Ｌｒｐ４／Ｃｏｒｉｎドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカー
神経細胞移植治療においては、安全性の面では目的の細胞種のみからなる細胞群、そして腫瘍形成の危険性を考慮すれば分裂停止後の神経細胞が好ましいと考えられる。さらに、移植先での生存、正しいネットワーク形成能等を考慮するとより早期の前駆細胞により治療効果が増大されると期待される。
本発明により、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的に発現する遺伝子Ｌｒｐ４が同定された。細胞における該Ｌｒｐ４の発現を指標とすることにより、安全面、生存率及びネットワーク形成能の面でもパーキンソン病を含む神経変性疾患に対する移植治療に適した細胞を選択することが可能となる。
本発明により、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的に発現する遺伝子Ｌｒｐ４が同定された。細胞における該Ｌｒｐ４の発現を指標とすることにより、安全面、生存率及びネットワーク形成能の面でもパーキンソン病を含む神経変性疾患に対する移植治療に適した細胞を選択することが可能となる。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）において発現している遺伝子としてＬｒｐ４を同定した。該遺伝子の発現、または該遺伝子によりコードされる膜貫通蛋白質の発現を検出することにより、パーキンソン病（ＰＤ）等の神経変性疾患の移植治療において用いることができるドーパミン産生ニューロン前駆細胞を効率的に分離することができる。
【背景技術】
ドーパミン系は、哺乳動物の脳において重要な運動調節、ホルモン分泌調節、情動調節等に関与する非常に重要な系である。従って、ドーパミン作動性神経伝達における異常は、様々な神経系の障害を引き起こす。例えば、パーキンソン病（ＰＤ）は、中脳黒質のドーパミン産生ニューロンの特異的な脱落が原因で起こる錐体外路系の神経変性疾患である（ＨＡＲＲＩＳＯＮ’Ｓ ＰＲＩＮＣＩＰＬＥＳ ＯＦ ＩＮＴＥＲＮＡＬ ＭＥＤＩＣＩＮＥ 第２巻 第２３版，Ｉｓｓｅｌｂａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．編，ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ Ｉｎｃ．，ＮＹ（１９９４）ｐｐ．２２７５−７）。パーキンソン病の治療法としては、産生されるドーパミン量の低下を補うためにＬ−ＤＯＰＡ（３，４−ジヒドロキシフェニルアラニン）を経口投与する方法が主に採られているが、効果の持続性が良くないことが知られている。
パーキンソン病治療において、最近では失われたドーパミン産生ニューロンを補うために、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含む６〜９週齢の中絶胎児の中脳腹側領域を移植する治療法も試みられている（米国特許第５６９０９２７号；Ｓｐｅｎｃｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５４１−８；Ｆｒｅｅｄ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５４９−５５；Ｗｉｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５５６−６３；Ｋｏｒｄｏｗｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３３２：１１１８−２４；Ｄｅｆｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｂｒａｉｎ １１９：４１−５０；Ｌｏｐｅｚ−Ｌｏｚａｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｔｒａｎｓｐ．Ｐｒｏｃ．２９：９７７−８０）。しかし、現在のところ、この方法では細胞の供給面、倫理面（Ｒｏｓｅｎｓｔａｉｎ（１９９５）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．３３：１０６；Ｔｕｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．３３：１０３１−７）で問題があると共に、感染汚染の危険性、免疫学的な移植片拒絶（Ｌｏｐｅｚ−Ｌｏｚａｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｔｒａｎｓｐ．Ｐｒｏｃ．２９：９７７−８０；Ｗｉｄｎｅｒ ａｎｄ Ｂｒｕｄｉｎ（１９８８）Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．Ｒｅｖ．１３：２８７−３２４）、胎児組織が糖分解よりも脂質代謝に主に依存しているための生存率の低さ（Ｒｏｓｅｎｓｔｅｉｎ（１９９５）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．３３：１０６）等の様々な面で問題が指摘されている。
倫理面や供給不足の問題を解決するために、例えばブタ由来の皮質、線条、及び中脳細胞を用いる方法も提案されている（例えば、特表平１０−５０８４８７号公報；特表平１０−５０８４８８号公報；特表平１０−５０９０３４号公報参照）。この方法においては、拒絶反応を抑制するため、細胞表面上の抗原（ＭＨＣクラスＩ抗原）を改変するという煩雑な操作が必要とされる。移植片拒絶を解消する方法としては、例えば、セルトーリ細胞を同時に移植することにより、局在的に免疫抑制する方法も提案されている（特表平１１−５０９１７０号公報；特表平１１−５０１８１８号公報；Ｓｅｌａｗｒｙ ａｎｄ Ｃａｍｅｒｏｎ（１９９３）Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ ２：１２３−９）。ＭＨＣがマッチする血縁者、他人の骨髄、骨髄バンク、及び臍帯血バンク等から移植細胞を得ることも可能であるが、患者自身の細胞を用いることができれば、余計な操作や手間なしに拒絶反応の問題も解決することができる。
そこで、中絶胎児由来の細胞に代えて、胚性幹細胞（ＥＳ）細胞、骨髄間質細胞などの非神経系細胞からのｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるドーパミン産生ニューロンの分化系の移植材料としての利用が有望視されている。実際、ラットパーキンソン病モデルの病変線条へのＥＳ細胞移植により機能的なドーパミン産生ニューロンが形成されたとの報告もある（Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ（２００２）Ｎａｔｕｒｅ ４１８：５０−５６）。将来的にはＥＳ細胞若しくは患者本人の持つ神経幹細胞からの再生治療の重要性が増してくるものと思われる。
神経組織の損傷の治療においては脳機能の再構築が必要となり、周囲の細胞と適切なリンクを形成する（ネットワーク形成）ために成熟した細胞ではなくニューロンへとｉｎ ｖｉｖｏにおいて分化し得る細胞を移植する必要がある。ニューロン前駆細胞の移植において上述した供給面以外で問題となるのは、前駆細胞が不均一な細胞集団へと分化する可能性がある点である。例えば、パーキンソン病の治療においては、カテコールアミン含有ニューロンの中でもドーパミン産生ニューロンを選択的に移植することが必要である。これまで、パーキンソン病の治療に用いることが提案されている移植細胞としては、線条体（Ｌｉｎｄｖａｌｌ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ａｒｃｈ．Ｎｅｕｒｏｌ．４６：６１５−３１；Ｗｉｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５５６−６３）、ヒト胎児神経由来の不死化セルライン（特表平８−５０９２１５号公報；特表平１１−５０６９３０号公報；特表２００２−５２２０７０号公報）、ＮＴ２Ｚ細胞の有糸分裂後ヒトニューロン（特表平９−５０５０５５４号公報）、ニューロン始原細胞（特表平１１−５０９７２９号公報）、ドパミン等のカテコールアミンを産生するように外来遺伝子によりトランスフェクトされた細胞、骨髄ストロマ細胞（特表２００２−５０４５０３号公報；特表２００２−５１３５４５号公報）、遺伝子改変されたＥＳ細胞（Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ（２００２）Ｎａｔｕｒｅ ４１８：５０−５６）等が挙げられる。しかしながらいずれも、ドーパミン産生ニューロンまたはドーパミン産生ニューロンへと分化する細胞のみを含むものではない。
未分化な細胞集団からドーパミン産生ニューロンを選択的に濃縮・分離する方法としては、ドーパミン産生ニューロンで発現するチロシンハイドロキシラーゼ（ＴＨ）等の遺伝子のプロモーター／エンハンサーの制御下で蛍光蛋白質を発現するレポーター遺伝子を細胞集団の各細胞に導入し、蛍光を発する細胞を分離することにより、ドーパミン産生ニューロンを生きたまま可視化して濃縮・分離、または同定する方法（特開２００２−５１７７５号公報）が提案されている。この方法は、外来遺伝子の導入という煩雑な工程を不可欠とするものであり、さらに、遺伝子治療に用いることを目的とする場合、レポーター遺伝子の存在は毒性、免疫原性の面からも問題である。
【発明の開示】
現時点でのＰＤ移植治療における大きな問題の一つは、中絶胎児の中脳腹側領域あるいはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導したドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、いずれも多種の細胞の混合物である点である。神経回路形成における安全性を考えると、目的の細胞種のみを分離してから用いるのが望ましい。また、腫瘍形成の危険性を考慮すれば、分裂停止後の神経細胞を分離してから使用することが良いと考えられる。さらに、細胞の移植先の脳内での生存や、正しくネットワーク形成する能力を考えると、より早期の前駆細胞を分離することにより治療効果を増大させ得ると期待される。そこで、本発明者は、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子の単離を試みた。そして既に、分裂停止直後の神経前駆細胞で一過性に発現する遺伝子の一つとして、新規遺伝子６５Ｂ１３の単離に成功し、特許出願した（特願２００２−３０７５７３号）。
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子を単離するために、Ｅ１２．５マウス中脳腹側領域を背腹方向にさらに２つの領域に切り分けて、ドーパミン産生ニューロンを含む最も腹側の領域に特異的に発現する遺伝子をサブトラクション法（Ｎ−ＲＤＡ；ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ法；ＲＤＡ法（Ｌｉｓｔｓｙｎ ＮＡ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７）を改良（「ＤＮＡ断片の量の均一化方法及びサブストラクション法」特願２００１−１８４７５７（出願日２００１／６／１９））により同定した。単離した断片の一つはＬｒｐ４／ＣｏｒｉｎをコードするｃＤＮＡ断片であった。Ｌｒｐ４はＩＩ型膜貫通蛋白質をコードしている（図１）。
ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析の結果、Ｌｒｐ４は中脳ではドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的に発現すると考えられた（図４及び５）。Ｌｒｐ４は胎生期から成人期にかけての心臓に発現しており、血圧調整ホルモンである心房性ナトリウム利尿ペプチド（ＡＮＰ）の切断を行うと考えられているＩＩ型膜貫通プロテアーゼである。ＡＮＰは前駆型であるｐｒｏ−ＡＮＰの状態で発現し、細胞外に分泌された後にＬｒｐ４より細胞膜表面上で切断され、活性型ＡＮＰとなると考えられている。これまで、増殖中のドーパミン産生ニューロン前駆細胞で特異的に発現する膜蛋白質をコードする遺伝子は報告されていない。細胞膜表面に発現するＬｒｐ４蛋白質に対する抗体は、Ｌｒｐ４発現細胞の分離に非常に効果的であると考えられる。例えば、抗Ｌｒｐ４抗体を用いて、中脳腹側領域またはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導したドーパミン産生ニューロンを含む培養細胞から、Ｌｒｐ４発現細胞を分離することで、純粋なドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることができる（図６）。
さらに、該前駆細胞をそのまま、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させた後に移植することも可能である。本発明の前駆細胞は脳内の最適な場所で分化成熟していく可能性やｉｎ ｖｉｖｏでさらに前駆細胞が増殖する可能性もあり、長期的な治療効果が期待できる。また、Ｌｒｐ４発現細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで分化、成熟させた後に移植を行えば、ｉｎ ｖｉｖｏで何らかの理由でドーパミン産生ニューロンへの分化が行われない場合にも、治療効果が期待できる。腫瘍化等の危険性を考慮すれば、ｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させたＬｒｐ４発現細胞を分化誘導した後に、６５Ｂ１３等の分裂停止後のニューロンマーカーを用いて分離した細胞を移植すればより高い安全性が期待できる。いずれの方法でもＬｒｐ４発現細胞を分離して移植治療に用いることで、目的の細胞種のみを分離しているので安全性が高く、また、最も初期の前駆細胞を用いることができるため、生存率やネットワーク形成能等の面でも高い治療効果が期待される。分離直後の初期の前駆細胞で最高の治療効果を得られない場合があったとしても、本発明のマーカーにより分離される前駆細胞はｉｎ ｖｉｔｒｏで培養する等して成熟させることもできるため、最適な分化段階の材料を調製することを可能にする（図６）。
一方、純粋なドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることは、ドーパミン産生ニューロンに特異的な遺伝子の単離等、パーキンソン病治療のターゲット探索にも有効である。特に増殖前駆細胞を得られるということは、ドーパミン産生ニューロンの成熟過程の研究や、成熟を指標にしたスクリーニング系だけでなく、前駆細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで増殖させる薬剤のスクリーニングや、ｉｎ ｖｉｖｏで前駆細胞から分化を誘導する薬剤（ｉｎ ｖｉｖｏでの再生治療薬剤）のスクリーニング等にも有用である。
より具体的には、本発明は
［１］ 以下の（１）〜（５）の塩基配列から選択される配列を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブ、
（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列
（５）上記（１）〜（４）の配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列
［２］ 以下の（１）〜（６）から選択されるポリペプチドに対する抗体、
（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド
（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド
（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド
（６）上記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチド
［３］ ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、上記［１］記載のポリヌクレオチドとドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法、
［４］ ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、上記［２］記載の抗体とドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法、
［５］ 以下の工程を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法、
（１）上記［３］または［４］記載のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法によりドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する工程
（２）上記（１）において選択された前駆細胞を培養する工程
（３）上記（２）において培養された前駆細胞を、分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングする工程
［６］ 上記［３］〜［５］記載の方法により選択された分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞、
［７］ ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離方法であって、上記［６］記載の前駆細胞または該前駆細胞から分化、誘導若しくは増殖された細胞を用い、該細胞において特異的に発現している遺伝子を検出、単離する工程を含む方法、並びに
［８］ 成熟を指標としたスクリーニング方法であり、上記［６］記載の前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む方法、
に関する。
＜マーカーポリヌクレオチドプローブ＞
本発明のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブは、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択及び／または検出するマーカーとして使用されるものである。該プローブとして使用されるポリヌクレオチドは、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列を含むものである。配列番号：１はマウスＬｒｐ４ ｃＤＮＡの塩基配列、そして配列番号：２はヒトＬｒｐ４ ｃＤＮＡの塩基配列であり、それぞれＧｅｎＢａｎｋに登録された配列である（マウス：Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿０１６８６９；ヒト：Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＸＭ＿０３５０３７）。
ここで、「マーカーポリヌクレオチドプローブ」とは、Ｌｒｐ４の発現、特に転写されたｍＲＮＡを検出することができればよく、複数のデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはリボ核酸（ＲＮＡ）等の塩基または塩基対からなる重合体を指す。二本鎖ｃＤＮＡも組織ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションでプローブとして利用可能であることが知られており、本発明のマーカーにはそのような二本鎖ｃＤＮＡも含まれる。組織中のＲＮＡの検出において特に好ましいプローブとなるマーカーポリヌクレオチドプローブとしては、ＲＮＡプローブ（リボプローブ）を挙げることができる。また、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、天然以外の塩基、例えば、４−アセチルシチジン、５−（カルボキシヒドロキシメチル）ウリジン、２’−０−メチルシチジン、５−カルボキシメチルアミノメチル−２−チオウリジン、５−カルボキシメチルアミノメチルウリジン、ジヒドロウリジン、２’−０−メチルプソイドウリジン、β−Ｄ−ガラクトシルキュェオシン、２’−０−メチルグアノシン、イノシン、Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、１−メチルアデノシン、１−メチルプソイドウリジン、１−メチルグアノシン、１−メチルイノシン、２，２−ジメチルグアノシン、２−メチルアデノシン、２−メチルグアノシン、３−メチルシチジン、５−メチルシチジン、Ｎ６−メチルアデノシン、７−メチルグアノシン、５−メチルアミノメチルウリジン、５−メトキシアミノメチル−２−チオウリジン、β−Ｄ−マンノシルキュェオシン、５−メトキシカルボニルメチル−２−チオウリジン、５−メトキシカルボニルメチルウリジン、５−メトキシウリジン、２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシル−２−メチルリオプリン−６−イル）カルバモイル）トレオニン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）Ｎ−メチルカルバモイル）トレオニン、ウリジン−５−オキシ酢酸−メチルエステル、ウリジン−５オキシ酢酸、ワイブトキソシン、プソイドウリジン、キュェオシン、２−チオシチジン、５−メチル−２−チオウリジン、２−チオウリジン、４−チオウリジン、５−メチルウリジン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）カルバモイル）トレオニン、２’−０−メチル−５−メチルウリジン、２’−０−メチルウリジン、ワイブトシン、３−（３−アミノ−３−カルボキシプロピル）ウリジン等を必要に応じて含んでいてもよい。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に特異的に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列を含む。配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列は、配列番号：１または２に記載された塩基配列に加えて、遺伝子暗号の縮重により配列番号：１または２記載の配列とは異なる塩基配列を含むものである。本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブはまた、配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において、膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に対して相補的な配列を含むものを包含する。配列番号：３または４記載のアミノ酸配列中、シグナル配列は存在せず、マウスＬｒｐ４（配列番号：３）では１１３−１３５アミノ酸残基、ヒトＬｒｐ４（配列番号：４）では４６−６８アミノ酸残基の部分が膜貫通領域を形成している。なお、配列番号：３及び４に記載の配列も各々ＧｅｎＢａｎｋに登録されている。
ここで、或る「塩基配列に対して相補的」とは、塩基配列が鋳型に対して完全に対になっている場合のみならず、そのうちの少なくとも７０％、好ましくは８０％、より好ましくは９０％、さらに好ましくは９５％以上（例えば、９７％または９９％）が対になっているものも含む。対になっているとは、鋳型となるポリヌクレオチドの塩基配列中のＡに対しＴ（ＲＮＡの場合はＵ）、ＴまたはＵに対しＡ、Ｃに対しＧ、そしてＧに対しＣが対応して鎖が形成されていることを意味する。そして或るポリヌクレオチド同士の塩基配列レベルでの相同性は、ＢＬＡＳＴアルゴリズム（Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−８；Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：５８７３−７）によって決定することができる。このアルゴリズムに基づいた塩基配列についてのプログラムとして、ＢＬＡＳＴＮ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０）が開発されており、マーカーポリヌクレオチドプローブ配列の相同性の決定に使用することができる。具体的な解析方法については、例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ．等を参照することができる。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブには、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に特異的に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むポリヌクレオチドが包含される。Ｌｒｐ４については配列番号：１または２で示される塩基配列を有するものが公知であるが、そのアルタナティブアイソフォーム、及びアレリック変異体が存在する可能性があり、そのようなアイソフォームやアレリック変異体に相補的な配列を有するものも本発明のマーカーポリペプチドとして利用することができる。このようなアイソフォーム及びアレリック変異体は、配列番号：１または２の塩基配列を含むポリヌクレオチドをプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション、プラークハイブリダイゼーション、サザンブロット等の公知のハイブリダイゼーション法により、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、ニワトリ、ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の動物のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーから得ることができる。ｃＤＮＡライブラリーの作成方法については、『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））を参照することができる。また、市販のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーを利用してもよい。
より具体的に、ｃＤＮＡライブラリーの作製においては、まず、Ｌｒｐ４を発現する細胞、臓器、組織等からグアニジン超遠心法（Ｃｈｉｒｗｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９７９）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １８：５２９４−９）、ＡＧＰＣ法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ ａｎｄ Ｓａｃｃｈｉ（１９８７）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６２：１５６−９）等の公知の手法により全ＲＮＡを調製し、ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等を用いてｍＲＮＡを精製する。ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）のような、直接ｍＲＮＡを調製するためのキットを利用してもよい。次に得られたｍＲＮＡから逆転写酵素を用いてｃＤＮＡを合成する。ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（生化学工業）のようなｃＤＮＡ合成のためのキットも市販されている。その他の方法として、ｃＤＮＡはＰＣＲを利用した５’−ＲＡＣＥ法（Ｆｒｏｈｍａｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：８９９８−９００２；Ｂｅｌｙａｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：２９１９−３２）により合成、及び増幅させてもよい。また、全長率の高いｃＤＮＡライブラリーを作製するために、オリゴキャップ法（Ｍａｒｕｙａｍａ ａｎｄ Ｓｕｇａｎｏ（１９９４）Ｇｅｎｅ １３８：１７１−４；Ｓｕｚｕｋｉ（１９９７）Ｇｅｎｅ ２００：１４９−５６）等の公知の手法を採用することもできる。上述のようにして得られたｃＤＮＡは、適当なベクター中に組み込む。
本発明におけるハイブリダイゼーション条件としては、例えば「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、５０℃」、「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」、「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」、よりストリンジェントな条件としては、例えば「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」、「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」、「０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」等の条件を挙げることができる。より詳細には、Ｒａｐｉｄ−ｈｙｂ ｂｕｆｆｅｒ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を用いた方法として、６８℃で３０分以上プレハイブリダイゼーションを行った後、プローブを添加して１時間以上６８℃に保ってハイブリッド形成させ、その後、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、室温で２０分の洗浄を３回、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、３７℃で２０分の洗浄を３回、最後に、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、５０℃で２０分の洗浄を２回行うことも考えられる。その他、例えばＥｘｐｒｅｓｓｈｙｂ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＣＬＯＮＴＥＣＨ）中、５５℃で３０分以上プレハイブリダイゼーションを行い、標識プローブを添加し、３７〜５５℃で１時間以上インキュベートし、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、室温で２０分の洗浄を３回、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、３７℃で２０分の洗浄を１回行うこともできる。ここで、例えば、プレハイブリダイゼーション、ハイブリダイゼーションや２度目の洗浄の際の温度を上げることにより、よりストリンジェントな条件とすることができる。例えば、プレハイブリダイゼーション及びハイブリダイゼーションの温度を６０℃、さらにストリンジェントな条件としては６８℃とすることができる。当業者であれば、このようなバッファーの塩濃度、温度等の条件に加えて、その他のプローブ濃度、プローブの長さ、反応時間等の諸条件を加味し、Ｌｒｐ４のアイソフォーム、アレリック変異体、及び対応する他種生物由来の遺伝子を得るための条件を設定することができる。
ハイブリダイゼーション法の詳細な手順については、『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）；特にＳｅｃｔｉｏｎ９．４７−９．５８）、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７−１９９７）；特にＳｅｃｔｉｏｎ６．３−６．４）、『ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ １：Ｃｏｒｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（１９９５）；条件については特にＳｅｃｔｉｏｎ２．１０）等を参照することができる。ハイブリダイズするポリヌクレオチドとしては、配列番号：１または２の塩基を含む塩基配列に対して少なくとも５０％以上、好ましくは７０％、さらに好ましくは８０％、より一層好ましくは９０％（例えば、９５％以上、さらには９９％）の同一性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチドが挙げられる。このような同一性は、上述の相同性の決定と同様にＢＬＡＳＴアルゴリズム（Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−８；Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：５８７３−７）によって決定することができる。上述の塩基配列についてのプログラムＢＬＡＳＴＮの他に、このアルゴリズムに基づいたアミノ酸配列についての同一性を決定するプログラムとしてＢＬＡＳＴＸ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０）等が開発されており、利用可能である。具体的な解析方法については先に挙げたように、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ．等を参照することができる。
その他、遺伝子増幅技術（ＰＣＲ）（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ ６．１−６．４）により、Ｌｒｐ４のアイソフォームやアレリック変異体等、Ｌｒｐ４と類似した構造及び機能を有する遺伝子を、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、ニワトリ、ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の動物のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーから、配列番号：１または２に記載の塩基配列を基に設計したプライマーを利用して得ることができる。
ポリヌクレオチドの塩基配列は、慣用の方法により配列決定して確認することができる。例えば、ジデオキシヌクレオチドチェーンターミネーション法（Ｓａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９７７）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７４：５４６３）等による確認が可能である。また、適当なＤＮＡシークエンサーを利用して配列を解析することも可能である。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブには、上記（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列、（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な配列、（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域部分を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な配列、及び（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列の各塩基配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドが含まれる。
このような少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドは、Ｌｒｐ４ ｍＲＮＡの発現を検出するためのプローブ、増幅して検出を行うためのプライマーとして利用することができる。通常、プローブとして使用する場合には１５〜１００、好ましくは１５〜３５個の塩基より構成されていることが望ましく、プライマーとして使用する場合には、少なくとも１５、好ましくは３０個の塩基より構成されていることが望ましい。プライマーの場合には、３’末端側の領域を標的とする配列に対して相補的な配列に、５’末端側には制限酵素認識配列、タグ等を付加した形態に設計することができる。このような少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドは、Ｌｒｐ４ポリヌクレオチドに対してハイブリダイズすることができる。
本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、Ｌｒｐ４を発現する細胞より上述のハイブリダイゼーション法、ＰＣＲ法等により調製することができる。また、Ｌｒｐ４の公知の配列情報に基づいて、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは化学合成により製造することもできる。特に組織中のＲＮＡの検出に好ましいとされるリボプローブは、例えば、プラスミドベクターｐＳＰ６４にクローニングしたＬｒｐ４遺伝子またはその一部を逆方向に挿入し、挿入した配列部分をランオフ転写することにより得ることができる。ｐＳＰ６４はＳＰ６プロモーターを含むものであるが、その他、ファージＴ３、Ｔ７プロモーター及びＲＮＡポリメラーゼを組合せてリボプローブを作成する方法も公知である。
＜抗体＞
本発明により、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を脳組織、または培養細胞より選択するために利用することができる抗体が提供される。本発明の抗体にはポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体（ｓｃＦＶ）（Ｈｕｓｔｏｎ ｅｔ ｌａ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９−８３；Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ，ｖｏｌ．１１３，Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ ｅｄ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ（１９９４）ｐｐ．２６９−３１５）、ヒト化抗体、多特異性抗体（ＬｅＤｏｕｓｓａｌ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ Ｓｕｐｐｌ．７：５８−６２；Ｐａｕｌｕｓ（１９８５）Ｂｅｈｒｉｎｇ Ｉｎｓｔ．Ｍｉｔｔ．７８：１１８−３２；Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｃｕｅｌｌｏ（１９８３）Ｎａｔｕｒｅ ３０５：５３７−９；Ｚｉｍｍｅｒｍａｎｎ（１９８６）Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．１０５：１７６−２６０；Ｖａｎ Ｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ４３：９４４−９）、並びに、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｃ、Ｆｖ等の抗体断片が含まれる。さらに、本発明の抗体は必要に応じ、ＰＥＧ等により修飾されていてもよい。その他、本発明の抗体は、β−ガラクトシダーゼ、マルトース結合蛋白質、ＧＳＴ、緑色蛍光蛋白質（ＧＦＰ）等との融合蛋白質として製造することにより二次抗体を用いずに検出できるようにしてもよい。また、ビオチン等により抗体を標識することによりアビジン、ストレプトアビジン等を用いて抗体の回収を行い得るように改変してもよい。
本発明の抗体は、（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド、（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド、（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド、（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド、並びに（６）前記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチドのいずれかに対して特異的な抗体である。
本発明の抗体は、Ｌｒｐ４ポリペプチド若しくはその断片、またはそれらを発現する細胞を感作抗原として利用することにより製造することができる。また、Ｌｒｐ４ポリペプチドの短い断片はウシ血清アルブミン、キーホールリンペットヘモシアニン、卵白アルブミン等のキャリアに結合した形で免疫原として用いてもよい。また、Ｌｒｐ４のポリペプチドまたはその断片と共に、アルミニウムアジュバント、完全（または不完全）フロイントアジュバント、百日咳菌アジュバント等の公知のアジュバントを抗原に対する免疫応答を強化するために用いてもよい。
本発明における「Ｌｒｐ４ポリペプチド」はペプチド重合体であり、配列番号：３または４記載のアミノ酸配列を有する蛋白質を好ましい例として挙げることができる。Ｌｒｐ４ポリペプチドを構成するアミノ酸残基は天然に存在するものでも、また修飾されたものであっても良い。さらに、Ｌｒｐ４ポリペプチドには膜貫通領域部分を欠く蛋白質、及びその他のペプチド配列により修飾された融合蛋白質が含まれる。
本発明において、Ｌｒｐ４ポリペプチドは、Ｌｒｐ４ポリペプチドの抗原性を有すればよく、配列番号：３または４のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドを包含する。１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなる変異ポリペプチドで、元のポリペプチドと同じ生物学的活性が維持されることは公知である（Ｍａｒｋ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：５６６２−６；Ｚｏｌｌｅｒ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ（１９８２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１０：６４８７−５００；Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２４：１４３１−３；Ｄａｌｂａｄｉｅ−ＭｃＦａｒｌａｎｄ ｅｔ ａｌ．（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：６４０９−１３）。そして、このような配列番号：３または４のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列を有するＬｒｐ４の抗原性を維持したポリペプチドは、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを公知の『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７−１９９７）；特にＳｅｃｔｉｏｎ８．１−８．５）、Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ−Ｇｏｔｏ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｇｅｎｅ １５２：２７１−５、Ｋｕｎｋｅｌ（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：４８８−９２、Ｋｒａｍｅｒ ａｎｄ Ｆｒｉｔｚ（１９８７）Ｍｅｔｈｏｄ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１５４：３５０−６７、Ｋｕｎｋｅｌ（１９８８）Ｍｅｔｈｏｄ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．８５：２７６３−６等に記載の部位特異的変異誘発法等の方法に従って調製し、適宜発現させることにより得ることができる。
Ｌｒｐ４ポリペプチド断片は、上記Ｌｒｐ４ポリペプチドの一部と同一であり、少なくとも８アミノ酸残基以上（例えば、８、１０、１２、または１５アミノ酸残基以上）からなるポリペプチド断片である。特に好ましい断片としては、アミノ末端、カルボキシル末端、膜貫通ドメインを欠失したポリペプチド断片を挙げることができる。αヘリックス及びαヘリックス形成領域、α両親媒性領域、βシート及びβシート形成領域、β両親媒性領域、基質結合領域、高抗原指数領域、コイル及びコイル形成領域、親水性領域、疎水性領域、ターン及びターン形成領域、並びに表面形成領域を含む断片がＬｒｐ４のポリペプチド断片に含まれる。本発明におけるＬｒｐ４のポリペプチド断片は、Ｌｒｐ４ポリペプチドの抗原性さえ有すればどのような断片であってもよい。ポリペプチドの抗原決定部位は、蛋白質のアミノ酸配列上の疎水性／親水性を解析する方法（Ｋｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ（１９８２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５７：１０５−２２）、二次構造を解析する方法（Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎ（１９７８）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ ４７：２５１−７６）により推定し、さらにコンピュータープログラム（Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１５１：５４０−６（１９８５））、または短いペプチドを合成しその抗原性を確認するＰＥＰＳＣＡＮ法（特表昭６０−５００６８４号公報）等により確認することができる。
Ｌｒｐ４ポリペプチド、及びポリペプチド断片は、Ｌｒｐ４を発現する細胞・組織等を原料として、その物理的性質等に基づいて単離することができる。また、公知の遺伝子組換え技術により、また化学的な合成法により製造することもできる。例えば、Ｌｒｐ４ポリペプチドをｉｎ ｖｉｔｒｏで製造する場合、ｉｎ ｖｉｔｒｏトランスレーション（Ｄａｓｓｏ ａｎｄ Ｊａｃｋｓｏｎ（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：３１２９−４４）等の方法に従って、細胞を含まない試験管内の系でポリペプチドを製造することができる。それに対して、細胞を用いてポリペプチドを製造する場合、まず所望のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを適当なベクターに組み込み、適当な宿主細胞を選択し該ベクターによる形質転換を行い、形質転換された細胞を培養することにより所望のポリペプチドを得ることができる。
適当なベクターとして、プラスミド、コスミド、ウイルス、バクテリオファージ、クローニング用ベクター、発現ベクター等の種々のベクターを挙げることができる（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）；Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７））。ベクターは、導入された宿主細胞内で所望のポリヌクレオチドが発現されるように制御配列を有し、ポリヌクレオチドは該制御配列下に結合される。ここで「制御配列」とは、宿主細胞が原核生物であればプロモーター、リボソーム結合部位、及びターミネーターを含み、真核生物の場合は、プロモーター及びターミネーターであり、場合によってトランスアクチベーター、転写因子、転写物を安定化するポリＡシグナル、スプライシング及びポリアデニル化シグナル等が含まれる。このような制御配列は、それに連結されたポリヌクレオチドの発現に必要とされるすべての構成成分を含むものである。ベクターは、選択可能なマーカーを含んでいてもよい。さらに、細胞内で発現されたポリペプチドを小胞体内腔、グラム陰性菌を宿主とする場合ペリプラズム内、または細胞外へと移行させるために必要とされるシグナルペプチドを目的のポリペプチドに付加するようにして発現ベクターへ組み込むこともできる。このようなシグナルペプチドとして、異種蛋白質由来のシグナルペプチドを利用することができる。さらに、必要に応じリンカーの付加、開始コドン（ＡＴＧ）、終止コドン（ＴＡＡ、ＴＡＧまたはＴＧＡ）の挿入を行ってもよい。
ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるポリペプチドの発現を可能にするベクターとしては、ｐＢＥＳＴ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を例示することができる。また、原核細胞宿主における発現に適した種々のベクターが公知であり（『微生物学基礎講座８ 遺伝子工学』（共立出版）等参照）、原核細胞を宿主として選択した場合、当業者であれば選択した宿主に適したベクター、ベクターの宿主への導入方法を適宜選ぶことができる。その他、酵母等の真菌類、高等植物、昆虫、魚類、両生類、爬虫類、鳥類、哺乳類、種々の培養系細胞（ＣＯＳ、Ｈｅｌａ、Ｃ１２７、３Ｔ３、ＢＨＫ、ＨＥＫ２９３、Ｂｏｗｅｓメラノーマ細胞）、ミエローマ、Ｖｅｒｏ、Ｎａｍａｌｗａ、Ｎａｍａｌｗａ ＫＪＭ−１、ＨＢＴ５６３７（特開昭６３−２９９号公報）等）もＬｒｐ４ポリペプチド及びその抗原性断片を発現させる宿主として利用することができ、各細胞に適したベクター系、ベクターの宿主細胞への導入手法も公知である。さらに、動物の生体内（Ｓｕｓｕｍｕ（１９８５）Ｎａｔｕｒｅ ３１５：５９２−４；Ｌｕｂｏｎ（１９９８）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．４：１−５４等参照）、及び植物体において外来蛋白質を発現させる方法も公知でありＬｒｐ４ポリヌクレオチドを発現させるために利用することができる。
ベクターへのＤＮＡの挿入は、制限酵素サイトを利用したリガーゼ反応により行うことができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．４−１１．１１；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）Ｓｅｃｔｉｏｎ ５．６１−５．６３）。また必要に応じ、使用する宿主のコドン使用頻度を考慮して、発現効率の高い塩基配列を選択し、Ｌｒｐ４ポリペプチドコード発現ベクターを設計することができる（Ｇｒａｎｔｈａｍ ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．９：ｒ４３−７４）。Ｌｒｐ４ポリペプチドを産生する宿主は、Ｌｒｐ４ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを細胞内に含むものであるが、該ポリヌクレオチドは、宿主細胞のゲノム上の天然に存在する位置になければよく、該ポリヌクレオチド自身のプロモーター支配下にあっても、ゲノム中に組み込まれていても、染色体外の構造として保持されていても良い。
宿主細胞の培養は、選択した細胞に適した公知の方法により行う。例えば、動物細胞を選択した場合には、ＤＭＥＭ（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ８：３９６（１９５９）、ＭＥＭ（Ｓｃｉｅｎｃｅ １２２：５０１（１９５２））、ＲＰＭＩ１６４０（Ｊ．Ａｍ．Ｍｅｄ．Ａｓｓｏｃ．１９９：５１９（１９６７））、１９９（Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．７３：１（１９５０））、ＩＭＤＭ等の培地を用い、必要に応じウシ胎児血清（ＦＣＳ）等の血清を添加し、ｐＨ約６〜８、３０〜４０℃において１５〜２００時間前後の培養を行うことができる。その他、必要に応じ途中で培地の交換を行ったり、通気及び攪拌を行ったりすることができる。
通常、遺伝子組換え技術により製造されたＬｒｐ４ポリペプチドは、まず、ポリペプチドが細胞外に分泌される場合には培地を、特にトランスジェニック生物の場合には体液等を、細胞内に産生される場合には細胞を溶解して溶解物の回収を行う。そして、蛋白質の精製方法として公知の塩析、蒸留、各種クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、ゲル濾過、限外濾過、再結晶、酸抽出、透析、免疫沈降、溶媒沈澱、溶媒抽出、硫安またはエタノール沈澱等を適宜組合せることにより所望のポリペプチドを精製する。クロマトグラフィーとしては、アニオンまたはカチオン交換等のイオン交換、アフィニティー、逆相、吸着、ゲル濾過、疎水性、ヒドロキシアパタイト、ホスホセルロース、レクチンクロマトグラフィー等が公知である（Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｃｏｕｒｓｅ Ｍａｎｕａｌ，Ｍａｒｓｈａｋ ｅｔ ａｌ．ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９９６））。ＨＰＬＣ、ＦＰＬＣ等の液相クロマトグラフィーを用いて行うことができる。また、例えば、ＧＳＴとの融合蛋白質とした場合にはグルタチオンカラムを、ヒスチジンタグを付加した融合蛋白質とした場合にはニッケルカラムを用いた精製法も利用できる。Ｌｒｐ４ポリペプチドを融合蛋白質として製造した場合には、必要に応じて精製後にトロンビンまたはファクターＸａ等を使用して不要な部分を切断することもできる。
また、天然由来のポリペプチドを精製して取得してもよい。例えば、Ｌｒｐ４ポリペプチドに対する抗体を利用して、アフィニティークロマトグラフィーにより精製することもできる（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １６．１−１６．１９）。さらに、精製したポリペプチドを必要に応じキモトリプシン、グルコシダーゼ、トリプシン、プロテインキナーゼ、リシルエンドペプチダーゼ等の酵素を用いて修飾することも可能である。一方、Ｌｒｐ４のポリペプチド断片は、上述のＬｒｐ４ポリペプチドと同じような合成及び遺伝子工学的な手法に加えて、ペプチダーゼのような適当な酵素を用いてＬｒｐ４ポリペプチドを切断して製造することもできる。
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択するためのポリクローナル抗体は、例えば、上述のようにして精製されたＬｒｐ４のポリペプチドまたはその断片を所望によりアジュバントと共に哺乳動物に免疫し、免疫した動物より血清を得る。ここで用いる哺乳動物は、特に限定されないが、ゲッ歯目、ウサギ目、霊長目の動物が一般的である。マウス、ラット、ハムスター等のゲッ歯目、ウサギ等のウサギ目、カニクイザル、アカゲザル、マントヒヒ、チンパンジー等のサル等の霊長目の動物が挙げられる。動物の免疫化は、感作抗原をＰｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）または生理食塩水等で適宜希釈、懸濁し、必要に応じアジュバントを混合して乳化した後、動物の腹腔内または皮下に注射して行われる。その後、好ましくは、フロイント不完全アジュバントに混合した感作抗原を４〜２１日毎に数回投与する。抗体の産生は、血清中の所望の抗体レベルを慣用の方法により測定することにより確認することができる。最終的に、血清そのものをポリクローナル抗体として用いても良いし、さらに精製して用いてもよい。具体的な方法として、例えば、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．１２−１１．１３）を参照することができる。
また、モノクローナル抗体を産生するためには、まず、上述のようにして免疫化した動物より脾臓を摘出し、該脾臓より免疫細胞を分離し、適当なミエローマ細胞とポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等を用いて融合してハイブリドーマを作成する。細胞の融合は、Ｍｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｇａｌｆｒｅ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ（１９８１）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．７３：３−４６）に準じて行うことができる。ここで、適当なミエローマ細胞として特に、融合細胞を薬剤により選択することを可能にする細胞を挙げられる。このようなミエローマを用いた場合、融合されたハイブリドーマは、融合された細胞以外は死滅するヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む培養液（ＨＡＴ培養液）で培養して選択する。次に、作成されたハイブリドーマの中から、本発明のポリペプチドまたはその断片に対して結合する抗体を産生するクローンを選択する。その後、選択したクローンをマウス等の腹腔内に移植し、腹水を回収してモノクローナル抗体を得る。また、具体的な方法として、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．４−１１．１１）を参照することもできる。
ハイブリドーマは、その他、最初にＥＢウイルスに感染させたヒトリンパ球をｉｎ ｖｉｔｒｏで免疫原を用いて感作し、感作リンパ球をヒト由来のミエローマ細胞（Ｕ２６６等）と融合し、ヒト抗体を産生するハイブリドーマを得る方法（特開昭６３−１７６８８号公報）によっても得ることができる。また、ヒト抗体遺伝子のレパートリーを有するトランスジェニック動物を感作して製造した抗体産生細胞を用いても、ヒト抗体を得ることができる（ＷＯ９２／０３９１８；ＷＯ９３−０２２２７；ＷＯ９４／０２６０２；ＷＯ９４／２５５８５；ＷＯ９６／３３７３５；ＷＯ９６／３４０９６；Ｍｅｎｄｅｚ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．１５：１４６−５６等）。ハイブリドーマを用いない例としては、抗体を産生するリンパ球等の免疫細胞に癌遺伝子を導入して不死化する方法が挙げられる。
また、遺伝子組換え技術により抗体を製造することもできる（Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ ａｎｄ Ｌａｒｒｉｃｋ（１９９０）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ＭａｃＭｉｌｌａｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ ＬＴＤ．，ＵＫ参照）。そのためには、まず、抗体をコードする遺伝子をハイブリドーマまたは抗体産生細胞（感作リンパ球等）からクローニングする。得られた遺伝子を適当なベクターに組み込み、宿主に該ベクターを導入し、宿主を培養することにより抗体を産生させる。このような組換え型の抗体も本発明の抗体に含まれる。代表的な組換え型の抗体として、非ヒト抗体由来可変領域及びヒト抗体由来定常領域とからなるキメラ抗体、並びに非ヒト抗体由来相補性決定領域（ＣＤＲ）、及び、ヒト抗体由来フレームワーク領域（ＦＲ）及び定常領域とからなるヒト化抗体が挙げられる（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ．（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：５２２−５；Ｒｅｉｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３−９；Ｐｒｅｓｔａ（１９９２）Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．２：５９３−６；Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．２０３：９９−１２１（１９９１））。
抗体断片は、上述のポリクローナルまたはモノクローナル抗体をパパイン、ペプシン等の酵素で処理することにより製造し得る。または、抗体断片をコードする遺伝子を用いて遺伝子工学的に製造することも可能である（Ｃｏ ｅｔ ａｌ．，（１９９４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２：２９６８−７６；Ｂｅｔｔｅｒ ａｎｄ Ｈｏｒｗｉｔｚ（１９８９）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１７８：４７６−９６；Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ ａｎｄ Ｓｋｅｒｒａ（１９８９）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１７８：４９７−５１５；Ｌａｍｏｙｉ（１９８６）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１２１：６５２−６３；Ｒｏｕｓｓｅａｕｘ ｅｔ ａｌ．（１９８６）１２１：６６３−９；Ｂｉｒｄ ａｎｄ Ｗａｌｋｅｒ（１９９１）Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．９：１３２−７参照）。
多特異性抗体には、二特異性抗体（ＢｓＡｂ）、ダイアボディ（Ｄｂ）等が含まれる。多特異性抗体は、（１）異なる特異性の抗体を異種二機能性リンカーにより化学的にカップリングする方法（Ｐａｕｌｕｓ（１９８５）Ｂｅｈｒｉｎｇ Ｉｎｓｔ．Ｍｉｌｌ．７８：１１８−３２）、（２）異なるモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマを融合する方法（Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｃｕｅｌｌｏ（１９８３）Ｎａｔｕｒｅ ３０５：５３７−９）、（３）異なるモノクローナル抗体の軽鎖及び重鎖遺伝子（４種のＤＮＡ）によりマウス骨髄腫細胞等の真核細胞発現系をトランスフェクションした後、二特異性の一価部分を単離する方法（Ｚｉｍｍｅｒｍａｎｎ（１９８６）Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．１０５：１７６−２６０；Ｖａｎ Ｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ４３：９４４−９）等により作製することができる。一方、Ｄｂは遺伝子融合により構築され得る二価の２本のポリペプチド鎖から構成されるダイマーの抗体断片であり、公知の手法により作製することができる（Ｈｏｌｌｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４−８；ＥＰ４０４０９７；ＷＯ９３／１１１６１参照）。
抗体及び抗体断片の回収及び精製は、プロテインＡ及びＧを用いて行う他、抗体以外のポリペプチドの製造の場合と同様に上記した蛋白質精製技術によっても行い得る（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））。例えば、本発明の抗体の精製にプロテインＡを利用する場合、Ｈｙｐｅｒ Ｄ、ＰＯＲＯＳ、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等のプロテインＡカラムが公知であり、使用可能である。得られた抗体の濃度は、その吸光度を測定することにより、または酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）等により決定することができる。
抗体の抗原結合活性は、吸光度測定、蛍光抗体法、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、ＥＬＩＳＡ等により測定することができる。ＥＬＩＳＡ法により測定する場合、本発明の抗体をプレート等の担体に固相化し、次いでＬｒｐ４ポリペプチドを添加した後、目的とする抗体を含む試料を添加する。ここで、抗体を含む試料としては、抗体産性細胞の培養上清、精製抗体等が考えられる。続いて、本発明の抗体を認識する二次抗体を添加し、プレートのインキュベーションを行う。その後、プレートを洗浄し、二次抗体に付加された標識を検出する。即ち、二次抗体がアルカリホスファターゼで標識されている場合には、ｐ−ニトロフェニルリン酸等の酵素基質を添加して吸光度を測定することで、抗原結合活性を測定することができる。また、抗体の活性評価に、ＢＩＡｃｏｒｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等の市販の系を使用することもできる。
＜ドーパミン産生ニューロンの選択方法＞
本発明により分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択的に均一な集団として選択する方法が提供された。分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブまたは抗体を用いて選択することができる。ここで、「選択」という用語は、或る試料中におけるドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞の存在を検出すること、及び、存在を検出しさらに分離または単離することの両方を含むものである。より具体的には、本発明は、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブとドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含むドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法を提供するものである。該方法においては、マーカーポリヌクレオチドプローブを好ましくは放射性同位体または非放射性化合物で標識しておく。例えば、標識するための放射性同位体としては、３５Ｓ、３Ｈ等を挙げることができる。放射標識したマーカーポリヌクレオチドプローブを用いた場合、エマルションオートラジオグラフィーにより銀粒子を検出することによりマーカーと結合するＲＮＡを検出することができる。また、マーカーポリヌクレオチドプローブ標識のための非放射性同位体としては、ビオチン、ジゴキシゲニン等が例示される。ビオチン標識マーカーの検出は、例えば、蛍光、または、アルカリ性ホスファターゼ若しくは西洋ワサビペルオキシダーゼ等の酵素を標識したアビジンを用いて行うことができる。一方、ジゴキシゲニン標識マーカーの検出には、蛍光、または、アルカリ性ホスファターゼ若しくは西洋ワサビペルオキシダーゼ等の酵素を標識した抗ジゴキシゲニン抗体を使用することができる。酵素標識を使用する場合には、酵素の基質と共にインキュベートし、安定な色素をマーカー位置に沈着させることで検出を行う。特に蛍光を利用した、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリッド形成法（ＦＩＳＨ）が簡便であり、特に好ましいものである。
また、本発明により、本発明のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択するための抗体とドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含むドーパミン産生ニューロンの選択方法が提供される。即ち、ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むことが予測される細胞試料と本発明の抗体とを接触させ、抗体に結合する細胞を選択することでＬｒｐ４ポリペプチドを発現している細胞、即ち、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を取得できる（図６参照）。細胞との接触前に、抗体を適当な担体に固定化して用いることも可能である。または、細胞と抗体とを接触させ、結合させた後、抗体のアフィニティーによる精製を行うことで、該抗体と結合した細胞を選択的に回収することもできる。例えば、本発明の抗体がビオチンと結合されている場合には、アビジンやストレプトアビジンを結合したプレートやカラムに対して添加することにより精製を行うことができる。その他、例えば、磁性粒子を抗体に結合し、該抗体及び抗体に結合したＬｒｐ４を細胞表面上に発現している細胞を磁石を利用して回収することもできる。また、セルソーター、及び蛍光等により標識した抗Ｌｒｐ４抗体を使用して、フローサイトメトリーによりＬｒｐ４を発現するドーパミン産生ニューロンを選択することもできる。
さらに、本発明により、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブまたは抗体を使用して選択されたドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を培養し、培養した前駆細胞を分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングすることにより、腫瘍化する危険性の低い移植治療に特に適したドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることができる。分裂停止後のニューロンマーカーとしては、例えば６５Ｂ１３を挙げることができる。例えば、６５ＢＢ１３ポリペプチドに対する抗体を培養したドーパミン産生ニューロン前駆細胞と接触させて６５Ｂ１３ポリペプチドを発現している細胞を選択することにより分裂停止直後のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択することができる。また、６５Ｂ１３はＩｇドメイン接着分子様の構造を有する。培養細胞中で６５Ｂ１３発現させた場合、６５Ｂ１３を発現させた細胞同士は接着するのに対し、６５Ｂ１３を発現させていない細胞とは接着しない。そのため、６５Ｂ１３を介した接着はホモフィリックな結合と考えられている。そこで、６５Ｂ１３ポリペプチドの細胞外領域部分の接着を利用した６５Ｂ１３発現ドーパミン産生ニューロン前駆細胞のスクリーニングも可能である。
Ｌｒｐ４発現ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞及び６５Ｂ１３発現ドーパミン産生ニューロン前駆細胞の選択及び／またはスクリーニングは、各々Ｌｒｐ４または６５Ｂ１３に対するプロモーターを利用して行うこともできる（例えば、特開２００２−５１７７５号公報参照）。例えば、後述するＬｒｐ４の発現領域解析により得られるプロモーター部分に対し、ＧＦＰ等の検出可能なマーカーをコードする遺伝子を連結した構築物を含むベクターを細胞に対してトランスフェクションすることができる。その他、Ｌｒｐ４遺伝子座へマーカーをコードする遺伝子をノックインすることができる。どちらの場合にも、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的にマーカー遺伝子の発現が検出されることとなり、特異的な細胞の選択が可能となる。６５Ｂ１３についてもＬｒｐ４と同様の方法によりスクリーニングが可能である。６５Ｂ１３については、例えば、特願２００２−３０７５７３号明細書に記載の配列を参照することができる。
ここで使用する細胞試料は好ましくは、中脳腹側領域の細胞、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導されたドーパミン産生ニューロンを含む培養培地である。ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるドーパミン産生ニューロンの分化誘導は、公知のＥＳ細胞、骨髄間質細胞、神経由来の不死化セルライン（特表平８−５０９２１５号公報；特表平１１−５０６９３０号公報；特表２００２−５２２０７０号公報）、ニューロン始原細胞（特表平１１−５０９７２９号公報）等の細胞を出発材料として、公知の方法により行うことができる。通常、ドーパミン産生ニューロンは、脳のドーパミン産生ニューロン領域から得た組織を神経組織由来の支持細胞層と共培養することにより分化させることができる。さらに、線条体及び皮質等の通常非ドーパミン産生神経組織からドーパミン産生細胞を誘導する方法も知られている（特表平１０−５０９３１９号公報）。また、低酸素条件下での培養により、より多くドーパミン産生ニューロンを含む細胞が得られるとの報告もある（特表２００２−５３００６８号公報）。本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞の選択に用いる細胞試料は、これらを含む如何なる方法により分離または培養された細胞群であってもよい。
また、本発明の抗体またはポリペプチドを固定する担体としては、細胞に対して無害なものである必要がある。例えば、合成または天然の有機高分子化合物、ガラスビーズ、シリカゲル、アルミナ、活性炭等の無機材料、及びこれらの表面に多糖類、合成高分子等をコーティングしたものが考えられる。担体の形状には特に制限はなく、膜状、繊維状、顆粒状、中空糸状、不織布状、多孔形状、ハニカム形状等が挙げられ、その厚さ、表面積、太さ、長さ、形状、大きさを種々変えることにより接触面積を制御することができる。
＜ドーパミン産生ニューロン前駆細胞＞
このようにしてＬｒｐ４の発現を指標として獲得された細胞は、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞であることから、従来の雑多な細胞集団または外来遺伝子を導入したドーパミン産生ニューロンと比べて、安全性、生存率、ネットワーク形成能の面でＰＤ等の神経変性疾患の移植治療に好ましいものである。Ｌｒｐ４の発現を指標として獲得された細胞は、そのまま、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させた後に移植に使用することができる（図６）。本発明のＬｒｐ４の発現を指標として選択されるドーパミン産生ニューロン前駆細胞は増殖中の前駆細胞であることから、脳内の最適な場所で分化成熟していく可能性、またｉｎ ｖｉｖｏにおいてさらに前駆細胞が増殖する可能性があることから、より長期的な治療効果が期待される。さらに、本方法により得られた本発明の細胞（群）は、分裂停止前の前駆細胞であることから、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて培地等の条件を選択することにより適当な段階まで分化させることも可能であり、種々の神経移植治療の材料としても好ましいものである。例えば、前述したように、Ｌｒｐ４の発現を指標として選択された細胞について、さらに細胞分裂停止直後のマーカー（例えば、６５Ｂ１３）を指標とした選択を行うことにより、より移植の上では安全性の高い細胞を得ることもできる。
本発明の方法により得られたニューロン前駆細胞の移植では、１×１０３〜１×１０６個、さらに好ましくは５〜６×１０４個のニューロンを移植する。第１の方法としては、細胞の懸濁液を脳に移植する定位脳固定術（ｓｔｅｒｅｏｔａｘｉｃ ｓｕｒｇｅｒｙ）が挙げられる。また、ミクロ手術（ｍｉｃｒｏｓｕｒｇｅｒｙ）により細胞を移植しても良い。ニューロン組織の移植方法については、Ｂａｃｋｌｕｎｄ等（Ｂａｃｋｌｕｎｄ ｅｔ ａｌ．（１９８５）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．６２：１６９−７３）、Ｌｉｎｄｖａｌｌ等（Ｌｉｎｄｖａｌｌ ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．２２：４５７−６８）、Ｍａｄｒａｚｏ等（Ｍａｄｒａｚｏ ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ｎｅｗ Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１６：８３１−４）の方法を参照することができる。
さらに、本発明の細胞は、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離、ＰＤ治療のターゲット探索、ドーパミン産生ニューロンの成熟過程の解明、並びに成熟を指標としたスクリーニング等にも利用することができる。
＜遺伝子発現レベルの比較＞
本発明の抗体を用いて得られた分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、該細胞において特異的に発現している遺伝子を単離する材料として使用することができる。さらに、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を分化、誘導、または増殖させた細胞に特異的に発現している遺伝子を調べ、単離することもできる。また、分化／誘導／増殖させた細胞と元の前駆細胞とにおいて発現レベルに差違のある遺伝子を調べることによりドーパミン産生ニューロンの生体内における分化に必要とされる遺伝子を調べることもできる。このような遺伝子はドーパミン産生ニューロンにおける何等かの欠陥が病因となっている疾病の治療対象候補となり得るので、当該遺伝子を決定し、単離することは非常に有用である。
本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞と該細胞から分化／誘導／増殖された細胞若しくはその他の細胞、または該分化／誘導／増殖された細胞とその他の細胞との間での遺伝子の発現レベルの比較は、慣用の細胞ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、ノーザンブロットハイブリダイゼーション、ＲＮＡドットブロットハイブリダイゼーション、逆転写ＰＣＲ、ＲＮａｓｅ保護アッセイ、ＤＮＡマイクロアレイハイブリダイゼーション、遺伝子発現の連続解析（ＳＡＧＥ；ｓｅｒｉａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）（Ｖｅｌｃｕｌｅｓｃｕ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７０：４８４−７）、差し引きハイブリダイゼーション（ｓｕｂｔｒａｃｔｉｖｅ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）、代表差違分析（ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ；ＲＤＡ）（Ｌｉｓｉｔｓｙｎ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７）等により行うことができる。
細胞ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションでは、特定のＲＮＡ配列に特異的な標識プローブを用い細胞から調製した総ＲＮＡまたはｐｏｌｙＡ＋ＲＮＡに対してハイブリダイゼーションを行うことにより、個々の細胞におけるＲＮＡのプロセッシング、輸送、細胞質への局在化が起こる場所等を調べることができる。また、ＲＮＡの大きさをゲル電気泳動等によりサイズ分画して決定することもできる。また、定量的な蛍光ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）及びデジタル画像顕微鏡を用いれば、ＲＮＡ転写産物をｉｎ ｓｉｔｕで視覚的に捉えることも可能であり（Ｆｅｍｉｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８０：５８５−９０）、本発明において利用することができる。
遺伝子発現の解析で逆転写ＰＣＲを用いた場合、特定遺伝子の発現を大まかに定量することができる。本方法では、１つのＲＮＡ転写産物の種々のアイソフォームを検出及び解析することも可能である。逆転写ＰＣＲにおいてはまず、エキソン特異性プライマーを用いた逆転写ＰＣＲを行い、予想された産物以外の増幅産物が検出された場合、それらを解析することにより選択的スプライシングにより生じるｍＲＮＡアイソフォームを同定することが可能である。例えば、Ｐｙｋｅｔｔ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｈｕｍ．Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．３：５５９−６４等に記載の方法を参照することができる。特に大まかな発現パターンを迅速に解析することが求められる場合、本発明のＰＣＲを利用した本方法は、その速さ、感度の高さ、簡便さの点からも望ましいものである。
ＤＮＡチップを使用することにより、遺伝子発現スクリーニングの能率を向上させることができる。ここで、ＤＮＡチップとは、ガラス等の担体表面上にオリゴヌクレオチドまたはＤＮＡクローン等を高密度に固定した小型のアレイである。例えば、多重発現スクリーニングを行うためには、各目的遺伝子に対するｃＤＮＡクローンまたは該遺伝子特異的なオリゴヌクレオチドをチップに対して固定化し、マイクロアレイを作製する。次に本発明のドーパミン特異的ニューロン前駆細胞、または該細胞より分化／誘導／増殖された細胞よりＲＮＡを調製し、逆転写酵素処理を行い、ｃＤＮＡを得る。次に、得られたｃＤＮＡ試料を蛍光タグ等のタグにより標識し、マイクロアレイに対するハイブリダイゼーションを行う。その結果、総標識ｃＤＮＡ中、細胞内で活発に発現している遺伝子の割合が高くなり、あまり発現されていない遺伝子の割合は低くなる。即ち、標識ｃＤＮＡとチップ上のｃＤＮＡクローンまたはオリゴヌクレオチドとのハイブリッド形成を表す蛍光シグナルの強度は、標識ｃＤＮＡ内での各配列の発現の度合いを示すことなり、遺伝子発現の定量を可能成らしめる。
また、縮重ＰＣＲプライマーを用いた逆転写ＰＣＲを行うｍＲＮＡディファレンシャルディスプレイにより、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞、または該細胞から分化／誘導／増殖された細胞について多数の遺伝子の発現を同時に解析することもできる。まず、特定のｍＲＮＡのｐｏｌｙＡ尾部に３’末端の１または２つの塩基を変更した修飾オリゴｄＴプライマーを準備し、本発明の前駆細胞または該細胞から分化／増殖された細胞、及び、発現を比較する対照細胞から単離した総ＲＮＡに対して逆転写酵素反応を行う（Ｌｉａｎｇ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２１：３２６９−７５）。変更した塩基が「Ｇ」であれば、ｐｏｌｙＡ尾部の直前にＣを持つｍＲＮＡを選択的に増幅することができ、また「ＣＡ」であれば、ＴＧを直前に持つｍＲＮＡを増幅することができる。次に、第２のプライマーとして、１０塩基程度の長さの任意の配列を有するものを用意し、修飾オリゴｄＴプライマー及び第２のプライマーを使用してＰＣＲ増幅反応を行う。増幅産物を泳動距離の長いポリアクリルアミドゲルを用いて電気泳動し、サイズ分画する。このような方法により、本発明の細胞と対照細胞とで各細胞に特異的に発現しているｍＲＮＡ由来のｃＤＮＡは、一方の試料を泳動した場合にのみ検出されるバンドとして検出することができる。この方法では、同定されていない遺伝子の発現についても解析することができる。
ＳＡＧＥ分析は、多数の転写産物の発現を同時に検出することができ、また検出に特殊な装置を必要としない点で好ましい分析方法の一つである。まず、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞または該細胞から分化／誘導／増殖された細胞よりｐｏｌｙＡ＋ＲＮＡを慣用の方法により抽出する。次に、ビオチン化オリゴｄＴプライマーを用い、前記ＲＮＡをｃＤＮＡに変換し、４塩基認識制限酵素（アンカー用酵素；ＡＥ）で処理する。これにより、ＡＥ処理断片はその３’末端にビオチン基を含んだ形となる。次に、ＡＥ処理断片をストレプトアビジンに結合させる、結合されたｃＤＮＡを２画分に分け、それぞれの画分を別々の２本鎖オリゴヌクレオチドアダプター（リンカー）Ａ及びＢに連結する。このリンカーは、（１）アンカー用酵素の作用で生じる突出部の配列と相補的な配列を有する１本鎖突出部、（２）タグ用酵素（ｔａｇｇｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ；ＴＥ）となるＩＩＳ型制限酵素（認識部位より２０ｂｐ以下の離れた定位置の切断を行う）の５’塩基認識配列、及び（３）ＰＣＲ用特異的プライマーを構成するのに十分な追加配列より構成される。ここで、リンカーを連結したｃＤＮＡをタグ用酵素で切断することにより、リンカー結合型の状態でｃＤＮＡ配列部分のみが短鎖配列タグとなる。次に、リンカーの異なる２種類のプールを互いに連結し、リンカーＡ及びＢに特異的プライマーを使用してＰＣＲ増幅する。その結果、増幅産物はリンカーＡ及びＢに結合した２つの隣接配列タグ（ダイタグ；ｄｉｔａｇ）を含む多様な配列の混在物として得られる。そこで、増幅産物をアンカー用酵素により処理し、遊離したダイタグ部分を通常の連結反応により鎖状に連結し、クローニングを行う。クローニングにより得られたクローンの塩基配列を決定することにより、一定長の連続ダイタグの読み出しを得ることができる。このようにしてクローンの塩基配列を決定し、配列タグの情報が得られれば、それぞれのタグに該当するｍＲＮＡの存在を同定することができる。
差し引きハイブリダイゼーションは、種々の組織または細胞間で発現の差違のある遺伝子のクローニングによく用いられる方法であるが、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞、またはそれから分化／誘導／増殖された細胞において特異的に発現している遺伝子をクローニングするのにも使用することができる。まず、本発明の前記細胞のうちの試験する細胞のＤＮＡ試料を調製する（以下、テストＤＮＡと呼ぶ）。次に、比較する細胞のＤＮＡ（以下、ドライバーＤＮＡと呼ぶ）を調製する。テストＤＮＡとドライバーＤＮＡとを逆に用いることもできる。いずれにせよ、テストＤＮＡに存在し、ドライバーＤＮＡに存在しない遺伝子の存在が検出される。次に、調製したテストＤＮＡ及び大過剰量のドライバーＤＮＡを混合し、変性させ一本鎖ＤＮＡとした後にアニーリングさせる。アニーリング条件を調節することにより、ドライバーＤＮＡ中には存在しない特異的な配列をテストＤＮＡ由来のＤＮＡのみからなる二本鎖ＤＮＡとして単離することができる。より詳細な方法については、Ｓｗａｒｏｏｐ ｅｔ ａｌ．（１９９１）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：１９５４及びＹａｓｕｎａｇａ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．２１：３６３−９等を参照することができる。
ＲＤＡ法は、ＰＣＲを利用した、ドライバーＤＮＡに存在しないテストＤＮＡ中の配列を選択的に増幅することを可能とする方法であり、上述のその他の方法と同様に本発明において用いることができる。より詳細な手順については、Ｌｉｓｉｔｓｙｎ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７及びＳｃｈｕｔｔｅ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２：５９５０−４を参照することができる。
以上のようにして検出、単離されたドーパミン産生ニューロン前駆細胞、または該細胞を分化、誘導、または増殖させた細胞に特異的な遺伝子を上述の各種公知の方法によりベクター等に挿入し、配列決定、発現解析を行うこともできる。
＜前駆細胞の成熟を指標としたスクリーニング＞
本発明により、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む、スクリーニング方法が提供される。本方法によりスクリーニングされる化合物は、ドーパミン産生ニューロンの分化、増殖等を調節する機能を示すことから、ドーパミン産生ニューロンにおける何等かの欠陥が病因となっている疾病の治療対象候補となり得、有用と考えられる。
ここで、「被験物質」とはどのような化合物であってもよいが、例えば、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物ライブラリー、合成ペプチドライブラリー、抗体、細菌放出物質、細胞（微生物、植物細胞、動物細胞）抽出液、細胞（微生物、植物細胞、動物細胞）培養上清、精製または部分精製ポリペプチド、海洋生物、植物または動物等由来の抽出物、土壌、ランダムファージペプチドディスプレイライブラリーが挙げられる。
細胞の分化や増殖は、被験物質と接触させない場合における細胞の状態と比較することにより検出することができる。細胞の分化や増殖は、顕微鏡下において形態学的な観察を行うこと、または、細胞で産生されるドーパミン等の物質を検出、定量して検出してもよい。
＜Ｌｒｐ４の発現領域解析＞
Ｌｒｐ４の発現制御領域は、Ｌｒｐ４の遺伝子配列を利用してゲノムＤＮＡから公知の方法によってクローニングすることができる。例えば、Ｓ１マッピング法のような転写開始点の特定方法（細胞工学 別冊８ 新細胞工学実験プロトコール，東京大学医科学研究所制癌研究部編，秀潤社（１９９３）ｐｐ．３６２−３７４）が公知であり、利用できる。一般に、遺伝子の発現制御領域は、遺伝子の５’末端の１５〜１００ｂｐ、好ましくは３０〜５０ｂｐをプローブＤＮＡとして利用して、ゲノムＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることによりクローニングすることができる（本発明においては、配列番号：１または２の塩基全部またはその１部）。このようにして得られるクローンは、１０ｋｂｐ以上の５’非翻訳領域を含むものであるので、次にエキソヌクレアーゼ等により処理し短縮化または断片化する。最後に、短縮された発現制御領域の候補を含む配列部分をレポーター遺伝子を利用して、その発現の有無、強さ、制御等について評価し、Ｌｒｐ４の発現制御領域の活性維持のための最小必要単位を決定することができる。
遺伝子の発現制御領域は、Ｎｅｕｒａｌ Ｎｅｔｗｏｒｋ等のプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｆｒｕｉｔｆｌｙ．ｏｒｇ．／ｓｅｑ＿ｔｏｏｌｓ／ｐｒｏｍｏｔｅｒ．ｈｔｍｌ；Ｒｅｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｍｐｕｔｉｎｇ：Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ １９９６ Ｐａｃｉｆｉｃ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ，Ｈｕｎｔｅｒ ａｎｄ Ｋｌｅｉｎ ｅｄ．，Ｗｏｒｌｄ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｓｉｎｇａｐｏｒｅ，（１９９６））を用いて予測することもできる。さらに、発現制御領域の活性最小単位を予測するプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｏｓｃｉ．ｃｂｓ．ｕｍｎ．ｅｄｕ．／ｓｏｆｔｗａｒｅ／ｐｒｏｓｃａｎ／ｐｒｏｍｏｔｅｒｓｃａｎ．ｈｔｍ；Ｐｒｅｓｔｒｉｄｇｅ（１９９５）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２４９：９２３−３２）も公知であり、用いることができる。
このようにして単離された、Ｌｒｐ４遺伝子の発現領域は、ｉｎ ｖｉｖｏで分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞特異的に所望の蛋白質を産生するのに利用することもできる。
＜Ｌｒｐ４に対するリガンド＞
Ｌｒｐ４ポリペプチドは膜貫通ドメインを有することから、天然において細胞膜中に埋め込まれた状態で存在すると考えられる。Ｌｒｐ４は、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞で発現されていることから、前駆細胞の増殖制御やニューロンの分化、成熟に関与していることが考えられる。従って、Ｌｒｐ４に対するアゴニストやアンタゴニスト等の機能を示す可能性があるリガンドは、ドーパミン産生ニューロンのｉｎ ｖｉｖｏ、ｅｘ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｔｒｏにおける分化を制御するのに利用できる可能性がある。Ｌｒｐ４ポリペプチドに対するリガンドの同定においては、まず、Ｌｒｐ４ポリペプチドと候補化合物とを接触させ、結合の有無を検定する。この際、Ｌｒｐ４ポリペプチドを担体に固定したり、細胞膜に埋めこまれた状態に発現させて用いることもできる。候補化合物としては特に制限はなく、遺伝子ライブラリーの発現産物、海洋生物由来の天然成分、各種細胞の抽出物、公知化合物及びペプチド、植物由来の天然成分、生体組織抽出物、微生物の培養上清、並びにファージディスプレイ法等によりランダムに製造されたペプチド群（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２２：３０１−１０（１９９１））等が含まれる。また、結合の検出を容易にするために、候補化合物は標識しても良い。
＜Ｌｒｐ４の発現抑制＞
本発明により、Ｌｒｐ４が分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞で一過性に発現されることが明らかにされたことから、Ｌｒｐ４が前駆細胞の増殖制御やニューロンの分化、成熟に関与していることが考えられた。従って、Ｌｒｐ４遺伝子の発現を阻害するものは、ドーパミン産生ニューロンのｉｎ ｖｉｖｏ、ｅｘ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｔｒｏにおける分化を制御するのに利用できる可能性がある。遺伝子の発現を阻害し得るものとして、例えば、アンチセンス、リボザイム及び２本鎖ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ；ｓｉＲＮＡ）が挙げられる。従って、本発明はこのようなアンチセンス、リボザイム及び２本鎖ＲＮＡを提供するものである。
アンチセンスが標的遺伝子の発現を抑制する機構としては、（１）３重鎖形成による転写開始阻害、（２）ＲＮＡポリメラーゼにより形成される局所的開状ループ構造部位とのハイブリッド形成による転写抑制、（３）合成中のＲＮＡとのハイブリッド形成による転写阻害、（４）イントロン−エキソン接合点におけるハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（５）スプライソソーム形成部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（６）ｍＲＮＡとのハイブリッド形成による、ｍＲＮＡの細胞質への移行抑制、（７）キャッピング部位またはポリＡ付加部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（８）翻訳開始因子結合部位とのハイブリッド形成による翻訳開始抑制、（９）リボソーム結合部位とのハイブリッド形成による翻訳抑制、（１０）ｍＲＮＡ翻訳領域またはポリソーム結合部位とのハイブリッド形成によるペプペプチド鎖の伸長抑制、並びに（１１）核酸と蛋白質の相互作用部位とのハイブリッド形成による遺伝子発現抑制が挙げられる（平島及び井上『新生化学実験講座２ 核酸ＩＶ 遺伝子の複製と発現』日本生化学会編、東京化学同人、ｐｐ．３１９−３４７（１９９３））。
本発明のＬｒｐ４アンチセンス核酸は、上述の（１）〜（１１）のどの機構により遺伝子発現を抑制する核酸であってもよく、即ち、発現を阻害する目的の遺伝子の翻訳領域のみならず、非翻訳領域の配列に対するアンチセンス配列を含むものであってもよい。アンチセンス核酸をコードするＤＮＡは、その発現を可能とする適当な制御配列下に連結して使用され得る。アンチセンス核酸は、標的とする遺伝子の翻訳領域または非翻訳領域に対して完全に相補的である必要はなく、効果的に該遺伝子の発現を阻害するものであればよい。このようなアンチセンス核酸は、少なくとも１５ｂｐ以上、好ましくは１００ｂｐ以上、さらに好ましくは５００ｂｐ以上であり通常３０００ｂｐ以内、好ましくは２０００ｂｐ以内、より好ましくは１０００ｂｐ以内の鎖長を有し、標的遺伝子の転写産物の相補鎖に対して好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上同一である。このようなアンチセンス核酸は、Ｌｒｐ４ポリヌクレオチドを基に、ホスホロチオネート法（Ｓｔｅｉｎ（１９８８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１６：３２０９−２１）等により調製することができる。
リボザイムとは、ＲＮＡを構成成分とする触媒の総称であり、大きくラージリボザイム（ｌａｒｇｅ ｒｉｂｏｚｙｍｅ）及びスモールリボザイム（ｓｍａｌｌ ｌｉｂｏｙｍｅ）に分類される。ラージリボザイムは、核酸のリン酸エステル結合を切断し、反応後に５’−リン酸と３’−ヒドロキシル基を反応部位に残す酵素である。ラージリボザイムは、さらに（１）グアノシンによる５’−スプライス部位でのトランスエステル化反応を行うグループＩイントロンＲＮＡ、（２）自己スプライシングをラリアット構造を経る二段階反応で行うグループＩＩイントロンＲＮＡ、及び（３）加水分解反応によるｔＲＮＡ前駆体を５’側で切断するリボヌクレアーゼＰのＲＮＡ成分に分類される。それに対して、スモールリボザイムは、比較的小さな構造単位（４０ｂｐ程度）であり、ＲＮＡを切断して、５’−ヒドロキシル基と２’−３’環状リン酸を生じさせる。スモールリボザイムには、ハンマーヘッド型（Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８８）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．２２８：２２５）、ヘアピン型（Ｂｕｚａｙａｎ（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２３：３４９；Ｋｉｋｕｃｈｉ ａｎｄ Ｓａｓａｋｉ（１９９２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：６７５１；菊地洋（１９９２）化学と生物３０：１１２）等のリボザイムが含まれる。リボザイムは、改変及び合成が容易になため多様な改良方法が公知であり、例えば、リボザイムの基質結合部を標的部位の近くのＲＮＡ配列と相補的となるように設計することにより、標的ＲＮＡ中の塩基配列ＵＣ、ＵＵまたはＵＡを認識して切断するハンマーヘッド型リボザイムを作ることができる（Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８８）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．２２８：２２５；小泉誠及び大塚栄子（１９９０）蛋白質核酸酵素３５：２１９１；Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：７０５９）。ヘアピン型のリボザイムについても、公知の方法に従って設計、製造が可能である（Ｋｉｋｕｃｈｉ ａｎｄ Ｓａｓａｋｉ（１９９２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：６７５１；菊地洋（１９９２）化学と生物３０：１１２）。
本発明のアンチセンス核酸及びリボザイムは、細胞内における遺伝子の発現を制御するために、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス等のウイルス由来のベクター、リポソーム等を利用した非ウイルスベクター、またはｎａｋｅｄ ＤＮＡとしてｅｘ ｖｉｖｏ法またはｉｎ ｖｉｖｏ法により遺伝子治療に用いることもできる。
１９９８年に、線虫においてＲＮＡ同士が邪魔し合い働きを失う現象（ＲＮＡ干渉）が観察された（Ｆｉｒｅ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ ３９１：８０６−１１）。ＲＮＡ干渉とは、二本鎖の人工ＲＮＡを細胞に導入することにより、同じ塩基配列を有するＲＮＡが分解される現象である。その後の研究により、ＲＮＡ干渉等のＲＮＡサイレンシングの現象は、欠陥を持つｍＲＮＡの排除、並びにトランスポゾン、ウイルス等の寄生体に対する防御のための細胞機構であることが示唆されている。現在では、多くの遺伝子の発現を抑制するためのツールとして、二本鎖ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ；ｓｉＲＮＡ）が利用されており、病気の原因遺伝子等の発現抑制をｓｉＲＮＡを用いて行うことにより病気を治療・予防する方法も検討されている。本発明のｓｉＲＮＡは、Ｌｒｐ４のｍＲＮＡの転写を阻害する限り、特に限定されない。通常、ｓｉＲＮＡは、標的ｍＲＮＡの配列に対するセンス鎖及びアンチセンス鎖の組合せであり、少なくとも１０個から標的ｍＲＮＡと同じ個数までのヌクレオチド長を有する。好ましくは、１５〜７５個、より好ましくは１８〜５０個、さらに好ましくは２０〜２５個のヌクレオチド長である。
Ｌｒｐ４発現を抑制するために、ｓｉＲＮＡは公知の方法により細胞に導入することができる。例えば、ｓｉＲＮＡを構成する二本のＲＮＡ鎖を、一本鎖上にコードするＤＮＡを設計し、該ＤＮＡを発現ベクターに組み込み、細胞を該発現ベクターで形質転換し、ｓｉＲＮＡをヘアピン構造を有する二本鎖ＲＮＡとして細胞内で発現させることができる。トランスフェクションにより持続的にｓｉＲＮＡを産生するプラスミド発現ベクターも設計されている（例えば、ＲＮＡｉ−Ｒｅａｄｙ ｐＳＩＲＥＮ Ｖｅｃｔｏｒ、ＲＮＡｉ−Ｒｅａｄｙ ｐＳＩＲＥＮ−ＲｅｔｒｏＱ Ｖｅｃｔｏｒ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ））。
ｓｉＲＮＡの塩基配列は、例えば、Ａｍｂｉｏｎ ｗｅｂｓｉｔｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｍｂｉｏｎ．ｃｏｍ／ｔｅｃｈｌｉｂ／ｍｉｓｃ／ｓｉＲＮＡ＿ｆｉｎｄｅｒ．ｈｔｍｌ）のコンピュータープログラムを用いて設計することができる。機能的ｓｉＲＮＡをスクリーニングするためのキット（例えば、ＢＤ Ｋｎｏｃｋｏｕｔ ＲＮＡｉ Ｓｙｓｔｅｍ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ））等も市販されており利用可能である。
【図面の簡単な説明】
図１は、Ｌｒｐ４の構造を模式的に示す図である。ＴＭ：膜貫通ドメイン、ＦＲＩ：ｆｒｉｚｚｅｌｅｄドメイン、ＬＤＬａ：ＬＤＬレセプタードメイン、ＳＲ：スカベンジャーレセプタードメイン、Ｐｒｏ：セリンプロテアーゼドメイン。
図２は、Ｌｒｐ４及びＳｈｈのｍＲＮＡのＥ１２．５マウス後脳腹側及び脊髄における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。
図３は、Ｌｒｐ４、Ｓｈｈ、チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）、及びＮＣＡＭのｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中脳腹側における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。
図４は、Ｌｒｐ４の中脳における発現パターンを模式的に示す図である。ＶＺ：ｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｚｏｎｅ、ＭＬ：ｍａｎｔｌｅ ｌａｙｅｒ。
図５は、ドーパミン産生ニューロンの発生から成熟までの間におけるＬｒｐ４、６５Ｂ１３、ＴＨ、ＮＣＡＭ及びＤＡＴの発現時期を模式的に示す図である。
図６は、抗Ｌｒｐ４抗体を用いたドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞の分離及び活用法を示す模式図である。
図７は、Ｌｒｐ４のｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中枢神経系における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。Ａ：矢状面；Ｂ：Ａの枠内部分の拡大写真；Ｃ：Ａの赤線位置での断面。Ｄ：Ｌｒｐ４、Ｓｈｈ及びチロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）のｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中脳腹側における発現を示す。
図８は、ＥＳ細胞からのｉｎ ｖｉｔｒｏドーパミン産生ニューロン分化系におけるＬｒｐ４の発現について示す。上は、ＥＳ細胞からのドーパミン産生ニューロンの分化を模式的に示す図である。下の写真は、ＳＤＩＡ法によりＥＳ細胞よりドーパミン産生ニューロンを分化誘導し、時間を追ってＬｒｐ４の発現をＲＴ−ＰＣＲ法で調べた結果を示す。
【発明を実施するための最良の形態】
以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、これらの実施例は本発明をいかなる意味でも限定するものではない。
１．ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子の単離及び配列解析
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子を単離するために、Ｅ１２．５マウス中脳腹側領域を背腹方向にさらに二つの領域に切り分けて、ドーパミン産生ニューロンを含む最も腹側の領域に特異的に発現する遺伝子をサブトラクション（Ｎ−ＲＤＡ）法により同定した。単離した断片の一つはＬｒｐ４／ＣｏｒｉｎをコードするｃＤＮＡ断片であった。Ｌｒｐ４はＩＩ型膜貫通蛋白質をコードしている（図１）。
（１）Ｎ−ＲＤＡ法
（１）−１．アダプターの調製
下記のオリゴヌクレオチドをアニーリングさせ、１００μＭに調製した。
（１）−２．ｃＤＮＡ合成
日本ＳＬＣより入手したマウス１２．５日胚より中脳腹側を切り出し、さらに背腹方向に２つの領域に切り分けた。ＲＮｅａｓｙ ｍｉｎｉ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて全ＲＮＡを調製し、ｃＤＮＡ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｋｉｔ（ＴＡＫＡＲＡ）を用いて二本鎖ｃＤＮＡを合成した。制限酵素ＲｓａＩで消化したのち、ａｄ２を付加し、ａｄ２Ｓをプライマーとして、１５サイクルのＰＣＲでｃＤＮＡを増幅した。増幅条件は７２℃で５分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｎ−ＲＤＡのＰＣＲはすべて以下の反応液組成で行った。
１０×ＥｘＴａｑ ５μｌ
２．５ｍＭ ｄＮＴＰ ４μｌ
ＥｘＴａｑ ０．２５μｌ
１００μＭ ｐｒｉｍｅｒ ０．５μｌ
ｃＤＮＡ ２μｌ
蒸留水 ３８．２５μｌ
（１）−３．Ｄｒｉｖｅｒの作製
ａｄ２Ｓで増幅したｃＤＮＡをさらに５サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｃＤＮＡを精製し、ＲｓａＩ消化した。１回のサブトラクションに３μｇずつ使用した。
（１）−４．Ｔｅｓｔｅｒの作製
ａｄ２Ｓで増幅したｃＤＮＡをさらに５サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｃＤＮＡを精製し、ＲｓａＩ消化した。６０ｎｇのＲｓａＩ消化ｃＤＮＡにａｄ３を付加した。
（１）−５．サブトラクション１回目
上記３及び４で作製したＴｅｓｔｅｒおよびＤｒｉｖｅｒを混合し、エタノール沈殿した後に、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ １μｌに溶解した。９８℃５分の後、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ＋１Ｍ ＮａＣｌ １μｌを加えた。さらに９８℃５分の後、６８℃で１６時間ハイブリダイズさせた。
ハイブリダイズさせたｃＤＮＡをａｄ３Ｓをプライマーとして１０サイクルのＰＣＲで増幅した後（７２℃で５分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１０サイクル行った）、Ｍｕｎｇ Ｂｅａｎ Ｎｕｃｌｅａｓｅ（ＴＡＫＡＲＡ）で消化し、Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔで精製した。さらに１３サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１３サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。
（１）−６．均一化
サブトラクション１回目で増幅したｃＤＮＡ ８ｎｇに２ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ １μｌを加えた。９８℃５分の後、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ＋１Ｍ ＮａＣｌ ２μｌを加えた。さらに９８℃５分の後、６８℃で１６時間ハイブリダイズさせた。
ハイブリダイズさせたｃＤＮＡをＲｓａＩで消化し、Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔで精製した。これをａｄ３Ｓをプライマーとして１１サイクルのＰＣＲで増幅した後（９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１１サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした）ＲｓａＩで消化し、ａｄ４を付加した。
（１）−７．サブトラクション２回目
上記６でａｄ４を付加したｃＤＮＡ ２０ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、さらに、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。最終的にＲｓａＩ消化したｃＤＮＡにａｄ５を付加した。
（１）−８．サブトラクション３回目
上記７でａｄ５を付加したｃＤＮＡ ２ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、さらに、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。最終的にＲｓａＩ消化したｃＤＮＡにａｄ１３を付加した。
（１）−９．サブトラクション４回目
上記８でａｄ１３を付加したｃＤＮＡ ２ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、以下、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。増幅したｃＤＮＡをｐＣＲＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にクローニングし、ＡＢＩ３１００シーケンスアナライザーを用いて塩基配列を解析した。
２．Ｌｒｐ４遺伝子の発現解析
次に、Ｌｒｐ４遺伝子を用いて以下のプロトコールによりｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析を行った。
まず、マウス１２．５日胚をＯＣＴで包埋し、厚さ１６μｍの新鮮凍結切片を作製した。スライドガラス上で乾燥させた後に４％ＰＦＡで室温３０分間固定した。ＰＢＳで洗浄した後、ハイブリダイゼーション（１μｇ／ｍｌＤＩＧ化ＲＮＡプローブ、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ，１％ＳＤＳ，５０μｇ／ｍｌ ｙｅａｓｔ ＲＮＡ，５０μｇ／ｍｌ Ｈｅｐａｒｉｎ）を６５度で４０時間行った。その後、洗浄（５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ，１％ＳＤＳ）を６５度で行い、ＲＮａｓｅ処理（５μｇ／ｍｌ ＲＮａｓｅ）を室温５分間行った。０．２ｘＳＳＣで６５度の洗浄、１ｘＴＢＳＴで室温の洗浄ののち、ブロッキング（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｒｅａｇｅｎｔ：Ｒｏｃｈｅ）を行った。アルカリフォスファターゼ標識抗ＤＩＧ抗体（ＤＡＫＯ）を反応させ、洗浄（１ｘＴＢＳＴ、２ｍＭ Ｌｅｖａｍｉｓｏｌｅ）の後、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ（ＤＡＫＯ）を基質として発色させた。
ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析の結果、ドーパミン産生ニューロンの発生する時期であるＥ１２．５で、Ｌｒｐ４は中脳から後脳、脊髄にかけての腹側中心部に特異的発現していることが示された。後脳から脊髄にかけては、Ｓｈｈと同様の発現パターンを示し、オーガナイザー領域である底板（ｆｌｏｏｒ ｐｌａｔｅ）に特異的であることが明らかになった（図２及び７）。中脳ではＳｈｈ発現領域の中でもより中心部にのみ発現が見られた（図３及び７）。
ニューロンの成熟マーカーであるＮＣＡＭと比較した結果、Ｌｒｐ４発現細胞はＮＣＡＭ陰性の脳室領域（Ｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ Ｚｏｎｅ（ＶＺ））内の増殖前駆細胞であった。さらにドーパミンニューロンのマーカーであるチロシンヒドロキシラーゼ（ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ；ＴＨ）の発現と比較すると、ＴＨは外套層（ｍａｎｔｌｅ ｌａｙｅｒ（ＭＬ））にのみ発現しているので、同一の細胞で両者の発現が認められることはないものの、背−腹軸方向での発現領域は完全に一致していた（図３及び７）。一般に神経管（ｎｅｕｒａｌ ｔｕｂｅ）内の神経細胞は、まずＶＺ内で増殖し、分化開始とともに分裂を停止し、その後すぐ外側のＭＬに移動したのちに成熟することが知られている。従って、ドーパミン産生ニューロンの前駆細胞は、ＴＨ発現領域のすぐ内側のＶＺ内で増殖し、分裂停止後に外側に移動してからＴＨを発現すると考えられる。即ち、Ｌｒｐ４は中脳ではドーパミン産生ニューロンの前駆細胞に特異的に発現すると考えられる（図４及び５）。
３．ＥＳ細胞より分化誘導したドーパミン産生ニューロンにおけるＬｒｐ４の発現
次にＥＳ細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏでドーパミン産生ニューロンに分化誘導させた場合にＬｒｐ４が発現するかどうか検討した。
まず、ＳＤＩＡ法（Ｋａｗａｓａｋｉ ｅｔ．ａｌ．（２０００）Ｎｅｕｒｏｎ ２８（１）：３１−４０）によりＥＳ細胞よりドーパミンニューロンへの分化誘導を行った（図８上参照）。誘導後４、６、８、１０、１２日後にそれぞれ細胞を回収し、ＲＮｅａｓｙ ｍｉｎｉ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｔｏｔａｌ ＲＮＡを回収し、ＲＴ−ＰＣＲを行った。ＲＴ−ＰＣＲにおいては、最初に１μｇのｔｏｔａｌ ＲＮＡに対して、ＲＮＡ ＰＣＲ ｋｉｔ（ＴａＫａＲａ）を用いてｃＤＮＡ合成を行った。このうち１０ｎｇ、１ｎｇ、０．１ｎｇ相当分のｃＤＮＡを鋳型に用いて以下の反応系でＰＣＲを行った。
１０×ＥｘＴａｑ ２μｌ
２．５ｍＭ ｄＮＴＰ １．６μｌ
ＥｘＴａｑ ０．１μｌ
１００μＭプライマー 各０．２μｌ
ｃＤＮＡ １μｌ
蒸留水 １４．９μｌ
９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を３５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。
以下の配列のプライマーを使用した。
そして、ＲＴ−ＰＣＲによる発現解析の結果、Ｌｒｐ４はＥＳ細胞（ＣＣＥ）およびストローマ細胞（ＰＡ６）には発現していないが、分化誘導の結果、ＴＨと同様に４日目から発現が誘導されることが明らかになった（図８）。従って、胎児中脳由来のドーパミンニューロン増殖前駆細胞だけでなく、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＥＳ細胞より分化誘導したドーパミンニューロン増殖前駆細胞を分離する際にもＬｒｐ４はマーカーとして有用である。
【産業上の利用の可能性】
本発明により、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的、且つ一過性に発現する遺伝子Ｌｒｐ４が同定された。細胞における該Ｌｒｐ４の発現を指標とすることにより、安全面、生存率及びネットワーク形成能の面でもパーキンソン病を含む神経変性疾患に対する移植治療に適した細胞を選択することが可能となった。また、分裂停止前のニューロン増殖前駆細胞を選択的に得られるため、成熟した細胞の求められる治療等において使用する場合であっても、ｉｎ ｖｉｔｒｏで最適な状態へと容易に分化させることができる。さらに、本発明の遺伝子を用いて得られるドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞により、該細胞に特異的に発現している遺伝子を単離することが可能となった。該細胞は、パーキンソン病等の神経変性疾患に対する医薬を開発する上でも有用と考えられる。分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞という、ニューロン形成における初期の前駆細胞は、さらに、ニューロンの成熟過程、即ち、成熟過程に関与する種々の因子を明らかにするのに役立つ。このような因子の解明は、神経変性疾患の治療に大きく貢献することが予期される。さらに、該細胞の成熟を指標として、その過程を調節（阻害または促進）するような物質のスクリーニングに用いることもできる。
【配列表】
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【技術分野】
分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）において発現している遺伝子としてＬｒｐ４を同定した。該遺伝子の発現、または該遺伝子によりコードされる膜貫通蛋白質の発現を検出することにより、パーキンソン病（ＰＤ）等の神経変性疾患の移植治療において用いることができるドーパミン産生ニューロン前駆細胞を効率的に分離することができる。
【背景技術】
ドーパミン系は、哺乳動物の脳において重要な運動調節、ホルモン分泌調節、情動調節等に関与する非常に重要な系である。従って、ドーパミン作動性神経伝達における異常は、様々な神経系の障害を引き起こす。例えば、パーキンソン病（ＰＤ）は、中脳黒質のドーパミン産生ニューロンの特異的な脱落が原因で起こる錐体外路系の神経変性疾患である（ＨＡＲＲＩＳＯＮ’Ｓ ＰＲＩＮＣＩＰＬＥＳ ＯＦ ＩＮＴＥＲＮＡＬ ＭＥＤＩＣＩＮＥ 第２巻 第２３版，Ｉｓｓｅｌｂａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．編，ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ Ｉｎｃ．，ＮＹ（１９９４）ｐｐ．２２７５−７）。パーキンソン病の治療法としては、産生されるドーパミン量の低下を補うためにＬ−ＤＯＰＡ（３，４−ジヒドロキシフェニルアラニン）を経口投与する方法が主に採られているが、効果の持続性が良くないことが知られている。
パーキンソン病治療において、最近では失われたドーパミン産生ニューロンを補うために、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含む６〜９週齢の中絶胎児の中脳腹側領域を移植する治療法も試みられている（米国特許第５６９０９２７号；Ｓｐｅｎｃｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５４１−８；Ｆｒｅｅｄ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５４９−５５；Ｗｉｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５５６−６３；Ｋｏｒｄｏｗｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３３２：１１１８−２４；Ｄｅｆｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｂｒａｉｎ １１９：４１−５０；Ｌｏｐｅｚ−Ｌｏｚａｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｔｒａｎｓｐ．Ｐｒｏｃ．２９：９７７−８０）。しかし、現在のところ、この方法では細胞の供給面、倫理面（Ｒｏｓｅｎｓｔａｉｎ（１９９５）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．３３：１０６；Ｔｕｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．３３：１０３１−７）で問題があると共に、感染汚染の危険性、免疫学的な移植片拒絶（Ｌｏｐｅｚ−Ｌｏｚａｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｔｒａｎｓｐ．Ｐｒｏｃ．２９：９７７−８０；Ｗｉｄｎｅｒ ａｎｄ Ｂｒｕｄｉｎ（１９８８）Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．Ｒｅｖ．１３：２８７−３２４）、胎児組織が糖分解よりも脂質代謝に主に依存しているための生存率の低さ（Ｒｏｓｅｎｓｔｅｉｎ（１９９５）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．３３：１０６）等の様々な面で問題が指摘されている。
倫理面や供給不足の問題を解決するために、例えばブタ由来の皮質、線条、及び中脳細胞を用いる方法も提案されている（例えば、特表平１０−５０８４８７号公報；特表平１０−５０８４８８号公報；特表平１０−５０９０３４号公報参照）。この方法においては、拒絶反応を抑制するため、細胞表面上の抗原（ＭＨＣクラスＩ抗原）を改変するという煩雑な操作が必要とされる。移植片拒絶を解消する方法としては、例えば、セルトーリ細胞を同時に移植することにより、局在的に免疫抑制する方法も提案されている（特表平１１−５０９１７０号公報；特表平１１−５０１８１８号公報；Ｓｅｌａｗｒｙ ａｎｄ Ｃａｍｅｒｏｎ（１９９３）Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ ２：１２３−９）。ＭＨＣがマッチする血縁者、他人の骨髄、骨髄バンク、及び臍帯血バンク等から移植細胞を得ることも可能であるが、患者自身の細胞を用いることができれば、余計な操作や手間なしに拒絶反応の問題も解決することができる。
そこで、中絶胎児由来の細胞に代えて、胚性幹細胞（ＥＳ）細胞、骨髄間質細胞などの非神経系細胞からのｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるドーパミン産生ニューロンの分化系の移植材料としての利用が有望視されている。実際、ラットパーキンソン病モデルの病変線条へのＥＳ細胞移植により機能的なドーパミン産生ニューロンが形成されたとの報告もある（Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ（２００２）Ｎａｔｕｒｅ ４１８：５０−５６）。将来的にはＥＳ細胞若しくは患者本人の持つ神経幹細胞からの再生治療の重要性が増してくるものと思われる。
神経組織の損傷の治療においては脳機能の再構築が必要となり、周囲の細胞と適切なリンクを形成する（ネットワーク形成）ために成熟した細胞ではなくニューロンへとｉｎ ｖｉｖｏにおいて分化し得る細胞を移植する必要がある。ニューロン前駆細胞の移植において上述した供給面以外で問題となるのは、前駆細胞が不均一な細胞集団へと分化する可能性がある点である。例えば、パーキンソン病の治療においては、カテコールアミン含有ニューロンの中でもドーパミン産生ニューロンを選択的に移植することが必要である。これまで、パーキンソン病の治療に用いることが提案されている移植細胞としては、線条体（Ｌｉｎｄｖａｌｌ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ａｒｃｈ．Ｎｅｕｒｏｌ．４６：６１５−３１；Ｗｉｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２７：１５５６−６３）、ヒト胎児神経由来の不死化セルライン（特表平８−５０９２１５号公報；特表平１１−５０６９３０号公報；特表２００２−５２２０７０号公報）、ＮＴ２Ｚ細胞の有糸分裂後ヒトニューロン（特表平９−５０５０５５４号公報）、ニューロン始原細胞（特表平１１−５０９７２９号公報）、ドパミン等のカテコールアミンを産生するように外来遺伝子によりトランスフェクトされた細胞、骨髄ストロマ細胞（特表２００２−５０４５０３号公報；特表２００２−５１３５４５号公報）、遺伝子改変されたＥＳ細胞（Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ（２００２）Ｎａｔｕｒｅ ４１８：５０−５６）等が挙げられる。しかしながらいずれも、ドーパミン産生ニューロンまたはドーパミン産生ニューロンへと分化する細胞のみを含むものではない。
未分化な細胞集団からドーパミン産生ニューロンを選択的に濃縮・分離する方法としては、ドーパミン産生ニューロンで発現するチロシンハイドロキシラーゼ（ＴＨ）等の遺伝子のプロモーター／エンハンサーの制御下で蛍光蛋白質を発現するレポーター遺伝子を細胞集団の各細胞に導入し、蛍光を発する細胞を分離することにより、ドーパミン産生ニューロンを生きたまま可視化して濃縮・分離、または同定する方法（特開２００２−５１７７５号公報）が提案されている。この方法は、外来遺伝子の導入という煩雑な工程を不可欠とするものであり、さらに、遺伝子治療に用いることを目的とする場合、レポーター遺伝子の存在は毒性、免疫原性の面からも問題である。
【発明の開示】
現時点でのＰＤ移植治療における大きな問題の一つは、中絶胎児の中脳腹側領域あるいはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導したドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、いずれも多種の細胞の混合物である点である。神経回路形成における安全性を考えると、目的の細胞種のみを分離してから用いるのが望ましい。また、腫瘍形成の危険性を考慮すれば、分裂停止後の神経細胞を分離してから使用することが良いと考えられる。さらに、細胞の移植先の脳内での生存や、正しくネットワーク形成する能力を考えると、より早期の前駆細胞を分離することにより治療効果を増大させ得ると期待される。そこで、本発明者は、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子の単離を試みた。そして既に、分裂停止直後の神経前駆細胞で一過性に発現する遺伝子の一つとして、新規遺伝子６５Ｂ１３の単離に成功し、特許出願した（特願２００２−３０７５７３号）。
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子を単離するために、Ｅ１２．５マウス中脳腹側領域を背腹方向にさらに２つの領域に切り分けて、ドーパミン産生ニューロンを含む最も腹側の領域に特異的に発現する遺伝子をサブトラクション法（Ｎ−ＲＤＡ；ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ法；ＲＤＡ法（Ｌｉｓｔｓｙｎ ＮＡ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７）を改良（「ＤＮＡ断片の量の均一化方法及びサブストラクション法」特願２００１−１８４７５７（出願日２００１／６／１９））により同定した。単離した断片の一つはＬｒｐ４／ＣｏｒｉｎをコードするｃＤＮＡ断片であった。Ｌｒｐ４はＩＩ型膜貫通蛋白質をコードしている（図１）。
ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析の結果、Ｌｒｐ４は中脳ではドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的に発現すると考えられた（図４及び５）。Ｌｒｐ４は胎生期から成人期にかけての心臓に発現しており、血圧調整ホルモンである心房性ナトリウム利尿ペプチド（ＡＮＰ）の切断を行うと考えられているＩＩ型膜貫通プロテアーゼである。ＡＮＰは前駆型であるｐｒｏ−ＡＮＰの状態で発現し、細胞外に分泌された後にＬｒｐ４より細胞膜表面上で切断され、活性型ＡＮＰとなると考えられている。これまで、増殖中のドーパミン産生ニューロン前駆細胞で特異的に発現する膜蛋白質をコードする遺伝子は報告されていない。細胞膜表面に発現するＬｒｐ４蛋白質に対する抗体は、Ｌｒｐ４発現細胞の分離に非常に効果的であると考えられる。例えば、抗Ｌｒｐ４抗体を用いて、中脳腹側領域またはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導したドーパミン産生ニューロンを含む培養細胞から、Ｌｒｐ４発現細胞を分離することで、純粋なドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることができる（図６）。
さらに、該前駆細胞をそのまま、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させた後に移植することも可能である。本発明の前駆細胞は脳内の最適な場所で分化成熟していく可能性やｉｎ ｖｉｖｏでさらに前駆細胞が増殖する可能性もあり、長期的な治療効果が期待できる。また、Ｌｒｐ４発現細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで分化、成熟させた後に移植を行えば、ｉｎ ｖｉｖｏで何らかの理由でドーパミン産生ニューロンへの分化が行われない場合にも、治療効果が期待できる。腫瘍化等の危険性を考慮すれば、ｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させたＬｒｐ４発現細胞を分化誘導した後に、６５Ｂ１３等の分裂停止後のニューロンマーカーを用いて分離した細胞を移植すればより高い安全性が期待できる。いずれの方法でもＬｒｐ４発現細胞を分離して移植治療に用いることで、目的の細胞種のみを分離しているので安全性が高く、また、最も初期の前駆細胞を用いることができるため、生存率やネットワーク形成能等の面でも高い治療効果が期待される。分離直後の初期の前駆細胞で最高の治療効果を得られない場合があったとしても、本発明のマーカーにより分離される前駆細胞はｉｎ ｖｉｔｒｏで培養する等して成熟させることもできるため、最適な分化段階の材料を調製することを可能にする（図６）。
一方、純粋なドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることは、ドーパミン産生ニューロンに特異的な遺伝子の単離等、パーキンソン病治療のターゲット探索にも有効である。特に増殖前駆細胞を得られるということは、ドーパミン産生ニューロンの成熟過程の研究や、成熟を指標にしたスクリーニング系だけでなく、前駆細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで増殖させる薬剤のスクリーニングや、ｉｎ ｖｉｖｏで前駆細胞から分化を誘導する薬剤（ｉｎ ｖｉｖｏでの再生治療薬剤）のスクリーニング等にも有用である。
より具体的には、本発明は
［１］ 以下の（１）〜（５）の塩基配列から選択される配列を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブ、
（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列
（５）上記（１）〜（４）の配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列
［２］ 以下の（１）〜（６）から選択されるポリペプチドに対する抗体、
（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド
（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド
（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド
（６）上記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチド
［３］ ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、上記［１］記載のポリヌクレオチドとドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法、
［４］ ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、上記［２］記載の抗体とドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法、
［５］ 以下の工程を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法、
（１）上記［３］または［４］記載のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法によりドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する工程
（２）上記（１）において選択された前駆細胞を培養する工程
（３）上記（２）において培養された前駆細胞を、分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングする工程
［６］ 上記［３］〜［５］記載の方法により選択された分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞、
［７］ ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離方法であって、上記［６］記載の前駆細胞または該前駆細胞から分化、誘導若しくは増殖された細胞を用い、該細胞において特異的に発現している遺伝子を検出、単離する工程を含む方法、並びに
［８］ 成熟を指標としたスクリーニング方法であり、上記［６］記載の前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む方法、
に関する。
＜マーカーポリヌクレオチドプローブ＞
本発明のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブは、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択及び／または検出するマーカーとして使用されるものである。該プローブとして使用されるポリヌクレオチドは、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列を含むものである。配列番号：１はマウスＬｒｐ４ ｃＤＮＡの塩基配列、そして配列番号：２はヒトＬｒｐ４ ｃＤＮＡの塩基配列であり、それぞれＧｅｎＢａｎｋに登録された配列である（マウス：Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿０１６８６９；ヒト：Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＸＭ＿０３５０３７）。
ここで、「マーカーポリヌクレオチドプローブ」とは、Ｌｒｐ４の発現、特に転写されたｍＲＮＡを検出することができればよく、複数のデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはリボ核酸（ＲＮＡ）等の塩基または塩基対からなる重合体を指す。二本鎖ｃＤＮＡも組織ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションでプローブとして利用可能であることが知られており、本発明のマーカーにはそのような二本鎖ｃＤＮＡも含まれる。組織中のＲＮＡの検出において特に好ましいプローブとなるマーカーポリヌクレオチドプローブとしては、ＲＮＡプローブ（リボプローブ）を挙げることができる。また、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、天然以外の塩基、例えば、４−アセチルシチジン、５−（カルボキシヒドロキシメチル）ウリジン、２’−０−メチルシチジン、５−カルボキシメチルアミノメチル−２−チオウリジン、５−カルボキシメチルアミノメチルウリジン、ジヒドロウリジン、２’−０−メチルプソイドウリジン、β−Ｄ−ガラクトシルキュェオシン、２’−０−メチルグアノシン、イノシン、Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、１−メチルアデノシン、１−メチルプソイドウリジン、１−メチルグアノシン、１−メチルイノシン、２，２−ジメチルグアノシン、２−メチルアデノシン、２−メチルグアノシン、３−メチルシチジン、５−メチルシチジン、Ｎ６−メチルアデノシン、７−メチルグアノシン、５−メチルアミノメチルウリジン、５−メトキシアミノメチル−２−チオウリジン、β−Ｄ−マンノシルキュェオシン、５−メトキシカルボニルメチル−２−チオウリジン、５−メトキシカルボニルメチルウリジン、５−メトキシウリジン、２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシル−２−メチルリオプリン−６−イル）カルバモイル）トレオニン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）Ｎ−メチルカルバモイル）トレオニン、ウリジン−５−オキシ酢酸−メチルエステル、ウリジン−５オキシ酢酸、ワイブトキソシン、プソイドウリジン、キュェオシン、２−チオシチジン、５−メチル−２−チオウリジン、２−チオウリジン、４−チオウリジン、５−メチルウリジン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）カルバモイル）トレオニン、２’−０−メチル−５−メチルウリジン、２’−０−メチルウリジン、ワイブトシン、３−（３−アミノ−３−カルボキシプロピル）ウリジン等を必要に応じて含んでいてもよい。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に特異的に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列を含む。配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列は、配列番号：１または２に記載された塩基配列に加えて、遺伝子暗号の縮重により配列番号：１または２記載の配列とは異なる塩基配列を含むものである。本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブはまた、配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において、膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に対して相補的な配列を含むものを包含する。配列番号：３または４記載のアミノ酸配列中、シグナル配列は存在せず、マウスＬｒｐ４（配列番号：３）では１１３−１３５アミノ酸残基、ヒトＬｒｐ４（配列番号：４）では４６−６８アミノ酸残基の部分が膜貫通領域を形成している。なお、配列番号：３及び４に記載の配列も各々ＧｅｎＢａｎｋに登録されている。
ここで、或る「塩基配列に対して相補的」とは、塩基配列が鋳型に対して完全に対になっている場合のみならず、そのうちの少なくとも７０％、好ましくは８０％、より好ましくは９０％、さらに好ましくは９５％以上（例えば、９７％または９９％）が対になっているものも含む。対になっているとは、鋳型となるポリヌクレオチドの塩基配列中のＡに対しＴ（ＲＮＡの場合はＵ）、ＴまたはＵに対しＡ、Ｃに対しＧ、そしてＧに対しＣが対応して鎖が形成されていることを意味する。そして或るポリヌクレオチド同士の塩基配列レベルでの相同性は、ＢＬＡＳＴアルゴリズム（Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−８；Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：５８７３−７）によって決定することができる。このアルゴリズムに基づいた塩基配列についてのプログラムとして、ＢＬＡＳＴＮ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０）が開発されており、マーカーポリヌクレオチドプローブ配列の相同性の決定に使用することができる。具体的な解析方法については、例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ．等を参照することができる。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブには、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に特異的に発現するＬｒｐ４ポリペプチドをコードする配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むポリヌクレオチドが包含される。Ｌｒｐ４については配列番号：１または２で示される塩基配列を有するものが公知であるが、そのアルタナティブアイソフォーム、及びアレリック変異体が存在する可能性があり、そのようなアイソフォームやアレリック変異体に相補的な配列を有するものも本発明のマーカーポリペプチドとして利用することができる。このようなアイソフォーム及びアレリック変異体は、配列番号：１または２の塩基配列を含むポリヌクレオチドをプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション、プラークハイブリダイゼーション、サザンブロット等の公知のハイブリダイゼーション法により、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、ニワトリ、ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の動物のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーから得ることができる。ｃＤＮＡライブラリーの作成方法については、『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））を参照することができる。また、市販のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーを利用してもよい。
より具体的に、ｃＤＮＡライブラリーの作製においては、まず、Ｌｒｐ４を発現する細胞、臓器、組織等からグアニジン超遠心法（Ｃｈｉｒｗｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９７９）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １８：５２９４−９）、ＡＧＰＣ法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ ａｎｄ Ｓａｃｃｈｉ（１９８７）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６２：１５６−９）等の公知の手法により全ＲＮＡを調製し、ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等を用いてｍＲＮＡを精製する。ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）のような、直接ｍＲＮＡを調製するためのキットを利用してもよい。次に得られたｍＲＮＡから逆転写酵素を用いてｃＤＮＡを合成する。ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（生化学工業）のようなｃＤＮＡ合成のためのキットも市販されている。その他の方法として、ｃＤＮＡはＰＣＲを利用した５’−ＲＡＣＥ法（Ｆｒｏｈｍａｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：８９９８−９００２；Ｂｅｌｙａｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：２９１９−３２）により合成、及び増幅させてもよい。また、全長率の高いｃＤＮＡライブラリーを作製するために、オリゴキャップ法（Ｍａｒｕｙａｍａ ａｎｄ Ｓｕｇａｎｏ（１９９４）Ｇｅｎｅ １３８：１７１−４；Ｓｕｚｕｋｉ（１９９７）Ｇｅｎｅ ２００：１４９−５６）等の公知の手法を採用することもできる。上述のようにして得られたｃＤＮＡは、適当なベクター中に組み込む。
本発明におけるハイブリダイゼーション条件としては、例えば「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、５０℃」、「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」、「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」、よりストリンジェントな条件としては、例えば「２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」、「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」、「０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」等の条件を挙げることができる。より詳細には、Ｒａｐｉｄ−ｈｙｂ ｂｕｆｆｅｒ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を用いた方法として、６８℃で３０分以上プレハイブリダイゼーションを行った後、プローブを添加して１時間以上６８℃に保ってハイブリッド形成させ、その後、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、室温で２０分の洗浄を３回、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、３７℃で２０分の洗浄を３回、最後に、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、５０℃で２０分の洗浄を２回行うことも考えられる。その他、例えばＥｘｐｒｅｓｓｈｙｂ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＣＬＯＮＴＥＣＨ）中、５５℃で３０分以上プレハイブリダイゼーションを行い、標識プローブを添加し、３７〜５５℃で１時間以上インキュベートし、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、室温で２０分の洗浄を３回、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、３７℃で２０分の洗浄を１回行うこともできる。ここで、例えば、プレハイブリダイゼーション、ハイブリダイゼーションや２度目の洗浄の際の温度を上げることにより、よりストリンジェントな条件とすることができる。例えば、プレハイブリダイゼーション及びハイブリダイゼーションの温度を６０℃、さらにストリンジェントな条件としては６８℃とすることができる。当業者であれば、このようなバッファーの塩濃度、温度等の条件に加えて、その他のプローブ濃度、プローブの長さ、反応時間等の諸条件を加味し、Ｌｒｐ４のアイソフォーム、アレリック変異体、及び対応する他種生物由来の遺伝子を得るための条件を設定することができる。
ハイブリダイゼーション法の詳細な手順については、『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）；特にＳｅｃｔｉｏｎ９．４７−９．５８）、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７−１９９７）；特にＳｅｃｔｉｏｎ６．３−６．４）、『ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ １：Ｃｏｒｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（１９９５）；条件については特にＳｅｃｔｉｏｎ２．１０）等を参照することができる。ハイブリダイズするポリヌクレオチドとしては、配列番号：１または２の塩基を含む塩基配列に対して少なくとも５０％以上、好ましくは７０％、さらに好ましくは８０％、より一層好ましくは９０％（例えば、９５％以上、さらには９９％）の同一性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチドが挙げられる。このような同一性は、上述の相同性の決定と同様にＢＬＡＳＴアルゴリズム（Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−８；Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：５８７３−７）によって決定することができる。上述の塩基配列についてのプログラムＢＬＡＳＴＮの他に、このアルゴリズムに基づいたアミノ酸配列についての同一性を決定するプログラムとしてＢＬＡＳＴＸ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０）等が開発されており、利用可能である。具体的な解析方法については先に挙げたように、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ．等を参照することができる。
その他、遺伝子増幅技術（ＰＣＲ）（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ ６．１−６．４）により、Ｌｒｐ４のアイソフォームやアレリック変異体等、Ｌｒｐ４と類似した構造及び機能を有する遺伝子を、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、ニワトリ、ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の動物のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーから、配列番号：１または２に記載の塩基配列を基に設計したプライマーを利用して得ることができる。
ポリヌクレオチドの塩基配列は、慣用の方法により配列決定して確認することができる。例えば、ジデオキシヌクレオチドチェーンターミネーション法（Ｓａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９７７）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７４：５４６３）等による確認が可能である。また、適当なＤＮＡシークエンサーを利用して配列を解析することも可能である。
さらに、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブには、上記（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列、（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な配列、（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域部分を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な配列、及び（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列の各塩基配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドが含まれる。
このような少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドは、Ｌｒｐ４ ｍＲＮＡの発現を検出するためのプローブ、増幅して検出を行うためのプライマーとして利用することができる。通常、プローブとして使用する場合には１５〜１００、好ましくは１５〜３５個の塩基より構成されていることが望ましく、プライマーとして使用する場合には、少なくとも１５、好ましくは３０個の塩基より構成されていることが望ましい。プライマーの場合には、３’末端側の領域を標的とする配列に対して相補的な配列に、５’末端側には制限酵素認識配列、タグ等を付加した形態に設計することができる。このような少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列からなるポリヌクレオチドは、Ｌｒｐ４ポリヌクレオチドに対してハイブリダイズすることができる。
本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは、Ｌｒｐ４を発現する細胞より上述のハイブリダイゼーション法、ＰＣＲ法等により調製することができる。また、Ｌｒｐ４の公知の配列情報に基づいて、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブは化学合成により製造することもできる。特に組織中のＲＮＡの検出に好ましいとされるリボプローブは、例えば、プラスミドベクターｐＳＰ６４にクローニングしたＬｒｐ４遺伝子またはその一部を逆方向に挿入し、挿入した配列部分をランオフ転写することにより得ることができる。ｐＳＰ６４はＳＰ６プロモーターを含むものであるが、その他、ファージＴ３、Ｔ７プロモーター及びＲＮＡポリメラーゼを組合せてリボプローブを作成する方法も公知である。
＜抗体＞
本発明により、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞を脳組織、または培養細胞より選択するために利用することができる抗体が提供される。本発明の抗体にはポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体（ｓｃＦＶ）（Ｈｕｓｔｏｎ ｅｔ ｌａ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９−８３；Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ，ｖｏｌ．１１３，Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ ｅｄ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ（１９９４）ｐｐ．２６９−３１５）、ヒト化抗体、多特異性抗体（ＬｅＤｏｕｓｓａｌ ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ Ｓｕｐｐｌ．７：５８−６２；Ｐａｕｌｕｓ（１９８５）Ｂｅｈｒｉｎｇ Ｉｎｓｔ．Ｍｉｔｔ．７８：１１８−３２；Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｃｕｅｌｌｏ（１９８３）Ｎａｔｕｒｅ ３０５：５３７−９；Ｚｉｍｍｅｒｍａｎｎ（１９８６）Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．１０５：１７６−２６０；Ｖａｎ Ｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ４３：９４４−９）、並びに、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｃ、Ｆｖ等の抗体断片が含まれる。さらに、本発明の抗体は必要に応じ、ＰＥＧ等により修飾されていてもよい。その他、本発明の抗体は、β−ガラクトシダーゼ、マルトース結合蛋白質、ＧＳＴ、緑色蛍光蛋白質（ＧＦＰ）等との融合蛋白質として製造することにより二次抗体を用いずに検出できるようにしてもよい。また、ビオチン等により抗体を標識することによりアビジン、ストレプトアビジン等を用いて抗体の回収を行い得るように改変してもよい。
本発明の抗体は、（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド、（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド、（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド、（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド、並びに（６）前記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチドのいずれかに対して特異的な抗体である。
本発明の抗体は、Ｌｒｐ４ポリペプチド若しくはその断片、またはそれらを発現する細胞を感作抗原として利用することにより製造することができる。また、Ｌｒｐ４ポリペプチドの短い断片はウシ血清アルブミン、キーホールリンペットヘモシアニン、卵白アルブミン等のキャリアに結合した形で免疫原として用いてもよい。また、Ｌｒｐ４のポリペプチドまたはその断片と共に、アルミニウムアジュバント、完全（または不完全）フロイントアジュバント、百日咳菌アジュバント等の公知のアジュバントを抗原に対する免疫応答を強化するために用いてもよい。
本発明における「Ｌｒｐ４ポリペプチド」はペプチド重合体であり、配列番号：３または４記載のアミノ酸配列を有する蛋白質を好ましい例として挙げることができる。Ｌｒｐ４ポリペプチドを構成するアミノ酸残基は天然に存在するものでも、また修飾されたものであっても良い。さらに、Ｌｒｐ４ポリペプチドには膜貫通領域部分を欠く蛋白質、及びその他のペプチド配列により修飾された融合蛋白質が含まれる。
本発明において、Ｌｒｐ４ポリペプチドは、Ｌｒｐ４ポリペプチドの抗原性を有すればよく、配列番号：３または４のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドを包含する。１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなる変異ポリペプチドで、元のポリペプチドと同じ生物学的活性が維持されることは公知である（Ｍａｒｋ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：５６６２−６；Ｚｏｌｌｅｒ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ（１９８２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１０：６４８７−５００；Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２４：１４３１−３；Ｄａｌｂａｄｉｅ−ＭｃＦａｒｌａｎｄ ｅｔ ａｌ．（１９８２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７９：６４０９−１３）。そして、このような配列番号：３または４のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列を有するＬｒｐ４の抗原性を維持したポリペプチドは、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを公知の『Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．』（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７−１９９７）；特にＳｅｃｔｉｏｎ８．１−８．５）、Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ−Ｇｏｔｏ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｇｅｎｅ １５２：２７１−５、Ｋｕｎｋｅｌ（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：４８８−９２、Ｋｒａｍｅｒ ａｎｄ Ｆｒｉｔｚ（１９８７）Ｍｅｔｈｏｄ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１５４：３５０−６７、Ｋｕｎｋｅｌ（１９８８）Ｍｅｔｈｏｄ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．８５：２７６３−６等に記載の部位特異的変異誘発法等の方法に従って調製し、適宜発現させることにより得ることができる。
Ｌｒｐ４ポリペプチド断片は、上記Ｌｒｐ４ポリペプチドの一部と同一であり、少なくとも８アミノ酸残基以上（例えば、８、１０、１２、または１５アミノ酸残基以上）からなるポリペプチド断片である。特に好ましい断片としては、アミノ末端、カルボキシル末端、膜貫通ドメインを欠失したポリペプチド断片を挙げることができる。αヘリックス及びαヘリックス形成領域、α両親媒性領域、βシート及びβシート形成領域、β両親媒性領域、基質結合領域、高抗原指数領域、コイル及びコイル形成領域、親水性領域、疎水性領域、ターン及びターン形成領域、並びに表面形成領域を含む断片がＬｒｐ４のポリペプチド断片に含まれる。本発明におけるＬｒｐ４のポリペプチド断片は、Ｌｒｐ４ポリペプチドの抗原性さえ有すればどのような断片であってもよい。ポリペプチドの抗原決定部位は、蛋白質のアミノ酸配列上の疎水性／親水性を解析する方法（Ｋｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ（１９８２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５７：１０５−２２）、二次構造を解析する方法（Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎ（１９７８）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ ４７：２５１−７６）により推定し、さらにコンピュータープログラム（Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１５１：５４０−６（１９８５））、または短いペプチドを合成しその抗原性を確認するＰＥＰＳＣＡＮ法（特表昭６０−５００６８４号公報）等により確認することができる。
Ｌｒｐ４ポリペプチド、及びポリペプチド断片は、Ｌｒｐ４を発現する細胞・組織等を原料として、その物理的性質等に基づいて単離することができる。また、公知の遺伝子組換え技術により、また化学的な合成法により製造することもできる。例えば、Ｌｒｐ４ポリペプチドをｉｎ ｖｉｔｒｏで製造する場合、ｉｎ ｖｉｔｒｏトランスレーション（Ｄａｓｓｏ ａｎｄ Ｊａｃｋｓｏｎ（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：３１２９−４４）等の方法に従って、細胞を含まない試験管内の系でポリペプチドを製造することができる。それに対して、細胞を用いてポリペプチドを製造する場合、まず所望のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを適当なベクターに組み込み、適当な宿主細胞を選択し該ベクターによる形質転換を行い、形質転換された細胞を培養することにより所望のポリペプチドを得ることができる。
適当なベクターとして、プラスミド、コスミド、ウイルス、バクテリオファージ、クローニング用ベクター、発現ベクター等の種々のベクターを挙げることができる（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）；Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７））。ベクターは、導入された宿主細胞内で所望のポリヌクレオチドが発現されるように制御配列を有し、ポリヌクレオチドは該制御配列下に結合される。ここで「制御配列」とは、宿主細胞が原核生物であればプロモーター、リボソーム結合部位、及びターミネーターを含み、真核生物の場合は、プロモーター及びターミネーターであり、場合によってトランスアクチベーター、転写因子、転写物を安定化するポリＡシグナル、スプライシング及びポリアデニル化シグナル等が含まれる。このような制御配列は、それに連結されたポリヌクレオチドの発現に必要とされるすべての構成成分を含むものである。ベクターは、選択可能なマーカーを含んでいてもよい。さらに、細胞内で発現されたポリペプチドを小胞体内腔、グラム陰性菌を宿主とする場合ペリプラズム内、または細胞外へと移行させるために必要とされるシグナルペプチドを目的のポリペプチドに付加するようにして発現ベクターへ組み込むこともできる。このようなシグナルペプチドとして、異種蛋白質由来のシグナルペプチドを利用することができる。さらに、必要に応じリンカーの付加、開始コドン（ＡＴＧ）、終止コドン（ＴＡＡ、ＴＡＧまたはＴＧＡ）の挿入を行ってもよい。
ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるポリペプチドの発現を可能にするベクターとしては、ｐＢＥＳＴ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を例示することができる。また、原核細胞宿主における発現に適した種々のベクターが公知であり（『微生物学基礎講座８ 遺伝子工学』（共立出版）等参照）、原核細胞を宿主として選択した場合、当業者であれば選択した宿主に適したベクター、ベクターの宿主への導入方法を適宜選ぶことができる。その他、酵母等の真菌類、高等植物、昆虫、魚類、両生類、爬虫類、鳥類、哺乳類、種々の培養系細胞（ＣＯＳ、Ｈｅｌａ、Ｃ１２７、３Ｔ３、ＢＨＫ、ＨＥＫ２９３、Ｂｏｗｅｓメラノーマ細胞）、ミエローマ、Ｖｅｒｏ、Ｎａｍａｌｗａ、Ｎａｍａｌｗａ ＫＪＭ−１、ＨＢＴ５６３７（特開昭６３−２９９号公報）等）もＬｒｐ４ポリペプチド及びその抗原性断片を発現させる宿主として利用することができ、各細胞に適したベクター系、ベクターの宿主細胞への導入手法も公知である。さらに、動物の生体内（Ｓｕｓｕｍｕ（１９８５）Ｎａｔｕｒｅ ３１５：５９２−４；Ｌｕｂｏｎ（１９９８）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．４：１−５４等参照）、及び植物体において外来蛋白質を発現させる方法も公知でありＬｒｐ４ポリヌクレオチドを発現させるために利用することができる。
ベクターへのＤＮＡの挿入は、制限酵素サイトを利用したリガーゼ反応により行うことができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．４−１１．１１；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）Ｓｅｃｔｉｏｎ ５．６１−５．６３）。また必要に応じ、使用する宿主のコドン使用頻度を考慮して、発現効率の高い塩基配列を選択し、Ｌｒｐ４ポリペプチドコード発現ベクターを設計することができる（Ｇｒａｎｔｈａｍ ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．９：ｒ４３−７４）。Ｌｒｐ４ポリペプチドを産生する宿主は、Ｌｒｐ４ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを細胞内に含むものであるが、該ポリヌクレオチドは、宿主細胞のゲノム上の天然に存在する位置になければよく、該ポリヌクレオチド自身のプロモーター支配下にあっても、ゲノム中に組み込まれていても、染色体外の構造として保持されていても良い。
宿主細胞の培養は、選択した細胞に適した公知の方法により行う。例えば、動物細胞を選択した場合には、ＤＭＥＭ（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ８：３９６（１９５９）、ＭＥＭ（Ｓｃｉｅｎｃｅ １２２：５０１（１９５２））、ＲＰＭＩ１６４０（Ｊ．Ａｍ．Ｍｅｄ．Ａｓｓｏｃ．１９９：５１９（１９６７））、１９９（Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．７３：１（１９５０））、ＩＭＤＭ等の培地を用い、必要に応じウシ胎児血清（ＦＣＳ）等の血清を添加し、ｐＨ約６〜８、３０〜４０℃において１５〜２００時間前後の培養を行うことができる。その他、必要に応じ途中で培地の交換を行ったり、通気及び攪拌を行ったりすることができる。
通常、遺伝子組換え技術により製造されたＬｒｐ４ポリペプチドは、まず、ポリペプチドが細胞外に分泌される場合には培地を、特にトランスジェニック生物の場合には体液等を、細胞内に産生される場合には細胞を溶解して溶解物の回収を行う。そして、蛋白質の精製方法として公知の塩析、蒸留、各種クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、ゲル濾過、限外濾過、再結晶、酸抽出、透析、免疫沈降、溶媒沈澱、溶媒抽出、硫安またはエタノール沈澱等を適宜組合せることにより所望のポリペプチドを精製する。クロマトグラフィーとしては、アニオンまたはカチオン交換等のイオン交換、アフィニティー、逆相、吸着、ゲル濾過、疎水性、ヒドロキシアパタイト、ホスホセルロース、レクチンクロマトグラフィー等が公知である（Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｃｏｕｒｓｅ Ｍａｎｕａｌ，Ｍａｒｓｈａｋ ｅｔ ａｌ．ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９９６））。ＨＰＬＣ、ＦＰＬＣ等の液相クロマトグラフィーを用いて行うことができる。また、例えば、ＧＳＴとの融合蛋白質とした場合にはグルタチオンカラムを、ヒスチジンタグを付加した融合蛋白質とした場合にはニッケルカラムを用いた精製法も利用できる。Ｌｒｐ４ポリペプチドを融合蛋白質として製造した場合には、必要に応じて精製後にトロンビンまたはファクターＸａ等を使用して不要な部分を切断することもできる。
また、天然由来のポリペプチドを精製して取得してもよい。例えば、Ｌｒｐ４ポリペプチドに対する抗体を利用して、アフィニティークロマトグラフィーにより精製することもできる（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １６．１−１６．１９）。さらに、精製したポリペプチドを必要に応じキモトリプシン、グルコシダーゼ、トリプシン、プロテインキナーゼ、リシルエンドペプチダーゼ等の酵素を用いて修飾することも可能である。一方、Ｌｒｐ４のポリペプチド断片は、上述のＬｒｐ４ポリペプチドと同じような合成及び遺伝子工学的な手法に加えて、ペプチダーゼのような適当な酵素を用いてＬｒｐ４ポリペプチドを切断して製造することもできる。
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択するためのポリクローナル抗体は、例えば、上述のようにして精製されたＬｒｐ４のポリペプチドまたはその断片を所望によりアジュバントと共に哺乳動物に免疫し、免疫した動物より血清を得る。ここで用いる哺乳動物は、特に限定されないが、ゲッ歯目、ウサギ目、霊長目の動物が一般的である。マウス、ラット、ハムスター等のゲッ歯目、ウサギ等のウサギ目、カニクイザル、アカゲザル、マントヒヒ、チンパンジー等のサル等の霊長目の動物が挙げられる。動物の免疫化は、感作抗原をＰｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）または生理食塩水等で適宜希釈、懸濁し、必要に応じアジュバントを混合して乳化した後、動物の腹腔内または皮下に注射して行われる。その後、好ましくは、フロイント不完全アジュバントに混合した感作抗原を４〜２１日毎に数回投与する。抗体の産生は、血清中の所望の抗体レベルを慣用の方法により測定することにより確認することができる。最終的に、血清そのものをポリクローナル抗体として用いても良いし、さらに精製して用いてもよい。具体的な方法として、例えば、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．１２−１１．１３）を参照することができる。
また、モノクローナル抗体を産生するためには、まず、上述のようにして免疫化した動物より脾臓を摘出し、該脾臓より免疫細胞を分離し、適当なミエローマ細胞とポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等を用いて融合してハイブリドーマを作成する。細胞の融合は、Ｍｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｇａｌｆｒｅ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ（１９８１）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．７３：３−４６）に準じて行うことができる。ここで、適当なミエローマ細胞として特に、融合細胞を薬剤により選択することを可能にする細胞を挙げられる。このようなミエローマを用いた場合、融合されたハイブリドーマは、融合された細胞以外は死滅するヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む培養液（ＨＡＴ培養液）で培養して選択する。次に、作成されたハイブリドーマの中から、本発明のポリペプチドまたはその断片に対して結合する抗体を産生するクローンを選択する。その後、選択したクローンをマウス等の腹腔内に移植し、腹水を回収してモノクローナル抗体を得る。また、具体的な方法として、『Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ』（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（１９８７）Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．４−１１．１１）を参照することもできる。
ハイブリドーマは、その他、最初にＥＢウイルスに感染させたヒトリンパ球をｉｎ ｖｉｔｒｏで免疫原を用いて感作し、感作リンパ球をヒト由来のミエローマ細胞（Ｕ２６６等）と融合し、ヒト抗体を産生するハイブリドーマを得る方法（特開昭６３−１７６８８号公報）によっても得ることができる。また、ヒト抗体遺伝子のレパートリーを有するトランスジェニック動物を感作して製造した抗体産生細胞を用いても、ヒト抗体を得ることができる（ＷＯ９２／０３９１８；ＷＯ９３−０２２２７；ＷＯ９４／０２６０２；ＷＯ９４／２５５８５；ＷＯ９６／３３７３５；ＷＯ９６／３４０９６；Ｍｅｎｄｅｚ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．１５：１４６−５６等）。ハイブリドーマを用いない例としては、抗体を産生するリンパ球等の免疫細胞に癌遺伝子を導入して不死化する方法が挙げられる。
また、遺伝子組換え技術により抗体を製造することもできる（Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ ａｎｄ Ｌａｒｒｉｃｋ（１９９０）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ＭａｃＭｉｌｌａｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ ＬＴＤ．，ＵＫ参照）。そのためには、まず、抗体をコードする遺伝子をハイブリドーマまたは抗体産生細胞（感作リンパ球等）からクローニングする。得られた遺伝子を適当なベクターに組み込み、宿主に該ベクターを導入し、宿主を培養することにより抗体を産生させる。このような組換え型の抗体も本発明の抗体に含まれる。代表的な組換え型の抗体として、非ヒト抗体由来可変領域及びヒト抗体由来定常領域とからなるキメラ抗体、並びに非ヒト抗体由来相補性決定領域（ＣＤＲ）、及び、ヒト抗体由来フレームワーク領域（ＦＲ）及び定常領域とからなるヒト化抗体が挙げられる（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ．（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：５２２−５；Ｒｅｉｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３−９；Ｐｒｅｓｔａ（１９９２）Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．２：５９３−６；Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．２０３：９９−１２１（１９９１））。
抗体断片は、上述のポリクローナルまたはモノクローナル抗体をパパイン、ペプシン等の酵素で処理することにより製造し得る。または、抗体断片をコードする遺伝子を用いて遺伝子工学的に製造することも可能である（Ｃｏ ｅｔ ａｌ．，（１９９４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２：２９６８−７６；Ｂｅｔｔｅｒ ａｎｄ Ｈｏｒｗｉｔｚ（１９８９）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１７８：４７６−９６；Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ ａｎｄ Ｓｋｅｒｒａ（１９８９）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１７８：４９７−５１５；Ｌａｍｏｙｉ（１９８６）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１２１：６５２−６３；Ｒｏｕｓｓｅａｕｘ ｅｔ ａｌ．（１９８６）１２１：６６３−９；Ｂｉｒｄ ａｎｄ Ｗａｌｋｅｒ（１９９１）Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．９：１３２−７参照）。
多特異性抗体には、二特異性抗体（ＢｓＡｂ）、ダイアボディ（Ｄｂ）等が含まれる。多特異性抗体は、（１）異なる特異性の抗体を異種二機能性リンカーにより化学的にカップリングする方法（Ｐａｕｌｕｓ（１９８５）Ｂｅｈｒｉｎｇ Ｉｎｓｔ．Ｍｉｌｌ．７８：１１８−３２）、（２）異なるモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマを融合する方法（Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｃｕｅｌｌｏ（１９８３）Ｎａｔｕｒｅ ３０５：５３７−９）、（３）異なるモノクローナル抗体の軽鎖及び重鎖遺伝子（４種のＤＮＡ）によりマウス骨髄腫細胞等の真核細胞発現系をトランスフェクションした後、二特異性の一価部分を単離する方法（Ｚｉｍｍｅｒｍａｎｎ（１９８６）Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．１０５：１７６−２６０；Ｖａｎ Ｄｉｊｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ４３：９４４−９）等により作製することができる。一方、Ｄｂは遺伝子融合により構築され得る二価の２本のポリペプチド鎖から構成されるダイマーの抗体断片であり、公知の手法により作製することができる（Ｈｏｌｌｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４−８；ＥＰ４０４０９７；ＷＯ９３／１１１６１参照）。
抗体及び抗体断片の回収及び精製は、プロテインＡ及びＧを用いて行う他、抗体以外のポリペプチドの製造の場合と同様に上記した蛋白質精製技術によっても行い得る（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））。例えば、本発明の抗体の精製にプロテインＡを利用する場合、Ｈｙｐｅｒ Ｄ、ＰＯＲＯＳ、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等のプロテインＡカラムが公知であり、使用可能である。得られた抗体の濃度は、その吸光度を測定することにより、または酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）等により決定することができる。
抗体の抗原結合活性は、吸光度測定、蛍光抗体法、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、ＥＬＩＳＡ等により測定することができる。ＥＬＩＳＡ法により測定する場合、本発明の抗体をプレート等の担体に固相化し、次いでＬｒｐ４ポリペプチドを添加した後、目的とする抗体を含む試料を添加する。ここで、抗体を含む試料としては、抗体産性細胞の培養上清、精製抗体等が考えられる。続いて、本発明の抗体を認識する二次抗体を添加し、プレートのインキュベーションを行う。その後、プレートを洗浄し、二次抗体に付加された標識を検出する。即ち、二次抗体がアルカリホスファターゼで標識されている場合には、ｐ−ニトロフェニルリン酸等の酵素基質を添加して吸光度を測定することで、抗原結合活性を測定することができる。また、抗体の活性評価に、ＢＩＡｃｏｒｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）等の市販の系を使用することもできる。
＜ドーパミン産生ニューロンの選択方法＞
本発明により分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択的に均一な集団として選択する方法が提供された。分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブまたは抗体を用いて選択することができる。ここで、「選択」という用語は、或る試料中におけるドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞の存在を検出すること、及び、存在を検出しさらに分離または単離することの両方を含むものである。より具体的には、本発明は、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブとドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含むドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法を提供するものである。該方法においては、マーカーポリヌクレオチドプローブを好ましくは放射性同位体または非放射性化合物で標識しておく。例えば、標識するための放射性同位体としては、３５Ｓ、３Ｈ等を挙げることができる。放射標識したマーカーポリヌクレオチドプローブを用いた場合、エマルションオートラジオグラフィーにより銀粒子を検出することによりマーカーと結合するＲＮＡを検出することができる。また、マーカーポリヌクレオチドプローブ標識のための非放射性同位体としては、ビオチン、ジゴキシゲニン等が例示される。ビオチン標識マーカーの検出は、例えば、蛍光、または、アルカリ性ホスファターゼ若しくは西洋ワサビペルオキシダーゼ等の酵素を標識したアビジンを用いて行うことができる。一方、ジゴキシゲニン標識マーカーの検出には、蛍光、または、アルカリ性ホスファターゼ若しくは西洋ワサビペルオキシダーゼ等の酵素を標識した抗ジゴキシゲニン抗体を使用することができる。酵素標識を使用する場合には、酵素の基質と共にインキュベートし、安定な色素をマーカー位置に沈着させることで検出を行う。特に蛍光を利用した、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリッド形成法（ＦＩＳＨ）が簡便であり、特に好ましいものである。
また、本発明により、本発明のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択するための抗体とドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含むドーパミン産生ニューロンの選択方法が提供される。即ち、ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を含むことが予測される細胞試料と本発明の抗体とを接触させ、抗体に結合する細胞を選択することでＬｒｐ４ポリペプチドを発現している細胞、即ち、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を取得できる（図６参照）。細胞との接触前に、抗体を適当な担体に固定化して用いることも可能である。または、細胞と抗体とを接触させ、結合させた後、抗体のアフィニティーによる精製を行うことで、該抗体と結合した細胞を選択的に回収することもできる。例えば、本発明の抗体がビオチンと結合されている場合には、アビジンやストレプトアビジンを結合したプレートやカラムに対して添加することにより精製を行うことができる。その他、例えば、磁性粒子を抗体に結合し、該抗体及び抗体に結合したＬｒｐ４を細胞表面上に発現している細胞を磁石を利用して回収することもできる。また、セルソーター、及び蛍光等により標識した抗Ｌｒｐ４抗体を使用して、フローサイトメトリーによりＬｒｐ４を発現するドーパミン産生ニューロンを選択することもできる。
さらに、本発明により、本発明のマーカーポリヌクレオチドプローブまたは抗体を使用して選択されたドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を培養し、培養した前駆細胞を分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングすることにより、腫瘍化する危険性の低い移植治療に特に適したドーパミン産生ニューロン前駆細胞を得ることができる。分裂停止後のニューロンマーカーとしては、例えば６５Ｂ１３を挙げることができる。例えば、６５ＢＢ１３ポリペプチドに対する抗体を培養したドーパミン産生ニューロン前駆細胞と接触させて６５Ｂ１３ポリペプチドを発現している細胞を選択することにより分裂停止直後のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択することができる。また、６５Ｂ１３はＩｇドメイン接着分子様の構造を有する。培養細胞中で６５Ｂ１３発現させた場合、６５Ｂ１３を発現させた細胞同士は接着するのに対し、６５Ｂ１３を発現させていない細胞とは接着しない。そのため、６５Ｂ１３を介した接着はホモフィリックな結合と考えられている。そこで、６５Ｂ１３ポリペプチドの細胞外領域部分の接着を利用した６５Ｂ１３発現ドーパミン産生ニューロン前駆細胞のスクリーニングも可能である。
Ｌｒｐ４発現ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞及び６５Ｂ１３発現ドーパミン産生ニューロン前駆細胞の選択及び／またはスクリーニングは、各々Ｌｒｐ４または６５Ｂ１３に対するプロモーターを利用して行うこともできる（例えば、特開２００２−５１７７５号公報参照）。例えば、後述するＬｒｐ４の発現領域解析により得られるプロモーター部分に対し、ＧＦＰ等の検出可能なマーカーをコードする遺伝子を連結した構築物を含むベクターを細胞に対してトランスフェクションすることができる。その他、Ｌｒｐ４遺伝子座へマーカーをコードする遺伝子をノックインすることができる。どちらの場合にも、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的にマーカー遺伝子の発現が検出されることとなり、特異的な細胞の選択が可能となる。６５Ｂ１３についてもＬｒｐ４と同様の方法によりスクリーニングが可能である。６５Ｂ１３については、例えば、特願２００２−３０７５７３号明細書に記載の配列を参照することができる。
ここで使用する細胞試料は好ましくは、中脳腹側領域の細胞、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで分化誘導されたドーパミン産生ニューロンを含む培養培地である。ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるドーパミン産生ニューロンの分化誘導は、公知のＥＳ細胞、骨髄間質細胞、神経由来の不死化セルライン（特表平８−５０９２１５号公報；特表平１１−５０６９３０号公報；特表２００２−５２２０７０号公報）、ニューロン始原細胞（特表平１１−５０９７２９号公報）等の細胞を出発材料として、公知の方法により行うことができる。通常、ドーパミン産生ニューロンは、脳のドーパミン産生ニューロン領域から得た組織を神経組織由来の支持細胞層と共培養することにより分化させることができる。さらに、線条体及び皮質等の通常非ドーパミン産生神経組織からドーパミン産生細胞を誘導する方法も知られている（特表平１０−５０９３１９号公報）。また、低酸素条件下での培養により、より多くドーパミン産生ニューロンを含む細胞が得られるとの報告もある（特表２００２−５３００６８号公報）。本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞の選択に用いる細胞試料は、これらを含む如何なる方法により分離または培養された細胞群であってもよい。
また、本発明の抗体またはポリペプチドを固定する担体としては、細胞に対して無害なものである必要がある。例えば、合成または天然の有機高分子化合物、ガラスビーズ、シリカゲル、アルミナ、活性炭等の無機材料、及びこれらの表面に多糖類、合成高分子等をコーティングしたものが考えられる。担体の形状には特に制限はなく、膜状、繊維状、顆粒状、中空糸状、不織布状、多孔形状、ハニカム形状等が挙げられ、その厚さ、表面積、太さ、長さ、形状、大きさを種々変えることにより接触面積を制御することができる。
＜ドーパミン産生ニューロン前駆細胞＞
このようにしてＬｒｐ４の発現を指標として獲得された細胞は、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞であることから、従来の雑多な細胞集団または外来遺伝子を導入したドーパミン産生ニューロンと比べて、安全性、生存率、ネットワーク形成能の面でＰＤ等の神経変性疾患の移植治療に好ましいものである。Ｌｒｐ４の発現を指標として獲得された細胞は、そのまま、またはｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖させた後に移植に使用することができる（図６）。本発明のＬｒｐ４の発現を指標として選択されるドーパミン産生ニューロン前駆細胞は増殖中の前駆細胞であることから、脳内の最適な場所で分化成熟していく可能性、またｉｎ ｖｉｖｏにおいてさらに前駆細胞が増殖する可能性があることから、より長期的な治療効果が期待される。さらに、本方法により得られた本発明の細胞（群）は、分裂停止前の前駆細胞であることから、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて培地等の条件を選択することにより適当な段階まで分化させることも可能であり、種々の神経移植治療の材料としても好ましいものである。例えば、前述したように、Ｌｒｐ４の発現を指標として選択された細胞について、さらに細胞分裂停止直後のマーカー（例えば、６５Ｂ１３）を指標とした選択を行うことにより、より移植の上では安全性の高い細胞を得ることもできる。
本発明の方法により得られたニューロン前駆細胞の移植では、１×１０３〜１×１０６個、さらに好ましくは５〜６×１０４個のニューロンを移植する。第１の方法としては、細胞の懸濁液を脳に移植する定位脳固定術（ｓｔｅｒｅｏｔａｘｉｃ ｓｕｒｇｅｒｙ）が挙げられる。また、ミクロ手術（ｍｉｃｒｏｓｕｒｇｅｒｙ）により細胞を移植しても良い。ニューロン組織の移植方法については、Ｂａｃｋｌｕｎｄ等（Ｂａｃｋｌｕｎｄ ｅｔ ａｌ．（１９８５）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．６２：１６９−７３）、Ｌｉｎｄｖａｌｌ等（Ｌｉｎｄｖａｌｌ ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．２２：４５７−６８）、Ｍａｄｒａｚｏ等（Ｍａｄｒａｚｏ ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ｎｅｗ Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１６：８３１−４）の方法を参照することができる。
さらに、本発明の細胞は、ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離、ＰＤ治療のターゲット探索、ドーパミン産生ニューロンの成熟過程の解明、並びに成熟を指標としたスクリーニング等にも利用することができる。
＜遺伝子発現レベルの比較＞
本発明の抗体を用いて得られた分裂停止前のドーパミン産生ニューロン前駆細胞は、該細胞において特異的に発現している遺伝子を単離する材料として使用することができる。さらに、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を分化、誘導、または増殖させた細胞に特異的に発現している遺伝子を調べ、単離することもできる。また、分化／誘導／増殖させた細胞と元の前駆細胞とにおいて発現レベルに差違のある遺伝子を調べることによりドーパミン産生ニューロンの生体内における分化に必要とされる遺伝子を調べることもできる。このような遺伝子はドーパミン産生ニューロンにおける何等かの欠陥が病因となっている疾病の治療対象候補となり得るので、当該遺伝子を決定し、単離することは非常に有用である。
本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞と該細胞から分化／誘導／増殖された細胞若しくはその他の細胞、または該分化／誘導／増殖された細胞とその他の細胞との間での遺伝子の発現レベルの比較は、慣用の細胞ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、ノーザンブロットハイブリダイゼーション、ＲＮＡドットブロットハイブリダイゼーション、逆転写ＰＣＲ、ＲＮａｓｅ保護アッセイ、ＤＮＡマイクロアレイハイブリダイゼーション、遺伝子発現の連続解析（ＳＡＧＥ；ｓｅｒｉａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）（Ｖｅｌｃｕｌｅｓｃｕ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７０：４８４−７）、差し引きハイブリダイゼーション（ｓｕｂｔｒａｃｔｉｖｅ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）、代表差違分析（ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ；ＲＤＡ）（Ｌｉｓｉｔｓｙｎ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７）等により行うことができる。
細胞ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションでは、特定のＲＮＡ配列に特異的な標識プローブを用い細胞から調製した総ＲＮＡまたはｐｏｌｙＡ＋ＲＮＡに対してハイブリダイゼーションを行うことにより、個々の細胞におけるＲＮＡのプロセッシング、輸送、細胞質への局在化が起こる場所等を調べることができる。また、ＲＮＡの大きさをゲル電気泳動等によりサイズ分画して決定することもできる。また、定量的な蛍光ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）及びデジタル画像顕微鏡を用いれば、ＲＮＡ転写産物をｉｎ ｓｉｔｕで視覚的に捉えることも可能であり（Ｆｅｍｉｎｏ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８０：５８５−９０）、本発明において利用することができる。
遺伝子発現の解析で逆転写ＰＣＲを用いた場合、特定遺伝子の発現を大まかに定量することができる。本方法では、１つのＲＮＡ転写産物の種々のアイソフォームを検出及び解析することも可能である。逆転写ＰＣＲにおいてはまず、エキソン特異性プライマーを用いた逆転写ＰＣＲを行い、予想された産物以外の増幅産物が検出された場合、それらを解析することにより選択的スプライシングにより生じるｍＲＮＡアイソフォームを同定することが可能である。例えば、Ｐｙｋｅｔｔ ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｈｕｍ．Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．３：５５９−６４等に記載の方法を参照することができる。特に大まかな発現パターンを迅速に解析することが求められる場合、本発明のＰＣＲを利用した本方法は、その速さ、感度の高さ、簡便さの点からも望ましいものである。
ＤＮＡチップを使用することにより、遺伝子発現スクリーニングの能率を向上させることができる。ここで、ＤＮＡチップとは、ガラス等の担体表面上にオリゴヌクレオチドまたはＤＮＡクローン等を高密度に固定した小型のアレイである。例えば、多重発現スクリーニングを行うためには、各目的遺伝子に対するｃＤＮＡクローンまたは該遺伝子特異的なオリゴヌクレオチドをチップに対して固定化し、マイクロアレイを作製する。次に本発明のドーパミン特異的ニューロン前駆細胞、または該細胞より分化／誘導／増殖された細胞よりＲＮＡを調製し、逆転写酵素処理を行い、ｃＤＮＡを得る。次に、得られたｃＤＮＡ試料を蛍光タグ等のタグにより標識し、マイクロアレイに対するハイブリダイゼーションを行う。その結果、総標識ｃＤＮＡ中、細胞内で活発に発現している遺伝子の割合が高くなり、あまり発現されていない遺伝子の割合は低くなる。即ち、標識ｃＤＮＡとチップ上のｃＤＮＡクローンまたはオリゴヌクレオチドとのハイブリッド形成を表す蛍光シグナルの強度は、標識ｃＤＮＡ内での各配列の発現の度合いを示すことなり、遺伝子発現の定量を可能成らしめる。
また、縮重ＰＣＲプライマーを用いた逆転写ＰＣＲを行うｍＲＮＡディファレンシャルディスプレイにより、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞、または該細胞から分化／誘導／増殖された細胞について多数の遺伝子の発現を同時に解析することもできる。まず、特定のｍＲＮＡのｐｏｌｙＡ尾部に３’末端の１または２つの塩基を変更した修飾オリゴｄＴプライマーを準備し、本発明の前駆細胞または該細胞から分化／増殖された細胞、及び、発現を比較する対照細胞から単離した総ＲＮＡに対して逆転写酵素反応を行う（Ｌｉａｎｇ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２１：３２６９−７５）。変更した塩基が「Ｇ」であれば、ｐｏｌｙＡ尾部の直前にＣを持つｍＲＮＡを選択的に増幅することができ、また「ＣＡ」であれば、ＴＧを直前に持つｍＲＮＡを増幅することができる。次に、第２のプライマーとして、１０塩基程度の長さの任意の配列を有するものを用意し、修飾オリゴｄＴプライマー及び第２のプライマーを使用してＰＣＲ増幅反応を行う。増幅産物を泳動距離の長いポリアクリルアミドゲルを用いて電気泳動し、サイズ分画する。このような方法により、本発明の細胞と対照細胞とで各細胞に特異的に発現しているｍＲＮＡ由来のｃＤＮＡは、一方の試料を泳動した場合にのみ検出されるバンドとして検出することができる。この方法では、同定されていない遺伝子の発現についても解析することができる。
ＳＡＧＥ分析は、多数の転写産物の発現を同時に検出することができ、また検出に特殊な装置を必要としない点で好ましい分析方法の一つである。まず、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞または該細胞から分化／誘導／増殖された細胞よりｐｏｌｙＡ＋ＲＮＡを慣用の方法により抽出する。次に、ビオチン化オリゴｄＴプライマーを用い、前記ＲＮＡをｃＤＮＡに変換し、４塩基認識制限酵素（アンカー用酵素；ＡＥ）で処理する。これにより、ＡＥ処理断片はその３’末端にビオチン基を含んだ形となる。次に、ＡＥ処理断片をストレプトアビジンに結合させる、結合されたｃＤＮＡを２画分に分け、それぞれの画分を別々の２本鎖オリゴヌクレオチドアダプター（リンカー）Ａ及びＢに連結する。このリンカーは、（１）アンカー用酵素の作用で生じる突出部の配列と相補的な配列を有する１本鎖突出部、（２）タグ用酵素（ｔａｇｇｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ；ＴＥ）となるＩＩＳ型制限酵素（認識部位より２０ｂｐ以下の離れた定位置の切断を行う）の５’塩基認識配列、及び（３）ＰＣＲ用特異的プライマーを構成するのに十分な追加配列より構成される。ここで、リンカーを連結したｃＤＮＡをタグ用酵素で切断することにより、リンカー結合型の状態でｃＤＮＡ配列部分のみが短鎖配列タグとなる。次に、リンカーの異なる２種類のプールを互いに連結し、リンカーＡ及びＢに特異的プライマーを使用してＰＣＲ増幅する。その結果、増幅産物はリンカーＡ及びＢに結合した２つの隣接配列タグ（ダイタグ；ｄｉｔａｇ）を含む多様な配列の混在物として得られる。そこで、増幅産物をアンカー用酵素により処理し、遊離したダイタグ部分を通常の連結反応により鎖状に連結し、クローニングを行う。クローニングにより得られたクローンの塩基配列を決定することにより、一定長の連続ダイタグの読み出しを得ることができる。このようにしてクローンの塩基配列を決定し、配列タグの情報が得られれば、それぞれのタグに該当するｍＲＮＡの存在を同定することができる。
差し引きハイブリダイゼーションは、種々の組織または細胞間で発現の差違のある遺伝子のクローニングによく用いられる方法であるが、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞、またはそれから分化／誘導／増殖された細胞において特異的に発現している遺伝子をクローニングするのにも使用することができる。まず、本発明の前記細胞のうちの試験する細胞のＤＮＡ試料を調製する（以下、テストＤＮＡと呼ぶ）。次に、比較する細胞のＤＮＡ（以下、ドライバーＤＮＡと呼ぶ）を調製する。テストＤＮＡとドライバーＤＮＡとを逆に用いることもできる。いずれにせよ、テストＤＮＡに存在し、ドライバーＤＮＡに存在しない遺伝子の存在が検出される。次に、調製したテストＤＮＡ及び大過剰量のドライバーＤＮＡを混合し、変性させ一本鎖ＤＮＡとした後にアニーリングさせる。アニーリング条件を調節することにより、ドライバーＤＮＡ中には存在しない特異的な配列をテストＤＮＡ由来のＤＮＡのみからなる二本鎖ＤＮＡとして単離することができる。より詳細な方法については、Ｓｗａｒｏｏｐ ｅｔ ａｌ．（１９９１）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：１９５４及びＹａｓｕｎａｇａ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．２１：３６３−９等を参照することができる。
ＲＤＡ法は、ＰＣＲを利用した、ドライバーＤＮＡに存在しないテストＤＮＡ中の配列を選択的に増幅することを可能とする方法であり、上述のその他の方法と同様に本発明において用いることができる。より詳細な手順については、Ｌｉｓｉｔｓｙｎ（１９９５）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１１：３０３−７及びＳｃｈｕｔｔｅ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２：５９５０−４を参照することができる。
以上のようにして検出、単離されたドーパミン産生ニューロン前駆細胞、または該細胞を分化、誘導、または増殖させた細胞に特異的な遺伝子を上述の各種公知の方法によりベクター等に挿入し、配列決定、発現解析を行うこともできる。
＜前駆細胞の成熟を指標としたスクリーニング＞
本発明により、本発明のドーパミン産生ニューロン前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む、スクリーニング方法が提供される。本方法によりスクリーニングされる化合物は、ドーパミン産生ニューロンの分化、増殖等を調節する機能を示すことから、ドーパミン産生ニューロンにおける何等かの欠陥が病因となっている疾病の治療対象候補となり得、有用と考えられる。
ここで、「被験物質」とはどのような化合物であってもよいが、例えば、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物ライブラリー、合成ペプチドライブラリー、抗体、細菌放出物質、細胞（微生物、植物細胞、動物細胞）抽出液、細胞（微生物、植物細胞、動物細胞）培養上清、精製または部分精製ポリペプチド、海洋生物、植物または動物等由来の抽出物、土壌、ランダムファージペプチドディスプレイライブラリーが挙げられる。
細胞の分化や増殖は、被験物質と接触させない場合における細胞の状態と比較することにより検出することができる。細胞の分化や増殖は、顕微鏡下において形態学的な観察を行うこと、または、細胞で産生されるドーパミン等の物質を検出、定量して検出してもよい。
＜Ｌｒｐ４の発現領域解析＞
Ｌｒｐ４の発現制御領域は、Ｌｒｐ４の遺伝子配列を利用してゲノムＤＮＡから公知の方法によってクローニングすることができる。例えば、Ｓ１マッピング法のような転写開始点の特定方法（細胞工学 別冊８ 新細胞工学実験プロトコール，東京大学医科学研究所制癌研究部編，秀潤社（１９９３）ｐｐ．３６２−３７４）が公知であり、利用できる。一般に、遺伝子の発現制御領域は、遺伝子の５’末端の１５〜１００ｂｐ、好ましくは３０〜５０ｂｐをプローブＤＮＡとして利用して、ゲノムＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることによりクローニングすることができる（本発明においては、配列番号：１または２の塩基全部またはその１部）。このようにして得られるクローンは、１０ｋｂｐ以上の５’非翻訳領域を含むものであるので、次にエキソヌクレアーゼ等により処理し短縮化または断片化する。最後に、短縮された発現制御領域の候補を含む配列部分をレポーター遺伝子を利用して、その発現の有無、強さ、制御等について評価し、Ｌｒｐ４の発現制御領域の活性維持のための最小必要単位を決定することができる。
遺伝子の発現制御領域は、Ｎｅｕｒａｌ Ｎｅｔｗｏｒｋ等のプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｆｒｕｉｔｆｌｙ．ｏｒｇ．／ｓｅｑ＿ｔｏｏｌｓ／ｐｒｏｍｏｔｅｒ．ｈｔｍｌ；Ｒｅｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｍｐｕｔｉｎｇ：Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ １９９６ Ｐａｃｉｆｉｃ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ，Ｈｕｎｔｅｒ ａｎｄ Ｋｌｅｉｎ ｅｄ．，Ｗｏｒｌｄ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｓｉｎｇａｐｏｒｅ，（１９９６））を用いて予測することもできる。さらに、発現制御領域の活性最小単位を予測するプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｏｓｃｉ．ｃｂｓ．ｕｍｎ．ｅｄｕ．／ｓｏｆｔｗａｒｅ／ｐｒｏｓｃａｎ／ｐｒｏｍｏｔｅｒｓｃａｎ．ｈｔｍ；Ｐｒｅｓｔｒｉｄｇｅ（１９９５）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２４９：９２３−３２）も公知であり、用いることができる。
このようにして単離された、Ｌｒｐ４遺伝子の発現領域は、ｉｎ ｖｉｖｏで分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞特異的に所望の蛋白質を産生するのに利用することもできる。
＜Ｌｒｐ４に対するリガンド＞
Ｌｒｐ４ポリペプチドは膜貫通ドメインを有することから、天然において細胞膜中に埋め込まれた状態で存在すると考えられる。Ｌｒｐ４は、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞で発現されていることから、前駆細胞の増殖制御やニューロンの分化、成熟に関与していることが考えられる。従って、Ｌｒｐ４に対するアゴニストやアンタゴニスト等の機能を示す可能性があるリガンドは、ドーパミン産生ニューロンのｉｎ ｖｉｖｏ、ｅｘ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｔｒｏにおける分化を制御するのに利用できる可能性がある。Ｌｒｐ４ポリペプチドに対するリガンドの同定においては、まず、Ｌｒｐ４ポリペプチドと候補化合物とを接触させ、結合の有無を検定する。この際、Ｌｒｐ４ポリペプチドを担体に固定したり、細胞膜に埋めこまれた状態に発現させて用いることもできる。候補化合物としては特に制限はなく、遺伝子ライブラリーの発現産物、海洋生物由来の天然成分、各種細胞の抽出物、公知化合物及びペプチド、植物由来の天然成分、生体組織抽出物、微生物の培養上清、並びにファージディスプレイ法等によりランダムに製造されたペプチド群（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２２：３０１−１０（１９９１））等が含まれる。また、結合の検出を容易にするために、候補化合物は標識しても良い。
＜Ｌｒｐ４の発現抑制＞
本発明により、Ｌｒｐ４が分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞で一過性に発現されることが明らかにされたことから、Ｌｒｐ４が前駆細胞の増殖制御やニューロンの分化、成熟に関与していることが考えられた。従って、Ｌｒｐ４遺伝子の発現を阻害するものは、ドーパミン産生ニューロンのｉｎ ｖｉｖｏ、ｅｘ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｔｒｏにおける分化を制御するのに利用できる可能性がある。遺伝子の発現を阻害し得るものとして、例えば、アンチセンス、リボザイム及び２本鎖ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ；ｓｉＲＮＡ）が挙げられる。従って、本発明はこのようなアンチセンス、リボザイム及び２本鎖ＲＮＡを提供するものである。
アンチセンスが標的遺伝子の発現を抑制する機構としては、（１）３重鎖形成による転写開始阻害、（２）ＲＮＡポリメラーゼにより形成される局所的開状ループ構造部位とのハイブリッド形成による転写抑制、（３）合成中のＲＮＡとのハイブリッド形成による転写阻害、（４）イントロン−エキソン接合点におけるハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（５）スプライソソーム形成部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（６）ｍＲＮＡとのハイブリッド形成による、ｍＲＮＡの細胞質への移行抑制、（７）キャッピング部位またはポリＡ付加部位とのハイブリッド形成によるスプライシング抑制、（８）翻訳開始因子結合部位とのハイブリッド形成による翻訳開始抑制、（９）リボソーム結合部位とのハイブリッド形成による翻訳抑制、（１０）ｍＲＮＡ翻訳領域またはポリソーム結合部位とのハイブリッド形成によるペプペプチド鎖の伸長抑制、並びに（１１）核酸と蛋白質の相互作用部位とのハイブリッド形成による遺伝子発現抑制が挙げられる（平島及び井上『新生化学実験講座２ 核酸ＩＶ 遺伝子の複製と発現』日本生化学会編、東京化学同人、ｐｐ．３１９−３４７（１９９３））。
本発明のＬｒｐ４アンチセンス核酸は、上述の（１）〜（１１）のどの機構により遺伝子発現を抑制する核酸であってもよく、即ち、発現を阻害する目的の遺伝子の翻訳領域のみならず、非翻訳領域の配列に対するアンチセンス配列を含むものであってもよい。アンチセンス核酸をコードするＤＮＡは、その発現を可能とする適当な制御配列下に連結して使用され得る。アンチセンス核酸は、標的とする遺伝子の翻訳領域または非翻訳領域に対して完全に相補的である必要はなく、効果的に該遺伝子の発現を阻害するものであればよい。このようなアンチセンス核酸は、少なくとも１５ｂｐ以上、好ましくは１００ｂｐ以上、さらに好ましくは５００ｂｐ以上であり通常３０００ｂｐ以内、好ましくは２０００ｂｐ以内、より好ましくは１０００ｂｐ以内の鎖長を有し、標的遺伝子の転写産物の相補鎖に対して好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上同一である。このようなアンチセンス核酸は、Ｌｒｐ４ポリヌクレオチドを基に、ホスホロチオネート法（Ｓｔｅｉｎ（１９８８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１６：３２０９−２１）等により調製することができる。
リボザイムとは、ＲＮＡを構成成分とする触媒の総称であり、大きくラージリボザイム（ｌａｒｇｅ ｒｉｂｏｚｙｍｅ）及びスモールリボザイム（ｓｍａｌｌ ｌｉｂｏｙｍｅ）に分類される。ラージリボザイムは、核酸のリン酸エステル結合を切断し、反応後に５’−リン酸と３’−ヒドロキシル基を反応部位に残す酵素である。ラージリボザイムは、さらに（１）グアノシンによる５’−スプライス部位でのトランスエステル化反応を行うグループＩイントロンＲＮＡ、（２）自己スプライシングをラリアット構造を経る二段階反応で行うグループＩＩイントロンＲＮＡ、及び（３）加水分解反応によるｔＲＮＡ前駆体を５’側で切断するリボヌクレアーゼＰのＲＮＡ成分に分類される。それに対して、スモールリボザイムは、比較的小さな構造単位（４０ｂｐ程度）であり、ＲＮＡを切断して、５’−ヒドロキシル基と２’−３’環状リン酸を生じさせる。スモールリボザイムには、ハンマーヘッド型（Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８８）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．２２８：２２５）、ヘアピン型（Ｂｕｚａｙａｎ（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２３：３４９；Ｋｉｋｕｃｈｉ ａｎｄ Ｓａｓａｋｉ（１９９２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：６７５１；菊地洋（１９９２）化学と生物３０：１１２）等のリボザイムが含まれる。リボザイムは、改変及び合成が容易になため多様な改良方法が公知であり、例えば、リボザイムの基質結合部を標的部位の近くのＲＮＡ配列と相補的となるように設計することにより、標的ＲＮＡ中の塩基配列ＵＣ、ＵＵまたはＵＡを認識して切断するハンマーヘッド型リボザイムを作ることができる（Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８８）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．２２８：２２５；小泉誠及び大塚栄子（１９９０）蛋白質核酸酵素３５：２１９１；Ｋｏｉｚｕｍｉ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：７０５９）。ヘアピン型のリボザイムについても、公知の方法に従って設計、製造が可能である（Ｋｉｋｕｃｈｉ ａｎｄ Ｓａｓａｋｉ（１９９２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１９：６７５１；菊地洋（１９９２）化学と生物３０：１１２）。
本発明のアンチセンス核酸及びリボザイムは、細胞内における遺伝子の発現を制御するために、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス等のウイルス由来のベクター、リポソーム等を利用した非ウイルスベクター、またはｎａｋｅｄ ＤＮＡとしてｅｘ ｖｉｖｏ法またはｉｎ ｖｉｖｏ法により遺伝子治療に用いることもできる。
１９９８年に、線虫においてＲＮＡ同士が邪魔し合い働きを失う現象（ＲＮＡ干渉）が観察された（Ｆｉｒｅ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ ３９１：８０６−１１）。ＲＮＡ干渉とは、二本鎖の人工ＲＮＡを細胞に導入することにより、同じ塩基配列を有するＲＮＡが分解される現象である。その後の研究により、ＲＮＡ干渉等のＲＮＡサイレンシングの現象は、欠陥を持つｍＲＮＡの排除、並びにトランスポゾン、ウイルス等の寄生体に対する防御のための細胞機構であることが示唆されている。現在では、多くの遺伝子の発現を抑制するためのツールとして、二本鎖ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ；ｓｉＲＮＡ）が利用されており、病気の原因遺伝子等の発現抑制をｓｉＲＮＡを用いて行うことにより病気を治療・予防する方法も検討されている。本発明のｓｉＲＮＡは、Ｌｒｐ４のｍＲＮＡの転写を阻害する限り、特に限定されない。通常、ｓｉＲＮＡは、標的ｍＲＮＡの配列に対するセンス鎖及びアンチセンス鎖の組合せであり、少なくとも１０個から標的ｍＲＮＡと同じ個数までのヌクレオチド長を有する。好ましくは、１５〜７５個、より好ましくは１８〜５０個、さらに好ましくは２０〜２５個のヌクレオチド長である。
Ｌｒｐ４発現を抑制するために、ｓｉＲＮＡは公知の方法により細胞に導入することができる。例えば、ｓｉＲＮＡを構成する二本のＲＮＡ鎖を、一本鎖上にコードするＤＮＡを設計し、該ＤＮＡを発現ベクターに組み込み、細胞を該発現ベクターで形質転換し、ｓｉＲＮＡをヘアピン構造を有する二本鎖ＲＮＡとして細胞内で発現させることができる。トランスフェクションにより持続的にｓｉＲＮＡを産生するプラスミド発現ベクターも設計されている（例えば、ＲＮＡｉ−Ｒｅａｄｙ ｐＳＩＲＥＮ Ｖｅｃｔｏｒ、ＲＮＡｉ−Ｒｅａｄｙ ｐＳＩＲＥＮ−ＲｅｔｒｏＱ Ｖｅｃｔｏｒ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ））。
ｓｉＲＮＡの塩基配列は、例えば、Ａｍｂｉｏｎ ｗｅｂｓｉｔｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｍｂｉｏｎ．ｃｏｍ／ｔｅｃｈｌｉｂ／ｍｉｓｃ／ｓｉＲＮＡ＿ｆｉｎｄｅｒ．ｈｔｍｌ）のコンピュータープログラムを用いて設計することができる。機能的ｓｉＲＮＡをスクリーニングするためのキット（例えば、ＢＤ Ｋｎｏｃｋｏｕｔ ＲＮＡｉ Ｓｙｓｔｅｍ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ））等も市販されており利用可能である。
【図面の簡単な説明】
図１は、Ｌｒｐ４の構造を模式的に示す図である。ＴＭ：膜貫通ドメイン、ＦＲＩ：ｆｒｉｚｚｅｌｅｄドメイン、ＬＤＬａ：ＬＤＬレセプタードメイン、ＳＲ：スカベンジャーレセプタードメイン、Ｐｒｏ：セリンプロテアーゼドメイン。
図２は、Ｌｒｐ４及びＳｈｈのｍＲＮＡのＥ１２．５マウス後脳腹側及び脊髄における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。
図３は、Ｌｒｐ４、Ｓｈｈ、チロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）、及びＮＣＡＭのｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中脳腹側における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。
図４は、Ｌｒｐ４の中脳における発現パターンを模式的に示す図である。ＶＺ：ｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｚｏｎｅ、ＭＬ：ｍａｎｔｌｅ ｌａｙｅｒ。
図５は、ドーパミン産生ニューロンの発生から成熟までの間におけるＬｒｐ４、６５Ｂ１３、ＴＨ、ＮＣＡＭ及びＤＡＴの発現時期を模式的に示す図である。
図６は、抗Ｌｒｐ４抗体を用いたドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞の分離及び活用法を示す模式図である。
図７は、Ｌｒｐ４のｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中枢神経系における発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により解析した結果を示す写真である。Ａ：矢状面；Ｂ：Ａの枠内部分の拡大写真；Ｃ：Ａの赤線位置での断面。Ｄ：Ｌｒｐ４、Ｓｈｈ及びチロシンヒドロキシラーゼ（ＴＨ）のｍＲＮＡのＥ１２．５マウス中脳腹側における発現を示す。
図８は、ＥＳ細胞からのｉｎ ｖｉｔｒｏドーパミン産生ニューロン分化系におけるＬｒｐ４の発現について示す。上は、ＥＳ細胞からのドーパミン産生ニューロンの分化を模式的に示す図である。下の写真は、ＳＤＩＡ法によりＥＳ細胞よりドーパミン産生ニューロンを分化誘導し、時間を追ってＬｒｐ４の発現をＲＴ−ＰＣＲ法で調べた結果を示す。
【発明を実施するための最良の形態】
以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、これらの実施例は本発明をいかなる意味でも限定するものではない。
１．ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子の単離及び配列解析
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的な遺伝子を単離するために、Ｅ１２．５マウス中脳腹側領域を背腹方向にさらに二つの領域に切り分けて、ドーパミン産生ニューロンを含む最も腹側の領域に特異的に発現する遺伝子をサブトラクション（Ｎ−ＲＤＡ）法により同定した。単離した断片の一つはＬｒｐ４／ＣｏｒｉｎをコードするｃＤＮＡ断片であった。Ｌｒｐ４はＩＩ型膜貫通蛋白質をコードしている（図１）。
（１）Ｎ−ＲＤＡ法
（１）−１．アダプターの調製
下記のオリゴヌクレオチドをアニーリングさせ、１００μＭに調製した。
（１）−２．ｃＤＮＡ合成
日本ＳＬＣより入手したマウス１２．５日胚より中脳腹側を切り出し、さらに背腹方向に２つの領域に切り分けた。ＲＮｅａｓｙ ｍｉｎｉ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて全ＲＮＡを調製し、ｃＤＮＡ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｋｉｔ（ＴＡＫＡＲＡ）を用いて二本鎖ｃＤＮＡを合成した。制限酵素ＲｓａＩで消化したのち、ａｄ２を付加し、ａｄ２Ｓをプライマーとして、１５サイクルのＰＣＲでｃＤＮＡを増幅した。増幅条件は７２℃で５分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｎ−ＲＤＡのＰＣＲはすべて以下の反応液組成で行った。
１０×ＥｘＴａｑ ５μｌ
２．５ｍＭ ｄＮＴＰ ４μｌ
ＥｘＴａｑ ０．２５μｌ
１００μＭ ｐｒｉｍｅｒ ０．５μｌ
ｃＤＮＡ ２μｌ
蒸留水 ３８．２５μｌ
（１）−３．Ｄｒｉｖｅｒの作製
ａｄ２Ｓで増幅したｃＤＮＡをさらに５サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｃＤＮＡを精製し、ＲｓａＩ消化した。１回のサブトラクションに３μｇずつ使用した。
（１）−４．Ｔｅｓｔｅｒの作製
ａｄ２Ｓで増幅したｃＤＮＡをさらに５サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｃＤＮＡを精製し、ＲｓａＩ消化した。６０ｎｇのＲｓａＩ消化ｃＤＮＡにａｄ３を付加した。
（１）−５．サブトラクション１回目
上記３及び４で作製したＴｅｓｔｅｒおよびＤｒｉｖｅｒを混合し、エタノール沈殿した後に、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ １μｌに溶解した。９８℃５分の後、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ＋１Ｍ ＮａＣｌ １μｌを加えた。さらに９８℃５分の後、６８℃で１６時間ハイブリダイズさせた。
ハイブリダイズさせたｃＤＮＡをａｄ３Ｓをプライマーとして１０サイクルのＰＣＲで増幅した後（７２℃で５分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１０サイクル行った）、Ｍｕｎｇ Ｂｅａｎ Ｎｕｃｌｅａｓｅ（ＴＡＫＡＲＡ）で消化し、Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔで精製した。さらに１３サイクルのＰＣＲで増幅した。増幅条件は９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１３サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。
（１）−６．均一化
サブトラクション１回目で増幅したｃＤＮＡ ８ｎｇに２ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ １μｌを加えた。９８℃５分の後、１ｘＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ＋１Ｍ ＮａＣｌ ２μｌを加えた。さらに９８℃５分の後、６８℃で１６時間ハイブリダイズさせた。
ハイブリダイズさせたｃＤＮＡをＲｓａＩで消化し、Ｑｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔで精製した。これをａｄ３Ｓをプライマーとして１１サイクルのＰＣＲで増幅した後（９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を１１サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした）ＲｓａＩで消化し、ａｄ４を付加した。
（１）−７．サブトラクション２回目
上記６でａｄ４を付加したｃＤＮＡ ２０ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、さらに、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。最終的にＲｓａＩ消化したｃＤＮＡにａｄ５を付加した。
（１）−８．サブトラクション３回目
上記７でａｄ５を付加したｃＤＮＡ ２ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、さらに、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。最終的にＲｓａＩ消化したｃＤＮＡにａｄ１３を付加した。
（１）−９．サブトラクション４回目
上記８でａｄ１３を付加したｃＤＮＡ ２ｎｇをＴｅｓｔｅｒとして、上記３のＤｒｉｖｅｒと混合し、以下、上記５と同様の方法でサブトラクションを行った。増幅したｃＤＮＡをｐＣＲＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にクローニングし、ＡＢＩ３１００シーケンスアナライザーを用いて塩基配列を解析した。
２．Ｌｒｐ４遺伝子の発現解析
次に、Ｌｒｐ４遺伝子を用いて以下のプロトコールによりｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析を行った。
まず、マウス１２．５日胚をＯＣＴで包埋し、厚さ１６μｍの新鮮凍結切片を作製した。スライドガラス上で乾燥させた後に４％ＰＦＡで室温３０分間固定した。ＰＢＳで洗浄した後、ハイブリダイゼーション（１μｇ／ｍｌＤＩＧ化ＲＮＡプローブ、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ，１％ＳＤＳ，５０μｇ／ｍｌ ｙｅａｓｔ ＲＮＡ，５０μｇ／ｍｌ Ｈｅｐａｒｉｎ）を６５度で４０時間行った。その後、洗浄（５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ，１％ＳＤＳ）を６５度で行い、ＲＮａｓｅ処理（５μｇ／ｍｌ ＲＮａｓｅ）を室温５分間行った。０．２ｘＳＳＣで６５度の洗浄、１ｘＴＢＳＴで室温の洗浄ののち、ブロッキング（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｒｅａｇｅｎｔ：Ｒｏｃｈｅ）を行った。アルカリフォスファターゼ標識抗ＤＩＧ抗体（ＤＡＫＯ）を反応させ、洗浄（１ｘＴＢＳＴ、２ｍＭ Ｌｅｖａｍｉｓｏｌｅ）の後、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ（ＤＡＫＯ）を基質として発色させた。
ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションによる発現解析の結果、ドーパミン産生ニューロンの発生する時期であるＥ１２．５で、Ｌｒｐ４は中脳から後脳、脊髄にかけての腹側中心部に特異的発現していることが示された。後脳から脊髄にかけては、Ｓｈｈと同様の発現パターンを示し、オーガナイザー領域である底板（ｆｌｏｏｒ ｐｌａｔｅ）に特異的であることが明らかになった（図２及び７）。中脳ではＳｈｈ発現領域の中でもより中心部にのみ発現が見られた（図３及び７）。
ニューロンの成熟マーカーであるＮＣＡＭと比較した結果、Ｌｒｐ４発現細胞はＮＣＡＭ陰性の脳室領域（Ｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ Ｚｏｎｅ（ＶＺ））内の増殖前駆細胞であった。さらにドーパミンニューロンのマーカーであるチロシンヒドロキシラーゼ（ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ；ＴＨ）の発現と比較すると、ＴＨは外套層（ｍａｎｔｌｅ ｌａｙｅｒ（ＭＬ））にのみ発現しているので、同一の細胞で両者の発現が認められることはないものの、背−腹軸方向での発現領域は完全に一致していた（図３及び７）。一般に神経管（ｎｅｕｒａｌ ｔｕｂｅ）内の神経細胞は、まずＶＺ内で増殖し、分化開始とともに分裂を停止し、その後すぐ外側のＭＬに移動したのちに成熟することが知られている。従って、ドーパミン産生ニューロンの前駆細胞は、ＴＨ発現領域のすぐ内側のＶＺ内で増殖し、分裂停止後に外側に移動してからＴＨを発現すると考えられる。即ち、Ｌｒｐ４は中脳ではドーパミン産生ニューロンの前駆細胞に特異的に発現すると考えられる（図４及び５）。
３．ＥＳ細胞より分化誘導したドーパミン産生ニューロンにおけるＬｒｐ４の発現
次にＥＳ細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏでドーパミン産生ニューロンに分化誘導させた場合にＬｒｐ４が発現するかどうか検討した。
まず、ＳＤＩＡ法（Ｋａｗａｓａｋｉ ｅｔ．ａｌ．（２０００）Ｎｅｕｒｏｎ ２８（１）：３１−４０）によりＥＳ細胞よりドーパミンニューロンへの分化誘導を行った（図８上参照）。誘導後４、６、８、１０、１２日後にそれぞれ細胞を回収し、ＲＮｅａｓｙ ｍｉｎｉ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｔｏｔａｌ ＲＮＡを回収し、ＲＴ−ＰＣＲを行った。ＲＴ−ＰＣＲにおいては、最初に１μｇのｔｏｔａｌ ＲＮＡに対して、ＲＮＡ ＰＣＲ ｋｉｔ（ＴａＫａＲａ）を用いてｃＤＮＡ合成を行った。このうち１０ｎｇ、１ｎｇ、０．１ｎｇ相当分のｃＤＮＡを鋳型に用いて以下の反応系でＰＣＲを行った。
１０×ＥｘＴａｑ ２μｌ
２．５ｍＭ ｄＮＴＰ １．６μｌ
ＥｘＴａｑ ０．１μｌ
１００μＭプライマー 各０．２μｌ
ｃＤＮＡ １μｌ
蒸留水 １４．９μｌ
９４℃で２分インキュベートした後、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、及び７２℃で２分の反応を３５サイクル行い、最後に７２℃で２分インキュベートした。
以下の配列のプライマーを使用した。
そして、ＲＴ−ＰＣＲによる発現解析の結果、Ｌｒｐ４はＥＳ細胞（ＣＣＥ）およびストローマ細胞（ＰＡ６）には発現していないが、分化誘導の結果、ＴＨと同様に４日目から発現が誘導されることが明らかになった（図８）。従って、胎児中脳由来のドーパミンニューロン増殖前駆細胞だけでなく、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＥＳ細胞より分化誘導したドーパミンニューロン増殖前駆細胞を分離する際にもＬｒｐ４はマーカーとして有用である。
【産業上の利用の可能性】
本発明により、分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞に特異的、且つ一過性に発現する遺伝子Ｌｒｐ４が同定された。細胞における該Ｌｒｐ４の発現を指標とすることにより、安全面、生存率及びネットワーク形成能の面でもパーキンソン病を含む神経変性疾患に対する移植治療に適した細胞を選択することが可能となった。また、分裂停止前のニューロン増殖前駆細胞を選択的に得られるため、成熟した細胞の求められる治療等において使用する場合であっても、ｉｎ ｖｉｔｒｏで最適な状態へと容易に分化させることができる。さらに、本発明の遺伝子を用いて得られるドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞により、該細胞に特異的に発現している遺伝子を単離することが可能となった。該細胞は、パーキンソン病等の神経変性疾患に対する医薬を開発する上でも有用と考えられる。分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞という、ニューロン形成における初期の前駆細胞は、さらに、ニューロンの成熟過程、即ち、成熟過程に関与する種々の因子を明らかにするのに役立つ。このような因子の解明は、神経変性疾患の治療に大きく貢献することが予期される。さらに、該細胞の成熟を指標として、その過程を調節（阻害または促進）するような物質のスクリーニングに用いることもできる。
【配列表】
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（１）〜（５）の塩基配列から選択される配列を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブ。
（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列
（５）上記（１）〜（４）の配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列
【請求項２】
以下の（１）〜（６）から選択されるポリペプチドに対する抗体。
（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド
（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド
（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド
（６）上記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチド
【請求項３】
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、請求項１記載のポリヌクレオチドとドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法。
【請求項４】
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、請求項２記載の抗体とドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法。
【請求項５】
以下の工程を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法。
（１）請求項３または４記載のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法によりドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する工程
（２）上記（１）において選択された前駆細胞を培養する工程
（３）上記（２）において培養された前駆細胞を、分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングする工程
【請求項６】
請求項３乃至５記載の方法により選択された分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞。
【請求項７】
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離方法であって、請求項６記載の前駆細胞または該前駆細胞から分化、誘導若しくは増殖された細胞を用い、該細胞において特異的に発現している遺伝子を検出、単離する工程を含む方法。
【請求項８】
成熟を指標としたスクリーニング方法であり、請求項６記載の前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む方法。
【請求項１】
以下の（１）〜（５）の塩基配列から選択される配列を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞マーカーポリヌクレオチドプローブ。
（１）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な塩基配列
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠く配列をコードする塩基配列に相補的な塩基配列
（４）配列番号：１または２の塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列
（５）上記（１）〜（４）の配列中の少なくとも連続した１５塩基を含む塩基配列
【請求項２】
以下の（１）〜（６）から選択されるポリペプチドに対する抗体。
（１）配列番号：１または２の塩基配列によりコードされるポリペプチド
（２）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（３）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において膜貫通領域を欠くアミノ酸配列からなるポリペプチド
（４）配列番号：３または４記載のアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド
（５）配列番号：１または２の塩基配列に相補的な配列に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によりコードされるポリペプチド
（６）上記（１）〜（５）のポリペプチドの断片であり、少なくとも８アミノ酸残基を有するポリペプチド
【請求項３】
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、請求項１記載のポリヌクレオチドとドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法。
【請求項４】
ドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法であって、請求項２記載の抗体とドーパミン産生ニューロン前駆細胞を含むと考えられる細胞試料とを接触させる工程を含む方法。
【請求項５】
以下の工程を含むドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞を選択する方法。
（１）請求項３または４記載のドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する方法によりドーパミン産生ニューロン前駆細胞を選択する工程
（２）上記（１）において選択された前駆細胞を培養する工程
（３）上記（２）において培養された前駆細胞を、分裂停止後のニューロンマーカーを用いてスクリーニングする工程
【請求項６】
請求項３乃至５記載の方法により選択された分裂停止前のドーパミン産生ニューロン増殖前駆細胞。
【請求項７】
ドーパミン産生ニューロン前駆細胞特異的遺伝子及び前駆細胞からドーパミン産生ニューロンへの各成熟段階に特異的な遺伝子の単離方法であって、請求項６記載の前駆細胞または該前駆細胞から分化、誘導若しくは増殖された細胞を用い、該細胞において特異的に発現している遺伝子を検出、単離する工程を含む方法。
【請求項８】
成熟を指標としたスクリーニング方法であり、請求項６記載の前駆細胞に対し、被験物質を接触させる工程、及び接触による前駆細胞の分化または増殖を検出する工程を含む方法。
【国際公開番号】ＷＯ２００４／０６５５９９
【国際公開日】平成１６年８月５日（２００４．８．５）
【発行日】平成１８年５月１８日（２００６．５．１８）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００５−５０８１２８（Ｐ２００５−５０８１２８）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２００４／０００６２９
【国際出願日】平成１６年１月２３日（２００４．１．２３）
【出願人】（００００００２１７）エーザイ株式会社 (102)
【Ｆターム（参考）】
【国際公開日】平成１６年８月５日（２００４．８．５）
【発行日】平成１８年５月１８日（２００６．５．１８）
【国際特許分類】
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＪＰ２００４／０００６２９
【国際出願日】平成１６年１月２３日（２００４．１．２３）
【出願人】（００００００２１７）エーザイ株式会社 (102)
【Ｆターム（参考）】
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