モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、抗癌剤及び健康食品
鹿茸から抽出したモノアセチルジアシルグリセロール誘導体の免疫調節剤としての用途が開示される。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する医薬品及び健康食品が開示される。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体は免疫増進を含有する免疫調節に顕著な効果を果す。ハムスターに癌細胞系を注入して癌の発生を誘導した場合、免疫増進に重要な要素であるリンパ球、単核球及び樹状突起細胞を活性化させることにより癌の発生が遅延され、免疫細胞の癌細胞に対する毒性活性を増進させて癌細胞のアポトーシスが誘導される。また、敗血性ショックが誘導されたマウスの場合、免疫機能の調節及びアポトーシスの抑制効果により、１２０時間以後にも１００％の生存率を見せる。したがって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、免疫調節剤、敗血症治療剤、癌治療剤及び免疫調節又は癌予防のための健康食品用として効果的に使用され得る。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は鹿茸から抽出されたモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、医薬品及び健康食品に関する。
【背景技術】
【０００２】
鹿茸(ラテン語：Cervi parvum cornu)は、鹿科の動物から採取して乾燥した石灰化していない角である。韓国の伝統東洋医学では、人参と共に鹿茸が高く評価される各種薬効のために広く使用されている。鹿茸の伝統的な使用のための鹿科は、マンシュウジカ(Cervus nippon Temminick var.mantchuricus Swinhoe、 以下、C.N.と称する。)とロクジョウ(マンシュウアカジカ：Cervus elaphus L.）とに限定される。鹿茸は、多くの薬効を持つものと評価されている。鹿茸は、強壮剤、生長及び発育促進、造血、神経衰弱治療、心不全症治療、一般的な五臓六腑の機能向上に多様な効能があると知られている(韓国の伝統医学書籍である東医宝鑑を参照)。鹿茸の効果について伝統医学の他の書籍にも、心筋機能、疲労回復効果、抵抗力増進を含む強壮効果、滋養効果、活力増強効果が報告されている。鹿茸の神秘な化学的構成に関する研究が多様になされてきた。その結果、遊離アミノ酸、微量(金属)元素、六炭糖、五炭糖、へキソサミン、ウロン酸、シアル酸、ムコ多糖類(ヒアルロン酸、コンドロイチンＡ)、多様な脂肪酸、プロスタグランジン類のような活性成分を含有することが確認されている。また、糖脂質、リン脂質、コレステロール、ヒポキサンチン、コレスト−５−エン−３β、７α−ジオール、コレステロールエステル、ポリアミンが鹿茸抽出物から検出されたことが報告されている。また、エストロン及びエストラジオールレセプターの存在が報告されている(ＮＩＨコリアリポート、Vol.22, p359, 1985; Korean Biochem.J, Vol.9, No.3, p153, 1976; Korean Biochem.J, Vol.9, NO.4; p215, 1976;Korean Biochem.J, Vol.10, NO.1, p1, 1977;Shoykugaku Zasshi, 43(2), p173, 1989)。
【０００３】
免疫は、各種病原体から生体を保護する防御メカニズムである。免疫不全は、免疫系システムの成分の欠陥により、免疫システムが多様な抗原に反応出来ないことである。免疫不全は、先天性免疫不全(congenital or primary immunodeficiency)と、後天性免疫不全(acquired or secondary immunodeficiency)とに大別される。先天性免疫不全の場合、Ｂ細胞又はＴ細胞が先天的に存在しないため、遺伝子治療、抗体注入及び骨髄移植のみにより治療できる。一方後天性免疫不全の場合、全ての免疫関連要素は先天的に存在するが、免疫反応に障害があるため、免疫要素の機能を増進させることにより改善できる。近年、関節炎、アトピー、認知症及び敗血症のような自己免疫疾患の発現が増加している。自己免疫疾患は免疫機能の過度な増加に起因する。自己免疫疾患の治療に免疫抑制剤が利用されているが、免疫抑制剤は免疫性をしばしば減少させる。免疫メカニズムの説明に基づき、免疫性調節のための免疫調節物質の開発に対する多様な試みが行われている。このような試みの目的は、非特異的に免疫細胞を刺激する免疫調節物質により免疫機能の増進又は抑制をコントロールすることにより、病原体に対抗する生体の防御力を増加させて副作用を最小化することにある。免疫調節物質は、癌、敗血症、退行性関節炎、感染症、認知症、老化、糖尿、貧血、皮膚病、喘息、アトピー、ストレス、神経衰弱、全身疲労、慢性疲労症候群及び骨粗しょう症のような生体の大分部の疾病を治療できる。現在、免疫調節物質としては、化学合成物質、微生物組成物及び生物製剤などが利用されている。前述した免疫調節物質の大部分は、片方の効果(免疫増進又は抑制のどちらか)のみを果たすため、使用が制限的である。よって、免疫調節物質は、副作用を誘発したり毒性を持ちうる。前述した問題を解決するために、免疫調節物質の開発をするために、無毒の食品素材、天然物質から抽出した有効成分及び伝統的な漢方薬を主なターゲットとして、薬剤としての効果を検査する実験が進行中にある。しかしながら、これらの免疫調節物質は、相変らず免疫増進又は免疫抑制のどちらか一つの側面のみを持っている。
【０００４】
韓国における第１位の死亡原因である癌は毎年増加している。癌治療のための化学療法又は放射線療法は、癌細胞だけでなく一般の正常骨髄細胞、特に免疫及び造血を調節する造血細胞(hematopoietic cell)までも破壊させることにより、免疫システム及び造血器官の機能不全を引き起こす(Korean J. BRM., 1, p23, 1993;Korean J. BRM., 4、p47, 1994; Crit Rev Oncol Hematol. 1, p227, 1984)。敗血症は、重篤な全身への感染によって過度な全身炎症反応に達する、致死率４５％を越える深刻な疾病である。大部分の場合、感染した宿主がグラム陰性菌の内毒素(endotoxin)に対して過度に反応する時に発生する。しかし、敗血性ショック治療剤としては、抗生物質、ステロイド製剤又はジグリス(Xigris、イーライリリー社製)が使用されているが、このような抗生物質、ステロイド製剤又はジグリスが敗血症に対して効果が大きくないため、敗血性ショックによる致死率は依然として高い。
【０００５】
よって、本発明者は、民間療法として優れた薬理効能を持つ C.N.鹿茸の多様な成分を分離し、さらにこれらのC.N.鹿茸の有効成分の一つであるモノアセチルジアシルグリセロールが生体内で重要な免疫調節作用をすることを観察した。免疫調節効果の結果として、C.N.鹿茸が生体内で毒性を表さず、敗血性ショック治療及び抗癌作用剤として使用される可能性がある。また、本発明者は、本発明のモノアセチルジアシルグリセロールが、安全な免疫増進剤、免疫調節剤、敗血性ショック治療剤及び抗癌剤として使用できることを確認することで、本発明を完成した。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
従って、本発明の目的は、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、敗血性ショック治療剤、抗癌剤及び健康食品を提供することにある。健康食品は、免疫調節、敗血症、癌の予防及び治療のためのものである。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、免疫増進を含む免疫調節に顕著な効果を果す。ハムスターに癌細胞系を注入して癌の発生を誘導した場合、免疫増進に重要な要素であるリンパ球、単核球及び樹状突起細胞を活性化させることにより癌の進行が遅延され、免疫細胞の癌細胞に対する毒性活性を増進させて癌細胞のアポトーシスが誘導される。また、敗血性ショックが誘導されたマウスの場合、免疫機能の調節及びアポトーシスの抑制効果により、１２０時間以後にも１００％の生存率を見せる。したがって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、免疫調節剤、敗血症治療剤、癌治療剤及び免疫調節又は癌予防のための健康食品用として効果的に使用され得る。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記目的を達成するために、本発明は、下記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤を提供する。
【化１】
ここで、Ｒ１／Ｒ２は、９−オクタデセノイル(オレオイル)／ヘキサデカノイル(パルミトイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９−オクタデセノイル(オレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２−オクタデカジエノイル(リノレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル(リノレノイル)又はヘキサデカノイル(パルミトイル)／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル(アラキドノイル)である。
【０００９】
ここで、次の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が好ましい。
【化２】
また、本発明は、前記化学式１のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有するＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤を提供する。また、本発明は、前記化学式１のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節用又は抗癌用の健康食品を提供する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１１】
本発明は、上記の化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、ＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤を提供する。本発明の化学式１で表される化合物は、下記５つの化合物の何れか１つである。
【００１２】
１)１−オレオイル−２−２パルミトイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝９−オクタデセノイル／ヘキサデカノイル；以下、「化合物１」と称する。)
【００１３】
２)１−パルミトイル−２−オレオイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９−オクタデセノイル；以下、「化合物２」と称する。)
【００１４】
３)１−パルミトイル−２−リノレオイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９,１２−オクタデカジエノイル；以下、「化合物３」と称する。)
【００１５】
４)１−パルミトイル−２−リノレノイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル；以下、「化合物４」と称する。)
【００１６】
５)１−パルミトイル−２−アラキドノイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル；以下、「化合物５」と称する。)
【００１７】
上記の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体の何れも使用可能であるが、特に化合物３が好ましい。本発明の化合物は、 C.N.鹿茸から抽出されたり、或いは、公知の有機合成法により製造される。抽出方法は次のような段階を有する。特に、C.N.鹿茸のクロロホルム抽出物は、最初にヘキサンによりC.N.鹿茸を抽出し、ヘキサン抽出の残余をクロロホルムにより抽出して得られる。この抽出過程で使用されたヘキサン及びクロロホルムの量は、C.N.鹿茸が十分浸る程度である。一般的には、C.N.鹿茸１ｋｇに対しヘキサン及びクロロホルムを各々４〜５リットルの割合で使用される。このような抽出過程により得られたC.N.鹿茸のクロロホルム抽出物が、一連のシリカゲルコラムクロマトグラフィー及びＴＬＣ(薄膜クロマトグラフィー)により分画化されて精製される。後続抽出段階の溶離液はクロロホルム／メタノール、ヘキサン／エチルアセテートから選択される。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を化学的に合成するためには、例えば、グリセロールとパルミチン酸との反応により生成された生成物から１−パルミトイルグリセリンを分離する。目的とするモノアセチルジアシルグリセロールは、酢酸、リノール酸などのようなカルボン酸化合物で、１−パルミトイルグリセリンをエステル化させることにより合成することができ、必要に応じて精製することができる。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の他の合成方法は、ホスファチジルコリンのアセトリシス(acetolysis)である。
【００１８】
本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール化合物は、免疫調節剤として有用である。免疫調節は、異常に低下した免疫力の増進、或いは、異常に増加した免疫力の均衡維持を含む。よって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール化合物は、低下した免疫システム及び癌による各種疾患の予防及び治療だけでなく、自己免疫反応による関節炎、アトピー、認知症及び敗血症のような自己免疫疾患の抑制、予防及び治療効能を持つ。
【００１９】
免疫機能の調節における重要なことは、免疫を担当するＴ細胞の増加でなく、これらのＴ細胞の活性化の程度、Ｔ４とＴ８細胞の比率及びＴ４とＴ８細胞から分泌されたサイトカインの種類である。本発明者らは、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体の免疫調節効果を調べるために、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体をＴ−４リンパ球及びＴ−８リンパ球に処理した。その結果、これらの細胞からサイトカインの一種であるＩＬ−２の分泌が増加されることを確認した(図１参照)。また、多量のサイトカインを一度に測定できるバイオ−プレックス(Bio−plex)を用いて本発明の化合物３で細胞を処理した後、Ｔ細胞でのサイトカインの分泌を観察した。その結果、対照群に比べて化合物３で処理した群でＩＬ−２、ＩＬ−４及びＩＬ−５の分泌が大幅に多かった(図２参照)。最も多く増加するサイトカインであるＩＬ−４は、抗炎症サイトカインと呼ばれる多機能サイトカインであって、Ｔ４細胞から分化したＴｈ２から分泌される。Ｔ４がＴｈ１に分化されるのを抑制することで、ＩＬ−４は抗癌効果及び免疫反応の調節に非常に重要な役割を果し、自己免疫反応による細胞損傷も抑制できる(Annu. Rev. Immunol. 1999. 17:701〜738)。本発明の化合物は、ＩＬ−２の分泌刺激による免疫増強と共に、ＩＬ−４の分泌刺激による免疫調節効果を持つ。また、本発明の化合物は、Ｔ４と細胞毒性免疫細胞(cytotoxic immune cell)であるＴ８細胞とを増加及び活性化させ、Ｔ４細胞とＴ８細胞との比を正常に維持できる。よって、免疫体系の異常減少又は異常増加による副作用及び疾患の治療に有用である。敗血性ショックモデルでは、これらの免疫増進の効果がＩＬ−４の分泌刺激及びアポトーシス(apoptosis)を抑制する方向に作用できる。その結果、敗血症の致死率を顕著に低下させることができる。したがって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、ＩＬ−４サイトカインの分泌を増加させるため、例えば、敗血症の予防及び治療など、自己免疫治療に有用である。
【００２０】
細胞間の相互作用が多様な造血細胞及び免疫細胞を刺激すると知られており、特に樹状突起細胞は兔疫体系に非常に重要なものと知られている。本発明者らは、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が分離・誘導された樹状突起細胞及びＴＣＲ(t-cell Receptor)の相互作用にどのような影響を及ぼすかを調査した。このために、化合物３で処理された樹状突起細胞(ＤＣ)のＲＴ−ＰＣＲが遂行され、ＤＣとＴＣＲとの間の相互作用を媒介する接着分子の発現を測定した。その結果、Ｖｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−４、ＶＬＡ−５及びＬＦＡ−１のような接着分子の発現が対照群に比べて増加した(図５参照)。上記の結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞を活性化すると共に、樹状突起細胞を活性化して、それによってＴ細胞が癌細胞の抗原を認識するようになることで、特異的な抗癌効果も持つことを確認した。
【００２１】
以上の結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞を活性化することでサイトカインの分泌を増加させ、細胞間接着分子の発現を増加させることで、造血細胞及び免疫細胞の増殖及び刺激を促進して、免疫力を増加させる効果を持つことを確認した。その結果として、これらの化合物には多様な疾病に対する免疫療法としての使用の可能性があることを確認した。例えば、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ４及びＴ８細胞増殖効果により、人のＡＩＤＳ患者の免疫力を増進させる治療剤又は健康食品として使用され得る。ＡＩＤＳ患者の初期には、Ｔ４が減少するが、深刻な発病は観察されない。一方、ＡＩＤＳ患者の後期には、Ｔ８が減少して深刻な発病が観察される。従って、Ｔ４／Ｔ８の比率が重要な要因になり、Ｔ４およびＴ８の絶対的数字も重要な要因になる。さらに、本発明者らは、ＩＬ−４分泌の増加による免疫機能の調節が各種の自己免疫疾患にも効果的であることを確認した。本発明による化合物の敗血性ショックの予防及び治療としての用途を調査するために、マウスのＣＬＰ(Cecal Ligation and Punctur)テストが行なわれた。その結果、実験した全てのマウスが１２０時間まで生存した。よって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が敗血性ショック(敗血症)の予防及び治療に有用であることを確認した。このような結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、免疫増進効果及び免疫機能調節効果を持つ理想的な免疫調節剤として有利であることを確認した。
【００２２】
また、本発明者らは、本発明の化合物の癌の予防及び治療剤としての用途を調査するために、治療が非常に難しい癌として知られている胆管癌及び悪性黒色腫に対する化合物の抗癌効果を調べた。まず、本発明者らは、胆管癌細胞系であるＫＩＢＧ−５をハムスターに静脈注射及び皮下注射して癌発生を誘導した。続いて、ＲＰＭＩ、ＢＭＳＣ、アデノウイルス／ΔＥ１、樹状突起細胞＋腫瘍 溶菌液、化合物３、アデノウイルス／ＩＬ−２及び混合物をハムスターに注入し、４週間後、その結果が観察された。その結果を肉眼や顕微鏡で観察したところ、樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群、化合物３処理及びアデノウイルス／ＩＬ−２処理群は、腫瘍が形成されなかった(図６参照)。また、腫瘍細胞を静脈注射して８週間後に観察した。その結果、ＢＭＳＣ＋アデノウイルス／ＩＬ−２処理群を除いた全ての群で肺転移病変が形成された。生体組織検査により、樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群及び化合物３処理群で微細な病巣が観察された(図７、図８及び図９参照)。また、腫瘍細胞を皮下注入して１２週間後に観察した。その結果、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２＋化合物３処理群を除いた全ての群で腫瘍が形成された(図１０参照)。腫瘍の形成は化合物３の濃度に依存して抑制された(図１１及び図１２参照)。後述するように、本発明者らは、ハムスターに胆管癌細胞(ＫＩＢＧ−５)を注入して転移性癌を誘導し、ハムスターを本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体で処理した。その結果、本発明のこれらの化合物の処理によって癌発生が著しく抑制されることを確認した。
【００２３】
悪性黒色腫細胞をマウス尻尾の静脈に注入して癌発生を誘導した。続いて、ＲＰＭＩ、樹状突起細胞（ＤＣ）、腫瘍溶菌液及び化合物３で各々又は混合して処理した。その結果、ＲＰＭＩ処理された対照群では肺転移病変が形成されたが、化合物３と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液とで処理した群では肺転移病変が観察されなかった(図１３及び図１４参照)。また、化合物３処理群と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群とでは、腫瘍を注入し、６週間後、その結果を観察したところ、９０％の生存率を見せた(図１５参照)。これらの結果から、本発明者らは、化合物３が抗癌効果を持つ、Ｔ細胞(Ｔ４及びＴ８)を活性化させることを確認した。よって、化合物３で活性化させたＴ−細胞の悪性黒色腫に対する細胞毒性検査をインビトロで実施した。その結果、化合物３でＴ−細胞を処理しなかった時よりも化合物３でＴ−細胞を処理した時、細胞毒性が増加して、また、Ｔ−細胞の量が増加するほど細胞毒性が増加することを観察した(図１６参照)。前述するように、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、癌発生を抑制させ、Ｔ細胞を活性化させて癌細胞に対する毒性を示すことが確認され、抗癌剤として有用であることが示された。本発明の生成物を抗癌剤として使用することは、胆管癌、腎臓癌及び悪性黒色腫に有望であり、他の形態の悪性疾患にも使用しうる。
【００２４】
以後、本発明者らは、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分とする試験用カプセル及び錠剤を製造することにより本発明を完成した。本発明の免疫調節剤、ＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤は、 モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を、化合物の総重量に対して２０〜１００重量％含有することが好ましく、３０〜１００重量％含有することがより好ましい。モノアセチルジアシルグリセロールの量が少なかったり多かったりする場合、投薬し難いだけで特別な利益はない。また、敗血症治療剤、抗癌剤及び免疫調節剤として経口投与する場合には、１日１回〜３回、または1回〜4回、１回５０ｍｇ／ｋｇの用量で投与することが好ましい。本発明による化合物は、有効成分に加えて医薬としての形態で製造するために、本発明の化合物に薬学的に許容される１以上の担体を追加で含むことができる。担体は生理食塩水、緩衝生理食塩水、水、グリセロール及びエタノールからなる群から選ばれるが、これに限定されるものではない。適した公知の医学製剤(Remingtons's Pharmaceutical Science(最新版)、Mack Publishing Company、Easton PA)の何れも使用可能である。本発明の組成物は、経口投与が可能であり、一般的な医薬製剤の形態で使用できる。本発明の組成物は、一般的に使用される充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、分解剤、界面活性剤などの希釈剤又は賦形剤を混合することにより、経口投与用として調製できる。本発明の組成物の有効な投与量は、年齢、性別、健康状態、活性成分の吸収度、不活性率、排泄速度及び共に使用する薬物によって決定され得る。例えば、１日経口投与量は０.２４〜９.０ｇであるが、常にこれに限定されるものではない。また、本発明は用量単位の医学製剤を含む。これは、製剤が個別要素、例えば、錠剤、被覆錠剤、カプセル剤、丸剤、坐薬及びアンプル剤として存在し、これらの活性成分含量は個別投与量の分率又は倍数に該当することを意味する。用量単位は、例えば、個別投与量の１、２、３又は４倍、或いは、１／２、１／３又は１／４倍を含有できる。個別投与量は、好ましくは１回に投与され、通常１日投与量の全部、１／２、１／３又は１／４倍に該当する活性化合物の量を含有する。経口投与のための固形製剤は錠製、丸剤、散剤、及びカプセル剤であり、経口投与のための液状製剤は懸濁剤、液剤、乳剤及びシロップ剤である。前述した製剤はよく使用される水、液状パラフィンのような簡単な希釈剤以外に多様な賦形剤、例えば、湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤を含むことができる。本発明の化合物は、前述した経口投与用製剤だけでなく、注射用製剤として提供され得る。例えば、滅菌注射用の水性又は油性懸濁液は、公知の技術により分散剤、湿潤剤又は懸濁剤を用いて製造できる。薬学的に許容される溶媒は、水、リンゲル液、等張ＮａＣｌ溶液を包含する。滅菌固定オイルは、溶媒又は懸濁媒質として使用され、モノグリセリド、ジグリセリド及びポリプロピレングリコールを含む無刺激性固定オイルおよびオレイン酸のような脂肪酸を含むことができる。
【００２５】
また、本発明は、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分とする免疫調節及び抗癌用の健康食品を提供する。本発明における“健康食品”は、各種疾病の治療や予防、身体機能の均衡的な維持のための食料品、営養剤及び健康補助剤を含む。本発明により製造された健康食品は、０.０２〜１００重量％のモノアセチルジアシルグリセロールを含有する。本発明の化合物を健康食品として使用する場合、前記化合物を完全な化合物として使用したり、他の食品又は食品成分と共に混合して使用する等、通常の方法によって使用することができる。混合化合物の有効量はその使用目的(予防、健康又は治療的処置)による。予防を目的として使用する場合、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の量は、健康食品の総重量に対し、好ましくは０.０２〜２重量％、より好ましくは０.２〜０.６重量％を含む。モノアセチルジアシルグリセロールの量が少なかったり多かったりする場合、健康食品を飲み難いだけで特別な利益はない。細胞毒性検査でも支持された通り、有効成分は健康の調節又は保存を目的とする長期間の摂取でも安全である。本発明の構成物を含有する食品の種類は特別な制限がない。例えば、肉類ソーセージ、パン、スープ、飲料、茶、ドリンク剤、アルコール飲料及びビタミン複合剤が本発明の組成物を含有する健康食品として製造可能である。健康食品が疾病の治療及び予防を目的とする営養剤や健康補助剤として使用される場合、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の量は、健康食品の総重量に対して２０〜１００重量％、好ましくは３０〜１００重量％、より好ましくは３５〜９５重量％を含む。このとき、１日摂取量は０.１８〜９.０ｇであるが、これに限定されるものではない。製剤は錠剤及びカプセル剤を含む。
【００２６】
前述したように、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞の活性化によりサイトカインの分泌を増加させ、細胞間接着分子の発現の増加により造血細胞および免疫細胞を刺激することで、免疫力を増加させ、自己免疫疾患及び癌を予防及び治療する。
【００２７】
以下、本発明の実施形態を本発明のよりよい理解の為に詳細に説明する。但し、後述する実施形態は本発明の例示だけで、本発明はこれに限定されるものではない。
【実施例１】
【００２８】
モノアセチルジアシルグリセロール誘導体がＴ細胞の増殖及び単核球の増殖に及ぼす影響
【００２９】
（実施例１−１）モノアセチルジアシルグリセロール誘導体がＴ細胞の増殖に及ぼす影響
【００３０】
(大韓民国ソウルの牙山研究所の生命科学動物ラボで提供された)Ｃ５７ＢＬ／６マウスの脾臓から脾臓細胞を収集した。繰返し行う吸引(aspiration)及びフラッシング(flushing)により単一細胞懸濁液を得た。塩化アンモニウム(ammonium chloride)を用いて赤血球細胞を除去し、ナイロンウールを通過させながら細胞残屑(debris)と凝集塊(clump)とを除去した。抗ヤギＩｇＧ(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)、あるいは抗マウスＣＤ４(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)又は抗マウスＣＤ８抗体(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)を含む磁性ビーズ(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)を用いてＴ細胞を精製した(Turner and Dockrell(1996)Immunology、87:339−342)。
【００３１】
Ｔ細胞懸濁液は、１０％牛胎児血清(Fetal Bovine serum；以下、“ＦＢＳ”と称する。)(Gibco、Grand Island、NY)が補充されたＩＭＤＭ(Isocove's modified dulbecco's medium)(Gibco、Grand Island、NY)で懸濁された。(大韓民国ソウルの梨花女子大学で合成し提供された)１μｇ／ｍｌの化合物１、２、４、５と、０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度の化合物３と、２０ｎｇ／ｍｌ濃度のＩＬ−２とを処理して、９６ウェルプレートで、ウェル別に５×１０４の生育可能な細胞を培養した。 培養６日目に３Ｈ−チミジンを各細胞培養ウェル当たり１μＣｉで処理して２４時間培養した。培養７日目に細胞を回収して、下記の数式１によってＳＩ(incorporation index)を計算した。
【００３２】
(数１)
ＳＩ＝実験群のウェルから吸収された３Ｈ−チミジン(サンプルのＣＰＭ)／対照群のウェルから吸収された３Ｈ−チミジン(対照群のＣＰＭ)
【００３３】
その結果、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体処理群では、２.０５チミジンの取り込みによりＴ細胞のＳＩが２.０５に増加した。これはＩＬ−２処理群のものと類似した(表１)。
【表１】
上記表において、＊Ｐ＜０.０５、＊＊Ｐ＜０.００５であり、全ての検査は、３重に遂行され、３回繰返された。
(実施例１−２)モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が単核球の増殖に及ぼす影響
【００３４】
ヒストパク(Histopaque)１０７７を用いて人間の全血(whole blood)から単核球を分離した。続いて、５％ＣＯ２培養器で３時間、単核球細胞(５×１０６細胞／mｌ)が組織培養フラスコに付着するようにした。３時間後、付着されない細胞を除去し、付着細胞を１０％ＦＢＳが補充されたＲＰＭＩ １６４０培地(GIBCO、Grand Island、NY)内の９６ウェルプレートにのせる。各ウェル当たり生育できる細胞５×１０４個を１μｇ／ｍｌ濃度の化合物１〜５と共に９６−ウェルプレートで培養した。６日目に細胞を各ウェル別に１μＣｉ３Ｈ−チミジンを用いて２４時間培養した。７日目に細胞を回収した後、取り込まれた３Ｈ−チミジンを測定した。ＳＩは上記式１によって計算された。その結果、化合物１〜５処理群は、対照群に比べて単核球のＳＩ数値が１０.６８倍増加し、これは化合物が単核球の増殖を刺激することを意味する(表２)。
【表２】
上記表において、＊Ｐ＜０.００１であり、全ての検査は、３重に遂行され、２回繰返された。
【実施例２】
【００３５】
化合物３がＴ細胞の活性に及ぼす影響
【００３６】
（実施例２−１）エリスポット(Elispot)によるサイトカイン測定
エリスポット生物定量法(ESAT−６enzyme−linked immunospot assay)は、この定量法で使用されるエリスポットプレートの各ウェルの底面がサイトカイン特異的な抗体で予めコートされているため、メンブレンに結合したサイトカインを検出するのに非常に敏感な定量法である。従って、エリスポット定量法によりＴ細胞の活性を測定した。Ｔ細胞を２４ウェル滅菌組織培養プレート(Nunc、Denmark)に各ウエル当たり２×１０６細胞を接種した後、化合物３の０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度、或いは、ＩＬ−２の２０ｎｇ／ｍｌ濃度で処理した。７日目に細胞を回収して、１次抗体(マウスＩＬ−２)でコートされたマルチテストプレート(Elispot system kit、AID、Straberg、Germany)に５×１０５細胞を接種した。上記プレートを２４時間５％ＣＯ２培養器で培養した後、細胞によるサイトカインの分泌があった。これは、製造会社の指針に従って市販のＩＬ−２エリスポットキットを用いるエリスポットにより決定される１次抗体によりキャップチャされた。各サンプルに対して２回実験した。エリスポット読取機(AID Elispot Reader System)を用いてエリスポットによりＩＬ−２を産生する細胞の数を算出した。その結果、化合物３処理群は、対照群に比べて１.５２倍増加したＴ−４活性と、１.４６倍増加したＴ−８活性とを示した(図１)。
【００３７】
（実施例２−２）バイオ−プレックスを用いたサイトカイン測定
バイオ−プレックスは、１つのウェルで多量のサイトカインを一度に測定できる。よって、バイオ−プレックスキットは、Ｔ細胞の活性化の際、分泌されるＴｈ１／Ｔｈ２経路の８種のサイトカインを定量するのに用いられた。２４−ウェル滅菌組織培養プレート(Nunc、Denmark)を抗ＣＤ３および抗ＣＤ２８で処理した。プレートに２×１０6／ｍｌのＴ細胞が接種された。Ｔ細胞を活性化するために、０.１、１μｇ／ｍｌ化合物３で処理した後、５日間培養した。５日目、各段階にある培養液を回収して遠心分離した。上清液を回収し、その内部に分泌されたサイトカインをバイオ−プレックスキットを用いて製造会社(Bio−rad)の指針に従って定量化した。その結果、化合物３で処理した群において、８種のサイトカイン(ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−１０、ＩＬ−１２、ＩＮＦ−γ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＴＮＦ−α)のうちの３種(ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５)が分泌され、その量は化合物３を処理しない対照群に比べて多かった(図２)。
【実施例３】
【００３８】
Ｔ細胞の増殖の分析
化合物３がＡＩＤＳ患者の免疫細胞に及ぼす影響を確認するために、次のような実験を遂行した。まず、ＡＩＤＳ患者の末梢血液からヒストパク(Histopaque)１０７７によって単核球細胞を回収した。塩化アンモニウムを用いて赤血球 細胞を除去した後、ナイロンウールを通過させながら細胞残屑と凝集塊とを除去した。Ｔ細胞をマグネチックビーズ(抗ヒトＣＤ３)(MACS bead、Miltenyi Biotec)を用いて精製した。Ｔ細胞懸濁液は、１０％牛胎児血清(Fetal Bovine serum；以下、“ＦＢＳ”と称する。)(Gibco、Grand Island、NY)が補充されたＩＭＤＭ(Isocove's modified dulbecco's medium)(Gibco、Grand Island、NY)で懸濁された。９６ウェルプレートで、０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度の化合物３または２０ｎｇ／ｍｌ濃度のＩＬ−２とで処理して、ウェル別に５×１０４生育可能な細胞を培養した。培養６日目に３Ｈ−チミジンを各細胞培養ウェル当たり１μＣｉで処理して２４時間培養した。培養７日目に細胞を回収して３Ｈ−チミジンの取り込みを計算した。ＳＩ(刺激指数)は前述した式１により計算された。その結果、表３に示すように、ＡＩＤＳ患者の場合、Ｔ細胞の増殖アッセイで、化合物３処理群における全ての患者(４名中の４名)のチミジンの摂取によるＴ細胞刺激指数が、対照群に比べて１.５〜３.９倍増加したことが表された。化合物３による刺激の全般的な結果は、ＩＬ−２による刺激と比較可能である。
【表３】
【実施例４】
【００３９】
化合物３が樹状突起細胞の接着分子の発現に及ぼす影響
【００４０】
（実施例４−１）樹状突起細胞の培養
骨髄細胞は、Ｂａｌｂ／ｃ ＡｎＮマウスの大腿骨及び脛骨から公知の方法により回収した(Park,J.etal.(2003)J.Korean Med. Sci.,18:372−380)。細胞をＲＰＭＩで３回洗浄した後、単核球を回収した。これらの単核球細胞をＲＰＭＩ及び１０％ＦＢＳ内で３時間組織培養フラスコに付着されるようにした。培養後、付着細胞(単核球細胞)を除去した後、マウスｒＧＭ−ＣＳＦ(R＆D systems, Minneapolis, MN, USA)２０ｎｇ／ｍｌ、およびマウスＩＬ−４(R＆D systems)１０ｎｇ／ｍｌ及びマウスＴＮＦ−α(R＆D systems)２.５ｎｇ／ｍｌが補充された、１０％ＦＢＳ追加のＲＰＭＩ中、未付着細胞を１×１０５細胞／ｍｌにて１００ｍｍ織培養皿に配置した。培養皿は３日毎に交換した。マウスＴＮＦ−α(R＆D systems)を６日目に添加した後、１１日になるまで３日毎に添加した。成熟樹状突起細胞は接着分子研究のＲＴ−ＰＣＲ用として採取された。その結果、円形の顆粒細胞を３日間培養したとき、これらの細胞は細胞培養プレートのウェルの底面に付着して成長するクラスターを形成し、成熟樹状突起細胞は培養６日又は７日目に群を形成しながら成長した。培養９日目に樹状突起細胞が特異的に小さく長い突起(protrusion)を形成した(図３)。
【００４１】
（実施例４−２）樹状突起細胞の表現型の決定
トリパンブルー染色に対して陰性であり、サイズが大きい細胞を計数して、これらのそれぞれの形態を調べた。１×１０６細胞／ｍｌの細胞を培養した後、洗浄し、１％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。固定された細胞はＦＡＣＳｃａｎ(Beckton Dickinson、Mountain View、CA、U.S.A)を用いてフローサイトメトリー解析(Flow cytometric analysis)を行うことで、下記のマーカーに対する抗体によって表現型を決定した。ハムスターＩｇＧに対する同型(isotype)対照群、ラットＩｇＧ２ａ、ＤＣマーカー：ＤＥＣ−２０５(ＮＬＤＣ−１４５)及びＣＤ１１Ｃ、共同−刺激／接着(Co−stimutatory／adhesion)分子:ＣＤ８０(Ｂ７−１)及びＣＤ８６(Ｂ７−２)、マクロファージマーカー:ＣＤ１４及びＦ４／８０、顆粒球(Granulocyte)マーカー:Ｇｒ−１(Pharmingen、Hamburg、Germany)。その結果、共同−刺激特異的分子マーカーであるＣＤ８０及びＣＤ８６、樹状突起細胞特異的マーカーであるＣＤ１１Ｃ及びＤＥＣ−２０５の水準は高かったが、単核球特異的マーカーであるＣＤ１４及びＦ４／８０と、顆粒球特異的マーカーであるＧｒ−１との水準は低かった。このような結果は、本発明で分離された樹状突起細胞が、樹状突起細胞の正確な表現型と９７％〜９８％の純度とを持つことを意味する(図４)。
【００４２】
（実施例４−３）接着分子の処理及び発現分析
一般的に、細胞間の相互作用が、多様な造血細胞及び免疫細胞の刺激の過程に関与することが知られている。よって、本発明者らは、化合物３が言及された細胞の多様な接着分子に影響を及ぼすかを確認しようと努力した。特に、前述した実施例で培養した樹状突起細胞を化合物３で１μｇ／ｍｌ濃度で処理し、ＲＴ−ＰＣＲを遂行した。
【００４３】
次のプライマー：Ｉｃａｍ−１(配列表の配列番号１及び２)、Ｉｃａｍ−２(配列表の配列番号３及び４)、Ｖｃａｍ−１(配列表の配列番号５及び６)、ＶＬＡ−４(配列表の配列番号７及び８)、ＶＬＡ−５(配列表の配列番号９及び１０)、ＬＦＡ−１(配列表の配列番号１１及び１２)及びＧＡＰＤＨ(配列表の配列番号１３及び１４)をＲＴ−ＰＣＲ用として使用した。ここで使用された反応セットは、２μｌのＤＮＡ、１０ｘ緩衝液、１.５μｌのＭｇＣｌ２、２μｌのｄＮＴＰ、０.５μｌのフォワードプライマー、０.５μｌのリバースプライマー、０.２μｌのポリメラーゼ及び１５.８μｌの蒸溜水からなる混合液であった。
【００４４】
オリゴ(ｄｔ)−プライマーを用いて培養した低密度細胞であるＭＳ−５及び樹状突起細胞から分離したトータルＲＮＡを逆転写させ、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒及び７２℃で５０秒ＰＣＲを遂行した。ＰＣＲ遂行回数は総３４回、ＰＣＲ生成物は遂行毎に２倍ずつ増加した。ＲＴ−ＰＣＲによりＶｃａｍ−1、Ｉｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−４、ＶＬＡ−５、およびＬＦＡ−１のような接着分子の発現を確認した。定量のために、ＧＡＲＤＨに対するＰＣＲを遂行して、相応するｃＤＮＡを確認した。その結果は、化合物３で処理した樹状突起細胞に対する接着分子Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−５、ＬＦＡ−１の発現が、対照群に比べて非常に増加したことを示した(図５)。
【実施例５】
【００４５】
皮下注入法(ローカルモデル)及び静脈注入法(全身モデル)による化合物３の抗癌効果に関する検討
【００４６】
（実施例５−１）胆管癌ハムスターモデル
６週齢の雌のシリアンゴールデンハムスター(Harlan、Indianapolis、India、USA)を特定病原菌不在飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＢＧ−５細胞(Molcular therapy、Vol.3、No4、pp431−437)５×１０５を、大腿部血管に静脈注射(intravenously inject、I.V)した。また、無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＧＢ−５の５×１０５細胞は、ハムスターの横腹に皮下注射(subcutaneously inject、S.C)された。ＫIＢＧ−５注入されたハムスターは、下記の７つの群に分けた;
１)ＲＰＭＩ培地処理された対照群、
２)変形されないＢＭＳＣ細胞(２.５×１０６)(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)で処理された実験群、
３)Ａｄ／ΔＥ１５０ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)、
４)ＤＣ＋腫瘍溶菌液(５×１０６)処理された実験群、
５)Ａｄ／ｈＩＬ−２ ５０ ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)、
６)Ａｄ／ｈＩＬ−２ ５０ ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群＋化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理された実験群、及び
７)化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理された実験群。
【００４７】
ハムスターに癌細胞を注入(ＢＭＳＣ処理群)した１週間後、ＢＭＳＣ細胞２.５×１０６個を各ハムスターに再注入した。ＤＣ＋腫瘍溶菌液(５×１０６)処理群の場合、ＤＣ細胞の５×１０６及び腫瘍溶菌液を１週、２週、３週、４週、６週及び８週のときに各ハムスターに注入(皮下注射又は静脈注射)し、１２週間観察した。化合物３処理群の場合、ＫＩＢＧ−５細胞注射の１週間前に、化合物３の経口投与にて、２週間処置及び１週間休みの形式で８週間処置した。
【００４８】
その結果、癌細胞注入してから４週間目に、対照群であるＲＰＭＩ処理群、ＢＭＳＣ処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群には腫瘍が形成されたが、ＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群、化合物３処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ＩＬ−２処理群には腫瘍が発見されなかった(図６)。また、癌細胞を注入してから８週間目に、対照群であるＲＰＭＩ注入群、ＢＭＳＣ処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１注入群では多発的肺転移病変が発見され、ＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群及び化合物３処理群ではただ一つの小さな肺病変が発見された。しかしながら、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ＩＬ−２処理群では病変が発見されなかった(図７〜図９)。また、癌細胞の皮下注入してから１２週間目に、対照群であるＲＰＭＩ処理群、ＢＭＳＣ処理群、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群及びＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群では腫瘍が形成され、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２処理群では１匹で５ｍｍ以下の腫瘍が発見された。しかしながら、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２＋化合物３処理群では腫瘍が全く形成されなかった(図１０)。
【００４９】
一方、６週齢の雌のシリアンハゴールデンハムスターを特定病原菌不在飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＢＧ−５細胞(５×１０５)を大腿部血管に静脈注射した。ハムスターは、下記の４つの群に分けた;１)ＰＢＳ対照群、２)化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群、３)化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群、４)化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。腫瘍細胞注入１週間前、化合物３の経口投与を(１０、２５又は５０ｍｇ／ｋｇ／日)、２週間処置及び１週間休みの形式で１２週間行った。各群の動物は、４週間目、８週間目及び１２週間目に病理検査に供された。４週間目の肉眼観察から、対照群において注入位置で腫瘍が発現され、化合物３(１０、２５、５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群では腫瘍が発見されかった。また、８週間目、対照群は両側肺に多発的肺転移病変が観察された。化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群は肉眼では多発的肺転移病変が全く観察されなかったが、顕微鏡により一つの微細な病変が観察された。化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群では左側肺に腫瘍が見られた(図１１および図１２)。
【００５０】
（実施例５−２）黒色腫マウスモデル
６週齢の雌Ｃ５７ＢＬ／６マウス(韓国ソウルの牙山生命科学研究所で提供)を無菌飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＢ１６Ｆ１０細胞(２×１０４)を尻尾静脈に注射した。腫瘍細胞注入１週間前、下記の３群に処理された。
１)ＲＰＭＩ対照群
２)樹状突起細胞(ＤＣ)(５×１０５細胞／日)＋腫瘍溶菌液処理群
３)化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群
【００５１】
樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群の場合、黒色腫細胞注入１週間前、１週間おきに腫瘍溶菌液と混合された５×１０５ＤＣ細胞を腹腔に注入した。化合物３処理群においては化合物３の５０ｍｇ／ｋｇ／日がこの各マウスに処理された。黒色腫(Ｂ１６Ｆ１０)注入１週間前、２週間処置及び１週間休みの形式で６週間化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)を経口投与した。その結果、４週間目の肉眼による発見から、対照群において両側肺に多発的肺転移病変が観察された。化合物３処理群と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群は、肺転移病変が全く観察されず(図１３及び図１４)、黒色腫(Ｂ１６Ｆ１０)注入後、６週間の観察で９０％生存率を示した(図１５)。
【００５２】
化合物３の抗癌効果が化合物３のＴ細胞による活性化に因るという推定に基づいて、化合物３で活性化されたＴ細胞の悪性黒色腫細胞に対する細胞毒性検査を実施した。その結果、化合物３で活性化されたＴ細胞と黒色腫細胞との比率が１００：１のとき、細胞毒性は４２％増加した(図１６)。
【実施例６】
【００５３】
化合物３の毒性試験
合成した化合物３を、２０ｇ当り０.１ｍｌ容量で経口投与されるエタノール５％溶液に溶かした。対照群はエタノール５％溶液で処理された。ＳＰＦ設備内で飼育されたＩＣＲマウスを検査動物として使用した。薬物投与１日前、その動物を捕獲した後、水や飼料は自由に摂取させた。体重２５〜３５ｇのＩＣＲマウス８〜１０匹を一つの群とした。投与量を６２.５ｍｇ／ｋｇ、１２５ｍｇ／ｋｇ、２５０ｍｇ／ｋｇ、５００ｍｇ／ｋｇ、１ｇ／ｋｇ、２ｇ／ｋｇに増加させながら、試験薬は１回経口投与された。生存数及び異常の有無を投与日から１４日間肉眼で観察した。ＬＤ５０はLichfield-Wilcoxon法に`より計算し(白須、泰彦、吐山、豊秋：新毒性試験法−方法及び評価−急性毒性試験、Realize Inc.、Tokyo、1988)、体重増加率は次の数式２によって算出した。
【００５４】
(数２)
体重増加率(％)={１４日目の体重−０日目の体重}÷{０日目の体重}×１００
【００５５】
結果は表４に示す。６２.５ｍｇ／ｋｇ〜２ｇ／ｋｇの化合物３では、毒性が全く検出されなかった。このような観察から、ＬＤ５０が全部２ｇ／ｋｇ以上であることを意味した。また、投与後１４日間の観察の際、異常信号は肉眼で観察されなかった。処理群内の動物の体重は、対照群動物と同様に継続的に増加した。表５に示すように、重要で且つ治療に特異的な体重変化(増加又は減少)は、観察されなかった。
【表４】
【表５】
長時間の肝毒性検査は、化合物３の投与量を１００ｍｇ／ｋｇ体重／日としてマウスに４週間経口投与して実施し、肝機能検査、血中脂質検査及びシトクロームＣ−４５０活性度検査が観察された。４週末に肝組織が観察された。どのような重大な副作用も観察されなかった。
【実施例７】
【００５６】
ＣＬＰ(Cecal Ligation and Puncture)テスト
ＣＬＰテストは、上記化合物３の敗血性ショックに対する予防及び治療効果を確認するために行われた。１０匹の７〜１０週齢の同種交配雄Ｃ３Ｈ／ＨｅＮマウス(体重２０〜２５ｇ)を一つの群として形成した。これらのマウスに２週間５０ｍｇ／ｋｇ／日の容量で処置し、１週間休みの形式で化合物３を経口投与した後、ケタミン(ketamine)８０ｍｇ／ｋｇ及びロムパン(rompun)１６ｍｇ／ｋｇを使用してマウスを麻酔した。麻酔されたマウスにＣＬＰモデルによる敗血性ショックを誘導させた。敗血性ショックを誘導していから１時間後、化合物３の５０ｍｇ／ｋｇで処理し、以後、２４時間毎に同様な処理が３日間継続された。対照群にＰＢＳ＋５％エタノール溶液が経口投与された。化合物３処理群及び対照群の時間経過に従う生存率を表６に示す。化合物３処理群は１２０時間経過後にも１００％の生存率を見せた。
【表６】
（製造例１）化合物３を有効成分として含有する医薬品の製造
【００５７】
上記実験例により化合物３が優れた免疫調節及び抗癌活性を持つことを確認した後、本発明者らは化合物３を有効成分として含有する治療剤を製造した。また、化合物３を有効成分として含有する治療剤の下記製造例は、治療剤の製造だけでなく、健康食品の製造にも応用できる。下記の製造例において、％は別途の言及がなければ重量％を示す。
【００５８】
（製造例１−１）軟質ゼラチンカプセルの製造
【００５９】
（製造例１−１−１）
化合物３ ３０％
ビタミンＣ ４.５％
ビタミンＤ３ ０.００１％
硫酸マンガン ０.１％
ワックス(Wax) １０％
パーム油 ２５％
紅花油(Carthamus tinctorius) ３０.３９９％
【００６０】
（製造例１−１−２）
化合物３ ３１.２５％
月見草オイル ５９.７５％
大豆油 ６.７％
ビタミンＥ酢酸エステル(ＤＬ-α- 酢酸トコフェロール)２.１％
大豆レシチン ０.２％
【００６１】
（製造例１−１−３）
化合物３ ９８.０％
ビタミンＥ酢酸エステル(ＤＬ-α- 酢酸トコフェロール)２.０％
【００６２】
（製造例１−２）錠剤の製造
化合物３ ３０％
ビタミンＣ １０％
ビタミンＤ３ ０.００１％
硫酸マンガン ０.１％
結晶セルロース ２５.０％
乳糖 ３２.９９９％
ステアリン酸マグネシウム ２％
【００６３】
（製造例１−３）注射用製剤の製造
化合物３ ２％
プロピレングリコール ３５％
モノグリセリド ８％
エタノール ５％
水 ５０％
前述した組成及び含量に基づき、通常の方法を用いて注射用製剤を製造した。
【００６４】
（製造例２）化合物１、２、４及び５を各々有効成分として含有する医薬品の製造
【００６５】
化合物３の代りに、各々化合物１、２、４及び５を同比率で使用した以外は、前述した製造例１と同様な方法及び組成により、軟質ゼラチンカプセル、錠剤及び注射剤懸濁液を製造した。
【００６６】
（製造例３）化合物３を有効成分として含有する健康食品の製造
前記実験例により化合物３が優れた免疫調節効果、抗敗血性ショック及び抗癌活性を持つことを確認した後、本発明者らは化合物３を有効成分として含有する健康食品を製造した。
【００６７】
（製造例３−１）飲料の製造
蜂蜜 ５２２ｍｇ
チオクト酸アミド ５ｍｇ
ニコチン酸アミド １０ｍｇ
塩酸リボフラビンナトリウム ３ｍｇ
塩酸ピリドキシン ２ｍｇ
イノシトール ３０ｍｇ
オルト酸 ５０ｍｇ
化合物３ ０.４８〜１.２８ｍｇ
水 ２００ｍｌ
前述した組成及び含量に基づき、通常の方法を用いて飲料を製造した。
【００６８】
（製造例３−２）チューインガムの製造
ガムベース ２０％
砂糖 ７６.３６〜７６.７６％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
フルーツ香料 １％
水 ２％
チューインガムは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００６９】
（製造例３−３）キャンディの製造
砂糖 ５０〜６０％
水飴 ３９.２６〜４９.６６％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
オレンジ香料 ０.１％
キャンディは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７０】
（製造例３−４）ビスケットの製造
強力粉１級 ８８ｋｇ
薄力粉１級 ７６.４ｋｇ
精白糖 １６.５ｋｇ
食塩 ２.５ｋｇ
グルコース ２.７ｋｇ
パームショートニング ４０.５ｋｇ
アンモ ５.３ｋｇ
重曹 ０.６ｋｇ
重硫酸ナトリウム ０.５５ｋｇ
コメ粉 ５.０ｋｇ
ビタミンＢ１ ０.００３ｋｇ
ビタミンＢ２ ０.００３ｋｇ
ミルク香料 ０.１６ｋｇ
水 ７１.１ｋｇ
全脂粉乳 ４ｋｇ
代用粉乳 １ｋｇ
第１リン酸カルシウム ０.１ｋｇ
散布塩 １ｋｇ
噴霧乳 ２５ｋｇ
化合物３ ０.２〜０.５ｋｇ
ビスケットは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７１】
（製造例３−５）アイスクリームの製造
乳脂肪 １０.０％
無脂乳固形分 １０.８％
砂糖 １２.０％
水飴 ３.０％
乳化安定剤(スパン) ０.５％
香料(ストロベリ) ０.１５％
水 ６３.３１〜６２.９１％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
アイスクリームは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７２】
（製造例３−６）チョコレートの製造
砂糖 ３４.３６〜３４.７６％
ココアバター ３４％
ココアマット １５％
ココアパウダー １５％
レシチン ０.５％
バニラ香料 ０.５％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
チョコレートは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７３】
（製造例４）化合物１、２、４及び５を有効成分として含有する健康食品の製造
【００７４】
化合物３の代りに、各々化合物１、２、４及び５を同比率で使用した以外は、前記前述した製造例３と同様な方法及び組成に基づき、飲料、チューインガム、キャンディ、ビスケット、アイスクリーム及びチョコレートを製造した。
【図面の簡単な説明】
【００７５】
【図１】対照群、ＩＬ−２処理群(２０ｎｇ／ｍｌ処理)及び化合物３処理群(１μｇ／ｍｌ処理)のＴ細胞(Ｔ−４及びＴ−８)活性を示す写真セットである。各数字はＩＬ−２特異的抗体を捕獲したスポットの個数を示す。
【図２】化合物３によるＴリンパ球の活性化時のサイトカインの分泌を示すグラフである。 （１）対照群：抗ＣＤ３、抗ＣＤ２８処理群 （２）実験群：抗ＣＤ３、抗ＣＤ２８および化合物３(０.１、１μｇ ／ｍｌ)処理群
【図３】ＧＭ−ＣＳＦ(２０ｎｇ／ｍｌ)、ＩＬ−４(２０ｎｇ／ｍｌ)及びＴＮＦ−α(５ｎｇ／ｍｌ)を処理した後、マウス骨髄細胞由来マウス樹状突起細胞(ＤＣ)の形態を示す写真である。 Ａ：マウス骨髄細胞を１×１０６細胞数／ｍｌ密度に接種した直後の顕微鏡写真(×１００)である。 Ｂ：３日間の培養後、丸い骨髄幹細胞を示す顕微鏡写真(×４００)であって、前記細胞はクラスターを形成し、細胞培養プレートウェルの底面に付着して成長する。 Ｃ：培養６日目または７日目にクラスターを形成しつつある成熟樹状突起細胞の成長を示す顕微鏡写真(×４００)であって、小さな写真は特定細胞の拡大写真(×２)である。 Ｄ：培養９日目の樹状突起細胞が特異的に長くて小さな突起(protrusion)を形成する樹状突起細胞の顕微鏡写真(×１０００)であって、小さな写真は特定細胞の拡大写真(×２)である。
【図４】Ｂａｌｂ／ｃ ＡｎＮマウスから分離した骨髄細胞の培養１１日目の樹状突起細胞の特異的マーカー、単核球特異的マーカー及び顆粒球特異的マーカーの発現を分析したＦＡＣＳ結果を示すグラフである(このとき、ハムスターＩｇＧ及びラットＩｇＧ２ａに対する異性体対照群染色がセッティングマーカー系(直線)として使用された)。 下記のマーカーが使用される。 共同刺激特異的マーカーとしてＣＤ８０及びＣＤ８６ 樹状突起細胞特異的マーカーとしてＣＤ１１ｃ及びＤＥＣ−２０５ 単核球／大食細胞特異的マーカーとしてＣＤ１４及びＦ４／８０ 顆粒球特異的マーカーとしてＧｒ−１
【図５】接着分子の発現に対する樹状突起細胞の化合物３の影響を示す電気泳動写真である。 レーン１:Ｖｃａｍ−１ レーン２:Ｉｃａｍ−１ レーン３:Ｉｃａｍ−２ レーン４:ＶＬＡ−４ レーン５:ＶＬＡ−５ レーン６:ＬＦＡ−１ レーン７:ＧＡＰＤＨ (＋)：化合物３処理群、 (−)：対照群。
【図６】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、異なる条件で処理して４週間後、注入部位の近所での腫瘍形成結果を示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群。
【図７】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、異なる条件で処理して８週間後、注入部位の近辺での腫瘍形成結果を示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｄ：樹状突起細胞(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｅ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｆ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図８】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、８週間後、各群での肺転移病変を肉眼や顕微鏡による観察を示す写真である。 図８において、 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｄ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群
【図９】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、８週間後、各群での肺転移病変を肉眼や顕微鏡による観察を示す写真である。 図９において、 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１０】腫瘍ＫIＧＢ−５を皮下移植し、１２週間後、各群の肺腫瘍及びそのサイズを示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｄ：ＤＣ(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｅ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｆ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)＋化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｇ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１１】胆管癌細胞(５×１０５細胞)を注入し、８週間後、化合物３の多様な容量で処理されたシリアンハゴールデンハムスターの各群の肺転移病変の肉眼所見を示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｄ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１２】胆管癌細胞(５×１０５細胞)を注入し、８週間後、化合物３の多様な容量で処理されたシリアンハゴールデンハムスターの各群の肺転移病変の顕微鏡所見を示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｄ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１３】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、４週間後、多様に治療されたＣ５７Ｂ１／６マウスのそれぞれの肺転移病変が肉眼で発見されることを示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(４×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１４】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、４週間後、多様に治療されたＣ５７Ｂ１／６マウスのそれぞれの肺転移病変が肉眼で発見されることを示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(４×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１５】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、６週間の各処理群の生存率を示すグラフである。（１）ＲＰＭＩ対照群、（２）樹状突起細胞(５×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群、（３） 化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１６】黒色腫細胞に対する化合物３により活性化されたＴリンパ球の細胞毒性を示すグラフである。（１） 対照群１：抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８処理群（２） 対照群２： 抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８とＩＬ−２(２０ｎｇ／ｍｌ)処理群（３） 実験群： 抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８と化合物３(１μｇ／ｍｌ)処理群
【技術分野】
【０００１】
本発明は鹿茸から抽出されたモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、医薬品及び健康食品に関する。
【背景技術】
【０００２】
鹿茸(ラテン語：Cervi parvum cornu)は、鹿科の動物から採取して乾燥した石灰化していない角である。韓国の伝統東洋医学では、人参と共に鹿茸が高く評価される各種薬効のために広く使用されている。鹿茸の伝統的な使用のための鹿科は、マンシュウジカ(Cervus nippon Temminick var.mantchuricus Swinhoe、 以下、C.N.と称する。)とロクジョウ(マンシュウアカジカ：Cervus elaphus L.）とに限定される。鹿茸は、多くの薬効を持つものと評価されている。鹿茸は、強壮剤、生長及び発育促進、造血、神経衰弱治療、心不全症治療、一般的な五臓六腑の機能向上に多様な効能があると知られている(韓国の伝統医学書籍である東医宝鑑を参照)。鹿茸の効果について伝統医学の他の書籍にも、心筋機能、疲労回復効果、抵抗力増進を含む強壮効果、滋養効果、活力増強効果が報告されている。鹿茸の神秘な化学的構成に関する研究が多様になされてきた。その結果、遊離アミノ酸、微量(金属)元素、六炭糖、五炭糖、へキソサミン、ウロン酸、シアル酸、ムコ多糖類(ヒアルロン酸、コンドロイチンＡ)、多様な脂肪酸、プロスタグランジン類のような活性成分を含有することが確認されている。また、糖脂質、リン脂質、コレステロール、ヒポキサンチン、コレスト−５−エン−３β、７α−ジオール、コレステロールエステル、ポリアミンが鹿茸抽出物から検出されたことが報告されている。また、エストロン及びエストラジオールレセプターの存在が報告されている(ＮＩＨコリアリポート、Vol.22, p359, 1985; Korean Biochem.J, Vol.9, No.3, p153, 1976; Korean Biochem.J, Vol.9, NO.4; p215, 1976;Korean Biochem.J, Vol.10, NO.1, p1, 1977;Shoykugaku Zasshi, 43(2), p173, 1989)。
【０００３】
免疫は、各種病原体から生体を保護する防御メカニズムである。免疫不全は、免疫系システムの成分の欠陥により、免疫システムが多様な抗原に反応出来ないことである。免疫不全は、先天性免疫不全(congenital or primary immunodeficiency)と、後天性免疫不全(acquired or secondary immunodeficiency)とに大別される。先天性免疫不全の場合、Ｂ細胞又はＴ細胞が先天的に存在しないため、遺伝子治療、抗体注入及び骨髄移植のみにより治療できる。一方後天性免疫不全の場合、全ての免疫関連要素は先天的に存在するが、免疫反応に障害があるため、免疫要素の機能を増進させることにより改善できる。近年、関節炎、アトピー、認知症及び敗血症のような自己免疫疾患の発現が増加している。自己免疫疾患は免疫機能の過度な増加に起因する。自己免疫疾患の治療に免疫抑制剤が利用されているが、免疫抑制剤は免疫性をしばしば減少させる。免疫メカニズムの説明に基づき、免疫性調節のための免疫調節物質の開発に対する多様な試みが行われている。このような試みの目的は、非特異的に免疫細胞を刺激する免疫調節物質により免疫機能の増進又は抑制をコントロールすることにより、病原体に対抗する生体の防御力を増加させて副作用を最小化することにある。免疫調節物質は、癌、敗血症、退行性関節炎、感染症、認知症、老化、糖尿、貧血、皮膚病、喘息、アトピー、ストレス、神経衰弱、全身疲労、慢性疲労症候群及び骨粗しょう症のような生体の大分部の疾病を治療できる。現在、免疫調節物質としては、化学合成物質、微生物組成物及び生物製剤などが利用されている。前述した免疫調節物質の大部分は、片方の効果(免疫増進又は抑制のどちらか)のみを果たすため、使用が制限的である。よって、免疫調節物質は、副作用を誘発したり毒性を持ちうる。前述した問題を解決するために、免疫調節物質の開発をするために、無毒の食品素材、天然物質から抽出した有効成分及び伝統的な漢方薬を主なターゲットとして、薬剤としての効果を検査する実験が進行中にある。しかしながら、これらの免疫調節物質は、相変らず免疫増進又は免疫抑制のどちらか一つの側面のみを持っている。
【０００４】
韓国における第１位の死亡原因である癌は毎年増加している。癌治療のための化学療法又は放射線療法は、癌細胞だけでなく一般の正常骨髄細胞、特に免疫及び造血を調節する造血細胞(hematopoietic cell)までも破壊させることにより、免疫システム及び造血器官の機能不全を引き起こす(Korean J. BRM., 1, p23, 1993;Korean J. BRM., 4、p47, 1994; Crit Rev Oncol Hematol. 1, p227, 1984)。敗血症は、重篤な全身への感染によって過度な全身炎症反応に達する、致死率４５％を越える深刻な疾病である。大部分の場合、感染した宿主がグラム陰性菌の内毒素(endotoxin)に対して過度に反応する時に発生する。しかし、敗血性ショック治療剤としては、抗生物質、ステロイド製剤又はジグリス(Xigris、イーライリリー社製)が使用されているが、このような抗生物質、ステロイド製剤又はジグリスが敗血症に対して効果が大きくないため、敗血性ショックによる致死率は依然として高い。
【０００５】
よって、本発明者は、民間療法として優れた薬理効能を持つ C.N.鹿茸の多様な成分を分離し、さらにこれらのC.N.鹿茸の有効成分の一つであるモノアセチルジアシルグリセロールが生体内で重要な免疫調節作用をすることを観察した。免疫調節効果の結果として、C.N.鹿茸が生体内で毒性を表さず、敗血性ショック治療及び抗癌作用剤として使用される可能性がある。また、本発明者は、本発明のモノアセチルジアシルグリセロールが、安全な免疫増進剤、免疫調節剤、敗血性ショック治療剤及び抗癌剤として使用できることを確認することで、本発明を完成した。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
従って、本発明の目的は、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、敗血性ショック治療剤、抗癌剤及び健康食品を提供することにある。健康食品は、免疫調節、敗血症、癌の予防及び治療のためのものである。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、免疫増進を含む免疫調節に顕著な効果を果す。ハムスターに癌細胞系を注入して癌の発生を誘導した場合、免疫増進に重要な要素であるリンパ球、単核球及び樹状突起細胞を活性化させることにより癌の進行が遅延され、免疫細胞の癌細胞に対する毒性活性を増進させて癌細胞のアポトーシスが誘導される。また、敗血性ショックが誘導されたマウスの場合、免疫機能の調節及びアポトーシスの抑制効果により、１２０時間以後にも１００％の生存率を見せる。したがって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、免疫調節剤、敗血症治療剤、癌治療剤及び免疫調節又は癌予防のための健康食品用として効果的に使用され得る。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記目的を達成するために、本発明は、下記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤を提供する。
【化１】
ここで、Ｒ１／Ｒ２は、９−オクタデセノイル(オレオイル)／ヘキサデカノイル(パルミトイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９−オクタデセノイル(オレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２−オクタデカジエノイル(リノレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル(リノレノイル)又はヘキサデカノイル(パルミトイル)／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル(アラキドノイル)である。
【０００９】
ここで、次の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が好ましい。
【化２】
また、本発明は、前記化学式１のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有するＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤を提供する。また、本発明は、前記化学式１のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節用又は抗癌用の健康食品を提供する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１１】
本発明は、上記の化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有する免疫調節剤、ＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤を提供する。本発明の化学式１で表される化合物は、下記５つの化合物の何れか１つである。
【００１２】
１)１−オレオイル−２−２パルミトイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝９−オクタデセノイル／ヘキサデカノイル；以下、「化合物１」と称する。)
【００１３】
２)１−パルミトイル−２−オレオイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９−オクタデセノイル；以下、「化合物２」と称する。)
【００１４】
３)１−パルミトイル−２−リノレオイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９,１２−オクタデカジエノイル；以下、「化合物３」と称する。)
【００１５】
４)１−パルミトイル−２−リノレノイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル；以下、「化合物４」と称する。)
【００１６】
５)１−パルミトイル−２−アラキドノイル−３−アセチルグリセロール(Ｒ１／Ｒ２＝ヘキサデカノイル／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル；以下、「化合物５」と称する。)
【００１７】
上記の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体の何れも使用可能であるが、特に化合物３が好ましい。本発明の化合物は、 C.N.鹿茸から抽出されたり、或いは、公知の有機合成法により製造される。抽出方法は次のような段階を有する。特に、C.N.鹿茸のクロロホルム抽出物は、最初にヘキサンによりC.N.鹿茸を抽出し、ヘキサン抽出の残余をクロロホルムにより抽出して得られる。この抽出過程で使用されたヘキサン及びクロロホルムの量は、C.N.鹿茸が十分浸る程度である。一般的には、C.N.鹿茸１ｋｇに対しヘキサン及びクロロホルムを各々４〜５リットルの割合で使用される。このような抽出過程により得られたC.N.鹿茸のクロロホルム抽出物が、一連のシリカゲルコラムクロマトグラフィー及びＴＬＣ(薄膜クロマトグラフィー)により分画化されて精製される。後続抽出段階の溶離液はクロロホルム／メタノール、ヘキサン／エチルアセテートから選択される。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を化学的に合成するためには、例えば、グリセロールとパルミチン酸との反応により生成された生成物から１−パルミトイルグリセリンを分離する。目的とするモノアセチルジアシルグリセロールは、酢酸、リノール酸などのようなカルボン酸化合物で、１−パルミトイルグリセリンをエステル化させることにより合成することができ、必要に応じて精製することができる。モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の他の合成方法は、ホスファチジルコリンのアセトリシス(acetolysis)である。
【００１８】
本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール化合物は、免疫調節剤として有用である。免疫調節は、異常に低下した免疫力の増進、或いは、異常に増加した免疫力の均衡維持を含む。よって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール化合物は、低下した免疫システム及び癌による各種疾患の予防及び治療だけでなく、自己免疫反応による関節炎、アトピー、認知症及び敗血症のような自己免疫疾患の抑制、予防及び治療効能を持つ。
【００１９】
免疫機能の調節における重要なことは、免疫を担当するＴ細胞の増加でなく、これらのＴ細胞の活性化の程度、Ｔ４とＴ８細胞の比率及びＴ４とＴ８細胞から分泌されたサイトカインの種類である。本発明者らは、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体の免疫調節効果を調べるために、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体をＴ−４リンパ球及びＴ−８リンパ球に処理した。その結果、これらの細胞からサイトカインの一種であるＩＬ−２の分泌が増加されることを確認した(図１参照)。また、多量のサイトカインを一度に測定できるバイオ−プレックス(Bio−plex)を用いて本発明の化合物３で細胞を処理した後、Ｔ細胞でのサイトカインの分泌を観察した。その結果、対照群に比べて化合物３で処理した群でＩＬ−２、ＩＬ−４及びＩＬ−５の分泌が大幅に多かった(図２参照)。最も多く増加するサイトカインであるＩＬ−４は、抗炎症サイトカインと呼ばれる多機能サイトカインであって、Ｔ４細胞から分化したＴｈ２から分泌される。Ｔ４がＴｈ１に分化されるのを抑制することで、ＩＬ−４は抗癌効果及び免疫反応の調節に非常に重要な役割を果し、自己免疫反応による細胞損傷も抑制できる(Annu. Rev. Immunol. 1999. 17:701〜738)。本発明の化合物は、ＩＬ−２の分泌刺激による免疫増強と共に、ＩＬ−４の分泌刺激による免疫調節効果を持つ。また、本発明の化合物は、Ｔ４と細胞毒性免疫細胞(cytotoxic immune cell)であるＴ８細胞とを増加及び活性化させ、Ｔ４細胞とＴ８細胞との比を正常に維持できる。よって、免疫体系の異常減少又は異常増加による副作用及び疾患の治療に有用である。敗血性ショックモデルでは、これらの免疫増進の効果がＩＬ−４の分泌刺激及びアポトーシス(apoptosis)を抑制する方向に作用できる。その結果、敗血症の致死率を顕著に低下させることができる。したがって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、ＩＬ−４サイトカインの分泌を増加させるため、例えば、敗血症の予防及び治療など、自己免疫治療に有用である。
【００２０】
細胞間の相互作用が多様な造血細胞及び免疫細胞を刺激すると知られており、特に樹状突起細胞は兔疫体系に非常に重要なものと知られている。本発明者らは、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が分離・誘導された樹状突起細胞及びＴＣＲ(t-cell Receptor)の相互作用にどのような影響を及ぼすかを調査した。このために、化合物３で処理された樹状突起細胞(ＤＣ)のＲＴ−ＰＣＲが遂行され、ＤＣとＴＣＲとの間の相互作用を媒介する接着分子の発現を測定した。その結果、Ｖｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−４、ＶＬＡ−５及びＬＦＡ−１のような接着分子の発現が対照群に比べて増加した(図５参照)。上記の結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞を活性化すると共に、樹状突起細胞を活性化して、それによってＴ細胞が癌細胞の抗原を認識するようになることで、特異的な抗癌効果も持つことを確認した。
【００２１】
以上の結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞を活性化することでサイトカインの分泌を増加させ、細胞間接着分子の発現を増加させることで、造血細胞及び免疫細胞の増殖及び刺激を促進して、免疫力を増加させる効果を持つことを確認した。その結果として、これらの化合物には多様な疾病に対する免疫療法としての使用の可能性があることを確認した。例えば、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ４及びＴ８細胞増殖効果により、人のＡＩＤＳ患者の免疫力を増進させる治療剤又は健康食品として使用され得る。ＡＩＤＳ患者の初期には、Ｔ４が減少するが、深刻な発病は観察されない。一方、ＡＩＤＳ患者の後期には、Ｔ８が減少して深刻な発病が観察される。従って、Ｔ４／Ｔ８の比率が重要な要因になり、Ｔ４およびＴ８の絶対的数字も重要な要因になる。さらに、本発明者らは、ＩＬ−４分泌の増加による免疫機能の調節が各種の自己免疫疾患にも効果的であることを確認した。本発明による化合物の敗血性ショックの予防及び治療としての用途を調査するために、マウスのＣＬＰ(Cecal Ligation and Punctur)テストが行なわれた。その結果、実験した全てのマウスが１２０時間まで生存した。よって、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が敗血性ショック(敗血症)の予防及び治療に有用であることを確認した。このような結果から、本発明によるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、免疫増進効果及び免疫機能調節効果を持つ理想的な免疫調節剤として有利であることを確認した。
【００２２】
また、本発明者らは、本発明の化合物の癌の予防及び治療剤としての用途を調査するために、治療が非常に難しい癌として知られている胆管癌及び悪性黒色腫に対する化合物の抗癌効果を調べた。まず、本発明者らは、胆管癌細胞系であるＫＩＢＧ−５をハムスターに静脈注射及び皮下注射して癌発生を誘導した。続いて、ＲＰＭＩ、ＢＭＳＣ、アデノウイルス／ΔＥ１、樹状突起細胞＋腫瘍 溶菌液、化合物３、アデノウイルス／ＩＬ−２及び混合物をハムスターに注入し、４週間後、その結果が観察された。その結果を肉眼や顕微鏡で観察したところ、樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群、化合物３処理及びアデノウイルス／ＩＬ−２処理群は、腫瘍が形成されなかった(図６参照)。また、腫瘍細胞を静脈注射して８週間後に観察した。その結果、ＢＭＳＣ＋アデノウイルス／ＩＬ−２処理群を除いた全ての群で肺転移病変が形成された。生体組織検査により、樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群及び化合物３処理群で微細な病巣が観察された(図７、図８及び図９参照)。また、腫瘍細胞を皮下注入して１２週間後に観察した。その結果、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２＋化合物３処理群を除いた全ての群で腫瘍が形成された(図１０参照)。腫瘍の形成は化合物３の濃度に依存して抑制された(図１１及び図１２参照)。後述するように、本発明者らは、ハムスターに胆管癌細胞(ＫＩＢＧ−５)を注入して転移性癌を誘導し、ハムスターを本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体で処理した。その結果、本発明のこれらの化合物の処理によって癌発生が著しく抑制されることを確認した。
【００２３】
悪性黒色腫細胞をマウス尻尾の静脈に注入して癌発生を誘導した。続いて、ＲＰＭＩ、樹状突起細胞（ＤＣ）、腫瘍溶菌液及び化合物３で各々又は混合して処理した。その結果、ＲＰＭＩ処理された対照群では肺転移病変が形成されたが、化合物３と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液とで処理した群では肺転移病変が観察されなかった(図１３及び図１４参照)。また、化合物３処理群と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群とでは、腫瘍を注入し、６週間後、その結果を観察したところ、９０％の生存率を見せた(図１５参照)。これらの結果から、本発明者らは、化合物３が抗癌効果を持つ、Ｔ細胞(Ｔ４及びＴ８)を活性化させることを確認した。よって、化合物３で活性化させたＴ−細胞の悪性黒色腫に対する細胞毒性検査をインビトロで実施した。その結果、化合物３でＴ−細胞を処理しなかった時よりも化合物３でＴ−細胞を処理した時、細胞毒性が増加して、また、Ｔ−細胞の量が増加するほど細胞毒性が増加することを観察した(図１６参照)。前述するように、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、癌発生を抑制させ、Ｔ細胞を活性化させて癌細胞に対する毒性を示すことが確認され、抗癌剤として有用であることが示された。本発明の生成物を抗癌剤として使用することは、胆管癌、腎臓癌及び悪性黒色腫に有望であり、他の形態の悪性疾患にも使用しうる。
【００２４】
以後、本発明者らは、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分とする試験用カプセル及び錠剤を製造することにより本発明を完成した。本発明の免疫調節剤、ＡＩＤＳ治療剤、敗血症治療剤及び抗癌剤は、 モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を、化合物の総重量に対して２０〜１００重量％含有することが好ましく、３０〜１００重量％含有することがより好ましい。モノアセチルジアシルグリセロールの量が少なかったり多かったりする場合、投薬し難いだけで特別な利益はない。また、敗血症治療剤、抗癌剤及び免疫調節剤として経口投与する場合には、１日１回〜３回、または1回〜4回、１回５０ｍｇ／ｋｇの用量で投与することが好ましい。本発明による化合物は、有効成分に加えて医薬としての形態で製造するために、本発明の化合物に薬学的に許容される１以上の担体を追加で含むことができる。担体は生理食塩水、緩衝生理食塩水、水、グリセロール及びエタノールからなる群から選ばれるが、これに限定されるものではない。適した公知の医学製剤(Remingtons's Pharmaceutical Science(最新版)、Mack Publishing Company、Easton PA)の何れも使用可能である。本発明の組成物は、経口投与が可能であり、一般的な医薬製剤の形態で使用できる。本発明の組成物は、一般的に使用される充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、分解剤、界面活性剤などの希釈剤又は賦形剤を混合することにより、経口投与用として調製できる。本発明の組成物の有効な投与量は、年齢、性別、健康状態、活性成分の吸収度、不活性率、排泄速度及び共に使用する薬物によって決定され得る。例えば、１日経口投与量は０.２４〜９.０ｇであるが、常にこれに限定されるものではない。また、本発明は用量単位の医学製剤を含む。これは、製剤が個別要素、例えば、錠剤、被覆錠剤、カプセル剤、丸剤、坐薬及びアンプル剤として存在し、これらの活性成分含量は個別投与量の分率又は倍数に該当することを意味する。用量単位は、例えば、個別投与量の１、２、３又は４倍、或いは、１／２、１／３又は１／４倍を含有できる。個別投与量は、好ましくは１回に投与され、通常１日投与量の全部、１／２、１／３又は１／４倍に該当する活性化合物の量を含有する。経口投与のための固形製剤は錠製、丸剤、散剤、及びカプセル剤であり、経口投与のための液状製剤は懸濁剤、液剤、乳剤及びシロップ剤である。前述した製剤はよく使用される水、液状パラフィンのような簡単な希釈剤以外に多様な賦形剤、例えば、湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤を含むことができる。本発明の化合物は、前述した経口投与用製剤だけでなく、注射用製剤として提供され得る。例えば、滅菌注射用の水性又は油性懸濁液は、公知の技術により分散剤、湿潤剤又は懸濁剤を用いて製造できる。薬学的に許容される溶媒は、水、リンゲル液、等張ＮａＣｌ溶液を包含する。滅菌固定オイルは、溶媒又は懸濁媒質として使用され、モノグリセリド、ジグリセリド及びポリプロピレングリコールを含む無刺激性固定オイルおよびオレイン酸のような脂肪酸を含むことができる。
【００２５】
また、本発明は、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分とする免疫調節及び抗癌用の健康食品を提供する。本発明における“健康食品”は、各種疾病の治療や予防、身体機能の均衡的な維持のための食料品、営養剤及び健康補助剤を含む。本発明により製造された健康食品は、０.０２〜１００重量％のモノアセチルジアシルグリセロールを含有する。本発明の化合物を健康食品として使用する場合、前記化合物を完全な化合物として使用したり、他の食品又は食品成分と共に混合して使用する等、通常の方法によって使用することができる。混合化合物の有効量はその使用目的(予防、健康又は治療的処置)による。予防を目的として使用する場合、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の量は、健康食品の総重量に対し、好ましくは０.０２〜２重量％、より好ましくは０.２〜０.６重量％を含む。モノアセチルジアシルグリセロールの量が少なかったり多かったりする場合、健康食品を飲み難いだけで特別な利益はない。細胞毒性検査でも支持された通り、有効成分は健康の調節又は保存を目的とする長期間の摂取でも安全である。本発明の構成物を含有する食品の種類は特別な制限がない。例えば、肉類ソーセージ、パン、スープ、飲料、茶、ドリンク剤、アルコール飲料及びビタミン複合剤が本発明の組成物を含有する健康食品として製造可能である。健康食品が疾病の治療及び予防を目的とする営養剤や健康補助剤として使用される場合、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体の量は、健康食品の総重量に対して２０〜１００重量％、好ましくは３０〜１００重量％、より好ましくは３５〜９５重量％を含む。このとき、１日摂取量は０.１８〜９.０ｇであるが、これに限定されるものではない。製剤は錠剤及びカプセル剤を含む。
【００２６】
前述したように、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、Ｔ細胞の活性化によりサイトカインの分泌を増加させ、細胞間接着分子の発現の増加により造血細胞および免疫細胞を刺激することで、免疫力を増加させ、自己免疫疾患及び癌を予防及び治療する。
【００２７】
以下、本発明の実施形態を本発明のよりよい理解の為に詳細に説明する。但し、後述する実施形態は本発明の例示だけで、本発明はこれに限定されるものではない。
【実施例１】
【００２８】
モノアセチルジアシルグリセロール誘導体がＴ細胞の増殖及び単核球の増殖に及ぼす影響
【００２９】
（実施例１−１）モノアセチルジアシルグリセロール誘導体がＴ細胞の増殖に及ぼす影響
【００３０】
(大韓民国ソウルの牙山研究所の生命科学動物ラボで提供された)Ｃ５７ＢＬ／６マウスの脾臓から脾臓細胞を収集した。繰返し行う吸引(aspiration)及びフラッシング(flushing)により単一細胞懸濁液を得た。塩化アンモニウム(ammonium chloride)を用いて赤血球細胞を除去し、ナイロンウールを通過させながら細胞残屑(debris)と凝集塊(clump)とを除去した。抗ヤギＩｇＧ(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)、あるいは抗マウスＣＤ４(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)又は抗マウスＣＤ８抗体(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)を含む磁性ビーズ(MACS bead、Miltenyi Biotec、bergich gladbach、Germany)を用いてＴ細胞を精製した(Turner and Dockrell(1996)Immunology、87:339−342)。
【００３１】
Ｔ細胞懸濁液は、１０％牛胎児血清(Fetal Bovine serum；以下、“ＦＢＳ”と称する。)(Gibco、Grand Island、NY)が補充されたＩＭＤＭ(Isocove's modified dulbecco's medium)(Gibco、Grand Island、NY)で懸濁された。(大韓民国ソウルの梨花女子大学で合成し提供された)１μｇ／ｍｌの化合物１、２、４、５と、０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度の化合物３と、２０ｎｇ／ｍｌ濃度のＩＬ−２とを処理して、９６ウェルプレートで、ウェル別に５×１０４の生育可能な細胞を培養した。 培養６日目に３Ｈ−チミジンを各細胞培養ウェル当たり１μＣｉで処理して２４時間培養した。培養７日目に細胞を回収して、下記の数式１によってＳＩ(incorporation index)を計算した。
【００３２】
(数１)
ＳＩ＝実験群のウェルから吸収された３Ｈ−チミジン(サンプルのＣＰＭ)／対照群のウェルから吸収された３Ｈ−チミジン(対照群のＣＰＭ)
【００３３】
その結果、モノアセチルジアシルグリセロール誘導体処理群では、２.０５チミジンの取り込みによりＴ細胞のＳＩが２.０５に増加した。これはＩＬ−２処理群のものと類似した(表１)。
【表１】
上記表において、＊Ｐ＜０.０５、＊＊Ｐ＜０.００５であり、全ての検査は、３重に遂行され、３回繰返された。
(実施例１−２)モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が単核球の増殖に及ぼす影響
【００３４】
ヒストパク(Histopaque)１０７７を用いて人間の全血(whole blood)から単核球を分離した。続いて、５％ＣＯ２培養器で３時間、単核球細胞(５×１０６細胞／mｌ)が組織培養フラスコに付着するようにした。３時間後、付着されない細胞を除去し、付着細胞を１０％ＦＢＳが補充されたＲＰＭＩ １６４０培地(GIBCO、Grand Island、NY)内の９６ウェルプレートにのせる。各ウェル当たり生育できる細胞５×１０４個を１μｇ／ｍｌ濃度の化合物１〜５と共に９６−ウェルプレートで培養した。６日目に細胞を各ウェル別に１μＣｉ３Ｈ−チミジンを用いて２４時間培養した。７日目に細胞を回収した後、取り込まれた３Ｈ−チミジンを測定した。ＳＩは上記式１によって計算された。その結果、化合物１〜５処理群は、対照群に比べて単核球のＳＩ数値が１０.６８倍増加し、これは化合物が単核球の増殖を刺激することを意味する(表２)。
【表２】
上記表において、＊Ｐ＜０.００１であり、全ての検査は、３重に遂行され、２回繰返された。
【実施例２】
【００３５】
化合物３がＴ細胞の活性に及ぼす影響
【００３６】
（実施例２−１）エリスポット(Elispot)によるサイトカイン測定
エリスポット生物定量法(ESAT−６enzyme−linked immunospot assay)は、この定量法で使用されるエリスポットプレートの各ウェルの底面がサイトカイン特異的な抗体で予めコートされているため、メンブレンに結合したサイトカインを検出するのに非常に敏感な定量法である。従って、エリスポット定量法によりＴ細胞の活性を測定した。Ｔ細胞を２４ウェル滅菌組織培養プレート(Nunc、Denmark)に各ウエル当たり２×１０６細胞を接種した後、化合物３の０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度、或いは、ＩＬ−２の２０ｎｇ／ｍｌ濃度で処理した。７日目に細胞を回収して、１次抗体(マウスＩＬ−２)でコートされたマルチテストプレート(Elispot system kit、AID、Straberg、Germany)に５×１０５細胞を接種した。上記プレートを２４時間５％ＣＯ２培養器で培養した後、細胞によるサイトカインの分泌があった。これは、製造会社の指針に従って市販のＩＬ−２エリスポットキットを用いるエリスポットにより決定される１次抗体によりキャップチャされた。各サンプルに対して２回実験した。エリスポット読取機(AID Elispot Reader System)を用いてエリスポットによりＩＬ−２を産生する細胞の数を算出した。その結果、化合物３処理群は、対照群に比べて１.５２倍増加したＴ−４活性と、１.４６倍増加したＴ−８活性とを示した(図１)。
【００３７】
（実施例２−２）バイオ−プレックスを用いたサイトカイン測定
バイオ−プレックスは、１つのウェルで多量のサイトカインを一度に測定できる。よって、バイオ−プレックスキットは、Ｔ細胞の活性化の際、分泌されるＴｈ１／Ｔｈ２経路の８種のサイトカインを定量するのに用いられた。２４−ウェル滅菌組織培養プレート(Nunc、Denmark)を抗ＣＤ３および抗ＣＤ２８で処理した。プレートに２×１０6／ｍｌのＴ細胞が接種された。Ｔ細胞を活性化するために、０.１、１μｇ／ｍｌ化合物３で処理した後、５日間培養した。５日目、各段階にある培養液を回収して遠心分離した。上清液を回収し、その内部に分泌されたサイトカインをバイオ−プレックスキットを用いて製造会社(Bio−rad)の指針に従って定量化した。その結果、化合物３で処理した群において、８種のサイトカイン(ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−１０、ＩＬ−１２、ＩＮＦ−γ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＴＮＦ−α)のうちの３種(ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５)が分泌され、その量は化合物３を処理しない対照群に比べて多かった(図２)。
【実施例３】
【００３８】
Ｔ細胞の増殖の分析
化合物３がＡＩＤＳ患者の免疫細胞に及ぼす影響を確認するために、次のような実験を遂行した。まず、ＡＩＤＳ患者の末梢血液からヒストパク(Histopaque)１０７７によって単核球細胞を回収した。塩化アンモニウムを用いて赤血球 細胞を除去した後、ナイロンウールを通過させながら細胞残屑と凝集塊とを除去した。Ｔ細胞をマグネチックビーズ(抗ヒトＣＤ３)(MACS bead、Miltenyi Biotec)を用いて精製した。Ｔ細胞懸濁液は、１０％牛胎児血清(Fetal Bovine serum；以下、“ＦＢＳ”と称する。)(Gibco、Grand Island、NY)が補充されたＩＭＤＭ(Isocove's modified dulbecco's medium)(Gibco、Grand Island、NY)で懸濁された。９６ウェルプレートで、０.０１、０.１、１μｇ／ｍｌ濃度の化合物３または２０ｎｇ／ｍｌ濃度のＩＬ−２とで処理して、ウェル別に５×１０４生育可能な細胞を培養した。培養６日目に３Ｈ−チミジンを各細胞培養ウェル当たり１μＣｉで処理して２４時間培養した。培養７日目に細胞を回収して３Ｈ−チミジンの取り込みを計算した。ＳＩ(刺激指数)は前述した式１により計算された。その結果、表３に示すように、ＡＩＤＳ患者の場合、Ｔ細胞の増殖アッセイで、化合物３処理群における全ての患者(４名中の４名)のチミジンの摂取によるＴ細胞刺激指数が、対照群に比べて１.５〜３.９倍増加したことが表された。化合物３による刺激の全般的な結果は、ＩＬ−２による刺激と比較可能である。
【表３】
【実施例４】
【００３９】
化合物３が樹状突起細胞の接着分子の発現に及ぼす影響
【００４０】
（実施例４−１）樹状突起細胞の培養
骨髄細胞は、Ｂａｌｂ／ｃ ＡｎＮマウスの大腿骨及び脛骨から公知の方法により回収した(Park,J.etal.(2003)J.Korean Med. Sci.,18:372−380)。細胞をＲＰＭＩで３回洗浄した後、単核球を回収した。これらの単核球細胞をＲＰＭＩ及び１０％ＦＢＳ内で３時間組織培養フラスコに付着されるようにした。培養後、付着細胞(単核球細胞)を除去した後、マウスｒＧＭ−ＣＳＦ(R＆D systems, Minneapolis, MN, USA)２０ｎｇ／ｍｌ、およびマウスＩＬ−４(R＆D systems)１０ｎｇ／ｍｌ及びマウスＴＮＦ−α(R＆D systems)２.５ｎｇ／ｍｌが補充された、１０％ＦＢＳ追加のＲＰＭＩ中、未付着細胞を１×１０５細胞／ｍｌにて１００ｍｍ織培養皿に配置した。培養皿は３日毎に交換した。マウスＴＮＦ−α(R＆D systems)を６日目に添加した後、１１日になるまで３日毎に添加した。成熟樹状突起細胞は接着分子研究のＲＴ−ＰＣＲ用として採取された。その結果、円形の顆粒細胞を３日間培養したとき、これらの細胞は細胞培養プレートのウェルの底面に付着して成長するクラスターを形成し、成熟樹状突起細胞は培養６日又は７日目に群を形成しながら成長した。培養９日目に樹状突起細胞が特異的に小さく長い突起(protrusion)を形成した(図３)。
【００４１】
（実施例４−２）樹状突起細胞の表現型の決定
トリパンブルー染色に対して陰性であり、サイズが大きい細胞を計数して、これらのそれぞれの形態を調べた。１×１０６細胞／ｍｌの細胞を培養した後、洗浄し、１％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。固定された細胞はＦＡＣＳｃａｎ(Beckton Dickinson、Mountain View、CA、U.S.A)を用いてフローサイトメトリー解析(Flow cytometric analysis)を行うことで、下記のマーカーに対する抗体によって表現型を決定した。ハムスターＩｇＧに対する同型(isotype)対照群、ラットＩｇＧ２ａ、ＤＣマーカー：ＤＥＣ−２０５(ＮＬＤＣ−１４５)及びＣＤ１１Ｃ、共同−刺激／接着(Co−stimutatory／adhesion)分子:ＣＤ８０(Ｂ７−１)及びＣＤ８６(Ｂ７−２)、マクロファージマーカー:ＣＤ１４及びＦ４／８０、顆粒球(Granulocyte)マーカー:Ｇｒ−１(Pharmingen、Hamburg、Germany)。その結果、共同−刺激特異的分子マーカーであるＣＤ８０及びＣＤ８６、樹状突起細胞特異的マーカーであるＣＤ１１Ｃ及びＤＥＣ−２０５の水準は高かったが、単核球特異的マーカーであるＣＤ１４及びＦ４／８０と、顆粒球特異的マーカーであるＧｒ−１との水準は低かった。このような結果は、本発明で分離された樹状突起細胞が、樹状突起細胞の正確な表現型と９７％〜９８％の純度とを持つことを意味する(図４)。
【００４２】
（実施例４−３）接着分子の処理及び発現分析
一般的に、細胞間の相互作用が、多様な造血細胞及び免疫細胞の刺激の過程に関与することが知られている。よって、本発明者らは、化合物３が言及された細胞の多様な接着分子に影響を及ぼすかを確認しようと努力した。特に、前述した実施例で培養した樹状突起細胞を化合物３で１μｇ／ｍｌ濃度で処理し、ＲＴ−ＰＣＲを遂行した。
【００４３】
次のプライマー：Ｉｃａｍ−１(配列表の配列番号１及び２)、Ｉｃａｍ−２(配列表の配列番号３及び４)、Ｖｃａｍ−１(配列表の配列番号５及び６)、ＶＬＡ−４(配列表の配列番号７及び８)、ＶＬＡ−５(配列表の配列番号９及び１０)、ＬＦＡ−１(配列表の配列番号１１及び１２)及びＧＡＰＤＨ(配列表の配列番号１３及び１４)をＲＴ−ＰＣＲ用として使用した。ここで使用された反応セットは、２μｌのＤＮＡ、１０ｘ緩衝液、１.５μｌのＭｇＣｌ２、２μｌのｄＮＴＰ、０.５μｌのフォワードプライマー、０.５μｌのリバースプライマー、０.２μｌのポリメラーゼ及び１５.８μｌの蒸溜水からなる混合液であった。
【００４４】
オリゴ(ｄｔ)−プライマーを用いて培養した低密度細胞であるＭＳ−５及び樹状突起細胞から分離したトータルＲＮＡを逆転写させ、９４℃で３０秒、６５℃で３０秒及び７２℃で５０秒ＰＣＲを遂行した。ＰＣＲ遂行回数は総３４回、ＰＣＲ生成物は遂行毎に２倍ずつ増加した。ＲＴ−ＰＣＲによりＶｃａｍ−1、Ｉｃａｍ−１、Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−４、ＶＬＡ−５、およびＬＦＡ−１のような接着分子の発現を確認した。定量のために、ＧＡＲＤＨに対するＰＣＲを遂行して、相応するｃＤＮＡを確認した。その結果は、化合物３で処理した樹状突起細胞に対する接着分子Ｉｃａｍ−２、ＶＬＡ−５、ＬＦＡ−１の発現が、対照群に比べて非常に増加したことを示した(図５)。
【実施例５】
【００４５】
皮下注入法(ローカルモデル)及び静脈注入法(全身モデル)による化合物３の抗癌効果に関する検討
【００４６】
（実施例５−１）胆管癌ハムスターモデル
６週齢の雌のシリアンゴールデンハムスター(Harlan、Indianapolis、India、USA)を特定病原菌不在飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＢＧ−５細胞(Molcular therapy、Vol.3、No4、pp431−437)５×１０５を、大腿部血管に静脈注射(intravenously inject、I.V)した。また、無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＧＢ−５の５×１０５細胞は、ハムスターの横腹に皮下注射(subcutaneously inject、S.C)された。ＫIＢＧ−５注入されたハムスターは、下記の７つの群に分けた;
１)ＲＰＭＩ培地処理された対照群、
２)変形されないＢＭＳＣ細胞(２.５×１０６)(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)で処理された実験群、
３)Ａｄ／ΔＥ１５０ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)、
４)ＤＣ＋腫瘍溶菌液(５×１０６)処理された実験群、
５)Ａｄ／ｈＩＬ−２ ５０ ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群(Leukemia & Lymphoma,Vol.44,No11,pp1973−1978)、
６)Ａｄ／ｈＩＬ−２ ５０ ＭＯＩ改変ＢＭＳＣ細胞処理された実験群＋化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理された実験群、及び
７)化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理された実験群。
【００４７】
ハムスターに癌細胞を注入(ＢＭＳＣ処理群)した１週間後、ＢＭＳＣ細胞２.５×１０６個を各ハムスターに再注入した。ＤＣ＋腫瘍溶菌液(５×１０６)処理群の場合、ＤＣ細胞の５×１０６及び腫瘍溶菌液を１週、２週、３週、４週、６週及び８週のときに各ハムスターに注入(皮下注射又は静脈注射)し、１２週間観察した。化合物３処理群の場合、ＫＩＢＧ−５細胞注射の１週間前に、化合物３の経口投与にて、２週間処置及び１週間休みの形式で８週間処置した。
【００４８】
その結果、癌細胞注入してから４週間目に、対照群であるＲＰＭＩ処理群、ＢＭＳＣ処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群には腫瘍が形成されたが、ＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群、化合物３処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ＩＬ−２処理群には腫瘍が発見されなかった(図６)。また、癌細胞を注入してから８週間目に、対照群であるＲＰＭＩ注入群、ＢＭＳＣ処理群及びＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１注入群では多発的肺転移病変が発見され、ＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群及び化合物３処理群ではただ一つの小さな肺病変が発見された。しかしながら、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ＩＬ−２処理群では病変が発見されなかった(図７〜図９)。また、癌細胞の皮下注入してから１２週間目に、対照群であるＲＰＭＩ処理群、ＢＭＳＣ処理群、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群及びＤＣ＋腫瘍溶菌液処理群では腫瘍が形成され、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２処理群では１匹で５ｍｍ以下の腫瘍が発見された。しかしながら、ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ｈＩＬ−２＋化合物３処理群では腫瘍が全く形成されなかった(図１０)。
【００４９】
一方、６週齢の雌のシリアンハゴールデンハムスターを特定病原菌不在飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＫＩＢＧ−５細胞(５×１０５)を大腿部血管に静脈注射した。ハムスターは、下記の４つの群に分けた;１)ＰＢＳ対照群、２)化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群、３)化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群、４)化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。腫瘍細胞注入１週間前、化合物３の経口投与を(１０、２５又は５０ｍｇ／ｋｇ／日)、２週間処置及び１週間休みの形式で１２週間行った。各群の動物は、４週間目、８週間目及び１２週間目に病理検査に供された。４週間目の肉眼観察から、対照群において注入位置で腫瘍が発現され、化合物３(１０、２５、５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群では腫瘍が発見されかった。また、８週間目、対照群は両側肺に多発的肺転移病変が観察された。化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群は肉眼では多発的肺転移病変が全く観察されなかったが、顕微鏡により一つの微細な病変が観察された。化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群では左側肺に腫瘍が見られた(図１１および図１２)。
【００５０】
（実施例５−２）黒色腫マウスモデル
６週齢の雌Ｃ５７ＢＬ／６マウス(韓国ソウルの牙山生命科学研究所で提供)を無菌飼育場で飼育した。無血清ＲＰＭＩ １６４０培地１００μｌに懸濁されたＢ１６Ｆ１０細胞(２×１０４)を尻尾静脈に注射した。腫瘍細胞注入１週間前、下記の３群に処理された。
１)ＲＰＭＩ対照群
２)樹状突起細胞(ＤＣ)(５×１０５細胞／日)＋腫瘍溶菌液処理群
３)化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群
【００５１】
樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群の場合、黒色腫細胞注入１週間前、１週間おきに腫瘍溶菌液と混合された５×１０５ＤＣ細胞を腹腔に注入した。化合物３処理群においては化合物３の５０ｍｇ／ｋｇ／日がこの各マウスに処理された。黒色腫(Ｂ１６Ｆ１０)注入１週間前、２週間処置及び１週間休みの形式で６週間化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)を経口投与した。その結果、４週間目の肉眼による発見から、対照群において両側肺に多発的肺転移病変が観察された。化合物３処理群と樹状突起細胞＋腫瘍溶菌液処理群は、肺転移病変が全く観察されず(図１３及び図１４)、黒色腫(Ｂ１６Ｆ１０)注入後、６週間の観察で９０％生存率を示した(図１５)。
【００５２】
化合物３の抗癌効果が化合物３のＴ細胞による活性化に因るという推定に基づいて、化合物３で活性化されたＴ細胞の悪性黒色腫細胞に対する細胞毒性検査を実施した。その結果、化合物３で活性化されたＴ細胞と黒色腫細胞との比率が１００：１のとき、細胞毒性は４２％増加した(図１６)。
【実施例６】
【００５３】
化合物３の毒性試験
合成した化合物３を、２０ｇ当り０.１ｍｌ容量で経口投与されるエタノール５％溶液に溶かした。対照群はエタノール５％溶液で処理された。ＳＰＦ設備内で飼育されたＩＣＲマウスを検査動物として使用した。薬物投与１日前、その動物を捕獲した後、水や飼料は自由に摂取させた。体重２５〜３５ｇのＩＣＲマウス８〜１０匹を一つの群とした。投与量を６２.５ｍｇ／ｋｇ、１２５ｍｇ／ｋｇ、２５０ｍｇ／ｋｇ、５００ｍｇ／ｋｇ、１ｇ／ｋｇ、２ｇ／ｋｇに増加させながら、試験薬は１回経口投与された。生存数及び異常の有無を投与日から１４日間肉眼で観察した。ＬＤ５０はLichfield-Wilcoxon法に`より計算し(白須、泰彦、吐山、豊秋：新毒性試験法−方法及び評価−急性毒性試験、Realize Inc.、Tokyo、1988)、体重増加率は次の数式２によって算出した。
【００５４】
(数２)
体重増加率(％)={１４日目の体重−０日目の体重}÷{０日目の体重}×１００
【００５５】
結果は表４に示す。６２.５ｍｇ／ｋｇ〜２ｇ／ｋｇの化合物３では、毒性が全く検出されなかった。このような観察から、ＬＤ５０が全部２ｇ／ｋｇ以上であることを意味した。また、投与後１４日間の観察の際、異常信号は肉眼で観察されなかった。処理群内の動物の体重は、対照群動物と同様に継続的に増加した。表５に示すように、重要で且つ治療に特異的な体重変化(増加又は減少)は、観察されなかった。
【表４】
【表５】
長時間の肝毒性検査は、化合物３の投与量を１００ｍｇ／ｋｇ体重／日としてマウスに４週間経口投与して実施し、肝機能検査、血中脂質検査及びシトクロームＣ−４５０活性度検査が観察された。４週末に肝組織が観察された。どのような重大な副作用も観察されなかった。
【実施例７】
【００５６】
ＣＬＰ(Cecal Ligation and Puncture)テスト
ＣＬＰテストは、上記化合物３の敗血性ショックに対する予防及び治療効果を確認するために行われた。１０匹の７〜１０週齢の同種交配雄Ｃ３Ｈ／ＨｅＮマウス(体重２０〜２５ｇ)を一つの群として形成した。これらのマウスに２週間５０ｍｇ／ｋｇ／日の容量で処置し、１週間休みの形式で化合物３を経口投与した後、ケタミン(ketamine)８０ｍｇ／ｋｇ及びロムパン(rompun)１６ｍｇ／ｋｇを使用してマウスを麻酔した。麻酔されたマウスにＣＬＰモデルによる敗血性ショックを誘導させた。敗血性ショックを誘導していから１時間後、化合物３の５０ｍｇ／ｋｇで処理し、以後、２４時間毎に同様な処理が３日間継続された。対照群にＰＢＳ＋５％エタノール溶液が経口投与された。化合物３処理群及び対照群の時間経過に従う生存率を表６に示す。化合物３処理群は１２０時間経過後にも１００％の生存率を見せた。
【表６】
（製造例１）化合物３を有効成分として含有する医薬品の製造
【００５７】
上記実験例により化合物３が優れた免疫調節及び抗癌活性を持つことを確認した後、本発明者らは化合物３を有効成分として含有する治療剤を製造した。また、化合物３を有効成分として含有する治療剤の下記製造例は、治療剤の製造だけでなく、健康食品の製造にも応用できる。下記の製造例において、％は別途の言及がなければ重量％を示す。
【００５８】
（製造例１−１）軟質ゼラチンカプセルの製造
【００５９】
（製造例１−１−１）
化合物３ ３０％
ビタミンＣ ４.５％
ビタミンＤ３ ０.００１％
硫酸マンガン ０.１％
ワックス(Wax) １０％
パーム油 ２５％
紅花油(Carthamus tinctorius) ３０.３９９％
【００６０】
（製造例１−１−２）
化合物３ ３１.２５％
月見草オイル ５９.７５％
大豆油 ６.７％
ビタミンＥ酢酸エステル(ＤＬ-α- 酢酸トコフェロール)２.１％
大豆レシチン ０.２％
【００６１】
（製造例１−１−３）
化合物３ ９８.０％
ビタミンＥ酢酸エステル(ＤＬ-α- 酢酸トコフェロール)２.０％
【００６２】
（製造例１−２）錠剤の製造
化合物３ ３０％
ビタミンＣ １０％
ビタミンＤ３ ０.００１％
硫酸マンガン ０.１％
結晶セルロース ２５.０％
乳糖 ３２.９９９％
ステアリン酸マグネシウム ２％
【００６３】
（製造例１−３）注射用製剤の製造
化合物３ ２％
プロピレングリコール ３５％
モノグリセリド ８％
エタノール ５％
水 ５０％
前述した組成及び含量に基づき、通常の方法を用いて注射用製剤を製造した。
【００６４】
（製造例２）化合物１、２、４及び５を各々有効成分として含有する医薬品の製造
【００６５】
化合物３の代りに、各々化合物１、２、４及び５を同比率で使用した以外は、前述した製造例１と同様な方法及び組成により、軟質ゼラチンカプセル、錠剤及び注射剤懸濁液を製造した。
【００６６】
（製造例３）化合物３を有効成分として含有する健康食品の製造
前記実験例により化合物３が優れた免疫調節効果、抗敗血性ショック及び抗癌活性を持つことを確認した後、本発明者らは化合物３を有効成分として含有する健康食品を製造した。
【００６７】
（製造例３−１）飲料の製造
蜂蜜 ５２２ｍｇ
チオクト酸アミド ５ｍｇ
ニコチン酸アミド １０ｍｇ
塩酸リボフラビンナトリウム ３ｍｇ
塩酸ピリドキシン ２ｍｇ
イノシトール ３０ｍｇ
オルト酸 ５０ｍｇ
化合物３ ０.４８〜１.２８ｍｇ
水 ２００ｍｌ
前述した組成及び含量に基づき、通常の方法を用いて飲料を製造した。
【００６８】
（製造例３−２）チューインガムの製造
ガムベース ２０％
砂糖 ７６.３６〜７６.７６％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
フルーツ香料 １％
水 ２％
チューインガムは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００６９】
（製造例３−３）キャンディの製造
砂糖 ５０〜６０％
水飴 ３９.２６〜４９.６６％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
オレンジ香料 ０.１％
キャンディは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７０】
（製造例３−４）ビスケットの製造
強力粉１級 ８８ｋｇ
薄力粉１級 ７６.４ｋｇ
精白糖 １６.５ｋｇ
食塩 ２.５ｋｇ
グルコース ２.７ｋｇ
パームショートニング ４０.５ｋｇ
アンモ ５.３ｋｇ
重曹 ０.６ｋｇ
重硫酸ナトリウム ０.５５ｋｇ
コメ粉 ５.０ｋｇ
ビタミンＢ１ ０.００３ｋｇ
ビタミンＢ２ ０.００３ｋｇ
ミルク香料 ０.１６ｋｇ
水 ７１.１ｋｇ
全脂粉乳 ４ｋｇ
代用粉乳 １ｋｇ
第１リン酸カルシウム ０.１ｋｇ
散布塩 １ｋｇ
噴霧乳 ２５ｋｇ
化合物３ ０.２〜０.５ｋｇ
ビスケットは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７１】
（製造例３−５）アイスクリームの製造
乳脂肪 １０.０％
無脂乳固形分 １０.８％
砂糖 １２.０％
水飴 ３.０％
乳化安定剤(スパン) ０.５％
香料(ストロベリ) ０.１５％
水 ６３.３１〜６２.９１％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
アイスクリームは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７２】
（製造例３−６）チョコレートの製造
砂糖 ３４.３６〜３４.７６％
ココアバター ３４％
ココアマット １５％
ココアパウダー １５％
レシチン ０.５％
バニラ香料 ０.５％
化合物３ ０.２４〜０.６４％
チョコレートは、前記組成及び含量に基づき、下記の通常の方法を用いて製造した。
【００７３】
（製造例４）化合物１、２、４及び５を有効成分として含有する健康食品の製造
【００７４】
化合物３の代りに、各々化合物１、２、４及び５を同比率で使用した以外は、前記前述した製造例３と同様な方法及び組成に基づき、飲料、チューインガム、キャンディ、ビスケット、アイスクリーム及びチョコレートを製造した。
【図面の簡単な説明】
【００７５】
【図１】対照群、ＩＬ−２処理群(２０ｎｇ／ｍｌ処理)及び化合物３処理群(１μｇ／ｍｌ処理)のＴ細胞(Ｔ−４及びＴ−８)活性を示す写真セットである。各数字はＩＬ−２特異的抗体を捕獲したスポットの個数を示す。
【図２】化合物３によるＴリンパ球の活性化時のサイトカインの分泌を示すグラフである。 （１）対照群：抗ＣＤ３、抗ＣＤ２８処理群 （２）実験群：抗ＣＤ３、抗ＣＤ２８および化合物３(０.１、１μｇ ／ｍｌ)処理群
【図３】ＧＭ−ＣＳＦ(２０ｎｇ／ｍｌ)、ＩＬ−４(２０ｎｇ／ｍｌ)及びＴＮＦ−α(５ｎｇ／ｍｌ)を処理した後、マウス骨髄細胞由来マウス樹状突起細胞(ＤＣ)の形態を示す写真である。 Ａ：マウス骨髄細胞を１×１０６細胞数／ｍｌ密度に接種した直後の顕微鏡写真(×１００)である。 Ｂ：３日間の培養後、丸い骨髄幹細胞を示す顕微鏡写真(×４００)であって、前記細胞はクラスターを形成し、細胞培養プレートウェルの底面に付着して成長する。 Ｃ：培養６日目または７日目にクラスターを形成しつつある成熟樹状突起細胞の成長を示す顕微鏡写真(×４００)であって、小さな写真は特定細胞の拡大写真(×２)である。 Ｄ：培養９日目の樹状突起細胞が特異的に長くて小さな突起(protrusion)を形成する樹状突起細胞の顕微鏡写真(×１０００)であって、小さな写真は特定細胞の拡大写真(×２)である。
【図４】Ｂａｌｂ／ｃ ＡｎＮマウスから分離した骨髄細胞の培養１１日目の樹状突起細胞の特異的マーカー、単核球特異的マーカー及び顆粒球特異的マーカーの発現を分析したＦＡＣＳ結果を示すグラフである(このとき、ハムスターＩｇＧ及びラットＩｇＧ２ａに対する異性体対照群染色がセッティングマーカー系(直線)として使用された)。 下記のマーカーが使用される。 共同刺激特異的マーカーとしてＣＤ８０及びＣＤ８６ 樹状突起細胞特異的マーカーとしてＣＤ１１ｃ及びＤＥＣ−２０５ 単核球／大食細胞特異的マーカーとしてＣＤ１４及びＦ４／８０ 顆粒球特異的マーカーとしてＧｒ−１
【図５】接着分子の発現に対する樹状突起細胞の化合物３の影響を示す電気泳動写真である。 レーン１:Ｖｃａｍ−１ レーン２:Ｉｃａｍ−１ レーン３:Ｉｃａｍ−２ レーン４:ＶＬＡ−４ レーン５:ＶＬＡ−５ レーン６:ＬＦＡ−１ レーン７:ＧＡＰＤＨ (＋)：化合物３処理群、 (−)：対照群。
【図６】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、異なる条件で処理して４週間後、注入部位の近所での腫瘍形成結果を示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ＋Ａｄ／ΔＥ１処理群。
【図７】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、異なる条件で処理して８週間後、注入部位の近辺での腫瘍形成結果を示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｄ：樹状突起細胞(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｅ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｆ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図８】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、８週間後、各群での肺転移病変を肉眼や顕微鏡による観察を示す写真である。 図８において、 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｄ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群
【図９】腫瘍ＫIＧＢ−５を静脈注射し、８週間後、各群での肺転移病変を肉眼や顕微鏡による観察を示す写真である。 図９において、 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１０】腫瘍ＫIＧＢ−５を皮下移植し、１２週間後、各群の肺腫瘍及びそのサイズを示す写真である。 Ａ：ＲＰＭＩ対照群 Ｂ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ΔＥ１(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｃ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)処理群 Ｄ：ＤＣ(５×１０６細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｅ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)処理群 Ｆ：ＢＭＳＣ(２.５×１０６細胞／日)＋Ａｄ／ＩＬ−２(５０ ＭＯＩ)＋化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｇ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１１】胆管癌細胞(５×１０５細胞)を注入し、８週間後、化合物３の多様な容量で処理されたシリアンハゴールデンハムスターの各群の肺転移病変の肉眼所見を示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｄ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１２】胆管癌細胞(５×１０５細胞)を注入し、８週間後、化合物３の多様な容量で処理されたシリアンハゴールデンハムスターの各群の肺転移病変の顕微鏡所見を示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：化合物３(１０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｃ：化合物３(２５ｍｇ／ｋｇ／日)処理群 Ｄ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１３】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、４週間後、多様に治療されたＣ５７Ｂ１／６マウスのそれぞれの肺転移病変が肉眼で発見されることを示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(４×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１４】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、４週間後、多様に治療されたＣ５７Ｂ１／６マウスのそれぞれの肺転移病変が肉眼で発見されることを示す写真である。 Ａ：ＰＢＳ対照群 Ｂ：樹状突起細胞(４×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群 Ｃ：化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１５】黒色腫細胞(２×１０４細胞)を静脈注入し、６週間の各処理群の生存率を示すグラフである。（１）ＲＰＭＩ対照群、（２）樹状突起細胞(５×１０５細胞／日)＋腫瘍分解処理群、（３） 化合物３(５０ｍｇ／ｋｇ／日)処理群。
【図１６】黒色腫細胞に対する化合物３により活性化されたＴリンパ球の細胞毒性を示すグラフである。（１） 対照群１：抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８処理群（２） 対照群２： 抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８とＩＬ−２(２０ｎｇ／ｍｌ)処理群（３） 実験群： 抗ＣＤ３、 抗ＣＤ２８と化合物３(１μｇ／ｍｌ)処理群
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、免疫調節剤。
【化１】
ここで、Ｒ１／Ｒ２は、９−オクタデセノイル(オレオイル)／ヘキサデカノイル(パルミトイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９−オクタデセノイル(オレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２−オクタデカジエノイル(リノレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル(リノレノイル)又はヘキサデカノイル(パルミトイル)／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル(アラキドノイル)である。
【請求項２】
前記化学式１で表される前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、次の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロールであることを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【化２】
【請求項３】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、Ｔ−細胞内のＩＬ−２、ＩＬ−４及びＩＬ−５からなる群から選択されるサイトカインの分泌を刺激することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項４】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、自己免疫反応による細胞損傷を抑制することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項５】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、ＩＬ−４の分泌を刺激し、Ｔ４及びＴ８細胞の両方を増殖及び活性化させるように機能することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項６】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、免疫調節剤の総重量に対して２０〜１００重量％含有されていることを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項７】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、ＡＩＤＳ治療剤。
【請求項８】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、敗血症治療剤。
【請求項９】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、抗癌剤。
【請求項１０】
前記抗癌剤が、胆管癌、腎臓癌又は悪性黒色腫の治療剤に用いられることを特徴とする、請求項９に記載の抗癌剤。
【請求項１１】
前記抗癌剤が、Ｔ−細胞が癌細胞の抗原を認識することができるように樹状突起細胞を活性化させることを特徴とする、請求項９に記載の抗癌剤。
【請求項１２】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、免疫調節用又は癌予防用の健康食品。
【請求項１３】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、健康食品の総重量に対して０.０２〜１００重量％含有されることを特徴とする、請求項１２に記載の健康食品。
【請求項１】
下記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、免疫調節剤。
【化１】
ここで、Ｒ１／Ｒ２は、９−オクタデセノイル(オレオイル)／ヘキサデカノイル(パルミトイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９−オクタデセノイル(オレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２−オクタデカジエノイル(リノレオイル)、ヘキサデカノイル(パルミトイル)／９,１２,１５−オクタデカトリエノイル(リノレノイル)又はヘキサデカノイル(パルミトイル)／５,８,１１,１４−エイコサテトラエノイル(アラキドノイル)である。
【請求項２】
前記化学式１で表される前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体は、次の化学式２で表されるモノアセチルジアシルグリセロールであることを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【化２】
【請求項３】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、Ｔ−細胞内のＩＬ−２、ＩＬ−４及びＩＬ−５からなる群から選択されるサイトカインの分泌を刺激することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項４】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、自己免疫反応による細胞損傷を抑制することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項５】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、ＩＬ−４の分泌を刺激し、Ｔ４及びＴ８細胞の両方を増殖及び活性化させるように機能することを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項６】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、免疫調節剤の総重量に対して２０〜１００重量％含有されていることを特徴とする、請求項１に記載の免疫調節剤。
【請求項７】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、ＡＩＤＳ治療剤。
【請求項８】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、敗血症治療剤。
【請求項９】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、抗癌剤。
【請求項１０】
前記抗癌剤が、胆管癌、腎臓癌又は悪性黒色腫の治療剤に用いられることを特徴とする、請求項９に記載の抗癌剤。
【請求項１１】
前記抗癌剤が、Ｔ−細胞が癌細胞の抗原を認識することができるように樹状突起細胞を活性化させることを特徴とする、請求項９に記載の抗癌剤。
【請求項１２】
前記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール誘導体を有効成分として含有することを特徴とする、免疫調節用又は癌予防用の健康食品。
【請求項１３】
前記モノアセチルジアシルグリセロール誘導体が、健康食品の総重量に対して０.０２〜１００重量％含有されることを特徴とする、請求項１２に記載の健康食品。
【図１】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図２】
【図３】
【図４】
【図５】
【図６】
【図７】
【図８】
【図９】
【図１０】
【図１１】
【図１２】
【図１３】
【図１４】
【図１５】
【図１６】
【図２】
【公表番号】特表２００７−５３４６８１（Ｐ２００７−５３４６８１Ａ）
【公表日】平成１９年１１月２９日（２００７．１１．２９）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００７−５０９４００（Ｐ２００７−５０９４００）
【出願日】平成１７年４月２２日（２００５．４．２２）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＫＲ２００５／００１１７５
【国際公開番号】ＷＯ２００５／１１２９１２
【国際公開日】平成１７年１２月１日（２００５．１２．１）
【出願人】（５０６３５５２７９）
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成１９年１１月２９日（２００７．１１．２９）
【国際特許分類】
【出願日】平成１７年４月２２日（２００５．４．２２）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＫＲ２００５／００１１７５
【国際公開番号】ＷＯ２００５／１１２９１２
【国際公開日】平成１７年１２月１日（２００５．１２．１）
【出願人】（５０６３５５２７９）
【Ｆターム（参考）】
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