Ｔ細胞における抗原特異性アポトーシスの誘導のためのリガンド
【課題】 Ｔ細胞の表面で発現した分子に結合し、活性化Ｔ細胞において抗原特異性アポトーシスを誘起する単離されたリガンドの提供。
【解決手段】 本発明によれば、Ｔ細胞表面分子のＣＴＬＡ４に結合し、活性化Ｔ細胞にて抗原特異性アポトーシスを誘起するリガンドが得られる。
【解決手段】 本発明によれば、Ｔ細胞表面分子のＣＴＬＡ４に結合し、活性化Ｔ細胞にて抗原特異性アポトーシスを誘起するリガンドが得られる。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ｔ細胞における抗原特異性アポトーシスの誘導のためのリガンドに関する。
【０００２】
政府援助
本明細書に記載した研究は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈにより授与された基金ＲＯ１ＣＡ４０２１６およびＰＯ１ＡＩ３５２２５の下で支援された。そのため米国政府は本発明において特定の権利を有する。
【背景技術】
【０００３】
抗原特異的Ｔ細胞応答の誘導にはＴ細胞上の細胞表面受容体および抗原表示細胞上のリガンドの間で多重の相互作用が必要である。最初の相互作用はＴ細胞受容体／ＣＤ３複合体と、Ｔ細胞受容体に対する抗原ペプチドを表示する主要な組織適合複合体分子の間であり、それがＴ細胞の抗原特異的シグナルの引き金となる。この抗原特異的シグナルに加え、Ｔ細胞応答には２番目の共刺激シグナルが必要である。共刺激シグナルは細胞表面受容体ＣＤ２８を通してＴ細胞を刺激することによりＴ細胞上発生させることができる（ハーディング，Ｆ．Ａ．，Ｎａｔｕｒｅ ３５６，６０７−６０９（１９９２））。ＣＤ２８のリガンドは抗原表示細胞（ＡＰＣｓ）上で同定されている。ＣＤ２８リガンドにはタンパクのＢ７ファミリーの構成員、例えばＢ７−１（ＣＤ８０）およびＢ７−２（ＣＤ８６）が含まれる（フリードマン，Ａ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７，３２６０−３２６７（１９８７）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．１４３，２７１４−２７２２（１９８９）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，６２５−６３１（１９９１）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６２，９０９−９１１（１９９３）；アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，２１８５−２１９２（１９９３））。さらに、Ｂ７−１およびＢ７−２はＣＴＬＡ４と称するＣＤ２８に関連したＴ細胞上の別の表面受容体に結合することが示されている（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６２，９０９−９１１（１９９３））。Ｔ細胞上に本質的に発現するＣＤ２８に比較して、ＣＴＬＡ４は活性化によりＴ細胞上に誘導される（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６，１５９５−１６０４（１９９２））。ＣＴＬＡ４の機能的役割は知られていないが、ＣＴＬＡ４がＴ細胞に共刺激シグナルを送る時にＣＤ２８と相乗作用を示しうる証拠がいくつかある（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６，１５９５−１６０４（１９９２）；ダムレ，Ｎ．Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２，２６８６−２６９７（１９９４））。
【０００４】
共刺激シグナルが存在しない時にＴ細胞に抗原特異的シグナルを送ると、Ｔ細胞応答を誘起しないが、むしろＴ細胞の非反応すなわちアネルギー状態を誘起するのが見出されている（シュヴァルツ，Ｒ．Ｈ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４８，１３４９（１９９０）；ジェンキンス，Ｍ．Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４０，３３２４（１９８８）参照）。臨床の場の数という面では、Ｔ細胞応答を阻害するのが望ましい（例えば移植または自己免疫障害において）。従って、治療のアプローチとしてＴ細胞の共刺激シグナルを阻止して抗原特異的Ｔ細胞非応答を誘起することが提唱されている。例えば、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方を結合するＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパクは、異型的および外因性の移植片の拒絶を阻害するために用いられている（ツルカ，Ｌ．Ａ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９，１１１０２−１１１０５（１９９２）；レンショウ，Ｄ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５７，７８９−７９２（１９９２））。同様に、Ｂ７−１および／またはＢ７−２と反応する抗体はイン・ビトロでのＴ細胞の増殖およびＩＬ−２産生を阻害し、イン・ビボでの抗原に対する最初の免疫応答を阻害するのに使用されている（ハスコック，Ｋ．Ｓ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６２，９０５−９０７（１９９３）；アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）；パワーズ，Ｇ．Ｄ．ら、Ｃｅｌｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５３，２９８−３１１（１９９４）；チェン，Ｃ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２，２１０５−２１１４（１９９４））。
【０００５】
抗原に対する不必要なＴ細胞反応を避けるためのアネルギー誘起の別のアプローチは、抗原に特異的なＴ細胞をクローン的に排除し、それによりＴ細胞のレパートリーから抗原特異的Ｔ細胞を除去することである。イン・ビボでは、胸腺におけるＴ細胞の成熟が、潜在的な自己反応性Ｔ細胞のクローン的排除を引き起こす。さらに、予め活性化したＴ細胞がクローンの展開後の末梢において選択的に枯渇し、エフェクター機能を生じるという証拠が増えつつある（ウェッブ，Ｓ．ら、Ｃｅｌｌ６３，１２４９−１２５６（１９９０）；ローチャ，Ｂ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５１，１２２５−１２２７（１９９１）；およびラッセル，Ｊ．Ｈ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８８，２１５１−２１５５（１９９１））。Ｔ細胞を含む多くの細胞型の排除または除去は、アポトーシスと称する機構すなわちプログラムされた細胞死により引き起こされる。細胞におけるアポトーシスの発生は、細胞収縮、核崩壊およびＤＮＡの分断といった様相に特徴づけられる（コーエン，Ｊ．Ｊ．ら、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０，２６７−２９３（１９９２）に記述されている）。Ｆａｓおよび腫瘍壊死因子受容体を含むいくつかの細胞表面分子は、ライゲートする時に細胞にアポトーシスを誘起できることが確認されている（ヨネハラ，Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６９，１７４７−１７５６（１９８９）；トゥラウズ，Ｂ．Ｃ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４５，３０１−３０５（１９８９）；イトウ，Ｎ．ら、Ｃｅｌｌ６６，２３３−２３９（１９９１）；およびグリーンブラット，Ｍ．Ｓ．ら、Ｂｌｏｏｄ８０，１３３９−１３４４（１９９２））。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、これらのアポトーシス分子には、Ｔ細胞系列（ｌｉｎｅａｇｅ）を限定するものがなく、抗原に特異的な方法でアポトーシスを誘起するものもない。抗原刺激に依存した方法でＴ細胞をクローン的に排除する能力は、種々の臨床の場において対象に付随する有害な副作用を伴う慢性的な全身の免疫抑制を必要としない、Ｔ細胞応答の長期的阻害の方法を提供する。したがって、抗原特異的なアポトーシスを惹起しうるリガンドの発見が望まれている。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
発明の要約
本発明は、少なくともある程度、Ｔ細胞表面分子に結合し、活性化Ｔ細胞における抗原特異的アポトーシスを誘起する新規なリガンドの発見に基づくものである。好ましくは、リガンドはＴ細胞表面分子ＣＴＬＡ４、とりわけヒトＣＴＬＡ４に結合する抗体、または抗体断片である。既知ＣＴＬＡ４リガンドＢ７−１およびＢ７−２により認識された（複数の）エピトープとは異なる、ＣＴＬＡ４上に結合する抗ＣＴＬＡ４抗体は、とりわけ抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起するのに使用するのが好ましい。抗体はポリクローナルもしくはモノクローナル抗体またはそれらの断片でよい。キメラおよびヒト化モノクローナル抗体、およびそれらの断片は、本発明の範疇に入る。別の態様において、リガンドはＴ細胞アポトーシスを誘起できるＢ７−１およびＢ７−２と異なる新規のＣＴＬＡ４リガンド可溶性組換え体である。また別に、リガンドはＣＤ２８に結合することなくＣＴＬＡ４に結合するＢ７−１またはＢ７−２を改変した形態でもよい（例えばＢ７−１またはＢ７−２の改変体は本発明の抗体により認識されるＣＴＬＡ４上の同一のエピトープに結合し、Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する）。
【０００８】
本発明の別の態様は、既知のＢ７−１およびＢ７−２リガンドにより結合されるエピトープとは異なるＣＴＬＡ４上のエピトープに結合し、Ｔ細胞のアポトーシスを誘起するリガンドに係わる。好ましくは、本発明のリガンド例えば抗体により認識されるＣＴＬＡ４エピトープは、アミノ酸配列：
【化１】
【０００９】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、好ましくは０〜５、さらに好ましくは０〜３である。）を含有または包含する。このＣＴＬＡ４エピトープは、ヒトＣＴＬＡ４においてアミノ酸位置５９〜６４で見出される。従って、典型的なものでは、Ｘａａはアミノ側もしくはカルボキシ側のどちらかで、またはアミノ側およびカルボキシ側の両方で見出される、ヒトＣＴＬＡ４アミノ酸配列（配列番号：３６）におけるエピトープのさらなるアミノ酸残基である。また別に、Ｘａａは得られるペプチドの溶解性を高めるか、または得られたペプチドを免疫原として使用するための免疫原性を増強するアミノ酸残基でもよい。例えば、Ｘａａはペプチドの溶解性を高めるために加えることができる荷電アミノ酸（例えばリジン、アルギニン）でよい。また別に、Ｘａａは得られたペプチドの二量体形成を増強するために加えられるシステインでもよい。
【００１０】
本発明のリガンドは、医薬的に許容できる担体と組み合わせた時に、医薬的投与に適した組成物として用いることができる。
【００１１】
本発明のリガンドは、イン・ビトロまたはイン・ビボのどちらかで、Ｔ細胞アポトーシスを誘起することにより、抗原に特異的な方法で活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するのに有用である。一の態様において、活性化Ｔ細胞はイン・ビトロでＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてＴ細胞を刺激する１番目の物質と、およびＣＴＬＡ４上のエピトープを架橋する２番目の物質と接触するか、またはＴ細胞においてアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４−媒介経路を通じて細胞内シグナルを提供する。また別に、２番目の物質は医薬的に許容できる担体と共に対象に投与し、イン・ビボで対象にＴ細胞アポトーシスを誘起する。好ましい２番目の物質は、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体である。ＣＴＬＡ４−媒介経路を通じたアポトーシスの誘起に加えて、１またはそれ以上のさらなる物質を対象に投与し、Ｔ細胞に刺激シグナルを送るのを阻害することができる。例を挙げると、対象における（複数の）Ｔ細胞成長因子の産生または機能を阻害する物質、例えば抗ＩＬ−２受容体抗体、抗ＩＬ−２抗体またはシクロスポリンＡもまた、対象に投与することができる。また別に、またはさらに、Ｔ細胞に共刺激シグナルを送るのを阻害する、別の物質、例えばＣＤ２８並びにＢ７−１および／またはＢ７−２の間の相互作用を阻害する分子（例えば抗体または可溶性融合タンパク）もまた、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する物質と一緒に投与することができる。
【００１２】
本明細書に記載した方法に準じた、アポトーシスの誘起によるＴ細胞のクローン的排除は、種々の臨床の場に適用される。例えば、異種反応性（ａｌｌｏｒｅａｃｔｉｖｅ）のＴ細胞を移植の受容者から排除し、移植細胞、組織または器官の拒絶を阻害することができる。さらに、骨髄移植の前に、供与体の骨髄から異種反応性Ｔ細胞を排除し、移植受容者における移植片対宿主疾患を阻害できる。その他の適用として、自己反応性Ｔ細胞を除去して自己免疫障害を処置し、およびアレルゲン特異的Ｔ細胞を除去してアレルギーを処置する。表面でＣＴＬＡ４を発現する、ウイルス感染したまたは悪性のＴ細胞もまた、本発明の方法に準じて排除できる。
【００１３】
Ｔ細胞におけるアポトーシスの誘起を提供するのに加えて、本発明はまたＴ細胞アポトーシスを阻害する方法をも提供する。一の態様において、Ｔ細胞アポトーシスは、Ｔ細胞上のＣＴＬＡ４、および抗原表示細胞でアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドとの間の相互作用で干渉することにより阻害される。ＣＴＬＡ４抗体もしくはそれらの断片（例えばＦａｂ断片）の阻止形態またはＣＴＬＡ４リガンドの可溶性阻止形態は、Ｔ細胞アポトーシスの阻害に用いることができる。また別に、細胞内で作用して、ＣＴＬＡ４−媒介経路を通じてＴ細胞のアポトーシスを阻害する物質を用いることができる。アポトーシスを阻害する方法は、例えば腫瘍細胞および病原体（例えば細菌、ウイルス、菌類、寄生虫等）に対するＴ細胞応答を増強し、予防接種の効果を増強するのに有用である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
発明の詳しい説明
本発明は、少なくともある程度、活性化Ｔ細胞上のＴ細胞表面分子、例えばＣＴＬＡ４の架橋が、ＴＣＲ／ＣＤ３複合体を介した活性化Ｔ細胞へのシグナルの配送と共に、Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するという発見に基づいている。抗原がＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてシグナルを配送するために用いられる場合、結果的に抗原特異的アポトーシスを引き起こす。従って、本発明は、抗原に特異的な方法で活性化Ｔ細胞をクローン的に排除させる方法を提供する。
【００１５】
本発明の一つの態様として、Ｔ細胞表面に存在する分子に結合する新規な単離リガンドを提供し、活性化Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する。本明細書で用いる「リガンド」は標的分子に特異的な反応性（すなわち特異的に認識し、そして結合する）を示す分子である。本発明のリガンドは、Ｔ細胞特異的表面分子に結合し、Ｔ細胞のアポトーシスシグナルの引き金となる。表面分子、すなわち、「Ｔ細胞特異性」は、別の細胞型に比較して独占的にまたは優先的に（すなわち優越して）Ｔリンパ球に発現する。本発明のリガンドが結合する、好ましいＴ細胞表面分子はＣＴＬＡ４である。一つの態様において、ＣＴＬＡ４は配列番号：３６（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１）をも参照）に示すアミノ酸配列を有し、配列番号：３５（ダリアバッハ，Ｆ．ら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８，１９０１−１９０５（１９８８）をも参照）に示すヌクレオチド配列を有するｃＤＮＡによりコード化されるヒトタンパクを表す。別の態様において、ＣＴＬＡ４は別の哺乳動物種からのヒトタンパク相同体、例えばマウスＣＴＬＡ４を表す（マウスＣＴＬＡ４をコード化したｃＤＮＡはブルネット，Ｊ．Ｆ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３２８，２６７−２７０（１９８７）に記載されている）。さらに、タンパクに結合するリガンドは、Ｔ細胞特異性発現を示し、Ｔ細胞に抗原特異性アポトーシスを媒介することができるＣＴＬＡ４（例えば相同のアミノ酸配列を有する）に構造的に関連しており、本発明の意図するところである。
【００１６】
本発明のリガンドは抗原特異的な態様で、活性化Ｔ細胞にアポトーシスまたはアポトーシスシグナルを誘起することができる。「アポトーシス」なる用語は細胞収縮、核崩壊、および最も典型的な細胞ＤＮＡの分断の存在により特徴づけられる、プログラムされた細胞死の細胞の過程を記載することを意味する。「抗原特異性」アポトーシスは、Ｔ細胞集団の中で、アポトーシスが特定の抗原、例えば同種抗原または自己抗原に特異性を有するＴ細胞にのみアポトーシスが起こることを意味する。抗原特異性アポトーシスは活性化Ｔ細胞を抗原および本発明のＣＴＬＡ４リガンドの両方で刺激することにより達成できる。また別に非抗原特異性（すなわちポリクローナル）アポトーシスは、非抗原特異的シグナルをＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、例えば抗ＣＤ３抗体を本発明のＣＴＬＡ４リガンドと共に、Ｔ細胞に送ることにより達成できる。アポトーシスは表面上にＣＴＬＡ４を発現する「活性化」Ｔ細胞に誘起される。Ｔ細胞は抗原に特異的な方法で、例えばＴ細胞を共刺激シグナルと共に（例えばＣＤ２８経路を通じてシグナルを送る）抗原で刺激することによりＣＴＬＡ４を発現するように活性化できる。また別に、Ｔ細胞は、例えば、ミトゲン例えば植物性赤血球凝集素（ＰＨＡ）またはフォルボールエステル例えばフォルボールミリスティックアセテート（ＰＭＡ）と培養することにより、ポリクローナル的に活性化できる。
【００１７】
好ましい態様において、本発明のリガンドはＣＴＬＡ４に結合する抗体（本明細書で抗ＣＴＬＡ４抗体とも称する）である。本明細書で用いる「抗体」なる用語は、免疫グロブリン分子および免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分、すなわち抗原例えばＣＴＬＡ４に特異的に結合する（免疫反応する）抗原結合部位を含有する分子を意味する。構造的には、最も簡単な天然に存在する抗体（例えばＩｇＧ）は、４個のポリペプチド鎖、２個の重（Ｈ）鎖および２個の軽（Ｌ）鎖を含有し、ジスルフィド結合により内部で結合している。抗体の抗原結合機能は、天然に存在する抗体の断片により実行できることが示されている。従って、これらの抗原結合断片もまた「抗体」なる用語で表す。抗体なる用語の範疇に入る結合断片の実例としては、（ｉ）ＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨ１領域から成るＦａｂ断片；（ｉｉ）ＶＨおよびＣＨ１領域から成るＦｄ断片；（ｉｉｉ）抗体の単一のアームのＶＬおよびＶＨ領域から成るＦｖ断片；（ｉｖ）ＶＨ領域から成るｄＡｂ断片（ワードら、Ｎａｔｕｒｅ ３４１，５４４−５４６（１９８９））；（ｖ）単離した相補的決定部域（ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ：ＣＤＲ）；および（ｖｉ）蝶番部域でジスルフィド橋により連結された２個のＦａｂ断片を含む２価の断片である、Ｆ（ａｂ’）２断片が含まれる。さらにＦｖ断片の２個の領域は別の遺伝子によりコード化されるが、合成リンカーは、組換え法により単一のタンパク鎖（一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として既知；バードら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２，４２３−４２６（１９８８），およびフストンら、ＰＮＡＳ ８５，５８７９−５８８３（１９８８））にできるように作ることができる。このような一本鎖抗体もまた「抗体」なる用語の範疇に入る。アポトーシスを誘起する好ましい抗体断片は、標的抗原例えばＦ（ａｂ’）２断片のような２価の断片を架橋する能力のあるものである。また別に、それ自身は標的抗原を架橋しない抗体断片（例えばＦａｂ断片）は、それにより標的抗原と架橋する抗体断片を架橋させる二次的な抗体と組み合わせて用いることができる。さらに、非架橋抗体断片（例えばＦａｂ断片）は、以下に記載するようにアポトーシスを阻止または阻害するために用いることができる。抗体は本明細書に記載するように通常の方法を用いて分断でき、断片は抗体全体のために記載したのと同一の方法によりスクリーニングして使用することができる。本発明の抗体はＣＴＬＡ４結合タンパクを有する２重に特異的でキメラな分子を含むことをも意味する。
【００１８】
「ＣＴＬＡ４エピトープに対して望ましく結合する特異性」なる言語およびさらに一般的な「特異的に結合する（免疫反応する）抗原結合部位」なる言語は、個々の抗体がＴ細胞表面分子、例えばＣＴＬＡ４と特異的に免疫反応する能力を意味する。すなわち、これは、抗体分子とＣＴＬＡ４の抗原決定因子との間での非無作為結合反応を意味する。望ましい結合特異性は、典型的には、抗体のＣＴＬＡ４抗原および無関係の抗原に差別的に結合し、したがって、とりわけ２個の抗原が独特のエピトープである場合に、２個の異なる抗原を区別する能力を参考にして決定する。ＣＴＬＡ４エピトープに特異的に結合する抗体は、「特異的抗体」と称する。
【００１９】
本明細書で用いる「抗体結合部位」は、抗原に特異的に結合する（免疫反応する）、重および軽鎖可変および超可変部域を包含する、抗体分子の構造的な部分を意味する。種々の形態の“免疫反応する”および“と反応する”なる用語は、抗原決定因子含有分子、および抗体結合部位を含有する分子、例えば抗体分子全体またはそれの一部分の間の結合という意味で本明細書で使用する。
【００２０】
本明細書で用いる「エピトープ」なる用語は、抗体結合部位により免疫学的に結合される、抗原の実際の構造部分を意味する。この用語はまた「抗原決定因子」と互換的にも用いられる。本発明のリガンド、例えば抗体は、好ましくはＢ７−１またはＢ７−２により結合される（複数の）エピトープとは区別される（すなわち、異なる）ＣＴＬＡ４上のエピトープに結合する。すなわち、ＣＴＬＡ４リガンドはＣＴＬＡ４上のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは区別されるＣＴＬＡ４上の部位に結合する。ＣＴＬＡ４リガンドの、Ｂ７−１またはＢ７−２結合部位とは区別されるＣＴＬＡ４エピトープへの結合は、リガンドがＢ７−１またはＢ７−２のＣＴＬＡ４への結合を阻害する、またはその逆の不能力性（すなわち、Ｂ７−１またはＢ７−２の、ＣＴＬＡ４リガンドのＣＴＬＡ４に対する結合を阻害するための不能力性）により示される。これは、実施例２に記載するように、例えば酵素連結免疫吸着検定（ＥＬＩＳＡ）並びに、可溶性Ｂ７−１、Ｂ７−２およびＣＴＬＡ４融合タンパクを用いて評価することができる。好ましくは、Ｆａｂ断片を、抗体がＢ７−１またはＢ７−２のＣＴＬＡ４への結合を阻害し、立体障害による非特異的阻害を減少させる能力を評価するために用いる。
【００２１】
本発明のＣＴＬＡ４リガンドが結合する、好ましいヒトＣＴＬＡ４エピトープには、アミノ酸配列：
【化２】
【００２２】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、さらに好ましくは０〜１０、よりさらに好ましくは０〜５、最も好ましくは０〜３である。）を含有または包含する。天然のヒトＣＴＬＡ４では、この配列は相補的決定部域２（ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｙｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇｒｅｇｉｏｎ２：ＣＤＲ２）様部域の細胞内領域に、配列番号：３６のアミノ酸位置５９〜６４（配列番号：３６）に位置する。従って、典型的なものでは、ＸａａはヒトＣＴＬＡ４のコアエピトープのアミノまたはカルボキシ側のどちらかか、またはアミノおよびカルボキシ側の両方に見出されるさらなるアミノ酸残基である（これのアミノ酸配列の全長を配列番号：３６に示す）。天然のタンパクでは、さらなる、隣接しないアミノ酸残基もまた、抗体により認識されるエピトープの配置に寄与できることが、当業者に理解されるであろう。６個のコアアミノ酸残基の側面になるその他のアミノ酸残基を含有するエピトープを包含する合成ペプチドを作ることができる（すなわちＸａａはまた別に、天然のＣＴＬＡ４タンパクに見出されるものとは異なるアミノ酸残基にできる）。これらの側面にあるアミノ酸は得られるペプチドの特性を変化させる機能（例えば、溶解性の増加、免疫原性の増強または得られるペプチドの二量体形成の亢進）を有することができる。ペプチドを免疫原として用いる場合、１またはそれ以上の荷電アミノ酸（例えばリジン、アルギニン）は、ペプチドの溶解性を増加させ、および／またはペプチドの免疫原性を増加するために含有することができる。また別に、システイン残基は、得られるペプチドの二量体形成を増加させるために含有することができる。
【００２３】
本発明のこれらのおよびその他の態様は、以下の節に詳細に記載する：
【００２４】
Ｉ．ＣＴＬＡ４および抗ＣＴＬＡ４抗体
ＣＴＬＡ４抗原は、免疫細胞に対して抗原を表示する、Ｂリンパ球、専門の抗原表示細胞（例えば単球、樹状突起細胞、ランゲルハン細胞）およびその他の細胞（例えばケラチノサイト、内皮細胞、星状細胞、線維芽細胞、乏突起膠細胞）の表面に見出される共刺激分子に結合できるＴ細胞表面分子のファミリーの一員である。このファミリーの別の一員はＣＴＬＡ４と全アミノ酸の同一性の３１％を共有するＴ細胞表面分子ＣＤ２８である（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１））。ＣＤ２８およびＣＴＬＡ４分子は各々Ｂ７−１およびＢ７−２のような共刺激分子に結合する。しかしながら、抗ＣＤ２８Ｆａｂ断片が、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方による共刺激に対するＴ細胞応答を完全に阻害するのを観察すると、Ｂ７ファミリー共刺激が優勢的にＣＤ２８に媒介されるという仮説が支持される（ギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８８，６５７５−６５７９（１９９１）；およびフリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，２１８５−２１９２（１９９３）参照）。対照的に、Ｔ細胞アポトーシスは新規ＣＴＬＡ４リガンドとの相互作用により、ＣＴＬＡ４に媒介されることが発見されている。
【００２５】
ＣＴＬＡ４分子は、休止Ｔ細胞には発現しないが、活性化により誘起される。例えば正常の休止ヒトＴ細胞をＰＨＡまたはＰＭＡで２４時間刺激した後、ＣＴＬＡ４ｍＲＮＡはＣＤ４＋およびＣＤ８＋サブセットの両方に発現する（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２））。さらに、ＣＴＬＡ４発現はＴ細胞セルライン感染ＨＴＬＶ−ＩおよびＨＩＶに観察されている（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２）；ハーファー，Ｏ．Ｋ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，１１０９４−１１０９８（１９９３）参照）。
【００２６】
Ｔ細胞表面分子例えばＣＴＬＡ４の精製方法は、確立されており、そしてさらに、ＣＴＬＡ４遺伝子およびｃＤＮＡはヒトおよびマウスの両方からクローン化されている（例えば、ダリアバッハ，Ｆ．ら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８，１９０１−１９０５（１９８８）；およびブルネット，Ｊ−Ｆ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３２８，２６７−２７０（１９８７）参照）。ヒトＣＴＬＡ４のヌクレオチド配列および誘導されるアミノ酸配列を、各々配列番号：３５および３６に示す。ＣＴＬＡ４タンパク、またはそれのペプチドは、天然タンパクの精製により、または組換え発現により入手できる。ＣＴＬＡ４の改変した組換え体、例えばＣＴＬＡ４の細胞外領域は、ＣＴＬＡ４コード化ＤＮＡを発現ベクターに入れて発現させ、ベクターを宿主細胞、原核または真核細胞のどちらかに導入することができる。例えば、ＣＴＬＡ４細胞外領域またはそれのペプチドは、細菌細胞例えばＥ．ｃｏｌｉ、昆虫細胞（例えばバキュロウイルス発現系を使用する）、酵母または哺乳動物細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）、ＣＯＳもしくはＮＳＯ細胞に発現できる。その他の適当な宿主細胞および発現ベクターは、ゴエデル、（１９９０）（前掲）に見出され、すなわち当業者に周知である。酵母Ｓ．ｃｅｒｉｖｉｓａｅに発現するベクターの例としては、ｐＹｅｐＳｅｃ１（バルダリら、Ｅｍｂｏ．Ｊ．６，２２９−２３４（１９８７））、ｐＭＦａ（クルジャンおよびヘルスコヴィッツ、Ｃｅｌｌ３０，９３３−９４３（１９８２））、ｐＪＲＹ８８（シュルツら、Ｇｅｎｅ ５４，１１３−１２３（１９８７））およびｐＹＥＳ２（インヴィトロゲンコーポレーション、サンディエゴ、カリフォルニア州）が挙げられる。培養昆虫細胞（ＳＦ９細胞）におけるタンパクの発現に使用可能なバキュロウイルスベクターには、ｐＡｃシリーズ（スミスら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３，２１５６−２１６５（１９８３））およびｐＶＬシリーズ（リュックロー，Ｖ．Ａ．およびサマーズ，Ｍ．Ｄ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ１７０，３１−３９（１９８９））が含まれる。一般的に、ＣＯＳ細胞（グルツマン，Ｙ．，Ｃｅｌｌ２３，１７５−１８２（１９８１））は，ｐＣＤＭ８（シード，Ｂ．，Ｎａｔｕｒｅ ３２９，８４０（１９８７））のようなベクターと一緒に、哺乳動物細胞における一過性の増幅／発現のために用い、一方ＣＨＯ（ｄｈｆｒ−チャイニーズハムスター卵巣：ｄｈｆｒ−Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｈａｍｓｔｅｒ Ｏｖａｒｙ）細胞はｐＭＴ２ＰＣ（カウフマンら、ＥＭＢＯＪ．６，１８７−１９５（１９８７））のようなベクターと、哺乳動物細胞における安定した増幅／発現のために用いられる。ガルフレ，Ｇ．およびミルステイン，Ｃ．（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ７３（１３），３−４６（１９８１）並びにＰｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｓｔｒａｔｅｇｙ ａｎｄ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ，アカデミックプレス、ニューヨーク、ニューヨーク州）に記載されるように、組換えタンパクは、ＮＳＯ骨髄腫セルラインで産生できる。
また別に、ＣＴＬＡ４の組換え細胞外部分は、細菌細胞、例えばＥ．ｃｏｌｉに発現できる。好ましいＥ．ｃｏｌｉ発現系には、誘導可能な発現ベクターｐＴｒｃ（アマンら、Ｇｅｎｅ ６９，３０１−３１５（１９８８））およびｐＥＴ１１（ステュディヤーら、Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、アカデミックプレス、サンディエゴ、カリフォルニア、１８５，６０−８９（１９９０）；ノヴァゲンより入手可能）を含む。ｐＴｒｃベクター系では、宿主ＲＮＡポリメラーゼ転写によりｐｅ１Ｂシグナル配列でハイブリッドｔｒｐ−ｌａｃ融合タンパクから挿入した遺伝子を発現する。誘導後、ペリプラスミック分画から組換えＣＴＬＡ４を精製できる。ｐＥＴ１１ベクター系では、共発現ウイルス性ＲＮＡポリメラーゼ（Ｔ７ｇｎｌ）により媒介されるＴ７ ｇｎ１０−ｌａｃ ０融合プロモーターから転写することにより、非融合タンパクとして標的遺伝子を発現する。このウイルス性ポリメラーゼは、宿主Ｅ．ｃｏｌｉ株ＢＬ２１（ＤＥ３）またはＨＭＳ１７４（ＤＥ３）により、ｌａｃＵＶ５プロモーターの転写制御下で、Ｔ７ｇｎ１を隠す内在性λプロファージから供給される。この系では、組換えＣＴＬＡ４は細胞封入体から変性された形態で精製でき、望む場合は、段階グラジエント透析により変性原を除去して復元できる。Ｅ．ｃｏｌｉにおけるヒトＣＴＬＡ４の細胞外領域の発現については、実施例６でさらに詳細に記載する。
【００２７】
ＣＴＬＡ４の組換え細胞表面形態は、タンパクの膜透過および／または細胞質部分の改変により、哺乳動物の細胞上に発現できる（天然の全長の形態のタンパクは、多くの哺乳動物細胞の表面に効率よく発現しない）。例えば、膜透過および細胞質領域は、分子を細胞表面に繋ぎ止めるためのまた別の構造、例えばグリコフォスファチヂルイノシトール（ｇｐｉ）アンカー（実施例１で記載）または脂肪酸アンカーで置換できる。また別に、ＣＴＬＡ４の細胞表面発現は、異型の膜透過領域を用いて、または細胞質領域を排除することにより達成できる。リンスレイＰ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）に記載するように、ＣＴＬＡ４は可溶性融合タンパク（例えば免疫グロブリン融合タンパク）として哺乳動物にも発現できる。
【００２８】
哺乳動物細胞に発現するためには、通常の技法で、例えばリン酸カルシウムまたは塩化カルシウムの共沈、ＤＥＡＥデキストラン介在トランスフェクション、リポフェクチンまたはエレクトロポレーション（ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ）によりベクターＤＮＡを哺乳動物細胞に誘導する。宿主細胞を形質転換するに適した方法は、サムブロックら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー・プレス（１９８９））およびその他の実験テキストに見出すことができる。哺乳動物細胞で用いる場合、発現ベクターの制御機能は、しばしばウイルスの遺伝物質により提供される。例えば、通常用いられるプロモーターは、ポリオーマ、アデノウイルス２、サイトメガロウイルスおよび最も頻繁に用いられるシミアンウイルス４０に由来する。
【００２９】
哺乳動物細胞またはその他の所に発現するＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチドは、硫酸アンモニウム沈殿、分別カラムクロマトグラフィー（例えばイオン交換、ゲル濾過、電気泳動、親和性クロマトグラフィー等）および最後には結晶化を含む、当業界で標準的な方法で精製できる（一般的には、“Ｅｎｚｙｍｅ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ”，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２２，２３５−５７７（１９７１）参照）。
【００３０】
抗ＣＴＬＡ４抗体は、当業者により、以下の標準的な方法により産生できる。例えば、いろいろな種からのＣＴＬＡ４分子は可溶性形態であっても、膜結合性であっても、抗ＣＴＬＡ４抗体の形成を誘起するために用いることができる。このような抗体はポリクローナルもしくはモノクローナル抗体か、またはこのような抗体の抗原結合断片のどちらでもよい。治療に適用するためにとりわけ重要なことは、Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４上のエピトープを架橋する抗体である。また別に、この「アポトーシス性エピトープ」に特異的に結合するが、ＣＴＬＡ４に架橋せず、アポトーシスを誘起しない、抗体またはそれらの（例えばＦａｂ）断片は、Ｔ細胞アポトーシスを阻害するために治療的に用いることができる。本発明はヒトＣＴＬＡ４（例えば抗ヒトＣＴＬＡ４ ｍＡｂ、好ましくはヒトまたはヒト化ｍＡｂ）およびその他の種例えばサル、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ラット、マウス等のＣＴＬＡ４タンパクに結合する抗体を包含し、獣医学的な目的のために用いることができる。抗ＣＴＬＡ４抗体の産生のための方法を、さらに詳細に以下に記載する：
【００３１】
Ａ．免疫原
「免疫原」なる用語は、ＣＴＬＡ４に対する抗体の調製物に用いるための活性成分として、ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを含有する組成物を記載するために、本明細書で用いる。ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを抗体を誘導するために用いる場合、ペプチドは単独でまたは担体に連結して複合体またはペプチドポリマーとして用いることができる。
【００３２】
適当な抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するために、ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを所望により担体に連結した複合体として、有効な免疫原量の免疫原を含有すべきである。単位投与量あたりのペプチドの有効量は、当業者に周知であるように、とりわけ接種した動物の種、動物の体重および採用した免疫方法に依存する。この免疫原調製物は、典型的なものでは、ペプチドを免疫投与量あたり約１０マイクログラムから約５００ミリグラム、好ましくは投与量あたり約５０マイクログラムから約５０ミリグラム含有する。免疫調製物は、アジュバントを希釈剤の一部として含有することもできる。完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）、不完全フロインドアジュバント（ＩＦＡ）およびミョウバンのようなアジュバントは当業界で周知であり、いくつかの製造元より市販により入手可能である。
【００３３】
当業者は、免疫するために、天然物の形態のＣＴＬＡ４を使用する代わりに、本発明で使用するために抗体を増加できるように、合成ペプチドを代替的に用いることを理解するであろう。可溶性および膜結合性ＣＴＬＡ４タンパクまたはペプチド断片の両方とも、免疫原として用いるのに適しており、同様にまた免疫親和性精製により単離できる。上述のように、または当業界で周知のように単離できるような、ＣＴＬＡ４タンパクの精製体はそれ自体免疫原として直接的に使用できるか、また別に、化学的カップリング法およびＣＴＬＡ４タンパクのクローン化遺伝子を用いる遺伝子操作を含む通常の方法で、適当なキャリヤータンパクに連結することができる。精製ＣＴＬＡ４タンパクは非タンパク性物質、例えば脂質または炭水化物で共有結合的にまたは非共有結合的に修飾して、免疫原性または溶解性を増強できる。また別に、免疫原性を増強するために、精製ＣＴＬＡ４タンパクは、ウイルス性粒子、複製ウイルスまたはその他の微生物と結合またはこれらに挿入することができる。ＣＴＬＡ４タンパクは、例えばウイルス粒子もしくは微生物、またはそれらの免疫原性部分に化学的に結合できる。
【００３４】
説明的な態様において、精製ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチド断片（例えば限定的なタンパク溶解またはＤＮＡ組換え法により産生）は、動物において免疫原であるキャリヤーに結合する。好ましいキャリヤーには、タンパク例えばアルブミン、血清タンパク（例えばグロブリンおよびリポタンパク）およびポリアミノ酸が含まれる。有用なタンパクの実例としては、ウシ血清アルブミン、ウサギ血清アルブミン、甲状腺グロブリン、キーホール・リンペット・ヘモシアニン（ｋｅｙｈｏｌｅ ｌｉｍｐｅｔ ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）、卵のオバルブミンおよびウシガンマーグロブリンが含まれる。合成ポリアミノ酸、例えばポリリジンまたはポリアルギニンもまた有用なキャリャーである。ＣＴＬＡ４タンパクまたはペプチド断片を適当な免疫原性キャリヤーに共有結合させることに関して、当業者に既知の多くの化学的架橋試薬がある。好ましい架橋試薬は、タンパクを漸次的に連結するのに用いることができる異二機能架橋剤である。広範に種々の異二機能架橋剤が当業界に知られており、サクシンイミジル４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）、ｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシサクシンイミドエステル（ＭＢＳ）；Ｎ−サクシンイミジル（４−ヨードアセチル）アミノゼンゾエート（ＳＩＡＢ）、サクシンイミジル４−（ｐ−マレイミドフェニル）ブチレート（ＳＭＰＢ）、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミドハイドロクロライド（ＥＤＣ）；４−サクシンイミジルオキシカルボニル−ａ−メチル−ａ−（２−ピリジルジチオ）−トルン（ＳＭＰＴ）、Ｎ−サクシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、サクシンイミジル６−［３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート］ヘキサノエート（ＬＣ−ＳＰＤＰ）が含まれる。
【００３５】
表面にＣＴＬＡ４タンパクを発現する全形の細胞で動物を単純に免疫するのも望ましい。種々のセルラインを免疫原として用い、活性化Ｔ細胞に限定はしないが、これを含めるＣＴＬＡ４抗原に対するモノクローナル抗体を産生することができる。例えば対象から得た末梢血Ｔ細胞はイン・ビトロで抗ＣＤ３抗体、ＰＨＡまたはＰＭＡで活性化できる。また別に、抗原を提示することにより、共刺激シグナルと共にＴ細胞にＣＴＬＡ４を発現するように抗原特異性（例えば全身反応性）Ｔ細胞クローンを活性化できる。ＣＴＬＡ４特異性抗体を産生する免疫原として用いることができる全形の細胞には、組換えトランスフェクタントも含まれる。例えばＣＯＳおよびＣＨＯ細胞は、実施例１に記載するように、ＣＴＬＡ４−ｇｐｉｃＤＮＡでトランスフェクションすることにより再構築し、それらの表面にＣＴＬＡ４を発現する細胞を産生できる。これらのトランスフェクタント細胞は、次いで免疫原として抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するのに用いることができる。トランスフェクタント細胞のその他の例としては、とりわけＣＴＬＡ４タンパクをグリコシル化できる真核細胞が知られており、細胞表面にトランスフェクトしたＣＴＬＡ４遺伝子を発現するように可動できる任意の方法を用いて、全形細胞免疫原を産生することができる。
【００３６】
ＣＴＬＡ４発現細胞または単離ＣＴＬＡ４タンパクに代わって、ＣＴＬＡ４のペプチド断片を免疫原として用いて、抗ＣＴＬＡ４抗体を産生することができる。好ましい態様において、抗体に結合するＣＴＬＡ４エピトープには、アミノ酸配列：
【００３７】
【化３】
【００３８】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、好ましくは０〜１０、さらに好ましくは０〜５、最も好ましくは０〜３である。）を包含する。従って、配列番号：３３のアミノ酸配列を有するペプチドは免疫原として用いることができる。よって、本発明はさらに、アミノ酸配列：
【００３９】
【化４】
【００４０】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０）を含有する単離ＣＴＬＡ４ペプチドを包含する。
【００４１】
また別に、アポトーシスを誘起できる抗ＣＴＬＡ４抗体が多くのその他のペプチド配列（実施例３に記載するようなファージ表示法（ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）により決定）と交差反応できることが見いだされている。これらのその他のペプチド配列の実例を以下に示す：
【化５】
【００４２】
【化６】
【００４３】
代替のアミノ酸残基を側面につけることができる、太字で括弧で括った６個のアミノ酸（抗体に結合したエピトープを表す）の伸長を含有する、任意のこれらのペプチド、またはその他のペプチドもまた、免疫原として用いて本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を産生でき、本発明に包含される。免疫原として使用するために、ペプチドを上記のように溶解性の上昇および／または免疫原性の増強のために修飾できる。
【００４４】
タンパクまたはペプチドを免疫原として使用するための別法としては、いわゆる遺伝子免疫するために、免疫原としてタンパクまたはペプチドをコードする核酸（例えばＤＮＡ）を使用することができる。従って、「免疫原」なる用語は、それに抗して抗体を増加させるタンパクまたはペプチドをコードする核酸をも含めることを意味する。遺伝子免疫により抗体を増加させるために、当該タンパク（例えばＣＴＬＡ４またはそれらのペプチド）をコードする核酸を含有する発現ベクター構築物は、粒子（例えば金粒子）を構築物で被覆し、粒子を皮膚へ注入することにより、動物（例えばマウス）の皮膚へ細胞内分配される。この操作が、結果的に皮膚にて抗原を産生し、特異的抗体反応を発展させる（タング，Ｄ．Ｃ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３５６，１５２−１５４（１９９２）；アイセンブラウン，Ｍ．Ｄ．ら、ＤＮＡ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２，７９１−７９７（１９９３）；ワング，Ｂ．ら、ＤＮＡ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２，７９９−８０５（１９９３））。
【００４５】
Ｂ．ポリクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体
一般的に、ＣＴＬＡ４免疫原、例えばＣＴＬＡ４タンパクの細胞外領域およびアジュバントを多数回皮下（ｓｃ）または腹膜腔内（ｉｐ）注射することにより、精製ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチド断片に対するポリクローナル抗体を、動物で増加させることができる。ポリクローナル抗ＣＴＬＡ４抗血清は、例えばリンドステン，Ｔ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１，３４８９−３４９９（１９９３）に記載するように、産生できる。説明的な態様において、免疫原性ＣＴＬＡ４タンパク、ペプチドまたは約１μｇ〜１ｍｇのタンパクをフロイント完全アジュバントと組み合わせ、溶液を数箇所で皮内注射して、誘導した物体に抗して、動物を通常的に免疫する。１ヶ月後、フロイント完全アジュバント（またはその他の適当なアジュバント）中の免疫原の元来の量の１／５〜１／１０で、数箇所で皮下注射して動物を免疫促進する。７〜１４日後、動物を出血させ、血清の抗ＣＴＬＡ４力価を（例えばＥＬＩＳＡにより）検定する。力価がプラトーに達するまで動物を免疫促進する。また、ミョウバンのような凝集剤も、免疫応答を増強するために使用することができる。
【００４６】
このような哺乳動物産生抗体分子群は、この群がＣＴＬＡ４に異なる免疫特異性および親和性を有する抗体を含有するので、「ポリクローナル」と称する。次いでこの抗体分子を、哺乳動物から（例えば血液から）回収し、周知の技術、例えばタンパクＡクロマトグラフィーにより単離し、ＩｇＧ分画を得る。抗体の特異性を増強するために、固相固着免疫原を用いる免疫親和性クロマトグラフィーにより抗体を精製できる。免疫原が抗体分子と免疫反応し、固相固着免疫複合体を形成するのに十分な時間、抗体を固相固着免疫原と接触させる。結合した抗体を標準的な方法で複合体から分離する。
【００４７】
Ｃ．モノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体
本明細書で用いる「モノクローナル抗体」または「モノクローナル抗体組成物」なる用語は、ＣＴＬＡ４抗原の粒子エピトープでの免疫反応が可能な抗原結合部位の一種のみを含有する抗体分子群を意味する。このように、モノクローナル抗体組成物は、通常それと免疫反応する特定のＣＴＬＡ４タンパクに単一の結合親和性を示す。好ましくは、対象となる方法で用いるモノクローナル抗体は、さらにヒトに由来するＣＴＬＡ４と免疫反応するという特徴がある。
【００４８】
本発明の組成物および方法に有用なモノクローナル抗体は、Ｔ細胞活性時のＣＴＬＡ４抗原のエピトープに導かれ、抗体およびＣＴＬＡ４抗原間で複合体形成（本明細書ではライゲーションを意味する）し、活性化Ｔ細胞におけるアポトーシスを誘起する。ＣＴＬＡ４のエピトープに対するモノクローナル抗体は、培養中、連続的なセルラインによる、抗体分子の産生を供する方法を用いて調製できる。これらには元来コーラーおよびミルステイン（Ｎａｔｕｒｅ ２５６，４９５−４９７（１９７５））により記載されたハイブリドーマ法およびさらに最近のヒトＢセルハイブリドーマ法（コズボールら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ ４，７２（１９８３））、ＥＤＶハイブリドーマ法（コールら、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、アラン・アール・リス・インコーポレイテッド、７７−９６頁）およびトリオーマ法が含まれるが、これらに限定するものではない。本発明に有用なモノクローナル抗体を有効に生じることができるその他の方法には、ファージ表示法が含まれる（マークスら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１６００７−１６０１０（１９９２））。
【００４９】
一つの態様において、対象方法に用いる抗体調製物は、ハイブリドーマセルラインにより産生したモノクローナル抗体である。ハイブリドーマ融合法は、最初コーラーおよびミルステイン（コーラーら、Ｎａｔｕｒｅ ２５６，４９５−９７（１９７５）；ブラウンら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２７，５３９−４６（１９８１）；ブラウンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５，４９８０−８３（１９８０）；イェーら、ＰＮＡＳ ７６，２９２７−３１（１９７６）；およびイェーら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ２９，２６９−７５（１９８２））により紹介された。従って、本発明のモノクローナル抗体組成物は、下記の段階を含む以下の方法により産生できる。
【００５０】
（ａ）ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチドでの動物の免疫化
免疫は通常ＣＴＬＡ４免疫原を、免疫学的に適した哺乳動物に、免疫学的に有効量すなわち免疫反応を生じるのに十分な量投与することにより達成できる。好ましくは哺乳動物はウサギ、ラットまたはマウスのような齧歯類である。次いで、ＣＴＬＡ４免疫原と免疫反応する抗体分子を分泌する細胞を哺乳動物が産生するのに十分な時間、哺乳動物を保持した。このような免疫反応は、免疫原タンパクの調製物との免疫反応で生み出された抗体分子のスクリーニングにより検出される。所望により、検定で抗体分子により検出される形態のタンパク調製物、例えばＣＴＬＡ４の膜結合形態で、抗体分子をスクリーニングするのが望ましい。これらのスクリーニング法は、当業者に周知であり、例えば酵素連結免疫吸着検定（ＥＬＩＳＡ）および／またはフローサイトメトリーがある。
【００５１】
（ｂ）次に望ましい抗体を分泌する免疫哺乳動物から取り出した抗体産生細胞の懸濁液を調製する。十分な時間の後、マウスを殺し、体細胞抗体産生リンパ球を得る。抗体産生細胞は、用意した動物のリンパ節、脾臓および末梢血から取ることができる。脾臓細胞が好ましく、当業者に周知の方法で生理学的に耐えうる培地中、機械的に個々の細胞に分離できる。マウスリンパ球は、以下に記載するマウス骨髄腫と安定した高い確率で融合する。ラット、ウサギおよびカエル体細胞をも使用することができる。望ましい免疫グロブリンをコードする脾臓細胞染色体は、通常、融合剤、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の存在下、脾臓細胞を骨髄種細胞と融合することにより固定化する。標準的な方法に準じて、任意の数の骨髄腫細胞セルラインを、融合のパートナーとして使用できる；例えばＰ３−ＮＳ１／１−Ａｇ４−１、Ｐ３−ｘ６３−Ａｇ８．６５３またはＳｐ２／Ｏ−Ａｇ１４骨髄腫セルラインである。これらの骨髄腫セルラインは、アメリカンタイプカルチャーコレクション（ＡＴＣＣ）、ロックビル、メリーランド州より入手可能である。
【００５２】
次いで非融合骨髄腫またはリンパ球親細胞が最終的に死ぬ、選択培地、例えばＨＡＴ培地中、望ましいハイブリドーマを含有する、得られた細胞を成長させる。ハイブリドーマ細胞のみが生き残り、単離したクローンを得るための限定的な希釈条件で成長させることができる。ハイブリドーマの上澄を、例えば免疫に用いた抗原を用いた免疫検定法により、望ましい特異性の抗体の存在をスクリーニングする。次に陽性のクローンを限定的な希釈条件でサブクローン化し、産生したモノクローナル抗体を単離できる。その他のタンパクおよびその他の狭雑物を除去するために、モノクローナル抗体を単離および精製する種々の常法がある。モノクローナル抗体の精製のために通常用いられる方法は、硫酸アンモニウム沈殿、イオン交換クロマトグラフィー、および親和クロマトグラフィーが含まれる（ゾラら、Ｍｎｏｃｌｏｎａｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ａｎｔｉｂｏｄｙｓ：Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ Ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、ヒュウレル（編）５１−５２頁（１９８２）（ＣＲＣプレス））。これらの方法に準じて産生したハイブリドーマは、当業界に既知の方法でイン・ビトロまたはイン・ビボで伸長できる。
【００５３】
一般的に個々のセルラインは、イン・ビトロで、例えば実験用培養容器中、伸長でき、単一の特異性モノクローナル抗体を高濃度で含有する培養培地を、デカンテーション、濾過または遠心により収穫できる。また別に、モノクローナル抗体の産生は、体細胞および骨髄腫細胞に元来の融合を提供するために使用した組織適合した形態の動物にハイブリドーマの試料を注射することにより、増強できる。融合細胞ハイブリッドにより特異的モノクローナル抗体を分泌する腫瘍は、注射された動物で成長する。動物の体液、例えば腹水または血清は、高濃度のモノクローナル抗体を提供する。ヒトハイブリドーマまたはＥＢＶハイブリドーマを使用した場合、動物例えばマウスに注射した異種移植片の拒絶を避ける必要がある。免疫不全すなわちヌードマウスを使用でき、またはハイブリドーマを最初に放射線照射ヌードマウスに固体の皮下腫瘍として継代し、イン・ビトロで培養し、次に特異性ヒトモノクローナル抗体を多量に分泌する腹水腫瘍を成長させている、プリスタン・プライム（ｐｒｉｓｔａｎｅ ｐｒｉｍｅｄ）した、放射線照射ヌードマウスに腹膜腔内注射できる。
【００５４】
これらの組成物の調製に有用な培地および動物は、共に当業者に周知であり、市販により入手可能であり、合成培養培地、同系交配マウス等が含まれる。典型的な合成培地は、デュルベッコ最小必須培地（ＤＭＥＭ；デュルベッコら、Ｖｉｒｏｌ．８，３９６（１９５９））に４．５ｇｍ／１グルコース、２０ｍＭグルタミン、および２０％ウシ胎仔血清を補充したものである。典型的な同系交配マウス系列は、Ｂａｌｂ／ｃである。
【００５５】
実施例１は、ネズミ抗ヒトＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の産生について記載しており、これは対象の方法および組成物に使用できる。ＥＲ５．４Ｄ３（４Ｄ３またはＣＴＬＡ４．１とも称する）、ＥＳ５．３Ｄ６（３Ｄ６またはＣＴＬＡ４．２とも称する）、ＥＲ５．３Ｄ８（３Ｄ８またはＣＴＬＡ４．３とも称する）、ＥＳ５．４Ｅ３（４Ｅ３またはＣＴＬＡ４．４とも称す）およびＥＲ４．７Ｇ１１（７Ｇ１１とも称する）抗体を産生するＥＲ５．４Ｄ３、ＥＳ５．３Ｄ６、ＥＳ５．３Ｄ８、ＥＳ５．４Ｅ３およびＥＲ４．７Ｇ１１ハイブリドーマは、各々、ブダペスト条約の規定の下、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、パークローンドライブ、ロックビル、メリーランド州に１９９４年６月３日に寄託した。ＥＲ５．４Ｄ３ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＳ５．３Ｄ６ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＲ５．３Ｄ８ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＳ５．４Ｅ３ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＲ４．７Ｇ１１ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。
【００５６】
Ｄ．キメラおよびヒト化抗ＣＴＬＡ４抗体
非ヒト対象に産生した抗体をヒトで治療的に使用する場合、異質の物としての程度が変わるのが認められ、患者に免疫反応が起こりうる。この問題を最小にまたは排除するための一つのアプローチとして、一般的に免疫を抑制することが好ましく、キメラ抗体誘導体、すなわち非ヒト動物可変部域およびヒト定常部域を組み合わせた抗体分子を産生させる。このような抗体は、上述のモノクローナルおよびポリクローナル抗体と等価であるが、ヒトに投与した場合、免疫原性が少なくなり、従って、患者の耐性がよくなる。
【００５７】
ＣＴＬＡ４と反応するキメラマウス−ヒトモノクローナル抗体（すなわちキメラ抗体）は、当業界に既知の組換えＤＮＡ法により産生できる。例えばネズミ（またはその他の種）抗ＣＴＬＡ４抗体分子の定常部域をコードする遺伝子は、ヒト定常部域をコードする遺伝子と代用される（ロビンソンら、国際特許公開ＰＣＴ／ＵＳ８６／０２２６９；アキラら、ヨーロッパ特許出願１８４１８７；タニグチ，Ｍ．ヨーロッパ特許出願１７１４９６；モリソンら、ヨーロッパ特許出願１７３４９４；ニューベルガーら、ＰＣＴ出願 ＷＯ８６／０１５３３；キャビリーら、米国特許番号４８１６５６７；キャビリーら、ヨーロッパ特許出願１２５０２３；ベターら、（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０，１０４１−１０４３（１９８８））リウら、ＰＮＡＳ ８４，３４３９−３４４３（１９８７）；リウら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３９，３５２１−３５２６（１９８７）；サンら、ＰＮＡＳ ８４，２１４−２１８（１９８７）；ニシムラら、Ｃａｎｃ．Ｒｅｓ．４７，９９９−１００５（１９８７）；ウッドら、Ｎａｔｕｒｅ ３１４，４４６−４４９（１９８５）；ショーら、Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ ８０，１５５３−１５５９（１９８８）参照）。
【００５８】
可変部域をヒト可変部域から等価な部分に結合した抗原を巻き込まないで置換することによりキメラ抗体をさらに「ヒト化」できる。「ヒト化」キメラ抗体に関する一般的な研究は、モリソン，Ｓ．Ｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２９，１２０２−１２０７（１９８５）およびオイら、Ｂｉｏ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ４，２１４（１９８６）により提供されている。これらの方法には、少なくとも一つの重または軽鎖からの免疫グロブリン可変部域の全てまたは一部をコードする核酸配列の単離、操作および発現が含まれる。このような核酸の入手源は当業者に周知であるが、例えばハイブリドーマ産生抗ＣＴＬＡ４抗体から得ることができる。キメラ抗体またはそれらの断片をコードするｃＤＮＡは、次に適当な発現ベクターにクローン化できる。また、適切な「ヒト化」抗体は、ＣＤＲまたはＣＥＡ置換により産生できる（ウィンターに対する米国特許５２２５５３９；ジョーンズら、Ｎａｔｕｒｅ ３２１，５５２−５２５（１９８６）；ヴェルホーヤンら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３９，１５３４（１９８８）；およびベイドラーら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４１，４０５３−４０６０（１９８８）参照）。
【００５９】
マウスまたはその他の種からのヒト化ｍＡｂの別法として、ヒトタンパクに直接的に抗してヒトｍＡｂを産生できる。ヒト抗体レパートリーを運ぶトランスジェノシスしたマウスを作り、ヒトＣＴＬＡ４で免疫できる。次にこれらの免疫し、トランスジェノシスしたマウスからの脾細胞を用いて、ヒトＣＴＬＡ４に特異的に反応するヒトｍＡｂを分泌するハイブリドーマを形成することができる（例えばウッドら、ＰＣＴ公開ＷＯ９１／００９０６；クッヒャーラパティら、ＰＣＴ公開ＷＯ９１／１０７４１；ロンベルグら、ＰＣＴ公開ＷＯ９２／０３９１８；キーら、ＰＣＴ公開９２／０３９１７；ロンベルグ，Ｎ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６８，８５６−８５９（１９９４）；グリーン，Ｌ．Ｌ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．７，１３−２１（１９９４）；モリソン，Ｓ．Ｌ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８１，６８５１−６８５５（１９９４）；ブラッジュマンら、Ｙｅａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ．７，３３−４０（１９９３）；テュアイロンら、ＰＮＡＳ ９０，３７２０−３７２４（１９９３）；ブラッジュマンら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２１，１３２３−１３２６（１９９１）参照）。
【００６０】
Ｅ．コンビナトリアル抗ＣＴＬＡ４抗体
本発明のモノクローナル抗体組成物は、組換えＤＮＡ法の当業者に周知のその他の方法によっても産生することができる。「コンビナトリアル抗体表示」と称する別法は、特定の抗原特異性を有する抗体断片を同定および単離するために開発され、モノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するのに利用できる（コンビナトリアル抗体表示の説明については、例えばサストリーら、ＰＮＡＳ ８６，５７２８（１９８９）；ヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５（１９８９）；およびオーランディーら、ＰＮＡＳ ８６，３８３３（１９８９）参照）。上述のようにＣＴＬＡ４免疫原で動物を免疫した後、休止Ｂ細胞プールの抗体レパートリーをクローン化する。方法は一般的に知られており、オリゴマープライマーおよびＰＣＲの混合物を用いて、免疫グロブリン分子多様な集団の可変部域のＤＮＡ配列が直接的に得られる。例えば、５’リーダー（シグナルペプチド）配列および／またはフレームワーク１（ＦＲ１）配列に対応する混合オリゴヌクレオチドプライマー、および保存された３’定常部域のプライマーを多くのネズミ抗体からの重および軽鎖のＰＣＲ増幅のために用いることができる（ラリックら、Ｂｉｏ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １１，１５２−１５６（１９９１））。同様の試験方法を用いて、ヒト抗体からのヒト重および軽鎖可変部域を増幅することもできる（ラリックら、Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２，１０６−１１０（１９９１））。
【００６１】
説明的な態様において、ＲＮＡは、例えば末梢血細胞、骨髄、または脾臓調製物の活性化Ｂ細胞から、標準的な試験計画を用いて単離する（例えば米国特許番号４６８３２０２；オーランディーら、ＰＮＡＳ ８６，３８３３−３８３７（１９８９）；サストリーら、ＰＮＡＳ ８６，５７２８−５７３２（１９８９）：およびヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５−１２８１（１９８９））。
【００６２】
ｃＤＮＡの最初の鎖は、（複数の）重鎖並びにκおよびλ軽鎖の各々の定常部域に特異的なプライマー、ならびにシグナル配列のプライマーを用いて合成する。可変部域ＰＣＲプライマーを用いると、重および軽鎖の両方の可変部域が各々単独でまたは組み合わせて増幅され、適当なベクターにライゲートして表示パッケージを生じさせてさらに操作する。増幅試験計画に有用なオリゴヌクレオチドプライマーは独特のものであるかまたは、同義的あるいは同義的部位においてイノシンを組み入れることができる。制限エンドヌクレアーゼ認識配列もまた、プライマーに組み入れて、予め決定した発現の解読枠で、増幅した断片をベクター中にクローニングすることができる。
【００６３】
免疫由来抗体レパートリーからクローン化したＶ遺伝子ライブラリーは、表示パッケージの集団、好ましくは線状ファージ由来のものにより発現し、抗体表示ライブラリーを形成できる。理想的には、表示パッケージは、非常に多様性に富んだ抗体表示ライブラリーの試料摂取、各々の親和性分離段階の後の急速な分別、および精製表示パッケージからの抗体遺伝子の簡単な単離を可能にする方法を含む。さらに、ファージ表示ライブラリー産生のための市販により入手可能なキット（例えばファルマシア・リコンビナント・ファージ・アンティボディ・システム、カタログ番号２７−９４００−０１；およびストラッタジーン ＳｕｒｆＺＡＰＴＭファージ表示キット、カタログ番号２４０６１２）に加え、とりわけ、多様な抗ＣＴＬＡ４抗体表示ライブラリーを産生するために使用できる方法および試薬の実例を、例えばラドナーら、米国特許番号５２２３４０９；カングら、国際公開番号ＷＯ９２／１８６１９；ドーワーら、国際公開番号ＷＯ９１／１７２７１；ウィンターら、国際公開番号ＷＯ９２／２０７９１；マークランドら、国際公開番号ＷＯ９２／１５６７９；ブレイトリングら、国際公開番号ＷＯ９３／０１２８８；マックカフェルティーら、国際公開番号ＷＯ９２／０１０４７；ガラルドら、国際公開番号ＷＯ９２／０９６９０；ラドナーら、国際公開番号ＷＯ９０／０２８０９；フッシュら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｌｏｇｙ ９，１３７０−１３７２（１９９１）；ヘイら、Ｈｕｍ．Ａｎｔｉｂｏｄ．Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ ３，８１−８５（１９９２）；ヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５−１２８１（１９８９）；グリフツら、ＥＭＢＯ Ｊ．１２，７２５−７３４（１９９３）；ホーキンスら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２６，８８９−８９６（１９９２）；クラックソンら、Ｎａｔｕｒｅ ３５２，６２４−６２８（１９９１）；グラムら、ＰＮＡＳ ８９，３５７６−３５８０（１９９２）；ガラッドら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９，１３７３−１３７７（１９９１）：フーゲンブームら、Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．１９，４１３３−４１３７（１９９１）；およびバーバスら、ＰＮＡＳ ８８，７９７８−７９８２（１９９１）に見出すことができる。
【００６４】
ある態様において、重および軽鎖のＶ部域領域は、柔軟性のあるリンカーで接合され、単一鎖Ｆｖ断片を形成する、同一のポリペプチドに発現でき、続いてＳｃＦＶ遺伝子を望ましい発現ベクターまたはファージゲノムにクローン化できる。一般的にマックカフェルティーら、Ｎａｔｕｒｅ ３４８，５５２−５５４（１９９０）に記載されるように、柔軟性のある（Ｇｌｙ４−Ｓｅｒ）３リンカーで接合した抗体の完全なＶＨおよびＶＬ領域は、抗原親和性に基づいて分離可能な表示パッケージを提供できる単一鎖抗体を産生するのに用いることができる。ＣＴＬＡ４と免疫反応するｓｃＦＶ抗体の単離に、続いて対象方法で使用する医薬調製物に製剤化できる。
【００６５】
表示パッケージ（例えば線状ファージ）の表面にひとたび表示されると、ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれのペプチド断片で抗体ライブラリーをスクリーニングし、ＣＴＬＡ４に特異性を有する抗体を発現するパッケージを同定および単離する。分泌される抗体をコードする核酸は、表示パッケージから（例えばファージゲノムから）回収でき、標準的な組換えＤＮＡ法により、その他の発現ベクターにサブクローン化できる。
【００６６】
Ｆ．ハイブリドーマおよび調製方法
本発明に有用なハイブリドーマは、ＣＴＬＡ４抗原と特異的に免疫反応するモノクローナル抗体を産生する能力を有することで特徴づけられる。以下に記載するように、抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、受容者動物が定常的な抗体源を提供するように、動物に直接的に埋め込むことができる。ハイブリドーマ培養物をカプセルで包むための免疫隔離装置（ｉｍｍｕｎｏｉｓｏｌａｔｏｒｙ ｄｅｖｉｃｅｓ）を使用すると、埋め込んだ細胞に抗した免疫原性反応を避け、免疫的に妥協した宿主におけるハイブリドーマ細胞の未確認の増殖を避けることができる。本発明の好ましいハイブリドーマは、ライゲートした時にＴセルにアポトーシスを誘起する、活性化ヒトＴ細胞の細胞表面で発現するＣＴＬＡ４分子のエピトープと特異的に免疫反応する抗体分子を産生するという特徴がある。
【００６７】
望ましい免疫特異性、すなわち、とりわけＣＴＬＡ４、および／またはＣＴＬＡ４の同定可能なエピトープと免疫反応する能力のある抗体分子を産生、例えば分泌するハイブリドーマの産生方法は、当業界に周知である。特に採用できるものは、ニーマンら、ＰＮＡＳ ８０，４９４９−４９５３（１９８３）；およびガルフレら、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．７３，３−４６（１９８１）に記載されるハイブリドーマ法である。
【００６８】
Ｇ．本発明のさらなる抗ＣＴＬＡ４抗体
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明のＣＴＬＡ４抗体に加え、本発明はＣＤ２８と交差反応する抗ＣＴＬＡ４抗体（本明細書で抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体と称し、代表的なものは、７Ｇ１１ｍＡｂである）をも提供する。このような抗体は、上述の方法で産生でき、実施例１に記載するようにスクリーニングし、同定できる。好ましい態様において、ＣＴＬＡ４のエピトープに結合する抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体は、アミノ酸配列：
【００６９】
【化７】
【００７０】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０（好ましくは０〜１０、さらに好ましくは０〜５、よりさらに好ましくは０〜３）である）を含有または包含する。天然のヒトＣＴＬＡ４では、この配列は、配列番号：３６のアミノ酸位置１０１〜１０５にある。Ｘａａはこの部域の側面になるさらなるＣＴＬＡ４アミノ酸残基であるか、または例えば上述のようにペプチドの溶解性または免疫原性を増強するために含まれるその他の残基でよい。共通のＣＤ２８／ＣＴＬＡ４エピトープを含有するペプチド（例えば配列番号：３４）は免疫原として用いて本発明の抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体を上昇させることができる。従って、本発明はさらに、アミノ酸配列：
【００７１】
【化８】
【００７２】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である。）を含む単離したＣＴＬＡ４ペプチドを包含する。本発明の抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体は、実施例に記載するように、Ｔ細胞に共刺激シグナルを誘起するのに有用である。
【００７３】
ＩＩ．Ｔ細胞アポトーシスを誘起するその他の物質
抗ＣＴＬＡ４抗体、またはそれらの断片に替わって、単離形態の新規天然ＣＴＬＡ４リガンドにより、アポトーシスを誘起できる。実施例５に記載するように、Ｔ細胞アポトーシスは、Ｂリンパ芽球セルライン（ＬＢＬ）の表面に存在する新規非Ｂ７−１、非Ｂ７−２、ＣＴＬＡ４結合リガンドにより誘起できる。この新規ＣＴＬＡ４リガンドをコードするｃＤＮＡは、実施例５に記載するように発現クローニングにより単離できる。このように単離したアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドは、上述のように、標準的な方法により、組換えにより発現できる。とりわけ、天然のＣＴＬＡ４リガンドの可溶性組換え体は、例えば単独でまたは融合タンパク（例えば免疫グロブリン融合タンパク）としてタンパクの細胞外領域を発現することにより、発現または単離できる。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋できる天然ＣＴＬＡ４リガンドの単離可溶性形態は、本発明の方法に準じてクローン的にＴ細胞を排除するために用いることができる。さらに、新規ＣＴＬＡ４リガンドは、細胞表面上に発現することができ、ＣＴＬＡ４リガンドを発現する細胞は、Ｔ細胞アポトーシスを誘起するために用いることができる（例えば、リガンドは異反応性Ｔ細胞をクローン的に排除する異型性細胞に発現できる）。また別に、アポトーシスを誘起しない（例えばＣＴＬＡ４を架橋しない）が、ＣＴＬＡ４に結合し、天然のアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドとの相互作用を阻害するＣＴＬＡ４リガンドの単離形態は、Ｔ細胞アポトーシスを阻害するのに使用できる。
【００７４】
ＣＴＬＡ４にのみ結合し、ＣＤ２８には結合せず、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する、既知ＣＴＬＡ４リガンドＢ７−１およびＢ７−２の修飾した形態もまた本発明の範疇に入る。Ｂ７−１またはＢ７−２をコードする核酸（例えばｃＤＮＡ）は、突然変異誘発に供する事ができ（例えば無作為化学的突然変異誘発、部位直接的突然変異誘発、ポリメラーゼ連鎖反応媒介突然変異誘発等）、そこでコード化された突然変異タンパクは、組換えで発現できる。Ｂ７−１またはＢ７−２の修飾形態は、ＣＤ２８にもはや結合しない（例えばＥＬＩＳＡにより検定するように）が、ＣＴＬＡ４結合性は保持し、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する（例えば実施例に記載するような系を用いて評価する；例えばＣＨＯ細胞に発現させたＢ７−１またはＢ７−２の修飾形態を、抗ＣＤ３抗体処理と組み合わせて、活性化Ｔ細胞と培養したときにアポトーシスを誘起する）ように選択できる。
【００７５】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに結合またはこれに架橋する、既知または新規ＣＴＬＡ４リガンドのペプチド断片、ペプチド擬似物質およびその他の小分子（例えば薬物）もまた、本発明の範疇に入る。Ｔ細胞アポトーシスの小分子インデューサーは、実施例に記載するような系を用いて、物質をスクリーニングすることにより、または合理的なドラッグデザイン、例えばＴ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ（例えば配列番号：３３に示すエピトープ）と相互作用を示すように分子を修飾することにより、同定できる。
【００７６】
本発明が意図する別の型のアポトーシス性物質は、本明細書に記載するＣＴＬＡ４アポトーシス性リガンドをコードする核酸である。例えばアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する抗ＣＴＬＡ４抗体（またはそれらの断片）をコードする核酸（例えばＤＮＡ）、またはアポトーシスを誘起する新規ＣＴＬＡ４リガンド（またはそれらの一部）をコードする核酸を、イン・ビトロで細胞に導入できるか、または遺伝子治療として活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するために、イン・ビボで対象に投与することができる。細胞におけるタンパクまたはペプチドの発現のための組換え発現ベクター（例えば組換えウイルス性ベクター）、およびイン・ビトロまたはイン・ビボで遺伝子治療に適した核酸運搬機構は、当業者に周知である。可溶型および分泌型の抗ＣＴＬＡ４抗体、またはその他のＣＴＬＡ４リガントをコードする発現ベクターは、ＣＴＬＡ４アポトーシス性リガンドを細胞内に産生するために用いることができ、そのリガンドは、次いで細胞から分泌され、（例えば培養においてまたはイン・ビボで）アポトーシスを誘起する活性化Ｔ細胞のＣＴＬＡ４に結合する。
【００７７】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起するための別の型の物質は、ＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシス性シグナルの引き金となるように細胞内で作用する物質である。従って、この物質は、ＣＴＬＡ４の細胞外部分には結合せず、むしろアポトーシス性リガンドによるＣＴＬＡ４のライゲートに関連する細胞内シグナル（例えば２番目のメッセンジャー）に類似しているか、またはこれらを誘起する。本明細書に記載するアポトーシス性リガンド（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）は、ＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシスに関与する（複数の）細胞内シグナルを、（実施例に記載するように）ＣＴＬＡ４を活性化Ｔ細胞と接触させることにより、および結果的に発生する細胞内シグナル（例えばタンパクチロシンリン酸化、カルシウム還流、血清／スレオニンおよび／またはチロシンキナーゼの活性化、フィスファチジルイノシトール代謝等）を試験することにより同定するために用いることができる。ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスに関連する細胞内シグナルを阻害または増強する物質は、Ｔ細胞アポトーシスを制御するために用いることができる。また別に、物質（例えば小分子、薬物等）は、実施例に記載するような系を用いてアポトーシスを阻害または増強する能力をスクリーニングできる。
【００７８】
ＩＩＩ．Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドの治療的使用
本発明のＣＴＬＡ４リガンド、例えば架橋抗体、またはＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシス性シグナルの引き金となるように細胞内で働く物質は、Ｔ細胞のアポトーシスを誘導して活性化Ｔ細胞をクローン的に排除し、それによりＴ細胞応答を阻害するために、治療的に用いることができる。アポトーシス性リガンド、または細胞内物質は、実施例に記載するように、ＴＣＲ／ＣＤ３刺激剤の存在下、活性化Ｔ細胞のイン・ビトロ培養物に加えた場合のアポトーシス誘起能力により同定できる。ＴＣＲ／ＣＤ３刺激剤は、抗原、例えば抗原表示細胞によりＴ細胞クローンに表示される抗原に特異的であるか、または抗ＣＤ３抗体によるＣＤ３架橋のように非特異的である。アポトーシスは、典型的なものでは、例えばアガロース電気泳動ゲル上のヌクレオソームの長さのＤＮＡ断片を検出することにより、細胞内ＤＮＡ分断化を測定し、評価する（例えば、クイングシェング，Ｔ．ら、Ｃｅｌｌ ６７，６２９−６３９（１９９１）参照）。その他の適切なアポトーシスの検定には、ヘキスト３３３４２染料の取り込み（ハーディン，Ｊ．Ａ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １５４，９９−１０７（１９９２）参照）、染料ｐ−フェニレンジアミンの挿入を用いた核ＤＮＡ損傷の検出（サルセド，Ｔ．Ｗ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １４８，２０９−２１６（１９９２）参照）およびダルツィンキヴィッチ，Ｚ．ら、Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ １３，７９５−８０８（１９９２）に記載されるフローサイトメトリーがある。
【００７９】
Ｔ細胞集団におけるアポトーシスの発生を直接的に評価するのに加えて、Ｔ細胞集団内のＴ細胞のクローン的な排除を、アポトーシスの結果として、抗原刺激剤でＴ細胞集団を再対抗し、Ｔ細胞応答、例えば増殖および／またはサイトカイン産生が起こっているかどうかを決定することにより評価できる。例えば、異型的細胞および本発明のＣＴＬＡ４リガンドを接触させることにより、Ｔ細胞集団内で異反応性活性化Ｔ細胞に、アポトーシスを誘起できる。引き続いて、Ｔ細胞集団を異型的細胞で対抗し、Ｔ細胞増殖および／またはサイトカイン（例えばＩＬ−２）を測定することにより、異反応性Ｔ細胞のクローン的排除を評価できる。Ｔ細胞増殖は、典型的なものでは、三重水素化チミジンの組み込みにより測定し、一方、サイトカイン産生は、培養上澄でのサイトカイン（例えばＩＬ−２）の検出を、例えばＥＬＩＳＡにより評価する。異反応性Ｔ細胞クローン的排除は、異型的細胞による再刺激に対するＴ細胞応答の欠如により示される。
【００８０】
本発明に準じて活性化Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を、Ｔ細胞と接触させる。この物質は、アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ（例えば、配列番号：３３に示すアミノ酸配列を含むエピトープ）に架橋することにより作用するか、または細胞内に作用してＣＴＬＡ４媒介アポトーシス経路に関連するアポトーシスシグナルを誘起する。好ましい架橋剤には、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体、例えば抗ヒトＣＴＬＡ４モノクローナル抗体がある。しかしながら、ＣＴＬＡ４に架橋し、望ましい結果を得る（すなわちアポトーシス）ことができるその他の物質（例えば可溶性天然ＣＴＬＡ４リガンド、化学物質等）をも用いることができる。活性化Ｔ細胞（すなわち、抗原に特異的な方法で、または非特異的な方法で、予め表面にＣＴＬＡ４を発現する用に刺激したＴ細胞）は、本発明のＣＴＬＡ４リガンド、またはアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに架橋するか、もしくはアポトーシスに関連する細胞内シグナルを生じるその他の物質と接触させることにより、アポトーシスを引き起こすことができる。アポトーシスを起こすために、（例えばＣＴＬＡ４の架橋により）ＣＴＬＡ４関与シグナルの誘導に加え、Ｔ細胞もまた、別の（複数の）表面分子、とりわけＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、抗原または非特異性刺激剤、例えば抗ＣＤ３抗体で接触させることにより刺激することが必要である。Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）を通じてＴ細胞を刺激するために抗原を用いる場合、抗原特異性アポトーシスが結果的に引き起こされる。従って、本発明は、活性化Ｔ細胞に抗原特異性アポトーシスを誘起する方法を提供する。抗原に特異的な方法でＴ細胞をクローン的に排除するアポトーシス性ＣＴＬＡ４リカンドの能力は、抗原特異性Ｔ細胞反応性を阻害し、長期の抗原特異的免疫抑制および／または耐性を生じるために用いることができる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの刺激と組み合わせた、その他のＴ細胞表面分子の刺激により、抗原に非特異的な方法でＴ細胞に、またアポトーシスを誘起できる。
【００８１】
Ｔ細胞は、本発明の方法に準じてアポトーシスを誘起することにより、イン・ビトロ、またはイン・ビボのどちらかで、クローン的に排除できる。イン・ビトロでＴ細胞アポトーシスを誘起するために、活性化Ｔ細胞をＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてＴ細胞を刺激する１番目の物質および、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する２番目の物質、例えばＴ細胞にアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する物質（例えば本発明のＣＴＬＡ４リガンドまたはその他のＣＴＬＡ４架橋物質）の両方と接触させる。１番目の物質は、ポリクローナルＴ細胞アポトーシスを誘起する非特異的物質、例えば抗ＣＤ３抗体でよい。さらに好ましくは抗原特異性アポトーシスは、ＴＣＲを通じて抗原、例えば抗原表示細胞で表示した抗原または異型的細胞の表面の異型抗原でＴ細胞を刺激して誘起する（すなわち、１番目の物質はＴＣＲを通じてシグナルを刺激するのに適した形態でＴ細胞に表示する抗原である）。好ましい態様において、２番目の物質は、抗ＣＴＬＡ４抗体であり、モノクローナル抗体が好ましい。
【００８２】
イン・ビボでＴ細胞アポトーシスを誘起するために、Ｔ細胞にＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えばＴ細胞にアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する物質）を、対象に投与する。この場合、活性化Ｔ細胞はＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、イン・ビボの内因性の刺激（例えば自己抗原またはイン・ビボで抗原表示細胞により表示される外来性の抗原）により、必要な刺激を享受する。また別に、抗原性刺激剤はＣＴＬＡ４架橋物質と同時に投与できる（例えば、抗原特異性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、アレルゲンをＣＴＬＡ４架橋物質と同時に投与でき、または自己抗原特異的Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、自己抗原を同時に投与できる）。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するために対象に投与する好ましいＣＴＬＡ４架橋物質は、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体であり、好ましくは抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体である。
【００８３】
ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を対象に投与することにより、Ｔ細胞アポトーシスをイン・ビボで誘起する場合、Ｔ細胞の増殖および／またはその他のＴ細胞応答を促進する、イン・ビボでの微環境においてＴ細胞に送られる刺激シグナルを阻害または阻止するために、対象をさらに処置する必要がある。例えば、実施例４に記載するように、リンパ液インターロイキン−２（ＩＬ−２）の存在が、ＣＴＬＡ４の架橋により媒介されるアポトーシスの誘起を阻害できる。従って、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する方法において、対象のＴ細胞成長因子（例えばＩＬ−２）の産生または機能を阻害するのも有効である。このように、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質に加えて、Ｔ細胞成長因子の産生、または機能を阻害する別の物質を対象に投与し、Ｔ細胞アポトーシスを促進することができる。Ｔ細胞成長因子の産生または機能を阻害するのに適した物質の実例としては、抗ＩＬ−２抗体、抗ＩＬ−２受容体抗体または対象のＩＬ−２値を低下させる免疫抑制剤、例えばシクロスポリンＡが含まれる。
【００８４】
さらに、または別に、対象にアポトーシスを誘起するために、Ｔ細胞がイン・ビボで共刺激シグナル、例えばＣＤ２８とＢ７−１またはＢ７−２のどちらかとの相互作用により媒介される共刺激シグナルを受け取るのを阻害または阻止するのにも有効である。従って、対象にＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を投与するのに加えて、Ｔ細胞の共刺激シグナルの発生を阻害する別の物質、例えばＣＤ２８、Ｂ７−１またはＢ７−２に結合する阻止分子をも対象に投与できる。適切な阻止分子の実例としては、抗ＣＤ２８Ｆａｂ断片、抗Ｂ７−１または抗Ｂ７−２阻止抗体（すなわち、ＣＤ２８−Ｂ７−１／Ｂ７−２相互作用を阻止するが、Ｔ細胞の共刺激シグナルを誘起しない抗体）およびＣＤ２８、Ｂ７−１またはＢ７−２の可溶性形態（例えば、ＣＤ２８−Ｂ７−１／Ｂ７−２相互作用を阻止するが、Ｔ細胞に共刺激シグナルを誘起しない免疫グロブリン融合タンパク）が含まれる。さらに、阻止分子の組み合わせ、例えば抗Ｂ７−１抗体および抗Ｂ７−２抗体を用いてもよい。
【００８５】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明の方法は、以下の節でより詳細に記載するように、反応性Ｔ細胞の特異的集団をクローン的に排除するのが望ましい、種々の臨床の場に適用可能である。
【００８６】
Ａ．器官移植／ＧＶＨＤ
活性化Ｔ細胞における異型抗原特異的アポトーシスの誘起による、異反応性Ｔ細胞のクローン的排除は、細胞、組織、皮膚、および器官移植の場合に、並びに骨髄移植に（例えば、移植片対宿主疾患（ＧＶＨＤ）の阻止に）有用である。例えば、異反応性Ｔ細胞の排除は、組織移植における組織破壊を減じさせ、一般的な免疫抑制を必要としないで、長期的に組織片を受け入れられるようになる。典型的なものでは、組織移植において、Ｔ細胞が外来性であると認識することにより、組織片の拒絶が始まり、続いて組織片を破壊する免疫反応が起こる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質、例えば本発明のモノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体を移植細胞と一緒に移植の受容者に投与すると、移植された外来性細胞により活性化された、受容者の異反応性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起できる。処置法には、供与細胞（例えばヘマトポイエチン細胞）の試料を移植の前に受容者に投与することにより、受容者の異反応性Ｔ細胞を供与体抗原に対して、「前感作」（すなわち活性化）することを含めることができる。この前処置により、受容者における供与体特異的Ｔ細胞が活性化され、ＣＴＬＡ４＋になり、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の存在下、供与体抗原に（例えば移植片上で）再暴露した時、クローン的に排除されるようになる。
【００８７】
別の処置法には、イン・ビトロで、受容者に移植片を移植する前に、供与体細胞（例えば、移植片供与体のヘマトポイエチン細胞）に対して受容体のＴ細胞を暴露し、異型性抗原特異性Ｔ細胞を活性化する（すなわち異反応性細胞の表面にＣＴＬＡ４を誘起する）ことが含まれ、一度活性化すると、イン・ビトロで受容者のＴ細胞を供与体細胞およびＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナル（例えば、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ）を刺激する物質の両方と接触され、それにより活性化異反応性細胞にアポトーシスを誘起する。一度異反応性Ｔ細胞をイン・ビトロでクローン的に排除すると、残ったＴ細胞は受容者に再投与し、移植を実施することができる。さらなるＣＴＬＡ４架橋物質を対象に投与し、イン・ビボで、残存する任意の異反応性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起できる（すなわち、イン・ビトロの排除、イン・ビトロの処置アプローチを組み合わせて利用できる）。
【００８８】
上述のアプローチは、骨髄移植の場合も同様に適用でき、供与体骨髄からの異反応性Ｔ細胞を特異的に排除する。異反応性Ｔ細胞は除去し、一方その他のＴ細胞の存在は保持することは、移植片対宿主疾患の発生阻止、移植受容者の骨髄混入の亢進、および移植片における供与体細胞の抗白血病活性（すなわち移植片対白血病応答）の保持に有用である。移植片における異反応性Ｔ細胞をクローン的に排除するために、供与体骨髄を移植に先立ち、イン・ビトロで受容者からの細胞（例えばヘマトポイエチン細胞）と共にインキュベートし、骨髄における異反応性Ｔ細胞を活性化する。活性化に続いて、イン・ビトロで受容者の細胞とＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の両方と共にインキュベートして、異反応性Ｔ細胞を骨髄からクローン的に排除する。Ｔ細胞に刺激シグナルを発生させるのを阻害するさらなる物質（例えば、上述の抗Ｂ７−１および／または抗Ｂ７−２抗体、抗ＩＬ−２Ｒ抗体等）を、インキュベーション中に含有することができる。異反応性細胞を特異的に排除した骨髄を、次に受容者に投与し、さらにイン・ビボでＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質で処置し、任意の残った異反応性細胞にイン・ビボでアポトーシスを誘起する。受容者のＴ細胞における共刺激シグナルの発生を阻害するか、または受容者における（複数の）Ｔ細胞成長因子（例えばＩＬ−２）の産生もしくは機能を阻害するさらなる処置も、受容者のＴ細胞アポトーシス誘起をさらに亢進するように、イン・ビボで投与できる。
【００８９】
器官移植の拒絶またはＧＶＨＤを予防する場合、ＣＴＬＡ４関連アポトーシスシグナルを刺激する特定の物質の効果は、ヒトにおける効果が予期できる動物モデルを用いて評価できる。異なる種のＣＴＬＡ４分子間の血液学は知られているので、ＣＴＬＡ４の機能的に重要な様相は、このようにヒトにおける効果を知るためのモデルに用いることが許されている種の間で、組織的に保持されていると思われる。使用できる適当な系の実例としては、ラットの異型的心臓移植片およびマウスの外因性ランゲルハンス島細胞が含まれ、その両方とも、レンショウら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５７，７８９−７９２（１９９２）、およびツルカら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９，１１１０２−１１１０５（１９９２）に記載されるように、イン・ビボでＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパクの免疫抑制効果を調べるために使用されている。さらに、ＧＶＨＤのネズミモデル（ポール編、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、ラベンプレス、ニューヨーク、８４６−８４７頁（１９８９）参照）は、その疾患の進行中に、ＣＴＬＡ４関連アポトーシスシグナルを介するＴ細胞アポトーシスを誘起する効果を（イン・ビトロおよび／またはイン・ビボでＴ細胞を処理することにより）決定するために用いることができる。
【００９０】
説明的な態様としては、抗ＣＴＬＡ４抗体は、器官移植のラットモデルにおいて、抗体の異型性抗原の応答を阻止する能力をイン・ビボで確認するために使用できる。ボーリング，Ｓ．Ｆ．ら、Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ ４５３，２８３−２８６（１９９２）に記載するように、受容者ルイスラットは、頚部で器官を吻合したブラウン−ノルウェイ系ラットの心臓異移植片を受け取る。移植片は、触診により機械的機能を、心電図により電気生理学的機能を監視する。移植片拒絶は、触知可能な収縮機能の最終日に起こるといわれている。最初の実験のように、動物は抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体、またはアイソタイプに合致させた対照モノクローナル抗体を７日間毎日注射して処置する。抗体は投与量約０．０１５ｍｇ／日および０．５ｍｇ／日の範囲で投与する。平行実験では、心臓異移植片に先立ち、受容者ルイスラットに、ブラウン−ノルウェイ細胞（例えば末梢血または脾臓細胞）を与え、受容者における異反応性Ｔ細胞を活性化する。この前感作段階に続いて、抗ＣＴＬＡ４抗体の投与と一緒に異移植片を移植する。未処置ルイスラットは、通常、約７日で異所性ブラウン−ノルウェイ異移植片を拒絶する。抗体処置動物による異移植片の拒絶は、未処置対照と比較して評価する。
【００９１】
未処置動物および抗体処置動物は、屠殺し、組織学的検査を行う。移植４日後、未処置動物および抗体処置動物から、心臓異移植片を取り出す。異移植片をホルマリンで固定し、組織切片をヘマトキシリン−エオシンで染色する。未処置および処置動物の心臓組織は、浮腫形成を伴う隆起した介在性単核細胞浸潤、筋細胞破壊、および小動脈壁の浸潤を含む重篤で急性の細胞拒絶を組織学的に試験する。移植片拒絶を防ぐ場合の抗体処置の効果は、抗体処置動物の心臓組織における急性の細胞拒絶の欠如により支持される。
【００９２】
以下の抗体処置を持続できる、移植片の長期的に受入できる、抗体治療が確立されるかどうかを決定するために、７日間抗体を毎日注射して処置した動物を、移植片の機能が停止するまで、さらに処置することなく、観察する。動物は未処置、抗ＣＴＬＡ４抗体、またはアイソタイプに合致させた対照モノクローナル抗体のどちらかを与えられる。抗体処置は、移植時に開始し、７日間続ける。移植片の生存を上述のように毎日評価する。上述のように、移植片が機能停止した動物の異移植片を組織学的に試験する。抗体処置を停止しても移植片の機能が持続することにより、抗体処置による移植片耐性が誘導されることが示される。
【００９３】
長期の移植片受入の後、抗体処置動物を屠殺し、受容者からのリンパ球の機能的応答を試験する。これらの応答を対照（非移植）ルイスラットからのリンパ球の応答と比較し、結果を対照応答の比率として正規化する。ＣｏｎＡ並びにブラウン−ノルウェイラットおよび３番目の集団のＡＣＩラットからの細胞に対するＴ細胞増殖応答を試験できる。さらに、未処置および処置動物からの胸腺および脾臓の大きさ、細胞数および細胞型を（例えば胸腺、リンパ節および脾臓細胞のフローサイトメトリー分析により）比較できる。異反応性細胞の特異的クローン的排除の結果、処置動物における異型性抗原に対する特異的非応答性は、ＣｏｎＡおよび３番目の集団の刺激物質（例えばＡＣＩラット細胞）に応答するが、ブラウン−ノルウェイラット細胞には応答しないＴ細胞の能力により示される。
【００９４】
Ｂ．自己免疫疾患
抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスの誘起によるＴ細胞のクローン的排除はまた、自己免疫疾患の処置の治療にも有用である。多くの自己免疫障害は、自己の組織に抗して反応する（すなわち、自己抗原に抗して反応する）不適切なＴ細胞の活性化の結果であり、これは疾患の病理にも関与するサイトカインおよび自己抗体の産生を亢進する。このような自己反応性Ｔ細胞の活性化の防止により、疾患の症状を減じ、または除去できる。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに結合する、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質、例えば本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を投与すると、自己反応性Ｔ細胞を排除でき、それにより、Ｔ細胞応答を阻害し、自己抗体または疾患の過程において関与しうるＴ細胞由来のサイトカインの産生を防ぐことができる。さらに、自己反応性Ｔ細胞は単に耐性がよくなるのではなく、排除されるので、疾患からの長期的な緩解が達成できる。
【００９５】
自己免疫障害を処置するために、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えば、本発明のＣＴＬＡ４リガンド）を、処置の必要な対照に投与する。イン・ビボで自己抗原で予め活性化した自己反応性Ｔ細胞は、イン・ビボで自己抗原により、抗原刺激した時に、アポトーシスの発生を引き起こす。また別に、既知の自己抗原での自己免疫障害には、対象に自己抗原をアポトーシス性物質を同時投与できる。活性化Ｔ細胞のみがこの処置により排除されるので、その他の抗原に特異的な休止Ｔ細胞は、処置により影響を受けない。
【００９６】
この方法は、糖尿病、関節炎（関節リウマチ、若年性関節リウマチ、変形性関節症、乾癬性関節炎を含む）、多発性硬化症、重症筋無力症、全身性エリテマトーデス、自己免疫性甲状腺炎、皮膚炎（アトピー性皮膚炎および酵素性（ｅｎｚｅｍａｔｏｕｓ）皮膚炎を含む）、乾癬、シェーグレン症候群に二次的に起こる乾性角結膜炎を含むシェーグレン症候群、円形脱毛症、節足動物刺傷反応によるアレルギー反応、クローン病、アフタ性潰瘍、虹彩炎、結膜炎、角結膜炎、潰瘍性大腸炎、喘息、アレルギー性喘息、皮膚エリテマトーデス、強皮症、膣炎、直腸炎、薬疹、らい逆転反応、らい性結節性紅斑（ｅｒｙｔｈｅｍａ ｎｏｄｏｓｕｍ ｌｅｐｒｏｓｕｍ）、自己免疫性ブドウ膜炎、アレルギー性脳脊髄炎、急性壊死出血性脳障害、突発性進行性両側性感音性聴力損失、無形成貧血、赤芽球ろう、突発性血小板減少症、多発性軟骨炎、ヴェーゲナー肉芽腫症、慢性活動性肝炎、スティヴェンズ−ジョンソン症候群、突発性スプルー、偏平苔癬、クローン病、グラヴェス眼障害、サルコイドーシス、原発性胆汁性肝硬変、後部ブドウ膜炎、および介在性肺線維症を含む自己免疫成分を有する種々の自己免疫疾患および障害の処置に用いることができる。
【００９７】
自己免疫障害を防ぐまたは緩和する場合のＣＴＬＡ４架橋物質の効果は、ヒト自己免疫疾患をよく特徴化した多くの動物モデルを用いて決定できる。実例としては、ネズミ実験的自己免疫性脳炎、ＭＲＬ／ｌｐｒ／ｌｐｒマウスまたはＮＺＢハイブリッドマウスの全身性エリテマトーデス、ネズミ自己免疫性コラーゲン関節炎、ＮＯＤマウスおよびＢＢラットにおける糖尿病、ネズミ実験的重症筋無力症が含まれる（ポール編、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、ラヴェンプレス、ニューヨーク、８４０−８５６頁（１９８９）参照）。
【００９８】
実験的自己免疫脳脊髄炎（ＥＡＥ）は、多発性硬化症の齧歯類および霊長類モデルである。説明的な態様において、受動的ＥＡＥモデルでは、供与体マウスを完全フロイントアジュバント中ミエリン塩基性タンパク（ＭＢＰ）０．４ｍｇで４回に分けて免疫化する。１１日後に、ドルーンをつけた腋窩および鼠径部リンパ節を除去する。リンパ節細胞（４×１０６／ｍｌ）を２４ウェルプレート中、２５μｇ／ｍｌ ＭＢＰの存在下、２ｍｌの培地のプレートにおく。４日間の培養の後、処置細胞３０×１０６を、各々のナイーヴで同系の受容者マウスの尾静脈に注射する。
【００９９】
受容者マウスは疾患を沈静、再発させ、以下の診断基準を用いて評価する：
０ 正常、健康
１ 尾をぐったりさせる、失禁；時々疾患の最初の兆候である「傾斜」
２ 後肢が弱る、ぎこちない
３ 穏やかな不全対麻痺
４ 重篤な不全対麻痺
５ 四肢麻痺
６ 死亡
【０１００】
ＥＡＥの受動性モデルを用い、供与細胞の抗ＣＴＬＡ４抗体処置が受容者動物において、結果的に疾患の重篤性に及ぼす効果を、マウス（例えばＰＬＳＪＬＦ１／Ｊ系）で試験する。リンパ節細胞をイン・ビトロで、約３０μｇ／ｍｌの抗ＣＴＬＡ４抗体の存在下または不在下、ＭＢＰと培養する。処置細胞を次に同系の受容者マウスに導入する。受容者の疾患の最初のエピソードの重篤性に及ぼす、供与体細胞の抗体処置効果を、未処置細胞を受け入れたマウスと比較して、疾患の重篤性を評価する上記の診断基準を用いて決定できる。さらに、未処置細胞に対して抗体処置細胞を受け入れたマウスにおいて起こる再発を、上記の診断基準を用いて評価できる。
【０１０１】
受容者における臨床疾患の重篤性に及ぼす、供与体マウスおよび抗ＣＴＬＡ４抗体と培養した供与体細胞の両方の処置効果を、さらに評価できる。これらの実験において、ＭＢＰで免疫した供与体マウス（例えばＳＪＬ／Ｊ系）に、抗ＣＴＬＡ４抗体（単独で、または組み合わせて）を１００μｇか、または対照抗体に合致したアイソタイプを１００μｇ、腹膜腔内に毎日１１日間与える。次にこれらの供与体のリンパ節から細胞を単離し、イン・ビトロで３０μｇ／ｍｌの抗ＣＴＬＡ４抗体（単独でまたは組み合わせて）または対照抗体の存在下、ＭＢＰと培養する。処置した細胞を、次に同型の受容者に導入する。受容者に起こる疾患の重篤性に及ぼす抗体処置効果を、次いで、上記の診断基準を用いて評価する。
【０１０２】
ＥＡＥの直接的な（活性な）モデルを用いた研究をも行うことができる。これらの実験では、抗ＣＴＬＡ４抗体は、ＭＢＰで免疫し、百日咳毒素（ＰＴ）で処置したマウスに直接的に投与する。マウス（例えばＰＬＳＪＬＦＩ／Ｊ系）をＭＢＰで０日に免疫し、０および２日にＰＴを静脈注射し、抗ＣＴＬＡ４抗体または対照抗体に合致したアイソタイプを０〜７日に与える。受容者に起こる疾患の重篤性に及ぼす、ＭＢＰ免疫化マウスの直接的な抗体の処置効果を、次に上記診断基準を用いて評価する。
【０１０３】
Ｃ．アレルギー
アトピー性アレルギーにおけるＩｇＥ抗体応答はＴ細胞に高度に依存し、従って、アレルゲン特異性Ｔ細胞をアポトーシスを誘起することによりクローン的に排除することは、アレルギーおよびアレルギー反応の処置において治療的に有用である。例えば、抗ＣＴＬＡ４抗体を、アレルゲンに暴露されたアレルギーの対象に投与し、アレルゲン特異的Ｔ細胞にアポトーシスを誘起し、それにより対象におけるアレルギー反応を低下させることができる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスを刺激する物質を、アレルギーの対象に投与することは、アレルゲンへの環境的な暴露、または対象へのアレルゲンの同時投与を伴う。アレルギー反応は、通常、全身性または局所性であり、アレルゲンの侵入経路および肥満細胞または塩基性染色細胞のＩｇＥの沈着パターンに依存する。従って、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を適当に投与することにより、アレルゲン特異的Ｔ細胞アポトーシスを、局所的にまたは全身的に誘起することが必要である。例えば、一つの態様において、抗ＣＴＬＡ４抗体およびアレルゲンをアレルギーの対象に皮下に同時投与する。
【０１０４】
Ｄ．ウイルス感染または悪性Ｔ細胞
ＣＴＬＡ４の架橋によりＴ細胞アポトーシスを誘起する方法は、表面にＴ細胞を発現する任意のＴ細胞に適用できる。特異的抗原に暴露して活性化したＴ細胞に加えて、その他の形態のＴ細胞も表面にＣＴＬＡ４を発現する。例えば、ウイルス感染したＴ細胞、例えばＨＴＬＶ−ＩまたはＨＩＶで感染したＴ細胞は、ＣＴＬＡ４＋にできる（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２）；ハーファー，Ｏ．Ｋ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，１１０９４−１１０９８（１９９３）参照）。従って、ＣＴＬＡ４＋ウイルス感染Ｔ細胞は、Ｔ細胞にＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを誘起することにより排除できる。例えば、対象から得たＣＴＬＡ４＋ウイルス感染Ｔ細胞は、イン・ビトロで抗ＣＤ３抗体と一緒に、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体と培養し、アポトーシスを誘起することができる。ウイルス感染細胞の排除に続いて、残ったＴ細胞集団をイン・ビトロで通常の方法で拡張し、対象に再投与できる。さらに表面にＣＴＬＡ４を発現する悪性Ｔ細胞は、本明細書に記載するように、Ｔ細胞にアポトーシスを誘起して除去できる。
【０１０５】
Ｅ．抗原特異的クローン的排除
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明の方法は、本質的には、任意の抗原（例えばタンパク）に適用して、対象中のその抗原に応答するＴ細胞をクローン的に排除できる。従って、対象は抗原でプライムし、抗原特異的Ｔ細胞を活性化し（すなわち、抗原特異的Ｔ細胞の表面にＣＴＬＡ４を誘起する）、次いで抗原で再対抗した場合、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を抗原と同時投与し、抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起する。抗原は可溶性形態で投与するか、またはキャリヤーもしくは支持体（例えばビーズ）に付けることができる。この基本的なアプローチには、治療目的のために強力な免疫原性分子を利用する治療に付随して、広く適用されている。例えば、タンパク質性分子、例えば抗体、融合タンパク等を臨床的な障害の処置に利用する治療的アプローチが増えている。このような分子を治療的に使用するために制限されることは、処置される対象における治療用分子に直接的に抗した免疫応答を引き出すことができることである（例えば、ヒト対象におけるネズミモノクローナル抗体の効果は、ヒト対象における抗体に抗した免疫応答の誘導により隠れてしまう）。抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起するための本発明の方法は、治療の場に適用し、治療用分子を、対象において免疫応答を引き出すことなく長期間使用することを可能にする。例えば、対象中、抗体に特異的なＴ細胞を典型的に活性化する治療用抗体（例えばネズミｍＡｂ）を、対象（例えばヒト）に投与する。これらの活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するために、治療用抗体を対象に、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質と共に再投与し、それによりＴ細胞に抗原特異的アポトーシスを誘起する。これらの活性化Ｔ細胞のクローン的排除は、対象における治療用抗体の効果を持続させる。
【０１０６】
ＩＶ．Ｔ細胞アポトーシスを阻害するＣＴＬＡ４リガンドの治療的使用
Ｔ細胞にアポトーシスを誘起する方法を提供するのに加えて、本発明はまたＴ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの発生を妨害することによりＴ細胞アポトーシスを阻害する方法をも提供する。このシグナルは、例えば、Ｔ細胞上のＣＴＬＡ４およびＴ細胞アポトーシスを誘起する抗原表示細胞上のＣＴＬＡ４リガンドの間の相互作用を妨害することにより阻害できる。また別に、細胞内でアポトーシスシグナルを阻止または阻害するように作用する物質を、アポトーシスの阻害に用いることができる。このように、Ｔ細胞におけるアポトーシスは、Ｔ細胞を、Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを阻害する物質と接触させる（例えばイン・ビトロではインキュベーションし、またはイン・ビボで投与する）ことにより、例えばＴ細胞上のＣＴＬＡ４とアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リカンドとの間の相互作用を阻害することにより、阻害される。好ましくは、この物質はＣＴＬＡ４リガンドとＴ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ、例えば配列番号：３３で示すアミノ酸配列を含むエピトープとの相互作用を阻止する。この物質は、例えば可溶性ＣＴＬＡ４タンパク（またはそれらの一部）、可溶性ＣＴＬＡ４融合タンパクもしくは抗ＣＴＬＡ４抗体、またはそれらの断片でよく、ＣＴＬＡ４に結合するが、アポトーシスを誘起しない。アポトーシスを阻害する好ましい物質には、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体のＦａｂ断片（またはその他の非架橋抗体断片）およびＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパク（例えばＣＴＬＡ４ Ｉｇ）が含まれ、これらの両方は実施例５に記載するＴ細胞アポトーシスを阻害できる。また別に、この物質はＣＴＬＡ４の可溶性形態、ＣＴＬＡ４リガンドの可溶性融合タンパクまたは抗ＣＴＬＡ４リガンド抗体、またはそれらの断片でよい。さらに、ペプチド断片またはペプチド擬似物質は、ＣＴＬＡ４とアポトーシス性リガンドとの相互作用を阻害するのに用いることができる。例えば、ＣＴＬＡ４上のアポトーシス性エピトープを包含する（例えば、配列番号：３３のアミノ酸配列を包含する）ペプチドを、細胞表面ＣＴＬＡ４およびＣＴＬＡ４上のこのエピトープに結合する天然のリガンドとの間の相互作用を阻害するために用いることができる。従って、ＣＴＬＡ４アポトーシス性エピトープを包含する本発明のペプチドもまた、Ｔ細胞におけるアポトーシスの阻害に有用である。
【０１０７】
Ｔ細胞アポトーシスの阻害は、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスにより自然に低減する免疫応答を、増強、延長および／または維持するのに、治療的に有用である。例えば、抗腫瘍反応は、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを通じて腫瘍特異的Ｔ細胞をクローン的に排除することにより、自然に低減される（例えばＴ細胞アポトーシスは腫瘍表面にアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドを発現することにより誘起される）。従って、抗腫瘍反応はＣＴＬＡ４およびアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドの相互作用を、例えば上述の阻止物質を腫瘍のある対象に投与することにより阻害して、増強することができる。さらに、病原菌、例えばウイルス、細菌、菌類、寄生虫等に対するＴ細胞応答は、本明細書に記載するように、ＣＴＬＡ４媒介Ｔ細胞アポトーシスを阻害することにより増強および延長できる。ワクチン接種の効果もまた、本発明によるＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻止することにより上昇させることができる。例えば、ワクチンはＴ細胞アポトーシスを阻止する物質（例えば抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ Ｆａｂ断片）と一緒に投与でき、ワクチン化物質に抗する免疫応答を増強できる。
【０１０８】
別の適用において、Ｔ細胞アポトーシスの阻害は、対象、例えばＴ細胞破壊に関係するウイルス例えばＨＩＶに感染した対象におけるＴ細胞保持のために用いることができる。ＨＩＶ感染において、ウイルス感染したＴ細胞、例えばＨＩＶ感染したＴ細胞の表面のＣＴＬＡ４発現は、イン・ビボでＣＴＬＡ４媒介アポトーシスにより細胞を破壊することになる。ウィルス感染Ｔ細胞のこの破壊は、イン・ビボで付随するウイルス放出を伴い、傍観者的Ｔ細胞の更なるウイルス感染が亢進され、これによりＴ細胞がウイルスに抗して免疫応答を開始する能力が阻害される。さらに、対象における非感染Ｔ細胞は、ＣＴＬＡ４依存性アポトーシス機構により排除され、さらにＴ細胞集団が排除される。従って、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻害する物質を対象に投与することは、ＨＩＶ感染した対象におけるウイルスの散らばりを制御し、Ｔ細胞集団を保持するのに有用である。
【０１０９】
Ｖ．治療用形態のＣＴＬＡ４リガンドの投与
本発明のＣＴＬＡ４リガンド（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を、イン・ビボで生物学的に適合した、医薬的投与に適した形態で対象に投与し、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する。「イン・ビボで生物学的に適合した、投与に適した形態」とは、リガンドの治療効果が毒性効果に優る、投与タンパクの形態を意味する。対象なる用語は、免疫応答を引き出すことができる生きた器官、例えば哺乳動物を含むことを意味する。対象の実例としては、ヒト、サル、イヌ、ネコ、マウス、ラット、およびそれらのトランスジェニック種が含まれる。本明細書に記載するリガンドは、治療的に活性な量のＣＴＬＡ４リガンドを単独でまたは別の治療用分子（例えば、上述のように、抗ＩＬ−２受容体抗体またはＣＤ２８、Ｂ７−１もしくはＢ７−２阻止抗体等）および医薬的に許容できる担体と組み合わせたものを、任意の薬理学的形態で投与できる。本発明の治療用組成物を治療的に活性な量投与することは、望ましい結果を成就するのに必要な量および期間の有効量と定義される。例えば抗ＣＴＬＡ４抗体の治療的有効量は、個々の疾患の状態、年齢、性別および体重のような因子、並びに個々に望ましい免疫応答を引き出す抗体の能力に応じて変化する。投与計画は最適な治療的応答を提供するように調整できる。例えば幾つかに分割した量を毎日投与するか、または治療状況のエクシジェンシー（ｅｘｉｇｅｎｃｉｅｓ）により示されるように投与量を比例的に減少させることができる。
【０１１０】
活性化合物（例えば抗体）は、通常の方法、例えば注射（皮下、静脈内等）、経口投与、吸入、経皮適用、または直腸投与で投与できる。投与経路に応じて、活性化合物は、酵素、酸および化合物を不活化しうるその他の自然の状況の作用から保護する材料で被覆できる。
【０１１１】
ＣＴＬＡ４リガンドを非経口投与以外の投与法により投与するために、リガンドを不活化を防ぐ材料で被覆するか、またはリガンドをその材料と同時に投与する必要がある。ＣＴＬＡ４リガンドは適当なキャリヤーまたは希釈剤中、個体に投与でき、酵素阻害剤とまたは適当なキャリヤー例えばリポソームと同時投与できる。医薬的に許容できる希釈剤には、生理食塩水および水性緩衝溶液が含まれる。酵素阻害剤には、膵臓トリプシン阻害剤、ジイソプロピルフルオロフォスフェート（ＤＥＰ）およびトラジロールが含まれる。リポソームには、水中油中水乳液および通常のリポソームが含まれる（ストレジャンら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．７，２７（１９８４））。
【０１１２】
また、活性化合物は、非経口または腹膜腔内投与もできる。分散液はグリセロール、液体ポリエチレングリコール、およびそれらの混合物中、並びに油中に調製できる。保存および使用の通常の条件下で、これらの調製物は微生物の成長を防ぐための保存剤を含有できる。
【０１１３】
注射可能な使用に適した医薬組成物は、無菌水溶液（水溶性である場合）または無菌注射液または分散液の用事調製用製剤のための分散液および無菌粉末を含む。全ての場合において、組成物は無菌でなければならず、容易にシリンジが動かせる程度の流動性がなければならない。製造および保存の条件下で安定でなければならず、微生物、例えば細菌および菌類の汚染作用に備えて保存されなければならない。キャリヤーは溶媒または分散溶媒でよく、例えば水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコール等）および適当なそれらの混合物を含有する。適当な流動性を、例えば被覆物例えばレクチンの使用、分散液の場合必要な粒子径の維持、および界面活性剤の使用により維持できる。微生物の作用の予防は、種々の抗細菌および抗菌物質、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサル等により達成できる。多くの場合、等張化物質例えば糖、ポリアルコール例えばマンニトール、ソルビトール、塩化ナトリウムを組成物中に含有するのが好ましい。注射可能な組成物の吸収を長期化するのは、吸収を遅延させる物質、例えばアルミニウムモノステアレートおよびゼラチンを含有することによる。
【０１１４】
無菌の注射可能な溶液は、活性な化合物（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を必要な量、適当な溶媒中、上記に列挙した成分を一つまたは組み合わせて入れ、必要な場合、濾過により無菌化して調製できる。一般的に分散液は活性化合物を、基本的な分散溶媒および上記に列挙したものから必要なその他の成分を含有する無菌賦形剤に入れて調製する。無菌の注射液を調製するための無菌粉末の場合、好ましい調製方法は、真空乾燥および凍結乾燥であり、活性成分（例えば抗体）に予め無菌濾過した溶液からの任意のさらに望ましい成分を加えた粉末を生じる。
【０１１５】
活性化合物が上述のように適切に保護される場合、化合物は、例えば不活性な希釈剤と、または消化でき食することができるキャリヤーと共に投与できる。本明細書で用いる「医薬的に許容できるキャリヤー」には、任意のおよび全ての溶媒、分散溶媒、被覆剤、抗細菌および抗菌剤、等張化および吸収遅延化剤等が含まれる。このような溶媒および医薬的に活性物質のための試薬は、当業界に周知である。任意の通常の溶媒または試薬が活性化合物と相容れない場合に限る以外は、治療用組成物におけるそれらの使用は意図されるものである。補足的な活性化合物をも組成物に入れることができる。
【０１１６】
非経口組成物を、投与を平易にする投与量単位形態で、および投与量を一定にするために製剤化するのがとりわけ優れている。本明細書で用いる投与量単位形態とは、哺乳動物の対象を処置するための投与量単位として、適合する物理的な個々の単位を意味する；望ましい治療効果を生みだすように算出した活性化合物を予め決定した量、必要な医薬的キャリヤーと一緒に含有する各単位。本発明の投与量単位形態の詳記は、（ａ）活性化合物の独特な特性、および達成される特定の治療効果、並びに（ｂ）このような活性化合物を個々の感受性の処置用に混合する技術における元来の制限、に指示され、直接的に依存する。
【０１１７】
ＶＩ．ＣＴＬＡ４媒介Ｔ細胞アポトーシスにおいて引き起こされるさらなる分子の同定
本発明は、Ｔ細胞のアポトーシスの誘起においてＣＴＬＡ４の機能的役割を開示する。Ｔ細胞におけるアポトーシスはＣＴＬＡ４リガンドによるライゲート時にＣＴＬＡ４により直接的に媒介されるか、また別に、ＣＴＬＡ４関与分子がアポトーシスシグナルをＴセルに配送するのに関与している。ＣＴＬＡ４関与分子は当業界に周知である多くの方法により同定できる。例えば本発明のＣＴＬＡ４抗体は免疫沈殿検定に用いてＣＴＬＡ４と免疫共沈する分子を同定できる。活性化Ｔ細胞により発現するタンパクは、放射性物質で標識化（例えば３５Ｓ−メチオニンで、または１２５Ｉでタンパク表面を標識する）でき、本明細書で記載するＣＴＬＡ４抗体は、Ｔ細胞からタンパクを免疫沈殿するのに用いられる。免疫沈殿法は当業界に周知であり、例えばアウスベル，Ｆ．ら（編）、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、ジョーンウィレイ＆サンズ、ニューヨーク、セクション１０．１６．（１９８９）に記載されている。細胞内または細胞表面のどちらかでＣＴＬＡ４と関係する分子は、ＣＴＬＡ４との免疫共沈により同定できる（例えば免疫沈殿したタンパクを電気泳動分析により検出）。このようなＣＴＬＡ４関与分子は次にＣＴＬＡ４との相互作用に基づいてさらに精製および特性化できる。
【０１１８】
また別に、発現クローン化アプローチをＣＴＬＡ４に関与する分子の同定に用いることができる。膜透過型の組換えＣＴＬＡ４は標準的な方法によりＣＯＳまたはＣＨＯ細胞のような宿主細胞において安定して発現でき（しかしながら、実施例１に記載するようにｇｐｉ連結形態として発現できる）、さらなる分子がＣＴＬＡ４の安定した表面発現を達成するのに必要であることを示唆している。従って、この特性は、宿主細胞に膜透過性ＣＴＬＡ４の表面発現を可能にする分子を同定するために開拓できる。例えば、ｃＤＮＡ発現ライブラリーは、実施例５に記載するように、活性化Ｔ細胞から調製できる。この発現ライブラリーは、次に宿主細胞（例えばＣＯＳ細胞）に、ＣＴＬＡ４の膜透過型をコードする発現ベクターと共にトランスフェクトする。ＣＴＬＡ４を表面に発現する、トランスフェクトした細胞は、例えば本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を用いたパニング（ｐａｎｎｉｎｇ）または免疫磁気ビーズ分離により選別できる（実施例５記載の方法は、ＣＴＬＡ４発現クローンの細胞トランスフェクションおよび単離に用いることができる）。ＣＴＬＡ４関与分子をコードするｃＤＮＡは、選別した細胞から単離できる。
【０１１９】
本発明は、以下の実施例によりさらに説明されるが、制限を意図するものではない。本明細書で引用した参考文献、特許および公開された特許出願は、それにより参考となるように取り入れたものである。
【実施例１】
【０１２０】
実施例１：抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の産生およびスクリーニング
ヒトＣＴＬＡ４に対するモノクローナル抗体の産生
Ｂａ１ｂ／ｃ雌マウス（タコニック、ジャーマンタウン、ニューヨークより入手）を、ＥＲシリーズマウス用にマウスあたり５０μｇの組換えヒトＥ．ｃｏｌｉ発現ＣＴＬＡ４（細胞外領域のみ）を完全フロイントアジュバント（シグマケミカルカンパニー、セントルイス、ミズーリー州）中乳濁液化したもので、またはＥＳシリーズマウス用にマウスあたり２×１０６ＰＭＡ／イオノマイシン活性化ヒトＴ細胞（リュウコパックスより入手）で、皮下または腹膜腔内で免疫した。マウスは、マウスあたり２０〜２５μｇのヒト組換えＣＴＬＡ４を完全フロイントアジュバント（シグマケミカルカンパニー、セントルイス、ミズーリー州）中乳濁液化したもので、または１０６ＰＭＡ／イオノマイシン活性ヒトＴ細胞で、最初の免疫に続いて１４日間隔で免疫促進した。マウスの尾静脈より出血させ、血清を免疫化タンパクに抗してＥＬＩＳＡにより免疫原に反応する抗体の存在を検定した。強い血清学的な力価を示すマウスは、マウスあたり５０μｇの組換えヒトＣＴＬＡ４をリン酸塩緩衝化生理食塩水に希釈したもの（ｐＨ７．２）（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）で免疫促進した。免疫促進後３〜４日にマウスから取り出した脾臓をＳＰ２／０−Ａｇ１４ミエローマ細胞（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）とＰＥＧ１４５０（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）と５：１の比率で融合し、放射線照射したＭＲＣ−５線維芽細胞（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）を２５％ＣＰＳＲ−３（シグマケミカルカンパニー）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、５０Ｕ／ｍｌ ペニシリン、５０μｇ／ｍｌストレプトマイシン、２０μｇ／ｍｌゲンタマイシン、０．２５μｇ／ｍｌフンギゾーン、および１０％ＮＣＴＣ−１０９（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）を含有するデュルベッコ改変イーグル培地（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）中に含有する、９６ウェルプレートに載せる。ヒポキサンチンアミノプテリン−チミジン（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）の存在下、ハイブリドーマを選別した。ハイブリドーマのコロニーは、次の１０〜２１日に発芽するので、最初のスクリーニングとして、ウェルの上澄を組換えヒトＣＴＬＡ４で被覆した９６ウェル平底ＥＩＡプレート上でスクリーニングした。２番目のスクリーニングは、フヒトＣＴＬＡ４トランスフェクトしたＣＨＯ細胞およびＰＭＡ／イオノマイシン活性化ヒトＴ細胞でフローサイトメトリーにより行った。ＣＴＬＡ４に指向した抗体を含有すると同定されたハイブリドーマ上澄は、腹水産生およびタンパクＡ−セファロース親和性クロマトグラフィーによる抗体精製の前に、２回伸張しサブクローン化した。
【０１２１】
ｍＡｂの最初のスクリーニング：ＥＬＩＳＡプロトコール
９６ウェル平底ＥＩＡプレート（コスター、キャンブリッジ、マサチューセッツ州）の各ウェルを、ウェルあたり５０μｌのリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で作った１μｇ／ｍｌ組換えヒトＣＴＬＡ４溶液で被覆した。ＣＴＬＡ４溶液を吸引し、ウェルを１００μｌのリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで、室温で１時間阻止した。この阻止インキュベーションに続いて、ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で洗浄し、ウェルあたり５０μｌのハイブリドーマ上澄を加え、４５分間３７℃でインキュベートした。このインキュベートに続いて、ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で３回洗浄し、次にウェルあたり５０μｌの西洋ワサビペルオキシダーセ結合親和性精製ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＆Ｌ）特異的抗体（ザイムドラボラトリーズ、サンフランシスコ、カリフォルニア州）の１：４０００希釈物と、４５分間３７℃でインキュベートした。ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で３回洗浄し、続いてウェルあたり５０μｌの０．１Ｍクエン酸ナトリウム（ｐＨ４．２）中１ｍＭ ＡＢＴＳ（２，２アジノ−ビス−３−エチルベンスチアゾール−６−スルフォニックアシッド）中３０分間インキュベートし、これに３０％過酸化水素の１：１０００希釈物をＨＲＰの基質として加え、結合抗体を検出した。次に分光光度計（モレキュラーデバイスソーポレーション、メンロパーク、カリフォルニア州）で４１０ｎｍにおける吸収を測定した。
【０１２２】
ｍＡｂの２番目のスクリーニング：フローサイトメトリー
２番目のスクリーニングをヒトＣＴＬＡ４−ｇｐｉトランスフェクトしたＣＨＯ細胞およびＰＭＡ／イオノマイシン活性化Ｔ細胞でフローサイトメトリーを行った。ＣＴＬＡ４はＣＴＬＡ４の細胞外領域をグリコフォスファチジルイノシトール（ｇｐｉ）アンカーに連結することによりＣＨＯおよびＣＯＳ細胞に発現した。ＣＴＬＡ４の細胞外領域をコードするＤＮＡはＰＣＲにより、センスプライマーとして、
【０１２３】
【化９】
【０１２４】
（これは強力な翻訳開始部位であるＨｉｎｄ ＩＩＩ部位およびＣＴＬＡ４コード化配列の最初の１５個のヌクレオチドを含有し）、およびアンチセンスプライマーとして、
【０１２５】
【化１０】
【０１２６】
（これはＣＴＬＡ４細胞外領域の最後の１９個のヌクレオチドおよびＡｆ１ ＩＩ部位を含有する）
を用いることによりヒトＣＴＬＡ４ｃＤＮＡから増幅できる。ＰＣＲ条件は９４℃、１分、４３℃、１分、７２℃、１分を３５サイクル、続いて７２℃、１０分である。ＰＣＲ産生物は、Ｈｉｎｄ ＩＩＩおよびＡｆ１ ＩＩで消化し、ゲルろ過し、ヒトＣＤ５８のｇｐｉアンカーを含有するＨｉｎｄ ＩＩＩおよびＡｆ１ ＩＩ消化ｐＣＤＭ８ベクターに連結した（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８，３２７１参照、ドクター・ドナルド・スタウントン、センター・フォー・ブラッド・リサーチ、ボストン、マサチューセッツ州に親切にも提供される）。ＣＴＬＡ４−ｇｐｉ挿入物を含有するプラスミドは、一時的にＣＯＳ細胞にトランスフェクトされ、Ｂ７−Ｉｇ融合タンパクの結合により判断されるように、細胞表面ＣＴＬＡ４を強度に発現する。ＣＴＬＡ４−ｇｐｉプラスミドは、ネオマイシン抵抗性をコードするプラスミドと共にＣＨＯ細胞にトランスフェクトし、安定したトランスフェクタントをＧ４１８で選別した。ＣＨＯ細胞トランスフェクタントは、Ｂ７−ＩＧ結合およびクローン化に基づいて分類した。
【０１２７】
フローサイトメトリー用の細胞（ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４かまたは活性化ヒトＴ細胞のどちらか）はリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで徹底的に洗浄し、次に１０６細胞あたり５０μｌのハイブリドーマ上澄または培養培地と、３０分間４℃でインキュベートした。インキュベートに続いて、細胞をリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで３回洗浄し、次に５０μｌの蛍光結合ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＆Ｌ）抗体（ザイムドラボラトリーズ、サンフランシスコ、ＣＡ）の１：４０希釈物と、３０分間４℃でインキュベートした。細胞を次にリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで３回洗浄し、１％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。細胞試料を次にＦＡＣスキャンフローサイトメーター（ベックマンディッキンソン）で分析した。
【０１２８】
上述の抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の１番目および２番目のスクリーニングにより、さらに特性化するために５個のｍＡｂが単離された：ＥＲ４．７Ｇ１１（７Ｇ１１と称する）、ＥＲ５．３Ｄ８（３Ｄ８と称する）、ＥＲ５．４Ｄ３（４Ｄ３と称する）、ＥＳ５．３Ｄ６（３Ｄ６と称する）、ＥＳ．４Ｅ３（４Ｅ３と称する）。抗体のＥＲシリーズは組換えヒトＣＴＬＡ４により上昇するが、一方抗体のＥＲシリーズは活性化Ｔ細胞により上昇する。
【実施例２】
【０１２９】
実施例２：抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の特性化
結合特性
５個の７Ｇ１１、４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３の結合特性を決定するために、ＣＤ２８を発現するようにトランスフェクトしたＣＨＯ細胞か、またはＣＴＬＡ４を発現するようにトランスフェクトしたＣＨＯ細胞に対する結合を、非直接的免疫蛍光により評価した。異なる抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂの結合パターンは（対照抗ＣＤ２８ ｍＡｂ ３Ｄ１０に比較して）以下の表１にまとめる：
表１
【０１３０】
【表１】
【０１３１】
７Ｇ１１抗体がＣＨＯ−ＣＤ２８およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４の両方に結合するのが認められ、従って抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂと称する。これに比して、４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３は、ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４のみに結合するのが認められ、従ってＣＴＬＡ４特異的抗体と称する。これらの抗体はまた、本明細書において、各々ＣＴＬＡ４．１、ＣＴＬＡ４．２、ＣＴＬＡ４．３およびＣＴＬＡ４．４とも称する。
【０１３２】
エピトープのマッピング
上述の５個のｍＡｂで認識されるエピトープを決定するために、ファージ表示ライブラリー（ＰＤＬ）スクリーニングにより、マッピングを行い、用いている合成ペプチドを確認した。クゥイルラ，Ｓ．Ｅ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８７，６３７８−６３８２（１９９０）に記載するように、無作為に２０個のアミノ酸ＰＤＬを同義オリゴヌクレオチドをｆＵＳＥ５ベクター（スコット，Ｊ．Ｋ．およびスミス，Ｇ．Ｐ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９，３８６−３９０（１９９０））にクローン化して調製した。ＰＤＬは、ジェリス，Ｃ．Ｌ．ら、Ｇｅｎｅ １３７，６３−６８（１９９３）に記載するように、マイクロパニング法によりｍＡｂ抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４および抗ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４に特異的に結合する短いペプチドを同定するのに用いた。各々のファージクローンは、固定化ｍＡｂに対する親和性により、ライブラリーより精製し、無作為ペプチドをＤＮＡ配列決定により同定した。抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４（７Ｇ１１）でのパニングより選別した２０個のクローンの配列分析により、以下に示す９個の独特のペプチド配列を生じた。
【０１３３】
ｍＡｂ ７Ｇ１１選別ファージペプチド
【化１１】
【化１２】
【０１３４】
これらの９個のペプチドから、５個の残基、Ｐ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ／Ｉ（配列番号：１２）のコンセンサンス結合配列を同定し、このうち芳香性残基ＦおよびＷはしばしばＹと置換された。Ｐ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ配列（配列番号：１３）は、ｈＣＴＬＡ４の細胞外領域内で、ＣＤＲ３領域内または非常に接近して同定され、ＣＴＬＡ４合成ペプチドＲＰ４５４に包含される。
【０１３５】
【化１３】
【０１３６】
ＲＰ４５４ペプチドは抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４エピトープの確認に用いられ、抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４の結合を天然ｈＣＴＬＡ４と競合できる。マッピングした部域をまたぐＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の配列決定は、ＣＨＯ−ＣＤ２８およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４上のこのｍＡｂで、観察された交差活性を説明する。
【０１３７】
ｍＡｂ ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４は別々にパニングされ、任意のこれらのパニングからのファージが、４個のｍＡｂのいずれにも特異的に反応することが観察された。４２個のファージクローンの配列分析により、以下に示す１４個のペプチドを生じた：
ｍＡｂ４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３選別ファージペプチド
【化１４】
【化１５】
【０１３８】
これらのペプチドから、共有するエピトープを、アミノ酸配列Ｌ−Ｔ−Ｆ−Ｌ−Ｄ−Ｄ（配列番号：２９）を有するｈＣＴＬＡ４の６個の残基を伸張したものにマッピングする。エピトープはＣＴＬＡ４のＣＤＲ２様部域に存在し、抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂのエピトープと上記のＰ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ（配列番号：１３）と区別される。共有する抗ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４エピトープは、合成ＣＴＬＡ４ペプチドＲＰ３６５内に含まれる：
【化１６】
【０１３９】
これはエピトープマッピングの結果を確認するために用いられる。
【０１４０】
Ｂ７−１およびＢ７−２の交差競合
５抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂは、ＣＴＬＡ４分子上で２個の異なる抗原部域に結合するので、これらの部域のどれかが同族員の結合部位の一部であるかどうかを決定した。モノクローナル抗体７Ｇ１１および４Ｄ３は、以下の実験様式を用いて、Ｂ７−１−ＩｇのＣＴＬＡ４−Ｉｇに対する結合を阻止する能力を試験した（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７３，７２１−７３０（１９９１）；およびリンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４、５６１−５６９（１９９１）に記載されるように構築した。）：
【０１４１】
ヌンクマキシソーププレートを２０μｇ／ｍｌ ＣＴＬＡ４−ＩｇのＰＢＳ溶液で、室温で一晩被覆し、次いでＰＢＳ／１％ ＢＳＡで１時間阻止した。１０μｇ／ｍｌのビオチニル化Ｂ７−１−Ｉｇを、１００μｇ／ｍｌまで漸増的にモノクローナル抗体と共に加えた。対照試薬（“冷”Ｂ７−１−Ｉｇ、ＣＴＬＡ４−Ｉｇ、抗Ｂ７−１抗体４Ｂ２および６Ｂ１０並びにＨＩＶ抗体５９．１）をも試験した。ビオチニル化Ｂ７−１−Ｉｇはストレパビジン−西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）および酵素基質を用いて可視化した。結果は以下にまとめ、７Ｇ１１および４Ｄ３は競合物質として無効であることが示された：
【０１４２】
【表２】
【０１４３】
【表３】
【０１４４】
２番目の実験では、様式は“とばされている（ｆｌｉｐｐｅｄ）”。プレートをＰＢＳ中２０μｇ／ｍｌのＢ７−１−Ｉｇで一晩被覆し、ＰＢＳ／１％ ＢＳＡで阻止し、次いで最初の実験で記載するように、ビオチニル化ＣＴＬＡ４−Ｉｇに種々競合物質及び対照物質を加えたものと共にインキュベートした。ビオチニル化ＣＴＬＡ４はストレパビジン：ＨＲＰおよび酵素基質を用いて可視化した。結果は上記で示したものに類似している：
【０１４５】
【表４】
【０１４６】
【表５】
【０１４７】
これらの相補的なデータを考慮に入れると、ｍＡｂ ７Ｇ１１および４Ｄ３にはＣＴＬＡ４−ＩｇのＢ７−１−Ｉｇに対する結合を引き裂く能力はないことが示される。Ｂ７−２−Ｉｇを用いた実験でも、同様の結果が観察された。抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体（７Ｇ１１）はＢ７−１−ＩｇのＣＴＬＡ４に対する結合（またはその逆）を阻害しないという結果は、７Ｇ１１抗体のためにマッピングしたＰ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ（配列番号：１３）とオーバーラップする配列Ｍ−Ｙ−Ｐ−Ｐ−Ｐ−Ｙ（配列番号：３１）が、ＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の両方のＢ７−１に対する結合部位の一部であることが、以前から示唆されていた（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１）参照）ので、驚くべきことであった。
【実施例３】
【０１４８】
実施例３：抗ＣＴＬＡ４抗体によるＴ細胞におけるアポトーシスの誘起
この実施例では、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂを用いてＴ細胞表面でＣＴＬＡ４をライゲートすることにより、予め活性化したＴ細胞にアポトーシスを誘起した。最初の一連の実験では、異反応性Ｔ細胞クローンを用いた。ＨＬＡ−ＤＲ７に特異性を有する異反応性Ｔ細胞は、ＨＬＡ−ＤＲ７に陰性の個体から作った。Ｔ細胞クローンは放射線照射したＤＲ７＋同型接合性リンパ芽球セルライン（ＬＢＬ−ＤＲ７）と２４時間培養することにより活性化し、２４時間、ＣＴＬＡ４表面発現を誘起した。Ｔ細胞は９６ウェル平底マイクロタイタープレート中１０５セル／ウェルの濃度で、３７℃，５％ＣＯ２で培養した。活性化Ｔ細胞クローンは、ヒトＤＲαおよびＤＲ７βでトランスフェクトしたＮＩＨ−３Ｔ３細胞（ｔ−ＤＲ７；ギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，６５８６−６５９０（１９９３）に記載）単独で、または抗ＣＤ２８もしくは抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂと共に再対抗し、２番目のシグナルを提供した。有糸分裂活性の指標となるチミジンの組み込みを標準的な方法により評価した。アポトーシスは、クイングシェング，Ｔ．ら、Ｃｅｌｌ ６７，６２９−６３９（１９９１）に記載されるように、アガロースゲル電気泳動で、ＤＮＡ分断化の存在により評価した。簡単に述べると、ＤＮＡを細胞から抽出し、試料を０．５μｇ／ｍｌエチジウムブロマイドを含有する１％アガロースゲルに載せる。電気泳動した後、ＤＮＡをＵＶ光のもとで可視化し、アポトーシスの特性を有するヌクレオソームの長さの断片の存在を評価した。さらに、アポトーシスをハーディン，Ｊ．Ａ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １５４，９９−１０７（１９９２）に記載するように、ヘキスト３３３４２染料の取り込みにより評価した。
【０１４９】
結果は図１Ａにグラフで説明する。活性化Ｔ細胞クローンは、ｔ−ＤＲ７の対抗に応答して増殖し、ＩＬ−２の蓄積は検出されなかった。抗ＣＤ２８または抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ（例えば７Ｇ１１）を添加すると、結果的に著明に増殖し、ＩＬ−２が蓄積される。それに比して、抗ＣＴＬＡ４．１ ｍＡｂをｔ−ＤＲ７刺激Ｔ細胞培養物に添加すると、増殖を刺激せず、代わりに増殖は著明に減少し、ＩＬ−２の蓄積は検出されず、ＤＮＡ分断化により測定されるようにアポトーシスを誘起する。外因性のＩＬ−２をｔ−ＤＲ７およびＣＴＬＡ４．１ ｍＡｂに添加すると、ＩＬ−２単独でｔ−ＤＲ７に添加して観察した場合と比較して、結果的にＴ細胞が著明に増殖し、ｔ−ＤＲ７および抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂによるアポトーシスの誘起を阻止した。ＣＴＬＡ４．１とのＣＴＬＡ４ライゲーションに続いて、活性化Ｔ細胞クローンが外因性ＩＬ−２の存在下で増殖するのは観察されず、このことは、これらの細胞が抗原特異的クローンを排除するという結論に合致する。
【０１５０】
２番目の一連の実験では、ＣＴＬＡ４ライゲーションが、予め活性化した正常ヒトＴ細胞でのアポトーシスをも誘起するかどうかを決定した。ＣＤ４陽性Ｔ細胞芽細胞を、Ｔ細胞を活性化するためにフィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）を含有する培地で、４日間ＰＢＭＣを培養した後、枯渇陰性により単離した。細胞を徹底的に洗浄し、次に種々の２番目のシグナルの存在下、抗ＣＤ３ ｍＡｂで再対抗した。
【０１５１】
結果は図１Ｂにグラフで説明する。抗ＣＤ３処置しない抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂは、Ｔ細胞増殖またはＩＬ−２産生に影響をおよぼさない。抗ＣＤ３単独では低水準のＩＬ−２蓄積を伴うＰＨＡ芽細胞の穏やかな増殖を誘起した。抗ＣＤ２８または抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４（例えば７Ｇ１１）ｍＡｂの添加により増殖およびＩＬ−２の蓄積の両方が増強された。ＨＬＡ−ＤＲ７特異的異反応性Ｔ細胞クローンについての上述の結果に類似して、活性化した正常末梢血Ｔ細胞の抗ＣＤ３刺激は、任意の抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ（例えばＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４）の存在下、増殖の低減、ＩＬ−２蓄積の欠如、およびアポトーシスを招く。アポトーシスは６時間の培養と同じほど早くに検出される。抗ＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂに効果がないので、ＣＴＬＡ４の交差連結が必要である。活性化Ｔ細胞クローンに観察されるように、外因性ＩＬ−２を抗ＣＴＬＡ４．１に添加すると、アポトーシスから保護する。同様に、抗ＣＤ２８の添加もまたアポトーシスから保護する。培地中単独で２４時間まで培養したＣＤ４＋ＰＨＡ芽細胞はアポトーシスを起こさなかったので、アポトーシスは、単にＩＬ−２産生の欠如の結果によるものではないと思われる。抗ＣＤ４５、抗ＣＤ４５ＲＡ、抗ＣＤ４５ＲＯ、抗ＣＤ４、抗ＣＤ５、または抗ＣＤ６ ｍＡｂ交差架橋が同等の培養条件下で、５個の実施実験のいずれにおいても増殖の低減またはアポトーシスを誘起しないという知見により、ＣＴＬＡ４架橋の特異性が提供された。単離した非分画化Ｔ細胞にもまた同様の水準のアポトーシスが観察され、ＣＤ２８陽性およびＣＤ８陽性ＰＨＡ芽細胞を、同等の培養条件下で試験した。
【実施例４】
【０１５２】
実施例４：新規ＣＴＬＡ４リガンドによるＴセルにおけるアポトーシスの誘起
実施例２に記載するように、ＣＴＬＡ４の抗ＣＴＬＡ４抗体とのライゲーションは、最初の活性化シグナルの存在下、予め活性化した正常Ｔ細胞および異反応性Ｔ細胞クローンにアポトーシスを誘起した。次に既知ＣＴＬＡ４リガンド、Ｂ７−１またはＢ７−２のいずれかもまたこの融合を媒介できるかどうかを決定した。上述と同等のＴ細胞活性化の系を用いて、活性化異反応性Ｔ細胞クローンを、ＨＬＡ−ＤＲ７を単独で発現するようにトランスフェクトしたＣＯＳ細胞（ｔ−ＤＲ７）単独で、またはＨＬＡ−ＤＲ７および、Ｂ７−１（ｔＤＲ７／Ｂ７−１）またはＢ７−２（ｔＤＲ／Ｂ７−２）のいずれかの両方を発現するようにトランスフェクトしたＣＯＳ細胞で再対抗して、シグナル２を提供する。対照偽トランスフェクト細胞（ｔ−ｍｏｃｋ）をｐＣＤＮＡＩプラスミド単独でトランスフェクトした。結果は図２Ａにグラフで説明する。以前に観察したように、活性化Ｔ細胞クローンをｔ−ＤＲ７と、抗ＣＴＬＡ４．１の存在下培養すると、増殖を抑制し、アポトーシスを誘起した。これに比して、ｔ−ＤＲ７／Ｂ７−１およびｔ−ＤＲ７／Ｂ７−２の両方は、増殖を増すが、アポトーシスを誘起しない。抗ＣＤ２８ Ｆａｂの添加は、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方により誘起される増殖の増加を阻止し（すなわち増殖の水準がｔ−ＤＲ７単独で観察されたものまで減少した）、このことはＢ７−１またはＢ７−２により提供される増殖のシグナルが、ＣＤ２８にまさに媒介されていることを示している。さらに、ＣＤ２８媒介シグナル化が存在しない場合に、Ｂ７−１またはＢ７−２がＣＴＬＡ４に結合するこれらの状況下で、ｔ−ＤＲ７に比して、増殖の低減もアポトーシスも起こらなかった。合致した結果が、ＰＨＡ活性化正常ヒトＴ細胞で観察された。これらの実験から、分子的にクローン化したＣＴＬＡ４天然リガンド（すなわちＢ７−１またはＢ７−２）には、Ｔ細胞の抗原特異的クローン的排除を媒介するものはないと、結論づけることができる。
【０１５３】
２個の分子的クローン化ＣＴＬＡ４天然リガンドは抗原特異的クローン的排除を媒介しないことを考慮にいれて、代替のＣＴＬＡ４リガンドがアポトーシスを媒介するかどうかを次に決定した。活性化異反応性Ｔ細胞クローンを、ＬＢＬ−ＤＲ７と単独に、または種々ｍＡｂおよびＩｇ融合タンパクの存在下、図２Ｂに示すように再対抗し、このことは実験の結果を説明する。全てのｍＡｂを培養物に最終濃度１０μｇ／ｍｌで加えた。Ｂ７−１、Ｂ７−２、およびＢ７−３（ＢＢ１ ｍＡｂ）に指向する阻止ｍＡｂは、各々ＬＢＬ−ＤＲ７誘起増殖を２５％まで抑制した。対照Ｉｇは添加しないのだが、ＣＴＬＡ４−Ｉｇの添加により増殖が５０％まで抑制され、全体的にＩＬ−２産生が阻止された。得られた増殖はｔ−ＤＲ７単独で観察されたものと比較できる。しかしながら、抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂを組み合わせたものを添加すると、増殖が著しく抑制され、さらに重要なことに、Ｔ細胞がアポトーシスを起こした。ＢＢ１ ｍＡｂまたは対照Ｉｇを抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂにさらに添加すると、増殖にもアポトーシスにもさらなる効果はおよぼさなかった。これに比して、ＣＴＬＡ４−ＩｇまたはＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂのどちらかを抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂに添加すると、アポトーシスを完全に阻止し、および増殖の水準をｔ−ＤＲ７単独で観察される水準にまでもどした。これらのデータは、アポトーシスを誘起するＬＢＬ−ＤＲ７に発現するリガンドはＢ７−１でもＢ７−２でもなく、ＣＴＬＡ４を通じてシグナルを送るＣＴＬＡ４結合リガンドであるということを示している。ＬＢＬ−ＤＲＩ細胞は同等の培養条件下で増殖を低減せず、アポトーシスを誘起しないので、アポトーシスは抗原特異的である。実施例４に記載された以前の観察に類似して、ＩＬ−２の抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２への添加は、増殖の抑制およびアポトーシスを撤廃した。ＰＨＡ芽細胞で観察されたものと再び合致した。
【０１５４】
これらのことを鑑みて、これらの結果は以下のことを示している；抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを媒介するＣＴＬＡ４の生理学的リガンドは：１）ＬＢＬ−ＤＲ７細胞である、２）阻止Ｂ７−１およびＢ７−２がアポトーシスを阻害しないので、Ｂ７−１でもＢ７−２でもない、３）ＣＴＬＡ４ Ｉｇがアポトーシスを阻止するので、ＣＴＬＡ４結合リガンドである、４）抗ＣＴＬＡ４．１もまたアポトーシスを阻止するのでＣＴＬＡ４を通じるシグナルである。さらにこの天然リガンドの機能的エピトープは、ＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂがアポトーシスを阻止できるので、本明細書に記載する４個の抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂすべてにより認識される同等なＣＴＬＡ４エピトープ（Ｌ−Ｔ−Ｆ−Ｌ−Ｄ−Ｄ；配列番号：２９）に結合するのに適している。これらの結果はＣＴＬＡ４が過多のＣＤ２８様共刺激経路ではなく、むしろ適当な条件下で予め活性化したＴ細胞をクローン的に排除する能力のある、異なるシグナル発生経路であり、さらにＬＢＬ−ＤＲ７に存在する新規な天然ＣＴＬＡ４リガンドが、このアポトーシスを媒介できるという仮説に合致する。
【０１５５】
免疫応答の進行中に、活性化／増幅を媒介するシグナル、および続いて抗原特異的細胞性排除を誘起するシグナルの間で均衡がある。ＣＤ２８の架橋または、ｍＡｂもしくはそれらの天然リガンドＢ７−１もしくはＢ７−２によるＣＤ２８／ＣＴＬＡ４の共通結合部域のどちらかは、結果的にＩＬ−２蓄積を引き起こす陽性の共刺激シグナルのようなものを提供する。本明細書に記載する結果は、ＩＬ−２を蓄積するシグナルは優勢であることを示唆している、というのは、これらが免疫応答を増幅し、それによりＣＴＬＡ４媒介アポトーシスからの免疫応答の進行を防ぐためである。Ｂ７−１およびＢ７−２はＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の両方のリガンドであるので、たいていの場合細胞排除よりむしろ増幅シグナルを媒介する。この隔たりの間で、ＣＴＬＡ４の架橋はアポトーシスを媒介せず、対照的に、相乗的な共刺激シグナルをＣＤ２８に提供できる。Ｔ細胞活性化に続いて、Ｂ７−１によるＣＤ２８連結は、ＣＴＬＡ４発現を増加させるが、ＣＤ２８合成および機能を低下制御する（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５０，３１６１−３１６９（１９９３））。増殖応答が衰退する場合の条件下、共刺激剤に媒介されるＣＤ２８の不在下、ＣＴＬＡ４の架橋は、予め活性化した細胞の細胞的排除を誘起できる。共刺激またはＴ細胞活性化状態に依存したアポトーシス誘起の機能的能力は、受容体のＴＮＦの基の的を構成員レパートリー数を回顧させる（スミス，Ｃ．Ａ．ら、Ｃｅｌｌ ７６，９５９−９６２（１９９４）参照）。しかしながら、ＴＣＲを通じたシグナルをも必要であるので、異なるアポトーシスはＴＮＦ受容体群の構成員で誘起され、ＣＴＬＡ４架橋は抗原特異的クローン的排除を媒介する。
【実施例５】
【０１５６】
実施例５：活性化Ｔ細胞にアポアプトシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドのクローニング
Ｔ細胞のアポトーシスを媒介する天然のＣＴＬＡ４リガンドは、ＣＴＬＡ４との相互作用に基づく発現クローニングにより分子的に単離される。実施例５に示すように、天然のＣＴＬＡ４リガンドは、Ｂリンパ芽球セルライン（ＬＢＬ）の表面に発現される。このようなＬＢＬセルラインは、当業界に周知であり、Ｂリンパ腫細胞のエプステイン−バールウイルス形質転換に関連する標準的な方法により構築できる。Ｔ細胞のアポトーシスを媒介する天然のＣＴＬＡ４リガンドを単離するために、ｃＤＮＡ発現ライブラリーを以下のようなＬＢＬセルラインから調製する。
【０１５７】
Ａ．ＣＤＮＡ発現ライブラリーの構築
ｃＤＮＡライブラリーは真核生物の発現ベクター、例えばｐＣＤＭベクター（シード、Ｎａｔｕｒｅ ３２９，８４０（１９８７））にＬＢＬセルラインから単離したポリ（Ａ）＋ＲＮＡを用いて上述のように構築する（アルフォら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））。全ＲＮＡを調製するために、ＬＢＬ細胞を培養物から収穫し、細胞小塊を４Ｍグアニジンチオシアネート、０．５％サルコシル、２５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．５、０．１３％シグマアンチフォームＡおよび０．７％メルカプトエタノールの溶液中均質化する。ＲＮＡ均質化物より、２４時間３２０００ｒｐｍで５．７Ｍ ＣｓＣｌ、１０ｍＭ ＥＤＴＡ、２５ｍＭ酢酸ナトリウム、ｐＨ７の溶液を通じて、遠心により精製する。ＲＮＡ小塊を５％サルコシル、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１０ｍＭトリス、ｐＨ７．５に溶解し、２容量の５０％エタノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルルコールで抽出する。ＲＮＡは２回エタノール沈殿させる。ｃＤＮＡライブラリーに用いるポリ（Ａ）＋ＲＮＡ構築物は、オリゴ（ｄＴ）セルロース選別を２サイクル行うことにより精製する。
【０１５８】
相補的ＤＮＡは、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．３、７５ｍＭ ＫＣｌ、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、１０ｍＭジチオスレイトール、５００μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５０μｇ／ｍｌオリゴ（ｄＴ）１２−１８、１８０ユニット／ｍｌＲナシン、および１０００ユニット／ｍｌモロネイ−ＭＬＶ逆転写酵素を全量５５μｌを含有する反応物中、３７℃で１時間、５．５μｇポリ（Ａ）＋ＲＮＡから合成する。逆転写に続いて、溶液を２５ｍＭトリス、ｐＨ８．３、１００ｍＭ ＫＣｌ、５ｍＭ ＭｇＣｌ２、各々２５０μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５ｍＭジチオスレイトール、２５０ユニット／ｍｌＤＮＡポリメラーゼＩ、８．５ユニット／ｍｌリボヌクレアーゼＨに調整し、１６℃、２時間インキュベートすることにより、ｃＤＮＡを２重鎖ＤＮＡに転換する。ＥＤＴＡを加えて１８ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールおよび担体として４マイクログラムの線状ポリアクリルアミドで沈殿させる。さらに、ｃＤＮＡは４μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡから、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．８、５０μｇ／ｍｌオリゴ（ｄＴ）１２−１８、３２７ユニット／ｍｌＲナシン、および９５２ユニット／ｍｌ ＡＭＶ逆転写酵素を全容量１００μｌで、４２℃で０．６７時間反応させて合成する。逆転写に続いて、逆転写酵素を７０℃、１０分間加熱して不活化する。ｃＤＮＡを３２０μｌのＨ２Ｏおよび８０μｌの０．１Ｍトリス、ｐＨ７．５、２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．５Ｍ ＫＣｌ、２５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、および５０ｍＭジチオスレイトールの溶液を添加し、溶液を各々２００μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５０ユニット／ｍｌ ＤＮＡポリメラーゼＩ、８ユニット／ｍｌリボヌクレアーゼＨに調整し、１６℃、２時間インキュベートすることにより、ｃＤＮＡを２重鎖ＤＮＡに転換する。ＥＤＴＡを加えて１８ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールおよび担体として４マイクログラムの線状ポリアクリルアミドで沈殿させる。４μｇのＡＭＶ逆転写物および２．０μｇのモロネイ逆転写物からのＤＮＡをまとめる。非自己相補的ＢｓｔＸＩアダプターを以下のようにＤＮＡに加える：６μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡからの２重鎖ｃＤＮＡを３．６μｇのキナーゼ処理した配列ＣＴＴＴＡＧＡＧＧＣＡＣＡ（配列番号：３１）のオリゴヌクレオチド、２．４μｇおよびキナーゼ処理した配列ＣＴＣＴＡＡＡＧ（配列番号：３２）のオリゴヌクレオチドと、６ｍＭトリス、ｐＨ７．５、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、５ｍＭ ＮａＣｌ、３５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、７ｍＭメルカプトエタノール、０．１ｍＭ ＡＴＰ、２ｍＭジチオスレイトール、１ｍＭスペルミジン、および６００ユニットＴ４ＤＮＡリガーゼを含有する溶液全容量０．４５ｍｌ中、１５℃、１６時間、インキュベートする。ＥＤＴＡを加えて３４ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールで沈殿させる。
【０１５９】
６００ｂｐより大きいＤＮＡは以下のように選別する：アダプター化したＤＮＡを１０ｍＭトリス、ｐＨ８、１ｍＭ ＥＤＴＡ、６００ｍＭ ＮａＣｌ、０．１％サルコシルに溶解し、同一の緩衝液中、セファロースＣＬ−４Ｂカラムでクロマトグラフにかける。カラムの空容量のＤＮＡ（６００ｂｐ以上のＤＮＡを含有する）をプールし、エタノールで沈殿させる。ｐＣＤＭ８ベクターをｃＤＮＡクローニング用に、ＢｓｔＸＩで消化し、アガロースゲルで精製して、調製する。６μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡからのアダプター化したＤＮＡを６ｍＭトリス、ｐＨ７．５、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、５ｍＭ ＮａＣｌ、３５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、７ｍＭメルカプトエタノール、０．１ｍＭ ＡＴＰ、２ｍＭジチオスレイトール、１ｍＭスペルミジン、および６００ユニットＴ４ ＤＮＡリガーゼを含有する溶液全容量１．５ｍｌ中、１５℃、２４時間、２．２５μｇのＢｓｔＸＩ切断ｐＣＤＭ８にライゲートする。ライゲート反応混合物を次に標準的な方法により、受容能力のあるＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ／Ｐ３に形質転換する。
【０１６０】
プラスミドＤＮＡを、ｃＤＮＡライブラリーの元来の形質転換物の５００ｍｌ培養物から調製する。プラスミドＤＮＡをアルカリ性溶解法、続いてＣｓＣｌ平衡グラジエントで２回バンド形成させて精製する（マニアティスら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州（１９８７））。
【０１６１】
Ｂ．クローニング方法
クローニング方法において、ｃＤＮＡ発現ライブラリーを真核細胞セルライン、例えばＣＯＳ細胞に導入し、細胞をＣＴＬＡ４タンパク（例えばＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパク）で選別し、それらの表面のトランスフェクトした発現ＣＴＬＡ４リガンドを同定する。アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドをコードするｃＤＮＡを含有するのに加えて、ｃＤＮＡライブラリーは“夾雑物”Ｂ７−１およびＢ７−２ｃＤＮＡをも含有することがあるので、ライブラリースクリーニングの３番目の段階では、抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２抗体での前処理、続いて抗マウスＩｇ結合磁気ビーズを用いて免疫原性ビーズを除去して、これらのタンパクを発現するクローンを取り除く。スクリーニングの最初の段階では、５０％融合性ＣＯＳ細胞の１００ｍｍ皿３０個を、ＤＥＡＥデキストラン法を用いて０．０５ｇ／ｍｌ ＬＢＬセルラインライブラリーＤＮＡで、トランスフェクトする（シード，Ｂ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））。細胞をトリプシン処理し、２４時間後に再度プレート化する。４７時間後、細胞をＰＢＳ／０．５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．４／０．０２％ナトリウムアジド中３７℃、３０分間インキュベートして、分離する。
【０１６２】
分離した細胞を１０μｇ／ｍｌ ＣＴＬＡ４ Ｉｇ（組換えＣＴＬＡ４−ヒトＩｇ融合タンパクは、リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）；およびギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ９０，６５８６−６５９０（１９９３）に記載される）で処理する。細胞を融合タンパクと共に４５分間、４℃でインキュベートする。細胞を洗浄し、親和性精製ヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体で被覆したパニング皿に分配し、室温で付着させる。３時間後、プレートをＰＢＳ／０．５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．４／０．０２％ナトリウムアジド、５％ ＦＣＳで２回、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１Ｍヘペス、ｐＨ７．４、５％ ＦＣＳで１回、穏やかに洗浄する。非結合細胞をこのように取り除き、通常の方法により、エピソームのＤＮＡを付着性のパニングした細胞（すなわちＣＴＬＡ４ Ｉｇに結合する細胞）から回復させる。
【０１６３】
エピソームのＤＮＡをＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ／Ｐ３に形質転換する。プラスミドＤＮＡを、記載されるように（シード，Ｂ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））スフェロプラスト融合によりＣＯＳ細胞に再導入し、発現およびパニングのサイクルを２回繰り返す。分別の２および３番目の段階では、４７時間後、分離したＣＯＳ細胞を最初は、１０ｇ／ｍｌネズミ抗Ｂ７−１ｍＡｂ（例えば、フリードマン，Ａ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７，３２６０−３２６７（１９８７）に記載されるｍＡｂ１３３、ベクトン・ディッキンソンより市販により入手可能なｍＡｂＬ３０７、および／またはレプリゲンコーポレーションからのＢ１．１）および抗Ｂ７−２ｍＡｂ（例えば、アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）に記載されるｍＡｂ Ｂ−７０、ファルミンゲンより市販により入手可能）と共に、４５分間、４℃でインキュベートする。Ｂ７−１またはＢ７−２を発現する細胞を、抗マウスＩｇＧおよびＩｇＭ被覆磁気ビーズを用いて取り除く。次にＣＯＳ細胞を１０ｇ／ｍｌヒトＣＴＬＡ４ Ｉｇ（ｈＣＴＬＡ４ Ｉｇ）で処理する。新規ＣＴＬＡ４リガンドを発現する細胞をヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体を被覆した皿上でパニングにより選別する。スクリーニングの３番目の段階の後、プラスミドＤＮＡを個々のコロニーより調製し、ＤＥＡＥデキストラン法により、ＣＯＳ細胞にトランスフェクトする。トランスフェクトしたＣＯＳ細胞上でのＣＴＬＡ４の発現は、ＣＴＬＡ４ Ｉｇで、間接的免疫蛍光により分析する。
【０１６４】
また別なアプローチでは、クローンを、ＢＢ１抗体への結合に基づいて選別する。新規ＣＴＬＡ４リガンドへの候補物質は、Ｂ７−３であり、これはＢＢ１ ｍＡｂの結合により定義される（ボウシトチス，Ｖ．Ａ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ，ＵＳＡ ９０，１１０５９−１１０６３（１９９３））。Ｂｂ１ ｍＡｂはＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻止できなかったが（実施例５参照）、Ｂ７−３はアポトーシスを媒介するＣＴＬＡ４リガンドであるが、ＢＢ１ ｍＡｂが抗体のこの機能を阻止しないということは、可能である。従ってｃＤＮＡ発現ライブラリーは、上述のように、ＢＢ１ ｍＡｂに結合するクローンをスクリーニングできる（ＢＢ１ ｍＡｂは、ヨコチ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｌ．１２８，８２３−８２７（１９８２）に記載されている）。クローンはパニングにより、ヤギ抗マウスＩｇＭ２次抗体で被覆したプレートに単離される。ＬＢＬ ｃＤＮＡライブラリーは、使用することができ、また別に、ライブラリーはＢＢ１抗原を発現することが知られている活性化ヒトケラチノサイトから調製でき、上述のようにスクリーニングできる。
【０１６５】
上述のように発現クローンから単離したＣＴＬＡ４リガンドの、活性化Ｔ細胞に抗原特異的アポトーシスを誘起する能力は、前の実施例に記載した系を用いて評価できる。例えば、ライブラリースクリーニングから単離したｃＤＮＡは、ＣＨＯ細胞に導入して、ＣＴＬＡ４リガンドを表面に発現するＣＨＯ形質転換物（ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４Ｌ）を作ることができる。正常ヒトＴ細胞におけるアポトーシスを評価するために、ＰＨＡ活性化ＣＤ４＋Ｔ細胞芽細胞を、抗ＣＤ３およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４Ｌで培養し、ＤＮＡ分断化を、アポトーシスの測定として決定する。異反応性Ｔ細胞における抗原特異的アポトーシスを評価するために、予め活性化したＨＬＡ−ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンを、ＨＬＡ−ＤＲ７およびＣＴＬＡ４リガンドの両方を発現する様にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞（ＣＨＯ−ＤＲ７／ＣＴＬＡ４）と共に培養し、ＤＮＡ分断化およびＴ細胞増殖の低減制御を、アポトーシスおよび生物学的な機能の測定により評価する。
【実施例６】
【０１６６】
実施例６：Ｅ．ｃｏｌｉにおけるヒトＣＴＬＡ４細胞外領域の発現
ＣＴＬＡ４細胞外領域のクローニング
ＣＴＬＡ４の細胞外領域を、発現ベクターｐＥＴＣｍ１１ａにクローニングした後、Ｅ．ｃｏｌｉに発現させた。このベクターは、アンピシリン抵抗性遺伝子内のＳｃａＩ制限部位にクロラムフェニコール抵抗性遺伝子カセットをクローニングすることにより、発現ベクターｐＥＴ−１１ａ（ノバゲンインコーポレーティッド、マジソン、ウィスコンシン州）から得た。ＣＴＬＡ４の細胞外領域は、オリゴヌクレオチド５‘ＧＣＡＧＡＧＡＧＡＣＡＴＡＴＧＧＣＡＡＴＧＣＡＣＧＴＧＧＣＣＣＡＧＣＣＴＧＣＴＧＴＧＧ−３’（配列番号：３７）を先行プライマーとして、オリゴヌクレオチド５‘ＧＣＡＧＡＧＡＧＡＧＧＡＴＣＣＴＣＡＧＴＣＡＧＴＴＡＧＴＣＡＧＡＡＴＣＴＧＧＧＣＡＣＧＧＴＴＣＴＧＧ−３’（配列番号：３８）を逆転プライマーとして用いて、ＰＣＲ増幅により、プラスミドｐｈＣＴＬＡ４から調製した。先行ＰＣＲプライマーは、Ｎｄｅ１制限部位のＡＴＧ配列が成熟ＣＴＬＡ４の最初のアミノ酸からのコドンがすぐ後に続く、Ｎｄｅ１制限部位を含有する。逆転ＰＣＲプライマーは、ＣＴＬＡ４膜透過領域の直前に最後のアミノ酸により先行される３個の全ての解読枠の翻訳停止コドンにより先行される、ＢａｍＨＩ制限部位を含有する。これらのプライマーでのＰＣＲ増幅は、メチオニンコドンにより先行されるＣＴＬＡ４の細胞外領域をコードするＤＮＡ配列を含有するＮｄｅ１およびＢａｍＨＩ制限部位により結合される４１６ｂｐ断片を生み出す。ＰＣＲ産生物は、Ｎｄｅ１およびＢａｍＨＩで消化し、ライゲートして同一の制限酵素で消化したベクターｐＥＴＣｍ１１ａを発現する。ライゲートしたＤＮＡを、ラムダＤＥ３ヘルパーファージを含有するＥ．ｃｏｌｉ株ＢＬ２１、ＨＭＳ１７４、ＲＧＮ７１４およびＲＧＮ７１５にトランスフェクトした。形質転換物はクロラムフェニコールを含有するＬ寒天中で選別した。個々の形質転換物は、選別し、０．５ｍＭ ＩＰＴＧとの処理により導入した後、ＣＴＬＡ４発現を試験した。全細胞抽出物を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で分析し、続いてクーマシー青色染色およびウェスタンブロット分析を行った。これらの細胞の大部分のＣＴＬＡ４タンパクは細胞封入体の中に見出された。
【０１６７】
細胞封入体からのＣＴＬＡ４の精製
組換えＣＴＬＡ４は、洗浄細胞を溶解緩衝液（５０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＰＭＳＦ、５ｍＭ ＥＤＴＡ、０．５％トライトンＸ−１００およびライソザインを０．３ｍｇ／ｍｌで）中処理し、続いてソニケートして、細胞小塊より回収した。細胞封入体は、２００００×ｇで遠心して回収し、可溶化緩衝液（５０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２−メルカプトエタノール（２−ＭＥ））で処理して可溶化した。可溶化は室温で２時間攪拌することにより助成した。可溶性分画はＣＴＬＡ４を含有した。ＣＴＬＡ４は以下のように、Ｓセファロース（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）でクロマトグラフィーにより精製した。ＣＴＬＡ４含有上澄は、氷酢酸を添加することによりｐＨ３．４に調整し、カラム緩衝液（１００ｍＭ 酢酸ナトリウム、ｐＨ６．５、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２−ＭＥおよび５ｍＭ ＥＤＴＡ）で平衡にしたＳセファロースに適用した。カラムをカラム緩衝液で洗浄し、結合ＣＴＬＡ４を、カラム緩衝液で調製した直線塩グラジエント（ＮａＣｌ、０〜１Ｍ）で流出した。Ａｂｓ２８０ｎｍで高値を呈するピーク分画をプールし、透析緩衝液（１００ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２ＭＥ、５ｍＭ ＥＤＴＡ）に抗して透析した。残留した夾雑タンパクを、セファクリルＳ−１００クロマトグラフィー（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）の測定カラムで除去した。得られた調製物はＳＤＳ−ＰＡＧＥで推測されたように、９５％以上の純度であり、続いてクーマシー青色染色およびウェスタンブロット分析を行った。Ｅ．ｃｏｌｉに産生された単量体組換えＣＴＬＡ４の推測された大きさは、約１５ｋＤａであったので、精製プロトコールの全工程は、１５ｋＤａタンパクの存在をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより試験され、ＣＴＬＡ４の存在は、ウェスタンブロットにより証明された。
【０１６８】
Ｅ．ｃｏｌｉからの分泌ＣＴＬＡ４の調製
分泌型のＣＴＬＡ４を以下のようにＥ．ｃｏｌｉより調製した。ＣＴＬＡ４の細胞外領域をｐｅ１Ｂ（レイ，Ｓ．−Ｐ．ら、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１６９，４３７９−４３８３（１９８７））シグナル配列に、鋳型としてプラスミドｐｈＣＴＬＡ４、および先行プライマーとしてオリゴヌクレオチド５‘ＧＧＣＡＣＴＡＧＴＣＡＴＧＡＡＡＴＡＣＣＴＡＴＴＧＣＣＴＡＣＧＧＣＡＧＣＣＧＣＴＧＧＡＴＴＧＴＴＡＴＴＡＣＴＣＧＣＴＧＣＣＣＡＡＣＣＡＧＣＧＡＴＧＧＣＣＧＣＡＧＣＡＡＴＧＣＡＣＧＴＧＧＣＣＣＡＧＣＣＴＧＣＴＧＴＧＧ３’（配列番号：３９）および逆転プライマーとして上述のオリゴヌクレオチド配列番号：３８を用いて、ＰＣＲにより結合した。先行ＰＣＲプライマーは、独特のＢｓｐＨ１制限部位、完全ｐｅ１Ｂシグナル配列およびＣＴＬＡ４の細胞外領域の５’末端を含む。逆転ＰＣＲプライマーは、ＣＴＬＡ４の膜透過領域の前の最後のアミノ酸に先行される３個の全ての解読枠の翻訳停止コドンにより先行される、独特のＢａｍＨ１制限部位を含む。これらのプライマーでのＰＣＲ増幅は、ＣＴＬＡ４細胞外領域に結合するｐｅ１Ｂシグナル配列をコードする、独特のＢｓｐＨ１およびＢａｍＨ１制限部位に結合した断片により、４８０を産生した。ＰＣＲ増幅の後、ＤＮＡ断片をＢｓｐＨ１およびＢａｍＨ１で消化し、予めＮｃｏ１およびＢａｍＨ１で消化した発現ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）にライゲートした。この結果、ｐｅ１Ｂ−ＣＴＬＡ４タンパクの発現が、ｐＴｒｃ９９Ａ発現ベクターに存在するｐＴｒｃプロモーターにより引き起こされるプラスミドになる。ライゲートし、ＤＮＡで形質転換したＥ．ｃｏｌｉ宿主株は、アンピシリン含有（５０μｇ／ｍｌ）Ｌ−寒天上で選別され、個々のクローンを単離した。これらの株のＣＴＬＡ４発現は、ＩＰＴＧ（０．５ｍＭ）で一晩、指数的成長培養処理により誘起された。濃縮後の培養培地から、またはペリプラスムからの放出により調製した抽出物（細胞は２０％ショ糖、１０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ７．５、中室温で１５分間インキュベートし、遠心により回収し、４℃で水に再懸濁し、氷中１０分間保持した）をＣＴＬＡ４の存在を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、ウェスタンブロットおよび競合Ｂ７結合ＥＬＩＳＡにより検定した。
【０１６９】
同等物
当業者は、通常の実験方法のみを用いて、本明細書に記載する詳細な態様に対する多くの同等物を認識するか、または確認できる。このような同等物は、以下の特許請求の範囲に包含されるものとする。
【図面の簡単な説明】
【０１７０】
【図１Ａ】抗原（ｔ−ＤＲ７）および指示した、２番目のシグナルで再対抗したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体（ｍＡｂ）によりアポトーシスが誘起されることを示す。
【図１Ｂ】抗ＣＤ３および指示した２番目のシグナルで再対抗したしたときの、正常な末梢血ＣＤ４＋Ｔ細胞芽細胞によるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂによりアポトーシスが誘起されることを示す。
【図２Ａ】単独の抗原（ｔ−ＤＲ７）を発現する細胞または両方の抗原およびＢ７−１（ｔＤＲ７／Ｂ７−１）またはＢ７−２（ｔＤＲ７／Ｂ７−２）のどちらか一方を発現する細胞で再攻撃したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、Ｂ７−１もＢ７−２も抗原特異的アポトーシスを誘起しないことを示す。
【図２Ｂ】指示した細胞で指示したｍＡｂまたは融合タンパクと共に再攻撃したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗原特異的アポトーシスが非Ｂ７−１非Ｂ７−２ＣＴＬＡ４結合リガンドにより誘起されることを示す。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ｔ細胞における抗原特異性アポトーシスの誘導のためのリガンドに関する。
【０００２】
政府援助
本明細書に記載した研究は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈにより授与された基金ＲＯ１ＣＡ４０２１６およびＰＯ１ＡＩ３５２２５の下で支援された。そのため米国政府は本発明において特定の権利を有する。
【背景技術】
【０００３】
抗原特異的Ｔ細胞応答の誘導にはＴ細胞上の細胞表面受容体および抗原表示細胞上のリガンドの間で多重の相互作用が必要である。最初の相互作用はＴ細胞受容体／ＣＤ３複合体と、Ｔ細胞受容体に対する抗原ペプチドを表示する主要な組織適合複合体分子の間であり、それがＴ細胞の抗原特異的シグナルの引き金となる。この抗原特異的シグナルに加え、Ｔ細胞応答には２番目の共刺激シグナルが必要である。共刺激シグナルは細胞表面受容体ＣＤ２８を通してＴ細胞を刺激することによりＴ細胞上発生させることができる（ハーディング，Ｆ．Ａ．，Ｎａｔｕｒｅ ３５６，６０７−６０９（１９９２））。ＣＤ２８のリガンドは抗原表示細胞（ＡＰＣｓ）上で同定されている。ＣＤ２８リガンドにはタンパクのＢ７ファミリーの構成員、例えばＢ７−１（ＣＤ８０）およびＢ７−２（ＣＤ８６）が含まれる（フリードマン，Ａ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７，３２６０−３２６７（１９８７）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．１４３，２７１４−２７２２（１９８９）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，６２５−６３１（１９９１）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６２，９０９−９１１（１９９３）；アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，２１８５−２１９２（１９９３））。さらに、Ｂ７−１およびＢ７−２はＣＴＬＡ４と称するＣＤ２８に関連したＴ細胞上の別の表面受容体に結合することが示されている（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）；フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６２，９０９−９１１（１９９３））。Ｔ細胞上に本質的に発現するＣＤ２８に比較して、ＣＴＬＡ４は活性化によりＴ細胞上に誘導される（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６，１５９５−１６０４（１９９２））。ＣＴＬＡ４の機能的役割は知られていないが、ＣＴＬＡ４がＴ細胞に共刺激シグナルを送る時にＣＤ２８と相乗作用を示しうる証拠がいくつかある（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６，１５９５−１６０４（１９９２）；ダムレ，Ｎ．Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２，２６８６−２６９７（１９９４））。
【０００４】
共刺激シグナルが存在しない時にＴ細胞に抗原特異的シグナルを送ると、Ｔ細胞応答を誘起しないが、むしろＴ細胞の非反応すなわちアネルギー状態を誘起するのが見出されている（シュヴァルツ，Ｒ．Ｈ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４８，１３４９（１９９０）；ジェンキンス，Ｍ．Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４０，３３２４（１９８８）参照）。臨床の場の数という面では、Ｔ細胞応答を阻害するのが望ましい（例えば移植または自己免疫障害において）。従って、治療のアプローチとしてＴ細胞の共刺激シグナルを阻止して抗原特異的Ｔ細胞非応答を誘起することが提唱されている。例えば、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方を結合するＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパクは、異型的および外因性の移植片の拒絶を阻害するために用いられている（ツルカ，Ｌ．Ａ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９，１１１０２−１１１０５（１９９２）；レンショウ，Ｄ．Ｊ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５７，７８９−７９２（１９９２））。同様に、Ｂ７−１および／またはＢ７−２と反応する抗体はイン・ビトロでのＴ細胞の増殖およびＩＬ−２産生を阻害し、イン・ビボでの抗原に対する最初の免疫応答を阻害するのに使用されている（ハスコック，Ｋ．Ｓ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６２，９０５−９０７（１９９３）；アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）；パワーズ，Ｇ．Ｄ．ら、Ｃｅｌｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５３，２９８−３１１（１９９４）；チェン，Ｃ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２，２１０５−２１１４（１９９４））。
【０００５】
抗原に対する不必要なＴ細胞反応を避けるためのアネルギー誘起の別のアプローチは、抗原に特異的なＴ細胞をクローン的に排除し、それによりＴ細胞のレパートリーから抗原特異的Ｔ細胞を除去することである。イン・ビボでは、胸腺におけるＴ細胞の成熟が、潜在的な自己反応性Ｔ細胞のクローン的排除を引き起こす。さらに、予め活性化したＴ細胞がクローンの展開後の末梢において選択的に枯渇し、エフェクター機能を生じるという証拠が増えつつある（ウェッブ，Ｓ．ら、Ｃｅｌｌ６３，１２４９−１２５６（１９９０）；ローチャ，Ｂ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５１，１２２５−１２２７（１９９１）；およびラッセル，Ｊ．Ｈ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８８，２１５１−２１５５（１９９１））。Ｔ細胞を含む多くの細胞型の排除または除去は、アポトーシスと称する機構すなわちプログラムされた細胞死により引き起こされる。細胞におけるアポトーシスの発生は、細胞収縮、核崩壊およびＤＮＡの分断といった様相に特徴づけられる（コーエン，Ｊ．Ｊ．ら、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０，２６７−２９３（１９９２）に記述されている）。Ｆａｓおよび腫瘍壊死因子受容体を含むいくつかの細胞表面分子は、ライゲートする時に細胞にアポトーシスを誘起できることが確認されている（ヨネハラ，Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６９，１７４７−１７５６（１９８９）；トゥラウズ，Ｂ．Ｃ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４５，３０１−３０５（１９８９）；イトウ，Ｎ．ら、Ｃｅｌｌ６６，２３３−２３９（１９９１）；およびグリーンブラット，Ｍ．Ｓ．ら、Ｂｌｏｏｄ８０，１３３９−１３４４（１９９２））。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、これらのアポトーシス分子には、Ｔ細胞系列（ｌｉｎｅａｇｅ）を限定するものがなく、抗原に特異的な方法でアポトーシスを誘起するものもない。抗原刺激に依存した方法でＴ細胞をクローン的に排除する能力は、種々の臨床の場において対象に付随する有害な副作用を伴う慢性的な全身の免疫抑制を必要としない、Ｔ細胞応答の長期的阻害の方法を提供する。したがって、抗原特異的なアポトーシスを惹起しうるリガンドの発見が望まれている。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
発明の要約
本発明は、少なくともある程度、Ｔ細胞表面分子に結合し、活性化Ｔ細胞における抗原特異的アポトーシスを誘起する新規なリガンドの発見に基づくものである。好ましくは、リガンドはＴ細胞表面分子ＣＴＬＡ４、とりわけヒトＣＴＬＡ４に結合する抗体、または抗体断片である。既知ＣＴＬＡ４リガンドＢ７−１およびＢ７−２により認識された（複数の）エピトープとは異なる、ＣＴＬＡ４上に結合する抗ＣＴＬＡ４抗体は、とりわけ抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起するのに使用するのが好ましい。抗体はポリクローナルもしくはモノクローナル抗体またはそれらの断片でよい。キメラおよびヒト化モノクローナル抗体、およびそれらの断片は、本発明の範疇に入る。別の態様において、リガンドはＴ細胞アポトーシスを誘起できるＢ７−１およびＢ７−２と異なる新規のＣＴＬＡ４リガンド可溶性組換え体である。また別に、リガンドはＣＤ２８に結合することなくＣＴＬＡ４に結合するＢ７−１またはＢ７−２を改変した形態でもよい（例えばＢ７−１またはＢ７−２の改変体は本発明の抗体により認識されるＣＴＬＡ４上の同一のエピトープに結合し、Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する）。
【０００８】
本発明の別の態様は、既知のＢ７−１およびＢ７−２リガンドにより結合されるエピトープとは異なるＣＴＬＡ４上のエピトープに結合し、Ｔ細胞のアポトーシスを誘起するリガンドに係わる。好ましくは、本発明のリガンド例えば抗体により認識されるＣＴＬＡ４エピトープは、アミノ酸配列：
【化１】
【０００９】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、好ましくは０〜５、さらに好ましくは０〜３である。）を含有または包含する。このＣＴＬＡ４エピトープは、ヒトＣＴＬＡ４においてアミノ酸位置５９〜６４で見出される。従って、典型的なものでは、Ｘａａはアミノ側もしくはカルボキシ側のどちらかで、またはアミノ側およびカルボキシ側の両方で見出される、ヒトＣＴＬＡ４アミノ酸配列（配列番号：３６）におけるエピトープのさらなるアミノ酸残基である。また別に、Ｘａａは得られるペプチドの溶解性を高めるか、または得られたペプチドを免疫原として使用するための免疫原性を増強するアミノ酸残基でもよい。例えば、Ｘａａはペプチドの溶解性を高めるために加えることができる荷電アミノ酸（例えばリジン、アルギニン）でよい。また別に、Ｘａａは得られたペプチドの二量体形成を増強するために加えられるシステインでもよい。
【００１０】
本発明のリガンドは、医薬的に許容できる担体と組み合わせた時に、医薬的投与に適した組成物として用いることができる。
【００１１】
本発明のリガンドは、イン・ビトロまたはイン・ビボのどちらかで、Ｔ細胞アポトーシスを誘起することにより、抗原に特異的な方法で活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するのに有用である。一の態様において、活性化Ｔ細胞はイン・ビトロでＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてＴ細胞を刺激する１番目の物質と、およびＣＴＬＡ４上のエピトープを架橋する２番目の物質と接触するか、またはＴ細胞においてアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４−媒介経路を通じて細胞内シグナルを提供する。また別に、２番目の物質は医薬的に許容できる担体と共に対象に投与し、イン・ビボで対象にＴ細胞アポトーシスを誘起する。好ましい２番目の物質は、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体である。ＣＴＬＡ４−媒介経路を通じたアポトーシスの誘起に加えて、１またはそれ以上のさらなる物質を対象に投与し、Ｔ細胞に刺激シグナルを送るのを阻害することができる。例を挙げると、対象における（複数の）Ｔ細胞成長因子の産生または機能を阻害する物質、例えば抗ＩＬ−２受容体抗体、抗ＩＬ−２抗体またはシクロスポリンＡもまた、対象に投与することができる。また別に、またはさらに、Ｔ細胞に共刺激シグナルを送るのを阻害する、別の物質、例えばＣＤ２８並びにＢ７−１および／またはＢ７−２の間の相互作用を阻害する分子（例えば抗体または可溶性融合タンパク）もまた、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する物質と一緒に投与することができる。
【００１２】
本明細書に記載した方法に準じた、アポトーシスの誘起によるＴ細胞のクローン的排除は、種々の臨床の場に適用される。例えば、異種反応性（ａｌｌｏｒｅａｃｔｉｖｅ）のＴ細胞を移植の受容者から排除し、移植細胞、組織または器官の拒絶を阻害することができる。さらに、骨髄移植の前に、供与体の骨髄から異種反応性Ｔ細胞を排除し、移植受容者における移植片対宿主疾患を阻害できる。その他の適用として、自己反応性Ｔ細胞を除去して自己免疫障害を処置し、およびアレルゲン特異的Ｔ細胞を除去してアレルギーを処置する。表面でＣＴＬＡ４を発現する、ウイルス感染したまたは悪性のＴ細胞もまた、本発明の方法に準じて排除できる。
【００１３】
Ｔ細胞におけるアポトーシスの誘起を提供するのに加えて、本発明はまたＴ細胞アポトーシスを阻害する方法をも提供する。一の態様において、Ｔ細胞アポトーシスは、Ｔ細胞上のＣＴＬＡ４、および抗原表示細胞でアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドとの間の相互作用で干渉することにより阻害される。ＣＴＬＡ４抗体もしくはそれらの断片（例えばＦａｂ断片）の阻止形態またはＣＴＬＡ４リガンドの可溶性阻止形態は、Ｔ細胞アポトーシスの阻害に用いることができる。また別に、細胞内で作用して、ＣＴＬＡ４−媒介経路を通じてＴ細胞のアポトーシスを阻害する物質を用いることができる。アポトーシスを阻害する方法は、例えば腫瘍細胞および病原体（例えば細菌、ウイルス、菌類、寄生虫等）に対するＴ細胞応答を増強し、予防接種の効果を増強するのに有用である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
発明の詳しい説明
本発明は、少なくともある程度、活性化Ｔ細胞上のＴ細胞表面分子、例えばＣＴＬＡ４の架橋が、ＴＣＲ／ＣＤ３複合体を介した活性化Ｔ細胞へのシグナルの配送と共に、Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するという発見に基づいている。抗原がＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてシグナルを配送するために用いられる場合、結果的に抗原特異的アポトーシスを引き起こす。従って、本発明は、抗原に特異的な方法で活性化Ｔ細胞をクローン的に排除させる方法を提供する。
【００１５】
本発明の一つの態様として、Ｔ細胞表面に存在する分子に結合する新規な単離リガンドを提供し、活性化Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する。本明細書で用いる「リガンド」は標的分子に特異的な反応性（すなわち特異的に認識し、そして結合する）を示す分子である。本発明のリガンドは、Ｔ細胞特異的表面分子に結合し、Ｔ細胞のアポトーシスシグナルの引き金となる。表面分子、すなわち、「Ｔ細胞特異性」は、別の細胞型に比較して独占的にまたは優先的に（すなわち優越して）Ｔリンパ球に発現する。本発明のリガンドが結合する、好ましいＴ細胞表面分子はＣＴＬＡ４である。一つの態様において、ＣＴＬＡ４は配列番号：３６（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１）をも参照）に示すアミノ酸配列を有し、配列番号：３５（ダリアバッハ，Ｆ．ら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８，１９０１−１９０５（１９８８）をも参照）に示すヌクレオチド配列を有するｃＤＮＡによりコード化されるヒトタンパクを表す。別の態様において、ＣＴＬＡ４は別の哺乳動物種からのヒトタンパク相同体、例えばマウスＣＴＬＡ４を表す（マウスＣＴＬＡ４をコード化したｃＤＮＡはブルネット，Ｊ．Ｆ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３２８，２６７−２７０（１９８７）に記載されている）。さらに、タンパクに結合するリガンドは、Ｔ細胞特異性発現を示し、Ｔ細胞に抗原特異性アポトーシスを媒介することができるＣＴＬＡ４（例えば相同のアミノ酸配列を有する）に構造的に関連しており、本発明の意図するところである。
【００１６】
本発明のリガンドは抗原特異的な態様で、活性化Ｔ細胞にアポトーシスまたはアポトーシスシグナルを誘起することができる。「アポトーシス」なる用語は細胞収縮、核崩壊、および最も典型的な細胞ＤＮＡの分断の存在により特徴づけられる、プログラムされた細胞死の細胞の過程を記載することを意味する。「抗原特異性」アポトーシスは、Ｔ細胞集団の中で、アポトーシスが特定の抗原、例えば同種抗原または自己抗原に特異性を有するＴ細胞にのみアポトーシスが起こることを意味する。抗原特異性アポトーシスは活性化Ｔ細胞を抗原および本発明のＣＴＬＡ４リガンドの両方で刺激することにより達成できる。また別に非抗原特異性（すなわちポリクローナル）アポトーシスは、非抗原特異的シグナルをＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、例えば抗ＣＤ３抗体を本発明のＣＴＬＡ４リガンドと共に、Ｔ細胞に送ることにより達成できる。アポトーシスは表面上にＣＴＬＡ４を発現する「活性化」Ｔ細胞に誘起される。Ｔ細胞は抗原に特異的な方法で、例えばＴ細胞を共刺激シグナルと共に（例えばＣＤ２８経路を通じてシグナルを送る）抗原で刺激することによりＣＴＬＡ４を発現するように活性化できる。また別に、Ｔ細胞は、例えば、ミトゲン例えば植物性赤血球凝集素（ＰＨＡ）またはフォルボールエステル例えばフォルボールミリスティックアセテート（ＰＭＡ）と培養することにより、ポリクローナル的に活性化できる。
【００１７】
好ましい態様において、本発明のリガンドはＣＴＬＡ４に結合する抗体（本明細書で抗ＣＴＬＡ４抗体とも称する）である。本明細書で用いる「抗体」なる用語は、免疫グロブリン分子および免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分、すなわち抗原例えばＣＴＬＡ４に特異的に結合する（免疫反応する）抗原結合部位を含有する分子を意味する。構造的には、最も簡単な天然に存在する抗体（例えばＩｇＧ）は、４個のポリペプチド鎖、２個の重（Ｈ）鎖および２個の軽（Ｌ）鎖を含有し、ジスルフィド結合により内部で結合している。抗体の抗原結合機能は、天然に存在する抗体の断片により実行できることが示されている。従って、これらの抗原結合断片もまた「抗体」なる用語で表す。抗体なる用語の範疇に入る結合断片の実例としては、（ｉ）ＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨ１領域から成るＦａｂ断片；（ｉｉ）ＶＨおよびＣＨ１領域から成るＦｄ断片；（ｉｉｉ）抗体の単一のアームのＶＬおよびＶＨ領域から成るＦｖ断片；（ｉｖ）ＶＨ領域から成るｄＡｂ断片（ワードら、Ｎａｔｕｒｅ ３４１，５４４−５４６（１９８９））；（ｖ）単離した相補的決定部域（ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ：ＣＤＲ）；および（ｖｉ）蝶番部域でジスルフィド橋により連結された２個のＦａｂ断片を含む２価の断片である、Ｆ（ａｂ’）２断片が含まれる。さらにＦｖ断片の２個の領域は別の遺伝子によりコード化されるが、合成リンカーは、組換え法により単一のタンパク鎖（一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として既知；バードら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２，４２３−４２６（１９８８），およびフストンら、ＰＮＡＳ ８５，５８７９−５８８３（１９８８））にできるように作ることができる。このような一本鎖抗体もまた「抗体」なる用語の範疇に入る。アポトーシスを誘起する好ましい抗体断片は、標的抗原例えばＦ（ａｂ’）２断片のような２価の断片を架橋する能力のあるものである。また別に、それ自身は標的抗原を架橋しない抗体断片（例えばＦａｂ断片）は、それにより標的抗原と架橋する抗体断片を架橋させる二次的な抗体と組み合わせて用いることができる。さらに、非架橋抗体断片（例えばＦａｂ断片）は、以下に記載するようにアポトーシスを阻止または阻害するために用いることができる。抗体は本明細書に記載するように通常の方法を用いて分断でき、断片は抗体全体のために記載したのと同一の方法によりスクリーニングして使用することができる。本発明の抗体はＣＴＬＡ４結合タンパクを有する２重に特異的でキメラな分子を含むことをも意味する。
【００１８】
「ＣＴＬＡ４エピトープに対して望ましく結合する特異性」なる言語およびさらに一般的な「特異的に結合する（免疫反応する）抗原結合部位」なる言語は、個々の抗体がＴ細胞表面分子、例えばＣＴＬＡ４と特異的に免疫反応する能力を意味する。すなわち、これは、抗体分子とＣＴＬＡ４の抗原決定因子との間での非無作為結合反応を意味する。望ましい結合特異性は、典型的には、抗体のＣＴＬＡ４抗原および無関係の抗原に差別的に結合し、したがって、とりわけ２個の抗原が独特のエピトープである場合に、２個の異なる抗原を区別する能力を参考にして決定する。ＣＴＬＡ４エピトープに特異的に結合する抗体は、「特異的抗体」と称する。
【００１９】
本明細書で用いる「抗体結合部位」は、抗原に特異的に結合する（免疫反応する）、重および軽鎖可変および超可変部域を包含する、抗体分子の構造的な部分を意味する。種々の形態の“免疫反応する”および“と反応する”なる用語は、抗原決定因子含有分子、および抗体結合部位を含有する分子、例えば抗体分子全体またはそれの一部分の間の結合という意味で本明細書で使用する。
【００２０】
本明細書で用いる「エピトープ」なる用語は、抗体結合部位により免疫学的に結合される、抗原の実際の構造部分を意味する。この用語はまた「抗原決定因子」と互換的にも用いられる。本発明のリガンド、例えば抗体は、好ましくはＢ７−１またはＢ７−２により結合される（複数の）エピトープとは区別される（すなわち、異なる）ＣＴＬＡ４上のエピトープに結合する。すなわち、ＣＴＬＡ４リガンドはＣＴＬＡ４上のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは区別されるＣＴＬＡ４上の部位に結合する。ＣＴＬＡ４リガンドの、Ｂ７−１またはＢ７−２結合部位とは区別されるＣＴＬＡ４エピトープへの結合は、リガンドがＢ７−１またはＢ７−２のＣＴＬＡ４への結合を阻害する、またはその逆の不能力性（すなわち、Ｂ７−１またはＢ７−２の、ＣＴＬＡ４リガンドのＣＴＬＡ４に対する結合を阻害するための不能力性）により示される。これは、実施例２に記載するように、例えば酵素連結免疫吸着検定（ＥＬＩＳＡ）並びに、可溶性Ｂ７−１、Ｂ７−２およびＣＴＬＡ４融合タンパクを用いて評価することができる。好ましくは、Ｆａｂ断片を、抗体がＢ７−１またはＢ７−２のＣＴＬＡ４への結合を阻害し、立体障害による非特異的阻害を減少させる能力を評価するために用いる。
【００２１】
本発明のＣＴＬＡ４リガンドが結合する、好ましいヒトＣＴＬＡ４エピトープには、アミノ酸配列：
【化２】
【００２２】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、さらに好ましくは０〜１０、よりさらに好ましくは０〜５、最も好ましくは０〜３である。）を含有または包含する。天然のヒトＣＴＬＡ４では、この配列は相補的決定部域２（ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｙｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇｒｅｇｉｏｎ２：ＣＤＲ２）様部域の細胞内領域に、配列番号：３６のアミノ酸位置５９〜６４（配列番号：３６）に位置する。従って、典型的なものでは、ＸａａはヒトＣＴＬＡ４のコアエピトープのアミノまたはカルボキシ側のどちらかか、またはアミノおよびカルボキシ側の両方に見出されるさらなるアミノ酸残基である（これのアミノ酸配列の全長を配列番号：３６に示す）。天然のタンパクでは、さらなる、隣接しないアミノ酸残基もまた、抗体により認識されるエピトープの配置に寄与できることが、当業者に理解されるであろう。６個のコアアミノ酸残基の側面になるその他のアミノ酸残基を含有するエピトープを包含する合成ペプチドを作ることができる（すなわちＸａａはまた別に、天然のＣＴＬＡ４タンパクに見出されるものとは異なるアミノ酸残基にできる）。これらの側面にあるアミノ酸は得られるペプチドの特性を変化させる機能（例えば、溶解性の増加、免疫原性の増強または得られるペプチドの二量体形成の亢進）を有することができる。ペプチドを免疫原として用いる場合、１またはそれ以上の荷電アミノ酸（例えばリジン、アルギニン）は、ペプチドの溶解性を増加させ、および／またはペプチドの免疫原性を増加するために含有することができる。また別に、システイン残基は、得られるペプチドの二量体形成を増加させるために含有することができる。
【００２３】
本発明のこれらのおよびその他の態様は、以下の節に詳細に記載する：
【００２４】
Ｉ．ＣＴＬＡ４および抗ＣＴＬＡ４抗体
ＣＴＬＡ４抗原は、免疫細胞に対して抗原を表示する、Ｂリンパ球、専門の抗原表示細胞（例えば単球、樹状突起細胞、ランゲルハン細胞）およびその他の細胞（例えばケラチノサイト、内皮細胞、星状細胞、線維芽細胞、乏突起膠細胞）の表面に見出される共刺激分子に結合できるＴ細胞表面分子のファミリーの一員である。このファミリーの別の一員はＣＴＬＡ４と全アミノ酸の同一性の３１％を共有するＴ細胞表面分子ＣＤ２８である（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１））。ＣＤ２８およびＣＴＬＡ４分子は各々Ｂ７−１およびＢ７−２のような共刺激分子に結合する。しかしながら、抗ＣＤ２８Ｆａｂ断片が、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方による共刺激に対するＴ細胞応答を完全に阻害するのを観察すると、Ｂ７ファミリー共刺激が優勢的にＣＤ２８に媒介されるという仮説が支持される（ギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８８，６５７５−６５７９（１９９１）；およびフリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７８，２１８５−２１９２（１９９３）参照）。対照的に、Ｔ細胞アポトーシスは新規ＣＴＬＡ４リガンドとの相互作用により、ＣＴＬＡ４に媒介されることが発見されている。
【００２５】
ＣＴＬＡ４分子は、休止Ｔ細胞には発現しないが、活性化により誘起される。例えば正常の休止ヒトＴ細胞をＰＨＡまたはＰＭＡで２４時間刺激した後、ＣＴＬＡ４ｍＲＮＡはＣＤ４＋およびＣＤ８＋サブセットの両方に発現する（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２））。さらに、ＣＴＬＡ４発現はＴ細胞セルライン感染ＨＴＬＶ−ＩおよびＨＩＶに観察されている（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２）；ハーファー，Ｏ．Ｋ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，１１０９４−１１０９８（１９９３）参照）。
【００２６】
Ｔ細胞表面分子例えばＣＴＬＡ４の精製方法は、確立されており、そしてさらに、ＣＴＬＡ４遺伝子およびｃＤＮＡはヒトおよびマウスの両方からクローン化されている（例えば、ダリアバッハ，Ｆ．ら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８，１９０１−１９０５（１９８８）；およびブルネット，Ｊ−Ｆ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３２８，２６７−２７０（１９８７）参照）。ヒトＣＴＬＡ４のヌクレオチド配列および誘導されるアミノ酸配列を、各々配列番号：３５および３６に示す。ＣＴＬＡ４タンパク、またはそれのペプチドは、天然タンパクの精製により、または組換え発現により入手できる。ＣＴＬＡ４の改変した組換え体、例えばＣＴＬＡ４の細胞外領域は、ＣＴＬＡ４コード化ＤＮＡを発現ベクターに入れて発現させ、ベクターを宿主細胞、原核または真核細胞のどちらかに導入することができる。例えば、ＣＴＬＡ４細胞外領域またはそれのペプチドは、細菌細胞例えばＥ．ｃｏｌｉ、昆虫細胞（例えばバキュロウイルス発現系を使用する）、酵母または哺乳動物細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）、ＣＯＳもしくはＮＳＯ細胞に発現できる。その他の適当な宿主細胞および発現ベクターは、ゴエデル、（１９９０）（前掲）に見出され、すなわち当業者に周知である。酵母Ｓ．ｃｅｒｉｖｉｓａｅに発現するベクターの例としては、ｐＹｅｐＳｅｃ１（バルダリら、Ｅｍｂｏ．Ｊ．６，２２９−２３４（１９８７））、ｐＭＦａ（クルジャンおよびヘルスコヴィッツ、Ｃｅｌｌ３０，９３３−９４３（１９８２））、ｐＪＲＹ８８（シュルツら、Ｇｅｎｅ ５４，１１３−１２３（１９８７））およびｐＹＥＳ２（インヴィトロゲンコーポレーション、サンディエゴ、カリフォルニア州）が挙げられる。培養昆虫細胞（ＳＦ９細胞）におけるタンパクの発現に使用可能なバキュロウイルスベクターには、ｐＡｃシリーズ（スミスら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３，２１５６−２１６５（１９８３））およびｐＶＬシリーズ（リュックロー，Ｖ．Ａ．およびサマーズ，Ｍ．Ｄ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ１７０，３１−３９（１９８９））が含まれる。一般的に、ＣＯＳ細胞（グルツマン，Ｙ．，Ｃｅｌｌ２３，１７５−１８２（１９８１））は，ｐＣＤＭ８（シード，Ｂ．，Ｎａｔｕｒｅ ３２９，８４０（１９８７））のようなベクターと一緒に、哺乳動物細胞における一過性の増幅／発現のために用い、一方ＣＨＯ（ｄｈｆｒ−チャイニーズハムスター卵巣：ｄｈｆｒ−Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｈａｍｓｔｅｒ Ｏｖａｒｙ）細胞はｐＭＴ２ＰＣ（カウフマンら、ＥＭＢＯＪ．６，１８７−１９５（１９８７））のようなベクターと、哺乳動物細胞における安定した増幅／発現のために用いられる。ガルフレ，Ｇ．およびミルステイン，Ｃ．（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ７３（１３），３−４６（１９８１）並びにＰｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｓｔｒａｔｅｇｙ ａｎｄ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ，アカデミックプレス、ニューヨーク、ニューヨーク州）に記載されるように、組換えタンパクは、ＮＳＯ骨髄腫セルラインで産生できる。
また別に、ＣＴＬＡ４の組換え細胞外部分は、細菌細胞、例えばＥ．ｃｏｌｉに発現できる。好ましいＥ．ｃｏｌｉ発現系には、誘導可能な発現ベクターｐＴｒｃ（アマンら、Ｇｅｎｅ ６９，３０１−３１５（１９８８））およびｐＥＴ１１（ステュディヤーら、Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、アカデミックプレス、サンディエゴ、カリフォルニア、１８５，６０−８９（１９９０）；ノヴァゲンより入手可能）を含む。ｐＴｒｃベクター系では、宿主ＲＮＡポリメラーゼ転写によりｐｅ１Ｂシグナル配列でハイブリッドｔｒｐ−ｌａｃ融合タンパクから挿入した遺伝子を発現する。誘導後、ペリプラスミック分画から組換えＣＴＬＡ４を精製できる。ｐＥＴ１１ベクター系では、共発現ウイルス性ＲＮＡポリメラーゼ（Ｔ７ｇｎｌ）により媒介されるＴ７ ｇｎ１０−ｌａｃ ０融合プロモーターから転写することにより、非融合タンパクとして標的遺伝子を発現する。このウイルス性ポリメラーゼは、宿主Ｅ．ｃｏｌｉ株ＢＬ２１（ＤＥ３）またはＨＭＳ１７４（ＤＥ３）により、ｌａｃＵＶ５プロモーターの転写制御下で、Ｔ７ｇｎ１を隠す内在性λプロファージから供給される。この系では、組換えＣＴＬＡ４は細胞封入体から変性された形態で精製でき、望む場合は、段階グラジエント透析により変性原を除去して復元できる。Ｅ．ｃｏｌｉにおけるヒトＣＴＬＡ４の細胞外領域の発現については、実施例６でさらに詳細に記載する。
【００２７】
ＣＴＬＡ４の組換え細胞表面形態は、タンパクの膜透過および／または細胞質部分の改変により、哺乳動物の細胞上に発現できる（天然の全長の形態のタンパクは、多くの哺乳動物細胞の表面に効率よく発現しない）。例えば、膜透過および細胞質領域は、分子を細胞表面に繋ぎ止めるためのまた別の構造、例えばグリコフォスファチヂルイノシトール（ｇｐｉ）アンカー（実施例１で記載）または脂肪酸アンカーで置換できる。また別に、ＣＴＬＡ４の細胞表面発現は、異型の膜透過領域を用いて、または細胞質領域を排除することにより達成できる。リンスレイＰ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）に記載するように、ＣＴＬＡ４は可溶性融合タンパク（例えば免疫グロブリン融合タンパク）として哺乳動物にも発現できる。
【００２８】
哺乳動物細胞に発現するためには、通常の技法で、例えばリン酸カルシウムまたは塩化カルシウムの共沈、ＤＥＡＥデキストラン介在トランスフェクション、リポフェクチンまたはエレクトロポレーション（ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ）によりベクターＤＮＡを哺乳動物細胞に誘導する。宿主細胞を形質転換するに適した方法は、サムブロックら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー・プレス（１９８９））およびその他の実験テキストに見出すことができる。哺乳動物細胞で用いる場合、発現ベクターの制御機能は、しばしばウイルスの遺伝物質により提供される。例えば、通常用いられるプロモーターは、ポリオーマ、アデノウイルス２、サイトメガロウイルスおよび最も頻繁に用いられるシミアンウイルス４０に由来する。
【００２９】
哺乳動物細胞またはその他の所に発現するＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチドは、硫酸アンモニウム沈殿、分別カラムクロマトグラフィー（例えばイオン交換、ゲル濾過、電気泳動、親和性クロマトグラフィー等）および最後には結晶化を含む、当業界で標準的な方法で精製できる（一般的には、“Ｅｎｚｙｍｅ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ”，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２２，２３５−５７７（１９７１）参照）。
【００３０】
抗ＣＴＬＡ４抗体は、当業者により、以下の標準的な方法により産生できる。例えば、いろいろな種からのＣＴＬＡ４分子は可溶性形態であっても、膜結合性であっても、抗ＣＴＬＡ４抗体の形成を誘起するために用いることができる。このような抗体はポリクローナルもしくはモノクローナル抗体か、またはこのような抗体の抗原結合断片のどちらでもよい。治療に適用するためにとりわけ重要なことは、Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４上のエピトープを架橋する抗体である。また別に、この「アポトーシス性エピトープ」に特異的に結合するが、ＣＴＬＡ４に架橋せず、アポトーシスを誘起しない、抗体またはそれらの（例えばＦａｂ）断片は、Ｔ細胞アポトーシスを阻害するために治療的に用いることができる。本発明はヒトＣＴＬＡ４（例えば抗ヒトＣＴＬＡ４ ｍＡｂ、好ましくはヒトまたはヒト化ｍＡｂ）およびその他の種例えばサル、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ラット、マウス等のＣＴＬＡ４タンパクに結合する抗体を包含し、獣医学的な目的のために用いることができる。抗ＣＴＬＡ４抗体の産生のための方法を、さらに詳細に以下に記載する：
【００３１】
Ａ．免疫原
「免疫原」なる用語は、ＣＴＬＡ４に対する抗体の調製物に用いるための活性成分として、ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを含有する組成物を記載するために、本明細書で用いる。ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを抗体を誘導するために用いる場合、ペプチドは単独でまたは担体に連結して複合体またはペプチドポリマーとして用いることができる。
【００３２】
適当な抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するために、ＣＴＬＡ４ペプチドまたはタンパクを所望により担体に連結した複合体として、有効な免疫原量の免疫原を含有すべきである。単位投与量あたりのペプチドの有効量は、当業者に周知であるように、とりわけ接種した動物の種、動物の体重および採用した免疫方法に依存する。この免疫原調製物は、典型的なものでは、ペプチドを免疫投与量あたり約１０マイクログラムから約５００ミリグラム、好ましくは投与量あたり約５０マイクログラムから約５０ミリグラム含有する。免疫調製物は、アジュバントを希釈剤の一部として含有することもできる。完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）、不完全フロインドアジュバント（ＩＦＡ）およびミョウバンのようなアジュバントは当業界で周知であり、いくつかの製造元より市販により入手可能である。
【００３３】
当業者は、免疫するために、天然物の形態のＣＴＬＡ４を使用する代わりに、本発明で使用するために抗体を増加できるように、合成ペプチドを代替的に用いることを理解するであろう。可溶性および膜結合性ＣＴＬＡ４タンパクまたはペプチド断片の両方とも、免疫原として用いるのに適しており、同様にまた免疫親和性精製により単離できる。上述のように、または当業界で周知のように単離できるような、ＣＴＬＡ４タンパクの精製体はそれ自体免疫原として直接的に使用できるか、また別に、化学的カップリング法およびＣＴＬＡ４タンパクのクローン化遺伝子を用いる遺伝子操作を含む通常の方法で、適当なキャリヤータンパクに連結することができる。精製ＣＴＬＡ４タンパクは非タンパク性物質、例えば脂質または炭水化物で共有結合的にまたは非共有結合的に修飾して、免疫原性または溶解性を増強できる。また別に、免疫原性を増強するために、精製ＣＴＬＡ４タンパクは、ウイルス性粒子、複製ウイルスまたはその他の微生物と結合またはこれらに挿入することができる。ＣＴＬＡ４タンパクは、例えばウイルス粒子もしくは微生物、またはそれらの免疫原性部分に化学的に結合できる。
【００３４】
説明的な態様において、精製ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチド断片（例えば限定的なタンパク溶解またはＤＮＡ組換え法により産生）は、動物において免疫原であるキャリヤーに結合する。好ましいキャリヤーには、タンパク例えばアルブミン、血清タンパク（例えばグロブリンおよびリポタンパク）およびポリアミノ酸が含まれる。有用なタンパクの実例としては、ウシ血清アルブミン、ウサギ血清アルブミン、甲状腺グロブリン、キーホール・リンペット・ヘモシアニン（ｋｅｙｈｏｌｅ ｌｉｍｐｅｔ ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）、卵のオバルブミンおよびウシガンマーグロブリンが含まれる。合成ポリアミノ酸、例えばポリリジンまたはポリアルギニンもまた有用なキャリャーである。ＣＴＬＡ４タンパクまたはペプチド断片を適当な免疫原性キャリヤーに共有結合させることに関して、当業者に既知の多くの化学的架橋試薬がある。好ましい架橋試薬は、タンパクを漸次的に連結するのに用いることができる異二機能架橋剤である。広範に種々の異二機能架橋剤が当業界に知られており、サクシンイミジル４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）、ｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシサクシンイミドエステル（ＭＢＳ）；Ｎ−サクシンイミジル（４−ヨードアセチル）アミノゼンゾエート（ＳＩＡＢ）、サクシンイミジル４−（ｐ−マレイミドフェニル）ブチレート（ＳＭＰＢ）、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミドハイドロクロライド（ＥＤＣ）；４−サクシンイミジルオキシカルボニル−ａ−メチル−ａ−（２−ピリジルジチオ）−トルン（ＳＭＰＴ）、Ｎ−サクシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、サクシンイミジル６−［３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート］ヘキサノエート（ＬＣ−ＳＰＤＰ）が含まれる。
【００３５】
表面にＣＴＬＡ４タンパクを発現する全形の細胞で動物を単純に免疫するのも望ましい。種々のセルラインを免疫原として用い、活性化Ｔ細胞に限定はしないが、これを含めるＣＴＬＡ４抗原に対するモノクローナル抗体を産生することができる。例えば対象から得た末梢血Ｔ細胞はイン・ビトロで抗ＣＤ３抗体、ＰＨＡまたはＰＭＡで活性化できる。また別に、抗原を提示することにより、共刺激シグナルと共にＴ細胞にＣＴＬＡ４を発現するように抗原特異性（例えば全身反応性）Ｔ細胞クローンを活性化できる。ＣＴＬＡ４特異性抗体を産生する免疫原として用いることができる全形の細胞には、組換えトランスフェクタントも含まれる。例えばＣＯＳおよびＣＨＯ細胞は、実施例１に記載するように、ＣＴＬＡ４−ｇｐｉｃＤＮＡでトランスフェクションすることにより再構築し、それらの表面にＣＴＬＡ４を発現する細胞を産生できる。これらのトランスフェクタント細胞は、次いで免疫原として抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するのに用いることができる。トランスフェクタント細胞のその他の例としては、とりわけＣＴＬＡ４タンパクをグリコシル化できる真核細胞が知られており、細胞表面にトランスフェクトしたＣＴＬＡ４遺伝子を発現するように可動できる任意の方法を用いて、全形細胞免疫原を産生することができる。
【００３６】
ＣＴＬＡ４発現細胞または単離ＣＴＬＡ４タンパクに代わって、ＣＴＬＡ４のペプチド断片を免疫原として用いて、抗ＣＴＬＡ４抗体を産生することができる。好ましい態様において、抗体に結合するＣＴＬＡ４エピトープには、アミノ酸配列：
【００３７】
【化３】
【００３８】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０、好ましくは０〜１０、さらに好ましくは０〜５、最も好ましくは０〜３である。）を包含する。従って、配列番号：３３のアミノ酸配列を有するペプチドは免疫原として用いることができる。よって、本発明はさらに、アミノ酸配列：
【００３９】
【化４】
【００４０】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０）を含有する単離ＣＴＬＡ４ペプチドを包含する。
【００４１】
また別に、アポトーシスを誘起できる抗ＣＴＬＡ４抗体が多くのその他のペプチド配列（実施例３に記載するようなファージ表示法（ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）により決定）と交差反応できることが見いだされている。これらのその他のペプチド配列の実例を以下に示す：
【化５】
【００４２】
【化６】
【００４３】
代替のアミノ酸残基を側面につけることができる、太字で括弧で括った６個のアミノ酸（抗体に結合したエピトープを表す）の伸長を含有する、任意のこれらのペプチド、またはその他のペプチドもまた、免疫原として用いて本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を産生でき、本発明に包含される。免疫原として使用するために、ペプチドを上記のように溶解性の上昇および／または免疫原性の増強のために修飾できる。
【００４４】
タンパクまたはペプチドを免疫原として使用するための別法としては、いわゆる遺伝子免疫するために、免疫原としてタンパクまたはペプチドをコードする核酸（例えばＤＮＡ）を使用することができる。従って、「免疫原」なる用語は、それに抗して抗体を増加させるタンパクまたはペプチドをコードする核酸をも含めることを意味する。遺伝子免疫により抗体を増加させるために、当該タンパク（例えばＣＴＬＡ４またはそれらのペプチド）をコードする核酸を含有する発現ベクター構築物は、粒子（例えば金粒子）を構築物で被覆し、粒子を皮膚へ注入することにより、動物（例えばマウス）の皮膚へ細胞内分配される。この操作が、結果的に皮膚にて抗原を産生し、特異的抗体反応を発展させる（タング，Ｄ．Ｃ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３５６，１５２−１５４（１９９２）；アイセンブラウン，Ｍ．Ｄ．ら、ＤＮＡ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２，７９１−７９７（１９９３）；ワング，Ｂ．ら、ＤＮＡ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２，７９９−８０５（１９９３））。
【００４５】
Ｂ．ポリクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体
一般的に、ＣＴＬＡ４免疫原、例えばＣＴＬＡ４タンパクの細胞外領域およびアジュバントを多数回皮下（ｓｃ）または腹膜腔内（ｉｐ）注射することにより、精製ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチド断片に対するポリクローナル抗体を、動物で増加させることができる。ポリクローナル抗ＣＴＬＡ４抗血清は、例えばリンドステン，Ｔ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１，３４８９−３４９９（１９９３）に記載するように、産生できる。説明的な態様において、免疫原性ＣＴＬＡ４タンパク、ペプチドまたは約１μｇ〜１ｍｇのタンパクをフロイント完全アジュバントと組み合わせ、溶液を数箇所で皮内注射して、誘導した物体に抗して、動物を通常的に免疫する。１ヶ月後、フロイント完全アジュバント（またはその他の適当なアジュバント）中の免疫原の元来の量の１／５〜１／１０で、数箇所で皮下注射して動物を免疫促進する。７〜１４日後、動物を出血させ、血清の抗ＣＴＬＡ４力価を（例えばＥＬＩＳＡにより）検定する。力価がプラトーに達するまで動物を免疫促進する。また、ミョウバンのような凝集剤も、免疫応答を増強するために使用することができる。
【００４６】
このような哺乳動物産生抗体分子群は、この群がＣＴＬＡ４に異なる免疫特異性および親和性を有する抗体を含有するので、「ポリクローナル」と称する。次いでこの抗体分子を、哺乳動物から（例えば血液から）回収し、周知の技術、例えばタンパクＡクロマトグラフィーにより単離し、ＩｇＧ分画を得る。抗体の特異性を増強するために、固相固着免疫原を用いる免疫親和性クロマトグラフィーにより抗体を精製できる。免疫原が抗体分子と免疫反応し、固相固着免疫複合体を形成するのに十分な時間、抗体を固相固着免疫原と接触させる。結合した抗体を標準的な方法で複合体から分離する。
【００４７】
Ｃ．モノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体
本明細書で用いる「モノクローナル抗体」または「モノクローナル抗体組成物」なる用語は、ＣＴＬＡ４抗原の粒子エピトープでの免疫反応が可能な抗原結合部位の一種のみを含有する抗体分子群を意味する。このように、モノクローナル抗体組成物は、通常それと免疫反応する特定のＣＴＬＡ４タンパクに単一の結合親和性を示す。好ましくは、対象となる方法で用いるモノクローナル抗体は、さらにヒトに由来するＣＴＬＡ４と免疫反応するという特徴がある。
【００４８】
本発明の組成物および方法に有用なモノクローナル抗体は、Ｔ細胞活性時のＣＴＬＡ４抗原のエピトープに導かれ、抗体およびＣＴＬＡ４抗原間で複合体形成（本明細書ではライゲーションを意味する）し、活性化Ｔ細胞におけるアポトーシスを誘起する。ＣＴＬＡ４のエピトープに対するモノクローナル抗体は、培養中、連続的なセルラインによる、抗体分子の産生を供する方法を用いて調製できる。これらには元来コーラーおよびミルステイン（Ｎａｔｕｒｅ ２５６，４９５−４９７（１９７５））により記載されたハイブリドーマ法およびさらに最近のヒトＢセルハイブリドーマ法（コズボールら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ ４，７２（１９８３））、ＥＤＶハイブリドーマ法（コールら、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、アラン・アール・リス・インコーポレイテッド、７７−９６頁）およびトリオーマ法が含まれるが、これらに限定するものではない。本発明に有用なモノクローナル抗体を有効に生じることができるその他の方法には、ファージ表示法が含まれる（マークスら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１６００７−１６０１０（１９９２））。
【００４９】
一つの態様において、対象方法に用いる抗体調製物は、ハイブリドーマセルラインにより産生したモノクローナル抗体である。ハイブリドーマ融合法は、最初コーラーおよびミルステイン（コーラーら、Ｎａｔｕｒｅ ２５６，４９５−９７（１９７５）；ブラウンら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２７，５３９−４６（１９８１）；ブラウンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５，４９８０−８３（１９８０）；イェーら、ＰＮＡＳ ７６，２９２７−３１（１９７６）；およびイェーら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ２９，２６９−７５（１９８２））により紹介された。従って、本発明のモノクローナル抗体組成物は、下記の段階を含む以下の方法により産生できる。
【００５０】
（ａ）ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれらのペプチドでの動物の免疫化
免疫は通常ＣＴＬＡ４免疫原を、免疫学的に適した哺乳動物に、免疫学的に有効量すなわち免疫反応を生じるのに十分な量投与することにより達成できる。好ましくは哺乳動物はウサギ、ラットまたはマウスのような齧歯類である。次いで、ＣＴＬＡ４免疫原と免疫反応する抗体分子を分泌する細胞を哺乳動物が産生するのに十分な時間、哺乳動物を保持した。このような免疫反応は、免疫原タンパクの調製物との免疫反応で生み出された抗体分子のスクリーニングにより検出される。所望により、検定で抗体分子により検出される形態のタンパク調製物、例えばＣＴＬＡ４の膜結合形態で、抗体分子をスクリーニングするのが望ましい。これらのスクリーニング法は、当業者に周知であり、例えば酵素連結免疫吸着検定（ＥＬＩＳＡ）および／またはフローサイトメトリーがある。
【００５１】
（ｂ）次に望ましい抗体を分泌する免疫哺乳動物から取り出した抗体産生細胞の懸濁液を調製する。十分な時間の後、マウスを殺し、体細胞抗体産生リンパ球を得る。抗体産生細胞は、用意した動物のリンパ節、脾臓および末梢血から取ることができる。脾臓細胞が好ましく、当業者に周知の方法で生理学的に耐えうる培地中、機械的に個々の細胞に分離できる。マウスリンパ球は、以下に記載するマウス骨髄腫と安定した高い確率で融合する。ラット、ウサギおよびカエル体細胞をも使用することができる。望ましい免疫グロブリンをコードする脾臓細胞染色体は、通常、融合剤、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の存在下、脾臓細胞を骨髄種細胞と融合することにより固定化する。標準的な方法に準じて、任意の数の骨髄腫細胞セルラインを、融合のパートナーとして使用できる；例えばＰ３−ＮＳ１／１−Ａｇ４−１、Ｐ３−ｘ６３−Ａｇ８．６５３またはＳｐ２／Ｏ−Ａｇ１４骨髄腫セルラインである。これらの骨髄腫セルラインは、アメリカンタイプカルチャーコレクション（ＡＴＣＣ）、ロックビル、メリーランド州より入手可能である。
【００５２】
次いで非融合骨髄腫またはリンパ球親細胞が最終的に死ぬ、選択培地、例えばＨＡＴ培地中、望ましいハイブリドーマを含有する、得られた細胞を成長させる。ハイブリドーマ細胞のみが生き残り、単離したクローンを得るための限定的な希釈条件で成長させることができる。ハイブリドーマの上澄を、例えば免疫に用いた抗原を用いた免疫検定法により、望ましい特異性の抗体の存在をスクリーニングする。次に陽性のクローンを限定的な希釈条件でサブクローン化し、産生したモノクローナル抗体を単離できる。その他のタンパクおよびその他の狭雑物を除去するために、モノクローナル抗体を単離および精製する種々の常法がある。モノクローナル抗体の精製のために通常用いられる方法は、硫酸アンモニウム沈殿、イオン交換クロマトグラフィー、および親和クロマトグラフィーが含まれる（ゾラら、Ｍｎｏｃｌｏｎａｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ａｎｔｉｂｏｄｙｓ：Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ Ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、ヒュウレル（編）５１−５２頁（１９８２）（ＣＲＣプレス））。これらの方法に準じて産生したハイブリドーマは、当業界に既知の方法でイン・ビトロまたはイン・ビボで伸長できる。
【００５３】
一般的に個々のセルラインは、イン・ビトロで、例えば実験用培養容器中、伸長でき、単一の特異性モノクローナル抗体を高濃度で含有する培養培地を、デカンテーション、濾過または遠心により収穫できる。また別に、モノクローナル抗体の産生は、体細胞および骨髄腫細胞に元来の融合を提供するために使用した組織適合した形態の動物にハイブリドーマの試料を注射することにより、増強できる。融合細胞ハイブリッドにより特異的モノクローナル抗体を分泌する腫瘍は、注射された動物で成長する。動物の体液、例えば腹水または血清は、高濃度のモノクローナル抗体を提供する。ヒトハイブリドーマまたはＥＢＶハイブリドーマを使用した場合、動物例えばマウスに注射した異種移植片の拒絶を避ける必要がある。免疫不全すなわちヌードマウスを使用でき、またはハイブリドーマを最初に放射線照射ヌードマウスに固体の皮下腫瘍として継代し、イン・ビトロで培養し、次に特異性ヒトモノクローナル抗体を多量に分泌する腹水腫瘍を成長させている、プリスタン・プライム（ｐｒｉｓｔａｎｅ ｐｒｉｍｅｄ）した、放射線照射ヌードマウスに腹膜腔内注射できる。
【００５４】
これらの組成物の調製に有用な培地および動物は、共に当業者に周知であり、市販により入手可能であり、合成培養培地、同系交配マウス等が含まれる。典型的な合成培地は、デュルベッコ最小必須培地（ＤＭＥＭ；デュルベッコら、Ｖｉｒｏｌ．８，３９６（１９５９））に４．５ｇｍ／１グルコース、２０ｍＭグルタミン、および２０％ウシ胎仔血清を補充したものである。典型的な同系交配マウス系列は、Ｂａｌｂ／ｃである。
【００５５】
実施例１は、ネズミ抗ヒトＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の産生について記載しており、これは対象の方法および組成物に使用できる。ＥＲ５．４Ｄ３（４Ｄ３またはＣＴＬＡ４．１とも称する）、ＥＳ５．３Ｄ６（３Ｄ６またはＣＴＬＡ４．２とも称する）、ＥＲ５．３Ｄ８（３Ｄ８またはＣＴＬＡ４．３とも称する）、ＥＳ５．４Ｅ３（４Ｅ３またはＣＴＬＡ４．４とも称す）およびＥＲ４．７Ｇ１１（７Ｇ１１とも称する）抗体を産生するＥＲ５．４Ｄ３、ＥＳ５．３Ｄ６、ＥＳ５．３Ｄ８、ＥＳ５．４Ｅ３およびＥＲ４．７Ｇ１１ハイブリドーマは、各々、ブダペスト条約の規定の下、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、パークローンドライブ、ロックビル、メリーランド州に１９９４年６月３日に寄託した。ＥＲ５．４Ｄ３ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＳ５．３Ｄ６ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＲ５．３Ｄ８ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＳ５．４Ｅ３ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。ＥＲ４．７Ｇ１１ハイブリドーマは、ＡＴＣＣ受入番号−−−−で寄託された。
【００５６】
Ｄ．キメラおよびヒト化抗ＣＴＬＡ４抗体
非ヒト対象に産生した抗体をヒトで治療的に使用する場合、異質の物としての程度が変わるのが認められ、患者に免疫反応が起こりうる。この問題を最小にまたは排除するための一つのアプローチとして、一般的に免疫を抑制することが好ましく、キメラ抗体誘導体、すなわち非ヒト動物可変部域およびヒト定常部域を組み合わせた抗体分子を産生させる。このような抗体は、上述のモノクローナルおよびポリクローナル抗体と等価であるが、ヒトに投与した場合、免疫原性が少なくなり、従って、患者の耐性がよくなる。
【００５７】
ＣＴＬＡ４と反応するキメラマウス−ヒトモノクローナル抗体（すなわちキメラ抗体）は、当業界に既知の組換えＤＮＡ法により産生できる。例えばネズミ（またはその他の種）抗ＣＴＬＡ４抗体分子の定常部域をコードする遺伝子は、ヒト定常部域をコードする遺伝子と代用される（ロビンソンら、国際特許公開ＰＣＴ／ＵＳ８６／０２２６９；アキラら、ヨーロッパ特許出願１８４１８７；タニグチ，Ｍ．ヨーロッパ特許出願１７１４９６；モリソンら、ヨーロッパ特許出願１７３４９４；ニューベルガーら、ＰＣＴ出願 ＷＯ８６／０１５３３；キャビリーら、米国特許番号４８１６５６７；キャビリーら、ヨーロッパ特許出願１２５０２３；ベターら、（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０，１０４１−１０４３（１９８８））リウら、ＰＮＡＳ ８４，３４３９−３４４３（１９８７）；リウら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３９，３５２１−３５２６（１９８７）；サンら、ＰＮＡＳ ８４，２１４−２１８（１９８７）；ニシムラら、Ｃａｎｃ．Ｒｅｓ．４７，９９９−１００５（１９８７）；ウッドら、Ｎａｔｕｒｅ ３１４，４４６−４４９（１９８５）；ショーら、Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ ８０，１５５３−１５５９（１９８８）参照）。
【００５８】
可変部域をヒト可変部域から等価な部分に結合した抗原を巻き込まないで置換することによりキメラ抗体をさらに「ヒト化」できる。「ヒト化」キメラ抗体に関する一般的な研究は、モリソン，Ｓ．Ｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２９，１２０２−１２０７（１９８５）およびオイら、Ｂｉｏ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ４，２１４（１９８６）により提供されている。これらの方法には、少なくとも一つの重または軽鎖からの免疫グロブリン可変部域の全てまたは一部をコードする核酸配列の単離、操作および発現が含まれる。このような核酸の入手源は当業者に周知であるが、例えばハイブリドーマ産生抗ＣＴＬＡ４抗体から得ることができる。キメラ抗体またはそれらの断片をコードするｃＤＮＡは、次に適当な発現ベクターにクローン化できる。また、適切な「ヒト化」抗体は、ＣＤＲまたはＣＥＡ置換により産生できる（ウィンターに対する米国特許５２２５５３９；ジョーンズら、Ｎａｔｕｒｅ ３２１，５５２−５２５（１９８６）；ヴェルホーヤンら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３９，１５３４（１９８８）；およびベイドラーら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４１，４０５３−４０６０（１９８８）参照）。
【００５９】
マウスまたはその他の種からのヒト化ｍＡｂの別法として、ヒトタンパクに直接的に抗してヒトｍＡｂを産生できる。ヒト抗体レパートリーを運ぶトランスジェノシスしたマウスを作り、ヒトＣＴＬＡ４で免疫できる。次にこれらの免疫し、トランスジェノシスしたマウスからの脾細胞を用いて、ヒトＣＴＬＡ４に特異的に反応するヒトｍＡｂを分泌するハイブリドーマを形成することができる（例えばウッドら、ＰＣＴ公開ＷＯ９１／００９０６；クッヒャーラパティら、ＰＣＴ公開ＷＯ９１／１０７４１；ロンベルグら、ＰＣＴ公開ＷＯ９２／０３９１８；キーら、ＰＣＴ公開９２／０３９１７；ロンベルグ，Ｎ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６８，８５６−８５９（１９９４）；グリーン，Ｌ．Ｌ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．７，１３−２１（１９９４）；モリソン，Ｓ．Ｌ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８１，６８５１−６８５５（１９９４）；ブラッジュマンら、Ｙｅａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ．７，３３−４０（１９９３）；テュアイロンら、ＰＮＡＳ ９０，３７２０−３７２４（１９９３）；ブラッジュマンら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２１，１３２３−１３２６（１９９１）参照）。
【００６０】
Ｅ．コンビナトリアル抗ＣＴＬＡ４抗体
本発明のモノクローナル抗体組成物は、組換えＤＮＡ法の当業者に周知のその他の方法によっても産生することができる。「コンビナトリアル抗体表示」と称する別法は、特定の抗原特異性を有する抗体断片を同定および単離するために開発され、モノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するのに利用できる（コンビナトリアル抗体表示の説明については、例えばサストリーら、ＰＮＡＳ ８６，５７２８（１９８９）；ヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５（１９８９）；およびオーランディーら、ＰＮＡＳ ８６，３８３３（１９８９）参照）。上述のようにＣＴＬＡ４免疫原で動物を免疫した後、休止Ｂ細胞プールの抗体レパートリーをクローン化する。方法は一般的に知られており、オリゴマープライマーおよびＰＣＲの混合物を用いて、免疫グロブリン分子多様な集団の可変部域のＤＮＡ配列が直接的に得られる。例えば、５’リーダー（シグナルペプチド）配列および／またはフレームワーク１（ＦＲ１）配列に対応する混合オリゴヌクレオチドプライマー、および保存された３’定常部域のプライマーを多くのネズミ抗体からの重および軽鎖のＰＣＲ増幅のために用いることができる（ラリックら、Ｂｉｏ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １１，１５２−１５６（１９９１））。同様の試験方法を用いて、ヒト抗体からのヒト重および軽鎖可変部域を増幅することもできる（ラリックら、Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐａｎｉｏｎ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２，１０６−１１０（１９９１））。
【００６１】
説明的な態様において、ＲＮＡは、例えば末梢血細胞、骨髄、または脾臓調製物の活性化Ｂ細胞から、標準的な試験計画を用いて単離する（例えば米国特許番号４６８３２０２；オーランディーら、ＰＮＡＳ ８６，３８３３−３８３７（１９８９）；サストリーら、ＰＮＡＳ ８６，５７２８−５７３２（１９８９）：およびヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５−１２８１（１９８９））。
【００６２】
ｃＤＮＡの最初の鎖は、（複数の）重鎖並びにκおよびλ軽鎖の各々の定常部域に特異的なプライマー、ならびにシグナル配列のプライマーを用いて合成する。可変部域ＰＣＲプライマーを用いると、重および軽鎖の両方の可変部域が各々単独でまたは組み合わせて増幅され、適当なベクターにライゲートして表示パッケージを生じさせてさらに操作する。増幅試験計画に有用なオリゴヌクレオチドプライマーは独特のものであるかまたは、同義的あるいは同義的部位においてイノシンを組み入れることができる。制限エンドヌクレアーゼ認識配列もまた、プライマーに組み入れて、予め決定した発現の解読枠で、増幅した断片をベクター中にクローニングすることができる。
【００６３】
免疫由来抗体レパートリーからクローン化したＶ遺伝子ライブラリーは、表示パッケージの集団、好ましくは線状ファージ由来のものにより発現し、抗体表示ライブラリーを形成できる。理想的には、表示パッケージは、非常に多様性に富んだ抗体表示ライブラリーの試料摂取、各々の親和性分離段階の後の急速な分別、および精製表示パッケージからの抗体遺伝子の簡単な単離を可能にする方法を含む。さらに、ファージ表示ライブラリー産生のための市販により入手可能なキット（例えばファルマシア・リコンビナント・ファージ・アンティボディ・システム、カタログ番号２７−９４００−０１；およびストラッタジーン ＳｕｒｆＺＡＰＴＭファージ表示キット、カタログ番号２４０６１２）に加え、とりわけ、多様な抗ＣＴＬＡ４抗体表示ライブラリーを産生するために使用できる方法および試薬の実例を、例えばラドナーら、米国特許番号５２２３４０９；カングら、国際公開番号ＷＯ９２／１８６１９；ドーワーら、国際公開番号ＷＯ９１／１７２７１；ウィンターら、国際公開番号ＷＯ９２／２０７９１；マークランドら、国際公開番号ＷＯ９２／１５６７９；ブレイトリングら、国際公開番号ＷＯ９３／０１２８８；マックカフェルティーら、国際公開番号ＷＯ９２／０１０４７；ガラルドら、国際公開番号ＷＯ９２／０９６９０；ラドナーら、国際公開番号ＷＯ９０／０２８０９；フッシュら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｌｏｇｙ ９，１３７０−１３７２（１９９１）；ヘイら、Ｈｕｍ．Ａｎｔｉｂｏｄ．Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ ３，８１−８５（１９９２）；ヒューズら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１２７５−１２８１（１９８９）；グリフツら、ＥＭＢＯ Ｊ．１２，７２５−７３４（１９９３）；ホーキンスら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２６，８８９−８９６（１９９２）；クラックソンら、Ｎａｔｕｒｅ ３５２，６２４−６２８（１９９１）；グラムら、ＰＮＡＳ ８９，３５７６−３５８０（１９９２）；ガラッドら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９，１３７３−１３７７（１９９１）：フーゲンブームら、Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．１９，４１３３−４１３７（１９９１）；およびバーバスら、ＰＮＡＳ ８８，７９７８−７９８２（１９９１）に見出すことができる。
【００６４】
ある態様において、重および軽鎖のＶ部域領域は、柔軟性のあるリンカーで接合され、単一鎖Ｆｖ断片を形成する、同一のポリペプチドに発現でき、続いてＳｃＦＶ遺伝子を望ましい発現ベクターまたはファージゲノムにクローン化できる。一般的にマックカフェルティーら、Ｎａｔｕｒｅ ３４８，５５２−５５４（１９９０）に記載されるように、柔軟性のある（Ｇｌｙ４−Ｓｅｒ）３リンカーで接合した抗体の完全なＶＨおよびＶＬ領域は、抗原親和性に基づいて分離可能な表示パッケージを提供できる単一鎖抗体を産生するのに用いることができる。ＣＴＬＡ４と免疫反応するｓｃＦＶ抗体の単離に、続いて対象方法で使用する医薬調製物に製剤化できる。
【００６５】
表示パッケージ（例えば線状ファージ）の表面にひとたび表示されると、ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれのペプチド断片で抗体ライブラリーをスクリーニングし、ＣＴＬＡ４に特異性を有する抗体を発現するパッケージを同定および単離する。分泌される抗体をコードする核酸は、表示パッケージから（例えばファージゲノムから）回収でき、標準的な組換えＤＮＡ法により、その他の発現ベクターにサブクローン化できる。
【００６６】
Ｆ．ハイブリドーマおよび調製方法
本発明に有用なハイブリドーマは、ＣＴＬＡ４抗原と特異的に免疫反応するモノクローナル抗体を産生する能力を有することで特徴づけられる。以下に記載するように、抗ＣＴＬＡ４抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、受容者動物が定常的な抗体源を提供するように、動物に直接的に埋め込むことができる。ハイブリドーマ培養物をカプセルで包むための免疫隔離装置（ｉｍｍｕｎｏｉｓｏｌａｔｏｒｙ ｄｅｖｉｃｅｓ）を使用すると、埋め込んだ細胞に抗した免疫原性反応を避け、免疫的に妥協した宿主におけるハイブリドーマ細胞の未確認の増殖を避けることができる。本発明の好ましいハイブリドーマは、ライゲートした時にＴセルにアポトーシスを誘起する、活性化ヒトＴ細胞の細胞表面で発現するＣＴＬＡ４分子のエピトープと特異的に免疫反応する抗体分子を産生するという特徴がある。
【００６７】
望ましい免疫特異性、すなわち、とりわけＣＴＬＡ４、および／またはＣＴＬＡ４の同定可能なエピトープと免疫反応する能力のある抗体分子を産生、例えば分泌するハイブリドーマの産生方法は、当業界に周知である。特に採用できるものは、ニーマンら、ＰＮＡＳ ８０，４９４９−４９５３（１９８３）；およびガルフレら、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．７３，３−４６（１９８１）に記載されるハイブリドーマ法である。
【００６８】
Ｇ．本発明のさらなる抗ＣＴＬＡ４抗体
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明のＣＴＬＡ４抗体に加え、本発明はＣＤ２８と交差反応する抗ＣＴＬＡ４抗体（本明細書で抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体と称し、代表的なものは、７Ｇ１１ｍＡｂである）をも提供する。このような抗体は、上述の方法で産生でき、実施例１に記載するようにスクリーニングし、同定できる。好ましい態様において、ＣＴＬＡ４のエピトープに結合する抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体は、アミノ酸配列：
【００６９】
【化７】
【００７０】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０（好ましくは０〜１０、さらに好ましくは０〜５、よりさらに好ましくは０〜３）である）を含有または包含する。天然のヒトＣＴＬＡ４では、この配列は、配列番号：３６のアミノ酸位置１０１〜１０５にある。Ｘａａはこの部域の側面になるさらなるＣＴＬＡ４アミノ酸残基であるか、または例えば上述のようにペプチドの溶解性または免疫原性を増強するために含まれるその他の残基でよい。共通のＣＤ２８／ＣＴＬＡ４エピトープを含有するペプチド（例えば配列番号：３４）は免疫原として用いて本発明の抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体を上昇させることができる。従って、本発明はさらに、アミノ酸配列：
【００７１】
【化８】
【００７２】
（式中、Ｘａａは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である。）を含む単離したＣＴＬＡ４ペプチドを包含する。本発明の抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体は、実施例に記載するように、Ｔ細胞に共刺激シグナルを誘起するのに有用である。
【００７３】
ＩＩ．Ｔ細胞アポトーシスを誘起するその他の物質
抗ＣＴＬＡ４抗体、またはそれらの断片に替わって、単離形態の新規天然ＣＴＬＡ４リガンドにより、アポトーシスを誘起できる。実施例５に記載するように、Ｔ細胞アポトーシスは、Ｂリンパ芽球セルライン（ＬＢＬ）の表面に存在する新規非Ｂ７−１、非Ｂ７−２、ＣＴＬＡ４結合リガンドにより誘起できる。この新規ＣＴＬＡ４リガンドをコードするｃＤＮＡは、実施例５に記載するように発現クローニングにより単離できる。このように単離したアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドは、上述のように、標準的な方法により、組換えにより発現できる。とりわけ、天然のＣＴＬＡ４リガンドの可溶性組換え体は、例えば単独でまたは融合タンパク（例えば免疫グロブリン融合タンパク）としてタンパクの細胞外領域を発現することにより、発現または単離できる。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋できる天然ＣＴＬＡ４リガンドの単離可溶性形態は、本発明の方法に準じてクローン的にＴ細胞を排除するために用いることができる。さらに、新規ＣＴＬＡ４リガンドは、細胞表面上に発現することができ、ＣＴＬＡ４リガンドを発現する細胞は、Ｔ細胞アポトーシスを誘起するために用いることができる（例えば、リガンドは異反応性Ｔ細胞をクローン的に排除する異型性細胞に発現できる）。また別に、アポトーシスを誘起しない（例えばＣＴＬＡ４を架橋しない）が、ＣＴＬＡ４に結合し、天然のアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドとの相互作用を阻害するＣＴＬＡ４リガンドの単離形態は、Ｔ細胞アポトーシスを阻害するのに使用できる。
【００７４】
ＣＴＬＡ４にのみ結合し、ＣＤ２８には結合せず、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する、既知ＣＴＬＡ４リガンドＢ７−１およびＢ７−２の修飾した形態もまた本発明の範疇に入る。Ｂ７−１またはＢ７−２をコードする核酸（例えばｃＤＮＡ）は、突然変異誘発に供する事ができ（例えば無作為化学的突然変異誘発、部位直接的突然変異誘発、ポリメラーゼ連鎖反応媒介突然変異誘発等）、そこでコード化された突然変異タンパクは、組換えで発現できる。Ｂ７−１またはＢ７−２の修飾形態は、ＣＤ２８にもはや結合しない（例えばＥＬＩＳＡにより検定するように）が、ＣＴＬＡ４結合性は保持し、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する（例えば実施例に記載するような系を用いて評価する；例えばＣＨＯ細胞に発現させたＢ７−１またはＢ７−２の修飾形態を、抗ＣＤ３抗体処理と組み合わせて、活性化Ｔ細胞と培養したときにアポトーシスを誘起する）ように選択できる。
【００７５】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに結合またはこれに架橋する、既知または新規ＣＴＬＡ４リガンドのペプチド断片、ペプチド擬似物質およびその他の小分子（例えば薬物）もまた、本発明の範疇に入る。Ｔ細胞アポトーシスの小分子インデューサーは、実施例に記載するような系を用いて、物質をスクリーニングすることにより、または合理的なドラッグデザイン、例えばＴ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ（例えば配列番号：３３に示すエピトープ）と相互作用を示すように分子を修飾することにより、同定できる。
【００７６】
本発明が意図する別の型のアポトーシス性物質は、本明細書に記載するＣＴＬＡ４アポトーシス性リガンドをコードする核酸である。例えばアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する抗ＣＴＬＡ４抗体（またはそれらの断片）をコードする核酸（例えばＤＮＡ）、またはアポトーシスを誘起する新規ＣＴＬＡ４リガンド（またはそれらの一部）をコードする核酸を、イン・ビトロで細胞に導入できるか、または遺伝子治療として活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するために、イン・ビボで対象に投与することができる。細胞におけるタンパクまたはペプチドの発現のための組換え発現ベクター（例えば組換えウイルス性ベクター）、およびイン・ビトロまたはイン・ビボで遺伝子治療に適した核酸運搬機構は、当業者に周知である。可溶型および分泌型の抗ＣＴＬＡ４抗体、またはその他のＣＴＬＡ４リガントをコードする発現ベクターは、ＣＴＬＡ４アポトーシス性リガンドを細胞内に産生するために用いることができ、そのリガンドは、次いで細胞から分泌され、（例えば培養においてまたはイン・ビボで）アポトーシスを誘起する活性化Ｔ細胞のＣＴＬＡ４に結合する。
【００７７】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起するための別の型の物質は、ＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシス性シグナルの引き金となるように細胞内で作用する物質である。従って、この物質は、ＣＴＬＡ４の細胞外部分には結合せず、むしろアポトーシス性リガンドによるＣＴＬＡ４のライゲートに関連する細胞内シグナル（例えば２番目のメッセンジャー）に類似しているか、またはこれらを誘起する。本明細書に記載するアポトーシス性リガンド（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）は、ＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシスに関与する（複数の）細胞内シグナルを、（実施例に記載するように）ＣＴＬＡ４を活性化Ｔ細胞と接触させることにより、および結果的に発生する細胞内シグナル（例えばタンパクチロシンリン酸化、カルシウム還流、血清／スレオニンおよび／またはチロシンキナーゼの活性化、フィスファチジルイノシトール代謝等）を試験することにより同定するために用いることができる。ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスに関連する細胞内シグナルを阻害または増強する物質は、Ｔ細胞アポトーシスを制御するために用いることができる。また別に、物質（例えば小分子、薬物等）は、実施例に記載するような系を用いてアポトーシスを阻害または増強する能力をスクリーニングできる。
【００７８】
ＩＩＩ．Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドの治療的使用
本発明のＣＴＬＡ４リガンド、例えば架橋抗体、またはＣＴＬＡ４により媒介されるアポトーシス性シグナルの引き金となるように細胞内で働く物質は、Ｔ細胞のアポトーシスを誘導して活性化Ｔ細胞をクローン的に排除し、それによりＴ細胞応答を阻害するために、治療的に用いることができる。アポトーシス性リガンド、または細胞内物質は、実施例に記載するように、ＴＣＲ／ＣＤ３刺激剤の存在下、活性化Ｔ細胞のイン・ビトロ培養物に加えた場合のアポトーシス誘起能力により同定できる。ＴＣＲ／ＣＤ３刺激剤は、抗原、例えば抗原表示細胞によりＴ細胞クローンに表示される抗原に特異的であるか、または抗ＣＤ３抗体によるＣＤ３架橋のように非特異的である。アポトーシスは、典型的なものでは、例えばアガロース電気泳動ゲル上のヌクレオソームの長さのＤＮＡ断片を検出することにより、細胞内ＤＮＡ分断化を測定し、評価する（例えば、クイングシェング，Ｔ．ら、Ｃｅｌｌ ６７，６２９−６３９（１９９１）参照）。その他の適切なアポトーシスの検定には、ヘキスト３３３４２染料の取り込み（ハーディン，Ｊ．Ａ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １５４，９９−１０７（１９９２）参照）、染料ｐ−フェニレンジアミンの挿入を用いた核ＤＮＡ損傷の検出（サルセド，Ｔ．Ｗ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １４８，２０９−２１６（１９９２）参照）およびダルツィンキヴィッチ，Ｚ．ら、Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ １３，７９５−８０８（１９９２）に記載されるフローサイトメトリーがある。
【００７９】
Ｔ細胞集団におけるアポトーシスの発生を直接的に評価するのに加えて、Ｔ細胞集団内のＴ細胞のクローン的な排除を、アポトーシスの結果として、抗原刺激剤でＴ細胞集団を再対抗し、Ｔ細胞応答、例えば増殖および／またはサイトカイン産生が起こっているかどうかを決定することにより評価できる。例えば、異型的細胞および本発明のＣＴＬＡ４リガンドを接触させることにより、Ｔ細胞集団内で異反応性活性化Ｔ細胞に、アポトーシスを誘起できる。引き続いて、Ｔ細胞集団を異型的細胞で対抗し、Ｔ細胞増殖および／またはサイトカイン（例えばＩＬ−２）を測定することにより、異反応性Ｔ細胞のクローン的排除を評価できる。Ｔ細胞増殖は、典型的なものでは、三重水素化チミジンの組み込みにより測定し、一方、サイトカイン産生は、培養上澄でのサイトカイン（例えばＩＬ−２）の検出を、例えばＥＬＩＳＡにより評価する。異反応性Ｔ細胞クローン的排除は、異型的細胞による再刺激に対するＴ細胞応答の欠如により示される。
【００８０】
本発明に準じて活性化Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を、Ｔ細胞と接触させる。この物質は、アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ（例えば、配列番号：３３に示すアミノ酸配列を含むエピトープ）に架橋することにより作用するか、または細胞内に作用してＣＴＬＡ４媒介アポトーシス経路に関連するアポトーシスシグナルを誘起する。好ましい架橋剤には、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体、例えば抗ヒトＣＴＬＡ４モノクローナル抗体がある。しかしながら、ＣＴＬＡ４に架橋し、望ましい結果を得る（すなわちアポトーシス）ことができるその他の物質（例えば可溶性天然ＣＴＬＡ４リガンド、化学物質等）をも用いることができる。活性化Ｔ細胞（すなわち、抗原に特異的な方法で、または非特異的な方法で、予め表面にＣＴＬＡ４を発現する用に刺激したＴ細胞）は、本発明のＣＴＬＡ４リガンド、またはアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに架橋するか、もしくはアポトーシスに関連する細胞内シグナルを生じるその他の物質と接触させることにより、アポトーシスを引き起こすことができる。アポトーシスを起こすために、（例えばＣＴＬＡ４の架橋により）ＣＴＬＡ４関与シグナルの誘導に加え、Ｔ細胞もまた、別の（複数の）表面分子、とりわけＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、抗原または非特異性刺激剤、例えば抗ＣＤ３抗体で接触させることにより刺激することが必要である。Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）を通じてＴ細胞を刺激するために抗原を用いる場合、抗原特異性アポトーシスが結果的に引き起こされる。従って、本発明は、活性化Ｔ細胞に抗原特異性アポトーシスを誘起する方法を提供する。抗原に特異的な方法でＴ細胞をクローン的に排除するアポトーシス性ＣＴＬＡ４リカンドの能力は、抗原特異性Ｔ細胞反応性を阻害し、長期の抗原特異的免疫抑制および／または耐性を生じるために用いることができる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの刺激と組み合わせた、その他のＴ細胞表面分子の刺激により、抗原に非特異的な方法でＴ細胞に、またアポトーシスを誘起できる。
【００８１】
Ｔ細胞は、本発明の方法に準じてアポトーシスを誘起することにより、イン・ビトロ、またはイン・ビボのどちらかで、クローン的に排除できる。イン・ビトロでＴ細胞アポトーシスを誘起するために、活性化Ｔ細胞をＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じてＴ細胞を刺激する１番目の物質および、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する２番目の物質、例えばＴ細胞にアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する物質（例えば本発明のＣＴＬＡ４リガンドまたはその他のＣＴＬＡ４架橋物質）の両方と接触させる。１番目の物質は、ポリクローナルＴ細胞アポトーシスを誘起する非特異的物質、例えば抗ＣＤ３抗体でよい。さらに好ましくは抗原特異性アポトーシスは、ＴＣＲを通じて抗原、例えば抗原表示細胞で表示した抗原または異型的細胞の表面の異型抗原でＴ細胞を刺激して誘起する（すなわち、１番目の物質はＴＣＲを通じてシグナルを刺激するのに適した形態でＴ細胞に表示する抗原である）。好ましい態様において、２番目の物質は、抗ＣＴＬＡ４抗体であり、モノクローナル抗体が好ましい。
【００８２】
イン・ビボでＴ細胞アポトーシスを誘起するために、Ｔ細胞にＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えばＴ細胞にアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープを架橋する物質）を、対象に投与する。この場合、活性化Ｔ細胞はＴＣＲ／ＣＤ３複合体を通じて、イン・ビボの内因性の刺激（例えば自己抗原またはイン・ビボで抗原表示細胞により表示される外来性の抗原）により、必要な刺激を享受する。また別に、抗原性刺激剤はＣＴＬＡ４架橋物質と同時に投与できる（例えば、抗原特異性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、アレルゲンをＣＴＬＡ４架橋物質と同時に投与でき、または自己抗原特異的Ｔ細胞にアポトーシスを誘起するために、自己抗原を同時に投与できる）。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するために対象に投与する好ましいＣＴＬＡ４架橋物質は、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体であり、好ましくは抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体である。
【００８３】
ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を対象に投与することにより、Ｔ細胞アポトーシスをイン・ビボで誘起する場合、Ｔ細胞の増殖および／またはその他のＴ細胞応答を促進する、イン・ビボでの微環境においてＴ細胞に送られる刺激シグナルを阻害または阻止するために、対象をさらに処置する必要がある。例えば、実施例４に記載するように、リンパ液インターロイキン−２（ＩＬ−２）の存在が、ＣＴＬＡ４の架橋により媒介されるアポトーシスの誘起を阻害できる。従って、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する方法において、対象のＴ細胞成長因子（例えばＩＬ−２）の産生または機能を阻害するのも有効である。このように、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質に加えて、Ｔ細胞成長因子の産生、または機能を阻害する別の物質を対象に投与し、Ｔ細胞アポトーシスを促進することができる。Ｔ細胞成長因子の産生または機能を阻害するのに適した物質の実例としては、抗ＩＬ−２抗体、抗ＩＬ−２受容体抗体または対象のＩＬ−２値を低下させる免疫抑制剤、例えばシクロスポリンＡが含まれる。
【００８４】
さらに、または別に、対象にアポトーシスを誘起するために、Ｔ細胞がイン・ビボで共刺激シグナル、例えばＣＤ２８とＢ７−１またはＢ７−２のどちらかとの相互作用により媒介される共刺激シグナルを受け取るのを阻害または阻止するのにも有効である。従って、対象にＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を投与するのに加えて、Ｔ細胞の共刺激シグナルの発生を阻害する別の物質、例えばＣＤ２８、Ｂ７−１またはＢ７−２に結合する阻止分子をも対象に投与できる。適切な阻止分子の実例としては、抗ＣＤ２８Ｆａｂ断片、抗Ｂ７−１または抗Ｂ７−２阻止抗体（すなわち、ＣＤ２８−Ｂ７−１／Ｂ７−２相互作用を阻止するが、Ｔ細胞の共刺激シグナルを誘起しない抗体）およびＣＤ２８、Ｂ７−１またはＢ７−２の可溶性形態（例えば、ＣＤ２８−Ｂ７−１／Ｂ７−２相互作用を阻止するが、Ｔ細胞に共刺激シグナルを誘起しない免疫グロブリン融合タンパク）が含まれる。さらに、阻止分子の組み合わせ、例えば抗Ｂ７−１抗体および抗Ｂ７−２抗体を用いてもよい。
【００８５】
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明の方法は、以下の節でより詳細に記載するように、反応性Ｔ細胞の特異的集団をクローン的に排除するのが望ましい、種々の臨床の場に適用可能である。
【００８６】
Ａ．器官移植／ＧＶＨＤ
活性化Ｔ細胞における異型抗原特異的アポトーシスの誘起による、異反応性Ｔ細胞のクローン的排除は、細胞、組織、皮膚、および器官移植の場合に、並びに骨髄移植に（例えば、移植片対宿主疾患（ＧＶＨＤ）の阻止に）有用である。例えば、異反応性Ｔ細胞の排除は、組織移植における組織破壊を減じさせ、一般的な免疫抑制を必要としないで、長期的に組織片を受け入れられるようになる。典型的なものでは、組織移植において、Ｔ細胞が外来性であると認識することにより、組織片の拒絶が始まり、続いて組織片を破壊する免疫反応が起こる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質、例えば本発明のモノクローナル抗ＣＴＬＡ４抗体を移植細胞と一緒に移植の受容者に投与すると、移植された外来性細胞により活性化された、受容者の異反応性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起できる。処置法には、供与細胞（例えばヘマトポイエチン細胞）の試料を移植の前に受容者に投与することにより、受容者の異反応性Ｔ細胞を供与体抗原に対して、「前感作」（すなわち活性化）することを含めることができる。この前処置により、受容者における供与体特異的Ｔ細胞が活性化され、ＣＴＬＡ４＋になり、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の存在下、供与体抗原に（例えば移植片上で）再暴露した時、クローン的に排除されるようになる。
【００８７】
別の処置法には、イン・ビトロで、受容者に移植片を移植する前に、供与体細胞（例えば、移植片供与体のヘマトポイエチン細胞）に対して受容体のＴ細胞を暴露し、異型性抗原特異性Ｔ細胞を活性化する（すなわち異反応性細胞の表面にＣＴＬＡ４を誘起する）ことが含まれ、一度活性化すると、イン・ビトロで受容者のＴ細胞を供与体細胞およびＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナル（例えば、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ）を刺激する物質の両方と接触され、それにより活性化異反応性細胞にアポトーシスを誘起する。一度異反応性Ｔ細胞をイン・ビトロでクローン的に排除すると、残ったＴ細胞は受容者に再投与し、移植を実施することができる。さらなるＣＴＬＡ４架橋物質を対象に投与し、イン・ビボで、残存する任意の異反応性Ｔ細胞にアポトーシスを誘起できる（すなわち、イン・ビトロの排除、イン・ビトロの処置アプローチを組み合わせて利用できる）。
【００８８】
上述のアプローチは、骨髄移植の場合も同様に適用でき、供与体骨髄からの異反応性Ｔ細胞を特異的に排除する。異反応性Ｔ細胞は除去し、一方その他のＴ細胞の存在は保持することは、移植片対宿主疾患の発生阻止、移植受容者の骨髄混入の亢進、および移植片における供与体細胞の抗白血病活性（すなわち移植片対白血病応答）の保持に有用である。移植片における異反応性Ｔ細胞をクローン的に排除するために、供与体骨髄を移植に先立ち、イン・ビトロで受容者からの細胞（例えばヘマトポイエチン細胞）と共にインキュベートし、骨髄における異反応性Ｔ細胞を活性化する。活性化に続いて、イン・ビトロで受容者の細胞とＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の両方と共にインキュベートして、異反応性Ｔ細胞を骨髄からクローン的に排除する。Ｔ細胞に刺激シグナルを発生させるのを阻害するさらなる物質（例えば、上述の抗Ｂ７−１および／または抗Ｂ７−２抗体、抗ＩＬ−２Ｒ抗体等）を、インキュベーション中に含有することができる。異反応性細胞を特異的に排除した骨髄を、次に受容者に投与し、さらにイン・ビボでＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質で処置し、任意の残った異反応性細胞にイン・ビボでアポトーシスを誘起する。受容者のＴ細胞における共刺激シグナルの発生を阻害するか、または受容者における（複数の）Ｔ細胞成長因子（例えばＩＬ−２）の産生もしくは機能を阻害するさらなる処置も、受容者のＴ細胞アポトーシス誘起をさらに亢進するように、イン・ビボで投与できる。
【００８９】
器官移植の拒絶またはＧＶＨＤを予防する場合、ＣＴＬＡ４関連アポトーシスシグナルを刺激する特定の物質の効果は、ヒトにおける効果が予期できる動物モデルを用いて評価できる。異なる種のＣＴＬＡ４分子間の血液学は知られているので、ＣＴＬＡ４の機能的に重要な様相は、このようにヒトにおける効果を知るためのモデルに用いることが許されている種の間で、組織的に保持されていると思われる。使用できる適当な系の実例としては、ラットの異型的心臓移植片およびマウスの外因性ランゲルハンス島細胞が含まれ、その両方とも、レンショウら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５７，７８９−７９２（１９９２）、およびツルカら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９，１１１０２−１１１０５（１９９２）に記載されるように、イン・ビボでＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパクの免疫抑制効果を調べるために使用されている。さらに、ＧＶＨＤのネズミモデル（ポール編、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、ラベンプレス、ニューヨーク、８４６−８４７頁（１９８９）参照）は、その疾患の進行中に、ＣＴＬＡ４関連アポトーシスシグナルを介するＴ細胞アポトーシスを誘起する効果を（イン・ビトロおよび／またはイン・ビボでＴ細胞を処理することにより）決定するために用いることができる。
【００９０】
説明的な態様としては、抗ＣＴＬＡ４抗体は、器官移植のラットモデルにおいて、抗体の異型性抗原の応答を阻止する能力をイン・ビボで確認するために使用できる。ボーリング，Ｓ．Ｆ．ら、Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ ４５３，２８３−２８６（１９９２）に記載するように、受容者ルイスラットは、頚部で器官を吻合したブラウン−ノルウェイ系ラットの心臓異移植片を受け取る。移植片は、触診により機械的機能を、心電図により電気生理学的機能を監視する。移植片拒絶は、触知可能な収縮機能の最終日に起こるといわれている。最初の実験のように、動物は抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体、またはアイソタイプに合致させた対照モノクローナル抗体を７日間毎日注射して処置する。抗体は投与量約０．０１５ｍｇ／日および０．５ｍｇ／日の範囲で投与する。平行実験では、心臓異移植片に先立ち、受容者ルイスラットに、ブラウン−ノルウェイ細胞（例えば末梢血または脾臓細胞）を与え、受容者における異反応性Ｔ細胞を活性化する。この前感作段階に続いて、抗ＣＴＬＡ４抗体の投与と一緒に異移植片を移植する。未処置ルイスラットは、通常、約７日で異所性ブラウン−ノルウェイ異移植片を拒絶する。抗体処置動物による異移植片の拒絶は、未処置対照と比較して評価する。
【００９１】
未処置動物および抗体処置動物は、屠殺し、組織学的検査を行う。移植４日後、未処置動物および抗体処置動物から、心臓異移植片を取り出す。異移植片をホルマリンで固定し、組織切片をヘマトキシリン−エオシンで染色する。未処置および処置動物の心臓組織は、浮腫形成を伴う隆起した介在性単核細胞浸潤、筋細胞破壊、および小動脈壁の浸潤を含む重篤で急性の細胞拒絶を組織学的に試験する。移植片拒絶を防ぐ場合の抗体処置の効果は、抗体処置動物の心臓組織における急性の細胞拒絶の欠如により支持される。
【００９２】
以下の抗体処置を持続できる、移植片の長期的に受入できる、抗体治療が確立されるかどうかを決定するために、７日間抗体を毎日注射して処置した動物を、移植片の機能が停止するまで、さらに処置することなく、観察する。動物は未処置、抗ＣＴＬＡ４抗体、またはアイソタイプに合致させた対照モノクローナル抗体のどちらかを与えられる。抗体処置は、移植時に開始し、７日間続ける。移植片の生存を上述のように毎日評価する。上述のように、移植片が機能停止した動物の異移植片を組織学的に試験する。抗体処置を停止しても移植片の機能が持続することにより、抗体処置による移植片耐性が誘導されることが示される。
【００９３】
長期の移植片受入の後、抗体処置動物を屠殺し、受容者からのリンパ球の機能的応答を試験する。これらの応答を対照（非移植）ルイスラットからのリンパ球の応答と比較し、結果を対照応答の比率として正規化する。ＣｏｎＡ並びにブラウン−ノルウェイラットおよび３番目の集団のＡＣＩラットからの細胞に対するＴ細胞増殖応答を試験できる。さらに、未処置および処置動物からの胸腺および脾臓の大きさ、細胞数および細胞型を（例えば胸腺、リンパ節および脾臓細胞のフローサイトメトリー分析により）比較できる。異反応性細胞の特異的クローン的排除の結果、処置動物における異型性抗原に対する特異的非応答性は、ＣｏｎＡおよび３番目の集団の刺激物質（例えばＡＣＩラット細胞）に応答するが、ブラウン−ノルウェイラット細胞には応答しないＴ細胞の能力により示される。
【００９４】
Ｂ．自己免疫疾患
抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスの誘起によるＴ細胞のクローン的排除はまた、自己免疫疾患の処置の治療にも有用である。多くの自己免疫障害は、自己の組織に抗して反応する（すなわち、自己抗原に抗して反応する）不適切なＴ細胞の活性化の結果であり、これは疾患の病理にも関与するサイトカインおよび自己抗体の産生を亢進する。このような自己反応性Ｔ細胞の活性化の防止により、疾患の症状を減じ、または除去できる。Ｔ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープに結合する、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質、例えば本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を投与すると、自己反応性Ｔ細胞を排除でき、それにより、Ｔ細胞応答を阻害し、自己抗体または疾患の過程において関与しうるＴ細胞由来のサイトカインの産生を防ぐことができる。さらに、自己反応性Ｔ細胞は単に耐性がよくなるのではなく、排除されるので、疾患からの長期的な緩解が達成できる。
【００９５】
自己免疫障害を処置するために、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えば、本発明のＣＴＬＡ４リガンド）を、処置の必要な対照に投与する。イン・ビボで自己抗原で予め活性化した自己反応性Ｔ細胞は、イン・ビボで自己抗原により、抗原刺激した時に、アポトーシスの発生を引き起こす。また別に、既知の自己抗原での自己免疫障害には、対象に自己抗原をアポトーシス性物質を同時投与できる。活性化Ｔ細胞のみがこの処置により排除されるので、その他の抗原に特異的な休止Ｔ細胞は、処置により影響を受けない。
【００９６】
この方法は、糖尿病、関節炎（関節リウマチ、若年性関節リウマチ、変形性関節症、乾癬性関節炎を含む）、多発性硬化症、重症筋無力症、全身性エリテマトーデス、自己免疫性甲状腺炎、皮膚炎（アトピー性皮膚炎および酵素性（ｅｎｚｅｍａｔｏｕｓ）皮膚炎を含む）、乾癬、シェーグレン症候群に二次的に起こる乾性角結膜炎を含むシェーグレン症候群、円形脱毛症、節足動物刺傷反応によるアレルギー反応、クローン病、アフタ性潰瘍、虹彩炎、結膜炎、角結膜炎、潰瘍性大腸炎、喘息、アレルギー性喘息、皮膚エリテマトーデス、強皮症、膣炎、直腸炎、薬疹、らい逆転反応、らい性結節性紅斑（ｅｒｙｔｈｅｍａ ｎｏｄｏｓｕｍ ｌｅｐｒｏｓｕｍ）、自己免疫性ブドウ膜炎、アレルギー性脳脊髄炎、急性壊死出血性脳障害、突発性進行性両側性感音性聴力損失、無形成貧血、赤芽球ろう、突発性血小板減少症、多発性軟骨炎、ヴェーゲナー肉芽腫症、慢性活動性肝炎、スティヴェンズ−ジョンソン症候群、突発性スプルー、偏平苔癬、クローン病、グラヴェス眼障害、サルコイドーシス、原発性胆汁性肝硬変、後部ブドウ膜炎、および介在性肺線維症を含む自己免疫成分を有する種々の自己免疫疾患および障害の処置に用いることができる。
【００９７】
自己免疫障害を防ぐまたは緩和する場合のＣＴＬＡ４架橋物質の効果は、ヒト自己免疫疾患をよく特徴化した多くの動物モデルを用いて決定できる。実例としては、ネズミ実験的自己免疫性脳炎、ＭＲＬ／ｌｐｒ／ｌｐｒマウスまたはＮＺＢハイブリッドマウスの全身性エリテマトーデス、ネズミ自己免疫性コラーゲン関節炎、ＮＯＤマウスおよびＢＢラットにおける糖尿病、ネズミ実験的重症筋無力症が含まれる（ポール編、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、ラヴェンプレス、ニューヨーク、８４０−８５６頁（１９８９）参照）。
【００９８】
実験的自己免疫脳脊髄炎（ＥＡＥ）は、多発性硬化症の齧歯類および霊長類モデルである。説明的な態様において、受動的ＥＡＥモデルでは、供与体マウスを完全フロイントアジュバント中ミエリン塩基性タンパク（ＭＢＰ）０．４ｍｇで４回に分けて免疫化する。１１日後に、ドルーンをつけた腋窩および鼠径部リンパ節を除去する。リンパ節細胞（４×１０６／ｍｌ）を２４ウェルプレート中、２５μｇ／ｍｌ ＭＢＰの存在下、２ｍｌの培地のプレートにおく。４日間の培養の後、処置細胞３０×１０６を、各々のナイーヴで同系の受容者マウスの尾静脈に注射する。
【００９９】
受容者マウスは疾患を沈静、再発させ、以下の診断基準を用いて評価する：
０ 正常、健康
１ 尾をぐったりさせる、失禁；時々疾患の最初の兆候である「傾斜」
２ 後肢が弱る、ぎこちない
３ 穏やかな不全対麻痺
４ 重篤な不全対麻痺
５ 四肢麻痺
６ 死亡
【０１００】
ＥＡＥの受動性モデルを用い、供与細胞の抗ＣＴＬＡ４抗体処置が受容者動物において、結果的に疾患の重篤性に及ぼす効果を、マウス（例えばＰＬＳＪＬＦ１／Ｊ系）で試験する。リンパ節細胞をイン・ビトロで、約３０μｇ／ｍｌの抗ＣＴＬＡ４抗体の存在下または不在下、ＭＢＰと培養する。処置細胞を次に同系の受容者マウスに導入する。受容者の疾患の最初のエピソードの重篤性に及ぼす、供与体細胞の抗体処置効果を、未処置細胞を受け入れたマウスと比較して、疾患の重篤性を評価する上記の診断基準を用いて決定できる。さらに、未処置細胞に対して抗体処置細胞を受け入れたマウスにおいて起こる再発を、上記の診断基準を用いて評価できる。
【０１０１】
受容者における臨床疾患の重篤性に及ぼす、供与体マウスおよび抗ＣＴＬＡ４抗体と培養した供与体細胞の両方の処置効果を、さらに評価できる。これらの実験において、ＭＢＰで免疫した供与体マウス（例えばＳＪＬ／Ｊ系）に、抗ＣＴＬＡ４抗体（単独で、または組み合わせて）を１００μｇか、または対照抗体に合致したアイソタイプを１００μｇ、腹膜腔内に毎日１１日間与える。次にこれらの供与体のリンパ節から細胞を単離し、イン・ビトロで３０μｇ／ｍｌの抗ＣＴＬＡ４抗体（単独でまたは組み合わせて）または対照抗体の存在下、ＭＢＰと培養する。処置した細胞を、次に同型の受容者に導入する。受容者に起こる疾患の重篤性に及ぼす抗体処置効果を、次いで、上記の診断基準を用いて評価する。
【０１０２】
ＥＡＥの直接的な（活性な）モデルを用いた研究をも行うことができる。これらの実験では、抗ＣＴＬＡ４抗体は、ＭＢＰで免疫し、百日咳毒素（ＰＴ）で処置したマウスに直接的に投与する。マウス（例えばＰＬＳＪＬＦＩ／Ｊ系）をＭＢＰで０日に免疫し、０および２日にＰＴを静脈注射し、抗ＣＴＬＡ４抗体または対照抗体に合致したアイソタイプを０〜７日に与える。受容者に起こる疾患の重篤性に及ぼす、ＭＢＰ免疫化マウスの直接的な抗体の処置効果を、次に上記診断基準を用いて評価する。
【０１０３】
Ｃ．アレルギー
アトピー性アレルギーにおけるＩｇＥ抗体応答はＴ細胞に高度に依存し、従って、アレルゲン特異性Ｔ細胞をアポトーシスを誘起することによりクローン的に排除することは、アレルギーおよびアレルギー反応の処置において治療的に有用である。例えば、抗ＣＴＬＡ４抗体を、アレルゲンに暴露されたアレルギーの対象に投与し、アレルゲン特異的Ｔ細胞にアポトーシスを誘起し、それにより対象におけるアレルギー反応を低下させることができる。ＣＴＬＡ４関与アポトーシスを刺激する物質を、アレルギーの対象に投与することは、アレルゲンへの環境的な暴露、または対象へのアレルゲンの同時投与を伴う。アレルギー反応は、通常、全身性または局所性であり、アレルゲンの侵入経路および肥満細胞または塩基性染色細胞のＩｇＥの沈着パターンに依存する。従って、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を適当に投与することにより、アレルゲン特異的Ｔ細胞アポトーシスを、局所的にまたは全身的に誘起することが必要である。例えば、一つの態様において、抗ＣＴＬＡ４抗体およびアレルゲンをアレルギーの対象に皮下に同時投与する。
【０１０４】
Ｄ．ウイルス感染または悪性Ｔ細胞
ＣＴＬＡ４の架橋によりＴ細胞アポトーシスを誘起する方法は、表面にＴ細胞を発現する任意のＴ細胞に適用できる。特異的抗原に暴露して活性化したＴ細胞に加えて、その他の形態のＴ細胞も表面にＣＴＬＡ４を発現する。例えば、ウイルス感染したＴ細胞、例えばＨＴＬＶ−ＩまたはＨＩＶで感染したＴ細胞は、ＣＴＬＡ４＋にできる（フリーマン，Ｇ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９，３７９５−３８０１（１９９２）；ハーファー，Ｏ．Ｋ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，１１０９４−１１０９８（１９９３）参照）。従って、ＣＴＬＡ４＋ウイルス感染Ｔ細胞は、Ｔ細胞にＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを誘起することにより排除できる。例えば、対象から得たＣＴＬＡ４＋ウイルス感染Ｔ細胞は、イン・ビトロで抗ＣＤ３抗体と一緒に、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体と培養し、アポトーシスを誘起することができる。ウイルス感染細胞の排除に続いて、残ったＴ細胞集団をイン・ビトロで通常の方法で拡張し、対象に再投与できる。さらに表面にＣＴＬＡ４を発現する悪性Ｔ細胞は、本明細書に記載するように、Ｔ細胞にアポトーシスを誘起して除去できる。
【０１０５】
Ｅ．抗原特異的クローン的排除
Ｔ細胞アポトーシスを誘起する本発明の方法は、本質的には、任意の抗原（例えばタンパク）に適用して、対象中のその抗原に応答するＴ細胞をクローン的に排除できる。従って、対象は抗原でプライムし、抗原特異的Ｔ細胞を活性化し（すなわち、抗原特異的Ｔ細胞の表面にＣＴＬＡ４を誘起する）、次いで抗原で再対抗した場合、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を抗原と同時投与し、抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起する。抗原は可溶性形態で投与するか、またはキャリヤーもしくは支持体（例えばビーズ）に付けることができる。この基本的なアプローチには、治療目的のために強力な免疫原性分子を利用する治療に付随して、広く適用されている。例えば、タンパク質性分子、例えば抗体、融合タンパク等を臨床的な障害の処置に利用する治療的アプローチが増えている。このような分子を治療的に使用するために制限されることは、処置される対象における治療用分子に直接的に抗した免疫応答を引き出すことができることである（例えば、ヒト対象におけるネズミモノクローナル抗体の効果は、ヒト対象における抗体に抗した免疫応答の誘導により隠れてしまう）。抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを誘起するための本発明の方法は、治療の場に適用し、治療用分子を、対象において免疫応答を引き出すことなく長期間使用することを可能にする。例えば、対象中、抗体に特異的なＴ細胞を典型的に活性化する治療用抗体（例えばネズミｍＡｂ）を、対象（例えばヒト）に投与する。これらの活性化Ｔ細胞をクローン的に排除するために、治療用抗体を対象に、ＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質と共に再投与し、それによりＴ細胞に抗原特異的アポトーシスを誘起する。これらの活性化Ｔ細胞のクローン的排除は、対象における治療用抗体の効果を持続させる。
【０１０６】
ＩＶ．Ｔ細胞アポトーシスを阻害するＣＴＬＡ４リガンドの治療的使用
Ｔ細胞にアポトーシスを誘起する方法を提供するのに加えて、本発明はまたＴ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの発生を妨害することによりＴ細胞アポトーシスを阻害する方法をも提供する。このシグナルは、例えば、Ｔ細胞上のＣＴＬＡ４およびＴ細胞アポトーシスを誘起する抗原表示細胞上のＣＴＬＡ４リガンドの間の相互作用を妨害することにより阻害できる。また別に、細胞内でアポトーシスシグナルを阻止または阻害するように作用する物質を、アポトーシスの阻害に用いることができる。このように、Ｔ細胞におけるアポトーシスは、Ｔ細胞を、Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを阻害する物質と接触させる（例えばイン・ビトロではインキュベーションし、またはイン・ビボで投与する）ことにより、例えばＴ細胞上のＣＴＬＡ４とアポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リカンドとの間の相互作用を阻害することにより、阻害される。好ましくは、この物質はＣＴＬＡ４リガンドとＴ細胞アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４のエピトープ、例えば配列番号：３３で示すアミノ酸配列を含むエピトープとの相互作用を阻止する。この物質は、例えば可溶性ＣＴＬＡ４タンパク（またはそれらの一部）、可溶性ＣＴＬＡ４融合タンパクもしくは抗ＣＴＬＡ４抗体、またはそれらの断片でよく、ＣＴＬＡ４に結合するが、アポトーシスを誘起しない。アポトーシスを阻害する好ましい物質には、本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体のＦａｂ断片（またはその他の非架橋抗体断片）およびＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパク（例えばＣＴＬＡ４ Ｉｇ）が含まれ、これらの両方は実施例５に記載するＴ細胞アポトーシスを阻害できる。また別に、この物質はＣＴＬＡ４の可溶性形態、ＣＴＬＡ４リガンドの可溶性融合タンパクまたは抗ＣＴＬＡ４リガンド抗体、またはそれらの断片でよい。さらに、ペプチド断片またはペプチド擬似物質は、ＣＴＬＡ４とアポトーシス性リガンドとの相互作用を阻害するのに用いることができる。例えば、ＣＴＬＡ４上のアポトーシス性エピトープを包含する（例えば、配列番号：３３のアミノ酸配列を包含する）ペプチドを、細胞表面ＣＴＬＡ４およびＣＴＬＡ４上のこのエピトープに結合する天然のリガンドとの間の相互作用を阻害するために用いることができる。従って、ＣＴＬＡ４アポトーシス性エピトープを包含する本発明のペプチドもまた、Ｔ細胞におけるアポトーシスの阻害に有用である。
【０１０７】
Ｔ細胞アポトーシスの阻害は、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスにより自然に低減する免疫応答を、増強、延長および／または維持するのに、治療的に有用である。例えば、抗腫瘍反応は、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを通じて腫瘍特異的Ｔ細胞をクローン的に排除することにより、自然に低減される（例えばＴ細胞アポトーシスは腫瘍表面にアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドを発現することにより誘起される）。従って、抗腫瘍反応はＣＴＬＡ４およびアポトーシス性ＣＴＬＡ４リガンドの相互作用を、例えば上述の阻止物質を腫瘍のある対象に投与することにより阻害して、増強することができる。さらに、病原菌、例えばウイルス、細菌、菌類、寄生虫等に対するＴ細胞応答は、本明細書に記載するように、ＣＴＬＡ４媒介Ｔ細胞アポトーシスを阻害することにより増強および延長できる。ワクチン接種の効果もまた、本発明によるＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻止することにより上昇させることができる。例えば、ワクチンはＴ細胞アポトーシスを阻止する物質（例えば抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ Ｆａｂ断片）と一緒に投与でき、ワクチン化物質に抗する免疫応答を増強できる。
【０１０８】
別の適用において、Ｔ細胞アポトーシスの阻害は、対象、例えばＴ細胞破壊に関係するウイルス例えばＨＩＶに感染した対象におけるＴ細胞保持のために用いることができる。ＨＩＶ感染において、ウイルス感染したＴ細胞、例えばＨＩＶ感染したＴ細胞の表面のＣＴＬＡ４発現は、イン・ビボでＣＴＬＡ４媒介アポトーシスにより細胞を破壊することになる。ウィルス感染Ｔ細胞のこの破壊は、イン・ビボで付随するウイルス放出を伴い、傍観者的Ｔ細胞の更なるウイルス感染が亢進され、これによりＴ細胞がウイルスに抗して免疫応答を開始する能力が阻害される。さらに、対象における非感染Ｔ細胞は、ＣＴＬＡ４依存性アポトーシス機構により排除され、さらにＴ細胞集団が排除される。従って、ＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻害する物質を対象に投与することは、ＨＩＶ感染した対象におけるウイルスの散らばりを制御し、Ｔ細胞集団を保持するのに有用である。
【０１０９】
Ｖ．治療用形態のＣＴＬＡ４リガンドの投与
本発明のＣＴＬＡ４リガンド（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を、イン・ビボで生物学的に適合した、医薬的投与に適した形態で対象に投与し、Ｔ細胞アポトーシスを誘起する。「イン・ビボで生物学的に適合した、投与に適した形態」とは、リガンドの治療効果が毒性効果に優る、投与タンパクの形態を意味する。対象なる用語は、免疫応答を引き出すことができる生きた器官、例えば哺乳動物を含むことを意味する。対象の実例としては、ヒト、サル、イヌ、ネコ、マウス、ラット、およびそれらのトランスジェニック種が含まれる。本明細書に記載するリガンドは、治療的に活性な量のＣＴＬＡ４リガンドを単独でまたは別の治療用分子（例えば、上述のように、抗ＩＬ−２受容体抗体またはＣＤ２８、Ｂ７−１もしくはＢ７−２阻止抗体等）および医薬的に許容できる担体と組み合わせたものを、任意の薬理学的形態で投与できる。本発明の治療用組成物を治療的に活性な量投与することは、望ましい結果を成就するのに必要な量および期間の有効量と定義される。例えば抗ＣＴＬＡ４抗体の治療的有効量は、個々の疾患の状態、年齢、性別および体重のような因子、並びに個々に望ましい免疫応答を引き出す抗体の能力に応じて変化する。投与計画は最適な治療的応答を提供するように調整できる。例えば幾つかに分割した量を毎日投与するか、または治療状況のエクシジェンシー（ｅｘｉｇｅｎｃｉｅｓ）により示されるように投与量を比例的に減少させることができる。
【０１１０】
活性化合物（例えば抗体）は、通常の方法、例えば注射（皮下、静脈内等）、経口投与、吸入、経皮適用、または直腸投与で投与できる。投与経路に応じて、活性化合物は、酵素、酸および化合物を不活化しうるその他の自然の状況の作用から保護する材料で被覆できる。
【０１１１】
ＣＴＬＡ４リガンドを非経口投与以外の投与法により投与するために、リガンドを不活化を防ぐ材料で被覆するか、またはリガンドをその材料と同時に投与する必要がある。ＣＴＬＡ４リガンドは適当なキャリヤーまたは希釈剤中、個体に投与でき、酵素阻害剤とまたは適当なキャリヤー例えばリポソームと同時投与できる。医薬的に許容できる希釈剤には、生理食塩水および水性緩衝溶液が含まれる。酵素阻害剤には、膵臓トリプシン阻害剤、ジイソプロピルフルオロフォスフェート（ＤＥＰ）およびトラジロールが含まれる。リポソームには、水中油中水乳液および通常のリポソームが含まれる（ストレジャンら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．７，２７（１９８４））。
【０１１２】
また、活性化合物は、非経口または腹膜腔内投与もできる。分散液はグリセロール、液体ポリエチレングリコール、およびそれらの混合物中、並びに油中に調製できる。保存および使用の通常の条件下で、これらの調製物は微生物の成長を防ぐための保存剤を含有できる。
【０１１３】
注射可能な使用に適した医薬組成物は、無菌水溶液（水溶性である場合）または無菌注射液または分散液の用事調製用製剤のための分散液および無菌粉末を含む。全ての場合において、組成物は無菌でなければならず、容易にシリンジが動かせる程度の流動性がなければならない。製造および保存の条件下で安定でなければならず、微生物、例えば細菌および菌類の汚染作用に備えて保存されなければならない。キャリヤーは溶媒または分散溶媒でよく、例えば水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコール等）および適当なそれらの混合物を含有する。適当な流動性を、例えば被覆物例えばレクチンの使用、分散液の場合必要な粒子径の維持、および界面活性剤の使用により維持できる。微生物の作用の予防は、種々の抗細菌および抗菌物質、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサル等により達成できる。多くの場合、等張化物質例えば糖、ポリアルコール例えばマンニトール、ソルビトール、塩化ナトリウムを組成物中に含有するのが好ましい。注射可能な組成物の吸収を長期化するのは、吸収を遅延させる物質、例えばアルミニウムモノステアレートおよびゼラチンを含有することによる。
【０１１４】
無菌の注射可能な溶液は、活性な化合物（例えば抗ＣＴＬＡ４抗体）を必要な量、適当な溶媒中、上記に列挙した成分を一つまたは組み合わせて入れ、必要な場合、濾過により無菌化して調製できる。一般的に分散液は活性化合物を、基本的な分散溶媒および上記に列挙したものから必要なその他の成分を含有する無菌賦形剤に入れて調製する。無菌の注射液を調製するための無菌粉末の場合、好ましい調製方法は、真空乾燥および凍結乾燥であり、活性成分（例えば抗体）に予め無菌濾過した溶液からの任意のさらに望ましい成分を加えた粉末を生じる。
【０１１５】
活性化合物が上述のように適切に保護される場合、化合物は、例えば不活性な希釈剤と、または消化でき食することができるキャリヤーと共に投与できる。本明細書で用いる「医薬的に許容できるキャリヤー」には、任意のおよび全ての溶媒、分散溶媒、被覆剤、抗細菌および抗菌剤、等張化および吸収遅延化剤等が含まれる。このような溶媒および医薬的に活性物質のための試薬は、当業界に周知である。任意の通常の溶媒または試薬が活性化合物と相容れない場合に限る以外は、治療用組成物におけるそれらの使用は意図されるものである。補足的な活性化合物をも組成物に入れることができる。
【０１１６】
非経口組成物を、投与を平易にする投与量単位形態で、および投与量を一定にするために製剤化するのがとりわけ優れている。本明細書で用いる投与量単位形態とは、哺乳動物の対象を処置するための投与量単位として、適合する物理的な個々の単位を意味する；望ましい治療効果を生みだすように算出した活性化合物を予め決定した量、必要な医薬的キャリヤーと一緒に含有する各単位。本発明の投与量単位形態の詳記は、（ａ）活性化合物の独特な特性、および達成される特定の治療効果、並びに（ｂ）このような活性化合物を個々の感受性の処置用に混合する技術における元来の制限、に指示され、直接的に依存する。
【０１１７】
ＶＩ．ＣＴＬＡ４媒介Ｔ細胞アポトーシスにおいて引き起こされるさらなる分子の同定
本発明は、Ｔ細胞のアポトーシスの誘起においてＣＴＬＡ４の機能的役割を開示する。Ｔ細胞におけるアポトーシスはＣＴＬＡ４リガンドによるライゲート時にＣＴＬＡ４により直接的に媒介されるか、また別に、ＣＴＬＡ４関与分子がアポトーシスシグナルをＴセルに配送するのに関与している。ＣＴＬＡ４関与分子は当業界に周知である多くの方法により同定できる。例えば本発明のＣＴＬＡ４抗体は免疫沈殿検定に用いてＣＴＬＡ４と免疫共沈する分子を同定できる。活性化Ｔ細胞により発現するタンパクは、放射性物質で標識化（例えば３５Ｓ−メチオニンで、または１２５Ｉでタンパク表面を標識する）でき、本明細書で記載するＣＴＬＡ４抗体は、Ｔ細胞からタンパクを免疫沈殿するのに用いられる。免疫沈殿法は当業界に周知であり、例えばアウスベル，Ｆ．ら（編）、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、ジョーンウィレイ＆サンズ、ニューヨーク、セクション１０．１６．（１９８９）に記載されている。細胞内または細胞表面のどちらかでＣＴＬＡ４と関係する分子は、ＣＴＬＡ４との免疫共沈により同定できる（例えば免疫沈殿したタンパクを電気泳動分析により検出）。このようなＣＴＬＡ４関与分子は次にＣＴＬＡ４との相互作用に基づいてさらに精製および特性化できる。
【０１１８】
また別に、発現クローン化アプローチをＣＴＬＡ４に関与する分子の同定に用いることができる。膜透過型の組換えＣＴＬＡ４は標準的な方法によりＣＯＳまたはＣＨＯ細胞のような宿主細胞において安定して発現でき（しかしながら、実施例１に記載するようにｇｐｉ連結形態として発現できる）、さらなる分子がＣＴＬＡ４の安定した表面発現を達成するのに必要であることを示唆している。従って、この特性は、宿主細胞に膜透過性ＣＴＬＡ４の表面発現を可能にする分子を同定するために開拓できる。例えば、ｃＤＮＡ発現ライブラリーは、実施例５に記載するように、活性化Ｔ細胞から調製できる。この発現ライブラリーは、次に宿主細胞（例えばＣＯＳ細胞）に、ＣＴＬＡ４の膜透過型をコードする発現ベクターと共にトランスフェクトする。ＣＴＬＡ４を表面に発現する、トランスフェクトした細胞は、例えば本発明の抗ＣＴＬＡ４抗体を用いたパニング（ｐａｎｎｉｎｇ）または免疫磁気ビーズ分離により選別できる（実施例５記載の方法は、ＣＴＬＡ４発現クローンの細胞トランスフェクションおよび単離に用いることができる）。ＣＴＬＡ４関与分子をコードするｃＤＮＡは、選別した細胞から単離できる。
【０１１９】
本発明は、以下の実施例によりさらに説明されるが、制限を意図するものではない。本明細書で引用した参考文献、特許および公開された特許出願は、それにより参考となるように取り入れたものである。
【実施例１】
【０１２０】
実施例１：抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の産生およびスクリーニング
ヒトＣＴＬＡ４に対するモノクローナル抗体の産生
Ｂａ１ｂ／ｃ雌マウス（タコニック、ジャーマンタウン、ニューヨークより入手）を、ＥＲシリーズマウス用にマウスあたり５０μｇの組換えヒトＥ．ｃｏｌｉ発現ＣＴＬＡ４（細胞外領域のみ）を完全フロイントアジュバント（シグマケミカルカンパニー、セントルイス、ミズーリー州）中乳濁液化したもので、またはＥＳシリーズマウス用にマウスあたり２×１０６ＰＭＡ／イオノマイシン活性化ヒトＴ細胞（リュウコパックスより入手）で、皮下または腹膜腔内で免疫した。マウスは、マウスあたり２０〜２５μｇのヒト組換えＣＴＬＡ４を完全フロイントアジュバント（シグマケミカルカンパニー、セントルイス、ミズーリー州）中乳濁液化したもので、または１０６ＰＭＡ／イオノマイシン活性ヒトＴ細胞で、最初の免疫に続いて１４日間隔で免疫促進した。マウスの尾静脈より出血させ、血清を免疫化タンパクに抗してＥＬＩＳＡにより免疫原に反応する抗体の存在を検定した。強い血清学的な力価を示すマウスは、マウスあたり５０μｇの組換えヒトＣＴＬＡ４をリン酸塩緩衝化生理食塩水に希釈したもの（ｐＨ７．２）（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）で免疫促進した。免疫促進後３〜４日にマウスから取り出した脾臓をＳＰ２／０−Ａｇ１４ミエローマ細胞（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）とＰＥＧ１４５０（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）と５：１の比率で融合し、放射線照射したＭＲＣ−５線維芽細胞（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）を２５％ＣＰＳＲ−３（シグマケミカルカンパニー）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、５０Ｕ／ｍｌ ペニシリン、５０μｇ／ｍｌストレプトマイシン、２０μｇ／ｍｌゲンタマイシン、０．２５μｇ／ｍｌフンギゾーン、および１０％ＮＣＴＣ−１０９（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）を含有するデュルベッコ改変イーグル培地（ギブコ、グランドアイランド、ニューヨーク州）中に含有する、９６ウェルプレートに載せる。ヒポキサンチンアミノプテリン−チミジン（ＡＴＣＣ、ロックビル、メリーランド州）の存在下、ハイブリドーマを選別した。ハイブリドーマのコロニーは、次の１０〜２１日に発芽するので、最初のスクリーニングとして、ウェルの上澄を組換えヒトＣＴＬＡ４で被覆した９６ウェル平底ＥＩＡプレート上でスクリーニングした。２番目のスクリーニングは、フヒトＣＴＬＡ４トランスフェクトしたＣＨＯ細胞およびＰＭＡ／イオノマイシン活性化ヒトＴ細胞でフローサイトメトリーにより行った。ＣＴＬＡ４に指向した抗体を含有すると同定されたハイブリドーマ上澄は、腹水産生およびタンパクＡ−セファロース親和性クロマトグラフィーによる抗体精製の前に、２回伸張しサブクローン化した。
【０１２１】
ｍＡｂの最初のスクリーニング：ＥＬＩＳＡプロトコール
９６ウェル平底ＥＩＡプレート（コスター、キャンブリッジ、マサチューセッツ州）の各ウェルを、ウェルあたり５０μｌのリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で作った１μｇ／ｍｌ組換えヒトＣＴＬＡ４溶液で被覆した。ＣＴＬＡ４溶液を吸引し、ウェルを１００μｌのリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで、室温で１時間阻止した。この阻止インキュベーションに続いて、ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で洗浄し、ウェルあたり５０μｌのハイブリドーマ上澄を加え、４５分間３７℃でインキュベートした。このインキュベートに続いて、ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で３回洗浄し、次にウェルあたり５０μｌの西洋ワサビペルオキシダーセ結合親和性精製ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＆Ｌ）特異的抗体（ザイムドラボラトリーズ、サンフランシスコ、カリフォルニア州）の１：４０００希釈物と、４５分間３７℃でインキュベートした。ウェルをリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）で３回洗浄し、続いてウェルあたり５０μｌの０．１Ｍクエン酸ナトリウム（ｐＨ４．２）中１ｍＭ ＡＢＴＳ（２，２アジノ−ビス−３−エチルベンスチアゾール−６−スルフォニックアシッド）中３０分間インキュベートし、これに３０％過酸化水素の１：１０００希釈物をＨＲＰの基質として加え、結合抗体を検出した。次に分光光度計（モレキュラーデバイスソーポレーション、メンロパーク、カリフォルニア州）で４１０ｎｍにおける吸収を測定した。
【０１２２】
ｍＡｂの２番目のスクリーニング：フローサイトメトリー
２番目のスクリーニングをヒトＣＴＬＡ４−ｇｐｉトランスフェクトしたＣＨＯ細胞およびＰＭＡ／イオノマイシン活性化Ｔ細胞でフローサイトメトリーを行った。ＣＴＬＡ４はＣＴＬＡ４の細胞外領域をグリコフォスファチジルイノシトール（ｇｐｉ）アンカーに連結することによりＣＨＯおよびＣＯＳ細胞に発現した。ＣＴＬＡ４の細胞外領域をコードするＤＮＡはＰＣＲにより、センスプライマーとして、
【０１２３】
【化９】
【０１２４】
（これは強力な翻訳開始部位であるＨｉｎｄ ＩＩＩ部位およびＣＴＬＡ４コード化配列の最初の１５個のヌクレオチドを含有し）、およびアンチセンスプライマーとして、
【０１２５】
【化１０】
【０１２６】
（これはＣＴＬＡ４細胞外領域の最後の１９個のヌクレオチドおよびＡｆ１ ＩＩ部位を含有する）
を用いることによりヒトＣＴＬＡ４ｃＤＮＡから増幅できる。ＰＣＲ条件は９４℃、１分、４３℃、１分、７２℃、１分を３５サイクル、続いて７２℃、１０分である。ＰＣＲ産生物は、Ｈｉｎｄ ＩＩＩおよびＡｆ１ ＩＩで消化し、ゲルろ過し、ヒトＣＤ５８のｇｐｉアンカーを含有するＨｉｎｄ ＩＩＩおよびＡｆ１ ＩＩ消化ｐＣＤＭ８ベクターに連結した（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８，３２７１参照、ドクター・ドナルド・スタウントン、センター・フォー・ブラッド・リサーチ、ボストン、マサチューセッツ州に親切にも提供される）。ＣＴＬＡ４−ｇｐｉ挿入物を含有するプラスミドは、一時的にＣＯＳ細胞にトランスフェクトされ、Ｂ７−Ｉｇ融合タンパクの結合により判断されるように、細胞表面ＣＴＬＡ４を強度に発現する。ＣＴＬＡ４−ｇｐｉプラスミドは、ネオマイシン抵抗性をコードするプラスミドと共にＣＨＯ細胞にトランスフェクトし、安定したトランスフェクタントをＧ４１８で選別した。ＣＨＯ細胞トランスフェクタントは、Ｂ７−ＩＧ結合およびクローン化に基づいて分類した。
【０１２７】
フローサイトメトリー用の細胞（ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４かまたは活性化ヒトＴ細胞のどちらか）はリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで徹底的に洗浄し、次に１０６細胞あたり５０μｌのハイブリドーマ上澄または培養培地と、３０分間４℃でインキュベートした。インキュベートに続いて、細胞をリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで３回洗浄し、次に５０μｌの蛍光結合ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＆Ｌ）抗体（ザイムドラボラトリーズ、サンフランシスコ、ＣＡ）の１：４０希釈物と、３０分間４℃でインキュベートした。細胞を次にリン酸塩緩衝化生理食塩水（ｐＨ７．２）中１％ ＢＳＡで３回洗浄し、１％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。細胞試料を次にＦＡＣスキャンフローサイトメーター（ベックマンディッキンソン）で分析した。
【０１２８】
上述の抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の１番目および２番目のスクリーニングにより、さらに特性化するために５個のｍＡｂが単離された：ＥＲ４．７Ｇ１１（７Ｇ１１と称する）、ＥＲ５．３Ｄ８（３Ｄ８と称する）、ＥＲ５．４Ｄ３（４Ｄ３と称する）、ＥＳ５．３Ｄ６（３Ｄ６と称する）、ＥＳ．４Ｅ３（４Ｅ３と称する）。抗体のＥＲシリーズは組換えヒトＣＴＬＡ４により上昇するが、一方抗体のＥＲシリーズは活性化Ｔ細胞により上昇する。
【実施例２】
【０１２９】
実施例２：抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体の特性化
結合特性
５個の７Ｇ１１、４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３の結合特性を決定するために、ＣＤ２８を発現するようにトランスフェクトしたＣＨＯ細胞か、またはＣＴＬＡ４を発現するようにトランスフェクトしたＣＨＯ細胞に対する結合を、非直接的免疫蛍光により評価した。異なる抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂの結合パターンは（対照抗ＣＤ２８ ｍＡｂ ３Ｄ１０に比較して）以下の表１にまとめる：
表１
【０１３０】
【表１】
【０１３１】
７Ｇ１１抗体がＣＨＯ−ＣＤ２８およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４の両方に結合するのが認められ、従って抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂと称する。これに比して、４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３は、ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４のみに結合するのが認められ、従ってＣＴＬＡ４特異的抗体と称する。これらの抗体はまた、本明細書において、各々ＣＴＬＡ４．１、ＣＴＬＡ４．２、ＣＴＬＡ４．３およびＣＴＬＡ４．４とも称する。
【０１３２】
エピトープのマッピング
上述の５個のｍＡｂで認識されるエピトープを決定するために、ファージ表示ライブラリー（ＰＤＬ）スクリーニングにより、マッピングを行い、用いている合成ペプチドを確認した。クゥイルラ，Ｓ．Ｅ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８７，６３７８−６３８２（１９９０）に記載するように、無作為に２０個のアミノ酸ＰＤＬを同義オリゴヌクレオチドをｆＵＳＥ５ベクター（スコット，Ｊ．Ｋ．およびスミス，Ｇ．Ｐ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９，３８６−３９０（１９９０））にクローン化して調製した。ＰＤＬは、ジェリス，Ｃ．Ｌ．ら、Ｇｅｎｅ １３７，６３−６８（１９９３）に記載するように、マイクロパニング法によりｍＡｂ抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４および抗ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４に特異的に結合する短いペプチドを同定するのに用いた。各々のファージクローンは、固定化ｍＡｂに対する親和性により、ライブラリーより精製し、無作為ペプチドをＤＮＡ配列決定により同定した。抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４（７Ｇ１１）でのパニングより選別した２０個のクローンの配列分析により、以下に示す９個の独特のペプチド配列を生じた。
【０１３３】
ｍＡｂ ７Ｇ１１選別ファージペプチド
【化１１】
【化１２】
【０１３４】
これらの９個のペプチドから、５個の残基、Ｐ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ／Ｉ（配列番号：１２）のコンセンサンス結合配列を同定し、このうち芳香性残基ＦおよびＷはしばしばＹと置換された。Ｐ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ配列（配列番号：１３）は、ｈＣＴＬＡ４の細胞外領域内で、ＣＤＲ３領域内または非常に接近して同定され、ＣＴＬＡ４合成ペプチドＲＰ４５４に包含される。
【０１３５】
【化１３】
【０１３６】
ＲＰ４５４ペプチドは抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４エピトープの確認に用いられ、抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４の結合を天然ｈＣＴＬＡ４と競合できる。マッピングした部域をまたぐＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の配列決定は、ＣＨＯ−ＣＤ２８およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４上のこのｍＡｂで、観察された交差活性を説明する。
【０１３７】
ｍＡｂ ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４は別々にパニングされ、任意のこれらのパニングからのファージが、４個のｍＡｂのいずれにも特異的に反応することが観察された。４２個のファージクローンの配列分析により、以下に示す１４個のペプチドを生じた：
ｍＡｂ４Ｄ３、３Ｄ６、３Ｄ８および４Ｅ３選別ファージペプチド
【化１４】
【化１５】
【０１３８】
これらのペプチドから、共有するエピトープを、アミノ酸配列Ｌ−Ｔ−Ｆ−Ｌ−Ｄ−Ｄ（配列番号：２９）を有するｈＣＴＬＡ４の６個の残基を伸張したものにマッピングする。エピトープはＣＴＬＡ４のＣＤＲ２様部域に存在し、抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂのエピトープと上記のＰ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ（配列番号：１３）と区別される。共有する抗ＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４エピトープは、合成ＣＴＬＡ４ペプチドＲＰ３６５内に含まれる：
【化１６】
【０１３９】
これはエピトープマッピングの結果を確認するために用いられる。
【０１４０】
Ｂ７−１およびＢ７−２の交差競合
５抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂは、ＣＴＬＡ４分子上で２個の異なる抗原部域に結合するので、これらの部域のどれかが同族員の結合部位の一部であるかどうかを決定した。モノクローナル抗体７Ｇ１１および４Ｄ３は、以下の実験様式を用いて、Ｂ７−１−ＩｇのＣＴＬＡ４−Ｉｇに対する結合を阻止する能力を試験した（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７３，７２１−７３０（１９９１）；およびリンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４、５６１−５６９（１９９１）に記載されるように構築した。）：
【０１４１】
ヌンクマキシソーププレートを２０μｇ／ｍｌ ＣＴＬＡ４−ＩｇのＰＢＳ溶液で、室温で一晩被覆し、次いでＰＢＳ／１％ ＢＳＡで１時間阻止した。１０μｇ／ｍｌのビオチニル化Ｂ７−１−Ｉｇを、１００μｇ／ｍｌまで漸増的にモノクローナル抗体と共に加えた。対照試薬（“冷”Ｂ７−１−Ｉｇ、ＣＴＬＡ４−Ｉｇ、抗Ｂ７−１抗体４Ｂ２および６Ｂ１０並びにＨＩＶ抗体５９．１）をも試験した。ビオチニル化Ｂ７−１−Ｉｇはストレパビジン−西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）および酵素基質を用いて可視化した。結果は以下にまとめ、７Ｇ１１および４Ｄ３は競合物質として無効であることが示された：
【０１４２】
【表２】
【０１４３】
【表３】
【０１４４】
２番目の実験では、様式は“とばされている（ｆｌｉｐｐｅｄ）”。プレートをＰＢＳ中２０μｇ／ｍｌのＢ７−１−Ｉｇで一晩被覆し、ＰＢＳ／１％ ＢＳＡで阻止し、次いで最初の実験で記載するように、ビオチニル化ＣＴＬＡ４−Ｉｇに種々競合物質及び対照物質を加えたものと共にインキュベートした。ビオチニル化ＣＴＬＡ４はストレパビジン：ＨＲＰおよび酵素基質を用いて可視化した。結果は上記で示したものに類似している：
【０１４５】
【表４】
【０１４６】
【表５】
【０１４７】
これらの相補的なデータを考慮に入れると、ｍＡｂ ７Ｇ１１および４Ｄ３にはＣＴＬＡ４−ＩｇのＢ７−１−Ｉｇに対する結合を引き裂く能力はないことが示される。Ｂ７−２−Ｉｇを用いた実験でも、同様の結果が観察された。抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４抗体（７Ｇ１１）はＢ７−１−ＩｇのＣＴＬＡ４に対する結合（またはその逆）を阻害しないという結果は、７Ｇ１１抗体のためにマッピングしたＰ−Ｐ−Ｙ−Ｙ−Ｌ（配列番号：１３）とオーバーラップする配列Ｍ−Ｙ−Ｐ−Ｐ−Ｐ−Ｙ（配列番号：３１）が、ＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の両方のＢ７−１に対する結合部位の一部であることが、以前から示唆されていた（ハーパー，Ｋ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７，１０３７−１０４４（１９９１）参照）ので、驚くべきことであった。
【実施例３】
【０１４８】
実施例３：抗ＣＴＬＡ４抗体によるＴ細胞におけるアポトーシスの誘起
この実施例では、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂを用いてＴ細胞表面でＣＴＬＡ４をライゲートすることにより、予め活性化したＴ細胞にアポトーシスを誘起した。最初の一連の実験では、異反応性Ｔ細胞クローンを用いた。ＨＬＡ−ＤＲ７に特異性を有する異反応性Ｔ細胞は、ＨＬＡ−ＤＲ７に陰性の個体から作った。Ｔ細胞クローンは放射線照射したＤＲ７＋同型接合性リンパ芽球セルライン（ＬＢＬ−ＤＲ７）と２４時間培養することにより活性化し、２４時間、ＣＴＬＡ４表面発現を誘起した。Ｔ細胞は９６ウェル平底マイクロタイタープレート中１０５セル／ウェルの濃度で、３７℃，５％ＣＯ２で培養した。活性化Ｔ細胞クローンは、ヒトＤＲαおよびＤＲ７βでトランスフェクトしたＮＩＨ−３Ｔ３細胞（ｔ−ＤＲ７；ギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０，６５８６−６５９０（１９９３）に記載）単独で、または抗ＣＤ２８もしくは抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂと共に再対抗し、２番目のシグナルを提供した。有糸分裂活性の指標となるチミジンの組み込みを標準的な方法により評価した。アポトーシスは、クイングシェング，Ｔ．ら、Ｃｅｌｌ ６７，６２９−６３９（１９９１）に記載されるように、アガロースゲル電気泳動で、ＤＮＡ分断化の存在により評価した。簡単に述べると、ＤＮＡを細胞から抽出し、試料を０．５μｇ／ｍｌエチジウムブロマイドを含有する１％アガロースゲルに載せる。電気泳動した後、ＤＮＡをＵＶ光のもとで可視化し、アポトーシスの特性を有するヌクレオソームの長さの断片の存在を評価した。さらに、アポトーシスをハーディン，Ｊ．Ａ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １５４，９９−１０７（１９９２）に記載するように、ヘキスト３３３４２染料の取り込みにより評価した。
【０１４９】
結果は図１Ａにグラフで説明する。活性化Ｔ細胞クローンは、ｔ−ＤＲ７の対抗に応答して増殖し、ＩＬ−２の蓄積は検出されなかった。抗ＣＤ２８または抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ（例えば７Ｇ１１）を添加すると、結果的に著明に増殖し、ＩＬ−２が蓄積される。それに比して、抗ＣＴＬＡ４．１ ｍＡｂをｔ−ＤＲ７刺激Ｔ細胞培養物に添加すると、増殖を刺激せず、代わりに増殖は著明に減少し、ＩＬ−２の蓄積は検出されず、ＤＮＡ分断化により測定されるようにアポトーシスを誘起する。外因性のＩＬ−２をｔ−ＤＲ７およびＣＴＬＡ４．１ ｍＡｂに添加すると、ＩＬ−２単独でｔ−ＤＲ７に添加して観察した場合と比較して、結果的にＴ細胞が著明に増殖し、ｔ−ＤＲ７および抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂによるアポトーシスの誘起を阻止した。ＣＴＬＡ４．１とのＣＴＬＡ４ライゲーションに続いて、活性化Ｔ細胞クローンが外因性ＩＬ−２の存在下で増殖するのは観察されず、このことは、これらの細胞が抗原特異的クローンを排除するという結論に合致する。
【０１５０】
２番目の一連の実験では、ＣＴＬＡ４ライゲーションが、予め活性化した正常ヒトＴ細胞でのアポトーシスをも誘起するかどうかを決定した。ＣＤ４陽性Ｔ細胞芽細胞を、Ｔ細胞を活性化するためにフィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）を含有する培地で、４日間ＰＢＭＣを培養した後、枯渇陰性により単離した。細胞を徹底的に洗浄し、次に種々の２番目のシグナルの存在下、抗ＣＤ３ ｍＡｂで再対抗した。
【０１５１】
結果は図１Ｂにグラフで説明する。抗ＣＤ３処置しない抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂは、Ｔ細胞増殖またはＩＬ−２産生に影響をおよぼさない。抗ＣＤ３単独では低水準のＩＬ−２蓄積を伴うＰＨＡ芽細胞の穏やかな増殖を誘起した。抗ＣＤ２８または抗ＣＤ２８／ＣＴＬＡ４（例えば７Ｇ１１）ｍＡｂの添加により増殖およびＩＬ−２の蓄積の両方が増強された。ＨＬＡ−ＤＲ７特異的異反応性Ｔ細胞クローンについての上述の結果に類似して、活性化した正常末梢血Ｔ細胞の抗ＣＤ３刺激は、任意の抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂ（例えばＣＴＬＡ４．１−ＣＴＬＡ４．４）の存在下、増殖の低減、ＩＬ−２蓄積の欠如、およびアポトーシスを招く。アポトーシスは６時間の培養と同じほど早くに検出される。抗ＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂに効果がないので、ＣＴＬＡ４の交差連結が必要である。活性化Ｔ細胞クローンに観察されるように、外因性ＩＬ−２を抗ＣＴＬＡ４．１に添加すると、アポトーシスから保護する。同様に、抗ＣＤ２８の添加もまたアポトーシスから保護する。培地中単独で２４時間まで培養したＣＤ４＋ＰＨＡ芽細胞はアポトーシスを起こさなかったので、アポトーシスは、単にＩＬ−２産生の欠如の結果によるものではないと思われる。抗ＣＤ４５、抗ＣＤ４５ＲＡ、抗ＣＤ４５ＲＯ、抗ＣＤ４、抗ＣＤ５、または抗ＣＤ６ ｍＡｂ交差架橋が同等の培養条件下で、５個の実施実験のいずれにおいても増殖の低減またはアポトーシスを誘起しないという知見により、ＣＴＬＡ４架橋の特異性が提供された。単離した非分画化Ｔ細胞にもまた同様の水準のアポトーシスが観察され、ＣＤ２８陽性およびＣＤ８陽性ＰＨＡ芽細胞を、同等の培養条件下で試験した。
【実施例４】
【０１５２】
実施例４：新規ＣＴＬＡ４リガンドによるＴセルにおけるアポトーシスの誘起
実施例２に記載するように、ＣＴＬＡ４の抗ＣＴＬＡ４抗体とのライゲーションは、最初の活性化シグナルの存在下、予め活性化した正常Ｔ細胞および異反応性Ｔ細胞クローンにアポトーシスを誘起した。次に既知ＣＴＬＡ４リガンド、Ｂ７−１またはＢ７−２のいずれかもまたこの融合を媒介できるかどうかを決定した。上述と同等のＴ細胞活性化の系を用いて、活性化異反応性Ｔ細胞クローンを、ＨＬＡ−ＤＲ７を単独で発現するようにトランスフェクトしたＣＯＳ細胞（ｔ−ＤＲ７）単独で、またはＨＬＡ−ＤＲ７および、Ｂ７−１（ｔＤＲ７／Ｂ７−１）またはＢ７−２（ｔＤＲ／Ｂ７−２）のいずれかの両方を発現するようにトランスフェクトしたＣＯＳ細胞で再対抗して、シグナル２を提供する。対照偽トランスフェクト細胞（ｔ−ｍｏｃｋ）をｐＣＤＮＡＩプラスミド単独でトランスフェクトした。結果は図２Ａにグラフで説明する。以前に観察したように、活性化Ｔ細胞クローンをｔ−ＤＲ７と、抗ＣＴＬＡ４．１の存在下培養すると、増殖を抑制し、アポトーシスを誘起した。これに比して、ｔ−ＤＲ７／Ｂ７−１およびｔ−ＤＲ７／Ｂ７−２の両方は、増殖を増すが、アポトーシスを誘起しない。抗ＣＤ２８ Ｆａｂの添加は、Ｂ７−１およびＢ７−２の両方により誘起される増殖の増加を阻止し（すなわち増殖の水準がｔ−ＤＲ７単独で観察されたものまで減少した）、このことはＢ７−１またはＢ７−２により提供される増殖のシグナルが、ＣＤ２８にまさに媒介されていることを示している。さらに、ＣＤ２８媒介シグナル化が存在しない場合に、Ｂ７−１またはＢ７−２がＣＴＬＡ４に結合するこれらの状況下で、ｔ−ＤＲ７に比して、増殖の低減もアポトーシスも起こらなかった。合致した結果が、ＰＨＡ活性化正常ヒトＴ細胞で観察された。これらの実験から、分子的にクローン化したＣＴＬＡ４天然リガンド（すなわちＢ７−１またはＢ７−２）には、Ｔ細胞の抗原特異的クローン的排除を媒介するものはないと、結論づけることができる。
【０１５３】
２個の分子的クローン化ＣＴＬＡ４天然リガンドは抗原特異的クローン的排除を媒介しないことを考慮にいれて、代替のＣＴＬＡ４リガンドがアポトーシスを媒介するかどうかを次に決定した。活性化異反応性Ｔ細胞クローンを、ＬＢＬ−ＤＲ７と単独に、または種々ｍＡｂおよびＩｇ融合タンパクの存在下、図２Ｂに示すように再対抗し、このことは実験の結果を説明する。全てのｍＡｂを培養物に最終濃度１０μｇ／ｍｌで加えた。Ｂ７−１、Ｂ７−２、およびＢ７−３（ＢＢ１ ｍＡｂ）に指向する阻止ｍＡｂは、各々ＬＢＬ−ＤＲ７誘起増殖を２５％まで抑制した。対照Ｉｇは添加しないのだが、ＣＴＬＡ４−Ｉｇの添加により増殖が５０％まで抑制され、全体的にＩＬ−２産生が阻止された。得られた増殖はｔ−ＤＲ７単独で観察されたものと比較できる。しかしながら、抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂを組み合わせたものを添加すると、増殖が著しく抑制され、さらに重要なことに、Ｔ細胞がアポトーシスを起こした。ＢＢ１ ｍＡｂまたは対照Ｉｇを抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂにさらに添加すると、増殖にもアポトーシスにもさらなる効果はおよぼさなかった。これに比して、ＣＴＬＡ４−ＩｇまたはＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂのどちらかを抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２ ｍＡｂに添加すると、アポトーシスを完全に阻止し、および増殖の水準をｔ−ＤＲ７単独で観察される水準にまでもどした。これらのデータは、アポトーシスを誘起するＬＢＬ−ＤＲ７に発現するリガンドはＢ７−１でもＢ７−２でもなく、ＣＴＬＡ４を通じてシグナルを送るＣＴＬＡ４結合リガンドであるということを示している。ＬＢＬ−ＤＲＩ細胞は同等の培養条件下で増殖を低減せず、アポトーシスを誘起しないので、アポトーシスは抗原特異的である。実施例４に記載された以前の観察に類似して、ＩＬ−２の抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２への添加は、増殖の抑制およびアポトーシスを撤廃した。ＰＨＡ芽細胞で観察されたものと再び合致した。
【０１５４】
これらのことを鑑みて、これらの結果は以下のことを示している；抗原特異的Ｔ細胞アポトーシスを媒介するＣＴＬＡ４の生理学的リガンドは：１）ＬＢＬ−ＤＲ７細胞である、２）阻止Ｂ７−１およびＢ７−２がアポトーシスを阻害しないので、Ｂ７−１でもＢ７−２でもない、３）ＣＴＬＡ４ Ｉｇがアポトーシスを阻止するので、ＣＴＬＡ４結合リガンドである、４）抗ＣＴＬＡ４．１もまたアポトーシスを阻止するのでＣＴＬＡ４を通じるシグナルである。さらにこの天然リガンドの機能的エピトープは、ＣＴＬＡ４．１ Ｆａｂがアポトーシスを阻止できるので、本明細書に記載する４個の抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂすべてにより認識される同等なＣＴＬＡ４エピトープ（Ｌ−Ｔ−Ｆ−Ｌ−Ｄ−Ｄ；配列番号：２９）に結合するのに適している。これらの結果はＣＴＬＡ４が過多のＣＤ２８様共刺激経路ではなく、むしろ適当な条件下で予め活性化したＴ細胞をクローン的に排除する能力のある、異なるシグナル発生経路であり、さらにＬＢＬ−ＤＲ７に存在する新規な天然ＣＴＬＡ４リガンドが、このアポトーシスを媒介できるという仮説に合致する。
【０１５５】
免疫応答の進行中に、活性化／増幅を媒介するシグナル、および続いて抗原特異的細胞性排除を誘起するシグナルの間で均衡がある。ＣＤ２８の架橋または、ｍＡｂもしくはそれらの天然リガンドＢ７−１もしくはＢ７−２によるＣＤ２８／ＣＴＬＡ４の共通結合部域のどちらかは、結果的にＩＬ−２蓄積を引き起こす陽性の共刺激シグナルのようなものを提供する。本明細書に記載する結果は、ＩＬ−２を蓄積するシグナルは優勢であることを示唆している、というのは、これらが免疫応答を増幅し、それによりＣＴＬＡ４媒介アポトーシスからの免疫応答の進行を防ぐためである。Ｂ７−１およびＢ７−２はＣＤ２８およびＣＴＬＡ４の両方のリガンドであるので、たいていの場合細胞排除よりむしろ増幅シグナルを媒介する。この隔たりの間で、ＣＴＬＡ４の架橋はアポトーシスを媒介せず、対照的に、相乗的な共刺激シグナルをＣＤ２８に提供できる。Ｔ細胞活性化に続いて、Ｂ７−１によるＣＤ２８連結は、ＣＴＬＡ４発現を増加させるが、ＣＤ２８合成および機能を低下制御する（リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５０，３１６１−３１６９（１９９３））。増殖応答が衰退する場合の条件下、共刺激剤に媒介されるＣＤ２８の不在下、ＣＴＬＡ４の架橋は、予め活性化した細胞の細胞的排除を誘起できる。共刺激またはＴ細胞活性化状態に依存したアポトーシス誘起の機能的能力は、受容体のＴＮＦの基の的を構成員レパートリー数を回顧させる（スミス，Ｃ．Ａ．ら、Ｃｅｌｌ ７６，９５９−９６２（１９９４）参照）。しかしながら、ＴＣＲを通じたシグナルをも必要であるので、異なるアポトーシスはＴＮＦ受容体群の構成員で誘起され、ＣＴＬＡ４架橋は抗原特異的クローン的排除を媒介する。
【実施例５】
【０１５６】
実施例５：活性化Ｔ細胞にアポアプトシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドのクローニング
Ｔ細胞のアポトーシスを媒介する天然のＣＴＬＡ４リガンドは、ＣＴＬＡ４との相互作用に基づく発現クローニングにより分子的に単離される。実施例５に示すように、天然のＣＴＬＡ４リガンドは、Ｂリンパ芽球セルライン（ＬＢＬ）の表面に発現される。このようなＬＢＬセルラインは、当業界に周知であり、Ｂリンパ腫細胞のエプステイン−バールウイルス形質転換に関連する標準的な方法により構築できる。Ｔ細胞のアポトーシスを媒介する天然のＣＴＬＡ４リガンドを単離するために、ｃＤＮＡ発現ライブラリーを以下のようなＬＢＬセルラインから調製する。
【０１５７】
Ａ．ＣＤＮＡ発現ライブラリーの構築
ｃＤＮＡライブラリーは真核生物の発現ベクター、例えばｐＣＤＭベクター（シード、Ｎａｔｕｒｅ ３２９，８４０（１９８７））にＬＢＬセルラインから単離したポリ（Ａ）＋ＲＮＡを用いて上述のように構築する（アルフォら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））。全ＲＮＡを調製するために、ＬＢＬ細胞を培養物から収穫し、細胞小塊を４Ｍグアニジンチオシアネート、０．５％サルコシル、２５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．５、０．１３％シグマアンチフォームＡおよび０．７％メルカプトエタノールの溶液中均質化する。ＲＮＡ均質化物より、２４時間３２０００ｒｐｍで５．７Ｍ ＣｓＣｌ、１０ｍＭ ＥＤＴＡ、２５ｍＭ酢酸ナトリウム、ｐＨ７の溶液を通じて、遠心により精製する。ＲＮＡ小塊を５％サルコシル、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１０ｍＭトリス、ｐＨ７．５に溶解し、２容量の５０％エタノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルルコールで抽出する。ＲＮＡは２回エタノール沈殿させる。ｃＤＮＡライブラリーに用いるポリ（Ａ）＋ＲＮＡ構築物は、オリゴ（ｄＴ）セルロース選別を２サイクル行うことにより精製する。
【０１５８】
相補的ＤＮＡは、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．３、７５ｍＭ ＫＣｌ、３ｍＭ ＭｇＣｌ２、１０ｍＭジチオスレイトール、５００μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５０μｇ／ｍｌオリゴ（ｄＴ）１２−１８、１８０ユニット／ｍｌＲナシン、および１０００ユニット／ｍｌモロネイ−ＭＬＶ逆転写酵素を全量５５μｌを含有する反応物中、３７℃で１時間、５．５μｇポリ（Ａ）＋ＲＮＡから合成する。逆転写に続いて、溶液を２５ｍＭトリス、ｐＨ８．３、１００ｍＭ ＫＣｌ、５ｍＭ ＭｇＣｌ２、各々２５０μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５ｍＭジチオスレイトール、２５０ユニット／ｍｌＤＮＡポリメラーゼＩ、８．５ユニット／ｍｌリボヌクレアーゼＨに調整し、１６℃、２時間インキュベートすることにより、ｃＤＮＡを２重鎖ＤＮＡに転換する。ＥＤＴＡを加えて１８ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールおよび担体として４マイクログラムの線状ポリアクリルアミドで沈殿させる。さらに、ｃＤＮＡは４μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡから、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．８、５０μｇ／ｍｌオリゴ（ｄＴ）１２−１８、３２７ユニット／ｍｌＲナシン、および９５２ユニット／ｍｌ ＡＭＶ逆転写酵素を全容量１００μｌで、４２℃で０．６７時間反応させて合成する。逆転写に続いて、逆転写酵素を７０℃、１０分間加熱して不活化する。ｃＤＮＡを３２０μｌのＨ２Ｏおよび８０μｌの０．１Ｍトリス、ｐＨ７．５、２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．５Ｍ ＫＣｌ、２５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、および５０ｍＭジチオスレイトールの溶液を添加し、溶液を各々２００μＭ ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰ、５０ユニット／ｍｌ ＤＮＡポリメラーゼＩ、８ユニット／ｍｌリボヌクレアーゼＨに調整し、１６℃、２時間インキュベートすることにより、ｃＤＮＡを２重鎖ＤＮＡに転換する。ＥＤＴＡを加えて１８ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールおよび担体として４マイクログラムの線状ポリアクリルアミドで沈殿させる。４μｇのＡＭＶ逆転写物および２．０μｇのモロネイ逆転写物からのＤＮＡをまとめる。非自己相補的ＢｓｔＸＩアダプターを以下のようにＤＮＡに加える：６μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡからの２重鎖ｃＤＮＡを３．６μｇのキナーゼ処理した配列ＣＴＴＴＡＧＡＧＧＣＡＣＡ（配列番号：３１）のオリゴヌクレオチド、２．４μｇおよびキナーゼ処理した配列ＣＴＣＴＡＡＡＧ（配列番号：３２）のオリゴヌクレオチドと、６ｍＭトリス、ｐＨ７．５、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、５ｍＭ ＮａＣｌ、３５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、７ｍＭメルカプトエタノール、０．１ｍＭ ＡＴＰ、２ｍＭジチオスレイトール、１ｍＭスペルミジン、および６００ユニットＴ４ＤＮＡリガーゼを含有する溶液全容量０．４５ｍｌ中、１５℃、１６時間、インキュベートする。ＥＤＴＡを加えて３４ｍＭにし、溶液を５０％フェノール、４９％クロロホルム、１％イソアミルアルコールの等容量で抽出する。ＤＮＡは２．５Ｍ酢酸アンモニウムを含有する２容量のエタノールで沈殿させる。
【０１５９】
６００ｂｐより大きいＤＮＡは以下のように選別する：アダプター化したＤＮＡを１０ｍＭトリス、ｐＨ８、１ｍＭ ＥＤＴＡ、６００ｍＭ ＮａＣｌ、０．１％サルコシルに溶解し、同一の緩衝液中、セファロースＣＬ−４Ｂカラムでクロマトグラフにかける。カラムの空容量のＤＮＡ（６００ｂｐ以上のＤＮＡを含有する）をプールし、エタノールで沈殿させる。ｐＣＤＭ８ベクターをｃＤＮＡクローニング用に、ＢｓｔＸＩで消化し、アガロースゲルで精製して、調製する。６μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡからのアダプター化したＤＮＡを６ｍＭトリス、ｐＨ７．５、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、５ｍＭ ＮａＣｌ、３５０μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、７ｍＭメルカプトエタノール、０．１ｍＭ ＡＴＰ、２ｍＭジチオスレイトール、１ｍＭスペルミジン、および６００ユニットＴ４ ＤＮＡリガーゼを含有する溶液全容量１．５ｍｌ中、１５℃、２４時間、２．２５μｇのＢｓｔＸＩ切断ｐＣＤＭ８にライゲートする。ライゲート反応混合物を次に標準的な方法により、受容能力のあるＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ／Ｐ３に形質転換する。
【０１６０】
プラスミドＤＮＡを、ｃＤＮＡライブラリーの元来の形質転換物の５００ｍｌ培養物から調製する。プラスミドＤＮＡをアルカリ性溶解法、続いてＣｓＣｌ平衡グラジエントで２回バンド形成させて精製する（マニアティスら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州（１９８７））。
【０１６１】
Ｂ．クローニング方法
クローニング方法において、ｃＤＮＡ発現ライブラリーを真核細胞セルライン、例えばＣＯＳ細胞に導入し、細胞をＣＴＬＡ４タンパク（例えばＣＴＬＡ４ Ｉｇ融合タンパク）で選別し、それらの表面のトランスフェクトした発現ＣＴＬＡ４リガンドを同定する。アポトーシスを誘起するＣＴＬＡ４リガンドをコードするｃＤＮＡを含有するのに加えて、ｃＤＮＡライブラリーは“夾雑物”Ｂ７−１およびＢ７−２ｃＤＮＡをも含有することがあるので、ライブラリースクリーニングの３番目の段階では、抗Ｂ７−１および抗Ｂ７−２抗体での前処理、続いて抗マウスＩｇ結合磁気ビーズを用いて免疫原性ビーズを除去して、これらのタンパクを発現するクローンを取り除く。スクリーニングの最初の段階では、５０％融合性ＣＯＳ細胞の１００ｍｍ皿３０個を、ＤＥＡＥデキストラン法を用いて０．０５ｇ／ｍｌ ＬＢＬセルラインライブラリーＤＮＡで、トランスフェクトする（シード，Ｂ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））。細胞をトリプシン処理し、２４時間後に再度プレート化する。４７時間後、細胞をＰＢＳ／０．５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．４／０．０２％ナトリウムアジド中３７℃、３０分間インキュベートして、分離する。
【０１６２】
分離した細胞を１０μｇ／ｍｌ ＣＴＬＡ４ Ｉｇ（組換えＣＴＬＡ４−ヒトＩｇ融合タンパクは、リンスレイ，Ｐ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７４，５６１−５６９（１９９１）；およびギミ，Ｃ．Ｄ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ９０，６５８６−６５９０（１９９３）に記載される）で処理する。細胞を融合タンパクと共に４５分間、４℃でインキュベートする。細胞を洗浄し、親和性精製ヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体で被覆したパニング皿に分配し、室温で付着させる。３時間後、プレートをＰＢＳ／０．５ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．４／０．０２％ナトリウムアジド、５％ ＦＣＳで２回、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０１Ｍヘペス、ｐＨ７．４、５％ ＦＣＳで１回、穏やかに洗浄する。非結合細胞をこのように取り除き、通常の方法により、エピソームのＤＮＡを付着性のパニングした細胞（すなわちＣＴＬＡ４ Ｉｇに結合する細胞）から回復させる。
【０１６３】
エピソームのＤＮＡをＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ／Ｐ３に形質転換する。プラスミドＤＮＡを、記載されるように（シード，Ｂ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４，３３６５（１９８７））スフェロプラスト融合によりＣＯＳ細胞に再導入し、発現およびパニングのサイクルを２回繰り返す。分別の２および３番目の段階では、４７時間後、分離したＣＯＳ細胞を最初は、１０ｇ／ｍｌネズミ抗Ｂ７−１ｍＡｂ（例えば、フリードマン，Ａ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７，３２６０−３２６７（１９８７）に記載されるｍＡｂ１３３、ベクトン・ディッキンソンより市販により入手可能なｍＡｂＬ３０７、および／またはレプリゲンコーポレーションからのＢ１．１）および抗Ｂ７−２ｍＡｂ（例えば、アズマ，Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ３６６，７６−７９（１９９３）に記載されるｍＡｂ Ｂ−７０、ファルミンゲンより市販により入手可能）と共に、４５分間、４℃でインキュベートする。Ｂ７−１またはＢ７−２を発現する細胞を、抗マウスＩｇＧおよびＩｇＭ被覆磁気ビーズを用いて取り除く。次にＣＯＳ細胞を１０ｇ／ｍｌヒトＣＴＬＡ４ Ｉｇ（ｈＣＴＬＡ４ Ｉｇ）で処理する。新規ＣＴＬＡ４リガンドを発現する細胞をヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体を被覆した皿上でパニングにより選別する。スクリーニングの３番目の段階の後、プラスミドＤＮＡを個々のコロニーより調製し、ＤＥＡＥデキストラン法により、ＣＯＳ細胞にトランスフェクトする。トランスフェクトしたＣＯＳ細胞上でのＣＴＬＡ４の発現は、ＣＴＬＡ４ Ｉｇで、間接的免疫蛍光により分析する。
【０１６４】
また別なアプローチでは、クローンを、ＢＢ１抗体への結合に基づいて選別する。新規ＣＴＬＡ４リガンドへの候補物質は、Ｂ７−３であり、これはＢＢ１ ｍＡｂの結合により定義される（ボウシトチス，Ｖ．Ａ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ，ＵＳＡ ９０，１１０５９−１１０６３（１９９３））。Ｂｂ１ ｍＡｂはＣＴＬＡ４媒介アポトーシスを阻止できなかったが（実施例５参照）、Ｂ７−３はアポトーシスを媒介するＣＴＬＡ４リガンドであるが、ＢＢ１ ｍＡｂが抗体のこの機能を阻止しないということは、可能である。従ってｃＤＮＡ発現ライブラリーは、上述のように、ＢＢ１ ｍＡｂに結合するクローンをスクリーニングできる（ＢＢ１ ｍＡｂは、ヨコチ，Ｔ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｌ．１２８，８２３−８２７（１９８２）に記載されている）。クローンはパニングにより、ヤギ抗マウスＩｇＭ２次抗体で被覆したプレートに単離される。ＬＢＬ ｃＤＮＡライブラリーは、使用することができ、また別に、ライブラリーはＢＢ１抗原を発現することが知られている活性化ヒトケラチノサイトから調製でき、上述のようにスクリーニングできる。
【０１６５】
上述のように発現クローンから単離したＣＴＬＡ４リガンドの、活性化Ｔ細胞に抗原特異的アポトーシスを誘起する能力は、前の実施例に記載した系を用いて評価できる。例えば、ライブラリースクリーニングから単離したｃＤＮＡは、ＣＨＯ細胞に導入して、ＣＴＬＡ４リガンドを表面に発現するＣＨＯ形質転換物（ＣＨＯ−ＣＴＬＡ４Ｌ）を作ることができる。正常ヒトＴ細胞におけるアポトーシスを評価するために、ＰＨＡ活性化ＣＤ４＋Ｔ細胞芽細胞を、抗ＣＤ３およびＣＨＯ−ＣＴＬＡ４Ｌで培養し、ＤＮＡ分断化を、アポトーシスの測定として決定する。異反応性Ｔ細胞における抗原特異的アポトーシスを評価するために、予め活性化したＨＬＡ−ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンを、ＨＬＡ−ＤＲ７およびＣＴＬＡ４リガンドの両方を発現する様にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞（ＣＨＯ−ＤＲ７／ＣＴＬＡ４）と共に培養し、ＤＮＡ分断化およびＴ細胞増殖の低減制御を、アポトーシスおよび生物学的な機能の測定により評価する。
【実施例６】
【０１６６】
実施例６：Ｅ．ｃｏｌｉにおけるヒトＣＴＬＡ４細胞外領域の発現
ＣＴＬＡ４細胞外領域のクローニング
ＣＴＬＡ４の細胞外領域を、発現ベクターｐＥＴＣｍ１１ａにクローニングした後、Ｅ．ｃｏｌｉに発現させた。このベクターは、アンピシリン抵抗性遺伝子内のＳｃａＩ制限部位にクロラムフェニコール抵抗性遺伝子カセットをクローニングすることにより、発現ベクターｐＥＴ−１１ａ（ノバゲンインコーポレーティッド、マジソン、ウィスコンシン州）から得た。ＣＴＬＡ４の細胞外領域は、オリゴヌクレオチド５‘ＧＣＡＧＡＧＡＧＡＣＡＴＡＴＧＧＣＡＡＴＧＣＡＣＧＴＧＧＣＣＣＡＧＣＣＴＧＣＴＧＴＧＧ−３’（配列番号：３７）を先行プライマーとして、オリゴヌクレオチド５‘ＧＣＡＧＡＧＡＧＡＧＧＡＴＣＣＴＣＡＧＴＣＡＧＴＴＡＧＴＣＡＧＡＡＴＣＴＧＧＧＣＡＣＧＧＴＴＣＴＧＧ−３’（配列番号：３８）を逆転プライマーとして用いて、ＰＣＲ増幅により、プラスミドｐｈＣＴＬＡ４から調製した。先行ＰＣＲプライマーは、Ｎｄｅ１制限部位のＡＴＧ配列が成熟ＣＴＬＡ４の最初のアミノ酸からのコドンがすぐ後に続く、Ｎｄｅ１制限部位を含有する。逆転ＰＣＲプライマーは、ＣＴＬＡ４膜透過領域の直前に最後のアミノ酸により先行される３個の全ての解読枠の翻訳停止コドンにより先行される、ＢａｍＨＩ制限部位を含有する。これらのプライマーでのＰＣＲ増幅は、メチオニンコドンにより先行されるＣＴＬＡ４の細胞外領域をコードするＤＮＡ配列を含有するＮｄｅ１およびＢａｍＨＩ制限部位により結合される４１６ｂｐ断片を生み出す。ＰＣＲ産生物は、Ｎｄｅ１およびＢａｍＨＩで消化し、ライゲートして同一の制限酵素で消化したベクターｐＥＴＣｍ１１ａを発現する。ライゲートしたＤＮＡを、ラムダＤＥ３ヘルパーファージを含有するＥ．ｃｏｌｉ株ＢＬ２１、ＨＭＳ１７４、ＲＧＮ７１４およびＲＧＮ７１５にトランスフェクトした。形質転換物はクロラムフェニコールを含有するＬ寒天中で選別した。個々の形質転換物は、選別し、０．５ｍＭ ＩＰＴＧとの処理により導入した後、ＣＴＬＡ４発現を試験した。全細胞抽出物を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で分析し、続いてクーマシー青色染色およびウェスタンブロット分析を行った。これらの細胞の大部分のＣＴＬＡ４タンパクは細胞封入体の中に見出された。
【０１６７】
細胞封入体からのＣＴＬＡ４の精製
組換えＣＴＬＡ４は、洗浄細胞を溶解緩衝液（５０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＰＭＳＦ、５ｍＭ ＥＤＴＡ、０．５％トライトンＸ−１００およびライソザインを０．３ｍｇ／ｍｌで）中処理し、続いてソニケートして、細胞小塊より回収した。細胞封入体は、２００００×ｇで遠心して回収し、可溶化緩衝液（５０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２−メルカプトエタノール（２−ＭＥ））で処理して可溶化した。可溶化は室温で２時間攪拌することにより助成した。可溶性分画はＣＴＬＡ４を含有した。ＣＴＬＡ４は以下のように、Ｓセファロース（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）でクロマトグラフィーにより精製した。ＣＴＬＡ４含有上澄は、氷酢酸を添加することによりｐＨ３．４に調整し、カラム緩衝液（１００ｍＭ 酢酸ナトリウム、ｐＨ６．５、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２−ＭＥおよび５ｍＭ ＥＤＴＡ）で平衡にしたＳセファロースに適用した。カラムをカラム緩衝液で洗浄し、結合ＣＴＬＡ４を、カラム緩衝液で調製した直線塩グラジエント（ＮａＣｌ、０〜１Ｍ）で流出した。Ａｂｓ２８０ｎｍで高値を呈するピーク分画をプールし、透析緩衝液（１００ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ８．０、８Ｍ尿素、５０ｍＭ ２ＭＥ、５ｍＭ ＥＤＴＡ）に抗して透析した。残留した夾雑タンパクを、セファクリルＳ−１００クロマトグラフィー（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）の測定カラムで除去した。得られた調製物はＳＤＳ−ＰＡＧＥで推測されたように、９５％以上の純度であり、続いてクーマシー青色染色およびウェスタンブロット分析を行った。Ｅ．ｃｏｌｉに産生された単量体組換えＣＴＬＡ４の推測された大きさは、約１５ｋＤａであったので、精製プロトコールの全工程は、１５ｋＤａタンパクの存在をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより試験され、ＣＴＬＡ４の存在は、ウェスタンブロットにより証明された。
【０１６８】
Ｅ．ｃｏｌｉからの分泌ＣＴＬＡ４の調製
分泌型のＣＴＬＡ４を以下のようにＥ．ｃｏｌｉより調製した。ＣＴＬＡ４の細胞外領域をｐｅ１Ｂ（レイ，Ｓ．−Ｐ．ら、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１６９，４３７９−４３８３（１９８７））シグナル配列に、鋳型としてプラスミドｐｈＣＴＬＡ４、および先行プライマーとしてオリゴヌクレオチド５‘ＧＧＣＡＣＴＡＧＴＣＡＴＧＡＡＡＴＡＣＣＴＡＴＴＧＣＣＴＡＣＧＧＣＡＧＣＣＧＣＴＧＧＡＴＴＧＴＴＡＴＴＡＣＴＣＧＣＴＧＣＣＣＡＡＣＣＡＧＣＧＡＴＧＧＣＣＧＣＡＧＣＡＡＴＧＣＡＣＧＴＧＧＣＣＣＡＧＣＣＴＧＣＴＧＴＧＧ３’（配列番号：３９）および逆転プライマーとして上述のオリゴヌクレオチド配列番号：３８を用いて、ＰＣＲにより結合した。先行ＰＣＲプライマーは、独特のＢｓｐＨ１制限部位、完全ｐｅ１Ｂシグナル配列およびＣＴＬＡ４の細胞外領域の５’末端を含む。逆転ＰＣＲプライマーは、ＣＴＬＡ４の膜透過領域の前の最後のアミノ酸に先行される３個の全ての解読枠の翻訳停止コドンにより先行される、独特のＢａｍＨ１制限部位を含む。これらのプライマーでのＰＣＲ増幅は、ＣＴＬＡ４細胞外領域に結合するｐｅ１Ｂシグナル配列をコードする、独特のＢｓｐＨ１およびＢａｍＨ１制限部位に結合した断片により、４８０を産生した。ＰＣＲ増幅の後、ＤＮＡ断片をＢｓｐＨ１およびＢａｍＨ１で消化し、予めＮｃｏ１およびＢａｍＨ１で消化した発現ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（ファルマシア、ピスカッタウェイ、ＮＪ）にライゲートした。この結果、ｐｅ１Ｂ−ＣＴＬＡ４タンパクの発現が、ｐＴｒｃ９９Ａ発現ベクターに存在するｐＴｒｃプロモーターにより引き起こされるプラスミドになる。ライゲートし、ＤＮＡで形質転換したＥ．ｃｏｌｉ宿主株は、アンピシリン含有（５０μｇ／ｍｌ）Ｌ−寒天上で選別され、個々のクローンを単離した。これらの株のＣＴＬＡ４発現は、ＩＰＴＧ（０．５ｍＭ）で一晩、指数的成長培養処理により誘起された。濃縮後の培養培地から、またはペリプラスムからの放出により調製した抽出物（細胞は２０％ショ糖、１０ｍＭ塩酸トリス、ｐＨ７．５、中室温で１５分間インキュベートし、遠心により回収し、４℃で水に再懸濁し、氷中１０分間保持した）をＣＴＬＡ４の存在を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、ウェスタンブロットおよび競合Ｂ７結合ＥＬＩＳＡにより検定した。
【０１６９】
同等物
当業者は、通常の実験方法のみを用いて、本明細書に記載する詳細な態様に対する多くの同等物を認識するか、または確認できる。このような同等物は、以下の特許請求の範囲に包含されるものとする。
【図面の簡単な説明】
【０１７０】
【図１Ａ】抗原（ｔ−ＤＲ７）および指示した、２番目のシグナルで再対抗したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体（ｍＡｂ）によりアポトーシスが誘起されることを示す。
【図１Ｂ】抗ＣＤ３および指示した２番目のシグナルで再対抗したしたときの、正常な末梢血ＣＤ４＋Ｔ細胞芽細胞によるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗ＣＴＬＡ４ ｍＡｂによりアポトーシスが誘起されることを示す。
【図２Ａ】単独の抗原（ｔ−ＤＲ７）を発現する細胞または両方の抗原およびＢ７−１（ｔＤＲ７／Ｂ７−１）またはＢ７−２（ｔＤＲ７／Ｂ７−２）のどちらか一方を発現する細胞で再攻撃したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、Ｂ７−１もＢ７−２も抗原特異的アポトーシスを誘起しないことを示す。
【図２Ｂ】指示した細胞で指示したｍＡｂまたは融合タンパクと共に再攻撃したときの、活性化ＤＲ７特異的Ｔ細胞クローンによるＴ細胞応答（増殖、ＩＬ−２産生またはアポトーシス）をグラフで示しており、抗原特異的アポトーシスが非Ｂ７−１非Ｂ７−２ＣＴＬＡ４結合リガンドにより誘起されることを示す。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｔ細胞特異性表面分子に結合し、活性化Ｔ細胞において抗原特異性アポトーシスを誘起する単離されたリガンド。
【請求項２】
Ｔ細胞特異性表面分子に結合する抗体である請求項１記載のリガンド。
【請求項３】
Ｔ細胞特異性表面分子がＣＴＬＡ４である請求項１記載のリガンド。
【請求項４】
Ｔ細胞表面分子のエピトープＣＴＬＡ４に結合し、活性化Ｔ細胞において抗原特異性アポトーシスを誘起する単離されたリガンド。
【請求項５】
ヒトＣＴＬＡ４のエピトープに結合する請求項４記載のリガンド。
【請求項６】
ＣＴＬＡ４のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは異なるエピトープに結合する請求項４記載のリガンド。
【請求項７】
ＣＴＬＡ４のエピトープが、アミノ酸配列：
【化１】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝１〜２０である）を含有する請求項４記載のリガンド。
【請求項８】
抗ＣＴＬＡ４抗体またはその断片である請求項５記載のリガンド。
【請求項９】
モノクローナル抗体である請求項８記載の抗体。
【請求項１０】
キメラモノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１１】
ヒト化モノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１２】
ヒトモノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１３】
ＣＴＬＡ４のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは異なるエピトープに結合する請求項９記載の抗体。
【請求項１４】
ＣＴＬＡ４のエピトープが、アミノ酸配列：
【化２】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する請求項９記載の抗体。
【請求項１５】
ＥＲ５.４Ｄ３（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、ＥＳ５.３Ｄ６（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、ＥＲ５.３Ｄ８（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、およびＥＳ５.４Ｅ３（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）から成る群から選択される請求項９記載の抗体。
【請求項１６】
Ｂリンパ芽球セルラインの表面に天然型で発現される請求項４記載のリガンド。
【請求項１７】
Ｂリンパ芽球セルラインの表面に発現される天然型の組換え可溶性誘導体である請求項１６記載のリガンド。
【請求項１８】
アミノ酸配列：
【化３】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有するヒトＣＴＬＡ４のエピトープに結合するモノクローナル抗体。
【請求項１９】
アミノ酸配列：
【化４】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する単離されたヒトＣＴＬＡ４ペプチド。
【請求項２０】
アミノ酸配列：
【化５】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する単離されたヒトＣＴＬＡ４ペプチド。
【請求項２１】
請求項８記載の抗体および医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２２】
請求項１４記載の抗体および医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２３】
請求項１７記載のリガンドおよび医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２４】
Ｔ細胞を：
ａ）Ｔ細胞においてＴＣＲ／ＣＤ３複合体関与シグナルを刺激する１番目の物質；および
ｂ）Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する２番目の物質と接触させることからなる、活性化Ｔ細胞においてアポトーシスを誘起する方法。
【請求項２５】
２番目の物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項２４記載の方法。
【請求項２６】
２番目の物質がＢリンパ芽球セルラインに発現する天然ＣＴＬＡ４リガンドの可溶型である請求項２４記載の方法。
【請求項２７】
２番目の物質がＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激するように細胞内で作用する請求項２４記載の方法。
【請求項２８】
２番目の物質がＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激するＣＴＬＡ４リガンドをコードする核酸である請求項２４記載の方法。
【請求項２９】
さらに、Ｔ細胞において共刺激シグナルを阻害する少なくとも１つの３番目の物質にＴ細胞を接触させることからなる請求項２４記載の方法。
【請求項３０】
Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を有効量、対象に投与することからなる対象の活性化Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する方法。
【請求項３１】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３０記載の方法。
【請求項３２】
さらに、Ｔ細胞における共刺激シグナルを阻害する少なくとも１つの２番目の物質を対象に投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３３】
２番目の物質が、Ｂ７−１、Ｂ７−２およびＣＤ２８からなる群から選択されるリガンドに結合する阻止分子である請求項３２記載の方法。
【請求項３４】
さらに、対象においてＴ細胞成長因子の産生または機能を阻害する２番目の物質を対象に投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３５】
２番目の物質が、インターロイキン−２およびインターロイキン−２受容体からなる群から選択されるリガンドに結合する阻止分子である請求項３４記載の方法。
【請求項３６】
対象が自己免疫疾患に罹患している請求項３０記載の方法。
【請求項３７】
さらに、自己抗原を対象に投与することからなる請求項３６記載の方法。
【請求項３８】
対象がアレルギーを患っている方法において、さらにその患者にアレルゲンを投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３９】
受容者における異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の有効量を受容者に投与することからなる供与体からの移植片に対する移植受容者における拒絶反応の阻止方法。
【請求項４０】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３９記載の方法。
【請求項４１】
物質の投与に先立ち、および受容者への移植片の移植に先立ち、供与体からの細胞を投与することからなる請求項３９記載の方法。
【請求項４２】
供与体骨髄における異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の有効量を受容者に投与することからなる骨髄移植の受容者の移植片対宿主疾患（ＧＶＨＤ）の阻止方法。
【請求項４３】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３９記載の方法。
【請求項４４】
さらに、
ａ）移植に先立ち、供与体骨髄をイン・ビトロで：
ｉ）受容者からの細胞；および
ii）供与体骨髄の異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質に接触させること
ｂ）受容者に供与体骨髄を投与すること
からなる請求項４２記載の方法。
【請求項４５】
Ｔ細胞におけるＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの発生を阻害する物質に、Ｔ細胞を接触させることからなる活性化Ｔ細胞におけるアポトーシスの阻害方法。
【請求項４６】
物質が、ＣＴＬＡ４に結合するがアポトーシスを誘起しない、可溶性ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれの断片、可溶性ＣＴＬＡ４融合タンパクまたはそれのペプチド断片、および抗ＣＴＬＡ４抗体またはそれのペプチド断片からなる群から選択される請求項４５記載の方法。
【請求項４７】
物質が、可溶型ＣＴＬＡ４リガンドまたはそれのペプチド断片、可溶性ＣＴＬＡ４リガンド融合タンパクまたはそれのペプチド断片、およびＣＴＬＡ４リガンドに結合する抗体またはそれのペプチド断片からなる群から選択される、請求項４５記載の方法。
【請求項１】
Ｔ細胞特異性表面分子に結合し、活性化Ｔ細胞において抗原特異性アポトーシスを誘起する単離されたリガンド。
【請求項２】
Ｔ細胞特異性表面分子に結合する抗体である請求項１記載のリガンド。
【請求項３】
Ｔ細胞特異性表面分子がＣＴＬＡ４である請求項１記載のリガンド。
【請求項４】
Ｔ細胞表面分子のエピトープＣＴＬＡ４に結合し、活性化Ｔ細胞において抗原特異性アポトーシスを誘起する単離されたリガンド。
【請求項５】
ヒトＣＴＬＡ４のエピトープに結合する請求項４記載のリガンド。
【請求項６】
ＣＴＬＡ４のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは異なるエピトープに結合する請求項４記載のリガンド。
【請求項７】
ＣＴＬＡ４のエピトープが、アミノ酸配列：
【化１】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝１〜２０である）を含有する請求項４記載のリガンド。
【請求項８】
抗ＣＴＬＡ４抗体またはその断片である請求項５記載のリガンド。
【請求項９】
モノクローナル抗体である請求項８記載の抗体。
【請求項１０】
キメラモノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１１】
ヒト化モノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１２】
ヒトモノクローナル抗体である請求項９記載の抗体。
【請求項１３】
ＣＴＬＡ４のＢ７−１またはＢ７−２結合部位とは異なるエピトープに結合する請求項９記載の抗体。
【請求項１４】
ＣＴＬＡ４のエピトープが、アミノ酸配列：
【化２】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する請求項９記載の抗体。
【請求項１５】
ＥＲ５.４Ｄ３（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、ＥＳ５.３Ｄ６（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、ＥＲ５.３Ｄ８（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）、およびＥＳ５.４Ｅ３（ＡＴＣＣ Ｎo.＿＿）から成る群から選択される請求項９記載の抗体。
【請求項１６】
Ｂリンパ芽球セルラインの表面に天然型で発現される請求項４記載のリガンド。
【請求項１７】
Ｂリンパ芽球セルラインの表面に発現される天然型の組換え可溶性誘導体である請求項１６記載のリガンド。
【請求項１８】
アミノ酸配列：
【化３】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有するヒトＣＴＬＡ４のエピトープに結合するモノクローナル抗体。
【請求項１９】
アミノ酸配列：
【化４】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する単離されたヒトＣＴＬＡ４ペプチド。
【請求項２０】
アミノ酸配列：
【化５】
（式中、Ｘaaは任意のアミノ酸であり、ｎ＝０〜２０である）を含有する単離されたヒトＣＴＬＡ４ペプチド。
【請求項２１】
請求項８記載の抗体および医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２２】
請求項１４記載の抗体および医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２３】
請求項１７記載のリガンドおよび医薬的に許容できる担体を含む医薬的投与に適した組成物。
【請求項２４】
Ｔ細胞を：
ａ）Ｔ細胞においてＴＣＲ／ＣＤ３複合体関与シグナルを刺激する１番目の物質；および
ｂ）Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する２番目の物質と接触させることからなる、活性化Ｔ細胞においてアポトーシスを誘起する方法。
【請求項２５】
２番目の物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項２４記載の方法。
【請求項２６】
２番目の物質がＢリンパ芽球セルラインに発現する天然ＣＴＬＡ４リガンドの可溶型である請求項２４記載の方法。
【請求項２７】
２番目の物質がＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激するように細胞内で作用する請求項２４記載の方法。
【請求項２８】
２番目の物質がＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激するＣＴＬＡ４リガンドをコードする核酸である請求項２４記載の方法。
【請求項２９】
さらに、Ｔ細胞において共刺激シグナルを阻害する少なくとも１つの３番目の物質にＴ細胞を接触させることからなる請求項２４記載の方法。
【請求項３０】
Ｔ細胞においてＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質を有効量、対象に投与することからなる対象の活性化Ｔ細胞のアポトーシスを誘起する方法。
【請求項３１】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３０記載の方法。
【請求項３２】
さらに、Ｔ細胞における共刺激シグナルを阻害する少なくとも１つの２番目の物質を対象に投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３３】
２番目の物質が、Ｂ７−１、Ｂ７−２およびＣＤ２８からなる群から選択されるリガンドに結合する阻止分子である請求項３２記載の方法。
【請求項３４】
さらに、対象においてＴ細胞成長因子の産生または機能を阻害する２番目の物質を対象に投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３５】
２番目の物質が、インターロイキン−２およびインターロイキン−２受容体からなる群から選択されるリガンドに結合する阻止分子である請求項３４記載の方法。
【請求項３６】
対象が自己免疫疾患に罹患している請求項３０記載の方法。
【請求項３７】
さらに、自己抗原を対象に投与することからなる請求項３６記載の方法。
【請求項３８】
対象がアレルギーを患っている方法において、さらにその患者にアレルゲンを投与することからなる請求項３０記載の方法。
【請求項３９】
受容者における異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の有効量を受容者に投与することからなる供与体からの移植片に対する移植受容者における拒絶反応の阻止方法。
【請求項４０】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３９記載の方法。
【請求項４１】
物質の投与に先立ち、および受容者への移植片の移植に先立ち、供与体からの細胞を投与することからなる請求項３９記載の方法。
【請求項４２】
供与体骨髄における異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質の有効量を受容者に投与することからなる骨髄移植の受容者の移植片対宿主疾患（ＧＶＨＤ）の阻止方法。
【請求項４３】
物質が抗ＣＴＬＡ４モノクローナル抗体またはその断片である請求項３９記載の方法。
【請求項４４】
さらに、
ａ）移植に先立ち、供与体骨髄をイン・ビトロで：
ｉ）受容者からの細胞；および
ii）供与体骨髄の異反応性Ｔ細胞のＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルを刺激する物質に接触させること
ｂ）受容者に供与体骨髄を投与すること
からなる請求項４２記載の方法。
【請求項４５】
Ｔ細胞におけるＣＴＬＡ４関与アポトーシスシグナルの発生を阻害する物質に、Ｔ細胞を接触させることからなる活性化Ｔ細胞におけるアポトーシスの阻害方法。
【請求項４６】
物質が、ＣＴＬＡ４に結合するがアポトーシスを誘起しない、可溶性ＣＴＬＡ４タンパクまたはそれの断片、可溶性ＣＴＬＡ４融合タンパクまたはそれのペプチド断片、および抗ＣＴＬＡ４抗体またはそれのペプチド断片からなる群から選択される請求項４５記載の方法。
【請求項４７】
物質が、可溶型ＣＴＬＡ４リガンドまたはそれのペプチド断片、可溶性ＣＴＬＡ４リガンド融合タンパクまたはそれのペプチド断片、およびＣＴＬＡ４リガンドに結合する抗体またはそれのペプチド断片からなる群から選択される、請求項４５記載の方法。
【図１Ａ】
【図１Ｂ】
【図２Ａ】
【図２Ｂ】
【図１Ｂ】
【図２Ａ】
【図２Ｂ】
【公開番号】特開２００８−７４８５９（Ｐ２００８−７４８５９Ａ）
【公開日】平成２０年４月３日（２００８．４．３）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−２６８９８０（Ｐ２００７−２６８９８０）
【出願日】平成１９年１０月１６日（２００７．１０．１６）
【分割の表示】特願平８−５０１０８５の分割
【原出願日】平成７年６月２日（１９９５．６．２）
【出願人】（５０４２３２０４４）レプリゲン・コーポレイション (1)
【氏名又は名称原語表記】ＲＥＰＬＩＧＥＮ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ
【出願人】（５９１１８３９９１）ダナ−ファーバー キャンサー インスティテュート，インコーポレイテッド (17)
【氏名又は名称原語表記】ＤＡＮＡ−ＦＡＲＢＥＲ ＣＡＮＣＥＲ ＩＮＳＴＩＴＵＴＥ， ＩＮＣＯＲＰＯＲＡＴＥＤ
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２０年４月３日（２００８．４．３）
【国際特許分類】
【出願日】平成１９年１０月１６日（２００７．１０．１６）
【分割の表示】特願平８−５０１０８５の分割
【原出願日】平成７年６月２日（１９９５．６．２）
【出願人】（５０４２３２０４４）レプリゲン・コーポレイション (1)
【氏名又は名称原語表記】ＲＥＰＬＩＧＥＮ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ
【出願人】（５９１１８３９９１）ダナ−ファーバー キャンサー インスティテュート，インコーポレイテッド (17)
【氏名又は名称原語表記】ＤＡＮＡ−ＦＡＲＢＥＲ ＣＡＮＣＥＲ ＩＮＳＴＩＴＵＴＥ， ＩＮＣＯＲＰＯＲＡＴＥＤ
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]