カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液及びその製造方法
【課題】ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止できる、優れたカダベリン又はカダベリン塩の溶液を提供する。
【解決手段】溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下である。
【解決手段】溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液、並びに、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法に関する。なお、以下の記載では、カダベリン及び／又はカダベリン塩を「カダベリン類」と総称する場合がある。
【背景技術】
【０００２】
従来、プラスチックの原料としては、主にナフサ等の化石原料が用いられている。しかし、プラスチックを廃棄する場合、再生利用する場合を除くと、焼却等の手法で廃棄することになるが、プラスチックを焼却すると炭酸ガスの放出を招くことから、近年課題となりつつある。そこで、地球温暖化防止及び循環型社会の形成に向けて、プラスチックの製造原料をバイオマス由来の原料に置き換えることが嘱望されている。このようなニーズは、フィルム、自動車部品、電気・電子部品、機械部品等の射出成型品、繊維、モノフィラメント等、多岐にわたる。
【０００３】
プラスチックの中でも、ポリアミド樹脂は、機械的強度、耐熱性、耐薬品性等に優れており、いわゆるエンジニアリングプラスチックスの１つとして多くの分野で用いられている。中でもフィルムは、二軸延伸ポリプロピレンフィルムや二軸延伸ポリエステルフィルム等に比べ、優れた機械的特性、耐熱性、透明性、ガスバリア性などの特徴を有しており、食品、医薬品、雑貨などの包装用フィルムとして広く利用されている。
【０００４】
ポリアミド樹脂フィルムは強度やガスバリア性を付与するため、二軸延伸等の延伸処理を施して使用される場合が多いが、この際フィッシュアイと称される粒状欠陥があると、それを起点に延伸破断を起こし生産性を損なうだけでなく、フィルムの外観を悪化させ商品価値を著しく損なうため、極力低減することが求められている。
【０００５】
また、ポリアミド樹脂はその優れた性能を生かし、繊維やモノフィラメントの分野でも広く用いられているが、これらの用途でも上述のフィルム同様、フィッシュアイは成型時の延伸破断や表面外観の悪化を招くため、その低減が求められている。
【０００６】
一方、ポリアミド樹脂からなる射出成形品には、自動車部品、電気・電子部品、機械部品等が挙げられるが、いずれも部品のコンパクト化や軽量化を目的に薄肉化が望まれている。この場合、ポリアミド樹脂本来の物性を維持するため分子量（数平均分子量）を下げることなく、高い流動性を有するポリアミド樹脂が求められる。
【０００７】
バイオマス由来の原料を使用して製造されるポリアミド樹脂としては、カダベリン及びジカルボン酸からなる塩（カダベリン・ジカルボン酸塩）を原料とし、これらを重合させて得られるものが知られている。例えば、５６ナイロンは、カダベリン及びアジピン酸からなる塩（カダベリン・アジピン酸塩）を重合させることにより作製される。
【０００８】
ポリアミド樹脂の原料となるカダベリン及び／又はカダベリン塩（カダベリン類）を製造する方法として、例えば、特許文献１〜３には、リジン及び／又はリジン塩（リジン類）の溶液を原料とし、これにリジン脱炭酸酵素（Lysine Decarboxylase：ＬＤＣ）を作用させることにより、カダベリン類の溶液を得る方法が開示されている。リジン脱炭酸酵素としては、微生物由来のものが用いられる。
【０００９】
【特許文献１】特開２００２−２２３７７０号公報
【特許文献２】特開２００４−２２３７７１号公報
【特許文献３】特開２００４−１１４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
しかしながら、上述の特許文献１〜３記載の技術によれば、得られたカダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を生じる場合があった。
【００１１】
カダベリン類の生産速度を上げるために反応時間を短く設定すれば、リジン類をカダベリン類に変換する反応が終わり切らず、原料のリジン類がカダベリン類溶液中に不純物として残存してしまう。この場合、精製による不純物の除去が困難となり、結果としてポリアミド樹脂フィルムに外観上の欠陥が生じてしまうと考えられる。
【００１２】
このため、リジン脱炭酸酵素の使用量を増やし、リジン類を消費させるため反応速度を向上させることが検討されてきたが、上記課題を十分に解決するまでには至っていなかった。
【００１３】
以上の背景から、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することが可能なカダベリン類溶液を、容易且つ経済的に製造する技術が求められていた。
【００１４】
本発明は、上述の課題に鑑みてなされたもので、その目的は、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することが可能なカダベリン又はカダベリン塩の溶液を提供するとともに、このようなカダベリン又はカダベリン塩を容易且つ経済的に製造することが可能な方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討した結果、カダベリン類溶液中に存在するタンパク質やペプチドが、ポリアミド樹脂フィルム等の表面外観の欠陥を招く原因の一つとなっていることを見出した。そして、これらのタンパク質やペプチドの量を表わす指標として、カダベリン類溶液中の加水分解アミノ酸量に着目し、この加水分解アミノ酸量を所定範囲内に抑えたカダベリン類溶液を用いることにより、ポリアミド樹脂フィルム等の表面外観の欠陥を低減することが可能となることを見出した。
【００１６】
更に、本発明者らは、カダベリン類溶液中に存在するこれらのタンパク質やペプチドは、リジン脱炭酸酵素の使用に伴う微生物（菌体）に由来することを見出した。そして、反応時に使用する菌体の量を所定範囲内に抑えることにより、上記規定のカダベリン類溶液を得ることが可能となることを見出し、本発明を完成させた。
【００１７】
即ち、本発明の要旨は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液であって、前記溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下であることを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液に存する（請求項１）。
【００１８】
ここで、前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が０．００３以下であることが好ましい（請求項２）。
【００１９】
また、前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が０．００３以下であることが好ましい（請求項３）。
【００２０】
また、カダベリン塩を形成する酸が、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、及びスルホン酸からなる群より選択される一種以上の酸であることが好ましい（請求項４）。
【００２１】
また、本発明の別の要旨は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造する方法であって、反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体の乾燥菌体換算重量の比率を０．００２以下とすることを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法に存する（請求項５）。
【発明の効果】
【００２２】
本発明のカダベリン又はカダベリン塩の溶液は、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することができる。
また、本発明のカダベリン又はカダベリン塩の製造方法によれば、上述の優れたカダベリン又はカダベリン塩の溶液を、容易且つ経済的に得ることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２３】
以下、本発明について実施の形態を挙げて詳細に説明するが、本発明は以下の説明に限定されるものではなく、その要旨を超えない範囲において種々に変更して実施することができる。
【００２４】
なお、以下の記載では、まず、本発明のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液（以下「本発明のカダベリン類溶液」という場合がある。）について説明し、続いて、本発明のカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法（以下「本発明のカダベリン類の製造方法」或いは単に「本発明の製造方法」という場合がある。）について説明し、更に、本発明のカダベリン類溶液からカダベリン類を精製する方法と、リジン脱炭酸酵素（Lysine decarboxylase：ＬＤＣ）活性を高めるべく微生物を改変する方法について説明する。
【００２５】
［Ｉ．カダベリン類溶液］
本発明のカダベリン類溶液は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩と、溶媒とを備えてなる。なお、リジン類にＬＤＣを作用させてカダベリン類を得る方法については、［II．カダベリン類の製造方法］の欄で後述する。
【００２６】
本発明において「カダベリン」とは、１，５−ペンタンジアミン（Ｈ2Ｎ（ＣＨ2）5ＮＨ2）をいう。カダベリンは、ポリマー原料や医薬中間体の合成原料として有用な化合物である。
【００２７】
本発明において「カダベリン塩」とは、カダベリン及び酸から形成される塩のことを言う。
カダベリンとともに塩を形成する酸の種類に制限はない。無機酸でも有機酸でもよく、また、一価の酸でも二価以上の酸でもよい。酸の例としては、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、スルホン酸等が挙げられる。カルボン酸の具体例としては、ギ酸、酢酸、アジピン酸、グルタル酸、コハク酸、セバシン酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸等が挙げられる。中でも、ナイロン等のポリアミドの製造用途に使用する観点からは、酸としてはカルボン酸が好ましく、アジピン酸がより好ましい。これらの酸は何れか一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００２８】
カダベリン塩１分子を構成するカダベリン及び酸の分子数も任意に選択し得る。カダベリン塩１分子あたり、カダベリン及び酸が共に１分子であってもよく、カダベリン及び酸の一方又は双方が２分子以上であってもよい。例えば、二価の塩基であるカダベリンと二価の酸とから構成される塩の場合、一般的にはカダベリン１分子と二価の酸（例えばアジピン酸）１分子とからカダベリン塩１分子が構成されるが、他の形態を排除するものではなく、２分子以上のカダベリン及び／又は２分子以上の二価の酸から構成されたカダベリン塩が含まれていてもよい。
【００２９】
本発明のカダベリン類溶液は、カダベリンのみを含有していてもよく、カダベリン塩のみを含有していてもよく、カダベリン及びカダベリン塩の双方を含有していてもよい。但し、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン塩を含有する場合、カダベリン塩の一部は通常、カダベリン（又はカダベリンのイオン）と酸（又は酸のイオン）とに解離した状態で溶液中に存在する。本発明において「カダベリン類溶液」即ち「カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液」とは、このような状態の溶液をも含む概念である。
また、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン塩を含有する場合、カダベリン塩の種類は一種のみでもよく、二種以上であってもよい。
【００３０】
溶媒としては、上述のカダベリン及び／又はカダベリン塩を溶解させることが可能であれば、その種類は任意である。具体的な溶媒の種類は、本発明に係るカダベリン類溶液の調製の手法や用途等に応じて選択される。また、何れか一種の溶媒を単独で用いてもよく、二種以上の溶媒を任意の組み合わせ及び比率で混合して用いてもよい。
【００３１】
溶媒としては通常、水及び／又は有機溶媒が使用される。有機溶媒の種類は制限されるものではなく、使用する触媒等の条件に応じて選択すればよい。一般的な有機溶媒の例としては、ジクロロメタン、クロロホルム、１，２，３−トリクロロプロパン、テトラクロルエチレン、１，１，２，２−テトラクロロエタン、１，２−ジクロロエタン等のハロゲン化脂肪族炭化水素類；メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、ペンタノール、ヘキサノール、シクロヘキサノール、オクタノール等のアルコール類；アセトン、メチルエチルケトン、メチルイソブチルケトン等のケトン類；酢酸エチル、プロピオン酸メチル、エナント酸メチル、リノール酸メチル、ステアリン酸メチル等のエステル類；シクロヘキサン、ヘキサン、オクタン等の脂肪族炭化水素類；ベンゼン、トルエン、キシレン、メシチレン、ジフェニルメタン、モノクロロベンゼン、ジクロロベンゼン、ニトロベンゼン、スクアラン等の芳香族炭化水素類；ジメチルスルホキシド、スルホラン等のスルホキシド類；Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル尿素、１，３−ジメチルイミダゾリジノン等のアミド類；テトラヒドロフラン、ジオキサン、ジメトキシエタン、ジエチレングリコールジメチルエーテル、トリエチレングリコールジメチルエーテル、テトラエチレングリコールジメチルエーテル等のエーテル類；等が挙げられる。これらの溶媒は、何れか一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で混合して用いてもよい。
【００３２】
特に、ＬＤＣによるカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造反応時に使用した溶媒をそのまま使用する場合、溶媒としては通常、水又は水を主成分とする混合溶媒が用いられる。ここで「主成分」とは、混合溶媒の通常５０重量％以上、好ましくは８０重量％以上、より好ましくは９０重量％以上を占める成分をいう。
【００３３】
なお、ＬＤＣを用いた反応によるカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造後、得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩に対して精製等の後処理やポリアミドへの変換を行なう際にも、水及び／又は有機溶媒が使用される場合がある。この場合、反応時に使用した溶媒をそのまま使用してもよく、異なる溶媒を使用してもよい。
【００３４】
本発明のカダベリン類溶液におけるカダベリン及び／又はカダベリン塩の濃度（カダベリン塩の場合はカダベリン換算濃度）は、カダベリン及び／又はカダベリン塩が溶媒に溶解可能な範囲内であれば任意であるが、工業的な観点からは、通常１０ｇ／Ｌ以上、好ましくは２０ｇ／Ｌ以上、また、通常５００ｇ／Ｌ以下、好ましくは４００ｇ／Ｌ以下の範囲であることが望ましい。なお、カダベリン類溶液におけるカダベリン及び／又はカダベリン塩の濃度（カダベリン塩の場合はカダベリン換算濃度）は、後述する溶液中におけるカダベリンのモル濃度と同様の手法により求めることが可能である。
【００３５】
また、本発明のカダベリン類溶液は、上述の溶媒並びにカダベリン及び／又はカダベリン塩に加えて、その他の一種又は二種以上の成分を含有していてもよい。その他の成分の種類や含有量は任意であり、通常はカダベリン類溶液の製法や用途に応じて選択される。
【００３６】
そして、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が、通常０．００８以下、好ましくは０．００７５以下、より好ましくは０．００７以下、更に好ましくは０．００６５以下、特に好ましくは０．００６以下であることを特徴としている。この特徴は、本発明のカダベリン類溶液が、アミノ酸、タンパク質、ペプチド等の不純物の含有量が比較的少なく、高純度であることを表わしている。逆にこの比率が高いと、カダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合にフィッシュアイ等の表面外観の欠陥が増大する場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度の比率を指す。
【００３７】
加えて、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２５以下、より好ましくは０．００２以下、更に好ましくは０．００１５以下であることが望ましい。更には、溶液中におけるカダベリンに対する加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２５以下、より好ましくは０．００２以下、更に好ましくは０．００１５以下であることが望ましい。これらの比率が高過ぎると、カダベリン類溶液をポリアミド等の材料とした場合に、溶液中のリジンやアルギニンが架橋してゲルの原因となり、射出成形品においては機械物性の低下、フィルムにおいてはＦ／Ｅ発生による表面外観の低下や延伸時の破断原因となり、フィラメントにおいても延伸時の破断原因となる場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンの合計モル濃度の比率を指す。また、「溶液中におけるカダベリンに対する加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンの合計モル濃度の比率を指す。
【００３８】
更に、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２９以下、より好ましくは０．００２８以下であることが望ましい。この比率が高過ぎると、カダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥が増大する場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度の比率を指す。
【００３９】
なお、溶液中におけるカダベリンのモル濃度とは、溶液に存在するカダベリン分子及びカダベリンイオンのモル濃度を表わす。ここで、カダベリンイオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わないものとする。
【００４０】
溶液中におけるカダベリンのモル濃度は、種々の分析機器で測定することが可能である。分析手法は限定されないが、イオンクロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー等を用いて測定するのが一般的である。これらのクロマトグラフィーによって測定を行なう場合、測定対象となる溶液をそのまま、或いは必要に応じて所定の濃度範囲となるように希釈して測定に供する。また、ガスクロマトグラフィー又は液体クロマトグラフィーで測定を行なう場合は、溶液中の成分が有する特定の官能基（主にアミノ基）を誘導体化してから、測定に供することが好ましい。
【００４１】
また、溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度とは、溶液中に遊離して存在するアミノ酸（アミノ酸分子及びアミノ酸イオン。ここで、アミノ酸イオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わない。）のモル濃度を表わす。
【００４２】
溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度は、種々の分析機器で測定することが可能である。分析手法は限定されないが、アミノ酸分析計、イオンクロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー等を用いて測定するのが一般的である。これらのクロマトグラフィーによって測定を行なう場合、測定対象となる溶液をそのまま、或いは必要に応じて所定の濃度範囲となるように希釈して測定に供する。また、ガスクロマトグラフィー又は液体クロマトグラフィーで測定を行なう場合は、溶液中の成分が有する特定の官能基（主にアミノ基）を誘導体化してから、測定に供することが好ましい。
【００４３】
また、溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度とは、溶液中の成分を加水分解した後における遊離アミノ酸のモル濃度を表わす。即ち、加水分解アミノ酸とは、加水分解前の溶液中に存在する遊離アミノ酸と、タンパク質やペプチド等の分子中で他の成分と結合（加水分解により分解される結合）を形成しているアミノ酸とを包括する概念である。
【００４４】
溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度は、例えば［実施例］の欄で後述する条件により、塩酸を用いて溶液中のタンパク質やペプチドの加水分解を行なった上で、加水分解後の溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度を上述の手法で測定することにより、得ることが可能である。
【００４５】
また、溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度は、溶液中に遊離して存在するリジン及びアルギニン（リジン分子及びリジンイオン、並びにアルギニン分子及びアルギニンイオン。ここで、リジンイオン及びアルギニンイオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わない。）のモル濃度を表わす。
【００４６】
また、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル濃度とは、溶液中の成分を加水分解した後における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度を表わす。即ち加水分解リジン及び加水分解アルギニンとは、加水分解前の溶液中に存在する遊離リジン及び遊離アルギニンと、タンパク質やペプチド等の分子中で他の成分と結合（加水分解により分解される結合）を形成しているリジン及びアルギニンとを包括する概念である。
【００４７】
溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度は、上述の遊離アミノ酸のモル濃度の測定手法と同様の手法を用いて測定することができる。
また、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル濃度は、上述の加水分解アミノ酸のモル濃度の測定手法と同様の手法を用いて測定することができる。
【００４８】
本発明のカダベリン類溶液は、リジン類にＬＤＣを作用させて得られたカダベリン類を含有するものであれば、その製造方法は制限されるものではないが、以下に説明する方法（本発明のカダベリン類の製造方法）により製造することが好ましい。
【００４９】
［II．カダベリン類の製造方法］
本発明のカダベリン類の製造方法は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造するものである。
【００５０】
原料としては、リジン及び／又はリジン塩を用いる。また、通常はこれらに加えて、更に酸を原料として用いる。
リジンは、酵素的脱炭酸反応によりカダベリンを生成するものであれば、Ｌ−リジン、Ｄ−リジンの何れであってもよく、これらが任意の比率で混合されたものであってもよいが、通常はＬ−リジンが好ましい。
リジン塩は、リジンと、酸及び／又は塩基とから構成される塩であるが、好ましくはリジン及び酸から構成される塩である。リジン塩を構成する酸の種類やその好ましい例は、上述のカダベリン塩を構成する酸として挙げたものと同様である。リジン塩は一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００５１】
また、原料として酸を用いる場合、その種類や好ましい例も、上述のカダベリン塩を構成する酸として挙げたものと同様である。酸は一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
なお、原料となるリジン、リジン塩、酸の組み合わせや比率等の詳細は、目的とするカダベリン及び／又はカダベリン塩の詳細を考慮して、適宜選択することが好ましい。
【００５２】
反応は通常、溶媒の存在下で行なう。溶媒としては通常、上述のように、水又は水を主成分とする混合溶媒が用いられる。水と混合される溶媒は制限されないが、通常は水と混和性を有する親水性有機溶媒が用いられる。親水性有機溶媒の例としては、アルコール類、カルボン酸、エステル類等が挙げられる。アルコール類の例としては、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノール、イソブタノール、ｔ−ブタノール、ペンタノール、イソペンタノール、ヘキサノール、エチレングリコール、１，２-プロパンジオール、１，３−プロパンジオール、１，２−ブタンジオール、１，３−ブタンジオール、１，４−ブタンジオール、グリセリン等が挙げられる。カルボン酸の例としては、ギ酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、イソ酪酸、吉草酸、イソ吉草酸、ヘキサン酸等が挙げられる。エステル類の例としては、酢酸メチル、酢酸エチル、プロピオン酸メチル、プロピオン酸エチル等が挙げられる。親水性有機溶媒は一種を単独で使用してもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００５３】
なお、通常は酸によって反応液のｐＨを調整するため、他のｐＨ調整剤や緩衝剤を併用する必要はないが、溶媒として緩衝液を用いてもよい。緩衝液としては、酢酸ナトリウム緩衝液等が挙げられる。但し、カダベリンと酸との塩を形成させるという点からは、緩衝剤等は用いないか、用いる場合であっても低濃度に抑えることが好ましい。
但し、溶媒の詳細についても、目的とするカダベリン類溶液の詳細を考慮して、適宜選択することが好ましい。
【００５４】
上述のリジン及び／又はリジン塩、並びに必要に応じて用いられる酸を、上述の溶媒に溶解させることにより、反応液を調製する。
【００５５】
ここで、原料となるリジン及び／又はリジン塩並びに酸は、反応開始前又は反応開始時に全量を反応液に含有させてもよく、ＬＤＣ反応の進行に応じて分割して反応液に加えてもよいが、反応開始時におけるリジン及び／又はリジン塩と酸との比率を調整することにより、反応液のｐＨが酵素的脱炭酸反応に適したｐＨとなるように調整することが好ましい。具体的には、反応液のｐＨを、通常４．０以上、好ましくは５．０以上、より好ましくは５．５以上、また、通常８．０以下、好ましくは７．５以下、より好ましくは７．０以下の範囲である。反応液のｐＨが低過ぎても高過ぎても、充分な反応速度が得られない場合がある。なお、以下の記載では、このように反応液のｐＨを酵素的脱炭酸反応に適したｐＨに調整することを、「中和」と称する場合がある。
【００５６】
なお、反応液中におけるリジンの濃度は制限されないが、通常１０ｇ／Ｌ以上、好ましくは２０ｇ／Ｌ以上、また、通常５００ｇ／Ｌ以下、好ましくは４００ｇ／Ｌ以下の範囲とすることが望ましい。
【００５７】
なお、生産速度及び反応収率向上のため、反応液に補酵素としてビタミンＢ６を含有させることが好ましい。ビタミンＢ６の例としては、ピリドキシン、ピリドキサミン、ピリドキサル、ピリドキサルリン酸等が挙げられる。これらは一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。中でも、ピリドキサルリン酸が好ましい。
【００５８】
ビタミンＢ６の使用量は特に制限されないが、通常、反応液に対して０．０１ｍＭ以上、０．５ｍＭ以下の範囲が好ましい。ビタミンＢ６の使用量が少な過ぎると反応速度が遅くなる場合があり、多過ぎると反応液の色が黄色くなる場合がある。
ビタミンＢ６を反応液に含有させる時期や手法に制限はない。反応前に反応液に混合してもよく、反応中に反応液に加えてもよい。また、一度に反応液に混合してもよく、二度以上に分割して、異なる時期に反応液に含有させてもよい。
【００５９】
上述の中和された反応液にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を加えて、リジンの脱炭酸反応を行なう。ＬＤＣとしては、リジンに作用してカダベリンを生成させるものであれば、その種類に制限はない。
【００６０】
本発明では、ＬＤＣを産生する細胞として、微生物を用いる（以下、微生物を「菌体」という場合がある。）。微生物としては、細菌、真核細胞等が挙げられる。細菌としては、大腸菌（Escherichia coli）等のエシェリヒア属細菌、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）等のコリネ型細菌、バチルス・サブチリス（Bacillus subtills）等のバチルス属細菌、セラチア・マルセッセンス（Serratia marcescens）等のセラチア属細菌等が挙げられる。真核細胞としては、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）等が挙げられる。中でも、微生物としては細菌が好ましく、エシェリヒア属細菌がより好ましく、大腸菌が特に好ましい。微生物は、ＬＤＣを産生する限り、野生株でもよく、変異株であってもよい。また、ＬＤＣ活性が上昇するように改変された組換え株であってもよい。なお、組換え細胞の詳細については後述する。
【００６１】
ＬＤＣを産生する細胞を用いる場合は、細胞をそのまま反応液に含有させてもよく、ＬＤＣを含む細胞処理物としてから反応液に含有させてもよい。細胞処理物としては、細胞の破砕液及びその分画物が挙げられる。
【００６２】
ここで、本発明の製造方法は、反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体（微生物）の乾燥菌体換算重量の比率を、通常０．００２以下、好ましくは０．００１５以下、より好ましくは０．００１以下とすることを特徴としている。この比率が高いと、菌体を多量に作製する必要がなく、経済的に合理的でない場合がある。また、菌体由来のタンパク質やペプチド等が不純物としてポリアミド中に取り込まれ、表面欠陥上の原因となる場合がある。
【００６３】
なお、反応に使用するリジンの総重量とは、反応開始時に反応系内に存在するリジンの重量と、反応中に反応系に加えたリジンの重量との総和を表わす。
【００６４】
また、菌体の乾燥菌体換算重量とは、乾燥して水分を含まない菌体の重量を表わす。菌体の乾燥菌体換算重量は、例えば、菌体を含む液（菌体液）から、遠心分離やろ過等の方法で菌体を分離し、重量が一定になるまで乾燥し、その重量を測定することにより求めることができる。
【００６５】
リジン溶液にＬＤＣを加えて反応を開始した後は、反応の進行に伴い、リジンから遊離される炭酸ガスが反応液から放出され、ｐＨが上昇する。従って、反応液のｐＨが前記範囲となるように、反応液に酸を加えてｐＨを調整する。酸は反応液に連続的に加えてもよく、ｐＨが前記範囲に維持される限り、分割して加えてもよい。
【００６６】
反応時の条件は、ＬＤＣがリジンに作用してカダベリンを生成させる条件であれば特に制限はないが、一般的には以下の通りである。
【００６７】
反応方式は、連続式でもバッチ式でもよい。反応中に酸の添加を容易に行なう観点からは、バッチ式で反応を行なうことが好ましい。また、ＬＤＣ並びにＬＤＣを産生する細胞及びその処理物のうち一種又は二種以上を固定化した担体を用いた移動床カラムクロマトグラフィーによって反応を行なうこともできる。その場合は、反応系のｐＨが所定の範囲に維持されたまま反応が進行するように、リジン及び／又は酸をカラムの適当な部位に注入すればよい。
【００６８】
反応液の温度は、通常２０℃以上、好ましくは３０℃以上、また、通常６０℃以下、好ましくは４０℃以下の範囲とすることが望ましい。反応液の温度が低過ぎると反応が進行しない場合があり、高過ぎると酵素が失活する場合がある。
【００６９】
反応時の雰囲気は任意であるが、通常は空気、炭酸ガス又は窒素ガス雰囲気下が好ましい。
反応時の圧力も任意であるが、通常は常圧或いはそれに近い圧力下で行なう。
また、反応液に攪拌を加えてもよい。
【００７０】
なお、反応時には、反応液への通気量を特定の範囲にすることが望ましい。具体的には通常０．４ｖｖｍ以下、好ましくは０．２ｖｖｍ以下、より好ましくは０．１ｖｖｍ以下、更に好ましくは０ｖｖｍ（通気なし）とすることが望ましい。反応液への通気量をこの範囲に収めることにより、ＬＤＣの触媒活性を向上させ、生産速度を高めることが可能となる。なお、「ｖｖｍ」はVolume per Volume per Minuteの略で、１分間における単位体積当たりの通気量を表わす単位である。
【００７１】
以上の手順により、リジンの酵素的脱炭酸反応によってカダベリンが生成し、それに伴って反応液のｐＨが上昇する。よって、酸を用いて反応液を逐次中和することにより、酵素反応が良好に進行する。反応によって生成するカダベリンは、通常はカダベリン塩として反応液中に蓄積する。
【００７２】
以上の反応により得られた反応液は、そのままの状態で、或いは処理を加えることにより、本発明に係るカダベリン類溶液として用いることが可能である。処理の内容は任意であるが、例としては、反応液の滅菌・濾過や、溶媒の除去・追加によるカダベリン及び／カダベリン塩の濃度調整等の処理が挙げられる。
【００７３】
［III．カダベリン類の精製方法］
次に、本発明のカダベリン類溶液から晶析によりカダベリン類を精製するための手法について説明する。なお、以下の記載では、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン・アジピン酸塩水溶液であり、精製により得られるカダベリン類がカダベリン・アジピン酸塩である場合を例として説明する。
【００７４】
カダベリン・アジピン酸塩水溶液は、黄色く着色している場合があるため、晶析前に脱色剤を用いて脱色することが好ましい。
脱色剤の例としては、活性炭、合成吸着剤、活性白土、シリカ、ゼオライト等が挙げられるが、中でも活性炭が好ましい。
脱色の手法としては、脱色剤を充填した塔にカダベリン・アジピン酸塩水溶液を通液する方法や、カダベリン・アジピン酸塩水溶液と脱色剤とを混合・攪拌する方法等が挙げられるが、前者の手法が好ましい。
【００７５】
脱色後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液は、窒素バブリングにより溶存酸素を追い出した後、カダベリン・アジピン酸塩の濃度が通常５０重量％以上、好ましくは６０重量％以上、また、通常６９重量％以下、好ましくは６７重量％以下となるまで濃縮する。晶析前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液におけるカダベリン・アジピン酸塩の濃度が低過ぎると、晶析後の収率が低くなる傾向があり、カダベリン・アジピン酸塩の濃度が高過ぎると、リジン、アルギニンの含有量が高くなる傾向がある。
【００７６】
濃縮は、カダベリン・アジピン酸塩水溶液の温度が通常５０℃以上、７０℃以下、また、減圧度が通常２０ＭＰａ（約１５０Ｔｏｒｒ）以下の条件で行なうのが好ましい。温度が低過ぎると、濃縮時間が長くなる傾向があり、温度が高過ぎると、カダベリン・アジピン酸塩が分解する傾向がある。また、減圧度が十分に低くないと、濃縮時間が長くなる傾向がある。
【００７７】
晶析は、上記手順により得られた濃縮液を冷却して、カダベリン・アジピン酸塩を析出させることにより行なう。
【００７８】
冷却時の降温速度は通常１℃／ｍｉｎ以上、好ましくは２℃／ｍｉｎ以上、より好ましくは３℃／ｍｉｎ以上、また、通常３０℃／ｍｉｎ以下、好ましくは２０℃／ｍｉｎ以下、より好ましくは１０℃／ｍｉｎ以下の範囲である。降温速度が遅過ぎると、晶析時間が長くなる傾向があり、降温速度が速過ぎると、結晶サイズが小さくなり、精製度が低下する傾向がある。
【００７９】
なお、降温の途中で、濃縮液中に種晶を加えることが好ましい。種晶としては、析出するカダベリン・アジピン酸塩を用いることが好ましいが、種晶としての効果が得られればそれに限らない。
【００８０】
晶析終了温度は、通常１℃以上、好ましくは５℃以上、更に好ましくは１０℃以上、また、通常３０℃以下、好ましくは２５℃以下、更に好ましくは２０℃以下の範囲である。晶析終了温度が高過ぎる場合、特に雰囲気温度より高い場合には、カダベリン・アジピン酸塩スラリーの移送時にも引き続きカダベリン・アジピン酸塩の更なる析出が生じてしまい、配管が閉塞し易くなる傾向がある。
【００８１】
晶析率は、濃縮液のカダベリン・アジピン酸塩濃度と晶析終了温度により決まるが、通常１重量％以上、好ましくは５重量％以上、更に好ましくは１０重量％以上、また、通常４６重量％以下、好ましくは３９重量％以下、更に好ましくは３５重量％以下の範囲内となるように制御することが好ましい。晶析率が低過ぎると収率が低くなる傾向があり、晶析率が高過ぎると、加水分解アミノ酸や遊離アミノ酸（特にリジンやアルギニン）の濃度が高くなる傾向がある。
【００８２】
晶析によって得られるカダベリン・アジピン酸塩スラリーを、常法に従い固液分離することにより、カダベリン・アジピン酸の結晶が得られる。固液分離の例としては、遠心濾過が挙げられる。遠心濾過を行なう場合は、母液（カダベリン・アジピン酸塩スラリーの液体成分）を振り切った後に、遠心濾過器が回転している状態で少量の脱塩水をシャワー状に振り掛け、カダベリン・アジピン酸塩に付着している母液を更に洗い流すと、精製度が上がるので好ましい。脱塩水量は、ｗｅｔケーキ（若干の水を含んだカダベリン・アジピン酸塩）に対して、通常１重量％以上、好ましくは５重量％以上、また、通常４０重量％以下、好ましくは３０重量％以下の範囲内である。脱塩水量が少な過ぎると、洗浄効果が小さくなる場合があり、脱塩水量が多過ぎると、析出したカダベリン・アジピン酸塩が溶解して収率が低下する場合がある。
【００８３】
以上の手順により得られるカダベリン・アジピン酸の結晶を１番晶と称する。
１番晶の固液分離時に得られる母液や洗浄液（これらをそれぞれ「１番母液」及び「１番洗浄液」という場合がある。）を回収して、上述の手順で再度、濃縮、晶析、固液分離を行なうことにより、２番晶を得ることができる。
また、上述の手順を同様に繰り返すことにより、２番晶の固液分離時に得られる母液（２番母液）や洗浄液（２番洗浄液）から３番晶を、３番晶の固液分離時に得られる母液（３番母液）や洗浄液（３番洗浄液）から４番晶を、それぞれ順に得ることができる。以下、５番晶以降も同様である。
【００８４】
なお、上記手順において得られた各母液（１番母液、２番母液、３番母液・・・）及び各洗浄液（１番洗浄液、２番洗浄液、３番洗浄液・・・）も、カダベリン・アジピン酸を含有する溶液であるため、その溶液中のカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が上記規定範囲を満たすものであれば、本発明のカダベリン類溶液として使用することが可能である。
【００８５】
［IV．ＬＤＣ遺伝子の発現の増強］
次に、微生物をＬＤＣ活性が上昇するように改質する方法について例示する。なお、他の細胞についても、それに適するように下記の方法を適宜改変することによって、同様にＬＤＣ活性を上昇させることができる。
【００８６】
ＬＤＣ活性は、例えば、ＬＤＣをコードする遺伝子（ＬＤＣ遺伝子）の発現を増強することによって上昇する。ＬＤＣ遺伝子の発現の増強は、ＬＤＣ遺伝子のコピー数を高めることによって達成される。例えば、ＬＤＣ遺伝子断片を、微生物で機能するベクター、好ましくはマルチコピー型のベクターと連結して組換えＤＮＡを作製し、これを適当な宿主に導入して形質変換すればよい。
【００８７】
ＬＤＣ遺伝子のコピー数の増大は、ＬＤＣ遺伝子を微生物の染色体ＤＮＡ上に多コピー存在させることによっても達成できる。微生物の染色体ＤＮＡ上に遺伝子を多コピーで導入するには、染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列を標的に利用して相同組換えにより行なう。染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列としては、レペティティブＤＮＡ、転移因子の端部に存在するインバーテッド・リピートが利用できる。あるいは、特開平２−１０９９８５号公報に開示されているように、目的遺伝子をトランスポゾンに搭載してこれを転移させて染色体ＤＮＡ上に多コピー導入することも可能である。
【００８８】
ＬＤＣ活性の上昇は、上記の遺伝子増幅による以外に、染色体ＤＮＡ上又はプラスミド上のＬＤＣ遺伝子のプロモーター等の発現調節配列を強力なものに置換することによっても達成される。例えば、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔｒｃプロモーター等が強力なプロモーターとして知られている。また、国際公開第００／１８９３５号パンフレットに開示されているように、遺伝子のプロモーター領域に数塩基の塩基置換を導入し、より強力なものに改変することも可能である。これらのプロモーター置換又は改変によりＬＤＣ遺伝子の発現が強化され、ＬＤＣ活性が上昇する。これら発現調節配列の改変は、遺伝子のコピー数を高めることと組み合わせてもよい。
【００８９】
発現調節配列の置換は、例えば、温度感受性プラスミドを用いた遺伝子置換と同様にして行うことができる。大腸菌の温度感受性複製起点を有するベクターとしては、例えば国際公開第９９／０３９８８号パンフレットに記載のプラスミドｐＭＡＮ９９７等が挙げられる。また、λファージのレッド・リコンビナーゼ（Red recombinase）を利用した方法（Datsenko, K. A., PNAS (2000) 97(12), 6640-6645）によっても、発現調節配列の置換を行うことができる。
【００９０】
ＬＤＣ遺伝子としては、コードされるＬＤＣが、リジンの脱炭酸反応に有効利用できるものであれば特に制限されないが、例えば、バクテリウム カダベリス、大腸菌等の細菌や、カラス豆等の植物、更には、特開２００２−２２３７７０号公報に記載の微生物のＬＤＣ遺伝子が挙げられる。
【００９１】
宿主微生物として大腸菌を用いる場合は、大腸菌由来のＬＤＣ遺伝子が好ましい。
大腸菌のＬＤＣ遺伝子としては、ｃａｄＡ遺伝子及びｌｄｃ遺伝子（米国特許第５８２７６９８号明細書）が知られているが、これらの中ではｃａｄＡ遺伝子が好ましい。大腸菌のｃａｄＡ遺伝子は配列が知られており（N. Watson et al., Journal of bacteriology (1992) vo.174, p.530-540; S. Y. Meng et al. Journal of bacteriology (1992) vo.174, p.2659-2668; GenBank accession M76411）、その配列に基づいて作成したプライマーを用いたＰＣＲにより、大腸菌染色体ＤＮＡから単離することができる。このようなプライマーとしては、配列番号１及び２に示す塩基配列を有するプライマーが挙げられる。
【００９２】
取得されたＬＤＣ遺伝子とベクターを連結して組換えＤＮＡを調製するには、ＬＤＣ遺伝子の末端に合うような制限酵素でベクターを切断し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼ等のリガーゼを用いて前記遺伝子とベクターを連結すればよい。大腸菌用のベクターとしては、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＳＴＶ２９、ｐＨＳＧ２９９、ｐＨＳＧ３９９、ｐＨＳＧ３９８、ＲＳＦ１０１０、ｐＢＲ３２２、ｐＡＣＹＣ１８４、ｐＭＷ２１９等が挙げられる。
【００９３】
ＬＤＣ遺伝子は、野生型であってもよいし、変異型であってもよい。例えばｃａｄＡ遺伝子は、コードされるＬＤＣの活性が損なわれない限り、１若しくは複数の位置での１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むＬＤＣをコードするものであってもよい。ここで、「数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には２個以上、また、通常５０個以下、好ましくは３０個以下、より好ましくは１０個以下である。
【００９４】
上記のようなＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡは、例えば部位特異的変異法によって、特定の部位のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むようにｃａｄＡ遺伝子の塩基配列を改変することによって得られる。また、上記のような改変されたＤＮＡは、従来知られている変異処理によっても取得され得る。変異処理としては、変異処理前のＤＮＡをヒドロキシルアミン等でインビトロ処理する方法、及び変異処理前のＤＮＡを保持する微生物、例えばエシェリヒア属細菌を、紫外線、又は、Ｎ−メチル−Ｎ'−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）若しくはエチルメタンスルホン酸（ＥＭＳ）等の通常変異処理に用いられている変異剤によって処理する方法が挙げられる。
【００９５】
上記のような変異を有するＤＮＡを、適当な細胞で発現させ、発現産物の活性を調べることにより、ＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。また、変異を有するＬＤＣをコードするＤＮＡ又はこれを保持する細胞から、例えばｃａｄＡ遺伝子（GenBank accession M76411）のコード領域の配列、又は同配列の一部を有するプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、且つ、ＬＤＣと同等の活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。ここでいう「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、一例を示せば、相同性が高いＤＮＡ同士、例えば通常７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それにより相同性が低いＤＮＡ同士がハイブリダイズしない条件、或いは、通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である、温度約６０℃で、通常は１倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度、好ましくは０．１倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度でハイブリダイズする条件が挙げられる。
【００９６】
プローブとしてｃａｄＡ遺伝子の一部の配列を用いることもできる。そのようなプローブは、公知のｃａｄＡ遺伝子の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、ｃａｄＡ遺伝子を含むＤＮＡ断片を鋳型とするＰＣＲによって作製することができる。プローブとして、３００ｂｐ程度の長さのＤＮＡ断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件としては、例えば温度約５０℃、２倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度という条件が挙げられる。
【００９７】
ＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡとして、具体的には、公知のｃａｄＡ遺伝子がコードするアミノ酸配列と、好ましくは７０％以上、より好ましくは８０％以上、更に好ましくは９０％以上の相同性を有し、且つ、ＬＤＣ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡが挙げられる。
【００９８】
組換えＤＮＡの微生物への導入は、これまでに報告されている形質転換法に従って行なえばよい。例えば、大腸菌Ｋ１２について報告されているような、受容菌細胞を塩化カルシウムで処理してＤＮＡの透過性を増す方法（Mandel, M. and Higa, A., J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)）があり、バチルス・サブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してＤＮＡを導入する方法（Ducan, C. H., Wilson, G. A. and Young, F. E., Gene, 1, 153 (1997)）がある。或いは、バチルス・サブチリス、放線菌類及び酵母について知られているような、ＤＮＡ受容菌の細胞を、組換えＤＮＡを容易に取り込むプロトプラスト又はスフェロプラストの状態にして、組換えＤＮＡをＤＮＡ受容菌に導入する方法（Chang, S. and Choen, S. N., Molec, Gen. Genet., 168, 111 (1979); Bibb, M. J., Ward, J. M. and Hopwood, O. A., Nature, 274, 398 (1978); Hinnen, A., Hicks, J. B. and Fink, G. R. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 1929 (1978)）も応用できる。更には、電気パルス法（特開平２−２０７７９１号公報）によっても、微生物の形質転換を行なうことができる。
【００９９】
ＬＤＣを産生する微生物又は細胞を得るための培養は、用いる微生物又は細胞に応じて、ＬＤＣの産生に適した方法によって行なえばよい。
【０１００】
例えば、培地としては、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機成分を含有する通常の培地を用いればよい。
【０１０１】
炭素源としては、グルコース、ラクトース、ガラクトース、フラクトース、アラビノース、マルトース、キシロース、トレハロース、リボース、澱粉の加水分解物等の糖類、グリセロール、マンニトールやソルビトールなどのアルコール類、グルコン酸、フマール酸、クエン酸やコハク酸等の有機酸類を用いることができる。
【０１０２】
窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガス、アンモニア水等を用いることができる。
【０１０３】
有機微量栄養素としては、ビタミンＢ１等のビタミン類、アデニンやＲＮＡ等の核酸類などの要求物質又は酵母エキス等を適量含有させることが望ましい。
【０１０４】
これらの他に、必要に応じて、リン酸カルシウム、硫酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等を少量使用してもよい。
【０１０５】
培養条件としては、大腸菌の場合、好気的条件下で１６〜７２時間程度実施するのがよく、培養温度は３０〜４５℃に、培養中ｐＨは５〜８に制御するのがよい。なお、ｐＨ調整には、無機又は有機の酸性又はアルカリ性物質、アンモニアガス等を使用することができる。
なお、ＬＤＣ遺伝子の発現が、誘導可能なプロモーターによって調節されている場合には、誘導剤を培地に含有させてもよい。
【０１０６】
培養後、細胞を遠心分離機や膜により集めることにより、培養液から回収することができる。
回収された細胞は、そのまま用いてもよいが、ＬＤＣを含むそれらの処理物を用いる場合は、細胞を超音波、フレンチプレス、又は酵素的処理により破砕して酵素を抽出し、無細胞抽出液とする。更に、そこからＬＤＣを精製する場合には、常法に従い、硫安塩折、各種クロマトグラフィーを使用することによって精製することができる。
【実施例】
【０１０７】
以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの記載に限定されるものではではない。
【０１０８】
［カダベリン及びアミノ酸分析］
なお、後述の各実施例及び各比較例のカダベリン・アジピン酸塩水溶液における、カダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各モル濃度は、以下の手法により分析した。
【０１０９】
（１）カダベリン分析：
試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）中のカダベリンは、陽イオン交換カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により分離し、電気伝導度計で検出することにより、濃度を定量した。ＨＰＬＣの移動相としては、４０ｍＭのメタンスルホン酸水溶液を使用した。
【０１１０】
（２）遊離アミノ酸分析：
分析装置としては、日立アミノ酸分析計Ｌ−８９００を用いた。まず、試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）を限外濾過（ＭＷＣＯ１００００）して、濾液を分析試料とした。分析条件は生体アミノ酸分離条件とし、分析法としてはニンヒドリン発色法（５７０ｎｍ、４４０ｎｍ）を用いた。標準品としては和光アミノ酸混合液ＡＮII型及びＢ型を希釈したものを用い、分析試料の注入量は１０μＬとした。定量計算として、Ｐｒｏ（プロリン）は４４０ｎｍ、他のアミノ酸は５７０ｎｍのピーク面積から、一点外部標準法にて各アミノ酸のモル濃度を算出し、それらを合計して遊離アミノ酸のモル濃度とした。
【０１１１】
（３）加水分解アミノ酸分析：
試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）をリアクティバイアルに適量秤量し、６Ｎ塩酸５００μＬを加えてよく攪拌し、１１０℃で２４時間加熱した。これを遠心濃縮機で蒸発乾固させた。得られた固体を２００μＬの水に再溶解させ、０．４５μｍフィルターで濾過し、濾液を分析試料とした。分析試料の各アミノ酸のモル濃度を、上記「（１）遊離アミノ酸分析」と同様の手順により測定し、それらを合計して加水分解アミノ酸のモル濃度とした。
【０１１２】
［リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増強株の作製］
次いで、後述のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製に用いた、リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株の作製手順について説明する。
リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）を組み込んだプラスミドｐＣＡＤ１の構築手順の概要を図１に示す。具体的には、以下に説明する手順により行なった。
【０１１３】
（１）大腸菌ＤＮＡ抽出：
ＬＢ培地［組成：トリプトン１０ｇ、イーストエキストラクト５ｇ、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）５ｇを蒸留水１Ｌに溶解］１０ｍＬに、大腸菌ＪＭ１０９株を対数増殖期後期まで培養し、得られた菌体を、１０ｍｇ／ｍＬのリゾチームを含む１０ｍＭＮａＣｌ／２０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ８．０）／１ｍＭエチレンジアミン四酢酸ジナトリウム（ＥＤＴＡ・２Ｎａ）水溶液０．１５ｍＬに懸濁した。
【０１１４】
次に、上記懸濁液にプロテナーゼＫを、最終濃度が１００μｇ／ｍＬになるように加え、３７℃で１時間保温した。更に、ドデシル硫酸ナトリウムを、最終濃度が０．５％になるように加え、５０℃で６時間保温して溶菌した。この溶菌液に、等量のフェノール／クロロホルム溶液を加え、室温で１０分間緩やかに振盪した後、全量を遠心分離（５０００×ｇ、２０分間、１０〜１２℃）し、上清画分を分取し、酢酸ナトリウムを０．３Ｍとなるように加えた後、２倍量のエタノールを加え混合した。遠心分離（１５０００×ｇ、２分）により回収した沈殿物を７０％エタノールで洗浄した後、風乾した。得られたＤＮＡに、１０ｍＭ トリス緩衝液（ｐＨ７．５）−１ｍＭ ＥＤＴＡ・２Ｎａ溶液５ｍＬを加え、４℃で一晩静置し、後述のＰＣＲの鋳型ＤＮＡとして使用した。
【０１１５】
（２）ｃａｄＡのクローニング：
大腸菌ｃａｄＡの取得は、上記（Ａ）で調製したＤＮＡを鋳型とし、全ゲノム配列が報告されている大腸菌Ｋ１２−ＭＧ１６５５株の該遺伝子の配列（GenBank Database Accession No.U00096）を基に設計した合成ＤＮＡ（下記の配列番号１及び配列番号２で表わされる配列からなるＤＮＡ）をプライマーとして用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって行なった。
【０１１６】
・配列番号１：
ＧＴＴＧＣＧＴＧＴＴＣＴＧＣＴＴＣＡＴＣＧＣＧＣＴＧＡＴＧ
・配列番号２：
ＡＣＣＡＡＧＣＴＧＡＴＧＧＧＴＧＡＧＡＴＡＧＡＧＡＡＴＧＡＧＴＡＡＧ
【０１１７】
なお、反応液は、鋳型ＤＮＡ１μＬ及びＰｌａｔｉｎｕｍ（登録商標）Ｐｆｘ ＤＮＡポリメラーゼ（インビトロジェン社製）０．２μＬに、各プライマーが０．３μＭ、ＭｇＳＯ4が１ｍＭ、デオキシヌクレオチド３リン酸（ｄＮＴＰｓ）が０．２５μＭとなるように、１倍濃度Ｐｆｘ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（インビトロジェン社製）を加えて全量を２０μＬとすることにより調製した。
【０１１８】
また、反応温度条件としては、ＤＮＡサーマルサイクラー（ＭＪＲｅｓｅａｒｃｈ社製ＰＴＣ−２００）を用い、９４℃で２０秒、６０℃で２０秒、７２℃で２．５分からなるサイクルを３５回繰り返した。但し、１サイクル目の９４℃での保温は１分２０秒、最終サイクルの７２℃での保温は１０分とした。
【０１１９】
ＰＣＲの終了後、増幅産物をエタノール沈殿により精製し、制限酵素ＫｐｎＩ及び制限
酵素ＳｐｈＩで切断した。得られたＤＮＡ標品を、０．７５％アガロース（SeaKem GTG a
garose：ＦＭＣＢｉｏＰｒｏｄｕｃｔｓ製）ゲル電気泳動により分離した後、臭化エチジウム染色を用いて可視化することにより、ｃａｄＡを含む約２．６ｋｂの断片を検出し、ＱＩＡ Quick Gel Extraction Kit（ＱＩＡＧＥＮ製）を用いて目的ＤＮＡ断片の回収を行なった。
【０１２０】
回収したＤＮＡ断片を、大腸菌プラスミドベクターｐＵＣ１８（タカラバイオ社製）を制限酵素ＫｐｎＩ及び制限酵素ＳｐｈＩで切断して調製したＤＮＡ断片と混合し、ライゲ
ーションキットｖｅｒ．２（タカラバイオ社製）を用いて連結後、得られたプラスミドＤＮＡを用いて大腸菌（ＪＭ１０９株）を形質転換した。この様にして得られた組換え大腸菌を５０μｇ／ｍＬアンピシリン、０．２ｍＭ ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）及び５０μｇ／ｍＬ Ｘ−Ｇａｌを含むＬＢ寒天培地に塗抹した。
【０１２１】
この培地上で白色のコロニーを形成したクローンを、常法により液体培養した後、プラスミドＤＮＡを精製した。得られたプラスミドＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩ及び制限酵素Ｓ
ｐｈＩで切断することにより、約２．５ｋｂの挿入断片が認められることを確認した。こ
のプラスミドをｐＣＡＤ１と命名し、ｐＣＡＤ１を含む大腸菌株をＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１と命名した。
【０１２２】
［カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製］
次いで、後述の実施例及び比較例で使用したカダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製手順について説明する。カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製は、上述のリジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株を用い、リジン・アジピン酸塩を原料として、以下の手順で行なった。
【０１２３】
（１）ｃａｄＡ増幅株の培養：
上記手順により得られた大腸菌株ＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１をＬＢ培地入りフラスコ１０本で前培養した後、１Ｌの培養液を９９ＬのＬＢ培地が入った２００Ｌ容ジャーファーメンターに接種し、温度３５℃、通気量０．５ｖｖｍ、攪拌回転数２５０ｒｐｍの条件下で培養を行なった。培養開始６時間後、この培養液全量を、３ｍ3の２倍濃度ＬＢ培地が入った５ｍ3容培養タンクに接種して、更に培養を行なった。５ｍ3培養タンクでの培養条件は、通気量０．５ｖｖｍ、温度３５℃であった。攪拌回転数は、溶存酸素濃度が十分高い値になるように、６０〜１００ｒｐｍの範囲で調節した。培養４時間目に、滅菌したＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を終濃度で０．５ｍＭになるように加え、その後１４時間培養を継続した。
【０１２４】
（２）菌体の分離
遠心回転数６４００ｒｐｍ、フィード速度７５０Ｌ／ｈｒの条件下で、アルファラバル分離機により培養液からの菌体回収を行なった。回収された菌体の湿重量は３６．９ｋｇであった。この湿菌体を１０ｍＭの酢酸ナトリウム溶液１６０Ｌに懸濁したのち、遠心回転数１５０００ｒｐｍ、フィード速度１．０Ｌ／ｍｉｎの条件下で、シャープレス遠心機により再度菌体回収を行ない、１８．７ｋｇの湿菌体を取得した。
【０１２５】
（３）カダベリン・アジピン酸塩の製造：
５００ｇ／Ｌリジン水溶液に、ｐＨが６．０となるようにアジピン酸を加え、リジン・アジピン酸塩の濃厚溶液を調製した。この濃厚溶液を、リジン濃度が６０ｇ／Ｌとなるように水で希釈することにより、基質溶液（３ｍ3）を作製し、これを５ｍ3容培養タンクにはり込んだ。ピリドキサルリン酸を０．１ｍＭの濃度となるように基質容液に加え、更に、大腸菌株ＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１の菌体を、ＯＤ６６０が０．５になるように加えて反応を開始した。反応時の条件は、温度３７℃、通気量０．５ｖｖｍ、攪拌回転数７０ｒｐｍとした。反応中の溶液のｐＨは、２５０ｋｇのアジピン酸をイオン交換水４００Ｌに懸濁したスラリーを加え、ｐＨ６．５になるように制御した。また、リジン濃度３１８ｇ/Ｌの基質濃厚溶液（６００Ｌ）を開始から約１３０Ｌ／ｈで連続的にフィードし、約４．５時間で全量を添加した。更に反応を継続して、計２２時間反応させた。反応終了時には、リジン残存濃度が０．０３ｇ／Ｌ以下であり、ほぼ１００％のリジンがカダベリンに変換されていた。反応後の溶液（約４ｍ3）は、菌体の不活化処理（８０℃、３０分）を実施した後、分子量１３０００カットのＵＦ膜モジュールを通して高分子量の不純物除去を行なった。ＵＦ処理による回収率は９９．３％であった。
以上の手順により、カダベリン及びアジピン酸をほぼ等モル含むカダベリン・アジピン酸塩水溶液を調製した。
【０１２６】
［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］
（１）活性炭による脱色：
直径７００ｍｍの活性炭塔に、活性炭（三菱化学製ＭＭ−１１）１０５ｋｇ（約４４０Ｌ）を仕込み、２日間脱塩水を通水した。次に、前記カダベリン・アジピン酸塩水溶液（約４ｍ3）を１．３２ｍ3／ｈの速度で通液し、最後に５００Ｌの脱塩水を通水した。初期の流出液４６０Ｌをパージした後、続く流出液を回収することにより、活性炭処理したカダベリン・アジピン酸塩水溶液を採取した。
【０１２７】
活性炭処理前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の重量は４０７６．５ｋｇであり、これに含有されるカダベリン・アジピン酸塩の重量は６０３．９ｋｇであった。また、活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の重量は５０２９ｋｇであり、これに含有されるカダベリン・アジピン酸塩の重量は６０３．７ｋｇであった。
【０１２８】
（２）濃縮：
前記活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液を、ＰＰプリーツカートリッジフィルター（ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製ＴＣＰ−ＪＸ）を通して２ｍ3攪拌槽に仕込み、ジャケット温度１１０℃、内温５７℃、真空度１４０〜１５０Ｔｏｒｒ（約１８．６〜２０ＭＰａ）にて濃縮を開始し、適宜、活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液を仕込みながら濃縮を行なった。
得られた濃縮液の重量は９１８．４ｋｇであり、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６３．５重量％であった。
【０１２９】
（３）晶析：
次に、同一の２ｍ3攪拌槽にて晶析を行なった。攪拌翼は３枚後退翼、攪拌速度は４０ｒｐｍ、降温速度は８℃／ｈとした。内温３７．４℃の時に、予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１０．５℃で晶析終了として、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを得た。尚、種晶としてのカダベリン・アジピン酸塩は、本実施例に準じてラボスケールにて準備した。
【０１３０】
（４）遠心濾過：
直径１．２２ｍの遠心濾過器を用い、前記カダベリン・アジピン酸塩スラリーを３回に分けて遠心濾過した。回転数は９８０ｒｐｍ、母液振り切り時間は１５分、母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１２ｋｇ（脱塩水約１２ｋｇは予想ｗｅｔケーキ重量の約２０重量％分）をシャワー状に振りかけて洗浄し、その脱塩水の振り切り時間は１５分とした。
【０１３１】
１番晶として得られたｗｅｔケーキは１９４．３ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として１６５．２ｋｇ、濃縮液に対する晶析率は２８．３重量％）であった。遠心濾過後に回収した１番母液は６４４ｋｇ、同じく回収した１番洗浄水は９１．１ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩が溶けて量が増えた）であった。
【０１３２】
尚、上記カダベリン・アジピン酸塩重量は、ｗｅｔケーキの水分量を水分計（電量滴定式水分測定装置ＣＡ−０６型及び水分気化装置ＶＡ−０６型、何れも三菱化学製）にて測定して算出した。
【０１３３】
（５）２番晶：
前記回収した１番母液及び１番洗浄水を２ｍ3攪拌槽に仕込み、１番晶との相違点として以下に示した点以外は上記（２）〜（４）と同様の手順により濃縮、晶析、遠心濾過を行なった。２番晶析品としてｗｅｔケーキ１４２．６ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として１２１．４ｋｇ、晶析率３０．６重量％）を得た。回収した２番母液は４１４ｋｇ、回収した２番洗浄水は７６．３ｋｇであった。
【０１３４】
１番晶との相違点として、濃縮工程では、濃縮液の重量は６１０．５ｋｇ、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６５．０重量％であった。晶析工程では、内温４０℃の時に予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１０．０℃で晶析を終了した。遠心濾過工程では、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを２回に分けて遠心濾過を行ない、母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１６ｋｇをシャワー状に振りかけて洗浄した。
【０１３５】
（６）３番晶析：
前記回収した２番母液及び２番洗浄水を２ｍ3攪拌槽に仕込み、１番晶との相違点として以下に示した点以外は上記（２）〜（４）と同様の手順により濃縮、晶析、遠心濾過を行なった。３番晶析品としてｗｅｔケーキ８０．４ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として６８．２ｋｇ、晶析率２４．５重量％）を得た。回収した３番母液と３番洗浄水の合計は４１８ｋｇであった。
【０１３６】
１番晶との相違点として、濃縮工程では、濃縮液の重量は４２１．５ｋｇ、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６６．０重量％であった。晶析工程では、内温４０℃の時に予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１２．０℃で晶析を終了した。遠心濾過工程では、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを２回に分けて遠心濾過を行ない、各々母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１０ｋｇをシャワー状に振りかけて洗浄した。
【０１３７】
［実施例１］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（２）濃縮」にて調製した、カダベリン・アジピン酸塩の１番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩の濃縮水溶液について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１３８】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（４）遠心濾過」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキ２５ｋｇ、水２５ｋｇ及び亜燐酸１．２５ｇを、窒素雰囲気下で混合して完全に溶解させ、原料水溶液を得た。
プランジャーポンプにて予め窒素置換したオートクレーブに、上記の原料水溶液を移送した。ジャケット温度を２８０℃に、オートクレーブの圧力を１．４７ＭＰａにそれぞれ調節し、内容物を２７０℃に昇温した。
【０１３９】
次に、オートクレーブ内の圧力を除々に放圧した後、更に減圧して所定の攪拌動力に到達した時点で反応終了とした。反応終了後に窒素にて復圧し、内容物をストランド状に冷却水槽へ導入した後、回転式カッターでペレット化した。
得られたペレットを、１２０℃、１ｔｏｒｒ（０．１３ｋＰａ）の条件で、水分量が０．１％以下となるまで乾燥し、ポリアミド樹脂を得た。相対粘度は３．５１であった。
【０１４０】
得られたポリアミド樹脂１００重量部に対し、平均粒子径が３．０μｍのタルク０．０３重量部、及び、エチレンビスステアリン酸アマイド（花王社製、カオーワックスＥＢ−ＦＦ）０．１重量部を乾式混合して得られたポリアミド樹脂組成物を原料として、押出機シリンダ径４０ｍｍのＴ−ダイ式成膜機を用い、押出機のシリンダ設定温度を２６０℃、成膜されたフィルムを巻き取る冷却ロールの温度を９０℃として、厚み２５μｍのフィルムを成膜した。成膜開始から１時間が経過した直後のフィルムを評価用サンプルとし、面積９００ｃｍ2中における大きさ５０μｍ以上の粒状欠陥（フィッシュアイ）の数を数えることにより、Ｆ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４１】
［実施例２］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（４）遠心濾過」にて回収された１番母液及び１番洗浄水、即ち、カダベリン・アジピン酸塩の２番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩水溶液について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１４２】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
実施例１において用いたカダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキの代わりに、上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（５）２番晶析」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の２番晶のｗｅｔケーキを用いた他は、実施例１と同様の手順により、ポリアミド樹脂の作製、フィルムの成膜及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４３】
［比較例１］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（５）２番晶」にて回収された２番母液及び２番洗浄水、即ち、カダベリン・アジピン酸塩の３番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩水溶液（これを「比較例１のカダベリン・アジピン酸塩溶液」とする。）について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１４４】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
実施例１において用いたカダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキの代わりに、上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（６）３番晶析」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の３番晶のｗｅｔケーキを用いた他は、実施例１と同様の手順により、ポリアミド樹脂の作製、フィルムの成膜及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４５】
［結果］
実施例１、実施例２及び比較例１の結果を表１に示す。
【０１４６】
【表１】
【０１４７】
［参考例］
上述の［カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製］に従ってリジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株を培養した。培養液を遠心分離することにより、菌体ペレットを回収した。得られた菌体を蒸留水で希釈して、下記の表２の最左欄の各列に示す乾燥菌体濃度（乾燥菌体換算重量に基づく濃度）のサンプルを調製した。得られたサンプルを３７℃で２４時間放置した後、遠心分離を行なって、上清の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸の各モル濃度を、上記［カダベリン及びアミノ酸分析］記載の手順により測定した。
【０１４８】
各サンプルの乾燥菌体濃度と、上清の加水分解アミノ酸濃度及び遊離アミノ酸濃度との関係を、下記の表２及び図２のグラフに示す。
【表２】
【０１４９】
これらの結果から、菌体濃度が高いほど加水分解アミノ酸が増加していることが分かる。また、遊離アミノ酸は殆ど存在しなかったことから、測定された加水分解アミノ酸のほぼ１００％が、菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）に含まれていたペプチドやタンパク質等に由来するものであると推測される。
【０１５０】
すなわち、晶析精製前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液中に存在する加水分解アミノ酸は、その大部分が菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）に由来するものであると推測される。従って、反応時に使用する菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）の量を少なくすれば、不純物となる加水分解アミノ酸成分（ペプチドやタンパク質）を低減化することが可能であると考えられる。
【産業上の利用可能性】
【０１５１】
本発明を利用可能な分野は制限されず、カダベリン及び又はカダベリン塩の溶液が用いられる任意の分野に利用することが可能であるが、特にナイロン等のポリアミドの製造分野において好適に用いられる。
【図面の簡単な説明】
【０１５２】
【図１】リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）を組み込んだプラスミドｐＣＡＤ１の構築手順の概要を示す図である。
【図２】参考例における各サンプルの乾燥菌体濃度と、上清の加水分解アミノ酸濃度及び遊離アミノ酸濃度との関係を示すグラフである。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液、並びに、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法に関する。なお、以下の記載では、カダベリン及び／又はカダベリン塩を「カダベリン類」と総称する場合がある。
【背景技術】
【０００２】
従来、プラスチックの原料としては、主にナフサ等の化石原料が用いられている。しかし、プラスチックを廃棄する場合、再生利用する場合を除くと、焼却等の手法で廃棄することになるが、プラスチックを焼却すると炭酸ガスの放出を招くことから、近年課題となりつつある。そこで、地球温暖化防止及び循環型社会の形成に向けて、プラスチックの製造原料をバイオマス由来の原料に置き換えることが嘱望されている。このようなニーズは、フィルム、自動車部品、電気・電子部品、機械部品等の射出成型品、繊維、モノフィラメント等、多岐にわたる。
【０００３】
プラスチックの中でも、ポリアミド樹脂は、機械的強度、耐熱性、耐薬品性等に優れており、いわゆるエンジニアリングプラスチックスの１つとして多くの分野で用いられている。中でもフィルムは、二軸延伸ポリプロピレンフィルムや二軸延伸ポリエステルフィルム等に比べ、優れた機械的特性、耐熱性、透明性、ガスバリア性などの特徴を有しており、食品、医薬品、雑貨などの包装用フィルムとして広く利用されている。
【０００４】
ポリアミド樹脂フィルムは強度やガスバリア性を付与するため、二軸延伸等の延伸処理を施して使用される場合が多いが、この際フィッシュアイと称される粒状欠陥があると、それを起点に延伸破断を起こし生産性を損なうだけでなく、フィルムの外観を悪化させ商品価値を著しく損なうため、極力低減することが求められている。
【０００５】
また、ポリアミド樹脂はその優れた性能を生かし、繊維やモノフィラメントの分野でも広く用いられているが、これらの用途でも上述のフィルム同様、フィッシュアイは成型時の延伸破断や表面外観の悪化を招くため、その低減が求められている。
【０００６】
一方、ポリアミド樹脂からなる射出成形品には、自動車部品、電気・電子部品、機械部品等が挙げられるが、いずれも部品のコンパクト化や軽量化を目的に薄肉化が望まれている。この場合、ポリアミド樹脂本来の物性を維持するため分子量（数平均分子量）を下げることなく、高い流動性を有するポリアミド樹脂が求められる。
【０００７】
バイオマス由来の原料を使用して製造されるポリアミド樹脂としては、カダベリン及びジカルボン酸からなる塩（カダベリン・ジカルボン酸塩）を原料とし、これらを重合させて得られるものが知られている。例えば、５６ナイロンは、カダベリン及びアジピン酸からなる塩（カダベリン・アジピン酸塩）を重合させることにより作製される。
【０００８】
ポリアミド樹脂の原料となるカダベリン及び／又はカダベリン塩（カダベリン類）を製造する方法として、例えば、特許文献１〜３には、リジン及び／又はリジン塩（リジン類）の溶液を原料とし、これにリジン脱炭酸酵素（Lysine Decarboxylase：ＬＤＣ）を作用させることにより、カダベリン類の溶液を得る方法が開示されている。リジン脱炭酸酵素としては、微生物由来のものが用いられる。
【０００９】
【特許文献１】特開２００２−２２３７７０号公報
【特許文献２】特開２００４−２２３７７１号公報
【特許文献３】特開２００４−１１４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
しかしながら、上述の特許文献１〜３記載の技術によれば、得られたカダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を生じる場合があった。
【００１１】
カダベリン類の生産速度を上げるために反応時間を短く設定すれば、リジン類をカダベリン類に変換する反応が終わり切らず、原料のリジン類がカダベリン類溶液中に不純物として残存してしまう。この場合、精製による不純物の除去が困難となり、結果としてポリアミド樹脂フィルムに外観上の欠陥が生じてしまうと考えられる。
【００１２】
このため、リジン脱炭酸酵素の使用量を増やし、リジン類を消費させるため反応速度を向上させることが検討されてきたが、上記課題を十分に解決するまでには至っていなかった。
【００１３】
以上の背景から、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することが可能なカダベリン類溶液を、容易且つ経済的に製造する技術が求められていた。
【００１４】
本発明は、上述の課題に鑑みてなされたもので、その目的は、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することが可能なカダベリン又はカダベリン塩の溶液を提供するとともに、このようなカダベリン又はカダベリン塩を容易且つ経済的に製造することが可能な方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討した結果、カダベリン類溶液中に存在するタンパク質やペプチドが、ポリアミド樹脂フィルム等の表面外観の欠陥を招く原因の一つとなっていることを見出した。そして、これらのタンパク質やペプチドの量を表わす指標として、カダベリン類溶液中の加水分解アミノ酸量に着目し、この加水分解アミノ酸量を所定範囲内に抑えたカダベリン類溶液を用いることにより、ポリアミド樹脂フィルム等の表面外観の欠陥を低減することが可能となることを見出した。
【００１６】
更に、本発明者らは、カダベリン類溶液中に存在するこれらのタンパク質やペプチドは、リジン脱炭酸酵素の使用に伴う微生物（菌体）に由来することを見出した。そして、反応時に使用する菌体の量を所定範囲内に抑えることにより、上記規定のカダベリン類溶液を得ることが可能となることを見出し、本発明を完成させた。
【００１７】
即ち、本発明の要旨は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液であって、前記溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下であることを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液に存する（請求項１）。
【００１８】
ここで、前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が０．００３以下であることが好ましい（請求項２）。
【００１９】
また、前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が０．００３以下であることが好ましい（請求項３）。
【００２０】
また、カダベリン塩を形成する酸が、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、及びスルホン酸からなる群より選択される一種以上の酸であることが好ましい（請求項４）。
【００２１】
また、本発明の別の要旨は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造する方法であって、反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体の乾燥菌体換算重量の比率を０．００２以下とすることを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法に存する（請求項５）。
【発明の効果】
【００２２】
本発明のカダベリン又はカダベリン塩の溶液は、ポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥を防止することができる。
また、本発明のカダベリン又はカダベリン塩の製造方法によれば、上述の優れたカダベリン又はカダベリン塩の溶液を、容易且つ経済的に得ることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２３】
以下、本発明について実施の形態を挙げて詳細に説明するが、本発明は以下の説明に限定されるものではなく、その要旨を超えない範囲において種々に変更して実施することができる。
【００２４】
なお、以下の記載では、まず、本発明のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液（以下「本発明のカダベリン類溶液」という場合がある。）について説明し、続いて、本発明のカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法（以下「本発明のカダベリン類の製造方法」或いは単に「本発明の製造方法」という場合がある。）について説明し、更に、本発明のカダベリン類溶液からカダベリン類を精製する方法と、リジン脱炭酸酵素（Lysine decarboxylase：ＬＤＣ）活性を高めるべく微生物を改変する方法について説明する。
【００２５】
［Ｉ．カダベリン類溶液］
本発明のカダベリン類溶液は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩と、溶媒とを備えてなる。なお、リジン類にＬＤＣを作用させてカダベリン類を得る方法については、［II．カダベリン類の製造方法］の欄で後述する。
【００２６】
本発明において「カダベリン」とは、１，５−ペンタンジアミン（Ｈ2Ｎ（ＣＨ2）5ＮＨ2）をいう。カダベリンは、ポリマー原料や医薬中間体の合成原料として有用な化合物である。
【００２７】
本発明において「カダベリン塩」とは、カダベリン及び酸から形成される塩のことを言う。
カダベリンとともに塩を形成する酸の種類に制限はない。無機酸でも有機酸でもよく、また、一価の酸でも二価以上の酸でもよい。酸の例としては、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、スルホン酸等が挙げられる。カルボン酸の具体例としては、ギ酸、酢酸、アジピン酸、グルタル酸、コハク酸、セバシン酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸等が挙げられる。中でも、ナイロン等のポリアミドの製造用途に使用する観点からは、酸としてはカルボン酸が好ましく、アジピン酸がより好ましい。これらの酸は何れか一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００２８】
カダベリン塩１分子を構成するカダベリン及び酸の分子数も任意に選択し得る。カダベリン塩１分子あたり、カダベリン及び酸が共に１分子であってもよく、カダベリン及び酸の一方又は双方が２分子以上であってもよい。例えば、二価の塩基であるカダベリンと二価の酸とから構成される塩の場合、一般的にはカダベリン１分子と二価の酸（例えばアジピン酸）１分子とからカダベリン塩１分子が構成されるが、他の形態を排除するものではなく、２分子以上のカダベリン及び／又は２分子以上の二価の酸から構成されたカダベリン塩が含まれていてもよい。
【００２９】
本発明のカダベリン類溶液は、カダベリンのみを含有していてもよく、カダベリン塩のみを含有していてもよく、カダベリン及びカダベリン塩の双方を含有していてもよい。但し、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン塩を含有する場合、カダベリン塩の一部は通常、カダベリン（又はカダベリンのイオン）と酸（又は酸のイオン）とに解離した状態で溶液中に存在する。本発明において「カダベリン類溶液」即ち「カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液」とは、このような状態の溶液をも含む概念である。
また、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン塩を含有する場合、カダベリン塩の種類は一種のみでもよく、二種以上であってもよい。
【００３０】
溶媒としては、上述のカダベリン及び／又はカダベリン塩を溶解させることが可能であれば、その種類は任意である。具体的な溶媒の種類は、本発明に係るカダベリン類溶液の調製の手法や用途等に応じて選択される。また、何れか一種の溶媒を単独で用いてもよく、二種以上の溶媒を任意の組み合わせ及び比率で混合して用いてもよい。
【００３１】
溶媒としては通常、水及び／又は有機溶媒が使用される。有機溶媒の種類は制限されるものではなく、使用する触媒等の条件に応じて選択すればよい。一般的な有機溶媒の例としては、ジクロロメタン、クロロホルム、１，２，３−トリクロロプロパン、テトラクロルエチレン、１，１，２，２−テトラクロロエタン、１，２−ジクロロエタン等のハロゲン化脂肪族炭化水素類；メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、ペンタノール、ヘキサノール、シクロヘキサノール、オクタノール等のアルコール類；アセトン、メチルエチルケトン、メチルイソブチルケトン等のケトン類；酢酸エチル、プロピオン酸メチル、エナント酸メチル、リノール酸メチル、ステアリン酸メチル等のエステル類；シクロヘキサン、ヘキサン、オクタン等の脂肪族炭化水素類；ベンゼン、トルエン、キシレン、メシチレン、ジフェニルメタン、モノクロロベンゼン、ジクロロベンゼン、ニトロベンゼン、スクアラン等の芳香族炭化水素類；ジメチルスルホキシド、スルホラン等のスルホキシド類；Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル尿素、１，３−ジメチルイミダゾリジノン等のアミド類；テトラヒドロフラン、ジオキサン、ジメトキシエタン、ジエチレングリコールジメチルエーテル、トリエチレングリコールジメチルエーテル、テトラエチレングリコールジメチルエーテル等のエーテル類；等が挙げられる。これらの溶媒は、何れか一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で混合して用いてもよい。
【００３２】
特に、ＬＤＣによるカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造反応時に使用した溶媒をそのまま使用する場合、溶媒としては通常、水又は水を主成分とする混合溶媒が用いられる。ここで「主成分」とは、混合溶媒の通常５０重量％以上、好ましくは８０重量％以上、より好ましくは９０重量％以上を占める成分をいう。
【００３３】
なお、ＬＤＣを用いた反応によるカダベリン及び／又はカダベリン塩の製造後、得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩に対して精製等の後処理やポリアミドへの変換を行なう際にも、水及び／又は有機溶媒が使用される場合がある。この場合、反応時に使用した溶媒をそのまま使用してもよく、異なる溶媒を使用してもよい。
【００３４】
本発明のカダベリン類溶液におけるカダベリン及び／又はカダベリン塩の濃度（カダベリン塩の場合はカダベリン換算濃度）は、カダベリン及び／又はカダベリン塩が溶媒に溶解可能な範囲内であれば任意であるが、工業的な観点からは、通常１０ｇ／Ｌ以上、好ましくは２０ｇ／Ｌ以上、また、通常５００ｇ／Ｌ以下、好ましくは４００ｇ／Ｌ以下の範囲であることが望ましい。なお、カダベリン類溶液におけるカダベリン及び／又はカダベリン塩の濃度（カダベリン塩の場合はカダベリン換算濃度）は、後述する溶液中におけるカダベリンのモル濃度と同様の手法により求めることが可能である。
【００３５】
また、本発明のカダベリン類溶液は、上述の溶媒並びにカダベリン及び／又はカダベリン塩に加えて、その他の一種又は二種以上の成分を含有していてもよい。その他の成分の種類や含有量は任意であり、通常はカダベリン類溶液の製法や用途に応じて選択される。
【００３６】
そして、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が、通常０．００８以下、好ましくは０．００７５以下、より好ましくは０．００７以下、更に好ましくは０．００６５以下、特に好ましくは０．００６以下であることを特徴としている。この特徴は、本発明のカダベリン類溶液が、アミノ酸、タンパク質、ペプチド等の不純物の含有量が比較的少なく、高純度であることを表わしている。逆にこの比率が高いと、カダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合にフィッシュアイ等の表面外観の欠陥が増大する場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度の比率を指す。
【００３７】
加えて、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２５以下、より好ましくは０．００２以下、更に好ましくは０．００１５以下であることが望ましい。更には、溶液中におけるカダベリンに対する加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２５以下、より好ましくは０．００２以下、更に好ましくは０．００１５以下であることが望ましい。これらの比率が高過ぎると、カダベリン類溶液をポリアミド等の材料とした場合に、溶液中のリジンやアルギニンが架橋してゲルの原因となり、射出成形品においては機械物性の低下、フィルムにおいてはＦ／Ｅ発生による表面外観の低下や延伸時の破断原因となり、フィラメントにおいても延伸時の破断原因となる場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンの合計モル濃度の比率を指す。また、「溶液中におけるカダベリンに対する加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンの合計モル濃度の比率を指す。
【００３８】
更に、本発明のカダベリン類溶液は、溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が、通常０．００３以下、好ましくは０．００２９以下、より好ましくは０．００２８以下であることが望ましい。この比率が高過ぎると、カダベリン類溶液をポリアミド樹脂フィルム等の原料として用いた場合に、フィッシュアイ等の表面外観の欠陥が増大する場合がある。ここで、「溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率」とは、溶液中におけるカダベリンのモル濃度に対する、溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度の比率を指す。
【００３９】
なお、溶液中におけるカダベリンのモル濃度とは、溶液に存在するカダベリン分子及びカダベリンイオンのモル濃度を表わす。ここで、カダベリンイオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わないものとする。
【００４０】
溶液中におけるカダベリンのモル濃度は、種々の分析機器で測定することが可能である。分析手法は限定されないが、イオンクロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー等を用いて測定するのが一般的である。これらのクロマトグラフィーによって測定を行なう場合、測定対象となる溶液をそのまま、或いは必要に応じて所定の濃度範囲となるように希釈して測定に供する。また、ガスクロマトグラフィー又は液体クロマトグラフィーで測定を行なう場合は、溶液中の成分が有する特定の官能基（主にアミノ基）を誘導体化してから、測定に供することが好ましい。
【００４１】
また、溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度とは、溶液中に遊離して存在するアミノ酸（アミノ酸分子及びアミノ酸イオン。ここで、アミノ酸イオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わない。）のモル濃度を表わす。
【００４２】
溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度は、種々の分析機器で測定することが可能である。分析手法は限定されないが、アミノ酸分析計、イオンクロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー等を用いて測定するのが一般的である。これらのクロマトグラフィーによって測定を行なう場合、測定対象となる溶液をそのまま、或いは必要に応じて所定の濃度範囲となるように希釈して測定に供する。また、ガスクロマトグラフィー又は液体クロマトグラフィーで測定を行なう場合は、溶液中の成分が有する特定の官能基（主にアミノ基）を誘導体化してから、測定に供することが好ましい。
【００４３】
また、溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度とは、溶液中の成分を加水分解した後における遊離アミノ酸のモル濃度を表わす。即ち、加水分解アミノ酸とは、加水分解前の溶液中に存在する遊離アミノ酸と、タンパク質やペプチド等の分子中で他の成分と結合（加水分解により分解される結合）を形成しているアミノ酸とを包括する概念である。
【００４４】
溶液中における加水分解アミノ酸のモル濃度は、例えば［実施例］の欄で後述する条件により、塩酸を用いて溶液中のタンパク質やペプチドの加水分解を行なった上で、加水分解後の溶液中における遊離アミノ酸のモル濃度を上述の手法で測定することにより、得ることが可能である。
【００４５】
また、溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度は、溶液中に遊離して存在するリジン及びアルギニン（リジン分子及びリジンイオン、並びにアルギニン分子及びアルギニンイオン。ここで、リジンイオン及びアルギニンイオンは、解離したイオンとして存在しているか、他のイオンと結合して塩を形成しているかを問わない。）のモル濃度を表わす。
【００４６】
また、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル濃度とは、溶液中の成分を加水分解した後における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度を表わす。即ち加水分解リジン及び加水分解アルギニンとは、加水分解前の溶液中に存在する遊離リジン及び遊離アルギニンと、タンパク質やペプチド等の分子中で他の成分と結合（加水分解により分解される結合）を形成しているリジン及びアルギニンとを包括する概念である。
【００４７】
溶液中における遊離リジン及び遊離アルギニンのモル濃度は、上述の遊離アミノ酸のモル濃度の測定手法と同様の手法を用いて測定することができる。
また、溶液中における加水分解リジン及び加水分解アルギニンのモル濃度は、上述の加水分解アミノ酸のモル濃度の測定手法と同様の手法を用いて測定することができる。
【００４８】
本発明のカダベリン類溶液は、リジン類にＬＤＣを作用させて得られたカダベリン類を含有するものであれば、その製造方法は制限されるものではないが、以下に説明する方法（本発明のカダベリン類の製造方法）により製造することが好ましい。
【００４９】
［II．カダベリン類の製造方法］
本発明のカダベリン類の製造方法は、リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造するものである。
【００５０】
原料としては、リジン及び／又はリジン塩を用いる。また、通常はこれらに加えて、更に酸を原料として用いる。
リジンは、酵素的脱炭酸反応によりカダベリンを生成するものであれば、Ｌ−リジン、Ｄ−リジンの何れであってもよく、これらが任意の比率で混合されたものであってもよいが、通常はＬ−リジンが好ましい。
リジン塩は、リジンと、酸及び／又は塩基とから構成される塩であるが、好ましくはリジン及び酸から構成される塩である。リジン塩を構成する酸の種類やその好ましい例は、上述のカダベリン塩を構成する酸として挙げたものと同様である。リジン塩は一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００５１】
また、原料として酸を用いる場合、その種類や好ましい例も、上述のカダベリン塩を構成する酸として挙げたものと同様である。酸は一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
なお、原料となるリジン、リジン塩、酸の組み合わせや比率等の詳細は、目的とするカダベリン及び／又はカダベリン塩の詳細を考慮して、適宜選択することが好ましい。
【００５２】
反応は通常、溶媒の存在下で行なう。溶媒としては通常、上述のように、水又は水を主成分とする混合溶媒が用いられる。水と混合される溶媒は制限されないが、通常は水と混和性を有する親水性有機溶媒が用いられる。親水性有機溶媒の例としては、アルコール類、カルボン酸、エステル類等が挙げられる。アルコール類の例としては、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノール、イソブタノール、ｔ−ブタノール、ペンタノール、イソペンタノール、ヘキサノール、エチレングリコール、１，２-プロパンジオール、１，３−プロパンジオール、１，２−ブタンジオール、１，３−ブタンジオール、１，４−ブタンジオール、グリセリン等が挙げられる。カルボン酸の例としては、ギ酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、イソ酪酸、吉草酸、イソ吉草酸、ヘキサン酸等が挙げられる。エステル類の例としては、酢酸メチル、酢酸エチル、プロピオン酸メチル、プロピオン酸エチル等が挙げられる。親水性有機溶媒は一種を単独で使用してもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。
【００５３】
なお、通常は酸によって反応液のｐＨを調整するため、他のｐＨ調整剤や緩衝剤を併用する必要はないが、溶媒として緩衝液を用いてもよい。緩衝液としては、酢酸ナトリウム緩衝液等が挙げられる。但し、カダベリンと酸との塩を形成させるという点からは、緩衝剤等は用いないか、用いる場合であっても低濃度に抑えることが好ましい。
但し、溶媒の詳細についても、目的とするカダベリン類溶液の詳細を考慮して、適宜選択することが好ましい。
【００５４】
上述のリジン及び／又はリジン塩、並びに必要に応じて用いられる酸を、上述の溶媒に溶解させることにより、反応液を調製する。
【００５５】
ここで、原料となるリジン及び／又はリジン塩並びに酸は、反応開始前又は反応開始時に全量を反応液に含有させてもよく、ＬＤＣ反応の進行に応じて分割して反応液に加えてもよいが、反応開始時におけるリジン及び／又はリジン塩と酸との比率を調整することにより、反応液のｐＨが酵素的脱炭酸反応に適したｐＨとなるように調整することが好ましい。具体的には、反応液のｐＨを、通常４．０以上、好ましくは５．０以上、より好ましくは５．５以上、また、通常８．０以下、好ましくは７．５以下、より好ましくは７．０以下の範囲である。反応液のｐＨが低過ぎても高過ぎても、充分な反応速度が得られない場合がある。なお、以下の記載では、このように反応液のｐＨを酵素的脱炭酸反応に適したｐＨに調整することを、「中和」と称する場合がある。
【００５６】
なお、反応液中におけるリジンの濃度は制限されないが、通常１０ｇ／Ｌ以上、好ましくは２０ｇ／Ｌ以上、また、通常５００ｇ／Ｌ以下、好ましくは４００ｇ／Ｌ以下の範囲とすることが望ましい。
【００５７】
なお、生産速度及び反応収率向上のため、反応液に補酵素としてビタミンＢ６を含有させることが好ましい。ビタミンＢ６の例としては、ピリドキシン、ピリドキサミン、ピリドキサル、ピリドキサルリン酸等が挙げられる。これらは一種を単独で用いてもよく、二種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。中でも、ピリドキサルリン酸が好ましい。
【００５８】
ビタミンＢ６の使用量は特に制限されないが、通常、反応液に対して０．０１ｍＭ以上、０．５ｍＭ以下の範囲が好ましい。ビタミンＢ６の使用量が少な過ぎると反応速度が遅くなる場合があり、多過ぎると反応液の色が黄色くなる場合がある。
ビタミンＢ６を反応液に含有させる時期や手法に制限はない。反応前に反応液に混合してもよく、反応中に反応液に加えてもよい。また、一度に反応液に混合してもよく、二度以上に分割して、異なる時期に反応液に含有させてもよい。
【００５９】
上述の中和された反応液にリジン脱炭酸酵素（ＬＤＣ）を加えて、リジンの脱炭酸反応を行なう。ＬＤＣとしては、リジンに作用してカダベリンを生成させるものであれば、その種類に制限はない。
【００６０】
本発明では、ＬＤＣを産生する細胞として、微生物を用いる（以下、微生物を「菌体」という場合がある。）。微生物としては、細菌、真核細胞等が挙げられる。細菌としては、大腸菌（Escherichia coli）等のエシェリヒア属細菌、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）等のコリネ型細菌、バチルス・サブチリス（Bacillus subtills）等のバチルス属細菌、セラチア・マルセッセンス（Serratia marcescens）等のセラチア属細菌等が挙げられる。真核細胞としては、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）等が挙げられる。中でも、微生物としては細菌が好ましく、エシェリヒア属細菌がより好ましく、大腸菌が特に好ましい。微生物は、ＬＤＣを産生する限り、野生株でもよく、変異株であってもよい。また、ＬＤＣ活性が上昇するように改変された組換え株であってもよい。なお、組換え細胞の詳細については後述する。
【００６１】
ＬＤＣを産生する細胞を用いる場合は、細胞をそのまま反応液に含有させてもよく、ＬＤＣを含む細胞処理物としてから反応液に含有させてもよい。細胞処理物としては、細胞の破砕液及びその分画物が挙げられる。
【００６２】
ここで、本発明の製造方法は、反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体（微生物）の乾燥菌体換算重量の比率を、通常０．００２以下、好ましくは０．００１５以下、より好ましくは０．００１以下とすることを特徴としている。この比率が高いと、菌体を多量に作製する必要がなく、経済的に合理的でない場合がある。また、菌体由来のタンパク質やペプチド等が不純物としてポリアミド中に取り込まれ、表面欠陥上の原因となる場合がある。
【００６３】
なお、反応に使用するリジンの総重量とは、反応開始時に反応系内に存在するリジンの重量と、反応中に反応系に加えたリジンの重量との総和を表わす。
【００６４】
また、菌体の乾燥菌体換算重量とは、乾燥して水分を含まない菌体の重量を表わす。菌体の乾燥菌体換算重量は、例えば、菌体を含む液（菌体液）から、遠心分離やろ過等の方法で菌体を分離し、重量が一定になるまで乾燥し、その重量を測定することにより求めることができる。
【００６５】
リジン溶液にＬＤＣを加えて反応を開始した後は、反応の進行に伴い、リジンから遊離される炭酸ガスが反応液から放出され、ｐＨが上昇する。従って、反応液のｐＨが前記範囲となるように、反応液に酸を加えてｐＨを調整する。酸は反応液に連続的に加えてもよく、ｐＨが前記範囲に維持される限り、分割して加えてもよい。
【００６６】
反応時の条件は、ＬＤＣがリジンに作用してカダベリンを生成させる条件であれば特に制限はないが、一般的には以下の通りである。
【００６７】
反応方式は、連続式でもバッチ式でもよい。反応中に酸の添加を容易に行なう観点からは、バッチ式で反応を行なうことが好ましい。また、ＬＤＣ並びにＬＤＣを産生する細胞及びその処理物のうち一種又は二種以上を固定化した担体を用いた移動床カラムクロマトグラフィーによって反応を行なうこともできる。その場合は、反応系のｐＨが所定の範囲に維持されたまま反応が進行するように、リジン及び／又は酸をカラムの適当な部位に注入すればよい。
【００６８】
反応液の温度は、通常２０℃以上、好ましくは３０℃以上、また、通常６０℃以下、好ましくは４０℃以下の範囲とすることが望ましい。反応液の温度が低過ぎると反応が進行しない場合があり、高過ぎると酵素が失活する場合がある。
【００６９】
反応時の雰囲気は任意であるが、通常は空気、炭酸ガス又は窒素ガス雰囲気下が好ましい。
反応時の圧力も任意であるが、通常は常圧或いはそれに近い圧力下で行なう。
また、反応液に攪拌を加えてもよい。
【００７０】
なお、反応時には、反応液への通気量を特定の範囲にすることが望ましい。具体的には通常０．４ｖｖｍ以下、好ましくは０．２ｖｖｍ以下、より好ましくは０．１ｖｖｍ以下、更に好ましくは０ｖｖｍ（通気なし）とすることが望ましい。反応液への通気量をこの範囲に収めることにより、ＬＤＣの触媒活性を向上させ、生産速度を高めることが可能となる。なお、「ｖｖｍ」はVolume per Volume per Minuteの略で、１分間における単位体積当たりの通気量を表わす単位である。
【００７１】
以上の手順により、リジンの酵素的脱炭酸反応によってカダベリンが生成し、それに伴って反応液のｐＨが上昇する。よって、酸を用いて反応液を逐次中和することにより、酵素反応が良好に進行する。反応によって生成するカダベリンは、通常はカダベリン塩として反応液中に蓄積する。
【００７２】
以上の反応により得られた反応液は、そのままの状態で、或いは処理を加えることにより、本発明に係るカダベリン類溶液として用いることが可能である。処理の内容は任意であるが、例としては、反応液の滅菌・濾過や、溶媒の除去・追加によるカダベリン及び／カダベリン塩の濃度調整等の処理が挙げられる。
【００７３】
［III．カダベリン類の精製方法］
次に、本発明のカダベリン類溶液から晶析によりカダベリン類を精製するための手法について説明する。なお、以下の記載では、本発明のカダベリン類溶液がカダベリン・アジピン酸塩水溶液であり、精製により得られるカダベリン類がカダベリン・アジピン酸塩である場合を例として説明する。
【００７４】
カダベリン・アジピン酸塩水溶液は、黄色く着色している場合があるため、晶析前に脱色剤を用いて脱色することが好ましい。
脱色剤の例としては、活性炭、合成吸着剤、活性白土、シリカ、ゼオライト等が挙げられるが、中でも活性炭が好ましい。
脱色の手法としては、脱色剤を充填した塔にカダベリン・アジピン酸塩水溶液を通液する方法や、カダベリン・アジピン酸塩水溶液と脱色剤とを混合・攪拌する方法等が挙げられるが、前者の手法が好ましい。
【００７５】
脱色後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液は、窒素バブリングにより溶存酸素を追い出した後、カダベリン・アジピン酸塩の濃度が通常５０重量％以上、好ましくは６０重量％以上、また、通常６９重量％以下、好ましくは６７重量％以下となるまで濃縮する。晶析前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液におけるカダベリン・アジピン酸塩の濃度が低過ぎると、晶析後の収率が低くなる傾向があり、カダベリン・アジピン酸塩の濃度が高過ぎると、リジン、アルギニンの含有量が高くなる傾向がある。
【００７６】
濃縮は、カダベリン・アジピン酸塩水溶液の温度が通常５０℃以上、７０℃以下、また、減圧度が通常２０ＭＰａ（約１５０Ｔｏｒｒ）以下の条件で行なうのが好ましい。温度が低過ぎると、濃縮時間が長くなる傾向があり、温度が高過ぎると、カダベリン・アジピン酸塩が分解する傾向がある。また、減圧度が十分に低くないと、濃縮時間が長くなる傾向がある。
【００７７】
晶析は、上記手順により得られた濃縮液を冷却して、カダベリン・アジピン酸塩を析出させることにより行なう。
【００７８】
冷却時の降温速度は通常１℃／ｍｉｎ以上、好ましくは２℃／ｍｉｎ以上、より好ましくは３℃／ｍｉｎ以上、また、通常３０℃／ｍｉｎ以下、好ましくは２０℃／ｍｉｎ以下、より好ましくは１０℃／ｍｉｎ以下の範囲である。降温速度が遅過ぎると、晶析時間が長くなる傾向があり、降温速度が速過ぎると、結晶サイズが小さくなり、精製度が低下する傾向がある。
【００７９】
なお、降温の途中で、濃縮液中に種晶を加えることが好ましい。種晶としては、析出するカダベリン・アジピン酸塩を用いることが好ましいが、種晶としての効果が得られればそれに限らない。
【００８０】
晶析終了温度は、通常１℃以上、好ましくは５℃以上、更に好ましくは１０℃以上、また、通常３０℃以下、好ましくは２５℃以下、更に好ましくは２０℃以下の範囲である。晶析終了温度が高過ぎる場合、特に雰囲気温度より高い場合には、カダベリン・アジピン酸塩スラリーの移送時にも引き続きカダベリン・アジピン酸塩の更なる析出が生じてしまい、配管が閉塞し易くなる傾向がある。
【００８１】
晶析率は、濃縮液のカダベリン・アジピン酸塩濃度と晶析終了温度により決まるが、通常１重量％以上、好ましくは５重量％以上、更に好ましくは１０重量％以上、また、通常４６重量％以下、好ましくは３９重量％以下、更に好ましくは３５重量％以下の範囲内となるように制御することが好ましい。晶析率が低過ぎると収率が低くなる傾向があり、晶析率が高過ぎると、加水分解アミノ酸や遊離アミノ酸（特にリジンやアルギニン）の濃度が高くなる傾向がある。
【００８２】
晶析によって得られるカダベリン・アジピン酸塩スラリーを、常法に従い固液分離することにより、カダベリン・アジピン酸の結晶が得られる。固液分離の例としては、遠心濾過が挙げられる。遠心濾過を行なう場合は、母液（カダベリン・アジピン酸塩スラリーの液体成分）を振り切った後に、遠心濾過器が回転している状態で少量の脱塩水をシャワー状に振り掛け、カダベリン・アジピン酸塩に付着している母液を更に洗い流すと、精製度が上がるので好ましい。脱塩水量は、ｗｅｔケーキ（若干の水を含んだカダベリン・アジピン酸塩）に対して、通常１重量％以上、好ましくは５重量％以上、また、通常４０重量％以下、好ましくは３０重量％以下の範囲内である。脱塩水量が少な過ぎると、洗浄効果が小さくなる場合があり、脱塩水量が多過ぎると、析出したカダベリン・アジピン酸塩が溶解して収率が低下する場合がある。
【００８３】
以上の手順により得られるカダベリン・アジピン酸の結晶を１番晶と称する。
１番晶の固液分離時に得られる母液や洗浄液（これらをそれぞれ「１番母液」及び「１番洗浄液」という場合がある。）を回収して、上述の手順で再度、濃縮、晶析、固液分離を行なうことにより、２番晶を得ることができる。
また、上述の手順を同様に繰り返すことにより、２番晶の固液分離時に得られる母液（２番母液）や洗浄液（２番洗浄液）から３番晶を、３番晶の固液分離時に得られる母液（３番母液）や洗浄液（３番洗浄液）から４番晶を、それぞれ順に得ることができる。以下、５番晶以降も同様である。
【００８４】
なお、上記手順において得られた各母液（１番母液、２番母液、３番母液・・・）及び各洗浄液（１番洗浄液、２番洗浄液、３番洗浄液・・・）も、カダベリン・アジピン酸を含有する溶液であるため、その溶液中のカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が上記規定範囲を満たすものであれば、本発明のカダベリン類溶液として使用することが可能である。
【００８５】
［IV．ＬＤＣ遺伝子の発現の増強］
次に、微生物をＬＤＣ活性が上昇するように改質する方法について例示する。なお、他の細胞についても、それに適するように下記の方法を適宜改変することによって、同様にＬＤＣ活性を上昇させることができる。
【００８６】
ＬＤＣ活性は、例えば、ＬＤＣをコードする遺伝子（ＬＤＣ遺伝子）の発現を増強することによって上昇する。ＬＤＣ遺伝子の発現の増強は、ＬＤＣ遺伝子のコピー数を高めることによって達成される。例えば、ＬＤＣ遺伝子断片を、微生物で機能するベクター、好ましくはマルチコピー型のベクターと連結して組換えＤＮＡを作製し、これを適当な宿主に導入して形質変換すればよい。
【００８７】
ＬＤＣ遺伝子のコピー数の増大は、ＬＤＣ遺伝子を微生物の染色体ＤＮＡ上に多コピー存在させることによっても達成できる。微生物の染色体ＤＮＡ上に遺伝子を多コピーで導入するには、染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列を標的に利用して相同組換えにより行なう。染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列としては、レペティティブＤＮＡ、転移因子の端部に存在するインバーテッド・リピートが利用できる。あるいは、特開平２−１０９９８５号公報に開示されているように、目的遺伝子をトランスポゾンに搭載してこれを転移させて染色体ＤＮＡ上に多コピー導入することも可能である。
【００８８】
ＬＤＣ活性の上昇は、上記の遺伝子増幅による以外に、染色体ＤＮＡ上又はプラスミド上のＬＤＣ遺伝子のプロモーター等の発現調節配列を強力なものに置換することによっても達成される。例えば、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔｒｃプロモーター等が強力なプロモーターとして知られている。また、国際公開第００／１８９３５号パンフレットに開示されているように、遺伝子のプロモーター領域に数塩基の塩基置換を導入し、より強力なものに改変することも可能である。これらのプロモーター置換又は改変によりＬＤＣ遺伝子の発現が強化され、ＬＤＣ活性が上昇する。これら発現調節配列の改変は、遺伝子のコピー数を高めることと組み合わせてもよい。
【００８９】
発現調節配列の置換は、例えば、温度感受性プラスミドを用いた遺伝子置換と同様にして行うことができる。大腸菌の温度感受性複製起点を有するベクターとしては、例えば国際公開第９９／０３９８８号パンフレットに記載のプラスミドｐＭＡＮ９９７等が挙げられる。また、λファージのレッド・リコンビナーゼ（Red recombinase）を利用した方法（Datsenko, K. A., PNAS (2000) 97(12), 6640-6645）によっても、発現調節配列の置換を行うことができる。
【００９０】
ＬＤＣ遺伝子としては、コードされるＬＤＣが、リジンの脱炭酸反応に有効利用できるものであれば特に制限されないが、例えば、バクテリウム カダベリス、大腸菌等の細菌や、カラス豆等の植物、更には、特開２００２−２２３７７０号公報に記載の微生物のＬＤＣ遺伝子が挙げられる。
【００９１】
宿主微生物として大腸菌を用いる場合は、大腸菌由来のＬＤＣ遺伝子が好ましい。
大腸菌のＬＤＣ遺伝子としては、ｃａｄＡ遺伝子及びｌｄｃ遺伝子（米国特許第５８２７６９８号明細書）が知られているが、これらの中ではｃａｄＡ遺伝子が好ましい。大腸菌のｃａｄＡ遺伝子は配列が知られており（N. Watson et al., Journal of bacteriology (1992) vo.174, p.530-540; S. Y. Meng et al. Journal of bacteriology (1992) vo.174, p.2659-2668; GenBank accession M76411）、その配列に基づいて作成したプライマーを用いたＰＣＲにより、大腸菌染色体ＤＮＡから単離することができる。このようなプライマーとしては、配列番号１及び２に示す塩基配列を有するプライマーが挙げられる。
【００９２】
取得されたＬＤＣ遺伝子とベクターを連結して組換えＤＮＡを調製するには、ＬＤＣ遺伝子の末端に合うような制限酵素でベクターを切断し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼ等のリガーゼを用いて前記遺伝子とベクターを連結すればよい。大腸菌用のベクターとしては、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＳＴＶ２９、ｐＨＳＧ２９９、ｐＨＳＧ３９９、ｐＨＳＧ３９８、ＲＳＦ１０１０、ｐＢＲ３２２、ｐＡＣＹＣ１８４、ｐＭＷ２１９等が挙げられる。
【００９３】
ＬＤＣ遺伝子は、野生型であってもよいし、変異型であってもよい。例えばｃａｄＡ遺伝子は、コードされるＬＤＣの活性が損なわれない限り、１若しくは複数の位置での１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むＬＤＣをコードするものであってもよい。ここで、「数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には２個以上、また、通常５０個以下、好ましくは３０個以下、より好ましくは１０個以下である。
【００９４】
上記のようなＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡは、例えば部位特異的変異法によって、特定の部位のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むようにｃａｄＡ遺伝子の塩基配列を改変することによって得られる。また、上記のような改変されたＤＮＡは、従来知られている変異処理によっても取得され得る。変異処理としては、変異処理前のＤＮＡをヒドロキシルアミン等でインビトロ処理する方法、及び変異処理前のＤＮＡを保持する微生物、例えばエシェリヒア属細菌を、紫外線、又は、Ｎ−メチル−Ｎ'−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）若しくはエチルメタンスルホン酸（ＥＭＳ）等の通常変異処理に用いられている変異剤によって処理する方法が挙げられる。
【００９５】
上記のような変異を有するＤＮＡを、適当な細胞で発現させ、発現産物の活性を調べることにより、ＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。また、変異を有するＬＤＣをコードするＤＮＡ又はこれを保持する細胞から、例えばｃａｄＡ遺伝子（GenBank accession M76411）のコード領域の配列、又は同配列の一部を有するプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、且つ、ＬＤＣと同等の活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。ここでいう「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、一例を示せば、相同性が高いＤＮＡ同士、例えば通常７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それにより相同性が低いＤＮＡ同士がハイブリダイズしない条件、或いは、通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である、温度約６０℃で、通常は１倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度、好ましくは０．１倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度でハイブリダイズする条件が挙げられる。
【００９６】
プローブとしてｃａｄＡ遺伝子の一部の配列を用いることもできる。そのようなプローブは、公知のｃａｄＡ遺伝子の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、ｃａｄＡ遺伝子を含むＤＮＡ断片を鋳型とするＰＣＲによって作製することができる。プローブとして、３００ｂｐ程度の長さのＤＮＡ断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件としては、例えば温度約５０℃、２倍濃度ＳＳＣ又は０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度という条件が挙げられる。
【００９７】
ＬＤＣと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡとして、具体的には、公知のｃａｄＡ遺伝子がコードするアミノ酸配列と、好ましくは７０％以上、より好ましくは８０％以上、更に好ましくは９０％以上の相同性を有し、且つ、ＬＤＣ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡが挙げられる。
【００９８】
組換えＤＮＡの微生物への導入は、これまでに報告されている形質転換法に従って行なえばよい。例えば、大腸菌Ｋ１２について報告されているような、受容菌細胞を塩化カルシウムで処理してＤＮＡの透過性を増す方法（Mandel, M. and Higa, A., J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)）があり、バチルス・サブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してＤＮＡを導入する方法（Ducan, C. H., Wilson, G. A. and Young, F. E., Gene, 1, 153 (1997)）がある。或いは、バチルス・サブチリス、放線菌類及び酵母について知られているような、ＤＮＡ受容菌の細胞を、組換えＤＮＡを容易に取り込むプロトプラスト又はスフェロプラストの状態にして、組換えＤＮＡをＤＮＡ受容菌に導入する方法（Chang, S. and Choen, S. N., Molec, Gen. Genet., 168, 111 (1979); Bibb, M. J., Ward, J. M. and Hopwood, O. A., Nature, 274, 398 (1978); Hinnen, A., Hicks, J. B. and Fink, G. R. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 1929 (1978)）も応用できる。更には、電気パルス法（特開平２−２０７７９１号公報）によっても、微生物の形質転換を行なうことができる。
【００９９】
ＬＤＣを産生する微生物又は細胞を得るための培養は、用いる微生物又は細胞に応じて、ＬＤＣの産生に適した方法によって行なえばよい。
【０１００】
例えば、培地としては、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機成分を含有する通常の培地を用いればよい。
【０１０１】
炭素源としては、グルコース、ラクトース、ガラクトース、フラクトース、アラビノース、マルトース、キシロース、トレハロース、リボース、澱粉の加水分解物等の糖類、グリセロール、マンニトールやソルビトールなどのアルコール類、グルコン酸、フマール酸、クエン酸やコハク酸等の有機酸類を用いることができる。
【０１０２】
窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガス、アンモニア水等を用いることができる。
【０１０３】
有機微量栄養素としては、ビタミンＢ１等のビタミン類、アデニンやＲＮＡ等の核酸類などの要求物質又は酵母エキス等を適量含有させることが望ましい。
【０１０４】
これらの他に、必要に応じて、リン酸カルシウム、硫酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等を少量使用してもよい。
【０１０５】
培養条件としては、大腸菌の場合、好気的条件下で１６〜７２時間程度実施するのがよく、培養温度は３０〜４５℃に、培養中ｐＨは５〜８に制御するのがよい。なお、ｐＨ調整には、無機又は有機の酸性又はアルカリ性物質、アンモニアガス等を使用することができる。
なお、ＬＤＣ遺伝子の発現が、誘導可能なプロモーターによって調節されている場合には、誘導剤を培地に含有させてもよい。
【０１０６】
培養後、細胞を遠心分離機や膜により集めることにより、培養液から回収することができる。
回収された細胞は、そのまま用いてもよいが、ＬＤＣを含むそれらの処理物を用いる場合は、細胞を超音波、フレンチプレス、又は酵素的処理により破砕して酵素を抽出し、無細胞抽出液とする。更に、そこからＬＤＣを精製する場合には、常法に従い、硫安塩折、各種クロマトグラフィーを使用することによって精製することができる。
【実施例】
【０１０７】
以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの記載に限定されるものではではない。
【０１０８】
［カダベリン及びアミノ酸分析］
なお、後述の各実施例及び各比較例のカダベリン・アジピン酸塩水溶液における、カダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各モル濃度は、以下の手法により分析した。
【０１０９】
（１）カダベリン分析：
試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）中のカダベリンは、陽イオン交換カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により分離し、電気伝導度計で検出することにより、濃度を定量した。ＨＰＬＣの移動相としては、４０ｍＭのメタンスルホン酸水溶液を使用した。
【０１１０】
（２）遊離アミノ酸分析：
分析装置としては、日立アミノ酸分析計Ｌ−８９００を用いた。まず、試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）を限外濾過（ＭＷＣＯ１００００）して、濾液を分析試料とした。分析条件は生体アミノ酸分離条件とし、分析法としてはニンヒドリン発色法（５７０ｎｍ、４４０ｎｍ）を用いた。標準品としては和光アミノ酸混合液ＡＮII型及びＢ型を希釈したものを用い、分析試料の注入量は１０μＬとした。定量計算として、Ｐｒｏ（プロリン）は４４０ｎｍ、他のアミノ酸は５７０ｎｍのピーク面積から、一点外部標準法にて各アミノ酸のモル濃度を算出し、それらを合計して遊離アミノ酸のモル濃度とした。
【０１１１】
（３）加水分解アミノ酸分析：
試料溶液（カダベリン・アジピン酸塩水溶液）をリアクティバイアルに適量秤量し、６Ｎ塩酸５００μＬを加えてよく攪拌し、１１０℃で２４時間加熱した。これを遠心濃縮機で蒸発乾固させた。得られた固体を２００μＬの水に再溶解させ、０．４５μｍフィルターで濾過し、濾液を分析試料とした。分析試料の各アミノ酸のモル濃度を、上記「（１）遊離アミノ酸分析」と同様の手順により測定し、それらを合計して加水分解アミノ酸のモル濃度とした。
【０１１２】
［リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増強株の作製］
次いで、後述のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製に用いた、リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株の作製手順について説明する。
リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）を組み込んだプラスミドｐＣＡＤ１の構築手順の概要を図１に示す。具体的には、以下に説明する手順により行なった。
【０１１３】
（１）大腸菌ＤＮＡ抽出：
ＬＢ培地［組成：トリプトン１０ｇ、イーストエキストラクト５ｇ、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）５ｇを蒸留水１Ｌに溶解］１０ｍＬに、大腸菌ＪＭ１０９株を対数増殖期後期まで培養し、得られた菌体を、１０ｍｇ／ｍＬのリゾチームを含む１０ｍＭＮａＣｌ／２０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ８．０）／１ｍＭエチレンジアミン四酢酸ジナトリウム（ＥＤＴＡ・２Ｎａ）水溶液０．１５ｍＬに懸濁した。
【０１１４】
次に、上記懸濁液にプロテナーゼＫを、最終濃度が１００μｇ／ｍＬになるように加え、３７℃で１時間保温した。更に、ドデシル硫酸ナトリウムを、最終濃度が０．５％になるように加え、５０℃で６時間保温して溶菌した。この溶菌液に、等量のフェノール／クロロホルム溶液を加え、室温で１０分間緩やかに振盪した後、全量を遠心分離（５０００×ｇ、２０分間、１０〜１２℃）し、上清画分を分取し、酢酸ナトリウムを０．３Ｍとなるように加えた後、２倍量のエタノールを加え混合した。遠心分離（１５０００×ｇ、２分）により回収した沈殿物を７０％エタノールで洗浄した後、風乾した。得られたＤＮＡに、１０ｍＭ トリス緩衝液（ｐＨ７．５）−１ｍＭ ＥＤＴＡ・２Ｎａ溶液５ｍＬを加え、４℃で一晩静置し、後述のＰＣＲの鋳型ＤＮＡとして使用した。
【０１１５】
（２）ｃａｄＡのクローニング：
大腸菌ｃａｄＡの取得は、上記（Ａ）で調製したＤＮＡを鋳型とし、全ゲノム配列が報告されている大腸菌Ｋ１２−ＭＧ１６５５株の該遺伝子の配列（GenBank Database Accession No.U00096）を基に設計した合成ＤＮＡ（下記の配列番号１及び配列番号２で表わされる配列からなるＤＮＡ）をプライマーとして用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって行なった。
【０１１６】
・配列番号１：
ＧＴＴＧＣＧＴＧＴＴＣＴＧＣＴＴＣＡＴＣＧＣＧＣＴＧＡＴＧ
・配列番号２：
ＡＣＣＡＡＧＣＴＧＡＴＧＧＧＴＧＡＧＡＴＡＧＡＧＡＡＴＧＡＧＴＡＡＧ
【０１１７】
なお、反応液は、鋳型ＤＮＡ１μＬ及びＰｌａｔｉｎｕｍ（登録商標）Ｐｆｘ ＤＮＡポリメラーゼ（インビトロジェン社製）０．２μＬに、各プライマーが０．３μＭ、ＭｇＳＯ4が１ｍＭ、デオキシヌクレオチド３リン酸（ｄＮＴＰｓ）が０．２５μＭとなるように、１倍濃度Ｐｆｘ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（インビトロジェン社製）を加えて全量を２０μＬとすることにより調製した。
【０１１８】
また、反応温度条件としては、ＤＮＡサーマルサイクラー（ＭＪＲｅｓｅａｒｃｈ社製ＰＴＣ−２００）を用い、９４℃で２０秒、６０℃で２０秒、７２℃で２．５分からなるサイクルを３５回繰り返した。但し、１サイクル目の９４℃での保温は１分２０秒、最終サイクルの７２℃での保温は１０分とした。
【０１１９】
ＰＣＲの終了後、増幅産物をエタノール沈殿により精製し、制限酵素ＫｐｎＩ及び制限
酵素ＳｐｈＩで切断した。得られたＤＮＡ標品を、０．７５％アガロース（SeaKem GTG a
garose：ＦＭＣＢｉｏＰｒｏｄｕｃｔｓ製）ゲル電気泳動により分離した後、臭化エチジウム染色を用いて可視化することにより、ｃａｄＡを含む約２．６ｋｂの断片を検出し、ＱＩＡ Quick Gel Extraction Kit（ＱＩＡＧＥＮ製）を用いて目的ＤＮＡ断片の回収を行なった。
【０１２０】
回収したＤＮＡ断片を、大腸菌プラスミドベクターｐＵＣ１８（タカラバイオ社製）を制限酵素ＫｐｎＩ及び制限酵素ＳｐｈＩで切断して調製したＤＮＡ断片と混合し、ライゲ
ーションキットｖｅｒ．２（タカラバイオ社製）を用いて連結後、得られたプラスミドＤＮＡを用いて大腸菌（ＪＭ１０９株）を形質転換した。この様にして得られた組換え大腸菌を５０μｇ／ｍＬアンピシリン、０．２ｍＭ ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）及び５０μｇ／ｍＬ Ｘ−Ｇａｌを含むＬＢ寒天培地に塗抹した。
【０１２１】
この培地上で白色のコロニーを形成したクローンを、常法により液体培養した後、プラスミドＤＮＡを精製した。得られたプラスミドＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩ及び制限酵素Ｓ
ｐｈＩで切断することにより、約２．５ｋｂの挿入断片が認められることを確認した。こ
のプラスミドをｐＣＡＤ１と命名し、ｐＣＡＤ１を含む大腸菌株をＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１と命名した。
【０１２２】
［カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製］
次いで、後述の実施例及び比較例で使用したカダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製手順について説明する。カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製は、上述のリジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株を用い、リジン・アジピン酸塩を原料として、以下の手順で行なった。
【０１２３】
（１）ｃａｄＡ増幅株の培養：
上記手順により得られた大腸菌株ＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１をＬＢ培地入りフラスコ１０本で前培養した後、１Ｌの培養液を９９ＬのＬＢ培地が入った２００Ｌ容ジャーファーメンターに接種し、温度３５℃、通気量０．５ｖｖｍ、攪拌回転数２５０ｒｐｍの条件下で培養を行なった。培養開始６時間後、この培養液全量を、３ｍ3の２倍濃度ＬＢ培地が入った５ｍ3容培養タンクに接種して、更に培養を行なった。５ｍ3培養タンクでの培養条件は、通気量０．５ｖｖｍ、温度３５℃であった。攪拌回転数は、溶存酸素濃度が十分高い値になるように、６０〜１００ｒｐｍの範囲で調節した。培養４時間目に、滅菌したＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を終濃度で０．５ｍＭになるように加え、その後１４時間培養を継続した。
【０１２４】
（２）菌体の分離
遠心回転数６４００ｒｐｍ、フィード速度７５０Ｌ／ｈｒの条件下で、アルファラバル分離機により培養液からの菌体回収を行なった。回収された菌体の湿重量は３６．９ｋｇであった。この湿菌体を１０ｍＭの酢酸ナトリウム溶液１６０Ｌに懸濁したのち、遠心回転数１５０００ｒｐｍ、フィード速度１．０Ｌ／ｍｉｎの条件下で、シャープレス遠心機により再度菌体回収を行ない、１８．７ｋｇの湿菌体を取得した。
【０１２５】
（３）カダベリン・アジピン酸塩の製造：
５００ｇ／Ｌリジン水溶液に、ｐＨが６．０となるようにアジピン酸を加え、リジン・アジピン酸塩の濃厚溶液を調製した。この濃厚溶液を、リジン濃度が６０ｇ／Ｌとなるように水で希釈することにより、基質溶液（３ｍ3）を作製し、これを５ｍ3容培養タンクにはり込んだ。ピリドキサルリン酸を０．１ｍＭの濃度となるように基質容液に加え、更に、大腸菌株ＪＭ１０９／ｐＣＡＤ１の菌体を、ＯＤ６６０が０．５になるように加えて反応を開始した。反応時の条件は、温度３７℃、通気量０．５ｖｖｍ、攪拌回転数７０ｒｐｍとした。反応中の溶液のｐＨは、２５０ｋｇのアジピン酸をイオン交換水４００Ｌに懸濁したスラリーを加え、ｐＨ６．５になるように制御した。また、リジン濃度３１８ｇ/Ｌの基質濃厚溶液（６００Ｌ）を開始から約１３０Ｌ／ｈで連続的にフィードし、約４．５時間で全量を添加した。更に反応を継続して、計２２時間反応させた。反応終了時には、リジン残存濃度が０．０３ｇ／Ｌ以下であり、ほぼ１００％のリジンがカダベリンに変換されていた。反応後の溶液（約４ｍ3）は、菌体の不活化処理（８０℃、３０分）を実施した後、分子量１３０００カットのＵＦ膜モジュールを通して高分子量の不純物除去を行なった。ＵＦ処理による回収率は９９．３％であった。
以上の手順により、カダベリン及びアジピン酸をほぼ等モル含むカダベリン・アジピン酸塩水溶液を調製した。
【０１２６】
［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］
（１）活性炭による脱色：
直径７００ｍｍの活性炭塔に、活性炭（三菱化学製ＭＭ−１１）１０５ｋｇ（約４４０Ｌ）を仕込み、２日間脱塩水を通水した。次に、前記カダベリン・アジピン酸塩水溶液（約４ｍ3）を１．３２ｍ3／ｈの速度で通液し、最後に５００Ｌの脱塩水を通水した。初期の流出液４６０Ｌをパージした後、続く流出液を回収することにより、活性炭処理したカダベリン・アジピン酸塩水溶液を採取した。
【０１２７】
活性炭処理前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の重量は４０７６．５ｋｇであり、これに含有されるカダベリン・アジピン酸塩の重量は６０３．９ｋｇであった。また、活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液の重量は５０２９ｋｇであり、これに含有されるカダベリン・アジピン酸塩の重量は６０３．７ｋｇであった。
【０１２８】
（２）濃縮：
前記活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液を、ＰＰプリーツカートリッジフィルター（ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製ＴＣＰ−ＪＸ）を通して２ｍ3攪拌槽に仕込み、ジャケット温度１１０℃、内温５７℃、真空度１４０〜１５０Ｔｏｒｒ（約１８．６〜２０ＭＰａ）にて濃縮を開始し、適宜、活性炭処理後のカダベリン・アジピン酸塩水溶液を仕込みながら濃縮を行なった。
得られた濃縮液の重量は９１８．４ｋｇであり、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６３．５重量％であった。
【０１２９】
（３）晶析：
次に、同一の２ｍ3攪拌槽にて晶析を行なった。攪拌翼は３枚後退翼、攪拌速度は４０ｒｐｍ、降温速度は８℃／ｈとした。内温３７．４℃の時に、予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１０．５℃で晶析終了として、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを得た。尚、種晶としてのカダベリン・アジピン酸塩は、本実施例に準じてラボスケールにて準備した。
【０１３０】
（４）遠心濾過：
直径１．２２ｍの遠心濾過器を用い、前記カダベリン・アジピン酸塩スラリーを３回に分けて遠心濾過した。回転数は９８０ｒｐｍ、母液振り切り時間は１５分、母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１２ｋｇ（脱塩水約１２ｋｇは予想ｗｅｔケーキ重量の約２０重量％分）をシャワー状に振りかけて洗浄し、その脱塩水の振り切り時間は１５分とした。
【０１３１】
１番晶として得られたｗｅｔケーキは１９４．３ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として１６５．２ｋｇ、濃縮液に対する晶析率は２８．３重量％）であった。遠心濾過後に回収した１番母液は６４４ｋｇ、同じく回収した１番洗浄水は９１．１ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩が溶けて量が増えた）であった。
【０１３２】
尚、上記カダベリン・アジピン酸塩重量は、ｗｅｔケーキの水分量を水分計（電量滴定式水分測定装置ＣＡ−０６型及び水分気化装置ＶＡ−０６型、何れも三菱化学製）にて測定して算出した。
【０１３３】
（５）２番晶：
前記回収した１番母液及び１番洗浄水を２ｍ3攪拌槽に仕込み、１番晶との相違点として以下に示した点以外は上記（２）〜（４）と同様の手順により濃縮、晶析、遠心濾過を行なった。２番晶析品としてｗｅｔケーキ１４２．６ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として１２１．４ｋｇ、晶析率３０．６重量％）を得た。回収した２番母液は４１４ｋｇ、回収した２番洗浄水は７６．３ｋｇであった。
【０１３４】
１番晶との相違点として、濃縮工程では、濃縮液の重量は６１０．５ｋｇ、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６５．０重量％であった。晶析工程では、内温４０℃の時に予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１０．０℃で晶析を終了した。遠心濾過工程では、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを２回に分けて遠心濾過を行ない、母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１６ｋｇをシャワー状に振りかけて洗浄した。
【０１３５】
（６）３番晶析：
前記回収した２番母液及び２番洗浄水を２ｍ3攪拌槽に仕込み、１番晶との相違点として以下に示した点以外は上記（２）〜（４）と同様の手順により濃縮、晶析、遠心濾過を行なった。３番晶析品としてｗｅｔケーキ８０．４ｋｇ（カダベリン・アジピン酸塩として６８．２ｋｇ、晶析率２４．５重量％）を得た。回収した３番母液と３番洗浄水の合計は４１８ｋｇであった。
【０１３６】
１番晶との相違点として、濃縮工程では、濃縮液の重量は４２１．５ｋｇ、カダベリン・アジピン酸塩濃度は６６．０重量％であった。晶析工程では、内温４０℃の時に予め作製したカダベリン・アジピン酸塩を種晶として１ｋｇ加えて結晶を析出させ、内温１２．０℃で晶析を終了した。遠心濾過工程では、カダベリン・アジピン酸塩スラリーを２回に分けて遠心濾過を行ない、各々母液振り切り後に１０℃の脱塩水約１０ｋｇをシャワー状に振りかけて洗浄した。
【０１３７】
［実施例１］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（２）濃縮」にて調製した、カダベリン・アジピン酸塩の１番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩の濃縮水溶液について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１３８】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（４）遠心濾過」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキ２５ｋｇ、水２５ｋｇ及び亜燐酸１．２５ｇを、窒素雰囲気下で混合して完全に溶解させ、原料水溶液を得た。
プランジャーポンプにて予め窒素置換したオートクレーブに、上記の原料水溶液を移送した。ジャケット温度を２８０℃に、オートクレーブの圧力を１．４７ＭＰａにそれぞれ調節し、内容物を２７０℃に昇温した。
【０１３９】
次に、オートクレーブ内の圧力を除々に放圧した後、更に減圧して所定の攪拌動力に到達した時点で反応終了とした。反応終了後に窒素にて復圧し、内容物をストランド状に冷却水槽へ導入した後、回転式カッターでペレット化した。
得られたペレットを、１２０℃、１ｔｏｒｒ（０．１３ｋＰａ）の条件で、水分量が０．１％以下となるまで乾燥し、ポリアミド樹脂を得た。相対粘度は３．５１であった。
【０１４０】
得られたポリアミド樹脂１００重量部に対し、平均粒子径が３．０μｍのタルク０．０３重量部、及び、エチレンビスステアリン酸アマイド（花王社製、カオーワックスＥＢ−ＦＦ）０．１重量部を乾式混合して得られたポリアミド樹脂組成物を原料として、押出機シリンダ径４０ｍｍのＴ−ダイ式成膜機を用い、押出機のシリンダ設定温度を２６０℃、成膜されたフィルムを巻き取る冷却ロールの温度を９０℃として、厚み２５μｍのフィルムを成膜した。成膜開始から１時間が経過した直後のフィルムを評価用サンプルとし、面積９００ｃｍ2中における大きさ５０μｍ以上の粒状欠陥（フィッシュアイ）の数を数えることにより、Ｆ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４１】
［実施例２］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（４）遠心濾過」にて回収された１番母液及び１番洗浄水、即ち、カダベリン・アジピン酸塩の２番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩水溶液について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１４２】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
実施例１において用いたカダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキの代わりに、上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（５）２番晶析」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の２番晶のｗｅｔケーキを用いた他は、実施例１と同様の手順により、ポリアミド樹脂の作製、フィルムの成膜及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４３】
［比較例１］
（１）カダベリン・アジピン酸塩水溶液の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸分析：
上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（５）２番晶」にて回収された２番母液及び２番洗浄水、即ち、カダベリン・アジピン酸塩の３番晶の晶析前におけるカダベリン・アジピン酸塩水溶液（これを「比較例１のカダベリン・アジピン酸塩溶液」とする。）について、溶液中のカダベリン、加水分解アミノ酸、加水分解リジン、加水分解アルギニン、遊離アミノ酸、遊離リジン及び遊離アルギニンの各々のモル濃度を上記手順により測定した。結果を表１に示す。
【０１４４】
（２）ポリアミド樹脂フィルムの作製及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価：
実施例１において用いたカダベリン・アジピン酸塩の１番晶のｗｅｔケーキの代わりに、上記［カダベリン・アジピン酸塩の精製・単離］の「（６）３番晶析」にて得られた、カダベリン・アジピン酸塩の３番晶のｗｅｔケーキを用いた他は、実施例１と同様の手順により、ポリアミド樹脂の作製、フィルムの成膜及びＦ／Ｅ（フィッシュアイ）の評価を行なった。結果を表１に示す。
【０１４５】
［結果］
実施例１、実施例２及び比較例１の結果を表１に示す。
【０１４６】
【表１】
【０１４７】
［参考例］
上述の［カダベリン・アジピン酸塩水溶液の調製］に従ってリジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株を培養した。培養液を遠心分離することにより、菌体ペレットを回収した。得られた菌体を蒸留水で希釈して、下記の表２の最左欄の各列に示す乾燥菌体濃度（乾燥菌体換算重量に基づく濃度）のサンプルを調製した。得られたサンプルを３７℃で２４時間放置した後、遠心分離を行なって、上清の遊離アミノ酸及び加水分解アミノ酸の各モル濃度を、上記［カダベリン及びアミノ酸分析］記載の手順により測定した。
【０１４８】
各サンプルの乾燥菌体濃度と、上清の加水分解アミノ酸濃度及び遊離アミノ酸濃度との関係を、下記の表２及び図２のグラフに示す。
【表２】
【０１４９】
これらの結果から、菌体濃度が高いほど加水分解アミノ酸が増加していることが分かる。また、遊離アミノ酸は殆ど存在しなかったことから、測定された加水分解アミノ酸のほぼ１００％が、菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）に含まれていたペプチドやタンパク質等に由来するものであると推測される。
【０１５０】
すなわち、晶析精製前のカダベリン・アジピン酸塩水溶液中に存在する加水分解アミノ酸は、その大部分が菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）に由来するものであると推測される。従って、反応時に使用する菌体（リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）増幅株）の量を少なくすれば、不純物となる加水分解アミノ酸成分（ペプチドやタンパク質）を低減化することが可能であると考えられる。
【産業上の利用可能性】
【０１５１】
本発明を利用可能な分野は制限されず、カダベリン及び又はカダベリン塩の溶液が用いられる任意の分野に利用することが可能であるが、特にナイロン等のポリアミドの製造分野において好適に用いられる。
【図面の簡単な説明】
【０１５２】
【図１】リジン脱炭酸酵素遺伝子（ｃａｄＡ）を組み込んだプラスミドｐＣＡＤ１の構築手順の概要を示す図である。
【図２】参考例における各サンプルの乾燥菌体濃度と、上清の加水分解アミノ酸濃度及び遊離アミノ酸濃度との関係を示すグラフである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液であって、
前記溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下である
ことを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項２】
前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が０．００３以下である
ことを特徴とする、請求項１記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項３】
前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が０．００３以下である
ことを特徴とする、請求項２記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項４】
カダベリン塩を形成する酸が、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、及びスルホン酸からなる群より選択される一種以上の酸である
ことを特徴とする、請求項１〜３の何れか一項に記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項５】
リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造する方法であって、
反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体の乾燥菌体換算重量の比率を０．００２以下とする
ことを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法。
【請求項１】
リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させて得られたカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液であって、
前記溶液中におけるカダベリンに対する加水分解アミノ酸のモル比率が０．００８以下である
ことを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項２】
前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離リジン及び遊離アルギニンのモル比率が０．００３以下である
ことを特徴とする、請求項１記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項３】
前記溶液中におけるカダベリンに対する遊離アミノ酸のモル比率が０．００３以下である
ことを特徴とする、請求項２記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項４】
カダベリン塩を形成する酸が、塩酸、硫酸、硝酸、炭酸、カルボン酸、リン酸、及びスルホン酸からなる群より選択される一種以上の酸である
ことを特徴とする、請求項１〜３の何れか一項に記載のカダベリン及び／又はカダベリン塩の溶液。
【請求項５】
リジン及び／又はリジン塩にリジン脱炭酸酵素を作用させることにより、カダベリン及び／又はカダベリン塩を製造する方法であって、
反応に使用するリジンの総重量に対する、反応に使用する菌体の乾燥菌体換算重量の比率を０．００２以下とする
ことを特徴とする、カダベリン及び／又はカダベリン塩の製造方法。
【図１】
【図２】
【図２】
【公開番号】特開２００８−１８７９６３（Ｐ２００８−１８７９６３Ａ）
【公開日】平成２０年８月２１日（２００８．８．２１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−２６２９６（Ｐ２００７−２６２９６）
【出願日】平成１９年２月６日（２００７．２．６）
【出願人】（０００００５９６８）三菱化学株式会社 (4,356)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年８月２１日（２００８．８．２１）
【国際特許分類】
【出願日】平成１９年２月６日（２００７．２．６）
【出願人】（０００００５９６８）三菱化学株式会社 (4,356)
【Ｆターム（参考）】
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