【課題】安定な抗原結合ユニット及びそれらのレパートリーを生成して治療的抗原結合ユニットの同定をおこなうための改善された組成物及び方法を提供する。
【解決手段】本発明によれば、ヘテロ多量体を形成するための単量体ポリペプチドの特異的集合に用いられる方法が提供される。この方法は、抗原結合ユニット等のヘテロ多量体の遺伝学的に多様なレパートリーを生成するのに特に有用である。また、本発明によれば、本明細書に記載の方法によりアセンブルされる、非一本鎖抗原結合ユニットと一本鎖抗原結合ユニットの両方も提供される。

【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、免疫学の分野に属する。具体的には、本発明は、独特のヘテロ二量体化配列を用いた非一本鎖抗原結合ユニット等のキメラヘテロ多量体の生成に関する。また、本発明は、対象のヘテロ二量体化配列により安定化された一本鎖抗原結合ユニットの生成に関する。本発明による組成物及び方法は、主に診断及び/又は治療に使用される可能性のある抗原結合ユニットを同定するのに特に有用である。
【背景技術】
【０００２】
抗体又は免疫グロブリンは、特異的同族抗原を認識し且つそれに結合する分子である。それらが排他的特異性を有するため、抗体、特にモノクローナル抗体は、種々のヒトの疾病の診断及び治療に広く使用されてきた。
【０００３】
脊椎動物系における塩基性免疫グロブリン（Ｉｇ）は、２つの同一の軽（「Ｌ」）鎖ポリペプチド（約２３ｋＤａ）と２つの同一の重（「Ｈ」）鎖ポリペプチド（約５３〜７０ｋＤａ）からなる。４つの鎖は、「Ｙ」配置においてジスルフィド結合により連結されている。Ｙの塩基で、２つのＨ鎖は、共有ジスルフィド結合されている。Ｌ鎖とＨ鎖は、一連のドメインで組織化されている。Ｌ鎖は、Ｃ領域に相当する２つのドメイン（「ＣＬ」）を有し、他はＶ領域（「ＶＬ」）に相当する。Ｈ鎖は、４つのドメインを有し、一つがＶ領域（「ＶＨ」）に相当し、３つのドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３）はＣ領域にある。抗体は、２つのアーム（各アームはＦａｂフラグメントである）を含む。各アームは、互いに関連したＶＬ領域とＶＨ領域を有する。このＶ領域対（ＶＬ及びＶＨ）は、一つの抗体ごとに異なり（アミノ酸配列の変化により）、且つ一緒に抗原の認識及び抗原結合部位の付与に関与している。より詳細には、各Ｖ領域は、４つのフレームワーク領域（ＦＲ）により分離されている３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）から構成されている。ＣＤＲは、可変領域の最も変えられる部分であり、決定的な抗原結合機能を果たす。ＣＤＲ領域は、組み換え、突然変異及び選択を含む複雑なプロセスを介して数多くの可能性のある生殖細胞系配列に由来している。
【０００４】
最近の研究により、結合抗原の機能が、全抗体のフラグメントにより果たされることができることが、明らかとなった。典型的な抗原結合フラグメントは、（ｉ）ＶＬドメイン、ＶＨドメイン、ＣＬドメイン及びＣＨ１ドメインからなるＦａｂフラグメント；（ii）ＶＨドメインとＣＨ１ドメインとからなるＦｄフラグメント；（iii）ＶＨドメインからなるｄＡｂフラグメント（非特許文献１）；（iv）分離されたＣＤＲ領域；及び（ｖ）ヒンジ領域でジスルフィド架橋により連結された２つのＦａｂフラグメントを含む二価のフラグメントであるＦ（ａｂ’）₂フラグメント；及び（vi）抗体の単一アームのＶＬドメイン及びＶＨドメインからなるＦｖフラグメントである。Ｆｖフラグメントは、抗原の高アフィニティー結合に必要とされる最小の機能性ユニットである。
【０００５】
抗体の分野における一つの主要な挑戦は、ヒト免疫系における免疫グロブリンプールを再現する、免疫グロブリンの非常に多種多様なレパートリーを再構成することであった。このようなレパートリーは、一般的に１０⁸〜１０¹³個の範囲の別個の免疫グロブリンの複雑性を有する。このようなレパートリーが生成すると、治療標的と特異的に相互作用できる免疫グロブリンの同定及び産生が非常に容易になる。しかしながら、このようなレパートリーの設計及び産生は、従来では最小機能性ユニット、すなわち、Ｆｖフラグメントのアセンブリのための安定化手段を欠いているために妨害されていた。当該技術分野においては、ＶＨ領域及びＶＬ領域は単独で発現されると、極めて低い相互作用エネルギーを示すことは、周知な問題である（非特許文献２）。２つの成分は、低タンパク質濃度で解離し、生理学的体温では数多くの用途で非常に不安定である。また、全抗体等の大タンパク質は（極めて安定であるにもかかわらず）、宿主細胞では明らかなレベルでは発現しないので、非常に種々の抗体レパートリーを構成するのが極めて困難となることも、長年にわたって認識されている技術的な障害である。
【０００６】
より最近では、安定なＶＬとＶＨの複合体を生成するのに、３つの方法が開発された。しかしながら、これらの方法の各々は、多数の固有の限界があり、これらの方法のどれもが、上記した技術的な障害を完全に回避していない。第一の方法では、ペプチドリンカーを使用してＶＬとＶＨを一本鎖（「ｓｃＦｖ」）として接続している（非特許文献３）。得られたｓｃＦｖは実質的な抗原結合活性を示すが、全ての抗体が一本鎖として製造できるわけではなく、まだ高い結合親和性を保持している（非特許文献３、非特許文献４）。部分的に、このことは、抗原結合部位によるリンカー配列の妨害によるものである。第二の方法では、ＶＬ領域とＶＨ領域における１対のシステイン残基を挿入してジスルフィド結合安定化Ｆｖ（「ｄｓＦｖ」）を生成することが含まれる（非特許文献５）。しかしながら、組み込まれたジスルフィド結合は、数多くの宿主細胞における還元条件下では不安定である。例えば、大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）のサイトゾルでは、分子間ジスルフィド結合は、しばしばＶＬとＶＨの複合体を安定化するのには不十分である。さらに、この方法では、典型的には結合活性を破壊することなくシステイン対を適切な場所に確実に挿入するために、Ｖ領域の３次元構造情報が必要である。大部分の既存の抗体の３次元情報は知られていないので、この方法はほとんど実用性がなく、特に抗体ライブラリーの構築、とりわけＢ細胞由来の抗体レパートリーを構成するのには適していない。ＶＬ領域及びＶＨ領域を安定化するための第三の方法では、ＣＨ１ドメイン及びＣＬドメインに由来するジスルフィド結合を利用する。この方法は続けて、ＣＨ１ドメインとＣＬドメインを連結するジスルフィド結合をＶＬ領域及びＶＨ領域のＣ末端にグラフトしてＦａｂフラグメントを再構成する。得られたＦａｂフラグメントは、一般的により安定であり、しばしばｓｃＦｖよりも大きな結合親和性を示すが、Ｆａｂは、その大きなサイズのために、高レベル発現及び抗体レパートリー構築には最適ではない。
【０００７】
コイルドコイル構造を形成する一定の二量体化配列も、多価抗体を構築するために用いられてきた。具体的には、特許文献１は、Ｆｏｓ及びＪｕｎロイシンジッパーにより連結された二重特異性Ｆ（ａｂ’）₂ヘテロ二量体を記載している。Ｆｏｓ及びＪｕｎロイシンジッパーは、優先的にヘテロ二量体を形成することが知られている十分に特徴付けられた配列である。しかしながら、Ｆｏｓ及びＪｕｎロイシンジッパーは、まだ生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を形成する顕著な傾向を示す（非特許文献６、非特許文献７）。実際に、Ｊｕｎ／Ｊｕｎホモ二量体は、非常に安定であるので、生体外でＦｏｓ／Ｊｕｎヘテロ二量体の形成には、まず加熱によるか、又は２−メルカプトエタニルアミンで還元することによりＪｕｎ／Ｊｕｎホモ二量体を解離させる必要がある（特許文献２第７欄第３５〜３７行目、特許文献１第１６欄第１５〜３０行目参照）。生体内で試験すると、Ｆｏｓ及びＪｕｎの両方が、検出可能な量のホモ二量体を生成する（例えば、特許文献１第１５欄第４１〜４３行目；及び非特許文献７参照）。ホモ二量体化の傾向が多少あることは、単一の抗体種の生成にとっては実質的に重要ではないが、このような傾向は、ＶＬ領域とＶＨ領域との間の効率の高いヘテロ二量体化が必要である抗体レパートリーの構築には問題である。
【０００８】
Ｈｏｕｓｔｏｎ等による特許文献３では、Ｆｏｓ及びＪｕｎロイシンジッパーの他に、コイルドコイル二量体化ペプチドの組み合わせライブラリーの構築が記載されている。Ｈｏｕｓｔｏｎ等は、このライブラリーは、抗体等の選択された高分子リガンドと特異的に相互作用できるポリペプチドを同定するのに有用であることを提案している（第８頁と第９頁にかけての最終パラグラフを参照）。明らかに、特許文献３は、標的抗体の構築及び選択よりむしろ、標的抗体に結合する「抗原ペプチド」の選択に関する。特許文献３は、全くことなる目的に焦点をあてており、コイルドコイル配列を使用して安定な抗原結合ユニットを生成することを記載又は示唆さえもしていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００９】
【特許文献１】米国特許第５，９３２，４４８号
【特許文献２】米国特許第５，９１０，５７３号
【特許文献３】米国特許第５，８２４，４８３号
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Ｗａｒｄ，Ｅ．Ｓ．等、Ｎａｔｕｒｅ ３４１，５４４−５４６（１９８９）
【非特許文献２】Ｇｌｏｃｋｓｈｕｂｅｒ等（１９９０）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２９（６）：１３６２−１３６７
【非特許文献３】Ｈｕｓｔｏｎ等（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ８５：５８７９−５８８３
【非特許文献４】Ｓｔｅｍｍｅｒ等（１９９３）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ１４（２）：２５６−２６５
【非特許文献５】Ｂｒｉｎｋｍａｎｎ等（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．９０（１６）：７５３８−７５４２
【非特許文献６】Ｏ’Ｓｈｅａ等（１９９２）Ｃｅｌｌ６８：６９９−７０８
【非特許文献７】Ｖｉｄａｌ等（１９９６）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
したがって、安定な抗原結合ユニット及びそれらのレパートリーを生成して治療的抗原結合ユニットの同定をおこなうための改善された組成物及び方法について、かなりの必要性がある。理想的な抗原結合ユニットは、Ｆｖフラグメントよりも安定であるが、Ｆａｂフラグメントよりも小さくて大規模製造及び効率的なディスプレイを可能にするものが好ましい。また、このような抗原結合ユニットは、多価抗体及び/又は多重特異性抗体を構築するためのビルディングブロックとしての役割も果たす。本発明は、これらの必要性を満足し、関連した利点も提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明の主要な態様は、安定なヘテロ多量体を形成するための単量体ポリペプチドの特異的集合の方法の設計にある。このヘテロ多量体産生法により、機能性ヘテロ多量体を高生産性で産生することが容易であり、望ましくないホモ二量体の集合が回避される。この方法は、特に抗原結合ユニット等のヘテロ多量体の遺伝学的に多種多様なレパートリーを生成するのに有用である。この方法は、所望の結合特異性を有する抗原結合ユニットの選択を容易にする種々の「遺伝パッケージディスプレイ」技術に容易に適合できる。このような遺伝パッケージディスプレイ技術の詳細は、米国特許第６２４８５１６号、第５９６９１０８号、第５８８５７９３号、第５８３７５００号、第５５７１６９８号、第５２２３４０９号、第５５１４５４８号、ＰＣＴ国際出願公開第ＷＯ９００５１４４号、ＥＰ０３６８６８４、ＰＣＴ国際出願公開第ＷＯ０９２０１０４７号、同第ＷＯ０９３１１２３６号及び同第ＷＯ０９７０８３２０号に記載されている。
【００１３】
対象とする抗原結合ユニットが、ヘテロ二量体化配列の異なる対による親和性により、集合させられ、且つ安定化される。これらの配列は、ヘテロ二量体化対の少なくとも一つのメンバーが、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない点で異なる。ある実施態様では、安定化抗原結合ユニットは、Ｆａｂフラグメントよりも小さい分子サイズを有するだけでなく、必要とする結合特異性及び親和性を示す。さらに、本発明のある種の非一本鎖抗原結合ユニットは、対応する慣用の一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）よりも結合親和性が大きい。抗原結合ユニットは、抗体ライブラリーの構築及び表示に特に適している。対象の抗原結合ユニットの一定の配置は、多価及び多重特異的免疫グロブリンのための都合のよいビルディングユニットとしての役割を果たす。
【００１４】
すなわち、本発明によれば、以下の：（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に融合した軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる軽（Ｌ）鎖ポリペプチド；（ｂ）第二ヘテロ二量体化配列に融合した重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる重（Ｈ）鎖ポリペプチド；を含み、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し；且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、非一本鎖抗原結合ユニットが提供される。好ましくは、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない。
【００１５】
本発明の別の態様によれば、以下の：（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に融合した軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる軽（Ｌ）鎖ポリペプチド；（ｂ）第二ヘテロ二量体化配列に融合した重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる重（Ｈ）鎖ポリペプチド；を含み、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、ヘテロ二量体性受容体由来の前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化する、非一本鎖抗原結合ユニットが提供される。一の態様によれば、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が、前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体化受容体配列を含む。さらに別の態様によれば、対象とするヘテロ二量体化配列は、コイルドコイル二量体を形成する。さらに別の態様によれば、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記２つのヘテロ二量体化配列の非共有結合性の対による親和性を介して二量体化する。好ましくは、前記Ｌ鎖又はＨ鎖ポリペプチドが、前記可変領域及び前記ヘテロ二量体化配列により両側を挟まれているフレクソンをさらに含んでいる。Ｌポリペプチド配列とＨポリペプチド配列の両方が、ヒトＬ鎖及びヒトＨ鎖由来のものでよい。ヘテロ二量体性抗原結合ユニットをさらに安定化するために、システイン残基を導入して、第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列との間のジスルフィド結合を形成することができる。非一本鎖抗原結合ユニットは、一価でも、多価でもよい。これらは、単一特異的でも、多重特異的でもよい。好ましい多重特異性Ａｂｕｓは、二重特異性分子、三重特異性分子及び四重特異性分子である。
【００１６】
本発明の別の実施態様によれば、軽（Ｌ）鎖可変領域と重（Ｈ）鎖可変領域とを含み、前記軽（Ｌ）鎖可変領域と前記重（Ｈ）鎖可変領域が、前記領域の一方のＣ末端と前記他の領域のＮ末端の間の距離をまたがった第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列により接続されており、前記２つの領域が、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成し；且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、一本鎖抗原結合ユニットが提供される。好ましくは、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない。
【００１７】
本発明の別の態様によれば、一本鎖抗原結合ユニットであって、ＶＬ領域及びＶＨ領域が、ヘテロ二量体性受容体に由来する前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成する、一本鎖抗原結合ユニットが提供される。一の態様によれば、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が、前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体化受容体配列を含む。
【００１８】
さらに別の態様によれば、第一ヘテロ二量体化配列及び第二ヘテロ二量体化配列が、コイルドコイル二量体を形成する。別の態様によれば、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、非共有結合性の対による親和性を介して二量体化している。ＶＬ領域とＶＨ領域の両方が、それぞれヒトＬ鎖及びヒトＨ鎖における対応の配列に由来するものでよい。
【００１９】
非一本鎖抗原結合ユニットと一本鎖抗原結合ユニットの両方は、化学的機能性部分に結合できる。典型的な機能性部分には、シグナルペプチド、免疫学的反応性を高める物質、固体支持体へのカップリングを容易にする物質、ワクチンキャリア、生物反応修飾物質、トキシン、検出可能な標識、常磁性標識及び薬物などが含まれるが、これらには限定されない。
【００２０】
対象とする抗原結合ユニットに含まれている好ましいヘテロ二量体化配列は、それぞれＧＡＢＡ_B受容体１及びＧＡＢＡ_B受容体２のＣ末端配列に由来するものである。より好ましくは、第一ヘテロ二量体化配列は、システイン残基に連結されており、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されているものに匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含み；且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、システイン残基に連結されており、前記第二ヘテロ二量体化が、配列番号４に示されているものに匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含む。別法として、前記第一ヘテロ二量体化配列が、システイン残基に連結されており、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号４に示されているものに匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含み；且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、システイン残基に連結されており、前記第二ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されているものに匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含む。
【００２１】
本発明は、非一本鎖抗原結合ユニットのＬポリペプチド及び/又はＨポリペプチドをコードしているコード配列を含む組み換えポリヌクレオチドを提供する。また、本発明は、一本鎖抗原結合ユニットのＶＬ領域又はＶＨ領域をコードするコード配列を含む組み換えポリヌクレオチドも提供する。また、本明細書に記載の組み換えポリヌクレオチドのいずれか一つを含むベクターも、提供される。ベクターは、発現ベクター、例えば、ファージディスプレイベクターであることができる。さらに、本発明によれば、１以上の対象ベクターを含む、抗原結合ユニットのレパートリーをコードしている発現ベクターの選択可能なライブラリーが提供される。好ましくは、前記選択可能なライブラリーは、複数のファージディスプレイベクターを含む。
【００２２】
また、本発明によれば、対象の組み換えポリヌクレオチドを含む宿主細胞も提供される。前記Ｌ鎖ポリペプチドをコードする前記組み換えポリヌクレオチド及び前記Ｈ鎖ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、単一のベクターに存在しても、別個のベクターに存在してもよい。宿主細胞は、真核細胞であっても、原核細胞であってもよい。
【００２３】
本発明のさらに別の態様によれば、非一本鎖抗原結合ユニットの製造方法が提供される。この方法は、以下のステップ：（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に融合して軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる、軽（Ｌ）鎖ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと、第二ヘテロ二量体化配列に融合して重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる、重（Ｈ）鎖ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチドとを、宿主細胞で発現するステップであって、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記ステップと；そして、場合により（ｂ）前記宿主細胞において発現された抗原結合ユニットを分離するステップを含む。
【００２４】
また、産生した抗原結合ユニットは、ヘテロ二量体性受容体由来であるヘテロ二量体化配列を含んでいてもよい。さらに、ステップ（ａ）で発現される非一本鎖抗原結合ユニットは、宿主細胞の表面上にディスプレイされることができる。好ましくは、ステップ（ａ）で発現される非一本鎖抗原結合ユニットは、ファージ粒子上に表示される。
【００２５】
本発明のさらに別の実施態様によれば、非一本鎖抗原結合ユニットの製造方法が提供される。この方法には、以下のステップ：（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に融合して軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる、軽（Ｌ）鎖ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと、第二ヘテロ二量体化配列に融合して重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる、重（Ｈ）鎖ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチドとを調製するステップであって、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記ステップと；そして、（ｂ）前記第一ポリペプチド及び前記第二ポリペプチドを、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化させるステップ、を含む。二量体化のステップは、生体外でおこなってもよいし、生体内でおこなってもよい。
【００２６】
また、本発明は、一本鎖抗原結合ユニットの製造方法を含む。この方法は、以下のステップ：（ａ）対象の一本鎖抗原結合ユニットをコードしているコード配列を含むポリヌクレオチドを宿主細胞において発現するステップ；そして、場合により（ｂ）前記宿主細胞において発現された前記一本鎖抗原結合ユニットを分離するステップを含む。
【００２７】
さらに、本発明は、宿主細胞の表面上に少なくとも２つのポリペプチドを含むキメラヘテロ多量体をディスプレイする方法を含む。この方法は、以下のステップ：前記宿主細胞において、（ｉ）第一ヘテロ二量体化配列及び表面提示配列に融合した第一ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと；そして、（ii）第二ヘテロ二量体化配列に融合した第二ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチド、を発現させるステップであって、前記第一ポリペプチドと前記第二ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を形成できない、前記ステップを含む。一つの側面によれば、前記第一ポリヌクレオチド及び前記第二ポリヌクレオチドが、単一のファージディスプレイベクターにより発現される。別の態様によれば、前記第一ポリヌクレオチド及び前記第二ポリヌクレオチドが、別々のファージディスプレイベクターにより発現される。キメラヘテロ多量体は、好ましくは本発明の非一本鎖抗原結合ユニットである。
【００２８】
また、本発明には、所望の抗原と免疫反応性である非一本鎖抗原結合ユニットを同定する方法が含まれる。この方法は、以下のステップ：（ａ）抗原結合ユニットの遺伝学的に種々のレパートリーを調製するステップであって、前記レパートリーが対象の１以上の抗原結合ユニットを含む、前記ステップと；（ｂ）前記抗原結合ユニットのレパートリーを前記所望の抗原と接触させるステップと；そして、（ｃ）抗原結合ユニットと前記抗原との間の特異的結合を検出することにより、前記所望の抗原と免疫反応性である前記抗原結合ユニットを同定するステップを含む。この実施態様の一つの側面によれば、抗原結合ユニットのレパートリーは、複数の抗原結合ユニットをコードしているベクターのライブラリーを発現させることにより調製される。好ましくは、ベクターのライブラリーは、複数のファージベクターを含む。
【００２９】
最後に、本発明によれば、本発明のベクターを好適なパッケージに入れて含むキットが提供される。
【図面の簡単な説明】
【００３０】
【図１】種々の抗原結合ユニットを示す概略図である。
【図２】対象Ａｂｕｓを構築するのに使用したＧＡＢＡＢ受容体１及びＧＡＢＡＢ受容体２のヌクレオチド配列及びアミノ酸配列を示す；コイルドコイル配列は、ヒトＧＡＢＡ_B−Ｒ１受容体及びＧＡＢＡ_B−Ｒ２受容体由来のものである；ＧＡＢＡ_B受容体１からのコードアミノ酸配列は、図２の上のパネルに示すように、ＥＥＫＳから始まり、ＱＬＱＳで終わる；ＧＡＢＡ_B受容体２からのコードアミノ酸配列は、図２の下のパネルに示すように、ＴＳＲＬから始まり、ＱＬＱＤで終わる；フレキシブルＳｅｒＡｒｇＧｌｙＧｌｙＧｌｙＧｌｙスペーサーを、Ｒ１とＲ２のヘテロ二量体化配列のアミノ末端に付加して機能的Ｆｖヘテロ二量体が形成するようにした；このヘテロ二量体をさらに安定化させるために、本発明者等は、ＶａｌＧｌｙＧｌｙＣｙｓスペーサーを導入して、ヘテロ二量体性コイルドコイル対をシステイン残基の間のジスルフィド結合を介してロックした（配列番号２及び配列番号４）；ＧＧＧＧスペーサーのＮ末端でのＳｅｒＡｒｇコード配列により、ＧＲ１（ＧＡＢＡＢ１受容体由来のヘテロ二量体化配列）ドメイン及び ＧＲ２（ＧＡＢＡＢ２由来のヘテロ二量体化配列）ドメインのそれぞれＶＨフラグメント及びＶＬフラグメントのカルボキシル末端への融合のためのＸｂａＩ部位又はＸｈｏＩ部位が得られる。
【図３Ａ】２つの発現ベクターｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２の概略図である；ｐＡＢＭＸ１とｐＡＢＭＸ２の両方は、抗生物質選択用アンピシリン耐性遺伝子（Ａｍｐ）、複製のプラスミドオリジン（ｃｏｌＥ１ ｏｒｉ）、複製のｆ１ファージオリジン（ｆ１ ｏｒｉ）及びｌａｃプロモーター／ｌａｃＯ１推進タンパク質発現カセット（ｐＡＢＭＸ１について、ｐｌａｃ−ＲＢＳ−ｐ８リーダー−ＤＨタグ、ｐＡＢＭＸ２について、ｐｌａｃ−ＲＢＳ−ｐｅｌＢ リーダー−ＤＨタグ）を含むｐｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）由来のものであった；異種配列を、ＤＨ−タグ（ＨＡ及び６ｘＨｉｓ ｔａｇ）融合タンパク質として発現させ、シグナルペプチド（ｐ８リーダー又はｐｅｌＢリーダー）により、リーダー配列が切断されるペリプラスミドスペースに方向づける。
【図３Ｂ】ｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２のＡｇｅＩ部位とＢｇｌＩＩ部位との間のｌａｃプロモーターの後の配列（配列番号５〜８）を示す；ＨｉｎｄＩＩＩ／ＸｂａＩ部位又はＨｉｎｄＩＩＩ／ＮｏｔＩ部位又はＸｂａＩ／ＮｏｔＩ部位を使用して、ｐＡＢＭＸ１ベクターで発現される異種配列を挿入することができる；ｐＡＢＭＸ２ベクターに含まれるさらなるクローニング部位は、ＮｃｏＩ、ＰｓｔＩ、ＸｂａＩ及びＮｏｔＩである。
【図４Ａ】抗原結合ユニットをディスプレイするのに有用であるファージミドベクターｐＡＢＭＤ１及びｐＡＢＭＤ２の概略図であ る；ｐＡＢＭＤ１及びｐＡＢＭＤ２は、それぞれｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２に由来するものであった；これらは、ｐＡＢＭＸ１ベクター及びｐＡＢＭＸ２ベクターの機能的要素の全て並びに繊維状ファージのｐＩＩＩ遺伝子を含む；ｐＩＩＩ遺伝子を、ＤＨ−タグの３’端にすぐに隣接している位置に挿入し た；ｌａｃプロモーターは、ｐＩＩＩキャプシド融合タンパク質としての異種配列の発現を推進し、次にＫＯ７（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ社）又はＲ４０８ヘルパーファージ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社）等のヘルパーファージの重複感染によりファージ粒子上にディスプレイする；また、このベクターを非サプレッサー細菌の菌株における可溶性タンパク質の発現に使用できる。
【図４Ｂ】ｐＡＢＭＤ１及びｐＡＢＭＤ２のＡｇｅＩ部位とＳａｌＩ部位との間のｌａｃプロモーターの後の配列（配列番号９〜１２）を示す。
【図５Ａ】ベクターｐＡＢＭＸ５及びベクターｐＡＢＭＸ６の概略図である；ｐＡＢＭＸ５及びｐＡＢＭＸ６は、それぞれｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２に由来するものであった；異なるリーダー配列を、ｐＡＢＭＸ５及びｐＡＢＭＸ６に組み込んだ；異種配列の挿入用サブクローニング部位（例えば、ＶＨ遺伝子）も、これらの２つのベクターにおいて異なる；ｐＡＢＭＸ５は、ｐ８リーダーを含み、ｐＡＢＭＸ６は、ｐｅｌＢリーダーを含む；ｌａｃプロモーターを用いる２つのタンパク質発現カセットを、これらの２つのベクターに組み込んだ；第一のカセットを使用してＶＨ−ＧＲ１（ＧＡＢＡ_B受容体１のＶＨ−ヘテロ二量体化配列）を発現し、第二のカセットを使用してＶＬ−ＧＲ２（ＧＡＢＡ_B受容体２のＶＬ−ヘテロ二量体化配列）を発現する；ＤＨ−タグをＧＲ２ドメインに融合して、得られたヘテロ二量体の精製を容易にした。
【図５Ｂ】ｐＡＢＭＸ５ベクター及びｐＡＢＭＸ６ベクターにおけるリーダー配列とＤＨ−タグとの間の配列（配列番号１３〜１６）を示す；さらに、リボソーム結合部位、ＤＨ−タグ、ＶＨ、ＶＬ、ＧＲ１及びＧＲ２の挿入のためのサブクローニング部位も示す。
【図６Ａ】ファージ粒子上にｃｃＦｖを発現及びディスプレイするのに有用であるファージミドベクター、ｐＡＢＭＤ５及びｐＡＢＭＤ６の概略図である；ｐＡＢＭＤ５及びｐＡＢＭＤ６は、それぞれｐＡＢＭＸ５及びｐＡＢＭＸ６に由来するものであった。繊維状ファージに由来するｐＩＩＩ遺伝子を、ＤＨ− タグのすぐ後に挿入した；ＶＬ−ＧＲ２タンパク質を、ｐＩＩＩキャプシドタンパク質に連結してｃｃＦｖヘテロ二量体のディスプレイを容易にした。
【図６Ｂ】ｐＡＢＭＤ５ベクター及びｐＡＢＭＤ６ベクターについての、リーダー配列とｐＩＩＩとの間の配列（配列番号１７〜２０）を示す；さらに、リボソーム結合部位、ＤＨ−タグ、部分的ｐＩＩＩ、ＶＨ、ＶＬ、ＧＲ１及びＧＲ２の挿入のためのサブクローニング部位も示す。
【図７】酵母においてｃｃＦｖフラグメントを発現するのに有用なベクターｐＡＭＥＸ７を示す。
【図８】ｐＡＢＭＸ１ベクターにより発現されたＡＭ２−ｓｃＦｖフラグメントを用いたＥＬＩＳＡアッセイの結果を示す；これらの結果は、用量依存的なＡＭ２−ｓｃＦｖのその抗原ＡＭ２への結合を示す。
【図９】ファージ粒子上にディスプレイされたＡＭ２−ｓｃＦｖフラグメントを用いたＥＬＩＳＡアッセイの結果を示す；これらの結果は、ファージミドベクターｐＡＢＭＤ１を用いてファージ粒子上に機能的ｓｃＦｖフラグメントが集合したことを示す。
【図１０Ａ】還元条件下及び非還元条件下で大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）中で発現されたＡＭ１−ｃｃＦｖのＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析の結果を示す；得られた結果は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）中でヘテロ二量体性ｃｃＦｖがうまく発現し且つ集合したことを示す。
【図１０Ｂ】大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）中で発現された可溶性ＡＭ１−ｃｃＦｖを用いたＥＬＩＳＡアッセイの結果を示す；これらの結果は、対応の抗原に対する予想される結合特異性を有する機能性ｃｃＦｖがうまく集合したことを示す。
【図１１Ａ】ＡＭ１−ｃｃＦｖ発現ファージの抗原結合能とＡＭ１−ｓｃＦｖ発現ファージの抗原結合能の比較を示す；得られた結果は、ＡＭ１−ｃｃＦｖフラグメ ントを表示するファージ粒子は、慣用のｓｃＦｖフラグメントをディスプレイするファージよりも、結合能がわずかに高いことを示す。
【図１１Ｂ】ＡＭ２−ｃｃＦｖ発現ファージの抗原結合能とＡＭ２−ｓｃＦｖ発現ファージの抗原結合能の比較を示す；得られた結果は、ＡＭ２−ｃｃＦｖフラグメントを ディスプレイするファージ粒子の結合能は、ＡＭ２−ｓｃＦｖ発現ファージの結合能よりもほぼ一桁大きいことを示す。
【図１２】各々が一つ以上の塩基性ｃｃＦｖユニットを含む３つの多価Ａｂｕ配置を示す。
【図１３】各々が塩基性ｃｃＦｖユニットとｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントとを含む、４つの２価Ａｂｕ配置を示す。
【図１４】各々が一つ以上の塩基性ｃｃＦｖユニットと、一つ以上のｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントとを含む、３つの３価Ａｂｕ配置を示す。
【図１５】各々が別個の結合特異性を有する一つ以上の塩基性ｃｃＦｖユニット及び/又はｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントを含む、４つの二重特異性Ａｂｕ配置を示す。
【図１６】３つのさらなる二重特異性Ａｂｕ配置を示す。
【図１７】各々が少なくとも一つの塩基性ｃｃＦｖユニットと、少なくとも一つのｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントとを含む、３つの三重特異性Ａｂｕ配置を示す。
【図１８】ヘテロ二量体化配列を平行配置又は逆平行配置に配置した、２つの典型的な単一Ａｂｕｓを示す。
【図１９】原核細胞又は真核細胞の表面上にディスプレイされるｃｃＦｖの概略図である；一番上のパネルは、宿主細胞の表面に付着したファージ粒子によりディスプレイされたｃｃＦｖを示す。
【図２０】「モデルライブラリー」のパンニングからのＡＭ２についての固定化タンパク質抗原を含むＥＬＩＳＡを用いた「モデルファージライブラリー」のパンニングの結果を示す；「モデルライブラリー」は、ＡＭ２−ｃｃＦｖファージと、関連のないファージであるＡＭ１−ｃｃＦｖとのそれぞれ１：１０⁶及び１：１０⁷の比の混合物を含有していた；ＡＭ２−ｃｃＦｖ反応性のみを検出したので、ＥＬＩＳＡの読み取り値は、混合物におけるＡＭ２−ｃｃＦｖの集団を表す；第一ラウンドのパンニングの後、ＥＬＩＳＡシグナルは検出されなかった；このことは、混合物に存在するＡＭ２−ｃｃＦｖ画分がまだ低いことを示している；しかしながら、２ラウンドのパンニング後、測定されたＡＭ２−ｃｃＦｖ画分が、ＥＬＩＳＡシグナルが劇的に増加したことから明らかなように優勢になった。
【図２１】図１２に示すモデルライブラリーのパンニングを用いたＡＭ２−ｃｃＦｖの濃縮をＰＣＲ解析により確認した結果を示す；パンニングの前に、一つのＡＭ２−ｃｃＦｖファージが、１０⁷個の関係のないファージごとに検出された（０．００００１％）；第一ラウンドのパンニング後、ＡＭ２−ｃｃＦｖの発生は４．４％に達し、そして第二ラウンドのパンニング後には１００％に達した。
【図２２】ＡＭ２−ｃｃＦｖのＶＨ（重鎖）のＣＤＲ３の設計を示す；変性ＤＮＡオリゴを、２つのサブクローニング制限部位に隣接した2つのＰＣＲプライマーにより増幅した；オリゴを、まずＰＣＲで増幅し、続いてサブクローニングしてＡＭ２-ｃｃＦｖのＶＨの野生型ＣＤＲ３を置き換える前に制限消化した。
【図２３】第５（上パネル）パンニング及び第７（下パネル）パンニングからランダムに選んだ個々のクローンからのＡＭ２−ｃｃＦｖファージＥＬＩＳＡの結果を示す；各バーは、特定のＡＭ２−ｃｃＦｖ変異体のＯＤ４０５での読み取り値を示す。
【図２４】ＡＭ２−ｃｃＦｖＣＤＲ３ＶＨライブラリーパンニングから選択された変異体の配列を示す；一番上には、ライブラリーのアミノ酸配列（但し、Ｘは図２２に 示した変性ＤＮＡオリゴ由来の残基の複数の選択可能物を示す）が示されている；その下には、パンニングからの各「Ｘ」位置において選択された残基及びヒットレート（特定の残基の発生率）が示されている；ライブラリー設計により変更されなかった位置を、ブランクで示す；パンニング由来のコンセンサスを、一番下に示す。
【図２５】ＡＭ２−ｃｃＦｖ変異体と野生型ＡＭ２−ｃｃＦｖのＫ_off速度の比較を示す；曲線の勾配は、試験抗体が抗原から解離する速度を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３１】
本明細書で使用される略語の説明
１．Ｎｓｃ：非一本鎖
２．Ｓｃ：一本鎖
３．Ａｂｕ：抗原結合ユニット
４．Ａｂｕｓ：抗原結合ユニット（複数）
４．Ｌ鎖：軽鎖
５．Ｈ鎖：重鎖
６．ＶＬ：軽鎖可変領域
７．ＶＨ：重鎖可変領域
【００３２】
この開示全体を通じて、種々の刊行物、特許及び公表された特許明細書が、引用により言及される。これらの刊行物、特許及び公表された特許明細書は、参考文献として本開示中に援用されている。
【００３３】
一般的方法：
本発明の実施では、特記のない限りは、当業者には明らかである免疫学、生化学、化学、分子生物学、微生物学、細胞生物学、ゲノミクス及び組み換えＤＮＡの慣用の方法が用いられる。例えば、Ｍａｔｔｈｅｗｓ，ＰＬＡＮＴ ＶＩＲＯＬＯＧＹ、第３版（１９９１）；Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｆｒｉｔｓｃｈ及びＭａｎｉａｔｉｓ、ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ（分子クローニング：実験マニュアル）、第２版（１９８９）；ＣＵＲＲＥＮＴ ＰＲＯＴＯＣＯＬＳ ＩＮ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＩＯＬＯＧＹ（分子生物学の現在のプロトコール）（編者Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ等（１９８７））；ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ（酵素学の方法）シリーズ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ社）：ＰＣＲ２：Ａ ＰＲＡＣＴＩＣＡＬ ＡＰＰＲＯＡＣＨ（実用的手法）（Ｍ．Ｊ．ＭａｃＰｈｅｒｓｏｎ，Ｂ．Ｄ．Ｈａｍｅｓ及びＧ．Ｒ．Ｔａｙｌｏｒ編（１９９５））、編者Ｈａｒｌｏｗ及び Ｌａｎｅ（１９８８）ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ，Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ ａｎｄ ＡＮＩＭＡＬ ＣＥＬＬ ＣＵＬＴＵＲＥ（抗体、実験マニュアル及び動物細胞培養）（編者Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ（１９８７））参照。
【００３４】
本明細書及び特許請求の範囲では、用語は、特記のない限りは複数をも含む。例えば、用語「細胞」は、複数の細胞（混合物を含む）をも含む。
【００３５】
定義：
用語「ポリペプチド」、「ペプチド」及び「タンパク質」は、本明細書では、いずれかの長さのアミノ酸のポリマーに言及するのに相互に交換可能に（同じ意味で）使用される。ポリマーは、線状でも、環状でも、分岐状でもよく、修飾アミノ酸を含んでいてもよく、また、非アミノ酸により中断されていてもよい。また、これらの用語は、例えば、硫酸化、グリコシル化、脂質化、アセチル化、リン酸化、ヨウ素化、メチル化、酸化、タンパク質分解処理、リン酸化、プレニル化、ラセミ化、セレノイル化、アミノ酸のタンパク質へのトランスファー−ＲＮＡ媒介付加、例えば、アルギニル化、ユビキチン化、又は標識成分との結合等の他の操作により修飾されたアミノ酸ポリマーを包含する。本明細書で使用される用語「アミノ酸」は、天然及び/又は非天然又は合成のアミノ酸、例えば、グリシン及びＤ又はＬ光学異性体の両方、並びにアミノ酸類似体及びペプチド模倣体を意味する。
【００３６】
指定されたタンパク質「由来」のポリペプチド又はアミノ酸配列は、ポリペプチドの起源を意味する。好ましくは、ポリペプチドは、配列中にコードされているポリペプチド又はその一部分と基本的に同一であるアミノ酸配列を有する。ここで、上記部分は、少なくとも１０〜２０アミノ酸、好ましくは少なくとも２０〜３０アミノ酸、より好ましくは少なくとも３０〜５０アミノ酸からなるか、又は配列中にコードされているポリペプチドで免疫学的に同定可能なものである。また、この用語には、指定された核酸配列から発現されたポリペプチドも含まれる。
【００３７】
「キメラ」タンパク質は、天然で生じる配列とは異なる位置に領域を含む少なくとも一つの融合ポリペプチドを含む。これらの領域は、通常別個のタンパク質に存在し、融合ポリペプチドに一緒に入れられてもよいし；又はこれらは、通常同じタンパク質に存在するが、融合ポリペプチドにおける新しい配置に入れられたものでもよい。キメラタンパク質は、例えば、化学合成によるか、又はペプチド領域が所望の関係においてコードされているポリヌクレオチドを生成及び翻訳することにより生成できる。
【００３８】
本明細書で使用される用語「多量体タンパク質」は、互いに関連して１以上の別個のポリペプチド又はタンパク質鎖を含んで、生体外又は生体内で単一の球状タンパク質を形成する、球状タンパク質を意味する。多量体タンパク質は、同じ種類の１以上のポリペプチドから成り、「ホモ多量体」を形成することができる。別法として、多量体タンパク質は、別個の配列の１以上のポリペプチドから構成されて「ヘテロ多量体」を形成してもよい。したがって、「ヘテロ多量体」は、少なくとも第一ポリペプチドと第二ポリペプチドを含む分子であって、第二ポリペプチドが、第一ポリペプチドとは、アミノ酸配列において、少なくとも一つのアミノ酸残基で異なる、分子である。ヘテロ多量体は、第一ポリペプチド及び第二ポリペプチドにより形成された「ヘテロ二量体」を含んでいてもよいし、又は２つを超えるポリペプチドが存在する高度三次構造を形成することができる。ヘテロ多量体のための典型的な構造には、ヘテロ二量体（例えば、Ｆｖフラグメント及びＦａｂフラグメント、二重特異性抗体（diabodies）、ＧＡＢＡ_B受容体１及び２複合体）、三量体Ｇタンパク質、ヘテロ四量体（例えば、Ｆ（ａｂ’）₂フラグメント）及びさらなるオリゴマー構造体などがある。
【００３９】
キメラヘテロ多量体の「第一組み換えポリペプチド」は、それぞれ第一ポリペプチド及び第二ポリペプチドに連結した２つの二量体化配列の対による親和性を介して「第二組み換えポリペプチド」と関連しているか、関連していたいずれかのポリペプチドを意味する。好ましくは、第一ポリペプチド及び第二ポリペプチドは、免疫グロブリンの軽鎖又は重鎖由来の配列を含む。より好ましくは、第一ポリペプチド及び第二ポリペプチドは、所望の抗原に対する結合特異性を付与するＮｓｃ Ａｂｕを形成する。
【００４０】
「第一ヘテロ二量体化配列」は、「第二ヘテロ二量体化配列」と関連しているか、又は関連していた いずれかの二量体化配列を意味する。ここで、第二ヘテロ二量体化配列は、アミノ酸配列において、少なくとも一つのアミノ酸残基だけ異なる。「ヘテロ二量体 化対」は、ヘテロ二量体を形成することができる２つのヘテロ二量体化配列を意味する。
【００４１】
本明細書で使用される用語「抗体」は、免疫グロブリン分子、及び免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分、すなわち、抗原と特異的に結合する（「と免疫反応する」）抗原結合部位を含む分子を意味する。構造的には、最も単純な天然の抗体（例えば、ＩｇＧ）は、ジスルフィド結合により相互接続された、４つのポリペプチド鎖（２つの重（Ｈ）鎖及び２つの軽（Ｌ）鎖）を含む。免疫グロブリンは、数種の分子、例えば、ＩｇＤ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ及びＩｇＥを含む大きな分子群を表す。用語「免疫グロブリン分子」には、例えば、ハイブリッド抗体又は変更抗体、それらの断片などが含まれる。抗体の抗原結合機能は、天然の抗体のフラグメントにより果たされることができることが判明した。これらのフラグメントは、まとめて「抗原結合ユニット（複数）」（「Ａｂｕｓ」）と称される。Ａｂｕｓは、それらの分子構造に基づいて、おおざっぱに「一本鎖」（「Ｓｃ」）型及び「非一本鎖」（「Ｎｓｃ」）型に分けられる。
【００４２】
用語「抗体」及び「Ａｂｕｓ」には、無脊椎動物及び脊椎動物などの多種多様な種に由来するの免疫グロブリン分子も包含される。抗体又はＡｂｕに適用したときの用語「ヒト」は、ヒト遺伝子又はそのフラグメントにより発現される免疫グロブリン分子を意味する。非ヒト（例えば、齧歯類又は霊長類）抗体に適用したときの用語「ヒト化」は、ハイブリッド免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖又はそのフラグメント（非ヒト免疫グロブリン由来の最小の配列を含む）を意味する。大部分において、ヒト化抗体は、レシピエントの相補性決定領域（ＣＤＲ）からの残基が、所望の特異性、親和性及び能力を有するマウス、ラット、ウサギ又は霊長類等の非ヒト種（ドナー抗体）のＣＤＲから残基により置き換えられた、ヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）である。ある場合には、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク領域（ＦＲ）残基が、対応する非ヒト残基により置き換えられる。さらに、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも移入ＣＤＲ配列又はフレームワーク配列にもみられない残基を含んでいてもよい。抗体性能を改善し且つ最適化するとともに、ヒトの体に導入したときに、免疫原性を最小限とするために、修飾がなされる。一般的に、ヒト化抗体は、少なくとも一つ及び典型的に２つの可変領域の実質的に全てを含む。ここで、ＣＤＲ領域の全て又は実質的に全てが、非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、ＦＲ領域の全て又は実質的に全てが、ヒト免疫グロブリン配列のものである。また、ヒト化抗体は、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部、典型的にはヒト免疫グロブリンの免疫グロブリン定常領域の少なくとも一部を含んでいてもよい。
【００４３】
「非一本鎖抗原結合ユニット」（「Ｎｓｃ Ａｂｕｓ」）は、軽鎖ポリペプチドと重鎖ポリペプチドとを含むヘテロ多量体である。Ｎｓｃ Ａｂｕｓとしては、例えば、（ｉ）本明細書で開示されているヘテロ二量体化配列により安定化されたｃｃＦｖフラグメント（図１）；（ii）本明細書で記載されている少なくとも一つのｃｃＦｖフラグメントを含むいずれか他の一価分子及び多価分子；（iii）ＶＬドメイン、ＶＨドメイン、ＣＬドメイン及びＣＨ１ドメインからなるＦａｂフラグメント；（iv）ＶＨドメイン及びＣＨ１ドメインからなるＦｄフラグメント；（ｖ）抗体の単一アームのＶＬドメイン及びＶＨドメインからなるＦｖフラグメント；（vi）ヒンジ領域でジスルフィド架橋により連結された２つのＦａｂフラグメントを含む二価のフラグメントであるＦ（ａｂ’）２フラグメント；（vii）二重特異性抗体（diabody）；及び（viii）Ｌｉｔｔｌｅ等（２０００）Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙに記載されているいずれか他のＮｓｃ Ａｂｕｓがあるが、これらには限定されない。
【００４４】
上記したように、ＮｓｃＡｂｕｓは、「一価」でも、「多価」でもよい。前者は、一抗原結合ユニットあたり一つの結合部位を有しているのに対して、後者は、同じ又は異なる種類の１以上の抗原に結合することができる複数の結合部位を含んでいる。結合部位の数に応じて、ＮｓｃＡｂｕｓは、二価（２つの抗原結合部位を有する）、三価（３つの抗原結合部位を有する）、四価（４つの抗原結合部位を有する）等であることができる。
【００４５】
多価ＮｓｃＡｂｕｓは、さらにそれらの結合の特異性に基づいて分類できる。「単一特異性」ＮｓｃＡｂｕは、同じ種類の一つ以上の抗原に結合できる分子である。「多重特異性」ＮｓｃＡｂｕは、少なくとも２つの異なる抗原に対する結合特異性を有する分子である。このような分子は、通常２つの別個の抗原にしか結合しない（すなわち、二重特異性Ａｂｕｓ）が、三重特異性抗体等のさらなる特異性を有する抗体は、本明細書中で使用するときにこの表現に包含される（例えば、図１５〜図１７参照）。二重特異性抗原結合ユニットとしては、例えば、一つのアームが腫瘍細胞抗原に指向し、他のアームが細胞障害トリガー分子に指向しているもの、例えば、抗ＦｃγＲＩ／抗ＣＤ１５、抗ｐ１８５^HER2／ＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）、抗ＣＤ３／抗悪性Ｂ細胞（１Ｄ１０）、抗ＣＤ３／抗ｐ１８５^HER2、抗ＣＤ３／抗ｐ９７、抗ＣＤ３／抗腎細胞癌、抗ＣＤ３／抗ＯＶＣＡＲ−３、抗ＣＤ３／Ｌ−Ｄ１（抗大腸癌）、抗ＣＤ３／抗メラニン細胞刺激ホルモン類似体、抗ＥＧＦ受容体／抗ＣＤ３、抗ＣＤ３／抗ＣＡＭＡ１、抗ＣＤ３／抗ＣＤ１９、抗ＣＤ３／ＭｏＶ１８、抗神経細胞接着分子（ＮＣＡＭ）／抗ＣＤ３、抗葉酸結合タンパク質（ＦＢＰ）／抗ＣＤ３、抗パンカルシノーマ（pancarcinoma）関連抗原（ＡＭＯＣ−３１）／抗ＣＤ３；一つのアームが腫瘍抗原に特異的に結合し、一つのアームがトキシンに結合する二重特異性Ａｂｕｓ、例えば、抗サポリン／抗Ｉｄ−１、抗ＣＤ２２／抗サポリン、抗ＣＤ７／抗サポリン、抗ＣＤ３８／抗サポリン、抗ＣＥＡ／抗リシンＡ鎖、抗インターフェロン−α（ＩＦＮ−α）／抗ハイブリドーマイディオタイプ、抗ＣＥＡ／抗ビンカアルカロイド；酵素活性化プロドラッグを転化するためのＢｓＡｂｓ、例えば、抗ＣＤ３０／抗アルカリホスファターゼ（マイトマイシンホスフェートプロドラッグのマイトマイシンアルコールへの転化を触媒する）；線維素溶解薬として使用できる二重特異性Ａｂｕｓ、例えば、抗フィブリン／抗組織プラスミノゲン活性化因子（ｔＰＡ）、抗フィブリン／抗ウロキナーゼ型プラスミノゲン活性化因子（ｕＰＡ）；免疫複合体を細胞表面受容体に対して標的とするための二重特異性抗原結合ユニット、例えば、抗低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）／抗Ｆｃ受容体（例えば、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ又はＦｃγＲＩＩＩ）；感染症の治療に使用される二重特異性Ａｂｕｓ、例えば、抗ＣＤ３／抗単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）、抗Ｔ細胞受容体：ＣＤ３複合体／抗インフルエンザ、抗ＦｃγＲ／抗ＨＩＶ；生体外又は生体内における腫瘍検出のための二重特異性Ａｂｕｓ、例えば、抗ＣＥＡ／抗ＥＯＴＵＢＥ、抗ＣＥＡ／抗ＤＰＴＡ、抗ｐ１８５^HER2／抗ハプテン；ワクチン補助剤としてのＢｓＡｂｓ（上記したＦａｎｇｅｒ等参照）；並びに診断ツールとしての二重特異性Ａｂｕｓ、例えば、抗ウサギＩｇＧ／抗フェリチン、抗ホースラディシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）／抗ホルモン、抗ソマトスタチン／抗物質Ｐ、抗ＨＲＰ／抗ＦＩＴＣ、抗ＣＥＡ／抗ベータ−ガラクトシダーゼ（上記したＮｏｌａｎ等参照）などがある。三重特異性抗体としては、例えば、抗ＣＤ３／抗ＣＤ４／抗ＣＤ３７、抗ＣＤ３／抗ＣＤ５／抗ＣＤ３７及び抗ＣＤ３／抗ＣＤ８／抗ＣＤ３７などを含む。
【００４６】
「一本鎖抗原結合ユニット」（「Ｓｃ Ａｂｕ」）は、単量体Ａｂｕを意味する。Ｆｖフラグメントの２つのドメインは別個の遺伝子によりコードされているが、組み換え法により、Ｂｉｒｄ等（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３−４２６及びＨｕｓｔｏｎ等（１９８８）ＰＮＡＳ ８５：５８７９−５８８３）に記載されているような単一タンパク質鎖（すなわち、一本鎖Ｆｖ（「ｓｃＦｖ」）として製造できる合成リンカーを製造できる。他のＳｃ Ａｂｕｓには、対象のヘテロ二量体化配列により安定化された抗原結合分子（例えば、図１８参照）、及びＶＨドメインと分離された相補性決定領域（ＣＤＲ）からなるｄＡｂフラグメント（Ｗａｒｄ等（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ３４１：５４４−５４６）などがある。連結ペプチドの一例として、一つのＶ領域のカルボキシル末端と別のＶ領域のアミノ末端との間の約３．５ｎｍを架橋する（ＧＧＧＧＳ）₃がある。他のリンカー配列を使用することもでき、さらなる機能、例えば、薬剤又は固体支持体を結合させるための手段を提供できる。好ましい一本鎖抗原結合ユニットは、１対の対象ヘテロ二量体化配列により一緒に連結及び安定化されたＶＬ領域及びＶＨ領域を含む。ｓｃＦｖは、いずれの順序で構築してもよく、例えば、ＶＨ−（第一ヘテロ二量体化配列）−（第二ヘテロ二量体化配列）−ＶＬ又はＶ_L−（第一ヘテロ二量体化配列）−（第二ヘテロ二量体化配列）−ＶＨの順序でよい。
【００４７】
「抗原結合ユニットのレパートリー」は、複数の抗原結合ユニットであって、そのうちの少なくとも２つが別個の結合特異性を示す、抗原結合ユニットを意味する。抗原結合ユニットの遺伝学的に多様なレパートリーは、複数の抗原結合ユニットを意味し、抗原結合ユニットの大部分及びさもなければ抗原結合ユニットの全てが、互いに独特の結合特異性を示す。遺伝学的に多様なレパートリーは、典型的には少なくとも１０⁶〜１０¹³、好ましくは１０⁷〜１０⁹、より好ましくは１０⁸〜１０¹⁰、さらにより好ましくは１０⁸〜１０¹¹の別個の抗原結合ユニットの複雑性を有する。
【００４８】
抗体又はＡｂｕは、ポリペプチド又は他の物質を含む他の標準抗原に結合するよりも大きな親和性又はアビディティで結合する場合には、抗原「に特異的に結合する」か、又は「と免疫反応する」。
【００４９】
Ａｂｕが宿主細胞の外表面で提示されるときには、Ａｂｕは、「宿主細胞の表面上」でディスプレイされる。ディスプレイされたＡｂｕは、宿主細胞の外表面に直接結合してもよいし、ファージ粒子等の宿主細胞結合遺伝子パッケージを介して宿主細胞に間接的に結合してもよい。
【００５０】
「表面提示配列」は、異種配列のディスプレイを容易にする配列を意味する。典型的には、表面提示配列は、遺伝子パッケージ、例えば、ファージ又は細菌の外表面に存在する。ファージの好ましい表面提示配列は、Ｍ１３繊維状ファージのｐＩＩＩである。
【００５１】
本明細書で使用される用語「抗原」は、抗体により特異的に認識され且つ結合される物質を意味する。抗原としては、ペプチド、タンパク質、糖タンパク質、多糖類及び脂質；それらの一部分及びそれらの組み合わせを含むことができる。
【００５２】
本明細書で使用される用語「表面抗原」は、細胞の形質膜成分を意味する。表面抗原は、形質膜を構成する内在性及び表在性膜タンパク質、糖タンパク質、多糖類及び脂質を包含する。「内在性膜タンパク質」は、細胞の形質膜の脂質二分子層にわたって延びている膜貫通型タンパク質である。典型的な内在性膜タンパク質は、一般的に疎水性アミノ酸残基を含む少なくとも一つの「膜スパンニングセグメント」からなる。表在性膜タンパク質は、脂質二分子層の疎水性内部に延びておらず、且つ他の膜タンパク質との非共有結合性相互作用によって膜表面に結合される。
【００５３】
細胞タンパク質に適用したときの用語「膜」、「細胞質」、「核」及び「分泌された」は、細胞タンパク質がほとんど、大部分又は優先的に局在化している細胞外及び/又は亜細胞の位置を規定する。
【００５４】
「細胞表面受容体」は、それぞれのリガンドに結合できる膜タンパク質の一部分を表す。細胞表面受容体は、細胞形質膜に固定又は挿入された分子である。これらは、形質膜の構造成分としての役割を果たすだけでなく、種々の生物学的機能を支配する調節要素としての役割を果たす、タンパク質、糖タンパク質、多糖類及び脂質の大きな群を構成する。
【００５５】
「ヘテロ二量体性受容体」は、リガンドに対して結合親和性を示す二つのタンパク性サブユニットからなる細胞タンパク質を包含する。これらの２つのタンパク性サブユニットは、アミノ酸配列において、少なくとも一つのアミノ酸残基だけ異なる別個の分子である。ヘテロ二量体性受容体として、増殖因子（例えば、ヘレグリン）、神経伝達物質（例えば、γ−アミノ酪酸）及び他の有機又は無機小分子（例えば、ミネラルコルチコイド、グルココルチコイド）に結合するものが挙げられるが、これらには限定されない。好ましいヘテロ二量体性受容体には、核ホルモン受容体である（Ｂｅｌｓｈａｗ等（１９９６）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ ９３（１０）：４６０４−４６０７）、ｅｒｂＢ３及びｅｒｂＢ２受容体複合体並びにＧタンパク質結合型受容体、例えば、オピオイド（Ｇｏｍｅｓ等（２０００）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ ２０（２２）：ＲＣ１１０）；Ｊｏｒｄａｎ等（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ ３９９：６９７−７００）、ムスカリン性、ドーパミン、セロトニン、アデノシン／ドーパミン及びＧＡＢＡ_B群の受容体などがあるが、これらには限定されない。
【００５６】
「ドメイン」は、タンパク質又はペプチドの他の部分から物理的又は機能的に区別されるタンパク質の一部分を意味する。物理的に定義されるドメインには、極めて疎水性又は親水性であるアミノ酸配列、例えば、膜関連又は細胞質関連の配列なとが含まれる。また、ドメインは、例えば、遺伝子重複から生じる内部相同性により定義することもできる。機能的に定義されるドメインは、別個の生物学的機能（単一又は複数）を有する。例えば、受容体のリガンド結合ドメインは、リガンドに結合するドメインである。抗原結合ドメインは、抗原に結合する抗原結合ユニットの部分又は抗原に結合する抗体を意味する。機能的に定義されるドメインは、近接するアミノ酸配列によりコードされる必要がない。機能的に定義されるドメインは、一つ以上の物理的に定義されるドメインを含んでいてもよい。例えば、受容体は、一般的に細胞外リガンド結合ドメイン、膜貫通型ドメイン及び細胞内エフェクタードメインに分けられる。「膜固定ドメイン」は、膜会合を媒介するタンパク質の部分を意味する。一般的に、膜固定ドメインは、疎水性アミノ酸残基からなる。また、膜固定ドメインは、修飾アミノ酸、例えば、脂肪酸鎖に結合し、次にタンパク質を膜に固定するアミノ酸を含むことができる。
【００５７】
「宿主細胞」には、対象ベクターについてレシピエントであることができるか、レシピエントであった個々の細胞又は細胞培養が含まれる。宿主細胞には、単一の宿主細胞の子孫が含まれる。子孫は、最初の親細胞とは、自然、偶然又は意図的な突然変異のために、完全に同一（形態学的に又は総ＤＮＡのゲノムにおいて）である必要はない。宿主細胞には、本発明のベクターを生体内トランスフェクションした細胞などが含まれる。
【００５８】
「細胞株」又は「細胞培養」は、生体外で成長又は維持される細菌、植物、昆虫又は高等真核細胞を意味する。細胞の子孫は、親細胞に完全に同一（形態学、遺伝子型又は表現型の面で）でなくてもよい。
【００５９】
「定義された培地」は、培地の成分が公知であるような培養における細胞の生存及び/又は成長に必要な栄養上及びホルモン上の要求を含む培地を意味する。従来、定義された培地は、成長及び/又は生存のために必要な栄養因子及び成長因子を付加することにより処方されてきた。典型的には、定義された培地により、以下のカテゴリーの一つ以上からの少なくとも一つの成分が供給される：ａ）全ての必須アミノ酸、及び通常２０アミノ酸＋システインからなる基本的な組；ｂ）通常グルコース等の炭水化物の形態のエネルギー源；ｃ）低濃度で必要とされるビタミン類及び/又は他の有機化合物；ｄ）遊離脂肪酸；及びｅ）典型的に極めて低濃度（通常マイクロモル範囲）で必要とされる、無機化合物又は天然元素として定義される微量元素。また、定義された培地には、以下のカテゴリーのいずれかからの一つ以上の成分を必要に応じて補充することができる：ａ）一種以上の分裂促進剤；ｂ）例えば、カルシウム塩、マグネシウム塩及びホスフェートとしての塩及び緩衝剤；ｃ）例えば、アデノシン及びチミジン、ヒポキサンチン等のヌクレオシド及び塩基；並びにｄ）タンパク質及び組織加水分解物。
【００６０】
本明細書で使用される用語「単離された」とは、ポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体又はそれらのフラグメントが自然状態では通常関連している、成分、細胞等から分離されたことを意味する。当業者には明らかなように、非天然のポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体又はそれらのフラグメントは、その天然の対応物から区別するのに、「単離」を必要としない。さらに、「濃縮された」、「分離された」又は「希釈された」ポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体又はそれらのフラグメントは、その天然の対応物とは、容積あたりの分子の濃度又は数が、その天然の対応物の「濃縮された」ものよりも大きいか、「分離された」ものよりも小さい点で区別できる。
【００６１】
濃縮は、溶液の容積あたり重量等の絶対基準で測定してもよいし、又はソース混合物に存在する第二の干渉する可能性のある物質との関連で測定できる。本発明の実施態様では、濃縮度を増加すればするほど好ましい。したがって、例えば、２倍濃縮が好ましく、１０倍濃縮がより好ましく、１００倍濃縮がさらに好ましく、１０００倍濃縮がさらにもっと好ましい。また、物質を、化学合成又は組み換え発現による等の人工的アセンブリプロセスにより単離された状態で提供することができる。
【００６２】
「連 結した」及び「融合した」又は「融合」は、ここでは可換性に使用される。これらの用語は、化学的共役又は組み換え手段を含むどのような手段であろうとも、２つ以上の化学元素又は成分を一緒に連結することを意味する。「フレーム内での融合」とは、２つ以上のオープンリーディングフレーム（ＯＦＲ）を、最初のＯＦＲの正しいリーディングフレームを維持するように連結して、連続したより長いＯＦＲを形成することを意味する。したがって、得られる組み換え融合タンパク質は、最初のＯＦＲによりコードされているポリペプチドに相当する２つ以上のセグメントを含む単一のタンパク質である（セグメントが自然の状態では通 常そのように連結されていない）。したがって、リーディングフレームは、融合されたセグメント全体を通して連続に形成されるが、セグメントは、以下で記載する、例えば、フレーム内リンカー配列（例えば、「フレクソン」）により、物理的又は空間的に分離できる。
【００６３】
ポリペプチドとの関連で、「直鎖状配列」又は「配列」は、配列において互いに隣り合う残基がポリペプチドの一次構造において連続している、アミノ末端からカルボキシル末端方向におけるポリペプチドでのアミノ酸の順序である。「部分配列」は、一方向又は両方向においてさらなる残基を含むことが知られているポリペプチドの一部分の直鎖状配列である。
【００６４】
「異種」とは、比較される残りの存在物とは遺伝子型で区別可能な存在物に由来することを意味する。例えば、天然コード配列から取り出され且つ天然配列以外のコード配列に作動可能に連結されているプロモーターは、異種のプロモーターである。ポリヌクレオチド、ポリペプチドに適用される用語「異種」とは、ポリヌクレオチド又はポリペプチドが、比較されている残りの存在物とは遺伝子型として別個の存在物に由来していることを意味する。例えば、異種のポリヌクレオチド又は抗原は、異なる種の起源、異なる細胞型、及び別個の個体の同じ種類の細胞に由来するものでよい。
【００６５】
用語「ポリヌクレオチド」、「核酸」、「ヌクレオチド」及び「オリゴヌクレオチド」は、可換性に使用される。これらは、デオキシリボヌクレオチド若しくはリボヌクレオチド又はそれらの類似体であるいずれかの長さのポリマー型ヌクレオチドを意味する。ポリヌクレオチドは、３次元構造を有していてもよく、且つ公知又は未知の機能を果たすものでよい。以下に、ポリヌクレオチドの例を示すが、これらには限定されない：遺伝子又は遺伝子フラグメントのコード領域又は非コード領域、結合解析から定義される座、エクソン、イントロン、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、トランスファーＲＮＡ、リボソームＲＮＡ、リボザイム、ｃＤＮＡ、組み換えポリヌクレオチド、分岐ポリヌクレオチド、プラスミド、ベクター、いずれかの配列の単離ＤＮＡ、いずれかの配列の単離ＲＮＡ、核酸プローブ及びプライマー。ポリヌクレオチドは、メチル化ヌクレオチド及びヌクレオチド類似体等の修飾ヌクレオチドを含んでいてもよい。もし存在する場合には、ヌクレオチド構造に対する修飾を、ポリマーの集合の前又は後に加えることができる。ヌクレオチドの配列は、非ヌクレオチド成分により中断されていてよい。ポリヌクレオチドは、例えば、標識成分との結合により、重合後にさらに修飾してもよい。
【００６６】
ポリヌクレオチドに適用される「組み換え」は、ポリヌクレオチドは、クローニングステップ、制限ステップ及び/又はライゲーションステップ、並びに自然の状態でみられるポリヌクレオチドとは別個である構築物を生じる他の手順の種々の組み合わせの産物であることを意味する。
【００６７】
用語「遺伝子」又は「遺伝子フラグメント」は、本明細書では可換性に使用される。これらは、転写及び翻訳された後、特定のタンパク質をコードすることができる少なくとも一つのオープンリーディングフレームを含むポリヌクレオチドを意味する。遺伝子又は遺伝子フラグメントは、ポリヌクレオチドが全体のコード領域又はそのセグメントをカバーすることができる少なくとも一つのオープンリーディングフレームを含む限り、ゲノム又はｃＤＮＡであることができる。
【００６８】
「作動可能に連結された」とは、そのように記載された構成要素が、それらの意図する方法で機能することができる関係にある並置を意味する。例えば、プロモーター配列がコード配列の転写を促進する場合には、プロモーター配列は、コード配列に作動可能に連結される。
【００６９】
「融合遺伝子」は、互いに連結された少なくとも２つの異種のポリヌクレオチドからなる遺伝子である。
【００７０】
遺伝子「データベース」は、生物学的標準物質の集合を表すヌクレオチド及びペプチド配列を含む配列の集合を表す一連の保存データを意味する。
【００７１】
本明細書で使用される用語「発現」は、ポリヌクレオチドがｍＲＮＡに転写されるプロセス及び/又は転写されたｍＲＮＡ（「転写物」とも称される）が続いてペプチド、ポリペプチド又はタンパク質に翻訳されるプロセスを意味する。転写物及びコードされているポリペプチドは、まとめて遺伝子産物と称される。ポリヌクレオチドがゲノムＤＮＡ由来である場合には、発現は、真核細胞におけるｍＲＮＡのスプライシングを含んでいてよい。
【００７２】
本明細書で使用される用語「対象」とは、発現された遺伝子物質を含む生物学的存在物を意味する。生物学的存在物は、好ましくは植物、動物又はバクテリア、ウィルス、菌類及び原生動物を含む微生物である。生体内で得られたか、又は生体外で培養された生物学的存在物の組織、細胞及びそれらの子孫も、含まれる。
【００７３】
「ベクター」は、挿入された核酸分子を、宿主細胞中及び/又は間でトランスファーする核酸分子、好ましくは自己複製核酸分子である。この用語は、主として細胞へのＤＮＡ又はＲＮＡの挿入について機能するベクター、主としてＤＮＡ又はＲＮＡの複製について機能するベクターの複製、及びＤＮＡ又はＲＮＡの転写及び/又は翻訳について機能する発現ベクターなどを含む。また、上記機能の複数を提供するベクターも含まれる。
【００７４】
「発現ベクター」は、適切な宿主細胞に導入されたときに、ポリペプチド（単一又は複数）に転写及び翻訳されることができるポリヌクレオチドである。「発現系」は、通常所望の発現産物が得られるように機能することができる発現ベクターを含む好適な宿主細胞をも意味する。
【００７５】
「レプリコン」は、適切な宿主細胞においてポリヌクレオチドの複製を可能にする複製源（一般的にｏｒｉ配列と称される）を含むポリヌクレオチドを意味する。レプリコンには、例えば、エピソーム（プラスミド等）、並びに染色体（例えば、核又はミトコンドリア染色体）などが含まれる。
【００７６】
本発明のキメラヘテロ多量体
上記したように、多量体タンパク質の生物学的機能を確保するには、安定な複合体を形成するためのポリペプチドサブユニットの適切な会合が必要である。したがって、本発明の中心的態様は、選択された単量体ポリペプチドの特異的会合がヘテロ多量体を効率的に産生できる方法の設計にある。実験計画法が、結合の特異性が特定の方法での特異的サブユニットの会合に依存するＡｂｕｓ等のヘテロ多量体の生成及びスクリーニングに特に有用である。以前に報告したキメラＡｂｕｓとは区別される対象Ａｂｕｓは、以下の独特な特徴の一つ以上を有している。第一に、Ａｂｕｓは２つのヘテロ二量体化配列の対による親和性により再構成される。この際、２つのヘテロ二量体化配列の少なくとも一つ、好ましくは両方が、ホモ二量体を検出可能な程度に形成する傾向を欠いている。生物学的緩衝条件と生物学的体温の両方の下でホモ二量体を形成することが知られているＦｏｓ及びＪｕｎロイシンジッパー等の以前に報告した二量体化配列（Ｏ’Ｓｈｅａ等（１９９２）Ｃｅｌｌ ６８：６９９−７０８；Ｖｉｄａｌ等（１９９６）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ）とは異なり、対象のヘテロ二量体化配列は、規定の緩衝条件下及び/又は規定の体温ではホモ二量体を基本的に形成できない。また、対象のヘテロ二量体化配列は、以下で詳細に述べるように以前に用いられた配列とは構造レベルで区別することができる。
【００７７】
本発明の一実施態様によれば、宿主細胞の表面上に表示されるキメラヘテロ多量体が提供される。ここで、ヘテロ多量体は、以下の：（ｉ）第一ヘテロ二量体化配列及び表面提示配列に融合した第一ポリペプチド；（ii）第二ヘテロ二量体化配列に融合した第二ポリペプチドを含み；ここで、前記第一ポリペプチドと前記第二ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し；且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない。
【００７８】
本発明の別の実施態様によれば、以下の：（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に連結した軽鎖可変領域を含んでいる軽鎖ポリペプチド；（ｂ）第二ヘテロ二量体化配列に連結した重鎖可変領域を含んでいる重鎖ポリペプチドとを含んでなり、ここで、前記軽鎖ポリペプチドと前記重鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ポリペプチドの少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、ＮｓｃＡｂｕが提供される。本発明の別の側面によれば、ヘテロ二量体性受容体に由来する第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して、軽鎖ポリペプチドと重鎖ポリペプチドが二量体化するＮｓｃＡｂｕが提供される。一の側面によれば、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が、前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体化受容体配列を含む。
【００７９】
本発明の別の実施態様によれば、軽鎖可変領域と重鎖可変領域とを含み、前記軽鎖可変領域と前記重鎖可変領域が、前記領域の一方のＣ末端と前記他の領域のＮ末端の間の距離をまたがった第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列により接続されており、ここで、前記２つの領域が、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、ＳｃＡｂｕが提供される。この実施態様の別の側面によれば、本発明により、軽鎖可変領域と重鎖可変領域が、ヘテロ二量体性受容体に由来する２つのヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成する、ＳｃＡｂｕが提供される。一の側面によれば、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体化受容体配列を含む。
【００８０】
ヘテロ二量体化配列の選択：
いくつかの因子が、上記した特性の一つ以上を有するＡｂｕｓの設計に適用される。最初に、ヘテロ二量体化配列は、対による親和性を示して安定な複合体を形成しなければならない。「安定な」とは、複合体又は二量体が、複合体又は二量体の形成と、それに続いての検出及び/又は精製との間の期間に存続する程度に十分に長期間存続することを意味する。複合体又は二量体は、どのような条件が存在し、また、形成時と検出時との間に導入されたとしてもそれらに耐えることができなければならない。これらの条件は、おこなわれるアッセイ又は反応と相関している。好ましくは、複合体又は二量体の形成は、生理学的緩衝条件下及びほぼ室温〜ほぼ３７℃の範囲の生理学的体温で実施される。場合により存在することができ、且つ複合体又は二量体を除去することができる介在条件には、洗浄、加熱、さらなる溶質又は溶媒の反応混合物（例えば、変性物）への添加、さらなる反応種との競合などがある。安定な複合体又は二量体は、不可逆性であっても、可逆性であってもよいが、この定義の他の要件を満足しなければならない。したがって、過渡的複合体又は二量体が反応混合物中で形成することがあるが、これは、生理学的緩衝条件下で自然に解離するか、新たに課せられた条件又は検出前に導入された操作の結果として解離する場合には、安定な複合体を構成しない。
【００８１】
第二に、選択されたヘテロ二量体化配列は、対による親和性を示して、優越的にヘテロ二量体を形成してホモ二量体を実質的に排除しなければならない。好ましくは、優越した形成により、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温で形成されることができる、ヘテロ二量体を少なくとも６０％、より好ましくはヘテロ二量体を少なくとも８０％、より好ましくはヘテロ二量体を８５〜９０％、より好ましくはヘテロ二量体を９０〜９５％、さらにより好ましくはヘテロ二量体を９６〜９９％含有するヘテロ多量体プールが得られる。本発明のある実施態様によれば、Ａｂｕを再構成するのに用いられるヘテロ二量体化配列の少なくとも一つは、生理学的緩衝液及び/又は生理学的体温ではホモ二量体を基本的に形成できない。「基本的に形成できない」とは、単独で試験したときに、選択されたヘテロ二量体化配列が、Ｋａｍｍｅｒｅｒ等（１９９９）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３８：１３２６３−１３２６９）に詳細に記載されている生体外沈降実験、又は生体内酵母ツーハイブリッド解析（例えば、Ｗｈｉｔｅ等、Ｎａｔｕｒｅ（１９９８）３９６：６７９−６８２参照）においては、検出できる量のホモ二量体を形成しないことを意味する。具体的には、Ｋａｍｍｅｒｅｒ等は、沈降実験により、ＧＡＢＡ_Bの受容体１及び２のヘテロ二量体化配列は、単独で試験したときに、生理学的条件下及び生理学的体温（例えば、３７℃）で、単量体の分子質量で沈降することを明らかにした。等モル量で混合すると、ＧＡＢＡ_Bの受容体１及び２のヘテロ二量体化配列は、２つの配列のヘテロ二量体に対応する分子質量で沈降する（Ｋａｍｍｅｒｅｒ等の表１参照）。さらに、個々のヘテロ 二量体化配列は、宿主細胞において発現でき、宿主細胞にホモ二量体が存在しないことは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、ウェスタンブロット及び免疫沈降を含むがこれらには限定されない種々のタンパク質分析により明らかにすることができる。生体外アッセイは、生理学的緩衝条件下及び/又は好ましくは生理学的体温でおこなわなければならない。一般的に、生理学的緩衝液は、生理学的濃度の塩を含有し、ｐＨを約６．５〜約７．８の中性ｐＨ範囲、好ましくは約７．０〜約７．５のｐＨに調整してある。種々の生理学的緩衝液が、上記したＳａｍｂｒｏｏｋ等（１９８９）に挙げられており、したがって、ここでは詳細には説明しない。好ましい生理学的条件が、上記したＫａｍｍｅｒｅｒ等に記載されている。
【００８２】
ヘテロ二量体化配列の特異的関連には、典型的には非共有結合性相互作用が含まれる。このような相互作用には、共有結合を生じない全ての存在する安定な結合が含まれる。非共有結合性相互作用としては、静電結合、水素結合、ファンデルワールス力、両親媒性ペプチドの立体的嵌合などが含まれるが、これらには限定されない。
【００８３】
対象Ａｂｕを設計する際にさらに考慮することは、ヘテロ二量体化配列と、得られたヘテロ多量体の抗原結合部位との間の構造的干渉を最小限とすることである。内部構造の干渉を最小限としたキメラヘテロ多量体を設計するには、当該技術分野における種々の方法が使用できる。例えば、一つの方法として、ヘテロ二量体化に必要とされるアミノ酸残基のみを含む最小ヘテロ二量体化配列を使用することがある。第二の方法は、ヘテロ二量体化配列を、得られたヘテロ多量体のＮ末端又はＣ末端に連結することである。どちらの末端を選択するかは、ヘテロ多量体の生物学的活性ドメインの位置に依存する。抗原結合部位が軽鎖可変領域及び重鎖可変領域のＮ末端側半分にあるキメラＡｂｕを構築するためには、軽鎖又は重鎖のＣ末端にヘテロ二量体化配列を連結することが好ましい。別の代替設計では、「フレクソン」を、ヘテロ多量体の抗原結合部位とヘテロ二量体化配列との間に組み込んで用いる。本明細書で使用される用語「フレクソン」は、典型的に小側鎖を有するアミノ酸（例えば、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン及びセリン）を含むフレキシブルポリペプチドリンカー（又はこのようなポリペプチドをコードしている核酸配列）を意味する。対象Ａｂｕの一つ以上の部位の間にフレクソンを組み込むことは、それらが相対的に互いに独立している立体構造をとることにより、機能性を促進すると思われる。このような構成により、一般的に抗原結合ドメインにさらなるフレキシビリティが付与される。好適なフレクソンは、好ましくはアミノ酸を、約４〜約１００、より好ましくは約４〜５０、さらにより好ましくは約４〜１５含む。
【００８４】
対象のＡｂｕｓを構築するのに適用できるヘテロ二量体化配列は、種々のソースから得ることができる。一般的に、安定なヘテロ多量体の形成に関与しているタンパク質配列は、ヘテロ二量体化配列の候補である。そのようなものとして、これらの配列を、ヘテロ多量体タンパク質複合体から得ることができる。代表的な候補配列には、アデノ関連ウイルスのキャプシドタンパク質等のウイルスタンパク質、ＳＨ２ドメイン含有タンパク質と相互作用するタンパク質キナーゼリン酸化部位である（Ｃａｎｔｅｌｙ等（１９９３）Ｃｅｌｌ ７２：７６７−７７８；Ｃａｎｔｅｌｙ等（１９９５）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０（４４）：２６０２９−２６０３２）、ヘテロマーの形成を仲介する転写因子及びヘテロ二量体性受容体のドメインがある。
【００８５】
好ましいヘテロ多量体転写因子には、ａ−Ｐａｌ／Ｍａｘ複合体及びＨｏｘ／Ｐｂｘ複合体がある。Ｈｏｘは、胚形成中に前−後軸のパターンニングに関与する大きな転写因子群を表す。Ｈｏｘタンパク質は、保存された３つのアルファらせんホメオドメインを有するＤＮＡと結合する。特異的にＤＮＡ配列に結合するためには、Ｈｏｘタンパク質には、Ｐｂｘホメオドメイン等のヘテロパートナーが存在する必要がある。Ｗｏｌｂｅｒｇｅｒ等は、Ｈｏｘ−Ｐｂｘ複合体の形成がどのようにして生じるか、及びこの複合体がどのようにしてＤＮＡに結合するかを理解するために、ＨｏｘＢ１−Ｐｂｘ１−ＤＮＡ三元複合体の２．３５Ａ結晶構造を解明した。この構造から、各タンパク質のホメオドメインが、ＤＮＡの反対側の隣接する認識配列に結合することが分かる。ヘテロ二量体化は、６アミノ酸ヘキサペプチドＮ末端とＨｏｘＢ１のホメオドメインとの間で形成される接点、及びらせん３とらせん１及び２との間で形成されるＰｂｘ１におけるポケットを介して生じる。Ｐｂｘ１ホメオドメインのＣ末端延長により、らせん１に対して充填するアルファらせんが形成されてより大きな４らせんホメオドメインを形成する（Ｗｏｌｂｅｒｇｅｒ等（１９９９）Ｃｅｌｌ ９６：５８７−５９７；Ｗｏｌｂｅｒｇｅｒ等 Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．２９１：５２１−５３０）。
【００８６】
また、おびただしい数のヘテロ二量体性受容体も、同定された。これらには、成長因子（例えば、ヘレグリン）、神経伝達物質（例えば、γ−アミノ酪酸）及び他の有機又は無機小分子（例えば、ミネラルコルチコイド、グルココルチコイド）に結合するものがあるが、これらには限定されない。好ましいヘテロ二量体性受容体には、核ホルモン受容体（Ｂｅｌｓｈａｗ等（１９９６）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ ９３（１０）：４６０４−４６０７）、ｅｒｂＢ３及びｅｒｂＢ２受容体複合体並びにＧタンパク質結合型受容体、例えば、オピオイド（Ｇｏｍｅｓ等（２０００）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ ２０（２２）：ＲＣ１１０）；Ｊｏｒｄａｎ等（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ ３９９：６９７−７００）、ムスカリン性、ドーパミン、セロトニン、アデノシン／ドーパミン及びＧＡＢＡ_B群の受容体などがあるが、これらには限定されない。公知のヘテロ二量体性受容体の大部分については、それらのＣ末端配列は、ヘテロ二量体形成を仲介する。
【００８７】
所望により、新規なヘテロ二量体性受容体からの配列を、対象のＡｂｕｓを構築するのに用いることができる。このような状況では、一定の受容体対における候補のヘテロ二量体化配列の同定は、過度の実験をおこなうことなく、遺伝アッセイ又は生化学アッセイによりおこなうことができる。さらに、コンピュータによるモデリング及びサーチ技術により、関連遺伝子及び非関連遺伝子において現れる共通ドメインの配列ホモロジーに基づくヘテロ二量体化配列の検出が、さらに容易となる。ホモロジーサーチが可能であるプログラムには、Ｂｌａｓｔ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）、 Ｆａｓｔａ（ウィスコンシン州ＭａｄｉｓｏｎにあるＧｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ Ｇｒｏｕｐのパッケージ）、ＤＮＡ Ｓｔａｒ、Ｃｌｕｓｔｌａｗ、ＴＯＦＦＥＥ、ＣＯＢＬＡＴＨ、Ｇｅｎｔｈｒｅａｄｅｒ及びＭｅｇＡｌｉｇｎがあるが、これらには限定されない。標的受容体 に対応するＤＮＡ配列又はそれらのセグメントを含む配列データベースを使用して、配列の解析をおこなうことができる。一般的に用いられるデータベースに は、ＧｅｎＢａｎｋ、ＥＭＢＬ、ＤＤＢＪ、ＰＤＢ、ＳＷＩＳＳ−ＰＲＯＴ、ＥＳＴ、ＳＴＳ、ＧＳＳ及びＨＴＧＳなどがあるが、これらには限定されない。
【００８８】
別の好ましい種類のヘテロ二量体化配列は、コイルドコイルらせん構造を採用する両親媒性ペプチドからなる。らせんコイルドコイルは、タンパク質における主要なサブユニットオリゴマー化配列の一つである。一次配列解析から、全てのタンパク質残基の約２〜３％がコイルドコイルを形成することが分かった（Ｗｏｌｆ等（１９９７）Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉ．６：１１７９−１１８９）。十分に特徴付けされたコイルドコイル含有タンパク質は、細胞骨格ファミリー（例えば、α−ケラチン、ビメンチン）、細胞骨格モーターファミリー（例えば、ミオシン、キネシン及びダイニン）、ウイルス膜タンパク質（例えば、Ｅｂｏｌａ又はＨＩＶの膜タンパク質）、ＤＮＡ結合タンパク質及び細胞表面受容体（例えば、ＧＡＢＡ_Bの受容体１及び受容体２）のメンバーなどを含む。本発明のコイルドコイルヘテロ二量体化配列は、大ざっぱに２つのグループ、すなわち、左巻きコイルドコイル及び右巻きコイルドコイルに分類できる。左巻きコイルドコイルは、無極性残基が第一（ａ）位置及び第四（ｄ）位置に優先的に位置する「ａｂｃｄｅｆｇ」で示されるヘプタッド反復（heptadrepeat）により特徴付けられる。これらの２つの位置での残基は、典型的には他のスタンドのものとインターロックしてきっちりとした疎水性コアを形成する「ノブズアンドホールズ」のジグザグパターンを構成する。これに対して、コイルドコイルの周辺をカバーする第二（ｂ）位置、第三（ｃ）位置及び第六（ｆ）位置は、好ましくは帯電残基である。帯電アミノ酸としては、例えば、塩基性残基、例えば、リジン、アルギニン、ヒスチジン、及び酸性残基、例えば、アスルパテート、グルタメート、アスパラギン及びグルタミンなどがある。ヘテロ二量体性コイルドコイルの設計に好適な非帯電又は無極アミノ酸には、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン及びスレオニンなどがあるが、これらには限定されない。非帯電残基は、典型的には疎水性コアを形成するが、たとえコア位置であっても帯電残基を含むらせん間塩架橋及びらせん内塩架橋を用いて、全体的ならせんコイルドコイル構造を安定化させることができる（Ｂｕｒｋｈａｒｄ等（２０００）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７５：１１６７２−１１６７７）。種々の長さのコイルドコイルを用いることができるが、対象のヘテロ二量体化配列は、好ましくは２〜１０のヘプタッド反復を含む。より好ましくは、ヘテロ二量体化配列は、３〜８のヘプタッド反復、さらにより好ましくは４〜５のヘプタッド反復を含む。
【００８９】
最適なコイルドコイルヘテロ二量体化配列を設計する際に、ペプチドの二 次構造を予測する種々の既存のコンピュータソフトウエアプログラムを使用できる。一例としてのコンピュータ解析では、アミノ酸配列を公知の二本鎖コイルド コイルのデータベースにおける配列と比較するＣＯＩＬＳアルゴリズムを使用し、高い確率でコイルドコイル延伸を予測する（Ｋａｍｍｅｒｅｒ等（１９９９）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３８：１３２６３−１３２６９）。
【００９０】
ヘテロオリゴマー化に関与する多種多様なコイルドコイルを本発明に用いることができるが、好ましいコイルドコイルは、ヘテロ二量体性受容体由来のものである。したがって、本発明は、ＧＡＢＡ_B受容体１及びＧＡＢＡ_B受容体２に由来するコイルドコイル二量体性配列を含む。一の側面によれば、対象コイルドコイルは、ＧＡＢＡ_B受容体１及びＧＡＢＡ_B受容体２のＣ末端配列を含む。別の側面では、対象のコイルドコイルが、さらにシステイン残基に連結される。コイルドコイルは、少なくとも３０アミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチド及びＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドである。こられのうちの一方が、配列番号２に示されているものに匹敵する長さの線状配列と基本的に同一であり、他方は、配列番号４に示されているものに匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である。
【００９１】
ペプチドの線状配列は、両方の配列が実質的にアミノ酸配列ホモロジーを示す場合には、別の線状配列に「基本的に同一」である。一般的に、基本的に同一の配列は、相同領域を整列すると、互いに少なくとも約６０％が同一である。好ましくは、配列は、少なくとも約７０％が同一であり、より好ましくは少なくとも約８０％が同一であり、より好ましくは少なくとも約９０％が同一であり、より好ましくは少なくとも約９５％が同一であり、さらにより好ましくは１００％が同一である。
【００９２】
ポリペプチド配列が基本的に同一であるかどうかを決定するには、比較されているポリペプチドの機能性を保存する配列が、特に好ましい。機能性は、異なる基準、例えば、対形成コイルドコイル配列とヘテロ二量体を形成する能力、及び生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を形成できない能力により確定できる。
【００９３】
本発明には、本明細書で例示されている配列と機能的に同等である修飾ＧＡＢＡ_Bヘテロ二量体化配列が含まれる。得られたＡｂｕｓに対して改善された安定性を付与する修飾ポリペプチドが、好ましい。修飾ポリペプチドとしては、例えば、アミノ酸残基の保存的置換、及びヘテロ二量体化特異性に顕著な害を及ぼさないアミノ酸の一つ以上の欠失又は付加を受けたものなどがある。置換の範囲は、対による親和性が維持される限り、一つ以上のアミノ酸残基の変更又は修飾から領域の完全な再設計にわたることができる。アミノ酸の置換（存在する場合には）は、ペプチドの折りたたみ又は機能特性に悪影響を及ぼさない保存的置換が好ましい。保存的置換をなすことができる機能的に関連したアミノ酸群には、グリシン／アラニン；バリン／イソロイシン／ロイシン；アスパラギン／グルタミン；アスパラギン酸／グルタミン酸；セリン／スレオニン／メチオニン；リジン／アルギニン；及びフェニルアラニン／チロシン／トリプトファンがある。本発明のポリペプチドは、グリコシル化された形態でも、非グリコシル化形態でもよいし、翻訳後に修飾されてもよいし（例えば、アセチル化及びリン酸化）、又は合成的に修飾してもよい（例えば、標識基の結合）。
【００９４】
抗原結合ユニット（Ａｂｕｓ）の配置及び修飾：
本発明のＡｂｕｓは、種々の配置をとることができる。最小の非一本鎖Ａｂｕは、１価のｃｃＦｖフラグメントである。ｃｃＦｖフラグメントは、それぞれＶＬ領域及びＶＨ領域とフレーム内で融合した第一ヘテロ二量体化配列及び第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化した、ＶＬ領域とＶＨ領域とからなる二量体タンパク質である。好ましくは、ｃｃＦｖは、ＶＬ領域及びＶＨ領域にさらなるフレキシビリティを付与する短フレクソン配列を含む（図１に例示したｃｃＦｖ参照）。より複雑なＮｓｃＡｂｕは、同種の１以上の抗原に結合できる（すなわち、多価であるが、単一特異性）又は異種の１以上の抗原に結合できる（すなわち、多価であり且つ多重特異性Ａｂｕｓ）多価分子である。典型的には、多価Ａｂｕは、Ｌポリペプチド若しくはＨポリペプチド又はこれらの両方が一以上のＶ領域を含んでいる、１以上のＬ鎖及びＨ鎖ポリペプチドからなるヘテロ多量体である。例えば、例示的な２価Ａｂｕｓは、図１２に示すような（ｃｃＦｖ）₂の配置をとる。この例示の２価ＡｂｕｓにおけるＨ鎖ポリペプチドは、２つのＶＨ領域を含む。これら２つのＶＨ領域の各々は、ＶＬ領域と二量体化して２つの抗原結合部位を構成する。あるいは、Ｌ鎖ポリペプチドは、２つのＶＬ領域を提供し、これらの２つのＶＬ領域の各々は、ＶＨ領域と二量体化して２つの結合部位を再構成してもよい。図１２に示すように、多価Ａｂｕは、ＶＬ領域及びＶＨ領域に連結された２つのヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して安定化される。ヘテロ二量体化配列の少なくとも一つ及び好ましくはこれらの両方が、ホモ二量体を形成することができないので、分子内二量体化して非機能性ＶＨ／ＶＨ二量体又はＶＬ／ＶＬ二量体を形成するのが最小限となることから、Ａｂｕは効率的に構築される。この一般的な抗体エンジニアリングスキームを適用して、３価Ａｂｕｓ及び４価Ａｂｕｓを構築できる（例えば、図１２参照）。
【００９５】
多価Ａｂｕｓを構築するための変法では、図１３に示したようなｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントが用いられる。一つの抗原結合部位を提供するビルディングユニットｃｃＦｖの他に、この配置のＡｂｕｓは、ｃｃＦｖに連結した一つ以上のｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントを含む。連結したｓｃＦｖ又はｄｓＦｖにより、追加の結合部位が形成される。例えば、２価Ａｂｕｓは、ｃｃＦｖ−ｓｃＦｖ配置又はｃｃＦｖ−ｄｓＦｖ配置をとることができる（図１３）。抗原結合部位の一つは、ＶＬ領域及びＶＨ領域に連結したヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して構築される（ｃｃＦｖと同様に）のに対して、他のものは、フレーム内でＶＬ領域と融合したｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントにより形成される。あるいは、ｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントは、ＶＨ領域に連結してもよい。
【００９６】
同様な手法を用いて、図１４に示すような３価のｃｃＦｖ−ｓｃＦｖＡｂｕｓ又はｃｃＦｖ−ｄｓＦｖＡｂｕｓを生成することができる。一の側面によれば、３価のＡｂｕｓは、ｃｃＦｖ−（ｓｃＦｖ）₂の配置をとる。ここでは、２つのポリペプチド「ＶＨ−第一ヘテロ二量体化配列−ｓｃＦｖ」及び「ＶＬ−第二ヘテロ二量体化配列−ｓｃＦｖ」は、２つのヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化して３つの結合部位を構成する。結合部位の一つは、ｃｃＦｖビルディングユニットのＶＬ領域及びＶＨ領域からなり、残りの２つは、それぞれＶＬポリペプチド及びＶＨポリペプチドに連結したｓｃＦｖフラグメントにより提供される。あるいは、多価Ａｂｕｓは、ｃｃＦｖ−ｓｃＦｖ−ｄｓＦｖとして構成できる。この配置では、抗原結合部位の一つは、ｄｓＦｖフラグメントのＶＨ領域及びＶＬ領域内に位置する１対のシステイン残基の間の分子間ジスルフィド結合により構築され且つ安定化される。この配置のさらなる変形例は、３価のｃｃＦｖ−（ｄｓＦｖ）₂である。この場合、結合部位のうちの２つは、ｄｓＦｖフォーマットをとる（例えば、図１４参照）。単一特異性であるか多重特異性であるかとは無関係に、塩基性ｃｃＦｖビルディングユニットを用いたいずれかの他の多価Ａｂｕｓ変形例も、本発明に含まれる。
【００９７】
したがって、本発明によれば、さらに多重特異性Ａｂｕｓが提供される。これらは、少なくとも２つの別個の抗原に結合することができる多価分子である。好ましい多重特異性Ａｂｕｓは、それぞれ２個及び３個の別個の抗原に対して結合特異性を示す二重特異性分子及び三重特異性分子である。以前に特徴付けられた多重特異的抗体（例えば、米国特許第５，９３２，４４８号参照）とは区別される対象の多重特異的Ａｂｕｓは、別個の結合特異性を有する一つ以上のｃｃＦｖビルディングユニットを含む。また、対象の多重特異的Ａｂｕｓは、上記で詳細に説明した一つ以上のｓｃＦｖフラグメント又はｄｓＦｖフラグメントを組み込むことができる。好ましい二重特異性Ａｂｕｓ及び三重特異性Ａｂｕｓは、図１５〜１７に示す一般的な構造にしたがって配置される。
【００９８】
非一本鎖Ａｂｕｓとは別に、本発明では、対象のヘテロ二量体化配列により安定化される一本鎖Ａｂｕｓが含まれる。典型的には、ＳｃＡｂｕｓは、ＶＬ領域とＶＨ領域を含み、これらの領域は、これらの２つの領域に接続したヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成している。ヘテロ二量体化配列は、平行又は逆平行で配置できる（例えば、図１８参照）。平行配置では、２つのヘテロ二量体化配列は、これらが同じ配向（アミノ末端〜カルボキシル末端）を有するように整列される。逆平行配置では、一つの配列のアミノ末端が他の配列のカルボキシル末端と整列するように、又はこの逆に、ヘテロ二量体化配列が配列される。一般的には、ヘテロ二量体化配列は、フレクソン配列を介して一緒に連結される。ここで、フレクソンは、典型的に小側鎖を有するアミノ酸（例えば、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン及びセリン）を含むフレキシブルポリペプチドリンカー（又はこのようなポリペプチドをコードする核酸配列）である。２つのヘテロ二量体化配列の間にフレクソンを組み込むことにより、一般的にそれらが分子内二量体を形成するための空間的フレキシビリティが提供される。逆平行配置に好適なフレクソンは、好ましくはアミノ酸を、約４〜約１００、より好ましくは約４〜５０、さらにより好ましくは約４〜１５を含む。平行配置のためのフレクソンは、一般的にもっと長く、アミノ酸残基を、好ましくは約１０〜約１００、より好ましくは約５０〜約３０を含む。
【００９９】
所望により、一つ以上のシステイン残基の対を、ヘテロ二量体化配列のＮ末端又はＣ末端に組み込んで本発明のＡｂｕｓをさらに安定化することができる。
【０１００】
本発明のＡｂｕｓは、Ｌ鎖又はＨ鎖の定常領域由来の配列を含むことができる。定常領域に由来するこのような配列は、一般的に軽鎖又は重鎖可変領域と、連結されるヘテロ二量体化配列の間に配置される。さらに、軽鎖及び重鎖は、ヒト配列を部分的又は全体的に含んでいてもよい。
【０１０１】
非ヒト抗体をヒト化するための方法は、当該技術分野において周知である。「ヒト化」抗体は、配列の少なくとも一部分が、その最初の形態から変更され、よりヒト免疫グロブリンに類似した抗体である。一つの方法として、Ｈ鎖及びＬ鎖のＣ領域を、ヒト配列と置き換えることが考えられる。これは、Ｖ領域及び異種の免疫グロブリンＣ領域を含む融合ポリペプチドである。別の方法として、ＣＤＲ領域が非ヒト抗体配列を含むとともに、Ｖフレームワーク領域も、転化されたヒト配列とすることが考えられる。例えば、ＥＰ０３２９４００を参照のこと。第３の方法として、ヒトＶ領域及びマウスＶ領域のコンセンサス配列を設計し、コンセンサス配列の間で異なるＣＤＲの外の残基を転化することにより、Ｖ領域がヒト化されることが考えられる。
【０１０２】
ヒト化抗体の調製では、フレームワーク残基の選択は、高結合親和性を保持するのに極めて重要である。原則として、いずれかのＨuＡｂからのフレームワーク配列は、ＣＤＲグラフト化のためのテンプレートとしての役割を果たすことができる。しかしながら、このようなフレームワークへのストレートＣＤＲ置き換えにより、抗原への結合親和性の顕著な損失が生じることがあることが明らかとなった（Ｇｌａｓｅｒ等（１９９２）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：２６０６；Ｔｅｍｐｅｓｔ等（１９９２）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９：２６６；及びＳｈａｌａｂｙ等（１９９２）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７：２１７。 ＨｕＡｂが最初のｍｕＡｂにより相同であるほど、ヒトフレームワークが歪みをマウスＣＤＲに導入して親和性を減少させることが少なくなる。抗体配列データ ベースに対しての配列ホモロジーサーチに基づいて、ＨｕＡｂ ＩＣ４により、ｍｕＭ４ＴＳ．２２に対する良好なフレームワークホモロジーが得られる。但し、他の高度に相同性のＨｕＡｂｓ、とりわけヒトサブグループＩＩＩからのヒトサブグループＩ又はＨ鎖からのカッパＬ鎖も、好適であろう（Ｋａｂａｔ等（１９８７））。ＥＮＣＡＤ（Ｌｅｖｉｔｔ等（１９８３）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１６８：５９５） 等の種々のコンピュータプログラムが、Ｖ領域に理想的な配列を予測するのに有効である。したがって、本発明は、異なるＶ領域を有するＨｕＡｂｓを含む。当業者には、好適なＶ領域配列を決定し且つこれらの配列を最適化することは明らかである。免疫原性が減少した抗体を得るための方法が、米国特許第５，２７０，２０２号及びＥＰ６９９，７５５にも記載されている。
【０１０３】
抗原及び他の好ましい生物学的特性に対して高い親和性を保持しながら、抗体をヒト化することが重要である。この目標を達成するために、好ましい方法によれば、ヒト化抗体は、親配列及び種々の概念上のヒト化産物を親配列及びヒト化配列の三次元モデルを用いて解析するプロセスにより調製される。三次元免疫グロブリンモデルは、当業者においてよく知られている。選択された免疫グロブリン配列候補の可能性のある三次元立体構造を説明し且つ表示するコンピュータプログラムは、入手できる。これらのディスプレイを調べることにより、免疫グロブリン配列候補の機能における残基の可能性のある役割の分析、すなわち、免疫グロブリン候補がその抗原に結合する能力に影響する残基の分析が可能である。このように、ＦＲ残基は、コンセンサス及びインポート配列から選択され、組み合わせられて、所望の抗体特性、例えば、標的抗原（単一又は複数）に対する親和性の増加が達成できるようにできる。
【０１０４】
また、本発明は、化学的に機能的な部分に結合したＡｂｕｓを含む。典型的には、この部分は、検出できるシグナルを生成できる標識である。これらの結合Ａｂｕｓは、例えば、全身腫瘍組織量の定量化及び転移性病巣のイメージング及び腫瘍のイメージング等の検出系において有用である。このような標識は、当該技術分野において公知であり、放射性同位元素、酵素、蛍光化合物、化学発光化合物、生物発光化合物基質共同因子及びインヒビターなどを含むが、これらには限定されない。このような標識の使用を教示している特許、例えば、米国特許第３，８１７，８３７号、第３，８５０，７５２号、第３，９３９，３５０号、第３，９９６，３４５号、第４，２７７，４３７号、第４，２７５，１４９号及び第４，３６６，２４１号を参照のこと。この部分は、Ａｂｕｓに共有結合するか、組み換え連結するか、又はＡｂｕｓに、二次試薬、例えば、第二抗体、プロテインＡ又はビオチン−アビジン複合体を用いて結合することができる。
【０１０５】
他の機能的部分は、シグナルペプチド、免疫学的反応性を高める物質、固体支持体へのカップリングを容易にする物質、ワクチンキャリア、生物反応修飾物質、常磁性標識及び薬物などを含む。シグナルペプチドは、新たに合成されたタンパク質を、細胞膜、通常真核細胞における小胞体及び細菌の内膜又は内膜と外膜の両方を介して導く、短いアミノ酸配列である。シグナルペプチドは、典型的にはポリペプチドのＮ末端部分にあり、典型的には生合成と、細胞からのポリペプチドの分泌との間で酵素的に除去される。このようなペプチドを、対象Ａｂｕｓに組み込むことにより、合成した分子を分泌できる。
【０１０６】
免疫反応性を高める物質には、細菌性超抗原などがあるが、これらには限定されない。固体支持体へのカップリングを容易にする物質には、ビオチン又はアビジンがあるが、これらには限定されない。免疫原キャリアには、生理学的に許容される緩衝液などがあるが、これらには限定されない。生物反応修飾物質は、サイトカイン、特に腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、インターロイキン−２、インターロイキン−４、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子及びγ−インターフェロンなどを含む。
【０１０７】
好適な薬物部分には、抗腫瘍薬などがある。これらとしては、例えば、放射性同位体、ビンカアルカロイド類、例えば、ビンブラスチン硫酸塩、ビンクリスチン硫酸塩及びビンデシン硫酸塩、アドリアマイシン、ブレオマイシン硫酸塩、カルボプラチン、シスプラチン、シクロホスファミド、シタラビン、ダカルバジン、ダクチノマイシン、デュアノルビシン塩酸塩、ドキソルビシン塩酸塩、エトポシド、フルオロウラシル、ロムスチン、メクロロレタミン塩酸塩、メルファラン、メルカプトプリン、メトトレキサート、マイトマイシン、ミトーテン、ペントスタチン、ピポブロマン、プロカルバゼ塩酸塩、ストレプトゾトシン、タキソール、チオグアニン及びウラシルマスタードなどがあるが、これらには限定されない。
【０１０８】
一本鎖分子を含む免疫毒素は、組み換え手段により産生できる。種々の免疫毒素の産生は、当該技術分野において周知であり、このための方法は、例えば、「Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｔｏｘｉｎ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ： Ａｉｍｉｎｇ ｔｈｅ Ｍａｇｉｃ Ｂｕｌｌｅｔ（モノクローナル抗体−トキシン結合体：特効薬を目指して）」Ｔｈｏｒｐｅ等（１９８２）Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｉｎ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ社、第１６８〜１９０頁；Ｖｉｔａｔｔａ（１９８７）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３８：１０９８−１１０４；並びにＷｉｎｔｅｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎ（１９９１）Ｎａｔｕｒｅ ３４９：２９３−２９９に記載されている。好適なトキシンには、リシン、放射性核種、アメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、シュードモナスエクソトキシンＡ、ジフテリア毒素、リシンＡ鎖、真菌毒素、例えば、レストリクトシン及びホスホリパーゼ酵素などがあるが、これらには限定されない。一般的には、「Ｃｈｉｍｅｒｉｃ Ｔｏｘｉｎｓ（キメラトキシン）」、Ｏｌｓｎｅｓ及びＰｉｈｌ、Ｐｈａｒｍａｃ．Ｔｈｅｒ．１５：３５５−３８１（１９８１）； 並びに「Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ（癌の検出及び治療のためのモノクローナル抗体）」、編者Ｂａｌｄｗｉｎ及びＢｙｅｒｓ、第１５９〜１７９頁、第２２４〜２６６頁、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ社（１９８５）を参照されたい。
【０１０９】
化学的に機能的な部分は、組み換えで、例えば、Ａｂｕ部分及び機能的部分をコードしている融合遺伝子を生成することにより調製できる。あるいは、Ａｂｕは、種々の十分に確立された化学的方法のいずれかにより部分に化学的に結合できる。例えば、部分がタンパク質であるときには、結合は、ヘテロ二機能性クロスリンカー、例えば、ＳＰＤＰ、カルボジイミドグルタルアルデヒド等によるものでよい。これらの部分は、共有結合してもよいし、二次試薬、例えば、二次抗体、プロテインＡ又はビオチン−アビジン複合体を介して結合してもよい。常磁性部分及び抗体へのその結合は、当該技術分野において周知である。例えば、Ｍｉｌｔｅｎｙｉ等（１９９０）Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ １１：２３１−２３８を参照のこと。
【０１１０】
抗原結合ユニット（Ａｂｕｓ）の調製：
対象Ａｂｕｓは、組み換えＤＮＡ技術、合成化学法又はそれらの組み合わせにより調製できる。例えば、ＶＬ、ＶＨ及びヘテロ二量体化配列を含むＡｂｕｓの所望の成分をコードしている配列は、典型的に構築され、フラグメントを発現ベクターにライゲーションする。これらの配列は、所望のタンパク質配列をコードしている他のベクターからか、それぞれのテンプレート核酸を用いたＰＣＲ生成フラグメントからか、又は所望の配列をコードしている合成オリゴヌクレオチドの集合により構築されることができる。しかしながら、Ａｂｕｓをコードしている全ての核酸配列は、好ましくはコード配列のフレーム内融合により構築される。上記したフレクソンは、種々の成分及びドメインとの間に含ませて、個々の成分が相対的に互いに独立している配置をとる能力を高めることができる。ＮｓｃＡｂｕｓを産生するために、Ｌ鎖とＨ鎖を、別個に形成した後、集合させる、すなわち、両鎖のための発現系による生体内集合をすることができる。このような発現系は、好適な細胞を、Ｌ鎖及びＨ鎖用の別個の転写可能領域を含むベクターでトランスフェクションするか、同じ細胞を各鎖用のベクターで同時形質移入することにより生成できる。
【０１１１】
集合させられたＡｂｕｓは、当該技術分野において公知の種々のタンパク質精製法を用いて単離できる。一般的に、Ａｂｕは、培地から分泌されたポリペプチドとして単離される。但し、これらは、シグナルペプチドなしで直接に産生されるときに、宿主細胞ライゼート又は細菌ペリプラスムから回収できる。Ａｂｕｓが膜結合している場合、当業者により一般的に用いられる好適な洗浄剤溶液により可溶化される。回収されたＡｂｕｓは、塩析沈殿（例えば、硫酸アンモニウムで）、イオン交換クロマトグラフィー（例えば、カチオン又はアニオン交換カラム上、中性ｐＨでイオン強度を増加させる段階的勾配で溶離）、ゲル濾過クロマトグラフィー（ゲル濾過ＨＰＬＣ等）、並びにタグアフィニティーカラム、又はアフィニティー樹脂、例えば、プロテインＡ、プロテインＧ、ヒドロキシアパタイト及び抗免疫グロブリン、によるクロマトグラフィーにより、さらに精製できる。
【０１１２】
本発明のポリヌクレオチド及びベクター
本発明によれば、本発明のＡｂｕｓをコードする種々のポリヌクレオチドが提供される。本発明のポリヌクレオチドは、部分的に、上記で詳細に説明したように、その中に含まれる独特のヘテロ二量体化配列により特徴付けられる。このようなヘテロ二量体化配列により、所望の抗原に特異的に結合するもの等のＡｂｕｓの効率的な構築及びスクリーニングができる。また、このような配列により、ファージ、細菌、他の原核細胞又は真核細胞等の生体生理学的存在物上へのヘテロ二量体のディスプレイが容易となる。好ましいヘテロ二量体化配列を、配列番号２及び４に示す。
【０１１３】
本発明の一実施態様によれば、対象ＮｓｃＡｂｕｓをコードする単離されたポリヌクレオチドが提供される。この実施態様の一の側面によれば、組み換えポリヌクレオチドは、対象ＮｓｃＡｂｕの軽鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む。別の側面によれば、組み換えポリヌクレオチドは、ＮｓｃＡｂｕの重鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む。さらに別の側面によれば、組み換えポリヌクレオチドは、２つの別個のコード配列を含む。これらのコード配列のうちの一つは軽鎖ポリペプチドをコードし、他の配列は重鎖をコードしている。
【０１１４】
既存の抗体のＬ鎖又はＨ鎖の種々の領域に対応するヌクレオチド配列は、ハイブリダイゼーション、ＰＣＲ及びＤＮＡ配列決定を含むがこれらには限定されない通常の方法を用いて容易に得られ且つ配列決定できる。モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、抗体ヌクレオチド配列の好ましいソースとしての役割を果たす。一連のモノクローナル抗体を産生する数多くのハイブリドーマ細胞を、公共又は私的な寄託機関から得ることができる。最大の寄託機関は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｔｃｃ．ｏｒｇ）である。ここでは、十分に特徴付けされたハイブリドーマ細胞系の多様なコレクションが提 供されている。あるいは、抗体ヌクレオチドを、免疫化又は非免疫化齧歯類又はヒトから得ることができ、且つ脾臓及び末梢血リンパ球等の器官から得ることが できる。抗体ヌクレオチドを抽出及び合成するのに適用できる具体的な方法が、Ｏｒｌａｎｄｉ等（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ ８６：３８３３−３８３７；Ｌａｒｒｉｃｋ等（１９８９）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１６０：１２５０−１２５５；Ｓａｓｔｒｙ等（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，Ｕ．Ｓ．Ａ．８６：５７２８−５７３２；及び米国特許第５，９６９，１０８号に記載されている。
【０１１５】
また、抗体ヌクレオチド配列は、例えば、相同性非ヒト配列の代わりにヒト重鎖及び軽鎖定常領域についてのコード配列を用いることによっても修飾できる。この方法で、最初の抗体の結合特異性を保持するキメラ抗体が調製される。
【０１１６】
また、本発明によるポリヌクレオチドには、例示されたポリペプチドの機能的等価物及びそれらのフラグメントをコードしているものなどが含まれることも分かる。機能的に等価のポリペプチドには、それらによりコードされているポリペプチドの特性を高めるか、減少させるか、又は顕著な影響を及ぼさないものが含まれる。機能的等価物は、保存的アミノ酸の置換を有するポリペプチド、融合を含む類似体及び突然変異体であることができる。
【０１１７】
遺伝コードの縮重のため、Ｌ配列及びＨ配列だけでなく、本発明のポリヌクレオチド及びベクターの構築に好適なヘテロ二量体化配列のヌクレオチドがかなりの変化をすることがある。配列変異体は、一つ以上の置換、欠失又は付加（これらの本質的な効果は、所望の抗原結合活性を保持することである）の行われた修飾されたＤＮＡ又はアミノ酸配列を有することができる。例えば、コードされているアミノ酸の変更や、保存的変化を生じない、コード領域における種々の置換をおこなうことができる。これらの置換は、本発明に含まれる。保存的アミノ酸の置換には、以下の群の範囲内の置換が含まれる：グリシン、アラニン；バリン、イソロイシン、ロイシン；アスパラギン酸、グルタミン酸；アスパラギン、グルタミン；セリン、スレオニン；リジン、アルギニン；及びフェニルアラニン、チロシン。保存的置換は、産生されるポリペプチドに含まれる一つ以上のアミノ酸残基を効果的に変化させるが、これらの置換は、得られた産生されるＡｂｕｓの抗原結合活性を妨害するとは思われない。コードされるアミノ酸残基を変更しないヌクレオチドの置換は、種々の系における遺伝子発現を最適化するのに有用である。好適な置換は、当業者には公知であり、例えば、発現系において好ましいコドンの使用を反映するようにおこなわれる。
【０１１８】
所望により、組み換えポリヌクレオチドは、遺伝子産物の発現及び精製の検出を容易にする異種の配列を含むことができる。このような配列の例は、当該技術分野において公知であり、β−ガラクトシダーゼ、β−ラクタマーゼ、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）、ルシフェラーゼ、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）及びそれらの誘導体等のレポータータンパク質をコードするものなどが含まれる。精製を容易にする他の異種配列は、エピトープ、例えば、Ｍｙｃ、ＨＡ（インフルエンザウイルス血球凝集素由来）、Ｈｉｓ−６、ＦＬＡＧ、又は免疫グロブリンのＦｃ部分、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）及びマルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）をコードすることができる。
【０１１９】
ポリヌクレオチドは、上記した種々の化学的機能性部分に結合できる。一般的に用いられる部分には、検出可能なシグナルを産生できる標識、シグナルペプチド、免疫学的反応性を高める物質、固体支持体へのカップリングを容易にする物質、ワクチンキャリア、生物反応修飾物質、常磁性標識及び薬物などが含まれる。これらの部分は、ポリヌクレオチドに、共有結合か、組み換えか、又は当該技術分野において公知の他の手段により連結できる。
【０１２０】
本発明のポリヌクレオチドは、追加の配列、例えば、同じ転写ユニット内の追加のコード配列、制御要素、例えば、プロモーター、リボソーム結合部位及びポリアデニル化部位、同一又は異なるプロモーターの制御下での追加の転写ユニット、宿主細胞のクローニング、発現及び形質転換を可能にする配列、並びに本発明の実施態様に望ましいことがある構築物を含むことができる。
【０１２１】
本発明で提供されるポリヌクレオチドは、化学合成、組み換えクローニング法、ＰＣＲ又はそれらの組み合わせを用いて得ることができる。化学的なポリヌクレオチド合成法は、当該技術分野において周知であり、ここで詳細に説明する必要はない。当業者は、ここに記載の配列データを使用して、ＤＮＡ合成装置又は商業サービスからのオーダリングを用いることにより所望のポリヌクレオチドを得ることができる。
【０１２２】
所望の配列を含むポリヌクレオチドを、好適なベクターに挿入し、それを次に好適な宿主細胞に導入して複製及び増幅することができる。したがって、本発明には、本発明のポリヌクレオチドの一つ以上を含む種々のベクターが含まれる。また、対象Ａｂｕｓをコードしている少なくとも一つのベクターを含む発現ベクターの選択可能なライブラリーも、提供される。
【０１２３】
本発明のベクターは、一般的にクローニングベクター及び発現ベクターのカテゴリーに入る。クローニングベクターは、それらが含有するポリヌクレオチドの複製コピーを得たり、又は今後の回収のために寄託機関にポリヌクレオチドを保管する手段として有用である。発現ベクター（及びこれらの発現ベクターを含む宿主細胞）を使用して、ポリペプチドを、それらに含まれるポリヌクレオチドから産生することができる。好適なクローニングベクター及び発現ベクターには、当該技術分野において公知のもの、例えば、細菌、哺乳動物、酵母、昆虫及びファージディスプレイ発現系に使用されるものなどが含まれる。
【０１２４】
好適なクローニングベクターは、標準的な方法により構築してもよいし、当該技術分野において入手できる多数のクローニングベクターから選択してもよい。選択されるクローニングベクターは、使用しようとする宿主細胞に応じて異なることができるが、有用なクローニングベクターは、一般的に自己複製能を有し、特定の制限エンドヌクレアーゼについての単一の標的を有していてもよく、又はマーカー遺伝子を担持していてもよい。好適な例として、プラスミド及び細菌ウイルス、例えば、ｐＢＲ３２２、ｐＭＢ９、ＣｏｌＥ１、ｐＣＲ１、ＲＰ４、ｐＵＣ１８、ｍｐ１８、ｍｐ１９、ファージＤＮＡ(繊維状ファージＤＮＡ及び非繊維状ファージＤＮＡ等）並びにシャトルベクター、例えば、ｐＳＡ３及びｐＡＴ２８などがある。これら及び他のクローニングベクターは、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、ＢｉｏＲａｄ、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ及び Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ等の商業的ベンダーから入手できる。
【０１２５】
これらの核酸を含む発現ベクターは、タンパク質及びポリペプチドを産生する宿主ベクター系を得るのに有用である。これらの発現ベクターは、エピソーマーとして又は、染色体ＤＮＡの一体部分として宿主生物において複製可能でなければならないことを意味している。好適な発現ベクターには、プラスミド、ウイルスベクター、例えば、ファージミド、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、レトロウイルス、コスミッド等が含まれる。酵母、鳥類及び哺乳動物の細胞などの真核細胞における発現に好適な多数の発現ベクターが、当該技術分野において公知である。発現ベクターの一例として、転写がサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）初期プロモーター／エンハンサーにより推進されるｐｃＤＮＡ３（カリフォルニア州サンディエゴにあるＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）があげられる。対象Ａｂｕｓを発現するのに特に有用な発現ベクターとして、ファージディスプレイベクター及び細菌ディスプレイベクターの２種類がある。
【０１２６】
ファージディスプレイベクターを構築するための方法は、当該技術分野において十分に確立されている（Ｗｉｎｔｅｒ Ｇ．等（１９９４）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２：４３３−５５ の総論参照）。繊維状ファージ配列と非繊維状ファージ配列の両方が、ディスプレイベクターを構築するのに適用できる。この種の数多くの代表的なファージの ゲノムが配列決定され、それらのゲノムは非繊維状ファージよりもはるかに小さいことがわかっているので、繊維状ファージベクターが好ましい。この種の代表的なファージには、Ｍ１３、ｆｌ、ｆｄ、Ｉｆｌ、Ｉｋｅ、Ｘｆ、Ｐｆ１及びＰｆ３などがある。ファージベクターは、典型的にはヘテロマルチマー、例えば、抗体ペプチドを発現するように、ファージコートタンパク質の一部分又は全てに融合することにより構築される。好適なコートタンパク質には、Ｍ１３の ｐＩＩＩ、ＶＩＩＩ、ＶＩ、ＶＩＩ及びＩＸなとが含まれる。ヘテロ多量体配列は、発現ファージコートの一体性が損なわれないようにファージベクターに挿入しなければならない。ヘテロ多量体は、好ましくは生物学的に機能性である。
【０１２７】
ｐＩＩＩ融合ベクターを構築するために、一般的に用いられる融合部位を、アミノ末端、ｐＩＩＩの２つのドメインの間のフレキシブルスペーサーの間（Ｓｍｉｔｈ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８８：１３１５−１７）又は米国特許第５，９６９，１０８号、第５，８３７，５００号に記載されている他の代替融合部位に位置する。ファージのｐＩＩＩ融合及び他のタンパク質は、同じファージレプリコン内又は異なるレプリコン上に全体的にコードされることができる。少なくとも２つのレプリコンを使用する とき、ｐＩＩＩ融合は、一般的にファージミド、複製のファージオリジンを含むプラスミド上にコードされる。ファージミドは、ｐＩＩＩを含む全てのファージ タンパク質を提供するが、欠陥オリジンのため、ファージミドとの競合でそれ自体よくはパッケージされないＭ１３ＫＯ７等のヘルパーファージを用いた「レスキュー」によりファージ粒子にパッケージされることができる。パッケージ効率を高めるために変更ｐＩＩＩを欠くか、それを含む他の多価ヘルパーファージ（例えば、Ｍ１３ΔｇＩＩＩ）を、用いることもできる（Ｒｏｎｄｏｔ等、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １９：７５−７８）。
【０１２８】
他の繊維状ファージを用いて、同様の構築をおこなうことができる。Ｐｆ３は、ＩｎｃＰ−１プラスミドを含む緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｅｎｏｓａ）細胞に感染する周知の繊維状ファージである。ゲノム全体の配列決定がなされており、複製及び集合に関与する遺伝シグナルは、特徴付けされている。ＰＦ３の主要なコートタンパク質は、その分泌を導くためのシグナルペプチドを有しない点で通常とは異なる。配列は、露出されるアミノ末端と一致している帯電残基ＡＳＰ₇、ＡＲＧ₃₇、ＬＹＳ₄₀及びＰＨＥ₄₄−ＣＯＯ^-を 有している。ディスプレイＰｆ３ベクターを構築するためには、異種のポリペプチドをコードしている遺伝子フラグメントにフレーム内で融合され、次に成熟 Ｐｆ３コートタンパク質をコードしているＤＮＡとフレーム内で融合している緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｅｎｏｓａ）において分泌を生じることが知られているシグナル配列を構成することが、一般的に望ましい。
【０１２９】
同じ一般的な構築スキームは、バクテリオファージＸ１７４、λ、Ｔ４及びＴ７ファージを含む非繊維状ファージから得た配列を含む提示ベクターの構成に適用される。これらの非繊維状ファージの構造についての豊富な情報が、当該技術分野において公知である。当業者は、必要以上の実験をおこなうことなく独特のヘテロ二量体化配列を用いて対象のヘテロ多量体を発現する対応のディスプレイベクターを容易に生成できる。
【０１３０】
ファージ提示ベクターの他に、別の種類の好ましいベクターとして、細菌ディスプレイベクターがあげられる。上記で概略示した一般的なスキームは、このようなベクターを構築するのに等しく適用できる。簡単に述べると、ベクターは、ヘテロ多量体、特にＡｂｕｓの発現を、細菌表面タンパク質との融合体の形態で容易にする。事前のサーチから、このような融合体を発現するのに適用できる非常に数多くの細菌表面タンパク質が明らかとなった。細菌表面タンパク質として、例えば、ＬａｍＢ（Ｂｒｅｍｅｒ等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８４）８１：３８３０−３４；Ｇｅｎｅ（１９８７）５２：１６５−７３）；ＯｍｐＡ（Ｐｒｏｇ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｍｏｌｅｃ Ｂｉｏｌ（１９８７）４９：８９−１１５）；ＯｍｐＣ；ＯｍｐＦ（Ｐａｇｅｓ等、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｍｉｅ（１９９０）７２：１６９−７６）；ＰｈｏＥ（ｖａｎ ｄｅｒ Ｌｅｙ等、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６１：１２２２２−５）；ｐｉｌｉｎ（Ｓｏ等、Ｃｕｒｒ Ｔｏｐ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ＆Ｉｍｍｕｎｏｌ（１９８５）１１８：１３−２８）；ｐｌｄＡ（ｄｅ Ｇｅｕｓ等、ＥＭＢＯ Ｊ．（１９８４）３（８）：１７９９−１８０２）及びそれらの同族体があげられるが、これらには限定されない。これら及び他の表面タンパク質の特徴付け並びにこれらのタンパク質を異種ポリペプチドのディスプレイに用いる方法が、米国特許第５，８３７，５００号及びそれに引用されている文献に詳細に記載されている。
【０１３１】
本発明のベクターは、一般的にＡｂｕｓを発現するために必要とする転写又は翻訳制御配列を含む。好適な転写又は翻訳制御配列には、複製オリジン、プロモーター、エンハンサー、リプレッサー結合領域、転写開始部位、リボソーム結合部位、翻訳開始部位並びに転写及び翻訳のための末端部位などがあるが、これらには限定されない。
【０１３２】
本明細書で使用される用語「プロモーター」は、一定の条件下で、ＲＮＡポリメラーゼに結合でき且つプロモーターよりも下流（３’方向）に位置するコード領域の転写を開始できるＤＮＡ領域である。プロモーターは、構成してもよいし、誘導してもよい。一般的に、プロモーター配列は、その３’端末で、転写開始部位に結合され、上流（５’方向）に延びてバックグランドより上の検出可能なレベルで転写を開始するのに必要とする、最小数の塩基又は要素を含むようにする。転写開始部位だけでなく、ＲＮＡポリメラーゼの結合に関与しているタンパク質結合ドメインも、プロモーター配列内にある。真核生物のプロモーターは、常にではないが、「ＴＡＴＡ」ボックス及び「ＣＡＴ」ボックスを含むことがしばしばある。
【０１３３】
選択されるプロモーターは、ベクターを導入する宿主細胞に大きく依存する。動物細胞については、種々の強固なプロモーター（ウイルスプロモーター及び非ウイルスプロモーターの両方）が当該技術分野において公知である。代表的なウイルスプロモーターとしては、例えば、ＣＭＶ、ＳＶ４０ウィルスの初期及び後期プロモーター、種々の種類のアデノウイルス（例えば、アデノウィルス２）及びアデノ関連ウイルスのプロモーターが挙げられるが、これらには限定されない。また、通常所望の軽鎖遺伝子又は重鎖遺伝子と関連したプロモーターを利用することが、このような制御配列が宿主細胞系と適合する限りは、可能であり且つしばしば望ましい。
【０１３４】
他の真核細胞に好適なプロモーター配列には、３−ホスホグリセレートキナーゼ、又は他の解糖系酵素、例えば、エノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ、３−ホスホグリセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ及びグルコキナーゼのためのプロモーターなどがある。転写が成長条件により制御されるというさらなる利点を有する他のプロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソシトクロムＣ、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連した分解系酵素、上記したグリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ並びにマルトース及びガラクトース利用に関与する酵素のためのプロモーター領域である。
【０１３５】
ある好ましい実施態様によれば、本発明のベクターでは、強力なエンハンサー及びプロモーター発現カセットを使用する。このような発現カセットとしては、例えば、ヒトサイトメガロウイルス直初期（ＨＣＭＶ−ＩＥ）プロモーター（Ｂｏｓｈａｒｔ等、Ｃｅｌｌ ４１：５２１（１９８５））、β−アクチンプロモーター（Ｇｕｎｎｉｎｇ等（１９８７）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）８４：５８３１）、ヒストンＨ４プロモーター（Ｇｕｉｌｄ等（１９８８）、Ｊ．Ｖｉｒａｌ．６２：３７９５）、マウスメタロチオネインプロモーター（ＭｃＩｖｏｒ等（１９８７）、Ｍｏｌ，Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．７：８３８）、ラット成長ホルモンプロモーター（Ｍｉｌｌｅｔ等（１９８５）、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．５：４３１）、ヒトアデノシンデアミナーゼプロモーター（Ｈａｎｔｚａｐｏｕｌｏｓ等（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：３５１９）、ＨＳＶ ｔｋプロモーター２５（Ｔａｂｉｎ等（１９８２）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．２：４２６）、α−１アンチトリプシンエンハンサー（Ｐｅｎｇ等（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：８１４６）及び免疫グロブリンエンハンサー／プロモーター（Ｂｌａｎｋｅｎｓｔｅｉｎ等（１９８８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．１６：１０９３９）、 ＳＶ４０初期又は後期プロモーター、Ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ ２主要後期プロモーター、又はポリオーマウイルス、ウシパピローマウイルス又は他のレトロウイルス若しくはアデノウイルスなど由来の他のウイルスプロモー ターがある。免疫グロブリン（Ｉｇ）遺伝子のプロモーター及びエンハンサー要素は、Ｂリンパ球（Ｂａｎｅｒｊｉ等（１９８３）Ｃｅｌｌ ３３：７２９；Ｇｉｌｌｉｅｓ等（１９８３）Ｃｅｌｌ ３３：７１７；Ｍａｓｏｎ等（１９８５）Ｃｅｌｌ ４１：４７９）に対する著しい特異性を付与し、一方Ｂグロビン遺伝子の転写を制御する要素は、赤血球系細胞でのみ機能する（ｖａｎ Ａｓｓｅｎｄｅｌｆｔ等（１９８９）Ｃｅｌｌ ５６：９６９）。
【０１３６】
細胞特異的又は組織特異的プロモーターを、使用することもできる。極めて多様な組織特異的プロモーターが、当業者により記載され且つ用いられてきた。選択動物細胞において作動可能な代表的なプロモーターには、肝細胞特異的プロモーター及び心筋特異的プロモーターなどがある。選択されるレシピエント細胞型に応じて、当業者は、本発明の発現ベクターの構築に適用できる他の好適な細胞特異的又は組織特異的プロモーターについて知るであろう。
【０１３７】
周知の制限及びライゲーション法を使用して、適切な転写制御配列を、種々のＤＮＡソースから切除し、本発明により発現される無傷選択可能融合遺伝子との作動的関係において一体化することができる。
【０１３８】
対象ベクターを構築する際、外生的配列と関連した終止配列も、転写される所望の配列の３’端に挿入してｍＲＮＡのポリアデニレーション及び/又は転写終止シグナルを得る。ターミネーター配列は、好ましくは一つ以上の転写終止配列（ポリアデニル化配列等）を含み、またさらなる転写読み過ごしを中断させるようにさらなるＤＮＡ配列を含ませることにより長くすることができる。本発明の好ましいターミネーター配列（又は終止部位）は遺伝子を有し、その遺伝子の後に転写終止配列（それ自身の終止配列又は異種の終止配列）が存在する。このような終止配列としては、例えば、当該技術分野において公知であり、広く入手可能であり、以下で例示する、種々のポリアデニル化配列にカップリングした停止コドンがあげられる。ターミネーターが遺伝子を含む場合、検出可能又は選択可能なマーカーをコードする遺伝子を使用するのが有利であり、それによりターミネーター配列（及びしたがって、転写ユニットの対応する失活及び/又は活性化）の存在及び/又は不存在を、検出及び/又は選択できる手段が提供される。
【０１３９】
上記要素の他に、ベクターは、選択可能なマーカー（例えば、ベクターで形質転換した宿主細胞の生存又は成長に必要なタンパク質をコードする遺伝子）を含んでいてよいが、このようなマーカー遺伝子は、宿主細胞に共導入した別のポリヌクレオチド配列に担持されることができる。選択可能な遺伝子が導入されたこのような宿主細胞のみが、選択的条件下で生存及び/又は成長する。典型的な選択的遺伝子は、（ａ）抗生物質又は他のトキシン、例えば、アンピシリン、ネオマイシン、Ｇ４１８、メトトレキサート等に対する耐性を付与するタンパク質、（ｂ）栄養素要求性欠乏を補完するタンパク質、又は（ｃ）天然培地からは得られない必須の栄養物を供給するタンパク質をコードする。どのマーカー遺伝子を選択するのが適切かは、宿主細胞に依存し、種々の宿主について適切な遺伝子は、当該技術分野において公知である。
【０１４０】
好ましい実施態様によれば、ベクターは、少なくとも２つの非関連発現系で複製できるシャトルベクターである。このような複製を容易にするために、ベクターは、一般的に少なくとも２つの複製オリジンを含み、一つは各発現系において有効である。典型的には、シャトルベクターは、真核生物発現系及び原核生物発現系において複製できる。これにより、真核宿主（発現細胞の種類）のタンパク質発現及び原核宿主（増幅細胞の種類）におけるベクターの増幅を検出できる。好ましくは、複製の一つのオリジンはＳＶ４０に由来し、一つはｐＢＲ３２２に由来する。但し、ベクターの複製を導く限りは、当該技術分野において公知のいずれかの好適なオリジンを、使用することができる。ベクターがシャトルベクターである場合、ベクターは、好ましくは少なくとも２つの選択可能なマーカーを含み、一つは発現細胞の種類のためのものであり、一つは増幅細胞の種類のためのものである。利用される発現系において機能する限り、当該技術分野において公知の選択可能なマーカー又は本明細書に記載の選択可能なマーカーのいずれも用いることができる。
【０１４１】
本発明によるベクターは、組み換えクローニング法の使用及び/又は化学合成により得ることができる。極めて多数の組み換えクローニング法、例えば、ＰＣＲ、制限エンドヌクレアーゼ消化及びライゲーションが、当該技術分野において周知であり、ここで詳細には説明する必要がない。また、当業者は、ここに記載の配列データ又は公共又は企業のデータベースにおける配列データを使用して、当該技術分野において入手できるいずれかの合成手段により所望のベクターを得ることができる。
【０１４２】
本発明の宿主細胞：
本発明によれば、ベクターで形質転換した宿主細胞又は上記した発現ベクターのライブラリーが提供される。発現ベクターは、多数の好適な手段、例えば、エレクトロポレーション、マイクロプロジェクタイルボンバードメント；リポフェクション、感染（ベクターを感染物質にカップリングする）、塩化カルシウム、塩化ルビジウム、リン酸カルシウム、ＤＥＡＥ−デキストラン又は他の物質を用いたトランスフェクションのいずれかにより、好適な原核細胞又は真核細胞に導入できる。ベクターを導入するのにどの手段を選択するかは、宿主細胞の特徴によって決まることがしばしばある。
【０１４３】
ほとんどの動物細胞の場合、上記した方法のいずれも、ベクターのデリバリーに好適である。好ましい動物細胞は、例えば、ミリグラムのレベルで、外生的に導入される遺伝子産物を多量に発現できる、脊椎動物細胞、好ましくは哺乳動物細胞である。好ましい細胞としては、ＮＩＨ３Ｔ３細胞、ＣＯＳ、ＨｅＬａ及びＣＨＯ細胞があるが、これらには限定されない。
【０１４４】
動物細胞は、種々の培地で培養できる。市販の培地、例えば、Ｈａｍ’ｓ Ｆ１０（Ｓｉｇｍａ社）、Ｍｉｎｉｍａｌ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ、Ｓｉｇｍａ社）、ＲＰＭＩ−１６４０（Ｓｉｇｍａ社）及びＤｕｌｂｅｃｃｏ‘ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ、Ｓｉｇｍａ社）が、宿主細胞を培養するのに好適である。さらに、動物細胞を、血清を欠くが、ホルモン、増殖因子又は特定の細胞型の生存及び/又は成長に必要な他の因子を補充した定義された培地で増殖できる。細胞の生存を支持する定義された培地は、生存能、モルホロジー、代謝能及びもしかしたら細胞の分化能を維持するのに対して、細胞成長を促進する定義された培地は、細胞の繁殖又は増殖に必要な全ての化学物質が提供される。生体外での哺乳動物の細胞の生存及び成長を支配する一般的なパラメータは、当該技術分野において十分に確定している。異なる細胞培養系で制御できる物理化学的パラメータは、例えば、ｐＨ、ｐＯ₂、温度及び浸透圧である。細胞の栄養上の必要物は、通常最適な環境を提供するために開発された標準培地配合物で供給される。栄養物は、以下のいくつかのカテゴリー：アミノ酸及びその誘導体、炭水化物、糖類、脂肪酸、複合脂質、核酸誘導体及びビタミン類、に分けることができる。細胞の代謝を維持するための栄養物とは別に、ほとんどの細胞は、無血清培地での増殖のために、以下の群：ステロイド類、プロスタグランジン類、増殖因子、下垂体ホルモン及びペプチドホルモン（Ｓａｔｏ，Ｇ．Ｈ．等、「Ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｃｅｌｌｓ ｉｎ Ｈｏｒｍｏｎａｌｌｙ Ｄｅｆｉｎｅｄ Ｍｅｄｉａ（ホルモン的に定義された培地における細胞の成長）」、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ社，Ｎ．Ｙ．，１９８２）、の少なくとも一つから選択される一種以上のホルモンも必要とする。ホルモンの他に、細胞は、生体外での生存及び成長のために、輸送タンパク質、例えば、トランスフェリン（血漿鉄輸送タンパク質）、セルロプラスミン（銅輸送タンパク質）及び高密度リポタンパク質（脂質キャリア）を必要とすることがある。最適なホルモン又は輸送タンパク質の組は、各細胞型ごとに異なる。これらのホルモン又は輸送タンパク質のほとんどは、外生的に添加されるか、又はめったにないことではあるが、特定の因子を必要としない突然変異細胞系が発見された。当業者には、必要以上の実験をおこなうことなく、細胞培養を維持するには他にどのような因子が必要かは、分かるであろう。
【０１４５】
植物細胞については、種々のベクターデリバリー法が、当該技術分野において公知である。宿主細胞は、全植物、単離細胞又はプロトプラストの形態であることができる。ベクターを植物細胞に導入するための具体的な手順には、アグロバクテリウムを用いた植物形質転換、プロトプラスト形質転換、花粉への遺伝子トランスファー、生殖器官への注射及び未成熟胚への注射などがある。当業者には明らかなように、これらの方法の各々は、異なる利点及び欠点がある。したがって、特定の植物種へベクターを導入する一つの特定の方法は、別の植物種にとっては最も有効ではないことがある。
【０１４６】
Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ（アグロバクテリウムツメファシエンス）を用いたトランスファーは、ベクターを全植物組織に導入でき、プロトプラストからの完全な植物の再分化の必要性を回避できるので、植物細胞にベクターを導入するために広く適用できる系である。アグロバクテリウムを用いた発現ベクターを使用して植物細胞にベクターを導入することは、当該技術分野において周知である。この方法では、それらのＤＮＡの一部分（Ｔ−ＤＮＡ）を宿主細胞にトランスファーして核ＤＮＡに一体化することにより、植物をコロニー化するアグロバクテリウムの共通の特徴を利用する。Ｔ−ＤＮＡは、長さが２５塩基対であるボーダー配列により定義され、且つこれらのボーダー配列の間のＤＮＡを、植物細胞にトランスファーすることもできる。Ｔ−ＤＮＡボーダー配列の間の組み換え植物ウイルス核酸の挿入により、組み換え植物ウイルス核酸の植物細胞へのトランスファーが生じ、そこで組み換え植物ウイルス核酸が複製された後、植物全体に組織的に広がる。
【０１４７】
全ての植物がアグロバクテリウムについての天然の宿主というわけではないので、プロトプラストの形質転換等の代替法を用いて対象ベクターを宿主細胞に導入してもよい。一定の単子葉植物について、植物プロトプラストの形質転換は、リン酸カルシウム共沈法、ポリエチレングリコール処理、エレクトロポレーション及びこれらの処理の組み合わせに基づく方法を用いて達成できる。
【０１４８】
プロトプラスト形質転換の他に、パーティクル・ボンバードメントは、本発明によるベクターを植物宿主細胞へ放出するための別の都合のよい方法である。具体的には、植物細胞は、複数の対象ベクターでコーティングした微小粒子を打ち込まれることができる。ＤＮＡ被覆微小入射粒子を打ち込むことにより、植物及び動物の両方において安定な形質転換体をうまく産生した（例えば、Ｓａｎｆｏｒｄ等（１９９３）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２１７：４８３−５０９ 参照）。ベクターを植物細胞に導入するのに好適である微小粒子は、典型的には金属、好ましくはタングステン又は金で作製される。これらの微小粒子は、例えば、ＢｉｏＲａｄ（例えば、Ｂｉｏ−Ｒａｄ ＰＤＳ−１０００／Ｈｅ）から入手できる。当業者には、パーティクル・ボンバードメントプロトコールが、パラメータ、例えば、Ｈｅ圧、被覆粒子量、マクロ キャリアと停止スクリーンとの間の距離、及び停止スクリーンから標的までの飛行距離を変化させることにより、植物について最適化できることを、当業者は分 かるであろう。
【０１４９】
また、ベクターを、Ｚｈｏｕ等、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１：４３３（１９８３）；Ｄ．Ｈｅｓｓ，Ｉｎｔｅｒｎ Ｒｅｖ．Ｃｙｔｏｌ．，１０７：３６７（１９８７）；Ｌｕｏ等、Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｏｒｔｅｒ，６：１６５（１９８８）により記載されているように、花粉に直接ＤＮＡトランスファーすることにより植物に導入することもできる。別法として、ベクターを、Ｐｅｎａ等、Ｎａｔｕｒｅ，３２５：２７４（１９８７）により記載されているように植物の生殖器官に注入できる。
【０１５０】
核酸を植物細胞に導入するための他の方法には、以下のものがある：
（ａ）ハンド接種。ハンド接種を、セライト又はカーボランダム（通常約１％）を添加した、中性ｐＨ、低モル濃度リン酸緩衝液を用いておこなう。試料の１〜４滴を、葉の上表面に置き、穏やかに擦る。
（ｂ）植物床の機械的接種。植物床接種は、葉を切断しながらベクター溶液をトラクター駆動の草刈り機に噴霧（ガス推進）することによりおこなわれる。別法として、植物床を刈り、ベクター溶液を、切断葉上に直ちに噴霧する。
（ｃ）単葉の高圧噴霧。また、単一植物接種を、緩衝化ベクター溶液にカーボランダム約１％を含有する狭い定方向噴霧（５０ｐｓｉ、葉から６〜１２インチ）で葉に噴霧することによりおこなうこともできる。
（ｄ）真空侵入。宿主生物を実質的に真空圧環境において感染を容易にすることにより、接種をおこなうことができる。
【０１５１】
対象ベクターをクローニング及び発現するのに好適な他の宿主細胞は、原核微生物及び真核微生物、例えば、菌類又は酵母細胞である。これに好適な原核細胞には、グラム陰性生物及びグラム陽性生物を含む細菌が含まれる。この種類の微生物の代表的なメンバーには、腸内細菌科（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ）（例えば、大腸菌）、エンテロバクター属（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ）、エルビニア属（Ｅｒｗｉｎｉａ）、クレ ブシエラ属（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）、プロテウス属（Ｐｒｏｔｅｕｓ）、サルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）（例えば、ねずみチフス菌 （Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ））、セラチア属（Ｓｅｒｒａｔｉａ）（例えば、霊菌（Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃａｎｓ））、赤痢菌属（Ｓｈｉｇｅｌｌａ）、ナイセリア属（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）（例えば、髄膜炎菌（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ））だけでなく、バチルス綱（Ｂａｃｉｌｌｉ）（例えば、バチルススブチリス（Ｂａｃｉｌｌｉ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）及びバチルスリキニホルムス（Ｂａｃｉｌｌｉ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ））がある。好ましくは、宿主細胞は、発現Ａｂｕｓのタンパク質分解フラグメントの最小量を分泌する。一般的に用いられる菌類 （酵母を含む）宿主細胞は、Ｓ．セレビジアエ（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、クリュイベロミセス・ラクティス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ（Ｋ．ｌａｃｔｉｓ））、カンジダ属（Ｃａｎｄｉｄａ）に属する種、例えば、カンジダ・アルビカンス（Ｃ．ａｌｂｉｃａｎｓ）、カンジダ・グ ラブラータ（Ｃ．ｇｌａｂｒａｔａ）、カンジダ・マルトーサ（Ｃ．ｍａｌｔｏｓａ）、カンジダ・アティリス（Ｃ．ｕｔｉｌｉｓ）、カンジダ・ステラトイデ ア（Ｃ．ｓｔｅｌｌａｔｏｉｄｅａ）、カンジダ・パラプシローシス（Ｃ．ｐａｒａｐｓｉｌｏｓｉｓ）、カンジダ・トロピカルス （Ｃ．ｔｒｏｐｉｃａｌｕｓ）、アカパンカビ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ ｃｒａｓｓａｓ）、アスペルギルス・ニダランス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓ）、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ（Ｓ．ｐｏｍｂｅ））、ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）及びヤロウィア・リポリティカ（Ｙａｒｏｗｉａ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ）などがある。
【０１５２】
好適な宿主細胞に導入したら、Ａｂｕｓの発現を、当該技術分野において公知の核酸又はタンパク質アッセイを用いて測定できる。例えば、Ｌ鎖又はＨ鎖（ＳｃＡｂｕ）の転写ｍＲＮＡの存在は、Ａｂｕポリヌクレオチドのいずれかの領域に相補的なプローブを用いて、慣用のハイブリダイゼーションアッセイ（例えば、ノーザンブロット分析）、増幅法（例えば、ＲＴ−ＰＣＲ）、ＳＡＧＥ（米国特許第５，６９５，３９７号）及びアレイ系法（例えば、米国特許第５，４０５，７８３号、第５，４１２，０８７号及び第５，４４５，９３４号参照）により検出及び／又は定量化できる。
【０１５３】
また、ベクターの発現は、発現されたＡｂｕを試験することにより測定することもできる。タンパク質分析について当該技術分野において公知の種々の方法が、可能である。これらには、ラジオイムノアッセイ、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫放射測定法）、「サンドイッチ」免疫アッセイ、イムノラジオメトリックアッセイ、インサイツイムノアッセイ（例えば、コロイド金、酵素又は放射性同位元素標識を用いて）、ウエスタンブロッティング分析、免疫沈降アッセイ、免疫蛍光アッセイ及びＰＡＧＥ−ＳＤＳなどがあるが、これらには限定されない。
【０１５４】
本発明のポリヌクレオチド、ベクター及び宿主細胞の使用：
本発明のポリヌクレオチド及びベクターには、いくつかの特定の用途がある。これらは、例えば、SｃとＮｓｃＡｂｕｓの両方の産生の発現系に有用である。また、ポリヌクレオチドは、所望のポリヌクレオチドの増幅をおこなうためのプライマーとしても有用である。さらに、本発明のポリヌクレオチドは、ワクチン、診断薬及び薬物等の医薬組成物にも有用である。
【０１５５】
本発明の宿主細胞は、とりわけ対象のポリヌクレオチドのリポジトリー、ベクター、又はそれらの抗原結合特異性に基づく所望のＡｂｕｓを産生及びスクリーニングするためのビヒクルとして使用できる。
【０１５６】
したがって、本発明によれば、所望の抗原と免疫反応性であるＮｓｃＡｂｕを同定する方法が提供される。この方法は、以下のステップ：（ａ）遺伝学的に種々のレパートリーのＡｂｕｓを準備するステップであって、前記レパートリーが少なくとも一つの対象Ａｂｕを含む、前記ステップと、（ｂ）前記抗原結合ユニットのレパートリーを前記所望の抗原と接触させるステップ と、（ｃ）Ａｂｕｓと前記抗原との間の特異的結合を検出することにより、前記所望の抗原と免疫反応性である前記Ａｂｕを同定するステップを含む。
【０１５７】
Ａｂｕが所望の抗原に特異的に結合する能力は、当該技術分野において十分に確立された種々の方法により試験できる。Ｈａｒｌｏｗ及び Ｌａｎｅ（１９８８）Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ；Ｇｈｅｒａｒｄｉ等（１９９０）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．１２６：６１−６８ を参照のこと。典型的には、所望の結合特異性を示すＡｂｕｓは、免疫アッセイ、例えば、標識されたＡｂｕｓを、固体支持体又は基質上に固定化した抗原と反 応させることにより直接検出できる。一般的に、抗原が接着した基質は、免疫アッセイ中に低レベルの非特異的結合を示す物質を用いて調製される。好ましい固 体支持体は、以下の種類の物質：プラスチックポリマー、ガラス、セルロース、ニトロセルロース、半導電性物質及び金属、の一つ以上から調製される。好まし くは、基質は、ペトリ皿、クロマトグラフィービーズ、磁性ビーズ等である。
【０１５８】
このような固相アッセイについて、未反応Ａｂｕｓは、洗浄により除去される。しかしながら、液相アッセイでは、未反応Ａｂｕｓは、濾過又はクロマトグラフィー等のなんからの他の分離法により除去される。抗原を標識Ａｂｕｓに結合した後、結合した標識の量を測定する。この方法の変法に、競合アッセイがある。この方法では、抗原は、最初の結合分子と飽和まで結合させられる。対象Ａｂｕの集団を複合体に導入するとき、より高い結合親和性を示すもののみが競合でき、したがって、抗原に結合したままである。
【０１５９】
別法として、一定の抗原への特異的結合を、セルソーティングにより評価できる。セルソーティングには、所望の抗原を、ソーティングされる細胞上に提示した後、標的細胞を、検出可能な物質にカップリングするＡｂｕｓで標識し、その後標識した細胞を、セルソーターにおいて未標識のものから分離することが含まれる。最新の細胞分離法は、蛍光標示式セルソーティング（ＦＡＣＳ）である。微細流における単一ファイルを移動する細胞は、レーザービームを通過し、蛍光標識Ａｂｕにより結合された各細胞の蛍光を、次に測定する。
【０１６０】
溶離されたＡｂｕｓの続いての分析では、Ｌ鎖及びＨ鎖のアミノ酸配列を描写するためのタンパク質の配列決定が含まれていてよい。推定されたアミノ酸配列に基づいて、抗体ポリペプチドをコードしているｃＤＮＡは、次にＰＣＲ、ライブラリースクリーニング、既存の核酸データベースにおけるホモロジーサーチ、又はそれらの組み合わせを含む組み換えクローニング方法により得られることができる。一般的に用いられるデータベースには、ＧｅｎＢａｎｋ、ＥＭＢＬ、ＤＤＢＪ、ＰＤＢ、ＳＷＩＳＳ−ＰＲＯＴ、ＥＳＴ、ＳＴＳ、ＧＳＳ及びＨＴＧＳとがあるが、これらには限定されない。
【０１６１】
Ａｂｕのレパートリーを、ファージ又は細菌粒子上にディスプレイするとき、好ましくは、アフィニティークロマトグラフィーを用いて選択がおこなわれる。この方法は、典型的には抗原被覆プレート、カラムマトリックス、細胞へのファージＡｂｕｓのレパートリーの結合、又は溶液中のビオチニル化抗原に結合した後に捕獲することにより進行する。固相に結合したファージ又は細菌を、洗浄した後、可溶性ハプテン、酸又はアルカリにより溶離する。別法として、抗原の濃度を増加することにより、Ａｂｕｓをアフィニティーマトリックスから解離できる。抗原への極めて高い親和性又は結合活性を有する一定のＡｂｕｓについては、効率的に溶離するには、ＰＣＴ国際出願公開第ＷＯ９２／０１０４７号に記載のような高ｐＨ又は温和な還元溶液を必要とすることがある。
【０１６２】
所望の結合特異性を有する結合Ａｂｕｓを回収する際の困難を回避するために、プロテアーゼ切断部位を、Ａｂｕｓをディスプレイするために用いられる、ヘテロ二量体化配列とファージ被覆タンパク質との間に導入することができる。この目的のための適用できる切断部位には、因子Ｘ、トリプシン及びトロンビン認識部位などがあるが、これらには限定されない。ファージレパートリーをアフィニティーマトリックスに結合し且つ非特異的ファージを洗浄した後、所望の親和性を有するＡｂｕｓをディスプレイする残存ファージを、切断部位での消化に好適な条件下でプロテアーゼで抗原アフィニティーマトリックスを洗浄することにより、採集することができる。このような消化により、ファージ粒子からＡｂｕｓが放出される。
【０１６３】
上記の方法の別法では、強力に結合したファージ又は細菌粒子を保持したアフィニティーマトリックスを採取し、それらの核酸を、例えば、ＳＤＳ溶液における沸騰により抽出する。抽出した核酸を使用してＥ．ｃｏｌｉ宿主細胞を直接形質転換してもよいし、又は抗体コード配列を、好適なプライマーを用いたＰＣＲにより増幅できる。
【０１６４】
選択の効率は、いくつかの因子の組み合わせ、例えば、洗浄中の解離の動力学、及び単一ファージ又は細菌上の複数のＡｂｕｓが固体支持体上の抗原に同時に結合することができるかどうかに依存しやすい。例えば、速い解離速度（及び弱い結合親和性）を有する抗体は、短い洗浄、多価のディスプレイ、及び固体支持体での抗原の高コーティング密度を使用することにより保持しなければならない。逆に、低解離速度（及び良好な結合親和性）を有するＡｂｕｓを選択するには、長時間洗浄、一価ファージ及び抗原の低コーティング密度を使用することが好ましい。
【０１６５】
必要に応じて、Ａｂｕｓのレパートリーを、無関係抗原に対して予備選択して望ましくないＡｂｕｓを対向選択することができる。また、レパートリーを、関係のある抗原に対して予備選択して、例えば、抗イディオタイプＡｂｕｓを単離することができる。
【０１６６】
対象Ａｂｕレパートリーにより、所望の特異性を有するＡｂｕｓを迅速に単離できる。単離されたＡｂｕｓの数多くのものは、慣用のハイブリドーマ又は遺伝子組み換え動物技術により得ることは困難又は不可能であると思われる。
【０１６７】
本発明のベクターを含むキット
本発明には、本発明のベクターを好適なパッケージング中に含むキットも含まれる。本発明によるキットには、本明細書に記載の独特のヘテロ二量体化配列対の対による親和性により再構成されたＡｂｕｓの生成が可能であるものが含まれる。
【０１６８】
各キットは、必ずベクターの宿主細胞へのデリバリーを可能にする試薬を含む。ベクターのデリバリーを容易するのに選択される試薬は、使用される特定のトランスフェクション法又は感染法によって異なることがある。また、キットは、Ａｂｕｓの検出のための標識ポリヌクレオチドプローブ又はタンパク性プローブを生成するのに有用な試薬も含有できる。各試薬は、固体の形態で供給してもよいし、又は在庫貯蔵に好適であり、且つあとで実験をおこなうときに交換したり、反応培地に添加したりするのに好適である緩衝液に溶解／懸濁して供給できる。好適なパッケージングが提供される。キットは、必要に応じて手順に有用であるさらなる成分を提供できる。これらの任意成分には、緩衝剤、捕獲剤、展開試薬、標識、反応表面、検出手段、対照試料、説明書及び説明用情報などがあるが、これらには限定されない。
【０１６９】
本発明によるＡｂｕｓ、ポリヌクレオチド、ベクター及び宿主細胞の開発及び使用について、以下の実施例セクションにおいてさらに説明する。これらの実施例は、当業者が実施するための指針として提供されるものであり、いかなる方法によっても本発明を限定しない。
【実施例】
【０１７０】
非一本鎖抗原結合ユニットの構築：コイルドコイルＦｖ（ｃｃＦｖ）
上記したように、Ｆｖフラグメントは、全抗原結合部位を含む最小の抗体フラグメントである。重鎖及び軽鎖（ＶＨ及びＶＬ）の２つの可変領域からなるＦｖは、Ｙ字状免疫グロブリン分子の「上」先端に位置している。Ｆｖフラグメントは、これら２つのＶＨフラグメント及びＶＬフラグメントの間の相互作用エネルギーが極めて低く、生理学的条件では、数多くの用途にとってはしばしば不安定すぎる。天然の免疫グロブリン（例えば、Ｉｇ）では、定常ドメインＣＨ１及びＣＬに位置している鎖間ジスルフィド結合を使用して、ＶＨ及びＶＬを連結する。この結合により、分子量５０ｋＤａの安定化抗原結合フラグメントＦａｂが形成される。ＶＨフラグメント及びＶＬフラグメントは、一つのフラグメントのカルボキシル末端と、別のフラグメントのアミノ末端との間に、短ペプチドリンカーにより一緒に人工的に保持されて、一本鎖Ｆｖ抗体フラグメント（ｓｃＦｖ）を形成することもできることが判明した。ｓｃＦｖ抗原結合ユニットは、Ｆａｂのサイズの半分しかない。しかしながら、ある種のｓｃＦｖタンパク質も、不安定である。ｓｃＦｖにおけるポリペプチドリンカーは、ある場合において結合を妨害することがある。また、鎖間ジスルフィド結合は、ＶＨ及びＶＬにおけるフレームワーク領域に導入されてジスルフィド安定化Ｆｖ（ｄｓＦｖ）が形成された。ｄｓＦｖ配置も、著しい制限がある。２つのＣｙｓ残基を抗原結合可変領域へ導入することにより、ＶＨ又はＶＬにおける鎖内ジスルフィド結合を変化させることがあり、したがって、抗原結合が妨害されることがある。
【０１７１】
本発明者等は、ＶＨとＶＬのヘテロ二量体を安定化させる新規な方法を考え出した。本発明者等は、独特のヘテロ二量体化配列対を設計し、使用してＦａｂ様機能性人工Ｆｖフラグメント、すなわち、コイルドコイルＦｖフラグメント（ｃｃＦｖ）を生成した。ヘテロ二量体化対は、ヘテロ二量体性受容体ＧＡＢＡ_B受容体１及び２に由来する。配列の対は、コイルドコイル構造を形成し、ＧＡＢＡ_B−Ｒ１受容体及びＧＡＢＡ_B−Ｒ２受容体の機能的ヘテロ二量体化を仲介する。
【０１７２】
Ｆｏｓタンパク質及びＪｕｎタンパク質からの先に特徴付けされたコイルドコイルロイシンジッパーとは区別される、ＧＡＢＡ_B−Ｒ１受容体及びＧＡＢＡ_B−Ｒ２受容体のＣ末端コイルドコイルは、生理学的条件下（例えば、生体内）では検出可能なホモ二量体を形成しないだけでなく、生理学的体温でホモ二量体を形成しない。Ｋｕｎｅｒ等及びＷｈｉｔｅ等（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９９）２８３：７４−７７）；Ｎａｔｕｒｅ（１９９８）３９６：６７９−６８２））による研究から、生体内におけるＧＡＢＡ_B−Ｒ１及びＧＡＢＡ_B−Ｒ２のヘテロ二量体化特異性が明らかとなった。実際に、Ｗｈｉｔｅ等は、このヘテロ二量体性受容体対の排他的特異性に基づいて酵母細胞からＧＡＢＡ_B−Ｒ２をクローニングすることができた。上記Ｋａｍｍｅｒｅｒ等による生体外での研究から、ＧＡＢＡ_B−Ｒ１Ｃ末端配列もＧＡＢＡ_B−Ｒ２Ｃ末端配列も、生理学的体温でアッセイしたときに生理学的緩衝条件においてホモ二量体を形成できないことがわかった（Ｋａｍｍｅｒｅｒの表１参照）。しかしながら、ＧＡＢＡ_B−Ｒ２遺伝子の最初の分離及びコイルドコイル配列の特徴付けに関与したこれらの研究者のだれも、抗原結合ユニット等のヘテロ多量体の構築にこの独特のヘテロ二量体化配列を使用することは、記載していないし、示唆もしていない。
【０１７３】
本発明者等は、フレクソン「ＳｅｒＡｒｇＧｌｙＧｌｙＧｌｙＧｌｙ」をＧＲ１ドメイン及びＧＲ２ドメインのアミノ末端に付加することにより、ＧＲ１ドメイン及びＧＲ２ドメインのカルボキシル末端を修飾してＶ領域にさらなるフレキシビリティを付与した。さらにｃｃＦＶを安定化するために、ｃｃＦｖをさらに安定化するために本発明者等は、コイルドコイルのＣ末端に「ＶａｌＧｌｙＧｌｙＣｙｓ」スペーサーを付加することにより、１対のシステイン残基を導入した。ＧＲ１ドメイン及びＧＲ２ドメインは、それぞれＶＨフラグメント及びＶＬフラグメントのカルボキシル末端に融合する。ＶＨ−ＧＲ１融合及びＶＬ−ＧＲ２融合を、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で発現させ、ファージによりディスプレイした。図１０及び図１１に示すように、平行コイルドコイルらせんにより安定化された機能性ヘテロ二量体性ｃｃＦｖＡｂｕｓを、生成した。コイルドコイルヘテロ二量体化配列はＣＨ１ドメイン及びＣＬドメインのサイズのほぼ半分であるので、ｃｃＦｖ（約３５ｋＤａ）は、慣用のＦａｂフラグメント（約５０ｋＤａ）よりも小さい。サイズが小さいので、ｃｃＦｖとその誘導体は、腫瘍及び組織侵入等の臨床用途においてより有用である可能性がある。ｃｃＦｖのより効率的な発現及び表示が、予想される。さらに、独特のヘテロ二量体化配列の対による親和性によるＶＨ領域及びＶＬ領域の特異的集合により、強固な多種多様なＡｂｓのレパートリーの構築がより実現可能となる。
【０１７４】
材料及び方法：
細菌及びファージの株：大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＴＧ１（ｓｕｐＥΔ（ｈｓｄＭ−ｍｃｒＢ）５（ｒ_k^-ｍ_k^-ＭｃｒＢ^-）ｔｈｉΔ（ｌａｃ−ｐｒｏＡＢ／Ｆ’ｔｒａＤ３６，Ｌａｃｌ^qΔ（ｌａｃＺ）Ｍ１５］を、プラスミドＤＮＡ及びファージの産生に使用した；Ｐｈａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ社製ＫＯ７ヘルパーファージ及びＨＲＰ結合抗Ｍ１３抗体；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製ｐｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）；Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製抗ＨＡ抗体。
【０１７５】
実施例１：ベクターの構築
ｐＡＢＭＸ１ベクター及びｐＡＢＭＸ２ベクター：
ファージミドディスプレイベクターｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２を、ｐｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）から得た。独特のＡｇｅＩ制限部位を、一組のプライマーを用いたＰＣＲ系部位指定突然変異誘発により、ｌａｃプロモーターのすぐあとに導入し（ｐＢＳ−ＳＫａ：５’ＧＧＡＡＴＴＧＴＧＡＧＣＧＧＡＴＡＡＣＡＡＴＴＴＡＣＣＧＧＴＣＡＣＡＣＡＧＧＡＡＡＣＡＧＣＴＡＴＧＡＣＣＡＴＧ−３’及びｐＢＳ−ＳＫｂ ５’ＣＡＴＧＧＴＣＡＴＡＧＣＴＧＴＴＴＣＣＴＧＴＧＴＧＡＣＣＧＧＴＡＡＡＴＴＧＴＴＡＴＣＣＧＣＴＣＡＣＡＡＴＴＣＣ−３’）、そしてＸｈｏＩ部位及 びＫｐｎＩ部位を、切断及び平滑末端ライゲーションにより欠失させた。その後、５’にＡｇｅＩ部位及び３’にＢｇｌＩＩ／ＥｃｏＲＩ部位と隣接し、Ｔ７ ファージ遺伝子１０からの翻訳エンハンス配列ＥＰ（ＴＴＡＡＣＴＴＴＡ）、リボソーム結合配列Ｓ／Ｄ（ＴＡＡＧＧＡＧＧ）、ＨｉｎｄＩＩＩ部位を有するｆｄファージ遺伝子８リーダー配列（ｐＡＢＭＸ１について、ＡＴＧＡＡＡＡＡＧＴＣＴＴＴＡＧＴＣＣＴＣＡＡＡＧＣＣＴＣＣＧＴＡＧＣＣＧＴＴＧＣＴＣＣＣＴＣＧＴＴＣＣＧＡＴＧＣＴＡＡＧＣＴＴＣＧＣＴ）又は ｐｅｌＢリーダー配列（ｐＡＢＭＸ２について、 ＡＴＧＡＡＡＴＡＣＣＴＡＴＴＧＣＣＴＡＣＧＧＣＡＧＣＣＧＣＴＧＧＡＴＴＧＴＴＡＴＴＡＣＴＣＧＣＧＧＣＣＣＡＧＣＣＧＧＣＣＡＴＧＧＣＧ）及び ＨＡ−（Ｈｉｓ）₆−タグ（ＤＨタグ）（ＴＡＴＣＣＡＴＡＣＧＡＣＧＴＡＣＣＡＧＡＣＴＡＣＧＣＡＧＧＡＧＧＴＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＴＣＡＣＣＡＴＴＡＧ）を含む合成ＤＮＡフラグメントを、修飾ｐｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）にクローニングした。得られたベクターを、ｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２と命名する（制限マップ及び配列については、図３Ａ〜３Ｂ参照）。Ｎｓｃ Ａｂｕｓ等のヘテロ多量体をコードしている異種配列を、さらにこれらのベクターにサブクローニングして、ペリプラスム発現させた。
【０１７６】
ｐＡＢＭＤ１ベクター及びｐＡＢＭＤ２ベクター：
ＢｇｌＩＩ部位とＳａｌＩ部位を両側に有するＰＣＲ増幅ｆｄ遺伝子ＩＩＩ（又は遺伝子３）フラグメントを、ｐＡＢＭＸ１ベクター及びｐＡＢＭＸ２ベクターに挿入した （図４参照）。ディスプレイされるべき異種配列を、リーダー配列の後に挿入できる。ｌａｃプロモーターは、ｐＩＩＩキャプシド融合の発現を推進し、これを次に、ＫＯ７等のヘルパーファージによる重複感染後にファージ表面にディスプレイできる。
【０１７７】
ＰＡＢＭＸ５ベクター及びｐＡＢＭＸ６ベクター：
これらの２つのベクターを、ｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２から得た。５’でＸｂａＩ／ＡｓｃＩ部位、３’でＭｌｕＩ／ＸｈｏＩ／ＮｏｔＩ部位と隣接し、リボ ソーム結合配列Ｓ／Ｄ（ＴＡＡＧＧＡＧＧ）及び遺伝子３リーダー配列（ＡＴＧＡＡＡＡＡＡＴＴＡＴＴＡＴＴＣＧＣＡＡＴＴＣＣＴＴＴＡＧＴＴＧＴＴＣＣＴＴＴＣＴＡＴＴＣＴＣＡＣＴＣＣＧＣＴ）を含む合成ＤＮＡフラグメン トを、ＸｂａＩ／ＮｏｔＩ部位によりｐＡＢＭＸ１及びｐＡＢＭＸ２に挿入した。その後、ＧＲ１ドメインコード配列（図２）をＸｂａ／ＡｓｃＩ部位にサブクローニングし、ＧＲ２ドメインコード配列（図２）をＸｈｏＩ／ＮｏｔＩ部位に挿入した。その後、ＶＨドメインとＶＬドメインを、それぞれＧＲ１配列及びＧＲ２配列の前に挿入した。ベクターｐＡＢＭＸ５及びベクターｐＡＢＭＸ６の概略を、図５Ａとして示す。これらのベクターは、一つのｌａｃプロモーターの下に２種のタンパク質ＶＨ−ＧＲ１及びＶＬ−ＧＲ２を発現する。
【０１７８】
ｐＡＢＭＤ５ベクター及びｐＡＢＭＤ６ベクター：
ベクターｐＡＢＭＸ５及びベクターｐＡＢＭＸ６からのｃｃＦｖＤＮＡフラグメントを、ｐＡＢＭＤ１及びｐＡＢＭＤ２にサブクローニングしてベクターｐＡＢＭＤ５及びベクターｐＡＢＭＤ６を得た（制限マップ及 び配列については、図６Ａ及び図６Ｂ参照）。これらのベクターは、２種のタンパク質であるＶＨ−ＧＲ１融合タンパク質とＶＬ−ＧＲ２−ｐＩＩＩ融合タンパク質を発現する。発現されたＶＨ−ＧＲ１融合タンパク質及びＶＬ−ＧＲ２−ｐＩＩＩ融合タンパク質を、ペリプラスムスペースに分泌し、ここで二量体化がコ イルドコイルドメインヘテロ二量体化を介しておこる。次に、集合したＡｂｕを、ＫＯ７等のヘルパーファージの重複感染によりファージ表面にディスプレイす る。
【０１７９】
実施例２：機能性ｃｃＦｖの発現
抗体ＡＭ１からの抗体可変ドメインを、ｃｃＦｖフラグメントを発 現させるためにｐＡＢＭＸ６ベクターにサブクローニングした。次に、このベクターを、ＴＧ１細胞又はＢＬ２１細胞に導入した。単一コロニーからの約１００υｇ／ｍｌカルベニシリン及び０．１％グルコースを含有する５００ｍｌ ２ｘＹＴにおいて、形質転換したバクテリアを、３７℃でＯＤ₆₀₀＝０．７（ほぼ）まで増殖させた。１ｍＭ ＩＰＴＧを、３０℃における４時間の誘導のために添加した。細菌ペレットを、ペリプラスム及び浸透圧ショック調製物のために集めた。ペレットを、 Ｓｉｇｍａ社製の１．２５ｍｌのタンパク質分解酵素抑制剤混合物を含有する１２．５ｍｌのＰＰＢ緩衝液（２００ｍｇ／ｍｌスクロース、１ｍＭ ＥＤＴＡ、３０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０）に再懸濁し、２０分間氷上に置いた。上清を、回転により集めた。得られたペレットを、５ｍＭ ＭｇＳＯ₄に再懸濁し、氷上で２０分間インキュベーションした。ＭｇＳＯ₄及びＰＰＢ上清を混ぜ、ＰＢＳに 対して透析した。Ｎｉ−ＮＴＡカラム１ｍｌに加えた後、Ｈｉｓ−タグタンパク質を、３５０ｍＭイミドゾールによる溶離により精製した。図１０Ａは、精製したｃｃＦｖが非還元ゲル上で３５ｋＤａの電気泳動移動度を有することを示す。還元条件下で分析したとき、ＶＬ及びＶＨに相当する２つのサブユニットを観察 した。上のバンドは、ウエスタンブロッティング解析によりＶＬ−Ｈｉｓ−タグ融合として確認した。
【０１８０】
可溶性ＡＭ１−ｃｃＦｖの結合特異性を測定するために、ＥＬＩＳＡアッセイを実施した。ＡＭ１抗原（０．２〜１ｕｇ／ウェル）で、ＥＬＩＳＡプレート上をコーティングして、４℃で一晩おいた。５％ミルク／ＰＢＳブロッキング後、５％ミルク／ＰＢＳ中の抗体溶液をＥＬＩＳＡプレートに添加し、室温で１〜２時間インキュベーションした。未結合Ａｂｕｓを、洗浄除去した。図１０Ｂは、ＡＭ１−ｃｃＦｖのその抗原への特異的結合を示す。対照は、ＰＢＳにミルクを５％添加したものを含有する。この結果から、コイルドコイルＧＡＢＡ_BＲ１／Ｒ２ヘテロ二量体化配列による、機能的ｃｃＦｖの集合が確認される。
【０１８１】
実施例３：機能的ｃｃＦｖのディスプレイ
遺伝学的パッケージによる抗体のディスプレイは、大きなライブラリーから特異的Ａｂｕを濃縮し且つ分離するための強力なツールである。ｃｃＦｖがファージディスプレイシステムにおいて利用できるかどうかを解析するために、本発明者等は、ＡＭ１抗体のｃｃＦｖ遺伝子をｐＡＢＭＤ６ベクターにサブクローニング することにより、ファージミドベクターを構築した。ファージミドベクターを担持するＴＧ１細胞を、ＫＯ７ヘルパーファージにより重複感染した。感染したＴＧ１細胞を、２ｘＹＴ／Ａｍｐ／Ｋａｎ中、３０℃で一晩成長させた。ファージミド粒子を、ＰＥＧ／ＮａＣｌにより、培養上清から２回沈殿させ、ＰＢＳに再懸濁させた。ファージ上にディスプレイさせた抗体を、ファージＥＬＩＳＡアッセイを用いて抗原結合活性により検出した。すなわち、抗原で、まず ＥＬＩＳＡプレート上をコーティングした。５％ミルク／ＰＢＳブロッキング後、ファージ溶液を、ＥＬＩＳＡプレートに添加した。抗原に結合したファージ を、ＨＲＰ結合抗Ｍ１３抗体とともにインキュベーションすることにより、検出した。基質ＡＢＴＳ［２，２’−アジノ−ビス(３-エチルベンズチアゾリン−６−スルホン酸)］を使用して、ＨＲＰ活性を測定した。また、抗ＨＡタグ抗体を使用して、ファージ粒子上に表示したタンパク質を検出した。抗ＨＡ抗体 で、９６ウエルプレート上をコーティングした（各ウエルあたり２uｇ）。ＥＬＩＳＡプレートをコーティングした抗ＨＡ抗体に結合したファージを、ＨＲＰ結 合抗Ｍ１３抗体により検出した。
【０１８２】
また、ｃｃＦｖ及びｓｃＦｖのファージディスプレイを比較するために、一本鎖抗体ファージも調製した。図１１Ａ及び図１１Ｂに示すように、ｃｃＦｖファージの結合能は、慣用のｓｃＦｖファージに匹敵する。一定のｃｃＦｖ発現ファージについては、それらの結合能は、慣用のｓｃＦｖを発現するファージよりもほとんど一桁大きい（図１１Ｂ）。したがって、ｃｃＦｖは、ファージ粒子上にディスプレイされた場合であっても機能性Ａｂｕである。
【０１８３】
一本鎖抗原結合ユニットの発現：
実施例４：慣用のｓｃＦｖの発現
ＡＭ２−ｓｃＦｖを、可溶性発現ベクターｐＡＢＭＸ１のＨｉｎｄＩＩＩ／ＮｏｔＩ部位にサブクローニングした。ペリプラスム調製物を、上記で概説したようにして実施した。 ＮＩ−ＮＴＡカラムから精製した３０ｋＤａの抗体タンパク質を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析により確認し、ＥＬＩＳＡを用いてその抗原結合特異性について試験し た。ＡＭ２抗原を、最初にＥＬＩＳＡプレートを、０．２ｕｇ／ウエルの濃度でコーティングした。種々の量のＡＭ２−ｓｃＦｖフラグメントを、抗原とともに インキュベーションした。結合ＡＭ２−ｓｖＦｖフラグメントを、抗ＨＡ−タグ抗体により検出した。実験により、ＡＭ２−ｓｃＦｖのそのＡＭ２抗原への用量 依存的結合が明らかとなった（図８）。
【０１８４】
実施例５：ファージ上での慣用のｓｃＦｖのディスプレイ
ＡＭ２−ｓｃＦｖフラグメントを、まずファージミドベクターｐＡＢＭＤ１のＨｉｎｄＩＩＩ／ＮｏｔＩ部位にサブクローニングした。このファージミドベクターを担持している ＴＧ１細胞を、ヘルパーファージＫＯ７により感染させた。ファージを、上清から精製した。続いて、ファージＥＬＩＳＡアッセイをおこなって、ファージ粒子上にディスプレイされたＡＭ２−ｓｃＦｖを検出した。コートｐＩＩＩ遺伝子はＨＡ−タグで標識されているので、融合は、抗ＨＡ抗体で検出できる。ＡＭ２抗原及び抗ＨＡ抗体を用いたＥＬＩＳＡアッセイにより、ディスプレイされたｓｃＦｖが対応の抗原に特異的に結合できることが確認された（図９）。対照は、ＨＡ標識されていない無関係抗体を表示するファージが含む。
【０１８５】
真核細胞における対象抗原結合ユニットの発現：
実施例６：酵母におけるｃｃＦｖの発現
対象ヘテロ二量体化配列に連結したＶＬ配列とＶＨ配列の両方を担持している酵母ベクターｐＡＭＥＸ７を、構築する。コンピテント酵母細胞、例えば、ＡＨ１０９細胞、を調製し、当該技術分野において公知の方法でｐＡＭＥＸ７ベクターで形質転換する。形質転換された酵母細胞を、タンパク質の発現に好適な 条件下で培養する。このような条件は、当業者には周知であり、したがって、ここでは詳細には説明しない。発現されたｃｃＦｖ Ａｂｕｓを、当該技術分野において公知の慣用の方法及び/又は本明細書に記載の方法を用いて採取する。収穫したｃｃＦｖの抗原結合能を、上記したプロト コールにしたがってＥＬＩＳＡにより測定する。
【０１８６】
所望の結合特異性を示すｃｃＦｖファージの濃縮及び同定：
実施例７：モデルライブラリーからのＡＭ２−ｃｃＦｖファージの濃縮
所望の結合特異性を有するｃｃＦｖ表示ファージをバックグランドファージから選択し且つ最終的に濃縮できることを示すために、モデルライブラリーからのＡＭ２−ｃｃＦｖファージのパンニングをおこなった。ＡＭ２−ｃｃＦｖファージを関係のないＡＭ１−ｃｃＦｖディスプレイファージと１：１０⁶又は１：１０⁷の比で混合することにより、モデルライブラリーを調製した。Ｎｕｎｃ Ｍａｘｉｓｏｒｂ９６ウエルプレートをコーティングした特異的タンパク質抗原に対してライブラリーのパンニングを、２ラウンドおこなった。ＰＢＳにミルクを５％添加したものでブロッキングした後、２％ミルク／ＰＢＳに１Ｘ１０¹²ライブラリーファージを添加したものを、ウエルに添加 し、室温で２時間インキュベーションした。次に、ファージ溶液を捨て、ウエルをＰＢＳＴ（ＰＢＳにＴｗｅｅｎ−２０を０．０５％添加）で５回洗浄し、ＰＢＳで５回洗浄した。結合ファージを、１００ｍＭトリエチルアミンで溶離し、ＴＧ１培養に添加して感染させた。感染ＴＧ１細胞から調製したファージを、次のラウンドのパンニング、及びＡＭ２−ｃｃＦｖの固定化タンパク質抗原に対するＥＬＩＳＡに使用した。各ラウンドのパンニングの後、ＡＭ１−ｃｃＦｖで はなく（ＰＣＲ産物ではない）、ＡＭ２−ｃｃＦｖのみについて特異的に設計（約１ｋｂＰＣＲ産物のバンドは、１％アガロースゲル上で可視化できた）した１対のプライマーを介して、ランダムに選んだクローンのＰＣＲ解析を行ない、ＡＭ２−ｃｃＦｖファージのバックグランドファージＡＭ１−ｃｃＦｖファージに 対する比も測定した。図２０に示すように、ＡＭ２−ｃｃＦｖの固定化タンパク質抗原に対するＥＬＩＳＡを実施した。第二ラウンドのパンニングからのファージでは、第一ラウンドに比較し てはるかに高いＯＤ４０５読み取り値が得られた。このことは、ＡＭ２−ｃｃＦｖファージがうまく選択され、パンニング中に濃縮されたことを示唆している。図２１に示すＰＣＲ分析は、ランダムに選んだクローンのＰＣＲ産物からの１％アガロースゲルイメージを示す。得られた結果から、ＡＭ２−ｃｃＦｖファージの発生率が、第一ラウンドのパンニング後の１：１０⁷ライブラリーから４．４％であるのに対して、第二ラウンドのパンニング後では、発生率が１００％に達したことが分かった。
【０１８７】
実施例８：機能的ｃｃＦｖをディスプレイするファージライブラリーを用いたライブラリースクリーニング
多数のＡｂｕｓを有するファージライブラリー（これらの全ては、所望の抗原に結合できるが、各Ａｂｕは、臨界的結合ドメインの一定領域において異なる）をスクリーニングすることにより、さらに高い親和性を有する抗体を同定し且つさらに設計することができる。ｃｃＦｖを抗体ライブラリースクリーニング用のビヒクルとして効率的に使用できることを示すために、本発明者等は、ｃｃＦｖのフォーマットでＡＭ２のライブラリーを構築した。ＡＭ２のフレームワーク構造は、ＶＨ領域とＶＬ領域とから構成されていた。各々を、上記したようなベクターｐＡＢＭＤ６の対応する位置にサブクローニングした。すなわち、ＶＨをＧＲ１のＮ末端に、ＶＬをＧＲ２のＮ末端にそれぞれ連結した。次に、ｃｃＦｖ抗体フラグメントをファージ粒子の表面にディスプレイするために、ＧＲ２をｐＩＩＩに融合した（例１、３及び７参照）。ファージを選択するために（ｃｃＦｖファージライブラリーパンニングを介した高い親和性バインダー）、ＶＨのＣＤＲ３を、複数の位置に複数の選択残基を含むライブラリーとして構築した。このライブラリーは、両末端での変性ＤＮＡオリゴフランキング制限部位の標準合成により、ＰＣＲ増幅及び制限消化後のＡＭ２のその位置にサブクローニングされることができるように、調製した。図２２は、変性ＤＮＡオリゴ、その増幅プライマー及び方向の設計を示す。ライブラリーの多様性については、合計約１ｘ１０⁶種であるように設計した。ライゲーション後、ライブラリーを、ＴＧ１コンピテント細胞に、エレクトロポレーションした。次に、ライブラリーのファージ粒子を、上記した例で述べたようにして集める前に形質転換体を収穫し、レスキューした（ＫＯ７ヘルパーファージにより）。ライブラリーを「パン」するために、組み換え抗原を、４℃で一晩、０．０５Ｍ ＮａＨＣＯ₃ ｐＨ９．６緩衝液中でＮｕｎｃ Ｍａｘｉｓｏｒｂ９６ウエルプレート上に固定化した。ミルク２％を含有するＰＢＳ緩衝液で希釈した１０¹²ファー ジ粒子を含有するライブラリーファージのアリコットを、抗原でコーティングしたウエルに添加した。３７℃で２時間インキュベーションした後、ウエルを洗浄 し、ファージを実施例３及び実施例７で記載したようにして溶離した。溶離したファージを使用してＴＧ１細胞を感染させた後、ＫＯ７ヘルパーファージにより レスキューした。３０℃で一晩成長させた後、ファージを、ＴＧ１細胞で増幅し、次のラウンドのパンニングのために収穫できるようにした。事前の実験では、解離速度ｋ_offは、その特定の抗体の親和性に最も顕著に寄与するのに対して、Ｋ_onは比較的一定であることが分かった。したがって、高結合親和性を有するファージを選択するために、生存ファージを選択するために長時間洗浄する方法であるオフレートパンニングを設計して、より低速のＫ_offを有するファージを特異的に選択した。このライブラリーのために、合計７ラウンドの連続パンニングをおこなった。
【０１８８】
第 ５ラウンドのパンニング及び第７ラウンドのパンニング後に、個々のクローンをランダムに選んで、ファージパンニングにおいて同じタンパク質抗原を用いて、 ＥＬＩＳＡ用のファージを調製した。ＥＬＩＳＡは、上記実施例７に記載の手順に準じて、９６ウエルマイクロタイタープレートを用いておこなった。図２３に示すように、第５ラウンド及び第７ラウンドで選択された全てのクローンは、抗原との反応が陽性であった。但し、負の対照は、第５ラウンドの位置Ｈ１０、Ｈ１１、Ｈ１２及び第７ラウンドの位置Ｈ１１、Ｈ１２に設定した。これらの全ては、０．０５ＯＤ₄₀₅未満であった。
【０１８９】
次に、第７パンニングのＥＬＩＳＡにおいて陽性の反応性を示したクローンを、配列決定用にランダムに選び、ＶＨのＣＤＲ３上の残基を、図２４にマッピングした。次に、ライブラリーにより標的とされた位置上のコンセンサスを、同定した。コンセンサス配列を表すクローン及び野生型（オリジナル ＡＭ２）のタンパク質発現をおこない、続いてタンパク質を、ＢｉａＣｏｒｅ（表面プラズモン共鳴）を用いて固定化タンパク質抗原との結合におけるそれらの Ｋ_offを測定するのに使用した。図２５に示すように、ライブラリーから選択されたＡＭ２変異体は、顕著により遅いＫ_offを示す。

【特許請求の範囲】
【請求項１】
非一本鎖抗原結合ユニットであって、以下の：
（ａ）フレーム内で第一ヘテロ二量体化配列に融合している軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる軽（Ｌ）鎖ポリペプチド；及び、
（ｂ）フレーム内で第二ヘテロ二量体化配列に融合している重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる重（Ｈ）鎖ポリペプチド
を含んでなり、ここで、
前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、請求項１に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項３】
非一本鎖抗原結合ユニットであって、以下の：
（ａ）フレーム内で第一ヘテロ二量体化配列に融合している軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる軽（Ｌ）鎖ポリペプチド；及び、
（ｂ）フレーム内で第二ヘテロ二量体化配列に融合している重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる重（Ｈ）鎖ポリペプチド
を含んでなり、ここで、
前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドは、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列がヘテロ二量体性受容体配列を含み、前記ヘテロ二量体性受容体配列が前記受容体のヘテロ二量体化を仲介する、前記非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項４】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、コイルドコイル二量体を形成する、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項５】
前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記２つのヘテロ二量体化配列の非共有結合性の対による親和性を介して二量体化する、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項６】
前記Ｌ鎖ポリペプチドが、前記Ｌ鎖可変領域及び前記第一ヘテロ二量体化配列により両側を挟まれているフレクソンをさらに含む、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項７】
前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記Ｈ鎖可変領域及び前記第二ヘテロ二量体化配列により両側を挟まれているフレクソン配列をさらに含む、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項８】
前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、少なくとも一つのシステイン残基に連結している、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項９】
多価である、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１０】
多重特異性である、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１１】
二重特異性である、請求項１０に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１２】
三重特異性である、請求項１０に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１３】
前記Ｌ鎖ポリペプチドが、ヒト軽鎖由来の配列を含む、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１４】
前記Ｈ鎖ポリペプチドが、ヒト重鎖由来の配列を含む、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１５】
化学的機能性部分に結合している、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１６】
前記部分が、以下の：シグナルペプチド、免疫学的反応性を高める物質、固体支持体へのカップリングを容易にする物質、ワクチンキャリア、生物反応修飾物質、トキシン、検出可能な標識、常磁性標識及び薬物からなる群から選択されたものである、請求項１５に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１７】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、それぞれＧＡＢＡ_B受容体１及びＧＡＢＡ_B受容体２のＣ末端配列に由来するものである、請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１８】
請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニットであって、ここで、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、配列番号４に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列がシステイン残基に連結されている、前記非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項１９】
請求項４に記載の非一本鎖抗原結合ユニットであって、ここで、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号４に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列がシステイン残基に連結されている、前記非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２０】
一本鎖結合ユニットであって、軽（Ｌ）鎖可変領域と重（Ｈ）鎖可変領域とを含み、前記軽（Ｌ）鎖可変領域と前記重（Ｈ）鎖可変領域が、前記領域の一方のＣ末端と前記他の領域のＮ末端の間の距離をまたがった第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列により接続されており、前記２つの領域が、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２１】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、請求項２０に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２２】
一本鎖抗原結合ユニットであって、軽（Ｌ）鎖可変領域と重（Ｈ）鎖可変領域とを含み、前記軽（Ｌ）鎖可変領域と前記重（Ｈ）鎖可変領域が、前記領域の一方のＣ末端と前記他の領域のＮ末端の間の距離をまたがった第一ヘテロ二量体化配列と第二ヘテロ二量体化配列により接続されており、前記２つの領域が、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して分子内二量体を形成し、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体性受容体配列を含む、前記一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２３】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、コイルドコイル二量体を形成する、請求項２０又は２２に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２４】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、非共有結合性の対による親和性を介して二量体化している、請求項２０又は２２に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２５】
化学的機能性部分に結合している、請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２６】
前記Ｌ鎖可変領域が、ヒト軽鎖由来の配列を含む、請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２７】
前記Ｈ鎖可変領域が、ヒト重鎖由来の配列を含む、請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２８】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、それぞれＧＡＢＡ_B受容体１及びＧＡＢＡ_B受容体２のＣ末端配列に由来するものである、請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項２９】
請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニットであって、ここで、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、配列番号４に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列がシステイン残基に連結されている、前記一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項３０】
請求項２３に記載の一本鎖抗原結合ユニットであって、ここで、前記第一ヘテロ二量体化配列が、配列番号４に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体１ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、且つ前記第二ヘテロ二量体化配列が、配列番号２に示されている匹敵する長さの線状ペプチド配列と基本的に同一である、少なくとも３０のアミノ酸残基のＧＡＢＡ_B受容体２ポリペプチドを含むヘテロ二量体化配列であり、前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列がシステイン残基に連結されている、前記一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項３１】
請求項１に記載のＬ鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３２】
請求項１に記載のＨ鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３３】
請求項１に記載のＬ鎖ポリペプチドをコードする第一コード配列と、請求項１に記載のＨ鎖ポリペプチドをコードする第二コード配列とを含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３４】
請求項３に記載のＬ鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３５】
請求項３に記載のＨ鎖ポリペプチドをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３６】
請求項３に記載のＬ鎖ポリペプチドをコードする第一コード配列と、請求項３に記載のＨ鎖ポリペプチドをコードする第二コード配列とを含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３７】
請求項２０に記載の一本鎖抗原結合ユニットをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３８】
請求項２２に記載の一本鎖抗原結合ユニットをコードするコード配列を含む、組み換えポリヌクレオチド。
【請求項３９】
請求項３１〜３８のいずれか１項に記載の組み換えポリヌクレオチドを含む、ベクター。
【請求項４０】
発現ベクターである、請求項３９に記載のベクター。
【請求項４１】
ファージディスプレイベクターである、請求項３９に記載のベクター。
【請求項４２】
請求項３９に記載の１以上のベクターを含む、抗原結合ユニットのレパートリーをコードしている、発現ベクターの選択可能なライブラリー。
【請求項４３】
前記ベクターが、ファージディスプレイベクターである、請求項３９に記載の前記選択可能なライブラリー。
【請求項４４】
請求項３１〜３８のいずれか１項に記載の組み換えポリヌクレオチドを含む、宿主細胞。
【請求項４５】
前記Ｌ鎖ポリペプチドをコードする前記組み換えポリヌクレオチド及び前記Ｈ鎖ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、単一のベクターに存在する、請求項４４に記載の宿主細胞。
【請求項４６】
前記Ｌ鎖ポリペプチドをコードする前記組み換えポリヌクレオチド及び前記Ｈ鎖ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、別々のベクターに存在する、請求項４４に記載の宿主細胞。
【請求項４７】
真核細胞である、請求項４４に記載の宿主細胞。
【請求項４８】
原核細胞である、請求項４４に記載の宿主細胞。
【請求項４９】
非一本鎖抗原結合ユニットの製造方法であって、以下のステップ：
（ａ）フレーム内で第一ヘテロ二量体化配列に融合して軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる、軽（Ｌ）鎖ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと、フレーム内で第二ヘテロ二量体化配列に融合して重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる、重（Ｈ）鎖ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチドとを、宿主細胞内で発現させるステップであって、ここで、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記ステップ；及び場合により、
（ｂ）前記宿主細胞において発現された前記抗原結合ユニットを分離するステップ
を含む、前記方法。
【請求項５０】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、請求項４９に記載の方法。
【請求項５１】
非一本鎖抗原結合ユニットの製造方法であって、以下のステップ：
（ａ）第一ヘテロ二量体化配列に融合して軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる、軽（Ｌ）鎖ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと、第二ヘテロ二量体化配列に融合して重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる、重（Ｈ）鎖ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチドとを、宿主細胞内で発現させるステップであって、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列が、前記受容体のヘテロ二量体化を仲介するヘテロ二量体性受容体配列を含む、前記ステップ；及び、場合により、
（ｂ）前記宿主細胞において発現された前記抗原結合ユニットを分離するステップ
を含む、前記方法。
【請求項５２】
前記ステップ（ａ）で発現された前記非一本鎖抗原結合ユニットが、前記宿主細胞の表面上にディスプレイされる、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５３】
前記ステップ（ａ）で発現された前記非一本鎖抗原結合ユニットが、ファージ粒子上にディスプレイされる、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５４】
前記宿主細胞が、真核細胞である、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５５】
前記宿主細胞が、原核細胞である、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５６】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、コイルドコイル二量体を形成する、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５７】
前記Ｌ鎖ポリペプチド及び前記Ｈ鎖ポリペプチドが、非共有結合性の対による親和性を介して二量体化している、請求項４９又は５１に記載の方法。
【請求項５８】
前記Ｌ鎖ポリペプチドが、前記Ｌ鎖可変領域及び前記第一ヘテロ二量体化配列により両側を挟まれているフレクソンをさらに含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項５９】
前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記Ｈ鎖可変領域及び前記第二ヘテロ二量体化配列により両側を挟まれているフレクソン配列をさらに含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項６０】
前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、少なくとも一つのシステイン残基に連結している、請求項５６に記載の方法。
【請求項６１】
前記非一本鎖抗原結合ユニットが、多価である、請求項５６に記載の方法。
【請求項６２】
前記非一本鎖抗原結合ユニットが、多重特異性である、請求項５６に記載の方法。
【請求項６３】
前記非一本鎖抗原結合ユニットが、二重特異性である、請求項６２に記載の方法。
【請求項６４】
前記非一本鎖抗原結合ユニットが、三重特異性である、請求項６２に記載の方法。
【請求項６５】
前記Ｌ鎖ポリペプチドが、ヒト軽鎖由来の配列を含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項６６】
前記Ｈ鎖ポリペプチドが、ヒト重鎖由来の配列を含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項６７】
非一本鎖抗原結合ユニットの製造方法であって、以下のステップ：
（ａ）フレーム内で第一ヘテロ二量体化配列に融合して軽（Ｌ）鎖可変領域を含んでいる、軽（Ｌ）鎖ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチドと、フレーム内で第二ヘテロ二量体化配列に融合して重（Ｈ）鎖可変領域を含んでいる、重（Ｈ）鎖ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチドとを調製するステップであって、ここで、前記Ｌ鎖ポリペプチドと前記Ｈ鎖ポリペプチドが、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記ステップ；及び
（ｂ）前記第一ポリペプチド及び前記第二ポリペプチドを、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化させるステップ
を含む、前記方法。
【請求項６８】
前記ステップ（ｂ）が、前記第一ポリペプチドと前記第二ポリペプチドとを生体外で二量体化することを含む、請求項６７に記載の方法。
【請求項６９】
一本鎖抗原結合ユニットの製造方法であって、以下のステップ：
（ａ）請求項２０又は２２に記載の前記一本鎖抗原結合ユニットをコードしているコード配列を含むポリヌクレオチドを宿主細胞において発現させるステップ；及び場合により、
（ｂ）前記宿主細胞において発現された前記一本鎖抗原結合ユニットを分離するステップ
を含む、前記方法。
【請求項７０】
前記ポリヌクレオチドがファージディスプレイベクターに含まれている、請求項６９に記載の方法。
【請求項７１】
宿主細胞の表面上に少なくとも２つのポリペプチドを含むキメラヘテロ多量体をディスプレイする方法であって、以下のステップ：
前記宿主細胞において、
（ａ）フレーム内において第一ヘテロ二量体化配列及び表面提示配列に融合している、第一ポリペプチドをコードしている第一組み換えポリヌクレオチド；
（ｂ）フレーム内において第二ヘテロ二量体化配列に融合している第二ポリペプチドをコードしている第二組み換えポリヌクレオチド
を発現させるステップを含み、ここで、
前記第一ポリペプチドと前記第二ポリペプチドが、前記第一ヘテロ二量体化配列と前記第二ヘテロ二量体化配列の対による親和性を介して二量体化し、且つ前記ヘテロ二量体化配列の少なくとも一方が、生理学的緩衝条件下及び/又は生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、前記方法。
【請求項７２】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列の両方が、生理学的緩衝条件下及び生理学的体温でホモ二量体を基本的に形成できない、請求項７１に記載の方法。
【請求項７３】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、コイルドコイル二量体を形成する、請求項７１に記載の方法。
【請求項７４】
前記第一ポリヌクレオチド及び前記第二ポリヌクレオチドが、単一ファージディスプレイベクターにより発現される、請求項７１に記載の方法。
【請求項７５】
前記第一ポリヌクレオチド及び前記第二ポリヌクレオチドが、別々のファージディスプレイベクターにより発現される、請求項７１に記載の方法。
【請求項７６】
前記宿主細胞が、原核細胞である、請求項７１に記載の方法。
【請求項７７】
前記宿主細胞が、真核細胞である、請求項７１に記載の方法。
【請求項７８】
前記キメラヘテロ多量体が、非一本鎖抗原結合ユニットである、請求項７１に記載の方法。
【請求項７９】
請求項７１に記載の方法により前記宿主細胞の表面上にディスプレイされるキメラヘテロ多量体。
【請求項８０】
所望の抗原と免疫反応性である非一本鎖抗原結合ユニットを同定する方法であって、以下のステップ：
（ａ）抗原結合ユニットの遺伝学的に多様なレパートリーを調製するステップであって、前記レパートリーが請求項１又は３に記載の１以上の抗原結合ユニットを含む、前記ステップ；
（ｂ）抗原結合ユニットの前記レパートリーを前記所望の抗原と接触させるステップ；及び
（ｃ）抗原結合ユニットと前記抗原との間の特異的結合を検出することにより、前記所望の抗原と免疫反応性である前記抗原結合ユニットを同定するステップ
を含む、前記方法。
【請求項８１】
抗原結合ユニットの前記レパートリーが、前記抗原結合ユニットの複数をコードしているベクターのライブラリーを発現させることにより調製される、請求項８０に記載の方法。
【請求項８２】
ベクターの前記ライブラリーが、複数のファージベクターを含む、請求項８０に記載の方法。
【請求項８３】
所望の抗原と免疫反応性である一本鎖抗原結合ユニットを同定する方法であって、以下のステップ：
（ａ）一本鎖抗原結合ユニットの遺伝学的に多様なレパートリーを調製するステップであって、前記レパートリーが請求項２０又は２２に記載の少なくとも一つの抗原結合ユニットを含む、前記ステップ；及び
（ｂ）抗原結合ユニットの前記レパートリーを前記所望の抗原と接触させるステップ；
抗原結合ユニットと前記抗原との間の特異的結合を検出することにより、前記所望の抗原と免疫反応性である前記一本鎖抗原結合ユニットを同定するステップ
を含む、前記方法。
【請求項８４】
抗原結合ユニットの前記レパートリーが、前記抗原結合ユニットの複数をコードしているベクターのライブラリーを発現させることにより調製される、請求項８３に記載の方法。
【請求項８５】
ベクターの前記ライブラリーが、複数のファージベクターを含む、請求項８３に記載の方法。
【請求項８６】
好適なパッケージングに請求項３９に記載のベクターを含むキット。
【請求項８７】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、増殖因子受容体のヘテロ二量体性受容体配列を含む、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項８８】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、Ｇタンパク質結合受容体のヘテロ二量体性受容体配列を含む、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項８９】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、神経伝達物質のヘテロ二量体性受容体配列を含む、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項９０】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、核ホルモン受容体のヘテロ二量体性受容体配列を含む、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項９１】
ｃｃＦｖフラグメントである、請求項１又は３に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項９２】
前記生理学的体温が、約３７℃である、請求項１に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。
【請求項９３】
前記第一ヘテロ二量体化配列及び前記第二ヘテロ二量体化配列が、等モル混合したときにホモ二量体を基本的に形成できない、請求項１に記載の非一本鎖抗原結合ユニット。

【図２】

【図３Ａ】

【図３Ｂ】

【図４Ａ】

【図４Ｂ】

【図５Ａ】

【図５Ｂ】

【図６Ａ】

【図６Ｂ】

【図７】

【図８】

【図９】

【図１０Ｂ】

【図１１Ａ】

【図１１Ｂ】

【図２０】

【図２２】

【図２４】

【図２５】

【図１】

【図１０Ａ】

【図１２】

【図１３】

【図１４】

【図１５】

【図１６】

【図１７】

【図１８】

【図１９】

【図２１】

【図２３】

【公開番号】特開２０１０−５３１３２（Ｐ２０１０−５３１３２Ａ）
【公開日】平成２２年３月１１日（２０１０．３．１１）
【国際特許分類】
【外国語出願】
【出願番号】特願２００９−２１１９１４（Ｐ２００９−２１１９１４）
【出願日】平成２１年９月１４日（２００９．９．１４）
【分割の表示】特願２００３−５１７２４７（Ｐ２００３−５１７２４７）の分割
【原出願日】平成１４年７月３１日（２００２．７．３１）
【出願人】（５０４０４１３０９）アブマクシス，インコーポレイティド (3)
【Ｆターム（参考）】