ＲＮＡ治療用ペプチドリボ核酸縮合体粒子のための化合物及び方法
直径１０００ｎｍ未満の縮合粒子を含む化合物であって、ここでその粒子が１又はそれ以上の二本鎖リボ核酸（ｄｓＫＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを含む。この化合物、組成物、及び方法は、ＲＮＡ干渉による遺伝子発現の調節に有用である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＲＮＡ干渉の分野及びＲＮＡ治療送達の分野全般に関する。より詳細には、本発明はペプチドリボ核酸縮合体粒子の化合物及び組成物、並びにそれらの薬物への使用及び治療法としての送達への使用に関する。本発明は、哺乳動物内での遺伝子発現の遺伝子特異的抑制のためのＲＮＡ干渉における、ペプチドリボ核酸縮合化合物の使用方法全般に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）とは、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）と呼ばれる二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）が媒介する、配列特異的な転写後ジーンサイレンシングの方法のことである。Ｆｉｒｅら，Ｎａｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．３９１，ｐ．８０６, １９９８、及びＨａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、を参照のこと。ＲＮＡｉは種々の動植物に共有されており、進化の過程で保存されてきた異質遺伝子の発現に対する細胞の防御メカニズムであると考えられている。Ｆｉｒｅら，Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．３５８, １９９９、を参照のこと。
【０００３】
従って、ＲＮＡｉは、小さなノンコーディングＲＮＡを用いて遺伝子の発現をサイレンシングする、普遍的内在性メカニズムである。Ｄｙｋｘｈｏｏｒｎ，Ｄ．Ｍ． ａｎｄ Ｊ． Ｌｉｅｂｅｒｍａｎ，Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｍｅｄ． Ｅｎｇ．，Ｖｏｌ．８，ｐ．３７７−４０２, ２００６、を参照のこと。ＲＮＡｉは、細胞死、分化、及び発生に関与する重要な遺伝子を制御することができる。ＲＮＡｉはさらに、トランスポゾン及びウィルスによってコードされた侵入遺伝要素からゲノムを保護することもできる。ｓｉＲＮＡは細胞内に導入されると内在性のＲＮＡｉメカニズムと結びつき、高い特異性をもって相補的配列を含むｍＲＮＡの発現を阻害する。いかなる疾患原因遺伝子、及び細胞種又は組織も潜在的に標的となり得る。この技術は、遺伝子機能解析並びに創薬ターゲットの探索及び確認に急速に利用されてきている。ｓｉＲＮＡをインビボで細胞へ導入することには依然として重大な障害が伴うが、ＲＮＡｉの利用は治療の分野においても非常に有望である。
【０００４】
ＲＮＡｉのメカニズムは、また完全には解明されていないが、標的となるｍＲＮＡの開裂を介するものである。ＲＮＡｉ応答には、ＲＮＡ誘導性サイレンシング化合物（ＲＩＳＣ）として知られるエンドヌクレアーゼ化合物が関与しており、この複合体がｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な一本鎖ＲＮＡの開裂を媒介する。標的ＲＮＡの開裂は、ｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な領域の中央部で生じる（Ｅｌｂａｓｈｉｒら，Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．１８８, ２００１）。
【０００５】
ＲＮＡｉを行う一つの方法は、ｓｉＲＮＡを細胞内へ導入するか、又は細胞内で発現させることである。もう一つの方法は、ダイサーと呼ばれる内在性のリボヌクレアーゼＩＩＩ酵素を利用することである。ダイサーの一つの活性は、長鎖ｄｓＲＮＡをｓｉＲＮＡへ変換することである。Ｈａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、及びＢｅｒｓｔｅｉｎら，Ｎａｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．４０９，ｐ．３６３, ２００１、を参照のこと。ダイサーから誘導されたｓｉＲＮＡは通常、全体の長さが約２１から２３ヌクレオチドであり、約１９塩基対の二本鎖部分を有する。Ｈａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、及びＥｌｂａｓｈｉｒら，Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．１８８, ２００１、を参照のこと。実質的に、長鎖ｄｓＲＮＡはｓｉＲＮＡの前駆体として細胞内に導入することができる。
【０００６】
いろいろな治療の中でとりわけＲＮＡｉ治療、アンチセンス治療、及び遺伝子治療の開発により、活性な核酸剤を細胞内へ導入するための有効な方法に対する需要が生じてきた。一般的に、核酸は細胞又は血漿内で非常に短い時間しか安定ではない。しかし、核酸剤は、細胞送達するのに十分に小さい粒子となり得る縮合化合物へと凝集するか又は結合することで安定化させることができる。
【０００７】
最終的には治療法としての細胞間送達のために活性核酸剤を含有する小粒子を含む化合物、及びそのような化合物を作製する方法が求められている。特に、細胞へ二本鎖ＲＮＡを送達してＲＮＡｉ応答を発生させるための化合物及び方法が求められている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−リボ核酸化合物及び組成物の範囲を提供することにより、本技術分野におけるこれらの及びその他の障害を克服する。詳細には、本発明は、ＲＮＡ干渉を通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、１又はそれ以上のペプチドと１又はそれ以上のリボ核酸剤とが縮合した安定な小粒子を含む化合物、並びに該化合物の製造方法を提供する。本概要は、図面の説明、本発明の詳細な説明、並びに添付の実施例、請求項、及び図面と合わせて、開示された本発明を包含する。
【０００９】
ある局面では、本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−ＲＮＡ化合物及び組成物を提供し、その化合物にはＲＮＡｉを通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、ＲＮＡとペプチドが縮合した安定な小粒子を含有する化合物を含む。本発明の化合物は、一般に合成ペプチドと核酸の様々な混合物又は縮合体として提供される。
【００１０】
他の局面では、本発明の縮合化合物及び組成物は、ペプチド−ＲＮＡ化合物から成る安定小粒子を含む。ある態様では、これらの化合物及び粒子は架橋することによってさらに安定化することができる。他の態様では、本発明の化合物及び組成物は送達促進のためにポリエチレングリコールなどのステルス剤（ｓｔｅａｌｔｈｉｎｇ ａｇｅｎｔ）又は表面改質剤を含む。
【００１１】
さらなる局面では、本発明の化合物は１又はそれ以上のリボ核酸と１又はそれ以上のペプチド成分との縮合化合物を含む。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を保持することができる。
【００１２】
ある局面では、本発明の縮合化合物は均一粒子を形成することができる。ある態様では、ペプチド−核酸化合物球状粒子の直径は、平均が１０００ナノメートル（ｎｍ）未満の狭い分布をとることができる。
【００１３】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は、独自の多成分製剤を提供することができる。ある態様では、インビボでの治療のために、化合物は細胞への送達のための担体若しくは運搬体、又は様々な送達マトリックスといった薬物送達のためのその他の薬剤と組み合わせることができる。
【００１４】
ある態様において、化合物は、少なくとも一つのリボ核酸剤を水性溶液へ溶解し、それから少なくとも一つのペプチド成分をその水性溶液へ添加して粒径１０００ｎｍ未満の粒子を縮合し、その後粒子の質量を増加させる第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水性溶液に添加することにより、１又はそれ以上のリボ核酸及び１又はそれ以上のペプチドから提供される。
【００１５】
さらなる態様において、化合物は、第一のペプチド成分を水性溶液に溶解し、そしてリボ核酸剤をその水性溶液へ添加して粒径１０００ｎｍ未満の粒子を縮合し、その後粒子の質量を増加させる第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水性溶液に添加することにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤及び１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００１６】
本発明の一つの局面では、ペプチド成分はその核酸への相対的親和性に基づいて選択される。ペプチド成分は、該ペプチド成分の核酸への結合度を変化できるように選択することができる。
【００１７】
ある局面では、リボ核酸−ペプチド縮合化合物は可逆的に結合させることができる。リボ核酸と一定量の正に帯電したリボ核酸結合性ペプチドから成る化合物は、細胞外生体環境において十分に安定となることができ、細胞内エンドソームとの接触によってリボ核酸を放出する。この放出によってＲＮＡｉ応答を誘起することができる。
【００１８】
さらなる局面では、ペプチド−リボ核酸化合物を安定化させる構造と方法が提供され、その構造及び方法には化合物内でのリボ核酸結合性ペプチドの架橋が含まれる。ペプチド−リボ核酸化合物を生命体内部での分解から保護する方法としては、化合物内でペプチドの少なくとも一部を架橋することが含まれる。
【００１９】
本発明はさらに、この化合物の、薬物としての使用、並びに動物及びヒトのＲＮＡｉ治療に用いるための薬物の製造において提供する。
【課題を解決するための手段】
【００２０】
本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−ＲＮＡ化合物及び組成物を提供する。さらに詳細には、本発明は、ＲＮＡｉを通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、ＲＮＡとペプチドとが縮合した安定な小粒子を含有する化合物を含む。
【００２１】
本発明の化合物は、一般的に合成ペプチドと核酸の混合物又は縮合体として提供される。広範囲にわたる様々なペプチドを使用して化合物を形成することができる。ペプチドの質量は通常、約１２０ｋＤａ未満、又は約６０ｋＤａ未満、又は約３０ｋＤａ未満である。化合物のペプチドは粘膜透過修飾因子又は粘膜透過促進因子であってよい。
【００２２】
縮合化合物は、ペプチド−ＲＮＡ複合体の安定な小粒子を含む。これらの化合物及び粒子は、様々な試薬で架橋することによりさらに安定化することができる。ある態様において、本発明の化合物及び組成物は、送達促進のためにポリエチレングリコールなどのステルス剤（ｓｔｅａｌｔｈｉｎｇ ａｇｅｎｔ）又は表面改質剤を含む。
【００２３】
本発明の化合物には、１又はそれ以上のリボ核酸及び１又はそれ以上のペプチド成分を含む縮合複合体が含まれる。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を持つことができる。リボ核酸及びインビボでの条件下でリボ核酸を安定化させるのに有効な量のリボ核酸結合性ペプチドから構成される安定なリボ核酸複合体が提供される。ペプチド−核酸化合物の成分の結合は一部イオン間力によるものであり、ファンデルワールス力又は水素結合など様々なその他の相互作用も伴う場合がある。
【００２４】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は均一な粒子を含むことができる。ペプチド−核酸化合物の球状粒子の直径は、平均が１０００ナノメートル（ｎｍ）未満の狭い分布をとることができる。球状粒子の直径は、１０００ナノメートル未満であってよく、約０．５乃至約４００ナノメートル、約１０乃至約３００ナノメートル、及び約４０乃至約１００ナノメートルであってもよい。安定粒子のゼータ電位の大きさは、約２０ミリボルト超又は約３０ミリボルト超であってよい。
【００２５】
本明細書で用いる“均一”という用語は化合物の粒子の大部分が狭い粒径分布を持つことを意味する。均一粒子の化合物において複数の粒径分布が生じていてもよい。一つの狭い粒径分布は、粒子径測定器の対時間相関係数の生データに基づく粒径分布グラフ中の一つのピークに相当する。均一な化合物は、少なくとも粒子の３０％を一つの狭い粒径分布内に有することが好ましい。
【００２６】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は、独自の多成分製剤を提供することができ、生体内治療のために、細胞への送達のための担体若しくは運搬体、又は様々な送達マトリックスといった薬物送達のためのその他の薬剤と組み合わせることができる。
【００２７】
本発明の化合物及び組成物は、薬理学的に許容される媒体内に分散させ、マトリックスと会合させ、又は細胞若しくは対象へ送達するための担体若しくは運搬体と会合させることができる。本発明の化合物又は粒子の分散体を含む溶液は、治療法としての送達のために提供することができる。
【００２８】
ペプチド成分
本発明の化合物に好適なペプチド成分は合成したものでもよく、又は自然若しくはその他の供給源に由来するものでもよい。
【００２９】
ペプチド成分は、２から約１０００個のアミノ酸の長さ、２から約６００個のアミノ酸の長さ、２から約６０個のアミノ酸の長さ、５から約３０個のアミノ酸の長さ、及び５から約２５個のアミノ酸の長さを含んでもよい。
【００３０】
ペプチド成分は複数の正の電荷を含んでよい。例えば、ペプチド成分は１から約１００個、５から約３０個、及び９から約１５個の正電荷を含んでよい。ペプチド成分の正電荷は正に帯電したリシン又はアルギニンの残基によって提供することができる。
【００３１】
広範囲にわたる様々なペプチドを使用することで、ペプチド−核酸化合物を形成することができる。ペプチド成分の質量は通常、約１２０ｋＤａ未満、又は約６０ｋＤａ未満、又は約３０ｋＤａ未満である。ペプチド成分のペプチドは、任意にポリアルキレンオキシド、ポリエチレンオキシド、ポリプロピレンオキシド、又はこれらの組み合わせなどのポリマと抱合体を形成するか又は誘導体化されてもよい。例えば、本発明の化合物のペプチド成分はポリエチレングリコール（ＰＥＧ）と共有結合により誘導体化されてよい。
【００３２】
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドの機能性ドメインは、ｓｉＮＡを細胞内へ送達する能力において有用である。このような機能性ドメインには、膜付着領域、膜融合領域、及びヌクレオチド結合領域が含まれる。膜付着は、典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドが細胞膜と結合する能力を表す。膜融合性は、細胞膜から脱離して細胞質内に進入する能力を表す。ペプチドの膜付着ドメイン及び膜融合ドメインは機構的に密接なつながりがあり（すなわち、ペプチドが細胞内へ入る能力）、従って実験的に区別することは難しいであろう。最後に、ヌクレオチド結合性は、ペプチドがヌクレオチドと結合する能力を表す。
【００３３】
化合物のペプチドは、粘膜などの障壁間の化合物の送達を促進することが知られている構造的特徴を含んでよい。送達を促進する特徴の例としては様々なタンパク質導入ドメインが挙げられる。ペプチド成分は粘膜透過修飾因子であってよい。
【００３４】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのタンパク質導入ドメインの例としては、
１．ＴＡＴタンパク質導入ドメイン（ＰＴＤ）（配列番号１）ＫＲＲＱＲＲＲ；
２．ペネトラチンＰＴＤ（配列番号２）ＲＱＩＫＩＷＦＱＮＲＲＭＫＷＫＫ；
３．ＶＰ２２ ＰＴＤ（配列番号３）ＤＡＡＴＡＴＲＧＲＳＡＡＳＲＰＴＥＲＰＲＡＰＡＲＳＡＳＲＰＲＲＰＶＤ；
４．カポジＦＧＦシグナル配列（配列番号４）ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ；及び（配列番号５）ＡＡＶＬＬＰＶＬＬＰＶＬＬＡＡＰ；
５．ヒトβ３インテグリンシグナル配列（配列番号６）ＶＴＶＬＡＬＧＡＬＡＧＶＧＶＧ；
６．ｇｐ４１融合配列（配列番号７）ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡ；
７．カイマンクロコディルス（ｃａｉｍａｎ ｃｒｏｃｏｄｙｌｕｓ）のＩｇ（ｖ）軽鎖（配列番号８）ＭＧＬＧＬＨＬＬＶＬＡＡＡＬＱＧＡ；
８．ｈＣＴ誘導性ペプチド（配列番号９）ＬＧＴＹＴＱＤＦＮＫＦＨＴＦＰＱＴＡＩＧＶＧＡＰ；
９．トランスポータン（配列番号１０）ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＫＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ；
１０．ロリゴマー（ｌｏｌｉｇｏｍｅｒ）（配列番号１１）ＴＰＰＫＫＫＲＫＶＥＤＰＫＫＫＫ；
１１．アルギニンペプチド（配列番号１２）ＲＲＲＲＲＲＲ；並びに
１２．両親媒性モデルペプチド（配列番号１３）ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ；
が挙げられる。
【００３５】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのウィルス融合ペプチド膜融合ドメインの例としては、
１．インフルエンザＨＡ２（配列番号１４）ＧＬＦＧＡＩＡＧＦＩＥＮＧＷＥＧ；
２．センダイＦ１（配列番号１５）ＦＦＧＡＶＩＧＴＩＡＬＧＶＡＴＡ；
３．呼吸器多核体ウィルスＦ１（配列番号１６）ＦＬＧＦＬＬＧＶＧＳＡＩＡＳＧＶ；
４．ＨＩＶ ｇｐ４１（配列番号１７）ＧＶＦＶＬＧＦＬＧＦＬＡＴＡＧＳ；及び
５．エボラＧＰ２（配列番号１８）ＧＡＡＩＧＬＡＷＩＰＹＦＧＰＡＡ；
が挙げられる
【００３６】
ある態様では、本発明の方法及び組成物の範囲内で、ポリペプチド−ｓｉＮＡ複合体の形成を促進し、及び／若しくはｓｉＮＡの送達を促進するＤＮＡ結合性ドメイン又はモチーフが組み込まれたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドが提供される。ここで言うＤＮＡ結合性ドメインの典型例としては、以下の表１に示すＤＮＡ結合性調節タンパク質及びその他のタンパク質に見られる、様々な「ジンクフィンガー」領域が挙げられる（Ｓｉｍｐｓｏｎら，Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．，２７８：２８０１１−２８０１８, ２００３、参照）。
【００３７】
【表１】
【００３８】
表１において、Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３、Ｓｐ４、ＤｒｏｓＢｔｄ、ＤｒｏｓＳｐ、ＣｅＴ２２Ｃ８．５、及びＹ４ｐＢ１Ａ．４の配列は、本明細書ではそれぞれ配列番号１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、及び２６と定められる。
【００３９】
表１は、Ｃ−ｘ(２，４)−Ｃ−ｘ(１２)−Ｈ−ｘ(３)−Ｈ（配列番号２７）のモチーフパターンにより特徴付けられる二本鎖ＤＮＡ結合性保存ジンクフィンガーモチーフを示しており、それ自体を用いて本発明にかかるさらなるポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを選択して設計することができる。
【００４０】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを構築するのに有用なＤＮＡ結合性ドメインの他の選択肢としては、例えばＨＩＶ Ｔａｔタンパク質配列の一部分が挙げられる。
【００４１】
本発明のある態様においては、前述の構造要素、ドメイン、又はモチーフのいずれかをｓｉＮＡの対象細胞への送達の促進を媒介する単一のポリペプチドへ組み入れることによって、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを構築することができる。例えば、ＴＡＴポリペプチドのタンパク質導入ドメインは、ＨＡ２と呼ばれるインフルエンザウィルスの赤血球凝集素タンパク質のＮ末端側の２０個のアミノ酸領域と融合してポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを作り出すことができる。
【００４２】
本発明の化合物は、１又はそれ以上のペプチド成分を含むことができる。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を保持することができる。ペプチド−核酸複合体の成分の結合は一部イオン間力によるが、ファンデルワールス力、水素結合、又は疎水性相互作用などのその他の様々な相互作用も伴う場合がある。複合体は水性相互作用又は高溶媒濃度領域を保持していてもよい。
【００４３】
リボ核酸及び生体内条件下でリボ核酸を安定化させるのに有効な量のリボ核酸結合性ペプチドを含む安定なペプチド−リボ核酸複合体が得られる。
【００４４】
本発明の化合物に有用なペプチドのいくつかの例を表２に示す。
【００４５】
【表２】
【００４６】
本発明の化合物に有用なペプチドのさらなる例は以下の実施例中で示す。
【００４７】
縮合化合物とその調製
本発明は、直径が約１０００ｎｍ未満、約０．５ｎｍから約４００ｎｍ、約１０ｎｍから約３００ｎｍ、及び約４０ｎｍから約１００ｎｍである粒子から構成されてよいペプチド−リボ核酸縮合化合物を提供する。
【００４８】
化合物のペプチド成分は、粒子質量の５乃至９５％又は４５乃至９５％であってよい。
【００４９】
本発明のある態様においては、ペプチド−核酸化合物は１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供され、該リボ核酸剤と該ペプチド成分を水溶液中で縮合することによって直径１０００ｎｍ未満の粒子を形成する。
【００５０】
一般に本発明の化合物は、１又はそれ以上のペプチドと１又はそれ以上の核酸から形成されたペプチド−核酸縮合体を含む。この縮合体は、一つには核酸に対するペプチドの窒素対リン比（Ｎ／Ｐ比）で特徴付けられる。
【００５１】
本発明の化合物は直径１０００ｎｍ未満の縮合体粒子から成ってよく、ここで各粒子は少なくとも１０個の二本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）分子及び少なくとも１０個のペプチドを含む。本明細書で用いられる「少なくとも１０個のペプチド」とは、部分モル量が１０ペプチド分子であることを意味し、ペプチド分子の構造は同じであっても異なっていてもよい。従って、「少なくとも１０個のペプチド」とは、単一のペプチド構造の部分モル量、又は２若しくは３個以上の異なるペプチド構造の部分モル量であってもよい。
【００５２】
一般に、本明細書で用いられる「ペプチド」、「核酸」、並びに「ｄｓＲＮＡ」及び「ｓｉＲＮＡ」などの用語は、本発明の化合物を形成するのに十分な量にあるこれらの分子を意味する。すなわち、一般に、このような用語は個々の分子ではなく部分モル量を表す。「ペプチド」とは、例えばアボガドロ数個のペプチド分子など、１又は２個以上のペプチド分子のことである。「二つのペプチドをリボ核酸剤に付加する」とは、個々の部分モル量にある構造の異なる二種類のペプチドの混合物をリボ核酸剤に添加混合することを意味する。
【００５３】
複合体又は縮合体中の核酸（ＮＡ）に結合したペプチドの量は、窒素リン比（Ｎ／Ｐ比）とも呼ばれる、単一分子ペア形成についてのペプチド：ＮＡ電荷比を用いることにより結合した核酸の量から得ることができる。縮合後に溶液中に残存する遊離ペプチドの量は、物質収支から得られる。従って、本明細書において、電荷比Ｎ／Ｐとは、初期縮合溶液中における単一ペプチド成分の単一核酸剤に対する初期電荷比Ｎ／Ｐを意味する。
【００５４】
一般に、溶液中の核酸剤濃度はその溶解度によってのみ制限される。溶液中のペプチド成分の濃度は、所望のＮ／Ｐ比が得られるよう調節される。
【００５５】
ある態様において、溶液のペプチド成分濃度は全体のＮ／Ｐ比が約１となるように調節される。Ｎ／Ｐ比が約１の時、イオン電荷という面でペプチド成分も核酸剤も過剰ではない。
【００５６】
ある態様において、溶液の各ペプチド成分濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約５０、約０．５から約２０、約０．５から約７、又は約０．５から約２．５となるように調節される。
【００５７】
溶液のｐＨは通常約１１未満、約９未満、及び約８未満である。溶液の成分の混合は、任意に、ボルテックス撹拌行ってもよい。
【００５８】
ある態様において、縮合化合物は核酸剤をペプチド成分を含有する溶液へ添加することによって調製される。
【００５９】
ある態様において、溶液は無機塩又は有機塩を含んでよい。例えば、水溶液は約１Ｍ以下、約０．５Ｍ以下、及び約０．２５Ｍ以下の濃度の塩化ナトリウムを含んでよい。
【００６０】
任意に、特定のサイズ分布を有するペプチド−核酸縮合化合物は溶液から単離することができる。ある態様においては、ペプチド−核酸縮合化合物を含有する溶液をろ過することで様々なサイズの粒子が単離される。
【００６１】
他の態様において、ペプチド−核酸縮合化合物を含有する溶液を透析にかけることによって過剰な又は結合しなかったペプチド成分が除去される。
【００６２】
ある態様において、単離されたペプチド−核酸粒子は凍結乾燥される。
【００６３】
本発明のある態様において、ペプチド−核酸化合物は、少なくとも１種類のリボ核酸剤を水溶液中に溶解し、それから少なくとも１種類のペプチド成分をその水溶液中へ添加して１０００ｎｍ未満の粒径を有する粒子を縮合させ、その後第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水溶液中へ添加して粒子質量を増加させることにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００６４】
本発明のある態様において、ペプチド−核酸化合物は、第一のペプチド成分を水溶液中に溶解し、それからリボ核酸剤をその水溶液中へ添加して１０００ｎｍ未満の粒径を有する粒子を縮合させ、その後第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水溶液中へ添加して粒子質量を増加させることにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００６５】
本発明の一つの局面において、ペプチド−核酸化合物は、ペプチド成分を核酸への相対親和性に基づいて選択することによって提供される。例えば、ペプチドによる核酸結合性色素ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの置換を測定することにより、様々なペプチドの核酸に対する相対結合性の分析が行われる。化合物の核酸に対するペプチド成分の相対親和性を特徴付けることにより、ペプチド成分の核酸への結合度を変化できるようにペプチド成分を選択することができる。
【００６６】
ペプチド成分の核酸への結合度を変化させることにより、最初に結合性の強いペプチド成分によって縮合体粒子が形成され、続いて結合性の弱いペプチド成分が粒子を形成するか、若しくはその逆が可能となり、又は縮合化合物に結合強度の異なる成分を複数回に分けて添加することが可能となる。
【００６７】
ある態様において、核酸剤と縮合する第一のペプチド成分が、第二以降のペプチド成分よりもその核酸剤に対して強い結合親和性を持つことが好ましい。これらの態様において、溶液の第一のペプチド成分の濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約７、約０．２から約２．５、又は約０．２から約１となるよう調節される。これらの態様において、後に続くペプチド成分の濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約５０、約０．５から約２０、約０．５から約７、又は約０．５から約２．５となるよう調節される。
【００６８】
可逆的に結合したリボ核酸−ペプチド縮合化合物は、リボ核酸、並びに細胞外生体環境下で十分に安定であって、細胞内エンドソームと接触することでリボ核酸を放出することができるリボ核酸−ペプチド縮合体を形成する量にある正に帯電したリボ核酸結合性ペプチドを含む。
【００６９】
ペプチドがリボ核酸を結合させるのに有効な量の正に帯電した残基を含む、ペプチド−核酸縮合体の集団が提供される。このリボ核酸−ペプチド縮合体は細胞外生体環境下で十分に安定であり、ＲＮＡｉ応答を発生させるのに有効な方法で細胞内にリボ核酸を放出することができる。
【００７０】
本発明のある局面において、試薬を用いてペプチド−ＲＮＡ縮合体が架橋される。例えば、グルタルアルデヒドなどのジアルデヒド基を導入することでペプチド又は粒子表面のアミノ基を架橋し、ペプチド−ＲＮＡ縮合体の安定性を高めることができる。架橋剤の他の例としては、ホルムアルデヒド、アクロレイン、及びジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）が挙げられる。架橋された縮合化合物は、血清中のエンドヌクレアーゼによる代謝に対する耐性が向上していることであろう。
【００７１】
ある態様において、核酸剤と縮合する第一のペプチド成分は、第二以降のペプチド成分を添加する前に架橋される。任意に、第一のペプチド成分の縮合体は、第二以降のペプチド成分を添加した後に架橋されてもよい。ある態様において、第一のペプチド成分の縮合体は、第二以降のペプチド成分の添加前及び添加後に架橋される。
【００７２】
ペプチド−リボ核酸化合物を安定化する方法には、化合物内においてリボ核酸結合性ペプチドを、例えばグルタルアルデヒド架橋剤で架橋することが含まれる。ペプチド−リボ核酸化合物を生命体内部における分解から保護する方法としては、化合物内でペプチドの少なくとも一部を、例えばグルタルアルデヒド架橋剤で架橋することが含まれる。
【００７３】
本発明のペプチド−リボ核酸化合物は、界面活性剤、中性脂質、又はポリエチレンオキシドなどの表面改質剤を添加することによっても安定化することができる。例えば、ポリエチレングリコールは縮合化合物の溶液に添加されるとその複合粒の粒子へ付着することができる。例えば、非イオン性であるポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロック共重合体を添加して化合物の粒子を安定化させることもできる。
【００７４】
本開示には、動物及びヒトのＲＮＡｉ治療に用いるための薬物の製造における本発明の化合物の使用が包含される。
【００７５】
核酸剤
本発明に有用な核酸剤は、一本鎖核酸、二本鎖核酸、修飾若しくは分解耐性核酸、ＲＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡキメラ、アンチセンス核酸、又はリボザイムであってよい。
【００７６】
これに関連して、本発明は、ＲＮＡ干渉によって遺伝子発現を調節するための化合物、組成物、及び方法を提供する。本発明の化合物又は組成物はリボ核酸剤をＲＮＡｉ応答を生じさせることが可能な細胞へ放出することができる。本発明の化合物又は組成物は、細胞内エンドソームとの接触によってリボ核酸剤を細胞へ放出することができる。リボ核酸剤の細胞内放出によって細胞内における遺伝子発現を阻害することができる。
【００７７】
本発明に有用なリボ核酸剤は様々な遺伝子を標的とすることができる。例えば、本発明のｓｉＲＮＡ剤は、ＴＮＦ−α遺伝子の領域と相補的な配列を有することができる。本発明のある態様において、この化合物及び組成物は腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）の発現を制御するのに有用である。ＴＮＦ−αは、例えば肺疾患において発生する炎症プロセスと関連し得るため、抗炎症効果を生じ得る。本発明の組成物を送達することによってＴＮＦ−αをブロックすることは、リウマチ性関節炎の兆候及び／又は症状の治療又は予防に有用であろう。
【００７８】
本発明は、ＲＮＡ干渉によってＴＮＦ−αの発現及び活性を調節するための化合物、組成物、及び方法を提供する。
【００７９】
ＴＮＦ−αの発現及び／又は活性は、例えばｓｉＲＮＡ分子であるＩｎｍ−４を細胞へ送達することによって調節することができる。Ｉｎｍ−４は、ヒトＴＮＦ−α遺伝子と相同的な配列を持つ２１ヌクレオチドの二本鎖ｓｉＲＮＡ分子である。Ｉｎｍ−４は、センス鎖上に３’−ｄＴｄＴのオーバーハングを、アンチセンス鎖上に３’−ｄＡｄＴオーバーハングを有する。Ｉｎｍ−４の一次構造は以下の通りである。
センス鎖（配列番号４４）
５’−ＣＣＧＵＣＡＧＣＣＧＡＵＵＵＧＣＵＡＵｄＴｄＴ
アンチセンス鎖（配列番号４５）
５’−ＡＵＡＧＣＡＡＡＵＣＧＧＣＵＧＡＣＧＧｄＴｄＴ
【００８０】
ＴＮＦ−αの発現及び／又は活性は、例えばｓｉＲＮＡ分子であるＬＣ２０を細胞へ送達することによって調節することができる。ＬＣ２０は、ヒトＴＮＦ−α遺伝子と相同的な配列を持つ２１ヌクレオチドの二本鎖ｓｉＲＮＡ分子である。ＬＣ２０が標的とするのは、ヒトＴＮＦ−αの３’−ＵＴＲ領域である。ＬＣ２０は１９塩基対を持ち、センス鎖上に３’−ｄＴｄＴのオーバーハングを、アンチセンス鎖上に３’−ｄＡｄＴオーバーハングを有する。ナトリウム塩型の分子量は１４，２９８である。ＬＣ２０の一次構造は以下の通りである。
センス鎖（配列番号４６）
（５’）−ＧＧＧＵＣＧＧＡＡＣＣＣＡＡＧＣＵＵＡｄＴｄＴ
アンチセンス鎖（配列番号４７）
（５’）−ＵＡＡＧＣＵＵＧＧＧＵＵＣＣＧＡＣＣＣｄＴｄＡ
【００８１】
本発明のｓｉＲＮＡは、ウィルス遺伝子の領域と相補的な配列を有することができる。例えば、本発明のある組成物及び方法は、インフルエンザのウィルスゲノムの発現を制御するのに有用である。
【００８２】
これに関連して、本発明は、ＲＮＡ干渉によってインフルエンザの発現及び感染活性を調節するための組成物及び方法を提供する。インフルエンザの発現及び／又は活性は、例えばインフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットの領域と相補的な配列を有する短鎖干渉ＲＮＡ分子を細胞へ送達することによって調節することができる。例としてインフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットと相同的な配列を有する二本鎖ｓｉＲＮＡ分子を表３に示す。
【００８３】
【表３】
【００８４】
本発明のｓｉＲＮＡは、インフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットの領域と相補的な配列を有することができる。
【００８５】
本発明は、インフルエンザのｍＲＮＡを標的とするｓｉＮＡを投与するための組成物及び方法を提供し、これらの組成物と方法によってインフルエンザＲＮＡは効果的に下方制御され、それによってインフルエンザ感染が低減、予防、又は寛解される。
【００８６】
ＲＮＡ干渉治療
ある態様において、本発明は、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子又はその前駆体などのＲＮＡｉ誘導性化合物を有効量含有する組成物を対象へ投与することによって該対象内の標的転写物の発現を阻害するための化合物、組成物、及び方法を提供する。ＲＮＡｉは、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を用いてメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を標的とし、翻訳を減弱する。本発明で用いられるｓｉＲＮＡは、例えばｓｉＲＮＡへのプロセッシングを受ける長鎖ｄｓＲＮＡなど、ダイサーによるプロセッシングを受ける前駆体であってよい。本発明は、標的転写物の発現又は標的転写物によってコードされたペプチド若しくはタンパク質の活性に関連する疾患又は状態を治療又は予防する方法を提供する。
【００８７】
ＲＮＡｉに基づく治療法を用いて、ウィルス又は微生物の成長又は機能を停止したり、疾患経路内の内在性遺伝子産物の機能を停止したりすることによって、広範囲にわたる様々な疾患を治療することができる。
【００８８】
ある態様において、本発明は、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子及びその前駆体などのＲＮＡｉ誘導性化合物を送達するための新規な組成物及び方法を提供する。詳細には、本発明は、対象の細胞、組織、及び／又は器官の１又はそれ以上の転写物を標的とするＲＮＡｉ誘導性化合物を含有する組成物を提供する。
【００８９】
ｓｉＲＮＡは、約１９ヌクレオチドの長さの相補的領域を有する二本鎖ＲＮＡであってよい。ｓｉＲＮＡは任意に一つ又は二つの一本鎖オーバーハング又はループを含んでいてもよい。
【００９０】
ｓｈＲＮＡは自己相補的領域を有する一本鎖ＲＮＡであってよい。この一本鎖ＲＮＡはステムとループを有するヘアピン構造を形成することができ、任意に、このＲＮＡの５’末端及び／又は３’末端において１又は２箇所以上の非対形成部分を有してよい。
【００９１】
活性治療剤は、インビボでのヌクレアーゼ分解に対する耐性が高められ、及び／又は細胞取り込みが改善された化学修飾ｓｉＮＡであって、ＲＮＡｉ活性が保持されたものであってよい。
【００９２】
本発明のｓｉＲＮＡ剤は、標的遺伝子のある領域に相補的な配列を有してよい。本発明のｓｉＲＮＡは２９塩基対から５０塩基対を有してよく、例えば標的遺伝子のある領域に相補的な配列を有するｄｓＲＮＡである。あるいは、二本鎖核酸はｄｓＤＮＡであってもよい。
【００９３】
ある態様において、活性剤は、遺伝子産物の発現を調節可能な短鎖干渉核酸（ｓｉＮＡ）、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）、マイクロＲＮＡ、又は短鎖ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）であってよい。
【００９４】
選択された疾患状態と関連する原因因子又は寄与因子として発現が異常に増加することが知れらている大多数の遺伝子のいずれをも含む、対象の特定の疾患状態に関連する１又はそれ以上の異なる遺伝子の発現を標的とする類似の方法及び組成物が提供される。
【００９５】
本発明のＲＮＡｉ誘導性化合物は、疾患状態に対するその他の公知の治療と合わせて投与してもよい。
【００９６】
ある態様において、本発明は、送達促進化合物と混合、化合物化、又は抱合された形の短鎖干渉核酸、短鎖干渉ＲＮＡ、二本鎖ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、又は短鎖ヘアピンＲＮＡなどの低分子核酸分子を含有する組成物を特徴とする。
【００９７】
本明細書で用いる「短鎖干渉核酸」、「ｓｉＮＡ」、「短鎖干渉ＲＮＡ」、「ｓｉＲＮＡ」、「短鎖干渉核酸分子」、「短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子」、及び「化学修飾短鎖干渉核酸分子」の各用語は、例えば配列特異的にＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）又はジーンサイレンシングを媒介することによって、遺伝子発現又はウィルス複製を阻害又は下方制御可能ないずれの核酸分子も意味する。
【００９８】
ある態様において、ｓｉＮＡは、アンチセンス領域が、発現を下方制御する標的リボ核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部を含み、センス領域が、標的リボ核酸の配列又はその一部に対応する（すなわち実質的に同一の配列である）ヌクレオチド配列を含む、自己相補的なセンス鎖及びアンチセンス鎖を含む二本鎖ポリヌクレオチド分子である。
【００９９】
「ｓｉＮＡ」は、例えば短鎖二本鎖核酸であるｓｉＲＮＡ、又は任意に、長鎖のその前駆体等の低分子干渉核酸を意味する。本発明の範囲内で有用なｓｉＮＡの長さは、ある態様においては約２０乃至５０ｂｐの長さで最適化される。しかし、ｓｉＲＮＡを含む有用なｓｉＮＡの長さには特に制限はない。例えばｓｉＮＡはまず、標的細胞内に存在して、標的細胞への送達と同時に又はその後にジーンサイレンシングを引き起こす最終的な形又はプロセッシングを受けた形のｓｉＮＡとは十分に異なる前駆体の形で細胞へ導入することができる。ｓｉＮＡの前駆体は、例えば送達と同時に又はその後にプロセッシング、分解、変性、又は開裂に付される前駆体配列要素を含むことで、細胞内でジーンサイレンシングを媒介する活性を有するｓｉＮＡを生成することができる。ある態様において、有用なｓｉＮＡの前駆体の長さは例えば約１００乃至２００塩基対、５０乃至１００塩基対、又は約５０塩基対未満であって、これによって標的細胞内において活性なプロセッシングを受けたｓｉＮＡが生成される。他の態様においては、有用なｓｉＮＡ又はｓｉＮＡ前駆体の長さは、約１０から４９塩基対、１５から３５塩基対、又は約２１から３０塩基対となる。
【０１００】
本発明のある態様においては、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを使用して、大きなｓｉＮＡの核酸前駆体を含む従来のｓｉＮＡよりも大きな核酸分子の送達を促進する。例えば、本発明の方法及び組成物を、所望のｓｉＮＡの「前駆体」である大きな核酸の送達を促進するために用いることができ、ここで前駆体のアミノ酸が標的細胞への送達の前、間、若しくは後に開裂又はプロセッシングに付されて標的細胞内での遺伝子発現を調節する活性ｓｉＮＡを形成することができる。
【０１０１】
例えば、ｓｉＮＡ前駆体ポリヌクレオチドとしては、自己相補的なセンス領域及びアンチセンス領域を含む２又は３個以上のループ構造並びにステムを有する環状一本鎖ポリヌクレオチドを選択することができ、ここでアンチセンス領域は、標的核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部を含み、センス領域は、標的核酸の配列又はその一部に対応するヌクレオチド配列を含み、そしてこの環状ポリヌクレオチドがインビボ又はインビトロでプロセッシングを受けることでＲＮＡｉを媒介可能な活性ｓｉＮＡ分子を生成することができる。
【０１０２】
本発明のｓｉＮＡ分子、特に前駆体でない形のものは、３０塩基対未満であってよく、約１７乃至１９ｂｐ、１９乃至２１ｂｐ、又は２１乃至２３ｂｐであってもよい。
【０１０３】
ｓｉＲＮＡは哺乳類系で選択的なジーンサイレンシングを媒介することができる。短鎖ループ及び１９乃至２７塩基対のステムを有するヘアピンＲＮＡも、その二本鎖ステムの配列と相同的な遺伝子の発現を選択的にサイレンシングする。哺乳類細胞は短鎖ヘアピンＲＮＡを、ｓｉＲＮＡへ変換して選択的ジーンサイレンシングを媒介することができる。
【０１０４】
ＲＩＳＣは、ｓｉＲＮＡ二重鎖のアンチセンス鎖と相補的な配列を有する一本鎖ＲＮＡの開裂を媒介する。標的ＲＮＡの開裂は、ｓｉＲＮＡ二重鎖のアンチセンス鎖と相補的な領域内で発生する。２１ヌクレオチドのｓｉＲＮＡ二重鎖は、通常２ヌクレオチドの３’末端オーバーハングを含む場合に最も活性が高い。
【０１０５】
２−ヌクレオチドの３’末端オーバーハングを有する２１−ｍｅｒのｓｉＲＮＡ二重鎖の３’末端オーバーハングセグメントをデオキシリボヌクレオチドで置換しても、ＲＮＡｉ活性への悪影響が生じない場合がある。ｓｉＲＮＡの各末端において４ヌクレオチドまではデオキシリボヌクレオチドによる置換が許容され得るが、完全にデオキシリボヌクレオチドで置換するとＲＮＡｉ活性が喪失する場合がある。
【０１０６】
別の選択肢として、ｓｉＮＡは、単一の又は複数のｓｉＮＡをコードし、その発現を標的細胞内で該ｓｉＮＡを発現させるポリヌクレオチドベクタによって発現された単一の又は複数の転写産物として送達することができる。このような態様においては、標的細胞内で発現されるｓｉＲＮＡの最終転写産物の二本鎖部分の長さは、例えば１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｂｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。
【０１０７】
本発明のある態様において、二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖領域は、バルジ部分、ミスマッチ部分、又はその両方を含んでよい。二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖部分は、完全に対合したヌクレオチドセグメントに限定されず、例えばミスマッチ（対応するヌクレオチドが相補的でない）、バルジ（一方の鎖上の対応する相補的ヌクレオチドが欠失）、又はオーバーハングによって対合していない部分を含んでよい。非対合部分は、ｓｉＮＡ形成に干渉しない程度含まれていてよい。ある態様において、「バルジ」は１つ又は２つの非対合ヌクレオチドを含んでよく、二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖領域は、約１個乃至７個又は約１個乃至５個のバルジを含んでよい。さらに、ｓｉＮＡの二本鎖領域に含まれる「ミスマッチ」部分は、１個乃至７個又は１個乃至５個存在してよい。ミスマッチで最も多いのは、ヌクレオチドの一つがグアニンで他方がウラシルの場合である。このようなミスマッチは、例えばセンスＲＮＡをコードする対応するＤＮＡ内のＣからＴ、ＧからＡ、又はそれらの組み合わせという変異に起因するであろうが、他の要因も考えられる。
【０１０８】
本発明のｓｉＮＡの末端構造は、ｓｉＮＡが標的遺伝子の発現を阻害する活性を保持する限りにおいて、平滑末端又は粘着末端（オーバーハング）であってよい。粘着末端（オーバーハング）構造は３’末端オーバーハングに限定されず、ジーンサイレンシングを誘起する活性が保持される限りにおいて、５’末端オーバーハング構造も含まれる。さらに、オーバーハング部のヌクレオチド数は２又は３に限定されず、ジーンサイレンシングを誘起する活性が保持される限りにおいて、ヌクレオチド数はいくつであってもよい。例えば、オーバーハング部は１乃至約８のヌクレオチド又は２乃至４のヌクレオチドを含んでよい。
【０１０９】
粘着末端（オーバーハング）構造を有するｓｉＮＡの長さは、対合する二本鎖部分及び各末端のオーバーハング部分の長さとして表すことができる。例えば、２ｂｐの３’末端アンチセンスオーバーハングを有する２５／２７−ｍｅｒのｓｉＮＡ二本鎖は、２５−ｍｅｒのセンス鎖及び２７−ｍｅｒのアンチセンス鎖を持ち、この場合、対合部の長さは２５ｂｐである。
【０１１０】
いずれのオーバーハング配列も標的遺伝子に対する特異性は低くてよく、標的遺伝子配列に対して相補的（アンチセンス鎖）でなくても同一（センス鎖）でなくてもよい。ｓｉＮＡはジーンサイレンシング活性を保持する限りにおいて、そのオーバーハング部中に、例えばｔＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ウィルスＲＮＡなどの自然ＲＮＡ分子又は人工ＲＮＡ分子等の低分子量構造を含んでよい。
【０１１１】
ｓｉＮＡの末端構造は、二本鎖核酸の一方の末端部が、例えばリンカＲＮＡ等のリンカ核酸によって繋がっているステム−ループ構造であってよい。二本鎖領域（ステム−ループ部分）の長さは、例えば１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｂｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。別の選択肢として、標的細胞内で発現されるｓｉＮＡの最終転写産物である二本鎖領域の長さは、例えば約１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。
【０１１２】
ｓｉＮＡは、標的核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部分を有する一本鎖ポリヌクレオチドを含むことができ、ここで一本鎖ポリヌクレオチドは、５’リン酸（例えば、Ｍａｒｔｉｎｅｚら，Ｃｅｌｌ． １１０： ５６３−５７４, ２００２； Ｓｃｈｗａｒｚら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ １０： ５３７−５６８, ２００２、を参照）又は５’，３’−リン酸ジエステルなどの末端リン酸を含んでよい。
【０１１３】
本明細書で用いるｓｉＮＡ分子という用語は、天然のＲＮＡ又はＤＮＡのみを含む分子に限定されず、化学修飾されたヌクレオチド及び非ヌクレオチドも包含する。ある態様において、本発明の短鎖干渉核酸分子は２’−ヒドロキシ基（２’−ＯＨ）を含むヌクレオチドが欠失している。ある態様において、短鎖干渉核酸はＲＮＡｉを媒介するのに２’ −ヒドロキシ基を有するヌクレオチドは存在する必要がなく、従って本発明の短鎖干渉核酸分子は、任意にリボヌクレオチド（例：２’−ＯＨ基を持つヌクレオチド）をまったく含まなくてもよい。しかし、ＲＮＡｉを媒介するためにｓｉＮＡ分子内にリボヌクレオチドが存在する必要がないｓｉＮＡ分子は、２’−ＯＨ基を有する１又は２個以上のヌクレオチドを含む、接合した一つ若しくは複数のリンカ、又はその他の接合若しくは会合した基、部分、若しくは鎖を有してよい。ｓｉＮＡ分子は、ヌクレオチド部位の少なくとも約５、１０、２０、３０、４０、又は５０％にリボヌクレオチドを含んでいてもよい。
【０１１４】
本明細書で用いるｓｉＮＡという用語は、配列特異的ＲＮＡｉを媒介することができる核酸分子を包含し、中でも特に例を挙げると、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）分子、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）分子、マイクロＲＮＡ分子、短鎖ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）分子、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子、短鎖干渉核酸分子、短鎖干渉修飾オリゴヌクレオチド分子、化学修飾ｓｉＲＮＡ分子、及び転写後ジーンサイレンシングＲＮＡ（ｐｔｇｓＲＮＡ）分子等がある。
【０１１５】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は個別のセンス及びアンチセンス配列若しくは領域を含み、ここでセンス領域及びアンチセンス領域はヌクレオチド若しくは非ヌクレオチドリンカ分子によって共有結合されているか、又はイオン性相互作用、水素結合、ファンデルワールス相互作用、疎水性相互作用、及び／若しくはスタッキング相互作用により非共有的に結合されている。
【０１１６】
「アンチセンスＲＮＡ」とは、標的遺伝子ｍＲＮＡと相補的な配列を有するＲＮＡ鎖であって、標的遺伝子ｍＲＮＡと結合することによってＲＮＡｉを誘起することができるＲＮＡ鎖をいう。
【０１１７】
「センスＲＮＡ」とは、アンチセンスＲＮＡと相補的な配列を有するＲＮＡ鎖であって、その相補的アンチセンスＲＮＡとアニールしてｓｉＲＮＡを形成するＲＮＡ鎖をいう。
【０１１８】
本明細書で用いる「ＲＮＡｉ構築物（ＲＮＡｉ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ）」又は「ＲＮＡｉ前駆体」という用語は、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、ヘアピンＲＮＡ、及びインビボで開裂してｓｉＲＮＡを形成することができるその他のＲＮＡ種等のＲＮＡｉ誘導性化合物を意味する。本明細書におけるＲＮＡｉ前駆体は、細胞中でｄｓＲＮＡ若しくはヘアピンＲＮＡを形成する転写物、及び／又はｓｉＲＮＡをインビボで生成することができる転写物を生じさせることが可能な発現ベクタ（ＲＮＡｉ発現ベクタとも言う）も含む。
【０１１９】
ｓｉＨｙｂｒｉｄ分子は、ｓｉＲＮＡと同様の機能を有する二本鎖核酸である。二本鎖ＲＮＡ分子と違い、ｓｉＨｙｂｒｉｄはＲＮＡ鎖及びＤＮＡ鎖から構成される。ＲＮＡ鎖が標的ｍＲＮＡと結合するアンチセンス鎖であることが好ましい。ＤＮＡ鎖とＲＮＡ鎖のハイブリダイゼーションによって生じたｓｉＨｙｂｒｉｄは、ハイブリダイズした相補的部分、及び好ましくは少なくとも一つの３’末端オーバーハングを有する。
【０１２０】
本発明の範囲内で使用するｓｉＮＡは、二つの別々のオリゴヌクレオチドから構築することができ、ここでこのうち一方はセンス鎖でもう一方はアンチセンス鎖であって、この場合、アンチセンス鎖とセンス鎖は自己相補的（すなわち、各鎖が他方の鎖のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列を含む；アンチセンス鎖及びセンス鎖が二重又は二本鎖構造を形成しており、この場合、例えばその二本鎖領域が約１９塩基対である。）である。アンチセンス鎖は標的核酸分子のヌクレオチド配列又はその一部分と相補的なヌクレオチド配列を含むことができ、センス鎖は標的核酸配列又はその一部分に対応するヌクレオチド配列を含むことができる。別の選択肢として、ｓｉＮＡは単一のオリゴヌクレオチドから構築することもでき、この場合、ｓｉＮＡの自己相補的なセンス領域とアンチセンス領域は核酸系又は非核酸系のリンカによって結合される。
【０１２１】
ある態様では、細胞内送達のためのｓｉＮＡは、自己相補的センス及びアンチセンス領域を有し、二本鎖、非対称二本鎖、ヘアピン、又は非対称ヘアピン二次構造を有するポリヌクレオチドであってよく、ここでアンチセンス領域は個々の標的核酸分子内のヌクレオチド配列又はその一部分と相補的なヌクレオチド配列を含み、センス領域は標的核酸配列又はその一部分に対応するヌクレオチド配列を含む。
【０１２２】
ｓｉＮＡに施すことが可能な化学修飾の例としては、ヌクレオチド間のホスホロチオエート結合、２’−デオキシリボヌクレオチド、２’−Ｏ−メチルリボヌクレオチド、２’−デオキシ−２’−フルオロリボヌクレオチド、「ユニバーサル塩基」ヌクレオチド、「非環式」ヌクレオチド、５−Ｃ−メチルヌクレオチド、並びに末端グリセリル及び／又は逆位デオキシ脱塩基残基（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄｅｏｘｙａｂａｓｉｓ ｒｅｓｉｄｕｅ）の取り込みが挙げられる。
【０１２３】
ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域は、そのアンチセンス領域の３’末端にヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を有することができる。アンチセンス領域は、そのアンチセンス領域の５’末端に約１乃至約５個のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を有することができる。ｓｉＮＡ分子の３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、核酸の糖、塩基、若しくはバックボーンが化学修飾されたリボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドを含むことができる。３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、１又は２個以上のユニバーサル塩基リボヌクレオチドを含むことができる。３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、１又は２個以上の非環式ヌクレオチドを含むことができる。
【０１２４】
例えば、化学修飾ｓｉＮＡは１、２、３、４、５、６、７、８個若しくは９個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を一方の鎖に有することができ、又は１乃至８個若しくは９個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を各鎖に有することができる。ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合は、ｓｉＮＡ二本鎖の一方又は両方のオリゴヌクレオチド鎖に存在することができ、例えばセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に存在することができる。
【０１２５】
ｓｉＮＡ分子は、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の３’末端、５’末端、又は３’末端と５’末端の両方に、１又は２個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含むことができる。例えば、典型的なｓｉＮＡ分子は、１、２、３、４、５個、又は６個以上の連続するヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の５’末端に有することができる。
【０１２６】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個又は１１個以上のヌクレオチド間ピリミジンホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に有する。
【０１２７】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個又は１１個以上のヌクレオチド間プリンホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に有する。
【０１２８】
ｓｉＮＡ分子は環状核酸分子を含むことができ、この場合、ｓｉＮＡの長さは例えば約３８、４０、４５、５０、５５、６０、６５、又は７０ヌクレオチド等の約３８乃至約７０ヌクレオチドであって、例えば約１８、１９、２０、２１、２２、又は２３塩基対等の約１８乃至２３塩基対を有し、この場合、この環状オリゴヌクレオチドは約１９塩基対及び２つのループを持つダンベル型構造を形成する。
【０１２９】
環状ｓｉＮＡ分子は、二つのループモチーフを含むことができ、この場合、ｓｉＮＡ分子の一方又は両方のループ部は生分解性である。例えば、環状ｓｉＮＡ分子のループ部はインビボで変形されて、約２個のヌクレオチドを含む３’末端ヌクレオチドオーバーハング等の３’末端オーバーハングを有する二本鎖ｓｉＮＡ分子を生成することができる。
【０１３０】
ｓｉＮＡ分子の修飾ヌクレオチドは、アンチセンス鎖、センス鎖、又はその両方にあってよい。例えば、修飾ヌクレオチドはノーザンコンフォメーション（例：ノーザン擬回転周期（ｎｏｒｔｈｅｒｎ ｐｓｅｕｄｏｒｏｔａｔｉｏｎ ｃｙｃｌｅ）、例えばＳａｅｎｇｅｒ著、「Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏｆ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ」、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ− Ｖｅｒｌａｇ編集、１９８４年を参照）を持つことができる。ノーザン立体配置を持つヌクレオチドの例としては、架橋型核酸（ｌｏｃｋｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ；ＬＮＡ）ヌクレオチド（例：２’−Ｏ，４’−Ｃ−メチレン−（Ｄ−リボフラノシル）ヌクレオチド）、２’−メトキシエトキシ（ＭＯＥ）ヌクレオチド、２’−メチルチオエチル、２’−デオキシ−２’−フルオロヌクレオチド、２’−デオキシ−２’−クロロヌクレオチド、２’−アジドヌクレオチド、及び２’−Ｏ−メチルヌクレオチドが挙げられる。
【０１３１】
化学修飾ヌクレオチドは、ＲＮＡｉを媒介する能力を維持しながら同時にヌクレアーゼ分解に対する耐性を持つことができる。
【０１３２】
二本鎖ｓｉＮＡ分子のセンス鎖は、逆位デオキシ脱塩基部位（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄｅｏｘｙａｂａｓｉｓ ｍｏｉｅｔｙ）などの末端キャップ部位を３’末端、５’末端、又は３’末端と５’末端の両方に有してもよい。
【０１３３】
抱合体の例としては、２００３年４月３０日に出願されたＶａｒｇｅｅｓｅら、米国特許出願番号１０／４２７１６０に記載の抱合体及びリガンドが挙げられ、図面を含むこの出願の全文は参照することで本明細書に組み入れられる。
【０１３４】
本発明のある態様では、抱合体は、生分解性リンカによって化学修飾ｓｉＮＡ分子と共有結合することができる。例えば、抱合体分子は化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の３’末端に結合することができる。
【０１３５】
ある態様では、抱合体分子は化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の５’末端に結合する。ある態様では、抱合体分子は、化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、若しくはその両方の３’末端及び５’末端の両方、又はこれらのいずれかの組み合わせに結合する。
【０１３６】
ある態様では、抱合体分子は、細胞等の生体系への化学修飾ｓｉＮＡ分子の送達を促進する分子を含む。
【０１３７】
ある態様では、化学修飾ｓｉＮＡ分子と結合する抱合体分子は、ポリエチレングリコール、ヒト血清アルブミン、又は細胞取り込みを媒介できる細胞受容体のリガンドである。本発明で意図する、化学修飾ｓｉＮＡ分子と結合可能な抱合体分子の具体例は、Ｖａｒｇｅｅｓｅら、米国特許公開公報ＵＳ２００３／０１３０１８６及び米国特許公開公報ＵＳ２００４／０１１０２９６に記載されており、これらの各文献の全文は参照することで本明細書に組み入れられる。
【０１３８】
ｓｉＮＡは、ｓｉＮＡのセンス領域とｓｉＮＡのアンチセンス領域を連結する、ヌクレオチド、非ヌクレオチド、又はヌクレオチドと非ヌクレオチドとが混在するリンカを含むことができる。ある態様では、ヌクレオチドリンカの長さは３、４、５、６、７、８、９、又は１０ヌクレオチドであってよい。ある態様では、ヌクレオチドリンカは核酸アプタマであってよい。本明細書で用いる「アプタマ」又は「核酸アプタマ」という用語は、標的分子に特異的に結合する核酸分子を包含しており、この場合、核酸分子は、自然環境下で標的分子によって認識される配列を含んでいる。別の選択肢として、アプタマは、標的分子が核酸と自然には結合しない場合において、標的分子と結合する核酸分子であってよい。
【０１３９】
例えば、アプタマを用いてタンパク質のリガンド結合ドメインと結合させ、それによって天然のリガンドとタンパク質との相互作用を防ぐことができる。例えば、Ｇｏｌｄら，Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ６４： ７６３, １９９５； Ｂｒｏｄｙ及びＧｏｌｄ，Ｊ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ７４： ５, ２０００； Ｓｕｎ，Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｍｏｌ． Ｔｈｅｒ． ２： １００, ２０００； Ｋｕｓｓｅｒ，Ｊ. Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ７４： ２７, ２０００； Ｈｅｒｍａｎｎ及びＰａｔｅｌ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７： ８２０, ２０００； 及びＪａｙａｓｅｎａ，Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４５： １６２８, １９９９、を参照のこと。
【０１４０】
非ヌクレオチドリンカは、脱塩基ヌクレオチド、ポリエーテル、ポリアミン、ポリアミド、ペプチド、炭水化物、脂質、ポリ炭化水素、又はその他のポリマ化合物（例：２乃至１００のエチレングリコール単位を有するポリエチレングリコール等）であってよい。具体例としては、Ｓｅｅｌａ及びＫａｉｓｅｒ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ６３５３, １９９０、及びＮｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １５： ３１１３, １９８７； Ｃｌｏａｄ及びＳｃｈｅｐａｒｔｚ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ６３２４, １９９１； Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ及びＳｃｈｅｐａｒｔｚ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ５１０９, １９９１； Ｍａら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２１： ２５８５, １９９３： 及びＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３２： １７５１, １９９３； Ｄｕｒａｎｄら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ６３５３, １９９０； ＭｃＣｕｒｄｙら，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ＆Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ １０： ２８７, １９９１； Ｊｓｃｈｋｅら，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ． ３４： ３０１, １９９３； Ｏｎｏら，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３０： ９９１４, １９９１； Ａｒｎｏｌｄら、国際公開公報ＷＯ８９／０２４３９、Ｕｓｍａｎら、国際公開公報ＷＯ９５／０６７３１、Ｄｕｄｙｃｚら、国際公開公報ＷＯ９５／１１９１０、並びにＦｅｒｅｎｔｚ及びＶｅｒｄｉｎｅ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ４０００, １９９１、に記載のものが挙げられる。
【０１４１】
「非ヌクレオチドリンカ」とは、糖及び／又はリン酸エステル置換基を含む１又は２個以上のヌクレオチド単位の代わりに核酸鎖に取り込まれることができ、残った塩基に酵素活性を示させる基又は化合物のことを言う。この基又は化合物は、例えば糖のＣ１の位置にアデノシン、グアニン、シトシン、ウラシル、又はチミン等の一般的に認知されたヌクレオチド塩基を含まない点において、脱塩基型となり得る。
【０１４２】
ある態様では、修飾ｓｉＮＡ分子はリン酸エステル主鎖の修飾部を有することができ、修飾には、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、モルホリノ、アミデートカルバメート、カルボキシメチル、アセトアミデート、ポリアミド、スルホネート、スルホンアミド、スルファメート、ホルムアセタール、チオホルムアセタール、及び／若しくはアルキルシリルの１又はそれ以上の修飾が含まれる。オリゴヌクレオチド主鎖の修飾の例は、Ｈｕｎｚｉｋｅｒ及びＬｅｕｍａｎｎ著、「Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ａｎａｌｏｇｕｅｓ： Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ, ｉｎ Ｍｏｄｅｒｎ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ」、ＶＣＨ、ｐ．３３１−４１７、１９９５年、及びＭｅｓｍａｅｋｅｒら著、「Ｎｏｖｅｌ Ｂａｃｋｂｏｎｅ Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔｓ ｆｏｒ Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ， ｉｎ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ」、ＡＣＳ、ｐ．２４−３９、１９９４年、に記載されている。
【０１４３】
化学的修飾が可能なｓｉＮＡ分子は、（ａ）ｓｉＮＡ分子の二つの相補鎖を合成する工程、及び（ｂ）二本鎖ｓｉＮＡ分子を得るのに適した条件下でこの二つの相補鎖をアニールする工程によって合成することができる。ある態様では、ｓｉＮＡ分子の相補的な部分は、固相オリゴヌクレオチド合成又は固相タンデムオリゴヌクレオチド合成によって合成される。
【０１４４】
オリゴヌクレオチド（例：特定の修飾オリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドのリボヌクレオチドを含まない部分）は、例えばＣａｒｕｔｈｅｒｓら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２１１： ３−１９, １９９２； Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、国際公開公報ＷＯ９９／５４４５９、Ｗｉｎｃｏｔｔら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３： ２６７７−２６８４, １９９５； Ｗｉｎｃｏｔｔら，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ． Ｂｉｏ． ７４： ５９, １９９７； Ｂｒｅｎｎａｎら，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． Ｂｉｏｅｎｇ． ６１： ３３−４５, １９９８； 及びＢｒｅｎｎａｎ、米国特許公報第６００１３１１号に記載の本技術分野で公知のプロトコルを用いて合成される。本発明の特定のｓｉＮＡ分子を含むＲＮＡの合成は、例えばＵｓｍａｎら，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １０９： ７８４５, １９８７； Ｓｃａｒｉｎｇｅら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ５４３３, １９９０； Ｗｉｎｃｏｔｔら, Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３： ２６７７−２６８４, １９９５； 及びＷｉｎｃｏｔｔら, Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ． Ｂｉｏ． ７４： ５９, １９９７、に記載の一般的手順に従う。
【０１４５】
本明細書で用いる「非対称ヘアピン」とは、アンチセンス領域と、ヌクレオチド又は非ヌクレオチドを含むことができるループ部と、アンチセンス領域と塩基対を作ってループ付き二重鎖を形成するのに十分な相補的ヌクレオチドを有する限りにおいてアンチセンス領域よりも少ないヌクレオチドを含むセンス領域と、を含む直鎖ｓｉＮＡ分子である。
【０１４６】
本明細書で用いる「非対称二重鎖」とは、センス領域及びアンチセンス領域を含む別々の二本の鎖を有するｓｉＮＡ分子であり、この場合、センス領域は、アンチセンス領域と塩基対を作って二重鎖を形成するのに十分な相補的ヌクレオチドを有する限りにおいてアンチセンス領域よりも少ないヌクレオチドを含む。
【０１４７】
本明細書で用いる「遺伝子発現を調節する」とは、標的遺伝子の発現を上方制御又は下方制御することであり、細胞内に存在するｍＲＮＡのレベル、ｍＲＮＡの翻訳、又は標的遺伝子によってコードされるタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの合成の上方制御又は下方制御を含む場合がある。
【０１４８】
本明細書で用いる、「阻害する」、「下方制御する」、又は「発現を低下させる」という用語は、遺伝子の発現、ＲＮＡ分子又は１又はそれ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする同等のＲＮＡ分子のレベル、又は標的遺伝子によってコードされる１又はそれ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットのレベル若しくは活性が、本発明の核酸分子（例：ｓｉＮＡ）の非存在下で観察される値よりも低下することを意味する。
【０１４９】
本明細書で用いる「ジーンサイレンシング」とは、細胞内における遺伝子発現を部分的に又は完全に阻害することであり、「遺伝子ノックダウン」と言うこともある。ジーンサイレンシングの程度は本技術分野で公知の方法によって定量することができ、方法のうちのいくつかは国際公開公報ＷＯ９９／３２６１９にまとめられている。
【０１５０】
本明細書で用いる「リボ核酸」及び「ＲＮＡ」という用語は、少なくとも一つのリボヌクレオチド残基を含む分子を意味する。リボヌクレオチドはベータ−Ｄ−リボフラノース部位の２’位にヒドロキシル基を有するヌクレオチドである。これらの用語は、二本鎖ＲＮＡ、一本鎖ＲＮＡ、部分的に精製されたＲＮＡなどの単離されたＲＮＡ、実質的に純粋なＲＮＡ、合成ＲＮＡ、組み換えによって作製したＲＮＡ、並びに１若しくは２個以上のヌクレオチドの付加、欠失、置換、修飾、及び／又は変性によって修飾及び変性された天然のＲＮＡとは異なるＲＮＡを含む。ＲＮＡの変性は、ｓｉＮＡの末端部又は内部等において、例えばＲＮＡの１又は２個以上のヌクレオチドに対する非ヌクレオチド材料の付加を含む場合がある。
【０１５１】
ＲＮＡ分子中のヌクレオチドには、天然ではないヌクレオチド又は化学合成されたヌクレオチド若しくはデオキシヌクレオチド等の非標準的なヌクレオチドが含まれる。このような変性されたＲＮＡは類似体と呼ばれる場合がある。
【０１５２】
「高度保存配列領域」とは、標的遺伝子の１又はそれ以上の領域のヌクレオチド配列が、一つの世代から別の世代へ、又は一つの生体系から別の生体系へかけて実質的に変化しないことを意味する。
【０１５３】
「センス領域」とは、ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域に対して相補性を有するそのｓｉＮＡ分子のヌクレオチド配列を意味する。さらに、ｓｉＮＡ分子のセンス領域は、標的核酸配列と相同性を有する核酸配列を含むことができる。
【０１５４】
「アンチセンス領域」とは、標的核酸配列に対して相補性を有するｓｉＮＡ分子のヌクレオチド配列を意味する。さらに、ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域は、そのｓｉＮＡ分子のセンス領域に対して相補性を有する核酸配列を含むことができる。
【０１５５】
「標的核酸」とは、発現又は活性が調節されるいずれの核酸配列も意味する。標的核酸はＤＮＡ又はＲＮＡであり得る。
【０１５６】
「相補性」とは、核酸が別の核酸配列と、従来のワトソン−クリック結合様式又はその他の従来のものとは異なる結合様式によって水素結合を形成できることを意味する。
【０１５７】
本明細書で用いる「生分解性リンカ」とは、例えば生物的に活性な分子とｓｉＮＡ分子又はｓｉＮＡ分子のセンス鎖とアンチセンス鎖を連結させるような、一つの分子をもう一つの分子と連結させるための生分解性リンカとして設計された核酸又は非核酸リンカ分子を意味する。生分解性リンカは、特定の組織又は細胞種への送達等の特定の目的のためにその安定性を調節することができるように設計されている。核酸系の生分解性リンカ分子の安定性は、例えばリボヌクレオチドと、デオキシリボヌクレオチドと、２’−Ｏ−メチル、２’−フルオロ、２’−アミノ、２’−Ｏ−アミノ、２’−Ｃ−アリル、２’−Ｏ−アリル、及びその他の２’位修飾ヌクレオチド又は塩基修飾ヌクレオチド等の化学修飾ヌクレオチドとの組み合わせによって、様々に調節することができる。生分解性核酸リンカ分子は、例えば長さが約２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、若しくは２０ヌクレオチドであるオリゴヌクレオチドのような二量体、三量体、四量体、若しくはさらに長い核酸分子であってよく、又は例えばホスホロアミデート若しくはホスホジエステル結合等のリン含有結合を有する一つのヌクレオチドを含んでもよい。生分解性核酸リンカ分子は、核酸のバックボーン、核酸の糖、又は核酸の塩基の修飾を含んでいてもよい。
【０１５８】
本明細書で述べる２’位修飾ヌクレオチドと関連して、「アミノ」とは２’−ＮＨ２又は２’−Ｏ−ＮＨ２を意味し、修飾されていてもされていなくてもよい。このような修飾された基は、例えばＥｃｋｓｔｅｉｎら、米国特許公報第５６７２６９５号及びＭａｔｕｌｉｃ−Ａｄａｍｉｃら、米国特許公報第６２４８８７８号に記載されている。
【０１５９】
投与
本発明の範囲内で使用するための核酸分子を送達する方法の中には、例えばＡｋｈｔａｒら，Ｔｒｅｎｄｓ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏ． ２： １３９, １９９２； Ａｋｈｔａｒ編、「Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ」、１９９５年、Ｍａｕｒｅｒら，Ｍｏｌ． Ｍｅｍｂｒ． Ｂｉｏｌ． １６： １２９−１４０, １９９９； Ｈｏｆｌａｎｄ及びＨｕａｎｇ，Ｈａｎｄｂ． Ｅｘｐ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． １３７： １６５−１９２, １９９９； 及びＬｅｅら，ＡＣＳ Ｓｙｍｐ． Ｓｅｒ． ７５２： １８４−１９２, ２０００、に記載されているものもある。Ｓｕｌｌｉｖａｎら、国際公開公報ＷＯ９４／０２５９５には、酵素核酸分子の送達の一般的方法がさらに記載されている。これらのプロトコルは本発明の範囲内で意図される実質的にいかなる核酸分子の補助的な又は補完的な送達に対しても利用することができる。
【０１６０】
核酸分子及びペプチドは、当業者に公知の様々な方法によって細胞へ投与することができ、その方法にはｓｉＮＡ及びペプチドのみを含む製剤又は薬理学的に許容される担体、希釈剤、賦形剤、アジュバンド、乳化剤、バッファ、安定剤、保存剤等の一つ若しくはそれ以上の追加成分をさらに含む製剤内における投与が含まれるが、これに限定されない。特定の態様において、ｓｉＮＡ及び／又はペプチドは、リポソーム内に被包されたり、イオントフォレーシスで投与されたり、又はハイドロゲル、シクロデキストリン、生分解性ナノカプセル、生体接着性マイクロスフェア、若しくはタンパク質性ベクタ等の他の運搬体へ取り込まれたりすることができる（Ｏ’Ｈａｒｅ及びＮｏｒｍａｎｄ、国際公開公報ＷＯ００／５３７２２参照）。別の選択肢として、核酸／ペプチド／運搬体の組み合わせを、直接注射又は輸液ポンプの使用によって局所的に送達することもできる。本発明の核酸分子の直接注射は、皮下注射、筋肉内注射、若しくは皮内注射を問わず、標準的な針とシリンジによる方法、又は、Ｃｏｎｒｙら，Ｃｌｉｎ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５： ２３３０−２３３７, １９９９、及びＢａｒｒｙら、国際公開公報ＷＯ９９／３１２６２に記載されるような無針技術を用いて行うことができる。
【０１６１】
本発明の組成物は、実質的に医薬品として使用することができる。医薬品は、患者の疾患状態若しくはその他の有害な状態の発生又は重症度化を予防若しくは調節したり、又はこれらを治療（一つ若しくはそれ以上の症状を、検出若しくは測定可能な程度で軽減）する。
【０１６２】
従って、追加的態様の範囲内において、本発明は、通常ペプチドと組み合わされた、複合体化し、若しくは抱合体形成した形であって、任意に希釈剤、安定剤、バッファ等の薬理学的に許容される担体と共に製剤されていてもよい１若しくは２種類以上のｓｉＮＡである、１若しくは２種類以上のポリ核酸の存在又は投与を特徴とする医薬組成物及び方法を提供する。
【０１６３】
本発明は、対象の特定の疾患状態又はその他の有害な状態と関連する遺伝子の発現を調節する短鎖干渉核酸（ｓｉＮＡ）分子を提供することにより、更なる課題及び利点を満足するものである。通常ｓｉＮＡは、対象の疾患状態又は有害な状態と関連する原因因子又は寄与因子として、高レベルに発現された遺伝子を標的とすることになる。この点で、ｓｉＮＡは、１又はそれ以上の関連する疾患症状の再発が予防される、又はその重症度が軽減若しくは減少するレベルまで遺伝子の発現を効果的に下方制御するであろう。別の選択肢として、疾患又は他の有害な状態の結果又は続きとして標的遺伝子の発現が必ずしも高まらない様々な個別の疾患モデルに対しても、それでも標的遺伝子の下方制御は遺伝子の発現を低下させる（すなわち、標的遺伝子の選択されたｍＲＮＡ及び／又はタンパク質産物のレベルを下げる）ことによって治療効果を示すであろう。別の選択肢として、本発明のｓｉＮＡは、一つの遺伝子の発現の低下を目的とすることによって、その標的遺伝子の産物又は活性によって発現が負の制御を受ける「下流」の遺伝子の上方制御を行うことができる。
【０１６４】
本発明のこのｓｉＮＡは、例えば経皮投与又は局所注射など、いかなる形でも投与することができる。動物を対象として、選択された疾患状態と関連する原因因子又は寄与因子として発現が異常に増加することが公知である大多数の遺伝子のいずれをも含む、その選択された疾患状態と関連する１又はそれ以上の異なる遺伝子の発現を標的とする類似の方法及び組成物が提供される。
【０１６５】
本発明の負に帯電したポリヌクレオチド（例：ＲＮＡ又はＤＮＡ）は、医薬組成物を形成する安定剤やバッファ等を含んだ又は含まない状態で、いかなる標準的な方法によっても患者に投与することができる。リポソームによる送達メカニズムの使用を所望する場合は、リポソームを形成する標準的なプロトコルに従うことができる。本発明の組成物は、経口投与のために錠剤、カプセル、又はエリキシール剤として、直腸内投与のために坐薬として、注射投与のために無菌溶液又は懸濁液として、及び本技術分野で公知のその他の組成物として製剤し、使用することもできる。
【０１６６】
本発明はさらに、本明細書で述べる組成物の薬理学的に許容される製剤も含む。このような製剤は、例えば塩酸、臭素酸、酢酸、及びベンゼンスルホン酸の塩といった酸付加塩等の上述の化合物の塩を含む。
【０１６７】
ｓｉＮＡは、例えば薬物の直腸内投与のために坐薬の形で投与することもできる。このような組成物は、薬物を、常温で固体だが直腸内温度では液体となるため直腸内で融解して薬物を放出する適切な非刺激性賦形剤と混合することによって調製することができる。そのような物質としては、ココアバター及びポリエチレングリコールが挙げられる。
【０１６８】
核酸分子は、当業者に公知の様々な方法によって細胞へ投与することができ、その方法にはリポソーム内への封入、イオントフォレーシスによるもの、生分解性ポリマ、ハイドロゲル、シクロデキストリン（例えば、Ｇｏｎｚａｌｅｚら，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ． １０： １０６８−１０７４, １９９９、並びにＷａｎｇら、国際公開公報ＷＯ０３／４７５１８及び国際公開公報ＷＯ０３／４６１８５参照）、乳酸−グリコール酸共重合ポリマ（ＰＬＧＡ）及びＰＬＣＡマイクロスフェア（例えば、米国特許公報第６４４７７９６号、米国特許公開公報ＵＳ２００２／１３０４３０参照）、生分解性ナノカプセル、並びに生体接着性マイクロスフェア等のその他の運搬体への取り込みによるもの、又はタンパク質ベクタによるもの（Ｏ’Ｈａｒｅ及びＮｏｒｍａｎｄ、国際公開公報ＷＯ００／５３７２２参照）が含まれるが、これらに限定されない。別の選択肢として、核酸／運搬体の組み合わせは、直接注射又は輸液ポンプの使用によって局所的に送達される。本発明の核酸分子の直接注射は、皮下注射、筋肉内注射、若しくは皮内注射を問わず、標準的な針とシリンジによる方法、又は、Ｃｏｎｒｙら，Ｃｌｉｎ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５： ２３３０−２３３７, １９９９、及びＢａｒｒｙら、国際公開公報ＷＯ９９／３１２６２に記載のような無針技術を用いて行うことができる。本発明の分子は医薬品として使用することができる。医薬品は、対象の疾患状態について、その発生を予防若しくは調節したり、又はこれらを治療（一つの症状を、好ましくはすべての症状をある程度軽減）したりする。
【０１６９】
本発明のカチオン性ペプチドのいずれか一つを選択又はいくつかを組み合わせることにより、本発明の方法及び組成物の範囲内においてｓｉＮＡの細胞内送達を誘導又は促進するのに有効なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド試薬を得ることができる。
【０１７０】
医薬組成物
本発明は、本明細書で述べる化合物の薬理学的に許容される製剤又は組成物も含む。このような製剤には、例えば塩酸、臭素酸、酢酸、及びベンゼンスルホン酸の塩といった酸付加塩等の上述の化合物の有機塩及び無機塩が含まれる。
【０１７１】
水性懸濁液は、水性懸濁液を製造するのに適した賦形剤との混合物の形で活性物質を含む。そのような賦形剤は、例えばカルボキシメチルセルロースのナトリウム塩、メチルセルロース、ヒドロプロピル−メチルセルロース、アルギン酸ナトリウム、ポリビニルピロリドン、トラガントガム、及びアカシアガム等の懸濁剤であり、分散剤又は湿潤剤は例えばレシチン等の天然のホスファチド、例えばポリオキシエチレンステアレート等のアルキレンオキサイドと脂肪酸との縮合生成物、例えばヘプタデカエチレンオキシセタノール等のエチレンオキサイドと長鎖脂肪族アルコールとの縮合生成物、ポリオキシエチレンソルビトールモノオレエート等のエチレンオキサイドと脂肪酸及びヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物、又は例えばポリエチレンソルビタンモノオレエート等のエチレンオキサイドと脂肪酸及び無水ヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物であってよい。水性懸濁液は、例えばｐ−ヒドロキシ安息香酸のエチル若しくはｎ−プロピルエステル等の１又はそれ以上の保存剤、１又はそれ以上の着色剤、１又はそれ以上の香味料、及びスクロース若しくはサッカリン等の１又はそれ以上の甘味料をさらに含んでよい。
【０１７２】
油性懸濁液は、例えば落花生油、オリーブ油、ゴマ油、若しくはココナッツ油等の植物性油、又は液状パラフィン等の鉱油中に活性成分を懸濁させることで調製することができる。油性懸濁液は、例えば蜜蝋、固形パラフィン、又はセチルアルコール等の増粘剤を含んでもよい。飲みやすい経口製剤を提供するために甘味料及び香味料を加えてもよい。このような組成物は、アスコルビン酸等の抗酸化剤を加えることで保存することができる。
【０１７３】
水の添加によって水性懸濁液を調製するのに適した分散性粉末及び顆粒により、活性成分は、分散剤又は湿潤剤と、懸濁剤と、１又はそれ以上の保存料との混合物として提供される。例えば甘味料、香味料、及び着色料等の追加的な賦形剤も存在してよい。
【０１７４】
本発明の医薬組成物は、水中油型エマルジョンの形をとることもできる。油相は、植物油、鉱油、又はこれらの混合物であってよい。適切な乳化剤としては、例えばアカシアガム又はトラガントガム等の天然ガム、例えば大豆、レシチン等の天然ホスファチド、及び例えばソルビタンモノオレエート等の脂肪酸と無水ヘキシトールとから誘導されるエステル又は部分エステル、並びに例えばポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート等の前述の部分エステルとエチレンオキシドとの縮合生成物であってよい。また、エマルジョンは甘味料及び香味料を含んでいてもよい。
【０１７５】
医薬組成物は水性又は油性の無菌注射用懸濁液の形をとることができる。この懸濁液は、適切な分散剤若しくは湿潤剤、及び／又は懸濁剤を用いて調製することができる。無菌注射用製剤は、例えば１，３−ブタノール溶液等非経口的に許容される無害な希釈剤若しくは溶媒中の無菌注射用溶液又は懸濁液であってもよい。
【０１７６】
医薬組成物用の許容可能な担体、運搬体、及び溶媒としては、水、リンゲル液、及び等張性の塩化ナトリウム溶液が挙げられる。さらに、無菌固定油は、担体、運搬体、溶媒、又は懸濁媒体として従来から使用されている。上記目的のためには、合成モノグリセリド又はジグリセリドを含むいかなる無刺激性の固定油も使用することができる。さらに、オレイン酸等の脂肪酸も注射液の調製に有用である。
【０１７７】
本明細書で引用するあらゆる刊行物、参考文献、特許、及び特許出願の全文献は、参照することで具体的に本明細書に組み入れられる。
【０１７８】
本発明を特定の態様について説明し、例示の目的で多くの詳細事項を述べてきたが、本発明が追加的な態様を含み、本明細書で述べた詳細事項が本発明の範囲から逸脱しない範囲で大きく変形され得ることは、当業者には明らかであろう。本発明は、そのような追加的な態様、変更、及び同等な内容を含む。
【０１７９】
本発明の説明及び請求項においてここで使用する「１の（ａ）」、「１の（ａｎ）」、「その（ｔｈｅ）」、及びこれらに類似の言葉は、単数形及び複数形の両方を含むものとして解釈されるべきである。「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、及び「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」という言葉は、例えば「含むがこれらに限定されない」という意味のように、目的語を制限しない言葉として解釈されるべきである。本明細書における数値の範囲の列挙は、その範囲内の数値が明示的に列挙されていてもいなくても、本明細書において個々の数値が列挙されているかのごとく、その範囲内に入る個々の各数値を意味することを意図したものである。本明細書で取り上げた具体的数値は典型例であって本発明を制限するものではないことが理解されるであろう。
【０１８０】
本明細書で示された例及び用いられた典型的な用語は単に例示目的のためのものであって、本発明の範囲を制限することを意図したものではない。
【発明を実施するための最良の形態】
【０１８１】
調製例１
水中でのＰＮ０８２６：ｓｉＲＮＡ化合物。
化合物は以下のようにして調製した。ＲＮａｓｅを含有しない８２．１２μｌの水、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。この溶液をボルテックス撹拌により混合した。最後に７．８８μｌのＰＮ０８２６（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を加え、ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８２】
調製例２
ＰＮ０８２６、Ｆ−１０８、及び水。
化合物は以下のようにして調製した。まずＲＮａｓｅを含有しない８２．１２μｌの水を、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。次に７．８８μｌのＰＮ０８２６（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を加えてボルテックス撹拌により混合した。最後に、５μｌのプルロニックＦ１０８（２０ｍｇ／ｍｌ、０．２μＭろ過済み）を添加してピペットで混合した。
【０１８３】
調製例３
Ｃｙ５−Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、及び一晩。
化合物は以下のようにして調製した。まず１１９．４０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのペプチドＰＮ０１８３（２ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を４℃で一晩保存した。最後に１５μｌのＣｙ５−Ｉｎｍ４（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８４】
調製例４
Ｃｙ５−Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、Ｆ１２７、及び一晩。
化合物は以下のようにして調製した。まず１１９．４０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのペプチドＰＮ０１８３（２ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）及び７．５μｌのプルロニックＦ１２７（２０ｍｇ／ｍｌ、０．２μＭろ過済み）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を４℃で一晩保存した。最後に１５μｌのＣｙ５−Ｉｎｍ４（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８５】
調製例５
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、希釈用水、及びペプチドから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８６】
調製例６
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、希釈用バッファ、及びペプチドから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８７】
調製例７
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、及びボルテックス撹拌なし。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加してピペッティングにより混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ピペッティングにより混合した。
【０１８８】
調製例８
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして希釈による濃度低下。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。最後にこの溶液を１０倍に希釈して濃度を下げた。
【０１８９】
調製例９
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びｓｉＲＮＡから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。
【０１９０】
調製例１０
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして３０分間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０Ｍ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で３０分間平衡化した。
【０１９１】
調製例１１
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして６０分間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で６０分間平衡化した。
【０１９２】
調製例１２
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして２４時間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で２４時間平衡化した。
【０１９３】
調製例１３
Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９、及びｓｉＲＮＡを投与直前に添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず２５９．１μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）及び１０．３０μｌのＰＮ０９３９（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に１５．００μｌのＩｎｍ４（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。
【０１９４】
調製例１４
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びピペッティングによる混合。
化合物は以下のようにして調製した。まず１７２．００μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１０μｌのＩｎｍ４（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ピペッティングにより混合した。その後１１．２０μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ピペッティングにより混合した。最後に６．８０μｌのＰＮ０９３９（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ピペッティングにより混合した。この溶液を氷上で１時間平衡化した。
【０１９５】
調製例１５
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びボルテックス混合。
化合物は以下のようにして調製した。まず２２８９．５０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて２４．００μｌのＩｎｍ４（２０ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後５３．６０μｌのＰＮ０１８３（１０ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に３２．９０μｌのＰＮ０９３９（２０ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を氷上で１時間平衡化した。
【０１９６】
調製例１６
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びｐＨ７．４。
化合物は以下のようにして調製した。まず３７６．１９μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ７．４）を、続いて５μｌのＩｎｍ４（２０ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１５．３９μｌのＰＮ０１８３（７．２６ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に３．４２μｌのＰＮ０９３９を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０１９７】
調製例１７
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びｔｅｒｔ−ブタノール。
化合物は以下のようにして調製した。まず７２．９３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ボルテックス撹拌により混合した。最後に１２．９０μｌのｔｅｒｔ−ブタノールを添加し、ピペッティングにより混合した。
【０１９８】
調製例１８
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びエタノール。
化合物は以下のようにして調製した。まず７３．３３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ボルテックス撹拌により混合した。最後に１２．５０μｌのエタノールを添加し、ピペッティングにより混合した。
【０１９９】
調製例１９
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を１２１．４０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２００】
Ｌａｃ−Ｚの構造は以下の通りである。
センス鎖：ＣＮ２９３８。（配列番号６４）
５’−ｒ（ＣＵＡＣＡＣＡＡＡＵＣＡＧＣＧＡＵＵＵ）ｄＴｄＴ−３’
アンチセンス鎖：ＣＮ２９３９。（配列番号６５）
５’−ｒ（ＡＡＡＵＣＧＣＵＧＡＵＵＵＧＵＧＵＡＧ）ｄＴｄＣ−３’
【０２０１】
調製例２０
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３８。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び０．９７μｌのＰＮ０９３８（１ｍｇ／ｍｌ）を一緒に１２２．４１μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０２】
調製例２１
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９、及び架橋。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。次に１．６０μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加してピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。
【０２０３】
調製例２２
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、及びＰＮ０９３９。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、続いて１．６０μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。最後に１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０２０４】
調製例２３
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、ＰＮ０９３９、及び架橋
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、続いて０．８μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。続いて１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）及び０．８μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０２０５】
調製例２４
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、透析、及びＰＮ０９３９
化合物は以下のようにして調製した。まず１５８．６μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ７．４）、１０３．４５μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）、及び３３．５３μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を加えることでＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の混合物を作成した。ボルテックス撹拌によって混合した。次に４．４μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で２時間平衡化した。続いてこの溶液を４℃で一晩透析にかけた。４３．５μｌの架橋された混合物を３３１．５μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ中へ希釈した。４．９６μｌのＰＮ０９３９（０．１ｍｇ／ｍｌ）を５７．５４μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ中へ希釈した。この二つの希釈溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０６】
調製例２５
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０８２６、及びＰＥＧ３３５０
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）及び１．６μｌのＰＮ０１８３（０．１ｍｇ／ｍｌ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加し、ボルテックス撹拌により混合した。３．９６μｌのＰＮ０８２６（０．１ｍｇ／ｍｌ）及び２．５０μｌのＰＥＧ３３５０（１０ｍｇ／ｍｌ）を１１８．５４μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０７】
実施例１
ゴールドダイ置換分析（Ｇｏｌｄ Ｄｙｅ Ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ Ａｓｓａｙ）によるペプチド−ｓｉＲＮＡ親和性
高速スクリーニングによる様々なペプチドのｓｉＲＮＡに対する相対結合性を、核酸結合性色素ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの置換を間接的に測定することによって評価した。ペプチドとＳＹＢＲ−ｇｏｌｄが同時にｓｉＲＮＡとの競争結合を起こすように、ｓｉＲＮＡ、ペプチド、及びＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの緩衝混合物を測定プレート内で２つの系に重複して調製した。ｓｉＲＮＡの濃度は１０μｇ／ｍＬに固定し、それを０．０５乃至１０のペプチド：ｓｉＲＮＡ電荷比に対応する濃度範囲の各ペプチドの力価と組み合わせた。ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素はｓｉＲＮＡと結合した時にのみ蛍光を発するため、ｓｉＲＮＡと結合するペプチドは色素の結合を阻害し、結果として蛍光発光が減少する。従って、蛍光発光量はペプチドのｓｉＲＮＡとの結合と逆相関を示した。Ｋｄ及びＢｍａｘの両方の値を算出した。高いＫｄ値は、ペプチドとｓｉＲＮＡとの結合親和性が高いことを示すものであった。
【０２０８】
１０，０００倍濃度の核酸結合性ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素ストック液は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社（カリフォルニア州、カールズバッド）より入手し、−２０℃で保存した。このストック液は、室温と平衡状態にしてからＨｙｃｌｏｎｅ社のヌクレアーゼを含有しない水で１００倍希釈した。これを測定プレート上で１０倍希釈し、分析用の最終濃度である１０倍濃度とした。これは、５０μｇ／ｍＬまでの濃度においてｓｉＲＮＡ二重鎖と正比例にある結合が得られる最適濃度であった。ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄとＧ１４９８ｓｉＲＮＡとの正比例にある結合度を示す検量線作成に用いた数値を表４に示す。
【０２０９】
【表４】
【０２１０】
サンプルは３８４ウェルの分析プレート上で直接混合した。まず、マルチチャネルピペットを用い、ピペットチップをウェルの底に接触させることで溶液が完全に排出されるようにして、５μＬのＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素を各ウェルへ分注した。次に、２２．５μＬの２×ペプチド溶液をシングルチャネルピペットで添加した。最後に、２２．５μＬの２×ｓｉＲＮＡ溶液をマルチチャネルピペットで添加した。プレートを直ちに箔でカバーし、軽くたたいて混合しウェルの側壁についた液滴を落とした。
【０２１１】
蛍光強度は、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社（カリフォルニア州、サニーベール）のＳｐｅｃｔｒａＭａｘ蛍光プレートリーダーで測定した。プレートの設定条件に含まれたのは、励起波長を４９５ｎｍ及び発光波長を５３７ｎｍとし、測定前の振とう及びウェル一つあたり１回の測定であった。プレートはｓｉＲＮＡの添加後３０分以内に測定した。
【０２１２】
ペプチド結合性のためのスキャッチャードプロット
スキャッチャードプロットはペプチドの結合性（結合[ペプチド]／遊離[ペプチド]）ｖｓ結合[ペプチド]のプロットである。このプロットの直線回帰の傾きは、−１／Ｋｄであり、Ｂｍａｘはｙ切片である。遊離のペプチドと結合ペプチドの濃度を直接測定することはできないので、ｓｉＲＮＡの間接測定値を用いて算出した。遊離ｓｉＲＮＡは、測定された蛍光強度から検量線を用いて定量した。結合ｓｉＲＮＡは、既知の初期ｓｉＲＮＡ濃度（１０μｇ／ｍＬ）からの物質収支により、検量線から定量した。
【０２１３】
結合ペプチドは、（ｓｉＲＮＡ：ペプチド）結合モル比が単一分子対の（ｓｉＲＮＡ：ペプチド）電荷比に等しいと仮定して、結合ｓｉＲＮＡから算出した。この結合ペプチド算出量から、物質収支により遊離ペプチドを算出した。
【０２１４】
粒子サイズとゼータ電位
粒子サイズとゼータ電位は、ゼータ電位測定用透明使い捨てセルＤＴＳ１０６０Ｃを用い、２５℃でＭａｌｖｅｒｎ Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ Ｎａｎｏ ＺＳ（Ｍａｌｖｅｒｎ社、イギリス、ウスターシャー）により測定した。粒子サイズ用の分散剤は粘度１．０２００ｃＰのＰＢＳ又は粘度０．８８７２ＣＰの水を用いた。ゼータ電位用の分散剤は粘度０．８８７２ＣＰの水を用いた。分散剤粘度をサンプル粘度として使用した。ゼータ電位と粒子サイズの両方を測定する場合は、ゼータ電位測定用透明使い捨てセルを用いた。粒子サイズのみを測定する場合は、サイズ測定用低容量使い捨てキュベットを用いた。
【０２１５】
実施例２
様々な核酸濃度及びＮ／Ｐ比における縮合体粒子サイズ
様々なＧ１４９８濃度とＮ／Ｐ比におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図１に示す。特定のＮ／Ｐ比における各一組の３本の棒グラフにおいて、Ｇ１４９８濃度は一番左の棒グラフが１００μｇ／ｍｌ、真ん中が５０μｇ／ｍｌ、一番右が１０μｇ／ｍｌであった。Ｎ／Ｐ比０．２及び０．５では、Ｇ１４９８濃度が１０μｇ／ｍｌの時の粒子が非常に小さかったため、その濃度の棒グラフは図示されていない。
【０２１６】
Ｐ／Ｎ比が約１．４より小さい場合は、すべてのｓｉＲＮＡ濃度において粒子サイズは約２００ｎｍよりも小さかった。Ｐ／Ｎ比が約１．４か又はそれより大きい場合も、最も高い濃度（１００μｇ／ｍｌ）を除くすべてのＲＮＡ濃度において縮合体粒子サイズは約２００ｎｍよりも小さいままであった。
【０２１７】
実施例３
様々な核酸濃度及びＮ／Ｐ比における縮合体粒子サイズ
様々な混合後の時間及び窒素／リン比（Ｎ／Ｐ比）で得られたｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図２乃至図５に示す。図２乃至図５の各図の特定のＮ／Ｐ比における各一組の２本の棒グラフにおいて、左の棒グラフがボルテックス撹拌ありの場合、右の棒グラフがボルテックス撹拌なしの場合であった。
【０２１８】
図２の粒子径は混合後直ちに測定されたものであり、図３、図４、及び図５の粒子径は、それぞれ混合後３０分、６０分、及び２４時間で測定された。
【０２１９】
実施例４
縮合体粒子サイズに対するｐＨの影響
Ｎ／Ｐ比１．４及びＧ１４９８濃度１００μｇ／ｍｌで得られた、様々なｐＨ値に対するｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図６に示す。
【０２２０】
ｐＨが約１２より低い場合、縮合体粒子サイズは減少し、ｐＨの低下に伴って減少し続ける。約１１より低いｐＨでは、粒子サイズは約５００ｎｍより小さかった。
【０２２１】
強度は、後方散乱光子 (ｂａｃｋ ｓｃａｔｔｅｒｅｄ ｐｈｏｔｏｎ)（後方散乱モード (Ｂａｃｋ ｓｃａｔｔｅｒｅｄ ｍｏｄｅ））の測定値である。粒子サイズは、拡散自己相関アルゴリズムを使って計算したサイズである。
【０２２２】
実施例５
縮合体粒子サイズに対する塩濃度の影響
様々な塩化ナトリウム濃度で得られたｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図７に示す。
【０２２３】
約０．５までの塩化ナトリウム濃度では、粒子径は約１００ｎｍから約２７５ｎｍへ増加する。塩化ナトリウム濃度が約０．５を超えると、縮合体粒子サイズは上下に変動する。
【０２２４】
実施例６
縮合体粒子サイズに対するＲＮＡ及びペプチドの添加順の影響
様々なＮ／Ｐ比及び混合順におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図８に示す。Ｎ／Ｐ比が０．５以下の場合、粒子サイズは添加順による大きな影響は受けない。Ｎ／Ｐ比が０．５を超える場合は、ｓｉＲＮＡが先に溶液中へ導入され、そのｓｉＲＮＡ溶液にペプチドが添加された場合に粒子サイズは概して小さかった。
【０２２５】
実施例７
縮合体粒子の形態
ペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子形態は、透過電子顕微鏡（ＴＥＭ）イメージングによって測定した。以下のプロトコルを用いた。
グリッド上に１５μＬのサンプルを滴下して１０分放置；
半分の強度のカルノフスキー液に浸漬；
カコジル塩バッファに浸漬；
ＴＥＭ造影剤：３％酢酸ウラニル（ＵＡ）；
３回水に浸漬、ＵＡに浸漬、湿らせたフィルター紙で余分な液体を除去、乾燥；
混合物１：（オリジナルのカルノフスキー混合物）；
１６％パラホルムアルデヒド溶液：２０ｍＬ；
５０％グルタルアルデヒド ＥＭ級：８ｍＬ；
０．２Ｍリン酸ナトリウムバッファ：２５ｍＬ；
蒸留水：２５ｍＬ。
最終混合物は７８ｍＬで、０．０８Ｍバッファ中に５％グルタルアルデヒドと４％ホルムアルデヒドを含む。
この混合物のモル浸透圧濃度は２０００ｍＯＳＭを超えていた。
カコジル酸ナトリウムバッファ０．１Ｍ；
カコジル酸ナトリウム：４．２８ｇｍ；
塩化カルシウム：２５．０ｇｍ；
０．２Ｎ塩酸：２．５ｍｌ；
蒸留水で２００ｍｌに希釈、ｐＨは７．４。
【０２２６】
グロー放電なしで上記のプロトコルを用いた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８（濃度１００μ／ｍｌ）とペプチドＰＮ１８３（Ｎ／Ｐ比１．４）との縮合化合物の粒子のＴＥＭ写真を図９に示す。この写真から、サイズが均一で形態が球状の粒子であることがわかる。粒子サイズは１００ｎｍより小さく、典型的には約５０乃至６０ｎｍであった。
【０２２７】
グロー放電ありで上記のプロトコルを用いた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８（濃度１００μ／ｍｌ）とペプチドＰＮ１８３（Ｎ／Ｐ比１．４）との縮合化合物の粒子のＴＥＭ写真を図１０に示す。この写真から、サイズが均一で形態が球状の粒子であることがわかる。粒子サイズは１００ｎｍより小さく、典型的には約３０乃至６０ｎｍであった。
【０２２８】
実施例８
ペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子サイズの特徴
いくつかのペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子サイズ特性を表５にまとめて示す。
【０２２９】
【表５】
【０２３０】
例えば、Ｎ／Ｐ比０．５における化合物Ｇ１４９８／ＰＮ１８３は、全強度の９８．７％を占めるピークを示し、ピーク径が７３．３ｎｍ、ピーク幅が３２．９ｎｍ、Ｚ−平均粒子径が６３．８であった。
【０２３１】
実施例９
ペプチド−ＲＮＡ縮合体を用いてＬＰＳ刺激されたマウスの肺内でのＴＦＮ−αのインビボノックダウンアッセイ
ｓｉＲＮＡのノックダウン活性を、細胞にペプチド−ｓｉＲＮＡ縮合化合物をトランスフェクトすることによって測定した。ランダムｓｉＲＮＡ配列をネガティブコントロールとして用いた。
【０２３２】
ｓｉＲＮＡ Ｉｎｍ−４及びペプチドＰＮ１８３及びＰＮ９３９との縮合化合物を含む組成物の鼻孔内投与による、モデルマウス内でのＬＰＳ誘導性ＴＦＮ−α発現（ｐｇ／ｍｌ）のノックダウンアッセイの結果を図１１に示す。
【０２３３】
図１１において、一番左の棒グラフがバッファコントロールであり、次がＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータ、その右がグルタルアルデヒド（Ｇ）で架橋したＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９化合物のデータである。プラセボ（Ｐｌａｃｅｂｏ）はｓｉＲＮＡを含有しておらず、Ｑｎｅｇは不活性ｓｉＲＮＡを含有している。
【０２３４】
図１１のデータを表６に示す。
【０２３５】
【表６】
【０２３６】
投与は鼻腔内から行った。投与後４時間及び２４時間で、動物を０．６２５ｎｇ（５０μｌ）のＬＰＳで誘起した。ＬＰＳ導入後２時間で肺を採取した。ＴＮＦαのＥＬＩＳＡアッセイ及びＢＣＡ全タンパク質アッセイを行った。実験に用いた物質及び方法は以下の通りであった。
動物：正常マウス
投与量：０．５ｍｇ／ｋｇ
容量：５０μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：１０
コントロール：媒体、Ｑｎｅｇ
ｓｉＲＮＡ：Ｉｎｍ４
投与：Ｉｎｍ４濃度０．５ｍｇ／ｋｇで製剤を調製した。各製剤の全容量は２００μｌであった。各マウス（ｎ＝３）に５０μｌずつ投与した。
ｓｉＲＮＡの調製：既存の２０ｍｇ／ｍｌのＩｎｍ−４ｓｉＲＮＡストック液を Ｈｅｐｅｓ／バッファにより５ｍｇ／ｍｌに希釈した。Ｑｎｅｇは、既存の３．２９ｍｇ／ｍｌのストック液を使用した。
ペプチド：ペプチドはバッファ（１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロース）により適切な濃度に希釈した。
賦形剤調製：グルタルアルデヒド（０．０５％Ｗ／Ｖ）を使用した。０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤調製：１．５ｍｌＢｉｏ−ｐｕｒ Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆチューブに各成分を加えた。
（Ａ）まず、少量の他の成分を受ける容量のバッファを加えた。
（Ｂ）以下に示す順序で全成分を加えた。ｓｉＲＮＡ、ペプチド１、ペプチド２、必要に応じて添加剤、バッファ。
（Ｃ）グルタルアルデヒド架橋を行う製剤については、１時間経ってから投与した。
【０２３７】
代表的な製剤を表７に示す。
【０２３８】
【表７】
【０２３９】
代表的製剤の詳細を表８及び表９に示す。
【０２４０】
【表８】
【０２４１】
【表９】
【０２４２】
実施例１０
ラット膠肉腫線維芽細胞（９Ｌ／ＬａｃＺ）におけるＬａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイ
ｌａｃ−ｚ ｓｉＲＮＡとペプチドＰＮ１８３並びに様々な第二のペプチドとの縮合化合物によるラット膠肉腫線維芽細胞である９Ｌ／ＬａｃＺ内でのｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を図１２に示す。
【０２４３】
図１２において、一番左の棒グラフがＨｉＰｅｒＦｅｃｔ（商標）（Ｑｉａｇｅｎ社、カリフォルニア州、バレンシア）を用いた比較データであり、それに続くのが本発明の様々な化合物のデータによるものである。ＰＮ１８３のＮ／Ｐ比は０．７５であり、第二のペプチドのＮ／Ｐ比０．３であった。図１２のデータを表１０に示す。
【０２４４】
【表１０】
【０２４５】
実験に用いた物質及び方法は以下の通りであった。
細胞：９Ｌ／ＬａｃＺ
投与量：１００ｎＭ、全トランスフェクション用量１００μｌに基づく
容量：製剤容量２５μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：２０
コントロール：Ｑｎｅｇ ｗ／Ａｌｅｘｉｓ５４６
ｓｉＲＮＡ：ＬａｃＺ
Ｌａｃ−Ｚ又はＱｎｅｇ：５４μｌのｓｉＲＮＡ＋１７．２８μｌのＰＮ０１８３＋１２７８μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ
ペプチドはＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地で適切な濃度に希釈した。
賦形剤はすべて０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤：
（Ａ）ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３を一緒にＯＰＴＩ−ＭＥＭで希釈して粒子を形成させた。ボルテックス撹拌した。
（Ｂ）送達媒体をＯＰＴＩ−ＭＥＭで希釈した。ボルテックス撹拌で送達媒体を混合した。
（Ｃ）各製剤について、９６ウェルに希釈した送達媒体をまず添加し、続いてｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３製剤を添加した。ピペッティングにより混合した。トランスフェクトする前に３０分間放置した。トランスフェクション：各製剤は５つのウェルに十分な１２５μｌであった。各ウェル（ｎ＝３）には２５μｌ注入した。
【０２４６】
代表的な製剤の詳細を表１１に示す。
【０２４７】
【表１１】
【０２４８】
代表的製剤の詳細を表１２に示す。
【０２４９】
【表１２】
【０２５０】
実施例１１
ラット膠肉腫線維芽細胞（９Ｌ／ＬａｃＺ）におけるＬａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイ
様々な縮合化合物によるラット膠肉腫線維芽細胞である９Ｌ／ＬａｃＺ内でのｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を表１３に示す。
【０２５１】
【表１３】
【０２５２】
実験に用いた材料と方法は以下の通りであった。
細胞：９Ｌ／ＬａｃＺ
投与量：１００ｎＭ、全トランスフェクション用量１００μｌに基づく
容量：製剤容量２５μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：２０
コントロール：Ｑｎｅｇ ｗ／Ａｌｅｘｉｓ５４６
ｓｉＲＮＡ：ＬａｃＺ
トランスフェクション：各製剤は５つのウェルに十分な１２５μｌであった。各ウェル（ｎ＝３）には２５μｌ注入した。
ペプチド調製：ペプチドはＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地で適切な濃度に希釈した。
賦形剤調製：賦形剤はすべて０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤調製：
（Ａ）ＰＮ０１８３なしの製剤については、送達媒体をまず添加してからｓｉＲＮＡを添加し、ピペッティングにより混合した。
（Ｂ）ＰＮ０１８３ありの製剤については、ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の複合体をまず作製した。９６ウェルプレートに、送達媒体をまず添加し、それからｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３複合体を添加し、ピペッティングにより混合した。
（Ｃ）架橋を行う製剤については、ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の複合体をまず作製し、それから透析（４℃、一晩）を行うか、又は行わなかった。続いて翌朝に他の送達媒体をまず添加し、そしてｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３複合体を添加、それからピペッティングにより混合した。
【０２５３】
代表的な製剤を表１４に示す。
【０２５４】
【表１４】
【０２５５】
代表的製剤の詳細を表１５、１６、及び１７に示す。
【０２５６】
【表１５】
【０２５７】
【表１６】
【０２５８】
【表１７】
【０２５９】
実施例１２
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド
典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３は、以下に示すヒトのヒストン２Ｂ（Ｈ２Ｂ）タンパク質のアミノ酸配列から誘導された。Ｈ２Ｂタンパク質中の下線部１３乃至４８番目までの残基部分がＰＮ７３を誘導するために使用された断片部を示す。Ｈ２Ｂの１２乃至４８番目までのアミノ酸で表される場合もある。ＰＮ７３の一次構造も以下に示す。
Ｈ２Ｂ（ヒストン２Ｂ）アミノ酸配列（配列番号６６）
ＭＰＥＰＡＫＳＡＰＡＰＫＫＧＳＫＫＡＶＴＫＡＱＫＫＤＳＫＫＲＫＲＳＲＫＥＳＹＳＶＹＶＹＫＶＬＫＶＨＰＤＴＧＩＳＳＫＡＭＧＩＭＮＳＦＶＮＤＩＦＥＲＩＡＧＥＡＳＲＬＡＨＹＮＫＲＳＴＩＴＳＲＥＩＱＴＡＶＲＬＬＬＰＧＥＬＡＫＨＡＶＳＥＧＴＫＡＶＴＫＹＴＳＳＫ
ＰＮ７３（１３−４８）（配列番号４２）
ＮＨ２−ＫＧＳＫＫＡＶＴＫＡＱＫＫＤＧＫＫＲＫＲＳＲＫＥＳＹＳＶＹＶＹＫＶＬＫＱ−アミド
【０２６０】
典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３残基の置換及び欠失によって作製したいくつかのポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド変異体の構造を表１８に示す。
【０２６１】
【表１８】
【０２６２】
表１９に示すのは、典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３及びその切断型誘導体の構造である。以下に示すＰＮ３６０及びＰＮ３６１のアミノ酸配列は、ＰＮ７３の対応するアミノ酸配列にアラインメントしてある。
【０２６３】
【表１９】
【０２６４】
ＰＮ３６０はＰＮ７３とＮ末端は共通だがＰＮ７３のＣ末端が欠失しており、ＰＮ３６１はＰＮ７３とＣ末端が共通だがＰＮ７３のＮ末端が欠失している。ＰＮ７６６はＰＮ７３のＣ末端側１５のアミノ酸に相当する。ＰＮ７３、ＰＮ３６０、ＰＮ３６１、及びＰＮ７６６はＦＩＴＣ（フルオレセイン−５−イソチオシアネート）（すなわち、−ＧＫ［イプシロン］Ｇ−アミド）によるＣ末端標識はされていない。表１９にはさらに１１のＰＮ７３切断型を示し、これらはＰＮ７６８を除いてペプチドのＮ末端から順に残基を３つずつ欠失させて作成した。これらのペプチドはすべて、このペプチドを含む細胞を蛍光顕微鏡で検出し、そして／又はフローサイトメトリで分離できるように、ＦＩＴＣ（フルオレセイン−５−イソチオシアネート）（すなわち、−ＧＫ［イプシロン］Ｇ−アミド）によるＣ末端標識が施されている。ＰＮ７６６及びＰＮ７０８は同じアミノ酸配列を持つが、ＰＮ７０８がＣ末端ＦＩＴＣ標識されている点で異なっている。
【０２６５】
実施例１３
ｓｉＲＮＡの細胞取り込みと標的遺伝子ノックダウンのためのインビトロでの実験方法及び手順
本実施例では、実施例１２の表１８及び表１９に挙げた典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドによる、ｓｉＲＮＡの細胞取り込み及びｓｉＲＮＡによる標的遺伝子ノックダウン活性を促進する有効性を評価するために使用される方法と手順を示す。細胞の生存率も評価した。各実験における細胞の培養条件及びプロトコルは以下に詳細に説明する。
【０２６６】
細胞培養
初代ヒト単球：
健康な提供者からのヒトの新鮮血サンプルをＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社より購入した。単球の単離のために、血液サンプルは入手後直ちにＰＢＳにより１：１の比率で希釈した。まず全血から末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）をＦｉｃｏｌｌ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）勾配法により単離した。さらにＭｉｌｔｅｎｙｉＣＤ１４ポジティブ選別キット及び提供されたプロトコル（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ社）を用いて単球をＰＢＭＣから分離した。単球試料の純度を評価するために、細胞を抗ＣＤ１４抗体（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）とインキュベートし、その後フローサイトメトリで分離した。単球試料の純度は９５％超であった。
【０２６７】
０．１乃至１．０ｎｇ／ｍｌのリポ多糖、ＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社、ミズーリ州、セントルイス）を細胞培養液に添加して腫瘍壊死因子−±（ＴＮＦ−±）の生成を刺激することにより、ヒト単球の活性化を行った。細胞はＬＰＳと共に３時間インキュベートした後に回収し、Ｑｕａｎｔｉｇｅｎｅアッセイ（Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社、カリフォルニア州、フリーモント）を用いて製造元の説明書に従ってｍＲＮＡレベルを測定した。
【０２６８】
マウス尾線維芽細胞：マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）はＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスの尾から得た。尾を切り離し、７０％エタノールに浸漬した後剃刀の刃で切って小片とした。この小片をＰＢＳで３回洗浄した後、０．５ｍｇ/ｍＬのコラゲナーゼ、１００ユニット／ｍＬのペニシリン、及び１００μｇ/ｍＬのストレプトマイシンと共に３７℃で振とう器中でインキュベーションして組織を破壊した。次に尾の小片を完全培地（２０％ＦＢＳ、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸、１００ユニット／ｍＬのペニシリン、及び１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン含有ダルベッコ改変必須培地）中で細胞が樹立するまで培養した。細胞は、上で概説したように、３７℃、５％ＣＯ２下で、完全培地中で培養した。
【０２６９】
細胞生存率（ＭＴＴアッセイ法）
細胞生存率は、ＭＴＴアッセイ法（ＭＴＴ−１００、ＭａｔＴｅｋキット）を用いて評価した。このキットは、テトラゾリウム塩の取り込みとホルマザン色素への変換を測定するものである。解凍した濃縮ＭＴＴ２ｍＬをＭＴＴ希釈剤８ｍＬと混合することで脂質を用いて解凍して希釈したＭＴＴの濃縮物を投与終了時の１時間前に調製した。各細胞培養インサートをＣａ２＋及びＭｇ２＋含有ＰＢＳで２回洗浄し、それから各ウェルに１００μＬの混合ＭＴＴ溶液を含む新品の９６ウェル輸送用プレートへ移した。この９６ウェル輸送用プレートを次に３７℃、５％ＣＯ２下で３時間インキュベートした。３時間のインキュベーションの後ＭＴＴ溶液を除去し、各ウェルに２５０μＬのＭＴＴ抽出溶液を含む第二の９６ウェル供給用トレイへ培養物を移した。各培養ウェルの表面へ１５０μＬのＭＴＴ抽出溶液を追加添加し、このサンプルを暗所に室温で最小２時間、最大２４時間放置した。その後ピペットチップをインサート膜に突き刺して、ウェルの上部と下部の溶液を混合させた。この混合抽出溶液２００μＬを抽出ブランク（ネガティブコントロール）と共にマイクロリーダー測定のための９６ウェルプレートへ移した。プレートリーダーにより、６５０ｎｍでバックグラウンド除去を行い、５７０ｎｍでサンプルの光学濃度（ＯＤ）を測定した。細胞生存率はパーセントで表され、処理インサートに対して読み取ったＯＤをＰＢＳ処理インサートに対して読み取ったＯＤで割り、それを１００倍して計算した。本分析の目的のために、ＰＢＳは細胞生存率に影響せず、従って１００％の細胞生存率を表していると仮定した。
【０２７０】
ｓｉＲＮＡ調製
オリゴヌクレオチドの合成は、５’−Ｏ−ジメチルトリチル−２’−Ｏ−ｔ−ブチルジメチルシリル−３’−Ｏ−スクシニルリボヌクレオシドで誘導体化された長鎖アルキルアミン処理多孔質ガラス上、又は場合によっては５’−Ｏ−ジメチルトリチル−２’−デオキシ−３’−Ｏ−スクシニルチミジンの支持体上での標準２−シアノエチルホスホラミダイト法（１）によって行った。オリゴヌクレオチドはすべて、ＡＢＩ３４００ＤＮＡ/ＲＮＡ合成装置（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社、カリフォルニア州、フォスターシティ）を用いて０．２又は１μｍｏｌのオーダーで合成し、濃ＮＨ４ＯＨを用いて固体担体から切断し、ＮＨ４ＯＨ：エタノール３：１混合液を用いて５５℃で脱保護した。保護基２’−ＴＢＤＭＳの脱保護は、塩基が脱された保護ＲＮＡをＮ−メチルピロリジノン／トリエチルアミン／トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（ＮＭＰ／ＴＥＡ／３ＨＦ；体積比で６：３：４）の溶液（１μｍｏｌあたり６００μＬ）と共に６５℃で２．５時間インキュベートすることで達成した。対応する構成要素である、Ａ、Ｕ、Ｃ及びＧの５’−ジメトキシトリチル−Ｎ−（ｔａｃ）−２’−Ｏ−（ｔ−ブチルジメチルシリル）−３’−［（２−シアノエチル）−（Ｎ，Ｎ−ジイソプロピル）］ホスホラミダイト（Ｐｒｏｌｉｇｏ社、コロラド州、ボールダー）、並びに修飾ホスホラミダイトである５’−ＤＭＴｒ−５−メチル−Ｕ−ＴＯＭ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ａｃ−Ｃ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ｇ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ｕ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ａ−ＣＥホスホラミダイト（Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ社、バージニア州、スターリング）は供給業者から直接購入した。トリエチルアミン三フッ化水素酸塩、Ｎ−メチルピロリジノン、及び濃水酸化アンモニウムはＡｌｄｒｉｃｈ社（ウィスコンシン州、ミルウォーキー）から購入した。すべてのＨＰＬＣ分析及び精製は、Ｘｔｅｒｒａ（商標）Ｃ１８カラムを用いてＷａｔｅｒｓ２６９０ＨＰＬＣシステムにより行った。その他の試薬はすべてＧｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｃ．社から購入した。オリゴヌクレオチドは、ＲＰ−ＨＰＬＣで測定したところ純度９７％超まで精製されていた。マウス注射用ｓｉＲＮＡは、Ｑｉａｇｅｎ社（カリフォルニア州、バレンシア）からインビボグレードのものを購入し、アニーリング後ＨＰＬＣで精製した。一本鎖ｓｉＲＮＡの量は、λ＝２６０ｎｍにおけるナトリウム塩の形での消衰係数の計算値３５．０μｇ／ＯＤに基づき、分光測定により求めた。二本の鎖がアニールされる時は、約１０％の淡色効果が観測された。従って、二本鎖型の定量には消衰係数を１０％低下させた。ｓｉＲＮＡの内毒素レベルは通常０．００２４ＥＵ／ｍｇ以下であった。
【０２７１】
ペプチド合成
ペプチドは固相Ｆｍｏｃ法により、Ｒａｉｎｉｎ社シンフォニー（Ｓｙｍｐｈｏｎｙ）合成装置を用いてＣＬＥＡＲアミド樹脂上に合成した。５当量のＨＣＴＵ及びＦｍｏｃアミノ酸を用い、過剰のＮ−メチルモルフォリンと共に４０分間カップリングを行った。このペプチド樹脂を２０％ピペリジンのＤＭＦ溶液で１０分間２回の処理を行い、Ｆｍｏｃを除去した。全ペプチドの反応が完了した時点で、Ｆｍｏｃ基をピペリジンで除去し、ＤＭＦで十分に洗浄を行った。ペプチド樹脂のＮ末端に、３．０当量の３−マレイミドプロピオン酸及びＨＣＴＵを６当量のＮ−メチルモルフォリンの存在下でカップリングすることにより、マレイミド変性ペプチドを調製した。カップリングの進み具合はカイザーテストでモニターした。２．５％の水と２．５のトリイソプロピルシランを含有するＴＦＡ１０ｍＬを添加し、続いて室温で２時間ゆるやかに撹拌することによりペプチドを樹脂から開裂させた。得られた粗ペプチドはエーテルで倍散し、続いてろ過により回収した。粗生成物をＭｉｌｌｉｐｏｒｅ水に溶解し、凍結乾燥により乾固した。粗ペプチドを０．０５％のＴＦＡを含有する水１５ｍＬと酢酸３ｍＬへ投入し、５ｍＬの注入ループを通して流速５ｍＬ／分でＺｏｒｂａｘ ＲＸ−Ｃ８逆相カラム（内径２２ｍｍ×２５０ｍｍ、粒子径５μｍ）にローディングした。精製は、溶媒Ａを０．０５％ＴＦＡ含有水とし、溶媒Ｂを０．０５％ＴＦＡ含有アセトニトリルとした場合、０．１％Ｂ／分の直線ＡＢ勾配を流すことで達成した。精製ペプチドはＨＰＬＣ及びＥＳＭＳによって分析した。
【０２７２】
フローサイトメトリ
蛍光活性セルソーティング（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）（ＦＡＣＳ）分析は、Ｂｅｃｋｍａｎ社のＣｏｕｌｔｅｒ ＦＣ５００セルアナライザー（カリフォルニア州、フラートン）で行った。装置は、用いた蛍光プローブ（ｓｉＲＮＡにはＦＡＭ又はＣｙ５、ＣＤ１４にはＦＩＴＣ及びＰＥ）に合わせて調節した。細胞生存率及び細胞毒性の指標として、ヨウ化プロピジウム（Ｆｌｕｋａ社、セントルイス）及びアネキシンＶ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社、ミネアポリス）を用いた。工程順のプロトコルを簡単に以下に示す。
（ａ）ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体に曝露後、細胞を少なくとも３時間インキュベートした。
（ｂ）２００μｌのＰＢＳで細胞を洗浄する。
（ｃ）１５μｌのＴＥによって細胞を脱離し、３７℃で温置する。
（ｄ）３０μｌのＦＡＣＳ溶液（０．５％ＢＳＡ及び０．１％アジ化ナトリウム含有ＰＢＳ）が入った５つのウェル中で細胞を再懸濁する。
（ｅ）５つのウェルの溶液を一つのチューブにまとめる。
（ｆ）５μｌのＰＩ（ヨウ化プロピジウム）各チューブへ加える。
（ｇ）蛍光活性セルソーティング（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）（ＦＡＣＳ）により、製造元の説明書に従って細胞を分析する。
【０２７３】
ｓｉＲＮＡ取り込みの分析については、細胞をＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理し（付着細胞のみ）、続いてフローサイトメトリで分析した。上述のＢＡで表されるｓｉＲＮＡの取り込みも、細胞内のＣｙ５又はＦＩＴＣの蛍光強度によって測定し、そしてヨウ化プロピジウム又はアネキシンＶ−ＰＥの添加によって細胞生存率を評価した。細胞取り込みを蛍光標識ｓｉＲＮＡの膜への挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。
【０２７４】
実施例１４
典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドの欠失解析
初代マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）の細胞取り込みアッセイをインビトロで行い、完全長型と切断型のポリペプチドＰＮ７３の細胞内への進入効率を調べた。培養液中のＦＩＴＣ標識ペプチドを受けとった細胞数はフローサイトメトリで測定した。ペプチドの細胞取り込み率は培養液中の全細胞数に対する割合で表した。さらに、細胞内のＦＩＴＣ標識ペプチド量は平均蛍光強度（ＭＦＩ）を用いて評価した。ＭＦＩは細胞内のＦＩＴＣ標識ペプチド量と正の相関関係があり、相対的に高いＭＦＩ値は高い細胞内ＦＩＴＣ標識ペプチド量と相関している。ペプチドは０．６３μＭ、２．５μＭ、及び１０μＭの濃度で評価し、ＰＮ７６８は２μＭ、１０μＭ、及び５０μＭでテストした。
【０２７５】
完全長型と切断型のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３を、トランスフェクションの前日に細胞に曝露した。ＦＩＴＣ標識ペプチドはＯｐｔｉ−ＭＥＭ（登録商標）培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中で室温で約５分間希釈してから細胞へ添加した。細胞は３時間かけてトランスフェクトして、ＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理後、フローサイトメトリで分析した。細胞生存率を上述のようにして測定した。細胞取り込みを膜挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。
【０２７６】
この細胞取り込み分析において、完全長型ＦＩＴＣ標識ＰＮ７３ペプチド（ＰＮ６９０）は、テストしたすべての濃度において（１０μＭの結果を表２０中「ペプチド細胞取り込み率（％）」の列に示す）ほぼ１００％の細胞取り込みを達成した。残りの切断型ＰＮ７３は、５０μＭの濃度が必要であったＰＮ７６８を除いて、１０μＭの濃度においてＰＮ６９０と同等の細胞取り込み率（カッコ内の数値）を達成し、これはＰＮ７３のＮ末端残基はペプチドが細胞内へ進入する能力にとって必要ではないことを示唆している。ペプチドの細胞取り込みには、ＰＮ７６８として示すＰＮ７３の５塩基分のＣ末端残基で十分である。切断型ＰＮ７３は、０．６３μＭにおいてペプチドの長さに比例して細胞取り込み活性の低下を示した。すなわち、０．６３μＭの濃度でテストされたペプチドを全体的に見ると、ＰＮ７３ペプチドの長さが減少するとその細胞取り込み活性も低下し、従って、ペプチドの細胞取り込み活性は投与量に依存することが示唆された。
【０２７７】
表２０に細胞取り込みと標的遺伝子ノックダウン（ＫＤ）のデータをまとめた。
【０２７８】
【表２０】
【０２７９】
表２０より、欠失したＰＮ７３のＮ末端部（ＰＮ３６１参照）がｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を５０％低下させ、またＣ末端を除くことで（ＰＮ３６０参照）ｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性が低下したことが分かる。これらのデータは、典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３のＣ末端領域が、ペプチドのヌクレオチド細胞取り込み活性に寄与していることを示している。
【０２８０】
本発明のｓｉＲＮＡ／ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド化合物による標的遺伝子発現の有効なノックダウンを実証した。具体的には、ｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物によるヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子の発現を調節する能力を評価した。ｈＴＮＦ−α遺伝子は、ヒトやその他の哺乳類の対象中で過剰発現すると関節リウマチ（ＲＡ）の発症と進行を媒介することが示唆されているため、これを標的とすることは重要である。
【０２８１】
ヒト単球をモデルシステムとして用いて、ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体のｈＴＮＦ−α遺伝子発現に対する影響を測定した。ＱｎｅｇはランダムｓｉＲＮＡ配列を表し、ネガティブコントロールとした。観察されたＱｎｅｇによるノックダウン活性を１００％（遺伝子発現レベル１００％）の基準とし、以下の各ｓｉＲＮＡ、Ａ１９Ｓ２１、２１／２１、及びＬＣ２０のノックダウン活性はこのネガティブコントロールに対する相対パーセントで表した。Ａ１９Ｓ２１、２１／２１、及びＬＣ２０はｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡである。典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドであるＰＮ６４３（完全長型ＰＮ７３からＣ末端標識を取り除いたもの）、ＰＮ６９０（Ｃ末端ＦＩＴＣ標識付き完全長型ＰＮ７３）、並びに欠失系ＰＮ６６０，ＰＮ７３５、ＰＮ６５４及びＰＮ７０８からのＰＮ７３の切断型を上で挙げたｓｉＲＮＡと複合体化させ、各ｓｉＲＮＡがヒト単球中ｈＴＮＦ−α遺伝子の発現レベルを低下させる能力に対するこれらポリペプチドの影響を調べた。典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３の完全長型及び切断型のノックダウン活性を上の表２０にまとめる。「ＫＤ」の列の「＋」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して８０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが２０％低下）を有していたことを意味する。「＋／−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して約９０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが１０％低下）を有していたことを意味する。最後に「−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇネガティブコントロールと比較して有意なノックダウン活性を有していなかったことを意味する。
【０２８２】
健康なヒトの血液をＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社（カリフォルニア州）から購入し、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｇｕｅ Ｐｌｕｓ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）の勾配を用いて末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液から分離した。次にＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ社の磁気マイクロビーズを用い、ヒト単球をＰＢＭＣ分画から分離した。単離したヒト単球は、４ｍＭのグルタミン、１０％ＦＢＳ、１×非必須アミノ酸、及び１×ペニシリン−ストレプトマイシンを添加したＩＭＤＭ中に再懸濁し、使用するまで４℃で保存した。
【０２８３】
９６ウェル平底プレートを使い、ＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中にヒト単球を１００Ｋ／ウェル／１００μｌで播種した。典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、２０ｎＭのｓｉＲＮＡとモル比１：５にてＯｐｔｉＭＥＭ培地中室温で５分間混合した。このインキュベーションの最後にＦＢＳをこの混合物へ添加し（終濃度３％）、この混合物５０μｌを細胞へ添加した。細胞は３７℃で３時間温置した。温置の後、細胞をＶ底プレートへ移し、１５００ｒｐｍで５分間かけてペレット化した。細胞を増殖培地（グルタミン、非必須アミノ酸、及びペニシリン−ストレプトマイシンを含むＩＭＤＭ）中へ再懸濁した。一晩のインキュベーションの後、単球に１ｎｇ／ｍｌのＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社）を適用して３時間刺激し、ＴＮＦ−α発現レベルを増加させた。ＬＰＳの導入後、ｍＲＮＡ定量のために細胞を上述のように回収し、上清はタンパク質定量が必要な場合は保存した。
【０２８４】
ｍＲＮＡの測定は、Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社（カリフォルニア州）の分岐ＤＮＡ技術を用いて製造者の仕様に従って行った。細胞中のｍＲＮＡレベルを定量するために、ハウスキーピング遺伝子（ｃｙｐＢ）及び標的遺伝子（ＴＮＦ−α）のｍＲＮＡの両方を測定し、ＴＮＦ−αの読み取りをｃｙｐＢに対して標準化して相対発光単位を得た。
【０２８５】
全体として、ＰＮ６４３（ＦＩＴＣ標識なし完全長型ＰＮ７３）及びＰＮ６９０（ＦＩＴＣ標識完全長型ＰＮ７３）は、「ＫＤ」列の「＋」（結果を表２０に示す）が示すように、テストしたすべてのｓｉＲＮＡにおいて、同等のｓｉＲＮＡノックダウン活性を有していた。さらに、ＰＮ６６０は、テストしたすべてのｓｉＲＮＡにおいてＰＮ６４３及びＰＮ６９０と同等のｓｉＲＮＡノックダウン活性を有しており、このことはＰＮ７３の最もＮ末端側の９残基を除いても、ｓｉＲＮＡが媒介する標的ＴＮＦ−αｍＲＮＡのノックダウン活性に影響がないことを示唆している。ＰＮ６５４は、Ａ１９Ｓ２１及び２１／２１の両ｓｉＲＮＡに対して中程度のノックダウン活性を示したが、ＬＣ２０ｓｉＲＮＡに対してはノックダウン活性を示さなかった（ノックダウン活性は、ノックダウン活性の列中に「±」として示されている）。しかし、ＰＮ７０８又はＰＮ７３５と複合体化されたｓｉＲＮＡは、いずれのｓｉＲＮＡについても観測可能なノックダウン活性を示さなかった。
【０２８６】
実施例１５
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７０８
上述のように、細胞取り込み分析は、ペプチドと化合物化されたＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを受け入れる細胞の数を測定する。ｓｉＲＮＡの細胞取り込みはフローサイトメトリ（詳細は実施例２を参照）で評価した。取り込み率は、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含有する細胞の数を培養液中のトランスフェクトされた細胞及びされていない細胞を合わせた全細胞数で割って計算したパーセントで表した。平均蛍光強度（ＭＦＩ）はフローサイトメトリで測定し、これにより細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを定量した。ＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの量と正の相関関係があり、従って高いＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの数が多いことを示す。
【０２８７】
この例では、ＰＮ６４３（完全長型ＰＮ７３からＣ末端標識を取り除いたもの）、ＰＮ６９０（Ｃ末端ＦＩＴＣ標識を有する完全長型ＰＮ７３）、及びＰＮ７０８（１５塩基長、ＰＮ７３のＮ末端残基２１個を欠失して誘導）は５μＭ、１０μＭ、２０μＭ、及び４０μＭでテストした。ＰＮ６４３及びＰＮ６９０は２．５μＭでもテストし、ＰＮ６９０はさらに１．２５μＭでもテストした。ＰＮ６４３及びＰＮ７０８の両方は８０μＭでもテストした。
【０２８８】
表２１に示すように、ＦＩＴＣ標識なしのＰＮ７３（ＰＮ６４３）ペプチドは１０μＭの濃度でほぼ１００％のｓｉＲＮＡの取り込みを達成した。しかし、ＰＮ７３をＦＩＴＣで標識すると（ＰＮ６９０）、最大細胞取り込み活性は約７０％まで低下した。ＰＮ７０８は、ｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性が投与量に依存して増加することを示した。ＰＮ７０８は、８０μＭでｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性の最大である９５％を達成した。完全長型ＰＮ７３ペプチドでは、ペプチド濃度の上昇に伴って細胞生存率が減少した。対照的に、ＰＮ７０８ペプチドとインキュベートした細胞は、すべてのテスト濃度のペプチド存在下において９０％超の生存率を維持した。この例では、切断型ペプチドＰＮ７０８は、完全長型ＰＮ７３（ＰＮ６９０）と比較して細胞内へ送達されたＣｙ５−ｓｉＲＮＡの量を約２倍に増加させた。
【０２８９】
【表２１】
【０２９０】
ポリペプチドＰＮ７０８は、ｓｉＲＮＡが媒介する標的遺伝子発現低下への影響によってその特性を評価した。ＰＮ７０８ペプチドのＣ末端ＦＩＴＣ標識を除いてから、ｓｉＲＮＡと複合体化した時のその標的遺伝子発現低下を促進する能力を評価した。ＦＩＴＣ標識が存在しない場合の切断型の典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドは、ＰＮ７６６とした（実施例１２の表１９参照）。ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体によるヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子発現の調節能を評価した（プロトコルの詳細は実施例３参照）。この例では、ランダムｓｉＲＮＡ配列であるＱｎｅｇをネガティブコントロールとし、ＬＣ２０及びＬＣ１７のｓｉＲＮＡを用いてヒト単球中のｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とした。テストしたｓｉＲＮＡのペプチドに対するモル比は１：５、１：１０、１：２５、１：５０、１：７５、及び１：１００であった。ＬＣ２０、ＬＣ１７共に２０ｎＭの濃度で使用した。
【０２９１】
ノックダウンの結果は、ＬＣ２０／ＰＮ７６６及びＬＣ１７／ＰＮ７６６の両方のｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体共に、１：５、１：１０、及び１：２５においてｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのレベルがｓｉＲＮＡネガティブコントロールＱｎｅｇの約７０乃至８０％まで低下した（すなわち、ネガティブコントロールＱｎｅｇに比べてｍＲＮＡのレベルが２０乃至３０％低下）。ｓｉＲＮＡ／ペプチド比が１：５０、１：７５、及び１：１００の場合は、コントロールＱｎｅｇと比較してｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのレベルに有意の影響はなかった。ＰＮ７６６ペプチド存在下においてヒト単球に細胞毒性は見られなかった。
【０２９２】
実施例１６
ペプチド媒介によるｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性
ｓｉＲＮＡの細胞取り込み分析及びＭＦＩ測定を、実施例２及び３で既述のように行った。データを表２２にまとめた。各ペプチドは、０．６３μＭ、１．２５μＭ、２．５μＭ、及び５μＭの濃度でテストした。
【０２９３】
【表２２】
【０２９４】
実施例１７
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド
表２３に示すポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）中へのｓｉＲＮＡ送達能についてスクリーニングした。
【０２９５】
【表２３】
【０２９６】
ｓｉＲＮＡと化合物化された表２３に挙げたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性。各ポリペプチドのｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性データ、平均蛍光強度（ＭＦＩ）測定値、及び細胞生存率データを表２４にまとめた。「処理」の列にグレーでハイライトしたものがｓｉＲＮＡ細胞取り込み率７５％以上を達成したポリペプチドである。これらのハイライトした各ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体の具体的なｓｉＲＮＡ細胞取り込み率も、「ｓｉＲＮＡ細胞取り込み率（％）」の列中にグレーでハイライトされている。
【０２９７】
ＬＣ２０はヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）ｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡとして使用されるオリゴであり、以下のリボヌクレオチド配列で表される。
（配列番号９６）
ＵＡＧＧＧＵＣＧＧＡＡＣＣＣＡＡＧＣＵＵＡ
【０２９８】
細胞によるｓｉＲＮＡの取り込みはフローサイトメトリ（詳細は実施例２参照）によって評価した。取り込み率は、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含有する細胞の数を培養液中のトランスフェクトされた細胞及びされていない細胞を合わせた全細胞数で割って計算したパーセントで表した。平均蛍光強度（ＭＦＩ）はフローサイトメトリで測定し、これにより細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを定量した。ＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの量と正の相関関係があり、従って高いＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの数が多いことを示す。
【０２９９】
データによると、ＰＮ６８０、ＰＮ６８１、ＰＮ７０９、ＰＮ７６０、ＰＮ７５９、及びＰＮ６８２が、ｓｉＲＮＡと複合体化されると細胞内へｓｉＲＮＡを送達する。表２３に示したポリペプチドのスクリーニングの結果を表２４に示す。
【０３００】
【表２４】
【０３０１】
表２４の「ｓｉＲＮＡ細胞取り込み率（％）」の列に示すように、「未処理」ネガティブコントロールはｓｉＲＮＡの細胞取り込みが見られず、一方ポジティブコントロールのペプチドは９５％のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を達成した。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのＰＮ６８０、ＰＮ６８１、ＰＮ７０９、ＰＮ７６０、ＰＮ７５９、又はＰＮ６８２と複合体化したｓｉＲＮＡのＣｙ５抱合ＬＣ２０は、７５％を超えるかそれ以上のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を達成した。ポリペプチドＰＮ６９４及びＰＮ７１４は、それぞれ５４％及び４３％という中程度のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を示した。ポリペプチドＰＮ６６５及びＰＮ７３４は、有意のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を示さなかった（５％未満）。
【０３０２】
ポリペプチドはさらにそのｓｉＲＮＡを細胞中へトランスフェクトする能力を、平均蛍光強度（ＭＦＩ）を分析することによって評価した。細胞取り込み分析がＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含む細胞のパーセントを定量したのに対し、ＭＦＩ測定では細胞内へ進入したＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの相対平均量を定量した。表２４の「Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡのＭＦＩ」の列に示すように、ポジティブコントロールペプチドＰＮ６４３によるＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの送達では、約７単位のＭＦＩが達成された。予想通り、「未処理」のネガティブコントロールでは測定可能なＭＦＩを示さなかった。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６６５に対してはＭＦＩの測定は行わなかった。ＰＮ７４３、ＰＮ６９４、及びＰＮ７１４のＭＦＩ測定値はポジティブコントロールよりも著しく低かった。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０、ＰＮ７０９、及びＰＮ６８２のＭＦＩ測定値はＰＮ６４３のポジティブコントロールと同等であり、一方ＰＮ６８１のＭＦＩはポジティブコントロールの２倍であった。ＰＮ７６０及びＰＮ７５９のＭＦＩ測定値は、ポジティブコントロールと比べてそれぞれ約１３倍及び６倍高かった。
【０３０３】
以下のプロトコルを用いて、表２３に挙げたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドをテストした。完全培地中でトランスフェクションを行う前日に、マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）を２４ウェルプレートの各ウェルに約８０，０００個ずつ播種した。ポジティブコントロールを除く各送達ペプチドを、０．５μＭのＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの存在下で、０．６３μＭ、２．５μＭ、１０μＭ、及び４０μＭの濃度でテストした。ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体については、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡとペプチドを別々にＯｐｔｉ−ＭＥＭ（登録商標）培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）により、最終濃度の２倍まで希釈した。等容量のｓｉＲＮＡとペプチドを混合し、室温で５分間複合体化させた。このｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で洗浄済みの細胞へ添加した。細胞は３７℃、５％ＣＯ２下で３時間トランスフェクトさせた。細胞をＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理後フローサイトメトリで分析した。ｓｉＲＮＡの細胞取り込み量は細胞内のＣｙ５の蛍光強度により測定した。細胞生存率は、ヨウ化プロピジウム取り込み又はアネキシンＶ−ＰＥ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）染色法を用いて測定した。標識ｓｉＲＮＡ（又は蛍光標識ペプチド）の細胞による取り込みを膜挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。トリパンブルー（Ｓｉｇｍａ社）を最終濃度０．０４％となるように細胞に添加して再度フローサイトメトリにかけ、蛍光が細胞膜に集中していることを示唆する蛍光強度の変化が見られるかどうかを調べた。
【０３０４】
実施例１８
ポリペプチドを有するｓｉＲＮＡのノックダウン活性
ヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子の発現を調節するｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物の能力を評価した。
【０３０５】
ヒト単球をモデルシステムとして用い、ｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物のｈＴＮＦ−α遺伝子発現に対する影響を測定した。ＱｎｅｇはランダムｓｉＲＮＡ配列を表し、ネガティブコントロールとして機能した。観察されたＱｎｅｇによるノックダウン活性を１００％（遺伝子発現レベル１００％）の基準とし、以下の各ｓｉＲＮＡ、Ａ１９Ｓ２１ ＭＤ８、２１／２１ ＭＤ８、及びＬＣ２０のノックダウン活性はこのネガティブコントロールに対する相対パーセントで表した。Ａ１９Ｓ２１ ＭＤ８、２１／２１ ＭＤ８、及びＬＣ２０はｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡである。
【０３０６】
ポリペプチドＰＮ６０２は前述の実施例において使用されたポジティブコントロールをアセチル化したものであり、この例においては、ｓｉＲＮＡのヒト単球への有効な送達及びｓｉＲＮＡの媒介によるｈＴＮＦ−αｍＲＮＡレベルの許容ノックダウン活性の両方についてのポジティブコントロールとして使用した。
【０３０７】
データが示すのは、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０がｓｉＲＮＡを細胞内へ送達し、ｓｉＲＮＡ媒介による有効なジーンサイレンシングを可能とすることである。ＰＮ６０２、ＰＮ６８０、及びＰＮ６８１のノックダウン活性を表２５に示す。「＋」のマークは、ペプチド／ｓｉＲＮＡ複合体がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して８０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが２０％低下）を有していたことを意味する。「＋／−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ複合体がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して約９０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが１０％低下）を有していたことを意味する。最後に「−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇネガティブコントロールと比較して有意なノックダウン活性を有していなかったことを意味する。
【０３０８】
【表２５】
【０３０９】
表２５の結果は、ポジティブコントロールであるポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６０２と１：５及び１：１０の比率で複合体化された三種類のｓｉＲＮＡはすべて、同じポリペプチドと複合体化されたＱｎｅｇネガティブコントロールと比較してｈＴＮＦ−α遺伝子発現のレベルを中程度に低下させたことを示している。しかし、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８１と１：５及び１：１０の比率で複合体化された同じｓｉＲＮＡは、ＱｎｅｇネガティブコントロールであるｓｉＲＮＡ／ＰＮ６８１複合体と比べてほとんど乃至全くノックダウン活性を示さなかった。対照的に、ｈＴＮＦ−αに特異的なｓｉＲＮＡのいずれかと１：５の比率で複合体化されたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０は、Ｑｎｅｇ／ＰＮ６８０コントロール複合体と比べて有意なｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのノックダウン活性を示した。さらに、１：１０の比率のＬＣ２０／ＰＮ６８０複合体も、Ｑｎｅｇ／ＰＮ６８０コントロール複合体と比べて有意なノックダウン活性を示した。
【０３１０】
健康なヒトの血液をＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社（カリフォルニア州）から購入し、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｇｕｅ Ｐｌｕｓ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）の勾配を用いて末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液から分離した。次にＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ社の磁気マイクロビーズを用い、ヒト単球をＰＢＭＣ分画から分離した。単離したヒト単球は、４ｍＭのグルタミン、１０％ＦＢＳ、１×非必須アミノ酸、及び１×ペニシリン−ストレプトマイシン（添加したＩＭＤＭ中に再懸濁し、使用するまで４℃で保存した。
【０３１１】
９６ウェル平底プレートを使い、ＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中にヒト単球を１０００００個／ウェル／１００μｌで播種した。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、２０ｎＭのｓｉＲＮＡとモル比１：５又は１：１０にてＯｐｔｉＭＥＭ培地中室温で５分間混合した。このインキュベーションの最後にＦＢＳをこの混合物へ添加し（終濃度３％）、この混合物５０μｌを細胞へ添加した。細胞は３７℃で３時間温置した。温置の後、細胞をＶ底プレートへ移し、１５００ｒｐｍで５分間かけてペレット化した。細胞を増殖培地（グルタミン、非必須アミノ酸、及びペニシリン−ストレプトマイシンを含むＩＭＤＭ）中へ再懸濁した。一晩のインキュベーションの後、単球に１ｎｇ／ｍｌのＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社）を適用して３時間刺激し、ＴＮＦ−α発現レベルを増加させた。ＬＰＳの導入後、ｍＲＮＡ定量のために細胞を上述のように回収し、上清はタンパク質定量が必要な場合は保存した。
【０３１２】
ｍＲＮＡの測定は、Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社（カリフォルニア州）の分岐ＤＮＡ技術を用いて製造元の説明書に従って行った。細胞中のｍＲＮＡレベルを定量するために、ハウスキーピング遺伝子（ｃｙｐＢ）及び標的遺伝子（ＴＮＦ−α）ｍＲＮＡの両方を測定し、ＴＮＦ−αの読み取りをｃｙｐＢに対して標準化して相対発光単位を得た。
【図面の簡単な説明】
【０３１３】
【図１】様々なｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８濃度及び窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における３本の棒グラフにおいて、Ｇ１４９８濃度は左から１００μｇ／ｍｌ、５０μｇ／ｍｌ、及び１０μｇ／ｍｌであった。Ｎ／Ｐ比０．２及び０．５において、Ｇ１４９８濃度が１０μｇ／ｍｌの時の粒子は非常に小さかった。
【図２】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後直ちに取得した。
【図３】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後３０分経過後に取得した。
【図４】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後６０分経過後に取得した。
【図５】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後２４時間経過後に取得した。
【図６】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８濃度１００μｇ／ｍｌにおける、様々なｐＨ値に対するＧ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。
【図７】塩化ナトリウム濃度を増加させた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。
【図８】様々なＮ／Ｐ比及び成分添加の順番における、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はｓｉＲＮＡを先に加えて得られたもの、右はペプチドを先に加えて得られたものであった。
【図９】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子の透過電子顕微鏡写真である。長さの指標記号は２００ｎｍを表す。
【図１０】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子の透過電子顕微鏡写真である。長さの指標記号は２００ｎｍを表す。
【図１１】ｓｉＲＮＡ Ｉｎｍ−４とペプチドＰＮ１８３及びＰＮ９３９との縮合体粒子を含む組成物の鼻腔内投与による、モデルマウスにおけるＬＰＳ刺激によるＴＦＮ−α発現（ｐｇ／ｍｌ）のノックダウンアッセイの結果を示す図である。一番左の棒グラフが緩衝液による対照実験、次がＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータ、その右がグルタルアルデヒド（Ｇ）で架橋したＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータである。プラセボはｓｉＲＮＡを含んでおらず、Ｑｎｅｇは不活性ｓｉＲＮＡを含む。
【図１２】Ｌａｃ−ｚ ｓｉＲＮＡとペプチドＰＮ１８３及び異なる第二のペプチドとの縮合体を用いた、ラット膠肉腫線維芽細胞９Ｌ／ＬａｃＺにおけるｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を示す図である。一番左の棒グラフがＨｉＰｅｒＦｅｃｔ（商標）（Ｑｉａｇｅｎ社、カリフォルニア州、バレンシア）を用いた比較データであり、それに続くのが本発明の様々な化合物によるデータである。Ｎ／Ｐ比は、ＰＮ１８３が０．７５、第二のペプチドが０．３であった。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＲＮＡ干渉の分野及びＲＮＡ治療送達の分野全般に関する。より詳細には、本発明はペプチドリボ核酸縮合体粒子の化合物及び組成物、並びにそれらの薬物への使用及び治療法としての送達への使用に関する。本発明は、哺乳動物内での遺伝子発現の遺伝子特異的抑制のためのＲＮＡ干渉における、ペプチドリボ核酸縮合化合物の使用方法全般に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）とは、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）と呼ばれる二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）が媒介する、配列特異的な転写後ジーンサイレンシングの方法のことである。Ｆｉｒｅら，Ｎａｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．３９１，ｐ．８０６, １９９８、及びＨａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、を参照のこと。ＲＮＡｉは種々の動植物に共有されており、進化の過程で保存されてきた異質遺伝子の発現に対する細胞の防御メカニズムであると考えられている。Ｆｉｒｅら，Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．３５８, １９９９、を参照のこと。
【０００３】
従って、ＲＮＡｉは、小さなノンコーディングＲＮＡを用いて遺伝子の発現をサイレンシングする、普遍的内在性メカニズムである。Ｄｙｋｘｈｏｏｒｎ，Ｄ．Ｍ． ａｎｄ Ｊ． Ｌｉｅｂｅｒｍａｎ，Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｍｅｄ． Ｅｎｇ．，Ｖｏｌ．８，ｐ．３７７−４０２, ２００６、を参照のこと。ＲＮＡｉは、細胞死、分化、及び発生に関与する重要な遺伝子を制御することができる。ＲＮＡｉはさらに、トランスポゾン及びウィルスによってコードされた侵入遺伝要素からゲノムを保護することもできる。ｓｉＲＮＡは細胞内に導入されると内在性のＲＮＡｉメカニズムと結びつき、高い特異性をもって相補的配列を含むｍＲＮＡの発現を阻害する。いかなる疾患原因遺伝子、及び細胞種又は組織も潜在的に標的となり得る。この技術は、遺伝子機能解析並びに創薬ターゲットの探索及び確認に急速に利用されてきている。ｓｉＲＮＡをインビボで細胞へ導入することには依然として重大な障害が伴うが、ＲＮＡｉの利用は治療の分野においても非常に有望である。
【０００４】
ＲＮＡｉのメカニズムは、また完全には解明されていないが、標的となるｍＲＮＡの開裂を介するものである。ＲＮＡｉ応答には、ＲＮＡ誘導性サイレンシング化合物（ＲＩＳＣ）として知られるエンドヌクレアーゼ化合物が関与しており、この複合体がｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な一本鎖ＲＮＡの開裂を媒介する。標的ＲＮＡの開裂は、ｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な領域の中央部で生じる（Ｅｌｂａｓｈｉｒら，Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．１８８, ２００１）。
【０００５】
ＲＮＡｉを行う一つの方法は、ｓｉＲＮＡを細胞内へ導入するか、又は細胞内で発現させることである。もう一つの方法は、ダイサーと呼ばれる内在性のリボヌクレアーゼＩＩＩ酵素を利用することである。ダイサーの一つの活性は、長鎖ｄｓＲＮＡをｓｉＲＮＡへ変換することである。Ｈａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、及びＢｅｒｓｔｅｉｎら，Ｎａｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．４０９，ｐ．３６３, ２００１、を参照のこと。ダイサーから誘導されたｓｉＲＮＡは通常、全体の長さが約２１から２３ヌクレオチドであり、約１９塩基対の二本鎖部分を有する。Ｈａｍｉｌｔｏｎら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２８６，ｐ．９５０−９５１, １９９９、及びＥｌｂａｓｈｉｒら，Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．，Ｖｏｌ．１５，ｐ．１８８, ２００１、を参照のこと。実質的に、長鎖ｄｓＲＮＡはｓｉＲＮＡの前駆体として細胞内に導入することができる。
【０００６】
いろいろな治療の中でとりわけＲＮＡｉ治療、アンチセンス治療、及び遺伝子治療の開発により、活性な核酸剤を細胞内へ導入するための有効な方法に対する需要が生じてきた。一般的に、核酸は細胞又は血漿内で非常に短い時間しか安定ではない。しかし、核酸剤は、細胞送達するのに十分に小さい粒子となり得る縮合化合物へと凝集するか又は結合することで安定化させることができる。
【０００７】
最終的には治療法としての細胞間送達のために活性核酸剤を含有する小粒子を含む化合物、及びそのような化合物を作製する方法が求められている。特に、細胞へ二本鎖ＲＮＡを送達してＲＮＡｉ応答を発生させるための化合物及び方法が求められている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−リボ核酸化合物及び組成物の範囲を提供することにより、本技術分野におけるこれらの及びその他の障害を克服する。詳細には、本発明は、ＲＮＡ干渉を通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、１又はそれ以上のペプチドと１又はそれ以上のリボ核酸剤とが縮合した安定な小粒子を含む化合物、並びに該化合物の製造方法を提供する。本概要は、図面の説明、本発明の詳細な説明、並びに添付の実施例、請求項、及び図面と合わせて、開示された本発明を包含する。
【０００９】
ある局面では、本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−ＲＮＡ化合物及び組成物を提供し、その化合物にはＲＮＡｉを通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、ＲＮＡとペプチドが縮合した安定な小粒子を含有する化合物を含む。本発明の化合物は、一般に合成ペプチドと核酸の様々な混合物又は縮合体として提供される。
【００１０】
他の局面では、本発明の縮合化合物及び組成物は、ペプチド−ＲＮＡ化合物から成る安定小粒子を含む。ある態様では、これらの化合物及び粒子は架橋することによってさらに安定化することができる。他の態様では、本発明の化合物及び組成物は送達促進のためにポリエチレングリコールなどのステルス剤（ｓｔｅａｌｔｈｉｎｇ ａｇｅｎｔ）又は表面改質剤を含む。
【００１１】
さらなる局面では、本発明の化合物は１又はそれ以上のリボ核酸と１又はそれ以上のペプチド成分との縮合化合物を含む。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を保持することができる。
【００１２】
ある局面では、本発明の縮合化合物は均一粒子を形成することができる。ある態様では、ペプチド−核酸化合物球状粒子の直径は、平均が１０００ナノメートル（ｎｍ）未満の狭い分布をとることができる。
【００１３】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は、独自の多成分製剤を提供することができる。ある態様では、インビボでの治療のために、化合物は細胞への送達のための担体若しくは運搬体、又は様々な送達マトリックスといった薬物送達のためのその他の薬剤と組み合わせることができる。
【００１４】
ある態様において、化合物は、少なくとも一つのリボ核酸剤を水性溶液へ溶解し、それから少なくとも一つのペプチド成分をその水性溶液へ添加して粒径１０００ｎｍ未満の粒子を縮合し、その後粒子の質量を増加させる第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水性溶液に添加することにより、１又はそれ以上のリボ核酸及び１又はそれ以上のペプチドから提供される。
【００１５】
さらなる態様において、化合物は、第一のペプチド成分を水性溶液に溶解し、そしてリボ核酸剤をその水性溶液へ添加して粒径１０００ｎｍ未満の粒子を縮合し、その後粒子の質量を増加させる第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水性溶液に添加することにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤及び１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００１６】
本発明の一つの局面では、ペプチド成分はその核酸への相対的親和性に基づいて選択される。ペプチド成分は、該ペプチド成分の核酸への結合度を変化できるように選択することができる。
【００１７】
ある局面では、リボ核酸−ペプチド縮合化合物は可逆的に結合させることができる。リボ核酸と一定量の正に帯電したリボ核酸結合性ペプチドから成る化合物は、細胞外生体環境において十分に安定となることができ、細胞内エンドソームとの接触によってリボ核酸を放出する。この放出によってＲＮＡｉ応答を誘起することができる。
【００１８】
さらなる局面では、ペプチド−リボ核酸化合物を安定化させる構造と方法が提供され、その構造及び方法には化合物内でのリボ核酸結合性ペプチドの架橋が含まれる。ペプチド−リボ核酸化合物を生命体内部での分解から保護する方法としては、化合物内でペプチドの少なくとも一部を架橋することが含まれる。
【００１９】
本発明はさらに、この化合物の、薬物としての使用、並びに動物及びヒトのＲＮＡｉ治療に用いるための薬物の製造において提供する。
【課題を解決するための手段】
【００２０】
本発明は、ＲＮＡ干渉及びその他の治療方法に使用するための様々なペプチド−ＲＮＡ化合物及び組成物を提供する。さらに詳細には、本発明は、ＲＮＡｉを通して標的遺伝子の発現を阻害する活性を有する、ＲＮＡとペプチドとが縮合した安定な小粒子を含有する化合物を含む。
【００２１】
本発明の化合物は、一般的に合成ペプチドと核酸の混合物又は縮合体として提供される。広範囲にわたる様々なペプチドを使用して化合物を形成することができる。ペプチドの質量は通常、約１２０ｋＤａ未満、又は約６０ｋＤａ未満、又は約３０ｋＤａ未満である。化合物のペプチドは粘膜透過修飾因子又は粘膜透過促進因子であってよい。
【００２２】
縮合化合物は、ペプチド−ＲＮＡ複合体の安定な小粒子を含む。これらの化合物及び粒子は、様々な試薬で架橋することによりさらに安定化することができる。ある態様において、本発明の化合物及び組成物は、送達促進のためにポリエチレングリコールなどのステルス剤（ｓｔｅａｌｔｈｉｎｇ ａｇｅｎｔ）又は表面改質剤を含む。
【００２３】
本発明の化合物には、１又はそれ以上のリボ核酸及び１又はそれ以上のペプチド成分を含む縮合複合体が含まれる。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を持つことができる。リボ核酸及びインビボでの条件下でリボ核酸を安定化させるのに有効な量のリボ核酸結合性ペプチドから構成される安定なリボ核酸複合体が提供される。ペプチド−核酸化合物の成分の結合は一部イオン間力によるものであり、ファンデルワールス力又は水素結合など様々なその他の相互作用も伴う場合がある。
【００２４】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は均一な粒子を含むことができる。ペプチド−核酸化合物の球状粒子の直径は、平均が１０００ナノメートル（ｎｍ）未満の狭い分布をとることができる。球状粒子の直径は、１０００ナノメートル未満であってよく、約０．５乃至約４００ナノメートル、約１０乃至約３００ナノメートル、及び約４０乃至約１００ナノメートルであってもよい。安定粒子のゼータ電位の大きさは、約２０ミリボルト超又は約３０ミリボルト超であってよい。
【００２５】
本明細書で用いる“均一”という用語は化合物の粒子の大部分が狭い粒径分布を持つことを意味する。均一粒子の化合物において複数の粒径分布が生じていてもよい。一つの狭い粒径分布は、粒子径測定器の対時間相関係数の生データに基づく粒径分布グラフ中の一つのピークに相当する。均一な化合物は、少なくとも粒子の３０％を一つの狭い粒径分布内に有することが好ましい。
【００２６】
本発明のペプチド−核酸縮合化合物は、独自の多成分製剤を提供することができ、生体内治療のために、細胞への送達のための担体若しくは運搬体、又は様々な送達マトリックスといった薬物送達のためのその他の薬剤と組み合わせることができる。
【００２７】
本発明の化合物及び組成物は、薬理学的に許容される媒体内に分散させ、マトリックスと会合させ、又は細胞若しくは対象へ送達するための担体若しくは運搬体と会合させることができる。本発明の化合物又は粒子の分散体を含む溶液は、治療法としての送達のために提供することができる。
【００２８】
ペプチド成分
本発明の化合物に好適なペプチド成分は合成したものでもよく、又は自然若しくはその他の供給源に由来するものでもよい。
【００２９】
ペプチド成分は、２から約１０００個のアミノ酸の長さ、２から約６００個のアミノ酸の長さ、２から約６０個のアミノ酸の長さ、５から約３０個のアミノ酸の長さ、及び５から約２５個のアミノ酸の長さを含んでもよい。
【００３０】
ペプチド成分は複数の正の電荷を含んでよい。例えば、ペプチド成分は１から約１００個、５から約３０個、及び９から約１５個の正電荷を含んでよい。ペプチド成分の正電荷は正に帯電したリシン又はアルギニンの残基によって提供することができる。
【００３１】
広範囲にわたる様々なペプチドを使用することで、ペプチド−核酸化合物を形成することができる。ペプチド成分の質量は通常、約１２０ｋＤａ未満、又は約６０ｋＤａ未満、又は約３０ｋＤａ未満である。ペプチド成分のペプチドは、任意にポリアルキレンオキシド、ポリエチレンオキシド、ポリプロピレンオキシド、又はこれらの組み合わせなどのポリマと抱合体を形成するか又は誘導体化されてもよい。例えば、本発明の化合物のペプチド成分はポリエチレングリコール（ＰＥＧ）と共有結合により誘導体化されてよい。
【００３２】
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドの機能性ドメインは、ｓｉＮＡを細胞内へ送達する能力において有用である。このような機能性ドメインには、膜付着領域、膜融合領域、及びヌクレオチド結合領域が含まれる。膜付着は、典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドが細胞膜と結合する能力を表す。膜融合性は、細胞膜から脱離して細胞質内に進入する能力を表す。ペプチドの膜付着ドメイン及び膜融合ドメインは機構的に密接なつながりがあり（すなわち、ペプチドが細胞内へ入る能力）、従って実験的に区別することは難しいであろう。最後に、ヌクレオチド結合性は、ペプチドがヌクレオチドと結合する能力を表す。
【００３３】
化合物のペプチドは、粘膜などの障壁間の化合物の送達を促進することが知られている構造的特徴を含んでよい。送達を促進する特徴の例としては様々なタンパク質導入ドメインが挙げられる。ペプチド成分は粘膜透過修飾因子であってよい。
【００３４】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのタンパク質導入ドメインの例としては、
１．ＴＡＴタンパク質導入ドメイン（ＰＴＤ）（配列番号１）ＫＲＲＱＲＲＲ；
２．ペネトラチンＰＴＤ（配列番号２）ＲＱＩＫＩＷＦＱＮＲＲＭＫＷＫＫ；
３．ＶＰ２２ ＰＴＤ（配列番号３）ＤＡＡＴＡＴＲＧＲＳＡＡＳＲＰＴＥＲＰＲＡＰＡＲＳＡＳＲＰＲＲＰＶＤ；
４．カポジＦＧＦシグナル配列（配列番号４）ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ；及び（配列番号５）ＡＡＶＬＬＰＶＬＬＰＶＬＬＡＡＰ；
５．ヒトβ３インテグリンシグナル配列（配列番号６）ＶＴＶＬＡＬＧＡＬＡＧＶＧＶＧ；
６．ｇｐ４１融合配列（配列番号７）ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡ；
７．カイマンクロコディルス（ｃａｉｍａｎ ｃｒｏｃｏｄｙｌｕｓ）のＩｇ（ｖ）軽鎖（配列番号８）ＭＧＬＧＬＨＬＬＶＬＡＡＡＬＱＧＡ；
８．ｈＣＴ誘導性ペプチド（配列番号９）ＬＧＴＹＴＱＤＦＮＫＦＨＴＦＰＱＴＡＩＧＶＧＡＰ；
９．トランスポータン（配列番号１０）ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＫＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ；
１０．ロリゴマー（ｌｏｌｉｇｏｍｅｒ）（配列番号１１）ＴＰＰＫＫＫＲＫＶＥＤＰＫＫＫＫ；
１１．アルギニンペプチド（配列番号１２）ＲＲＲＲＲＲＲ；並びに
１２．両親媒性モデルペプチド（配列番号１３）ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ；
が挙げられる。
【００３５】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのウィルス融合ペプチド膜融合ドメインの例としては、
１．インフルエンザＨＡ２（配列番号１４）ＧＬＦＧＡＩＡＧＦＩＥＮＧＷＥＧ；
２．センダイＦ１（配列番号１５）ＦＦＧＡＶＩＧＴＩＡＬＧＶＡＴＡ；
３．呼吸器多核体ウィルスＦ１（配列番号１６）ＦＬＧＦＬＬＧＶＧＳＡＩＡＳＧＶ；
４．ＨＩＶ ｇｐ４１（配列番号１７）ＧＶＦＶＬＧＦＬＧＦＬＡＴＡＧＳ；及び
５．エボラＧＰ２（配列番号１８）ＧＡＡＩＧＬＡＷＩＰＹＦＧＰＡＡ；
が挙げられる
【００３６】
ある態様では、本発明の方法及び組成物の範囲内で、ポリペプチド−ｓｉＮＡ複合体の形成を促進し、及び／若しくはｓｉＮＡの送達を促進するＤＮＡ結合性ドメイン又はモチーフが組み込まれたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドが提供される。ここで言うＤＮＡ結合性ドメインの典型例としては、以下の表１に示すＤＮＡ結合性調節タンパク質及びその他のタンパク質に見られる、様々な「ジンクフィンガー」領域が挙げられる（Ｓｉｍｐｓｏｎら，Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．，２７８：２８０１１−２８０１８, ２００３、参照）。
【００３７】
【表１】
【００３８】
表１において、Ｓｐ１、Ｓｐ２、Ｓｐ３、Ｓｐ４、ＤｒｏｓＢｔｄ、ＤｒｏｓＳｐ、ＣｅＴ２２Ｃ８．５、及びＹ４ｐＢ１Ａ．４の配列は、本明細書ではそれぞれ配列番号１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、及び２６と定められる。
【００３９】
表１は、Ｃ−ｘ(２，４)−Ｃ−ｘ(１２)−Ｈ−ｘ(３)−Ｈ（配列番号２７）のモチーフパターンにより特徴付けられる二本鎖ＤＮＡ結合性保存ジンクフィンガーモチーフを示しており、それ自体を用いて本発明にかかるさらなるポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを選択して設計することができる。
【００４０】
本発明のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを構築するのに有用なＤＮＡ結合性ドメインの他の選択肢としては、例えばＨＩＶ Ｔａｔタンパク質配列の一部分が挙げられる。
【００４１】
本発明のある態様においては、前述の構造要素、ドメイン、又はモチーフのいずれかをｓｉＮＡの対象細胞への送達の促進を媒介する単一のポリペプチドへ組み入れることによって、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを構築することができる。例えば、ＴＡＴポリペプチドのタンパク質導入ドメインは、ＨＡ２と呼ばれるインフルエンザウィルスの赤血球凝集素タンパク質のＮ末端側の２０個のアミノ酸領域と融合してポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを作り出すことができる。
【００４２】
本発明の化合物は、１又はそれ以上のペプチド成分を含むことができる。ペプチド成分は、リボ核酸と結合して非共有結合によるペプチド−リボ核酸縮合化合物を形成するのに十分な正の電荷を保持することができる。ペプチド−核酸複合体の成分の結合は一部イオン間力によるが、ファンデルワールス力、水素結合、又は疎水性相互作用などのその他の様々な相互作用も伴う場合がある。複合体は水性相互作用又は高溶媒濃度領域を保持していてもよい。
【００４３】
リボ核酸及び生体内条件下でリボ核酸を安定化させるのに有効な量のリボ核酸結合性ペプチドを含む安定なペプチド−リボ核酸複合体が得られる。
【００４４】
本発明の化合物に有用なペプチドのいくつかの例を表２に示す。
【００４５】
【表２】
【００４６】
本発明の化合物に有用なペプチドのさらなる例は以下の実施例中で示す。
【００４７】
縮合化合物とその調製
本発明は、直径が約１０００ｎｍ未満、約０．５ｎｍから約４００ｎｍ、約１０ｎｍから約３００ｎｍ、及び約４０ｎｍから約１００ｎｍである粒子から構成されてよいペプチド−リボ核酸縮合化合物を提供する。
【００４８】
化合物のペプチド成分は、粒子質量の５乃至９５％又は４５乃至９５％であってよい。
【００４９】
本発明のある態様においては、ペプチド−核酸化合物は１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供され、該リボ核酸剤と該ペプチド成分を水溶液中で縮合することによって直径１０００ｎｍ未満の粒子を形成する。
【００５０】
一般に本発明の化合物は、１又はそれ以上のペプチドと１又はそれ以上の核酸から形成されたペプチド−核酸縮合体を含む。この縮合体は、一つには核酸に対するペプチドの窒素対リン比（Ｎ／Ｐ比）で特徴付けられる。
【００５１】
本発明の化合物は直径１０００ｎｍ未満の縮合体粒子から成ってよく、ここで各粒子は少なくとも１０個の二本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）分子及び少なくとも１０個のペプチドを含む。本明細書で用いられる「少なくとも１０個のペプチド」とは、部分モル量が１０ペプチド分子であることを意味し、ペプチド分子の構造は同じであっても異なっていてもよい。従って、「少なくとも１０個のペプチド」とは、単一のペプチド構造の部分モル量、又は２若しくは３個以上の異なるペプチド構造の部分モル量であってもよい。
【００５２】
一般に、本明細書で用いられる「ペプチド」、「核酸」、並びに「ｄｓＲＮＡ」及び「ｓｉＲＮＡ」などの用語は、本発明の化合物を形成するのに十分な量にあるこれらの分子を意味する。すなわち、一般に、このような用語は個々の分子ではなく部分モル量を表す。「ペプチド」とは、例えばアボガドロ数個のペプチド分子など、１又は２個以上のペプチド分子のことである。「二つのペプチドをリボ核酸剤に付加する」とは、個々の部分モル量にある構造の異なる二種類のペプチドの混合物をリボ核酸剤に添加混合することを意味する。
【００５３】
複合体又は縮合体中の核酸（ＮＡ）に結合したペプチドの量は、窒素リン比（Ｎ／Ｐ比）とも呼ばれる、単一分子ペア形成についてのペプチド：ＮＡ電荷比を用いることにより結合した核酸の量から得ることができる。縮合後に溶液中に残存する遊離ペプチドの量は、物質収支から得られる。従って、本明細書において、電荷比Ｎ／Ｐとは、初期縮合溶液中における単一ペプチド成分の単一核酸剤に対する初期電荷比Ｎ／Ｐを意味する。
【００５４】
一般に、溶液中の核酸剤濃度はその溶解度によってのみ制限される。溶液中のペプチド成分の濃度は、所望のＮ／Ｐ比が得られるよう調節される。
【００５５】
ある態様において、溶液のペプチド成分濃度は全体のＮ／Ｐ比が約１となるように調節される。Ｎ／Ｐ比が約１の時、イオン電荷という面でペプチド成分も核酸剤も過剰ではない。
【００５６】
ある態様において、溶液の各ペプチド成分濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約５０、約０．５から約２０、約０．５から約７、又は約０．５から約２．５となるように調節される。
【００５７】
溶液のｐＨは通常約１１未満、約９未満、及び約８未満である。溶液の成分の混合は、任意に、ボルテックス撹拌行ってもよい。
【００５８】
ある態様において、縮合化合物は核酸剤をペプチド成分を含有する溶液へ添加することによって調製される。
【００５９】
ある態様において、溶液は無機塩又は有機塩を含んでよい。例えば、水溶液は約１Ｍ以下、約０．５Ｍ以下、及び約０．２５Ｍ以下の濃度の塩化ナトリウムを含んでよい。
【００６０】
任意に、特定のサイズ分布を有するペプチド−核酸縮合化合物は溶液から単離することができる。ある態様においては、ペプチド−核酸縮合化合物を含有する溶液をろ過することで様々なサイズの粒子が単離される。
【００６１】
他の態様において、ペプチド−核酸縮合化合物を含有する溶液を透析にかけることによって過剰な又は結合しなかったペプチド成分が除去される。
【００６２】
ある態様において、単離されたペプチド−核酸粒子は凍結乾燥される。
【００６３】
本発明のある態様において、ペプチド−核酸化合物は、少なくとも１種類のリボ核酸剤を水溶液中に溶解し、それから少なくとも１種類のペプチド成分をその水溶液中へ添加して１０００ｎｍ未満の粒径を有する粒子を縮合させ、その後第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水溶液中へ添加して粒子質量を増加させることにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００６４】
本発明のある態様において、ペプチド−核酸化合物は、第一のペプチド成分を水溶液中に溶解し、それからリボ核酸剤をその水溶液中へ添加して１０００ｎｍ未満の粒径を有する粒子を縮合させ、その後第二のペプチド成分又は第三以降のペプチド成分をその水溶液中へ添加して粒子質量を増加させることにより、１又はそれ以上のリボ核酸剤と１又はそれ以上のペプチド成分から提供される。
【００６５】
本発明の一つの局面において、ペプチド−核酸化合物は、ペプチド成分を核酸への相対親和性に基づいて選択することによって提供される。例えば、ペプチドによる核酸結合性色素ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの置換を測定することにより、様々なペプチドの核酸に対する相対結合性の分析が行われる。化合物の核酸に対するペプチド成分の相対親和性を特徴付けることにより、ペプチド成分の核酸への結合度を変化できるようにペプチド成分を選択することができる。
【００６６】
ペプチド成分の核酸への結合度を変化させることにより、最初に結合性の強いペプチド成分によって縮合体粒子が形成され、続いて結合性の弱いペプチド成分が粒子を形成するか、若しくはその逆が可能となり、又は縮合化合物に結合強度の異なる成分を複数回に分けて添加することが可能となる。
【００６７】
ある態様において、核酸剤と縮合する第一のペプチド成分が、第二以降のペプチド成分よりもその核酸剤に対して強い結合親和性を持つことが好ましい。これらの態様において、溶液の第一のペプチド成分の濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約７、約０．２から約２．５、又は約０．２から約１となるよう調節される。これらの態様において、後に続くペプチド成分の濃度は、Ｎ／Ｐ比が約０．２から約５０、約０．５から約２０、約０．５から約７、又は約０．５から約２．５となるよう調節される。
【００６８】
可逆的に結合したリボ核酸−ペプチド縮合化合物は、リボ核酸、並びに細胞外生体環境下で十分に安定であって、細胞内エンドソームと接触することでリボ核酸を放出することができるリボ核酸−ペプチド縮合体を形成する量にある正に帯電したリボ核酸結合性ペプチドを含む。
【００６９】
ペプチドがリボ核酸を結合させるのに有効な量の正に帯電した残基を含む、ペプチド−核酸縮合体の集団が提供される。このリボ核酸−ペプチド縮合体は細胞外生体環境下で十分に安定であり、ＲＮＡｉ応答を発生させるのに有効な方法で細胞内にリボ核酸を放出することができる。
【００７０】
本発明のある局面において、試薬を用いてペプチド−ＲＮＡ縮合体が架橋される。例えば、グルタルアルデヒドなどのジアルデヒド基を導入することでペプチド又は粒子表面のアミノ基を架橋し、ペプチド−ＲＮＡ縮合体の安定性を高めることができる。架橋剤の他の例としては、ホルムアルデヒド、アクロレイン、及びジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）が挙げられる。架橋された縮合化合物は、血清中のエンドヌクレアーゼによる代謝に対する耐性が向上していることであろう。
【００７１】
ある態様において、核酸剤と縮合する第一のペプチド成分は、第二以降のペプチド成分を添加する前に架橋される。任意に、第一のペプチド成分の縮合体は、第二以降のペプチド成分を添加した後に架橋されてもよい。ある態様において、第一のペプチド成分の縮合体は、第二以降のペプチド成分の添加前及び添加後に架橋される。
【００７２】
ペプチド−リボ核酸化合物を安定化する方法には、化合物内においてリボ核酸結合性ペプチドを、例えばグルタルアルデヒド架橋剤で架橋することが含まれる。ペプチド−リボ核酸化合物を生命体内部における分解から保護する方法としては、化合物内でペプチドの少なくとも一部を、例えばグルタルアルデヒド架橋剤で架橋することが含まれる。
【００７３】
本発明のペプチド−リボ核酸化合物は、界面活性剤、中性脂質、又はポリエチレンオキシドなどの表面改質剤を添加することによっても安定化することができる。例えば、ポリエチレングリコールは縮合化合物の溶液に添加されるとその複合粒の粒子へ付着することができる。例えば、非イオン性であるポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロック共重合体を添加して化合物の粒子を安定化させることもできる。
【００７４】
本開示には、動物及びヒトのＲＮＡｉ治療に用いるための薬物の製造における本発明の化合物の使用が包含される。
【００７５】
核酸剤
本発明に有用な核酸剤は、一本鎖核酸、二本鎖核酸、修飾若しくは分解耐性核酸、ＲＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡキメラ、アンチセンス核酸、又はリボザイムであってよい。
【００７６】
これに関連して、本発明は、ＲＮＡ干渉によって遺伝子発現を調節するための化合物、組成物、及び方法を提供する。本発明の化合物又は組成物はリボ核酸剤をＲＮＡｉ応答を生じさせることが可能な細胞へ放出することができる。本発明の化合物又は組成物は、細胞内エンドソームとの接触によってリボ核酸剤を細胞へ放出することができる。リボ核酸剤の細胞内放出によって細胞内における遺伝子発現を阻害することができる。
【００７７】
本発明に有用なリボ核酸剤は様々な遺伝子を標的とすることができる。例えば、本発明のｓｉＲＮＡ剤は、ＴＮＦ−α遺伝子の領域と相補的な配列を有することができる。本発明のある態様において、この化合物及び組成物は腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）の発現を制御するのに有用である。ＴＮＦ−αは、例えば肺疾患において発生する炎症プロセスと関連し得るため、抗炎症効果を生じ得る。本発明の組成物を送達することによってＴＮＦ−αをブロックすることは、リウマチ性関節炎の兆候及び／又は症状の治療又は予防に有用であろう。
【００７８】
本発明は、ＲＮＡ干渉によってＴＮＦ−αの発現及び活性を調節するための化合物、組成物、及び方法を提供する。
【００７９】
ＴＮＦ−αの発現及び／又は活性は、例えばｓｉＲＮＡ分子であるＩｎｍ−４を細胞へ送達することによって調節することができる。Ｉｎｍ−４は、ヒトＴＮＦ−α遺伝子と相同的な配列を持つ２１ヌクレオチドの二本鎖ｓｉＲＮＡ分子である。Ｉｎｍ−４は、センス鎖上に３’−ｄＴｄＴのオーバーハングを、アンチセンス鎖上に３’−ｄＡｄＴオーバーハングを有する。Ｉｎｍ−４の一次構造は以下の通りである。
センス鎖（配列番号４４）
５’−ＣＣＧＵＣＡＧＣＣＧＡＵＵＵＧＣＵＡＵｄＴｄＴ
アンチセンス鎖（配列番号４５）
５’−ＡＵＡＧＣＡＡＡＵＣＧＧＣＵＧＡＣＧＧｄＴｄＴ
【００８０】
ＴＮＦ−αの発現及び／又は活性は、例えばｓｉＲＮＡ分子であるＬＣ２０を細胞へ送達することによって調節することができる。ＬＣ２０は、ヒトＴＮＦ−α遺伝子と相同的な配列を持つ２１ヌクレオチドの二本鎖ｓｉＲＮＡ分子である。ＬＣ２０が標的とするのは、ヒトＴＮＦ−αの３’−ＵＴＲ領域である。ＬＣ２０は１９塩基対を持ち、センス鎖上に３’−ｄＴｄＴのオーバーハングを、アンチセンス鎖上に３’−ｄＡｄＴオーバーハングを有する。ナトリウム塩型の分子量は１４，２９８である。ＬＣ２０の一次構造は以下の通りである。
センス鎖（配列番号４６）
（５’）−ＧＧＧＵＣＧＧＡＡＣＣＣＡＡＧＣＵＵＡｄＴｄＴ
アンチセンス鎖（配列番号４７）
（５’）−ＵＡＡＧＣＵＵＧＧＧＵＵＣＣＧＡＣＣＣｄＴｄＡ
【００８１】
本発明のｓｉＲＮＡは、ウィルス遺伝子の領域と相補的な配列を有することができる。例えば、本発明のある組成物及び方法は、インフルエンザのウィルスゲノムの発現を制御するのに有用である。
【００８２】
これに関連して、本発明は、ＲＮＡ干渉によってインフルエンザの発現及び感染活性を調節するための組成物及び方法を提供する。インフルエンザの発現及び／又は活性は、例えばインフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットの領域と相補的な配列を有する短鎖干渉ＲＮＡ分子を細胞へ送達することによって調節することができる。例としてインフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットと相同的な配列を有する二本鎖ｓｉＲＮＡ分子を表３に示す。
【００８３】
【表３】
【００８４】
本発明のｓｉＲＮＡは、インフルエンザのＲＮＡポリメラーゼサブユニットの領域と相補的な配列を有することができる。
【００８５】
本発明は、インフルエンザのｍＲＮＡを標的とするｓｉＮＡを投与するための組成物及び方法を提供し、これらの組成物と方法によってインフルエンザＲＮＡは効果的に下方制御され、それによってインフルエンザ感染が低減、予防、又は寛解される。
【００８６】
ＲＮＡ干渉治療
ある態様において、本発明は、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子又はその前駆体などのＲＮＡｉ誘導性化合物を有効量含有する組成物を対象へ投与することによって該対象内の標的転写物の発現を阻害するための化合物、組成物、及び方法を提供する。ＲＮＡｉは、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を用いてメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を標的とし、翻訳を減弱する。本発明で用いられるｓｉＲＮＡは、例えばｓｉＲＮＡへのプロセッシングを受ける長鎖ｄｓＲＮＡなど、ダイサーによるプロセッシングを受ける前駆体であってよい。本発明は、標的転写物の発現又は標的転写物によってコードされたペプチド若しくはタンパク質の活性に関連する疾患又は状態を治療又は予防する方法を提供する。
【００８７】
ＲＮＡｉに基づく治療法を用いて、ウィルス又は微生物の成長又は機能を停止したり、疾患経路内の内在性遺伝子産物の機能を停止したりすることによって、広範囲にわたる様々な疾患を治療することができる。
【００８８】
ある態様において、本発明は、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子及びその前駆体などのＲＮＡｉ誘導性化合物を送達するための新規な組成物及び方法を提供する。詳細には、本発明は、対象の細胞、組織、及び／又は器官の１又はそれ以上の転写物を標的とするＲＮＡｉ誘導性化合物を含有する組成物を提供する。
【００８９】
ｓｉＲＮＡは、約１９ヌクレオチドの長さの相補的領域を有する二本鎖ＲＮＡであってよい。ｓｉＲＮＡは任意に一つ又は二つの一本鎖オーバーハング又はループを含んでいてもよい。
【００９０】
ｓｈＲＮＡは自己相補的領域を有する一本鎖ＲＮＡであってよい。この一本鎖ＲＮＡはステムとループを有するヘアピン構造を形成することができ、任意に、このＲＮＡの５’末端及び／又は３’末端において１又は２箇所以上の非対形成部分を有してよい。
【００９１】
活性治療剤は、インビボでのヌクレアーゼ分解に対する耐性が高められ、及び／又は細胞取り込みが改善された化学修飾ｓｉＮＡであって、ＲＮＡｉ活性が保持されたものであってよい。
【００９２】
本発明のｓｉＲＮＡ剤は、標的遺伝子のある領域に相補的な配列を有してよい。本発明のｓｉＲＮＡは２９塩基対から５０塩基対を有してよく、例えば標的遺伝子のある領域に相補的な配列を有するｄｓＲＮＡである。あるいは、二本鎖核酸はｄｓＤＮＡであってもよい。
【００９３】
ある態様において、活性剤は、遺伝子産物の発現を調節可能な短鎖干渉核酸（ｓｉＮＡ）、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）、マイクロＲＮＡ、又は短鎖ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）であってよい。
【００９４】
選択された疾患状態と関連する原因因子又は寄与因子として発現が異常に増加することが知れらている大多数の遺伝子のいずれをも含む、対象の特定の疾患状態に関連する１又はそれ以上の異なる遺伝子の発現を標的とする類似の方法及び組成物が提供される。
【００９５】
本発明のＲＮＡｉ誘導性化合物は、疾患状態に対するその他の公知の治療と合わせて投与してもよい。
【００９６】
ある態様において、本発明は、送達促進化合物と混合、化合物化、又は抱合された形の短鎖干渉核酸、短鎖干渉ＲＮＡ、二本鎖ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、又は短鎖ヘアピンＲＮＡなどの低分子核酸分子を含有する組成物を特徴とする。
【００９７】
本明細書で用いる「短鎖干渉核酸」、「ｓｉＮＡ」、「短鎖干渉ＲＮＡ」、「ｓｉＲＮＡ」、「短鎖干渉核酸分子」、「短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子」、及び「化学修飾短鎖干渉核酸分子」の各用語は、例えば配列特異的にＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）又はジーンサイレンシングを媒介することによって、遺伝子発現又はウィルス複製を阻害又は下方制御可能ないずれの核酸分子も意味する。
【００９８】
ある態様において、ｓｉＮＡは、アンチセンス領域が、発現を下方制御する標的リボ核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部を含み、センス領域が、標的リボ核酸の配列又はその一部に対応する（すなわち実質的に同一の配列である）ヌクレオチド配列を含む、自己相補的なセンス鎖及びアンチセンス鎖を含む二本鎖ポリヌクレオチド分子である。
【００９９】
「ｓｉＮＡ」は、例えば短鎖二本鎖核酸であるｓｉＲＮＡ、又は任意に、長鎖のその前駆体等の低分子干渉核酸を意味する。本発明の範囲内で有用なｓｉＮＡの長さは、ある態様においては約２０乃至５０ｂｐの長さで最適化される。しかし、ｓｉＲＮＡを含む有用なｓｉＮＡの長さには特に制限はない。例えばｓｉＮＡはまず、標的細胞内に存在して、標的細胞への送達と同時に又はその後にジーンサイレンシングを引き起こす最終的な形又はプロセッシングを受けた形のｓｉＮＡとは十分に異なる前駆体の形で細胞へ導入することができる。ｓｉＮＡの前駆体は、例えば送達と同時に又はその後にプロセッシング、分解、変性、又は開裂に付される前駆体配列要素を含むことで、細胞内でジーンサイレンシングを媒介する活性を有するｓｉＮＡを生成することができる。ある態様において、有用なｓｉＮＡの前駆体の長さは例えば約１００乃至２００塩基対、５０乃至１００塩基対、又は約５０塩基対未満であって、これによって標的細胞内において活性なプロセッシングを受けたｓｉＮＡが生成される。他の態様においては、有用なｓｉＮＡ又はｓｉＮＡ前駆体の長さは、約１０から４９塩基対、１５から３５塩基対、又は約２１から３０塩基対となる。
【０１００】
本発明のある態様においては、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを使用して、大きなｓｉＮＡの核酸前駆体を含む従来のｓｉＮＡよりも大きな核酸分子の送達を促進する。例えば、本発明の方法及び組成物を、所望のｓｉＮＡの「前駆体」である大きな核酸の送達を促進するために用いることができ、ここで前駆体のアミノ酸が標的細胞への送達の前、間、若しくは後に開裂又はプロセッシングに付されて標的細胞内での遺伝子発現を調節する活性ｓｉＮＡを形成することができる。
【０１０１】
例えば、ｓｉＮＡ前駆体ポリヌクレオチドとしては、自己相補的なセンス領域及びアンチセンス領域を含む２又は３個以上のループ構造並びにステムを有する環状一本鎖ポリヌクレオチドを選択することができ、ここでアンチセンス領域は、標的核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部を含み、センス領域は、標的核酸の配列又はその一部に対応するヌクレオチド配列を含み、そしてこの環状ポリヌクレオチドがインビボ又はインビトロでプロセッシングを受けることでＲＮＡｉを媒介可能な活性ｓｉＮＡ分子を生成することができる。
【０１０２】
本発明のｓｉＮＡ分子、特に前駆体でない形のものは、３０塩基対未満であってよく、約１７乃至１９ｂｐ、１９乃至２１ｂｐ、又は２１乃至２３ｂｐであってもよい。
【０１０３】
ｓｉＲＮＡは哺乳類系で選択的なジーンサイレンシングを媒介することができる。短鎖ループ及び１９乃至２７塩基対のステムを有するヘアピンＲＮＡも、その二本鎖ステムの配列と相同的な遺伝子の発現を選択的にサイレンシングする。哺乳類細胞は短鎖ヘアピンＲＮＡを、ｓｉＲＮＡへ変換して選択的ジーンサイレンシングを媒介することができる。
【０１０４】
ＲＩＳＣは、ｓｉＲＮＡ二重鎖のアンチセンス鎖と相補的な配列を有する一本鎖ＲＮＡの開裂を媒介する。標的ＲＮＡの開裂は、ｓｉＲＮＡ二重鎖のアンチセンス鎖と相補的な領域内で発生する。２１ヌクレオチドのｓｉＲＮＡ二重鎖は、通常２ヌクレオチドの３’末端オーバーハングを含む場合に最も活性が高い。
【０１０５】
２−ヌクレオチドの３’末端オーバーハングを有する２１−ｍｅｒのｓｉＲＮＡ二重鎖の３’末端オーバーハングセグメントをデオキシリボヌクレオチドで置換しても、ＲＮＡｉ活性への悪影響が生じない場合がある。ｓｉＲＮＡの各末端において４ヌクレオチドまではデオキシリボヌクレオチドによる置換が許容され得るが、完全にデオキシリボヌクレオチドで置換するとＲＮＡｉ活性が喪失する場合がある。
【０１０６】
別の選択肢として、ｓｉＮＡは、単一の又は複数のｓｉＮＡをコードし、その発現を標的細胞内で該ｓｉＮＡを発現させるポリヌクレオチドベクタによって発現された単一の又は複数の転写産物として送達することができる。このような態様においては、標的細胞内で発現されるｓｉＲＮＡの最終転写産物の二本鎖部分の長さは、例えば１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｂｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。
【０１０７】
本発明のある態様において、二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖領域は、バルジ部分、ミスマッチ部分、又はその両方を含んでよい。二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖部分は、完全に対合したヌクレオチドセグメントに限定されず、例えばミスマッチ（対応するヌクレオチドが相補的でない）、バルジ（一方の鎖上の対応する相補的ヌクレオチドが欠失）、又はオーバーハングによって対合していない部分を含んでよい。非対合部分は、ｓｉＮＡ形成に干渉しない程度含まれていてよい。ある態様において、「バルジ」は１つ又は２つの非対合ヌクレオチドを含んでよく、二本鎖が対合しているｓｉＮＡの二本鎖領域は、約１個乃至７個又は約１個乃至５個のバルジを含んでよい。さらに、ｓｉＮＡの二本鎖領域に含まれる「ミスマッチ」部分は、１個乃至７個又は１個乃至５個存在してよい。ミスマッチで最も多いのは、ヌクレオチドの一つがグアニンで他方がウラシルの場合である。このようなミスマッチは、例えばセンスＲＮＡをコードする対応するＤＮＡ内のＣからＴ、ＧからＡ、又はそれらの組み合わせという変異に起因するであろうが、他の要因も考えられる。
【０１０８】
本発明のｓｉＮＡの末端構造は、ｓｉＮＡが標的遺伝子の発現を阻害する活性を保持する限りにおいて、平滑末端又は粘着末端（オーバーハング）であってよい。粘着末端（オーバーハング）構造は３’末端オーバーハングに限定されず、ジーンサイレンシングを誘起する活性が保持される限りにおいて、５’末端オーバーハング構造も含まれる。さらに、オーバーハング部のヌクレオチド数は２又は３に限定されず、ジーンサイレンシングを誘起する活性が保持される限りにおいて、ヌクレオチド数はいくつであってもよい。例えば、オーバーハング部は１乃至約８のヌクレオチド又は２乃至４のヌクレオチドを含んでよい。
【０１０９】
粘着末端（オーバーハング）構造を有するｓｉＮＡの長さは、対合する二本鎖部分及び各末端のオーバーハング部分の長さとして表すことができる。例えば、２ｂｐの３’末端アンチセンスオーバーハングを有する２５／２７−ｍｅｒのｓｉＮＡ二本鎖は、２５−ｍｅｒのセンス鎖及び２７−ｍｅｒのアンチセンス鎖を持ち、この場合、対合部の長さは２５ｂｐである。
【０１１０】
いずれのオーバーハング配列も標的遺伝子に対する特異性は低くてよく、標的遺伝子配列に対して相補的（アンチセンス鎖）でなくても同一（センス鎖）でなくてもよい。ｓｉＮＡはジーンサイレンシング活性を保持する限りにおいて、そのオーバーハング部中に、例えばｔＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ウィルスＲＮＡなどの自然ＲＮＡ分子又は人工ＲＮＡ分子等の低分子量構造を含んでよい。
【０１１１】
ｓｉＮＡの末端構造は、二本鎖核酸の一方の末端部が、例えばリンカＲＮＡ等のリンカ核酸によって繋がっているステム−ループ構造であってよい。二本鎖領域（ステム−ループ部分）の長さは、例えば１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｂｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。別の選択肢として、標的細胞内で発現されるｓｉＮＡの最終転写産物である二本鎖領域の長さは、例えば約１５乃至４９ｂｐ、１５乃至３５ｐ、又は約２１乃至３０ｂｐであってよい。
【０１１２】
ｓｉＮＡは、標的核酸分子内のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列又はその一部分を有する一本鎖ポリヌクレオチドを含むことができ、ここで一本鎖ポリヌクレオチドは、５’リン酸（例えば、Ｍａｒｔｉｎｅｚら，Ｃｅｌｌ． １１０： ５６３−５７４, ２００２； Ｓｃｈｗａｒｚら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ １０： ５３７−５６８, ２００２、を参照）又は５’，３’−リン酸ジエステルなどの末端リン酸を含んでよい。
【０１１３】
本明細書で用いるｓｉＮＡ分子という用語は、天然のＲＮＡ又はＤＮＡのみを含む分子に限定されず、化学修飾されたヌクレオチド及び非ヌクレオチドも包含する。ある態様において、本発明の短鎖干渉核酸分子は２’−ヒドロキシ基（２’−ＯＨ）を含むヌクレオチドが欠失している。ある態様において、短鎖干渉核酸はＲＮＡｉを媒介するのに２’ −ヒドロキシ基を有するヌクレオチドは存在する必要がなく、従って本発明の短鎖干渉核酸分子は、任意にリボヌクレオチド（例：２’−ＯＨ基を持つヌクレオチド）をまったく含まなくてもよい。しかし、ＲＮＡｉを媒介するためにｓｉＮＡ分子内にリボヌクレオチドが存在する必要がないｓｉＮＡ分子は、２’−ＯＨ基を有する１又は２個以上のヌクレオチドを含む、接合した一つ若しくは複数のリンカ、又はその他の接合若しくは会合した基、部分、若しくは鎖を有してよい。ｓｉＮＡ分子は、ヌクレオチド部位の少なくとも約５、１０、２０、３０、４０、又は５０％にリボヌクレオチドを含んでいてもよい。
【０１１４】
本明細書で用いるｓｉＮＡという用語は、配列特異的ＲＮＡｉを媒介することができる核酸分子を包含し、中でも特に例を挙げると、短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）分子、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）分子、マイクロＲＮＡ分子、短鎖ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）分子、短鎖干渉オリゴヌクレオチド分子、短鎖干渉核酸分子、短鎖干渉修飾オリゴヌクレオチド分子、化学修飾ｓｉＲＮＡ分子、及び転写後ジーンサイレンシングＲＮＡ（ｐｔｇｓＲＮＡ）分子等がある。
【０１１５】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は個別のセンス及びアンチセンス配列若しくは領域を含み、ここでセンス領域及びアンチセンス領域はヌクレオチド若しくは非ヌクレオチドリンカ分子によって共有結合されているか、又はイオン性相互作用、水素結合、ファンデルワールス相互作用、疎水性相互作用、及び／若しくはスタッキング相互作用により非共有的に結合されている。
【０１１６】
「アンチセンスＲＮＡ」とは、標的遺伝子ｍＲＮＡと相補的な配列を有するＲＮＡ鎖であって、標的遺伝子ｍＲＮＡと結合することによってＲＮＡｉを誘起することができるＲＮＡ鎖をいう。
【０１１７】
「センスＲＮＡ」とは、アンチセンスＲＮＡと相補的な配列を有するＲＮＡ鎖であって、その相補的アンチセンスＲＮＡとアニールしてｓｉＲＮＡを形成するＲＮＡ鎖をいう。
【０１１８】
本明細書で用いる「ＲＮＡｉ構築物（ＲＮＡｉ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ）」又は「ＲＮＡｉ前駆体」という用語は、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、ヘアピンＲＮＡ、及びインビボで開裂してｓｉＲＮＡを形成することができるその他のＲＮＡ種等のＲＮＡｉ誘導性化合物を意味する。本明細書におけるＲＮＡｉ前駆体は、細胞中でｄｓＲＮＡ若しくはヘアピンＲＮＡを形成する転写物、及び／又はｓｉＲＮＡをインビボで生成することができる転写物を生じさせることが可能な発現ベクタ（ＲＮＡｉ発現ベクタとも言う）も含む。
【０１１９】
ｓｉＨｙｂｒｉｄ分子は、ｓｉＲＮＡと同様の機能を有する二本鎖核酸である。二本鎖ＲＮＡ分子と違い、ｓｉＨｙｂｒｉｄはＲＮＡ鎖及びＤＮＡ鎖から構成される。ＲＮＡ鎖が標的ｍＲＮＡと結合するアンチセンス鎖であることが好ましい。ＤＮＡ鎖とＲＮＡ鎖のハイブリダイゼーションによって生じたｓｉＨｙｂｒｉｄは、ハイブリダイズした相補的部分、及び好ましくは少なくとも一つの３’末端オーバーハングを有する。
【０１２０】
本発明の範囲内で使用するｓｉＮＡは、二つの別々のオリゴヌクレオチドから構築することができ、ここでこのうち一方はセンス鎖でもう一方はアンチセンス鎖であって、この場合、アンチセンス鎖とセンス鎖は自己相補的（すなわち、各鎖が他方の鎖のヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列を含む；アンチセンス鎖及びセンス鎖が二重又は二本鎖構造を形成しており、この場合、例えばその二本鎖領域が約１９塩基対である。）である。アンチセンス鎖は標的核酸分子のヌクレオチド配列又はその一部分と相補的なヌクレオチド配列を含むことができ、センス鎖は標的核酸配列又はその一部分に対応するヌクレオチド配列を含むことができる。別の選択肢として、ｓｉＮＡは単一のオリゴヌクレオチドから構築することもでき、この場合、ｓｉＮＡの自己相補的なセンス領域とアンチセンス領域は核酸系又は非核酸系のリンカによって結合される。
【０１２１】
ある態様では、細胞内送達のためのｓｉＮＡは、自己相補的センス及びアンチセンス領域を有し、二本鎖、非対称二本鎖、ヘアピン、又は非対称ヘアピン二次構造を有するポリヌクレオチドであってよく、ここでアンチセンス領域は個々の標的核酸分子内のヌクレオチド配列又はその一部分と相補的なヌクレオチド配列を含み、センス領域は標的核酸配列又はその一部分に対応するヌクレオチド配列を含む。
【０１２２】
ｓｉＮＡに施すことが可能な化学修飾の例としては、ヌクレオチド間のホスホロチオエート結合、２’−デオキシリボヌクレオチド、２’−Ｏ−メチルリボヌクレオチド、２’−デオキシ−２’−フルオロリボヌクレオチド、「ユニバーサル塩基」ヌクレオチド、「非環式」ヌクレオチド、５−Ｃ−メチルヌクレオチド、並びに末端グリセリル及び／又は逆位デオキシ脱塩基残基（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄｅｏｘｙａｂａｓｉｓ ｒｅｓｉｄｕｅ）の取り込みが挙げられる。
【０１２３】
ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域は、そのアンチセンス領域の３’末端にヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を有することができる。アンチセンス領域は、そのアンチセンス領域の５’末端に約１乃至約５個のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を有することができる。ｓｉＮＡ分子の３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、核酸の糖、塩基、若しくはバックボーンが化学修飾されたリボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドを含むことができる。３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、１又は２個以上のユニバーサル塩基リボヌクレオチドを含むことができる。３’末端ヌクレオチドオーバーハングは、１又は２個以上の非環式ヌクレオチドを含むことができる。
【０１２４】
例えば、化学修飾ｓｉＮＡは１、２、３、４、５、６、７、８個若しくは９個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を一方の鎖に有することができ、又は１乃至８個若しくは９個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を各鎖に有することができる。ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合は、ｓｉＮＡ二本鎖の一方又は両方のオリゴヌクレオチド鎖に存在することができ、例えばセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に存在することができる。
【０１２５】
ｓｉＮＡ分子は、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の３’末端、５’末端、又は３’末端と５’末端の両方に、１又は２個以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含むことができる。例えば、典型的なｓｉＮＡ分子は、１、２、３、４、５個、又は６個以上の連続するヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の５’末端に有することができる。
【０１２６】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個又は１１個以上のヌクレオチド間ピリミジンホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に有する。
【０１２７】
ある態様では、ｓｉＮＡ分子は１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個又は１１個以上のヌクレオチド間プリンホスホロチオエート結合を、センス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方に有する。
【０１２８】
ｓｉＮＡ分子は環状核酸分子を含むことができ、この場合、ｓｉＮＡの長さは例えば約３８、４０、４５、５０、５５、６０、６５、又は７０ヌクレオチド等の約３８乃至約７０ヌクレオチドであって、例えば約１８、１９、２０、２１、２２、又は２３塩基対等の約１８乃至２３塩基対を有し、この場合、この環状オリゴヌクレオチドは約１９塩基対及び２つのループを持つダンベル型構造を形成する。
【０１２９】
環状ｓｉＮＡ分子は、二つのループモチーフを含むことができ、この場合、ｓｉＮＡ分子の一方又は両方のループ部は生分解性である。例えば、環状ｓｉＮＡ分子のループ部はインビボで変形されて、約２個のヌクレオチドを含む３’末端ヌクレオチドオーバーハング等の３’末端オーバーハングを有する二本鎖ｓｉＮＡ分子を生成することができる。
【０１３０】
ｓｉＮＡ分子の修飾ヌクレオチドは、アンチセンス鎖、センス鎖、又はその両方にあってよい。例えば、修飾ヌクレオチドはノーザンコンフォメーション（例：ノーザン擬回転周期（ｎｏｒｔｈｅｒｎ ｐｓｅｕｄｏｒｏｔａｔｉｏｎ ｃｙｃｌｅ）、例えばＳａｅｎｇｅｒ著、「Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏｆ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ」、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ− Ｖｅｒｌａｇ編集、１９８４年を参照）を持つことができる。ノーザン立体配置を持つヌクレオチドの例としては、架橋型核酸（ｌｏｃｋｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ；ＬＮＡ）ヌクレオチド（例：２’−Ｏ，４’−Ｃ−メチレン−（Ｄ−リボフラノシル）ヌクレオチド）、２’−メトキシエトキシ（ＭＯＥ）ヌクレオチド、２’−メチルチオエチル、２’−デオキシ−２’−フルオロヌクレオチド、２’−デオキシ−２’−クロロヌクレオチド、２’−アジドヌクレオチド、及び２’−Ｏ−メチルヌクレオチドが挙げられる。
【０１３１】
化学修飾ヌクレオチドは、ＲＮＡｉを媒介する能力を維持しながら同時にヌクレアーゼ分解に対する耐性を持つことができる。
【０１３２】
二本鎖ｓｉＮＡ分子のセンス鎖は、逆位デオキシ脱塩基部位（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄｅｏｘｙａｂａｓｉｓ ｍｏｉｅｔｙ）などの末端キャップ部位を３’末端、５’末端、又は３’末端と５’末端の両方に有してもよい。
【０１３３】
抱合体の例としては、２００３年４月３０日に出願されたＶａｒｇｅｅｓｅら、米国特許出願番号１０／４２７１６０に記載の抱合体及びリガンドが挙げられ、図面を含むこの出願の全文は参照することで本明細書に組み入れられる。
【０１３４】
本発明のある態様では、抱合体は、生分解性リンカによって化学修飾ｓｉＮＡ分子と共有結合することができる。例えば、抱合体分子は化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の３’末端に結合することができる。
【０１３５】
ある態様では、抱合体分子は化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、又はその両方の５’末端に結合する。ある態様では、抱合体分子は、化学修飾ｓｉＮＡ分子のセンス鎖、アンチセンス鎖、若しくはその両方の３’末端及び５’末端の両方、又はこれらのいずれかの組み合わせに結合する。
【０１３６】
ある態様では、抱合体分子は、細胞等の生体系への化学修飾ｓｉＮＡ分子の送達を促進する分子を含む。
【０１３７】
ある態様では、化学修飾ｓｉＮＡ分子と結合する抱合体分子は、ポリエチレングリコール、ヒト血清アルブミン、又は細胞取り込みを媒介できる細胞受容体のリガンドである。本発明で意図する、化学修飾ｓｉＮＡ分子と結合可能な抱合体分子の具体例は、Ｖａｒｇｅｅｓｅら、米国特許公開公報ＵＳ２００３／０１３０１８６及び米国特許公開公報ＵＳ２００４／０１１０２９６に記載されており、これらの各文献の全文は参照することで本明細書に組み入れられる。
【０１３８】
ｓｉＮＡは、ｓｉＮＡのセンス領域とｓｉＮＡのアンチセンス領域を連結する、ヌクレオチド、非ヌクレオチド、又はヌクレオチドと非ヌクレオチドとが混在するリンカを含むことができる。ある態様では、ヌクレオチドリンカの長さは３、４、５、６、７、８、９、又は１０ヌクレオチドであってよい。ある態様では、ヌクレオチドリンカは核酸アプタマであってよい。本明細書で用いる「アプタマ」又は「核酸アプタマ」という用語は、標的分子に特異的に結合する核酸分子を包含しており、この場合、核酸分子は、自然環境下で標的分子によって認識される配列を含んでいる。別の選択肢として、アプタマは、標的分子が核酸と自然には結合しない場合において、標的分子と結合する核酸分子であってよい。
【０１３９】
例えば、アプタマを用いてタンパク質のリガンド結合ドメインと結合させ、それによって天然のリガンドとタンパク質との相互作用を防ぐことができる。例えば、Ｇｏｌｄら，Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ６４： ７６３, １９９５； Ｂｒｏｄｙ及びＧｏｌｄ，Ｊ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ７４： ５, ２０００； Ｓｕｎ，Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｍｏｌ． Ｔｈｅｒ． ２： １００, ２０００； Ｋｕｓｓｅｒ，Ｊ. Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ７４： ２７, ２０００； Ｈｅｒｍａｎｎ及びＰａｔｅｌ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８７： ８２０, ２０００； 及びＪａｙａｓｅｎａ，Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４５： １６２８, １９９９、を参照のこと。
【０１４０】
非ヌクレオチドリンカは、脱塩基ヌクレオチド、ポリエーテル、ポリアミン、ポリアミド、ペプチド、炭水化物、脂質、ポリ炭化水素、又はその他のポリマ化合物（例：２乃至１００のエチレングリコール単位を有するポリエチレングリコール等）であってよい。具体例としては、Ｓｅｅｌａ及びＫａｉｓｅｒ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ６３５３, １９９０、及びＮｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １５： ３１１３, １９８７； Ｃｌｏａｄ及びＳｃｈｅｐａｒｔｚ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ６３２４, １９９１； Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ及びＳｃｈｅｐａｒｔｚ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ５１０９, １９９１； Ｍａら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２１： ２５８５, １９９３： 及びＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３２： １７５１, １９９３； Ｄｕｒａｎｄら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ６３５３, １９９０； ＭｃＣｕｒｄｙら，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ＆Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ １０： ２８７, １９９１； Ｊｓｃｈｋｅら，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ． ３４： ３０１, １９９３； Ｏｎｏら，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３０： ９９１４, １９９１； Ａｒｎｏｌｄら、国際公開公報ＷＯ８９／０２４３９、Ｕｓｍａｎら、国際公開公報ＷＯ９５／０６７３１、Ｄｕｄｙｃｚら、国際公開公報ＷＯ９５／１１９１０、並びにＦｅｒｅｎｔｚ及びＶｅｒｄｉｎｅ，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １１３： ４０００, １９９１、に記載のものが挙げられる。
【０１４１】
「非ヌクレオチドリンカ」とは、糖及び／又はリン酸エステル置換基を含む１又は２個以上のヌクレオチド単位の代わりに核酸鎖に取り込まれることができ、残った塩基に酵素活性を示させる基又は化合物のことを言う。この基又は化合物は、例えば糖のＣ１の位置にアデノシン、グアニン、シトシン、ウラシル、又はチミン等の一般的に認知されたヌクレオチド塩基を含まない点において、脱塩基型となり得る。
【０１４２】
ある態様では、修飾ｓｉＮＡ分子はリン酸エステル主鎖の修飾部を有することができ、修飾には、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、モルホリノ、アミデートカルバメート、カルボキシメチル、アセトアミデート、ポリアミド、スルホネート、スルホンアミド、スルファメート、ホルムアセタール、チオホルムアセタール、及び／若しくはアルキルシリルの１又はそれ以上の修飾が含まれる。オリゴヌクレオチド主鎖の修飾の例は、Ｈｕｎｚｉｋｅｒ及びＬｅｕｍａｎｎ著、「Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ａｎａｌｏｇｕｅｓ： Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ, ｉｎ Ｍｏｄｅｒｎ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ」、ＶＣＨ、ｐ．３３１−４１７、１９９５年、及びＭｅｓｍａｅｋｅｒら著、「Ｎｏｖｅｌ Ｂａｃｋｂｏｎｅ Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔｓ ｆｏｒ Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ， ｉｎ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ」、ＡＣＳ、ｐ．２４−３９、１９９４年、に記載されている。
【０１４３】
化学的修飾が可能なｓｉＮＡ分子は、（ａ）ｓｉＮＡ分子の二つの相補鎖を合成する工程、及び（ｂ）二本鎖ｓｉＮＡ分子を得るのに適した条件下でこの二つの相補鎖をアニールする工程によって合成することができる。ある態様では、ｓｉＮＡ分子の相補的な部分は、固相オリゴヌクレオチド合成又は固相タンデムオリゴヌクレオチド合成によって合成される。
【０１４４】
オリゴヌクレオチド（例：特定の修飾オリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドのリボヌクレオチドを含まない部分）は、例えばＣａｒｕｔｈｅｒｓら，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２１１： ３−１９, １９９２； Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、国際公開公報ＷＯ９９／５４４５９、Ｗｉｎｃｏｔｔら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３： ２６７７−２６８４, １９９５； Ｗｉｎｃｏｔｔら，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ． Ｂｉｏ． ７４： ５９, １９９７； Ｂｒｅｎｎａｎら，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． Ｂｉｏｅｎｇ． ６１： ３３−４５, １９９８； 及びＢｒｅｎｎａｎ、米国特許公報第６００１３１１号に記載の本技術分野で公知のプロトコルを用いて合成される。本発明の特定のｓｉＮＡ分子を含むＲＮＡの合成は、例えばＵｓｍａｎら，Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １０９： ７８４５, １９８７； Ｓｃａｒｉｎｇｅら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １８： ５４３３, １９９０； Ｗｉｎｃｏｔｔら, Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３： ２６７７−２６８４, １９９５； 及びＷｉｎｃｏｔｔら, Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ． Ｂｉｏ． ７４： ５９, １９９７、に記載の一般的手順に従う。
【０１４５】
本明細書で用いる「非対称ヘアピン」とは、アンチセンス領域と、ヌクレオチド又は非ヌクレオチドを含むことができるループ部と、アンチセンス領域と塩基対を作ってループ付き二重鎖を形成するのに十分な相補的ヌクレオチドを有する限りにおいてアンチセンス領域よりも少ないヌクレオチドを含むセンス領域と、を含む直鎖ｓｉＮＡ分子である。
【０１４６】
本明細書で用いる「非対称二重鎖」とは、センス領域及びアンチセンス領域を含む別々の二本の鎖を有するｓｉＮＡ分子であり、この場合、センス領域は、アンチセンス領域と塩基対を作って二重鎖を形成するのに十分な相補的ヌクレオチドを有する限りにおいてアンチセンス領域よりも少ないヌクレオチドを含む。
【０１４７】
本明細書で用いる「遺伝子発現を調節する」とは、標的遺伝子の発現を上方制御又は下方制御することであり、細胞内に存在するｍＲＮＡのレベル、ｍＲＮＡの翻訳、又は標的遺伝子によってコードされるタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの合成の上方制御又は下方制御を含む場合がある。
【０１４８】
本明細書で用いる、「阻害する」、「下方制御する」、又は「発現を低下させる」という用語は、遺伝子の発現、ＲＮＡ分子又は１又はそれ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする同等のＲＮＡ分子のレベル、又は標的遺伝子によってコードされる１又はそれ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットのレベル若しくは活性が、本発明の核酸分子（例：ｓｉＮＡ）の非存在下で観察される値よりも低下することを意味する。
【０１４９】
本明細書で用いる「ジーンサイレンシング」とは、細胞内における遺伝子発現を部分的に又は完全に阻害することであり、「遺伝子ノックダウン」と言うこともある。ジーンサイレンシングの程度は本技術分野で公知の方法によって定量することができ、方法のうちのいくつかは国際公開公報ＷＯ９９／３２６１９にまとめられている。
【０１５０】
本明細書で用いる「リボ核酸」及び「ＲＮＡ」という用語は、少なくとも一つのリボヌクレオチド残基を含む分子を意味する。リボヌクレオチドはベータ−Ｄ−リボフラノース部位の２’位にヒドロキシル基を有するヌクレオチドである。これらの用語は、二本鎖ＲＮＡ、一本鎖ＲＮＡ、部分的に精製されたＲＮＡなどの単離されたＲＮＡ、実質的に純粋なＲＮＡ、合成ＲＮＡ、組み換えによって作製したＲＮＡ、並びに１若しくは２個以上のヌクレオチドの付加、欠失、置換、修飾、及び／又は変性によって修飾及び変性された天然のＲＮＡとは異なるＲＮＡを含む。ＲＮＡの変性は、ｓｉＮＡの末端部又は内部等において、例えばＲＮＡの１又は２個以上のヌクレオチドに対する非ヌクレオチド材料の付加を含む場合がある。
【０１５１】
ＲＮＡ分子中のヌクレオチドには、天然ではないヌクレオチド又は化学合成されたヌクレオチド若しくはデオキシヌクレオチド等の非標準的なヌクレオチドが含まれる。このような変性されたＲＮＡは類似体と呼ばれる場合がある。
【０１５２】
「高度保存配列領域」とは、標的遺伝子の１又はそれ以上の領域のヌクレオチド配列が、一つの世代から別の世代へ、又は一つの生体系から別の生体系へかけて実質的に変化しないことを意味する。
【０１５３】
「センス領域」とは、ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域に対して相補性を有するそのｓｉＮＡ分子のヌクレオチド配列を意味する。さらに、ｓｉＮＡ分子のセンス領域は、標的核酸配列と相同性を有する核酸配列を含むことができる。
【０１５４】
「アンチセンス領域」とは、標的核酸配列に対して相補性を有するｓｉＮＡ分子のヌクレオチド配列を意味する。さらに、ｓｉＮＡ分子のアンチセンス領域は、そのｓｉＮＡ分子のセンス領域に対して相補性を有する核酸配列を含むことができる。
【０１５５】
「標的核酸」とは、発現又は活性が調節されるいずれの核酸配列も意味する。標的核酸はＤＮＡ又はＲＮＡであり得る。
【０１５６】
「相補性」とは、核酸が別の核酸配列と、従来のワトソン−クリック結合様式又はその他の従来のものとは異なる結合様式によって水素結合を形成できることを意味する。
【０１５７】
本明細書で用いる「生分解性リンカ」とは、例えば生物的に活性な分子とｓｉＮＡ分子又はｓｉＮＡ分子のセンス鎖とアンチセンス鎖を連結させるような、一つの分子をもう一つの分子と連結させるための生分解性リンカとして設計された核酸又は非核酸リンカ分子を意味する。生分解性リンカは、特定の組織又は細胞種への送達等の特定の目的のためにその安定性を調節することができるように設計されている。核酸系の生分解性リンカ分子の安定性は、例えばリボヌクレオチドと、デオキシリボヌクレオチドと、２’−Ｏ−メチル、２’−フルオロ、２’−アミノ、２’−Ｏ−アミノ、２’−Ｃ−アリル、２’−Ｏ−アリル、及びその他の２’位修飾ヌクレオチド又は塩基修飾ヌクレオチド等の化学修飾ヌクレオチドとの組み合わせによって、様々に調節することができる。生分解性核酸リンカ分子は、例えば長さが約２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、若しくは２０ヌクレオチドであるオリゴヌクレオチドのような二量体、三量体、四量体、若しくはさらに長い核酸分子であってよく、又は例えばホスホロアミデート若しくはホスホジエステル結合等のリン含有結合を有する一つのヌクレオチドを含んでもよい。生分解性核酸リンカ分子は、核酸のバックボーン、核酸の糖、又は核酸の塩基の修飾を含んでいてもよい。
【０１５８】
本明細書で述べる２’位修飾ヌクレオチドと関連して、「アミノ」とは２’−ＮＨ２又は２’−Ｏ−ＮＨ２を意味し、修飾されていてもされていなくてもよい。このような修飾された基は、例えばＥｃｋｓｔｅｉｎら、米国特許公報第５６７２６９５号及びＭａｔｕｌｉｃ−Ａｄａｍｉｃら、米国特許公報第６２４８８７８号に記載されている。
【０１５９】
投与
本発明の範囲内で使用するための核酸分子を送達する方法の中には、例えばＡｋｈｔａｒら，Ｔｒｅｎｄｓ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏ． ２： １３９, １９９２； Ａｋｈｔａｒ編、「Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ」、１９９５年、Ｍａｕｒｅｒら，Ｍｏｌ． Ｍｅｍｂｒ． Ｂｉｏｌ． １６： １２９−１４０, １９９９； Ｈｏｆｌａｎｄ及びＨｕａｎｇ，Ｈａｎｄｂ． Ｅｘｐ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． １３７： １６５−１９２, １９９９； 及びＬｅｅら，ＡＣＳ Ｓｙｍｐ． Ｓｅｒ． ７５２： １８４−１９２, ２０００、に記載されているものもある。Ｓｕｌｌｉｖａｎら、国際公開公報ＷＯ９４／０２５９５には、酵素核酸分子の送達の一般的方法がさらに記載されている。これらのプロトコルは本発明の範囲内で意図される実質的にいかなる核酸分子の補助的な又は補完的な送達に対しても利用することができる。
【０１６０】
核酸分子及びペプチドは、当業者に公知の様々な方法によって細胞へ投与することができ、その方法にはｓｉＮＡ及びペプチドのみを含む製剤又は薬理学的に許容される担体、希釈剤、賦形剤、アジュバンド、乳化剤、バッファ、安定剤、保存剤等の一つ若しくはそれ以上の追加成分をさらに含む製剤内における投与が含まれるが、これに限定されない。特定の態様において、ｓｉＮＡ及び／又はペプチドは、リポソーム内に被包されたり、イオントフォレーシスで投与されたり、又はハイドロゲル、シクロデキストリン、生分解性ナノカプセル、生体接着性マイクロスフェア、若しくはタンパク質性ベクタ等の他の運搬体へ取り込まれたりすることができる（Ｏ’Ｈａｒｅ及びＮｏｒｍａｎｄ、国際公開公報ＷＯ００／５３７２２参照）。別の選択肢として、核酸／ペプチド／運搬体の組み合わせを、直接注射又は輸液ポンプの使用によって局所的に送達することもできる。本発明の核酸分子の直接注射は、皮下注射、筋肉内注射、若しくは皮内注射を問わず、標準的な針とシリンジによる方法、又は、Ｃｏｎｒｙら，Ｃｌｉｎ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５： ２３３０−２３３７, １９９９、及びＢａｒｒｙら、国際公開公報ＷＯ９９／３１２６２に記載されるような無針技術を用いて行うことができる。
【０１６１】
本発明の組成物は、実質的に医薬品として使用することができる。医薬品は、患者の疾患状態若しくはその他の有害な状態の発生又は重症度化を予防若しくは調節したり、又はこれらを治療（一つ若しくはそれ以上の症状を、検出若しくは測定可能な程度で軽減）する。
【０１６２】
従って、追加的態様の範囲内において、本発明は、通常ペプチドと組み合わされた、複合体化し、若しくは抱合体形成した形であって、任意に希釈剤、安定剤、バッファ等の薬理学的に許容される担体と共に製剤されていてもよい１若しくは２種類以上のｓｉＮＡである、１若しくは２種類以上のポリ核酸の存在又は投与を特徴とする医薬組成物及び方法を提供する。
【０１６３】
本発明は、対象の特定の疾患状態又はその他の有害な状態と関連する遺伝子の発現を調節する短鎖干渉核酸（ｓｉＮＡ）分子を提供することにより、更なる課題及び利点を満足するものである。通常ｓｉＮＡは、対象の疾患状態又は有害な状態と関連する原因因子又は寄与因子として、高レベルに発現された遺伝子を標的とすることになる。この点で、ｓｉＮＡは、１又はそれ以上の関連する疾患症状の再発が予防される、又はその重症度が軽減若しくは減少するレベルまで遺伝子の発現を効果的に下方制御するであろう。別の選択肢として、疾患又は他の有害な状態の結果又は続きとして標的遺伝子の発現が必ずしも高まらない様々な個別の疾患モデルに対しても、それでも標的遺伝子の下方制御は遺伝子の発現を低下させる（すなわち、標的遺伝子の選択されたｍＲＮＡ及び／又はタンパク質産物のレベルを下げる）ことによって治療効果を示すであろう。別の選択肢として、本発明のｓｉＮＡは、一つの遺伝子の発現の低下を目的とすることによって、その標的遺伝子の産物又は活性によって発現が負の制御を受ける「下流」の遺伝子の上方制御を行うことができる。
【０１６４】
本発明のこのｓｉＮＡは、例えば経皮投与又は局所注射など、いかなる形でも投与することができる。動物を対象として、選択された疾患状態と関連する原因因子又は寄与因子として発現が異常に増加することが公知である大多数の遺伝子のいずれをも含む、その選択された疾患状態と関連する１又はそれ以上の異なる遺伝子の発現を標的とする類似の方法及び組成物が提供される。
【０１６５】
本発明の負に帯電したポリヌクレオチド（例：ＲＮＡ又はＤＮＡ）は、医薬組成物を形成する安定剤やバッファ等を含んだ又は含まない状態で、いかなる標準的な方法によっても患者に投与することができる。リポソームによる送達メカニズムの使用を所望する場合は、リポソームを形成する標準的なプロトコルに従うことができる。本発明の組成物は、経口投与のために錠剤、カプセル、又はエリキシール剤として、直腸内投与のために坐薬として、注射投与のために無菌溶液又は懸濁液として、及び本技術分野で公知のその他の組成物として製剤し、使用することもできる。
【０１６６】
本発明はさらに、本明細書で述べる組成物の薬理学的に許容される製剤も含む。このような製剤は、例えば塩酸、臭素酸、酢酸、及びベンゼンスルホン酸の塩といった酸付加塩等の上述の化合物の塩を含む。
【０１６７】
ｓｉＮＡは、例えば薬物の直腸内投与のために坐薬の形で投与することもできる。このような組成物は、薬物を、常温で固体だが直腸内温度では液体となるため直腸内で融解して薬物を放出する適切な非刺激性賦形剤と混合することによって調製することができる。そのような物質としては、ココアバター及びポリエチレングリコールが挙げられる。
【０１６８】
核酸分子は、当業者に公知の様々な方法によって細胞へ投与することができ、その方法にはリポソーム内への封入、イオントフォレーシスによるもの、生分解性ポリマ、ハイドロゲル、シクロデキストリン（例えば、Ｇｏｎｚａｌｅｚら，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ． １０： １０６８−１０７４, １９９９、並びにＷａｎｇら、国際公開公報ＷＯ０３／４７５１８及び国際公開公報ＷＯ０３／４６１８５参照）、乳酸−グリコール酸共重合ポリマ（ＰＬＧＡ）及びＰＬＣＡマイクロスフェア（例えば、米国特許公報第６４４７７９６号、米国特許公開公報ＵＳ２００２／１３０４３０参照）、生分解性ナノカプセル、並びに生体接着性マイクロスフェア等のその他の運搬体への取り込みによるもの、又はタンパク質ベクタによるもの（Ｏ’Ｈａｒｅ及びＮｏｒｍａｎｄ、国際公開公報ＷＯ００／５３７２２参照）が含まれるが、これらに限定されない。別の選択肢として、核酸／運搬体の組み合わせは、直接注射又は輸液ポンプの使用によって局所的に送達される。本発明の核酸分子の直接注射は、皮下注射、筋肉内注射、若しくは皮内注射を問わず、標準的な針とシリンジによる方法、又は、Ｃｏｎｒｙら，Ｃｌｉｎ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５： ２３３０−２３３７, １９９９、及びＢａｒｒｙら、国際公開公報ＷＯ９９／３１２６２に記載のような無針技術を用いて行うことができる。本発明の分子は医薬品として使用することができる。医薬品は、対象の疾患状態について、その発生を予防若しくは調節したり、又はこれらを治療（一つの症状を、好ましくはすべての症状をある程度軽減）したりする。
【０１６９】
本発明のカチオン性ペプチドのいずれか一つを選択又はいくつかを組み合わせることにより、本発明の方法及び組成物の範囲内においてｓｉＮＡの細胞内送達を誘導又は促進するのに有効なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド試薬を得ることができる。
【０１７０】
医薬組成物
本発明は、本明細書で述べる化合物の薬理学的に許容される製剤又は組成物も含む。このような製剤には、例えば塩酸、臭素酸、酢酸、及びベンゼンスルホン酸の塩といった酸付加塩等の上述の化合物の有機塩及び無機塩が含まれる。
【０１７１】
水性懸濁液は、水性懸濁液を製造するのに適した賦形剤との混合物の形で活性物質を含む。そのような賦形剤は、例えばカルボキシメチルセルロースのナトリウム塩、メチルセルロース、ヒドロプロピル−メチルセルロース、アルギン酸ナトリウム、ポリビニルピロリドン、トラガントガム、及びアカシアガム等の懸濁剤であり、分散剤又は湿潤剤は例えばレシチン等の天然のホスファチド、例えばポリオキシエチレンステアレート等のアルキレンオキサイドと脂肪酸との縮合生成物、例えばヘプタデカエチレンオキシセタノール等のエチレンオキサイドと長鎖脂肪族アルコールとの縮合生成物、ポリオキシエチレンソルビトールモノオレエート等のエチレンオキサイドと脂肪酸及びヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物、又は例えばポリエチレンソルビタンモノオレエート等のエチレンオキサイドと脂肪酸及び無水ヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物であってよい。水性懸濁液は、例えばｐ−ヒドロキシ安息香酸のエチル若しくはｎ−プロピルエステル等の１又はそれ以上の保存剤、１又はそれ以上の着色剤、１又はそれ以上の香味料、及びスクロース若しくはサッカリン等の１又はそれ以上の甘味料をさらに含んでよい。
【０１７２】
油性懸濁液は、例えば落花生油、オリーブ油、ゴマ油、若しくはココナッツ油等の植物性油、又は液状パラフィン等の鉱油中に活性成分を懸濁させることで調製することができる。油性懸濁液は、例えば蜜蝋、固形パラフィン、又はセチルアルコール等の増粘剤を含んでもよい。飲みやすい経口製剤を提供するために甘味料及び香味料を加えてもよい。このような組成物は、アスコルビン酸等の抗酸化剤を加えることで保存することができる。
【０１７３】
水の添加によって水性懸濁液を調製するのに適した分散性粉末及び顆粒により、活性成分は、分散剤又は湿潤剤と、懸濁剤と、１又はそれ以上の保存料との混合物として提供される。例えば甘味料、香味料、及び着色料等の追加的な賦形剤も存在してよい。
【０１７４】
本発明の医薬組成物は、水中油型エマルジョンの形をとることもできる。油相は、植物油、鉱油、又はこれらの混合物であってよい。適切な乳化剤としては、例えばアカシアガム又はトラガントガム等の天然ガム、例えば大豆、レシチン等の天然ホスファチド、及び例えばソルビタンモノオレエート等の脂肪酸と無水ヘキシトールとから誘導されるエステル又は部分エステル、並びに例えばポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート等の前述の部分エステルとエチレンオキシドとの縮合生成物であってよい。また、エマルジョンは甘味料及び香味料を含んでいてもよい。
【０１７５】
医薬組成物は水性又は油性の無菌注射用懸濁液の形をとることができる。この懸濁液は、適切な分散剤若しくは湿潤剤、及び／又は懸濁剤を用いて調製することができる。無菌注射用製剤は、例えば１，３−ブタノール溶液等非経口的に許容される無害な希釈剤若しくは溶媒中の無菌注射用溶液又は懸濁液であってもよい。
【０１７６】
医薬組成物用の許容可能な担体、運搬体、及び溶媒としては、水、リンゲル液、及び等張性の塩化ナトリウム溶液が挙げられる。さらに、無菌固定油は、担体、運搬体、溶媒、又は懸濁媒体として従来から使用されている。上記目的のためには、合成モノグリセリド又はジグリセリドを含むいかなる無刺激性の固定油も使用することができる。さらに、オレイン酸等の脂肪酸も注射液の調製に有用である。
【０１７７】
本明細書で引用するあらゆる刊行物、参考文献、特許、及び特許出願の全文献は、参照することで具体的に本明細書に組み入れられる。
【０１７８】
本発明を特定の態様について説明し、例示の目的で多くの詳細事項を述べてきたが、本発明が追加的な態様を含み、本明細書で述べた詳細事項が本発明の範囲から逸脱しない範囲で大きく変形され得ることは、当業者には明らかであろう。本発明は、そのような追加的な態様、変更、及び同等な内容を含む。
【０１７９】
本発明の説明及び請求項においてここで使用する「１の（ａ）」、「１の（ａｎ）」、「その（ｔｈｅ）」、及びこれらに類似の言葉は、単数形及び複数形の両方を含むものとして解釈されるべきである。「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、及び「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」という言葉は、例えば「含むがこれらに限定されない」という意味のように、目的語を制限しない言葉として解釈されるべきである。本明細書における数値の範囲の列挙は、その範囲内の数値が明示的に列挙されていてもいなくても、本明細書において個々の数値が列挙されているかのごとく、その範囲内に入る個々の各数値を意味することを意図したものである。本明細書で取り上げた具体的数値は典型例であって本発明を制限するものではないことが理解されるであろう。
【０１８０】
本明細書で示された例及び用いられた典型的な用語は単に例示目的のためのものであって、本発明の範囲を制限することを意図したものではない。
【発明を実施するための最良の形態】
【０１８１】
調製例１
水中でのＰＮ０８２６：ｓｉＲＮＡ化合物。
化合物は以下のようにして調製した。ＲＮａｓｅを含有しない８２．１２μｌの水、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。この溶液をボルテックス撹拌により混合した。最後に７．８８μｌのＰＮ０８２６（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を加え、ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８２】
調製例２
ＰＮ０８２６、Ｆ−１０８、及び水。
化合物は以下のようにして調製した。まずＲＮａｓｅを含有しない８２．１２μｌの水を、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。次に７．８８μｌのＰＮ０８２６（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を加えてボルテックス撹拌により混合した。最後に、５μｌのプルロニックＦ１０８（２０ｍｇ／ｍｌ、０．２μＭろ過済み）を添加してピペットで混合した。
【０１８３】
調製例３
Ｃｙ５−Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、及び一晩。
化合物は以下のようにして調製した。まず１１９．４０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのペプチドＰＮ０１８３（２ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を４℃で一晩保存した。最後に１５μｌのＣｙ５−Ｉｎｍ４（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８４】
調製例４
Ｃｙ５−Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、Ｆ１２７、及び一晩。
化合物は以下のようにして調製した。まず１１９．４０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのペプチドＰＮ０１８３（２ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）及び７．５μｌのプルロニックＦ１２７（２０ｍｇ／ｍｌ、０．２μＭろ過済み）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を４℃で一晩保存した。最後に１５μｌのＣｙ５−Ｉｎｍ４（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８５】
調製例５
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、希釈用水、及びペプチドから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８６】
調製例６
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、希釈用バッファ、及びペプチドから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。
【０１８７】
調製例７
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、及びボルテックス撹拌なし。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加してピペッティングにより混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ピペッティングにより混合した。
【０１８８】
調製例８
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして希釈による濃度低下。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。最後にこの溶液を１０倍に希釈して濃度を下げた。
【０１８９】
調製例９
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びｓｉＲＮＡから添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。
【０１９０】
調製例１０
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして３０分間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０Ｍ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で３０分間平衡化した。
【０１９１】
調製例１１
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして６０分間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で６０分間平衡化した。
【０１９２】
調製例１２
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、ペプチドから添加、そして２４時間放置。
化合物は以下のようにして調製した。まず８５．８３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのペプチドＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加し、ボルテックス撹拌により混合した。最後に１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）をこの溶液に添加して再度ボルテックス撹拌により混合した。この溶液を氷上で２４時間平衡化した。
【０１９３】
調製例１３
Ｉｎｍ４、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９、及びｓｉＲＮＡを投与直前に添加。
化合物は以下のようにして調製した。まず２５９．１μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１５．６０μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）及び１０．３０μｌのＰＮ０９３９（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に１５．００μｌのＩｎｍ４（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。
【０１９４】
調製例１４
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びピペッティングによる混合。
化合物は以下のようにして調製した。まず１７２．００μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて１０μｌのＩｎｍ４（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ピペッティングにより混合した。その後１１．２０μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ピペッティングにより混合した。最後に６．８０μｌのＰＮ０９３９（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ピペッティングにより混合した。この溶液を氷上で１時間平衡化した。
【０１９５】
調製例１５
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びボルテックス混合。
化合物は以下のようにして調製した。まず２２８９．５０μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて２４．００μｌのＩｎｍ４（２０ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後５３．６０μｌのＰＮ０１８３（１０ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に３２．９０μｌのＰＮ０９３９（２０ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を氷上で１時間平衡化した。
【０１９６】
調製例１６
Ｉｎｍ４、ｓｉＲＮＡ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９の順番、及びｐＨ７．４。
化合物は以下のようにして調製した。まず３７６．１９μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ７．４）を、続いて５μｌのＩｎｍ４（２０ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１５．３９μｌのＰＮ０１８３（７．２６ｍｇ／ｍｌ、ＲＮａｓｅを含有しない水中）を添加した。ボルテックス撹拌により混合した。最後に３．４２μｌのＰＮ０９３９を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０１９７】
調製例１７
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びｔｅｒｔ−ブタノール。
化合物は以下のようにして調製した。まず７２．９３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ボルテックス撹拌により混合した。最後に１２．９０μｌのｔｅｒｔ−ブタノールを添加し、ピペッティングにより混合した。
【０１９８】
調製例１８
Ｇ１４９８、ＰＮ０１８３、及びエタノール。
化合物は以下のようにして調製した。まず７３．３３μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ５．０）を、続いて４．１７μｌのＰＮ０１８３（５ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を遠心用チューブに添加した。ボルテックス撹拌により混合した。その後１０μｌのＧ１４９８（１ｍｇ／ｍｌ、ｐＨ５．０の１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ中）を添加した。再度ボルテックス撹拌により混合した。最後に１２．５０μｌのエタノールを添加し、ピペッティングにより混合した。
【０１９９】
調製例１９
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を１２１．４０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２００】
Ｌａｃ−Ｚの構造は以下の通りである。
センス鎖：ＣＮ２９３８。（配列番号６４）
５’−ｒ（ＣＵＡＣＡＣＡＡＡＵＣＡＧＣＧＡＵＵＵ）ｄＴｄＴ−３’
アンチセンス鎖：ＣＮ２９３９。（配列番号６５）
５’−ｒ（ＡＡＡＵＣＧＣＵＧＡＵＵＵＧＵＧＵＡＧ）ｄＴｄＣ−３’
【０２０１】
調製例２０
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３８。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び０．９７μｌのＰＮ０９３８（１ｍｇ／ｍｌ）を一緒に１２２．４１μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０２】
調製例２１
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０９３９、及び架橋。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）及び１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。次に１．６０μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加してピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。
【０２０３】
調製例２２
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、及びＰＮ０９３９。
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、続いて１．６０μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。最後に１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０２０４】
調製例２３
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、ＰＮ０９３９、及び架橋
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ希釈した。１．６２μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を１１９．８０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、続いて０．８μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で１時間平衡化した。続いて１．９８μｌのＰＮ０９３９（１ｍｇ／ｍｌ）及び０．８μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。
【０２０５】
調製例２４
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、架橋、透析、及びＰＮ０９３９
化合物は以下のようにして調製した。まず１５８．６μｌの１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロースバッファ（ｐＨ７．４）、１０３．４５μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）、及び３３．５３μｌのＰＮ０１８３（１ｍｇ／ｍｌ）を加えることでＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の混合物を作成した。ボルテックス撹拌によって混合した。次に４．４μｌのグルタルアルデヒド（０．０５％、Ｗ／Ｖ）を添加した。ピペッティングにより混合した。この溶液を室温で２時間平衡化した。続いてこの溶液を４℃で一晩透析にかけた。４３．５μｌの架橋された混合物を３３１．５μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ中へ希釈した。４．９６μｌのＰＮ０９３９（０．１ｍｇ／ｍｌ）を５７．５４μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ中へ希釈した。この二つの希釈溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０６】
調製例２５
Ｌａｃ−Ｚ、ＰＮ０１８３、ＰＮ０８２６、及びＰＥＧ３３５０
化合物は以下のようにして調製した。５．０μｌのＬａｃ−Ｚ ｓｉＲＮＡ（２０μＭ）及び１．６μｌのＰＮ０１８３（０．１ｍｇ／ｍｌ）を１２０μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加し、ボルテックス撹拌により混合した。３．９６μｌのＰＮ０８２６（０．１ｍｇ／ｍｌ）及び２．５０μｌのＰＥＧ３３５０（１０ｍｇ／ｍｌ）を１１８．５４μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中へ添加した。この二つの溶液を一つにまとめ、ピペッティングにより混合した。
【０２０７】
実施例１
ゴールドダイ置換分析（Ｇｏｌｄ Ｄｙｅ Ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ Ａｓｓａｙ）によるペプチド−ｓｉＲＮＡ親和性
高速スクリーニングによる様々なペプチドのｓｉＲＮＡに対する相対結合性を、核酸結合性色素ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの置換を間接的に測定することによって評価した。ペプチドとＳＹＢＲ−ｇｏｌｄが同時にｓｉＲＮＡとの競争結合を起こすように、ｓｉＲＮＡ、ペプチド、及びＳＹＢＲ−ｇｏｌｄの緩衝混合物を測定プレート内で２つの系に重複して調製した。ｓｉＲＮＡの濃度は１０μｇ／ｍＬに固定し、それを０．０５乃至１０のペプチド：ｓｉＲＮＡ電荷比に対応する濃度範囲の各ペプチドの力価と組み合わせた。ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素はｓｉＲＮＡと結合した時にのみ蛍光を発するため、ｓｉＲＮＡと結合するペプチドは色素の結合を阻害し、結果として蛍光発光が減少する。従って、蛍光発光量はペプチドのｓｉＲＮＡとの結合と逆相関を示した。Ｋｄ及びＢｍａｘの両方の値を算出した。高いＫｄ値は、ペプチドとｓｉＲＮＡとの結合親和性が高いことを示すものであった。
【０２０８】
１０，０００倍濃度の核酸結合性ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素ストック液は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社（カリフォルニア州、カールズバッド）より入手し、−２０℃で保存した。このストック液は、室温と平衡状態にしてからＨｙｃｌｏｎｅ社のヌクレアーゼを含有しない水で１００倍希釈した。これを測定プレート上で１０倍希釈し、分析用の最終濃度である１０倍濃度とした。これは、５０μｇ／ｍＬまでの濃度においてｓｉＲＮＡ二重鎖と正比例にある結合が得られる最適濃度であった。ＳＹＢＲ−ｇｏｌｄとＧ１４９８ｓｉＲＮＡとの正比例にある結合度を示す検量線作成に用いた数値を表４に示す。
【０２０９】
【表４】
【０２１０】
サンプルは３８４ウェルの分析プレート上で直接混合した。まず、マルチチャネルピペットを用い、ピペットチップをウェルの底に接触させることで溶液が完全に排出されるようにして、５μＬのＳＹＢＲ−ｇｏｌｄ色素を各ウェルへ分注した。次に、２２．５μＬの２×ペプチド溶液をシングルチャネルピペットで添加した。最後に、２２．５μＬの２×ｓｉＲＮＡ溶液をマルチチャネルピペットで添加した。プレートを直ちに箔でカバーし、軽くたたいて混合しウェルの側壁についた液滴を落とした。
【０２１１】
蛍光強度は、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社（カリフォルニア州、サニーベール）のＳｐｅｃｔｒａＭａｘ蛍光プレートリーダーで測定した。プレートの設定条件に含まれたのは、励起波長を４９５ｎｍ及び発光波長を５３７ｎｍとし、測定前の振とう及びウェル一つあたり１回の測定であった。プレートはｓｉＲＮＡの添加後３０分以内に測定した。
【０２１２】
ペプチド結合性のためのスキャッチャードプロット
スキャッチャードプロットはペプチドの結合性（結合[ペプチド]／遊離[ペプチド]）ｖｓ結合[ペプチド]のプロットである。このプロットの直線回帰の傾きは、−１／Ｋｄであり、Ｂｍａｘはｙ切片である。遊離のペプチドと結合ペプチドの濃度を直接測定することはできないので、ｓｉＲＮＡの間接測定値を用いて算出した。遊離ｓｉＲＮＡは、測定された蛍光強度から検量線を用いて定量した。結合ｓｉＲＮＡは、既知の初期ｓｉＲＮＡ濃度（１０μｇ／ｍＬ）からの物質収支により、検量線から定量した。
【０２１３】
結合ペプチドは、（ｓｉＲＮＡ：ペプチド）結合モル比が単一分子対の（ｓｉＲＮＡ：ペプチド）電荷比に等しいと仮定して、結合ｓｉＲＮＡから算出した。この結合ペプチド算出量から、物質収支により遊離ペプチドを算出した。
【０２１４】
粒子サイズとゼータ電位
粒子サイズとゼータ電位は、ゼータ電位測定用透明使い捨てセルＤＴＳ１０６０Ｃを用い、２５℃でＭａｌｖｅｒｎ Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ Ｎａｎｏ ＺＳ（Ｍａｌｖｅｒｎ社、イギリス、ウスターシャー）により測定した。粒子サイズ用の分散剤は粘度１．０２００ｃＰのＰＢＳ又は粘度０．８８７２ＣＰの水を用いた。ゼータ電位用の分散剤は粘度０．８８７２ＣＰの水を用いた。分散剤粘度をサンプル粘度として使用した。ゼータ電位と粒子サイズの両方を測定する場合は、ゼータ電位測定用透明使い捨てセルを用いた。粒子サイズのみを測定する場合は、サイズ測定用低容量使い捨てキュベットを用いた。
【０２１５】
実施例２
様々な核酸濃度及びＮ／Ｐ比における縮合体粒子サイズ
様々なＧ１４９８濃度とＮ／Ｐ比におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図１に示す。特定のＮ／Ｐ比における各一組の３本の棒グラフにおいて、Ｇ１４９８濃度は一番左の棒グラフが１００μｇ／ｍｌ、真ん中が５０μｇ／ｍｌ、一番右が１０μｇ／ｍｌであった。Ｎ／Ｐ比０．２及び０．５では、Ｇ１４９８濃度が１０μｇ／ｍｌの時の粒子が非常に小さかったため、その濃度の棒グラフは図示されていない。
【０２１６】
Ｐ／Ｎ比が約１．４より小さい場合は、すべてのｓｉＲＮＡ濃度において粒子サイズは約２００ｎｍよりも小さかった。Ｐ／Ｎ比が約１．４か又はそれより大きい場合も、最も高い濃度（１００μｇ／ｍｌ）を除くすべてのＲＮＡ濃度において縮合体粒子サイズは約２００ｎｍよりも小さいままであった。
【０２１７】
実施例３
様々な核酸濃度及びＮ／Ｐ比における縮合体粒子サイズ
様々な混合後の時間及び窒素／リン比（Ｎ／Ｐ比）で得られたｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図２乃至図５に示す。図２乃至図５の各図の特定のＮ／Ｐ比における各一組の２本の棒グラフにおいて、左の棒グラフがボルテックス撹拌ありの場合、右の棒グラフがボルテックス撹拌なしの場合であった。
【０２１８】
図２の粒子径は混合後直ちに測定されたものであり、図３、図４、及び図５の粒子径は、それぞれ混合後３０分、６０分、及び２４時間で測定された。
【０２１９】
実施例４
縮合体粒子サイズに対するｐＨの影響
Ｎ／Ｐ比１．４及びＧ１４９８濃度１００μｇ／ｍｌで得られた、様々なｐＨ値に対するｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図６に示す。
【０２２０】
ｐＨが約１２より低い場合、縮合体粒子サイズは減少し、ｐＨの低下に伴って減少し続ける。約１１より低いｐＨでは、粒子サイズは約５００ｎｍより小さかった。
【０２２１】
強度は、後方散乱光子 (ｂａｃｋ ｓｃａｔｔｅｒｅｄ ｐｈｏｔｏｎ)（後方散乱モード (Ｂａｃｋ ｓｃａｔｔｅｒｅｄ ｍｏｄｅ））の測定値である。粒子サイズは、拡散自己相関アルゴリズムを使って計算したサイズである。
【０２２２】
実施例５
縮合体粒子サイズに対する塩濃度の影響
様々な塩化ナトリウム濃度で得られたｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図７に示す。
【０２２３】
約０．５までの塩化ナトリウム濃度では、粒子径は約１００ｎｍから約２７５ｎｍへ増加する。塩化ナトリウム濃度が約０．５を超えると、縮合体粒子サイズは上下に変動する。
【０２２４】
実施例６
縮合体粒子サイズに対するＲＮＡ及びペプチドの添加順の影響
様々なＮ／Ｐ比及び混合順におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合化合物の粒子径を図８に示す。Ｎ／Ｐ比が０．５以下の場合、粒子サイズは添加順による大きな影響は受けない。Ｎ／Ｐ比が０．５を超える場合は、ｓｉＲＮＡが先に溶液中へ導入され、そのｓｉＲＮＡ溶液にペプチドが添加された場合に粒子サイズは概して小さかった。
【０２２５】
実施例７
縮合体粒子の形態
ペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子形態は、透過電子顕微鏡（ＴＥＭ）イメージングによって測定した。以下のプロトコルを用いた。
グリッド上に１５μＬのサンプルを滴下して１０分放置；
半分の強度のカルノフスキー液に浸漬；
カコジル塩バッファに浸漬；
ＴＥＭ造影剤：３％酢酸ウラニル（ＵＡ）；
３回水に浸漬、ＵＡに浸漬、湿らせたフィルター紙で余分な液体を除去、乾燥；
混合物１：（オリジナルのカルノフスキー混合物）；
１６％パラホルムアルデヒド溶液：２０ｍＬ；
５０％グルタルアルデヒド ＥＭ級：８ｍＬ；
０．２Ｍリン酸ナトリウムバッファ：２５ｍＬ；
蒸留水：２５ｍＬ。
最終混合物は７８ｍＬで、０．０８Ｍバッファ中に５％グルタルアルデヒドと４％ホルムアルデヒドを含む。
この混合物のモル浸透圧濃度は２０００ｍＯＳＭを超えていた。
カコジル酸ナトリウムバッファ０．１Ｍ；
カコジル酸ナトリウム：４．２８ｇｍ；
塩化カルシウム：２５．０ｇｍ；
０．２Ｎ塩酸：２．５ｍｌ；
蒸留水で２００ｍｌに希釈、ｐＨは７．４。
【０２２６】
グロー放電なしで上記のプロトコルを用いた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８（濃度１００μ／ｍｌ）とペプチドＰＮ１８３（Ｎ／Ｐ比１．４）との縮合化合物の粒子のＴＥＭ写真を図９に示す。この写真から、サイズが均一で形態が球状の粒子であることがわかる。粒子サイズは１００ｎｍより小さく、典型的には約５０乃至６０ｎｍであった。
【０２２７】
グロー放電ありで上記のプロトコルを用いた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８（濃度１００μ／ｍｌ）とペプチドＰＮ１８３（Ｎ／Ｐ比１．４）との縮合化合物の粒子のＴＥＭ写真を図１０に示す。この写真から、サイズが均一で形態が球状の粒子であることがわかる。粒子サイズは１００ｎｍより小さく、典型的には約３０乃至６０ｎｍであった。
【０２２８】
実施例８
ペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子サイズの特徴
いくつかのペプチド−ＲＮＡ縮合化合物の粒子サイズ特性を表５にまとめて示す。
【０２２９】
【表５】
【０２３０】
例えば、Ｎ／Ｐ比０．５における化合物Ｇ１４９８／ＰＮ１８３は、全強度の９８．７％を占めるピークを示し、ピーク径が７３．３ｎｍ、ピーク幅が３２．９ｎｍ、Ｚ−平均粒子径が６３．８であった。
【０２３１】
実施例９
ペプチド−ＲＮＡ縮合体を用いてＬＰＳ刺激されたマウスの肺内でのＴＦＮ−αのインビボノックダウンアッセイ
ｓｉＲＮＡのノックダウン活性を、細胞にペプチド−ｓｉＲＮＡ縮合化合物をトランスフェクトすることによって測定した。ランダムｓｉＲＮＡ配列をネガティブコントロールとして用いた。
【０２３２】
ｓｉＲＮＡ Ｉｎｍ−４及びペプチドＰＮ１８３及びＰＮ９３９との縮合化合物を含む組成物の鼻孔内投与による、モデルマウス内でのＬＰＳ誘導性ＴＦＮ−α発現（ｐｇ／ｍｌ）のノックダウンアッセイの結果を図１１に示す。
【０２３３】
図１１において、一番左の棒グラフがバッファコントロールであり、次がＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータ、その右がグルタルアルデヒド（Ｇ）で架橋したＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９化合物のデータである。プラセボ（Ｐｌａｃｅｂｏ）はｓｉＲＮＡを含有しておらず、Ｑｎｅｇは不活性ｓｉＲＮＡを含有している。
【０２３４】
図１１のデータを表６に示す。
【０２３５】
【表６】
【０２３６】
投与は鼻腔内から行った。投与後４時間及び２４時間で、動物を０．６２５ｎｇ（５０μｌ）のＬＰＳで誘起した。ＬＰＳ導入後２時間で肺を採取した。ＴＮＦαのＥＬＩＳＡアッセイ及びＢＣＡ全タンパク質アッセイを行った。実験に用いた物質及び方法は以下の通りであった。
動物：正常マウス
投与量：０．５ｍｇ／ｋｇ
容量：５０μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：１０
コントロール：媒体、Ｑｎｅｇ
ｓｉＲＮＡ：Ｉｎｍ４
投与：Ｉｎｍ４濃度０．５ｍｇ／ｋｇで製剤を調製した。各製剤の全容量は２００μｌであった。各マウス（ｎ＝３）に５０μｌずつ投与した。
ｓｉＲＮＡの調製：既存の２０ｍｇ／ｍｌのＩｎｍ−４ｓｉＲＮＡストック液を Ｈｅｐｅｓ／バッファにより５ｍｇ／ｍｌに希釈した。Ｑｎｅｇは、既存の３．２９ｍｇ／ｍｌのストック液を使用した。
ペプチド：ペプチドはバッファ（１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ／５％デキストロース）により適切な濃度に希釈した。
賦形剤調製：グルタルアルデヒド（０．０５％Ｗ／Ｖ）を使用した。０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤調製：１．５ｍｌＢｉｏ−ｐｕｒ Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆチューブに各成分を加えた。
（Ａ）まず、少量の他の成分を受ける容量のバッファを加えた。
（Ｂ）以下に示す順序で全成分を加えた。ｓｉＲＮＡ、ペプチド１、ペプチド２、必要に応じて添加剤、バッファ。
（Ｃ）グルタルアルデヒド架橋を行う製剤については、１時間経ってから投与した。
【０２３７】
代表的な製剤を表７に示す。
【０２３８】
【表７】
【０２３９】
代表的製剤の詳細を表８及び表９に示す。
【０２４０】
【表８】
【０２４１】
【表９】
【０２４２】
実施例１０
ラット膠肉腫線維芽細胞（９Ｌ／ＬａｃＺ）におけるＬａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイ
ｌａｃ−ｚ ｓｉＲＮＡとペプチドＰＮ１８３並びに様々な第二のペプチドとの縮合化合物によるラット膠肉腫線維芽細胞である９Ｌ／ＬａｃＺ内でのｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を図１２に示す。
【０２４３】
図１２において、一番左の棒グラフがＨｉＰｅｒＦｅｃｔ（商標）（Ｑｉａｇｅｎ社、カリフォルニア州、バレンシア）を用いた比較データであり、それに続くのが本発明の様々な化合物のデータによるものである。ＰＮ１８３のＮ／Ｐ比は０．７５であり、第二のペプチドのＮ／Ｐ比０．３であった。図１２のデータを表１０に示す。
【０２４４】
【表１０】
【０２４５】
実験に用いた物質及び方法は以下の通りであった。
細胞：９Ｌ／ＬａｃＺ
投与量：１００ｎＭ、全トランスフェクション用量１００μｌに基づく
容量：製剤容量２５μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：２０
コントロール：Ｑｎｅｇ ｗ／Ａｌｅｘｉｓ５４６
ｓｉＲＮＡ：ＬａｃＺ
Ｌａｃ−Ｚ又はＱｎｅｇ：５４μｌのｓｉＲＮＡ＋１７．２８μｌのＰＮ０１８３＋１２７８μｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭ
ペプチドはＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地で適切な濃度に希釈した。
賦形剤はすべて０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤：
（Ａ）ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３を一緒にＯＰＴＩ−ＭＥＭで希釈して粒子を形成させた。ボルテックス撹拌した。
（Ｂ）送達媒体をＯＰＴＩ−ＭＥＭで希釈した。ボルテックス撹拌で送達媒体を混合した。
（Ｃ）各製剤について、９６ウェルに希釈した送達媒体をまず添加し、続いてｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３製剤を添加した。ピペッティングにより混合した。トランスフェクトする前に３０分間放置した。トランスフェクション：各製剤は５つのウェルに十分な１２５μｌであった。各ウェル（ｎ＝３）には２５μｌ注入した。
【０２４６】
代表的な製剤の詳細を表１１に示す。
【０２４７】
【表１１】
【０２４８】
代表的製剤の詳細を表１２に示す。
【０２４９】
【表１２】
【０２５０】
実施例１１
ラット膠肉腫線維芽細胞（９Ｌ／ＬａｃＺ）におけるＬａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイ
様々な縮合化合物によるラット膠肉腫線維芽細胞である９Ｌ／ＬａｃＺ内でのｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を表１３に示す。
【０２５１】
【表１３】
【０２５２】
実験に用いた材料と方法は以下の通りであった。
細胞：９Ｌ／ＬａｃＺ
投与量：１００ｎＭ、全トランスフェクション用量１００μｌに基づく
容量：製剤容量２５μＬ
反復実験数：ｎ＝３
全グループ数：２０
コントロール：Ｑｎｅｇ ｗ／Ａｌｅｘｉｓ５４６
ｓｉＲＮＡ：ＬａｃＺ
トランスフェクション：各製剤は５つのウェルに十分な１２５μｌであった。各ウェル（ｎ＝３）には２５μｌ注入した。
ペプチド調製：ペプチドはＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地で適切な濃度に希釈した。
賦形剤調製：賦形剤はすべて０．２μｍで滅菌ろ過した。
製剤調製：
（Ａ）ＰＮ０１８３なしの製剤については、送達媒体をまず添加してからｓｉＲＮＡを添加し、ピペッティングにより混合した。
（Ｂ）ＰＮ０１８３ありの製剤については、ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の複合体をまず作製した。９６ウェルプレートに、送達媒体をまず添加し、それからｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３複合体を添加し、ピペッティングにより混合した。
（Ｃ）架橋を行う製剤については、ｓｉＲＮＡとＰＮ０１８３の複合体をまず作製し、それから透析（４℃、一晩）を行うか、又は行わなかった。続いて翌朝に他の送達媒体をまず添加し、そしてｓｉＲＮＡ／ＰＮ０１８３複合体を添加、それからピペッティングにより混合した。
【０２５３】
代表的な製剤を表１４に示す。
【０２５４】
【表１４】
【０２５５】
代表的製剤の詳細を表１５、１６、及び１７に示す。
【０２５６】
【表１５】
【０２５７】
【表１６】
【０２５８】
【表１７】
【０２５９】
実施例１２
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド
典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３は、以下に示すヒトのヒストン２Ｂ（Ｈ２Ｂ）タンパク質のアミノ酸配列から誘導された。Ｈ２Ｂタンパク質中の下線部１３乃至４８番目までの残基部分がＰＮ７３を誘導するために使用された断片部を示す。Ｈ２Ｂの１２乃至４８番目までのアミノ酸で表される場合もある。ＰＮ７３の一次構造も以下に示す。
Ｈ２Ｂ（ヒストン２Ｂ）アミノ酸配列（配列番号６６）
ＭＰＥＰＡＫＳＡＰＡＰＫＫＧＳＫＫＡＶＴＫＡＱＫＫＤＳＫＫＲＫＲＳＲＫＥＳＹＳＶＹＶＹＫＶＬＫＶＨＰＤＴＧＩＳＳＫＡＭＧＩＭＮＳＦＶＮＤＩＦＥＲＩＡＧＥＡＳＲＬＡＨＹＮＫＲＳＴＩＴＳＲＥＩＱＴＡＶＲＬＬＬＰＧＥＬＡＫＨＡＶＳＥＧＴＫＡＶＴＫＹＴＳＳＫ
ＰＮ７３（１３−４８）（配列番号４２）
ＮＨ２−ＫＧＳＫＫＡＶＴＫＡＱＫＫＤＧＫＫＲＫＲＳＲＫＥＳＹＳＶＹＶＹＫＶＬＫＱ−アミド
【０２６０】
典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３残基の置換及び欠失によって作製したいくつかのポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド変異体の構造を表１８に示す。
【０２６１】
【表１８】
【０２６２】
表１９に示すのは、典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３及びその切断型誘導体の構造である。以下に示すＰＮ３６０及びＰＮ３６１のアミノ酸配列は、ＰＮ７３の対応するアミノ酸配列にアラインメントしてある。
【０２６３】
【表１９】
【０２６４】
ＰＮ３６０はＰＮ７３とＮ末端は共通だがＰＮ７３のＣ末端が欠失しており、ＰＮ３６１はＰＮ７３とＣ末端が共通だがＰＮ７３のＮ末端が欠失している。ＰＮ７６６はＰＮ７３のＣ末端側１５のアミノ酸に相当する。ＰＮ７３、ＰＮ３６０、ＰＮ３６１、及びＰＮ７６６はＦＩＴＣ（フルオレセイン−５−イソチオシアネート）（すなわち、−ＧＫ［イプシロン］Ｇ−アミド）によるＣ末端標識はされていない。表１９にはさらに１１のＰＮ７３切断型を示し、これらはＰＮ７６８を除いてペプチドのＮ末端から順に残基を３つずつ欠失させて作成した。これらのペプチドはすべて、このペプチドを含む細胞を蛍光顕微鏡で検出し、そして／又はフローサイトメトリで分離できるように、ＦＩＴＣ（フルオレセイン−５−イソチオシアネート）（すなわち、−ＧＫ［イプシロン］Ｇ−アミド）によるＣ末端標識が施されている。ＰＮ７６６及びＰＮ７０８は同じアミノ酸配列を持つが、ＰＮ７０８がＣ末端ＦＩＴＣ標識されている点で異なっている。
【０２６５】
実施例１３
ｓｉＲＮＡの細胞取り込みと標的遺伝子ノックダウンのためのインビトロでの実験方法及び手順
本実施例では、実施例１２の表１８及び表１９に挙げた典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドによる、ｓｉＲＮＡの細胞取り込み及びｓｉＲＮＡによる標的遺伝子ノックダウン活性を促進する有効性を評価するために使用される方法と手順を示す。細胞の生存率も評価した。各実験における細胞の培養条件及びプロトコルは以下に詳細に説明する。
【０２６６】
細胞培養
初代ヒト単球：
健康な提供者からのヒトの新鮮血サンプルをＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社より購入した。単球の単離のために、血液サンプルは入手後直ちにＰＢＳにより１：１の比率で希釈した。まず全血から末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）をＦｉｃｏｌｌ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）勾配法により単離した。さらにＭｉｌｔｅｎｙｉＣＤ１４ポジティブ選別キット及び提供されたプロトコル（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ社）を用いて単球をＰＢＭＣから分離した。単球試料の純度を評価するために、細胞を抗ＣＤ１４抗体（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）とインキュベートし、その後フローサイトメトリで分離した。単球試料の純度は９５％超であった。
【０２６７】
０．１乃至１．０ｎｇ／ｍｌのリポ多糖、ＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社、ミズーリ州、セントルイス）を細胞培養液に添加して腫瘍壊死因子−±（ＴＮＦ−±）の生成を刺激することにより、ヒト単球の活性化を行った。細胞はＬＰＳと共に３時間インキュベートした後に回収し、Ｑｕａｎｔｉｇｅｎｅアッセイ（Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社、カリフォルニア州、フリーモント）を用いて製造元の説明書に従ってｍＲＮＡレベルを測定した。
【０２６８】
マウス尾線維芽細胞：マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）はＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスの尾から得た。尾を切り離し、７０％エタノールに浸漬した後剃刀の刃で切って小片とした。この小片をＰＢＳで３回洗浄した後、０．５ｍｇ/ｍＬのコラゲナーゼ、１００ユニット／ｍＬのペニシリン、及び１００μｇ/ｍＬのストレプトマイシンと共に３７℃で振とう器中でインキュベーションして組織を破壊した。次に尾の小片を完全培地（２０％ＦＢＳ、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸、１００ユニット／ｍＬのペニシリン、及び１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン含有ダルベッコ改変必須培地）中で細胞が樹立するまで培養した。細胞は、上で概説したように、３７℃、５％ＣＯ２下で、完全培地中で培養した。
【０２６９】
細胞生存率（ＭＴＴアッセイ法）
細胞生存率は、ＭＴＴアッセイ法（ＭＴＴ−１００、ＭａｔＴｅｋキット）を用いて評価した。このキットは、テトラゾリウム塩の取り込みとホルマザン色素への変換を測定するものである。解凍した濃縮ＭＴＴ２ｍＬをＭＴＴ希釈剤８ｍＬと混合することで脂質を用いて解凍して希釈したＭＴＴの濃縮物を投与終了時の１時間前に調製した。各細胞培養インサートをＣａ２＋及びＭｇ２＋含有ＰＢＳで２回洗浄し、それから各ウェルに１００μＬの混合ＭＴＴ溶液を含む新品の９６ウェル輸送用プレートへ移した。この９６ウェル輸送用プレートを次に３７℃、５％ＣＯ２下で３時間インキュベートした。３時間のインキュベーションの後ＭＴＴ溶液を除去し、各ウェルに２５０μＬのＭＴＴ抽出溶液を含む第二の９６ウェル供給用トレイへ培養物を移した。各培養ウェルの表面へ１５０μＬのＭＴＴ抽出溶液を追加添加し、このサンプルを暗所に室温で最小２時間、最大２４時間放置した。その後ピペットチップをインサート膜に突き刺して、ウェルの上部と下部の溶液を混合させた。この混合抽出溶液２００μＬを抽出ブランク（ネガティブコントロール）と共にマイクロリーダー測定のための９６ウェルプレートへ移した。プレートリーダーにより、６５０ｎｍでバックグラウンド除去を行い、５７０ｎｍでサンプルの光学濃度（ＯＤ）を測定した。細胞生存率はパーセントで表され、処理インサートに対して読み取ったＯＤをＰＢＳ処理インサートに対して読み取ったＯＤで割り、それを１００倍して計算した。本分析の目的のために、ＰＢＳは細胞生存率に影響せず、従って１００％の細胞生存率を表していると仮定した。
【０２７０】
ｓｉＲＮＡ調製
オリゴヌクレオチドの合成は、５’−Ｏ−ジメチルトリチル−２’−Ｏ−ｔ−ブチルジメチルシリル−３’−Ｏ−スクシニルリボヌクレオシドで誘導体化された長鎖アルキルアミン処理多孔質ガラス上、又は場合によっては５’−Ｏ−ジメチルトリチル−２’−デオキシ−３’−Ｏ−スクシニルチミジンの支持体上での標準２−シアノエチルホスホラミダイト法（１）によって行った。オリゴヌクレオチドはすべて、ＡＢＩ３４００ＤＮＡ/ＲＮＡ合成装置（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社、カリフォルニア州、フォスターシティ）を用いて０．２又は１μｍｏｌのオーダーで合成し、濃ＮＨ４ＯＨを用いて固体担体から切断し、ＮＨ４ＯＨ：エタノール３：１混合液を用いて５５℃で脱保護した。保護基２’−ＴＢＤＭＳの脱保護は、塩基が脱された保護ＲＮＡをＮ−メチルピロリジノン／トリエチルアミン／トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（ＮＭＰ／ＴＥＡ／３ＨＦ；体積比で６：３：４）の溶液（１μｍｏｌあたり６００μＬ）と共に６５℃で２．５時間インキュベートすることで達成した。対応する構成要素である、Ａ、Ｕ、Ｃ及びＧの５’−ジメトキシトリチル−Ｎ−（ｔａｃ）−２’−Ｏ−（ｔ−ブチルジメチルシリル）−３’−［（２−シアノエチル）−（Ｎ，Ｎ−ジイソプロピル）］ホスホラミダイト（Ｐｒｏｌｉｇｏ社、コロラド州、ボールダー）、並びに修飾ホスホラミダイトである５’−ＤＭＴｒ−５−メチル−Ｕ−ＴＯＭ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ａｃ−Ｃ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ｇ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ｕ−ＣＥホスホラミダイト、５’−ＤＭＴｒ−２’−ＯＭｅ−Ａ−ＣＥホスホラミダイト（Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ社、バージニア州、スターリング）は供給業者から直接購入した。トリエチルアミン三フッ化水素酸塩、Ｎ−メチルピロリジノン、及び濃水酸化アンモニウムはＡｌｄｒｉｃｈ社（ウィスコンシン州、ミルウォーキー）から購入した。すべてのＨＰＬＣ分析及び精製は、Ｘｔｅｒｒａ（商標）Ｃ１８カラムを用いてＷａｔｅｒｓ２６９０ＨＰＬＣシステムにより行った。その他の試薬はすべてＧｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｃ．社から購入した。オリゴヌクレオチドは、ＲＰ−ＨＰＬＣで測定したところ純度９７％超まで精製されていた。マウス注射用ｓｉＲＮＡは、Ｑｉａｇｅｎ社（カリフォルニア州、バレンシア）からインビボグレードのものを購入し、アニーリング後ＨＰＬＣで精製した。一本鎖ｓｉＲＮＡの量は、λ＝２６０ｎｍにおけるナトリウム塩の形での消衰係数の計算値３５．０μｇ／ＯＤに基づき、分光測定により求めた。二本の鎖がアニールされる時は、約１０％の淡色効果が観測された。従って、二本鎖型の定量には消衰係数を１０％低下させた。ｓｉＲＮＡの内毒素レベルは通常０．００２４ＥＵ／ｍｇ以下であった。
【０２７１】
ペプチド合成
ペプチドは固相Ｆｍｏｃ法により、Ｒａｉｎｉｎ社シンフォニー（Ｓｙｍｐｈｏｎｙ）合成装置を用いてＣＬＥＡＲアミド樹脂上に合成した。５当量のＨＣＴＵ及びＦｍｏｃアミノ酸を用い、過剰のＮ−メチルモルフォリンと共に４０分間カップリングを行った。このペプチド樹脂を２０％ピペリジンのＤＭＦ溶液で１０分間２回の処理を行い、Ｆｍｏｃを除去した。全ペプチドの反応が完了した時点で、Ｆｍｏｃ基をピペリジンで除去し、ＤＭＦで十分に洗浄を行った。ペプチド樹脂のＮ末端に、３．０当量の３−マレイミドプロピオン酸及びＨＣＴＵを６当量のＮ−メチルモルフォリンの存在下でカップリングすることにより、マレイミド変性ペプチドを調製した。カップリングの進み具合はカイザーテストでモニターした。２．５％の水と２．５のトリイソプロピルシランを含有するＴＦＡ１０ｍＬを添加し、続いて室温で２時間ゆるやかに撹拌することによりペプチドを樹脂から開裂させた。得られた粗ペプチドはエーテルで倍散し、続いてろ過により回収した。粗生成物をＭｉｌｌｉｐｏｒｅ水に溶解し、凍結乾燥により乾固した。粗ペプチドを０．０５％のＴＦＡを含有する水１５ｍＬと酢酸３ｍＬへ投入し、５ｍＬの注入ループを通して流速５ｍＬ／分でＺｏｒｂａｘ ＲＸ−Ｃ８逆相カラム（内径２２ｍｍ×２５０ｍｍ、粒子径５μｍ）にローディングした。精製は、溶媒Ａを０．０５％ＴＦＡ含有水とし、溶媒Ｂを０．０５％ＴＦＡ含有アセトニトリルとした場合、０．１％Ｂ／分の直線ＡＢ勾配を流すことで達成した。精製ペプチドはＨＰＬＣ及びＥＳＭＳによって分析した。
【０２７２】
フローサイトメトリ
蛍光活性セルソーティング（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）（ＦＡＣＳ）分析は、Ｂｅｃｋｍａｎ社のＣｏｕｌｔｅｒ ＦＣ５００セルアナライザー（カリフォルニア州、フラートン）で行った。装置は、用いた蛍光プローブ（ｓｉＲＮＡにはＦＡＭ又はＣｙ５、ＣＤ１４にはＦＩＴＣ及びＰＥ）に合わせて調節した。細胞生存率及び細胞毒性の指標として、ヨウ化プロピジウム（Ｆｌｕｋａ社、セントルイス）及びアネキシンＶ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社、ミネアポリス）を用いた。工程順のプロトコルを簡単に以下に示す。
（ａ）ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体に曝露後、細胞を少なくとも３時間インキュベートした。
（ｂ）２００μｌのＰＢＳで細胞を洗浄する。
（ｃ）１５μｌのＴＥによって細胞を脱離し、３７℃で温置する。
（ｄ）３０μｌのＦＡＣＳ溶液（０．５％ＢＳＡ及び０．１％アジ化ナトリウム含有ＰＢＳ）が入った５つのウェル中で細胞を再懸濁する。
（ｅ）５つのウェルの溶液を一つのチューブにまとめる。
（ｆ）５μｌのＰＩ（ヨウ化プロピジウム）各チューブへ加える。
（ｇ）蛍光活性セルソーティング（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）（ＦＡＣＳ）により、製造元の説明書に従って細胞を分析する。
【０２７３】
ｓｉＲＮＡ取り込みの分析については、細胞をＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理し（付着細胞のみ）、続いてフローサイトメトリで分析した。上述のＢＡで表されるｓｉＲＮＡの取り込みも、細胞内のＣｙ５又はＦＩＴＣの蛍光強度によって測定し、そしてヨウ化プロピジウム又はアネキシンＶ−ＰＥの添加によって細胞生存率を評価した。細胞取り込みを蛍光標識ｓｉＲＮＡの膜への挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。
【０２７４】
実施例１４
典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドの欠失解析
初代マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）の細胞取り込みアッセイをインビトロで行い、完全長型と切断型のポリペプチドＰＮ７３の細胞内への進入効率を調べた。培養液中のＦＩＴＣ標識ペプチドを受けとった細胞数はフローサイトメトリで測定した。ペプチドの細胞取り込み率は培養液中の全細胞数に対する割合で表した。さらに、細胞内のＦＩＴＣ標識ペプチド量は平均蛍光強度（ＭＦＩ）を用いて評価した。ＭＦＩは細胞内のＦＩＴＣ標識ペプチド量と正の相関関係があり、相対的に高いＭＦＩ値は高い細胞内ＦＩＴＣ標識ペプチド量と相関している。ペプチドは０．６３μＭ、２．５μＭ、及び１０μＭの濃度で評価し、ＰＮ７６８は２μＭ、１０μＭ、及び５０μＭでテストした。
【０２７５】
完全長型と切断型のポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３を、トランスフェクションの前日に細胞に曝露した。ＦＩＴＣ標識ペプチドはＯｐｔｉ−ＭＥＭ（登録商標）培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中で室温で約５分間希釈してから細胞へ添加した。細胞は３時間かけてトランスフェクトして、ＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理後、フローサイトメトリで分析した。細胞生存率を上述のようにして測定した。細胞取り込みを膜挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。
【０２７６】
この細胞取り込み分析において、完全長型ＦＩＴＣ標識ＰＮ７３ペプチド（ＰＮ６９０）は、テストしたすべての濃度において（１０μＭの結果を表２０中「ペプチド細胞取り込み率（％）」の列に示す）ほぼ１００％の細胞取り込みを達成した。残りの切断型ＰＮ７３は、５０μＭの濃度が必要であったＰＮ７６８を除いて、１０μＭの濃度においてＰＮ６９０と同等の細胞取り込み率（カッコ内の数値）を達成し、これはＰＮ７３のＮ末端残基はペプチドが細胞内へ進入する能力にとって必要ではないことを示唆している。ペプチドの細胞取り込みには、ＰＮ７６８として示すＰＮ７３の５塩基分のＣ末端残基で十分である。切断型ＰＮ７３は、０．６３μＭにおいてペプチドの長さに比例して細胞取り込み活性の低下を示した。すなわち、０．６３μＭの濃度でテストされたペプチドを全体的に見ると、ＰＮ７３ペプチドの長さが減少するとその細胞取り込み活性も低下し、従って、ペプチドの細胞取り込み活性は投与量に依存することが示唆された。
【０２７７】
表２０に細胞取り込みと標的遺伝子ノックダウン（ＫＤ）のデータをまとめた。
【０２７８】
【表２０】
【０２７９】
表２０より、欠失したＰＮ７３のＮ末端部（ＰＮ３６１参照）がｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を５０％低下させ、またＣ末端を除くことで（ＰＮ３６０参照）ｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性が低下したことが分かる。これらのデータは、典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３のＣ末端領域が、ペプチドのヌクレオチド細胞取り込み活性に寄与していることを示している。
【０２８０】
本発明のｓｉＲＮＡ／ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド化合物による標的遺伝子発現の有効なノックダウンを実証した。具体的には、ｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物によるヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子の発現を調節する能力を評価した。ｈＴＮＦ−α遺伝子は、ヒトやその他の哺乳類の対象中で過剰発現すると関節リウマチ（ＲＡ）の発症と進行を媒介することが示唆されているため、これを標的とすることは重要である。
【０２８１】
ヒト単球をモデルシステムとして用いて、ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体のｈＴＮＦ−α遺伝子発現に対する影響を測定した。ＱｎｅｇはランダムｓｉＲＮＡ配列を表し、ネガティブコントロールとした。観察されたＱｎｅｇによるノックダウン活性を１００％（遺伝子発現レベル１００％）の基準とし、以下の各ｓｉＲＮＡ、Ａ１９Ｓ２１、２１／２１、及びＬＣ２０のノックダウン活性はこのネガティブコントロールに対する相対パーセントで表した。Ａ１９Ｓ２１、２１／２１、及びＬＣ２０はｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡである。典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドであるＰＮ６４３（完全長型ＰＮ７３からＣ末端標識を取り除いたもの）、ＰＮ６９０（Ｃ末端ＦＩＴＣ標識付き完全長型ＰＮ７３）、並びに欠失系ＰＮ６６０，ＰＮ７３５、ＰＮ６５４及びＰＮ７０８からのＰＮ７３の切断型を上で挙げたｓｉＲＮＡと複合体化させ、各ｓｉＲＮＡがヒト単球中ｈＴＮＦ−α遺伝子の発現レベルを低下させる能力に対するこれらポリペプチドの影響を調べた。典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７３の完全長型及び切断型のノックダウン活性を上の表２０にまとめる。「ＫＤ」の列の「＋」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して８０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが２０％低下）を有していたことを意味する。「＋／−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して約９０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが１０％低下）を有していたことを意味する。最後に「−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇネガティブコントロールと比較して有意なノックダウン活性を有していなかったことを意味する。
【０２８２】
健康なヒトの血液をＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社（カリフォルニア州）から購入し、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｇｕｅ Ｐｌｕｓ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）の勾配を用いて末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液から分離した。次にＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ社の磁気マイクロビーズを用い、ヒト単球をＰＢＭＣ分画から分離した。単離したヒト単球は、４ｍＭのグルタミン、１０％ＦＢＳ、１×非必須アミノ酸、及び１×ペニシリン−ストレプトマイシンを添加したＩＭＤＭ中に再懸濁し、使用するまで４℃で保存した。
【０２８３】
９６ウェル平底プレートを使い、ＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中にヒト単球を１００Ｋ／ウェル／１００μｌで播種した。典型的ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、２０ｎＭのｓｉＲＮＡとモル比１：５にてＯｐｔｉＭＥＭ培地中室温で５分間混合した。このインキュベーションの最後にＦＢＳをこの混合物へ添加し（終濃度３％）、この混合物５０μｌを細胞へ添加した。細胞は３７℃で３時間温置した。温置の後、細胞をＶ底プレートへ移し、１５００ｒｐｍで５分間かけてペレット化した。細胞を増殖培地（グルタミン、非必須アミノ酸、及びペニシリン−ストレプトマイシンを含むＩＭＤＭ）中へ再懸濁した。一晩のインキュベーションの後、単球に１ｎｇ／ｍｌのＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社）を適用して３時間刺激し、ＴＮＦ−α発現レベルを増加させた。ＬＰＳの導入後、ｍＲＮＡ定量のために細胞を上述のように回収し、上清はタンパク質定量が必要な場合は保存した。
【０２８４】
ｍＲＮＡの測定は、Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社（カリフォルニア州）の分岐ＤＮＡ技術を用いて製造者の仕様に従って行った。細胞中のｍＲＮＡレベルを定量するために、ハウスキーピング遺伝子（ｃｙｐＢ）及び標的遺伝子（ＴＮＦ−α）のｍＲＮＡの両方を測定し、ＴＮＦ−αの読み取りをｃｙｐＢに対して標準化して相対発光単位を得た。
【０２８５】
全体として、ＰＮ６４３（ＦＩＴＣ標識なし完全長型ＰＮ７３）及びＰＮ６９０（ＦＩＴＣ標識完全長型ＰＮ７３）は、「ＫＤ」列の「＋」（結果を表２０に示す）が示すように、テストしたすべてのｓｉＲＮＡにおいて、同等のｓｉＲＮＡノックダウン活性を有していた。さらに、ＰＮ６６０は、テストしたすべてのｓｉＲＮＡにおいてＰＮ６４３及びＰＮ６９０と同等のｓｉＲＮＡノックダウン活性を有しており、このことはＰＮ７３の最もＮ末端側の９残基を除いても、ｓｉＲＮＡが媒介する標的ＴＮＦ−αｍＲＮＡのノックダウン活性に影響がないことを示唆している。ＰＮ６５４は、Ａ１９Ｓ２１及び２１／２１の両ｓｉＲＮＡに対して中程度のノックダウン活性を示したが、ＬＣ２０ｓｉＲＮＡに対してはノックダウン活性を示さなかった（ノックダウン活性は、ノックダウン活性の列中に「±」として示されている）。しかし、ＰＮ７０８又はＰＮ７３５と複合体化されたｓｉＲＮＡは、いずれのｓｉＲＮＡについても観測可能なノックダウン活性を示さなかった。
【０２８６】
実施例１５
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ７０８
上述のように、細胞取り込み分析は、ペプチドと化合物化されたＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを受け入れる細胞の数を測定する。ｓｉＲＮＡの細胞取り込みはフローサイトメトリ（詳細は実施例２を参照）で評価した。取り込み率は、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含有する細胞の数を培養液中のトランスフェクトされた細胞及びされていない細胞を合わせた全細胞数で割って計算したパーセントで表した。平均蛍光強度（ＭＦＩ）はフローサイトメトリで測定し、これにより細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを定量した。ＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの量と正の相関関係があり、従って高いＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの数が多いことを示す。
【０２８７】
この例では、ＰＮ６４３（完全長型ＰＮ７３からＣ末端標識を取り除いたもの）、ＰＮ６９０（Ｃ末端ＦＩＴＣ標識を有する完全長型ＰＮ７３）、及びＰＮ７０８（１５塩基長、ＰＮ７３のＮ末端残基２１個を欠失して誘導）は５μＭ、１０μＭ、２０μＭ、及び４０μＭでテストした。ＰＮ６４３及びＰＮ６９０は２．５μＭでもテストし、ＰＮ６９０はさらに１．２５μＭでもテストした。ＰＮ６４３及びＰＮ７０８の両方は８０μＭでもテストした。
【０２８８】
表２１に示すように、ＦＩＴＣ標識なしのＰＮ７３（ＰＮ６４３）ペプチドは１０μＭの濃度でほぼ１００％のｓｉＲＮＡの取り込みを達成した。しかし、ＰＮ７３をＦＩＴＣで標識すると（ＰＮ６９０）、最大細胞取り込み活性は約７０％まで低下した。ＰＮ７０８は、ｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性が投与量に依存して増加することを示した。ＰＮ７０８は、８０μＭでｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性の最大である９５％を達成した。完全長型ＰＮ７３ペプチドでは、ペプチド濃度の上昇に伴って細胞生存率が減少した。対照的に、ＰＮ７０８ペプチドとインキュベートした細胞は、すべてのテスト濃度のペプチド存在下において９０％超の生存率を維持した。この例では、切断型ペプチドＰＮ７０８は、完全長型ＰＮ７３（ＰＮ６９０）と比較して細胞内へ送達されたＣｙ５−ｓｉＲＮＡの量を約２倍に増加させた。
【０２８９】
【表２１】
【０２９０】
ポリペプチドＰＮ７０８は、ｓｉＲＮＡが媒介する標的遺伝子発現低下への影響によってその特性を評価した。ＰＮ７０８ペプチドのＣ末端ＦＩＴＣ標識を除いてから、ｓｉＲＮＡと複合体化した時のその標的遺伝子発現低下を促進する能力を評価した。ＦＩＴＣ標識が存在しない場合の切断型の典型的なポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドは、ＰＮ７６６とした（実施例１２の表１９参照）。ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体によるヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子発現の調節能を評価した（プロトコルの詳細は実施例３参照）。この例では、ランダムｓｉＲＮＡ配列であるＱｎｅｇをネガティブコントロールとし、ＬＣ２０及びＬＣ１７のｓｉＲＮＡを用いてヒト単球中のｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とした。テストしたｓｉＲＮＡのペプチドに対するモル比は１：５、１：１０、１：２５、１：５０、１：７５、及び１：１００であった。ＬＣ２０、ＬＣ１７共に２０ｎＭの濃度で使用した。
【０２９１】
ノックダウンの結果は、ＬＣ２０／ＰＮ７６６及びＬＣ１７／ＰＮ７６６の両方のｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体共に、１：５、１：１０、及び１：２５においてｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのレベルがｓｉＲＮＡネガティブコントロールＱｎｅｇの約７０乃至８０％まで低下した（すなわち、ネガティブコントロールＱｎｅｇに比べてｍＲＮＡのレベルが２０乃至３０％低下）。ｓｉＲＮＡ／ペプチド比が１：５０、１：７５、及び１：１００の場合は、コントロールＱｎｅｇと比較してｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのレベルに有意の影響はなかった。ＰＮ７６６ペプチド存在下においてヒト単球に細胞毒性は見られなかった。
【０２９２】
実施例１６
ペプチド媒介によるｓｉＲＮＡの細胞取り込み活性
ｓｉＲＮＡの細胞取り込み分析及びＭＦＩ測定を、実施例２及び３で既述のように行った。データを表２２にまとめた。各ペプチドは、０．６３μＭ、１．２５μＭ、２．５μＭ、及び５μＭの濃度でテストした。
【０２９３】
【表２２】
【０２９４】
実施例１７
ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチド
表２３に示すポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）中へのｓｉＲＮＡ送達能についてスクリーニングした。
【０２９５】
【表２３】
【０２９６】
ｓｉＲＮＡと化合物化された表２３に挙げたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性。各ポリペプチドのｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性データ、平均蛍光強度（ＭＦＩ）測定値、及び細胞生存率データを表２４にまとめた。「処理」の列にグレーでハイライトしたものがｓｉＲＮＡ細胞取り込み率７５％以上を達成したポリペプチドである。これらのハイライトした各ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体の具体的なｓｉＲＮＡ細胞取り込み率も、「ｓｉＲＮＡ細胞取り込み率（％）」の列中にグレーでハイライトされている。
【０２９７】
ＬＣ２０はヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）ｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡとして使用されるオリゴであり、以下のリボヌクレオチド配列で表される。
（配列番号９６）
ＵＡＧＧＧＵＣＧＧＡＡＣＣＣＡＡＧＣＵＵＡ
【０２９８】
細胞によるｓｉＲＮＡの取り込みはフローサイトメトリ（詳細は実施例２参照）によって評価した。取り込み率は、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含有する細胞の数を培養液中のトランスフェクトされた細胞及びされていない細胞を合わせた全細胞数で割って計算したパーセントで表した。平均蛍光強度（ＭＦＩ）はフローサイトメトリで測定し、これにより細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを定量した。ＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの量と正の相関関係があり、従って高いＭＦＩ値は細胞内のＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの数が多いことを示す。
【０２９９】
データによると、ＰＮ６８０、ＰＮ６８１、ＰＮ７０９、ＰＮ７６０、ＰＮ７５９、及びＰＮ６８２が、ｓｉＲＮＡと複合体化されると細胞内へｓｉＲＮＡを送達する。表２３に示したポリペプチドのスクリーニングの結果を表２４に示す。
【０３００】
【表２４】
【０３０１】
表２４の「ｓｉＲＮＡ細胞取り込み率（％）」の列に示すように、「未処理」ネガティブコントロールはｓｉＲＮＡの細胞取り込みが見られず、一方ポジティブコントロールのペプチドは９５％のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を達成した。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドのＰＮ６８０、ＰＮ６８１、ＰＮ７０９、ＰＮ７６０、ＰＮ７５９、又はＰＮ６８２と複合体化したｓｉＲＮＡのＣｙ５抱合ＬＣ２０は、７５％を超えるかそれ以上のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を達成した。ポリペプチドＰＮ６９４及びＰＮ７１４は、それぞれ５４％及び４３％という中程度のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を示した。ポリペプチドＰＮ６６５及びＰＮ７３４は、有意のｓｉＲＮＡ細胞取り込み活性を示さなかった（５％未満）。
【０３０２】
ポリペプチドはさらにそのｓｉＲＮＡを細胞中へトランスフェクトする能力を、平均蛍光強度（ＭＦＩ）を分析することによって評価した。細胞取り込み分析がＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡを含む細胞のパーセントを定量したのに対し、ＭＦＩ測定では細胞内へ進入したＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの相対平均量を定量した。表２４の「Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡのＭＦＩ」の列に示すように、ポジティブコントロールペプチドＰＮ６４３によるＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの送達では、約７単位のＭＦＩが達成された。予想通り、「未処理」のネガティブコントロールでは測定可能なＭＦＩを示さなかった。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６６５に対してはＭＦＩの測定は行わなかった。ＰＮ７４３、ＰＮ６９４、及びＰＮ７１４のＭＦＩ測定値はポジティブコントロールよりも著しく低かった。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０、ＰＮ７０９、及びＰＮ６８２のＭＦＩ測定値はＰＮ６４３のポジティブコントロールと同等であり、一方ＰＮ６８１のＭＦＩはポジティブコントロールの２倍であった。ＰＮ７６０及びＰＮ７５９のＭＦＩ測定値は、ポジティブコントロールと比べてそれぞれ約１３倍及び６倍高かった。
【０３０３】
以下のプロトコルを用いて、表２３に挙げたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドをテストした。完全培地中でトランスフェクションを行う前日に、マウス尾線維芽細胞（ＭＴＦ）を２４ウェルプレートの各ウェルに約８０，０００個ずつ播種した。ポジティブコントロールを除く各送達ペプチドを、０．５μＭのＣｙ５抱合ｓｉＲＮＡの存在下で、０．６３μＭ、２．５μＭ、１０μＭ、及び４０μＭの濃度でテストした。ｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体については、Ｃｙ５抱合ｓｉＲＮＡとペプチドを別々にＯｐｔｉ−ＭＥＭ（登録商標）培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）により、最終濃度の２倍まで希釈した。等容量のｓｉＲＮＡとペプチドを混合し、室温で５分間複合体化させた。このｓｉＲＮＡ／ペプチド複合体をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で洗浄済みの細胞へ添加した。細胞は３７℃、５％ＣＯ２下で３時間トランスフェクトさせた。細胞をＰＢＳで洗浄し、トリプシンで処理後フローサイトメトリで分析した。ｓｉＲＮＡの細胞取り込み量は細胞内のＣｙ５の蛍光強度により測定した。細胞生存率は、ヨウ化プロピジウム取り込み又はアネキシンＶ−ＰＥ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）染色法を用いて測定した。標識ｓｉＲＮＡ（又は蛍光標識ペプチド）の細胞による取り込みを膜挿入と区別するため、トリパンブルーを用いて細胞膜表面の蛍光を消光した。トリパンブルー（Ｓｉｇｍａ社）を最終濃度０．０４％となるように細胞に添加して再度フローサイトメトリにかけ、蛍光が細胞膜に集中していることを示唆する蛍光強度の変化が見られるかどうかを調べた。
【０３０４】
実施例１８
ポリペプチドを有するｓｉＲＮＡのノックダウン活性
ヒト腫瘍壊死因子α（ｈＴＮＦ−α）遺伝子の発現を調節するｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物の能力を評価した。
【０３０５】
ヒト単球をモデルシステムとして用い、ｓｉＲＮＡ／ペプチド化合物のｈＴＮＦ−α遺伝子発現に対する影響を測定した。ＱｎｅｇはランダムｓｉＲＮＡ配列を表し、ネガティブコントロールとして機能した。観察されたＱｎｅｇによるノックダウン活性を１００％（遺伝子発現レベル１００％）の基準とし、以下の各ｓｉＲＮＡ、Ａ１９Ｓ２１ ＭＤ８、２１／２１ ＭＤ８、及びＬＣ２０のノックダウン活性はこのネガティブコントロールに対する相対パーセントで表した。Ａ１９Ｓ２１ ＭＤ８、２１／２１ ＭＤ８、及びＬＣ２０はｈＴＮＦ−αｍＲＮＡを標的とするｓｉＲＮＡである。
【０３０６】
ポリペプチドＰＮ６０２は前述の実施例において使用されたポジティブコントロールをアセチル化したものであり、この例においては、ｓｉＲＮＡのヒト単球への有効な送達及びｓｉＲＮＡの媒介によるｈＴＮＦ−αｍＲＮＡレベルの許容ノックダウン活性の両方についてのポジティブコントロールとして使用した。
【０３０７】
データが示すのは、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０がｓｉＲＮＡを細胞内へ送達し、ｓｉＲＮＡ媒介による有効なジーンサイレンシングを可能とすることである。ＰＮ６０２、ＰＮ６８０、及びＰＮ６８１のノックダウン活性を表２５に示す。「＋」のマークは、ペプチド／ｓｉＲＮＡ複合体がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して８０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが２０％低下）を有していたことを意味する。「＋／−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ複合体がＱｎｅｇのネガティブコントロールｓｉＲＮＡに対して約９０％のノックダウン活性（Ｑｎｅｇネガティブコントロールと比較してｍＲＮＡレベルが１０％低下）を有していたことを意味する。最後に「−」は、ペプチド／ｓｉＲＮＡ化合物がＱｎｅｇネガティブコントロールと比較して有意なノックダウン活性を有していなかったことを意味する。
【０３０８】
【表２５】
【０３０９】
表２５の結果は、ポジティブコントロールであるポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６０２と１：５及び１：１０の比率で複合体化された三種類のｓｉＲＮＡはすべて、同じポリペプチドと複合体化されたＱｎｅｇネガティブコントロールと比較してｈＴＮＦ−α遺伝子発現のレベルを中程度に低下させたことを示している。しかし、ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８１と１：５及び１：１０の比率で複合体化された同じｓｉＲＮＡは、ＱｎｅｇネガティブコントロールであるｓｉＲＮＡ／ＰＮ６８１複合体と比べてほとんど乃至全くノックダウン活性を示さなかった。対照的に、ｈＴＮＦ−αに特異的なｓｉＲＮＡのいずれかと１：５の比率で複合体化されたポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドＰＮ６８０は、Ｑｎｅｇ／ＰＮ６８０コントロール複合体と比べて有意なｈＴＮＦ−αｍＲＮＡのノックダウン活性を示した。さらに、１：１０の比率のＬＣ２０／ＰＮ６８０複合体も、Ｑｎｅｇ／ＰＮ６８０コントロール複合体と比べて有意なノックダウン活性を示した。
【０３１０】
健康なヒトの血液をＧｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社（カリフォルニア州）から購入し、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｇｕｅ Ｐｌｕｓ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）の勾配を用いて末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液から分離した。次にＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ社の磁気マイクロビーズを用い、ヒト単球をＰＢＭＣ分画から分離した。単離したヒト単球は、４ｍＭのグルタミン、１０％ＦＢＳ、１×非必須アミノ酸、及び１×ペニシリン−ストレプトマイシン（添加したＩＭＤＭ中に再懸濁し、使用するまで４℃で保存した。
【０３１１】
９６ウェル平底プレートを使い、ＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）中にヒト単球を１０００００個／ウェル／１００μｌで播種した。ポリヌクレオチド送達促進ポリペプチドを、２０ｎＭのｓｉＲＮＡとモル比１：５又は１：１０にてＯｐｔｉＭＥＭ培地中室温で５分間混合した。このインキュベーションの最後にＦＢＳをこの混合物へ添加し（終濃度３％）、この混合物５０μｌを細胞へ添加した。細胞は３７℃で３時間温置した。温置の後、細胞をＶ底プレートへ移し、１５００ｒｐｍで５分間かけてペレット化した。細胞を増殖培地（グルタミン、非必須アミノ酸、及びペニシリン−ストレプトマイシンを含むＩＭＤＭ）中へ再懸濁した。一晩のインキュベーションの後、単球に１ｎｇ／ｍｌのＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ社）を適用して３時間刺激し、ＴＮＦ−α発現レベルを増加させた。ＬＰＳの導入後、ｍＲＮＡ定量のために細胞を上述のように回収し、上清はタンパク質定量が必要な場合は保存した。
【０３１２】
ｍＲＮＡの測定は、Ｇｅｎｏｓｐｅｃｔｒａ社（カリフォルニア州）の分岐ＤＮＡ技術を用いて製造元の説明書に従って行った。細胞中のｍＲＮＡレベルを定量するために、ハウスキーピング遺伝子（ｃｙｐＢ）及び標的遺伝子（ＴＮＦ−α）ｍＲＮＡの両方を測定し、ＴＮＦ−αの読み取りをｃｙｐＢに対して標準化して相対発光単位を得た。
【図面の簡単な説明】
【０３１３】
【図１】様々なｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８濃度及び窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における３本の棒グラフにおいて、Ｇ１４９８濃度は左から１００μｇ／ｍｌ、５０μｇ／ｍｌ、及び１０μｇ／ｍｌであった。Ｎ／Ｐ比０．２及び０．５において、Ｇ１４９８濃度が１０μｇ／ｍｌの時の粒子は非常に小さかった。
【図２】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後直ちに取得した。
【図３】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後３０分経過後に取得した。
【図４】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後６０分経過後に取得した。
【図５】様々な窒素／リン比（Ｎ／Ｐ）におけるｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はボルテックス撹拌あり、右はボルテックス撹拌なしであった。データは混合後２４時間経過後に取得した。
【図６】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８濃度１００μｇ／ｍｌにおける、様々なｐＨ値に対するＧ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。
【図７】塩化ナトリウム濃度を増加させた時の、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。
【図８】様々なＮ／Ｐ比及び成分添加の順番における、ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子径を示す図である。各Ｎ／Ｐ比における２本の棒グラフにおいて、左はｓｉＲＮＡを先に加えて得られたもの、右はペプチドを先に加えて得られたものであった。
【図９】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子の透過電子顕微鏡写真である。長さの指標記号は２００ｎｍを表す。
【図１０】ｓｉＲＮＡ Ｇ１４９８とペプチドＰＮ１８３との縮合体粒子の透過電子顕微鏡写真である。長さの指標記号は２００ｎｍを表す。
【図１１】ｓｉＲＮＡ Ｉｎｍ−４とペプチドＰＮ１８３及びＰＮ９３９との縮合体粒子を含む組成物の鼻腔内投与による、モデルマウスにおけるＬＰＳ刺激によるＴＦＮ−α発現（ｐｇ／ｍｌ）のノックダウンアッセイの結果を示す図である。一番左の棒グラフが緩衝液による対照実験、次がＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータ、その右がグルタルアルデヒド（Ｇ）で架橋したＩｎｍ−４／ＰＮ１８３／ＰＮ９３９縮合体のデータである。プラセボはｓｉＲＮＡを含んでおらず、Ｑｎｅｇは不活性ｓｉＲＮＡを含む。
【図１２】Ｌａｃ−ｚ ｓｉＲＮＡとペプチドＰＮ１８３及び異なる第二のペプチドとの縮合体を用いた、ラット膠肉腫線維芽細胞９Ｌ／ＬａｃＺにおけるｌａｃ−ｚ発現のインビトロノックダウンアッセイの結果を示す図である。一番左の棒グラフがＨｉＰｅｒＦｅｃｔ（商標）（Ｑｉａｇｅｎ社、カリフォルニア州、バレンシア）を用いた比較データであり、それに続くのが本発明の様々な化合物によるデータである。Ｎ／Ｐ比は、ＰＮ１８３が０．７５、第二のペプチドが０．３であった。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
縮合粒子を含む化合物であって、各粒子が１又はそれ以上の短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを具え、該粒子の直径が１０００ｎｍ未満であり、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えることを特徴とする化合物。
【請求項２】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が０．５乃至４００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項３】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項４】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が４０乃至１００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項５】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５乃至９９％であることを特徴とする化合物。
【請求項６】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５乃至５０％であることを特徴とする化合物。
【請求項７】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５０乃至９９％であることを特徴とする化合物。
【請求項８】
請求項１に記載の化合物において、少なくとも３０％の前記粒子が１０００ｎｍ未満の直径を有することを特徴とする化合物。
【請求項９】
請求項１に記載の化合物において、少なくとも３０％の前記粒子が４００ｎｍ未満の直径を有することを特徴とする化合物。
【請求項１０】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも２０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項１１】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも３０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項１２】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザウィルスを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項１３】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがヒトＴＮＦ−αを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項１４】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が架橋されていることを特徴とする化合物。
【請求項１５】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が噴霧乾燥によって調製されることを特徴とする化合物。
【請求項１６】
１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を含むステップと、
水性溶液中で前記ｓｉＲＮＡを前記ペプチドと縮合させて直径１０００ｎｍ未満の粒子を形成するステップと、
を具える方法によって生成される化合物。
【請求項１７】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．２乃至５０であることを特徴とする化合物。
【請求項１８】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至２０であることを特徴とする化合物。
【請求項１９】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至７であることを特徴とする化合物。
【請求項２０】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至２．５であることを特徴とする化合物。
【請求項２１】
請求項１６に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項２２】
請求項１６に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも２０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項２３】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、１１にほぼ等しいか又は１１未満のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２４】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、９にほぼ等しいか又は９未満のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２５】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、約７．４のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２６】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液がボルテックス撹拌されることを特徴とする化合物。
【請求項２７】
請求項１６に記載の化合物において、前記ペプチドを前記ｓｉＲＮＡ分子の水性溶液へ添加することによって前記縮合工程が行われることを特徴とする化合物。
【請求項２８】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が塩を含むことを特徴とする化合物。
【請求項２９】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約１Ｍ未満又は約１Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３０】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約０．５Ｍ未満又は約０．５Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３１】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約０．２５Ｍ未満又は約０．２５Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３２】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項３３】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡがＴＮＦ−αを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項３４】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡが、配列番号６２及び６３のＧ１４９８、配列番号６０及び６１のＧ８２８６、配列番号５８及び５９のＧ８２８２、配列番号５６及び５７のＧ６１２９、配列番号５４及び５５のＧ６１２４、配列番号５２及び５３のＧ３８１７、配列番号５０及び５１のＧ３８０７、配列番号４８及び４９のＧ３７８９、並びにこれらの組み合わせから選択されることを特徴とする化合物。
【請求項３５】
請求項１に記載の化合物において、前記リボ核酸剤が配列番号６２及び６３のＧ１４９８であることを特徴とする化合物。
【請求項３６】
請求項１に記載の化合物において、前記化合物が、ｓｉＲＮＡ単独の場合と比較してインフルエンザウィルスの増殖を２分の１に低下させることを特徴とする化合物。
【請求項３７】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが１２０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項３８】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが６０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項３９】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが３０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項４０】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が１乃至１００であることを特徴とする化合物。
【請求項４１】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が５乃至３０であることを特徴とする化合物。
【請求項４２】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が９乃至１５であることを特徴とする化合物。
【請求項４３】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つがタンパク質導入ドメインを具えることを特徴とする化合物。
【請求項４４】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つが粘膜透過修飾因子であることを特徴とする化合物。
【請求項４５】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つがＰＥＧ化されていることを特徴とする化合物。
【請求項４６】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドのうち少なくとも一つが、配列番号２８のＰＮ１８３、配列番号３７のＰＮ８２６、配列番号３８のＰＮ８６１、配列番号３９のＰＮ９２４、配列番号３４のＰＮ９３９、及びこれらの変異体から選択されることを特徴とする化合物。
【請求項４７】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つが配列番号２８のＰＮ１８３であることを特徴とする化合物。
【請求項４８】
化合物の生成方法において、１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
水性溶液中で前記ｄｓＲＮＡを前記ペプチドと縮合させて直径が１０００ｎｍ未満の粒子を形成するステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項４９】
請求項４８に記載の方法において、前記粒子が架橋されていることを特徴とする方法。
【請求項５０】
化合物の生成方法において、
（ａ）１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
（ｂ）水性溶液中に前記ｓｉＲＮＡを溶解させるステップと、
（ｃ）前記ペプチドを前記水性溶液へ添加して直径が１０００ｎｍ未満の粒子を縮合させるステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項５１】
化合物の生成方法において、
（ａ）１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
（ｂ）水性溶液中に前記ペプチドを溶解させるステップと、
（ｃ）前記ｓｉＲＮＡを前記水性溶液へ添加して直径が１０００ｎｍ未満の粒子を縮合させるステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項５２】
請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物と担持体を具えることを特徴とする医薬組成物。
【請求項５３】
請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物を具える治療上有効な量の医薬組成物を必要な対象に投与するステップを具え、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とするインフルエンザの治療方法。
【請求項５４】
請求項５３に記載の方法において、前記ｓｉＲＮＡが配列番号６２及び６３のＧ１４９８であることを特徴とする方法。
【請求項５５】
インフルエンザ及び関節リウマチを含むヒトの疾患又は状態の兆候並びに症状を治療するための薬物としての請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物の使用。
【請求項５６】
インフルエンザ及び関節リウマチを含むヒトの疾患又は状態の兆候並びに症状を治療するための薬物の製造における請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物の使用。
【請求項５７】
直径１０００ｎｍ未満の縮合粒子を具える化合物の使用において、該粒子が、インフルエンザ及び関節リウマチを含む、ヒトの疾患又は状態の兆候及び症状を治療するための薬物の製造において、１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを具え、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えることを特徴とする化合物の使用。
【請求項５８】
請求項５７に記載の使用において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザウィルスを標的とすることを特徴とする化合物の使用。
【請求項１】
縮合粒子を含む化合物であって、各粒子が１又はそれ以上の短鎖干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを具え、該粒子の直径が１０００ｎｍ未満であり、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えることを特徴とする化合物。
【請求項２】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が０．５乃至４００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項３】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項４】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が４０乃至１００ｎｍであることを特徴とする化合物。
【請求項５】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５乃至９９％であることを特徴とする化合物。
【請求項６】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５乃至５０％であることを特徴とする化合物。
【請求項７】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドが前記粒子の質量の５０乃至９９％であることを特徴とする化合物。
【請求項８】
請求項１に記載の化合物において、少なくとも３０％の前記粒子が１０００ｎｍ未満の直径を有することを特徴とする化合物。
【請求項９】
請求項１に記載の化合物において、少なくとも３０％の前記粒子が４００ｎｍ未満の直径を有することを特徴とする化合物。
【請求項１０】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも２０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項１１】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも３０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項１２】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザウィルスを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項１３】
請求項１に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがヒトＴＮＦ−αを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項１４】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が架橋されていることを特徴とする化合物。
【請求項１５】
請求項１に記載の化合物において、前記粒子が噴霧乾燥によって調製されることを特徴とする化合物。
【請求項１６】
１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を含むステップと、
水性溶液中で前記ｓｉＲＮＡを前記ペプチドと縮合させて直径１０００ｎｍ未満の粒子を形成するステップと、
を具える方法によって生成される化合物。
【請求項１７】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．２乃至５０であることを特徴とする化合物。
【請求項１８】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至２０であることを特徴とする化合物。
【請求項１９】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至７であることを特徴とする化合物。
【請求項２０】
請求項１６に記載の化合物において、各ペプチドの電荷比Ｎ／Ｐが０．５乃至２．５であることを特徴とする化合物。
【請求項２１】
請求項１６に記載の化合物において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項２２】
請求項１６に記載の化合物において、前記粒子が少なくとも２０ｍＶの大きさのゼータ電位を有することを特徴とする化合物。
【請求項２３】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、１１にほぼ等しいか又は１１未満のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２４】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、９にほぼ等しいか又は９未満のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２５】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が、約７．４のｐＨを有することを特徴とする化合物。
【請求項２６】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液がボルテックス撹拌されることを特徴とする化合物。
【請求項２７】
請求項１６に記載の化合物において、前記ペプチドを前記ｓｉＲＮＡ分子の水性溶液へ添加することによって前記縮合工程が行われることを特徴とする化合物。
【請求項２８】
請求項１６に記載の化合物において、前記水性溶液が塩を含むことを特徴とする化合物。
【請求項２９】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約１Ｍ未満又は約１Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３０】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約０．５Ｍ未満又は約０．５Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３１】
請求項２８に記載の化合物において、前記水性溶液が約０．２５Ｍ未満又は約０．２５Ｍに等しい濃度の塩化ナトリウムを有することを特徴とする化合物。
【請求項３２】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項３３】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡがＴＮＦ−αを標的とすることを特徴とする化合物。
【請求項３４】
請求項１に記載の化合物において、前記ｓｉＲＮＡが、配列番号６２及び６３のＧ１４９８、配列番号６０及び６１のＧ８２８６、配列番号５８及び５９のＧ８２８２、配列番号５６及び５７のＧ６１２９、配列番号５４及び５５のＧ６１２４、配列番号５２及び５３のＧ３８１７、配列番号５０及び５１のＧ３８０７、配列番号４８及び４９のＧ３７８９、並びにこれらの組み合わせから選択されることを特徴とする化合物。
【請求項３５】
請求項１に記載の化合物において、前記リボ核酸剤が配列番号６２及び６３のＧ１４９８であることを特徴とする化合物。
【請求項３６】
請求項１に記載の化合物において、前記化合物が、ｓｉＲＮＡ単独の場合と比較してインフルエンザウィルスの増殖を２分の１に低下させることを特徴とする化合物。
【請求項３７】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが１２０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項３８】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが６０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項３９】
請求項１に記載の化合物において、各ペプチドが３０ｋＤａ未満の質量を有することを特徴とする化合物。
【請求項４０】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が１乃至１００であることを特徴とする化合物。
【請求項４１】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が５乃至３０であることを特徴とする化合物。
【請求項４２】
請求項１に記載の化合物において、ｐＨ７．４におけるペプチドの正電荷数が９乃至１５であることを特徴とする化合物。
【請求項４３】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つがタンパク質導入ドメインを具えることを特徴とする化合物。
【請求項４４】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つが粘膜透過修飾因子であることを特徴とする化合物。
【請求項４５】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つがＰＥＧ化されていることを特徴とする化合物。
【請求項４６】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドのうち少なくとも一つが、配列番号２８のＰＮ１８３、配列番号３７のＰＮ８２６、配列番号３８のＰＮ８６１、配列番号３９のＰＮ９２４、配列番号３４のＰＮ９３９、及びこれらの変異体から選択されることを特徴とする化合物。
【請求項４７】
請求項１に記載の化合物において、前記ペプチドの少なくとも一つが配列番号２８のＰＮ１８３であることを特徴とする化合物。
【請求項４８】
化合物の生成方法において、１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
水性溶液中で前記ｄｓＲＮＡを前記ペプチドと縮合させて直径が１０００ｎｍ未満の粒子を形成するステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項４９】
請求項４８に記載の方法において、前記粒子が架橋されていることを特徴とする方法。
【請求項５０】
化合物の生成方法において、
（ａ）１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
（ｂ）水性溶液中に前記ｓｉＲＮＡを溶解させるステップと、
（ｃ）前記ペプチドを前記水性溶液へ添加して直径が１０００ｎｍ未満の粒子を縮合させるステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項５１】
化合物の生成方法において、
（ａ）１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを提供するステップであって、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えるステップと、
（ｂ）水性溶液中に前記ペプチドを溶解させるステップと、
（ｃ）前記ｓｉＲＮＡを前記水性溶液へ添加して直径が１０００ｎｍ未満の粒子を縮合させるステップと、
を具えることを特徴とする方法。
【請求項５２】
請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物と担持体を具えることを特徴とする医薬組成物。
【請求項５３】
請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物を具える治療上有効な量の医薬組成物を必要な対象に投与するステップを具え、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザを標的とすることを特徴とするインフルエンザの治療方法。
【請求項５４】
請求項５３に記載の方法において、前記ｓｉＲＮＡが配列番号６２及び６３のＧ１４９８であることを特徴とする方法。
【請求項５５】
インフルエンザ及び関節リウマチを含むヒトの疾患又は状態の兆候並びに症状を治療するための薬物としての請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物の使用。
【請求項５６】
インフルエンザ及び関節リウマチを含むヒトの疾患又は状態の兆候並びに症状を治療するための薬物の製造における請求項１乃至４７のいずれか１項に記載の化合物の使用。
【請求項５７】
直径１０００ｎｍ未満の縮合粒子を具える化合物の使用において、該粒子が、インフルエンザ及び関節リウマチを含む、ヒトの疾患又は状態の兆候及び症状を治療するための薬物の製造において、１又はそれ以上の短鎖干渉リボ核酸（ｓｉＲＮＡ）及び１又はそれ以上のペプチドを具え、各ペプチドが配列番号２８乃至３７、４２乃至４３、及び６７乃至９５から選択される配列を具えることを特徴とする化合物の使用。
【請求項５８】
請求項５７に記載の使用において、前記直径が１０乃至３００ｎｍであり、前記ｓｉＲＮＡがインフルエンザウィルスを標的とすることを特徴とする化合物の使用。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【公表番号】特表２００９−５１１６００（Ｐ２００９−５１１６００Ａ）
【公表日】平成２１年３月１９日（２００９．３．１９）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−５３５７３５（Ｐ２００８−５３５７３５）
【出願日】平成１８年１０月１３日（２００６．１０．１３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００６／０４０１７４
【国際公開番号】ＷＯ２００７／０４７４８２
【国際公開日】平成１９年４月２６日（２００７．４．２６）
【出願人】（５０７３２８１８４）エムディーアールエヌエー，インコーポレイテッド (29)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２１年３月１９日（２００９．３．１９）
【国際特許分類】
【出願日】平成１８年１０月１３日（２００６．１０．１３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００６／０４０１７４
【国際公開番号】ＷＯ２００７／０４７４８２
【国際公開日】平成１９年４月２６日（２００７．４．２６）
【出願人】（５０７３２８１８４）エムディーアールエヌエー，インコーポレイテッド (29)
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]