結合性有害物質は、本発明によって開示される装置又は器具又は方法を用いて除去することができる。
【００７１】
本明細書で用いられるように、用語「炎症誘発性細胞」は、哺乳動物における炎症反応に関与する細胞を意味する。「炎症誘発性細胞」の例としては、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ及び炎症性顆粒球を含む。
【００７２】
本明細書で用いられるように、用語「炎症誘発性タンパク質」は、例えば、微生物感染又は免疫付与に伴って放出されるサイトカインのようなタンパク質を意味する。
【００７３】
本明細書で用いられるように、用語「サイトカイン」は、例えば、微生物感染又は免疫付与に伴って放出される、インターロイキン、インターフェロン、ケモカイン及び腫瘍壊死因子から成るグループから選択されるタンパク質を意味する。
【実施例】
【００７４】
〔実施例１〕
表面固定化ヘパリンの一般的な定量方法
本方法の原理は、酸性水溶液におけるヘパリンと亜硝酸ナトリウムの間の化学反応に基づく。ヘパリンのＤ−グルコサミン単位は、グリコシド結合の切断と同時に、２，５−アンヒドロＤ−マンノースに変換される。２，５−アンヒドロＤ−マンノースの末端アルデヒド基は、３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンヒドラゾン塩酸塩水和物（ＭＢＴＨ）と反応し、塩化鉄（ＩＩＩ）・六水和物（ＦｅＣｌ3・６Ｈ2Ｏ）の存在で着色した錯体を形成する。錯体の色強度は、６５０ｎｍの波長で分光光度計で測定する。
【００７５】
〔実施例２〕
セファデックスＧ１０のアミノ化
メタ過ヨウ素酸ナトリウム（ＮａＩＯ4、１２．０ｇ）を水（１．６Ｌ）に溶解し、セファデックスＧ１０（１００ｇ）に添加した。混合物は、振とうしながら１７時間暗所に保持した。濾過し、水（４Ｌ）で洗浄し、最後に０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（１Ｌ）で洗浄した後、得られた生成物を、２００ｍＬの Lupasol（登録商標）（５％水溶液）を含む０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（１．２Ｌ）に懸濁させた。
ゲルは、ＮａＢＨ3ＣＮの水溶液を添加して安定化させた。シアノ水素化ホウ素ナトリウム（１．０ｇ）を含む０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（２００ｍＬ）を、ゲル混合物に添加した。混合物は、振とうしながら室温で２４時間保持した。ゲルを濾別し、水（２Ｌ）、０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（２Ｌ）、水（２Ｌ）、０．１Ｍ酢酸衝液、ｐＨ４．０（２Ｌ）及び水（２Ｌ）で洗浄した。ゲルは、風乾した。
【００７６】
〔実施例３〕
ポリエチレンビーズのアミノ化
エッチング：
ポリエチレンビーズ（ＰＥビーズ）（直径おおよそ３００μｍ、６０ｇ）は、クロロホルム（２００ｍＬ）中で攪拌して１時間洗浄した。ビーズを、ガラスフィルター上に集め、３×５０ｍＬのクロロホルムで洗浄し、放置して風乾した。過マンガン酸カリウム（ＫＭｎＯ4、１．２ｇ）を濃硫酸（６００ｍＬ）に溶解し、予洗浄したビーズを添加した。懸濁液を５分間攪拌した。ビーズをガラスフィルター上に集め、注意深く水（５Ｌ）で洗浄し、風乾した。
【００７７】
エッチングしたビーズのアミノ化
以下の溶液を調製した：
水性ホウ酸緩衝液：ホウ酸（５３．０ｇ）及び塩化ナトリウム（３．５ｇ）を、水（５．０Ｌ）に加えた。生成した溶液のｐＨ値を、水酸化ナトリウムのペレットを加えて９．０に調整した。
Ｓ１：水性ホウ酸緩衝液（５．０Ｌ）に、クロトンアルデヒド（１．７ｍＬ）及びLupasol（登録商標）（５．０ｍＬ、５％水溶液）を添加し、溶液Ｓ１を得た。
Ｓ２：塩化ナトリウム（１４６．５ｇ）及びデキストラン硫酸（０．５ｇ）を水（５．０Ｌ）に加えた。生成した溶液のｐＨ値を、１Ｍ塩酸を加えて３．０に調整し、Ｓ２溶液を得た。
Ｓ３：Lupasol（登録商標）（２５ｍＬ、５％水溶液）を、水（２．５Ｌ）に添加し、１ＭＮａＯＨでｐＨを９．０に調整し、溶液Ｓ３を得た。
【００７８】
コーティング手順
１．エッチングされたＰＥビーズをＳ１（２．５Ｌ）に添加した。懸濁液を、室温で１０分間攪拌した。
２．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
３．ビーズをＳ２（２．５Ｌ）に添加した。懸濁液を６０℃で１０分間攪拌した。
４．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
５．工程１を新しいＳ１で繰り返した。
６．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
７．工程２を新しいＳ２で繰り返した。
８．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
９．得られたビーズをＳ３（２．５Ｌ）に添加し、懸濁液を室温で１０分間攪拌した。
１０．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（５．０Ｌ）で洗浄し、アミノ化ＰＥビーズを得た。
【００７９】
〔実施例４〕
亜硝酸分解ヘパリンのアミノ化クロマトグラフィーゲルへの共有末端結合
実施例２に記載したようにアミノ化したセファデックスＧ１０（１０ｇ）を、０．１Ｍ酢酸緩衝液ｐＨ４．０（１００ｍＬ）に懸濁し、亜硝酸分解ヘパリン（１．６ｇ）を添加した。１５分間振とうした後、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（１０ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。反応混合物は、室温で２４時間振とうし、そして追加の０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（１０ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加し、室温で更に２４時間振とうを継続した。
ゲルを濾過し、水（２００ｍＬ）、０．１７Ｍホウ酸緩衝液ｐＨ９．０（２５０ｍＬ）及び水（２Ｌ）の順で洗浄した。ゲルは、風乾した。
セファデックスＧ１０ビーズは、約１００μｍの平均直径を有する。概算では、１ｃｍ3は１０6個のビーズを含み、３００ｃｍ2／ｃｍ3の表面積を与えることになる。ヘパリン化セファデックスゲルの硫黄の分析の結果、０．０２４％の硫黄が得られた。 更に、ヘパリンがビーズの表面だけに結合したとすれば、ヘパリン化セファデックスＧ１０は、約７μｇ／ｃｍ2のヘパリンを有していた。
【００８０】
〔実施例５〕
亜硝酸分解ヘパリンのアミノ化ＰＥビーズへの共有末端結合
実施例３に記載したように製造したアミノ化ＰＥビーズを、実施例４に記載したようにヘパリン化した。
実施例１に記載の手順に従って、ヘパリン化ＰＥビーズは、２．６ｍｇ／ｇビーズのヘパリンを含むことが決定された。
【００８１】
〔実施例６〕
全長ヘパリンのアミノ化クロマトグラフィーゲルへの共有末端結合
実施例２におけるようにアミノ化したセファデックスＧ１０（１０ｇ）を、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（４５ｍＬ）に懸濁し、ＮａＣｌ（１．４６ｇ）及び全長ヘパリン（１．６ｇ）を添加した。０．５時間振とうした後、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（５ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。反応混合物を６０℃で２４時間振とうした。８時間後、追加のＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。ゲルを濾過し、水（２００ｍＬ）、０．１７Ｍホウ酸緩衝液ｐＨ９．０（２５０ｍＬ）及び水（２Ｌ）の順で洗浄した。ゲルは、風乾した。
セファデックスＧ１０ビーズは、約１００μｍの平均直径を有する。概算では、１ｃｍ3は１０6個のビーズを含み、３００ｃｍ2／ｃｍ3の表面積を与えることになる。ヘパリン化セファデックスゲルの硫黄の分析の結果、０．０３７％の硫黄が得られた。 更に、ヘパリンがビーズの表面だけに結合したとすれば、ヘパリン化セファデックスＧ１０は約１１μｇヘパリン／ｃｍ2を有していた；即ち、全長ヘパリンを用いた場合、分解ヘパリンを使用した場合よりも約３６％多いヘパリンが固定化された（実施例４を参照）。
【００８２】
〔実施例７〕
全長ヘパリンのアミノ化ＰＥビーズへの共有末端結合
実施例３に記載したように製造したアミノ化ＰＥビーズを、実施例６に記載したようにヘパリン化した。
実施例１に記載の手順に従って、ヘパリン化ＰＥビーズは、２．６ｍｇヘパリン／ｇビーズ含むことが決定された。
【００８３】
〔実施例８〕
亜硝酸分解ヘパリンの中空糸内腔への共有末端結合
この実施例では、小児のヘモフロー（haemoflow）透析器を使用した。 中空糸はポリスルホン製で、内径が２００μｍ、壁厚が４０μｍであった。 材料と血液が接触する総表面積は４０００ｃｍ2であり、プライミング容積は２８ｍＬであった。
アミノ化の手順は、エッチング工程が省略される以外は、ＰＥビーズについて実施例３で説明したように行った。 ポリスルホンは親水性であり、エッチングする必要はなかった。ヘパリンの固定化は、基本的に実施例４に記載したように、亜硝酸分解ヘパリンとＮａＢＨ3ＣＮを含む溶液を中空糸内にポンプ注入することによって行った。
ヘパリン量の測定は破壊的方法であるため、同一条件下でヘパリン化された対照透析器を犠牲にし、その中空糸を硫黄の分析に供した。 その結果、約５μｇヘパリン／ｃｍ2のヘパリン含量であること、そしてそれは、装置内では２０ｍｇのヘパリン含量に相当することが明らかになった。
【００８４】
〔実施例９〕
全長ヘパリンの中空糸内腔への共有末端結合
実験は、全長ヘパリンが使用されることを除けば、実施例８に記載した通りに行った。その結果、約８μｇヘパリン／ｃｍ2のヘパリン含量であること、そしてそれは、装置内では３２ｍｇのヘパリン含量に相当することが明らかになった。
【００８５】
〔実施例１０〕
血漿中の腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）のヘパリン化ＰＥビーズへの付着
亜硝酸分解ヘパリン（実施例５に記載の通りに製造）又は全長ヘパリン（実施例７に記載の通りに製造）を有するＰＥビーズを使用した。２００ｍｇのビーズを、差込み継手蓋付きのカラム（MoBiTec, M1002）（１ｍＬ）に添加した。
ヒト患者から採取した４ｍＬの血漿から、サンプル（０．５ｍＬ）をシリンジで抜き取った。血漿サンプルを、それぞれのカラムに３０秒間で通した。カラムを通過させる前及び通過後のサンプル中のＴＮＦ−α含有量は、EVOLIS機器（BioRad）で、Quantikine （登録商標）ヒトＴＮＦ−α／ＴＮＦＳＦ１Ａ高感度ＥＬＩＳＡキット（R&D Systems）を用いて測定した。
亜硝酸分解ヘパリンを有する２００ｍｇのＰＥビーズのカラムを通過した後、サンプル中に残ったＴＮＦ−α濃度は、４．５ｐｇ／ｍＬであった。全長ヘパリンを有する２００ｍｇのＰＥビーズのカラムを通過した後、サンプル中に残ったＴＮＦ−α濃度は、４．１ｐｇ／ｍＬであった。このように、全長ヘパリン（Ｍｗ：２０ｋＤａ）でヘパリン化された２００ｍｇのビーズを通過した血漿のＴＮＦ−α濃度の低下は、亜硝酸分解ヘパリン（Ｍｗ：８ｋＤａ）でヘパリン化されたビーズでの減少よりもより大きかった。
【００８６】
〔実施例１１〕
アンチトロンビン（ＡＴ）のヘパリン化ＰＥビーズへの付着
亜硝酸分解ヘパリン（実施例５に記載の通りに製造）又は全長ヘパリン（実施例７に記載の通りに製造）を有するＰＥビーズを使用した。２００ｍｇのビーズを、差込み継手蓋付きのカラム（MoBiTec, S1012）（２．５ｍＬ）に添加した。
トリス緩衝液（ｐＨ７．４）中に２ＩＵ／ｍＬのヒトアンチトロンビンＩＩＩ（Octapharma）の溶液を、カラムに添加した。１５分間インキュベーションした後、固定化ヘパリン上の低親和性部位に結合したアンチトロンビンを、トリス緩衝液で数回洗浄して除去した。 次に、固定化ヘパリン上の高親和性部位に結合したアンチトロンビンは、トリス緩衝液に１ｍｇヘパリン／ｍＬの大容量を使用して溶離した。得られた溶出液のヘパリン・アンチトロンビン複合体含有量は、Berichrom Antithrombin III試薬（Sysmex）を用いてSysmex CA 1500機器（Sysmex）で測定した。 結果を表１に示す。
【００８７】
【表１】
【００８８】
これらの結果から、全長ヘパリンは、亜硝酸分解ヘパリンよりも質量単位当たり１．５倍多くのアンチトロンビンと結合することは明らかである。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンを含む装置に関する。本発明はまた、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質を体外除去する方法に関する。本発明は、更に、固体基材に、全長ヘパリンを共有末端結合させる方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
敗血症は、最も一般的には、グラム陰性菌の全身性感染によって誘発され、そして今日、抗生物質耐性細菌株によって起こった感染が主たる問題をなす場合、予防と治療のための代わりの方法が必要である。初期の生体外及び生体内での研究は、固定化されたヘパリンを含む組成物が、微生物感染に対して予防的な特性を有することを明らかにしている。また、体外回路の生体不適合によって引き起こされる炎症反応は、重大な臨床上の問題であり、最終的に敗血症を引き起こす可能性がある。
【０００３】
ヘパラン硫酸は、殆ど全ての哺乳類細胞の表面に存在するプロテオグリカンである。微生物の多くは、哺乳類細胞の表面のヘパラン硫酸を受容体として利用する。更に、炎症細胞及びサイトカインは、結合及び活性化のために細胞表面上のヘパラン硫酸を利用する。ヘパリンは、哺乳類組織の肥満細胞の好塩基顆粒内プロテオグリカンから分離される１５〜２５ｋＤａの分子量を有する別のプロテオグリカンである。ヘパリンとヘパラン硫酸の間の構造的類似性により、固体表面に固定化されたヘパリンは、炎症細胞及びサイトカインと同様に、細菌、ウイルス及び寄生虫も結合する。
【０００４】
炎症誘発状態の進行は、敗血症、ウイルス血症、急性又は慢性腎疾患、心臓血管疾患、血液量減少性ショック、アナフィラキシー反応及び自己免疫疾患を含む多くの哺乳類の疾患における罹病率及び死亡率の劇的な増加に関連する。組織損傷及び臓器機能障害は、外来微生物によってだけでなく、そのような感染に反応して放出される炎症誘発性メディエーターによって、又は従来の体外回路による表面活性化（補体活性化など）によっても、引き起こされる可能性がある。サイトカイン（腫瘍壊死因子、インターロイキン−１、インターロイキン−６など）及び非サイトカイン（一酸化窒素、血小板活性化因子、補体及びエイコサノイド）は、代償的な組織の損傷を加え、複数の臓器系の機能障害及び生物細胞の死の一因となる可能性がある。細菌、寄生虫、真菌又はウイルス由来の成分は、多くの細胞タイプによって炎症誘発性サイトカインの活性化を惹起する可能性がある。マクロファージ、リンパ球及び顆粒球を含む炎症細胞が活性化される。感染に反応して内在性の抗炎症メディエーターが放出され、重篤な全身性の炎症反応をコントロールするために作用する。最初に、病原性微生物を除去することが、炎症反応を減退させるために極めて重要である。第２に、炎症性メディエーターのネガティブ・フィードバックとポジティブ・フィードバックの間の脆弱なバランスは、細胞損傷を調節しそして臨床転帰に影響を及ぼす重要な要因であり、従って、循環する炎症誘発性刺激物及び／又は炎症誘発性サイトカインを減少させることは、敗血症性合併症をコントロールする重要な事象である。
【０００５】
特許文献１は、微生物とアガロースに固定化されたヘパリンとの相互作用に基づいて、フラビウイルス及び他の出血性ウイルスの分離、診断及び治療の方法を開示している。特許文献１で使用されるヘパリンアガロースは、アガロース上に固定化された切断されたヘパリン分子を含む。
【０００６】
非特許文献１では、炎症誘発性サイトカインが、ヘパリンコーティングの体外回路を用いて吸着される。体外回路は、静電気的に多数点で結合したヘパリンによるBaxter Duraflo IIヘパリン表面を備えている。
【０００７】
血液の体外処理のための改善された方法及び装置についての要望が存在する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】米国特許第６，１９７，５６８号
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Artificial Organs, 26(12)：1020-1025 (2002)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明の目的は、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質の体外除去のための改善された装置及び方法を提供することである。
【００１１】
本発明の別の目的は、例えば、血液透析又は酸素投与用の従来の体外循環システムに使用し、哺乳類の血液又は血液成分から有害物質を除去するための装置を提供することである。
【００１２】
本発明の更なる目的は、全長ヘパリンを、ヘパリン分子の必要な生物学的活性を変化させないで装置に固定化させる方法を提供することである。更に、その表面は、使用される反応条件下で、特にヘパリンの浸出に関して安定でなければならない。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
その第１の側面において、本発明は、血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンを含む装置を提供する。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
表面のヘパリン化のために現在使用されている最も有効な技術は、Carmeda Bioactive Surface（CBAS（登録商標））である。CBAS（登録商標）表面の調製では、表面に末端結合するヘパリン断片に反応基を付与するために、ヘパリン分子は切断される。多糖類の末端結合は、ヘパリンの結合相手が、ヘパリン分子に接近し結合することを可能にするために必要である。CBAS（登録商標）法によって結合されるヘパリン分子の平均分子量は、６〜９ｋＤａである。
【００１５】
本発明による装置ではヘパリン固定化技術が使用され、この場合平均分子量が２１ｋＤａ以上の全長ヘパリン分子が表面に末端結合される。本発明の方法を使用すると、現在のCBAS（登録商標）の技術状態と比較して、表面に付着するヘパリンの量を、ほぼ倍増させることができる。本発明の方法によって結合した長い鎖は、また、ヘパリン結合相手が結合に利用できる、大量の接近可能なヘパリンオリゴマーをもたらすスペーサ機能をも備える。
【００１６】
本発明者らは、本発明による全長ヘパリンでコーティングされた表面は、一般に従来技術で使用されるようなヘパリン断片でコーティングされた従来の表面よりも効率的に、ＴＮＦ−αを結合することを見出した。従来技術では、殆どのヘパリンコーティング表面は、固体基材にヘパリン断片を結合させるために役立つ反応基を得るために、ヘパリン分子の断片化を含む方法によって製造されている。全長ヘパリンを固体表面に連結させるこれまでの試みは、結合したヘパリン表面濃度が低く、実際の適用に役に立たないヘパリン表面をもたらした。他の全長ヘパリンを固体表面に結合させるこれまでの試みでは、ヘパリンの結合能力を大きく低下させる、固体基材へのヘパリン分子の多点結合が生じている。
【００１７】
従って、本発明の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、１０ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、１５ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の更に別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、２１ｋＤａを超える平均分子量を有する。本発明の更に別の実施態様では、固定化されたヘパリン分子は、３０ｋＤａを超える平均分子量を有する。好ましくは、固定化されたヘパリン分子は、１５〜２５ｋＤａの範囲の平均分子量を有する。平均分子量は、また、２５〜３５ｋＤａの範囲のように、より大きくてもよい。
【００１８】
本発明による装置の固定化されたヘパリン分子の平均分子量は、従って、現行の技術で使用されるヘパリン分子の平均分子量よりも著しく大きい。本発明に従って使用される全長ヘパリン分子は、固体基材の表面積単位当たり結合できるヘパリン結合分子の量の観点、及び固定化された全長ヘパリン分子によって提示される結合モチーフの選択支の増加によって、表面によって結合し得る分子の範囲の観点、の両者から、ヘパリン結合分子に対する改善された結合能力を提供する。
【００１９】
本発明は、末端結合した全長ヘパリンを持つ表面の製造法に関するものであり、その方法は、高い全長ヘパリン表面濃度を有する全長ヘパリンでコーティングされた表面をもたらす。本発明のさまざまな側面で用いられる全長ヘパリン分子は、従来技術のヘパリン表面と比較すると、単位表面積当たりのヘパリン結合実体の結合能力に、大幅な増加をもたらす。ヘパリンは、好ましくは共有結合で前記固体基材に結合する。ヘパリン分子の共有結合は、ヘパリンコーティング表面との接触で血液中にヘパリンが浸出することを防止する。ヘパリンの浸出は、例えば、ヘパリンの表面への静電的結合を使用している従来技術において、問題になっている。
【００２０】
より具体的な実施態様では、前記ヘパリンが、共有末端結合によって前記固体基材に結合する。固体基材へのヘパリンの共有結合は、非共有結合に比べて、固定化される分子の表面密度及び配向性のようなパラメータを良くコントロール出来る。本発明者らは、これらのパラメータが、固定化されたヘパリン分子に対してヘパリン結合有害物質の最適結合を提供するために重要であることを見出した。１つの実施態様では、固体基材上のヘパリンの表面濃度は、１〜２０μｇ／ｃｍ2の範囲である。別の実施態様において、固体基材上のヘパリンの表面濃度は、５〜１５μｇ／ｃｍ2の範囲である。共有末端結合は、ヘパリンが、ヘパリン分子の末端残基を介して固体基材に共有結合的に結合することを意味する。
【００２１】
本発明の実施態様では、表面への全長ヘパリン分子の共有結合は、ヘパリン分子のアルデヒド基と表面に存在する第一級アミノ基の反応によって達成される。全ての炭水化物の固有の特性は、還元末端にヘミアセタールを有することである。このアセタールはアルデヒドの形態と平衡状態にあり、第一級アミンとシッフ塩基を形成することができる。これらのシッフ塩基は、次に還元されて安定な第二級アミンになることができる。本発明の装置の１つの実施態様では、前記ヘパリンは、安定な第二級アミノ基を介して前記固体基材に共有結合で結合される。
【００２２】
１つの実施態様では、装置は、ヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記の入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。
【００２３】
装置の固体基材は、好ましくは大きな表面積を有する材料を含んでもよい。装置の固体基材は、微粒子又は中空糸を含むことができるが、他の種類の固体基材が使用されてもよい。前記固体基材の全表面積は、０．１〜２０ｍ2の範囲、好ましくは０．５〜３ｍ2の範囲であればよい。本発明の或る実施態様では、前記固体基材の材料は、ガラス、セルロース、セルロースアセテート、キチン、キトサン、架橋デキストラン、架橋アガロース、架橋アルギン酸、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスルホン、ポリアクリロニトリル、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）及びポリウレタンから成るグループから選択される。
【００２４】
固体基材は、粒子又はビーズを含んでもよい。本発明の固体基材が粒子又はビーズである装置の１つの実施態様では、前記粒子又はビーズは、好ましくはポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の微粒子に一般に使用される他の材料も使用することができる。本発明の別の実施態様では、固体基材は、架橋多糖類を含む。
【００２５】
本発明の固体基材が中空糸を含む装置の実施態様では、前記中空糸は、好ましくはポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の中空糸に一般に使用される他の材料も使用することができる。中空糸は、好ましくはポリスルホンを含むことができる。
【００２６】
装置の固体基材は、もちろん大きな表面積を与える他の形状又は形態で存在してもよい。
【００２７】
固体基材のサイズ及び空孔率は、それぞれの適用又は処理に対して、許容される装置圧力損失で好適な血液流速が実現できるように選択されるべきである。高血液流量で低圧損を要求するある種の適用のために、より大きい径の粒子、孔、中空糸又は他の固体基材が要求される。高血液流量及び低圧損を必要としない他の適用では、より小さい径の粒子、孔、中空糸又は他の固体基材が使用されてもよい。従って、本発明の固体基材が粒子の形態で存在する実施態様では、粒径は、１０μｍ〜５ｍｍの範囲であればよい。粒径は、また、１０μｍ〜１，０００μｍの範囲であってもよい。一般に、２０〜２００μｍの範囲の粒径が有用であるが、高流速の適用では大きな粒子が必要である可能性がある。固体基材は、１本又はそれ以上の中空糸を含んでもよい。本発明の固体基材が中空糸の形態で存在する実施態様では、前記の中空糸の内径は、１μｍ〜１，０００μｍの範囲であればよい。一般に、内径は２０〜２００μｍの範囲が有用であるが、特定の用途においては、より大きい又は小さい径の糸が使用されてもよい。
【００２８】
本発明の装置は、好ましくは、意図される適用で必要とされる血流速度のために好適に寸法調整されるべきである。非限定的な例として、腎臓透析のための体外回路における血流速度は、一般に２００〜５００ｍＬ／分の範囲であるのに対して、酸素を与えるための体外回路における血流速度は、一般に２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲である。急性敗血症の治療のための体外回路におけるような或る適用においては、血流速度はより低く、例えば、１〜１００ｍＬ／分の範囲である。
【００２９】
従って、１つの実施態様において、本発明の装置は、２００〜５００ｍＬ／分の血流に好適である。別の実施態様において、本発明の装置は、２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流に好適である。更に別の実施態様において、本発明の装置は、１〜１００ｍＬ／分の血流に好適である。
【００３０】
体外循環用の血液接触医療機器内の局所血流パターンは、停滞域でずり活性化（shear activation）による血塊形成及び血小板凝集に影響することが知られている。従って、本発明の装置は、これらの問題が生じない方式に設計されるべきである。
【００３１】
１つの実施態様において、本発明の装置は、静脈から静脈、又は動脈から静脈への体外バイパス回路状に配列される。そのような回路には、更にポンプ、チューブ及びカニューレが含まれてもよい。装置は、好ましくは、さまざまな医療処置に要求される血流に、好適であればよい。
【００３２】
別の実施態様において、本発明の装置は、装置を通して血液を輸送するポンプを含む。特定の実施態様では、装置は、他の機器に独立して操作できる独立型ユニットとして存在してもよい。
【００３３】
本発明の第１の側面の実施態様では、装置は、体外回路と共に使用するために配置されるカラムである。カラムはヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含み、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。ヘパリン化固体基材は、約１０μｇ／ｃｍ2の表面濃度で、共有末端結合した全長ヘパリンによってコーティングされる。
【００３４】
本発明による装置は、例えば、敗血症性ショック、敗血症、播種性血管内凝固、自己免疫疾患、移植拒絶反応のような適応症の治療又は予防に有用である可能性がある。他の臨床応用は、微小生物（例えば、マラリア、Ｃ型肝炎及びＨＩＶ）及びヘパリン結合性毒（例えば、ヘビ毒）の除去を含む。人工肺及び透析装置を含む従来の体外循環用の回路と組み合わせた本発明の装置の使用は、そのような回路の長期使用に関連する罹病率及び死亡率を低下させるだろう。
【００３５】
本発明の有害物質は、例えば、炎症誘発性細胞又は炎症誘発性タンパク質のような炎症誘発性メディエーターであってもよい。しかし、本発明の装置は、炎症誘発性細胞及び炎症誘発性タンパク質の除去に限定されない。ヘパリンに結合親和性を有するいかなる内因性又は外因性分子も、本発明の装置を用いて除去することができる。同様に、ヘパリンに結合親和性を有する分子を含む微生物は、本発明の装置を用いて除去することができる。本発明による装置を用いて、血液から除去することができる微生物及び分子には、例えば、細菌、ウイルス及び寄生虫から成るグループから選択される微生物、及び付随的にそのような微生物によってコードされる又はそれに関連するタンパク質又は他の分子が含まれる。
【００３６】
１つの実施態様では、前記有害物質は、ウイルスである。より具体的な実施態様では、前記ウイルスは、単純ヘルペスウイルス１型、単純ヘルペスウイルス２型、インフルエンザＡウイルス、サイトメガロウイルス及びヒト免疫不全ウイルスから成るグループから選択される。別のより具体的な実施態様では、前記ウイルスは、単純ヘルペスウイルス１型又は単純ヘルペスウイルス２型から成るグループから選択される。
【００３７】
別の実施態様において、前記有害物質は、細菌である。より具体的な実施態様では、前記細菌は、ストレプトコッカス・ニューモニエ（Streptococcus pneumoniae）のような連鎖球菌、スタフィロコッカス・アウレウス（Staphylococcus aureus）のようなブドウ球菌、エシェリキア・コリ（Escherichia coli）のような大腸菌、シュードモナス・エルギノーサ（Pseudomonas aureginosa）のような緑膿菌、ニューモコッカス・タイプ２（Pneumococcus type 2）のような肺炎球菌から成るグループから選択される。好ましい実施態様では、前記有害物質は、スタフィロコッカス・アウレウスである。
【００３８】
更に別の実施態様では、前記有害物質は、寄生虫である。より具体的な実施態様では、前記原虫は、熱帯熱マラリア原虫（Plasmodium falciparum）及びクルーズトリパノソーマ（Tryoanosoma cruzi）から成るグループから選択される。
【００３９】
更なる実施態様では、炎症誘発性メディエーターは、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ及び炎症性顆粒球から成るグループから選択される炎症誘発性細胞であってもよい。
【００４０】
その上更なる実施態様では、炎症誘発性メディエーターは、炎症誘発性サイトカインのような炎症誘発性タンパク質であってもよい。炎症誘発性タンパク質の例として、J. Biol. Chem., 2007, Mar 30;282(13):10018-27 に開示されているようなヘパリン結合モチーフを含むタンパク質、及び腫瘍壊死因子、インターロイキン−１、インターロイキン−６、プロテインＣ、インターロイキン−８、高速移動群ボックス１タンパク質又はマクロファージ遊走阻止因子から成るグループから選択されるタンパク質が挙げられる。より具体的な実施態様では、前記炎症誘発性サイトカインは、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）、腫瘍壊死因子ベータ（ＴＮＦ−β）、インターロイキン−１（ＩＬ−１）及びインターロイキン−６（ＩＬ−６）から成るグループから選択される。
【００４１】
その第２の側面では、本発明は、哺乳類の血液から有害物質を体外除去するための、以下の工程：
ａ）哺乳類の血液のサンプルを備える；
ｂ）該サンプルを、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）該有害物質が少なくとも部分的に固体基材に保持されるように、サンプルを固体基材から分離する；そして
ｄ）減少した量の上記有害物質を含有する上記サンプルを回収する；
を含む方法を提供する。
【００４２】
本発明の第２の側面の実施態様において、この方法の工程ｂ）及びｃ）は、本発明の第１の側面によって画成された装置を用いて実施される。本発明の第２の側面に記載の方法の更なる実施態様は、本発明の第１の側面に記載された装置について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質、哺乳類の血液、固体基材及びヘパリン固定化に関して特定した実施態様に対応する。
【００４３】
その第３の側面では、本発明は、有害物質によって引き起こされ又は悪化した状態に苦しむ哺乳類の対象を治療するための、以下の工程：
ａ）対象（subject）から血液を採取する；
ｂ）採取した血液を、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）減少した量の上記有害物質を含有する血液を、対象の血流に再導入する；
を含む方法を提供する。
【００４４】
本発明の第３の側面の実施態様において、この方法の工程ｂ）は、本発明の第１の側面によって画成された装置を用いて実施される。本発明の第３の側面に記載の方法の更なる実施態様は、本発明の第１の側面に記載された装置について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質、哺乳類の血液、固体基材及びヘパリン固定化に関して特定した実施態様に対応する。
【００４５】
１つの実施態様において、本発明の方法は、哺乳類の血液から炎症誘発性サイトカインを除去するために使用することができる。
【００４６】
その第４の側面では、本発明は、従来の体外血液処理装置と本明細書に記載の有害物質の除去のための装置を含む、血液又は血液成分の体外循環のための装置を提供する。
【００４７】
患者の敗血症又は腎不全のような病態の治療には、しばしば透析装置を含む体外回路での患者血液の処理を必要とする。体外血液処理で使用される処理法は、それ自体炎症誘発性サイトカインの活性化を誘導し、治療中の患者の血流におけるこれらの物質の増加をもたらす可能性がある。サイトカインの活性化は、例えば、体外循環血液処理システムのチューブ、接続部及び部品を通って輸送される間に、血液に加わる機械的ストレスによって引き起こされる可能性がある。これが重要な問題となる別の例は、例えば、外傷後の急性呼吸不全の間、血液に酸素を与えるために使用される人工肺である。特に、狭い直径の孔又は通路を通す血液輸送は、血液中に存在する血液細胞に対してずり応力を起こす可能性がある。また、血液を接触させる様々な成分の表面材料は、血液中の炎症誘発性サイトカインの活性化に影響を及ぼす可能性がある。本発明による装置は、従来の血液処理装置で発生する炎症誘発性サイトカインの活性化に関連する問題を減少させる。
【００４８】
本発明の第４の側面による方法の実施態様は、本発明の第１の側面に記載された方法について、先に、有害物質、炎症誘発性細胞、炎症誘発性タンパク質及び哺乳類の血液に関して特定した実施態様に対応する。
【００４９】
装置の実施態様では、前記の従来の体外血液処理装置は、血液に酸素を与えるための装置である。
【００５０】
装置の別の実施態様では、前記の従来の体外血液処理装置は、血液透析用の装置である。
【００５１】
他のタイプの従来の体外血液処理装置も、また、本発明の装置に使用することが考えられる。
【００５２】
本発明の装置では、有害物質の除去のための装置は、好ましくは従来の体外血液処理装置の下流に配置すべきである。
【００５３】
本発明の装置の好ましい実施態様では、前記の有害物質除去のための装置は、固体基材に固定化されたヘパリンを含む。
【００５４】
有害物質除去のための装置の固体基材は、好ましくは大きな表面積を有する材料を含んでもよい。装置の固体基材は、微粒子又は中空糸を含むことができるが、他の種類の固体基材が使用されてもよい。前記固体基材の全表面積は、０．１〜２０ｍ2の範囲であればよく、好ましくは０．５〜３ｍ2の範囲であればよい。
【００５５】
固体基材は、粒子又はビーズを含んでもよい。固体基材が粒子又はビーズである装置の実施態様では、前記の粒子又はビーズは、好ましくは、ポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー（例えば、ポリテトラフルオロエチレン）、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の微粒子に一般に使用される他の材料も使用することができる。別の実施態様では、固体基材は、架橋多糖類を含む。
【００５６】
固体基材が中空糸を含む装置の実施態様では、前記中空糸は、好ましくは、ポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含んでもよい。医療用の中空糸に一般に使用される他の材料も使用することができる。
【００５７】
装置の固体基材は、また、もちろん大きな表面積を与える他の形状又は形態で存在してもよい。
【００５８】
本発明による装置の固体基材が粒子の形態で存在する実施態様において、粒径は、１０μｍ〜５ｍｍの範囲であればよい。粒径はまた、１０μｍ〜１，０００μｍの範囲であってもよい。一般的に、２０〜２００μｍの範囲の粒径が有用であるが、高流速の適用では大きな粒子が必要である可能性がある。固体基材は、１本又はそれ以上の中空糸を含んでもよい。本発明の固体基材が中空糸の形態で存在する実施態様では、前記の中空糸の内径は、１μｍ〜１，０００μｍの範囲であればよい。一般に、内径は２０〜２００μｍの範囲が有用であるが、特定の用途においては、より大きい又は小さい径の糸が使用されてもよい。
【００５９】
有害物質を除去するための装置は、好ましくはヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、前記カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、前記の入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に前記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される。
【００６０】
本発明の装置は、好ましくは、意図される適用で必要とされる血流速度に適した寸法に調整すべきである。従って、１つの実施態様において、本発明の装置は、２００〜５００ｍＬ／分の血流に好適である。別の実施態様において、本発明の装置は、２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流に好適である。更に別の実施態様において、本発明の装置は、１〜１００ｍＬ／分の血流に好適である。有害物質の除去のための装置は、好ましくは、停滞域でずり（shear）活性化を介する血塊形成及び血小板凝集を起こさない方式に設計されるべきである。
【００６１】
前記ヘパリンの表面濃度は、好ましくは１〜２０μｇ／ｃｍ2の範囲であり、５〜１５μｇ／ｃｍ2の範囲が好ましい。前記装置の固定化ヘパリンは、好ましくは共有結合で固体基材に結合され得る。前記装置の固定化ヘパリンは、安定な第二級アミノ基を介して共有結合で固体基材に結合され得る。より好ましくは、前記装置の固定化ヘパリンは共有末端結合した全長ヘパリンである。従って、本発明の第４の側面による装置の実施態様では、有害物質を除去するための装置は、本発明の第１の側面に関して先に開示したような装置であってもよい。
【００６２】
その第５の側面では、本発明は、血液又は血液成分の体外処理のために上記で定義した装置の使用を提供する。
【００６３】
１つの実施態様では、上記で定義された装置は、血液透析を必要としている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは２００〜５００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６４】
別の実施態様において、上記で定義された装置は、酸素投与を必要としている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６５】
更に別の実施態様では、上記で定義された装置は、急性敗血症に罹っている患者の治療に用いられる。そのような実施態様では、前記血液又は血液成分の流量は、好ましくは１〜１００ｍＬ／分の範囲であればよい。
【００６６】
本発明の装置の更なる用法は、血液の体外処理の当業者には明らかである。
本発明の更なる態様では、全長ヘパリンを固体基材に共有末端結合させる方法が提供され、前記方法は以下の工程：
ａ）第一級アミノ官能基を有する固体基材を備える；
ｂ）該固体基材を、水性媒体中で全長ヘパリン及び還元剤と混合する；
ｃ）ヘパリンを、アミノ官能基に還元的に結合させる；そして
ｄ）表面に共有結合した全長ヘパリンを有する固体基材を回収する；
を含む。
【００６７】
１つの実施態様において、混合物中の全長ヘパリンの初期濃度は、２０〜５０ｇ／Ｌの範囲である。本発明の方法で使用される還元剤は、有機合成の当業者によって認識されているような、任意の好適な還元剤であればよい。１つの実施態様において、還元剤は、ＮａＢＨ3ＣＮである。本発明の方法の工程ｃ）の還元的結合は、好ましくは、３〜５の範囲のｐＨ値で行われ得る。本発明の方法の工程ｃ）の還元的結合は、好ましくは、高温で行われ得る。１つの実施態様において、前記の還元的結合は、６０℃、２４時間で行われる。その方法は、場合により、還元的結合の工程ｃ）の間に、２回目のＮａＢＨ3ＣＮを添加する追加の工程を含んでもよい。
【００６８】
本明細書で用いられるように、「血液」及び「血液成分」の用語は、哺乳類の全血、血漿及び／又は、例えば、赤血球又は血小板のような血球を指す。血液又は血液成分は、希釈又はさもなければ修飾される可能性があることが意図されている。
【００６９】
本明細書で用いられるように、用語「全長ヘパリン」は、固体表面に結合する反応性末端基を得るための切断がなされていないヘパリン又はその誘導体を意味する。生体内に存在するような全長ヘパリンの分子量は、一般的に約３〜４０ｋＤａの範囲に分布している。市販ヘパリン製剤に含まれるヘパリンの分子量は、一般に１５〜２５ｋＤａの範囲に分布している。全長ヘパリンの平均分子量は、約２１ｋＤａである。
【００７０】
本明細書で用いられるように、用語「有害物質」は、疾患又は障害の症候を示す、炎症誘発性サイトカインのような有害物質と同様、哺乳類における病気又は疾患の原因となる、ウイルス、細菌又は寄生虫のような微生物を含んでもよい。有害な微生物の例としては、スタフィロコッカス属菌、ＨＩＶ、Ｃ型肝炎、デング熱ウイルス及びマラリア起因菌のプラスモジウム属菌が挙げられる。有害物質は、例えば、単純ヘルペスウイルス１型、単純ヘルペスウイルス２型、インフルエンザＡウイルス、サイトメガロウイルス及びヒト免疫不全ウイルスなどのウイルスであってもよい。有害物質は、例えば、ストレプトコッカス・ニューモニエのような連鎖球菌、スタフィロコッカス・アウレウスのようなブドウ球菌、エシェリキア・コリのような大腸菌、シュードモナス・エルギノーサのような緑膿菌、ニューモコッカス・タイプ２のような肺炎球菌から成るグループから選択される細菌であってもよい。有害物質は、例えば、熱帯熱マラリア原虫又はクルーズトリパノソーマのような原虫であってもよい。有害物質は、例えば、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ又は炎症性顆粒球のような炎症誘発性細胞であってもよい。有害物質は、また、例えば、炎症誘発性サイトカインのような炎症誘発性タンパク質、例えば、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）、腫瘍壊死因子ベータ（ＴＮＦ−β）、インターロイキン−１（ＩＬ−１）及びインターロイキン−６（ＩＬ−６）であってもよい。上記の有害物質の例は、本発明の範囲を制限すると見なされるべきではない。当業者によって容易に認識されるように、全ての種類のヘパリン結合性有害物質は、本発明によって開示される装置又は器具又は方法を用いて除去することができる。
【００７１】
本明細書で用いられるように、用語「炎症誘発性細胞」は、哺乳動物における炎症反応に関与する細胞を意味する。「炎症誘発性細胞」の例としては、炎症性リンパ球、炎症性マクロファージ及び炎症性顆粒球を含む。
【００７２】
本明細書で用いられるように、用語「炎症誘発性タンパク質」は、例えば、微生物感染又は免疫付与に伴って放出されるサイトカインのようなタンパク質を意味する。
【００７３】
本明細書で用いられるように、用語「サイトカイン」は、例えば、微生物感染又は免疫付与に伴って放出される、インターロイキン、インターフェロン、ケモカイン及び腫瘍壊死因子から成るグループから選択されるタンパク質を意味する。
【実施例】
【００７４】
〔実施例１〕
表面固定化ヘパリンの一般的な定量方法
本方法の原理は、酸性水溶液におけるヘパリンと亜硝酸ナトリウムの間の化学反応に基づく。ヘパリンのＤ−グルコサミン単位は、グリコシド結合の切断と同時に、２，５−アンヒドロＤ−マンノースに変換される。２，５−アンヒドロＤ−マンノースの末端アルデヒド基は、３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンヒドラゾン塩酸塩水和物（ＭＢＴＨ）と反応し、塩化鉄（ＩＩＩ）・六水和物（ＦｅＣｌ3・６Ｈ2Ｏ）の存在で着色した錯体を形成する。錯体の色強度は、６５０ｎｍの波長で分光光度計で測定する。
【００７５】
〔実施例２〕
セファデックスＧ１０のアミノ化
メタ過ヨウ素酸ナトリウム（ＮａＩＯ4、１２．０ｇ）を水（１．６Ｌ）に溶解し、セファデックスＧ１０（１００ｇ）に添加した。混合物は、振とうしながら１７時間暗所に保持した。濾過し、水（４Ｌ）で洗浄し、最後に０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（１Ｌ）で洗浄した後、得られた生成物を、２００ｍＬの Lupasol（登録商標）（５％水溶液）を含む０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（１．２Ｌ）に懸濁させた。
ゲルは、ＮａＢＨ3ＣＮの水溶液を添加して安定化させた。シアノ水素化ホウ素ナトリウム（１．０ｇ）を含む０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（２００ｍＬ）を、ゲル混合物に添加した。混合物は、振とうしながら室温で２４時間保持した。ゲルを濾別し、水（２Ｌ）、０．１Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ７．０（２Ｌ）、水（２Ｌ）、０．１Ｍ酢酸衝液、ｐＨ４．０（２Ｌ）及び水（２Ｌ）で洗浄した。ゲルは、風乾した。
【００７６】
〔実施例３〕
ポリエチレンビーズのアミノ化
エッチング：
ポリエチレンビーズ（ＰＥビーズ）（直径おおよそ３００μｍ、６０ｇ）は、クロロホルム（２００ｍＬ）中で攪拌して１時間洗浄した。ビーズを、ガラスフィルター上に集め、３×５０ｍＬのクロロホルムで洗浄し、放置して風乾した。過マンガン酸カリウム（ＫＭｎＯ4、１．２ｇ）を濃硫酸（６００ｍＬ）に溶解し、予洗浄したビーズを添加した。懸濁液を５分間攪拌した。ビーズをガラスフィルター上に集め、注意深く水（５Ｌ）で洗浄し、風乾した。
【００７７】
エッチングしたビーズのアミノ化
以下の溶液を調製した：
水性ホウ酸緩衝液：ホウ酸（５３．０ｇ）及び塩化ナトリウム（３．５ｇ）を、水（５．０Ｌ）に加えた。生成した溶液のｐＨ値を、水酸化ナトリウムのペレットを加えて９．０に調整した。
Ｓ１：水性ホウ酸緩衝液（５．０Ｌ）に、クロトンアルデヒド（１．７ｍＬ）及びLupasol（登録商標）（５．０ｍＬ、５％水溶液）を添加し、溶液Ｓ１を得た。
Ｓ２：塩化ナトリウム（１４６．５ｇ）及びデキストラン硫酸（０．５ｇ）を水（５．０Ｌ）に加えた。生成した溶液のｐＨ値を、１Ｍ塩酸を加えて３．０に調整し、Ｓ２溶液を得た。
Ｓ３：Lupasol（登録商標）（２５ｍＬ、５％水溶液）を、水（２．５Ｌ）に添加し、１ＭＮａＯＨでｐＨを９．０に調整し、溶液Ｓ３を得た。
【００７８】
コーティング手順
１．エッチングされたＰＥビーズをＳ１（２．５Ｌ）に添加した。懸濁液を、室温で１０分間攪拌した。
２．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
３．ビーズをＳ２（２．５Ｌ）に添加した。懸濁液を６０℃で１０分間攪拌した。
４．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
５．工程１を新しいＳ１で繰り返した。
６．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
７．工程２を新しいＳ２で繰り返した。
８．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（２．５Ｌ）で洗浄した。
９．得られたビーズをＳ３（２．５Ｌ）に添加し、懸濁液を室温で１０分間攪拌した。
１０．ビーズをガラスフィルター上に集め、水（５．０Ｌ）で洗浄し、アミノ化ＰＥビーズを得た。
【００７９】
〔実施例４〕
亜硝酸分解ヘパリンのアミノ化クロマトグラフィーゲルへの共有末端結合
実施例２に記載したようにアミノ化したセファデックスＧ１０（１０ｇ）を、０．１Ｍ酢酸緩衝液ｐＨ４．０（１００ｍＬ）に懸濁し、亜硝酸分解ヘパリン（１．６ｇ）を添加した。１５分間振とうした後、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（１０ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。反応混合物は、室温で２４時間振とうし、そして追加の０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（１０ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加し、室温で更に２４時間振とうを継続した。
ゲルを濾過し、水（２００ｍＬ）、０．１７Ｍホウ酸緩衝液ｐＨ９．０（２５０ｍＬ）及び水（２Ｌ）の順で洗浄した。ゲルは、風乾した。
セファデックスＧ１０ビーズは、約１００μｍの平均直径を有する。概算では、１ｃｍ3は１０6個のビーズを含み、３００ｃｍ2／ｃｍ3の表面積を与えることになる。ヘパリン化セファデックスゲルの硫黄の分析の結果、０．０２４％の硫黄が得られた。 更に、ヘパリンがビーズの表面だけに結合したとすれば、ヘパリン化セファデックスＧ１０は、約７μｇ／ｃｍ2のヘパリンを有していた。
【００８０】
〔実施例５〕
亜硝酸分解ヘパリンのアミノ化ＰＥビーズへの共有末端結合
実施例３に記載したように製造したアミノ化ＰＥビーズを、実施例４に記載したようにヘパリン化した。
実施例１に記載の手順に従って、ヘパリン化ＰＥビーズは、２．６ｍｇ／ｇビーズのヘパリンを含むことが決定された。
【００８１】
〔実施例６〕
全長ヘパリンのアミノ化クロマトグラフィーゲルへの共有末端結合
実施例２におけるようにアミノ化したセファデックスＧ１０（１０ｇ）を、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（４５ｍＬ）に懸濁し、ＮａＣｌ（１．４６ｇ）及び全長ヘパリン（１．６ｇ）を添加した。０．５時間振とうした後、０．１Ｍ酢酸緩衝液、ｐＨ４．０（５ｍＬ）に溶解したＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。反応混合物を６０℃で２４時間振とうした。８時間後、追加のＮａＢＨ3ＣＮ（１００ｍｇ）を添加した。ゲルを濾過し、水（２００ｍＬ）、０．１７Ｍホウ酸緩衝液ｐＨ９．０（２５０ｍＬ）及び水（２Ｌ）の順で洗浄した。ゲルは、風乾した。
セファデックスＧ１０ビーズは、約１００μｍの平均直径を有する。概算では、１ｃｍ3は１０6個のビーズを含み、３００ｃｍ2／ｃｍ3の表面積を与えることになる。ヘパリン化セファデックスゲルの硫黄の分析の結果、０．０３７％の硫黄が得られた。 更に、ヘパリンがビーズの表面だけに結合したとすれば、ヘパリン化セファデックスＧ１０は約１１μｇヘパリン／ｃｍ2を有していた；即ち、全長ヘパリンを用いた場合、分解ヘパリンを使用した場合よりも約３６％多いヘパリンが固定化された（実施例４を参照）。
【００８２】
〔実施例７〕
全長ヘパリンのアミノ化ＰＥビーズへの共有末端結合
実施例３に記載したように製造したアミノ化ＰＥビーズを、実施例６に記載したようにヘパリン化した。
実施例１に記載の手順に従って、ヘパリン化ＰＥビーズは、２．６ｍｇヘパリン／ｇビーズ含むことが決定された。
【００８３】
〔実施例８〕
亜硝酸分解ヘパリンの中空糸内腔への共有末端結合
この実施例では、小児のヘモフロー（haemoflow）透析器を使用した。 中空糸はポリスルホン製で、内径が２００μｍ、壁厚が４０μｍであった。 材料と血液が接触する総表面積は４０００ｃｍ2であり、プライミング容積は２８ｍＬであった。
アミノ化の手順は、エッチング工程が省略される以外は、ＰＥビーズについて実施例３で説明したように行った。 ポリスルホンは親水性であり、エッチングする必要はなかった。ヘパリンの固定化は、基本的に実施例４に記載したように、亜硝酸分解ヘパリンとＮａＢＨ3ＣＮを含む溶液を中空糸内にポンプ注入することによって行った。
ヘパリン量の測定は破壊的方法であるため、同一条件下でヘパリン化された対照透析器を犠牲にし、その中空糸を硫黄の分析に供した。 その結果、約５μｇヘパリン／ｃｍ2のヘパリン含量であること、そしてそれは、装置内では２０ｍｇのヘパリン含量に相当することが明らかになった。
【００８４】
〔実施例９〕
全長ヘパリンの中空糸内腔への共有末端結合
実験は、全長ヘパリンが使用されることを除けば、実施例８に記載した通りに行った。その結果、約８μｇヘパリン／ｃｍ2のヘパリン含量であること、そしてそれは、装置内では３２ｍｇのヘパリン含量に相当することが明らかになった。
【００８５】
〔実施例１０〕
血漿中の腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）のヘパリン化ＰＥビーズへの付着
亜硝酸分解ヘパリン（実施例５に記載の通りに製造）又は全長ヘパリン（実施例７に記載の通りに製造）を有するＰＥビーズを使用した。２００ｍｇのビーズを、差込み継手蓋付きのカラム（MoBiTec, M1002）（１ｍＬ）に添加した。
ヒト患者から採取した４ｍＬの血漿から、サンプル（０．５ｍＬ）をシリンジで抜き取った。血漿サンプルを、それぞれのカラムに３０秒間で通した。カラムを通過させる前及び通過後のサンプル中のＴＮＦ−α含有量は、EVOLIS機器（BioRad）で、Quantikine （登録商標）ヒトＴＮＦ−α／ＴＮＦＳＦ１Ａ高感度ＥＬＩＳＡキット（R&D Systems）を用いて測定した。
亜硝酸分解ヘパリンを有する２００ｍｇのＰＥビーズのカラムを通過した後、サンプル中に残ったＴＮＦ−α濃度は、４．５ｐｇ／ｍＬであった。全長ヘパリンを有する２００ｍｇのＰＥビーズのカラムを通過した後、サンプル中に残ったＴＮＦ−α濃度は、４．１ｐｇ／ｍＬであった。このように、全長ヘパリン（Ｍｗ：２０ｋＤａ）でヘパリン化された２００ｍｇのビーズを通過した血漿のＴＮＦ−α濃度の低下は、亜硝酸分解ヘパリン（Ｍｗ：８ｋＤａ）でヘパリン化されたビーズでの減少よりもより大きかった。
【００８６】
〔実施例１１〕
アンチトロンビン（ＡＴ）のヘパリン化ＰＥビーズへの付着
亜硝酸分解ヘパリン（実施例５に記載の通りに製造）又は全長ヘパリン（実施例７に記載の通りに製造）を有するＰＥビーズを使用した。２００ｍｇのビーズを、差込み継手蓋付きのカラム（MoBiTec, S1012）（２．５ｍＬ）に添加した。
トリス緩衝液（ｐＨ７．４）中に２ＩＵ／ｍＬのヒトアンチトロンビンＩＩＩ（Octapharma）の溶液を、カラムに添加した。１５分間インキュベーションした後、固定化ヘパリン上の低親和性部位に結合したアンチトロンビンを、トリス緩衝液で数回洗浄して除去した。 次に、固定化ヘパリン上の高親和性部位に結合したアンチトロンビンは、トリス緩衝液に１ｍｇヘパリン／ｍＬの大容量を使用して溶離した。得られた溶出液のヘパリン・アンチトロンビン複合体含有量は、Berichrom Antithrombin III試薬（Sysmex）を用いてSysmex CA 1500機器（Sysmex）で測定した。 結果を表１に示す。
【００８７】
【表１】
【００８８】
これらの結果から、全長ヘパリンは、亜硝酸分解ヘパリンよりも質量単位当たり１．５倍多くのアンチトロンビンと結合することは明らかである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンを含む装置。
【請求項２】
請求項１に記載の装置であって、全長ヘパリンが１５〜２５ｋＤａの範囲の平均分子量を有する装置。
【請求項３】
請求項１に記載の装置であって、全長ヘパリンが２１ｋＤａを超える平均分子量を有する装置。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項に記載の装置であって、全長ヘパリンの表面濃度が１〜２０μｇ／ｃｍ2である装置。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の装置であって、全長ヘパリンの表面濃度が５〜１５μｇ／ｃｍ2である装置。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の装置であって、ヘパリンが安定な第二級アミノ基を介して固体基材に共有結合している装置。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材の全表面積が０．５〜３ｍ2の範囲である装置。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材が粒子又はビーズを含む装置。
【請求項９】
請求項８に記載の装置であって、粒子又はビーズの直径が１０〜１，０００μｍの範囲である装置。
【請求項１０】
請求項９に記載の装置であって、粒子又はビーズの直径が２０〜２００μｍの範囲である装置。
【請求項１１】
請求項８〜１０のいずれか１項に記載の装置であって、粒子又はビーズがポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含む装置。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材が１本又はそれ以上の中空糸を含む装置。
【請求項１３】
請求項１２に記載の装置であって、中空糸の内径が１０〜１，０００μｍの範囲である装置。
【請求項１４】
請求項１３に記載の装置であって、中空糸の内径が２０〜２００μｍの範囲である装置。
【請求項１５】
請求項１２〜１４のいずれか１項に記載の装置であって、中空糸がポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含む装置。
【請求項１６】
請求項１〜１５のいずれか１項に記載の装置であって、装置はヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、該カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、該入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に上記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される装置。
【請求項１７】
２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項１８】
２００〜５００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項１９】
１〜１００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項２０】
哺乳類の血液から有害物質を体外除去するための方法であって、以下の工程：
ａ）哺乳類の血液のサンプルを備える；
ｂ）該サンプルを、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）上記有害物質が少なくとも部分的に固体基材に保持されるように、サンプルを固体基材から分離する；そして
ｄ）減少した量の上記有害物質を含有する上記サンプルを回収する；
を含む方法。
【請求項２１】
請求項２０に記載の方法であって、有害物質が炎症誘発性サイトカインである方法。
【請求項２２】
有害物質によって引き起こされた又は悪化した病態に罹患する哺乳類の対象を治療するための方法であって、以下の工程：
ａ）対象から血液を採取する；
ｂ）採取した血液を、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）減少した量の上記有害物質を含有する血液を、対象の血流に再導入する；
を含む方法。
【請求項２３】
従来の体外血液処理装置及び有害物質の除去のための装置を含む、血液又は血液成分の体外循環のための装置。
【請求項２４】
請求項２３に記載の装置であって、有害物質の除去のための装置が従来の体外血液処理装置の下流に配置される装置。
【請求項２５】
請求項２３又は２４に記載の装置であって、有害物質の除去のための装置が固体基材に固定化されたヘパリンを含む装置。
【請求項２６】
請求項２５に記載の装置であって、ヘパリンの表面濃度が１〜２０μｍ／ｃｍ2である装置。
【請求項２７】
請求項２５又は２６に記載の装置であって、ヘパリンが共有末端結合した全長ヘパリンである装置。
【請求項２８】
請求項２３〜２７のいずれか１項に記載の装置であって、従来の体外血液処理装置が血液透析用の装置である装置。
【請求項２９】
請求項２３〜２７のいずれか１項に記載の装置であって、従来の体外血液処理装置が血液に酸素を与えるための装置である装置。
【請求項３０】
血液又は血液成分の体外処理のための、請求項２３〜２９のいずれか１項に記載の装置の使用。
【請求項３１】
血液透析を必要とする患者の治療のための、請求項２８に記載の装置の使用。
【請求項３２】
請求項３１に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が２００〜５００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３３】
酸素を与える必要がある患者の治療のための、請求項２９に記載の装置の使用。
【請求項３４】
請求項３３に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３５】
急性敗血症に罹患した患者の治療のための、請求項２３〜２８のいずれか１項に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が１〜１００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３６】
全長ヘパリンを固体基材に共有末端結合させる方法であって、以下の工程：
ａ）第一級アミノ官能基を有する固体基材を備える；
ｂ）該固体基材を、水性媒体中で全長ヘパリン及び還元剤と混合する；
ｃ）ヘパリンを、アミノ官能基に還元的に結合させる；そして
ｄ）表面に共有結合した全長ヘパリンを有する固体基材を回収する；
を含む方法。
【請求項３７】
請求項３６に記載の方法であって、全長ヘパリンの濃度が２０〜５０ｇ／Ｌの範囲である方法。
【請求項３８】
請求項３６又は３７に記載の方法であって、還元剤がＮａＢＨ3ＣＮである方法。
【請求項３９】
請求項３６〜３８のいずれか１項に記載の方法であって、工程ｃ）の水溶液のｐＨ値が３〜５の範囲である方法。
【請求項４０】
請求項３６〜３９のいずれか１項に記載の方法であって、工程ｃ）の還元的結合が６０℃、２４時間で行われる方法。
【請求項４１】
還元的結合の工程ｃ）の間に２回目のＮａＢＨ3ＣＮを添加する追加の工程を更に含む、請求項３６〜４０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１】
血液又は血液成分から有害物質を体外除去するための装置であって、共有末端結合で固体基材に固定化された全長ヘパリンを含む装置。
【請求項２】
請求項１に記載の装置であって、全長ヘパリンが１５〜２５ｋＤａの範囲の平均分子量を有する装置。
【請求項３】
請求項１に記載の装置であって、全長ヘパリンが２１ｋＤａを超える平均分子量を有する装置。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項に記載の装置であって、全長ヘパリンの表面濃度が１〜２０μｇ／ｃｍ2である装置。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の装置であって、全長ヘパリンの表面濃度が５〜１５μｇ／ｃｍ2である装置。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の装置であって、ヘパリンが安定な第二級アミノ基を介して固体基材に共有結合している装置。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材の全表面積が０．５〜３ｍ2の範囲である装置。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材が粒子又はビーズを含む装置。
【請求項９】
請求項８に記載の装置であって、粒子又はビーズの直径が１０〜１，０００μｍの範囲である装置。
【請求項１０】
請求項９に記載の装置であって、粒子又はビーズの直径が２０〜２００μｍの範囲である装置。
【請求項１１】
請求項８〜１０のいずれか１項に記載の装置であって、粒子又はビーズがポリウレタン、ポリオレフィン、シリコン、フルオロポリマー、ポリ（メチルメタクリレート）、ガラス、架橋アルギン酸、及びアガロース、デキストラン、セルロース、キトサン及びデンプンのような架橋多糖類から成るグループから選択される材料を含む装置。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれか１項に記載の装置であって、固体基材が１本又はそれ以上の中空糸を含む装置。
【請求項１３】
請求項１２に記載の装置であって、中空糸の内径が１０〜１，０００μｍの範囲である装置。
【請求項１４】
請求項１３に記載の装置であって、中空糸の内径が２０〜２００μｍの範囲である装置。
【請求項１５】
請求項１２〜１４のいずれか１項に記載の装置であって、中空糸がポリスルホン、ポリアミド、ポリニトリル、ポリプロピレン、架橋アルギン酸及びセルロースから成るグループから選択される材料を含む装置。
【請求項１６】
請求項１〜１５のいずれか１項に記載の装置であって、装置はヘパリン化固体基材を含有するケーシングを含むカラムであり、該カラムは、血液がカラムに入る入口及び血液がカラムから出る出口を有し、該入口及び出口は、入口から入る血液が、出口から出る前に上記ヘパリン化固体基材と接触するように配置される装置。
【請求項１７】
２，０００〜７，０００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項１８】
２００〜５００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項１９】
１〜１００ｍＬ／分の血流速度に好適な、請求項１６に記載の装置。
【請求項２０】
哺乳類の血液から有害物質を体外除去するための方法であって、以下の工程：
ａ）哺乳類の血液のサンプルを備える；
ｂ）該サンプルを、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）上記有害物質が少なくとも部分的に固体基材に保持されるように、サンプルを固体基材から分離する；そして
ｄ）減少した量の上記有害物質を含有する上記サンプルを回収する；
を含む方法。
【請求項２１】
請求項２０に記載の方法であって、有害物質が炎症誘発性サイトカインである方法。
【請求項２２】
有害物質によって引き起こされた又は悪化した病態に罹患する哺乳類の対象を治療するための方法であって、以下の工程：
ａ）対象から血液を採取する；
ｂ）採取した血液を、共有末端結合で固体基材上に固定化された全長ヘパリンと、ヘパリンへの上記有害物質の結合を可能にする条件下で、接触させる；
ｃ）減少した量の上記有害物質を含有する血液を、対象の血流に再導入する；
を含む方法。
【請求項２３】
従来の体外血液処理装置及び有害物質の除去のための装置を含む、血液又は血液成分の体外循環のための装置。
【請求項２４】
請求項２３に記載の装置であって、有害物質の除去のための装置が従来の体外血液処理装置の下流に配置される装置。
【請求項２５】
請求項２３又は２４に記載の装置であって、有害物質の除去のための装置が固体基材に固定化されたヘパリンを含む装置。
【請求項２６】
請求項２５に記載の装置であって、ヘパリンの表面濃度が１〜２０μｍ／ｃｍ2である装置。
【請求項２７】
請求項２５又は２６に記載の装置であって、ヘパリンが共有末端結合した全長ヘパリンである装置。
【請求項２８】
請求項２３〜２７のいずれか１項に記載の装置であって、従来の体外血液処理装置が血液透析用の装置である装置。
【請求項２９】
請求項２３〜２７のいずれか１項に記載の装置であって、従来の体外血液処理装置が血液に酸素を与えるための装置である装置。
【請求項３０】
血液又は血液成分の体外処理のための、請求項２３〜２９のいずれか１項に記載の装置の使用。
【請求項３１】
血液透析を必要とする患者の治療のための、請求項２８に記載の装置の使用。
【請求項３２】
請求項３１に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が２００〜５００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３３】
酸素を与える必要がある患者の治療のための、請求項２９に記載の装置の使用。
【請求項３４】
請求項３３に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が２，０００〜７，０００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３５】
急性敗血症に罹患した患者の治療のための、請求項２３〜２８のいずれか１項に記載の使用であって、血液又は血液成分の流速が１〜１００ｍＬ／分の範囲である使用。
【請求項３６】
全長ヘパリンを固体基材に共有末端結合させる方法であって、以下の工程：
ａ）第一級アミノ官能基を有する固体基材を備える；
ｂ）該固体基材を、水性媒体中で全長ヘパリン及び還元剤と混合する；
ｃ）ヘパリンを、アミノ官能基に還元的に結合させる；そして
ｄ）表面に共有結合した全長ヘパリンを有する固体基材を回収する；
を含む方法。
【請求項３７】
請求項３６に記載の方法であって、全長ヘパリンの濃度が２０〜５０ｇ／Ｌの範囲である方法。
【請求項３８】
請求項３６又は３７に記載の方法であって、還元剤がＮａＢＨ3ＣＮである方法。
【請求項３９】
請求項３６〜３８のいずれか１項に記載の方法であって、工程ｃ）の水溶液のｐＨ値が３〜５の範囲である方法。
【請求項４０】
請求項３６〜３９のいずれか１項に記載の方法であって、工程ｃ）の還元的結合が６０℃、２４時間で行われる方法。
【請求項４１】
還元的結合の工程ｃ）の間に２回目のＮａＢＨ3ＣＮを添加する追加の工程を更に含む、請求項３６〜４０のいずれか１項に記載の方法。
【公表番号】特表２０１０−５３０２８８（Ｐ２０１０−５３０２８８Ａ）
【公表日】平成２２年９月９日（２０１０．９．９）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１０−５１３３６５（Ｐ２０１０−５１３３６５）
【出願日】平成２０年６月１８日（２００８．６．１８）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００８／０６７２７１
【国際公開番号】ＷＯ２００８／１５７５７０
【国際公開日】平成２０年１２月２４日（２００８．１２．２４）
【出願人】（５０９３４７１８１）エクステラ・メディカル・エルエルシー (3)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２２年９月９日（２０１０．９．９）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年６月１８日（２００８．６．１８）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００８／０６７２７１
【国際公開番号】ＷＯ２００８／１５７５７０
【国際公開日】平成２０年１２月２４日（２００８．１２．２４）
【出願人】（５０９３４７１８１）エクステラ・メディカル・エルエルシー (3)
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]