インフルエンザワクチン組成物を生成する方法
インフルエンザワクチンとして適したインフルエンザウイルスの生産を最適化する方法および組成物を提供する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、インフルエンザワクチン組成物を生成する方法に関する。
【０００２】
関連出願との相互参照
本出願は、「インフルエンザワクチン組成物を生成する方法」と題された、２００３年２月２５日出願の米国特許仮出願第６０／４５０，１８１号に基づく利益を要求する。この先行出願を、あらゆる目的に対して、参照により全体として組み込む。
【背景技術】
【０００３】
発明の背景
毎年、多数の個体が、異なる株及び型のインフルエンザウイルスに感染しているので、多様で、しかも進化しつつあるインフルエンザ株に対するワクチンは、地域医療の見地からだけでなく、商業的にも重要なものである。乳児、高齢者、適切な医療を受けていない人々、および免疫無防備状態の人々は、そのような感染によって死亡する危険が特に高い。インフルエンザ感染症の問題を難しくしているのは、新規のインフルエンザ株が容易に進化し、そのため、新規ワクチンの生産が恒常的に必要とされているということである。
【０００４】
そのような様々なインフルエンザウイルスに特異的な防御的免疫反応を生み出すことのできる多数のワクチンが、５０年を超える期間にわたって産生されており、それらには、例えば、全ウイルスワクチン、ウイルス成分ワクチン、表面抗原ワクチン、および弱毒生ウイルスワクチンが含まれる。しかし、これらのワクチンタイプの適切な製剤は、いずれも全身性免疫反応を引き起こすことができるが、弱毒生ウイルスワクチンは、気道での局所粘膜免疫も刺激できるという利点を有する。したがって、弱毒生ウイルスを含むワクチンであって、しかも、迅速かつ経済的に生産することもでき、さらに、容易に貯蔵／輸送できるワクチンは、非常に望ましいものである。
【０００５】
これまでのところ、市販されているすべてのインフルエンザワクチンが、孵化鶏卵中で増殖されている。鶏卵中で、インフルエンザウイルスは良く増殖するが、ワクチン生産がそのような卵の利用可能性に依存している。卵の供給を組織化しなければならず、そして、ワクチン生産用の株を、次の流感時期の何ヶ月も前に選択しなければならないので、このアプローチでは、柔軟性が制限されることがあり、しばしば生産および配給に遅れと不足とがもたらされる。したがって、鶏卵中におけるワクチン生産の時間内処理量を増大させ、かつ/またはその生産量を増大させるいかなる方法も、非常に望ましいものである。
【０００６】
細胞培養中でインフルエンザウイルスを生産するシステムも近年に開発されている（例えば、Ｎｉｃｈｏｌｓｏｎら（編集）、「Textbook of Influenza」中、３２４〜３３２頁、Ｆｕｒｍｉｎｇｅｒ、「Vaccine Production」；Ｃｏｈｅｎ＆Ｓｈａｆｆｅｒｍａｎ（編集）、「Novel Strategies in Design and Production of Vaccines」中、１４１〜１５１頁、Ｍｅｒｔｅｎら（１９９６）、「Production of influenza virus in cell cultures for vaccine preparation」を参照）。鶏卵中でのワクチン生産に関する多くの困難を除去するものではあるが、細胞培養中で、すべての病原性のインフルエンザ株が良好に増殖するわけではなく、また、確立されている組織培養法で生産できるわけでもない。さらに、望ましい特性、例えば、弱毒性、温度感受性、および寒冷適応性を備え、かつ弱毒生ワクチンの生産に適した多数の株に関して、確立されている方法を用いて組織培養中で増殖させるのに未だに成功していない。したがって、細胞培養中におけるワクチン生産の時間内処理量を増大させ、かつ／またはその生産量を増大させるいかなる方法も、非常に望ましいものである。
【発明の開示】
【０００７】
本発明者ら、およびその共同研究者らによって、ワクチン生産用のインフルエンザウイルス産生に関して、かなりの研究がなされており、例えば、「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」、２００２年４月２６日出願の米国特許出願第６０／３７５，６７５号、２００３年４月２５日出願のＰＣＴ出願第ＰＣＴ／ＵＳ０３／１２７２８号、および２００３年４月２５日出願の米国特許出願第１０／４２３，８２８号などを参照されたい。本発明は、ワクチン組成物生産用のそのようなウイルス、および他のインフルエンザウイルスの生産を増強／最適化（量／品質および速度の両方に関して）する方法を提供する。本発明の諸態様は、伝統的な鶏卵ワクチン生産様式、および新規の細胞培養ワクチン生産様式（および、併用システム）に適用でき、以下を総覧することによって明らかになるであろう多くの他の利益を含むものである。
【０００８】
発明の概要
本発明は、インフルエンザウイルス（例えば、Ａ型ウイルス株またはＢ型ウイルス株など）を、卵を介して継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法の実施形態を提供する。そのような実施形態の一部では、組成物に、孔径が０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの範囲にあるマイクロフィルターを通過させることが濾過に含まれる。さらに、様々な実施形態で、そのような実施形態における加熱温度が、任意選択で約２８℃〜約４０℃以上を含み、一方、一部の実施形態では、この温度が３１℃、または約３０℃〜約３２℃を含む。そのような実施形態における加熱は、濾過の前もしくは濾過中に、または濾過の前および濾過中に行われてもよく、約５０分間から約１００分間まで、約６０分間から約９０分間まで、または約６０分間を含んでもよい。本発明は、そのような方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物（上記組成物がワクチン組成物である場合も含む）も提供する。
【０００９】
他の態様では、本発明は、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、ウイルスを精製するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法を含む。そのような実施形態は、膜を通して組成物を濾過することを含んでもよく、上記組成物には、ワクチン組成物が含まれ、そのような実施形態によって生産された実際のワクチン組成物も含まれる。
【００１０】
関連した態様では、本発明は、継代中に揺動されている卵を介してインフルエンザウイルスを継代させることによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法を含む。場合によっては、揺動させることには、卵を１分間に約１サイクル、任意選択で約12時間傾斜させることが含まれるそのような実施形態は、Ａ型インフルエンザウイルス株、および／またはＢ型インフルエンザウイルス株を用いてもよく、かつ、任意選択で、そのような揺動された卵のＴＣＩＤ５０が、揺動されかかった卵を介して継代された同じインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ｌｏｇ大きいことを含む。そのような実施形態によって生成されるウイルス組成物も、本発明の特徴であり、これには上記組成物がワクチン組成物であるものも含まれる。
【００１１】
本発明は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを（ウイルスの複製を補助することができる）宿主卵の集団に導入するステップと、卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する（例えば、そのようなものの再集合に偏向を与える）方法も含む。そのようなウイルスは、例えば、弱毒化ウイルス、寒冷適応ウイルス、温度感受性ウイルス、または弱毒寒冷適応温度感受性ウイルスを含んでもよく、例えば、Ｂ型インフルエンザウイルスも含んでもよい。そのような実施形態によって生成されたウイルス組成物も、本発明の特徴である（ワクチン組成物も含まれる）。そのような態様は、任意選択で、野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るためにさらに選別することを含む（例えば、複数のウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることによって（例えば、１つまたは複数の卵の中でこれを行う））。このようにして生成された、ワクチン組成物を含めたウイルス組成物も、本発明の特徴である。
【００１２】
本発明の他の態様は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、（インフルエンザウイルスの複製を補助することができる）宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、複数のウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、（揺動されている）卵を介してウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱し、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成することを含む。そのような方法で生成されるウイルスも、本発明の特徴である（ワクチン組成物も含まれる）。
【００１３】
本明細書に具体化された様々な方法では、インフルエンザウイルス組成物を、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイしてもよい。そのようなウイルス組成物は、任意選択で、約１０％から約６０％の未分画の正常な尿膜腔液（および、任意選択で、約１％から約５％のアルギニン）を含む。正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液を用いて、これらの組成物を希釈してもよい。これらの組成物は、本発明において、場合によって、ゼラチンを実質的に含まないものである。これらの組成物は、約２℃〜約８℃までの間で安定であるか、または４℃で安定なものである。本明細書における一部の組成物および方法では、ウイルスがインフルエンザウイルスであり、一方、本明細書におけるさらに他の組成物および方法（例えば、マイクロフィルター濾過、および/または限外濾過、および/または加熱、および／または揺動を行うもの）では、任意選択で、ウイルスが、例えば非インフルエンザウイルス（例えば、卵における培養で生成されるウイルス、例えば、ミクソウイルス、パラミクソウイルス、ＲＳＶ、ムンプスウイルス、麻疹ウイルス、センダイウイルス、黄熱病ウイルス、ｐＩＶなど）を含む。したがって、また、本発明の方法と組成物もそのような他のウイルスおよび／または非インフルエンザウイルスに適切である。
【００１４】
さらに他の態様では、本発明は、卵を介してインフルエンザウイルス継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、上記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が、第２のＴＣＩＤ５０より大きく、第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１５】
本発明の他の態様は、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、上記継代中に上記卵が揺動され、上記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、上記第２のＴＣＩＤ５０は、継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１６】
本発明のさらに他の実施形態は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入すること、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、上記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、上記第２のＴＣＩＤ５０がインフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１７】
本発明のこれらおよび他の目的および特徴は、添付図と併せて、以下の詳細な説明を読めば、より完全に明らかになるであろう。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
詳細な説明
本発明は、ワクチン生産／使用に適したウイルスおよびウイルス組成物生産の時間内処理量および産出量を増大させる方法および組成物を含む。例えば、本明細書により詳細に記載する通り、ウイルス産生における所望の再集合体の選別、温度調整／濾過、揺動、抗体選択、力価アッセイ、および多くの別の特性に関する方法および組成物が含まれる。
【００１９】
本明細書に記載の様々なステップをすべて行う必要も、また、それらが同一の生産系列に存在している必要もないことが当業者には理解されよう。したがって、一部の好ましい実施形態では、表１に概要を示すように、本明細書に記載のすべてのステップおよび／または組成物が実施されるか、または存在するが、他の実施形態では、任意選択で、１つまたは複数のステップが、例えば、省略されるか、（範囲、順序、配置などが）変更されるか、または同様の処置がされる。
【００２０】
本明細書に記載のウイルス産生の方法および組成物の基本的な概要を、表１に示す。全体を通して強調されるべきであるが、ここでも、表１に記載のものなど、本発明の個々のステップは、必ずしも相互に依存しない。例えば、一部の実施形態では、適当な再集合ウイルス溶液を含有する卵をインキュベーション中に揺動させる（下記参照）が、他の実施形態では揺らさないこと；ステップ１０における加熱および濾過は、ステップ１３における汎用試薬の使用とは独立したものであることなどが挙げられる。本発明におけるステップ／方法／組成物のいずれの一つの存在も、本発明におけるいずれの他のステップ／方法／組成物の必要な存在に依存するものではない。したがって、本発明の様々な実施形態は、これらのステップの１つのみを含むことも、全ステップを含むことも、また、これらのステップの様々な組合せすべてのいかなるものを含むこともある。
【００２１】
典型的な実施形態が、当技術分野で公知のステップ／方法／組成物、例えば、ウイルスを含有している卵の検卵、ウイルスによる卵の接種などを含むことも当業者には理解されよう。したがって、当業者ならば、適当なウイルス、ウイルス溶液、組成物などを生成する、そのような公知のステップに適切な条件、サブステップ、ステップの詳細などを容易に決定することができる。個々のステップについて、以下により詳細に記述する。例示的実施形態で用いられる主要ステップの一覧として、表１を参照されたい。
【００２２】
論考および記述を容易にするために、本発明の様々なステップ、例えば、様々な方法および組成物は、４つのおおまかなグループを含むもの、またはそれらに分類されるものと考えることができる。第１のグループは、同時感染、再集合、再集合体の選別、および再集合体のクローニングなどの態様を含む（例えば、それによって、おおよそ表１のステップ１から３までと対応している）。第２のグループは、再集合体の精製および増殖などの態様を含み、おおよそ表１のステップ４から６までに対応すると考えることができる。第３のグループは、卵における再集合体のさらなる増殖と、そのようなウイルス溶液の収集、および収集されたウイルス溶液の精製とを含む（例えば、おおよそ表１のステップ７から１１までに対応している）。第４のグループは、収集されたウイルス溶液の安定化およびウイルス溶液の力価／無菌性アッセイを含む（例えば、おおよそ表１のステップ１２から１５に対応している）。しかし、本発明の態様を上記の４つの一般的範疇に分類するのは、もっぱら、説明および組織化を行うことが目的であって、ステップの相互依存性のいかなる推論も行うべきではないことを理解されたい。
【００２３】
ステップの詳細な説明
論考および記述を容易にするため、本発明の様々なステップを、上述の通り、４つの広いグループを含むものとして考えることができる。第１のグループは、同時感染、再集合、再集合体の選択、および再集合体のクローニングなどの態様を含む（例えば、それによって、表１におけるステップ１から３に対応している）。第２のグループは、再集合体の精製および増殖などの態様を含み、表１におけるステップ４から６にほぼ対応すると考えることができる。第３のグループは、卵で再集合体をさらに増殖させること、採取すること、およびそのような採取されたウイルス溶液を精製することを含む（例えば、表１におけるステップ７から１１にほぼ対応している）。第４のグループは、採取されたウイルス溶液の安定化と、ウイルス溶液の効力／無菌性アッセイを含む（例えば、表１におけるステップ１２から１５にほぼ対応している）。しかし、本発明の態様を上述した４つの一般的カテゴリーに分類したのは、もっぱら説明/組織化を目的したものであって、ステップの相互依存などの推論を行うべきではないことを強調しておく必要がある。
【００２４】
グループ１
本明細書でグループ１に属するものとしておおまかに分類された、本発明の態様は、特に望ましい再集合ウイルスを生成するために、例えば、マスタードナーウイルスおよび１つまたは複数の野生型のウイルスを細胞培養系に同時感染させる上での最適化に関する方法および組成物；適切な再集合ウイルスの選択；および選択された再集合ウイルスのクローニングを含む。インフルエンザウイルス株の再集合は当業者に周知である。再集合ウイルス株を生成するのに、Ａ型インフルエンザウイルスおよびＢ型インフルエンザウイルスの両者の再集合が、細胞培養および卵の双方で用いられている。例えば、Ｔａｎｎｏｃｋら、「Preparation and characterisation of attenuated cold-adapted influenza A reassortants derived from the A/Leningrad/134/17/57 donor strain」、Ｖａｃｃｉｎｅ（２００２）、第２０巻、２０８２〜２０９０頁を参照。インフルエンザ株の再集合は、プラスミドコンストラクトでも示されている。上記に引用した「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照されたい。
【００２５】
再集合は、簡潔には、異なったウイルスに由来する遺伝子セグメントの混合（例えば、卵または細胞培養で）を、通常含む。例えば、Ｂ型インフルエンザウイルス株の典型的な８つのセグメントを、例えば、注目しているエピトープを有する野生型株と、例えば、寒冷適応株を含む「ドナー」株との間で混合することができる。２つのウイルスタイプ間で再集合を行うことによって、とりわけ、１つのセグメントに野生型エピトープ株を含み、他のセグメントに寒冷適応株を含むウイルスを生成することができる。残念ながら、所望の再集合体を生成するには、時に、多数の再集合を行う必要がある。ウイルスは、再集合の後に、選別することができる（例えば、所望の再集合体を見つけるために）。その後、所望の再集合体を、クローニングすることができる（例えば、数を増やして）。したがって、再集合体の構築に必要な時間を短縮するステップ、および所望の再集合体の生成を促進するステップは、極めて望ましいものである。
【００２６】
Ｂ型インフルエンザウイルスでは、所望の再集合体の、伝統的な最適化、選択、およびクローニングは、通常、細胞培養（例えば、ＣＥＫ細胞）に対するウイルス株の同時感染によって、そして、それに続く、例えば、親ウイルスの１株に由来する物質に対する適当な抗体を用いた選別（通常、卵で行われる）、および、通常は細胞培養で行われる、ウイルスのクローニングまたは増殖などによって行われる。しかし、そのような伝統的な再集合は、所望のセグメント混合物を生成するのに何千もの再集合を必要とする点に欠点がある。そのような再集合を行ったとしても、最終産物が真に無作為な再集合でないことが明らかである。言い換えれば、この過程に偏向を与える圧力がシステム中に存在するのである。しかしＡ型インフルエンザ株では、そのような過程に、そのような偏向が生じてはいないようである。Ａ株では、ウイルス株の同時感染（通常、ＣＥＫ細胞などの細胞培養を感染させる）の後で、選別およびクローニングを同時に行うが、これも、通常は細胞培養中で行う。
【００２７】
したがって、本明細書で詳述するように、本発明の様々な実施形態は、再集合における偏向を減少させるステップを含む。すなわち、再集合体のクローニングを、細胞系で行う代わりに卵（例えば、３３℃）で行うか、または細胞系で行うが、例えば、２５℃で行う。
【００２８】
再集合の最適化
本発明は、必要となる再集合の数を減少させる（それによって、ワクチン生産過程の時間内処理量を増大させる）ために、グループ１のステップを用いて再集合の過程を最適化する。そのような最適化技法を用いたステップは、通常、Ｂ型インフルエンザ株の再集合によって実現され、通常、細胞培養、例えば、ＣＥＫ細胞で行われる。
【００２９】
インフルエンザウイルスの再集合を行う他の方法では、マスタードナーウイルス（ＭＤＶ）および野生型ウイルスの希釈液、例えば、各溶液の濃度に関わらずそれぞれ１：５希釈したものを、混合し、それらを次に２５℃および３３℃で、２４および４８時間インキュベートする。しかし、そのようなアプローチは、Ａ型インフルエンザ株には許容できる場合が多いのにもかかわらず、通常、Ｂ型インフルエンザ株では、そのようなプロトコールで陽性の結果が得られない。例えば、適切な６：２再集合（すなわち、ＭＤＶから６遺伝子、そして、野生型ウイルスから２遺伝子、ＮＡおよびＨＡ）を実現するのに、しばしば、何千もの再集合を行わなければならない。
【００３０】
したがって、本発明のグループ１に含まれるステップの典型的な実施形態は、ＭＤＶ株および野生型株（特に、用いられたＢ型インフルエンザ株の野生型株）のＭＯＩ（感染多重度）の測定と、それに続く、表２で例示されたものを含む再集合とを含む。そのような最適化された再集合混合物のインキュベーションは、卵内、３３℃で２４時間行われる。最適化されていないシステムで何千もの再集合混和物が必要なのとは対照的に、このような実施形態では、通常、数百の再集合混和物をスクリーニングすることによって、適切な６：２再集合が実現される。
【００３１】
再集合体の選別およびクローニング
グループ１のステップは、再重合されたインフルエンザウイルスの選別も含む。本発明の方法および組成物は、適切に再集合されたＢ型インフルエンザウイルスを選別するのに特に有用である（そして、通常、そのように用いられる）。再集合されたＡ型インフルエンザ株は、細胞培養（例えば、ＣＥＫ細胞）または卵で選別できる。しかし、細胞培養で再集合された場合（例えば、ＣＥＫ細胞で選別される場合）、再集合されたＢ型インフルエンザ株には、問題が存在する。ＣＥＫ細胞は、Ｂ型インフルエンザ株でＭ遺伝子を妨害し、したがって、生成全体を抑制すると考えられている。下記参照。本発明は、そのような抑制に留意し、一部の実施形態では、Ｂ型インフルエンザの再集合の選別を、卵（卵はＢ型インフルエンザ株におけるＭ遺伝子に対する淘汰圧に関して中立的である）で３３℃において、または別法として、ＣＥＫ細胞で２５℃において行う。図５２を参照。
【００３２】
グループ１における本発明の他の実施形態には、選別過程で抗ＨＡ（ＭＤＶの）抗血清および抗ＮＡ（ＭＤＶの）抗血清を使用し、それによって、より強い選別を実現することが含まれる。
【００３３】
グループ１における本発明のさらに他の実施形態には、生成された再集合体のクローニングが含まれる。これまでの論考から明らかであろうが、ＣＥＫ細胞培養でのＢ型インフルエンザ再集合体のクローニングは、負の選択圧のため、問題があることが判明している。したがって、本明細書に記載のいくつかの実施形態では、Ｂ株の再集合体を、卵で、３３℃においてクローニングする。他方、Ａ株の再集合体は、場合によっては、ＣＥＫ細胞培養でクローニングし、同時に選別を行う。
【００３４】
本明細書に記載の一部の実施形態は、再集合における卵の無偏向性または非抑制性を利用する（上記参照）が、本明細書に記載の他の実施形態は、細胞培養での再集合体の選択／クローニングを含み、ただしこれを２５℃で行う。したがって、本発明の一部の態様は、ＭＤＶＢ（マスタードナーウイルスＢ）Ｍ遺伝子および野生型ＢウイルスＭ遺伝子の異なった特性を利用する実施形態を含む。例えば、望ましい再集合体を生成するため、任意選択で６：２および５：３の同時感染を行う。したがって、例えば、Ｂ／ＨｏｎｇＫｏｎｇ／３３０／０１ ＭＶＳの生成過程では、３３℃におけるＣＥＫ細胞の限界希釈による、野生型および寒冷適応型のＭウイルスＲＮＡからのクローニングの結果として、野生型ＭウイルスＲＮＡの成長が優勢となる。野生型のＭ ｖＲＮＡを得る確率は、卵の方がより高いが、３３℃で６：２を５：３（野生型のＭ遺伝子を含有している）と同時感染させた場合、卵およびＣＥＫ細胞の両方で、ＭＤＶ由来のＭ ｖＲＮＡより、野生型のＭ ｖＲＮＡが優性である。対照的に、ＭＤＶに由来する野生型のＭ ｖＲＮＡは、６：２および５：３を２５℃でＣＥＫ細胞に同時感染させた場合、相互に匹敵する量で存在する。したがって、本明細書に記載の一部の実施形態では、ＭＶＳ過程おけるＣＥＫ細胞での６：２クローニングに２５℃が用いられる。図１から８を参照。これらの図から、プラークアッセイによって、ＭＯＩが低い場合、３３℃におけるＢウイルス６：２の力価が５：３より少なくとも２ｌｏｇ１０低く、一方、２５℃では６：２は５：３と同じレベルにまで増殖することが示されていると見て取ることができる。３３℃における６：２の増殖欠損は、ＭＶＳ ＣＥＫクローニングの６：２に対する選別が原因かもしれない。ＭＤＶＢと６：２とで増殖特性が異なることは、Ｍ遺伝子優性にＨＡおよびＮＡが関与していることを示唆する。ＭＤＶＢと、野生型Ｂウイルスとの間には、２個の保存的アミノ酸が相違しているのみである。６：２ Ｍ１の遺伝子上のバリンから、野生型で保存されているメチオニンへの単一変異によって、３３℃におけるＣＥＫ細胞での６：２の増殖欠損を逆転することができる。
【００３５】
再集合の特性分析
本発明のさらに他の実施形態は、本発明で使用されるインフルエンザウイルスの遺伝子群（ｇｅｎｅ ｃｏｎｓｔｅｌｌａｔｉｏｎ）を決定するのに、ハイスループット一本鎖高次構造多型／キャピラリー電気泳動（ＳＳＣＰ／ＣＥ）アッセイの適用を利用する。そのような特性分析の局面は、本明細書に記載の他の「グループ」に分類することもできるが、構成上の目的から、ここで論ずるものと理解するべきである。インフルエンザウイルスは、上述のように、８つの遺伝子セグメントを含有しており、単一の細胞を２つの異なったインフルエンザ株で同時感染させることにより、いずれの親からも異なる新規な遺伝子群を備えた再集合体ウイルスを生成することができる。したがって、本明細書に記載のいくつかの実施形態では、多数のインフルエンザウイルス試料の遺伝子セグメント群を迅速に決定するのに、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイを用いる。インフルエンザウイルスの遺伝子セグメントは、任意選択で、８つのセグメントのそれぞれに特異的な蛍光標識プライマーを用いて、ＲＴ−ＰＣＲによって増幅する。あらゆる目的に関して、参照により本明細書に組み込まれている、Ａｒｖｉｎら（２０００）、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏ．、第３８（２）巻、８３９〜８４５頁も参照のこと。
【００３６】
インフルエンザゲノムの８つのセグメントすべての遺伝子型決定をするのに必要なＲＴ−ＰＣＲ反応の数を減少させるために、任意選択で、複数のセグメントを同一反応中で同時に増幅する多重反応を実施する。各セグメントに対応するＲＴ−ＰＣＲ産物は、サイズ、移動パターン、および蛍光色によって区別する。非変性マトリクス中での一本鎖ＤＮＡフラグメントの移動は、サイズのみではなく、その配列内容によっても決定される。
【００３７】
細胞は、任意選択で、寒冷適応したＢ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／１／６６（ＭＤＶ−Ｂ）または同様のものと、いくつかの野生型Ｂ型インフルエンザ株の１つとで同時感染させる。この同時感染の子孫は、限界希釈法によってクローニングし、多重反応で核酸を増幅する。プライマーを選択し、産物を１８℃でＳＳＣＰ／ＣＥによって分離する。ＳＳＣＰ／ＣＥは、ＭＤＶ Ｂおよび野生型株の８つの遺伝子セグメント間の解像度を高める。
【００３８】
例として、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイの正確さを実証にするために、約５０の異なった再集合体ウイルスからの４００の遺伝子セグメントを分析し、ＳＳＣＰ／ＣＥによる結果を、制限断片長多型（ＲＦＬＰ）によって得られたものと比較した。これら２セットのデータ相互には、高い一致（約９８％）が見出され、それによってＳＳＣＰ／ＣＥアッセイの確証がなされた。さらに、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイによって、Ｂ型インフルエンザウイルスのＭ遺伝子セグメント内にある単一ヌクレオチド置換を検出できることが示された。
【００３９】
細菌汚染の防止
本発明の一部の実施形態は、インフルエンザウイルスが生成される卵の微生物汚染を検出、および／または、防止／検出するステップを含む。そのようなステップは、表１に概要を示すいくつかの領域で有用であり、グループ１、２、および３に含めることができるが、構成上の目的からグループ１のステップと共に提示する。本発明の微生物検出ストラテジーは、迅速／ハイスループットの微生物検出に有用であり、したがって、本明細書の多数の他のステップでもそうであるように、ウイルス／ワクチン生産の時間内処理量を増大させるのに有用である。
【００４０】
本明細書に記載の本発明の一部の実施形態も含めて、現在のインフルエンザワクチン生産ストラテジーの多くは、その構成要素として、特定の病原体を含まない稔性の鶏卵でインフルエンザウイルスを増殖させる伝統的方法を用いる。卵でのウイルス産生では、いくつかの時点で、潜在的な微生物汚染が起こりうる。例えば、図９を参照のこと。図９は、ウイルス産生フローチャートの可能な一例と、その中で汚染が起こりうる領域の概要とを示す。残念ながら、鶏卵は、その天然生物相の一部として、殻の外に何種類かの微生物を有することがある。ニワトリ胚の発生中に卵の殻の中に封じこめられた微生物を有することも起こりうる。受精された鶏卵は、胚を発生させるために、高湿度、３７℃でインキュベーションを行うが、これは、多くのタイプの微生物夾雑物にとっても最良のインキュベーション条件を構成する。微生物汚染が起こりうる別の時点は、卵に接種するために、殻に穴があけられるときである。ウイルス接種の前には、しばしば卵にアルコールを噴霧するが、微生物が卵の中に進入する機会が依然として存在する。
【００４１】
ウイルスを卵の中で２から３日間増殖させた後、通常、卵中の、ウイルスを含有する尿膜腔液を手作業で収集するために、卵殻の頭頂を除去する。この収集が、微生物汚染が起こりうるもう１つの時点である。残念ながら、そのような混入している生物汚染を有する卵は検出を逃れることがあり、そのため、ロット全体がＭＰＡ試験で不合格になって拒絶されることを最小にするために、複数のボトルにプールする必要がある。通常、３つのインフルエンザ株がワクチン生産に用いられるため、最終原体には、３つの株を混合する必要である。産物が微生物を含まないことを確実にするために、過程中ＭＰＡ（微生物学的純度アッセイ）試験を、例えば、混合および充填に使用する前のウイルス採取の際に行う（図９を参照）。
【００４２】
インキュベーションの後で、検卵（ｃａｎｄｌｉｎｇ）の「伝統的な」方法を用いて、無精卵および死亡卵の同定を行う。卵は、天然の要因または微生物汚染によって死亡している可能性がある（すなわち、死亡卵は、ウイルスの感染力、および／または、微生物の増殖によって生じうるものであり、これらは両方とも検出して、そのような卵を排除する必要がある）。検卵は、例えば、暗くした部屋の光源の前に卵を保持して、発生中の胚の明視化を可能にする過程を含む。死亡卵は、ウイルス接種から排除する。
【００４３】
上記の点から明らかであるように、微生物汚染の検出は、インフルエンザワクチンの製造中、複数のステップで必要となりうる。トリ由来および環境由来の微生物を排除または低減させる必要、ならびに、環境由来およびヒト由来の微生物の導入を排除または抑制する必要がある。したがって、不稔性であるか、死亡しているか、または微生物に汚染されている卵を同定して、除去するための、非侵襲的で迅速な卵のスクリーニング方法が必要とされている。そのような方法は、好ましくは、非侵襲的かつ迅速なものであるべきである。混入している微生物を検出する現行の方法には、例えば、公定書記載の方法（ｃｏｍｐｅｎｄｉａｌ ｍｅｔｈｏｄ）（ＭＰＡおよび生物汚染）が含まれる。現行の方法は、例えば、卵の接種前／後の検卵（これは、通常、約５００卵／時間／人の速度で手動で行われる）；通常、手動であり、ＭＰＡ試験には約１４日間、そして生物汚染試験には約３日（これは、ウイルス収集中に行われる）かかるＭＰＡ試験および生物汚染試験；通常、手動であり、約２８日間（これは、ウイルス収集中に行われる）かかるマイコプラズマ試験；ならびに、通常、手動であり、約５６日間かかる（これは、ウイルス収集中に行われる）ミコバクテリア試験を含むことができる。これらから、伝統的方法には、回転時間の有意な短縮を行う余地のあることが理解されよう。新規の方法は、例えば、結果が出るまでの時間が何日もかかっていたものを２４時間以下に（そして過程中試行試験では、好ましくは、４時間以下に）、そして放出試験（Ｒｅｌｅａｓｅ Ｔｅｓｔｉｎｇ）では何週間もかかっていたものを数日間にまで短縮するものが望ましい。他の優先事項には、例えば、中間体／在庫保持時間の短縮、潜在的な製品発売／承認の迅速化、および費用／労力／間接費の削減が含まれる。概して、微生物汚染を検出するために選択されるいかなる方法も、例えば、意図している用途、結果がでるまでの時間、機器の性能などの科学的要件；ＦＤＡのガイドライン（例えば、ＦＤＡによって要請されているように、生物汚染は生存している全生物の尺度でなければならない）、レビュー、希望／許容などの規制要件；業者監査、業者サポート（機器ＩＯＰＱすなわち機器測定された見込み品質（ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔａｌｌｙ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖａｌ ｑｕａｌｉｔｙ））、ソフトウェア検証、および文書完備などの順守要件；ならびに、業界動向、実施費用、試験あたりの費用などの業務要件を考慮するべきである。
【００４４】
本発明の様々な実施形態に存在する微生物汚染を検出するのに利用可能な別法のいくつかを表３に記載する。したがって、例えば、検卵の別法、そして本発明の一実施形態は、ウイルスの接種前／後における熱イメージングを含む。そのような実施形態では、インキュベートされている卵から放出される赤外線を赤外線カメラで捕捉する。補足されたイメージは、ソフトウェアを用いて、卵の温度測定値に変換する。このようなカメラは、０．０１℃以下の温度相違を捕捉することができる。代謝活性が高い発生中の胚は、無精卵または死亡している胚より熱の喪失が遅く、したがって、その結果、温度較差がより大きくなっている。例えば、ウイルス接種前／後の熱イメージングを検卵の別法として用いるには、卵をトレーごとに熱イメージングすることができる（例えば、卵のトレー（例えば、底が開いた隔室に置かれたトレー）の下に赤外線カメラは設置することができる）。そして、卵それぞれの底部（または、側部、頭頂部など）温度を測定するように、ソフトウェアを設定することができる。個々の卵それぞれの温度減衰速度を評価することができ、それによって、問題の卵における最大温度較差を示す時間の同定が可能となる。そのような熱イメージングによって、生存している胚と、無精卵および死亡卵との間にある温度較差を同定することができる。図１０および１１を参照。
【００４５】
本明細書に記載の他の実施形態では、本発明は、ウイルス収集の際の生物汚染試験の別法の１つ、すなわち、ＭＰＮすなわち最確数を用いる。これは、Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｍａｎｕａｌ Ｏｎｌｉｎｅ、２００１年１月、付属２、「Most Probable Number from Serial Dilutions.」、ＦＤＡ／ＣＦＳＡ−ＢＡＭに基づくものである。例えば、ＭＰＮ試験では、複製３つの９６ウェル試験を含むことができ、その試験では、１：１０の系列希釈（例えば、１：１０、１：１００、１：１Ｋ、１：１０Ｋ、１：１００Ｋ、および１：１０００Ｋ希釈）を、９６ウェルマイクロタイタープレートで、陰性対照と共に、３種類の異なる試料について、三重で検査することができる。ＴＳＢをすべてのウェルに、最初に希釈剤として添加することができ、そして微生物の増殖を補助する濃縮培地として添加することができる。プレートは、目視によって、または６００ｎｍで読み取ることできる。ＭＰＮ生物汚染試験は、汚染を検出するための膜濾過試験に比べてかなり有用である。膜濾過試験は、（３種類の試料に対して）１５枚のＴＳＡプレート、大きな試料容積、集約的な量の時間および労働を必要とし、自動化が困難な場合があり、試料は１：１０および１：１００希釈のみであるが、９６ウェルＭＰＧ試験は、（３種類の試料に対して）１枚の９６ウェルマイクロタイタープレート（対照も含む）、小さな試料容積、いくつかの簡単な使い捨て用品および試薬のみを必要とし、１：１０から１：１０００００までの希釈範囲があり、さらに、目視で読み取ることも、９６ウェルプレートリーダーで自動的に読み取ることもできる。７０の試料を、従来の生物汚染試験を用いて試験した結果と、９６ウェルプレートＭＰＮ試験を用いて試験した結果は、相互に完全に一致することが判明した。とりわけ、意図した目的に関しては、９６ウェルプレートＭＰＮは、同等の結果を、よりハイスループットで提供した。
【００４６】
ウイルス収集における伝統的な公定書ミコプラズマ試験の別法として、本発明は、一部の実施形態で、核酸増幅に基づいた、標準化され、汎用性のある迅速な市販キット（例えば、ＰＣＲ）の使用を含む。現行の公定書記載の方法は、（直接的および間接的に）すべての株の汚染（トリＭ．ｓｙｎｏｖｉａｅおよびＭ．ｇａｌｌｉｓｅｐｔｉｃｕｍ、ならびにヒトＭ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、すなわち、すべてのトリおよびヒトミコバクテリア株が含まれる）を検出する。代替となるＰＣＲ検出法には、研究者によって開発された、リアルタイムＰＣＲ用のプライマー／プローブセットが含まれるが、これらは、あるマイコプラズマパネルを特異的に検出し、標的遺伝子（例えば、１６ｓおよび／または２３ｓリボソームＲＮＡの属特異的および／または種特異的な配列）の配列相同性に基づいて、場合によっては、結核菌および非結核性マイコバクテリア（例えば、Ｍ．ａｂｓｃｅｓｓｕｓおよびＭ．ａｖｉｕｍ）など、４０を超える種を検出する。本明細書に記載の一部の実施形態は、結核菌および非結核性マイコバクテリアなどを迅速に検出する、標準化され、核酸増幅に基づいたキットを利用する。
【００４７】
グループ２
グループ２に該当する本発明の態様には、表１のステップ４からステップ６までに対応するものが含まれる。正しい再集合過程、および再集合体（すなわち、６：２ウイルス）のクローニングの後、そのような再集合ウイルス粒子を、孵化鶏卵中でさらに精製し、正しいクローンを量的に増大させて（再度、鶏卵中での増殖を介して）、マスターウイルス株（ＭＶＳ）またはマスターウイルス種子を生成させる。マスターウイルス株（ＭＶＳ）またはマスターウイルス種子は、次に、マスター作業ウイルス株（ＭＷＶＳ）または製造会社の作業ウイルス種子を生成させるためにさらに増殖させる。卵からウイルス粒子を精製する多くの態様、および、ウイルス粒子の量を増大させる目的で、さらに多くの卵に接種するための、そのような精製ウイルスの使用は、当業者に周知のものである。多数のそのよう技法は、ウイルス粒子の現行の生産に共通であり、少なくとも４０年間用いられている。例えば、Ｒｅｉｍｅｒら、「Influenza virus purification with the zonal ultracentrifuge」、Ｓｃｉｅｎｃｅ、１９６６年、第１５２巻、１３７９〜８１頁、参照。例えば、共通の精製プロトコールでは、例えば、ショ糖勾配（例えば、１０〜４０％ショ糖）中での超遠心分離などを含むことができる。また、本明細書に記述したように、例えば微生物汚染の防止など、他のグループに記載された他の操作なども、任意選択でグループ２の範疇に含まれる。
【００４８】
グループ３
グループ３という標題の下に分類される、本発明の態様は、表１のステップ７からステップ１１までが含まれる。これらのステップは、主として、孵化卵の調整（ウイルスに感染した卵のインキュベーションに関する特定の取り扱いおよび環境条件）と、卵の尿膜腔液からのインフルエンザウイルスの収集および清澄化とを行う。
【００４９】
例えば、本発明は、ワクチンで用いられる再集合ウイルスを含有する卵の調整、洗浄、検卵、およびインキュベーション；そのような卵の接種、密閉など；そのような卵の検卵；卵からのウイルス溶液（例えば、尿膜腔液）の収集；ならびにウイルス溶液の清澄化を含む。ここでも、グループ２のステップに適用できるいくつかの技法が、グループ３のステップにも等しく適用できることに留意するべきである（例えば、検卵など）。グループ３を含む本発明のいくつかの態様は、当業者に周知のものである。ウイルス産生における卵の検卵の様々な態様は、卵へのウイルスの接種、そのような卵の洗浄およびインキュベーションと共に、卵におけるウイルス／ワクチンの生産において周知の技法である。当然ながら、そのような周知の技法は、本発明の独特かつ革新的態様とともに用いられるものと理解されよう。
【００５０】
揺動
一部のタイプのインフルエンザ株（例えば、とりわけ、Ｖｉｃｔｏｒｉａ／５０４／２０００などのＢ型インフルエンザ株）を培養することの欠点の１つは、卵で増殖させた場合に、他の株ほど高い力価を生じないことである。例えば、第１の株（例えば、Ａ型インフルエンザ株）が１０８または１０９ｌｏｇの力価（すなわち、ミリリットルあたり１０８または１０９のウイルス粒子）を生み、第２の株（例えば、Ｂ型インフルエンザ株）がミリリットルあたり１０７のウイルス粒子しか生み出さない場合、第２の株は、例えば、より大量の卵で増殖させなければならず、さもなくば、第２の株が第２の生産などで増殖するまで、第１の株を保持しなければならない。
【００５１】
したがって、本発明の一態様は、ウイルス株のインキュベーションが行われている卵（すなわち、卵がウイルスで接種をされた後）を、揺動させるか、または穏やかに振動させることである。そのような揺動を実現するのに用いられる正確な機構は、限定されないことに留意するべきである。例えば、卵は、振盪プラットホームまたはロッキングプラットホームで揺動させてもよい（例えば、細菌培養フラスコのインキュベーションに使用されているように、卵のインキュベーターで使用されるようになど）。一部の実施形態では、１分間あたり約１サイクル以下から、毎分約２サイクル以上で卵を揺動させる。この文脈において、「サイクル」とは、動作の全範囲にわたる卵の移動を意味すると理解するべきである。さらに他の実施形態では、毎分約０．５サイクル以下から、毎分約５サイクル以上で卵を揺動させる。一部の実施形態では、卵を１分間あたり約１サイクルで揺動させる。グループ３のインキュベーションステップ（すなわち、接種の後）に揺動させることを加えた場合、Ｂ−Ｖｉｃｔｏｒｉａインフルエンザ株の力価が、揺動されなかった対照群の卵より０．４ｌｏｇ増大した。
【００５２】
濾過および加温
グループ３に分類される本発明のさらに別の態様は、無菌濾過（通常０．２μｍのフィルターを通す）中における、ウイルスの力価（ｐｏｔｅｎｃｙ）の減失に対する、ウイルス尿膜腔液（ＶＡＰ）の温度の影響に関与するものである。本発明の様々な実施形態では、ウイルス粒子を尿膜腔液から収集し、その後、この体液の加温と、その後の濾過とを含む過程を通して行う。例えば、表１のステップ１０および１１を参照。そのようなステップが望ましいのには、いくつかの理由がある。例えば、本明細書に指摘したように、ワクチン調製物中の尿膜腔液および破片の存在は、アレルギー反応を導くことがある。また、かなり重要なこととして、濾過によって、生物汚染（細菌）が溶液から除去される。生物汚染を含有するすべてのＶＨ（ウイルス収集）溶液を廃棄しなければならない。これは、弱毒生ウイルスワクチンの鼻腔内投与でもあてはまる。したがって、そのような生物汚染などの存在を除去および／または減少させるための弱毒生ウイルスの濾過および清澄化を可能にする本発明の態様は、かなり望ましいものである。
【００５３】
ここでは、一例として、寒冷適応（ｃａ）ウイルス株（例えば、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、Ｈ３Ｎ２型）を滅菌グレードのフィルターを通して、許容範囲の力価減失で濾過するのに必要なウイルス尿膜腔液（ＶＡＦ）の温度および加温時間の影響を用いる。許容できる状態でＡ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を濾過する条件、および同様の条件で濾過された、さらに５株の寒冷適応インフルエンザ株（すなわち、２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、２× Ｂ）の結果について論じる。
【００５４】
濾過過程全体を通したウイルス尿膜腔液の特徴付けを行うのに、３通りの独立したアッセイ（ＴＣＩＤ５０、ノイラミニダーゼ、および赤血球凝集素）を用いた。これらのデータによって、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７では、濾過過程に加温ステップ（例えば、濾過の前に、３１±３℃の温度に最大６０分間曝露する）を追加することによって、加温ステップ無しで行った滅菌グレードの濾過と比較して、力価の減失が許容できるレベル（０〜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）まで低減したことが実証された。他の実施形態では、任意選択で、加温温度が２８℃超または２８から３６℃で、少なくとも３０分間、あるいは、他の実施形態では、約６０から２４０分間である。加温過程は、実際、長時間継続することができるが、さらに長時間行った後には、そのような高い温度におけるウイルス安定性の減失による力価の減失が測定可能かつ有害なものとなることが理解されよう。追加した加温ステップは、試験した他の株では、試験した時間内の力価のさらなる減失に寄与しなかった。これは、加温ステップが、寒冷適応しているインフルエンザウイルス（ＣＡＩＶ）の滅菌グレードでの濾過において許容できる操作ステップであることを示す。
【００５５】
本明細書に記載の通り、現行のＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）製造プロセスは、孵化鶏卵を用いてマスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、およびウイルス収集物（ＶＨ）を生成するものである。表１のステップ６を参照。種子およびウイルス収集物は、生物汚染（通常、細菌汚染）を含有する可能性があり、その場合には、それによって、種子または原体ウイルス産物ロットがワクチン生産工程で拒絶されることになる。ウイルス含有尿膜腔液の濾過の使用を評価するための以前の研究を通して、この過程に濾過ステップを導入することによって生物汚染が低減できることが示された。しかし、以前の研究に基づくと、そのような濾過は、特定のウイルス株（例えば、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７）で問題を有する。そのような研究に基づいて、様々な関連供給ライン、分配ライン、および試料収集ラインを併せ持ち、プレフィルターおよび０．２ミリメートル滅菌グレードフィルターに連結された無菌プラスチック培地バッグを含む濾過装置の設計案が提案された（下記参照）。当然ながら、使用された特定の産物タイプ、サイズなどの特定の列挙または記載は、そうであると明確に述べられない限り、本発明を制限するものと見なされるべきではないことが理解されよう。
【００５６】
そのような研究から判るように、試験された寒冷適応（ｃａ）ウイルス株の大部分は、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ ＳａｒｔｏｃｌｅａｎＣＡプレフィルターを通して、それに続いて、滅菌グレードフィルターとしてＳａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２を通すことによって最小限の力価減失で濾過することができる。しかし、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を用いた他の濾過研究では、力価減失が０．７〜１．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの間であるという結果が得られた。さらに研究を行ったところ、この減失は、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２滅菌グレードフィルターを通すことによって生じることが明らかになった。ここでも、任意選択で、他のフィルターブランドおよび／またはフィルタータイプが、そのようなステップで使用され、特定のフィルター名／タイプの言及は、限定として解釈するべきではないことに留意するべきである。
【００５７】
以下に示す第１セットの実験の目的は、濾過中におけるウイルス力価の減失に対するＶＡＰ温度の影響を試験することであった。この研究の第２部は、濾過前におけるＶＡＦの適切な加温時間を決定するように設計されていた。加温条件を決定するモデル株として、寒冷適応（ｃａ）Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス株（Ｈ３Ｎ２型）を用いたが、これは、前述のように、この株で濾過中の力価の大きな減失が観測されていたためである。
【００５８】
この実施例の第３部では、いくつかの他の一価ウイルス株について、濾過によって引き起こされる力価の減失に対する、ウイルス尿膜腔液（ＶＡＦ）を暖めることの影響を評価した。５株のＣＡＩＶ株（２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、および２× Ｂ）をこれらの検査に用いた。すべての実験は、ショ糖リン酸グルタミン酸（ＳＰＧ）で安定化したＶＡＦ １．０〜３．０Ｌと、試験試料を取り出す前に、適切にスケーリングされたフィルター、すなわち、予測される最大ＶＨ過程規模の約１：３０から１：１０のフィルターを用いたＣＡＩＶ種子スケール（ＭＶＳおよびＭＷＶＳ）で行った。典型的な過程規模は、濾過装置あたり安定化ＶＨ約３３Ｌまでである。そのような容積は、通常、濾過装置用に選択された５０Ｌバッグを用いて良好に濾過され、標準的な１０インチのフィルターカプセルを用いて濾過できる容積にも、妥当な安全域を有する。しかし、開発／例示的な研究には、そのような容積は大きすぎることが多く、そのため、１／１０の規模（すなわち、約３Ｌ）の濾過を行った。
【００５９】
そのような温度／濾過ステップ用に、当技術分野で周知の方法に従って、かつ／または、表４に要約される寒冷適応（ｃａ）インフルエンザ株を用いた本発明（上記および下記参照）の他の態様を用いて、ウイルス伝播を行うことができる。
【００６０】
実験における全段階からの試料の力価を、組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）を手動アッセイで測定することによってアッセイした（ＴＣＩＤ５０測定の他の側面については下記参照）。ノイラミニダーゼ活性（ＮＡ）および赤血球凝集素活性（ＨＡ）も測定した。
【００６１】
力価（ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）、ノイラミニダーゼ（ＮＡ）活性、および赤血球凝集素（ＨＡ）活性の損失に対するＶＡＦ温度の影響を評価するため、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ ＳａｒｔｏｃｌｅａｎＣＡとＳａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターの組合せを通して一連の濾過を行った。
【００６２】
ウイルス収集中に、ＶＡＦを１Ｌ ＰＥＴＧボトルにプールした。必要な容積の非安定化ＶＡＦが収集され、プールされたときに、濾過を行った。この段階での非安定化ＶＡＦの温度（始動温度）は、１５±３℃であった。全加温時間は、ＶＡＦが３３±１℃の水浴中にあった時間として定義し、昇温時間（１５℃±３℃〜２８±３℃）および温熱保持時間（例えば、設定点において２８℃以上である時間）からなった。
【００６３】
第１部のＶＡＦ温度影響研究（下記参照）は、寒冷適応している（ｃａ）Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス株（Ｈ３Ｎ２型）で行った。実施例の第２部は、任意選択の温熱保持時間（「その温度にある時間」）の決定に焦点をしぼった。第３部では、事前に決定した温熱保持時間の影響を、他の５株（表５）で試験した。この実施例のすべての部で、１．０〜３．０Ｌのショ糖リン酸グルタミン酸（ＳＰＧ）で安定化されたＶＡＦ、通常のウイルス種子スケール、および予測されるｍＶＨ過程規模の約１：３０〜１：１０を、装置を通して濾過した。
【００６４】
収集後における現行の典型的な製造プロセスでは、さらに輸送するため、ＶＨの遠心、安定化、および冷凍を行う。これらの実施例では、非安定化プールから取り出したＶＡＦ試料を、現行の製造プロセスと同様に、遠心し、ＳＰＧで安定化し、これが、この実施例すべての部における濾過されたＶＡＦに対する対照として機能した。
【００６５】
第１部：濾過中におけるＡ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス力価変化に対する温度の影響
力価の減失に対する温度の影響を測定するため、様々な温度における２セットの濾過実験を行った。各セットは、同じバッチの卵から収集したＶＡＦを用いて、同じ日に行った３つの平行実験からなった。これらの実験では、収集後、ＶＡＰをＳＰＧで安定化し、３つのプールに分離し、濾過の前に６０分間、５±３℃（冷蔵庫）、２０±３℃（卓上）、または３１±３℃（水浴）に曝露した。この間、ボトル中のＶＡＦは、１０分毎に反転によって混合した。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、ＶＡＰを遠心し、安定化させた。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００６６】
力価の減失に対するＶＡＦ温度の影響を測定するため、濾過の前に、ＶＡＦを６０分間、５±３℃、２０±３℃、または３１±３℃に曝露した。遠心および安定化された物質と、異なった温度処理受けた濾過後の物質との間での、力価の変化、ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素活性の相違を表５〜１０に要約する。それらから判るように、低温（５±３℃）および室温（２０±３℃）でのＶＡＦの濾過によって、０．７から１．０ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの力価減失がもたらされた（表５および８を参照）。しかし、ＶＡＰを３１±３℃に６０分間（３０分間の昇温時間＋設定点温度での３０分間の温暖保持時間）暖めた場合には、濾過の後では、（遠心および安定化されたＶＡＦと比較して）力価の減失がなかった。表５および８を参照。さらに、濾過後のノイラミニダーゼ活性レベルは、ＶＡＦを３１±３℃まで暖めた後に濾過を行った場合、低温および室温での濾過で観測されたレベルより高かった。表６および９を参照。昇温ステップの追加は、赤血球凝集素活性の損失も低減させた。表７および１０を参照。
【００６７】
第２部：Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７の、濾過における力価の減失が許容範囲となるのに必要な加温時間の決定
必要な加温時間を決定するために、水浴中で濾過の前に３１±３℃に暖められたＶＡＦを用いて、一連の実験を行った。対照実験では、ＳＰＧで安定化した後、直ちにＶＡＦの濾過を行った。すべての実験で、加温時間は、ＶＡＦが水浴中（すなわち、３１±３℃）にあった合計時間（昇温時間および温暖保持時間）として定義した。ボトルの中のＶＡＦは、１０分毎に反転によって混合した。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、現行の製造プロセスを代表して、ＶＡＦを遠心し、安定化させた。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００６８】
ｃａ Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を濾過するのに必要な、濾過前の加温時間を決定するため一連の実験が行った。その際、１セットの実験では、濾過の前にＶＡＦを３１±３℃に、３０、９０または１８０分間暖め、もう１セットの実験では、３０、６０、または９０分間暖めた。対照実験では、ＳＰＧで安定化した後、暖めずに、直ちにＶＡＦを濾過した。濾過されたＶＡＦと対照との間のウイルス力価、ノイラミニダーゼレベル、および赤血球凝集素レベルを表１１〜１６に要約する。
【００６９】
データは、ＶＡＦを３１±３℃に曝露することによって、濾過後のウイルス力価の減失が低減され、ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素の活性の部分的な回復を可能にしたことを実証する。表１１〜１３を参照。実験開始当初（収集後かつ加温前）の非安定化ＶＡＦの温度は１５±２℃であった。１〜１．５ＬのＶＡＦを３１±３℃に達するのに必要な昇温時間は約２０〜３０分間であった。したがって、ＶＡＦの全加温時間が３０分間である場合、３１±３℃でのＶＡＰ温暖保持時間が０〜１０分間となる。
【００７０】
濾過による力価の減失を最小にするのに必要な最小の加温時間を、第２のシリーズの実験で測定した。表１４〜１６（第１セット）および表１７〜１９（反復セット）を参照。濾過後の力価、ＨＡ、およびＮＡの減失を、全加温時間が０および３０分間の実験で観測した。全加温時間が６０および９０分（３１±３℃での温暖保持が３０〜４０分、および６０〜７０分）の実験では、濾過後のウイルス力価、ＨＡ、ＮＡレベルが対照（遠心および安定化されたＶＡＦ）試料と同程度であった。表１４〜１９を参照。
【００７１】
第３部：他株に対する加温の影響
Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７以外のインフルエンザウイルス株の濾過に対する昇温ステップ影響を評価するために、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７以外の５株、すなわち、２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、および２× Ｂを用いて一連の実験を行った。各株の試験を２回行った。濾過の前に、ＶＡＦを３１±３℃で６０分間（３０分間の昇温時間＋この温度で３０分間）暖めた。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、ＶＡＦを、室温でＳＰＧによって安定化した後、直ちに濾過した。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００７２】
追加して試験した５株の寒冷適応インフルエンザウイルス株では、３１±３℃（設定点温度での温暖保持時間は３０〜４０分間）に短時間曝露（全加温時間は６０分間）した場合に、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７およびＢ／Ｖｉｃｔｏｒｉａ／５０４／２０００の、温度処理なしの実験と比較して、濾過後の力価減失の低減に寄与し、他の株では力価に影響がなかった。これらの実験における力価（ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）、ノイラミニダーゼレベル、および赤血球凝集素レベルを、下記の表２０〜２５に要約する。
【００７３】
表から読み取ることができるように、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７では、安定化されたウイルス収集物を、Ｓａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡプレフィルターおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２の滅菌グレードフィルターを通す濾過の前に、３１±３℃、または任意選択で最大３６℃（ボトル中の１〜１．５ＬのＶＡＦでは、温暖保持時間が６０〜９０分間）にさえ暖めることを含む本発明の態様では、ウイルス力価の減少が許容できる範囲（０〜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌ）となった。対照実験では、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７の安定化されたウイルス収集物を加温せずに濾過した場合、力価の減失が最大１．０ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌであった。
【００７４】
そのような表からも判るように、試験した６株の寒冷適応インフルエンザウイルス株すべてで、３１±３℃（３１±３℃での温暖保持時間３０〜４０分間）に短時間曝露する（昇温時間および温暖保持時間６０分間）ことは、力価の減失を低減するか、さもなくば、濾過中における力価のさらなる減失に寄与しないものであった。すべての実験で、濾過後の力価の減失が、０．３ ｌｏｇ ＴＣＩＤ５０／ｍｌより高くなることはなかった。加温されて濾過されたＶＡＦのウイルス表面タンパク質（ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素）活性の損失が、加温されていないものと比較して低減したことは、ＴＣＩＤ５０アッセイによって示された、力価減失の低減データを支持する。
【００７５】
したがって、これらのデータは、ＣＡＩＶ（ＭＶＳ、ＭＷＶＳまたはＶＨ）を濾過するのに必要な６０分間（ＶＡＦを３１±３℃に暖める時間、および少なくとも３０分間の温暖保持（設定点温度での時間））の加温時間を含む、本発明の一部の実施形態では、力価の減失が許容できる範囲にある。このような加温による耐性は、とりわけ他の濾過の試みからみて、新規かつ予想外の結果である。上記参照。理解されるように、ここでも、加熱／濾過ステップを含む本発明の実施形態は、上記の実施例によって限定されるものではない。言い換えれば、任意選択で、例えば、他のフィルターおよびフィルタータイプなども、本発明から逸脱せずに使用される。
【００７６】
グループ４
本発明のグループ４の態様は、例えば、表１のステップ１２〜１５を含む。そのようなステップは、主としてウイルス含有溶液の安定化（例えば、成分の添加、緩衝液／ＮＡＦ比の変更などを介した）、および力価／無菌アッセイに関する。一部の実施形態では、生ウイルスを含む最終ウイルス溶液／ワクチンが、インフルエンザワクチン接種シーズン（例えば、北半球では、通常、ほぼ９月から３月まで）を通して、「フィールド中」での貯蔵（例えば、４℃で冷蔵されている際の販売および商業化）を可能にするのに十分な期間、液体形態、４℃で安定である。したがって、ウイルス／ワクチン組成物は、保存期間の間、それらの力価を保持するか、さもなくば力価の喪失速度が許容範囲であることが望ましい。例えば、０．３ｌｏｇの力価減失が許容でき、保存期間が９カ月であるならば、力価の０．０５ｌｏｇ／月の低減が許容できよう。さらに、ＦＦＡを使用することによって、許容できる減失の範囲がさらに大きくなるであろう。例えば、最大０．７５ｌｏｇまでの減失が許容される場合、０．０９ｌｏｇ／月以下の速度は、冷蔵庫温度（例えば、４℃）に継続的に保存されている物質の安定性を保持するのに十分であろう。他の実施形態では、そのような溶液／ワクチンが、液体形態で、約２℃〜約８℃で安定である。さらに他の実施形態では、溶液／ワクチンが室温で安定である。本明細書に記載の典型的な実施形態は、ＮＡＦを希釈することによって、免疫原性の低減を示さない（または、小さな低減を示す）（下記参照）。
【００７７】
ウイルス収集物の濃縮／ダイアフィルトレーション
本明細書に記載の一部の実施形態では、適切なカラムを用いて、任意選択で、ウイルス収集物を濃縮する。インフルエンザウイルス溶液は、ウイルスの力価／活性の目に見える減失を伴わずに濃縮することができる。以前の文献などが、濃縮によるウイルス活性の減失を示しているので、力価の減失のないこのような濃縮は、極めて驚くべき結果である。ウイルス粒子を増強して、他のタンパク質、ＲＮＡなどを除去するために、例えば、表１に例示するような、精製／生産工程中の多くの時点でウイルスを濃縮することができる。例えば、濃縮は、力価アッセイの前、または力価アッセイの後などでさえ行うことができるが、多くの実施形態において、グループ４に分類されるステップの中／間に行われる。ウイルス粒子の濃縮は、精製、ワクチン調製、および特性分析に有用である場合がある。例えば、「Methods and Techniques in Virology」、Ｐｉｅｒｒｅ ＰａｙｍｅｎｔおよびＭｉｃｈｅｌ Ｔｒｕｄｅｌ、Marcel Dekker社（１９９３）を参照。一部のＶＡＦ試料では、ウイルス量が少ないため、ウイルス粒子を直接分析するのに、分析超遠心法（ＡＵＣ）、ディスク遠心分離、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）、および粒子計数法などの一部の分析技法が利用できない。
【００７８】
卵ＮＡＦなどからのウイルスの濃縮は、以前には伝統的に、勾配精製遠心法で行った。例えば、「Concentration and Purification of Influenza Virus from Allantoic Fluid」、Ａｒｏｒａら、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第１４４巻、１８９〜１９２頁（１９８５）を参照。しかし、本明細書に記載の実施形態は、サイズ排除カラムを利用する。濃縮は、ウイルスの産生が、卵産生を介して、細胞培養生産（例えば、Ｖｅｒｏ細胞）を介して、プラスミドレスキュー生産などを介して行われるかに関係なく、用いることができる。また、濃縮ステップは、例えば、製品品質を確実にするために、多数の異なったウイルスおよび／またはウイルス株（例え、Ａ型インフルエンザ株およびＢ型インフルエンザ株の両方がそのような操作を受け入れる）、そして、１つの株の異なったロットでも行うことができる。さらに、サイズ排除カラムによる濃縮は、１つの収集の中、例えば、１つの卵の中などにおけるウイルス粒子の量の追跡用にしばしば用いることができる。すなわち、例えば、そのような溶液のＴＣＩＤ５０測定の代わりに、またはそれに加えてピーク面積（すなわち、カラムから溶出されたウイルスの面積）を用いることができる。そのような追跡は、卵で生成されたウイルスに対して特に有用である。さらに、濃縮および精製されたウイルス性物質は、任意選択で、その後の研究用に純粋なＨＡ、ＮＡ、および他のウイルス成分を生成するための出発物質にすることができる。さらに、ＳＥＣで精製されたウイルスは、ウイルス構造および宿主細胞との結合機構に関するより深い洞察を提供することができる。ほとんどのＶＡＦ（ウイルス／ウイルス尿膜腔液）物質の中では、ウイルス粒子がＵＶの検出限界未満であるため、ウイルス粒子の濃縮は、それらをさらに特徴づけるのにかなり有用である。
【００７９】
ウイルス収集物の濃縮を行う際に、不純物および／または、好ましくない緩衝液／体液を除去するのに、サイズ排除カラム、例えば、圧力下にある中空繊維フィルターを備えたＭｉｄＧｅｅまたはＱｕｉｘＳｔａｎｄ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）を用いることができる。したがって、濃縮されたウイルスは、特定の緩衝液／安定化剤により簡単に懸濁または保存される。下記参照。
【００８０】
ウイルス収集物試料の濃縮の例示を行うため、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａインフルエンザ収集物を濃縮して、クロスフロー濾過によってＶＡＦから分析した。当然のことであるが、ここでも、この節に記載の技法は、ウイルスの特定の株／タイプに限定されないことを改めて強調する。そのような濃縮によって、ウイルス粒子が濃縮され、大部分の不純物が除去され、そして、ウイルスの感染性が保持された。例示したように、ウイルスの感染性はＣＥＬＩＳＡ（ＴＣＩＤ５０）によって検査した。ＨＡアッセイによる赤血球凝集、ノイラミニダーゼ活性、ＳＥＣ分析、ＲＨＰＬＣによるＮＡＦ、およびＲＴＰＣＲによるＲＮＡ分析も行った。
【００８１】
以下の実施例におけるウイルスの濃縮は、Ａｍｅｒｓｈａｍ社製クロスフロー濾過ユニットＭｉｄＧｅｅを用いて行った。ＭｉｄＧｅｅは、２〜３時間の間に１００または２００ｍｌを１０ｍｌに濃縮することができる。同様に、ＱｕｉｘＳｔａｎｄは、４から６時間の間に、ウイルス粒子を２リットルから１００ｍｌに濃縮するのに用いることができる。ウイルスの濃縮は、ウイルスの粒子数を増加させるだけではなく、卵タンパク質、ＲＮＡ、および、尿酸などの小分子など、大部分の他の不純物を除去する。
【００８２】
以下の実施例で用いたウイルスは、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９であった。ＮＡＦは、寒冷適合インフルエンザウイルスを含んでいた。ニワトリ血液は、Ｃｏｌｏｒａｄｏ Ｓｅｒｕｍ Ｃｏｍｐａｎｙ社（Ｄｅｎｖｅｒ、ＣＯ）から入手した。濃縮に用いた装置は、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社（Ａ／Ｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）から入手したものであって、ぜん動ポンプ（Ｗａｔｓｏｎ Ｍａｒｌｏｗｅ社）を備えたＭｉｄＪｅｔシステムであった。濃縮に用いたカラムは、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社（Ａ／Ｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）から入手したものであって、名目上の分子量カットオフが７５０，０００であるＭｉｄＧｅｅ Ｈｏｏｐクロスフローフィルターであった。しかし、さらにここでも、装置の特定のモデル、製造業者などの使用または言及は、本発明に対する制限として理解するべきではないことを強調する必要がある。この実施例で洗浄に用いた緩衝液は１Ｘ−ＳＰＧであった。
【００８３】
ＳＥＣに用いた機器はＨｅｗｅｌｔｔ Ｐａｃｋａｒｄ社製ＨＰ１１００ＨＰＬＣシステムであり、カラムは、Ｗａｔｅｒｓ社から入手した、大きさが７．８×３００ｍｍのＵｌｔｒａｈｙｄｒｏｇｅｌ１０００であった。ＳＥＣで用いた緩衝液は、Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｓｏｌｖｅｎｔ社から入手したダルベッコリン酸緩衝生理食塩水であった。ＳＥＣでは、この方法は、流速０．５ｍｌ／分の定組成条件を含み、２１０および２８０ｎｍでモニターされた。ＲＨＰＬＣには、機器がWaters社から入手したもの、そして、カラムはＹＭＣ Ｃ４（逆相）、２．１×２５０ｍｍ、５μｍ、３００Ａであった。ＲＨＰＬＣの方法は：移動相−Ａ：０．１％ＴＦＡ水溶液、Ｂ：９５％ＣＡＮ ０．０９％ＴＦＡ；溶出条件−可変勾配、１３〜１００％、Ｂ；流速：０．２ｍｌ／分；カラム温度−４５℃；注射容積−５０μｌ；および検出−２１４ｎｍであった。
【００８４】
図１２に示すように、ステップ１、１５０ｍｌのＡ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９を低温室でＭｉｄＪｅｔ装置によって濃縮した。入り口と出口との間の圧力は、５〜１０ｐｓｉの間に維持した。クロスフィルターの中を２時間循環させた後に、１５０ｍｌの１Ｘ試料を１５ｍｌの１０Ｘ濃縮試料に濃縮した（ステップ２）。透過液は、別々に収集し、後の分析用に保存した。特性分析用に、４ｍｌの１０Ｘ試料を取り出した（ステップ３）。１０Ｘ試料の残った１１ｍｌを、１Ｘ−ＳＰＧで１１０ｍｌに希釈し、透過液として１ＸＳＰＧを除去することによって、さらに１１ｍｌまで濃縮した。保持液（ｒｅｔｅｎｔａｔｅ）からの不純物の大部分は、透過液中に保持される。ステップ４およびステップ５に示すように、このステップを、１Ｘ−ＳＰＧで５回反復した。洗浄透過液は、後の分析用に保存した。第１および第２洗浄液は黄色を示した。これは、卵タンパク質および他の小分子不純物の除去によるためだと考えられる。透過液の黄色は、３回目および４回目の洗浄の後に見えなくなった。５回目の洗浄の後、試料を１Ｘ−ＳＰＧで１１０ｍｌに希釈して、濃度を１Ｘに戻した。ステップ６では、１０ｍｌの１Ｘ−Ｗをアッセイ用に保存した。残っていた１００ｍｌの１Ｘ−Ｗを、さらに１０Ｘ−Ｗまで濃縮した（ステップ７）。この濃縮試料は、後の分析用に１ｍｌアリコートに分注した。
【００８５】
すべての試料をＳＥＣクロマトグラフィーで分析した。Ｕｌｔｒａｈｙｄｒｏｇｅｌ１００カラムは、ＤＰＢＳを溶剤とした分析用に用いた。データは、考察用に２２０、２６０、および２８０ｎｍで収集したが、比較は２２０ｎｍのピーク面積で行った。クロマトグラムピークは、ウイルス（保持時間が約１０．６分）に１グループ、不純物グループ−１（保持時間が１８から２１分）に１グループ、そして、不純物グループ−２（保持時間が２１から２７分）に１グループの３つの大きなグループに分類した。３種類のＮＡＦタンパク質、オボアルブミン、コンアルブミン、およびオボムコイドは、保持時間が１８から２１分程度で溶出する。図１３を参照。リゾチームは約２７．０分で溶出する。グループ−２の不純物は、尿酸および特徴付けされていない他の物質などの小分子からなると考えられている。すべての洗浄液を、ウイルスの分析と同じ条件で、分析用ＳＥＣクロマトグラムで検査した。ＣＥＬＩＳＡ、ＨＡアッセイ、ＮＡアッセイ、およびＲＴＰＣＲを、異なるグループで実行した。
【００８６】
ＳＥＣ分析およびＣＥＬＩＳＡ
未処理の試料である１Ｘは、ウイルスピークを、１１．１分間に、ピーク面積１，２２１で示した。図１４を参照。しかし、濃縮された１０Ｘ試料は、ピーク面積１１，１９２を示した。図１５を参照。そして、ピーク増分は、１Ｘと比較して約９．１６倍であった。表２６を参照する、１１，１９２／１２２１。これは、ピーク面積と注入ウイルス試料の量との間の線形性を示した以前の実験に基づいている。濃縮中、いかなる洗浄もなしで、一部の不純物が除去されたが、顕著には除去されなかった。表２６、図１６ａ〜ｂを参照。不純物グループ−１およびグループ−２は、１Ｘと１０Ｘ（表２６）との間でピークサイズの増大を示した。対応するＴＣＩＤ５０は、ｌｏｇ９．１から、ｌｏｇ１０．０に増大した（表２７）。このステップ中、感染力の９５．９％が保持されていた。このデータは、１Ｘ試料を１０Ｘ試料に濃縮する間、感染力が極めて良好に保持されたことを示す。
【００８７】
１Ｘ−ＳＰＧで５回目の洗浄を行った後の試料１Ｘ−Ｗのウイルスピーク面積は１００５であり、洗浄前の１２２１と比較して保持されている（表２６）。ピーク面積によると、１Ｘと１Ｘ−Ｗとの間での回収率は約８２％（１００５／１２２１）であった。１Ｘおよび１Ｘ−Ｗのクロマトグラム（図１７を参照）を比較すると、これは、不純物グループ１およびグループ−２が有意に減少したことを示している（表２６）。１Ｘ−Ｗは、わずかなＴＣＩＤ５０値の低減を示した（表２７、１Ｘ：９．１、１Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ８．９）。１Ｘと１Ｘ−Ｗとの間での感染力の回収は約９８．９９％であった（ｌｏｇ８．９／ｌｏｇ９．１）。洗浄ステップは、ＮＡＦタンパク質および他の成分を除去することによって、ウイルス物質の品質を改善した。
【００８８】
同様に、１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗを比較することによって、不純物グループ−１およびグループ−２が大幅に除去された（表２６、図１８）。５回の洗浄を通して行うことによって、ウイルスピーク面積が１０Ｘ：１１，１９２であったのが、１０Ｘ−Ｗ：１０，２８２にまで減少した（表２６、ピーク面積によると９１．８６％）。ＴＣＩＤ５０は、ｌｏｇ１０．０（１０Ｘ）からｌｏｇ９．９（１０Ｘ−Ｗ）に変わって、回収率は９９．５６％であった（表２７）。
【００８９】
１Ｘ−Ｗと１０Ｘ−Ｗのクロマトグラムを比較すると、ピーク面積が１０倍に増大していた。表２６を参照、１Ｘ−Ｗ：ピーク面積：１００５、そして１０Ｘ−Ｗ：１０，２８２。ＴＣＩＤ５０値も１ｌｏｇ増大した（表２７、１Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ８．９、そして１０Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ９．９）。１０Ｘ−Ｗは１Ｘ−Ｗから１ステップで濃縮されたものなので、活性にも、ピーク面積にも減失がなかった（１０Ｘ−Ｗ：ピーク面積１０２８２、そして１Ｘ−Ｗピーク面積１００５）。
【００９０】
透過液は、１０．４分にピーク面積２５のウイルスピークを示した。これはごくわずかな量のウイルス粒子の減失によるもの、または、１Ｘの試料中のウイルスと共に溶出されるなんらかの他のタンパク質によるものかもしれない。不純物の大部分は、グループ−１およびグループ−２で溶出していた。表２６を参照。ＣＥＬＩＳＡ値は、感染力が検出限界未満であったことを示した。これは、濃縮操作法中に膜を通って溶出されるウイルス粒子が多くないことを示す。
【００９１】
５回の洗浄によって、グループ−１およびグループ−２の不純物の大部分が除去されることで、ウイルスの品質が改善された。これを、表２６および図１９に例示する。グループ−１およびグループ−２の不純物は、２回目の洗浄の後には相当量除去されていた。５回目の洗浄の後には、曲線がプラトーに達した。５回目の洗浄の後でさえ、１Ｘ−Ｗおよび１０Ｘ−Ｗの試料は、不純物グループ−１およびグループ−２をごく少量示した。図２０を参照。１９．２０８分のピークのアイデンティティは、１０Ｘ−Ｗ試料から単離することによって、オボアルブミンであると確認された。ＳＤＳ−ＰＡＧＥもこの結果を確認した。
【００９２】
ＨＡアッセイ
試料１Ｘおよび１Ｘ−Ｗは、ＨＡＵ１０２４を示した。図２１を参照。濃縮されているが洗浄されていない１０Ｘは、ＨＡＵ８１９２を示した。しかし、１０Ｘ−ＷはＨＡＵ２および４で偽陰性を示した。これは、ニワトリＲＢＣと比較して、ウイルスが大量であるためかもしれない。多量のノイラミニダーゼは、赤血球凝集過程を逆行させる。「Virus cultivation, Detection, and Genetics」、Ｓ．Ｊ．Ｆｌｉｎｔ、Ｌ．Ｗ．Ｅｎｑｕｉｓｔ、Ｒ．Ｍ．Ｋｒｕｇ、Ｖ．Ｒ．ＲａｃａｎｉｅｌｌｏおよびＡ．Ｍ．，Ｓｋａｌｋｓ、「Principles of Virology」、ＡＳＭ Ｐｒｅｓｓ社、Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ、３４頁（２０００）を参照。透過液中にＨＡＵが存在しなかったことは、ステップ１で溶出されるウイルスが多くないことを示す。図１２を参照。
【００９３】
ＮＡアッセイ
ノイラミニダーゼアッセイは、希釈されて１Ｘに戻された１０Ｘが、１Ｘと比較して、ある程度の活性の低下を示すことを例示した。図２２を参照。これは、遊離ＮＡタンパク質がＶＡＦ物質から減失することによると考えられた。これは透過液中にある少量のＮＡによって支持された。試料１Ｘ−Ｗ、および希釈されて１Ｘ−Ｗに戻された１０Ｘ−Ｗは、同じレベルの活性を保持した。これは、試料１０Ｘ−Ｗが、１Ｘ−Ｗから直接濃縮されたものだからである。すべての洗浄液の活性が検出レベル未満であった。
【００９４】
ＲＨＰＬＣ
卵タンパク質の分析は、以前にＲＨＰＬＣによって最適化されている。したがって、この実施例における存在する物質すべてを、同一条件下、例えば、０．１％ＴＦＡ／アセトニトリル勾配を有し、２１４ｎｍでモニターされるＣ４カラムで分析した。オボムコイド、リゾチーム、コンアルブミン、およびオボアルブミンの溶出パターンを図２３に示す。いかなる洗浄も行われる前の１０Ｘ試料は、すべての卵タンパク質を示した。これは、対照試料の保持時間と一致した。１０Ｘは、Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３と標識された未同定のウイルスタンパク質ピークも示した。完全に洗浄された試料である１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗは、ウイルスタンパク質Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３を保持していた。１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗ試料は、Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３タンパク質を同量、含有していた。これらのタンパク質の比率が同じであったため、これらのタンパク質はアセトニトリルに曝露されている間にウイルス粒子から生成されるものかもしれない。しかし、オボムコイド、リゾチーム、およびコンアルブミンは、１Ｘ−ＳＰＧで５回洗浄することによって、１０Ｘから完全に除去された。顕著にも、これらとは対照的に、最も明白なタンパク質ピークがオボアルブミンであり、オボアルブミンは、１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗ試料でも、なおこれらと共に溶出する。１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗは、６回および５回の洗浄を経ているが、それでもなお、オボアルブミンはウイルスに結合しているのである。これは、ＨＡタンパク質とオボアルブミンとの間の強固な相互作用によるものかもしれない。このデータも、棒グラフの形態で、図２４に提示する。
【００９５】
透過液およびすべての洗浄液をＲＨＰＬＣで検査した。図２５を参照。透過液は、すべてのＮＡＦタンパク質と、他の未同定のピークとを含有する。オボムコイドは２回の洗浄によって（図２６を参照）；リゾチームも２回の洗浄によって（図２７を参照）；コンアルブミンも２回の洗浄によって（図２８を参照）除去され；オボアルブミンは、徐々に枯渇していき、６回目の洗浄の後でさえ約５％が残っていた。図２９を参照。
【００９６】
Ａｇｉｌｅｎｔバイオアナライザー
同時に、図３０に示すように、Ａｇｉｌｅｎｔバイオアナライザー（Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ）によってオボアルブミンの測定を行った。濃縮を行っただけで、洗浄ステップが全くなくても、１０Ｘまでに、１Ｘから相当量のオボアルブミンが除去された。大部分のオボアルブミンが、第１の透過液に保持されていた。ＲＨＰＬＣは、すべての洗浄液でオボアルブミンの存在を示したが、バイオアナライザー分析では、それは検出限界未満に達していた。１０Ｘ−Ｗ試料を１０倍に希釈して、１Ｘ−Ｗ試料に近い濃度に達するようにしたところ、それは少量のオボアルブミンを示した。このデータに基づいて、卵タンパク質の９５％が、濃縮ステップおよび洗浄ステップによって除去されたことになる。
【００９７】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウエスタンブロット
１Ｘ（レーン２）と比較すると、１０Ｘ（レーン９）は、強度がより高い銀染色バンドを多数含有している。図３１を参照。１０Ｘと比較して、１０Ｘ−Ｗ（レーン１０）は、より少ない数のバンドを示した。これは、ＮＡＦタンパク質および他の不純物が除去されていたためであった。同様に、１Ｘ−Ｗ（レーン８）も、１Ｘよりきれいに見える。試料１Ｘ、１Ｘまで希釈された１０Ｘ（第３レーン）、および１Ｘ−Ｗまで希釈された１０ＸＷ（第４レーン）は、同量のウイルスを含有するが、不純物の除去において異なった程度の改善を示す。明らかに、１Ｘ−Ｗまで希釈された１０Ｘ−Ｗが、より明確なウイルスタンパク質バンドを示している。しかし、この試料は、依然としてオボアルブミンバンドを含有していた。これを、レーン６のＮＡＦタンパク質と比較する。１０Ｘ−Ｗ試料を分析用ＳＥＣカラムでさらに精製し、その画分を収集した。図３２を参照。１９．１分に集められた画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥで検査したところ、この画分は主としてオボアルブミンタンパク質（レーン５）を含有している。これは、抗ＮＡＦに対するウエスタンブロットで照らし出された。これはオボアルブミンが６回の洗浄の後でさえウイルスに強固に結合することを示す追加証拠である。抗ＮＡＦゲルのストリッピングを行って、そして、ニワトリ抗Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａでプロービングした。ウイルスタンパク質である、ＨＡ０、およびＨＡ２またはＭタンパク質を示す明確なバンドが観測された。図３１を参照。
【００９８】
ＲＴＰＣＲ
ＲＴＰＣＲは、１Ｘと１０Ｘとの間で、ＲＮＡがほぼ１ｌｏｇ高いことを示した。図３３を参照。同様に、１Ｘ−Ｗと１０Ｘ−Ｗとの間で、ウイルスＲＮＡに約１０倍の増大があった。これは、ウイルスの大部分が濃縮ステップ中で保持されたことを示した。透過液は、いかなる検出可能なウイルスＲＮＡも有しないが、１Ｘ−ＳＰＧ洗浄液は、ごく少量のＲＮＡを示した。これは、循環中に少量のウイルスの剪断が行われたことによるか、または、ウイルスＲＮＡの一部が濾液に結合して、後になって洗浄サイクル中にゆっくりと放出されたことによるかもしれない。
【００９９】
要約すると、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の濃縮は、クロスフロー濾過装置を用いることによって行った。ウイルス粒子の感染力は、この操作法中保持され、これはＣＥＬＩＳＡアッセイによって確認された。１Ｘ−ＳＰＧでの濃縮物質の洗浄は、他の不純物を除去することによって、ウイルスの品質は改善した。５回目の洗浄の後でさえ、少量のオボアルブミンが強固にウイルスに結合していた。これは、オボアルブミンと、ＨＡまたはＮＡタンパク質との間の強固な相互作用によるものかもしれない。このタンパク質−タンパク質の考えは、ＲＨＰＬＣ、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、およびウエスタンブロットによって支持されている。未処理の試料と、濃縮試料との間でＲＮＡ量が増大していることは、この操作法によってウイルスの大部分が回収されていることを示す。
【０１００】
細胞培養からのウイルス試料、例えばＶｅｒｏ細胞などの細胞で増殖されたインフルエンザ試料の使用にも、同様の技法が適用できる。そのことを例示するため、３株のウイルス、すなわち、そのまま使用されたＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ（Ａ／Ｈ１Ｎ１）；２Ｌから１００ｍｌまで、すなわち２０Ｘ濃縮されたＡ／Ｐａｎａｍａ（Ａ／Ｈ３Ｎ２）；および２Ｌから１０ｍｌまで、すなわち２００Ｘ濃縮されたＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇを、Ｖｅｒｏ細胞培養で増殖させた。Ｖｅｒｏ細胞からのウイルスの収率は通常低いため、この節の実施形態を、任意選択で、ウイルス試料を濃縮するのに用いることができるのが理解されよう。上記の例示と同様に、Ａｍｅｒｓｈａｍ社のＭｉｄＧｅｅおよびＱｕｉｘＳｔａｎｄ機器をウイルス濃縮に用いた。
【０１０１】
図３４〜３５は、ＳＥＣ（図３４）によるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ細胞培養伝播のモニタリングと、Ａ／ＢｅｉｊｉｎｇＶｅｒｏ細胞培養の収集（図３５）とを示す。これらから明らかであるように、ＳＥＣは、ウイルス伝播を短時間にモニタリングするための効率的な技法である。そのようなモニタリングに必要な量も、通常少量である（例えば、１００μｌ）。図３６は、Ａ／Ｐａｎａｍａ細胞培養試料の２リットル試料の濃縮を例示する。２リットルのウイルス収集物を、ＱｕｉｘＳｔａｎｄによって１００ｍｌにまで濃縮した。上記参照。１Ｘ混合物のＴＣＩＤ５０は検出不可能であったが、２０Ｘ混合物のＴＣＩＤ５０は４．４であった。２０Ｘ対１Ｘのピーク面積比があった。Ｐａｎａｍａ細胞培養試料の濃縮は、クロスフロー濾過の利点、例えば、ウイルス粒子を効率的に増強できること、溶液から低分子量不純物を除去できること、および、溶液をさらに「クリーンアップ」するのにダイアフィルトレーションを行うことができることなどを例示する。図３７は、Ｖｅｒｏ細胞で増殖しているＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇの培養物の２リットルから１０ｍｌまでの濃縮を示す。１Ｘでは、ｌｏｇ１０ ＴＣＥＤ５０／ｍｌが４．７であったが、１８．８Ｘでは、それが５．８（理論上はそれが５．９５）で、２００Ｘでは、６．９５であった（理論上は、それが７．００）。
【０１０２】
上記の図から、ＳＥＣが、細胞培養試料で増殖しているウイルスをモニターするのに有用な技法であること；ウイルス試料を濃縮した後には、力価が非常に低いウイルスもアッセイできること；そして、濃縮の後には、力価が低いウイルスもアッセイできることを読み取ることができる。
【０１０３】
安定化剤／緩衝液
本発明はウイルス溶液の組成物、およびこれを生成する方法を含む。そのような組成物は、任意選択で、関心あるウイルスと、本明細書に詳細に記載する、例えば、ショ糖、アルギニン、ゼラチン、ＥＤＴＡなどの組合せとを含むＮＡＦ（通常未分画のＮＡＦ）の様々な希釈を含む。後述するように、本明細書に記載の様々な組成物は、１０％から６０％までのＮＡＦを含む。ＮＡＦは、ヌクレアーゼリゾチームなどの様々な酵素を含有する場合があり、それらによって、ウイルス組成物の安定性が有害な影響を受けることがある。そのような方法および組成物は、所望の温度（例えば、通常、４℃、５℃、８℃、約２℃〜約８℃、または２℃超など）で、選択された期間（通常、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１２カ月、少なくとも１５カ月、少なくとも１８カ月、少なくとも２４カ月など）にわたって安定である（すなわち、容認できない力価の減失を示さない）ことが好ましい。好ましい実施形態は、所望の保存期間の間、力価の減少を全く示さない。他の実施形態は、１０％未満の低減、５％未満、４％未満、３％未満、２％未満、または１％未満の低減を示す。本明細書に記載のウイルス組成物の力価は、ＦＦＵすなわち蛍光焦点単位（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｆｏｃｕｓ ｕｎｉｔ）（下記のＦＦＡアッセイの記述を参照）で測定した。標的ＦＦＵ値は、通常、時間ゼロにおけるウイルス濃度（例えば、ＮＡＦの希釈などによる）に基づいて設定する。したがって、好ましい実施形態は、開始値からの減少をほとんど示さないか、または全く示さない。本明細書に記載の様々な組成物では、ウイルス溶液がショ糖約５％〜約１０％、アルギニン約１％〜約４％、およびゼラチン約１％〜約４％を含む。一部の好ましい実施形態は、ショ糖約７〜１０％、アルギニン約２％、およびゼラチン約２％を含む。一部の実施形態では、ウイルス製剤を所望の温度で貯蔵した後に、安定性をＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）塗布器／アキュスプレイ装置または他の同様の装置で測定する。
【０１０４】
一部の実施形態では、本発明は、ゼラチンまたはゼラチン関連および／もしくは由来の生成物（例えば、ゼラチン加水分解物）と併用して、あるいはその代わりに、例えば、アルギニン（ｐＨが約７．０から約７．２までの）の安定化剤を含む組成物を含む。表１のステップ１２および１５を参照。しかし、現行の規制における、動物、およびゼラチン、コラーゲンなどの動物由来の生成物からの思いがけない汚染の可能性に関する危惧（例えば、プリオン、マイコプラズマ、または宿主由来のウイルスなどの問題による）、また、動物由来の生成物が有するアレルゲン性の可能性に関する危惧から、非動物ベースの安定化剤が必要となっている。アルギニンの単独使用、あるいは金属イオンキレート剤（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）および／もしくはその塩）または他のアミノ酸（例えば、ヒスチジンおよび／もしくはその塩）などの追加の賦形剤との併用は、寒冷適応インフルエンザウイルス調製物を、非動物由来の賦形剤を用いて安定化する可能性を提供する。
【０１０５】
様々な実施形態で、アルギニンは、任意選択で、無機酸との塩または有機酸との塩のいずれかを含む。当然ながら、そのような塩は、ワクチン成分として用いられるので、通常、薬学的に許容される塩を含む。典型的な望ましい塩は、例えば、塩酸塩、クエン酸塩、および硫酸塩を含む。用いられるそのような安定剤の量は、特別の特定範囲に限定されないが、用いられる典型的な量は、ウイルス溶液１ｍＬあたりの約５ｍｇ〜約６０ｍｇまでの範囲にある。用いられた量は、好ましくは、ウイルス溶液１ｍＬあたり約１０ｍｇ〜約５０ｍｇまで、より好ましくは、約１０ｍｇ〜約２５ｍｇまででありうる。他の実施形態では、用いられる量が約１％から、約１．５％から、約２％から、約３％から、または約４％から約５％までの範囲にあるウイルス溶液のアルギニン溶液でありうる。用いられる量は、本発明の様々な実施形態で異なることがある。本発明のさらに他の実施形態では、ウイルス溶液／ワクチン溶液が、任意選択でリン酸カリウムを含む。ある実施形態では、溶液が約１１ｍＭのリン酸カリウムを含む。他の実施形態では、溶液が約１０ｍＭから約１２ｍＭのリン酸カリウムを含む。製剤組成物は、任意選択で、大量の卵の尿膜腔液成分（例えば、タンパク質および代謝産物）、および／または緩衝希釈剤を含有することができる。さらに、許容されるワクチン組成物は、例えば、濃度が例えば５から２００ミリモルまでの、リン酸の一塩基および二塩基ナトリウム塩もしくはカリウム塩の混合物、または、濃度が例えば２５から１００ミリモルまでのヒスチジンおよび／もしくはその塩など、緩衝塩を含有することもできる。好ましい実施形態では、ショ糖が約１００ミリモルから３５０ミリモルまでの濃度で存在する。
【０１０６】
多くのウイルス溶液／ワクチン溶液において、任意選択で、ＳＰＧ（ショ糖、リン酸カリウム、およびグルタミン酸一ナトリウム）基礎液が用いられる。しかし、本発明の一部の実施形態では、ＭＳＧがウイルス／ワクチン溶液の一部ではない。さらに他の実施形態では、ＭＳＧのレベルが低減されている。本明細書に記載の実施形態で使用可能なショ糖の量は、広範囲にわたって可変的である。典型的な実施形態では、約０．２Ｍのショ糖（７％ ｗ／ｖ）が利用されるが、約２０％までのショ糖を含む組成物も、ウイルス活性／力価に有害影響を示さないことがある。組成物の様々な実施形態における界面活性剤は、濃度がおおよそ０．０１から０．１％（ｗ／ｖ％）までの範囲にある例えば、ポロキサマー１８８（ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロック共重合体、例えば、プルロニック（登録商標）Ｆ６８）およびＴｗｅｅｎ２０（ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート）を含むことができる。一部の実施形態では、ポロキサマー、ゼラチン加水分解物、およびアルギニンの組合せが、これらの成分の１つのみを含有するいかなる溶液よりも優れており、各溶液は、次に、これらの添加成分のいずれも含有しない溶液よりは安定である。
【０１０７】
さらに他の実施形態では、グループ４（例えば、表１のステップ１５）のステップが、ウイルスがその中に懸濁されている正常な尿膜腔液（ＮＡＦ）のすべてまたは一部を、ショ糖、リン酸カリウム、およびグルタミン酸一ナトリウム（ＳＰＧ）の緩衝液、または他の単純な溶液、例えば、ＭＳＧを減少させたものなどで置換することを含む。一部またはすべてのＮＡＦ希釈液の代わりにＳＰＧを使用することによって、溶液中のウイルスの安定性のより増大が得られる。そのような安定性は、本発明の実施形態の新規かつ予想外の恩恵である。上述した製剤特性の一部またはすべてを具体化する代表的な製剤を調製して、その構成成分である寒冷適応ウイルスの安定性を評価した。代表的製剤の組成を表２８に示す。５℃における製剤の安定性を表２９に示す。
【０１０８】
本発明の様々な製剤を、それらの安定性について、様々な月および温度にわたって試験した。例えば、表３０は、１２の異なる製剤を例示する。製剤１０および１１は、乾燥ウイルス調製物用に使用された製剤に基づいた。そのような表にある製剤は、例えば、ショ糖およびゼラチンなど、ある範囲の様々な成分を網羅したものである。表３１〜３４は、４つの異なったウイルス株を含むそのような調製物の安定性を、６カ月（各々２回の試料採取点）以上にわたって示すものである。図３８は、Ｂ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ株を用いた、４つの例示的製剤の結果をグラフで表す。表３５は、追加の製剤の組成を示す。表３５における組成物は、リゾチームなど、ＮＡＦに存在する有害な成分の潜在的な阻害を補助するために、基本的組成（すなわち、通常、１０／２／２は、ショ糖約１０％、アルギニン約２％、およびゼラチン約２％を意味する）に様々な化合物を追加して、試験する。表３５の製剤の安定性に関する結果は、表３６〜３９ならびに図３９および４０に示されている。表４０および４１、ならびに図４１ａ〜ｃでは、製剤中における異なった濃度のシトレートに注目している（ここでは、基礎組成が、ショ糖約１０％、ゼラチン約１％、およびアルギニン約２％である）。シトレートを含む製剤は、約７〜８カ月の貯蔵で沈殿を示した。表４２および４３、ならびに、図４２ａ〜ｃも、同様の分析を示すが、ＥＤＴＡの濃度が異なっている。上記実施例からの例示的製剤の試験をさらに行った。それらを表４４および４５ａ〜ｄに示す。様々な濃度のショ糖、ゼラチン、アルギニン、およびＥＤＴＡなどを含む追加の製剤を、表４６から４８に示す。
【０１０９】
本明細書に記載のいくつかの一価製剤の安定性を例示するため、６０％の尿膜腔液を含む組成物の安定性を試験した。試料を５℃で保存して、ＦＦＡ分析で検査した。最初の２カ月は隔週で試料採取を行い、その後、毎月、９ヶ月間試料採取を行った。ＡＦの濃度を６０％とすることによって、力価が低い株でさえ、何年にもわたって必要な力価を有するＶＨを高い確率で生成することが可能となるだろう。未精製のＶＨを使用した一部の製剤は、全株試験で十分な安定性を示し、５℃、７カ月で０．５ｌｏｇの減失という評価基準を、ほとんど一貫して満たした。安定性を試験した株の中では、インフルエンザ株Ｂ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ／３３０／０１が、最も多くの問題を有していたように見えた。表３０を参照のこと。この表は、ショ糖、アルギニン、ゼラチン、および１３の異なった製剤用の他の成分の組成をパーセントで示す。図４３は、そのような製剤中の４つのウイルス株の、９ヶ月後の安定性を例示する。未精製のウイルス組成物製剤の例示的製剤は、例えば、ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、デキストラン１％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ＰＶＰ ０．５％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、ＥＤＴＡ ２．５ｍＭ；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、クエン酸緩衝液；および、ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、ヒスチジン緩衝液を含むものでありうる。
【０１１０】
ウイルス／ワクチン溶液を精製する（例えば、安定化などのために）他の方法には、溶液に安定性を与えるために、（安定化剤の添加と伴に）分画化を介してすべてのＮＡＦの排除する技法が含まれる。しかし、本発明の様々な実施形態には、例えば、ウイルス／ワクチンがその中に存在するＮＡＦの希釈を行うことが含まれる。例えば、本明細書に記載の様々な実施形態では、ＮＡＦの濃度が、任意選択で、溶液の約１０％〜約６０％を含む。他の実施形態では、ＮＡＦが、任意選択で、溶液の約２０％〜約５０％、または約３０％〜約４０％を含みうる。そのようにＮＡＦ濃度を希釈することによって、ウイルス／ワクチン溶液の安定性を、液体形態で、とりわけ所望の温度（例えば、４℃、約２℃〜約８℃など）でより高めることが可能となる。さらに、本発明の一部の実施形態では、アルギニンの使用と併せて、ＮＡＦ濃度の低減を含む（上記参照）。本発明の様々な製剤の安定性を、ＮＡＦを含まない精製製剤、または、ＮＡＦを減少させた（ただし、依然としてＮＡＦ精製の）製剤であるウイルス組成物と比較した。表４９は、本発明のいくつかの組成物の製剤、および様々な方法でＶＨがＮＡＦから精製されているいくつかの製剤を例示する。表４９に示す基礎製剤も、通常、アルギニン約２％、ゼラチン約２％、ＰＶＰ約１％、デキストラン約１％、ＥＤＴＡ 約２．７ｍＭ、およびヒスチジン約１００ｍＭを含むことが理解されよう。表４９中の数字は、図４４〜４６に示した製剤に対応している。
【０１１１】
本発明の希釈ＮＡＦ実施形態を、代替的な安定化手法と比較する。そのような代替的手法では、例えばそれらの最終製剤に含まれるＮＡＦが、最終的には１０〜２５％の分画されたＮＡＦとなり、ときには、５％以下の分画されたＮＡＦとなることもある。しかし、当業者ならば、現行の一部の実施形態に存在するＮＡＦが、そのような分画されたＮＡＦを含まず、その代わりに未分画のＮＡＦからなることを理解するだろう。本発明の製剤を、安定性の点について精製されたＮＡＦ（例えば、分画されたＮＡＦなど）から調製された他の現行のウイルス溶液と比較した。この比較での目標は、２℃〜８℃の間、例えば４℃で保存した際の力価の減失を１２カ月で１．０ｌｏｇ以下、または、力価の減失を０．０８０ｌｏｇ／月以下にすることであった。本発明の製剤と比較した他の現行のウイルス製剤は、分留、ダイアフィルトレーションなどによって精製されていた。異なった製剤を、３つの異なったインフルエンザ株、Ｈ１Ｎ１株（Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９またはＡ／ＮＣ）、Ｈ３Ｎ２株（Ａ／Ｐａｎａｍａ／２００７／９９、またはＡ／ＰＡＮ、またはＡ／ＰＡ）、およびＢ株（Ｂ／ＨｏｎｇＫｏｎｇ／３３０／０１またはＢ／ＨＫ）で試験し、アキュスプレイ装置（すなわち、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）用送達装置）に充填した。可能性の高い製造プロセスを模擬するため、初期ステップとして、試料を−２５℃で少なくとも６日間冷凍した。
【０１１２】
最初の比較では、ＮＡＦ精製された寒冷適応三価製剤の安定性を、本発明の非精製ＮＡＦ製剤と比較した。これらの製剤は、ショ糖７％、ゼラチン１％、アルギニン１％（これらは、三価製剤との比較における標準物質である）、および、本発明の製剤用には、ＡＦ（尿膜腔液）６０％を含んでいた。本発明の製剤は、６カ月後に、Ａ／ＮＣが−０．０３５±０．０１６、Ａ／Ｐａｎが−０．０７９±０．０３５、そしてＢ／ＨＫが−０．１５１±０．０１８を示した。精製組成物の測定値は、Ａ／ＮＣが−０．０２０±０．０２７、Ａ／Ｐａｎが−０．０１１±０．０２０、そして、Ｂ／ＨＫが−０．１３８±０．０２２であった。上記での単位は、ｌｏｇＦＦＵ／月である。表５０を参照。表５１は、本発明の製剤が１０／２／２組成（上記参照）を用いた際の、精製製剤と、本発明の製剤との間の比較を示す。観察される初期における力価の大きな減失は、凍結融解および／または混合損失の結果と考えられる。表５２も、同様の比較を示すが、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）製剤中にヒスチジンを用いており、その結果、より良好な安定性が得られて、初期の力価減失も観測されなかった。
【０１１３】
図４４は、上で観測された初期の力価減失（凍結および／または混合損失）が、もっぱらリン酸緩衝製剤に関連したものであることを図示する。ヒスチジン緩衝液は、安定性に良い影響を与え、いかなる初期力価減失も観測されなかった。図４４に示す製剤は、表４９に記載のものである。図４５は、６カ月後における、表４９の製剤の安定性勾配の「全体」像を図示する。これから判るように、ヒスチジン緩衝の１０／２／２製剤が、安定性および目標達成における最良の組合せを示した。上記参照。図４６は、同様のデータの異なった視点（すなわち、月ではなく週）を与える。図４７は、ゼラチン（Ｌ１０６）またはＰＶＰ／ＥＤＴＡ（Ｌ１０４）のいずれかを含む１０／２／２＋ヒスチジン製剤の安定性を例示する結果を与えた２次研究を図示する。図から見て取ることができるように、ＰＶＰ／ＥＤＴＡでゼラチンを置換した場合も、ゼラチンを含めた場合とほぼ同じくらい効率的に安定性が得られた。図４８は、本発明のヒスチジンベース１０／２／２製剤の最適ｐＨを検査する。これから判るように、ｐＨ７．０が好ましい実施形態を構成する。ｐＨが約６．８〜約７．２の範囲にある、ヒスチジン１００ｍＭの１０／２／２製剤も本発明の実施形態に含まれる。図４９は、本発明の実施形態における、ショ糖濃度の好ましい実施形態の検査を示す。一部の好ましい実施形態は、ショ糖約１０％を含み、一方、他では約７％含む。図４９の基本製剤は、上記の１０／２／２を含み、これにショ糖ヒスチジンが添加されている。本明細書に例示した様々な実施形態で、一部の実施形態は、ヒスチジンを緩衝添加物として、かつ／または、アルギニンを安定化剤として、かつ／またはデキストランおよび／もしくはＰＶＰをゼラチンの代わりに含む。
【０１１４】
本発明の他の実施形態は、任意選択で、ウイルス／ワクチン溶液の限外濾過／濃縮を用いて安定化される。そのような限外濾過は、通常、ＮＡＦの低減／希釈に対する、溶液安定性を実現するための代替手段である。例えば、なんらかの状況で、特定の株／溶液の力価(ｔｉｔｅｒ)または力価(ｐｏｔｅｎｃｙ)が低い場合、ＮＡＦ希釈（これは、溶液の力価(ｔｉｔｅｒ/ｐｏｔｅｎｃｙ)をさらに低下させるように作用するかもしれない）に代わりに任意選択で限外濾過を用いることができる。グループ４のステップにおける限外濾過は、上述のマイクロフィルター濾過とはわずかに異なっている。以前のグループでは、濾過は、例えば無菌性を目的としており、それに対して、このグループでは、濾過は、安定性などに関するものである。また、ウイルスは濾過中にも保持される。上記参照。
【０１１５】
力価アッセイ
本明細書に記載の一部の実施形態では、ウイルス／ワクチンの力価測定を細胞ベースＥＬＩＳＡ（すなわち、細胞ベースＥＬＩＳＡ、またはＣＥＬＩＳＡ、弱毒生インフルエンザウイルスワクチンであるＦｌｕＭｉｓｔまたは他のそのようなワクチンの力価測定に用いる）によって行う。そのような方法は、生ウイルスの力価測定に用いる、より伝統的な中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイの、より単純で迅速な代替手段である。簡潔には、９６ウェルマイクロタイタープレート中のマディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞の集密的単層培養を、生ウイルスを含有する試料で感染させ、感染後１６〜１８時間でホルマリン固定し、インフルエンザウイルス特異的なモノクローナル抗体（Ｍａｂ）と反応させる。次いでウイルス抗原に結合したＭａｂの検出を、抗マウスＩｇＧペルオキシダーゼと、可溶性の着色産物を発生するペルオキシダーゼ基質とを用いて、その光学濃度（ＯＤ）を分光光学的に測定することで行う。当業者ならば、インフルエンザ株の様々なサブタイプに共有されているエピトープ／抗原を熟知しているであろう（例えば、様々なＨＡなど）。試料中にある生ウイルスの力価は、確証済みのＴＣＩＤ５０力価アッセイで得られた既知のｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０値を有する生インフルエンザウイルス較正株を用いて作成された標準曲線から計算する。ＣＥＬＩＳＡは、ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０が４．９〜６．７の範囲で線形（ｒ２が９．９５以上）であることが示されている。試験日間、分析者間、プレート間、プレート内（残留）変動（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０の標準的偏差）は、それぞれ０．０６、０．０２、０．０５、および０．０３であった。ＣＥＬＩＳＡで測定した、いくつかのワクチン、ならびに野生型インフルエンザＡ／Ｈ１Ｎ１、Ａ／Ｈ３Ｎ２、およびＢ株の力価は、平行して行った、確証済みＴＣＩＤ５０力価アッセイで測定した力価と同程度のものであった（±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）。ＣＥＬＩＳＡは、２日間の間に最大１０試料／プレートの力価を測定できるが、それとは対照的に、確証済みＴＣＩＤ５０力価アッセイでは、６日間に２試料／プレートである。ＣＥＬＩＳＡは、任意選択で、力価アッセイの他の方法（例えば、ＦＦＡおよびＴＣＩＤ５０、下記参照）の代わりに、またはそれらに加えて用いる。
【０１１６】
中央値組織培養感染量５０％（ＴＣＩＤ５０）アッセイ（より詳細には下記参照）は、生ウイルスおよび生ウイルスワクチンの力価測定に広く用いられている方法である。しかし、本明細書に記載の一部の実施形態では、弱毒生ワクチンであるＦｌｕＭｉｓｔ（または他の同様のワクチン）に含まれるインフルエンザウイルスの力価を測定するのに、細胞ベースＥＬＩＳＡ（ＣＥＬＩＳＡ）を、時間と労力とを必要とする伝統的なＴＣＩＤアッセイに代わるより簡単でより迅速な代替手段として使用してもよい。
【０１１７】
他の典型的な実施形態では、ウイルス溶液の力価アッセイが、当技術分野で用いられている一般的なＴＣＩＤ５０アッセイではなく、蛍光焦点アッセイ（ＦＦＡ）を含んでもよい。そのようなＦＦＡは、自動化がより容易であるという追加の恩恵を有しており、そのため、時間内処理量がより大きいワクチン生産を可能にする。通常、ＴＣＩＤ５０アッセイは、特定の細胞培養の５０％を感染させるであろうウイルス懸濁液または溶液の量を測定する。この測定は、正確な結果を与えるが、ＦＦＡより遅く、そのため、ワクチン生産における貴重な時間を使い果たしてしまう可能性もある。FＦＡアッセイは、感染細胞中のウイルス抗原を検出するのに、通常、タイプ特異的かつ／またはサブタイプ特異的（または、普遍抗原特異的）抗インフルエンザ抗体（通常、抗ＨＡ抗体）を用いる。抗体がインフルエンザの異なったタイプ／サブタイプで交差反応しない場合の使用では、多ウイルス調製物（例えば、三価ワクチン製剤）中の別々のウイルス型を定量するのにそれらを用いられることもできる。ＦＦＡアッセイは、特定の株に関する同定試験として用いることもできる。当業者ならば、ＦＦＡおよびウイルス／ワクチン試験におけるそれらの使用にかなり熟知しているであろう。
【０１１８】
蛍光焦点アッセイは、他方で、細胞死（感染細胞または指標細胞）の誘導に依存しない。代わりに、それらは、単層細胞培養における感染細胞の中のウイルス抗原を検出する抗体染色法を用いる。次に、これらの感染細胞は、ウイルス特異抗体上の蛍光標識を用いて可視化され、定量される。本発明の典型的なＦＦＡは、感染細胞中のウイルス抗原を可視化するのに、例えば、タイプ特異的およびサブタイプ特異的な抗インフルエンザＨＡ抗体を用いる。
【０１１９】
他の実施形態では、ＦＦＡ（および、任意選択で、本明細書に記載の他のアッセイ）は、任意選択で、汎用試薬（または、普遍的抗原）を用いる。この場合、汎用試薬は、特定のタイプ／サブタイプのインフルエンザ抗原に特異的ではなく、代わりに、汎用インフルエンザ抗原に特異的なものである。したがって、汎用試薬は、ＦＦＡで多数の異なったスクリーニングを行う際に、場合によっては有用であり、異なったウイルスをアッセイする度にタイプ／サブタイプ特異的抗体を、開発して、産生する必要がない。
【０１２０】
本明細書に記載の他の実施形態は、細胞ベース蛍光分析アッセイ（ＣＦＡ）を用いたウイルスの力価測定を含む。ＦＦＡアッセイは、多くの実施形態でかなり有用であるが、他の実施形態では、ＣＦＡアッセイが優先的に用いられる。ＦＦＡアッセイの画像処理および出力は、約２０プレート／人／日（または、約５プレート／時間の画像処理）にまで達しうるが、ＣＰＡアッセイからの画像処理および出力は、さらにその約４倍の速さにまで達しうる。また、ＦＦＡ力価は、Ｂ型インフルエンザ株で、ＴＣＩＤ５０力価と異なることがあるが、ＣＦＡ力価は、アッセイ標準物質または較正物質の使用のため、ＴＣＩＤ５０（または、ＦＦＡ）力価からの有意差を示していない。簡潔には、ＣＦＡアッセイは、９６ウェルプレートで増殖しているＭＤＣＫ細胞中の感染性インフルエンザウイルスを測定する。ＦＦＡと同様、ＣＦＡは、最初の感染サイクル中に、ＭＤＣＫ細胞のウイルス感染の結果として生じるウイルスタンパク質の発現を検出する。ＣＦＡアッセイは、力価計算に較正物質またはアッセイ標準物質を利用する。ＣＦＡ試薬として、典型的抗体試薬は、ＨＡ、またはＡ株およびＢ株（インフルエンザの場合）に特異的な一次抗体と、二次抗体、例えば、アレクシア４８８に結合したヤギ抗マウスＩｇＧとを含むことができる。ＣＦＡ用のアッセイ標準物質は、試験される試料と同じ株で、ＦＦＡまたはＴＣＩＤ力価が既知のウイルス収集物を含むことができる。ＣＦＡ用のアッセイ参照は、既知のＦＦＡまたはＴＣＩＤ力価、および既知の線形勾配を有するウイルス収集物（必ずしも試験される試料と同じ株である必要はない）を含むことができる。試料一次抗体は、例えば、作業希釈率１：２０００の、例えば、Ａ／Ｈ１Ｎ１またはＡ／Ｈ２Ｎ２株に特異的なもの（例えば、Ｔａｋａｒａ社から購入）、例えば、作業希釈率１：１０００の、Ａ／Ｈ３Ｎ２株に特異的なもの（例えば、Ｔａｋａｒａ社から購入）、および、例えば、作業希釈率１：１０００の、Ｂ株に特異的なもの（例えば、Ｃｈｅｍｉｃｏｎ社から購入）を含むことができる。典型的なＣＦＡアッセイ操作は、ウイルス接種、それに続く、３３℃で１８時間のインキュベーション、それに続く、固定、および室温で１５分間のインキュベーションを含むことができる。その後、３７℃で６０分間の一次抗体インキュベーションに続いて、３７℃で６０分間の二次抗体インキュベーションが行われる。その後、蛍光計でプレートを読み取り、データを分析する。ＣＦＡの一部の実施形態では、ウェルの感染レベルなどを、タンパク質発現を介して測定する（感染した細胞の数を測定する典型的なＦＦＡアッセイとは対照的に）。当業者ならば、通常のＦＦＡアッセイおよび蛍光分析を知っているだろう。そして、同様の注意点がＣＦＡアッセイにもあてはまる。
【０１２１】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイ
上述のように、本発明のいくつかの実施形態は、ＴＣＩＤ５０アッセイ、およびその様々な改変などを含む。例えば、一部の実施形態は、以下の記述によって例示されるように、準自動化された変形形態を含む。
【０１２２】
この節では、弱毒生インフルエンザウイルスワクチン、例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）または他の同様のワクチンの力価を測定するための手動および準自動の中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイの比較を提供する。ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、任意選択で、ＦｌｕＭｉｓｔまたは他の同様のワクチンの力価測定に用いられる。準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイについて記載されているが、そこでは、確証済み手動力価アッセイの労力要求的な２つのステップに改善がなされている。これらは、（ｉ）試料希釈およびＭＤＣＫ単層感染に、ステップ中、何度も手動で希釈を反復していた代わりに、自動ピペットステーションを使用すること、および、（ｉｉ）ＭＤＣＫ細胞におけるインフルエンザウイルス誘発性の細胞変性効果（ＣＰＥ）の存在を評価するために、全アッセイプレートの９６ウェルそれぞれを手動で光学顕微鏡観測していた代わりに、細胞健康／生存率の指標として広く用いられている生体染色剤であるＭＴＴ（３−（４，５ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド）の産物を、感染後の６日間、９６ウェルプレートリーダーを使用して分光光度的に測定することである。
【０１２３】
本明細書に記載の一部の実施形態で用いられた準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイの開発および検証を行って、精度（反復性：＜０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；中間精度：ＳＤ（日）＜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；ＳＤ（分析者）およびＳＤ（機器）＜０．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；９０％信頼区間での再現精度 ±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）、線形性、精度、および範囲（勾配１±０．１）を実証した。自動ピペットステーションおよびＭＴＴ色素を用いた準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、確証済みの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイと同等の結果を提供することが示された（９０％信頼区間で±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）。簡潔には、ここに記載した結果は、例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標)生成におけるインフルエンザウイルスの力価の測定で、ピペットステーションおよびＭＴＴ色素を使用することを支持するものである。これらの改良は、試験の時間内処理量も増大させる。
【０１２４】
感染力／力価（一価）アッセイの検証
一価インフルエンザ株の力価を測定する現行の手動法の準自動変形形態は、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンおよび他の同様のワクチンの製造にも任意選択で使用される。準自動力価アッセイは、プレートの洗浄、および系列希釈ステップの自動化を組み込み、手動での顕微鏡検出に代わって、色素をベースにした、ウイルス誘発性細胞変性効果（ＣＰＥ）の自動検出を行う。プレート洗浄および系列希釈ステップの自動化は、アッセイの時間内処理量の増強を可能にし、このアッセイを行う品質管理分析者に対する反復性運動外傷の危険を低下させる。ウイルス誘発性ＣＰＥの色素ベースによる自動検出は、顕微鏡検出を排除することによってアッセイの一貫性および時間内処理量を増強する。
【０１２５】
準自動アッセイの一部のステップ／態様は、より伝統的なＴＣＩＤ５０アッセイと同様であるが、他のステップ／態様は全く異なっている。アッセイステップには、マディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）単層を含有しているアッセイプレートの調製、インキュベーション、および洗浄、アッセイプレートの感染および感染後インキュベーション、ならびに、ＣＰＥ陽性ウェルの数および両アッセイにおける試料試験配置に基づいた力価の計算が含まれる。準自動の力価アッセイが検証され、このアッセイの成績は、発明者らおよびその同僚による現行の手動アッセイと同等のものであることを実証した。この準自動アッセイは、任意選択で、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の感染力／力価を測定する主要な方法として用いられる。手動アッセイは、任意選択で、準自動アッセイを行うことができない状況、すなわち、長期の設備休止がある場合のバックアップとして用いられる。
【０１２６】
伝統的な中央値組織培養感染量（ＴＣＤＩＤ５０）アッセイは、感染性の細胞破壊性ビリオンを測定する細胞ベースの方法である。ＭＤＣＫ細胞を９６ウェルプレートで培養し、集密状態の単層にウイルス試料の系列希釈を接種する。ＭＤＣＫ細胞中でのウイルスの複製によって細胞死がもたらされる。子孫ウイルスが他の細胞に感染し、最終的には単層の破壊がもたらされる。感染から生じたＣＰＥは、６日間のインキュベーション期間中に発達が許される。各ウェルにおけるＣＰＥの存在を判定するために、個々のウェルが、微視的に読み取られる。この操作によって、毎日４回の個別の測定が３日間行われ、全１２回の力価測定の結果が平均され、１つの試験結果が生じる。試料に加えて、各分析者は、一価の対照１つを分析し、これも３日間、毎日、４複製の測定を行う。
【０１２７】
手動のアッセイは、労力要求的であり、サンプル時間内処理量が限られている。個々の測定それぞれが、頻繁な細胞洗浄と、系列希釈ステップとを含み、それらは、手動のピペッターを用いて行われる。９６ウェルアッセイプレートの各ウェルについて、検鏡によってＣＰＥの存在または不在を記録しなければならない。多数のプレート洗浄および希釈ステップは、分析者に反復性運動外傷のリスクを与えるものである。加えて、９６ウェルプレートの個々のウェルをそれぞれ顕微鏡で読み取っていくのは、ひどく疲れさせる作業であり、これによって、各分析者が１日に行うことのできる分析数が１日当たり約２０プレートに制限される。１つの試験結果は、３日間の試験期間にわたる１２回の測定の平均として得られ、各分析者は、試料に加えて、１回の一価アッセイ対照を行う。これは、アッセイ時間内処理量を、３日間の試験期間あたりに１人の分析者あたり９試料（平均して１分析者、１日あたり３試料）に制限する。一価インフルエンザワクチン収集物の個々のサブロット（１ロットあたり約４０から５０サブロット）がこのアッセイによって試験されるため、このような時間内処理量の制限は、ワクチン（例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンなど）を本格的な規模で商業化するための容量に制限を与えうるものである。
【０１２８】
伝統的なアッセイ、とりわけプレート洗浄およびピペット操作ステップ、ならびに、ＭＴＴ（３−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］−２，５−ジフェニル−テトラゾリウムブロマイド）色素ベースのＣＰＥ検出を自動化することによって、一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイが開発される。準自動アッセイは、洗浄ステップにＳｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いるが、その際には、砕片および使用済みの培地が細胞培養プレートから除去され、新しい培地で置換される。ウイルスの逐次１０倍希釈を行ったり、希釈された試料を、９６ウェルアッセイプレート中の単層細胞培養に移したりするには、Ｍａｔｒｉｘ社製ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）多チャンネルピペットステーションを用いる。当然ながら、同様の機能を行う他の装置も、ここで、任意選択で、代用され、装置の特定のブランド／タイプの特異的な言及も、そうであると明確に示されない限り、限定として理解されるべきではない。６日のインキュベーション期間の後、９６ウェルアッセイプレートを、ＭＴＴ色素と共に６時間インキュベートする。ＭＴＴ色素は、細胞代謝および生存率の広く受け入れられた指標である。インキュベーション期間中、無傷で健康な細胞単層は色素を処理して、不溶性、紫色のホルマザン生成物を形成する（生成物は細胞内に蓄積する）。細胞単層が破壊されているウェルでは、色素生成物が形成されない。その後、界面活性剤ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）２０％を含有する０．０１Ｎ塩酸の可溶化溶液を添加し、プレートを終夜インキュベートして、不溶性の色素生成物を溶解させる。５７０ｎｍの吸光度を測定し、紫色のホルマザン色素生成物を定量する。吸光度の読取りは、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ社製Ｅｘｃｅｌ（商標）のマクロプログラム（または、他の同様のプログラム）を用いて処理して、ＣＰＥ陽性ウェルまたは陰性ウェルの同定および計数を行い、ＴＣＩＤ５０力価を計算する。無傷の細胞単層を含有するウェルは、予め決められたカットオフ値と比較して、さらに高い吸光度を示し、ＣＰＥ陰性として同定され、一方、ＣＰＥの陽性ウェルは、カットオフ値より低い吸光度読取り値を示す（図５０を参照）。次に、各希釈でＣＰＥを示すウェルの数を用いて、Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ法のＫａｒｂｅｒ修正に基づいて力価（ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍＬ）を計算する。細胞洗浄、系列希釈、およびウイルス接種ステップ、ならびに、ＭＴＴ色素ベースのＣＰＥ検出の自動化について、以下に詳細に説明する。
【０１２９】
Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いた細胞洗浄ステップの自動化
手動のアッセイでは、９６ウェルプレート中のＭＤＣＫ細胞単層を含有するプレートは、希釈されたウイルス試料の接種の前に２回洗浄する。４日の細胞インキュベーションから生じた廃棄物およびウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有する使用済み培地を除去し、ＦＢＳを含まない新たなウイルス増殖培地（ＶＧＭ）で置換する。次に、細胞を、３３±で１℃、５±１％ＣＯ２で、少なくとも１０分間インキュベートし、その後、ＶＧＭを除去し、再度、新たなＶＧＭで置換する。各洗浄ステップでは、個々のプレートを清潔なペーパータオル上に逆にし、穏やかに吸い取りウェルから培地を除去し、その後、携帯用多チャンネルピペッターを用いて、各ウェルに２００μｌの新たなＶＧＭを再充填する。処理するプレートの数が多いときには、この過程は、労働集約的で、時間もかかる。
【０１３０】
Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒ（シリーズ３００、モデル１２０１０）は、マイクロプロセッサー制御の９６チャネル細胞洗浄機であり、これらの洗浄ステップを自動的に行う。Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒは、十分に小さく、６フィートの層流バイオセーフティフードに入れることができる。Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒを用いた、細胞プレートの洗浄ステップの自動化には、使用済み培地をプレートから吸引して、その後、新たなＶＧＭを空のウェルに分注する洗浄プログラムが含まれる。個々のプレートがＳｋａｎｗａｓｈｅｒに搭載され、その後、洗浄サイクルが終わったときに、３３±１℃、５±１％ＣＯ２のインキュベーターに移される。プレートを最低１０分間インキュベートし、その後、第２の洗浄のため、Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒに搭載し、その後、それらをインキュベーターに戻す。これらの洗浄ステップにおける、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒの作業性能は、細胞洗浄ステップでの使用に許容できることが示されている。２００μｌ容積における分注精度のＣＶは、＜１０％であり、分注の正確さは１０％以内である。吸引ステップでの残気量は１％未満である。したがって、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒは許容できる性能を提供し、一方で、使いやすさと、細胞洗浄ステップにおける時間内処理効率とを改善する。ここでも、同じ標準で機能できる同様の装置が、任意選択で使用されることが理解されよう。
【０１３１】
Ｍａｔｒｉｘ社製ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）多重チャネルピペットステーションを用いて自動化された系列希釈およびウイルス接種
伝統的な手動ＴＣＩＤ５０アッセイの系列希釈およびウイルス接種ステップは、携帯用多重チャンネルマイクロピペットによって行う。系列希釈は、２ステップで行う。最初のセットの５回の系列希釈は、０．５ｍＬの希釈ブロックで行い、その後、第１ブロックからの適切な希釈を、最終５回の系列希釈用に、２ｍＬの希釈ブロックに移す。いずれの１つの希釈でピペットの誤操作があっても、それが伝播され、後続のシリーズを通して拡大される可能性があるため、これらの系列希釈を慎重に実行することが重要である。後続のウイルス接種ステップには、希釈されたウイルスを、集密状態の細胞単層を含有しているアッセイプレートの複数の行または列に繰り返しピペット注入することが含まれる。長時間の使用によって、これらのタスクに必要な精度が得られたが、携帯用多チャンネルマイクロピペットを長時間使用すると、重度の筋肉疲労および腱炎を引き起こす可能性があり、それによって、各分析者が１日に行うことのできるプレートの数が制限され、したがって、全過程の時間内処理量も制限される。
【０１３２】
系列希釈およびウイルス接種ステップでＭａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）ピペットステーションを使用することによって、使いやすさと、アッセイの時間内処理量とが改善され、操作者傷害の発生が抑制され、一方で、これらのタスクに必要な精度および正確さも提供される。Ｍａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）ピペットステーションは、５μ〜２２５μｌの範囲の容積を吸引および分注できる、１２チャネルの筒先を備えた卓上液体操作ステーションである。この装置は、標準の４または６フィートバイオセイフティキャビネットに入れるのに十分に小さく、さらに使いやすい。Ｍａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）は、５μｌから２２５μｌの送達容積において、０．５μｌより高い精度と、１．０μｌより優れた正確さとを提供する。これは、系列希釈ステップで用いられる３０μｌの送達容積に対して、±１．７％より優れた正確さと、±３．３％より高い精度とに対応している。自動化アッセイと、現行の手動アッセイとを用いて得られたアッセイ結果が相互に比較しうるものであるかどうかは、以下の記載の通りに確認される。ここでも、同じ標準で機能できる同様の装置が、任意選択で使用されることが理解されよう。
【０１３３】
ＭＴＴ色素ベースの検出に関する記述
ＴＣＩＤ５０アッセイにおける最終ステップは、ＣＰＥの検出およびウイルスの定量化である。現行（手動）のＴＣＩＤ５０アッセイでは、各ウェルにおけるＣＰＥの徴候を探すために、個々のウェルを顕微鏡によって読み込む。これらの徴候には、フォーカス領域、細胞単層の部分的または完全な崩壊、および破壊された細胞単層上の丸くて暗色の細胞の存在が含まれる。分析者が多数のプレートを数えることによって、かなりの眼精疲労が引き起こされることが観測されており、それによって、１人の操作者が数えることのできるプレート数の実際的な限界が、約２０プレートに設定されている。このステップは、手動アッセイの時間内処理量に対して律速となっている。
【０１３４】
テトラゾリウム色素は、細胞生存率の指標として広く用いられている。最も一般的に使用されている色素は、黄色のＭＴＴ色素である。活性のミトコンドリアを保持している生存細胞は、ＭＴＴ色素を還元して不溶性、紫色のホルマザン生成物に変換し、可溶化ステップの後に、これを５７０ｎｍで検出することができる。ＣＰＥの陽性ウェルでは、大多数の細胞が破壊されており、色素生成物がほとんど形成されず、はるかに低い吸光度が観測される。
【０１３５】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイでは、感染、および６日間のプレートのインキュベーションの後、使用済みの培地を除去し、新しいウイルス増殖培地に０．５ｍｇ／ｍＬのＭＴＴ色素を含む溶液１００μｌを、９６ウェルプレートの各ウェルに添加し、細胞を、３７±１℃、５±１％ＣＯ２で、６時間インキュベートする。色素生成物は、可溶化試薬（０．０１Ｎ ＨＣｌ中２０％ ＳＤＳ）１００μｌを添加した後、３７±１℃で、夜通しインキュベートして可溶化し、その後、紫色のホルマザン色素生成物による５７０ｎｍの吸光度をプレートリーダーで測定する。吸光度データは、予め設定したカットオフ値に基づいて、吸光度測定値をＣＰＥカウントに変換する確証済みのＭｉｃｒｏｓｏｆｔ社製Ｅｘｃｅｌ（商標）マクロ（または、他の同様のプログラム）に移す。無傷の細胞単層を含有するウェルは、予め決められたカットオフ値と比較して、さらに高い吸光度を示し、ＣＰＥ陰性として同定される。ＣＰＥの陽性ウェルは、カットオフ値より低い吸光度読取り値を示す。次に、各希釈でＣＰＥを示すウェルの数を用いて、Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ法のＫａｒｂｅｒ修正に基づいて力価（ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍＬ）を計算する。
【０１３６】
自動化された色素ベースの検出は、ＣＰＥ判定の一貫性と、アッセイの時間内処理量の増大を促進する。色素ベースの検出が、顕微鏡による手動のＣＰＥ検出と比較できるものであるかどうかは、大規模な研究によって確証される。この研究では、様々なワクチンと、野生型ウイルス株と、様々な細胞継代数および播種密度で調製されたプレートとを用いてアッセイを行った。これらの研究では、最初にプレートを手動で検鏡し、その後、色素ベースの吸光度検出で読み込んだ。これらの研究で得た結果を分析して、両方の検出法で同等のＣＰＥカウントを提供した、汎用吸光度カットオフ値を決定した。５７０ｎｍの吸光度で０．５２５４である、この汎用カットオフ値は、９人の異なった分析者が、３台の異なった機器において、合計５７３枚のアッセイプレートを用いて、６日間のアッセイ日にわたってアッセイを行った詳細な研究によって確認した（下記参照）。各ウェル（１プレートあたり８０ウェル、合計で４５８４０ウェルにウイルスが接種された）でのＣＰＥの存在または不在を、まず手動の検鏡によって、その後、色素ベースの吸光度検出で読み取った。
【０１３７】
図５０は、ウェルの吸光度読取り値に対して、その値の頻度（その吸光度値が読まれたウェルの数）をプロットすることによって得られたヒストグラムを示す。頻度測定によって、Ａ５７０＝０．５２５４の吸光度カットオフ値は、ＣＰＥ陰性ウェルの分布における最も左のテール（確率＝０．００７％）に位置し、かつ、ＣＰＥ陽性ウェルの分布における最も右のテール（確率＝０．０２％）に位置することが示された。このカットオフ値を用いた両方の方法による、各ウェルのＣＰＥ検出を比較したところ、ほとんどのウェル（４５８４０のうち４５２７９、９８．７８％）が、色素ベースの検出と、検鏡との両方によってＣＰＥ陽性またはＣＰＥ陰性として同定される１対１対応を示した。
【０１３８】
準自動力価アッセイの検証
一価インフルエンザワクチンウイルスを分析するための準自動中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）力価アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の感染力／力価の測定に意図される。このアッセイの検証を行い、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの精度（再現精度(ｒｅｐｅａｔａｂｉｌｉｔｙ)、中間的精度、および再現精度(ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｉｌｉｔｙ)）、線形性、正確さ、および範囲を実証し、それが手動のＴＣＩＤ５０アッセイと同等の結果を提供することを示す。検証試験は、Ａ／Ｈ１Ｎ１型の１株、Ａ／Ｈ３Ｎ２型の１株、およびＢ型の１株を含むように選択された、３株の異なった一価ワクチン株で行った。アッセイ検証は、実験室相互での再現性を実証するため、異なった実験室で、２つの別々のグループによって行った。準自動アッセイの精度（試験間変動）、線形性、正確さ、および範囲を、手動アッセイで観測されたそれらと、表５３で比較する。
【０１３９】
準自動アッセイの試験間標準偏差（ＳＤ）を、３株のワクチン株のそれぞれに関して、同じ分析者グループが、同じピペットステーションで実施した６回の試験から評価した（３日間に得られた１２の測定を平均することによって、各試験結果を得る）。準自動アッセイの試験間変動に関する合格基準は、０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌであった。これは、手動アッセイで観測された最大の変動性（０．１１ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位）に基づく、単一試験結果の９５％信頼区間の半値幅である。３つの株の準自動アッセイで得られた実際のＳＤ値は、０．０６〜０．０９ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲であった。これらの値は、ＳＤ＜０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位という合格基準内にあり、３株のそれぞれの３つの独立したロットで行った９回の繰返し試験で得られた、手動ＴＣＩＤ５０アッセイで観測された試験間変動（０．０７〜０．１１ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位）と同程度である。
【０１４０】
このアッセイが、１０５倍の希釈範囲（４．２〜９．３ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍＬの力価範囲）で線形であることの立証を、計算されたＴＣＩＤ５０力価と、測定されたＴＣＩＤ５０力価との相関が、１％有意レベルでの線形モデルへの適合性の欠如に関する試験に合格したことを示すことによって行った。このアッセイは正確であった。すなわち、３つの株で、１．００〜１．０２の勾配を有し、それらはすべて、合格基準である勾配１±０．１の範囲内にあった。準自動アッセイの線形性、正確さ、および範囲は、手動アッセイと同程度である。表５３を参照。
【０１４１】
準自動アッセイの中間的精度を、変量効果モデルを、Ａ型１株およびＢ型１株のワクチンウイルス株に関して、２つ分析者グループによって９つの様々なアッセイ日にわたって得られた１８試験のセットに適合させることによって実証した。試験日間変動（ＳＤ（日））、分析者グループ間変動（ＳＤ（分析者））、機器間変動（ＳＤ（機器））の測定された標準偏差の範囲は、それぞれ０．０４〜０．０８、０．１４〜０．１６、および０．０００〜０．０３であったが、それらは、ＳＤ（日）＜０．３、ＳＤ（分析者）＜０．４、およびＳＤ（機器）＜０．４の合格基準を満たした。
【０１４２】
アッセイの実験室間再現性を、Ａ／Ｈ１Ｎ１型１株、Ａ／Ｈ３Ｎ２型１株、およびＢ型１株に関して、２箇所の異なった実験室でアッセイを実行することによって実証した。実験室間の合格基準は、２つの実験室で得た結果の平均の相違における９０％両側信頼区間が±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲にあることを必要とした。この合格基準は満たされた。すなわち、９０％の信頼区間の下限および上限が、それぞれ、３株すべてで、−０．０５超および＋０．１５未満であった。
【０１４３】
手動アッセイと、準自動アッセイとが比較できるものであることを実証するため、詳細な統計的比較を行った。２つのワクチン株、Ａ／Ｈ１Ｎ１型１株（Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９）およびＢ型１株（Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８）を手動でアッセイして、各株について１８試験の結果を得た。各株について手動で得た全１８試験の結果のデータをプールし、準自動試験に関して行った精度および中間精度研究から得て、プールされている試験結果（１株あたり１８試験結果）と比較した。方法間平均差およびその９０％信頼区間（ＣＩ）を推定するため、ＳＡＳのＰｒｏｃ Ｍｉｘｅｄ法を用いた。合格基準は、９０％ＣＩが±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲内になければならないこと、すなわち、９０％ＣＩの下限（ＬＢ）が−０．３より大きくなくてはならず、かつ、上限（ＵＢ）が０．３未満でなければならないことである。結果は、アッセイ検証報告に提示されており、また下記表５４に要約されている。結果から判るかもしれないが、９０％の両側信頼区間は、両方の株に関して、合格基準の±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあった。すなわち、下限および上限の実際の推定値が−０．０５から０．１０ ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍｌの範囲にあった。
【０１４４】
したがって、要約すると、一価インフルエンザウイルスの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の１価インフルエンザワクチン株の感染力／力価を測定する伝統的な確証済みアッセイであるが、それは、頻繁な手動ピペットステップを含む労働集約的な方法であり、分析者に反復性運動外傷の危険を引き起こす。さらに、それは手動の顕微鏡のＣＰＥ判定を用い、それによって、アッセイ時間内処理量が、１分析者、試験日１日あたり３試験に制限されている。プレート洗浄および手動ピペット操作ステップの自動化、ならびに手動の顕微鏡判定のかわりにＭＴＴ色素ベースのＣＰＥ検出を行うことによって、一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイが発展しうる。一価物質を試験するための準自動アッセイを実現することによって、場合によっては、アッセイ時間内処理量が２〜３倍増強され、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンなど、市場に予期されるレベルの用量で、ワクチンを実際的に商業化することが可能となる。別の恩恵は、品質管理分析者が反復性運動外傷になる危険が低下することである。
【０１４５】
準自動アッセイは、検証されて、４．２〜９．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲の力価のウイルス物質のアッセイで再現性、中間的精度、線形性、および正確さがあることが、あるグループで実証されている。また、このアッセイは、別のグループでも検証されて、実験室間再現性があることも実証された。
【０１４６】
準自動アッセイおよび手動アッセイの両方を用いることによって得られた、Ａ型１株およびＢ型１株のインフルエンザの反復された力価測定値に関する結果の詳細な統計的比較も、２種類のアッセイが同等の結果を産することを示した。したがって、準自動アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の力価の測定における使用に関して、手動アッセイに匹敵するものであると実証されている。
【０１４７】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイにおけるＣＰＥの汎用カットオフ値
本明細書に記載のさらに他の実施形態では、ＴＣＩＤ５０アッセイの他の変形および修正が、ワクチン／ウイルスの力価を測定するのに利用される。そのような改変の１つは、一価インフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０準自動力価アッセイのための、ＣＰＥ評価用の汎用カットオフ値の確認である。「一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ」（上記参照）は、感染されたＭＤＣＫ細胞の単層における細胞変性効果（ＣＰＥ）を記録するために、生存細胞色素ＭＴＴ（３−（４，５ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド）を用いる。ＣＰＥ陽性ウェルの数を検出するために、ＭＴＴ比色分析終点を用いてウイルス力価を確実に測定するためには、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性のウェルとを再現性を持って識別する吸光度カットオフ値を確立すると有用である。発明者らの他の研究に記載されているように、「汎用カットオフ」吸光度（Ａ５７０）値、０．５２５４が決定されている。「一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ」では、吸光度値がＡ５７０＜０．５２５４である場合に、ウェルがＣＰＥ陽性であるとみなされ、ＣＰＥ陰性ウェルは、Ａ５７０＞０．５２５４の吸光度値を有する。
【０１４８】
この節に要約されているデータは、以前に決定された汎用カットオフ値を検証する。寒冷適応インフルエンザ株、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９（Ａ／Ｈ１Ｎ１型）、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７（Ａ／Ｈ３Ｎ２型）、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８（Ｂ型）の大規模な試験は、汎用カットオフ指定の補強データを生み出すだけはなく、分析者相互および機器相互の比較も可能にする。本明細書に提示したデータは、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの堅牢性、再現性、および信頼性を実証し、確証済みの手動力価アッセイと比較できるものであることも実証する。したがって、実施形態の力を例示することには、これらの測定も含まれる。
【０１４９】
上記に説明したように、中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイは、感染性の細胞破壊性ビリオンの力価を測定する細胞ベースのアッセイである。ウイルス試料の系列希釈を、９６ウェルプレートで増殖しているマディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞の集密的な単層に添加する。ＭＤＣＫ細胞中でのウイルスの複製が細胞代謝に影響を与え、最終的には、子孫ウイルスの培養上清への放出と、細胞死とをもたらす。子孫ウイルスが次に他の細胞に感染し、最終的には単層の破壊がもたらされる。感染から生じた細胞変性効果（ＣＰＥ）は、６日間のインキュベーション期間中に発達が許される。この期間の後、ＭＴＴは、細胞単層にＣＰＥが存在するか、存在しないかを検出するのに用いられる。ＭＴＦのような生体染色剤は、細胞ベースのバイオアッセイで、細胞健康および生存率の指標として広範に使用されている（例えば、Ｄｅｎｉｚｏｔら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８６）、第８９巻、２７１〜２７７頁；Ｇｅｒｌｉｅｒら（１９８６）、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、第９４巻、５７〜６３頁；Ｈｅｅｇら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８５）、第７７巻、２３７〜２４６頁；Ｍｏｏｓｅｍａｎ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８３）、第６５巻、５５〜６３頁；Ｔａｄａら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８６）、第９３巻、１４７〜１６５頁、Ｖｉｓｔｉｃａ、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ（１９９１）、第５１巻、２５１５〜２５２０頁参照）。生存細胞（ＣＰＥ陰性）の無傷の単層を含有するウェルは、色素を処理して、紫色のホルマザン色素生成物にし、５７０ｎｍ（Ａ５７０）で高い吸光度値を産する。対照的に、ＣＰＥ陽性のウェルは、ウイルスによって引き起こされた部分的または完全な単層破壊のため、より低い吸光度値によって特徴付けられる。ＣＰＥ陽性ウェルの数を検出するために、比色分析終点を用いてウイルス力価値を確実に測定するためには、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性のウェルとを再現性を持って識別する吸光度カットオフ値を確立すると有用である。汎用カットオフ値と併せて使用され、ウイルス試験試料からの吸光度値はＣＰＥ陽性またはＣＰＥ陰性として記録される。ＣＰＥ陽性ウェルの数は、ウイルス力価（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）を計算するのに用いられる。
【０１５０】
発明者らとその同僚とによる仕事は、３株のインフルエンザウイルスを用いて、数日間にわたって、複数の分析者によって行われた２つの研究に基づいて、汎用カットオフ値の初期推奨値を提供する。記載されているように、吸光度値がＡ５７０＜０．５２５４である場合に、ウェルがＣＰＥ陽性であるとみなされ、ＣＰＥ陰性ウェルは、Ａ５７０＞０．５２５４の吸光度値を有した。この節は、以前に決定された吸光度カットオフ値を検証するために設計された追加実験について説明する。２つの独立したアッセイグループからの複数の分析者が、３株の参照ウイルス株の力価を、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを用いて測定した。記載されているように、検鏡による確証済みの手動方法で評価されたＣＰＥは、「金標準」であるとみなされ、ＭＴＴで判定したＣＰＥと比較された。Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９（Ａ／Ｈ１Ｎ１型）、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７（Ａ／Ｈ３Ｎ２型）、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８（Ｂ型）の大規模な試験は、汎用カットオフ指定の補強データを生み出しただけはなく、分析者相互および機器相互の比較も可能にした。本明細書に提示したデータは、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの堅牢性、再現性、および信頼性を実証し、確証済みの手動力価アッセイと比較できるものであることも実証する。
【０１５１】
準自動力価アッセイの開発は、確証済みの手動力価アッセイを用いて事前に測定された既知の力価値を有する参照ウイルス株の使用を必要とした。参照寒冷適応ウイルス株は以下の通り、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９、Ａ／Ｈ１Ｎ１型ウイルス；Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、Ａ／Ｈ３Ｎ２型ウイルス；およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８、Ｂ型ウイルスであった。寒冷適応対照ウイルス株Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を、システム適性を確認するのに使用した。
【０１５２】
一価インフルエンザの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ方法、半プレート複製用の全体的アッセイ配置、および視覚的なＣＰＥスコアリング方法は、発明者らおよびその同僚が開発した。上記参照。簡潔には、９６ウェルプレート中のＭＤＣＫ細胞の集密的な単層を、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いて、ウイルス増殖培地（ＶＧＭ）で２回洗浄する。ウイルス試料の連続１０倍希釈を、ＴＰＣＫ−トリプシンを含有するＶＧＭ中に、Ｍａｔｒｉｘ(商標)ＳｅｒｉａｌＭａｔｅピペットステーションおよび９６ウェル希釈ブロックを用いて調製する。最終の５つの系列希釈（１０−５から１０−９）を、ＭＤＣＫ細胞プレートに移し、初期の開始力価と比較して、１０−６から１０−１０までの範囲の最終ウイルス濃度を実現する。このフォーマットは、各プレートから得た２つの力価データポイントに由来する。各試料は２枚のプレート上で検査されるので、４複製の力価値が得られる。１６の対照ウェル（プレート列６および７）には、ウイルスを含まないＶＧＭを入れ、細胞対照として用いる。６日間のインキュベーション（５±１％ ＣＯ２、３３±１℃）の後、全ウェルを、顕微鏡を用いて検査し、ＣＰＥの存在または不在を記録した。したがって、ウイルス破壊のいかなる証跡でも、単層が含有する場合、ウェルがＣＰＥ陽性と記録する。逆に、ＣＰＥ陰性のウェルにある単層は完全に無傷であった。
【０１５３】
プレート上の単層を目視によりＣＰＥを記録した後、培地を廃棄し、リン酸緩衝生理食塩水で調製されたＭＴＴ（０．５ｍｇ／ｍＬ）（ＵＳ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社、Ｃｌｅｖｅｌａｎｄ、ＯＨ）を各ウェルに分注する（１００μｌ／ウェル）。単層を、ＭＴＴと共に、５±１％ ＣＯ２、３７±１℃で、６±０．５時間インキュベートする。可溶化緩衝液（０．０１Ｎ ＨＣｌ中２０％ ＳＤＳを１００μｌ）を各ウェルに添加し、プレートを、５±１％ ＣＯ２の環境、３７＋１℃で１６〜２０時間インキュベートする。５７０ｎｍの吸光度値を、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ−Ｗａｌｌａｃ １４２０ Ｍｕｌｔｉｌａｂｅｌ Ｃｏｕｎｔｅｒ分光光度計を用いて測定し、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ（商標）Ｅｘｃｅｌマクロにエクスポートした。このプログラムは、ＣＰＥ陽性ウェルの数からウイルス力価（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）を計算するのに使用したものである。
【０１５４】
合格基準はこの節中の実施形態に適用される。したがって、各プレートの１６箇所の細胞対照ウェルのうち１を超えない数のウェルが、ＣＰＥの視覚的な証拠、細胞毒性、または微生物汚染を示した場合、プレートは有効であるとみなされた。さらに、各半プレートが有効であるには、５以上３６以下のウェルがＣＰＥ陽性と記録されなければならなかった。最後に、一価ウイルス対照試料（Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７）に関して得た４複製のＴＣＩＤ５０力価値の平均および標準偏差（ＳＤ）の両方が資格のある対照証明書に報告されている合格範囲内になければならなかった。
【０１５５】
感受性および特異性の推定は、下記に示す、「金標準」ＣＰＥと、ＭＴＴによって評価されたＣＰＥとの間の関係に基づいて計算した。ＴＰは「真陽性」、ＦＰは「偽陽性」、ＦＮは「偽陰性」、そして、ＴＮは「真陰性」を示す。したがって、「全陽性」はＴＰ＋ＦＮの合計であろう。また、「全陰性」はＦＰ＋ＴＮの合計であろう。表５５を参照のこと。計算は次の通りである。すなわち、各複製の感受性＝（ＴＰ）／（全ＣＰＥ陽性）そして、各複製の特異性＝（ＴＮ）／（全ＣＰＥ陰性）である。
【０１５６】
機器間比較を行うため、３つの参照ウイルス試料の力価値を、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを用いて、第１グループの６人の分析者によって測定した。２セットの実験室機器ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０を３日間にわたって使用した。第２グループの試験者は１つの機器システム、ＡＺ−０３６を用いた。このグループの３人の分析者が、３つの参照ウイルス試料を用いて、３日間、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。
【０１５７】
分析者間比較を行うため、グループ１で試験を行っている各分析者（分析者＃１〜６）が準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを、３つの参照株に関して、機器ＡＺ−０３９を用いて、３日間にわたって行った。第２のグループでは、３人の分析者（分析者＃７〜９）それぞれが、準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを、同じ３つの参照ウイルス株に関して、機器ＡＺ−０３６を用いて、３日間にわたって行った。
【０１５８】
準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイで、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性ウェルとを、ＭＴＴを用いて確実に識別するため、汎用カットオフ値を統計的に測定した。このカットオフ値の使用を検証する目的において、２つのグループによる一層の独立した評価によって、４５８４０の吸光度値がさらに測定された。結果を以下に示す。
【０１５９】
感受性および特異性の測定は、参照標準として手動の顕微鏡法を用いることで計算した。２つのグループ（ｎ＝４５８４０）からの総合データを表５６に示す。推奨されたカットオフ値０．５２５４を用いた結果、感受性が９８．４５％、特異性が９９．１２％となった。さらに、感受性および特異性決定に関する第２グループからのデータは、それぞれが９９．１５％、および９９．９９％であった。同様に、感受性および特異性に関する第１グループからのデータは、それぞれが９８．１３％、および９８．７１％であった。上記の全データ（＞９５％感受性および＞９５％特異性）が、測定されたデータと相関していた。測定データでは、感受性が９９．０５％、特異性が９９．９９％と計算された。
【０１６０】
図５１は、吸光度読取り値に対して、その値の頻度をプロットすることで得たヒストグラムを示す（Ｎ＝４５，８４０）。前の情報と一致して、２つのグループからの総合データは、汎用カットオフ値０．５２５４は、ＣＰＥ陽性ウェルおよびＣＰＥ陰性ウェルの分布の間の中点近くにあることを示している。度数分布は、推奨されたカットオフ値が、対照ウェル分布の最も左のテールの中にあり、左に向かって伸長しているテール中で、確率０．００７％に対応していることを示している。カットオフ値０．５２５４は、全ＣＰＥ陽性ウェルから吸光度値を用いてカットオフ値を推定した場合、確率０．０２％のテールにも対応する。さらに、図５１から明らかな分布プロファイルは、ＣＰＥ陽性ウェルの吸光度値は、ＣＰＥ陰性ウェルの吸光度値から遠く切り離されていることを強調する。
【０１６１】
６７２０の対照ウェルからの吸光度値に基づいてカットオフ値０．５２５４を推定した、生成されたＣＰＥ陰性対照ウェルに関して得られた平均吸光度値の比較が以前に行われた。対照ウェルの平均吸光度値１．２６１が、標準偏差０．１５と共に得られた。表５７に示すように、この研究は、９１６８の対照ウェルを追加に生成し、そのうち２８８０が第２グループから得られ、６２８８が第１のグループから得た。平均吸光度値は、１．２２６および１．２３５が、それぞれ第２グループおよび第１グループから得られ、総合平均吸光度値は、１．２３１であった。総合平均吸光度値と、以前に報告されていたものとの相違は０．０３の吸光度値にすぎなかった（表５７を参照）。これは、データが６カ月間にわたって生成されたことを考慮すると、非常に小さい相違である。以前に記載された研究は、連続した２カ月間に行われたが、本明細書に記載の研究が第２のグループで行われたのは、第１のグループが行う４カ月前のことである。
【０１６２】
表５８は、機器間比較を実施するために、３株の参照ウイルス株に関して、２つのグループで異なった機器を用いて得られた力価値を要約する。第１グループからの６人の分析者が、２セットの機器（ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０と呼ばれる）を用いて、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９に関して、全体的平均が９．２から９．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．０９ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった（表５８を参照）。Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７に関して、全体的平均が８．５から８．６ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．０２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった。Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８に関して、全体的平均が８．３から８．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．１２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった。第２のグループは、１つの機器システム（ＡＺ−０３６）を用いて結果を生み出した。３人の分析者が、３つの参照ウイルス試料を用いて、３日間、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。第２グループの機器と、Ｑｕａｌｉｔｙ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙの機器との間における、結果の平均差は、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９で０．０９ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７で０．０８ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下、そして、Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８で０．１２ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。平均差データを、第１のグループの２台の機器（ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０）相互で、そして、第１グループおよび第２グループ（ＡＺ−０３６）の間で計算した。
【０１６３】
分析者間比較を行うため、第１のグループでは、各分析者（分析者１〜６）がＡ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９、Ａ／Ｎｅｗ Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８に関して、機器ＡＺ−０３９で、３日間にわたって準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを行った。第２グループでは、３人の分析者（分析者７〜９）が、それぞれ同じウイルス株で、機器ＡＺ−０３６で、３日間にわたって準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを行った。各ウイルスに関して力価値を計算し、表５９に示す。第１グループの結果の間にある変動は、試験された３つのウイルス試料に関して、０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。同様に、第２のグループの力価値の間にある変動も０．２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。２つのグループの分析者間の全体的比較は、３つの参照ウイルス試料に関して、±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ未満であった。試験結果（３日間にわたって４複製が試験された）の標準偏差（ＳＤ）は０．１１から０．２７までの範囲にあった。ＳＤ値が合格基準値の０．５０未満であったので、すべてが有効であった。
【０１６４】
この節に提示する結果は、「汎用カットオフ」吸光度値（０．５２５４）を検証する。これらの研究によって生成されるデータは、独立したアッセイグループの複数の分析者によって、比較的長い時間枠で生成されているにも関わらず、一貫性が高いため、汎用カットオフ値に対しては、高レベルの信用がある。まとめると、２つのグループによって測定された対照（ＣＰＥ陰性）の吸光度値は、相互に一致するだけではなく、以前に報告された平均値と事実上等しかった（表５７を参照）。感受性および特異性の値は、２つのグループで相互に強く類似しており、また、以前の研究とも一致していた（図５１および表５７を参照）。ＭＴＴを用いてＣＰＥを評価する、準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ用の「汎用カットオフ」は、２つのグループで、相互に、そして、確証済みの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイによって得られたものと、比較できる力価値を生成した。最後に、準自動システムは、手動方法を上回る、いくつかの操作上の利点を有する。手動ピペット操作による労働集約的なステップ、およびアッセイプレートの顕微鏡検査の代わりに機器を使用することによって、容量を増大させ、より高い時間内処理量を可能にする。さらに、分光光度法によるＣＰＥ判定、およびその後の自動力価計算は、結果のプリントアウトおよび／または電子記録を提供する。
【０１６５】
定義
別段の定義がない限り、すべての科学用語および専門用語は、それらが関係する技術分野で一般的に用いられている意味と同じ意味を有すると理解される。本発明の目的において、以下の用語を下記に定義する。
【０１６６】
用語「核酸」、「ポリヌクレオチド」、「ポリヌクレオチド配列」、および「核酸配列」は、一本鎖または二本鎖のデオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチド重合体、またはそのキメラもしくは類似体を指す。本明細書で使用する場合、この用語には、それらが一本鎖の核酸と、天然に存在するヌクレオチドと同様の方法でハイブリダイズするという点で天然ヌクレオチドの本質的性質を有する、天然に存在するヌクレオチドの類似体の重合体も含んでもよい（例えば、ペプチド核酸）。別段の指示がない限り、特定の核酸配列は、任意選択で、明示された配列に加えて、相補配列も包含する。
【０１６７】
用語「遺伝子」は、生物学的機能に関連しているいかなる核酸も意味するように広範に使用される。したがって、遺伝子には、コード配列および／またはそれらの発現に必要な調節配列が含まれる。用語「遺伝子」は、特定のゲノム配列、および、そのゲノム配列によってコードされたｃＤＮＡまたはｍＲＮＡにもあてはまる。
【０１６８】
遺伝子には、例えば、他のタンパク質のための認識配列を形成する、発現されない核酸セグメントも含まれる。発現されない調節配列には、「プロモーター」および「エンハンサー」が含まれ、それらには、転写因子などの調節タンパク質が結合して、その結果、隣接の、または近傍の配列の転写が引き起こされる。「組織特異的な」プロモーターまたはエンハンサーは、特定の組織型もしくは細胞型、または複数のタイプで、転写を調節するものである。
【０１６９】
用語「ベクター」は、それによって核酸を、生物、細胞、または細胞構成要素の間を伝播および／または転移させることができる手段を意味する。ベクターには、自律的に複製を行うか、または、宿主細胞の染色体と統合することができる、プラスミド、ウイルス、バクテリオファージ、プロウイルス、ファージミド、トランスポゾン、人工染色体、および同様のものが含まれる。ベクターは、自律的に複製しない裸のＲＮＡポリヌクレオチド、裸のＤＮＡポリヌクレオチド、同一鎖中のＤＮＡおよびＲＮＡの両方で構成されたポリヌクレオチド、ポリリジンが結合したＤＮＡもしくはＲＮＡ、ペプチドが結合したＤＮＡまたはＲＮＡ、リポソームが結合したＤＮＡ、または同様のものである場合もある。最も一般的には、ベクターは、本明細書において、プラスミドを意味する。
【０１７０】
「発現ベクター」は、複製だけでなく、そこに組み込まれた核酸の発現を促進できるプラスミドなどのベクターである。通常、発現される核酸は、プロモーターおよび／またはエンハンサーに「作用可能に連結され」、そのようなプロモーターおよび／またはエンハンサーによる転写制御調節を受ける。
【０１７１】
「双方向発現ベクター」は、２つのプロモーターの間に位置した核酸と関連して逆方向に向けられた２つの選択的プロモーターによって特徴付けられ、それによって、両方向に発現を開始することができ、結果として、例えば、プラス（＋）鎖またはセンス鎖と、マイナス（−）鎖またはアンチセンス鎖との両方のＲＮＡの転写が起こる。
【０１７２】
本発明の文脈において、用語「単離」は、それが天然に存在する環境で、通常、それに付随しているか、またはそれと相互作用する成分を実質的に含まない、核酸またはタンパク質などの生物学的物質のことをいう。単離された物質は、任意選択で、その天然の環境、例えば細胞では見出されない物質を含む。例えば、細胞など、その天然の環境に、その物質がある場合、その物質は、細胞中の、その環境で見出された物質にとって自然でない位置（例えば、ゲノムまたは遺伝要素）に配置されている。例えば、天然に存在する核酸（例えば、コード配列、プロモーター、エンハンサーなど）は、天然に存在しない方法（例えば、プラスミド、ウイルスベクター、またはアンプリコンなどのベクター）で、その核酸にとって自然でない、ゲノムの遺伝子座に導入される場合、単離される。また、そのような核酸を「異種」核酸と呼ぶ。
【０１７３】
用語「組換え」は、物質（例えば、核酸またはタンパク質）が人工的にまたは合成的に（自然ではない）改変されていることを意味する。物質の改変は、その天然の環境もしくは状態の中で、またはそれから取り出して行うことができる。詳細には、ウイルスについて言及する場合、例えば、インフルエンザウイルスが組換え核酸の発現によって生成された場合には、それは組換え体である。
【０１７４】
用語「再集合体」は、ウイルスについて言及する場合、そのウイルスが、複数の親ウイルス株または供給源から得られた遺伝子および／またはポリペプチド成分を含んでいることを示す。例えば、７：１再集合体は、第１の親ウイルスに由来する７つのウイルスゲノムセグメント（または、遺伝子セグメント）を含み、第２の親のウイルスからは、単一の相補的ウイルスゲノムセグメント、例えば、赤血球凝集素またはノイラミニダーゼをコードするものを含む。６：２再集合体は、第１の親のウイルスから６つのゲノムセグメント、最も一般的には６つの内部遺伝子を含み、別の親のウイルスからは、２つの相補的なセグメント、例えば、赤血球凝集素およびノイラミニダーゼを含む。
【０１７５】
用語「導入」は、異種核酸または単離核酸について言及する場合、真核細胞または原核細胞の中に核酸を取り込ませることを意味する。この場合、核酸は、細胞のゲノム中（例えば、染色体、プラスミド、色素体、またはミトコンドリアＤＮＡ）に組み込まれるか、自律的レプリコンに転換するか、または一時的発現される（例えば、トランスフェクトされたｍＲＮＡ）。この用語には、「感染」、「トランスフェクション」、「形質転換」、および「形質導入」などの方法も含まれる。本発明の文脈では、原核細胞に核酸を導入するのに、電気穿孔法、リン酸カルシウム沈殿、脂質媒介トランスフェクション（リポフェクション）などを含めた様々な方法は利用することができる。
【０１７６】
用語「宿主細胞」は、ベクターなどの異種核酸を含有し、かつ、核酸の複製および／または発現を補助する細胞を意味する。宿主細胞は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）などの原核細胞、または酵母、昆虫、両生類、鳥類、もしくは、ヒト細胞を含めた哺乳類細胞などの真核細胞でありうる。本発明の文脈における例示的宿主細胞には、Ｖｅｒｏ（アフリカミドリザル腎臓）細胞、ＢＨＫ（ベビーハムスター腎臓）細胞、一次ニワトリ腎臓（ＰＣＫ）細胞、マディンダービイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞、マディンダービウシ腎（ＭＤＢＫ）細胞、２９３細胞（例えば、２９３Ｔ細胞）、およびＣＯＳ細胞（例えば、ＣＯＳ１、ＣＯＳ７細胞）が含まれる。
【０１７７】
インフルエンザウイルス
本明細書に記載の組成物および方法は、主として、ワクチン用インフルエンザウイルスの生産に関する。インフルエンザウイルスは、分節された一本鎖ＲＮＡゲノムを含有する内部リボ核タンパク質コアと、マトリックスタンパク質によって裏打ちされた外側リポタンパクエンベロープとからなる。Ａ型インフルエンザおよびＢ型インフルエンザウイルスは、それぞれ８セグメントの一本鎖マイナスセンスＲＮＡを含有している。Ａ型インフルエンザゲノムは１１のポリペプチドをコードする。セグメント１〜３は、３つのポリペプチドをコードし、ＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼを作りあげる。セグメント１は、ポリメラーゼ複合体タンパク質ＰＢ２をコードする。残りのポリメラーゼタンパク質ＰＢ１およびＰＡは、セグメント２およびセグメント３によってそれぞれコードされている。さらに、一部のインフルエンザ株のセグメント１は、ＰＢ１コード領域中の別のリーディングフレームから生成される小タンパク質、ＰＢ１−Ｆ２をコードする。セグメント４は、感染中の細胞付着および進入に関与する表面糖タンパク質である赤血球凝集素（ＨＡ）をコードする。セグメント５は、ウイルスＲＮＡに結合する主要な構造成分であるヌクレオキャプシド核タンパク質（ＮＰ）ポリペプチドをコードする。セグメント６は、ノイラミニダーゼ（ＮＡ）エンベロープ糖タンパク質をコードする。セグメント７は、Ｍ１およびＭ２と呼ばれる２つのマトリックスタンパク質をコードする。これらは、異なってスプライシングされたｍＲＮＡから翻訳される。セグメント８は、２つの非構造タンパク質、ＮＳ１およびＮＳ２をコードする。これらは、選択スプライシングされたｍＲＮＡ変異体から翻訳される。
【０１７８】
Ｂ型インフルエンザの８つのゲノムセグメントは、１１タンパク質をコードしている。３つの最も大きい遺伝子は、ＲＮＡポリメラーゼの構成要素、ＰＢ１、ＰＢ２、およびＰＡをコードする。セグメント４は、ＨＡタンパク質をコードする。セグメント５は、ＮＰをコードする。セグメント６は、ＮＡタンパク質およびＮＢタンパク質をコードする。ＮＢおよびＮＡの両タンパク質が、バイシストロニックｍＲＮＡの重複したリーディングフレームから翻訳される。Ｂ型インフルエンザのセグメント７は、２つタンパク質、Ｍ１およびＢＭ２もコードする。最も小さいセグメントは２つの産物をコードする。すなわち、完全長ＲＮＡから翻訳されるＮＳ１、および、スプライシングされたｍＲＮＡ変異体から翻訳されるＮＳ２である。
【０１７９】
インフルエンザウイルスワクチン
これまで、インフルエンザウイルスワクチンは、主として孵化鶏卵で、適切な株の実証的な予測に基づいて選択されたウイルス株を用いて、生成されてきた。より最近になって、選択された赤血球凝集素およびノイラミニダーゼ抗原を、承認されている弱毒、温度感受性のマスター株のコンテクストに組み込む再集合体ウイルスが生成された。鶏卵中でウイルスを複数回継代させて培養した後、インフルエンザウイルスを回収し、任意選択で、例えば、ホルムアルデヒドおよび／またはβ−プロピオラクトンを用いて不活性化させる（または、代わりに弱毒化生ワクチンとして用いる）。
【０１８０】
しかし、この方法でのインフルエンザワクチンの生産には、いくつかのの重大の懸念がある。例えば、鶏卵から残留する夾雑物は、強い抗原性および／または発熱性である可能性がある。また、投与の際に重大な副作用を頻繁にもたらす可能性もある。したがって、本明細書に記載したように、本発明の一態様は、何らかの割合の卵成分を、動物を含まない培地で置換することを含む。通常、さらに重要なことに、ワクチン生産のために指定されるウイルス株は、次のインフルエンザシーズンの何カ月も前に、選択および分配して、インフルエンザワクチンの生産および不活性化のための時間を残しておかなければならない。重ねて、例えば、本発明の方法および組成物を使用することで、生産時間のいかなる改良が得られても、それは非常に望ましいことである。
【０１８１】
組換え型および再集合体ワクチンを細胞培養で生産しようとする試みは、ワクチン生産のために承認されているいくつかの株が、標準的な細胞培養条件下で効率的に増殖できないということによって妨げられている。したがって、発明者らおよび彼らの同僚による以前の研究は、組換え型および再集合体ウイルスを培養で生成するベクターシステムおよび方法を提供し、それによって、１つまたは多数の選択された抗原性ウイルス株に対応するワクチンを迅速に生成するのを可能にした。上記に引用された、「Multi-Plasmid System for the production of Influenza virus」を参照のこと。当然ながら、そのような再集合体は、任意選択で、鶏卵中で、さらに増幅される。通常、培養は、細胞培養インキュベーターなどのシステムで、湿度およびＣＯ２を制御し、サーモスタットなどの温度調整器を用いて定温に維持し、温度が３５℃を超えないことを確実にする。そのような先導的研究、および他のワクチン生産は、本発明の全体または一部の使用によってさらに最適化および合理化することができる。
【０１８２】
再集合体インフルエンザウイルスは、関心のある株（例えば、関心のある抗原変異体）に由来する相補的なセグメントと組み合わせて、マスターインフルエンザウイルスのゲノムセグメントに対応するベクターサブセットを導入することによって、容易に得ることができる。通常、マスター株は、ワクチン投与に関係のある望ましい特性に基づいて選択される。例えば、ワクチン生産、例えば、弱毒生ワクチンの生産のために、マスタードナーウイルス株を、弱毒表現型、寒冷適応性および／または温度感受性で選別してもよい。
【０１８３】
ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）
前述の通り、インフルエンザワクチンには多数の例とタイプとが存在する。例示的インフルエンザワクチンの一例がＦｌｕＭｉｓｔ（商標）であり、これは、インフルエンザ疾患から子供と成体とを保護する弱毒生ワクチンである（Ｂｅｌｓｈｅら（１９９８）、「The efficacy of live attenuated cold-adapted trivalent, intranasal influenza virus vaccine in children」、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．、第３３８巻、１４０５〜１２頁；Ｎｉｃｈｏｌら（１９９９）、「Effectiveness of live, attenuated intrarasal influenza virus vaccine in healthy, working adults: a randomized controlled trial」、ＪＡＭＡ、第２８２巻、１３７〜４４頁）。典型的な実施形態では、本発明の方法および組成物を、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチン生産に適合させるか、またはこれと共に使用することが好ましい。しかし、当業者ならば、本明細書に記載のステップ／組成物は、同様のウイルスワクチンの生産、または異なったウイルスワクチンの生産にさえ適合性があることが理解されよう。
【０１８４】
ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチン株は、例えば、野生型株由来のＨＡおよびＮＡ遺伝子セグメントを含有し、これと、通常のマスタードナーウイルス（ＭＤＶ）由来の６つの遺伝子セグメント、ＰＢ１、ＰＢ２、ＰＡ、ＮＰ、Ｍ、およびＮＳとで、このワクチンが記述される。ＦｌｕＭｉｓｔのＡ型インフルエンザ用ＭＤＶ（ＭＤＶ−Ａ）は、野生型Ａ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０（Ａ／ＡＡ／６／６０）株を、ニワトリ腎臓一次組織培養で、連続的に温度を低下させながら連続継代することによって生成された（Ｍａａｓｓａｂ（１９６７）、「Adaptation and growth characteristics of influenza virus at 25 degrees C」、Ｎａｔｕｒｅ、第２１３巻、６１２〜４頁）。ＭＤＶ−Ａは、２５℃で効率的に複製するが（ｃａ、寒冷適応）、その増殖は３８および３９℃（ｔｓ、温度感受性）で制限される。さらに、このウイルスは、感染したフェレットの肺では複製しない（ａｔｔ、弱毒）。ｔｓ表現型は、気管の最低温の領域以外のすべてで複製を制限することによって、ヒトにおけるワクチンの弱毒化に寄与すると考えられている。この特性の安定性は動物モデルおよび臨床試験で実証されている。化学突然変異誘発で生成されたインフルエンザ株のｔｓ表現型とは対照的に、感染したハムスターでの継代の後、または小児からの脱落単離株で、ＭＤＶ−Ａのｔｓ特性が戻ることはない（最近の概観に関しては、Ｍｕｒｐｈｙ＆Ｃｏｅｌｉｎｇｈ（２００２）、「Principles underlying the development and use of live attenuated cold adapted influenza A and B virus vaccines」、Ｖｉｒａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ．、第１５巻、２９５〜３２３頁参照）。
【０１８５】
１２株の別々の６：２再集合体株を含む、２０，０００人以上の成人および子供の臨床試験によって、これらのワクチンが弱毒化されており、安全で、かつ有効であることが示された。（Ｂｅｌｓｈｅら（１９９８）、「The efficacy of live attenuated cold-adapted, trivalent, intranasal influenza virus vaccine in children」、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．、第３３８巻、１４０５〜１２頁；Ｂｏｙｃｅら（２０００）、「Safety and immunogenicity of adjuvanted and unadjuvanted subunit influenza vaccines administered intranasally to healthy adults」、Ｖａｃｃｉｎｅ、第１９巻、２１７〜２６頁；Ｅｄｗａｒｄｓら（１９９４）、「A randomized controlled trial of cold adapted and inactivated vaccines for the prevention of influenza A disease」、Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．、第１６９巻、６８〜７６頁；Ｎｉｃｈｏｌら（１９９９）、「Effectivenese of live, attenuated intranasal influenza virus vaccine in healthy, working adults: a randomized controlled trial」、ＪＡＭＡ、第２８２巻、１３７〜４４頁）。ＭＤＶ−Ａの６つの内部遺伝子と、野生株ウイルスの２つのＨＡおよびＮＡ遺伝子セグメントとを保持する再集合体（すなわち、６：２再集合体）は、一貫してｃａ、ｔｓ、およびａｔｔ表現型を維持する。（Ｍａａｓｓａｂら（１９８２）、「Evaluation of a cold-recombinant influenza virus vaccine in ferrets.」、Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．、第１４６巻、７８０〜９００頁）。しかし、Ｂ型インフルエンザ株を用いたそのような再集合ウイルスの生産はより困難である。
【０１８６】
最近の研究は、クローン化されたｃＤＮＡから完全なＢ型インフルエンザウイルスを生成する８プラスミドシステムと、鼻腔内投与に有用な生ウイルスワクチン製剤などのワクチン製剤に適した弱毒生ＡおよびＢ型インフルエンザウイルスを生産する方法とを示した。上記に引用した、「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照のこと。
【０１８７】
以前に記載されたシステムおよび方法は、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）などの鼻腔内投与に適したワクチンなどの弱毒生ワクチンを含めた、ワクチンとしての使用に適したウイルスを含めた、組換え型および再集合体ＡおよびＢ型インフルエンザウイルスを、細胞培養で迅速に生成するのに有用である。本明細書に記載の本発明の方法は、ワクチン用のウイルスを、より安定に、一貫して、生産的な方法で生成するために、任意選択で、例えば、ワクチン生産用の再集合インフルエンザウイルスを含む、そのような以前の研究と共同して、または併用して用いられる。
【０１８８】
細胞培養
前述のように、インフルエンザウイルスは、任意選択で細胞培養で増殖させることができる。通常、ウイルスの伝播は、宿主細胞が一般的に培養されている培地組成物中で行われる。インフルエンザウイルスの複製に適した宿主細胞には、例えば、２９３Ｔ細胞、ＣＯＳ７細胞を含めた、Ｖｅｒｏ細胞、ＢＨＫ細胞、ＭＤＣＫ細胞、２９３細胞、およびＣＯＳ細胞が含まれる。一般的に、共培養は上記細胞系のうち２つを含み、例えば、複製効率を改善するために、ＭＤＣＫ細胞と、２９３ＴまたはＣＯＳ細胞とが、例えば、１：１の比率で利用される。通常、細胞は、血清（例えば、１０％ウシ胎仔血清）を補充したダルベッコ改変イーグル培地、または無血清培地などの標準的な市販培地中で、制御された湿度、中性の緩衝ｐＨ（例えば、７．０から７．２までのｐＨ）を維持するのに適したＣＯ２濃度の下で培養される。培地は、任意選択で、細菌増殖を予防するために、例えば、ペニシリン、ストレプトマイシンなどの抗生物質、および／またはＬ−グルタミン、ピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸などの追加の栄養物、好ましい増殖特性を促進する追加のサプリメント、例えば、トリプシン、β−メルカプトエタノール、および同様のものを含有している。
【０１８９】
培養されている哺乳類細胞を維持する操作法は、広範に報告されており、当業者には周知である。全般的プロトコールは、例えば、Ｆｒｅｓｈｎｅｙ（１９８３）、「Culture of Animal Cells: Manual of Basic Technique」、Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ社、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ；Ｐａｕｌ（１９７５）、「Cell and Tissue Culture」、第５版、Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎ、Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ；Ａｄａｍｓ（１９８０）、「Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology-Cell Culture for Biochemists」、ＷｏｒｋおよびＢｕｎｉｏｎ（編集）、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、Ａｍｓｔｅｒｄａｍに提供されている。インフルエンザウイルスのｉｎ ｖｉｔｒｏ生産において特に興味深い組織培養操作に関するさらなる詳細には、例えば、すべての目的のために本明細書に全体として組み込まれている、Ｍｅｒｔｅｎら（１９９６）、「Production of influenza virus in cell cultures for vaccine preparation」、ＣｏｈｅｎおよびＳｈａｆｆｅｒｍａｎ（編集）、「Novel Strategies in Design and Production of Vaccines」が含まれる。さらに、本発明に適合させたそのような操作法の変形は、通常の実験で容易に決定されるものであり、当業者ならば熟知していよう。
【０１９０】
インフルエンザウイルス産生用の細胞は血清含有培地でも、無血清培地でも培養することができる。場合によって、例えば、精製ウイルスを調製するには、通常、宿主細胞を無血清条件で増殖させるのが望ましい。細胞の培養は、小規模で、例えば、２５ｍｌ未満の培地で、培養試験管またはフラスコで、または、大きいフラスコで撹拌させながら、回転板ボトル中で、または、マイクロキャリアビーズ（例えば、Ｄｏｒｍａｃｅｌｌ、Ｐｆｅｉｆｅｒ＆ＬａｎｇｅｎなどのＤＥＡＥ−デキストランマイクロキャリアビーズ；Ｓｕｐｅｒｂｅａｄ、Ｆｌｏｗ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ；Ｈｉｌｌｅｘ、ＳｏｌｏＨｉｌｌ、Ａｎｎ Ａｒｂｏｒなどの、スチレン共重合体トリメチルアミンビーズ）上で、フラスコ、ボトル、または反応器培養中で行うことができる。マイクロキャリアビーズは、小球（直径１００〜２００ミクロンの範囲）であって、接着細胞の増殖用に、細胞培養容積あたり、広大な表面積を提供する。例えば、１リットルの培地は２０００万個以上のマイクロキャリアビーズを含有でき、それによって、８０００平方センチメートル以上の増殖面積を提供する。ウイルスの商業生産、例えば、ワクチン生産のためには、多くの場合、バイオリアクターまたは発酵槽で細胞を培養するのが望ましい。バイオリアクターは、１リットル未満の容積から、１００リットル以上のものまで、例えば、Ｃｙｔｏ３バイオリアクター（Ｏｓｍｏｎｉｃｓ社、Ｍｉｎｎｅｔｏｎｋａ、ＭＮ）；ＮＢＳバイオリアクター（Ｎｅｗ Ｂｒｕｎｓｗｉｃｋ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｅｄｉｓｏｎ、Ｎ．Ｊ．）；Ｂ．Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社（Ｂ．Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ社、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、ドイツ）の実験室および商業規模バイオリアクターが利用可能である。
【０１９１】
温度依存性の多プラスミドシステム（例えば、上記に引用した「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照）を用い、濾過などのためにウイルス溶液を加熱して、組換え型および／または再集合体インフルエンザウイルスの効率的回収を保障するために、本発明の多くの望ましい態様では、培養容積にかかわらず、培養が適切な温度に維持されていることが重要である。通常、細胞培養システムおよび／または他の溶液の温度を検知して、維持するための調整器、例えば、サーモスタットまたは他の装置を利用して適正な期間（例えば、ウイルス複製など）中温度が正しいレベルにあることを保証する。
【０１９２】
本明細書に記載の一部の実施形態（例えば、再集合ウイルスがベクター上のセグメントから生成される場合）では、インフルエンザゲノムセグメントを含むベクターを、例えば、リン酸カルシウム共沈、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション法、リポフェクション、およびポリアミントランスフェクション試薬を利用するトランスフェクションを含めた、当技術分野で周知の、真核細胞に異種核酸を導入する方法に従って、宿主細胞に導入する（例えば、トランスフェクトする）。例えば、再集合ウイルスなどを生成するため、ベクター、例えば、プラスミドを、メーカーの指示に従ってポリアミントランスフェクション試薬ＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴ１（Ｍｉｒｕｓ社）を用いて、ＣＯＳ細胞、２９３Ｔ細胞、または、ＣＯＳ細胞もしくは２９３Ｔ細胞と、ＭＤＣＫ細胞との組合せなどの宿主細胞にトランスフェクトすることができる。各約１μｇのベクターを、１６０μｌの培地、好ましくは全容積で２００μｌの無血清培地で希釈された約２μｌのＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴＩで、宿主細胞の集団に導入するべきである。ＤＮＡ：トランスフェクション試薬混合物を室温で４５分間インキュベートし、その後、８００μｌの培地を添加する。トランスフェクション混合物を宿主細胞に添加し、細胞を上述の通りに、あるいは、当業者に周知の他の方法で培養する。従って、細胞培養で組換え型または再集合体ウイルスを生産するためには、８つのゲノムセグメント（ＰＢ２、ＰＢ１、ＰＡ ＮＰ、Ｍ、ＮＳ、ＨＡおよびＮＡ）のそれぞれを取り入れたベクターを、約２０μｌのＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴ１と混合し、宿主細胞の中にトランスフェクトする。任意選択で、血清添加培地を、トランスフェクション前に無血清培地、例えば、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉで置換し４〜６時間、インキュベートする。
【０１９３】
別法として、そのようなインフルエンザゲノムセグメントを取り込んだベクターを宿主細胞に導入するのに、エレクトロポレーションを利用することができる。例えば、Ａ型インフルエンザまたはＢ型インフルエンザウイルスを組み込んだプラスミドベクターは、以下の操作法に従って、エレクトロポレーションを用いてＶｅｒｏ細胞に導入するのが好都合である。簡潔には、例えば、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を補充した改変イーグル培地（ＭＥＭ）で育成された約５×１０６のＶｅｒｏ細胞を０．４ｍｌ ＯｐｔｉＭＥＭに再懸濁し、エレクトロポレーションキュベットに入れる。最大２５μｌの容積中のＤＮＡ ２０μｇをキュベット中の細胞に添加し、タッピングによって穏やかに混和させる。エレクトロポレーションは、メーカー（例えば、Ｃａｐａｃｉｔａｎｃｅ Ｅｘｔｅｎｄｅｒ Ｐｌｕｓを接続したＢｉｏＲａｄ Ｇｅｎｅ ＰｕｌｓｅｒＩＩ）の指示に従って、３００ボルト、９５０マイクロファラッド、時定数２８〜３３ｍｓｅｃで行う。穏やかなタッピングによって細胞を再混合し、エレクトロポレーションの約１〜２分後に、１０％ＦＢＳを含有するＭＥＭ ０．７ｍｌを、キュベットに直接添加する。細胞は、その後、２ｍｌ ＭＥＭ、１０％ＰＢＳを含有する６ウェル組織培養皿の２つのウェルに移す。残留したいかなる細胞も回収するため、キュベットを洗浄し、洗浄懸濁液を２つのウェルに分割する。最終容積は約３．５ｍｌである。その後、ウイルスの増殖を許容する条件下、例えば、寒冷適応株には約３３℃で細胞をインキュベートする。
【０１９４】
キット
本発明の方法および組成物の使用を促進するため、例えば、尿膜腔液中の再集合ウイルス、および様々な製剤など、任意のワクチン成分および／または組成物、ならびに、緩衝液、細胞、培養液など、実験上または治療上のワクチン用途におけるインフルエンザウイルスのパッケージングおよび感染に有用である追加の構成要素を、キットの形態で包装することができる。通常、キットは、上記の構成要素に加えて、追加の物質を含有しており、それには、例えば、本発明の方法を行うための説明書、包装材料、および容器を含めることができる。
【０１９５】
明快さと理解とを目的として、以上の発明を、ある程度詳細に説明したが、この開示を読めば、本発明の真の範囲から逸脱することなく、形式および詳細に様々な改変を加えられることが、当業者には明らかであろう。例えば、上述した技法および装置は、すべて様々な組合せで用いることができる。本出願で引用されたすべての刊行物、特許、特許出願、または他の文書は、それぞれの個々の刊行物、特許、特許出願、または他の文書が、すべての目的のために引用によって組み込まれるように個別に示されている程度に、すべての目的において引用によって全体として組み込まれる。
【０１９６】
表
【表１】
【０１９７】
【表２】
【０１９８】
【表３】
【０１９９】
【表４】
【０２００】
【表５】
【０２０１】
【表６】
【０２０２】
【表７】
【０２０３】
【表８】
【０２０４】
【表９】
【０２０５】
【表１０】
【０２０６】
【表１１】
【０２０７】
【表１２】
【０２０８】
【表１３】
【０２０９】
【表１４】
【０２１０】
【表１５】
【０２１１】
【表１６】
【０２１２】
【表１７】
【０２１３】
【表１８】
【０２１４】
【表１９】
【０２１５】
【表２０】
【０２１６】
【表２１】
【０２１７】
【表２２】
【０２１８】
【表２３】
【０２１９】
【表２４】
【０２２０】
【表２５】
【０２２１】
【表２６】
【０２２２】
【表２７】
【０２２３】
【表２８】
【０２２４】
【表２９】
【０２２５】
【表３０】
【０２２６】
【表３１】
【０２２７】
【表３２】
【０２２８】
【表３３】
【０２２９】
【表３４】
【０２３０】
【表３５】
【０２３１】
【０２３２】
【表３６】
【０２３３】
【表３７】
【０２３４】
【表３８】
【０２３５】
【表３９】
【０２３６】
【表４０】
【０２３７】
【表４１】
【０２３８】
【表４２】
【０２３９】
【表４３】
【０２４０】
【表４４】
【０２４１】
【表４５】
【０２４２】
【表４６】
【０２４３】
【表４７】
【０２４４】
【表４８】
【０２４５】
【表４９】
【０２４６】
【表５０】
【０２４７】
【表５１】
【０２４８】
【表５２】
【０２４９】
【表５３】
【０２５０】
【表５４】
【０２５１】
【表５５】
【０２５２】
【表５６】
【０２５３】
【表５７】
【０２５４】
【表５８】
【０２５５】
【表５９】
【図面の簡単な説明】
【０２５６】
【図１】ＤＥＫ ＴＣ−２４における３３℃および２５℃での感染後のＭ遺伝子型決定を示す図である。
【図２】３３℃で５：３および６：２の力価が異なることを示すプラークアッセイおよびデータを示す図である。
【図３】６：２対５：３再集合体の増殖曲線を示す図である。
【図４】ＭＤＶ−Ｂおよび野生型Ｂ型ウイルスのＭ１配列を示す図である。
【図５】ＭＤＶ−Ｂおよび野生型Ｂ型ウイルスのＭ２配列を示す図である。
【図６】ＭＤＶ Ｂ−Ｍ１で保存されている２箇所の部位における突然変異を示す図である。
【図７】Ｂ／ＨＫ ６：２ Ｍ１突然変異の増殖曲線を示す図である。
【図８】様々なＭＯＩでの様々なＣＥＫ細胞の感染を示す図である。
【図９】ワクチン生産工程中の潜在的微生物汚染を示すフローチャートである。
【図１０】赤外線イメージングによる個々の卵の温度崩壊率を示す図である。
【図１１】生存卵、無精卵、および死亡卵の熱イメージングを示す図である。
【図１２】ウイルス収集物濃縮の模式的フローチャートである。
【図１３】第５洗浄液とＮＡＦタンパク質の比較を示す図である。
【図１４】濃縮前のＮ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９ １−Ｘ−未処理試料のアッセイを示す図である。
【図１５】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９ １０Ｘ濃縮試料のアッセイ示す図である。
【図１６】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１Ｘおよび１０Ｘの比較と５回の洗浄後の１Ｘ−Ｗ試料とを示す図である(パネルＡ−Ｂ)。
【図１７】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１Ｘおよび１Ｘ−Ｗ試料の比較を示す図である。
【図１８Ａ】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗの比較を示す図である。
【図１８Ｂ−Ｃ】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の透過液と；Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の５回の洗浄とを示す図である。
【図１９】洗浄の回数および除去された不純物を比較するＳＥＣ分析を示す図である。
【図２０】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１ＸＷおよび１０Ｘ−Ｗの比較を示す図である。
【図２１】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の９６ウェルプレートアッセイを示す図である。
【図２２】保持液および透過液におけるノイラミニダーゼ活性／ウイルス精製のグラフを示す図である。
【図２３】対照、１０Ｘ、１０Ｘ−Ｗ、および１Ｘ−ＷのＲＨＰＬＣを示す図である。
【図２４】対照、１０Ｘ、１Ｘ−Ｗ、および１０Ｘ−Ｗ試料のグラフを示す図である。
【図２５】透過液および洗浄液１〜６のＲＨＰＬＣを示す図である。
【図２６】ＲＨＰＬＣオボムコイド除去（ピーク面積）のグラフを示す図である。
【図２７】リゾチーム除去（ピーク面積）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図２８】コンアルブミン除去（ピーク面積）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図２９】オボアルブミン除去（ピーク面積による）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図３０】Ａｇｉｌｅｎｔ２１００によるオボアルブミン分析のグラフを示す図である。
【図３１】抗Ａ／Ｎｅｗ ＣａｌｅｄｏｎｉａのウエスタンブロットＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示す図である。
【図３２】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の５回の洗浄後の１０Ｘ−Ｗ試料のアッセイを示す図である。
【図３３】ＲＴＰＣＲによるＲＮＡ分析のグラフを示す図である。
【図３４】ＳＥＣによるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ−細胞培養増殖のモニタリングを示す図である。
【図３５】Ｖｅｒｏ細胞におけるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇの細胞培養収集物を示す図である。
【図３６】２リットルのＡ／Ｐａｎａｍａ細胞培養の濃縮を示す図である。
【図３７】２リットルのＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ細胞培養を１０ｍｌに濃縮することを示す図である。
【図３８】例示的なウイルス貯蔵製剤の安定性に関する４つのグラフを示す図である。
【図３９】様々なウイルス株を用いた例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性に関するグラフを示す図である。
【図４０】様々なウイルス株を用いた例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性に関するグラフを示す図である。
【図４１】様々なシトレート濃度を有する例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性を示す図である(パネルＡ−Ｃ)。
【図４２】様々なＥＤＴＡ濃度を有する例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性を示す図である(パネルＡ−Ｃ)。
【図４３】様々なウイルス株を用いた未精製ウイルス収集物製剤の９カ月にわたる安定性を示す図である。
【図４４】リン酸緩衝液に関連した、製剤の初期力価減失を示す図である。
【図４５】６カ月目における様々な製剤の安定性勾配の全体像を提供する図である。
【図４６】６カ月目における様々な製剤の安定性勾配の全体像を提供する図である。
【図４７】ゼラチンおよびＰＶＰ／ＥＤＴＡを含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図４８】様々なｐＨにおけるヒスチジンを含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図４９】様々な量のショ糖を含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図５０】ウェルの吸光度読取り値に対して、その値の頻度（その吸光度値を与えるウェルの数）をプロットすることによって得られたヒストグラムである。
【図５１】吸光度読取り値に対して値の頻度をプロットすることによって得られたヒストグラムである。
【図５２】６：２インフルエンザ再集合体を生成する一般的過程を示す図である。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、インフルエンザワクチン組成物を生成する方法に関する。
【０００２】
関連出願との相互参照
本出願は、「インフルエンザワクチン組成物を生成する方法」と題された、２００３年２月２５日出願の米国特許仮出願第６０／４５０，１８１号に基づく利益を要求する。この先行出願を、あらゆる目的に対して、参照により全体として組み込む。
【背景技術】
【０００３】
発明の背景
毎年、多数の個体が、異なる株及び型のインフルエンザウイルスに感染しているので、多様で、しかも進化しつつあるインフルエンザ株に対するワクチンは、地域医療の見地からだけでなく、商業的にも重要なものである。乳児、高齢者、適切な医療を受けていない人々、および免疫無防備状態の人々は、そのような感染によって死亡する危険が特に高い。インフルエンザ感染症の問題を難しくしているのは、新規のインフルエンザ株が容易に進化し、そのため、新規ワクチンの生産が恒常的に必要とされているということである。
【０００４】
そのような様々なインフルエンザウイルスに特異的な防御的免疫反応を生み出すことのできる多数のワクチンが、５０年を超える期間にわたって産生されており、それらには、例えば、全ウイルスワクチン、ウイルス成分ワクチン、表面抗原ワクチン、および弱毒生ウイルスワクチンが含まれる。しかし、これらのワクチンタイプの適切な製剤は、いずれも全身性免疫反応を引き起こすことができるが、弱毒生ウイルスワクチンは、気道での局所粘膜免疫も刺激できるという利点を有する。したがって、弱毒生ウイルスを含むワクチンであって、しかも、迅速かつ経済的に生産することもでき、さらに、容易に貯蔵／輸送できるワクチンは、非常に望ましいものである。
【０００５】
これまでのところ、市販されているすべてのインフルエンザワクチンが、孵化鶏卵中で増殖されている。鶏卵中で、インフルエンザウイルスは良く増殖するが、ワクチン生産がそのような卵の利用可能性に依存している。卵の供給を組織化しなければならず、そして、ワクチン生産用の株を、次の流感時期の何ヶ月も前に選択しなければならないので、このアプローチでは、柔軟性が制限されることがあり、しばしば生産および配給に遅れと不足とがもたらされる。したがって、鶏卵中におけるワクチン生産の時間内処理量を増大させ、かつ/またはその生産量を増大させるいかなる方法も、非常に望ましいものである。
【０００６】
細胞培養中でインフルエンザウイルスを生産するシステムも近年に開発されている（例えば、Ｎｉｃｈｏｌｓｏｎら（編集）、「Textbook of Influenza」中、３２４〜３３２頁、Ｆｕｒｍｉｎｇｅｒ、「Vaccine Production」；Ｃｏｈｅｎ＆Ｓｈａｆｆｅｒｍａｎ（編集）、「Novel Strategies in Design and Production of Vaccines」中、１４１〜１５１頁、Ｍｅｒｔｅｎら（１９９６）、「Production of influenza virus in cell cultures for vaccine preparation」を参照）。鶏卵中でのワクチン生産に関する多くの困難を除去するものではあるが、細胞培養中で、すべての病原性のインフルエンザ株が良好に増殖するわけではなく、また、確立されている組織培養法で生産できるわけでもない。さらに、望ましい特性、例えば、弱毒性、温度感受性、および寒冷適応性を備え、かつ弱毒生ワクチンの生産に適した多数の株に関して、確立されている方法を用いて組織培養中で増殖させるのに未だに成功していない。したがって、細胞培養中におけるワクチン生産の時間内処理量を増大させ、かつ／またはその生産量を増大させるいかなる方法も、非常に望ましいものである。
【発明の開示】
【０００７】
本発明者ら、およびその共同研究者らによって、ワクチン生産用のインフルエンザウイルス産生に関して、かなりの研究がなされており、例えば、「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」、２００２年４月２６日出願の米国特許出願第６０／３７５，６７５号、２００３年４月２５日出願のＰＣＴ出願第ＰＣＴ／ＵＳ０３／１２７２８号、および２００３年４月２５日出願の米国特許出願第１０／４２３，８２８号などを参照されたい。本発明は、ワクチン組成物生産用のそのようなウイルス、および他のインフルエンザウイルスの生産を増強／最適化（量／品質および速度の両方に関して）する方法を提供する。本発明の諸態様は、伝統的な鶏卵ワクチン生産様式、および新規の細胞培養ワクチン生産様式（および、併用システム）に適用でき、以下を総覧することによって明らかになるであろう多くの他の利益を含むものである。
【０００８】
発明の概要
本発明は、インフルエンザウイルス（例えば、Ａ型ウイルス株またはＢ型ウイルス株など）を、卵を介して継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法の実施形態を提供する。そのような実施形態の一部では、組成物に、孔径が０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの範囲にあるマイクロフィルターを通過させることが濾過に含まれる。さらに、様々な実施形態で、そのような実施形態における加熱温度が、任意選択で約２８℃〜約４０℃以上を含み、一方、一部の実施形態では、この温度が３１℃、または約３０℃〜約３２℃を含む。そのような実施形態における加熱は、濾過の前もしくは濾過中に、または濾過の前および濾過中に行われてもよく、約５０分間から約１００分間まで、約６０分間から約９０分間まで、または約６０分間を含んでもよい。本発明は、そのような方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物（上記組成物がワクチン組成物である場合も含む）も提供する。
【０００９】
他の態様では、本発明は、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、ウイルスを精製するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法を含む。そのような実施形態は、膜を通して組成物を濾過することを含んでもよく、上記組成物には、ワクチン組成物が含まれ、そのような実施形態によって生産された実際のワクチン組成物も含まれる。
【００１０】
関連した態様では、本発明は、継代中に揺動されている卵を介してインフルエンザウイルスを継代させることによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法を含む。場合によっては、揺動させることには、卵を１分間に約１サイクル、任意選択で約12時間傾斜させることが含まれるそのような実施形態は、Ａ型インフルエンザウイルス株、および／またはＢ型インフルエンザウイルス株を用いてもよく、かつ、任意選択で、そのような揺動された卵のＴＣＩＤ５０が、揺動されかかった卵を介して継代された同じインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ｌｏｇ大きいことを含む。そのような実施形態によって生成されるウイルス組成物も、本発明の特徴であり、これには上記組成物がワクチン組成物であるものも含まれる。
【００１１】
本発明は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを（ウイルスの複製を補助することができる）宿主卵の集団に導入するステップと、卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する（例えば、そのようなものの再集合に偏向を与える）方法も含む。そのようなウイルスは、例えば、弱毒化ウイルス、寒冷適応ウイルス、温度感受性ウイルス、または弱毒寒冷適応温度感受性ウイルスを含んでもよく、例えば、Ｂ型インフルエンザウイルスも含んでもよい。そのような実施形態によって生成されたウイルス組成物も、本発明の特徴である（ワクチン組成物も含まれる）。そのような態様は、任意選択で、野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るためにさらに選別することを含む（例えば、複数のウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることによって（例えば、１つまたは複数の卵の中でこれを行う））。このようにして生成された、ワクチン組成物を含めたウイルス組成物も、本発明の特徴である。
【００１２】
本発明の他の態様は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、（インフルエンザウイルスの複製を補助することができる）宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、複数のウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、（揺動されている）卵を介してウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱し、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって、１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成することを含む。そのような方法で生成されるウイルスも、本発明の特徴である（ワクチン組成物も含まれる）。
【００１３】
本明細書に具体化された様々な方法では、インフルエンザウイルス組成物を、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイしてもよい。そのようなウイルス組成物は、任意選択で、約１０％から約６０％の未分画の正常な尿膜腔液（および、任意選択で、約１％から約５％のアルギニン）を含む。正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液を用いて、これらの組成物を希釈してもよい。これらの組成物は、本発明において、場合によって、ゼラチンを実質的に含まないものである。これらの組成物は、約２℃〜約８℃までの間で安定であるか、または４℃で安定なものである。本明細書における一部の組成物および方法では、ウイルスがインフルエンザウイルスであり、一方、本明細書におけるさらに他の組成物および方法（例えば、マイクロフィルター濾過、および/または限外濾過、および/または加熱、および／または揺動を行うもの）では、任意選択で、ウイルスが、例えば非インフルエンザウイルス（例えば、卵における培養で生成されるウイルス、例えば、ミクソウイルス、パラミクソウイルス、ＲＳＶ、ムンプスウイルス、麻疹ウイルス、センダイウイルス、黄熱病ウイルス、ｐＩＶなど）を含む。したがって、また、本発明の方法と組成物もそのような他のウイルスおよび／または非インフルエンザウイルスに適切である。
【００１４】
さらに他の態様では、本発明は、卵を介してインフルエンザウイルス継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、上記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が、第２のＴＣＩＤ５０より大きく、第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、ウイルスを加熱するステップと、膜を通してウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１５】
本発明の他の態様は、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、上記継代中に上記卵が揺動され、上記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、上記第２のＴＣＩＤ５０は、継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１６】
本発明のさらに他の実施形態は、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入すること、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、上記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、上記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、上記第２のＴＣＩＤ５０がインフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物を含む。
【００１７】
本発明のこれらおよび他の目的および特徴は、添付図と併せて、以下の詳細な説明を読めば、より完全に明らかになるであろう。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
詳細な説明
本発明は、ワクチン生産／使用に適したウイルスおよびウイルス組成物生産の時間内処理量および産出量を増大させる方法および組成物を含む。例えば、本明細書により詳細に記載する通り、ウイルス産生における所望の再集合体の選別、温度調整／濾過、揺動、抗体選択、力価アッセイ、および多くの別の特性に関する方法および組成物が含まれる。
【００１９】
本明細書に記載の様々なステップをすべて行う必要も、また、それらが同一の生産系列に存在している必要もないことが当業者には理解されよう。したがって、一部の好ましい実施形態では、表１に概要を示すように、本明細書に記載のすべてのステップおよび／または組成物が実施されるか、または存在するが、他の実施形態では、任意選択で、１つまたは複数のステップが、例えば、省略されるか、（範囲、順序、配置などが）変更されるか、または同様の処置がされる。
【００２０】
本明細書に記載のウイルス産生の方法および組成物の基本的な概要を、表１に示す。全体を通して強調されるべきであるが、ここでも、表１に記載のものなど、本発明の個々のステップは、必ずしも相互に依存しない。例えば、一部の実施形態では、適当な再集合ウイルス溶液を含有する卵をインキュベーション中に揺動させる（下記参照）が、他の実施形態では揺らさないこと；ステップ１０における加熱および濾過は、ステップ１３における汎用試薬の使用とは独立したものであることなどが挙げられる。本発明におけるステップ／方法／組成物のいずれの一つの存在も、本発明におけるいずれの他のステップ／方法／組成物の必要な存在に依存するものではない。したがって、本発明の様々な実施形態は、これらのステップの１つのみを含むことも、全ステップを含むことも、また、これらのステップの様々な組合せすべてのいかなるものを含むこともある。
【００２１】
典型的な実施形態が、当技術分野で公知のステップ／方法／組成物、例えば、ウイルスを含有している卵の検卵、ウイルスによる卵の接種などを含むことも当業者には理解されよう。したがって、当業者ならば、適当なウイルス、ウイルス溶液、組成物などを生成する、そのような公知のステップに適切な条件、サブステップ、ステップの詳細などを容易に決定することができる。個々のステップについて、以下により詳細に記述する。例示的実施形態で用いられる主要ステップの一覧として、表１を参照されたい。
【００２２】
論考および記述を容易にするために、本発明の様々なステップ、例えば、様々な方法および組成物は、４つのおおまかなグループを含むもの、またはそれらに分類されるものと考えることができる。第１のグループは、同時感染、再集合、再集合体の選別、および再集合体のクローニングなどの態様を含む（例えば、それによって、おおよそ表１のステップ１から３までと対応している）。第２のグループは、再集合体の精製および増殖などの態様を含み、おおよそ表１のステップ４から６までに対応すると考えることができる。第３のグループは、卵における再集合体のさらなる増殖と、そのようなウイルス溶液の収集、および収集されたウイルス溶液の精製とを含む（例えば、おおよそ表１のステップ７から１１までに対応している）。第４のグループは、収集されたウイルス溶液の安定化およびウイルス溶液の力価／無菌性アッセイを含む（例えば、おおよそ表１のステップ１２から１５に対応している）。しかし、本発明の態様を上記の４つの一般的範疇に分類するのは、もっぱら、説明および組織化を行うことが目的であって、ステップの相互依存性のいかなる推論も行うべきではないことを理解されたい。
【００２３】
ステップの詳細な説明
論考および記述を容易にするため、本発明の様々なステップを、上述の通り、４つの広いグループを含むものとして考えることができる。第１のグループは、同時感染、再集合、再集合体の選択、および再集合体のクローニングなどの態様を含む（例えば、それによって、表１におけるステップ１から３に対応している）。第２のグループは、再集合体の精製および増殖などの態様を含み、表１におけるステップ４から６にほぼ対応すると考えることができる。第３のグループは、卵で再集合体をさらに増殖させること、採取すること、およびそのような採取されたウイルス溶液を精製することを含む（例えば、表１におけるステップ７から１１にほぼ対応している）。第４のグループは、採取されたウイルス溶液の安定化と、ウイルス溶液の効力／無菌性アッセイを含む（例えば、表１におけるステップ１２から１５にほぼ対応している）。しかし、本発明の態様を上述した４つの一般的カテゴリーに分類したのは、もっぱら説明/組織化を目的したものであって、ステップの相互依存などの推論を行うべきではないことを強調しておく必要がある。
【００２４】
グループ１
本明細書でグループ１に属するものとしておおまかに分類された、本発明の態様は、特に望ましい再集合ウイルスを生成するために、例えば、マスタードナーウイルスおよび１つまたは複数の野生型のウイルスを細胞培養系に同時感染させる上での最適化に関する方法および組成物；適切な再集合ウイルスの選択；および選択された再集合ウイルスのクローニングを含む。インフルエンザウイルス株の再集合は当業者に周知である。再集合ウイルス株を生成するのに、Ａ型インフルエンザウイルスおよびＢ型インフルエンザウイルスの両者の再集合が、細胞培養および卵の双方で用いられている。例えば、Ｔａｎｎｏｃｋら、「Preparation and characterisation of attenuated cold-adapted influenza A reassortants derived from the A/Leningrad/134/17/57 donor strain」、Ｖａｃｃｉｎｅ（２００２）、第２０巻、２０８２〜２０９０頁を参照。インフルエンザ株の再集合は、プラスミドコンストラクトでも示されている。上記に引用した「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照されたい。
【００２５】
再集合は、簡潔には、異なったウイルスに由来する遺伝子セグメントの混合（例えば、卵または細胞培養で）を、通常含む。例えば、Ｂ型インフルエンザウイルス株の典型的な８つのセグメントを、例えば、注目しているエピトープを有する野生型株と、例えば、寒冷適応株を含む「ドナー」株との間で混合することができる。２つのウイルスタイプ間で再集合を行うことによって、とりわけ、１つのセグメントに野生型エピトープ株を含み、他のセグメントに寒冷適応株を含むウイルスを生成することができる。残念ながら、所望の再集合体を生成するには、時に、多数の再集合を行う必要がある。ウイルスは、再集合の後に、選別することができる（例えば、所望の再集合体を見つけるために）。その後、所望の再集合体を、クローニングすることができる（例えば、数を増やして）。したがって、再集合体の構築に必要な時間を短縮するステップ、および所望の再集合体の生成を促進するステップは、極めて望ましいものである。
【００２６】
Ｂ型インフルエンザウイルスでは、所望の再集合体の、伝統的な最適化、選択、およびクローニングは、通常、細胞培養（例えば、ＣＥＫ細胞）に対するウイルス株の同時感染によって、そして、それに続く、例えば、親ウイルスの１株に由来する物質に対する適当な抗体を用いた選別（通常、卵で行われる）、および、通常は細胞培養で行われる、ウイルスのクローニングまたは増殖などによって行われる。しかし、そのような伝統的な再集合は、所望のセグメント混合物を生成するのに何千もの再集合を必要とする点に欠点がある。そのような再集合を行ったとしても、最終産物が真に無作為な再集合でないことが明らかである。言い換えれば、この過程に偏向を与える圧力がシステム中に存在するのである。しかしＡ型インフルエンザ株では、そのような過程に、そのような偏向が生じてはいないようである。Ａ株では、ウイルス株の同時感染（通常、ＣＥＫ細胞などの細胞培養を感染させる）の後で、選別およびクローニングを同時に行うが、これも、通常は細胞培養中で行う。
【００２７】
したがって、本明細書で詳述するように、本発明の様々な実施形態は、再集合における偏向を減少させるステップを含む。すなわち、再集合体のクローニングを、細胞系で行う代わりに卵（例えば、３３℃）で行うか、または細胞系で行うが、例えば、２５℃で行う。
【００２８】
再集合の最適化
本発明は、必要となる再集合の数を減少させる（それによって、ワクチン生産過程の時間内処理量を増大させる）ために、グループ１のステップを用いて再集合の過程を最適化する。そのような最適化技法を用いたステップは、通常、Ｂ型インフルエンザ株の再集合によって実現され、通常、細胞培養、例えば、ＣＥＫ細胞で行われる。
【００２９】
インフルエンザウイルスの再集合を行う他の方法では、マスタードナーウイルス（ＭＤＶ）および野生型ウイルスの希釈液、例えば、各溶液の濃度に関わらずそれぞれ１：５希釈したものを、混合し、それらを次に２５℃および３３℃で、２４および４８時間インキュベートする。しかし、そのようなアプローチは、Ａ型インフルエンザ株には許容できる場合が多いのにもかかわらず、通常、Ｂ型インフルエンザ株では、そのようなプロトコールで陽性の結果が得られない。例えば、適切な６：２再集合（すなわち、ＭＤＶから６遺伝子、そして、野生型ウイルスから２遺伝子、ＮＡおよびＨＡ）を実現するのに、しばしば、何千もの再集合を行わなければならない。
【００３０】
したがって、本発明のグループ１に含まれるステップの典型的な実施形態は、ＭＤＶ株および野生型株（特に、用いられたＢ型インフルエンザ株の野生型株）のＭＯＩ（感染多重度）の測定と、それに続く、表２で例示されたものを含む再集合とを含む。そのような最適化された再集合混合物のインキュベーションは、卵内、３３℃で２４時間行われる。最適化されていないシステムで何千もの再集合混和物が必要なのとは対照的に、このような実施形態では、通常、数百の再集合混和物をスクリーニングすることによって、適切な６：２再集合が実現される。
【００３１】
再集合体の選別およびクローニング
グループ１のステップは、再重合されたインフルエンザウイルスの選別も含む。本発明の方法および組成物は、適切に再集合されたＢ型インフルエンザウイルスを選別するのに特に有用である（そして、通常、そのように用いられる）。再集合されたＡ型インフルエンザ株は、細胞培養（例えば、ＣＥＫ細胞）または卵で選別できる。しかし、細胞培養で再集合された場合（例えば、ＣＥＫ細胞で選別される場合）、再集合されたＢ型インフルエンザ株には、問題が存在する。ＣＥＫ細胞は、Ｂ型インフルエンザ株でＭ遺伝子を妨害し、したがって、生成全体を抑制すると考えられている。下記参照。本発明は、そのような抑制に留意し、一部の実施形態では、Ｂ型インフルエンザの再集合の選別を、卵（卵はＢ型インフルエンザ株におけるＭ遺伝子に対する淘汰圧に関して中立的である）で３３℃において、または別法として、ＣＥＫ細胞で２５℃において行う。図５２を参照。
【００３２】
グループ１における本発明の他の実施形態には、選別過程で抗ＨＡ（ＭＤＶの）抗血清および抗ＮＡ（ＭＤＶの）抗血清を使用し、それによって、より強い選別を実現することが含まれる。
【００３３】
グループ１における本発明のさらに他の実施形態には、生成された再集合体のクローニングが含まれる。これまでの論考から明らかであろうが、ＣＥＫ細胞培養でのＢ型インフルエンザ再集合体のクローニングは、負の選択圧のため、問題があることが判明している。したがって、本明細書に記載のいくつかの実施形態では、Ｂ株の再集合体を、卵で、３３℃においてクローニングする。他方、Ａ株の再集合体は、場合によっては、ＣＥＫ細胞培養でクローニングし、同時に選別を行う。
【００３４】
本明細書に記載の一部の実施形態は、再集合における卵の無偏向性または非抑制性を利用する（上記参照）が、本明細書に記載の他の実施形態は、細胞培養での再集合体の選択／クローニングを含み、ただしこれを２５℃で行う。したがって、本発明の一部の態様は、ＭＤＶＢ（マスタードナーウイルスＢ）Ｍ遺伝子および野生型ＢウイルスＭ遺伝子の異なった特性を利用する実施形態を含む。例えば、望ましい再集合体を生成するため、任意選択で６：２および５：３の同時感染を行う。したがって、例えば、Ｂ／ＨｏｎｇＫｏｎｇ／３３０／０１ ＭＶＳの生成過程では、３３℃におけるＣＥＫ細胞の限界希釈による、野生型および寒冷適応型のＭウイルスＲＮＡからのクローニングの結果として、野生型ＭウイルスＲＮＡの成長が優勢となる。野生型のＭ ｖＲＮＡを得る確率は、卵の方がより高いが、３３℃で６：２を５：３（野生型のＭ遺伝子を含有している）と同時感染させた場合、卵およびＣＥＫ細胞の両方で、ＭＤＶ由来のＭ ｖＲＮＡより、野生型のＭ ｖＲＮＡが優性である。対照的に、ＭＤＶに由来する野生型のＭ ｖＲＮＡは、６：２および５：３を２５℃でＣＥＫ細胞に同時感染させた場合、相互に匹敵する量で存在する。したがって、本明細書に記載の一部の実施形態では、ＭＶＳ過程おけるＣＥＫ細胞での６：２クローニングに２５℃が用いられる。図１から８を参照。これらの図から、プラークアッセイによって、ＭＯＩが低い場合、３３℃におけるＢウイルス６：２の力価が５：３より少なくとも２ｌｏｇ１０低く、一方、２５℃では６：２は５：３と同じレベルにまで増殖することが示されていると見て取ることができる。３３℃における６：２の増殖欠損は、ＭＶＳ ＣＥＫクローニングの６：２に対する選別が原因かもしれない。ＭＤＶＢと６：２とで増殖特性が異なることは、Ｍ遺伝子優性にＨＡおよびＮＡが関与していることを示唆する。ＭＤＶＢと、野生型Ｂウイルスとの間には、２個の保存的アミノ酸が相違しているのみである。６：２ Ｍ１の遺伝子上のバリンから、野生型で保存されているメチオニンへの単一変異によって、３３℃におけるＣＥＫ細胞での６：２の増殖欠損を逆転することができる。
【００３５】
再集合の特性分析
本発明のさらに他の実施形態は、本発明で使用されるインフルエンザウイルスの遺伝子群（ｇｅｎｅ ｃｏｎｓｔｅｌｌａｔｉｏｎ）を決定するのに、ハイスループット一本鎖高次構造多型／キャピラリー電気泳動（ＳＳＣＰ／ＣＥ）アッセイの適用を利用する。そのような特性分析の局面は、本明細書に記載の他の「グループ」に分類することもできるが、構成上の目的から、ここで論ずるものと理解するべきである。インフルエンザウイルスは、上述のように、８つの遺伝子セグメントを含有しており、単一の細胞を２つの異なったインフルエンザ株で同時感染させることにより、いずれの親からも異なる新規な遺伝子群を備えた再集合体ウイルスを生成することができる。したがって、本明細書に記載のいくつかの実施形態では、多数のインフルエンザウイルス試料の遺伝子セグメント群を迅速に決定するのに、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイを用いる。インフルエンザウイルスの遺伝子セグメントは、任意選択で、８つのセグメントのそれぞれに特異的な蛍光標識プライマーを用いて、ＲＴ−ＰＣＲによって増幅する。あらゆる目的に関して、参照により本明細書に組み込まれている、Ａｒｖｉｎら（２０００）、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏ．、第３８（２）巻、８３９〜８４５頁も参照のこと。
【００３６】
インフルエンザゲノムの８つのセグメントすべての遺伝子型決定をするのに必要なＲＴ−ＰＣＲ反応の数を減少させるために、任意選択で、複数のセグメントを同一反応中で同時に増幅する多重反応を実施する。各セグメントに対応するＲＴ−ＰＣＲ産物は、サイズ、移動パターン、および蛍光色によって区別する。非変性マトリクス中での一本鎖ＤＮＡフラグメントの移動は、サイズのみではなく、その配列内容によっても決定される。
【００３７】
細胞は、任意選択で、寒冷適応したＢ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／１／６６（ＭＤＶ−Ｂ）または同様のものと、いくつかの野生型Ｂ型インフルエンザ株の１つとで同時感染させる。この同時感染の子孫は、限界希釈法によってクローニングし、多重反応で核酸を増幅する。プライマーを選択し、産物を１８℃でＳＳＣＰ／ＣＥによって分離する。ＳＳＣＰ／ＣＥは、ＭＤＶ Ｂおよび野生型株の８つの遺伝子セグメント間の解像度を高める。
【００３８】
例として、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイの正確さを実証にするために、約５０の異なった再集合体ウイルスからの４００の遺伝子セグメントを分析し、ＳＳＣＰ／ＣＥによる結果を、制限断片長多型（ＲＦＬＰ）によって得られたものと比較した。これら２セットのデータ相互には、高い一致（約９８％）が見出され、それによってＳＳＣＰ／ＣＥアッセイの確証がなされた。さらに、ＳＳＣＰ／ＣＥアッセイによって、Ｂ型インフルエンザウイルスのＭ遺伝子セグメント内にある単一ヌクレオチド置換を検出できることが示された。
【００３９】
細菌汚染の防止
本発明の一部の実施形態は、インフルエンザウイルスが生成される卵の微生物汚染を検出、および／または、防止／検出するステップを含む。そのようなステップは、表１に概要を示すいくつかの領域で有用であり、グループ１、２、および３に含めることができるが、構成上の目的からグループ１のステップと共に提示する。本発明の微生物検出ストラテジーは、迅速／ハイスループットの微生物検出に有用であり、したがって、本明細書の多数の他のステップでもそうであるように、ウイルス／ワクチン生産の時間内処理量を増大させるのに有用である。
【００４０】
本明細書に記載の本発明の一部の実施形態も含めて、現在のインフルエンザワクチン生産ストラテジーの多くは、その構成要素として、特定の病原体を含まない稔性の鶏卵でインフルエンザウイルスを増殖させる伝統的方法を用いる。卵でのウイルス産生では、いくつかの時点で、潜在的な微生物汚染が起こりうる。例えば、図９を参照のこと。図９は、ウイルス産生フローチャートの可能な一例と、その中で汚染が起こりうる領域の概要とを示す。残念ながら、鶏卵は、その天然生物相の一部として、殻の外に何種類かの微生物を有することがある。ニワトリ胚の発生中に卵の殻の中に封じこめられた微生物を有することも起こりうる。受精された鶏卵は、胚を発生させるために、高湿度、３７℃でインキュベーションを行うが、これは、多くのタイプの微生物夾雑物にとっても最良のインキュベーション条件を構成する。微生物汚染が起こりうる別の時点は、卵に接種するために、殻に穴があけられるときである。ウイルス接種の前には、しばしば卵にアルコールを噴霧するが、微生物が卵の中に進入する機会が依然として存在する。
【００４１】
ウイルスを卵の中で２から３日間増殖させた後、通常、卵中の、ウイルスを含有する尿膜腔液を手作業で収集するために、卵殻の頭頂を除去する。この収集が、微生物汚染が起こりうるもう１つの時点である。残念ながら、そのような混入している生物汚染を有する卵は検出を逃れることがあり、そのため、ロット全体がＭＰＡ試験で不合格になって拒絶されることを最小にするために、複数のボトルにプールする必要がある。通常、３つのインフルエンザ株がワクチン生産に用いられるため、最終原体には、３つの株を混合する必要である。産物が微生物を含まないことを確実にするために、過程中ＭＰＡ（微生物学的純度アッセイ）試験を、例えば、混合および充填に使用する前のウイルス採取の際に行う（図９を参照）。
【００４２】
インキュベーションの後で、検卵（ｃａｎｄｌｉｎｇ）の「伝統的な」方法を用いて、無精卵および死亡卵の同定を行う。卵は、天然の要因または微生物汚染によって死亡している可能性がある（すなわち、死亡卵は、ウイルスの感染力、および／または、微生物の増殖によって生じうるものであり、これらは両方とも検出して、そのような卵を排除する必要がある）。検卵は、例えば、暗くした部屋の光源の前に卵を保持して、発生中の胚の明視化を可能にする過程を含む。死亡卵は、ウイルス接種から排除する。
【００４３】
上記の点から明らかであるように、微生物汚染の検出は、インフルエンザワクチンの製造中、複数のステップで必要となりうる。トリ由来および環境由来の微生物を排除または低減させる必要、ならびに、環境由来およびヒト由来の微生物の導入を排除または抑制する必要がある。したがって、不稔性であるか、死亡しているか、または微生物に汚染されている卵を同定して、除去するための、非侵襲的で迅速な卵のスクリーニング方法が必要とされている。そのような方法は、好ましくは、非侵襲的かつ迅速なものであるべきである。混入している微生物を検出する現行の方法には、例えば、公定書記載の方法（ｃｏｍｐｅｎｄｉａｌ ｍｅｔｈｏｄ）（ＭＰＡおよび生物汚染）が含まれる。現行の方法は、例えば、卵の接種前／後の検卵（これは、通常、約５００卵／時間／人の速度で手動で行われる）；通常、手動であり、ＭＰＡ試験には約１４日間、そして生物汚染試験には約３日（これは、ウイルス収集中に行われる）かかるＭＰＡ試験および生物汚染試験；通常、手動であり、約２８日間（これは、ウイルス収集中に行われる）かかるマイコプラズマ試験；ならびに、通常、手動であり、約５６日間かかる（これは、ウイルス収集中に行われる）ミコバクテリア試験を含むことができる。これらから、伝統的方法には、回転時間の有意な短縮を行う余地のあることが理解されよう。新規の方法は、例えば、結果が出るまでの時間が何日もかかっていたものを２４時間以下に（そして過程中試行試験では、好ましくは、４時間以下に）、そして放出試験（Ｒｅｌｅａｓｅ Ｔｅｓｔｉｎｇ）では何週間もかかっていたものを数日間にまで短縮するものが望ましい。他の優先事項には、例えば、中間体／在庫保持時間の短縮、潜在的な製品発売／承認の迅速化、および費用／労力／間接費の削減が含まれる。概して、微生物汚染を検出するために選択されるいかなる方法も、例えば、意図している用途、結果がでるまでの時間、機器の性能などの科学的要件；ＦＤＡのガイドライン（例えば、ＦＤＡによって要請されているように、生物汚染は生存している全生物の尺度でなければならない）、レビュー、希望／許容などの規制要件；業者監査、業者サポート（機器ＩＯＰＱすなわち機器測定された見込み品質（ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔａｌｌｙ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖａｌ ｑｕａｌｉｔｙ））、ソフトウェア検証、および文書完備などの順守要件；ならびに、業界動向、実施費用、試験あたりの費用などの業務要件を考慮するべきである。
【００４４】
本発明の様々な実施形態に存在する微生物汚染を検出するのに利用可能な別法のいくつかを表３に記載する。したがって、例えば、検卵の別法、そして本発明の一実施形態は、ウイルスの接種前／後における熱イメージングを含む。そのような実施形態では、インキュベートされている卵から放出される赤外線を赤外線カメラで捕捉する。補足されたイメージは、ソフトウェアを用いて、卵の温度測定値に変換する。このようなカメラは、０．０１℃以下の温度相違を捕捉することができる。代謝活性が高い発生中の胚は、無精卵または死亡している胚より熱の喪失が遅く、したがって、その結果、温度較差がより大きくなっている。例えば、ウイルス接種前／後の熱イメージングを検卵の別法として用いるには、卵をトレーごとに熱イメージングすることができる（例えば、卵のトレー（例えば、底が開いた隔室に置かれたトレー）の下に赤外線カメラは設置することができる）。そして、卵それぞれの底部（または、側部、頭頂部など）温度を測定するように、ソフトウェアを設定することができる。個々の卵それぞれの温度減衰速度を評価することができ、それによって、問題の卵における最大温度較差を示す時間の同定が可能となる。そのような熱イメージングによって、生存している胚と、無精卵および死亡卵との間にある温度較差を同定することができる。図１０および１１を参照。
【００４５】
本明細書に記載の他の実施形態では、本発明は、ウイルス収集の際の生物汚染試験の別法の１つ、すなわち、ＭＰＮすなわち最確数を用いる。これは、Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｍａｎｕａｌ Ｏｎｌｉｎｅ、２００１年１月、付属２、「Most Probable Number from Serial Dilutions.」、ＦＤＡ／ＣＦＳＡ−ＢＡＭに基づくものである。例えば、ＭＰＮ試験では、複製３つの９６ウェル試験を含むことができ、その試験では、１：１０の系列希釈（例えば、１：１０、１：１００、１：１Ｋ、１：１０Ｋ、１：１００Ｋ、および１：１０００Ｋ希釈）を、９６ウェルマイクロタイタープレートで、陰性対照と共に、３種類の異なる試料について、三重で検査することができる。ＴＳＢをすべてのウェルに、最初に希釈剤として添加することができ、そして微生物の増殖を補助する濃縮培地として添加することができる。プレートは、目視によって、または６００ｎｍで読み取ることできる。ＭＰＮ生物汚染試験は、汚染を検出するための膜濾過試験に比べてかなり有用である。膜濾過試験は、（３種類の試料に対して）１５枚のＴＳＡプレート、大きな試料容積、集約的な量の時間および労働を必要とし、自動化が困難な場合があり、試料は１：１０および１：１００希釈のみであるが、９６ウェルＭＰＧ試験は、（３種類の試料に対して）１枚の９６ウェルマイクロタイタープレート（対照も含む）、小さな試料容積、いくつかの簡単な使い捨て用品および試薬のみを必要とし、１：１０から１：１０００００までの希釈範囲があり、さらに、目視で読み取ることも、９６ウェルプレートリーダーで自動的に読み取ることもできる。７０の試料を、従来の生物汚染試験を用いて試験した結果と、９６ウェルプレートＭＰＮ試験を用いて試験した結果は、相互に完全に一致することが判明した。とりわけ、意図した目的に関しては、９６ウェルプレートＭＰＮは、同等の結果を、よりハイスループットで提供した。
【００４６】
ウイルス収集における伝統的な公定書ミコプラズマ試験の別法として、本発明は、一部の実施形態で、核酸増幅に基づいた、標準化され、汎用性のある迅速な市販キット（例えば、ＰＣＲ）の使用を含む。現行の公定書記載の方法は、（直接的および間接的に）すべての株の汚染（トリＭ．ｓｙｎｏｖｉａｅおよびＭ．ｇａｌｌｉｓｅｐｔｉｃｕｍ、ならびにヒトＭ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、すなわち、すべてのトリおよびヒトミコバクテリア株が含まれる）を検出する。代替となるＰＣＲ検出法には、研究者によって開発された、リアルタイムＰＣＲ用のプライマー／プローブセットが含まれるが、これらは、あるマイコプラズマパネルを特異的に検出し、標的遺伝子（例えば、１６ｓおよび／または２３ｓリボソームＲＮＡの属特異的および／または種特異的な配列）の配列相同性に基づいて、場合によっては、結核菌および非結核性マイコバクテリア（例えば、Ｍ．ａｂｓｃｅｓｓｕｓおよびＭ．ａｖｉｕｍ）など、４０を超える種を検出する。本明細書に記載の一部の実施形態は、結核菌および非結核性マイコバクテリアなどを迅速に検出する、標準化され、核酸増幅に基づいたキットを利用する。
【００４７】
グループ２
グループ２に該当する本発明の態様には、表１のステップ４からステップ６までに対応するものが含まれる。正しい再集合過程、および再集合体（すなわち、６：２ウイルス）のクローニングの後、そのような再集合ウイルス粒子を、孵化鶏卵中でさらに精製し、正しいクローンを量的に増大させて（再度、鶏卵中での増殖を介して）、マスターウイルス株（ＭＶＳ）またはマスターウイルス種子を生成させる。マスターウイルス株（ＭＶＳ）またはマスターウイルス種子は、次に、マスター作業ウイルス株（ＭＷＶＳ）または製造会社の作業ウイルス種子を生成させるためにさらに増殖させる。卵からウイルス粒子を精製する多くの態様、および、ウイルス粒子の量を増大させる目的で、さらに多くの卵に接種するための、そのような精製ウイルスの使用は、当業者に周知のものである。多数のそのよう技法は、ウイルス粒子の現行の生産に共通であり、少なくとも４０年間用いられている。例えば、Ｒｅｉｍｅｒら、「Influenza virus purification with the zonal ultracentrifuge」、Ｓｃｉｅｎｃｅ、１９６６年、第１５２巻、１３７９〜８１頁、参照。例えば、共通の精製プロトコールでは、例えば、ショ糖勾配（例えば、１０〜４０％ショ糖）中での超遠心分離などを含むことができる。また、本明細書に記述したように、例えば微生物汚染の防止など、他のグループに記載された他の操作なども、任意選択でグループ２の範疇に含まれる。
【００４８】
グループ３
グループ３という標題の下に分類される、本発明の態様は、表１のステップ７からステップ１１までが含まれる。これらのステップは、主として、孵化卵の調整（ウイルスに感染した卵のインキュベーションに関する特定の取り扱いおよび環境条件）と、卵の尿膜腔液からのインフルエンザウイルスの収集および清澄化とを行う。
【００４９】
例えば、本発明は、ワクチンで用いられる再集合ウイルスを含有する卵の調整、洗浄、検卵、およびインキュベーション；そのような卵の接種、密閉など；そのような卵の検卵；卵からのウイルス溶液（例えば、尿膜腔液）の収集；ならびにウイルス溶液の清澄化を含む。ここでも、グループ２のステップに適用できるいくつかの技法が、グループ３のステップにも等しく適用できることに留意するべきである（例えば、検卵など）。グループ３を含む本発明のいくつかの態様は、当業者に周知のものである。ウイルス産生における卵の検卵の様々な態様は、卵へのウイルスの接種、そのような卵の洗浄およびインキュベーションと共に、卵におけるウイルス／ワクチンの生産において周知の技法である。当然ながら、そのような周知の技法は、本発明の独特かつ革新的態様とともに用いられるものと理解されよう。
【００５０】
揺動
一部のタイプのインフルエンザ株（例えば、とりわけ、Ｖｉｃｔｏｒｉａ／５０４／２０００などのＢ型インフルエンザ株）を培養することの欠点の１つは、卵で増殖させた場合に、他の株ほど高い力価を生じないことである。例えば、第１の株（例えば、Ａ型インフルエンザ株）が１０８または１０９ｌｏｇの力価（すなわち、ミリリットルあたり１０８または１０９のウイルス粒子）を生み、第２の株（例えば、Ｂ型インフルエンザ株）がミリリットルあたり１０７のウイルス粒子しか生み出さない場合、第２の株は、例えば、より大量の卵で増殖させなければならず、さもなくば、第２の株が第２の生産などで増殖するまで、第１の株を保持しなければならない。
【００５１】
したがって、本発明の一態様は、ウイルス株のインキュベーションが行われている卵（すなわち、卵がウイルスで接種をされた後）を、揺動させるか、または穏やかに振動させることである。そのような揺動を実現するのに用いられる正確な機構は、限定されないことに留意するべきである。例えば、卵は、振盪プラットホームまたはロッキングプラットホームで揺動させてもよい（例えば、細菌培養フラスコのインキュベーションに使用されているように、卵のインキュベーターで使用されるようになど）。一部の実施形態では、１分間あたり約１サイクル以下から、毎分約２サイクル以上で卵を揺動させる。この文脈において、「サイクル」とは、動作の全範囲にわたる卵の移動を意味すると理解するべきである。さらに他の実施形態では、毎分約０．５サイクル以下から、毎分約５サイクル以上で卵を揺動させる。一部の実施形態では、卵を１分間あたり約１サイクルで揺動させる。グループ３のインキュベーションステップ（すなわち、接種の後）に揺動させることを加えた場合、Ｂ−Ｖｉｃｔｏｒｉａインフルエンザ株の力価が、揺動されなかった対照群の卵より０．４ｌｏｇ増大した。
【００５２】
濾過および加温
グループ３に分類される本発明のさらに別の態様は、無菌濾過（通常０．２μｍのフィルターを通す）中における、ウイルスの力価（ｐｏｔｅｎｃｙ）の減失に対する、ウイルス尿膜腔液（ＶＡＰ）の温度の影響に関与するものである。本発明の様々な実施形態では、ウイルス粒子を尿膜腔液から収集し、その後、この体液の加温と、その後の濾過とを含む過程を通して行う。例えば、表１のステップ１０および１１を参照。そのようなステップが望ましいのには、いくつかの理由がある。例えば、本明細書に指摘したように、ワクチン調製物中の尿膜腔液および破片の存在は、アレルギー反応を導くことがある。また、かなり重要なこととして、濾過によって、生物汚染（細菌）が溶液から除去される。生物汚染を含有するすべてのＶＨ（ウイルス収集）溶液を廃棄しなければならない。これは、弱毒生ウイルスワクチンの鼻腔内投与でもあてはまる。したがって、そのような生物汚染などの存在を除去および／または減少させるための弱毒生ウイルスの濾過および清澄化を可能にする本発明の態様は、かなり望ましいものである。
【００５３】
ここでは、一例として、寒冷適応（ｃａ）ウイルス株（例えば、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、Ｈ３Ｎ２型）を滅菌グレードのフィルターを通して、許容範囲の力価減失で濾過するのに必要なウイルス尿膜腔液（ＶＡＦ）の温度および加温時間の影響を用いる。許容できる状態でＡ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を濾過する条件、および同様の条件で濾過された、さらに５株の寒冷適応インフルエンザ株（すなわち、２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、２× Ｂ）の結果について論じる。
【００５４】
濾過過程全体を通したウイルス尿膜腔液の特徴付けを行うのに、３通りの独立したアッセイ（ＴＣＩＤ５０、ノイラミニダーゼ、および赤血球凝集素）を用いた。これらのデータによって、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７では、濾過過程に加温ステップ（例えば、濾過の前に、３１±３℃の温度に最大６０分間曝露する）を追加することによって、加温ステップ無しで行った滅菌グレードの濾過と比較して、力価の減失が許容できるレベル（０〜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）まで低減したことが実証された。他の実施形態では、任意選択で、加温温度が２８℃超または２８から３６℃で、少なくとも３０分間、あるいは、他の実施形態では、約６０から２４０分間である。加温過程は、実際、長時間継続することができるが、さらに長時間行った後には、そのような高い温度におけるウイルス安定性の減失による力価の減失が測定可能かつ有害なものとなることが理解されよう。追加した加温ステップは、試験した他の株では、試験した時間内の力価のさらなる減失に寄与しなかった。これは、加温ステップが、寒冷適応しているインフルエンザウイルス（ＣＡＩＶ）の滅菌グレードでの濾過において許容できる操作ステップであることを示す。
【００５５】
本明細書に記載の通り、現行のＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）製造プロセスは、孵化鶏卵を用いてマスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、およびウイルス収集物（ＶＨ）を生成するものである。表１のステップ６を参照。種子およびウイルス収集物は、生物汚染（通常、細菌汚染）を含有する可能性があり、その場合には、それによって、種子または原体ウイルス産物ロットがワクチン生産工程で拒絶されることになる。ウイルス含有尿膜腔液の濾過の使用を評価するための以前の研究を通して、この過程に濾過ステップを導入することによって生物汚染が低減できることが示された。しかし、以前の研究に基づくと、そのような濾過は、特定のウイルス株（例えば、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７）で問題を有する。そのような研究に基づいて、様々な関連供給ライン、分配ライン、および試料収集ラインを併せ持ち、プレフィルターおよび０．２ミリメートル滅菌グレードフィルターに連結された無菌プラスチック培地バッグを含む濾過装置の設計案が提案された（下記参照）。当然ながら、使用された特定の産物タイプ、サイズなどの特定の列挙または記載は、そうであると明確に述べられない限り、本発明を制限するものと見なされるべきではないことが理解されよう。
【００５６】
そのような研究から判るように、試験された寒冷適応（ｃａ）ウイルス株の大部分は、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ ＳａｒｔｏｃｌｅａｎＣＡプレフィルターを通して、それに続いて、滅菌グレードフィルターとしてＳａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２を通すことによって最小限の力価減失で濾過することができる。しかし、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を用いた他の濾過研究では、力価減失が０．７〜１．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの間であるという結果が得られた。さらに研究を行ったところ、この減失は、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２滅菌グレードフィルターを通すことによって生じることが明らかになった。ここでも、任意選択で、他のフィルターブランドおよび／またはフィルタータイプが、そのようなステップで使用され、特定のフィルター名／タイプの言及は、限定として解釈するべきではないことに留意するべきである。
【００５７】
以下に示す第１セットの実験の目的は、濾過中におけるウイルス力価の減失に対するＶＡＰ温度の影響を試験することであった。この研究の第２部は、濾過前におけるＶＡＦの適切な加温時間を決定するように設計されていた。加温条件を決定するモデル株として、寒冷適応（ｃａ）Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス株（Ｈ３Ｎ２型）を用いたが、これは、前述のように、この株で濾過中の力価の大きな減失が観測されていたためである。
【００５８】
この実施例の第３部では、いくつかの他の一価ウイルス株について、濾過によって引き起こされる力価の減失に対する、ウイルス尿膜腔液（ＶＡＦ）を暖めることの影響を評価した。５株のＣＡＩＶ株（２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、および２× Ｂ）をこれらの検査に用いた。すべての実験は、ショ糖リン酸グルタミン酸（ＳＰＧ）で安定化したＶＡＦ １．０〜３．０Ｌと、試験試料を取り出す前に、適切にスケーリングされたフィルター、すなわち、予測される最大ＶＨ過程規模の約１：３０から１：１０のフィルターを用いたＣＡＩＶ種子スケール（ＭＶＳおよびＭＷＶＳ）で行った。典型的な過程規模は、濾過装置あたり安定化ＶＨ約３３Ｌまでである。そのような容積は、通常、濾過装置用に選択された５０Ｌバッグを用いて良好に濾過され、標準的な１０インチのフィルターカプセルを用いて濾過できる容積にも、妥当な安全域を有する。しかし、開発／例示的な研究には、そのような容積は大きすぎることが多く、そのため、１／１０の規模（すなわち、約３Ｌ）の濾過を行った。
【００５９】
そのような温度／濾過ステップ用に、当技術分野で周知の方法に従って、かつ／または、表４に要約される寒冷適応（ｃａ）インフルエンザ株を用いた本発明（上記および下記参照）の他の態様を用いて、ウイルス伝播を行うことができる。
【００６０】
実験における全段階からの試料の力価を、組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）を手動アッセイで測定することによってアッセイした（ＴＣＩＤ５０測定の他の側面については下記参照）。ノイラミニダーゼ活性（ＮＡ）および赤血球凝集素活性（ＨＡ）も測定した。
【００６１】
力価（ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）、ノイラミニダーゼ（ＮＡ）活性、および赤血球凝集素（ＨＡ）活性の損失に対するＶＡＦ温度の影響を評価するため、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ ＳａｒｔｏｃｌｅａｎＣＡとＳａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターの組合せを通して一連の濾過を行った。
【００６２】
ウイルス収集中に、ＶＡＦを１Ｌ ＰＥＴＧボトルにプールした。必要な容積の非安定化ＶＡＦが収集され、プールされたときに、濾過を行った。この段階での非安定化ＶＡＦの温度（始動温度）は、１５±３℃であった。全加温時間は、ＶＡＦが３３±１℃の水浴中にあった時間として定義し、昇温時間（１５℃±３℃〜２８±３℃）および温熱保持時間（例えば、設定点において２８℃以上である時間）からなった。
【００６３】
第１部のＶＡＦ温度影響研究（下記参照）は、寒冷適応している（ｃａ）Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス株（Ｈ３Ｎ２型）で行った。実施例の第２部は、任意選択の温熱保持時間（「その温度にある時間」）の決定に焦点をしぼった。第３部では、事前に決定した温熱保持時間の影響を、他の５株（表５）で試験した。この実施例のすべての部で、１．０〜３．０Ｌのショ糖リン酸グルタミン酸（ＳＰＧ）で安定化されたＶＡＦ、通常のウイルス種子スケール、および予測されるｍＶＨ過程規模の約１：３０〜１：１０を、装置を通して濾過した。
【００６４】
収集後における現行の典型的な製造プロセスでは、さらに輸送するため、ＶＨの遠心、安定化、および冷凍を行う。これらの実施例では、非安定化プールから取り出したＶＡＦ試料を、現行の製造プロセスと同様に、遠心し、ＳＰＧで安定化し、これが、この実施例すべての部における濾過されたＶＡＦに対する対照として機能した。
【００６５】
第１部：濾過中におけるＡ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７ウイルス力価変化に対する温度の影響
力価の減失に対する温度の影響を測定するため、様々な温度における２セットの濾過実験を行った。各セットは、同じバッチの卵から収集したＶＡＦを用いて、同じ日に行った３つの平行実験からなった。これらの実験では、収集後、ＶＡＰをＳＰＧで安定化し、３つのプールに分離し、濾過の前に６０分間、５±３℃（冷蔵庫）、２０±３℃（卓上）、または３１±３℃（水浴）に曝露した。この間、ボトル中のＶＡＦは、１０分毎に反転によって混合した。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、ＶＡＰを遠心し、安定化させた。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００６６】
力価の減失に対するＶＡＦ温度の影響を測定するため、濾過の前に、ＶＡＦを６０分間、５±３℃、２０±３℃、または３１±３℃に曝露した。遠心および安定化された物質と、異なった温度処理受けた濾過後の物質との間での、力価の変化、ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素活性の相違を表５〜１０に要約する。それらから判るように、低温（５±３℃）および室温（２０±３℃）でのＶＡＦの濾過によって、０．７から１．０ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの力価減失がもたらされた（表５および８を参照）。しかし、ＶＡＰを３１±３℃に６０分間（３０分間の昇温時間＋設定点温度での３０分間の温暖保持時間）暖めた場合には、濾過の後では、（遠心および安定化されたＶＡＦと比較して）力価の減失がなかった。表５および８を参照。さらに、濾過後のノイラミニダーゼ活性レベルは、ＶＡＦを３１±３℃まで暖めた後に濾過を行った場合、低温および室温での濾過で観測されたレベルより高かった。表６および９を参照。昇温ステップの追加は、赤血球凝集素活性の損失も低減させた。表７および１０を参照。
【００６７】
第２部：Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７の、濾過における力価の減失が許容範囲となるのに必要な加温時間の決定
必要な加温時間を決定するために、水浴中で濾過の前に３１±３℃に暖められたＶＡＦを用いて、一連の実験を行った。対照実験では、ＳＰＧで安定化した後、直ちにＶＡＦの濾過を行った。すべての実験で、加温時間は、ＶＡＦが水浴中（すなわち、３１±３℃）にあった合計時間（昇温時間および温暖保持時間）として定義した。ボトルの中のＶＡＦは、１０分毎に反転によって混合した。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、現行の製造プロセスを代表して、ＶＡＦを遠心し、安定化させた。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００６８】
ｃａ Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を濾過するのに必要な、濾過前の加温時間を決定するため一連の実験が行った。その際、１セットの実験では、濾過の前にＶＡＦを３１±３℃に、３０、９０または１８０分間暖め、もう１セットの実験では、３０、６０、または９０分間暖めた。対照実験では、ＳＰＧで安定化した後、暖めずに、直ちにＶＡＦを濾過した。濾過されたＶＡＦと対照との間のウイルス力価、ノイラミニダーゼレベル、および赤血球凝集素レベルを表１１〜１６に要約する。
【００６９】
データは、ＶＡＦを３１±３℃に曝露することによって、濾過後のウイルス力価の減失が低減され、ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素の活性の部分的な回復を可能にしたことを実証する。表１１〜１３を参照。実験開始当初（収集後かつ加温前）の非安定化ＶＡＦの温度は１５±２℃であった。１〜１．５ＬのＶＡＦを３１±３℃に達するのに必要な昇温時間は約２０〜３０分間であった。したがって、ＶＡＦの全加温時間が３０分間である場合、３１±３℃でのＶＡＰ温暖保持時間が０〜１０分間となる。
【００７０】
濾過による力価の減失を最小にするのに必要な最小の加温時間を、第２のシリーズの実験で測定した。表１４〜１６（第１セット）および表１７〜１９（反復セット）を参照。濾過後の力価、ＨＡ、およびＮＡの減失を、全加温時間が０および３０分間の実験で観測した。全加温時間が６０および９０分（３１±３℃での温暖保持が３０〜４０分、および６０〜７０分）の実験では、濾過後のウイルス力価、ＨＡ、ＮＡレベルが対照（遠心および安定化されたＶＡＦ）試料と同程度であった。表１４〜１９を参照。
【００７１】
第３部：他株に対する加温の影響
Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７以外のインフルエンザウイルス株の濾過に対する昇温ステップ影響を評価するために、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７以外の５株、すなわち、２× Ｈ１Ｎ１、１× Ｈ３Ｎ２、および２× Ｂを用いて一連の実験を行った。各株の試験を２回行った。濾過の前に、ＶＡＦを３１±３℃で６０分間（３０分間の昇温時間＋この温度で３０分間）暖めた。温度処理の後に、それをＳａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２フィルターを通して濾過した。対照実験では、ＶＡＦを、室温でＳＰＧによって安定化した後、直ちに濾過した。異なった条件下での濾過におけるＴＣＩＤ５０の結果を相互に、そして対照と比較した。
【００７２】
追加して試験した５株の寒冷適応インフルエンザウイルス株では、３１±３℃（設定点温度での温暖保持時間は３０〜４０分間）に短時間曝露（全加温時間は６０分間）した場合に、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７およびＢ／Ｖｉｃｔｏｒｉａ／５０４／２０００の、温度処理なしの実験と比較して、濾過後の力価減失の低減に寄与し、他の株では力価に影響がなかった。これらの実験における力価（ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）、ノイラミニダーゼレベル、および赤血球凝集素レベルを、下記の表２０〜２５に要約する。
【００７３】
表から読み取ることができるように、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７では、安定化されたウイルス収集物を、Ｓａｒｔｏｃｌｅａｎ ＣＡプレフィルターおよびＳａｒｔｏｐｏｒｅ２の滅菌グレードフィルターを通す濾過の前に、３１±３℃、または任意選択で最大３６℃（ボトル中の１〜１．５ＬのＶＡＦでは、温暖保持時間が６０〜９０分間）にさえ暖めることを含む本発明の態様では、ウイルス力価の減少が許容できる範囲（０〜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌ）となった。対照実験では、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７の安定化されたウイルス収集物を加温せずに濾過した場合、力価の減失が最大１．０ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌであった。
【００７４】
そのような表からも判るように、試験した６株の寒冷適応インフルエンザウイルス株すべてで、３１±３℃（３１±３℃での温暖保持時間３０〜４０分間）に短時間曝露する（昇温時間および温暖保持時間６０分間）ことは、力価の減失を低減するか、さもなくば、濾過中における力価のさらなる減失に寄与しないものであった。すべての実験で、濾過後の力価の減失が、０．３ ｌｏｇ ＴＣＩＤ５０／ｍｌより高くなることはなかった。加温されて濾過されたＶＡＦのウイルス表面タンパク質（ノイラミニダーゼおよび赤血球凝集素）活性の損失が、加温されていないものと比較して低減したことは、ＴＣＩＤ５０アッセイによって示された、力価減失の低減データを支持する。
【００７５】
したがって、これらのデータは、ＣＡＩＶ（ＭＶＳ、ＭＷＶＳまたはＶＨ）を濾過するのに必要な６０分間（ＶＡＦを３１±３℃に暖める時間、および少なくとも３０分間の温暖保持（設定点温度での時間））の加温時間を含む、本発明の一部の実施形態では、力価の減失が許容できる範囲にある。このような加温による耐性は、とりわけ他の濾過の試みからみて、新規かつ予想外の結果である。上記参照。理解されるように、ここでも、加熱／濾過ステップを含む本発明の実施形態は、上記の実施例によって限定されるものではない。言い換えれば、任意選択で、例えば、他のフィルターおよびフィルタータイプなども、本発明から逸脱せずに使用される。
【００７６】
グループ４
本発明のグループ４の態様は、例えば、表１のステップ１２〜１５を含む。そのようなステップは、主としてウイルス含有溶液の安定化（例えば、成分の添加、緩衝液／ＮＡＦ比の変更などを介した）、および力価／無菌アッセイに関する。一部の実施形態では、生ウイルスを含む最終ウイルス溶液／ワクチンが、インフルエンザワクチン接種シーズン（例えば、北半球では、通常、ほぼ９月から３月まで）を通して、「フィールド中」での貯蔵（例えば、４℃で冷蔵されている際の販売および商業化）を可能にするのに十分な期間、液体形態、４℃で安定である。したがって、ウイルス／ワクチン組成物は、保存期間の間、それらの力価を保持するか、さもなくば力価の喪失速度が許容範囲であることが望ましい。例えば、０．３ｌｏｇの力価減失が許容でき、保存期間が９カ月であるならば、力価の０．０５ｌｏｇ／月の低減が許容できよう。さらに、ＦＦＡを使用することによって、許容できる減失の範囲がさらに大きくなるであろう。例えば、最大０．７５ｌｏｇまでの減失が許容される場合、０．０９ｌｏｇ／月以下の速度は、冷蔵庫温度（例えば、４℃）に継続的に保存されている物質の安定性を保持するのに十分であろう。他の実施形態では、そのような溶液／ワクチンが、液体形態で、約２℃〜約８℃で安定である。さらに他の実施形態では、溶液／ワクチンが室温で安定である。本明細書に記載の典型的な実施形態は、ＮＡＦを希釈することによって、免疫原性の低減を示さない（または、小さな低減を示す）（下記参照）。
【００７７】
ウイルス収集物の濃縮／ダイアフィルトレーション
本明細書に記載の一部の実施形態では、適切なカラムを用いて、任意選択で、ウイルス収集物を濃縮する。インフルエンザウイルス溶液は、ウイルスの力価／活性の目に見える減失を伴わずに濃縮することができる。以前の文献などが、濃縮によるウイルス活性の減失を示しているので、力価の減失のないこのような濃縮は、極めて驚くべき結果である。ウイルス粒子を増強して、他のタンパク質、ＲＮＡなどを除去するために、例えば、表１に例示するような、精製／生産工程中の多くの時点でウイルスを濃縮することができる。例えば、濃縮は、力価アッセイの前、または力価アッセイの後などでさえ行うことができるが、多くの実施形態において、グループ４に分類されるステップの中／間に行われる。ウイルス粒子の濃縮は、精製、ワクチン調製、および特性分析に有用である場合がある。例えば、「Methods and Techniques in Virology」、Ｐｉｅｒｒｅ ＰａｙｍｅｎｔおよびＭｉｃｈｅｌ Ｔｒｕｄｅｌ、Marcel Dekker社（１９９３）を参照。一部のＶＡＦ試料では、ウイルス量が少ないため、ウイルス粒子を直接分析するのに、分析超遠心法（ＡＵＣ）、ディスク遠心分離、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）、および粒子計数法などの一部の分析技法が利用できない。
【００７８】
卵ＮＡＦなどからのウイルスの濃縮は、以前には伝統的に、勾配精製遠心法で行った。例えば、「Concentration and Purification of Influenza Virus from Allantoic Fluid」、Ａｒｏｒａら、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第１４４巻、１８９〜１９２頁（１９８５）を参照。しかし、本明細書に記載の実施形態は、サイズ排除カラムを利用する。濃縮は、ウイルスの産生が、卵産生を介して、細胞培養生産（例えば、Ｖｅｒｏ細胞）を介して、プラスミドレスキュー生産などを介して行われるかに関係なく、用いることができる。また、濃縮ステップは、例えば、製品品質を確実にするために、多数の異なったウイルスおよび／またはウイルス株（例え、Ａ型インフルエンザ株およびＢ型インフルエンザ株の両方がそのような操作を受け入れる）、そして、１つの株の異なったロットでも行うことができる。さらに、サイズ排除カラムによる濃縮は、１つの収集の中、例えば、１つの卵の中などにおけるウイルス粒子の量の追跡用にしばしば用いることができる。すなわち、例えば、そのような溶液のＴＣＩＤ５０測定の代わりに、またはそれに加えてピーク面積（すなわち、カラムから溶出されたウイルスの面積）を用いることができる。そのような追跡は、卵で生成されたウイルスに対して特に有用である。さらに、濃縮および精製されたウイルス性物質は、任意選択で、その後の研究用に純粋なＨＡ、ＮＡ、および他のウイルス成分を生成するための出発物質にすることができる。さらに、ＳＥＣで精製されたウイルスは、ウイルス構造および宿主細胞との結合機構に関するより深い洞察を提供することができる。ほとんどのＶＡＦ（ウイルス／ウイルス尿膜腔液）物質の中では、ウイルス粒子がＵＶの検出限界未満であるため、ウイルス粒子の濃縮は、それらをさらに特徴づけるのにかなり有用である。
【００７９】
ウイルス収集物の濃縮を行う際に、不純物および／または、好ましくない緩衝液／体液を除去するのに、サイズ排除カラム、例えば、圧力下にある中空繊維フィルターを備えたＭｉｄＧｅｅまたはＱｕｉｘＳｔａｎｄ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）を用いることができる。したがって、濃縮されたウイルスは、特定の緩衝液／安定化剤により簡単に懸濁または保存される。下記参照。
【００８０】
ウイルス収集物試料の濃縮の例示を行うため、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａインフルエンザ収集物を濃縮して、クロスフロー濾過によってＶＡＦから分析した。当然のことであるが、ここでも、この節に記載の技法は、ウイルスの特定の株／タイプに限定されないことを改めて強調する。そのような濃縮によって、ウイルス粒子が濃縮され、大部分の不純物が除去され、そして、ウイルスの感染性が保持された。例示したように、ウイルスの感染性はＣＥＬＩＳＡ（ＴＣＩＤ５０）によって検査した。ＨＡアッセイによる赤血球凝集、ノイラミニダーゼ活性、ＳＥＣ分析、ＲＨＰＬＣによるＮＡＦ、およびＲＴＰＣＲによるＲＮＡ分析も行った。
【００８１】
以下の実施例におけるウイルスの濃縮は、Ａｍｅｒｓｈａｍ社製クロスフロー濾過ユニットＭｉｄＧｅｅを用いて行った。ＭｉｄＧｅｅは、２〜３時間の間に１００または２００ｍｌを１０ｍｌに濃縮することができる。同様に、ＱｕｉｘＳｔａｎｄは、４から６時間の間に、ウイルス粒子を２リットルから１００ｍｌに濃縮するのに用いることができる。ウイルスの濃縮は、ウイルスの粒子数を増加させるだけではなく、卵タンパク質、ＲＮＡ、および、尿酸などの小分子など、大部分の他の不純物を除去する。
【００８２】
以下の実施例で用いたウイルスは、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９であった。ＮＡＦは、寒冷適合インフルエンザウイルスを含んでいた。ニワトリ血液は、Ｃｏｌｏｒａｄｏ Ｓｅｒｕｍ Ｃｏｍｐａｎｙ社（Ｄｅｎｖｅｒ、ＣＯ）から入手した。濃縮に用いた装置は、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社（Ａ／Ｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）から入手したものであって、ぜん動ポンプ（Ｗａｔｓｏｎ Ｍａｒｌｏｗｅ社）を備えたＭｉｄＪｅｔシステムであった。濃縮に用いたカラムは、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社（Ａ／Ｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）から入手したものであって、名目上の分子量カットオフが７５０，０００であるＭｉｄＧｅｅ Ｈｏｏｐクロスフローフィルターであった。しかし、さらにここでも、装置の特定のモデル、製造業者などの使用または言及は、本発明に対する制限として理解するべきではないことを強調する必要がある。この実施例で洗浄に用いた緩衝液は１Ｘ−ＳＰＧであった。
【００８３】
ＳＥＣに用いた機器はＨｅｗｅｌｔｔ Ｐａｃｋａｒｄ社製ＨＰ１１００ＨＰＬＣシステムであり、カラムは、Ｗａｔｅｒｓ社から入手した、大きさが７．８×３００ｍｍのＵｌｔｒａｈｙｄｒｏｇｅｌ１０００であった。ＳＥＣで用いた緩衝液は、Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｓｏｌｖｅｎｔ社から入手したダルベッコリン酸緩衝生理食塩水であった。ＳＥＣでは、この方法は、流速０．５ｍｌ／分の定組成条件を含み、２１０および２８０ｎｍでモニターされた。ＲＨＰＬＣには、機器がWaters社から入手したもの、そして、カラムはＹＭＣ Ｃ４（逆相）、２．１×２５０ｍｍ、５μｍ、３００Ａであった。ＲＨＰＬＣの方法は：移動相−Ａ：０．１％ＴＦＡ水溶液、Ｂ：９５％ＣＡＮ ０．０９％ＴＦＡ；溶出条件−可変勾配、１３〜１００％、Ｂ；流速：０．２ｍｌ／分；カラム温度−４５℃；注射容積−５０μｌ；および検出−２１４ｎｍであった。
【００８４】
図１２に示すように、ステップ１、１５０ｍｌのＡ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９を低温室でＭｉｄＪｅｔ装置によって濃縮した。入り口と出口との間の圧力は、５〜１０ｐｓｉの間に維持した。クロスフィルターの中を２時間循環させた後に、１５０ｍｌの１Ｘ試料を１５ｍｌの１０Ｘ濃縮試料に濃縮した（ステップ２）。透過液は、別々に収集し、後の分析用に保存した。特性分析用に、４ｍｌの１０Ｘ試料を取り出した（ステップ３）。１０Ｘ試料の残った１１ｍｌを、１Ｘ−ＳＰＧで１１０ｍｌに希釈し、透過液として１ＸＳＰＧを除去することによって、さらに１１ｍｌまで濃縮した。保持液（ｒｅｔｅｎｔａｔｅ）からの不純物の大部分は、透過液中に保持される。ステップ４およびステップ５に示すように、このステップを、１Ｘ−ＳＰＧで５回反復した。洗浄透過液は、後の分析用に保存した。第１および第２洗浄液は黄色を示した。これは、卵タンパク質および他の小分子不純物の除去によるためだと考えられる。透過液の黄色は、３回目および４回目の洗浄の後に見えなくなった。５回目の洗浄の後、試料を１Ｘ−ＳＰＧで１１０ｍｌに希釈して、濃度を１Ｘに戻した。ステップ６では、１０ｍｌの１Ｘ−Ｗをアッセイ用に保存した。残っていた１００ｍｌの１Ｘ−Ｗを、さらに１０Ｘ−Ｗまで濃縮した（ステップ７）。この濃縮試料は、後の分析用に１ｍｌアリコートに分注した。
【００８５】
すべての試料をＳＥＣクロマトグラフィーで分析した。Ｕｌｔｒａｈｙｄｒｏｇｅｌ１００カラムは、ＤＰＢＳを溶剤とした分析用に用いた。データは、考察用に２２０、２６０、および２８０ｎｍで収集したが、比較は２２０ｎｍのピーク面積で行った。クロマトグラムピークは、ウイルス（保持時間が約１０．６分）に１グループ、不純物グループ−１（保持時間が１８から２１分）に１グループ、そして、不純物グループ−２（保持時間が２１から２７分）に１グループの３つの大きなグループに分類した。３種類のＮＡＦタンパク質、オボアルブミン、コンアルブミン、およびオボムコイドは、保持時間が１８から２１分程度で溶出する。図１３を参照。リゾチームは約２７．０分で溶出する。グループ−２の不純物は、尿酸および特徴付けされていない他の物質などの小分子からなると考えられている。すべての洗浄液を、ウイルスの分析と同じ条件で、分析用ＳＥＣクロマトグラムで検査した。ＣＥＬＩＳＡ、ＨＡアッセイ、ＮＡアッセイ、およびＲＴＰＣＲを、異なるグループで実行した。
【００８６】
ＳＥＣ分析およびＣＥＬＩＳＡ
未処理の試料である１Ｘは、ウイルスピークを、１１．１分間に、ピーク面積１，２２１で示した。図１４を参照。しかし、濃縮された１０Ｘ試料は、ピーク面積１１，１９２を示した。図１５を参照。そして、ピーク増分は、１Ｘと比較して約９．１６倍であった。表２６を参照する、１１，１９２／１２２１。これは、ピーク面積と注入ウイルス試料の量との間の線形性を示した以前の実験に基づいている。濃縮中、いかなる洗浄もなしで、一部の不純物が除去されたが、顕著には除去されなかった。表２６、図１６ａ〜ｂを参照。不純物グループ−１およびグループ−２は、１Ｘと１０Ｘ（表２６）との間でピークサイズの増大を示した。対応するＴＣＩＤ５０は、ｌｏｇ９．１から、ｌｏｇ１０．０に増大した（表２７）。このステップ中、感染力の９５．９％が保持されていた。このデータは、１Ｘ試料を１０Ｘ試料に濃縮する間、感染力が極めて良好に保持されたことを示す。
【００８７】
１Ｘ−ＳＰＧで５回目の洗浄を行った後の試料１Ｘ−Ｗのウイルスピーク面積は１００５であり、洗浄前の１２２１と比較して保持されている（表２６）。ピーク面積によると、１Ｘと１Ｘ−Ｗとの間での回収率は約８２％（１００５／１２２１）であった。１Ｘおよび１Ｘ−Ｗのクロマトグラム（図１７を参照）を比較すると、これは、不純物グループ１およびグループ−２が有意に減少したことを示している（表２６）。１Ｘ−Ｗは、わずかなＴＣＩＤ５０値の低減を示した（表２７、１Ｘ：９．１、１Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ８．９）。１Ｘと１Ｘ−Ｗとの間での感染力の回収は約９８．９９％であった（ｌｏｇ８．９／ｌｏｇ９．１）。洗浄ステップは、ＮＡＦタンパク質および他の成分を除去することによって、ウイルス物質の品質を改善した。
【００８８】
同様に、１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗを比較することによって、不純物グループ−１およびグループ−２が大幅に除去された（表２６、図１８）。５回の洗浄を通して行うことによって、ウイルスピーク面積が１０Ｘ：１１，１９２であったのが、１０Ｘ−Ｗ：１０，２８２にまで減少した（表２６、ピーク面積によると９１．８６％）。ＴＣＩＤ５０は、ｌｏｇ１０．０（１０Ｘ）からｌｏｇ９．９（１０Ｘ−Ｗ）に変わって、回収率は９９．５６％であった（表２７）。
【００８９】
１Ｘ−Ｗと１０Ｘ−Ｗのクロマトグラムを比較すると、ピーク面積が１０倍に増大していた。表２６を参照、１Ｘ−Ｗ：ピーク面積：１００５、そして１０Ｘ−Ｗ：１０，２８２。ＴＣＩＤ５０値も１ｌｏｇ増大した（表２７、１Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ８．９、そして１０Ｘ−Ｗ：ｌｏｇ９．９）。１０Ｘ−Ｗは１Ｘ−Ｗから１ステップで濃縮されたものなので、活性にも、ピーク面積にも減失がなかった（１０Ｘ−Ｗ：ピーク面積１０２８２、そして１Ｘ−Ｗピーク面積１００５）。
【００９０】
透過液は、１０．４分にピーク面積２５のウイルスピークを示した。これはごくわずかな量のウイルス粒子の減失によるもの、または、１Ｘの試料中のウイルスと共に溶出されるなんらかの他のタンパク質によるものかもしれない。不純物の大部分は、グループ−１およびグループ−２で溶出していた。表２６を参照。ＣＥＬＩＳＡ値は、感染力が検出限界未満であったことを示した。これは、濃縮操作法中に膜を通って溶出されるウイルス粒子が多くないことを示す。
【００９１】
５回の洗浄によって、グループ−１およびグループ−２の不純物の大部分が除去されることで、ウイルスの品質が改善された。これを、表２６および図１９に例示する。グループ−１およびグループ−２の不純物は、２回目の洗浄の後には相当量除去されていた。５回目の洗浄の後には、曲線がプラトーに達した。５回目の洗浄の後でさえ、１Ｘ−Ｗおよび１０Ｘ−Ｗの試料は、不純物グループ−１およびグループ−２をごく少量示した。図２０を参照。１９．２０８分のピークのアイデンティティは、１０Ｘ−Ｗ試料から単離することによって、オボアルブミンであると確認された。ＳＤＳ−ＰＡＧＥもこの結果を確認した。
【００９２】
ＨＡアッセイ
試料１Ｘおよび１Ｘ−Ｗは、ＨＡＵ１０２４を示した。図２１を参照。濃縮されているが洗浄されていない１０Ｘは、ＨＡＵ８１９２を示した。しかし、１０Ｘ−ＷはＨＡＵ２および４で偽陰性を示した。これは、ニワトリＲＢＣと比較して、ウイルスが大量であるためかもしれない。多量のノイラミニダーゼは、赤血球凝集過程を逆行させる。「Virus cultivation, Detection, and Genetics」、Ｓ．Ｊ．Ｆｌｉｎｔ、Ｌ．Ｗ．Ｅｎｑｕｉｓｔ、Ｒ．Ｍ．Ｋｒｕｇ、Ｖ．Ｒ．ＲａｃａｎｉｅｌｌｏおよびＡ．Ｍ．，Ｓｋａｌｋｓ、「Principles of Virology」、ＡＳＭ Ｐｒｅｓｓ社、Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ、３４頁（２０００）を参照。透過液中にＨＡＵが存在しなかったことは、ステップ１で溶出されるウイルスが多くないことを示す。図１２を参照。
【００９３】
ＮＡアッセイ
ノイラミニダーゼアッセイは、希釈されて１Ｘに戻された１０Ｘが、１Ｘと比較して、ある程度の活性の低下を示すことを例示した。図２２を参照。これは、遊離ＮＡタンパク質がＶＡＦ物質から減失することによると考えられた。これは透過液中にある少量のＮＡによって支持された。試料１Ｘ−Ｗ、および希釈されて１Ｘ−Ｗに戻された１０Ｘ−Ｗは、同じレベルの活性を保持した。これは、試料１０Ｘ−Ｗが、１Ｘ−Ｗから直接濃縮されたものだからである。すべての洗浄液の活性が検出レベル未満であった。
【００９４】
ＲＨＰＬＣ
卵タンパク質の分析は、以前にＲＨＰＬＣによって最適化されている。したがって、この実施例における存在する物質すべてを、同一条件下、例えば、０．１％ＴＦＡ／アセトニトリル勾配を有し、２１４ｎｍでモニターされるＣ４カラムで分析した。オボムコイド、リゾチーム、コンアルブミン、およびオボアルブミンの溶出パターンを図２３に示す。いかなる洗浄も行われる前の１０Ｘ試料は、すべての卵タンパク質を示した。これは、対照試料の保持時間と一致した。１０Ｘは、Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３と標識された未同定のウイルスタンパク質ピークも示した。完全に洗浄された試料である１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗは、ウイルスタンパク質Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３を保持していた。１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗ試料は、Ｕ１、Ｕ２、およびＵ３タンパク質を同量、含有していた。これらのタンパク質の比率が同じであったため、これらのタンパク質はアセトニトリルに曝露されている間にウイルス粒子から生成されるものかもしれない。しかし、オボムコイド、リゾチーム、およびコンアルブミンは、１Ｘ−ＳＰＧで５回洗浄することによって、１０Ｘから完全に除去された。顕著にも、これらとは対照的に、最も明白なタンパク質ピークがオボアルブミンであり、オボアルブミンは、１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗ試料でも、なおこれらと共に溶出する。１０Ｘ−Ｗおよび１Ｘ−Ｗは、６回および５回の洗浄を経ているが、それでもなお、オボアルブミンはウイルスに結合しているのである。これは、ＨＡタンパク質とオボアルブミンとの間の強固な相互作用によるものかもしれない。このデータも、棒グラフの形態で、図２４に提示する。
【００９５】
透過液およびすべての洗浄液をＲＨＰＬＣで検査した。図２５を参照。透過液は、すべてのＮＡＦタンパク質と、他の未同定のピークとを含有する。オボムコイドは２回の洗浄によって（図２６を参照）；リゾチームも２回の洗浄によって（図２７を参照）；コンアルブミンも２回の洗浄によって（図２８を参照）除去され；オボアルブミンは、徐々に枯渇していき、６回目の洗浄の後でさえ約５％が残っていた。図２９を参照。
【００９６】
Ａｇｉｌｅｎｔバイオアナライザー
同時に、図３０に示すように、Ａｇｉｌｅｎｔバイオアナライザー（Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ）によってオボアルブミンの測定を行った。濃縮を行っただけで、洗浄ステップが全くなくても、１０Ｘまでに、１Ｘから相当量のオボアルブミンが除去された。大部分のオボアルブミンが、第１の透過液に保持されていた。ＲＨＰＬＣは、すべての洗浄液でオボアルブミンの存在を示したが、バイオアナライザー分析では、それは検出限界未満に達していた。１０Ｘ−Ｗ試料を１０倍に希釈して、１Ｘ−Ｗ試料に近い濃度に達するようにしたところ、それは少量のオボアルブミンを示した。このデータに基づいて、卵タンパク質の９５％が、濃縮ステップおよび洗浄ステップによって除去されたことになる。
【００９７】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウエスタンブロット
１Ｘ（レーン２）と比較すると、１０Ｘ（レーン９）は、強度がより高い銀染色バンドを多数含有している。図３１を参照。１０Ｘと比較して、１０Ｘ−Ｗ（レーン１０）は、より少ない数のバンドを示した。これは、ＮＡＦタンパク質および他の不純物が除去されていたためであった。同様に、１Ｘ−Ｗ（レーン８）も、１Ｘよりきれいに見える。試料１Ｘ、１Ｘまで希釈された１０Ｘ（第３レーン）、および１Ｘ−Ｗまで希釈された１０ＸＷ（第４レーン）は、同量のウイルスを含有するが、不純物の除去において異なった程度の改善を示す。明らかに、１Ｘ−Ｗまで希釈された１０Ｘ−Ｗが、より明確なウイルスタンパク質バンドを示している。しかし、この試料は、依然としてオボアルブミンバンドを含有していた。これを、レーン６のＮＡＦタンパク質と比較する。１０Ｘ−Ｗ試料を分析用ＳＥＣカラムでさらに精製し、その画分を収集した。図３２を参照。１９．１分に集められた画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥで検査したところ、この画分は主としてオボアルブミンタンパク質（レーン５）を含有している。これは、抗ＮＡＦに対するウエスタンブロットで照らし出された。これはオボアルブミンが６回の洗浄の後でさえウイルスに強固に結合することを示す追加証拠である。抗ＮＡＦゲルのストリッピングを行って、そして、ニワトリ抗Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａでプロービングした。ウイルスタンパク質である、ＨＡ０、およびＨＡ２またはＭタンパク質を示す明確なバンドが観測された。図３１を参照。
【００９８】
ＲＴＰＣＲ
ＲＴＰＣＲは、１Ｘと１０Ｘとの間で、ＲＮＡがほぼ１ｌｏｇ高いことを示した。図３３を参照。同様に、１Ｘ−Ｗと１０Ｘ−Ｗとの間で、ウイルスＲＮＡに約１０倍の増大があった。これは、ウイルスの大部分が濃縮ステップ中で保持されたことを示した。透過液は、いかなる検出可能なウイルスＲＮＡも有しないが、１Ｘ−ＳＰＧ洗浄液は、ごく少量のＲＮＡを示した。これは、循環中に少量のウイルスの剪断が行われたことによるか、または、ウイルスＲＮＡの一部が濾液に結合して、後になって洗浄サイクル中にゆっくりと放出されたことによるかもしれない。
【００９９】
要約すると、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の濃縮は、クロスフロー濾過装置を用いることによって行った。ウイルス粒子の感染力は、この操作法中保持され、これはＣＥＬＩＳＡアッセイによって確認された。１Ｘ−ＳＰＧでの濃縮物質の洗浄は、他の不純物を除去することによって、ウイルスの品質は改善した。５回目の洗浄の後でさえ、少量のオボアルブミンが強固にウイルスに結合していた。これは、オボアルブミンと、ＨＡまたはＮＡタンパク質との間の強固な相互作用によるものかもしれない。このタンパク質−タンパク質の考えは、ＲＨＰＬＣ、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、およびウエスタンブロットによって支持されている。未処理の試料と、濃縮試料との間でＲＮＡ量が増大していることは、この操作法によってウイルスの大部分が回収されていることを示す。
【０１００】
細胞培養からのウイルス試料、例えばＶｅｒｏ細胞などの細胞で増殖されたインフルエンザ試料の使用にも、同様の技法が適用できる。そのことを例示するため、３株のウイルス、すなわち、そのまま使用されたＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ（Ａ／Ｈ１Ｎ１）；２Ｌから１００ｍｌまで、すなわち２０Ｘ濃縮されたＡ／Ｐａｎａｍａ（Ａ／Ｈ３Ｎ２）；および２Ｌから１０ｍｌまで、すなわち２００Ｘ濃縮されたＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇを、Ｖｅｒｏ細胞培養で増殖させた。Ｖｅｒｏ細胞からのウイルスの収率は通常低いため、この節の実施形態を、任意選択で、ウイルス試料を濃縮するのに用いることができるのが理解されよう。上記の例示と同様に、Ａｍｅｒｓｈａｍ社のＭｉｄＧｅｅおよびＱｕｉｘＳｔａｎｄ機器をウイルス濃縮に用いた。
【０１０１】
図３４〜３５は、ＳＥＣ（図３４）によるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ細胞培養伝播のモニタリングと、Ａ／ＢｅｉｊｉｎｇＶｅｒｏ細胞培養の収集（図３５）とを示す。これらから明らかであるように、ＳＥＣは、ウイルス伝播を短時間にモニタリングするための効率的な技法である。そのようなモニタリングに必要な量も、通常少量である（例えば、１００μｌ）。図３６は、Ａ／Ｐａｎａｍａ細胞培養試料の２リットル試料の濃縮を例示する。２リットルのウイルス収集物を、ＱｕｉｘＳｔａｎｄによって１００ｍｌにまで濃縮した。上記参照。１Ｘ混合物のＴＣＩＤ５０は検出不可能であったが、２０Ｘ混合物のＴＣＩＤ５０は４．４であった。２０Ｘ対１Ｘのピーク面積比があった。Ｐａｎａｍａ細胞培養試料の濃縮は、クロスフロー濾過の利点、例えば、ウイルス粒子を効率的に増強できること、溶液から低分子量不純物を除去できること、および、溶液をさらに「クリーンアップ」するのにダイアフィルトレーションを行うことができることなどを例示する。図３７は、Ｖｅｒｏ細胞で増殖しているＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇの培養物の２リットルから１０ｍｌまでの濃縮を示す。１Ｘでは、ｌｏｇ１０ ＴＣＥＤ５０／ｍｌが４．７であったが、１８．８Ｘでは、それが５．８（理論上はそれが５．９５）で、２００Ｘでは、６．９５であった（理論上は、それが７．００）。
【０１０２】
上記の図から、ＳＥＣが、細胞培養試料で増殖しているウイルスをモニターするのに有用な技法であること；ウイルス試料を濃縮した後には、力価が非常に低いウイルスもアッセイできること；そして、濃縮の後には、力価が低いウイルスもアッセイできることを読み取ることができる。
【０１０３】
安定化剤／緩衝液
本発明はウイルス溶液の組成物、およびこれを生成する方法を含む。そのような組成物は、任意選択で、関心あるウイルスと、本明細書に詳細に記載する、例えば、ショ糖、アルギニン、ゼラチン、ＥＤＴＡなどの組合せとを含むＮＡＦ（通常未分画のＮＡＦ）の様々な希釈を含む。後述するように、本明細書に記載の様々な組成物は、１０％から６０％までのＮＡＦを含む。ＮＡＦは、ヌクレアーゼリゾチームなどの様々な酵素を含有する場合があり、それらによって、ウイルス組成物の安定性が有害な影響を受けることがある。そのような方法および組成物は、所望の温度（例えば、通常、４℃、５℃、８℃、約２℃〜約８℃、または２℃超など）で、選択された期間（通常、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１２カ月、少なくとも１５カ月、少なくとも１８カ月、少なくとも２４カ月など）にわたって安定である（すなわち、容認できない力価の減失を示さない）ことが好ましい。好ましい実施形態は、所望の保存期間の間、力価の減少を全く示さない。他の実施形態は、１０％未満の低減、５％未満、４％未満、３％未満、２％未満、または１％未満の低減を示す。本明細書に記載のウイルス組成物の力価は、ＦＦＵすなわち蛍光焦点単位（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｆｏｃｕｓ ｕｎｉｔ）（下記のＦＦＡアッセイの記述を参照）で測定した。標的ＦＦＵ値は、通常、時間ゼロにおけるウイルス濃度（例えば、ＮＡＦの希釈などによる）に基づいて設定する。したがって、好ましい実施形態は、開始値からの減少をほとんど示さないか、または全く示さない。本明細書に記載の様々な組成物では、ウイルス溶液がショ糖約５％〜約１０％、アルギニン約１％〜約４％、およびゼラチン約１％〜約４％を含む。一部の好ましい実施形態は、ショ糖約７〜１０％、アルギニン約２％、およびゼラチン約２％を含む。一部の実施形態では、ウイルス製剤を所望の温度で貯蔵した後に、安定性をＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）塗布器／アキュスプレイ装置または他の同様の装置で測定する。
【０１０４】
一部の実施形態では、本発明は、ゼラチンまたはゼラチン関連および／もしくは由来の生成物（例えば、ゼラチン加水分解物）と併用して、あるいはその代わりに、例えば、アルギニン（ｐＨが約７．０から約７．２までの）の安定化剤を含む組成物を含む。表１のステップ１２および１５を参照。しかし、現行の規制における、動物、およびゼラチン、コラーゲンなどの動物由来の生成物からの思いがけない汚染の可能性に関する危惧（例えば、プリオン、マイコプラズマ、または宿主由来のウイルスなどの問題による）、また、動物由来の生成物が有するアレルゲン性の可能性に関する危惧から、非動物ベースの安定化剤が必要となっている。アルギニンの単独使用、あるいは金属イオンキレート剤（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）および／もしくはその塩）または他のアミノ酸（例えば、ヒスチジンおよび／もしくはその塩）などの追加の賦形剤との併用は、寒冷適応インフルエンザウイルス調製物を、非動物由来の賦形剤を用いて安定化する可能性を提供する。
【０１０５】
様々な実施形態で、アルギニンは、任意選択で、無機酸との塩または有機酸との塩のいずれかを含む。当然ながら、そのような塩は、ワクチン成分として用いられるので、通常、薬学的に許容される塩を含む。典型的な望ましい塩は、例えば、塩酸塩、クエン酸塩、および硫酸塩を含む。用いられるそのような安定剤の量は、特別の特定範囲に限定されないが、用いられる典型的な量は、ウイルス溶液１ｍＬあたりの約５ｍｇ〜約６０ｍｇまでの範囲にある。用いられた量は、好ましくは、ウイルス溶液１ｍＬあたり約１０ｍｇ〜約５０ｍｇまで、より好ましくは、約１０ｍｇ〜約２５ｍｇまででありうる。他の実施形態では、用いられる量が約１％から、約１．５％から、約２％から、約３％から、または約４％から約５％までの範囲にあるウイルス溶液のアルギニン溶液でありうる。用いられる量は、本発明の様々な実施形態で異なることがある。本発明のさらに他の実施形態では、ウイルス溶液／ワクチン溶液が、任意選択でリン酸カリウムを含む。ある実施形態では、溶液が約１１ｍＭのリン酸カリウムを含む。他の実施形態では、溶液が約１０ｍＭから約１２ｍＭのリン酸カリウムを含む。製剤組成物は、任意選択で、大量の卵の尿膜腔液成分（例えば、タンパク質および代謝産物）、および／または緩衝希釈剤を含有することができる。さらに、許容されるワクチン組成物は、例えば、濃度が例えば５から２００ミリモルまでの、リン酸の一塩基および二塩基ナトリウム塩もしくはカリウム塩の混合物、または、濃度が例えば２５から１００ミリモルまでのヒスチジンおよび／もしくはその塩など、緩衝塩を含有することもできる。好ましい実施形態では、ショ糖が約１００ミリモルから３５０ミリモルまでの濃度で存在する。
【０１０６】
多くのウイルス溶液／ワクチン溶液において、任意選択で、ＳＰＧ（ショ糖、リン酸カリウム、およびグルタミン酸一ナトリウム）基礎液が用いられる。しかし、本発明の一部の実施形態では、ＭＳＧがウイルス／ワクチン溶液の一部ではない。さらに他の実施形態では、ＭＳＧのレベルが低減されている。本明細書に記載の実施形態で使用可能なショ糖の量は、広範囲にわたって可変的である。典型的な実施形態では、約０．２Ｍのショ糖（７％ ｗ／ｖ）が利用されるが、約２０％までのショ糖を含む組成物も、ウイルス活性／力価に有害影響を示さないことがある。組成物の様々な実施形態における界面活性剤は、濃度がおおよそ０．０１から０．１％（ｗ／ｖ％）までの範囲にある例えば、ポロキサマー１８８（ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロック共重合体、例えば、プルロニック（登録商標）Ｆ６８）およびＴｗｅｅｎ２０（ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート）を含むことができる。一部の実施形態では、ポロキサマー、ゼラチン加水分解物、およびアルギニンの組合せが、これらの成分の１つのみを含有するいかなる溶液よりも優れており、各溶液は、次に、これらの添加成分のいずれも含有しない溶液よりは安定である。
【０１０７】
さらに他の実施形態では、グループ４（例えば、表１のステップ１５）のステップが、ウイルスがその中に懸濁されている正常な尿膜腔液（ＮＡＦ）のすべてまたは一部を、ショ糖、リン酸カリウム、およびグルタミン酸一ナトリウム（ＳＰＧ）の緩衝液、または他の単純な溶液、例えば、ＭＳＧを減少させたものなどで置換することを含む。一部またはすべてのＮＡＦ希釈液の代わりにＳＰＧを使用することによって、溶液中のウイルスの安定性のより増大が得られる。そのような安定性は、本発明の実施形態の新規かつ予想外の恩恵である。上述した製剤特性の一部またはすべてを具体化する代表的な製剤を調製して、その構成成分である寒冷適応ウイルスの安定性を評価した。代表的製剤の組成を表２８に示す。５℃における製剤の安定性を表２９に示す。
【０１０８】
本発明の様々な製剤を、それらの安定性について、様々な月および温度にわたって試験した。例えば、表３０は、１２の異なる製剤を例示する。製剤１０および１１は、乾燥ウイルス調製物用に使用された製剤に基づいた。そのような表にある製剤は、例えば、ショ糖およびゼラチンなど、ある範囲の様々な成分を網羅したものである。表３１〜３４は、４つの異なったウイルス株を含むそのような調製物の安定性を、６カ月（各々２回の試料採取点）以上にわたって示すものである。図３８は、Ｂ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ株を用いた、４つの例示的製剤の結果をグラフで表す。表３５は、追加の製剤の組成を示す。表３５における組成物は、リゾチームなど、ＮＡＦに存在する有害な成分の潜在的な阻害を補助するために、基本的組成（すなわち、通常、１０／２／２は、ショ糖約１０％、アルギニン約２％、およびゼラチン約２％を意味する）に様々な化合物を追加して、試験する。表３５の製剤の安定性に関する結果は、表３６〜３９ならびに図３９および４０に示されている。表４０および４１、ならびに図４１ａ〜ｃでは、製剤中における異なった濃度のシトレートに注目している（ここでは、基礎組成が、ショ糖約１０％、ゼラチン約１％、およびアルギニン約２％である）。シトレートを含む製剤は、約７〜８カ月の貯蔵で沈殿を示した。表４２および４３、ならびに、図４２ａ〜ｃも、同様の分析を示すが、ＥＤＴＡの濃度が異なっている。上記実施例からの例示的製剤の試験をさらに行った。それらを表４４および４５ａ〜ｄに示す。様々な濃度のショ糖、ゼラチン、アルギニン、およびＥＤＴＡなどを含む追加の製剤を、表４６から４８に示す。
【０１０９】
本明細書に記載のいくつかの一価製剤の安定性を例示するため、６０％の尿膜腔液を含む組成物の安定性を試験した。試料を５℃で保存して、ＦＦＡ分析で検査した。最初の２カ月は隔週で試料採取を行い、その後、毎月、９ヶ月間試料採取を行った。ＡＦの濃度を６０％とすることによって、力価が低い株でさえ、何年にもわたって必要な力価を有するＶＨを高い確率で生成することが可能となるだろう。未精製のＶＨを使用した一部の製剤は、全株試験で十分な安定性を示し、５℃、７カ月で０．５ｌｏｇの減失という評価基準を、ほとんど一貫して満たした。安定性を試験した株の中では、インフルエンザ株Ｂ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ／３３０／０１が、最も多くの問題を有していたように見えた。表３０を参照のこと。この表は、ショ糖、アルギニン、ゼラチン、および１３の異なった製剤用の他の成分の組成をパーセントで示す。図４３は、そのような製剤中の４つのウイルス株の、９ヶ月後の安定性を例示する。未精製のウイルス組成物製剤の例示的製剤は、例えば、ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、デキストラン１％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ＰＶＰ ０．５％；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、ＥＤＴＡ ２．５ｍＭ；ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、クエン酸緩衝液；および、ＶＨ、ショ糖１０％、アルギニン２％、ゼラチン２％、ヒスチジン緩衝液を含むものでありうる。
【０１１０】
ウイルス／ワクチン溶液を精製する（例えば、安定化などのために）他の方法には、溶液に安定性を与えるために、（安定化剤の添加と伴に）分画化を介してすべてのＮＡＦの排除する技法が含まれる。しかし、本発明の様々な実施形態には、例えば、ウイルス／ワクチンがその中に存在するＮＡＦの希釈を行うことが含まれる。例えば、本明細書に記載の様々な実施形態では、ＮＡＦの濃度が、任意選択で、溶液の約１０％〜約６０％を含む。他の実施形態では、ＮＡＦが、任意選択で、溶液の約２０％〜約５０％、または約３０％〜約４０％を含みうる。そのようにＮＡＦ濃度を希釈することによって、ウイルス／ワクチン溶液の安定性を、液体形態で、とりわけ所望の温度（例えば、４℃、約２℃〜約８℃など）でより高めることが可能となる。さらに、本発明の一部の実施形態では、アルギニンの使用と併せて、ＮＡＦ濃度の低減を含む（上記参照）。本発明の様々な製剤の安定性を、ＮＡＦを含まない精製製剤、または、ＮＡＦを減少させた（ただし、依然としてＮＡＦ精製の）製剤であるウイルス組成物と比較した。表４９は、本発明のいくつかの組成物の製剤、および様々な方法でＶＨがＮＡＦから精製されているいくつかの製剤を例示する。表４９に示す基礎製剤も、通常、アルギニン約２％、ゼラチン約２％、ＰＶＰ約１％、デキストラン約１％、ＥＤＴＡ 約２．７ｍＭ、およびヒスチジン約１００ｍＭを含むことが理解されよう。表４９中の数字は、図４４〜４６に示した製剤に対応している。
【０１１１】
本発明の希釈ＮＡＦ実施形態を、代替的な安定化手法と比較する。そのような代替的手法では、例えばそれらの最終製剤に含まれるＮＡＦが、最終的には１０〜２５％の分画されたＮＡＦとなり、ときには、５％以下の分画されたＮＡＦとなることもある。しかし、当業者ならば、現行の一部の実施形態に存在するＮＡＦが、そのような分画されたＮＡＦを含まず、その代わりに未分画のＮＡＦからなることを理解するだろう。本発明の製剤を、安定性の点について精製されたＮＡＦ（例えば、分画されたＮＡＦなど）から調製された他の現行のウイルス溶液と比較した。この比較での目標は、２℃〜８℃の間、例えば４℃で保存した際の力価の減失を１２カ月で１．０ｌｏｇ以下、または、力価の減失を０．０８０ｌｏｇ／月以下にすることであった。本発明の製剤と比較した他の現行のウイルス製剤は、分留、ダイアフィルトレーションなどによって精製されていた。異なった製剤を、３つの異なったインフルエンザ株、Ｈ１Ｎ１株（Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９またはＡ／ＮＣ）、Ｈ３Ｎ２株（Ａ／Ｐａｎａｍａ／２００７／９９、またはＡ／ＰＡＮ、またはＡ／ＰＡ）、およびＢ株（Ｂ／ＨｏｎｇＫｏｎｇ／３３０／０１またはＢ／ＨＫ）で試験し、アキュスプレイ装置（すなわち、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）用送達装置）に充填した。可能性の高い製造プロセスを模擬するため、初期ステップとして、試料を−２５℃で少なくとも６日間冷凍した。
【０１１２】
最初の比較では、ＮＡＦ精製された寒冷適応三価製剤の安定性を、本発明の非精製ＮＡＦ製剤と比較した。これらの製剤は、ショ糖７％、ゼラチン１％、アルギニン１％（これらは、三価製剤との比較における標準物質である）、および、本発明の製剤用には、ＡＦ（尿膜腔液）６０％を含んでいた。本発明の製剤は、６カ月後に、Ａ／ＮＣが−０．０３５±０．０１６、Ａ／Ｐａｎが−０．０７９±０．０３５、そしてＢ／ＨＫが−０．１５１±０．０１８を示した。精製組成物の測定値は、Ａ／ＮＣが−０．０２０±０．０２７、Ａ／Ｐａｎが−０．０１１±０．０２０、そして、Ｂ／ＨＫが−０．１３８±０．０２２であった。上記での単位は、ｌｏｇＦＦＵ／月である。表５０を参照。表５１は、本発明の製剤が１０／２／２組成（上記参照）を用いた際の、精製製剤と、本発明の製剤との間の比較を示す。観察される初期における力価の大きな減失は、凍結融解および／または混合損失の結果と考えられる。表５２も、同様の比較を示すが、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）製剤中にヒスチジンを用いており、その結果、より良好な安定性が得られて、初期の力価減失も観測されなかった。
【０１１３】
図４４は、上で観測された初期の力価減失（凍結および／または混合損失）が、もっぱらリン酸緩衝製剤に関連したものであることを図示する。ヒスチジン緩衝液は、安定性に良い影響を与え、いかなる初期力価減失も観測されなかった。図４４に示す製剤は、表４９に記載のものである。図４５は、６カ月後における、表４９の製剤の安定性勾配の「全体」像を図示する。これから判るように、ヒスチジン緩衝の１０／２／２製剤が、安定性および目標達成における最良の組合せを示した。上記参照。図４６は、同様のデータの異なった視点（すなわち、月ではなく週）を与える。図４７は、ゼラチン（Ｌ１０６）またはＰＶＰ／ＥＤＴＡ（Ｌ１０４）のいずれかを含む１０／２／２＋ヒスチジン製剤の安定性を例示する結果を与えた２次研究を図示する。図から見て取ることができるように、ＰＶＰ／ＥＤＴＡでゼラチンを置換した場合も、ゼラチンを含めた場合とほぼ同じくらい効率的に安定性が得られた。図４８は、本発明のヒスチジンベース１０／２／２製剤の最適ｐＨを検査する。これから判るように、ｐＨ７．０が好ましい実施形態を構成する。ｐＨが約６．８〜約７．２の範囲にある、ヒスチジン１００ｍＭの１０／２／２製剤も本発明の実施形態に含まれる。図４９は、本発明の実施形態における、ショ糖濃度の好ましい実施形態の検査を示す。一部の好ましい実施形態は、ショ糖約１０％を含み、一方、他では約７％含む。図４９の基本製剤は、上記の１０／２／２を含み、これにショ糖ヒスチジンが添加されている。本明細書に例示した様々な実施形態で、一部の実施形態は、ヒスチジンを緩衝添加物として、かつ／または、アルギニンを安定化剤として、かつ／またはデキストランおよび／もしくはＰＶＰをゼラチンの代わりに含む。
【０１１４】
本発明の他の実施形態は、任意選択で、ウイルス／ワクチン溶液の限外濾過／濃縮を用いて安定化される。そのような限外濾過は、通常、ＮＡＦの低減／希釈に対する、溶液安定性を実現するための代替手段である。例えば、なんらかの状況で、特定の株／溶液の力価(ｔｉｔｅｒ)または力価(ｐｏｔｅｎｃｙ)が低い場合、ＮＡＦ希釈（これは、溶液の力価(ｔｉｔｅｒ/ｐｏｔｅｎｃｙ)をさらに低下させるように作用するかもしれない）に代わりに任意選択で限外濾過を用いることができる。グループ４のステップにおける限外濾過は、上述のマイクロフィルター濾過とはわずかに異なっている。以前のグループでは、濾過は、例えば無菌性を目的としており、それに対して、このグループでは、濾過は、安定性などに関するものである。また、ウイルスは濾過中にも保持される。上記参照。
【０１１５】
力価アッセイ
本明細書に記載の一部の実施形態では、ウイルス／ワクチンの力価測定を細胞ベースＥＬＩＳＡ（すなわち、細胞ベースＥＬＩＳＡ、またはＣＥＬＩＳＡ、弱毒生インフルエンザウイルスワクチンであるＦｌｕＭｉｓｔまたは他のそのようなワクチンの力価測定に用いる）によって行う。そのような方法は、生ウイルスの力価測定に用いる、より伝統的な中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイの、より単純で迅速な代替手段である。簡潔には、９６ウェルマイクロタイタープレート中のマディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞の集密的単層培養を、生ウイルスを含有する試料で感染させ、感染後１６〜１８時間でホルマリン固定し、インフルエンザウイルス特異的なモノクローナル抗体（Ｍａｂ）と反応させる。次いでウイルス抗原に結合したＭａｂの検出を、抗マウスＩｇＧペルオキシダーゼと、可溶性の着色産物を発生するペルオキシダーゼ基質とを用いて、その光学濃度（ＯＤ）を分光光学的に測定することで行う。当業者ならば、インフルエンザ株の様々なサブタイプに共有されているエピトープ／抗原を熟知しているであろう（例えば、様々なＨＡなど）。試料中にある生ウイルスの力価は、確証済みのＴＣＩＤ５０力価アッセイで得られた既知のｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０値を有する生インフルエンザウイルス較正株を用いて作成された標準曲線から計算する。ＣＥＬＩＳＡは、ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０が４．９〜６．７の範囲で線形（ｒ２が９．９５以上）であることが示されている。試験日間、分析者間、プレート間、プレート内（残留）変動（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０の標準的偏差）は、それぞれ０．０６、０．０２、０．０５、および０．０３であった。ＣＥＬＩＳＡで測定した、いくつかのワクチン、ならびに野生型インフルエンザＡ／Ｈ１Ｎ１、Ａ／Ｈ３Ｎ２、およびＢ株の力価は、平行して行った、確証済みＴＣＩＤ５０力価アッセイで測定した力価と同程度のものであった（±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）。ＣＥＬＩＳＡは、２日間の間に最大１０試料／プレートの力価を測定できるが、それとは対照的に、確証済みＴＣＩＤ５０力価アッセイでは、６日間に２試料／プレートである。ＣＥＬＩＳＡは、任意選択で、力価アッセイの他の方法（例えば、ＦＦＡおよびＴＣＩＤ５０、下記参照）の代わりに、またはそれらに加えて用いる。
【０１１６】
中央値組織培養感染量５０％（ＴＣＩＤ５０）アッセイ（より詳細には下記参照）は、生ウイルスおよび生ウイルスワクチンの力価測定に広く用いられている方法である。しかし、本明細書に記載の一部の実施形態では、弱毒生ワクチンであるＦｌｕＭｉｓｔ（または他の同様のワクチン）に含まれるインフルエンザウイルスの力価を測定するのに、細胞ベースＥＬＩＳＡ（ＣＥＬＩＳＡ）を、時間と労力とを必要とする伝統的なＴＣＩＤアッセイに代わるより簡単でより迅速な代替手段として使用してもよい。
【０１１７】
他の典型的な実施形態では、ウイルス溶液の力価アッセイが、当技術分野で用いられている一般的なＴＣＩＤ５０アッセイではなく、蛍光焦点アッセイ（ＦＦＡ）を含んでもよい。そのようなＦＦＡは、自動化がより容易であるという追加の恩恵を有しており、そのため、時間内処理量がより大きいワクチン生産を可能にする。通常、ＴＣＩＤ５０アッセイは、特定の細胞培養の５０％を感染させるであろうウイルス懸濁液または溶液の量を測定する。この測定は、正確な結果を与えるが、ＦＦＡより遅く、そのため、ワクチン生産における貴重な時間を使い果たしてしまう可能性もある。FＦＡアッセイは、感染細胞中のウイルス抗原を検出するのに、通常、タイプ特異的かつ／またはサブタイプ特異的（または、普遍抗原特異的）抗インフルエンザ抗体（通常、抗ＨＡ抗体）を用いる。抗体がインフルエンザの異なったタイプ／サブタイプで交差反応しない場合の使用では、多ウイルス調製物（例えば、三価ワクチン製剤）中の別々のウイルス型を定量するのにそれらを用いられることもできる。ＦＦＡアッセイは、特定の株に関する同定試験として用いることもできる。当業者ならば、ＦＦＡおよびウイルス／ワクチン試験におけるそれらの使用にかなり熟知しているであろう。
【０１１８】
蛍光焦点アッセイは、他方で、細胞死（感染細胞または指標細胞）の誘導に依存しない。代わりに、それらは、単層細胞培養における感染細胞の中のウイルス抗原を検出する抗体染色法を用いる。次に、これらの感染細胞は、ウイルス特異抗体上の蛍光標識を用いて可視化され、定量される。本発明の典型的なＦＦＡは、感染細胞中のウイルス抗原を可視化するのに、例えば、タイプ特異的およびサブタイプ特異的な抗インフルエンザＨＡ抗体を用いる。
【０１１９】
他の実施形態では、ＦＦＡ（および、任意選択で、本明細書に記載の他のアッセイ）は、任意選択で、汎用試薬（または、普遍的抗原）を用いる。この場合、汎用試薬は、特定のタイプ／サブタイプのインフルエンザ抗原に特異的ではなく、代わりに、汎用インフルエンザ抗原に特異的なものである。したがって、汎用試薬は、ＦＦＡで多数の異なったスクリーニングを行う際に、場合によっては有用であり、異なったウイルスをアッセイする度にタイプ／サブタイプ特異的抗体を、開発して、産生する必要がない。
【０１２０】
本明細書に記載の他の実施形態は、細胞ベース蛍光分析アッセイ（ＣＦＡ）を用いたウイルスの力価測定を含む。ＦＦＡアッセイは、多くの実施形態でかなり有用であるが、他の実施形態では、ＣＦＡアッセイが優先的に用いられる。ＦＦＡアッセイの画像処理および出力は、約２０プレート／人／日（または、約５プレート／時間の画像処理）にまで達しうるが、ＣＰＡアッセイからの画像処理および出力は、さらにその約４倍の速さにまで達しうる。また、ＦＦＡ力価は、Ｂ型インフルエンザ株で、ＴＣＩＤ５０力価と異なることがあるが、ＣＦＡ力価は、アッセイ標準物質または較正物質の使用のため、ＴＣＩＤ５０（または、ＦＦＡ）力価からの有意差を示していない。簡潔には、ＣＦＡアッセイは、９６ウェルプレートで増殖しているＭＤＣＫ細胞中の感染性インフルエンザウイルスを測定する。ＦＦＡと同様、ＣＦＡは、最初の感染サイクル中に、ＭＤＣＫ細胞のウイルス感染の結果として生じるウイルスタンパク質の発現を検出する。ＣＦＡアッセイは、力価計算に較正物質またはアッセイ標準物質を利用する。ＣＦＡ試薬として、典型的抗体試薬は、ＨＡ、またはＡ株およびＢ株（インフルエンザの場合）に特異的な一次抗体と、二次抗体、例えば、アレクシア４８８に結合したヤギ抗マウスＩｇＧとを含むことができる。ＣＦＡ用のアッセイ標準物質は、試験される試料と同じ株で、ＦＦＡまたはＴＣＩＤ力価が既知のウイルス収集物を含むことができる。ＣＦＡ用のアッセイ参照は、既知のＦＦＡまたはＴＣＩＤ力価、および既知の線形勾配を有するウイルス収集物（必ずしも試験される試料と同じ株である必要はない）を含むことができる。試料一次抗体は、例えば、作業希釈率１：２０００の、例えば、Ａ／Ｈ１Ｎ１またはＡ／Ｈ２Ｎ２株に特異的なもの（例えば、Ｔａｋａｒａ社から購入）、例えば、作業希釈率１：１０００の、Ａ／Ｈ３Ｎ２株に特異的なもの（例えば、Ｔａｋａｒａ社から購入）、および、例えば、作業希釈率１：１０００の、Ｂ株に特異的なもの（例えば、Ｃｈｅｍｉｃｏｎ社から購入）を含むことができる。典型的なＣＦＡアッセイ操作は、ウイルス接種、それに続く、３３℃で１８時間のインキュベーション、それに続く、固定、および室温で１５分間のインキュベーションを含むことができる。その後、３７℃で６０分間の一次抗体インキュベーションに続いて、３７℃で６０分間の二次抗体インキュベーションが行われる。その後、蛍光計でプレートを読み取り、データを分析する。ＣＦＡの一部の実施形態では、ウェルの感染レベルなどを、タンパク質発現を介して測定する（感染した細胞の数を測定する典型的なＦＦＡアッセイとは対照的に）。当業者ならば、通常のＦＦＡアッセイおよび蛍光分析を知っているだろう。そして、同様の注意点がＣＦＡアッセイにもあてはまる。
【０１２１】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイ
上述のように、本発明のいくつかの実施形態は、ＴＣＩＤ５０アッセイ、およびその様々な改変などを含む。例えば、一部の実施形態は、以下の記述によって例示されるように、準自動化された変形形態を含む。
【０１２２】
この節では、弱毒生インフルエンザウイルスワクチン、例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）または他の同様のワクチンの力価を測定するための手動および準自動の中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイの比較を提供する。ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、任意選択で、ＦｌｕＭｉｓｔまたは他の同様のワクチンの力価測定に用いられる。準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイについて記載されているが、そこでは、確証済み手動力価アッセイの労力要求的な２つのステップに改善がなされている。これらは、（ｉ）試料希釈およびＭＤＣＫ単層感染に、ステップ中、何度も手動で希釈を反復していた代わりに、自動ピペットステーションを使用すること、および、（ｉｉ）ＭＤＣＫ細胞におけるインフルエンザウイルス誘発性の細胞変性効果（ＣＰＥ）の存在を評価するために、全アッセイプレートの９６ウェルそれぞれを手動で光学顕微鏡観測していた代わりに、細胞健康／生存率の指標として広く用いられている生体染色剤であるＭＴＴ（３−（４，５ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド）の産物を、感染後の６日間、９６ウェルプレートリーダーを使用して分光光度的に測定することである。
【０１２３】
本明細書に記載の一部の実施形態で用いられた準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイの開発および検証を行って、精度（反復性：＜０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；中間精度：ＳＤ（日）＜０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；ＳＤ（分析者）およびＳＤ（機器）＜０．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０；９０％信頼区間での再現精度 ±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）、線形性、精度、および範囲（勾配１±０．１）を実証した。自動ピペットステーションおよびＭＴＴ色素を用いた準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、確証済みの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイと同等の結果を提供することが示された（９０％信頼区間で±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０）。簡潔には、ここに記載した結果は、例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標)生成におけるインフルエンザウイルスの力価の測定で、ピペットステーションおよびＭＴＴ色素を使用することを支持するものである。これらの改良は、試験の時間内処理量も増大させる。
【０１２４】
感染力／力価（一価）アッセイの検証
一価インフルエンザ株の力価を測定する現行の手動法の準自動変形形態は、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンおよび他の同様のワクチンの製造にも任意選択で使用される。準自動力価アッセイは、プレートの洗浄、および系列希釈ステップの自動化を組み込み、手動での顕微鏡検出に代わって、色素をベースにした、ウイルス誘発性細胞変性効果（ＣＰＥ）の自動検出を行う。プレート洗浄および系列希釈ステップの自動化は、アッセイの時間内処理量の増強を可能にし、このアッセイを行う品質管理分析者に対する反復性運動外傷の危険を低下させる。ウイルス誘発性ＣＰＥの色素ベースによる自動検出は、顕微鏡検出を排除することによってアッセイの一貫性および時間内処理量を増強する。
【０１２５】
準自動アッセイの一部のステップ／態様は、より伝統的なＴＣＩＤ５０アッセイと同様であるが、他のステップ／態様は全く異なっている。アッセイステップには、マディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）単層を含有しているアッセイプレートの調製、インキュベーション、および洗浄、アッセイプレートの感染および感染後インキュベーション、ならびに、ＣＰＥ陽性ウェルの数および両アッセイにおける試料試験配置に基づいた力価の計算が含まれる。準自動の力価アッセイが検証され、このアッセイの成績は、発明者らおよびその同僚による現行の手動アッセイと同等のものであることを実証した。この準自動アッセイは、任意選択で、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の感染力／力価を測定する主要な方法として用いられる。手動アッセイは、任意選択で、準自動アッセイを行うことができない状況、すなわち、長期の設備休止がある場合のバックアップとして用いられる。
【０１２６】
伝統的な中央値組織培養感染量（ＴＣＤＩＤ５０）アッセイは、感染性の細胞破壊性ビリオンを測定する細胞ベースの方法である。ＭＤＣＫ細胞を９６ウェルプレートで培養し、集密状態の単層にウイルス試料の系列希釈を接種する。ＭＤＣＫ細胞中でのウイルスの複製によって細胞死がもたらされる。子孫ウイルスが他の細胞に感染し、最終的には単層の破壊がもたらされる。感染から生じたＣＰＥは、６日間のインキュベーション期間中に発達が許される。各ウェルにおけるＣＰＥの存在を判定するために、個々のウェルが、微視的に読み取られる。この操作によって、毎日４回の個別の測定が３日間行われ、全１２回の力価測定の結果が平均され、１つの試験結果が生じる。試料に加えて、各分析者は、一価の対照１つを分析し、これも３日間、毎日、４複製の測定を行う。
【０１２７】
手動のアッセイは、労力要求的であり、サンプル時間内処理量が限られている。個々の測定それぞれが、頻繁な細胞洗浄と、系列希釈ステップとを含み、それらは、手動のピペッターを用いて行われる。９６ウェルアッセイプレートの各ウェルについて、検鏡によってＣＰＥの存在または不在を記録しなければならない。多数のプレート洗浄および希釈ステップは、分析者に反復性運動外傷のリスクを与えるものである。加えて、９６ウェルプレートの個々のウェルをそれぞれ顕微鏡で読み取っていくのは、ひどく疲れさせる作業であり、これによって、各分析者が１日に行うことのできる分析数が１日当たり約２０プレートに制限される。１つの試験結果は、３日間の試験期間にわたる１２回の測定の平均として得られ、各分析者は、試料に加えて、１回の一価アッセイ対照を行う。これは、アッセイ時間内処理量を、３日間の試験期間あたりに１人の分析者あたり９試料（平均して１分析者、１日あたり３試料）に制限する。一価インフルエンザワクチン収集物の個々のサブロット（１ロットあたり約４０から５０サブロット）がこのアッセイによって試験されるため、このような時間内処理量の制限は、ワクチン（例えば、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンなど）を本格的な規模で商業化するための容量に制限を与えうるものである。
【０１２８】
伝統的なアッセイ、とりわけプレート洗浄およびピペット操作ステップ、ならびに、ＭＴＴ（３−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］−２，５−ジフェニル−テトラゾリウムブロマイド）色素ベースのＣＰＥ検出を自動化することによって、一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイが開発される。準自動アッセイは、洗浄ステップにＳｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いるが、その際には、砕片および使用済みの培地が細胞培養プレートから除去され、新しい培地で置換される。ウイルスの逐次１０倍希釈を行ったり、希釈された試料を、９６ウェルアッセイプレート中の単層細胞培養に移したりするには、Ｍａｔｒｉｘ社製ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）多チャンネルピペットステーションを用いる。当然ながら、同様の機能を行う他の装置も、ここで、任意選択で、代用され、装置の特定のブランド／タイプの特異的な言及も、そうであると明確に示されない限り、限定として理解されるべきではない。６日のインキュベーション期間の後、９６ウェルアッセイプレートを、ＭＴＴ色素と共に６時間インキュベートする。ＭＴＴ色素は、細胞代謝および生存率の広く受け入れられた指標である。インキュベーション期間中、無傷で健康な細胞単層は色素を処理して、不溶性、紫色のホルマザン生成物を形成する（生成物は細胞内に蓄積する）。細胞単層が破壊されているウェルでは、色素生成物が形成されない。その後、界面活性剤ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）２０％を含有する０．０１Ｎ塩酸の可溶化溶液を添加し、プレートを終夜インキュベートして、不溶性の色素生成物を溶解させる。５７０ｎｍの吸光度を測定し、紫色のホルマザン色素生成物を定量する。吸光度の読取りは、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ社製Ｅｘｃｅｌ（商標）のマクロプログラム（または、他の同様のプログラム）を用いて処理して、ＣＰＥ陽性ウェルまたは陰性ウェルの同定および計数を行い、ＴＣＩＤ５０力価を計算する。無傷の細胞単層を含有するウェルは、予め決められたカットオフ値と比較して、さらに高い吸光度を示し、ＣＰＥ陰性として同定され、一方、ＣＰＥの陽性ウェルは、カットオフ値より低い吸光度読取り値を示す（図５０を参照）。次に、各希釈でＣＰＥを示すウェルの数を用いて、Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ法のＫａｒｂｅｒ修正に基づいて力価（ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍＬ）を計算する。細胞洗浄、系列希釈、およびウイルス接種ステップ、ならびに、ＭＴＴ色素ベースのＣＰＥ検出の自動化について、以下に詳細に説明する。
【０１２９】
Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いた細胞洗浄ステップの自動化
手動のアッセイでは、９６ウェルプレート中のＭＤＣＫ細胞単層を含有するプレートは、希釈されたウイルス試料の接種の前に２回洗浄する。４日の細胞インキュベーションから生じた廃棄物およびウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有する使用済み培地を除去し、ＦＢＳを含まない新たなウイルス増殖培地（ＶＧＭ）で置換する。次に、細胞を、３３±で１℃、５±１％ＣＯ２で、少なくとも１０分間インキュベートし、その後、ＶＧＭを除去し、再度、新たなＶＧＭで置換する。各洗浄ステップでは、個々のプレートを清潔なペーパータオル上に逆にし、穏やかに吸い取りウェルから培地を除去し、その後、携帯用多チャンネルピペッターを用いて、各ウェルに２００μｌの新たなＶＧＭを再充填する。処理するプレートの数が多いときには、この過程は、労働集約的で、時間もかかる。
【０１３０】
Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒ（シリーズ３００、モデル１２０１０）は、マイクロプロセッサー制御の９６チャネル細胞洗浄機であり、これらの洗浄ステップを自動的に行う。Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒは、十分に小さく、６フィートの層流バイオセーフティフードに入れることができる。Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒを用いた、細胞プレートの洗浄ステップの自動化には、使用済み培地をプレートから吸引して、その後、新たなＶＧＭを空のウェルに分注する洗浄プログラムが含まれる。個々のプレートがＳｋａｎｗａｓｈｅｒに搭載され、その後、洗浄サイクルが終わったときに、３３±１℃、５±１％ＣＯ２のインキュベーターに移される。プレートを最低１０分間インキュベートし、その後、第２の洗浄のため、Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒに搭載し、その後、それらをインキュベーターに戻す。これらの洗浄ステップにおける、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒの作業性能は、細胞洗浄ステップでの使用に許容できることが示されている。２００μｌ容積における分注精度のＣＶは、＜１０％であり、分注の正確さは１０％以内である。吸引ステップでの残気量は１％未満である。したがって、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）Ｓｋａｎｗａｓｈｅｒは許容できる性能を提供し、一方で、使いやすさと、細胞洗浄ステップにおける時間内処理効率とを改善する。ここでも、同じ標準で機能できる同様の装置が、任意選択で使用されることが理解されよう。
【０１３１】
Ｍａｔｒｉｘ社製ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）多重チャネルピペットステーションを用いて自動化された系列希釈およびウイルス接種
伝統的な手動ＴＣＩＤ５０アッセイの系列希釈およびウイルス接種ステップは、携帯用多重チャンネルマイクロピペットによって行う。系列希釈は、２ステップで行う。最初のセットの５回の系列希釈は、０．５ｍＬの希釈ブロックで行い、その後、第１ブロックからの適切な希釈を、最終５回の系列希釈用に、２ｍＬの希釈ブロックに移す。いずれの１つの希釈でピペットの誤操作があっても、それが伝播され、後続のシリーズを通して拡大される可能性があるため、これらの系列希釈を慎重に実行することが重要である。後続のウイルス接種ステップには、希釈されたウイルスを、集密状態の細胞単層を含有しているアッセイプレートの複数の行または列に繰り返しピペット注入することが含まれる。長時間の使用によって、これらのタスクに必要な精度が得られたが、携帯用多チャンネルマイクロピペットを長時間使用すると、重度の筋肉疲労および腱炎を引き起こす可能性があり、それによって、各分析者が１日に行うことのできるプレートの数が制限され、したがって、全過程の時間内処理量も制限される。
【０１３２】
系列希釈およびウイルス接種ステップでＭａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）ピペットステーションを使用することによって、使いやすさと、アッセイの時間内処理量とが改善され、操作者傷害の発生が抑制され、一方で、これらのタスクに必要な精度および正確さも提供される。Ｍａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）ピペットステーションは、５μ〜２２５μｌの範囲の容積を吸引および分注できる、１２チャネルの筒先を備えた卓上液体操作ステーションである。この装置は、標準の４または６フィートバイオセイフティキャビネットに入れるのに十分に小さく、さらに使いやすい。Ｍａｔｒｉｘ ＳｅｒｉａｌＭａｔｅ（登録商標）は、５μｌから２２５μｌの送達容積において、０．５μｌより高い精度と、１．０μｌより優れた正確さとを提供する。これは、系列希釈ステップで用いられる３０μｌの送達容積に対して、±１．７％より優れた正確さと、±３．３％より高い精度とに対応している。自動化アッセイと、現行の手動アッセイとを用いて得られたアッセイ結果が相互に比較しうるものであるかどうかは、以下の記載の通りに確認される。ここでも、同じ標準で機能できる同様の装置が、任意選択で使用されることが理解されよう。
【０１３３】
ＭＴＴ色素ベースの検出に関する記述
ＴＣＩＤ５０アッセイにおける最終ステップは、ＣＰＥの検出およびウイルスの定量化である。現行（手動）のＴＣＩＤ５０アッセイでは、各ウェルにおけるＣＰＥの徴候を探すために、個々のウェルを顕微鏡によって読み込む。これらの徴候には、フォーカス領域、細胞単層の部分的または完全な崩壊、および破壊された細胞単層上の丸くて暗色の細胞の存在が含まれる。分析者が多数のプレートを数えることによって、かなりの眼精疲労が引き起こされることが観測されており、それによって、１人の操作者が数えることのできるプレート数の実際的な限界が、約２０プレートに設定されている。このステップは、手動アッセイの時間内処理量に対して律速となっている。
【０１３４】
テトラゾリウム色素は、細胞生存率の指標として広く用いられている。最も一般的に使用されている色素は、黄色のＭＴＴ色素である。活性のミトコンドリアを保持している生存細胞は、ＭＴＴ色素を還元して不溶性、紫色のホルマザン生成物に変換し、可溶化ステップの後に、これを５７０ｎｍで検出することができる。ＣＰＥの陽性ウェルでは、大多数の細胞が破壊されており、色素生成物がほとんど形成されず、はるかに低い吸光度が観測される。
【０１３５】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイでは、感染、および６日間のプレートのインキュベーションの後、使用済みの培地を除去し、新しいウイルス増殖培地に０．５ｍｇ／ｍＬのＭＴＴ色素を含む溶液１００μｌを、９６ウェルプレートの各ウェルに添加し、細胞を、３７±１℃、５±１％ＣＯ２で、６時間インキュベートする。色素生成物は、可溶化試薬（０．０１Ｎ ＨＣｌ中２０％ ＳＤＳ）１００μｌを添加した後、３７±１℃で、夜通しインキュベートして可溶化し、その後、紫色のホルマザン色素生成物による５７０ｎｍの吸光度をプレートリーダーで測定する。吸光度データは、予め設定したカットオフ値に基づいて、吸光度測定値をＣＰＥカウントに変換する確証済みのＭｉｃｒｏｓｏｆｔ社製Ｅｘｃｅｌ（商標）マクロ（または、他の同様のプログラム）に移す。無傷の細胞単層を含有するウェルは、予め決められたカットオフ値と比較して、さらに高い吸光度を示し、ＣＰＥ陰性として同定される。ＣＰＥの陽性ウェルは、カットオフ値より低い吸光度読取り値を示す。次に、各希釈でＣＰＥを示すウェルの数を用いて、Ｒｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ法のＫａｒｂｅｒ修正に基づいて力価（ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍＬ）を計算する。
【０１３６】
自動化された色素ベースの検出は、ＣＰＥ判定の一貫性と、アッセイの時間内処理量の増大を促進する。色素ベースの検出が、顕微鏡による手動のＣＰＥ検出と比較できるものであるかどうかは、大規模な研究によって確証される。この研究では、様々なワクチンと、野生型ウイルス株と、様々な細胞継代数および播種密度で調製されたプレートとを用いてアッセイを行った。これらの研究では、最初にプレートを手動で検鏡し、その後、色素ベースの吸光度検出で読み込んだ。これらの研究で得た結果を分析して、両方の検出法で同等のＣＰＥカウントを提供した、汎用吸光度カットオフ値を決定した。５７０ｎｍの吸光度で０．５２５４である、この汎用カットオフ値は、９人の異なった分析者が、３台の異なった機器において、合計５７３枚のアッセイプレートを用いて、６日間のアッセイ日にわたってアッセイを行った詳細な研究によって確認した（下記参照）。各ウェル（１プレートあたり８０ウェル、合計で４５８４０ウェルにウイルスが接種された）でのＣＰＥの存在または不在を、まず手動の検鏡によって、その後、色素ベースの吸光度検出で読み取った。
【０１３７】
図５０は、ウェルの吸光度読取り値に対して、その値の頻度（その吸光度値が読まれたウェルの数）をプロットすることによって得られたヒストグラムを示す。頻度測定によって、Ａ５７０＝０．５２５４の吸光度カットオフ値は、ＣＰＥ陰性ウェルの分布における最も左のテール（確率＝０．００７％）に位置し、かつ、ＣＰＥ陽性ウェルの分布における最も右のテール（確率＝０．０２％）に位置することが示された。このカットオフ値を用いた両方の方法による、各ウェルのＣＰＥ検出を比較したところ、ほとんどのウェル（４５８４０のうち４５２７９、９８．７８％）が、色素ベースの検出と、検鏡との両方によってＣＰＥ陽性またはＣＰＥ陰性として同定される１対１対応を示した。
【０１３８】
準自動力価アッセイの検証
一価インフルエンザワクチンウイルスを分析するための準自動中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）力価アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の感染力／力価の測定に意図される。このアッセイの検証を行い、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの精度（再現精度(ｒｅｐｅａｔａｂｉｌｉｔｙ)、中間的精度、および再現精度(ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｉｌｉｔｙ)）、線形性、正確さ、および範囲を実証し、それが手動のＴＣＩＤ５０アッセイと同等の結果を提供することを示す。検証試験は、Ａ／Ｈ１Ｎ１型の１株、Ａ／Ｈ３Ｎ２型の１株、およびＢ型の１株を含むように選択された、３株の異なった一価ワクチン株で行った。アッセイ検証は、実験室相互での再現性を実証するため、異なった実験室で、２つの別々のグループによって行った。準自動アッセイの精度（試験間変動）、線形性、正確さ、および範囲を、手動アッセイで観測されたそれらと、表５３で比較する。
【０１３９】
準自動アッセイの試験間標準偏差（ＳＤ）を、３株のワクチン株のそれぞれに関して、同じ分析者グループが、同じピペットステーションで実施した６回の試験から評価した（３日間に得られた１２の測定を平均することによって、各試験結果を得る）。準自動アッセイの試験間変動に関する合格基準は、０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌであった。これは、手動アッセイで観測された最大の変動性（０．１１ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位）に基づく、単一試験結果の９５％信頼区間の半値幅である。３つの株の準自動アッセイで得られた実際のＳＤ値は、０．０６〜０．０９ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲であった。これらの値は、ＳＤ＜０．２５ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位という合格基準内にあり、３株のそれぞれの３つの独立したロットで行った９回の繰返し試験で得られた、手動ＴＣＩＤ５０アッセイで観測された試験間変動（０．０７〜０．１１ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０単位）と同程度である。
【０１４０】
このアッセイが、１０５倍の希釈範囲（４．２〜９．３ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍＬの力価範囲）で線形であることの立証を、計算されたＴＣＩＤ５０力価と、測定されたＴＣＩＤ５０力価との相関が、１％有意レベルでの線形モデルへの適合性の欠如に関する試験に合格したことを示すことによって行った。このアッセイは正確であった。すなわち、３つの株で、１．００〜１．０２の勾配を有し、それらはすべて、合格基準である勾配１±０．１の範囲内にあった。準自動アッセイの線形性、正確さ、および範囲は、手動アッセイと同程度である。表５３を参照。
【０１４１】
準自動アッセイの中間的精度を、変量効果モデルを、Ａ型１株およびＢ型１株のワクチンウイルス株に関して、２つ分析者グループによって９つの様々なアッセイ日にわたって得られた１８試験のセットに適合させることによって実証した。試験日間変動（ＳＤ（日））、分析者グループ間変動（ＳＤ（分析者））、機器間変動（ＳＤ（機器））の測定された標準偏差の範囲は、それぞれ０．０４〜０．０８、０．１４〜０．１６、および０．０００〜０．０３であったが、それらは、ＳＤ（日）＜０．３、ＳＤ（分析者）＜０．４、およびＳＤ（機器）＜０．４の合格基準を満たした。
【０１４２】
アッセイの実験室間再現性を、Ａ／Ｈ１Ｎ１型１株、Ａ／Ｈ３Ｎ２型１株、およびＢ型１株に関して、２箇所の異なった実験室でアッセイを実行することによって実証した。実験室間の合格基準は、２つの実験室で得た結果の平均の相違における９０％両側信頼区間が±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲にあることを必要とした。この合格基準は満たされた。すなわち、９０％の信頼区間の下限および上限が、それぞれ、３株すべてで、−０．０５超および＋０．１５未満であった。
【０１４３】
手動アッセイと、準自動アッセイとが比較できるものであることを実証するため、詳細な統計的比較を行った。２つのワクチン株、Ａ／Ｈ１Ｎ１型１株（Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９）およびＢ型１株（Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８）を手動でアッセイして、各株について１８試験の結果を得た。各株について手動で得た全１８試験の結果のデータをプールし、準自動試験に関して行った精度および中間精度研究から得て、プールされている試験結果（１株あたり１８試験結果）と比較した。方法間平均差およびその９０％信頼区間（ＣＩ）を推定するため、ＳＡＳのＰｒｏｃ Ｍｉｘｅｄ法を用いた。合格基準は、９０％ＣＩが±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍｌの範囲内になければならないこと、すなわち、９０％ＣＩの下限（ＬＢ）が−０．３より大きくなくてはならず、かつ、上限（ＵＢ）が０．３未満でなければならないことである。結果は、アッセイ検証報告に提示されており、また下記表５４に要約されている。結果から判るかもしれないが、９０％の両側信頼区間は、両方の株に関して、合格基準の±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあった。すなわち、下限および上限の実際の推定値が−０．０５から０．１０ ｌｏｇ１０ ＴＣｌＤ５０／ｍｌの範囲にあった。
【０１４４】
したがって、要約すると、一価インフルエンザウイルスの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ（ｅＷＴ）、マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の１価インフルエンザワクチン株の感染力／力価を測定する伝統的な確証済みアッセイであるが、それは、頻繁な手動ピペットステップを含む労働集約的な方法であり、分析者に反復性運動外傷の危険を引き起こす。さらに、それは手動の顕微鏡のＣＰＥ判定を用い、それによって、アッセイ時間内処理量が、１分析者、試験日１日あたり３試験に制限されている。プレート洗浄および手動ピペット操作ステップの自動化、ならびに手動の顕微鏡判定のかわりにＭＴＴ色素ベースのＣＰＥ検出を行うことによって、一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイが発展しうる。一価物質を試験するための準自動アッセイを実現することによって、場合によっては、アッセイ時間内処理量が２〜３倍増強され、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチンなど、市場に予期されるレベルの用量で、ワクチンを実際的に商業化することが可能となる。別の恩恵は、品質管理分析者が反復性運動外傷になる危険が低下することである。
【０１４５】
準自動アッセイは、検証されて、４．２〜９．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲の力価のウイルス物質のアッセイで再現性、中間的精度、線形性、および正確さがあることが、あるグループで実証されている。また、このアッセイは、別のグループでも検証されて、実験室間再現性があることも実証された。
【０１４６】
準自動アッセイおよび手動アッセイの両方を用いることによって得られた、Ａ型１株およびＢ型１株のインフルエンザの反復された力価測定値に関する結果の詳細な統計的比較も、２種類のアッセイが同等の結果を産することを示した。したがって、準自動アッセイは、拡張された野生型インフルエンザ、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）マスターウイルス種子（ＭＶＳ）、製造会社の作業ウイルス種子（ＭＷＶＳ）、および、ウイルス収集物（ＶＨ）試料の力価の測定における使用に関して、手動アッセイに匹敵するものであると実証されている。
【０１４７】
準自動ＴＣＩＤ５０アッセイにおけるＣＰＥの汎用カットオフ値
本明細書に記載のさらに他の実施形態では、ＴＣＩＤ５０アッセイの他の変形および修正が、ワクチン／ウイルスの力価を測定するのに利用される。そのような改変の１つは、一価インフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０準自動力価アッセイのための、ＣＰＥ評価用の汎用カットオフ値の確認である。「一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ」（上記参照）は、感染されたＭＤＣＫ細胞の単層における細胞変性効果（ＣＰＥ）を記録するために、生存細胞色素ＭＴＴ（３−（４，５ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド）を用いる。ＣＰＥ陽性ウェルの数を検出するために、ＭＴＴ比色分析終点を用いてウイルス力価を確実に測定するためには、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性のウェルとを再現性を持って識別する吸光度カットオフ値を確立すると有用である。発明者らの他の研究に記載されているように、「汎用カットオフ」吸光度（Ａ５７０）値、０．５２５４が決定されている。「一価インフルエンザウイルスの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ」では、吸光度値がＡ５７０＜０．５２５４である場合に、ウェルがＣＰＥ陽性であるとみなされ、ＣＰＥ陰性ウェルは、Ａ５７０＞０．５２５４の吸光度値を有する。
【０１４８】
この節に要約されているデータは、以前に決定された汎用カットオフ値を検証する。寒冷適応インフルエンザ株、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９（Ａ／Ｈ１Ｎ１型）、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７（Ａ／Ｈ３Ｎ２型）、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８（Ｂ型）の大規模な試験は、汎用カットオフ指定の補強データを生み出すだけはなく、分析者相互および機器相互の比較も可能にする。本明細書に提示したデータは、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの堅牢性、再現性、および信頼性を実証し、確証済みの手動力価アッセイと比較できるものであることも実証する。したがって、実施形態の力を例示することには、これらの測定も含まれる。
【０１４９】
上記に説明したように、中央値組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）アッセイは、感染性の細胞破壊性ビリオンの力価を測定する細胞ベースのアッセイである。ウイルス試料の系列希釈を、９６ウェルプレートで増殖しているマディンダービーイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞の集密的な単層に添加する。ＭＤＣＫ細胞中でのウイルスの複製が細胞代謝に影響を与え、最終的には、子孫ウイルスの培養上清への放出と、細胞死とをもたらす。子孫ウイルスが次に他の細胞に感染し、最終的には単層の破壊がもたらされる。感染から生じた細胞変性効果（ＣＰＥ）は、６日間のインキュベーション期間中に発達が許される。この期間の後、ＭＴＴは、細胞単層にＣＰＥが存在するか、存在しないかを検出するのに用いられる。ＭＴＦのような生体染色剤は、細胞ベースのバイオアッセイで、細胞健康および生存率の指標として広範に使用されている（例えば、Ｄｅｎｉｚｏｔら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８６）、第８９巻、２７１〜２７７頁；Ｇｅｒｌｉｅｒら（１９８６）、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、第９４巻、５７〜６３頁；Ｈｅｅｇら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８５）、第７７巻、２３７〜２４６頁；Ｍｏｏｓｅｍａｎ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８３）、第６５巻、５５〜６３頁；Ｔａｄａら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８６）、第９３巻、１４７〜１６５頁、Ｖｉｓｔｉｃａ、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ（１９９１）、第５１巻、２５１５〜２５２０頁参照）。生存細胞（ＣＰＥ陰性）の無傷の単層を含有するウェルは、色素を処理して、紫色のホルマザン色素生成物にし、５７０ｎｍ（Ａ５７０）で高い吸光度値を産する。対照的に、ＣＰＥ陽性のウェルは、ウイルスによって引き起こされた部分的または完全な単層破壊のため、より低い吸光度値によって特徴付けられる。ＣＰＥ陽性ウェルの数を検出するために、比色分析終点を用いてウイルス力価値を確実に測定するためには、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性のウェルとを再現性を持って識別する吸光度カットオフ値を確立すると有用である。汎用カットオフ値と併せて使用され、ウイルス試験試料からの吸光度値はＣＰＥ陽性またはＣＰＥ陰性として記録される。ＣＰＥ陽性ウェルの数は、ウイルス力価（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）を計算するのに用いられる。
【０１５０】
発明者らとその同僚とによる仕事は、３株のインフルエンザウイルスを用いて、数日間にわたって、複数の分析者によって行われた２つの研究に基づいて、汎用カットオフ値の初期推奨値を提供する。記載されているように、吸光度値がＡ５７０＜０．５２５４である場合に、ウェルがＣＰＥ陽性であるとみなされ、ＣＰＥ陰性ウェルは、Ａ５７０＞０．５２５４の吸光度値を有した。この節は、以前に決定された吸光度カットオフ値を検証するために設計された追加実験について説明する。２つの独立したアッセイグループからの複数の分析者が、３株の参照ウイルス株の力価を、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを用いて測定した。記載されているように、検鏡による確証済みの手動方法で評価されたＣＰＥは、「金標準」であるとみなされ、ＭＴＴで判定したＣＰＥと比較された。Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９（Ａ／Ｈ１Ｎ１型）、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７（Ａ／Ｈ３Ｎ２型）、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８（Ｂ型）の大規模な試験は、汎用カットオフ指定の補強データを生み出しただけはなく、分析者相互および機器相互の比較も可能にした。本明細書に提示したデータは、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイの堅牢性、再現性、および信頼性を実証し、確証済みの手動力価アッセイと比較できるものであることも実証する。
【０１５１】
準自動力価アッセイの開発は、確証済みの手動力価アッセイを用いて事前に測定された既知の力価値を有する参照ウイルス株の使用を必要とした。参照寒冷適応ウイルス株は以下の通り、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９、Ａ／Ｈ１Ｎ１型ウイルス；Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、Ａ／Ｈ３Ｎ２型ウイルス；およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８、Ｂ型ウイルスであった。寒冷適応対照ウイルス株Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７を、システム適性を確認するのに使用した。
【０１５２】
一価インフルエンザの準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ方法、半プレート複製用の全体的アッセイ配置、および視覚的なＣＰＥスコアリング方法は、発明者らおよびその同僚が開発した。上記参照。簡潔には、９６ウェルプレート中のＭＤＣＫ細胞の集密的な単層を、Ｓｋａｔｒｏｎ（商標）細胞洗浄機を用いて、ウイルス増殖培地（ＶＧＭ）で２回洗浄する。ウイルス試料の連続１０倍希釈を、ＴＰＣＫ−トリプシンを含有するＶＧＭ中に、Ｍａｔｒｉｘ(商標)ＳｅｒｉａｌＭａｔｅピペットステーションおよび９６ウェル希釈ブロックを用いて調製する。最終の５つの系列希釈（１０−５から１０−９）を、ＭＤＣＫ細胞プレートに移し、初期の開始力価と比較して、１０−６から１０−１０までの範囲の最終ウイルス濃度を実現する。このフォーマットは、各プレートから得た２つの力価データポイントに由来する。各試料は２枚のプレート上で検査されるので、４複製の力価値が得られる。１６の対照ウェル（プレート列６および７）には、ウイルスを含まないＶＧＭを入れ、細胞対照として用いる。６日間のインキュベーション（５±１％ ＣＯ２、３３±１℃）の後、全ウェルを、顕微鏡を用いて検査し、ＣＰＥの存在または不在を記録した。したがって、ウイルス破壊のいかなる証跡でも、単層が含有する場合、ウェルがＣＰＥ陽性と記録する。逆に、ＣＰＥ陰性のウェルにある単層は完全に無傷であった。
【０１５３】
プレート上の単層を目視によりＣＰＥを記録した後、培地を廃棄し、リン酸緩衝生理食塩水で調製されたＭＴＴ（０．５ｍｇ／ｍＬ）（ＵＳ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社、Ｃｌｅｖｅｌａｎｄ、ＯＨ）を各ウェルに分注する（１００μｌ／ウェル）。単層を、ＭＴＴと共に、５±１％ ＣＯ２、３７±１℃で、６±０．５時間インキュベートする。可溶化緩衝液（０．０１Ｎ ＨＣｌ中２０％ ＳＤＳを１００μｌ）を各ウェルに添加し、プレートを、５±１％ ＣＯ２の環境、３７＋１℃で１６〜２０時間インキュベートする。５７０ｎｍの吸光度値を、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ−Ｗａｌｌａｃ １４２０ Ｍｕｌｔｉｌａｂｅｌ Ｃｏｕｎｔｅｒ分光光度計を用いて測定し、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ（商標）Ｅｘｃｅｌマクロにエクスポートした。このプログラムは、ＣＰＥ陽性ウェルの数からウイルス力価（ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ）を計算するのに使用したものである。
【０１５４】
合格基準はこの節中の実施形態に適用される。したがって、各プレートの１６箇所の細胞対照ウェルのうち１を超えない数のウェルが、ＣＰＥの視覚的な証拠、細胞毒性、または微生物汚染を示した場合、プレートは有効であるとみなされた。さらに、各半プレートが有効であるには、５以上３６以下のウェルがＣＰＥ陽性と記録されなければならなかった。最後に、一価ウイルス対照試料（Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７）に関して得た４複製のＴＣＩＤ５０力価値の平均および標準偏差（ＳＤ）の両方が資格のある対照証明書に報告されている合格範囲内になければならなかった。
【０１５５】
感受性および特異性の推定は、下記に示す、「金標準」ＣＰＥと、ＭＴＴによって評価されたＣＰＥとの間の関係に基づいて計算した。ＴＰは「真陽性」、ＦＰは「偽陽性」、ＦＮは「偽陰性」、そして、ＴＮは「真陰性」を示す。したがって、「全陽性」はＴＰ＋ＦＮの合計であろう。また、「全陰性」はＦＰ＋ＴＮの合計であろう。表５５を参照のこと。計算は次の通りである。すなわち、各複製の感受性＝（ＴＰ）／（全ＣＰＥ陽性）そして、各複製の特異性＝（ＴＮ）／（全ＣＰＥ陰性）である。
【０１５６】
機器間比較を行うため、３つの参照ウイルス試料の力価値を、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを用いて、第１グループの６人の分析者によって測定した。２セットの実験室機器ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０を３日間にわたって使用した。第２グループの試験者は１つの機器システム、ＡＺ−０３６を用いた。このグループの３人の分析者が、３つの参照ウイルス試料を用いて、３日間、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。
【０１５７】
分析者間比較を行うため、グループ１で試験を行っている各分析者（分析者＃１〜６）が準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを、３つの参照株に関して、機器ＡＺ−０３９を用いて、３日間にわたって行った。第２のグループでは、３人の分析者（分析者＃７〜９）それぞれが、準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを、同じ３つの参照ウイルス株に関して、機器ＡＺ−０３６を用いて、３日間にわたって行った。
【０１５８】
準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイで、ＣＰＥ陽性ウェルと、ＣＰＥ陰性ウェルとを、ＭＴＴを用いて確実に識別するため、汎用カットオフ値を統計的に測定した。このカットオフ値の使用を検証する目的において、２つのグループによる一層の独立した評価によって、４５８４０の吸光度値がさらに測定された。結果を以下に示す。
【０１５９】
感受性および特異性の測定は、参照標準として手動の顕微鏡法を用いることで計算した。２つのグループ（ｎ＝４５８４０）からの総合データを表５６に示す。推奨されたカットオフ値０．５２５４を用いた結果、感受性が９８．４５％、特異性が９９．１２％となった。さらに、感受性および特異性決定に関する第２グループからのデータは、それぞれが９９．１５％、および９９．９９％であった。同様に、感受性および特異性に関する第１グループからのデータは、それぞれが９８．１３％、および９８．７１％であった。上記の全データ（＞９５％感受性および＞９５％特異性）が、測定されたデータと相関していた。測定データでは、感受性が９９．０５％、特異性が９９．９９％と計算された。
【０１６０】
図５１は、吸光度読取り値に対して、その値の頻度をプロットすることで得たヒストグラムを示す（Ｎ＝４５，８４０）。前の情報と一致して、２つのグループからの総合データは、汎用カットオフ値０．５２５４は、ＣＰＥ陽性ウェルおよびＣＰＥ陰性ウェルの分布の間の中点近くにあることを示している。度数分布は、推奨されたカットオフ値が、対照ウェル分布の最も左のテールの中にあり、左に向かって伸長しているテール中で、確率０．００７％に対応していることを示している。カットオフ値０．５２５４は、全ＣＰＥ陽性ウェルから吸光度値を用いてカットオフ値を推定した場合、確率０．０２％のテールにも対応する。さらに、図５１から明らかな分布プロファイルは、ＣＰＥ陽性ウェルの吸光度値は、ＣＰＥ陰性ウェルの吸光度値から遠く切り離されていることを強調する。
【０１６１】
６７２０の対照ウェルからの吸光度値に基づいてカットオフ値０．５２５４を推定した、生成されたＣＰＥ陰性対照ウェルに関して得られた平均吸光度値の比較が以前に行われた。対照ウェルの平均吸光度値１．２６１が、標準偏差０．１５と共に得られた。表５７に示すように、この研究は、９１６８の対照ウェルを追加に生成し、そのうち２８８０が第２グループから得られ、６２８８が第１のグループから得た。平均吸光度値は、１．２２６および１．２３５が、それぞれ第２グループおよび第１グループから得られ、総合平均吸光度値は、１．２３１であった。総合平均吸光度値と、以前に報告されていたものとの相違は０．０３の吸光度値にすぎなかった（表５７を参照）。これは、データが６カ月間にわたって生成されたことを考慮すると、非常に小さい相違である。以前に記載された研究は、連続した２カ月間に行われたが、本明細書に記載の研究が第２のグループで行われたのは、第１のグループが行う４カ月前のことである。
【０１６２】
表５８は、機器間比較を実施するために、３株の参照ウイルス株に関して、２つのグループで異なった機器を用いて得られた力価値を要約する。第１グループからの６人の分析者が、２セットの機器（ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０と呼ばれる）を用いて、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９に関して、全体的平均が９．２から９．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．０９ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった（表５８を参照）。Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７に関して、全体的平均が８．５から８．６ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．０２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった。Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８に関して、全体的平均が８．３から８．４ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬの範囲にあり、ＡＺ０３９とＡＺ−０４０との間で、力価には０．１２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以上相違しなかった。第２のグループは、１つの機器システム（ＡＺ−０３６）を用いて結果を生み出した。３人の分析者が、３つの参照ウイルス試料を用いて、３日間、準自動ＴＣＩＤ５０アッセイを行った。第２グループの機器と、Ｑｕａｌｉｔｙ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙの機器との間における、結果の平均差は、Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９で０．０９ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下、Ａ／Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７で０．０８ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下、そして、Ｂ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８で０．１２ ｌｏｇ１０ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。平均差データを、第１のグループの２台の機器（ＡＺ−０３９およびＡＺ−０４０）相互で、そして、第１グループおよび第２グループ（ＡＺ−０３６）の間で計算した。
【０１６３】
分析者間比較を行うため、第１のグループでは、各分析者（分析者１〜６）がＡ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９、Ａ／Ｎｅｗ Ｓｙｄｎｅｙ／０５／９７、およびＢ／Ｙａｍａｎａｓｈｉ／１６６／９８に関して、機器ＡＺ−０３９で、３日間にわたって準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを行った。第２グループでは、３人の分析者（分析者７〜９）が、それぞれ同じウイルス株で、機器ＡＺ−０３６で、３日間にわたって準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイを行った。各ウイルスに関して力価値を計算し、表５９に示す。第１グループの結果の間にある変動は、試験された３つのウイルス試料に関して、０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。同様に、第２のグループの力価値の間にある変動も０．２ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ以下であった。２つのグループの分析者間の全体的比較は、３つの参照ウイルス試料に関して、±０．３ ｌｏｇ１０ ＴＣＩＤ５０／ｍＬ未満であった。試験結果（３日間にわたって４複製が試験された）の標準偏差（ＳＤ）は０．１１から０．２７までの範囲にあった。ＳＤ値が合格基準値の０．５０未満であったので、すべてが有効であった。
【０１６４】
この節に提示する結果は、「汎用カットオフ」吸光度値（０．５２５４）を検証する。これらの研究によって生成されるデータは、独立したアッセイグループの複数の分析者によって、比較的長い時間枠で生成されているにも関わらず、一貫性が高いため、汎用カットオフ値に対しては、高レベルの信用がある。まとめると、２つのグループによって測定された対照（ＣＰＥ陰性）の吸光度値は、相互に一致するだけではなく、以前に報告された平均値と事実上等しかった（表５７を参照）。感受性および特異性の値は、２つのグループで相互に強く類似しており、また、以前の研究とも一致していた（図５１および表５７を参照）。ＭＴＴを用いてＣＰＥを評価する、準自動ＴＣＩＤ５０力価アッセイ用の「汎用カットオフ」は、２つのグループで、相互に、そして、確証済みの手動ＴＣＩＤ５０力価アッセイによって得られたものと、比較できる力価値を生成した。最後に、準自動システムは、手動方法を上回る、いくつかの操作上の利点を有する。手動ピペット操作による労働集約的なステップ、およびアッセイプレートの顕微鏡検査の代わりに機器を使用することによって、容量を増大させ、より高い時間内処理量を可能にする。さらに、分光光度法によるＣＰＥ判定、およびその後の自動力価計算は、結果のプリントアウトおよび／または電子記録を提供する。
【０１６５】
定義
別段の定義がない限り、すべての科学用語および専門用語は、それらが関係する技術分野で一般的に用いられている意味と同じ意味を有すると理解される。本発明の目的において、以下の用語を下記に定義する。
【０１６６】
用語「核酸」、「ポリヌクレオチド」、「ポリヌクレオチド配列」、および「核酸配列」は、一本鎖または二本鎖のデオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチド重合体、またはそのキメラもしくは類似体を指す。本明細書で使用する場合、この用語には、それらが一本鎖の核酸と、天然に存在するヌクレオチドと同様の方法でハイブリダイズするという点で天然ヌクレオチドの本質的性質を有する、天然に存在するヌクレオチドの類似体の重合体も含んでもよい（例えば、ペプチド核酸）。別段の指示がない限り、特定の核酸配列は、任意選択で、明示された配列に加えて、相補配列も包含する。
【０１６７】
用語「遺伝子」は、生物学的機能に関連しているいかなる核酸も意味するように広範に使用される。したがって、遺伝子には、コード配列および／またはそれらの発現に必要な調節配列が含まれる。用語「遺伝子」は、特定のゲノム配列、および、そのゲノム配列によってコードされたｃＤＮＡまたはｍＲＮＡにもあてはまる。
【０１６８】
遺伝子には、例えば、他のタンパク質のための認識配列を形成する、発現されない核酸セグメントも含まれる。発現されない調節配列には、「プロモーター」および「エンハンサー」が含まれ、それらには、転写因子などの調節タンパク質が結合して、その結果、隣接の、または近傍の配列の転写が引き起こされる。「組織特異的な」プロモーターまたはエンハンサーは、特定の組織型もしくは細胞型、または複数のタイプで、転写を調節するものである。
【０１６９】
用語「ベクター」は、それによって核酸を、生物、細胞、または細胞構成要素の間を伝播および／または転移させることができる手段を意味する。ベクターには、自律的に複製を行うか、または、宿主細胞の染色体と統合することができる、プラスミド、ウイルス、バクテリオファージ、プロウイルス、ファージミド、トランスポゾン、人工染色体、および同様のものが含まれる。ベクターは、自律的に複製しない裸のＲＮＡポリヌクレオチド、裸のＤＮＡポリヌクレオチド、同一鎖中のＤＮＡおよびＲＮＡの両方で構成されたポリヌクレオチド、ポリリジンが結合したＤＮＡもしくはＲＮＡ、ペプチドが結合したＤＮＡまたはＲＮＡ、リポソームが結合したＤＮＡ、または同様のものである場合もある。最も一般的には、ベクターは、本明細書において、プラスミドを意味する。
【０１７０】
「発現ベクター」は、複製だけでなく、そこに組み込まれた核酸の発現を促進できるプラスミドなどのベクターである。通常、発現される核酸は、プロモーターおよび／またはエンハンサーに「作用可能に連結され」、そのようなプロモーターおよび／またはエンハンサーによる転写制御調節を受ける。
【０１７１】
「双方向発現ベクター」は、２つのプロモーターの間に位置した核酸と関連して逆方向に向けられた２つの選択的プロモーターによって特徴付けられ、それによって、両方向に発現を開始することができ、結果として、例えば、プラス（＋）鎖またはセンス鎖と、マイナス（−）鎖またはアンチセンス鎖との両方のＲＮＡの転写が起こる。
【０１７２】
本発明の文脈において、用語「単離」は、それが天然に存在する環境で、通常、それに付随しているか、またはそれと相互作用する成分を実質的に含まない、核酸またはタンパク質などの生物学的物質のことをいう。単離された物質は、任意選択で、その天然の環境、例えば細胞では見出されない物質を含む。例えば、細胞など、その天然の環境に、その物質がある場合、その物質は、細胞中の、その環境で見出された物質にとって自然でない位置（例えば、ゲノムまたは遺伝要素）に配置されている。例えば、天然に存在する核酸（例えば、コード配列、プロモーター、エンハンサーなど）は、天然に存在しない方法（例えば、プラスミド、ウイルスベクター、またはアンプリコンなどのベクター）で、その核酸にとって自然でない、ゲノムの遺伝子座に導入される場合、単離される。また、そのような核酸を「異種」核酸と呼ぶ。
【０１７３】
用語「組換え」は、物質（例えば、核酸またはタンパク質）が人工的にまたは合成的に（自然ではない）改変されていることを意味する。物質の改変は、その天然の環境もしくは状態の中で、またはそれから取り出して行うことができる。詳細には、ウイルスについて言及する場合、例えば、インフルエンザウイルスが組換え核酸の発現によって生成された場合には、それは組換え体である。
【０１７４】
用語「再集合体」は、ウイルスについて言及する場合、そのウイルスが、複数の親ウイルス株または供給源から得られた遺伝子および／またはポリペプチド成分を含んでいることを示す。例えば、７：１再集合体は、第１の親ウイルスに由来する７つのウイルスゲノムセグメント（または、遺伝子セグメント）を含み、第２の親のウイルスからは、単一の相補的ウイルスゲノムセグメント、例えば、赤血球凝集素またはノイラミニダーゼをコードするものを含む。６：２再集合体は、第１の親のウイルスから６つのゲノムセグメント、最も一般的には６つの内部遺伝子を含み、別の親のウイルスからは、２つの相補的なセグメント、例えば、赤血球凝集素およびノイラミニダーゼを含む。
【０１７５】
用語「導入」は、異種核酸または単離核酸について言及する場合、真核細胞または原核細胞の中に核酸を取り込ませることを意味する。この場合、核酸は、細胞のゲノム中（例えば、染色体、プラスミド、色素体、またはミトコンドリアＤＮＡ）に組み込まれるか、自律的レプリコンに転換するか、または一時的発現される（例えば、トランスフェクトされたｍＲＮＡ）。この用語には、「感染」、「トランスフェクション」、「形質転換」、および「形質導入」などの方法も含まれる。本発明の文脈では、原核細胞に核酸を導入するのに、電気穿孔法、リン酸カルシウム沈殿、脂質媒介トランスフェクション（リポフェクション）などを含めた様々な方法は利用することができる。
【０１７６】
用語「宿主細胞」は、ベクターなどの異種核酸を含有し、かつ、核酸の複製および／または発現を補助する細胞を意味する。宿主細胞は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）などの原核細胞、または酵母、昆虫、両生類、鳥類、もしくは、ヒト細胞を含めた哺乳類細胞などの真核細胞でありうる。本発明の文脈における例示的宿主細胞には、Ｖｅｒｏ（アフリカミドリザル腎臓）細胞、ＢＨＫ（ベビーハムスター腎臓）細胞、一次ニワトリ腎臓（ＰＣＫ）細胞、マディンダービイヌ腎（ＭＤＣＫ）細胞、マディンダービウシ腎（ＭＤＢＫ）細胞、２９３細胞（例えば、２９３Ｔ細胞）、およびＣＯＳ細胞（例えば、ＣＯＳ１、ＣＯＳ７細胞）が含まれる。
【０１７７】
インフルエンザウイルス
本明細書に記載の組成物および方法は、主として、ワクチン用インフルエンザウイルスの生産に関する。インフルエンザウイルスは、分節された一本鎖ＲＮＡゲノムを含有する内部リボ核タンパク質コアと、マトリックスタンパク質によって裏打ちされた外側リポタンパクエンベロープとからなる。Ａ型インフルエンザおよびＢ型インフルエンザウイルスは、それぞれ８セグメントの一本鎖マイナスセンスＲＮＡを含有している。Ａ型インフルエンザゲノムは１１のポリペプチドをコードする。セグメント１〜３は、３つのポリペプチドをコードし、ＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼを作りあげる。セグメント１は、ポリメラーゼ複合体タンパク質ＰＢ２をコードする。残りのポリメラーゼタンパク質ＰＢ１およびＰＡは、セグメント２およびセグメント３によってそれぞれコードされている。さらに、一部のインフルエンザ株のセグメント１は、ＰＢ１コード領域中の別のリーディングフレームから生成される小タンパク質、ＰＢ１−Ｆ２をコードする。セグメント４は、感染中の細胞付着および進入に関与する表面糖タンパク質である赤血球凝集素（ＨＡ）をコードする。セグメント５は、ウイルスＲＮＡに結合する主要な構造成分であるヌクレオキャプシド核タンパク質（ＮＰ）ポリペプチドをコードする。セグメント６は、ノイラミニダーゼ（ＮＡ）エンベロープ糖タンパク質をコードする。セグメント７は、Ｍ１およびＭ２と呼ばれる２つのマトリックスタンパク質をコードする。これらは、異なってスプライシングされたｍＲＮＡから翻訳される。セグメント８は、２つの非構造タンパク質、ＮＳ１およびＮＳ２をコードする。これらは、選択スプライシングされたｍＲＮＡ変異体から翻訳される。
【０１７８】
Ｂ型インフルエンザの８つのゲノムセグメントは、１１タンパク質をコードしている。３つの最も大きい遺伝子は、ＲＮＡポリメラーゼの構成要素、ＰＢ１、ＰＢ２、およびＰＡをコードする。セグメント４は、ＨＡタンパク質をコードする。セグメント５は、ＮＰをコードする。セグメント６は、ＮＡタンパク質およびＮＢタンパク質をコードする。ＮＢおよびＮＡの両タンパク質が、バイシストロニックｍＲＮＡの重複したリーディングフレームから翻訳される。Ｂ型インフルエンザのセグメント７は、２つタンパク質、Ｍ１およびＢＭ２もコードする。最も小さいセグメントは２つの産物をコードする。すなわち、完全長ＲＮＡから翻訳されるＮＳ１、および、スプライシングされたｍＲＮＡ変異体から翻訳されるＮＳ２である。
【０１７９】
インフルエンザウイルスワクチン
これまで、インフルエンザウイルスワクチンは、主として孵化鶏卵で、適切な株の実証的な予測に基づいて選択されたウイルス株を用いて、生成されてきた。より最近になって、選択された赤血球凝集素およびノイラミニダーゼ抗原を、承認されている弱毒、温度感受性のマスター株のコンテクストに組み込む再集合体ウイルスが生成された。鶏卵中でウイルスを複数回継代させて培養した後、インフルエンザウイルスを回収し、任意選択で、例えば、ホルムアルデヒドおよび／またはβ−プロピオラクトンを用いて不活性化させる（または、代わりに弱毒化生ワクチンとして用いる）。
【０１８０】
しかし、この方法でのインフルエンザワクチンの生産には、いくつかのの重大の懸念がある。例えば、鶏卵から残留する夾雑物は、強い抗原性および／または発熱性である可能性がある。また、投与の際に重大な副作用を頻繁にもたらす可能性もある。したがって、本明細書に記載したように、本発明の一態様は、何らかの割合の卵成分を、動物を含まない培地で置換することを含む。通常、さらに重要なことに、ワクチン生産のために指定されるウイルス株は、次のインフルエンザシーズンの何カ月も前に、選択および分配して、インフルエンザワクチンの生産および不活性化のための時間を残しておかなければならない。重ねて、例えば、本発明の方法および組成物を使用することで、生産時間のいかなる改良が得られても、それは非常に望ましいことである。
【０１８１】
組換え型および再集合体ワクチンを細胞培養で生産しようとする試みは、ワクチン生産のために承認されているいくつかの株が、標準的な細胞培養条件下で効率的に増殖できないということによって妨げられている。したがって、発明者らおよび彼らの同僚による以前の研究は、組換え型および再集合体ウイルスを培養で生成するベクターシステムおよび方法を提供し、それによって、１つまたは多数の選択された抗原性ウイルス株に対応するワクチンを迅速に生成するのを可能にした。上記に引用された、「Multi-Plasmid System for the production of Influenza virus」を参照のこと。当然ながら、そのような再集合体は、任意選択で、鶏卵中で、さらに増幅される。通常、培養は、細胞培養インキュベーターなどのシステムで、湿度およびＣＯ２を制御し、サーモスタットなどの温度調整器を用いて定温に維持し、温度が３５℃を超えないことを確実にする。そのような先導的研究、および他のワクチン生産は、本発明の全体または一部の使用によってさらに最適化および合理化することができる。
【０１８２】
再集合体インフルエンザウイルスは、関心のある株（例えば、関心のある抗原変異体）に由来する相補的なセグメントと組み合わせて、マスターインフルエンザウイルスのゲノムセグメントに対応するベクターサブセットを導入することによって、容易に得ることができる。通常、マスター株は、ワクチン投与に関係のある望ましい特性に基づいて選択される。例えば、ワクチン生産、例えば、弱毒生ワクチンの生産のために、マスタードナーウイルス株を、弱毒表現型、寒冷適応性および／または温度感受性で選別してもよい。
【０１８３】
ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）
前述の通り、インフルエンザワクチンには多数の例とタイプとが存在する。例示的インフルエンザワクチンの一例がＦｌｕＭｉｓｔ（商標）であり、これは、インフルエンザ疾患から子供と成体とを保護する弱毒生ワクチンである（Ｂｅｌｓｈｅら（１９９８）、「The efficacy of live attenuated cold-adapted trivalent, intranasal influenza virus vaccine in children」、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．、第３３８巻、１４０５〜１２頁；Ｎｉｃｈｏｌら（１９９９）、「Effectiveness of live, attenuated intrarasal influenza virus vaccine in healthy, working adults: a randomized controlled trial」、ＪＡＭＡ、第２８２巻、１３７〜４４頁）。典型的な実施形態では、本発明の方法および組成物を、ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチン生産に適合させるか、またはこれと共に使用することが好ましい。しかし、当業者ならば、本明細書に記載のステップ／組成物は、同様のウイルスワクチンの生産、または異なったウイルスワクチンの生産にさえ適合性があることが理解されよう。
【０１８４】
ＦｌｕＭｉｓｔ（商標）ワクチン株は、例えば、野生型株由来のＨＡおよびＮＡ遺伝子セグメントを含有し、これと、通常のマスタードナーウイルス（ＭＤＶ）由来の６つの遺伝子セグメント、ＰＢ１、ＰＢ２、ＰＡ、ＮＰ、Ｍ、およびＮＳとで、このワクチンが記述される。ＦｌｕＭｉｓｔのＡ型インフルエンザ用ＭＤＶ（ＭＤＶ−Ａ）は、野生型Ａ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０（Ａ／ＡＡ／６／６０）株を、ニワトリ腎臓一次組織培養で、連続的に温度を低下させながら連続継代することによって生成された（Ｍａａｓｓａｂ（１９６７）、「Adaptation and growth characteristics of influenza virus at 25 degrees C」、Ｎａｔｕｒｅ、第２１３巻、６１２〜４頁）。ＭＤＶ−Ａは、２５℃で効率的に複製するが（ｃａ、寒冷適応）、その増殖は３８および３９℃（ｔｓ、温度感受性）で制限される。さらに、このウイルスは、感染したフェレットの肺では複製しない（ａｔｔ、弱毒）。ｔｓ表現型は、気管の最低温の領域以外のすべてで複製を制限することによって、ヒトにおけるワクチンの弱毒化に寄与すると考えられている。この特性の安定性は動物モデルおよび臨床試験で実証されている。化学突然変異誘発で生成されたインフルエンザ株のｔｓ表現型とは対照的に、感染したハムスターでの継代の後、または小児からの脱落単離株で、ＭＤＶ−Ａのｔｓ特性が戻ることはない（最近の概観に関しては、Ｍｕｒｐｈｙ＆Ｃｏｅｌｉｎｇｈ（２００２）、「Principles underlying the development and use of live attenuated cold adapted influenza A and B virus vaccines」、Ｖｉｒａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ．、第１５巻、２９５〜３２３頁参照）。
【０１８５】
１２株の別々の６：２再集合体株を含む、２０，０００人以上の成人および子供の臨床試験によって、これらのワクチンが弱毒化されており、安全で、かつ有効であることが示された。（Ｂｅｌｓｈｅら（１９９８）、「The efficacy of live attenuated cold-adapted, trivalent, intranasal influenza virus vaccine in children」、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．、第３３８巻、１４０５〜１２頁；Ｂｏｙｃｅら（２０００）、「Safety and immunogenicity of adjuvanted and unadjuvanted subunit influenza vaccines administered intranasally to healthy adults」、Ｖａｃｃｉｎｅ、第１９巻、２１７〜２６頁；Ｅｄｗａｒｄｓら（１９９４）、「A randomized controlled trial of cold adapted and inactivated vaccines for the prevention of influenza A disease」、Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．、第１６９巻、６８〜７６頁；Ｎｉｃｈｏｌら（１９９９）、「Effectivenese of live, attenuated intranasal influenza virus vaccine in healthy, working adults: a randomized controlled trial」、ＪＡＭＡ、第２８２巻、１３７〜４４頁）。ＭＤＶ−Ａの６つの内部遺伝子と、野生株ウイルスの２つのＨＡおよびＮＡ遺伝子セグメントとを保持する再集合体（すなわち、６：２再集合体）は、一貫してｃａ、ｔｓ、およびａｔｔ表現型を維持する。（Ｍａａｓｓａｂら（１９８２）、「Evaluation of a cold-recombinant influenza virus vaccine in ferrets.」、Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．、第１４６巻、７８０〜９００頁）。しかし、Ｂ型インフルエンザ株を用いたそのような再集合ウイルスの生産はより困難である。
【０１８６】
最近の研究は、クローン化されたｃＤＮＡから完全なＢ型インフルエンザウイルスを生成する８プラスミドシステムと、鼻腔内投与に有用な生ウイルスワクチン製剤などのワクチン製剤に適した弱毒生ＡおよびＢ型インフルエンザウイルスを生産する方法とを示した。上記に引用した、「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照のこと。
【０１８７】
以前に記載されたシステムおよび方法は、ＦｌｕＭｉｓｔ（登録商標）などの鼻腔内投与に適したワクチンなどの弱毒生ワクチンを含めた、ワクチンとしての使用に適したウイルスを含めた、組換え型および再集合体ＡおよびＢ型インフルエンザウイルスを、細胞培養で迅速に生成するのに有用である。本明細書に記載の本発明の方法は、ワクチン用のウイルスを、より安定に、一貫して、生産的な方法で生成するために、任意選択で、例えば、ワクチン生産用の再集合インフルエンザウイルスを含む、そのような以前の研究と共同して、または併用して用いられる。
【０１８８】
細胞培養
前述のように、インフルエンザウイルスは、任意選択で細胞培養で増殖させることができる。通常、ウイルスの伝播は、宿主細胞が一般的に培養されている培地組成物中で行われる。インフルエンザウイルスの複製に適した宿主細胞には、例えば、２９３Ｔ細胞、ＣＯＳ７細胞を含めた、Ｖｅｒｏ細胞、ＢＨＫ細胞、ＭＤＣＫ細胞、２９３細胞、およびＣＯＳ細胞が含まれる。一般的に、共培養は上記細胞系のうち２つを含み、例えば、複製効率を改善するために、ＭＤＣＫ細胞と、２９３ＴまたはＣＯＳ細胞とが、例えば、１：１の比率で利用される。通常、細胞は、血清（例えば、１０％ウシ胎仔血清）を補充したダルベッコ改変イーグル培地、または無血清培地などの標準的な市販培地中で、制御された湿度、中性の緩衝ｐＨ（例えば、７．０から７．２までのｐＨ）を維持するのに適したＣＯ２濃度の下で培養される。培地は、任意選択で、細菌増殖を予防するために、例えば、ペニシリン、ストレプトマイシンなどの抗生物質、および／またはＬ−グルタミン、ピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸などの追加の栄養物、好ましい増殖特性を促進する追加のサプリメント、例えば、トリプシン、β−メルカプトエタノール、および同様のものを含有している。
【０１８９】
培養されている哺乳類細胞を維持する操作法は、広範に報告されており、当業者には周知である。全般的プロトコールは、例えば、Ｆｒｅｓｈｎｅｙ（１９８３）、「Culture of Animal Cells: Manual of Basic Technique」、Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ社、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ；Ｐａｕｌ（１９７５）、「Cell and Tissue Culture」、第５版、Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎ、Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ；Ａｄａｍｓ（１９８０）、「Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology-Cell Culture for Biochemists」、ＷｏｒｋおよびＢｕｎｉｏｎ（編集）、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、Ａｍｓｔｅｒｄａｍに提供されている。インフルエンザウイルスのｉｎ ｖｉｔｒｏ生産において特に興味深い組織培養操作に関するさらなる詳細には、例えば、すべての目的のために本明細書に全体として組み込まれている、Ｍｅｒｔｅｎら（１９９６）、「Production of influenza virus in cell cultures for vaccine preparation」、ＣｏｈｅｎおよびＳｈａｆｆｅｒｍａｎ（編集）、「Novel Strategies in Design and Production of Vaccines」が含まれる。さらに、本発明に適合させたそのような操作法の変形は、通常の実験で容易に決定されるものであり、当業者ならば熟知していよう。
【０１９０】
インフルエンザウイルス産生用の細胞は血清含有培地でも、無血清培地でも培養することができる。場合によって、例えば、精製ウイルスを調製するには、通常、宿主細胞を無血清条件で増殖させるのが望ましい。細胞の培養は、小規模で、例えば、２５ｍｌ未満の培地で、培養試験管またはフラスコで、または、大きいフラスコで撹拌させながら、回転板ボトル中で、または、マイクロキャリアビーズ（例えば、Ｄｏｒｍａｃｅｌｌ、Ｐｆｅｉｆｅｒ＆ＬａｎｇｅｎなどのＤＥＡＥ−デキストランマイクロキャリアビーズ；Ｓｕｐｅｒｂｅａｄ、Ｆｌｏｗ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ；Ｈｉｌｌｅｘ、ＳｏｌｏＨｉｌｌ、Ａｎｎ Ａｒｂｏｒなどの、スチレン共重合体トリメチルアミンビーズ）上で、フラスコ、ボトル、または反応器培養中で行うことができる。マイクロキャリアビーズは、小球（直径１００〜２００ミクロンの範囲）であって、接着細胞の増殖用に、細胞培養容積あたり、広大な表面積を提供する。例えば、１リットルの培地は２０００万個以上のマイクロキャリアビーズを含有でき、それによって、８０００平方センチメートル以上の増殖面積を提供する。ウイルスの商業生産、例えば、ワクチン生産のためには、多くの場合、バイオリアクターまたは発酵槽で細胞を培養するのが望ましい。バイオリアクターは、１リットル未満の容積から、１００リットル以上のものまで、例えば、Ｃｙｔｏ３バイオリアクター（Ｏｓｍｏｎｉｃｓ社、Ｍｉｎｎｅｔｏｎｋａ、ＭＮ）；ＮＢＳバイオリアクター（Ｎｅｗ Ｂｒｕｎｓｗｉｃｋ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、Ｅｄｉｓｏｎ、Ｎ．Ｊ．）；Ｂ．Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社（Ｂ．Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ社、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、ドイツ）の実験室および商業規模バイオリアクターが利用可能である。
【０１９１】
温度依存性の多プラスミドシステム（例えば、上記に引用した「Multi-Plasmid System for the Production of Influenza Virus」を参照）を用い、濾過などのためにウイルス溶液を加熱して、組換え型および／または再集合体インフルエンザウイルスの効率的回収を保障するために、本発明の多くの望ましい態様では、培養容積にかかわらず、培養が適切な温度に維持されていることが重要である。通常、細胞培養システムおよび／または他の溶液の温度を検知して、維持するための調整器、例えば、サーモスタットまたは他の装置を利用して適正な期間（例えば、ウイルス複製など）中温度が正しいレベルにあることを保証する。
【０１９２】
本明細書に記載の一部の実施形態（例えば、再集合ウイルスがベクター上のセグメントから生成される場合）では、インフルエンザゲノムセグメントを含むベクターを、例えば、リン酸カルシウム共沈、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション法、リポフェクション、およびポリアミントランスフェクション試薬を利用するトランスフェクションを含めた、当技術分野で周知の、真核細胞に異種核酸を導入する方法に従って、宿主細胞に導入する（例えば、トランスフェクトする）。例えば、再集合ウイルスなどを生成するため、ベクター、例えば、プラスミドを、メーカーの指示に従ってポリアミントランスフェクション試薬ＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴ１（Ｍｉｒｕｓ社）を用いて、ＣＯＳ細胞、２９３Ｔ細胞、または、ＣＯＳ細胞もしくは２９３Ｔ細胞と、ＭＤＣＫ細胞との組合せなどの宿主細胞にトランスフェクトすることができる。各約１μｇのベクターを、１６０μｌの培地、好ましくは全容積で２００μｌの無血清培地で希釈された約２μｌのＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴＩで、宿主細胞の集団に導入するべきである。ＤＮＡ：トランスフェクション試薬混合物を室温で４５分間インキュベートし、その後、８００μｌの培地を添加する。トランスフェクション混合物を宿主細胞に添加し、細胞を上述の通りに、あるいは、当業者に周知の他の方法で培養する。従って、細胞培養で組換え型または再集合体ウイルスを生産するためには、８つのゲノムセグメント（ＰＢ２、ＰＢ１、ＰＡ ＮＰ、Ｍ、ＮＳ、ＨＡおよびＮＡ）のそれぞれを取り入れたベクターを、約２０μｌのＴｒａｎｓＩＴ−ＬＴ１と混合し、宿主細胞の中にトランスフェクトする。任意選択で、血清添加培地を、トランスフェクション前に無血清培地、例えば、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉで置換し４〜６時間、インキュベートする。
【０１９３】
別法として、そのようなインフルエンザゲノムセグメントを取り込んだベクターを宿主細胞に導入するのに、エレクトロポレーションを利用することができる。例えば、Ａ型インフルエンザまたはＢ型インフルエンザウイルスを組み込んだプラスミドベクターは、以下の操作法に従って、エレクトロポレーションを用いてＶｅｒｏ細胞に導入するのが好都合である。簡潔には、例えば、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を補充した改変イーグル培地（ＭＥＭ）で育成された約５×１０６のＶｅｒｏ細胞を０．４ｍｌ ＯｐｔｉＭＥＭに再懸濁し、エレクトロポレーションキュベットに入れる。最大２５μｌの容積中のＤＮＡ ２０μｇをキュベット中の細胞に添加し、タッピングによって穏やかに混和させる。エレクトロポレーションは、メーカー（例えば、Ｃａｐａｃｉｔａｎｃｅ Ｅｘｔｅｎｄｅｒ Ｐｌｕｓを接続したＢｉｏＲａｄ Ｇｅｎｅ ＰｕｌｓｅｒＩＩ）の指示に従って、３００ボルト、９５０マイクロファラッド、時定数２８〜３３ｍｓｅｃで行う。穏やかなタッピングによって細胞を再混合し、エレクトロポレーションの約１〜２分後に、１０％ＦＢＳを含有するＭＥＭ ０．７ｍｌを、キュベットに直接添加する。細胞は、その後、２ｍｌ ＭＥＭ、１０％ＰＢＳを含有する６ウェル組織培養皿の２つのウェルに移す。残留したいかなる細胞も回収するため、キュベットを洗浄し、洗浄懸濁液を２つのウェルに分割する。最終容積は約３．５ｍｌである。その後、ウイルスの増殖を許容する条件下、例えば、寒冷適応株には約３３℃で細胞をインキュベートする。
【０１９４】
キット
本発明の方法および組成物の使用を促進するため、例えば、尿膜腔液中の再集合ウイルス、および様々な製剤など、任意のワクチン成分および／または組成物、ならびに、緩衝液、細胞、培養液など、実験上または治療上のワクチン用途におけるインフルエンザウイルスのパッケージングおよび感染に有用である追加の構成要素を、キットの形態で包装することができる。通常、キットは、上記の構成要素に加えて、追加の物質を含有しており、それには、例えば、本発明の方法を行うための説明書、包装材料、および容器を含めることができる。
【０１９５】
明快さと理解とを目的として、以上の発明を、ある程度詳細に説明したが、この開示を読めば、本発明の真の範囲から逸脱することなく、形式および詳細に様々な改変を加えられることが、当業者には明らかであろう。例えば、上述した技法および装置は、すべて様々な組合せで用いることができる。本出願で引用されたすべての刊行物、特許、特許出願、または他の文書は、それぞれの個々の刊行物、特許、特許出願、または他の文書が、すべての目的のために引用によって組み込まれるように個別に示されている程度に、すべての目的において引用によって全体として組み込まれる。
【０１９６】
表
【表１】
【０１９７】
【表２】
【０１９８】
【表３】
【０１９９】
【表４】
【０２００】
【表５】
【０２０１】
【表６】
【０２０２】
【表７】
【０２０３】
【表８】
【０２０４】
【表９】
【０２０５】
【表１０】
【０２０６】
【表１１】
【０２０７】
【表１２】
【０２０８】
【表１３】
【０２０９】
【表１４】
【０２１０】
【表１５】
【０２１１】
【表１６】
【０２１２】
【表１７】
【０２１３】
【表１８】
【０２１４】
【表１９】
【０２１５】
【表２０】
【０２１６】
【表２１】
【０２１７】
【表２２】
【０２１８】
【表２３】
【０２１９】
【表２４】
【０２２０】
【表２５】
【０２２１】
【表２６】
【０２２２】
【表２７】
【０２２３】
【表２８】
【０２２４】
【表２９】
【０２２５】
【表３０】
【０２２６】
【表３１】
【０２２７】
【表３２】
【０２２８】
【表３３】
【０２２９】
【表３４】
【０２３０】
【表３５】
【０２３１】
【０２３２】
【表３６】
【０２３３】
【表３７】
【０２３４】
【表３８】
【０２３５】
【表３９】
【０２３６】
【表４０】
【０２３７】
【表４１】
【０２３８】
【表４２】
【０２３９】
【表４３】
【０２４０】
【表４４】
【０２４１】
【表４５】
【０２４２】
【表４６】
【０２４３】
【表４７】
【０２４４】
【表４８】
【０２４５】
【表４９】
【０２４６】
【表５０】
【０２４７】
【表５１】
【０２４８】
【表５２】
【０２４９】
【表５３】
【０２５０】
【表５４】
【０２５１】
【表５５】
【０２５２】
【表５６】
【０２５３】
【表５７】
【０２５４】
【表５８】
【０２５５】
【表５９】
【図面の簡単な説明】
【０２５６】
【図１】ＤＥＫ ＴＣ−２４における３３℃および２５℃での感染後のＭ遺伝子型決定を示す図である。
【図２】３３℃で５：３および６：２の力価が異なることを示すプラークアッセイおよびデータを示す図である。
【図３】６：２対５：３再集合体の増殖曲線を示す図である。
【図４】ＭＤＶ−Ｂおよび野生型Ｂ型ウイルスのＭ１配列を示す図である。
【図５】ＭＤＶ−Ｂおよび野生型Ｂ型ウイルスのＭ２配列を示す図である。
【図６】ＭＤＶ Ｂ−Ｍ１で保存されている２箇所の部位における突然変異を示す図である。
【図７】Ｂ／ＨＫ ６：２ Ｍ１突然変異の増殖曲線を示す図である。
【図８】様々なＭＯＩでの様々なＣＥＫ細胞の感染を示す図である。
【図９】ワクチン生産工程中の潜在的微生物汚染を示すフローチャートである。
【図１０】赤外線イメージングによる個々の卵の温度崩壊率を示す図である。
【図１１】生存卵、無精卵、および死亡卵の熱イメージングを示す図である。
【図１２】ウイルス収集物濃縮の模式的フローチャートである。
【図１３】第５洗浄液とＮＡＦタンパク質の比較を示す図である。
【図１４】濃縮前のＮ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９ １−Ｘ−未処理試料のアッセイを示す図である。
【図１５】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９ １０Ｘ濃縮試料のアッセイ示す図である。
【図１６】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１Ｘおよび１０Ｘの比較と５回の洗浄後の１Ｘ−Ｗ試料とを示す図である(パネルＡ−Ｂ)。
【図１７】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１Ｘおよび１Ｘ−Ｗ試料の比較を示す図である。
【図１８Ａ】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１０Ｘおよび１０Ｘ−Ｗの比較を示す図である。
【図１８Ｂ−Ｃ】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の透過液と；Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の５回の洗浄とを示す図である。
【図１９】洗浄の回数および除去された不純物を比較するＳＥＣ分析を示す図である。
【図２０】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の１ＸＷおよび１０Ｘ−Ｗの比較を示す図である。
【図２１】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の９６ウェルプレートアッセイを示す図である。
【図２２】保持液および透過液におけるノイラミニダーゼ活性／ウイルス精製のグラフを示す図である。
【図２３】対照、１０Ｘ、１０Ｘ−Ｗ、および１Ｘ−ＷのＲＨＰＬＣを示す図である。
【図２４】対照、１０Ｘ、１Ｘ−Ｗ、および１０Ｘ−Ｗ試料のグラフを示す図である。
【図２５】透過液および洗浄液１〜６のＲＨＰＬＣを示す図である。
【図２６】ＲＨＰＬＣオボムコイド除去（ピーク面積）のグラフを示す図である。
【図２７】リゾチーム除去（ピーク面積）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図２８】コンアルブミン除去（ピーク面積）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図２９】オボアルブミン除去（ピーク面積による）のＲＨＰＬＣグラフを示す図である。
【図３０】Ａｇｉｌｅｎｔ２１００によるオボアルブミン分析のグラフを示す図である。
【図３１】抗Ａ／Ｎｅｗ ＣａｌｅｄｏｎｉａのウエスタンブロットＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示す図である。
【図３２】Ａ／Ｎｅｗ Ｃａｌｅｄｏｎｉａ／２０／９９の５回の洗浄後の１０Ｘ−Ｗ試料のアッセイを示す図である。
【図３３】ＲＴＰＣＲによるＲＮＡ分析のグラフを示す図である。
【図３４】ＳＥＣによるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇ−細胞培養増殖のモニタリングを示す図である。
【図３５】Ｖｅｒｏ細胞におけるＡ／Ｂｅｉｊｉｎｇの細胞培養収集物を示す図である。
【図３６】２リットルのＡ／Ｐａｎａｍａ細胞培養の濃縮を示す図である。
【図３７】２リットルのＢ／Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ細胞培養を１０ｍｌに濃縮することを示す図である。
【図３８】例示的なウイルス貯蔵製剤の安定性に関する４つのグラフを示す図である。
【図３９】様々なウイルス株を用いた例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性に関するグラフを示す図である。
【図４０】様々なウイルス株を用いた例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性に関するグラフを示す図である。
【図４１】様々なシトレート濃度を有する例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性を示す図である(パネルＡ−Ｃ)。
【図４２】様々なＥＤＴＡ濃度を有する例示的ウイルス貯蔵製剤の安定性を示す図である(パネルＡ−Ｃ)。
【図４３】様々なウイルス株を用いた未精製ウイルス収集物製剤の９カ月にわたる安定性を示す図である。
【図４４】リン酸緩衝液に関連した、製剤の初期力価減失を示す図である。
【図４５】６カ月目における様々な製剤の安定性勾配の全体像を提供する図である。
【図４６】６カ月目における様々な製剤の安定性勾配の全体像を提供する図である。
【図４７】ゼラチンおよびＰＶＰ／ＥＤＴＡを含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図４８】様々なｐＨにおけるヒスチジンを含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図４９】様々な量のショ糖を含む様々な製剤の安定性を示す図である。
【図５０】ウェルの吸光度読取り値に対して、その値の頻度（その吸光度値を与えるウェルの数）をプロットすることによって得られたヒストグラムである。
【図５１】吸光度読取り値に対して値の頻度をプロットすることによって得られたヒストグラムである。
【図５２】６：２インフルエンザ再集合体を生成する一般的過程を示す図である。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｂ．前記インフルエンザウイルスを暖めるステップと、
ｃ．膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項２】
前記インフルエンザウイルスが、１株もしくは複数のＡ型インフルエンザウイルス株、および／または１株もしくは複数のＢ型インフルエンザウイルス株を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
濾過するステップが、前記インフルエンザウイルス組成物にマイクロフィルターを通過させるステップを含み、前記マイクロフィルターが、約０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの孔径を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３１℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃以上でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃〜約４０℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３６℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３４℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項９】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３０℃〜約３２℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項１０】
前記ウイルスを濾過するステップの前に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記ウイルスを濾過するステップの間に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記ウイルスを濾過するステップの前、および前記ウイルスを濾過するステップの間の両方で、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１３】
暖めるステップが約１時間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
暖めるステップが約３０分間〜約２４０分間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
暖めるステップが約４５分間〜約２００分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
加熱が約６０分間〜約９０分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
請求項１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項１８】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項２４】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップを含み、接種後、前記継代中に前記卵を揺動させる方法。
【請求項２５】
揺動させるステップが、１分間に約１サイクル以下の速度で、１分間に約５サイクル以下の速度で、または１分間に約１０サイクル以下の速度で、前記卵を傾斜させることを含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
前記卵を約１２時間揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２７】
前記卵を約２４〜４８時間揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２８】
二次インキュベーションをさらに含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項２９】
前記二次インキュベーションの間に前記卵を揺動させる、請求項２８に記載の方法。
【請求項３０】
前記インフルエンザウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス、および／またはＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項３１】
前記揺動させた卵のＴＣＩＤ５０が、揺動させなかった卵を介して継代された同一のインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ ｌｏｇ大きい、請求項２４に記載の方法。
【請求項３２】
請求項２４に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３３】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項３４】
請求項３３に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３５】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｂ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｃ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
を含む方法。
【請求項３６】
前記インフルエンザウイルスが、弱毒インフルエンザウイルス、寒冷適応インフルエンザウイルス、温度感受性インフルエンザウイルス、または、弱毒寒冷適応温度感受性インフルエンザウイルスのうちの１つまたは複数を含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記複数のベクターが、１つまたは複数のＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項３８】
請求項３５に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項４０】
請求項３９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４１】
野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るために選別することをさらに含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項４２】
選別するステップが、前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることを含む、請求項４１に記載の方法。
【請求項４３】
インキュベーションが、１個または複数の卵の中で行われる、請求項４２に記載の方法。
【請求項４４】
請求項４２に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４２に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４７】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．ｉ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｉｉ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｉｉｉ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
ｂ．前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、
ｃ．揺動させている卵を介して前記インフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｄ．前記インフルエンザウイルスを加熱し、膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項４８】
請求項４７に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４７に記載の方法。
【請求項５０】
請求項４９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項５１】
前記インフルエンザウイルス組成物が、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイされる、請求項１に記載の方法。
【請求項５２】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、前記組成物が、約１０％〜約６０％の未分画の正常な尿膜腔液を含む方法。
【請求項５３】
前記組成物が約１％〜約５％のアルギニンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５４】
前記インフルエンザウイルス組成物が、正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液で希釈されている、請求項１に記載の方法。
【請求項５５】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約１％〜約４％のゼラチンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５６】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２％のゼラチンを含む、請求項５５に記載の方法。
【請求項５７】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約５％〜約１０％のショ糖を含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５８】
前記組成物が約７％または約１０％のショ糖を含む、請求項５７に記載の方法。
【請求項５９】
前記組成物が、約２％のアルギニンを含む、請求項５３に記載の方法。
【請求項６０】
前記組成物が、約８０〜約１５０ｍＭのヒスチジンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項６１】
前記組成物が、約１００ｍＭのヒスチジンを含む、請求項６０に記載の方法。
【請求項６２】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２℃〜約８℃で、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１８カ月、または少なくとも２４カ月実質的に安定である、請求項５２に記載の方法。
【請求項６３】
前記組成物が、約４℃で実質的に安定である、請求項６２に記載の方法。
【請求項６５】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６６】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、前記継代中に前記卵が揺動され、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が前記継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６７】
インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｂ．前記インフルエンザウイルスを暖めるステップと、
ｃ．膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項２】
前記インフルエンザウイルスが、１株もしくは複数のＡ型インフルエンザウイルス株、および／または１株もしくは複数のＢ型インフルエンザウイルス株を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
濾過するステップが、前記インフルエンザウイルス組成物にマイクロフィルターを通過させるステップを含み、前記マイクロフィルターが、約０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの孔径を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３１℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃以上でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃〜約４０℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３６℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３４℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項９】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３０℃〜約３２℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項１０】
前記ウイルスを濾過するステップの前に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記ウイルスを濾過するステップの間に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記ウイルスを濾過するステップの前、および前記ウイルスを濾過するステップの間の両方で、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１３】
暖めるステップが約１時間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
暖めるステップが約３０分間〜約２４０分間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
暖めるステップが約４５分間〜約２００分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
加熱が約６０分間〜約９０分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
請求項１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項１８】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項２０】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップを含み、接種後、前記継代中に前記卵を揺動させる方法。
【請求項２１】
揺動させるステップが、１分間に約１サイクル以下の速度で、１分間に約５サイクル以下の速度で、または１分間に約１０サイクル以下の速度で、前記卵を傾斜させることを含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
前記卵を約１２時間揺動させる、請求項２０に記載の方法。
【請求項２３】
前記卵を約２４〜４８時間揺動させる、請求項２０に記載の方法。
【請求項２４】
二次インキュベーションをさらに含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２５】
前記二次インキュベーションの間に前記卵を揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
前記インフルエンザウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス、および／またはＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２７】
前記揺動させた卵のＴＣＩＤ５０が、揺動させなかった卵を介して継代された同一のインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ ｌｏｇ大きい、請求項２０に記載の方法。
【請求項２８】
請求項２０に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項２９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項３０】
請求項２９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｂ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｃ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
を含む方法。
【請求項３２】
前記インフルエンザウイルスが、弱毒インフルエンザウイルス、寒冷適応インフルエンザウイルス、温度感受性インフルエンザウイルス、または、弱毒寒冷適応温度感受性インフルエンザウイルスのうちの１つまたは複数を含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３３】
前記複数のベクターが、１つまたは複数のＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３４】
請求項３１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３６】
請求項３５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３７】
野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るために選別することをさらに含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３８】
選別するステップが、前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることを含む、請求項３７に記載の方法。
【請求項３９】
インキュベーションが、１個または複数の卵の中で行われる、請求項３８に記載の方法。
【請求項４０】
請求項３８に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４１】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３８に記載の方法。
【請求項４２】
請求項４１に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４３】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．ｉ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｉｉ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｉｉｉ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
ｂ．前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、
ｃ．揺動させている卵を介して前記インフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｄ．前記インフルエンザウイルスを加熱し、膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項４４】
請求項４３に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４３に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４７】
前記インフルエンザウイルス組成物が、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイされる、請求項１に記載の方法。
【請求項４８】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、前記組成物が、約１０％〜約６０％の未分画の正常な尿膜腔液を含む方法。
【請求項４９】
前記組成物が約１％〜約５％のアルギニンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５０】
前記インフルエンザウイルス組成物が、正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液で希釈されている、請求項４８に記載の方法。
【請求項５１】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約１％〜約４％のゼラチンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５２】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２％のゼラチンを含む、請求項５１に記載の方法。
【請求項５３】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約５％〜約１０％のショ糖を含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５４】
前記組成物が約７％または約１０％のショ糖を含む、請求項５３に記載の方法。
【請求項５５】
前記組成物が、約２％のアルギニンを含む、請求項４９に記載の方法。
【請求項５６】
前記組成物が、約８０〜約１５０ｍＭのヒスチジンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５７】
前記組成物が、約１００ｍＭのヒスチジンを含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項５８】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２℃〜約８℃で、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１８カ月、または少なくとも２４カ月実質的に安定である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５９】
前記組成物が、約４℃で実質的に安定である、請求項５８に記載の方法。
【請求項６０】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６１】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、前記継代中に前記卵が揺動され、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が前記継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６２】
インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６３】
インフルエンザウイルス、アルギニン、ショ糖、ＮＡＦおよびゼラチンを含んでなる安定したインフルエンザウイルスワクチン組成物。
【請求項６４】
約１％〜約４％濃度のアルギニンを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６５】
約５％〜約１０％濃度のショ糖を含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６６】
約１０％〜約６０％濃度のＮＡＦを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６７】
約１％〜約４％濃度のゼラチンを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６８】
約２℃〜約８℃で安定している、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６９】
インフルエンザウイルス、約１％〜約４％のアルギニン、約５％〜約１０％のショ糖、約１０％〜約６０％のＮＡＦおよび約１％〜約４％のゼラチンを含んでなる、約２℃〜約８℃で安定しているインフルエンザウイルスワクチン組成物。
【請求項１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｂ．前記インフルエンザウイルスを暖めるステップと、
ｃ．膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項２】
前記インフルエンザウイルスが、１株もしくは複数のＡ型インフルエンザウイルス株、および／または１株もしくは複数のＢ型インフルエンザウイルス株を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
濾過するステップが、前記インフルエンザウイルス組成物にマイクロフィルターを通過させるステップを含み、前記マイクロフィルターが、約０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの孔径を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３１℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃以上でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃〜約４０℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３６℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３４℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項９】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３０℃〜約３２℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項１０】
前記ウイルスを濾過するステップの前に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記ウイルスを濾過するステップの間に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記ウイルスを濾過するステップの前、および前記ウイルスを濾過するステップの間の両方で、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１３】
暖めるステップが約１時間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
暖めるステップが約３０分間〜約２４０分間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
暖めるステップが約４５分間〜約２００分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
加熱が約６０分間〜約９０分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
請求項１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項１８】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項２４】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップを含み、接種後、前記継代中に前記卵を揺動させる方法。
【請求項２５】
揺動させるステップが、１分間に約１サイクル以下の速度で、１分間に約５サイクル以下の速度で、または１分間に約１０サイクル以下の速度で、前記卵を傾斜させることを含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
前記卵を約１２時間揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２７】
前記卵を約２４〜４８時間揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２８】
二次インキュベーションをさらに含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項２９】
前記二次インキュベーションの間に前記卵を揺動させる、請求項２８に記載の方法。
【請求項３０】
前記インフルエンザウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス、および／またはＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項３１】
前記揺動させた卵のＴＣＩＤ５０が、揺動させなかった卵を介して継代された同一のインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ ｌｏｇ大きい、請求項２４に記載の方法。
【請求項３２】
請求項２４に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３３】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項２４に記載の方法。
【請求項３４】
請求項３３に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３５】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｂ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｃ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
を含む方法。
【請求項３６】
前記インフルエンザウイルスが、弱毒インフルエンザウイルス、寒冷適応インフルエンザウイルス、温度感受性インフルエンザウイルス、または、弱毒寒冷適応温度感受性インフルエンザウイルスのうちの１つまたは複数を含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記複数のベクターが、１つまたは複数のＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項３８】
請求項３５に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項４０】
請求項３９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４１】
野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るために選別することをさらに含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項４２】
選別するステップが、前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることを含む、請求項４１に記載の方法。
【請求項４３】
インキュベーションが、１個または複数の卵の中で行われる、請求項４２に記載の方法。
【請求項４４】
請求項４２に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４２に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４７】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．ｉ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｉｉ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｉｉｉ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
ｂ．前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、
ｃ．揺動させている卵を介して前記インフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｄ．前記インフルエンザウイルスを加熱し、膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項４８】
請求項４７に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４７に記載の方法。
【請求項５０】
請求項４９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項５１】
前記インフルエンザウイルス組成物が、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイされる、請求項１に記載の方法。
【請求項５２】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、前記組成物が、約１０％〜約６０％の未分画の正常な尿膜腔液を含む方法。
【請求項５３】
前記組成物が約１％〜約５％のアルギニンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５４】
前記インフルエンザウイルス組成物が、正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液で希釈されている、請求項１に記載の方法。
【請求項５５】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約１％〜約４％のゼラチンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５６】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２％のゼラチンを含む、請求項５５に記載の方法。
【請求項５７】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約５％〜約１０％のショ糖を含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項５８】
前記組成物が約７％または約１０％のショ糖を含む、請求項５７に記載の方法。
【請求項５９】
前記組成物が、約２％のアルギニンを含む、請求項５３に記載の方法。
【請求項６０】
前記組成物が、約８０〜約１５０ｍＭのヒスチジンを含む、請求項５２に記載の方法。
【請求項６１】
前記組成物が、約１００ｍＭのヒスチジンを含む、請求項６０に記載の方法。
【請求項６２】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２℃〜約８℃で、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１８カ月、または少なくとも２４カ月実質的に安定である、請求項５２に記載の方法。
【請求項６３】
前記組成物が、約４℃で実質的に安定である、請求項６２に記載の方法。
【請求項６５】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６６】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、前記継代中に前記卵が揺動され、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が前記継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６７】
インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｂ．前記インフルエンザウイルスを暖めるステップと、
ｃ．膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項２】
前記インフルエンザウイルスが、１株もしくは複数のＡ型インフルエンザウイルス株、および／または１株もしくは複数のＢ型インフルエンザウイルス株を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
濾過するステップが、前記インフルエンザウイルス組成物にマイクロフィルターを通過させるステップを含み、前記マイクロフィルターが、約０．２マイクロメーターから約０．４５マイクロメーターまでの孔径を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３１℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃以上でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
暖めるステップが、前記ウイルスを２８℃〜約４０℃でインキュベートすることを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３６℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
暖めるステップが、前記ウイルスを約２８℃〜約３４℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項９】
暖めるステップが、前記ウイルスを約３０℃〜約３２℃でインキュベートすることを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項１０】
前記ウイルスを濾過するステップの前に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記ウイルスを濾過するステップの間に、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記ウイルスを濾過するステップの前、および前記ウイルスを濾過するステップの間の両方で、暖めるステップを行う、請求項１に記載の方法。
【請求項１３】
暖めるステップが約１時間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
暖めるステップが約３０分間〜約２４０分間行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
暖めるステップが約４５分間〜約２００分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
加熱が約６０分間〜約９０分間行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
請求項１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項１８】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項２０】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップを含み、接種後、前記継代中に前記卵を揺動させる方法。
【請求項２１】
揺動させるステップが、１分間に約１サイクル以下の速度で、１分間に約５サイクル以下の速度で、または１分間に約１０サイクル以下の速度で、前記卵を傾斜させることを含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
前記卵を約１２時間揺動させる、請求項２０に記載の方法。
【請求項２３】
前記卵を約２４〜４８時間揺動させる、請求項２０に記載の方法。
【請求項２４】
二次インキュベーションをさらに含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２５】
前記二次インキュベーションの間に前記卵を揺動させる、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
前記インフルエンザウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス、および／またはＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項２７】
前記揺動させた卵のＴＣＩＤ５０が、揺動させなかった卵を介して継代された同一のインフルエンザウイルスのＴＣＩＤ５０より、少なくとも０．４ ｌｏｇ大きい、請求項２０に記載の方法。
【請求項２８】
請求項２０に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項２９】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項２０に記載の方法。
【請求項３０】
請求項２９に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３１】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｂ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｃ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
を含む方法。
【請求項３２】
前記インフルエンザウイルスが、弱毒インフルエンザウイルス、寒冷適応インフルエンザウイルス、温度感受性インフルエンザウイルス、または、弱毒寒冷適応温度感受性インフルエンザウイルスのうちの１つまたは複数を含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３３】
前記複数のベクターが、１つまたは複数のＢ型インフルエンザウイルスを含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３４】
請求項３１に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項３５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３６】
請求項３５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項３７】
野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子を含有するインフルエンザウイルスを得るために選別することをさらに含む、請求項３１に記載の方法。
【請求項３８】
選別するステップが、前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートすることを含む、請求項３７に記載の方法。
【請求項３９】
インキュベーションが、１個または複数の卵の中で行われる、請求項３８に記載の方法。
【請求項４０】
請求項３８に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４１】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項３８に記載の方法。
【請求項４２】
請求項４１に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４３】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、
ａ．ｉ．インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、
ｉｉ．前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、
ｉｉｉ．複数のインフルエンザウイルスを回収するステップと、
ｂ．前記複数のインフルエンザウイルスを、非野生型のＨＡおよびＮＡ遺伝子に特異的な１つまたは複数の抗体とインキュベートするステップと、
ｃ．揺動させている卵を介して前記インフルエンザウイルスを継代させるステップと、
ｄ．前記インフルエンザウイルスを加熱し、膜を通して前記インフルエンザウイルスを濾過するステップと、
を含む方法。
【請求項４４】
請求項４３に記載の方法で生成されたインフルエンザウイルス組成物。
【請求項４５】
前記ウイルス組成物がインフルエンザワクチン組成物を含む、請求項４３に記載の方法。
【請求項４６】
請求項４５に記載の方法で生成されたインフルエンザワクチン組成物。
【請求項４７】
前記インフルエンザウイルス組成物が、蛍光焦点アッセイを用いてアッセイされる、請求項１に記載の方法。
【請求項４８】
１つまたは複数のインフルエンザウイルス組成物を生成する方法であって、前記組成物が、約１０％〜約６０％の未分画の正常な尿膜腔液を含む方法。
【請求項４９】
前記組成物が約１％〜約５％のアルギニンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５０】
前記インフルエンザウイルス組成物が、正常な尿膜腔液を実質的に含まない緩衝液で希釈されている、請求項４８に記載の方法。
【請求項５１】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約１％〜約４％のゼラチンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５２】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２％のゼラチンを含む、請求項５１に記載の方法。
【請求項５３】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約５％〜約１０％のショ糖を含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５４】
前記組成物が約７％または約１０％のショ糖を含む、請求項５３に記載の方法。
【請求項５５】
前記組成物が、約２％のアルギニンを含む、請求項４９に記載の方法。
【請求項５６】
前記組成物が、約８０〜約１５０ｍＭのヒスチジンを含む、請求項４８に記載の方法。
【請求項５７】
前記組成物が、約１００ｍＭのヒスチジンを含む、請求項５６に記載の方法。
【請求項５８】
前記インフルエンザウイルス組成物が、約２℃〜約８℃で、少なくとも６カ月、少なくとも９カ月、少なくとも１８カ月、または少なくとも２４カ月実質的に安定である、請求項４８に記載の方法。
【請求項５９】
前記組成物が、約４℃で実質的に安定である、請求項５８に記載の方法。
【請求項６０】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が卵を介してウイルスを継代させるステップと、前記ウイルスを加熱するステップと、膜を通して前記ウイルスを濾過するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６１】
卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたインフルエンザウイルス組成物であって、前記継代中に前記卵が揺動され、前記組成物が第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が前記継代中に揺動される卵を介してインフルエンザウイルスを継代させるステップによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６２】
インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されるインフルエンザウイルス組成物であって、前記組成物は、第１のＴＣＩＤ５０を有し、前記第１のＴＣＩＤ５０が第２のＴＣＩＤ５０より大きく、前記第２のＴＣＩＤ５０が、インフルエンザウイルスのゲノムを含む複数のベクターを、インフルエンザウイルスの複製を補助できる宿主卵の集団に導入するステップと、前記宿主卵の集団を３５℃以下の温度で培養するステップと、複数のインフルエンザウイルスを回収するステップとによって生成されたものではないインフルエンザウイルスによるものである、インフルエンザウイルス組成物。
【請求項６３】
インフルエンザウイルス、アルギニン、ショ糖、ＮＡＦおよびゼラチンを含んでなる安定したインフルエンザウイルスワクチン組成物。
【請求項６４】
約１％〜約４％濃度のアルギニンを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６５】
約５％〜約１０％濃度のショ糖を含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６６】
約１０％〜約６０％濃度のＮＡＦを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６７】
約１％〜約４％濃度のゼラチンを含む、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６８】
約２℃〜約８℃で安定している、請求項６３に記載の組成物。
【請求項６９】
インフルエンザウイルス、約１％〜約４％のアルギニン、約５％〜約１０％のショ糖、約１０％〜約６０％のＮＡＦおよび約１％〜約４％のゼラチンを含んでなる、約２℃〜約８℃で安定しているインフルエンザウイルスワクチン組成物。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８Ａ】
【図１８Ｂ−Ｃ】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【図３５】
【図３６】
【図３７】
【図３８】
【図３９】
【図４０】
【図４１】
【図４２】
【図４３】
【図４４】
【図４５】
【図４６】
【図４７】
【図４８】
【図４９】
【図５０】
【図５１】
【図５２】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図１７】
【図１８Ａ】
【図１８Ｂ−Ｃ】
【図１９】
【図２０】
【図２１】
【図２２】
【図２３】
【図２４】
【図２５】
【図２６】
【図２７】
【図２８】
【図２９】
【図３０】
【図３１】
【図３２】
【図３３】
【図３４】
【図３５】
【図３６】
【図３７】
【図３８】
【図３９】
【図４０】
【図４１】
【図４２】
【図４３】
【図４４】
【図４５】
【図４６】
【図４７】
【図４８】
【図４９】
【図５０】
【図５１】
【図５２】
【公表番号】特表２００６−５１９０２８（Ｐ２００６−５１９０２８Ａ）
【公表日】平成１８年８月２４日（２００６．８．２４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００６−５０８８４１（Ｐ２００６−５０８８４１）
【出願日】平成１６年２月２５日（２００４．２．２５）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００４／００５６９７
【国際公開番号】ＷＯ２００５／０１４８６２
【国際公開日】平成１７年２月１７日（２００５．２．１７）
【出願人】（５０３０３６５５３）メッドイミューン バクシーンズ、インコーポレイティド (2)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成１８年８月２４日（２００６．８．２４）
【国際特許分類】
【出願日】平成１６年２月２５日（２００４．２．２５）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００４／００５６９７
【国際公開番号】ＷＯ２００５／０１４８６２
【国際公開日】平成１７年２月１７日（２００５．２．１７）
【出願人】（５０３０３６５５３）メッドイミューン バクシーンズ、インコーポレイティド (2)
【Ｆターム（参考）】
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