子宮体癌の検出方法
【課題】未だ見出されていない子宮体癌の特異的腫瘍マーカーとなり得る生体要素を見出し、これを基とする子宮体癌を検出する手段を提供すること。
【解決手段】被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出する検出方法を提供することにより、上記の課題を解決し得ることを見出した。
【解決手段】被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出する検出方法を提供することにより、上記の課題を解決し得ることを見出した。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、癌の検出手段、より詳細には、子宮体癌に対する特異的腫瘍マーカーに関する発明である。
【背景技術】
【０００２】
子宮癌は、女性では、胃癌、乳癌に次いで多い癌であり、子宮頸癌と子宮体癌に大別される。本発明に直接的に関連する子宮体癌は、子宮癌の中でも比較的発症頻度の低い癌として知られていたが、近年、その頻度が急激に高くなっていることが問題視されている。
【０００３】
子宮体癌は、子宮体部に発生する癌で、広義には、子宮内膜に発生する子宮内膜癌と、子宮筋に発生する子宮肉腫の両者を含むが、一般的には子宮内膜癌を意味するものである。本発明では、子宮内膜癌を子宮体癌として定義する。
【０００４】
子宮体癌の初期症状は、不正性器出血（特に閉経期後）が挙げられるものの、比較的緩慢であり、早期発見が難しい癌の一つである。
【０００５】
子宮体癌の診断としては、子宮内膜細胞診検査、子宮内膜組織検査、子宮内膜全面掻爬・子宮鏡検査、超音波・ＣＴ・ＭＲＩ等による画像診断が、必要に応じて組み合わせて行われている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
癌の診断手段のうち、近年極めて有力な手段となりつつあるものとして、いわゆる腫瘍マーカーが挙げられる。腫瘍マーカーは、特定の腫瘍の存在に対応して、血液中や尿中において特徴的な挙動を示す生体物質である。腫瘍マーカーの定量を行い、その定量値を指標とすることにより、特定の腫瘍の存在を検出することができるので、腫瘍マーカーは、その簡便性から、当該特定腫瘍の早期発見に大いに貢献するものである。例えば、子宮頸癌等の腫瘍マーカーとして、SCC等が知られている。また、卵巣癌の腫瘍マーカーとして、CA125、α−フェトプロテイン、LDH、CEA、CA72-4、CA19-9等が知られている。
【０００７】
しかしながら、子宮体癌に対する特異的な腫瘍マーカーは、現在のところ知られておらず、上述したように、既存の子宮体癌に対する検査手段は手軽とはいえない。このことが、子宮体癌の早期発見を妨げる原因の一つであることは明らかである。
【０００８】
子宮体癌の早期発見は、患者の命を救うことになるのみならず、出産の望みをつなぐことになる。すなわち、子宮体癌の治療の原則は手術療法であることから、かつ、子宮全摘出＋付属器（卵巣・卵管）切除＋骨盤及び傍大動脈リンパ節郭清が原則であり、特に、閉経前の女性の場合、治療と同時に出産の望みが絶たれることになる。しかしながら、ごく初期段階（異型子宮内膜腺癌(Grade I）の臨床進行期Ｉａ)であれば、子宮温存療法を選択することも可能であるが、この段階の子宮体癌を発見するためには、鋭敏な腫瘍マーカーによる診断の助けを借りることが必要となる。
【０００９】
よって、本発明の課題は、未だ見出されていない子宮体癌の特異的腫瘍マーカーとなり得る生体要素を見出し、これを基とする子宮体癌を検出する手段を提供することにある。
【００１０】
本発明者は、この課題の解決に向けて検討を重ねた結果、驚くべきことに、特定の血中タンパク質を指標とすることにより、被験者の子宮体癌を、極めて高い精度で検出することが可能であることを見出し、本発明を完成した。
【００１１】
すなわち、本発明は、被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌（本発明では子宮内膜癌を意味するものである）を検出する、検出方法（以下、本検出方法ともいう）を提供する発明である。
【００１２】
上述したように、現在のところ子宮体癌に対する特異的な腫瘍マーカーは未だ見出されておらず、本発明は、子宮体癌の早期発見に大いなる貢献をすることが期待される。
【００１３】
血液検体とは、被験者から採取された血液又はその処理物のことを意味するものであり、動脈血であっても、静脈血であってもよいが、通常は、静脈血、特に、末梢静脈血を用いる。また、本発明にて用いる血液検体は、真空採血又はシリンジ採血等により、常法により全血を採取することができる。本検出方法においては、全血、血漿、及び、血清のうち、血清を用いることが好適である。また、通常の血清に対してさらに前分画を行い、これを試料として用いることにより、いっそう検出感度を上げることができる。かかる前分画は、例えば、陰イオン交換固相担体で血清を処理することにより行われる。
【００１４】
上記質量分布の測定には、タンパク質の質量分析が可能な装置又はシステムであれば、特に制限なく使用できる。例えば、四重極型質量分析計、飛行時間型質量分析計、四重極イオントラップ質量分析計、フーリエ変換型イオンサイクロトロン型質量分析計等の装置や、プロテインチップと飛行時間型質量分析計及び測定・解析に使用するソフトウエアがインストールされたコンピュータが一体となったプロテインチップシステム等を用いることができる。好適には、飛行時間型質量分析計やプロテインチップシステムを用いることが可能であり、特に好適には、Ciphergen社製のプロテインチップシステムを使用することができる。当該社製のプロテインチップシステムは、固相担体に捕捉された血中タンパク質に対してレーザー光線を照射することにより、当該血中タンパク質をイオン化した状態で当該固相担体から脱離させ、当該脱離タンパク質を、飛行時間型質量分析計にて検出することが可能である。
【００１５】
上記質量分布の測定の前提として、血液検体を固相担体と接触させて、血中タンパクを当該固相担体に捕捉させることが必要である場合が多い。例えば、上記各プロテインチップシステムでは、タンパク質の解析に適した様々な性質を有する固相担体を主要な構成要素とするプロテインチップに血中タンパク質を捕捉させて、当該捕捉タンパク質に対して、各々特有の原理による質量分析を行うことにより、所望の測定を行うことができる。ここで用いられる固相担体としては、疎水性固相担体、陽イオン交換型固相担体、陰イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体、順相型固相担体、逆相型固相担体等の発現解析に適した担体を挙げることができる。また、特定の結合分子、例えば、活性化型分子、抗体、レセプタータンパク質、核酸等を固相化したアフィニティー担体を、特異的な結合の解析を行うために用いることもできる。これらの中でも、発現解析用の固相担体、すなわち、疎水性固相担体、陽イオン交換型固相担体、陰イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体、順相型固相担体、又は、逆相型固相担体を用いることが、本発明においては好適であり、これらの中でも、陽イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体として銅イオン修飾固相担体、又は、逆相型固相担体が、特に好適である。
【００１６】
特に、分子量１０００〜２０００００Daの範囲で連続したパターンを得るためには、これらの固相化担体に捕捉させた捕捉タンパク質は、イオン化させることによって当該固相化担体から分離した状態でピークパターンとして提供される。かかるイオン化方法としては、上述したレーザー光線照射によるイオン化法（例えば、matrix-assisted laser desorption ionization(MALDI)法）の他に、電子衝撃イオン化(EI)法、化学イオン化(CI)法、フィールドデソープション(FD)法、高速原子衝突(FAB)法、エレクトロスプレーイオン化(ESI)法等が挙げられる。
【００１７】
本検出方法では、分子量１０００〜２０００００Daの範囲において、血中タンパク質のピークを連続的に解析して、この連続的な解析により得られたピークパターンを、子宮体癌罹患型のパターンと、健常人（少なくとも、子宮体癌には罹患していないことを意味する）型のパターンに分けて、被験者のピークパターンが子宮体癌罹患型のパターンに分類される場合に、子宮体癌陽性として検出を行うことができる。また、特に、解析の対象となる血中タンパク質の分子量の範囲を１０００〜２００００Da程度とすることも可能である。
【００１８】
上記の分子量１０００〜２０００００Daの範囲に存在する血中タンパク質のピークパターン全体に対して解析を行い、その結果により被験者の子宮体癌を検出することも可能であるが、子宮体癌の罹患者において特徴的な特定の血中タンパク質のピークに着目して解析を行うこともできる。着目すべき血中タンパク質の選択は、可能な限り子宮体癌罹患の検出精度が維持される組み合わせにて行うことが好適である。
【００１９】
具体的には、下記（１）及び／又は（２）を行うことが、本検出方法の好適な態様として挙げられる。
【００２０】
（１）被験者の血液検体中において、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも増加している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【００２１】
これらの（１）の群にて表された質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質は、陽イオン交換型固相担体に血液検体を捕捉させて、当該捕捉タンパク質について質量分布解析を行うことにより測定することが好適である。
【００２２】
（２）被験者の血液検体中において、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも減少している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【００２３】
これらの（２）の群にて表された質量中心分布を実質的に有する血中タンパク質は、金属イオン修飾固相担体に血液検体を捕捉させて、当該捕捉タンパク質について質量分布解析を行うことで測定することが好適である。当該金属イオン修飾固相担体における修飾金属イオンは銅イオンであることが好適である。
【００２４】
上記の特定の血中タンパク質の質量分布中心を規定する用語である「実質的に」とは、最大の測定誤差を考慮して規定するという意味を有している。具体的には、当該最大誤差は±０．２％である。本明細書において、特定の血中タンパク質を質量分布中心で示した場合、特に断らない限り、ここでいう「実質的」な数値を意味するものである。
【００２５】
上記のように、特定の分子量範囲の血中タンパク質のピークパターン全体、又は、上記の個々のピークパターンに着目して解析する場合（シングルマーカー解析）、例えば、上述した機器（例えば、Ciphergen社製のプロテインチップシステム）を用いて、特定質量範囲の血中タンパク質の質量分布として総括的に把握することが可能である。また、同様に、上記の個々の血中タンパク質の存在、非存在、増加又は減少を把握することが可能である。特に、当該質量分布と子宮体癌の罹患の関係を関連付けたアルゴリズムを有するソフトウエアを介して、被験者の血液検体における血中タンパク質の質量分布情報を処理することにより、非常に簡便かつ正確に、被験者における子宮体癌の検出を行うことができる。この場合のデータ処理方法としては、例えば、単変量解析あるいは多変量解析（階層的クラスター解析、主成分解析又はClassification解析等）を行うことができる。
【発明の効果】
【００２６】
本発明により、特定の血中タンパク質を腫瘍マーカーとして、子宮体癌を高精度で検出し得る、子宮体癌の検出方法が提供される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２７】
以下、本発明の具体的な形態を実施例として記載するが、かかる記載により本発明の範囲が限定されるものではない。
【実施例】
【００２８】
（１）血液検体
初期の被験者候補として、子宮体癌群２６例（ステージＩ〜IV）と、健常人群２５例について採血を行い、目視によるチェックとプロテインチップ［陽イオン交換チップ（CM１０）］にてヘモグロビンピークを指標とした溶血チェックを行った（100 mM Sodium Acetate, pH4）。
【００２９】
子宮体癌群は、再発・ケモ中の３例とステージIVの2例、そして健常人群との年齢の差を考慮し、最高齢の１例の計６例を除いた２０例を選択した。健常人サンプルは４０代の中からヘモグロビンの影響が認められた２例と、子宮体癌群サンプルとの年齢の差を減少させるため、若年齢の方から３例の計５例を除いた２０例を選択した。
【００３０】
このようにして選択された子宮体癌群と健常人群のそれぞれ２０例の腕末梢静脈血管からの採血を行い、常法により血清検体とした。当該血清検体は、一旦、凍結状態として、氷上で融解し、20000xgにて10分間遠心した後、上清を回収した。前分画は96ウェルフォーマットフィルタープレート上で処理し、全ての上清の回収工程を、DPC Micromix 5 shakerを搭載したBiomek2000 Laboratory Work Station(Beckman)を用いて行った。このようにして、上清として得られた血清サンプルに、20μLに変性バッファー、U9(9M urea, 2%CHAPS, 50mM Tris-HCl, pH9)30μLを加え、4℃で20分間振とうした。次いで、Bio Sepra Q Ceramic HyperDF（陰イオン交換樹脂）は50mM Tris-HCl,pH9にて前もって平衡化し、50% slurryに調製した。このレジン180μLを、フィルタープレートの各ウェルに加え、U1バッファー(U9バッファーを50mM Tris-HCl, pH9にて9倍希釈したもの)200μLで3回、平衡化を行った。上記のU9で変性させた血清サンプルをレジンに加え、サンプルウェルをΜLバッファー50μLで共洗いし、併せてレジンに加え、４℃にて３０分間振とうした後、非吸着画分を回収し、50mM Tris-HCl, pH9, 0.1%OGP 100μLをレジンに加えた。この洗浄液を回収し、非吸着画分と合わせ、Fraction１とした。この後、pH7,5,4,3の段階的なpH勾配によってタンパク質を溶出させた(各溶出バッファー, 100μL×2)。なお、この段階的なタンパク質溶出工程のうち、pH7における溶出は、溶出バッファー（50mM HEPES with 0.1% OGP pH7）にて行い、pH5における溶出は、溶出バッファー(100mM NaAcetate with 0.1% OGP pH5)にて行い、pH4における溶出は、溶出バッファー(100mM NaAcetate with 0.1% OGP pH4)にて行い、pH3における溶出は、溶出バッファー(50mM NaCitrate with 0.1% OGP pH3)にて行った。最後に、レジンに強固に結合したタンパク質を有機溶媒(33.3% isopropanol/16.7% acetonitrile/0.1% trifluoracetic acid)で溶出した。
【００３１】
（２）プロテインチップへの試料の吸着
プロテインチップに搭載された固相担体としては、陽イオン交換樹脂（CM10）（結合・洗浄バッファー：100mM NaAcetate pH4）、同（結合・洗浄バッファー：50mM HEPES pH7）、銅イオン修飾担体(IMAC30)（結合・洗浄バッファー：50mM NaPhosphate, pH7.0, 0.5M NaCl）、及び、逆相担体(H50)（結合・洗浄バッファー：50mM HEPES pH7）を用いた。すべての条件で、シナピン酸 (sinapinic acid：SPA)とCHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)の２種をマトリクス分子として使用した。また、分注等の操作は、全てBiomek2000(Beckman)を用いて行った。
【００３２】
陽イオン交換チップ(CM10)
陽イオン交換基（Carboxymethyl基）を有するＣＭ１０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、結合・洗浄バッファー（100mM Sodium Acetate, pH4と100mM Sodium Acetate, pH7の２種類を使用）を150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。この操作を2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、チップ表面を洗浄した。これを3回繰り返して非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で2回脱塩処理を行った。チップは風乾した後に50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)、あるいは、50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)を、1μL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３３】
銅イオン修飾チップ(IMAC30)
銅イオンをチップ表面に固定化するため、nitrilotriacetic acid基を有するＩＭＡＣ３０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、100mM CuSO4を50μL/spot添加し、10分間室温にて振とうした後に、200μL/spotのMilliQ水で2分間・2回洗浄、さらに0.1M Sodium Acetate, pH4を50μL/spot添加し、5分間室温にて振とうした後に、200μL/spotのMilliQ水で2分間洗浄を行った。
【００３４】
次に、結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。この操作を2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを、結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。
【００３５】
結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、チップ表面を洗浄した。これを3回繰り返して非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で脱塩処理を行った。チップは風乾した後に、50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)、あるいは、50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)を、1μL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３６】
逆相チップ(H50)
炭素原子数６〜１２のアルキル基を有するＨ５０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。これを2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを、結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、チップ表面を洗浄、非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で脱塩処理を2回行った。チップは風乾した後に50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)あるいは50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)をlμL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３７】
（３）測定・データ解析
プロテインチップは、サイファージェン社のプロテインチップリーダーModelPBSIICにより測定を行った。データ取得はProteinChip Software version3.2およびCiphergenExpressTMData Manager version3.0により行った。照準測定範囲は、低分子領域データとして3000-10000m/z、高分子領域データとして10000-30000m/z、最高測定分子量は、低分子領域データとして100000m/z・高分子領域データとして200000m/zとした。１サンプルあたり２点アッセイを行い、ピーク強度の平均値で解析を行った。
【００３８】
データ解析は、CiphergenExpressTMDataManager version3.0より行った。測定されたスペクトルからベースライン補正を行った後、分子量校正を行った。分子量校正に用いたタンパク質は表１に示した。
【００３９】
【表１】
【００４０】
次に、Total Ion Current(TIC)Normalizatioにより正規化処理を行った。解析対象はSignal/Noise（S/N）が２より大きいピークとし、サンプル間でのピークパターン比較、群間でのピーク強度の値を用いたu-検定(ｐ値による解析)を行った。
【００４１】
マルチマーカー解析としては、階層的クラスター解析、主成分解析(CiphergenExpressTMDataManager version3.0)、Biomarker Patterns Software version5.0を用いたClassification解析をおこなった。
【００４２】
（４）結果
（Ａ）シングルマーカー解析
データ解析の流れを図１に示した。まず、上述のように、S/N>2を示した9175ピークを対象にして単変量解析（Mann-Whitney u-test）を行い、p値<0.05の1436ピークを選択した。次に、これらの中からノイズや個体差によるピークを取り除き、マーカー候補とした。
【００４３】
子宮体癌群サンプルで強度が増加しているピーク
子宮体癌群サンプルで、健常人群サンプルに比べて強度が増加しているピークとして、陽イオン交換チップにて捕捉され得る、質量中心が、６４９３Da（６４９３Da＃１：ｐH7の緩衝液で平衡化した陽イオン交換チップにて捕捉されたもの。６４９３Da＃２：ｐH４の緩衝液で平衡化した陽イオン交換チップにて捕捉されたもの。以下、＃１と＃２は同様の意味で用いる。）６４８７Da（＃１，＃２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，＃２）、６６８４Da（＃１，＃２）、３３４３Da（＃１，＃２）、及び、１９３１８Da、のピークに該当する強度の増加が認められた。
【００４４】
（ａ）６４９３Daタンパク質（図２〜３）
図２は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６４９３Daのタンパク質（６４９３Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図３は、図２に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６４９３Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６４９３Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００４５】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６４９３Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００４６】
（ｂ）６４８７Daタンパク質（図４〜５）
図４は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６４８７Daのタンパク質（６４８７Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図５は、図４に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６４８７Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６４８７Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００４７】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６４８７Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００４８】
（ｃ）３２４４Daタンパク質（図６）
図６は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が３２４４Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、３２４４Daタンパク質が有意に増加していることが、当該図面において明確に示されている。
【００４９】
よって、ｐＨ７の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る３２４４Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
（ｄ）６６９１Daタンパク質（図７〜８）
図７は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６６９１Daのタンパク質（６６９１Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図８は、図７に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６６９１Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６６９１Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５０】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６６９１Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５１】
（ｅ）６６８４Daタンパク質（図９〜１０）
図９は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６６８４Daのタンパク質６６８４Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図１０は、図９に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６６８４Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plot とROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６６８４Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５２】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６６８４Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５３】
（ｆ）３３４３Daタンパク質（図１１〜１２）
図１１は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が３３４３Daのタンパク質（３３４３＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図１２は、図１１に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（３３４３Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、３３４３Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５４】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る３３４３Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５５】
（ｇ）１９３１８Daタンパク質（図１３）
図１３は、上記のｐＨ７のバッファーを用いて調製した画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(HIGH）］とｐＨ５の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が１９３１８Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、１９３１８Daタンパク質が有意に増加していることが、当該図面において明確に示されている。
【００５６】
よって、ｐＨ５の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る１９３１８Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５７】
以上、図２〜１３に示したように、子宮体癌群における、陽イオン交換チップにて捕捉され得る、質量中心が、６４９３Da（＃１，＃２）、６４８７Da（＃１，＃２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，＃２）、６６８４Da（＃１，＃２）、３３４３Da（＃１，＃２）、及び、１９３１８Da、のピークは、それぞれ有意差をもって、コントロール群よりも強いピークとして認められた。この結果より、これらのピークに相当する血中タンパク質のうち１種以上を選んで、そのピーク（血中存在量）の増大を、標準値（健常人におけるピーク値）との比較において検出指標とすることにより、極めて鋭敏に子宮体癌を検出することが可能であることが判明した。これらのうち、３３４３Daタンパク質と、６６８４Daタンパク質と、６６９１Daタンパク質では、＃１と＃２の双方とも、P値＜０．０００００１と極めて高い有意差を示した。
【００５８】
子宮体癌群サンプルで強度が減少しているピーク
子宮体癌群サンプルで、健常人群サンプルに比べて強度が減少しているピークとして、質量中心が、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daのピークに、該当する強度の減少が認められた。
【００５９】
（ａ）５６２５Daタンパク質（図１４）
図１４は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が５６２５Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、５６２５Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６０】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る５６２５Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６１】
（ｂ）９３７０Daタンパク質（図１５）
図１５は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が９３７０Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、９３７０Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６２】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る９３７０Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６３】
（ｃ）２８１６５Daタンパク質（図１６）
図１６は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が２８１６５Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、２８１６５Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６４】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る２８１６５Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６５】
以上図１４〜１６に示したように、子宮体癌群における、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る、質量中心が、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daのピークは、それぞれ有意差をもって、コントロール群よりも弱いピークとして認められた。この結果より、これらのピークに相当する血中タンパク質のうち１種以上を選んで、そのピーク（血中存在量）の減少を、標準値（健常人におけるピーク値）との比較において検出指標とすることにより、極めて鋭敏に子宮体癌を検出することが可能であることが判明した。
【００６６】
（Ｂ）マルチマーカー解析
階層的クラスター解析
階層的クラスター解析とは、未だ分類されていない対象を特定の基準にて分類する方法であり、通常、対象間の類似度により分類される。本実施例においては、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）を基準として、コントロール群と子宮体癌群からなる上述した全４０検体を２群解析した。その結果、コントロール群と子宮体癌群が明確に分類分けされた。よって、血液検体における特定分子量間のタンパク質の質量分布のパターンについて、階層的クラスター解析を行うことにより、子宮体癌を検出可能であることが示された。
【００６７】
主成分解析
主成分解析は、複数変数のデータのばらつき傾向から少数の合成された新たな変数（主成分）を求め、これらの主成分を用いて、未だ分類されていない対象を分類する方法である。本実施例の場合、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）から、表２に示すPercent varianceの高い上位3つの主成分１(PCAcomp1)、主成分２(PCAcomp2)、主成分３(PCAcomp3)が新たに合成され、これらを組み合わせて解析を行った。各主成分において寄与率（Importance)の高いピークを上位10までリストアップした（表２）。その結果、PCAcomp1と3の組み合わせ、PCAcomp2と3の組み合わせ、およびPCAcomp1,2,3の組み合わせで、コントロール群と子宮体癌群を分類することができた。よって、血液検体における特定分子量間のタンパク質の質量分布のパターンについて、主成分解析を行うことにより、子宮体癌を検出可能であることが示された。
【００６８】
【表２】
【００６９】
また、上述した１５種類のピーク群［６４９３Da（＃１，２）、６４８７Da（＃１，２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，２）、６６８４Da（＃１，２）、３３４３Da（＃１，２）、１９３１８Da、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daの分子量分布中心を示すピーク群］のみを使用して、上記と同様の主成分解析を行った。その結果、この場合においても、コントロール群と子宮体癌群を分類することができた。
【００７０】
Classification解析
Classification解析は、すでに分類されている対象を新しい基準を用いて分類する方法であり、一般的には、分類されている対象によりルールを構築するステップと、分類されていない対象を当該ルールに照合して分類するステップに分かれる。本実施例の場合は、Biomarker Patterns Software version5.0を用いてClassification解析を行った。具体的には、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）を基準として、コントロール群と子宮体癌群とを分類するルールを構築した。
【００７１】
１）コントロール群と子宮体癌群の2群解析によるP値が0.05以下のピークからノイズピークを除いたCHCA条件のみを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークは、シングルマーカー解析時にCandidate Peakに選ばれているMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７２】
２）コントロール群と子宮体癌群の2群解析によるP値が0.05以下のピークでノイズピークを除いた全試験条件の701ピークを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークは、シングルマーカー解析時にCandidate Peakに選ばれているMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７３】
３）上記の１５種類のCandidate Peakのみを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークはMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７４】
まとめ
上述したシングルマーカー解析及びマルチマーカー解析を行うことにより、子宮体癌群とコントロール群を分類分け可能であることが示された。これらの解析により、血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜３００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出することが可能であることが明らかになった。
【図面の簡単な説明】
【００７５】
【図１】シングルマーカー解析におけるデータ解析の流れを図式化して示した図面である。
【図２】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４９３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図３】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４９３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図４】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４８７Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図５】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４８７Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図６】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３２４４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図７】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６９１Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図８】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６９１Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図９】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６８４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１０】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６８４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１１】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３３４３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１２】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３３４３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１３】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(HIGH）］とｐＨ５の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の１９３１８Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１４】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の５６２５Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１５】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の９３７０Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１６】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の２８１６５Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、癌の検出手段、より詳細には、子宮体癌に対する特異的腫瘍マーカーに関する発明である。
【背景技術】
【０００２】
子宮癌は、女性では、胃癌、乳癌に次いで多い癌であり、子宮頸癌と子宮体癌に大別される。本発明に直接的に関連する子宮体癌は、子宮癌の中でも比較的発症頻度の低い癌として知られていたが、近年、その頻度が急激に高くなっていることが問題視されている。
【０００３】
子宮体癌は、子宮体部に発生する癌で、広義には、子宮内膜に発生する子宮内膜癌と、子宮筋に発生する子宮肉腫の両者を含むが、一般的には子宮内膜癌を意味するものである。本発明では、子宮内膜癌を子宮体癌として定義する。
【０００４】
子宮体癌の初期症状は、不正性器出血（特に閉経期後）が挙げられるものの、比較的緩慢であり、早期発見が難しい癌の一つである。
【０００５】
子宮体癌の診断としては、子宮内膜細胞診検査、子宮内膜組織検査、子宮内膜全面掻爬・子宮鏡検査、超音波・ＣＴ・ＭＲＩ等による画像診断が、必要に応じて組み合わせて行われている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
癌の診断手段のうち、近年極めて有力な手段となりつつあるものとして、いわゆる腫瘍マーカーが挙げられる。腫瘍マーカーは、特定の腫瘍の存在に対応して、血液中や尿中において特徴的な挙動を示す生体物質である。腫瘍マーカーの定量を行い、その定量値を指標とすることにより、特定の腫瘍の存在を検出することができるので、腫瘍マーカーは、その簡便性から、当該特定腫瘍の早期発見に大いに貢献するものである。例えば、子宮頸癌等の腫瘍マーカーとして、SCC等が知られている。また、卵巣癌の腫瘍マーカーとして、CA125、α−フェトプロテイン、LDH、CEA、CA72-4、CA19-9等が知られている。
【０００７】
しかしながら、子宮体癌に対する特異的な腫瘍マーカーは、現在のところ知られておらず、上述したように、既存の子宮体癌に対する検査手段は手軽とはいえない。このことが、子宮体癌の早期発見を妨げる原因の一つであることは明らかである。
【０００８】
子宮体癌の早期発見は、患者の命を救うことになるのみならず、出産の望みをつなぐことになる。すなわち、子宮体癌の治療の原則は手術療法であることから、かつ、子宮全摘出＋付属器（卵巣・卵管）切除＋骨盤及び傍大動脈リンパ節郭清が原則であり、特に、閉経前の女性の場合、治療と同時に出産の望みが絶たれることになる。しかしながら、ごく初期段階（異型子宮内膜腺癌(Grade I）の臨床進行期Ｉａ)であれば、子宮温存療法を選択することも可能であるが、この段階の子宮体癌を発見するためには、鋭敏な腫瘍マーカーによる診断の助けを借りることが必要となる。
【０００９】
よって、本発明の課題は、未だ見出されていない子宮体癌の特異的腫瘍マーカーとなり得る生体要素を見出し、これを基とする子宮体癌を検出する手段を提供することにある。
【００１０】
本発明者は、この課題の解決に向けて検討を重ねた結果、驚くべきことに、特定の血中タンパク質を指標とすることにより、被験者の子宮体癌を、極めて高い精度で検出することが可能であることを見出し、本発明を完成した。
【００１１】
すなわち、本発明は、被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌（本発明では子宮内膜癌を意味するものである）を検出する、検出方法（以下、本検出方法ともいう）を提供する発明である。
【００１２】
上述したように、現在のところ子宮体癌に対する特異的な腫瘍マーカーは未だ見出されておらず、本発明は、子宮体癌の早期発見に大いなる貢献をすることが期待される。
【００１３】
血液検体とは、被験者から採取された血液又はその処理物のことを意味するものであり、動脈血であっても、静脈血であってもよいが、通常は、静脈血、特に、末梢静脈血を用いる。また、本発明にて用いる血液検体は、真空採血又はシリンジ採血等により、常法により全血を採取することができる。本検出方法においては、全血、血漿、及び、血清のうち、血清を用いることが好適である。また、通常の血清に対してさらに前分画を行い、これを試料として用いることにより、いっそう検出感度を上げることができる。かかる前分画は、例えば、陰イオン交換固相担体で血清を処理することにより行われる。
【００１４】
上記質量分布の測定には、タンパク質の質量分析が可能な装置又はシステムであれば、特に制限なく使用できる。例えば、四重極型質量分析計、飛行時間型質量分析計、四重極イオントラップ質量分析計、フーリエ変換型イオンサイクロトロン型質量分析計等の装置や、プロテインチップと飛行時間型質量分析計及び測定・解析に使用するソフトウエアがインストールされたコンピュータが一体となったプロテインチップシステム等を用いることができる。好適には、飛行時間型質量分析計やプロテインチップシステムを用いることが可能であり、特に好適には、Ciphergen社製のプロテインチップシステムを使用することができる。当該社製のプロテインチップシステムは、固相担体に捕捉された血中タンパク質に対してレーザー光線を照射することにより、当該血中タンパク質をイオン化した状態で当該固相担体から脱離させ、当該脱離タンパク質を、飛行時間型質量分析計にて検出することが可能である。
【００１５】
上記質量分布の測定の前提として、血液検体を固相担体と接触させて、血中タンパクを当該固相担体に捕捉させることが必要である場合が多い。例えば、上記各プロテインチップシステムでは、タンパク質の解析に適した様々な性質を有する固相担体を主要な構成要素とするプロテインチップに血中タンパク質を捕捉させて、当該捕捉タンパク質に対して、各々特有の原理による質量分析を行うことにより、所望の測定を行うことができる。ここで用いられる固相担体としては、疎水性固相担体、陽イオン交換型固相担体、陰イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体、順相型固相担体、逆相型固相担体等の発現解析に適した担体を挙げることができる。また、特定の結合分子、例えば、活性化型分子、抗体、レセプタータンパク質、核酸等を固相化したアフィニティー担体を、特異的な結合の解析を行うために用いることもできる。これらの中でも、発現解析用の固相担体、すなわち、疎水性固相担体、陽イオン交換型固相担体、陰イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体、順相型固相担体、又は、逆相型固相担体を用いることが、本発明においては好適であり、これらの中でも、陽イオン交換型固相担体、金属イオン修飾固相担体として銅イオン修飾固相担体、又は、逆相型固相担体が、特に好適である。
【００１６】
特に、分子量１０００〜２０００００Daの範囲で連続したパターンを得るためには、これらの固相化担体に捕捉させた捕捉タンパク質は、イオン化させることによって当該固相化担体から分離した状態でピークパターンとして提供される。かかるイオン化方法としては、上述したレーザー光線照射によるイオン化法（例えば、matrix-assisted laser desorption ionization(MALDI)法）の他に、電子衝撃イオン化(EI)法、化学イオン化(CI)法、フィールドデソープション(FD)法、高速原子衝突(FAB)法、エレクトロスプレーイオン化(ESI)法等が挙げられる。
【００１７】
本検出方法では、分子量１０００〜２０００００Daの範囲において、血中タンパク質のピークを連続的に解析して、この連続的な解析により得られたピークパターンを、子宮体癌罹患型のパターンと、健常人（少なくとも、子宮体癌には罹患していないことを意味する）型のパターンに分けて、被験者のピークパターンが子宮体癌罹患型のパターンに分類される場合に、子宮体癌陽性として検出を行うことができる。また、特に、解析の対象となる血中タンパク質の分子量の範囲を１０００〜２００００Da程度とすることも可能である。
【００１８】
上記の分子量１０００〜２０００００Daの範囲に存在する血中タンパク質のピークパターン全体に対して解析を行い、その結果により被験者の子宮体癌を検出することも可能であるが、子宮体癌の罹患者において特徴的な特定の血中タンパク質のピークに着目して解析を行うこともできる。着目すべき血中タンパク質の選択は、可能な限り子宮体癌罹患の検出精度が維持される組み合わせにて行うことが好適である。
【００１９】
具体的には、下記（１）及び／又は（２）を行うことが、本検出方法の好適な態様として挙げられる。
【００２０】
（１）被験者の血液検体中において、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも増加している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【００２１】
これらの（１）の群にて表された質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質は、陽イオン交換型固相担体に血液検体を捕捉させて、当該捕捉タンパク質について質量分布解析を行うことにより測定することが好適である。
【００２２】
（２）被験者の血液検体中において、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも減少している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【００２３】
これらの（２）の群にて表された質量中心分布を実質的に有する血中タンパク質は、金属イオン修飾固相担体に血液検体を捕捉させて、当該捕捉タンパク質について質量分布解析を行うことで測定することが好適である。当該金属イオン修飾固相担体における修飾金属イオンは銅イオンであることが好適である。
【００２４】
上記の特定の血中タンパク質の質量分布中心を規定する用語である「実質的に」とは、最大の測定誤差を考慮して規定するという意味を有している。具体的には、当該最大誤差は±０．２％である。本明細書において、特定の血中タンパク質を質量分布中心で示した場合、特に断らない限り、ここでいう「実質的」な数値を意味するものである。
【００２５】
上記のように、特定の分子量範囲の血中タンパク質のピークパターン全体、又は、上記の個々のピークパターンに着目して解析する場合（シングルマーカー解析）、例えば、上述した機器（例えば、Ciphergen社製のプロテインチップシステム）を用いて、特定質量範囲の血中タンパク質の質量分布として総括的に把握することが可能である。また、同様に、上記の個々の血中タンパク質の存在、非存在、増加又は減少を把握することが可能である。特に、当該質量分布と子宮体癌の罹患の関係を関連付けたアルゴリズムを有するソフトウエアを介して、被験者の血液検体における血中タンパク質の質量分布情報を処理することにより、非常に簡便かつ正確に、被験者における子宮体癌の検出を行うことができる。この場合のデータ処理方法としては、例えば、単変量解析あるいは多変量解析（階層的クラスター解析、主成分解析又はClassification解析等）を行うことができる。
【発明の効果】
【００２６】
本発明により、特定の血中タンパク質を腫瘍マーカーとして、子宮体癌を高精度で検出し得る、子宮体癌の検出方法が提供される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２７】
以下、本発明の具体的な形態を実施例として記載するが、かかる記載により本発明の範囲が限定されるものではない。
【実施例】
【００２８】
（１）血液検体
初期の被験者候補として、子宮体癌群２６例（ステージＩ〜IV）と、健常人群２５例について採血を行い、目視によるチェックとプロテインチップ［陽イオン交換チップ（CM１０）］にてヘモグロビンピークを指標とした溶血チェックを行った（100 mM Sodium Acetate, pH4）。
【００２９】
子宮体癌群は、再発・ケモ中の３例とステージIVの2例、そして健常人群との年齢の差を考慮し、最高齢の１例の計６例を除いた２０例を選択した。健常人サンプルは４０代の中からヘモグロビンの影響が認められた２例と、子宮体癌群サンプルとの年齢の差を減少させるため、若年齢の方から３例の計５例を除いた２０例を選択した。
【００３０】
このようにして選択された子宮体癌群と健常人群のそれぞれ２０例の腕末梢静脈血管からの採血を行い、常法により血清検体とした。当該血清検体は、一旦、凍結状態として、氷上で融解し、20000xgにて10分間遠心した後、上清を回収した。前分画は96ウェルフォーマットフィルタープレート上で処理し、全ての上清の回収工程を、DPC Micromix 5 shakerを搭載したBiomek2000 Laboratory Work Station(Beckman)を用いて行った。このようにして、上清として得られた血清サンプルに、20μLに変性バッファー、U9(9M urea, 2%CHAPS, 50mM Tris-HCl, pH9)30μLを加え、4℃で20分間振とうした。次いで、Bio Sepra Q Ceramic HyperDF（陰イオン交換樹脂）は50mM Tris-HCl,pH9にて前もって平衡化し、50% slurryに調製した。このレジン180μLを、フィルタープレートの各ウェルに加え、U1バッファー(U9バッファーを50mM Tris-HCl, pH9にて9倍希釈したもの)200μLで3回、平衡化を行った。上記のU9で変性させた血清サンプルをレジンに加え、サンプルウェルをΜLバッファー50μLで共洗いし、併せてレジンに加え、４℃にて３０分間振とうした後、非吸着画分を回収し、50mM Tris-HCl, pH9, 0.1%OGP 100μLをレジンに加えた。この洗浄液を回収し、非吸着画分と合わせ、Fraction１とした。この後、pH7,5,4,3の段階的なpH勾配によってタンパク質を溶出させた(各溶出バッファー, 100μL×2)。なお、この段階的なタンパク質溶出工程のうち、pH7における溶出は、溶出バッファー（50mM HEPES with 0.1% OGP pH7）にて行い、pH5における溶出は、溶出バッファー(100mM NaAcetate with 0.1% OGP pH5)にて行い、pH4における溶出は、溶出バッファー(100mM NaAcetate with 0.1% OGP pH4)にて行い、pH3における溶出は、溶出バッファー(50mM NaCitrate with 0.1% OGP pH3)にて行った。最後に、レジンに強固に結合したタンパク質を有機溶媒(33.3% isopropanol/16.7% acetonitrile/0.1% trifluoracetic acid)で溶出した。
【００３１】
（２）プロテインチップへの試料の吸着
プロテインチップに搭載された固相担体としては、陽イオン交換樹脂（CM10）（結合・洗浄バッファー：100mM NaAcetate pH4）、同（結合・洗浄バッファー：50mM HEPES pH7）、銅イオン修飾担体(IMAC30)（結合・洗浄バッファー：50mM NaPhosphate, pH7.0, 0.5M NaCl）、及び、逆相担体(H50)（結合・洗浄バッファー：50mM HEPES pH7）を用いた。すべての条件で、シナピン酸 (sinapinic acid：SPA)とCHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)の２種をマトリクス分子として使用した。また、分注等の操作は、全てBiomek2000(Beckman)を用いて行った。
【００３２】
陽イオン交換チップ(CM10)
陽イオン交換基（Carboxymethyl基）を有するＣＭ１０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、結合・洗浄バッファー（100mM Sodium Acetate, pH4と100mM Sodium Acetate, pH7の２種類を使用）を150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。この操作を2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、チップ表面を洗浄した。これを3回繰り返して非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で2回脱塩処理を行った。チップは風乾した後に50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)、あるいは、50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)を、1μL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３３】
銅イオン修飾チップ(IMAC30)
銅イオンをチップ表面に固定化するため、nitrilotriacetic acid基を有するＩＭＡＣ３０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、100mM CuSO4を50μL/spot添加し、10分間室温にて振とうした後に、200μL/spotのMilliQ水で2分間・2回洗浄、さらに0.1M Sodium Acetate, pH4を50μL/spot添加し、5分間室温にて振とうした後に、200μL/spotのMilliQ水で2分間洗浄を行った。
【００３４】
次に、結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。この操作を2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを、結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。
【００３５】
結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、チップ表面を洗浄した。これを3回繰り返して非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で脱塩処理を行った。チップは風乾した後に、50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)、あるいは、50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)を、1μL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３６】
逆相チップ(H50)
炭素原子数６〜１２のアルキル基を有するＨ５０チップ（サイファージェン・バイオシステムズ社）に、結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、5分間室温にて振とうし、当該バッファーを取り除いた。これを2回繰り返し、チップ表面を平衡化させた。次に、各フラクション10μLを、結合・洗浄バッファー90μLに加え(10倍希釈)、30分間室温にて振とうしながらサンプル中のタンパク質をチップ表面に吸着させた。結合・洗浄バッファーを150μL/spot添加して、チップ表面を洗浄、非吸着成分を取り除いた後に、200μL/spotのMilliQ水で脱塩処理を2回行った。チップは風乾した後に50%飽和シナピン酸(sinapinic acid:SPA)あるいは50%飽和CHCA(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid)をlμL/spot添加後、風乾を行った。この添加・風乾の操作を2回繰り返した。
【００３７】
（３）測定・データ解析
プロテインチップは、サイファージェン社のプロテインチップリーダーModelPBSIICにより測定を行った。データ取得はProteinChip Software version3.2およびCiphergenExpressTMData Manager version3.0により行った。照準測定範囲は、低分子領域データとして3000-10000m/z、高分子領域データとして10000-30000m/z、最高測定分子量は、低分子領域データとして100000m/z・高分子領域データとして200000m/zとした。１サンプルあたり２点アッセイを行い、ピーク強度の平均値で解析を行った。
【００３８】
データ解析は、CiphergenExpressTMDataManager version3.0より行った。測定されたスペクトルからベースライン補正を行った後、分子量校正を行った。分子量校正に用いたタンパク質は表１に示した。
【００３９】
【表１】
【００４０】
次に、Total Ion Current(TIC)Normalizatioにより正規化処理を行った。解析対象はSignal/Noise（S/N）が２より大きいピークとし、サンプル間でのピークパターン比較、群間でのピーク強度の値を用いたu-検定(ｐ値による解析)を行った。
【００４１】
マルチマーカー解析としては、階層的クラスター解析、主成分解析(CiphergenExpressTMDataManager version3.0)、Biomarker Patterns Software version5.0を用いたClassification解析をおこなった。
【００４２】
（４）結果
（Ａ）シングルマーカー解析
データ解析の流れを図１に示した。まず、上述のように、S/N>2を示した9175ピークを対象にして単変量解析（Mann-Whitney u-test）を行い、p値<0.05の1436ピークを選択した。次に、これらの中からノイズや個体差によるピークを取り除き、マーカー候補とした。
【００４３】
子宮体癌群サンプルで強度が増加しているピーク
子宮体癌群サンプルで、健常人群サンプルに比べて強度が増加しているピークとして、陽イオン交換チップにて捕捉され得る、質量中心が、６４９３Da（６４９３Da＃１：ｐH7の緩衝液で平衡化した陽イオン交換チップにて捕捉されたもの。６４９３Da＃２：ｐH４の緩衝液で平衡化した陽イオン交換チップにて捕捉されたもの。以下、＃１と＃２は同様の意味で用いる。）６４８７Da（＃１，＃２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，＃２）、６６８４Da（＃１，＃２）、３３４３Da（＃１，＃２）、及び、１９３１８Da、のピークに該当する強度の増加が認められた。
【００４４】
（ａ）６４９３Daタンパク質（図２〜３）
図２は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６４９３Daのタンパク質（６４９３Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図３は、図２に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６４９３Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６４９３Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００４５】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６４９３Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００４６】
（ｂ）６４８７Daタンパク質（図４〜５）
図４は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６４８７Daのタンパク質（６４８７Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図５は、図４に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６４８７Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６４８７Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００４７】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６４８７Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００４８】
（ｃ）３２４４Daタンパク質（図６）
図６は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が３２４４Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、３２４４Daタンパク質が有意に増加していることが、当該図面において明確に示されている。
【００４９】
よって、ｐＨ７の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る３２４４Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
（ｄ）６６９１Daタンパク質（図７〜８）
図７は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６６９１Daのタンパク質（６６９１Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図８は、図７に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６６９１Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６６９１Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５０】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６６９１Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５１】
（ｅ）６６８４Daタンパク質（図９〜１０）
図９は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が６６８４Daのタンパク質６６８４Da＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図１０は、図９に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（６６８４Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plot とROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、６６８４Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５２】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る６６８４Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５３】
（ｆ）３３４３Daタンパク質（図１１〜１２）
図１１は、上記のｐＨ９のバッファーを用いて調製したＦｒ１画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が３３４３Daのタンパク質（３３４３＃１）量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。また、図１２は、図１１に示した系において、結合・洗浄バッファーをｐＨ４の結合・洗浄バッファーに代えて捕捉されたタンパク質（３３４３Da＃２）についての結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。両系とも、子宮体癌群において、３３４３Daタンパク質が有意に増加していることが、これらの図面において明確に示されている。
【００５４】
よって、ｐＨ７又はｐＨ４の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る３３４３Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５５】
（ｇ）１９３１８Daタンパク質（図１３）
図１３は、上記のｐＨ７のバッファーを用いて調製した画分を、陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(HIGH）］とｐＨ５の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が１９３１８Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、１９３１８Daタンパク質が有意に増加していることが、当該図面において明確に示されている。
【００５６】
よって、ｐＨ５の緩衝液で平衡化された陽イオン交換チップに捕捉され得る１９３１８Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが、明らかになった。
【００５７】
以上、図２〜１３に示したように、子宮体癌群における、陽イオン交換チップにて捕捉され得る、質量中心が、６４９３Da（＃１，＃２）、６４８７Da（＃１，＃２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，＃２）、６６８４Da（＃１，＃２）、３３４３Da（＃１，＃２）、及び、１９３１８Da、のピークは、それぞれ有意差をもって、コントロール群よりも強いピークとして認められた。この結果より、これらのピークに相当する血中タンパク質のうち１種以上を選んで、そのピーク（血中存在量）の増大を、標準値（健常人におけるピーク値）との比較において検出指標とすることにより、極めて鋭敏に子宮体癌を検出することが可能であることが判明した。これらのうち、３３４３Daタンパク質と、６６８４Daタンパク質と、６６９１Daタンパク質では、＃１と＃２の双方とも、P値＜０．０００００１と極めて高い有意差を示した。
【００５８】
子宮体癌群サンプルで強度が減少しているピーク
子宮体癌群サンプルで、健常人群サンプルに比べて強度が減少しているピークとして、質量中心が、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daのピークに、該当する強度の減少が認められた。
【００５９】
（ａ）５６２５Daタンパク質（図１４）
図１４は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が５６２５Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、５６２５Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６０】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る５６２５Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６１】
（ｂ）９３７０Daタンパク質（図１５）
図１５は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が９３７０Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、９３７０Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６２】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る９３７０Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６３】
（ｃ）２８１６５Daタンパク質（図１６）
図１６は、銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の質量分布中心が２８１６５Daのタンパク質量の分布を、コントロール（健常人）群と子宮体癌群との間で比較した結果を示した図面（Group box and whiskers plotとROC plot）である。子宮体癌群において、２８１６５Daタンパク質が有意に減少していることが、当該図面において明確に示されている。
【００６４】
よって、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る２８１６５Daタンパク質は、本検出方法において子宮体癌のマーカーとして用いることが可能であることが明らかになった。
【００６５】
以上図１４〜１６に示したように、子宮体癌群における、銅イオン修飾チップにて捕捉され得る、質量中心が、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daのピークは、それぞれ有意差をもって、コントロール群よりも弱いピークとして認められた。この結果より、これらのピークに相当する血中タンパク質のうち１種以上を選んで、そのピーク（血中存在量）の減少を、標準値（健常人におけるピーク値）との比較において検出指標とすることにより、極めて鋭敏に子宮体癌を検出することが可能であることが判明した。
【００６６】
（Ｂ）マルチマーカー解析
階層的クラスター解析
階層的クラスター解析とは、未だ分類されていない対象を特定の基準にて分類する方法であり、通常、対象間の類似度により分類される。本実施例においては、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）を基準として、コントロール群と子宮体癌群からなる上述した全４０検体を２群解析した。その結果、コントロール群と子宮体癌群が明確に分類分けされた。よって、血液検体における特定分子量間のタンパク質の質量分布のパターンについて、階層的クラスター解析を行うことにより、子宮体癌を検出可能であることが示された。
【００６７】
主成分解析
主成分解析は、複数変数のデータのばらつき傾向から少数の合成された新たな変数（主成分）を求め、これらの主成分を用いて、未だ分類されていない対象を分類する方法である。本実施例の場合、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）から、表２に示すPercent varianceの高い上位3つの主成分１(PCAcomp1)、主成分２(PCAcomp2)、主成分３(PCAcomp3)が新たに合成され、これらを組み合わせて解析を行った。各主成分において寄与率（Importance)の高いピークを上位10までリストアップした（表２）。その結果、PCAcomp1と3の組み合わせ、PCAcomp2と3の組み合わせ、およびPCAcomp1,2,3の組み合わせで、コントロール群と子宮体癌群を分類することができた。よって、血液検体における特定分子量間のタンパク質の質量分布のパターンについて、主成分解析を行うことにより、子宮体癌を検出可能であることが示された。
【００６８】
【表２】
【００６９】
また、上述した１５種類のピーク群［６４９３Da（＃１，２）、６４８７Da（＃１，２）、３２４４Da、６６９１Da（＃１，２）、６６８４Da（＃１，２）、３３４３Da（＃１，２）、１９３１８Da、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daの分子量分布中心を示すピーク群］のみを使用して、上記と同様の主成分解析を行った。その結果、この場合においても、コントロール群と子宮体癌群を分類することができた。
【００７０】
Classification解析
Classification解析は、すでに分類されている対象を新しい基準を用いて分類する方法であり、一般的には、分類されている対象によりルールを構築するステップと、分類されていない対象を当該ルールに照合して分類するステップに分かれる。本実施例の場合は、Biomarker Patterns Software version5.0を用いてClassification解析を行った。具体的には、P値が0.05以下のピークのうちノイズピークを除いた全試験条件の７０１ピークの高さ（当該ピークに相当するタンパク質の存在量）を基準として、コントロール群と子宮体癌群とを分類するルールを構築した。
【００７１】
１）コントロール群と子宮体癌群の2群解析によるP値が0.05以下のピークからノイズピークを除いたCHCA条件のみを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークは、シングルマーカー解析時にCandidate Peakに選ばれているMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７２】
２）コントロール群と子宮体癌群の2群解析によるP値が0.05以下のピークでノイズピークを除いた全試験条件の701ピークを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークは、シングルマーカー解析時にCandidate Peakに選ばれているMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７３】
３）上記の１５種類のCandidate Peakのみを使用してClassification解析を行った。最初の分類分けに使用されたピークはMW3343であった。このピークを用いて分類した結果、Specificity90%、Sensitivity95%の精度で診断可能であることが判明した。
【００７４】
まとめ
上述したシングルマーカー解析及びマルチマーカー解析を行うことにより、子宮体癌群とコントロール群を分類分け可能であることが示された。これらの解析により、血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜３００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出することが可能であることが明らかになった。
【図面の簡単な説明】
【００７５】
【図１】シングルマーカー解析におけるデータ解析の流れを図式化して示した図面である。
【図２】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４９３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図３】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４９３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図４】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４８７Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図５】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６４８７Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図６】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３２４４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図７】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６９１Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図８】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(LOW）］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６９１Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図９】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６８４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１０】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の６６８４Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１１】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ７の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３３４３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１２】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の３３４３Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１３】陽イオン交換チップ［CM10：マトリクス分子はSPA(HIGH）］とｐＨ５の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の１９３１８Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１４】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の５６２５Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１５】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の９３７０Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【図１６】銅イオン修飾チップ［IMAC30：マトリクス分子はCHCA］とｐＨ４の結合・洗浄バッファーで処理して測定を行った場合の２８１６５Daのタンパク質を示すピークについて解析した結果を示す図面である。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出する、検出方法。
【請求項２】
前記検出方法において、被験者の血液検体中のタンパク質における分子量の測定範囲が、１０００〜２００００Daである、請求項１記載の検出方法。
【請求項３】
前記検出方法において、前記質量分布のパターンの差異の検出手段として、単変量解析、あるいは、階層的クラスター解析、主成分解析及びclassification解析から選ばれる１種以上の多変量解析、を用いる、請求項１又は２記載の検出方法。
【請求項４】
前記検出方法において、下記（１）及び／又は（２）を行う、請求項１〜３のいずれかに記載の検出方法。
（１）被験者の血液検体中において、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも増加している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
（２）被験者の血液検体中において、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも減少している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【請求項５】
前記検出方法において、項目（１）に係わる、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、陽イオン交換型固相担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項４記載の検出方法。
【請求項６】
前記検出方法において、６４９３Da、６４８７Da、６６９１Da、６６８４Da、及び、３３４３Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、ｐH４又はｐH７の緩衝液にて平衡化された陽イオン交換型固相担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項５記載の検出方法。
【請求項７】
前記検出方法において、項目（１）に係わる血中タンパク質が、３３４３Da、６６８４Da、及び、６６９１Daからなる群の質量分布中心を実質的に有するタンパク質から選ばれる１種以上である、請求項４〜６のいずれかに記載の検出方法。
【請求項８】
前記検出方法において、項目（２）に係わる、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、金属イオン修飾担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項４〜７のいずれかに記載の検出方法。
【請求項９】
前記検出方法において、金属イオン修飾担体の金属イオンが銅イオンである、請求項８記載の検出方法。
【請求項１０】
前記検出方法が、固相担体に捕捉された血中タンパク質に対してレーザー光線を照射することにより、当該血中タンパク質をイオン化した状態で当該固相担体から脱離させ、当該脱離タンパク質を、飛行時間型質量分析計にて検出することにより行われる、請求項１〜９のいずれかに記載の検出方法。
【請求項１１】
前記検出方法において、血液検体が血清検体である、請求項１〜１０のいずれかに記載の検出方法。
【請求項１２】
前記検出方法において、血清検体が、陰イオン交換固相担体に対する接触処理がなされた血清検体である、請求項１１記載の検出方法。
【請求項１】
被験者の血液検体中のタンパク質における分子量１０００〜２０００００Daの範囲の質量分布と発現強度を測定し、当該質量分布と相対発現強度のパターンを、健常人におけるパターンと比較して見出される差異を指標として、当該被験者における子宮体癌を検出する、検出方法。
【請求項２】
前記検出方法において、被験者の血液検体中のタンパク質における分子量の測定範囲が、１０００〜２００００Daである、請求項１記載の検出方法。
【請求項３】
前記検出方法において、前記質量分布のパターンの差異の検出手段として、単変量解析、あるいは、階層的クラスター解析、主成分解析及びclassification解析から選ばれる１種以上の多変量解析、を用いる、請求項１又は２記載の検出方法。
【請求項４】
前記検出方法において、下記（１）及び／又は（２）を行う、請求項１〜３のいずれかに記載の検出方法。
（１）被験者の血液検体中において、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも増加している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
（２）被験者の血液検体中において、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上を検出し、当該１種以上の血中タンパク質の量が健常人よりも減少している場合、これを当該被験者における子宮体癌の指標とする。
【請求項５】
前記検出方法において、項目（１）に係わる、６４９３Da、６４８７Da、３２４４Da、６６９１Da、６６８４Da、３３４３Da、及び、１９３１８Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、陽イオン交換型固相担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項４記載の検出方法。
【請求項６】
前記検出方法において、６４９３Da、６４８７Da、６６９１Da、６６８４Da、及び、３３４３Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、ｐH４又はｐH７の緩衝液にて平衡化された陽イオン交換型固相担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項５記載の検出方法。
【請求項７】
前記検出方法において、項目（１）に係わる血中タンパク質が、３３４３Da、６６８４Da、及び、６６９１Daからなる群の質量分布中心を実質的に有するタンパク質から選ばれる１種以上である、請求項４〜６のいずれかに記載の検出方法。
【請求項８】
前記検出方法において、項目（２）に係わる、５６２５Da、９３７０Da、及び、２８１６５Daからなる群の質量分布中心を実質的に有する血中タンパク質から選ばれる１種以上が、金属イオン修飾担体に捕捉される性質を有するタンパク質である、請求項４〜７のいずれかに記載の検出方法。
【請求項９】
前記検出方法において、金属イオン修飾担体の金属イオンが銅イオンである、請求項８記載の検出方法。
【請求項１０】
前記検出方法が、固相担体に捕捉された血中タンパク質に対してレーザー光線を照射することにより、当該血中タンパク質をイオン化した状態で当該固相担体から脱離させ、当該脱離タンパク質を、飛行時間型質量分析計にて検出することにより行われる、請求項１〜９のいずれかに記載の検出方法。
【請求項１１】
前記検出方法において、血液検体が血清検体である、請求項１〜１０のいずれかに記載の検出方法。
【請求項１２】
前記検出方法において、血清検体が、陰イオン交換固相担体に対する接触処理がなされた血清検体である、請求項１１記載の検出方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【公開番号】特開２００７−５７３０９（Ｐ２００７−５７３０９Ａ）
【公開日】平成１９年３月８日（２００７．３．８）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−２４１１１４（Ｐ２００５−２４１１１４）
【出願日】平成１７年８月２３日（２００５．８．２３）
【出願人】（５０５３１７５４０）
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１９年３月８日（２００７．３．８）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年８月２３日（２００５．８．２３）
【出願人】（５０５３１７５４０）
【Ｆターム（参考）】
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