過酸化物分解酵素
【課題】 乳酸菌に由来する新規な過酸化物分解酵素の提供。
【解決手段】 乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素。
（１）基質特異性 ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量 約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
上記乳酸菌としては、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY1573株（NITE P-91）が好適である。
【解決手段】 乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素。
（１）基質特異性 ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量 約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
上記乳酸菌としては、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY1573株（NITE P-91）が好適である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、乳酸菌が産生する過酸化物分解酵素に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体内外の過酸化物を除去するために、生物は様々な過酸化物分解酵素を有しており、代表的な過酸化物分解酵素として、例えば、グルタチオンペルオキシダーゼが挙げられる。
【０００３】
グルタチオンペルオキシダーゼは、動物をはじめとする生物全般に広く存在し、複数段階の反応によって、下記一般式（１）に示されるように、過酸化物をアルコール類と水に変換する（非特許文献１〜４参照）。
【０００４】
【化１】
【０００５】
このように、過酸化物分解酵素は動植物をはじめとする生物に広く存在し、強酸、強アルカリ、加熱等による変性失活のおそれがない限り、抗酸化能力を有する。
【０００６】
【非特許文献１】吉川敏一、他３名、「活性酸素・フリーラジカルの全て」、丸善株式会社、p.85-92
【非特許文献２】谷口直之、「活性酸素実験プロトコール」、秀潤社、p.84-95
【非特許文献３】二木鋭雄，他２名、「抗酸化物質」、学会出版センター、p79-86、p321-323
【非特許文献４】国際生化学連合酵素委員会報告 「酵素名・酵素反応記号一覧」共立出版株式会社、p70-88
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
ところで、ヨーグルトなど広く発酵食品に利用されている乳酸菌の一部は抗酸化酵素を有していると言われているが、その諸性質については不明な点が多く、そのため前記酵素の諸性質を明らかにすることが求められている。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
そこで、本発明者らは、種々の発酵食品から乳酸菌を分離し、該乳酸菌の培養菌体の諸性質について鋭意検討したところ、ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌が産生する酵素が過酸化物に対して分解特性を示すことを見出し、本発明を完成した。
【０００９】
すなわち、本発明の要旨は以下のとおりである。
〔１〕 乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素、
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
〔２〕 ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）に由来する酵素である、前記〔１〕記載の過酸化物分解酵素、
〔３〕 配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する、前記〔２〕記載の過酸化物分解酵素、
〔４〕 配列番号１に記載のアミノ酸配列において、１もしくは複数のアミノ酸が付加、欠失若しくは置換されたアミノ酸配列からなり、かつ過酸化物分解活性を維持している、前記〔２〕記載の過酸化物分解酵素、
〔５〕 前記〔１〕〜〔４〕のいずれか記載の過酸化物分解酵素を含有する飲食品、化粧品または医薬品。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、乳酸菌に由来する新規な過酸化物分解酵素を提供することができる。また、前記酵素を飲食品、化粧品または医薬品に含有させることにより、該酵素が有する過酸化物除去能力を活用することが期待できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明の過酸化物分解酵素の製造に用いられる乳酸菌は、例えば、ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌のうち、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に対して分解特性を示すものであって、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）による測定で、分子量が約５５ｋＤａを示すものであれば特に限定されない。
【００１２】
なお、本発明において過酸化水素とは、水素原子に過酸基を有する過酸化物であり、過酸化物とは、通常の過酸化脂質（例えば、過酸化リノール酸など）の他、炭化水素基に過酸基を有する過酸化物（例えば、過酸化ブチル、過酸化クメンなど）を含む概念であり、過酸化水素は含まれない。
【００１３】
ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌の菌種として、例えば、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)、ペディオコッカス・アシディラクティシ（Pediococcus acidilactici）、ペディオコッカス・セレビシェ（Pediococcus cerevisiae）、ペディオコッカス・セレビシェ・バー・デキストリニカス（Pediococcus cerevisiae var. dextrinicus）、ペディオコッカス・クラウセニ（Pediococcus claussenii）、ペディオコッカス・ダムノサス（Pediococcus damnosus）、ペディオコッカス・デキストリニカス（Pediococcus dextrinicus）、ペディオコッカス・ハロフィラス（Pediococcus halophilus）、ペディオコッカス・オマリ（Pediococcus homari）、ペディオコッカス・イノピタナス（Pediococcus inopinatus）、ペディオコッカス・パルバラス（Pediococcus parvulus）、ペディオコッカス・サブスピーシーズ・インテルメディウス（Pediococcus pentosaceus subsp. intermedius）、ペディオコッカス・ソヤ（Pediococcus soya）、ペディオコッカス・ソヤエ（Pediococcus soyae）、ペディオコッカス・エスピー（Pediococcus sp.）、ペディオコッカス・ウリナエッキー（Pediococcus urinaeequi）が挙げられる。後述する実施例では、これらのうち、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）を用いた例を示している。
【００１４】
過酸化物に対して分解特性を示す乳酸菌は次のようにしてスクリーニングすることができる。すなわち、まず、各種発酵食品を分離源とし、該分離源を固形培地で培養して乳酸菌を単離し、該単離した乳酸菌を液体培地で培養して得られる培養物から菌体を回収し、次いで該菌体を含有する菌体懸濁液を被検液として、該被検液が、過酸化物に対する分解特性を有するか否か調べることによりスクリーニングすることができる。
【００１５】
本発明において発酵食品とは、一般的に乳酸菌が含まれている動物性および植物性の発酵食品をいい、代表的な発酵食品を例示すれば、例えば、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト等が挙げられる。そして、培養に際して、前記発酵食品を破砕し、例えば生理食塩水で希釈した食品懸濁液とすることが好ましい。
【００１６】
固形培地としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等に、固形化剤として0.5〜2.0％の寒天を添加したものが挙げられる。また、培地上に乳酸菌を選択的に増殖させるため、好気性菌の発育を阻害する物質（例えば、アジ化ナトリウム）、グラム陰性菌の発育を阻害する物質（例えば、ポリミキシンＢ）、真菌の発育を阻害する物質（例えば、シクロヘキシミド）などを適宜組み合わせて前記固形培地に含有させてもよい。また、液体培地としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等が挙げられる。
【００１７】
乳酸菌の培養は、常法にしたがって行えばよく、例えば、３０〜４０℃、１０〜４０時間の条件で好気的培養、静置培養または中和培養などを行えばよい。
【００１８】
培養終了後、乳酸菌のコロニーを１コロニーずつ単離し、常法にしたがって純化することが好ましい。そして、前記単離した乳酸菌株を常法にしたがって培養し、得られた培養物を遠心分離して菌体を回収し、該菌体に緩衝液を加えてOD660nm＝1.5〜1.7に濃度調節した菌体懸濁液を調製し、該菌体懸濁液が、過酸化物に対する分解特性を示すか否か調べ、過酸化物に対する分解特性を示す乳酸菌株を本発明の目的に適した乳酸菌とする。
【００１９】
過酸化物に対する分解特性は、例えば、前記菌体懸濁液に過酸化物（終濃度１．０〜３．０ｍＭ）、および必要に応じて糖類（たとえば、グルコース）（終濃度３０〜１００ｍＭ）をそれぞれ添加して、３７℃で３時間反応させ、反応終了後の反応液を遠心分離し、上清に含まれる過酸化物残量を測定することにより評価される。なお、前記糖類は、乳酸菌株の代謝によるエネルギーを供与するために添加するものであるが、必ずしも添加しなくてもよい。
【００２０】
以上のようにして分離した乳酸菌株の過酸化物分解特性を評価した結果、過酸化物分解特性を示すものとして、例えば、後述する乳酸菌TY-1573株を選択することができた。そして、菌学的性質および遺伝学的特性の結果から、乳酸菌TY-1573株は、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。上記菌株は、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY1573（NITE P-91）として独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに寄託されている。
【００２１】
本発明では、上述のようにして単離した乳酸菌株を常法にしたがって培養し、得られた培養物を遠心分離して菌体を回収し、該菌体に緩衝液を加えた菌体懸濁液や、該菌体懸濁液を機械的方法、酵素的方法等で破砕して得られる細胞抽出液など粗酵素の状態で利用することができる。また、該粗酵素液を被覆保護材（例えば、レシチン、キチンなど）でミセル化してカプセルとして、あるいは賦形剤（例えば、デキストリン等）で吸着させて粉末として利用してもよい。好ましくは、本発明に係る過酸化物分解酵素は精製した状態で利用される。また、該酵素は、必要に応じて常法にしたがい、凍結乾燥、噴霧乾燥などを行い、乾燥品としても利用可能である。
【００２２】
過酸化物分解酵素の精製にあたっては、例えば、前記菌体懸濁液を破砕して得られる細胞抽出液に遠心処理を行い、該細胞抽出液から未破砕菌体を除去したものを粗酵素液として用いる。そして、該粗酵素液に、例えば、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム等の塩析処理、および疎水ブチルカラム、弱陰イオン交換カラム、強陰イオン交換カラム、アフィニティーカラム等のクロマトグラフィーを適宜組み合わせることで精製酵素を得ることができる。得られた精製酵素は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥでほぼ単一のバンドを示す程度に純化されている。
【００２３】
なお、上記の各種クロマト法を適用した際に得られる各画分については、各画分の過酸化物分解活性、およびタンパク質のピークパターンを分析することで過酸化物分解酵素を含有する画分を回収した。過酸化物分解活性は、各画分に電子供与体であるＮＡＤＨまたはＮＡＤＰＨ（以下、「ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ」という場合がある）および電子受容体である過酸化物を添加し、３７℃で３分間反応させ、反応後におけるＮＡＤ（Ｐ）Ｈ濃度と過酸化物濃度を測定することで評価した。ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ濃度は３４０ｎｍの吸光度により測定され、過酸化物濃度は公知のチオシアン酸−鉄錯体による発色法により測定される。
【００２４】
上記のようにして得られる過酸化物分解酵素は、以下の理化学的性質を示す。
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
【００２５】
上記の酵素反応において、過酸化物はアルコール類と水に分解（還元）されていると推測される。
【００２６】
さらに、前記過酸化物分解酵素は、配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する。得られた３０残基の配列に対し相同性の高いものとして、例えば、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）ATCC25745のPyruvate/2-oxoglutarate dehydrogenase complex dihydrolipoamide dehydrogenase(E3) component,and related enzymes（１００％の相同性）を例示することができる。
【００２７】
本発明に係る過酸化物分解酵素は、例えば、飲食品、化粧品、医薬品に含有させた状態で用いることができる。前記酵素を飲食品等に含有させることにより、該酵素が有する過酸化物除去能力を活用することが期待できる。
【実施例】
【００２８】
以下に実施例を示して本発明を詳細に説明するが、本発明は当該実施例に限定されるものではない。
【００２９】
１．乳酸菌のスクリーニング
1-1.食品懸濁液の調製
乳酸菌の分離源として、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト、果実、野菜、海藻、魚類を入手し、前記食品をそれぞれ破砕した後、生理食塩水で希釈して食品懸濁液とした。
【００３０】
1-2.スクリーニング
ＧＹＰ培地（１％ グルコース，１％ 酵母エキス，0.5％ ペプトン，0.2％ 酢酸ナトリウム・3H20，20ppm MgSO4・7H20，1ppm MnSO4・4H20，1ppm FeSO4・7H20，1ppm NaCl，50ppm Tween80）にアジ化ナトリウム（終濃度30ppm）、ポリミキシンＢ（終濃度30ppm）およびシクロヘキシミド（終濃度30ppm）を含む選択寒天培地に前記「1-1.食品懸濁液の調製」で調製した食品懸濁液をそれぞれ添加し、３０℃で１６時間静置培養した。培養終了後、前記「1-1.食品懸濁液の調製」に記載の分離源から調製した食品懸濁液添加試料からコロニーが生育していることが確認され、１コロニーずつ単離した。そして、得られた乳酸菌株のコロニーをＧＹＰ寒天培地上に植菌して常法にしたがい純化した。そして、上記食品群から分離した乳酸菌株をTY-1573株と命名した。
【００３１】
２.乳酸菌の菌学的性質
前記「1-2.スクリーニング」で分離した乳酸菌株（TY-1573株）の菌学的性質を、乳酸菌実験マニュアル（小崎道雄監修、内村泰、岡田早苗著、朝倉書店）にしたがって検討した。結果を表１に示す。
【００３２】
【表１】
【００３３】
３．乳酸菌の遺伝学的特性
前記「1-2.スクリーニング」で分離したTY-1573株について、常法にしたがい16S rDNAの塩基配列を決定し、BLASTプログラムおよびClustal Wプログラムを使用して、既存の乳酸菌のうちどの菌種の配列に最も近いか検索した。その結果、乳酸菌TY-1573株の16S rDNAの塩基配列がペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)の16S rDNAの塩基配列と100％一致した。以上の結果から、乳酸菌TY-1573株はペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。
【００３４】
４．乳酸菌の過酸化物分解特性
前記「３．乳酸菌の遺伝学的特性」で同定されたTY-1573株の菌体懸濁液に過酸化物を添加し、所定時間経過後の反応液中に残存する過酸化物の残量を測定して、過酸化物に対する分解特性を調べた。
【００３５】
4-1.菌体懸濁液の調製
TY1573株の菌株をそれぞれＧＹＰ培地に接種して３７℃で約２４時間静置培養した。培養終了後、培養物を8,000rpmで１０分間遠心分離し、上清を除去することにより菌体を集菌した。次いで、集菌した菌体をリン酸緩衝液に懸濁し、OD660nm＝1.6に濃度調節したものを菌体懸濁液とした。
【００３６】
4-2.過酸化物に対する分解特性
前記「4-1.菌体懸濁液の調製」で調製した菌体懸濁液に過酸化物（過酸化クメンまたは過酸化ｔ−ブチル）（終濃度3.0mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心処理し、上清に含まれる未反応の前記過酸化物濃度を測定した。
【００３７】
過酸化物の濃度測定には、ヘモグロビン存在下における過酸化物とメチレンブルー誘導体の等モル呈色反応を利用した八木別法を用いた。実際の測定は、デタミナーＬＰＯ（協和メデックス社）を使用して、使用マニュアルに記載の反応条件に準じて呈色反応を行った。具体的には、アスコルビン酸オキシダーゼを緩衝液に溶解した前処理液 1,000μlを試験管に分注し、次いでヘモグロビンと10-N-メチルカルバモイル-3,7-ジメチルアミノ-10H-フェノチアジン（MCDP）を緩衝液に溶解した発色液 2,000μlを分注した。そして、前記反応液（上清部分）を100μl前記試験管に分注して３０℃で１０分間反応させた。反応終了後、得られた被検液の675nmにおける吸光度を測定し、該被検液中に含まれる過酸化物の濃度を求めた。そして、得られたデータに基づいて過酸化物の分解量を算出したところ、過酸化クメンについては約1300μＭが得られ、過酸化ｔ−ブチルについては約300μＭが得られた。
【００３８】
4-3.過酸化物に対する分解特性
前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」で使用した過酸化物に代えてリノール酸由来の過酸化物（過酸化リノール酸）を実験に供した。過酸化物は、リノール酸溶液にリポキシゲナーゼを加えて湯浴中（３０℃）で約５分間、酸素を吹き込みながら激しく撹拌して得られたものを使用した。なお、過酸化リノール酸の確認には薄層クロマトグラフィーを用いた（参考文献：過酸化脂質実験法、金田尚志、植田伸夫編集、医歯薬出版株式会社、Agric.Biol.Chem. 45,P587−593,1981、汎用衛生試験法と解説、日本薬学会編、南山堂、P33、脂質分析法入門、藤野安彦、学会出版センター、P100）。実験に際しては、得られた過酸化リノール酸を乳化分散させたものを使用した。
【００３９】
そして、前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」で調製した菌体懸濁液に上述した過酸化リノール酸水溶液（終濃度1mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心分離し、上清に含まれる未反応の過酸化リノール酸濃度を測定した。過酸化リノール酸濃度の測定方法は前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」に準じて行った。得られたデータに基づいて過酸化リノール酸の分解量を算出したところ、約30μＭが得られた。
【００４０】
５．過酸化物分解酵素の精製
過酸化物分解酵素の精製を次のようにして行った。なお、各精製段階における、ＮＡＤＨ濃度、過酸化クメン（過酸化物として）濃度、タンパク質濃度およびＳＤＳ−ＰＡＧＥは下記の方法にて測定した。
【００４１】
（ＮＡＤＨ濃度）
ＮＡＤＨの濃度測定には、該物質が有する吸光波長(λ＝340nm)の減少にて活性を測定した。具体的には、マイクロブラックセルに約10mM、pH無調製トリス緩衝液500μlに溶解した終濃度150μM ＮＡＤＨ、終濃度500μM 過酸化クメン、1/100倍容 被検試料（細胞抽出液又は各精製段階で得られた各画分）を予め3分間37℃にて加温し、順次添加しその都度転換混和した。ダブルビーム吸光度計（ε340＝6.220 M−1cm−1）にて本酵素の活性を37℃で経時的にＮＡＤＨの減少量として測定した。過酸化クメンの分解に伴うＮＡＤＨ減少活性は、過酸化クメンを添加した際の初速から添加直後の前記被検試料の初速を引いて算出した。
【００４２】
（過酸化クメン濃度）
過酸化クメンの濃度測定は、チオシアン酸−鉄錯体による発色法を用いた。前記「（ＮＡＤＨ濃度）」と同じ実験系を用い、過酸化クメンと反応させた過酸化物分解酵素を適宜希釈し、500μl、2.0 mlエッペンドルフチューブに採取し、10%トリクロロ酢酸水溶液を500μl、0.01 N 硫酸にて溶解した硫酸アンモニウム鉄(II)10 mMを100μl、2.5 M チオシアン酸カリウムを500μl順次添加し、赤色に反応したサンプルを、ダブルビーム分光光度計にてλ＝480nmにて測定した。過酸化クメンの定量には、常法により測定値から検量線を作成し、被検試料（細胞抽出液又は各精製段階で得られた各画分）を測定し、過酸化クメン濃度を算出した。
【００４３】
（タンパク質濃度）
過酸化クメン分解活性を有する各画分のタンパク質濃度は、ブラッドフォード法と呼ばれる常法を用いて算出した。測定原理はクマシーブリリアントブルー(CBB)という色素がタンパク質と結合した際の赤紫色から青への変色を利用したものである。本法では被検試料中に含まれるタンパク質濃度に比例し、濃い青色を示す。タンパク質の濃度の定量を行う際には、既知のタンパク質である鶏卵白アルブミンにて検量線を作製し、タンパク質濃度を算出した。
【００４４】
（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）
酵素精製過程における精製度の確認や、回収に際し有用な画分の判断には、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを使用した。酵素の解析には、「初歩からのバイオ実験」（大山 徹、渡部 俊弘編著、三共出版）を参考に実施し、必要に応じて前著の変法を用いている。
【００４５】
アクリルアミド29.2g、N,N’-メチレンビスアクリルアミド0.8g、100ml蒸留水にて調製したゲル作製ストック溶液Ａ液、pH8.8に調整した1.5Mトリス緩衝液に0.4％SDSを溶解せしめたゲル作製ストック溶液Ｂ液、pH6.8に調整した0.5Mトリス緩衝液に0.4％SDSを溶解せしめたゲル作製ストック溶液Ｃ液、および10％過硫酸アンモニウム溶液からなるゲル作製ストック溶液Ｄ液をそれぞれ調製した。上記ゲル作製ストック溶液と、N,N,N’N’-テトラメチルエチレンジアミン(TEMED)の組み合わせにてSDSポリアクリルアミドゲルの調製を行った。SDSポリアクリルアミドゲルの調製に際し、各種ストック溶液はアスピレーターにて溶存酸素を除去して実施した。各種ストック溶液の組み合わせについては後述する。
【００４６】
分離用SDSポリアクリルアミドゲルの作製にあたっては、フラスコに、蒸留水6.0ml、ゲル作製ストック溶液Ｂ液4.5ml、ゲル作製ストック溶液Ａ液7.5ml、ゲル作製ストック溶液Ｄ液0.07ml、TEMED0.01mlの順番に添加し、撹拌後に作成用プレートに分注した。分離用SDSポリアクリルアミドゲルの硬化後、濃縮用SDSポリアクリルアミドゲルを重層した。
【００４７】
濃縮用SDSポリアクリルアミドゲルの作製にあたっては、フラスコに蒸留水3.6ml、ゲル作製ストック溶液Ｃ液1.5ml、ゲル作製ストック溶液Ａ液0.9ml、ゲル作製ストック溶液Ｄ液0.018ml、TEMED0.01mlを順番に添加し、撹拌後にSDSポリアクリルアミドゲル作成用プレートに重層した。重層後速やかにサンプルコームを挿入し、重合反応が終了するまで放置した。
【００４８】
作製したゲルプレートを蒸留水1L当たりトリス緩衝液3.828g、グリシン14.411g、SDS 1gを含む泳動用緩衝液で満たした泳動槽にセットした。10%SDS 100μl、2-メルカプトエタノール 10μl、ゲル作製ストックC液 20μl、グリセリン 200μlからなるSDS処理緩衝液を5μlと粗酵素液や解析目的のサンプル10μlを添加混合後5分間煮沸処理し、処理サンプルを10μlとグリセリン12ml、蒸留水8ml、ブロモフェノールブルー10mgからなるマーカー色素2μlとを混合しサンプルコームを抜いたウェルに分注した。濃縮ゲル部分では7.5〜10ｍＡ、濃縮ゲル通過後は15〜20ｍＡに電流を印加し電気泳動を行った。電気泳動はゲルプレート下端手前約1cmにて泳動を停止し、染色工程に移行した。
【００４９】
泳動終了後のポリアクリルアミドゲルをメタノール500ml、酢酸100ml、蒸留水400 ml、クマシーブリリアントブルー(CBB) R-250 2.5gからなる染色液にて30分染色し、明瞭な染色バンドが得られるまで、メタノール500ml、酢酸100ml、蒸留水400 mlからなる脱色液にて脱色作業を行った。得られた染色バンドについては、ゲルドライヤー、セロファン膜にて乾燥保管し、精製酵素の精製度や回収画分について考察を行った。
【００５０】
5-1.粗酵素液の調製
乳酸菌を培養する方法については、当業者が用いる常法に従って行った。乳酸菌の培養に通常用いられるGYP液体培地２０ l にペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY-1573株（NITE AP−91）を接種し、ジャーファーメンターにて３７℃、１３〜１４時間培養した。対数増殖期後期に培養菌体を遠心処理にて回収した。回収培養菌体についてはpH7.0、50ｍMリン酸緩衝液にて培養菌体を洗浄した。
【００５１】
上述の操作で得られた乳酸菌体を7.5g秤量し、リン酸緩衝液で５倍容に希釈した菌体を撹拌して菌体懸濁液とした。該菌体懸濁液に5mgリゾチームを添加し、３０分間撹拌した。その後、超音波処理機にて４分間、さらに超高圧細胞破砕機にて菌体破砕を４度実施した。こうして得られた懸濁液を0℃、7000rpm、20分間遠心処理して未破砕菌体を菌体破砕液から除去したものを粗酵素液とした。
【００５２】
5-2.塩析処理およびクロマトグラフィー
上述の操作で得られた粗酵素液に終濃度23％硫酸アンモニウムを添加して不要なタンパクを沈殿せしめて除去し、さらに粗酵素溶液上清に対し10％ストレプトマイシン硫酸塩-トリス塩酸緩衝液溶液(pH 8.0、10mM)を1.0 ml添加し、不要な核酸を沈殿せしめて除去した。本工程で得られた上清を以下の順番にカラムに供して精製を実施した。
【００５３】
上述の操作で得られた粗酵素液の上清を23% 硫酸アンモニウム含有、50ｍMリン酸緩衝液（pH7.0）で平衡化された疎水ブチルカラムに供し、画分を得た。精製工程における各画分の過酸化クメン分解量を測定し、精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５４】
疎水ブチルカラムにて精製した前記画分を、pH 7.0、50mM リン酸緩衝液で平衡化済みの弱陰イオン交換カラムに供した。精製工程では250mM NaCl含有 50mM リン酸緩衝液で濃度勾配溶出を3カラム容量分実施し、同じく250mM NaCl含有リン酸緩衝液にて3カラム容量分溶出した後、1M NaCl含有リン酸緩衝液にて濃度勾配溶出し精製画分を得た。精製工程における各画分の過酸化クメン分解量を測定し、精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５５】
そして、透析処理した画分を限外濾過膜で処理して9kDa以下の莢雑タンパク質、ペプチドを除去し、透析画分容量から6倍の濃度になるように濃縮処理を実施し濃縮画分とした。次に濃縮画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５６】
次に、透析処理した画分を250ｍM 塩化ナトリウム含有、pH7.0、50 mM リン酸緩衝液で平衡化済のアフィニティーカラムに供した。500 mM 塩化ナトリウム含有 pH7.0、50 mM リン酸緩衝液、750 mM 塩化ナトリウム含有 pH7.0、50 mM リン酸緩衝液、1000 mM 塩化ナトリウム含有 pH 7.0、50 mM リン酸緩衝液で順次切り替え溶出を実施した後、精製工程において各分画毎に過酸化クメン分解量を調査し、タンパク質のピークパターン、過酸化クメン分解活性を有する画分を判断し回収した。回収画分について透析処理を24〜48時間行った。
【００５７】
続いて、濃縮画分に対して透析処理を行った前記画分をpH7.0、50mM リン酸緩衝液で平衡化済の強陰イオン交換カラムに供した。250mM NaCl含有50mM リン酸緩衝液で濃度勾配溶出を実施し1M 塩化ナトリウム含有リン酸緩衝液で切り替え溶出を実施した。精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５８】
回収画分中に特に過酸化クメンの分解能力が高く、精製されているバンドをＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたところ、約５５ｋＤａの位置に単一バンドの存在を確認し、本画分を精製酵素とした。また、ＮＡＤＨ減少活性値、過酸化クメン分解活性値およびタンパク質量から算出したところ、前記精製酵素の過酸化クメン分解活性は１６Ｕ／ｍｇタンパク質量であった。
【００５９】
６．Ｎ末端アミノ酸配列の分析
精製酵素が確認されたSDSポリアクリルアミドゲルプレートは、セミドライブロティング装置を用いて、PVDF膜にブロッティングし、Ｎ末端アミノ酸配列分析に供した。
【００６０】
メタノール50ml、蒸留水450ml、トリスアミノメタン18.15g、10％SDS 2.5mlを混合し、ブロッティングＡ液とした。メタノール50ml、蒸留水450ml、トリスアミノメタン1.5g、10％SDS 2.5mlを混合し、ブロッティングＢ液とした。メタノール100ml、蒸留水900ml、トリスアミノメタン3.0g、6-アミノ-n-カプロン酸5.2g、10％SDS 5.0mlを混合し、ブロッティングＣ液とした。また、アミノ酸配列分析の為に1Mチオグリコール酸ナトリウム水溶液と、1Mチオグリコール酸ナトリウム水溶液10μl、前述の色素マーカー90μlからなるブロッティング用色素マーカーを用意した。次にCBB R-250 0.12g、メタノール20ml、酢酸 50ml、蒸留水50mlからなるPVDF膜用染色液と、メタノール20ml、酢酸 50ml、蒸留水50mlからなるPVDF膜用脱色液を準備し、以下の実験に供した。
【００６１】
精製酵素を含むSDSポリアクリルアミドゲルをブロッティングＣ液に浸し、5分間浸透した。次に、PVDF膜をメタノールに浸した後、Ｃ液に浸したゲル容器にPVDF膜を浸し、5分間浸透した。下から、ブロッティングＡ液に浸した濾紙、ブロッティングＡ液に浸した濾紙、ブロッティングＢ液に浸した濾紙、ブロッティングＢ液に浸した濾紙、PVDF膜、SDSポリアクリルアミドゲル、ブロッティングＣ液に浸した濾紙、ブロッティングＣ液に浸した濾紙の順番に重層し、ゲルの面積×1mA分、ブロッティング泳動を実施した。PVDF膜、ゲルについてはそれぞれCBB染色後、精製酵素に該当するバンドを切り出して、アミノ酸配列分析を実施した。アミノ酸配列分析には、常法であるPITCもしくはエドマン法にて自動解析を行った。アミノ酸配列分析の結果、配列番号１のアミノ酸配列を得ることができた。
【００６２】
得られたＮ末端アミノ酸残基の配列は、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）ATCC25745のPyruvate/2-oxoglutarate dehydrogenase complex dihydrolipoamide dehydrogenase(E3) component,and related enzymes のＮ末端アミノ酸配列３０残基と１００％の相同性を示した。
【００６３】
７．基質特異性
「５．過酸化物分解酵素の精製 （ＮＡＤＨ濃度）」の実験系のうち、被検試料として精製した過酸化物分解酵素を使用し、過酸化クメンに代えて過酸化水素を使用した以外は前記と同様に酵素反応を行わせることにより、過酸化水素濃度を測定し、前記過酸化物分解酵素が過酸化水素に対する分解活性を有するか否かを調べた。過酸化水素の濃度測定は、前記「５．過酸化物分解酵素の精製 （過酸化クメン濃度）」に準じて行った。結果、反応前後で過酸化水素濃度は変化せず、このことから、本発明に係る過酸化物分解酵素は過酸化水素には実質的には作用しないことが分かった。
【００６４】
８．過酸化物分解酵素の用途
8-1.過酸化物分解粗酵素液の製造例
水97.5重量部、ブドウ糖1重量部、大豆ペプチド0.5重量部および酵母エキス1重量部から構成される培地にTY-1573株を接種して、３０℃で１６時間静置培養し、培養後の培養物を遠心処理によって菌体を採取した。この菌体を湿重量に対し５倍容のリン酸緩衝液に懸濁し、２７０ＭＰａ以上の高圧処理にて菌体を破砕し、これを過酸化物分解粗酵素液とした。
【００６５】
8-2.ヨーグルトの製造例
水44.36重量部、ゼラチン0.1重量部、砂糖8.2重量部、乳酸菌スターター0.05重量部、脱脂粉乳5.81重量部、牛乳41.4重量部、過酸化物分解粗酵素液0.03重量部、香料0.05重量部を混合してヨーグルトを得た。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【００６６】
8-3.アイスクリームの製造例
水55.85重量部、砂糖8.0重量部、水飴8.0重量部、液糖4.0重量部、植物油脂13.0重量部、脱脂粉乳8.5重量部、加糖卵黄（２０％卵黄分）2.0重量部、過酸化物分解粗酵素液0.05重量部、安定剤0.5重量部および香料0.1重量部を混合してアイスクリームを得た。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【００６７】
8-4.化粧水の製造例
水73.89重量部、グリセリン5重量部、可溶化剤5重量部、界面活性剤1重量部、エタノール15.0重量部、過酸化物分解粗酵素液0.1重量部、防腐剤0.005重量部および香料0.005重量部を混合して化粧水を製造した。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、乳酸菌が産生する過酸化物分解酵素に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体内外の過酸化物を除去するために、生物は様々な過酸化物分解酵素を有しており、代表的な過酸化物分解酵素として、例えば、グルタチオンペルオキシダーゼが挙げられる。
【０００３】
グルタチオンペルオキシダーゼは、動物をはじめとする生物全般に広く存在し、複数段階の反応によって、下記一般式（１）に示されるように、過酸化物をアルコール類と水に変換する（非特許文献１〜４参照）。
【０００４】
【化１】
【０００５】
このように、過酸化物分解酵素は動植物をはじめとする生物に広く存在し、強酸、強アルカリ、加熱等による変性失活のおそれがない限り、抗酸化能力を有する。
【０００６】
【非特許文献１】吉川敏一、他３名、「活性酸素・フリーラジカルの全て」、丸善株式会社、p.85-92
【非特許文献２】谷口直之、「活性酸素実験プロトコール」、秀潤社、p.84-95
【非特許文献３】二木鋭雄，他２名、「抗酸化物質」、学会出版センター、p79-86、p321-323
【非特許文献４】国際生化学連合酵素委員会報告 「酵素名・酵素反応記号一覧」共立出版株式会社、p70-88
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
ところで、ヨーグルトなど広く発酵食品に利用されている乳酸菌の一部は抗酸化酵素を有していると言われているが、その諸性質については不明な点が多く、そのため前記酵素の諸性質を明らかにすることが求められている。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
そこで、本発明者らは、種々の発酵食品から乳酸菌を分離し、該乳酸菌の培養菌体の諸性質について鋭意検討したところ、ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌が産生する酵素が過酸化物に対して分解特性を示すことを見出し、本発明を完成した。
【０００９】
すなわち、本発明の要旨は以下のとおりである。
〔１〕 乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素、
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
〔２〕 ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）に由来する酵素である、前記〔１〕記載の過酸化物分解酵素、
〔３〕 配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する、前記〔２〕記載の過酸化物分解酵素、
〔４〕 配列番号１に記載のアミノ酸配列において、１もしくは複数のアミノ酸が付加、欠失若しくは置換されたアミノ酸配列からなり、かつ過酸化物分解活性を維持している、前記〔２〕記載の過酸化物分解酵素、
〔５〕 前記〔１〕〜〔４〕のいずれか記載の過酸化物分解酵素を含有する飲食品、化粧品または医薬品。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、乳酸菌に由来する新規な過酸化物分解酵素を提供することができる。また、前記酵素を飲食品、化粧品または医薬品に含有させることにより、該酵素が有する過酸化物除去能力を活用することが期待できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明の過酸化物分解酵素の製造に用いられる乳酸菌は、例えば、ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌のうち、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に対して分解特性を示すものであって、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）による測定で、分子量が約５５ｋＤａを示すものであれば特に限定されない。
【００１２】
なお、本発明において過酸化水素とは、水素原子に過酸基を有する過酸化物であり、過酸化物とは、通常の過酸化脂質（例えば、過酸化リノール酸など）の他、炭化水素基に過酸基を有する過酸化物（例えば、過酸化ブチル、過酸化クメンなど）を含む概念であり、過酸化水素は含まれない。
【００１３】
ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌の菌種として、例えば、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)、ペディオコッカス・アシディラクティシ（Pediococcus acidilactici）、ペディオコッカス・セレビシェ（Pediococcus cerevisiae）、ペディオコッカス・セレビシェ・バー・デキストリニカス（Pediococcus cerevisiae var. dextrinicus）、ペディオコッカス・クラウセニ（Pediococcus claussenii）、ペディオコッカス・ダムノサス（Pediococcus damnosus）、ペディオコッカス・デキストリニカス（Pediococcus dextrinicus）、ペディオコッカス・ハロフィラス（Pediococcus halophilus）、ペディオコッカス・オマリ（Pediococcus homari）、ペディオコッカス・イノピタナス（Pediococcus inopinatus）、ペディオコッカス・パルバラス（Pediococcus parvulus）、ペディオコッカス・サブスピーシーズ・インテルメディウス（Pediococcus pentosaceus subsp. intermedius）、ペディオコッカス・ソヤ（Pediococcus soya）、ペディオコッカス・ソヤエ（Pediococcus soyae）、ペディオコッカス・エスピー（Pediococcus sp.）、ペディオコッカス・ウリナエッキー（Pediococcus urinaeequi）が挙げられる。後述する実施例では、これらのうち、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）を用いた例を示している。
【００１４】
過酸化物に対して分解特性を示す乳酸菌は次のようにしてスクリーニングすることができる。すなわち、まず、各種発酵食品を分離源とし、該分離源を固形培地で培養して乳酸菌を単離し、該単離した乳酸菌を液体培地で培養して得られる培養物から菌体を回収し、次いで該菌体を含有する菌体懸濁液を被検液として、該被検液が、過酸化物に対する分解特性を有するか否か調べることによりスクリーニングすることができる。
【００１５】
本発明において発酵食品とは、一般的に乳酸菌が含まれている動物性および植物性の発酵食品をいい、代表的な発酵食品を例示すれば、例えば、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト等が挙げられる。そして、培養に際して、前記発酵食品を破砕し、例えば生理食塩水で希釈した食品懸濁液とすることが好ましい。
【００１６】
固形培地としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等に、固形化剤として0.5〜2.0％の寒天を添加したものが挙げられる。また、培地上に乳酸菌を選択的に増殖させるため、好気性菌の発育を阻害する物質（例えば、アジ化ナトリウム）、グラム陰性菌の発育を阻害する物質（例えば、ポリミキシンＢ）、真菌の発育を阻害する物質（例えば、シクロヘキシミド）などを適宜組み合わせて前記固形培地に含有させてもよい。また、液体培地としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等が挙げられる。
【００１７】
乳酸菌の培養は、常法にしたがって行えばよく、例えば、３０〜４０℃、１０〜４０時間の条件で好気的培養、静置培養または中和培養などを行えばよい。
【００１８】
培養終了後、乳酸菌のコロニーを１コロニーずつ単離し、常法にしたがって純化することが好ましい。そして、前記単離した乳酸菌株を常法にしたがって培養し、得られた培養物を遠心分離して菌体を回収し、該菌体に緩衝液を加えてOD660nm＝1.5〜1.7に濃度調節した菌体懸濁液を調製し、該菌体懸濁液が、過酸化物に対する分解特性を示すか否か調べ、過酸化物に対する分解特性を示す乳酸菌株を本発明の目的に適した乳酸菌とする。
【００１９】
過酸化物に対する分解特性は、例えば、前記菌体懸濁液に過酸化物（終濃度１．０〜３．０ｍＭ）、および必要に応じて糖類（たとえば、グルコース）（終濃度３０〜１００ｍＭ）をそれぞれ添加して、３７℃で３時間反応させ、反応終了後の反応液を遠心分離し、上清に含まれる過酸化物残量を測定することにより評価される。なお、前記糖類は、乳酸菌株の代謝によるエネルギーを供与するために添加するものであるが、必ずしも添加しなくてもよい。
【００２０】
以上のようにして分離した乳酸菌株の過酸化物分解特性を評価した結果、過酸化物分解特性を示すものとして、例えば、後述する乳酸菌TY-1573株を選択することができた。そして、菌学的性質および遺伝学的特性の結果から、乳酸菌TY-1573株は、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。上記菌株は、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY1573（NITE P-91）として独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに寄託されている。
【００２１】
本発明では、上述のようにして単離した乳酸菌株を常法にしたがって培養し、得られた培養物を遠心分離して菌体を回収し、該菌体に緩衝液を加えた菌体懸濁液や、該菌体懸濁液を機械的方法、酵素的方法等で破砕して得られる細胞抽出液など粗酵素の状態で利用することができる。また、該粗酵素液を被覆保護材（例えば、レシチン、キチンなど）でミセル化してカプセルとして、あるいは賦形剤（例えば、デキストリン等）で吸着させて粉末として利用してもよい。好ましくは、本発明に係る過酸化物分解酵素は精製した状態で利用される。また、該酵素は、必要に応じて常法にしたがい、凍結乾燥、噴霧乾燥などを行い、乾燥品としても利用可能である。
【００２２】
過酸化物分解酵素の精製にあたっては、例えば、前記菌体懸濁液を破砕して得られる細胞抽出液に遠心処理を行い、該細胞抽出液から未破砕菌体を除去したものを粗酵素液として用いる。そして、該粗酵素液に、例えば、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム等の塩析処理、および疎水ブチルカラム、弱陰イオン交換カラム、強陰イオン交換カラム、アフィニティーカラム等のクロマトグラフィーを適宜組み合わせることで精製酵素を得ることができる。得られた精製酵素は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥでほぼ単一のバンドを示す程度に純化されている。
【００２３】
なお、上記の各種クロマト法を適用した際に得られる各画分については、各画分の過酸化物分解活性、およびタンパク質のピークパターンを分析することで過酸化物分解酵素を含有する画分を回収した。過酸化物分解活性は、各画分に電子供与体であるＮＡＤＨまたはＮＡＤＰＨ（以下、「ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ」という場合がある）および電子受容体である過酸化物を添加し、３７℃で３分間反応させ、反応後におけるＮＡＤ（Ｐ）Ｈ濃度と過酸化物濃度を測定することで評価した。ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ濃度は３４０ｎｍの吸光度により測定され、過酸化物濃度は公知のチオシアン酸−鉄錯体による発色法により測定される。
【００２４】
上記のようにして得られる過酸化物分解酵素は、以下の理化学的性質を示す。
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）
【００２５】
上記の酵素反応において、過酸化物はアルコール類と水に分解（還元）されていると推測される。
【００２６】
さらに、前記過酸化物分解酵素は、配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する。得られた３０残基の配列に対し相同性の高いものとして、例えば、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）ATCC25745のPyruvate/2-oxoglutarate dehydrogenase complex dihydrolipoamide dehydrogenase(E3) component,and related enzymes（１００％の相同性）を例示することができる。
【００２７】
本発明に係る過酸化物分解酵素は、例えば、飲食品、化粧品、医薬品に含有させた状態で用いることができる。前記酵素を飲食品等に含有させることにより、該酵素が有する過酸化物除去能力を活用することが期待できる。
【実施例】
【００２８】
以下に実施例を示して本発明を詳細に説明するが、本発明は当該実施例に限定されるものではない。
【００２９】
１．乳酸菌のスクリーニング
1-1.食品懸濁液の調製
乳酸菌の分離源として、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト、果実、野菜、海藻、魚類を入手し、前記食品をそれぞれ破砕した後、生理食塩水で希釈して食品懸濁液とした。
【００３０】
1-2.スクリーニング
ＧＹＰ培地（１％ グルコース，１％ 酵母エキス，0.5％ ペプトン，0.2％ 酢酸ナトリウム・3H20，20ppm MgSO4・7H20，1ppm MnSO4・4H20，1ppm FeSO4・7H20，1ppm NaCl，50ppm Tween80）にアジ化ナトリウム（終濃度30ppm）、ポリミキシンＢ（終濃度30ppm）およびシクロヘキシミド（終濃度30ppm）を含む選択寒天培地に前記「1-1.食品懸濁液の調製」で調製した食品懸濁液をそれぞれ添加し、３０℃で１６時間静置培養した。培養終了後、前記「1-1.食品懸濁液の調製」に記載の分離源から調製した食品懸濁液添加試料からコロニーが生育していることが確認され、１コロニーずつ単離した。そして、得られた乳酸菌株のコロニーをＧＹＰ寒天培地上に植菌して常法にしたがい純化した。そして、上記食品群から分離した乳酸菌株をTY-1573株と命名した。
【００３１】
２.乳酸菌の菌学的性質
前記「1-2.スクリーニング」で分離した乳酸菌株（TY-1573株）の菌学的性質を、乳酸菌実験マニュアル（小崎道雄監修、内村泰、岡田早苗著、朝倉書店）にしたがって検討した。結果を表１に示す。
【００３２】
【表１】
【００３３】
３．乳酸菌の遺伝学的特性
前記「1-2.スクリーニング」で分離したTY-1573株について、常法にしたがい16S rDNAの塩基配列を決定し、BLASTプログラムおよびClustal Wプログラムを使用して、既存の乳酸菌のうちどの菌種の配列に最も近いか検索した。その結果、乳酸菌TY-1573株の16S rDNAの塩基配列がペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)の16S rDNAの塩基配列と100％一致した。以上の結果から、乳酸菌TY-1573株はペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。
【００３４】
４．乳酸菌の過酸化物分解特性
前記「３．乳酸菌の遺伝学的特性」で同定されたTY-1573株の菌体懸濁液に過酸化物を添加し、所定時間経過後の反応液中に残存する過酸化物の残量を測定して、過酸化物に対する分解特性を調べた。
【００３５】
4-1.菌体懸濁液の調製
TY1573株の菌株をそれぞれＧＹＰ培地に接種して３７℃で約２４時間静置培養した。培養終了後、培養物を8,000rpmで１０分間遠心分離し、上清を除去することにより菌体を集菌した。次いで、集菌した菌体をリン酸緩衝液に懸濁し、OD660nm＝1.6に濃度調節したものを菌体懸濁液とした。
【００３６】
4-2.過酸化物に対する分解特性
前記「4-1.菌体懸濁液の調製」で調製した菌体懸濁液に過酸化物（過酸化クメンまたは過酸化ｔ−ブチル）（終濃度3.0mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心処理し、上清に含まれる未反応の前記過酸化物濃度を測定した。
【００３７】
過酸化物の濃度測定には、ヘモグロビン存在下における過酸化物とメチレンブルー誘導体の等モル呈色反応を利用した八木別法を用いた。実際の測定は、デタミナーＬＰＯ（協和メデックス社）を使用して、使用マニュアルに記載の反応条件に準じて呈色反応を行った。具体的には、アスコルビン酸オキシダーゼを緩衝液に溶解した前処理液 1,000μlを試験管に分注し、次いでヘモグロビンと10-N-メチルカルバモイル-3,7-ジメチルアミノ-10H-フェノチアジン（MCDP）を緩衝液に溶解した発色液 2,000μlを分注した。そして、前記反応液（上清部分）を100μl前記試験管に分注して３０℃で１０分間反応させた。反応終了後、得られた被検液の675nmにおける吸光度を測定し、該被検液中に含まれる過酸化物の濃度を求めた。そして、得られたデータに基づいて過酸化物の分解量を算出したところ、過酸化クメンについては約1300μＭが得られ、過酸化ｔ−ブチルについては約300μＭが得られた。
【００３８】
4-3.過酸化物に対する分解特性
前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」で使用した過酸化物に代えてリノール酸由来の過酸化物（過酸化リノール酸）を実験に供した。過酸化物は、リノール酸溶液にリポキシゲナーゼを加えて湯浴中（３０℃）で約５分間、酸素を吹き込みながら激しく撹拌して得られたものを使用した。なお、過酸化リノール酸の確認には薄層クロマトグラフィーを用いた（参考文献：過酸化脂質実験法、金田尚志、植田伸夫編集、医歯薬出版株式会社、Agric.Biol.Chem. 45,P587−593,1981、汎用衛生試験法と解説、日本薬学会編、南山堂、P33、脂質分析法入門、藤野安彦、学会出版センター、P100）。実験に際しては、得られた過酸化リノール酸を乳化分散させたものを使用した。
【００３９】
そして、前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」で調製した菌体懸濁液に上述した過酸化リノール酸水溶液（終濃度1mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心分離し、上清に含まれる未反応の過酸化リノール酸濃度を測定した。過酸化リノール酸濃度の測定方法は前記「4-2.過酸化物に対する分解特性」に準じて行った。得られたデータに基づいて過酸化リノール酸の分解量を算出したところ、約30μＭが得られた。
【００４０】
５．過酸化物分解酵素の精製
過酸化物分解酵素の精製を次のようにして行った。なお、各精製段階における、ＮＡＤＨ濃度、過酸化クメン（過酸化物として）濃度、タンパク質濃度およびＳＤＳ−ＰＡＧＥは下記の方法にて測定した。
【００４１】
（ＮＡＤＨ濃度）
ＮＡＤＨの濃度測定には、該物質が有する吸光波長(λ＝340nm)の減少にて活性を測定した。具体的には、マイクロブラックセルに約10mM、pH無調製トリス緩衝液500μlに溶解した終濃度150μM ＮＡＤＨ、終濃度500μM 過酸化クメン、1/100倍容 被検試料（細胞抽出液又は各精製段階で得られた各画分）を予め3分間37℃にて加温し、順次添加しその都度転換混和した。ダブルビーム吸光度計（ε340＝6.220 M−1cm−1）にて本酵素の活性を37℃で経時的にＮＡＤＨの減少量として測定した。過酸化クメンの分解に伴うＮＡＤＨ減少活性は、過酸化クメンを添加した際の初速から添加直後の前記被検試料の初速を引いて算出した。
【００４２】
（過酸化クメン濃度）
過酸化クメンの濃度測定は、チオシアン酸−鉄錯体による発色法を用いた。前記「（ＮＡＤＨ濃度）」と同じ実験系を用い、過酸化クメンと反応させた過酸化物分解酵素を適宜希釈し、500μl、2.0 mlエッペンドルフチューブに採取し、10%トリクロロ酢酸水溶液を500μl、0.01 N 硫酸にて溶解した硫酸アンモニウム鉄(II)10 mMを100μl、2.5 M チオシアン酸カリウムを500μl順次添加し、赤色に反応したサンプルを、ダブルビーム分光光度計にてλ＝480nmにて測定した。過酸化クメンの定量には、常法により測定値から検量線を作成し、被検試料（細胞抽出液又は各精製段階で得られた各画分）を測定し、過酸化クメン濃度を算出した。
【００４３】
（タンパク質濃度）
過酸化クメン分解活性を有する各画分のタンパク質濃度は、ブラッドフォード法と呼ばれる常法を用いて算出した。測定原理はクマシーブリリアントブルー(CBB)という色素がタンパク質と結合した際の赤紫色から青への変色を利用したものである。本法では被検試料中に含まれるタンパク質濃度に比例し、濃い青色を示す。タンパク質の濃度の定量を行う際には、既知のタンパク質である鶏卵白アルブミンにて検量線を作製し、タンパク質濃度を算出した。
【００４４】
（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）
酵素精製過程における精製度の確認や、回収に際し有用な画分の判断には、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを使用した。酵素の解析には、「初歩からのバイオ実験」（大山 徹、渡部 俊弘編著、三共出版）を参考に実施し、必要に応じて前著の変法を用いている。
【００４５】
アクリルアミド29.2g、N,N’-メチレンビスアクリルアミド0.8g、100ml蒸留水にて調製したゲル作製ストック溶液Ａ液、pH8.8に調整した1.5Mトリス緩衝液に0.4％SDSを溶解せしめたゲル作製ストック溶液Ｂ液、pH6.8に調整した0.5Mトリス緩衝液に0.4％SDSを溶解せしめたゲル作製ストック溶液Ｃ液、および10％過硫酸アンモニウム溶液からなるゲル作製ストック溶液Ｄ液をそれぞれ調製した。上記ゲル作製ストック溶液と、N,N,N’N’-テトラメチルエチレンジアミン(TEMED)の組み合わせにてSDSポリアクリルアミドゲルの調製を行った。SDSポリアクリルアミドゲルの調製に際し、各種ストック溶液はアスピレーターにて溶存酸素を除去して実施した。各種ストック溶液の組み合わせについては後述する。
【００４６】
分離用SDSポリアクリルアミドゲルの作製にあたっては、フラスコに、蒸留水6.0ml、ゲル作製ストック溶液Ｂ液4.5ml、ゲル作製ストック溶液Ａ液7.5ml、ゲル作製ストック溶液Ｄ液0.07ml、TEMED0.01mlの順番に添加し、撹拌後に作成用プレートに分注した。分離用SDSポリアクリルアミドゲルの硬化後、濃縮用SDSポリアクリルアミドゲルを重層した。
【００４７】
濃縮用SDSポリアクリルアミドゲルの作製にあたっては、フラスコに蒸留水3.6ml、ゲル作製ストック溶液Ｃ液1.5ml、ゲル作製ストック溶液Ａ液0.9ml、ゲル作製ストック溶液Ｄ液0.018ml、TEMED0.01mlを順番に添加し、撹拌後にSDSポリアクリルアミドゲル作成用プレートに重層した。重層後速やかにサンプルコームを挿入し、重合反応が終了するまで放置した。
【００４８】
作製したゲルプレートを蒸留水1L当たりトリス緩衝液3.828g、グリシン14.411g、SDS 1gを含む泳動用緩衝液で満たした泳動槽にセットした。10%SDS 100μl、2-メルカプトエタノール 10μl、ゲル作製ストックC液 20μl、グリセリン 200μlからなるSDS処理緩衝液を5μlと粗酵素液や解析目的のサンプル10μlを添加混合後5分間煮沸処理し、処理サンプルを10μlとグリセリン12ml、蒸留水8ml、ブロモフェノールブルー10mgからなるマーカー色素2μlとを混合しサンプルコームを抜いたウェルに分注した。濃縮ゲル部分では7.5〜10ｍＡ、濃縮ゲル通過後は15〜20ｍＡに電流を印加し電気泳動を行った。電気泳動はゲルプレート下端手前約1cmにて泳動を停止し、染色工程に移行した。
【００４９】
泳動終了後のポリアクリルアミドゲルをメタノール500ml、酢酸100ml、蒸留水400 ml、クマシーブリリアントブルー(CBB) R-250 2.5gからなる染色液にて30分染色し、明瞭な染色バンドが得られるまで、メタノール500ml、酢酸100ml、蒸留水400 mlからなる脱色液にて脱色作業を行った。得られた染色バンドについては、ゲルドライヤー、セロファン膜にて乾燥保管し、精製酵素の精製度や回収画分について考察を行った。
【００５０】
5-1.粗酵素液の調製
乳酸菌を培養する方法については、当業者が用いる常法に従って行った。乳酸菌の培養に通常用いられるGYP液体培地２０ l にペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY-1573株（NITE AP−91）を接種し、ジャーファーメンターにて３７℃、１３〜１４時間培養した。対数増殖期後期に培養菌体を遠心処理にて回収した。回収培養菌体についてはpH7.0、50ｍMリン酸緩衝液にて培養菌体を洗浄した。
【００５１】
上述の操作で得られた乳酸菌体を7.5g秤量し、リン酸緩衝液で５倍容に希釈した菌体を撹拌して菌体懸濁液とした。該菌体懸濁液に5mgリゾチームを添加し、３０分間撹拌した。その後、超音波処理機にて４分間、さらに超高圧細胞破砕機にて菌体破砕を４度実施した。こうして得られた懸濁液を0℃、7000rpm、20分間遠心処理して未破砕菌体を菌体破砕液から除去したものを粗酵素液とした。
【００５２】
5-2.塩析処理およびクロマトグラフィー
上述の操作で得られた粗酵素液に終濃度23％硫酸アンモニウムを添加して不要なタンパクを沈殿せしめて除去し、さらに粗酵素溶液上清に対し10％ストレプトマイシン硫酸塩-トリス塩酸緩衝液溶液(pH 8.0、10mM)を1.0 ml添加し、不要な核酸を沈殿せしめて除去した。本工程で得られた上清を以下の順番にカラムに供して精製を実施した。
【００５３】
上述の操作で得られた粗酵素液の上清を23% 硫酸アンモニウム含有、50ｍMリン酸緩衝液（pH7.0）で平衡化された疎水ブチルカラムに供し、画分を得た。精製工程における各画分の過酸化クメン分解量を測定し、精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５４】
疎水ブチルカラムにて精製した前記画分を、pH 7.0、50mM リン酸緩衝液で平衡化済みの弱陰イオン交換カラムに供した。精製工程では250mM NaCl含有 50mM リン酸緩衝液で濃度勾配溶出を3カラム容量分実施し、同じく250mM NaCl含有リン酸緩衝液にて3カラム容量分溶出した後、1M NaCl含有リン酸緩衝液にて濃度勾配溶出し精製画分を得た。精製工程における各画分の過酸化クメン分解量を測定し、精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５５】
そして、透析処理した画分を限外濾過膜で処理して9kDa以下の莢雑タンパク質、ペプチドを除去し、透析画分容量から6倍の濃度になるように濃縮処理を実施し濃縮画分とした。次に濃縮画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５６】
次に、透析処理した画分を250ｍM 塩化ナトリウム含有、pH7.0、50 mM リン酸緩衝液で平衡化済のアフィニティーカラムに供した。500 mM 塩化ナトリウム含有 pH7.0、50 mM リン酸緩衝液、750 mM 塩化ナトリウム含有 pH7.0、50 mM リン酸緩衝液、1000 mM 塩化ナトリウム含有 pH 7.0、50 mM リン酸緩衝液で順次切り替え溶出を実施した後、精製工程において各分画毎に過酸化クメン分解量を調査し、タンパク質のピークパターン、過酸化クメン分解活性を有する画分を判断し回収した。回収画分について透析処理を24〜48時間行った。
【００５７】
続いて、濃縮画分に対して透析処理を行った前記画分をpH7.0、50mM リン酸緩衝液で平衡化済の強陰イオン交換カラムに供した。250mM NaCl含有50mM リン酸緩衝液で濃度勾配溶出を実施し1M 塩化ナトリウム含有リン酸緩衝液で切り替え溶出を実施した。精製工程で得られたタンパク質のピークパターンと過酸化クメン分解活性から必要な画分を回収後、回収画分に対して透析処理を24〜48時間行った。
【００５８】
回収画分中に特に過酸化クメンの分解能力が高く、精製されているバンドをＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたところ、約５５ｋＤａの位置に単一バンドの存在を確認し、本画分を精製酵素とした。また、ＮＡＤＨ減少活性値、過酸化クメン分解活性値およびタンパク質量から算出したところ、前記精製酵素の過酸化クメン分解活性は１６Ｕ／ｍｇタンパク質量であった。
【００５９】
６．Ｎ末端アミノ酸配列の分析
精製酵素が確認されたSDSポリアクリルアミドゲルプレートは、セミドライブロティング装置を用いて、PVDF膜にブロッティングし、Ｎ末端アミノ酸配列分析に供した。
【００６０】
メタノール50ml、蒸留水450ml、トリスアミノメタン18.15g、10％SDS 2.5mlを混合し、ブロッティングＡ液とした。メタノール50ml、蒸留水450ml、トリスアミノメタン1.5g、10％SDS 2.5mlを混合し、ブロッティングＢ液とした。メタノール100ml、蒸留水900ml、トリスアミノメタン3.0g、6-アミノ-n-カプロン酸5.2g、10％SDS 5.0mlを混合し、ブロッティングＣ液とした。また、アミノ酸配列分析の為に1Mチオグリコール酸ナトリウム水溶液と、1Mチオグリコール酸ナトリウム水溶液10μl、前述の色素マーカー90μlからなるブロッティング用色素マーカーを用意した。次にCBB R-250 0.12g、メタノール20ml、酢酸 50ml、蒸留水50mlからなるPVDF膜用染色液と、メタノール20ml、酢酸 50ml、蒸留水50mlからなるPVDF膜用脱色液を準備し、以下の実験に供した。
【００６１】
精製酵素を含むSDSポリアクリルアミドゲルをブロッティングＣ液に浸し、5分間浸透した。次に、PVDF膜をメタノールに浸した後、Ｃ液に浸したゲル容器にPVDF膜を浸し、5分間浸透した。下から、ブロッティングＡ液に浸した濾紙、ブロッティングＡ液に浸した濾紙、ブロッティングＢ液に浸した濾紙、ブロッティングＢ液に浸した濾紙、PVDF膜、SDSポリアクリルアミドゲル、ブロッティングＣ液に浸した濾紙、ブロッティングＣ液に浸した濾紙の順番に重層し、ゲルの面積×1mA分、ブロッティング泳動を実施した。PVDF膜、ゲルについてはそれぞれCBB染色後、精製酵素に該当するバンドを切り出して、アミノ酸配列分析を実施した。アミノ酸配列分析には、常法であるPITCもしくはエドマン法にて自動解析を行った。アミノ酸配列分析の結果、配列番号１のアミノ酸配列を得ることができた。
【００６２】
得られたＮ末端アミノ酸残基の配列は、ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）ATCC25745のPyruvate/2-oxoglutarate dehydrogenase complex dihydrolipoamide dehydrogenase(E3) component,and related enzymes のＮ末端アミノ酸配列３０残基と１００％の相同性を示した。
【００６３】
７．基質特異性
「５．過酸化物分解酵素の精製 （ＮＡＤＨ濃度）」の実験系のうち、被検試料として精製した過酸化物分解酵素を使用し、過酸化クメンに代えて過酸化水素を使用した以外は前記と同様に酵素反応を行わせることにより、過酸化水素濃度を測定し、前記過酸化物分解酵素が過酸化水素に対する分解活性を有するか否かを調べた。過酸化水素の濃度測定は、前記「５．過酸化物分解酵素の精製 （過酸化クメン濃度）」に準じて行った。結果、反応前後で過酸化水素濃度は変化せず、このことから、本発明に係る過酸化物分解酵素は過酸化水素には実質的には作用しないことが分かった。
【００６４】
８．過酸化物分解酵素の用途
8-1.過酸化物分解粗酵素液の製造例
水97.5重量部、ブドウ糖1重量部、大豆ペプチド0.5重量部および酵母エキス1重量部から構成される培地にTY-1573株を接種して、３０℃で１６時間静置培養し、培養後の培養物を遠心処理によって菌体を採取した。この菌体を湿重量に対し５倍容のリン酸緩衝液に懸濁し、２７０ＭＰａ以上の高圧処理にて菌体を破砕し、これを過酸化物分解粗酵素液とした。
【００６５】
8-2.ヨーグルトの製造例
水44.36重量部、ゼラチン0.1重量部、砂糖8.2重量部、乳酸菌スターター0.05重量部、脱脂粉乳5.81重量部、牛乳41.4重量部、過酸化物分解粗酵素液0.03重量部、香料0.05重量部を混合してヨーグルトを得た。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【００６６】
8-3.アイスクリームの製造例
水55.85重量部、砂糖8.0重量部、水飴8.0重量部、液糖4.0重量部、植物油脂13.0重量部、脱脂粉乳8.5重量部、加糖卵黄（２０％卵黄分）2.0重量部、過酸化物分解粗酵素液0.05重量部、安定剤0.5重量部および香料0.1重量部を混合してアイスクリームを得た。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【００６７】
8-4.化粧水の製造例
水73.89重量部、グリセリン5重量部、可溶化剤5重量部、界面活性剤1重量部、エタノール15.0重量部、過酸化物分解粗酵素液0.1重量部、防腐剤0.005重量部および香料0.005重量部を混合して化粧水を製造した。なお、過酸化物分解粗酵素液は前記で製造したものを使用した。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素。
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない。
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）。
【請求項２】
ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）に由来する酵素である、請求項１記載の過酸化物分解酵素。
【請求項３】
配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する、請求項２記載の過酸化物分解酵素。
【請求項４】
配列番号１に記載のアミノ酸配列において、１もしくは複数のアミノ酸が付加、欠失若しくは置換されたアミノ酸配列からなり、かつ過酸化物分解活性を維持している、請求項２記載の過酸化物分解酵素。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか記載の過酸化物分解酵素を含有する飲食品、化粧品または医薬品。
【請求項１】
乳酸菌由来で、下記の理化学的性質を有する過酸化物分解酵素。
（１）基質特異性
ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの存在下、過酸化物に高い反応性を示し、かつ過酸化水素には実質的に作用しない。
（２）分子量
約５５ｋＤａ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定）。
【請求項２】
ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）に由来する酵素である、請求項１記載の過酸化物分解酵素。
【請求項３】
配列番号１に記載のアミノ酸配列をＮ末端に有する、請求項２記載の過酸化物分解酵素。
【請求項４】
配列番号１に記載のアミノ酸配列において、１もしくは複数のアミノ酸が付加、欠失若しくは置換されたアミノ酸配列からなり、かつ過酸化物分解活性を維持している、請求項２記載の過酸化物分解酵素。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか記載の過酸化物分解酵素を含有する飲食品、化粧品または医薬品。
【公開番号】特開２００８−１０４３７５（Ｐ２００８−１０４３７５Ａ）
【公開日】平成２０年５月８日（２００８．５．８）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００６−２８８５２３（Ｐ２００６−２８８５２３）
【出願日】平成１８年１０月２４日（２００６．１０．２４）
【出願人】（０００２０８０８６）大洋香料株式会社 (34)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年５月８日（２００８．５．８）
【国際特許分類】
【出願日】平成１８年１０月２４日（２００６．１０．２４）
【出願人】（０００２０８０８６）大洋香料株式会社 (34)
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]