メチルチオ化トリアジンの分解能を有する新規な微生物
【課題】
本発明は、農薬などとして多用されているメチルチオ化トリアジン、特にシメトリン、ジメタメトリン又はプロメトリンなどを分解することが可能な新規微生物と当該微生物を用いたメチルチオ化トリアジンの分解法を提供する。
【解決手段】
メチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンの少なくとも１種の物質の分解能を有する新規細菌ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株及び新規細菌バシラス セレウス ＪＵＮ７株を提供する。また、当該細菌を用いてメチルチオ化トリアジンを分解する方法、特にシメトリン、ジメタメトリン、及び／又はプロメトリンなどを分解する方法を提供する。
本発明は、農薬などとして多用されているメチルチオ化トリアジン、特にシメトリン、ジメタメトリン又はプロメトリンなどを分解することが可能な新規微生物と当該微生物を用いたメチルチオ化トリアジンの分解法を提供する。
【解決手段】
メチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンの少なくとも１種の物質の分解能を有する新規細菌ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株及び新規細菌バシラス セレウス ＪＵＮ７株を提供する。また、当該細菌を用いてメチルチオ化トリアジンを分解する方法、特にシメトリン、ジメタメトリン、及び／又はプロメトリンなどを分解する方法を提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、メチルチオ化トリアジン系農薬、特にシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する能力を有する新規な微生物、より詳細にはロドコッカス属又はバシラス属に属する微生物に関し、また当該微生物又は当該微生物を含む複合微生物系を用いてメチルチオ化トリアジン系農薬を分解する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近代農業において農薬は、収量の維持・安定化及び労務軽減、生産コスト削減のために必要不可欠である。しかしながら使用された農薬の一部が河川・湖沼・地下水等に流出している事実が明らかとなり、一般環境中の生物への影響が懸念されている。土壌中には多種多様な微生物が生息しており、これらの中には、農薬等の有機化学物質を分解して無害化する能力を有するものが存在する。しかしこれら分解菌の自然環境中での存在密度は低く、また一様に分布するものでもないため、有機汚染物質の環境中での蓄積や拡散を未然に防ぐまでには至らないのが通常である。そこでこのような分解菌を土壌中から選択的に集積且つ単離した後、農薬等の有機汚染物質を分解する方法、所謂バイオレメディエーション法が有効な手段であると考えられる。
【０００３】
トリアジン系化合物は長年にわたり、農薬や消泡剤、染料等として世界中で多用されてきているが、現在では環境汚染物質として問題となっている。塩素化トリアジン系農薬であるアトラジンに関しては多くの微生物がこれを分解することが知られている（特許文献１参照）一方で、シメトリンを始めとしたメチルチオ化トリアジン類はより難分解性であり、微生物によるメチルチオ化トリアジンの分解に関する報告は限られている。ＣｏｏｋとＨｕｔｔｅｒは、アメトリンあるいはプロメトリンを硫黄源として与えた合成培地を用いて土壌から分解菌を集積し、最終的に増殖速度の速い３種類の細菌を選抜したことを報告している（非特許文献１）。そのうち２種はアメトリンを、他の１種はアメトリンとプロメトリンを分解して脱メチルチオ化した代謝物を生じさせた。しかしながら、これらの菌株について菌学的な検討は報告されていない。また、Ｓｔｒｏｎｇらは高濃度のアトラジンで汚染したゴミ集積場からアトラジン分解能を有するアルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株を単離し、アルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株がアメトリンあるいはプロメトリンを唯一の窒素源として含む培地にて生育したことを示したことを報告している（非特許文献２）。しかしながら、アルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株がこれらのメチルチオ化トリアジンを分解したことを示す証拠は記載されていない。一方、Ｔｏｐｐらはノカルディオイデス ｓｐ． Ｃ１９０株の菌体あるいは菌体抽出物を、シメトリン、アメトリン、プロメトリンあるいはテルブトリンを含む溶液に分散させ、嫌気条件下にて保温静置したところ、これらを分解して脱メチルチオ化した代謝物が認められたことを報告している（非特許文献３）。また、Ｓｅｆｆｅｒｎｉｃｋらはクラビバクター ミシガネンシス ＡＴＺ１株の菌体抽出物でアメトリンを脱メチルチオ化したことを報告している（非特許文献４）。
以上の様に、微生物を用いたメチルチオ化トリアジンの分解についてはいくつかの報告がなされてはいるものの、単離株の菌学的検討が十分でない、メチルチオ化トリアジンの分解そのものの証明が提示されていない、生菌体での分解が示されていない等、現時点でのバイオレメディエーションに利用できる菌株が存在するとは言えないのが現状である。
【０００４】
【特許文献１】特開２００５−２７５３６号
【非特許文献１】Cook，A.M.，Hutter，R. 1982. Appl. Environ. Microbiol. 43，781-786.
【非特許文献２】Strong，L.C.，Rosendahl，C.，Johnson，G.，Sadowsky，M.J.，Wackett，L.P. 2002. Appl Environ Microbiol. 68，5973-5980.
【非特許文献３】Topp，E.，Mulbry，W.M.，Zhu，H.，Nour，S.M.，Cuppels，D. 2000. Appl. Environ. Microbiol. 66，3134-3141.
【非特許文献４】Seffernick，J.L.，Johnson，G.，Sadowsky，M.J.，Wackett，L.P. 2000. Appl. Environ. Microbiol. 66，4247-4252.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物を分解することができる新規な微生物、及びこれを用いたメチルチオ化トリアジン系化合物の分解方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、土壌から単離したロドコッカス属の細菌又はバシラス属の細菌の中に、シメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物の分解能を有する細菌がいることを見出した。また、これらの細菌は特徴的な１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子を有し、菌学的性質からも新規な細菌が含まれることを見出した。さらに、これらの細菌を用いることにより、従来分解が困難とされていたシメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物を効率よく分解することができることを見出した。
即ち、本発明は、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌、より詳細には、１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子が、配列表の配列番号１に記載する塩基配列、又はメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個若しくは複数個の塩基が、欠失、置換、若しくは付加することにより配列表の配列番号１に記載された塩基配列と９５％以上の相同性を有する塩基配列を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌に関する。さらに詳細には、後述する菌学的性質を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌に関する。当該ロドコッカス属に属するメチルチオ化トリアジン分解菌の具体例としては、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株（ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５）が挙げられる。
【０００７】
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌、より詳細には、１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子が、配列表の配列番号２に記載する塩基配列、又はメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個若しくは複数個の塩基が、欠失、置換、若しくは付加することにより配列表の配列番号２に記載された塩基配列と９５％以上の相同性を有する塩基配列を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌に関する。さらに詳細には、後述する菌学的性質を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌に関する。好ましくは、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌に関する。当該バシラス属に属するメチルチオ化トリアジン分解菌の具体例としては、バシラス セレウス ＪＵＮ７株（ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４）が挙げられる。
【０００８】
本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解する方法に関する。より詳細には、本発明は、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解する方法、即ち分解法に関する。
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解するための組成物に関する。より詳細には、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解するための組成物に関する。
【０００９】
さらに、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化する方法に関する。より詳細には、本発明は、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化する方法に関する。
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化するための組成物に関する。より詳細には、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化するための組成物に関する。
【００１０】
以下、本発明の実施形態について説明する。本発明は、土壌から単離したメチルチオ化トリアジン分解菌である。本発明におけるメチルチオ化トリアジンとは、トリアジン骨格にメチルチオ基を有するメチルチオ化トリアジン系化合物であり、このようなトリアジン骨格としては、１，３，５−トリアジン（ｓ−トリアジン）、１，２，４−トリアジン、１，２，３−トリアジンのいずれでもよいが、ｓ−トリアジン又は１，２，４−トリアジンが好ましい。したがって、本発明のメチルチオ化トリアジンとしては、メチルチオ化ｓ−トリアジン、メチルチオ化−１，２，４−トリアジン、又はメチルチオ化−１，２，３−トリアジンのいずれでもよいが、メチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンが好ましい。本発明のメチルチオ化トリアジンの好ましい例としては、例えば、シメトリン（３，５−ビス（Ｎ−エチルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、ジメタメトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−（１，２−ジメチルプロピル）アミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、プロメトリン（３，５−ビス（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、アメトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、デスメトリン（３−（Ｎ−メチルアミノ）−５−（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、テルブトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）等のメチルチオ化ｓ−トリアジン、メトリブジン（４−アミノ−６−ｔｅｒｔ−ブチル−３−メチルチオ−４Ｈ−１，２，４−トリアジン−５−オン）等のメチルチオ化−１，２，４−トリアジン等が挙げられる。
【００１１】
本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌とは、前記したメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンの１種又は２種以上の化合物を分解することができる作用を有する菌である。より具体的には、本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌としては、例えば、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する能力を有する微生物である。
本発明におけるメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌のひとつはロドコッカス属に属する細菌であって、しかもその１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列中に後述する配列表の配列番号１に記載する塩基配列を含有していることを特徴とするものである。当該塩基配列は、ロドコッカス属の特徴、及び本発明の分解菌のメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として、１個又は複数個の塩基が、欠失、置換又は付加されることにより配列表の配列番号１に記載される塩基配列に比べて、少なくとも９５％以上、好ましくは９８％以上の相同性を有するものが含まれる。
また、本発明におけるメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌の他の例としては、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌であって、しかもその１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列中に後述する配列表の配列番号２に記載する塩基配列を含有していることを特徴とするものである。当該塩基配列は、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかの特徴、及び本発明の分解菌のメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個又は複数個の塩基が、欠失、置換又は付加されることにより配列表の配列番号２に記載される塩基配列に比べて、少なくとも９５％以上、好ましくは９８％以上の相同性を有するものが含まれる。
【００１２】
本発明のメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンに対する分解能を有するロドコッカス属に属する細菌には、下記の菌学的特徴を有するものが含まれる。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態：不規則桿菌（細胞の分岐有り）
（２） 大きさ ：０．８〜１．０μｍ×２．０〜４．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：なし
（４） 運動性 ：なし
【００１３】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：４８時間）
（１） コロニー直径：１．０〜２．０ｍｍ
（２） 色調 ：ピンク色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：レンズ状
（５） 周縁 ：菌糸状
（６） 表面の形状 ：スムーズ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００１４】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００１５】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ Ｃｏｒｙｎｅによる）
（１） 硝酸塩還元 ： −
（２） ピラジナミダーゼ ： −
（３） ピロリドニルアリルアミダーゼ ： −
（４） アルカリフォスファターゼ ： −
（５） β−グルクロニダーゼ ： −
（６） β−ガラクトシダーゼ ： −
（７） α−グルコシダーゼ ： ＋
（８） Ｎ−アセチル−β−グルコサミニダーゼ ： −
（９） エスクリン ： −
（１０） ウレアーゼ ： −
（１１） ゼラチン加水分解 ： −
（１２） グルコース資化性 ： −
（１３） リボース資化性 ： −
（１４） キシロース資化性 ： −
（１５） マンニトール資化性 ： −
（１６） マルトース資化性 ： −
（１７） 乳糖資化性 ： −
（１８） 白糖資化性 ： −
（１９） グリコーゲン資化性 ： −
【００１６】
さらに、本発明が対象とするメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌には、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌であって下記の菌学的特徴を有するものが含まれる。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：桿菌
（２） 大きさ ：１．０μｍ×２．０〜３．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：有り
（４） 運動性 ：有り
【００１７】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：２４時間）
（１） コロニー直径：２．０〜３．０ｍｍ
（２） 色調 ：クリーム色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：扁平
（５） 周縁 ：波状
（６） 表面の形状 ：ラフ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００１８】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００１９】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ ５０ＣＨＢによる）
（１） グリセロール資化性 ： ＋
（２） エリスリトール資化性 ： −
（３） Ｄ−アラビノース資化性 ： −
（４） Ｌ−アラビノース資化性 ： −
（５） リボース資化性 ： ＋
（６） Ｄ−キシロース資化性 ： −
（７） Ｌ−キシロース資化性 ： −
（８） アドニトール資化性 ： −
（９） β−メチル−Ｄ−キシロース資化性 ： −
（１０） ガラクト−ス資化性 ： −
（１１） グルコース資化性 ： ＋
（１２） フラクトース資化性 ： ＋
（１３） マンノース資化性 ： −
（１４） ソルボース資化性 ： −
（１５） ラムノース資化性 ： −
（１６） ズルシトール資化性 ： −
（１７） イノシトール資化性 ： −
（１８） マンニトール資化性 ： −
（１９） ソルビトール資化性 ： −
（２０） α−メチル−Ｄ−マンノース資化性 ： −
（２１） α−メチル−Ｄ−グルコース資化性 ： −
（２２） Ｎ−アセチルグルコサミン資化性 ： ＋
（２３） アミグダリン資化性 ： −
（２４） アルブチン資化性 ： ＋
（２５） エスクリン資化性 ： ＋
（２６） サリシン資化性 ： ＋
（２７） セロビオース資化性 ： −
（２８） マルトース資化性 ： ＋
（２９） 乳糖資化性 ： −
（３０） メリビオース資化性 ： −
【００２０】
（３１） 白糖資化性 ： −
（３２） トレハロース資化性 ： ＋
（３３） イヌリン資化性 ： −
（３４） メレチトース資化性 ： −
（３５） ラフィノース資化性 ： −
（３６） 澱粉資化性 ： ＋
（３７） グリコーゲン資化性 ： ＋
（３８） キシリトール資化性 ： −
（３９） ゲンチオビオース資化性 ： −
（４０） Ｄ−ツラノース資化性 ： −
（４１） Ｄ−リキソース資化性 ： −
（４２） Ｄ−タガトース資化性 ： −
（４３） Ｄ−フコース資化性 ： −
（４４） Ｌ−フコース資化性 ： −
（４５） Ｄ−アラビトール資化性 ： −
（４６） Ｌ−アラビトール資化性 ： −
（４７） グルコネート資化性 ： −
（４８） ２−ケトグルコン酸資化性 ： −
（４９） ５−ケトグルコン酸資化性 ： −
（５０） β−ガラクトシダーゼ ： −
（５１） アルギニンジヒドロラーゼ ： −
（５２） リシンデカルボキシラーゼ ： −
（５３） オルニチンデカルボキシラーゼ ： −
（５４） クエン酸の利用性 ： −
（５５） 硫化水素産生 ： −
（５６） ウレアーゼ ： −
（５７） トリプトファンデアミナーゼ ： −
（５８） インドール産生 ： −
（５９） アセトイン産生 ： −
（６０） ゼラチナーゼ ： ＋
（６１） 硝酸塩還元 ： ＋
【００２１】
本発明が対象とするメチルチオ化トリアジン分解菌の具体的な例として、新規分離菌株であるロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株及びバシラス セレウス ＪＵＮ７株がある。ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに微生物の表示（寄託者が付した識別のための表示）「Rhodococcus sp. strain FJ1117YT」、受託番号「ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５」として寄託されている。バシラス セレウス ＪＵＮ７株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに微生物の表示（寄託者が付した識別のための表示）「Bacillus cereus JUN7」、受託番号「ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４」として寄託されている。
【００２２】
本発明者らは、後記する実施例１に記載の方法により、新規なメチルチオ化トリアジン分解菌株ＦＪ１１１７ＹＴ株を見出した。この微生物の生育に有利な培地を実験的に検索したところ、次の表１に示したＧＧＶ培地が最適であることが判明した。
【００２３】
【表１】
【００２４】
前記の表１中の混合ビタミンは、次の表２に示される組成からなるものである。
【００２５】
【表２】
【００２６】
そして、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ培地９ｍｌにこの微生物を植種し、３０℃で振とう培養を行った。培養液を経日的にサンプリングし、ＨＰＬＣを用いて培養液中のシメトリン濃度を測定した結果を図４に示す。図４に示されるように、約１５日後には、培養液中のシメトリン濃度はほぼ０となった。このように、本発明の微生物はメチルチオ化トリアジンを顕著に分解する作用を有していることが明らかになった。
また、後記する実施例３に記載の方法により、培養液中のシメトリン濃度を顕著に低下させた３株（図６のＣ）を得た。この３株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列を決定したところ、各株につき４８５塩基の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列が３株間でその全てが一致したことから、これらは同一の菌種と判断された。このようにして、本発明の新規メチルチオ化トリアジン分解菌株ＪＵＮ７株が見出された。
【００２７】
得られたＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を検討した。ｐＨが４、５、６、７、７．６、９、及び１０の培地を作製した。１／１０ＬＢ培地にて前培養したＪＵＮ７株を０．１ｍｌ植菌し、２６℃にて振とう培養し、培養液中のシメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液に接種しないものも同様に操作し、対照とした。その結果を図７に示す。
図７のグラフの左縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、右縦軸は培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図７の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示す。また図７の黒四角印（■）は対照のＬ字管における培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、白四角印（□）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管の培養液の６６０ｎｍでの濁度を示す。
図７のＡ及びＢで明らかな様に、培地の初期ｐＨを４とした場合、ＪＵＮ７株の生育は極めて僅かで、シメトリンをほとんど分解することができなかった。培地の初期ｐＨを５とした場合、ＪＵＮ７株は培養後期に僅かに生育し、シメトリンを若干分解した。培地の初期ｐＨを６、７、７．６、９あるいは１０とした場合、ＪＵＮ７株は旺盛に生育し、シメトリンをよく分解した。一方、ＪＵＮ７株を植菌していない対照ではいずれのｐＨでも培地中シメトリン濃度の低下は認められなかった。以上の結果から、ＪＵＮ７株のシメトリン分解能は培地の初期ｐＨが５以上、望ましくは６以上で機能し、ｐＨ１０でも十分な機能を保つことが判明した。
【００２８】
ＪＵＮ７株を用いて、ジメタメトリン及びプロメトリンに対する分解試験を前記と同様にして行った。その結果を図８及び図９に示す。
図８のグラフの縦軸は培養液中のジメタメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図８の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示す。
図９のグラフの縦軸は培養液中のプロメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図９の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示す。
図８及び図９で示される様に、ＪＵＮ７株はジメタメトリンとプロメトリンも分解できることが明らかとなった。
以上のことから、シメトリン分解能を有する細菌は、ジメタメトリン、プロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジンの分解が可能であると考えられることがわかった。
【００２９】
本発明のメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する方法は、本発明のメチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌から選ばれる微生物の少なくとも１種を、これらの微生物が生育できる条件で、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する材料と接触させることにより行うことができる。これらの微生物が生育できる条件としては、前記したＧＧＶ培地や１／１０ＬＢ培地などが好ましいが、これらに限定されるものではなく、これらの微生物による分解を行うことができる条件であればよい。メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する材料としては、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する廃棄農薬、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有すると考えられる土壌や、地下水、用水などの水などが挙げられる。
【００３０】
また、本発明のメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解するための組成物としては、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌から選ばれる微生物の少なくとも１種を含有するものである。当該組成物における細菌の生育が許容される担体としては、本発明の微生物が生育できる条件に適した材料であればよく、前記した培地やその改変培地、それを支持する支持体などが挙げられる。このような支持体としては、本発明の微生物を安定に保持することができるものであれば特に制限はないが、多孔質素材、更に具体的には当該細菌又は複合微生物系を集積させた多孔質の木質炭化材料、竹炭材料、綿布材料などが挙げられる。より具体的には特開平１０−２２５２８８号（特許第３０３０３７０号公報）、又は特開平１１−３１８４３５号（特許第２９０４４３２号公報）に記載の多孔質材料が挙げられ、これらの公報に記載の内容を本明細書に全て取り込む。
さらに、ＷＯ２０００／０７８９２３号に記載されているような装置を用いて、本発明の微生物をその分解菌保持担体に担持させて使用することもできる。
【００３１】
さらに、本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、又は当該分解菌を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物を用いて、シメトリン、プロメトリン、アメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物が配合された廃棄農薬を無害化し、あるいはメチルチオ化トリアジン系化合物で汚染されている土壌や、地下水、用水などの水などの環境を浄化することができる。この方法は、本発明のメチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌若しくはバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌から選ばれる微生物の少なくとも１種、又は当該微生物を含有してなる組成物を、これらの微生物が生育できる条件で、メチルチオ化トリアジン系化合物を含む材料と接触させることにより行うことができる。この方法により、シメトリン、プロメトリン、アメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物が配合された廃棄農薬、あるいはメチルチオ化トリアジン系化合物で汚染されている土壌や、地下水、用水などの水などの材料中のメチルチオ化トリアジン系化合物を本発明の微生物により分解して、これを無害化し、浄化することができる。
また、本発明は、このような環境汚染物質の無害化及び浄化のために適した組成物を提供するものであり、当該組成物は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるものである。当該担体としては、前記したメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物における担体と同様なものを使用することができる。
【発明の効果】
【００３２】
以上説明したように本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌によりメチルチオ化トリアジン系農薬、特にシメトリンを分解する事が出来る。更に本発明の微生物を用いると速やかに当該農薬を分解することが可能であり、廃棄農薬や環境中の残留農薬を速やかにかつ効率的に分解することができる。
【００３３】
以下、本発明分解菌の単離培養、分類同定、更に本発明分解菌を用いたシメトリンを始めとするメチルチオ化トリアジン系農薬分解の実験例を示して、本発明を更に詳細かつ具体的に説明するが、本出願発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００３４】
ＦＪ１１１７ＹＴ株の単離
発明者らは、以下の様にして、本発明に係わる新規メチルチオ化トリアジン分解菌ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株を単離した。図１に示すように、土壌層タンク１に土壌を３０〜５０ｇ入れて集積用土壌層２を形成した。そして、適量のシメトリンを炭素源及び窒素源として加えた滅菌済の無機塩培地２００ｍｌを還流液３として貯液タンク４から集積用土壌層２に還流させた。用いた無機塩培地の組成は次の表３の通りである。
【００３５】
【表３】
【００３６】
図１に示した装置を４台用意し、還流開始後、それぞれの還流液中のシメトリン濃度をＨＰＬＣで測定した。結果を図２に示す。図２のグラフの縦軸は還流液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は還流時間（日）を示す。図２の矢印は還流液を全量、新鮮なものと交換した時点を示す。図２で認められるように装置Ｃ（図２のグラフにおいて白丸（○）で示す）において、還流液中のシメトリン濃度が急激に低下した。
そこでこの装置Ｃの還流液１ｍｌを、あらかじめシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む無機塩培地７ｍｌを分注しておいたＬ字管に接種し、２０℃にて振とう培養を行った。この培養液のサンプリングを経日的に行い、孔径０．４５μｍのフィルターでろ過後、ＨＰＬＣにてシメトリン濃度の測定を行った。また装置Ｃの還流液を加えていないＬ字管も用意し、対照とした。それぞれ３本ずつ試験した平均を図３に示す。対照のＬ字管では培養液中のシメトリン濃度の低下は認められなかった一方で、還流液を接種したＬ字管では、培養を開始して２日を過ぎてから徐々に培養液中のシメトリン濃度が低下し始め、１５日後には培養開始時に含まれていたシメトリンの７３％が消失した。この結果から、装置Ｃ内にシメトリン分解菌が集積していることが明らかとなった。
しかし、装置Ｃの還流液を高次に希釈してシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む無機塩培地に添加すると、シメトリン分解が見られなくなった。そこで、シメトリン分解菌の生育に有利な培地を実験的に検索したところ、前記した表１に示したＧＧＶ培地が最適であることが判明した。そこで装置Ｃの還流液から、シメトリンを２０ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ寒天培地（表１のＧＧＶ培地に寒天を１．５％添加したもの）を用いて単コロニー分離を行った。生じたコロニーを新たなＧＧＶ寒天培地及びＲ２Ａ寒天培地を用いて純化し、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ培地９ｍｌを分注したＬ字管に植種し、３０℃で振とう培養を行った。各コロニーの培養液を経日的にサンプリングし、ＨＰＬＣを用いて培養液中のシメトリン濃度を測定したところ、図４に示すように培養液中のシメトリン濃度を明らかに減少させるコロニーの単離に成功した。この新規メチルチオ化トリアジン分解菌株をＦＪ１１１７ＹＴ株と命名した。
【実施例２】
【００３７】
ＦＪ１１１７ＹＴ株の菌学的検討
実施例１にて単離したＦＪ１１１７ＹＴ株の菌学的位置付けを行うために、ＦＪ１１１７ＹＴ株の形態的性質、培地における生育の様相、生理学的性質、生化学的性状についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて分析を行った。その結果、次の菌学的性質が認められた。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：不規則桿菌（細胞の分岐有り）
（２） 大きさ ：０．８〜１．０μｍ×２．０〜４．０μｍ
（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：なし
（４） 運動性 ：なし
【００３８】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：４８時間）
（５） コロニー直径 ：１．０〜２．０ｍｍ
（６） 色調 ：ピンク色
（７） 形 ：円形
（８） 隆起状態 ：レンズ状
（９） 周縁 ：菌糸状
（１０） 表面の形状 ：スムーズ
（１１） 透明度 ：不透明
（１２） 粘稠度 ：バター様
【００３９】
Ｃ．生理学的性質
（１３） グラム染色 ： ＋
（１４） ３７℃における生育 ： ＋
（１５） ４５℃における生育 ： −
（１６） カタラーゼ ： ＋
（１７） オキシダーゼ ： −
（１８） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（１９） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００４０】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ Ｃｏｒｙｎｅによる）
（２０） 硝酸塩還元 ： −
（２１） ピラジナミダーゼ ： −
（２２） ピロリドニルアリルアミダーゼ ： −
（２３） アルカリフォスファターゼ ： −
（２４） β−グルクロニダーゼ ： −
（２５） β−ガラクトシダーゼ ： −
（２６） α−グルコシダーゼ ： ＋
（２７） Ｎ−アセチル−β−グルコサミニダーゼ ： −
（２８） エスクリン ： −
（２９） ウレアーゼ ： −
（３０） ゼラチン加水分解 ： −
（３１） グルコース資化性 ： −
（３２） リボース資化性 ： −
（３３） キシロース資化性 ： −
（３４） マンニトール資化性 ： −
（３５） マルトース資化性 ： −
（３６） 乳糖資化性 ： −
（３７） 白糖資化性 ： −
（３８） グリコーゲン資化性 ： −
【００４１】
結果をバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＦＪ１１１７ＹＴ株はコリネ型細菌の一種であると推定された。コリネ型細菌は多様な細菌群で、上記の菌学的性質の試験結果のみから本株を分類同定することは困難であった。そこで以下の手順に則り、ＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列に基づいた遺伝子分類学的な検討を行った。
【００４２】
（１）ＤＮｅａｓｙ Ｔｉｓｓｕｅ Ｋｉｔ (キアゲン製)を用いてＦＪ１１１７ＹＴ株の菌体からＤＮＡを調製した。
（２）上記ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとして、公知のユーバクテリア１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子増幅用プライマーを用いてＰＣＲ法によりＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子断片を増幅し、QIAquick PCR Purification Kit (キアゲン製)を用いてＤＮＡを精製した。
（３）上記精製ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとして蛍光ラベルした公知のユーバクテリア１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列解析用プライマーを用いてサイクルシーケンス反応を行い、ＤＮＡシーケンサＳＱ５５００Ｅ（日立製）により塩基配列を決定した。
以上の操作により決定されたＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列、１，４５０塩基を配列番号１に示す。ジェネティクスＰＤＢ（ジェネティクス製）を用いて、配列番号１に示したＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列と、ＤＮＡ塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ）に登録された他の微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列をＦＡＳＴＡ法により相同性比較を行った。その結果、ＦＪ１１１７ＹＴ株はロドコッカス sp. ＤＳＭ４３９４３株と９９．９％の相同性（１，４４９／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７９７）を示した。また、ＦＪ１１１７ＹＴ株はロドコッカス ｓｐ．８７１−ＡＮ０４０株と９９．８％の相同性（１，４４７／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７９０）を示した。種レベルまで記載のある微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列の相同性比較では、ロドコッカス コレーンシスと９９．２％の相同性（１，４３８／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７２８）を、ロドコッカス マリノナッセンスと９８．８％の相同性（１，４３３／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７０１）を示した。
以上の結果から、発明者らは本菌株を新規なロドコッカス ｓｐ．ＦＪ１１１７ＹＴ株と同定し、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５として寄託した。
【実施例３】
【００４３】
ＪＵＮ７株の単離
発明者らは、以下の様にして、本発明に係わる新規メチルチオ化トリアジン分解菌バシラス セレウス ＪＵＮ７株を単離した。日本各地の１４地点で採取した土壌を０．１ｇずつ、滅菌済生理食塩水１０ｍｌに分散させ、懸濁液とした。あらかじめシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む１／１０ＬＢ培地を６ｍｌずつ分注しておいたＬ字管に、この懸濁液０．５ｍｌを接種した。同様にして、１種の土壌に付き２本のＬ字管を用意し、これらのＬ字管を２６℃にて振とう培養を行った。１／１０ＬＢ培地の組成は次の表４の通りである。
【００４４】
【表４】
【００４５】
培養中、培養液を経日的にサンプリングし、遠心して菌体などの浮遊物を除いた後にＨＰＬＣを用いてシメトリン濃度を求めた。その結果、供試した土壌の中で土壌ＪＵＮの懸濁液を加えたＬ字管のうちの一本において、シメトリン濃度の低下が認められた。そこでこのＬ字管から培養液０．１ｍｌを採取して、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む滅菌済１／１０ＬＢ培地に接種し、これを２６℃にて振とう培養して、経日的に培養液中のシメトリンの濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図５に示す。図５のグラフの縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図５で認められるように、培養期間中、対照のＬ字管では培養液中のシメトリン濃度が変化しなかった一方で、培養液を接種したＬ字管では培養液中のシメトリン濃度の低下が認められた。
【００４６】
そこで図５で培養液中のシメトリン濃度の低下が認められたＬ字管の培養液からのシメトリン分解菌の単離を試みた。まず、この培養液を滅菌水で適宜希釈し、１／１０ＬＢ寒天培地（表４の１／１０ＬＢ培地に寒天を１．２％添加したもの）に塗布して３０℃にて２日間培養した。出現したコロニーから外観を基準に９株を選択し、それぞれシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む滅菌済１／１０ＬＢ培地に接種し、これを２６℃にて振とう培養して、経日的に培養液中のシメトリンの濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図６に示す。図６のグラフの縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図６で認められるように、試験した９株は、培養液中のシメトリン濃度が対照とほとんど変わらない５株（図６のＡ）、若干シメトリン濃度が低下した１株（図６のＢ）及びシメトリン濃度が顕著に低下した３株（図６のＣ）の３群に分けられた。
次に図６で培養液中シメトリン濃度を顕著に低下させた３株（図６のＣ）の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列を実施例２に記した手順に従って決定した。その結果、各株につき４８５塩基の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列が決定され、３株間でその全てが一致したことから、これらは同一の菌種と判断された。この新規メチルチオ化トリアジン分解菌株をＪＵＮ７株と命名した。
【実施例４】
【００４７】
ＪＵＮ７株の菌学的検討
実施例３にて単離したＪＵＮ７株の菌学的位置付けを行うために、ＪＵＮ７株の形態的性質、培地における生育の様相、生理学的性質、生化学的性状についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて分析を行った。その結果、次の菌学的性質が認められた。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：桿菌
（２） 大きさ ：１．０μｍ×２．０〜３．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：有り
（４） 運動性 ：有り
【００４８】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：２４時間）
（１） コロニー直径 ：２．０〜３．０ｍｍ
（２） 色調 ：クリーム色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：扁平
（５） 周縁 ：波状
（６） 表面の形状 ：ラフ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００４９】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００５０】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ ５０ＣＨＢによる）
（１） グリセロール資化性 ： ＋
（２） エリスリトール資化性 ： −
（３） Ｄ−アラビノース資化性 ： −
（４） Ｌ−アラビノース資化性 ： −
（５） リボース資化性 ： ＋
（６） Ｄ−キシロース資化性 ： −
（７） Ｌ−キシロース資化性 ： −
（８） アドニトール資化性 ： −
（９） β−メチル−Ｄ−キシロース資化性 ： −
（１０） ガラクト−ス資化性 ： −
（１１） グルコース資化性 ： ＋
（１２） フラクトース資化性 ： ＋
（１３） マンノース資化性 ： −
（１４） ソルボース資化性 ： −
（１５） ラムノース資化性 ： −
（１６） ズルシトール資化性 ： −
（１７） イノシトール資化性 ： −
（１８） マンニトール資化性 ： −
（１９） ソルビトール資化性 ： −
（２０） α−メチル−Ｄ−マンノース資化性 ： −
（２１） α−メチル−Ｄ−グルコース資化性 ： −
（２２） Ｎ−アセチルグルコサミン資化性 ： ＋
（２３） アミグダリン資化性 ： −
（２４） アルブチン資化性 ： ＋
（２５） エスクリン資化性 ： ＋
（２６） サリシン資化性 ： ＋
（２７） セロビオース資化性 ： −
（２８） マルトース資化性 ： ＋
（２９） 乳糖資化性 ： −
（３０） メリビオース資化性 ： −
【００５１】
（３１） 白糖資化性 ： −
（３２） トレハロース資化性 ： ＋
（３３） イヌリン資化性 ： −
（３４） メレチトース資化性 ： −
（３５） ラフィノース資化性 ： −
（３６） 澱粉資化性 ： ＋
（３７） グリコーゲン資化性 ： ＋
（３８） キシリトール資化性 ： −
（３９） ゲンチオビオース資化性 ： −
（４０） Ｄ−ツラノース資化性 ： −
（４１） Ｄ−リキソース資化性 ： −
（４２） Ｄ−タガトース資化性 ： −
（４３） Ｄ−フコース資化性 ： −
（４４） Ｌ−フコース資化性 ： −
（４５） Ｄ−アラビトール資化性 ： −
（４６） Ｌ−アラビトール資化性 ： −
（４７） グルコネート資化性 ： −
（４８） ２−ケトグルコン酸資化性 ： −
（４９） ５−ケトグルコン酸資化性 ： −
（５０） β−ガラクトシダーゼ ： −
（５１） アルギニンジヒドロラーゼ ： −
（５２） リシンデカルボキシラーゼ ： −
（５３） オルニチンデカルボキシラーゼ ： −
（５４） クエン酸の利用性 ： −
（５５） 硫化水素産生 ： −
（５６） ウレアーゼ ： −
（５７） トリプトファンデアミナーゼ ： −
（５８） インドール産生 ： −
（５９） アセトイン産生 ： −
（６０） ゼラチナーゼ ： ＋
（６１） 硝酸塩還元 ： ＋
【００５２】
形態的性質、培地における生育の様相及び生理学的性質の試験結果をバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＪＵＮ７株はバシラス属細菌に代表される好気的に生育可能な有芽胞桿菌と考えられた。さらに生化学的性状試験では、バシラス属の中でもバシラス セレウスグループに属する細菌と類似の性状を示した。そこで次に溶血性、結晶封入体確認及びレシチナーゼ活性についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて追加試験を行った。
Ｅ．溶血性試験
ＪＵＮ７株をＯｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒにヒツジ血液を５％の割合で混合した５％羊血液寒天平板培地に植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、生育したコロニー周辺には透明帯が形成されたことから、溶血性陽性と判定された。
Ｆ．結晶封入体確認
ＪＵＮ７株をＯｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒに植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、光学顕微鏡ＢＸ５０Ｆ４（オリンパス製）で菌体を観察したところ、細胞内に結晶封入体は確認されなかった。
Ｇ．レシチナーゼ活性
ＪＵＮ７株を無菌卵黄液（アテクト製）を１０％の割合で混合したＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ製Ｈｅａｒｔ Ｉｎｆｕｓｉｏｎ Ａｇａｒに植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、生育したコロニー周辺には混濁帯が形成されたことから、レシチナーゼ活性陽性と判定された。
以上の追加試験の結果を医学細菌同定の手引き第３版（１９９３）及びバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＪＵＮ７株はバシラス セレウスグループに属する細菌と考えられた。
【００５３】
また、実施例２に記した手順に従ってＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列、１，４６０塩基を決定した。その塩基配列を配列表の配列番号２に示す。実施例２と同様に、配列番号２に示したＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列と、ＤＮＡ塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ）に登録された他の微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列をＦＡＳＴＡ法により相同性比較を行った。その結果、ＪＵＮ７株はバシラス セレウスグループに属する多くの細菌と高い相同性を示した。（例えばバシラス セレウス ＡＴＣＣ５３５２２株、及びバシラス チューリンゲーンシス ＡＴＣＣ１０７９２株とは１００．０％の相同性、バシラス マイコイデス ＡＴＣＣ６４６２株とは９９．３％の相同性を示した。）
以上の結果から、発明者らは本菌株を新規なバシラス セレウスＪＵＮ７株と同定した。本菌株は独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４として寄託した。
【実施例５】
【００５４】
ＪＵＮ７株によるシメトリンに及ぼす培地ｐＨの影響
ＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を検討した。シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む１／１０ＬＢ培地を用意し、塩酸溶液及び水酸化ナトリウム溶液でｐＨを調整後滅菌した。この方法で滅菌後ｐＨが４、５、６、７、７．６、９、又は１０の培地を作製した。これらのｐＨ調整済培地をＬ字管に６ｍｌずつ分注し、１／１０ＬＢ培地にて前培養したＪＵＮ７株を０．１ｍｌ植菌した。Ｌ字管は２６℃にて振とう培養し、培養液中のシメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図７に示す。
図７のグラフの左縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、右縦軸は培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図７の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示す。また図７の黒四角印（■）は対照のＬ字管における培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、白四角印（□）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管の培養液の６６０ｎｍでの濁度を示す。
図７のＡ及びＢで明らかな様に、培地の初期ｐＨを４とした場合、ＪＵＮ７株の生育は極めて僅かで、シメトリンをほとんど分解することができなかった。培地の初期ｐＨを５とした場合、ＪＵＮ７株は培養後期に僅かに生育し、シメトリンを若干分解した。培地の初期ｐＨを６、７、７．６、９、又は１０とした場合、ＪＵＮ７株は旺盛に生育し、シメトリンをよく分解した。一方、ＪＵＮ７を植菌していない対照ではいずれのｐＨでも培地中シメトリン濃度の低下は認められなかった。以上の結果から、ＪＵＮ７株のシメトリン分解能は培地の初期ｐＨが５以上、望ましくは６以上で機能し、ｐＨ１０でも十分な機能を保つことが判明した。
【実施例６】
【００５５】
ＪＵＮ７株による他のメチルチオ化トリアジンの分解
ＪＵＮ７株を用いて、シメトリン以外のメチルチオ化トリアジン系化合物について分解能を検討した。ここでは対象化合物として、ジメタメトリン及びプロメトリンを供試した。ジメタメトリンあるいはプロメトリンを５ｍｇ／Ｌの割合で含む滅菌済１／１０ＬＢ培地を用意した。これらをＬ字管に６ｍｌずつ分注し、１／１０ＬＢ寒天培地にて前培養したＪＵＮ７株を植菌した。Ｌ字管は２６℃にて振とう培養し、培養液中のジメタメトリン及びプロメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図８及び図９に示す。
図８のグラフの縦軸は培養液中のジメタメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図８の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示す。
図９のグラフの縦軸は培養液中のプロメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図９の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示す。
図８及び図９で示される様に、ＪＵＮ７株はジメタメトリンとプロメトリンも分解できることが明らかとなった。以上のことから、ＪＵＮ７株はシメトリン及びジメタメトリン、プロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジンの分解が可能であると考えられた。
【実施例７】
【００５６】
ＦＪ１１１７ＹＴ株による他のメチルチオ化トリアジンの分解。
ＦＪ１１１７ＹＴ株を用いて、シメトリン以外のメチルチオ化トリアジンの分解が可能であるか検討した。ここでは対象化合物として、アメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンを供試した。いずれかの農薬を３〜７ｍｇ／Ｌの割合で含む滅菌済１／１０ＬＢ培地をそれぞれ用意し、これらをＬ字管に９ｍｌずつ分注後、Ｒ２Ａ寒天培地にて前培養したＦＪ１１１７ＹＴ株を植菌した。Ｌ字管は２０℃にて振とう培養し、２５日後に培養液中のアメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリン濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。培養液中の農薬濃度を、対照を１とした場合の相対濃度として、この結果を次の表５に示す。
【００５７】
【表５】
【００５８】
この結果、表５で示される様に、ＦＪ１１１７ＹＴ株は、アメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンのいずれのメチルチオ化トリアジン系化合物も分解できることが明らかとなった。以上のことから、ＦＪ１１１７ＹＴ株はアメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジンの分解が可能であると考えられた。
【産業上の利用可能性】
【００５９】
本発明は、農薬などとして多用されているメチルチオ化トリアジン系化合物を分解する新規な細菌、それを含有してなる組成物、細菌及びそれを用いたメチルチオ化トリアジン系化合物を分解する方法を提供するものであり、廃棄農薬や環境中に残留している過剰のメチルチオ化トリアジン系化合物を分解して無害化し、環境の浄化に寄与するものであり、残留物を除去してきれいな土壌や水を提供することを可能とするものであり、産業上の利用可能性を有する。
【図面の簡単な説明】
【００６０】
【図１】図１は、本発明の分解菌を集積するために用いた装置の模式図である。
【図２】図２は、図１に示した装置における、Ａ〜Ｄの各装置の還流液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図３】図３は、実施例１における装置Ｃの還流液を接種したＬ字管の培養液（白丸印（○））中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図４】図４は、本発明の分解菌ＦＪ１１１７ＹＴ株のシメトリン分解を示すグラフである。
【図５】図５は、実験例３における土壌ＪＵＮを添加したＬ字管の培養液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図６】図６は、実験例３における単離した各コロニーを接種したＬ字管の培養液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図７】図７は、本発明のＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を示すグラフである。
【図８】図８は、本発明のＪＵＮ７株のジメタメトリン分解を示すグラフである。
【図９】図９は、本発明のＪＵＮ７株のプロメトリン分解を示すグラフである。
【配列表フリーテキスト】
【００６１】
配列番号１：本発明の分解菌ＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の１４５０塩基。
配列番号２：本発明の分解菌ＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の１４６０塩基。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、メチルチオ化トリアジン系農薬、特にシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する能力を有する新規な微生物、より詳細にはロドコッカス属又はバシラス属に属する微生物に関し、また当該微生物又は当該微生物を含む複合微生物系を用いてメチルチオ化トリアジン系農薬を分解する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近代農業において農薬は、収量の維持・安定化及び労務軽減、生産コスト削減のために必要不可欠である。しかしながら使用された農薬の一部が河川・湖沼・地下水等に流出している事実が明らかとなり、一般環境中の生物への影響が懸念されている。土壌中には多種多様な微生物が生息しており、これらの中には、農薬等の有機化学物質を分解して無害化する能力を有するものが存在する。しかしこれら分解菌の自然環境中での存在密度は低く、また一様に分布するものでもないため、有機汚染物質の環境中での蓄積や拡散を未然に防ぐまでには至らないのが通常である。そこでこのような分解菌を土壌中から選択的に集積且つ単離した後、農薬等の有機汚染物質を分解する方法、所謂バイオレメディエーション法が有効な手段であると考えられる。
【０００３】
トリアジン系化合物は長年にわたり、農薬や消泡剤、染料等として世界中で多用されてきているが、現在では環境汚染物質として問題となっている。塩素化トリアジン系農薬であるアトラジンに関しては多くの微生物がこれを分解することが知られている（特許文献１参照）一方で、シメトリンを始めとしたメチルチオ化トリアジン類はより難分解性であり、微生物によるメチルチオ化トリアジンの分解に関する報告は限られている。ＣｏｏｋとＨｕｔｔｅｒは、アメトリンあるいはプロメトリンを硫黄源として与えた合成培地を用いて土壌から分解菌を集積し、最終的に増殖速度の速い３種類の細菌を選抜したことを報告している（非特許文献１）。そのうち２種はアメトリンを、他の１種はアメトリンとプロメトリンを分解して脱メチルチオ化した代謝物を生じさせた。しかしながら、これらの菌株について菌学的な検討は報告されていない。また、Ｓｔｒｏｎｇらは高濃度のアトラジンで汚染したゴミ集積場からアトラジン分解能を有するアルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株を単離し、アルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株がアメトリンあるいはプロメトリンを唯一の窒素源として含む培地にて生育したことを示したことを報告している（非特許文献２）。しかしながら、アルスロバクター アウレッセンス ＴＣ１株がこれらのメチルチオ化トリアジンを分解したことを示す証拠は記載されていない。一方、Ｔｏｐｐらはノカルディオイデス ｓｐ． Ｃ１９０株の菌体あるいは菌体抽出物を、シメトリン、アメトリン、プロメトリンあるいはテルブトリンを含む溶液に分散させ、嫌気条件下にて保温静置したところ、これらを分解して脱メチルチオ化した代謝物が認められたことを報告している（非特許文献３）。また、Ｓｅｆｆｅｒｎｉｃｋらはクラビバクター ミシガネンシス ＡＴＺ１株の菌体抽出物でアメトリンを脱メチルチオ化したことを報告している（非特許文献４）。
以上の様に、微生物を用いたメチルチオ化トリアジンの分解についてはいくつかの報告がなされてはいるものの、単離株の菌学的検討が十分でない、メチルチオ化トリアジンの分解そのものの証明が提示されていない、生菌体での分解が示されていない等、現時点でのバイオレメディエーションに利用できる菌株が存在するとは言えないのが現状である。
【０００４】
【特許文献１】特開２００５−２７５３６号
【非特許文献１】Cook，A.M.，Hutter，R. 1982. Appl. Environ. Microbiol. 43，781-786.
【非特許文献２】Strong，L.C.，Rosendahl，C.，Johnson，G.，Sadowsky，M.J.，Wackett，L.P. 2002. Appl Environ Microbiol. 68，5973-5980.
【非特許文献３】Topp，E.，Mulbry，W.M.，Zhu，H.，Nour，S.M.，Cuppels，D. 2000. Appl. Environ. Microbiol. 66，3134-3141.
【非特許文献４】Seffernick，J.L.，Johnson，G.，Sadowsky，M.J.，Wackett，L.P. 2000. Appl. Environ. Microbiol. 66，4247-4252.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物を分解することができる新規な微生物、及びこれを用いたメチルチオ化トリアジン系化合物の分解方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、土壌から単離したロドコッカス属の細菌又はバシラス属の細菌の中に、シメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物の分解能を有する細菌がいることを見出した。また、これらの細菌は特徴的な１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子を有し、菌学的性質からも新規な細菌が含まれることを見出した。さらに、これらの細菌を用いることにより、従来分解が困難とされていたシメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物を効率よく分解することができることを見出した。
即ち、本発明は、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌、より詳細には、１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子が、配列表の配列番号１に記載する塩基配列、又はメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個若しくは複数個の塩基が、欠失、置換、若しくは付加することにより配列表の配列番号１に記載された塩基配列と９５％以上の相同性を有する塩基配列を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌に関する。さらに詳細には、後述する菌学的性質を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するロドコッカス属の細菌に関する。当該ロドコッカス属に属するメチルチオ化トリアジン分解菌の具体例としては、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株（ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５）が挙げられる。
【０００７】
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌、より詳細には、１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子が、配列表の配列番号２に記載する塩基配列、又はメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個若しくは複数個の塩基が、欠失、置換、若しくは付加することにより配列表の配列番号２に記載された塩基配列と９５％以上の相同性を有する塩基配列を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌に関する。さらに詳細には、後述する菌学的性質を有することを特徴とするメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属の細菌に関する。好ましくは、メチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン分解能を有するバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌に関する。当該バシラス属に属するメチルチオ化トリアジン分解菌の具体例としては、バシラス セレウス ＪＵＮ７株（ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４）が挙げられる。
【０００８】
本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解する方法に関する。より詳細には、本発明は、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解する方法、即ち分解法に関する。
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解するための組成物に関する。より詳細には、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を分解するための組成物に関する。
【０００９】
さらに、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化する方法に関する。より詳細には、本発明は、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌を用いてメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化する方法に関する。
また、本発明は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化するための組成物に関する。より詳細には、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物を含有する環境を浄化するための組成物に関する。
【００１０】
以下、本発明の実施形態について説明する。本発明は、土壌から単離したメチルチオ化トリアジン分解菌である。本発明におけるメチルチオ化トリアジンとは、トリアジン骨格にメチルチオ基を有するメチルチオ化トリアジン系化合物であり、このようなトリアジン骨格としては、１，３，５−トリアジン（ｓ−トリアジン）、１，２，４−トリアジン、１，２，３−トリアジンのいずれでもよいが、ｓ−トリアジン又は１，２，４−トリアジンが好ましい。したがって、本発明のメチルチオ化トリアジンとしては、メチルチオ化ｓ−トリアジン、メチルチオ化−１，２，４−トリアジン、又はメチルチオ化−１，２，３−トリアジンのいずれでもよいが、メチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンが好ましい。本発明のメチルチオ化トリアジンの好ましい例としては、例えば、シメトリン（３，５−ビス（Ｎ−エチルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、ジメタメトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−（１，２−ジメチルプロピル）アミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、プロメトリン（３，５−ビス（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、アメトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、デスメトリン（３−（Ｎ−メチルアミノ）−５−（Ｎ−イソプロピルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）、テルブトリン（３−（Ｎ−エチルアミノ）−５−（Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルアミノ）−メチルチオ−ｓ−トリアジン）等のメチルチオ化ｓ−トリアジン、メトリブジン（４−アミノ−６−ｔｅｒｔ−ブチル−３−メチルチオ−４Ｈ−１，２，４−トリアジン−５−オン）等のメチルチオ化−１，２，４−トリアジン等が挙げられる。
【００１１】
本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌とは、前記したメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンの１種又は２種以上の化合物を分解することができる作用を有する菌である。より具体的には、本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌としては、例えば、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する能力を有する微生物である。
本発明におけるメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌のひとつはロドコッカス属に属する細菌であって、しかもその１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列中に後述する配列表の配列番号１に記載する塩基配列を含有していることを特徴とするものである。当該塩基配列は、ロドコッカス属の特徴、及び本発明の分解菌のメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として、１個又は複数個の塩基が、欠失、置換又は付加されることにより配列表の配列番号１に記載される塩基配列に比べて、少なくとも９５％以上、好ましくは９８％以上の相同性を有するものが含まれる。
また、本発明におけるメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌の他の例としては、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌であって、しかもその１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列中に後述する配列表の配列番号２に記載する塩基配列を含有していることを特徴とするものである。当該塩基配列は、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかの特徴、及び本発明の分解菌のメチルチオ化トリアジン分解能力を損なわないことを限度として１個又は複数個の塩基が、欠失、置換又は付加されることにより配列表の配列番号２に記載される塩基配列に比べて、少なくとも９５％以上、好ましくは９８％以上の相同性を有するものが含まれる。
【００１２】
本発明のメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジンに対する分解能を有するロドコッカス属に属する細菌には、下記の菌学的特徴を有するものが含まれる。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態：不規則桿菌（細胞の分岐有り）
（２） 大きさ ：０．８〜１．０μｍ×２．０〜４．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：なし
（４） 運動性 ：なし
【００１３】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：４８時間）
（１） コロニー直径：１．０〜２．０ｍｍ
（２） 色調 ：ピンク色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：レンズ状
（５） 周縁 ：菌糸状
（６） 表面の形状 ：スムーズ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００１４】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００１５】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ Ｃｏｒｙｎｅによる）
（１） 硝酸塩還元 ： −
（２） ピラジナミダーゼ ： −
（３） ピロリドニルアリルアミダーゼ ： −
（４） アルカリフォスファターゼ ： −
（５） β−グルクロニダーゼ ： −
（６） β−ガラクトシダーゼ ： −
（７） α−グルコシダーゼ ： ＋
（８） Ｎ−アセチル−β−グルコサミニダーゼ ： −
（９） エスクリン ： −
（１０） ウレアーゼ ： −
（１１） ゼラチン加水分解 ： −
（１２） グルコース資化性 ： −
（１３） リボース資化性 ： −
（１４） キシロース資化性 ： −
（１５） マンニトール資化性 ： −
（１６） マルトース資化性 ： −
（１７） 乳糖資化性 ： −
（１８） 白糖資化性 ： −
（１９） グリコーゲン資化性 ： −
【００１６】
さらに、本発明が対象とするメチルチオ化トリアジン分解菌、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン分解菌又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン分解菌には、バシラス属好ましくはバシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌であって下記の菌学的特徴を有するものが含まれる。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：桿菌
（２） 大きさ ：１．０μｍ×２．０〜３．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：有り
（４） 運動性 ：有り
【００１７】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：２４時間）
（１） コロニー直径：２．０〜３．０ｍｍ
（２） 色調 ：クリーム色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：扁平
（５） 周縁 ：波状
（６） 表面の形状 ：ラフ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００１８】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００１９】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ ５０ＣＨＢによる）
（１） グリセロール資化性 ： ＋
（２） エリスリトール資化性 ： −
（３） Ｄ−アラビノース資化性 ： −
（４） Ｌ−アラビノース資化性 ： −
（５） リボース資化性 ： ＋
（６） Ｄ−キシロース資化性 ： −
（７） Ｌ−キシロース資化性 ： −
（８） アドニトール資化性 ： −
（９） β−メチル−Ｄ−キシロース資化性 ： −
（１０） ガラクト−ス資化性 ： −
（１１） グルコース資化性 ： ＋
（１２） フラクトース資化性 ： ＋
（１３） マンノース資化性 ： −
（１４） ソルボース資化性 ： −
（１５） ラムノース資化性 ： −
（１６） ズルシトール資化性 ： −
（１７） イノシトール資化性 ： −
（１８） マンニトール資化性 ： −
（１９） ソルビトール資化性 ： −
（２０） α−メチル−Ｄ−マンノース資化性 ： −
（２１） α−メチル−Ｄ−グルコース資化性 ： −
（２２） Ｎ−アセチルグルコサミン資化性 ： ＋
（２３） アミグダリン資化性 ： −
（２４） アルブチン資化性 ： ＋
（２５） エスクリン資化性 ： ＋
（２６） サリシン資化性 ： ＋
（２７） セロビオース資化性 ： −
（２８） マルトース資化性 ： ＋
（２９） 乳糖資化性 ： −
（３０） メリビオース資化性 ： −
【００２０】
（３１） 白糖資化性 ： −
（３２） トレハロース資化性 ： ＋
（３３） イヌリン資化性 ： −
（３４） メレチトース資化性 ： −
（３５） ラフィノース資化性 ： −
（３６） 澱粉資化性 ： ＋
（３７） グリコーゲン資化性 ： ＋
（３８） キシリトール資化性 ： −
（３９） ゲンチオビオース資化性 ： −
（４０） Ｄ−ツラノース資化性 ： −
（４１） Ｄ−リキソース資化性 ： −
（４２） Ｄ−タガトース資化性 ： −
（４３） Ｄ−フコース資化性 ： −
（４４） Ｌ−フコース資化性 ： −
（４５） Ｄ−アラビトール資化性 ： −
（４６） Ｌ−アラビトール資化性 ： −
（４７） グルコネート資化性 ： −
（４８） ２−ケトグルコン酸資化性 ： −
（４９） ５−ケトグルコン酸資化性 ： −
（５０） β−ガラクトシダーゼ ： −
（５１） アルギニンジヒドロラーゼ ： −
（５２） リシンデカルボキシラーゼ ： −
（５３） オルニチンデカルボキシラーゼ ： −
（５４） クエン酸の利用性 ： −
（５５） 硫化水素産生 ： −
（５６） ウレアーゼ ： −
（５７） トリプトファンデアミナーゼ ： −
（５８） インドール産生 ： −
（５９） アセトイン産生 ： −
（６０） ゼラチナーゼ ： ＋
（６１） 硝酸塩還元 ： ＋
【００２１】
本発明が対象とするメチルチオ化トリアジン分解菌の具体的な例として、新規分離菌株であるロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株及びバシラス セレウス ＪＵＮ７株がある。ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに微生物の表示（寄託者が付した識別のための表示）「Rhodococcus sp. strain FJ1117YT」、受託番号「ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５」として寄託されている。バシラス セレウス ＪＵＮ７株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに微生物の表示（寄託者が付した識別のための表示）「Bacillus cereus JUN7」、受託番号「ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４」として寄託されている。
【００２２】
本発明者らは、後記する実施例１に記載の方法により、新規なメチルチオ化トリアジン分解菌株ＦＪ１１１７ＹＴ株を見出した。この微生物の生育に有利な培地を実験的に検索したところ、次の表１に示したＧＧＶ培地が最適であることが判明した。
【００２３】
【表１】
【００２４】
前記の表１中の混合ビタミンは、次の表２に示される組成からなるものである。
【００２５】
【表２】
【００２６】
そして、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ培地９ｍｌにこの微生物を植種し、３０℃で振とう培養を行った。培養液を経日的にサンプリングし、ＨＰＬＣを用いて培養液中のシメトリン濃度を測定した結果を図４に示す。図４に示されるように、約１５日後には、培養液中のシメトリン濃度はほぼ０となった。このように、本発明の微生物はメチルチオ化トリアジンを顕著に分解する作用を有していることが明らかになった。
また、後記する実施例３に記載の方法により、培養液中のシメトリン濃度を顕著に低下させた３株（図６のＣ）を得た。この３株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列を決定したところ、各株につき４８５塩基の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列が３株間でその全てが一致したことから、これらは同一の菌種と判断された。このようにして、本発明の新規メチルチオ化トリアジン分解菌株ＪＵＮ７株が見出された。
【００２７】
得られたＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を検討した。ｐＨが４、５、６、７、７．６、９、及び１０の培地を作製した。１／１０ＬＢ培地にて前培養したＪＵＮ７株を０．１ｍｌ植菌し、２６℃にて振とう培養し、培養液中のシメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液に接種しないものも同様に操作し、対照とした。その結果を図７に示す。
図７のグラフの左縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、右縦軸は培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図７の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示す。また図７の黒四角印（■）は対照のＬ字管における培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、白四角印（□）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管の培養液の６６０ｎｍでの濁度を示す。
図７のＡ及びＢで明らかな様に、培地の初期ｐＨを４とした場合、ＪＵＮ７株の生育は極めて僅かで、シメトリンをほとんど分解することができなかった。培地の初期ｐＨを５とした場合、ＪＵＮ７株は培養後期に僅かに生育し、シメトリンを若干分解した。培地の初期ｐＨを６、７、７．６、９あるいは１０とした場合、ＪＵＮ７株は旺盛に生育し、シメトリンをよく分解した。一方、ＪＵＮ７株を植菌していない対照ではいずれのｐＨでも培地中シメトリン濃度の低下は認められなかった。以上の結果から、ＪＵＮ７株のシメトリン分解能は培地の初期ｐＨが５以上、望ましくは６以上で機能し、ｐＨ１０でも十分な機能を保つことが判明した。
【００２８】
ＪＵＮ７株を用いて、ジメタメトリン及びプロメトリンに対する分解試験を前記と同様にして行った。その結果を図８及び図９に示す。
図８のグラフの縦軸は培養液中のジメタメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図８の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示す。
図９のグラフの縦軸は培養液中のプロメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図９の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示す。
図８及び図９で示される様に、ＪＵＮ７株はジメタメトリンとプロメトリンも分解できることが明らかとなった。
以上のことから、シメトリン分解能を有する細菌は、ジメタメトリン、プロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジンの分解が可能であると考えられることがわかった。
【００２９】
本発明のメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解する方法は、本発明のメチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌から選ばれる微生物の少なくとも１種を、これらの微生物が生育できる条件で、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する材料と接触させることにより行うことができる。これらの微生物が生育できる条件としては、前記したＧＧＶ培地や１／１０ＬＢ培地などが好ましいが、これらに限定されるものではなく、これらの微生物による分解を行うことができる条件であればよい。メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する材料としては、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有する廃棄農薬、メチルチオ化トリアジン系化合物を含有すると考えられる土壌や、地下水、用水などの水などが挙げられる。
【００３０】
また、本発明のメチルチオ化トリアジン系化合物、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジン系化合物又はメチルチオ化−１，２，４−トリアジン系化合物、より好ましくはシメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種の物質を分解するための組成物としては、前記した本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌から選ばれる微生物の少なくとも１種を含有するものである。当該組成物における細菌の生育が許容される担体としては、本発明の微生物が生育できる条件に適した材料であればよく、前記した培地やその改変培地、それを支持する支持体などが挙げられる。このような支持体としては、本発明の微生物を安定に保持することができるものであれば特に制限はないが、多孔質素材、更に具体的には当該細菌又は複合微生物系を集積させた多孔質の木質炭化材料、竹炭材料、綿布材料などが挙げられる。より具体的には特開平１０−２２５２８８号（特許第３０３０３７０号公報）、又は特開平１１−３１８４３５号（特許第２９０４４３２号公報）に記載の多孔質材料が挙げられ、これらの公報に記載の内容を本明細書に全て取り込む。
さらに、ＷＯ２０００／０７８９２３号に記載されているような装置を用いて、本発明の微生物をその分解菌保持担体に担持させて使用することもできる。
【００３１】
さらに、本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌、又は当該分解菌を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物を用いて、シメトリン、プロメトリン、アメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物が配合された廃棄農薬を無害化し、あるいはメチルチオ化トリアジン系化合物で汚染されている土壌や、地下水、用水などの水などの環境を浄化することができる。この方法は、本発明のメチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌若しくはバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌から選ばれる微生物の少なくとも１種、又は当該微生物を含有してなる組成物を、これらの微生物が生育できる条件で、メチルチオ化トリアジン系化合物を含む材料と接触させることにより行うことができる。この方法により、シメトリン、プロメトリン、アメトリンなどのメチルチオ化トリアジン系化合物が配合された廃棄農薬、あるいはメチルチオ化トリアジン系化合物で汚染されている土壌や、地下水、用水などの水などの材料中のメチルチオ化トリアジン系化合物を本発明の微生物により分解して、これを無害化し、浄化することができる。
また、本発明は、このような環境汚染物質の無害化及び浄化のために適した組成物を提供するものであり、当該組成物は、メチルチオ化トリアジン分解能を有するロドコッカス属に属する細菌又はバシラス属好ましくはバシラス属セレウスに属する細菌、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるものである。当該担体としては、前記したメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物における担体と同様なものを使用することができる。
【発明の効果】
【００３２】
以上説明したように本発明のメチルチオ化トリアジン分解菌によりメチルチオ化トリアジン系農薬、特にシメトリンを分解する事が出来る。更に本発明の微生物を用いると速やかに当該農薬を分解することが可能であり、廃棄農薬や環境中の残留農薬を速やかにかつ効率的に分解することができる。
【００３３】
以下、本発明分解菌の単離培養、分類同定、更に本発明分解菌を用いたシメトリンを始めとするメチルチオ化トリアジン系農薬分解の実験例を示して、本発明を更に詳細かつ具体的に説明するが、本出願発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００３４】
ＦＪ１１１７ＹＴ株の単離
発明者らは、以下の様にして、本発明に係わる新規メチルチオ化トリアジン分解菌ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株を単離した。図１に示すように、土壌層タンク１に土壌を３０〜５０ｇ入れて集積用土壌層２を形成した。そして、適量のシメトリンを炭素源及び窒素源として加えた滅菌済の無機塩培地２００ｍｌを還流液３として貯液タンク４から集積用土壌層２に還流させた。用いた無機塩培地の組成は次の表３の通りである。
【００３５】
【表３】
【００３６】
図１に示した装置を４台用意し、還流開始後、それぞれの還流液中のシメトリン濃度をＨＰＬＣで測定した。結果を図２に示す。図２のグラフの縦軸は還流液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は還流時間（日）を示す。図２の矢印は還流液を全量、新鮮なものと交換した時点を示す。図２で認められるように装置Ｃ（図２のグラフにおいて白丸（○）で示す）において、還流液中のシメトリン濃度が急激に低下した。
そこでこの装置Ｃの還流液１ｍｌを、あらかじめシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む無機塩培地７ｍｌを分注しておいたＬ字管に接種し、２０℃にて振とう培養を行った。この培養液のサンプリングを経日的に行い、孔径０．４５μｍのフィルターでろ過後、ＨＰＬＣにてシメトリン濃度の測定を行った。また装置Ｃの還流液を加えていないＬ字管も用意し、対照とした。それぞれ３本ずつ試験した平均を図３に示す。対照のＬ字管では培養液中のシメトリン濃度の低下は認められなかった一方で、還流液を接種したＬ字管では、培養を開始して２日を過ぎてから徐々に培養液中のシメトリン濃度が低下し始め、１５日後には培養開始時に含まれていたシメトリンの７３％が消失した。この結果から、装置Ｃ内にシメトリン分解菌が集積していることが明らかとなった。
しかし、装置Ｃの還流液を高次に希釈してシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む無機塩培地に添加すると、シメトリン分解が見られなくなった。そこで、シメトリン分解菌の生育に有利な培地を実験的に検索したところ、前記した表１に示したＧＧＶ培地が最適であることが判明した。そこで装置Ｃの還流液から、シメトリンを２０ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ寒天培地（表１のＧＧＶ培地に寒天を１．５％添加したもの）を用いて単コロニー分離を行った。生じたコロニーを新たなＧＧＶ寒天培地及びＲ２Ａ寒天培地を用いて純化し、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含むＧＧＶ培地９ｍｌを分注したＬ字管に植種し、３０℃で振とう培養を行った。各コロニーの培養液を経日的にサンプリングし、ＨＰＬＣを用いて培養液中のシメトリン濃度を測定したところ、図４に示すように培養液中のシメトリン濃度を明らかに減少させるコロニーの単離に成功した。この新規メチルチオ化トリアジン分解菌株をＦＪ１１１７ＹＴ株と命名した。
【実施例２】
【００３７】
ＦＪ１１１７ＹＴ株の菌学的検討
実施例１にて単離したＦＪ１１１７ＹＴ株の菌学的位置付けを行うために、ＦＪ１１１７ＹＴ株の形態的性質、培地における生育の様相、生理学的性質、生化学的性状についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて分析を行った。その結果、次の菌学的性質が認められた。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：不規則桿菌（細胞の分岐有り）
（２） 大きさ ：０．８〜１．０μｍ×２．０〜４．０μｍ
（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：なし
（４） 運動性 ：なし
【００３８】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：４８時間）
（５） コロニー直径 ：１．０〜２．０ｍｍ
（６） 色調 ：ピンク色
（７） 形 ：円形
（８） 隆起状態 ：レンズ状
（９） 周縁 ：菌糸状
（１０） 表面の形状 ：スムーズ
（１１） 透明度 ：不透明
（１２） 粘稠度 ：バター様
【００３９】
Ｃ．生理学的性質
（１３） グラム染色 ： ＋
（１４） ３７℃における生育 ： ＋
（１５） ４５℃における生育 ： −
（１６） カタラーゼ ： ＋
（１７） オキシダーゼ ： −
（１８） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（１９） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００４０】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ Ｃｏｒｙｎｅによる）
（２０） 硝酸塩還元 ： −
（２１） ピラジナミダーゼ ： −
（２２） ピロリドニルアリルアミダーゼ ： −
（２３） アルカリフォスファターゼ ： −
（２４） β−グルクロニダーゼ ： −
（２５） β−ガラクトシダーゼ ： −
（２６） α−グルコシダーゼ ： ＋
（２７） Ｎ−アセチル−β−グルコサミニダーゼ ： −
（２８） エスクリン ： −
（２９） ウレアーゼ ： −
（３０） ゼラチン加水分解 ： −
（３１） グルコース資化性 ： −
（３２） リボース資化性 ： −
（３３） キシロース資化性 ： −
（３４） マンニトール資化性 ： −
（３５） マルトース資化性 ： −
（３６） 乳糖資化性 ： −
（３７） 白糖資化性 ： −
（３８） グリコーゲン資化性 ： −
【００４１】
結果をバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＦＪ１１１７ＹＴ株はコリネ型細菌の一種であると推定された。コリネ型細菌は多様な細菌群で、上記の菌学的性質の試験結果のみから本株を分類同定することは困難であった。そこで以下の手順に則り、ＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列に基づいた遺伝子分類学的な検討を行った。
【００４２】
（１）ＤＮｅａｓｙ Ｔｉｓｓｕｅ Ｋｉｔ (キアゲン製)を用いてＦＪ１１１７ＹＴ株の菌体からＤＮＡを調製した。
（２）上記ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとして、公知のユーバクテリア１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子増幅用プライマーを用いてＰＣＲ法によりＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子断片を増幅し、QIAquick PCR Purification Kit (キアゲン製)を用いてＤＮＡを精製した。
（３）上記精製ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとして蛍光ラベルした公知のユーバクテリア１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列解析用プライマーを用いてサイクルシーケンス反応を行い、ＤＮＡシーケンサＳＱ５５００Ｅ（日立製）により塩基配列を決定した。
以上の操作により決定されたＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列、１，４５０塩基を配列番号１に示す。ジェネティクスＰＤＢ（ジェネティクス製）を用いて、配列番号１に示したＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列と、ＤＮＡ塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ）に登録された他の微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列をＦＡＳＴＡ法により相同性比較を行った。その結果、ＦＪ１１１７ＹＴ株はロドコッカス sp. ＤＳＭ４３９４３株と９９．９％の相同性（１，４４９／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７９７）を示した。また、ＦＪ１１１７ＹＴ株はロドコッカス ｓｐ．８７１−ＡＮ０４０株と９９．８％の相同性（１，４４７／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７９０）を示した。種レベルまで記載のある微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列の相同性比較では、ロドコッカス コレーンシスと９９．２％の相同性（１，４３８／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７２８）を、ロドコッカス マリノナッセンスと９８．８％の相同性（１，４３３／１，４５０、ＩＮＴスコア：５，７０１）を示した。
以上の結果から、発明者らは本菌株を新規なロドコッカス ｓｐ．ＦＪ１１１７ＹＴ株と同定し、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５として寄託した。
【実施例３】
【００４３】
ＪＵＮ７株の単離
発明者らは、以下の様にして、本発明に係わる新規メチルチオ化トリアジン分解菌バシラス セレウス ＪＵＮ７株を単離した。日本各地の１４地点で採取した土壌を０．１ｇずつ、滅菌済生理食塩水１０ｍｌに分散させ、懸濁液とした。あらかじめシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む１／１０ＬＢ培地を６ｍｌずつ分注しておいたＬ字管に、この懸濁液０．５ｍｌを接種した。同様にして、１種の土壌に付き２本のＬ字管を用意し、これらのＬ字管を２６℃にて振とう培養を行った。１／１０ＬＢ培地の組成は次の表４の通りである。
【００４４】
【表４】
【００４５】
培養中、培養液を経日的にサンプリングし、遠心して菌体などの浮遊物を除いた後にＨＰＬＣを用いてシメトリン濃度を求めた。その結果、供試した土壌の中で土壌ＪＵＮの懸濁液を加えたＬ字管のうちの一本において、シメトリン濃度の低下が認められた。そこでこのＬ字管から培養液０．１ｍｌを採取して、シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む滅菌済１／１０ＬＢ培地に接種し、これを２６℃にて振とう培養して、経日的に培養液中のシメトリンの濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図５に示す。図５のグラフの縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図５で認められるように、培養期間中、対照のＬ字管では培養液中のシメトリン濃度が変化しなかった一方で、培養液を接種したＬ字管では培養液中のシメトリン濃度の低下が認められた。
【００４６】
そこで図５で培養液中のシメトリン濃度の低下が認められたＬ字管の培養液からのシメトリン分解菌の単離を試みた。まず、この培養液を滅菌水で適宜希釈し、１／１０ＬＢ寒天培地（表４の１／１０ＬＢ培地に寒天を１．２％添加したもの）に塗布して３０℃にて２日間培養した。出現したコロニーから外観を基準に９株を選択し、それぞれシメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む滅菌済１／１０ＬＢ培地に接種し、これを２６℃にて振とう培養して、経日的に培養液中のシメトリンの濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図６に示す。図６のグラフの縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図６で認められるように、試験した９株は、培養液中のシメトリン濃度が対照とほとんど変わらない５株（図６のＡ）、若干シメトリン濃度が低下した１株（図６のＢ）及びシメトリン濃度が顕著に低下した３株（図６のＣ）の３群に分けられた。
次に図６で培養液中シメトリン濃度を顕著に低下させた３株（図６のＣ）の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列を実施例２に記した手順に従って決定した。その結果、各株につき４８５塩基の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列が決定され、３株間でその全てが一致したことから、これらは同一の菌種と判断された。この新規メチルチオ化トリアジン分解菌株をＪＵＮ７株と命名した。
【実施例４】
【００４７】
ＪＵＮ７株の菌学的検討
実施例３にて単離したＪＵＮ７株の菌学的位置付けを行うために、ＪＵＮ７株の形態的性質、培地における生育の様相、生理学的性質、生化学的性状についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて分析を行った。その結果、次の菌学的性質が認められた。
Ａ．形態的性質（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃）
（１） 細胞形態 ：桿菌
（２） 大きさ ：１．０μｍ×２．０〜３．０μｍ（培養２４時間後）
（３） 胞子 ：有り
（４） 運動性 ：有り
【００４８】
Ｂ．コロニー形態（使用培地：Ｏｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ、
培養温度：３０℃、培養時間：２４時間）
（１） コロニー直径 ：２．０〜３．０ｍｍ
（２） 色調 ：クリーム色
（３） 形 ：円形
（４） 隆起状態 ：扁平
（５） 周縁 ：波状
（６） 表面の形状 ：ラフ
（７） 透明度 ：不透明
（８） 粘稠度 ：バター様
【００４９】
Ｃ．生理学的性質
（１） グラム染色 ： ＋
（２） ３７℃における生育 ： ＋
（３） ４５℃における生育 ： −
（４） カタラーゼ ： ＋
（５） オキシダーゼ ： −
（６） グルコースからの酸／ガス産生 ： −／−
（７） Ｏ／Ｆテスト ： −／−
【００５０】
Ｄ．生化学的性状試験（ビオメリュー製ＡＰＩ ５０ＣＨＢによる）
（１） グリセロール資化性 ： ＋
（２） エリスリトール資化性 ： −
（３） Ｄ−アラビノース資化性 ： −
（４） Ｌ−アラビノース資化性 ： −
（５） リボース資化性 ： ＋
（６） Ｄ−キシロース資化性 ： −
（７） Ｌ−キシロース資化性 ： −
（８） アドニトール資化性 ： −
（９） β−メチル−Ｄ−キシロース資化性 ： −
（１０） ガラクト−ス資化性 ： −
（１１） グルコース資化性 ： ＋
（１２） フラクトース資化性 ： ＋
（１３） マンノース資化性 ： −
（１４） ソルボース資化性 ： −
（１５） ラムノース資化性 ： −
（１６） ズルシトール資化性 ： −
（１７） イノシトール資化性 ： −
（１８） マンニトール資化性 ： −
（１９） ソルビトール資化性 ： −
（２０） α−メチル−Ｄ−マンノース資化性 ： −
（２１） α−メチル−Ｄ−グルコース資化性 ： −
（２２） Ｎ−アセチルグルコサミン資化性 ： ＋
（２３） アミグダリン資化性 ： −
（２４） アルブチン資化性 ： ＋
（２５） エスクリン資化性 ： ＋
（２６） サリシン資化性 ： ＋
（２７） セロビオース資化性 ： −
（２８） マルトース資化性 ： ＋
（２９） 乳糖資化性 ： −
（３０） メリビオース資化性 ： −
【００５１】
（３１） 白糖資化性 ： −
（３２） トレハロース資化性 ： ＋
（３３） イヌリン資化性 ： −
（３４） メレチトース資化性 ： −
（３５） ラフィノース資化性 ： −
（３６） 澱粉資化性 ： ＋
（３７） グリコーゲン資化性 ： ＋
（３８） キシリトール資化性 ： −
（３９） ゲンチオビオース資化性 ： −
（４０） Ｄ−ツラノース資化性 ： −
（４１） Ｄ−リキソース資化性 ： −
（４２） Ｄ−タガトース資化性 ： −
（４３） Ｄ−フコース資化性 ： −
（４４） Ｌ−フコース資化性 ： −
（４５） Ｄ−アラビトール資化性 ： −
（４６） Ｌ−アラビトール資化性 ： −
（４７） グルコネート資化性 ： −
（４８） ２−ケトグルコン酸資化性 ： −
（４９） ５−ケトグルコン酸資化性 ： −
（５０） β−ガラクトシダーゼ ： −
（５１） アルギニンジヒドロラーゼ ： −
（５２） リシンデカルボキシラーゼ ： −
（５３） オルニチンデカルボキシラーゼ ： −
（５４） クエン酸の利用性 ： −
（５５） 硫化水素産生 ： −
（５６） ウレアーゼ ： −
（５７） トリプトファンデアミナーゼ ： −
（５８） インドール産生 ： −
（５９） アセトイン産生 ： −
（６０） ゼラチナーゼ ： ＋
（６１） 硝酸塩還元 ： ＋
【００５２】
形態的性質、培地における生育の様相及び生理学的性質の試験結果をバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＪＵＮ７株はバシラス属細菌に代表される好気的に生育可能な有芽胞桿菌と考えられた。さらに生化学的性状試験では、バシラス属の中でもバシラス セレウスグループに属する細菌と類似の性状を示した。そこで次に溶血性、結晶封入体確認及びレシチナーゼ活性についてエヌシーアイエムビー・ジャパンにて追加試験を行った。
Ｅ．溶血性試験
ＪＵＮ７株をＯｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒにヒツジ血液を５％の割合で混合した５％羊血液寒天平板培地に植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、生育したコロニー周辺には透明帯が形成されたことから、溶血性陽性と判定された。
Ｆ．結晶封入体確認
ＪＵＮ７株をＯｘｏｉｄ製ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒに植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、光学顕微鏡ＢＸ５０Ｆ４（オリンパス製）で菌体を観察したところ、細胞内に結晶封入体は確認されなかった。
Ｇ．レシチナーゼ活性
ＪＵＮ７株を無菌卵黄液（アテクト製）を１０％の割合で混合したＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ製Ｈｅａｒｔ Ｉｎｆｕｓｉｏｎ Ａｇａｒに植菌し、３０℃にて培養した。２４時間後、生育したコロニー周辺には混濁帯が形成されたことから、レシチナーゼ活性陽性と判定された。
以上の追加試験の結果を医学細菌同定の手引き第３版（１９９３）及びバージーのマニュアル（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.2(1984)）に従って同定を行ったところ、本発明のＪＵＮ７株はバシラス セレウスグループに属する細菌と考えられた。
【００５３】
また、実施例２に記した手順に従ってＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列、１，４６０塩基を決定した。その塩基配列を配列表の配列番号２に示す。実施例２と同様に、配列番号２に示したＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の部分塩基配列と、ＤＮＡ塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ）に登録された他の微生物の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の配列をＦＡＳＴＡ法により相同性比較を行った。その結果、ＪＵＮ７株はバシラス セレウスグループに属する多くの細菌と高い相同性を示した。（例えばバシラス セレウス ＡＴＣＣ５３５２２株、及びバシラス チューリンゲーンシス ＡＴＣＣ１０７９２株とは１００．０％の相同性、バシラス マイコイデス ＡＴＣＣ６４６２株とは９９．３％の相同性を示した。）
以上の結果から、発明者らは本菌株を新規なバシラス セレウスＪＵＮ７株と同定した。本菌株は独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４として寄託した。
【実施例５】
【００５４】
ＪＵＮ７株によるシメトリンに及ぼす培地ｐＨの影響
ＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を検討した。シメトリンを５ｍｇ／Ｌ含む１／１０ＬＢ培地を用意し、塩酸溶液及び水酸化ナトリウム溶液でｐＨを調整後滅菌した。この方法で滅菌後ｐＨが４、５、６、７、７．６、９、又は１０の培地を作製した。これらのｐＨ調整済培地をＬ字管に６ｍｌずつ分注し、１／１０ＬＢ培地にて前培養したＪＵＮ７株を０．１ｍｌ植菌した。Ｌ字管は２６℃にて振とう培養し、培養液中のシメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図７に示す。
図７のグラフの左縦軸は培養液中のシメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、右縦軸は培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図７の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のシメトリン濃度を示す。また図７の黒四角印（■）は対照のＬ字管における培養液の６６０ｎｍでの濁度を示し、白四角印（□）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管の培養液の６６０ｎｍでの濁度を示す。
図７のＡ及びＢで明らかな様に、培地の初期ｐＨを４とした場合、ＪＵＮ７株の生育は極めて僅かで、シメトリンをほとんど分解することができなかった。培地の初期ｐＨを５とした場合、ＪＵＮ７株は培養後期に僅かに生育し、シメトリンを若干分解した。培地の初期ｐＨを６、７、７．６、９、又は１０とした場合、ＪＵＮ７株は旺盛に生育し、シメトリンをよく分解した。一方、ＪＵＮ７を植菌していない対照ではいずれのｐＨでも培地中シメトリン濃度の低下は認められなかった。以上の結果から、ＪＵＮ７株のシメトリン分解能は培地の初期ｐＨが５以上、望ましくは６以上で機能し、ｐＨ１０でも十分な機能を保つことが判明した。
【実施例６】
【００５５】
ＪＵＮ７株による他のメチルチオ化トリアジンの分解
ＪＵＮ７株を用いて、シメトリン以外のメチルチオ化トリアジン系化合物について分解能を検討した。ここでは対象化合物として、ジメタメトリン及びプロメトリンを供試した。ジメタメトリンあるいはプロメトリンを５ｍｇ／Ｌの割合で含む滅菌済１／１０ＬＢ培地を用意した。これらをＬ字管に６ｍｌずつ分注し、１／１０ＬＢ寒天培地にて前培養したＪＵＮ７株を植菌した。Ｌ字管は２６℃にて振とう培養し、培養液中のジメタメトリン及びプロメトリン濃度を経日的にＨＰＬＣを用いて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。その結果を図８及び図９に示す。
図８のグラフの縦軸は培養液中のジメタメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図８の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のジメタメトリン濃度を示す。
図９のグラフの縦軸は培養液中のプロメトリン濃度（ｍｇ／Ｌ）を示し、横軸は培養時間（日）を示す。図９の黒丸印（●）は対照のＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示し、白丸印（○）はＪＵＮ７株を植菌したＬ字管における培養液中のプロメトリン濃度を示す。
図８及び図９で示される様に、ＪＵＮ７株はジメタメトリンとプロメトリンも分解できることが明らかとなった。以上のことから、ＪＵＮ７株はシメトリン及びジメタメトリン、プロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジン、好ましくはメチルチオ化ｓ−トリアジンの分解が可能であると考えられた。
【実施例７】
【００５６】
ＦＪ１１１７ＹＴ株による他のメチルチオ化トリアジンの分解。
ＦＪ１１１７ＹＴ株を用いて、シメトリン以外のメチルチオ化トリアジンの分解が可能であるか検討した。ここでは対象化合物として、アメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンを供試した。いずれかの農薬を３〜７ｍｇ／Ｌの割合で含む滅菌済１／１０ＬＢ培地をそれぞれ用意し、これらをＬ字管に９ｍｌずつ分注後、Ｒ２Ａ寒天培地にて前培養したＦＪ１１１７ＹＴ株を植菌した。Ｌ字管は２０℃にて振とう培養し、２５日後に培養液中のアメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリン濃度をＨＰＬＣにて測定した。培養液を接種しないＬ字管も同様に操作し、対照とした。培養液中の農薬濃度を、対照を１とした場合の相対濃度として、この結果を次の表５に示す。
【００５７】
【表５】
【００５８】
この結果、表５で示される様に、ＦＪ１１１７ＹＴ株は、アメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンのいずれのメチルチオ化トリアジン系化合物も分解できることが明らかとなった。以上のことから、ＦＪ１１１７ＹＴ株はアメトリン、デスメトリン、ジメタメトリン、メトリブジン及びプロメトリンを含む全てのメチルチオ化トリアジンの分解が可能であると考えられた。
【産業上の利用可能性】
【００５９】
本発明は、農薬などとして多用されているメチルチオ化トリアジン系化合物を分解する新規な細菌、それを含有してなる組成物、細菌及びそれを用いたメチルチオ化トリアジン系化合物を分解する方法を提供するものであり、廃棄農薬や環境中に残留している過剰のメチルチオ化トリアジン系化合物を分解して無害化し、環境の浄化に寄与するものであり、残留物を除去してきれいな土壌や水を提供することを可能とするものであり、産業上の利用可能性を有する。
【図面の簡単な説明】
【００６０】
【図１】図１は、本発明の分解菌を集積するために用いた装置の模式図である。
【図２】図２は、図１に示した装置における、Ａ〜Ｄの各装置の還流液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図３】図３は、実施例１における装置Ｃの還流液を接種したＬ字管の培養液（白丸印（○））中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図４】図４は、本発明の分解菌ＦＪ１１１７ＹＴ株のシメトリン分解を示すグラフである。
【図５】図５は、実験例３における土壌ＪＵＮを添加したＬ字管の培養液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図６】図６は、実験例３における単離した各コロニーを接種したＬ字管の培養液中のシメトリン濃度変化を示すグラフである。
【図７】図７は、本発明のＪＵＮ７株のシメトリン分解に及ぼす培地ｐＨの影響を示すグラフである。
【図８】図８は、本発明のＪＵＮ７株のジメタメトリン分解を示すグラフである。
【図９】図９は、本発明のＪＵＮ７株のプロメトリン分解を示すグラフである。
【配列表フリーテキスト】
【００６１】
配列番号１：本発明の分解菌ＦＪ１１１７ＹＴ株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の１４５０塩基。
配列番号２：本発明の分解菌ＪＵＮ７株の１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子の１４６０塩基。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ロドコッカス属の細菌であって、メチルチオ化トリアジン系化合物の少なくとも１種の化合物の分解能を有することを特徴とするロドコッカス属の細菌。
【請求項２】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリンである請求項１に記載の細菌。
【請求項３】
ロドコッカス属の細菌が、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５）である請求項１又は２に記載の細菌。
【請求項４】
バシラス属の細菌であって、メチルチオ化トリアジン系化合物の少なくとも１種の化合物の分解能を有することを特徴とするバシラス属の細菌。
【請求項５】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリン、ジメタメトリン、又はプロメトリンの少なくとも１種である請求項４に記載の細菌。
【請求項６】
バシラス属の細菌が、バシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌である請求項４又は５に記載の細菌。
【請求項７】
バシラス属の細菌が、バシラス セレウス ＪＵＮ７株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４）である請求項４〜６のいずれかに記載の細菌。
【請求項８】
請求項１〜７の何れか１項に記載の細菌によってメチルチオ化トリアジンを分解することを特徴とするメチルチオ化トリアジンの分解法。
【請求項９】
メチルチオ化トリアジンがシメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１０】
メチルチオ化トリアジンがジメタメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１１】
メチルチオ化トリアジンがプロメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１２】
請求項１〜７のいずれか１項に記載の細菌の少なくとも１種、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物。
【請求項１３】
細菌が、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株又はバシラス セレウス ＪＵＮ７株の少なくとも１種である請求項１２に記載の組成物。
【請求項１４】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種である請求項１２又は１３に記載の組成物。
【請求項１】
ロドコッカス属の細菌であって、メチルチオ化トリアジン系化合物の少なくとも１種の化合物の分解能を有することを特徴とするロドコッカス属の細菌。
【請求項２】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリンである請求項１に記載の細菌。
【請求項３】
ロドコッカス属の細菌が、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３５）である請求項１又は２に記載の細菌。
【請求項４】
バシラス属の細菌であって、メチルチオ化トリアジン系化合物の少なくとも１種の化合物の分解能を有することを特徴とするバシラス属の細菌。
【請求項５】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリン、ジメタメトリン、又はプロメトリンの少なくとも１種である請求項４に記載の細菌。
【請求項６】
バシラス属の細菌が、バシラス属セレウス、バシラス属チューリンゲーンシス、及びバシラス属マイコイデスのいずれかに属する細菌である請求項４又は５に記載の細菌。
【請求項７】
バシラス属の細菌が、バシラス セレウス ＪＵＮ７株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２０５３４）である請求項４〜６のいずれかに記載の細菌。
【請求項８】
請求項１〜７の何れか１項に記載の細菌によってメチルチオ化トリアジンを分解することを特徴とするメチルチオ化トリアジンの分解法。
【請求項９】
メチルチオ化トリアジンがシメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１０】
メチルチオ化トリアジンがジメタメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１１】
メチルチオ化トリアジンがプロメトリンである請求項８に記載の分解法。
【請求項１２】
請求項１〜７のいずれか１項に記載の細菌の少なくとも１種、及び当該細菌の生育が許容される担体を含有してなるメチルチオ化トリアジン系化合物を分解するための組成物。
【請求項１３】
細菌が、ロドコッカス ｓｐ． ＦＪ１１１７ＹＴ株又はバシラス セレウス ＪＵＮ７株の少なくとも１種である請求項１２に記載の組成物。
【請求項１４】
メチルチオ化トリアジン系化合物が、シメトリン、ジメタメトリン、プロメトリン、アメトリン、デスメトリン、及びメトリブジンからなる群から選ばれる少なくとも１種である請求項１２又は１３に記載の組成物。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【公開番号】特開２００７−６７１４（Ｐ２００７−６７１４Ａ）
【公開日】平成１９年１月１８日（２００７．１．１８）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−１８７９９７（Ｐ２００５−１８７９９７）
【出願日】平成１７年６月２８日（２００５．６．２８）
【出願人】（５０１２４５４１４）独立行政法人農業環境技術研究所 (60)
【出願人】（０００１６３００６）興和株式会社 (618)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１９年１月１８日（２００７．１．１８）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年６月２８日（２００５．６．２８）
【出願人】（５０１２４５４１４）独立行政法人農業環境技術研究所 (60)
【出願人】（０００１６３００６）興和株式会社 (618)
【Ｆターム（参考）】
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