レトロウイルスプロテアーゼインヒビターの組合せ
【課題】本発明は、レトロウイルスの複製を容器内あるいは生体内で防止するのに有効なレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤のコンビネーションを使用することにより、哺乳動物のレトロウイルス感染症（例えばＨＩＶ）を治療する方法を指向するものである。
【解決手段】特に、本発明はプロテアーゼ阻害剤化合物を他のプロテアーゼ阻害剤化合物とのコンビネーション療法で使用する方法に関する。本発明はまたプロテアーゼ阻害剤とプロテアーゼ阻害剤の外の抗ウイルス剤とのコンビネーションを用いるコンビネーション療法に関するものである。
リグノフェノール誘導体を利用した新規な樹脂組成物を提供することを課題とする。
【解決手段】特に、本発明はプロテアーゼ阻害剤化合物を他のプロテアーゼ阻害剤化合物とのコンビネーション療法で使用する方法に関する。本発明はまたプロテアーゼ阻害剤とプロテアーゼ阻害剤の外の抗ウイルス剤とのコンビネーションを用いるコンビネーション療法に関するものである。
リグノフェノール誘導体を利用した新規な樹脂組成物を提供することを課題とする。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））のインビトロおよびインビボでの複製の防止に有効なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの組合せを用いる、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））感染の治療法に関する。特に本発明は、他のプロテアーゼインヒビター化合物との併用療法で使用されるプロテアーゼインヒビター化合物に関する。
【背景技術】
【０００２】
レトロウイルスの複製サイクルの間、ｇａｇおよびｇａｐ−ｐｏｌ遺伝子転写産物はタンパク質として翻訳される。このタンパク質は次に、ウイルスにコードされるプロテアーゼ（またはプロテイナーゼ）により処理されて、ウイルス酵素およびウイルスコアの構造タンパク質を生成する。一般的には、ｇａｇ前駆体タンパク質は処理されてコアタンパク質になり、ｐｏｌ前駆体タンパク質は処理されてウイルス酵素（例えば、逆転写酵素やレトロウイルスプロテアーゼ）になる。感染性ウイルス粒子を組み立てるには、レトロウイルスプロテアーゼによる前駆体タンパク質の正しい処理が必要であることは、証明されている。例えば、ＨＩＶのｐｏｌ遺伝子のプロテアーゼ領域のフレームシフト突然変異は、ｇａｇ前駆体タンパク質の処理を妨害することは証明されている。またｇａｇ前駆体タンパク質が防害されることは、ＨＩＶプロテアーゼ活性部位中のアスパラギン酸残基の部位特異的突然変異誘発によっても証明されている。すなわち、レトロウイルスプロテアーゼの作用を阻害することによりウイルス複製を阻害するという試みがなされている。
【０００３】
レトロウイルスプロテアーゼ阻害は、典型的には遷移状態の模倣が関与し、こうしてレトロウイルスプロテアーゼは、ｇａｇおよびｇａｐ−ｐｏｌタンパク質と競合して酵素に結合（典型的には可逆的に）し、こうして構造タンパク質の特異的処理とレトロウイルスプロテアーゼ自身の放出を阻害する模倣化合物に接触される。この方法で、レトロウイルス複製プロテアーゼは有効に阻害される。
【０００４】
特にプロテアーゼの阻害（例えば、ＨＩＶプロテアーゼの阻害）のためにいくつかのクラスの模倣化合物が提唱されている。そのような模倣化合物には、ヒドロキシエチルアミン同配体（ｉｓｏｓｔｅｒｅｓ）、還元アミド同配体および非ペプチド同配体がある。例えば、ＥＰ０３４６８４７（特許文献１）；ＥＰ０３４２５４１（特許文献２）；ロバーツ（Ｒｏｂｅｒｔｓ）ら、「ペプチドベースのプロテアーゼインヒビターの合理的設計」、Ｓｃｉｎｅｃｅ，２４８，３５８（１９９０）（非特許文献１）；エリックソン（Ｅｒｉｃｋｓｏｎ）ら、「ＨＩＶ−１プロテアーゼと複合体を形成したＣ２対称インヒビターの設計活性及び２．８Å結晶構造〕、Ｓｃｉｎｅｃｅ，２４９，５２７（１９９０）（非特許文献２）；およびエス・タイスリボングス（Ｓ．Ｔｈａｉｓｒｉｖｏｎｇｓ）、「非ペプチドＨＩＶプロテアーゼインヒビターの構造ベースの設計」、第３５回バッファロー医化学ミーティング（３５ｔｈ Ａｎｎｕａｌ Ｂｕｆｆａｌｏ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｍｅｅｔｉｎｇ）、ニューヨーク州立大学バッファロー校、バッファロー、ニューヨーク、１９９４年５月２２〜２５日（非特許文献３）を参照。
ＨＩＶプロテアーゼインヒビターのようなレトロウイルスプロテアーゼインヒビターについての問題は、インヒビターに耐性のウイルス株の出現である。例えば、メルク社（Ｍｅｒｃｋ＆Ｃｏ．）のＨＩＶプロテアーゼインヒビターであるＬ−７３５，５２４は、ヒトのＨＩＶ感染に有効であるが、後にＬ−７３５，５２４耐性のＨＩＶ株が患者に出現する（ワルドホルツ（Ｗａｌｄｈｏｌｚ）、Ｔｈｅ Ｗａｌｌ Ｓｔｒｅｅｔ Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｆｅｂｒｕａｒｙ ２５，１９９４，ｐａｇｅ Ｂ３（非特許文献４）；およびコンドラ（Ｃｏｎｄｒａ）ら、Ｎａｔｕｒｅ ３７４：５６９−５７１（１９９５）（非特許文献５））。他の例は、バッカ（Ｖａｃｃａ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：４０９６−４１００（１９９４）（非特許文献６）；ホー（Ｈｏ）ら、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６８：２０１６−２０２０（１９９４）；およびサルダナ（Ｓａｒｄａｎａ）ら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．３３：２００４−２０１０（１９９４）（非特許文献７）に見いだされる。
【０００５】
【特許文献１】ＥＰ０３４６８４７
【特許文献２】ＥＰ０３４２５４１
【非特許文献１】Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４８，３５８（１９９０）
【非特許文献２】Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，５２７（１９９０）
【非特許文献３】「非ペプチドＨＩＶプロテアーゼインヒビターの構造ベースの設計」、第３５回バッファロー医化学ミーティング（３５ｔｈ Ａｎｎｕａｌ Ｂｕｆｆａｌｏ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｍｅｅｔｉｎｇ）、ニューヨーク州立大学バッファロー校、バッファロー、ニューヨーク、１９９４年５月２２〜２５日
【非特許文献４】Ｔｈｅ Ｗａｌｌ Ｓｔｒｅｅｔ Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｆｅｂｒｕａｒｙ ２５，１９９４，ｐａｇｅ Ｂ３
【非特許文献５】Ｎａｔｕｒｅ ３７４：５６９−５７１（１９９５）
【非特許文献６】Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：４０９６−４１００（１９９４）
【非特許文献７】Ｂｉｏｃｈｅｍ．３３：２００４−２０１０（１９９４）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））のインビトロおよびインビボでの複製の防止に有効なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの組合せを用いる、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））感染の治療法に関する。特に本発明は、他のプロテアーゼインヒビター化合物との併用療法で使用されるプロテアーゼインヒビター化合物に関する。さらに、この組合せはまた、他の抗ウイルス剤と組合せて使用することもできる。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
レトロウイルスプロテアーゼは、レトロウイルス複製過程において決定的に重要な酵素である。レトロウイルス（例えば、ＨＩＶ）の増殖は、ウイルスをレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝すことにより妨害できる。しかしレトロウイルスをプロテアーゼインヒビターに長期間曝すと、変種レトロウイルスが選択されて、プロテアーゼインヒビターに耐性の新しい主要なレトロウイルス株が出現する。この新しい主要なレトロウイルス株は、プロテアーゼインヒビターに阻害されないか、またはより頻繁にはプロテアーゼインヒビターによる阻害が不十分であるプロテアーゼを産生し、インヒビターの濃度を実質的に増加させない限りプロテアーゼインヒビターの存在下でも自由に増殖する。本発明は、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターに耐性のレトロウイルス株の出現を克服する方法を提供する。
【０００８】
本発明は、哺乳動物（例えば、ヒト、サル、ネコなど）への、少なくとも２つの有効量のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの投与を提供する。投与は、少なくとも２つのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの同時投与により行われ、すなわち哺乳動物中である時点に少なくとも２つのインヒビターの有効量が存在するように２つまたはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターが投与される。あるいは、投与は、少なくとも２つのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの連続的または交互の投与により行われ、すなわち哺乳動物中である時点に１つのインヒビターのみの有効量が存在するように２つまたはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターが投与される。レトロウイルスプロテアーゼインヒビターを正しく選択することにより、この方法は、任意の１つのインヒビターに対して耐性の株の存在下でもレトロウイルスの増殖を有効に防止することができる。
【０００９】
レトロウイルスプロテアーゼインヒビターは、レトロウイルスの増殖培養物にインヒビターを曝すことによりインビボまたはインビトロで出現するレトロウイルスの耐性株のプロフィールに基づき選択される。レトロウイルスプロテアーゼインヒビターは、少なくとも１つのレトロウイルス耐性株による交差耐性の欠如について選択される。レトロウイルス株が両方のインヒビターに対して耐性である時、レトロウイルス株は２つのプロテアーゼインヒビターに対して交差耐性であると見なされる。ある程度の交差耐性は許容されるが、群として考えた時選択されたレトロウイルスプロテアーゼの間に交差耐性がないことが好ましい。すなわち、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝した後に出現するレトロウイルスの変種（突然変異株）は、第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターにより阻害されるか、または第１と第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝した後に出現する変種は、第３のまたは第４のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターにより阻害されるなど。
【００１０】
種々のプロテアーゼインヒビターの間の交差耐性プロフィールの比較を行い、好ましくはほとんどまたは全く交差耐性を示さない併用療法のための化合物が選択される。薬剤耐性の表現型は、耐性無し、低レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１０倍未満のシフト）、中レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１０〜約１００倍のシフト）、高レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１００倍以上のシフト）に分類される。達成できるインビボインヒビター濃度が、耐性ウイルスに対して阻害効果が低下している時、薬剤耐性は患者のウイルス負荷への作用の低下と相関することが予測される。すなわち、プロテアーゼインヒビターのより好適な組合せは、最小の交差耐性プロフィール（すなわち、好ましくは中レベルの耐性以下であり、より好ましくは低レベル以下の耐性であり、そして最も好ましくは耐性無し）を示し、野性型および／または別のインヒビターに対して選択された耐性ウイルスに対して最大の本質的力価を示すものである。例えば、第１の化合物と組合せて使用するのに好適な化合物は、中レベル、より好ましくは高レベルで第１の化合物に耐性のウイルス株に対して有効であることが好ましい。各インヒビターおよび組合せの薬理および毒性は、併用療法のインヒビターの選択の因子でもある。
【００１１】
より好ましくは、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して耐性の少なくとも１つのウイルス株と、第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して耐性の少なくとも１つのウイルス株が、プロテアーゼの同じ基質結合部位領域に影響し観察されたインヒビター耐性に寄与するプロテアーゼペプチド配列中の異なるアミノ酸置換を有する時、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターが選択される。すなわち、プロテアーゼ中の同じ部位で起きる可能なアミノ酸置換の数は限定される。これは、この部位が酵素の活性、有効性および／または安定性に決定的に重要である時、特に真実である。
【００１２】
これは、本発明の例１および例２のＨＩＶプロテアーゼインヒビターに関して観察された。例１の化合物に対するレトロウイルス耐性は、ＨＩＶプロテアーゼのアミノ酸８８の部位突然変異（アスパラギン８８のアスパラギン酸８８による置換）により得られた。例２の化合物に対するレトロウイルス耐性も、ＨＩＶプロテアーゼのアミノ酸８８の部位突然変異（アスパラギン８８のセリン８８による置換）により得られた。アミノ酸８８のいくつかの置換は、酵素活性の喪失を引き起こすことが知られている（ロエブ（Ｌｏｅｂ）ら、Ｎａｔｕｒｅ ３４０：３８７−４００（１９８９））。すなわち、例１と２のＨＩＶプロテアーゼインヒビターの両方の投与は、両方のインヒビターに対して交差耐性のウイルスの耐性株のさらなる産生の可能性を実質的に低下させる。両方のインヒビターを組合せて６週間治療した場合、同期間の１つのインヒビターに対して耐性の表現型の出現と比較して、組合せて使用した両方のインヒビターに対する耐性は検出されていない。酵素活性に影響する部位突然変異以外に、酵素活性および／または耐性に実質的に影響しない同じ変種の他の部位突然変異も発生し得る。
【００１３】
あるいは、より好ましくは、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して少なくとも１つのウイルス耐性株が、第２のプロテアーゼインヒビターに対して感受性が上昇している時、または第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して少なくとも１つのウイルス耐性株が、第１のプロテアーゼインヒビターに対して感受性が上昇している時、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターが選択される。
【００１４】
本発明の方法での使用に適した代表的なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターには、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）、第０８／２５３，５３１号（１９９４年６月３日出願）、第０８／１０９、７８７号（１９９３年８月２０日出願）、第０８／１１０，９１１号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／１１０，９１３号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／１１０，９１２号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／２０４，８２７号（１９９４年３月２日出願）、第０７／８８６，５５６号（１９９２年５月２０日出願）、第０７／８８６，６６３号（１９９２年５月２０日出願）、第０７／８８６，５３１号（１９９２年５月２０日出願）、第０８／１４８，８１７号（１９９３年１１月８日出願）、第０８／８８６，７００号（１９９２年５月２１日出願）、および第０７／９９８，１８７号（１９９２年１２月２９日出願）、およびＰＣＴ特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０５５２号（１９９３年１０月２９日出願）、ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０４６０号（１９９３年１０月２９日出願）、ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０４６１号（１９９３年１０月２９日出願）に開示および記載されているプロテアーゼがあるが、これらに限定されない（これらはそれぞれ、参考のため本明細書に引用される）。本発明の方法での使用に適したさらなるレトロウイルスプロテアーゼインヒビターには、米国特許第５，１５７，０４１号；ＥＰ３４６，８４７号；米国特許出願第０７／８８３，８２５号（１９９２年５月１５日出願）；ＷＯ９３／０９０９６号；Ｔｅｔ．Ｌｅｔｔ．３５：６７３−６７６（１９９４）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：４０９６−４１００（１９９４）；ワイ・エヌ・ウォング（Ｙ．Ｎ．Ｗｏｎｇ）ら、Ｂｉｏｐｈａｒｍ．＆Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｐｏｓ．１５：５３５−５４４（１９９４）；エム・エル・ウェストとディー・ピー・フェアリー（Ｍ．Ｌ．Ｗｅｓｔ ａｎｄ Ｄ．Ｐ．Ｆａｉｒｌｉｅ）、Ｔｒｅｎｄｓ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｓｃｉ．１６：６７−７５（１９９５）；およびエス・タイスリボングス（Ｓ．Ｔｈａｉｓｒｉｖｏｎｇｓ）、「ＨＩＶプロテアーゼインヒビター」、Ａｎｎ．Ｒｅｐｏｒｔｓ Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２９，Ｃｈａｐ．１４，ｐｐ１３３−１４４（１９９４）（アカデミックプレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ）、ジェイ・ブリストル（Ｊ．Ｂｒｉｓｔｏｌ）編）に開示および記載されているプロテアーゼがあるが、これらに限定されない（これらはそれぞれ、参考のため本明細書に引用される）。
【００１５】
さらに説明しなくても、当業者は前記の記載を用いて、本発明を最大に利用できると考えられる。以下の好適な実施態様は、すべての可能な化合物の組合せを網羅するものではなく、有効であることが記載される薬剤組合せの例を提供するのみである。耐性ウイルス単離物（以下に記載するものに限定されない）を用いるこれらおよび他のプロテアーゼインヒビターの同様の試験は、適当な薬剤組合せを同定するのに有効であろう。従って以下の好適な実施態様は、単に例示のためであり、決して本発明を限定するものではない。
【００１６】
例１
【化１】
【００１７】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ*），２Ｓ＊］］−Ｎ１−［３−［［［１，１−ジメチルエチル）アミノ］カルボニル］）２−メチルプロピル）アミノ］−２−ヒドロキシ−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−［（２−キノリニルカルボニル）アミノ］−ブタンジアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００１８】
例２
【化２】
【００１９】
（２Ｒ，３Ｓ）−３−（Ｎ−メチルアミノアセチル−Ｌ−ｔｅｒｔ−ブチルグリシニル）アミノ−１−（Ｎ−イソアミル−Ｎ−（ｔｅｒｔ−ブチルカルバモイル））アミノ−４−フェニル−２−ブタノールは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１０９，７８７号（１９９３年８月２０日出願）、本出願と同時出願された代理人事件整理番号２７６６／１号、および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２０】
例３
【化３】
【００２１】
［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（４−メトキシフェニル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］カルバミン酸５−ピリミジルメチルエステルは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１１０，９１１号（１９９３年８月２４日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２２】
例４
【化４】
【００２３】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ＊），２Ｓ＊］］−Ｎ−［２−ヒドロキシ−３−［Ｎ１−（２−メチルプロピル）−Ｎ１−（４−メトキシフェニルスルホニル）アミノ］−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１１０，９１３号（１９９３年８月２４日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２４】
例５
【化５】
【００２５】
Ｎ−（２（Ｒ）−ヒドロキシ−１（Ｓ）−インダニル）−２（Ｒ）−フェニルメチル−４（Ｓ）−ヒドロキシ−５−（１−（４−（３−ピリジルメチル）−２（Ｓ）−Ｎ’−（ｔ−ブチルカルボキサミド）−ピペラジニル））−ペンタンアミド（Ｌ−７３５，５２４）は、米国特許出願第０７／８８３，８２５号（１９９２年５月１５日出願）、ＷＯ９３／０９０９６号、Ｔｅｔ．Ｌｅｔｔ．３５：６７３−６７６（１９９４）およびＰｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：４０９６−４１００（１９９４）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２６】
例６
【化６】
【００２７】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニル−３（Ｓ）−［［Ｎ−（２−キノリルカルボニル）−Ｌ−アスパラジニル］アミノ］ブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（Ｒｏ３１−８９５９）は、米国特許第５，１５７，０４１号に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２８】
例７
【化７】
【００２９】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ＊），２Ｓ＊］］−Ｎ１−［３−［［［（１−ジメチルエチル）アミノ］カルボニル］（３−メチルブチル）アミノ］−２−ヒドロキシ−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−［（２−キノリルカルボニル）アミノ］−ブタンジアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３０】
例８
【化８】
【００３１】
Ｎ−［３−［Ｎ２−［Ｎ１−（１，１−ジメチルエチル）アミノスルホニル］−Ｎ２−（２−メチルプロピル）アミノ］−２Ｒ−ヒドロキシ−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（２−キノリニルカルボニル）アミノ］ブタンジアミドは、共有の同時係属ＰＣＴ特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０５５２号（１９９３年１０月２９日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３２】
例９
【化９】
【００３３】
（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−２，５−ビス−［Ｎ−［Ｎ−［［Ｎ−メチル−Ｎ−（２−ピリジニルメチル）アミノ］カルボニル］バリニル］アミノ］−３，４−ジヒドロキシ−１，６−ジフェニルヘキサン（Ａ−７７００３）は、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ３６：３２０−３３０（１９９３）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３４】
例１０
【化１０】
【００３５】
（２Ｓ，３Ｓ，５Ｓ）５−（Ｎ−［Ｎ−［Ｎ−メチル−Ｎ−［（２−イソプロピル−４−チアゾリル）メチル］アミノ］カルボニル］バリニル］アミノ］−２−［Ｎ−［（５−チアゾリル）メトキシカルボニル］アミノ］−３−ヒドロキシ−１，６−ジフェニルヘキサン（Ａ−８４５３８、ＡＢＴ−５３８）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９４／１４４３６号（１９９３年１２月１６日出願）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３６】
例１１
【化１１】
【００３７】
［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（４−アミノフェニル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］カルバミン酸３Ｓ−テトラヒドロフラニルエステル（ＶＸ−４７８）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９４／０５６３９号（１９９３年９月７日出願）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３８】
例１２
【化１２】
【００３９】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−（フェニルチオ）−３（Ｓ）−［［Ｎ−［（２−メチル−３−ヒドロキシフェニル）カルボニル］アミノ］ブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（ＡＧ−１３４３、ＡＧ−１３５０）は、Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７１５−７２０，５：７２１−７２６および５：７２７−７３２（１９９５）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。特に、３−ヒドロキシ−２−メチル安息香酸（Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７２７−７３２（１９９５））のＨＯＢＴ活性エステルは、Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−（フェニルチオ）−３（Ｓ）−アミノブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７１５−７２０（１９９５））に結合することができる。
【００４０】
例１３
【化１３】
【００４１】
［４Ｒ−（４α，５α，６β，７β）］−１，３−ビス［（３−アミノフェニル）メチル］ヘキサヒドロ−５，６−ジヒドロキシ−４，７−ビス（フェニルメチル）−２Ｈ−１，３−ジアゼピン−２−オン（ＤＭＰ−４５０、ＸＭ−４１２）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９３／０７１２８号に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。特に３−ニトロフェニルメチルハロゲン化物（例えば、３−ニトリルフェニルメチルクロリドまたはブロミド）は、［４Ｒ−（４α５α，６β，７β）］−ヘキサヒドロ−５，６−ジヒドロキシ−４，７−ビス（フェニルメチル）−２Ｈ−１，３−ジアゼピン−２−オンのヒドロキシ保護誘導体と反応させて、次にヒドロキシ基を脱保護（ＷＯ９３／０７１２８号参照）して、ニトロ基をアミノ基に還元する。そのような還元は、当業者に公知の標準的方法を用いて行われる。
【００４２】
例１４
【化１４】
【００４３】
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［［（ピロリジン−１−イル）アセチル］アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
パートＡ：１，３−ベンゾキオキソール−５−スルホニルクロリドの調製
０℃の４．２５ｇの無水Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミドの溶液に、窒素下で７．８４ｇの塩化スルフリルを加えると、固体が生成した。１５分間攪拌後、６．４５ｇの１，３−ベンゾジオキソールを加え、混合物を１００℃で２時間加熱した。反応物を冷却し、氷水中に注ぎ、塩化メチレンで抽出し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して７．３２ｇの粗物質を黒い油状物として得た。これを２０％塩化メチレン／ヘキサンを用いてシリカゲルでクロマトグラフィーをして、１．９ｇの（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニルクロリドを得た。
【００４４】
あるいは、機械攪拌器、冷却器、加熱用マントル、および圧力平衡化滴下ロートを取り付けた２２リットルの丸底フラスコに、三酸化イオウＤＭＦ複合体（２７７８ｇ，１８．１モル）を加えた。次にジクロロメタン（４リットル）を加え、攪拌を始めた。次に１，３−ベンゾジオキソール（１９０５ｇ，１５．６モル）を、滴下ロートで５分間かけて加えた。次に温度を７５℃に上げ、２２時間維持した（ＮＭＲは、９時間後に反応が完了したことを示した）。反応物を２６℃に冷却し塩化オキサリル（２２９０ｇ，１８．１モル）を、温度を４０℃以下に維持するような速度で加えた（１．５時間）。混合物を６７℃に５時間加熱し、次に氷浴で１６℃に冷却した。反応を、温度を２０℃以下に維持する速度で水（５リットル）で停止させた。水の添加終了後、混合物を１０分間攪拌した。層を分離し、有機層を再度水（５リットル）で洗浄した。有機層を硫酸マグネシウム（５００ｇ）で乾燥し、ろ過して、乾燥物質を除去した。溶媒を減圧下で５０℃で除去した。得られた暖かい液体を冷却させると、固体が生成し始めた。１時間後固体をヘキサン（４００ｍｌ）で洗浄し、ろ過し、乾燥して、目的の塩化スルホニル（２８２３ｇ）を得た。ヘキサン洗浄物を濃縮して、得られた固体を４００ｍｌのヘキサンで洗浄して、さらに塩化スルホニル（４６４ｇ）を得た。総収率は３２８７ｇであった（１，３−ベンゾジオキソールに基づき９５．５％）。
【００４５】
パートＢ：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールの調製
方法１：Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）−Ｌ−フェニルアラニンフェニルメチルエステルのＤＩＢＡＬ還元からの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール
【００４６】
工程１：水（５００ｍｌ）中のＬ−フェニルアラニン（５０．０ｇ，０．３０２モル）、水酸化ナトリウム（２４．２ｇ，０．６０５モル）および炭酸カリウム（８３．６ｇ，０．６０５モル）の溶液を、９７℃に加熱した。次に臭化ベンジル（１０８．５ｍｌ，０．６０５モル）を静かに加えた（添加時間−２５分）。混合物を９７℃で３０分間窒素下で攪拌した。溶液を室温に冷却し、トルエン（２×２５０ｍｌ）で抽出した。合わせた有機層を水と食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、油状物を得た。Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）−Ｌ−フェニルアラニンフェニルメチルエステルは、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１５％酢酸エチル／ヘキサン）で精製できる。通常この生成物は、直接使用するのに充分純粋であり、さらに精製することなく次の工程に使用できた。ＥＩＭＳ：ｍ／ｚ４３４（Ｍ−１）。
【００４７】
工程２：前記の反応からのベンジル化フェニルアラニンフェニルメチルエステル（０．３０２モル）をトルエン（７５０ｍｌ）に溶解し、−５５℃に冷却した。トルエン中の１．５ＭのＤＩＢＡＬの溶液（４４３．９ｍｌ，０．６６６モル）を、温度を−５５〜−５０℃に維持する速度で加えた（添加時間−１時間）。混合物を窒素下で２０分間攪拌し、次にメタノール（３７ｍｌ）を静かに加えて−５５℃で反応を停止させた。冷却溶液を次に、冷却した（５℃）１．５ＮのＨＣｌ溶液（１．８リットル）に注いだ。沈殿した固体（約１３８ｇ）をろ過して、トルエンで洗浄した。固体物質を、トルエン（４００ｍｌ）と水（１００ｍｌ）の混合液に懸濁した。混合液を５℃に冷却し、２．５ＮのＮａＯＨ（１８６ｍｌ）で処理し、固体が溶解するまで室温で攪拌した。トルエン層を水層から分離し、水と食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、７５ｍｌ（８９ｇ）の容量に濃縮した。残渣に酢酸エチル（２５ｍｌ）とヘキサン（２５ｍｌ）を加えると、目的のアルコール産物が結晶化し始めた。３０分後、さらに５０ｍｌのヘキサンを加えて、結晶化を促進させた。固体をろ過し、５０ｍｌのヘキサンで洗浄して、最初の産物３４．９ｇを得た。母液を再度ろ過して第２の産物（５．６ｇ）を単離した。２つの産物を合わせて、酢酸エチル（２０ｍｌ）とヘキサン（３０ｍｌ）から結晶化して、４０ｇの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールを得た（Ｌ−フェニルアラニンからの収率は４０％）。Ｃ２３Ｈ２５ＯＮの元素分析、理論値：Ｃ，８３．３４；Ｈ，７．６０；Ｎ，４．２３。実測値：Ｃ，８３．４３，；Ｈ，７．５９；Ｎ，４．２２。
【００４８】
方法２：Ｌ−フェニルアラニノールのＮ，Ｎ−ジベンジル化からのβＳ−２−［ビス（フェニルメチル）アミノ］ベンゼン−プロパノールの調製
Ｌ−フェニルアラニノール（１７６．６ｇ，１．１６８モル）を、７１０ｍｌの水中の炭酸カリウム（４８４．６ｇ，３．５０６モル）の攪拌溶液に加えた。混合物を窒素下で６５℃に加熱した。３Ａエタノール（３０５ｍｌ）中の臭化ベンジル（４００ｇ，２．３３９モル）の溶液を、６０〜６８℃の温度を維持する速度で加えた。２相系の溶液を６５℃で５５分間攪拌し、次に激しく攪拌しながら１０℃に冷却した。油状生成物を固化させて小さい顆粒にした。生成物を２．０リットルの水道水で希釈し、５分間攪拌して生成物の無機物質を溶解させた。減圧下でろ過して生成物を単離し、ｐＨが７になるまで水で洗浄した。得られた粗生成物を、１．１リットルの酢酸エチル／ヘプタン（１：１０）から再結晶した。生成物をろ過して（−８℃で）単離し、１．６リットルの冷（−１０℃）酢酸エチル／ヘプタン（１：１０）で洗浄して、空気乾燥して、３３９ｇ（収率８８％）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（融点＝７１．５〜７３．０℃）を得た。
【００４９】
パートＣ：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドの調製
方法１：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（２００ｇ，０．６０４モル）を、トリエチルアミン（３００ｍｌ，２．１５モル）に溶解した。混合物を１２℃に冷却し、ＤＭＳＯ（１．６リットル）中の３酸化イオウ／ピリジン複合体（３８０ｇ，２．６９モル）の溶液を、８〜１７℃の温度を維持するような速度で加えた。溶液を窒素下で周囲温度で１．５時間攪拌した。反応混合物を氷水で冷却し、１．６リットルの冷水（１０〜１５℃）で４５分間かけて反応を停止させた。得られた溶液を酢酸エチル（２．０リットル）で抽出し、５％クエン酸（２．０リットル）と食塩水（２．２リットル）で洗浄し、硫酸マグネシウム（２８０ｇ）で乾燥し、ろ過した。溶媒を真空下で除去し、次に真空下で乾燥して１９８．８ｇの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを淡黄色の油状物として得た（９９．９％）。得られた粗生成物は、直接使用するのに充分純粋であり、さらに精製することなく次の工程に使用できた。
【００５０】
方法２：ジクロロメタン（２４０ｍｌ）中の塩化オキサリル（８．４ｍｌ，０．０９６モル）の溶液を−７４℃に冷却した。次にジクロロメタン（５０ｍｌ）中のＤＭＳＯ（１２．０ｍｌ，０．１５５モル）の溶液を、温度を−７４℃に維持するような速度で静かに加えた（添加時間、約１．２５時間）。混合物を５分間攪拌して、次に１００ｍｌのジクロロメタン中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（０．０７４モル）の溶液を加えた（添加時間−２０分、温度−７５℃〜−６８℃）。溶液を−７８℃で窒素下で３５分間攪拌した。次にトリエチルアミン（４１．２ｍｌ，０．２９５モル）を１０分間かけて加える（温度−７８℃〜−６８℃）と、アンモニウム塩が沈殿した。冷混合物を３０分間攪拌して、次に水（２２５ｍｌ）を加えた。ジクロロメタン層を水層から分離して、水、食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過して濃縮した。残渣を酢酸エチルとヘキサンで希釈し、次にろ過してアンモニウム塩をさらに除去した。濾液を濃縮して、２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを得た。このアルデヒドを精製することなく次の工程に使用した。
【００５１】
方法３：１．０ｇ（３．０ミリモル）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール、０．５３１ｇ（４．５３ミリモル）のＮ−メチルモルホリン、２．２７ｇのモレキュラーシーブ（４Å）そして９．１ｍｌのアセトニトリルの混合物に、５３ｍｇ（０．１５ミリモル）のテトラプロピルアンモニウム過ルテニウム酸（ＴＲＡＰ）を加えた。混合物を室温で４０分間攪拌して、減圧下で濃縮した。残渣を１５ｍｌの酢酸エチルに懸濁して、シリカゲルのパッドでろ過した。濾液を減圧下で濃縮して、約５０％の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを含有する生成物を淡黄色の油状物として得た。
【００５２】
方法４：９．０ｍｌのトルエン中の１．０ｇ（３．０２ミリモル）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールの溶液に、４．６９ｍｇ（０．０３ミリモル）の２，２，６，６−テトラメチル−１−ピペリジニルオキシ、遊離ラジカル（ＴＥＭＰＯ）、０．３２ｇ（３．１１ミリモル）の臭化ナトリウム、９．０ｍｌの酢酸エチルおよび１．５ｍｌの水を加えた。混合物を０℃に冷却し、０．７３５ｇ（８．７５ミリモル）の重炭酸ナトリウムを含有する５％家庭用漂白剤２．８７ｍｌと水８．５３ｍｌを、２５分間かけて静かに加えた。混合物を０℃で６０分間攪拌した。さらに２回（各回１．４４ｍｌ）漂白剤を加え、次に１０分間攪拌した。水層を、２０ｍｌの酢酸エチルで２回抽出した。合わせた有機層を、２５ｍｇのヨウ化カリウムと水（４．０ｍｌ）を含有する溶液４．０ｍｌ、２０ｍｌの１０％チオ硫酸ナトリウム水溶液および次に食塩水溶液で洗浄した。有機溶液を硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、減圧下で濃縮して、少量の目的のアルデヒド、２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを含有する粗油状物１．３４ｇを得た。
パートＤ：Ｎ，Ｎ−ジベンジル−３（Ｓ）−アミノ−１，２−（Ｓ）−エポキシ−４−フェニルブタンの調製
【００５３】
方法１：テトラヒドロフラン（１．８リットル）中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒド（１９１．７ｇ，０．５８モル）とクロロヨードメタン（５６．４ｍｌ，０．７７モル）の溶液を、ステンレスの反応槽中で窒素下で−３０〜−３５℃に冷却した。次にヘキサン中のｎ−ブチルリチウムの溶液（１．６Ｍ，３６５ｍｌ，０．５８モル）を、−２５℃以下の温度を維持するような速度で加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。以下の方法でさらに試薬を加えた：（１）追加のクロロヨードメタン（１７ｍｌ）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（１１０ｍｌ）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。（２）追加のクロロヨードメタン（８．５ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５５ｍｌ，０．０８８モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを５回繰り返した。
【００５４】
（３）追加のクロロヨードメタン（８．５ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（３７ｍｌ，０．０５９モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。外部冷却器を停止させ、混合物を４〜１６時間かけて周囲温度まで暖めると、ＴＬＣ（シリカゲル、２０％酢酸エチル／ヘキサン）は、反応が完了したことを示していた。反応混合物を１０℃に冷却し、２３℃以下の温度を維持しながら、１４５２ｇの１６％塩化アンモニウム溶液で反応を停止させた。この混合物を１０分間攪拌し、有機層と水層を分離した。水層を酢酸エチル（２×５００ｍｌ）で抽出した。酢酸エチル層を、テトラヒドロフラン層と合わせた。合わせた溶液を硫酸マグネシウム（２２０ｇ）で乾燥し、ろ過し、真空下で濃縮した。褐色の油状残渣を真空下（０．８バール）で７０℃で１時間乾燥して、２２２．８ｇの粗物質を得た。粗生成物は、精製することなく直接次の工程に使用される。
【００５５】
方法２：テトラヒドロフラン（２８５ｍｌ）中の粗アルデヒド０．０７４モルとクロロヨードメタン（７．０ｍｌ，０．０９６モル）の溶液を、窒素下で−７８℃に冷却した。次にヘキサン中１．６Ｍのｎ−ブチルリチウム溶液（２５ｍｌ，０．０４０モル）を、−７５℃の温度を維持するような速度で加えた。最初の添加後、クロロヨードメタン（１．６ｍｌ，０．０２２モル）を再度加え、温度を−７５℃に維持して次にｎ−ブチルリチウム（２３ｍｌ，０．０３７モル）を加えた。混合物を１５分間攪拌した。クロロヨードメタン（０．７０ｍｌ，０．０１０モル）とｎ−ブチルリチウム（５ｍｌ，０．００８モル）の各試薬を、４５分間かけて−７５℃でさらに４回加えた。次に冷却浴を除き、溶液を１．５時間かけて２２℃に暖めた。混合物を３００ｍｌの飽和塩化アンモニウム溶液中に注いだ。テトラヒドロフラン層を分離した。水層を酢酸エチル（１×３００ｍｌ）で抽出した。合わせた有機層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、褐色の油状物を得た（２７．４ｇ）。生成物を精製することなく次の工程に使用した。
【００５６】
方法３：テトラヒドロフラン（１．８リットル）中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒド（１７８．８４ｇ，０．５４モル）とブロモクロロメタン（４６ｍｌ，０．７１モル）の溶液を、ステンレスの反応槽中で窒素下で−３０〜−３５℃に冷却した。次にヘキサン中のｎ−ブチルリチウムの溶液（１．６Ｍ，３４０ｍｌ，０．５４モル）を、−２５℃以下の温度を維持するような速度で加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。以下の方法でさらに試薬を加えた：（１）追加のブロモクロロメタン（１４ｍｌ）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（１０２ｍｌ）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。（２）追加のブロモクロロメタン（７ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５１ｍｌ，０．０８２モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを５回繰り返した。（３）追加のブロモクロロメタン（７ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５１ｍｌ，０．０８２モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。外部冷却器を停止させ、混合物を４〜１６時間かけて周囲温度まで暖めると、ＴＬＣ（シリカゲル、２０％酢酸エチル／ヘキサン）は、反応が完了したことを示していた。反応混合物を１０℃に冷却し、２３℃以下の温度を維持しながら、１４５２ｇの１６％塩化アンモニウム溶液で反応を停止させた。混合物を１０分間攪拌し、有機層と水層を分離した。水層を酢酸エチル（２×５００ｍｌ）で抽出した。酢酸エチル層を、テトラヒドロフラン層と合わせた。合わせた溶液を硫酸マグネシウム（２２０ｇ）で乾燥し、ろ過し、６５℃でロータリーエバポレーターで濃縮した。褐色の油状残渣を真空下（０．８バール）で７０℃で１時間乾燥して、２２２．８ｇの粗物質を得た。
【００５７】
パートＥ：Ｎ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩の調製
工程１：イソプロパノール（２．７リットル）（または酢酸エチル）中の粗Ｎ，Ｎ−ジベンジル−３（Ｓ）−アミノ−１，２（Ｓ）−エポキシ−４−フェニルブタンの溶液（３８８．５ｇ，１．１３モル）の溶液に、２分間かけてイソブチルアミン（１．７ｋｇ，２３．１モル）を加えた。温度は２５℃から３０℃に上昇した。溶液を８２℃に加熱して、この温度で１．５時間攪拌した。暖かい溶液を真空下で濃縮した。褐色の油状残渣を１６時間真空下で乾燥（０．８ｍｍＨｇ）して、４５０ｇの生成物を粗油状物として得た。
工程２：メタノール（７６ｍｌ）中のシュウ酸の溶液（８．０８ｇ，８９．７２モル）に、酢酸エチル（９０ｍｌ）中の粗３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−１−（２−メチルプロピル）アミノ−４−フェニルブタン−２（Ｒ）−オールを１５分間かけて加えた。混合物を室温で約２時間攪拌した。固体をろ過して単離し、酢酸エチル（２×２０ｍｌ）で洗浄し、真空下で約１時間乾燥して、２１．８６ｇの９７％ジアステレオ異性体的に純粋な塩を得た。融点＝１７４．９９℃；微量元素分析：理論値：Ｃ，７１．０５％；Ｈ，７．５０％；Ｎ，５．５３％。実測値：Ｃ，７１．７１％；Ｈ，７．７５％；Ｎ，５．３９％。
あるいは、粗３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−１−（２−メチルプロピル）アミノ−４−フェニルブタン−２（Ｒ）−オール（５ｇ）を、メチル−ｔｅｒｔ−ブチルエーテル（ＭＴＢＥ）（１０ｍｌ）中に溶解し、メタノール（４ｍｌ）中のシュウ酸（１ｇ）を加えた。混合物を約２時間攪拌した。得られた固体をろ過し、冷ＭＴＢＥで洗浄し、乾燥して、約９８．９％のジアステレオ異性体的に純粋な（ＨＰＬＣピーク面積に基づく）２．１ｇの白色固体を得た。
【００５８】
パートＦ：１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノールの調製
１，４−ジオキサン（２０００ｍｌ）中のＮ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩（３５４．７ｇ，０．７モル）に、水（２５０ｍｌ）中の炭酸カリウム（２４１．９ｇ，１．７５モル）の溶液を加えた。混合物を室温で２時間攪拌し、次に１，４−ジオキサン（２５０ｍｌ）中の１，３−ベンゾジオキソール−５−スルホニルクロリド（１６２．２ｇ，０．７３５モル）を１５分間かけて加えた。反応混合物を室温で１８時間攪拌した。酢酸エチル（１０００ｍｌ）と水（５００ｍｌ）を加え、さらに１時間攪拌を続けた。水層を分離し、さらに酢酸エチル（２００ｍｌ）で抽出した。合わせた酢酸エチル層を、２５％食塩水（５００ｍｌ）で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。ろ過し、硫酸マグネシウムを酢酸エチル（２００ｍｌ）で洗浄後、溶媒を真空下で除去して、目的のスルホンアミドを粘性の黄色の発泡性の油状物として得た（４４０．２ｇ，収率１０５％）。ＨＰＬＣ／ＭＳ（電気スプレー）（ｍ／ｚ６０１［Ｍ＋Ｈ］＋）。
【００５９】
あるいは、Ｎ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩（２８００ｇ，５．５３モル）とＴＨＦ（４リットル）を、機械攪拌器を取り付けた２２リットルの丸底フラスコに加えた。炭酸カリウム（１９２１ｇ，１３．９モル）を水（２．８リットル）に溶解し、ＴＨＦスラリーに加えた。次に混合物を１時間攪拌した。１，３−ベンゾジオキソール−５−スルホニルクロリド（１２８１ｇ，５．８モル）をＴＨＦ（１．４リットル）に溶解し、２５分間かけて反応混合物に加えた。さらに２００ｍｌのＴＨＦを使用して、滴下ロートをすすいだ。反応物を１４時間攪拌し、次に水（４リットル）を加えた。この混合物を３０分間攪拌し、層を分離させた。層を除去し、水層をＴＨＦ（５００ｍｌ）で２回洗浄した。合わせたＴＨＦ層を硫酸マグネシウム（５００ｇ）で１時間乾燥した。次に溶液をろ過して、乾燥物質を除去し、次の反応に使用した。
【００６０】
パートＧ：１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−アミノ−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノール・メタンスルホン酸塩の調製
粗１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノール（６．２ｇ，０．０１０モル）を、メタノール（４０ｍｌ）に溶解した。次にメタンスルホン酸（０．９６９ｇ，０．０１０モル）と水（５ｍｌ）をこの溶液に加えた。混合物を、２０％Ｐｄ（ＯＨ）２担持活性炭（２５５ｍｇ，５０％水分含量）を含有する５００ｍｌのパール水素添加瓶中に入れた。瓶を水素添加装置に入れ、窒素を５回パージし、水素を５回パージした。反応を３５℃で６３ＰＳＩ水素圧で１８時間進ませた。さらに触媒（１２５ｍｇ）を加えて、パージ後、さらに２０時間水素添加を続けた。混合物を、メタノール（２×１０ｍｌ）で洗浄したセライトでろ過した。メタノールの約３分の１を減圧下で除去した。残りのメタノールを、８０ｔｏｒｒでトルエンと共沸蒸留させて除去した。トルエンを、１５、１０、１０および１０ｍｌで加えた。生成物を混合物から結晶化し、ろ過し、１０ｍｌのトルエンで２回洗浄した。固体を室温で１ｔｏｒｒで６時間乾燥して、アミン塩（４．５ｇ，８４％）を得た：ｍ／ｚ ４２１［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００６１】
あるいは、粗１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノールに、水（５００ｍｌ）を加え、次にメタンスルホン酸（５３１ｇ，５．５モル）を加えた。この溶液を完全に混合するように攪拌し、５ガロンのオートクレーブに入れた。パールマン（Ｐｅｒａｌｍａｎ）触媒（２００ｇの２０％Ｐｄ（ＯＨ）２担持活性炭／５０％水）を、ＴＨＦ（５００ｍｌ）とともにオートクレーブに加えた。反応槽に窒素を４回パージし、水素を４回パージした。反応槽に、６０ｐｓｉｇの水素を充填し、４５０ｒｐｍで攪拌を開始した。１６時間後、ＨＰＬＣ解析は、少量のモノ−ベンジル中間体がまだ残存していることを示していた。追加の触媒（５０ｇ）を加え、反応を一晩続けた。次に溶液をセライト（５００ｇ）でろ過して触媒を除去し、５つの画分に分けて真空下で濃縮した。各画分にトルエン（５００ｍｌ）を加え、残存水を共沸させて除去するために真空下で除去した。得られた溶液を３つの画分に分割し、各画分をメチルｔ−ブチルエーテル（２リットル）で洗浄しろ過した。残存溶媒を室温で真空オーブン中で１ｔｏｒｒ以下で除去して、２７１４ｇの目的の塩を得た。
【００６２】
パートＨ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（フェニルメトキシカルボニル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
７５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１１８．８ｇ（０．７７６モル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールと１３７．１ｇ（０．５２モル）のＮ−カルボベンジルオキシカルボニル−Ｌ−ｔｅｒｔ−ロイシンを、０℃で窒素下で１０９．１ｇ（０．５７モル）のＥＤＣに加えた。０℃で２時間攪拌後、あらかじめ２２８ｍｌ（２１０ｇ，２．０８モル）の４−メチルモルホリンで中和した、２５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の２７３ｇ（０．５３モル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で３０分間攪拌後、混合物を室温で１８時間攪拌した。溶媒を減圧下で４５℃で除去し、１．５リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、４００ｇの粗物質を得た。これを、シリカゲルのＰｒｅｐ２０００クロマトグラムで２０％−５０％酢酸エチル／ヘキサンを溶出液として用いて、３回のバッチでクロマトグラフィーをして、３２０ｇの精製物質を得た。ｍ／ｅ＝６７４（Ｍ＋Ｌｉ）、ＨＰＬＣで９８％。
【００６３】
パートＩ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−アミノ−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
１リットルのテトラヒドロフラン中の３１２ｇのＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（フェニルメトキシカルボニル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの溶液を、１００ｇの４％白金担持活性炭触媒の存在下で６０ｐｓｉｇの水素下で室温で６時間水素添加した。触媒をろ過して除去して、溶媒を減圧下で除去して、２４０ｇの目的の化合物を得た。
【００６４】
パートＪ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
１リットルの塩化メチレン中の２３４．３ｇ（０．４３９モル）のＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−アミノ−３，３−ジメチルブタンアミドに、８０ｍｌ（５９．５ｇ，０．４６モル）のジイソプロピルエチルアミンを加え、次に温度を３５℃以下に維持しながら室温の７８．８ｇ（０．４６モル）の無水クロロ酢酸を加えた。さらに１時間攪拌後、ＨＰＬＣで解析すると、少量の出発物質が残存しており、１．５ｇの無水クロロ酢酸を加えた。１０分後、減圧下で溶媒を除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、３１４ｇの粗物質を得た。これをシリカゲルのＰｒｅｐ２０００クロマトグラムで２０％−５０％酢酸エチル／ヘキサンを用いて、３回のバッチでクロマトグラフィーをして、１６５ｇの目的の化合物を得た。ｍ／ｅ＝６１６（Ｍ＋Ｌｉ）、ＨＰＬＣで９８％。
パートＫ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［［（ピロリジン−１−イル）アセチル］アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
【００６５】
１６４．２ｇ（０．２７モル）のＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドに、５００ｍｌのテトラヒドロフランを加え、次に減圧下で溶媒を除去して酢酸エチルを除去し、次に３５０ｍｌのテトラヒドロフランを加えた。この溶液に１０℃で１３０ｍｌ（１．５６モル）のピロリジンを加えた。１時間後、溶媒を減圧下で除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１８５ｇの粗物質を得て、これをＨＰＬＣで測定すると純度は９８．９％であった。これを３つに分けて、Ｐｒｅｐ２０００クロマトグラムで最初は５０％酢酸エチル／ヘキサンを用いて、次に５％メタノール／酢酸エチルで３回のバッチでクロマトグラフィーをして、１６０ｇの精製物質を得た（ＨＰＬＣで９９％）。これを次に、４６０ｍｌのジエチルエーテルと７０ｍｌのヘキサンから再結晶して、１２１ｇの目的の生成物を得た（ＨＰＬＣで＞９９％）、ｍ／ｅ＝６５１（Ｍ＋Ｌｉ）、融点＝１１２〜１１４℃。
【００６６】
例１５
【化１５】
【００６７】
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［（２−メチルプロピル）［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドの調製
パートＡ：２（Ｓ）−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸の調製
工程１：１．０リットルのメタノール中の２００ｇ（１．２３モル）のＤ−（−）−３−アセチル−ｂ−メルカプトイソ酪酸に、氷欲で冷却して温度を１０℃以下に維持しながら、５００ｍｌのメタノールに溶解した１６１．０ｇ（２．４７モル）の水酸化カリウムを加えた。さらに２０分間攪拌後、温度を２０℃以下に維持しながら１１７ｍｌ（１５６ｇ，１．２３モル）の硫酸ジメチルを加えた。氷浴を除去し、混合物をさらに６０分間攪拌した。塩をろ過して除去し、溶媒を減圧下で除去し、酢酸エチルを加えた。水層を分離後、濃塩酸で酸性にし、酢酸エチルで抽出し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１６４ｇ（９９％）の目的の２Ｓ−メチル−３−（メチルチオ）プロピオン酸を得た、ｍ／ｅ＝１３３（Ｍ−Ｈ）。
【００６８】
工程２：氷浴で１８℃に冷却した１５０ｍｌのアセトン中の１０．０ｇ（７４．６ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルチオ）プロピオン酸と３０ｍｌの水に、１６１．８ｇ（２６３ミリモル）のオキソン（Ｏｘｏｎｅ）を加えた。約半分の物質を加えた後、温度が２４℃に上昇し、添加を停止し、温度を１８℃に下げ、浴を除去して、反応物を室温で１時間攪拌した。固体をろ過し、アセトンで洗浄し、濾液を約４０ｍｌに濃縮して、残渣を２００ｍｌの酢酸エチルに溶解した。酢酸エチル層を無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１１．４ｇの油状物を得た。これを最小量の酢酸エチルに溶解し、ヘキサンを加えて沈殿物を形成させた。これを集めて６．９５ｇの目的の生成物を得た、ｍ／ｅ＝１６７（Ｍ＋Ｈ）。
【００６９】
パートＢ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［（２−メチルプロピル）［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドの調製
３０ｍｌの無水ＤＭＦ中の５．０ｇ（３０ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸と６．９０ｇ（４５ミリモル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールに、０℃で窒素下で６．３４ｇ（３３ミリモル）のＥＤＣを加えた。約１０分後、ＥＤＣはすべて溶解した。０℃で６０分後、３．４ｍｌ（３１．６ミリモル）の４−メチルモルホリンであらかじめ中和した、３０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１５．５ｇ（３０ミリモル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で３時間後、混合物を１７時間一晩攪拌した。減圧下でＤＭＦを除去し、酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、水、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して１６ｇの粗物質を得て、これはＨＰＬＣで純度８８％であった。生成物を２０％−８０％酢酸エチル／ヘキサンを用いてシリカゲルでクロマトグラフィーをして、純粋な生成物を得て、これを酢酸エチル／ヘキサンから再結晶して、８．８４ｇの純粋な生成物を得た、融点１３１．８〜１３３．８℃。
【００７０】
あるいは、２１０ｍｌの無水ＤＭＦ中の３５．０ｇ（２１１ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸と４８．３ｇ（３１５ミリモル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールに、０℃で窒素下で４４．４ｇ（２３１ミリモル）のＥＤＣを加えた。約３０分後、ＥＤＣはすべて溶解した。０℃で６０分後、２４ｍｌ（２２．３ｇ）の４−メチルモルホリンであらかじめ中和した、３５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１０８．８ｇ（２１１ミリモル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で２時間後、混合物を１８時間一晩攪拌した。減圧下でＤＭＦを除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、水、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して１２０．４ｇの粗物質を得て、これはＨＰＬＣで純度９０％であった。生成物を７５０〜１０００ｍｌの無水エタノールから再結晶して、８２．６ｇの純粋な生成物を得た。
【００７１】
例１６
【化１６】
【００７２】
２Ｓ−［［Ｎ−メチルアミノ）アセチル］アミノ］−Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドに、２５ｍｌのテトラヒドロフランを加え、溶媒を減圧下で除去して酢酸エチルを除去し、次に２５ｍｌのテトラヒドロフランを加えた。１０℃のこの溶液に１９ｍｌ（２１４ミリモル）の４０％メチルアミン水溶液を加えた。２時間後、溶媒を減圧下で除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、６．０ｇの生成物（純度９８％）を得た。
【００７３】
例１７
本発明のレトロウイルスプロテアーゼインヒビター化合物は、有効なＨＩＶプロテアーゼインヒビターである。以下に記載する酵素測定法は、併用療法で使用するためのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの選択に使用することができる。このような化合物のＩＣ５０（インヒビター化合物が酵素活性を５０％低下させる濃度）は、この方法を用いて計算できる。
【００７４】
酵素法は以下の通りである。基質は、２−アミノベンゾイル−Ｉｌｅ−Ｎｌｅ−Ｐｈｅ（ｐ−ＮＯ２）−Ｇｌｎ−ＡｒｇＮＨ２である。陽性対照はＭＶＴ−１０１（エム・ミラー（Ｍｉｌｌｅｒ，Ｍ．）ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１１４９（１９８９））である。測定緩衝液は、２０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ６．４、２０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ ＤＴＴおよび０．１％ＣＨＡＰＳである。基質はＤＭＳＯに溶解し、次に測定緩衝液で１０倍に希釈する。測定液中の最終基質濃度は、約８０μＭである。ＨＩＶプロテアーゼは、分子量１０，７８０に基づいて最終濃度が約１２．３ナノモルになるように、測定緩衝液で希釈する。
ＤＭＳＯの最終濃度は約１４％であり、グリセロールの最終濃度は約１８％である。試験化合物をＤＭＳＯに溶解し、ＤＭＳＯで試験濃度の約１０倍（１０×）に希釈する。次に１０μｌの基質を加える。蛍光の増加を、周囲温度で４点（０、８、１６、および２４分）で追跡する。各測定は、２重測定のウェルで行う。
【００７５】
例１８
本発明の選択したＨＩＶプロテアーゼインヒビター化合物の有効性は、上記の酵素測定法と以下のＣＤ４＋細胞株測定法で測定した。プロテアーゼインヒビターの抗ウイルス活性は、有効濃度５０（ＥＣ５０）および／または有効濃度９０（ＥＣ９０）値として表す。これらは、ウイルス複製をそれぞれ５０％または９０％阻害するのに必要なインヒビターの濃度である。
【００７６】
急性感染細胞のＨＩＶ阻害測定法は、基本的にはパウウェルズ（Ｐａｕｗｅｌｓ）らが報告した（Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２０，３０９−３２１（１９８８））テトラゾリウムに基づく自動比色法である。測定は、９６ウェル組織培養プレート中で行う。ＣＤ４＋細胞株（例えば、ＣＥＭ、ＭＴ−２、ＭＴ−４および類似の細胞株）を、１０％胎児牛血清を補足したＲＰＭＩ−１６４０培地（ギブコ（Ｇｉｂｃｏ））中で増殖させ、次にポリブレン（２μｇ／ｍｌ）で処理する。１×１０４細胞を含有する８０μｌ量の培地を、組織培養プレートの各ウェルに分注する。各ウェルに、組織培養培地に溶解した試験化合物（または、対照として試験化合物のない培地）１００μｌを添加して、目的の最終濃度として、３７℃で１時間インキュベートする。ＨＩＶ−１の凍結培養物を培地で、５×１０４ＴＣＩＤ５０／ｍｌ（ＴＣＩＤ５０＝組織培養中の５０％の細胞に感染するウイルス量）の濃度に希釈し、２０μｌのウイルス試料（１０００ＴＣＩＤ５０のウイルスを含有する）を、試験化合物を含有するウェルおよび培地のみを含有するウェル（感染対照細胞）に添加する。数個のウェルに、ウイルスのない培地（非感染対照細胞）を入れる。同様に、試験化合物の本質的毒性は、試験化合物を含有する数個のウェルにウイルスのない培地を加えて測定する。要約すると、組織培養プレートは以下の実験系を含有する：
【００７７】
【００７８】
実験系２と４では、試験化合物の最終濃度は１、１０、１００および５００μｇ／ｍｌである。アジドチミジン（ＡＺＴ）またはジデオキシイノシン（ｄｄＩ）は、陽性薬剤対照として含める。試験化合物をＤＭＳＯに溶解し、組織培養培地に希釈して、いずれの場合も最終ＤＭＳＯ濃度が１．５％を越えないようにする。ＤＭＳＯを、適当な濃度ですべての対照ウェルに加える。
ウイルスの添加後、細胞を３７℃で加湿した５％ＣＯ２雰囲気中で７日間インキュベートする。試験化合物を、必要であれば０、２、および５日目に加えることができる。感染後７日目に、各ウェルの細胞を再懸濁して、測定のために各細胞懸濁液１００μｌの試料を取る。５ｍｇ／ｍｌの３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロミド（ＭＴＴ）溶液２０μｌを、各１μｌの細胞懸濁液に加え、細胞を３７℃で加湿した５％ＣＯ２雰囲気中で４時間インキュベートする。このインキュベートの間、ＭＴＴは生きている細胞により代謝されて減少し、細胞中に着色したホルマザン生成物が産生される。各試料に、０．０１ＮのＨＣｌ中の１０％ドデシル硫酸ナトリウム１００μｌを加えて細胞を溶解し、試料を一晩インキュベートする。モレキュラーデバイシーズ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）マイクロプレートリーダーを用いて、各試料について５９０ｎｍの吸光度を測定する。試験化合物の細胞毒性と抗ウイルス活性は、化合物とともにインキュベートした感染または非感染細胞を含有するウェル中で得られた吸光度を、非感染、未処理対照ウェルと比較して求める。
【００７９】
ＨＩＶ培養法
ドナーリンパ球の刺激
アメリカ赤十字（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｒｅｄ Ｃｒｏｓｓ）またはワシントン大学医学部の血液銀行から、バッフィーコートを得た。これらの調製物を、ＨＩＶ抗体とＣＭＶ抗体、およびＨＢＶ表面抗原（ＨＢｓＡｇ）、および非Ａ非Ｂ肝炎のマーカーとしてのＡＬＴ（アラニントランスフェラーゼ活性）について、プレスクリーニングした。白血球を濃縮した血液（３０ｍｌ）をプラスチック容器から採取し、１５ｍｌを５０ｍｌのネジふた遠心分離管に分注した。各試料を等量の無菌ＰＢＳで希釈して、ピペットで混合した。フィコール−ペーク（Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ）（１５ｍｌ）またはＬＳＭを、パスツールピペットを用いて、希釈した血液試料の下に入れ、溶液を管の底から排出させる。次に各管を、２０℃で１３００ｒｐｍ（４００×ｇ）で４５分間遠心分離する。遠心分離後、界面のリンパ球バンドを取り、５０ｍｌの管に移す。無菌ＰＢＳを加えて、分離したリンパ球を希釈し、次に１３００ｒｐｍで８分間遠心分離した。細胞ペレットを、ＰＢＳに再懸濁し再遠心分離して２回洗浄する。最終細胞ペレットをピペットで２０ｍｌのＰＢＳに再懸濁し、生存細胞の総数をトリパンブルー排除により測定する。
【００８０】
臨床単離株を用いる急性感染性測定
約３×１０７個の細胞を、１０％胎児牛血清とＩＬ−２（１０Ｕ／ｍｌ）を含有するＲＰＭＩ中の約３〜５μｇ／ｍｌのＰＨＡで４８時間活性化する。定量したウイルス株を、感染多重度約０．００１〜０．０１で、活性化リンパ球懸濁液に加える。細胞−ウイルス懸濁液を３７℃で２時間インキュベートして、ウイルスを吸収させる。遠心分離して残存ウイルス接種株を除去し、細胞を１０％ＦＢＳと１０Ｕ／ｍｌＩＬ−２含有ＲＰＭＩ中に再懸濁する。これらの感染細胞を、９６ウェルマイクロタイタープレート中のＤＭＳＯ内のストック液（１０ｍｇ／ｍｌ）からの完全組織培養培地で希釈した試験物質に加えて、２００μｌ当たり約５×１０５細胞を得る。感染した未処理細胞、およびＤＭＳＯのみ（０．１％）またはＡＺＴもしＤＤＩで処理した細胞を、対照として用いた。培養物を融合細胞（ｓｙｎｃｙｔｉａ）形成について、感染後７日目および１１日目に観察するか、またはｐ２４抗原の逆転写酵素活性について上澄液を試験する。
【００８１】
慢性感染測定
ＨＸＢ２（ＨＩＶ−１の実験室株）で慢性に感染させたＣＥＭ細胞を、１２ウェルマイクロタイタープレートの６ウェルに加えて、約５×１０４細胞／ウェルを得る。ウェルの半分は種々の濃度の試験化合物で処理し、同じ数の非感染ＣＥＭ細胞を化合物を添加せずに維持する。試験化合物を含有するまたは含有しない新鮮な培地を、３日間連続して毎日加える。次に培養物を４８時間、培地を交換することなくインキュベートする。細胞を遠心分離して採取し、ＰＢＳで２回洗浄し、０．１２５ＭトリスｐＨ６．８、４％ＳＤＳ、２０％グリセロール、１０％ベータメルカプトエタノールおよび０．０２％ブロモフェノールブルーを含有する２×リームリ（Ｌａｅｍｍｌｉ）緩衝液５０μｌに再懸濁する。培養上澄液を０．２２μのフィルターに通し、細胞破片を除去し、５０，０００ｒｐｍで９０分間遠心分離してウイルス粒子を濃縮する。ウイルスペレットを５０μｌの２×リームリ緩衝液に再懸濁する。細胞またはウイルス懸濁液を５分間沸騰させ、次に１０〜２０％ＳＤＳ−ポリアクリルアミド勾配ゲル中で電気分離を行う。次にゲルの内容物を電気ブロッティングによりニトロセルロースに移す。ｐ２４およびｐ１７に対するモノクローナル抗体を用い、次にビオチンに結合したヤギ−抗マウスＩｇＧおよびＨＲＰに結合したアビジンを用いてＨＩＶ特異的タンパク質を検出する。４−クロロ−１−ナフトールの酵素的変換を用いて、これらのモノクローナル抗体に認識される特異的タンパク質を可視化する。さらに、試験化合物の存在下でまたは非存在下で慢性に感染したＣＥＭ細胞により産生されるウイルスの感染性を調べる。ろ過した上澄液を連続希釈を行い、非感染ＣＥＭ細胞（約１×１０４細胞／ウェル）を感染させるのに使用する。感染後７日目または１１日目に融合細胞の形成について培養物を試験するか、または上澄液を逆転写酵素活性もしくはｐ２４抗原について試験する。
【００８２】
微量逆転写酵素（ＲＴ）測定
微量ＲＴ測定法は、いくつかの標準的ＲＴ測定法の１つの応用である。これは、少量の試料のＨＩＶ ＲＴ活性を測定するためおよび多くの試料の処理を促進するために開発された。
【００８３】
【００８４】
方法：
１．ウェル当たり５０μｌのＲＴカクテルを９６ウェルＵ底マイクロタイタープレートに加える。
２．ウェル当たり１０〜２０μｌの細胞を含まない上澄液を加える。
３．機械回転器を用いて充分混合する。
４．３７℃で２時間インキュベートする。
５．ＴＯＭＴＥＫを用いて吸引してＤＥ８１濾紙または同等物にのせる。
６．２×ＳＳＣを用いて４回すすぐ。
７．９５％エタノールを用いて１回すすぐ。
８．濾紙を乾燥させる。
９．ベータ−プレートカウンター（ファルマシア（Ｐｈａｒｍａｃｉａ））を用いて計測する準備をする。
【００８５】
例１９
【化１７】
【００８６】
ＥＣ５０のシフトが観察されるまで、化合物の濃度を増加させて複数回サイクルを繰り返す。
以下は、ＨＩＶプロテアーゼインヒビター耐性突然変異体の選択のために使用した培養法である。感染した細胞を、プロテアーゼインヒビターの存在下で連続的に増殖させる。いくつかの培養物を週毎に交互に高濃度または低濃度のインヒビターに接触させる。他のものは一定の濃度で継代する。ＥＣ５０のシフトが観察されるまで、薬剤濃度を定期的に増加させる。用量応答曲線のシフトは、一般的に薬剤濃度０．５〜１μｇ／ｍｌ以上（ＥＣ９０の５〜１０倍）で検出され、処理されるウイルス単離物に依存する。ＨＩＶの実験室で適応させた単離物または初代臨床単離物を使用した。処理単離物および未処理単離物の間で直接ヌクレオシド配列が比較できるように、同じウイルス単離物を同じ方法で薬剤の非存在下で継代する。一般的にプロテアーゼインヒビターに耐性のＨＩＶ−１変種は、特定のプロテアーゼインヒビターのいくつかの阻害濃度の存在下で連続的に継代（増殖）させて選択される（マルコウィッツ（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ）ら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ６９：７０１−７０６（１９９５）を参照）。下記のＨＩＶ−１変種は、選択されたウイルス単離物中に存在するが、対照、未処理ウイルス単離物には存在しない突然変異を示す。
【００８７】
ＲＦはＨＩＶ−１株ＨＩＶ−１ＲＦを示し、ＲＦＲは例１の化合物に対してＲＦの選択により得られた耐性株の混合物を示す。ＲＦＲは、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ（１４／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１８／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｌ９０Ｓ（２／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｖ８２Ａ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｍ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｑ６１Ｈ（１／４０クローン）；Ｖ１３Ｉ、Ｇ４８Ｖ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｆ５３Ｌ、Ｖ８２Ａ（１／４０クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｃ９５Ｙ（１／４０クローン）を有するウイルス株の混合物である。ＲＦＲ２は、限界希釈の３回の増殖によりＲＦＲをクローニングして得られた耐性株の混合物である。ＲＦＲ２は、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１３／１５クローン）；Ｇ１７Ｅ、Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１／１５クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｎ３７Ｄ、Ｎ８８Ｄ（１／１５クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＲＦＲＲは、例１と２の化合物に対してＲＦの選択と次に限界希釈の３回の増殖によりクローニングして得られた耐性株の混合物である。ＲＦＲＲは、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ａ（７／９クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ａ、Ｎ８８Ｓ（１／９クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｇ７３Ｍ、Ｖ８２Ａ（１／９クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＳＦ１６２は、ＨＩＶ−１株ＳＦ−１６２であり、ＳＦ１６２Ｒは、例１の化合物に対してＳＲ１６２の選択により得られた耐性株の混合物である。ＳＦ１６２Ｒは、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｎ８８Ｄ（２／３クローン）；およびＭ４６Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｎ８８Ｄ、Ｑ９２Ｒ（１／３クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。８９−９５９はＨＩＶ−１株８９−９５９であり、８９−９５９Ｒは、例２の化合物に対して８９−９５９の選択により得られた耐性株の混合物である。８９−９５９Ｒは、プロテアーゼ遺伝子型Ｎ８８Ｓ（４／５クローン）；およびＤ２５Ｎ、Ｔ２６Ａ、Ｄ３０Ｎ、Ｄ３７Ｎ、Ｒ４１Ｋ、Ｇ７３Ｄ、Ｒ８７Ｋ、Ｎ８８Ｓ（１／４クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＮＬ４はＨＩＶ−１株ＨＩＶ−１ＮＬ４−３である。ＮＬ４（Ｇ４８Ｖ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸４８位でグリシンからバリンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｉ８４Ｖ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸８４位でイソロイシンからバリンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｒ８Ｑ、Ｍ４６Ｉ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸８位でアルギニンからグルタミンへの合成法で作成した部位特異的突然変異とアミノ酸４６位でメチオニンからイソロイシンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｐ２２−５３８）は、２２回の継代後に例１０の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株の混合物であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（４／１０）；Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（３／１０）；Ｍ４６Ｉ、Ａ７１Ｖ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（３／１０）よりなる。ＮＬ４（Ｐ３７−５３８）は、３７回の継代後に例１０の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬ４（５３８／５２４）は、２４回の継代後に例５の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬ４（５３８／Ｐ７−ＡＧ）は、７回の継代後に例１２の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株の混合物であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａ；およびＶ３２Ｉ、Ｖ８２Ｉよりなる。ＮＬ４（５３８／Ｐ２４−ＡＧ）は、２４回の継代後に例１２の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬＡ（Ｐ１９−００３）は、１９回の継代後に例９の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｒ８Ｋ、Ｍ４６Ｉよりなる。ＮＬ４（Ｐ３４−００３）は、３４回の継代後に例９の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｒ８Ｋ、Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｌ９０Ｍよりなる。ウイルス単離物の耐性は、表１〜１１に要約する。
【００８８】
例２０
表１から表３に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、下記の検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。１０％ウシ胎児血清およびＩＬ−２（１０単位／ｍｌ）を含むＲＰＭＩ中約３×１０７個の細胞を約３〜５μｇ／ｍｌのＰＨＡで４８時間活性化した。定量したウイルス原液をこの活性化されたリンパ球浮遊液へ約０．００１〜０．０１の感染多重度で加えた。細胞−ウイルス浮遊液を３７℃で２時間インキュベーションしてウイルスを吸収させた。残留ウイルス接種材を遠心により除き、１０％ＦＢＳおよび１０単位／ｍｌのＩＬ−２を含むＲＰＭＩ中に細胞を再浮遊させた。９６穴（ウェル）マイクロタイタープレート中で、これら感染細胞をＤＭＳＯ中の原液（１０ｍｇ／ｍｌ）から得た試験化合物（完全組織培地で希釈）へ加え、細胞約５×１０５個／ウェル／２００μｌとした。感染した未処理細胞およびＤＭＳＯだけ（０．１％）で処理した細胞あるいはＡＺＴまたはＤＤＩいずれかで処理した細胞を対照として使用した。培養を感染後７日目と１１日目にシンシチウム形成について調べるか、あるいは上澄を逆転写酵素活性またはｐ２４抗原について試験した。
【００８９】
【表１】
【表２】
【表３】
【００９０】
例２１
表４〜表６に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、下記の検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。検定は９６穴組織培養プレートで行なった。ＣＥＭ−Ｔ４細胞を９０％ＲＰＭＩ培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｓｂｕｒｇ，マリーランド州）１０％熱処理ウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｓｂｕｒｇ，マリーランド州）中に浮遊させ、最終濃度を生活力のある細胞５×１０５個／ｍｌとした。冷凍したＨＩＶ培養（ＨＩＶ−１ＲＦ株）の一部を迅速に融かし（３７℃の水浴中で）、ＣＥＭ−Ｔ４細胞へ加えて約０．００１〜０．０１感染単位／細胞の最終濃度とした。ウイルス−細胞浮遊液を回して迅速に混合し、直ちに１００μｌを９６穴組織培養プレートの各ウェル中各試験化合物（９０％ＲＰＭＩ、１０％ＦＢＳ中２×濃縮液として調製）希釈液１００μｌに加えた。各プレートは細胞とウイルスからなり試験化合物は含まない対照ウェルを含んだ。すべての検定で３’−アジド−３’−デオキシチミジン（ＡＺＴ）を正の対照として含めた。
【００９１】
これら組織培養プレートを加湿した５％ＣＯ２雰囲気中３７℃で７日間インキュベーションした。次にウイルスの複製レベルを標準法（前述した通り、例えばＨＩＶ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ａｌｄｏｖｉｎｉ＆Ｗａｌｋｅｒ，編、１９９０年、Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，ニューヨーク州、中の技術参照）を用いて、上澄中の逆転写酵素活性の測定により決定した。
【００９２】
【表４】
【表５】
【表６】
【００９３】
例２２
表７〜表１１に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ等、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，６９巻、７０１−７０６（１９９５）（これは参考文献としてそのまま本明細書中に取り入れている）により記述された検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。
【００９４】
【表７】
【表８】
【表９】
【表１０】
【表１１】
【００９５】
例２３
独特のヒドロキシエチル尿素等配電子体を含む例１および例２のプロテアーゼ阻害剤を用いて、薬物耐性ＨＩＶ−１変異株を容器内で選択した。臨床および研究室のＨＩＶ−１株を、Ｔ細胞系であるいは末梢血単核細胞（ＰＢＭＣＳ）で、存在する薬物の濃度を高めながら継代した。耐性変異株は、同一期間阻害剤欠如下で継代した対照ウイルスよりも、一貫して少なくとも１０倍高いＥＣ５０値を示した。ウイルスＤＮＡをＰＣＲにより増幅し、プロテアーゼをコード化する遺伝子のヌクレオチド配列を標準法を用いて測定した。それぞれ例２および例１のプロテアーゼ阻害剤に対して耐性のあるウイルスにおいては、選ばれた変異株の多くで８８位のアミノ酸の変化が一貫して観察された。８８のＡｓｎ残基は、構造的に保存されたらせん領域内にあり、単量体および二量体両方のアスパラギン酸プロティナーゼ中に存在する。対応するカルボキシ末端配列Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｐ／Ａｓｎ（残基８６−８８）は、レトロウイルスアスパラギン酸プロティナーゼに独特である。これらの結果に対するどんな説明も推測に過ぎないが、組換えＨＩＶ−１プロテアーゼに結合した基本型のヒドロキシエチル尿素阻害剤の高分解能Ｘ線構造から誘導された鋳型に基づくモデル化の研究は、Ａｓｎ８８突然変異がプロテアーゼの立体配座を変えるかもしれないことを示唆するようである。
【００９６】
本発明に係るレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は、有利に効果のある抗ウイルス化合物であり、そしてとりわけレトロウイルス、特に上に示したレンチウイルス、の有効な阻害剤である。従って、この主題化合物はＨＩＶの有効な抑制物質である。本発明化合物はまたＨＩＶの他の株、例えばＨＩＶ−２および他のウイルス類、例えばＶＩＳＮＡウイルスおよびサル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ）、ＨＴＬＶ−１およびＨＴＬＶ−２も抑制するであろうことも企図されている。従って、本発明化合物はレトロウイルス感染症の治療および（または）予防に有効である。
【００９７】
本発明はレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物の溶媒和物あるいは水和物を包含することも意味し、可能ならばこの分野で公知の方法により調製あるいは単離される。
本レトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は、無機酸または有機酸から誘導される塩の形で使用できる。これらの塩は次のものを包含するが、これらに限定しない：酢酸塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、クエン酸塩、アスパラギン酸塩、安息香酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、重硫酸塩、酪酸塩、ショウノウ酸塩、ショウノウスルホン酸塩、ジグルコン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタンスルホン酸塩、グルコヘプタン酸塩、グリセロリン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、ヘキサン酸塩、フマル酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシ−エタンスルホン酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、メタンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、２−ナフタレンスルホン酸塩、シュウ酸塩、パルモエート、ペクチン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、ピクリン酸塩、ピバリン酸塩、プロピオン酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、チオシアン酸塩、トシレート、メシレートおよびウンデカン酸塩。
【００９８】
製薬上容認しうる酸付加塩をつくるために使用しうる酸の例として、無機酸、例えば塩酸、硫酸およびリン酸ならびに有機酸、例えばシュウ酸、マレイン酸、コハク酸およびクエン酸が挙げられるが、なるべくは塩酸塩が好ましい。他の例には、アルカリ金属またはアルカリ土類金属、例えばナトリウム、カリウム、カルシウムまたはマグネシウムとの塩あるいは有機塩基との塩が含まれる。
患者に対して一回分量または分割した用量で投与される全１日量は、例えば体重１ｋｇ当り０．０１から５０ｍｇ／日、より一般的には０．１から３０ｍｇの量でよい。投薬単位組成物は、このような量を分割してそれらを合わせて１日分量とする約量を含むことができる。
【００９９】
担体材料と合わせて単一剤形をつくることのできる活性成分の量は、処置を受ける患者および特定の投与様式によって変化する。
レトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物および（または）組成物を用いて病状を処置する用法・用量は、種々な因子、例えば患者のタイプ、年齢、体重、性別、食餌、および医学的症状、病気の重篤さ、投与経路、薬理学的な考慮すべき事柄、例えば使用した特定化合物の活性、効力、薬動学的および毒物学的プロフィル、薬物供給系を利用するかどうかまた化合物を薬剤コンビネーションの一部として投与するのかどうか、に従って選ばれる。従って、実際に用いられる用法・用量は広く変化することがあるので、前記の特に適当な用法・用量からそれることがある。
【０１００】
本発明化合物は、必要に応じ、通常の無毒性製薬上容認しうる担体、補助剤、およびビヒクルを含有する投薬単位製剤として、経口的、非経口的に、吸入スプレーにより、直腸に、あるいは局所的に投与することができる。局所投与はまた経皮投与、例えば経皮パッチあるいはイオン導入装置の使用も含みうる。本明細書で用いた非経口的という用語は、皮下注射、静脈内、筋肉内、胸骨内注射、あるいは点滴技術を包含する。
【０１０１】
注射用製剤、例えば無菌の注射用水性または油性懸濁系は、公知の技術に従い適当な分散剤または湿潤剤および懸濁剤を用いて処方できる。無菌注射用製剤はまた非経口的に容認しうる無毒性希釈剤あるいは溶剤中の無菌注射用溶液または懸濁系、例えば１，３−ブタンジオール中の溶液、のこともある。使用可能な容認することのできるビヒクルおよび溶媒は水、リンゲル液、および等張塩化ナトリウム溶液である。更にまた、無菌固定油も溶媒としてあるいは懸濁媒質として従来から使用されている。この目的に対して、合成モノグリセリドまたはジグリセリドを含めて刺激の少ない固定油はいずれも使用できる。更にまた、脂肪酸、例えばオレイン酸、を注射用製剤の製造に使用できる。
【０１０２】
薬剤の直腸投与に供される座剤は、薬剤を適当な無刺激性付形剤、例えばカカオ脂およびポリエチレングリコールと混合することにより製造できる。これら付形剤は常温では固体であるが、直腸温度では液体であるため直腸内で融解し、薬物を放出する。
【０１０３】
経口投与に供される固体剤形はカプセル、錠剤、丸剤、散剤、および顆粒剤を包含しうる。このような固体剤形においては、活性化合物を少なくとも１種の不活性希釈剤、例えばショ糖、乳糖またはデンプンと混合できる。このような剤形はまた普通の習慣にならって、不活性希釈剤の外の追加物質、例えば滑沢剤、例えばステアリン酸マグネシウム、を含有しうる。カプセル、錠剤、および丸剤の場合、これら剤形は緩衝剤も含むことができる。錠剤および丸剤は更に腸溶性被覆を施して製造できる。
【０１０４】
経口投与用液体剤形は、この分野で常用される不活性希釈剤、例えば水を含む製薬上容認できる乳濁系、溶液、懸濁系、シロップ、およびエリキシルを包含しうる。このような組成物はまた補助剤、例えば湿潤剤、乳化剤および懸濁剤、ならびに甘味剤、フレーバ付与剤、および香料も含有しうる。
本発明に係るレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は唯一の活性医薬剤として投与することができるが、これらはまたＨＩＶ−１のようなレトロウイルスに対して有効な他の抗ウイルス剤とのコンビネーションとしても使用できる。このような化合物として、他のＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤、種々なヌクレオシド類縁物質、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、タット拮抗物質およびグリコシダーゼ阻害剤が挙げられるがこれらに限定されない。
【０１０５】
ＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤の例には、Ｒｏ ３１−８５９（Ｒｏｂｅｒｔｓ，Ｎ．Ａ．等、Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９０，２４８，２５８−２６１およびＤｒｕｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｕｔｕｒｅ １９９１，１６（３），２１０−２１２，ＫＮＩ−２７２，（Ｋａｇａｙａｍａ，Ｓ．等、Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ １９９３，８１０−８１７）、環状尿素シリーズ（Ｌａｍ，Ｐ．等、“Ｄｅ Ｎｏｖｏ Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｏｆ Ｐｏｔｅｎｔ，Ｎｏｎｐｅｐｔｉｄａｌ ＨＩＶ−１ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ，”第２０５回アメリカ化学会国際学会、薬用化学部門における論文９６、デンバー、コロラド州、３月２８日〜４月２日、１９９３）Ｌ−７３５，５２４（Ｄｏｒｓｅｙ，Ｂ．Ｄ．等、“Ｌ−７３５，５２４：Ｔｈｅ Ｒａｔｉｏｎａｌ Ｄｅｓｉｇｎ ｏｆ ａ Ｐｏｔｅｎｔ ａｎｄ Ｏｒａｌｌｙ Ｂｉｏａｖａｉｌａｂｌｅ ＨＩＶ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ，”第２０６回アメリカ化学会国際学会、医用化学部門における論文６、シカゴ市、イリノイ州、８月２２日−２７日、１９９３）およびその類縁体が含まれるがこれらに限定されない。
【０１０６】
競合型ヌクレオシド類縁体の例には、アジドチミジン（ＡＺＴ）、ジデオキシイノシン（ＤＤＩ）、ＤＤＣ、３ＴＣ、Ｄ４ＴおよびＰＭＥＡが含まれるがこれらに限定されない。非ヌクレオシド、非競合型逆転写酵素阻害剤の例には、ピリドン類（Ｗｅｉ，Ｊ．Ｓ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９３，３６，２４９−２５５；Ｈｏｆｆｍａｎ，Ｊ．Ｍ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９２，３５，３７８４−３７９１；Ｓａａｒｉ等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９２，３５，３７９２−３８０２；Ｄｒｕｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｕｔｕｒｅ １９９２，１７（４），２８３−２８５、およびその類縁物質）；ビス（ヘテロアリール）ピペラジン類（Ｒｏｍｅｒｏ，Ｄ．Ｌ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ １９９３，３６，１５０５−１５０８；Ｒｏｍｅｒｏ，Ｄ．Ｌ．等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １９９１，３４，７４６〜７５１および３１８７〜３１９８；およびその類縁物質）および三環式ピリドベンゾ−およびデピリドジアゼピノン類（Ｈａｒｇｒａｖｅ，Ｋ．Ｄ．，Ｊ．Ｍｅｄ．ｈｅｍ．１９９１，３４，２２３１〜２２４１；Ｍｅｒｌｕｚｚｉ，Ｍ．Ｊ．Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９０，２５０，１４１１〜１４１３；およびその類縁物質）および５−クロロ−３−（フェニルスルホニル）インドール−２−カルボキサミドおよびその類縁物質（Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｔ．Ｍ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９３，３６，１２９１〜１２９４）が含まれるが、これらに限定されない。タット拮抗物質の例には、Ｒｏ ５−３３３５およびＲｏ ２４−７４２９（Ｈｓｕ，Ｍ．Ｃ．等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １９９３，９０９，６３９５〜６３９９；Ｔａｍ，Ｓ．等、“ＴＡＴ ＩＮＨＩＢＩＴＯＲＳ：Ａ ＮＥＷ ＣＬＡＳＳ ＯＦ ＡＮＴＩ−ＨＩＶ ＡＧＥＮＴＳ，”論文３７２，第２０４回アメリカ化学会国際学会、有機化学部門、ワシントン、コロンビア地区、８月２３日〜２８日、１９９２）およびその類縁物質が含まれるがこれらに限定されない。グリコシダーゼ阻害剤の例には、カスタノスペルミン、カスタノスペルミン６−ブトリルエステル、Ｎ−ブチル−１−デオキシノジリマイシン、Ｎ−ブチル−１−デオキシノジリマイシンペル−ブトリルエステルおよびその類縁物質とプロドラッグが含まれるがこれらに限定されない。
【０１０７】
本治療剤は実質的に同時に投与される別個の組成物として処方することができ、あるいは本治療剤を活性剤のすべてが患者に治療上有効な量で与えられるように単一組成物として投与することもできる。別法として、本治療剤は、活性剤の一方のみ、あるいは二つがいつでも治療上有効な量で患者の中にあるように異なる時間に患者に投与することもできる。
【０１０８】
本発明化合物および方法は効果的な抗ウイルス性化合物であり、とりわけ前に示したように効果的なレトロウイルス抑制剤である。従って、本発明化合物は有効なＨＩＶプロテアーゼ阻害剤である。本主題の化合物は他のレトロウイルス、例えば他のレンチウイルス、とりわけＨＩＶの他の株、例えばＨＩＶ−２、ヒトＴ−細胞白血病ウイルス、ラウス肉腫ウイルス、サル免疫不全ウイルスなど、も抑制するであろうということが企図されている。従って、本発明化合物はレトロウイルス感染症の治療および（または）予防に有効である。
【０１０９】
本発明化合物および方法は溶液中でレトロウイルスの増殖を防止する際にも有効である。キャリブレーターおよび対照を含めて研究および診断手順といった種種な公知の目的に対し、ヒトおよび動物の細胞培養、例えばＴ−リンパ球培養が利用される。細胞培養の増殖および貯蔵の前、およびその途中において、細胞培養の中に不注意にあるいは気付かずに存在するかもしれないレトロウイルスの予期しない複製あるいは望まない複製を防止するために、本発明化合物を細胞の培地へ有効な濃度で添加することができる。ウイルスは最初から細胞培養の中に存在するかもしれず、例えばＨＩＶはヒトＴ−リンパ球の中に、それが血液中に検出されるずっと以前から、あるいはウイルスへの曝露によって存在することが知られている。本発明化合物および方法のこの使用法は、研究者あるいは臨床医に対して潜在的に致命的となるレトロウイルスへの気付かない曝露あるいは不注意による曝露を防止するものである。
【０１１０】
上記の説明は本発明の単なる例示に過ぎないのであって、ここに開示された化合物に本発明を限定することは意図しない。当業者にとって明白な変化および変更は、請求の範囲に定義された本発明の範囲および本質内にあるものとする。
上記の説明から、当業者は本発明の本質的な特徴を容易に確かめることができ、そして本発明の主旨と範囲から離れることなく本発明を種々な用法および条件に適合させるように本発明に種々な変化および修飾を施すことができる。
【技術分野】
【０００１】
本発明は、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））のインビトロおよびインビボでの複製の防止に有効なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの組合せを用いる、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））感染の治療法に関する。特に本発明は、他のプロテアーゼインヒビター化合物との併用療法で使用されるプロテアーゼインヒビター化合物に関する。
【背景技術】
【０００２】
レトロウイルスの複製サイクルの間、ｇａｇおよびｇａｐ−ｐｏｌ遺伝子転写産物はタンパク質として翻訳される。このタンパク質は次に、ウイルスにコードされるプロテアーゼ（またはプロテイナーゼ）により処理されて、ウイルス酵素およびウイルスコアの構造タンパク質を生成する。一般的には、ｇａｇ前駆体タンパク質は処理されてコアタンパク質になり、ｐｏｌ前駆体タンパク質は処理されてウイルス酵素（例えば、逆転写酵素やレトロウイルスプロテアーゼ）になる。感染性ウイルス粒子を組み立てるには、レトロウイルスプロテアーゼによる前駆体タンパク質の正しい処理が必要であることは、証明されている。例えば、ＨＩＶのｐｏｌ遺伝子のプロテアーゼ領域のフレームシフト突然変異は、ｇａｇ前駆体タンパク質の処理を妨害することは証明されている。またｇａｇ前駆体タンパク質が防害されることは、ＨＩＶプロテアーゼ活性部位中のアスパラギン酸残基の部位特異的突然変異誘発によっても証明されている。すなわち、レトロウイルスプロテアーゼの作用を阻害することによりウイルス複製を阻害するという試みがなされている。
【０００３】
レトロウイルスプロテアーゼ阻害は、典型的には遷移状態の模倣が関与し、こうしてレトロウイルスプロテアーゼは、ｇａｇおよびｇａｐ−ｐｏｌタンパク質と競合して酵素に結合（典型的には可逆的に）し、こうして構造タンパク質の特異的処理とレトロウイルスプロテアーゼ自身の放出を阻害する模倣化合物に接触される。この方法で、レトロウイルス複製プロテアーゼは有効に阻害される。
【０００４】
特にプロテアーゼの阻害（例えば、ＨＩＶプロテアーゼの阻害）のためにいくつかのクラスの模倣化合物が提唱されている。そのような模倣化合物には、ヒドロキシエチルアミン同配体（ｉｓｏｓｔｅｒｅｓ）、還元アミド同配体および非ペプチド同配体がある。例えば、ＥＰ０３４６８４７（特許文献１）；ＥＰ０３４２５４１（特許文献２）；ロバーツ（Ｒｏｂｅｒｔｓ）ら、「ペプチドベースのプロテアーゼインヒビターの合理的設計」、Ｓｃｉｎｅｃｅ，２４８，３５８（１９９０）（非特許文献１）；エリックソン（Ｅｒｉｃｋｓｏｎ）ら、「ＨＩＶ−１プロテアーゼと複合体を形成したＣ２対称インヒビターの設計活性及び２．８Å結晶構造〕、Ｓｃｉｎｅｃｅ，２４９，５２７（１９９０）（非特許文献２）；およびエス・タイスリボングス（Ｓ．Ｔｈａｉｓｒｉｖｏｎｇｓ）、「非ペプチドＨＩＶプロテアーゼインヒビターの構造ベースの設計」、第３５回バッファロー医化学ミーティング（３５ｔｈ Ａｎｎｕａｌ Ｂｕｆｆａｌｏ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｍｅｅｔｉｎｇ）、ニューヨーク州立大学バッファロー校、バッファロー、ニューヨーク、１９９４年５月２２〜２５日（非特許文献３）を参照。
ＨＩＶプロテアーゼインヒビターのようなレトロウイルスプロテアーゼインヒビターについての問題は、インヒビターに耐性のウイルス株の出現である。例えば、メルク社（Ｍｅｒｃｋ＆Ｃｏ．）のＨＩＶプロテアーゼインヒビターであるＬ−７３５，５２４は、ヒトのＨＩＶ感染に有効であるが、後にＬ−７３５，５２４耐性のＨＩＶ株が患者に出現する（ワルドホルツ（Ｗａｌｄｈｏｌｚ）、Ｔｈｅ Ｗａｌｌ Ｓｔｒｅｅｔ Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｆｅｂｒｕａｒｙ ２５，１９９４，ｐａｇｅ Ｂ３（非特許文献４）；およびコンドラ（Ｃｏｎｄｒａ）ら、Ｎａｔｕｒｅ ３７４：５６９−５７１（１９９５）（非特許文献５））。他の例は、バッカ（Ｖａｃｃａ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：４０９６−４１００（１９９４）（非特許文献６）；ホー（Ｈｏ）ら、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６８：２０１６−２０２０（１９９４）；およびサルダナ（Ｓａｒｄａｎａ）ら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．３３：２００４−２０１０（１９９４）（非特許文献７）に見いだされる。
【０００５】
【特許文献１】ＥＰ０３４６８４７
【特許文献２】ＥＰ０３４２５４１
【非特許文献１】Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４８，３５８（１９９０）
【非特許文献２】Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，５２７（１９９０）
【非特許文献３】「非ペプチドＨＩＶプロテアーゼインヒビターの構造ベースの設計」、第３５回バッファロー医化学ミーティング（３５ｔｈ Ａｎｎｕａｌ Ｂｕｆｆａｌｏ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｍｅｅｔｉｎｇ）、ニューヨーク州立大学バッファロー校、バッファロー、ニューヨーク、１９９４年５月２２〜２５日
【非特許文献４】Ｔｈｅ Ｗａｌｌ Ｓｔｒｅｅｔ Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｆｅｂｒｕａｒｙ ２５，１９９４，ｐａｇｅ Ｂ３
【非特許文献５】Ｎａｔｕｒｅ ３７４：５６９−５７１（１９９５）
【非特許文献６】Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：４０９６−４１００（１９９４）
【非特許文献７】Ｂｉｏｃｈｅｍ．３３：２００４−２０１０（１９９４）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））のインビトロおよびインビボでの複製の防止に有効なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの組合せを用いる、哺乳動物レトロウイルス（例えば、ヒト免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ））感染の治療法に関する。特に本発明は、他のプロテアーゼインヒビター化合物との併用療法で使用されるプロテアーゼインヒビター化合物に関する。さらに、この組合せはまた、他の抗ウイルス剤と組合せて使用することもできる。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
レトロウイルスプロテアーゼは、レトロウイルス複製過程において決定的に重要な酵素である。レトロウイルス（例えば、ＨＩＶ）の増殖は、ウイルスをレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝すことにより妨害できる。しかしレトロウイルスをプロテアーゼインヒビターに長期間曝すと、変種レトロウイルスが選択されて、プロテアーゼインヒビターに耐性の新しい主要なレトロウイルス株が出現する。この新しい主要なレトロウイルス株は、プロテアーゼインヒビターに阻害されないか、またはより頻繁にはプロテアーゼインヒビターによる阻害が不十分であるプロテアーゼを産生し、インヒビターの濃度を実質的に増加させない限りプロテアーゼインヒビターの存在下でも自由に増殖する。本発明は、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターに耐性のレトロウイルス株の出現を克服する方法を提供する。
【０００８】
本発明は、哺乳動物（例えば、ヒト、サル、ネコなど）への、少なくとも２つの有効量のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの投与を提供する。投与は、少なくとも２つのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの同時投与により行われ、すなわち哺乳動物中である時点に少なくとも２つのインヒビターの有効量が存在するように２つまたはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターが投与される。あるいは、投与は、少なくとも２つのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの連続的または交互の投与により行われ、すなわち哺乳動物中である時点に１つのインヒビターのみの有効量が存在するように２つまたはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターが投与される。レトロウイルスプロテアーゼインヒビターを正しく選択することにより、この方法は、任意の１つのインヒビターに対して耐性の株の存在下でもレトロウイルスの増殖を有効に防止することができる。
【０００９】
レトロウイルスプロテアーゼインヒビターは、レトロウイルスの増殖培養物にインヒビターを曝すことによりインビボまたはインビトロで出現するレトロウイルスの耐性株のプロフィールに基づき選択される。レトロウイルスプロテアーゼインヒビターは、少なくとも１つのレトロウイルス耐性株による交差耐性の欠如について選択される。レトロウイルス株が両方のインヒビターに対して耐性である時、レトロウイルス株は２つのプロテアーゼインヒビターに対して交差耐性であると見なされる。ある程度の交差耐性は許容されるが、群として考えた時選択されたレトロウイルスプロテアーゼの間に交差耐性がないことが好ましい。すなわち、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝した後に出現するレトロウイルスの変種（突然変異株）は、第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターにより阻害されるか、または第１と第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに曝した後に出現する変種は、第３のまたは第４のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターにより阻害されるなど。
【００１０】
種々のプロテアーゼインヒビターの間の交差耐性プロフィールの比較を行い、好ましくはほとんどまたは全く交差耐性を示さない併用療法のための化合物が選択される。薬剤耐性の表現型は、耐性無し、低レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１０倍未満のシフト）、中レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１０〜約１００倍のシフト）、高レベルの耐性（ＥＣ５０またはＥＣ９０で約１００倍以上のシフト）に分類される。達成できるインビボインヒビター濃度が、耐性ウイルスに対して阻害効果が低下している時、薬剤耐性は患者のウイルス負荷への作用の低下と相関することが予測される。すなわち、プロテアーゼインヒビターのより好適な組合せは、最小の交差耐性プロフィール（すなわち、好ましくは中レベルの耐性以下であり、より好ましくは低レベル以下の耐性であり、そして最も好ましくは耐性無し）を示し、野性型および／または別のインヒビターに対して選択された耐性ウイルスに対して最大の本質的力価を示すものである。例えば、第１の化合物と組合せて使用するのに好適な化合物は、中レベル、より好ましくは高レベルで第１の化合物に耐性のウイルス株に対して有効であることが好ましい。各インヒビターおよび組合せの薬理および毒性は、併用療法のインヒビターの選択の因子でもある。
【００１１】
より好ましくは、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して耐性の少なくとも１つのウイルス株と、第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して耐性の少なくとも１つのウイルス株が、プロテアーゼの同じ基質結合部位領域に影響し観察されたインヒビター耐性に寄与するプロテアーゼペプチド配列中の異なるアミノ酸置換を有する時、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターが選択される。すなわち、プロテアーゼ中の同じ部位で起きる可能なアミノ酸置換の数は限定される。これは、この部位が酵素の活性、有効性および／または安定性に決定的に重要である時、特に真実である。
【００１２】
これは、本発明の例１および例２のＨＩＶプロテアーゼインヒビターに関して観察された。例１の化合物に対するレトロウイルス耐性は、ＨＩＶプロテアーゼのアミノ酸８８の部位突然変異（アスパラギン８８のアスパラギン酸８８による置換）により得られた。例２の化合物に対するレトロウイルス耐性も、ＨＩＶプロテアーゼのアミノ酸８８の部位突然変異（アスパラギン８８のセリン８８による置換）により得られた。アミノ酸８８のいくつかの置換は、酵素活性の喪失を引き起こすことが知られている（ロエブ（Ｌｏｅｂ）ら、Ｎａｔｕｒｅ ３４０：３８７−４００（１９８９））。すなわち、例１と２のＨＩＶプロテアーゼインヒビターの両方の投与は、両方のインヒビターに対して交差耐性のウイルスの耐性株のさらなる産生の可能性を実質的に低下させる。両方のインヒビターを組合せて６週間治療した場合、同期間の１つのインヒビターに対して耐性の表現型の出現と比較して、組合せて使用した両方のインヒビターに対する耐性は検出されていない。酵素活性に影響する部位突然変異以外に、酵素活性および／または耐性に実質的に影響しない同じ変種の他の部位突然変異も発生し得る。
【００１３】
あるいは、より好ましくは、第１のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して少なくとも１つのウイルス耐性株が、第２のプロテアーゼインヒビターに対して感受性が上昇している時、または第２のレトロウイルスプロテアーゼインヒビターに対して少なくとも１つのウイルス耐性株が、第１のプロテアーゼインヒビターに対して感受性が上昇している時、レトロウイルスプロテアーゼインヒビターが選択される。
【００１４】
本発明の方法での使用に適した代表的なレトロウイルスプロテアーゼインヒビターには、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）、第０８／２５３，５３１号（１９９４年６月３日出願）、第０８／１０９、７８７号（１９９３年８月２０日出願）、第０８／１１０，９１１号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／１１０，９１３号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／１１０，９１２号（１９９３年８月２４日出願）、第０８／２０４，８２７号（１９９４年３月２日出願）、第０７／８８６，５５６号（１９９２年５月２０日出願）、第０７／８８６，６６３号（１９９２年５月２０日出願）、第０７／８８６，５３１号（１９９２年５月２０日出願）、第０８／１４８，８１７号（１９９３年１１月８日出願）、第０８／８８６，７００号（１９９２年５月２１日出願）、および第０７／９９８，１８７号（１９９２年１２月２９日出願）、およびＰＣＴ特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０５５２号（１９９３年１０月２９日出願）、ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０４６０号（１９９３年１０月２９日出願）、ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０４６１号（１９９３年１０月２９日出願）に開示および記載されているプロテアーゼがあるが、これらに限定されない（これらはそれぞれ、参考のため本明細書に引用される）。本発明の方法での使用に適したさらなるレトロウイルスプロテアーゼインヒビターには、米国特許第５，１５７，０４１号；ＥＰ３４６，８４７号；米国特許出願第０７／８８３，８２５号（１９９２年５月１５日出願）；ＷＯ９３／０９０９６号；Ｔｅｔ．Ｌｅｔｔ．３５：６７３−６７６（１９９４）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：４０９６−４１００（１９９４）；ワイ・エヌ・ウォング（Ｙ．Ｎ．Ｗｏｎｇ）ら、Ｂｉｏｐｈａｒｍ．＆Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｐｏｓ．１５：５３５−５４４（１９９４）；エム・エル・ウェストとディー・ピー・フェアリー（Ｍ．Ｌ．Ｗｅｓｔ ａｎｄ Ｄ．Ｐ．Ｆａｉｒｌｉｅ）、Ｔｒｅｎｄｓ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｓｃｉ．１６：６７−７５（１９９５）；およびエス・タイスリボングス（Ｓ．Ｔｈａｉｓｒｉｖｏｎｇｓ）、「ＨＩＶプロテアーゼインヒビター」、Ａｎｎ．Ｒｅｐｏｒｔｓ Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２９，Ｃｈａｐ．１４，ｐｐ１３３−１４４（１９９４）（アカデミックプレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ）、ジェイ・ブリストル（Ｊ．Ｂｒｉｓｔｏｌ）編）に開示および記載されているプロテアーゼがあるが、これらに限定されない（これらはそれぞれ、参考のため本明細書に引用される）。
【００１５】
さらに説明しなくても、当業者は前記の記載を用いて、本発明を最大に利用できると考えられる。以下の好適な実施態様は、すべての可能な化合物の組合せを網羅するものではなく、有効であることが記載される薬剤組合せの例を提供するのみである。耐性ウイルス単離物（以下に記載するものに限定されない）を用いるこれらおよび他のプロテアーゼインヒビターの同様の試験は、適当な薬剤組合せを同定するのに有効であろう。従って以下の好適な実施態様は、単に例示のためであり、決して本発明を限定するものではない。
【００１６】
例１
【化１】
【００１７】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ*），２Ｓ＊］］−Ｎ１−［３−［［［１，１−ジメチルエチル）アミノ］カルボニル］）２−メチルプロピル）アミノ］−２−ヒドロキシ−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−［（２−キノリニルカルボニル）アミノ］−ブタンジアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００１８】
例２
【化２】
【００１９】
（２Ｒ，３Ｓ）−３−（Ｎ−メチルアミノアセチル−Ｌ−ｔｅｒｔ−ブチルグリシニル）アミノ−１−（Ｎ−イソアミル−Ｎ−（ｔｅｒｔ−ブチルカルバモイル））アミノ−４−フェニル−２−ブタノールは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１０９，７８７号（１９９３年８月２０日出願）、本出願と同時出願された代理人事件整理番号２７６６／１号、および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２０】
例３
【化３】
【００２１】
［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（４−メトキシフェニル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］カルバミン酸５−ピリミジルメチルエステルは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１１０，９１１号（１９９３年８月２４日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２２】
例４
【化４】
【００２３】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ＊），２Ｓ＊］］−Ｎ−［２−ヒドロキシ−３−［Ｎ１−（２−メチルプロピル）−Ｎ１−（４−メトキシフェニルスルホニル）アミノ］−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１１０，９１３号（１９９３年８月２４日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２４】
例５
【化５】
【００２５】
Ｎ−（２（Ｒ）−ヒドロキシ−１（Ｓ）−インダニル）−２（Ｒ）−フェニルメチル−４（Ｓ）−ヒドロキシ−５−（１−（４−（３−ピリジルメチル）−２（Ｓ）−Ｎ’−（ｔ−ブチルカルボキサミド）−ピペラジニル））−ペンタンアミド（Ｌ−７３５，５２４）は、米国特許出願第０７／８８３，８２５号（１９９２年５月１５日出願）、ＷＯ９３／０９０９６号、Ｔｅｔ．Ｌｅｔｔ．３５：６７３−６７６（１９９４）およびＰｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：４０９６−４１００（１９９４）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２６】
例６
【化６】
【００２７】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニル−３（Ｓ）−［［Ｎ−（２−キノリルカルボニル）−Ｌ−アスパラジニル］アミノ］ブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（Ｒｏ３１−８９５９）は、米国特許第５，１５７，０４１号に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００２８】
例７
【化７】
【００２９】
［１Ｓ−［１Ｒ＊（Ｒ＊），２Ｓ＊］］−Ｎ１−［３−［［［（１−ジメチルエチル）アミノ］カルボニル］（３−メチルブチル）アミノ］−２−ヒドロキシ−１−（フェニルメチル）プロピル］−２−［（２−キノリルカルボニル）アミノ］−ブタンジアミドは、共有の同時係属米国特許出願第０８／１５２，９３４号（１９９３年１１月１５日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３０】
例８
【化８】
【００３１】
Ｎ−［３−［Ｎ２−［Ｎ１−（１，１−ジメチルエチル）アミノスルホニル］−Ｎ２−（２−メチルプロピル）アミノ］−２Ｒ−ヒドロキシ−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（２−キノリニルカルボニル）アミノ］ブタンジアミドは、共有の同時係属ＰＣＴ特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９３／１０５５２号（１９９３年１０月２９日出願）および第０８／１５６，４９８号（１９９３年１１月２３日出願）に開示の方法（いずれも参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３２】
例９
【化９】
【００３３】
（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−２，５−ビス−［Ｎ−［Ｎ−［［Ｎ−メチル−Ｎ−（２−ピリジニルメチル）アミノ］カルボニル］バリニル］アミノ］−３，４−ジヒドロキシ−１，６−ジフェニルヘキサン（Ａ−７７００３）は、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ３６：３２０−３３０（１９９３）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３４】
例１０
【化１０】
【００３５】
（２Ｓ，３Ｓ，５Ｓ）５−（Ｎ−［Ｎ−［Ｎ−メチル−Ｎ−［（２−イソプロピル−４−チアゾリル）メチル］アミノ］カルボニル］バリニル］アミノ］−２−［Ｎ−［（５−チアゾリル）メトキシカルボニル］アミノ］−３−ヒドロキシ−１，６−ジフェニルヘキサン（Ａ−８４５３８、ＡＢＴ−５３８）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９４／１４４３６号（１９９３年１２月１６日出願）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３６】
例１１
【化１１】
【００３７】
［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（４−アミノフェニル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］カルバミン酸３Ｓ−テトラヒドロフラニルエステル（ＶＸ−４７８）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９４／０５６３９号（１９９３年９月７日出願）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。
【００３８】
例１２
【化１２】
【００３９】
Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−（フェニルチオ）−３（Ｓ）−［［Ｎ−［（２−メチル−３−ヒドロキシフェニル）カルボニル］アミノ］ブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（ＡＧ−１３４３、ＡＧ−１３５０）は、Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７１５−７２０，５：７２１−７２６および５：７２７−７３２（１９９５）に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。特に、３−ヒドロキシ−２−メチル安息香酸（Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７２７−７３２（１９９５））のＨＯＢＴ活性エステルは、Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルデカヒドロ−２−［２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−（フェニルチオ）−３（Ｓ）−アミノブチル］−（４ａＲ，８ａＳ）−イソキノリン−３（Ｓ）−カルボキサミド（Ｂｉｏｏｒｇ．＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．５：７１５−７２０（１９９５））に結合することができる。
【００４０】
例１３
【化１３】
【００４１】
［４Ｒ−（４α，５α，６β，７β）］−１，３−ビス［（３−アミノフェニル）メチル］ヘキサヒドロ−５，６−ジヒドロキシ−４，７−ビス（フェニルメチル）−２Ｈ−１，３−ジアゼピン−２−オン（ＤＭＰ−４５０、ＸＭ−４１２）は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９３／０７１２８号に開示の方法（参考のため本明細書に引用される）に従って調製することができる。特に３−ニトロフェニルメチルハロゲン化物（例えば、３−ニトリルフェニルメチルクロリドまたはブロミド）は、［４Ｒ−（４α５α，６β，７β）］−ヘキサヒドロ−５，６−ジヒドロキシ−４，７−ビス（フェニルメチル）−２Ｈ−１，３−ジアゼピン−２−オンのヒドロキシ保護誘導体と反応させて、次にヒドロキシ基を脱保護（ＷＯ９３／０７１２８号参照）して、ニトロ基をアミノ基に還元する。そのような還元は、当業者に公知の標準的方法を用いて行われる。
【００４２】
例１４
【化１４】
【００４３】
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［［（ピロリジン−１−イル）アセチル］アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
パートＡ：１，３−ベンゾキオキソール−５−スルホニルクロリドの調製
０℃の４．２５ｇの無水Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミドの溶液に、窒素下で７．８４ｇの塩化スルフリルを加えると、固体が生成した。１５分間攪拌後、６．４５ｇの１，３−ベンゾジオキソールを加え、混合物を１００℃で２時間加熱した。反応物を冷却し、氷水中に注ぎ、塩化メチレンで抽出し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して７．３２ｇの粗物質を黒い油状物として得た。これを２０％塩化メチレン／ヘキサンを用いてシリカゲルでクロマトグラフィーをして、１．９ｇの（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニルクロリドを得た。
【００４４】
あるいは、機械攪拌器、冷却器、加熱用マントル、および圧力平衡化滴下ロートを取り付けた２２リットルの丸底フラスコに、三酸化イオウＤＭＦ複合体（２７７８ｇ，１８．１モル）を加えた。次にジクロロメタン（４リットル）を加え、攪拌を始めた。次に１，３−ベンゾジオキソール（１９０５ｇ，１５．６モル）を、滴下ロートで５分間かけて加えた。次に温度を７５℃に上げ、２２時間維持した（ＮＭＲは、９時間後に反応が完了したことを示した）。反応物を２６℃に冷却し塩化オキサリル（２２９０ｇ，１８．１モル）を、温度を４０℃以下に維持するような速度で加えた（１．５時間）。混合物を６７℃に５時間加熱し、次に氷浴で１６℃に冷却した。反応を、温度を２０℃以下に維持する速度で水（５リットル）で停止させた。水の添加終了後、混合物を１０分間攪拌した。層を分離し、有機層を再度水（５リットル）で洗浄した。有機層を硫酸マグネシウム（５００ｇ）で乾燥し、ろ過して、乾燥物質を除去した。溶媒を減圧下で５０℃で除去した。得られた暖かい液体を冷却させると、固体が生成し始めた。１時間後固体をヘキサン（４００ｍｌ）で洗浄し、ろ過し、乾燥して、目的の塩化スルホニル（２８２３ｇ）を得た。ヘキサン洗浄物を濃縮して、得られた固体を４００ｍｌのヘキサンで洗浄して、さらに塩化スルホニル（４６４ｇ）を得た。総収率は３２８７ｇであった（１，３−ベンゾジオキソールに基づき９５．５％）。
【００４５】
パートＢ：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールの調製
方法１：Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）−Ｌ−フェニルアラニンフェニルメチルエステルのＤＩＢＡＬ還元からの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール
【００４６】
工程１：水（５００ｍｌ）中のＬ−フェニルアラニン（５０．０ｇ，０．３０２モル）、水酸化ナトリウム（２４．２ｇ，０．６０５モル）および炭酸カリウム（８３．６ｇ，０．６０５モル）の溶液を、９７℃に加熱した。次に臭化ベンジル（１０８．５ｍｌ，０．６０５モル）を静かに加えた（添加時間−２５分）。混合物を９７℃で３０分間窒素下で攪拌した。溶液を室温に冷却し、トルエン（２×２５０ｍｌ）で抽出した。合わせた有機層を水と食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、油状物を得た。Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）−Ｌ−フェニルアラニンフェニルメチルエステルは、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１５％酢酸エチル／ヘキサン）で精製できる。通常この生成物は、直接使用するのに充分純粋であり、さらに精製することなく次の工程に使用できた。ＥＩＭＳ：ｍ／ｚ４３４（Ｍ−１）。
【００４７】
工程２：前記の反応からのベンジル化フェニルアラニンフェニルメチルエステル（０．３０２モル）をトルエン（７５０ｍｌ）に溶解し、−５５℃に冷却した。トルエン中の１．５ＭのＤＩＢＡＬの溶液（４４３．９ｍｌ，０．６６６モル）を、温度を−５５〜−５０℃に維持する速度で加えた（添加時間−１時間）。混合物を窒素下で２０分間攪拌し、次にメタノール（３７ｍｌ）を静かに加えて−５５℃で反応を停止させた。冷却溶液を次に、冷却した（５℃）１．５ＮのＨＣｌ溶液（１．８リットル）に注いだ。沈殿した固体（約１３８ｇ）をろ過して、トルエンで洗浄した。固体物質を、トルエン（４００ｍｌ）と水（１００ｍｌ）の混合液に懸濁した。混合液を５℃に冷却し、２．５ＮのＮａＯＨ（１８６ｍｌ）で処理し、固体が溶解するまで室温で攪拌した。トルエン層を水層から分離し、水と食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、７５ｍｌ（８９ｇ）の容量に濃縮した。残渣に酢酸エチル（２５ｍｌ）とヘキサン（２５ｍｌ）を加えると、目的のアルコール産物が結晶化し始めた。３０分後、さらに５０ｍｌのヘキサンを加えて、結晶化を促進させた。固体をろ過し、５０ｍｌのヘキサンで洗浄して、最初の産物３４．９ｇを得た。母液を再度ろ過して第２の産物（５．６ｇ）を単離した。２つの産物を合わせて、酢酸エチル（２０ｍｌ）とヘキサン（３０ｍｌ）から結晶化して、４０ｇの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールを得た（Ｌ−フェニルアラニンからの収率は４０％）。Ｃ２３Ｈ２５ＯＮの元素分析、理論値：Ｃ，８３．３４；Ｈ，７．６０；Ｎ，４．２３。実測値：Ｃ，８３．４３，；Ｈ，７．５９；Ｎ，４．２２。
【００４８】
方法２：Ｌ−フェニルアラニノールのＮ，Ｎ−ジベンジル化からのβＳ−２−［ビス（フェニルメチル）アミノ］ベンゼン−プロパノールの調製
Ｌ−フェニルアラニノール（１７６．６ｇ，１．１６８モル）を、７１０ｍｌの水中の炭酸カリウム（４８４．６ｇ，３．５０６モル）の攪拌溶液に加えた。混合物を窒素下で６５℃に加熱した。３Ａエタノール（３０５ｍｌ）中の臭化ベンジル（４００ｇ，２．３３９モル）の溶液を、６０〜６８℃の温度を維持する速度で加えた。２相系の溶液を６５℃で５５分間攪拌し、次に激しく攪拌しながら１０℃に冷却した。油状生成物を固化させて小さい顆粒にした。生成物を２．０リットルの水道水で希釈し、５分間攪拌して生成物の無機物質を溶解させた。減圧下でろ過して生成物を単離し、ｐＨが７になるまで水で洗浄した。得られた粗生成物を、１．１リットルの酢酸エチル／ヘプタン（１：１０）から再結晶した。生成物をろ過して（−８℃で）単離し、１．６リットルの冷（−１０℃）酢酸エチル／ヘプタン（１：１０）で洗浄して、空気乾燥して、３３９ｇ（収率８８％）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（融点＝７１．５〜７３．０℃）を得た。
【００４９】
パートＣ：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドの調製
方法１：２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（２００ｇ，０．６０４モル）を、トリエチルアミン（３００ｍｌ，２．１５モル）に溶解した。混合物を１２℃に冷却し、ＤＭＳＯ（１．６リットル）中の３酸化イオウ／ピリジン複合体（３８０ｇ，２．６９モル）の溶液を、８〜１７℃の温度を維持するような速度で加えた。溶液を窒素下で周囲温度で１．５時間攪拌した。反応混合物を氷水で冷却し、１．６リットルの冷水（１０〜１５℃）で４５分間かけて反応を停止させた。得られた溶液を酢酸エチル（２．０リットル）で抽出し、５％クエン酸（２．０リットル）と食塩水（２．２リットル）で洗浄し、硫酸マグネシウム（２８０ｇ）で乾燥し、ろ過した。溶媒を真空下で除去し、次に真空下で乾燥して１９８．８ｇの２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを淡黄色の油状物として得た（９９．９％）。得られた粗生成物は、直接使用するのに充分純粋であり、さらに精製することなく次の工程に使用できた。
【００５０】
方法２：ジクロロメタン（２４０ｍｌ）中の塩化オキサリル（８．４ｍｌ，０．０９６モル）の溶液を−７４℃に冷却した。次にジクロロメタン（５０ｍｌ）中のＤＭＳＯ（１２．０ｍｌ，０．１５５モル）の溶液を、温度を−７４℃に維持するような速度で静かに加えた（添加時間、約１．２５時間）。混合物を５分間攪拌して、次に１００ｍｌのジクロロメタン中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール（０．０７４モル）の溶液を加えた（添加時間−２０分、温度−７５℃〜−６８℃）。溶液を−７８℃で窒素下で３５分間攪拌した。次にトリエチルアミン（４１．２ｍｌ，０．２９５モル）を１０分間かけて加える（温度−７８℃〜−６８℃）と、アンモニウム塩が沈殿した。冷混合物を３０分間攪拌して、次に水（２２５ｍｌ）を加えた。ジクロロメタン層を水層から分離して、水、食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過して濃縮した。残渣を酢酸エチルとヘキサンで希釈し、次にろ過してアンモニウム塩をさらに除去した。濾液を濃縮して、２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを得た。このアルデヒドを精製することなく次の工程に使用した。
【００５１】
方法３：１．０ｇ（３．０ミリモル）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノール、０．５３１ｇ（４．５３ミリモル）のＮ−メチルモルホリン、２．２７ｇのモレキュラーシーブ（４Å）そして９．１ｍｌのアセトニトリルの混合物に、５３ｍｇ（０．１５ミリモル）のテトラプロピルアンモニウム過ルテニウム酸（ＴＲＡＰ）を加えた。混合物を室温で４０分間攪拌して、減圧下で濃縮した。残渣を１５ｍｌの酢酸エチルに懸濁して、シリカゲルのパッドでろ過した。濾液を減圧下で濃縮して、約５０％の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを含有する生成物を淡黄色の油状物として得た。
【００５２】
方法４：９．０ｍｌのトルエン中の１．０ｇ（３．０２ミリモル）の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパノールの溶液に、４．６９ｍｇ（０．０３ミリモル）の２，２，６，６−テトラメチル−１−ピペリジニルオキシ、遊離ラジカル（ＴＥＭＰＯ）、０．３２ｇ（３．１１ミリモル）の臭化ナトリウム、９．０ｍｌの酢酸エチルおよび１．５ｍｌの水を加えた。混合物を０℃に冷却し、０．７３５ｇ（８．７５ミリモル）の重炭酸ナトリウムを含有する５％家庭用漂白剤２．８７ｍｌと水８．５３ｍｌを、２５分間かけて静かに加えた。混合物を０℃で６０分間攪拌した。さらに２回（各回１．４４ｍｌ）漂白剤を加え、次に１０分間攪拌した。水層を、２０ｍｌの酢酸エチルで２回抽出した。合わせた有機層を、２５ｍｇのヨウ化カリウムと水（４．０ｍｌ）を含有する溶液４．０ｍｌ、２０ｍｌの１０％チオ硫酸ナトリウム水溶液および次に食塩水溶液で洗浄した。有機溶液を硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、減圧下で濃縮して、少量の目的のアルデヒド、２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒドを含有する粗油状物１．３４ｇを得た。
パートＤ：Ｎ，Ｎ−ジベンジル−３（Ｓ）−アミノ−１，２−（Ｓ）−エポキシ−４−フェニルブタンの調製
【００５３】
方法１：テトラヒドロフラン（１．８リットル）中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒド（１９１．７ｇ，０．５８モル）とクロロヨードメタン（５６．４ｍｌ，０．７７モル）の溶液を、ステンレスの反応槽中で窒素下で−３０〜−３５℃に冷却した。次にヘキサン中のｎ−ブチルリチウムの溶液（１．６Ｍ，３６５ｍｌ，０．５８モル）を、−２５℃以下の温度を維持するような速度で加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。以下の方法でさらに試薬を加えた：（１）追加のクロロヨードメタン（１７ｍｌ）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（１１０ｍｌ）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。（２）追加のクロロヨードメタン（８．５ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５５ｍｌ，０．０８８モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを５回繰り返した。
【００５４】
（３）追加のクロロヨードメタン（８．５ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（３７ｍｌ，０．０５９モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。外部冷却器を停止させ、混合物を４〜１６時間かけて周囲温度まで暖めると、ＴＬＣ（シリカゲル、２０％酢酸エチル／ヘキサン）は、反応が完了したことを示していた。反応混合物を１０℃に冷却し、２３℃以下の温度を維持しながら、１４５２ｇの１６％塩化アンモニウム溶液で反応を停止させた。この混合物を１０分間攪拌し、有機層と水層を分離した。水層を酢酸エチル（２×５００ｍｌ）で抽出した。酢酸エチル層を、テトラヒドロフラン層と合わせた。合わせた溶液を硫酸マグネシウム（２２０ｇ）で乾燥し、ろ過し、真空下で濃縮した。褐色の油状残渣を真空下（０．８バール）で７０℃で１時間乾燥して、２２２．８ｇの粗物質を得た。粗生成物は、精製することなく直接次の工程に使用される。
【００５５】
方法２：テトラヒドロフラン（２８５ｍｌ）中の粗アルデヒド０．０７４モルとクロロヨードメタン（７．０ｍｌ，０．０９６モル）の溶液を、窒素下で−７８℃に冷却した。次にヘキサン中１．６Ｍのｎ−ブチルリチウム溶液（２５ｍｌ，０．０４０モル）を、−７５℃の温度を維持するような速度で加えた。最初の添加後、クロロヨードメタン（１．６ｍｌ，０．０２２モル）を再度加え、温度を−７５℃に維持して次にｎ−ブチルリチウム（２３ｍｌ，０．０３７モル）を加えた。混合物を１５分間攪拌した。クロロヨードメタン（０．７０ｍｌ，０．０１０モル）とｎ−ブチルリチウム（５ｍｌ，０．００８モル）の各試薬を、４５分間かけて−７５℃でさらに４回加えた。次に冷却浴を除き、溶液を１．５時間かけて２２℃に暖めた。混合物を３００ｍｌの飽和塩化アンモニウム溶液中に注いだ。テトラヒドロフラン層を分離した。水層を酢酸エチル（１×３００ｍｌ）で抽出した。合わせた有機層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、褐色の油状物を得た（２７．４ｇ）。生成物を精製することなく次の工程に使用した。
【００５６】
方法３：テトラヒドロフラン（１．８リットル）中の２Ｓ−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−３−フェニルプロパンアルデヒド（１７８．８４ｇ，０．５４モル）とブロモクロロメタン（４６ｍｌ，０．７１モル）の溶液を、ステンレスの反応槽中で窒素下で−３０〜−３５℃に冷却した。次にヘキサン中のｎ−ブチルリチウムの溶液（１．６Ｍ，３４０ｍｌ，０．５４モル）を、−２５℃以下の温度を維持するような速度で加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。以下の方法でさらに試薬を加えた：（１）追加のブロモクロロメタン（１４ｍｌ）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（１０２ｍｌ）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。（２）追加のブロモクロロメタン（７ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５１ｍｌ，０．０８２モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを５回繰り返した。（３）追加のブロモクロロメタン（７ｍｌ，０．１１モル）を加え、次に−２５℃以下でｎ−ブチルリチウム（５１ｍｌ，０．０８２モル）を加えた。添加後混合物を−３０〜−３５℃で１０分間攪拌した。これを１回繰り返した。外部冷却器を停止させ、混合物を４〜１６時間かけて周囲温度まで暖めると、ＴＬＣ（シリカゲル、２０％酢酸エチル／ヘキサン）は、反応が完了したことを示していた。反応混合物を１０℃に冷却し、２３℃以下の温度を維持しながら、１４５２ｇの１６％塩化アンモニウム溶液で反応を停止させた。混合物を１０分間攪拌し、有機層と水層を分離した。水層を酢酸エチル（２×５００ｍｌ）で抽出した。酢酸エチル層を、テトラヒドロフラン層と合わせた。合わせた溶液を硫酸マグネシウム（２２０ｇ）で乾燥し、ろ過し、６５℃でロータリーエバポレーターで濃縮した。褐色の油状残渣を真空下（０．８バール）で７０℃で１時間乾燥して、２２２．８ｇの粗物質を得た。
【００５７】
パートＥ：Ｎ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩の調製
工程１：イソプロパノール（２．７リットル）（または酢酸エチル）中の粗Ｎ，Ｎ−ジベンジル−３（Ｓ）−アミノ−１，２（Ｓ）−エポキシ−４−フェニルブタンの溶液（３８８．５ｇ，１．１３モル）の溶液に、２分間かけてイソブチルアミン（１．７ｋｇ，２３．１モル）を加えた。温度は２５℃から３０℃に上昇した。溶液を８２℃に加熱して、この温度で１．５時間攪拌した。暖かい溶液を真空下で濃縮した。褐色の油状残渣を１６時間真空下で乾燥（０．８ｍｍＨｇ）して、４５０ｇの生成物を粗油状物として得た。
工程２：メタノール（７６ｍｌ）中のシュウ酸の溶液（８．０８ｇ，８９．７２モル）に、酢酸エチル（９０ｍｌ）中の粗３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−１−（２−メチルプロピル）アミノ−４−フェニルブタン−２（Ｒ）−オールを１５分間かけて加えた。混合物を室温で約２時間攪拌した。固体をろ過して単離し、酢酸エチル（２×２０ｍｌ）で洗浄し、真空下で約１時間乾燥して、２１．８６ｇの９７％ジアステレオ異性体的に純粋な塩を得た。融点＝１７４．９９℃；微量元素分析：理論値：Ｃ，７１．０５％；Ｈ，７．５０％；Ｎ，５．５３％。実測値：Ｃ，７１．７１％；Ｈ，７．７５％；Ｎ，５．３９％。
あるいは、粗３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−１−（２−メチルプロピル）アミノ−４−フェニルブタン−２（Ｒ）−オール（５ｇ）を、メチル−ｔｅｒｔ−ブチルエーテル（ＭＴＢＥ）（１０ｍｌ）中に溶解し、メタノール（４ｍｌ）中のシュウ酸（１ｇ）を加えた。混合物を約２時間攪拌した。得られた固体をろ過し、冷ＭＴＢＥで洗浄し、乾燥して、約９８．９％のジアステレオ異性体的に純粋な（ＨＰＬＣピーク面積に基づく）２．１ｇの白色固体を得た。
【００５８】
パートＦ：１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノールの調製
１，４−ジオキサン（２０００ｍｌ）中のＮ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩（３５４．７ｇ，０．７モル）に、水（２５０ｍｌ）中の炭酸カリウム（２４１．９ｇ，１．７５モル）の溶液を加えた。混合物を室温で２時間攪拌し、次に１，４−ジオキサン（２５０ｍｌ）中の１，３−ベンゾジオキソール−５−スルホニルクロリド（１６２．２ｇ，０．７３５モル）を１５分間かけて加えた。反応混合物を室温で１８時間攪拌した。酢酸エチル（１０００ｍｌ）と水（５００ｍｌ）を加え、さらに１時間攪拌を続けた。水層を分離し、さらに酢酸エチル（２００ｍｌ）で抽出した。合わせた酢酸エチル層を、２５％食塩水（５００ｍｌ）で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。ろ過し、硫酸マグネシウムを酢酸エチル（２００ｍｌ）で洗浄後、溶媒を真空下で除去して、目的のスルホンアミドを粘性の黄色の発泡性の油状物として得た（４４０．２ｇ，収率１０５％）。ＨＰＬＣ／ＭＳ（電気スプレー）（ｍ／ｚ６０１［Ｍ＋Ｈ］＋）。
【００５９】
あるいは、Ｎ−［３（Ｓ）−［Ｎ，Ｎ−ビス（フェニルメチル）アミノ］−２（Ｒ）−ヒドロキシ−４−フェニルブチル］−Ｎ−イソブチルアミン・シュウ酸塩（２８００ｇ，５．５３モル）とＴＨＦ（４リットル）を、機械攪拌器を取り付けた２２リットルの丸底フラスコに加えた。炭酸カリウム（１９２１ｇ，１３．９モル）を水（２．８リットル）に溶解し、ＴＨＦスラリーに加えた。次に混合物を１時間攪拌した。１，３−ベンゾジオキソール−５−スルホニルクロリド（１２８１ｇ，５．８モル）をＴＨＦ（１．４リットル）に溶解し、２５分間かけて反応混合物に加えた。さらに２００ｍｌのＴＨＦを使用して、滴下ロートをすすいだ。反応物を１４時間攪拌し、次に水（４リットル）を加えた。この混合物を３０分間攪拌し、層を分離させた。層を除去し、水層をＴＨＦ（５００ｍｌ）で２回洗浄した。合わせたＴＨＦ層を硫酸マグネシウム（５００ｇ）で１時間乾燥した。次に溶液をろ過して、乾燥物質を除去し、次の反応に使用した。
【００６０】
パートＧ：１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−アミノ−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノール・メタンスルホン酸塩の調製
粗１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノール（６．２ｇ，０．０１０モル）を、メタノール（４０ｍｌ）に溶解した。次にメタンスルホン酸（０．９６９ｇ，０．０１０モル）と水（５ｍｌ）をこの溶液に加えた。混合物を、２０％Ｐｄ（ＯＨ）２担持活性炭（２５５ｍｇ，５０％水分含量）を含有する５００ｍｌのパール水素添加瓶中に入れた。瓶を水素添加装置に入れ、窒素を５回パージし、水素を５回パージした。反応を３５℃で６３ＰＳＩ水素圧で１８時間進ませた。さらに触媒（１２５ｍｇ）を加えて、パージ後、さらに２０時間水素添加を続けた。混合物を、メタノール（２×１０ｍｌ）で洗浄したセライトでろ過した。メタノールの約３分の１を減圧下で除去した。残りのメタノールを、８０ｔｏｒｒでトルエンと共沸蒸留させて除去した。トルエンを、１５、１０、１０および１０ｍｌで加えた。生成物を混合物から結晶化し、ろ過し、１０ｍｌのトルエンで２回洗浄した。固体を室温で１ｔｏｒｒで６時間乾燥して、アミン塩（４．５ｇ，８４％）を得た：ｍ／ｚ ４２１［Ｍ＋Ｈ］＋。
【００６１】
あるいは、粗１−［Ｎ−［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］−Ｎ−（２−メチルプロピル）アミノ］−３（Ｓ）−［ビス（フェニルメチル）アミノ］−４−フェニル−２（Ｒ）−ブタノールに、水（５００ｍｌ）を加え、次にメタンスルホン酸（５３１ｇ，５．５モル）を加えた。この溶液を完全に混合するように攪拌し、５ガロンのオートクレーブに入れた。パールマン（Ｐｅｒａｌｍａｎ）触媒（２００ｇの２０％Ｐｄ（ＯＨ）２担持活性炭／５０％水）を、ＴＨＦ（５００ｍｌ）とともにオートクレーブに加えた。反応槽に窒素を４回パージし、水素を４回パージした。反応槽に、６０ｐｓｉｇの水素を充填し、４５０ｒｐｍで攪拌を開始した。１６時間後、ＨＰＬＣ解析は、少量のモノ−ベンジル中間体がまだ残存していることを示していた。追加の触媒（５０ｇ）を加え、反応を一晩続けた。次に溶液をセライト（５００ｇ）でろ過して触媒を除去し、５つの画分に分けて真空下で濃縮した。各画分にトルエン（５００ｍｌ）を加え、残存水を共沸させて除去するために真空下で除去した。得られた溶液を３つの画分に分割し、各画分をメチルｔ−ブチルエーテル（２リットル）で洗浄しろ過した。残存溶媒を室温で真空オーブン中で１ｔｏｒｒ以下で除去して、２７１４ｇの目的の塩を得た。
【００６２】
パートＨ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（フェニルメトキシカルボニル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
７５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１１８．８ｇ（０．７７６モル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールと１３７．１ｇ（０．５２モル）のＮ−カルボベンジルオキシカルボニル−Ｌ−ｔｅｒｔ−ロイシンを、０℃で窒素下で１０９．１ｇ（０．５７モル）のＥＤＣに加えた。０℃で２時間攪拌後、あらかじめ２２８ｍｌ（２１０ｇ，２．０８モル）の４−メチルモルホリンで中和した、２５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の２７３ｇ（０．５３モル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で３０分間攪拌後、混合物を室温で１８時間攪拌した。溶媒を減圧下で４５℃で除去し、１．５リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、４００ｇの粗物質を得た。これを、シリカゲルのＰｒｅｐ２０００クロマトグラムで２０％−５０％酢酸エチル／ヘキサンを溶出液として用いて、３回のバッチでクロマトグラフィーをして、３２０ｇの精製物質を得た。ｍ／ｅ＝６７４（Ｍ＋Ｌｉ）、ＨＰＬＣで９８％。
【００６３】
パートＩ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−アミノ−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
１リットルのテトラヒドロフラン中の３１２ｇのＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（フェニルメトキシカルボニル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの溶液を、１００ｇの４％白金担持活性炭触媒の存在下で６０ｐｓｉｇの水素下で室温で６時間水素添加した。触媒をろ過して除去して、溶媒を減圧下で除去して、２４０ｇの目的の化合物を得た。
【００６４】
パートＪ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
１リットルの塩化メチレン中の２３４．３ｇ（０．４３９モル）のＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−アミノ−３，３−ジメチルブタンアミドに、８０ｍｌ（５９．５ｇ，０．４６モル）のジイソプロピルエチルアミンを加え、次に温度を３５℃以下に維持しながら室温の７８．８ｇ（０．４６モル）の無水クロロ酢酸を加えた。さらに１時間攪拌後、ＨＰＬＣで解析すると、少量の出発物質が残存しており、１．５ｇの無水クロロ酢酸を加えた。１０分後、減圧下で溶媒を除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、３１４ｇの粗物質を得た。これをシリカゲルのＰｒｅｐ２０００クロマトグラムで２０％−５０％酢酸エチル／ヘキサンを用いて、３回のバッチでクロマトグラフィーをして、１６５ｇの目的の化合物を得た。ｍ／ｅ＝６１６（Ｍ＋Ｌｉ）、ＨＰＬＣで９８％。
パートＫ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［［（ピロリジン−１−イル）アセチル］アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
【００６５】
１６４．２ｇ（０．２７モル）のＮ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−［（クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドに、５００ｍｌのテトラヒドロフランを加え、次に減圧下で溶媒を除去して酢酸エチルを除去し、次に３５０ｍｌのテトラヒドロフランを加えた。この溶液に１０℃で１３０ｍｌ（１．５６モル）のピロリジンを加えた。１時間後、溶媒を減圧下で除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１８５ｇの粗物質を得て、これをＨＰＬＣで測定すると純度は９８．９％であった。これを３つに分けて、Ｐｒｅｐ２０００クロマトグラムで最初は５０％酢酸エチル／ヘキサンを用いて、次に５％メタノール／酢酸エチルで３回のバッチでクロマトグラフィーをして、１６０ｇの精製物質を得た（ＨＰＬＣで９９％）。これを次に、４６０ｍｌのジエチルエーテルと７０ｍｌのヘキサンから再結晶して、１２１ｇの目的の生成物を得た（ＨＰＬＣで＞９９％）、ｍ／ｅ＝６５１（Ｍ＋Ｌｉ）、融点＝１１２〜１１４℃。
【００６６】
例１５
【化１５】
【００６７】
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［（２−メチルプロピル）［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドの調製
パートＡ：２（Ｓ）−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸の調製
工程１：１．０リットルのメタノール中の２００ｇ（１．２３モル）のＤ−（−）−３−アセチル−ｂ−メルカプトイソ酪酸に、氷欲で冷却して温度を１０℃以下に維持しながら、５００ｍｌのメタノールに溶解した１６１．０ｇ（２．４７モル）の水酸化カリウムを加えた。さらに２０分間攪拌後、温度を２０℃以下に維持しながら１１７ｍｌ（１５６ｇ，１．２３モル）の硫酸ジメチルを加えた。氷浴を除去し、混合物をさらに６０分間攪拌した。塩をろ過して除去し、溶媒を減圧下で除去し、酢酸エチルを加えた。水層を分離後、濃塩酸で酸性にし、酢酸エチルで抽出し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１６４ｇ（９９％）の目的の２Ｓ−メチル−３−（メチルチオ）プロピオン酸を得た、ｍ／ｅ＝１３３（Ｍ−Ｈ）。
【００６８】
工程２：氷浴で１８℃に冷却した１５０ｍｌのアセトン中の１０．０ｇ（７４．６ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルチオ）プロピオン酸と３０ｍｌの水に、１６１．８ｇ（２６３ミリモル）のオキソン（Ｏｘｏｎｅ）を加えた。約半分の物質を加えた後、温度が２４℃に上昇し、添加を停止し、温度を１８℃に下げ、浴を除去して、反応物を室温で１時間攪拌した。固体をろ過し、アセトンで洗浄し、濾液を約４０ｍｌに濃縮して、残渣を２００ｍｌの酢酸エチルに溶解した。酢酸エチル層を無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、１１．４ｇの油状物を得た。これを最小量の酢酸エチルに溶解し、ヘキサンを加えて沈殿物を形成させた。これを集めて６．９５ｇの目的の生成物を得た、ｍ／ｅ＝１６７（Ｍ＋Ｈ）。
【００６９】
パートＢ：Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［（２−メチルプロピル）［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロパンアミドの調製
３０ｍｌの無水ＤＭＦ中の５．０ｇ（３０ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸と６．９０ｇ（４５ミリモル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールに、０℃で窒素下で６．３４ｇ（３３ミリモル）のＥＤＣを加えた。約１０分後、ＥＤＣはすべて溶解した。０℃で６０分後、３．４ｍｌ（３１．６ミリモル）の４−メチルモルホリンであらかじめ中和した、３０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１５．５ｇ（３０ミリモル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で３時間後、混合物を１７時間一晩攪拌した。減圧下でＤＭＦを除去し、酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、水、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して１６ｇの粗物質を得て、これはＨＰＬＣで純度８８％であった。生成物を２０％−８０％酢酸エチル／ヘキサンを用いてシリカゲルでクロマトグラフィーをして、純粋な生成物を得て、これを酢酸エチル／ヘキサンから再結晶して、８．８４ｇの純粋な生成物を得た、融点１３１．８〜１３３．８℃。
【００７０】
あるいは、２１０ｍｌの無水ＤＭＦ中の３５．０ｇ（２１１ミリモル）の２Ｓ−メチル−３−（メチルスルホニル）プロピオン酸と４８．３ｇ（３１５ミリモル）のＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾールに、０℃で窒素下で４４．４ｇ（２３１ミリモル）のＥＤＣを加えた。約３０分後、ＥＤＣはすべて溶解した。０℃で６０分後、２４ｍｌ（２２．３ｇ）の４−メチルモルホリンであらかじめ中和した、３５０ｍｌの無水ＤＭＦ中の１０８．８ｇ（２１１ミリモル）の２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピルアミンメタンスルホン酸塩を加えた。０℃で２時間後、混合物を１８時間一晩攪拌した。減圧下でＤＭＦを除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、５％クエン酸、飽和重炭酸ナトリウム、水、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して１２０．４ｇの粗物質を得て、これはＨＰＬＣで純度９０％であった。生成物を７５０〜１０００ｍｌの無水エタノールから再結晶して、８２．６ｇの純粋な生成物を得た。
【００７１】
例１６
【化１６】
【００７２】
２Ｓ−［［Ｎ−メチルアミノ）アセチル］アミノ］−Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−３，３−ジメチルブタンアミドの調製
Ｎ−［２Ｒ−ヒドロキシ−３−［［（１，３−ベンゾジオキソール−５−イル）スルホニル］（２−メチルプロピル）アミノ］−１Ｓ−（フェニルメチル）プロピル］−２Ｓ−クロロアセチル）アミノ］−３，３−ジメチルブタンアミドに、２５ｍｌのテトラヒドロフランを加え、溶媒を減圧下で除去して酢酸エチルを除去し、次に２５ｍｌのテトラヒドロフランを加えた。１０℃のこの溶液に１９ｍｌ（２１４ミリモル）の４０％メチルアミン水溶液を加えた。２時間後、溶媒を減圧下で除去し、１リットルの酢酸エチルを加え、飽和重炭酸ナトリウム、食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、濃縮して、６．０ｇの生成物（純度９８％）を得た。
【００７３】
例１７
本発明のレトロウイルスプロテアーゼインヒビター化合物は、有効なＨＩＶプロテアーゼインヒビターである。以下に記載する酵素測定法は、併用療法で使用するためのレトロウイルスプロテアーゼインヒビターの選択に使用することができる。このような化合物のＩＣ５０（インヒビター化合物が酵素活性を５０％低下させる濃度）は、この方法を用いて計算できる。
【００７４】
酵素法は以下の通りである。基質は、２−アミノベンゾイル−Ｉｌｅ−Ｎｌｅ−Ｐｈｅ（ｐ−ＮＯ２）−Ｇｌｎ−ＡｒｇＮＨ２である。陽性対照はＭＶＴ−１０１（エム・ミラー（Ｍｉｌｌｅｒ，Ｍ．）ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６，１１４９（１９８９））である。測定緩衝液は、２０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ６．４、２０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ ＤＴＴおよび０．１％ＣＨＡＰＳである。基質はＤＭＳＯに溶解し、次に測定緩衝液で１０倍に希釈する。測定液中の最終基質濃度は、約８０μＭである。ＨＩＶプロテアーゼは、分子量１０，７８０に基づいて最終濃度が約１２．３ナノモルになるように、測定緩衝液で希釈する。
ＤＭＳＯの最終濃度は約１４％であり、グリセロールの最終濃度は約１８％である。試験化合物をＤＭＳＯに溶解し、ＤＭＳＯで試験濃度の約１０倍（１０×）に希釈する。次に１０μｌの基質を加える。蛍光の増加を、周囲温度で４点（０、８、１６、および２４分）で追跡する。各測定は、２重測定のウェルで行う。
【００７５】
例１８
本発明の選択したＨＩＶプロテアーゼインヒビター化合物の有効性は、上記の酵素測定法と以下のＣＤ４＋細胞株測定法で測定した。プロテアーゼインヒビターの抗ウイルス活性は、有効濃度５０（ＥＣ５０）および／または有効濃度９０（ＥＣ９０）値として表す。これらは、ウイルス複製をそれぞれ５０％または９０％阻害するのに必要なインヒビターの濃度である。
【００７６】
急性感染細胞のＨＩＶ阻害測定法は、基本的にはパウウェルズ（Ｐａｕｗｅｌｓ）らが報告した（Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２０，３０９−３２１（１９８８））テトラゾリウムに基づく自動比色法である。測定は、９６ウェル組織培養プレート中で行う。ＣＤ４＋細胞株（例えば、ＣＥＭ、ＭＴ−２、ＭＴ−４および類似の細胞株）を、１０％胎児牛血清を補足したＲＰＭＩ−１６４０培地（ギブコ（Ｇｉｂｃｏ））中で増殖させ、次にポリブレン（２μｇ／ｍｌ）で処理する。１×１０４細胞を含有する８０μｌ量の培地を、組織培養プレートの各ウェルに分注する。各ウェルに、組織培養培地に溶解した試験化合物（または、対照として試験化合物のない培地）１００μｌを添加して、目的の最終濃度として、３７℃で１時間インキュベートする。ＨＩＶ−１の凍結培養物を培地で、５×１０４ＴＣＩＤ５０／ｍｌ（ＴＣＩＤ５０＝組織培養中の５０％の細胞に感染するウイルス量）の濃度に希釈し、２０μｌのウイルス試料（１０００ＴＣＩＤ５０のウイルスを含有する）を、試験化合物を含有するウェルおよび培地のみを含有するウェル（感染対照細胞）に添加する。数個のウェルに、ウイルスのない培地（非感染対照細胞）を入れる。同様に、試験化合物の本質的毒性は、試験化合物を含有する数個のウェルにウイルスのない培地を加えて測定する。要約すると、組織培養プレートは以下の実験系を含有する：
【００７７】
【００７８】
実験系２と４では、試験化合物の最終濃度は１、１０、１００および５００μｇ／ｍｌである。アジドチミジン（ＡＺＴ）またはジデオキシイノシン（ｄｄＩ）は、陽性薬剤対照として含める。試験化合物をＤＭＳＯに溶解し、組織培養培地に希釈して、いずれの場合も最終ＤＭＳＯ濃度が１．５％を越えないようにする。ＤＭＳＯを、適当な濃度ですべての対照ウェルに加える。
ウイルスの添加後、細胞を３７℃で加湿した５％ＣＯ２雰囲気中で７日間インキュベートする。試験化合物を、必要であれば０、２、および５日目に加えることができる。感染後７日目に、各ウェルの細胞を再懸濁して、測定のために各細胞懸濁液１００μｌの試料を取る。５ｍｇ／ｍｌの３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロミド（ＭＴＴ）溶液２０μｌを、各１μｌの細胞懸濁液に加え、細胞を３７℃で加湿した５％ＣＯ２雰囲気中で４時間インキュベートする。このインキュベートの間、ＭＴＴは生きている細胞により代謝されて減少し、細胞中に着色したホルマザン生成物が産生される。各試料に、０．０１ＮのＨＣｌ中の１０％ドデシル硫酸ナトリウム１００μｌを加えて細胞を溶解し、試料を一晩インキュベートする。モレキュラーデバイシーズ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）マイクロプレートリーダーを用いて、各試料について５９０ｎｍの吸光度を測定する。試験化合物の細胞毒性と抗ウイルス活性は、化合物とともにインキュベートした感染または非感染細胞を含有するウェル中で得られた吸光度を、非感染、未処理対照ウェルと比較して求める。
【００７９】
ＨＩＶ培養法
ドナーリンパ球の刺激
アメリカ赤十字（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｒｅｄ Ｃｒｏｓｓ）またはワシントン大学医学部の血液銀行から、バッフィーコートを得た。これらの調製物を、ＨＩＶ抗体とＣＭＶ抗体、およびＨＢＶ表面抗原（ＨＢｓＡｇ）、および非Ａ非Ｂ肝炎のマーカーとしてのＡＬＴ（アラニントランスフェラーゼ活性）について、プレスクリーニングした。白血球を濃縮した血液（３０ｍｌ）をプラスチック容器から採取し、１５ｍｌを５０ｍｌのネジふた遠心分離管に分注した。各試料を等量の無菌ＰＢＳで希釈して、ピペットで混合した。フィコール−ペーク（Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ）（１５ｍｌ）またはＬＳＭを、パスツールピペットを用いて、希釈した血液試料の下に入れ、溶液を管の底から排出させる。次に各管を、２０℃で１３００ｒｐｍ（４００×ｇ）で４５分間遠心分離する。遠心分離後、界面のリンパ球バンドを取り、５０ｍｌの管に移す。無菌ＰＢＳを加えて、分離したリンパ球を希釈し、次に１３００ｒｐｍで８分間遠心分離した。細胞ペレットを、ＰＢＳに再懸濁し再遠心分離して２回洗浄する。最終細胞ペレットをピペットで２０ｍｌのＰＢＳに再懸濁し、生存細胞の総数をトリパンブルー排除により測定する。
【００８０】
臨床単離株を用いる急性感染性測定
約３×１０７個の細胞を、１０％胎児牛血清とＩＬ−２（１０Ｕ／ｍｌ）を含有するＲＰＭＩ中の約３〜５μｇ／ｍｌのＰＨＡで４８時間活性化する。定量したウイルス株を、感染多重度約０．００１〜０．０１で、活性化リンパ球懸濁液に加える。細胞−ウイルス懸濁液を３７℃で２時間インキュベートして、ウイルスを吸収させる。遠心分離して残存ウイルス接種株を除去し、細胞を１０％ＦＢＳと１０Ｕ／ｍｌＩＬ−２含有ＲＰＭＩ中に再懸濁する。これらの感染細胞を、９６ウェルマイクロタイタープレート中のＤＭＳＯ内のストック液（１０ｍｇ／ｍｌ）からの完全組織培養培地で希釈した試験物質に加えて、２００μｌ当たり約５×１０５細胞を得る。感染した未処理細胞、およびＤＭＳＯのみ（０．１％）またはＡＺＴもしＤＤＩで処理した細胞を、対照として用いた。培養物を融合細胞（ｓｙｎｃｙｔｉａ）形成について、感染後７日目および１１日目に観察するか、またはｐ２４抗原の逆転写酵素活性について上澄液を試験する。
【００８１】
慢性感染測定
ＨＸＢ２（ＨＩＶ−１の実験室株）で慢性に感染させたＣＥＭ細胞を、１２ウェルマイクロタイタープレートの６ウェルに加えて、約５×１０４細胞／ウェルを得る。ウェルの半分は種々の濃度の試験化合物で処理し、同じ数の非感染ＣＥＭ細胞を化合物を添加せずに維持する。試験化合物を含有するまたは含有しない新鮮な培地を、３日間連続して毎日加える。次に培養物を４８時間、培地を交換することなくインキュベートする。細胞を遠心分離して採取し、ＰＢＳで２回洗浄し、０．１２５ＭトリスｐＨ６．８、４％ＳＤＳ、２０％グリセロール、１０％ベータメルカプトエタノールおよび０．０２％ブロモフェノールブルーを含有する２×リームリ（Ｌａｅｍｍｌｉ）緩衝液５０μｌに再懸濁する。培養上澄液を０．２２μのフィルターに通し、細胞破片を除去し、５０，０００ｒｐｍで９０分間遠心分離してウイルス粒子を濃縮する。ウイルスペレットを５０μｌの２×リームリ緩衝液に再懸濁する。細胞またはウイルス懸濁液を５分間沸騰させ、次に１０〜２０％ＳＤＳ−ポリアクリルアミド勾配ゲル中で電気分離を行う。次にゲルの内容物を電気ブロッティングによりニトロセルロースに移す。ｐ２４およびｐ１７に対するモノクローナル抗体を用い、次にビオチンに結合したヤギ−抗マウスＩｇＧおよびＨＲＰに結合したアビジンを用いてＨＩＶ特異的タンパク質を検出する。４−クロロ−１−ナフトールの酵素的変換を用いて、これらのモノクローナル抗体に認識される特異的タンパク質を可視化する。さらに、試験化合物の存在下でまたは非存在下で慢性に感染したＣＥＭ細胞により産生されるウイルスの感染性を調べる。ろ過した上澄液を連続希釈を行い、非感染ＣＥＭ細胞（約１×１０４細胞／ウェル）を感染させるのに使用する。感染後７日目または１１日目に融合細胞の形成について培養物を試験するか、または上澄液を逆転写酵素活性もしくはｐ２４抗原について試験する。
【００８２】
微量逆転写酵素（ＲＴ）測定
微量ＲＴ測定法は、いくつかの標準的ＲＴ測定法の１つの応用である。これは、少量の試料のＨＩＶ ＲＴ活性を測定するためおよび多くの試料の処理を促進するために開発された。
【００８３】
【００８４】
方法：
１．ウェル当たり５０μｌのＲＴカクテルを９６ウェルＵ底マイクロタイタープレートに加える。
２．ウェル当たり１０〜２０μｌの細胞を含まない上澄液を加える。
３．機械回転器を用いて充分混合する。
４．３７℃で２時間インキュベートする。
５．ＴＯＭＴＥＫを用いて吸引してＤＥ８１濾紙または同等物にのせる。
６．２×ＳＳＣを用いて４回すすぐ。
７．９５％エタノールを用いて１回すすぐ。
８．濾紙を乾燥させる。
９．ベータ−プレートカウンター（ファルマシア（Ｐｈａｒｍａｃｉａ））を用いて計測する準備をする。
【００８５】
例１９
【化１７】
【００８６】
ＥＣ５０のシフトが観察されるまで、化合物の濃度を増加させて複数回サイクルを繰り返す。
以下は、ＨＩＶプロテアーゼインヒビター耐性突然変異体の選択のために使用した培養法である。感染した細胞を、プロテアーゼインヒビターの存在下で連続的に増殖させる。いくつかの培養物を週毎に交互に高濃度または低濃度のインヒビターに接触させる。他のものは一定の濃度で継代する。ＥＣ５０のシフトが観察されるまで、薬剤濃度を定期的に増加させる。用量応答曲線のシフトは、一般的に薬剤濃度０．５〜１μｇ／ｍｌ以上（ＥＣ９０の５〜１０倍）で検出され、処理されるウイルス単離物に依存する。ＨＩＶの実験室で適応させた単離物または初代臨床単離物を使用した。処理単離物および未処理単離物の間で直接ヌクレオシド配列が比較できるように、同じウイルス単離物を同じ方法で薬剤の非存在下で継代する。一般的にプロテアーゼインヒビターに耐性のＨＩＶ−１変種は、特定のプロテアーゼインヒビターのいくつかの阻害濃度の存在下で連続的に継代（増殖）させて選択される（マルコウィッツ（Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ）ら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ６９：７０１−７０６（１９９５）を参照）。下記のＨＩＶ−１変種は、選択されたウイルス単離物中に存在するが、対照、未処理ウイルス単離物には存在しない突然変異を示す。
【００８７】
ＲＦはＨＩＶ−１株ＨＩＶ−１ＲＦを示し、ＲＦＲは例１の化合物に対してＲＦの選択により得られた耐性株の混合物を示す。ＲＦＲは、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ（１４／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１８／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｌ９０Ｓ（２／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｖ８２Ａ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｍ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｑ６１Ｈ（１／４０クローン）；Ｖ１３Ｉ、Ｇ４８Ｖ（１／４０クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｆ５３Ｌ、Ｖ８２Ａ（１／４０クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｃ９５Ｙ（１／４０クローン）を有するウイルス株の混合物である。ＲＦＲ２は、限界希釈の３回の増殖によりＲＦＲをクローニングして得られた耐性株の混合物である。ＲＦＲ２は、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１３／１５クローン）；Ｇ１７Ｅ、Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ（１／１５クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｎ３７Ｄ、Ｎ８８Ｄ（１／１５クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＲＦＲＲは、例１と２の化合物に対してＲＦの選択と次に限界希釈の３回の増殖によりクローニングして得られた耐性株の混合物である。ＲＦＲＲは、プロテアーゼ遺伝子型Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ａ（７／９クローン）；Ｇ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ａ、Ｎ８８Ｓ（１／９クローン）；およびＧ４８Ｖ、Ｉ５４Ｔ、Ｌ６３Ｐ、Ｇ７３Ｍ、Ｖ８２Ａ（１／９クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＳＦ１６２は、ＨＩＶ−１株ＳＦ−１６２であり、ＳＦ１６２Ｒは、例１の化合物に対してＳＲ１６２の選択により得られた耐性株の混合物である。ＳＦ１６２Ｒは、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｎ８８Ｄ（２／３クローン）；およびＭ４６Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｎ８８Ｄ、Ｑ９２Ｒ（１／３クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。８９−９５９はＨＩＶ−１株８９−９５９であり、８９−９５９Ｒは、例２の化合物に対して８９−９５９の選択により得られた耐性株の混合物である。８９−９５９Ｒは、プロテアーゼ遺伝子型Ｎ８８Ｓ（４／５クローン）；およびＤ２５Ｎ、Ｔ２６Ａ、Ｄ３０Ｎ、Ｄ３７Ｎ、Ｒ４１Ｋ、Ｇ７３Ｄ、Ｒ８７Ｋ、Ｎ８８Ｓ（１／４クローン）を有するウイルス株の混合物よりなる。ＮＬ４はＨＩＶ−１株ＨＩＶ−１ＮＬ４−３である。ＮＬ４（Ｇ４８Ｖ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸４８位でグリシンからバリンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｉ８４Ｖ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸８４位でイソロイシンからバリンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｒ８Ｑ、Ｍ４６Ｉ）は、プロテアーゼ中でアミノ酸８位でアルギニンからグルタミンへの合成法で作成した部位特異的突然変異とアミノ酸４６位でメチオニンからイソロイシンへの合成法で作成した部位特異的突然変異を有する株である。ＮＬ４（Ｐ２２−５３８）は、２２回の継代後に例１０の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株の混合物であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（４／１０）；Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（３／１０）；Ｍ４６Ｉ、Ａ７１Ｖ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ｖ（３／１０）よりなる。ＮＬ４（Ｐ３７−５３８）は、３７回の継代後に例１０の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬ４（５３８／５２４）は、２４回の継代後に例５の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬ４（５３８／Ｐ７−ＡＧ）は、７回の継代後に例１２の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株の混合物であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａ；およびＶ３２Ｉ、Ｖ８２Ｉよりなる。ＮＬ４（５３８／Ｐ２４−ＡＧ）は、２４回の継代後に例１２の化合物に対してＮＬ４（Ｐ２２−５３８）の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｉ８４Ａよりなる。ＮＬＡ（Ｐ１９−００３）は、１９回の継代後に例９の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｒ８Ｋ、Ｍ４６Ｉよりなる。ＮＬ４（Ｐ３４−００３）は、３４回の継代後に例９の化合物に対してＨＩＶ−１ＮＬ４−３の選択により得られた耐性株であり、プロテアーゼ遺伝子型Ｒ８Ｋ、Ｍ４６Ｉ、Ｌ６３Ｐ、Ａ７１Ｖ、Ｌ９０Ｍよりなる。ウイルス単離物の耐性は、表１〜１１に要約する。
【００８８】
例２０
表１から表３に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、下記の検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。１０％ウシ胎児血清およびＩＬ−２（１０単位／ｍｌ）を含むＲＰＭＩ中約３×１０７個の細胞を約３〜５μｇ／ｍｌのＰＨＡで４８時間活性化した。定量したウイルス原液をこの活性化されたリンパ球浮遊液へ約０．００１〜０．０１の感染多重度で加えた。細胞−ウイルス浮遊液を３７℃で２時間インキュベーションしてウイルスを吸収させた。残留ウイルス接種材を遠心により除き、１０％ＦＢＳおよび１０単位／ｍｌのＩＬ−２を含むＲＰＭＩ中に細胞を再浮遊させた。９６穴（ウェル）マイクロタイタープレート中で、これら感染細胞をＤＭＳＯ中の原液（１０ｍｇ／ｍｌ）から得た試験化合物（完全組織培地で希釈）へ加え、細胞約５×１０５個／ウェル／２００μｌとした。感染した未処理細胞およびＤＭＳＯだけ（０．１％）で処理した細胞あるいはＡＺＴまたはＤＤＩいずれかで処理した細胞を対照として使用した。培養を感染後７日目と１１日目にシンシチウム形成について調べるか、あるいは上澄を逆転写酵素活性またはｐ２４抗原について試験した。
【００８９】
【表１】
【表２】
【表３】
【００９０】
例２１
表４〜表６に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、下記の検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。検定は９６穴組織培養プレートで行なった。ＣＥＭ−Ｔ４細胞を９０％ＲＰＭＩ培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｓｂｕｒｇ，マリーランド州）１０％熱処理ウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｓｂｕｒｇ，マリーランド州）中に浮遊させ、最終濃度を生活力のある細胞５×１０５個／ｍｌとした。冷凍したＨＩＶ培養（ＨＩＶ−１ＲＦ株）の一部を迅速に融かし（３７℃の水浴中で）、ＣＥＭ−Ｔ４細胞へ加えて約０．００１〜０．０１感染単位／細胞の最終濃度とした。ウイルス−細胞浮遊液を回して迅速に混合し、直ちに１００μｌを９６穴組織培養プレートの各ウェル中各試験化合物（９０％ＲＰＭＩ、１０％ＦＢＳ中２×濃縮液として調製）希釈液１００μｌに加えた。各プレートは細胞とウイルスからなり試験化合物は含まない対照ウェルを含んだ。すべての検定で３’−アジド−３’−デオキシチミジン（ＡＺＴ）を正の対照として含めた。
【００９１】
これら組織培養プレートを加湿した５％ＣＯ２雰囲気中３７℃で７日間インキュベーションした。次にウイルスの複製レベルを標準法（前述した通り、例えばＨＩＶ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ａｌｄｏｖｉｎｉ＆Ｗａｌｋｅｒ，編、１９９０年、Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，ニューヨーク州、中の技術参照）を用いて、上澄中の逆転写酵素活性の測定により決定した。
【００９２】
【表４】
【表５】
【表６】
【００９３】
例２２
表７〜表１１に要約されたウイルス分離株耐性の結果は、Ｍａｒｋｏｗｉｔｚ等、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，６９巻、７０１−７０６（１９９５）（これは参考文献としてそのまま本明細書中に取り入れている）により記述された検定法あるいはそれを少し修飾した方法に従って得た。
【００９４】
【表７】
【表８】
【表９】
【表１０】
【表１１】
【００９５】
例２３
独特のヒドロキシエチル尿素等配電子体を含む例１および例２のプロテアーゼ阻害剤を用いて、薬物耐性ＨＩＶ−１変異株を容器内で選択した。臨床および研究室のＨＩＶ−１株を、Ｔ細胞系であるいは末梢血単核細胞（ＰＢＭＣＳ）で、存在する薬物の濃度を高めながら継代した。耐性変異株は、同一期間阻害剤欠如下で継代した対照ウイルスよりも、一貫して少なくとも１０倍高いＥＣ５０値を示した。ウイルスＤＮＡをＰＣＲにより増幅し、プロテアーゼをコード化する遺伝子のヌクレオチド配列を標準法を用いて測定した。それぞれ例２および例１のプロテアーゼ阻害剤に対して耐性のあるウイルスにおいては、選ばれた変異株の多くで８８位のアミノ酸の変化が一貫して観察された。８８のＡｓｎ残基は、構造的に保存されたらせん領域内にあり、単量体および二量体両方のアスパラギン酸プロティナーゼ中に存在する。対応するカルボキシ末端配列Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｐ／Ａｓｎ（残基８６−８８）は、レトロウイルスアスパラギン酸プロティナーゼに独特である。これらの結果に対するどんな説明も推測に過ぎないが、組換えＨＩＶ−１プロテアーゼに結合した基本型のヒドロキシエチル尿素阻害剤の高分解能Ｘ線構造から誘導された鋳型に基づくモデル化の研究は、Ａｓｎ８８突然変異がプロテアーゼの立体配座を変えるかもしれないことを示唆するようである。
【００９６】
本発明に係るレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は、有利に効果のある抗ウイルス化合物であり、そしてとりわけレトロウイルス、特に上に示したレンチウイルス、の有効な阻害剤である。従って、この主題化合物はＨＩＶの有効な抑制物質である。本発明化合物はまたＨＩＶの他の株、例えばＨＩＶ−２および他のウイルス類、例えばＶＩＳＮＡウイルスおよびサル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ）、ＨＴＬＶ−１およびＨＴＬＶ−２も抑制するであろうことも企図されている。従って、本発明化合物はレトロウイルス感染症の治療および（または）予防に有効である。
【００９７】
本発明はレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物の溶媒和物あるいは水和物を包含することも意味し、可能ならばこの分野で公知の方法により調製あるいは単離される。
本レトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は、無機酸または有機酸から誘導される塩の形で使用できる。これらの塩は次のものを包含するが、これらに限定しない：酢酸塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、クエン酸塩、アスパラギン酸塩、安息香酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、重硫酸塩、酪酸塩、ショウノウ酸塩、ショウノウスルホン酸塩、ジグルコン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタンスルホン酸塩、グルコヘプタン酸塩、グリセロリン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、ヘキサン酸塩、フマル酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシ−エタンスルホン酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、メタンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、２−ナフタレンスルホン酸塩、シュウ酸塩、パルモエート、ペクチン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、ピクリン酸塩、ピバリン酸塩、プロピオン酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、チオシアン酸塩、トシレート、メシレートおよびウンデカン酸塩。
【００９８】
製薬上容認しうる酸付加塩をつくるために使用しうる酸の例として、無機酸、例えば塩酸、硫酸およびリン酸ならびに有機酸、例えばシュウ酸、マレイン酸、コハク酸およびクエン酸が挙げられるが、なるべくは塩酸塩が好ましい。他の例には、アルカリ金属またはアルカリ土類金属、例えばナトリウム、カリウム、カルシウムまたはマグネシウムとの塩あるいは有機塩基との塩が含まれる。
患者に対して一回分量または分割した用量で投与される全１日量は、例えば体重１ｋｇ当り０．０１から５０ｍｇ／日、より一般的には０．１から３０ｍｇの量でよい。投薬単位組成物は、このような量を分割してそれらを合わせて１日分量とする約量を含むことができる。
【００９９】
担体材料と合わせて単一剤形をつくることのできる活性成分の量は、処置を受ける患者および特定の投与様式によって変化する。
レトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物および（または）組成物を用いて病状を処置する用法・用量は、種々な因子、例えば患者のタイプ、年齢、体重、性別、食餌、および医学的症状、病気の重篤さ、投与経路、薬理学的な考慮すべき事柄、例えば使用した特定化合物の活性、効力、薬動学的および毒物学的プロフィル、薬物供給系を利用するかどうかまた化合物を薬剤コンビネーションの一部として投与するのかどうか、に従って選ばれる。従って、実際に用いられる用法・用量は広く変化することがあるので、前記の特に適当な用法・用量からそれることがある。
【０１００】
本発明化合物は、必要に応じ、通常の無毒性製薬上容認しうる担体、補助剤、およびビヒクルを含有する投薬単位製剤として、経口的、非経口的に、吸入スプレーにより、直腸に、あるいは局所的に投与することができる。局所投与はまた経皮投与、例えば経皮パッチあるいはイオン導入装置の使用も含みうる。本明細書で用いた非経口的という用語は、皮下注射、静脈内、筋肉内、胸骨内注射、あるいは点滴技術を包含する。
【０１０１】
注射用製剤、例えば無菌の注射用水性または油性懸濁系は、公知の技術に従い適当な分散剤または湿潤剤および懸濁剤を用いて処方できる。無菌注射用製剤はまた非経口的に容認しうる無毒性希釈剤あるいは溶剤中の無菌注射用溶液または懸濁系、例えば１，３−ブタンジオール中の溶液、のこともある。使用可能な容認することのできるビヒクルおよび溶媒は水、リンゲル液、および等張塩化ナトリウム溶液である。更にまた、無菌固定油も溶媒としてあるいは懸濁媒質として従来から使用されている。この目的に対して、合成モノグリセリドまたはジグリセリドを含めて刺激の少ない固定油はいずれも使用できる。更にまた、脂肪酸、例えばオレイン酸、を注射用製剤の製造に使用できる。
【０１０２】
薬剤の直腸投与に供される座剤は、薬剤を適当な無刺激性付形剤、例えばカカオ脂およびポリエチレングリコールと混合することにより製造できる。これら付形剤は常温では固体であるが、直腸温度では液体であるため直腸内で融解し、薬物を放出する。
【０１０３】
経口投与に供される固体剤形はカプセル、錠剤、丸剤、散剤、および顆粒剤を包含しうる。このような固体剤形においては、活性化合物を少なくとも１種の不活性希釈剤、例えばショ糖、乳糖またはデンプンと混合できる。このような剤形はまた普通の習慣にならって、不活性希釈剤の外の追加物質、例えば滑沢剤、例えばステアリン酸マグネシウム、を含有しうる。カプセル、錠剤、および丸剤の場合、これら剤形は緩衝剤も含むことができる。錠剤および丸剤は更に腸溶性被覆を施して製造できる。
【０１０４】
経口投与用液体剤形は、この分野で常用される不活性希釈剤、例えば水を含む製薬上容認できる乳濁系、溶液、懸濁系、シロップ、およびエリキシルを包含しうる。このような組成物はまた補助剤、例えば湿潤剤、乳化剤および懸濁剤、ならびに甘味剤、フレーバ付与剤、および香料も含有しうる。
本発明に係るレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤化合物は唯一の活性医薬剤として投与することができるが、これらはまたＨＩＶ−１のようなレトロウイルスに対して有効な他の抗ウイルス剤とのコンビネーションとしても使用できる。このような化合物として、他のＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤、種々なヌクレオシド類縁物質、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、タット拮抗物質およびグリコシダーゼ阻害剤が挙げられるがこれらに限定されない。
【０１０５】
ＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤の例には、Ｒｏ ３１−８５９（Ｒｏｂｅｒｔｓ，Ｎ．Ａ．等、Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９０，２４８，２５８−２６１およびＤｒｕｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｕｔｕｒｅ １９９１，１６（３），２１０−２１２，ＫＮＩ−２７２，（Ｋａｇａｙａｍａ，Ｓ．等、Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ １９９３，８１０−８１７）、環状尿素シリーズ（Ｌａｍ，Ｐ．等、“Ｄｅ Ｎｏｖｏ Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｏｆ Ｐｏｔｅｎｔ，Ｎｏｎｐｅｐｔｉｄａｌ ＨＩＶ−１ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ，”第２０５回アメリカ化学会国際学会、薬用化学部門における論文９６、デンバー、コロラド州、３月２８日〜４月２日、１９９３）Ｌ−７３５，５２４（Ｄｏｒｓｅｙ，Ｂ．Ｄ．等、“Ｌ−７３５，５２４：Ｔｈｅ Ｒａｔｉｏｎａｌ Ｄｅｓｉｇｎ ｏｆ ａ Ｐｏｔｅｎｔ ａｎｄ Ｏｒａｌｌｙ Ｂｉｏａｖａｉｌａｂｌｅ ＨＩＶ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ，”第２０６回アメリカ化学会国際学会、医用化学部門における論文６、シカゴ市、イリノイ州、８月２２日−２７日、１９９３）およびその類縁体が含まれるがこれらに限定されない。
【０１０６】
競合型ヌクレオシド類縁体の例には、アジドチミジン（ＡＺＴ）、ジデオキシイノシン（ＤＤＩ）、ＤＤＣ、３ＴＣ、Ｄ４ＴおよびＰＭＥＡが含まれるがこれらに限定されない。非ヌクレオシド、非競合型逆転写酵素阻害剤の例には、ピリドン類（Ｗｅｉ，Ｊ．Ｓ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９３，３６，２４９−２５５；Ｈｏｆｆｍａｎ，Ｊ．Ｍ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９２，３５，３７８４−３７９１；Ｓａａｒｉ等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９２，３５，３７９２−３８０２；Ｄｒｕｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｕｔｕｒｅ １９９２，１７（４），２８３−２８５、およびその類縁物質）；ビス（ヘテロアリール）ピペラジン類（Ｒｏｍｅｒｏ，Ｄ．Ｌ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ １９９３，３６，１５０５−１５０８；Ｒｏｍｅｒｏ，Ｄ．Ｌ．等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １９９１，３４，７４６〜７５１および３１８７〜３１９８；およびその類縁物質）および三環式ピリドベンゾ−およびデピリドジアゼピノン類（Ｈａｒｇｒａｖｅ，Ｋ．Ｄ．，Ｊ．Ｍｅｄ．ｈｅｍ．１９９１，３４，２２３１〜２２４１；Ｍｅｒｌｕｚｚｉ，Ｍ．Ｊ．Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９０，２５０，１４１１〜１４１３；およびその類縁物質）および５−クロロ−３−（フェニルスルホニル）インドール−２−カルボキサミドおよびその類縁物質（Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｔ．Ｍ．等、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１９９３，３６，１２９１〜１２９４）が含まれるが、これらに限定されない。タット拮抗物質の例には、Ｒｏ ５−３３３５およびＲｏ ２４−７４２９（Ｈｓｕ，Ｍ．Ｃ．等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １９９３，９０９，６３９５〜６３９９；Ｔａｍ，Ｓ．等、“ＴＡＴ ＩＮＨＩＢＩＴＯＲＳ：Ａ ＮＥＷ ＣＬＡＳＳ ＯＦ ＡＮＴＩ−ＨＩＶ ＡＧＥＮＴＳ，”論文３７２，第２０４回アメリカ化学会国際学会、有機化学部門、ワシントン、コロンビア地区、８月２３日〜２８日、１９９２）およびその類縁物質が含まれるがこれらに限定されない。グリコシダーゼ阻害剤の例には、カスタノスペルミン、カスタノスペルミン６−ブトリルエステル、Ｎ−ブチル−１−デオキシノジリマイシン、Ｎ−ブチル−１−デオキシノジリマイシンペル−ブトリルエステルおよびその類縁物質とプロドラッグが含まれるがこれらに限定されない。
【０１０７】
本治療剤は実質的に同時に投与される別個の組成物として処方することができ、あるいは本治療剤を活性剤のすべてが患者に治療上有効な量で与えられるように単一組成物として投与することもできる。別法として、本治療剤は、活性剤の一方のみ、あるいは二つがいつでも治療上有効な量で患者の中にあるように異なる時間に患者に投与することもできる。
【０１０８】
本発明化合物および方法は効果的な抗ウイルス性化合物であり、とりわけ前に示したように効果的なレトロウイルス抑制剤である。従って、本発明化合物は有効なＨＩＶプロテアーゼ阻害剤である。本主題の化合物は他のレトロウイルス、例えば他のレンチウイルス、とりわけＨＩＶの他の株、例えばＨＩＶ−２、ヒトＴ−細胞白血病ウイルス、ラウス肉腫ウイルス、サル免疫不全ウイルスなど、も抑制するであろうということが企図されている。従って、本発明化合物はレトロウイルス感染症の治療および（または）予防に有効である。
【０１０９】
本発明化合物および方法は溶液中でレトロウイルスの増殖を防止する際にも有効である。キャリブレーターおよび対照を含めて研究および診断手順といった種種な公知の目的に対し、ヒトおよび動物の細胞培養、例えばＴ−リンパ球培養が利用される。細胞培養の増殖および貯蔵の前、およびその途中において、細胞培養の中に不注意にあるいは気付かずに存在するかもしれないレトロウイルスの予期しない複製あるいは望まない複製を防止するために、本発明化合物を細胞の培地へ有効な濃度で添加することができる。ウイルスは最初から細胞培養の中に存在するかもしれず、例えばＨＩＶはヒトＴ−リンパ球の中に、それが血液中に検出されるずっと以前から、あるいはウイルスへの曝露によって存在することが知られている。本発明化合物および方法のこの使用法は、研究者あるいは臨床医に対して潜在的に致命的となるレトロウイルスへの気付かない曝露あるいは不注意による曝露を防止するものである。
【０１１０】
上記の説明は本発明の単なる例示に過ぎないのであって、ここに開示された化合物に本発明を限定することは意図しない。当業者にとって明白な変化および変更は、請求の範囲に定義された本発明の範囲および本質内にあるものとする。
上記の説明から、当業者は本発明の本質的な特徴を容易に確かめることができ、そして本発明の主旨と範囲から離れることなく本発明を種々な用法および条件に適合させるように本発明に種々な変化および修飾を施すことができる。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
患者に投与するための第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤を選択する方法であって、
（ａ）レトロウイルスの増殖培養物を第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に曝し、次いで
（ｂ）工程（ａ）の後に出現するレトロウイルス株に対する、一つもしくはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤の該レトロウイルス抑制活性を測定する工程を含む方法であって、
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、該レトロウイルス株に対する効果に基づいて選択される、上記方法。
【請求項２】
第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、両者ともＨＩＶプロテアーゼ阻害剤である、請求項１の方法。
【請求項３】
第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、ＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤またはＨＩＶ−２プロテアーゼ阻害剤である、請求項３の方法。
【請求項４】
該レトロウイルス株は、Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｌ９０Ｓ、Ｉ５４Ｔ、Ｇ４８Ｍ、Ｑ６１Ｈ、Ｖ１３Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｃ９５Ｙ、Ｇ１７Ｅ、Ｎ３７Ｄ、Ｎ８８Ｄ、Ｌ６３Ｐ、Ｎ８８Ｓ、Ｇ７３Ｍ、Ｍ４６Ｉ、Ａ７１Ｖ、Ｑ９２Ｒ、Ｄ２５Ｎ、Ｔ２６Ａ、Ｄ３０Ｎ、Ｄ３７Ｎ、Ｒ４１Ｋ、Ｇ７３Ｄ、Ｒ８７Ｋ、Ｉ８４Ｖ、Ｒ８Ｑ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ａ、Ｖ３２Ｉ、Ｖ８２Ｉ、Ｒ８ＫおよびＬ９０Ｍよりなる群から選ばれる少なくとも一つの変異を有するＨＩＶ−１変異体である、請求項３の方法。
【請求項５】
工程（ａ）は、一連の抑制濃度の該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤の存在下でのＨＩＶ−１レトロウイルスの増殖培養物の一連の成長物を含む、請求項３の方法。
【請求項６】
工程（ａ）はｉｎ ｖｉｔｒｏで行う、請求項１の方法。
【請求項７】
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤が有効な該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して中レベルの耐性を有し、該レトロウイルス株が、コントロールウイルスに比べて約１０倍から約１００倍高いＥＣ５０値を有する、請求項１の方法。
【請求項８】
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤が有効な該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して高レベルの耐性を有し、該レトロウイルス株が、コントロールウイルスに比べて約１００倍高いＥＣ５０値を有する、請求項１の方法。
【請求項９】
該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、第二のレトロウイルス株は、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、各々のレトロウイルス株が、プロテアーゼペプチド配列中に少なくとも１個のアミノ酸置換を有するレトロウイルスプロテアーゼをつくり出し、そしてこの置換がプロテアーゼの同じ基質結合部位領域に影響を及ぼし、観察された阻害剤耐性に寄与する、請求項１の方法。
【請求項１０】
該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有するレトロウイルス株は、該第一および第二の阻害剤をレトロウイルス増殖培養物に曝して６週間後には、観察されない、請求項１の方法。
【請求項１１】
該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対しては上昇した感受性を有する、請求項１の方法。
【請求項１２】
第二のレトロウイルス株は、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対しては上昇した感受性を有する、請求項１１の方法。
【請求項１３】
該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、ＶＩＳＮＡ、ＳＩＶ、ＨＴＬＶ−１、ＨＴＬＶ−２、ラウス肉腫ウイルス、ネコ白血病ウイルスおよびネコ免疫不全ウイルスからなる群から選ばれるレトロウイルスの阻害剤である、請求項１の方法。
【請求項１４】
該患者は、ヒト、サルまたはネコである、請求項１の方法。
【請求項１】
患者に投与するための第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤を選択する方法であって、
（ａ）レトロウイルスの増殖培養物を第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に曝し、次いで
（ｂ）工程（ａ）の後に出現するレトロウイルス株に対する、一つもしくはそれ以上のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤の該レトロウイルス抑制活性を測定する工程を含む方法であって、
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、該レトロウイルス株に対する効果に基づいて選択される、上記方法。
【請求項２】
第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、両者ともＨＩＶプロテアーゼ阻害剤である、請求項１の方法。
【請求項３】
第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、ＨＩＶ−１プロテアーゼ阻害剤またはＨＩＶ−２プロテアーゼ阻害剤である、請求項３の方法。
【請求項４】
該レトロウイルス株は、Ｇ４８Ｖ、Ｖ８２Ａ、Ｌ９０Ｓ、Ｉ５４Ｔ、Ｇ４８Ｍ、Ｑ６１Ｈ、Ｖ１３Ｉ、Ｆ５３Ｌ、Ｃ９５Ｙ、Ｇ１７Ｅ、Ｎ３７Ｄ、Ｎ８８Ｄ、Ｌ６３Ｐ、Ｎ８８Ｓ、Ｇ７３Ｍ、Ｍ４６Ｉ、Ａ７１Ｖ、Ｑ９２Ｒ、Ｄ２５Ｎ、Ｔ２６Ａ、Ｄ３０Ｎ、Ｄ３７Ｎ、Ｒ４１Ｋ、Ｇ７３Ｄ、Ｒ８７Ｋ、Ｉ８４Ｖ、Ｒ８Ｑ、Ｖ８２Ｆ、Ｉ８４Ａ、Ｖ３２Ｉ、Ｖ８２Ｉ、Ｒ８ＫおよびＬ９０Ｍよりなる群から選ばれる少なくとも一つの変異を有するＨＩＶ−１変異体である、請求項３の方法。
【請求項５】
工程（ａ）は、一連の抑制濃度の該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤の存在下でのＨＩＶ−１レトロウイルスの増殖培養物の一連の成長物を含む、請求項３の方法。
【請求項６】
工程（ａ）はｉｎ ｖｉｔｒｏで行う、請求項１の方法。
【請求項７】
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤が有効な該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して中レベルの耐性を有し、該レトロウイルス株が、コントロールウイルスに比べて約１０倍から約１００倍高いＥＣ５０値を有する、請求項１の方法。
【請求項８】
該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤が有効な該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して高レベルの耐性を有し、該レトロウイルス株が、コントロールウイルスに比べて約１００倍高いＥＣ５０値を有する、請求項１の方法。
【請求項９】
該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、第二のレトロウイルス株は、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、各々のレトロウイルス株が、プロテアーゼペプチド配列中に少なくとも１個のアミノ酸置換を有するレトロウイルスプロテアーゼをつくり出し、そしてこの置換がプロテアーゼの同じ基質結合部位領域に影響を及ぼし、観察された阻害剤耐性に寄与する、請求項１の方法。
【請求項１０】
該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有するレトロウイルス株は、該第一および第二の阻害剤をレトロウイルス増殖培養物に曝して６週間後には、観察されない、請求項１の方法。
【請求項１１】
該レトロウイルス株は、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対しては上昇した感受性を有する、請求項１の方法。
【請求項１２】
第二のレトロウイルス株は、該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対して耐性を有し、該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤に対しては上昇した感受性を有する、請求項１１の方法。
【請求項１３】
該第一のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤および該第二のレトロウイルスプロテアーゼ阻害剤は、ＶＩＳＮＡ、ＳＩＶ、ＨＴＬＶ−１、ＨＴＬＶ−２、ラウス肉腫ウイルス、ネコ白血病ウイルスおよびネコ免疫不全ウイルスからなる群から選ばれるレトロウイルスの阻害剤である、請求項１の方法。
【請求項１４】
該患者は、ヒト、サルまたはネコである、請求項１の方法。
【公開番号】特開２００７−２０５７６（Ｐ２００７−２０５７６Ａ）
【公開日】平成１９年２月１日（２００７．２．１）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００６−２４２２２５（Ｐ２００６−２４２２２５）
【出願日】平成１８年９月７日（２００６．９．７）
【分割の表示】特願平８−５０１０５７の分割
【原出願日】平成７年６月２日（１９９５．６．２）
【出願人】（５９０００３３７５）ジー．ディー．サール アンド カンパニー (1)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成１９年２月１日（２００７．２．１）
【国際特許分類】
【出願日】平成１８年９月７日（２００６．９．７）
【分割の表示】特願平８−５０１０５７の分割
【原出願日】平成７年６月２日（１９９５．６．２）
【出願人】（５９０００３３７５）ジー．ディー．サール アンド カンパニー (1)
【Ｆターム（参考）】
[ Back to top ]