ツタウルシ皮膚炎の防止／予防的治療のための組成物
本発明は、１つまたは複数の実施形態において、３−ｎ−ペンタデシルカテコール（ツタウルシウルシオール飽和同族体）および／または３−ｎ−ヘプタデシルカテコール（アメリカツタウルシウルシオール飽和同族体）の水溶性誘導体を、ツタウルシおよびアメリカツタウルシによって引き起こされる接触皮膚炎の防止および／または予防的治療のための組成物として含む。本発明はまた、そのような化合物の作製方法に関する。一般式（Ｉ）の水溶性ウルシオールエステルを含むウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を寛容化および脱感作するのに有効な化合物が開示される。ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対するヒトを含む哺乳動物の寛容化および脱感作は、少なくとも１つの水溶性ウルシオール化合物を含有する組成物を投与することにより達成される。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は一般に、ツタウルシ皮膚炎の防止および／または予防的治療および／または脱感作治療のための組成物、そのような組成物の使用方法、ならびにそのような組成物の作製方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ツタウルシ（トキシコデンドロン・ラジカンス（Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｒａｄｉｃａｎｓ））、アメリカツタウルシ（Ｔ．ジベルシロブム（Ｔ．ｄｉｖｅｒｓｉｌｏｂｕｍ））、およびドクウルシ（Ｔ．ベルニクス（Ｔ．ｖｅｒｎｉｘ））は、毎年１０００〜５０００万人の米国人を侵しており（１）、米国における職業性皮膚炎の主な原因である（２）。一般成人人口におけるツタウルシ過敏症およびアメリカツタウルシ過敏症の罹患率は、５０％〜７０％に及ぶ（３，４）。感作頻度は、８歳〜１４歳の間で最も高い（５）。ウルシオール感受性に対する遺伝的易罹患性から、ウルシオール感受性の両親から生まれる子供の８０％が感受性となることが示唆されている（６）。屋外活動ならびに消防、林業、および農業に関連する屋外仕事は危険性が高く、多大な医療費がかかり、従事者の身体障害をもたらす。毎年火災シーズンになると、カリフォルニア州、オレゴン州、およびワシントン州の林業従事者の約３分の１が、アメリカツタウルシ皮膚炎により障害を負う（７）。この障害は、大半の救急医および一次診療医および皮膚科医に非常によく知られている（８）。
【０００３】
皮膚原性成分を含む他のウルシ科植物属としては、アナカルジウム（Ａｎａｃａｒｄｉｕｍ）（カシューナッツ）、セミカルプス（Ｓｅｍｉｃａｒｐｕｓ）（インディアインクツリー）、メトピウム（Ｍｅｔｏｐｉｕｍ）（ポイゾンウッド）、およびマンギフェラ（Ｍａｎｇｉｆｅｒａ）（マンゴー）が挙げられる。これらのほとんどの植物中のアレルギー性成分は、Ｃ−１５またはＣ−１７側鎖と様々な不飽和度（０〜３個のオレフィン結合）とを有する３−ｎ−アルク−（エン）−イルカテコールである（９−１２）。ウルシオールは、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、およびアジア産のウルシ中に存在するそのようなアレルギー誘発性成分の典型である（１３）。これは、飽和しているかまたは１個、２個、もしくは３個の不飽和結合を有しているかのいずれかの、Ｃ−１５またはＣ−１７炭化水素鎖で３位または４位が置換されているカテコール環を有する（１４）。カテコール環と脂肪族鎖の両方が、ウルシオールのアレルギー誘発性に重要な役割を果たすことが証明されている（１５−１７）。これらのカテコールを感受性のある人の皮膚と接触させると、ウルシ科植物の全てのウルシオールに対する感作が起こる（１８）。ひとたび感受性が発現すると、消失させるのは、不可能ではないにしても難しい。
【０００４】
アレルギー性接触皮膚炎（ＡＣＤ）は、身体が異物と認識する物質との直接的な皮膚接触によって生じる。結果として生じる皮膚の炎症は、樹状細胞依存的な遅延型過敏免疫反応である。これは、眼瞼や性器皮膚などの薄い皮膚表面で生じるのがより一般的である。この種の応答は、ハプテンとして作用し得る種々の化合物に皮膚が曝されることによって誘発される。これらのハプテンは、タンパク質またはペプチドの別々のアミノ酸残基に結合した後、免疫原性となる。臨床症状の前に、臨床症状を示さない感作期がある。接触過敏症の齧歯類モデルは、ＡＣＤの機序を理解するのに貢献している。アレルゲン／ハプテン（今回の場合はウルシオール）を取り込んだ樹状細胞（ＤＣ）は、感作期間中に、流入領域リンパ節（ＬＮ）に遊走し、そこで成熟し、共刺激分子を発現し、ナイーブＴ細胞に抗原を提示することが知られている（１９−２０）。成熟ＤＣおよびナイーブＴ細胞は、ＬＮで発現されるケモカインによってＬＮに誘引される（１９，２１）。
【０００５】
感作された人がハプテン／ウルシオールに曝されると、特異的なＴ細胞（ＣＤ８＋およびＣＤ４＋）が、ケモカインの影響を受けて、皮膚上の曝露部位に遊走し、そこで細胞が大規模に増殖する（１９）。その後、活性化されたＴ細胞は、大量のサイトカインを産生および放出し、その結果、炎症および／または浮腫をもたらす炎症プロセスを引き起こす。ＣＤ８＋細胞傷害性リンパ球はＡＣＤの発症に関与する主要なエフェクター細胞であることが示唆されている。これらの細胞は、刺激後早期に動員される。ＣＤ４＋ Ｔ細胞サブセットは下方調節性細胞であり、７２時間後、ＡＣＤの回復期に皮膚病変で見られる（２２）。ウルシオールの経皮吸収は、他の親油性物質の経皮吸収と似ている。これらの分子は、角質層の細胞間脂質から皮膚に優先的に侵入する。ウルシオールと角質層との接触を阻止し、その侵入を防止する物質（別名、バリア製品）はどれも、ある程度の保護を与える可能性が高いと考えられる。多くの市販製品が開発され、それらのウルシオール皮膚炎防止効果が試験されており、これらの実験は公表されている（１，２３−２８）。現在、ある程度の現実的な効果を与える物質はごくわずかしかない（１，２３，２４）。
【０００６】
１つの製品（有機粘土のカンテリウム（ｑｕａｎｔｅｒｉｕｍ）−１８ベントナイト）が、Ｅｐｓｔｅｉｎ（２３）により試験的研究で検討され、ベントナイト、カオリン、またはシリコーンよりも実験的ウルシオール皮膚炎の防止に有効であることが分かった。１９９２年、Ｇｒｅｖｅｌｉｎｋら（２４）は、バリア製品の効果に関する当時の最良の概説を発表した。彼らはまた、９点の全般重症度スコアを用いて、２０人のボランティアにおける実験的ウルシオール皮膚炎の防止に対する７つの市販製品の有効性を比較した。Ｓｔｏｋｏｇａｒｄ（Ｓｔｏｃｋｈａｕｓｅｎ，Ｇｒｅｅｎｂｏｒｏ，ＮＣ）、Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ Ｍｏｉｓｔｕｒｅ Ｂａｒｒｉｅｒ（Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｌｉｂｅｒｔｙｖｉｌｌｅ，ＩＬ）、およびＨｙｄｒｏｐｅｌ（Ｃ＆Ｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ，Ｉｎｃ．，Ｈａｚｅｌ Ｐａｒｋ，ＭＩ）は、かなりの程度の保護を与えた。これらの製品は、それぞれ、５９％、５３％、および４８％の保護を与えた。Ｉｖｙ Ｓｈｉｅｌｄ（Ｉｎｔｅｒｐｒｏ，Ｉｎｃ．，Ｈａｖｅｒｈｉｌｌ，ＭＡ）、Ｓｈｉｅｌｄ Ｓｋｉｎ（Ｍａｎｔｏｒ Ｃｏｒｐ．，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）、Ｄｅｒｍｏｆｉｌｍ（Ｉｎｎｏｖｅｔｅｃ，Ｂｒｕｓｓｅｌｓ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、およびＵｎｉｄｅｒｍ（Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｎｅｐｈｅｗ，Ｉｎｃ．，Ｌａｒｇｏ，ＦＬ）は、それぞれ、２２％、１３％、３％、および９％の（あったとしても）ずっと少ないレベルの保護を与えた（２４）。Ｔｏｐｉｃａｌ Ｓｋｉｎ Ｐｒｏｔｅｃｔａｎｔ（ＴＳＰ）という、もう１つの皮膚バリア製品は、過フッ素化ポリエーテル油中で混合されたポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）樹脂から構成されている（２９）。ＴＳＰは、１９２か所の対を成す試験部位のうちの合計３４か所で皮膚炎を完全に防止し、２２か所の対を成す部位で皮膚炎を痕跡レベルのみにまで軽減させることがＶｉｄｍａｒおよびＩｗａｎｅにより報告された（２９）。
【０００７】
皮膚炎の治療は、主として対症的なものである。重症症例の患者に対しては、漸減用量の経口コルチコステロイド（例えば、プレドニソン）を使用してもよい。プレドニソンは、様々な疾患に対する免疫系の応答を減少させて、腫れやアレルギー型反応などの症状を低下させるコルチコステロイドホルモン（グルココルチコイド）である。しかしながら、コルチコステロイドの入手可能な「用量パック」は、非常に短い期間、わずかな用量のコルチコステロイドしか送達せず、多くの場合、リバウンド反応を引き起こすので、ほとんど役に立たない（３０）。
【０００８】
ツタウルシ関連ＡＣＤに対する残りの治療は、緩和ケアを中心としたものである。Ｂｅｎａｄｒｙｌ（登録商標）局所クリーム（Ｐｆｉｚｅｒ）は、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、およびドクウルシの滲出と浸出を乾燥させ、痛みと痒みを一時的に和らげる。
【０００９】
１９５０年代以降利用されている、ツタウルシ／アメリカツタウルシの抽出物を含む脱感作レジメン（感作された個体の感受性を消失させること）は多数あるが、確実に効果のあるものはない（３１，３２）。これらの技術は、様々なウルシオール製剤の摂取または非経口注射からなっていた。成功を記載した報告も中にはあったが（３１，３２）、脱感作のレベルは様々で、持続性がなかった。さらに、これらのレジメンによって、粘膜、皮膚、および全身への副作用が生じた。したがって、この手法は、大部分は中止されている。
【００１０】
植物抽出物の投与による減感作（感作された個体の感受性の程度を低下させること；寛容化）は得難い。これには多くの用量と長い年月が必要となるが、治療を中止すると感受性は速やかに取り戻される（１８，３１）。この目的のためにウルシ（Ｒｈｕｓ）抽出物（活性のあるアレルギー誘発性成分のウルシオールを含有する）を使用する利益と安全性は、１９１７年に最初に投与されて以来、議論の的となっている。ウルシ抽出物とアレルゲンの臨床的使用に関するいくつかの概説が書かれている（２３，３３，３４）。
【００１１】
投与された遊離形態のウルシオールに活性がない理由は、ウルシオールのカテコール部分に血漿タンパク質との高い反応性があることによる可能性がある。吸収されるとすぐに、ウルシオールはこれらのタンパク質と不可逆的に結合し、「失活」すると推定される。本発明者らは、寛容の生起またはツタウルシ皮膚炎の予防的治療に有効であるためには、ウルシオールが細胞膜に結合する必要があり得るということを理論的に説明した。このことを考慮して、本発明者らは以前に、溶解し、洗浄した血液細胞に由来する血液細胞膜の懸濁液にウルシオール溶液を添加することによって、細胞膜に結合したツタウルシウルシオールコンジュゲートを調製し、その後、この懸濁液を宿主動物に再注射した（１８）。本発明者ら（１８）は、モルモットの赤血球細胞膜に結合した３−ｎ−ペンタデシルカテコール（ツタウルシウルシオールの飽和同族体）の投与によって寛容が生じたことを示した。処置群は、２０週間の研究の間、３−ｎ−ペンタデシルカテコールに対して寛容であった。
【００１２】
その手法で成功したので、本発明者らは、一部のエステルが血液細胞の表面で加水分解し、それにより膜に結合し得る遊離ウルシオールを生じさせることができるという点で、ウルシオールエステルの投与はより有効であり得るという理論を立てた。ウルシオールエステルの投与は、例えば、皮下注射（「ｓ．ｃ」）、筋肉内注射（「ＩＭ」）、静脈内注射（「ＩＶ」）、鼻腔内投与、経粘膜投与、および直腸投与を介するものであり得る。ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの二酢酸エステルをナイーブモルモットにＩＶ注射することにより、モルモットモデルにおけるツタウルシウルシオールに対する寛容が達成され、感作された動物で同じ処置をすることにより、完全脱感作または減感作が達成された（３５）。ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの経口投与の有効性を、感受性のあるモルモットを脱感作するためのそれぞれのエステル化誘導体を用いて比較した（３６）。エステル化誘導体は、遊離ウルシオールがもたらすよりも大きい減感作をもたらし、この減感作はより長く持続した。本発明者らは、ウルシオールエステルが最も有効であるためには、非経口投与が必要であると結論付けた。したがって、本発明者らは、単回投与レジメンがツタウルシウルシオール皮膚炎に対する減感作に有効である可能性を評価する研究を行なった（３７）。減感作は、２０ｍｇの単回筋肉内用量で達成された。
【００１３】
エステル化ウルシオールを投与するためのビヒクルとして油を使用することは、ＩＶ注射または皮下注射の投与ほどは有効でない可能性のある徐放薬として作用することにより、投与経路（筋肉内に限定される）と薬物送達の効率の観点の両方から大きな制限を示す。したがって、有効な水溶性ウルシオール誘導体（またはその飽和同族体）の開発は、ツタウルシ／アメリカツタウルシ接触皮膚炎を防止するための成功した製品の実現可能な改良および選択肢となる。
【００１４】
ウルシオールを用いたツタウルシ／アメリカツタウルシ皮膚炎の予防的治療の作用機序は未知であるが、ＣＤ８＋ Ｔ細胞の下方調節を同時に伴うＣＤ４＋ Ｔ細胞増殖の上方調節が関与している可能性がある。
【発明の概要】
【００１５】
本発明は、１つまたは複数の実施形態において、ツタウルシウルシオール、すなわち、３−ｎ−ペンタデシルカテコール（ツタウルシウルシオール飽和同族体）および／またはアメリカツタウルシウルシオール、すなわち、３−ｎ−ヘプタデシルカテコール（アメリカツタウルシウルシオール飽和同族体）の水溶性誘導体を、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、ならびにＡＣＤを引き起こす他のウルシ科植物およびイチョウ科植物によって引き起こされる接触皮膚炎の防止および／または予防的治療のための組成物として含む。さらに、本発明は、そのような化合物の作製方法に関する。特に、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対する寛容化および脱感作に有効な化合物であって、一般式（Ｉ）
【化１】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル（すなわち、ジペプチド残基、トリペプチド残基、もしくはポリペプチド残基）、水溶性特性を有する塩形成化合物になるカルバメート形成化合物または硫酸エステルもしくはリン酸エステルまたはジカルボン酸エステルである）の水溶性ウルシオールエステルを含む化合物が開示される。好適な置換基としては、Ｒ1が、ペンタデシル、ヘプタデシル、ノナデシル、モノオレフィンペンタデシル、モノオレフィンヘプタデシル、ジオレフィンペンタデシル、ジオレフィンヘプタデシル、トリオレフィンペンタデシル、およびトリオレフィンヘプタデシルである化合物が挙げられる。
【００１６】
本発明はまた、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して、ヒトを含む哺乳動物を寛容化および脱感作する方法であって、本発明に開示されているような化合物または化合物の混合物を含む組成物を該哺乳動物に投与する工程から本質的になる方法に関する。本出願の文脈では、脱感作は、感作された対象における感受性の消失および感作された対象における感受性の程度の低下（減感作または寛容化）を包含することが意図される。本発明の組成物の調製方法も開示される。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図１Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図１Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図２Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図２Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図２Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図３Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験３）を示す。
【図３Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験３）を示す。
【図３Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコアを示す。
【図４Ａ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第Ｉ群）の写真を示す。
【図４Ｂ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＩ群）の写真を示す。
【図４Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＩＩ群）の写真を示す。
【図４Ｄ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＶ群）の写真を示す。
【図４Ｅ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第Ｖ群）の写真を示す。
【図５Ａ】ウルシオール刺激２４時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図５Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図５Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図６】ＥＬＩ-２１-５７-３で処置した後、ウルシオールで刺激した第ＩＶ群（７２時間での皮膚反応）の写真を示す。
【図７】ビヒクルで処置し、ウルシオールで刺激した第Ｖ群（７２時間での皮膚反応）の写真を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
水溶性ウルシオールエステル誘導体を含む戦略が開発された。該誘導体は、投与後に速やかに血流に達し、血液細胞の表面で加水分解して、活性のある遊離ウルシオールを生成することができ、その後、この活性のある遊離ウルシオールは、細胞膜に結合することができる。ウルシオール細胞膜コンジュゲートは、脱感作を引き起こす活性実体であると考えられている。
【００１９】
アミノ酸エステルにより、ウルシオールおよびウルシオール同族体のエステルであって、そのようなエステルを形成することが可能なカルボキシ基およびアミノ酸エステルの最終生成物中で薬学的に許容される塩形態に転換し得るアミノ基を有する化合物でフェノール基がエステル化されている、ウルシオールおよびウルシオール同族体のエステルを意味する。
【００２０】
ウルシオール「アミノ酸エステル」により、例えば、ウルシオールモノアラニナートまたはウルシオールジアラニナートを意味する。アミノ基（単数または複数）は、当然、任意のアミノ酸、ポリ（アミノ酸）、またはペプチドから生じたものであってよい。
【００２１】
本アミノ酸エステルを作製するために有用な化合物としては、天然と合成の両方のアミノ酸およびジペプチド、トリペプチド、またはポリペプチドが挙げられる。
【００２２】
有用なアミノ酸としては、例えば、アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、バリン、ホモセリン、ホモセリンラクトン、およびノルロイシンが挙げられる。
【００２３】
ウルシオールのカルバメート誘導体により、ウルシオール誘導体であって、フェノール性ヒドロキシル基がカルバメート結合に変換され、カルバメート形成物質の残基が薬学的に許容される塩に転換され得るカルボキシ基を含む、ウルシオール誘導体を意味する。
【００２４】
本明細書中の「ジカルボン酸」により、２つのカルボキシル基（−ＣＯＯＨ）を有する有機酸を意味する。本発明における好適なジカルボン酸は、例えば、マロン酸、リンゴ酸、グルタル酸およびその誘導体、ならびにコハク酸である。ジカルボン酸には、ジカルボン酸の無水物および反応性誘導体（例えば、ジカルボン酸ハライド）も含まれる。
【００２５】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対して対象を脱感作するのに有効な化合物であって、以下の式Ｉ
【化２】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル、カルバメート形成化合物、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体のエステルまたは硫酸エステルもしくはリン酸エステルであり、ここで、これらのエステルは塩形成化合物である）の水溶性ウルシオールエステルを含む化合物が開示される。
【００２６】
式ＩのＲ1は、ペンタデシル、ヘプタデシル、またはノナデシルであることができる。
【００２７】
式Ｉの化合物は、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せもしくはジカルボン酸を含むアミノ酸のエステル、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を介して形成されるエステル、リン酸エステルもしくは硫酸エステル、または塩形成カルバメートであるカルバメートエステルであることができる。
【００２８】
限定するものではないが、例示的化合物としては、ヘプタデシルカテコールフェニルアラニン酸エステル、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート、ヘプタデシルカテコールインドール−プロピオン酸エステル、ヘプタデシルカテコール−β−アラニン酸エステル、ペンタデシルカテコールバリニン酸エステル、ペンタデシルカテコール−ジ−バリニン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸エステル、ペンタデシルカテコールアスパラギン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステルが挙げられる。
【００２９】
本発明はまた、少なくとも１つの式Ｉによる水溶性化合物とそのための好適な薬学的担体とを含有する薬学的組成物を包含する。
【００３０】
これらの薬学的組成物は、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与されるのに適している。
【００３１】
本発明はさらに、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、式Ｉによる化合物または化合物の混合物を含む組成物を該対象に投与する工程を含む方法を包含する。
【００３２】
治療方法は、対象への非経口投与、経皮投与、または経鼻投与によるものであり得る。
【００３３】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する本方法は、式Ｉによる水溶性化合物または水溶性化合物の混合物を含有する薬学的組成物を該対象に投与する工程を含む。
【００３４】
本発明はさらに、式ＩＩ
【化３】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物を、保護アミノ酸または保護アミノ酸の組合せまたはジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を含む保護アミノ酸の誘導体と反応させ、その後、保護基を除去することによって、本発明による化合物を調製する方法を提供する。
【００３５】
さらに、本発明は、本発明による化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化４】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体と反応させる工程を含む方法を包含する。
【００３６】
さらに、本発明は、本発明による化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化５】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をパラニトロフェニルクロロホルメートと反応させ、その後、この中間体をアミノ酸またはアミノ酸の組合せのアリルエステルと反応させ、その後、アリル基を除去する工程を含む方法を包含する。
【００３７】
さらなる実施形態は、本発明による硫酸エステルを作製する方法であって、式ＩＩ
【化６】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をクロロスルホン酸と反応させる工程を含む方法である。
【００３８】
以下の実験では、本発明の水溶性誘導体の調製方法が記載されている。当業者は、これらの調製方法が様々なウルシオールエステル誘導体の調製に広く適用可能であることを認識しているであろう。したがって、以下の方法は例示的なものである。さらに、当業者は、寛容化／脱感作の方法も広く適用可能であることも認識しているであろう。
【００３９】
実験
水溶性誘導体は、好適性の基準として、合成による収率、水溶解度、および純度に基づいて評価し得るし、実際そのように評価した。さらに、誘導体は、モルモット動物モデルにおいてツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールへの感作に対する寛容を生じさせる有効性について試験し得るし、実際そのように試験した。本発明のモルモット動物モデルなどの動物モデルにおける医薬品または他の薬剤の使用による成功した治療は、ヒトを含む他の動物モデルにおける効果と強く相関することが当技術分野でよく知られている。
【００４０】
水溶性ウルシオール誘導体の合成：
４つの異なるタイプの水溶性ウルシオール誘導体、すなわち、アミノ酸エステル、ジカルボン酸エステル、遊離の末端カルボン酸基を有するカルバメート、ならびに硫酸エステルおよびリン酸エステルを調製することができる。ウルシオールへの水溶性と適当な生体活性（インビボでの加水分解能を含む）とを十分に提供する他の基も企図される。したがって、以下の生成物もまた例示的なものである。これらの生成物は、カラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、および高性能液体クロマトグラフィーなどの、様々なクロマトグラフィー技術を用いて精製することができる。例えば、マススペクトロメトリー（ＭＳ）、1Ｈ−ＮＭＲ、赤外／紫外スペクトル分析（例えば、ＦＴＩＲ）、および13Ｃ−ＮＭＲを融点分析および元素分析とともに用いるスペクトル分析によって、構造の確認を行なうことができる。
【００４１】
ウルシオールのアミノ酸エステルの合成：
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１）およびヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２）（それぞれ、ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの飽和同族体）を用いて、構造３〜１２に示すエステルのような、様々なアミノ酸を有するエステルを調製することができる。他のアミノ酸およびアミノ酸ラジカル（ジペプチド、トリペプチド、またはポリペプチド）も企図される。
【００４２】
出発物質（１および２）は、それぞれ、精製したツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールを水素化することにより調製することができる。あるいは、化合物１および２は、実施例１〜３に記載の手順１、２、および３で例示されるように、合成によって調製される。不飽和同族体も出発物質として企図されており、例えば、化合物（１）または（２）の不飽和同族体を誘導体化して、不飽和カテコール誘導体を生成してもよい。
【化７】
【００４３】
（１）または（２）をジクロロメタン（ＤＣＭ）に溶解することができ、アミノ酸（２．２当量）（例えば、上記のアミノ酸）をこの溶液に添加することができる。次に、触媒量のジメチル−アミノピリジン（４−ＤＭＡＰ、例えば、０．１当量）をジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ、２．２当量）とともに添加して、出発物質が生成物に完全に変換されたことが薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）で確認されるまで、反応混合物を撹拌させておくことができる。
【００４４】
好適な染色剤および他の検出手段（ＴＬＣプレートの紫外線分析を含む）を使用してもよく、当業者であれば、そのような薬剤および／または技術を容易に決定することができるであろう。例示的な技術には、モニター剤としての塩化第二鉄が含まれるが、その場合、遊離カテコールは明瞭な濃い青色をすぐに呈する。
【００４５】
ＴＬＣプレートの前処理も当業者の能力の範囲内であり、これには、塩化第二鉄で染色する前に、アルカリによるエステルの加水分解を誘導するために、１Ｎ ＮａＯＨをプレートスプレーとして使用することが含まれる。また、好適な後処理技術も当業者の能力の範囲内であり、これには、反応液の濾過、分離、または洗浄（分液漏斗および好適な溶媒の使用によるもの）と、有機溶媒の乾燥（例えば、硫酸マグネシウムまたは硫酸ナトリウムを用いるもの）と、濃縮（例えば、回転蒸発によるもの）とが含まれる。
【００４６】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル（ｔ−Ｂｏｃ）で保護された生成物は主に、ＴＬＣを含む任意の好適な技術で画分をモニターしながら、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製することが好ましい。
【００４７】
Ｔ−ＢＯＣの脱保護
無水テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を飽和するまでＨＣｌガスで通気する。過剰なＨＣｌガスは窒素でフラッシュする。その後、ｔ−Ｂｏｃ誘導体を無水ＴＨＦに溶解することができる。これに続いて、酸性ＴＨＦを滴加する。酸性ＴＨＦを全て添加した後、完全に脱保護されたことがＴＬＣまたは任意の他の好適な技術によって確認されるまで、混合物を室温で撹拌させておく。その後、溶媒を蒸発させる。その後、残渣にアセトンを添加し、混合物を冷凍庫で一晩保存する。翌朝、このようにして得られた固体生成物を濾過する。この結晶化手順を繰り返して、生成物を完全に回収してもよい（スキーム１）。１および２のアミノ酸エステルの中には、アセトンへの溶解度が高いものがある可能性があり、したがって、結晶化しない場合がある。このような場合は、溶媒を蒸発させて固体生成物を生じさせ、これを適当な溶媒から結晶化させる。
【化８】
【００４８】
スキーム１：１および／または２のアミノ酸エステルの合成のための一般的手順
【化９】
モノアミノ酸誘導体に加えて、本発明は、２つ、３つ、またはそれより多くのアミノ酸を有する誘導体（ジペプチド誘導体、トリペプチド誘導体、またはポリペプチド誘導体）も含む。そのような誘導体は、水溶性に加えて、増大した安定性を有する可能性がある。ジペプチド誘導体の合成は、モノ誘導体について記載したのと同じ手順に従い、それによって、アミノ酸をもう１つ付加してジペプチドを作製するためにモノ誘導体を使用し、アミノ酸をもう１つ付加してトリペプチド誘導体を形成するためにジペプチドを使用し、などとする。これは、下記の一般的スキームに示されている。あるいは、ポリペプチド誘導体については、まずポリペプチドそれ自体を所望の長さに合成した後、このポリペプチドを化合物１または２と直接反応させて、所望の生成物を生成させる。
【化１０】
【００４９】
カルバメートまたはウルシオールの合成
ペンタデシルカテコール（１）およびヘプタデシルカテコール（２）を用いて、スキーム２に概説されているような以下の一般的手順を用いて、様々なカルバメートを作製することができる。
【００５０】
新たに蒸留したＤＣＭに出発物質を溶解し、ＤＭＡＰとトリエチルアミンを添加した後、４−ニトロフェニル−クロロホルメートを添加した。反応の完了をＴＬＣでモニターすることができる。完了している場合、ＤＣＭに溶解された４−アミノ酪酸アリルエステルまたは６−アミノヘキサン酸アリルエステルまたは４−（４−アミノフェニル）酪酸アリルエステルを滴加して、それぞれ、最終生成物のアリルエステル９〜１１を生成させる。反応の完了を再びＴＬＣでモニターすることができる。保護された生成物は、様々なクロマトグラフィー技術で精製することができる。
【００５１】
カルバメートのアリルエステルの脱保護
生成物をＤＣＭに溶解し、この溶液にトリフェニルホスフィンとともにフェニルシランを添加することができる。反応混合物を室温で撹拌させておき、完了をＴＬＣでモニターすることができる。その後、メタノール（ＭｅＯＨ）を添加し、さらに１５分間撹拌を続ける。その後、溶媒を蒸発させ、クロマトグラフィー技術を用いて生成物を精製する。
【化１１】
【００５２】
スキーム２．１および／または２のカルバメートの合成のための一般的手順
【化１２】
ウルシオールの硫酸エステルの合成
出発物質（１または２）を無水トルエンに溶解し、−１６〜−１８℃に冷却し、この温度で維持することができる。温度を維持しながら、３０分間かけてクロロスルホン酸を滴加する。その後、例えば、ＴＬＣで示されるような完了まで、反応液を撹拌させておく。反応が完了するとすぐに、０．１Ｎ ＨＣｌを添加し、混合物をＤＣＭで３回抽出する。有機層を合わせ、蒸発乾固させる。様々なクロマトグラフィー技術を用いて生成物（１６、２から出発）を精製してもよい。
【化１３】
硫酸モノ−（３−ヘプタデシル−２−スルホオキシ−フェニル）エステル−１６
【実施例】
【００５３】
実施例１：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順１）
【化１４】
２，３−ジヒドロキシベンズアルデヒドの無水エタノール溶液に、触媒量のヨウ素とともに無水Ｋ2ＣＯ３を添加し、５℃で撹拌しながら、塩化ベンジルを滴加した。
【００５４】
混合物を還流しながら３時間撹拌し、その後、追加の塩化ベンジルを添加して、さらに２時間還流した。
【００５５】
溶媒を蒸発させ、残渣をエーテルと水の間に分配した。有機溶液を水で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させた。揮発性物質を全て高真空で蒸発させ、生成物を明黄色固体物質として得た。収率は定量的であった。
【化１５】
【００５６】
テトラデシルグリニャール試薬を、エーテル中の臭化テトラデシル、マグネシウム、および微量のヨウ素から通常の方法で調製した。この溶液に、還流しながら、エーテル中の２，３ジベンジルオキシ−ベンズアルデヒドを添加した。添加後、混合物を４時間還流し、冷却し、２２℃にて１２％塩酸で処理した。層を分離し、有機層を水で２回洗浄し、その後、ブラインで洗浄した。溶媒を蒸発させて、油状の粗生成物を生成させた。この油状の粗生成物を氷冷メタノールに溶解し、沈殿したろう状物質を濾過した。
【化１６】
【００５７】
１０％のＰｄ／Ｃ触媒と濃Ｈ2ＳＯ4とを用いて、２００ＰＳＩ、１２５℃で、２，３ジベンジルオキシ−テトラデシルベンジルアルコールまたは２，３ジベンジルオキシ−ヘキサデシルベンジルアルコールの水素化を行ない、ペンタデシルカテコール（１）またはヘプタデシルカテコール（２）を生成させた。
【００５８】
実施例２：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順２）
【化１７】
テトラデシルグリニャール試薬を、エーテル３Ｌ中の臭化テトラデシル（３．３ミリモル）とマグネシウム（３．５ミリモル）と微量のヨウ素とから通常の方法で調製した。これに、還流しながら、２，３−ジメトキシ−ベンズアルデヒド（２．９ミリモル）のエーテル溶液１Ｌを添加した。添加後、混合物を４時間還流し、冷却し、２０℃にて３Ｌの１２％ＨＣｌで処理し、層を分離し、有機層を水で２回洗浄し、その後、ブラインで洗浄した。その後、エーテルを回転蒸発させると、シロップが残った。このシロップを２ＬのＭｅＯＨに溶解した。氷浴中で一晩冷却した後、沈殿したろう状物質を濾過した。揮発性物質を全て回転蒸発させることにより、濾液から粗生成物を単離した。収率は定量的であった。
【化１８】
【００５９】
１０％のＰｄ／Ｃ触媒１０ｇと濃Ｈ2ＳＯ4 １０ｍＬとを用いて、２００ＰＳＩ、１２５℃で、酢酸エチル１．５Ｌ中の２，３−ジメトキシ−１−テトラデシルベンジルアルコール（１．７ミリモル、粗製物）を水素化した。反応は４〜６時間で完了した。触媒を濾過した。濾液を水で２回、ブラインで１回洗浄した。ＭｇＳＯ4上で乾燥させた後、溶媒を回転蒸発させ、残留油を蒸留した。最大１６０℃、０．１トールで、多量の物質（未同定）が得られた。その後、１６５〜１９５℃、０．２トールで、生成物を回収した。
【化１９】
【００６０】
ガラス蒸留した塩化メチレン（ＤＣＭ）５００ｍＬ中の２，３−ジメトキシ−６−ペンタデシルカテコール（０．９ミリモル）を、窒素雰囲気下のガラス蒸留したＤＣＭ ２Ｌ中の三臭化ホウ素（ＢＢｒ3）（２．４ミリモル）の撹拌溶液に、−２０〜−１０℃にて滴加した。添加を完了した後、混合物を室温で一晩撹拌した。メタノールを１０〜２０℃で添加した。混合物を強い窒素流の下で３０〜４０℃に加温し、存在する臭化水素の大部分を除去した。結晶化を用いて生成物を精製した。
【００６１】
実施例３：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順３）
上記の手順に記載したグリニャール反応の代替法であるウィッティヒ反応を用いて、以下に示すようにオレフィンを生成させた後、適切な工程を経て、所望の生成物を得た。
【化２０】
【００６２】
生成された全ての化合物をその純度（＞９９．５％）についてＨＰＬＣで分析した。
【００６３】
実施例４：ＨＤＣ−フェニルアラニン酸エステル（３）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．２５ｇ）をＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−フェニル−アラニン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとＤＣＣ（２．２当量）とを添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００６４】
塩化第二鉄を試薬として用いて、ＴＬＣで反応混合物をモニターしたが、その場合、遊離カテコールは、この試薬によって明瞭な濃い青色をすぐに呈した。しかしながら、エステルは、呈色する前に、塩基加水分解される必要があった。１ＮのＮａＯＨを第２のスプレーとして用いて、エステルを加水分解し、エステルのスポットを置いた。反応が完了した後すぐに、反応混合物を濾過して、試薬の大部分を取り除き、その後、溶媒を蒸発させた。ｔ−ｂｏｃ保護された生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、回収した画分をＴＬＣでモニターした。
【００６５】
無水ＴＨＦを飽和するまでＨＣｌガスで通気した。過剰なＨＣｌガスは窒素でフラッシュした。ｔ−ｂｏｃ誘導体を無水ＴＨＦに溶解し、酸性ＴＨＦを滴加した。酸性ＴＨＦを全て添加した後、ＴＬＣによって確認されるように完全に脱保護されるまで、混合物を室温で撹拌させておいた。その後、溶媒を蒸発させ、残渣にアセトンを添加した。混合物を冷凍庫で一晩保存した後、固体生成物を濾過により得た。この結晶化手順を繰り返して、生成物２３９ｍｇ（７３％）を得た。
【００６６】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ６４３．４４７０［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ58Ｎ2Ｏ4の計算値、６４３．４４７５）および他のスペクトル技術によって確認した。
【００６７】
ＨＤＣ−フェニルアラニン酸エステルの水溶解度：
エタノール５０ｕｌに溶解したとき、ＨＤＣ−フェニルアラニナート（１０ｍｇ）は均一な溶液を形成した。得られた溶液を水で１ｍｌに合わせた。
【化２１】
【００６８】
実施例５：３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート（４）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液に４−アミノ−フェニル−酪酸（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとＤＣＣ（２．２当量）とを添加し、出発物質が生成物（ＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステルともいう）４に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００６９】
反応混合物を通常通りに後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製した。生成物を含有する画分を合わせて、生成物１４４ｍｇ（８９％）を得た。
【００７０】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ６７１．４７８８［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ43Ｈ63Ｎ2Ｏ4の計算値、６７１．４９７０）および他のスペクトル技術によって確認した。
【００７１】
エタノール５０ｕｌにＨＣｌ塩として溶解したとき、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート１０ｍｇは透明な溶液であった。得られた溶液を水で１ｍｌ（１０ｍｇ／ｍｌ）に合わせた。
【化２２】
【００７２】
末端カルボン酸機能を有するウルシオールエステルの合成：
【００７３】
実施例６：５，５’−（３−ヘプタデシル−１，２−フェニレン）ビス（オキシ）ビス（５−オキソペンタン酸）（５）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にグルタル酸無水物（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとトリエチルアミンとを添加し、出発物質が生成物５（ＨＤＣ−ヘミグルタレートともいう）に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００７４】
反応混合物を上記のように後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、ＨＤＣのジ−ヘミグルタル酸エステル１８０ｍｇ（７２％）、（５）を得た。
【００７５】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５７５．３７４０［Ｍ−Ｈ］+（Ｃ33Ｈ52Ｏ8の計算値、５７５．３７３１）および他のスペクトル分析技術によって確認した。
【化２３】
【００７６】
エタノール５０ｕｌに溶解したとき、ＨＤＣのジヘミグルタル酸エステル１０ｍｇは均一な溶液を形成した。得られた溶液をリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ８）で１ｍｌに合わせた。
【００７７】
実施例７：ＨＤＣ−インドール−プロピオン酸エステル（６）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．２０ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にインドールプロピオン酸（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００７８】
反応混合物を通常通りに後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、生成物（９０％）を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７２５．４２４８［Ｍ＋Ｃｌ］-（Ｃ45Ｈ58ＣｌＮ2Ｏ4の計算値、７２５．４０８０）によって確認した。
【化２４】
【００７９】
実施例８：ＨＤＣ−β−アラニン酸エステル（７）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１０ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−β−アラニン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８０】
反応混合物を上記のように後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、生成物（８５％）を得た。
【００８１】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得る。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ４９０．３３７１［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ29Ｈ51Ｎ2Ｏ4の計算値、４９１．４０７２）によって確認した。
【化２５】
【００８２】
実施例９：ＰＤＣ−バリニン酸エステル（８）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．２５ｇ）をＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−バリン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８３】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７１９．５２２０［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ71Ｎ2Ｏ8の計算値、７１９．５２０５）によって確認した。
【００８４】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００８５】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５１９．４２２４［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ31Ｈ55Ｎ2Ｏ5の計算値、５１９．４９５６）によって確認した。
【化２６】
【００８６】
実施例１０：ＰＤＣ−ジ−バリニン酸エステル（９）の調製
ＰＤＣ−バリンをＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−バリン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８７】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ９１７．６５５３［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ59Ｈ89Ｎ4Ｏ10の計算値、９１７．６５７３）によって確認した。
【００８８】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載した手順で行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７１７．５５６１［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ73Ｎ4Ｏ6の計算値、７１７．５５２５）によって確認した。
【化２７】
【００８９】
実施例１１：ＰＤＣ−グルタミン酸エステル（１０）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．０５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−グルタミン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９０】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９１】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載した手順で行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５７７．３９６６［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ31Ｈ53Ｎ4Ｏ6の計算値、５７７．３９６０）によって確認した。
【化２８】
【００９２】
実施例１２：ＰＤＣ−アスパラギン酸エステル（１１）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．０５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−アスパラギン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９３】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９４】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成された生成物を、ＬＣ／ＭＳ ｍ／ｚ ５４９．５［Ｍ＋Ｈ］+を用いて確認した。
【化２９】
【００９５】
実施例１３：ＰＤＣ−グルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステル（１２）の調製
ＰＤＣ−グルタミン酸（１０）をＤＣＭ ８ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−β−アラニン（２．２当量）を添加した。触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９６】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９７】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成された生成物を、ＬＣ／ＭＳ ｍ／ｚ ７１９．６［Ｍ＋Ｈ］+を用いて確認した。
【化３０】
【００９８】
実施例１４：モルモット接触皮膚炎モデルにおける水溶性３−ｎ−ヘプタデシルカテコール誘導体を用いたツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールに対する寛容の誘導
特に、３−ｎ−ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、アメリカツタウルシウルシオールの飽和同族体）の３つの誘導体、すなわち、ＨＤＣフェニルアラニン酸エステル（３）、ＨＤＣヘミグルタル酸エステル（５）、およびＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル（４）を調製し、試験した。モルモット動物モデルを用いて、接触皮膚炎に対するこれらの薬剤活性および他の生物学的活性を評価した。
【化３１】
【００９９】
動物：ハートレー系モルモット（ｎ＝４０）をＨａｒｌａｎ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ ＩＮ ４６２２９から入手した。動物を５群（ｎ＝８／群）に分け、以下に記載の通りに処置した。これらの動物を１２時間の昼夜周期の管理された環境に置き、餌と水を自由に取らせた。研究デザイン：ダイアグラム１に、本発明に従って生成される薬剤の有効性を決定するための一般的手順が記載されている。ダイアグラムに示すように、０週目にＨＤＣ誘導体を注射した後、２週目に感作し、その後、３週目以降にウルシオール刺激する。
【化３２】
ダイアグラム１．実験中の様々な時点で与えられる処置を示す模式的研究デザイン
【０１００】
第Ｉ群．この群の動物には、各後肢に筋肉内（ＩＭ）経路を介して化合物（４）（ＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル）；遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μｌ投与した。２週間後、これらの動物を、頸部表皮へのウルシオール（１．０ｍｇのウルシオールを含有する１００μＬのアセトン）で感作した。２週間後、動物を、腹部皮膚への容量１５μＬのウルシオール（３．０μｇ、４．５μｇ、または６．０μｇを含有する容量１５μＬのアセトン）で刺激した。ビヒクルは、１５μＬのアセトンを含有していた（ダイアグラム２参照）。動物を感作後３回試験した。試験＃１は感作２週間後に、試験＃２は感作４週間後に、試験＃３は感作１２週間後に行なった。
【０１０１】
第ＩＩ群．動物には、ＩＭ経路を介してＨＤＣフェニルアラニンエステル（化合物３）の遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μＬ（合計６００μＬ）、各後肢に投与した。これに続いて、頸部へのウルシオールで感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚へのウルシオール刺激を試験した。
【０１０２】
第ＩＩＩ群．動物には、ＩＭ経路を介してＨＤＣヘミグルタル酸エステル（化合物５）の遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μＬ、各後肢に投与した。この２週間後に、頸部への（ウルシオール１００μＬ）で感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【０１０３】
第ＩＶ群．動物には、ＩＭ経路を介してビヒクル（５％エタノール）３００ｕＬを各後肢に投与した。この２週間後に感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【０１０４】
第Ｖ群．この群の動物には、ＩＭ経路を介してＰＢＳ（各後肢に３００μＬ）を投与した。この２週間後に感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【化３３】
ダイアグラム２．腹部皮膚上でのウルシオール刺激投与の適用部位
【０１０５】
動物を腹部皮膚へのウルシオールで刺激した後、紅斑と浮腫の重症度を観察し、以下に示すようなドレーズ（Ｄｒａｉｚｅ）スコアリングシステムに従ってスコアリングした。ウルシオールを皮膚に適用してから２４、４８、および７２時間後に、スコアを記録した。
【表１】
紅斑と浮腫のスコアの合計最大値＝８
【０１０６】
結果：表１Ａ、Ｂ、Ｃ（それぞれ、刺激後２４、４８、および７２時間でのスコア）から表３Ａ、Ｂ、Ｃ、ならびに図１Ａ、Ｂ、Ｃから図３Ａ、Ｂ、Ｃに結果を示す（処置群Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩと比較した未処置群ＩＶおよびＶにおける反応の重症度を図示するために、ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３の写真も図４Ａ〜Ｅに示す）。
【０１０７】
試験＃１：モルモットの３つの処置群である第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群は、腹部皮膚への様々な用量（３．０μｇ、４．５μｇ、および６．０μｇ）のウルシオールで刺激したとき、刺激の２４時間後、４８時間後、または７２時間後のいずれにも、曝露部位で紅斑を全く示さなかったか、またはほんのわずかな浮腫しか示さなかった。対照的に、第ＩＶ群および第Ｖ群の動物は、様々な程度の紅斑と浮腫を示した。２４時間で、ウルシオール３．０μｇおよび４．５μｇの刺激用量では、第ＩＶ群の皮膚病変スコアは第Ｖ群の皮膚病変スコアよりも低かった。しかしながら、６．０μｇの刺激用量では、これら２つの群のスコアに差がなかった。予期した通り、ビヒクル（アセトン）は反応を示さなかった。刺激の４８時間後、３つの予防的処置群Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩでは、紅斑または浮腫は観察されなかった。これらの群の皮膚病変スコアは、１．０未満のままであった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、病変スコアは、ウルシオール刺激濃度の増加につれてより高くなった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは同程度であったが、第Ｖ群でわずかにより高い傾向にあった。刺激の７２時間後、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群では、紅斑または浮腫は観察されなかった。皮膚病変スコアは、１．０未満のままであった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは同程度であったが、第Ｖ群でわずかにより高い傾向にあった。
【０１０８】
様々な時点での第ＩＶ群および第Ｖ群の病変スコアの比較により、最大の紅斑と浮腫は、４８時間で観察されたことが示されている。４８時間での病変と比較して、７２時間では、病変が消失する傾向にあった。
【０１０９】
試験＃２：この試験は、試験＃１の２週間後に実施された。２４時間で、（予防的処置をした）第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の皮膚病変スコアは１．０未満であった。第ＩＶ群（ビヒクル）では、スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量に曝露された場合に、２．５、３．０、および３．５であった。第Ｖ群では、スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量の場合に、１．０、４．０、および６．５であった。４８時間で、第Ｉ群は、４．５または６．０μｇの刺激用量のウルシオールで、合計スコア１．５を示した。第ＩＩ群の動物の皮膚病変スコアは１．０を超えなかった。第ＩＩＩ群では、合計スコアは、それぞれ、４．５および６．０μｇのウルシオール用量の場合に１．０および２．５であった。これらのスコアは、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアよりも比較的低かった。第Ｖ群では、合計スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量に対して、１．０、４．０、および６．５であった。
【０１１０】
７２時間で、病変は退縮する傾向にあった。第Ｉ群および第ＩＩ群の合計病変スコアは１．０を超えず、第ＩＩＩ群では最大２．０に後退した。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは後退し、０．５〜２．０の範囲であった。比較の上では、これらのスコアは、予防的処置をした第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群よりも相対的に高かった。
【０１１１】
試験＃３：この試験は、前回の試験＃２の約７週間後に実施された。２４時間で、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群は、使用したどの用量でも、ウルシオール刺激部位に紅斑または浮腫を示さなかった。第ＩＶ群の動物は、この研究で使用したそれぞれの増加用量に対して、２．０、５．０、および９．０という病変スコアを示した。第Ｖ群の皮膚病変スコアは、第ＩＶ群の皮膚病変スコアと同程度で、使用したそれぞれのウルシオール用量に対して、２．５、４．０、および７．０であった。
【０１１２】
４８時間で、第Ｉ群および第ＩＩＩ群の病変スコアは１．０未満のままであり、第ＩＩ群の病変スコアでは１．０を超えなかった。しかしながら、第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変は、比較的より顕著であった。第ＩＶ群では、病変スコアの合計は、使用したそれぞれのウルシオール用量に対して、１１．５、２０．５、および２９．５であった。同様に、第Ｖ群の病変スコアは、それぞれ３つのウルシオール刺激用量に対して、合計で最大６．０、１６．０、および２３．５であった。
【０１１３】
７２時間で、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群のスコアは１．０未満に後退したか、または１．０を超えなかった。対照的に、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアは、比較的高いままであった。これらの群では、ウルシオール刺激用量に対する応答最大値は、それぞれ、２８．５および２２．５であった。
【０１１４】
３つの試験の全てにおける第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の皮膚病変スコアは、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアと比較すると、無視できるほどであった。このことは、３つの試験化合物のどれを筋肉内注射しても、動物がツタウルシ皮膚炎から保護されたことを示している。これら３つの群の皮膚病変スコアには目立った差が認められなかったので、３つの化合物全てが同程度に有効であった。
【０１１５】
試験＃１および試験＃２における第ＩＶ群および第Ｖ群の皮膚病変は、試験＃３における第ＩＶ群および第Ｖ群の皮膚病変と比較されるほどには重症ではなかった。大規模な感作を起こす用量の頸部へのウルシオール（１．０ｍｇ）によって、「アレルギー」の状態が引き起こされた可能性があり得る。この状態は、膨大な量のＴＢ抗原を持つが、皮内ＴＢ検査に反応性を示さない（偽陰性）、結核（ＴＢ）患者で観察される。本発明者らの実験では、莫大な量のウルシオールで動物を感作したことにより、最初の２つの試験の間にアレルギー状態が誘導された可能性がある。しかしながら、感作から試験＃３までの１１週の休息期間が、アレルギー状態から正常な反応状態に反転させたのかも知れない。したがって、試験＃３では、第ＩＶ群および第Ｖ群の動物がウルシオール刺激に対する比較的より強い皮膚反応を示したが、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の動物は、予防的処置のために保護された（試験用量を局所適用してから７２時間後の３回目の刺激に対する様々な群の反応性の写真を参照されたい）。
【０１１６】
実施例１５ 水溶性３−ｎ−ヘプタデシルカテコール誘導体を用いた既に感受性のあるモルモットのツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールに対する脱感作
この研究では、調製した水溶性誘導体のうちの１つをＩＭ投与することによって、既に感受性のある動物が脱感作されるかどうかを明らかにするために、感受性が確立されている、寛容研究の（誘導体で処置されていない）対照動物群ＩＶおよびＶ（表３Ａ〜Ｃならびに図４ＤおよびＥ参照）を使用した。
【０１１７】
第ＩＶ群の動物には、ＨＤＣ ２０ｍｇ／ｍＬ相当を含有するＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステル、４、溶液６００μＬ（各後肢に３００μＬ）を注射した。第Ｖ群の動物には、２つの３００μＬ用量に分けたビヒクル６００μＬを各後肢に投与した。約２週間の休息期間の後、両方の群の動物を、３つの用量のウルシオール（アセトン１５μＬに溶解した３．０μｇ、４．５μｇ、および６．０μｇ）を局所適用することにより刺激した。局所刺激の２４、４８、および７２時間後に、皮膚病変を観察し、先に記載したように採点した。
【０１１８】
結果：図５〜図７、および図４Ａ〜図４Ｃに結果を示す。２４時間で、第ＩＶ群の動物に皮膚病変は観察されなかった。したがって、合計群スコアは、全ての用量について０であった。第Ｖ群では、ウルシオール３．０μｇの場合、皮膚反応は観察されなかった。ウルシオール４．５μｇの場合にごくわずかな紅斑が観察され、合計群スコアは１．０であった。同様に、ウルシオール用量６．０μｇの場合、合計群スコアは２．５と低いままであった。
【０１１９】
局所刺激の４８時間後（図５Ｂおよび表４Ｂ）、第ＩＶ群と第Ｖ群の両方において、ウルシオール３．０μｇの場合、紅斑は観察されなかった。４．５μｇのウルシオール刺激で、第ＩＶ群の合計スコアは０．５であったが、第Ｖ群の合計スコアは４．０であった。ウルシオール用量６．０μｇで、第ＩＶ群の合計スコアは０．５のままであったが、第Ｖ群では、合計スコアが６．５に上昇した。
【０１２０】
ウルシオール刺激の７２時間後、第ＩＶ群の合計スコアは、全てのウルシオール刺激用量で、０〜１．５のままであった。第Ｖ群の動物の合計皮膚病変スコアは、特に６．０μｇ用量で、１８．５まで上昇した。
【０１２１】
第ＩＶ群の動物でのウルシオール刺激に応答した皮膚反応は、第Ｖ群の動物でのウルシオール刺激に応答した皮膚反応と比較すると、無視できるほどであった。これは、最高用量（６．０μｇ）でのウルシオール刺激の７２時間後に、特に明白であった（図６および図７）。これらの結果は、試験化合物をＩＭ注射することによって、第ＩＶ群の動物がウルシオール接触皮膚炎反応から保護されたことを示している。対照的に、第Ｖ群の対照動物は強い皮膚反応を示した。このことは、試験化合物ＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステル、４、をＩＭ注射することによって、それ以前に反応性であった動物が有効に脱感作されたことを示している。
【０１２２】
実施例１６：化合物３、４、および５の安定性
化合物に、特に室温での長期保存の利点があるかどうかを確認するために、調製された全ての誘導体に安定性研究を受けさせた。
【０１２３】
３つの化合物の（５％エタノール）水溶液を、１０ｍｇ／ｍＬ相当のＨＤＣ濃度で調製した。各化合物について、２５０μＬのアリコートをガラスバイアルに移して、この物質をフリーズドライし、バイアルに蓋をして室温（２０〜２４℃）で保存した。
【０１２４】
その後、個々のバイアルをある時点で取り出し、蒸留水で再構成して残渣を溶解し、溶液をＨＰＬＣ分析にかけた。クロマトグラフィー条件は、分解（加水分解）が起こったかどうかの決定が容易となるようなものである。試料は、ゼロ時間、１か月、３か月、６か月、９か月、１２か月、１８か月、および２４か月で分析した。
【０１２５】
結果：ＨＤＣフェニルアラニン酸２・ＨＣｌ（３）およびＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸２・ＨＣｌ（４）は、フリーズドライ状態で、室温（２０〜２４℃）で極めて安定であり、２４か月間室温保存した後、ゼロ時間時のもとの量の＞９９％がエステル形態で存在していることがデータから示された。他方、ＨＤＣ−ヘミグルタル酸２Ｎａ+、（５）は、同じ条件下であまり安定していなかった。１か月後、エステル形態の８．３％が加水分解され、ゼロ時間時の物質の２９．３％および４４．４％が、それぞれ、３か月および６か月で加水分解された。したがって、アミノ酸誘導体はより安定であり、長期保存することができると考えられる。
【０１２６】
実施例１７：
ヒトでの使用に適合する注射製剤の調製
【０１２７】
動物研究用に調製した製剤は、２つの化合物の塩（フェニルアラニン酸エステル（３）および４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル（４）のＨＣｌ塩）の使用をベースにしていた。これらの塩は、エタノールに容易に溶解する。これらのエタノール溶液を蒸留水と混合して、アルコール濃度が５％でしかない最終溶液を作製した。
【０１２８】
この製剤はヒトで使用することが許されるが、本発明者らは、最終溶液が等張であるいくつかの他の製剤を調製した。これらの製剤は、様々な他の可溶化（安定化）剤を含んでおり、動物試験で使用されたもとの５％エタノール溶液と比較される。以下のビヒクルを用いて、化合物（３）および（４）の溶液を２０ｍｇ／ｍｌで調製した。
水中の５％エタノール ＮａＣｌで等張にした
５％プロピレングリコール ＮａＣｌで等張にした
１０％プロピレングリコール ＮａＣｌで等張にした
５％ポリエチレングリコール４００（ＰＥＧ４００） ＮａＣｌで等張にした
１０％ＰＥＧ４００ ＮａＣｌで等張にした
【０１２９】
プロピレングリコールとＰＥＧ４００は両方とも、注射液を調製するために使用されており、ＦＤＡからこうした適用に安全である（ＧＲＡＳ）とみなされている。
【０１３０】
全てのビヒクルが両方の化合物を溶解することができたが、その場合、２０ｍｇ／ｍｌ溶液が室温で透明な溶液として形成された。したがって、上記のビヒクルのどれを用いても、これらの化合物の注射溶液を調製することができた。
【０１３１】
本活性剤のための代表的な送達レジメンとしては、非経口（皮下、筋肉内、および静脈内を含む）、経皮、ならびに鼻腔内へのものが挙げられる。
【０１３２】
薬学的に許容される塩は、活性物質の所望の生物学的活性を保持し、中毒性副作用がない。そのような塩の例は、（ａ）無機酸、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、リン酸、硝酸など、とともに形成される酸付加塩；および有機酸、例えば、酢酸、シュウ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、グルコン酸、クエン酸、リンゴ酸、アスコルビン酸、安息香酸、タンニン酸、パモン酸、アルギン酸、ポリグルタミン酸、ナフタレンスルホン酸、ナフタレンジスルホン酸、ポリガラクツロン酸など、とともに形成される塩；（ｂ）一価金属イオンおよび多価金属イオン、例えば、ナトリウム、カリウム、亜鉛、カルシウム、マグネシウムなど、とともに形成される塩基付加塩である。
【０１３３】
本発明のさらなる態様は、本発明の活性成分を、その薬学的に許容される塩として、薬学的に許容される無毒担体と混合された状態で含む薬学的組成物に関する。そのような組成物は、非経口（皮下、筋肉内、または静脈内）投与用に、特に、点鼻薬や鼻エアロゾルなどの液体溶液の形態で調製し得る。
【０１３４】
組成物は、単位投薬形態で好都合に投与してもよく、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，第１７版，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．，（１９８５）に記載されているような、薬学の技術分野で周知の任意の方法で調製してもよい。非経口投与用製剤は、滅菌水または滅菌食塩水、アルキレングリコール（例えば、プロピレングリコール）、ポリアルキレングリコール（ポリエチレングリコール）などを賦形剤として含有し得る。鼻投与用製剤は固体であり得、かつ賦形剤、例えば、ラクトースもしくはテキストランを含有し得るか、または点鼻薬もしくは定量スプレーの形態で使用される水溶液であり得る。
【０１３５】
鼻投与用に処方される場合、例えば、グリココール酸、コール酸、タウロコール酸、エトコール酸、デオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、デヒドロコール酸、グリコデオキシコール酸、シクロデキストリンなどの、界面活性酸（ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ ａｃｉｄ）によって、鼻粘膜からの吸収を増強し得る。
【０１３６】
他の物質、例えば、防腐剤、等張性を達成するための塩、緩衝剤などを、非経口製剤および鼻用製剤に添加してもよい。
【０１３７】
投与される実際の投薬量は、患者の体重、状態の重症度、および突発性疾患などの身体的および生理的要因によって決定することができる。これらの考慮すべき事柄を念頭に置いて、特定の対象およびまたは治療方針のための本発明の活性物質の投薬量を容易に決定することができる。
【０１３８】
結論
上述の説明では、特定の用語および視覚的描写を用いて、好ましい実施形態を説明した。しかしながら、先行技術で示されているものを超えて、使用した用語または描写した図によって、不必要な限定が解釈されるべきではない。なぜなら、これらの用語および図は、例示であるに過ぎず、本発明の範囲を限定することが意図されないからである。さらに、添付の特許請求の範囲に明記されているような、本発明の範囲を逸脱することなく、本発明に他の修正を施し得ることが知られている。本明細書で言及される参考文献および引用は全て、参照により本明細書に完全に組み入れられる。
【０１３９】
参考文献
１．Ｐｒａｉｓｅｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｃｅｉｌｌｅｙ，Ｒ．Ｌ，Ｌｅｆｋｏｖｉｔｓ，Ａ．Ｍ．，Ｋａｔｚ，Ｂ．Ｅ ａｎｄ Ｐａｌｌｅｒ，Ａ．Ｓ．２００３．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ，ｏａｋ ａｎｄ ｓｕｍａｃ，Ｄｅｒｍ．Ｉｎｓｉｇｈｔｓ．４：２６−１８．
２．ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．，Ｂｅｎｉｇｎｉ，Ｄ．Ａ．，Ｔｏｒｒｅｓ，Ｌ．ａｎｄ Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．１９８３．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ａｎｔｉａｌｌｅｒｇｅｎｉｃ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ３−ｎ−Ｐｅｎｔａｄｅｃｙｌ− ａｎｄ ３−ｎ−Ｈｅｐｔａｄｅｃｙｌｃａｔｅｃｈｏｌ Ｅｓｔｅｒｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．７２：７９２−７９５．
３．Ｍａｒｋｓ，Ｊ．Ｇ．ａｎｄ Ｄｅｌｅｏ，Ｖ．Ａ．１９９２．Ｃｏｎｔａｃｔ ａｎｄ ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ，ｐ．２１３−２１７．Ｍｏｂｙ−Ｙｅａｒ Ｂｏｏｋ．Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ．
４．Ｍａｒｋｓ，Ｊ．Ｇ．１９８９．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌ．９：４９７−５０６．
５．Ｆｉｓｈｅｒ，Ａ．Ａ．ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ，Ｊ．Ｃ．１９９５．Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｉｎ：Ｒｉｅｔｓｃｈｅｌ ＲＬ編．Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｕｓ．第４版．Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，ＭＤ：Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ．４６１−５２３．
６．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９８７．Ｔｈｅ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｐｉｃｋｅｒ ｏｆ ｐｅｎｎｙｐａｃｋ ｐａｒｋ：ｔｈｅ ｃｏｎｔｉｎｕｉｎｇ ｓａｇａ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ．Ｊ Ｉｎｖｅｓｔ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．８８（補遺３）７−１１．
７．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９９４．Ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｏａｋ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｃｌｉｎ．ｌ２：５１１−５１６．
８．Ｇｌａｄｍａｎ，Ａ．Ｃ．２００６．Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ Ｄｅｒｍａｔｉｔｕｓ：Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ，Ｏａｋ ａｎｄ Ｓｕｍａｃ．Ｗｉｌｄｅｒｎｅｓｓ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｍｅｎｔａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，１７：１２０−１２８．
９．Ｓｙｍｅｓ，Ｗ．Ｆ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，ＣＲ．１９５４．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ．Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．７６：２９５９−２９６３．
１０．Ｓｕｎｔｈａｎｋａｒ，Ｓ．Ｖ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，ＣＲ．１９５４．Ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｏｌｅｆｉｎｉｃ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ Ｊａｐａｎｅｓｅ Ｌａｃ ｕｒｕｓｈｉｏｌ．Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．７６：５０７０−５０７４．
１１．Ｍａｒｋｉｅｗｉｔｚ，Ｋ．Ｈ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．１９６５．Ｏｎ ｔｈｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｌｌｅｒｇｅｎｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ．Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．３０：１６１０−１６１３．
１２．Ｂｉｌｌｅｔｓ，Ｓ．，Ｃｒａｉｇ，Ｊ．Ｃ，Ｃｏｒｂｅｔｔ，Ｍ．Ｄ．ａｎｄ Ｖｉｃｋｅｒｙ，Ｊ．Ｆ．１９７６．Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．１５：５３３−５３５．
【０１４０】
１３．Ｔｙｍａｎ，Ｊ．Ｈ．Ｐ．１９９６．Ｓｔｕｄｉｅｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ５２．ｐ．４６５−５４６．Ｉｎ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ａｎｄ Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｈｅｎｏｌｓ．Ｅｌｓｅｖｉｅｒ．
１４．Ｘｉａ，Ｚ．，Ｍｉｙａｋｏｓｈｉ，Ｔ．ａｎｄ Ｙｏｓｈｉｄａ，Ｔ．２００４．Ｌｉｐｏｘｙｇｅｎａｓｅ−ｃａｔａｌｙｓｅｄ ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｅｎｏｌｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ａ ｎｅｗ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｆｏｒ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ａｎｄ ｉｔｓ ａｎａｌｏｇｓ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ．３１５：７０４−７０９．（この文献中の参照文献）
１５．Ｂｙｃｋ，Ｊ．Ｓ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．１９６８．Ａｓｓａｙ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ−ｑｕｉｎｏｎｅ ｃｏｕｐｌｉｎｇ ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ａｃｔｉｖｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ．Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５：１２３−１３５．
１６．Ｂｅｎｅｚｒａ，Ｃ．１９９０．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｉｎ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｔｏ ｎａｔｕｒａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｓ．Ｐｕｒｅ Ａｐｐｌ．Ｃｈｅｍ．６２：１２５１−１２５８．
１７．Ｋａｌｉｓｈ，Ｒ．Ｓ．１９９１．Ｒｅｃｅｎｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ｏｆ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１２７：１５５８−１５６３．
１８．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ，Ｗｉｒｔｈ，Ｐ．Ｗ．，ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．ａｎｄ Ｓｋｉｅｒｋｏｗｓｋｉ，Ｐ．１９８１．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ ｕｓｉｎｇ ３−ｎ−Ｐｅｎｔａｄｅｃｙｌｃａｔｅｃｈｏｌ−“Ｍｏｄｉｆｉｅｄ”Ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．７０：７８５−７８９．（この文献中の参照文献）
１９．Ｓｅｂａｓｔｉａｎｉ，Ｓ．，Ａｌｂａｎｅｓｉ，Ｃ，Ｄｅ ＰＯ，Ｐｕｄｄｕ，Ｐ．，Ｃａｖａｎｉ，Ａ，ａｎｄ Ｇｉｒｏｌｏｍｏｎｉ，Ｇ．２００２．Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅｓ ｉｎ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｒｅｓ ２９３：５５２−５５９
２０．Ｓａｎｃｈｅｚ−Ｓａｎｃｈｅｚ，Ｎ．，Ｒｉｏｌ−Ｂｌａｎｃｏ，Ｌ．ａｎｄ Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ，Ｊ．Ｌ．２００６．Ｔｈｅ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｐｅｒｓｏｎａｌｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ＣＣＲ７ ｉｎ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌｓ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７６：５１５３−５１５９．
【０１４１】
２１．Ｅｂｅｒｔ，Ｌ．Ｍ．，Ｓｃｈａｅｒｌｉ，Ｐ．ａｎｄ Ｍｏｓｅｒ，Ｂ．２００５．Ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｔ ｃｅｌｌ ｔｒａｆｆｉｃ ｉｎ ｌｙｍｐｈｏｉｄ ａｎｄ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｔｉｓｓｕｅｓ．Ｍｏｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ ４２：７９９−８０９．
２２．Ａｋｉｂａ，Ｈ．，Ｋｅｈｒｅｎ，Ｊ．，Ｄｕｃｌｕｚｅａｕ，Ｍ．Ｔ．，Ｋｒａｓｔｅｖａ，Ｍ．，Ｈｏｒａｎｄ，Ｆ．，Ｋａｉｓｅｒｌｉａｎ，Ｄ．，Ｋａｎｅｋｏ，Ｆ．ａｎｄ Ｎｉｃｏｌａｓ，Ｊ．Ｆ．２００２．Ｓｋｉｎ Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ Ｄｕｒｉｎｇ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｈｙｐｅｒｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｉｓ Ｍｅｄｉａｔｅｄ ｂｙ Ｅａｒｌｙ Ｒｅｃｒｕｉｔｍｅｎｔ ｏｆ ＣＤ８＋ Ｔ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ １ Ｃｅｌｌｓ ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ １６８：３０７９−３０８７．
２３．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９８９．Ｔｏｐｉｃａｌ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ／ｏａｋ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１２５：４９９−５０１．
２４．Ｇｒｅｖｅｌｉｎｋ，Ｓ．Ａ．，Ｍｕｒｒｅｌｌ，Ｄ．Ｆ．ａｎｄ Ｏｌｓｅｎ，Ｅ．Ａ．１９９２．Ｅｆｆｅｃｔｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ ｖａｒｉｏｕｓ ｂａｒｒｉｅｒ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇ ａｎｄ／ｏｒ ａｍｅｌｉｏｒａｔｉｎｇ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｌｙ ｐｒｏｄｕｃｅｄ Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｊ．Ａｍ．Ａｃａｄ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．２７：１８２−１８８．
２５．Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ｌ．，Ｗａｒｎｅｒ，Ｌ．Ｈ．ａｎｄ Ｇｏｌｄｍａｎ，Ｆ．Ｈ．１９４０．Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｏｉｎｔｍｅｎｔ ｆｏｒ ｔｈｅ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ Ｒｅｐ．５５：１３２７−１３３３．
２６．Ｓｈｅｌｍｉｒｅ，Ｂ．１９４１．Ｓｏｄｉｕｍ ｐｅｒｂｏｒａｔｅ ｏｉｎｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．ＪＡＭＡ．１１６：６８１−６８３．
２７．Ｏｒｃｈａｒｄ，Ｓ．１９８４．Ｂａｒｒｉｅｒ ｃｒｅａｍｓ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．Ｃｌｉｎ．２：６１９−６２９．
２８．Ｏｒｃｈａｒｄ，Ｓ．Ｍ．，Ｆｅｌｌｍａｎ，Ｊ．Ｈ．ａｎｄ Ｓｔｏｒｒｓ，Ｆ．Ｊ．１９８７．Ｔｏｐｉｃａｌ ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ ｗｈｉｃｈ ｐｒｅｖｅｎｔ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ Ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｃｔａ Ｄｅｒｍ Ｖｅｎｅｒｅｏｌ Ｓｕｐｐｌ（Ｓｔｏｃｋｈ）．１３４：１０３−１０６．
【０１４２】
２９．Ｖｉｄｍａｒ，Ｄ．Ａ．ａｎｄ Ｉｗａｎｅ，Ｍ．Ｋ．１９９９．Ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｏｐｉｃａｌ Ｓｋｉｎ Ｐｒｏｔｅｃｔａｎｔ（ＴＳＰ） ｔｏ Ｐｒｏｔｅｃｔ Ａｇａｉｎｓｔ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｔｏ Ｕｒｕｓｈｉｏｌ （Ｒｈｕｓ） Ａｎｔｉｇｅｎ．Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．１０：１９０−１９７．
３０．Ｓａｎｆｉｌｉｐｐｏ，Ａ．Ｍ．，Ｂａｒｒｉｏ，Ｖ．，Ｋｕｌｐ−Ｓｈｏｒｔｅｎ，Ｃ．ａｎｄ Ｃａｌｌｅｎ，Ｊ．Ｐ．２００３．Ｃｏｍｍｏｎ Ｐｅｄｉａｔｒｉｃ ａｎｄ Ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔ Ｓｋｉｎ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ．Ｊ．Ｐｅｄｉａｔｒ．Ａｄｏｌｅｓｃ．Ｇｙｎｅｃｏｌ．１６：２６９−２８３．
３１．Ｋｌｉｇｍａｎ，Ａ．Ｍ．１９５８．Ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ Ｒｈｕｓ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．７８：４７−７２．
３２．Ｒｉｅｔｓｃｈｅｌ，Ｒ．Ｌ．ａｎｄ Ｆｏｗｌｅｒ，Ｊ．Ｆ．１９９５．Ｔｏｘｉｃｏｎｄｅｎｄｒｏｎ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ，ｐ．４６１−５２３ Ｉｎ Ｆｉｓｈｅｒ ＡＡ，（編）：Ｆｉｓｈｅｒ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ（第４版）．Ｌｅａ ＆ Ｆｅｂｉｇｅｒ．Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ．
３３．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．，Ｂａｅｒ，Ｈ．，Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．ａｎｄ Ｋｈｕｒａｎａ，Ｒ．Ｇ．１９７４．Ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１０９：３５６−３６０．
３４．Ｓｔｅｖｅｎｓ，Ｆ．Ａ．１９４５．Ｓｔａｔｕｓ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｅｘｔｒａｃｔｓ．ＪＡＭＡ．１２７：９１２−９２１．
３５．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ，Ｗｉｒｔｈ，Ｐ．Ｗ．，Ｗａｌｌｅｒ，Ｃ．Ｗ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９８１．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：１．Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ａｎｄ Ｄｅｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ ａｎｄ Ｏａｋ Ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ Ｕｓｉｎｇ Ｅｓｔｅｒｉｆｉｅｄ Ｕｒｕｓｈｉｏｌ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ．７６：１６４−１７０．
３６．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９８３．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：Ｏｒａｌ Ｄｅｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ ａｎｄ Ｏａｋ Ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ．８０：１４９−１５５．
３７．Ｗａｌｋｅｒ，Ｌ．Ａ．，Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９９５．Ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｓｅ ｐａｒｅｎｔｅｒａｌ ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ｉｎ ｇｕｉｎｅａ ｐｉｇｓ．Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ．１７：５６５−５７６．
【技術分野】
【０００１】
本発明は一般に、ツタウルシ皮膚炎の防止および／または予防的治療および／または脱感作治療のための組成物、そのような組成物の使用方法、ならびにそのような組成物の作製方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ツタウルシ（トキシコデンドロン・ラジカンス（Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｒａｄｉｃａｎｓ））、アメリカツタウルシ（Ｔ．ジベルシロブム（Ｔ．ｄｉｖｅｒｓｉｌｏｂｕｍ））、およびドクウルシ（Ｔ．ベルニクス（Ｔ．ｖｅｒｎｉｘ））は、毎年１０００〜５０００万人の米国人を侵しており（１）、米国における職業性皮膚炎の主な原因である（２）。一般成人人口におけるツタウルシ過敏症およびアメリカツタウルシ過敏症の罹患率は、５０％〜７０％に及ぶ（３，４）。感作頻度は、８歳〜１４歳の間で最も高い（５）。ウルシオール感受性に対する遺伝的易罹患性から、ウルシオール感受性の両親から生まれる子供の８０％が感受性となることが示唆されている（６）。屋外活動ならびに消防、林業、および農業に関連する屋外仕事は危険性が高く、多大な医療費がかかり、従事者の身体障害をもたらす。毎年火災シーズンになると、カリフォルニア州、オレゴン州、およびワシントン州の林業従事者の約３分の１が、アメリカツタウルシ皮膚炎により障害を負う（７）。この障害は、大半の救急医および一次診療医および皮膚科医に非常によく知られている（８）。
【０００３】
皮膚原性成分を含む他のウルシ科植物属としては、アナカルジウム（Ａｎａｃａｒｄｉｕｍ）（カシューナッツ）、セミカルプス（Ｓｅｍｉｃａｒｐｕｓ）（インディアインクツリー）、メトピウム（Ｍｅｔｏｐｉｕｍ）（ポイゾンウッド）、およびマンギフェラ（Ｍａｎｇｉｆｅｒａ）（マンゴー）が挙げられる。これらのほとんどの植物中のアレルギー性成分は、Ｃ−１５またはＣ−１７側鎖と様々な不飽和度（０〜３個のオレフィン結合）とを有する３−ｎ−アルク−（エン）−イルカテコールである（９−１２）。ウルシオールは、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、およびアジア産のウルシ中に存在するそのようなアレルギー誘発性成分の典型である（１３）。これは、飽和しているかまたは１個、２個、もしくは３個の不飽和結合を有しているかのいずれかの、Ｃ−１５またはＣ−１７炭化水素鎖で３位または４位が置換されているカテコール環を有する（１４）。カテコール環と脂肪族鎖の両方が、ウルシオールのアレルギー誘発性に重要な役割を果たすことが証明されている（１５−１７）。これらのカテコールを感受性のある人の皮膚と接触させると、ウルシ科植物の全てのウルシオールに対する感作が起こる（１８）。ひとたび感受性が発現すると、消失させるのは、不可能ではないにしても難しい。
【０００４】
アレルギー性接触皮膚炎（ＡＣＤ）は、身体が異物と認識する物質との直接的な皮膚接触によって生じる。結果として生じる皮膚の炎症は、樹状細胞依存的な遅延型過敏免疫反応である。これは、眼瞼や性器皮膚などの薄い皮膚表面で生じるのがより一般的である。この種の応答は、ハプテンとして作用し得る種々の化合物に皮膚が曝されることによって誘発される。これらのハプテンは、タンパク質またはペプチドの別々のアミノ酸残基に結合した後、免疫原性となる。臨床症状の前に、臨床症状を示さない感作期がある。接触過敏症の齧歯類モデルは、ＡＣＤの機序を理解するのに貢献している。アレルゲン／ハプテン（今回の場合はウルシオール）を取り込んだ樹状細胞（ＤＣ）は、感作期間中に、流入領域リンパ節（ＬＮ）に遊走し、そこで成熟し、共刺激分子を発現し、ナイーブＴ細胞に抗原を提示することが知られている（１９−２０）。成熟ＤＣおよびナイーブＴ細胞は、ＬＮで発現されるケモカインによってＬＮに誘引される（１９，２１）。
【０００５】
感作された人がハプテン／ウルシオールに曝されると、特異的なＴ細胞（ＣＤ８＋およびＣＤ４＋）が、ケモカインの影響を受けて、皮膚上の曝露部位に遊走し、そこで細胞が大規模に増殖する（１９）。その後、活性化されたＴ細胞は、大量のサイトカインを産生および放出し、その結果、炎症および／または浮腫をもたらす炎症プロセスを引き起こす。ＣＤ８＋細胞傷害性リンパ球はＡＣＤの発症に関与する主要なエフェクター細胞であることが示唆されている。これらの細胞は、刺激後早期に動員される。ＣＤ４＋ Ｔ細胞サブセットは下方調節性細胞であり、７２時間後、ＡＣＤの回復期に皮膚病変で見られる（２２）。ウルシオールの経皮吸収は、他の親油性物質の経皮吸収と似ている。これらの分子は、角質層の細胞間脂質から皮膚に優先的に侵入する。ウルシオールと角質層との接触を阻止し、その侵入を防止する物質（別名、バリア製品）はどれも、ある程度の保護を与える可能性が高いと考えられる。多くの市販製品が開発され、それらのウルシオール皮膚炎防止効果が試験されており、これらの実験は公表されている（１，２３−２８）。現在、ある程度の現実的な効果を与える物質はごくわずかしかない（１，２３，２４）。
【０００６】
１つの製品（有機粘土のカンテリウム（ｑｕａｎｔｅｒｉｕｍ）−１８ベントナイト）が、Ｅｐｓｔｅｉｎ（２３）により試験的研究で検討され、ベントナイト、カオリン、またはシリコーンよりも実験的ウルシオール皮膚炎の防止に有効であることが分かった。１９９２年、Ｇｒｅｖｅｌｉｎｋら（２４）は、バリア製品の効果に関する当時の最良の概説を発表した。彼らはまた、９点の全般重症度スコアを用いて、２０人のボランティアにおける実験的ウルシオール皮膚炎の防止に対する７つの市販製品の有効性を比較した。Ｓｔｏｋｏｇａｒｄ（Ｓｔｏｃｋｈａｕｓｅｎ，Ｇｒｅｅｎｂｏｒｏ，ＮＣ）、Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ Ｍｏｉｓｔｕｒｅ Ｂａｒｒｉｅｒ（Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｌｉｂｅｒｔｙｖｉｌｌｅ，ＩＬ）、およびＨｙｄｒｏｐｅｌ（Ｃ＆Ｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ，Ｉｎｃ．，Ｈａｚｅｌ Ｐａｒｋ，ＭＩ）は、かなりの程度の保護を与えた。これらの製品は、それぞれ、５９％、５３％、および４８％の保護を与えた。Ｉｖｙ Ｓｈｉｅｌｄ（Ｉｎｔｅｒｐｒｏ，Ｉｎｃ．，Ｈａｖｅｒｈｉｌｌ，ＭＡ）、Ｓｈｉｅｌｄ Ｓｋｉｎ（Ｍａｎｔｏｒ Ｃｏｒｐ．，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）、Ｄｅｒｍｏｆｉｌｍ（Ｉｎｎｏｖｅｔｅｃ，Ｂｒｕｓｓｅｌｓ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、およびＵｎｉｄｅｒｍ（Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｎｅｐｈｅｗ，Ｉｎｃ．，Ｌａｒｇｏ，ＦＬ）は、それぞれ、２２％、１３％、３％、および９％の（あったとしても）ずっと少ないレベルの保護を与えた（２４）。Ｔｏｐｉｃａｌ Ｓｋｉｎ Ｐｒｏｔｅｃｔａｎｔ（ＴＳＰ）という、もう１つの皮膚バリア製品は、過フッ素化ポリエーテル油中で混合されたポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）樹脂から構成されている（２９）。ＴＳＰは、１９２か所の対を成す試験部位のうちの合計３４か所で皮膚炎を完全に防止し、２２か所の対を成す部位で皮膚炎を痕跡レベルのみにまで軽減させることがＶｉｄｍａｒおよびＩｗａｎｅにより報告された（２９）。
【０００７】
皮膚炎の治療は、主として対症的なものである。重症症例の患者に対しては、漸減用量の経口コルチコステロイド（例えば、プレドニソン）を使用してもよい。プレドニソンは、様々な疾患に対する免疫系の応答を減少させて、腫れやアレルギー型反応などの症状を低下させるコルチコステロイドホルモン（グルココルチコイド）である。しかしながら、コルチコステロイドの入手可能な「用量パック」は、非常に短い期間、わずかな用量のコルチコステロイドしか送達せず、多くの場合、リバウンド反応を引き起こすので、ほとんど役に立たない（３０）。
【０００８】
ツタウルシ関連ＡＣＤに対する残りの治療は、緩和ケアを中心としたものである。Ｂｅｎａｄｒｙｌ（登録商標）局所クリーム（Ｐｆｉｚｅｒ）は、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、およびドクウルシの滲出と浸出を乾燥させ、痛みと痒みを一時的に和らげる。
【０００９】
１９５０年代以降利用されている、ツタウルシ／アメリカツタウルシの抽出物を含む脱感作レジメン（感作された個体の感受性を消失させること）は多数あるが、確実に効果のあるものはない（３１，３２）。これらの技術は、様々なウルシオール製剤の摂取または非経口注射からなっていた。成功を記載した報告も中にはあったが（３１，３２）、脱感作のレベルは様々で、持続性がなかった。さらに、これらのレジメンによって、粘膜、皮膚、および全身への副作用が生じた。したがって、この手法は、大部分は中止されている。
【００１０】
植物抽出物の投与による減感作（感作された個体の感受性の程度を低下させること；寛容化）は得難い。これには多くの用量と長い年月が必要となるが、治療を中止すると感受性は速やかに取り戻される（１８，３１）。この目的のためにウルシ（Ｒｈｕｓ）抽出物（活性のあるアレルギー誘発性成分のウルシオールを含有する）を使用する利益と安全性は、１９１７年に最初に投与されて以来、議論の的となっている。ウルシ抽出物とアレルゲンの臨床的使用に関するいくつかの概説が書かれている（２３，３３，３４）。
【００１１】
投与された遊離形態のウルシオールに活性がない理由は、ウルシオールのカテコール部分に血漿タンパク質との高い反応性があることによる可能性がある。吸収されるとすぐに、ウルシオールはこれらのタンパク質と不可逆的に結合し、「失活」すると推定される。本発明者らは、寛容の生起またはツタウルシ皮膚炎の予防的治療に有効であるためには、ウルシオールが細胞膜に結合する必要があり得るということを理論的に説明した。このことを考慮して、本発明者らは以前に、溶解し、洗浄した血液細胞に由来する血液細胞膜の懸濁液にウルシオール溶液を添加することによって、細胞膜に結合したツタウルシウルシオールコンジュゲートを調製し、その後、この懸濁液を宿主動物に再注射した（１８）。本発明者ら（１８）は、モルモットの赤血球細胞膜に結合した３−ｎ−ペンタデシルカテコール（ツタウルシウルシオールの飽和同族体）の投与によって寛容が生じたことを示した。処置群は、２０週間の研究の間、３−ｎ−ペンタデシルカテコールに対して寛容であった。
【００１２】
その手法で成功したので、本発明者らは、一部のエステルが血液細胞の表面で加水分解し、それにより膜に結合し得る遊離ウルシオールを生じさせることができるという点で、ウルシオールエステルの投与はより有効であり得るという理論を立てた。ウルシオールエステルの投与は、例えば、皮下注射（「ｓ．ｃ」）、筋肉内注射（「ＩＭ」）、静脈内注射（「ＩＶ」）、鼻腔内投与、経粘膜投与、および直腸投与を介するものであり得る。ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの二酢酸エステルをナイーブモルモットにＩＶ注射することにより、モルモットモデルにおけるツタウルシウルシオールに対する寛容が達成され、感作された動物で同じ処置をすることにより、完全脱感作または減感作が達成された（３５）。ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの経口投与の有効性を、感受性のあるモルモットを脱感作するためのそれぞれのエステル化誘導体を用いて比較した（３６）。エステル化誘導体は、遊離ウルシオールがもたらすよりも大きい減感作をもたらし、この減感作はより長く持続した。本発明者らは、ウルシオールエステルが最も有効であるためには、非経口投与が必要であると結論付けた。したがって、本発明者らは、単回投与レジメンがツタウルシウルシオール皮膚炎に対する減感作に有効である可能性を評価する研究を行なった（３７）。減感作は、２０ｍｇの単回筋肉内用量で達成された。
【００１３】
エステル化ウルシオールを投与するためのビヒクルとして油を使用することは、ＩＶ注射または皮下注射の投与ほどは有効でない可能性のある徐放薬として作用することにより、投与経路（筋肉内に限定される）と薬物送達の効率の観点の両方から大きな制限を示す。したがって、有効な水溶性ウルシオール誘導体（またはその飽和同族体）の開発は、ツタウルシ／アメリカツタウルシ接触皮膚炎を防止するための成功した製品の実現可能な改良および選択肢となる。
【００１４】
ウルシオールを用いたツタウルシ／アメリカツタウルシ皮膚炎の予防的治療の作用機序は未知であるが、ＣＤ８＋ Ｔ細胞の下方調節を同時に伴うＣＤ４＋ Ｔ細胞増殖の上方調節が関与している可能性がある。
【発明の概要】
【００１５】
本発明は、１つまたは複数の実施形態において、ツタウルシウルシオール、すなわち、３−ｎ−ペンタデシルカテコール（ツタウルシウルシオール飽和同族体）および／またはアメリカツタウルシウルシオール、すなわち、３−ｎ−ヘプタデシルカテコール（アメリカツタウルシウルシオール飽和同族体）の水溶性誘導体を、ツタウルシ、アメリカツタウルシ、ならびにＡＣＤを引き起こす他のウルシ科植物およびイチョウ科植物によって引き起こされる接触皮膚炎の防止および／または予防的治療のための組成物として含む。さらに、本発明は、そのような化合物の作製方法に関する。特に、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対する寛容化および脱感作に有効な化合物であって、一般式（Ｉ）
【化１】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル（すなわち、ジペプチド残基、トリペプチド残基、もしくはポリペプチド残基）、水溶性特性を有する塩形成化合物になるカルバメート形成化合物または硫酸エステルもしくはリン酸エステルまたはジカルボン酸エステルである）の水溶性ウルシオールエステルを含む化合物が開示される。好適な置換基としては、Ｒ1が、ペンタデシル、ヘプタデシル、ノナデシル、モノオレフィンペンタデシル、モノオレフィンヘプタデシル、ジオレフィンペンタデシル、ジオレフィンヘプタデシル、トリオレフィンペンタデシル、およびトリオレフィンヘプタデシルである化合物が挙げられる。
【００１６】
本発明はまた、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して、ヒトを含む哺乳動物を寛容化および脱感作する方法であって、本発明に開示されているような化合物または化合物の混合物を含む組成物を該哺乳動物に投与する工程から本質的になる方法に関する。本出願の文脈では、脱感作は、感作された対象における感受性の消失および感作された対象における感受性の程度の低下（減感作または寛容化）を包含することが意図される。本発明の組成物の調製方法も開示される。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図１Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図１Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験１）を示す。
【図２Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図２Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図２Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験２）を示す。
【図３Ａ】ウルシオール刺激２４時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験３）を示す。
【図３Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコア（試験３）を示す。
【図３Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に記録した全ての群（Ｉ〜Ｖ）の合計試験スコアを示す。
【図４Ａ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第Ｉ群）の写真を示す。
【図４Ｂ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＩ群）の写真を示す。
【図４Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＩＩ群）の写真を示す。
【図４Ｄ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第ＩＶ群）の写真を示す。
【図４Ｅ】ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３（第Ｖ群）の写真を示す。
【図５Ａ】ウルシオール刺激２４時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図５Ｂ】ウルシオール刺激４８時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図５Ｃ】ウルシオール刺激７２時間後の合計群スコア（ＩＶ＆Ｖ）を示す。
【図６】ＥＬＩ-２１-５７-３で処置した後、ウルシオールで刺激した第ＩＶ群（７２時間での皮膚反応）の写真を示す。
【図７】ビヒクルで処置し、ウルシオールで刺激した第Ｖ群（７２時間での皮膚反応）の写真を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
水溶性ウルシオールエステル誘導体を含む戦略が開発された。該誘導体は、投与後に速やかに血流に達し、血液細胞の表面で加水分解して、活性のある遊離ウルシオールを生成することができ、その後、この活性のある遊離ウルシオールは、細胞膜に結合することができる。ウルシオール細胞膜コンジュゲートは、脱感作を引き起こす活性実体であると考えられている。
【００１９】
アミノ酸エステルにより、ウルシオールおよびウルシオール同族体のエステルであって、そのようなエステルを形成することが可能なカルボキシ基およびアミノ酸エステルの最終生成物中で薬学的に許容される塩形態に転換し得るアミノ基を有する化合物でフェノール基がエステル化されている、ウルシオールおよびウルシオール同族体のエステルを意味する。
【００２０】
ウルシオール「アミノ酸エステル」により、例えば、ウルシオールモノアラニナートまたはウルシオールジアラニナートを意味する。アミノ基（単数または複数）は、当然、任意のアミノ酸、ポリ（アミノ酸）、またはペプチドから生じたものであってよい。
【００２１】
本アミノ酸エステルを作製するために有用な化合物としては、天然と合成の両方のアミノ酸およびジペプチド、トリペプチド、またはポリペプチドが挙げられる。
【００２２】
有用なアミノ酸としては、例えば、アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、バリン、ホモセリン、ホモセリンラクトン、およびノルロイシンが挙げられる。
【００２３】
ウルシオールのカルバメート誘導体により、ウルシオール誘導体であって、フェノール性ヒドロキシル基がカルバメート結合に変換され、カルバメート形成物質の残基が薬学的に許容される塩に転換され得るカルボキシ基を含む、ウルシオール誘導体を意味する。
【００２４】
本明細書中の「ジカルボン酸」により、２つのカルボキシル基（−ＣＯＯＨ）を有する有機酸を意味する。本発明における好適なジカルボン酸は、例えば、マロン酸、リンゴ酸、グルタル酸およびその誘導体、ならびにコハク酸である。ジカルボン酸には、ジカルボン酸の無水物および反応性誘導体（例えば、ジカルボン酸ハライド）も含まれる。
【００２５】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対して対象を脱感作するのに有効な化合物であって、以下の式Ｉ
【化２】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル、カルバメート形成化合物、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体のエステルまたは硫酸エステルもしくはリン酸エステルであり、ここで、これらのエステルは塩形成化合物である）の水溶性ウルシオールエステルを含む化合物が開示される。
【００２６】
式ＩのＲ1は、ペンタデシル、ヘプタデシル、またはノナデシルであることができる。
【００２７】
式Ｉの化合物は、アミノ酸もしくはアミノ酸の組合せもしくはジカルボン酸を含むアミノ酸のエステル、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を介して形成されるエステル、リン酸エステルもしくは硫酸エステル、または塩形成カルバメートであるカルバメートエステルであることができる。
【００２８】
限定するものではないが、例示的化合物としては、ヘプタデシルカテコールフェニルアラニン酸エステル、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート、ヘプタデシルカテコールインドール−プロピオン酸エステル、ヘプタデシルカテコール−β−アラニン酸エステル、ペンタデシルカテコールバリニン酸エステル、ペンタデシルカテコール−ジ−バリニン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸エステル、ペンタデシルカテコールアスパラギン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステルが挙げられる。
【００２９】
本発明はまた、少なくとも１つの式Ｉによる水溶性化合物とそのための好適な薬学的担体とを含有する薬学的組成物を包含する。
【００３０】
これらの薬学的組成物は、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与されるのに適している。
【００３１】
本発明はさらに、ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、式Ｉによる化合物または化合物の混合物を含む組成物を該対象に投与する工程を含む方法を包含する。
【００３２】
治療方法は、対象への非経口投与、経皮投与、または経鼻投与によるものであり得る。
【００３３】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する本方法は、式Ｉによる水溶性化合物または水溶性化合物の混合物を含有する薬学的組成物を該対象に投与する工程を含む。
【００３４】
本発明はさらに、式ＩＩ
【化３】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物を、保護アミノ酸または保護アミノ酸の組合せまたはジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を含む保護アミノ酸の誘導体と反応させ、その後、保護基を除去することによって、本発明による化合物を調製する方法を提供する。
【００３５】
さらに、本発明は、本発明による化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化４】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体と反応させる工程を含む方法を包含する。
【００３６】
さらに、本発明は、本発明による化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化５】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をパラニトロフェニルクロロホルメートと反応させ、その後、この中間体をアミノ酸またはアミノ酸の組合せのアリルエステルと反応させ、その後、アリル基を除去する工程を含む方法を包含する。
【００３７】
さらなる実施形態は、本発明による硫酸エステルを作製する方法であって、式ＩＩ
【化６】
（式中、Ｒ1は、上に規定のものである）の化合物をクロロスルホン酸と反応させる工程を含む方法である。
【００３８】
以下の実験では、本発明の水溶性誘導体の調製方法が記載されている。当業者は、これらの調製方法が様々なウルシオールエステル誘導体の調製に広く適用可能であることを認識しているであろう。したがって、以下の方法は例示的なものである。さらに、当業者は、寛容化／脱感作の方法も広く適用可能であることも認識しているであろう。
【００３９】
実験
水溶性誘導体は、好適性の基準として、合成による収率、水溶解度、および純度に基づいて評価し得るし、実際そのように評価した。さらに、誘導体は、モルモット動物モデルにおいてツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールへの感作に対する寛容を生じさせる有効性について試験し得るし、実際そのように試験した。本発明のモルモット動物モデルなどの動物モデルにおける医薬品または他の薬剤の使用による成功した治療は、ヒトを含む他の動物モデルにおける効果と強く相関することが当技術分野でよく知られている。
【００４０】
水溶性ウルシオール誘導体の合成：
４つの異なるタイプの水溶性ウルシオール誘導体、すなわち、アミノ酸エステル、ジカルボン酸エステル、遊離の末端カルボン酸基を有するカルバメート、ならびに硫酸エステルおよびリン酸エステルを調製することができる。ウルシオールへの水溶性と適当な生体活性（インビボでの加水分解能を含む）とを十分に提供する他の基も企図される。したがって、以下の生成物もまた例示的なものである。これらの生成物は、カラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、および高性能液体クロマトグラフィーなどの、様々なクロマトグラフィー技術を用いて精製することができる。例えば、マススペクトロメトリー（ＭＳ）、1Ｈ−ＮＭＲ、赤外／紫外スペクトル分析（例えば、ＦＴＩＲ）、および13Ｃ−ＮＭＲを融点分析および元素分析とともに用いるスペクトル分析によって、構造の確認を行なうことができる。
【００４１】
ウルシオールのアミノ酸エステルの合成：
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１）およびヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２）（それぞれ、ツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールの飽和同族体）を用いて、構造３〜１２に示すエステルのような、様々なアミノ酸を有するエステルを調製することができる。他のアミノ酸およびアミノ酸ラジカル（ジペプチド、トリペプチド、またはポリペプチド）も企図される。
【００４２】
出発物質（１および２）は、それぞれ、精製したツタウルシウルシオールおよびアメリカツタウルシウルシオールを水素化することにより調製することができる。あるいは、化合物１および２は、実施例１〜３に記載の手順１、２、および３で例示されるように、合成によって調製される。不飽和同族体も出発物質として企図されており、例えば、化合物（１）または（２）の不飽和同族体を誘導体化して、不飽和カテコール誘導体を生成してもよい。
【化７】
【００４３】
（１）または（２）をジクロロメタン（ＤＣＭ）に溶解することができ、アミノ酸（２．２当量）（例えば、上記のアミノ酸）をこの溶液に添加することができる。次に、触媒量のジメチル−アミノピリジン（４−ＤＭＡＰ、例えば、０．１当量）をジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ、２．２当量）とともに添加して、出発物質が生成物に完全に変換されたことが薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）で確認されるまで、反応混合物を撹拌させておくことができる。
【００４４】
好適な染色剤および他の検出手段（ＴＬＣプレートの紫外線分析を含む）を使用してもよく、当業者であれば、そのような薬剤および／または技術を容易に決定することができるであろう。例示的な技術には、モニター剤としての塩化第二鉄が含まれるが、その場合、遊離カテコールは明瞭な濃い青色をすぐに呈する。
【００４５】
ＴＬＣプレートの前処理も当業者の能力の範囲内であり、これには、塩化第二鉄で染色する前に、アルカリによるエステルの加水分解を誘導するために、１Ｎ ＮａＯＨをプレートスプレーとして使用することが含まれる。また、好適な後処理技術も当業者の能力の範囲内であり、これには、反応液の濾過、分離、または洗浄（分液漏斗および好適な溶媒の使用によるもの）と、有機溶媒の乾燥（例えば、硫酸マグネシウムまたは硫酸ナトリウムを用いるもの）と、濃縮（例えば、回転蒸発によるもの）とが含まれる。
【００４６】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル（ｔ−Ｂｏｃ）で保護された生成物は主に、ＴＬＣを含む任意の好適な技術で画分をモニターしながら、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製することが好ましい。
【００４７】
Ｔ−ＢＯＣの脱保護
無水テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を飽和するまでＨＣｌガスで通気する。過剰なＨＣｌガスは窒素でフラッシュする。その後、ｔ−Ｂｏｃ誘導体を無水ＴＨＦに溶解することができる。これに続いて、酸性ＴＨＦを滴加する。酸性ＴＨＦを全て添加した後、完全に脱保護されたことがＴＬＣまたは任意の他の好適な技術によって確認されるまで、混合物を室温で撹拌させておく。その後、溶媒を蒸発させる。その後、残渣にアセトンを添加し、混合物を冷凍庫で一晩保存する。翌朝、このようにして得られた固体生成物を濾過する。この結晶化手順を繰り返して、生成物を完全に回収してもよい（スキーム１）。１および２のアミノ酸エステルの中には、アセトンへの溶解度が高いものがある可能性があり、したがって、結晶化しない場合がある。このような場合は、溶媒を蒸発させて固体生成物を生じさせ、これを適当な溶媒から結晶化させる。
【化８】
【００４８】
スキーム１：１および／または２のアミノ酸エステルの合成のための一般的手順
【化９】
モノアミノ酸誘導体に加えて、本発明は、２つ、３つ、またはそれより多くのアミノ酸を有する誘導体（ジペプチド誘導体、トリペプチド誘導体、またはポリペプチド誘導体）も含む。そのような誘導体は、水溶性に加えて、増大した安定性を有する可能性がある。ジペプチド誘導体の合成は、モノ誘導体について記載したのと同じ手順に従い、それによって、アミノ酸をもう１つ付加してジペプチドを作製するためにモノ誘導体を使用し、アミノ酸をもう１つ付加してトリペプチド誘導体を形成するためにジペプチドを使用し、などとする。これは、下記の一般的スキームに示されている。あるいは、ポリペプチド誘導体については、まずポリペプチドそれ自体を所望の長さに合成した後、このポリペプチドを化合物１または２と直接反応させて、所望の生成物を生成させる。
【化１０】
【００４９】
カルバメートまたはウルシオールの合成
ペンタデシルカテコール（１）およびヘプタデシルカテコール（２）を用いて、スキーム２に概説されているような以下の一般的手順を用いて、様々なカルバメートを作製することができる。
【００５０】
新たに蒸留したＤＣＭに出発物質を溶解し、ＤＭＡＰとトリエチルアミンを添加した後、４−ニトロフェニル−クロロホルメートを添加した。反応の完了をＴＬＣでモニターすることができる。完了している場合、ＤＣＭに溶解された４−アミノ酪酸アリルエステルまたは６−アミノヘキサン酸アリルエステルまたは４−（４−アミノフェニル）酪酸アリルエステルを滴加して、それぞれ、最終生成物のアリルエステル９〜１１を生成させる。反応の完了を再びＴＬＣでモニターすることができる。保護された生成物は、様々なクロマトグラフィー技術で精製することができる。
【００５１】
カルバメートのアリルエステルの脱保護
生成物をＤＣＭに溶解し、この溶液にトリフェニルホスフィンとともにフェニルシランを添加することができる。反応混合物を室温で撹拌させておき、完了をＴＬＣでモニターすることができる。その後、メタノール（ＭｅＯＨ）を添加し、さらに１５分間撹拌を続ける。その後、溶媒を蒸発させ、クロマトグラフィー技術を用いて生成物を精製する。
【化１１】
【００５２】
スキーム２．１および／または２のカルバメートの合成のための一般的手順
【化１２】
ウルシオールの硫酸エステルの合成
出発物質（１または２）を無水トルエンに溶解し、−１６〜−１８℃に冷却し、この温度で維持することができる。温度を維持しながら、３０分間かけてクロロスルホン酸を滴加する。その後、例えば、ＴＬＣで示されるような完了まで、反応液を撹拌させておく。反応が完了するとすぐに、０．１Ｎ ＨＣｌを添加し、混合物をＤＣＭで３回抽出する。有機層を合わせ、蒸発乾固させる。様々なクロマトグラフィー技術を用いて生成物（１６、２から出発）を精製してもよい。
【化１３】
硫酸モノ−（３−ヘプタデシル−２−スルホオキシ−フェニル）エステル−１６
【実施例】
【００５３】
実施例１：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順１）
【化１４】
２，３−ジヒドロキシベンズアルデヒドの無水エタノール溶液に、触媒量のヨウ素とともに無水Ｋ2ＣＯ３を添加し、５℃で撹拌しながら、塩化ベンジルを滴加した。
【００５４】
混合物を還流しながら３時間撹拌し、その後、追加の塩化ベンジルを添加して、さらに２時間還流した。
【００５５】
溶媒を蒸発させ、残渣をエーテルと水の間に分配した。有機溶液を水で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させた。揮発性物質を全て高真空で蒸発させ、生成物を明黄色固体物質として得た。収率は定量的であった。
【化１５】
【００５６】
テトラデシルグリニャール試薬を、エーテル中の臭化テトラデシル、マグネシウム、および微量のヨウ素から通常の方法で調製した。この溶液に、還流しながら、エーテル中の２，３ジベンジルオキシ−ベンズアルデヒドを添加した。添加後、混合物を４時間還流し、冷却し、２２℃にて１２％塩酸で処理した。層を分離し、有機層を水で２回洗浄し、その後、ブラインで洗浄した。溶媒を蒸発させて、油状の粗生成物を生成させた。この油状の粗生成物を氷冷メタノールに溶解し、沈殿したろう状物質を濾過した。
【化１６】
【００５７】
１０％のＰｄ／Ｃ触媒と濃Ｈ2ＳＯ4とを用いて、２００ＰＳＩ、１２５℃で、２，３ジベンジルオキシ−テトラデシルベンジルアルコールまたは２，３ジベンジルオキシ−ヘキサデシルベンジルアルコールの水素化を行ない、ペンタデシルカテコール（１）またはヘプタデシルカテコール（２）を生成させた。
【００５８】
実施例２：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順２）
【化１７】
テトラデシルグリニャール試薬を、エーテル３Ｌ中の臭化テトラデシル（３．３ミリモル）とマグネシウム（３．５ミリモル）と微量のヨウ素とから通常の方法で調製した。これに、還流しながら、２，３−ジメトキシ−ベンズアルデヒド（２．９ミリモル）のエーテル溶液１Ｌを添加した。添加後、混合物を４時間還流し、冷却し、２０℃にて３Ｌの１２％ＨＣｌで処理し、層を分離し、有機層を水で２回洗浄し、その後、ブラインで洗浄した。その後、エーテルを回転蒸発させると、シロップが残った。このシロップを２ＬのＭｅＯＨに溶解した。氷浴中で一晩冷却した後、沈殿したろう状物質を濾過した。揮発性物質を全て回転蒸発させることにより、濾液から粗生成物を単離した。収率は定量的であった。
【化１８】
【００５９】
１０％のＰｄ／Ｃ触媒１０ｇと濃Ｈ2ＳＯ4 １０ｍＬとを用いて、２００ＰＳＩ、１２５℃で、酢酸エチル１．５Ｌ中の２，３−ジメトキシ−１−テトラデシルベンジルアルコール（１．７ミリモル、粗製物）を水素化した。反応は４〜６時間で完了した。触媒を濾過した。濾液を水で２回、ブラインで１回洗浄した。ＭｇＳＯ4上で乾燥させた後、溶媒を回転蒸発させ、残留油を蒸留した。最大１６０℃、０．１トールで、多量の物質（未同定）が得られた。その後、１６５〜１９５℃、０．２トールで、生成物を回収した。
【化１９】
【００６０】
ガラス蒸留した塩化メチレン（ＤＣＭ）５００ｍＬ中の２，３−ジメトキシ−６−ペンタデシルカテコール（０．９ミリモル）を、窒素雰囲気下のガラス蒸留したＤＣＭ ２Ｌ中の三臭化ホウ素（ＢＢｒ3）（２．４ミリモル）の撹拌溶液に、−２０〜−１０℃にて滴加した。添加を完了した後、混合物を室温で一晩撹拌した。メタノールを１０〜２０℃で添加した。混合物を強い窒素流の下で３０〜４０℃に加温し、存在する臭化水素の大部分を除去した。結晶化を用いて生成物を精製した。
【００６１】
実施例３：
ペンタデシルカテコールまたはヘプタデシルカテコール（ＰＤＣまたはＨＤＣ）の合成（手順３）
上記の手順に記載したグリニャール反応の代替法であるウィッティヒ反応を用いて、以下に示すようにオレフィンを生成させた後、適切な工程を経て、所望の生成物を得た。
【化２０】
【００６２】
生成された全ての化合物をその純度（＞９９．５％）についてＨＰＬＣで分析した。
【００６３】
実施例４：ＨＤＣ−フェニルアラニン酸エステル（３）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．２５ｇ）をＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−フェニル−アラニン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとＤＣＣ（２．２当量）とを添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００６４】
塩化第二鉄を試薬として用いて、ＴＬＣで反応混合物をモニターしたが、その場合、遊離カテコールは、この試薬によって明瞭な濃い青色をすぐに呈した。しかしながら、エステルは、呈色する前に、塩基加水分解される必要があった。１ＮのＮａＯＨを第２のスプレーとして用いて、エステルを加水分解し、エステルのスポットを置いた。反応が完了した後すぐに、反応混合物を濾過して、試薬の大部分を取り除き、その後、溶媒を蒸発させた。ｔ−ｂｏｃ保護された生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、回収した画分をＴＬＣでモニターした。
【００６５】
無水ＴＨＦを飽和するまでＨＣｌガスで通気した。過剰なＨＣｌガスは窒素でフラッシュした。ｔ−ｂｏｃ誘導体を無水ＴＨＦに溶解し、酸性ＴＨＦを滴加した。酸性ＴＨＦを全て添加した後、ＴＬＣによって確認されるように完全に脱保護されるまで、混合物を室温で撹拌させておいた。その後、溶媒を蒸発させ、残渣にアセトンを添加した。混合物を冷凍庫で一晩保存した後、固体生成物を濾過により得た。この結晶化手順を繰り返して、生成物２３９ｍｇ（７３％）を得た。
【００６６】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ６４３．４４７０［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ58Ｎ2Ｏ4の計算値、６４３．４４７５）および他のスペクトル技術によって確認した。
【００６７】
ＨＤＣ−フェニルアラニン酸エステルの水溶解度：
エタノール５０ｕｌに溶解したとき、ＨＤＣ−フェニルアラニナート（１０ｍｇ）は均一な溶液を形成した。得られた溶液を水で１ｍｌに合わせた。
【化２１】
【００６８】
実施例５：３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート（４）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液に４−アミノ−フェニル−酪酸（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとＤＣＣ（２．２当量）とを添加し、出発物質が生成物（ＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステルともいう）４に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００６９】
反応混合物を通常通りに後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製した。生成物を含有する画分を合わせて、生成物１４４ｍｇ（８９％）を得た。
【００７０】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ６７１．４７８８［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ43Ｈ63Ｎ2Ｏ4の計算値、６７１．４９７０）および他のスペクトル技術によって確認した。
【００７１】
エタノール５０ｕｌにＨＣｌ塩として溶解したとき、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート１０ｍｇは透明な溶液であった。得られた溶液を水で１ｍｌ（１０ｍｇ／ｍｌ）に合わせた。
【化２２】
【００７２】
末端カルボン酸機能を有するウルシオールエステルの合成：
【００７３】
実施例６：５，５’−（３−ヘプタデシル−１，２−フェニレン）ビス（オキシ）ビス（５−オキソペンタン酸）（５）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にグルタル酸無水物（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰとトリエチルアミンとを添加し、出発物質が生成物５（ＨＤＣ−ヘミグルタレートともいう）に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００７４】
反応混合物を上記のように後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、ＨＤＣのジ−ヘミグルタル酸エステル１８０ｍｇ（７２％）、（５）を得た。
【００７５】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５７５．３７４０［Ｍ−Ｈ］+（Ｃ33Ｈ52Ｏ8の計算値、５７５．３７３１）および他のスペクトル分析技術によって確認した。
【化２３】
【００７６】
エタノール５０ｕｌに溶解したとき、ＨＤＣのジヘミグルタル酸エステル１０ｍｇは均一な溶液を形成した。得られた溶液をリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ８）で１ｍｌに合わせた。
【００７７】
実施例７：ＨＤＣ−インドール−プロピオン酸エステル（６）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．２０ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にインドールプロピオン酸（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００７８】
反応混合物を通常通りに後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、生成物（９０％）を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７２５．４２４８［Ｍ＋Ｃｌ］-（Ｃ45Ｈ58ＣｌＮ2Ｏ4の計算値、７２５．４０８０）によって確認した。
【化２４】
【００７９】
実施例８：ＨＤＣ−β−アラニン酸エステル（７）の調製
ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、２、０．１０ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−β−アラニン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８０】
反応混合物を上記のように後処理し、生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーを用いて精製し、生成物を含有する画分を合わせて、生成物（８５％）を得た。
【００８１】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得る。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ４９０．３３７１［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ29Ｈ51Ｎ2Ｏ4の計算値、４９１．４０７２）によって確認した。
【化２５】
【００８２】
実施例９：ＰＤＣ−バリニン酸エステル（８）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．２５ｇ）をＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−バリン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８３】
生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７１９．５２２０［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ71Ｎ2Ｏ8の計算値、７１９．５２０５）によって確認した。
【００８４】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００８５】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５１９．４２２４［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ31Ｈ55Ｎ2Ｏ5の計算値、５１９．４９５６）によって確認した。
【化２６】
【００８６】
実施例１０：ＰＤＣ−ジ−バリニン酸エステル（９）の調製
ＰＤＣ−バリンをＤＣＭ ２０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−バリン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００８７】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ９１７．６５５３［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ59Ｈ89Ｎ4Ｏ10の計算値、９１７．６５７３）によって確認した。
【００８８】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載した手順で行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ７１７．５５６１［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ41Ｈ73Ｎ4Ｏ6の計算値、７１７．５５２５）によって確認した。
【化２７】
【００８９】
実施例１１：ＰＤＣ−グルタミン酸エステル（１０）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．０５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−グルタミン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９０】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９１】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載した手順で行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成物をＨＲＥＩＭＳ（ＴＯＦ） ｍ／ｚ ５７７．３９６６［Ｍ＋Ｈ］+（Ｃ31Ｈ53Ｎ4Ｏ6の計算値、５７７．３９６０）によって確認した。
【化２８】
【００９２】
実施例１２：ＰＤＣ−アスパラギン酸エステル（１１）の調製
ペンタデシルカテコール（ＰＤＣ、１、０．０５ｇ）をＤＣＭ １０ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−Ｌ−アスパラギン（２．２当量）を添加した。その後、触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９３】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−Ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９４】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成された生成物を、ＬＣ／ＭＳ ｍ／ｚ ５４９．５［Ｍ＋Ｈ］+を用いて確認した。
【化２９】
【００９５】
実施例１３：ＰＤＣ−グルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステル（１２）の調製
ＰＤＣ−グルタミン酸（１０）をＤＣＭ ８ｍＬに溶解し、この溶液にｔ−ｂｏｃ−β−アラニン（２．２当量）を添加した。触媒量のＤＭＡＰを（２．２当量）のＤＣＣとともに添加し、出発物質が生成物に完全に変換されたことがＴＬＣで確認されるまで、反応混合物を撹拌させておいた。
【００９６】
シリカゲルカラムクロマトグラフィーを使用し、画分をＴＬＣでモニターして、ｔ−ｂｏｃ保護された生成物を精製した。
【００９７】
ｔ−ｂｏｃの脱保護を先に記載したように行なった。アセトン結晶化手順を繰り返して、純粋な生成物を得た。生成された生成物を、ＬＣ／ＭＳ ｍ／ｚ ７１９．６［Ｍ＋Ｈ］+を用いて確認した。
【化３０】
【００９８】
実施例１４：モルモット接触皮膚炎モデルにおける水溶性３−ｎ−ヘプタデシルカテコール誘導体を用いたツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールに対する寛容の誘導
特に、３−ｎ−ヘプタデシルカテコール（ＨＤＣ、アメリカツタウルシウルシオールの飽和同族体）の３つの誘導体、すなわち、ＨＤＣフェニルアラニン酸エステル（３）、ＨＤＣヘミグルタル酸エステル（５）、およびＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル（４）を調製し、試験した。モルモット動物モデルを用いて、接触皮膚炎に対するこれらの薬剤活性および他の生物学的活性を評価した。
【化３１】
【００９９】
動物：ハートレー系モルモット（ｎ＝４０）をＨａｒｌａｎ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ ＩＮ ４６２２９から入手した。動物を５群（ｎ＝８／群）に分け、以下に記載の通りに処置した。これらの動物を１２時間の昼夜周期の管理された環境に置き、餌と水を自由に取らせた。研究デザイン：ダイアグラム１に、本発明に従って生成される薬剤の有効性を決定するための一般的手順が記載されている。ダイアグラムに示すように、０週目にＨＤＣ誘導体を注射した後、２週目に感作し、その後、３週目以降にウルシオール刺激する。
【化３２】
ダイアグラム１．実験中の様々な時点で与えられる処置を示す模式的研究デザイン
【０１００】
第Ｉ群．この群の動物には、各後肢に筋肉内（ＩＭ）経路を介して化合物（４）（ＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル）；遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μｌ投与した。２週間後、これらの動物を、頸部表皮へのウルシオール（１．０ｍｇのウルシオールを含有する１００μＬのアセトン）で感作した。２週間後、動物を、腹部皮膚への容量１５μＬのウルシオール（３．０μｇ、４．５μｇ、または６．０μｇを含有する容量１５μＬのアセトン）で刺激した。ビヒクルは、１５μＬのアセトンを含有していた（ダイアグラム２参照）。動物を感作後３回試験した。試験＃１は感作２週間後に、試験＃２は感作４週間後に、試験＃３は感作１２週間後に行なった。
【０１０１】
第ＩＩ群．動物には、ＩＭ経路を介してＨＤＣフェニルアラニンエステル（化合物３）の遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μＬ（合計６００μＬ）、各後肢に投与した。これに続いて、頸部へのウルシオールで感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚へのウルシオール刺激を試験した。
【０１０２】
第ＩＩＩ群．動物には、ＩＭ経路を介してＨＤＣヘミグルタル酸エステル（化合物５）の遊離カテコールの５％エタノール溶液２０ｍｇ／ｍＬ相当を３００μＬ、各後肢に投与した。この２週間後に、頸部への（ウルシオール１００μＬ）で感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【０１０３】
第ＩＶ群．動物には、ＩＭ経路を介してビヒクル（５％エタノール）３００ｕＬを各後肢に投与した。この２週間後に感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【０１０４】
第Ｖ群．この群の動物には、ＩＭ経路を介してＰＢＳ（各後肢に３００μＬ）を投与した。この２週間後に感作し、その後、第Ｉ群について記載したように腹部皮膚での試験を行なった。
【化３３】
ダイアグラム２．腹部皮膚上でのウルシオール刺激投与の適用部位
【０１０５】
動物を腹部皮膚へのウルシオールで刺激した後、紅斑と浮腫の重症度を観察し、以下に示すようなドレーズ（Ｄｒａｉｚｅ）スコアリングシステムに従ってスコアリングした。ウルシオールを皮膚に適用してから２４、４８、および７２時間後に、スコアを記録した。
【表１】
紅斑と浮腫のスコアの合計最大値＝８
【０１０６】
結果：表１Ａ、Ｂ、Ｃ（それぞれ、刺激後２４、４８、および７２時間でのスコア）から表３Ａ、Ｂ、Ｃ、ならびに図１Ａ、Ｂ、Ｃから図３Ａ、Ｂ、Ｃに結果を示す（処置群Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩと比較した未処置群ＩＶおよびＶにおける反応の重症度を図示するために、ウルシオール刺激７２時間後に撮影された試験＃３の写真も図４Ａ〜Ｅに示す）。
【０１０７】
試験＃１：モルモットの３つの処置群である第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群は、腹部皮膚への様々な用量（３．０μｇ、４．５μｇ、および６．０μｇ）のウルシオールで刺激したとき、刺激の２４時間後、４８時間後、または７２時間後のいずれにも、曝露部位で紅斑を全く示さなかったか、またはほんのわずかな浮腫しか示さなかった。対照的に、第ＩＶ群および第Ｖ群の動物は、様々な程度の紅斑と浮腫を示した。２４時間で、ウルシオール３．０μｇおよび４．５μｇの刺激用量では、第ＩＶ群の皮膚病変スコアは第Ｖ群の皮膚病変スコアよりも低かった。しかしながら、６．０μｇの刺激用量では、これら２つの群のスコアに差がなかった。予期した通り、ビヒクル（アセトン）は反応を示さなかった。刺激の４８時間後、３つの予防的処置群Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩでは、紅斑または浮腫は観察されなかった。これらの群の皮膚病変スコアは、１．０未満のままであった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、病変スコアは、ウルシオール刺激濃度の増加につれてより高くなった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは同程度であったが、第Ｖ群でわずかにより高い傾向にあった。刺激の７２時間後、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群では、紅斑または浮腫は観察されなかった。皮膚病変スコアは、１．０未満のままであった。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは同程度であったが、第Ｖ群でわずかにより高い傾向にあった。
【０１０８】
様々な時点での第ＩＶ群および第Ｖ群の病変スコアの比較により、最大の紅斑と浮腫は、４８時間で観察されたことが示されている。４８時間での病変と比較して、７２時間では、病変が消失する傾向にあった。
【０１０９】
試験＃２：この試験は、試験＃１の２週間後に実施された。２４時間で、（予防的処置をした）第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の皮膚病変スコアは１．０未満であった。第ＩＶ群（ビヒクル）では、スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量に曝露された場合に、２．５、３．０、および３．５であった。第Ｖ群では、スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量の場合に、１．０、４．０、および６．５であった。４８時間で、第Ｉ群は、４．５または６．０μｇの刺激用量のウルシオールで、合計スコア１．５を示した。第ＩＩ群の動物の皮膚病変スコアは１．０を超えなかった。第ＩＩＩ群では、合計スコアは、それぞれ、４．５および６．０μｇのウルシオール用量の場合に１．０および２．５であった。これらのスコアは、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアよりも比較的低かった。第Ｖ群では、合計スコアは、それぞれ、３．０、４．５、および６．０μｇのウルシオール用量に対して、１．０、４．０、および６．５であった。
【０１１０】
７２時間で、病変は退縮する傾向にあった。第Ｉ群および第ＩＩ群の合計病変スコアは１．０を超えず、第ＩＩＩ群では最大２．０に後退した。第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変スコアは後退し、０．５〜２．０の範囲であった。比較の上では、これらのスコアは、予防的処置をした第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群よりも相対的に高かった。
【０１１１】
試験＃３：この試験は、前回の試験＃２の約７週間後に実施された。２４時間で、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群は、使用したどの用量でも、ウルシオール刺激部位に紅斑または浮腫を示さなかった。第ＩＶ群の動物は、この研究で使用したそれぞれの増加用量に対して、２．０、５．０、および９．０という病変スコアを示した。第Ｖ群の皮膚病変スコアは、第ＩＶ群の皮膚病変スコアと同程度で、使用したそれぞれのウルシオール用量に対して、２．５、４．０、および７．０であった。
【０１１２】
４８時間で、第Ｉ群および第ＩＩＩ群の病変スコアは１．０未満のままであり、第ＩＩ群の病変スコアでは１．０を超えなかった。しかしながら、第ＩＶ群および第Ｖ群では、皮膚病変は、比較的より顕著であった。第ＩＶ群では、病変スコアの合計は、使用したそれぞれのウルシオール用量に対して、１１．５、２０．５、および２９．５であった。同様に、第Ｖ群の病変スコアは、それぞれ３つのウルシオール刺激用量に対して、合計で最大６．０、１６．０、および２３．５であった。
【０１１３】
７２時間で、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群のスコアは１．０未満に後退したか、または１．０を超えなかった。対照的に、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアは、比較的高いままであった。これらの群では、ウルシオール刺激用量に対する応答最大値は、それぞれ、２８．５および２２．５であった。
【０１１４】
３つの試験の全てにおける第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の皮膚病変スコアは、第ＩＶ群および第Ｖ群のスコアと比較すると、無視できるほどであった。このことは、３つの試験化合物のどれを筋肉内注射しても、動物がツタウルシ皮膚炎から保護されたことを示している。これら３つの群の皮膚病変スコアには目立った差が認められなかったので、３つの化合物全てが同程度に有効であった。
【０１１５】
試験＃１および試験＃２における第ＩＶ群および第Ｖ群の皮膚病変は、試験＃３における第ＩＶ群および第Ｖ群の皮膚病変と比較されるほどには重症ではなかった。大規模な感作を起こす用量の頸部へのウルシオール（１．０ｍｇ）によって、「アレルギー」の状態が引き起こされた可能性があり得る。この状態は、膨大な量のＴＢ抗原を持つが、皮内ＴＢ検査に反応性を示さない（偽陰性）、結核（ＴＢ）患者で観察される。本発明者らの実験では、莫大な量のウルシオールで動物を感作したことにより、最初の２つの試験の間にアレルギー状態が誘導された可能性がある。しかしながら、感作から試験＃３までの１１週の休息期間が、アレルギー状態から正常な反応状態に反転させたのかも知れない。したがって、試験＃３では、第ＩＶ群および第Ｖ群の動物がウルシオール刺激に対する比較的より強い皮膚反応を示したが、第Ｉ群、第ＩＩ群、および第ＩＩＩ群の動物は、予防的処置のために保護された（試験用量を局所適用してから７２時間後の３回目の刺激に対する様々な群の反応性の写真を参照されたい）。
【０１１６】
実施例１５ 水溶性３−ｎ−ヘプタデシルカテコール誘導体を用いた既に感受性のあるモルモットのツタウルシ／アメリカツタウルシウルシオールに対する脱感作
この研究では、調製した水溶性誘導体のうちの１つをＩＭ投与することによって、既に感受性のある動物が脱感作されるかどうかを明らかにするために、感受性が確立されている、寛容研究の（誘導体で処置されていない）対照動物群ＩＶおよびＶ（表３Ａ〜Ｃならびに図４ＤおよびＥ参照）を使用した。
【０１１７】
第ＩＶ群の動物には、ＨＤＣ ２０ｍｇ／ｍＬ相当を含有するＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステル、４、溶液６００μＬ（各後肢に３００μＬ）を注射した。第Ｖ群の動物には、２つの３００μＬ用量に分けたビヒクル６００μＬを各後肢に投与した。約２週間の休息期間の後、両方の群の動物を、３つの用量のウルシオール（アセトン１５μＬに溶解した３．０μｇ、４．５μｇ、および６．０μｇ）を局所適用することにより刺激した。局所刺激の２４、４８、および７２時間後に、皮膚病変を観察し、先に記載したように採点した。
【０１１８】
結果：図５〜図７、および図４Ａ〜図４Ｃに結果を示す。２４時間で、第ＩＶ群の動物に皮膚病変は観察されなかった。したがって、合計群スコアは、全ての用量について０であった。第Ｖ群では、ウルシオール３．０μｇの場合、皮膚反応は観察されなかった。ウルシオール４．５μｇの場合にごくわずかな紅斑が観察され、合計群スコアは１．０であった。同様に、ウルシオール用量６．０μｇの場合、合計群スコアは２．５と低いままであった。
【０１１９】
局所刺激の４８時間後（図５Ｂおよび表４Ｂ）、第ＩＶ群と第Ｖ群の両方において、ウルシオール３．０μｇの場合、紅斑は観察されなかった。４．５μｇのウルシオール刺激で、第ＩＶ群の合計スコアは０．５であったが、第Ｖ群の合計スコアは４．０であった。ウルシオール用量６．０μｇで、第ＩＶ群の合計スコアは０．５のままであったが、第Ｖ群では、合計スコアが６．５に上昇した。
【０１２０】
ウルシオール刺激の７２時間後、第ＩＶ群の合計スコアは、全てのウルシオール刺激用量で、０〜１．５のままであった。第Ｖ群の動物の合計皮膚病変スコアは、特に６．０μｇ用量で、１８．５まで上昇した。
【０１２１】
第ＩＶ群の動物でのウルシオール刺激に応答した皮膚反応は、第Ｖ群の動物でのウルシオール刺激に応答した皮膚反応と比較すると、無視できるほどであった。これは、最高用量（６．０μｇ）でのウルシオール刺激の７２時間後に、特に明白であった（図６および図７）。これらの結果は、試験化合物をＩＭ注射することによって、第ＩＶ群の動物がウルシオール接触皮膚炎反応から保護されたことを示している。対照的に、第Ｖ群の対照動物は強い皮膚反応を示した。このことは、試験化合物ＨＤＣ ４−（４−アミノフェニル）−酪酸エステル、４、をＩＭ注射することによって、それ以前に反応性であった動物が有効に脱感作されたことを示している。
【０１２２】
実施例１６：化合物３、４、および５の安定性
化合物に、特に室温での長期保存の利点があるかどうかを確認するために、調製された全ての誘導体に安定性研究を受けさせた。
【０１２３】
３つの化合物の（５％エタノール）水溶液を、１０ｍｇ／ｍＬ相当のＨＤＣ濃度で調製した。各化合物について、２５０μＬのアリコートをガラスバイアルに移して、この物質をフリーズドライし、バイアルに蓋をして室温（２０〜２４℃）で保存した。
【０１２４】
その後、個々のバイアルをある時点で取り出し、蒸留水で再構成して残渣を溶解し、溶液をＨＰＬＣ分析にかけた。クロマトグラフィー条件は、分解（加水分解）が起こったかどうかの決定が容易となるようなものである。試料は、ゼロ時間、１か月、３か月、６か月、９か月、１２か月、１８か月、および２４か月で分析した。
【０１２５】
結果：ＨＤＣフェニルアラニン酸２・ＨＣｌ（３）およびＨＤＣ−４−（４−アミノフェニル）−酪酸２・ＨＣｌ（４）は、フリーズドライ状態で、室温（２０〜２４℃）で極めて安定であり、２４か月間室温保存した後、ゼロ時間時のもとの量の＞９９％がエステル形態で存在していることがデータから示された。他方、ＨＤＣ−ヘミグルタル酸２Ｎａ+、（５）は、同じ条件下であまり安定していなかった。１か月後、エステル形態の８．３％が加水分解され、ゼロ時間時の物質の２９．３％および４４．４％が、それぞれ、３か月および６か月で加水分解された。したがって、アミノ酸誘導体はより安定であり、長期保存することができると考えられる。
【０１２６】
実施例１７：
ヒトでの使用に適合する注射製剤の調製
【０１２７】
動物研究用に調製した製剤は、２つの化合物の塩（フェニルアラニン酸エステル（３）および４−（４−アミノフェニル）酪酸エステル（４）のＨＣｌ塩）の使用をベースにしていた。これらの塩は、エタノールに容易に溶解する。これらのエタノール溶液を蒸留水と混合して、アルコール濃度が５％でしかない最終溶液を作製した。
【０１２８】
この製剤はヒトで使用することが許されるが、本発明者らは、最終溶液が等張であるいくつかの他の製剤を調製した。これらの製剤は、様々な他の可溶化（安定化）剤を含んでおり、動物試験で使用されたもとの５％エタノール溶液と比較される。以下のビヒクルを用いて、化合物（３）および（４）の溶液を２０ｍｇ／ｍｌで調製した。
水中の５％エタノール ＮａＣｌで等張にした
５％プロピレングリコール ＮａＣｌで等張にした
１０％プロピレングリコール ＮａＣｌで等張にした
５％ポリエチレングリコール４００（ＰＥＧ４００） ＮａＣｌで等張にした
１０％ＰＥＧ４００ ＮａＣｌで等張にした
【０１２９】
プロピレングリコールとＰＥＧ４００は両方とも、注射液を調製するために使用されており、ＦＤＡからこうした適用に安全である（ＧＲＡＳ）とみなされている。
【０１３０】
全てのビヒクルが両方の化合物を溶解することができたが、その場合、２０ｍｇ／ｍｌ溶液が室温で透明な溶液として形成された。したがって、上記のビヒクルのどれを用いても、これらの化合物の注射溶液を調製することができた。
【０１３１】
本活性剤のための代表的な送達レジメンとしては、非経口（皮下、筋肉内、および静脈内を含む）、経皮、ならびに鼻腔内へのものが挙げられる。
【０１３２】
薬学的に許容される塩は、活性物質の所望の生物学的活性を保持し、中毒性副作用がない。そのような塩の例は、（ａ）無機酸、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、リン酸、硝酸など、とともに形成される酸付加塩；および有機酸、例えば、酢酸、シュウ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、グルコン酸、クエン酸、リンゴ酸、アスコルビン酸、安息香酸、タンニン酸、パモン酸、アルギン酸、ポリグルタミン酸、ナフタレンスルホン酸、ナフタレンジスルホン酸、ポリガラクツロン酸など、とともに形成される塩；（ｂ）一価金属イオンおよび多価金属イオン、例えば、ナトリウム、カリウム、亜鉛、カルシウム、マグネシウムなど、とともに形成される塩基付加塩である。
【０１３３】
本発明のさらなる態様は、本発明の活性成分を、その薬学的に許容される塩として、薬学的に許容される無毒担体と混合された状態で含む薬学的組成物に関する。そのような組成物は、非経口（皮下、筋肉内、または静脈内）投与用に、特に、点鼻薬や鼻エアロゾルなどの液体溶液の形態で調製し得る。
【０１３４】
組成物は、単位投薬形態で好都合に投与してもよく、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，第１７版，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．，（１９８５）に記載されているような、薬学の技術分野で周知の任意の方法で調製してもよい。非経口投与用製剤は、滅菌水または滅菌食塩水、アルキレングリコール（例えば、プロピレングリコール）、ポリアルキレングリコール（ポリエチレングリコール）などを賦形剤として含有し得る。鼻投与用製剤は固体であり得、かつ賦形剤、例えば、ラクトースもしくはテキストランを含有し得るか、または点鼻薬もしくは定量スプレーの形態で使用される水溶液であり得る。
【０１３５】
鼻投与用に処方される場合、例えば、グリココール酸、コール酸、タウロコール酸、エトコール酸、デオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、デヒドロコール酸、グリコデオキシコール酸、シクロデキストリンなどの、界面活性酸（ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ ａｃｉｄ）によって、鼻粘膜からの吸収を増強し得る。
【０１３６】
他の物質、例えば、防腐剤、等張性を達成するための塩、緩衝剤などを、非経口製剤および鼻用製剤に添加してもよい。
【０１３７】
投与される実際の投薬量は、患者の体重、状態の重症度、および突発性疾患などの身体的および生理的要因によって決定することができる。これらの考慮すべき事柄を念頭に置いて、特定の対象およびまたは治療方針のための本発明の活性物質の投薬量を容易に決定することができる。
【０１３８】
結論
上述の説明では、特定の用語および視覚的描写を用いて、好ましい実施形態を説明した。しかしながら、先行技術で示されているものを超えて、使用した用語または描写した図によって、不必要な限定が解釈されるべきではない。なぜなら、これらの用語および図は、例示であるに過ぎず、本発明の範囲を限定することが意図されないからである。さらに、添付の特許請求の範囲に明記されているような、本発明の範囲を逸脱することなく、本発明に他の修正を施し得ることが知られている。本明細書で言及される参考文献および引用は全て、参照により本明細書に完全に組み入れられる。
【０１３９】
参考文献
１．Ｐｒａｉｓｅｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｃｅｉｌｌｅｙ，Ｒ．Ｌ，Ｌｅｆｋｏｖｉｔｓ，Ａ．Ｍ．，Ｋａｔｚ，Ｂ．Ｅ ａｎｄ Ｐａｌｌｅｒ，Ａ．Ｓ．２００３．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ，ｏａｋ ａｎｄ ｓｕｍａｃ，Ｄｅｒｍ．Ｉｎｓｉｇｈｔｓ．４：２６−１８．
２．ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．，Ｂｅｎｉｇｎｉ，Ｄ．Ａ．，Ｔｏｒｒｅｓ，Ｌ．ａｎｄ Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．１９８３．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ａｎｔｉａｌｌｅｒｇｅｎｉｃ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ３−ｎ−Ｐｅｎｔａｄｅｃｙｌ− ａｎｄ ３−ｎ−Ｈｅｐｔａｄｅｃｙｌｃａｔｅｃｈｏｌ Ｅｓｔｅｒｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．７２：７９２−７９５．
３．Ｍａｒｋｓ，Ｊ．Ｇ．ａｎｄ Ｄｅｌｅｏ，Ｖ．Ａ．１９９２．Ｃｏｎｔａｃｔ ａｎｄ ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ，ｐ．２１３−２１７．Ｍｏｂｙ−Ｙｅａｒ Ｂｏｏｋ．Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ．
４．Ｍａｒｋｓ，Ｊ．Ｇ．１９８９．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌ．９：４９７−５０６．
５．Ｆｉｓｈｅｒ，Ａ．Ａ．ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ，Ｊ．Ｃ．１９９５．Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｉｎ：Ｒｉｅｔｓｃｈｅｌ ＲＬ編．Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｕｓ．第４版．Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，ＭＤ：Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ．４６１−５２３．
６．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９８７．Ｔｈｅ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｐｉｃｋｅｒ ｏｆ ｐｅｎｎｙｐａｃｋ ｐａｒｋ：ｔｈｅ ｃｏｎｔｉｎｕｉｎｇ ｓａｇａ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ．Ｊ Ｉｎｖｅｓｔ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．８８（補遺３）７−１１．
７．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９９４．Ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｏａｋ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｃｌｉｎ．ｌ２：５１１−５１６．
８．Ｇｌａｄｍａｎ，Ａ．Ｃ．２００６．Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ Ｄｅｒｍａｔｉｔｕｓ：Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ，Ｏａｋ ａｎｄ Ｓｕｍａｃ．Ｗｉｌｄｅｒｎｅｓｓ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｍｅｎｔａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，１７：１２０−１２８．
９．Ｓｙｍｅｓ，Ｗ．Ｆ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，ＣＲ．１９５４．Ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ．Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．７６：２９５９−２９６３．
１０．Ｓｕｎｔｈａｎｋａｒ，Ｓ．Ｖ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，ＣＲ．１９５４．Ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｏｌｅｆｉｎｉｃ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ Ｊａｐａｎｅｓｅ Ｌａｃ ｕｒｕｓｈｉｏｌ．Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．７６：５０７０−５０７４．
１１．Ｍａｒｋｉｅｗｉｔｚ，Ｋ．Ｈ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．１９６５．Ｏｎ ｔｈｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｌｌｅｒｇｅｎｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ．Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．３０：１６１０−１６１３．
１２．Ｂｉｌｌｅｔｓ，Ｓ．，Ｃｒａｉｇ，Ｊ．Ｃ，Ｃｏｒｂｅｔｔ，Ｍ．Ｄ．ａｎｄ Ｖｉｃｋｅｒｙ，Ｊ．Ｆ．１９７６．Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．１５：５３３−５３５．
【０１４０】
１３．Ｔｙｍａｎ，Ｊ．Ｈ．Ｐ．１９９６．Ｓｔｕｄｉｅｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ５２．ｐ．４６５−５４６．Ｉｎ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ａｎｄ Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｈｅｎｏｌｓ．Ｅｌｓｅｖｉｅｒ．
１４．Ｘｉａ，Ｚ．，Ｍｉｙａｋｏｓｈｉ，Ｔ．ａｎｄ Ｙｏｓｈｉｄａ，Ｔ．２００４．Ｌｉｐｏｘｙｇｅｎａｓｅ−ｃａｔａｌｙｓｅｄ ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｅｎｏｌｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ａ ｎｅｗ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｆｏｒ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ａｎｄ ｉｔｓ ａｎａｌｏｇｓ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ．３１５：７０４−７０９．（この文献中の参照文献）
１５．Ｂｙｃｋ，Ｊ．Ｓ．ａｎｄ Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．１９６８．Ａｓｓａｙ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ−ｑｕｉｎｏｎｅ ｃｏｕｐｌｉｎｇ ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ａｃｔｉｖｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ．Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５：１２３−１３５．
１６．Ｂｅｎｅｚｒａ，Ｃ．１９９０．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｉｎ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｔｏ ｎａｔｕｒａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｓ．Ｐｕｒｅ Ａｐｐｌ．Ｃｈｅｍ．６２：１２５１−１２５８．
１７．Ｋａｌｉｓｈ，Ｒ．Ｓ．１９９１．Ｒｅｃｅｎｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ｏｆ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１２７：１５５８−１５６３．
１８．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ，Ｗｉｒｔｈ，Ｐ．Ｗ．，ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．ａｎｄ Ｓｋｉｅｒｋｏｗｓｋｉ，Ｐ．１９８１．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ ｕｓｉｎｇ ３−ｎ−Ｐｅｎｔａｄｅｃｙｌｃａｔｅｃｈｏｌ−“Ｍｏｄｉｆｉｅｄ”Ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ Ｂｌｏｏｄ Ｃｅｌｌｓ，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．７０：７８５−７８９．（この文献中の参照文献）
１９．Ｓｅｂａｓｔｉａｎｉ，Ｓ．，Ａｌｂａｎｅｓｉ，Ｃ，Ｄｅ ＰＯ，Ｐｕｄｄｕ，Ｐ．，Ｃａｖａｎｉ，Ａ，ａｎｄ Ｇｉｒｏｌｏｍｏｎｉ，Ｇ．２００２．Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅｓ ｉｎ ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｒｅｓ ２９３：５５２−５５９
２０．Ｓａｎｃｈｅｚ−Ｓａｎｃｈｅｚ，Ｎ．，Ｒｉｏｌ−Ｂｌａｎｃｏ，Ｌ．ａｎｄ Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ，Ｊ．Ｌ．２００６．Ｔｈｅ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｐｅｒｓｏｎａｌｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ＣＣＲ７ ｉｎ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌｓ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７６：５１５３−５１５９．
【０１４１】
２１．Ｅｂｅｒｔ，Ｌ．Ｍ．，Ｓｃｈａｅｒｌｉ，Ｐ．ａｎｄ Ｍｏｓｅｒ，Ｂ．２００５．Ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｔ ｃｅｌｌ ｔｒａｆｆｉｃ ｉｎ ｌｙｍｐｈｏｉｄ ａｎｄ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｔｉｓｓｕｅｓ．Ｍｏｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ ４２：７９９−８０９．
２２．Ａｋｉｂａ，Ｈ．，Ｋｅｈｒｅｎ，Ｊ．，Ｄｕｃｌｕｚｅａｕ，Ｍ．Ｔ．，Ｋｒａｓｔｅｖａ，Ｍ．，Ｈｏｒａｎｄ，Ｆ．，Ｋａｉｓｅｒｌｉａｎ，Ｄ．，Ｋａｎｅｋｏ，Ｆ．ａｎｄ Ｎｉｃｏｌａｓ，Ｊ．Ｆ．２００２．Ｓｋｉｎ Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ Ｄｕｒｉｎｇ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｈｙｐｅｒｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｉｓ Ｍｅｄｉａｔｅｄ ｂｙ Ｅａｒｌｙ Ｒｅｃｒｕｉｔｍｅｎｔ ｏｆ ＣＤ８＋ Ｔ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ １ Ｃｅｌｌｓ ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ １６８：３０７９−３０８７．
２３．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．１９８９．Ｔｏｐｉｃａｌ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ／ｏａｋ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１２５：４９９−５０１．
２４．Ｇｒｅｖｅｌｉｎｋ，Ｓ．Ａ．，Ｍｕｒｒｅｌｌ，Ｄ．Ｆ．ａｎｄ Ｏｌｓｅｎ，Ｅ．Ａ．１９９２．Ｅｆｆｅｃｔｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ ｖａｒｉｏｕｓ ｂａｒｒｉｅｒ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇ ａｎｄ／ｏｒ ａｍｅｌｉｏｒａｔｉｎｇ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｌｙ ｐｒｏｄｕｃｅｄ Ｔｏｘｉｃｏｄｅｎｄｒｏｎ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｊ．Ａｍ．Ａｃａｄ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．２７：１８２−１８８．
２５．Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ｌ．，Ｗａｒｎｅｒ，Ｌ．Ｈ．ａｎｄ Ｇｏｌｄｍａｎ，Ｆ．Ｈ．１９４０．Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｏｉｎｔｍｅｎｔ ｆｏｒ ｔｈｅ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ Ｒｅｐ．５５：１３２７−１３３３．
２６．Ｓｈｅｌｍｉｒｅ，Ｂ．１９４１．Ｓｏｄｉｕｍ ｐｅｒｂｏｒａｔｅ ｏｉｎｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．ＪＡＭＡ．１１６：６８１−６８３．
２７．Ｏｒｃｈａｒｄ，Ｓ．１９８４．Ｂａｒｒｉｅｒ ｃｒｅａｍｓ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．Ｃｌｉｎ．２：６１９−６２９．
２８．Ｏｒｃｈａｒｄ，Ｓ．Ｍ．，Ｆｅｌｌｍａｎ，Ｊ．Ｈ．ａｎｄ Ｓｔｏｒｒｓ，Ｆ．Ｊ．１９８７．Ｔｏｐｉｃａｌ ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ ｗｈｉｃｈ ｐｒｅｖｅｎｔ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ Ａｌｌｅｒｇｉｃ ｃｏｎｔａｃｔ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｃｔａ Ｄｅｒｍ Ｖｅｎｅｒｅｏｌ Ｓｕｐｐｌ（Ｓｔｏｃｋｈ）．１３４：１０３−１０６．
【０１４２】
２９．Ｖｉｄｍａｒ，Ｄ．Ａ．ａｎｄ Ｉｗａｎｅ，Ｍ．Ｋ．１９９９．Ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｏｐｉｃａｌ Ｓｋｉｎ Ｐｒｏｔｅｃｔａｎｔ（ＴＳＰ） ｔｏ Ｐｒｏｔｅｃｔ Ａｇａｉｎｓｔ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ ｔｏ Ｕｒｕｓｈｉｏｌ （Ｒｈｕｓ） Ａｎｔｉｇｅｎ．Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．１０：１９０−１９７．
３０．Ｓａｎｆｉｌｉｐｐｏ，Ａ．Ｍ．，Ｂａｒｒｉｏ，Ｖ．，Ｋｕｌｐ−Ｓｈｏｒｔｅｎ，Ｃ．ａｎｄ Ｃａｌｌｅｎ，Ｊ．Ｐ．２００３．Ｃｏｍｍｏｎ Ｐｅｄｉａｔｒｉｃ ａｎｄ Ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔ Ｓｋｉｎ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ．Ｊ．Ｐｅｄｉａｔｒ．Ａｄｏｌｅｓｃ．Ｇｙｎｅｃｏｌ．１６：２６９−２８３．
３１．Ｋｌｉｇｍａｎ，Ａ．Ｍ．１９５８．Ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ Ｒｈｕｓ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ．Ａｒｃｈ Ｄｅｒｍａｔｏｌ．７８：４７−７２．
３２．Ｒｉｅｔｓｃｈｅｌ，Ｒ．Ｌ．ａｎｄ Ｆｏｗｌｅｒ，Ｊ．Ｆ．１９９５．Ｔｏｘｉｃｏｎｄｅｎｄｒｏｎ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ，ｐ．４６１−５２３ Ｉｎ Ｆｉｓｈｅｒ ＡＡ，（編）：Ｆｉｓｈｅｒ Ｃｏｎｔａｃｔ Ｄｅｒｍａｔｉｔｉｓ（第４版）．Ｌｅａ ＆ Ｆｅｂｉｇｅｒ．Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ．
３３．Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｗ．Ｌ．，Ｂａｅｒ，Ｈ．，Ｄａｗｓｏｎ，Ｃ．Ｒ．ａｎｄ Ｋｈｕｒａｎａ，Ｒ．Ｇ．１９７４．Ｐｏｉｓｏｎ ｏａｋ ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１０９：３５６−３６０．
３４．Ｓｔｅｖｅｎｓ，Ｆ．Ａ．１９４５．Ｓｔａｔｕｓ ｏｆ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｅｘｔｒａｃｔｓ．ＪＡＭＡ．１２７：９１２−９２１．
３５．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ，Ｗｉｒｔｈ，Ｐ．Ｗ．，Ｗａｌｌｅｒ，Ｃ．Ｗ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９８１．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：１．Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ａｎｄ Ｄｅｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ ａｎｄ Ｏａｋ Ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ Ｕｓｉｎｇ Ｅｓｔｅｒｉｆｉｅｄ Ｕｒｕｓｈｉｏｌ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ．７６：１６４−１７０．
３６．Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．，Ｍｕｒｐｈｙ，Ｊ．Ｃ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９８３．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｐｏｉｓｏｎｏｕｓ Ａｎａｃａｒｄｉａｃｅａｅ：Ｏｒａｌ Ｄｅｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ Ｐｏｉｓｏｎ Ｉｖｙ ａｎｄ Ｏａｋ Ｕｒｕｓｈｉｏｌｓ ｉｎ Ｇｕｉｎｅａ Ｐｉｇｓ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ．８０：１４９−１５５．
３７．Ｗａｌｋｅｒ，Ｌ．Ａ．，Ｗａｔｓｏｎ，Ｅ．Ｓ．ａｎｄ ＥｌＳｏｈｌｙ，Ｍ．Ａ．１９９５．Ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｓｅ ｐａｒｅｎｔｅｒａｌ ｈｙｐｏｓｅｎｓｉｔｉｚａｔｉｏｎ ｔｏ ｐｏｉｓｏｎ ｉｖｙ ｕｒｕｓｈｉｏｌ ｉｎ ｇｕｉｎｅａ ｐｉｇｓ．Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ．１７：５６５−５７６．
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対して対象を脱感作するのに有効な化合物であって、以下の式Ｉ
【化１】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸またはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル、カルバメート形成化合物、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体のエステルまたは硫酸エステルもしくはリン酸エステルであり、前記エステルは塩形成化合物である）の水溶性ウルシオールエステルを含む、化合物。
【請求項２】
Ｒ1がペンタデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
Ｒ1がヘプタデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項４】
Ｒ1がノナデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項５】
前記水溶性エステルが、アミノ酸またはアミノ酸の組合せまたはジカルボン酸を含むアミノ酸の誘導体のエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項６】
前記水溶性エステルが、ジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体のエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項７】
前記水溶性エステルが、リン酸エステルまたは硫酸エステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項８】
前記水溶性エステルが、塩形成カルバメートである、請求項１に記載の化合物。
【請求項９】
前記化合物が、ヘプタデシルカテコールフェニルアラニン酸エステル、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート、ヘプタデシルカテコールインドール−プロピオン酸エステル、ヘプタデシルカテコール−β−アラニン酸エステル、ペンタデシルカテコールバリニン酸エステル、ペンタデシルカテコール−ジ−バリニン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸エステル、ペンタデシルカテコールアスパラギン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１０】
請求項１〜９のいずれか一項に記載の少なくとも１つの化合物とそのための好適な薬学的担体とを含む薬学的組成物。
【請求項１１】
前記組成物が、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与されるのに適している、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、請求項１〜９のいずれか一項に記載の化合物または化合物の混合物を前記対象に投与する工程を含む方法。
【請求項１３】
前記組成物が、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、請求項１０または１１に記載の薬学的組成物を前記対象に投与する工程を含む方法。
【請求項１５】
請求項５に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化２】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物を、保護アミノ酸または保護アミノ酸の組合せまたはジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を含む保護アミノ酸の誘導体と反応させ、その後、前記保護基を除去する工程を含む方法。
【請求項１６】
請求項６に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化３】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体と反応させる工程を含む方法。
【請求項１７】
請求項８に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化４】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をパラニトロフェニルクロロホルメートと反応させ、その後、この中間体をアミノ酸またはアミノ酸の組合せのアリルエステルと反応させ、その後、得られた生成物から前記アリル基を除去する工程を含む方法。
【請求項１８】
請求項７に記載の硫酸エステルを作製する方法であって、式ＩＩ
【化５】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をクロロスルホン酸と反応させる工程を含む方法。
【請求項１】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンによって引き起こされる接触皮膚炎に対して対象を脱感作するのに有効な化合物であって、以下の式Ｉ
【化１】
（式中、Ｒ1は、１１〜１９個の炭素原子を有するアルキルラジカル、もしくはその不飽和同族体、またはそれらの混合物であり、Ｒ2とＲ3は、各々独立して、アミノ酸またはアミノ酸の組合せに由来する残基ラジカル、カルバメート形成化合物、ジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体のエステルまたは硫酸エステルもしくはリン酸エステルであり、前記エステルは塩形成化合物である）の水溶性ウルシオールエステルを含む、化合物。
【請求項２】
Ｒ1がペンタデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
Ｒ1がヘプタデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項４】
Ｒ1がノナデシルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項５】
前記水溶性エステルが、アミノ酸またはアミノ酸の組合せまたはジカルボン酸を含むアミノ酸の誘導体のエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項６】
前記水溶性エステルが、ジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体のエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項７】
前記水溶性エステルが、リン酸エステルまたは硫酸エステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項８】
前記水溶性エステルが、塩形成カルバメートである、請求項１に記載の化合物。
【請求項９】
前記化合物が、ヘプタデシルカテコールフェニルアラニン酸エステル、３−ヘプタ−１，２−フェニレンビス（４−アミノフェニル）ブタノアート、ヘプタデシルカテコールインドール−プロピオン酸エステル、ヘプタデシルカテコール−β−アラニン酸エステル、ペンタデシルカテコールバリニン酸エステル、ペンタデシルカテコール−ジ−バリニン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸エステル、ペンタデシルカテコールアスパラギン酸エステル、ペンタデシルカテコールグルタミン酸−β−アラニンジペプチドエステルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１０】
請求項１〜９のいずれか一項に記載の少なくとも１つの化合物とそのための好適な薬学的担体とを含む薬学的組成物。
【請求項１１】
前記組成物が、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与されるのに適している、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、請求項１〜９のいずれか一項に記載の化合物または化合物の混合物を前記対象に投与する工程を含む方法。
【請求項１３】
前記組成物が、非経口投与、経皮投与、または鼻腔内投与される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
ウルシ科植物およびイチョウ科植物に含まれるアレルゲンに対して対象を脱感作する方法であって、請求項１０または１１に記載の薬学的組成物を前記対象に投与する工程を含む方法。
【請求項１５】
請求項５に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化２】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物を、保護アミノ酸または保護アミノ酸の組合せまたはジカルボン酸もしくはジカルボン酸誘導体を含む保護アミノ酸の誘導体と反応させ、その後、前記保護基を除去する工程を含む方法。
【請求項１６】
請求項６に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化３】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をジカルボン酸またはジカルボン酸誘導体と反応させる工程を含む方法。
【請求項１７】
請求項８に記載の化合物を調製する方法であって、式ＩＩ
【化４】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をパラニトロフェニルクロロホルメートと反応させ、その後、この中間体をアミノ酸またはアミノ酸の組合せのアリルエステルと反応させ、その後、得られた生成物から前記アリル基を除去する工程を含む方法。
【請求項１８】
請求項７に記載の硫酸エステルを作製する方法であって、式ＩＩ
【化５】
（式中、Ｒ1は、請求項１に規定ものである）の化合物をクロロスルホン酸と反応させる工程を含む方法。
【図１Ａ】
【図１Ｂ】
【図１Ｃ】
【図２Ａ】
【図２Ｂ】
【図２Ｃ】
【図３Ａ】
【図３Ｂ】
【図３Ｃ】
【図４Ａ】
【図４Ｂ】
【図４Ｃ】
【図４Ｄ】
【図４Ｅ】
【図５Ａ】
【図５Ｂ】
【図５Ｃ】
【図６】
【図７】
【図１Ｂ】
【図１Ｃ】
【図２Ａ】
【図２Ｂ】
【図２Ｃ】
【図３Ａ】
【図３Ｂ】
【図３Ｃ】
【図４Ａ】
【図４Ｂ】
【図４Ｃ】
【図４Ｄ】
【図４Ｅ】
【図５Ａ】
【図５Ｂ】
【図５Ｃ】
【図６】
【図７】
【公表番号】特表２０１１−５１６４９５（Ｐ２０１１−５１６４９５Ａ）
【公表日】平成２３年５月２６日（２０１１．５．２６）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２０１１−５０３２１１（Ｐ２０１１−５０３２１１）
【出願日】平成２１年４月３日（２００９．４．３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００９／０３９４７２
【国際公開番号】ＷＯ２００９／１４６１３１
【国際公開日】平成２１年１２月３日（２００９．１２．３）
【出願人】（５０３０８２４６８）ザ ユニヴァーシティー オブ ミシシッピ (1)
【Ｆターム（参考）】
【公表日】平成２３年５月２６日（２０１１．５．２６）
【国際特許分類】
【出願日】平成２１年４月３日（２００９．４．３）
【国際出願番号】ＰＣＴ／ＵＳ２００９／０３９４７２
【国際公開番号】ＷＯ２００９／１４６１３１
【国際公開日】平成２１年１２月３日（２００９．１２．３）
【出願人】（５０３０８２４６８）ザ ユニヴァーシティー オブ ミシシッピ (1)
【Ｆターム（参考）】
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