コイ由来抗菌剤の製造方法及び抗菌処理装置
【課題】 コイ血液から多量の抗菌剤を得る方法、及びその抗菌剤を用いた抗菌処理装置などを提供すること。
【解決手段】 コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することで抗菌剤を製造できる。この抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備え、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられている抗菌処理装置によって達成できる。
【解決手段】 コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することで抗菌剤を製造できる。この抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備え、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられている抗菌処理装置によって達成できる。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、コイ由来抗菌剤の製造方法及び、その抗菌剤を用いた抗菌処理装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトグリコホリンは、病原性ウィルスの受容体、レクチンへの接着能など生体防御機能や血液型決定基などの種々の生理活性を有していると云われている。本発明者は、魚類赤血球膜にもグリコホリン様の物質が存在すれば、ヒトグリコホリンと同様の生理機能を持つ可能性があり、魚病の防止や抗生物質に頼らない新規な薬物の開発にもつながるのではないかと考え、コイ血液から数個の糖類からなる抗菌剤を得ることに成功した（特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２００５−９７１３０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、上記特許文献に開示された方法では、得られる抗菌剤の量が極めて少ないために、応用することが困難であった。
本発明は、上記した事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、コイ血液から多量の抗菌剤を得る方法、及びその抗菌剤を用いた抗菌処理装置などを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者は、鋭意検討の結果、コイ赤血球膜を可溶化した後に、陰イオン交換クロマトグラフィーで処理することにより、従来の方法に比べて多量の抗菌剤を得られること、及びこの抗菌剤を抗菌処理装置に応用すると良好な抗菌作用を示すことを見出し、基本的には本発明を完成するに至った。
こうして、本願発明に係る抗菌剤の製造方法は、コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することを特徴とする。このとき、界面活性剤が、コール酸ナトリウムであることが好ましい。また、本願発明に係る魚類用薬剤は、上記製造方法によって得られた抗菌剤であることを特徴とする。なお、抗菌剤として用いる場合には、その他の添加物（例えば増量剤、防腐剤など）を同時に用いることもできる。
【０００６】
本願発明に係る抗菌処理装置は、コイ赤血球膜から得られた抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備えたものであって、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられていることを特徴とする。このとき、抗菌剤は、上記製造方法によって得られたものであることが好ましい。
本発明の抗菌剤は、糖部分に抗菌活性が存在するので、糖部分ではなくタンパク質部分と担体とを結合させる方法が好ましく使用できる。タンパク質を固定化する方法としては、当業者に周知の方法を用いることができる。そのような方法として、例えば水溶性カップリング試薬（EDCなど）を用いる方法、アミノ−ホルミル、チオール−マレイミド、アルデヒド−アミンなどの組み合わせを用いる方法が例示されるが、これらの方法には限定されない。通常、アミノ−ホルミルによるカップリング法を用い、アルブミンやグロブリン(血清中の抗体)などのタンパク質の結合に用いられる。
上記抗菌処理装置は、水道コックに連結される抗菌カラム、循環ポンプによって循環される水に用いる抗菌カラム、または排水処理用に用いるものであることが好ましい。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、コイ血液から多量の抗菌剤を得ることができる。この抗菌剤は、魚類の薬剤、抗菌処理装置に応用できる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】Econo-Pac 10DG カラムを用いてクロマトグラフィーを行い、コイ赤血球膜から糖タンパクを精製したときの結果を示すグラフである。
【図２】DEAE Toyopearl 650M カラムを用いてクロマトグラフィーを行い、コイ赤血球膜から糖タンパクを精製したときの結果を示すグラフである。
【図３】抗菌ゲルの構造を示す模式図である。
【図４】抗菌処理装置の斜視図である。
【図５】抗菌処理装置の側断面図である。
【図６】抗菌処理装置の側断面図である。
【図７】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【図８】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【図９】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
次に、本発明の実施形態について詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は、これらの実施形態によって限定されるものではなく、発明の要旨を変更することなく様々な形態で実施することができる。また、本発明の技術的範囲は、均等の範囲にまで及ぶものである。
＜抗菌剤の製造＞
１．コイ赤血球膜（ゴースト）の調製
供試魚として平均体重2,000〜3,000 g のコイ（Cyprinus carpio）を用いた。フィコール・パック・プラス（Ficoll-Paque PLUS）はファルマシア製のものを、他の試薬は全て和光純薬工業社製の生化学用または特級を用いた。
タンパク質の定量には、Lowry法を用いた。標準物質として、ウシ血清アルブミンを用いた。
【００１０】
まず、次のようにして、赤血球を調製した。500Lのパンライト水槽に常時飼育しているコイを用いて血液を採取した。コイ一尾をパンライト水槽から取り上げ、MS-222（m-aminobenzonic acid ethylester methanesulfonate）で薬浴麻酔した後、背部動脈からへパリン溶液（974.6 units/ml）で湿らせたシリンジを用いて血液を採取した。コイ1尾あたり平均で約20mlの血液が得られ、3〜4尾より合計70〜75m1の血液を採取した。血液採取後のコイは水槽に戻して蘇生させた。得られた血液を直ちに魚類リンゲル液（145 mM NaCl, 5 mM CaCl2, 1mM MgSO4, 4 mM KCl, 5 mM Glucose含有, 10 mM Hepes, pH7.9）で等倍に希釈した後、Ficoll-Paque PLUS に重層し、400×gで30分間、室温で遠心分離した。上層と中層を駒込ピペットで除去し、下層の赤血球のみを採取した。得られた赤血球を魚類リンゲル液に再度懸濁した後、700×gで5分間遠心分離を行い、赤血球を洗浄した。この操作を3回繰り返した。
【００１１】
次に、ゴーストを調製した。なお、以下の操作は特記しない限り、全て4℃で行った。上記操作で得られた赤血球画分約20mlを400mlの氷冷水溶液（5mM CaCl2 含有、5mM Tris-HCl緩衝液、pH7.6）に撹絆しながら加えて赤血球を溶血させた。氷冷水溶液には、予め最終濃度が0.15mMになるようにPhenylmethylsulfonyl fluoryde (PMSF)を添加した。得られた溶血液を氷冷下で5分間放置した後、40,000×gで20分間遠心分離し、上清を除去後、半透明の上層沈殿に400mlのPMSF含有氷冷水溶液を添加して懸濁した。懸濁液を再度40,000×gで20分間遠心分離した。得られた上層沈殿に、2倍に希釈したBuffer A(12.5 mM MgCl2, 5 mM CaCl2, 15 mM EDTA および 0.15 mM PMSF 含有 75 mM Tris-HCl 緩衝液, pH7.5)を約100ml 加えた後、Potter型テフロンホモジナイザーでホモジナイズ（10往復）した。
【００１２】
得られた懸濁液を40,000×g で20分間遠心分離した後、沈澱に約70mlの Buffer A を加え再度ホモジナイス（20往復）した。懸濁液15ml 毎に20ml のショ糖溶液（40%ショ糖および 10 mM MgCl2 含有 10mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5）に重層し、700×gで15分間遠心分離した。次に上層および中層を採取し、40,000×g にて20分間の遠心分離を行った。得られた沈澱に約30ml の Buffer B （2mM EDTA 含有 20mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5）を加えて、ホモジナイズ（10往復）を行ったものをゴースト調製液とした。ゴースト調製液は -20 ℃のフリーザーで保存した。こうして、コイ血液70ml あたり、タンパク質量で約210mg のゴーストが得られた。
【００１３】
２．グリコホリンの調製
ヒトゴーストには、少なくとも6種類のグリコホリンが存在する。ヒトグリコホリンは赤血球膜のタンパク質量の約10%を占め、さらに赤血球膜に含まれる全シアル酸量の約80%を含有している。一方、コイゴ一スト中には１種類のグリコホリンが確認されている。従来、コイゴ一ストからグリコホリンを抽出する方法に、ヒトグリコホリンで通常用いられる抽出法であるLIS-フェノール法（特許文献１）に核酸除去操作を加えた方法を用いていた。しかしながら、この方法は操作が煩雑な割りにはグリコホリンの回収率が1.1%と低く、効率が悪かった。そこで、本発明者は回収率を上げるために、界面活性剤および陰イオン交換カラムを用いてゴーストからグリコホリンを分画する方法を開発した。
【００１４】
実施例１で得られたコイゴ一スト調製液を試料とした。Econo-Pac 10DG カラムはBIO-RAD社製、 DEAE Toyopearl 650M カラムはTOSOH CORPORATION 製、他の試薬は全て和光純薬工業社製の生化学用または特級を用いた。
中性糖の測定には、フェノール−硫酸法を用いた。反応後、490nm の吸光度を測定した。標準物質として、D-グルコ一スを用いた。
シアル酸の定量には、Jourdianらの過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法を用いた。反応後、630nm の吸光度を測定した。標準物質として、NANA(N−アセチルノイラミン酸）を用いた。
【００１５】
凍結保存していたコイゴースト調製液を流水で解凍した後、分取した1.5ml に等量の可溶化試薬（0.3M LIS(3,5-ジョードサリチル酸リチウム)含有 40mM Tris-HCl、pH7.5）を添加してゴ一ストを可溶化した。可溶化した試料溶液を160,000×g で 30分間遠心分離し、上清をEcono-Pacカラムに負荷して、過剰なLISの除去を行った。可溶化試料を付加した後、 50mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5 でカラムを洗浄した。Econo-Pacカラムからの溶出は自然落下で行い、溶出液は 1ml ずつ分画した。各画分中の中性糖をフェノール−硫酸法を用いて定量し、シアル酸は過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法を用いて定量した。画分中の中性糖とシアル酸に関するデータをまとめたグラフを図１に示した。Tube No.4 - 7 に中性糖と共にシアル酸を検出したので、これらの画分をグリコホリン画分とした。得られたグリコホリン画分毎に、2M NaCl と10%コール酸ナトリウム溶液を少量添加して、終濃度が130mM NaCl および0.4%コール酸ナトリウムになるように調整した。
【００１６】
予めリン酸塩緩衝液（130mM NaCl および0.4%コール酸ナトリウム含有50mM KPi、pH7.5）で平衡化させたDEAE Toyopearl 650M カラム(V0=5ml)に上記グリコホリン画分を負荷した。同緩衝液でカラムの洗浄を行って不純タンパク質を除去した後、同緩衝液と、同緩衝液に0.5M NaClおよび0.7%コール酸ナトリウムを含有させた溶液とを用いて、濃度勾配法によるグリコホリン溶出を行った。フラクションコレクターの条件として、流速10 ml/hr、分画量50 drops/tube(約1ml)、UVモニターRANGE=2を用いた。試料の負荷後は、流速を20 ml/hr に増加させた。予めチューブ内に残っている溶液（1.6m1）を排出した後、モニタリングを開始した。画分中の中性糖とシアル酸に関するデータをまとめたグラフを図２に示した。Tube No.36 - 45 に中性糖とシアル酸の両方が検出されたことから、この画分を集めてグリコホリン画分とした。
【００１７】
＜結果＞
ゴ一ストの可溶化溶液をそのままアフィニティーおよび陰イオン交換カラムに負荷した場合、過剰の可溶化剤の影響によりカラムへの吸着・溶出が不十分となった。さらに、用いた可溶化剤であるLISはリン酸塩等とキレートを形成して白色沈殿を生じるため、カラムヘ負荷する前の可溶化試料中の過剰なLIS除去が不可欠であった。Econo-Pacカラムは脱塩カラムであるが、LISの分子量が低いことを利用してLISの除去に応用した。
次に、溶出に用いる各種界面活性剤を検討した結果、非イオン系の界面活性剤では、アフィニティーおよび陰イオン交換カラムからのグリコホリン溶出が困難となり、結果的にイオン系界面活性剤であるコール酸ナトリウムを選択した。適応可能なアフィニティーカラムの検討も同時に行ったが、吸着部位であるN-グリコリル基に対応するハプテン糖および界面活性剤が見出せないため、負に荷電しているシアル酸の性質を利用した陰イオン交換カラムを用いた。併せて、NaClおよびコール酸ナトリウムによる濃度勾配溶出法により、グリコホリンを効率良く溶出する事が可能となった。
【００１８】
シアル酸を定量する際に、過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法ではNaClによる呈色阻害が起こるため、集めたグリコホリン画分をさらにEcono-Pac カラムで脱塩した後、シアル酸の定量を行って回収率を算出した。その結果、DEAE Toyopearl カラムに負荷前の可溶化試料中のシアル酸量は 88.6 μg となり、カラムから溶出後のグリコホリン画分中のシアル酸量は 91.8 μg であった。これにより、本試験でのシアル酸量から計算したグリコホリンの回収率は103%となり、従来技術（特許文献１）のLIS-フェノール法の回収率である1.1%と比較すると、94倍の回収率増加となった。
【００１９】
＜抗菌処理装置の製造＞
次に、本実施形態の抗菌剤（グリコホリン）を用いた抗菌処理装置の製造について説明する。
１．抗菌剤の固定
ゲル担体として、各種のものを使用できるが、好ましくはグリコホリンに含まれる約100〜250μm のホルミルセルロース（FORMYL CELLUFINE 生化学工業株式会社製）を用いる。ゲル担体とグリコホリンとの質量比を1,000:1〜100:1の範囲とする。グリコホリン中のアミノ基と、ゲル担体のホルミル基とを反応させることにより、ゲル担体とグリコホリンとを共有結合させた。
図３には、グリコホリン１をゲル担体４に結合させた抗菌ゲル１４の模式図を示した。グリコホリン１は、タンパク質部分２とオリゴ糖部分３とを有しており、ゲル担体４とグリコホリン１はタンパク質部分２により結合している。なお、説明の容易のために、ゲル担体４には、１個のグリコホリン１が結合した様子を示したが、計算上は多数個のグリコホリン１が結合しているはずである。
【００２０】
２．抗菌処理装置の作成
（１）次に、図４及び図５に示すように、グリコホリン１を結合させたゲル担体４をカラムに充填して抗菌処理装置（抗菌カラム）５を作成した。
抗菌処理装置５は、外筒体６と蓋体１３とを備えている。両体６，１３は、例えばポリプロピレンなどのプラスチックで製造されている。外筒体６は、内部が空洞の円筒状であり、下面中央には流出口９が突設されている。また、上端部分には全周にわたって、径方向外側に向かってフランジ７が張り出されている。蓋体１３の中央には、導入口８が突設されている。
外筒体６の内部には、抗菌ゲル１４と充填剤１０が充填されている。充填剤１０としては、例えばセライトまたはBio-Gel(Bio-Rad製)などを用いることができる。充填剤１０は、抗菌ゲル１４の嵩を増加させるために加えた充填材である。また、抗菌ゲル１４の流出を防止するために、外筒体６の上下両端には、メッシュ１２と不織布１１が装入されている。
水の抗菌処理を行うには、処理前の水を導入口８から導入して（矢印Ａ）、内部の抗菌ゲル１４と接触させた後、処理後の水を流出口９から流出させる（矢印Ｂ）。
【００２１】
（２）図６には、２段階の抗菌処理を行うための抗菌処理装置２０を示した。この抗菌処理装置２０において、上記抗菌処理装置５と同様の作用を示す構成については、同一の符号を付して説明を省略する。
抗菌処理装置２０には、下面側のスタンド２２と角形の外筒体２１が設けられている。外筒体２１の内部空間は、仕切板２３によって二つに区切られている。仕切板２２の上端は、外筒体２１の上面２４からは離間しており、水が通過できるようになっている。
【００２２】
このようにして構成された抗菌処理装置２０を用いて、水の抗菌処理を行うには、処理前の水を図示左下端の導入口８から導入すると（矢印Ａ）、左側の内部空間を通って内部の抗菌ゲル１４と接触し（矢印Ｘ）、仕切板２２と上面２４との空隙を通過した後（矢印Ｙ）、再び図示右側の内部空間の抗菌ゲル１４と接触する。次いで、処理後の水が右下端の流出口９から流出する（矢印Ｂ）。
抗菌処理装置２０では、抗菌処理装置５に比べると、水を多くの抗菌ゲル１４と接触させられるので、抗菌効果をさらに高めることができる。また、コンパクトな形状で多くの抗菌ゲル１４を充填できるので、複数の抗菌処理装置５を並べて使用する場合に比べると、嵩張らないですむ。
【００２３】
＜抗菌処理装置の使用形態＞
図７〜図９には、抗菌処理装置の使用形態例を示した。
図７では、抗菌処理装置５を水道コック３０と連結している。水道コック３０から水を流すことにより、即座に抗菌処理された水を得られる。このような使用形態は、一般家庭に加えて、病院・高齢者施設・食堂などのように特に衛生環境に気を配る必要がある施設に良好に使用できる。
図８には、養殖場の生け簀３１に抗菌処理装置５を使用した例を示した。生け簀３１の内部に貯留された水Ｗは、循環ポンプ３２を用いて循環されている。循環ポンプ３２の前後には、水Ｗを流すためのパイプ３３，３４が連結されている。循環ポンプ３２の駆動によって、水Ｗは図中の矢印Ｔ方向に流れる。抗菌処理装置５は、出口側のパイプ３４の端部に連結されている。このようにして使用すれば、生け簀３１中の水Ｗの抗菌処理を行いつつ循環させられる。
【００２４】
図９には、廃水処理用の施設概要を示した。この施設では廃水は、上流側の処理槽４０と、下流側の処理槽４１との２段階で処理される。両処理槽４０，４１の内部には、活性汚泥が投入されている。両処理槽４０，４１の間には、廃水Ｗを処理槽４０から処理槽４１に移動させるポンプ４２が設けられている。ポンプ４２には、廃水Ｗの流出入を行うパイプ４３，４４が接続されている。出口側のパイプ４４の端部には、抗菌処理装置４５が設けられている。抗菌処理装置４５は、上下両方向に開放する角筒状とされており、下面側には抗菌ゲル１４が層状かつ外部に流出しない状態で設置されている。このような構造として、例えば目の細かい網の上面に抗菌処理装置５と同様の構成（つまり、メッシュ１２と不織布１１によって、抗菌ゲル１４を挟んだ構成）を備えたものが提供できる。
【００２５】
廃水Ｗは、上流側の処理槽４０に流し込まれた後（矢印Ｃ）、ポンプ４２によってパイプ４３，４４を通過し（矢印Ｄ）、抗菌処理装置４５に流し込まれる。ここで、抗菌ゲル１４と接触した後、抗菌処理装置４５の下面側から処理槽４１に至る（矢印Ｅ）。このようにして使用すれば、従来の活性汚泥による処理に加えて、廃水Ｗの抗菌処理を行える。
このように、本実施形態によれば、コイ血液から多量のグリコホリン（抗菌剤）を得ることができた。グリコホリンは、魚類の薬剤、抗菌処理装置５，２０，４５に応用できた。
【符号の説明】
【００２６】
１…グリコホリン（抗菌剤）
４…ゲル担体（担体）
５，２０…抗菌処理装置（抗菌カラム）
６…外筒体
８…導入口
９…流出口
３０…水道コック
３２…循環ポンプ
４５…抗菌処理装置
【技術分野】
【０００１】
本発明は、コイ由来抗菌剤の製造方法及び、その抗菌剤を用いた抗菌処理装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトグリコホリンは、病原性ウィルスの受容体、レクチンへの接着能など生体防御機能や血液型決定基などの種々の生理活性を有していると云われている。本発明者は、魚類赤血球膜にもグリコホリン様の物質が存在すれば、ヒトグリコホリンと同様の生理機能を持つ可能性があり、魚病の防止や抗生物質に頼らない新規な薬物の開発にもつながるのではないかと考え、コイ血液から数個の糖類からなる抗菌剤を得ることに成功した（特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２００５−９７１３０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、上記特許文献に開示された方法では、得られる抗菌剤の量が極めて少ないために、応用することが困難であった。
本発明は、上記した事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、コイ血液から多量の抗菌剤を得る方法、及びその抗菌剤を用いた抗菌処理装置などを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者は、鋭意検討の結果、コイ赤血球膜を可溶化した後に、陰イオン交換クロマトグラフィーで処理することにより、従来の方法に比べて多量の抗菌剤を得られること、及びこの抗菌剤を抗菌処理装置に応用すると良好な抗菌作用を示すことを見出し、基本的には本発明を完成するに至った。
こうして、本願発明に係る抗菌剤の製造方法は、コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することを特徴とする。このとき、界面活性剤が、コール酸ナトリウムであることが好ましい。また、本願発明に係る魚類用薬剤は、上記製造方法によって得られた抗菌剤であることを特徴とする。なお、抗菌剤として用いる場合には、その他の添加物（例えば増量剤、防腐剤など）を同時に用いることもできる。
【０００６】
本願発明に係る抗菌処理装置は、コイ赤血球膜から得られた抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備えたものであって、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられていることを特徴とする。このとき、抗菌剤は、上記製造方法によって得られたものであることが好ましい。
本発明の抗菌剤は、糖部分に抗菌活性が存在するので、糖部分ではなくタンパク質部分と担体とを結合させる方法が好ましく使用できる。タンパク質を固定化する方法としては、当業者に周知の方法を用いることができる。そのような方法として、例えば水溶性カップリング試薬（EDCなど）を用いる方法、アミノ−ホルミル、チオール−マレイミド、アルデヒド−アミンなどの組み合わせを用いる方法が例示されるが、これらの方法には限定されない。通常、アミノ−ホルミルによるカップリング法を用い、アルブミンやグロブリン(血清中の抗体)などのタンパク質の結合に用いられる。
上記抗菌処理装置は、水道コックに連結される抗菌カラム、循環ポンプによって循環される水に用いる抗菌カラム、または排水処理用に用いるものであることが好ましい。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、コイ血液から多量の抗菌剤を得ることができる。この抗菌剤は、魚類の薬剤、抗菌処理装置に応用できる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】Econo-Pac 10DG カラムを用いてクロマトグラフィーを行い、コイ赤血球膜から糖タンパクを精製したときの結果を示すグラフである。
【図２】DEAE Toyopearl 650M カラムを用いてクロマトグラフィーを行い、コイ赤血球膜から糖タンパクを精製したときの結果を示すグラフである。
【図３】抗菌ゲルの構造を示す模式図である。
【図４】抗菌処理装置の斜視図である。
【図５】抗菌処理装置の側断面図である。
【図６】抗菌処理装置の側断面図である。
【図７】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【図８】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【図９】抗菌処理装置の使用態様を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
次に、本発明の実施形態について詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は、これらの実施形態によって限定されるものではなく、発明の要旨を変更することなく様々な形態で実施することができる。また、本発明の技術的範囲は、均等の範囲にまで及ぶものである。
＜抗菌剤の製造＞
１．コイ赤血球膜（ゴースト）の調製
供試魚として平均体重2,000〜3,000 g のコイ（Cyprinus carpio）を用いた。フィコール・パック・プラス（Ficoll-Paque PLUS）はファルマシア製のものを、他の試薬は全て和光純薬工業社製の生化学用または特級を用いた。
タンパク質の定量には、Lowry法を用いた。標準物質として、ウシ血清アルブミンを用いた。
【００１０】
まず、次のようにして、赤血球を調製した。500Lのパンライト水槽に常時飼育しているコイを用いて血液を採取した。コイ一尾をパンライト水槽から取り上げ、MS-222（m-aminobenzonic acid ethylester methanesulfonate）で薬浴麻酔した後、背部動脈からへパリン溶液（974.6 units/ml）で湿らせたシリンジを用いて血液を採取した。コイ1尾あたり平均で約20mlの血液が得られ、3〜4尾より合計70〜75m1の血液を採取した。血液採取後のコイは水槽に戻して蘇生させた。得られた血液を直ちに魚類リンゲル液（145 mM NaCl, 5 mM CaCl2, 1mM MgSO4, 4 mM KCl, 5 mM Glucose含有, 10 mM Hepes, pH7.9）で等倍に希釈した後、Ficoll-Paque PLUS に重層し、400×gで30分間、室温で遠心分離した。上層と中層を駒込ピペットで除去し、下層の赤血球のみを採取した。得られた赤血球を魚類リンゲル液に再度懸濁した後、700×gで5分間遠心分離を行い、赤血球を洗浄した。この操作を3回繰り返した。
【００１１】
次に、ゴーストを調製した。なお、以下の操作は特記しない限り、全て4℃で行った。上記操作で得られた赤血球画分約20mlを400mlの氷冷水溶液（5mM CaCl2 含有、5mM Tris-HCl緩衝液、pH7.6）に撹絆しながら加えて赤血球を溶血させた。氷冷水溶液には、予め最終濃度が0.15mMになるようにPhenylmethylsulfonyl fluoryde (PMSF)を添加した。得られた溶血液を氷冷下で5分間放置した後、40,000×gで20分間遠心分離し、上清を除去後、半透明の上層沈殿に400mlのPMSF含有氷冷水溶液を添加して懸濁した。懸濁液を再度40,000×gで20分間遠心分離した。得られた上層沈殿に、2倍に希釈したBuffer A(12.5 mM MgCl2, 5 mM CaCl2, 15 mM EDTA および 0.15 mM PMSF 含有 75 mM Tris-HCl 緩衝液, pH7.5)を約100ml 加えた後、Potter型テフロンホモジナイザーでホモジナイズ（10往復）した。
【００１２】
得られた懸濁液を40,000×g で20分間遠心分離した後、沈澱に約70mlの Buffer A を加え再度ホモジナイス（20往復）した。懸濁液15ml 毎に20ml のショ糖溶液（40%ショ糖および 10 mM MgCl2 含有 10mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5）に重層し、700×gで15分間遠心分離した。次に上層および中層を採取し、40,000×g にて20分間の遠心分離を行った。得られた沈澱に約30ml の Buffer B （2mM EDTA 含有 20mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5）を加えて、ホモジナイズ（10往復）を行ったものをゴースト調製液とした。ゴースト調製液は -20 ℃のフリーザーで保存した。こうして、コイ血液70ml あたり、タンパク質量で約210mg のゴーストが得られた。
【００１３】
２．グリコホリンの調製
ヒトゴーストには、少なくとも6種類のグリコホリンが存在する。ヒトグリコホリンは赤血球膜のタンパク質量の約10%を占め、さらに赤血球膜に含まれる全シアル酸量の約80%を含有している。一方、コイゴ一スト中には１種類のグリコホリンが確認されている。従来、コイゴ一ストからグリコホリンを抽出する方法に、ヒトグリコホリンで通常用いられる抽出法であるLIS-フェノール法（特許文献１）に核酸除去操作を加えた方法を用いていた。しかしながら、この方法は操作が煩雑な割りにはグリコホリンの回収率が1.1%と低く、効率が悪かった。そこで、本発明者は回収率を上げるために、界面活性剤および陰イオン交換カラムを用いてゴーストからグリコホリンを分画する方法を開発した。
【００１４】
実施例１で得られたコイゴ一スト調製液を試料とした。Econo-Pac 10DG カラムはBIO-RAD社製、 DEAE Toyopearl 650M カラムはTOSOH CORPORATION 製、他の試薬は全て和光純薬工業社製の生化学用または特級を用いた。
中性糖の測定には、フェノール−硫酸法を用いた。反応後、490nm の吸光度を測定した。標準物質として、D-グルコ一スを用いた。
シアル酸の定量には、Jourdianらの過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法を用いた。反応後、630nm の吸光度を測定した。標準物質として、NANA(N−アセチルノイラミン酸）を用いた。
【００１５】
凍結保存していたコイゴースト調製液を流水で解凍した後、分取した1.5ml に等量の可溶化試薬（0.3M LIS(3,5-ジョードサリチル酸リチウム)含有 40mM Tris-HCl、pH7.5）を添加してゴ一ストを可溶化した。可溶化した試料溶液を160,000×g で 30分間遠心分離し、上清をEcono-Pacカラムに負荷して、過剰なLISの除去を行った。可溶化試料を付加した後、 50mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5 でカラムを洗浄した。Econo-Pacカラムからの溶出は自然落下で行い、溶出液は 1ml ずつ分画した。各画分中の中性糖をフェノール−硫酸法を用いて定量し、シアル酸は過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法を用いて定量した。画分中の中性糖とシアル酸に関するデータをまとめたグラフを図１に示した。Tube No.4 - 7 に中性糖と共にシアル酸を検出したので、これらの画分をグリコホリン画分とした。得られたグリコホリン画分毎に、2M NaCl と10%コール酸ナトリウム溶液を少量添加して、終濃度が130mM NaCl および0.4%コール酸ナトリウムになるように調整した。
【００１６】
予めリン酸塩緩衝液（130mM NaCl および0.4%コール酸ナトリウム含有50mM KPi、pH7.5）で平衡化させたDEAE Toyopearl 650M カラム(V0=5ml)に上記グリコホリン画分を負荷した。同緩衝液でカラムの洗浄を行って不純タンパク質を除去した後、同緩衝液と、同緩衝液に0.5M NaClおよび0.7%コール酸ナトリウムを含有させた溶液とを用いて、濃度勾配法によるグリコホリン溶出を行った。フラクションコレクターの条件として、流速10 ml/hr、分画量50 drops/tube(約1ml)、UVモニターRANGE=2を用いた。試料の負荷後は、流速を20 ml/hr に増加させた。予めチューブ内に残っている溶液（1.6m1）を排出した後、モニタリングを開始した。画分中の中性糖とシアル酸に関するデータをまとめたグラフを図２に示した。Tube No.36 - 45 に中性糖とシアル酸の両方が検出されたことから、この画分を集めてグリコホリン画分とした。
【００１７】
＜結果＞
ゴ一ストの可溶化溶液をそのままアフィニティーおよび陰イオン交換カラムに負荷した場合、過剰の可溶化剤の影響によりカラムへの吸着・溶出が不十分となった。さらに、用いた可溶化剤であるLISはリン酸塩等とキレートを形成して白色沈殿を生じるため、カラムヘ負荷する前の可溶化試料中の過剰なLIS除去が不可欠であった。Econo-Pacカラムは脱塩カラムであるが、LISの分子量が低いことを利用してLISの除去に応用した。
次に、溶出に用いる各種界面活性剤を検討した結果、非イオン系の界面活性剤では、アフィニティーおよび陰イオン交換カラムからのグリコホリン溶出が困難となり、結果的にイオン系界面活性剤であるコール酸ナトリウムを選択した。適応可能なアフィニティーカラムの検討も同時に行ったが、吸着部位であるN-グリコリル基に対応するハプテン糖および界面活性剤が見出せないため、負に荷電しているシアル酸の性質を利用した陰イオン交換カラムを用いた。併せて、NaClおよびコール酸ナトリウムによる濃度勾配溶出法により、グリコホリンを効率良く溶出する事が可能となった。
【００１８】
シアル酸を定量する際に、過ヨウ素酸−レソルシノ一ル法ではNaClによる呈色阻害が起こるため、集めたグリコホリン画分をさらにEcono-Pac カラムで脱塩した後、シアル酸の定量を行って回収率を算出した。その結果、DEAE Toyopearl カラムに負荷前の可溶化試料中のシアル酸量は 88.6 μg となり、カラムから溶出後のグリコホリン画分中のシアル酸量は 91.8 μg であった。これにより、本試験でのシアル酸量から計算したグリコホリンの回収率は103%となり、従来技術（特許文献１）のLIS-フェノール法の回収率である1.1%と比較すると、94倍の回収率増加となった。
【００１９】
＜抗菌処理装置の製造＞
次に、本実施形態の抗菌剤（グリコホリン）を用いた抗菌処理装置の製造について説明する。
１．抗菌剤の固定
ゲル担体として、各種のものを使用できるが、好ましくはグリコホリンに含まれる約100〜250μm のホルミルセルロース（FORMYL CELLUFINE 生化学工業株式会社製）を用いる。ゲル担体とグリコホリンとの質量比を1,000:1〜100:1の範囲とする。グリコホリン中のアミノ基と、ゲル担体のホルミル基とを反応させることにより、ゲル担体とグリコホリンとを共有結合させた。
図３には、グリコホリン１をゲル担体４に結合させた抗菌ゲル１４の模式図を示した。グリコホリン１は、タンパク質部分２とオリゴ糖部分３とを有しており、ゲル担体４とグリコホリン１はタンパク質部分２により結合している。なお、説明の容易のために、ゲル担体４には、１個のグリコホリン１が結合した様子を示したが、計算上は多数個のグリコホリン１が結合しているはずである。
【００２０】
２．抗菌処理装置の作成
（１）次に、図４及び図５に示すように、グリコホリン１を結合させたゲル担体４をカラムに充填して抗菌処理装置（抗菌カラム）５を作成した。
抗菌処理装置５は、外筒体６と蓋体１３とを備えている。両体６，１３は、例えばポリプロピレンなどのプラスチックで製造されている。外筒体６は、内部が空洞の円筒状であり、下面中央には流出口９が突設されている。また、上端部分には全周にわたって、径方向外側に向かってフランジ７が張り出されている。蓋体１３の中央には、導入口８が突設されている。
外筒体６の内部には、抗菌ゲル１４と充填剤１０が充填されている。充填剤１０としては、例えばセライトまたはBio-Gel(Bio-Rad製)などを用いることができる。充填剤１０は、抗菌ゲル１４の嵩を増加させるために加えた充填材である。また、抗菌ゲル１４の流出を防止するために、外筒体６の上下両端には、メッシュ１２と不織布１１が装入されている。
水の抗菌処理を行うには、処理前の水を導入口８から導入して（矢印Ａ）、内部の抗菌ゲル１４と接触させた後、処理後の水を流出口９から流出させる（矢印Ｂ）。
【００２１】
（２）図６には、２段階の抗菌処理を行うための抗菌処理装置２０を示した。この抗菌処理装置２０において、上記抗菌処理装置５と同様の作用を示す構成については、同一の符号を付して説明を省略する。
抗菌処理装置２０には、下面側のスタンド２２と角形の外筒体２１が設けられている。外筒体２１の内部空間は、仕切板２３によって二つに区切られている。仕切板２２の上端は、外筒体２１の上面２４からは離間しており、水が通過できるようになっている。
【００２２】
このようにして構成された抗菌処理装置２０を用いて、水の抗菌処理を行うには、処理前の水を図示左下端の導入口８から導入すると（矢印Ａ）、左側の内部空間を通って内部の抗菌ゲル１４と接触し（矢印Ｘ）、仕切板２２と上面２４との空隙を通過した後（矢印Ｙ）、再び図示右側の内部空間の抗菌ゲル１４と接触する。次いで、処理後の水が右下端の流出口９から流出する（矢印Ｂ）。
抗菌処理装置２０では、抗菌処理装置５に比べると、水を多くの抗菌ゲル１４と接触させられるので、抗菌効果をさらに高めることができる。また、コンパクトな形状で多くの抗菌ゲル１４を充填できるので、複数の抗菌処理装置５を並べて使用する場合に比べると、嵩張らないですむ。
【００２３】
＜抗菌処理装置の使用形態＞
図７〜図９には、抗菌処理装置の使用形態例を示した。
図７では、抗菌処理装置５を水道コック３０と連結している。水道コック３０から水を流すことにより、即座に抗菌処理された水を得られる。このような使用形態は、一般家庭に加えて、病院・高齢者施設・食堂などのように特に衛生環境に気を配る必要がある施設に良好に使用できる。
図８には、養殖場の生け簀３１に抗菌処理装置５を使用した例を示した。生け簀３１の内部に貯留された水Ｗは、循環ポンプ３２を用いて循環されている。循環ポンプ３２の前後には、水Ｗを流すためのパイプ３３，３４が連結されている。循環ポンプ３２の駆動によって、水Ｗは図中の矢印Ｔ方向に流れる。抗菌処理装置５は、出口側のパイプ３４の端部に連結されている。このようにして使用すれば、生け簀３１中の水Ｗの抗菌処理を行いつつ循環させられる。
【００２４】
図９には、廃水処理用の施設概要を示した。この施設では廃水は、上流側の処理槽４０と、下流側の処理槽４１との２段階で処理される。両処理槽４０，４１の内部には、活性汚泥が投入されている。両処理槽４０，４１の間には、廃水Ｗを処理槽４０から処理槽４１に移動させるポンプ４２が設けられている。ポンプ４２には、廃水Ｗの流出入を行うパイプ４３，４４が接続されている。出口側のパイプ４４の端部には、抗菌処理装置４５が設けられている。抗菌処理装置４５は、上下両方向に開放する角筒状とされており、下面側には抗菌ゲル１４が層状かつ外部に流出しない状態で設置されている。このような構造として、例えば目の細かい網の上面に抗菌処理装置５と同様の構成（つまり、メッシュ１２と不織布１１によって、抗菌ゲル１４を挟んだ構成）を備えたものが提供できる。
【００２５】
廃水Ｗは、上流側の処理槽４０に流し込まれた後（矢印Ｃ）、ポンプ４２によってパイプ４３，４４を通過し（矢印Ｄ）、抗菌処理装置４５に流し込まれる。ここで、抗菌ゲル１４と接触した後、抗菌処理装置４５の下面側から処理槽４１に至る（矢印Ｅ）。このようにして使用すれば、従来の活性汚泥による処理に加えて、廃水Ｗの抗菌処理を行える。
このように、本実施形態によれば、コイ血液から多量のグリコホリン（抗菌剤）を得ることができた。グリコホリンは、魚類の薬剤、抗菌処理装置５，２０，４５に応用できた。
【符号の説明】
【００２６】
１…グリコホリン（抗菌剤）
４…ゲル担体（担体）
５，２０…抗菌処理装置（抗菌カラム）
６…外筒体
８…導入口
９…流出口
３０…水道コック
３２…循環ポンプ
４５…抗菌処理装置
【特許請求の範囲】
【請求項１】
コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することを特徴とする抗菌剤の製造方法。
【請求項２】
前記界面活性剤が、コール酸ナトリウムであることを特徴とする請求項１に記載の抗菌剤の製造方法。
【請求項３】
請求項１または２に記載の製造方法によって製造された抗菌剤を含有する魚類用薬剤。
【請求項４】
請求項１または２に記載の製造方法によって製造された抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備えたものであって、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられていることを特徴とする抗菌処理装置。
【請求項５】
前記抗菌処理装置は、水道コックに連結される抗菌カラム、循環ポンプによって循環される水に用いる抗菌カラム、または排水処理用に用いるものであることを特徴とする請求項４に記載の抗菌処理装置。
【請求項１】
コイ血液から赤血球を単離し、この赤血球から膜画分を精製した後に、前記膜画分にリチウム塩を加えて可溶化し、遊離したグリコホリンを界面活性剤の存在下で陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画することを特徴とする抗菌剤の製造方法。
【請求項２】
前記界面活性剤が、コール酸ナトリウムであることを特徴とする請求項１に記載の抗菌剤の製造方法。
【請求項３】
請求項１または２に記載の製造方法によって製造された抗菌剤を含有する魚類用薬剤。
【請求項４】
請求項１または２に記載の製造方法によって製造された抗菌剤が固定された担体と、この担体を含む外筒体とを備えたものであって、前記外筒体には、処理前の水を導入して前記担体に接触させるための導入口と処理後の水を流出させる流出口とが設けられていることを特徴とする抗菌処理装置。
【請求項５】
前記抗菌処理装置は、水道コックに連結される抗菌カラム、循環ポンプによって循環される水に用いる抗菌カラム、または排水処理用に用いるものであることを特徴とする請求項４に記載の抗菌処理装置。
【図１】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【公開番号】特開２０１０−２４８０７５（Ｐ２０１０−２４８０７５Ａ）
【公開日】平成２２年１１月４日（２０１０．１１．４）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００９−９５７４５（Ｐ２００９−９５７４５）
【出願日】平成２１年４月１０日（２００９．４．１０）
【公序良俗違反の表示】
（特許庁注：以下のものは登録商標）
１．テフロン
【出願人】（３０４０２６６９６）国立大学法人三重大学 (270)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２２年１１月４日（２０１０．１１．４）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年４月１０日（２００９．４．１０）
【公序良俗違反の表示】
（特許庁注：以下のものは登録商標）
１．テフロン
【出願人】（３０４０２６６９６）国立大学法人三重大学 (270)
【Ｆターム（参考）】
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