抗ＨＩＶ抗体
本発明の目的は、高親和性抗ＨＩＶ抗体を提供することである。本発明によれば、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク 本発明の目的は、高親和性抗ＨＩＶ抗体を提供することである。本発明によれば、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質と結合し、かつ、解離定数がＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の抗体又はその断片、前記抗体又はその断片を含有する医薬組成物、ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫を、配列番号６に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドを抗原として免疫し、得られる動物又は子孫から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法が提供される。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
本発明は、ＨＩＶの外皮膜に存在し分子量約１２０ｋＤを有する糖タンパク質ｇｐ１２０に高親和性に結合する抗体及びその産生細胞に関する。また、本発明は、上記抗体を含有する医薬組成物に関する。
【背景技術】
後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）は、ＨＩＶ（Ｈｕｍａｎ Ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ Ｖｉｒｕｓ）の感染後、徐々に感染者の免疫能が低下して合併症を起こすようになった状態を意味する。
ＨＩＶは宿主の体内に侵入すると、ＣＤ４陽性細胞、特にＣＤ４＋Ｔリンパ球（ヘルパーＴ細胞）に感染する。ＣＤ４陽性細胞への感染に関与するタンパク質は、ＨＩＶの外被糖タンパク質ｇｐ１２０である。ｇｐ１２０は、ＨＩＶの外皮膜に存在し、分子量約１２０キロダルトン（ｋＤ）を有する糖タンパク質であり、細胞表面のＣＤ４を特異的受容体として結合する。そして、ＨＩＶはＣＤ４＋リンパ球に感染後、細胞内に侵入し、脱外被を起こして核酸（ＲＮＡ）を遊離する。その後、逆転写酵素によるＤＮＡ合成、転写、翻訳がなされ、ウイルスタンパク質が合成される。ウイルスタンパク質は細胞膜に移動してウイルス粒子となり放出される。
ＨＩＶは抗原変異が激しいため、ワクチンを作製することが困難であり、現在有効なワクチンは開発されていない。また、ＨＩＶ遺伝子は感染細胞内の染色体に組み込まれるため、感染したＨＩＶを完全に取り除くという根本的治療は極めて困難である。
現在、ＡＩＤＳの発病を遅らせ、延命効果が認められる薬剤としてＡＺＴ（アジトチミジン）などがあり、有効性が期待できる治療薬も次々と開発されつつある。しかしながら、まだ決定的な治療薬は確立していない。
一方、ＨＩＶを効果的に中和する能力を持ち、ＡＩＤＳの予防や診断に役立つ抗体を得るために種々の試みがなされている。ｇｐ１２０はＨＩＶの感染にとって最も重要な分子の一つであるため（ＭｃＤｏｕｇａｌ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３１，３８２−３８５（１９８６））、ＨＩＶの感染の効果的な抑制、感染予防及び診断には、ｇｐ１２０を標的とすることができる。これまでに、ＨＩＶのｇｐ１２０の前駆体であるｇｐ１６０のアミノ酸配列のうち、第３０８−３３１番目以内にある一つのエピトープを認識する「０．５β」と呼ばれる抗体が作製されている（特許第２７９７０９９号公報）。しかし、抗原との結合力をさらに高めるには、ＨＩＶのｇｐ１２０と反応して、効果的にウイルスを中和することができる高親和性抗体を開発することが必要である。
【発明の開示】
本発明は、ＨＩＶを中和する能力を有する高親和性抗体、及び該抗体を含む医薬組成物を提供することを目的とする。また、後天性免疫不全症候群の治療に用いられる医薬組成物を提供することを目的とする。
本発明者は、上記課題を解決するために誠意研究を行った結果、ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物を用いてｇｐ１２０により免疫すると、ＨＩＶの活性を中和し、かつＨＩＶと高親和性に結合する抗体を産生することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の通りである。
（１）ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質と結合し、かつ、解離定数がＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の抗体又はその断片。
上記抗体又はその断片は、ｇｐ１２０糖タンパク質のうち第３０８−３３０番目のアミノ酸配列（例えば配列番号６に示されるもの）の少なくとも一部を認識することができる。
本発明の抗体又はその断片は、非ヒト哺乳動物からの血清から採取する抗体、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。
本発明の抗体又はその断片は、例えば受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４であるハイブリドーマ細胞〔表示名：「Ａｎｔｉ−ＮＬ４３ｍｏｎｏ．Ｃｌｏｎｅ Ｎｏ．Ｇ２−２５ハイブリドーマ細胞」、寄託先：独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６（郵便番号３０５−８５６６））、寄託日：２００４年２月２５日〕により産生される。
（２）上記抗体又はその断片のＶ領域を含む、ヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片。
（３）配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫から採取される、高親和性抗体産生細胞。
また本発明は、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４である、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体産生細胞を提共する。
（４）ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト動物又はその子孫を、配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫し、得られる動物又は子孫から抗体を採取することを特微とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
（５）上記（３）記載の高親和性抗体産生細胞とミエローマ細胞との融合細胞、又は受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４で表されるモノクローナル抗体産生細胞を培養し、得られる培養物から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
（６）上記（１）記載の抗体又はその断片、及び上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有する医薬組成物。
本発明の医薬組成物は、後天性免疫不全症候群の治療薬として使用することが可能である。
（７）上記（１）記載の抗体若しくはその断片、又は上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体若しくはそれらの断片と、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質とを反応させることを特徴とするＨＩＶの検出方法。
（８）上記（１）記載の抗体又はその断片、及び上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有するＨＩＶ検出用キット。
【図面の簡単な説明】
図１は、Ｂ細胞におけるＧＡＮＰの発現の増加を示す図である。
図２は、ＥＬＩＳＡを用いて各抗体によるｇｐ１２０（３０８−３３０）ペプチドを検出した結果を示す図である。
図３は、各クローンの解離定数を測定した結果を示す図である。
図４は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープに対する結合能を評価した結果を示す図である。
図５は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープに対する結合能を評価した結果を示す図である。
図６は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体の中和活性試験結果を示す図である。
図７は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体の中和活性試験結果を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】
１．概要
本発明の抗体は、ＧＡＮＰトランスジェニック哺乳動物に、ＨＩＶのｇｐ１２０の一部、特にｇｐ１２０のアミノ酸配列のうち第３０８−３３０のアミノ酸配列からなるペプチドを抗原として免疫することにより得られたものである。ｇｐ１２０のアミノ酸配列のうち第３０８−３３０番目の配列（「ｇｐ１２０（３０８−３３０）」という）を認識する抗体は、ウイルス中和活性、及び感染細胞による合胞体形成抑制活性を有することが知られているが（Ｓｋｉｎｎｅｒ ＭＡ．ｅｔ ａｌ．，ＡＩＤＳ Ｒｅｓ．Ｈｕｍ．Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ（１９８８），４（３），１８７−１９７）、本発明の抗体は、ｇｐ１２０（３０８−３３０）と高親和性に結合することを特徴とするものである。
ここで、ＧＡＮＰとは、胚中心結合核タンパク質（Ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｎｕｃｌｅａｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）と呼ばれている核タンパク質である。ＧＡＮＰは、遺伝子に変異を誘導するプロセスにおいて直接的及び間接的に必要な分子である。また、ＧＡＮＰは、遺伝子変異を修復する際に、高親和性の抗体が得られるようにＶ領域の変異の誘導を促す能力を保有していることから、ＧＡＮＰをコードする遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物（「ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物」という）は、このＧＡＮＰ遺伝子の導入によって、獲得性免疫の高親和性抗体産生を促進することができる。また、このＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、速やかに抗原に対する結合力の高い抗体を産生することができる。従って、上記トランスジェニック非ヒト哺乳動物を、ＨＩＶのｇｐ１２０のアミノ酸配列のペプチド（例えばｇｐ１２０（３０８−３３０））を抗原に用いて免疫することで、従来は得られないような高親和性の抗体を簡便に得ることができる。
上述の通り、本発明により、ＨＩＶ中和活性、感染細胞の合胞体形成抑制作用を有し、従来は得られないような高親和性の抗ＨＩＶ抗体を得ることができる。そして、得られた抗体を含む医薬組成物は、ＡＩＤＳの治療に用いることができる。
上記抗体を産生する細胞は、ｇｐ１２０で免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物から得られた脾臓Ｂ細胞又はリンパ節細胞単独でもよく、Ｂ細胞又はリンパ細胞とミエローマ細胞とを融合させたハイブリドーマ細胞でもよい。本発明は、上記抗体を産生する細胞についても提供する。
さらに、ＨＩＶ感染を確認する臨床検査においては、ＨＩＶを高感度に検出することが重要である。その検出手段として、本発明の高親和性抗ＨＩＶ抗体を用いることができる。従って、本発明は、抗ＨＩＶ抗体を含むＨＩＶ検出キットを提供するものである。
２．抗原の調製
ＨＩＶのｇｐ１２０はデータベース等から配列情報を得ることが可能であり（ＰＲＦ １１０２２４７Ａ，ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ａｄ．ｊｐ／ｄｂｇｅｔ−ｂｉｎ／ｗｗｗ＿ｂｇｅｔ？ｐｒｆ：１１０２２４７Ａ）、そのアミノ酸配列は配列番号５に示されるものである。
そして、ｇｐ１２０（３０８−３３０）のポリペプチド配列は、
で表される２３アミノ酸残基であり（Ｌｅｅ Ｒａｔｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３１３，２７７−２８４，１９８５）、このアミノ酸配列のうちの少なくとも一部（全部又は一部）を含むポリペプチド又はペプチド（単にペプチドともいう）抗原として使用することができる。
ここで、抗原に用いる上記配列番号６で示されるペプチド配列の「アミノ酸配列の少なくとも一部」とは、長さに特に限定されるものではない。例えば２３アミノ酸残基のうち連続する８アミノ酸残基以上、例えば８、１０、１２、１６、２０、２３アミノ酸残基が挙げられる。また、選択する場所は、配列番号６の中の連続したアミノ酸であれば特に限定されず、任意の場所を選択することができる。例えば、７〜８アミノ酸残基を抗原に用いる場合には、配列番号６で示される２３残基のアミノ酸配列を、Ｎ末端から順に７〜８アミノ酸ずつ３つの領域に渡ってアミノ酸配列を選択してもよく、Ｎ末端から１アミノ酸ずつＣ末端側にずらした領域の配列を選択してもよい。
抗原には、配列番号６及び上記のアミノ酸配列の少なくとも一部を、単独又は混合して用いることができる。
また、上記ペプチドをキャリアタンパク質と結合させ、該ペプチドを側鎖として多数持つように抗原を作製してもよい。この場合は、上記ペプチドのＮ末端に、キャリアタンパク質を結合させるためのシステイン残基を付加することができる。
ペプチドの作製方法は、化学合成でも、大腸菌などを用いる生化学的合成でもよく、これらは当業者に周知の方法を用いることができる。
本発明のペプチドの化学合成を行う場合は、ペプチドの合成の周知方法によって合成することができる。例えば、アジド法、酸クロライド法、酸無水物法、混合酸無水物法、ＤＣＣ法、活性エステル法、カルボイミダゾール法、酸化還元法等が挙げられる。また、その合成は、固相合戍法及び液相合成法のいずれをも適用することができる。市販のペプチド合成装置（島津製作所製ＰＳＳＭ−８など）を使用してもよい。
反応後は、溶媒抽出、蒸留、カラムクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー、再結晶などの通常の精製法を組み合わせて本発明のペプチドを精製することができる。
本発明のペプチドの生化学的合成を行う場合は、まず、該ペプチドをコードするＤＮＡを設計し合成する。そして、上記ＤＮＡを適当なベクターに連結することによってタンパク質発現用組換えベクターを得、該組換えベクターを目的遺伝子が発現し得るように宿主中に導入することによって形質転換体を得ることができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌ Ｄ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，３ｒｄ ｅｄｉｔｉｏｎ，ＣＳＨＬ Ｐｒｅｓｓ，２００１）。
ベクターには、宿主微生物で自律的に増殖し得るファージ又はプラスミドが使用される。プラスミドＤＮＡとしては、大腸菌、枯草菌又は酵母由来のプラスミドなどが挙げられ、ファージＤＮＡとしてはλファージが挙げられる。さらに、動物ウイルス、昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。
組換えベクターの作製は、精製されたＤＮＡを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターＤＮＡの制限酵素部位等に挿入してベクターに連結すればよい。
形質転換に使用する宿主としては、目的の遺伝子を発現できるものであれば特に限定されるものではない。例えば、細菌（大腸菌、枯草菌等）、酵母、動物細胞（ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞等）、昆虫細胞又は昆虫が挙げられる。ヤギ等の哺乳動物を宿主として使用することも可能である。
宿主への組換えベクターの導入方法は公知であり、任意の方法（例えばカルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法等）が挙げられる。
本発明において、本発明のペプチドは、前記形質転換体を培養し、その培養物から採取することにより得ることができる。「培養物」とは、（ａ）培養上清、（ｂ）培養細胞若しくは培養菌体又はその破砕物のいずれをも意味するものである。
培養法は、当分野において周知である（前記Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇを参照）。
培養後、目的ペプチドが菌体内又は細胞内に生産される場合には、菌体又は細胞を破砕することによりペプチドを抽出する。また、目的ペプチドが菌体外又は細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離等により菌体又は細胞を除去する。その後、ペプチドの単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることにより、目的のペプチドを単離精製することができる。
本発明においては、ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳によるペプチド合成を採用することもできる。この場合は、ＲＮＡを鋳型にする方法とＤＮＡを鋳型にする方法（転写／翻訳）の２通りの方法を用いることができる。例えば、鋳型ＤＮＡとしては、翻訳開始点の上流にプロモーターとリボゾーム結合部位を有している該ペプチドをコードするＤＮＡ、あるいは翻訳開始点の上流に転写に必要なプロモーター等が組み込まれたＤＮＡが挙げられる。ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳システムは、市販のシステム、例えばＥｘｐｒｅｓｓｗａｙＴＭシステム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、ＰＵＲＥＳＹＳＴＥＭ（登録商標；ポストゲノム研究所）、ＴＮＴシステム（登録商標；Ｐｒｏｍｅｇａ社）などを用いることができる。ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳システムによるペプチド合成後は、上記の一般的な生化学的方法を単独又は組み合わせることにより、目的のペプチドを単離精製することができる。
上記のように得られたペプチドに結合させるキャリアタンパク質としては、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、ｋｅｙｈｏｌｅ ｌｉｍｐｅｔ ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ（ＫＬＨ）、ｈｕｍａｎ ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ，ニワトリガンマグロブリンを挙げることができる。
３．ＧＡＮＰ
ＧＡＮＰは、酵母Ｓａｃ３タンパク質とホモロジーを有する２１０ｋＤの核タンパク質である（ＷＯ００／５０６１１号公報）。そして、ＳＡＣ３はアクチン形成の抑制物質として特徴づけられている。また、ＧＡＮＰは、濾胞樹状細胞（ｆｏｌｌｉｃｕｌａｒ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌｓ：ＦＤＣ）により囲まれる胚中心（ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ，ＧＣ）Ｂ細胞において選択的にアップレギュレートされ、リン酸化依存性ＲＮＡプライマーゼ活性を有し、Ｂ細胞の細胞周期調節に関与しているタンパク質である（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８）。
本発明においては、ＧＡＮＰタンパク質のアミノ酸配列を、マウスについて配列番号２に、ヒトについて配列番号４に示す。また、ＧＡＮＰタンパク質をコードする遺伝子（ＧＡＮＰ遺伝子という）の塩基配列を、マウスについて配列番号１に、ヒトについて配列番号３に示す。なお、上記アミノ酸配列及び塩基配列は、国際公開ＷＯ００／５０６１１号公報にも記載されている。
またＧＡＮＰタンパク質は変異体でもよく、配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列において１又は複数のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列であってＲＮＡプライマーゼ活性を有するタンパク質であってもよい。例えば、配列番号２又は４に示すアミノ酸配列のうち１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が欠失しており、１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が他のアミノ酸で置換されており、及び／又は１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））の他のアミノ酸が付加されたアミノ酸配列からなり、かつ上記ＧＡＮＰタンパク質と同様のＲＮＡプライマーゼ活性を有するＧＡＮＰ変異型タンパク質を使用することもできる。
「ＲＮＡプライマーゼ活性」とは、ＲＮＡ複製において、５’→３’方向に進む鎖の伸長とは逆向きの鎖（ラギング鎖）を合成する際に、伸長の開始点となる短いプライマーのＲＮＡを合成する酵素活性を意味する。通常はαプライマーゼと呼ばれるＤＮＡポリメラーゼαと結合する分子が用いられるが、胚中心Ｂ細胞では第二のプライマーゼであるＧＡＮＰプライマーゼも誘導されている。
ＧＡＮＰタンパク質は、上記配列番号２若しくは４に示すアミノ酸配列又はこれらの変異型アミノ酸配列のほか、Ｎ末端側の一部の配列（例えば配列番号２に示すアミノ酸配列の１〜６００番、好ましくは１３９〜５６６番）又はこれらの変異型アミノ酸配列を有するものも含まれる。
本発明において、動物に導入するためのＧＡＮＰ遺伝子は、上記ＧＡＮＰタンパク質、Ｎ末側の一部の配列、又は変異型タンパク質をコードする遺伝子が挙げられる。そのような遺伝子として、例えば配列番号１又は３に示す塩基配列を有するものを使用することができる。配列番号１又は３に示す塩基配列のうち、コード領域のみの塩基配列であってもよい。また、上記配列番号１又は３に示す塩基配列に相補的な配列と、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ＲＮＡプライマーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子を使用することも可能である。
「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイズさせた後の洗浄時の条件であって塩（ナトリウム）濃度が１５０〜９００ｍＭであり、温度が５５〜７５℃、好ましくは塩（ナトリウム）濃度が２５０〜４５０ｍＭであり、温度が６８℃での条件をいう。
遺伝子に変異を導入するには、Ｋｕｎｋｅｌ法やＧａｐｐｅｄ ｄｕｐｌｅｘ法等の公知手法により、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット、例えばＧｅｎｅＴａｉｌｏｒＴＭ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）、ＴａＫａＲａ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｍｕｔａｎ−Ｋ、Ｍｕｔａｎ−Ｓｕｐｅｒ Ｅｘｐｒｅｓｓ Ｋｍ等：タカラバイオ社製）を用いて行うことができる。
変異遺伝子の詳細並びに取得方法は国際公開ＷＯ００／５０６１１号公報にも記載されている。
なお、抗μ抗体及び抗ＣＤ−４０モノクローナル抗体でＢ細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏ刺激すると、ＧＡＮＰ発現のアップレギュレーションのみならず、ＧＡＮＰタンパク質のアミノ酸配列のうち特定のセリン残基（例えば５０２番目のセリン：Ｓ５０２）のリン酸化を引き起こす。この反応は、ＧＡＮＰのＲＮＡプライマーゼ活性についてキーとなる反応である（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９８，１０２７９−１０２８３）。ＧＡＮＰタンパク質のＮ末端側のＲＮＡプライマーゼドメインはセリン残基を含んでおり、そのリン酸化はｉｎ ｖｉｔｒｏにおいてＣｄｋ２によって触媒される。Ｃ末端側ドメインにより、ＧＡＮＰはＭＣＭ３複製ライセンシング因子に結合する（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８；Ａｂｅ，Ｅ．ｅｔ ａｌ．（２０００）Ｇｅｎｅ ２５５，２１９−２２７）。
なお、ＧＡＮＰ遺伝子欠損マウスは胎生致死であるが、ＣＤ１９−Ｃｒｅマウスとｆｌｏｘ−ｇａｎｐ遺伝子のマウスを交配して作製したＢ細胞に選択的にＧＡＮＰ遺伝子を欠損したｃｏｎｄｉｔｉｏｎａｌ ｔａｒｇｅｔｉｎｇマウスを作製して、Ｔ細胞依存性抗原であるｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ（ＮＰ）−ニワトリガンマグロブリン抗原で免疫してＮＰ−ハプテン特異的な抗体産生を調べたところ、高親和性抗体産生が著しく障害されており、ＧＡＮＰ分子が抗体の親和性亢進に重要な機能をしていることが明らかになった。
４．ＧＡＮＰ遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物
ｇｐ１２０による免疫の対象となる動物は、ＧＡＮＰ遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物であり、当該トランスジェニック非ヒト哺乳動物は、好ましくは、導入したＧＡＮＰ遺伝子をＢ細胞で発現することができる。
（１）ＧＡＮＰ遺伝子とその関連分子
ＧＡＮＰ遺伝子とその関連分子で形成される複合体は、遺伝子に変異を誘導するプロセスで直接および間接的に必要な分子である。ＧＡＮＰタンパク質は、遺伝子変異を修復する際に、高親和性の抗体が得られるようにＶ領域の変異の誘導を促す能力を保有していることから、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、このＧＡＮＰ遺伝子又はその変異遺伝子の導入によって、獲得性免疫の高親和性抗体産生を促進することができる。また、この遺伝子を過剰に発現するトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、速やかに抗原に対する結合力の高い抗体を産生することができる。従って、上記トランスジェニック非ヒト哺乳動物を所定の抗原で免疫することで、従来では得られないような高親和性の抗体を簡便に得ることができる。その結果、難治性の病原微生物や異物を排除できるポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体を得ることができる。また、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物を用いてヒト型化抗体を作製することによって、あるいは、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物が産生する抗体のＶ領域を含む一本鎖抗体を作製することによって、抗体療法の効力を飛躍的に高めることが可能となる。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、ＧＡＮＰ又はその変異遺伝子の導入によって、Ｂ細胞で高親和性抗体の産生を促進することができ、前記高親和性抗体産生細胞はアポトーシスを誘導するシグナルに対して抵抗性を有する。
（２）ＧＡＮＰ遺伝子導入用哺乳動物
本発明における「哺乳動物」とは、ウシ、ウマ、ブタ、ヤギ、ウサギ、イヌ、ネコ、マウス、ラット、ハムスター及びモルモット等の任意の非ヒト哺乳動物を意味し、好ましくはマウス、ウサギ、ラットまたはハムスターであり、特に好ましくはマウスである。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、未受精卵、受精卵、精子およびその始原細胞を含む胚芽細胞などに対して、好ましくは、非ヒト哺乳動物の発生における胚発生の段階（さらに好ましくは、単細胞または受精卵細胞の段階でかつ一般に８細胞期以前）の細胞に対して、リン酸カルシウム法、電気パルス法、リポフェクション法、凝集法、マイクロインジェクション法、パーティクルガン法、ＤＥＡＥ−デキストラン法などにより、ＧＡＮＰ遺伝子を導入することにより作製することができる。また、上記遺伝子導入方法により、体細胞、生体の臓器、組織細胞などに目的とするＧＡＮＰ遺伝子を転移させ、細胞培養、組織培養などに利用することもできる。さらに、これら細胞を上述の胚芽細胞と公知の細胞融合法により融合させることにより、トランスジェニック非ヒト哺乳動物を作製することもできる。
ＧＡＮＰ遺伝子を対象動物に導入させる際、当該遺伝子を対象となる動物の細胞で発現させうるプロモーターの下流に連結した遺伝子構築物として導入することが好ましい。具体的には、目的とするＧＡＮＰ遺伝子を有する各種哺乳動物由来のＧＡＮＰ遺伝子を発現させうる各種プロモーターの下流に、ＧＡＮＰ遺伝子を連結したベクターを、対象となる哺乳動物の受精卵（例えば、マウス受精卵）にマイクロインジェクションすることによって、目的とするＧＡＮＰ遺伝子を高発現するトランスジェニック非ヒト哺乳動物を作製することができる。
（３）発現ベクター
ＧＡＮＰ遺伝子の発現ベクターとしては、大腸菌由来のプラスミド、枯草菌由来のプラスミド、酵母由来のプラスミド、λファージなどのバクテリオファージ、モロニー白血病ウイルスなどのレトロウイルス、ワクシニアウイルス又はバキュロウイルスなどの動物又は昆虫ウイルスなどが用いられる。
遺伝子発現の調節を行うプロモーターとしては、たとえばウイルス由来遺伝子のプロモーター、各種哺乳動物（ヒト、ウサギ、イヌ、ネコ、モルモット、ハムスター、ラット、マウスなど）および鳥類（ニワトリなど）由来遺伝子のプロモーターなどを使用することが可能である。
ウイルス由来遺伝子のプロモーターとしては、例えばサイトメガロウイルス、モロニー白血病ウイルス、ＪＣウイルス、乳癌ウイルス等由来遺伝子のプロモーターが挙げられる。
各種哺乳動物及び鳥類由来遺伝子のプロモーターとしては、例えば、アルブミン、インスリンＩＩ、エリスロポエチン、エンドセリン、オステオカルシン、筋クレアチンキナーゼ、血小板由来成長因子β、ケラチンＫ１，Ｋ１０およびＫ１４、コラーゲンＩ型およびＩＩ型、心房ナトリウム利尿性因子、ドーパミンβ−水酸化酵素、内皮レセプターチロシンキナーゼ、ナトリウムカリウムアデノシン３リン酸化酵素、ニューロフィラメント軽鎖、メタロチオネインＩ及びＩＩＡ、メタロプロティナーゼ１組織インヒビター、ＭＨＣクラスＩ抗原、平滑筋αアクチン、ポリペプチド鎖延長因子１α（ＥＦ−１α）、βアクチン、α及びβミオシン重鎖、ミオシン軽鎖１及び２、ミエリン基礎タンパク、血清アミロイドＰコンポーネント、ミオグロビン、レニンなどの遺伝子のプロモーターが挙げられる。
上記ベクターは、トランスジェニック非ヒト哺乳動物において目的とするメッセンジャーＲＮＡの転写を終結するターミネターを有していてもよい。その他、ＧＡＮＰ遺伝子をさらに高発現させる目的で、各遺伝子のスプライシングシグナル、エンハンサー領域、真核生物遺伝子のイントロンの一部をプロモーター領域の５’上流、プロモーター領域と翻訳領域間、あるいは翻訳領域の３’下流に連結することも所望により可能である。
本発明の好ましい態様では、免疫グロブリンプロモーターの下流にＧＡＮＰ遺伝子を連結することにより、あるいはヒト免疫グロブリン遺伝子イントロンエンハンサー部分をＧＡＮＰ遺伝子の５’側に連結することにより、ＧＡＮＰ遺伝子をＢ細胞で選択的に発現させることができる。
（４）ＧＡＮＰ遺伝子の導入
受精卵細胞段階におけるＧＡＮＰ遺伝子の導入は、例えば対象の哺乳動物の胚芽細胞および体細胞の全てに過剰に存在するように確保することが好ましい。遺伝子導入後の作出動物の胚芽細胞においてＧＡＮＰ遺伝子が過剰に存在することは、作出動物の子孫が全てその胚芽細胞および体細胞の全てにＧＡＮＰ遺伝子を過剰に有することを意味する。そして、遺伝子を受け継いだこの種の動物の子孫は、その胚芽細胞および体細胞の全てにＧＡＮＰ蛋白質を過剰に有する。
本発明においては、導入遺伝子を相同染色体の一方に持つヘテロ接合体を取得し、ヘテロ接合体同士を交配することで導入遺伝子を相同染色体の両方に持つホモ接合体を取得し、この雌雄の動物を交配することによりすべての子孫が導入されたＧＡＮＰ遺伝子を安定に保持する。そして、ＧＡＮＰ遺伝子を過剰に有することを確認して、通常の飼育環境で繁殖継代することができる。
トランスジェニック対象動物が有する内在性の遺伝子とは異なる遺伝子である外来性ＧＡＮＰ遺伝子を対象非ヒト哺乳動物（好ましくはマウスなど）、又はその先祖の受精卵（バッククロス）に転移する際に用いられる受精卵は、同種の雄哺乳動物と雌哺乳動物を交配させることによって得られる。
受精卵は自然交配によっても得られるが、雌哺乳動物の性周期を人工的に調節した後、雄哺乳動物と交配させる方法が好ましい。雌哺乳動物の性周期を人工的に調節する方法としては、例えば、初めに卵胞刺激ホルモン（妊馬血清性性腺刺激ホルモン（ＰＭＳＧ））、次いで黄体形成ホルモン（ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン（ｈＣＧ））を、例えば腹腔注射などにより投与する方法が好ましい。
得られた受精卵に、前述の方法により外来性ＧＡＮＰ遺伝子を導入した後、雌哺乳動物に人工的に移植・着床することにより、外来性遺伝子を組み込んだＤＮＡを有する非ヒト哺乳動物が得られる。雌哺乳動物に黄体形成ホルモン放出ホルモン（ＬＨＲＨ）を投与後、雄哺乳動物と交配させることにより受精能を誘起された偽妊娠雌哺乳動物に、受精卵を人工的に移植・着床させる方法が好ましい。遺伝子を導入する全能性細胞としては、マウスの場合、受精卵や初期胚を用いることができる。また培養細胞への遺伝子導入法としては、トランスジェニック非ヒト哺乳動物個体の産出効率や次代への導入遺伝子の伝達効率を考慮した場合、ＤＮＡのマイクロインジェクションが好ましい。
遺伝子を注入した受精卵は、次に仮親の卵管に移植され、個体まで発生し出生した動物を里親につけて飼育させたのち、体の一部（マウスの場合には、例えば、尾部先端）からＤＮＡを抽出し、サザン解析やＰＣＲ法により導入遺伝子の存在を確認することができる。導入遺伝子の存在が確認された個体を初代（Ｆｏｕｎｄｅｒ）とすれば、導入遺伝子はその子（Ｆ１）の５０％に伝達される。さらに、このＦ１個体を野生型動物または他のＦ１動物と交配させることにより、２倍体染色体の片方（ヘテロ接合）または両方（ホモ接合）に導入遺伝子を有する個体（Ｆ２）を作製することができる。
あるいは、ＧＡＮＰ蛋白質高発現トランスジェニック非ヒト哺乳動物は、上記したＧＡＮＰ遺伝子をＥＳ細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）に導入することによって作製することもできる。例えば、正常マウス胚盤胞（ｂｌａｓｔｏｃｙｓｔ）に由来するＨＰＲＴ陰性（ヒポキサンチングアニン・フォスフォリボシルトランスフェラーゼ遺伝子を欠いている）ＥＳ細胞に、ＧＡＮＰ遺伝子を導入する。当該ＧＡＮＰ遺伝子がマウス内在性遺伝子上に相同組み換えを起こさせ、インテグレートされたＥＳ細胞をＨＡＴセレクション法により選別する。次いで、選別したＥＳ細胞を、別の正常マウスから取得した受精卵（胚盤胞）にマイクロインジェクションする。得られた胚盤胞を、仮親としての別の正常マウスの子宮に移植する。その後、仮親マウスからキメラトランスジェニックマウスが生まれる。生まれたキメラトランスジェニックマウスを正常マウスと交配させることにより、ヘテロトランスジェニックマウスを得ることができる。そして、ヘテロトランスジェニックマウス同士を交配することにより、ホモトランスジェニックマウスが得られる。
本発明においては、上記したトランスジェニック非ヒト哺乳動物に限らず、その子孫、並びにトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫の一部も本発明の範囲内である。トランスジェニック非ヒト哺乳動物の一部としては、当該トランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫の組織、器官及び細胞などが挙げられ、器官または組織としては、脾臓、胸腺、リンパ節、骨髄あるいは扁桃腺などが挙げられ、細胞としてはＢ細胞などが挙げられる。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、Ｂ細胞をさらに活性化する哺乳動物と交配することも可能であり、これによりさらに高親和性抗体を産生することが可能である。
最近、ＭＲＬ／ｌｐｒマウスでＢ細胞が末梢のリンパ節での活性化の際に胚中心を経過した後、Ｔ細胞領域でさらにＶ領域の突然変異誘導が亢進していることが報告されている。また、本発明者らもＭＲＬ／ｌｐｒマウスにおいてＧＡＮＰ遺伝子がＩｇプロモーター、エンハンサーの下流に結合して作製したｇａｎｐトランスジェニックマウスに見られるのと同等の高い発現が、非免疫の状態で見られることを見出している。このことは、正常では自己の抗原に対しては高親和性の抗体はできないのに対して、この自己免疫疾患マウスでは、ＧＡＮＰ分子の異常な活性化が起こるために、自己の抗原に対しての高親和性抗体が産生されることとなる可能性が示唆される。
そこで、上記Ｂ細胞をさらに活性化する動物として、自己免疫疾患マウスであるとされるＭＲＬ／ｌｐｒ，ＮＺＢ，（ＮＺＢｘＮＺＷ）Ｆ１などを用いれば、さらに高い変異誘導を期待できる。
以上のことを利用したＭＬＲ／ｌｐｒマウスのＧＡＮＰトランスジェニックマウスを作製することによって、スーパー高親和性抗体産生マウスを作出できる可能性がある。すなわち、本発明のＧＡＮＰ遺伝子過剰発現トランスジェニック非ヒト哺乳動物とさまざまな自己免疫疾患モデル動物との交配により、高親和性抗体を産生できる哺乳動物を作製することができる。
５．ＨＩＶ ｇｐ１２０に対する高親和性抗体の作製
（１）高親和性抗体
本発明において「抗体」とは、抗原であるｇｐ１２０のアミノ酸配列第３０８−３３０番目のペプチドに結合し得る抗体分子全体（ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であっても良い）またはその断片を意味する。また、本発明の抗体のアイソタイプは特に限定されず、例えば、ＩｇＧ（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４）、ＩｇＭ、ＩｇＡ（ＩｇＡ１、ＩｇＡ２）、ＩｇＤ又はＩｇＥである。
本発明では、抗原に対する反応性が高い抗体のことを高親和性抗体という。「高親和性」とは、抗体が抗原と結合する結合能が高いことを意味し、抗体の結合能が一般のマウスなどの動物を用いて作製した抗体と比較して高く、また逆に当該抗原から解離することが遅い抗体のことをいう。これはエピトープに対して、立体的に密接して結合する能力が高く特異的であることを意味すると共に、抗体が結合することによってエピトープのみならずその抗原の構造の変換をきたすことによって結果的に強力な活性、例えば毒素中和活性、ＨＩＶの感染性阻止、不活性化などの生物活性を示すことも包含している。
抗体の結合能（親和性）は、スキャッチャード解析やＢｉａｃｏｒｅと呼ばれる表面プラズモン共鳴センサーにより、解離定数（ＫＤ）、解離速度定数（Ｋｄｉｓｓ）、結合速度定数（Ｋａｓｓ）として測定することができる。Ｂｉａｃｏｒｅ装置は、センサーチップ、マイクロ流路系、ＳＰＲ検出系の３つの技術を統合して分子結合の強さ、速さ、選択性を測定するというものであり、標識を使わずにリアルタイムで生体分子の検出と複数個の分子間での相互作用のモニタリングを行うことができる。Ｂｉａｃｏｒｅ装置としては、例えばＢｉａｃｏｒｅ３０００、Ｂｉａｃｏｒｅ２０００、ＢｉａｃｏｒｅＸ、ＢｉａｃｏｒｅＪ、ＢｉａｃｏｒｅＱ（いずれもＢｉａｃｏｒｅ社）などが挙げられる。
上記Ｂｉａｃｏｒｅによって、抗体の親和性を示すパラメーター、すなわち解離定数（ＫＤ）、解離速度定数（Ｋｄｉｓｓ）［１／Ｓｅｃ］及び結合速度定数（Ｋａｓｓ）［１／Ｍ．Ｓｅｃ］を測定する。
抗体は、解離定数（ＫＤ値）が小さい値であるほど親和性が高いという点で好ましい。抗体の結合能（親和性）は、Ｋｄｉｓｓ及びＫａｓｓの２つのパラメーターにより決定され、
ＫＤ［Ｍ］＝Ｋｄｉｓｓ／Ｋａｓｓ
により表わされる。
抗原の種類等複数の要因によって、得られる抗体の親和性は異なるが、ＫＤ値は１×１０−９（Ｍ）以下であることが好ましく、１．５×１０−１０（Ｍ）以下であることがより好ましく、１．０×１０−１０（Ｍ）以下（特に９．９×１０−１１（Ｍ）以下）であることがさらに好ましい。
本発明においては、作製された抗体が上記いずれかの作用又は性質を発揮する抗体であるときに、高親和性であると判断される。
本発明の抗体（ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体及び活性フラグメント）は、種々の方法のいずれかによって製造することができる。このような抗体の製造法は当該分野で周知である。
（２）ポリクローナル抗体の作製
上記の通り作製した抗原をＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物に投与する。哺乳動物は特に限定されものではなく、例えばラット、マウス、ウサギなどを挙げることができるが、ＧＡＮＰトランスジェニックマウス、又はＧＡＮＰトランスジェニックウサギが好ましい。
抗原の動物一匹あたりの投与量は、アジュバントを用いないときは、５〜５０ｍｇであり、アジュバントを用いるときは０．５〜２ｍｇである。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）、水酸化アルミニウムアジュバント、トレハロースダイマイコレート（ＴＤＭ）、リポ多糖（ＬＰＳ）、シリカアジュバント、市販の免疫賦活薬等が挙げられる。免疫は、主として静脈内、皮下、腹腔内等に注入することにより行われる。また、免疫の間隔は特に限定されず、数日から数週間間隔、好ましくは１〜５週間間隔で、１〜１０回、好ましくは２〜３回免疫を行う。そして、最終の免疫日から６〜６０日後に酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ［ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ］又はＥＩＡ［ｅｎｚｙｍｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ］）放射性免疫測定法（ＲＩＡ［ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏ ａｓｓａｙ］）等で抗体価を測定し、所望の抗体価を示した日に採血し、抗血清を得る。上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより精製することができる。
その後は、抗血清中のポリクローナル抗体の反応性をＥＬＩＳＡ法などで測定する。
（３）モノクローナル抗体の作製
（ａ）抗体産生細胞の採取
前記のように作製した抗原を、ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物、例えばラット、マウス、ウサギなどに投与する。抗原の動物一匹あたりの投与量はアジュバントを用いないときは、０．０５〜２ｍｇであり、アジュバントを用いるときは０．０５〜２ｍｇである。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）、水酸化アルミニウムアジュバント、ＢＣＧ、トレハロースダイマイコレート（ＴＤＭ）、リポ多糖（ＬＰＳ）、シリカアジュバント等が挙げられるが、抗体の誘導能等の関係から、ＦＣＡとＦＩＡとを組み合わせて使用することが好ましい。免疫は、主として静脈内、皮下、腹腔内に注入することにより行われる。また、免疫動物は、抗原の初回免疫後、さらに、追加免疫を数回行い、適当な日数を経過した後に部分採血を行い、上記方法で抗体価を測定することが好ましい。本発明の方法で産生される抗体は高親和性抗体であるため、上記免疫は初回のみで十分である可能性がある。免疫の間隔は特に限定されず、数日から数週間間隔、好ましくは２〜５週間間隔で、１〜１０回、好ましくは１〜５回免疫を行う。そして、最終の免疫日から１〜６０日後、好ましくは１〜１４日後に抗体産生細胞を採集する。抗体産生細胞としては、脾臓細胞、リンパ節細胞、末梢血細胞などが挙げられるが、脾臓細胞、又は局所リンパ節細胞が好ましい。
上記のようにして得られる本発明の高親和性抗体産生細胞も本発明に含まれる。
（ｂ）細胞融合
例えば、ＧＡＮＰトランスジェニックマウスを用いた場合、ハイブリドーマを得るため、抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合を行う。抗体産生細胞と融合させるミエローマ細胞として、マウスなどの動物の一般に入手可能な株化細胞を使用することができる。使用する細胞株としては、薬剤選択性を有し、未融合の状態ではＨＡＴ選択培地（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジンを含む）で生存できず、抗体産生細胞と融合した状態でのみ生存できる性質を有するものが好ましい。ミエローマ細胞としては、例えば、Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８（Ｘ６３）、Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８．Ｕ１（Ｐ３Ｕ１）、Ｐ３／ＮＳ Ｉ／１−Ａｇ４−１（ＮＳ１）、Ｓｐ２／０−Ａｇ１４（Ｓｐ２／０）等のマウスミエローマ細胞株を挙げることができる。ミエローマ細胞の選択に当たっては、抗体産生細胞との適合性を適宜考慮する。
次に、上記ミエローマ細胞と抗体産生細胞とを細胞融合させる。細胞融合は、血清を含まないＤＭＥＭ、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの動物細胞用培地中で、１×１０６〜１×１０７個／ｍｌの抗体産生細胞と２×１０５〜２×１０６個／ｍｌのミエローマ細胞とを混合し（抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞比５：１が好ましい）、細胞融合促進剤存在の下で融合反応を行う。細胞融合促進剤として、平均分子量１０００〜６０００ダルトン（Ｄ）のポリエチレングリコールなどを使用することができる。また、電気刺激（例えばエレクトロポレーション）を利用した市販の細胞融合装置を用いて、抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることもできる。
（ｃ）ハイブリドーマの選別及びクローニング
細胞融合処理後の細胞から目的とするハイブリドーマを選別する。その方法として、細胞懸濁液を例えばウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ−１６４０培地などに適当に希釈後、マイクロタイタープレート上にまき、各ウェルに選択培地を加え、以後適当に選択培地を交換して培養を行う。その結果、選択培地で培養開始後、１４日前後から生育してくる細胞をハイブリドーマとして得ることができる。
次に、増殖してきたハイブリドーマの培養上清中に、ｇｐ１２０に反応する抗体が存在するか否かをスクリーニングする。ハイブリドーマのスクリーニングは、通常の方法に従えばよく、特に限定されるものではない。例えば、ハイブリドーマとして生育したウェルに含まれる培養上清の一部を採集し、ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ、ＲＩＡなどによってスクリーニングすることができる。
融合細胞のクローニングは、限界希釈法等により行う。ｇｐ１２０に強い反応性を示す抗体であって、親和性を示す値がＫＤ＝１×１０−９（Ｍ）以下である抗体を産生するハイブリドーマを選択し、樹立する。
（ｄ）モノクローナル抗体の採取
樹立したハイブリドーマを培養し、得られる培養物からモノクローナル抗体を採取する方法として、通常の細胞培養法、又は腹水形成法等を採用することができる。「培養」とは、上記ハイブリドーマをシャーレやディッシュで生育すること、または上記ハイブリドーマを下記のように腹腔内で増殖することを意味する。また、「培養物」とは、培養上清、培養細胞若しくはその破砕物、又は腹水のいずれをも意味するものである。
細胞培養法においては、ハイブリドーマを１０％ウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ−１６４０培地、ＭＥＭ培地又は無血清培地等の動物細胞培養培地中で、通常の培養条件（例えば３７℃、５％ＣＯ２濃度）で７〜１４日間培養し、その培養上清から抗体を取得する。
腹水形成法の場合は、ミエローマ細胞由来の哺乳動物と同種系動物の腹腔内にハイブリドーマを約１×１０７個投与し、ハイブリドーマを大量に増殖させる。そして、１〜２週間後に腹水を採集する。
上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより精製することができる。
（ｅ）モノクローナル抗体の結合領域の利用
モノクローナル抗体はＨＩＶ抗原に結合することで感染阻止、およびＨＩＶウイルスの中和、排除を行う活性を有するが、その際にはＨ鎖ではどのＶ領域遺伝子を用いているか、どのＤ領域の遺伝子、Ｊ領域遺伝子を用いているか、さらにＮ配列が挿入されているか、またどのＬ鎖のＶ領域遺伝子を用いているか、Ｊ領域遺伝子を用いているかが高親和性抗体作製の基盤になる。しかし、結合親和性に関しては、これらに加えて、末梢のリンパ組織で誘導されるＶ領域遺伝子の体細胞突然変異の程度によって大きく変化する。ここではモノクローナル抗体の抗原結合に関わる領域、すなわちＨ鎖とＬ鎖のそれぞれ３つのＣＤＲ領域の構造によって、体細胞突然変異の程度が決まる。したがって、本発明で得られる高親和性の結合領域の情報を用いれば、ヒトのＥＢウイルスでトランスフォームした記憶Ｂ細胞株で抗ＨＩＶ抗体産生細胞を樹立して、そのＶ領域にここで得られている情報を直接遺伝子操作技術で導入することによって高親和性抗体を得ることも可能である。
（４）抗体断片、ヒト型化抗体又はヒト化抗体
上記の抗体の断片及びＶ領域の一本鎖抗体も本発明の範囲内である、抗体の断片としては、前述したポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体の一部分の領域を意味し、具体的にはＦ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ（ｖａｒｉａｂｌｅ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｏｆ ａｎｔｉｂｏｄｙ）、ｓＦｖ、ｄｓＦｖ（ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄ Ｆｖ）、あるいはｄＡｂ（ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｍａｉｎ ａｎｔｉｂｏｄｙ）等が挙げられる。一本鎖抗体は、ＶＬ（Ｌ鎖可変領域）とＶＨ（Ｈ鎖可変領域）をリンカーでつないだ構造を持つ。
本発明の高親和性抗体は、ヒト型化抗体やヒト抗体でも良い。これらの抗体は、免疫系をヒトのものと入れ換えた哺乳動物を用いて、該哺乳動物を免疫して、通常のモノクローナル抗体と同様に直接ヒト抗体を作製することができる。
ヒト型化抗体を作製する場合は、マウス抗体の可変領域から相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ；ＣＤＲ）をヒト可変領域に移植して、フレームワーク領域（ＦＲ）はヒト由来のものを、ＣＤＲはマウス由来のものからなる再構成した可変領域を作製する。
次にこれらのヒト型化された再構成ヒト可変領域をヒト定常領域に連結する。ヒト型化抗体の作製法は、当分野において周知である。
ヒト抗体は、一般にＶ領域の抗原結合部位、すなわち超過変領域（Ｈｙｐｅｒ Ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ）についてはその特異性と結合親和性が問題となるが、構造的にどの動物で作製してもかまわない。一方Ｖ領域のその他の部分や定常領域の構造は、ヒトの抗体と同じ構造をしていることが望ましい。ヒトに共通の遺伝子配列については遺伝子工学的手法によって作製する方法が確立されている。
（５）抗体の特性
本発明のＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳肋物より産生される抗体は、以下の（ｉ）〜（ｉｖ）の少なくとも１つの性質を有する。
（ｉ）ＨＩＶの外被膜にある分子量１２０ｋＤの糖タンパク質抗原ｇｐ１２０と結合して、ＨＩＶを中和する。
（ｉｉ）ＨＩＶに感染された細胞の表面に結合することによって、感染された細胞と感染されないＴ細胞により誘発される合胞体の形成を阻止する。
（ｉｉｉ）ｇｐ１２０（３０８−３３０）の領域の少なくとも一部のエピトープを認識する。
（ｉｖ）ｇｐ１２０（３０８−３３０）領域の少なくとも一部に対し、高親和性（ＫＤ＝１×１０−９（Ｍ）以下）に結合する。
合胞体とは、感染細胞が非感染細胞を取り込んで一つの細胞になることをいう。ｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶを細胞と培養すると、合胞体が形成されることがあり、このような合胞体は、生存できずに死滅する。ＨＩＶの中でも合胞体を作りやすいＳＩ型ＨＩＶの感染者では、ＣＤ４＋リンパ球の減少が早く、エイズへの進展が早く起こることが知られている。
６．医薬組成物
本発明の高親和性抗体は、ＡＩＤＳの病原であるＨＩＶを抗原として、その活性を中和させる作用を有するため、ＡＩＤＳの治療又は予防用医薬組成物として有用である。本発明の医薬組成物は、本発明の高親和性抗体又はその断片を有効成分として含み、さらに薬学的に許容される担体を含む医薬組成物の形態で提供することが好ましい。
ここで「薬学的に許容され得る担体」とは、賦形剤、希釈剤、増量剤、崩壊剤、安定剤、保存剤、緩衝剤、乳化剤、芳香剤、着色剤、甘味剤、粘稠剤、矯味剤、溶解補助剤あるいはその他の添加剤等が挙げられる。そのような担体の一つ以上を用いることにより、注射剤、液剤、カプセル剤、懸濁剤、乳剤あるいはシロップ剤等の形態の医薬組成物を調製することができる。これらの医薬組成物は、経口あるいは非経口的に投与することができる。非経口投与のためのその他の形態としては、一つまたはそれ以上の活性物質を含み、常法により処方される注射剤などが含まれる。
本発明の薬剤の投与量は、患者の年齢、性別、体重及び症状、治療効果、投与方法、処理時間、あるいは該薬剤に含有される活性成分である高親和性抗体の種類などにより異なるが、通常成人一人当たり、一回につき１０μｇから１０００ｍｇ、好ましくは１０μｇから１００ｍｇの範囲で投与することができるが、この範囲に限定されるものではない。体液量は、体重を６０ｋｇとすると５リットルと産出できる。抗体の有効な濃度はｉｎ ｖｉｔｒｏの実験では５〜５０μｇ／ｍｌである場合が多く、単純に計算すると２５〜２５０ｍｇの抗体が少なくとも数日間体内で存在することが望ましい。
例えば、注射剤の場合には、例えば生理食塩水あるいは市販の注射用蒸留水等の薬学的に許容される担体中に０．１μｇ抗体／ｍｌ担体〜１０ｍｇ抗体／ｍｌ担体の濃度となるように溶解または懸濁することにより製造することができる。このようにして製造された注射剤は、処置を必要とするヒト患者に対し、１回の投与において１ｋｇ体重あたり、１μｇ〜１００ｍｇの割合で、好ましくは５０μｇ〜５０ｍｇの割合で、１日あたり１回〜数回投与することができる。投与の形態としては、静脈内注射、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射あるいは腹腔内注射などが挙げられるが、好ましくは静脈内注射である。また、注射剤は、場合により、非水性の希釈剤（例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブ油のような植物油、エタノールのようなアルコール類など）、懸濁剤あるいは乳濁剤として調製することもできる。そのような注射剤の無菌化は、フィルターによる濾過滅菌、殺菌剤の配合等により行うことができる。注射剤は、用時調製の形態として製造することができる。即ち、凍結乾燥法などによって無菌の固体組成物とし、使用前に無菌の注射用蒸留水または他の溶媒に溶解して使用することができる。
７．ＨＩＶ検出キット
本発明の高親和性抗体は、疾患の診断、治療又は予防のための薬剤として有用である。
本発明の抗体を用いたＨＩＶ感染の検出は、被験者から採取した検体、例えば唾液や血液等と本発明の抗体又はその断片とを抗原抗体反応によって結合させ、結合した抗体量により検体中の目的とする抗原の量を測定することにより行う。抗体量の検出は、公知の免疫学的測定法に従って行えばよく、例えば、免疫沈降法、免疫凝集法、標識免疫測定法、免疫比懸濁法などを用いることができる。特に、標識免疫測定法が簡便且つ高感度という点で好ましい。標識免疫測定法では、検体中の抗体価は標識抗体を用いて直接検出した標識量で表すほか、既知濃度あるいは既知抗体価の抗体を標準液として相対的に表してもよい。すなわち、標準液と検体を測定計により測定し、標準液の値を基準にして検体中の抗体価を相対的に表すことができる。標識免疫測定法としては、公知の測定法、例えばＥＬＩＳＡ法、ＥＩＡ法、ＲＩＡ法、蛍光免疫測定法（Ｆｌｕｏｒｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＦＩＡ）、化学発光免疫測定法（Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）などを任意に利用することができる。
また、本発明の高親和性抗体を利用することにより、ＡＩＤＳ治療薬の薬効評価を高感度に行うことができる。本発明の高親和性抗体を利用した薬効評価方法は、ＡＩＤＳ患者あるいはヒトリンパ細胞を移入して作製したＡＩＤＳモデル動物（ＳＣＩＤ−Ｈｕマウス）に対して薬剤を投与後、これら生体中のＨＩＶあるいは各モデル動物に対する免疫不全ウイルスの量を本発明の抗体を用いて検出し、その量を比較することにより、生体中の抗原の量を通してＡＩＤＳ治療薬としての薬効を評価することができる。その際、従来の抗体に比べて２倍から１００倍の感度を有することが期待できる。
本発明の高親和性抗体は、各種疾患診断用キットの形態で提供することができる。該キットは、本発明の診断方法や本発明の薬効評価方法に使用することができる。また、輸血製剤や、生体サンプルのＨＩＶウイルス感染有無のチェックをするための、高感度で、敏速で、簡便なキットとして使用できる。本発明のキットは以下の（ａ）及び（ｂ）から選ばれる少なくとも一つ以上を含む。
（ａ）本発明の抗体又はその標識物
（ｂ）前項（ａ）記載の抗体又はその標識物を固定した固相化試薬
ここで、抗体の標識物とは、酵素、放射性同位体、蛍光化合物、または化学発光化合物によって標識されたものを意味する。
本発明のキットは、上記の構成要素の他、本発明の検出を実施するための他の試薬、例えば標識物が酵素標識物の場合は、酵素基質（発色性基質等）、酵素基質溶解液、酵素反応停止液、あるいは検体用希釈液等を含んでいても良い。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
本実施例は、通常免疫に用いられることの多いＢａｌｂ／ｃマウス、野生型（ＷＴ）マウス及びＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスの３種のマウスに、免疫抗原としてＨＩＶの中和活性が期待できるＨＩＶ２４ＮＬ４３（３０８−３３０）のペプチドをキャリアー蛋白に結合したものを免疫した。それぞれのマウスの中から各２匹を用いて細胞融合を行い、ＥＬＩＳＡ法、Ｂｉａｃｏｒｅによる測定にてスクリーニングし、陽性ハイブリドーマを得た。さらに各ハイブリドーマから得られた精製抗体を用いて、ＥＬＩＳＡ法およびＢｉａｃｏｒｅを用いた解析を実施した。
その結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスから得られたモノクローナル抗体（３クローン）は、かなりの高親和性モノクローナル抗体であり、親和性の指標となる解離定数は高いものではＫＤ（ＫＤ＝ｋ ｄｉｓｓ／ｋ ａｓｓ）＝９．９０×１０−１１（Ｍ）であった。
【実施例１】
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスの作製
マウスへの導入用遺伝子は、ｐＬＧベクターのＥｃｏＲＩサイトに５．３ｋｂのマウスＧＡＮＰ遺伝子を挿入して作製した。このベクターはヒト免疫グロブリンイントロンエンハンサー領域（２ｋｂ ＥｃｏＲＩフラグメント）を持ち、Ｂ細胞での強力な発現を行う、特異的ベクターである。この遺伝子を直線化してマウスに遺伝子導入を行った。マウスＧＡＮＰ全長ｃＤＮＡを含む線状化したｐＬＧ ｖｅｃｔｏｒ（Ｋｏｉｋｅ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．７，２１−３０（１９９５））をＣ５７ＢＬ／６マウスの受精卵にマイクロインジェクションした。マウスの尾のゲノムＤＮＡおよび以下のプライマー及び反応液を用いて導入遺伝子の存在についてスクリーニングした（図１、上パネル）。図１上パネルにおいて、５．３ｋｂ付近のバンドはＧＡＮＰ遺伝子のものである。
反応液組成：
反応条件：
［９８℃ ５ｓｅｃ；５９℃ ５ｓｅｃ；７２℃ １０ｓｅｃ］×３５サイクル
４℃
ＧＡＮＰ ｍＲＮＡの発現が亢進しているか否かは、ＲＴ−ＰＣＲで確認した。
全ＲＮＡは、脾臓又は脾臓Ｂ細胞からＴｒｉｚｏｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて抽出し、ＲＴ−ＰＣＲは、２種のプライマー１−５’及び１−３’を用いて行い、ｃＤＮＡを合成した（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８（２０００））。ＧＡＮＰ転写物はアガロースゲル電気泳動により検出した。β−アクチン転写物は対照として用いた。
その結果、ＧＡＮＰトランスジェニックマウスは、Ｂ細胞でＧＡＮＰの発現の増加を示し（図１、下パネル）、骨髄、脾臓及びリンパ節の細胞の表層マーカー分析において、Ｂ系細胞の通常の分化を示した。
【実施例２】
抗体の作製
（１）材料
（ａ）動物：Ｂａｌｂ／ｃマウス、野生型（ＷＴ）マウスとＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス
（ｂ）免疫抗原：ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチドＫＬＨコンジュゲーション
（ｃ）ＥＬＩＳＡ抗原：ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチド（配列：ＣＮＮＴＲＫＳＩＲＩ ＱＲＧＰＧＲＡＦＶＴＩＧＫＩ（配列番号９））
（ｄ）ミエローマ細胞：Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８．Ｕ１
（ｅ）２次抗体：ＨＲＰ標識抗マウス抗体ＩｇＧ・Ａ・Ｍ
（２）方法
上記３種のマウスの各５匹に、免疫抗原としてＮＬ４３ペプチド（キャリアータンパク質：ＫＬＨ）を、２週間おきに３回免疫し、３回免疫後採血抗血清を用いて抗体価をＥＬＩＳＡ法にて測定した。
この中から、力価の高いマウス各２匹から抗体産生細胞（脾細胞）を採取し、脾細胞とＰ３Ｕ１ミエローマ細胞との細胞融合を実施した。ＧＡＮＰ−Ｔｇマウスの脾細胞数が０．２×１０５／ウェルになるようにまきこみ、それぞれ、Ｂａｌｂ／ｃマウス：５４４８クローン、野生型（ＷＴ）マウス：１８８８クローン、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス：２０１６クローンをＨＡＴ培地にて培養した。
ＨＡＴ培養９日後の培養上清を用いて、ＮＬ４３ペプチド（１マイクロｇ／ｍＬ）を固相化抗原としてＥＬＩＳＡ法を実施した。ＧＡＮＰ−ＴｇマウスおよびＷＴの培養上清の母集団のそれぞれから、ＥＬＩＳＡの結果にて４９０ｎｍ吸光度１．５０以上のクローンを選出し、ＨＴ培地にてクローニングを実施した。
ＨＴ培養９日後の培養上清を用いて、ＮＬ４３ペプチド（１マイクロｇ／ｍＬ）を固相化抗原としてＥＬＩＳＡ法を実施した結果、Ｂａｌｂ／ｃマウスは３クローン（クローン名：Ｂ１−１０，Ｂ２−２４，Ｂ２−２７）、野生型（ＷＴ）マウスは９クローン（クローン名：Ｗ１−２，Ｗ１−７，Ｗ１−８，Ｗ１−１０，Ｗ１−２１，Ｗ１−４３，Ｗ１−４５，Ｗ１−６３，Ｗ１−８４）、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスは８クローン（クローン名：Ｇ１−２２，Ｇ１−６８，Ｇ１−１２４，Ｇ１−１６５，Ｇ１−１８１，Ｇ２−２３１，Ｇ２−１０，Ｇ２−２５）のハイブリドーマを樹立した。
このうち、Ｇ２−２５は「Ａｎｔｉ−ＮＬ４３ｍｏｎｏ．Ｃｌｏｎｅ Ｎｏ．Ｇ２−２５ハイブリドーマ細胞」と称し、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６（郵便番号３０５−８５６６））に、２００４年２月２５日付でＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。
ＧＡＮＰ−Ｔｇマウス、ＷＴのそれぞれのクローンをＲＰＭＩ培地にて培養し、さらに、無血清培地であるＳＦＭ培地にて培養し、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ精製によって、抗ペプチドモノクローナル精製抗体を作製した。
【実施例３】
親和性測定
上記実施例２で作製した各モノクローナル抗体を用いで、以下の評価検討を実施した。
抗体の親和性を評価するにあたり、ＥＬＩＳＡ法とＢｉａｃｏｒｅによる解析を実施した。
まず、ＥＬＩＳＡ法は、ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチド １マイクロｇ／ｍＬをそれぞれ固相化抗原として用い、室温にて１時間固相化した。ＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、２．０％ｓｋｉｍｍｉｌｋにてブロッキングを実施した。さらにＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、評価する抗ペプチドモノクローナル抗体（０．４５７〜１マイクロｇ／ｍＬ）を用いて、室温にて１時間反応させた。次に、サンプルをＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、ＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ・Ａ・Ｍと室温にて１時間反応させた。さらに、ＰＢＳＴＷｅｅｎ２０洗浄し、オルトフェニレンジアミン（ＯＰＤ）にて５分間発色させ、２Ｎ硫酸を月いて反応を停止した。
吸光度は、ＥＬＩＳＡ ＰＬＡＴＥ ＲＥＡＤＥＲを用いて、４９０ｎｍにて測定した。
ＥＬＩＳＡの結果を図２に示す。
ＧＡＮＰ−Ｔｇマウスを用いることにより、極めて高い結合能を有する３つの抗体が作製された（図２、吸光度１．４〜２．１付近）。これらのモノクローナル抗体のクローン名は、吸光度の高い順にＧ１−１８１、Ｇ２−１０、Ｇ２−２５である。
次に、Ｂｉａｃｏｒｅを用いて物理化学的結合能を調べた。
Ｂｉａｃｏｒｅによる解析は、ＨＩＶ２４ＮＬ４３ペプチドをリガンドとしてＢｉａｃｏｒｅセンサーチップに結合させたものに、アナライト溶液として、抗ペプチドモノクローナル抗体を用いて、それぞれの結合速度定数（ｋ ａｓｓ）、解離速度定数（ｋ ｄｉｓｓ）、そして親和性の指標となる解離定数ＫＤ（ＫＤ＝ｋ ｄｉｓｓ／ｋ ａｓｓ）を算出した。ＫＤが低い程、親和性は高いと評価される。
抗体の親和性の総合評価として、各クローンの解離定数とＥＬＩＳＡの結果を合わせて、図３に示す。図３において、クローンと解離定数との関係は以下の通りである。
抗体の結合親和性を検討するにはＢｉａｃｏｒｅによる感度測定による方法が現在のところ最も有効であるが、この際の解離定数は単位時間当たりに結合する抗体の結合速度定数を結合した抗体の解離定数で割った数値として便宜的に算出される。抗体の活性はこのペプチドに対する親和性に加えて、抗体がどれだけ短時間で抗原に結合しうるかも重要な要素である。生体内でできるだけ速やかにウイルスと結合し、その結果ウイルス抗原の分子構造に変化を加えて、一層強固な結合状態に入ることも期待できる。Ｇ１−１８１クローンは解離定数算出ではそれほど高いとはいえないものの、結合定数のプロファイルでは最も急速に多くの抗原分子と結合するという点で優れている。
通常、モノクローナル抗体作製のために用いるＢａｌｂ／ｃマウスから得られた抗体は、解離定数ＫＤ＝４．９７×１０−６〜５．６８×１０−９（Ｍ）で、低親和性でかつ少数の抗体しか得ることができず、陰性コントロールの野生型（ＷＴ）マウスにおいても、解離定数ＫＤ＝２．８１×１０−５〜３．１１×１０−９（Ｍ）の範囲までしか得られず、限界があった。
これらに対して、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいては、解離定数ＫＤ＝９．９０×１０−１１（Ｍ）という高親和性抗体（Ｇ２−１０）を得ることができ、この親和性は、Ｂａｌｂ／ｃマウスのクローンの５７倍、野生型（ＷＴ）マウスの３１倍も高親和性であるといえる。
【実施例４】
モノクローナル抗体とＮＬ４３エンベロープとの結合
上記実施例２で作製した抗ＨＩＶペプチド（ＮＬ４３）モノクローナル抗体が実際のＮＬ４３（ＨＩＶのエンベロープタンパク質）に対してｉｎ ｖｉｔｒｏで結合能を有するかを明らかにするために、結合アッセイを実施した。
（１）材料
（ａ）抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体
実施例２で作製した抗体を用いた。具体的には、以下に示す抗体を使用した。
Ｂａｌｂ／ｃマウス：３クローン（クローン名：Ｂ１−１０，Ｂ２−２４，Ｂ２−２７）、
野生型（ＷＴ）マウス：９クローン（クローン名：Ｗ１−２，Ｗ１−７，Ｗ１−８，Ｗ１−１０，Ｗ１−２１，Ｗ１−４３，Ｗ１−４５，Ｗ１−６３，Ｗ１−８４）
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス：８クローン（クローン名：Ｇ１−２２，Ｇ１−６８，Ｇ１−１２４，Ｇ１−１６５，Ｇ１−１８１，Ｇ１−２３１，Ｇ２−１０，Ｇ２−２５）
また、対照として７０Ｚ／３ ２−２８、０．５β及びａｎｔｉ−ＣＤ１９を用いた。
（ｂ）プラスミドベクター
ｐＬＰ−ＩＲＥＳ２−ＥＧＦＰ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）、ｐＬＰ−ＮＬ４−３ ｅｎｖｅｌｏｐｅ−ＥＧＦＰを使用した。本ベクターを用いることにより、単一のＲＮＡからの目的遺伝子（ＮＬ４３）とＥＧＦＰ両方の翻訳が可能となるので、蛍光を示す細胞のほぼ１００％はＮＬ４３を発現する。
（ｃ）遺伝子導入試薬
Ｅｆｆｅｃｔｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を使用した。
（ｄ）２次抗体
ＡＰＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を使用した。
（２）方法
結合アッセイは、エンベロープ（ＮＬ４３）の発現をモニターするために、ヒト胎児腎癌細胞株（２９３Ｔ細胞）にＧＦＰを導入し、その細胞に抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体とＡＰＣ標識２次抗体を反応させ、細胞表面を染色する。次にフローサイトメトリーによりｔｗｏ−ｃｏｌｏｒ解析を行い、その蛍光強度によりエンベロープへの結合能をみるものである。
ＧＦＰ遺伝子の細胞への導入は、ヒト胎児腎癌細胞株（２９３Ｔ細胞）を１０ｃｍディッシュに４０００００個播き、１日培養した後、Ｅｆｆｅｃｔｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用い、ｐＬＰ−ＩＲＥＳ２−ＥＧＦＰ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）又はｐＬＰ−ＮＬ４−３−ＥＧＦＰをそれぞれ５μｇ導入した。３６時間培養した後、細胞を集め細胞表面染色を行った。細胞表面染色は、各１０μｇ／ｍＬの抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体と、ＡＰＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体を５０倍希釈したものを用いて、それぞれ氷上にて３０分反応させた。
各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープへの結合能を、ＦＡＣＳ Ｃａｌｉｂｕｒを用いて平均蛍光強度（ＭＦＩ）を算出することにより評価した。
（３）結果
結合アッセイの結果を図４及び図５に示す。図４及び５は、ＧＦＰ陽性（＋）と陰性（−）のそれぞれにゲートをかけた場合の平均蛍光強度（ＭＦＩ）を棒グラフにしたものである。棒グラフは、ｐＬＰ−ＮＬ４−３ ｅｎｖｅｌｏｐｅ−ＥＧＦＰを導入させた細胞において、ＧＦＰ陽性でのＡＰＣ平均蛍光強度（ＭＦＩ）が高いほど、エンベロープに有効に結合することを示す。結合アッセイの結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいて作製したモノクローナル抗体（例えばＧ１−２２、Ｇ１−６８、Ｇ２−１０、Ｇ２−２５クローン）は、エンベロープへの結合能を有することがわかった。
【実施例５】
モノクローナル抗体の中和活性
実施例４で使用した精製抗体を用いて、実際にそのモノクローナル抗体がＨＩＶ−１ウイルスの感染を阻止する能力を有するかを確認するために、ヒトＣＤ４陽性細胞における中和活性実験（ウイルス感染阻止実験）を行った。
（１）材料
（ａ）抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体
実施例４で用いた各抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体を使用した。また、対照として７０Ｚ／３ ２−２８及び０．５βを用いた。
（ｂ）ＨＩＶ−１保存株
非働化した牛胎児血清１０％を添加したＲＰＭＩ−１６４０培地にてＰＭ１細胞を増殖させ、−８０℃で保存したものを使用した。
（ｃ）βガラクトシダーゼ検出キット
βガラクトシダーゼ検出キットは、Ｇａｌａｃｔｏ−ｓｔａｒ（ＴＲＯＰＩＸ）を使用した。エイズウイルス感染阻止（中和活性）実験において、本キットは、ＣＤ４細胞（ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５）から産生されるβガラクトシダーゼを化学発光基質（Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ方法）を用いて検出することによって、ＣＤ４細胞の生死（生細胞数）を判定するものである。
（２）方法
ＣＤ４細胞（ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５）を１日培養した後、一定のエイズウイルスを加えると、エイズウイルスにより感染した細胞からは、βガラクトシダーゼは検出されなくなる。このシステムにおいて、抗体の中和活性の測定は、エイズウイルス添加直前に、効力が異なる抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体を上記ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞にあらかじめ添加しておき、エイズウイルスを添加したときにエイズウイルスの感染を阻止できるか否かを、βガラクトシダーゼの産生量を指標として評価するものである。
この感染測定システムは、ウイルス感染に必要なウイルス量を高感度に決定することを可能とする。ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞による予備検討により、添加するウイルス量は、ウイルスの５０％終末点（ＴＣＩＤ５０）を目安として、５００と決定した。
細胞をＨＩＶに感染させるために、ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞を１×１０４／ウエルになるように９６プレートで培養した。１日後、各抗体５０μＬを添加し、３７℃で３０分間インキュベートした。続いて１０μｇ／ｍＬのＤＥＡＥ−ｄｅｘｔｒａｎに反応させたＨＩＶ−１溶液５０μＬを添加し、インキュベートした。添加したそれぞれの抗体濃度は、０．５、５又は５０μｇ／ｍＬの３濃度で実施した。２日後、βガラクトシダーゼ活性をＧａｌａｃｔｏ−ｓｔａｒ（ＴＲＯＰＩＸ）を用いて測定した。
（３）結果
中和活性実験の結果を図６及び図７に示す。各抗体の中和活性を測定した結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいて作製したＧ２−１０及びＧ２−２５クローンは、各濃度において表１に示すＨＩＶ中和活性を持つことがわかった。
実際に治療用抗体として利用する際には、微量で感染阻止する能力を有することが重要となるため、Ｇ２−１０及びＧ２−２５による上記の値は、非常に低濃度でＨＩＶ感染防止能力を示し、有効なＨＩＶ治療薬として利用可能と考えられる。
中和活性測定の陽性コントロールにはＨＩＶエンベロープそのものを免疫して作製されたとして用いている抗体（０．５β）を用いた（第２７９７０９９号特許）。０．５βの０．５μｇ／ｍＬにおいての中和活性能力は８６．５±３．０に及ぶが、上記２クローン、特にＧ２−２５におけるｉｎ ｖｉｔｒｏ感染阻止能力は、その抗体（０．５β）と同等またはそれ以上であるといえる。
これに対して、野生型（ＷＴ）マウスにおいて作製した９クローンの抗体の中和活性は、低濃度０．５μｇ／ｍＬにおいてほとんど中和活性が認められなかった。
実施例４及び５の結果は、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスで作製した抗エイズペプチド（ＮＬ４３）モノクローナル抗体が、実際にｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶ−１ウイルスエンベロープに対して結合し（実施例４）、その結合が強力な中和活性（感染阻止力）を有することを示している（実施例５）。更に重要なことは解離定数ＫＤ値（９．９０×１０−１１）を示すことから、一度結合するとその後長期間ウイルスと結合し続けることのできる高親和性抗体グループであるという点である（実施例３）。
このように強力なウイルス中和効果を持ち、抗原と解離する速度が著しく低い高親和性モノクローナル抗体は、これまでに多くの研究室で試みられてきたＨＩＶ−１ウイルスの遺伝子配列から推定するペプチド配列を基に作製した通常のモノクローナル抗体作製技術では得ることのできない優れたものである。野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウスに免疫して作製したモノクローナル抗体では５０μｇ／ｍｌの濃度で初めて高い中和活性を示すのに対して、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス由来のＧ２−１０，Ｇ２−２５モノクローナル抗体は両者ともわずか０．５μｇ／ｍｌ濃度においてそれらに匹敵する中和活性を発揮している。単純計算ではタンパク質濃度あたり１００倍の中和活性を示し、また、その結合が１０２オーダーの長期間に渡って持続することが期待できる。
これらのマウス抗ＨＩＶ−１モノクローナル抗体は、（ａ）ウイルスペプチド配列に特異的な高親和性抗体であること、（ｂ）実際にｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶ−１ウイルスエンベロープに対して結合すること、（ｃ）ｉｎ ｖｉｔｒｏでのヒトＣＤ４陽性細胞へのＨＩＶ−１ウイルス感染を阻止できること、（ｄ）従来法と異なる遺伝子変異マウスによって作製していることから新たなエピトープに対する抗体である可能性があること、（ｅ）この新たなＶＨ領域は更にバイオテクノロジーによる遺伝子改変を加えることによって更に強力な抗体を作製する基盤情報を提供するという長所を有している。
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスを用いてエイズウイルスの感染阻止作用を持つ高親和性抗体が速やかに得られるということは、これまでの研究成果とその応用の計画が正当であることを証明したものである。従って、本発明は、感染症に脅かされている現代において画期的な治療法開発につながる発明である点で極めて有用である。
【配列表フリーテキスト】
配列番号７：プライマー
配列番号８：プライマー
【産業上の利用可能性】
本発明により、ＧＡＮＰ遺伝子トランスジェニック非ヒト哺乳動物から得られる、高親和性抗ＨＩＶ抗体、及び該抗体を含む医薬組成物が提供される。本発明の抗体は、ＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の高親和性を有しているため、本発明の抗体を含む医薬組成物は、後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）の治療薬として使用することができる。
さらに、本発明により、該抗体を産生する細胞、及び該抗体を利用したＨＩＶの検出キットも提供される。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【技術分野】
本発明は、ＨＩＶの外皮膜に存在し分子量約１２０ｋＤを有する糖タンパク質ｇｐ１２０に高親和性に結合する抗体及びその産生細胞に関する。また、本発明は、上記抗体を含有する医薬組成物に関する。
【背景技術】
後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）は、ＨＩＶ（Ｈｕｍａｎ Ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ Ｖｉｒｕｓ）の感染後、徐々に感染者の免疫能が低下して合併症を起こすようになった状態を意味する。
ＨＩＶは宿主の体内に侵入すると、ＣＤ４陽性細胞、特にＣＤ４＋Ｔリンパ球（ヘルパーＴ細胞）に感染する。ＣＤ４陽性細胞への感染に関与するタンパク質は、ＨＩＶの外被糖タンパク質ｇｐ１２０である。ｇｐ１２０は、ＨＩＶの外皮膜に存在し、分子量約１２０キロダルトン（ｋＤ）を有する糖タンパク質であり、細胞表面のＣＤ４を特異的受容体として結合する。そして、ＨＩＶはＣＤ４＋リンパ球に感染後、細胞内に侵入し、脱外被を起こして核酸（ＲＮＡ）を遊離する。その後、逆転写酵素によるＤＮＡ合成、転写、翻訳がなされ、ウイルスタンパク質が合成される。ウイルスタンパク質は細胞膜に移動してウイルス粒子となり放出される。
ＨＩＶは抗原変異が激しいため、ワクチンを作製することが困難であり、現在有効なワクチンは開発されていない。また、ＨＩＶ遺伝子は感染細胞内の染色体に組み込まれるため、感染したＨＩＶを完全に取り除くという根本的治療は極めて困難である。
現在、ＡＩＤＳの発病を遅らせ、延命効果が認められる薬剤としてＡＺＴ（アジトチミジン）などがあり、有効性が期待できる治療薬も次々と開発されつつある。しかしながら、まだ決定的な治療薬は確立していない。
一方、ＨＩＶを効果的に中和する能力を持ち、ＡＩＤＳの予防や診断に役立つ抗体を得るために種々の試みがなされている。ｇｐ１２０はＨＩＶの感染にとって最も重要な分子の一つであるため（ＭｃＤｏｕｇａｌ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３１，３８２−３８５（１９８６））、ＨＩＶの感染の効果的な抑制、感染予防及び診断には、ｇｐ１２０を標的とすることができる。これまでに、ＨＩＶのｇｐ１２０の前駆体であるｇｐ１６０のアミノ酸配列のうち、第３０８−３３１番目以内にある一つのエピトープを認識する「０．５β」と呼ばれる抗体が作製されている（特許第２７９７０９９号公報）。しかし、抗原との結合力をさらに高めるには、ＨＩＶのｇｐ１２０と反応して、効果的にウイルスを中和することができる高親和性抗体を開発することが必要である。
【発明の開示】
本発明は、ＨＩＶを中和する能力を有する高親和性抗体、及び該抗体を含む医薬組成物を提供することを目的とする。また、後天性免疫不全症候群の治療に用いられる医薬組成物を提供することを目的とする。
本発明者は、上記課題を解決するために誠意研究を行った結果、ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物を用いてｇｐ１２０により免疫すると、ＨＩＶの活性を中和し、かつＨＩＶと高親和性に結合する抗体を産生することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の通りである。
（１）ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質と結合し、かつ、解離定数がＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の抗体又はその断片。
上記抗体又はその断片は、ｇｐ１２０糖タンパク質のうち第３０８−３３０番目のアミノ酸配列（例えば配列番号６に示されるもの）の少なくとも一部を認識することができる。
本発明の抗体又はその断片は、非ヒト哺乳動物からの血清から採取する抗体、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。
本発明の抗体又はその断片は、例えば受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４であるハイブリドーマ細胞〔表示名：「Ａｎｔｉ−ＮＬ４３ｍｏｎｏ．Ｃｌｏｎｅ Ｎｏ．Ｇ２−２５ハイブリドーマ細胞」、寄託先：独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６（郵便番号３０５−８５６６））、寄託日：２００４年２月２５日〕により産生される。
（２）上記抗体又はその断片のＶ領域を含む、ヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片。
（３）配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫から採取される、高親和性抗体産生細胞。
また本発明は、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４である、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体産生細胞を提共する。
（４）ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト動物又はその子孫を、配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫し、得られる動物又は子孫から抗体を採取することを特微とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
（５）上記（３）記載の高親和性抗体産生細胞とミエローマ細胞との融合細胞、又は受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４で表されるモノクローナル抗体産生細胞を培養し、得られる培養物から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
（６）上記（１）記載の抗体又はその断片、及び上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有する医薬組成物。
本発明の医薬組成物は、後天性免疫不全症候群の治療薬として使用することが可能である。
（７）上記（１）記載の抗体若しくはその断片、又は上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体若しくはそれらの断片と、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質とを反応させることを特徴とするＨＩＶの検出方法。
（８）上記（１）記載の抗体又はその断片、及び上記（２）記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有するＨＩＶ検出用キット。
【図面の簡単な説明】
図１は、Ｂ細胞におけるＧＡＮＰの発現の増加を示す図である。
図２は、ＥＬＩＳＡを用いて各抗体によるｇｐ１２０（３０８−３３０）ペプチドを検出した結果を示す図である。
図３は、各クローンの解離定数を測定した結果を示す図である。
図４は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープに対する結合能を評価した結果を示す図である。
図５は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープに対する結合能を評価した結果を示す図である。
図６は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体の中和活性試験結果を示す図である。
図７は、各抗ＨＩＶモノクローナル抗体の中和活性試験結果を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】
１．概要
本発明の抗体は、ＧＡＮＰトランスジェニック哺乳動物に、ＨＩＶのｇｐ１２０の一部、特にｇｐ１２０のアミノ酸配列のうち第３０８−３３０のアミノ酸配列からなるペプチドを抗原として免疫することにより得られたものである。ｇｐ１２０のアミノ酸配列のうち第３０８−３３０番目の配列（「ｇｐ１２０（３０８−３３０）」という）を認識する抗体は、ウイルス中和活性、及び感染細胞による合胞体形成抑制活性を有することが知られているが（Ｓｋｉｎｎｅｒ ＭＡ．ｅｔ ａｌ．，ＡＩＤＳ Ｒｅｓ．Ｈｕｍ．Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ（１９８８），４（３），１８７−１９７）、本発明の抗体は、ｇｐ１２０（３０８−３３０）と高親和性に結合することを特徴とするものである。
ここで、ＧＡＮＰとは、胚中心結合核タンパク質（Ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｎｕｃｌｅａｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）と呼ばれている核タンパク質である。ＧＡＮＰは、遺伝子に変異を誘導するプロセスにおいて直接的及び間接的に必要な分子である。また、ＧＡＮＰは、遺伝子変異を修復する際に、高親和性の抗体が得られるようにＶ領域の変異の誘導を促す能力を保有していることから、ＧＡＮＰをコードする遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物（「ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物」という）は、このＧＡＮＰ遺伝子の導入によって、獲得性免疫の高親和性抗体産生を促進することができる。また、このＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、速やかに抗原に対する結合力の高い抗体を産生することができる。従って、上記トランスジェニック非ヒト哺乳動物を、ＨＩＶのｇｐ１２０のアミノ酸配列のペプチド（例えばｇｐ１２０（３０８−３３０））を抗原に用いて免疫することで、従来は得られないような高親和性の抗体を簡便に得ることができる。
上述の通り、本発明により、ＨＩＶ中和活性、感染細胞の合胞体形成抑制作用を有し、従来は得られないような高親和性の抗ＨＩＶ抗体を得ることができる。そして、得られた抗体を含む医薬組成物は、ＡＩＤＳの治療に用いることができる。
上記抗体を産生する細胞は、ｇｐ１２０で免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物から得られた脾臓Ｂ細胞又はリンパ節細胞単独でもよく、Ｂ細胞又はリンパ細胞とミエローマ細胞とを融合させたハイブリドーマ細胞でもよい。本発明は、上記抗体を産生する細胞についても提供する。
さらに、ＨＩＶ感染を確認する臨床検査においては、ＨＩＶを高感度に検出することが重要である。その検出手段として、本発明の高親和性抗ＨＩＶ抗体を用いることができる。従って、本発明は、抗ＨＩＶ抗体を含むＨＩＶ検出キットを提供するものである。
２．抗原の調製
ＨＩＶのｇｐ１２０はデータベース等から配列情報を得ることが可能であり（ＰＲＦ １１０２２４７Ａ，ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ａｄ．ｊｐ／ｄｂｇｅｔ−ｂｉｎ／ｗｗｗ＿ｂｇｅｔ？ｐｒｆ：１１０２２４７Ａ）、そのアミノ酸配列は配列番号５に示されるものである。
そして、ｇｐ１２０（３０８−３３０）のポリペプチド配列は、
で表される２３アミノ酸残基であり（Ｌｅｅ Ｒａｔｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３１３，２７７−２８４，１９８５）、このアミノ酸配列のうちの少なくとも一部（全部又は一部）を含むポリペプチド又はペプチド（単にペプチドともいう）抗原として使用することができる。
ここで、抗原に用いる上記配列番号６で示されるペプチド配列の「アミノ酸配列の少なくとも一部」とは、長さに特に限定されるものではない。例えば２３アミノ酸残基のうち連続する８アミノ酸残基以上、例えば８、１０、１２、１６、２０、２３アミノ酸残基が挙げられる。また、選択する場所は、配列番号６の中の連続したアミノ酸であれば特に限定されず、任意の場所を選択することができる。例えば、７〜８アミノ酸残基を抗原に用いる場合には、配列番号６で示される２３残基のアミノ酸配列を、Ｎ末端から順に７〜８アミノ酸ずつ３つの領域に渡ってアミノ酸配列を選択してもよく、Ｎ末端から１アミノ酸ずつＣ末端側にずらした領域の配列を選択してもよい。
抗原には、配列番号６及び上記のアミノ酸配列の少なくとも一部を、単独又は混合して用いることができる。
また、上記ペプチドをキャリアタンパク質と結合させ、該ペプチドを側鎖として多数持つように抗原を作製してもよい。この場合は、上記ペプチドのＮ末端に、キャリアタンパク質を結合させるためのシステイン残基を付加することができる。
ペプチドの作製方法は、化学合成でも、大腸菌などを用いる生化学的合成でもよく、これらは当業者に周知の方法を用いることができる。
本発明のペプチドの化学合成を行う場合は、ペプチドの合成の周知方法によって合成することができる。例えば、アジド法、酸クロライド法、酸無水物法、混合酸無水物法、ＤＣＣ法、活性エステル法、カルボイミダゾール法、酸化還元法等が挙げられる。また、その合成は、固相合戍法及び液相合成法のいずれをも適用することができる。市販のペプチド合成装置（島津製作所製ＰＳＳＭ−８など）を使用してもよい。
反応後は、溶媒抽出、蒸留、カラムクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー、再結晶などの通常の精製法を組み合わせて本発明のペプチドを精製することができる。
本発明のペプチドの生化学的合成を行う場合は、まず、該ペプチドをコードするＤＮＡを設計し合成する。そして、上記ＤＮＡを適当なベクターに連結することによってタンパク質発現用組換えベクターを得、該組換えベクターを目的遺伝子が発現し得るように宿主中に導入することによって形質転換体を得ることができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌ Ｄ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，３ｒｄ ｅｄｉｔｉｏｎ，ＣＳＨＬ Ｐｒｅｓｓ，２００１）。
ベクターには、宿主微生物で自律的に増殖し得るファージ又はプラスミドが使用される。プラスミドＤＮＡとしては、大腸菌、枯草菌又は酵母由来のプラスミドなどが挙げられ、ファージＤＮＡとしてはλファージが挙げられる。さらに、動物ウイルス、昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。
組換えベクターの作製は、精製されたＤＮＡを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターＤＮＡの制限酵素部位等に挿入してベクターに連結すればよい。
形質転換に使用する宿主としては、目的の遺伝子を発現できるものであれば特に限定されるものではない。例えば、細菌（大腸菌、枯草菌等）、酵母、動物細胞（ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞等）、昆虫細胞又は昆虫が挙げられる。ヤギ等の哺乳動物を宿主として使用することも可能である。
宿主への組換えベクターの導入方法は公知であり、任意の方法（例えばカルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法等）が挙げられる。
本発明において、本発明のペプチドは、前記形質転換体を培養し、その培養物から採取することにより得ることができる。「培養物」とは、（ａ）培養上清、（ｂ）培養細胞若しくは培養菌体又はその破砕物のいずれをも意味するものである。
培養法は、当分野において周知である（前記Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇを参照）。
培養後、目的ペプチドが菌体内又は細胞内に生産される場合には、菌体又は細胞を破砕することによりペプチドを抽出する。また、目的ペプチドが菌体外又は細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離等により菌体又は細胞を除去する。その後、ペプチドの単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることにより、目的のペプチドを単離精製することができる。
本発明においては、ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳によるペプチド合成を採用することもできる。この場合は、ＲＮＡを鋳型にする方法とＤＮＡを鋳型にする方法（転写／翻訳）の２通りの方法を用いることができる。例えば、鋳型ＤＮＡとしては、翻訳開始点の上流にプロモーターとリボゾーム結合部位を有している該ペプチドをコードするＤＮＡ、あるいは翻訳開始点の上流に転写に必要なプロモーター等が組み込まれたＤＮＡが挙げられる。ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳システムは、市販のシステム、例えばＥｘｐｒｅｓｓｗａｙＴＭシステム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、ＰＵＲＥＳＹＳＴＥＭ（登録商標；ポストゲノム研究所）、ＴＮＴシステム（登録商標；Ｐｒｏｍｅｇａ社）などを用いることができる。ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳システムによるペプチド合成後は、上記の一般的な生化学的方法を単独又は組み合わせることにより、目的のペプチドを単離精製することができる。
上記のように得られたペプチドに結合させるキャリアタンパク質としては、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、ｋｅｙｈｏｌｅ ｌｉｍｐｅｔ ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ（ＫＬＨ）、ｈｕｍａｎ ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ，ニワトリガンマグロブリンを挙げることができる。
３．ＧＡＮＰ
ＧＡＮＰは、酵母Ｓａｃ３タンパク質とホモロジーを有する２１０ｋＤの核タンパク質である（ＷＯ００／５０６１１号公報）。そして、ＳＡＣ３はアクチン形成の抑制物質として特徴づけられている。また、ＧＡＮＰは、濾胞樹状細胞（ｆｏｌｌｉｃｕｌａｒ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌｓ：ＦＤＣ）により囲まれる胚中心（ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ，ＧＣ）Ｂ細胞において選択的にアップレギュレートされ、リン酸化依存性ＲＮＡプライマーゼ活性を有し、Ｂ細胞の細胞周期調節に関与しているタンパク質である（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８）。
本発明においては、ＧＡＮＰタンパク質のアミノ酸配列を、マウスについて配列番号２に、ヒトについて配列番号４に示す。また、ＧＡＮＰタンパク質をコードする遺伝子（ＧＡＮＰ遺伝子という）の塩基配列を、マウスについて配列番号１に、ヒトについて配列番号３に示す。なお、上記アミノ酸配列及び塩基配列は、国際公開ＷＯ００／５０６１１号公報にも記載されている。
またＧＡＮＰタンパク質は変異体でもよく、配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列において１又は複数のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列であってＲＮＡプライマーゼ活性を有するタンパク質であってもよい。例えば、配列番号２又は４に示すアミノ酸配列のうち１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が欠失しており、１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が他のアミノ酸で置換されており、及び／又は１若しくは複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜１０個、さらに好ましくは１個〜５個））の他のアミノ酸が付加されたアミノ酸配列からなり、かつ上記ＧＡＮＰタンパク質と同様のＲＮＡプライマーゼ活性を有するＧＡＮＰ変異型タンパク質を使用することもできる。
「ＲＮＡプライマーゼ活性」とは、ＲＮＡ複製において、５’→３’方向に進む鎖の伸長とは逆向きの鎖（ラギング鎖）を合成する際に、伸長の開始点となる短いプライマーのＲＮＡを合成する酵素活性を意味する。通常はαプライマーゼと呼ばれるＤＮＡポリメラーゼαと結合する分子が用いられるが、胚中心Ｂ細胞では第二のプライマーゼであるＧＡＮＰプライマーゼも誘導されている。
ＧＡＮＰタンパク質は、上記配列番号２若しくは４に示すアミノ酸配列又はこれらの変異型アミノ酸配列のほか、Ｎ末端側の一部の配列（例えば配列番号２に示すアミノ酸配列の１〜６００番、好ましくは１３９〜５６６番）又はこれらの変異型アミノ酸配列を有するものも含まれる。
本発明において、動物に導入するためのＧＡＮＰ遺伝子は、上記ＧＡＮＰタンパク質、Ｎ末側の一部の配列、又は変異型タンパク質をコードする遺伝子が挙げられる。そのような遺伝子として、例えば配列番号１又は３に示す塩基配列を有するものを使用することができる。配列番号１又は３に示す塩基配列のうち、コード領域のみの塩基配列であってもよい。また、上記配列番号１又は３に示す塩基配列に相補的な配列と、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ＲＮＡプライマーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子を使用することも可能である。
「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイズさせた後の洗浄時の条件であって塩（ナトリウム）濃度が１５０〜９００ｍＭであり、温度が５５〜７５℃、好ましくは塩（ナトリウム）濃度が２５０〜４５０ｍＭであり、温度が６８℃での条件をいう。
遺伝子に変異を導入するには、Ｋｕｎｋｅｌ法やＧａｐｐｅｄ ｄｕｐｌｅｘ法等の公知手法により、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット、例えばＧｅｎｅＴａｉｌｏｒＴＭ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）、ＴａＫａＲａ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｍｕｔａｎ−Ｋ、Ｍｕｔａｎ−Ｓｕｐｅｒ Ｅｘｐｒｅｓｓ Ｋｍ等：タカラバイオ社製）を用いて行うことができる。
変異遺伝子の詳細並びに取得方法は国際公開ＷＯ００／５０６１１号公報にも記載されている。
なお、抗μ抗体及び抗ＣＤ−４０モノクローナル抗体でＢ細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏ刺激すると、ＧＡＮＰ発現のアップレギュレーションのみならず、ＧＡＮＰタンパク質のアミノ酸配列のうち特定のセリン残基（例えば５０２番目のセリン：Ｓ５０２）のリン酸化を引き起こす。この反応は、ＧＡＮＰのＲＮＡプライマーゼ活性についてキーとなる反応である（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９８，１０２７９−１０２８３）。ＧＡＮＰタンパク質のＮ末端側のＲＮＡプライマーゼドメインはセリン残基を含んでおり、そのリン酸化はｉｎ ｖｉｔｒｏにおいてＣｄｋ２によって触媒される。Ｃ末端側ドメインにより、ＧＡＮＰはＭＣＭ３複製ライセンシング因子に結合する（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８；Ａｂｅ，Ｅ．ｅｔ ａｌ．（２０００）Ｇｅｎｅ ２５５，２１９−２２７）。
なお、ＧＡＮＰ遺伝子欠損マウスは胎生致死であるが、ＣＤ１９−Ｃｒｅマウスとｆｌｏｘ−ｇａｎｐ遺伝子のマウスを交配して作製したＢ細胞に選択的にＧＡＮＰ遺伝子を欠損したｃｏｎｄｉｔｉｏｎａｌ ｔａｒｇｅｔｉｎｇマウスを作製して、Ｔ細胞依存性抗原であるｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ（ＮＰ）−ニワトリガンマグロブリン抗原で免疫してＮＰ−ハプテン特異的な抗体産生を調べたところ、高親和性抗体産生が著しく障害されており、ＧＡＮＰ分子が抗体の親和性亢進に重要な機能をしていることが明らかになった。
４．ＧＡＮＰ遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物
ｇｐ１２０による免疫の対象となる動物は、ＧＡＮＰ遺伝子を導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物であり、当該トランスジェニック非ヒト哺乳動物は、好ましくは、導入したＧＡＮＰ遺伝子をＢ細胞で発現することができる。
（１）ＧＡＮＰ遺伝子とその関連分子
ＧＡＮＰ遺伝子とその関連分子で形成される複合体は、遺伝子に変異を誘導するプロセスで直接および間接的に必要な分子である。ＧＡＮＰタンパク質は、遺伝子変異を修復する際に、高親和性の抗体が得られるようにＶ領域の変異の誘導を促す能力を保有していることから、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、このＧＡＮＰ遺伝子又はその変異遺伝子の導入によって、獲得性免疫の高親和性抗体産生を促進することができる。また、この遺伝子を過剰に発現するトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、速やかに抗原に対する結合力の高い抗体を産生することができる。従って、上記トランスジェニック非ヒト哺乳動物を所定の抗原で免疫することで、従来では得られないような高親和性の抗体を簡便に得ることができる。その結果、難治性の病原微生物や異物を排除できるポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体を得ることができる。また、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物を用いてヒト型化抗体を作製することによって、あるいは、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物が産生する抗体のＶ領域を含む一本鎖抗体を作製することによって、抗体療法の効力を飛躍的に高めることが可能となる。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、ＧＡＮＰ又はその変異遺伝子の導入によって、Ｂ細胞で高親和性抗体の産生を促進することができ、前記高親和性抗体産生細胞はアポトーシスを誘導するシグナルに対して抵抗性を有する。
（２）ＧＡＮＰ遺伝子導入用哺乳動物
本発明における「哺乳動物」とは、ウシ、ウマ、ブタ、ヤギ、ウサギ、イヌ、ネコ、マウス、ラット、ハムスター及びモルモット等の任意の非ヒト哺乳動物を意味し、好ましくはマウス、ウサギ、ラットまたはハムスターであり、特に好ましくはマウスである。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、未受精卵、受精卵、精子およびその始原細胞を含む胚芽細胞などに対して、好ましくは、非ヒト哺乳動物の発生における胚発生の段階（さらに好ましくは、単細胞または受精卵細胞の段階でかつ一般に８細胞期以前）の細胞に対して、リン酸カルシウム法、電気パルス法、リポフェクション法、凝集法、マイクロインジェクション法、パーティクルガン法、ＤＥＡＥ−デキストラン法などにより、ＧＡＮＰ遺伝子を導入することにより作製することができる。また、上記遺伝子導入方法により、体細胞、生体の臓器、組織細胞などに目的とするＧＡＮＰ遺伝子を転移させ、細胞培養、組織培養などに利用することもできる。さらに、これら細胞を上述の胚芽細胞と公知の細胞融合法により融合させることにより、トランスジェニック非ヒト哺乳動物を作製することもできる。
ＧＡＮＰ遺伝子を対象動物に導入させる際、当該遺伝子を対象となる動物の細胞で発現させうるプロモーターの下流に連結した遺伝子構築物として導入することが好ましい。具体的には、目的とするＧＡＮＰ遺伝子を有する各種哺乳動物由来のＧＡＮＰ遺伝子を発現させうる各種プロモーターの下流に、ＧＡＮＰ遺伝子を連結したベクターを、対象となる哺乳動物の受精卵（例えば、マウス受精卵）にマイクロインジェクションすることによって、目的とするＧＡＮＰ遺伝子を高発現するトランスジェニック非ヒト哺乳動物を作製することができる。
（３）発現ベクター
ＧＡＮＰ遺伝子の発現ベクターとしては、大腸菌由来のプラスミド、枯草菌由来のプラスミド、酵母由来のプラスミド、λファージなどのバクテリオファージ、モロニー白血病ウイルスなどのレトロウイルス、ワクシニアウイルス又はバキュロウイルスなどの動物又は昆虫ウイルスなどが用いられる。
遺伝子発現の調節を行うプロモーターとしては、たとえばウイルス由来遺伝子のプロモーター、各種哺乳動物（ヒト、ウサギ、イヌ、ネコ、モルモット、ハムスター、ラット、マウスなど）および鳥類（ニワトリなど）由来遺伝子のプロモーターなどを使用することが可能である。
ウイルス由来遺伝子のプロモーターとしては、例えばサイトメガロウイルス、モロニー白血病ウイルス、ＪＣウイルス、乳癌ウイルス等由来遺伝子のプロモーターが挙げられる。
各種哺乳動物及び鳥類由来遺伝子のプロモーターとしては、例えば、アルブミン、インスリンＩＩ、エリスロポエチン、エンドセリン、オステオカルシン、筋クレアチンキナーゼ、血小板由来成長因子β、ケラチンＫ１，Ｋ１０およびＫ１４、コラーゲンＩ型およびＩＩ型、心房ナトリウム利尿性因子、ドーパミンβ−水酸化酵素、内皮レセプターチロシンキナーゼ、ナトリウムカリウムアデノシン３リン酸化酵素、ニューロフィラメント軽鎖、メタロチオネインＩ及びＩＩＡ、メタロプロティナーゼ１組織インヒビター、ＭＨＣクラスＩ抗原、平滑筋αアクチン、ポリペプチド鎖延長因子１α（ＥＦ−１α）、βアクチン、α及びβミオシン重鎖、ミオシン軽鎖１及び２、ミエリン基礎タンパク、血清アミロイドＰコンポーネント、ミオグロビン、レニンなどの遺伝子のプロモーターが挙げられる。
上記ベクターは、トランスジェニック非ヒト哺乳動物において目的とするメッセンジャーＲＮＡの転写を終結するターミネターを有していてもよい。その他、ＧＡＮＰ遺伝子をさらに高発現させる目的で、各遺伝子のスプライシングシグナル、エンハンサー領域、真核生物遺伝子のイントロンの一部をプロモーター領域の５’上流、プロモーター領域と翻訳領域間、あるいは翻訳領域の３’下流に連結することも所望により可能である。
本発明の好ましい態様では、免疫グロブリンプロモーターの下流にＧＡＮＰ遺伝子を連結することにより、あるいはヒト免疫グロブリン遺伝子イントロンエンハンサー部分をＧＡＮＰ遺伝子の５’側に連結することにより、ＧＡＮＰ遺伝子をＢ細胞で選択的に発現させることができる。
（４）ＧＡＮＰ遺伝子の導入
受精卵細胞段階におけるＧＡＮＰ遺伝子の導入は、例えば対象の哺乳動物の胚芽細胞および体細胞の全てに過剰に存在するように確保することが好ましい。遺伝子導入後の作出動物の胚芽細胞においてＧＡＮＰ遺伝子が過剰に存在することは、作出動物の子孫が全てその胚芽細胞および体細胞の全てにＧＡＮＰ遺伝子を過剰に有することを意味する。そして、遺伝子を受け継いだこの種の動物の子孫は、その胚芽細胞および体細胞の全てにＧＡＮＰ蛋白質を過剰に有する。
本発明においては、導入遺伝子を相同染色体の一方に持つヘテロ接合体を取得し、ヘテロ接合体同士を交配することで導入遺伝子を相同染色体の両方に持つホモ接合体を取得し、この雌雄の動物を交配することによりすべての子孫が導入されたＧＡＮＰ遺伝子を安定に保持する。そして、ＧＡＮＰ遺伝子を過剰に有することを確認して、通常の飼育環境で繁殖継代することができる。
トランスジェニック対象動物が有する内在性の遺伝子とは異なる遺伝子である外来性ＧＡＮＰ遺伝子を対象非ヒト哺乳動物（好ましくはマウスなど）、又はその先祖の受精卵（バッククロス）に転移する際に用いられる受精卵は、同種の雄哺乳動物と雌哺乳動物を交配させることによって得られる。
受精卵は自然交配によっても得られるが、雌哺乳動物の性周期を人工的に調節した後、雄哺乳動物と交配させる方法が好ましい。雌哺乳動物の性周期を人工的に調節する方法としては、例えば、初めに卵胞刺激ホルモン（妊馬血清性性腺刺激ホルモン（ＰＭＳＧ））、次いで黄体形成ホルモン（ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン（ｈＣＧ））を、例えば腹腔注射などにより投与する方法が好ましい。
得られた受精卵に、前述の方法により外来性ＧＡＮＰ遺伝子を導入した後、雌哺乳動物に人工的に移植・着床することにより、外来性遺伝子を組み込んだＤＮＡを有する非ヒト哺乳動物が得られる。雌哺乳動物に黄体形成ホルモン放出ホルモン（ＬＨＲＨ）を投与後、雄哺乳動物と交配させることにより受精能を誘起された偽妊娠雌哺乳動物に、受精卵を人工的に移植・着床させる方法が好ましい。遺伝子を導入する全能性細胞としては、マウスの場合、受精卵や初期胚を用いることができる。また培養細胞への遺伝子導入法としては、トランスジェニック非ヒト哺乳動物個体の産出効率や次代への導入遺伝子の伝達効率を考慮した場合、ＤＮＡのマイクロインジェクションが好ましい。
遺伝子を注入した受精卵は、次に仮親の卵管に移植され、個体まで発生し出生した動物を里親につけて飼育させたのち、体の一部（マウスの場合には、例えば、尾部先端）からＤＮＡを抽出し、サザン解析やＰＣＲ法により導入遺伝子の存在を確認することができる。導入遺伝子の存在が確認された個体を初代（Ｆｏｕｎｄｅｒ）とすれば、導入遺伝子はその子（Ｆ１）の５０％に伝達される。さらに、このＦ１個体を野生型動物または他のＦ１動物と交配させることにより、２倍体染色体の片方（ヘテロ接合）または両方（ホモ接合）に導入遺伝子を有する個体（Ｆ２）を作製することができる。
あるいは、ＧＡＮＰ蛋白質高発現トランスジェニック非ヒト哺乳動物は、上記したＧＡＮＰ遺伝子をＥＳ細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）に導入することによって作製することもできる。例えば、正常マウス胚盤胞（ｂｌａｓｔｏｃｙｓｔ）に由来するＨＰＲＴ陰性（ヒポキサンチングアニン・フォスフォリボシルトランスフェラーゼ遺伝子を欠いている）ＥＳ細胞に、ＧＡＮＰ遺伝子を導入する。当該ＧＡＮＰ遺伝子がマウス内在性遺伝子上に相同組み換えを起こさせ、インテグレートされたＥＳ細胞をＨＡＴセレクション法により選別する。次いで、選別したＥＳ細胞を、別の正常マウスから取得した受精卵（胚盤胞）にマイクロインジェクションする。得られた胚盤胞を、仮親としての別の正常マウスの子宮に移植する。その後、仮親マウスからキメラトランスジェニックマウスが生まれる。生まれたキメラトランスジェニックマウスを正常マウスと交配させることにより、ヘテロトランスジェニックマウスを得ることができる。そして、ヘテロトランスジェニックマウス同士を交配することにより、ホモトランスジェニックマウスが得られる。
本発明においては、上記したトランスジェニック非ヒト哺乳動物に限らず、その子孫、並びにトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫の一部も本発明の範囲内である。トランスジェニック非ヒト哺乳動物の一部としては、当該トランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫の組織、器官及び細胞などが挙げられ、器官または組織としては、脾臓、胸腺、リンパ節、骨髄あるいは扁桃腺などが挙げられ、細胞としてはＢ細胞などが挙げられる。
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、Ｂ細胞をさらに活性化する哺乳動物と交配することも可能であり、これによりさらに高親和性抗体を産生することが可能である。
最近、ＭＲＬ／ｌｐｒマウスでＢ細胞が末梢のリンパ節での活性化の際に胚中心を経過した後、Ｔ細胞領域でさらにＶ領域の突然変異誘導が亢進していることが報告されている。また、本発明者らもＭＲＬ／ｌｐｒマウスにおいてＧＡＮＰ遺伝子がＩｇプロモーター、エンハンサーの下流に結合して作製したｇａｎｐトランスジェニックマウスに見られるのと同等の高い発現が、非免疫の状態で見られることを見出している。このことは、正常では自己の抗原に対しては高親和性の抗体はできないのに対して、この自己免疫疾患マウスでは、ＧＡＮＰ分子の異常な活性化が起こるために、自己の抗原に対しての高親和性抗体が産生されることとなる可能性が示唆される。
そこで、上記Ｂ細胞をさらに活性化する動物として、自己免疫疾患マウスであるとされるＭＲＬ／ｌｐｒ，ＮＺＢ，（ＮＺＢｘＮＺＷ）Ｆ１などを用いれば、さらに高い変異誘導を期待できる。
以上のことを利用したＭＬＲ／ｌｐｒマウスのＧＡＮＰトランスジェニックマウスを作製することによって、スーパー高親和性抗体産生マウスを作出できる可能性がある。すなわち、本発明のＧＡＮＰ遺伝子過剰発現トランスジェニック非ヒト哺乳動物とさまざまな自己免疫疾患モデル動物との交配により、高親和性抗体を産生できる哺乳動物を作製することができる。
５．ＨＩＶ ｇｐ１２０に対する高親和性抗体の作製
（１）高親和性抗体
本発明において「抗体」とは、抗原であるｇｐ１２０のアミノ酸配列第３０８−３３０番目のペプチドに結合し得る抗体分子全体（ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であっても良い）またはその断片を意味する。また、本発明の抗体のアイソタイプは特に限定されず、例えば、ＩｇＧ（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４）、ＩｇＭ、ＩｇＡ（ＩｇＡ１、ＩｇＡ２）、ＩｇＤ又はＩｇＥである。
本発明では、抗原に対する反応性が高い抗体のことを高親和性抗体という。「高親和性」とは、抗体が抗原と結合する結合能が高いことを意味し、抗体の結合能が一般のマウスなどの動物を用いて作製した抗体と比較して高く、また逆に当該抗原から解離することが遅い抗体のことをいう。これはエピトープに対して、立体的に密接して結合する能力が高く特異的であることを意味すると共に、抗体が結合することによってエピトープのみならずその抗原の構造の変換をきたすことによって結果的に強力な活性、例えば毒素中和活性、ＨＩＶの感染性阻止、不活性化などの生物活性を示すことも包含している。
抗体の結合能（親和性）は、スキャッチャード解析やＢｉａｃｏｒｅと呼ばれる表面プラズモン共鳴センサーにより、解離定数（ＫＤ）、解離速度定数（Ｋｄｉｓｓ）、結合速度定数（Ｋａｓｓ）として測定することができる。Ｂｉａｃｏｒｅ装置は、センサーチップ、マイクロ流路系、ＳＰＲ検出系の３つの技術を統合して分子結合の強さ、速さ、選択性を測定するというものであり、標識を使わずにリアルタイムで生体分子の検出と複数個の分子間での相互作用のモニタリングを行うことができる。Ｂｉａｃｏｒｅ装置としては、例えばＢｉａｃｏｒｅ３０００、Ｂｉａｃｏｒｅ２０００、ＢｉａｃｏｒｅＸ、ＢｉａｃｏｒｅＪ、ＢｉａｃｏｒｅＱ（いずれもＢｉａｃｏｒｅ社）などが挙げられる。
上記Ｂｉａｃｏｒｅによって、抗体の親和性を示すパラメーター、すなわち解離定数（ＫＤ）、解離速度定数（Ｋｄｉｓｓ）［１／Ｓｅｃ］及び結合速度定数（Ｋａｓｓ）［１／Ｍ．Ｓｅｃ］を測定する。
抗体は、解離定数（ＫＤ値）が小さい値であるほど親和性が高いという点で好ましい。抗体の結合能（親和性）は、Ｋｄｉｓｓ及びＫａｓｓの２つのパラメーターにより決定され、
ＫＤ［Ｍ］＝Ｋｄｉｓｓ／Ｋａｓｓ
により表わされる。
抗原の種類等複数の要因によって、得られる抗体の親和性は異なるが、ＫＤ値は１×１０−９（Ｍ）以下であることが好ましく、１．５×１０−１０（Ｍ）以下であることがより好ましく、１．０×１０−１０（Ｍ）以下（特に９．９×１０−１１（Ｍ）以下）であることがさらに好ましい。
本発明においては、作製された抗体が上記いずれかの作用又は性質を発揮する抗体であるときに、高親和性であると判断される。
本発明の抗体（ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体及び活性フラグメント）は、種々の方法のいずれかによって製造することができる。このような抗体の製造法は当該分野で周知である。
（２）ポリクローナル抗体の作製
上記の通り作製した抗原をＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物に投与する。哺乳動物は特に限定されものではなく、例えばラット、マウス、ウサギなどを挙げることができるが、ＧＡＮＰトランスジェニックマウス、又はＧＡＮＰトランスジェニックウサギが好ましい。
抗原の動物一匹あたりの投与量は、アジュバントを用いないときは、５〜５０ｍｇであり、アジュバントを用いるときは０．５〜２ｍｇである。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）、水酸化アルミニウムアジュバント、トレハロースダイマイコレート（ＴＤＭ）、リポ多糖（ＬＰＳ）、シリカアジュバント、市販の免疫賦活薬等が挙げられる。免疫は、主として静脈内、皮下、腹腔内等に注入することにより行われる。また、免疫の間隔は特に限定されず、数日から数週間間隔、好ましくは１〜５週間間隔で、１〜１０回、好ましくは２〜３回免疫を行う。そして、最終の免疫日から６〜６０日後に酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ［ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ］又はＥＩＡ［ｅｎｚｙｍｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ］）放射性免疫測定法（ＲＩＡ［ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏ ａｓｓａｙ］）等で抗体価を測定し、所望の抗体価を示した日に採血し、抗血清を得る。上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより精製することができる。
その後は、抗血清中のポリクローナル抗体の反応性をＥＬＩＳＡ法などで測定する。
（３）モノクローナル抗体の作製
（ａ）抗体産生細胞の採取
前記のように作製した抗原を、ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物、例えばラット、マウス、ウサギなどに投与する。抗原の動物一匹あたりの投与量はアジュバントを用いないときは、０．０５〜２ｍｇであり、アジュバントを用いるときは０．０５〜２ｍｇである。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）、水酸化アルミニウムアジュバント、ＢＣＧ、トレハロースダイマイコレート（ＴＤＭ）、リポ多糖（ＬＰＳ）、シリカアジュバント等が挙げられるが、抗体の誘導能等の関係から、ＦＣＡとＦＩＡとを組み合わせて使用することが好ましい。免疫は、主として静脈内、皮下、腹腔内に注入することにより行われる。また、免疫動物は、抗原の初回免疫後、さらに、追加免疫を数回行い、適当な日数を経過した後に部分採血を行い、上記方法で抗体価を測定することが好ましい。本発明の方法で産生される抗体は高親和性抗体であるため、上記免疫は初回のみで十分である可能性がある。免疫の間隔は特に限定されず、数日から数週間間隔、好ましくは２〜５週間間隔で、１〜１０回、好ましくは１〜５回免疫を行う。そして、最終の免疫日から１〜６０日後、好ましくは１〜１４日後に抗体産生細胞を採集する。抗体産生細胞としては、脾臓細胞、リンパ節細胞、末梢血細胞などが挙げられるが、脾臓細胞、又は局所リンパ節細胞が好ましい。
上記のようにして得られる本発明の高親和性抗体産生細胞も本発明に含まれる。
（ｂ）細胞融合
例えば、ＧＡＮＰトランスジェニックマウスを用いた場合、ハイブリドーマを得るため、抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合を行う。抗体産生細胞と融合させるミエローマ細胞として、マウスなどの動物の一般に入手可能な株化細胞を使用することができる。使用する細胞株としては、薬剤選択性を有し、未融合の状態ではＨＡＴ選択培地（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジンを含む）で生存できず、抗体産生細胞と融合した状態でのみ生存できる性質を有するものが好ましい。ミエローマ細胞としては、例えば、Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８（Ｘ６３）、Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８．Ｕ１（Ｐ３Ｕ１）、Ｐ３／ＮＳ Ｉ／１−Ａｇ４−１（ＮＳ１）、Ｓｐ２／０−Ａｇ１４（Ｓｐ２／０）等のマウスミエローマ細胞株を挙げることができる。ミエローマ細胞の選択に当たっては、抗体産生細胞との適合性を適宜考慮する。
次に、上記ミエローマ細胞と抗体産生細胞とを細胞融合させる。細胞融合は、血清を含まないＤＭＥＭ、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの動物細胞用培地中で、１×１０６〜１×１０７個／ｍｌの抗体産生細胞と２×１０５〜２×１０６個／ｍｌのミエローマ細胞とを混合し（抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞比５：１が好ましい）、細胞融合促進剤存在の下で融合反応を行う。細胞融合促進剤として、平均分子量１０００〜６０００ダルトン（Ｄ）のポリエチレングリコールなどを使用することができる。また、電気刺激（例えばエレクトロポレーション）を利用した市販の細胞融合装置を用いて、抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることもできる。
（ｃ）ハイブリドーマの選別及びクローニング
細胞融合処理後の細胞から目的とするハイブリドーマを選別する。その方法として、細胞懸濁液を例えばウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ−１６４０培地などに適当に希釈後、マイクロタイタープレート上にまき、各ウェルに選択培地を加え、以後適当に選択培地を交換して培養を行う。その結果、選択培地で培養開始後、１４日前後から生育してくる細胞をハイブリドーマとして得ることができる。
次に、増殖してきたハイブリドーマの培養上清中に、ｇｐ１２０に反応する抗体が存在するか否かをスクリーニングする。ハイブリドーマのスクリーニングは、通常の方法に従えばよく、特に限定されるものではない。例えば、ハイブリドーマとして生育したウェルに含まれる培養上清の一部を採集し、ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ、ＲＩＡなどによってスクリーニングすることができる。
融合細胞のクローニングは、限界希釈法等により行う。ｇｐ１２０に強い反応性を示す抗体であって、親和性を示す値がＫＤ＝１×１０−９（Ｍ）以下である抗体を産生するハイブリドーマを選択し、樹立する。
（ｄ）モノクローナル抗体の採取
樹立したハイブリドーマを培養し、得られる培養物からモノクローナル抗体を採取する方法として、通常の細胞培養法、又は腹水形成法等を採用することができる。「培養」とは、上記ハイブリドーマをシャーレやディッシュで生育すること、または上記ハイブリドーマを下記のように腹腔内で増殖することを意味する。また、「培養物」とは、培養上清、培養細胞若しくはその破砕物、又は腹水のいずれをも意味するものである。
細胞培養法においては、ハイブリドーマを１０％ウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ−１６４０培地、ＭＥＭ培地又は無血清培地等の動物細胞培養培地中で、通常の培養条件（例えば３７℃、５％ＣＯ２濃度）で７〜１４日間培養し、その培養上清から抗体を取得する。
腹水形成法の場合は、ミエローマ細胞由来の哺乳動物と同種系動物の腹腔内にハイブリドーマを約１×１０７個投与し、ハイブリドーマを大量に増殖させる。そして、１〜２週間後に腹水を採集する。
上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより精製することができる。
（ｅ）モノクローナル抗体の結合領域の利用
モノクローナル抗体はＨＩＶ抗原に結合することで感染阻止、およびＨＩＶウイルスの中和、排除を行う活性を有するが、その際にはＨ鎖ではどのＶ領域遺伝子を用いているか、どのＤ領域の遺伝子、Ｊ領域遺伝子を用いているか、さらにＮ配列が挿入されているか、またどのＬ鎖のＶ領域遺伝子を用いているか、Ｊ領域遺伝子を用いているかが高親和性抗体作製の基盤になる。しかし、結合親和性に関しては、これらに加えて、末梢のリンパ組織で誘導されるＶ領域遺伝子の体細胞突然変異の程度によって大きく変化する。ここではモノクローナル抗体の抗原結合に関わる領域、すなわちＨ鎖とＬ鎖のそれぞれ３つのＣＤＲ領域の構造によって、体細胞突然変異の程度が決まる。したがって、本発明で得られる高親和性の結合領域の情報を用いれば、ヒトのＥＢウイルスでトランスフォームした記憶Ｂ細胞株で抗ＨＩＶ抗体産生細胞を樹立して、そのＶ領域にここで得られている情報を直接遺伝子操作技術で導入することによって高親和性抗体を得ることも可能である。
（４）抗体断片、ヒト型化抗体又はヒト化抗体
上記の抗体の断片及びＶ領域の一本鎖抗体も本発明の範囲内である、抗体の断片としては、前述したポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体の一部分の領域を意味し、具体的にはＦ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ（ｖａｒｉａｂｌｅ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｏｆ ａｎｔｉｂｏｄｙ）、ｓＦｖ、ｄｓＦｖ（ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄ Ｆｖ）、あるいはｄＡｂ（ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｍａｉｎ ａｎｔｉｂｏｄｙ）等が挙げられる。一本鎖抗体は、ＶＬ（Ｌ鎖可変領域）とＶＨ（Ｈ鎖可変領域）をリンカーでつないだ構造を持つ。
本発明の高親和性抗体は、ヒト型化抗体やヒト抗体でも良い。これらの抗体は、免疫系をヒトのものと入れ換えた哺乳動物を用いて、該哺乳動物を免疫して、通常のモノクローナル抗体と同様に直接ヒト抗体を作製することができる。
ヒト型化抗体を作製する場合は、マウス抗体の可変領域から相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ；ＣＤＲ）をヒト可変領域に移植して、フレームワーク領域（ＦＲ）はヒト由来のものを、ＣＤＲはマウス由来のものからなる再構成した可変領域を作製する。
次にこれらのヒト型化された再構成ヒト可変領域をヒト定常領域に連結する。ヒト型化抗体の作製法は、当分野において周知である。
ヒト抗体は、一般にＶ領域の抗原結合部位、すなわち超過変領域（Ｈｙｐｅｒ Ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ）についてはその特異性と結合親和性が問題となるが、構造的にどの動物で作製してもかまわない。一方Ｖ領域のその他の部分や定常領域の構造は、ヒトの抗体と同じ構造をしていることが望ましい。ヒトに共通の遺伝子配列については遺伝子工学的手法によって作製する方法が確立されている。
（５）抗体の特性
本発明のＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳肋物より産生される抗体は、以下の（ｉ）〜（ｉｖ）の少なくとも１つの性質を有する。
（ｉ）ＨＩＶの外被膜にある分子量１２０ｋＤの糖タンパク質抗原ｇｐ１２０と結合して、ＨＩＶを中和する。
（ｉｉ）ＨＩＶに感染された細胞の表面に結合することによって、感染された細胞と感染されないＴ細胞により誘発される合胞体の形成を阻止する。
（ｉｉｉ）ｇｐ１２０（３０８−３３０）の領域の少なくとも一部のエピトープを認識する。
（ｉｖ）ｇｐ１２０（３０８−３３０）領域の少なくとも一部に対し、高親和性（ＫＤ＝１×１０−９（Ｍ）以下）に結合する。
合胞体とは、感染細胞が非感染細胞を取り込んで一つの細胞になることをいう。ｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶを細胞と培養すると、合胞体が形成されることがあり、このような合胞体は、生存できずに死滅する。ＨＩＶの中でも合胞体を作りやすいＳＩ型ＨＩＶの感染者では、ＣＤ４＋リンパ球の減少が早く、エイズへの進展が早く起こることが知られている。
６．医薬組成物
本発明の高親和性抗体は、ＡＩＤＳの病原であるＨＩＶを抗原として、その活性を中和させる作用を有するため、ＡＩＤＳの治療又は予防用医薬組成物として有用である。本発明の医薬組成物は、本発明の高親和性抗体又はその断片を有効成分として含み、さらに薬学的に許容される担体を含む医薬組成物の形態で提供することが好ましい。
ここで「薬学的に許容され得る担体」とは、賦形剤、希釈剤、増量剤、崩壊剤、安定剤、保存剤、緩衝剤、乳化剤、芳香剤、着色剤、甘味剤、粘稠剤、矯味剤、溶解補助剤あるいはその他の添加剤等が挙げられる。そのような担体の一つ以上を用いることにより、注射剤、液剤、カプセル剤、懸濁剤、乳剤あるいはシロップ剤等の形態の医薬組成物を調製することができる。これらの医薬組成物は、経口あるいは非経口的に投与することができる。非経口投与のためのその他の形態としては、一つまたはそれ以上の活性物質を含み、常法により処方される注射剤などが含まれる。
本発明の薬剤の投与量は、患者の年齢、性別、体重及び症状、治療効果、投与方法、処理時間、あるいは該薬剤に含有される活性成分である高親和性抗体の種類などにより異なるが、通常成人一人当たり、一回につき１０μｇから１０００ｍｇ、好ましくは１０μｇから１００ｍｇの範囲で投与することができるが、この範囲に限定されるものではない。体液量は、体重を６０ｋｇとすると５リットルと産出できる。抗体の有効な濃度はｉｎ ｖｉｔｒｏの実験では５〜５０μｇ／ｍｌである場合が多く、単純に計算すると２５〜２５０ｍｇの抗体が少なくとも数日間体内で存在することが望ましい。
例えば、注射剤の場合には、例えば生理食塩水あるいは市販の注射用蒸留水等の薬学的に許容される担体中に０．１μｇ抗体／ｍｌ担体〜１０ｍｇ抗体／ｍｌ担体の濃度となるように溶解または懸濁することにより製造することができる。このようにして製造された注射剤は、処置を必要とするヒト患者に対し、１回の投与において１ｋｇ体重あたり、１μｇ〜１００ｍｇの割合で、好ましくは５０μｇ〜５０ｍｇの割合で、１日あたり１回〜数回投与することができる。投与の形態としては、静脈内注射、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射あるいは腹腔内注射などが挙げられるが、好ましくは静脈内注射である。また、注射剤は、場合により、非水性の希釈剤（例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブ油のような植物油、エタノールのようなアルコール類など）、懸濁剤あるいは乳濁剤として調製することもできる。そのような注射剤の無菌化は、フィルターによる濾過滅菌、殺菌剤の配合等により行うことができる。注射剤は、用時調製の形態として製造することができる。即ち、凍結乾燥法などによって無菌の固体組成物とし、使用前に無菌の注射用蒸留水または他の溶媒に溶解して使用することができる。
７．ＨＩＶ検出キット
本発明の高親和性抗体は、疾患の診断、治療又は予防のための薬剤として有用である。
本発明の抗体を用いたＨＩＶ感染の検出は、被験者から採取した検体、例えば唾液や血液等と本発明の抗体又はその断片とを抗原抗体反応によって結合させ、結合した抗体量により検体中の目的とする抗原の量を測定することにより行う。抗体量の検出は、公知の免疫学的測定法に従って行えばよく、例えば、免疫沈降法、免疫凝集法、標識免疫測定法、免疫比懸濁法などを用いることができる。特に、標識免疫測定法が簡便且つ高感度という点で好ましい。標識免疫測定法では、検体中の抗体価は標識抗体を用いて直接検出した標識量で表すほか、既知濃度あるいは既知抗体価の抗体を標準液として相対的に表してもよい。すなわち、標準液と検体を測定計により測定し、標準液の値を基準にして検体中の抗体価を相対的に表すことができる。標識免疫測定法としては、公知の測定法、例えばＥＬＩＳＡ法、ＥＩＡ法、ＲＩＡ法、蛍光免疫測定法（Ｆｌｕｏｒｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＦＩＡ）、化学発光免疫測定法（Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）などを任意に利用することができる。
また、本発明の高親和性抗体を利用することにより、ＡＩＤＳ治療薬の薬効評価を高感度に行うことができる。本発明の高親和性抗体を利用した薬効評価方法は、ＡＩＤＳ患者あるいはヒトリンパ細胞を移入して作製したＡＩＤＳモデル動物（ＳＣＩＤ−Ｈｕマウス）に対して薬剤を投与後、これら生体中のＨＩＶあるいは各モデル動物に対する免疫不全ウイルスの量を本発明の抗体を用いて検出し、その量を比較することにより、生体中の抗原の量を通してＡＩＤＳ治療薬としての薬効を評価することができる。その際、従来の抗体に比べて２倍から１００倍の感度を有することが期待できる。
本発明の高親和性抗体は、各種疾患診断用キットの形態で提供することができる。該キットは、本発明の診断方法や本発明の薬効評価方法に使用することができる。また、輸血製剤や、生体サンプルのＨＩＶウイルス感染有無のチェックをするための、高感度で、敏速で、簡便なキットとして使用できる。本発明のキットは以下の（ａ）及び（ｂ）から選ばれる少なくとも一つ以上を含む。
（ａ）本発明の抗体又はその標識物
（ｂ）前項（ａ）記載の抗体又はその標識物を固定した固相化試薬
ここで、抗体の標識物とは、酵素、放射性同位体、蛍光化合物、または化学発光化合物によって標識されたものを意味する。
本発明のキットは、上記の構成要素の他、本発明の検出を実施するための他の試薬、例えば標識物が酵素標識物の場合は、酵素基質（発色性基質等）、酵素基質溶解液、酵素反応停止液、あるいは検体用希釈液等を含んでいても良い。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
本実施例は、通常免疫に用いられることの多いＢａｌｂ／ｃマウス、野生型（ＷＴ）マウス及びＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスの３種のマウスに、免疫抗原としてＨＩＶの中和活性が期待できるＨＩＶ２４ＮＬ４３（３０８−３３０）のペプチドをキャリアー蛋白に結合したものを免疫した。それぞれのマウスの中から各２匹を用いて細胞融合を行い、ＥＬＩＳＡ法、Ｂｉａｃｏｒｅによる測定にてスクリーニングし、陽性ハイブリドーマを得た。さらに各ハイブリドーマから得られた精製抗体を用いて、ＥＬＩＳＡ法およびＢｉａｃｏｒｅを用いた解析を実施した。
その結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスから得られたモノクローナル抗体（３クローン）は、かなりの高親和性モノクローナル抗体であり、親和性の指標となる解離定数は高いものではＫＤ（ＫＤ＝ｋ ｄｉｓｓ／ｋ ａｓｓ）＝９．９０×１０−１１（Ｍ）であった。
【実施例１】
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスの作製
マウスへの導入用遺伝子は、ｐＬＧベクターのＥｃｏＲＩサイトに５．３ｋｂのマウスＧＡＮＰ遺伝子を挿入して作製した。このベクターはヒト免疫グロブリンイントロンエンハンサー領域（２ｋｂ ＥｃｏＲＩフラグメント）を持ち、Ｂ細胞での強力な発現を行う、特異的ベクターである。この遺伝子を直線化してマウスに遺伝子導入を行った。マウスＧＡＮＰ全長ｃＤＮＡを含む線状化したｐＬＧ ｖｅｃｔｏｒ（Ｋｏｉｋｅ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．７，２１−３０（１９９５））をＣ５７ＢＬ／６マウスの受精卵にマイクロインジェクションした。マウスの尾のゲノムＤＮＡおよび以下のプライマー及び反応液を用いて導入遺伝子の存在についてスクリーニングした（図１、上パネル）。図１上パネルにおいて、５．３ｋｂ付近のバンドはＧＡＮＰ遺伝子のものである。
反応液組成：
反応条件：
［９８℃ ５ｓｅｃ；５９℃ ５ｓｅｃ；７２℃ １０ｓｅｃ］×３５サイクル
４℃
ＧＡＮＰ ｍＲＮＡの発現が亢進しているか否かは、ＲＴ−ＰＣＲで確認した。
全ＲＮＡは、脾臓又は脾臓Ｂ細胞からＴｒｉｚｏｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて抽出し、ＲＴ−ＰＣＲは、２種のプライマー１−５’及び１−３’を用いて行い、ｃＤＮＡを合成した（Ｋｕｗａｈａｒａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｌｏｏｄ ９５，２３２１−２３２８（２０００））。ＧＡＮＰ転写物はアガロースゲル電気泳動により検出した。β−アクチン転写物は対照として用いた。
その結果、ＧＡＮＰトランスジェニックマウスは、Ｂ細胞でＧＡＮＰの発現の増加を示し（図１、下パネル）、骨髄、脾臓及びリンパ節の細胞の表層マーカー分析において、Ｂ系細胞の通常の分化を示した。
【実施例２】
抗体の作製
（１）材料
（ａ）動物：Ｂａｌｂ／ｃマウス、野生型（ＷＴ）マウスとＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス
（ｂ）免疫抗原：ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチドＫＬＨコンジュゲーション
（ｃ）ＥＬＩＳＡ抗原：ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチド（配列：ＣＮＮＴＲＫＳＩＲＩ ＱＲＧＰＧＲＡＦＶＴＩＧＫＩ（配列番号９））
（ｄ）ミエローマ細胞：Ｐ３−Ｘ６３．Ａｇ８．Ｕ１
（ｅ）２次抗体：ＨＲＰ標識抗マウス抗体ＩｇＧ・Ａ・Ｍ
（２）方法
上記３種のマウスの各５匹に、免疫抗原としてＮＬ４３ペプチド（キャリアータンパク質：ＫＬＨ）を、２週間おきに３回免疫し、３回免疫後採血抗血清を用いて抗体価をＥＬＩＳＡ法にて測定した。
この中から、力価の高いマウス各２匹から抗体産生細胞（脾細胞）を採取し、脾細胞とＰ３Ｕ１ミエローマ細胞との細胞融合を実施した。ＧＡＮＰ−Ｔｇマウスの脾細胞数が０．２×１０５／ウェルになるようにまきこみ、それぞれ、Ｂａｌｂ／ｃマウス：５４４８クローン、野生型（ＷＴ）マウス：１８８８クローン、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス：２０１６クローンをＨＡＴ培地にて培養した。
ＨＡＴ培養９日後の培養上清を用いて、ＮＬ４３ペプチド（１マイクロｇ／ｍＬ）を固相化抗原としてＥＬＩＳＡ法を実施した。ＧＡＮＰ−ＴｇマウスおよびＷＴの培養上清の母集団のそれぞれから、ＥＬＩＳＡの結果にて４９０ｎｍ吸光度１．５０以上のクローンを選出し、ＨＴ培地にてクローニングを実施した。
ＨＴ培養９日後の培養上清を用いて、ＮＬ４３ペプチド（１マイクロｇ／ｍＬ）を固相化抗原としてＥＬＩＳＡ法を実施した結果、Ｂａｌｂ／ｃマウスは３クローン（クローン名：Ｂ１−１０，Ｂ２−２４，Ｂ２−２７）、野生型（ＷＴ）マウスは９クローン（クローン名：Ｗ１−２，Ｗ１−７，Ｗ１−８，Ｗ１−１０，Ｗ１−２１，Ｗ１−４３，Ｗ１−４５，Ｗ１−６３，Ｗ１−８４）、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスは８クローン（クローン名：Ｇ１−２２，Ｇ１−６８，Ｇ１−１２４，Ｇ１−１６５，Ｇ１−１８１，Ｇ２−２３１，Ｇ２−１０，Ｇ２−２５）のハイブリドーマを樹立した。
このうち、Ｇ２−２５は「Ａｎｔｉ−ＮＬ４３ｍｏｎｏ．Ｃｌｏｎｅ Ｎｏ．Ｇ２−２５ハイブリドーマ細胞」と称し、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６（郵便番号３０５−８５６６））に、２００４年２月２５日付でＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。
ＧＡＮＰ−Ｔｇマウス、ＷＴのそれぞれのクローンをＲＰＭＩ培地にて培養し、さらに、無血清培地であるＳＦＭ培地にて培養し、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ精製によって、抗ペプチドモノクローナル精製抗体を作製した。
【実施例３】
親和性測定
上記実施例２で作製した各モノクローナル抗体を用いで、以下の評価検討を実施した。
抗体の親和性を評価するにあたり、ＥＬＩＳＡ法とＢｉａｃｏｒｅによる解析を実施した。
まず、ＥＬＩＳＡ法は、ＨＩＶ２４ＮＬ４３ ペプチド １マイクロｇ／ｍＬをそれぞれ固相化抗原として用い、室温にて１時間固相化した。ＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、２．０％ｓｋｉｍｍｉｌｋにてブロッキングを実施した。さらにＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、評価する抗ペプチドモノクローナル抗体（０．４５７〜１マイクロｇ／ｍＬ）を用いて、室温にて１時間反応させた。次に、サンプルをＰＢＳＴｗｅｅｎ２０洗浄後、ＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ・Ａ・Ｍと室温にて１時間反応させた。さらに、ＰＢＳＴＷｅｅｎ２０洗浄し、オルトフェニレンジアミン（ＯＰＤ）にて５分間発色させ、２Ｎ硫酸を月いて反応を停止した。
吸光度は、ＥＬＩＳＡ ＰＬＡＴＥ ＲＥＡＤＥＲを用いて、４９０ｎｍにて測定した。
ＥＬＩＳＡの結果を図２に示す。
ＧＡＮＰ−Ｔｇマウスを用いることにより、極めて高い結合能を有する３つの抗体が作製された（図２、吸光度１．４〜２．１付近）。これらのモノクローナル抗体のクローン名は、吸光度の高い順にＧ１−１８１、Ｇ２−１０、Ｇ２−２５である。
次に、Ｂｉａｃｏｒｅを用いて物理化学的結合能を調べた。
Ｂｉａｃｏｒｅによる解析は、ＨＩＶ２４ＮＬ４３ペプチドをリガンドとしてＢｉａｃｏｒｅセンサーチップに結合させたものに、アナライト溶液として、抗ペプチドモノクローナル抗体を用いて、それぞれの結合速度定数（ｋ ａｓｓ）、解離速度定数（ｋ ｄｉｓｓ）、そして親和性の指標となる解離定数ＫＤ（ＫＤ＝ｋ ｄｉｓｓ／ｋ ａｓｓ）を算出した。ＫＤが低い程、親和性は高いと評価される。
抗体の親和性の総合評価として、各クローンの解離定数とＥＬＩＳＡの結果を合わせて、図３に示す。図３において、クローンと解離定数との関係は以下の通りである。
抗体の結合親和性を検討するにはＢｉａｃｏｒｅによる感度測定による方法が現在のところ最も有効であるが、この際の解離定数は単位時間当たりに結合する抗体の結合速度定数を結合した抗体の解離定数で割った数値として便宜的に算出される。抗体の活性はこのペプチドに対する親和性に加えて、抗体がどれだけ短時間で抗原に結合しうるかも重要な要素である。生体内でできるだけ速やかにウイルスと結合し、その結果ウイルス抗原の分子構造に変化を加えて、一層強固な結合状態に入ることも期待できる。Ｇ１−１８１クローンは解離定数算出ではそれほど高いとはいえないものの、結合定数のプロファイルでは最も急速に多くの抗原分子と結合するという点で優れている。
通常、モノクローナル抗体作製のために用いるＢａｌｂ／ｃマウスから得られた抗体は、解離定数ＫＤ＝４．９７×１０−６〜５．６８×１０−９（Ｍ）で、低親和性でかつ少数の抗体しか得ることができず、陰性コントロールの野生型（ＷＴ）マウスにおいても、解離定数ＫＤ＝２．８１×１０−５〜３．１１×１０−９（Ｍ）の範囲までしか得られず、限界があった。
これらに対して、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいては、解離定数ＫＤ＝９．９０×１０−１１（Ｍ）という高親和性抗体（Ｇ２−１０）を得ることができ、この親和性は、Ｂａｌｂ／ｃマウスのクローンの５７倍、野生型（ＷＴ）マウスの３１倍も高親和性であるといえる。
【実施例４】
モノクローナル抗体とＮＬ４３エンベロープとの結合
上記実施例２で作製した抗ＨＩＶペプチド（ＮＬ４３）モノクローナル抗体が実際のＮＬ４３（ＨＩＶのエンベロープタンパク質）に対してｉｎ ｖｉｔｒｏで結合能を有するかを明らかにするために、結合アッセイを実施した。
（１）材料
（ａ）抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体
実施例２で作製した抗体を用いた。具体的には、以下に示す抗体を使用した。
Ｂａｌｂ／ｃマウス：３クローン（クローン名：Ｂ１−１０，Ｂ２−２４，Ｂ２−２７）、
野生型（ＷＴ）マウス：９クローン（クローン名：Ｗ１−２，Ｗ１−７，Ｗ１−８，Ｗ１−１０，Ｗ１−２１，Ｗ１−４３，Ｗ１−４５，Ｗ１−６３，Ｗ１−８４）
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス：８クローン（クローン名：Ｇ１−２２，Ｇ１−６８，Ｇ１−１２４，Ｇ１−１６５，Ｇ１−１８１，Ｇ１−２３１，Ｇ２−１０，Ｇ２−２５）
また、対照として７０Ｚ／３ ２−２８、０．５β及びａｎｔｉ−ＣＤ１９を用いた。
（ｂ）プラスミドベクター
ｐＬＰ−ＩＲＥＳ２−ＥＧＦＰ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）、ｐＬＰ−ＮＬ４−３ ｅｎｖｅｌｏｐｅ−ＥＧＦＰを使用した。本ベクターを用いることにより、単一のＲＮＡからの目的遺伝子（ＮＬ４３）とＥＧＦＰ両方の翻訳が可能となるので、蛍光を示す細胞のほぼ１００％はＮＬ４３を発現する。
（ｃ）遺伝子導入試薬
Ｅｆｆｅｃｔｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を使用した。
（ｄ）２次抗体
ＡＰＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を使用した。
（２）方法
結合アッセイは、エンベロープ（ＮＬ４３）の発現をモニターするために、ヒト胎児腎癌細胞株（２９３Ｔ細胞）にＧＦＰを導入し、その細胞に抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体とＡＰＣ標識２次抗体を反応させ、細胞表面を染色する。次にフローサイトメトリーによりｔｗｏ−ｃｏｌｏｒ解析を行い、その蛍光強度によりエンベロープへの結合能をみるものである。
ＧＦＰ遺伝子の細胞への導入は、ヒト胎児腎癌細胞株（２９３Ｔ細胞）を１０ｃｍディッシュに４０００００個播き、１日培養した後、Ｅｆｆｅｃｔｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用い、ｐＬＰ−ＩＲＥＳ２−ＥＧＦＰ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）又はｐＬＰ−ＮＬ４−３−ＥＧＦＰをそれぞれ５μｇ導入した。３６時間培養した後、細胞を集め細胞表面染色を行った。細胞表面染色は、各１０μｇ／ｍＬの抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体と、ＡＰＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体を５０倍希釈したものを用いて、それぞれ氷上にて３０分反応させた。
各抗ＨＩＶモノクローナル抗体のエンベロープへの結合能を、ＦＡＣＳ Ｃａｌｉｂｕｒを用いて平均蛍光強度（ＭＦＩ）を算出することにより評価した。
（３）結果
結合アッセイの結果を図４及び図５に示す。図４及び５は、ＧＦＰ陽性（＋）と陰性（−）のそれぞれにゲートをかけた場合の平均蛍光強度（ＭＦＩ）を棒グラフにしたものである。棒グラフは、ｐＬＰ−ＮＬ４−３ ｅｎｖｅｌｏｐｅ−ＥＧＦＰを導入させた細胞において、ＧＦＰ陽性でのＡＰＣ平均蛍光強度（ＭＦＩ）が高いほど、エンベロープに有効に結合することを示す。結合アッセイの結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいて作製したモノクローナル抗体（例えばＧ１−２２、Ｇ１−６８、Ｇ２−１０、Ｇ２−２５クローン）は、エンベロープへの結合能を有することがわかった。
【実施例５】
モノクローナル抗体の中和活性
実施例４で使用した精製抗体を用いて、実際にそのモノクローナル抗体がＨＩＶ−１ウイルスの感染を阻止する能力を有するかを確認するために、ヒトＣＤ４陽性細胞における中和活性実験（ウイルス感染阻止実験）を行った。
（１）材料
（ａ）抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体
実施例４で用いた各抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体を使用した。また、対照として７０Ｚ／３ ２−２８及び０．５βを用いた。
（ｂ）ＨＩＶ−１保存株
非働化した牛胎児血清１０％を添加したＲＰＭＩ−１６４０培地にてＰＭ１細胞を増殖させ、−８０℃で保存したものを使用した。
（ｃ）βガラクトシダーゼ検出キット
βガラクトシダーゼ検出キットは、Ｇａｌａｃｔｏ−ｓｔａｒ（ＴＲＯＰＩＸ）を使用した。エイズウイルス感染阻止（中和活性）実験において、本キットは、ＣＤ４細胞（ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５）から産生されるβガラクトシダーゼを化学発光基質（Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ方法）を用いて検出することによって、ＣＤ４細胞の生死（生細胞数）を判定するものである。
（２）方法
ＣＤ４細胞（ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５）を１日培養した後、一定のエイズウイルスを加えると、エイズウイルスにより感染した細胞からは、βガラクトシダーゼは検出されなくなる。このシステムにおいて、抗体の中和活性の測定は、エイズウイルス添加直前に、効力が異なる抗ＨＩＶ（ＮＬ４３）精製抗体を上記ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞にあらかじめ添加しておき、エイズウイルスを添加したときにエイズウイルスの感染を阻止できるか否かを、βガラクトシダーゼの産生量を指標として評価するものである。
この感染測定システムは、ウイルス感染に必要なウイルス量を高感度に決定することを可能とする。ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞による予備検討により、添加するウイルス量は、ウイルスの５０％終末点（ＴＣＩＤ５０）を目安として、５００と決定した。
細胞をＨＩＶに感染させるために、ＭＡＧＩ／ＣＣＲ５細胞を１×１０４／ウエルになるように９６プレートで培養した。１日後、各抗体５０μＬを添加し、３７℃で３０分間インキュベートした。続いて１０μｇ／ｍＬのＤＥＡＥ−ｄｅｘｔｒａｎに反応させたＨＩＶ−１溶液５０μＬを添加し、インキュベートした。添加したそれぞれの抗体濃度は、０．５、５又は５０μｇ／ｍＬの３濃度で実施した。２日後、βガラクトシダーゼ活性をＧａｌａｃｔｏ−ｓｔａｒ（ＴＲＯＰＩＸ）を用いて測定した。
（３）結果
中和活性実験の結果を図６及び図７に示す。各抗体の中和活性を測定した結果、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスにおいて作製したＧ２−１０及びＧ２−２５クローンは、各濃度において表１に示すＨＩＶ中和活性を持つことがわかった。
実際に治療用抗体として利用する際には、微量で感染阻止する能力を有することが重要となるため、Ｇ２−１０及びＧ２−２５による上記の値は、非常に低濃度でＨＩＶ感染防止能力を示し、有効なＨＩＶ治療薬として利用可能と考えられる。
中和活性測定の陽性コントロールにはＨＩＶエンベロープそのものを免疫して作製されたとして用いている抗体（０．５β）を用いた（第２７９７０９９号特許）。０．５βの０．５μｇ／ｍＬにおいての中和活性能力は８６．５±３．０に及ぶが、上記２クローン、特にＧ２−２５におけるｉｎ ｖｉｔｒｏ感染阻止能力は、その抗体（０．５β）と同等またはそれ以上であるといえる。
これに対して、野生型（ＷＴ）マウスにおいて作製した９クローンの抗体の中和活性は、低濃度０．５μｇ／ｍＬにおいてほとんど中和活性が認められなかった。
実施例４及び５の結果は、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスで作製した抗エイズペプチド（ＮＬ４３）モノクローナル抗体が、実際にｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶ−１ウイルスエンベロープに対して結合し（実施例４）、その結合が強力な中和活性（感染阻止力）を有することを示している（実施例５）。更に重要なことは解離定数ＫＤ値（９．９０×１０−１１）を示すことから、一度結合するとその後長期間ウイルスと結合し続けることのできる高親和性抗体グループであるという点である（実施例３）。
このように強力なウイルス中和効果を持ち、抗原と解離する速度が著しく低い高親和性モノクローナル抗体は、これまでに多くの研究室で試みられてきたＨＩＶ−１ウイルスの遺伝子配列から推定するペプチド配列を基に作製した通常のモノクローナル抗体作製技術では得ることのできない優れたものである。野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウスに免疫して作製したモノクローナル抗体では５０μｇ／ｍｌの濃度で初めて高い中和活性を示すのに対して、ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウス由来のＧ２−１０，Ｇ２−２５モノクローナル抗体は両者ともわずか０．５μｇ／ｍｌ濃度においてそれらに匹敵する中和活性を発揮している。単純計算ではタンパク質濃度あたり１００倍の中和活性を示し、また、その結合が１０２オーダーの長期間に渡って持続することが期待できる。
これらのマウス抗ＨＩＶ−１モノクローナル抗体は、（ａ）ウイルスペプチド配列に特異的な高親和性抗体であること、（ｂ）実際にｉｎ ｖｉｔｒｏでＨＩＶ−１ウイルスエンベロープに対して結合すること、（ｃ）ｉｎ ｖｉｔｒｏでのヒトＣＤ４陽性細胞へのＨＩＶ−１ウイルス感染を阻止できること、（ｄ）従来法と異なる遺伝子変異マウスによって作製していることから新たなエピトープに対する抗体である可能性があること、（ｅ）この新たなＶＨ領域は更にバイオテクノロジーによる遺伝子改変を加えることによって更に強力な抗体を作製する基盤情報を提供するという長所を有している。
ＧＡＮＰトランスジェニック（Ｔｇ）マウスを用いてエイズウイルスの感染阻止作用を持つ高親和性抗体が速やかに得られるということは、これまでの研究成果とその応用の計画が正当であることを証明したものである。従って、本発明は、感染症に脅かされている現代において画期的な治療法開発につながる発明である点で極めて有用である。
【配列表フリーテキスト】
配列番号７：プライマー
配列番号８：プライマー
【産業上の利用可能性】
本発明により、ＧＡＮＰ遺伝子トランスジェニック非ヒト哺乳動物から得られる、高親和性抗ＨＩＶ抗体、及び該抗体を含む医薬組成物が提供される。本発明の抗体は、ＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の高親和性を有しているため、本発明の抗体を含む医薬組成物は、後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）の治療薬として使用することができる。
さらに、本発明により、該抗体を産生する細胞、及び該抗体を利用したＨＩＶの検出キットも提供される。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質と結合し、かつ、解離定数がＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の抗体又はその断片。
【請求項２】
ｇｐ１２０糖タンパク質のうち第３０８−３３０番目のアミノ酸配列の少なくとも一部を認識することができる請求項１記載の抗体又はその断片。
【請求項３】
第３０８−３３０番目のアミノ酸配列が配列番号６に示されるものである請求項２記載の抗体又はその断片。
【請求項４】
ポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の抗体又はその断片。
【請求項５】
受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４であるハイブリドーマ細胞により産生される、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体又はその断片。
【請求項６】
請求項４又は５記載の抗体又はその断片のＶ領域を含む、ヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片。
【請求項７】
配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫から採取される、高親和性抗体産生細胞。
【請求項８】
受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４である、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体産生細胞。
【請求項９】
ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫を、配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫し、得られる動物又は子孫から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
【請求項１０】
請求項７記載の細胞とミエローマ細胞との融合細胞、又は請求項８記載のモノクローナル抗体産生細胞を培養し、得られる培養物から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
【請求項１１】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又はその断片、及び請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有する医薬組成物。
【請求項１２】
後天性免疫不全症候群の治療薬である請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１３】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体若しくはその断片、又は請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体若しくはそれらの断片と、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質とを反応させることを特徴とするＨＩＶの検出方法。
【請求項１４】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又はその断片、及び請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有するＨＩＶ検出用キット。
【請求項１】
ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質と結合し、かつ、解離定数がＫＤ＝１．０×１０−９（Ｍ）以下の抗体又はその断片。
【請求項２】
ｇｐ１２０糖タンパク質のうち第３０８−３３０番目のアミノ酸配列の少なくとも一部を認識することができる請求項１記載の抗体又はその断片。
【請求項３】
第３０８−３３０番目のアミノ酸配列が配列番号６に示されるものである請求項２記載の抗体又はその断片。
【請求項４】
ポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の抗体又はその断片。
【請求項５】
受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４であるハイブリドーマ細胞により産生される、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体又はその断片。
【請求項６】
請求項４又は５記載の抗体又はその断片のＶ領域を含む、ヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片。
【請求項７】
配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫したＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫から採取される、高親和性抗体産生細胞。
【請求項８】
受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−０８６４４である、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質に対するモノクローナル抗体産生細胞。
【請求項９】
ＧＡＮＰトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫を、配列番号６に示すアミノ酸配列のうち少なくとも一部を含むポリペプチドを抗原として免疫し、得られる動物又は子孫から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
【請求項１０】
請求項７記載の細胞とミエローマ細胞との融合細胞、又は請求項８記載のモノクローナル抗体産生細胞を培養し、得られる培養物から抗体を採取することを特徴とする、抗ＨＩＶ抗体又はその断片の製造方法。
【請求項１１】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又はその断片、及び請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有する医薬組成物。
【請求項１２】
後天性免疫不全症候群の治療薬である請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１３】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体若しくはその断片、又は請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体若しくはそれらの断片と、ＨＩＶのｇｐ１２０糖タンパク質とを反応させることを特徴とするＨＩＶの検出方法。
【請求項１４】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体又はその断片、及び請求項６記載のヒト型化抗体若しくはヒト抗体又はそれらの断片からなる群から選択される少なくとも１つを含有するＨＩＶ検出用キット。
【国際公開番号】ＷＯ２００５／０５８９６３
【国際公開日】平成１７年６月３０日（２００５．６．３０）
【発行日】平成１９年８月２３日（２００７．８．２３）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−５１６２６４（Ｐ２００５−５１６２６４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２００４／００３０４６
【国際出願日】平成１６年３月９日（２００４．３．９）
【出願人】（８０１００００５０）財団法人くまもとテクノ産業財団 (38)
【Ｆターム（参考）】
【国際公開日】平成１７年６月３０日（２００５．６．３０）
【発行日】平成１９年８月２３日（２００７．８．２３）
【国際特許分類】
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２００４／００３０４６
【国際出願日】平成１６年３月９日（２００４．３．９）
【出願人】（８０１００００５０）財団法人くまもとテクノ産業財団 (38)
【Ｆターム（参考）】
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