部位特異的にモノ抱合化されたインスリン分泌性のＧＬＰ−１ペプチド
本発明は、酵素による直接的かつ部位特異的なトランスグルタミネーション反応によって生体適合性のポリマー分子にモノ抱合化された、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）およびインスリン分泌性の類似体ペプチド、ならびに２型糖尿病のような代謝異常性の病状における治療に適用するためのこれらの医薬製剤および送達系に関する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、酵素による直接的かつ部位特異的なトランスグルタミネーション反応によって生体適合性のポリマー分子にモノ抱合化された、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）およびインスリン分泌性の類似体ペプチド、ならびに２型糖尿病のような代謝異常性の病状における治療に適用するためのこれらの医薬製剤および送達系に関する。
【背景技術】
【０００２】
糖尿病は、数千年前から存在していたことが知られており、現在、世界中で２億人を超える人々を苦しめている疾患である。糖尿病を有する個体の平均余命の減少および生活の質の低下に加えて、この疾患およびこれに関連した合併症は、健康の予算に対する大きな負担となっている。
【０００３】
糖尿病のより一般的な型は、遺伝的要素および環境的要素の双方を有し、多因子性で異種起源の障害の群を示す２型糖尿病（すなわち、インスリン非依存性糖尿病）であり、これは、インスリン分泌、インスリン作用、またはその双方における異常の結果として生じ、無制御なまたは高い血糖値をもたらす。
【０００４】
先進工業国において、糖尿病を有する個体のうちの約９０％は、おそらく食事および身体的な活動レベルの変化の影響を受けて罹患率が過去数十年にわたり劇的に増加している２型糖尿病を有する。
【０００５】
２型糖尿病は、通常、４５歳を超える過体重の成人において発生する；しかし、（通常、１０歳を超える）過体重の小児における２型糖尿病の発生率も急激に増加している。
【０００６】
２型糖尿病の管理における現在の療法としては、食事の改善および身体的な運動を通しての生活習慣への介入、ならびに経口または注射による血糖降下剤での治療などが挙げられる；しかし、２型糖尿病を有するすべての個体がこれらの治療に同じように応答するわけではない。
【０００７】
食事に対する生理学的な応答の理解が深まったことにより、インクレチンホルモンの発見、および胃腸のホルモン作用の促進に基づいた治療作用を有する新しい作用剤の開発が可能となった［非特許文献１］。
【０００８】
これらの療法は、胃内容排出を遅くすること、インスリンの刺激およびグルカゴン分泌の阻害、食後の高血糖の管理の改善、ならびに体重の管理に関連している。
【０００９】
インクレチンは、高血糖状態下でインスリン分泌を増強する栄養素によって放出される、消化管由来のホルモンである。ヒトのグルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）は、プレプログルカゴン遺伝子に由来して食物摂取後に腸の腸内分泌Ｌ細胞から分泌され、グルコース依存的に内因性インスリンの分泌、血中グルカゴンレベルの減少および胃の運動性を遅くすることによる胃内容排出の低下を含む、様々な生理学的な機序を通して強力な血糖降下作用を示す、原型のインクレチンホルモンである。また、ＧＬＰ−１は、β−細胞塊の増大を導く新しい膵β−細胞の増殖および分化を刺激する［非特許文献２］。
【００１０】
循環しているヒトＧＬＰ−１の主要な型は、一般にＧＬＰ−１（７−３６）−アミドとして示される、Ｃ末端がアミド化された３０アミノ酸残基のペプチドであり（配列番号１）、一般にＧＬＰ−１（７−３７）として示される、脱アミド化されておらずＣ末端がグリシンで伸長された３１アミノ酸残基の少量の型も、血中で検出可能である（配列番号：２）。双方のペプチドは、同様の生物学的活性を示し、かつ等しい効力を有する。本発明の目的のために、ＧＬＰ−１ペプチドおよびその類似体は、配列番号１および２で示すように、Ｎ末端ヒスチジン残基から始まるペプチド鎖の記数法によって報告する。
【００１１】
【表１】
【００１２】
ＧＬＰ−１ペプチドおよび類似体のインスリン分泌性の作用、すなわち、血漿中のグルコースレベルが正常な生理学的な値を超えるときだけのインスリン分泌の刺激により、これらの化合物は２型糖尿病の治療のための可能性のある候補となっている。ＧＬＰ−１ペプチドは、ランゲルハンス島のβ−細胞内ならびに胃腸管内および心臓、腎臓、肺、脳などの他の組織内で発現される７回膜貫通型Ｇタンパク質共役受容体を通してこれらの生物学的効果を発揮する。アラニンスキャニング変異導入法によって行われたＧＬＰ−１ペプチドの構造活性相関の研究により、１、４、６、７、９、１３、１５、２２、２３および２６番目の部位が受容体結合に重要であることが示された［非特許文献３；非特許文献４］。
【００１３】
ＧＬＰ−１類似体の例としては、元来ヒラモンスター（アメリカドクトカゲ（Ｈｅｌｏｄｅｒｍａ ｓｕｓｐｅｃｔｕｍ））の毒から単離された２種類の３９アミノ酸ペプチドである、エキセンディン−３およびエキセンディン−４などが挙げられ、これらは、ＧＬＰ−１それ自体と約５０％の配列同一性を共有しており、実際にＧＬＰ−１受容体のアゴニストである。エキセンディン−４の合成製剤（エクセナチド）は、米国およびヨーロッパの双方で１日２回の皮下注射に基づく２型糖尿病の治療のための補助療法として承認されている［非特許文献５］。
【００１４】
都合の悪いことに、ＧＬＰ−１ペプチドの治療用途は、ポリペプチド鎖からプロリン残基またはアラニン残基以降のＮ末端ジペプチドを切断するセリン型プロテアーゼである、血漿ジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰ−ＩＶ）またはＣＤ２６による急激な分解を主な原因とするきわめて短い血漿半減期（例えば、ＧＬＰ−１−アミドは、静脈内投与後、ｔ1/2＜１．５分を有する）によって限定される。天然の循環しているＧＬＰ−１ペプチドの生物活性は、実際に、不活性な代謝産物である脱Ｈｉｓ−Ａｌａ−ＧＬＰ−１ペプチドを生じる、ＤＰＰ−ＩＶを介したアラニン−２残基におけるＮ末端の切断によって調節されている。
【００１５】
Ｎ末端の２番目の部位がＧＬＰ−１と異なっているためにＤＰＰ−ＩＶ耐性を有し、したがって、基本的に糸球体濾過によって排除される、エクセナチドであっても、静脈内注射した場合、血漿中で約３０分の半減期を示す。ＧＬＰ−１ペプチドおよび類似体の急激な不活化および／またはクリアランスは、ｉｎ ｖｉｖｏでの投与後の天然のＧＬＰ−１ペプチドに対して長い作用時間を示す長期作用性で分解耐性のＧＬＰ−１受容体アゴニストへの関心を刺激してきた。これらのＧＬＰ−１誘導体の例は、科学文献および特許文献の双方において広範囲に報告されている；これらは、とりわけ、以下の手法に従って得ることができる：
【００１６】
ａ）ＤＰＰ−ＩＶ耐性を与える、ＧＬＰ−１ペプチド鎖における選択的なアミノ酸置換による手法、例えば、血漿安定性およびｉｎ ｖｉｖｏでの半減期を有意に増加させると共に、インスリン分泌活性を維持するＧＬＰ−１類似体が結果として生じる、Ｎ末端の２番目のアミノ酸であるＬ−アラニンをＤ−アラニンまたはセリンで置換することによる手法など［非特許文献６；非特許文献７；特許文献１］
【００１７】
ｂ）ＧＬＰ−１およびＧＬＰ−１類似体のアミノ酸残基の側鎖に１個または複数の親油性置換基を付加することによる手法。ここで、親油性置換基は、４から４０個の炭素原子を含有し、かつアミノ酸に直接にまたはスペーサーを介しての双方にて、化学的に抱合化される。親油性部分で誘導体化されたこれらのＧＬＰ−１類似体のうちのいくつかは、天然のＧＬＰ−１と比較してｉｎ ｖｉｖｏでの作用の遅延性のプロファイルおよび血漿中でのより高い持続性を示した（特許文献２）
【００１８】
ｃ）天然に存在するインスリン分泌性のペプチド、例えば、強力なＧＬＰ−１受容体アゴニストであることが見出された、元来トカゲの唾液腺から単離された２種類の３９アミノ酸のペプチドであるエキセンディン−３およびエキセンディン−４［非特許文献８］（またはこれらに相当する合成型のエクセナチド）などを利用することによる手法。２型糖尿病を有する患者における治療有効性も示されたエクセナチドは、ＧＬＰ−１と約５０％の配列同一性を共有している一方、アラニンがグリシン残基によって置換されているＮ末端の２番目の部位が異なっており、このために生物活性を低下させることなくＤＰＰ−ＩＶ耐性および比較的より長い半減期を有する。
【００１９】
しかし、アミノ酸置換および／または付加を有するヒトペプチドならびに、エクセナチドのような、ヒト以外の由来のペプチドの治療投与は、例えば、３０週間のエクセナチド治療により４０％を超える患者において抗エクセナチド抗体の生成が誘発されたことを示している臨床試験［非特許文献９］において報告されているように、患者において薬剤有効性を低下させ得るまたは有害事象を誘発し得る、望ましくない免疫応答を引き起こすこともある。
【００２０】
ｄ）ＧＬＰ−１ペプチドをポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）に化学的に抱合化して、タンパク質分解耐性の増加および、場合によっては、糸球体濾過の減少による長い生物学的寿命を有する誘導体を得る手法。部位特異的にモノペグ化されたＧＬＰ−１ペプチドは、ｐＨ４．５で行われる、Ｎ末端のＨｉｓ1残基のα−アミノ基上でのプロピオンアルデヒド官能化されたモノメトキシ−ＰＥＧ（ｍ−ＰＥＧ）での選択的な化学的ペグ化によって調製することができる；しかし、結果として生じるモノペグ化されたＧＬＰ−１は、ＤＰＰ−ＩＶ分解に耐性であるが、ｉｎ ｖｉｔｒｏで生物活性をほとんど有さないことが示された［非特許文献１０］。
【００２１】
ペプチダーゼ分解に対する耐性とインスリン分泌活性との間の好適な平衡は、リシンのε−アミノ基の無水マレイン酸保護、Ｌｙｓ20およびＬｙｓ28が保護されたＧＬＰ−１異性体のクロマトグラフィー分離、遊離のリシンのε−アミノ基の反応によって各異性体上に独立に行われるプロピオン酸サクシニミジルで官能化された２ｋＤａのｍ−ＰＥＧでの化学的ペグ化、その後の保護しているマレイン基の除去を含む多工程の化学合成によって調製された、Ｌｙｓ20残基上にモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドについてならびにＬｙｓ28上にモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドについて示されている［非特許文献１１］。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００２２】
【特許文献１】Buckley DIら、米国特許第５５４５６１８号明細書
【特許文献２】Knudsen Lら、ＥＰ０９４４６４８
【特許文献３】米国特許第４１７９３３７号明細書
【特許文献４】Veroneseら、国際公開第２００５０９９７６９号パンフレット
【特許文献５】Kinstler OBら、米国特許第５９８５２６５号明細書
【特許文献６】Fuchsbauer Hら、ＥＰ１０６８３０１
【特許文献７】Takahara Y、ＥＰ７８５２７６
【特許文献８】Takahara Yら、米国特許第６０１０８７１号明細書
【特許文献９】Johansen Lら、国際公開第０７０４６８号パンフレット
【非特許文献】
【００２３】
【非特許文献１】Drucker DJ、2001
【非特許文献２】Holst JJ、2007
【非特許文献３】Adelhorst K,ら、1994
【非特許文献４】Gallwitz Bら、1994
【非特許文献５】Davidson MBら、2005
【非特許文献６】Uckaya Gら、2005
【非特許文献７】Ritzel Uら、1998
【非特許文献８】Eng Jら、1992
【非特許文献９】Schnabel CAら、2006
【非特許文献１０】Lee SHら 2005
【非特許文献１１】Youn YSら、2007
【非特許文献１２】Knudsen LBら、2000
【非特許文献１３】Bloom M.ら、2003
【非特許文献１４】Choi Aら、2004
【非特許文献１５】Greenwald RBら、2003
【非特許文献１６】Parveen SおよびSahoo SK、2006
【非特許文献１７】Davis FFら
【非特許文献１８】Nucci MLら、1991
【非特許文献１９】Delgado Cら、1992
【非特許文献２０】Zalipski S、1995
【非特許文献２１】Roberts MJら、2002
【非特許文献２２】Kinstler OBら、1996
【非特許文献２３】Esposito CおよびCaputo I、2004
【非特許文献２４】Ando Hら、1989
【非特許文献２５】Kobayashi Kら、1996
【非特許文献２６】Kobayashi Kら、1998
【非特許文献２７】Yokoyama Kら、2000
【非特許文献２８】Ohtsuka Tら、2000
【非特許文献２９】Cousson PJら、1992
【非特許文献３０】Pastor MTら、1999
【非特許文献３１】Fontana Aら、2008
【非特許文献３２】Sato Hら、2000
【非特許文献３３】Sato H、2002
【非特許文献３４】Thornton KおよびGorenstein DG、1994
【発明の概要】
【００２４】
本発明は、酵素による直接的かつ部位特異的なトランスグルタミネーション反応によって生体適合性のポリマー分子にモノ抱合化された、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）およびインスリン分泌性の類似体ペプチド、ならびに２型糖尿病のような代謝異常性の病状における治療に適用するためのこれらの医薬製剤および送達系に関する。
【発明が解決しようとする課題】
【００２５】
これらの分解耐性のＧＬＰ−１類似体はＧＬＰ−１ペプチドの半減期を数分から数時間まで延長するが、糖尿病の治療のためのこれらの治療適用には依然として１日１回または２回の注射が必要とされるため、より長い循環半減期を示しかつより少ない回数の非経口投与を必要とする長期作用剤を開発する必要性が残されている。これらの手法の例は、当技術分野において知られており、とりわけ、以下の手法などが挙げられる：
ａ）ヒトのＧＬＰ−１またはその類似体のアシル化された誘導体、例えば、その中のアシル部分がｉｎ ｖｉｖｏで血清アルブミン結合を促進し、効力の減少なく約１３〜１５時間まで半減期を延長する、リラグルチド、すなわち、｛Ａｒｇ28−Ｌｙｓ20−Ｎ−［ε−（γ−Ｇｌｕ｛Ｎ−α−ヘキサデカノイル｝）］−ＧＬＰ−１｝［非特許文献１２］。
【００２６】
ｂ）ヒトアルブミンなどの、大きな血漿タンパク質に組換えＤＮＡ技術を通して共有結合で結合されて、例えば、サルにおいて３日の半減期を示すＧＬＰ−１−アルブミン融合タンパク質、すなわち、アルブゴンが得られる、ＤＰＰ−ＩＶ耐性のＧＬＰ−１ペプチド［非特許文献１３］
ｃ）持続したかつ制御された放出速度でＧＬＰ−１を送達するための徐放性製剤として働く生分解性ポリマー中へのＧＬＰ−１ペプチドの包括によって［非特許文献１４］。
【課題を解決するための手段】
【００２７】
本発明において、本発明者らは、酵素による直接的な部位特異的トランスグルタミネーション反応によって生体適合性ポリマーにモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドおよびＧＬＰ−１ペプチド類似体ならびに２型糖尿病における治療に適用するのに有用なこれらの医薬製剤および送達系の調製を通して、持続性のインスリン分泌性ペプチドの問題に対処している。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】ＧＬＰ−１−アミド（◆）；Ｑ１７Ｎ−Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミド（ ）ならびに対応する２０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミド（▽黒塗）およびＱ１７Ｎ−Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミド（◇）の誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでのＤＰＰ−ＩＶ分解プロファイル。
【図２】２型糖尿病ｄｂ／ｄｂマウスにおける２０ｋＤａ（△）および３０ｋＤａ（△黒塗）のＱ１７をモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドおよびエクセナチド（□）の腹腔内投与（時間−３０分、１００μ／ｋｇ）ならびにグルコースの経口投与（時間０分；１．５ｇ／ｋｇ）の後のグルコース安定化プロファイル
【図３】リン酸緩衝液中３７℃でインキュベートした、２２％のポロキサマー４０７を含有する熱可逆性のゲル製剤からの２０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドのｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出
【図４】天然のＧＬＰ−１−アミド（パネルＡ）、Ｍ−Ｔｇａｓｅによって触媒された、２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミノでのＧＬＰ−１−アミドの直接的なペグ化の室温で１６時間後の反応混合物（パネルＢ）およびイオン交換カラムクロマトグラフィーによって精製されたＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａ（パネルＣ）のＲＰ−ＨＰＬＣ分析
【発明を実施するための形態】
【００２９】
本発明は、天然のペプチドに対して、治療に有用な生物活性の維持、ペプチダーゼの分解に対する耐性およびより長い循環半減期を特徴とする、例えば、ＧＬＰ−１ペプチドのような、ポリマーに抱合化されたインクレチン模倣ペプチド、ならびにこれらの類似体および誘導体に関する。これらの新しい化合物は、ＧＬＰ−１ペプチドのようなインクレチン模倣ペプチド上に天然に存在するグルタミン残基上、または他の天然に存在する残基置換においてＧＬＰ−１ペプチド鎖に導入されたグルタミン残基上もしくはＧＬＰ−１のペプチド鎖に付加されたグルタミン残基上の双方での、トランスグルタミナーゼ（Ｔｇａｓｅ）に触媒される直接的な反応を通した、生体適合性ポリマーへの部位特異的なモノ抱合化によって得られる。
【００３０】
本発明の目的では、インクレチン模倣ペプチドという用語は、グルコース依存的なインスリン分泌ならびに、例えば、食事に伴うグルカゴン放出の阻害、胃内容排出の速度を遅くすることおよび満腹の促進などの関連する血糖降下作用を増強することによって、天然に存在するインクレチンホルモンＧＬＰ−１の作用を模倣する化合物を意味する。
【００３１】
高分子量の生体適合性親水性ポリマーへのペプチドまたはタンパク質分子の抱合化は、例えば受容体の認識能のような、当初の抱合化されていない分子の生物学的機能を大部分は維持しながら、結果として生じる抱合化された複合体の物理化学的性質を変えることはよく知られている。同時に、タンパク質およびペプチドの、ポリマー部分との抱合化は、タンパク質と特異的および非特異的の双方のタンパク質分解酵素との間の物理的な接触を妨げて酵素によるタンパク質分解を阻止または低減し得る。治療用タンパク質の抱合化に使用されてきたよく知られているポリマー部分は、約２ｋＤａから６０ｋＤａの間の分子量を有する直鎖状または分枝状のポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）鎖である。タンパク質分子内の１個または複数の残基へのこうしたポリマーの共有結合による抱合化は、抱合化された複合体のいくつかの機能的な側面を変え、例としては、みかけ上の分子の大きさの増大のための腎クリアランス、酵素分解に対する安定性ならびにタンパク質表面上の免疫原性エピトープのマスキングによる免疫原性の低下などが挙げられる。ポリ（エチレングリコール）−抱合化された（ペグ化された）治療用タンパク質を開発することへの関心が高まっている。その理由は、これらの向上した安定性およびペグ化されていないこれらの対応物よりも少ない投与回数を可能にしているより好適なこれらの薬物動態プロファイルのためである［非特許文献１５］。
【００３２】
ペグ化された誘導体として市販されている治療用タンパク質の例としては、とりわけ、Ｃ型肝炎ウイルスに感染している患者の治療に使用される、ＰＥＧ−インターフェロン−アルファ、骨髄中での顆粒球の産生および分化を刺激する、ＰＥＧ−フィルグラスチム（ＰＥＧ−顆粒球−コロニー刺激因子）、および、先端巨大症の治療に必要とされるペグ化されたヒト成長ホルモン受容体アンタゴニストである、ペグビソマントがある［非特許文献１６］。
【００３３】
以下の基本的な参考文献によって例証されるように、タンパク質およびペプチドのＰＥＧとの化学的抱合化の方法は、当技術分野で知られている：非特許文献１７、特許文献３；特許文献４；非特許文献１８；非特許文献１９；非特許文献２０；非特許文献２１。
【００３４】
ペグ化された治療用タンパク質は、理想的には、他のあらゆる薬剤と同様に、構造的特徴および機能的特徴が十分に確定された均質な製品でなければならない。しかし、タンパク質の化学的ペグ化は、求核性残基（最も一般的には、表面のリシン残基のε−アミノ基または側鎖のカルボキシル基）との非特異的な反応に基づいており、異なる程度の抱合化および／またはペグ化された位置異性体の混合物を生じさせ、これらのそれぞれが生物活性および副作用の出現などの臨床適用に重要な特徴にばらつきを生じさせ得る。
【００３５】
場合によっては、Ｇ−ＣＳＦの持続型として市販される、Ｎ末端をモノ抱合化されたＰＥＧ−フィルグラスチムを製造するのに適用されるように［非特許文献２２］、酸性のｐＨで、Ｎ末端残基のアルファ−アミノ基の、アルデヒド官能化されたモノメトキシ−ＰＥＧ（ｍ−ＰＥＧ）鎖との優先的な反応性を利用し、次いで、還元性のアルキル化を行うことによって、本質的に部位特異的にモノペグ化されたタンパク質を調製することが可能である［特許文献５］。
【００３６】
都合の悪いことに、Ｎ末端のヒスチジン残基が受容体の結合および活性化に関与しているという事実のために、Ｎ末端に選択的な上記の化学的ペグ化をＧＬＰ−１ペプチドに適用すると、部位特異的にモノペグ化された生物活性のない誘導体が得られる；一方、Ｌｙｓ20残基上またはＬｙｓ28上のいずれかにモノペグ化された生物活性のある誘導体を得るためのＧＬＰ−１−ペプチドの２個のリシン残基のうちの１個の選択的な化学ペグ化は、リシンのε−アミノ基の化学的保護、Ｌｙｓ20およびＬｙｓ28が保護されたＧＬＰ−１異性体のクロマトグラフィー分離、各異性体の従来の独立な化学的ペグ化、その後に続く未反応のリシン残基からの保護基の除去を必要とする、低収率で複雑な多工程の方法を通してのみ可能であった［非特許文献１１］。
【００３７】
上記に報告した化学的手法の制限を克服して生体適合性ポリマーに部位特異的にモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１の類似体および誘導体を調製するために有望な方法は、第一級アミノ基で官能化された生体適合性ポリマーとＧＬＰ−１様ペプチドに含有される単一グルタミン残基との間の、トランスグルタミナーゼに触媒される選択的な抱合化の適用を利用することである。
【００３８】
トランスグルタミナーゼ（Ｅ．Ｃ．２．３．２．１３；タンパク質−グルタミン γ−グルタミルトランスフェラーゼ；Ｔｇａｓｅ）は、以下の反応機構に従って、タンパク質を結合したグルタミン残基のγ−カルボキシアミド基と、リシン残基のε−アミノ基または多様な第一級アミン、特に直鎖アルキルアミン、との間のアシル転移反応を触媒する、真核性由来および原核生物由来の双方の酵素である：
タンパク質−ＣＯＮＨ2＋Ｒ−ＮＨ2→タンパク質−ＣＯＮＨＲ＋ＮＨ3
式中、−ＣＯＮＨ2は、アシル供与体として作用する、タンパク質を結合したグルタミン残基のγ−カルボキサミド基であり、かつＲ−ＮＨ2はアシル受容体として作用する多様な第一級アミン（タンパク質鎖中のリシン残基のε−アミノ基を含む）を表す。現在知られている真核生物のトランスグルタミナーゼとしては、とりわけ、血液凝固因子ＸＩＩＩａ、ケラチノサイトＴｇａｓｅ（１型Ｔｇａｓｅ）および遍在性の組織型Ｔｇａｓｅ（２型Ｔｇａｓｅ）などが挙げられる。多様な真核生物のＴｇａｓｅは、いくつかのサブユニットからなりかつ高度な配列類似性および機能特性の双方を共有している１種のファミリーのアイソザイムに属し、約７５〜９０ｋＤａの分子量および同様なＣａ2+依存的な触媒の作用機序を有する［非特許文献２３］。
【００３９】
より最近では、原核生物のトランスグルタミナーゼが、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）およびバシラス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）の株、ならびに他の多様な微生物で発見され［非特許文献２４；非特許文献２５］、さらにクローニングされて、組換えタンパク質として発現された［非特許文献２６；非特許文献２７；特許文献６］。真核生物のＴｇａｓｅに対して、微生物のＴｇａｓｅ（Ｍ−Ｔｇａｓｅ）は、約３８〜４０ｋＤａの分子量およびＣａ2+非依存性の触媒活性を有する単量体の酵素である。
【００４０】
哺乳動物および微生物のＴｇａｓｅはいずれも、アシル供与体部分に相当するタンパク質のグルタミン残基の側鎖上に特異的な選択性で作用するが、アシル受容体部分に相当する第一級アミノ基に対しては、選択性がきわめて低いまたはないことが示された。実際に、双方のＴｇａｓｅは、タンパク質鎖上のリシン残基のε−アミノ基のみと反応するわけではなく、第一級アミノ基を有する化合物または脂肪族アルキルアミンとも反応し、少なくとも４個の炭素原子の直鎖上の第一級脂肪族アミンと好ましくは反応する［非特許文献２８］。
【００４１】
また、Ｔｇａｓｅに触媒される反応におけるグルタミン特異性の根拠は依然として不明であるが、標的グルタミンの周囲の微小環境が、Ｔｇａｓｅ基質として作用するその能力に影響を及ぼし得ることが示されている；例えば、グルタミン残基の前または後の正の電荷をもつ側鎖または立体配置的に煩雑な側鎖は、酵素部分上での認識に正の影響を及ぼし得ることが報告されている［非特許文献２９；非特許文献２８］：一方、正の電荷をもつ２個の残基または２個のプロリン残基の双方の隣接するグルタミン残基を有するタンパク質配列は、Ｔｇａｓｅとの適切な相互作用を阻止する［非特許文献３０］。
【００４２】
Ｔｇａｓｅに触媒される反応によって修飾されるグルタミン残基の周囲に特異的なコンセンサス部位は同定されていないが、一般に、哺乳動物および微生物の双方のＴｇａｓｅは、溶媒が近づきやすく、柔軟性があり、かつ局所的に折りたたまれていない、そのグルタミン残基を包含するタンパク質鎖の領域に位置するグルタミン残基を基質として認識することができると考えられている［非特許文献３１］。
【００４３】
これらの特徴に基づいて、原核生物および真核生物の双方のＴｇａｓｅに触媒される反応は、アミノ酸配列中に少なくとも１個のグルタミン残基（ここで、グルタミンは、タンパク質鎖中に天然に存在していても、または部位特異的な変異生成によって挿入されていてもいずれであってもよい）を有するペプチドおよびタンパク質にポリマー鎖を共有結合で結合させるためのトランスグルタミナーゼの使用を記載している、特許文献［例えば、特許文献７；特許文献８を参照されたい］および科学論文［非特許文献３２；非特許文献３３］において報告されているように、アルキルアミノ官能化されたｍ−ＰＥＧ鎖などのアミノ官能化された分子のタンパク質への部位選択的な組込みに適用されている。
【００４４】
また、上記の開示された例によると、Ｔｇａｓｅに触媒されるこれらの抱合化反応は、グルタミン含有タンパク質基質に対して著しく過剰な、第一級アミノ基官能化されたｍ−ＰＥＧ基質の存在下（これは、約１００〜１０００倍モル過剰に存在した）で行われた。酵素による抱合化の過程を工業規模で実施しなければならない場合、特に、例えば、そうした高い濃度で処理するのが高価かつ困難の双方である２０〜６０ｋＤａのアルキルアミノ−ｍ−ＰＥＧを用いる場合のように、高分子量のアミノ官能化されたポリマーを用いる場合には、これらの条件は、明らかな経済的かつ技術的な欠点を示す。
【００４５】
Ｔｇａｓｅに触媒されるＧＬＰ−１−ペプチドのペグ化に関する限りでは、最近の特許出願［特許文献９］にこれらの制限を克服するための２工程の方法が教示されている：第１の工程では、官能化された化学的な小部分を、哺乳動物および微生物の双方のＴｇａｓｅの作用によってＧＬＰ−１−ペプチドの単一グルタミン残基上に転移させ、次いで、結果として生じる中間体である官能化されたグルタミンを、Ｔｇａｓｅの触媒作用によって先に導入された官能基と反応し得る反応基を有するｍ−ＰＥＧ鎖と化学的に抱合化する。第１の工程は低分子量の化合物に関与するので、酵素によるトランスグルタミナーゼ反応におけるその大過剰での使用は容易に扱うことができる。
【００４６】
本発明者らは、現在、驚くべきことに、単一グルタミン残基を有するＧＬＰ−１ペプチドおよびインスリン分泌性のＧＬＰ−１の類似体および誘導体をアルキルアミノ官能化されたポリマーに高収率で直接に抱合化することができることを見出しており、これは本発明の主な目的を表している；「直接に」という用語は、本明細書中で、その共有結合が、ＧＬＰ−１ペプチドとアルキルアミノ官能化されたポリマーとの間で、介在するリンカーも必要とすることなく、「直接に」生じることを示すために使用する。好ましくは、これらのアルキルアミンは、２から５０ｋＤａまで、好ましくは５から４０ｋＤａまで、より好ましくは１０から３０ｋＤａまで、さらにより好ましくは１５から２５ｋＤａまでの分子量の直鎖状または分枝状のｍ−ＰＥＧであってもよい；好ましい実施形態では、ｍ−ＰＥＧは、約２０ｋＤａの分子量を有する。
【００４７】
こうしたポリマーは、アルキルアミノ官能化されたポリマーとＧＬＰ−１様ペプチドのモル比が１：１から１：１００の間、好ましくは１：５から１：３５の間、より好ましくは１：１５から１：２５の間からなる、トランスグルタミナーゼ、好ましくは微生物のトランスグルタミナーゼ（Ｍ−Ｔｇａｓｅ）によって触媒される直接的な酵素反応によって抱合化される；最も好ましい実施形態によれば、このモル比は約１：２０である。さらに驚くべきことに、かつ特許文献９の教示に反して、本発明者らは、ＧＬＰ−１様ペプチドまたはエクセナチドの基質の単一グルタミン残基上のアミノ官能化されたポリマーの転移を触媒するために、モルモット−肝Ｔｇａｓｅのような、哺乳動物のトランスグルタミナーゼを使用した場合には酵素によるＧＬＰ−１誘導体の抱合化を達成できないのに対して、Ｍ−Ｔｇａｓｅだけがｍ−ＰＥＧ−アミンとＧＬＰ−１ペプチドまたはインスリン分泌性のＧＬＰ−１類似体との間の直接的な抱合化反応を触媒できることを見出した
酵素による直接的な、ＧＬＰ−１−アミドおよびエクセナチドのモノペグ化のいくつかの実験的研究の結果を表１および表２にまとめる。
【００４８】
【表２−１】
【００４９】
【表２−２】
【００５０】
【表３】
【００５１】
したがって、本発明の主な目的は、天然のインクレチンホルモンの生物活性と同様なｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性を示すことができるという点でインクレチン模倣体として作用するモノ抱合化された誘導体を得るための、ＧＬＰ−１−ペプチド中およびインスリン分泌性のＧＬＰ−１類似体中に含まれる単一グルタミン残基と、例えば２から６０ｋＤａまでの分子量の直鎖状または分枝状のアルキルアミノｍ−ＰＥＧのような、アミノ官能化された生体適合性ポリマーとの間の、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的な反応の方法を提供することである。
【００５２】
本発明のもう１つの実施形態は、天然にはＧＬＰ−１−アミドもしくはＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１の１７番目の部位に存在する単一グルタミン残基上または天然にはエクセナチドの１３番目の部位に存在する単一グルタミン残基上の、Ｍ−Ｔｇａｓｅで触媒される直接的な生体適合性ポリマーとの反応によってモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドによって表される。
【００５３】
ＧＬＰ−１ペプチドおよびインスリン分泌性の類似体ペプチドは水溶液中で定まった構造を有さない［非特許文献３４］という事実を、溶媒が近づきやすく、柔軟性があり、かつ局所的に折りたたまれていないタンパク質鎖の領域に位置するグルタミン残基を基質として認識すると報告されているＴｇａｓｅの能力［非特許文献３１］と組み合わせると、Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−ペプチドおよびＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体のペプチド鎖に導入されるグルタミン残基はＭ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的な生体適合性ポリマーとのモノ抱合化反応の代替の基質を提供するであろうと予想されることもあり得る。しかし、予想外なことに、グルタミンを含有しているこれらのＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１バリアントのうちのいくつか、例えば、２、５、８、１１、１２および２４番目の部位に単一グルタミン置換を有する誘導体などを、Ｍ−Ｔｇａｓｅの存在下で、アミノ官能化されたｍ−ＰＥＧと反応させた場合に、驚くべきことに、例えば表３に報告するように、Ａ２４Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１以外のすべての変異体はＭ−Ｔｇａｓｅの基質ではなく、かつ結果として、２４番目の部位にある単一グルタミン残基上でモノペグ化されたＡ２４Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１を除き、これらからは期待されたモノペグ化された誘導体は得られないことが見出された。
【００５４】
【表４】
【００５５】
本発明のもう１つの実施形態は、以下の双方である任意の残基の置換において導入された単一グルタミン残基上での、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される生体適合性ポリマーとの直接的な反応によって得られる、モノ抱合化されたＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドおよびインスリン分泌性のＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−ペプチド類似体によって表される：
ａ） ＧＬＰ−１−ペプチドの受容体結合に関与しない、すなわち、受容体結合に重要な１、４、６、７、９、１３、１５、２２、２３および２６番目の部位にあるもの［非特許文献３：非特許文献４］以外の任意の残基
ｂ） グルタミン置換を、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的なトランスグルタミナーゼ反応においてそれがアシル供与体として作用することが可能な部位に有する。
【００５６】
Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される部位特異的で直接的なモノペグ化反応の基質として本発明に従って使用されるＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体は、当技術分野でよく知られている従来の化学的な方法によって、例えば、以前に開示されているような固相ペプチド合成によってまたはペプチド断片の縮合反応によって（例えば、参照により本明細書に組み込まれている、Merrifield B、1986およびKaiser ET、1989を参照されたい）調製することができる。
【００５７】
あるいは、グルタミン置換を、受容体結合に関与せず、かつそれらがＭ−Ｔｇａｓｅアシル供与体基質として作用することが可能な部位にある、任意の残基に有するＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体を含む、本発明に従って使用されるＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体は、当技術分野でよく知られており、かつ以前に開示されている方法（例えば、参照により本明細書に組み込まれているSambrock Jら、1989を参照されたい）に従って組換えＤＮＡ技術によって調製することもできる。
【００５８】
本発明の直接的な酵素反応は、ＧＬＰ−１ペプチドまたはＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体を４から９の間、より好ましくは５から８の間のｐＨの適切な水性緩衝液に５０〜１０００μＭの間、より好ましくは１００μＭから５００μＭの間の濃度で溶解すること、および５０倍未満、好ましくは２５倍未満モル過剰の直鎖状または分枝状で２から６０ｋＤａの間の分子量のアルキルアミノｍ−ＰＥＧおよび０．１から２Ｕ／ｍｌ、より好ましくは０．２から１Ｕ／ｍｌのＭ−Ｔｇａｓｅを添加すること、ならびに反応混合物を１０から５０℃の間、より好ましくは１５から３０℃の間の温度で１０時間以上放置することによって行う。Ｍ−Ｔｇａｓｅは、例えば、味の素から市販されているＡｃｔｉｖａ ＷＭの標品または同等の活性を有する、天然または組換えの微生物に由来する任意のＭ−Ｔｇａｓｅの標品であってもよい。Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される反応の動態を、他のあらゆる酵素反応の動態と同様に、温度によってかつ酵素の量によって調節できることはよく知られており、かつ結果として、触媒活性の維持と適合可能な都合のよい任意の組合せの酵素濃度および温度を選択することによって、上記で説明した反応の反応時間を短縮することができる。部位特異的にモノペグ化された本発明のＧＬＰ−１類似体は、塩析、透析、限外濾過、等電沈殿、カラムクロマトグラフィーのような従来の方法、例えば実験の節に、記載されている当技術分野において周知な方法に従って精製した。上記に報告したように、Ｔｇａｓｅに触媒される、ＧＬＰ−１類似体とアミノ官能化されたｍ−ＰＥＧとの間の反応を、哺乳動物のＴｇａｓｅの製剤の存在下で行った場合には、表１および表２に示すように、ペグ化は達成されなかった。
【００５９】
部位特異的にモノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチドおよび類似体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで３７℃で試験されたＤＰＰ−ＩＶによる酵素分解に対して、修飾されていないペプチドと比較して、向上した耐性を示した。特に、表４に示すように、Ｎ末端ジペプチドの切断によってＧＬＰ−１−アミドが３７℃で８時間後に完全に不活化されたのに対し、モノペグ化されたその誘導体は２４時間のインキュベート後でさえも依然として約７０パーセントの活性な構造を維持しており、表４および図１に示すように、より大きな分子量のＰＥＧ鎖に抱合化されたＧＬＰ−１−アミドはＤＰＰ−ＩＶ切断に対してより耐性であった。
【００６０】
表４および図１に示すように、Ｑ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１変異体のモノペグ化された誘導体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでのＤＰＰ−ＩＶ分解に対する同様な耐性を示した。
【００６１】
【表５】
【００６２】
以下の実験的パラメータを考慮に入れながら、糖尿病マウスにおいて行われた経口グルコース負荷試験で試験したように、モノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチド誘導体のｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性を、グルコースを安定化する全体的な能力の観点から評価した：最高血糖値（ｍｇ／ｄｌでのＧｌｕmax）；血糖値が１００（±５）ｍｇ／ｄｌ（Ｔglu<100mg/dl)）未満に低下するまでの時間および総合的な血糖降下程度の対照生理食塩水に対するパーセント表示（ＨＤ%対照＝ＡＵＣ生理食塩水(0-180)−ＡＵＣ試験(0-180)／ＡＵＣ生理食塩水(0-180)×１００）。これらの結果を表５および図２に示している。
【００６３】
【表６】
【００６４】
グルコース投与の最初の１８０分後について算出したグルコースに関連したパラメータは、双方のＧＬＰ−１−ＰＥＧ製品、特にＧＬＰ−１−ＰＥＧ30kDaが、おそらく、同等のＤＰＰ−ＩＶ耐性のために、エクセナチドの活性と同様な活性を有することを示している。
【００６５】
２０ｋＤａおよび３０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドによって示される、経口グルコース負荷後８時間までのグルコースを安定化する活性は、おそらく、タンパク質分解安定性の増大およびクリアランスの低下と、エクセナチドによって示されるものと同等のまたはそれよりよい最終的な生物学的有効性との組合せによるものである。
【００６６】
本発明のさらなる目的は、本発明に記載の、ペグ化されていないペプチドに対して増大されたタンパク質分解安定性および／またはより長い循環半減期を特徴とし、かつ、したがって、１日１回から週３回までの投与に基づいて２型糖尿病患者の高血糖を低下させるのに適切な、インクレチン模倣特性を有するＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体の投与のための薬学的に許容される製剤を提供することである。
【００６７】
これらの製剤中に、モノペグ化されたＧＬＰ−１類似体は、０．１から５０ｍｇ／ｍｌの濃度で存在し、このとき、前記製剤は、５から９まで、より好ましくは７から８までのｐＨを有する。これらの製剤は、当技術分野において知られている等張化剤およびキレート化剤ならびに保存剤、安定剤および界面活性剤の添加の有無にかかわらず、緩衝系をさらに含有していてもよい。本発明の一実施形態において、こうした製剤は水溶液および／または水性懸濁剤であるのに対し、さらなる実施形態では、これらは任意の許容される方法、好ましくは凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚａｔｉｏｎ）によって得られる粉末状の製剤である。
【００６８】
本発明のさらなる目的は、生分解性ポリマー中または当技術分野において知られているタンパク質およびペプチドの送達のための任意のポリマー組成物中に組み込むことを通して、モノペグ化されたインスリン分泌性のＧＬＰ−１ペプチドの制御されかつ持続した放出を可能にする、週１回から月２回までの投与に基づいて２型糖尿病患者の高血糖を低下させるのに適切な、本発明に記載のインクレチン模倣特性を有するＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体を治療に適用するための送達オプションを提供することである。本発明に記載のＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体の長期送達のための系としては、とりわけ、以下の基本的な参照文献によって例証されるような、当技術分野において知られている有機または無機のポリマーのナノ粒子およびマイクロ粒子、リポソームおよびリポソーム様小胞、脂質ナノ粒子、ヒドロゲルを主成分とするマイクロ粒子、温度応答性ポリマーおよびｐＨ応答性ポリマーならびにマイクロエマルションなどを含む：参照により本明細書に組み込まれる、Kohane DS、2007；Lee KYおよびYuk SH、2007；Singh Sら、2007；Jorgensen Lら、2006；Schmaljohann D、2006；Muller RHおよびKeck CM、2004；Shina VRおよびTrehan A、2003。
【００６９】
本発明に例として記載している、インクレチン模倣特性を有するモノペグ化されたＧＬＰ−１様ペプチドの徐放性製剤は、ｐＨ４の酢酸緩衝液に４℃で溶解したポロキサマー４０７中の活性成分を組み込むことによって調製することができる。１ｍｌの製剤化されたゲルを１ｍｌの酢酸緩衝液０．２Ｍ ｐＨ４．０と共に３７℃でインキュベートすることによって検討した、０．３ｍｇ／ｍｌのＧＬＰ−１−アミド Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤＡを含有する２２％ｗ／ｗのポロキサマー４０７溶液からのｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出の動態を図３に示している。ポロキサマーに基づく製剤は、１８℃より高い温度でゲル相に転移することができるので、モノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチドの循環における緩徐な放出へと続く皮下注射直後のｉｎ ｓｉｔｕでのゲル化のための適切な系を代表するものである。
【００７０】
本発明のよりよい理解のために、以下の定義を示す。
【００７１】
本発明の使用に従ったＧＬＰ−１（グルカゴン様ペプチド−１）およびＧＬＰ−１類似体という用語は、３０アミノ酸のＣ末端がアミド化されたＧＬＰ−１（配列番号１）、３１アミノ酸のＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１（配列番号２）および１個または複数のアミノ酸残基の欠失、付加または置換を有するこれらの生物活性のある型ならびに配列番号２の３１アミノ酸のＣ末端がグリシンで伸長されたヒトＧＬＰ−１に関して少なくとも４０％の配列同一性を有する合成または天然のインスリン分泌性ペプチドを意味する。
【００７２】
特に、ＧＬＰ−１−ペプチド類似体について本明細書中で使用される場合、生物活性のある型という用語は、ｉｎ ｖｉｖｏで投与したときに、グルコースによって誘発されるインスリン分泌を増強することができるという点で、それらの製品がインクレチン模倣体として働くことを意味する。
【００７３】
本発明の使用に従ったＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体（ここで、ＱおよびＮはそれぞれ、グルタミンおよびアスパラギンの１文字コード表記である）という用語は、ペプチド鎖の１７番目の部位にアスパラギン残基を、かつ他の部位に１個の単一グルタミン残基を含有している、ＧＬＰ−１−アミドまたはＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１を意味する。
【００７４】
以下に、本発明の適用の分野を限定することなく、本発明の実例を提供する目的で、いくつかの実験的な実施例を示す。
【００７５】
本発明の使用に従ったナノ粒子およびマイクロ粒子という用語は、例えば、参照により本明細書に組み込まれる、Kohane DS（2007）、Lee KYおよびYuknSH（2007）、Muller RHおよびKeck CM（2004）ならびにShina VRおよびTrehan A（2003）によって記載されているように、活性成分の制御された放出を達成するために薬剤を入れた、１０ナノメートルから１００マイクロメートルまでの範囲に及ぶ寸法を有する無機および有機のあらゆるポリマー物質を意味する。
【００７６】
本発明の使用に従った温度応答性ポリマーという用語は、例えば、参照により本明細書に組み込まれている、Singh Sら（2007）、Schmalijohann D（2006）によって記載されているように、ｉｎ ｓｉｔｕデポ型薬剤送達系を形成するために、そのゾルからゲルへの転移が温度の上昇によって開始されるあらゆるポリマー物質を意味する。
【実施例１】
【００７７】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＧＬＰ−１ペプチドの部位特異的なモノペグ化
ＧＬＰ−１ペプチドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１モル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。
【００７８】
反応終了後、溶液を２０ｍＭ、ｐＨ４．０の酢酸ナトリウム緩衝液中に希釈し、イオン交換カラムクロマトグラフィー（Ｍａｃｒｏｃａｐ Ｓｐ）によってＮａＣｌの直線勾配（１０カラム量にて０から５０ｍＭまで）で溶出しながら精製する。モノペグ化されたＧＬＰ−１を含んでいる画分プールを濃縮し、脱塩して、凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚｅ）する。酵素によって触媒された直接的なＧＬＰ−１ペプチドのモノペグ化の収率は、約６０％である。
【００７９】
０および１６時間の時点で回収した反応混合物、ならびに精製したＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの一定分量のＲＰ−ＨＰＬＣを図４に報告している。
【実施例２】
【００８０】
モルモットのＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化の試行。
【００８１】
ＧＬＰ−１−アミドを、５０ｍＭ、ｐＨ７．５のトリス溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８２】
次いで、このタンパク質溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｆｌｕｋａ）を添加して、５００：１のＰＥＧ：Ｇ−ＬＰ−１モル比を達成する。
【００８３】
次いで、この反応混合物に、０．３Ｕ／ｍｌのモルモットのトランスグルタミナーゼ（Ｓｉｇｍａ）および１０ｍＭのＣａＣｌ2を添加し、この混合物を撹拌下、室温で１６時間維持する。出発および最終の反応混合物について実施したＲＰ−ＨＰＬＣは、未反応のＧＬＰ−１−アミドの存在を示しただけでペグ化された誘導体の痕跡はなかった。
【実施例３】
【００８４】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＳ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ ＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化の試行
Ｓ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８５】
次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１モル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。出発および最終の反応混合物について実施したＲＰ−ＨＰＬＣは、未反応のＳ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドの存在を示しただけでペグ化された誘導体の痕跡はなかった。
【実施例４】
【００８６】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＱ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化
Ｑ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８７】
次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１−ペプチドモル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。
【００８８】
反応終了後、溶液を２０ｍＭ、ｐＨ４．０の酢酸ナトリウム緩衝液中に希釈し、カラムクロマトグラフィー（Ｍａｃｒｏｃａｐ Ｓｐ）によってＮａＣｌの直線勾配（１０カラム量にて０から５００ｍＭまで）で溶出しながら精製する。モノペグ化されたＧＬＰ−１変異体を含んでいる画分プールを濃縮し、脱塩して、凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚｅ）する。ペグ化反応の程度ならびに最終のモノペグ化されたＧＬＰ−１ペプチド変異体の純度を、ＲＰ−ＨＰＬＣによって確認する。酵素によって触媒された直接的なＧＬＰ−１変異体のモノペグ化の収率は、約６０％である。
【実施例５】
【００８９】
ＤＰＰ−ＩＶの消化に対するＧＬＰ−１−ＰＥＧ誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでの安定性の決定
リン酸緩衝食塩水中、（ペプチド含有量を等しいものとして計算した）０．１ｍｇ／ｍｌの濃度のＧＬＰ−１−アミド、モノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドまたはモノペグ化されたＧＬＰ−アミドの変異体もしくは類似体の溶液を、ＤＰＰ−ＩＶ（ブタ腎臓由来のジペプチジルペプチダーゼＩＶ、Ｓｉｇｍａ）、５Ｕ／ｍｌのペプチド溶液と混合し、３７℃でインキュベートした。各時点で一定分量の反応混合物を回収し、ＤＰＰ−ＩＶによって除去されたＮ末端ジペプチドＨｉｓ−ＡｌａをＲＰ−ＨＰＬＣ分析によって検出してＧＬＰ−１−ペプチドの分解を測定した。例えば図１に示したように、酵素分解を各試料のＨｉｓ−Ａｌａタイトルから算出した
【実施例６】
【００９０】
ＧＬＰ−１−アミド、ＧＬＰ−１ペプチド類似体およびこれらのモノペグ化された誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでの生物活性の決定。
【００９１】
このアッセイは、グルコースならびに種々の濃度のＧＬＰ−１ペプチドおよびこれらのモノペグ化された誘導体の存在下における、ラットベータ細胞のインスリノーマに由来するＲＩＮ−ｍ５ｆ細胞からのインスリンの放出に基づいている。簡単に説明すると、２×１０5細胞を６穴プレート中の完全ＲＰＭＩ培地中に播き、３７℃で２日間インキュベートする；細胞を洗浄し、より低いグルコース濃度（０．２％）の培地でさらに４時間インキュベートし、次いで、再び洗浄し、ＧＬＰ−１ペプチドまたはこれらのモノペグ化された誘導体の１０ｍＭの溶液と共に１時間インキュベートする。上清を回収し、放出されたインスリンのタイトルをＥＬＩＳＡアッセイによって決定する。
【実施例７】
【００９２】
ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ５ｋＤａ、ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａ、ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ３０ｋＤａのｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性の決定。
【００９３】
血漿中のグルコースに対するＧＬＰ−１−アミドおよびそのペグ化された誘導体の安定化作用の評価を７から１０週齢の糖尿病（ｄｂ／ｄｂ）マウスを使用して検討した。グルコース溶液（１．５ｇ／ｋｇ体重）の経口投与前の１８時間および投与後３時間の間に餌を取り除き、グルコース投与の６時間後に再び餌を取り除いた。４０μｇ／ｍｌの試験する製品および陰性対照（リン酸緩衝食塩水）を、グルコース投与３０分間前に、２．５ｍｌ／ｋｇ体重の量の皮下注射によって投与した。注射前および注射後１５、３０、６０、１２０、１８０、２４０、３００、１４４０分に意識のあるマウスの尾静脈から血液試料を採取し、グルコテスターＡｓｃｅｎｓｉａ Ｅｌｉｔｅ（Ｂａｙｅｒ）によってグルコース濃度を測定した。エクセナチドおよび食塩水の対照と比較した、２０ｋＤａおよび３０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１アミドで行った実験の結果を図２に示している。
【実施例８】
【００９４】
ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの持続放出性ポロキサマー製剤の調製およびｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出アッセイ
ポロキサマー４０７の２７％溶液を、このポリマーを０．２Ｍの酢酸緩衝液ｐＨ４．０に４℃でゆっくりと溶解することによって調製した。ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ２０ｋＤａを添加して最終濃度０．３ｍｇ／ｍｌのＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ２０ｋＤａおよび２２％のポロキサマーを得て、この溶液を４℃で保存した。
【００９５】
１ｍｌの形成されたゲルを１ｍｌの酢酸緩衝液０．２Ｍ ｐＨ４．０と共に３７℃でインキュベートすることによって溶解試験を行った。ＲＰ−ＨＰＬＣ分析によってＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの放出を評価するために、各時点において溶液を回収して等量の緩衝液で置換した。溶解試験の結果を図３に示している。
【００９６】
参考文献
【００９７】
【表７】
【００９８】
【表８】
【００９９】
【表９】
【０１００】
【表１０】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、酵素による直接的かつ部位特異的なトランスグルタミネーション反応によって生体適合性のポリマー分子にモノ抱合化された、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）およびインスリン分泌性の類似体ペプチド、ならびに２型糖尿病のような代謝異常性の病状における治療に適用するためのこれらの医薬製剤および送達系に関する。
【背景技術】
【０００２】
糖尿病は、数千年前から存在していたことが知られており、現在、世界中で２億人を超える人々を苦しめている疾患である。糖尿病を有する個体の平均余命の減少および生活の質の低下に加えて、この疾患およびこれに関連した合併症は、健康の予算に対する大きな負担となっている。
【０００３】
糖尿病のより一般的な型は、遺伝的要素および環境的要素の双方を有し、多因子性で異種起源の障害の群を示す２型糖尿病（すなわち、インスリン非依存性糖尿病）であり、これは、インスリン分泌、インスリン作用、またはその双方における異常の結果として生じ、無制御なまたは高い血糖値をもたらす。
【０００４】
先進工業国において、糖尿病を有する個体のうちの約９０％は、おそらく食事および身体的な活動レベルの変化の影響を受けて罹患率が過去数十年にわたり劇的に増加している２型糖尿病を有する。
【０００５】
２型糖尿病は、通常、４５歳を超える過体重の成人において発生する；しかし、（通常、１０歳を超える）過体重の小児における２型糖尿病の発生率も急激に増加している。
【０００６】
２型糖尿病の管理における現在の療法としては、食事の改善および身体的な運動を通しての生活習慣への介入、ならびに経口または注射による血糖降下剤での治療などが挙げられる；しかし、２型糖尿病を有するすべての個体がこれらの治療に同じように応答するわけではない。
【０００７】
食事に対する生理学的な応答の理解が深まったことにより、インクレチンホルモンの発見、および胃腸のホルモン作用の促進に基づいた治療作用を有する新しい作用剤の開発が可能となった［非特許文献１］。
【０００８】
これらの療法は、胃内容排出を遅くすること、インスリンの刺激およびグルカゴン分泌の阻害、食後の高血糖の管理の改善、ならびに体重の管理に関連している。
【０００９】
インクレチンは、高血糖状態下でインスリン分泌を増強する栄養素によって放出される、消化管由来のホルモンである。ヒトのグルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）は、プレプログルカゴン遺伝子に由来して食物摂取後に腸の腸内分泌Ｌ細胞から分泌され、グルコース依存的に内因性インスリンの分泌、血中グルカゴンレベルの減少および胃の運動性を遅くすることによる胃内容排出の低下を含む、様々な生理学的な機序を通して強力な血糖降下作用を示す、原型のインクレチンホルモンである。また、ＧＬＰ−１は、β−細胞塊の増大を導く新しい膵β−細胞の増殖および分化を刺激する［非特許文献２］。
【００１０】
循環しているヒトＧＬＰ−１の主要な型は、一般にＧＬＰ−１（７−３６）−アミドとして示される、Ｃ末端がアミド化された３０アミノ酸残基のペプチドであり（配列番号１）、一般にＧＬＰ−１（７−３７）として示される、脱アミド化されておらずＣ末端がグリシンで伸長された３１アミノ酸残基の少量の型も、血中で検出可能である（配列番号：２）。双方のペプチドは、同様の生物学的活性を示し、かつ等しい効力を有する。本発明の目的のために、ＧＬＰ−１ペプチドおよびその類似体は、配列番号１および２で示すように、Ｎ末端ヒスチジン残基から始まるペプチド鎖の記数法によって報告する。
【００１１】
【表１】
【００１２】
ＧＬＰ−１ペプチドおよび類似体のインスリン分泌性の作用、すなわち、血漿中のグルコースレベルが正常な生理学的な値を超えるときだけのインスリン分泌の刺激により、これらの化合物は２型糖尿病の治療のための可能性のある候補となっている。ＧＬＰ−１ペプチドは、ランゲルハンス島のβ−細胞内ならびに胃腸管内および心臓、腎臓、肺、脳などの他の組織内で発現される７回膜貫通型Ｇタンパク質共役受容体を通してこれらの生物学的効果を発揮する。アラニンスキャニング変異導入法によって行われたＧＬＰ−１ペプチドの構造活性相関の研究により、１、４、６、７、９、１３、１５、２２、２３および２６番目の部位が受容体結合に重要であることが示された［非特許文献３；非特許文献４］。
【００１３】
ＧＬＰ−１類似体の例としては、元来ヒラモンスター（アメリカドクトカゲ（Ｈｅｌｏｄｅｒｍａ ｓｕｓｐｅｃｔｕｍ））の毒から単離された２種類の３９アミノ酸ペプチドである、エキセンディン−３およびエキセンディン−４などが挙げられ、これらは、ＧＬＰ−１それ自体と約５０％の配列同一性を共有しており、実際にＧＬＰ−１受容体のアゴニストである。エキセンディン−４の合成製剤（エクセナチド）は、米国およびヨーロッパの双方で１日２回の皮下注射に基づく２型糖尿病の治療のための補助療法として承認されている［非特許文献５］。
【００１４】
都合の悪いことに、ＧＬＰ−１ペプチドの治療用途は、ポリペプチド鎖からプロリン残基またはアラニン残基以降のＮ末端ジペプチドを切断するセリン型プロテアーゼである、血漿ジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰ−ＩＶ）またはＣＤ２６による急激な分解を主な原因とするきわめて短い血漿半減期（例えば、ＧＬＰ−１−アミドは、静脈内投与後、ｔ1/2＜１．５分を有する）によって限定される。天然の循環しているＧＬＰ−１ペプチドの生物活性は、実際に、不活性な代謝産物である脱Ｈｉｓ−Ａｌａ−ＧＬＰ−１ペプチドを生じる、ＤＰＰ−ＩＶを介したアラニン−２残基におけるＮ末端の切断によって調節されている。
【００１５】
Ｎ末端の２番目の部位がＧＬＰ−１と異なっているためにＤＰＰ−ＩＶ耐性を有し、したがって、基本的に糸球体濾過によって排除される、エクセナチドであっても、静脈内注射した場合、血漿中で約３０分の半減期を示す。ＧＬＰ−１ペプチドおよび類似体の急激な不活化および／またはクリアランスは、ｉｎ ｖｉｖｏでの投与後の天然のＧＬＰ−１ペプチドに対して長い作用時間を示す長期作用性で分解耐性のＧＬＰ−１受容体アゴニストへの関心を刺激してきた。これらのＧＬＰ−１誘導体の例は、科学文献および特許文献の双方において広範囲に報告されている；これらは、とりわけ、以下の手法に従って得ることができる：
【００１６】
ａ）ＤＰＰ−ＩＶ耐性を与える、ＧＬＰ−１ペプチド鎖における選択的なアミノ酸置換による手法、例えば、血漿安定性およびｉｎ ｖｉｖｏでの半減期を有意に増加させると共に、インスリン分泌活性を維持するＧＬＰ−１類似体が結果として生じる、Ｎ末端の２番目のアミノ酸であるＬ−アラニンをＤ−アラニンまたはセリンで置換することによる手法など［非特許文献６；非特許文献７；特許文献１］
【００１７】
ｂ）ＧＬＰ−１およびＧＬＰ−１類似体のアミノ酸残基の側鎖に１個または複数の親油性置換基を付加することによる手法。ここで、親油性置換基は、４から４０個の炭素原子を含有し、かつアミノ酸に直接にまたはスペーサーを介しての双方にて、化学的に抱合化される。親油性部分で誘導体化されたこれらのＧＬＰ−１類似体のうちのいくつかは、天然のＧＬＰ−１と比較してｉｎ ｖｉｖｏでの作用の遅延性のプロファイルおよび血漿中でのより高い持続性を示した（特許文献２）
【００１８】
ｃ）天然に存在するインスリン分泌性のペプチド、例えば、強力なＧＬＰ−１受容体アゴニストであることが見出された、元来トカゲの唾液腺から単離された２種類の３９アミノ酸のペプチドであるエキセンディン−３およびエキセンディン−４［非特許文献８］（またはこれらに相当する合成型のエクセナチド）などを利用することによる手法。２型糖尿病を有する患者における治療有効性も示されたエクセナチドは、ＧＬＰ−１と約５０％の配列同一性を共有している一方、アラニンがグリシン残基によって置換されているＮ末端の２番目の部位が異なっており、このために生物活性を低下させることなくＤＰＰ−ＩＶ耐性および比較的より長い半減期を有する。
【００１９】
しかし、アミノ酸置換および／または付加を有するヒトペプチドならびに、エクセナチドのような、ヒト以外の由来のペプチドの治療投与は、例えば、３０週間のエクセナチド治療により４０％を超える患者において抗エクセナチド抗体の生成が誘発されたことを示している臨床試験［非特許文献９］において報告されているように、患者において薬剤有効性を低下させ得るまたは有害事象を誘発し得る、望ましくない免疫応答を引き起こすこともある。
【００２０】
ｄ）ＧＬＰ−１ペプチドをポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）に化学的に抱合化して、タンパク質分解耐性の増加および、場合によっては、糸球体濾過の減少による長い生物学的寿命を有する誘導体を得る手法。部位特異的にモノペグ化されたＧＬＰ−１ペプチドは、ｐＨ４．５で行われる、Ｎ末端のＨｉｓ1残基のα−アミノ基上でのプロピオンアルデヒド官能化されたモノメトキシ−ＰＥＧ（ｍ−ＰＥＧ）での選択的な化学的ペグ化によって調製することができる；しかし、結果として生じるモノペグ化されたＧＬＰ−１は、ＤＰＰ−ＩＶ分解に耐性であるが、ｉｎ ｖｉｔｒｏで生物活性をほとんど有さないことが示された［非特許文献１０］。
【００２１】
ペプチダーゼ分解に対する耐性とインスリン分泌活性との間の好適な平衡は、リシンのε−アミノ基の無水マレイン酸保護、Ｌｙｓ20およびＬｙｓ28が保護されたＧＬＰ−１異性体のクロマトグラフィー分離、遊離のリシンのε−アミノ基の反応によって各異性体上に独立に行われるプロピオン酸サクシニミジルで官能化された２ｋＤａのｍ−ＰＥＧでの化学的ペグ化、その後の保護しているマレイン基の除去を含む多工程の化学合成によって調製された、Ｌｙｓ20残基上にモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドについてならびにＬｙｓ28上にモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドについて示されている［非特許文献１１］。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００２２】
【特許文献１】Buckley DIら、米国特許第５５４５６１８号明細書
【特許文献２】Knudsen Lら、ＥＰ０９４４６４８
【特許文献３】米国特許第４１７９３３７号明細書
【特許文献４】Veroneseら、国際公開第２００５０９９７６９号パンフレット
【特許文献５】Kinstler OBら、米国特許第５９８５２６５号明細書
【特許文献６】Fuchsbauer Hら、ＥＰ１０６８３０１
【特許文献７】Takahara Y、ＥＰ７８５２７６
【特許文献８】Takahara Yら、米国特許第６０１０８７１号明細書
【特許文献９】Johansen Lら、国際公開第０７０４６８号パンフレット
【非特許文献】
【００２３】
【非特許文献１】Drucker DJ、2001
【非特許文献２】Holst JJ、2007
【非特許文献３】Adelhorst K,ら、1994
【非特許文献４】Gallwitz Bら、1994
【非特許文献５】Davidson MBら、2005
【非特許文献６】Uckaya Gら、2005
【非特許文献７】Ritzel Uら、1998
【非特許文献８】Eng Jら、1992
【非特許文献９】Schnabel CAら、2006
【非特許文献１０】Lee SHら 2005
【非特許文献１１】Youn YSら、2007
【非特許文献１２】Knudsen LBら、2000
【非特許文献１３】Bloom M.ら、2003
【非特許文献１４】Choi Aら、2004
【非特許文献１５】Greenwald RBら、2003
【非特許文献１６】Parveen SおよびSahoo SK、2006
【非特許文献１７】Davis FFら
【非特許文献１８】Nucci MLら、1991
【非特許文献１９】Delgado Cら、1992
【非特許文献２０】Zalipski S、1995
【非特許文献２１】Roberts MJら、2002
【非特許文献２２】Kinstler OBら、1996
【非特許文献２３】Esposito CおよびCaputo I、2004
【非特許文献２４】Ando Hら、1989
【非特許文献２５】Kobayashi Kら、1996
【非特許文献２６】Kobayashi Kら、1998
【非特許文献２７】Yokoyama Kら、2000
【非特許文献２８】Ohtsuka Tら、2000
【非特許文献２９】Cousson PJら、1992
【非特許文献３０】Pastor MTら、1999
【非特許文献３１】Fontana Aら、2008
【非特許文献３２】Sato Hら、2000
【非特許文献３３】Sato H、2002
【非特許文献３４】Thornton KおよびGorenstein DG、1994
【発明の概要】
【００２４】
本発明は、酵素による直接的かつ部位特異的なトランスグルタミネーション反応によって生体適合性のポリマー分子にモノ抱合化された、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）およびインスリン分泌性の類似体ペプチド、ならびに２型糖尿病のような代謝異常性の病状における治療に適用するためのこれらの医薬製剤および送達系に関する。
【発明が解決しようとする課題】
【００２５】
これらの分解耐性のＧＬＰ−１類似体はＧＬＰ−１ペプチドの半減期を数分から数時間まで延長するが、糖尿病の治療のためのこれらの治療適用には依然として１日１回または２回の注射が必要とされるため、より長い循環半減期を示しかつより少ない回数の非経口投与を必要とする長期作用剤を開発する必要性が残されている。これらの手法の例は、当技術分野において知られており、とりわけ、以下の手法などが挙げられる：
ａ）ヒトのＧＬＰ−１またはその類似体のアシル化された誘導体、例えば、その中のアシル部分がｉｎ ｖｉｖｏで血清アルブミン結合を促進し、効力の減少なく約１３〜１５時間まで半減期を延長する、リラグルチド、すなわち、｛Ａｒｇ28−Ｌｙｓ20−Ｎ−［ε−（γ−Ｇｌｕ｛Ｎ−α−ヘキサデカノイル｝）］−ＧＬＰ−１｝［非特許文献１２］。
【００２６】
ｂ）ヒトアルブミンなどの、大きな血漿タンパク質に組換えＤＮＡ技術を通して共有結合で結合されて、例えば、サルにおいて３日の半減期を示すＧＬＰ−１−アルブミン融合タンパク質、すなわち、アルブゴンが得られる、ＤＰＰ−ＩＶ耐性のＧＬＰ−１ペプチド［非特許文献１３］
ｃ）持続したかつ制御された放出速度でＧＬＰ−１を送達するための徐放性製剤として働く生分解性ポリマー中へのＧＬＰ−１ペプチドの包括によって［非特許文献１４］。
【課題を解決するための手段】
【００２７】
本発明において、本発明者らは、酵素による直接的な部位特異的トランスグルタミネーション反応によって生体適合性ポリマーにモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドおよびＧＬＰ−１ペプチド類似体ならびに２型糖尿病における治療に適用するのに有用なこれらの医薬製剤および送達系の調製を通して、持続性のインスリン分泌性ペプチドの問題に対処している。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】ＧＬＰ−１−アミド（◆）；Ｑ１７Ｎ−Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミド（ ）ならびに対応する２０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミド（▽黒塗）およびＱ１７Ｎ−Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミド（◇）の誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでのＤＰＰ−ＩＶ分解プロファイル。
【図２】２型糖尿病ｄｂ／ｄｂマウスにおける２０ｋＤａ（△）および３０ｋＤａ（△黒塗）のＱ１７をモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドおよびエクセナチド（□）の腹腔内投与（時間−３０分、１００μ／ｋｇ）ならびにグルコースの経口投与（時間０分；１．５ｇ／ｋｇ）の後のグルコース安定化プロファイル
【図３】リン酸緩衝液中３７℃でインキュベートした、２２％のポロキサマー４０７を含有する熱可逆性のゲル製剤からの２０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドのｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出
【図４】天然のＧＬＰ−１−アミド（パネルＡ）、Ｍ−Ｔｇａｓｅによって触媒された、２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミノでのＧＬＰ−１−アミドの直接的なペグ化の室温で１６時間後の反応混合物（パネルＢ）およびイオン交換カラムクロマトグラフィーによって精製されたＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａ（パネルＣ）のＲＰ−ＨＰＬＣ分析
【発明を実施するための形態】
【００２９】
本発明は、天然のペプチドに対して、治療に有用な生物活性の維持、ペプチダーゼの分解に対する耐性およびより長い循環半減期を特徴とする、例えば、ＧＬＰ−１ペプチドのような、ポリマーに抱合化されたインクレチン模倣ペプチド、ならびにこれらの類似体および誘導体に関する。これらの新しい化合物は、ＧＬＰ−１ペプチドのようなインクレチン模倣ペプチド上に天然に存在するグルタミン残基上、または他の天然に存在する残基置換においてＧＬＰ−１ペプチド鎖に導入されたグルタミン残基上もしくはＧＬＰ−１のペプチド鎖に付加されたグルタミン残基上の双方での、トランスグルタミナーゼ（Ｔｇａｓｅ）に触媒される直接的な反応を通した、生体適合性ポリマーへの部位特異的なモノ抱合化によって得られる。
【００３０】
本発明の目的では、インクレチン模倣ペプチドという用語は、グルコース依存的なインスリン分泌ならびに、例えば、食事に伴うグルカゴン放出の阻害、胃内容排出の速度を遅くすることおよび満腹の促進などの関連する血糖降下作用を増強することによって、天然に存在するインクレチンホルモンＧＬＰ−１の作用を模倣する化合物を意味する。
【００３１】
高分子量の生体適合性親水性ポリマーへのペプチドまたはタンパク質分子の抱合化は、例えば受容体の認識能のような、当初の抱合化されていない分子の生物学的機能を大部分は維持しながら、結果として生じる抱合化された複合体の物理化学的性質を変えることはよく知られている。同時に、タンパク質およびペプチドの、ポリマー部分との抱合化は、タンパク質と特異的および非特異的の双方のタンパク質分解酵素との間の物理的な接触を妨げて酵素によるタンパク質分解を阻止または低減し得る。治療用タンパク質の抱合化に使用されてきたよく知られているポリマー部分は、約２ｋＤａから６０ｋＤａの間の分子量を有する直鎖状または分枝状のポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）鎖である。タンパク質分子内の１個または複数の残基へのこうしたポリマーの共有結合による抱合化は、抱合化された複合体のいくつかの機能的な側面を変え、例としては、みかけ上の分子の大きさの増大のための腎クリアランス、酵素分解に対する安定性ならびにタンパク質表面上の免疫原性エピトープのマスキングによる免疫原性の低下などが挙げられる。ポリ（エチレングリコール）−抱合化された（ペグ化された）治療用タンパク質を開発することへの関心が高まっている。その理由は、これらの向上した安定性およびペグ化されていないこれらの対応物よりも少ない投与回数を可能にしているより好適なこれらの薬物動態プロファイルのためである［非特許文献１５］。
【００３２】
ペグ化された誘導体として市販されている治療用タンパク質の例としては、とりわけ、Ｃ型肝炎ウイルスに感染している患者の治療に使用される、ＰＥＧ−インターフェロン−アルファ、骨髄中での顆粒球の産生および分化を刺激する、ＰＥＧ−フィルグラスチム（ＰＥＧ−顆粒球−コロニー刺激因子）、および、先端巨大症の治療に必要とされるペグ化されたヒト成長ホルモン受容体アンタゴニストである、ペグビソマントがある［非特許文献１６］。
【００３３】
以下の基本的な参考文献によって例証されるように、タンパク質およびペプチドのＰＥＧとの化学的抱合化の方法は、当技術分野で知られている：非特許文献１７、特許文献３；特許文献４；非特許文献１８；非特許文献１９；非特許文献２０；非特許文献２１。
【００３４】
ペグ化された治療用タンパク質は、理想的には、他のあらゆる薬剤と同様に、構造的特徴および機能的特徴が十分に確定された均質な製品でなければならない。しかし、タンパク質の化学的ペグ化は、求核性残基（最も一般的には、表面のリシン残基のε−アミノ基または側鎖のカルボキシル基）との非特異的な反応に基づいており、異なる程度の抱合化および／またはペグ化された位置異性体の混合物を生じさせ、これらのそれぞれが生物活性および副作用の出現などの臨床適用に重要な特徴にばらつきを生じさせ得る。
【００３５】
場合によっては、Ｇ−ＣＳＦの持続型として市販される、Ｎ末端をモノ抱合化されたＰＥＧ−フィルグラスチムを製造するのに適用されるように［非特許文献２２］、酸性のｐＨで、Ｎ末端残基のアルファ−アミノ基の、アルデヒド官能化されたモノメトキシ−ＰＥＧ（ｍ−ＰＥＧ）鎖との優先的な反応性を利用し、次いで、還元性のアルキル化を行うことによって、本質的に部位特異的にモノペグ化されたタンパク質を調製することが可能である［特許文献５］。
【００３６】
都合の悪いことに、Ｎ末端のヒスチジン残基が受容体の結合および活性化に関与しているという事実のために、Ｎ末端に選択的な上記の化学的ペグ化をＧＬＰ−１ペプチドに適用すると、部位特異的にモノペグ化された生物活性のない誘導体が得られる；一方、Ｌｙｓ20残基上またはＬｙｓ28上のいずれかにモノペグ化された生物活性のある誘導体を得るためのＧＬＰ−１−ペプチドの２個のリシン残基のうちの１個の選択的な化学ペグ化は、リシンのε−アミノ基の化学的保護、Ｌｙｓ20およびＬｙｓ28が保護されたＧＬＰ−１異性体のクロマトグラフィー分離、各異性体の従来の独立な化学的ペグ化、その後に続く未反応のリシン残基からの保護基の除去を必要とする、低収率で複雑な多工程の方法を通してのみ可能であった［非特許文献１１］。
【００３７】
上記に報告した化学的手法の制限を克服して生体適合性ポリマーに部位特異的にモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１の類似体および誘導体を調製するために有望な方法は、第一級アミノ基で官能化された生体適合性ポリマーとＧＬＰ−１様ペプチドに含有される単一グルタミン残基との間の、トランスグルタミナーゼに触媒される選択的な抱合化の適用を利用することである。
【００３８】
トランスグルタミナーゼ（Ｅ．Ｃ．２．３．２．１３；タンパク質−グルタミン γ−グルタミルトランスフェラーゼ；Ｔｇａｓｅ）は、以下の反応機構に従って、タンパク質を結合したグルタミン残基のγ−カルボキシアミド基と、リシン残基のε−アミノ基または多様な第一級アミン、特に直鎖アルキルアミン、との間のアシル転移反応を触媒する、真核性由来および原核生物由来の双方の酵素である：
タンパク質−ＣＯＮＨ2＋Ｒ−ＮＨ2→タンパク質−ＣＯＮＨＲ＋ＮＨ3
式中、−ＣＯＮＨ2は、アシル供与体として作用する、タンパク質を結合したグルタミン残基のγ−カルボキサミド基であり、かつＲ−ＮＨ2はアシル受容体として作用する多様な第一級アミン（タンパク質鎖中のリシン残基のε−アミノ基を含む）を表す。現在知られている真核生物のトランスグルタミナーゼとしては、とりわけ、血液凝固因子ＸＩＩＩａ、ケラチノサイトＴｇａｓｅ（１型Ｔｇａｓｅ）および遍在性の組織型Ｔｇａｓｅ（２型Ｔｇａｓｅ）などが挙げられる。多様な真核生物のＴｇａｓｅは、いくつかのサブユニットからなりかつ高度な配列類似性および機能特性の双方を共有している１種のファミリーのアイソザイムに属し、約７５〜９０ｋＤａの分子量および同様なＣａ2+依存的な触媒の作用機序を有する［非特許文献２３］。
【００３９】
より最近では、原核生物のトランスグルタミナーゼが、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）およびバシラス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）の株、ならびに他の多様な微生物で発見され［非特許文献２４；非特許文献２５］、さらにクローニングされて、組換えタンパク質として発現された［非特許文献２６；非特許文献２７；特許文献６］。真核生物のＴｇａｓｅに対して、微生物のＴｇａｓｅ（Ｍ−Ｔｇａｓｅ）は、約３８〜４０ｋＤａの分子量およびＣａ2+非依存性の触媒活性を有する単量体の酵素である。
【００４０】
哺乳動物および微生物のＴｇａｓｅはいずれも、アシル供与体部分に相当するタンパク質のグルタミン残基の側鎖上に特異的な選択性で作用するが、アシル受容体部分に相当する第一級アミノ基に対しては、選択性がきわめて低いまたはないことが示された。実際に、双方のＴｇａｓｅは、タンパク質鎖上のリシン残基のε−アミノ基のみと反応するわけではなく、第一級アミノ基を有する化合物または脂肪族アルキルアミンとも反応し、少なくとも４個の炭素原子の直鎖上の第一級脂肪族アミンと好ましくは反応する［非特許文献２８］。
【００４１】
また、Ｔｇａｓｅに触媒される反応におけるグルタミン特異性の根拠は依然として不明であるが、標的グルタミンの周囲の微小環境が、Ｔｇａｓｅ基質として作用するその能力に影響を及ぼし得ることが示されている；例えば、グルタミン残基の前または後の正の電荷をもつ側鎖または立体配置的に煩雑な側鎖は、酵素部分上での認識に正の影響を及ぼし得ることが報告されている［非特許文献２９；非特許文献２８］：一方、正の電荷をもつ２個の残基または２個のプロリン残基の双方の隣接するグルタミン残基を有するタンパク質配列は、Ｔｇａｓｅとの適切な相互作用を阻止する［非特許文献３０］。
【００４２】
Ｔｇａｓｅに触媒される反応によって修飾されるグルタミン残基の周囲に特異的なコンセンサス部位は同定されていないが、一般に、哺乳動物および微生物の双方のＴｇａｓｅは、溶媒が近づきやすく、柔軟性があり、かつ局所的に折りたたまれていない、そのグルタミン残基を包含するタンパク質鎖の領域に位置するグルタミン残基を基質として認識することができると考えられている［非特許文献３１］。
【００４３】
これらの特徴に基づいて、原核生物および真核生物の双方のＴｇａｓｅに触媒される反応は、アミノ酸配列中に少なくとも１個のグルタミン残基（ここで、グルタミンは、タンパク質鎖中に天然に存在していても、または部位特異的な変異生成によって挿入されていてもいずれであってもよい）を有するペプチドおよびタンパク質にポリマー鎖を共有結合で結合させるためのトランスグルタミナーゼの使用を記載している、特許文献［例えば、特許文献７；特許文献８を参照されたい］および科学論文［非特許文献３２；非特許文献３３］において報告されているように、アルキルアミノ官能化されたｍ−ＰＥＧ鎖などのアミノ官能化された分子のタンパク質への部位選択的な組込みに適用されている。
【００４４】
また、上記の開示された例によると、Ｔｇａｓｅに触媒されるこれらの抱合化反応は、グルタミン含有タンパク質基質に対して著しく過剰な、第一級アミノ基官能化されたｍ−ＰＥＧ基質の存在下（これは、約１００〜１０００倍モル過剰に存在した）で行われた。酵素による抱合化の過程を工業規模で実施しなければならない場合、特に、例えば、そうした高い濃度で処理するのが高価かつ困難の双方である２０〜６０ｋＤａのアルキルアミノ−ｍ−ＰＥＧを用いる場合のように、高分子量のアミノ官能化されたポリマーを用いる場合には、これらの条件は、明らかな経済的かつ技術的な欠点を示す。
【００４５】
Ｔｇａｓｅに触媒されるＧＬＰ−１−ペプチドのペグ化に関する限りでは、最近の特許出願［特許文献９］にこれらの制限を克服するための２工程の方法が教示されている：第１の工程では、官能化された化学的な小部分を、哺乳動物および微生物の双方のＴｇａｓｅの作用によってＧＬＰ−１−ペプチドの単一グルタミン残基上に転移させ、次いで、結果として生じる中間体である官能化されたグルタミンを、Ｔｇａｓｅの触媒作用によって先に導入された官能基と反応し得る反応基を有するｍ−ＰＥＧ鎖と化学的に抱合化する。第１の工程は低分子量の化合物に関与するので、酵素によるトランスグルタミナーゼ反応におけるその大過剰での使用は容易に扱うことができる。
【００４６】
本発明者らは、現在、驚くべきことに、単一グルタミン残基を有するＧＬＰ−１ペプチドおよびインスリン分泌性のＧＬＰ−１の類似体および誘導体をアルキルアミノ官能化されたポリマーに高収率で直接に抱合化することができることを見出しており、これは本発明の主な目的を表している；「直接に」という用語は、本明細書中で、その共有結合が、ＧＬＰ−１ペプチドとアルキルアミノ官能化されたポリマーとの間で、介在するリンカーも必要とすることなく、「直接に」生じることを示すために使用する。好ましくは、これらのアルキルアミンは、２から５０ｋＤａまで、好ましくは５から４０ｋＤａまで、より好ましくは１０から３０ｋＤａまで、さらにより好ましくは１５から２５ｋＤａまでの分子量の直鎖状または分枝状のｍ−ＰＥＧであってもよい；好ましい実施形態では、ｍ−ＰＥＧは、約２０ｋＤａの分子量を有する。
【００４７】
こうしたポリマーは、アルキルアミノ官能化されたポリマーとＧＬＰ−１様ペプチドのモル比が１：１から１：１００の間、好ましくは１：５から１：３５の間、より好ましくは１：１５から１：２５の間からなる、トランスグルタミナーゼ、好ましくは微生物のトランスグルタミナーゼ（Ｍ−Ｔｇａｓｅ）によって触媒される直接的な酵素反応によって抱合化される；最も好ましい実施形態によれば、このモル比は約１：２０である。さらに驚くべきことに、かつ特許文献９の教示に反して、本発明者らは、ＧＬＰ−１様ペプチドまたはエクセナチドの基質の単一グルタミン残基上のアミノ官能化されたポリマーの転移を触媒するために、モルモット−肝Ｔｇａｓｅのような、哺乳動物のトランスグルタミナーゼを使用した場合には酵素によるＧＬＰ−１誘導体の抱合化を達成できないのに対して、Ｍ−Ｔｇａｓｅだけがｍ−ＰＥＧ−アミンとＧＬＰ−１ペプチドまたはインスリン分泌性のＧＬＰ−１類似体との間の直接的な抱合化反応を触媒できることを見出した
酵素による直接的な、ＧＬＰ−１−アミドおよびエクセナチドのモノペグ化のいくつかの実験的研究の結果を表１および表２にまとめる。
【００４８】
【表２−１】
【００４９】
【表２−２】
【００５０】
【表３】
【００５１】
したがって、本発明の主な目的は、天然のインクレチンホルモンの生物活性と同様なｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性を示すことができるという点でインクレチン模倣体として作用するモノ抱合化された誘導体を得るための、ＧＬＰ−１−ペプチド中およびインスリン分泌性のＧＬＰ−１類似体中に含まれる単一グルタミン残基と、例えば２から６０ｋＤａまでの分子量の直鎖状または分枝状のアルキルアミノｍ−ＰＥＧのような、アミノ官能化された生体適合性ポリマーとの間の、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的な反応の方法を提供することである。
【００５２】
本発明のもう１つの実施形態は、天然にはＧＬＰ−１−アミドもしくはＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１の１７番目の部位に存在する単一グルタミン残基上または天然にはエクセナチドの１３番目の部位に存在する単一グルタミン残基上の、Ｍ−Ｔｇａｓｅで触媒される直接的な生体適合性ポリマーとの反応によってモノ抱合化されたＧＬＰ−１ペプチドによって表される。
【００５３】
ＧＬＰ−１ペプチドおよびインスリン分泌性の類似体ペプチドは水溶液中で定まった構造を有さない［非特許文献３４］という事実を、溶媒が近づきやすく、柔軟性があり、かつ局所的に折りたたまれていないタンパク質鎖の領域に位置するグルタミン残基を基質として認識すると報告されているＴｇａｓｅの能力［非特許文献３１］と組み合わせると、Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−ペプチドおよびＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体のペプチド鎖に導入されるグルタミン残基はＭ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的な生体適合性ポリマーとのモノ抱合化反応の代替の基質を提供するであろうと予想されることもあり得る。しかし、予想外なことに、グルタミンを含有しているこれらのＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１バリアントのうちのいくつか、例えば、２、５、８、１１、１２および２４番目の部位に単一グルタミン置換を有する誘導体などを、Ｍ−Ｔｇａｓｅの存在下で、アミノ官能化されたｍ−ＰＥＧと反応させた場合に、驚くべきことに、例えば表３に報告するように、Ａ２４Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１以外のすべての変異体はＭ−Ｔｇａｓｅの基質ではなく、かつ結果として、２４番目の部位にある単一グルタミン残基上でモノペグ化されたＡ２４Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１を除き、これらからは期待されたモノペグ化された誘導体は得られないことが見出された。
【００５４】
【表４】
【００５５】
本発明のもう１つの実施形態は、以下の双方である任意の残基の置換において導入された単一グルタミン残基上での、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される生体適合性ポリマーとの直接的な反応によって得られる、モノ抱合化されたＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドおよびインスリン分泌性のＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−ペプチド類似体によって表される：
ａ） ＧＬＰ−１−ペプチドの受容体結合に関与しない、すなわち、受容体結合に重要な１、４、６、７、９、１３、１５、２２、２３および２６番目の部位にあるもの［非特許文献３：非特許文献４］以外の任意の残基
ｂ） グルタミン置換を、Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される直接的なトランスグルタミナーゼ反応においてそれがアシル供与体として作用することが可能な部位に有する。
【００５６】
Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される部位特異的で直接的なモノペグ化反応の基質として本発明に従って使用されるＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体は、当技術分野でよく知られている従来の化学的な方法によって、例えば、以前に開示されているような固相ペプチド合成によってまたはペプチド断片の縮合反応によって（例えば、参照により本明細書に組み込まれている、Merrifield B、1986およびKaiser ET、1989を参照されたい）調製することができる。
【００５７】
あるいは、グルタミン置換を、受容体結合に関与せず、かつそれらがＭ−Ｔｇａｓｅアシル供与体基質として作用することが可能な部位にある、任意の残基に有するＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体を含む、本発明に従って使用されるＧＬＰ−１ペプチドならびにＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体は、当技術分野でよく知られており、かつ以前に開示されている方法（例えば、参照により本明細書に組み込まれているSambrock Jら、1989を参照されたい）に従って組換えＤＮＡ技術によって調製することもできる。
【００５８】
本発明の直接的な酵素反応は、ＧＬＰ−１ペプチドまたはＧＬＰ−１ペプチドの類似体および誘導体を４から９の間、より好ましくは５から８の間のｐＨの適切な水性緩衝液に５０〜１０００μＭの間、より好ましくは１００μＭから５００μＭの間の濃度で溶解すること、および５０倍未満、好ましくは２５倍未満モル過剰の直鎖状または分枝状で２から６０ｋＤａの間の分子量のアルキルアミノｍ−ＰＥＧおよび０．１から２Ｕ／ｍｌ、より好ましくは０．２から１Ｕ／ｍｌのＭ−Ｔｇａｓｅを添加すること、ならびに反応混合物を１０から５０℃の間、より好ましくは１５から３０℃の間の温度で１０時間以上放置することによって行う。Ｍ−Ｔｇａｓｅは、例えば、味の素から市販されているＡｃｔｉｖａ ＷＭの標品または同等の活性を有する、天然または組換えの微生物に由来する任意のＭ−Ｔｇａｓｅの標品であってもよい。Ｍ−Ｔｇａｓｅに触媒される反応の動態を、他のあらゆる酵素反応の動態と同様に、温度によってかつ酵素の量によって調節できることはよく知られており、かつ結果として、触媒活性の維持と適合可能な都合のよい任意の組合せの酵素濃度および温度を選択することによって、上記で説明した反応の反応時間を短縮することができる。部位特異的にモノペグ化された本発明のＧＬＰ−１類似体は、塩析、透析、限外濾過、等電沈殿、カラムクロマトグラフィーのような従来の方法、例えば実験の節に、記載されている当技術分野において周知な方法に従って精製した。上記に報告したように、Ｔｇａｓｅに触媒される、ＧＬＰ−１類似体とアミノ官能化されたｍ−ＰＥＧとの間の反応を、哺乳動物のＴｇａｓｅの製剤の存在下で行った場合には、表１および表２に示すように、ペグ化は達成されなかった。
【００５９】
部位特異的にモノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチドおよび類似体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで３７℃で試験されたＤＰＰ−ＩＶによる酵素分解に対して、修飾されていないペプチドと比較して、向上した耐性を示した。特に、表４に示すように、Ｎ末端ジペプチドの切断によってＧＬＰ−１−アミドが３７℃で８時間後に完全に不活化されたのに対し、モノペグ化されたその誘導体は２４時間のインキュベート後でさえも依然として約７０パーセントの活性な構造を維持しており、表４および図１に示すように、より大きな分子量のＰＥＧ鎖に抱合化されたＧＬＰ−１−アミドはＤＰＰ−ＩＶ切断に対してより耐性であった。
【００６０】
表４および図１に示すように、Ｑ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１変異体のモノペグ化された誘導体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでのＤＰＰ−ＩＶ分解に対する同様な耐性を示した。
【００６１】
【表５】
【００６２】
以下の実験的パラメータを考慮に入れながら、糖尿病マウスにおいて行われた経口グルコース負荷試験で試験したように、モノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチド誘導体のｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性を、グルコースを安定化する全体的な能力の観点から評価した：最高血糖値（ｍｇ／ｄｌでのＧｌｕmax）；血糖値が１００（±５）ｍｇ／ｄｌ（Ｔglu<100mg/dl)）未満に低下するまでの時間および総合的な血糖降下程度の対照生理食塩水に対するパーセント表示（ＨＤ%対照＝ＡＵＣ生理食塩水(0-180)−ＡＵＣ試験(0-180)／ＡＵＣ生理食塩水(0-180)×１００）。これらの結果を表５および図２に示している。
【００６３】
【表６】
【００６４】
グルコース投与の最初の１８０分後について算出したグルコースに関連したパラメータは、双方のＧＬＰ−１−ＰＥＧ製品、特にＧＬＰ−１−ＰＥＧ30kDaが、おそらく、同等のＤＰＰ−ＩＶ耐性のために、エクセナチドの活性と同様な活性を有することを示している。
【００６５】
２０ｋＤａおよび３０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドによって示される、経口グルコース負荷後８時間までのグルコースを安定化する活性は、おそらく、タンパク質分解安定性の増大およびクリアランスの低下と、エクセナチドによって示されるものと同等のまたはそれよりよい最終的な生物学的有効性との組合せによるものである。
【００６６】
本発明のさらなる目的は、本発明に記載の、ペグ化されていないペプチドに対して増大されたタンパク質分解安定性および／またはより長い循環半減期を特徴とし、かつ、したがって、１日１回から週３回までの投与に基づいて２型糖尿病患者の高血糖を低下させるのに適切な、インクレチン模倣特性を有するＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体の投与のための薬学的に許容される製剤を提供することである。
【００６７】
これらの製剤中に、モノペグ化されたＧＬＰ−１類似体は、０．１から５０ｍｇ／ｍｌの濃度で存在し、このとき、前記製剤は、５から９まで、より好ましくは７から８までのｐＨを有する。これらの製剤は、当技術分野において知られている等張化剤およびキレート化剤ならびに保存剤、安定剤および界面活性剤の添加の有無にかかわらず、緩衝系をさらに含有していてもよい。本発明の一実施形態において、こうした製剤は水溶液および／または水性懸濁剤であるのに対し、さらなる実施形態では、これらは任意の許容される方法、好ましくは凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚａｔｉｏｎ）によって得られる粉末状の製剤である。
【００６８】
本発明のさらなる目的は、生分解性ポリマー中または当技術分野において知られているタンパク質およびペプチドの送達のための任意のポリマー組成物中に組み込むことを通して、モノペグ化されたインスリン分泌性のＧＬＰ−１ペプチドの制御されかつ持続した放出を可能にする、週１回から月２回までの投与に基づいて２型糖尿病患者の高血糖を低下させるのに適切な、本発明に記載のインクレチン模倣特性を有するＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体を治療に適用するための送達オプションを提供することである。本発明に記載のＧＬＰ−１様ペプチドの部位特異的にモノ抱合化された誘導体の長期送達のための系としては、とりわけ、以下の基本的な参照文献によって例証されるような、当技術分野において知られている有機または無機のポリマーのナノ粒子およびマイクロ粒子、リポソームおよびリポソーム様小胞、脂質ナノ粒子、ヒドロゲルを主成分とするマイクロ粒子、温度応答性ポリマーおよびｐＨ応答性ポリマーならびにマイクロエマルションなどを含む：参照により本明細書に組み込まれる、Kohane DS、2007；Lee KYおよびYuk SH、2007；Singh Sら、2007；Jorgensen Lら、2006；Schmaljohann D、2006；Muller RHおよびKeck CM、2004；Shina VRおよびTrehan A、2003。
【００６９】
本発明に例として記載している、インクレチン模倣特性を有するモノペグ化されたＧＬＰ−１様ペプチドの徐放性製剤は、ｐＨ４の酢酸緩衝液に４℃で溶解したポロキサマー４０７中の活性成分を組み込むことによって調製することができる。１ｍｌの製剤化されたゲルを１ｍｌの酢酸緩衝液０．２Ｍ ｐＨ４．０と共に３７℃でインキュベートすることによって検討した、０．３ｍｇ／ｍｌのＧＬＰ−１−アミド Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤＡを含有する２２％ｗ／ｗのポロキサマー４０７溶液からのｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出の動態を図３に示している。ポロキサマーに基づく製剤は、１８℃より高い温度でゲル相に転移することができるので、モノペグ化されたＧＬＰ−１−ペプチドの循環における緩徐な放出へと続く皮下注射直後のｉｎ ｓｉｔｕでのゲル化のための適切な系を代表するものである。
【００７０】
本発明のよりよい理解のために、以下の定義を示す。
【００７１】
本発明の使用に従ったＧＬＰ−１（グルカゴン様ペプチド−１）およびＧＬＰ−１類似体という用語は、３０アミノ酸のＣ末端がアミド化されたＧＬＰ−１（配列番号１）、３１アミノ酸のＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１（配列番号２）および１個または複数のアミノ酸残基の欠失、付加または置換を有するこれらの生物活性のある型ならびに配列番号２の３１アミノ酸のＣ末端がグリシンで伸長されたヒトＧＬＰ−１に関して少なくとも４０％の配列同一性を有する合成または天然のインスリン分泌性ペプチドを意味する。
【００７２】
特に、ＧＬＰ−１−ペプチド類似体について本明細書中で使用される場合、生物活性のある型という用語は、ｉｎ ｖｉｖｏで投与したときに、グルコースによって誘発されるインスリン分泌を増強することができるという点で、それらの製品がインクレチン模倣体として働くことを意味する。
【００７３】
本発明の使用に従ったＱ１７Ｎ−ＧＬＰ−１類似体（ここで、ＱおよびＮはそれぞれ、グルタミンおよびアスパラギンの１文字コード表記である）という用語は、ペプチド鎖の１７番目の部位にアスパラギン残基を、かつ他の部位に１個の単一グルタミン残基を含有している、ＧＬＰ−１−アミドまたはＣ末端がグリシンで伸長されたＧＬＰ−１を意味する。
【００７４】
以下に、本発明の適用の分野を限定することなく、本発明の実例を提供する目的で、いくつかの実験的な実施例を示す。
【００７５】
本発明の使用に従ったナノ粒子およびマイクロ粒子という用語は、例えば、参照により本明細書に組み込まれる、Kohane DS（2007）、Lee KYおよびYuknSH（2007）、Muller RHおよびKeck CM（2004）ならびにShina VRおよびTrehan A（2003）によって記載されているように、活性成分の制御された放出を達成するために薬剤を入れた、１０ナノメートルから１００マイクロメートルまでの範囲に及ぶ寸法を有する無機および有機のあらゆるポリマー物質を意味する。
【００７６】
本発明の使用に従った温度応答性ポリマーという用語は、例えば、参照により本明細書に組み込まれている、Singh Sら（2007）、Schmalijohann D（2006）によって記載されているように、ｉｎ ｓｉｔｕデポ型薬剤送達系を形成するために、そのゾルからゲルへの転移が温度の上昇によって開始されるあらゆるポリマー物質を意味する。
【実施例１】
【００７７】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＧＬＰ−１ペプチドの部位特異的なモノペグ化
ＧＬＰ−１ペプチドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１モル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。
【００７８】
反応終了後、溶液を２０ｍＭ、ｐＨ４．０の酢酸ナトリウム緩衝液中に希釈し、イオン交換カラムクロマトグラフィー（Ｍａｃｒｏｃａｐ Ｓｐ）によってＮａＣｌの直線勾配（１０カラム量にて０から５０ｍＭまで）で溶出しながら精製する。モノペグ化されたＧＬＰ−１を含んでいる画分プールを濃縮し、脱塩して、凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚｅ）する。酵素によって触媒された直接的なＧＬＰ−１ペプチドのモノペグ化の収率は、約６０％である。
【００７９】
０および１６時間の時点で回収した反応混合物、ならびに精製したＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの一定分量のＲＰ−ＨＰＬＣを図４に報告している。
【実施例２】
【００８０】
モルモットのＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化の試行。
【００８１】
ＧＬＰ−１−アミドを、５０ｍＭ、ｐＨ７．５のトリス溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８２】
次いで、このタンパク質溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｆｌｕｋａ）を添加して、５００：１のＰＥＧ：Ｇ−ＬＰ−１モル比を達成する。
【００８３】
次いで、この反応混合物に、０．３Ｕ／ｍｌのモルモットのトランスグルタミナーゼ（Ｓｉｇｍａ）および１０ｍＭのＣａＣｌ2を添加し、この混合物を撹拌下、室温で１６時間維持する。出発および最終の反応混合物について実施したＲＰ−ＨＰＬＣは、未反応のＧＬＰ−１−アミドの存在を示しただけでペグ化された誘導体の痕跡はなかった。
【実施例３】
【００８４】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＳ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ ＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化の試行
Ｓ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８５】
次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１モル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。出発および最終の反応混合物について実施したＲＰ−ＨＰＬＣは、未反応のＳ１２Ｑ／Ｑ１７Ｎ−ＧＬＰ−１−アミドの存在を示しただけでペグ化された誘導体の痕跡はなかった。
【実施例４】
【００８６】
微生物のＴｇａｓｅによって触媒される、ｍ−ＰＥＧ−アミノ ２０ｋＤａでの直接的なＱ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミドの部位特異的なモノペグ化
Ｑ１７Ｎ／Ａ２４Ｑ−ＧＬＰ−１−アミドを、１０ｍＭ、ｐＨ８．０のクエン酸二水素ナトリウム溶液に、約１５０μＭの濃度に相当する、０．５ｍｇペプチド／ｍｌの濃度で溶解する。
【００８７】
次いで、このペプチド溶液に２０ｋＤａのｍ−ＰＥＧ−アミン（メトキシポリエチレングリコールアミン２００００、Ｉｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を添加して、２０：１のＰＥＧ：ＧＬＰ−１−ペプチドモル比を達成する。次いで、この反応混合物に、微生物のトランスグルタミナーゼ（Ａｃｔｉｖａ ＷＭ、味の素）を、０．２５Ｕ／ｍｌの最終濃度まで、添加する。撹拌下、室温で１６時間反応させる。
【００８８】
反応終了後、溶液を２０ｍＭ、ｐＨ４．０の酢酸ナトリウム緩衝液中に希釈し、カラムクロマトグラフィー（Ｍａｃｒｏｃａｐ Ｓｐ）によってＮａＣｌの直線勾配（１０カラム量にて０から５００ｍＭまで）で溶出しながら精製する。モノペグ化されたＧＬＰ−１変異体を含んでいる画分プールを濃縮し、脱塩して、凍結乾燥（ｌｉｏｐｈｙｌｉｚｅ）する。ペグ化反応の程度ならびに最終のモノペグ化されたＧＬＰ−１ペプチド変異体の純度を、ＲＰ−ＨＰＬＣによって確認する。酵素によって触媒された直接的なＧＬＰ−１変異体のモノペグ化の収率は、約６０％である。
【実施例５】
【００８９】
ＤＰＰ−ＩＶの消化に対するＧＬＰ−１−ＰＥＧ誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでの安定性の決定
リン酸緩衝食塩水中、（ペプチド含有量を等しいものとして計算した）０．１ｍｇ／ｍｌの濃度のＧＬＰ−１−アミド、モノペグ化されたＧＬＰ−１−アミドまたはモノペグ化されたＧＬＰ−アミドの変異体もしくは類似体の溶液を、ＤＰＰ−ＩＶ（ブタ腎臓由来のジペプチジルペプチダーゼＩＶ、Ｓｉｇｍａ）、５Ｕ／ｍｌのペプチド溶液と混合し、３７℃でインキュベートした。各時点で一定分量の反応混合物を回収し、ＤＰＰ−ＩＶによって除去されたＮ末端ジペプチドＨｉｓ−ＡｌａをＲＰ−ＨＰＬＣ分析によって検出してＧＬＰ−１−ペプチドの分解を測定した。例えば図１に示したように、酵素分解を各試料のＨｉｓ−Ａｌａタイトルから算出した
【実施例６】
【００９０】
ＧＬＰ−１−アミド、ＧＬＰ−１ペプチド類似体およびこれらのモノペグ化された誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏでの生物活性の決定。
【００９１】
このアッセイは、グルコースならびに種々の濃度のＧＬＰ−１ペプチドおよびこれらのモノペグ化された誘導体の存在下における、ラットベータ細胞のインスリノーマに由来するＲＩＮ−ｍ５ｆ細胞からのインスリンの放出に基づいている。簡単に説明すると、２×１０5細胞を６穴プレート中の完全ＲＰＭＩ培地中に播き、３７℃で２日間インキュベートする；細胞を洗浄し、より低いグルコース濃度（０．２％）の培地でさらに４時間インキュベートし、次いで、再び洗浄し、ＧＬＰ−１ペプチドまたはこれらのモノペグ化された誘導体の１０ｍＭの溶液と共に１時間インキュベートする。上清を回収し、放出されたインスリンのタイトルをＥＬＩＳＡアッセイによって決定する。
【実施例７】
【００９２】
ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ５ｋＤａ、ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａ、ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ３０ｋＤａのｉｎ ｖｉｖｏでの生物活性の決定。
【００９３】
血漿中のグルコースに対するＧＬＰ−１−アミドおよびそのペグ化された誘導体の安定化作用の評価を７から１０週齢の糖尿病（ｄｂ／ｄｂ）マウスを使用して検討した。グルコース溶液（１．５ｇ／ｋｇ体重）の経口投与前の１８時間および投与後３時間の間に餌を取り除き、グルコース投与の６時間後に再び餌を取り除いた。４０μｇ／ｍｌの試験する製品および陰性対照（リン酸緩衝食塩水）を、グルコース投与３０分間前に、２．５ｍｌ／ｋｇ体重の量の皮下注射によって投与した。注射前および注射後１５、３０、６０、１２０、１８０、２４０、３００、１４４０分に意識のあるマウスの尾静脈から血液試料を採取し、グルコテスターＡｓｃｅｎｓｉａ Ｅｌｉｔｅ（Ｂａｙｅｒ）によってグルコース濃度を測定した。エクセナチドおよび食塩水の対照と比較した、２０ｋＤａおよび３０ｋＤａのモノペグ化されたＧＬＰ−１アミドで行った実験の結果を図２に示している。
【実施例８】
【００９４】
ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの持続放出性ポロキサマー製剤の調製およびｉｎ ｖｉｔｒｏでの放出アッセイ
ポロキサマー４０７の２７％溶液を、このポリマーを０．２Ｍの酢酸緩衝液ｐＨ４．０に４℃でゆっくりと溶解することによって調製した。ＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ２０ｋＤａを添加して最終濃度０．３ｍｇ／ｍｌのＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７ ＰＥＧ ２０ｋＤａおよび２２％のポロキサマーを得て、この溶液を４℃で保存した。
【００９５】
１ｍｌの形成されたゲルを１ｍｌの酢酸緩衝液０．２Ｍ ｐＨ４．０と共に３７℃でインキュベートすることによって溶解試験を行った。ＲＰ−ＨＰＬＣ分析によってＧＬＰ−１−アミド−Ｑ１７−ＰＥＧ ２０ｋＤａの放出を評価するために、各時点において溶液を回収して等量の緩衝液で置換した。溶解試験の結果を図３に示している。
【００９６】
参考文献
【００９７】
【表７】
【００９８】
【表８】
【００９９】
【表９】
【０１００】
【表１０】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルキルアミノ官能化されたポリマーに共有結合で結合されたグルタミン残基を有する、インクレチン模倣ペプチドのモノ抱合化された誘導体であって、前記インクレチン模倣ペプチドと前記ポリマーとが直接結合されていることを特徴とする誘導体。
【請求項２】
前記インクレチン模倣ペプチドはグルカゴン様ペプチド−１であることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項３】
前記アルキルアミノ官能化されたポリマーは直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）であることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項４】
前記直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は第一級アミノ基で官能化されていることを特徴とする、請求項３に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項５】
前記第一級アミノ基で官能化されている直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は２から５０ｋＤａまで、好ましくは５から４０ｋＤａまでの分子量を有することを特徴とする、請求項４に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項６】
前記第一級アミノ基で官能化されている直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は１０から３０ｋＤａまで、好ましくは１５から２５ｋＤａまで、より好ましくは約２０ｋＤａの分子量を有することを特徴とする、請求項５に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項７】
前記インクレチン模倣ペプチドはＧＬＰ−１（７−３６）アミド（配列番号１）、グリシンで伸長されたＧＬＰ−１（７−３７）（配列番号２）、エキセディン−３（exendin-3）およびエキセディン−４（exendin-4）から選択されることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項８】
前記ＧＬＰ−１（７−３６）アミド（配列番号１）またはグリシンで伸長されたＧＬＰ−１（７−３７）（配列番号２）の１７番目の部位にあるグルタミン残基は前記アルキルアミノ官能化されたポリマーに共有結合で結合されていることを特徴とする、請求項１および７に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項９】
糖尿病、好ましくは２型糖尿病を治療するためのものであることを特徴とする、請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項１０】
糖尿病、好ましくは２型糖尿病を患っている患者において高血糖を低減するためのものであることを特徴とする、請求項１から９に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項１１】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体を少なくとも１種の薬学的に許容される賦形剤,および／またはアジュバントと共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１２】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体をポリマーおよび／または脂質のナノ粒子およびマイクロ粒子と共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１３】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体を温度応答性ポリマーと共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１４】
前記インクレチン模倣ペプチドを前記アルキルアミノ官能化されたポリマーとトランスグルタミナーゼの存在下で反応させるステップを含むことを特徴とする、請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体の調製のための方法。
【請求項１５】
前記トランスグルタミナーゼは微生物のトランスグルタミナーゼであることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
グルカゴン様ペプチド−１とアルキルアミノ官能化されたポリマーのモル比は、１：１から１：１００の間、好ましくは１：５から１：３５の間、より好ましくは、１：１５から１：２５の間に含まれることを特徴とする、請求項１４および１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記反応を４から９の間、好ましくは５から８の間のｐＨの緩衝液中で行うことを特徴とする、請求項１４から１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記トランスグルタミナーゼを０．１Ｕ／ｍｌから２Ｕ／ｍｌの間、好ましくは０．２Ｕ／ｍｌから１Ｕ／ｍｌの間の範囲の量で使用することを特徴とする、請求項１４から１７に記載の方法。
【請求項１９】
前記反応を１０℃から５０℃の間、好ましくは１５℃から３０℃の間の温度で行うことを特徴とする、請求項１４から１８に記載の方法。
【請求項１】
アルキルアミノ官能化されたポリマーに共有結合で結合されたグルタミン残基を有する、インクレチン模倣ペプチドのモノ抱合化された誘導体であって、前記インクレチン模倣ペプチドと前記ポリマーとが直接結合されていることを特徴とする誘導体。
【請求項２】
前記インクレチン模倣ペプチドはグルカゴン様ペプチド−１であることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項３】
前記アルキルアミノ官能化されたポリマーは直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）であることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項４】
前記直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は第一級アミノ基で官能化されていることを特徴とする、請求項３に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項５】
前記第一級アミノ基で官能化されている直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は２から５０ｋＤａまで、好ましくは５から４０ｋＤａまでの分子量を有することを特徴とする、請求項４に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項６】
前記第一級アミノ基で官能化されている直鎖状または分枝状のモノメトキシ−ポリ（エチレングリコール）は１０から３０ｋＤａまで、好ましくは１５から２５ｋＤａまで、より好ましくは約２０ｋＤａの分子量を有することを特徴とする、請求項５に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項７】
前記インクレチン模倣ペプチドはＧＬＰ−１（７−３６）アミド（配列番号１）、グリシンで伸長されたＧＬＰ−１（７−３７）（配列番号２）、エキセディン−３（exendin-3）およびエキセディン−４（exendin-4）から選択されることを特徴とする、請求項１に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項８】
前記ＧＬＰ−１（７−３６）アミド（配列番号１）またはグリシンで伸長されたＧＬＰ−１（７−３７）（配列番号２）の１７番目の部位にあるグルタミン残基は前記アルキルアミノ官能化されたポリマーに共有結合で結合されていることを特徴とする、請求項１および７に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項９】
糖尿病、好ましくは２型糖尿病を治療するためのものであることを特徴とする、請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項１０】
糖尿病、好ましくは２型糖尿病を患っている患者において高血糖を低減するためのものであることを特徴とする、請求項１から９に記載のモノ抱合化された誘導体。
【請求項１１】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体を少なくとも１種の薬学的に許容される賦形剤,および／またはアジュバントと共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１２】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体をポリマーおよび／または脂質のナノ粒子およびマイクロ粒子と共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１３】
請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体を温度応答性ポリマーと共に含有することを特徴とする製剤。
【請求項１４】
前記インクレチン模倣ペプチドを前記アルキルアミノ官能化されたポリマーとトランスグルタミナーゼの存在下で反応させるステップを含むことを特徴とする、請求項１から８に記載のモノ抱合化された誘導体の調製のための方法。
【請求項１５】
前記トランスグルタミナーゼは微生物のトランスグルタミナーゼであることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
グルカゴン様ペプチド−１とアルキルアミノ官能化されたポリマーのモル比は、１：１から１：１００の間、好ましくは１：５から１：３５の間、より好ましくは、１：１５から１：２５の間に含まれることを特徴とする、請求項１４および１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記反応を４から９の間、好ましくは５から８の間のｐＨの緩衝液中で行うことを特徴とする、請求項１４から１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記トランスグルタミナーゼを０．１Ｕ／ｍｌから２Ｕ／ｍｌの間、好ましくは０．２Ｕ／ｍｌから１Ｕ／ｍｌの間の範囲の量で使用することを特徴とする、請求項１４から１７に記載の方法。
【請求項１９】
前記反応を１０℃から５０℃の間、好ましくは１５℃から３０℃の間の温度で行うことを特徴とする、請求項１４から１８に記載の方法。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図２】
【図３】
【図４】
【公表番号】特表２０１２−５０９２９１（Ｐ２０１２−５０９２９１Ａ）
【公表日】平成２４年４月１９日（２０１２．４．１９）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１１−５３６８１５（Ｐ２０１１−５３６８１５）
【出願日】平成２１年１１月４日（２００９．１１．４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２００９／０６４５９９
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／０５７７７４
【国際公開日】平成２２年５月２７日（２０１０．５．２７）
【出願人】（５０８２０２４１８）バイオ−ケル ソシエタ ア レスポンサビリタ リミタータ (4)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２４年４月１９日（２０１２．４．１９）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年１１月４日（２００９．１１．４）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＥＰ２００９／０６４５９９
【国際公開番号】ＷＯ２０１０／０５７７７４
【国際公開日】平成２２年５月２７日（２０１０．５．２７）
【出願人】（５０８２０２４１８）バイオ−ケル ソシエタ ア レスポンサビリタ リミタータ (4)
【Ｆターム（参考）】
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